Метаболизм скелетных мышц и возможности его регуляции при травмах и удлинении конечности методом Илизарова тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.04, доктор биологических наук Стогов, Максим Валерьевич
Стогов, Максим Валерьевич
доктор биологических наук
2009
- Специальность ВАК РФ03.00.04
- Количество страниц 233
Оглавление диссертации доктор биологических наук Стогов, Максим Валерьевич
ВВЕДЕНИЕ.
1. БИОХИМИЯ МЫШЦ: АСПЕКТЫ ОНТОГЕНЕТИЧЕСКОГО СТАНОВЛЕНИЯ, ФУНКЦИОНАЛЬНАЯ БИОХИМИЯ, СПОСОБЫ РЕГУЛЯЦИИ ОБМЕНА В ТКАНИ (обзор литературы).
1.1. Метаболизм скелетных мышц в онтогенезе и его типологические особенности.
1.2. Функциональный метаболизм скелетных мышц.
1.3. Метаболизм скелетных мышц при посттравматической регенерации и в условиях удлинения конечности.
1.4. Способы регуляции мышечного метаболизма.
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1. Материалы и структура исследования.
2.2. Методы исследования.
3. МЕТАБОЛИЗМ СКЕЛЕТНЫХ МЫШЦ СОБАК В НОРМЕ, В УСЛОВИЯХ ОПЕРАТИВНОГО УДЛИНЕНИЯ ГОЛЕНИ И ПРИ СКЕЛЕТНОЙ ТРАВМЕ.
3.1. Некоторые типологические особенности метаболизма скелетных мышц собак в ходе онтогенеза.
3.2. Метаболизм скелетных мышц собак в условиях оперативного удлинения костей голени методом Илизарова.
3.3. Метаболизм скелетных мышц собак при моделировании оскольчатого перелома костей голени с последующим лечением аппаратом Илизарова.
4. СПОСОБЫ КОРРЕКЦИИ МЫШЕЧНОГО МЕТАБОЛИЗМА В РАЗЛИЧНЫХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ УСЛОВИЯХ.
4.1. Регуляция мышечного метаболизма белками костной ткани со свойствами инсулинподобных факторов роста.
4.2. Влияние перорального потребления некоторых аминокислот на уровень энергетических субстратов в скелетных мышцах мышей. 145 5. ЛАБОРАТОРНАЯ ОЦЕНКА СОСТОЯНИЯ СКЕЛЕТНЫХ МЫШЦ
В ТРАВМАТОЛОГИИ И ОРТОПЕДИИ.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Биохимия», 03.00.04 шифр ВАК
Особенности метаболизма и кинетики сократительных белков скелетных мышц голени в условиях репаративной регенерации костной ткани2012 год, кандидат биологических наук Гайдышев, Альберт Игоревич
Биохимическая оценка общего адаптационного ответа организма и скелетных мышц на удлинение конечности по Илизарову: Экспериментальное исследование2003 год, кандидат биологических наук Стогов, Максим Валерьевич
Особенности метаболических изменений при скелетной травме в условиях применения метода чрескостного остеосинтеза по Илизарову2012 год, кандидат биологических наук Ткачук, Елена Анатольевна
Особенности метаболических реакций организма в условиях удлинения конечностей по Илизарову2014 год, кандидат наук Тушина, Наталья Владимировна
Морфофункциональный анализ передней большеберцовой мышцы при различных условиях дистракционного остеосинтеза голени: Экспериментально-морфологическое исследование2005 год, кандидат биологических наук Филимонова, Галина Николаевна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Метаболизм скелетных мышц и возможности его регуляции при травмах и удлинении конечности методом Илизарова»
Актуальность исследования
Известно, что скелетные мышцы играют ключевую роль в создании оптимальных биомеханических условий, нормальной трофики и функции травмированной и удлиняемой конечности [101]. При этом репаративные возможности мышечной ткани отличаются от возможности к репаративному восстановлению костной ткани, в связи с чем, зачастую, именно функциональное состояние скелетных мышц является лимитирующим фактором при лечении и реабилитации больных ортопедотравматологического профиля [111, 112, 114, 116].
Функциональные возможности скелетных мышц зависят от их структурно-метаболического профиля, определяемого качественным и количественным составом сократительных белков, а также особенностями тканевого обмена, и, прежде всего, типом энергообеспечения [44, 365]. Несмотря на то, что метаболические процессы в скелетных мышцах находятся под жестким контролем системных, локальных и генетических факторов, мышцы демонстрируют значительную пластичность и лабильность структурно-метаболического профиля в ответ на изменения их функциональной нагрузки [189, 321, 336]. Материальной основой этому является значительный генетический полиморфизм как сократительных, так и регуляторных белков и ферментов, а также высокая взаимозаменяемость путей энергетического обмена [178, 337]. В связи с этим восстановление функциональной активности мышц в посттравматический и реабилитационный период зависит от интенсивности восстановления ее структурно-метаболических характеристик и должно обеспечиваться достаточным количеством пластических и энергетических ресурсов в ткани.
Если многочисленные данные физиологических, морфологических и гистохимических исследований дают достаточное представление о функциональных и структурных изменениях в скелетных мышцах при ее репаративнои регенерации при скелетных травмах и в условиях оперативного удлинения [22, 48, 62, 79, 81, 92, 93, 94, 103, 106, 118, 386, 394], то результатов биохимических исследований, позволяющих объективно оценить состояние метаболизма скелетных мышц, явно недостаточно. Особенно это касается исследований при оперативном удлинении конечностей. Практически не изучены также и изменения метаболизма в конечности контралатеральной травмированной или оперированной, хотя функциональная нагрузка на нее в посттравматический и в послеоперационный период? значительно возрастает. Кроме того, недостаточно разработаны критерии оценки и , схемы лабораторной диагностики и мониторинга за состоянием скелетных мышц у пациентов ортопедотравматологического профиля. <
Поиск и разработка эффективных средств для коррекции метаболических нарушений в скелетных мышцах имеет несомненную актуальность, что подтверждают многочисленные клинико-экспериментальные исследования [49, 50, 74, 146, 228, 244, 258, 263, 284, 291, 373]. Однако, имеющийся недостаток фактического материала по биохимии мышц, при ее регенерации, не позволяет сделать вывод о целесообразности проведения коррекции метаболических изменений и необходимости создания специальных препаратов, направленных на восстановление скелетных мышц при лечении патологии опорно-двигательного аппарата. В практике травматологии и ортопедии эффективность таких разрабатываемых средств, на наш взгляд, должна быть основана на возможности одновременного влияния на репарацию костной и мышечной ткани, что должно обеспечивать синхронное восстановление целостности кости и функциональной активности скелетных мышц, составляющих единый анатомо-функциональный блок. В этом плане наиболее доступными и эффективными являются методы пищевой и фармакологической регуляции. Кроме того, эти способы наиболее перспективны в плане их дальнейшего внедрения с использованием наноматериалов и нанотехнологий.
Цель исследования
Сформировать системное представление о метаболизме скелетных мышц и оценить возможности его регуляции при скелетной травме и оперативном удлинении конечности в эксперименте.
Задачи исследования
1. Описать возрастные изменения метаболизма скелетных мышц, характеризующие становление их метаболического профиля.
2. Изучить метаболизм скелетных мышц в условиях оперативного удлинения костей голени по методу Илизарова.
3. Разработать концепцию поведения скелетных мышц при удлинении конечности по Илизарову.
4. Выявить особенности обмена мышц при скелетной травме в эксперименте.
5. Провести сравнительный анализ биохимических изменений в скелетных мышцах при удлинении конечности и после скелетной травмы.
6. Выявить нарушения отдельных путей метаболизма, происходящие в скелетных мышцах в посттравматический период и при удлинении костей голени, и разработать критерии для их коррекции.
7. Предложить способы коррекции метаболизма мышечной ткани в экспериментальных условиях, моделирующих скелетную травму.
8. Предложить наиболее доступные и информативные лабораторные тесты, характеризующие функциональное состояние скелетных мышц, пригодные для использования их в лабораторном мониторинге у пациентов ортопедотравматологического профиля.
Основные положения, выносимые на защиту
1. При удлинении конечности в скелетных мышцах удлиняемого сегмента происходит активация энергетических путей обмена (в том числе и «резервных»), межорганных циклов (Кори и аланиновый), реакций перекисного окисления, что приводит к снижению уровня белка в ткани и изменению кинетических характеристик сократительных белков. Подобные биохимические сдвиги, но только более низкой интенсивности, происходят и в мышцах контралатеральной конечности. Отмеченные изменения носят обратимый характер, восстановление метаболического профиля начинается с момента снятия дистракционных нагрузок.
2. Метаболические изменения в мышцах после скелетной травмы сопровождаются высокой интенсивностью белкового обмена, реакций перекисного окисления и антиоксидантного звена на фоне компенсированных энергетических затрат. Восстановление энергетического метаболизма скелетных мышц при ранних сроках снятия аппарата происходит в течение трех месяцев после лечения.
3. Введение низкомолекулярных белковых факторов в область перелома не только стимулирует процессы репаративной регенерации кости, но и вызывает анаболический эффект в скелетных мышцах, способствуя накоплению гликогена и белка в ткани за счет пролонгированного антипротеолитического эффекта. Пероральное применение смеси аминокислот предупреждает потери креатина и креатинфосфата в скелетных мышцах и является фактором, регулирующим межорганный обмен энергетических субстратов.
4. Определение активности креатинкиназы в сыворотке крови является диагностически ценным и доступным критерием оценки поражения скелетных мышц при травмах и оперативном удлинении конечности.
Объекты исследования»
Работа выполнена на базе клинико-экспериментального лабораторного отдела ФГУ «Российского научного центра «Восстановительная травматология и ортопедия» им. акад. Г.А. Илизарова Росмедтехнологий». Объектами исследований являлись собаки, крысы и лабораторные мыши, использовался клинический материал. Материалом исследования служили: мышечная ткань, печень, сыворотка крови. В ходе выполнения данной работы применялись биохимические, экспериментальные и статистические методы. Проведение экспериментальных и клинических исследований разрешено комитетом по этике при ФЕУ «РНЩ «В10»> им:. акад;:,.1Г."А\ Илизарова. Росмедтехнологий»: Содержание животных, оперативные вмешательства, и эвтаназию осуществляли в соответствии с требованиями Европейской конвенции по защите экспериментальных животных, в соответствии с «Правилами^ проведения ., работ с; использованием экспериментальных животных» (приложение к приказу Минздрава СССР ог 12:0&1977 №' 755)? и: требованиями; инструкции №12/31Зь^ Министерства-здравоохранения« РСФСРС «Санитарные .правила по устройству,, оборудованию; и содержанию экспериментальных биологических клиник» от 06.01.1973 г. . • .
Научная>новизна?исследованияу
Впервые комплексно изучены изменения процессов энергетического, белкового обмена в скелетных мышцах при оперативном удлинении; костей голени по Илизаррву. Впервые . изучено? со стояние системы перекиси ого окисления^ и антиоксидантной защиты в мышцах- удлиняемого сегмента. Разработана' концепция поведения скелетных мышц в ответ на: удлинение: конечности. Обнаружено явление активации межорганных обменных путей в ходе оперативного удлинения. Обнаружен феномен снижения* количества: фракций саркоплазматических белков в' скелетных мышцах удлиняемой конечности. Впервые изучены кинетические характеристики миозина; выделенного из скелетных мышц, подверженных удлинению. Обнаружен эффект активатщи «резервных» метаболических путей в мышцах в ответ на, возрастающие дистракционные нагрузки. Продемонстрирована высокая лабильность обменных процессов скелетных мышц в ответ на дистракцию и снятие дистракционных нагрузок. Впервые показано, что в мышцах контралатеральной конечности происходят метаболические изменения: той же, что и в удлиняемой конечности направленности.
Впервые обнаружено^, что метаболические изменения; в« скелетных мышцах после перелома костей голени в условиях стабильной фиксации аппаратом Илизарова происходят на фоне компенсированных энергетических затрат. Впервые изучены кинетические свойства миозина из скелетных мышц голени после лечения оскольчатого перелома костей голени методом Илизарова. Впервые изучены метаболические особенности в скелетных мышцах голени в зависимости от сроков лечения оскольчатых переломов костей голени. Впервые изучены метаболические изменения, происходящие в скелетных мышцах контралатеральной, не травмированной конечности. Показано, что для процесса регенерации, при оперативном удлинении конечности, скелетная мышца в основном использует внеклеточные пластические и энергетические источники, при репаративной регенерации в посттравматический период - внутриклеточные.
Впервые продемонстрированы анаболические свойства низкомолекулярных белковых факторов, выделенных из костной ткани, оказываемые на скелетную мышцу при ее посттравматической регенерации. Обнаружена способность смеси аминокислот (лейцин, изолейцин, аргинин и метионин) предупреждать потерю и стимулировать синтез креатина в скелетных мышцах, регулировать межорганный обмен гликогена. Обнаружены гепатотропные свойства данной смеси.
Практическая значимость исследования, область внедрения
Полученные данные о существенных изменениях метаболических процессов в мышечной ткани дают обоснование для научного планирования мероприятий по предупреждению нарушений и восстановлению функциональных характеристик скелетных мышц в ходе лечения и в периоде реабилитации пациентов ортопедотравматологического профиля.
Полученные результаты дают теоретическое обоснование для разработки и внедрения фармакологических препаратов и биологически активных добавок на основе аминокислот и белков костной ткани для стимуляции репаративной регенерации костной и мышечной ткани.
Оценена информативность ряда биохимических показателей и предложены наиболее доступные тесты для лабораторной оценки состояния скелетных мышц, что может быть использовано в практической травматологии и ортопедии: в качестве дополнительного критерия; оценки тяжести скелетной травмы,; а также для мониторинга! состояния пациентов ортопедотравматологического профиля в период лечения и реабилитации;:
По результатам работы в клинико-диагностическую лабораторию Центра внедрены методы исследования, характеризующие состояние скелетных мышц при дистракционном остеосинтезе. Материалы работы включены в программу кафедры травматологии и ортопедии ФГЖ и 11ПС ГОУ, ВИО ТюмГМА, используются в курсе: лекций, по биохимий, для студентов факультета естественных , наук Курганского государственного университета. Получены три патента РФ на изобретение.
Апробация работы
Материалы диссертационного исследования доложены: на научно-практической конференции с: международным участием «Новые технологии в медицине» (Курган, 2000); на региональной: конференции биохимиков Урала,, Поволжья и Западной Сибири «Актуальные проблемы теоретической и прикладной биохимии» (Ижевск, 2001); на международной научно-практической: конференции «Медицина в: XXI веке: эстафета поколений» (Курган, . 2001); на IV всероссийской; конференции «Актуальные вопросы применения гипербарической: оксигенации в хирургии, травматологии и ортопедии» (Курган,; 2002); на IV Зауральском фестивале научно-исследовательского, . технического и прикладного - творчества молодежи «Новые горизонты-2002» (КГСХА, 2002); на VI международном симпозиуме «Биологически активные добавки к пище и проблемы оптимизации питания» (Сочи,. 2002);' на всероссийской конференции «35 лет гипербарической оксигенации: итоги, проблемы, перспективы» (Москва, 2003); на II Всероссийском симпозиуме «Клинические . и фундаментальные аспекты тканевой терапии» (Самара, 2004); на международной научно-практической конференции «Морфофункциональные аспекты; регенерации и адаптационной дифференцировки. структурных компонентов опорно-двигательного аппарата в условиях механических воздействий» (Курган,
2004); на I и II съездах травматологов и ортопедов Уральского федерального округа (Екатеринбург, 2005; Курган, 2008); на всероссийской научно-практической конференции «Молодые ученые: новые идеи и открытия» (Курган, 2006); на международном конгрессе по наружной фиксации (Каир, 2007); на всероссийской научно-практической конференции «Клеточные и нанотехнологии в биологии и медицине» (Курган, 2007); на юбилейной конференции посвященной 10-летию Южно-Уральского научного центра РАМН (Челябинск, 2008); на V международной конференции АСАМИ (Санкт-Петербург, 2008); на всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Современные технологии в хирургии позвоночника и периферических нервов» (Курган, 2008); на областном научном обществе ортопедов и травматологов (декабрь 2002; декабрь 2005, апрель 2007, ноябрь 2007).
Публикации
По теме диссертации опубликовано 50 печатных работ, в том числе 2 главы в коллективной монографии. Из печатных работ 12 опубликовано в изданиях, рекомендуемых ВАКом для публикации результатов докторских диссертаций.
Объем и структура работы
Работа изложена на 233 страницах машинописного текста, состоит из введения, 5 глав, заключения, практических рекомендаций, выводов, списка литературы, 65 таблиц, 57 рисунков, трех схем. Библиографический указатель включает 411 источников: из них 120 - отечественные, 391 — зарубежные. Диссертационное исследование выполнено по плану НИР ФГУ «Российский научный центр «Восстановительная травматология и ортопедия» им. акад. Г.А. Илизарова Росмедтехнологий».
Похожие диссертационные работы по специальности «Биохимия», 03.00.04 шифр ВАК
Биологические и хирургические аспекты стимуляции остеогенеза (экспериментальное исследование)2003 год, доктор медицинских наук Кочетков, Юрий Степанович
Чрескостный остеосинтез аппаратом Илизарова в системе лечения больных с множественными переломами бедра и голени2007 год, доктор медицинских наук Карасев, Анатолий Григорьевич
Биохимические изменения в тканях суставов при дегенеративно-дистрофических заболеваниях и способы их направленной биологической коррекции2003 год, доктор биологических наук Лунева, Светлана Николаевна
Структурно-функциональные аспекты в обосновании оперативного удлинения нижних конечностей2007 год, доктор биологических наук Менщикова, Татьяна Ивановна
Оперативное удлинение конечностей у пациентов с низким и субъективно низким ростом методом управляемого чрескостного остеосинтеза2008 год, доктор медицинских наук Новиков, Константин Игоревич
Заключение диссертации по теме «Биохимия», Стогов, Максим Валерьевич
выводы
1. Наибольшие изменения метаболизма скелетных мышц собак в ходе постнатального развития происходят в системе энергообеспечения ткани. Преобладающая аэробная направленность процессов энергообмена в икроножной мышце с возрастом снижается интенсивнее, чем в передней болынеберцовой мышце.
2. Возрастное снижение интенсивности белкового обмена и активация системы ПОЛ-АОС в скелетных мышцах не имеют различий, связанных с типологической принадлежностью мышц.
3. В скелетных мышцах удлиняемого сегмента активируются процессы энергетического обмена, перекисного окисления и система антиоксидантной защиты. Увеличивается- интенсивность аланинового цикла и цикла Кори, снижается содержание саркоплазматических и миофибриллярных белков в ткани, падает сродство миозина к субстрату.
4. При удлинении конечности наибольшие изменения метаболизма, связанные со значительным снижением эффективности тканевой системы энергообеспечения, отмечаются в пёредней болыпеберцовой мышце удлиняемого сегмента.
5. Метаболические изменения, аналогичные происходящим в мышцах удлиняемого сегмента, но меньшей интенсивности, наблюдаются и в мышцах контралатеральной конечности.
6. Увеличение интенсивности дистракционных нагрузок вызывает более значительный рост активности тканевых систем энергообеспечения, наряду с активацией дополнительных («резервных») путей обмена.
7. Метаболические изменения в скелетных мышцах после оскольчатого перелома связаны со значительной интенсификацией белкового обмена в мышцах травмированной конечности на фоне компенсированных энергетических затрат.
8. Наиболее значительные изменения тканевого метаболизма • в посттравматический период происходят в икроножной мышце травмированной конечности. В мышцах контралатеральной конечности значительных изменений обмена не происходит.
9. Восстановление энергетического метаболизма в мышцах травмированной конечности после окончания лечения имеет обратную зависимость от срока фиксации.
10. При удлинении конечности в мышцах удлиняемого сегмента происходит более значительное снижение уровня мышечных белков и энергетических резервов, нежели в скелетных мышцах при травме.
11. Снижение уровня белка и эндогенных энергетических субстратов в скелетных мышцах при оперативном удлинении и после травм является критерием для их направленной коррекции.
12. Разовое введение низкомолекулярных белков, полученных из неколлагеновых белков костной ткани, в область перелома не только стимулирует процессы репаративной регенерации кости, но и вызывает анаболический эффект в скелетных мышцах, способствуя накоплению гликогена и белка в ткани за счет пролонгированного антипротеолитического эффекта.
13. Пероральное применение смеси аминокислот (лейцин, изолейцин, аргинин и метионин в отношении 1:1:1:1) предупреждает потери креатина в скелетных мышцах в посттравйгатический период и в ходе антиортостатической разгрузки конечности, регулирует межорганные отношения энергетических субстратов между мышцами и печенью.
14. Определение активности креатинкиназы в сыворотке крови является наиболее доступным критерием для оценки состояния скелетных мышц в процессе лечения и реабилитации пациентов ортопедотравматологического профиля.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
1. Изучение активности креатинкиназы в сыворотке крови может быть использовано в качестве критерия оценки степени повреждения скелетных мышц в практике травматологии и ортопедии.
2. Адекватное поступление аминного азота с пищей, является необходимым фактором для восстановления структурных и функциональных характеристик скелетных мышц при оперативном удлинении конечности и в ходе посттравматической регенерации.
3. В качестве стимуляторов анаболических реакций в скелетных мышцах при лечении ортопедотравматологической патологии предлагается к использованию аминокислотная смесь, содержащая лейцин, изолейцин, аргинин и метионин в равных соотношениях, и низкомолекулярные белковые факторы, полученные из неколлагеновых белков костной ткани.
Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Стогов, Максим Валерьевич, 2009 год
1. Абдишева З.В. Влияние уровня двигательной активности на формирование энергетического обмена в различные возрастные периоды : автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1991. 17 с.
2. Аденилатциклазные сигнальные системы действия пептидов инсулинового суперсемейства и их функциональные нарушения в миометрии беременных женщин при сахарном диабете второго типа / С.А. Плеснева и др. // Росс, физиол. журнал. 2008. № 10. С. 11261136.
3. Анатомо-функциональное состояние мышц в условиях чрескостного дистракционного остеосинтеза (клиника, эксперимент факты гипотеза / A.B. Попков и др. // Вест, травм, и ортопедии. 2004. № 3. С. 67-72.
4. Антиоксидантная система тканей крыс при гипотермии и введении даларгина / С.П. Львова и др. // Вопр. мед. химии. 2002. № 3. С. 189195.
5. Бабаскин Б.С. Определение пировиноградной кислоты модифицированным методом Умбрайта // Лаб. дело. 1976. № 3. С. 76.
6. Бакарев М.А., Непомнящих Л.М., Колосова Н.Г. Деструктивные реакции скелетных мышц крыс OXYS и Вистар при токсико-метаболических повреждениях, вызванных бупивакаином // Бюлл. эксперим. биол. и медицины. 2007. № 5. С. 589-594.
7. Биохимическая оценка метаболических расстройств в тканях опорно-двигательного аппарата у больных профессиональными заболеваниями от физического перенапряжения / H.H. Шацкая и др. // Гигиена труда и проф. заболевания. 1991. № 10. С. 5-8.
8. Биохимические детерминанты и механизмы развития экстремальной гипоксической гипоксии / В.В. Горанчук и др. // Физ. человека. 1999. №4. С. 118-129.
9. Богданов Э.И., Фасхутдннов P.P. Сократительные свойства мышц при нарушениях периферической иннервации // Журн. невропат, и психиатрии. 1991. № 2. С. 129-132.
10. Вилкинсон Д. Принципы и методы диагностической энзимологии. М. : Медицина, 1981. 624 с.
11. Владимиров Ю.А. Кальций-транспортные АТФазы // Энциклопедия современного естествознания, т.8. М. : Наука, 2000. С. 201-209.
12. Владимиров Ю.А. Свободно-радикальное окисление липидов и физические свойства липидного бислоя биологических мембран // Биофизика. 1987. № 5. С. 830-834.
13. Владимиров Ю.А., Арчаков А.П. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М. : Медицина, 1972. 252 с.
14. Влияние двенадцатидневного комбинированного воздействия гипобарической гипоксии и физической нагрузки на структурно-метаболические характеристики скелетных мышц крыс / T.JI. Немировская и др. // Бюлл. эксперим. биол. и медицины. 1995. № 6. С. 602-605.
15. Влияние деафферентации на размеры и миозиновый фенотип мышечных волокон при растяжении m.soleus крысы на фоне гравитационной разгрузки / Т.Л. Немировская др. // Росс, физиол. журнал. 2003. № 3. С. 259-270.
16. Влияние невесомости и ограничения подвижности на структуру и метаболизм m. soleus у обезьян после космического полета / Б.С. Шенкман и др. // Росс, физиол. журнал. 2002. № 3. С. 340-347.
17. Влияние физической нагрузки на содержание миоглобина и тропомиозина в скелетных мышцах и миоглобина в крови крыс / B.C. Чайковский и др. //Вопр. мед. химии. 1987. № 4. С. 79-83.
18. Возрастные изменения массы мышечной, соединительной и жировой тканей у здоровых людей / В.И. Шевцов и др. // Гений ортопедии. 2005. № 1. С. 58-66.
19. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М. : Практика, 1998. 459 с.
20. Гребнева О.Л., Ковинька М.А., Изотова С.П. Влияние остеоиндуктивных компонентов плазмы крови на гематологические показатели у мышей // Гений ортопедии. 2005. № 3. С. 58-61.
21. Григорьев А.Г., Козловская И.Б., Шенкман Б.С. Роль опорной афферентации в организации тонической мышечной системы // Росс, физиол. журнал. 2004. № 5. С. 508-521.
22. Григорьева Ю.В., Ямщиков Н.В. Кратковременное размозжение скелетной мышечной ткани и ее регенерация // Усп. совр. естествознания. 2003. № 3. С. 37-38.
23. Григорьева Ю.В., Ямщиков Н.В. Особенности ультраструктурных изменений в скелетной мышце в первые сутки после травмы // Успехи совр. естествознания. 2005. № 2. С. 116-117.
24. Десятниченко К.С. Неколлагеновые белки костной ткани в регуляции скелетного гомеостаза, минерализации и репаративного остоегенеза: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. Челябинск, 1997. 34 с.
25. Дубинина Е.Е. Роль активных форм кислорода в качестве сигнальных молекул в метаболизме тканей при состояниях окислительного стресса //Вопр. мед. химии. 2001. № 6. С. 561-581.
26. Европейская конвенция по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других целей // Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2003. № 4. С. 34-36.
27. Ерофеев С.А., Чикорина Н.К., Сайфутдинов М.С. Реакция мышц голени на ее удлинение с высоким темпом в условиях автоматической дистракции в эксперименте // Гений ортопедии. 2004. № 4. С. 18-22.
28. ЗайчикА.Ш., Чурилов Л.П. Основы общей патологии. Часть 2. Основы патохимии. СПб. : Элби, 2000. 688 с.
29. Зенков Н.К., Меныцикова Е.Б. Активированные кислородные метаболиты в биологических системах // Успехи совр. биологии. 1993. № 3. С. 286-293.
30. Иванова Е.С. Лизосомальные механизмы клеточных повреждений и стрессовые протеины // Русский медицинский журнал. 1999. № 3. С. 138-138.
31. Изменение состава и свойств сократительных „ белков после космического полета / B.C. Оганов и др. // Биофизика. 1982. № 1. С. 26-29.
32. Ильина-Какуева Е.И. Особенности ' развития мышечных атрофий у крыс различного возраста при вывешивании // Авиакосмическая и экологическая медицина. 2001. № 1. С. 28-32.
33. Ильина-Какуева Е.И., Капланский A.C. Влияние опорных нагрузок и стимуляторов ЦНС на развитие атрофического процесса в мышцах вывешенных крыс // Авиакосмическая и экологическая медицина. 1999. №З.С. 20-23.
34. Иммуногистохимическое изучение камбаловидной мышцы крысы при различных способах денервации / P.P. Исламов и др. // Бюлл. эксперим. биол. и медицины. 2001. № 4. С. 477-480.I
35. Исламов P.P., Валиуллин В.В. Влияние одностроннего повреждения седалищного нерва на фенотип червеобразных мышц опытной и контрлатеральной конечности крысы // Бюлл. эксперим. биол. и медицины. 2005. № 5. С. 589-591.
36. Каган В.Е., Архипенко Ю.В., Козлов Ю.П. Са2+-АТФаза при перекисном окислении липидов в саркоплазматическом ретикулуме // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М. : Наука, 1982. С. 50-58.
37. Калинский М.И., Рогозкшт В1А. Биохимия мышечной деятельности. Киев : Здоровье, 1989: 142 с. ' ; '
38. Клиническое руководство по лабораторным тестам / Под ред. Н. Тица. М. : ЮНИМЕД-пресс, 2003.960 с. : ,
39. Клишов А.А. Гистогенез и регенерация тканей: Л.: : Медицина, 1984. ■ 232 с. • V' ' ' ' V , ' ' . ; '
40. Ковригина Т:Р:, Филимонов,- В1И: Постнатальная« дифферёнцировка . подошвенной мышц десимпатизированной белой крысы //
41. Морфология. 2006. № 5. С. 52. .■*;. •
42. Кочутина JI.H. Регенерационный миогенез мышц голени при ее удлинении в эксперименте // Изв. АН СССР: Сер. Биол. 1990. № 4. с. 565-570.
43. Кочутина Л.Н., Кудрявцева И.П. Гистогенетические особенности регенерации скелетной мышцы при дистракционном остеосинтезе по Илизарову //Гений ортопедии. 1996. № 2-3. С. 135-136.
44. Креатин как метаболический модулятор структуры и функции скелетных мышц при силовой тренировке у человека: эргогенные и метаболические эффекты / А.И. Нетреба и др. //Росс, физиол. журнал. 2006. № 1.С. 113-122.
45. Креатин как метаболический модулятор / Б.С. Шенкман и др. // Росс, физиол. журнал. 2006. № 1. С. 100-112.
46. Кроткиевски М. Капилляризация мышц, Pix морфология и патогенез метаболического синдрома // Проблемы эндокринологии. 1996. № 4. С. 42-46.
47. Кузнецов С.Л., Папас Е.А., Гутова Ф. Механизмы адаптации энергетического метаболизма волокон скелетной мышечной ткани // Морфология. 2002. № 2-3. С. 84.
48. Кузнецова Л.А. Регуляторные свойства изоформ аденилатциклаз // Журн. эволюц. биохимии и физиологии, т. 38. С. 289-304.
49. Курганов В.И. Принципы интеграции клеточного метаболизма // Мол. биология. 1986. № 2. С. 369-377.
50. Курганов Б.И., Любарев А.Е. Гипотетическая структура комплекса ферментов гликолиза//Мол. биология. 1988. № 6. С. 1605-1613.
51. Лебкова Н.П. Современные представления о внутриклеточных механизмах обеспечения энергетического гомеостаза в норме и патологии //Вест. РАМН. 2000. № 9. С. 16-22.
52. Логоша С.А., Морозов В.И., Рогозкин В.А. Влияние углеводного рациона и физической нагрузки на активность супероксиддисмутазы иконцентрацию диеновых конъюгатов в крови и цитозоле скелетной мышцы крыс // Физиол. журнал. 1996. № 2. С.55-60.
53. Лукьянова Л.Д. Биоэнергетическая гипоксия: понятие, механизмы и способы коррекции // Бюлл. эксп. биол. и медицины. 1997. № 9. С. 244255.
54. Лунева С.Н., Гребнева О.Л. Научно-клинические разработки лаборатории биохимии ФГУН РНЦ «ВТО» им. акад. Г.А. Илизарова по оптимизации регенераторных процессов в тканях опорно-двигательной системы // Гений ортопедии. 2006. № 4. С. 55-58.
55. Лызлова С.Н. Некоторые аспекты энергетического обеспечения развивающихся мышц // Проблемы миогенеза / под ред. Г.П. Пинаева,
56. B.Б. Ушакова. Л. : Наука, 1984. С. 115-125.
57. Лытаев С.А. Механизмы гемодинамики при повреждениях нижних конечностей различной этиологии // Физиология человека. 2003. № 2.1. C. 92-99.
58. Лытаев С.А., Шанин Ю.Н., Шеченко С.Б. Адаптивные механизмы системы движения. СПб. : ЭЛБИ, 2001. 270 с.
59. Масютин В.А., Вашетко Р.В., Широков Д.М. Возможность оценки функциональных резервов организма в раннем посттравматическом периоде // Трав, и орт. России. 1994. № 61 С. 86-95.
60. Меныцикова Е.Б., Зенков Н.К. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов // Успехи совр. биологии. 1993. № 4. С. 442-455.
61. Метод определения каталазы / М.А. Королюк и др. // Лаб. дело. 1988. № 1.С. 16-19.
62. Методические приемы исследования креатинина / В.Н. Титов и др. // Лаб. дело. 1989. № 9. С. 4-7.
63. Методы биохимических исследований / Под ред. М.И. Прохоровой. Л. : Изд-во Ленингр. ун-та, 1982. 272 с. '
64. Морфологические характеристики m. vastus lateralis человека в безопорной среде / Б.С. Шенкман и др. // Докл. РАН. 1999. № 4. С. 563-565.
65. Морфофункциональная характеристика мышц голени при удлинении ее с высокой дробностью и в разное время суток / Н.К. Чикорина и др. //Гений ортопедии. 2001. № 4. С. 13-17.
66. Наквасина М.А., Попова Л.И. Структурно-функциональные свойства ЛДГ в условиях воздействия некоторых физико-химических агентов // XVIII съезд физиол. общества имени Павлова: тез. докладов. Казань, 2001. С. 555-556.
67. Немченко Н.С., Ерюхин И.А., Шанин В.Ю. Постагрессионный обмен веществ при тяжелой механической травме // Вест, хирургии. 1991. № 4. С. 53-57.
68. Новая инсулинкомпетентная аденилатциклазная система как возможный механизм антиапоптического действия инсулина и инсулинподобного фактора1 / С.А. Плеснева и др. // Доклады РАН. 2003. №4. С. 551-553.
69. Новый подход к лечению мышечной дистрофии Дюшена с использованием ранних предшественников миогенеза / Г.Т. Сухих и др. //Бюлл. эксперим. биол. и медицины. 2001. № 12. С. 604-613.
70. Об особенностях нарушений энергетического обмена при травматическом шоке и возможности их фармакологической коррекции / Л.Д. Лукьянова и др. Л Бюлл. эксп. биол. и медицины. 2001. №9. С. 263-267.
71. Одинцова H.A., Хорошков Ю.А. Архитектоника и структурные связи цитоскелета миоцитов сердечной и скелетной мышц // Морфология. 2004. № 4. С. 94-95.
72. Озернюк Н.Д. Регуляция миогенеза // Изв. РАН. Сер. Биол. 1998. № 3. С. 330-343.
73. Озернюк Н.Д. Сравнительные особенности миогенеза у беспозвоночных, низших и высших позвоночных животных // Онтогенез. 2004. № 6. С. 441-450.
74. Опорная и опорно-динамическая функция нижних конечностей у больных с переломами костей голени / В.А. Щуров и др. // Гений ортопедии. 2008. № 2. С. 9-12.
75. Парфенова И.А., Свешников A.A., Пашков И.В. Влияние сомототипа, массы тела, мышечной, соединительной и жировой тканей на минеральную плотность костей скелета // Гений ортопедии. 2006. № 4. С. 79-86.
76. Периферическая кровь, гемодинамика, остеогенез при удлинении голени по Илизарову / С.А. Ерофеев и др. // Гений ортопедии. 2004. № 3. С.60-64.
77. Пластичность клеточных и тканевых структур m.soleus человека в условиях длительной гипокинезии / Б.С. Шенкман и др. //Биол. мембраны. 2003. № 1. С. 77-86.
78. Практикум по биохимии / Под ред. С.Е. Северина, Г.А. Соловьевой. М. : Из-во МГУ, 1989. 509 с.
79. Процесс перекисного окисления липидов и активность сукцинатдегидрогеназы мозга при черепно-мозговой травме в эксперименте / M.JI. Демчук и др. // Вопр. мед. химии. 1993. № 2. С. 23-25.
80. Различия в процессах перекисного окисления белков у беременных крыс, селективных по порогу возбудимости нервной системы /A.B. Вьюшина и др. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 2002. № 3. С. 292-294.
81. Роль гиперлактатдегидрогеназемии в индукции метаболических нарушений в организме / Ф.Н. Гильмиярова и др. //Вопр. мед. химии. 2001. №5. С. 469-476.
82. Роль индивидуальных фосфолипидов в функциональной активности КК сердечной мышцы человека / Г.О. Мелекситян и др. // Вопр. мед. химии. 1991. № 5. С. 68-70.
83. Сайфутдинов М.С., Менщикова Т.И., Чикорина Н.К. Методологические особенности комплексного описания мышц при удлинении конечности // Гений ортопедии. 2008. № 3. С. 44-46.
84. Свешников A.A., Парфенова И.А., Ларионова Т.А. Взаимосвязь соматотипа с минеральной плотностью костей скелета, массой мышечной, соединительной и жировой тканей // Гений ортопедии. 2007. №2. С. 79-83.
85. Современные методы в биохимии / Под ред. В.Н. Ореховича. М. : Медицина, 1977. С. 62-68.
86. Сократительные характеристики сканированных волокон musculus soleus крысы в условиях гравитационной разгрузки / К. С. Литвинова и др. //Биофизика. 2003. № 5. С. 905-910.
87. Состояние сосудистого бассейна мышц конечности при разных режимах удлинения (морфо-функциональное исследование) / В.И. Шевцов и др. // Гений ортопедии. 1997. № 2. С.5-11.
88. Стереологический анализ, характеризующий процессы адаптации передней болыпеберцовой мышцы при различных режимах удлинения голени по Илизарову / Г.Н. Филимонова и др. // Гений ортопедии. 1999. №3. С. 14-19.
89. Структурные основы адаптации и компенсации нарушенных функций / Под ред. Д.С. Саркисова. М. : Медицина, 1987. 448 с.
90. Сээне Т.П., Алиев К.П., Пэхме А .Я. Влияние повышенной функциональной активности скелетных мышц на скорость обновлениятяжелых и легких цепей миозина // Вопр. мед. химии. 1987. № 1. С. 7578.
91. Тамбовцева Р.В. Возрастная динамика СДГ-активности мышечных волокон двуглавой и трехглавой мышц плеча и четырехглавой мышцы бедра у детей от 7 до 17 лет // Росс, морфологические ведомости. 2001. № 1-2. С. 243-244.
92. Тамбовцева Р.В. Возрастные и типологические особенности энергетики мышечной деятельности: автореф. дис. . док. биол. наук / Институт возрастной физиологии РАО. М., 2002. 48с.
93. Трифонова Е.Б., Осипенко A.B. Значение окислительного метаболизма скелетных мышц в оценке течения их регенерации при удлинении конечности // Гений ортопедии. 1999. № 2. С. 47-50.
94. Филимонова Г.Н., Ерофеев С.А. Стереологический анализ передней болыпеберцовой мышцы голени, удлиняемой высокодробной дистракцией в разное время суток // Гений ортопедии. 2003. № 1. С. 7985.
95. Филимонова Г.Н., Ерофеев С.А, Шрейнер A.A. Гистохимические и морфометрические характеристики передней болыпеберцовой мышцы взрслых собак при дистракционном остеосинтезе с различной дробностью // Гений ортопедии. 2001. № 4. С. 5-12.
96. Функциональное состояние мышц как фактор, опосредующий стимулирующее влияние напряжения растяжения на процессы регенерации и роста / В.А. Щуров и др. // Гений ортопедии. 1996. № 2-3. С. 152-153.
97. Хапчаев А.Ю., Ширинский В.П., Воротников A.B. Структура, свойства и регуляция белковых продуктов гейетического локуса киназы легких цепей миозина // Успехи биол. химии. 2003. т.43. С. 365-420.
98. Чикорина Н.К., Ерофеев С.А., Шрейнер A.A. Морфологические изменения в скелетных мышцах голени при различной дробностидистракции // Тез. докл. науч.-прак. конференции «Новые технологии в медицине». Курган, 2000. С. 106.
99. Шевцов В.И., Чикорина Н.К., Ерофеев С.А. Гистологический анализ морфологических проявлений в скелетных мышцах экспериментальных животных при удлинении голени по Илизарову // Гений ортопедии. 1999. № 2. С. 72-75.
100. Шевцов В.И., Филимонова Г.Н. Передняя болыпеберцовая мышца собак на этапах постнатального и дистракционного морфогенеза // Гений ортопедии. 2008. № 1. С. 74-80.
101. Шенкман Б.С. Структурно-метаболическая пластичность скелетных мышц млекопитающих в условиях гипокинезии и невесомости // Авиакосмич. и экологич. медицина. 2002. № 3. С. 3-13.
102. Шишкин В.В., Чучков В.М., Сабельников Н.Е. Гистоэнзимохимическая характеристика нейромышечного синапса скелетных мышц // Морфология. 2004. № з. с. 19-23.
103. Широченко Н.Д., Рыхликова Г.Г., Аксенова Н.П. Структурно-химические изменения костной и мышечной тканей в условиях экспериментальной гипокинезии // Морфология. 2002. № 2-3. С. 182183.
104. Шок: теория, клиника, организация противошокой помощи / под ред. Г.С. Мазуркевича, С.Ф. Багненко. СПб. : Политехника, 2004. 539 с.
105. Щуров В.А. Сократительная способность мышц бедра у детей и подростков с заболеваниями опорно-двигательной системы // Гений ортопедии. 2003. № 4. С. 43-46.
106. Щуров В.А. Функциональное состояние опорно-двигательного аппарта при заболеваниях и травмах конечностей в условиях лечения по Илизарову // Гений ортопедии. 1998. № 4. С. 25-28.
107. Щуров В.А., Гребенюк JI.A., Мурадисинов С.О. Взаимосвязь структурных и функциональных свойств мышц голени в условиях гипо- и гипердинамии // Гений ортопедии. 2003. № 4. С. 52-56.
108. Щуров В.А., Колчев О.В., Буторина Н.И. Динамометрия мышц голени у больных мужского пола с заболеваниями опорно-двигательной системы // Гений ортопедии. 2007. №"3. С. 63-66.
109. Щуров В.А., Колчева О.В., Щуров И.В. Травма как фактор стимуляции последующего восстановления сократительной способности мышц //Гений ортопедии. 2007. № 3. С. 44-47.
110. Щуров В.А., Сагымбаев М.А., Горбачева Л.Ю. Сократительная способность мышц-тыльных разгибателей стопы при заболеваниях и травмах голени //Гений ортопедии. 2003. № 4. С. 57-60.
111. Щуров В.А., Сазонова Н.В., Николайчук Е.В. Особенности кислородного режима в тканях при оперативном удлинении конечности//Гений ортопедии. 2001.' № 2. С. 55-58.
112. Щуров И.В., Бойчук С.П., Щуров В.А. Полярографический контроль кровоснабжения тканей при лечении переломов костей голени // Гений ортопедии. 2008. № 2. С. 13-15.
113. Эделева Н. К., Петрова Н. И., Стельникова И. Г. Реакция скелетных мышц и эндокринных органов на ограничение двигательной активности // Морфология. 1998. № 3. С. 136.
114. Acevedo L.M., RiveroJ.L. New- insightsinto skeletal1:muscle fibre types in the dog with particular focus towards ¿Hybrid1myosin*phenôtypes // Cell
115. TissueRes. 2006. v. 323. jYo 2. P. 283-303. . V ' . •
116. Activity of some enzymes of energy metabolism during denervation and reflex atrophy in rat slow and fast muscles / J. Teisinger et al. // Physiol.' Bohemoslov. 1981. v.30. № 4. P. 353-358. ' ; v !
117. Acute effects of N-acety ley steine: on skeletal: muscle microcirculation following closed soft tissue trauma in râts / K.D. Schaser et al. // J. Orthop i Res. 200.5':.-v.23t№T. Pi 231-241. • v'-'^'';:
118. Adiponectin resistance precedes the accumulation of skeletal muscle lipids and insulin; resistance inrhigh- fat-.fed rats;/ K.E. Mullen et al;.;//, Am; J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2009. v,296. № 2. P. 243-251. ,
119. Age-related changes in glucose utilization and fatty acid oxidation in a muscle-specific manner during rabbit growth / F. Gondret et al. //J. Muscle Res; Gelli Motil. 20041.V. 251 № 4-5. P: 405-410.
120. Age-related changes in the structure and function of skeletal muscles / J.A. Faulkner et al. // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2007. v.34. № 11. P. 1091-1096.
121. Age-related changes of aqueous protein profiles in rat fast and slow twitch skeletal muscles / D. Cai et al. // Electrophoresis. 2000. v.21. № 2. P. 465472.
122. Alterations of superoxide dismutase iso-enzyme activity, content, and mRNA expression with aging in rat skeletal muscle / S. Oh-Ishi et al. // Mech. Ageing. Dev. 1995. v.84. № 1. P. 65-76.
123. An acute decrease in TCA cycle intermediates does not affect aerobic energy delivery in contracting rat skeletal muscle / K.D. Dawson et al. // J. Physiol. 2005. v.565(Pt2). P. 637-643.
124. An NAD(P)H oxidase regulates growth and transcription in melanoma cells / S.S. Brar et al. // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2002. v.282. № 6. P. 12121224.
125. Anabolic signaling deficits underlie amino acid resistance of wasting, aging muscle / D. Cuthbertson et al. // FASEB J. 2005. v. 19. № 3. P. 422-424.
126. Anaerobic and aerobic enzyme activities in human skeletal muscle from children and adults / J.J. Kaczor et al. // Pediatr. Res. 2005. v. 57. № 3. P. 331-335.
127. Analysis of muscle bioenergetic metabolism in rabbit leg lengthening / K. Kanbe et al. // Clin. Orthop. 1998. v.351. P. 214-221.
128. Andrade F.H., McMullen C.A. Lactate is a metabolic substrate that sustains extraocular muscle function // Pflugers Arch. 2006. v. 452. № 1. P. 102-108.
129. Archvillin, a muscle-specific isoform of supervillin, is an early expressed component of the costameric membrane skeleton / W. Oh Sang et al. // J. Cell Sci. 2003. v.116. № 11. P. 2261-2275.
130. Awede B.L., Thissen J.P., Lebacq J. Role of IGF-I and IGFBPs in the changes of mass and phenotype induced in rat soleus muscle by clenbuterol // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2002. v.282. № 1. P. 31-37.
131. Benzi G., Ceci A. Creatine as nutritional supplementation and medicinal product // J. Sports Med. Phys. Fitness. 2001. v.41. № 1. P. 1-10.
132. Bevington A., Brown J., Walls J. Leucine suppresses acid-induced protein wasting in L6 rat muscle cells // Eur. J. Clin. Invest. 2001. v.31. № 6. P. 497-503.
133. Bevington A., Walls J. Defective glycolysis and catabolism of protein and amino acids in skeletal muscle during metabolic acidosis // Contrib. Nephrol. 1997. v. 121. P. 49-55.
134. Bilaterally increased VEGF-levels in muscles during experimental unilateral callus distraction / N. Hansen-Algenstaedt et al. //J. Orthop. Res. 2003. v.21. № 5. P. 805-812.
135. Boldrin L., Morgan J.E. Activating muscle stem cells: therapeutic potential in muscle diseases // Curr. Opin. Neurol. 2007. v.20. № 5. P. 577-582.
136. Bonen A. The expression of lactate transporters (MCT1 and MCT4) in heart and muscle // Eur. J. Appl. Physiol. 2001. v.86. № 1. p. 6-11.
137. Brancaccio P., Maffulli N., Limongelli F.M. Creatine kinase monitoring in sport medicine // Br. Med. Bull. 2007. v.81-82. P. 209-230.
138. Branched-chain amino acid supplementation and indicators of muscle damage after endurance exercise / B.K. Greer et al. // Int. J. Sport Nutr. Exerc. Metab. 2007. v. 17. № 6. P. 595-607.
139. Branched-chain amino acids activate key enzymes in protein synthesis after physical exercise / E. Blomstrand et al. // J. Nutr. 2006. v. 136. № 1. P. 269-273.
140. Branched-chain amino acids as a protein- and energy-source in liver cirrhosis / H. Moriwaki et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004. v.313. № 2. P. 405-409.
141. Branched-chain amino acids improve glucose metabolism in rats with liver cirrhosis / S. Nishitani et al. // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2005. v.288. № 6. P. 1292-1300.
142. Brooks. G.A. Lactate shuttles in nature //Biochem. Soc. Trans. 2002. v. 30. № 2. P. 258-264.154; Brooks G.A. Lactate: link between glycolytic and oxidative metabolism //
143. Sports Med. 2007. v. 37. № 4-5. P. 341-343. 155. Bruce C.R., Dyck D.J. Cytokine regulation of skeletal muscle fatty acid . . , metabolism: effect of interleukin-6 and tumor necrosis factor-alpha // Am. J.
144. Physiol. Endocrinol. Metab.-2004. v.287. № 4. P. 616-621. ; 156., Calcineurin and skeletal muscle growth / S.E. Dunn et al:. //Nat. Cell. Biol. 2002. v.4. № 3. P. 46-47.
145. Calcineurin regulates slow myosin, but not fast myosin or metabolic enzymes, during fast-to-slow transformation in rabbit skeletal muscle cell culture / J.D. Meissner et al.//J. Physiol. 2001. v.533(Ptl). P. 215-226.
146. Calcium dyshomeostasis in beta-amyloid and tau-bearing skeletal myotubes . / R.A. Christensen et al..// J. Biol. Chem. 2004. v.279. № 51. P. 5352453532. " ■■.'. ' • . • ' '
147. Causes of excitation-induced muscle cell damage in isometric contractions: mechanical stress or calcium overload? / A. Fredsted et al. // Am. J.
148. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2007. v.292. № 6. P. 2249-2258.
149. Chan K.M., Decker E.A. Endogenous skeletal muscle antioxidants // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 1994. v.34. № 4. P. 403-426.
150. Changes in canine skeletal muscles during experimental tibial lengthening / B. Fink Let al. // Clin. Orthop. 2001. v.385. P. 207-218.
151. Changes in glycolytic network and mitochondrial design in creatine kinase-deficient muscles / AJ. de Groof et al. // Muscle Nerve. 2001. v.24. № 9. P. 1188-1196.
152. Changes in inorganic phosphate and ; force production« in human« skeletal? muscle after cast immobilization / N. Pathare et al. // J. Appl. Physiol. 2005; v.98: j\o 1. P. 307-314. ; ,
153. Changes in muscle fibre type, muscle mass and IGF-I gene expression in rabbit skeletal muscle subjected to stretch / H. Yang et al. 7/ J. Anat. 1997.v ; v. 190(Pt4);P. 613-62Z ■. ■;•/ • '. •"■ •'.•.■: , \
154. Charge S.B:,,Rudnicki M.A. Cellular and molecular regulation of muscle ' regeneration-//Physioli Rev. 2004! v;84ï №rl;. P; 209^238;, •
155. Chase P.B., Kiishmerick Mi J; Effect ofphysiologicalAIDP'concentrations'onf ; contoctipmofismglè^
156. Comparison of enzyme activities on glycogen metabolism inirabbifc slow andv fast muscles7 A. Tsutou;et al:. // Comp. Biochem. Physiol. B. 1985. v. 81. №3. P. 641-645. •■:' ■.; ^
157. Comparison of erythrocyte and skeletal muscle creatine : accumulation following creatine loading!/ D031Preen= et all. // Int; J. Sporti.Nutr. Exerc. Metab. 2005. v. 15. № 1. P. 84-93 ^ '•'/'■ :
158. Contraction-stimulated muscle glucose transport and GLUT-4 surface content, are: dependent on glycogen content / W. Derave et ah. // Am. J.
159. Physiol: 1999lv.277. № 6 (Ptl); P. 1103-11101
160. Contribution of skeletal muscle protein in elevated rates of whole body protein catabolism in trauma patients / C.L. Long et al. // Am. J. Clin. Nutr. 1981. v.34. № 6. P. 1087-1093.
161. Control of glycogen synthesis is shared between glucose transport and glycogen synthase in skeletal muscle fibers / I. Azpiazu et al. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2000. v.278. № 2. P. 234-243.
162. Creatine supplementation increases glycogen storage but not GLUT-4 expression in human skeletal muscle / L.J. van Loon et al. // Clin. Sci. (Lond.). 2004. v.106. № 1. P. 99-106.
163. Cross innervation and the regulatory protein system of rabbit soleus muscle / G.W. Amphlett et al. // Nature. 1975. v.257. №'5527. P. 602-604.
164. De Deyne P.G. Lengthening of muscle during distraction osteogenesis // Clin. Orthop. Relat. Res. 2002. v.403. P. 171-177.
165. Decrease in human quadriceps muscle protein turnover consequent upon leg immobilization / J.N. Gibson et al. // J. Clin.- Sci. (Lond). 1987. v.12. № 4. P. 503-509.
166. Dietary protein restriction lowers plasma insulin-like growth factor I (IGF-I), impairs cortical bone formation, and induces osteoblastic resistance to IGF-I in adult female rats / S. Bourrin et al. // Endocrinology. 2000. v. 141. №9. P. 3149-3155.
167. Differences between glycogen biogenesis in fast- and slow-twitch rabbit muscle / R. Cusso et al. // Biochim. Biophys. Acta. 2003. v. 1620. № 1-3. P. 65-71.
168. Differential changes in protein kinase C associated with regeneration of rat extensor digitorum longus and soleus muscles / J. Moraczewski et al. // Int. J. Biochem. Cell. Biol. 2002. v.34. № 8. P. 938-949.
169. Differential responses of HSPs to heat stress in slow and fast regions of rat gastrocnemius muscle / Y. Oishi et al. //Muscle Nerve. 2003. v.28. № 5. P. 587-594.
170. Distinct patterns of MMP-9 and MMP-2 activity in slow and fast twitch skeletal muscle regeneration in vivo / M. Zimowska et al. // Int. J. Dev. Biol. 2008. v.52. № 2-3. P. 307-314.
171. Disuse and passive stretch cause rapid alterations in expression of developmental and adult contractile protein genes in skeletal muscle / P.T. Loughna et al. // Development. 1990. v. 109. № 1. P. 217-223.
172. Dunn S.E., Michel R.N. Coordinated expression of myosin heavy chain isoforms and metabolic enzymes within overloaded rat muscle fibers // Am. J. Physiol. 1997. v.273. № 2 (Ptl). P. 371-383.
173. Early postnatal food intake alters myofiber maturation in pig skeletal muscle / L. Lefaucheur et al. // J. Nutr. 2003. v. 133. № 1. P. 140-147.
174. Edwards R., Young A., Wiles M. Needle biopsy of skeletal muscle in the diagnosis of myopathy and the clinical study of muscle function and repair // N. Engl. J. Med. 1980. v. 302. № 5. P. 261-271.
175. Effect of acute acidosis on protein and amino acid metabolism in rats / R. Safranek et al. // Clin. Nutr. 2003. v.22. № 5. P. 437-443.
176. Effect of acute and chronic branched-chain amino acids on energy metabolism and muscle performance / A. De Lorenzo et al. // Diabetes Nutr. Metab. 2003. v. 16. № 5-6. P. 291-297.
177. Effect of age and cold exposure on morphofunctional characteristics of skeletal muscle in neonatal pigs / P. Herpin et al. // Pflugers Arch. 2002. v. 444. №5. P. 610-618.
178. Effect of alpha-lipoic acid combined with creatine monohydrate on human skeletal muscle creatine and phosphagen concentration / D.G. Burke et al. // Int. J. Sport. Nutr. Exerc. Metab. 2003. v. 13. № 3. P. 294-302.
179. Effect of an isocaloric carbohydrate-protein-antioxidant drink on cycling performance / B.C. Romano-Ely et al. // Med. Sei. Sports Exerc. 2006. v.38. № 9. P. 1608-1616.
180. Effect of beta-hydroxy-beta-methylbutyrate, arginine, and lysine supplementation on strength, functionality, body composition, and protein metabolism in elderly women / P. Flakoll et al. // Nutrition. 2004. v.20. № 5. P. 445-451.
181. Effect of early feed restriction on myofibre types and expression of growth-related genes in the gastrocnemius muscle of crossbred broiler chickens / Y. Li et al. //Br. J. Nutr. 2007. v. 98. № 2. P. 310-319.
182. Effect of hind limb muscle unloading on liver metabolism of rats / T.P. Stein et al. // J. Nutr. Biochem. 2005. v. 16. № 1. P. 9-16.
183. Effect of muscle creatine content manipulation on contractile properties in mouse muscles / B.O. Eijnde et al. // Muscle Nerve. 2004. v.29. № 3. P. 428-435.
184. Effect of oral creatine supplementation on human muscle GLUT4 protein content after immobilization / B. Op't Eijnde et al. // Diabetes. 2001. v.50. № l.P. 18-23.
185. Effect of ribose supplementation on resynthesis of adenine nucleotides after intense intermittent training in humans / Y. Hellsten et al. // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2004. v.286. № 1. P. 182-188.
186. Effects of bone fracture and surgery on plasma myosin heavy chain fragments of skeletal muscle / G.N. Onuoha et al. // Clin. Invest. Med. 1999. v.22.№ 5. P. 180-184.
187. Effects of effervescent creatine, ribose, and glutamine supplementation on muscular strength, muscular endurance, and body composition / D.J.Falk et al. // J. Strength. Cond. Res. 2003. v. 17. № 4. P. 810-816.
188. Effects of hyperbaric oxygen on glucose, lactate, glycerol and anti-oxidant enzymes in the skeletal muscle of rats during ischaemia and reperfusion / G. Bosco et al. // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2007. v.34. № 1-2. P. 70-76.
189. Effects of inactivity on glycolytic capacity of single skeletal muscle fibers in adult and aged rats / B.E. Ojala et al. // Biol. Res. Nurs. 2001. v.3. № 2. P. 88-95.
190. Effects of repeated creatine supplementation on muscle, plasma, and urine creatine levels / E.S. Rawson et al. // J. Strength Cond. Res. 2004. v. 18. № l.P. 162-167.
191. Ehrhardt J., Morgan J. Regenerative capacity of skeletal muscle // Curr. Opin. Neurol. 2005. v. 18. № 5. P. 548-553.
192. Endurance training adaptations modulate the redox-force relationship of rat isolated slow-twitch skeletal muscles / D.R. Plant et al. // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2003. v.30. № 1-2. P. 77-81.
193. Exercise-induced HSP27, HSP70 and MAPK responses in human skeletal muscle / H.S. Thompson et al. // Acta Physiol. Scand. 2003. v. 178. № 1. P. 61-72.
194. Expression of insulin growth factor-1 splice variants and structural genes in rabbit skeletal muscle induced by stretch and stimulation / G. McKoy et al. //J. Physiol. 1999. v.516(Pt 2). P. 583-592.
195. Fast and slow myosins as markers of muscle injury / M. Guerrero et al. // Br. J. Sports Med. 2008. v.42. № 7. P. 581-584.
196. Fast and slow skeletal troponin I in serum from patients with various skeletal muscle disorders: a pilot study / J.A. Simpson et al. // Clin. Chem. 2005. v.51.№6.P. 966-972.
197. FATZ, a filamin-, actinin-, and telethonin-binding protein of the Z-disc of skeletal muscle / G. Faulkner et al. // J. Biol. Chem. 2000. v.275. № 52. P. 41234-41242.
198. Faulkner G., Lanfranchi G., Valle G. Telethonin and other new proteins of the Z-disc of skeletal muscle // IUBMB Life. 2001. v.51. № 5. P. 275-282.
199. Fiber type-specific expression of major proteolytic systems in fast- to slow-transforming rabbit muscle / K.R. Sultan et al. // Am. J. Physiol. Cell
200. Physiol. 2001. v.280. № 2. P. 239-247. .
201. Fiber-specific responses of muscle glycogen repletion in fasted rats physically active during recovery from high-intensity physical exertion / G. Raja et al. // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2008. v.295. № 2. P. 633-641.
202. Fitts R.H., Riley D.R., Widrick J J. Functional and structural adaptations of skeletal muscle to microgravity // J. Exp. Biol. 2001. v.204> № 18. P. 32013208.
203. Franch H.A., Price S.R. Molecular signaling pathways regulating muscle proteolysis during atrophy // Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2005. v. 8. № 3. P. 271-275.
204. Free radical generation by skeletal muscle of adult and old mice: effect of contractile activity / A. Vasilaki et al. // Aging Cell. 2006. v.5. № 2. P. 109-117.
205. From energy store to energy flux: a study in creatine kinase-deficient fast skeletal muscle / A. Kaasik et al. // FASEB J. 2003. v. 17. № 6. P. 708710.
206. Frost R.A., Lang C.H. Regulation of insulin-like growth factor-I in skeletal muscle and muscle cells // Minerva Endocrinol. 2003. v.28. № l.P. 53-73.
207. Fujita S., Volpi E. Amino acids and muscle loss with aging // J. Nutr. 2006. v. 136. № LP. 277-280.
208. Functional properties of slow and fast gastrocnemius muscle fibers after a 17-day spaceflight / J.J. Widrick et al. // J. Appl. Physiol. 2001. v.90. № 6. P. 2203-2211.
209. Gamma interferon as an antifibrosis agent in skeletal muscle / W. Foster // J. Orthop. Res. 2003. v.21. № 5. P. 798-804.
210. Garlick P.J. The role of leucine in the regulation of protein metabolism // J. Nutr. 2005. v.135. № 6. P. 1553-1556.
211. Gene therapy to improve osteogenesis in bone lesions with severe soft tissue damage / T. Rose et al. // Langenbecks Arch. Surg. 2003. v.388. № 5. P. 356-365.
212. Gene transfer and expression of human alpha-galactosidase from mouse muscle in vitro and in vivo / F.J. Novo et al. // Gene Ther. 1997. v.4. № 5. P. 488-492.
213. Glass D.J. Skeletal muscle hypertrophy and atrophy signaling pathways // Int. J. Biochem. Cell. Biol. 2005. v. 37. № 10. P. 1974-1984.
214. Glatz J.F., Bonen A., Luiken J.J. Exercise and insulin increase muscle fatty acid uptake by recruiting putative fatty acid transporters to the sarcolemma // Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2002. v.5. № 4. P. 365-370.
215. Glucose ingestion attenuates interleukin-6 release from contracting skeletal muscle in humans / M.A.Febbraio et al. // J. Physiol. 2003. v.549 (Pt2). P. 607-612.
216. GLUT-3 expression in human skeletal muscle / C.A. Stuart et al. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2000. v.279. № 4. P. 855-861.
217. Glycogen depletion of human skeletal muscle fibers in response to high-frequency electrical stimulation / M.J. Johnson et al. // Can. J. Appl. Physiol. 2003. v.28. № 3. P. 424-433.
218. Gopalakrishna R., Jaken S. Protein kinase C signaling;and^^oxidative stress:// \ . Free Radie. Biol. Med. 2000. v. 28. № 9. P. 1349-1361.
219. Gregorevic P., Lynch G.S., Williams D.A. Hyperbaric oxygen modulates antioxidanttenzyme: activity-'im ratcskelëtaB muscles ; //Eurr, JlÄppli Physioli: 2001. v.86. № 1'. P. 24-27. . ;,/V, : oy. ■ y • ■■' ; ' ;
220. Growth factors in skeletal muscle regeneration / I. Husmann et al. // , ■ Cytokine Growth Factor Rev. 1996. v.7. № 3. P. 249-258.
221. Growth hormone secretagogue increases muscle strength during immobilization after canine hindlimb immobilization / R.L. Lieber et al. // J. Orthop. Res. 1997. v.15; № 4. P: 519-527. 7 : ?
222. Hayatsu K., De Deyne P.G. Muscle adaptation during distraction osteogenesis in skeletally immature and mature rabbits // J. Orthop. Res. 2001. v.l9.№ 5. P. 897-905.
223. Hedstrom M., Saaf M., Dalen N. Low IGF-I levels in hip fracture-patients; A comparison of 20 coxarthrotic and 23 hip fracture patients // Acta Orthop. Scand. 1999. v.70. № 2. P. 145-148.
224. Helge J.W., Dela F. Effect of training on muscle triacylglycerol and structural lipids: a relation to insulin sensitivity? // Diabetes. 2003. v.52. № 8. P. 1881-1887.
225. Hespel P., Derave W. Ergogenic effects of creatine in sports and rehabilitation// Subcell. Biochem. 2007. v.46. P. 245-259.
226. Hess M., Manson N., Okabe E. Involvement of free radicals in the pathophysiology of ischemic heart disease // Canad. J. Physiol. Pharmacol. 1982. v. 60. № 11. P. 1382-1389.
227. Hexose transporter mRNAs for GLU4, GLUT5, and GLUT 12 predominate in human muscle / C.A. Stuart et al. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006. v.291. № 5. P. 1067-1073.
228. Holmes B., Dohm G.L. Regulation of GLUT4 gene expression during exercise // Med. Sci. Sports Exerc. 2004. v.36. № 7. P. 1202-1206.
229. Hoppeler H., Vogt M. Muscle tissue adaptations to hypoxia // J. Exp. Biol. 2001. v.204 (Pt 18). P. 133-139.
230. Human dystrophin expression corrects the myopathic phenotype in transgenic mdx mice / D.J. Wells et al. // Hum. Mol. Genet. 1992. v.l. № l.P. 35-40.
231. Human muscle protein synthesis is modulated by extracellular, not intramuscular amino acid availability: a dose-response study / J. Boho et al. // J. Physiol. 2003. v.552 (Pt 1). P. 315-324.
232. Hydrogen peroxide is a novel inducer of connective tissue growth factor / S.K. Park et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. v.284. № 4. P. 966-971.
233. Identification of a novel stretch-responsive skeletal muscle gene (Smpx) / T.J. Kemp et al. // Genomics. 2001. v.72. № 3. P. 260-271.
234. IGF-I stimulates muscle growth by suppressing protein breakdown and expression of atrophy-related ubiquitin ligases, atrogin-1 and MuRFl / J.M. Sacheck et al. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2004. v.287. № 4. P. 591-601.
235. IGF-I treatment improves the functional properties of fast- and slow-twitch skeletal muscles from dystrophic mice / G.S. Lynch et al. // Neuromuscul. Disord. 2001. v. 11. № 3. P. 260-268.
236. Impaired glycolysis and protein catabolism induced by acid in L6 rat muscle cells / A. Bevington et al. // Eur. J. Clin. Invest. 1998. v.28. № 11. P. 908917.
237. Impaired system A amino acid transport mimics the catabolic effects of acid in L6 cells / A. Bevington el al.j // Eur. J. Clin. Invest. 2002. v.32. № 8. P. 590-602.
238. Inactivation of NADP(+)-dependent isocitrate dehydrogenase by nitric oxide / E.S. Yang et al. // Free Radie. Biol. Med. 2002. v.33. № 7. P. 927-937.
239. Influence of overload on phenotypic remodeling in regenerated skeletal muscle / A.X. Bigard et al. //Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2001. v.281. № 5. P. 1686-1694.
240. Inhibition of proteasome activity by selected amino acids / F.G. Hamel et al. //Metabolism. 2003. v.52. № 7. P. 810-814.
241. Intact insulin and insulin-like growth factor-I receptor signaling is required for growth hormone effects on skeletal muscle growth and function in vivo / H. Kim et al. // Endocrinology. 2005. v.146. № 4. P. 1772-17779.
242. Interaction between macrophages, TGF-betal, and the COX-2 pathway during the inflammatory phase of skeletal muscle healing after injury / W. Shen et al. // J. Cell. Physiol. 2008. v.214. № 2. P. 405-412.
243. Interleukin-15 decreases proteolysis in skeletal muscle: a direct effect / S. Busquets et al. // Int. J. Mol. Med. 2005. v.16. № 3. P. 471-476.
244. Interleukin-6 release from human skeletal muscle during exercise: relation to AMPK activity / C. MacDonald et al. // J. Appl. Physiol. 2003. v.95. № 6. P. 2273-2277.
245. Intramyocellular lipids form an important substrate source during moderate intensity exercise in endurance-trained males in a fasted state / L.J. van Loon et al. // J. Physiol. 2003. v.553(Pt2). P. 611-625.
246. Intravenous administration of amino acids during anesthesia stimulates muscle protein synthesis and heat accumulation in the body / I. Yamaoka et al. //Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006. v.290. № 5. P. 882-888.
247. Investigation of the interaction of pig muscle lactate-dehydrogenase with acidic phospholipids at low pH / G. Terlecki et al. // J. Biochim. Biophys. Acta. 2006. v. 1758. № 2. P. 133-144.
248. Is creatine kinase responsible for fatigue? Studies of isolated skeletal muscle deficient in creatine kinase / A.J. Dahlstedt et al.,// FASEB J. 2000. v. 14. № 7. P. 982-990.
249. Jackson M.J. Reactive oxygen species and redox-regulation of skeletal muscle adaptations to exercise // Philos. Trans. R. Soc. Lond. Biol. Sci. 2005. v.360. № 1464. P. 2285-2291.
250. Jeevanandam M., Holaday N.J., Petersen S.R. Ornithine-alpha-ketoglutarate (OKG) supplementation is more effective than its component salts in traumatized rats // J. Nutr. 1996. v.126. № 9. P. 2141-2150.
251. Jenkins R.R., Tengi J. Catalase activity in skeletal, muscle of varying-fibre types //Experientia. 1981. v.37. № 1. P. 67-68.
252. Jenkins R.R. Exercise, oxidative stress "and antioxidants: a review // Sports Nutrition. 1993. v.3. № 4. P. 356-375.
253. Ji L.L. Antioxidant signaling in skeletal muscle: a brief review // Exp. Gerontol. 2007. v.42. № 7. P. 582-593.
254. Juel C., Halestrap A.P. Lactate transport in skeletal muscle role and regulation^ of the monocarboxylate'transporter // J. Physiol. 1999. v. 517(Pt• 3). P. 633-642.
255. Kadowaki M., Kanazawa T. Amino acids as regulators of proteolysis // J. Nutr. 2003. v.133. № 6. P. 2052-2056.
256. Kim B.Y., Han M.J., Chung A.S. Effects of reactive oxygen species on proliferation of Chinese hamster lung fibroblast (V79) cells // Free Radic. Biol. Med. 2001. v.30. № 6. P. 686-698.
257. Kim G.W., Chan P.H. Involvement of superoxide in excitotoxicity and DNA fragmentation in striatal vulnerability, in mice after treatment with the mitochondrial toxin, 3-nitropropionic acid // J. Cereb. Blood Flow. Metab. 2002. v.22. № 7. P. 798-809.
258. Klingenberg M. The ADP and ATP transport in mitochondria and its carrier // Biochim. Biophys. Acta. 2008. v.1778. № 10. P. 1978-2021.
259. Kreider R.B: Effects of creatine supplementation on performance and training adaptations // Cell. Biochem. 2003. v. 244. P. 89-94.
260. Lack of coordinated changes in metabolic enzymes and myosin heavy chain isoforms in regenerated muscles of trained rats / A.X. Bigard et al. // J. Muscle Res. Cell. Motil. 2000. v.21. № 3. P. 269-278.
261. Lactate availability is not the major factor limiting muscle glycogen repletion during recovery from an intense sprint in previously active fasted rats / G. Raja et al. // J: Exp. Biol. 2004. v.207(Pt26). P. 4615-4621.
262. Lactate dehydrogenase expression at the onset of altered loading in rat soleus muscle / T.A. Washington et al j // J. Appl: Physiol. 2004. v.91. № 4. P. 1424-1430.
263. Lang C.H., Vary T.C., Frost R.A. Acute in vivo elevation of insulin-like growth factor (IGF) binding protein-1 decreases plasma free IGF-I and muscle protein synthesis // Endocrinology. 2003. v.144. № 9. P. 3922-3933.
264. L-arginine improves dystrophic phenotype in mdx mice / V. Voisin et al. // Neurobiol. Dis. 2005. v.20. № 1. P. 123-130.
265. Layman D.K. Role of leucine in protein metabolism during exercise and recovery // Can. J. Appl. Physiol. 2002. v.27. № 6. P. 646-663.
266. MacGregor J., Parkhouse W:S. The potential role of insulin-like: growth factors in skeletal muscle regeneration// Can. J. Appl. Physiol. 1996. v.21.'№ 4. P. 236-250. ' .'•' ;v;'
267. Maltz I., Oron U. Proteolytic enzyme activities during regeneration of the rat gasricnemius muscleH J: Neurol. Sci: 1990; v. 98; № 2-3; P. 149-154;
268. Metabolic transformation of rabbit skeletal muscle cells in primary culture in response to low glucose / N. Hanke et al. // Biochim. Biophys. Acta. 2008. v.1783. № 5. P. 813-825.
269. Miranda E.R., Dey G.S. Effect of chromium and zinc on insulin signaling in skeletal muscle cells // Biol. Trace Elem. Res. 2004. v. 101. № 1. P. 19-36.
270. Mitochondrial and sarcoplasmic proteins, but not myosin heavy chain, are sensitive to leucine supplementation in old rat skeletal muscle / C. Guillet et al. //Exp. Gerontol. 2004: v.39. № 5. P., 745-751.
271. Mitochondrial function in intact skeletal muscle fibres of creatine kinase deficient mice / J.D. Bruton et al. // J. Physiol. 2003. v. 552(Pt 2). P. 393402. ■ ;
272. Mogensen M., Salilin K. Mitochondrial efficiency in rat skeletal muscle: influence of respiration rate, substrate and muscle type,// Acta Physiol. Scand. 2005: v. 185. № 3. P. 229-236.
273. Molecular impact of clenbuterol and isometric strength training on rat EDL muscles / R. Mounier et al. // Pflugers Arch. 2007. v.453. № 4. P. 497-507.
274. Morphometric analysis of canine skeletal muscles following experimental callus distraction according to the Ilizarov method / B. Fink et al. // J. Orthop. Res. 2000. v.18. № 4; P. 620-628.
275. Moura I.M., Farias F., Jose A.A. Creatine supplementation, induces alteration in crioss-sectional area in skeletal muscle fibers of Wistar rats after swimming training // J. Sports Sci. Med. 2002. v.l. P. 87-95.
276. Murrant C.L., Reid M.B. Detection of reactive oxygen and reactive nitrogen species in,skeletal muscle // Microsc. Res. Tech. 2001. v.55. № 4. P. 236• ■■ 248.
277. Muscle adaptations with immobilization and rehabilitation after ankle fracture / J.E. Stevens et al. // Med. Sci. Sports Exerc. 2004. v.36. № 10. P. 1695-1701.
278. Muscle energy metabolism: structural and functional features in different types of porcine striated muscles / K. Huber et al. // J. Muscle Res. Cell. Motil. 2007. v. 28. № 4-5. P. 249-258.
279. Muscle fiber type comparison of PDH kinase activity and isoform expression in fed and fasted rats / S.J. Peters et al. // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2001. v. 280. № 3. P. 661-668.
280. Muscle regeneration and fiber-type transformation during distraction osteogenesis / P.G. De Deyne et al. // J. Orthop. Res. 1999. v. 17. № 4. P. 560-570.
281. Muscle-bone interactions in dystrophin-deficient and myostatin-deficient mice / E. Montgomery et al. // Anat. Rec. A Discov. Mol. Cell. Evol. Biol. 2005. v.286. № 1. P. 814-822.
282. Muscle-derived interleukin-6: lipolytic, anti-inflammatory and immune regulatory effects / B.K. Pedersen et al. // Pflugers Arch. 2003. v.446. № 1. P. 9-16.
283. Muscular changes in experimental protein malnutrition / A. Conde Martel et al. //Nutr. Hosp. 1998. v. 13. № 6. P. 309-311.
284. Nair K.S., Short K.R. Hormonal and signaling role of branched-chain amino • acids // J. Nutr. 2005. v. 135. № 6. P. 1547-1552.
285. Negligible direct lactate oxidation in subsarcolemmal and intermyofibrillar mitochondria obtained from red and white rat skeletal muscle / Y. Yoshida et al. // J. Physiol. 2007. v. 582(Pt 3). P. 1317-1335.
286. Nerve activity-dependent modulation of calcineurin signaling in adult fast and slow skeletal muscle fibers / S.E. Dunn et al. // J. Biol. Chem. 2001. v.276. № 48. P.45243-45254.
287. Neuromuscular stimulation causes muscle phenotype-dependent changes in the expression of the IGFs and their binding proteins in developing slow and fast muscle of chick embryos / G.M. McEntee et al. // Dev. Dyn. 2006. v.235. № 7. P. 1777-17784.
288. Niess A.M., Simon P. Response and adaptation of skeletal muscle to exercise — the role of reactive oxygen species // Front. Biosci. 2007. v. 1. № 12. P. 4826-4838.
289. No limiting role for glycogenin in determining maximal attainable glycogen levels in rat skeletal muscle / B.F. Hansen et al. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2000. v. 278. № 3. P. 398-404.
290. Noguchi T. Protein nutrition and insulin-like growth factor system // Br. J. Nutr. 2000. v.84. P. 241-244.
291. Nutritional and metabolic effects and significance of mild orotic aciduria during dietary supplementation with arginine or its organic salts after trauma injury in rats / M. Jeevanandam et al. // Metabolism. 1997. v.46. № 7. P. 785-792.
292. Optimisation of growth hormone production by muscle cells using plasmid DNA / G.S. MacColl et al. // J. Endocrinol. 2000. v. 165. № 2. P. 329-336.
293. Oral creatine supplementation facilitates the rehabilitation of disuse atrophy and alters the expression of muscle myogenic factors in humans / P. Hespel et al. // J. Physiol. 2001. v. 536. № 2. P. 625-633.
294. Oral leucine administration stimulates protein synthesis in rat skeletal muscle / S.J.Crozier et al. // J. Nutr. 2005. v.135. № 3. P. 376-382.
295. Oron U. Proteolytic enzyme activity in rat hindlimb muscles in fetus and during post-natal development // Int. J. Dev. Biol. 1990. v.34. № 4. P. 457460.
296. Owino V., Yang S.Y., Goldspink G. Age-related loss of skeletal muscle function and the inability to express the autocrine form of insulin-like growth factor-1 (MGF) in response to mechanical overload // FEBS Lett. 2001. v.505. № 2. P. 259-263.
297. Oxidative stress and nitric oxide synthase in skeletal muscles of rats with post-infarction, compensated chronic heart failure / J. W. Rush et al. // Acta Physiol. Scand. 2005. v.185. № 3. P. 211-218.
298. Paddon-Jones D., Wolfe R.R., Ferrando-A.A. Amino acid-supplementation for,reversing bed rest and steroid myopathies // J. Nutr. 2005. v.135. № 7. P. 1809-1812.
299. Pathak C., Vinayak M.' Modulation of lactate dehydrogenase isozymes by modified base queuine //Mol. Biol. Rep. 2005. v. 32. № 3. P! 191-196.
300. Pattern of metalloprotease activity and' myofiber regeneration^ in skeletal muscles of mdx mice / C. Bani<et al. // Muscle Nerve: 2008. v.37. № 5. P: 583-592.
301. Pedersen.B.K., Steensberg A., Schjerling P. Muscle-derived interleukin-6: possible biological effects // J. Physiol. 2001. v. 536 (Pt2). Pi 329-337.
302. Persky A.M., Brazeau G.A., Hochhaus G. Pharmacokinetics of the dietary supplement creatine'// Glin. Pharmacokinet. 2003. v.42. № 6. P. 557-574.
303. Pette D; The adaptive potential of skeletal muscle fibers // Can. J. Appl. Physiol. 2002. v.27. № 4. P., 423-448:
304. Pette E>., Staron; R.S. Transitions of muscle fiber phenotypic profiles // Histochem. Cell. Biol. 2001. v.115. № 5. P. 359-372.
305. Pharmacological■ activities of branched:chain amino' acids: specificity of tissue and; signal transduction / S. Nishitani et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004. v.313. № 2. P. 387-389.«
306. PKosphocreatine degradation in type I and type- II muscle fibres* during-submaximal exercise in5man: effect of carbohydrate ingestion*/ K. Tsintzas et al. // T. Physiol: 2001. v.537(Pt 1). P: 305-3Î1.
307. Postnatal ontogeny of skeletal muscle protein synthesis in pigs / T.A. Davis et al. // J. Anim. Sci. 2008. v.86. № 14. P.13-18.
308. Production of consistent crush- lesions in murine quadriceps muscle—a^ biomechanical, histomorphological and immunohistochemical study / J.R. Bunn et al. // J. OrtHop. Res. 2004. v.22. № 6. P. 1336-1344.
309. Proteomic analysis of slow- and-fâst-twitch skeletal muscles / N. Okumùra et al. // Proteomics. 2005. v. 5. № 11. P. 2896-2906.
310. Proteomic profiling reveals a severely perturbed' protein expression pattern .--'.' in aged skeletal muscle IK. O'Connell ét al. //Int. J. Mol: Med. 2007. v. 20.2. P. 145-153. • • '.■•••'.
311. Quiroz-Rothe E., Rivero J:E. Coordinated expression of myosin heavy chains, metabolic enzymes, and morphological features of porcine skeletal musclé fiber types //.Microsc. Res. Tech: 2004! v. 65. № 1-2! P. 43-61.
312. Rat hindlimb . unloading: Soleus and Extensor Digitorum Longus histochemistry,, mitochondrial! DNA content and mitochondrial DNA deletions / V. Pesce et al. // Biosci. Rep: 2002. v.22. № l.P. 115-125.
313. Reactive oxygen species and fatigue-induced prolonged low-frequency force ' depression in skeletal musclc fibres of rats, mice and SOD2 overexpressingmice / J:D: Bruton et al:. // J! Physiol; 2008: v.586. № L P: 175-L84. \
314. Recovery of contractile and metabolic- phenotypes in regenerating slow musclc after notexin-induccd or crush injury / E. Fink et al. // J. Muscle Res. Cell. Motil. 2003. v.24. № 7. P: 421-429.
315. Regulation of cardiac and skeletal muscle protein synthesis by individual branched-chain amino acids in neonatal pigs / J. Escobar et al. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006. v.290. № 4. P. 612-621.
316. Regulation of skeletal muscle proteolysis by amino acids / D. Brochet et al. //J. Ren. Nutr. 2005. v. 15. № 1. P. 18-22.
317. Regulation of the properties of rat hind limb1 muscles following gravitational unloading / M. Ohira et al. // Jpn. J. Physiol. 2002. v.52. № 3. P. 235-245.
318. Regulatory role for the arginine-nitric oxide pathway in metabolism of energy substrates / W.S. Jobgen et al. // J. Nutr. Biochem. 2006. v. 17. № 9. P. 571-588.
319. Reid M.B. Free radicals and'muscle fatigue: Of ROS, canaries, and the IOC //Free Radie. Biol. Med. 2008. v.44. № 2. P. 169-179.
320. Response and function of skeletal muscle heat shock protein 70 / Y. Liu et al. // Front. Biosci. 2006. v. 11. P. 2802-2827.
321. Reznick A.Z., Coleman R., Stein H. Enzymatic activities in limb muscles subjected to external fixation with ring-hybrid frames // Orthopedics. 2007. v.30. № 4. P. 277-280.
322. RGD-independent binding of integrin alpha9betal to the ADAM-12 and -15 disintegrin domains mediates cell-cell interaction / K. Eto et al. // J. Biol. Chem. 2000. v.275. № 45. P. 34922-34930.
323. Role of mitochondrial lactate dehydrogenase and lactate oxidation in the intracellular lactate shuttle / G.A. Brooks et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. v. 96. №3. P. 1129-1134. "
324. Role of the lactate transporter (MCT1) in skeletal muscles / K.J. McCullagh et al. // Am. J. Physiol. 1996. v. 271. № l(Ptl). P. 143-150.
325. Rubanyi G.M. Vascular effects of oxygen-derived free radicals // Free Radie. Biol. Med. 1988. v.4. № 2. P. 107-120.
326. Samchukov M., Makarov A., Cherkashin J. Birch Mechanism of skeletal muscle adaptation to gradually increasing length // 2nd International Meeting of ASAMI: Scientific Abstracts. 2001. P. 73.
327. Sarcoglycan subcomplex in normal and pathological human muscle fibers / G. Anastasi et al. // Eur. J. Histochem. 2007. v.51. P. 29-33.
328. Sargeant A. Structural and functional determinants of human muscle power // J.Exp. Physiol. 2007. v. 92. № 2. P. 323-331.
329. Schertzer J.D., Ryall J.D., Lynch G.S. Systemic administration of IGF-I enhances oxidative status and reduces contraction-induced injury in skeletal muscles of mdx dystrophic mice // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006. v.291.№3. P. 499-505.
330. Schiaffino S., Reggiani C. Myosin isoforms in mammalian skeletal muscle // J. Appl. Physiol. 1994. v. 77. № 2. P. 493-501.
331. Serum enzyme monitoring in sports medicine / P. Brancaccio et al. // Clin.
332. Sports Med. 2008. v.27. № 1. P. 1-18. •i
333. Shulman R.G., Rothman D.L. The "glycogen shunt" in exercising muscle: A role for glycogen in muscle energetics and fatigue // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. v.98. № 2. P. 457-461.
334. Significant intramyocellular lipid use during prolonged cycling in endurance-trained males as assessed by three different methodologies / T. Stellingwerff et al. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2007. v.292. № 6. P.1715-1723.
335. Sitren H.S., Fisher H. Nitrogen retention in rats fed on diets enriched with arginine and glycine. 1. Improved N retention after trauma // Br. J. Nutr. 1977. v.37. № 2. P. 195-208.
336. Skeletal muscle fiber type' conversion during the repair of mouse soleus: potential implications for muscle healing after injury / T. Matsuura et al'. // J. Orthop. Res. 2007. v.25. №11. P.,1534-1540:
337. Sorichter S., Puschendorf B., Mair J. Skeletal muscle injury induced by eccentric muscle action: muscle proteins as markers of muscle fiber injury // Exerc.,Immunol. Rev. 1999. v.5. P. 5-21. .
338. Sprint-interval training-induced alterations of Myosin heavy chain isoforms and enzyme activities in rat diaphragm: effect of normobaric hypoxia- / Y. Ogura et al. // Jpn. J. Physiol. 2005. v.55. № 6. P. 309-316.
339. Stretch-induced nitric oxide modulates mechanical properties of skeletal muscle cells / J.S. Zhang et al. // Am: J. Physiol. Cell. Physiol. 2004. v.287. № 2. P. 292-299.
340. Svedruzic Z.M., Spivey H.O. Interaction- between mammalian glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase and L-lactate dehydrogenase from heart and muscle // Proteins. 2006: v. 63. № 3. P." 501-511.
341. Systemic administration of L-arginine benefits mdx skeletal muscle function / E.R.Barton et al. // Muscle Nerve. 2005. v.32. № 6. P. 751-760.
342. Szendroedi, J., Roden M. Ectopic lipids and organ function // Curr. Opin. Lipidol. 2009. v.20. № 1. P. 50-56.
343. Tabarean Jurankai Pi,. Morris C.E. Membrane1 stretch affects gating modes-of%'skelëtali muscle sodium; channel! //Biophys. JL 1999? v.77.№ 2: , P. 758-774.
344. The histochemical" profile of the rat extensor, digitorum« longus muscle ,■■"". differentiates! after birth- andïdedifferentiàtes>in?senescence;7 Mî Eehnert etal^Z/Eur-JlHistochem. 2007. v.5K>№'2LP;№lT8i
345. Welle S., Bhatt K., Pinkert C.A. Myofibrillar protein synthesis in myostatin-deficient mice // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006. v.290. № 3. P. 409-415.
346. Wernerman J. Clinical use of glutamine supplementation // J. Nutr. 2008. v.138. № 10. P. 2040-2044.
347. Willoughby D.S., Rosene J. Effects of oral creatine and resistance training on myosin heavy chain expression // Med. Sci. sports Exerc. 2001. v.33. P. 1674-1681.
348. Wolfe R.R. Regulation of skeletal muscle protein metabolism in catabolic states // Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2005. v.8. № 1. P. 61-65.
349. Yamazaki H., Abe M., Kanbara K. Changes of fiber type ratio and diameter in rabbit skeletal muscle during limb lengthening // J. Orthop. Sci. 2003. v.8. № l.P. 75-78.
350. Zhang P., Chen X., Fan M. Signaling mechanisms involved in disuse muscle atrophy // Med. Hypotheses. 2007. v.69. № 2. P. 310-321.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.