Морфология мотонейронов спинного мозга в норме и при перерезке седалищного нерва у взрослой крысы: экспериментально-морфологическое исследование тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.04, кандидат биологических наук Благова, Наталья Вениаминовна

• Благова, Наталья Вениаминовна
• кандидат биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Благова, Наталья Вениаминовна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Морфология мотонейронов в норме.

1.2. Распределение мотонейронов, формирующих седалищный нерв, по сегментам спинного мозга.

1.3. Реакция мотонейронов на повреждение их отростков

1.3.1. Перерезка и разрыв периферических нервов.

1.3.2. Пережатие нерва.

1.3.3. Пластика нерва.

1.4. Морфология седалищного нерва.

1.4.1. Исследование седалищного нерва в норме.

1.4.2. Посттравматические изменения в периферическом нерве

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Характеристика экспериментальных животных.

2.2. Техника эксперимента.

2.3. Методы гистологического исследования.

2.4. Статистический анализ.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Локализация и количественный анализ популяции мотонейронов седалищного нерва в норме.

3.2. Посттравматические изменения в популяции мотонейронов после перерезки седалищного нерва.

3.2.1. Количественный анализ мотонейронов на 30-е сутки после перерезки седалищного нерва.

3.2.2. Количественный анализ мотонейронов на 90-е сутки после перерезки седалищного нерва.

3.2.3. Количественный анализ популяции мотонейронов на 150-е сутки после перерезки седалищного нерва.

3.2.4. Количественный анализ популяции мотонейронов на 300-е сутки после перерезки седалищного нерва.

3.3. Исследование седалищного нерва.

3.3.1. Строение седалищного нерва в норме

3.3.2. Изменение структуры седалищного нерва после его перерезки.

4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфология мотонейронов спинного мозга в норме и при перерезке седалищного нерва у взрослой крысы: экспериментально-морфологическое исследование»

Вопрос о восстановлении периферических нервов после повреждения остается актуальным в современной медицине. В зависимости от тяжести повреждения возникающего1 при пересечении, разрывах, компрессии нерва наблюдаются1 длительные нарушения двигательных функций, потеря чувствительности, а так же вегетативно-трофические нарушения, что является следствием дегенерации- нервных волокон в дистальном участке нерва и гибели части аксотомированных нейронов.

Для изучения регенерации периферического нерва в эксперименте часто • используется модель травмы седалищного нерва (СН) крысы. Во многих работах исследуется не конкретная популяции мотонейронов (МН), а общее количество нейронов трех — четырех сегментов поясничного отдела спинного мозга (Terao S. et al., 1997; Behnam-Rasouli М. et al., 2000; Kalmar В. et al., 2002; Tiraihi Т., Masoudian N., 2003; Tiraihi Т., Rezaie M.J., 2003; SaxenaK. et al., 2007).

Однако не все аксоны МН данного отдела спинного мозга участвуют в формировании СН, в связи, с чем потенциальная возможность их регенерации оценивается не объективно. Для корректной оценки количества МН, выживающих после травмы СН, и способных участвовать в его восстановлении, необходимо оценить количественно популяцию МН данного нерва в норме.

Метод, ретроградного маркирования нейронов флуоресцентным красителем, позволяет выявить конкретную популяцию МН, формирующих СН белой нелинейной крысы, как в норме, так и в условиях посттравматической регенерации после повреждения нерва. Выявленная динамика количества МН поясничного отдела спинного мозга и их потенциальных возможностей на разных сроках эксперимента дает возможность определить отдаленные сроки реабилитации поврежденного нерва.

Исходя из этого, были сформулированы цель и задачи исследования.

Цель исследования:

Изучить закономерности распределения популяции мотонейронов, формирующих седалищный нерв в норме и при его перерезке у белых нелинейных крыс.

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:

1. установить общее количество мотонейронов в исследуемой популяции, их посегментарное распределение и размерные группы в норме у белых нелинейных крыс.

2. проверить наличие билатеральной симметрии в популяциях мотонейронов формирующих седалищные нервы с обеих сторон в норме.

3. определить количественно гибель, выживаемость мотонейронов и их размерные группы в динамике с 30-х по 300-е сутки после перерезки седалищного нерва при маркировании раздельно через проксимальную или дистальную культю нерва.

4. выявить морфологические особенности седалищного нерва нa^ уровне верхней трети бедра у белых нелинейных крыс в норме.

5. оценить количественно посттравматические изменения в проксимальной и дистальной культе седалищного нерва на 300-е сутки после его перерезки.

6. определить наиболее отдаленные сроки возможного восстановления двигательной части рефлекторной дуги на основе количественного анализа переживающих мотонейронов.

Научная новизна исследования

Установлены сегментарные уровни локализации популяции мотонейронов, формирующих седалищный нерв белой нелинейной крысы в норме.

- Впервые определен количественный состав и размерные группы в популяции мотонейронов сегментов Ь4, Ь5, Ь6, формирующих седалищный нерв у белых нелинейных крыс в норме.

- Выявлена динамика гибели- мотонейронов от 30-х до 300-х суток после перерезки седалищного нерва.

- Получены' количественные данные о реакции мотонейронов различных размерных групп на перерезку их аксонов.

- Впервые определено количество «регенерирующих» и «резервных» мотонейронов, аксоны которых участвуют в регенерации седалищного нерва.

- Выявлены морфологические особенности посттравматических изменений в проксимальной и дистальной культе седалищного нерва на 300-е сутки после его перерезки.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Популяция мотонейронов, участвующая в формировании седалищного нерва белой нелинейной крысы распределена в трех сегментах Ь4, Ь5, Ь6 спинного мозга с преимущественной локализацией в Ь4 и Ь5.

2. Соотношение мотонейронов размерных групп после аксотомии на разных сроках в посттравматическом периоде носит вариативный характер и к 300-м суткам возвращается к исходным показателям, но на фоне уменьшения количества нейронов в популяции.

Научно-практическая значимость работы.

В работе количественно определена популяция мотонейронов спинного мозга, аксоны, которых участвуют в формировании седалищного нерва белой нелинейной крысы.

Установлена локализация и их количество в отдельных сегментах спинного мозга с правой и левой стороны. Определена в динамике количественно элиминация мотонейронов и переживающие нейроны при перерезке их аксонов в седалищном нерве. Среди переживающих мотонейронов выделены:

1) «регенерирующие» - принимающие участие в регенерации (их аксоны преодолевают рубец),

2) «резервные» (их аксоны не преодолели рубец, но они могут, участвовать при определенных условиях в регенерации или элиминировать).

Анализ элиминирующих, «регенерирующих» и «резервных» мотонейронов позволил определить, что наиболее приемлемыми сроками восстановления перерезанного седалищного нерва являются 30-е и 90-е сутки после его повреждения.

Полученные сведения имеют фундаментальное значение и могут послужить для разработки вопросов посттравматической регенерации периферического нерва.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Клеточная биология, цитология, гистология», Благова, Наталья Вениаминовна

ВЫВОДЫ

1. Популяция мотонейронов, участвующих в формировании седалищного нерва у белой нелинейной крысы в норме, локализуется в сегментах L4—L6 спинного мозга. В пластине Рекседа данная популяция имеет длину 8,51±0,13 мм, расширяясь в местах выхода вентральных корешков. Сегменты имеют разную длину: L4 - 3,07±0,11 мм; L5 - 2,85±0,10 мм; Е6 -2,59±0,09 мм. Посегментарно мотонейроны распределяются неравномерно. Наибольшее их количество локализуется в сегменте L5 - 43,99% на правой и 43,14% на левой стороне (от всей популяции). На долю сегмента L4 приходится 29,57% нейронов справа и 29,70%) слева, сегмента L6 — 26,44% справа и 27,16%) слева.

2. В популяции мотонейронов седалищного нерва в норме выделены две размерные группы: большие (d > 25 мкм) и малые (d < 25 мкм). Группа больших мотонейронов составляет 93,65% с правой и 93,37% с левой стороны, а малых - 6,35% справа и 6,63% слева.

3. После перерезки седалищного нерва в популяции выделены категории элиминирующих и переживающих мотонейронов, последняя включает «регенерирующие» и «резервные» клетки. Среди элиминирующих нейронов выявлена тенденция к увеличению их количества на всех сроках эксперимента, достигающая к 300-м суткам 59,59% от популяции. На сроках 30, 90, 150 и 300 суток количество «регенерирующих» нейронов составляло 23,36%, 34,01%, 30,26% и 24,03% от нормы, а «резервных» -64,26%, 48,01%, 30,97% и 16,38% соответственно. Основываясь на полученных данных, сроки восстановления двигательной части рефлекторной дуги ограничены 90-ми сутками.

4. Перерезка седалищного нерва на ранних сроках приводит к изменению соотношения размерных групп мотонейронов, в сторону увеличения малых нейронов. Среди «регенерирующих» мотонейронов процентное соотношение размерных групп приближается к показателям в норме на 90-е сутки, а среди переживающих - на 300-е сутки эксперимента.

5. В седалищном нерве белой нелинейной крысы количество миелиновых волокон на уровне верхней трети бедра в норме составляет 5371,33±548,69 на правой и 5301,00±499,04 на левой стороне.

Перерезка седалищного нерва на 300-е сутки приводит к изменению архитектоники нерва. В проксимальной культе общее количество миелиновых волокон уменьшается до 79,84%, а в дистальной культе до 62,34% по сравнению с интактным нервом. В дистальной культе появляется мелкопучковость и уменьшается калибр миелиновых нервных волокон вследствие их мультипликаций.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Благова, Наталья Вениаминовна, 2011 год

1. Афанасьев, Ю.И. Морфология процессов адаптации клеток и тканей / Ю.И. Афанасьев. М.: «Медицина», 1971. - 276 с.

2. Благова Н.В., Количественный анализ популяции мотонейронов спинного мозга, участвующих в образовании седалищного нерва / Н.В. Благова, И.Л. Ермолин // Журнал «Морфология» Санкт-Петербург — 2010,-№4.-С. 33.

3. Благова Н.В., Особенности распределения популяции мотонейронов спинного мозга участвующих в седалищном нерве взрослых крыс / Н.В. Благова, И.Л. Ермолин // Журнал теоретической и практической медицины -Воронеж, 2010. — Т.8, спец. выпуск — С. 76-77.

4. Бродский, В.Я. Трофика клетки / В.Я. Бродский М.: Наука. - 1966. -355 с.

5. Быков, В.Л. Частная гистология человека (краткий обзорный курс) / В.Л. Быков. СПб.: СОТИС, 1999. - 300 с.

6. Викторов, И.В. Современные методы морфологических исследований мозга // доклады на научно-методической конференции Института мозга АМН СССР (Москва, 24-26 ноября 1969г.) / М.: ХОЗУ Минавтопрома, 1969. С. 7-10.

7. Выживаемость нейронов после повреждения их отростков у взрослой крысы / И.Л. Ермолин и др. // «Морфология». 2008. - Т. 134, № 5. - С. 68.

8. Гейнисман, Ю.Я. Данные к анализу функционально обусловленных изменений размеров тела и ядра нервной клетки / Ю.Я. Гейнисман // Цитология. 1966. -№ 8, 3. - С. 348-357.

9. Гейнисман, Ю.Я. Структурные и метаболические проявления функции нейрона / Ю.Я. Гейнисман. М.: Наука, 1974. - 207 с.

10. Голуб, Д.М. Регенерация нервов и реиннервация органов / Д.М. Голуб. Минск.: «Наука и техника», 1981. - 111 с.

11. Гретен, А.Г. Проблемные вопросы стимуляции репаративных процессов и организации синаптической зоны в поврежденной области спинного мозга / А.Г. Гретен // Восстановительные процессы в нервной системе и их коррекция. Горький, 1990. - С. 58-60.

12. Григорович, К.А. Хирургия нервов // Л. « Медицина», 1969. 446 с.

13. Григорович, К.А. Хирургическое лечение повреждений нервов // Л.: «Медицина», 1981.-302 с.

14. Динамика количества чувствительных и моторных нейронов, участвующих в регенерации седалищного нерва крысы после его перерезки / Л.Б. Тимофеева и др. // Морфологические ведомости. 2011. -№ 1. - С. 52-57.

15. Дойников, Б.С. Избранные труды по нейроморфологии и неврологии / Б.С. Дойников. М.: Медгиз, 1955. - 250 с.

16. Дьячкова, Л.Н. Нейронная организация наружной базилярной области спинного мозга кошки / Л.Н. Дьячкова, П.Г. Костюк, Н.Х. Погорелая // Нейрофизиология. 1972. - 4, № 3. - С. 296-302.

17. Ермолин, И.Л. Количественная оценка маркированных нейронов спинномозгового узла Т13 в условиях регенерации периферического нерва у взрослой крысы // Нижегородский медицинский журнал. 2006. - № 2. — С. 24-29.

18. Ермолин, И.Л. Морфология спинномозгового узла в норме и в условиях деафферентации у взрослой крысы: автореф. дис. .док. биол. наук: 03.00.25 / Ермолин Игорь Леонидович. Саранск, 2006. — 42 с.

19. Зяблов, В.И. Проблемные вопросы регенерации нервной системы / В.И. Зяблов // Симферополь: «Таврида», 1986. 38 с.

20. Жаботинский, Ю.М. Нормальная и патологическая морфология нейрона / Ю.М. Жаботинский Л.: Медицина, 1965. - 322 с.

21. Карлсон, Б.М. Регенерация / Б.М. Карлсон М.: «Наука», 1986. -296 с.

22. Лапин, С.К. Изменения в нервной системе после реимплантации конечности, сопровождающиеся осложнениями (экспериментальное морфологическое исследование) / С.К. Лапин, В.В. Шувалов // Эксперимент, хирур. и анастезиол. 1965. — № 4. — С. 58-62.

23. Морфология популяций чувствительных и моторных нейронов, формирующих седалищный нерв в норме и при его перерезке у взрослых крыс / Л.Б. Тимофеева и др. // Современные технологии в медицине. -2010.-№3.-С. 18-23.

24. Попова, Э.Н. Морфология приспособительных изменений нервных структур / Э.Н. Попова, С.К. Лапин, Г.Н. Кривицкая. М.: Медицина, 1976.-264 с.

25. Снесарев, П.Е. Общая гистология мозговой травмы / П.Е. Снесарев. -М.: Медгиз, 1946.-212 с.

26. Струков, А.И. Морфология компенсаторно-приспособительных процессов в нервной системе / А.И. Струков, С.К. Лапин // Архив патологии. 1964. - Т. 18, № 8. - С. 21.

27. Устойчивость чувствительных и моторных нейронов в ответ на перерезку их периферических отростков / Л.Б. Тимофеева и др. // Современные технологии в медицине. 2011. - № 2. - С. 114-117.

28. Царев, A.A. Топографо-анатомические особенности ветвления нервов задних конечностей крыс / А.А.Царев // Морфология. — 2008. — т. 2, вып. З.-С. 81-83.

29. Чайковский, Ю.Б. Регенерационная неврома // Морфология. 1999. -Т. 115, № 1.-С. 55-67.

30. Челышев Ю.А. Факторы поддержания регенерации периферических нервов // Успехи физиологических наук. 1995. -т. 26. — С. 57-77.

31. Чумасов, Е.И. О структуре периневрия периферической нервной системы / Е.И. Чумасов // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. -1975. Т. 68, № 4. - С. 29-34.

32. Щудло, М.М. Реактивные свойства тканевых компонентов периферического гемато-неврального барьера их роль в репаративной регенерации нервных стволов: автореф. дис. .док. мед. наук: 03.00.11 / Щудло Михаил Моисеевич. Курган, 1999. - 37 с.

33. Acute implantation of an avulsed lumbosacral ventral root into the rat conus medullaris promotes neuroprotection and graft reinnervation by autonomic and motor neurons / T.X. Hoang et al. // Neuroscitnce. — Vol. 138, N 4.-2006.-P.l 149-1160.

34. Adult spinal motoneurons remain viable despite prolonged absence of functional synaptic contact with muscle / S. Vanden-Noven et al. // Exp. Neurol. 1993.-Vol. 123, N 1.-P. 147-156.

35. Ahmed, A.M. The blood-nerve barrier and reconstitution of the perineurium following nerve grafting / A.M. Ahmed, R.O. Weller // Neuropath, appl. neurobiol. 1979. - Vol. 5, N 6. - P. 469-483.

36. Aitken, J.T. Neuron size and neuron population density in the lumbosacral region of the cat's spinal cord / J.T. Aitken, J.E. Bridger // J. Anat. 1961. -Vol. 95, N1.-P. 38-53.

37. Aitken, J.T. Retrograde changes in fibre size following nerve section / J.T. Aitken, P.K. Thomas // J. Anat. 1962. - Vol. 96, N 1. - P. 121-129.

38. Andersen, P. The mechanical properties and innervation of fast and slow motor units in the intercostal muscles of the cat / P. Andersen, T.A. Sears // J. Physiology.- 1964.-Vol. 173, N1.-P. 114-129.

39. A novel role for the myelin-associated glycoprotein as an inhibitor of axonal regeneration / G. Mukhopadhyay et al. // Neuron. 1994. - Vol. 13. — P. 812-819.

40. Assessment of motoneuron death during development following neonatal nerve crush and Mg2+ treatment / D. Kapoukranidou et al. // Med. Sci. Monit. -2005.-Vol.11,N 10.-P. 373-379.

41. Assessment-of recovery following a novel partial nerve lesion in a rat model / T.S Malushte et al. // J. Muscle. Nerve. 2004. - Vol. 30, N 5. - P. 609-617.

42. Axonal regrowth through collagen tubes bridging the spinal cord to nerve roots / S. Liu et al. // J. Neurosci. Res. 1997. - Vol. 49, N 4. - P. 425-432.

43. Barr, M.F. A quantitive study of certain morphological changes in spinal motor neurons during axon reaction / M.F. Barr, J.D. Hamilton // J. Comp. Neurol. 1948. - Vol.89., N 2. - P. 13-122.

44. Basso, D.M. Neuroanatomical substrates of functional recovery after experimental spinal cord injury: implications of basic science research for human spinal cord injury // Phys. Ther. 2000. - Vol. 80. - P. 808-817.

45. BDNF prevents and reverses adult rat motor neuron degeneration and induces axonal outgrowth / A. Kishino et al. // Exp. Neurol. — 1997 Vol. 144. -P. 273-286.

46. BDNF/TrkB signaling regulates HNK-1 carbohydrate expression in regenerating motor nerves and promotes functional recovery after peripheral nerve repair / K.A. Eberhardt et al. // Exp. Neurol. 2006. - Vol. 198. - P. 500-510.

47. Bertelli, J. Selective motor hyperreinnervation using motor rootlet transfer: an experimental study in rat brachial plexus / J. Bertelli, J.C. Mira, M. Pecot-Dechavassine // Exp. Neurosurg. 1997. - Vol. 87, N 1. - P. 79-84.

48. Bodian, D. The regenerative cycle of motor neurons, with special reference to phosphates activity / D. Bodian, R.C. Mellors // J. Exp. Med. — 1945.-Vol. 81.-P. 469-488.

49. Brannstrom, T. Recovery of synapses in axotomized adult cat spinal motoneurons after reinnervation into muscle / T. Brannstrom, J.-O. Kellerth // Exp. Brain. Res.- 1999.- Vol.125, N 1.- P. 19-27.

50. Brown, M.C. A reassessment of the accuracy of reinnervation by motoneurons following crushing or freezing of the sciatic or lumbar spinal nerves of rats / M.C. Brown, V.J. Hardman // Brain Research. 1987. - Vol. 110, N3. - P. 695-705.

51. Bruner, R. Localiztion and neurophysiological properties of motoneurones of the m. triceps surae of the rat after retrograde labelling with Evans blue / R. Bruner, P. Zimmermann, F.W. Klussmann // Cell Tissue Res. — 1980. Vol. 212,N1.-P. 73-81.

52. Brushart, T.M. Alteration in connections between muscle and anterior horn motoneurons after peripheral nerve repair / T.M. Brushart, M.M. Mesulam // Science. 1980. - Vol. 9, N 208. - P. 603-605.

53. Brushart, T.M. Motor axons preferentially reinnervate motor pathways // J. Neuroscience. 1993. - Vol. 13, N 6. - P. 2730-2738.

54. Brushart, T.M. Preferential Reinnervation of Motor Nerves by Regenerating Motor Axons // J. Neuroscience. 1988. - Vol. 8, N 3. - P. 10261031.

55. Brushart, T.M. Specificity of muscle reinnervation after epineurial and individual fascicular suture of the rat sciatic nerve / T.M. Brushart, E.C. Tarlov, M.M. Mesulam // J. Hand Surg Am. 1983. - Vol.8, N 3. - P. 248-253.

56. Bryan, R.N. Evidence for a common location of alpha and gamma motoneurons / R.N. Bryan, D.L. Trevino, W.D. Willis // Brain Research. -1972.-Vol. 38.-P. 193-196.

57. Cajal, S.R. Degeneration and regeneration of neurous system / S. R. Cajal -London, 1928.-85 p.

58. Calibration of the stereological estimation of the number of myelinated axons in the rat sciatic nerve: A multicenter study / S. Kaplan et al. // J. Neurosci Methods. 2010. - Vol. 187, N 1. - P. 90-99.

59. Carlson, J. Axonal atrophy from permanent peripheral axotomy in adalt cat / J. Carlson, A.C. Lais, P.J. Dyck // Neuropathol. Exp. Neurol. 1979. - Vol. 38, N6.-P. 579-586.

60. Carter, D.A. The numbers of unmyelinated and myelinated axons in normal and regenerated rat saphenous nerves / D.A. Carter, S.J. Lisney // J. Neurol. Sciences. 1987. - Vol.80, N 2-3. P. 163-171.

61. Castro, J. Fiber composition of the rat sciatic nerve and its modification during regeneration through a sieve electrode / J. Castro, P. Negredo, C. Avendano // Brain Res. 2008. - Vol. 1190. - P. 65-77.

62. Cell death after dorsal root injury / D J. Chew et al. // J. Neurosci Lett. — 2008. Vol. 433, N 3. - P. 231-234.

63. Chu, T. Motor nerve graft is better than sensory nerve graft for survival and regeneration of motoneurons after spinal root avulsion in adult rats / T. Chu, Y. Du, W. Wu // Experimental Neurology. 2008. - Vol. 212, N 2. - P. 562565.

64. Contributions of Pathway and Neuron to Preferential Motor Reinnervation / T.M. Brushart et ah. // J. Neuroscience. 1998. - Vol. 18, N 21. - P. 86748681.

65. Crockett, D.P. Plantar motoneuron columns in the rat / D.P. Crockett, S.L. Harris, M.D. Egger // J Comp Neurol. 1987. - Vol. 265, N 1. - P. 109-118.

66. Cytoskeletal and activity-related changes in spinal motoneurons after root avulsion / C. Penas et ah. // J. Neurotrauma. 2009. - Vol. 25, N 5. - P. 763779.

67. Differential growth of axons from sensory and motor neurons through a regenerative electrode: a stereological, retrograde tracer, and functional study in the rat / P. Negredo et ah. // Neuroscience. 2004. - Vol. 128. - P. 605-615.

68. Delayed implantation of a peripheral nerve graft reduces motoneuron survival but does not affect regeneration following spinal root avulsion in adult rats / W. Wu et ah. // J. Neurotrauma. 2004. - Vol. 21, N 8. - P. 1050-1058.

69. Delayed loss of spinal motoneurons after perifperal nerve injuiy in adalt rats: a quantative morphological stady / J. Ma et ah. // Exp. Brain Res. 2001. -Vol. 139, N2.-P. 216-223.

70. Desker, R.S. Retrograde responses of developing lateral motor column neurons / R.S. Desker // J. Comparative Neurology. 1978. - P. 635-660.

71. Early nerve repair after injury to the postganglionic plexus: an experimental study of sensory and motor neuronal survival in adult rats / J. Ma et al. // Scand J. Plast. Reconstr. Surg. Hand. Surg. 2003. - Vol. 37, N 1. -P. 1-9.

72. Eccles, J.C. Numbers and contraction values of individual motor units examined in some muscles of the limb / J.C. Eccles, C.S. Sherrington // Proceedings of the Royal Society. 1930. - Vol. 106. - P. 326-357.

73. Effect of low-intensity millimeter wave electromagnetic radiation on regeneration of the sciatic nerve in rats / L.I. Kolosova et al. // Bioelectromagnetics. 1996. - Vol. 17, N 1. - P. 44-47.

74. Effects of N-acetyl-cysteine on the survival and regeneration of sural sensory neurons in adult rats / D. Welina et al. // Exp. Brain. Res. — 2009. -Vol. 1287, N 1,-P. 58-66.

75. Egger, D.M. Quantitative morphological analysis of spinal motoneurons / D.M. Egger, D.L. Egger // Brain Research. 1982. - Vol. 253. - P. 19-30.

76. Electrophysiological study of regenerated rabbit tibial and peroneal nerves: autologous versus non-neural grafts / K. Wessel et al. // Electromyogr. Clin. Neurophysiol. 1994. - Vol. 34, N 5. - P. 259-264.

77. Endogenous repair after spinal cord contusion injuries in the rat / M.S. Beattie et al. // Exp. Neurol. 1997. - Vol. 148. - P. 453-463.

78. End-to-side neurorrhaphy resulting in limited sensory axonal regeneration in a rat model / G. Tarasidis et al. // Ann. Otol. Rhinol. Laryngol. 1997. -Vol. 106, N6.-P. 506-512.

79. Exogenous brain-derived neurotrophic factor regulates the synaptic composition of axonally lesioned and normal adult rat motoneurons / L.N. Novikov et al. // Neuroscience 2000. - Vol. 100, N 1. - P. 171 -181.

80. Fabricius, C. Dimensions of individual alpha and gamma motor fibres in the ventral funiculus of the cat spinal cord / C. Fabricius, C.-H. Berthold, M. Rydmark // J. Anat. 1994. - Vol. 184. - P. 319-333.

81. FK 506 increases peripheral nerve regeneration after chronic axotomy but not after chronic Schwann cell denervation / O.A.R. Sulaiman et al. // Experimental Neurology. 2002. - Vol. 175. - P. 127-137.

82. Fu, S.Y. The cellular and molecular basis of peripheral nerve regenerating / S.Y. Fu, T. Gordon // Mol Neurobiol. 1997. - Vol.14. - P.67-116.

83. Giannini, C. Number, size, and class of peripheral nerve fibers regenerating after crush, multiple crush, and graft / C. Giannini, A.C. Lais, P J. Dyck // Brain Res. 1989. - Vol. 500, N 1-2. - P. 131-138.

84. Gilmour, J.A. The fate of motoneurons in the spinal cord after peripheral nerve repair: a quantitative study using the neural tracer horseradish peroxidase / J.A. Gilmour, L.M. Myles, M.A. Glasby // J. Neurosurg. 1995. - Vol. 82, N 4. - P. 623-629.

85. Goettl, V.M. Sciatic nerve axotomy in aged rats: response of motoneurons and the effect of GM1 ganglioside treatment / V.M. Goettl, N.H. Neff, M. Hadjiconstantinou // Brain Research. 2003. - Vol. 968. - P. 44-53.)

86. Gu, Y. M. The effects of remaining axons on motoneuron survival and NOS expression following axotomy in the adult rat / Y.M. Gu, Z. Spasic, W.T. Wu // Dev. Neurosci. 1997. - Vol. 19. - P. 255-259.

87. Havton, L.A. Partial peripheral motor nerve lesions induce changes in the conduction properties of remaining intact motoneurons / L.A. Havton, J.R. Hotson, J.O. Kellerth // Muscle Nerve. 2001. - Vol. 24, N 5. - P. 662-666.

88. Holland, G.R. The number and size of axons central and peripheral to inferior alveolar nerve injuries in the cat / G.R. Holland, P.P. Robinson // J. Anat.- 1990.-Vol. 173.-P. 129-137.

89. Horch, K.W. On the number and nature of regenerating myelinated axons after lesions of cutaneous nerves in the cat / K.W. Horch, S.J. Lisney // J. Physiol. 1981.-Vol. 313.-P. 275-286.

90. Hulsebosh, C.E. Recent advances in pathophysiology and treatment of spinal cord injury // Adv. Physiol, Edu. 2002. - Vol. 26. - P. 238-255.

91. Ide, C. Peripheral nerve regeneration // Neurosci Res. 1996. - Vol. 25. -P.101-121.

92. Identification of myelin-associated glycoprotein as a major myelin-derived inhibitor of neurite outgrowth / L. McKerracher et al. // Neuron. -1994.-Vol. 13.-P. 805-811.

93. Immunohistochemical study of spinal motor neurons following sciatic nerve repair in adult rat / A. Roozbehi et al. // Yakhteh Madical J. 2006. -Vol. 8, N. 3. -P.184-189.

94. Inaccurate projection of rat soleus motoneurons: a comparison of nerve repair techniques / Bodine-Fowler et al. // Muscle Nerve. 1997. - Vol. 20. -P. 29-37.

95. Induction of transmitter release at the neuromuscular junction prevents motoneuron death after axotomy in neonatal rats / L. Greensmith et al. // Neuroscience. 1996. - Vol.71, N 1. - P. 213-20.

96. Influence of age on the late retrograde effects of sciatic nerve section in the rat / E. Kerezoudi et al. // J. Anat. 1995. - Vol. 187, N 1. - P. 27-35.

97. Influence of aging on peripheral nerve function and regeneration / E. Verdu et al. // J. Periph Nerv Syst. 2000. - Vol. 5. - P. 191-208.

98. Innervation of the caudal denervated ventral roots and their target muscles by the rostral spinal motoneurons after implanting a nerve autograft in spinal cord-injured adult marmosets / S. Liu et al. // Neurosurg. 2001. - Vol. 94, N l.-P: 82-90.

99. Jabbar, A. Sciatic nerve; Motor and sensory neurons of the rat. A horseradish peroxidase study / A. Jabbar, A. Naqvi, M. Haider // Professional Med J. 2007. - Vol. 14, N 2. - P. 328-336.

100. Janjua, M.Z. Organization of neurons forming the femoral, sciatic, common peroneal and tibial nerves in rats and monkeys / M.Z. Janjua, S.K. Leong // Brain Res. 1984. - Vol. 310, N 2. - P. 311 -323.

101. Jenq, C.B. Postnatal loss of axons in normal rat sciatic nerve / C.B. Jenq, K. Chung, R.E. Coggeshall // J. Comp. Neurol. 1986. - Vol. 244, N 4. - 445450.

102. Jenny, A.B. Principles of motor organisation of the monkey cervical spinal cord / A.B. Jenny, J. Inukai // J. Neuroscience. 1983. - Vol. 3. — P. 567575.

103. Johnson, I.P. A quantitative ultrastructural comparison of alpha and gamma motoneurons in the thoracic region of the spinal cord of the adult cat // J. Anat. 1986. - Vol. 147. - P. 55-72.

104. Johnson, LP. Ultrastructure of axotomized alpha and gamma motoneurons in the cat thoracic spinal cord / LP. Johnson, T.A. Sears // Neuropathology and Applied Neurobiology. 1988. - Vol. 15, N 2. - P. 149-163.

105. Kaar, G.F. The development of alpha and gamma motoneuron fibres in the rat. I. A comparative ultrastructural study of their central and peripheral axon growth / G.F. Kaar, J.P. Fraher // J. Anat. 1985. - 141. - P. 77-88.

106. Kao, C.C. Axonal regeneration across transected mammalian spinal cords: An electron microscopic study of delayed microsurgical nerve grafting / C.C. Kao, L.W. Chang, J.M.B. Bloodworth // Exp. Neurology. 1977. - Vol.54., N.3. — P.591-615.

107. Katsuki, M. Reinnervation of denervated muscle by transplantation of fetal spinal cord to transected sciatic nerve in the rat / M. Katsuki, Y. Atsuta, T. Hirayama // Brain Res. 1997. - Vol. 771, N 1. - P. 31-36.

108. Kawamura, Y. Permanent axotomy by amputation results in loss of motor neurons in man / Y. Kawamura, P.J. Dyck // J. Neuropathol. Exp. Neurol. -1981. Vol. 40, N 6. - P. 658-666.

109. Kawasaki, Y. Identification of myelinated motor and sensory axons in a regenerating mixed nerve / Y. Kawasaki, K. Yoshimura, K. Harii // J. Hand Surgery. 2000. - Vol. 25A,N l.-P. 104-111.

110. Kline, D.G. A comparative study of response of species to peripheral nerve injury. I. Severance / D.G. Kline, G.J. Hayes, A.S. Morse // J. Neurosurg. 1964. - Vol. 21. - P. 968-979.

111. Kline, D.G. A comparative study of response of species to peripheral nerve injury. II. Crush and severance with primary suture / D.G. Kline, G.J. Hayes, A.S. Morse // J. Neurosurg. 1964. - Vol. 21. - P. 980-988.

112. Kobbert, C. Topographic representation of the sciatic nerve motor neurons in the spinal cord of the adult rat correlates to region-specific activation patterns of microglia / C. Kobbert, S. Thanos // J. Neurocytology. 2000. - Vol. 29. - P. 271-283.

113. Krinke, G. Spinal radiculoneuropathy in aging rats: demyelination secondary to neuronal dwindling? // Acta Neuropathol. 1983. - Vol. 59, N 1. — P. 63-69.

114. Kuffler, S.W. Function of medullated nerve fibres in mammalian ventral roots: efferent spindle innervation / S.W Kuffler, C.C. Hunt, J.P. Quilliam // J. Neurophysiology.- 1951.-Vol. 14,N l.-P. 29-54.

115. Lagerbak, P.A. An ultrastructural study of cat lumbosacral garama-motoneurons after retrograde labelling with horseradish peroxidase // J. Comp Neurol. 1985. - Vol. 240, N 3. - P. 256-264.

116. Le Beau, J.M. Ultrastructural and morphometric analysis of long-term peripheral nerve regeneration through silicone tubes / J.M. Le Beau, M.H. Ellisman, H.C. Powell // J. Neurocytol. 1988. - Vol.17, N 2. - P. 161-172.

117. Lieberman, A.R. The axon reaction: a review of the principal features of perikarial responses to axon injury // Int. Rev. Neurobiol. 1971. - Vol. 14. — P. 49-124.

118. Long-term observation of the effect of peripheral nerve injury in neonatal and young rats / O. Watanabe et al. // Plast. Reconstr. Surg. 1998. - Vol.102, N 6. - P. 2072-2084.

119. Lowrie, M.B. Repeated injury to the sciatic nerve in immature rats causes motoneuron death and impairs muscle recovery / M.B. Lowrie, G. Vrbova // Experimental neurology. 2001. - Vol. 171, N 1. - P. 170-175.

120. Lowrie, M.B. Time course of motoneurone death after neonatal sciatic nerve crush in the rat / M.B. Lowrie, D. Lavalette, C.E. Davies // Dev. Neurosci. 1994. - Vol. 16, N 5-6. - P. 279-284.

121. Lutz, B.S. Morphological and functional evaluation of leg-muscle reinnervation after coupler coaptation of the divided rat sciatic nerve / B.S. Lutz, D. Lidman // Microsurgery. 2005. - Vol. 25, N 3. - P. 235-240.

122. Madison, R.D. Reinnervation accuracy of the rat femoral nerve by motor and sensory neurons / R.D. Madison, S.J. Archibald, T.M. Brushart // J: Neurosci. 1996.-Vol. 16, N 18.-P. 5698-5703.

123. Madison, R.D. The specificity of motor neurone regeneration (preferential reinnervation) / R.D. Madison, G.A. Robinson, S.R. Chadaram // Acta Physiologica. 2007. - Vol. 189, N 2. - P. 201 - 206.

124. Madorsky, S.J. Motor versus sensory neuron regeneration through collagen tubules / S.J. Madorsky, J.E. Swett, R.L. Crumley. // Plast. Reconstr. Surg. 1998. - Vol.102, N-2. - P. 430-478.

125. Martin, L. J. Motor neuron degeneration after sciatic nerve avulsion in adult rat evolves with oxidative / L.J. Martin, A. Kaiser, A.C. Price // J. Neurobiol. 1999. - Vol. 40. -P. 185-201.

126. Martin, L. J. Neuronal cell death in nervous system development, disease, and injury (Review) // Int. J Mol Med. 2001. - Vol. 7, N 5. - P. 455-478.

127. Mechanical anastomosis of nerves: a histological and functional comparison to conventional suturing / C.D. Prevel et al. // Ann Plast Surg. -1994.-Vol. 33, N6.-P. 600-605.

128. Meek, M.F. Functional recovery after transection of the sciatic nerve at an early age: a pilot study in rats / M.F. Meek, J.I. Jkema-Paassen, A. Gramsbergen // Developmental Medicine & Child Neurology. 2007. - Vol. 49. - P. 377-379.

129. Misdirection of regenerating motor axons after nerve injury and repair in the rat sciatic nerve model / G.C. de Ruiter et al. // Exp. Neurol. 2008. - Vol. 211, N2.-P. 339-350.

130. Mitsuinoto, H. Murine motor neuron disease (the wobbler mouse) degeneration and regeneration regeneration of the lower motor neuron / H. Mitsumoto, W.G. Bradley // Oxford J. Medicine Brain. 1982. - Vol. 105, N 4. -P. 811-834.

131. Molander, C. The cytoarchitectonic organization of the spinal cord in the rat. I. The lower thoracic and lumbosacral cord / C. Molander, Q. Xu, G. Grant // J. Comp. Neurol. 1984.-Vol. 230, N 1.-P. 133-141.

132. Motoneurons innervating partially denervated rat hind limb muscles remain susceptible to axotomy-induced cell death / D.I. Harding et al., // Neuroscience. 1998. - Vol. 86, N 1. - P. 291-299.

133. Motoneurons of the rat sciatic nerve / J.E. Swett et al. // Exp. Neurol. -1986. Vol. 93, N 1. - P. 227-252.

134. Motoneuron survival after chronic and sequential peripheral nerve injuries in the rat / Q.G. Xu et al. // J. Neurosurg. 2010. - Vol. 112, N 4. - P. 890899.

135. Motoneuron survival after neonatal peroneal nerve injury in the rat-evidence for the sparing effect of reciprocal inhibition / H.J. Waters et al. // Exp. Neurol.- 1998.-Vol. 152, N 1.-P. 95-100.

136. Motorneuron protection by N-acetyl-cysteine after ventral root avulsion and ventral rhizotomy / C.-G. Zhang et al. // British J. of Plastic Surgery. -2005. Vol.58. - P. 765-773.

137. Motor neurons essential for normal sciatic function in neonatally nerve-injured rats / A. Kakegawa et al. // Neuroreport. 2006. - Vol.17, N11. - P. 1149-1152.

138. Motor neuron regeneration through end-to-side repairs is a function ofdonor nerve axotomy / M.J. Brenner et al. // Plastic and reconstructive surgery.i-2007.-Vol. 120, N 1.-P. 215-223.

139. Motor nuclei of peroneal muscles in the cat spinal cord / G. Horcholle-Bossavit et al. // J. Comp. Neurol. 1988. - Vol. 277, N 3. - P. 430-40.

140. Motor, sympathetic and sensory innervation of rat skeletal muscles / J. M. Peyronnard et al. // Brain Res. 1986. - Vol. 373. - P. 288-302.

141. Nissl, F. Über die Veränderung der Ganglionsellen on Pacialishern dos Kanichens nach Ausroisoung der Nerven // All-gem. Ztachr. f. Psych, at. 1892. -Vol. 48.-P. 197-198.

142. Nogo-A is myelin-associated neurite outgrowth inhibitor and an antigen for monoclonal antibody IN-1 / M.S. Chen et al. // Nature. 2000. - Vol. 403. -P. 434-438.

143. Novikov, L. Brain-derived neurotrophic factor promotes axonal regeneration and long-term survival of adult rat spinal motoneurons in vivo / L. Novikov, L. Novikova, J.-O. Kellerth // J. Neuroscience. 1997. - Vol. 79, N 3. -P. 765-774.

144. Novikova, L. Brain-derived neurotrophic factor reduces necrotic zone and supports neuronal survival after spinal cord hemisection in adult rats / L. Novikova, L. Novikov, J.-O. Kellerth // J. Neuroscience. 1996. - Vol. 220, N 3.-P. 203-206.

145. Novikova, L. Persistent neuronal labeling by retrograde fluorescent tracers: a comparison between Fast Blue, Fluouo-Gold and various dextran conjugates / L. Novikova, L. Novikov, J.-O. Kellerth // J Neuroscience. 1997. -Vol. 74-P. 9-15.

146. Novikova, L. Short communication effects of neurotransplants and BDNF on the survival and regeneration of injured adult spinal motoneurons / L. Novikova, L. Novikov, J.-O. Kellerth // J. Neuroscience. 1997. - Vol. 9, N 12. - P. 2274-2777.

147. Nyberg-Hansen, R. Anatomical demonstration of gamma motoneurons in the cat's spinal cord // Experimental Neurology. 1965. — Vol. 13, N 1. — P. 71-81.

148. Oxidized galectin-1 advances the functional recovery after peripheral nerve injury / T. Kadoya et al. // Neuroscience Letters. Vol. 380, N 3. — 2005.-P. 284-288.

149. Pellegrini, M. Identification of different size motoneurons labeled by the retrograde axonal transport of horseradish peroxidase / M. Pellegrini, O. Pompeiano, N. Corvaja // J. Phisiology. 1977. - Vol. 368, N 1-2. - P. 161-163.

150. Peripheral and spinal motor reorganization after nerve injury and repair / A. Valero-Cabré et al. // J. Neurotrauma. 2004. - Vol. 21, N 1. - P. 95-108.

151. Peripheral pathways regulate motoneuron collateral dynamics / R. Redett et al. // J. Neurosci. 2005. - Vol. 25, N 41. - P. 9406-9412.

152. Permanent axotomy, a model of axonal atropy and secondary segmental demyelination and remyelination / P.J. Dyck et al. // Annals of Neurology. — 1981.-Vol. 9.-P. 575-583.

153. Peyghambari, F. A morphometric study on the early stages of dendrite changes in the axotomized motoneuron of the spinal cord in newborn rats / F. Peyghambari, M.R. Valojerdi, T. Tiraihi // Neurol. Res. 2005. - Vol. 27, N 6. -P. 586-590.

154. Peyronnard, J.M. Muscle reorganization after partial denervation and reinnervation / J.M. Peyronnard, L. Charron // Muscle Nerve. 1980. - Vol. 3, N6.-P. 509-518.

155. Piehl, F. Expression of NMDA receptor rnRNAs in rat motoneurons is down-regulated after axotomy / F. Piehl, G. Tabar, S. Cullheim // Eur. J. Neurosci. 1995. - Vol. 7. - P. 2101-2110.

156. Plunet, W. Promoting axonal regen eration in central nervous system by enhancing the cell body response to axotomy / W. Plunet, B.K. Клоп, W. Tetzlaff // J. Neurosci. Res. 2002. - Vol. 68, N 1. - P. 1-6.

157. Post-Operative Time Effects after Sciatic Nerve Crush on the Number of Alpha Motoneurons Using a Stereological Counting Method (Disector) / M. Behnam-Rasouli et al. // Iran. J. Biomed. 2000. - Vol. 4. - P. 45-49.

158. Prodanov, D. Morphometric analisis of the fiber populations of the rat sciatic nerve, its spinal roots, and its major branches / D. Prodanov, H.K. Feirabend // J. Comp Neurol. 2007. - Vol. 503, N1. - P. 85 - 100.

159. Puigdellivol-Sanchez, A. Estimations of topographically correct regeneration to nerve branches and skin after peripheral nerve injury-and repair / A. Puigdellivol-Sanchez, A. Prats-Galino, C. Molander // Brain Res. 2006. -Vol. 1098, N 1.-P. 49-60.

160. Quantitative image analysis of the chromatolysis in rat facial and hypoglossal motoneurons following axotomy with and without reinnervation / O. Guntinas-Lichius et al. // Cell Tissue Res. 1996. - Vol. 286, N 3. - P. 537-541.

161. Reinnervation of avulsed and reimplanted ventral rootlets in the cervical spinal cord of the cat / C.F. Hoffmann et al. // J. Neurosurg. 1996. - Vol. 84, N2.-P. 234-243.

162. Regeneration of the motor component of the rat sciatic nerve with local administration of neurotrophic growth factor in silicone chambers / X. Santos et al. // J. Reconstr. Microsurg. 1999. - Vol. 15, N 3. - P. 207-213.

163. Retrograde axonal transport of the alpha-subunit of the GTR-binding protein GZ in mouse sciatic nerve: a potential pathway for signal transduction in neurons / M.F. Crouch et al. // J. Neurosci. 1994. - Vol. 6. - P. 626-631.

164. Robinson, G.A. Influence of terminal nerve branch size on motor neuron regeneration accuracy / G.A. Robinson, R.D. Madison // Exp. Neurol. 2009. — Vol. 215, N2.-P. 228-235.

165. Robinson, G.A. Manipulations of the mouse femoral nerve influence the accuracy of pathway reinnervation by motor neurons / G.A. Robinson, R.D. Madison // Exp. Neurol. 2005. - Vol. 1 - P. 39-45.

166. Robinson, G.A. Motor neurons can preferentially reinnervate cutaneous pathways / G.A. Robinson, R.D. Madison // Exp. Neurol. 2004. - Vol. 190, N 2.-p. 407-13.

167. Rokx, J.T.M. Identification of alpha and gamma trigeminal motoneurones by the vibratome paraplast technique for HRP histochemistry / J.T.M. Rokx, R.S.B Liem, J.D. van Willigen // Acta anatomica. 1987. - Vol. 129. - P. 333336.

168. Romanes, G.J. Motor localization and the effects of nerve injury on the ventral horn cells of the spinal cord // J. Anat. 1946. - Vol. 80. - P. 117-131.

169. Rootman, D.S. Postnatal histogenetic death of rat forelimb motoneurons / D.S. Rootman, W.G. Tatton, M. Hay // J. Comp. Neurol. 1981. - Vol. 199, N l.-P. 17-27.

170. Saxena, K. FK506 protects neurons following peripheral nerve injury via immunosuppression / K. Saxena, N. Patro, I. Patro // Cell Mol Neurobiol. -2007. Vol. 27, N 8. - P. 1049-1057.

171. Scarisbrik, I.A. The arrangement of forearm motoneurons in young and adult rats and the possibility of naturally occurring motoneuron death / I.A. Scarisbrik, P. Haase, A.W. Hrycyshyn // J. Anat. 1990. - Vol.171. -P. 57-67.

172. Schmalbruch, H. Fiber composition of the rat sciatic nerve // Anat. Res. -1986.-Vol. 215, N l.-P. 71-81.

173. Schmalbruch, H. Motoneuron death after sciatic nerve section in newborn rats // J. Comp. Neurol. 1984. - Vol. 224, N 2. - P. 252-258.

174. Schmalbruch, H. Neurotrophin-4/5 postpones the death of injured spinal motoneurons in newborn rats / H. Schmalbruch, A. Rosenthal // Brain Res. -1995. Vol. 700, N 1-2. - P. 254-260.

175. Seniuk, N.A. Neurotrophic factors: role in peripheral neuron survival and axonal repair // J. Reconstr. Microsurg. 1992. - Vol. 8, N 5. - P. 399-404.

176. Sharma, A. K. Age changes in the tibial and plantar nerves of the rat / A. K. Sharma, S. Bajada, P. K. Thomas // J. Anat. 1980. - Vol. 130, N 2. - P. 417-428.

177. Specific and nonspecific regeneration of motor axons after sciatic nerve injury and repair in the rat / H. Aldskogius et al. // J. Neurol. Scl. 1987. -Vol. 80, N2-3.-P. 249-257.

178. Species and strain differences in rodent sciatic nerve anatomy: implications for studies of neuropathic pain / M. Rigaud et al. // Pain Suppl. -2008.-Vol. 136, N1-2.-P. 188-201.

179. Stichel, C.C. Experimental strategies to promote axonal regeneration after traumatic central nervous system injury / C.C. Stichel, H.W. Muller // Prog. Neurobiol. 1998. - Vol. 56, N 2. - P. 119-148.

180. Strain and model differences in behavioral outcomes after spinal cord injury in rat / C.D. Mills et al. // J. Neurotrauma. 2001. - Vol. 18, N 8. - P. 743-756.

181. Superior muscle reinnervation after autologous nerve graft or poly-1-lactide-caprolactone (PLC) tube implantation in comparison to silicone tube repair / Valero-Cabre et al. // J. Neurosci. Res. 2001. - Vol. 63, N 2. - P. 214-223.

182. Survival and regeneration of cutaneous and muscular afferent neurons after peripheral nerve injury in adult rats / D. Welin et al. // Exp. Brain. Res. -2008.-Vol. 186, N2.-P. 315-323.

183. Survival and regeneration of motoneurons in adult rats by reimplantation of ventral root following spinal root avulsion / H. Chai et al. // Neuroreport. — 2000. Vol. 11, N 6. - P. 1249-1252.

184. Survival, regeneration and functional recovery of motoneurons after delayed reimplantation of avulsed spinal root in adult rat / H.Y. Gu et al. // Exp. Neurol. 2005. - Vol.192, N 1. - P. 89-99.

185. Sutureless nerve repair at the fascicular level using a nerve coupler / D.M. Marshall et al. // J. Rehabil Res Dev. 1989. - Vol. 26, N 3. - P. 63-76.

186. Swett, J.E. All peroneal motoneurons of the rat survive crush injury but some fail to reinnervate their original targets / J.E. Swett, C.-Z. Hong, P.G. Miller // J. Comp. Neurol. 1991. - Vol. 304. - P. 234-252.

187. Terenghi, G. Peripheral nerve injury and regeneration // Histol Histopathol. 1995. -Vol.10, N 3. - P. 709-718.

188. Thangam, S. Differentiation of alpha and gamma motoneurons by the retrograde uptake of horseradish peroxidase / S. Thangam, K. Indirani, M.S. Devanandan // J. Anat. 1989. - Vol. 166. - P. 35-42.

189. The effects of delayed nerve repair on neuronal survival and axonal regeneration after seventh cervical spinal nerve axotomy in adult rats / S. Jivan et al. // Exp. Brain Res. 2006. - Vol. 170, N 2. - 245-254.

190. The influence of predegenerated nerve grafts on axonal regeneration from prelesioned peripheral nerves / N.A-K. E-S. Hasan et al. // J. Anal. 1996. -Vol. 189.-P. 293-302.

191. The L2/HNK-1 carbohydrate epitope is involved in the preferential outgrowth of motor neurons on ventral roots and motor nerves / R. Martini et al. // Eur. J. Neurosci. 1992. - Vol. 4. - P. 628-639.

192. There is no loss of motor neurons in the rat spinal cord during postnatal maturation / K. Lowry et al. // J. Anat. 2001. - Vol. 198, N 4. - P. 473-479.

193. The topographical localization of spinal motoneurons of the rat and its numerical alternation in regard to development (author's transl) / K. Tada et al. // Nippon Seikeigeka Gakkai Zasshi. 1979. -Vol.53, N 7. - P. 807-816.

194. Tidwell, J.L. Administration of Hsp70 in vivo inhibits motor and sensory neuron degeneration / J.L. Tidwell, L.J. Houenou, M. Tytell // Cell Stress Chaperones. 2004. - Vol. 9, N 4. - P. 88-98.

195. Tiraihi, T. Astrogliosis in different zones of the spinal cord gray matter after sciatic nerve axotomy in the newborn rat: a morphometric and immunohistochemical study / T. Tiraihi, N. Masoudian // Histol Histopathol. -2003.-Vol. 18, N2.-P. 459-465.

196. Tiraihi T. Apoptosis onset and bax protein distribution in spinal motoneurons of newborn rats following sciatic nerve axotomy / T. Tiraihi, M.J. Rezaie//J. Neurosci. -2003.- Vol. 113, N9.- P. 1163-1175.

197. Tomqvist, E. Motoneuron survival is not affected by the proximo-distal level of axotomy but by the possibility of regenerating axons to gain access to the distal nerve stump / E. Tomqvist, H. Aldskogius // J. Neurosci. 1994. -Vol. 39, N2.-P. 159-165.

198. Unique anti-apoptotic activity of EAAC1 in injured motor neurons / S. Kiryu-Seo et al. // EMBO J. 2006. - Vol. 25, N 14. - P. 3411-3421.

199. Upper Motor Neuron Lesions in Stroke Patients Do Not Induce Anterograde Transneuronal Degeneration in Spinal Anterior Horn Cells / S. Terao et al. // American Heart Association. Stroke. 1997. - Vol. 28. - P. 2553-2556.

200. Upregulation of heat shock proteins rescues motoneurones from axotomy-induced cell death in neonatal rats / B. Kalmar et al. // Exp. Neurol. 2002. -Vol. 176,N 1. —P. 87-97.

201. Uschold, T. Motor neuron regeneration accuracy: Balancing trophic influences between pathways and end-organs / T. Uschold, G.A. Robinson, R.D. Madison // Madison Exp. Neurol. 2007. - Vol. 205, P. 250-256.

202. Variation in rat sciatic nerve anatomy: implications for a rat model of neuropathic pain / F. Asato et al. // J. Peripher Nerv Syst. 2000. - Vol.5, N 1. -P.19-21.

203. Vejsada, R. Permanent alterations of spinal cord reflexes following nerve lesion in newborn rats / R. Vejsada, J. Palecek, P. Hnik // Physiol. Res. 1999. -Vol. 48, N6.-P. 483-489.

204. Ventral root avulsion: An experimental model of death of adult motor neurons / V.E. Koliatsos et al. // J. Comp. Neurol. 1994. - Vol. 342. - P. 3544.

205. Weiss, P. The effect of terminal connections on the caliber of nerve fibers / P. Weiss, M.V. Edds, M. Cavanaugh // Anat Rec. 1945. - Vol. 92. - P. 215233.

206. Wesselmann, by U. Retrograde horseradish peroxidase transport in motor axons after Nd:YAG laser irradiation of the tibial nerve in rats / by U. Wesselmann, W.Z. Rymer // Experimental Neurology. 1993. - Vol. 119, N 2. -P. 147-152.

207. Westbury, D.R. The morphology of four gamma motoneurones of the cat examined by horseradish peroxidase histochemistry // J. Physiology. 1979. — Vol. 292. P. 25-26.

208. Westbury, D.R. A comparison of the structures of alpha and gamma spinal motoneurones of the cat // J. Physiology. 1982. - Vol. 325. - P. 79-91.

209. White, C.M. Repeated stimuli for axonal growth causes motoneuron death in adult rats: the effect of botulinum toxin followed by partial denervation / C.M. White, L. Greensmith, G. Vrbova // Neuroscience. 2000. - Vol. 95, N 4. -P. 1101-1109.

210. Wu, W. Inhibition of nitric synthase reduces motoneuron death to spinal root avulsion / W. Wu, Li L. // J. Neurosci. 1993. - Vol. 153 - P. 121-124.

211. Zochodne, D.W. Neurotrophins and other growth factors un the regenerative milieu of proximal nerve stump tips / D.W. Zochodne, C. Cheng // J. Anat. -2000. -Vol.196. -P.279-283.

212. Zochodne, D.W. The microenvironment of injured and regenerationg peripheral nerves // Muscle Nerve Suppl. 2000. -Vol. 9. - P. 33-38.