Морфология спинномозгового узла в норме и в условиях деафферентации у взрослой крысы: экспериментально-морфологическое исследование тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.25, доктор биологических наук Ермолин, Игорь Леонидович

• Ермолин, Игорь Леонидович
• доктор биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации доктор биологических наук Ермолин, Игорь Леонидович

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Количество и нейронный состав СМУ в норме.

1.2 Внутри- и межузловые связи СМУ в норме.

1.3 Реакция нейронов на повреждение их отростков.

1.4 Регенерация аксонов и дендритов нейронов СМУ.

1.5 Переживание нейронов СМУ в условиях трансплантации.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1 Характеристика экспериментальных групп. ф 2.2 Техника экспериментов.

2.3 Методы гистологического исследования.

2.4 Статистическая обработка результатов.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ НАБЛЮДЕНИЙ.

3.1 Некоторые особенности структурной организации СМУ Т13 л в норме у взрослой крысы.

3.2 Посттравматические изменения спинномозгового узла Т13л при проведении контрольной операции на дорсальной и вентральной ветви его спинномозгового нерва.

3.3 Посттравматические изменения спинномозгового узла Т13л после перерезки дорсальной и вентральной ветвей его спинномозгового нерва.

3.4 Особенности репаративной регенерации СМУ Т13л при полной деафферентации в условиях его аутотрансплантации в спинной мозг.

4. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ ДАННЫХ.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфология спинномозгового узла в норме и в условиях деафферентации у взрослой крысы: экспериментально-морфологическое исследование»

1. Актуальность исследования

Проблема регенерации нервной системы занимает одно из основных мест в нейрогистологических исследованиях последнего десятилетия. Это связано с расширившимися возможностями моделирования регенераторных процессов нервной системы, новыми методологическими подходами к оценке экспериментальных результатов, а также теоретической и практической значимостью.

Изучение механизмов компенсаторно-восстановительных процессов в спинномозговых узлах (СМУ) является одной из актуальных проблем в неврологии, поскольку СМУ являются первичными афферентными нервными центрами, занимающими пограничное положение между центральной и периферической нервной системой. СМУ имеют большое функциональное значение в рефлекторных функциях организма, что связано с поступлением через них информации, как из внешней, так и из внутренней среды организма. В частности, СМУ Т13, на котором были поставлены эксперименты, занимает у крыс пограничное положение с поясничным отделом. Этот узел принимает участие в афферентной иннервации не только мышц, кожных покровов соответствующего соматического сегмента, но также осуществляет иннервацию межпозвонковых дисков L5 и L6 (Ohtori S. et al., 2002; Ohtori S. et al., 2003; Aoki Y. et al., 2003; Aoki Y. et al., 2004), почек (Lishnak T.S. et al., 2001), печени (Душкова З.Г., 2004), матки (Chalar С. et al., 2003), влагалища (Steinman J.L., et al., 1992), яичников (McNeill D.L. et al., 1987), уретры (Fitch G.K. et al., 1996) и мозгового вещества надпочечников (Nadelhaft I. et al., 1987). Вместе с тем СМУ, в силу своей локализации, часто вовлекаются в патологические процессы, которые возникают при спинномозговой травме, повреждениях позвоночника, дорсальных корешков, спинномозговых нервов и их терминал ей, что сопровождается болевыми синдромами и трофическими вазомоторными нарушениями. В связи с этим, проблема посттравматической регенерации занимает значительное место в патологии СМУ. Вместе с тем, не все вопросы, касающиеся проблем посттравматических изменений в СМУ, освещены в литературе с достаточной полнотой. Согласно известной концепции, нейроны СМУ обладают достаточно выраженной структурной пластичностью и способны образовывать новые отростки с восстановлением связей (Дойников Б.С., 1955; Саркисов Д.С., 1970; Бабминдра В.П., 1983; Карлсон Б.М., 1986; Cajal R., 1928; Gurtt L., 1956; Nicholls J., 1987 и др.). Вместе с тем следует отметить, что реализация этой потенции зависит не только от типа нейрона, но и от его микроокружения и трофики, изменение которой связано с нарушением гемодинамики. Из наблюдений J. В. Brierley (1955) известно, что СМУ имеют хорошую васкуляризацию, близкую к коре головного мозга, а, по данным Z. Szabo, F. Bolony (1955), количество сосудов на единицу его площади в 2 раза больше, чем в вегетативном узле. Это указывает на интенсивность функциональной нагрузки в СМУ.

В литературе имеются противоречивые сведения о нейронной организации СМУ, о количественных показателях, о межузловых, внутрисегментарных и межсегментарных связях. Недостаточно освещен вопрос о количественном участии афферентных нейронов наполняющих ветви спинномозгового нерва, в норме и в условиях репаративной регенерации. В известной литературе имеются сведения о гибели нейронов в СМУ вследствие ретроградной дегенерации, возникающей при перерезке дендритов афферентных нейронов. Подавляющее большинство этих исследований посвящено изучению СМУ поясничного отдела L3 - L5, что связано с участием их в иннервации седалищного нерва (Schmalbruch H., 1984; Devor M., Govrin-Lippmann R., Frank I. et al., 1985; Arvidsson J., Ygge J., Grant G., 1986; Tandrup T., Woolf C., Coggeshall R., 2000; Hart A.M., Brannstrom T., Wiberg M. et al., 2002; M.J. Groves, A. Schanzer, A.J. Simpson et al., 2003 и др.). Лишь в отдельных работах анализируются СМУ нижнегрудного отдела (Ygge J., 1984; Ygge J., Aldskogius H., 1984; Крюков M.A., Гретен А.Г., Беличенко П.В., 1990; Ljungberg С., Novicov L., Kellerth J.

O. et al, 1999), но и в них приводятся противоречивые сведения о результатах посттравматических изменений в узлах. Из литературы известно, что при свободной ауто- и гетеротрансплантации СМУ нейроны переживают в трансплантате не более 2-3 недель и подвергаются дегенерации с последующим фагоцитозом, а трансплантаты рассасываются на 2 - 3 месяце (Marinesco G., 1907; Ranson S.W., 1909; Cajal R.S., 1928; Сутулов Л.С, 1949; Чумасов Е.И., Чалисова Н.И., 1977; Берсенев В.А., 1980; и др.).

В связи с этим, нами были выбраны билатеральные СМУ трёх сегментарных уровней Thl2, Thl3 и L1, для изучения в норме и при ретроградной реакции афферентных нейронов на повреждение их дендритов в различных экспериментальных условиях. Созданы две экспериментальные модели - частичная и полная деафферентация нейронов СМУ. Частичная деафферентация осуществляется при перерезке дорсальной или вентральной ветви спинномозгового нерва. Полная деафферентация - при аутотрансплантации СМУ в спинной мозг с пересечением всего спинномозгового нерва и сохранением центральных связей.

Результаты настоящего исследования имеют важное общебиологическое значение, поскольку использованные методы позволяют дать более объективную оценку посттравматическим изменениям в СМУ, что важно для правильной коррекции тактики лечения повреждённого периферического нерва в условиях клиники.

Цель исследования: изучить структурную организацию и афферентные связи спинномозговых узлов нижнего грудного отдела в норме и закономерности посттравматических изменений нейронов спинномозгового узла Т13 в условиях частичной и полной деафферентации у взрослой крысы.

Задачи исследования:

1. Определить общее количество нервных клеток и их размерные группы в СМУ трёх сегментарных уровней ТЫ2, ТЫЗ, Ы в норме.

2. Сравнить билатеральные СМУ трёх сегментарных уровней ТЫ2, ТЫЗ, Ы, по общему количеству нейронов для выявления симметрии или асимметрии в норме.

3. Установить количество и размерные группы нейронов в СМУ Т13л, посылающих дендриты в дорсальную и вентральную ветви спинномозгового нерва в норме.

4. Выявить межузловые афферентные связи СМУ Т12, Т13, Ы с помощью ретроградного маркирования нейронов в норме.

5. Изучить посттравматические изменения нейронов в СМУ Т13л, вызванные контрольной операцией, проведённой со всеми операционными подходами к дорсальной или вентральной ветви его спинномозгового нерва, но без перерезки указанных ветвей.

6. Определить динамику изменения общего количества нейронов и соотношение их в размерных группах СМУ Т13л после перерезки дорсальной и вентральной ветвей.

7. Установить количество переживающих деафферентированных нервных клеток различных размерных групп и возможность прорастания их дендритов в перерезанном нерве с помощью ретроградного маркирования нейронов в конце эксперимента.

8. Изучить структурные изменения в проксимальной, дистальной культе и в области соединительнотканного рубца перерезанного периферического нерва.

9. Выявить особенности посттравматической регенерации СМУ Т13л в условиях полной деафферентации при его аутотрансплантации в спинной мозг.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Спинномозговой узел содержит субпопуляции нейронов, участвующих в наполнении дендритами конкретных ветвей его спинномозгового нерва. Размер субпопуляции зависит от величины ветви и имеет стереотипный характер по соотношению размерных групп нейронов.

2. Посттравматические изменения спинномозгового узла при частичной деафферентации сопровождаются ограниченной элиминацией нейронов в конкретной субпопуляции, зависят от её размеров и времени, прошедшего после повреждения нерва. Полная деафферентация спинномозгового узла приводит к неизбежной элиминации нейронов всех субпопуляций.

3. Образование гетерогенных нервных связей и восстановление ранее существовавших, способствует пролонгированию переживания сенсорных нейронов независимо от способа их деафферентации.

Научная новизна результатов: Впервые определён количественный состав и размерные группы нейронов билатеральных СМУ Т12, T13,L1b норме.

- Выявлены афферентные межсегментарные связи СМУ Т13л с ипсилатеральными СМУ Т12, L1 и показано отсутствие их с контрлатеральными СМУ трёх сегментарных уровней.

- Впервые установлено количество нейронов и их размерные группы в субпопуляциях СМУ Т13л, дендриты которых наполняют дорсальную и вентральную ветви его спинномозгового нерва.

- Получены сведения о формировании гетерогенных афферентных связей в условиях частичной и полной деафферентации нейронов СМУ.

- Установлена динамика гибели нейронов в СМУ Т13л в условиях частичной и полной деафферентации.

- Впервые определено количество переживающих нейронов субпопуляций дорсальной и вентральной ветви СМУ Т13л, дендриты которых участвуют в регенерации перерезанного нерва.

- Выявлены морфологические особенности посттравматических изменений до 90 суток в различных участках перерезанного периферического нерва.

Научно-практическая значимость работы

В работе количественно определены субпопуляции нейронов СМУ Т13л, дендриты которых наполняют дорсальную и вентральную ветви его спинномозгового нерва у интактных животных. Определены межузловые афферентные связи СМУ Т12 - L1 в норме. Установлены закономерности репаративной регенерации первичных афферентов, постдеафферентационной реорганизации нервных связей СМУ, а также особенности регенерации дендритов в перерезанных нервах при вторичном натяжении и в мозговом рубце. Определена динамика гибели нейронов при частичной и полной деафферентации. Выявлена группа переживающих «резервных» нейронов, которые способны участвовать в регенерации нерва, но, при вторичном натяжении, регенерация для них является «запрещённой» и они могут перейти в категорию элиминирующих нервных клеток. Показана возможность прорастания дендритов ограниченного количества переживающих нейронов (3,0% - 4,0%) различных размерных групп на 90 сутки наблюдения при вторичном натяжении повреждённого периферического нерва. Полученные сведения имеют фундаментальный характер и могут служить основой для разработки в эксперименте и клинике вопросов посттравматической регенерации и оптимизации способов коррекции афферентных проводников.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Проблема посттравматической регенерации нервной системы является одной из сложнейших проблем в невропатологии и нейроморфологии -поскольку перерыв путей ЦНС, повреждение различных отделов нервной периферической системы ведёт к глубоким нарушениям её функций и, как следствие, - к стойкой инвалидности. Поэтому восстановление различных звеньев нервной системы представляет собой важнейшую медицинскую задачу. В настоящее время накопился большой литературный материал, касающийся различных сторон этой проблемы. Особый интерес вызывают спинномозговые узлы, являющиеся первичными афферентными центрами на пути передачи сенсорной информации в центральную нервную систему. Их поражение приводит к широко распространённым неврологическим заболеваниям. Многочисленна литература с детальным описанием нейронной организации СМУ в норме (Догель A.C., 1897, 1908; Cajal R., 1906, 1928; Милохин A.A., 1967; Берсенев В.А., 1980; Ygge J, Aldskogius Н., Grant G., 1981; Kayaahara Т., Tkimoto Т., Sakashita S. al., 1981, Kayaahara Т., 1986; Dalsgaard C.S., Ygge J, 1984, 1985; Scmalbruch H., 1987; Ковальчук И.Е., 1991, Рудёнок B.B., 1992; Tandrup Т., 1993; Челышев Ю.А,Селякин С.П., Рагинов И.С., 2001; Румянцева Т.А., 2004 и др.). Однако, и по настоящее время, классификация, количество нервных клеток, внутри- и межузловые связи СМУ, участие нейронов в наполнении ветвей спинномозгового, седалищного и других смешанных нервов в норме являются спорными и окончательно неразрешёнными. Значительное количество исследований посвящено реактивным изменениям и межклеточным взаимодействиям в СМУ при различных экспериментальных повреждениях и заболеваниях организма (Дойников Б.С., 1955; Григорьева Т.А., 1959; Плечкова Е.К., 1961; Ермолин И.Л., 1975; Радаева Т.М., 1979; Берсенев В.А., 1980; Arvidsson J., Ygge J., Grant G., 1986; Басков A.B., 1986;

Ygge J., 1989; Hirnes B.T., Tessler A., 1989; Новиков Л.Н., 1991; Coggeshall R.E., Lekan H.A., Doubell T.P. et al., 1997; Челышев Ю.А., Селякин С.П., Рагинов И.С., 2001; Челышев Ю.А., Рагинов И.С., 2002; Рагинов И.С., Челышев Ю.А., Шагидуллин Т.Ф., 2002; Groves M. S., 2003; Ma J., Novikov L.N., Kellerth J.O., et al., 2003; Челышев Ю.А., Рагинов И.С., Гусева Д.С., Масгутов Р.Ф., 2004 и др.). Однако, вопрос о посттравматических изменениях, возникающих в условиях частичной и полной деафферентации нейронов СМУ, и в настоящее время можно отнести к наименее изученной области нейрогистологии. Исходя из цели настоящего исследования, можно выделить следующие направления в изучении СМУ в норме и в условиях посттравматических изменений:

1. количество и нейронный состав СМУ в норме;

2. внутри- и межузловые связи СМУ в норме;

3. реакция нейронов на повреждение их отростков;

4. регенерация аксонов и дендритов нейронов СМУ;

5. переживание нейронов СМУ в условиях трансплантации.

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, клеточная биология», Ермолин, Игорь Леонидович

ВЫВОДЫ

1. В спинномозговом узле (СМУ) Т13л в норме общее количество нервных клеток в среднем составляет 5454,00 ± 462,17. Среди них выделены 3 размерные группы: мелкие нейроны, имеющие d < 20 мкм, средние 20 < d < 35 мкм и большие d > 35 мкм. Из них на долю больших нейронов приходится 9,97%, средних - 70,66% и мелких - 19,39%. Нейроны всех размерных групп не имеют строгой локализации в строме узла.

2. Асимметрия количества нейронов парных спинномозговых узлов одного сегмента достигает 27,0%, но суммарное количество их в трёх сегментарных уровнях (Thl2, Thl3, L1) на билатеральных сторонах имеет практически одинаковые значения, не показывающие статистически достоверных различий. На левой стороне - 19174,33 ± 1334,73 нервных клеток, а на правой стороне - 18820,30 ± 559,32, при этом процентное соотношение размерных групп нейронов не имеет различий.

3. Количество нервных клеток в парных спинномозговых узлах увеличивается в каудальном направлении от Т12 к Т13 на 8,0%, а от Т13 к L1 на 15,0%. При этом выявлено снижение числа больших нервных клеток от Т12 к L1 на 10,0%), мелких нейронов на 24,0%, а количество средних увеличивается на 41,0%.

4. Выявлено в СМУ Т13л две субпопуляции нейронов, дендриты которых наполняют дорсальную и вентральную ветви. В дорсальной ветви участвуют 1507,66 ± 155,45 (27,65%>) нейронов, и в вентральной ветви - 2714,66 ± 203,15 (49,78%>). На субпопуляции остальных ветвей спинномозгового нерва Т13л приходится 22,57%о нейронов от общего их количества в узле. Процентное соотношение размерных групп нейронов в обеих субпопуляциях одинаково.

5. Ретроградное маркирование нейронов билатеральных СМУ T12,T13,L1 в норме, выявило афферентные связи СМУ Т13л с узлами ипсилатеральной стороны и отсутствие транзитных афферентных связей этих узлов через СМУ

Т13л. Афферентных связей СМУ Т13л с узлами контрлатеральной стороны не установлено.

6. Перерезка дорсальной ветви к 90 суткам наблюдения вызывает элиминацию 21,0% нейронов, а вентральной ветви - 42,84% от общего количества нервных клеток СМУ Т13л. При анализе субпопуляций СМУ Т13л выявлены более значимые показатели элиминации нейронов. Для субпопуляции дорсальной ветви она достигла 55,28%), а вентральной ветви -67,75%). Среди переживающих нейронов выделены две категории клеток: «резервные», их дендриты образуют регенерационную неврому в проксимальной культе, и «регенерирующие», дендриты которых проросли в дистальную культю. К 90 суткам эксперимента в субпопуляции дорсальной ветви переживает 44,72%, а вентральной ветви - 32,35% нейронов, из них в дистальную культю прорастают дендриты лишь 3,44% нейронов дорсальной ветви и 4,19% вентральной ветви. «Резервные» нейроны составляют соответственно 41,28%) и 28,16%

7. При частичной деафферентации основной вклад в элиминацию нервных клеток СМУ Т13л, на всех сроках наблюдения, вносят мелкие нейроны, а большие и средние имеют менее значимые показатели элиминации. Среди переживающих нервных клеток различных размерных групп наиболее выраженной регенерационной способностью в преодолении соединительнотканного рубца обладают мелкие нейроны. Регенерация дендритов незначительного количества переживающих нейронов, проросших в дистальную культю, происходит в основном по коллатеральному, а не магистральному типу.

8. При полной деафферентации в трансплантированном спинномозговом узле Т13л выявлена гетерохронность элиминации нейронов и выделены 3 периода:

- «острый» до 30 суток, основная элиминация нейронов составляет 56,0%;

- «вялотекущий» от 30 до 120 суток, дополнительная элиминация нейронов составляет 28,0%;

- «завершающий» от 120 до 180 суток, дополнительная элиминация нейронов составляет 11,0%. к 180 суткам достигает 95,0%.

В трансплантате к 180 суткам элиминирует 95,0%, а переживает около 5,0% нейронов, имеющих афферентные связи с ипсилатеральными СМУ.

9. Независимо от способа деафферентации для основной массы нервных клеток СМУ создаются условия «запрещенной» регенерации, при которой нейроны не могут реализовать свои потенциальные возможности для восстановления дендритов и установления нервных связей с ранее иннервируемыми мишенями. Это приводит к элиминации большинства нервных клеток, а «резервные» нейроны образуют неустойчивые гетерогенные связи, что является морфологической основой для развития атрофии деафферентированного чувствительного звена.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Ермолин, Игорь Леонидович, 2006 год

1. Автандилов, Г.Г. Медицинская морфометрия. Руководство / Г.Г. Автандилов. -М.: Медицина, 1990,- 384с.

2. Алексеева, Е.Б. Регенерация седалищного нерва крысы после кратковременного дозированного вытяжения его центрального отрезка: автореф. дис. .канд. биол. наук: 03.00.25 / Алексеева Елена Борисовна.- Саранск, 2003. 18с

3. Амвросьев, А.П. Анатомия афферентных систем пищеварительного тракта (экспериментально морфологическое исследование) / А.П. Амвросьев,- Минск: Наука и техника, 1972. - 312 с.

4. Амвросьев, А.П. Адренергическая и холинергическая иннервация органов пищеварительной системы (гистохимическое и экспериментальное исследование) / А.П. Амвросьев.- Минск: Наука и техника, 1977. 182с.

5. Арнаутова, E.H. Восстановление проведения в дуге рефлекса после перерезки и регенерации заднекорешковых волокон спинного мозга у крыс / E.H. Арнаутова, Т.Н. Несмеянова//ДАН СССР. 1964,- т.157,№ 6. - С. 1486- 1489.

6. Атлер, В.М. О гистологических особенностях строения интраспинальных сосудов миокарда / В.М. Атлер // Арх. Патол. 1965.- вып. 12. - С. 22 - 28.

7. Бабминдра, В.П. Аксонный транспорт // Итоги науки и техники ВИНИТИ. Морфология человека. Антропология. 1983. - С. 82 - 93.

8. Басакьян, А., Басков А, Борщенко И. Апоптоз при травматическом повреждении спинного мозга: перспективы фармакологической коррекции, www. jabat. narod. ru. 2000.

9. Басков, A.B. Нейрогенные расстройства мочеиспускания у больных с травматическим повреждением спинного мозга и их хирургическое лечение // Нейрохирургическая патология спинного мозга. Москва, 1986. - С. 12-15.

10. Берсенев, В.А. Шейные спинномозговые узлы / В.А. Берсенев. М.: Медицина, 1980.-208с.

11. Блинков, С.М. Мозг человекав цифрах и таблицах / С.М. Блинков, И.И. Глезер. Л.: Медицина, 1964.- 180 с.

12. Бондарь, В.М. Структурная организация нейронных ансамблей спинномозговых узлов человека и кошки / Сер. Б1ял. Навук,- 1986.- №3,1. С. 90-92.

13. Величанская, А.Г. Структурная характеристика симпатического ганглия белой крысы в норме и в условиях посттравматической регенерации: автореф. дис. .канд. биол. наук: 03.00.25 / Величанская Анна Генриховна.- Н. Новгород, 2004. -22с

14. Викторов, И.В. Современные методы морфологических исследований мозга // доклады на научно методической конференции Института мозга АМН СССР (Москва, 24 - 26 ноября 1969г.) / М.: ХОЗУ Минавтопрома, 1969. - с. 7 - 10.

15. Восстановление иннервации конечности крысы после соединения концов поврежденного нерва микрохирургическим швом / Е.И. Чумасов и др. // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1988. - т. 44, № 2. - С. 6 - 13.

16. Выживание и фенотипическая характеристика аксотомированных нейронов спинальных ганглиев / Ю.А. Челышев и др. // Морфология,- 2004,- т. 125 № 3,-С.45-49.

17. Гайер, Г. Электронная микроскопия / Г. Гайер.- М.: Мир, 1974,- 488с.

18. Гланц С. Медико биологическая статистика / С. Гланц. - М.: Практика, 1999. -459 с.

19. Графова, Г.Я. Реактивные изменения нервные элементов спинного мозга при повреждениях / Г.Я. Графова // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1957. -т. 34, № 1.-С. 67-78.

20. Институт нормальной физиологии АМН СССР им. П.К. Анохина, Москва, 1977). -М., 1977,- С. 73 -75.

21. Гретен, А.Г. Экспериментальная аутопластика повреждений спинного мозга нервными узлами / А.Г. Гретен, А.П. Хренов, И.Л. Ермолин, И.Ю. Басараб // Труды крымского мед. Института,- 1989,- т. 116.- с. 36 39.

22. Гретен, А.Г. Проблемные вопросы стимуляции репаративных процессов и организации синаптической зоны в поврежденной области мозга // Восстановительные процессы в нервной системе и их коррекция,- Горький, 1990.-С. 6-12.

23. Григорович, К.А. Хирургия нервов / К.А. Григорович. Ленинград: Медицина, 1969. - 446 с.

24. Григорьева, Т.А. Чувствительный нейрон как фактор целостности и адекватной дифференцированное™ иннервируемых им структур / Т.А. Григорьева // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1959. - т. 36, № 3. - С. 3 - 12.

25. Догель, A.C. Строение спинномозговых узлов и клеток у млекопитающих животных / A.C. Догель // Записки А.Н., физико-математическое отделение. 1897. - т5, №4. -С.1 -30.

26. Догель, A.C. Der Bau des Spinalganglien des Menschen und der Saugetiere / A.S. Dogiel.- Jena, 1908,- 151s.

27. Дойников, Б.С. Избранные труды по нейроморфологии и неврологии / Б.С. Дойников. -М.: Медгиз, 1955. -250с.

28. Душкова, З.Г. Регенерация печени и афферентное звено нейрогенной регуляции репаративного процесса: автореф. дис.канд. биол. наук: 03.00.13/ Душкова Зинаида Геннадьевна. Нижний Новгород, 2004. - 22с.

29. Ермолин, И.Л. Структурная характеристика нервных ганглиев при экспериментальных повреждениях спинного мозга: автореф. дис. .канд. биол. наук: 03.00.11 / Ермолин Игорь Леонидович. Горький, 1975. - 21с.

30. Ермолин, ИЛ. Посттравматическая регенерация нервных связей и ее коррекция при аутопластике спинного мозга / И.Л. Ермолин, А.Г. Гретен // Тезисыдокладов 10 Всесоюзного съезда Анатомов, гистологов и эмбриолгов,-Винница,1986.- С. 119.

31. Ермолин, И.Л. Структурные основы пластичности спинномозгового узла приего аутопластике в спинной мозг (сообщение 1) / И.Л. Ермолин // Нижегородский Медицинский журнал,- 2004,- №4,- С. 30 36.

32. Ермолин, И.Л. Количественная оценка нейронов и афферентные связи узлов Т12, ИЗ и LI в норме у взрослых крыс / И.Л. Ермолин // Нижегородский медицинский журнал.- 2005,- №2,- С. 30 34.

33. Ермолин, И.Л. Деафферентация сенсорных нейронов при перерезке периферического нерва у взрослой крысы / И.Л. Ермолин //Морфологические ведомости. Ижевск, 2005, № 3-4, с. 27-29.

34. Ермолин, И.Л. Количественная оценка маркированных нейронов спинномозгового узла Т13 в условиях регенерации периферического нерва у взрослой крысы / И.Л. Ермолин II Нижегородский медицинский журнал. Н. Новгород, 2006, № 2, с. 24 -29.

35. Ермолин, И.Л, Размерные группы нейронов спинномозгового узла Т13 в норме и в условиях периферической деафферентации / И.Л. Ермолин // Нижегородский медицинский журнал. Н. Новгород, 2006, № 2, с. 29- 34.

36. Жаботинский, Ю.М. О ретроградных изменениях в нервных клетках чувствительных ганглиев / Ю.М. Жаботинский II ДАН СССР. 1951.- т.80, №1. - С. 101-104.

37. Жаботинский, Ю.М. О делении нервных клеток в центральной нервной системе человека и мдекопитающих / Ю.М. Жаботинский // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1958. - т. 35, № 3. - С. 48 - 53.

38. Жаботинский, Ю.М. Нормальная и патологическая морфология нервных клеток, нервного волокна и окончаний / Ю.М. Жаботинский // Патологическая анатомия нервной системы. 1962. - т.2. - с. 38 - 45.

39. Жаботинский, Ю.М. Нормальная и патологическая морфология нейрона / Ю.М. Жаботинский-Л.: Медицина, 1965,- 322 с.

40. Ильинский, О.Б. Аутотрансплантация спинномозговых ганглиев кошки / О.Б. Ильинский, Н.И. Чалисова, Е.И. Чумасов // Доклады АН СССР,- 1977,- т.234, № 4,-С. 937-939.

41. Карлсон, Б.М. Регенерация / Б.М. Карлсон; перевод с англ. В.И.Миташова. М.: Наука, 1986.-296с.

42. Киселева, P.E. Адаптационные возможности иммунокомпетентных клеток / P.E. Киселева, Л.В. Кузьмичева,- Саранск: Изд-во Мордов. ун-та, 2004.- 180с.

43. Крыжановский Г.Н. Общая патофизиология нервной системы. Руководство / Г.Н. Крыжановский,- Москва: Медицина, 1997. 352с.

44. Крыжановский Г.Н. Дизрегуляционная патология / Г.Н. Крыжановский // Патогенез.- 2004,- №31.- С.21 29.

45. Крюков, М.А. Деление нейронов спинномозгового узла в условиях репаративной регенерации // Восстановительные процессы в нервной системе и их коррекция: Сб.научн. тр. Горьк.мед институт им. С.М. Кирова, Горький, 1990. - С. 58 - 65.

46. Крюков, М.А. Реакция чувствительных нейронов спинномозгового узла на перерезку их периферических и центральных отростков / М.А. Крюков, А.Г. Гретен, П.В. Беличенко // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1990. - № 11.-С.21 -28.

47. Кузьмичева, J1.B. Морфологические и функциональные изменения лимфоцитов в процессе краткосрочной адаптации : автореф. дис. .докт. биол. наук: 03.00.25 / Кузьмичева Лидия Васильевна. Саранск, 2005. - 42с.

48. Куприянов, В.В. О природе перицеллюлярных аппаратов на клетках спинномозговых узлов / В.В. Куприянов // Морфологические закономерности периферичекой иннервации. Кафедра норм. анат. Кишенёвск. мед. ин-та. -Кишенёв, 1958.-№ I.e. 4-11.

49. Лапин, С.К. Некоторые вопросы морфологии компенсаторно приспособительных реакций нервной системы // Труды института хтрургии АМН СССР,- Москва, 1963.-B.2.- С.280 - 287.

50. Лапин, С.К. Изменения в нервной системе после реплантации конечности, сопровождающиеся осложнениями (экспериментально морфологическое исследование) / С.К. Лапин, В.В. Шувалов // Эксперимент. Хирург. И анестезиол. -1965,-№4,- С. 58-62.

51. Лапин, С.К. Морфология репаративных и компенсаторных процессов в нервной системе // Компенсаторные и адаптивные процессы в центральной нервной системе.- Иркутск, 1977.- С. 102 114.

52. Лушников, Е.Ф. Гибель клетки (апоптоз) / Е.Ф. Лушников, А.Ю. Абросимов. М.: Медицина, 2001,- 192с.

53. Максименков, A.M. Анастомозы периферической нервной системы / A.M. Максименков // Вопросы нейрохирургии. 1939.- т.З, №4,- с. 26-43.

54. Манина, A.A. Ультраструктурные изменения и репаративные процессы в ЦНС при различных воздействиях / A.A. Манина,- Л.: Медицина, 1971. 199 с.

55. Милохин, A.A. Чувствительная иннервация вегетативных нейронов / A.A. Милохин. Л.: Наука, 1967.- 68с.

56. Милохин, A.A. Морфология рецепторной иннервации спинномозговых ганглиев / A.A. Милохин, С.С. Решетников // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. -1971.-т. 60, №5.-С. 93 103.

57. Мирошникова, М.Е. Регенерация седалищного нерва крысы после его различных экспериментальных повреждений / М.Е. Мирошникова, Е.И. Чумасов // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1988. - т. 45, № 10. - С. 30 - 35.

58. Михайлов, С.Е. Об отношении симпатической нервной системы к клеткам спинальных ганглиев в связи с вопросом о перицеллюлярных сплетениях / С.Е. Михайлов // Врач. Газета.- 1909.- СПб.- с. 1356 1359.

59. Мотавкин, П.А. К вопросу об околоклеточных и межклеточных клубочках нервных волокон в спинномозговых узлах // Сборник научных трудов, посвященный 10-летию Ярославского медицинского института,- Ярославль, 1954,- С. 21 25.

60. Мотавкин, П.А. О ретроградных изменениях ганглиозных клеток спинномозговых узлов / П.А. Мотавкин // Доклады АН СССР.- 1957,- т114, №2,- С. 421 424.

61. Мушкамбаров, H.H. Молекулярная биология / H.H. Мушкамбаров, С.Л. Кузнецов // Медицинское информационное агенство. 2003.- С. 535.

62. Несмеянова, Т.Н. Стимуляция восстановительных процессов при травме спинного мозга / Т.Н. Несмеянова.- М.: Наука, 1971,- 255с.

63. Новиков, Л.Н. Репаративная регенерация заднекорешковых афферентов спинного мозга: автореф. дис. .канд. мед. наук: 14.00.23 / Новиков Лев Николаевич. -Горький, 1991. 27с.

64. Пилипенко, В.И. Материалы к функциональной морфологии периферической нервной системы. Распределение чувствительных нейронов в организме позвоночных животных и человека / В.И. Пилипенко // Арх. Анатомии, гистологии и эмбриологии,- 1958,- №1.- С. 28-33.

65. Плечкова, Е.К. Реакция нервной системы организма на хроническое повреждениепериферического нерва / Е.К. Плечкова. М.: Медгиз, 1961. - 258с.

66. Покотиленко, А.К. К анатомии задних корешков конского хвоста спинного мозга человека и их отношение к мозговым оболочкам / А.К. Покотиленко // Нов. хир. арх.,1957.- №3,- С. 1-4.

67. Рагинов, И. С. Взаимодействие чувствительных нейронов и клеток-сателлитов при стимуляции регенерации нерва / И.С. Рагинов, Ю.А. Челышев, Т.Ф. Шагидуллин // Морфология,- 2002.- т. 122, №4,- с. 37 39.

68. Рагинов, И.С. Чувствительные нейроны и шванновские клетки при фармакологической стимуляции регенерации нерва / И.С, Рагинов, Ю.А. Челышев // Морфология,- 2000,- т. 118,- с. 36 40.

69. Радаева, Т.М. Репаративная регенерация в системе задних канатиков спинного мозга и спинномозговых узлов: автореф. дне. .канд. мед. наук: 03.00.11 / Радаева Татьяна Михайловна. Горький, 1979. - 21с.

70. Режабек, О.Я. О некоторых новых деталях в строении спинальных ганнглиев человека // Труды Туркменского гос. мед. ин-та. Ашхабад, 1960. - С. 61 - 72.

71. Ромейс, Б. Микроскопическая техника/Б. Ромейс,- М.,1953,- 718с.

72. Руденок, В.В. Строение шейных спинномозговых узлов в эмбриогенезе человека и белой крысы в норме и при введении гуанетидина беременной самке: автореф. дис. . канд. мед. наук: 14.00.13 / Руденок Василий Васильевич. Минск, 1992. -23с.

73. Румянцева, Т.А. Возрастные преобразования морфометрических и гистохимических характеристик нейроцитов различных ганглиев у белых крыс / Т.А. Румянцева // Морфология,- 2004,- т. 125, №3,- С.40 45.

74. Сабиров М.А. Пластичность кровеносных сосудов и тканевых структур спинного мозга и спинальных ганглиев после поясничной ганглиосимпатэктомии // Сб. научн. тр. Кирг.гос. мед. ин-т,- 1987,- с. 36 42.

75. Саркисов, Д.С. Регенерация и ее клиническое значение / Д.С. Саркисов. М.: Медицина, 1970.-282с.

76. Саркисов, Д.С. Микроскопическая техника: руководство/Д.С. Саркисов, Ю.Л. Перов. М.: Медицина, 1996.-544.

77. Серов, В.В. Соединительная ткань / В.В. Серов, А.Б. Шехтер.- М.: Медицина, 1981,- 312с.

78. Снесарев, П.Е. Общая гистопатология мозговой травмы / П.Е. Снесарев.- М.: Медгиз, 1946,- 150с.

79. Соколов, В.М. Общая ганглиология / В.М. Соколов.- Молотовск, 1943.- 325с.

80. Сотников О.С. Нейролеммоциты и проблема восстановления повреждённых нервов / О.С. Сотников, А.К. Коломийцев, Ю.Б. Чайковский // Архив анатомии. 1989.-т.ХСУ, № 1.- С. 87-99.

81. Сутулов, JI.C. Реактивные изменения в нервных и нейроглиальных элементах межпозвоночных узлов при трансплантации / Доклады АН СССР, 1949.- т. 69, №1.-С. 73-75.

82. Суханова, Г.А. Биохимия клетки / Г.А. Суханова, В.Ю. Серебров. Томск: Чародей, 2000,- 184с.

83. Тонков, В.Н. Артерии питающие межпозвоночные узлы / В.Н. Тонков.- М.: Медгиз, 1959,- 150с.

84. Уикли, Б. Электронная микроскопия для начинающих / Б. Уикли.- М.: Мир, 1975.324.

85. Умовист, М.Н. Современные представления о строении и функции оболочек нерва

86. М.Н. Умовист, Ю.Б. Чайковский // Архив анатомии, 1987,- т.92, №1.- С. 89 96.

87. Хренов, А.П. Морфологические аспекты аутотрансплантации симпатического ганглия в область гемисекции спинного мозга / А.П. Хренов // Бюлл. Экспер. Биол. -1980,- т.89,№4.-С. 504-507.

88. Хренов, А.П. Морфология восстановительных процессов в спинном мозге при травме и аутопластике: автореф. дис. .докт. мед. наук: 03.00.11 / Хренов Анатолий Петрович.- Горький, 1983. 35с.

89. Хренов, А.П. Формирование мозгового рубца в различных экспериментальных условиях / А.П. Хренов // Архив анатомии. 1984. - т. 87, №12. - С. 20 - 28.

90. Чайковский, Ю.Б. Гемомикроциркуляторное русло травмированного седалищного нерва// Архив анатомии. 1982. - т. 83, вып. 10. - С. 42-45.

91. Чайковский, Ю.Б. Некоторые ультраструктурные особенности нервных клеток спинальных ганнглиев / Ю.Б. Чайковский, Б.В. Втюрин // Архив анатомии, 1973 .-т.64, №4,- С. 5 9.

92. Чайковский, Ю.Б. Регенерационная неврома / Ю.Б. Чайковский // Морфология.-1999,-т.115, №1.-55-67.

93. Ч 98. Чалисова, Н.И. Длительная трансплантация зрелых чувствительных нейронов /• 1 Н.И. Чалисова, Е.И. Чумасов // Бюлл. эксп. биол,- 1978,- №8.- С.238 242.

94. Челышев, Ю.А. Посттравматическое выживание нейронов спинальных ганглиев при стимуляции регенерации нерва / Ю.А. Челышев, И.С. Рагинов // Бюл. экспер. биол,- 2002.- т. 134, №6,- с. 597 599.

95. Челышев, Ю.А. Факторы поддержания регенерации периферических нервов / Ю.А. Челышев // Успехи физиологических наук.- 1995,- т. 26,- с. 57 77.

96. Челышев, Ю.А. Выживание и фенотипическая характеристика аксотомированных нейронов спинальных ганглиев / Ю.А. Челышев, И.С. Рагинов, Д.С. Гусева, Р.Ф. Масгутов // Морфология,- 2004,- т. 125, №3,- С. 45 49.

97. Челышев, Ю.А. Межклеточные взаимодействия в спинальном ганглии при регенерации нерва / Ю.А. Челышев, С.П. Селякин, И.С. Рагинов // Российские морфологические ведомости.- 2001,-№ 1-2,- С.159 166.

98. Чумасов, Е.И. Восстановление иннервации конечности крысы после соединения концов повреждённого нерва микрохирургическим швом / Е.И. Чумасов, Г.Н. Акоев, Л.И. Колосова, О.Г. Трофимова// Архив анатомии.- 1988.- т. 44,- С. 6 13.

99. Чумасов, Е.И. Морфогенез тканей центральной и периферической нервнойсистемы в условиях культивирования и трансплантации: автореф. дис. .докт. биол. наук: 03.00.11 / Чумасов Евгений Иванович,- Ленинград, 1981. 35с.

100. Чумасов, Е.И. О структуре периневрия периферической нервной системы //Архив анатомии, 1975,- т.68, №4,- С. 29 34.

101. Чумасов, Е.И. Динамика восстановления структуры и функции седалищного нерва и рецепторов кожи при реиннервации задней конечности белой крысы / Е.И. Чумасов, Л.Д. Енин, K.M. Светикова, М.Е. Мирошникова // Бюл. Эксп. Биол. -1988,-т. 106,№12.-С. 728-732.

102. Чумасов, Е.И. Состояние нервных клеток спинномозговых узлов кошки, трансплантированных в брыжейку / Е.И. Чумасов, Н.И.Чалисова // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1977. - т. 72, № 5. - С. 83 - 90.

103. Шахворостова, Н.П. Микроскопическое строение спинномозговых узлов // Труды Алма-Атинского ветеринарно-зоотехнического института. Алма-Ата, 1949. - С. 159- 165.

104. Щудло, М.М. Реактивные свойства тканевых компонентов периферического гемато-неврального барьера их роль в репаративной регенерации нервных стволов:автореф. дис. .докт. мед. наук: 03.00.11 / Щудло Михаил Моисеевич.- Курган,1999.-37с.

105. Ярыгин, Н.Е. Рецепторы чувствительных ганглиев и симпатических узлов // Сборник научных трудов, посвященный 10-летию Ярославского медицинского института.- Ярославль, 1954,- С. 291 292.

106. Ярыгин, Н.Е., Ярыгин, В.Н. патологические и приспособительные изменения нейрона. М. Медицина, 1973. - 272с.

107. Aldskogius, Н The reaction of primary sensory neurons to peripheral nerve injury with particular emphasis on transganglionic changes / H. Aldskogius, J. Arvidsson, G. Grant // Brain Res. 1985. - N 10. - P. 27 - 46.

108. Aldskogius, H. Effect of sciatic neurectomy on neuronal number and size distribution in the L7 ganglion of kittens / H. Aldskogius, M. Risling // Exp Neurol. 1981.- Vol. 74,- P. 597 - 604.

109. Aldskogius, H. Number of dorsal root ganglion neurons and axons cats of different ages / H. Aldskogius, M. Risling // Exp Neurol. 1989. - Vol. 106, N 1. - P. 70-73.

110. Andre, S. Axotomy-inducer expression of calcium-activated chlorid current in subpopulations of mouse dorsal root ganglion neurons / S. Andre, B. Boukhaddaoui, B. Campo et al. // J. Neurophysiol.- 2003.- Vol. 90, N6 .- P. 3764 3773.

111. Andres, K.H. Untersuchungen uber den Feinban von Spinal gunglien / K.H. Andres // Z. Zellforsch.-1961.- Vol. 55, N1P. 1 - 48.

112. Arvidsson, J. A quantitative study of effects of neonatal capsaicin treatment and of subsequent peripheral nerve transection in the adult rat / J. Arvidsson, J. Ygge // Brain Res.- 1986.-Vol. 397, N1,-P. 10-16.

113. Arvidsson, J. Cell loss in lumbar dorsal root ganglia and transganglionic degeneration after sciatic nerve resection in the rat / J. Arvidsson, J. Yagge, G. Grant // Brain Res. -1986.-Vol. 373, N 1-2. P. 15-21.

114. Bergman, L. Vascular supply of the spinal ganglia / L. Bergman, L. Alexander // Archives of Neurology and Psychiatry.- 1941.- Vol. 46, N5.- P. 761 782.

115. Benson, M.D. Eprin-B3 is a myelin-based inhibitor of neurite outgrowth / M.D. Benson, M.I. Romero, M.E. Lush, Q.P. Lu, M. Henkemeyer // Proc Natl Acad Sci USA. -2005,- Vol. 102, N30,- P. 10694 10699.

116. Bontioti, E.N. Regeneration and functional recjvery in the upper extremity of rats after various types of nerve injuries / E.N. Bontioti, M. Kanje, L.B. Dahlin // J. Peripher. Nerv. Syst.- 2003,- Vol. 8, N3,- P. 159 168.

117. Brierley, J.B. The sensory ganglia recent anatomical physiological and pathological contribution // Acta psyshiat. scand.- 1955,- Vol. 11, N 4.- P. 554 576.

118. Cajal, R.S. Degeneration and regeneration of the nervous system / R.S. Cajal.- London: Oxford Univ. Ress., 1928,- 76lp.

119. Carbonetto, S. Nerve fiber growth and the cellular response to axotomy / S. Carbonetto, K. Miller // Current tropics in developmental, biology ,1983.- Chicago: Naples. P. 33 - 76.

120. Carlson, J. Axonal atrophy from permanent peripheral axotomy in adult cat / J. Carlson, A.C. Lais, P.J. Dyck // J Neuropathol Exp Neurol. 1979. - Vol. 38, N 6. - P. 579-585.

121. Carlsted, T. Mammalian root-spinal cord regeneration / T. Carlsted, S. Cullheim, M.

122. Risling, В. Ulfhake // Transplant into Mammal CNS.- Amsterdam etc., 1988.- P. 225 -229.

123. Carlsted, T. Nerve fibre regeneration across the peripheral-central transitional zone // J. Anat.-1997.-Vol. 190, N l.-P. 51-6.

124. Carlsted, T. Nerve fibre regeneration across the PNS-CNS interface at the root-spinal cord junction / T. Carlsted, S. Cullheim, M. Risling, B. Ulfhake // Brain Res. 1989.-Vol. 22, N1,- P. 93- 102.

125. Cavada, C. Retrograde double labeling of neurons: the combined use of horseradish peroxidase and diamidino yellow dihydrochloride (DY X 2HC1) compared with true blue and DY X 2HC1 in rat descending brainstem pathways / C. Cavada, A.M. Huuisman,

126. H.G. Kuypers // Brain Res. 1984,- Vol. 308. P. 123 - 136.

127. Cavanaugh, M.W. Quantitative effect of the peripheral innervation on nerves and spinal ganglion cells/M.W. Cavanaugh//J. Сотр. Neurol.-1951.- Vol. 94.- P. 181 -219.

128. Ciriello, J. Central projections of afferent renal fibers in the rat: an antoregrade trasport study of horseradish peroxidase / J. Ciriello, F. Calaresu // J. Auton Nerv Syst.- 1983.-Vol. 8, N3,-P. 273 -285.

129. Clark, W.E. The problem of neuronal regeneration in the central nerveus system. 1. The influence of spinal ganglia and nerve fragment grafted in the btain / W.E. Clark, Le Cross // Journ. Anat. 1942.- Vol. 77,- P. 20 - 48.

130. Clemente, C.D. Регенерация центральной нервной системы млекопитающих. Значение нейроглии и соединительной ткани // Регенерация центральной нервной системы / перевод с англ. -М., 1959.-С. 113-121.

131. Coggeshall, R.E. Central changes in primary afferent fibers following perifheral nerve lesions / R.E. Coggeshall, H.A. Lekan, T.P. Doubell, A. Allchome et al. // Neuroscience. 1997. -Vol. 77, N4.-P. 1115-1122.

132. Devor, M. Proliferation of primary sensory neurons in adult rat dorsal ganglion and the kinetics of retrograde cell loss after sciatic section / M. Devor, R. Gorvin-Lippmann, I. Frank, P. Raber // Somatosens Res. 1985. - Vol 3, N 2. - P.139-167.

133. Devor, M. Neurogenesis in adult rat dorsal root ganglia / M. Devor, R. Gorvin-Lippman,

134. Frank //Neurosci. Left. 1985.- Vol. 61.- P. 1-2.

135. Ding, Q. Proteome analysis of up-regulated proteins in the rat spinal cord induced by transaction injury / Q. Ding, Z. Wu, Y. Guo, C. Zhao, Y. Jia et al. II Proteomics. -2006,- Vol. 6, N2,-P. 505-518.

136. Dogel, A.S. Der bau des spinalganglien des menshen and der sangetiere / A.S. Dogel.-Jena, 1908,- 151s.

137. Donnerer, J. Regeneration of primary sensory neurons // Pharmacology. 2003. - Vol. 67. - P. 169-181.145. Duce, I.R. P.Keen 1977

138. Foester, 0. Die tigrolytische reaction der ganglienzelle 10. Foester, 0. Gagel // Z. Mikr. Anat.- 1934,- Bd. 36, N4,- S. 567 575.

139. Freilinger, G. Distribution of motor and sensory fibers in the intercostals nerves / G. Freilinger, J. Holle, S. Sulzgruber // Plast Reconstr Surg. 1978. - Vol. 62. - P. 240 -244.

140. Frisen, J. Distribution and axonal relations of macrophages in a neuroma / J. Frisen, M. Risling, K. Fried // Neuroscience. 1993. - Vol. 55, N 4. - P.1003-1013.

141. Fu, S.Y. The cellular and molecular basis of peripheral nerve regeneration / S.Y. Fu, T. Gordon // Mol Neurobiol. 1997. - Vol. 14. - P. 67 - 116.

142. Fugleholm, K. Early peripheral nerve regeneration after crushing, sectioning, and freeze studied by implanted electrodes in the cat / K. Fugleholm, H.Schmalbruch, C. Krarup // J Neurosci. 1994. - Vol.14, N 5 Ptl. - P. 2659-2673.

143. Gordon, T. Long-term response to nerve injury / T. Gordon, S.Y. Fu // Adv Neurol. -1997.-Vol. 72.-P. 185-99.

144. Grant, G. Effects of peripheral nerve lesions on the number of sensory ganglion cells and on central branches of primary afferent neurons / G. Grant // Neurosci. Science.- 1987.-Vol. 22,- P. 4.

145. Grant, G. Somatotopik organization of the thoracic spinal nerve in the dorsal horn demonstrated with transganglionic degeneration / G. Grant, J. Yagge // J Comp Neurol. -1981. Vol. 202, N 3. - P. 357-364.

146. Grant, G. The organization of the thoracic spinal nerve projection in the rat dorsal horn demonstrated with transganglionic transport of horseradish peroxidase / G. Grant, J. Yagge //J Comp Neurol. -1983. -Vol. 216, N 1.- P. 1-9.

147. Groves, M.J. Profile of adult rat sensory neuron loss, apoptpsis and replacement after sciatic nerve crush / M.J. Groves, A. Schanzer, A.J. Simpson et al. // J. Neurocytol.-2003,- Vol. 32, N2,-P. 113-122

148. Groves, M.J. Axotomy-induced apoptosis in rat primary sensory neurons / M.J. Groves, T. Christopherson, B. Giometto, F. Scaravilli // Journal of Neurocytology. 1997. - Vol. 26. - P.615-624.

149. Goldshmit, Y. Axonal regeneration and lack astrocytic gliosis in EphA4 deficient mice / Y. Goldshmit, M.P. Galea, G. Wise, P.F. Bartlett, A.M. Turnley // J Neurosci.- 2004,-Vol. 24, N 45,-P. 10064- 10073.

150. Gurth, L. Regeneration in the mammalion peripheral nervous system // Phisiol. Rev. -1956.-Vol. 36, N4,-P. 441.

151. Hamburger, V. Proliferation, differentiation and degeneration in the spinal ganglia of the chick embryo under normal and experimental conditions // V. Hamburger, R. Levi-Montalcini // J. exp. Zool. 1949,- Vol. 111, N 8.- P. 457 - 501.

152. Hare, W. Reaction of dorsal root ganglion cells to section of peripheral and central processes / W. Hare, J. Hinsey // J. Comp. Neurol.- 1940.- Vol.73.- P. 489 502.

153. Hart, M. A. Primary sensory neurons and satellite cells after peripheral axotomyin the adult rat: timecourse of cell death and elimination / A. Mckay Hart, T. Brannstrom, M. Wiberg, G. Terenghi // Exp. Brain Res. -2002,- Vol. 142, N 3.- P. 308 318.

154. Hatai, S. Number and size of the spinal ganglion cell and dorsal root fibers in the white rat at different ages / S. Hatai // J. Comp. Neurol.- 1902,- Vol.12, N2,- P. 107 124.

155. Hekmapanah, J. Organization of tactile dermatomes CI through L4 in cat // J Neurophysiol. 1961. - Vol. 24. - P. 129 - 140.

156. Himes, B.T. Death of some dorsal root ganglion neurons and plasticity of others following sciatic nerve section in aduit and neonatal rats / B.T. Himes, A. Tessler // J Comp Neurol. 1989. - Vol. 284, N 2. - P. 215-230.

157. Hirt, A. Uder den Aufbau des Spinalganglions und seine Beziehungen zum sympathicus / A. Hirt // Z. ges. Anat. 1928,- Bd 87.- S. 275 - 318.

158. Hokfeit, T. Messenger plasticity in primary sensory neurons following axotomy and its functional implications / T. Hokfeit, X. Zhang, Z. Wiesenfeld-Hallin // Trends Neurosci. -1994.-Vol. 17.-P. 22-30.

159. Huang, W.L. Hypoxia-inducer apoptosis in adult rat dorsal root ganglion neurons in vitro / W.L. Huang, Q. Yang, R.E. Ward et al. // J. Neuroreport.- 2005,- Vol. 16, N2,- P. 89 -93.

160. Ide, C. Peripheral nerve regeneration // Neurosci Res. 1996. - Vol. 25. - P. 101 - 121.

161. Jacob, M. Neural intersegmental connection in the spinal root and ganglion region of the rat / M. Jacob, G. Wedell // J Comp Neurol. 1975. - Vol. 161. - P. 115 - 124.

162. Kadoya, T. Oxidized galectin-1 advances the functional recovery after peripheral nerve injury / T. Kadoya, K. Oyanagi, E. Kawakami, M. Hasegawa, Y. Inagaki,

163. Y. Sohma, H. Horie // Neuroscience Letters 380 (2005) 284-288.

164. Kawatani, M. Central distribution of afferent pathways from the uterus of the cat / M. Kawatani, C. Takeshige, W.C. de Groat // J. Compar. Neurol. 1990,- Vol. 302, N2,- P. 294-304.

165. Kayahara,T. Synaptic connection between spinal motoneurons and dorsal root ganglion cells in the cat / T. Kayahara // Brain. Res.- 1986,- Vol. 376.- P. 299 309.

166. Kayahara,T. Synaptic junction in the cat spinal ganglion / T. Kayahara, T. Tkimoto, S. Sakashita // Brain. Res.- 1981,- Vol. 216,- P. 286 290.

167. Kimmel, D.J Dorsal root following anastomosis of the central stump / D.J. Kimmel, E.K. Moeyer // J Comp Neurol. 1947.- Vol. 87,- P. 289 - 319.

168. Kirk, E.J. Functional variation in dermatomes in the Macaque monkey following dorsal root lesions / E.J. Kirk, D. Denny-Braun // J Comp Neurol. 1970. - Vol. 139. - P. 307 -320.

169. Kiss, F. Sympathetic elements in cranial and spinal ganglia / F. Kiss // J. Anat. 1932.-Vol. 66.- P. 488-498.

170. Kuypers, H.G.J.M. Fluorescent neuronal tracers / H.G.J.M. Kuypers, A.M. Huisman // Adv. Cell. Neurobiol.- 1984,- Vol. 5,- P. 307 340.

171. Larnicol Nicol Morphometrical study of the cat thoracic dorsal root ganglion cells in relation to muscular and cutaneous afferent innervation / Larnicol Nicol , Rose Dominique, Duron Bernard//Neurosci. Res.- 1988.-Vol. 6, N2,-P. 149-161.

172. Lee, K.H. Correlation of cell body size, axon size, and signal conduction velocity for individually labelled dorsal root ganglion cells in the cat / K.H. Lee, K. Chung, J.M. Chung, R.E. Coggeshall // J Comp Neurol. 1986.- Vol. 243, N 3,- P. 335 - 346.

173. Lekan, H.A. Loss of dorsal root ganglion cells concominant with dorsal root axon sprouting following segmental nerve lesions / H.A. Lekan, K. Chung, Y.W. Yoon, J.M.

174. Chung et al. // Neuroscience. 1997. - Vol. 81, N 2. - P. 527-534.

175. Levi, G.J. Cangli cerebrospinali / G.J. Levi // Arch. ital. Anat. Embriol.- 1908.- Vol. 7,-P. 1 -392.

176. Lewin, T. Uder die Zahlen der nervenfasern und Ganglienzellen in den Spinalganglien des Kaninchens / T. Lewin, J. Gaule // Zentralb. Physiol. 1896,- Bd 10, N10, N15,- P. 437-440, (N16,-P. 456-471).

177. Lhamon, W. Reaction of spinal ganglion cells to section of dorsal root / W. Lhamon // J Comp Neurol. 1937,- Vol. 61.- P{. 205 - 214.

178. Lieberman, A.R. Some factors affecting retrograde neuronal responses to axonal lesions //Essays on the nervous system.- N.Y.: Oxford Univ. Press, 1976.- P. 71 105.

179. Lishnak, T. S. Phosphorylation of CREB in thoracolumbar spinal neurons and dorsal root ganglia after renal artery occlusion in rat / T.S. Lishnak, Margaret A. Vizzard // Autonomic neuroscience: Basic and Clinical. 2001, - Vol.94. - P. 62-73.

180. Liss, A. G. Loss of neurons in the dorsal root ganglia after transection of a peripheral sensory nerve. An anatomical study in monkeys / A.G. Liss, F.W. af Ekenstam, M. Widerg // J. Plast Reconstr Surg Hand Surg.- 1996,- Vol. 30,- P. 1- 6.

181. Liss, A.G. Cell loss in sensory ganglia after peripheral nerve injury / A.G. Liss, F.W. af Ekenstam, M. Widerg // Scand J Reconstr Hand Surg. 1994. - Vol. 28. - P. 177 - 187.

182. Liu, H. Trophic substance in the regenerating nerve / H. Liu, M. Skoff, E.Zacks // J. Neuropathol and Exp. Neurol.- 1978,- Vol. 37, N 5.- P. 659.

183. Liu, W. The occurrence of nitric oxide synthase-containing axonal baskets surrounding large neurons in rat dorsal root ganglia after sciatic nerve ligation / W. Liu, K. Hirata, M. Kawabuchi // Arch Histol Cytol. 2005. - Vol. 68, N 1. - P. 29 - 40.

184. Liuzzi, E. Astrocytes block axonal regeneration in mammals by activating the physiological stop pathway / E. Liuzzi, R. Lasek // Science.- 1987.- Vol. 237, N4815,-P. 632-645.

185. Ljungberg, C. The neurotrophins NGF and NT-3 reduce sensory neuronal loss in adult rat after peripheral nerve lesion / C. Ljungberg, L. Novicov, J.-O. Kellerth, T. Ebendal, M. Widerg // Neuroscience Letters.- 1999,- Vol. 262,- P. 29 32.

186. Lozeron, P. Regeneration of unmyelinated and myelinated sensory nerve fibres studied by a retrograde tracer method / P. Lozeron, C. Krarup, H. Schmalbruch // J Neurosci Methods. 2004. - Vol. 138, N 1 - 2. - P. 225 - 232.

187. Ma, J. Delayed loss of spinal motoneurons after peripheral nerve injury in adult rats: a quantitative morphological study / Jianjun Ma, L.N. Novicov, J.-O. Kellerth, M. Widerg // Exp Brain Res. 2001. - Vol. 139. -P/216- 223.

188. Majno, G. Apoptosis, oncosis and necrosis. An overview of cell death / G. Majno, I. Joris // American J. of Pathology.- 1995,- Vol. 146,- P. 3 15.

189. Malushte, T.S. Assessment of recovery following a novel partial nerve lesion in a rat model / T.S. Malushte, J.M. Kerns, C.C. Huang et al. // J. Muscle Nerve.- 2004,- Vol. 30, N5,- P. 609-617.

190. Marinesco, G. La cellule nerveuse / G. Marinesco // Paris , 1909 Vol. 1-2.

191. Marinesco, G. Quelques recherches sur la transplantation des ganglions nerveuex / G. Marinesco // Rev. Neurol. (Paris).- 1907.- Vol. 15.- P. 241 260.

192. Nageotte, J. Etude sur la greffe des ganglions rachidiens; variations et tropisms de neurone sensitive / J. Nageotte // Anat. Anzeiger.- 1907,- Vol. 31.- P. 225 245.

193. Nicholls, J.G. Neural repair. Introduction // J. Exp. Biol.- 1987,- Vol.132.- P. 1 3.

194. Norsio, R. The organization of neuronal sonata in the first sacral spinal ganglion of the cat / R. Norsio, D. Santis // Experim. neurology.- 1976.- Vol.50.- P. 246 558.

195. Oh, E.J. Changes in nerve growth factor levels in dorsal root ganglia and spinal nerves in a rat neuropathic pain model / E.J. Oh, Y.W. Yoon, S.E. Lee, S.K. Hong // Exp Brain Res. -2000.-Vol.130.-P. 93-99.

196. Olawale, A.R. FK506 increases Peripheral Nerve Regeneration after Chronic Axotomy but Not after Chronic Schwann Cell Denervation / A.R. Olawale et al. // Experimental Neurology. -2002.-Vol. 175.-P.127-137.

197. Olsson, Y. Permeability of vasa nervorum and perineurium in mouse sciatic nerve studied by fluorecence and electron microscopy / Y. Olsson, T.S. Reese // J. Neuropath. Exp. Neurol.-1971,- Vol. 30,-P. 105-119.

198. Pasking, Y. Regeneration of posterior root fibers in the cat / Y. Pasking // Arch, neurology and physiology.- 1936,- Vol. 36, N3,- P. 1077 1084.

199. Perry, M.J. Immunocytochemical properties of primary afferent neurons innervating skin, muscle or viscera in the rat / M.J. Perry, S.N. Lawson // J. Physiol. 1990,- Vol. 425,-P. 36.

200. Raivich, G. NGF receptor mediated decrease in axonal uptake and retrograde transport of endogenous NGF following sciatic nerve injury and during regeneration / G. Raivich, R. Hellweg, G.W. Kreutzberg //Neuron. - 1991. - Vol. 7. - P. 151 - 164.

201. Raivich, G. Peripheral nerve regeneration: Role of growth factors and their receptors / G. Raivich, G.W. Kreutzderg // Int J Dev Neurosci. 1993. - Vol. 17. - P. 311 - 324.

202. Rambourg, A. Y. Ultrastructural features of six types of neurons in rat dorsal root ganglia / A.Y. Rambourg, T. Clermont, A. Beaudet // J. Neurocytol.- 1983,- Vol. 12,- P. 47 66.

203. Ramer M., Bisby M. Reduced sympathetic sprouting occurs in dorsal root ganglia after axotomy in mice lacking low-affinity neurotrophin receptor. -http://wos.elibrary.ru/WoS/CIW.cgi?800EAA348&Func=Abstract&doc=15/17

204. Ranson, S.W. Retrograde degeneration in the spinal nerves / S.W. Ranson // J. Comp. Neurol.- 1906,- Vol. 14.- P. 265-293.

205. Ranson, S.W. Transplantation of the spinal ganglion with observation of the significanceof the complex types of spinal ganglion cells / S.W. Ranson // J. Comp. Neurol.-1914,- Vol. 42,- P. 547 558.

206. Ranson, S.W. Alteration in the spinal ganglion cells following neurotomy / S.W. Ranson //J. Comp. Neurol.- 1909,-Vol.19.-P. 125- 153.

207. Reynolds, E.S. The use of lead citrate at high pH as an electronopaque stain in electron microscopy/E.S. Reynolds// J. of Cell Biology.- 1963,-N 17,-P. 208 212.

208. Ribotta, M.G. Glial scar and axonal regeneration in the CNS: lessons from GFAP and vimentin transgenic mice / M.G. Ribotta, V. Menet, A. Privat // Acta Neurochir Suppl. -2004.-Vol. 89,-P. 87-92.

209. Richardson, P.M. Axonal regeneration in dorsal spinal root is accelerated by peripheral axonal transection / P.M. Richardson, V.M.K. Verge// Brain Res. 1987,-Vol. 411,-P. 406-408.

210. Risling, M. Effects of sciatic nerve crush on the L7 spinal roots and dorsal root ganglia in kittens / M. Risling, H. Aldskogius, C. Hildebrand // Exp Neurol. -1983.- Vol. 79, N1,- P. 176-187.

211. Robain, O. Histoenzymologie du ganglion spinal du lapin / O. Robain, L. Jardin // J. Neurol. Sci.- 1972,-Vol. 17, N4,-P. 419 433.

212. Schionning, J.D. A stereological study of dorsal root ganglion cells and nerve root fibers from rats treated with inorganic mercury / J.D. Schionning, J.O. Larsen // Acta Neuropathol.- 1997,- Vol. 94, N 3,- P. 280 286.

213. Schmalbruch, H. Loss of sensory neurons after sciatic nerve section in the rat // Anat Rec. 1987. - Vol. 219, N 3. - P. 323-329.

214. Schwab, J.M. Lesional RhoA + cell numbers are suppressed by anti-inflammatory, cyclooxygenase-inhibiting treatment following subacute spinal cord injury / J.M. Schwab, S. Conrad, T. Elbert, K. Trautmann // Glia 2004,- Vol. 47, N 4,- P. 377 - 386.

215. Shantha, T. The structure and function of neuros tissue / T. Shantha, G. Bourne // Acad Press New-York and London, 1968,- P. 380.

216. Shen, H. Changes in trkA expression in the dorsal root ganglion after peripheral nerve injury / H. Shen, J.M. Chung, R.E. Coggeshall, K.S. Chung // Exp Brain Res. 1999. -Vol.127.-P. 141-146.

217. Sherrington, C.S. Experiments in examination of the peripheral distribution on the fibres of the posterior roots of some spinal nerves // Philos Trans London. 1894. - Vol. 184. -P. 641 -763.

218. Sherrington, C.S. Experiments in examination of the peripheral distribution on the fibres of the posterior roots of some spinal nerves. II // Philos Trans London. 1898. - Vol. 190. -P. 45 - 186.

219. Shinowara, N.L. Morphological correlates of permeability in the frog perineurium. Vesicles and "transcellular channels" / N.L. Shinowara, M.E. Michel, S.I. Rapoport // Cell Tissue Res.- 1982,- Vol. 221,- P. 11 12.

220. Shortland, P. Distribution of transganglionically labeled soybean agglutinin ptimary afferent fibres after nerve injury/ P. Shortland, H.E. Wang, C. Molander// Brain Research. 1999.-Vol. 815.-P. 206-212.

221. Sinclair, D.C. Referred pain and associated phenomena / D.C. Sinclair, G. Weddell, W.H. Feindel // Brain. 1948. - Vol. 71. - P. 184 - 211.

222. Sommer, E.W. Neuronal subpopulations in the dorsal root ganglion of the mouse as characterized by combination of ultrastructural and cytochemical features / E.W. Sommer, J. Kazimierczak, B. Droz // Brain Res.- 1985,- Vol. 346,- P. 310 326.

223. Sorensen, B. No further loss of dorsal root ganglion cells after axotomy in p75 neurotrophin receptor knockout mice / B. Sorensen, T. Tandrup, M. Koltzenburg et al. // J. of Comparative Neurology.- 2003,- Vol. 459.- P. 242 250.

224. Sterling, P. Anatomical organization of the brachial spinal cord of the cat. I. The distribution of dorsal root fibers / P. Sterling, HGJM. Kuypers // Brain Res. 1967. - Vol.4.-P. 1-15.

225. Sterman, A. Cell body responses to axonal injury: traumatic axotomy versus toxic neurophathy / A. Sterman, M. Delannoy // Exp. Neurol.- 1985.- Vol. 89, N2,- P. 408 -419.

226. Szabo, Z. Blood supply of the ganglia / Z. Szabo, F. Bolony // Acta morphol. Acad, sei. Hung.- 1955,- Vol. 5, N1.- P. 165 170.

227. Szarijanny, N. Differental distribution of small and large neurons in the sacrococcygeal dorsal root ganglia of the cat // N. Szarijanny, M. Rethelyi // Acta, morhol. Acad. Sei. hung.- 1979,- Vol. 27, N 1-2,-P. 25-35.

228. Szentagothai, J. Projection of dermatomes on the substantia gelatinosa / J. Szentagothai, T. Kiss // Arch Neurol Psychiat. 1949. - Vol. 62. - P. 734 - 744.

229. Tandrup, T. A method for unbiased and efficient estimation of number and mean volume of specified neuron subtypes in rat dorsal root ganglion // J Comp Neurol. 1993. - Vol. 329,N2.-P. 269-276.

230. Tandrup, T. Delayed loss of small dorsal root ganglion cells after transection of the rat sciatic nerve / T. Tandrup, C.J. Woolf, R.E. Coggeshall // J Comp Neurol. 2000. - Vol. 422, N2.-P. 172-180.

231. Ten Cate, J. Über das Verhalten des isolierten Dermatoms beim Wachsen der Hunde / C. J. Ten, L. Waterman // Arch Neeri Physiol. 1932. - Vol. 17. - P. 537 - 548.

232. Terenghi, G. Changes in sensory neuropeptides in dorsal root ganglion and spinal cord of spontaneously diabetic BB rats. A quantitative immunohistochemical study / G. Terenghi,

233. Chen, A.L. Carrington et al. // J. Acta Diabetol.- 1994,- Vol. 31, N4,- P. 198 204.

234. Terenghi, G. Peripheral nerve injury and regeneration / G. Terenghi // Histol Histopathol.- 1995,- Vol. 10, N3,-P. 709-718.

235. Terenghi, G. Peripheral nerve regeneration and neurotrophic factors. J Anat. 1999. -Vol. 194.-P. 1-14.

236. Tessler, A. Sciatic nerve transection produces death of dorsal root ganglions cells and reversible loss substance P in spinal cord / A. Tessler, B.T. Himes, N.R. Krieger, M. Murray et al.//Brain Res.- 1985.-Vol. 332, N2.-P. 209-218.

237. Tidd, C.W. The transplantation of spinal ganglion in the white rat / C.W. Tidd II J. comp. Neurol.- 1932,- Vol. 55.- P. 531 541.

238. Toft, P.B. Axonal draching following crush lesions of peripheral nerves of rat / P.B. Toft, K. Fugleholm, H. Schmalbruch // Muscle Nerve. 1988. - Vol. 11, N 8. - P. 880 -889.

239. Tohill, M. Stem-cell plasticity and therapy for injuries of the peripheral nervous system /

240. M. Tohill, G. Terenghi // Biotechnol Appl Biochem. 2004. - Vol. 40, N 1. - P. 17-24.

241. Tyndall, D.A. Evaluation of peripheral nerve regeneration following crushing or transection injuries / D.A. Tundall, J.M. Gregg, J.S. Hanker // J. Oral Maxillofac Surg.-1984,-Vol. 42, N5,-P. 314-318.

242. Vega, J.A. Acetyl-cholinenestrase and fluoride-resistant acid phosphatase activities in dorsal root ganglia in the rat / J. Vega, C. Rodriguez, M. Medina, A. Telleria et al. // Cell, and Mol. Biol. 1989,- Vol. 35, N1,- P. 39 - 46.

243. Verdu, E. Influence of aging on peripheral nerve function and regeneration / E. Verdu, D. Ceballos, J,J. Vilches et al. // J Periph Nerv Syst. 2000. - Vol. 5. - P. 191 - 208.

244. Vestergaard, S. Effect of permanent axotomy on number and volume of dorsal root ganglion cell bodies / S. Vestergaard, T. Tandrup, J. Jakobsen // J Comp Neurol. 1997. -Vol. 388, N2.-P. 307-312.

245. Wagner, R. Schwann cells produce tumor necrosis factor alpha: expression in injured and non-injured nerves / R. Wagner, R.R. Myers // Neuroscience. 1996. - Vol. 73, N 3. -P. 625-629.

246. Weddell, G. Neural intersegmental connection in the spinal root and ganglion region of the rat / G. Weddell // J. comp. Neurol.- 1975,- Vol. 161, N1,- P. 115 123.

247. Xu, Q-G. Ischemia and failed regeneration in chronic experimental neuromas / Q-G. Xu, D.W. Zochodne // J. Brain Res. -2002.- Vol. 946,- P. 24 30.

248. Ygge, J. Asymmetries and symmetries in the number of thoracic dorsal root ganglion cells / J. Ygge, H. Aldskogius, G. Grant // J Comp Neurol. 1981. -Vol. 202, N 3. - P. 365372

249. Ygge, J. Central projection of the rat radial nerve investigated with transganglionic degeneration and transganglionic transport of horseradish peroxidase // J Comp Neurol. -1989.-Vol. 279, N2.-P. 199-211.

250. Ygge, J. Intercostal nerve transection and its effect on the dorsal root ganglion. A quantitative study on thoracic ganglion cell numbers and sizes in the rat / J. Ygge, H. Aldskogius // Exp Brain Res. 1984. - Vol. 55, N 3. - P. 402 - 408.

251. Ygge, J. Neuronal loss in lumbar dorsal root ganglia after proximal compared to distal sciatic nerve resection: a quantitative study in the rat // Brain Res. 1989. - Vol. 478, N l.-P. 193-195.

252. Ygge, J. On the organization of the thoracic spinal ganglion and nerve in the rat // Exp Brain Res. 1984. - Vol. 55, N 3. - P. 395 - 401.

253. Ygge, J. The organization of the thoracic spinal nerve projection in the rat dorsal horn demonstrated with transganglionic transport of horseradish peroxidase / J. Ygge, G. Grant //J Comp Neurol.- 1983.-Vol. 216.-P. 1-8.

254. Zochodne, D. W. Neurotrophins and other growth factors un the regenerative milieu of proximal nerve stump tips / D. W. Zochodne, C. Cheng // J. Anat.- 2000,- Vol. 196,- P. 279-283.

255. Zochodne, D. W. The microenvironment of injured and regenerationg peripheral nerves // Muscle Nerve Suppl. 2000. - Vol. 9. - P. 33 - 38.