Ультраструктурное исследование гаметогенеза камбал Hippoglossoides Dubius и Hippoglossoides (Cleisthenes) Herzensteini в связи с проблемой их систематического положения тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.10, кандидат биологических наук Незнанова, Светлана Юрьевна

• Незнанова, Светлана Юрьевна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Незнанова, Светлана Юрьевна

ВВЕДЕНИЕ 4 ^

ГЛАВА 1. КРАТКИЙ ОБЗОР БИОЛОГИИ И МОРФОЛОГИИ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ РОДА HIPPOGLOSSOIDES.

СИСТЕМАТИЧЕСКОЕ ПОЛОЖЕНИЕ ВИДОВ РОДА

ГЛАВА 2. ОБЩЕЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЕ О ГАМЕТОГЕНЕЗЕ КОСТИСТЫХ

2.1. Использование особенностей формирования и строения гамет в таксономии костистых рыб

2.2. Сперматогенез

2.3. Оогенез 26 ф

ГЛАВА 3. КРАТКАЯ ФИЗИКО-ГЕОГРАФИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА

РАЙОНА ИССЛЕДОВАНИЯ ч

ГЛАВА 4. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ j 4.1. Гистологическое исследование

4.2. Электронно-микроскопическое исследование

4.3. Морфометрическое исследование

ГЛАВА 5. СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ СПЕРМАТОГЕНЕЗА

5.1. Сперматогонии и сперматоциты

5.2. Сперматиды

5.3. Спермии

5.4. Вспомогательные клетки

5.5. Резорбция спермиев

ГЛАВА 6. СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ООГЕНЕЗА

6.1. Превителлогенез

6.2. Вителлогенез

6.3. Строение оболочек ооцитов f

ГЛАВА 7. ОБСУЖДЕНИЕ

7.1. Сравнительный анализ фолликулярных клеток в семенниках

7.2. Сравненый анализ особенностей сперматогенеза

7.3. Сравнительный анализ резорбции сперматозоидов в семенниках

7.4. Сравнительный анализ особенностей ооцитов и яйцевых оболочек ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Ультраструктурное исследование гаметогенеза камбал Hippoglossoides Dubius и Hippoglossoides (Cleisthenes) Herzensteini в связи с проблемой их систематического положения»

Современный уровень филогенетических исследований в значительной степени сопряжен с применением методов молекулярного анализа, которые привлекают ограниченный объем генетической информации и поэтому не обладают репрезентативностью, достаточной для построения полноценных филогенетических моделей. В соответствии со сформировавшимся мнением многих исследователей наиболее объективным методом современной кладистики является совместное использование нескольких типов филогенетических признаков. Анализ генетического материала - наиболее перспективный метод, должен дополняться привлечением данных, полученных на анатомическом и цитологическом уровнях (Гладышев, Дроздов, 2002).

К настоящему времени выяснено, что для суждения о родственных отношениях, филогении и систематике организмов актуально использование строения половых клеток (Иванков, 1987; Дроздов, Ивапков, 2000). Как правило, для сравнительного анализа используется строение зрелых гамет яйцеклеток и сперматозоидов. В последние годы в научной литературе появились данные, согласно которым для таксономического анализа могут привлекаться как оогенные, так и сиерматогеиные клетки, находящиеся на разных фазах роста и этапах дифференциации. Однако, большая часть исследований в этой области выполнена на гистологическом уровне, возможности которого широки, но ие обладают аналитической полнотой ультраструктурного анализа. В данной диссертационной работе впервые продемонстрированы возможности электронной микроскопии, как метода, с помощью которого при исследовании гаметогенеза выявляется целый ряд дополнительных признаков, пригодных для выяснения степени филогенетического родства. Впервые на повой основе изучены некоторые аспекты оогенеза и сперматогенеза двух видов камбаловых рыб, степень филогенетической близости которых является предметом дискуссий. Среди этих аспектов рассматриваются ультраструктурпая организация вспомогательных клеток, ультраструктурные особенности формирования желтка и оболочек 4 ооцитов, особенности сперматогенеза и резорбции спермиев. Благодаря ультраструктурпому анализу, проведенному в настоящей работе, стало очевидным, что различия могут быть обнаружены не только в строении половых и вспомогательных клеток, но и в механизмах их формирования и функционирования. Сравнительный электронно-микроскопический анализ ультратопких процессов гаметогеиеза может быть рекомендован к использованию как новый дополнительный эффективный метод при решении таксономических задач в ихтиологии. Таким образом, впервые в ихтиологической практике на защиту выносится филогенетически направленный подход сравнительного анализа ультраструктурных механизмов гаметогеиеза.

Цель работы: Продемонстрировать возможность применения сравнительного анализа ультраструктурных особенностей гаметогеиеза для выяснения таксопомичесмкой близости видов па примере камбаловых рыб Н. (Hippoglossodes) dubins и H.(Cleisthenes) herzensteini.

Для осуществления данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать ультраструктурную организацию мужских и женских половых клеток япопоморской палтусовидпой Н. (Hippoglossodes) dubius и остроголовой H.(Cleisthenes) herzensteini камбал;

2. На ультраструктуриом уровне исследовать механизмы резорбции сперматозоидов у япопоморской палтусовидпой и остроголовой камбал.

3. Провести сравнительный ультраструктурпый анализ сперматогенеза, оогенеза и вспомогательных клеток япопоморской палтусовидпой Н. (Hippoglossodes) dubius и остроголовой Н. (Cleisthenes) herzensteini камбал.

Научная новизна работы. Впервые в ихтиологической практике для сравнительного анализа привлечены особенности ультраструктурных механизмов гаметогеиеза. Впервые на ультраструктуриом уровне изучен процесс сперматогенеза и оогенеза двух видов камбал - япопоморской палтусовидной Я. (Hippoglossodes) dubius и остроголовой Н. (Cleisthenes) herzensteini. Также впервые изучены процессы посленерестовой резорбции мужских половых гамет у Н. {Hippoglossodes) dubius и Н. (Cleisthenes) herzensteini.

Теоретическое и практическое значение работы.

Предложенный способ анализа ультраструктурной организации и дифференциации мужских и женских половых клеток в перспективе позволит корректировать и уточнять схемы таксономической иерархии рыб и выяснять родственные отношения между филогенетическими группами и видами.

Апробация работы.

Материалы были представлены на IV, VI и VII Региональных конференциях по актуальным проблемам морской биологии, экологии и биотехнологии (Владивосток, 2001, 2003, 2004), на Международном симпозиуме по проблемам мейоза (Санкт-Петербург, 2003), на ежегодной конференции ИБМ ДВО РАН 2005 г. Публикации.

По теме диссертации опубликовано 11 научных работ. Структура и объем работы.

Диссертация состоит из введения, 7 глав, выводов, списка литературы (292 источника, из которых 186 на иностранном языке), проиллюстрирована 1 графиком, 5 схемами, 4 таблицами, 16 микрофотографиями и 84 электронограммами. Общий объем работы 116 страниц Благодарности.

Заключение диссертации по теме «Ихтиология», Незнанова, Светлана Юрьевна

выводы

1. Метод ультраструктурного анализа дифференциации гамет показал, что для исследованных видов камбал характерно определенное строение и функционирование половых клеток, структурные характеристики которых можно использовать в таксономии для характеристики таксонов. Дальнейшее развитие данного метода представляется перспективным.

2. Отмечены существенные различия в ультраструктурных особенностях спермиогенеза. У остроголовой камбалы в фазах морфогенеза сперматид участвуют микротрубочки, и происходит формирование акросомоподобной везикулы, чего не наблюдается в сперматидах япономорской палтусовидной камбалы. Изученные виды отличаются формой головки спермия и строением центриолярпого аппарата.

3. Фолликулярные клетки, участвующие в гаметогенезе исследованных камбал, отличаются формой и размерами. Для япономорской палтусовидной камбалы характерны фолликулярные клетки округлой формы и крупного размера, у остроголовой камбалы они небольшие и уплощенной формы.

4. В процессе резорбции спермиев обоих видов впервые обнаружено внеклеточное функционирование мембранных фрагментов, «обматывающих» структуры, подлежащие резорбции. Однако у япономорской палтусовидной камбалы в мембранные конгломераты заключаются сперматозоиды, тогда как у остроголовой камбалы упаковке подвергаются фрагменты автолизированных гамет. Резорбция упакованных сперматозоидов у палтусовидной камбалы происходит в фолликулярных клетках, а у остроголовой камбалы фолликулярные клетки не участвуют в утилизации остаточных тел.

5. В процессе оогенеза отмечены различия в способах образования желточных гранул в период вителлогенеза. У япономорской палтусовидной камбалы в формировании желточных гранул принимают участие митохондрии, чего не отмечено у остроголовой камбалы. Ооциты палтусовидной и остроголовой камбал различаются размерами, степенью изменчивости и размерами вакуолей, желточных зерен и глобул.

6. Обнаружено различие в строении оболочек яйцеклеток. В период позднего вителлогенеза оболочка ооцита япономорской палтусовидной камбалы становится трехслойной, у остроголовой остается однослойной.

7. Существенные различия, отмеченные при исследовании оогенеза и сперматогенеза дополняют перечень критериев, на основании которых близкое родство япономорской палтусовидной и остроголовой камбал подвергается сомнению и показывает необходимость пересмотра принадлежности остроголовой камбалы к роду Hippoglossoides и выведения рода Cleisthenes (остроголовые камбалы) в самостоятельный таксон.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Незнанова, Светлана Юрьевна, 2006 год

1. Андреев В.Л., Иванков В.Н. Опыт применения математических методов при анализе данных о строении яйцеклеток рыб для целей таксономии // Ж. Общ. биол. 1981. Т. 42. №1. С. 147-155.

2. Андрияшев А.П. К познанию ихтиофауны Берингова и Чукотского морей // Исслед. морей СССР. 1937. Вып. 25. с. 292-355.

3. Андрияшев А.П. Рыбы северных морей СССР. М.- Л. 1954. 556 с.

4. Алексеев Ф.Е., Алексеева Е.И. Определение стадий зрелости гонад и изучение половых циклов, плодовитости, продукции икры и темпа полового созревания у морских промысловых рыб // Труды АтлантНИРО. Калининград. 1996. 72 с.

5. Беляева В.Н., Черфас Н.Б. О процессах созревания и оплодотворения в яйцеклетках вьюна (Misgurnus fossilis L.) // Вопр. ихтиологии. 1965. Т. 5. С. 82-90.

6. Бирюлин Г.М., Бирюлина М.Г., Микулич Л.В., Якунин Л.П. Летние модификации вод залива Петра Великого // Тр. ДВНИГМИ. 1970. Вып. 30. С. 286-299.

7. Вдовин А.Н., Зуенко Ю.И. Вертикальная зональность и экологические группировки рыб залива Петра Великого // Изв. ТИНРО-центра. 1997. Т. 122. С. 152-176.

8. Гладышев Е.А., Дроздов А.Л. Современный филогенетический анализ * // Вестник ДВО РАН. 2002. № 4. Вып. 104. С. 62-74.

9. Гинзбург А.С. Оплодотворение рыб и проблема полиспермии. М.: Наука. 1968. 358 с.

10. Детлаф Т.А. Кортикальные гранулы и вещества, выделяющиеся из анимальной части яйца в период активизации у осетровых рыб // Докл. АН СССР. 1957. Т. 116. №2. С. 341-344.

11. Детлаф Т.А., Гинзбург А.С. Зародышевое развитие осетровых рыб (севрюги, осетра и белуги) в связи с вопросами их разведения // М.: АН ф СССР. 1954.216 с.

12. Дехник Т.В. Особенности строения, развития и экологии пелагических икринок и личинок рыб Черного моря // Биол. моря. 1971. Вып. 25. С. 3-28.

13. Дроздов A.JI, Колотухина Н.К., Максимович А.А. Особенности гистологического строения семенников и ультраструктура сперматозоидов горбуши // Биология моря. 1981. №1. С. 49-53.

14. Дроздов А.Л., Иванков В.Н. Морфология гамет животных. Значение для систематики и филогенетики // М.: Круглый год. 2000. 460 с.

15. Дружинин А. Д. Материалы о камбалах залива Анива // Изв. ТИНРО. 1954. Т. 41. С. 343-347.

16. Емельянова Н.Г. Ультраструктура оогониев и ооцитов у белого толстолобика// Онтогенез. 1979. Т. 10. №2. С. 145-151.

17. Животные и растения залива Петра Великого. Л: Изд-во «Наука». 1976.363 с.

18. Заленский В.В. История развития стерляди (Acipenser rutenus). Ч. 1. Эмбриональное развитие // Тр. об-ва естествоисп. при Казанском ун-те. 1878. Т.7. №3. С. 1-226.

19. Зотин А.И. Строение, свойства и значение яйцевых оболочек зародышей осетровых и лососевых рыб // Автореф. дис. . канд. биол. наук. М.: Ин-т морфол. жив. им. А.Н. Северцова АН СССР. 1953. 22 с.

20. Зуенко Ю.И. Типы термической стратификации вод на шельфе Приморья // Комплексные исследования морских гидробионтов и условий их обитания. Владивосток: ТИНРО. 1994. С. 20-39.

21. Иванков В.Н. Особенности морфологии оогенеза у рыб различных систематических групп. // Биол. рыб Дальнего Востока. Владивосток. 1976. С. 21-33.

22. Иванков В.Н. Значение исследования оогенеза для систематики рыб. // Вопр. раннего онтогенеза рыб. Киев: Наукова думка. 1978. С. 8-9.

23. Иванков В.Н. Строение яйцеклеток и систематика рыб. Владивосток. Изд-во Дальневост. ун-та. 1987. 160 с.

24. Иванков В.Н. Репродуктивная биология рыб. Владивосток: Изд-во Дальневост. ун-та. 2001. 224 с.

25. Иванков В.Н., Иванкова З.Г., Волкова Т.Д. Типы икрометания и сроки нереста камбал залива Петра Великого // Учен. зап. ДВГУ. 1972. Т. 60. С. 4961.

26. Иванков В.Н., Курдяева В.П. Систематические различия и экологическое значение строения оболочек яйцеклеток рыб // Вопр. ихтиологии. 1973. Т. 13. вып. 6. С. 1035-1045.

27. Иванков В.Н., Иванкова 3. Г. Плодовитость камбал северо-западной части Японского моря // Вопр. ихтиологии. 1974. Т. 14. Вып. 6. С. 1004-1013.

28. Иванков В.Н., Иванкова З.Г. Анализ закономерностей овогенеза и половых циклов камбал залива Петра Великого // Биологич. ресурсы морей Дальнего Востока. Владивосток. 1975. С. 40-42.

29. Иванов М.Ф. Яйцевые оболочки рыб, их сравнительная морфология и экологическое значение // Вестн. ЛГУ. 1956. №21. Сер. биол. Вып. 4. С. 7990.

30. Иванов М.Ф. Развитие студенистой оболочки яйцевых клеток некоторых рыб // Вестн. ЛГУ. 1958. №21. Сер. биол. Вып. 4. С. 57-62.

31. Иевлева М.Я. Гистологическое строение гонад лососей в период морских миграций // Лососевое хоз-во Дальнего Востока. М.: Наука. 1964. С. 127-141.

32. Исаева В.В, Реунов А.А. Половая плазма и детерминация линии половых клеток: роль митохондрий // Биол. моря. 2001. № 4. С. 231-237.

33. Казанский Б.Н. Особенности функции яичника и гипофиза у рыб с порционным икрометанием // Тр. Лаборат. Основ. Рыбоводства. 1949. Ч. 2. С. 23-45.

34. Казанский Б.Н. Оогенез и адаптация, связанные с размножением у рыб //Автореф. дис. докт. биол. наук. Л.: ЛГУ. 1956. 46 с.

35. Калинина Э.М., Салехова Л.П. Определитель демерсальной икры рыб Черного моря //Биол. моря. Киев: Наукова думка. 1971. Вып. 25. С. 29-46.

36. Касьянов В.Л., Медведева Л.А., Яковлев С.Н., Яковлев Ю.М. Размножение иглокожих и двустворчатых моллюсков. М.: Наука. 1980. 195с.

37. Кауфман З.С. Эмбриология рыб. М., АГРОПРОМИЗДАТ. 1990.

38. Кулаев С.И. Наблюдение за изменением семенников речного окуня (Perca fluviatilis) в течение годового цикла // Русс. зоол. журн. 1927. Т. 7. С. 15-53.

39. Коваль Е.З, Богданов Л.В. Биохимический полиморфизм девяти видов камбал подсем. Pleuronectidae в заливе Петра Великого // Биохимическая и популяционная генетика рыб. Л.: изд. Ин-та цитологии АН СССР. 1979. С. 99-105.

40. Коваль Е.З, Богданов Л.В. Сравнение электрофоретических спектров белков у разных видов дальневосточных камбал (Pleuronecti formes, Pleuronectidae) //Вопр. ихтиологии. 1982. Т. 22. Вып. 4. С. 679-685.

41. Ластовецкий Е.И. Климатические особенности омывающих • морей // Климат Владивостока. Л.: Гидрометеоиздат. 1978. С. 159-162.

42. Ластовецкий Е.И., Якунин Л.П. Гидрометеорологическая характеристика Дальневосточного государственного морского заповедника // Цветковые растения островов Дальневосточного морского заповедника. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1981. С. 18-33.

43. Линдберг Г.У. Список фауны морских вод Южного Сахалина и южных Курильских островов // Исслед. дальневост. морей СССР. 1959. Т. 6. С. 173256.

44. Линдберг Г.У., Федоров В.В. Рыбы Японского моря и сопредельных частей Охотского и Желтого морей". // Часть 6. Teleostomi. Osteichthyes. Actinopterygii. XXXI. Pleuronecti formes. СПб.: Наука. 1993. 272 с.

45. Лоция Японского моря. Л.: МО СССР, гл. упр. гидр. служ. ВМФ. 1960. Ч. 1.260 с.

46. Макеева А.П. Особенности образования клейкой оболочки икринок у лжепескаря Pseudogobio rivularis (Bas) // Вопр. ихтиологии. 1976. Т. 16. №2. С. 377-382.

47. Макеева А.П. Эмбриология рыб. М.: Изд-во МГУ. 1992. 216 с. Макеева А.П., Сагитов Н.И. Материалы по гаметогенезу и размножению большого амударьинского лопатоноса // Биологич. основы равития осетрового хоз-ва в водоемах СССР. М.: Наука. 1979. С. 155-169.

48. Максимович А.А. Эволюционная физиология размножения рыб. Владивосток. Изд-во Дальневост. ун-та. 2002. 140 с.

49. Мануйлов В.А. Подводные ландшафты залива Петра Великого. Владивосток: ДВГУ. 1990. 168 с.

50. Микодина Е.В. Микроструктура яйцевых оболочек костистых рыб разных экологических групп // Автореф. дис. . канд. биол. наук. М.: МГУ. 1979.23 с.

51. Микулич Л.В. Питание камбал у берегов южного Сахалина и Южных Курильских островов // Изв. ТИНРО. 1954. Т. 39. С. 135-235.

52. Моисеев П. А. Промысловые камбалы Дальнего Востока. Владивосток.: Примиздат. 1946. 60 с.

53. Моисеев П.А. Треска и камбалы дальневосточных морей // Изв. Тихоокеанск. н.-и. ин-та морск. рыбн. хоз-ва. и океанограф. 1953. Т.П. С. 119-265.

54. Никитин А.А., Дьяков Б.С. Структура фронтов и вихрей в западной части Японского моря // Изв. ТИНРО. 1998. Т. 124. Ч. 2. С. 714-733.

55. Озернюк Н.Д., Пальмбах JI.P. Связь между митохондриями и эндоплазматическим ретикулумом в ооцитах вьюна Misgurnus fossilis L. // Онтогенез. 1974. Т. 5. №4. С. 404-407.

56. Овен JI.C. Половые циклы и характер икрометания черноморских рыб // Размножение и экология массовых рыб Черного моря на ранних стадиях онтогенеза. Киев: Наук, думка. 1970. С. 29-36.

57. Орбов В.В. Гидродинамика донных ландшафтов шельфа южного Приморья // Донные ландшафты Японского моря. Владивосток: ДВО АН СССР. 1987. С. 95-113.

58. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб. М.: Наука. 1966. 376 с.

59. Перцева-Остроумова Т.А. Размножение и развитие дальневосточных камбал. М.: Из-во АН СССР. 1961. 484 с.

60. Подорванова Н.Ф., Ивашинникова Т.С., Петренко B.C., Хомичук JI.C. Основные черты гидрохимии залива Петра Великого (Японское море). Владивосток: ДВО АН СССР. 1989. 201 с.

61. Преображенский Б.В., Жариков В.В., Дубейковский JI.B. Основы подводного ландшафтоведения. Владивосток: Дальнаука. 2000. 360 с.

62. Равен X. Оогенез // М.: Мир. 1964. 287 с.

63. Райкова Е.В. Ультраструктура ооцитов осетровых рыб в период превителогенеза. I. Ультраструктура цитоплазмы // Цитология. 1973. Т. 15. №11. С. 1352-1361.

64. Расс Т.С. О типах строения икринок и их значения для классификации рыб // Докл. АН СССР. 1936. Т. 2(11). №7 (93). С. 299-302.

65. Расс Т.С. Состав ихтиофауны Баренцова моря и систематические признаки икринок и личинок рыб этого водоема // Тр. Всес. н.-и. ин-та морск. хоз. и океанограф. 1949. Т. 18. С. 264-356.

66. Расс Т.С. Значение строения икринок и личинок для систематики рыб // Очерки по общим вопр. ихтиологии. М. JL: АН СССР. 1953. С. 183-198.

67. Расе Т.С. Систематика плавучих икринок и личинок морских рыб (ихтиопланктона) // Бюлл. Моск. об-ва испыт. природы, отд. биол. 1972а. Т. 77. №5. С. 5-18.

68. Расс Т.С. К познанию ихтиопланктона морских вод Кубы. Плавучие икринки // Тр. ин-та океанол. АН СССР. 19726. Т. 93. С. 5-41.

69. Расс Т.С. О таксономии малоротых камбал. // Вопр. ихтиологии. 1996. Т.36. Вып.4. С. 569-571.

70. Реунов А.А. Акросомоподобная везикула в спермиогенезе гидромедузы Gonionemus vertens II Доклады Академии наук. 1998. Т. 359. №1. С. 128-129.

71. Реунов А.А. Сперматогенез многоклеточных животных // М.: Наука. 2005. 123 с.

72. Реунов А.А., Александрова Я.Н. Ультраструктурные параметры герминативных и желточных гранул в ооцитах и эмбриональных клетках голотурии Apostichopus japonicus. II Цитология. 2005. Т. 42. № 6. С. 634-712.

73. Решетников Ю.С. Специфика размножения тропических рыб // Особенности репродуктивных циклов рыб в водоемах различных широт. М., 1985. С. 12-34.

74. Рузен-Ранге Э. Сперматогенез у животных. М. Мир. 1980. 255с.

75. Садов И.А. Строение и формирование оболочек яиц осетровых и некоторых представителей костистых рыб // Тр. ин-та морфол. животных им. Северцова. 1963. вып. 38. С. 110-188.

76. Сакун О.Ф. Половые клетки и функция половых желез у сырти (Vimba vimba L.) в норме и при нарушении условий размножения // Автореф. дис. канд. биол. наук. JL: 1959. 22 с.

77. Сакун О.Ф. Химическая природа и значение включений в ооцитах костистых рыб // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1960. №1. С. 38-42.

78. Сакун О.Ф. Состояние нуклеополярного аппарата овоцитов костистых рыб в период, предшествующий мейотическим делениям // Докл. АН СССР. 1961. Т. 137. №3. С. 749-751.

79. Сакун О.Ф., Буцкая Н.А. Определение стадий зрелости и изучение половых циклов рыб // М.: Рыбная промышленность. 1968. 36 с.

80. Соин С.Г. Приспособительные особенности развития рыб // М.: МГУ. 1968.176 с. i.

81. Соин С.Г., Унанян Ю.М. Особенности строения и адаптивное значение вторичной яйцевой оболочки корюшек // Докл. АН СССР. 1964. Tv. 154. №5. С. 267-367.

82. Солдатов В.К., Линдберг Г.У. Обзор рыб дальневосточных морей // Изв. ТИНРО. Т. 5. Вып. XLVIII. 1930. 576 с.

83. Таликина М.Г. Исследование генеративной функции яичников черноморской камбалы-калкана Scorththalmus maeoticus (Pallas) в связи с вопросами её разведения // Автореф. дис. канд. биол. наук. Л.: ЛГУ. 1978. 16 с.

84. Таранец А.Я. Краткий определитель рыб советского Дальнего Востока и прилежащих вод // Изв. Тихоокеанск. н.-и. ин-та морск. рыбн. хоз. и океанограф. 1937. Т.П. 200 с.

85. Фадеев Н.С. Списк камбал материковой отмели восточного побережья Южного Сахалина и их краткая биологическая характеристика // Вопр. ихтиологии. 1959. Вып. 13. С. 26-34.

86. Фадеев Н.С. Промысловые рыбы северной части Тихого океана // Владивосток. 1984.269 с.

87. Фадеев Н.С. Северотихоокеанские камбалы (распространение и биология) //М.: 1987. 175 с.

88. Федоров К.Е. Овогенез и половой цикл черного палтуса // Тр. Полярн. НИИ морск. рыбн. хоз-ва и океанографии. 1968. Вып. 23. С. 425-451

89. Хотимченко Ю.С., Деридович И.И., Мотавкин П.А. Биология размножения и регуляция гаметогенеза и нереста у иглокожих. М. Наука 1993. 170 с.

90. Чмилевский Д.А. Синтез ДНК в раннем оогенезе ерша // Цитология. 1970. Т. 12. №5. С. 675-678.

91. Чмилевский Д.А. Синтез РНК и развитие ядрышкового аппарата в оогенезе ерша // Цитология. 1971. Т. 13. №10. С. 1233-1241.

92. Чмилевский Д.А. Цитохимическое исследование ооцитов ерша (Acerina cernua L.) II Уч. зап. Дальневосточ. ун-ва. 1971а. Т. 15. Вып. 3. С. 61-66.

93. Чмилевский Д.А. Особенности синтеза белков и полисахаридов в развивающихся ооцитах ерша// Цитология. 1972. Т. 14. № 3. С. 277-283.

94. Чмилевский Д.А., Каменева Т.О. Оогенез мозамбикской тиляпии. I. Оогонии и ооциты ранней профазы меозы // Цитология. 2000. Т. 42. №9. С. 896-902.

95. Чмилевский Д.А., Каменева Т.О. Оогенез мозамбикской тиляпии. II. Синтез РНК и развитие ядрышкового аппарата // Цитология. 2001а. Т. 43. №2. С. 114-121.

96. Чмилевский Д.А., Каменева Т.О. Оогенез мозамбикской тиляпии. III. Морфология цитоплазмы ооцитов периода превителлогенеза // Цитология. 20016. Т. 43. №10. С. 926-933.

97. Чмилевский Д.А., Каменева Т.О. Оогенез мозамбикской тиляпии. IV. Образование желтка//Цитология. 2003. Т. 45. №1. С. 5-13.

98. Шкарина Т.В. Сперматогенез и половой цикл самцов азиатской и малоротой корюшек (Osmeridae). // Владивосток. ДВГУ. 1984. С. 79-85.

99. Шмидт П.Ю.) Schmidt P.J. Fishes of Japan, collected in 1901 // Tp. Тихоокеан. ком. АН СССР. М.: 1931а. №2. С. 1-176.

100. Шмидт П.Ю. Рыбы Охотского моря // Тр. Тихоокеан. ком. АН СССР. М.: Л. 1950. №6. С. 1-370.

101. Шулькин В.М. Биогеохимия донных ландшафтов прибрежной зоны северо-западной части Японского моря // Донные ландшафты Японского моря. Дальнаука. 1987. С.82-94.

102. Юрасов Г.И., Яричин В.Г. Течения Японского моря. Владивосток: ДВО АН СССР. 1991.176 с.

103. Adrianov A.V., Reunov А.А., Malaknov V.V. Fine morphology of the gonads and spermatogenesis features of White Sea priapulids Halicryptus spinulosus (Cephalorhyncha, Priapulida). // Zool. Zh. 1992. V. 71. P. 31-39.

104. Afzelius B.A. Fine structure of the garfish spermatozoon // J. Ultrastruct. Res. 1978. V. 64. P. 309-314.

105. Ahlstrom E.H., Amaoka K., Hensley D.A., Moser H.G., Sumida B.Y. Pleuronectiformes: Development // Ontogeny and systematics of fishes. Spec. Publ. Amer. Soc. Ichthyol. a. Herpetol. 1984. №1. P. 640-670.

106. Arruda L.M. Histological changes in the gonads of Trachurus trachurus (L.) thringh the annual cycle II Revista de Biologia. 1983. V. 12. P. 597-608.

107. Asahina K., Uemarsu K., Aida K. Structure of the testis of the Goby Glossogobius olivaceus II Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1983b. V. 49(10). P. 14931498.

108. Asahina K., Uemarsu K., Aida K. Relationship between the structures and steroidogenic functions of the testis of the Urohare-goby (Glossogobius olivaceus) II Gen. Сотр. Endocrin. 1985. V. 57. P. 281-292.

109. Asai Т. Fine structure of centriolar complex in spermiogenesis of the viviparous fish Lebistes reticulates II J. Nara. Med. Ass., 1971. V. 22. P. 371 -382.

110. Audy M.C. Etude ultrastructurale des cellules de Leydig et de Sertoli an cours du cycle sexual saisonnier de la fouine (Martes foina Erx) // Gen. and Сотр. Endocrinol. 1978. V. 36. P. 462-476.

111. Ballard W.W., Needham R.G. Normal embrionic stages of Polyodon spathula (Walbaum) // J. Morphol. 1964. L. 114. №3. P. 465-477.

112. Barr W.A. The endocrine control of the sexual, cycle in the paice, Pleuronectes platessa. III. The endocrine control of spermatogenesis // Gen. and Compar. Endocrinol. 1963. V. 3. P. 216-225.

113. Begovac, P. C., Wallace, R. A. Major vitelline envelope proteins in pipefish oocytes originate within the follicle and are associated with the Z3 layer // Journal of Experimental Zoology. 1989. V. 251. P. 56-73.

114. Billard R. La spermatogenese de Poecilia reticulata. IV. La spermitogenese: etude ultructurale//Ann. Biol. Anim. Bioch. Biophys. 1970. V. 10. P. 493-510.

115. Billard R. Spermiogenesis in the rainbow trout (Salmo gairdneri). II Cell Tissue Res. 1983. V. 233. P. 265-284.

116. Billard R. Spermatogenesis and spermatology of some teleost fish species // Reprod. Nutr. Dev. 1986. V. 26. P. 877-920.

117. Billard В., Flechon J. E. Spermatogones et spermatocytes flagelles chez Poecilia reticulata (Teleosteens Cyprinodontiformes) //Ann. Biol. Anim. Bioch. Biophys. 1969. V. 9. P. 281-286.

118. Billard R., Jalabert В., Breton B. Les cellules de Sertoli des poisons teleosteens//Ann. Bioch. Biophys. 1972. V. 12. P. 19-32.

119. Boeseman M. Some remarks on Raja nidarosiensis storm, including the first record of an EGG-capsula from British waters // Proc. Konikl. nederl. akad. wet. 1967. V. 70. №4. P. 454-465.

120. Boisson C., Mattei C., Mattei X. Troisieme note sur la spermiogenese de Protopterus annectens (Dipneuste) du Senegal // Bull. Inst. Fondam. Afr. Noire Ser. A. Sci. Nat. 1967.V. 29. P. 1097-1107.

121. Boisson С., Mattei X., Mattei C.L evolution de la chromatin etudee au microscope electronique dans les spermatides de quelgues Blenniidae (Poisson Teleosteens Perciformes) // J. Microscopie. 1968. V. 7. P. 22.

122. Boisson C., Mattei X., Mattei C. Mise en plase et evolution du complexe centriolaire au cours de la spermiogenese dlJpeneus prayensis С. V. (Poisson Mullidae) // J. Microscopie. 1969. V. 8 P. 103-112.

123. Breucker H. Macrophages, a normal component in seasonally involuting testes of the swan Cygnus olor И Cell Tiss. Res. 1978. V. 193. p. 463-471.

124. Brock I. Beitrage zur Anatomic und Histologic der Geschlechtsorgane der Knochenfische // Moprh. Ib. 1878. V. 4. 505 p.

125. Brusle S. Fine structure of early previtellogenic oocytes in Mugil (Liza) auratus Risso, 1810 (Teleostei, Mugilidae) // Cell Tissue. Res. 1980. V. 207. P. 123-134.

126. Brusle S. Ultrastructure of spermiogenesis in Liza aurata Risso 1810 (Teleostei, Mugilidae) // Cell Tissue Res. 1981. V. 217 P. 415-424.

127. Buckland-Nicks J., Chia F.S. Fine structure of Sertoli cells in three marine snails with a discussion on the functional morphology of Sertoli cells in general // Cell Tissue Res. 1986. V. 245. P. 305-313.

128. Carcupino M., Baldacci A., Corso G., Franzoi P., Pala M., Mazzini M. Testis structure and symplastic spermatid formation during spermatogenesis of pipefishes//Journal of Fish Biology. 1999. V. 55. P. 344—353.

129. Cavey M.J., Markel K. Echinoidea // F.W. Harrison (eds) Microscopic Anatomy of Invertebrates. Echinodermata. Wiley-Liss. Inc. 1994. V. 14. P. 345400.

130. Chan S.L., Tan C.H., Pang M.K., Lam T.J. Vitellogenin purification and development of assay for vitellogenin receptor in oocyte membrane of the tilapia (Oreochromis niloticus, L) // J. Exp. Zool. 1991. V. 257. P. 96-109.

131. Cheng Q.-T., Zhou C.-W. (eds.) The fishes of Shandong Province. Fishes Shandong. 1997. P. 1-549

132. Cherr G.N., Clark W.H. An acrosome reaction in sperm from the white sturgeon, Acipenser transmontanus II J. Exp. Zool. 1984. V. 232. P. 129-139.

133. Cooper J.A., Chapleau F. Monophyly and intrarelationships of the family Pleuronectidae (Pleuronectiformes), with a revised classification. // Fish. Bull. 1998.V. 94. №6. P. 686-726.

134. Clarke P.G.H. Developmental cell death: morphological diversity and multiple mechanisms // Anat. Embryol. 1990. V. 181. P. 195-213.

135. Clerot J.C. Les groupenments mitochondriaux des cellules germinales des poisons teleoteens cyprinids 1. Etude ultrastructurale // J. Ultrastruct. Res. 1976. V. 54. p. 461-475.

136. Dean B. Reminiscence of holoblastic cleavage in the egg of the shark, Heterodontus (Cestracion) japonicus Macleay // Annot. zool. jap. 1901. V. 4. Pt. 1. P. 35-41.

137. Dean B. Chimaeroid fishes and theei development // Cam. Inst. Washington Publ. 1906. V. 32. P. 1-194.

138. Droller M., Roth T.F. An electron microscope study of yolk formation during oogenesis in Lebistes reticulates II J. Cell Biol. V. 28. №2. P. 209-232.

139. Dudois.W., Callard G.V. Role of the Sertoli cell in spermatogenesis. The Squalus testis model // Fish Phys. Biochem. 1989. V. 7(1-4). P. 221-227.

140. Eggert B. Entwicklung und Ban der Eier von Salarias flavoumbrionus II Zool. Anz. 1929. V. 83. P. 241-253.

141. Eschmeyer W.H., Herald E.S. A field guide to Pacific coast fishes of North America from the Gulf of Alaska to Baja California // The Peterson Field Guide Ser. 1983. №28. V. XII. 336 p.

142. Evseenko S. A. Family Pleuronectidae Cuvier 1816 righteye flouders // Calif. Acad. Sci. Annotated Checkists of Fishes. 2004. V. 37. P. 37.

143. Franzen A. On spermatogenesis, morphology of the spermatozoon and biology of fertilization among in invertebrates // Zool. Bidr. Uppsala. 1956. V. 31. P. 355-482.

144. Fishelson L., Gibson R.N., Delarea Y. Ususual cell organelles during spermiogenesis in two species of gobies (Gobiidae, Teleostei) // Cell Tissue. Res. 1990. V. 262. P. 397-400.

145. Forrester C.R., Tsiyki H., Fuke S., Smith J.E., Schnute J. Flathead sole in the North Pacific // Jorn. Fish. Res. Bd. of Canada. 1977. V. 34. №4. P. 455-462.

146. Garcia-Diaz M.M., Lorente M.J., Gonzalez J.A., Tuset V.M. Comparative ultrastructure of spermatozoa of three marine teleosts of the genus Serranus: S. atricauda, S. cabrilla and S. scriba II J. Submicrosc. Cytol. Pathol. 1999. V. 31. P. 503-508.

147. Garcia-Diaz M.M., Lorente M.J., Gonzalez J.A., Tuset V.M. Morfology of the ovotestis of Serranus atricauda (Teleostei, Serranidae) // Aquat. Sci. 2002. V. 64. P. 87-96.

148. Greenwood P.H., Rosen D.E., Weitzman S.H., Myera G.S. Phyletic studies of theleostean fishes with a provisional classification of living form // Bull. Amer. Mus. Nat. Histor. 1966. V. 131. P. 339-456.

149. Gresik E.W., Quirk I.G., Hamilton I.B. Fine structure of the Sertoli cells of the testis of the teleost Oryzias latipes II Gen. Сотр. Endocrinol. 1973. V. 21. P. 341-352.

150. Grier H.J. Ultrastructure of the testis in the teleost Poecilia latipinna. Spermiogenesis with reference to the intercentriolar lamellated body // J. Ultrastruct. Res. 1973. V. 45. P. 82-92.

151. Grier H.J. Aspects of germinal cyst and sperm development in Poecilia latipinna (Teleostei: Poeciliidae) // J. Morph. 1975a. V. 146. P. 229-249.

152. Grier H.J. Spermiogenesis in the teleost Gambusia affinis with particular reference to the role played by microtubules // Cell Tissue Res. 1975. V. 165. P. 89-102.

153. Grier H.J. Sperm development in the teleost Oryzias latipes II Cell Tissue Res. 1976. V. 168. P. 419-431.

154. Grier H.J. Cellular organization of the testis and spermatogenesis in fish. // Amer. Zool. 1981. V. 21. P. 345-357.

155. Grier H.J., Linton J.R., Leatherland., De Vlaming V. I. Structural evidence for two different testicular types in teleost fishes // Am. J. Anat. 1980. V. 159. P. 331-345.

156. Grier H.J., Hurk R., Billard R., Cytological identification of cell types in the testis of Esox lucius and E. niger II Cell Tissue Res. 1989. V. 257. № 3. P. 491496.

157. Grronberg R., Telkka A. Juxtanuclear changes during the early spermatogenesis in Lebistes reticulates (Guppy) // Z. Zellforsch. 1968. V. 84. P. 342-349.

158. Grronberg R., Wartiovaara J. A freeze etching study of spermiogenesis in a fish (Lebistes reticulates) // J. Ultrastruct. Res. 1972. V. 38. P. 197.

159. Guan T.L., Afzelius B.A. The spermatozoon of the Chinese bitterling. Rhodeus sericeus sinensis (Cyprinidae Teleostei) // J. Submicrosc. Cytol. Pathol. 1991. V. 23. P. 351-356.

160. Guraya S.S. Recent advances in the morphology, histochemistry and biochemistry of the steroid synthesizing cellular sites in the: testis of nonmammalian Vertebrates // Intern. Rev. Cytol. 1976. V. 47. P. 99-137.

161. Hagenmaier H.E. The hatching process in fish embryos: III. The structure, polysaccharide and protein cychemistry of the chorion of the trout egg, Salmo gaidneri (Rich) // Acta histihim. 1973. V. 47. №1. P. 61-69.

162. Hamaguchi S. The structure of the germinal dense bodies (nuage) during differentiation of the male germ line of the teleost Oryzias latipes II Cell Tissue Res. 1987. V. 248. P. 375-380.

163. Hildenbrand S.F., Schaeder W.S. Fishers of chasepeake Bag // Bull. U. S. Bur. Fish. 1928. V. 43. 388 p.

164. Hikita T. Flatfishes found in Northern Japan // Bull. School. Fish. Hokkaido Imp. Univ. 1934. V. 4. P. 10-15; 127-139.

165. Hikita Т. The fishes from eastern waters and rivers of the Shiretoko Peninsula in Hokkaido, Japan // Sci. Rep. Hokkaido Salmon Hatch. 1981. №35. P. 57-88.

166. Hoar W.S. The gonads and reproduction // The physiology of fishes. Acad. Press. 1957. V. 1. P. 287-321.

167. Hodson A.N., Jamieson B.G.M. Spermatogenesis in the earthworm Microchaetus pentheri (Oligochaeta, Microchaetidae) // Zoomorphology. 1992. V. 112. P. 57-66.

168. Hodgson A.N., Reunov A.A. Ultrastructure of the spermatozoa and spermiogenesis of the brachiopods Discinsca tenuis (Inarticulata) and Kraussina rubra (Articulata)//Invert. Reprod. Develop. 1994. V. 25. P. 23-31.

169. Huang J-D., Lee M., Chang C. The morphology of gonadal tissue and male germ cells in the Protandrous Black Porgy, Acanthopagrus schlegeli II Zoological Studies. 2002. V. 41. №2. P. 216-227.

170. Hurk van den R. Steroido genesis in the gonads of rainbow trout of fry (Salmo gairdneri) before and after the oncet of gonadal sex differentiation // Reprod. Nutr. Dev. 1982. V. 22. P. 413-425.

171. Hurk van den R., Meek J., Peute J. Ultrastructural study of the testis of the black molly (Mollienisia Latipinna) I. The intratesticular efferent duct system // Endocrinology. 1974. V. 77. P. 5.

172. Jaana H., Yamamoto T.S. The ultrastructure of spermatozoa with a note on the formation of the acrosomal filament in the lamprey, Lampetra japonica. Jpn. // J. Ichthyol. 1981. V. 28. P. 135-147.

173. Jamieson B.G. M. Fish evolution and systematics: evidence from spermatozoa // Cambridge University Press. 1991. 510 p.

174. Jespersen A. Fine structure of the spermatozoon of the Australian lungfish Neoceratodus forsterill J. Ultrastruct. Res. 1971. V. 37. P. 178-185.

175. Jones P.R., Butler R.D. Spermiogenesis in Platichthys flesus II J. Ultrastruct. Molec. Struct. Res. 1988a. V. 98. P. 83-93.

176. Jones P.R., Butler R.D. Spermatozoon ultrastructure of Platichthys flesus II J. Ultrastruct. Molec. Struct. Res. 1988b. V. 98. P. 71-82.

177. J0rgensen C., Ltitsen J. Ultrastructure of the non-germinal cells in the testes of ascidians (Urochordata) and their role in the phagocytosis of sperm // Zoomorphology. 1997. V. 117. P. 103-113.

178. Kayba Т., Takeda N., Adachi S., Yamauchi K. Ultrastructure of the oocytes of the Japanese eel Anguilla japonica during artificially induced sexual maturation // Fish. Sci. 2001. V. 67. P. 870-879.

179. Kerr I.G. The external features in the development of Lepidosiren paradoxa, Fitz // Phil. Trans. Roy. Soc. Ser. B. 1900. V. 192. P. 299-330.

180. Kerr Y. В., Yrby D. C., Kretser D.M. Ultrastructural and hormonal studies of human Sertoli cells in normal, hypospermatogenetic and Sertoli cells only testes //J. Anat. 1980. V. 130. P. 207-215.

181. Kessel R.G., Beams H.W., Tung H.N., Roberts R. Unusual particle arrays in the plasma membrane of zebrafish spermatozoa // J. Ultrastruct. Res. 1983. V. 84. P. 268-274.

182. Kim I.-S., Youn C.-H. Taxonomic revision of the flounders (Pisces: Pleuronectidae) from Korea // Korean J. Ichthyol. 1994. V. 6 №2. P. 99-132.

183. Kjesbu O.S., Kryvi H. Oogenesis in cod, Gadus morhua L., studied by light and electron microscopy // J. Fish. Biol. 1989. V. 34. P. 735-746.

184. Majno G., Joris I. Apoptosis, oncosis and necrosis. An overview of cell death // Am. J. Pathol. 1995. V. 146. V. 3-15.

185. Mattei X. Spermiogenese comparee des poisson. In: "Comparative spermatology". Baccetti B. // Academic Press. New York., London. 1970. P. 5769.

186. Mattei X. The flagellar apparatus of spermatozoa in fish. Ultrastructure and evolution // Biology of the Cell. 1988. V. 63. P. 151-158.

187. Mattei X., Boisson C. Le complexe centriolaire du spermatozoide de Lebistes reticulates IIC. R. Acad Sci. Paris. 1966. V. 262. P. 2620-2622.

188. Mattei X., Mattei C., Boisson C. L'extremite flagellaire du spermatozoide de Lebistes reticulates (Poeciliidae) // C. R. Soc. Biol. 1967. V. 161. P. 884-887.

189. Mattei C., Mattei X. La spermiogenese d Albula vulpes (L 1758) (Poisson Albulidae). Etude ultrastructurale // Z. Zellforsch. 1973. V. 142. P. 171-192.

190. Mattei C., Mattei X. Ultrastructure du canal cytoplasmique des spermatozoids de Teleoteens illustree par l'etude de la spermiogenese de Trichurus lepturus И J. Microscope Biol. Cell. 1976. V. 25. P. 249-258.

191. Mattei C., Mattei X. La spermiogenese d'un poisson Teleoteen (Lepadogaster lepadogaster) 1. La spermatide // Biol. Cellulaire. 1978. V. 32. P. 257-266.

192. Mattei C., Mattei X. Spermatozoids biflagelles chez un poisson teleosteen de la famille des Apogonidae//J. Ultrastruct. Res. 1984. V. 88. P. 223-228.

193. Mattei X., Thiam D., Thiam О. T. Le spermatozoide de Ophidion sp. (Poisson Teleosteen). Particularites ultrastructurales de flagella // J. Ultrastruct. Molec. Struct. Res. 1989. V. 102. P. 162-169.

194. Matsuyama M., Nagahama Y., Matsuura S. Observations on ovarion follicle ultrustructure in the marine teleost, Pargus major, during vitellogenesis and oocyte maturation// Aquaculture. 1991. V. 92. P. 67-82.

195. Medina A., Megina C., Abascal F.J., Calzada A. The sperm ultrastructure of Merluccius merluccius (Teleostei, Gadiformes): Phylogenetic considerations // Acta zool. 2003. V. 84. P. 131-137.

196. Minami T. Predations on the young flatfish in the Japan Sea // Bull. Jap. Sea Reg. Fish. Res. Lab. 1986. №36. P. 39-47.

197. Mori Т. Check list of the fishes of Korea // Mem/ Hyogo Univ. Agri. 1952. V. 1. №3. P. 1-228.

198. Morisawa S. Fine structure of spermatozoa of the hagflsh Eptatretus burgeri (Agnatha)//Biol. Bull. 1995. V. 189. P. 6-12.

199. Munoz M., Sabat M., Mallol S., Casadevall M Gonadal structure and gametogenesis of Trigla lyra (Pisces: Triglidae) // Zoological Studies. 2002. V. 41. №4. P. 412-420.

200. Nagahama Y., Clarke W.C., Hoar W.S. Ultrastructure of putative steroid-producing cells in the gonads of coho (Oncorhynchus kisutch) and pink salmon {Oncorhynchus gorbuscha) // Can. J. Zool. 1978. V. 56. P. 2508-2519.

201. Nagahama Y.H., Kagawa, Young G. Cellular souces of sex steroids in teleost gonads // Can. J. Fish Aquat. Sci. 1982. V. 39. P. 59-64.

202. Najada M.R. A note on the eggs and early embryonae development of Cyplisirus//Madras Fish. Bull. 1922. №15. P. 109-112.

203. Nelson G.J. Oring and diversification of teleostean fishes // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1969. V. 167. №1. P. 18-30.

204. Nelson J.S. Fishes of the World. Second Edition // N. Y.: J. Wiley and Sons. 1984. 523 p.

205. Nicholls T.Y., Graham G.P. The ultrastructure of lobule boundary cells and Leiding cells homologs in testis of a cichlid fish Cichlasoma nigrofasciatum // Gen. Сотр. Endocrinol. 1972. V. 19. P. 133-146.

206. Nielson J.G. Pleuronectidae // Fishes of the north-eastern Atlantic and the Mediterranean. UNESCO. Paris. 1986. V. III. P. 1299-1317.

207. Norman J.R. A systematic monograh of the flatfish (Heterosomata). 1. Psettodidae, Bothidae, Pleuronectidae // Brit. Mus. Nat. London, I-VIII 1934. 460 p.

208. Norman J.R., Wilimowsky List of the Fishes of Alaska // Stanford Ichtyol. Bull. 1954. V. 4. №5. P. 242-289.

209. Okada Y. Fishes of Japan. Ill ustrations and descriptions of Fishes of Japan // Tokyo. 1955. 434 p.

210. Opreshko L., Wiley H.S., Wallace R.A. Differential postendocytotic compartmentation in Xenopus oocytes as mediated by specifically bound ligand // Cell. 1980. V.22. P. 47-57.

211. Osanai K., Sato R., Hirai S. On the maturation of the oocytes in the chum-salmons homing to the parent river // Bull. Japan. Soc. Sci. Fish. 1972. V. 38. P. 1247-1251.

212. Pecio A., Rafinski J. Spermiogenesis in Mimagoniates barberi (Teleostei: Ostariophysi: Characidae), an oviparous, internally fertilizing fish // Acta Zoologica (Stockholm). 1999. V. 80. P. 35 45.

213. Poirier G.R., Nicholson N. Fine structure of the testicular spermatozoa from the channel catfish Ictalurus punctatus I I J. Ultrastruct. Res. 1982. V. 80. P. 104110.

214. Purket C.A. Reproduction and early development of the paddlefish // Trans. Am. Fisharies Soc. 1961. V. 90. №2. P. 125-129.

215. Quagio-Grassiotto I., Guimarres A.C.D. Follicular epithelium, theca and egg envelope formation in Serrasalmus spilopleura (Teleostei, Characiformes, Characidae)//Acta Zoologica. (Stockholm). 2003. V. 84. P. 121-129.

216. Rastogi R.K. Seminal vesicles and sperm duct of an Indian catfish, Mystus tengara (Ham) with particular reference to their seasonal cycle //Acta anat. 1969. V. 72. №4. P. 624-639.

217. Ressel R. Electron microscope and radioautographic studies on protein yolk formation in oocytes-follicle cell complex of the Necturus maculates II J. Cell Biol. 1966. V.31.P. 148A.

218. Retzius G. Zur kenntnis des spermien der everetebraten // Ver. Biol. Untersuch. NF. 1904. P. 1-32.

219. Reunov A.A. Is the "flagellate" pattern of spermatogenesis plesiomorphic in Metazoa? // Ibid. 2001. V. 40. №2/3. P. 239-242.

220. Reunov A.A., Au D.W.T., Wu R.S.S. Spermatogenesis of the green-lipped mussel Perna viridis with dual patterns of acrosome and tail development in spermatids // Helgoland Marine Research. 1999. V. 53. № 1. P. 62-69.

221. Reunov A.A., Drozdov A.L. The ultrastructure of spermetogonia, spermatocytes and spermatids of the far east seas cucumber // Tsitologiya. 1991. V. 33. P. 27-32.

222. Reunov A.A., Chernyshev A.V. The male gonad organization and spermatogenesis in the nemertean worm Tetrastemma nigrifrons Сое, 1904 (Haplonemertini, Tetrastemmatidae) // Tsitologiya. 1992. V. 34. P. 13-20.

223. Reunov A.A., Rice M. Ultrastructural observations on spermatogenesis in Phascolion cryptum II Trans.Amer. Microsc. Soc. 1993. V. 112. №3. P. 195-207.

224. Reunov A.A., Hodgson A.N. Ultrastructure of the spermatozoa of five species of south African bivalves (Mollusca), and an examination of early spermatogenesis // J. Morphol. 1994. V. 219. P. 275-283.

225. Reunov A.A., Klepal W. Ultrastructural investigation of spermatogenesis in nemertine worm Procephalothrix sp. (Palaeonemertini, Anopla) // Helgolander Meeresuters. 1997. V. 51. P. 125-135.

226. Reunov A., Isaeva V., Au D., Wu R. Nuage constituents arising from mitochondria: is it impossible // Dev. Growth Differentiation. 2000 .V. 42. P. 139143.

227. Reunov A.A., Klepal W. Ultrastructural study of spermatogenesis in Phoronopsis harmeri (Lophophorata, Phoronida) // Ibid. 2000. V. 58. P. 1-10.

228. Riehl R., Gotting K.J. Zu structur und Vokommen der Mikropylen an Eizellen und Eiern vor Knochenfischen (Teleostei) // Arch. Hydrobiol. 1974. B. 74. V. 3. P. 393-402.

229. Riehl R., Gotting K.J. Bau und Entwicklung der Mikropylen in den Oocyten ciniger Suwasser-Teleosteer // Zool. Ans. 1975. B. 195. V. 5-6. P. 363-373.

230. Robins C.R., Ray G.C. A field guide to Atlantic coast fishes of North America // The Peterson Field Guide Ser. 1986. №32. V. XII. 354 p.

231. Saffman E.E., Lasko P. Germinale development in vertebrates and invertebrates II Cell. Mol. Life Sci. 1999. V. 55. Р. 1141-1163.

232. Sakamoto K. Interrelationships of the family Pleuronectidae (Pisces: Pleuronectiformes). Mem. Fac. Fish. Hokkaido Univ. 1984. V. 31(1-2). P. 95-215.

233. Sakai Y., Yamashina S. Mechanism for the removal of residual cytoplasm from spermatids during mouse spermiogenesis // Anat. Record. 1989. V. 223. P. 348.

234. Selman K., Wallace R. Oogenesis in Fundulus heteroclitus. III. Vitellogenesis // J. Exp. Zool.1983. V. 226. P. 441-457.

235. Selman K., Wallace R.A., Sarka A., Xiaoping Q. Stage oocyte development in the zebrafish, Brachydanio rerio II J. Morphol. 1993. V. 218. P. 203-224.

236. Schjeide O.A., Nicholls Т., Graham G. Annulate lamellae and chromatoid bodies in the testes of a cyprinid fish (Pimephales notatus) IIZ. Zellforsh. 1972. V. 129. P. 1-10.

237. Schultz L.P., DeLacy A.C. Fishes of the American Northwest. A catalogue of the fishes of Washington and Oregon, with distributional records and bibliography // J. Pan-Pacif. Res. Inst. 1935. V. 11. №3. P. 211-226.

238. Schulze R. In vitro secretion of testosterone and 11-oxotestosterone of testicular and spemiduct tissue from the rainbow trout, Salmo gairdneri (Richardson) II Fish Physiol. Biochem. 1986. V. 1. №1. P. 55-61.

239. Shackley, E. S., King, P. E. Oogenesis in a marine teleost, Blenniuspholis L. // Cell and Tissue Research. 1977. V. 181. P. 105-128.

240. Shirai K. Correlation between the growth of the ovipositor and ovarian conditions in the bitterling, Rhodeus ocellatus II Bull. Fac. Fish Hokkaido Univ. 1962. V. 13. P. 137-151

241. Siegel G. Zur Morphologie der Eihullen sudamerikanischer bodenlaichender zahukarpfen // Wiss. Z. Fr. Schiller-Univ. math-nat. Reihe. 1958. V. 7. 229 p.

242. Silveria H., Rodrigues P., Azevedo C. Fine structure of spermatogenesis of Blennius pholis (Pisces Blenniidae) I I J. Submicrosc. Cytol. Pathol. 1990. V. 22. P. 103-108.

243. Smith H.W. The heterodont shark: the natural history and the external development of Heterodontus japonicus, based on notes and brawings by Bashford // Dean. Amaer. Mus. nat. hist. 1942. Bashford Dean Memorial. V. Art. 8. P. 647770.

244. Soley J. Т., Vuren J. H. J. Phagocytic properties of Sertoli cells in the testis of the teleost Tilapia rendalli (Cichlidae) // Proc. Electron Microsc. Soc. South. Afr. 1984. V. 14. P. 123-124.

245. Sprando R.L., Heidinger R.C., Russell L.D. Spermiogenesis in the bluegii (Lepomis macrochirus): A study of cytoplasmatic events including cell volume changes and cytoplasmic elimination//!. Morph. 1988. V. 198. P. 165-177.

246. Stanley H.P. An electron microscope study of spermiogenesis in the teleost fish Oligocottus maculosus И J. Ultrast. Res. 1969. V. 27. P. 230-243.

247. Stanley H.P. The fine structure of spermatozoa of Hydrolagus colliei (Chonddrichthyes, Holocephali) // J. Ultrastruct. Res. 1983. V. 83. P. 184-194.

248. Sterba G. Uber die Structur der Eihullen bei einigen Knochenfischen // Naturwissenschagten. 1957. V. 44. 178 p.

249. Sterba G., Muller H. Electronenmicroskopische Untersuchungen uber Bildung und Structur der Eithullen bei Knochenfischen // Zool. Gahrb. Abt. 1962. B. 80. V. l.P. 65-80.

250. Stoumboudi M.Th., Abraham M. The spermatogenetic process in Barbus longiceps, Capoeta damascina and their natural sterile hybrid (Teleostei, Cyprinidae) // Journal of Fish Biology. 1996. V. 49. P. 458-468.

251. Tchou-Su, Wang Yu-lan. Cytological study of egg maturation on two species of body fishes: Carassius auratus L. and Megalobrama terminalis II Acta biol. exptl sinsca. 1962. V. 8. P. 1-133.

252. Thiaw O.T., Mattei X., Romand R., Marchand B. Reinvestigation of spermatic flagella structure: The Teleostean Cyprinodontidae // J.Ultrast. Molec. Struct. Res. 1986. V. 97; №1-3. P. 109-118.

253. Thiaw O.T., Mattei X. Different aspects of tubulin polymerization in spermatids of cyprinodontidae (Fish Teleost) // J. Ultrast. Molec. Struct. Res. 1989. V. 102. P. 122-131.

254. Thiaw O.T., Thiam D., Mattei X. Extension of proximal centriole in a teleost fish spermatozoon //J. Submicrosc. Cytol. Pathol. 1990. V. 22. № 3. P. 357-360.

255. Todd P.R. Ultrastructure of the spermatozoa and spermiogenesis in New Zealand freshwater eels (Auguillidae) // Cell Tissue Res. 1976. V. 171. P. 221-232.

256. Tyler C.J., Sumpter J., Bromage N. Vitellogenin up-take by cultured oocytes of rainbow trout (Salmo gairdneri) // Gen. Сотр. Endocrinol. 1987. V. 66. P. 1920.

257. Ulrich E. Etude des ultrastructures au cours de l'ovogenese d'un poisson teleosteen, le Danio, Brachydanio rerio (Hamilton-Buchanan) // J. microsc. 1969. V. 8. №4. P. 447-478.

258. VanVuren J.H.J., Fishelson L. Ultrastructural features of the gonad of the Caoeta damascinus / Barbus canis hybrid I I J. Electr. Microsc. Soc. Afr. 1990. V. 5. P. 171-172.

259. VanVuren J.H.J., Soley J.T. Some ultrastructure observations of Leydig and Sertoli cells in the testis of Tilapia rendalli following testicular recrudescence // J. Morphol. 1990. V. 206. P. 57-63.

260. Vaux D.L., Korsmeyer SJ. Cell death in development // Cell. 1999. V. 96. P. 245-254.

261. Wallace R., Selman K. Cellular and dynamic aspects of oocyte growth in teleost//Amer. Zool. 1981. V. 21. P. 79-106.

262. Wang, S.-A., Wang, Z.-M., G.-L. Li, Y.-P. Cao. The fauna of Hebei, China. Pisces // Hebei Science and Technology Publishing House. 2001. Fauna Hebei. P. 1-366.

263. Weng S.L., Taylor S.L., Morshedi M., Schuffner A., Duran E.H., Beebe S., Oehninger S. Caspase activity and apoptotic markers in ejaculated human sperm // Molec. Hum. Reprod. 2002. V. 8 №10. P. 984-991.

264. Wickler W. Das Evivon Blennius fluviatilis ASSO (Bl Vulgaris) // Z. Zellfosch. 1957. B. 45. S. 641-648.

265. Wilimovsky N.J., Peden P.J., Peppar J. Systematics of six demersal fishes of the North Pacific Ocean // Tech. Rep. Fish. Res. Board Canada. 1967. №34. P. 195.

266. Wourms J.P. Reproduction and development in chondrichthyan fishes // Amer. Zool. 1977. V. 17. №2. P. 379-410.

267. Yamamoto K. Studies the formation of fish eggs. VI. The chemical nature and the origin of the yolk vesicles in the oocyte of the smelt, Hypomesus japonicus //Annot. Zool. Jap. 1955a. V. 28. №4. P. 233-237.

268. Yamamoto K. Studies on the formation of fish eggs. III. Localization of polysaccharides in the oocyte of the flounder, Liopsetta obscura И J. Fac. Sci. Hokkaido University, ser VI. Zool. 1955b. V. 12. №3. P. 58-64.

269. Yamamoto K. Studies on the formation of fish eggs. VIII. The fate of the yolk vesicle in the oocyte of the smelt, Hypomesus japonicus, during vitellogenesis // Embriologia. 1956. V. 3. №2. P. 131-138.

270. Yamamoto K. Studies the formation of fish eggs. IX. The fate of the yolk vesicle in the oocyte of the flounder, Liopsetta obscura, during vitellogenesis // Bull. Fac. Fisheries. Hokkaido University. 1956a. V. 7. №3. P. 208-217.

271. Yamamoto K., Onozato H. Electron microscopic study on the goldfishes oocytes during the first growth phase // Memoires Fac. Fish. Hokkaido University. 1965. V. 13. P. 79-106.

272. Yoshizaki N. In vivo study of vitellogenin-gold trans-port in the ovarian follicle and oocyte oiXenopus laevis II Develop. Growth Differ. 1992. V. 34 №5. P. 517-527.