Молекулярно-биологические методы диагностики микоплазмозов крупного рогатого скота тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Абед Алхуссен Мохаммад

• Абед Алхуссен Мохаммад
• кандидат наук
• 2023

Оглавление диссертации кандидат наук Абед Алхуссен Мохаммад

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1. 1 Краткая характеристика микоплазм

1.2 Клинические признаки микоплазменных инфекций, вызванных M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar и Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides SC

1.3 Распространение M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar и Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides SC в мире и РФ

1.4 Микробиологические особенности

1.5 Устойчивость к антимикробным препаратам

1.6 Передача возбудителей

1.7 Контаминация спермы быков - производителей

1.8 Инкубационный период

1.9 Особенности патогенеза и его молекулярные механизмы

1.10 Лабораторная диагностика

1.10.1 Микробиологические методы

1.10.2 Молекулярная диагностика

1.10.3 Полная геномная последовательность

1.10.4 Серологическая диагностика

1.11 Заключение по обзору литературы

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материалы

2.1.1 Материал для исследования

2.1.2 Штаммы вирусов, микоплазм и других бактерий

2.1.3 Реактивы, растворы и материалы

2.1.4 Оборудование

2.2 Методы

2.2.1 Выделение нуклеиновой кислоты

2.2.2 Постановка ПЦР в режиме реального времени для выявления генома M. bovis, M. bovigenitalium и Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides SC

2.2.3 Определение оптимальных концентраций хлорида магния и дезоксинуклеозидтрифосфатов для ПЦР-РВ

2.2.4 Определение оптимальных концентраций праймера и зонда для ПЦР-РВ

2.2.5 Оптимизация температуры отжига праймеров для ПЦР-РВ

2.2.6 Постановка ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле для выявления генома M. dispar

2.2.7 Культивирование M. bovis на жидких и плотных питательных средах

2.2.8 Определение активности изолята M. bovis

2.2.9 Антимикробная резистентность изолята M. bovis

2.2.10 Генетическая характеристика изолята «Калуга 2020» M. bovis

2.2.11 Статистическая обработка результатов

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

3.1 Разработка методики выявления ДНК M. bovis с помощью ПЦР-РВ

3.1.1 Оптимизация концентрации хлорида магния и дезоксинуклеозидтрифосфатов в ПЦР-РВ

3.1.2 Оптимизация концентраций праймеров и флуоресцентного зонда при постановке ПЦР-РВ

3.1.3 Оптимизация температурно-временных параметров ПЦР-РВ

3.1.4 Аналитическая специфичность разработанной методики выявления M. bovis с помощью ПЦР-РВ

3.1.5 Аналитическая чувствительность, эффективность и повторяемость методики выявления M. bovis с помощью ПЦР-РВ

3.2 Разработка методики выявления ДНК M. bovigenitalium с помощью

ПЦР-РВ

3.2.1 Оптимизация концентрации хлорида магния и дезоксинуклеозидтрифосфатов в ПЦР-РВ

3.2.2 Оптимизация концентраций праймеров и флуоресцентного зонда при постановке ПЦР-РВ

3.2.3 Оптимизация температурно-временных параметров ПЦР-РВ

3.2.4 Аналитическая специфичность разработанной методики выявления M. bovigenitalium с помощью ПЦР-РВ

3.2.5 Аналитическая чувствительность, эффективность и повторяемость методики выявления M. bovigenitalium с помощью ПЦР-РВ

3.3 Разработка методики выявления ДНК M. dispar в ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле

3.4 Разработка методики выявления ДНК M. mycoides subsp. Mycoides SC

(MmmSC) с помощью ПЦР-РВ

3.5. Выявление ДНК микоплазм в пробах биологического материала в 20202022 гг

3.6 Разработка методики выделения полевых изолятов M. bovis на жидких и плотных питательных средах

3.6.1 Определение фаз роста и времени максимального накопления изолята «Калуга 2020» M. bovis при культивировании в модифицированной среде Хейфлика

3.6.2 Определение оптимального состава питательной среды для культивирования изолята «Калуга 2020» M. bovis

3.7 Антимикробная резистентность изолята «Калуга 2020» M. bovis

3.8 Генетическая характеристика изолята «Калуга 2020» M. bovis

4. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

4.1 Выводы

4.2 Практические предложения

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Молекулярно-биологические методы диагностики микоплазмозов крупного рогатого скота»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Представители бактерий рода Mycoplasma способны вызывать у крупного рогатого скота (КРС) тяжелые респираторные и репродуктивные заболевания, требующие быстрого и точного выявления для эффективной борьбы с ними [24, 184, 198, 201].

Мастит, пневмония, проблемы с фертильностью, вызываемые микоплазмами, являются наиболее частыми клиническими признаками заболевших животных, что приводит к значительным экономическим и производственным потерям в мясном и молочном животноводстве [105, 108, 182, 201].

Среди микоплазмозов КРС наиболее экономически значимыми и подлежащими контролю являются Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC (Mmm SC), Mycoplasma bovis (M. bovis), Mycoplasma bovigenitalium (M. bovigenitalium), Mycoplasma dispar (M. dispar). В связи с развитием животноводства в мире, микоплазмы приобрели глобальное распространение, при этом отмечают высокий уровень заболеваемости в западных странах, что существенно влияет на благополучие животноводческой отрасли [64, 184, 198, 202]. Помимо моноинфекций, M. bovis, например, вызывает сочетанные инфекции с такими вирусными и бактериальными патогенами КРС, как Mannheimia haemolytica, Pasteurella multocida, Arcanobacterium pyogenes, Histophilus somni, респираторно-синцитиальный вирус КРС (BRSV), вирус герпеса КРС 1 (BHV-1), вирус вирусной диареи КРС (BVDV), вирус парагриппа 3, что значительно повышает заболеваемость и смертность, особенно среди молодняка [35, 136, 231].

Mycoplasma bovigenitalium связана с репродуктивными нарушениями у КРС [190, 230]. Экономический ущерб при поражении M. bovigenitalium связан с бесплодием и снижением репродуктивной способности животных [52, 146, 204].

M. dispar является одним из возбудителей респираторных заболеваний КРС, которые имеют повсеместное распространение и характеризуются воспалением слизистых оболочек верхних дыхательных путей и поражением легких, при этом распространенность M. dispar подтверждает ее роль в патогенезе респираторных заболеваний КРС [101, 112].

Наиболее опасный микоплазмоз КРС - контагиозная плевропневмония КРС (КПП) представляет собой контагиозное респираторное заболевание жвачных животных (родов Bos и Bubalus, т.е. в основном КРС, зебу, яков (Bos grunniens) и буйволов (Bubalus bubalis), вызываемое бактерией Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC (Mmm SC). Заболевание оказывает серьезное воздействие на животноводство в связи с возможностью его быстрого распространения. В результате страны, где регистрируется КПП, исключаются из международной торговли живыми животными, что приводит к значительным потерям производительности в животноводстве из-за высокого уровня смертности и заболеваемости [12, 266].

В целом при неблагоприятных условиях микоплазмы самостоятельно или в комбинации с другими инфекционными агентами могут вызывать серьезные респираторные заболевания, что обусловливает экономические потери в крупных животноводческих хозяйствах с высокой концентрацией животных [101, 116].

Для борьбы с микоплазмозом КРС используют антибиотики, однако микоплазмы невосприимчивы к ряду противомикробных препаратов из-за отсутствия клеточной стенки, что не позволяет эффективно контролировать лечение заболевания антибиотиками [159, 211, 228].

Одним из ключевых составляющих компонентов борьбы с микоплазмозами КРС является своевременная диагностика. Лабораторное подтверждение микоплазмоза КРС, вызванное M. bovis, M. bovigenitalium и M. dispar, имеет важное значение, поскольку эти формы микоплазмоза имеют глобальное распространение, что существенно влияет на благополучие животноводческой отрасли [16, 24, 184].

Классическим способом идентификации микоплазм КРС является выделение чистой культуры на жидких и твердых питательных средах, что имеет приоритетное значение, так как в этом случае можно получить наиболее полную информацию о культурально-морфологических и биологических свойствах возбудителя.

Кроме того, у данного метода имеется дополнительное преимущество, заключающееся в возможности создания банка клинических изолятов, которые в дальнейшем возможно использовать для разработки и совершенствования стратегий профилактики, контроля и искоренения микоплазмозов, а также выявления резистентности микоплазм к антибактериальным препаратам [16, 24, 143, 184]. Но следует также отметить, что данный способ трудоемок и требует 710 дней для постановки диагноза [24].

В современных условиях оперативность диагностики может быть достигнута за счет ПЦР в режиме реального времени, которая обеспечивает быструю и точную идентификацию генома микоплазм в пробах биологического материла [16, 24, 77, 186]. Наличие инструментов молекулярной идентификации генома M. bovis позволяет контролировать не только эпизоотологическую ситуацию в отечественных хозяйствах, но и проводить контроль, как при ввозе спермы, так и при использовании ее в производственных целях.

На территории РФ комплексная и систематическая лабораторная диагностика микоплазмозов КРС, вызванных M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar, Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC, к сожалению, не проводится и в

отечественной литературе отсутствуют актуальные данные о распространении M. bovis, M. bovigenitalium и M. dispar среди российского поголовья на фоне активного завоза племенного скота из неблагополучных стран Европы [14], поэтому борьба с микоплазмозом на территории РФ осложняется.

Исходя из вышеизложенного, усовершенствование отечественных методов выявления геномов M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar, Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC в пробах патологического материала, а также оптимизации компонентов питательных сред для культивирования M. bovis (выделение на питательных сред) и изучения полученных изолятов M. bovis является актуальной задачей для современной ветеринарии с целью внедрения в лабораторную практику методов идентификации и изучения микоплазм.

Степень разработанности проблемы. Изучению этиологической роли бактерий: M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar и Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC при атипичных пневмониях, инфекционных маститах и репродуктивных нарушениях у КРС посвящены работы как отечественных, так и зарубежных исследователей [5, 8, 94]. В рутинной работе ветеринарных лабораторий чаще проводят идентификацию этих возбудителей до рода, что связано со сложностью их выделения [24].

В то же время видовая идентификация условно-патогенных возбудителей важна при проведении мониторинговых исследований, оценке этиологического значения инфекционного агента, выборе антимикробного препарата, при изучении механизмов резистентности с целью рациональной фармакотерапии животных [5, 8, 24, 94, 256].

В разных странах мира для диагностики микоплазмозов КРС используют ИФА, ПЦР, бактериологические исследования и др. [24, 73, 184]. Наибольшее распространение имеют такие методы диагностики как ПЦР-РВ, ИФА и выделение возбудителя на питательных средах [73].

На настоящий момент различными авторами разработано несколько тест-систем, основанных на иммунофлюоресцентных, иммуногистохимических методах [42, 76] и на различных модификациях ПЦР, позволяющих выявлять ДНК M. bovis и M. bovigenitalium в пробах биологического материала [19, 21, 86, 195].

Также за рубежом осуществляют серодиагностику микоплазменной инфекции с использованием реакций агглютинации, связывания комплемента и ИФА в различных вариантах [16, 83, 103, 141].

Кроме того, существует множество жидких, полужидких и твердых питательных сред для выделения микоплазм КРС: среда Фрея, среда WJB, среда Хейфлика, Мартена, Эдварда, ВИЭВ, УНИЭВ и их модификации и др. [151, 247, 250]. Однако существующие трудности выделения микоплазм КРС на питательных средах обусловлены их биологическими особенностями [24, 173].

В настоящее время во многих диагностических лабораториях для диагностики микоплазмоза КРС методом ПЦР-РВ используют «Тест-систему для выявления ДНК микроорганизмов рода Mycoplasma в биологическом материале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) «МИК-КОМ» (ООО «ИнтерЛабСервис», г. Москва), а также набор реагентов для выявления ДНК возбудителей микоплазмоза (Mycoplasma spp.) в биологическом материале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени (ООО «ВЕТ ФАКТОР», г. Москва).

В Российской Федерации, Шибаев М.А., Прохватилова Л.Б., Макавчик С.А., Безбородова Н.А. и другие исследователи указывали на эффективность идентификации и выявления M. bovis и M. bovigenitalium с использованием ПЦР в режиме реального времени [3, 6, 7, 14, 127].

Также, А.А. Сухинин использовал бактериологический и молекулярно-генетический методы для выделения и идентификации Mycoplasma bovis у КРС [11].

В 2021г. появился коммерческий набор фирмы «ИДС» для выявления Mycoplasma bovis, M. bovigenitalium. В ФГБУ «ВГНКИ» разработаны методики на основе ПЦР-РВ для идентификации и дифференциации патогенных микоплазм (M. bovis, M. californicum, M. bovigenitalium).

На сегодняшний день в РФ отсутствуют тест-системы ПЦР-РВ отечественного производства, выявляющие ДНК M. mycoides subsp. Mycoides SC (Mmm SC), в связи с чем разработка современных методов молекулярной диагностики Mmm SC, с целью недопущения заноса возбудителя при импорте КРС на территорию РФ, является актуальной задачей.

Учитывая немногочисленные исследования в отечественной литературе, видовая идентификация, включая микробиологическое подтверждение с последующим анализом антибиотикоустойчивости микоплазм, изолированных от КРС, в условиях ветеринарных лабораторий не проводится, затрудняя усилия по оздоровлению российского скота от этих патогенов [1, 165, 242].

Сложности выделения и культивирования возбудителя микоплазмоза КРС на питательных средах, а также трудности получения достаточного количества бактериального материала с высокой биологической активностью, обусловили актуальность цели и задач данной диссертационной работы.

Цель и задачи исследования. Целью диссертационной работы являлась разработка комплекса средств лабораторной диагностики микоплазмоза КРС, вызванного M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar и M. mycoides subsp. mycoides SC (Mmm SC), и изучение выявляемости микоплазм КРС среди крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах на территории Российской Федерации.

Для достижения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

1. Разработать методику выявления ДНК M. bovis и M. bovigenitalium в пробах патологического материала КРС с помощью ПЦР-РВ.

2. Разработать методику по выявлению ДНК M. dispar методом ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле.

3. Разработать методику для выявления ДНК Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC в пробах патологического материала КРС с помощью ПЦР-РВ.

4. С использованием разработанных методик исследовать пробы биоматериала, отобранные из различных хозяйств Российской Федерации на наличие ДНК M. bovis, M. bovigenitalium и M. dispar.

5. Усовершенствовать состав питательной среды для повышения эффективности выделения бактерии M. bovis из проб биологического материала, отобранных от инфицированного крупного рогатого скота.

6. Определить антимикробную резистентность изолята M. bovis «Калуга 2020».

Научная новизна исследований.

Впервые показана широкая выявляемость ДНК возбудителей M. bovis, M. bovigenitalium и M. dispar в животноводческих хозяйствах на территории Российской Федерации.

Выделен изолят M. bovis «Калуга 2020», изучены его культуральные свойства и антимикробная резистентность.

Изучены стадии роста изолята M. bovis «Калуга 2020» и определен оптимальный состав питательных сред для культивирования.

На основе генетического анализа коровых генов генома установлено, что изолят M. bovis «Калуга 2020» генетически наиболее близок в кластеру изолятов M. bovis из Бельгии и Франции.

Теоретическая и практическая значимость исследования.

Разработаны, одобрены Ученым советом и утверждены директором ФГБУ «ВНИИЗЖ» и используются в лабораторной практике следующие методические рекомендации:

- «Методические рекомендации по выявлению ДНК патогенной Mycoplasma bovis с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени» (2021 г.);

- «Методические рекомендации по выделению Mycoplasma bovis на жидких и твердых питательных средах» (2021 г.);

- «Методические рекомендации по выявлению ДНК Mycoplasma dispar методом полимеразной цепной реакции с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле» (2022 г.);

- «Методические рекомендации по выявлению ДНК Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides SC (Mmm SC) с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени» (2022 г.).

- «Методические рекомендации по выявлению ДНК Mycoplasma bovigenitalium с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени» (2023 г.).

Практическая значимость работы состоит в том, что полученные результаты послужили основой для разработки и валидации:

- тест-систем на основе ПЦР в режиме реального времени для выявления ДНК M. bovis и M. bovigenitalium в пробах биологического материала КРС;

- ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле для выявления ДНК M. dispar в пробах биологического материала КРС;

- ПЦР в режиме реального времени для выявления ДНК M. mycoides subsp. mycoides SC.

Методология и методы исследования. В работе использовали классические методы исследования: бактериологические (выделение, культивирование и титрование патогена), молекулярно-биологические (ПЦР-РВ и секвенирование), а также физико-химические (приготовление химических

растворов, питательных сред, антигенных смесей, центрифугирование и др.) и статистические.

Положения, выносимые на защиту.

1. Методики на основе ПЦР и ПЦР-РВ по выявления генома возбудителей M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar, M. mycoides subsp. Mycoides SC (Mmm SC), обладающие высокой чувствительностью, специфичностью, эффективностью и воспроизводимостью, для проведения диагностических исследований.

2. Выявление ДНК M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar в животноводческих хозяйствах различных регионов Российской Федерации в период с 2020 по 2022 гг.

3. Усовершенствованный состав питательной среды путем подбора концентрации дрожжевого экстракта и сыворотки крови лошади и разработка методики выделения полевых изолятов M. bovis позволили получить накопление изолята «Калуга 2020» M. bovis в 9,60 lg КОЕ/мл, а также определить его резистентность к антибиотикам разных групп.

Степень достоверности и апробация результатов. Результаты проведённых исследований получены на большом объёме экспериментального материала. Степень достоверности результатов подтверждена обработкой их статистическими методами и комиссионными испытаниями. Результаты исследований по теме диссертации доложены и обсуждены на заседаниях методической комиссии и учёного совета ФГБУ «ВНИИЗЖ» в 2018-2022 гг.. Результаты исследований опубликованы: в материалах Международной научно-практической конференции «Современные пути профилактики наиболее распространенных инфекционных и инвазионных болезней сельскохозяйственных животных» (Таджикистан, 2021 г.); в Сборнике статей LXXV международной научно-практической конференции «Инновационные подходы в современной науке» (г. Москва, 2020 г.), и в Сборнике статей XXXII

международной научно-практической конференции «Advances in Science and Technology» (г. Москва, 2020 г.).

Личный вклад автора в выполнении работы. Исследования по теме диссертационной работы проведены автором самостоятельно. Консультативную и методическую помощь при выполнении отдельных этапов работы оказывали: д.б.н., профессор Прунтова О.В., вед. ветврач Брянцева М.С., к.б.н. Бьядовская О.П., к.в.н. Нестеров А.А., д.в.н. Кононов А.В., к.в.н. Щербинин С.В., к.б.н. Мазлум Али, д.в.н, профессор Колбасов Д.В., за что автор выражает им глубокую признательность.

Исследования по диссертационной работе были выполнены в период с 2018 по 2022 гг. в ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ») в рамках тематики НИР ФГБУ «ВНИИЗЖ» "Разработка комплексной системы контроля инфекционных болезней животных и совершенствование методов исследования остатков запрещенных и вредных веществ в организме животных, кормах и продуктах животного происхождения" («Ветеринарное благополучие»).

Публикация научных исследований. По материалам диссертации опубликовано четыре научные работы, из них три в рецензируемых изданиях, рекомендованных для опубликования основных научных результатов диссертации.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 194 страницах компьютерного текста и содержит следующие разделы: Обзор литературы, собственные исследования, результаты собственных исследований и их обсуждение, заключение. Список использованной литературы включает 282 источника. Работа иллюстрирована 28 рисунками и 36 таблицами. В приложении представлены копии титульных листов документов, подтверждающих достоверность результатов работы, ее научную и практическую значимость.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 Краткая характеристика микоплазм

Существует пять родов Mollicutes, имеющих ветеринарное значение, включая Mycoplasma, Ureaplasma, Acholeplasma, Anaeroplasma и Asteroplasma [66, 274]. Род Mycoplasma содержит большинство патогенов животных, а также несколько патогенов, связанных с болезнями человека, в общей сложности охарактеризовано более 100 видов Mycoplasma [174, 274].

Представители рода Mycoplasma (класс Mollicutes) — это мелкие микроорганизмы, которые характеризуются отсутствием клеточной стенки, низким содержанием G-C (23-40 %) и небольшим размером генома (0,58- 1,38 млн п.н.) [45, 113, 188, 198, 238]. Бактерия Mycoplasma состоит из цитоплазмы, клеточной мембраны и нуклеинового материала, в то время как другие комплексные органеллы не обнаруживаются по сравнению с другими патогенными видами бактерий у скота [184].

Первый представитель рода Mycoplasma -Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides был выделен в 1898 году от больных коров и охарактеризован как возбудитель контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота [137, 263, 264]. Это опасное заболевание, достигнув глобального распространения в XIX веке, было успешно ликвидировано в большинстве стран мира, за исключением Африки, где оно до сих пор остается серьезной проблемой [73, 102, 279]. К другим видам микоплазм, представляющим угрозу для КРС, относятся M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar, M. californicum, M. bovirhinis, M. bovoculi, M. leachii (ранее Mycoplasma sp. Bovine group 7), M. canis, M. canadense, M. alkalescens, M. arginine и M. wenyonii [24, 198, 199, 224, 274] (табл.1).

Микоплазмы выступают как в роли секундарной микрофлоры, присоединяясь к патологическому процессу, вызванному другими микроорганизмами, так и в качестве первичных этиологических агентов в случае ослабления общей резистентности организма-хозяина.

Микоплазмы вызывают многочисленные заболевания КРС, включая маститы, артриты, кератоконъюнктивиты, пневмонии и репродуктивные патологии [24, 73, 182, 184, 198]. К наиболее распространенным патогенным и клинически значимым видам в настоящее время относят M. bovis, M. bovigenitalium и M. dispar.

Таблица 1 - Виды микоплазм, выделенные от крупного рогатого скота

Вид Проявление заболевания

1 2

M. mycoides subsp. Mycoides Контагиозная плевропневмония КРС [263]

M. bovis У взрослого КРС Мастит [219, 270] Артрит / хромота [254, 270] У телят Артрит / хромота [254, 262] Пневмония [40, 200] Средний отит [207, 209] Пролежневые абсцессы [181]

M. californicum У взрослого КРС Мастит [135, 145, 160] У телят Артрит, Пневмония [210]

M. bovigenitalium У взрослого КРС Нарушения репродуктивной функции коров при вульвовагините и бесплодии [126] Ассоциация с дистоцией и эндометритом [190]

1 2

M. bovirhinis У телят Респираторные заболевания и пневмония, средний отит [111] В носу, легких и трахее здоровых телят [140, 154, 156, 280]

M. bovoculi У взрослых КРС и телят Конъюнктивит, кератоконъюнктивит [89, 193, 243]

M. leachii (ранее Mycoplasma sp. Bovine group 7) У взрослого КРС Мастит, аборт [110, 164] У телят Полиартрит [54, 110, 164]

M. dispar У взрослого КРС Респираторное заболевание [41] У телят Пневмония [148, 154]

M. canis У телят Пневмония [41, 154]

M. canadense У взрослого КРС Мастит [79, 135] Нарушения репродуктивной функции коров при вульвовагините и бесплодии [126]

M. alkalescens У взрослого КРС Изолирована из маститного молока [80] Изолирована от резервуара для молока [78] У телят Артрит [44, 276] Пневмония [149]

1 2

У взрослого КРС

Изолирована из резервуара для молока [78]

Может предрасполагать животных к маститу,

вызванному Streptococcus dysgalactiae [252]

M. arginini У телят

Респираторные заболевания и пневмония у телят

[142, 154]

В носу и трахее здоровых телят [280]

Средний отит [23]

M. wenyonii У взрослого КРС Лихорадка, отек задних конечностей и/или вымени, префеморальная лимфаденопатия [258]

1.2 Клинические признаки микоплазменных инфекций, вызванных M. bovis, M. bovigenitalium, M. dispar и Mycoplasma mycoides subsp.

Mycoides SC

Наиболее распространен среди КРС вид M. bovis, однако отмечались случаи его выделения от буйволов, мелких жвачных животных и кур. M. bovis считается основной причиной пневмонии молодняка КРС, однако и взрослый скот восприимчив к этому виду микоплазм. Распространенность инфекции M. bovis среди КРС на откормочных площадках составляла 40-100% [184, 229]. Пик клинической заболеваемости наблюдался у месячных телят [166]. Молодые телята более восприимчивы к инфекции, сообщалось о высокой смертности телят в возрасте 2-6 недель [166, 225].

Смертность варьируется в зависимости от множества факторов, таких как тяжесть клинического заболевания, тип заболевания, окружающая среда и географическое положение.

В Италии она составляла 5-10% у телят с пневмонией. Зарегистрированная заболеваемость в Европе составляла 35%. M. bovis колонизируется в нормальных слизистых оболочках дыхательных путей (верхние и нижние дыхательные пути) крупного рогатого скота, молочных желез и миндалин. Возбудитель не вызывает характерных клинических признаков: у животных отмечают резкий сухой кашель, лихорадку, апатию, выделения из глаз [24, 42, 108, 184, 198, 225].

При развитии пневмонии M. bovis всегда выявляется в ассоциации с другими патогенными микроорганизмами. Поражения в легких могут отсутствовать или ограничиваться локализацией в апикальных долях в виде красноватых участков мультилобулярной консолидации [42, 108].

Однако при тяжелом течении инфекции могут наблюдаться обширные поражения легких с областью коагуляционного некроза и абсцессы [60, 194, 198]. Хронические инфекции, вызванные M. bovis, характеризуются лимфоцитарной пневмонией, при которой отмечается гиперплазия перибронхиальной лимфоидной ткани, вызывающая стеноз просвета дыхательных путей, компрессию и коллапс прилегающей легочной паренхимы [53].

Антиген M. bovis обнаруживается на периферии областей коагуляционного некроза, в некротических экссудатах и тесно связан с инфильтрирующими макрофагами и нейтрофилами [53, 57, 108, 215, 239].

Пневмония может возникать как единственное проявление инфекции или в сочетании с другими клиническими признаками, включая полиартрит у взрослых животных и средний отит у молодых телят. M. bovis также способна вызывать субклинические, клинические или хронические маститы, что представляет серьезную проблему для производителей молока. M. bovis выявляли и при изучении абортированных плодов [76, 166, 180, 182, 203]. Продолжением как респираторной, так и маститной формы течения заболевания могут быть артриты, вызывающие нарушение двигательной функции, в тяжелых случаях — снижение потребления корма и истощение [198, 270].

Кроме того, M. bovis может приводить к эпидидимиту, орхиту, уретриту и семенному везикулиту быков [184, 244].

M. bovigenitalium была выделена из легких и репродуктивного тракта павших коров, а также от абортированных плодов КРС и буйволов, у которых наблюдали артрит и/или мастит. Известно, что M. bovigenitalium становится причиной развития некротического вульвовагинита, наносящего значительный ущерб племенному животноводству [126, 202]. Остро протекающие микоплазмозы приводят к серьезному повреждению вымени с поражением от одной до четырех долей [ 182].

При проявлении мастита наблюдается уплотнение вымени и снижение удоя молока на фоне неэффективности антибиотикотерапии. В последние годы M. bovigenitalium часто выделяют из образцов влагалищных смывов и дыхательных путей КРС со сниженной фертильностью, эндометритами и/или зернистым вульвитом. Также M. bovigenitalium часто обнаруживается в образцах спермы, на слизистых оболочках половых органов в ассоциации с M. bovis [24, 138, 213].

M. dispar обнаруживается в дыхательных путях у клинически здоровых животных. Так, при исследовании поголовья КРС в Нидерландах M. dispar выявляли у 92 % больных и 40 % здоровых телят [154, 156]. В Дании М. dispar выявляли в равной степени в образцах легких, отобранных от телят с признаками фибринозно-некротизирующей, гнойной бронхопневмонии и эмболической пневмонии [216]. Исследования развития респираторных заболеваний у молочных телят показали возможную инициирующую роль M. dispar, приводящей к инвазии P. Multocida. М. dispar колонизирует эпителий слизистой оболочки дыхательных путей, оказывая цитостатическое и даже цитопатическое действие на клетки дистальных бронхов и бронхиол и приводя к уменьшенному трахеобронхиальному клиренсу [27, 74, 265].

M. dispar вызывает образование уплотнений пурпурно-красного цвета, в основном в краниовентральных областях легкого. В Великобритании M. dispar часто выявляют у телят с признаками респираторной патологии [29, 244].

Считается, что возбудитель становится основной причиной тяжелой плевропневмонии и у взрослого поголовья КРС, иногда со смертельным исходом [41, 265].

Клиническая картина контагиозной плевропневмонии (КПП) у КРС варьируется от сверхострой до субклинической формы. Сверхострая форма КПП встречается редко, и КРС может внезапно умереть из-за обильного плеврального и перикардиального выпота без каких-либо значительных клинических признаков, кроме лихорадки. Острая форма КПП обычно возникает в начале эпидемии и характеризуется высокой температурой (до 42°C) и тяжелой дыхательной недостаточностью, которая может усугубляться физической нагрузкой. По мере прогрессирования заболевания у КРС могут наблюдаться тахипноэ, боль в груди с хрюканьем, кашель, подкожный отек, катаральные или гнойные выделения из носа, слюнотечение [18, 153, 162].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Абед Алхуссен Мохаммад, 2023 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Безбородова, Н.А. Сравнение лабораторных методов диагностики инфекций, вызываемых патогенными и условно-патогенными микроорганизмами / Н.А. Безбородова, Н.А. Ким // Эффективное животноводство. - 2018. -№ 2 (141). - C. 46-47.

2. Ваганова, А.Н. Распространённость смешанных микоплазменных инфекций у коров при маститах и эндометрита / А.Н. Ваганова, С.В. Борисенко, В.Н. Вербов // Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии. - М, 2019. - C. 102-103.

3. Детекция ДНК эмерджентных инфекции, как инструмент мониторинга за распространением и циркуляцией Mycoplasma bovis и Mycoplasma bovigenitalium у крупного рогатого скота на территории уральского региона / Н.А. Безбородова А.П. Порываева, Е.Н. Шилова [и др.] // Ветеринария Кубани. - 2021. - № 6. - C. 13-15.

4. Дифференциация Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Mycoplasma califomicum и выявление Ureaplasma diversum методом ПЦР в реальном времени / А.Д. Козлова, Н.С. Горбачева, Р.Ф. Хаерова [и др.] // Сельскохозяйственная биология. - 2019. - № 2 (54). - C. 378-385.

5. Красиков, А.П. Микоплазмозы человека и животных и их эпидемиологическое и эпизоотологическое значение: монография / А.П. Красиков, Н.В. Рудаков. - Омск: Омский научный вестник, 2016. - C. 608.

6. Макавчик, С.А. Эффективность определения Mycoplasma bovis в молоке коров при маститах с использованием полимеразной цепной реакции в режиме реального времени на микрочипе с лиофилизированными тест-системами / С.А. Макавчик // Международный вестник ветеринарии. - 2019. -№ 2. - C. 11-16.

7. Методические рекомендации по профилактике и ликвидации микоплазмозов сельскохозяйственных животных, в том числе птиц / А. А. / А.А.

Сухинин С.А. Макавчик., В.А. Кузьмин [и др.]. - СПб: ФГБОУ ВО СПбГАВМ, 2017. - C. 23.

8. Микоплазмы. Молекулярная и клеточная биология, взаимодействие с иммунной системой млекопитающих, патогенность, диагностика / С.Н. Борхсениус, О.А. Чернова, В.М. Чернов, М.С. Вонский. - СПб: Наука, 2002. - C. 2-136.

9. ПЦР в реальном времени / Д.В. Ребриков, Г.А. Саматов, Д.Ю. Трофимов, [и др.]. - М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2009. - 223 с.

10. Ремизова, Е.В. Распространение и этиология маститов и эндометритов у коров / Е.В. Ремизова // Эффективное животноводство. - 2021. - N° 8(174). - C. 9698.

11. Сухинин, А.А. Бактериологический и молекулярно-генетический метод для выделения и идентификации Mycoplasma bovis у крупного рогатого скота / А.А. Сухинин, С.А. Макавчик, Л.И. Смирнова // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2016. - N 4. - C. 80-83.

12. Теплякова, О.В. Хламидиоз телят в хозяйствах Новосибирской области / О.В. Теплякова // Науч.-техн. бюлл. / ИЭВС и ДВ СО ВАСХНИЛ. - 1986. - Вып. 24. - C. 17- 21.

13. Урбан, В.П. Болезни молодняка в промышленном животноводстве / В.П. Урбан, И.Л. Найманов. - М.: Колос, 1984. - 207 с.

14. Шибаев, М.А. Mycoplasma bovis. Индикация и распространённость в хозяйствах Российской Федерации [Крупный рогатый скот] / М.А. Шибаев, Л.Б. Прохватилова // Актуальные проблемы инфекционной патологии ветеринарной медицины: Междунар. науч.- практ. конф. молодых учёных. - Покров, 2009. - C. 182-186.

15. Шнейдер, Э.Д. Идентификация и диагностика возбудителей микоплазменных маститов коров при помощи бактериологических и

молекулярно-генетических методов / Э.Д. Шнейдер С.А. Макавчик // Бактериология. - 2018. - № 1 (3). - C. 22-25.

16. A European inter-laboratory trial to evaluate the performance of three serological methods for diagnosis of Mycoplasma bovis infection in cattle using latent class analysis / A.M. Andersson, A. Aspan, H.J. Wisselink [et al.] // BMC Veterinary Research. - 2019. - № 1(15). - P. 1-10.

17. A European interlaboratory trial to evaluate the performance of different PCR methods for Mycoplasma bovis diagnosis / H.J. Wisselink, B. Smid, J. Plater [et al.] // BMC Veterinary Research. - 2019. - № 1(15). - P. 86.

18. A metabolic enzyme as a primary virulence factor of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides small colony / P. Pilo, E.M. Vilei, E. Peterhans [et al.] // J. Bacteriology. - 2005. - № 19(187). - P. 6824-6831.

19. A novel polymerase chain reaction assay for the detection of seven Mycoplasma species of cattle origin / J. Lai, H. Lin, P. Hsu [et al.] // World J. Microbiology and Biotechnology. - 2022. - № 7(38). - P. 1- 6.

20. A novel rapid DNA microarray assay enables identification of 37 mycoplasma species and highlights multiple mycoplasma infections / C. Schnee, S. Schulsse, H. Hotzel [et al.] // PLoS ONE. - 2012. - № 3(7). - 13 p.

21. A PCR assay and PCR-restriction fragment length polymorphism combination identifying the 3 primary Mycoplasma species causing mastitis / S. Boonyayatra, L.K. Fox, T.E. Besser [et al.] // J. Dairy Science. - 2012. - № 1(95). - P. 196-205.

22. A polymerase chain reaction based method for detecting Mycoplasma/Acholeplasma contaminants in cell culture / J. Tang, M. Hu, S. Lee, R. Roblin // J. Microbiological Methods. - 2000. - № 2(39). - P. 121-126.

23. A retrospective study of 29 cases of otitis media/interna in dairy calves / G.V. Bernier, D. Francoz, M. Babkine [et al.] // Canadian Veterinary J. - 2012. - № 9 (53). -P. 957-962.

24. A review of mycoplasma diagnostics in cattle / A.M. Parker, P.A. Sheehy, M.S. Hazelton [et al.] // J. Veterinary Internal Medicine. - 2018. - № 3(32). - P. 1241-1252.

25. A space-time analysis of Mycoplasma bovis: bulk tank milk antibody screening results from all Danish dairy herds in 2013-2014 / M. Arede, P.K. Nielsen, S.S.U. Ahmed [et al.] // Acta Veterinaria Scandinavica. - 2016. - Vol. 58. - P. 16.

26. Acquired resistance to the 16-membered macrolides tylosin and tilmicosin by mycoplasma bovis / U. Lerner, E. Amram, R.D. Ayling [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2014. - № 2-4(168). - P. 365-371.

27. Almeida, R.A. Capsulelike surface material of Mycoplasma dispar induced by in vitro growth in culture with bovine cells is antigenically related to similar structures expressed in vivo / R.A. Almeida, R.F. Rosenbusch // Infection and Immunity. -1991. - № 9(59). - P. 3119-3125.

28. Amanfu, W. Contagious bovine pleuropneumonia (lung sickness) in Africa / W. Amanfu // The Onderstepoort J. Veterinary Research. - 2009. - № 1 (76). - P. 13-7.

29. An experimental infection model for reproduction of calf pneumonia with bovine respiratory syncytial virus (BRSV) based on one combined exposure of calves / K. Tj0rneh0j, A. Uttenthal, B. Viuff [et al.] // Research in Veterinary Science. -2003. - № 1(74). - P. 55-65.

30. An improved loop-mediated isothermal amplification assay for the detection of Mycoplasma bovis / Y. Higa, R. Uemura, W. Yamazaki [et al.] // J. Veterinary Medical Science. - 2016. - № 8(78). - P. 1343-1346.

31. Antibiotic susceptibilities of recent isolates of Mycoplasma bovis in Belgium / A. Thomas, C. Nicolas, I. Dizier [et al.] // Veterinary Record. - 2003. - № 14(153). - P. 428-431.

32. Antibiotic susceptibility profiles of Mycoplasma bovis strains isolated from cattle in Hungary, Central Europe / K.M. Sulyok, Z. Kreizinger, L. Fekete [et al.] // BMC Veterinary Research. -2014. - № 1(10). - P. 256.

33. Antimicrobial resistance in livestock / B. Catry, H. Laevens, L.A. Devriese [et al.] // J. Veterinary Pharmacology and Therapeutics. - 2003. - Vol. 26, № 2. - P. 81- 93.

34. Antimicrobial susceptibility and molecular characterization of macrolide resistance of Mycoplasma bovis isolates from multiple provinces in China / L.C. Kong, D. Gao, B.-Y. Jia [et al.] // J. Veterinary Medical Science. - 2016. - № 2 (78). - P. 293296.

35. Antimicrobial susceptibility of bacteria that cause bovine respiratory disease complex in Alberta, Canada / R.M. Anholt, C. Klima, N. Allan [et al.] // Frontiers in Veterinary Science. - 2017. - № 4. - P. 207.

36. Antimicrobial susceptibility of Mycoplasma bovis isolates from veal, dairy and beef herds / J. Bokma. L. Gille, K. De Bleecker [et al.] // Antibiotics. - 2020. - № 12(9).

- P. 882.

37. Antimicrobial treatment of Mycoplasma hyopneumoniae infections / D. Maes, F. Boyen, F. Haesebrouck, A.V. Gautier-Bouchardon // Veterinary J. - 2020. - Vol. 259260. - 11 p.

38. Antón, A.I. Sequence diversity in the 16S-23S intergenic spacer region (ISR) of the rRNA operons in representatives of the Escherichia coli ECOR collection / A.I. Antón, A.J. Martínez-Murcia, F. Rodríguez-Valera // J. Molecular Evolution. -1998. -№ 1(47). - P. 62-72.

39. Association between an outbreak strain causing mycoplasma bovis mastitis and its asymptomatic carriage in the herd: A case study from Idaho, USA / V. Punyapornwithaya, L.K. Fox, D.D. Hancock [et al.] // Preventive Veterinary Medicine.

- 2010. - № 1(93). - P. 66-70.

40. Associations of various physical and blood analysis variables with experimentally induced Mycoplasma bovis pneumonia in calves / B.C. Fraser, D.E. Anderson, B.J. White [et al.] // American J. Veterinary Research. - 2014. - № 2 (75). -P. 200-207.

41. Ayling, R.D. Mycoplasma species and related organisms isolated from ruminants in Britain between 1990 and 2000 / R.D. Ayling, S.E. Bashiruddin R.A.J. Nicholas // Veterinary Record. - 2004. - № 14(155). - P. 413-416.

42. Bacteriological, serological, pathological and immunohistochemical studies of Mycoplasma bovis respiratory infection in veal calves and adult cattle at slaughter / E. Radaelli, M. Luini, G.R. Loria [et al.] // Research in Veterinary Science. - 2008. - № 2(85). - P. 282-290.

43. Bennett, P.M. Integrons and gene cassettes: a genetic construction kit for bacteria / P.M. Bennett // J. Antimicrobial Chemotherapy. - 1999. -№ 1(43). - P. 1-4.

44. Bennett, R.H. Mycoplasma alkalescens-induced arthritis in dairy calves / R.H. Bennett, D.E. Jasper // J. American Veterinary Medical Association. -1978. - № 4 (172). - p. 484-488.

45. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology / P. Vos, G. Garrity, D. Jones [et al.]. - New York: Springer, 2011. - 236 p.

46. Biddle, M.K. Patterns of mycoplasma shedding in the milk of dairy cows with intramammary mycoplasma infection / M.K. Biddle, L.K. Fox, D.D. Hancock // J. American Veterinary Medical Association. 2003. - № 8 (223). - P. 1163-1166.

47. Biofilm formation by mycoplasma species and its role in environmental persistence and survival / L. McAuliffe, R.J. Ellis, K. Miles [et al.] // Microbiology. -2006. - № 4(152). - P. 913-922.

48. Biofilm-grown Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC exhibit both phenotypic and genotypic variation compared with planktonic cells / L. McAuliff, R.D. Ayling, R.J. Ellis, R.A.J. Nicholas // Veterinary Microbiology. - 2008. - № 3-4(129). -P. 315-324.

49. Bürki, S. Virulence, persistence and dissemination of Mycoplasma bovis / S. Bürki, J. Frey, P. Pilo [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2015. - № 1(179). - P. 1522.

50. Calcutt, M.J. Complete Genome Sequence of Mycoplasma bovoculi Strain M165/69T (ATCC 29104) / M.J. Calcutt, M.F. Foecking // Genome Announcements. -2014. - № 1(2). - 14 p.

51. Calcutt, M.J. Complete Genome Sequence of the Bovine Mastitis Pathogen Mycoplasma californicum Strain ST-6T (ATCC 33461T) / M.J. Calcutt., M.F. Foecking, L.K. Fox // Genome Announcements. - 2014. - № 4(2). - 8 p.

52. Cardoso, M.V. Importäncia das micoplasmoses na fertilidade de touros / M.V. Cardoso, S.A. Vasconcellos // Arquivos do Instituto Biológico. - 2004. - № 2(71). P. 257-265.

53. Caswell, J.L. Mycoplasma bovis pneumonia in cattle / J.L. Caswell, M. Archambault // Animal Health Research Reviews. - 2007. - № 2(8). - P. 161-186.

54. Chang, J.-T. Mycoplasma leachii sp. nov. in calves, China / J.-T. Chang H.-J. Yu, L. Liu // Emerging Infectious Diseases. - 2011. - № 9(17). - P. 1772-1773.

55. Changes in antimicrobial susceptibility profiles of Mycoplasma bovis over time / H.Y. Cai, R. McDowall, L. Parker [et al.] // Canadian J. Veterinary Research. - 2019. - Vol. 83. - P. 34-41.

56. Chanock, R.M. Growth on artificial medium of an agent associated with atypical pneumonia and its identification as a PPLO / R.M. Chanock, L. Hayflick, M.F. Barile // Proceedings National Academy of Sciences. - 1962. - № 1(48). - P. 41-49.

57. Chronic pneumonia in calves after experimental infection with Mycoplasma bovis strain 1067: characterization of lung pathology, persistence of variable surface protein antigens and local immune response / K. Hermeyer, I. Buchenau, A. Thomasmeyer [et al.] // Acta Veterinaria Scandinavica. - 2012. - № 1 (54). - P. 1-11.

58. Citti, C. Elongated versions of Vlp surface lipoproteins protect Mycoplasma hyorhinis escape variants from growth-inhibiting host antibodies / C. Citti, M.F. Kim, K.S. Wise // Infection and Immunity. - 1997. - № 5(65). - P. 1773-1785.

59. Close genetic and phenotypic relatedness between Mycoplasma ovine/caprine serogroup 11 and Mycoplasma bovigenitalium / R.A.J. Nicholas, L.A. Khan, B.

Houshaymi [et al.] // Systematic and Applied Microbiology. - 2002. - № 3(25). - P. 396-402.

60. Coinfection with bovine viral diarrhea virus and Mycoplasma bovis in feedlot cattle with chronic pneumonia / F.M. Shahriar, E.G. Clark, E. Janzen [et al.] // Canadian Veterinary J. - 2002. - № 11(43). - P. 863-868.

61. Cole, B.C. Hemolysin and peroxide activity of Mycoplasma species / B.C. Cole, J.R. Ward, C.H. Martin // J. Bacteriology. - 1968. - № 6(95). - P. 2022-2030.

62. Comparative genomics of Mycoplasma bovis strains reveals that decreased virulence with increasing passages might correlate with potential virulence-related factors / M.A. Rasheed, J. Qi, X. Zhu [et al.] // Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. - 2017. - Vol. 7. - P. 177.

63. Comparative geno-plasticity analysis of Mycoplasma bovis HB0801 (Chinese isolate) / J. Qi, A. Guo, P. Cui [et al.] // PLoS ONE. - 2012. - № 5(7). - 8 p.

64. Comparative molecular study of Mycoplasma bovis isolates from Egyptian buffaloes and cows suffered from mastitis / S.I. Eissa, A.M. Hassan, Y.M. Hashem, M.M. Shaker // European J. Biological Sciences. - 2012. - № 4(4). - P. 114-120.

65. Comparison of culture and a multiplex probe PCR for identifying Mycoplasma species in bovine milk, semen and swab samples / A.M. Parker, J.K. House, M.S. Hazelton [et al.] // PLOS ONE. - 2017. - № 3(12). - 14 p.

66. Comparison of different NAT assays for the detection of microorganisms belonging to the class Mollicutes / O. Vega-Orellana, J.B. Poveda, R.S. Rosales [et al.] // BMC Veterinary Research. - 2017. - № 1(13). - P. 1-11.

67. Comparison of in vitro activity of danofloxacin, florfenicol, oxytetracycline, spectinomycin and tilmicosin against recent field isolates of Mycoplasma bovis / R. D. Ayling, S.E. Baker, M.L. Peek, [et al.] // Veterinary Record. - 2000. - №2 (146). - P. 745-747.

68. Comparison of various diagnostic methods for the detection of Mycoplasma bovis / K. Sachse, H. Pfützner, H. Hotzel [et al.] // Revue Scientifique et Technique de l'OIE.). - 1993. - № 2(12). - P. 571-580.

69. Complete Genome Sequence of Mycoplasma bovis Strain 08M / S. Chen [et al.] // Genome Announcements. - 2017. - № 19(5). - 8 p.

70. Complete genome sequence of Mycoplasma bovis type strain PG45 (ATCC 25523) / K.S. Wise, M.J. Calcutt, M.F. Foecking [et al.] // Infection and immunity. -2011. - № 2(79). - P. 982-983.

71. Complete genome sequences of Mycoplasma leachii strain PG50T and the pathogenic Mycoplasma mycoides subsp. mycoides small colony biotype strain Gladysdale / K.S. Wise, M.J. Calcutt, M.F. Foecking [et al.] // J. Bacteriology. - 2012. - № 16(194). - P. 4448-4449.

72. Contagious bovine pleuropneumonia: A Comprehensive overview / G. Di Teodoro, G. Marruchella, A. Di Provvido [et al.] // Veterinary Pathology. - 2020. - № 4(57). - P. 476-489.

73. Contagious bovine pleuropneumonia: Challenges and prospects regarding diagnosis and control strategies in Africa / P.I. Ankeli, L.T. Ikpa, O.O. Abalobi // Veterinary Medicine: Research and Reports. - 2020. - Vol.11. - P. 71-85.

74. Dabo, S.M. Pasteurella multocida and bovine respiratory disease / S.M. Dabo, J.D. Taylor, A.W. Confer // Animal Health Research Reviews. - 2008. - Vol. 8, № 2. -P. 129-150.

75. Decreased susceptibility to macrolide-lincosamide in mycoplasma synoviae is associated with mutations in 23 s ribosomal RNA / I. Lysnyansky, I. Gerchman, B. Flaminio, S. Catania // Microbial Drug Resistance. - 2015. - № 6(21). - P. 581-589.

76. Demonstration of Mycoplasma bovis by immunohistochemistry and in situ hybridization in an aborted bovine fetus and neonatal calf / K. Hermeyer, M. Peters, M. Brügmann // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2012. - № 2 (24). - P. 364-369.

77. Detection and identification of Mycoplasma from bovine mastitis infections using a nested polymerase chain reaction / S.C. Baird, J. Carman, R.P Dinsmore, [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 1999. - № 5(11). - P. 432-435.

78. Detection of multiple Mycoplasma species in bulk tank milk samples using realtime PCR and conventional culture and comparison of test sensitivities / A. Justice-Allen, J. Trujillo, G. Goodell, D. Wilson // J. Dairy Science. - 2011. - № 7(94). - P. 3411-3419.

79. Detection of Mycoplasma canadense and Mycoplasma californicum in dairy cattle from Argentina / P.J. Tamiozzo, A.A. Estanguet, J. Maito // Revista Argentina de Microbiologia. - 2014. - № 2(46). - P. 119-121.

80. Detection of mycoplasma in mastitic milk by PCR analysis and culture method / K. Hirose, Y. Kawasaki, K. Kotani [et al.] // J. Veterinary Medical Science. - 2001. -№ 6(63). - P. 691-693.

81. Detection of subclinical bovine mastitis caused by mycoplasmosis by indirect ELISA test and isolation / J.J. Martínez Maya, E. Morales Salinas, A. Hernández, C.C. Núñez // Veterinaria México. - 2008. - № 2(39). - P. 161-171.

82. Determination of bacterial aetiologic factor on tracheobronchial lavage in relation to clinical signs of bovine respiratory disease / F.D. de Oliveira, B.N.C. Gaeta, B.L. Mendon?a Ribeiro [et al.] // J. Medical Microbiology. - 2016. - № 10(65). - P. 1137-1142.

83. Development and application of a colloidal carbon test strip for the detection of antibodies against Mycoplasma bovis / F. Shi, Y. Zhao, Y. Sun, C. Chen // World J. Microbiology and Biotechnology. - 2020. - № 10(36). - P. 157.

84. Development and validation of a loop-mediated isothermal amplification assay for the detection of Mycoplasma bovis in mastitic milk / A. Ashraf, M. Imran, T. Yaqub [et al.] // Folia Microbiologica. - 2018. - № 3(63). - P. 373-380.

85. Development of a direct competitive ELISA for the detection of Mycoplasma bovis infection based on a monoclonal antibody of P48 protein / P. Fu, Z. Sun, Y. Zhang [et al.] // BMC Veterinary Research. - 2014. - № 1(10). - P. 42.

86. Development of a multiplex qPCR assay for the simultaneous detection of Mycoplasma bovis, Mycoplasma species, and Acholeplasma laidlawii in milk / K. Chauhan S.S. Aly, T.W. Lehenbauer [et al.] // Peer J. - 2021. - Vol. 9. - 11 p.

87. Development of a Real-Time PCR for Detection of Mycoplasma Bovis in Bovine Milk and Lung Samples / H.Y. Cai, P. Bell-Rogers, L. Parker, J.F. Prescott // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2005. - № 6(17). - P. 537-545.

88. Development of a recombinant protein-based enzyme-linked immunosorbent assay for diagnosis of Mycoplasma bovis infection in cattle / N.K. Wawegama, G.F. Browning, A. Kanci [et al.] // Clinical and Vaccine Immunology: CVI. - 2014. - № 2(21). - P. 196-202.

89. Diagnosis of a mixed Mycoplasma infection associated with a severe outbreak of bovine pinkeye in young calves / S. Levisohn, S. Garazi, I. Gerchman, J. Brenner // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2004. - № 6(16). - P. 579-581.

90. Diagnosis of Mycoplasma bovis infection in cattle by ELISA and PCR / O. Babacan, M. Acan, T. Öncel [et al.] // Kafkas Universitesi Veteriner Fakultesi Dergisi.

- 2014. - № 2(20). - C. 249-252.

91. DISCONTOOLS: a database to identify research gaps on vaccines, pharmaceuticals and diagnostics for the control of infectious diseases of animals / D. O'Brien, J. Scudamore, J. Charlier, M. Delavergne // BMC Veterinary Research. -2016. - № 1(13). - P. 1-10.

92. Distribution and diversity of mycoplasma plasmids: Lessons from cryptic genetic elements / M. Breton, F. Tardy, E. Dordet-Frisoni, [et al.] // BMC Microbiology. - 2012.

- № 1(12). - P. 257.

93. DNA microarray assay and real-time PCR as useful tools for studying the respiratory tract Mycoplasma populations in young dairy calves / M. Bottinelli, F.

Passamonti, E. Rampacci [et al.] // J. Medical Microbiology. - 2017. - № 9(66). - P. 1342-1349.

94. Doig, P.A. Bovine genital mycoplasmosis / P.A. Doig // Canadian Veterinary J. 1981. - № 11(22). - P. 339-343.

95. Ebright, R.H. RNA polymerase: Structural similarities between bacterial RNA polymerase and eukaryotic RNA polymerase II / R.H. Ebright // J. Molecular Biology. - 2000. - № 5(304). - P. 687-698.

96. Edwards, D.J. Beginner's guide to comparative bacterial genome analysis using next-generation sequence data / D.J. Edwards, K.E. Holt // Microbial Informatics and Experimentation. - 2013. - № 1(3). - P. 1-9.

97. Effect of a new macrolide antibiotic (tilmicosin) on pneumonia experimentally induced in calves by Mycoplasma bovis and Pasteurella haemolytica / R.N. Gourlay, L.H. Thomas, S.G. Wyld, C.J. Smith // Research in Veterinary Science. - 1989. - № 1 (47). - P. 84-89.

98. a-Enolase, an adhesion-related factor of Mycoplasma bovis / Z. Song, Y. Li, Y. Liu [et al.] // PLoS ONE. - 2012. - № 6(7). - 12 p.

99. Epidemiologic analysis of Mycoplasma spp isolated from bulk-tank milk samples obtained from dairy herds that were members of a milk cooperative / J.H. Kirk, K. Glenn, L. Ruiz, E. Smith // J. American Veterinary Medical Association. -1997. - № 8(211). - P. 1036-1038.

100. Epitope mapping of immunogenic and adhesive structures in repetitive domains of Mycoplasma bovis variable surface lipoproteins / K. Sachse, J.H. Helbig, I. Lysnyansky [et al.] // Infection and Immunity. - 2000. - Vol. 68. - P. 680-687.

101. Evaluation of Mollicutes microorganisms in respiratory disease of cattle and their relationship to clinical signs / G. Tortorelli, N.C. Gaeta, B.L.M. Ribeiro [et al.] // J. Veterinary Internal Medicine. - 2017. - № 4(31). - P. 1215-1220.

102. Evolutionary history of contagious bovine pleuropneumonia using next generation sequencing of Mycoplasma mycoides Subsp. mycoides "Small Colony"/ V. Dupuy, L. Manso-Silván, V. Barbe [et al.] // PLoS ONE. -2012. - № 10 (7). - 11 p.

103. Field experience of antibody testing against Mycoplasma bovis in adult cows in commercial Danish dairy cattle herds / M.B. Petersen, L. Pedersen, L.M. Pedersen [et al.] // Pathogens. - 2020. - № 8(9). - P. 637.

104. Fluoroquinolone resistance in Mycoplasma gallisepticum: DNA gyrase as primary target of enrofloxacin and impact of mutations in topoisomerases on resistance level / A.K. Reinhardt, I. Kempf, M. Kobisch, A.V. Gautier-Bouchardon // J. Antimicrobial Chemotherapy. - 2002. - № 4(50). - P. 589-592.

105. Fox, L.K. Mycoplasma mastitis: causes, transmission, and control / L.K. Fox // Veterinary Clinics of North America. Food Animal Practice. - 2012. - № 2(28). - P. 225-237.

106. Friis, N.E. Sensitivity of certain porcine and bovine Mycoplasmas to antimicrobial agents in a liquid medium test compared to a disc assay / N.E. Friis, J. Szancer // Acta Veterinaria Scandinavica. - 1994. - № 4(35). - P. 389-394.

107. Friis, N.F. Some recommendations concerning primary isolation of Mycoplasma suipneumoniae and Mycoplasma flocculare a survey / N.F. Friis // Nordisk Veterinaermedicin. - 1975. - № 6(27). - P. 337-339.

108. Gap analysis of Mycoplasma bovis disease, diagnosis and control: An aid to identify future development requirements / M.J. Calcutt, I. Lysnyansky, K. Sachse [et al.] // Transboundary and Emerging Diseases. - 2018. - Vol. 65. -P. 91-109.

109. Gautier-Bouchardon, A.V. Antimicrobial resistance in Mycoplasma spp / A.V. Gautier-Bouchardon // Microbiology Spectrum. - 2018. - № 4 (6). - 6 p.

110. Genetic diversity among Mycoplasma species bovine group 7: clonal isolates from an outbreak of polyarthritis, mastitis, and abortion in dairy cattle / S.R. Djordjevic, W.A. Forbes, J. Forbes-Faulkner [et al.] // Electrophoresis. - 2001. - № 16 (22). - P. 3551-3561.

111. Genome-wide analysis of Mycoplasma bovirhinis gs01 reveals potential virulence factors and phylogenetic relationships / S. Chen, H. Hao, P. Zhao [et al.] // G3 (Bethesda, Md.). - 2018. - № 5(8). - P. 1417-1424.

112. Genome-wide analysis of mycoplasma dispar provides insights into putative virulence factors and phylogenetic relationships / S. Chen, H. Hao, X. Yan [et al.] // G3: Genes, Genomes, Genetics. - 2019. - № 2(9). - P. 317-325.

113. Genomic Islands in Mycoplasmas / C. Citti, E. Baranowski, E. Dordet-Frisoni [et al.] // Genes. - 2020. - № 8 (11). - P. 1-16.

114. Ghadersohi, A. Isolation, characterisation and DNA analysis of Mycoplasma spp. from moribund prawns Penaeus monodon cultured in Australia / A. Ghadersohi, L. Owens // Diseases Aquatic Organisms - 1999. - Vol. 35. - P. 53-61.

115. Gomes, F. Bovine mastitis disease/pathogenicity: evidence of the potential role of microbial biofilms / F. Gomes, M.J. Saavedra., M. Henriques // Pathogens and Disease. - 2016. - № 3(74). - P. ftw006.

116. Hannan, P.C.T. Guidelines and recommendations for antimicrobial minimum inhibitory concentration (MIC) testing against veterinary mycoplasma species // P.C.T Hannan // Veterinary Research. - 2000. - № 4(31). - P. 373-395.

117. Hata, E. Complete genome sequence of Mycoplasma arginini Strain HAZ 145_1 from bovine mastitic milk in Japan / E. Hata // Genome Announcements. - 2015. - № 2(3). - 15 p.

118. Hata, E. Complete genome sequence of Mycoplasma bovigenitalium Strain HAZ 596 from a bovine vagina in Japan / E. Hata, K. Nagai, K. Murakami // Genome Announcements. - 2017. - № 6(5). - 8 p.

119. Hata, E. Complete genome sequence of Mycoplasma californicum Strain HAZ160_1 from bovine mastitic milk in Japan / E. Hata, K. Murakami // Genome Announcements. - 2014. - № 4(2). - 14 p.

120. Hata, E. Complete genome sequence of Mycoplasma canadense Strain HAZ 360_1 from bovine mastitic milk in Japan / E. Hata // Genome Announcements. - 2014.

- № 5(2). - P. e00984-14.

121. Hayflick, L. Tissue cultures and mycoplasmas / L. Hayflick // Texas Reports on Biology and Medicine. - 1965. - Vol. 23. - P. 285-303.

122. Heuvelink, A.J. Antimicrobial susceptibility of Mycoplasma bovis isolates from veal calves and dairy cattle in the Netherlands / A. Heuvelink, C. Reugebrink, J. Mars // Veterinary Microbiology. - 2016. - Vol. 189. - P. 1-7.

123. Hirashima, A. Role of elongation factor G and a protein factor on the release of ribosomes from messenger ribonucleic acid / A. Hirashima, A. Kaji // J. Biological Chemistry. - 1973. - № 21(248). - P. 7580-7587.

124. Hotzel. H. Rapid detection of Mycoplasma bovis in milk samples and nasal swabs using the polymerase chain reaction / H. Hotzel, K. Sachase, H. Pfützner // J. Applied Bacteriology. - 1996. - № 5 (80). - P. 505-510.

125. Identification of genes involved in Mycoplasma gallisepticum biofilm formation using mini-Tn4001-SGM transposon mutagenesis / Y. Wang, L. Yi, F.G. Zhang [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2017. - Vol. 198. - P. 17-22.

126. Identification of Mycoplasma bovigenitalium and Mycoplasma canadense from outbreaks of granulopapular vulvovaginitis in dairy cattle in Israel / I. Lysnyansky, J. Brenner, N. Alpert [et al.] // Veterinary Record. - 2009. - № 1(165). - P. 319-322.

127. Identification of Mycoplasma bovis bacteria by polymerase chain reaction and sequencing / S.A. Makavchik, A.A. Sukhinin, S.R. Abgaryan, I.V. Belkina. // Research J. Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. - 2019. - № 1(10). - P. 20042012.

128. Identification of novel immunogenic proteins from Mycoplasma bovis and establishment of an indirect ELISA based on recombinant E1 beta subunit of the pyruvate dehydrogenase complex / Z. Sun, P. Fu, K. Wei [et al.] // PLoS ONE. - 2014.

- № 2(9). - 8 p.

129. In vitro amplification of the 16S rRNA genes from Mycoplasma bovis and Mycoplasma agalactiae by PCR / Y.R. Chávez González, C.R. Bascuñana, G. Bölske [et al.] // Veterinary Microbiology. - 1995. - № 1-2(47). - P. 183-190.

130. In vitro antimicrobial inhibition of mycoplasma bovis isolates submitted to the pennsylvania animal diagnostic laboratory using flow cytometry and a broth microdilution method / M.K. Soehnlen, M.E. Kunze, K.E. Karunathilake [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2011. - № 3(23). - P. 547-551.

131. In vitro antimicrobial inhibition profiles of Mycoplasma Bovis isolates recovered from various regions of the United States from 2002 to 2003 / R.F. Rosenbusch, J.M. Kinyon, M. Apley [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2005. - № 5(17). - p. 436-441.

132. In vitro antimicrobial susceptibility of mycoplasma bovis clinical isolates recovered from bison (Bison bison) / M. Suleman, T. Prysliak, C. Windeyer, J. Perez-Casal // Canadian J. Microbiology. - 2015. - № 3(62). - P. 272-278.

133. In vitro antimicrobial susceptibility of Mycoplasma bovis isolated in Israel from local and imported cattle / I. Gerchman, S. Levisohn, I. Mikula, I. Lysnyansky // Veterinary Microbiology. - 2009. - № 3-4(137). - P. 268-275.

134. Incidence and transmission of Mycoplasma bovis mastitis in Holstein dairy cows in a hospital pen: A case study / V. Punyapornwithaya, L.K. Fox, D.D. Hancock [et al.] // Preventive Veterinary Medicine. - 2011. - № 1(98). - P. 74-78.

135. Infante-Martínez, F. Mastitis outbreak due to Mycoplasma californicum and Mycoplasma canadense in a commercial dairy herd in the state of Jalisco, México / F. Infante-Martínez, J. Aguado, D. Eduard-Jasper // Revista Latinoamericana de Microbiologia. - 1999. - № 3(41). - P. 117-120.

136. Infectious bovine respiratory diseases in adult cattle: An extensive necropsic and etiological study / L. Dorso, M. Rouault, C. Barbotin [et al.] // Animals. - 2021. -Vol.11. - P. 2280.

137. Isolation and identification of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides in cattle from south-east Nigeria / K.C. Anyika, S.O. Okaiyeto, A.K.B. Sackey [et al.] // Open Veterinary J. - 2021. - № 1(11). - P. 174-179.

138. Isolation of Mycoplasma bovigenitalium from infertile dairy cattle / S. Catania, A. Tavella, F. Gobbo, R.A.J. Nichola [et al.] // Veterinary Record Case Reports. - 2014.

- № 2. - P. e000055.

139. Isolation of Mycoplasma bovis from intact and microinjected preimplantation bovine embryos washed or treated with trypsin or antibiotics / A. Bielanski, M.D. Eaglesome, H.L. Ruhnke, W.C. Hare // J. In Vitro Fertilization and Embryo Transfer. -1989. - № 4(6). - P. 236-241.

140. Isolation of mycoplasma species from the lower respiratory tract of healthy cattle and cattle with respiratory disease in Belgium / A. Thomas, H. Ball, I. Dizier [et al.] // Veterinary Record. - 2002. - № 16(151). - P. 472-476.

141. Isolation of Mycoplasma spp. and serological responses in bulls prior to and following their introduction into Mycoplasma bovis-infected dairy herds / M.S. Hazelton, J.M. Morton, K.L. Bosward [et al.] // J. Dairy Science. - 2018. - № 8 (101).

- P. 7412-7424.

142. Isolation of Mycoplasmas from nasal swabs of calves affected with respiratory diseases and antimicrobial susceptibility of their isolates / K. Hirose, H. Kobayashi, N.J. Ito [et al.] // Veterinary Medicine. B, Infectious Diseases and Veterinary Public Health. - 2003. - № 7(50). - P. 347-351.

143. Isolation, identification and biological characteristics of Mycoplasma bovis in yaks / J. Niu, D. Wang, M. Yan [et al.] // Microbial Pathogenesis. - 2021. - Vol. 150. -14 p.

144. Janda, J.M. 16S rRNA gene sequencing for bacterial identification in the diagnostic laboratory: pluses, perils, and pitfalls / M.J. Janda, S.L. Abbott // J. Clinical Microbiology. - 2007. - Vol. 45. - P. 2761-2764.

145. Jasper, D.E. Bovine mycoplasmal mastitis / D.E. Jasper // Advances in Veterinary Science and Comparative Medicine. - 1981. - Vol. 25. - P. 121-157.

146. Junqueira, J.R.C. Falhas da reprodu?äo na pecuaria bovina de corte com enfase para causas infecciosas / J.R.C. Junqueira, A.A. Alfieri // Semina: Ciencias Agrarias. -2006. - № 2(27). - P. 298-298.

147. Khan, L.A. Hydrogen peroxide production by Mycoplasma bovis and Mycoplasma agalactiae and effect of in vitro passage on a Mycoplasma bovis strain producing high levels of H2O2 / L.A. Khan, R.J. Miles, R.A.J. Nicholas // Veterinary Research Communications. - 2005. - № 3(29). - P. 181-188.

148. Knudtson, W.U. Identification of Mycoplasmatales in pneumonic calf lungs / W.U. Knudtson, D.E. Reed, G. Daniels // Veterinary Microbiology. - 1986. - № 1-2(11). - P. 79-91.

149. Kokotovic, B. Mycoplasma alkalescens demonstrated in bronchoalveolar lavage of cattle in Denmark / B. Kokotovic, N.F. Friis, P. Ahrens // Acta Veterinaria Scandinavica. - 2007. - № 1(49). - P. 1-3.

150. Kolbert, C.P. Ribosomal DNA sequencing as a tool for identification of bacterial pathogens / C.P. Kolbert, D.H. Persing // Current Opinion in Microbiology. - 1999. -№ 3(2). - P. 299-305.

151. Kraybill, W.H. A selective medium and color test for Mycoplasma pneumoniae / W.H. Kraybill, Y.E. Crawford // Experimental Biology and Medicine. - 1965. - № 4(118). - P. 965-970.

152. Kumar, A. Mycoplasma bovis, a multi disease producing pathogen: An overview / A. Kumar, A.K. Verma, A.V. Rahal // Asian J. Animal and Veterinary Advances. -2011. - № 6(6). - P. 537-546.

153. La pleuropolmonite contagiosa dei bovini (PPCB) / P.F. Guadagnini, F. De Simone, G.F. Panini [et al.] // Selezione Veterinaria. - 1991. - Vol. 32. - P. 3-31.

154. Laak, E.A. ter. Prevalence of mycoplasmas in the respiratory tracts of pneumonic calves / E.A. ter Laak, J.H. Noordergraaf, R.P. Dieltjes // Zentralblatt fur Veterinarmedizin. Reihe B. - 1992. - № 8(39). - P. 55-562.

155. Laak, E.A. ter. Susceptibilities of Mycoplasma bovis, Mycoplasma dispar, and Ureaplasma diversum strains to antimicrobial agents in vitro / E.A. ter Laak, J.H. Noordergraaf, M.H. Verschure // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. -1993. - № 2(37). - P. 317-321.

156. Laak, E.A. ter. The nasal mycoplasmal flora of healthy calves and cows / E.A. ter Laak, J.H. Noordergraaf, E. Boomsluiter // Zentralblatt fur Veterinarmedizin. Reihe B. - 1992. - № 8(39). - P. 610-616.

157. Langford, E.V. Isolation of Mycoplasma bovigenitalium from an aborted equine foetus / E.V. Langford // Veterinary Record. - 1974. - № 23(94). - P. 528.

158. Lo, Y.M. Introduction to the polymerase chain reaction / Y.M. Lo, K.C. Chan // Clinical Applications of PCR. Methods in Molecular Biology. - 2006. - Vol. 336. - P. 1-10.

159. Lysnyansky, I. Mycoplasma bovis: Mechanisms of Resistance and Trends in Antimicrobial Susceptibility / I. Lysnyansky, R.D. Ayling // Frontiers in Microbiology. - 2016. - Vol. 7. - P. 595.

160. Mackie, D.P. Isolation of Mycoplasma californicum from an outbreak of bovine mastitis and the experimental reproduction of the disease / D.P. Mackie, H.J. Ball, E. Logan // Veterinary Record. - 1982. - № 25(110). - P. 578-580.

161. Magee, J.T. Antibiotic resistance and prescribing in the community / J.T. Magee // Reviews in Medical Microbiology. - 2001. - № 2(12). - P. 87-96.

162. Manifestation and epidemiology of contagious bovine pleuropneumonia in Europe / J. Regalla, V. Caporale, A. Giovannini // Revue Scientifique et Technique de l'OIE. - 1996. - № 4(15). - P. 1309-1329.

163. Masiga, W.N. Manifestation and epidemiology of contagious bovine pleuropneumonia in Africa / W.N. Masiga, J. Domenech, R.S. Windsor // OIE Revue Scientifique et Technique. - 1996. - № 4(15). - P. 1283-1308.

164. Mastitis, polyarthritis and abortion caused by Mycoplasma species bovine group 7 in dairy cattle / S. Hum, A. Kessell, S. Djordjevic [et al.] // Australian Veterinary J. -2000. - № 11(78). - P. 744-750.

165. Matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry is a superior diagnostic tool for the identification and differentiation of Mycoplasmas isolated from animals / J. Spergser, C. Hess, I. Loncaric, A.S. Ramirez // J. Clinical Microbiology. - 2019. - № 9(57). - 19 p.

166. Maunsell, F.P. Mycoplasma bovis infections in young calves / F.P. Maunsell, G.A. Donovan // Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. - 2009.

- № 1(25). - P. 139-177.

167. McGarrity, G.J. Factors influencing microbiological assay of cell-culture mycoplasmas / G.J. McGarrity, J. Sarama, V. Vanaman // In Vitro. - 1979. - № 2(15).

- P. 73-81.

168. McVey, D.S. Veterinary Microbiology. - 3rd ed. / D.S. McVey, M.A. Kennedy, M.M. Chengappa. - Wiley-Blackwell, 2013. - 629 p.

169. Mechanisms and factors involved in Mycoplasma bovis adhesion to host cells / K. Sachse, C. Grajetzki, R. Rosengarten [et al.] // Zentralblatt für Bakteriologie. - 1996.

- № 1(284). - P. 80-92.

170. Melchior, M.B. Biofilms: A role in recurrent mastitis infections? / M.B. Melchior, H. Vaarkamp, J. Fink-Gremmels // Veterinary J. - 2006. - № 3(171). - P. 398407.

171. Merwe, J. van der. Invasion of bovine peripheral blood mononuclear cells and erythrocytes by Mycoplasma bovis / J. Merwe van der, T. Prysliak, J. Perez-Casal // Infection and immunity. - 2010. - №11(78). - P. 4570-4578.

172. Microbes in beach sands: integrating environment, ecology and public health / R.L. Whitman, V.J. Harwood, T.A. Edge [et al.] // Reviews in Environmental Science and Bio/Technology. - 2014. - № 3(13). - P. 329-368.

173. Microbiological and molecular detection of Mycoplasma bovis in milk samples from bovine clinical mastitis / A. Salina, J. Timenetsky, M.S. Barbosa [et al.] // Pesquisa Veterinaria Brasileira. - 2020. - № 2(40). - P. 82-87.

174. Mishra, S.K. A Concise Manual of Pathogenic Microbiology / S.K. Mishra, D. Agrawal. - John Wiley and Sons, 2012. - 246 p.

175. Molecular cloning and characterization of a surface-localized adhesion protein in Mycoplasma bovis Hubei-1 strain / X. Zou, Y. Li, Y. Wang [et al.] // PLoS ONE. -2013. - № 7(8). - 10 p.

176. Mosier, D. Review of BRD pathogenesis: the old and the new / D. Mosier // Animal Health Research Reviews. - 2014. - № 2(15). - P. 166-168.

177. Multiple locus variable number tandem repeat analysis of Mycoplasma bovis isolated from local and imported cattle / E. Amram, M. Freed, N. Khateb [et al.] // The Veterinary J. - 2013. - № 2 (197). - P. 286-290.

178. Mutations associated with decreased susceptibility to seven antimicrobial families in field and laboratory-derived Mycoplasma bovis strains / K.M. Sulyok, Z. Kreizinger, E. Wehmann [et al.] // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. - 2017. -№ 2(61). - 16 p.

179. Mycoplasma agalactiae, an etiological agent of contagious agalactia in small ruminants: A review / A. Kumar, A. Rahal, S. Chakraborty [et al.] // Veterinary Medicine International. - 2014. - Vol. 2014. - P. 1-13.

180. Mycoplasma bovis arthritis and pneumonia in calves in Jordan: An emerging disease / W.M. Hananeh, W.M. Al Momani, M.M. Ababneh [et al.] // Veterinary World. - 2018. - № 12 (11). - P. 1663-1668.

181. Mycoplasma Bovis associated with decubital abscesses in holstein calves / H. Kinde, B.M. Daft, R.L. Walker [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 1993.

- № 2(5). - P. 194-197.

182. Mycoplasma bovis infections in cattle / F.P. Maunsell, A.R. Woolums, D. Francoz [et al.] // J. Veterinary Internal Medicine. - 2011. - № 4(25). - P. 772-783.

183. Mycoplasma bovis infections in Swiss dairy cattle: a clinical investigation / M. Aebi, B. H. P. van den Borne, A. Raemy [et al.] // Acta Veterinaria Scandinavica. -2015. - № 10 (57). - 10 p.

184. Mycoplasma bovis Infections—Occurrence, Diagnosis and Control / K. Dudek R.A.J. Nicholas, E. Szacawa, D. Bednarek // Pathogens. - 2020. - № 8(9). - P. 1-21.

185. Mycoplasma bovis isolates recovered from cattle and bison (Bison bison) show differential in vitro effects on PBMC proliferation, alveolar macrophage apoptosis and invasion of epithelial and immune cells / M. Suleman, T. Prysliak, K. Clarke [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2016. - Vol.186. - P. 28-36.

186. Mycoplasma Bovis real-time polymerase chain reaction assay validation and diagnostic performance / K.A. Clothier, D.M. Jordan, C.J. Thompson [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2010. - № 6(22). - P. 956-960.

187. Mycoplasma bovis-associated suppurative otitis media and pneumonia in bull calves / T. Maeda, T. Shibahara, K. Kimura [et al.] // J. Comparative Pathology. - 2003.

- № 2-3(129). - P. 100-110.

188. Mycoplasma chromosomal transfer: A distributive, conjugative process creating an infinite variety of mosaic genomes / E. Dordet-Frisoni, M. Faucher, E. Sagne [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2019. - № 10 - P. 2441.

189. Mycoplasma detection by triplex real-time PCR in bronchoalveolar lavage fluid from bovine respiratory disease complex cases / J.B.W. Cornelissen, F.M. de Bree, F.J. van der Wal [et al.] // BMC Veterinary Research. - 2017. - № 1(13). - P. 97.

190. Mycoplasma infection in the uterus of early postpartum dairy cows and its relation to dystocia and endometritis / M.E. Ghanem, H. Higuchi, E. Tezuka [et al.] // Theriogenology. - 2013. - № 1(79). - P. 180-185.

191. Mycoplasma pneumoniae Infections: Pathogenesis and Vaccine Development / Z. Jiang, S. Li, C. Zhu [et al.] // Pathogens. - 2021. - № 2(10). - P. 119.

192. Mycoplasmas and their antibiotic resistance: the problems and prospects in controlling infections / O.A. Chernova, E.S. Medvedeva, A.A. Mouzykantov [et al.] // Acta Naturae. - 2016. - № 2(8). - P. 24-34.

193. Mycoplasmas associated with bovine conjunctivitis and keratoconjunctivitis / T. Naglié, F. Sankovié, J. Madié [et al.] // Acta Veterinaria Hungarica. - 1996. - № 1(44).

- P. 21-24.

194. Naturally occurring Mycoplasma bovis —associated pneumonia and polyarthritis in feedlot beef calves / M.I. Gagea, K.G. Bateman, R.A. Shanahan [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2006. - № 1(18). - P. 29-40.

195. Neder, V.E. Detection by multiplex PCR of Mycoplasma species associated with dairy cattle in Argentina / V.E. Neder, A.F. Amadio, L.F. Calvinho // Revista Argentina de Microbiología. - 2022. - № 2(54). - P. 158-161.

196. New antimicrobial susceptibility data from monitoring of Mycoplasma bovis isolated in Europe / U. Klein, A. de Jong, M. Youala [et al.] // Veterinary Microbiology.

- 2019. - Vol. 238. - 12 p.

197. Nicholas, R. Contagious Bovine Pleuropneumonia. / R. Nicholas, R. Ayling, L. McAuliffe - Wallingford UK: CABI, 2008. - P. 69-97.

198. Nicholas, R. Mycoplasma Diseases of Ruminants / R. Nicholas, R. Ayling, L. McAuliffe. - Wallingford, UK: CABI, 2008. - P. 133-154.

199. Nicholas, R. The Veterinary Significance of Mycoplasmas Totowa / R. Nicholas.

- NJ: Humana Press, 1998. -P. 17-23.

200. Nicholas, R.A.J. An experimental vaccine for calf pneumonia caused by Mycoplasma bovis: clinical, cultural, serological and pathological findings / R.A.J

Nicholas, R.D. Ayling, L.P. Stipkovits // Vaccine. - 2002. - № 29-30(20). - P. 35693575.

201. Nicholas, R.A.J. Bovine mycoplasmosis: silent and deadly / R.A.J. Nicholas // Veterinary Record. - 2011. - № 17(168). - P. 459-462.

202. Nicholas, R.A.J. Mycoplasma bovis: disease, diagnosis, and control / R.A.J Nicholas, R.D. Ayling // Research in Veterinary Science. - 2003. - № 2(74). - P. 105112.

203. Nicholas, R.A.J. Mycoplasma mastitis in cattle: To cull or not to cull / R.A.J. Nicholas, L.K. Fox, I. Lysnyansky // Veterinary J. - 2016. - Vol. 216. - P. 142-147.

204. Occurrence of Mycoplasma bovigenitalium and Ureaplasma diversum in dairy cattle from to Pernambuco state, Brazil / A.A. Macedo, J.M.B. Oliveira, B.P. Silva // Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinaria e Zootecnia. - 2018. - № 6(70). - P. 17981806.

205. Onono, J.O. Estimation of impact of contagious bovine pleuropneumonia on pastoralists in Kenya / J.O. Onono, B. Wieland, J. Rushton // Preventive Veterinary Medicine. - 2014. - № 3-4(115). - P. 122-129.

206. Optimization of culture media of pathogenic Mycoplasma hyopneumoniae by a response surface methodology / M.-H. Hwang, D. Damte, M.-H. Cho // J. Veterinary Science. - 2010. - № 4(11). - P. 327-332.

207. Oral inoculation of young dairy calves with Mycoplasma bovis results in colonization of tonsils, development of otitis media and local immunity maunsell / F. Maunsell, M.B. Brown, J. Powe [et al.] // Plos One. - 2012. - № 9(7). -12 p.

208. Ose, E.E. Isolation of Mycoplasma dispar from cattle in the United States / E.E. Ose, O.A. Muenster // Veterinary Record. - 1975. - № 5(97). - P. 97.

209. Otitis media in preweaned holstein dairy calves in michigan due to Mycoplasma Bovis / P.H. Walz, T.P Mullaney, J.A. Render [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 1997. - № 3(9). - P. 250-254.

210. Outbreak of pneumonia and arthritis in beef calves associated with Mycoplasma bovis and Mycoplasma californicum / M. Hewicker-Trautwein, M. Feldmann, W. Kehler [et al.] // Veterinary Record. - 2002. - № 23(151). - P. 699-703.

211. Overall decrease in the susceptibility of Mycoplasma bovis to antimicrobials over the past 30 years in France / A.V Gautier-Bouchardon. S. Ferré, D. Le Grand [et al.] // PLoS ONE. - 2014. - № 2 (9). - 9 p.

212. Pardon, B. Bovine respiratory disease diagnosis: what progress has been made in infectious diagnosis? / B. Pardon, S. Buczinski // Veterinary Clinics of North America - Food Animal Practice. - 2020. - Vol. 36, № 2. - P. 425-444.

213. Parkinson, T.J. specific infectious diseases causing infertility and subfertility in cattle / T.J. Parkinson // Veterinary Reproduction & Obstetrics. - 2019. - P. 434-466.

214. Pathogen-specific risk factors in acute outbreaks of respiratory disease in calves / B. Pardon, J. Callens, J. Maris [et al.] // J. Dairy Science. - 2020. - № 3(103). - P. 2556-2566.

215. Pathological and immunohistochemical studies of natural and experimental Mycoplasma bovis pneumonia in calves / F. Rodríguez, D.G. Bryson, H.J. Ball, F. Forster // J. Comparative Pathology. - 1996. - № 2(115). - P. 151-162.

216. Pathological and microbiological studies on pneumonic lungs from Danish calves / C. Tegtmeier, A. Uttenthal, N.F. Friis [et al.] // J. Veterinary Medicine, Series B. - 1999. - № 10(46). - P. 693-700.

217. Patterns of detection of respiratory viruses in nasal swabs from calves in Ireland: A retrospective study / R. O'Neill, J. Mooney, E. Connaghan [et al.] // Veterinary Record. - 2014. - №14(175). - P. 351-351.

218. Performance Standards for Antimicrobial Disk and Dilution Susceptibility Tests for Bacteria Isolated from Animals / M.T. Sweeney, D.V. Diaz-Campos, R. Bowden [et al.]. - CLSI, 2018. -156 p.

219. Persistence of Mycoplasma bovis infection in the mammary glands of lactating cows inoculated experimentally / W. Byrne, B. Markey, R. McCormack [et al.] // Veterinary Record. - 2005. -№ 24(156). - P. 767-771.

220. Petersen, M.B. Factors associated with variation in bulk tank milk Mycoplasma bovis antibody-ELISA results in dairy herds / M.B. Petersen, K. Krogh, L.R. Nielsen // J. Dairy Science. - 2016. - № 5(99). - P. 3815-3823.

221. Pfützner, H. Mycoplasma bovis as an agent of mastitis, pneumonia, arthritis and genital disorders in cattle / H. Pfützner, K. Sachse // Revue Scientifique et Technique de l'OIE. - 1996. - № 4(15). - P. 1477-1494.

222. Pfützner, H. The tenacity of Mycoplasma bovis / H. Pfützner // Zentralblatt fur Bakteriologie, Mikrobiologie, und Hygiene. Series A, Medical Microbiology, Infectious Diseases, Virology, Parasitology. - 1984. - № 1(258). - P. 38-41.

223. Phylogenomic analysis of Mycoplasma bovis from Belgian veal, dairy and beef herds / J. Bokma, N. Vereecke, K. De Bleecker [et al.] // Veterinary Research. 2020. -№ 1(51). - P. 1-10.

224. Phylogeny and molecular typing of Mycoplasma agalactiae and Mycoplasma bovis by multilocus sequencing / L. Manso-Silvan, V. Dupuy, I. Lysnyansky [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2012. - № 1-2(161). - P. 104-112.

225. Pitcher, D.G. Mycoplasma host specificity: Fact or fiction? / D.G. Pitcher, R.A.J. Nicholas // Veterinary J. - 2005. - № 3(170). - P. 300-306.

226. Point prevalence of infection with Mycoplasma bovoculi and Moraxella spp. in cattle at different stages of infectious bovine keratoconjunctivitis / C. Schnee, M. Heller, E. Schubert, K. Sachse // Veterinary J. 2015. - № 1(203). - P. 92-96.

227. Poveda, J.B. Serological identification of mycoplasmas by growth and metabolic inhibition tests / J.B. Poveda, R. Nicholas // Methods in Molecular Biology. - 1998. -Vol. 104. - P. 105-111.

228. Prevalence and Antimicrobial Susceptibility of Bovine Mycoplasma Species in Egypt / A.M. Ammar M.A. El-Hamid, Y.H. Mohamed [et al.] // Biology. - 2022. - № 7 (11). - P. 1083.

229. Prevalence and genotype of Mycoplasma bovis in beef cattle after arrival at a feedlot / F. Castillo-Alcala, K.G. Bateman, H.Y. Cai [et al.] // American J. Veterinary Research. - 2012. - № 12(73). - P. 1932-1943.

230. Prevalence and reproductive effects of Ureaplasma diversum in beef replacement Heifers and the relationship to blood urea nitrogen level / M.W. Sanderson, P.J. Chenoweth, T. Yeary, J.C. Nietfeld // Theriogenology. - 2000. - № 3(54). - P. 401-408.

231. Prevalence and risk factors associated with antimicrobial resistance in bacteria related to bovine respiratory disease - a broad cross-sectional study of beef cattle at entry into Canadian feedlots / S. Andres-Lasheras, R. Ha, R. Zaheer [et al.] // Frontiers in Veterinary Science. - 2021. - Vol.8. - P. 692646.

232. Proposal that the strains of the Mycoplasma ovine/caprine serogroup 11 be reclassified as Mycoplasma bovigenitalium / A.J. Nicholas Robin, Y.-C. Lin, K. Sachse [et al.] // International J. Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2008. - № 1(58).

- P. 308-312.

233. Pulsed-field gel electrophoresis patterns of Mycoplasma isolates from various body sites in dairy cattle with Mycoplasma mastitis / M.K. Biddle, L.K. Fox, M.A. Evans, C.C. Gay // J. American Veterinary Medical Association. - 2005. - № 3 (227). -P. 455-459.

234. Quantification of mycoplasmas in broth medium with sybr green-I and flow cytometry / P. Assun?äo, R.S. Rosales, M. Rifatbegovic [et al.] // Frontiers in Bioscience. - 2006. - № 1. - P. 492-497.

235. Rapid detection of a point mutation in the parC gene associated with decreased susceptibility to fluoroquinolones in Mycoplasma bovis / I. Lysnyansky, I. Mikula, I. Gerchman, S. Levisohn // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. - 2009. - № 11(53).

- P. 4911-4914.

236. Rapid identification of Mycoplasma bovis strains from bovine bronchoalveolar lavage fluid with matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry after enrichment procedure / J. Bokma, L. Van Driessche, P. Deprez [et al.] // J. Clinical Microbiology. - 2020. - № 6(58). - P. 1-20.

237. Razin, S. Mycoplasma adhesion / S. Razi, E. Jacobs // J. General Microbiology.

- 1992. - № 3(138). - P. 407-422.

238. Reference module in food science main pathogens detected in milk / P. Cremonesi, V. Monistero, P. Moroni [et al.]. - Elsevier, 2020.

239. Relationship between bronchoalveolar lavage fluid and plasma endotoxin activity in calves with bronchopneumonia / Y. Nishi, K. Tsukano, M. Otsuka [et al.] // J. Veterinary Medical Science. - 2019. - № 7(81). - P. 1043-1046.

240. Respiratory disease in calves: Microbiological investigations on trans-tracheally aspirated bronchoalveolar fluid and acute phase protein response / O. Angen, J. Thomsen, L.E. Larsen [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2009. - № 1-2(137). - P. 165-171.

241. Risk of Mycoplasma bovis transmission from contaminated sand bedding to naive dairy calves / D.J. Wilson, A. Justice-Allen, G. Goodell [et al.] // J. Dairy Science.

- 2011. - № 3(94). - P. 1318-1324.

242. RNA polymerase beta subunit (rpoB) gene and the 16S-23S rRNA intergenic transcribed spacer region (ITS) as complementary molecular markers in addition to the 16S rRNA gene for phylogenetic analysis and identification of the species of the family Mycoplasmataceae / D.V. Volokhov, V. Simonyan, M.K. Davidson, V. E. Chizhikov // Molecular Phylogenetics and Evolution. - 2012. - № 1(62). - P. 51-58.

243. Rosenbusch, R.F. Immune responses in Mycoplasma bovoculi conjunctivitis / R.F. Rosenbusch // Israel J. Medical Sciences. - 1987. - № 6(23). - P. 628-631.

244. Ross, R.F. Mycoplasma — Animal Pathogens / R.F. Ross. - Boston, MA: Springer US, 1993. - P. 69-109.

245. Rossetti, B.C. Direct detection of Mycoplasma bovis in milk and tissue samples by real-time PCR / B.C. Rossetti, J. Frey, P. Pilo // Molecular and Cellular Probes. -2010. - № 5(24). - P. 321-323.

246. 16S rRNA gene mutations associated with decreased susceptibility to tetracycline in Mycoplasma bovis / E. Amram, I. Mikula, C. Schnee [et al.] // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. - 2015. - № 2(59). - P. 796-802.

247. Selective medium for culture of Mycoplasma hyopneumoniae / B.S. Cook, J.G. Beddow, L. Manso-Silvan [et al.] // Veterinary Microbiology. - 2016. - Vol. 195. - P. 158-164.

248. Severe Mycoplasma bovis outbreak in an Austrian dairy herd / H. Pothmann, J. Spergser, J. Elmer [et al.] // J. Veterinary Diagnostic Investigation. - 2015. - № 6(27).

- P. 777-783.

249. Shaw, B.M. The Vsa shield of Mycoplasma pulmonis is antiphagocytic / B.M. Shaw, W.L. Simmons, K. Dybvig // Infection and Immunity. - 2012. - № 2(80). - P. 704-709.

250. Shimizu, T. Selective medium for the isolation of Mycoplasma bovis from nasal discharges of pneumonic calves / T. Shimizu / Research in Veterinary Science. - 1983.

- № 3(34). - P. 371-373.

251. Short communication: In vitro antimicrobial susceptibility of Mycoplasma bovis isolates identified in milk from dairy cattle in Belgium, Germany, and Italy / A. Barberio, B. Flaminio, P. Moroni [et al.] // J. Dairy Science. - 2016. - № 8 (99). - P. 6578-6584.

252. Short communication: Role of Mycoplasma arginini in mastitis caused by Streptococcus dysgalactiae / L. Stipkovits, M. Somogyi, B. Asvanyi [et al.] // J. Dairy Science. - 2013. - № 3(96). - P. 1661-1667.

253. Species identification of Mycoplasma bovis and Mycoplasma agalactiae based on the uvrC genes by PCR / S. Subramaniam, D. Bergonier, F. Poumarat [et al.] // Molecular and Cellular Probes. - 1998. - № 3(12). - P. 161-169.

254. Stalheim, O.H. Naturally occurring and experimentally induced mycoplasmal arthritis of cattle / O.H. Stalheim, L.A. Page // J. Clinical Microbiology. - 1975. - № 3(2). - P. 165-168.

255. Stanbridge, E. Mycoplasmas and cell cultures / E. Stanbridge // Bacteriological Reviews. - 1971. - № 2(35). - P. 206-227.

256. Status of the development of a vaccine against Mycoplasma bovis / J. Perez-Casal, T. Prysliak, T. Maina [et al.] // Vaccine. - 2017. - № 22(35). - P. 2902-2907.

257. Stemke, G.W. The growth response of Mycoplasma hyopneumoniae and Mycoplasma flocculare based upon ATP-dependent luminometry / G.W. Stemke, J.A. Robertson // Veterinary Microbiology. - 1990. - № 2(24). - P. 135-142.

258. Strugnell, B. Mycoplasma wenyonii infection in cattle / B. Strugnell, L. McAuliffe // In Practice. - 2012. - № 3(34). - P. 146-154.

259. Survival and replication of Mycoplasma species in recycled bedding sand and association with mastitis on dairy farms in Utah / A. Justice-Allen, J. Trujillo, R. Corbett // J. Dairy Science. - 2010. - № 1(93). - P. 192-202.

260. Tambi, N.E. An estimation of the economic impact of contagious bovine pleuropneumonia in Africa / N.E. Tambi, W.O. Maina, C. Ndi [et al.] // Revue Scientifique et Technique de l'OIE. - 2006. - Vol. 25. - P. 999-1011.

261. Taylor, G. Immunity to Mycoplasma Infections of the Respiratory Tract: A Review / G. Taylor // J. Royal Society Medicine. - 1979. - № 7(72). - P. 520-526.

262. The efficacy of valnemulin (Econor®) in the control of disease caused by experimental infection of calves with Mycoplasma bovis / L. Stipkovits, P.H. Ripley, M. Tenk [et al.] // Research in Veterinary Science. - 2005. - № 3(78). - P. 207-215.

263. The Microbe of pleuropneumonia / Nocard Messrs, Messrs Borrel, Salimbeniet, Dujardin-Beaumetz // Reviews of Infectious Diseases. - 1990. - Vol. 12. - P. 354-358.

264. The Origin of the 'Mycoplasma mycoides Cluster' coincides with domestication of ruminants / A. Fischer, B. Shapiro, C. Muriuki [et al.] // PLoS ONE. - 2012. - № 4(7). - 6 p.

265. The pathogen Mycoplasma dispar shows high minimum inhibitory concentrations for antimicrobials commonly used for bovine respiratory disease / M. Bottinelli, M. Merenda, M. Gastaldelli [et al.] // Antibiotics. - 2020. - № 8(9). - P. 111.

266. Thiaucourt, F. Contagious Bovine Pleuropneumonia / F. Thiaucourt, N.D. Nwankpa, W. Amanfu // Veterinary Vaccines. - 2021. - P. 317-326.

267. TrmFO, a fibronectin-binding adhesin of Mycoplasma bovis / Y. Guo, H. Zhu, J. Wang [et al.] // International J. Molecular Sciences. - 2017. - № 8(18). - P. 1732.

268. Type 1 and type 2 strains of Mycoplasma pneumoniae form different biofilms / W.L. Simmons, J.M. Daubenspeck, J.D. Osborne [et al.] // Microbiology (Reading). -2013. - № 4(159). - P. 737-747.

269. Uemura, R. Antimicrobial susceptibilities of four species of Mycoplasma isolated in 2008 and 2009 from cattle in Japan / R. Uemura, M. Sueyoshi, H. Nagatomo // J. Veterinary Medical Science. - 2010. - № 12(72). - P. 1661-1663.

270. Unusual history and initial clinical signs of Mycoplasma bovis mastitis and arthritis in first-lactation cows in a closed commercial dairy herd / D.J. Wilson, R.T. Skirpstunas, J.D. Trujillo [et al.] // J. American Veterinary Medical Association. - 2007. - № 10(230). - P. 1519-1523.

271. Uphoff, C.C. Detection of mycoplasma contamination in cell cultures / C.C. Uphoff, H. Drexler // Current Protocols in Molecular Biology. - 2014. - № 1(106). - P. 24-28.

272. Use of a novel real-time PCR technique to monitor and quantitate Mycoplasma bovis infection in cattle herds with mastitis and respiratory disease / K. Sachse, H.S.H. Salam, R. Diller [et al.] // Veterinary J. - 2010. - № 3(186). - P. 299-303.

273. Validation of ATP luminometry for rapid and accurate titration of Mycoplasma hyopneumoniae in Friis medium and a comparison with the color changing units assay / D. Calus, D. Maes, K. Vranckx [et al.] // J. Microbiological Methods. - 2010. - № 3(83). - P. 335-340.

274. Veterinary Microbiology and Microbial Disease. / P.J. Quinn, B.K. Markey, F.C. Leonard [et al.]. - John Wiley & Sons, 2011. - 2498 p.

275. Visser, I.J. Failure of antibiotics gentamycin, tylosin, lincomycin and spectinomycin to eliminate Mycoplasma bovis in artificially infected frozen bovine semen / I.J. Visser, E.A ter Laak, H.B. Jansen // Theriogenology. - 1999. - № 4(51). -P. 689-697.

276. Whithear, K.G. Isolation of Mycoplasma alkalescens from cases of polyarthritis in embryo-transplant calves / K.G. Whithear // Australian Veterinary J. - 1983. - № 6(60). - P. 191-192.

277. Whole-genome sequence of Mycoplasma bovis strain ningxia-1 / P. Sun, H. Luo, X. Zhang [et al.] // Genome Announcements. - 2018. - № 4(6). - 11 p.

278. Wilson, D.J. Realistic milk culture programs for herd expansion / D.J. Wilson, R.N. González // Proceedings of the 41st Annual Meeting of the National Mastitis Council. - 2002. - P. 118-124.

279. Windsor, R.S. The eradication of contagious bovine pleuropneumonia from south western Africa. A plan for action / R.S. Windsor // Annals New York Academy Sciences. - 2000. - Vol. 916. - P. 326-332.

280. Woldehiwet, Z. Effects of age, environmental temperature and relative humidity on the colonization of the nose and trachea of calves by Mycoplasma spp. / Z. Woldehiwet, M.B. Mamache, T.G. Rowan // British Veterinary J. - 1990. - № 5(146). - P. 419-424.

281. Wong, L.-J. C. Next generation sequencing: translation to clinical diagnostics. -1st ed. / L.-J. C. Wong. - New York: Springer, 2013. - 254 p.

282. Zhao, G. Mycoplasma bovis NADH oxidase functions as both a NADH oxidizing and O2 reducing enzyme and an adhesin / G. Zhao // Scientific Reports. -2017. - № 1(7). - P. 44.

ПРИЛОЖЕНИЯ

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

ПО ВЫЯВЛЕНИЮ ДНК ПАТОГЕННОЙ MYCOPLASMA BOVIS С ПОМОЩЬЮ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ

Авторы: Абед Алхуссен Мохаммад Спрыгин A.B. Нестеров A.A. Бьядовская О.П.

Рассмотрено и одобрено Рассмотрено ученым советом и

методкомиссией рекомендовано к утверждению

Протокол № 06 Протокол № 08

от «17» июня 2021 от «18» июня 2021

Владимир 2021

Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору федеральное государственное бюджетное учреждение «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

ПО ВЫЯВЛЕНИЮ ДНК MYCOPLASMA MYCOIDES SUBSP. MYCO IDES SC (MmmSC) МЕТОДОМ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ

Авторы: Абед Алхуссен Мохаммад Кротова А.О. Федорова O.E. Нестеров A.A. Прутников I I.В. Спрыгин A.B. Евграфова В.А. Бьядовская О.П.

Рассмотрено ученым советом и рекомендовано к утверждению Протокол № 07 от «30» ноября 2022 г.

Рассмотрено и одобрено методкомиссией Протокол № 06 от «29» ноября 2022 г.

Владимир 2022

ДАЮ

:тора по НИР 43Ж»

H.A. Чвала 2021 г.

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

ПО ВЫДЕЛЕНИЮ MYCOPLASMA BOVIS НА ЖИДКИХ И ТВЕРДЫХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕДАХ

Авторы: Абед Алхуссен Мохаммад Нестеров A.A. Спрыгин A.B. Евграфова В.А. Бьядовская О.П.

Рассмотрено и одобрено методкомиссией Протокол № 10 от «22» декабря 2021 г.

Рассмотрено ученым советом и рекомендовано к утверждению Протокол № 13 от «23» декабря 2021 г.

Владимир 2021

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

ПО ВЫЯВЛЕНИЮ ДНК MYCOPLASMA BOVIGENITALIUM С ПОМОЩЬЮ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО

ВРЕМЕНИ

Авторы: Абед Алхуссен Мохаммад Спрыгин A.B. Кротова А,О. Нестеров A.A. Шалина К.А. Бьядовская О.П.

Рассмотрено и одобрено Рассмотрено ученым советом и

методкомиссией рекомендовано к утверждению

Протокол № 01 Протокол № 03

от «21» февраля 2023 от «22» февраля 2023

Владимир 2023