Эпизоотология контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота в Республике Ангола тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, кандидат наук Катинда, Жоау Владимир Бело

• Катинда, Жоау Владимир Бело
• кандидат наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат наук Катинда, Жоау Владимир Бело

СОДЕРЖАНИЕ

Стр.

Введение

1. Обзор литературы

1.1. Распространение контагиозной плевропневмонии

крупного рогатого скота

1.2. Основные характеристики возбудителя

контагиозной плевропневмонии

1.3. Эпизоотологические особенности контагиозной

плевропневмонии

1.4. Клиническое и патологоанатомическое проявление контагиозной плевропневмонии

1.5. Диагностика контагиозной плевропневмонии

1.6. Специфическая профилактика и лечение

контагиозной плевропневмонии

1.7. Меры борьбы с контагиозной плевропневмонией

2. Собственные исследования

2.1. Материалы и методы исследований

2.2. Результаты собственных исследований

2.2.1. История появления и распространения контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота в Анголе

2.2.2. Природно-климатические и экономические условия сохранения инфекционных болезней крупного рогатого

скота республики Ангола

2.2.3. Контагиозная плевропневмония в нозологической структуре инфекционных болезней крупного рогатого скота

2.2.4. Характеристика эпизоотического процесса при контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота в Республике Ангола

2.2.4.1. Эпизоотическая ситуация по контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота в Республике

Ангола за период с 2002 по 2010 года

2.2.4.2. Территориальные границы эпизоотического проявления контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота

в Республике Ангола

2.2.4.3. Сезонные и периодические изменения интенсивности эпизоотического процесса при контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота в Республике Ангола

2.2.5. Клиническое и патологоанатомическое проявление контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота в Республике Ангола

2.2.6. Оптимизация мероприятий по контролю и искоренению контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота

в Республике Ангола

3. Обсуждение результатов исследования

4. Выводы

5. Практические предложения

6. Список литературы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эпизоотология контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота в Республике Ангола»

Введение

Актуальность работы. Контагиозная плевропневмония крупного рогатого скота (КПП) - инфекционная болезнь, характеризующаяся лихорадкой, крупозной интерстициальной пневмонией, серозно-фибринозным плевритом с последующим образованием в лёгких секвестров и скоплением большого количества экссудата в грудной полости [7, 18, 108].

КПП была широко распространена в Европе в течение многих столетий, откуда была импортирована со скотом в Южную Африку, Индию, США, Австралию, Китай, Японию, Россию. В подавляющем большинстве стран болезнь была ликвидирована в конце 19 начале 20 века, а в таких как Португалия, Италия, Австралия, Китай - в конце 20 начале 21 века. В настоящее время неблагополучными по КПП остаются ряд стран на Африканском континенте. В таких странах как Намибия, Эфиопия, Сомали, Нигерия, Республика Чад, Сенегал, Кот-д'Ивуар, Гана, Уганда, Танзания, Демократическая Республика Конго, Бенин, Буркина-Фасо, Того ежегодно регистрируются вспышки болезни [25, 84]. Как показали недавно проведенные исследования, в 12 эндемично инфицированных африканских странах ежегодные убытки от КПП составляют 30 миллионов € [124]. Эти потери обусловлены смертностью животных и сокращением производства говядины, молока и рабочей силы. В дальнейшем потери складываются в результате снижения рождаемости и потерей рынка сбыта из-за торговых запретов [57, 114, 143].

Республика Ангола также является длительное время неблагополучной по КПП крупного рогатого скота, которая служит одним из важнейших факторов, сдерживающих развитие скотоводства в стране, и представляет собой серьезную преграду для развития национальной экономики [42, 84]. Огромное влияние на реализацию государственного плана по искоренению КПП оказала 27-летняя гражданская война, которая не только обеспечила условия для сохранения болезни, но и создала все предпосылки для её повторного распространения по всей стране [87, 118].

Данное обстоятельство свидетельствует о том, что для полной ликвидации КПП в Республике Ангола требуется разработка специальной государственной целевой программы по искоренению и профилактике болезни с учетом современной эпизоотической ситуации, клинического проявления, зональных и территориальных особенностей эпизоотического процесса и влияние на него сезонного фактора и иммунизации.

Цель и задачи исследований. Основной целью работы являлось изучение современной эпизоотической ситуации по КПП крупного рогатого скота в Республике Ангола, определению особенностей проявления эпизоотического процесса и клинической картины болезни.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Провести историческое исследование причин появления и распространения КПП крупного рогатого скота в Республике Ангола.

2. Изучить природно-климатические предпосылки сохранения КПП в Анголе.

3. Определить роль и место КПП в нозологической структуре инфекционных болезней крупного рогатого скота.

4. Установить интенсивность проявления эпизоотического процесса КПП в современных условиях.

5. Выявить особенности клинического проявления болезни.

6. Дать рекомендации по оптимизации мероприятий, направленных на контроль и искоренение КПП крупного рогатого скота в Республике Ангола.

Научная новизна. Впервые проведены эпизоотологические исследования по КПП крупного рогатого скота в Республике Ангола, в ходе которых были установлены причины появления, развития и распространения болезни. Определена современная эпизоотическая ситуация по КПП и её место в нозологической структуре инфекционных болезней крупного рогатого скота. Определены особенности проявления эпизоотического процесса КПП в различных регионах и климатических зонах Анголы, а также выявлены сезон-

ные изменения интенсивности эпизоотического процесса и периодичности его возникновения. Определен характер течения и клинического проявления болезни. Выявлены основные недостатки, сдерживающие быструю ликвидацию болезни, на основании которых предложена оптимизация противоэпи-зоотических мероприятий по контролю и искоренению КПП в Республике Ангола.

Практическая значимость. Результаты работы позволили определить условия сохранения и эпизоотического проявления КПП в Республике Ангола. Составлены карты-схемы территориального и зонального проявления эпизоотического процесса, построены графические модели, характеризующие сезонные особенности и периодичность возникновения КПП на территории Анголы. Выявлены основополагающие факторы, которые позволяют оптимизировать проведение противоэпизоотических мероприятий, направленных на ликвидацию и профилактику болезни в стране.

Основные положения, выносимые на защиту:

- Территория Анголы длительное время эндемична по КПП крупного рогатого скота, этому способствуют социальные, экономические и природно-климатические факторы;

- КПП занимает ведущее место в нозологической структуре инфекционной патологии крупного рогатого скота, при которой эпизоотический процесс имеет явную тенденцию нарастания;

- Эпизоотический процесс при КПП в Республике Ангола имеет территориальные, зональные, сезонные особенности и характеризуется периодичностью;

- Особенности клинического проявления КПП заключаются в превалировании хронической формы течения болезни;

- Предложена система мер по оптимизации противоэпизоотических мероприятий, направленных на ликвидацию КПП в Республике Ангола.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы и полученные результаты доложены и обсуждены на научных конференциях

сотрудников и аспирантов факультета ветеринарной медицины Кубанского ГАУ (Краснодар 2010, 2011); международной научной конференции «Актуальные проблемы современной ветеринарии» (Краснодар, 2011), международной конференции «Ветеринарная медицина 21 века, инновации, обмен опытом и перспективы развития» (Саратов, 2012).

Публикации. По материалам диссертационной работы опубликовано 4 научные статьи, в том числе 2 в рецензируемых журналах рекомендованных ВАК.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 139 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов исследования, выводов, практических предложений, списка используемой литературы, который включает 13 источников отечественных и 138 иностранных авторов и приложений. Работа иллюстрирована 19 таблицами и 55 рисунками.

1. Обзор литературы

1.1. Распространение контагиозной плевропневмонии

крупного рогатого скота

Впервые о заболевании похожем на КПП крупного рогатого скота сообщил ученый Валентини в1696 г. Инфекционную природу КПП установил Буржеля в 1765 г., а французским исследователям Э. Нокарду и Э. Ру в 1898 г. впервые удалось выделить и культивировать возбудителя. Подробно описать возбудителя удалось Боррелю с соавторами в 1901 г. Экспериментально воспроизвести заболевание стало возможным только в 1935 г. [7].

На данный момент КПП является высоко контагиозным и очень опасным заболеванием и отнесено Международным эпизоотическим бюро (МЭБ) к списку А - особо опасные заразные болезни животных [7, 8, 42, 51, 87].

КПП была широко распространена в Европе в 18 веке из-за неконтролируемого перемещения крупного рогатого скота, которые были вызваны войнами, перегонным животноводством и торговлей. Болезнь была занесена в США, Австралию, Азию и Южную Африку в 19-м веке импортом зараженных животных из Европы, восточной, центральной и западной Африки, которые, как полагают, были инфицированы в 19-м веке крупным рогатым скотом из Индии [108].

В конце 19-го и начале 20-го века за счет энергичных усилий по борьбе с данным заболеванием, включающие полное уничтожение больных и зараженных животных и строгий запрет бесконтрольного перемещения животных, КПП была ликвидирована в США, Японии и большей части Западной Европы [110]. В Швейцарии болезнь не регистрируется с 1895 года [121], а последние случаи КПП в Германии датируются 1926 годом [51]. Однако некоторые очаги болезни в Европе ещё оставались в 20 веке, которые вновь вспыхнули в 1980 и 1990 гг. [109, 110].

Так в Португалии после длительного благополучия (с 1956 г.) в 1983 г. было зарегистрировано сразу 1507 случаев заболевания крупного рогатого скота [110]. В Италии после почти после 100-летного перерыва, в октябре

1990 г. было зарегистрировано 94 вспышки КПП, из которых 47 были сосредоточены в трех районах Северной Италии (в области Ломбардии). Болезнь была ликвидирована только в сентябре 1993 года [46, 47].

В европейской части России КПП крупного рогатого скота впервые была установлена в 1824 - 1825 гг. В начале 20-го века болезнь получила широкое распространение и наносила огромный ущерб. В результате проведения жестких оздоровительных мероприятий, заключающихся в тотальном уничтожении инфицированных стад, контагиозная плевропневмония была полностью ликвидирована в 1938 г. [7].

Австралии удалось искоренить данную болезнь в 1973 году, после присутствия её в стране в течение 100 лет. Стратегия борьбы была основана на вакцинации, контроле над перемещением животных, осуществления политики убоя больных и подозрительных по заболеванию животных, а также эффективной системой эпизоотологического наблюдения [91].

В Китае от КПП между 1949 и 1989 гг. пало 178 570 голов крупного рогатого скота, что привело к потерям в 356 миллионов юаней. КПП удалось взять под контроль только благодаря ежегодным вакцинациям. Последний случай выявления больного животного датируется 1989 годом. В 1992 году вакцинации крупного рогатого скота были остановлены, а в 2008 году Китай подал заявку в МЭБ, которая объявила Китай свободным от КПП [148].

Что касается Африканского континента, то здесь КПП до сих пор имеет широкое распространение. W.N. Masiga с соавторами [78] полагают, что в эпидемиологии этой болезни в Африке преобладают четыре фактора, а именно:

- крупный рогатый скот является единственным видом, в заболевании которого не участвовали дикие животные;

- животные с клиническими признаками или хронические носители являются обычными источниками инфекции;

- передача возбудителя осуществляется посредством прямого контакта;

- бесконтрольное передвижение скота.

Кроме того установлено, что поддержанию и расширению ареала болезни способствует сама система животноводства Африки, которая представляет собой отгонно-пастбищное скотоводство. Эта система является в большинстве стран безальтернативной, поскольку представляет собой стратегию выживания, практикующейся во время сухого сезона. При этом происходят неконтролируемые перемещения скота, вследствие чего животные разных стад смешиваются во время выпаса и водопоя. Так же следует отметить, что большую роль играет социально-культурные особенности жизни африканцев, более 75% животных перемещаются посредством подарков, приданого или обмена [101]. Учитывая эти особенности, а также нестабильную экономическую и социальную ситуации, КПП нашла благоприятную почву для развития и распространения в данном регионе.

Имеются сообщения о многочисленных вспышках КПП в странах Африки, в которых ранее болезнь была ликвидирована [21, 87].

Эпидемиологические отчеты и результаты патологоанатомических вскрытий крупного рогатого скота показывают, что распространенность КПП в Нигерии находится на подъеме, несмотря на ежегодную массовую вакцинацию и другие защитные меры. Число зарегистрированных вспышек увеличилось с 20 в 1981 г. до 64 в 1988 г., 114 в 1989 г., 82 в 1990 г. и 52 в 1991 г. (с января по июнь) [90].

М.М. АНуи с соавторами [14] сообщает, что в пяти скотоводческих штатах Нигерии с 1988 по 1997 гг. в общей сложности произошло 279 вспышек КПП, в результате которых было подвергнуто убою и патологоанатоми-ческому осмотру 1936015 голов крупного рогатого скота на наличие характерных поражений легких при КПП. Общее поражение животных КПП, основанное на данных вскрытий, составило 0,29% (95% коэффициент инцидентности 0.24, 0.35).

В Ботсване, которая была свободна от болезни в течение более 50 лет, были зарегистрированы вспышки в 1995 г., в результате чего было вынуждено убито 320 тысяч голов крупного рогатого скота [15, 16].

В Кении заболевание было впервые зарегистрировано в 1901 г. в окрестностях Найроби. С тех пор болезнь широко распространилась в стране из-за неконтролируемого движения зараженных животных. С 70-х годов 20-го века заболевание взяли под контроль в большинстве районах Кении благодаря карантину, контролю над передвижениями животных и вакцинации. Однако на масайских территориях (районы Ка^аёо и Иагок) оставались энзоотические области по данному заболеванию, в которых инфекция вспыхнула с новой силой в 1990 г. [58]. Необходимо отметить что, мера контроля над передвижением животных является важнейшей и неотъемлемой частью стратегии борьбы с КПП. В Кении 33,9% вспышек КПП были связанны только с передвижениями крупного рогатого скота [134]. В масайской экосистеме Кении КПП продолжает регистрироваться, поэтому в настоящее время эта область классифицирована как зараженная [101, 135].

В Танзании КПП была впервые зарегистрирована в 1916 г., но в 1964 г. заболевание удалось успешно ликвидировать. Однако, из-за отсутствия четкой политики по борьбе с заболеванием, неконтролируемые передвижения крупного рогатого скота, отсутствие информированности и участия общественности, неэффективное законодательство привело к тому, что в 1990 г. заболевание вновь появилось в стране. Этому предшествовало распространение КПП в областях Кении, граничащих с Танзанией. Из-за частых перемещений скота через границу, КПП вскоре была зарегистрирована в провинции ЬоПопёо на севере Танзании. Через месяц после первых случаев заболевания, КПП подозревалась в общей сложности в 9 стадах включающих 1500 крупного рогатого скота. До сих пор попытки контролировать и искоренить КПП в Танзании не увенчались успехом [27, 57, 62, 86].

Согласно данным МЭБ в 2007 - 2008 гг. КПП была широко распространена в 12 странах Африки [18, 104]. Этими странами являлись Уганда,

Танзания и Эфиопия в Восточной Африке; Нигерия, Нигер, Чад, Бенин, Гана, Буркин-Фасо» Того, Демократическая Республика Конго и Ангола в Западной и Центральной Африке. За счет мер контроля КПП имеет зональное распространение в таких странах, как Бурунди, Намибия, Замбия, Кения и Мали [129].

Существуют африканские страны, которым на данный момент удалось искоренить КПП. Например, Зимбабва освободилась от инфекции в 1904 г. и Южная Африка в 1924 году. В 2008 году Ботсвана была официально объявлена свободной от КПП, а Сенегал объявил себя временно свободным от данного заболевания в соответствии с декларацией МЭБ о свободе от КПП [104].

Таким образом, из приведенного материала видно, что, несмотря на то, что КПП ликвидирована в странах Американских континентов, Европы, Австралии, Японии, Китае, она до сих пор имеет широкое распространение в ряде стран Африки, где наносит огромный экономический ущерб, складывающийся из высокой заболеваемости, смертности животных и больших затрат на мероприятия по ликвидации данного заболевания. При этом в условиях наличия и дальнейшего расширения обширных торгово-экономических связей и рыночных отношений между развивающимися странами, в том числе и африканскими, существует постоянная угроза расширения современного ареала болезни, заноса возбудителя и возникновения болезни в благополучных по КПП странах.

1.2. Основные характеристики возбудителя контагиозной плевропневмонии

Возбудителем контагиозной плевропневмонии является Mycoplasma mycoides subspecies mycoides Small Colony (MmmSC), принадлежит к классу Mollicutes, порядку Mycoplasmatales и семейству Mycoplasmataceae. Семейство Mycoplasmataceae в свою очередь содержит два рода Mycoplasma (уре-азо-отрицательная) и Ureaplasma (уреазо-положительная) [100].

Мтт8С является внеклеточным паразитом, который живет в тесной связи с клетками хозяина. В мазках из экссудата, а также из культур, возбудитель КПП представлен мелкими клетками (0,1-0,45мкм), характеризующимися выраженным полиморфизмом. Они могут образовывать кокковую, ди-плококковую, нитевидную, ветвящиеся и более крупные многоядерные формы, способные образовывать псевдомицелий. Микроб неподвижный, грамот-рицательный, хорошо окрашивается анилиновыми красителями, аэроб, способен к саморепликации, имеет геном с молекулярной массой 4,4-4,8 кД и не имеет клеточной стенки, присущей бактериям, а окружен лишь трехслойной цитоплазматической мембраной. Мембрана полифункциональна, она выполняет не только защитную и транспортную, но и многие другие функции. Именно с цитоплазматической мембраной связывают патогенные реакции этих микроорганизмов. На мембране локализованы рецепторные белки и поверхностные антигены [12, 100, 107, 139].

Отсутствие клеточной стенки и небольшой объем генетической информации обуславливают требовательность Мшт8С к веществам, необходимым для питания и размножения. Они нуждаются в сыворотке крови млекопитающих, содержащей фактор роста (липопротеин) и в низкомолекулярных белках и аминокислотах с преобладанием аргинина, лейцина, глицина, лизина [107].

Также следует отметить, что немаловажную роль в патогенности микроорганизма играют экзо-, эндотоксины и липополисахарид, содержащий га-лактан, которые вызывают лихорадку, лейкопению, внезапный сильный стресс и депрессию (коллапс), поражения суставов, почек и плеврит, а также продолжительное нахождение микоплазм в крови [7,11].

МтпгёС прихотлива к условиям культивирования. В питательные среды необходимо вносить нативную сыворотку, холестерин, нуклеиновые кислоты, витамины и различные соли. Подходящие основы для них - перевар Хотингера, пептон Мартена и др. Широко для культивирования микоплазм используется среда Эдварда, которая включает в себя отвар сердца, лошади-

ную сыворотку, дрожжевой экстракт и ДНК тимуса теленка. При их отсутствии для первичного выделения также пригодны куриные эмбрионы, гибель которых наблюдают с 3-5 пассажа. Микоплазмы чувствительны к микроэлементному составу среды - высокое содержание Zn , Mg , Со и Fe может ингибировать рост [11].

При посеве на питательные среды с гемоглобином возбудитель КПП изменяет красноватый цвет среды на зелёный. На твердых средах образует характерные мелкие колонии (0.2-1.5 мм) с более темным и зернистым центром типа «яичницы глазуньи», напоминающие мелкие колонии L-форм бактерий. На средах, содержащих кровь, некоторые виды дают ос- и ß-гемолиз, преимущественно обусловленные образованием перекисей. На полужидких средах растут по уколу, формируя дисперсные, крошковатые колонии. На жидких средах дают очень незначительное помутнение или опалесценцию; некоторые штаммы способны образовывать тончайшую жидкую пленку. Чаще более обильный рост отмечают около поверхности или стенок сосуда, но некоторые виды дают и придонный рост [7, 11].

MmmSC отличают многие биохимические, иммунологические и генетические свойства от шести других микоплазм, сгруппированных в так называемый кластер Mycoplasma mycoides [100, 139]. Другими членами кластера являются Mycoplasma mycoides subsp. mycoides large colony, Mycoplasma capricolum subsp. capricolum, Mycoplasma capricolum subsp. capripneumoniae, Mycoplasma mycoides subsp. capri and Mycoplasma sp. bovine group 7. Анализ последовательности (секвенирование) и филогенетические исследования генов 16S рибосомной РНК (16S рРНК) показали, что все данные микоплазмы тесно связаны с группой Bacillus-Lactobacillus-Streptococcus, что предполагает их происхождение от грамположительных бактерий [136].

Микоплазмы кластера Mycoplasma mycoides высоко специфичны и адаптированы к основному хозяину, в котором они, как правило, патогенны, но могут паразитировать и у других хозяев [100]. По данным ряда авторов

MmmSC часто можно обнаружить у овец, болеющих маститом, и при контагиозной плевропневмонии коз. Остается неясным, является ли наличие MmmSC у овец и коз причинно связанной с наблюдаемыми заболеваниями [29, 60, 120].

Согласно литературным данным [7, 8, 11] устойчивость возбудителя КПП к физическим, химическим и другим факторам внешней среды относительно низкая. Солнечный свет и высушивание убивают его в течение 5 ч, влажное прогревание при 55 °С - за 5 мин, при 60 °С - за 2 мин, сухой жар -за 2 ч. В гниющем материале сохраняется до 9 дней, а в замороженных кусках пораженных легких - от 3 мес. до 1 года. Микоплазмы погибают при 10-кратном замораживании и оттаивании, а также после 6-часового воздействия 96% этилового спирта и эфира.

Возбудитель КПП обладает высокой устойчивостью ко всем препаратам, действие которых связано с биосинтезом белков клеточной стенки. К этой группе в первую очередь относятся пенициллины и сульфаниламиды. Чувствительна же микоплазма к ингибиторам синтеза мембранных и внутри-цитоплазматических белков, к антибиотикам тетрациклинового ряда, стрептомицину, хлорамфениколу, тилозину, многим макролидам, линкозамидам, противогрибковым и противопротозойным препаратам, а также к группе фторхинолонов (синтетических препаратов, действие которых направлено на подавление активности топоизомераз микроорганизмов). Обычные дезинфицирующие средства в общепринятых концентрациях, а также детергенты достаточно быстро и надежно обезвреживают возбудитель на объектах внешней среды [7, И].

1.3. Эпизоотологические особенности контагиозной

плевропневмонии

В естественных условиях КПП является заболеванием легких в первую очередь крупного рогатого скота (Bos. indicus и В. taurus), ни о каком резервуаре в дикой природе не сообщается [108]. В эксперименте материалом

от больных животных удается заразить овец, коз, верблюдов и северных оленей. Животные других видов, а также человек, находясь в контакте с больными, не заболевают. Мелкие лабораторные животные считаются невосприимчивыми к возбудителю КПП [7].

Источником возбудителя инфекции являются больные и переболевшие КПП животные, выделяющие MmmSC в окружающую среду с истечениями из носа, бронхиальным секретом при кашле, а также с мочой, калом, молоком и околоплодной жидкостью [61].

Основная передача возбудителя КПП осуществляется аэрогенным путем, посредством выдоха инфекционных аэрозолей больными животными и вдыхания их восприимчивыми животными. Аэрогенная передача возбудителя возможна на расстоянии 45 м от больного до восприимчивого животного. Поэтому болезнь чаще распространяется при торговле и перевозке скота, скученном совместном содержании больных и здоровых животных, частых перегруппировках. Также не исключается передача микоплазм через желудочно-кишечный тракт (с фуражом), половым, трансплацентарным, трансмиссивным путями, и посредством навоза и предметов ухода за животными

[7].

R.S. Windsor и W.N. Masiga [145] в экспериментальных условиях продемонстрировали передачу возбудителя КПП механическим путем через зараженный корм.

W.N. Masiga [76] и S.S. Stone с соавторами [123] подтвердили возможность трансплацентарной передачи, после того как выделили MmmSC от плода самки, инфицированной КПП.

J.M. Scudamore [117] выделил MmmSC из мочи крупного рогатого ско-

2 8

та больного острой формой КПП, с титрами в диапазоне между 10 и 10 микроорганизмов на миллилитр мочи.

M.R. Gon9alves [47] в результате своих исследований выделил и идентифицировал MmmSC из спермы и влагалищных смывов.

Хотя буйволы восприимчивы к КПП, об их роли в передаче возбудителя крупному рогатому скоту не сообщается.

Больной скот служит источником возбудителя инфекции на всех стадиях инфекционного процесса. Жизнеспособность возбудителя КПП в легких переболевших животных сохраняется до 5-6 мес. У животных, подвергшихся лечению, но имевших инкапсулированные очаги, установлена жизнеспособность возбудителя через 6 месяцев после лечения [144].

Эпизоотический процесс при контагиозной плевропневмонии в стаде развивается медленно и может длиться годами (стационарность). В неблагополучном стаде поражаются не все животные: 10-30% крупного рогатого скота резистентны к естественному или экспериментальному заражению, у 50% животных проявляется клиническая картина болезни, у 20-25% развивается субклиническая инфекция (выявляют лишь лихорадку и комплементсвя-зывающие антитела без поражения легких), и 10% животных могут стать хроническими носителями инфекта. Животные двух последних групп эпизо-отологически наиболее опасны [7].

В зависимости от породы животных, их общей резистентности, длительности содержания больных животных, заболеваемость при КПП достигает 75-90%, смертность варьируется от 10 до 90%, летальность составляет около 50% [7, 108, 119].

1.4. Клиническое и патологоанатомическое проявление контагиозной плевропневмонии

Инкубационный период, формы проявления и течение КПП варьируются и зависят от восприимчивости хозяина и вирулентности возбудителя. При этом R.A.J. Nicholas [97] и Р. Pilo [107] с соавторами считают, что MmmSC, выделенная при вспышках КПП в Европе, гораздо более патогенна, чем MmmSC, выделенная при вспышках КПП в Африке и Австралии.

J.R. Hudson и A.W. Turner [55] установили, что при экспериментальной инфекции типичные клинические признаки заболевания проявляются через три недели после заражения.

Н.О. Wesonga и F. Thiaucourt [138] в результате своих исследований в Кении сообщают о том, что клинически КПП проявляется между 40 и 57 днями после заражения.

После естественной инфекции инкубационный период не известен. Однако согласно литературным данным он составляет 2-4 недели (иногда до 4-6 мес.) [7].

Клинически КПП может проявляться в типичной и атипичной форме.

Типичная форма клинического проявления КПП характеризуется следующими течениями болезни: сверхострым, острым, подострым, хроническим [7, 108].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Катинда, Жоау Владимир Бело, 2012 год

6. Список литературы

1. Ашмарин, Н.П. Быстрые методы статистической обработки и планирование экспериментов / Н.П. Ашмарин, И.П. Васильев, В.А. Амбро-сов. - JL: Изд-во Ленингр. ун-та, 1974. - 76 с.

2. Вскрытие и патоморфологическая диагностика болезней животных: учебник / под ред. A.B. Жарова. - М.: Колос, 2000. - С. 304-306.

3. Гельман, В.Я. Медицинская информатика / В.Я. Гельман. - СПб.: Пи-тер, 2001.-480 с.

4. Глушков, A.A. Эпизоотологический мониторинг и основы эпизо-отологического исследования / A.A. Глушков. - М.: ФГОУ ВПО МГАВМиБ им. К.И. Скрябина, 2003. - 49 с.

5. Дудников, С.А. Количественная эпизоотология: основы прикладной эпидемиологии и биостатистики / С.А. Дудников. - Владимир: Демиург, 2004. - 460 с.

6. Зуева, Л.П. Эпидемиология: учебник / Л.П. Зуева, Р.Х. Яфаев. -СПб.: ООО «Издательство Фолиант», 2006. - 752 с.

7. Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, A.A. Ватутин, Е.С. Воронин и др.; под редакцией A.A. Сидорчука. - М.: КолосС, 2007. - С. 240-246.

8. Инфекционная патология животных / под ред. А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьева, Е.А. Непоклонова, Е.С. Воронина. - М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. - Т.2. - С. 409-417.

9. Колбасов, Д.В. Генотипирование возбудителя контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота / Д.В. Колбасов, Т.С. Маслова, С.Ж. Цыбанов // Вестн. Рос. акад. с.-х. наук. - 2006. - № 5. - С. 77-78.

10. Методические указания по эпизоотологическому исследованию / под редакцией И.А. Бакулова. - М.: Колос, 1982. - 18 с.

11. Микоплазмы / С.Н. Борхсениус, O.A. Чернова, В.М. Чернов, М.С. Вонский. - СПб.: Наука, 2002. - 320 с.

12. Руководство по общей эпизоотологии / под редакцией И.А. Баку-

лова, А.Д. Третьякова. - М: Колос, 1979. - 424 с.

13. Чевелева, Т. С. Сравнительный анализ генома вакцинных и эпизоотических штаммов возбудителя контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота: автореф. канд. вет. наук / Т.С. Чевелева; Покров, 1998. — 26 с.

14. Aliyu, М.М. Prevalence of contagious bovine pleuropneumonia (CBPP) in northern Nigeria / M.M. Aliyu, T.U. Obi, G.O. Egwu // Preventive Veterinary Medicine. - 2000. - № 47. - P. 263-269.

15. Amanfu, W. An outbreak of contagious bovine pleuropneumonia in Ngamiland district of north-west Botswana / W. Amanfu, K.V. Masupu, K.V. Adom, M.V. Raborokwe and J.B. Bashiruddin // Veterinary Record. - 1998. -№ 143.-P. 46-48.

16. Amanfu, W. Comparison between c-ELISA and CFT in detecting antibodies to Mycoplasma mycoides mycoides biotype SC in cattle affected by CBPP in Botswana / W. Amanfu, S. Sediadie, K.V. Masupu, V. Raborokgwe, A. Benkirane, R. Geiger and F. Thiaucourt // Annals of the New York Academy of Science. - 2000. - № 916. - P. 364-369.

17. Amanfu, W. The use of antibiotics for CBPP control: the challenges. CBPP control: Antibiotics to the rescue / W. Amanfu // Proceeding of the FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative group on CBPP in Africa, 12th -14th November Rome, Italy. - Rome, 2006. - P. 7-11.

18. Amanfu, W. Contagious bovine pleuropneumonia (lung sickness) in Africa / W. Amanfu // The Onderstepoort journal of veterinary research. - 2009. -Vol. 76(1). - P. 13-17.

19. Ayling, R. D. Assessing the in vitro effectiveness of antimicrobials against Mycoplasma mycoides subsp. mycoides small-colony type to reduce contagious bovine pleuropneumonia infection / R. D. Ayling, S. Bisgaard-Frantzen, J. B. March, K. Godinho and R. A. J. Nicholas // Antimicrobial agents and chemotherapy. - 2005. - Vol. 49, No. 12. - P. 5162-5165.

20. Ayling, R.D. Comparison of in vitro activity of danofloxacin, florfenicol, oxytetracycline, spectinomycin and tilmicosin against Mycoplasma

mycoides subsp mycoides small colony type / R.D. Ayling, S.E. Baker, R.AJ. Nicholas, M.L. Peek and A J. Simon // Veterinary Record. - 2000. - № 146. - P. 243-246.

21. Balenghien, T. Modelling and determination of the transmission contact rate for contagious bovine pleuropneumonia / T. Balenghien, K. Chalvet-Monfray, D J. Bicout, P. Sabatier // Epidemiology and Infection. - 2005. - № 2. - 337-342.

22. Bamhare, C. Contagious bovine pleuropneumonia in Namibia / C. Bamhare and B. Kohrs // FAO-EMPRES Transboundary Animal Diseases Bulletin. - 2000. - Vol. 14. - P. 12-14.

23. Barber, T.L. Antibody of cattle experimentally infected with CBPP assayed by CF, plate agglutination, Agar-gel diffusion precipitation tests / T.L. Barber, S.S. Stone and P.D. Delay // Infection and Immunity. - 1970. - Vol. 2, № 5.-P. 617-622.

24. Bashiruddin, J.B. Detection of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC in clinical material by a rapid colorimetric PCR/J.B. Bashiruddin, P. De Santis, A. Vacciana and F.G. Santini // Molecular and Cellular Probes. -1999.-№ 13.-P. 23-28.

25. Bednarek, D. Zaraza Plucna Bydla / D. Bednarek, J. Regalia // Medycyna Wet. - 2004. - Vol. 60, № 2. - P. 113-224.

26. Bellini, S. Sensitivity and specificity of serological and bacteriological tests for contagious bovine pleuropneumonia / S. Bellini, A. Giovannini, C. di Francesco, M. Tittarelli and V. Caporale // Scientific and Technical Review. -1998. -№> 17.-P. 654-659.

27. Bolske, G. Contagious bovine pleuropneumonia in northern Tanzania, culture confirmation and serological studies / G. Bolske, H.M. Msami, A. Gun-narsson, A.M. Kapaga, P.M. Loomu // Tropical animal health and production. -1995.-Vol. 27(4).-P. 193-201.

28. Bonnet, P. Seroprevalence of contagious bovine pleuropneumonia in Ethiopia highlands (West Wellega zone, Bodji District) / P. Bonnet, M. Le-snoff, F. Thiaucourt, A. Workalemahu and D. Kifle // Ethiopian Veterinary

Journal. - 2005. - № 9. - P. 85-93.

29. Brandâo, E. Isolation and identification of Mycoplasma mycoides subspecies mycoides strains in sheep and goats / E. Brandâo // Veterinary Record. - 1995.-№ 136.-P. 98-99.

30. Cetinkaya, B. Abattoir-based survey of contagious bovine pleuropneumonia in cattle in Turkey / B. Cetinkaya, H. Ongôr, M. Karahan, H. Kalender, S. Lorenzon, F. Thiaucourt // Veterinary Record. - 2003. - № 152. - P. 254-258.

31. Contagious bovine pleuropneumonia in pastoralist areas of east Africa: disease dynamics and control options / African Union/Interafrican Bureau for Animal Resources. - Nairobi, 2002. - 27 p.

32. Davies, G. The efficacy of T1 Strain of broth vaccine against contagious bovine pleuropneumonia: preliminary in-contact trials / G. Davies, W.N. Masiga, M. Shifrine and W.C.S. Read // Veterinary Record. - 1968. - № 83. - P. 239-244.

33. Dedieu, L. Characterization of the lymph node immune response following Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides SC infection in cattle / L. Dedieu, V. Balcer-Rodrigues, O. Cisse, M. Diallo, M. Niang // Veterinary Research. -2006. -№37.-P. 579-591.

34. Dedieu-Engelmann, L. Contagious bovine pleuropneumonia: A rationale for the mucosal sub-unit vaccine / L. Dedieu-Engelmann // Comaprative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases. - 2008. - № 31. - P. 227238.

35. Dedieu, L. Diagnosis of contagious bovine pleuropneumonia: problems and recent developments / L. Dedieu, A. Bréard, C. Le Goff, P.C. Lefèvre // Revue scientifique et technique.-1996.-Vol. 15(4).-P. 1331-1353.

36. Diagnostic tests for contagious bovine pleuropneumonia (CBPP): Scientific Committee on Animal Health and Animal Welfare / SANCO/AH/R25. -2001.-p. 33.

37. Domenech, J. Contagious bovine pleuropneumonia in Ethiopia. Epidemiology and vaccination / J. Domenech // Revue d'élevage et de médecine vété-

rinaire des pays tropicaux. - 1979. - Vol. 32. - P. 143-147.

38. Dyson, D. Virulence of Mycoplasma mycoides mycoides (se) / D. Dyson, G. Smith // Veterinary record. - 1997. - Vol. 140(13). - P. 348.

39. F AO CBPP control: Antibiotics to the rescue? CBPP control: Antibiotics to the rescue? Proceeding of the FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative group on CBPP in Africa, 12th -14th November Rome, Italy. - Rome, 2006.

40. F AO Surveillance Et Contrôle De La Peripneumonie Contagieuse Bovine Et D'autres Maladies Transfrontalières: ANGOLA, Compte rendu final du projet préparé pour le Gouvernement de l'Angola par l'Organisation des Nations Unies pour l'alimentation et l'agriculture, FAO, 2002

41. Fisher J. The origins, spread and disappearance of contagious bovine pleuropneumonia in New Zealand / J. Fisher // Aust. Vet J. - 2006. - № 84. - P. 439-444.

42. Geering, W.A. Preparation of Contagious Bovine Pleuropneumonia contingency plans / W. A. Geering W. Amanfu // FAO Animal Health Manual. - Rome, 2002. - № 14. - 76 p.

43. Geiger, R. Surveillance and testing strategies for the diagnosis of CBPP: Proceeding of the FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA / R. Geiger // Consultative Group on CBPP third meeting 12th-14th November 2003. - Rome, 2003.

44. Gilbert, F.R. The efficacy of T1 strain broth vaccine against contagious bovine pleuropneumonia: in contact trials carried out six and twelve months after primary vaccination / F.R. Gilbert, G. Davies, W.C.S. Read and G.R.J. Turner // Veterinary Record. - 1970. - № 86. - P. 29-32.

45. Gilbert, F.R. The immunizing dose for T1 strain Mycoplasma mycoides against contagious bovine pleuropneumonia / F.R. Gilbert and R.S. Windsor // Tropical Animal Health and Production. - 1971. - № 3. - P. 71-76.

46. Giovannini, A. Spatial risk factors related to outbreaks of contagious bovine pleuropneumonia in northern Italy (1990-1993) / A. Giovannini, S. Bellini, M.D. Salman, V. Caporale // Revue scientifique et technique. - 2000. - № 19. - P. 764-772.

47. Gon?alves, M.R. Isolation and identification of Mycoplasma mycoides subspecies mycoides SC from bull semen and sheath washings in Portugal / M.R. Gon?alves // Veterinary Record. - 1994. - № 135. - P. 308-309.

48. Gosney, F. Variable number tandem repeat (VNTR) typing of strains of Mycoplasma mycoides subspecies mycoides small colony isolated from the north-eastern regions of Italy between 1990 and 1993 / F. Gosney, M. Corrd, L. lob, L. McAuliffe, R.A. Nicholas // Veterinary microbiology. - 2011. - Vol. 147(1-2).-P. 220-222.

49. Grieco, V. Pathological, immunohistochemical and bacteriological findings in kidneys of cattle with contagious bovine pleuropneumonia (CBPP) / V. Grieco, M. Boldini, M. Luini, M. Finazzi, G. Mandelli, E. Scanziani // Journal of Comparative pathology. - 2001. - № 124. - P. 95-101.

50. Hamsten, C. Protein-specific analysis of humoral immune responses in a clinical trial for vaccines against contagious bovine pleuropneumonia / C. Hamsten, G. Tjipura-Zaire, L. McAuliffe, O. J. B. Huebschle, M. Scacchia, R. D. Ayling, A. Persson // Clinical and vaccine immunology. - 2010. - Vol. 17(5). -P. 853-861.

51. Heller, M. Contagious bovine pleuropneumonia - a nearly forgotten disease? / M. Heller, K. Sachse, E. Schubert // Dtsch. Tierarztl. Wochenschr. -2007. -№ 114.-P. 43-49.

52. Hubschle, O. Control of CBPP - a role for antibiotics? / O. Hubschle, O. Aschenborn, K. Godinho, R. Nicholas // Vet. Rec. - 2006. - № 159. - P. 464.

53. Hubschle, OJ.B. Danofloxacin (Advocin™) reduces the spread of contagious bovine pleuropneumonia to healthy in contact cattle / O.J.B. Hubschle, R.D. Ayling, K. Godinho, O. Lukhele, G. Tjipura-Zaire, T.G. Rowan and R.A.J. Nicholas // Research in Veterinary Science. - 2006. - № 81. - P. 304-309.

54. Hubschle, O.J.B. Experimental field trial with an immunostimulat-ing complex (ISCOM) vaccine against Contagious bovine pleuropneumonia / OJ.B. Hubschle, G. Tjipura-Zaire, I. Abusugra, G. Di Francesca, F. Mettler, A. Pi-ni and B. Morein // Journal of Veterinary Medicine (B). - 2003. - № 50. - P. 298-

55. Hudson, J.R. Contagious bovine pleuropneumonia: A comparison of the efficacy of two types of vaccines / J.R. Hudson and A.W. Turner // Australian Veterinary Journal. - 1963. - № 39. - P. 373-385.

56. Josefsen, M.H. Diagnostic PCR: Comparative sensitivity of four probe chemistries / M.H. Josefsen, C. Lofstrom, M.H. Sommer, J. Hoorfar // Mol. Cell Probes.-2009. -№23.-P. 201-203.

57. Karimuribo, E. Factors influencing the effective control of contagious bovine pleuropneumonia in Tanzania / E. Karimuribo, D.M. Kambarage, B.E. Lema, R.R. Kazwala, M.M.A. Mtambo and L.J.M. Kusiluka // Proceedings of the 15th scientific conference of the Tanzania Veterinary Association 1st-3rd December 1997, Arusha. - Tanzania, 1997.

58. Kariuki, D.P. History of contagious Bovine Pleuropneumonia in Kenya / D.P. Kariuki // Bulletin of Epizootic Diseases of Africa. -1971. - Vol. 19. - P. 111-116.

59. Karst, O. Contagious Bovine Pleuropneumonia: Lyophilized T1 vaccine / O. Karst // Bulletin of Epizootic Diseases of Africa. - 1972. - P. 69-76.

60. Kusiluka, L.J.M. Demonstration of Mycoplasma capricolum subsp. capripneumoniae and Mycoplasma mycoides subsp. mycoides, small colony type in outbreaks of caprine pleuropneumonia in Eastern Tanzania / L.J.M. Kusiluka, W.D. Semuguruka, R.R. Kazwala, B. Ojeniy and N.F. Friis // Acta Veterinaria Scandinavica. - 2000. - № 41. - P. 311-319.

61. Kusiluka, L.J.M. Mycoplasmas isolated from the respiratory tract of cattle and goats in Tanzania / L.J.M. Kusiluka, B. Ojeniyi, N.F. Friis, R.R. Kazwala and B. Kokotovic // Acta Veterinaria Scandinavica. - 2000. - № 41. - 299-309.

62. Kusiluka, L.J. Review of successes and failures of contagious bovine pleuropneumonia control strategies in Tanzania / L.J. Kusiluka, F.F. Sudi // Preventive veterinary medicine. - 2003. - № 59. - P. 113-123.

63. Le Goff, C. A competitive ELISA for specific diagnosis of Contagious bovine pleuropneumonia (CBPP) / C. Le Goff and F. Thiaucourt // Veterinary Mi-

crobiology. - 1998. -№ 60. -P. 179-191.

64. Lefevre, P.C. Contagious bovine pleuropneumonia / P.C. Lefevre // OIE Manual of standards for diagnostic tests and vaccines. - Paris, France, 2000. -p. 123-133.

65. Lesnoff, M. A mathematical model of the effects of chronic carriers on the within-herd spread of contagious bovine pleuropneumonia in an African mixed crop-livestock system / M. Lesnoff, G. Laval, P. Bonnet, K. Chalvet-Monfray, R. Lancelot, F. Thiaucourt // Preventive Veterinary Medicine. - 2004. -№62.-P. 101-117.

66. Lesnoff, M. Demographic parameters of a domestic cattle herd in a contagious bovine pleuropneumonia infected area of Ethiopian highlands / M. Lesnoff, M. Diedhiou, G. Laval, P. Bonnet, A. Workalemahu, D. Kifle // Revue Elev. Med. vet. Pays trop. - 2002. - Vol. 55 (2). - P. 139-147.

67. Lesnoff, M. Within-herd spread of contagious bovine pleuropneumonia in Ethiopian highlands / M. Lesnoff, G. Laval, P. Bonnet, S. Abdicho, A. Workalemahu, D. Kifle, A. Peyraud, R. Lancelot, F. Thiaucourt // Preventive veterinary medicine. - 2004. - Vol. 64(1). - P. 27-40.

68. Litamoi, J.K. Evaluation of the xerovac process for the preparation of heat tolerant Contagious Bovine Pleuropneumonia (CBPP) vaccine / J.K. Litamoi, G. Ayelet and M.M. Rweyemamu // Vaccine. - 2005. - № 23. - P. 2573-2579.

69. Li, Y. Strains of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides small colony type isolated in China between 1953 and 1960 show close similarity to strains of the Africa/Australia cluster / Y. Li, J. Xin, Y. Gao, J. Zhang, R.A. Nicholas, Y. Lin //Veterinary journal.-2009.-Vol. 179(1).-P. 137-41.

70. Lwebandiza, T.S. Contagious Bovine Pleuropneumonia in Tanzania / T.S. Lwebandiza // Bulletin of the World Organisation for Animal Health. - 1969. -Vol. 72. P. 71-78.

71. March, J.B Comparison of the virulence of European and African isolates of Mycoplasma mycoides subspecies mycoides small colony type / J.B. March, M. Brodlie // Veterinary record. - 2000. - Vol. 147(1). - P. 20-21.

72. March, J.B. Improved formulation for existing CBPP vaccines: recommendations for change / J.B. March // Vaccine. - 2004. - № 22. - P. 43584364.

73. March, J. B. Rapid detection of contagious bovine pleuropneumonia by a Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC capsular polysaccharide-specific antigen detection latex agglutination test / J. B. March, K. Kerr, B. Lema // Clinical and diagnostic laboratory immunology.-2003.-Vol. 10(2).- P. 233-240

74. Mariner, J.C. A model of contagious bovine pleuropneumonia transmission dynamics in East Africa / J.C. Mariner, J. McDermott, J.A.P. Hees-terbeek, G. Thomson, and S.W. Martin // Preventive Veterinary Medicine. -2006.-№73.-P. 55-74.

75. Marobela-Raborokgwe, C. Comparison of complement fixation test, immunoblotting, indirect ELISA, and competitive ELISA for detecting antibodies to Mycoplasma mycoides subspecies mycoides small colony (SC) in naturally infected cattle from the 1995 outbreak in Botswana / C. Marobela-Raborokgwe, R.A. Nicholas, R.D. Ayling, J.B. Bashiruddin // Onderstepoort journal of veterinary research. - 2003. - № 70. - P. 21-27.

76. Masiga, W.N. A new mode of spread of bovine contagious pleuropneumonia / W.N. Masiga, R.S. Windsor, and W.C.S. Read // Veterinary Record. -1972.-№90.-P. 247-248.

77. Masiga, W.N. Fate of the T1 strain of Mycoplasma mycoides in cattle following vaccination / W.N. Masiga, and G.M. Mugera // Journal of Comparative Pathology. - 1973. -№ 83. - P. 473-478.

78. Masiga, W.N. Manifestation and epidemiology of contagious bovine pleuropneumonia in Africa / W.N. Masiga, J. Domenech and R.S. Windsor // Scientific and Technical Review. - 1996. - №15. - P. 1283-1303.

79. Masiga, W.N. Overview and epidemiology of contagious bovine pleuropneumonia in Africa / W.N. Masiga and J. Domenech // Scientific and Technical Review. - 1995. - № 14. - P. 611-620.

80. Masiga, W.N. Some evidence of an age sustainability to Conta-

gious bovine pleuropneumonia / W.N. Masiga and R.S. Windsor // Research in Veterinary Science. - 1978. -№ 24. - P. 328-333.

81. Masiga, W.N. The efficacy of T1 strain broth culture vaccine against Contagious bovine pleuropneumonia; the effect of revaccination of cattle after 6 months and 1 year after primary vaccination and prolonged exposure / W.N. Masiga and R.S. Windsor // Bulletin of Epizootic Diseases of Africa. - 1974. -Vol. 12.-P. 27-31.

82. Matua-Alumira, R.W. The prevalence of Contagious Bovine Pleuropneumonia (CBPP) in cattle under different production systems in Kajiado district,

Kenya / R.W. Matua-Alumira, Z. Ng'ang'a, H. Kiara, C. Matere, F. Mbithi, M.

til

Mwirigi, C. Marobella-Raborogwe and S. Sidiadie // Proceedings of the 11 Sym-

th *

posium on Veterinary Epidemiology and Economics 6-8 June 2006, Cairns. -Canada, 2006.

83. Mbulu, R. Contagious Bovine Pleuropneumonia (CBPP) caused by vaccine strain Tl/44 of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC / R. Mbulu, G. Tjipura-Zaire, R. Lelli, J. Frey, P. Pilo, E.M. Vilei, F. Mettler, R.A.J. Nicholas and O.J.B. Huebschle // Veterinary Microbiology. - 2004. - № 98. - P. 229-234.

84. Mendes, A.M. Medicina veterinaria em Angola. Contributes historicos torn (1) / A.M. Mendes // Portugalia.: Alinha seguinte Lda, 2006. - 388 p.

85. Miles, K. Identification and differentiation of European and African/Australian strains of Mycoplasma mycoides subspecies mycoides small-colony type using polymerase chain reaction analysis / K. Miles, C.P. Churchward, L. McAuliffe, R.D. Ayling, R.A. Nicholas // Journal Veterinary Diagnostic Investigation. -2006.-№18.-P. 168-171.

86. Msami, H.M. Contagious bovine pleuropneumonia in Tanzania: current status / H.M. Msami, T. Ponella-Mlelwa, B.J. Mtei, and A.M. Kapaga // Tropical Animal Health and Production. - 2001. - № 33. - P. 21-28.

87. Musisi, F.L. The threat of contagious bovine pleuropneumonia and challenges for its control in the SADC region / F. L. Musisi, B. Dungu, R. Thwala, M. E. Mogajane, B. J. Mtei // FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative Group on

Contagious Bovine Pleuropneumonia, Third Meeting, 12-14 November Rome, Italy.-Rome, 2003.-P. 61-75.

88. Muuka, G. Comparison of complement fixation test, competitive ELISA and LppQ ELISA with post-mortem findings in the diagnosis of contagious bovine pleuropneumonia (CBPP) / G. Muuka, B.M. Hang'ombe, K.S. Nalubamba, S. Kabilika, L. Mwambazi, J.B. Muma // Tropical Animal Health and Production. -2011.-Vol. 43(5).-P. 1057-1062.

89. National Department of Agriculture Directorate Animal Health: Contagious bovine pleuropneumonia (lungsickness) /Animal diseases. - 1996. - № 5. -6 p.

90. Nawathe, D.R. Resurgence of contagious bovine pleuropneumonia in Nigeria / Nawathe D.R. // Revue scientifique et technique. - 1992. - Vol. 11(3). -P. 799-804.

91. Newton, L.G. Contagious bovine pleuropneumonia in Australia: some historic highlights from entry to eradication / L.G. Newton // Australian Veterinary Journal. - 1992. - №69. - P. 306-317.

92. Niang, M. Effect of antibiotic therapy on the pathogenesis of CBPP: Experimental transmission of the disease by contact from infected animals treated with Oxytetracycline, in CBPP control / M. Niang, A. Sery, O. Cisse, G. Diallo, M. Doucoure, M. Kone, C.F. Simbe, W. Amanfii and F. Thiaucourt // Proceedings of the fourth FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative Group meeting on CBPP in Africa, 6th-8th November 2006. - Rome, 2007.

93. Niang, M. Experimental studies on the effect of long-acting Oxytetracycline treatment in the development of sequestra in contagious bovine pleuropneumonia infected cattle / M. Niang, A. Sery, M. Doucoure, M. Kone, M. N'Diaye, W. Amanfii and F. Thiaucourt // Journal of Veterinary Medicine and Animal Health. - 2010. - Vol. 2(4). - P. 35-45.

94. Niang, M. Pulmonary and serum antibody responses elicited in zebu cattle experimentally infected with Mycoplasma mycoides subsp mycoides SC by contact exposure / M. Niang, M. Diallo, O. Cisse, M. Kone, M. Doucoure, J.A.

Roth, V. Balcer-Rodrigues and L. Dedieu // Veterinary Research. - 2006. - № 37. -P. 733-744.

95. Niang, M. Transmission expérimentale de la péripneumonie contagieuse bovine par contact chez des zébus : étude des aspects cliniques et pathologiques de la maladie / M. Niang, M. Diallo, O. Cissé, M. Koné, M. Doucouré, D. Le Grand, V. Balcer, L. Dedieu // Revue Élev. Méd. vét. Pays trop. -2004. - Vol. 57 (1-2). - P. 7-14.

96. Niang, M. Treatment of the CBPP with oxytetracycline long action and experimental transmission of the disease from treated cattle / M. Niang, A. Sery, O. Cissé, M. Doucouré, M. Koné, C.F. Simbé, M. N'Diaye, W. Amanfu, F. Thiaucourt // Bulletin of Animal Health and Production in Africa. - 2010. - Vol. 58, No. 4.-P. 339-347.

97. Nicholas, R.A.J. A comparison of serological tests and gross lung pathology for detecting contagious bovine pleuropneumonia in two groups of Italian cattle / RAJ. Nicholas, F.G. Santini, N.M.A. Clark, P. Palmer, P. De Santis and J.B. Bashiruddin // Veterinaiy Record. - 1996. - № 139. - P. 89-93.

98. Nicholas, R. Contagious bovine pleuropneumonia: a review of recent developments / R. Nicholas, J. Bashiruddin, R. Ayling and R. Miles // Veterinary Bulletin. - 2000. - № 70. - P. 827-838.

99. Nicholas, R.A. Contagious bovine pleuropneumonia in Europe / R.A. Nicholas, N. Palmer // State Veterinary journal. - 1994. - № 4. P. 14-16.

100. Nicolet, J. Animal mycoplasmoses: a general introduction / J. Nicolet // Scientific and Technical Review. - 1996. - №15. - P. 1233-1240.

101. Niwael J.M. Contagious Bovine Pleuropneumonia (CBPP) in the Maasai ecosystem of south-western Kenya: Evaluation of seroprevalence, risk factors and vaccine safety and efficacy: A thesis submitted for the degree of Doctor of Philosophy / J.M. Niwael; College of Medicine and Veterinary Medicine. - The University of Edinburgh, 2009. - 186 p.

102. Nkando, I. Efficacy of two vaccine formulations against contagious bovine pleuropneumonia (CBPP) in Kenyan indigenous cattle / I. Nkando, J.

Ndinda, J. Kuria, J. Naessens, F. Mbithi, C. Schnier, M. Gicheru, D. McKeever, H. Wesonga // Research in veterinary science [Epub ahead of print], - Sep 29, 2011.

103. OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for Terrestrial animals / Chapters LI.4/5 and 2.4.9. - Paris, 2010.

104. OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for Terrestrial animals, 6th Ed. / Chapter 2.4.9. Contagious bovine pleuropneumonia. - 2008. - pg. 712.

105. Osiyemi, T.I. The eradication of contagious bovine pleuropneumonia in Nigeria: prospects and problems / T.I. Osiyemi // Bulletin of animal health and production in Africa. - 1981. - Vol. 29. - P. 95-97.

106. Pearson, C.W. Immunoglobulins of the cattle affected by Contagious Bovine Pleuropneumonia / C.W. Pearson and L.C. Lloyd // Bulletin of Epizootic Diseases of Africa. - 1972.-Vol. 19.-P. 117-122.

107. Pilo, P. Molecular mechanisms of pathogenicity of Mycoplasma my-coides subsp. mycoides SC / P. Pilo, J. Frey, and E.M. Vilei // Veterinary Journal. - 2007. - № 174.-P. 513-521.

108. Provost, A. Contagious bovine pleuropneumonia / A. Provost, P. Perreau, A. Beard, C. Le Goff, J.L. Martel and G.S. Cottew // Scientific and Technical Review. - 1987. - № 6. - P. 625-679.

109. Provost, A. Strategies for prevention and eradication of contagious bovine pleuropneumonia with or without vaccination / A. Provost // Revue scientifique et technique. - 1996. -№ 15. - P. 1355-1371.

110. Regalia, J. Manifestation and epidemiology of contagious bovine pleuropneumonia in Europe / J. Regalia, V. Caporale, A. Giovannini, F.G. Santini, J.L. Mantel and A.P. Goncalves // Scientific and Technical Review. - 1996. - № 15.-P. 1309-1329.

111. Revell, S.G. Local reaction following CBPP vaccination in Zambia / S.G. Revell // Tropical Animal Health and Production. - 1973. - № 5. - P. 246252.

112. Rurangirwa, F.R. Uses of serology for the diagnosis of contagious bovine pleuropneumonia / F.R. Rurangirwa // Revue scientifique et technique. -

1995.-Vol 14(3).-Р. 603-609.

113. Rweyemamu, M.M. Contagious bovine pleuropneumonia vaccines: the need for improvements / M.M. Rweyemamu, J. Litamoi, V. Palya and D. Sylla // Scientific and Technical Review. -1995. - № 14. - P. 593-601.

114. Rweyemamu, M.M. Global impact of infections with organisms of the «Mycoplasma Mycoides cluster» in ruminants / M.M. Rweyemamu and A. Ben-kirane // In: Frey, J and Sarris, K. (ed.) EUR 16934-COST 826- Mycoplasmas of ruminants: pathogenicity, diagnostics, epidemiology and molecular genetics : Office for official Publications of the European communities. - Luxembourg,

1996.-P. 1-11.

115. Scanziani, E. Histological and immunohistochemical findings in thoracic lymph nodes of cattle with contagious bovine pleuropneumonia / E. Scanziani, S. Paltrinieri, M. Boldini, V. Grieco, C. Monaci, A.M. Giusti, G. Mandelli // Journal of Comparative pathology. - 1997. - № 117. - P. 127-136.

116. Schnee, C. Assessment of a novel multiplex real-time PCR assay for the detection of the CBPP agent Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC through experimental infection in cattle / C. Schnee, M. Heller, J. Jores, H. To-maso and H. Neubauer // BMC Veterinary Research. - 2011. - Режим доступа: http://www.biomedcentral.eom/l 746-6148/7/47.

117. Scudamore, J.M. Observation on the epidemiology of contagious bovine pleuropneumonia: Mycoplasma mycoides in urine / J.M. Scudamore // Research in Veterinary Science. - 1976. - № 20. - P. 330-333.

118. Simao, D.L. Strategie de Controle de la PPCB en Angola / D.L. Simao // FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative Group on Contagious Bovine Pleuropneumonia, Third Meeting, 12-14 November Rome, Italy. - Rome, 2003. - P. 165171.

119. Sori, T. Contagious Bovine pleuropneumonia (CBPP) post vaccinal complication in Ethiopia / T. Sori // Journal of Applied Research in Veterinary Medicine. - 2005. - Vol. 3(4). - P. 344-350.

120. Srivastava, N.C. Isolation of Mycoplasma mycoides small colony

type from contagious caprine pleuropneumonia in India / N.C. Srivastava, F. Thi-aucourt, V.P. Singh, J. Sunder and V.P. Singh // Veterinary Record. - 2000. - № 147.-P. 520-521.

121. Stärk, K.D. The epidemiology of contagious lung disease in Switzerland / K.D. Stärk, A. Vicari, A. Tontis, J. Nicolet // Schweiz. Arch. Tierheilkd. -1995.-№ 137.-P. 92-100.

122. Stone, S.S. Comparison of bovine serum and colostral antibody: effect of colostral antibody on vaccination of calves for contagious bovine pleuropneumonia / S. S. Stone // Immunology. - 1970. - № 18. - P. 369-377.

123. Stone, S.S. Transplacental transmission of MmmSC in cattle / S.S. Stone, W.N. Masiga and W.C.S. Read // Research in Veterinary Science. - 1969. -№ 10.-P. 368-372.

124. Tambi, N.E. An estimation of economic impact of contagious bovine pleuropneumonia (CBPP) in Africa / N.E. Tambi, W.O. Maina and C. Ndi // Scientific and Technical Review. - 2006. - № 25. - P. 999-1011.

125. Thiaucourt, F. Contagious bovine pleuropneumonia: A reassessment of the efficacy of vaccines used in Africa / F. Thiaucourt, A. Yaya, H. Wesonga, O.J.B. Huebschle, J J. Tulasne and A. Provost // Annals of the New York Academy of Science. - 2000. - № 916. - P. 71-80.

126. Thiaucourt, F. Contagious bovine pleuropneumonia vaccines and control strategies: recent data / F. Thiaucourt, Y. Aboubakar, H. Wesonga, L. Manso-Silvan, A. Blanchard // Dev. Biol. (Basel). - 2004. - № 119. - P. 99-111.

127. Thiaucourt, F. Contagious bovine pleuropneumonia vaccines, historic highlights, present situation and hopes / F. Thiaucourt, L. Dedieu, J.C. Maillard, P. Bonnet, M. Lesnoff, G. Laval, A. Provost // Dev. Biol. (Basel). - 2003. - № 114. -P. 147-160.

128. Thiaucourt, F. Vaccination against contagious bovine pleuropneumonia and the use of molecular tools in epidemiology / F. Thiaucourt, S. Lorenzon, A. David, J.J. Tulasne, J. Domenech // Annals of the New York Academy of Sciences. -1998.-№849.-P. 146-151.

129. Thomson, G. Contagious bovine pleuropneumonia and poverty: A strategy for addressing the effects in sub-Sahara Africa / G. Thomson // DFID Animal Health Programme, Centre for Tropical Veterinary Medicine, University of Edinburgh. - UK, 2005.

130. Trichard, C.J.V. An outbreak of contagious bovine pleuropneumonia in the Owambo mangetti area of south west Africa/Namibia: microbiological, immuno-fluorescent, pathological and serological findings / C.J.V. Trichard, P.A. Basson, J.J. Van Der Lugt, Elsie P. Jacobsz // Onderstepoort Journal of veterinary Research. -1989.-Vol. 56.-P. 277-284.

131. Twinamasiko, E. Evaluation of the role of antibiotics and antibacterial agents in the control of contagious bovine pleuropneumonia / E. Twinamasiko, N. Tailor, F. Mbuza, S. Senyonga and A. Mcloed // Uganda Journal of Agricultural Sciences. - 2004. - № 9. - P. 458-465.

132. Vilei, E.M. Detection of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides SC in bronchoalveolar lavage fluids of cows based on a TaqMan real-time PCR discriminating wild type strains from an IppQ-mutant vaccine strain used for DIVA-strategies / E.M. Vilei, J. Frey // Journal Microbiology Methods. - 2010. - № 81. -P. 211-218.

133. Waite, E.M. Effect of HEPES buffer systems upon the pH, growth and survival of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides small colony (MmmSC) vaccine cultures / E.M. Waite and J.B. March // FEMS Microbiology Letters. - 2001. - № 201. - P. 291-294.

134. Wanyoike, S.W. Assessment and mapping of contagious bovine pleuropneumonia in Kenya: Past and Present / S.W. Wanyoike // Masters of Science in Tropical Veterinary Epidemiology / Freie Universität Berlin, Germany and Addis Ababa University, Ethiopia, 1999.

135. Wanyoike-Kairu, S.W. The use of the fied complement fixation test in the diagnosis and control of contagious bovine pleuropneumonia-the Kenyan experience - successes and failures / S.W. Wanyoike-Kairu, A.K. Bengat and W. Lung'aho // Proceeding of the third FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative

Group meeting on CBPP in Africa, 12th-14thNovember.-Rome, 2003.

136. Weisnburg, W.G. A phylogenetic analysis of the mycoplasmas: Basis for their classification / W.G. Weisnburg, J.G. Tully, D.L. Rose, J.P. Pet-zel, H. Oyaisu, D. Yang, L. Mandelco, J. Sechrest, T.G. Lawrence and J.E.A. Van Etten // Journal of Bacteriology. - 1989. - № 171. - P. 6455-6467.

137. Wesonga, H. CBPP vaccine strain T1 44: Possible reversion to virulence / H. Wesonga, M.L. Silvan and F. Thiaucourt // Proceeding of the FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative Group on CBPP third meeting, 12th -14th November 2003. - Rome, 2004.

138. Wesonga, H.O. Experimental studies on the efficacy of Tlsr and Tl/44 vaccine strains of Mycoplasma mycoides subspecies mycoides (small colony) against a field isolate causing contagious bovine pleuropneumonia in Kenya - effect of a revaccination / H.O. Wesonga, F. Thiaucourt // Revue d'élevage et de médecine vétérinaire des pays tropicaux. - 2000. - Vol. 4. - 313-318.

139. Westberg, J. The genome sequence of Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides SC type strain PG1, the causative agent of contagious bovine Pleuropneumonia (CBPP) / J. Westberg, A. Persson, A. Holmberg, A. Goesmann, J. Lundeberg, K.E. Johansson, B. Pettersson, and M. Uhlen // Genome research. -2004. -№ 14.-P. 221-227.

140. White, G. Contagious bovine pleuropneumonia and vaccine strain Tl/44 / G. White // Veterinary record. - 2002. - Vol. 150(25). - P. 791-792.

141. Whittem, J.H. The eradication of bovine pleuropneumonia: a personal perspective / J.H. Whittem // Australian veterinary journal. - 2001. - Vol. 79(5). -P. 365-366.

142. Windsor, R.S. An investigation into the viability of broth cultures of the T1 strain of Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides / R.S. Windsor // Research in Veterinary Science. - 1978. - № 24. - P. 109-112.

143. Windsor, R.S. Contagious bovine pleuropneumonia. The costs of control in Central/southern Africa / R.S. Windsor, A. Wood //Annals of the New York Academy of Sciences. - 1998. - № 849. - P. 299-306.

144. Windsor, R.S. Investigations into the epidemiology of CBPP: the persistence of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides in placenta, urine and hay / R.S. Windsor and W.N. Masiga // Bulletin of Epizootic Diseases of Africa. - 1977. -№25.-P. 357-370.

145. Windsor, R.S. Investigation into the role of carrier animals in the spread of contagious bovine pleuropneumonia / R.S. Windsor and W.N. Masiga // Research in Veterinary Science. - 1977. - № 23. - P. 224-229.

146. Windsor, R.S. The effect of the route of administration on the immunity produced by T1 strain of Mycoplasma mycoides subsp. Mycoides / R.S. Windsor and W.N. Masiga // Revue d'élevage et de médecine vétérinaire des pays tropicaux. - 1977. - Vol. 30. - P. 259-267.

147. Windsor, R.S. The eradication of contagious bovine pleuropneumonia from south western Africa. A plan for action / R.S. Windsor // Annals of the New York Academy of Science. - 2000. - № 916. P. 326-332.

148. Xin, J. A history of the prevalence and control of contagious bovine pleuropneumonia in China. / J. Xin, Y. Li, R.A. Nicholas, C. Chen, Y. Liu, M.J. Zhang, H. Dong // Veterinary journal [Epub ahead of print]. - Mar 23, 2011.

149. Yaya, A. Essai comparatif d'efficacité des deux souches vaccinales Tl/44 et Tlsr contre la péripneumonie contagieuse bovine / A. Yaya, R. Golsia, B. Hamadou, A. Amaro, F. Thiaucourt // Revue d'élevage et de médecine vétérinaire des pays tropicaux. - 1999. - Vol. 52. - P. 171-179.

150. Yaya, A. Use of long acting tetracycline for CBPP: Preliminary results / A. Yaya, H. Wesonga, and F. Thiaucourt // Proceeding of the third FAO-OIE-AU/IBAR-IAEA Consultative Group meeting on CBPP in Africa, 12th-14th November 2003.-Rome, 2004.

151. Zessin, K.H. Analysis of baseline surveillance data on contagious bovine pleuropneumonia in the southern Sudan / K.H. Zessin, M. Baumann, C.W. Schwabe and M. Thornburn // Preventive Veterinary Medicine. - 1985. - № 4. - P. 371-389.