Цитологический и изоферментный анализ видов рода Agaricus Fr. emend. Karst. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.24, кандидат биологических наук Матросова, Елена Викторовна

• Матросова, Елена Викторовна
• кандидат биологических наук
• 2007

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Матросова, Елена Викторовна

Сокращения

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Систематика и экология рода Agaricus и вида Agaricus bisporus.

1.1.1. Систематика рода.

1.1.2. Экология рода.

1.1.3. Практическая значимость представителей рода.

1.2. Жизненный цикл агариковых грибов.

1.2.1. Общая характеристика.

1.2.2. Особенности жизненного цикла A. bisporus.

1.3. Характеристика ядерного аппарата видов рода Agaricus.

1.3.1. Вегетативный мицелий.

1.3.2. Плодовые тела (гимений и субгимепий).

1.3.3. Характеристика ядерных циклов вида A.bisporus.

1.4. Несовместимость у агариковых грибов.

1.4.1. Вегетативная несовместимость.

1.4.2. Половая несовместимость.

1.5. Методы и критерии отбора гомокарионов.

1.6. Использование изоферментов и метода электрофореза.

Глава 2. Материалы и методы.

2.1. Используемые в работе культуры.

2.2. Получение споровых отпечатков.

2.3. Питательные среды.

2.4. Поверхностное культивирование.

2.5. Глубинное культивирование.

2.6. Получение моноспоровых и мпогоспоровых культур.

2.7. Проведение гибридизации.

2.8. Получение плодовых тел Agaricus bisporus.

2.9. Микроскопия.

2.10. Электронная микроскопия.

2.11. Электрофорез.

Глава 3. Изучение свойств изолированных из природы штаммов 48 шампипьона двуснорового (.A.bisporus) и четырсхспорового штамма рода Agaricus.

3.1. Прорастание спор.

3.2. Скорость и характер роста мицелия

3.3. Определение ядерного статуса медленнорастущих культур.

3.4. Подтверждение ядерного статуса тестами на фертильность.

3.5. Гибридизация.

3.5.1. Гибридизация на чашках с КГА.

3.5.2. Гибридизация на зерне.

3.6. Плодовые тела.

3.7. Изучение базидий и базидиоспор у плодовых тел исследуемых 57 штаммов.

3.8. Исследование изоферментных спектров неспецифических эстераз 61 методом электрофореза у штаммов рода Agaricus.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Цитологический и изоферментный анализ видов рода Agaricus Fr. emend. Karst.»

Настоящая работа посвящена подробному исследованию 9 видов рода Agaricus, представителей экологических групп подстилочных сапротрофов, гумусовых сапро-трофов и сапротрофов-«гербофилов».

Представители рода Agaricus являются объектом пристального внимания многих исследователей. Прежде всего, это вид Agaricus bisporus (Lange) Imbach - культивируемый шампиньон. По объему производства плодовых тел этот гриб занимает первое место в мире, его выращивают более чем в 80 странах (Xu et al., 1997; Chang, 1999). Однако, одной из серьезных проблем в культивировании шампиньона является недостаток нового генетического материала для селекции сортов и штаммов (Дьяков и др., 1996; Гарибова, 2003). Во многих работах отмечен высокий уровень генетической гомологии коммерческих штаммов A. bisporus (Raper, 1987; Солиман, 1992; Можина и др., 1993). Анализ диких популяций показывает, что они содержат большое количество новых генотипов, не представленных в коллекциях культивируемых линий (штаммов), и, соответственно, могут служить источником нового генетического материала, необходимого для селекции штаммов и сортов культивируемого шампиньона двуспорового (Kerrigan, Ross, 1989; Raper, 1987). Проблема использования диких штаммов в селекции заключается в том, что в природе они встречаются крайне редко (Гарибова, 1964; Гарибова, 2003). Поэтому поиск и идентификация дикорастущих штаммов шампиньона могут быть очень полезны в качестве источника нового генетического материала.

Ряд других видов рода, такие как A.arvensis, A.bitorquis, A.blazei, A.macrosporus и др., также являются объектами промышленного культивирования или рассматриваются в качестве потенциально культивируемых видов (Calvo-Bado et al., 2000; Elliott, 1978; Kerrigan et al., 1999; Гарибова, 2003). Причем, помимо традиционно культивируемых в промышленном масштабе представителей гумусовых сапротрофов, ведутся работы по вводу в культуру представителей других экологических групп.

Для ряда видов рода описана противомикробная, противовирусная, противоалер-генная активность (Wasser et Weis, 1999; Бухало, 1988; Beelman et al., 2004). В плодовых телах и культуральном мицелии видов A.blazei и A.bisporus обнаружены вещества противоопухолевого действия (Ohno et al., 2001; Mizuno et al., 1999; Lin et Yang, 2006; Beelman et al., 2004). В этой связи особое внимание уделяется глубинному культивированию видов рода Agaricus, т.к. в процессе глубинного культивирования для многих грибов возможно быстрое и более дешевое получение биомассы, чем при выгонке плодовых тел, и, кроме того, в составе глубинного мицелия могут быть выделены соединения, которые отсутствуют в плодовых телах или превосходят их по могут быть выделены соединения, которые отсутствуют в плодовых телах или превосходят их по активности (Бухало, 1988; Mizuno et al., 1999; Lin, Yang, 2006).

Однако, несмотря на отмеченную многими авторами практическую значимость видов рода Agaricus, имеются лишь единичные разрозненные работы, посвященные цитологическому анализу видов рода. Наиболее подробно исследована цитология и ультраструктура вида A.bisporus (Evans, 1959; Степанова, Васильев, 1994; Камзолкина, 2005). Микроморфология поверхностно растущего вегетативного мицелия других видов рода была достаточно подробно изучена (Гарибова, 1982; Molitoris et al., 1996; Григапський, 1995), но известны лишь единичные работы, посвященные исследованию ультраструктуры клеток поверхностного мицелия (Козлова, Камзолкина, 2004), а исследования ядерного аппарата ограничены, как правило, подсчетом среднего числа ядер в клетке (Raper, 1976; Hou, Elliott, 1978; Raper, Кауе, 1978; Sonnenberg, Fritsche, 1989; Molitoris et al, 1996). Практически не проводился цитологический анализ глубинного мицелия, хотя эти виды являются перспективным объектом глубинного культивирования для получения быстрого роста мицелия в контролируемых условиях (Dijkstra et al., 1972; Высшие съедобные базидиомицеты., 1983; Бухало, 1988).

Показано, что виды из разных экологических групп требуют разных субстратов для роста, в том числе и в глубинной культуре (Lambert, 1961; Гарибова, 2003; Низковская 1972, 1978), поэтому необходимо подробное изучение микроморфологии, цитологии и ультраструктуры роста видов рода, принадлежащих к разным экологическим группам, на разных типах сред для понимания механизмов, контролирующих жизнедеятельность грибнойклетк" —----u et al., 1968; Bertrand, 1994; Sinclair et al., 1998; Jamet-Vierny et al., 1997). Изучение фоцессов старения у базидиальных грибов ограничены в основном работами голландских микологов, проведенными на базидиоме гриба A.bisporus (Umar et van Grinsven, 1997A, В). Было показано, что вид, A.bisporus является удобной моделью для изучения процессов старения грибной клетки (Камзолкина, 2005А, В), для которого характерно ускоренное старение мицелия при глубинном культивировании. Исследование роста в глубинной культуре других видов рода может явиться предпосылкой к более полному пониманию механизмов старения клеток базидиальных грибов.

Цель работы: провести комплексное морфолого-цитологическое исследование 9 видов рода Agaricus, принадлежащим к разным экологическим группам.

Для выполнения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Охарактеризовать критерии отбора дикорастущих штаммов вида A. bisporus.

2. Сравнить изоферментные спектры неспецифических эетераз у 9 видов рода Agaricus, представителей гумусовых сапротрофов, подстилочных сапротрофов и сапро-трофов-«гербофилов».

3. Исследовать макро- и микроморфологию мицелия 9 видов рода Agaricus при росте в поверхностной культуре на разных средах и при разных температурах.

4. Исследовать макро- и микроморфологию мицелия 9 видов рода Agaricus при росте в глубинной культуре.

5. Провести сравнительное описание ультраструктуры клеток мицелия видов рода Agaricus при росте в поверхностной и глубинной культурах.

6. Исследовать влияние ингибиторов транскрипции и трансляции белков па рост глубинного мицелия видов рода Agaricus.

Заключение диссертации по теме «Микология», Матросова, Елена Викторовна

Выводы

1. Комплексное цитологическое исследование 31 штамм из 9 видов рода Agaricus в поверхностной и глубинной культурах на разных средах позволило выявить ряд ( общих черт и особенностей , характерных для видов, принадлежащих к определенной экологической группе.

2. Впервые для видов A.bitorquis, A. excellens, A.macrocarpus, A.xanthodermus, A.arvensis, A.campestris, A.abruptibulbus, A.silvaticus показана дифференциация поверхностного мицелия на два структурно отличных типа: основной вегетативный мицелии и его производное - топким безъядерным мицелии.

3. Впервые проведен анализ изоферментного набора неспецифических эстераз у 9 видов рода Agaricus, принадлежащих к гумусовым сапротрофам, подстилочным сапротрофам и гербофилам. Показано сходство электрофоретических спектров у видов, относящихся к одной экологической группе.

4. Охарактеризованы основные критерии отбора дикорастущих штаммов вида A.bisporus на примере трех выделенных из природы изолятов: Bs83, Bs84 (вид A.bisporus) и Ас83 (вид A.campestris). Показана необходимость комплексного подхода (изучение культурально-морфологических, биохимических, цитологических и генетических свойств штаммов) в определении систематического положения представителей рода Agaricus.

5. Показана общность процессов старения мицелия при длительном росте на бедной по агаризовапной среде, на несбалансированной жидкой среде и при экстремально высоких температурах на макро-, микроморфологическом и ультраструктуриом уровнях. Признаками этого процесса являются: замедление скорости роста мицелия, формирование колоний без воздушного мицелия, фрагментация мицелия и образование хламидоспороподобпых клеток, изменение состояния хондриома, уменьшение числа ядер на клетку и размера ядер, прогрессивное развитие тесной ассоциации внешней мембраны митохондрий с рибосомами, вакуолизация цитоплазмы.

6. Продемонстрировано положительное влияние ингибиторов транскрипции и трансляции белков на рост глубинного мицелия, присутствие которых тормозило развитие каскада процессов старения глубинного мицелия.

7. Охарактеризовано два состояния хопдриома у видов рода Agaricus при росте на разных средах. Показано преобладание нитевидных митохондрий в субапикальной зоне гифы при благоприятных условиях роста и преобладание шаровидных митохондрий при неблагоприятных условиях роста (повышенная температура, глубинное культивирование и др.).

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Матросова, Елена Викторовна, 2007 год

1. Биосннтетическая деятельность высших грибов / Ширвина А.Н., Низковская О.В.,

2. Фалина Н.Н. и др. Л.: Наука. 1969. 241с.

3. Бирюзова В.И. Ультраструктурная организация дрожжевой клетки. Атлас. Наука. 1993.224 с.

4. Бухало А.С. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. Киев, Наукова Думка. 1988.144 с.

5. Бухало А.С., Шашек В, Закордонец О.А. Исследование культур высших базидиомицетов в сканирующем электронном микроскопе. II. Структуры вегетативного мицелия // Микология и фитопатология. 1988. Т. 22 (6). С.481-484.

6. Вассер С.П., Гарибова JI.B., Мокеева B.JI. Морфометр1я спор i таксоном1я роду Agaricus Fr. emend Karst. // Укр. Бот. Ж. Т.ЗЗ. №3. C.246-251,331.

7. Вассер С.П. Флора грибов Украины. Киев. 1980. 345 с.

8. Вассер С.П. Агарнковые грибы СССР. Киев, Наукова Думка. 1985. 184 с.

9. Великанов Л.Л., Сидорова И.И. Некоторые биохимические аспекты в экологии грибов // Успехи микробиологии. 1983. Т.18. С. 112-132.

10. Волкова В.Н., Камзолкина О.В., Козлова М.В., Дьяков Ю.Т. Сравнительная кариология штаммов Agaricus bisporus (Lange) Imbach с разными типами жизненного цикла // Микология и фитопатология. 2003. Т. 37. № 1. С. 30-41.

11. Волкова В.Н. Кариология штаммов Agaricus bisporus (Lange) Imbach с разными типами жизненного цикла. Дисс. канд. биол. наук. М: 2005. 88 с.

12. Высшие съедобные базидиомицеты в поверхностной и глубинной культуре // Бисько Н.А., Бухало А.С., Вассер С.П. и др. Под общей редакцией Дудки И.А. Киев. Наукова Думка. 1983. 312 с.

13. Гарибова Л.В. Биологические особенности различных штаммов культивируемого шампиньона и их связь с урожайностью. Автореф. Дис. Канд. биол. паук М: 1964. 22 с.

14. Гарибова Л.В., Шалашова Н.Б. Наличие пряжек на мицелии видов рода Agaricus Fr. // Микология и фитопатология. 1973. Т.7, №3. С. 231-232.

15. Гарибова Л.В., Сафрай А.И., Шалашова Н.Б. Условия плодоношения некоторых видов рода Agaricus Fr. emend. Karst. // Микол. и Фитопат. 1974. Т.8. Вып.З. С. 259-264.

16. Гарибова Л.В., Сафрай А.И. Влияние микрофлоры почвы на плодоношение некоторых видов рода Agaricus Fr. emend. Karst. В кн.: Систематика, экология и физиология почвенных грибов. Киев. «Наукова Думка». 1975. С. 177-178.

17. Гарибова J1.В., Сафрай А.И. Микроморфология мицелия чистых культур видов рода Agaricus Fr.emend. Karst. // Микология и фитопатология. 1980. Т. 14, №6. С. 480-485.

18. Гарибова J1.B. Морфология, биология и систематика рода Agaricus Fr. Emend. Karst. Дис. Докт. биол. наук. М.1982. 346 с.

19. Гарибова Л.В. Экологические основы механизмов плодообразования высших базидиальных грибов И Микол. и Фитопат. 1987. Т. 21. Вып.З. С. 286-291.

20. Гарибова Л. В. Р.Agaricus. Систематика. Экология. Особенности развития. // Новое в систематике и номенклатуре грибов. Москва. 2003. 495 с.

21. Григапський А.П. Бюлопя вцгцв роду Agaricus L.: Fr.emend. Karst. у чистш культур)'. Автореф. Дисс. канд. биол. наук. Кшв. 1995. 24 с.

22. Грубе Е.Т. Критерии отбора и гибридизации гомоклопов культивируемого шампиньона Agaricus bisporus (Lange) Imbach. Дисс. Капд. биол. паук. М: 1994. 120 с.

23. Дьяков Ю.Т., Долгова А.В. Вегетативная несовместимость фитопатогенных грибов. М. 1995. 160 с.

24. Дьяков Ю.Т., Камзолкина О.В., Грубе Е.Т. Проблемы генетики и селекции съедобных грибов (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 1996. Т.32. №4. С. 382-385.

25. Дьяков Ю.Т. Популяционная биология фитопатогенных грибов.: Москва, 1998. 384 с.

26. Дьяков Ю.Т. Системы размножения грибов и их эволюция // Микол. и фитонат. 1999. Т. 33. Вып.З. С. 137-149.

27. Дьяков Ю.Т. Структура комплексных видов базидиальных грибов // Новое в систематике и номенклатуре грибов. Москва. 2003. 495 с.

28. Захаров И.А. Гомозиготизация при виутритетрадпом и впутриоктадном оплодотворении грибов // Генетика. 1968. Т.4. С. 98-105.

29. Захаров И.А. Некоторые закономерности расположения генов в хромосомах эукариот: постановка проблемы и анализ неслучайности расположения локусов типа спаривания у грибов // Генетика. 1986. Т.22. С. 2620-2623.

30. Камалетдинова Ф.И., Васильев А.Е. Цитология дискомицетов. Алма-Ата: Наука. 1982. 176 с.

31. Камзолкина О.В. Цитологические исследования гомокариотических и гетерокариотичсских штаммов Agaricus bisporus // Микробиология. 1996. Т.65. N 2. С. 228-234.

32. Камзолкина О.В., Грубе Е.Т., Дьяков Ю.Т. Опыты по гибридизации культивируемого шампиньона// Вест. Моск. Уиив. 1996. Сер. 16. Биол. №3. С. 4349.

33. Камзолкина О.В. Микроморфология и ультраструктура агарикоидиых грибов на разных стадиях жизненных циклов. Дис. Докт. биол. наук. М. 2005. 251 с.

34. Юпошпикова Е.С. К вопросу о половой дифференцировке культурного шампиньона {Psalliota campestris Fr.) // Бюллетень М. о-ва исп. природы, отд. биологии. 1938. Т. XLVII. №1. С.30-38.

35. Юпошпикова Е.С. Чстырехспоровая дикая Psalliota campestris Fr., ее особенности и отличия от культурной двуспоровой формы шампиньона // Бюллетень М. о-ва исп. природы, отд. биологии. 1939. Т. XLYIII. №5-6. С.53-58.

36. Козлова М.В., Камзолкина О.В. Особенности ультраструктуры клеточной стспки вегетативного мицелия Agaricus bisporus (Lange) Imbach // Цитология. 2004. T.46. №3. С. 191-201.

37. Козлова М.В. Жизненный цикл галоалкалотолераитпого аскомицста Heleococcum alkalinum Bilancnko et Ivanova. Дисс. канд. биол. наук. М: 2006. 219с.

38. Литвинов М.А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов. Л.: Наука, 1969.64с.

39. Мажейка И.С., Грубе Е.Т., Камзолкина О.В., Дьяков Ю.Т. Нестабильность гомокариотических штаммов Agaricus bisporus // Микология и Фитопатология. 2000. Т. 34. Вып. 3. С. 34-38.

40. Мейсель М.Н. Функциональная морфология дрожжевых организмов. Москва: Академия Наук, 1950. 367 с.

41. Можина И.А., Белякова Г.А., Фиреал М.С., Дьяков Ю.Т. Маркирование сортов и дикорастущих штаммов культивируемого шампиньона Agaricus bisporus изоферментами эстеразы // Биол. науки. 1993. №1. С. 31-40.

42. Мокеева В.Л., Райтвиир А.Г., Гарибова J1.B. Анализ структуры рода Agaricus Fr. emend. Karst//Микол. и фитопат. 1977. T.l 1, вып. 4. С. 277-282.

43. Мюллер Э., Леффлер В. Микология. 1995. Москва. «Наука». 343 с.

44. Низковская О.П. Рост высших грибов в глубинной культуре // Микология и фитопатология. 1972. Т.6. №4. С. 306-312.

45. Низковская О.П. Рост грибов из порядка Agaricales в поверхностной и глубинной культурах // Производство высших съедобных грибов в СССР. Киев: Наукова Думка. 1978. С. 92-97.

46. Решетников С.В. Эволюция бесполого размножения высших базидиомицетов. 1991. Киев: Наукова Думка. 187 с.

47. Сафрай А.И., Гарибова Л.В. Физиология питания некоторых видов рода Agaricus Fr. emend. Karst. // Биол.науки. 1975. №9. C.78-82.

48. Сафрай А.И. Биологические особенности некоторых видов рода Agaricus Fr.emend Karst. Дисс. канд. биол. наук. М: 1977. 179 с.

49. Сафрай А.И., Гарибова Л.В. Взаимосвязь почвенных макро- и микромицетов в биоценозах. В кн.: Изучение грибов в биоценозах Л. Наука. 1977. С. 105-107.

50. Солиман P.M. Изоферментные маркеры штаммов Agaricus bisporus (J.Lge) Imbach. Автореф. дисс. канд. биол. паук. М.1992. 18 с.

51. Степанова А.А., Васильев А.Е. Ультраструктурпые основы морфологии шляпочных грибов. А.: Ылым, 1994. 264 с.

52. Уильяме Б., Уилсон К. (ред.). Методы практической биохимии // М. 1978. 268 с.

53. Феофилова Е.П. Клеточная стенка у грибов. Москва. Наука. 1983.248 с.

54. Феофилова Е.П. Торможение жизненной активности как универсальный биохимический механизм адаптации микроорганизмов к стрессовым воздействиям. Обзор // Прикладная биохимия и микробиология. 2003. Т. 37. №2. С. 5-24.

55. Феофилова Е.П., Терешина В.М., Гарибова Л.В., Завьялова Л.А., Меморская А.С., Марышева Н.С. Прорастание базидиоспор Agaricus bisporus И Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т.40. №2. С. 220-226.

56. Шноль С.Э. Биологические часы (краткий обзор хода исследований и современного состояния проблемы биологических часов). // Соросовский образовательный журнал. 1996. №7. С. 26-32.

57. Шиырева А. В. P. Pleurotus (Fr.) Kumm. // Новое в систематике и номенклатуре грибов. Москва. 2003.495 с.

58. Шнырева А.В., Белоконь Ю.С., Белоконь М.М. Использование молекулярных маркеров для дифференциации культивируемых штаммов вешепки и шампиньона // Генетика. 2003. Т.39. №10. С. 1-9.

59. Штаер О.В. Сравнительный анализ природных популяций Pleurotus pulmonarius (Fr.) Quel. //Автореф. дисс. капд. биол. наук. М.2006. 24 с.

60. Ades I.Z., Butow R.A. The transport of proteins into yeast mitochondria // The Journal of Biological Chemistry. 1980. V.255. №20. P.9925-9935.

61. Akamatsu Y., Takahashi M., Shimada M. Production of oxalic acid by wood-rooting basidiomycetes grown on low and high nitrogen culture media // Material and Organismen. 1994. V.24. №4. P. 251-264.

62. Alexopoulus C.J., Mims C.W., Blackwell M. Introductory Mycology. 1996. New York. John Wiley & Sons, INS. 869 p.

63. Allen J.J., Moore D., Elliott T.J. Persistent meiotic arrest in basidia of Agaricus bisporus // Mycol.Res. 1992. №96. P. 125-127.

64. Anderson J.B., Petsche D.M., Herr F.B., Horgen P.A. Breeding relationships among several species of Agaricus II Can. J. Bot. 1984. V.62. P. 1884-1889.

65. Angwin P.A., Hansen E.M. Pairing tests to determine mating compatibility in Phellinus weiriill Mycol.Res. 1993. V.97. P. 1469-1475.

66. Askari M.D.F., Vo-Dihn T. Implication of mitochondrial involvement in apoptic activity of fragile histidine triad gene: Application of synchronous luminescence spectroscopy // Biopolymers. 2004. V.73. issue 4. P. 510-523.

67. Barron G.L., Thorn R.G. Destruction of nematodes by species of Pleurotus И Can. J. Bot. 1986. V.65. P. 774-778.

68. Barron G.L. Microcolonies of bacteria as a nutrient source for lignicolous and other fungi // Can. J. Bot. 1988. V.66. P. 2505-2510.

69. Barticki-Garcia S. Fundamental aspects of hyphal morphogenesis // In Microbial Differentiation (ed. J.M. Asworth and J.E. Smith). 1973. P. 245 267. Cambridge University Press: Cambridge, UK.

70. Barticki-Garcia S. Hyphal tip growth: outstanding questions // In «Molecular Biology of fungal development»(ed. H.D. Osiewacz). 2002- . P. 29 58. Marcel Dekker: New York.

71. Bertrand H. Senescense is coupled to induction of an oxidative phosphorylation stress response by mitochondrial DNA mutation in Neurospora И Can. J. Bot. 1995. V.73 (1). P. 198-204.

72. Bonde M.R., Micales J.A., Peterson G.L. The use of isozyme analysis for the identification of plant pathogenic fungi // Plant Dis. 1993. V.77. 961 p.

73. Bowden C.G., Royse D.J., May B. Linkage relationships of allozyme-encoding loci in shiitake, Lentinula edodes II Genome. 1991.№34. P. 652-657.

74. Bresinsky A., Fischer M., Mcixncr В., Paulus W. Speciation in Pleurotus II Mycologia. 1987. V.79, №2. P. 234-245.

75. Brodie ILJ. Oidial mycelia and the diploidzation process in Coprinus lagorus II Ann. Bot. 1972. V.46. P.727-732.

76. Buller A.H.R. Researches of fungi. Vol.III. The production and liberation of spores in hymenomycetes and Uredinae. 1958. Hafner Publishing Co., New York. 611 p.

77. Burnett J.H. Mycogenetics. London: by William Clowes and Sons Ltd. 1975. 375 p.

78. Butt T.M., Hoch H.C., Staples R.C., Leger R.Y.S. Use of fluorochromes in the study of fungal cytology and differentiation//Exp. Mycol. 1989. V.13. P. 303-313.

79. Callac P., Billette C., Imbernon M., Kerrigan R.W. Morphological, genetic and interfertility analyses reveal a novel, tetrasporic variety of Agaricus bisporus from the Sonoran desert of California // Mycologia. 1993. V.85. №5. P.835-851

80. Callae P., Imbernon M., Kerrigan R.W. The two life cycles of Agaricus bisporus II Mushroom Biology and Mushroom Products, Royse (ed.); Penn. State. Univ. 1996. P. 57-66.

81. Callac P., Desmerger C., Kerrigan R.W., Imbernon M. Conservation of genetic linkage with map expansion in distantly related crosses of Agaricus bisporus // FEMS Microbiol. Letters. 1997. V.146. P. 235-240.

82. Callac P., Moquet F., Imbernon M., Ramos Guedes-Lafargue M., Olivier J.M. Evidence for PPC1, a determinant of the pilei-pellis color of Agaricus bisporus fruit bodies // Fung. Genet. & Biol. 1998 (A). V.23. P. 181-188.

83. Callac P., Hocquart S., Imbernon M., Desmerger C., Olivier J.M. Bsn t allele from French field strains of Agaricus bisporus // Applied Env. Microbiol. 1998 (B). V.64. P. 2105-2110.

84. Callac P. Brief review about the life cycles, the basidial spore number trait, and recombination, in Agaricus bisporus!11999 (Unpublished data).

85. Callac P., Jacobe de Ilaut I., Imbernon M., Guinberteau J. A novel homothallic variety of Agaricus bisporus comprises rare tetrasporic isolates from Europe // Mycologia. V.95(2). 2003. P. 222-231.

86. Callac P., Guinberteau J. Morphological and molecular characterization of two novel species of Agaricus section Xanthodermatei II Mycologia. 2005. V.97 (2). P. 416-424.

87. Callac P., Sparato C., Caille A., Imbernon M. Evidence of outcrossing via the BuIIer Phenomenon in a substrate simultaneously inoculated with spores and mycelium of Agaricus bisporus // Appl. and Environ. Microb. 2006. V.72. №4. P. 2366-2372.

88. Calvo Bado L., Noble R., Challen M., Dobrovin - Pennington A., Elliott T.J. Sexuality and Genetic Identify in Agaricus section Arvenses II Appl. and Environm. Microbiol. 2000. P. 728-734.

89. Castle A.J., Horgen P.A., Anderson J.B. Restriction fragment length polymorphisms in the mushrooms Agaricus brunnescens and Agaricus bitorquis II Appl. Environm. Microbiol. 1987. V.53. P. 816-822.

90. Castle A.J., Horgen P.A., Anderson J.B. Crosses among homokaryons from commersial and wild-collected strains of the mushroom Agaricus brunnescens (= A.bisporus) II Appl. Environm. Microbiol. 1988. V.54. №7. P. 1643-1648.

91. Challen M.P., Elliott T.J. The in vitro responses to a range of fungicides of two strains of the mushroom Agaricus bisporus and the pathogen Verticillium fungicola II Mycopathologia. 1985. V.90. P. 161-164.

92. Challen M.P., Kerrigan R.W., Callac P. A phylogenetic reconstruction and emendation of Agaricus section Duploannulatae // Mycologia. 2003. V.95(l). P.61-75.

93. Chang S.T. The biology and cultivation utilizing light microscopy // The biology and cultivation of edible mushrooms / Eds Chang S.T., Nayes W.A. New York: Acad. Press. 1978. P. 35-51.

94. Chang S.T. World production of cultivated edible and medicinal mushrooms in 1997 with emphasis on Lentinus edodes (Berk.) Sing, in China // International Journal of Medicinal Mushrooms. 1999. V.l. P. 291-300.

95. Chelstowska A., Jia Y., Rothermel В., Butow R.A. Retrograde regulation: a novel path of communication between mitochondria, the nucleus and peroxisomes in yeast // Can. J. Bot. 1994. V.73. (Suppl. 1). P. S205 S207.

96. Chiu S.W., Moore D. Cell form, function and lineage in the hymenia of Coprinus cinereus and Volvariella bombicina II Mycol.Res. 1993. V.97. P. 221-226.

97. Clemencon H. Cytology and plectology of the Hymenomycetes. Bibliotheca Mycologica. V.l99. Berlin. Stuttgart. 2004. 488 p.

98. Connolly J.H., Jellison J. Calcium translocation, calcium oxalate accumulation and hyphal sheath morphology in the white-rot fungus Pesinicium bicolor II Can. J. Bot. 1995. V.41.P. 433-437.

99. Cotter D.A., Miura-Santo L.Y., Hohl H. R. Ultrastructural changes during germination of Dyctiostelium discoideam spores // Journal of Bacteriology. 1969. V.l00. №2. P. 1020-1026.

100. Dai Y-C., Vainio E.J., Hantula Y., Niemela Т., Korhonen K. Sexuality and intersterility within the Heterobasidium insulare complex // Mycol. Res. 2002. V.l06 (12). P. 14351448.

101. Dickhardt R. Homokaryotization in Agaricus bitorquis (Quel.)Sacc. and Agaricus bisporus (Lange)Imb. // Theor. and Appl. Genet. 1985. V.70. P. 52 56.

102. Dijkstra F.U., Scheffers W.A., Wiken Т.О. Submerged growth of the cultivated mushroom, Agaricus bisporus II Antonie van Leeuwenhoek. 1972. V.38. P. 329-340.

103. Duncan E.J., Galbraith M.H. Post-meiotic events in the Homobasidiomycetidae // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1972. V.58. №3. P. 387-392.

104. Egel R. Two tightly linked silent cassette in the mating-type region of Schizosaccharomycespombe/l Current Genet. 1984. V.8. P.199-203.

105. Elliott T.J. Sex and the single spore // Mushroom Science. 1972. VIII. P. 11-19.

106. Elliott T.J. Basidiospore numbers in Agaricus bisporus (Lange)Imbach. // J. Bacteriol. 1977. V.l29. P. 525-526.

107. Elliott T.J. Comparative sexuality in Agaricus species // J. Gen. Microbiology. 1978. V.107. P. 113-122.

108. Elliott T.J. Breeding strategies in Agaricus bisporus II Mush. Sci. 1979. V.10. P. 73-81.

109. Elliott T.J., Challen M.P. Effect of temperature on spore number in cultivated mushroom, Agaricus bisporus II Trans. Brit. Mycol. Soc. 1984. V.82. P. 293-296.

110. Esser К., Meinhardt F. A common genetic control of dikaryotie and monokaryotic fruiting in the basidiomycete Agrocybe aegerita 11 Molee. Gen. Genet. 1977. V.155. P. 113-115.

111. Evans H.J. Nuclear behavior in the cultivated mushroom // Chromosoma. 1959. V.10. P. 115-135.

112. Falanghe H., Smith A.K., Rackis J.J. Production of fungal mycelium protein in submerged culture of soybean whey // Appl. Microbiol. 1964. V.12. №4. P.330-334.

113. Fermor T.R. Agaricus macrosporus: An edible fungus with commercial potential // Scientific Horticulture. 1982. V.16. P. 273-282.

114. Fincham J.R.S., Day P.R., Radford A. Fungal Genetics. Oxford London Edinburgh Melbourne. 1979. 636 p.

115. Fraser 1.М., Fujikawa B.S. The growth-promoting effect of several amino acids on the common cultivated mushroom, Agaricus bisporus II Mycologia. 1958. V.50. P. 538549.

116. Friel M.T., McLoughlin A.J. Production of a liquid inoculum/spawn of Agaricus bisporus И Biotech. Letters. 2000. V.22. P. 351-354.

117. Fries N. Spore germination, homing reaction and intersterility groups in Laccaria laccata (Agaricales) // Mycologia. 1983. V.75. P. 221-227.

118. Fritsche G. Tests on breeding with Agaricus arvensis II Mushroom Science. 1978. V.10. P.91-102.

119. Fritsche G. Genetic and breeding of the cultivated mushroom // Musliroom Journal. 1982. P.665-675.

120. Fiinfschilling U, Rospert S. Nascent polypeptide-associated complex stimulates protein import into yeast mitochondria // Molecular Biology of the Cell. 1999. V.10. P. 32893299.

121. Geml J., Rimoczi I. Attempts at cultivating wild strains of various Agaricus species. // Fungal Genetic Newsletter. 1999. V.46. P. 38.

122. Geml J., Geiser D.M., Royse D.J. Molecular evolution of Agaricus species based on ITS and LSU rDNA sequences // Mycol. Progress. 2004. V.3 (2). P. 157-176.

123. Girbardt M.A. A microfilamentous septal belt (FSB) during induction of cytokinesis in Trametes versicolor (L. ex Fr.) // Exper. Mycol. 1979. V.3. P. 215-228.

124. Goldman R.C., Kadam S.K. Binding of novel macrolide structures to macrolides-Iincosamides-streptogramin D-resistant ribosome inhibits protein synthesis and bacterisl growth // Antimicrob. Agents. Chemother. 1989. V.33. №7. P. 1058-1066.

125. Gooday G.W. Control of development of excised fruit bodies of the toadstool Coprinus cinereus //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1974. V.62. P. 391-399.

126. Gooday G.W. Metabolic control of fruit body morphogenesis in Coprinus cinerens II In Abstract, Second International Mycological Congress. Tampa. Florida. 1977. p. 231.

127. Grilio R., Korhoncn K., Hantula Y., Hietala A. Genetic evidence for somatic haploidization in developing fruit bodies of Armillaria tabescens II Fungal Genetics and Biology. 2000. V.30. P. 135-145.

128. Grove S.N., Bracker C.E. Protoplasmic organization of hyphal tips among fungi: vesicles and Spitzcnkorper // J. Bacteriol. 1970. V.104. P. 989-1009.

129. Hammad F., Watling R., Moore D. Cell population dynamics in Coprinus cinereus: narrow and inflated hyphae in basidiome stipe // Mycol. Res. 1993. V. 97. №3. P. 275282.

130. Hansen E.M., Stenlid J., Johansson M. Somatic incompatibility and nuclear reassortmcnt in Heterobasidion annosum II Mycol. Res. 1993. V.97. P. 1223-1228.

131. Heath M.C., Li A., Horgen P.A., Tam P.L. Hyphal morphology associated with strain instability in the commercial mushroom Agaricus bisporus II Mycologia. 1995. V.87, №4. P. 442-450.

132. Heckman D.S., Geiser D.M., Eidell B.R., Stauffer R.L., Kardos N.L., Hedges S.B. Molecular evidence for early colonization of land by fungi and plants // Science. 2001. V.293.P. 1129-1133.

133. Hibbert D.S., Fukumasa-Nagai Y., Tsuneda A., Donoghue M.J. Phylogenetic diversity in shiitake inferred from nuclear ribosomal DNA sequences // Mycologia. 1995. V.87. P. 618-638.

134. Hober J.E. Mating-type gene switching in Saccharomyces cerevisiae 11 Trends Genet. 1992. V.8. P. 446-452.

135. Holbrook M.A., Menninger J.R. Erythromycin slows aging of Saccharomyces cerevisiae // J. ofGeront. Series A: Biol. Sci. and Medical Sci. 2002. V.57. P. B52-B36.

136. Horgen P.A., Kokurewicz K.F., Anderson J.B. The germination of basidiospores from commercial and wild collected isolates of Agaricus bisporus II Can. J. Microbiol. 1989. V. 35. P. 492-498.

137. Hou H.H., Elliott T.J. Comparative cytology in the genus Agaricus II Mushroom Science. 1978. V.X (Part I). P. 51-62.

138. Hughes S.J. Conidiophores, conidia and classification // Can.J.Bot. 1953. V.31, №5. P. 577-659.

139. Hutchison L.J., Barron G.L. Parasitism of yeasts by lignicolous Basidiomycota and other fungi //Can. J. Bot. 1996. V.74. P. 735-742.

140. Hutchison L.J., Barron G.L. Parasitism of algae by lignicolous Basidiomycota and other fungi//Can. J. Bot. 1997. V.75. P. 1006-1011.

141. James C., Gschmeissner S., Frazer A., Evan G.I. CED-4 induces chromatin condensation in Schizosaccharomyces pombe and is inhibited by direct physical association with CED-9 // Curr. Biol. 1997. V.7. P. 246-252.

142. Jardetzky 0. Studies on the mechanism of action of chloramphenicol // The Journal of Biol. Chem. 1963. V.238. №7. P. 2498-2508.

143. Imbernon M. Sensibilite de quelques champignons cultives a certains antibiotiques // Mush. Sei. X (Part I) Proceedings of the tenth international congress on the science and cultivation of edible fungi. 1978. P. 31-39.

144. Imbernon M., Callac P., Gasqui P., Kerrigan R.W., and Velcko A.J. BSN, the primary determinant of basidial spore number and reprodutive mode in Agaricus bisporus, maps to chromosome 11 I Mycologia. 1996. V.88. №5. P. 749-761.

145. Index Fungorum Partnership. 2005. www.indexfunqorum.org

146. Kamada Т., Tanabe S. The role of the cytoskeleton in the movement and positioning of nuclei in Coprinus cinereus II Can. J. Bot. 1994.V.73. №1. P. 364-368.

147. Kamzolkina O.V., Volkova V.N., Kozlova M.V., Pancheva E.V., Dyakov Y.T., Callac P. Karyological evidence for meiosis in the three different types of life cycles existing in Agaricus bisporus II Mycologia. 2006. V.98 (5). P. 763-770.

148. Kellems R.E.,Butow R.A. Cytoplasmic-type 80S ribosomes associated with yeast mitochondria. I. Evidence for ribosome binding sites on yeast mitochondria // The Jour, of Biol. Chem. 1972. V.247. №24. P. 8043-8050.

149. Kellems R.E.,Butow R.A. Cytoplasmic-type 80S ribosomes associated with yeast mitochondria. III. Changes in the amount of bound ribosomes in response to changes in metabolic state // The Jour, of Biol. Chcm. 1974. V.249. №10. P. 3304-3310.

150. Kellems R.E., Allison V.F., Butow R.A. Cytoplasmic type 80S ribosomes associated with yeast mitochondria. IV. Attachment of ribosomes to the outer membrane of isolated mitochondria // The Jour, of Cell Biol. 1975. V.65. P. 1-14.

151. Kerrigan R.W. The Agaricales (Gilled Fungi) of California: 6. Agaricaceae. 1986. Mad River Press, Eureka, California. 62 p.

152. Kerrigan R.W., Ross I.K. Dynamic aspects of basidiospore number in Agaricus // Mycologia. 1987. V.79. №2. P.204-215.

153. Kerrigan R.W., Ross I.K. Allozymes of a wild Agaricus bisporus population: new alleles, new genotypes // Mycologia. 1989. V.8. №3. P. 433-443.

154. Kerrigan R.W. Evidence of genetic divergence in two populations of Agaricus bisporus II Mycol. Res. 1990. V.94. P. 721-733.

155. Kerrigan R.W., Bailer L.M., Horgen P.A., Anderson J.B. Strategies for the efficient recovery of Agaricus bisporus II Mycologia. 1992. V.84. №4. P.575-579.

156. Kerrigan R.W., Horgen P.A., Anderson J.B. The California population of Agaricus bisporus comprises at least two ancestral elements 11 Systematic Botany. 1993 (A). V.18. №1. P. 123-136.

157. Kerrigan R.W., Royer J.C., Bailer L.M., Kohli Y., Horgen P.A., and Anderson J.B. Meiotic behavior and linkage relationships in the secondary homothallic fungus Agaricus bisporus!I Genetics. 1993 (B). V.133. P.225-236.

158. Kerrigan R.W., Imberton M., Callac P., Billette C., Olivier J.M. The heterothallic life cycle of Agaricus bisporus var burnettii, and the inheritance of it's tetrasporic trait // Experimental Mycology. 1994. V.18. P. 193-210.

159. Kerrigan R.W., Callac P., Xu J., Noble R. Population and phylogenetic structure within the Agaricus subfloccosus complex // Mycological Research. 1999. V.103. P.15I5-1523.

160. Kerrigan R.W., Callac P., Guinberteau J., Challen M.P., Parra L.A. Agaricus section Xanthodermatei: a phylogenetic reconstruction with commentary on taxa // Mycologia. 2005. V.97 (6). P. 1292-1315.

161. Kcyhani E. Ribosomal granules associated with outer mitochondrial membrane in aerobic yeast cells // The Jour, of Cell Biol. 1973. V.58. P. 480-484.

162. Khush P.S., Becker E., Wach M. DNA amplification polymorphisms of the cultivated mushroom Agaricus bisporus И Appl. Environm. Microbiol. 1992. P.2971-2977.

163. Kligman A.M. Some structural and genctic problems in the cultivation of the mushroom Agaricus campestris Fr. //Am.J.Bot. 1943. V.30, №10. P. 745-761.

164. Koba M., Konora J. Actinomycin D and its mechanisms of action // Postepy Hig Med Dosw (Online). 2005. V.59. P. 290-298.

165. Koltin Y., Stramberger J., Lemke P.A. Genetic structure and evolution of the incompatibility factors in higher fungi // Bacterid. Rev. 1972. V.36. №2. P. 156-171.

166. Korhonen K., Hintikka V. Simple isolation and inoculation methods for fungal cultures // Karstenia. 1980. V.20. P. 19-22.

167. Kuhncr R. Variation of nuclear behavior in the homobasidiomycetes // Trans. Br. Mycol. 1977. V. 68(1). P.l-16.

168. Labarere J., Noel T. Mating type switching in the tctrapolar basidiomycete Agrocybe aegerita И Gcnctics. 1992. V. 131. P. 307-319.

169. Lambert E. Improving spawn cultures of cultivated mushroom // Mushroom Science IV. Copenhagen. 1961. P.33-52.

170. Lange M. Species concepts in the genus Coprinus // Dansk. Bot. Ark. 1952. V.14. №6. P. 19-25.

171. Lee S.Y., Krsmanovic V., Brawerman G. Attachment of ribosomes to membranes during polysome formation in mouse sarcoma 180 cells // The Jour, of Cell Biol. 1971. V.49. P. 683-691.

172. Lemke G. Mizelwachstumsteste mit vier champignonstammen // Champingon. 1972. №128. P. 1-5.

173. Lewis K. Programmed Death of Bacteria. // Microbiol, and Molecular Biol. Reviews. 2000. V.64. №3. P. 503-514.

174. Li A.M., Begin M., Kokurewitz K., Bowden C., Horgen P.A. Inheritance of strain instability (sectoring) in the commercial button mushroom, Agaricus bisporus II Appl. & Envirom. Microbiology. 1994. V.60. iss.7. P. 2384-2388.

175. Lin J-H., Yang S.-S. Mycelium and polysaccharide production of Agaricus blazei Murrill by submerged fermentation // J. Microbiol. Immunol. Infect. 2006. V.39. P. 98108.

176. Loeb J.N., Howell R.R., Tomkins G.M. Free and membrane-bound ribosomes in rat liver // The Jour, of Biol. Chem. 1967. V.242. №9. P. 2069-2074.

177. Losel, D. The stimulating of spore germination in Agaricus bisporus by living mycelium//Ann. Bot. 1964. V.28. P. 541-554

178. Lu B.C., Gallo N., Kues U. White-cap mutants and meiotic apoptosis in the basidiomyccte Coprinus cinercus // Fungal. Genet. Biol. 2003. V.39. P. 82-93.

179. Madeo F.F., Frohlich E., Ligr M., Grey M., Sigrist S.J., Wolf D.H., Frohlich K.U. Oxygen stress: a regulator of apoptosis in yeast. // J. Cell Biol. 1999. V.145. P. 757-767.

180. MacKenzie J.A., Payne R.M. Ribosomes specifically bind to mammalian mitochondria via protease-sensitive Proteins on the outer membrane // The Jour, of Biol. Chem.2004. V.279. №11. P. 9803-9810.

181. Martin A.M., Bailey V.I. Growth of Agaricus campestris NRRL 2334 in the form of pellets // Appl. and Environ. Microbiol. 1985. V.49. №6. P. 1502-1506.

182. Masaphy S., Levanon D., Tchelet R., Henis Y. Scanning electron microscope studies of interaction between Agaricus bisporus (Lang) Sing hyphae and bacteria in casing soil // Appl. and Environ. Microbiol. 1987. V.53. № 5. P. 1132-1137.

183. Matsumoto Т., Fukumasa-Nakai Y. Isolation and genetic analysis of a chloramphenicol-resistant mutant of Pleurotus ostreatus II Biosc. Biotech. Biochem. 1993. V.58 (2). P. 434-435.

184. May В., Royse D.J. Genetic variation and joint segregation of biochemical loci in the common meadow mushroom, Agaricus campestris II Biochem. Genet. 1982 (A). V.20. P. 1165-1173.

185. May В., Royse D.J. Conformation of crosses between lines of Agaricus brunnescens by isozyme analysis // Exp. Mycol. 1982 (B) V.6. P. 283-292.

186. May G. Somatic incompatibsility and individualism in the coprophilous basidiomycete, Coprinus cinereus //Trans. Br. Mycol. Soc. 1988. V.91. P. 443-451.

187. Mazheika I.S., Kolomiets O.L., Dyakov Y.T., Bogdanov Y.F. Abnormal meiosis in bisporic strains of white button mushroom Agaricus bisporus (Lange) Imbach // Russian Journal of Genetics. 2006. V.42. №3. P. 279-285.

188. Maziero R., Cavazzoni V., Bononi V.L.R. Screening of basidiomycctes for the production of exopolysaccharide and biomass in submerged culture // Rev.Microbiol. 1999. V.30. №1. P. 74-88.

189. McLaughlin D.J. Ultrastructure and cytochemistry of basidial and basidiospore development / Basidium and basidiocarp. Eds., K.Wells and E.K.Wells, Springer -Verlag, New York. 1982. P. 37-74.

190. Micales J.A., Bonde M.R. Isozymes: methods and applications // Molecular methods in plant pathology. 1995. 544 p.

191. Michalenko G.O., Hohle H.R., Rost D. Chemistry and architecture of the mycelial wall of Agaricus bisporus II J. Gen. Microbiol. 1976. V. 92. №2. P. 251-282.

192. Miller R.E. Evidence of sexuality in the cultivated muchroom, Agaricus bisporus И Mycologia. 1971 (a). V.63. №3. P. 630-634.

193. Miller O.K. The relationship of cultural characters to the taxonomy of the Agarics // Evolutionin the Higher Basidiomycetes: An Inter, symp. / Ed. R.Peterson. Knoxville. 1971 (b). P. 197-208.

194. Mizuno M., Minato K., Ito H., Kawade M., Terai H., Tsuchida H. Anti-tumor polysaccharide from the mycelium of liquid-cultured Agaricus blazei Mill. // Biochem. Mol. Biol. Int. 1999. V.47. №4. P. 707-714.

195. Molitoris P.H., Buchalo A.S., Grigansky A.Ph. Studies of the vegetative mycelium in the genus Agaricus L.: Fr.emcnd. Karst. В кн.: Ботаиика и микология на пути в третье тысячелетие. Киев. Ин-т ботаники НАНУ. 1996. Р. 316-330.

196. Moquet F., Gucdcs-Lafargue M.R., Mamoun М., Olivier J. Selfreproduction induced variability in agronomic traits for a wild Agaricus bisporus II Mycologia. 1998. V.90. №5. P. 806-812.

197. Nagasaki S. Cytological and physiological studies on phosphatases in developing cultures of Aspergillus niger IIJ. Gen. Appl. Microbiol. 1968. V.14. P. 263-277.

198. Newton A.C. Markers in pathogen populations. In: Genetic and Plant Pathogenesis, Day, P.R. and Jellis G.J. Eds. Blackwell Scientific, Oxford. 1987. 187 p.

199. Noble R., Grogan H., Elliott T. Variation in morphology, growth, and fructification of isolates in the Agaricus subfloccosus complex. // Mycol. Res. 1995. V.99. P. 1953 -1961.

200. Nobles M.K. Identification of cultures of wood-inhabiting Hymenomycetes II Can. J.Bot. 1965. V.43. P. 1097-1139.

201. Ohno N., Furukawa M., Miura N.N., Adachi Y., Motoi M., Yadomae T. Antitumor beta glucan from the cultured fruit body of Agaricus blazei II Biol. Pharm. Bull. 2001. V.24. №7. P. 820-828.

202. Osherov N., May G.S. The molecular mechanisms of conidial germination // FEMS Microbiology Letters. 2001. V. 199 (2). P. 153 160.

203. Ota Y., Fukuda K., and Suzuki K. The nonheterothallic life cycle of Japanese Armillaria mellea И Mycologia. 1998. V.90. № 3. P. 396-405.

204. Pantidou M., Waiting R., Gonou Z. Mycelial characters, anamorphs, and teleomorph in genera and species of various families of Agaricales in culture // Mycotaxon. 1983. V.17. P. 409-432.

205. Paran I, Michelmore R.W. Sequence characterized amplified regions: PCR-based genetic markers for higher organisms // Theor. Appl. Genet. Year. V.85. P.9828-9832.

206. Paranjpe M.S., Chen P.K., Jong S.C. Morphogenesis of Agaricus bisporus: changes in proteins and enzyme activity // Mycologia. 1979. V.71. P.469-478.

207. Pelhman Y. Techniques for mushroom genetics // Mushroom Sci. 1967. V.6. pp. 49-64.

208. Peterson R.H., Ridley G.S.A. New-Zeland Pleurotus with multiple-species sexual compatibility//Mycologia. 1996. V.88. P. 198-207.

209. Raper C.A., Raper J.R., Miller R.E. Genctic analysis of the life cycle of Agaricus bisporus И Mycologia. 1972. V.64. №5. P. 1088-1117.

210. Raper C.A. Sexuality and life cycle of the edible, wild Agaricus bitorquis II J. Gen. Microbiol. 1976. V.95. P. 54-66.

211. Raper C.A. Sexuality and breeding. The biology and cultivation of edible mushrooms. Ed. Chang S.J., Hayes W.A. A.P.N.Y.1978. P. 83-113.

212. Raper C.A., Kaye G. Breeding and another relationship in genus Agaricus И J. of Gen. Microbiology. 1978. V.105. P. 135-155.

213. Raper C.A. Strategies for mushroom breeding // The Biology and Technology of the Cultivated Mushroom. 1987. P. 515-527.

214. Redhead E.A. Phylogene of Agaricales. Re-examined // Mycol. Res. 2001. V.105. №1. P. 3-4.

215. Rcusscr F., Spencer J.F.T., Sallns H.H. Protein and fat content of some mushrooms grown in submerged culture// Appl.Microbiol. 1958. V.6. №1. P. 1-11.

216. Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electron opaque strain in electron microscopy. Hi. Biophys. Biochem. Cytol. 1963. V.17. P. 208.

217. Rigelato R.C., Trinci A.P., Pirt S.J., Peat A. The influence of maintenance energy and growth rate on the metabolic activity, morphology and conidiation of Penicillium chrysogenum H J.Gen. Microbiol. 1968. V.50. P. 399-412.

218. Ross I. K., Margalith P. Nuclear behavior in the basidia of the secondary homothallic Coprinus bilanatus И Mycologia. 1987. V.79. N4. P. 595-602.

219. Roux P.R., Labarere J. Isozyme characterization of dikaryotic strains of the edible basidiomycete Agaricus bitorquis (Quel.)Sacc. // Exp. Mycol. V.14. №2. P. 110-112.

220. Royse D.J., May B. Use of isozyme variation to identify genotypic classes of Agaricus brunnescens II Mycologia. 1982. V.74. P.93-102.

221. Royse D.J., Spear M.C., May B. Cell line authentication and genetic relatedness of lines of the Shiitake mushroom, Lentinus edodes II J. Gen. Appl. Microbiol. 1983. V.29. P.205-216234. www.rusmedsefv.com/books/macrolid.

222. Saksena K.N., Marino R., Haller M.N., Lemke P.A. Study on development of Agaricus bisporus by fluorescent microscopy and skanning electron microscopy // J. Baeteriol. 1976. V.126.№1. P. 417-428.

223. Shimada M., Akamatsu Y., Tokimatsu Т., Mii K., Hattori T. Possible biochemical role of oxalic acid as a low molecular weigh compound involved in brown-rot and white-rot wood decays. Minireview // J. Biotech. 1997. V.53. P. 103-113.

224. Sinclair D., Mills K., and Guarente L. Aging in Saccharomyces cerevisiae II Ann. Rev. Microbiol. 1998. V.52. P. 533-560.

225. Singer R. The Agaricales (Mushrooms) in modern taxonomy // Vaduz. Cramer. 1975. 912 c.

226. Solomons G.L. Submerged culture production of mycelial biomass // The filamentous fungi. Vol.1. Industrial Mycology. / Eds. J.E.Smith, D.R.Belly. London: Edward. 1975. P. 249-264.

227. Sonnenberg A.S.M., Fritschc G. Cytological observations in Agaricus arvensis II Mushroom Science Xll (Part 1). Proceedings of the 12th International Congress on the Science and Cultivation of edible Fungi. 1989. P. 101-107.

228. Spear M.C., Royse D.J., May B. Atypical meiosis and joint segregation of biochemical loci in Agaricus brunnescens II J. Hered. 1983. V.74. P. 417- 420.

229. Stalpers J.A. Identification of wood-inhabiting fungi in pure culture // Studies in Mycology. 1978. V.l6. P. 1-248.

230. Summerbell R.C., Castle A.J., Horgen P.A., Anderson J.B. Inheritance of restriction fragment length polymorphism in Agaricus brunnescens II Genetics. 1989. V.123. P. 293-300.

231. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA // Nucleic Acids Res. 1989. V.l7. P.6463-6471.

232. Tielke C. Die Feinstructur der Basidien des Kulturchampignons // Archiv fur Microbiologic. 1967. V.59. P.405-407.

233. Tielke C. Meiotic divisions in the basidium // Basidium and basidiocarp/ Eds Wells K. and Wells E.K. New York: Springer, 1982. P. 75-91.

234. Thomas G.W., Jackson B.M. Scanning electron microscopy of sheathing mycorrhizas of Sitka Spruce // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1982. V.79, №1. P. 31-39.

235. Thorn R.G., Barron G.L. Carnivorous Mushrooms // Science. 1984. V.224. P. 76-78.

236. Tomasz A., Walk S. Mechanism of action of penicillin: triggering of the pneumococcal autolytic enzyme by inhibitors of cell wall synthesis // Nature. 1975. V.72. P. 41624166.

237. Torralba S., Pisabarro A.G., Ramirez L. Immunofluorescence microscopy of the microtubule cytoskeleton during conjugate division in the dykaryon Pleurotus ostreatus N 001 // Mycologia. 2004. V.96. №1. P. 239-249.

238. Tsao G.T. Production of oxalic acid by a strain of Agaricus campestris II Appl. Microbiol. V. 11. P. 255.

239. Umar M.H., van Grinsven L.J.L.D. Morphological studies on the life span, developmental stages, senescense and death of Agaricus bisporus II Mycol.Res. 1997 (a). V.101.P. 1409-1422.

240. Umar M.H., van Grinsvcn L.J.L.D. Morphogcnctic cell death in developing primordia of Agaricus bisporus II Mycologia. 1997(b). V.89. P. 274-277.

241. Valk P., van dcr Marchant R., Wcssels J. G. H. Ultrastructural localization of polysaccharides in the wall and septum of the basidiomyccte Schizophyllum commune И Exp. Mycol. 1977. V.l. P. 69 82.

242. Wang Z.C., Liao J.H., Li F.G., Wang H.C. Studies on genetic basis of esterase isozyme loci Est А,В and С in Agaricus bisporus // Scicnce and Cultivation of edible fungi. 1991. V.l.P.3-9.

243. Wasser S. P., Garibova L.V., Mokejeva V.L. Morphometri of spores an substantiation of a new system in the genus Agaricus Fr. emend. Karst. // Acta Botanica Acad. Sci. Hungaricae. 1976. V.22. № 1-2. P. 249-258.

244. Wasser S.P., Weis A.L. Medicinal properties of substances occurring in higher Basidiomycetes mushrooms: current perspectives (review) // Int. J. Med. Mushr. 1999. V.l. P.31 -62.

245. Watson K. The organization of ribosomal granules within mitochondrial structures of aerobic and anaerobic cells of Saccaromyces cerevisiae II J. Cell. Biol. 1972. V. 55. P.721-726.

246. Whitehouse H.L.K. Multiple allelomorph heterothallism in the fungi // The New Phytologist. 1949. V.48. №2. P. 212-214.

247. Whitney K.D., Amott H.J. Calcium oxalate crystal morphology and development in Agaricus bisporus II Mycologia. 1987. V.79. P. 180-187.

248. Williams J.G.K., Kubelih A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetics markers // Nucl. Acids Res. 1990. V.18. P. 6531-6535.

249. Wood D.A., Craig G.D., Atkey P.T., Newsam R.J., Gull K. Ultrastructural studies on the cultivation processes and growth and development of the cultivated mushroom Agaricus bisporus // Food Microstructure. 1985. V.4. P.143-164.

250. Worral J.J. Somatic incompatibility in basidiomycetes // Mycologia. 1997. V.89(l). P. 24-36.

251. Xu J., Horgen P.A., Anderson J.B. Genetics of mating type in Agaricus bisporus II Program 17lh Fungal Genetics Conference. 1993. P.34.

252. Xu J., Horgen P.A., Anderson J.B.Somatic recombination in the cultivated mushroom Agaricus bisporus II Mycol. Res. 1996. V.100. №2. P. 188-192.

253. Xu J., Kerrigan R.W., Callac P., Horgen P.A., and Anderson J.B. Genetic structure of natural populations of Agaricus bisporus, the commercial button mushroom // J.Hered. 1997. V.88. №6 P.482-488.

254. Xu J., Dcsmcrger C., Callac P. Fine-scale genetic analyses reveal unexpected spatial-temporal heterogeneity in two natural populations of the commercial mushroom Agaricus bisporus II Microbiology. 2002. V.148. P. 1253-1262.

255. Zakharov I.A. Intratetrad mating and its genetic and evolutionary consequences // Russian Journal of Genetics. 2005. V.4I. №4. P. 402-411.

256. Znidarsic P., Pavko A. The morphology of filamentous fungi in submerged cultivations as a bioprocess parameter// Food technol. biotechnol. 2001. V.39. №3. P.237-252.

257. Переплетено ООО «Цифровичок» [phone]; [phone] www.cfr.ru [e-mail]