Генетические последствия ольфакторных стрессов у мышей тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.15, доктор биологических наук Даев, Евгений Владиславович

• Даев, Евгений Владиславович
• доктор биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации доктор биологических наук Даев, Евгений Владиславович

СОДЕРЖАНИЕ 2

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ 6

ВВЕДЕНИЕ 8

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 18

1.1. Стресс. Эволюция представлений 18

1.1 Л. Стресс наорганизменном уровне 18

1.1.1.1. Определение понятия "стресс" 18

1.1.1.2. Стресс и нейроэндокринно-иммунная система 24

1.1.1.3. Стресс и репродукция 30

1.1.2. «Стресс» на клеточном уровне 34

1.1.2.1. Сигнальная трапсдукция 34

1.1.2.2. Система белков теплового шока 42

1.1.2.3. Апоптоз 44

1.1.2.4. Оксидативный стресс 46

1.1.2.5. Геномный стресс 50

1.1.3. Стресс на уровне популяций 52

1.1.3.1. Стресс в популяциях мелких млекопитающих 53

1.1.3.2. Стресс как движущий фактор эволюции 56

1.1.4. «Стресс» и «норма реакции генотипа» 59

1.2. Ольфакторные стрессы в жизни млекопитающих 64

1.2.1. Эволюция хемокоммуникациопных механизмов 64

1.2.2. Роль феромонов в жизни млекопитающих 66

1.2.3. Химическая природа феромонов млекопитающих 69

1.2.4. Пути передачи ольфакторных сигналов в центральной нервной системе 74

1.2.5. Механизмы внеклеточного транспорта ольфакторных сигналов. Роль одорант-связывающих белков 78

1.2.6. Механизмы рецепции и внутриклеточной трансдукцип ольфакторных сигналов 84

1.2.7. Изучение механизмов развития ольфакторных стрессов у грызунов 87

I.3. Генетические аспекты изучения феромональиых эффектов 91

II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 100

2.1. Материал 100

2.2. Методы 102

2.2.1. Стрессирование мышей феромонами 102

2.2.2. Используемые стрессоры 104

2.2.3. Электрофорез главных белков мочи мышей 107

2.2.4. Анализ половых клеток самцов мышей на стадиях метафазы I и II 107

2.2.5. Анализ аномалий головок спермиев 111

2.2.6. Анализ делящихся клеток костного мозга мышей 113

2.2.7. Тест на «доминантные летали» 116

2.2.8. Оценка наличия норадреналина в нервных окончаниях слизистых оболочек 118

2.2.9. Оценка локомоторной активности нейтрофилов периферической крови 119

2.2.10. Оценка степени фагоцитоза 120

2.2.11. Оценка активности перекисного окисления липидов 122

2.2.12. Статистическая обработка полученпых данных 124

III. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 125

3.1. Отработка модели изучения влиянии стресса, индуцированного летучими веществами мочи, на сперматогенез у домовой мыши. Феромональная регуляция репродуктивной функции 125

3.2. Влияние феромонов на костный мозг и клетки иммунной системы домовой мыши 145

3.2.1. Анализ нарушений митоза в клетках костного мозга мышей после феромонального воздействия 145

3.2.2. Анализ локомоторной активности и фагоцитирующей способности иммунокомпетентных клеток периферической крови мышей после феромонального воздействия 153

3.3. Пути и механизмы действия феромонов на рецнпнентный организм у мышей 167

3.3.1. Удаление вомероназалыюго органа модифицирует цитогенетический эффект 2,5-ДМП 167

3.3.2. Изменения концентрации нейромедиаторов в слизистой оболочке носа и сосудистой оболочке семенников 170

3.3.3. Феромональная активация c-fos и c-jun в клетках семенников молодых самцов мышеи линии СВА 171

3.3.4. Изменения процессов перекисного окисления липидов при действии феромонов 175

3.3.4.1. Переписное окисление липидов в тканях костного мозга 175

3.3.4.2. Перекисное окисление липидов в тканях семенников 176

3.3.5. Изучение связи феромональных стрессоров с главными белками мочи 181

3.3.6. Цитогенетические эффекты структурно сходных или различающихся феромонов 194

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Генетические последствия ольфакторных стрессов у мышей»

Актуальность проблемы.

Все живые организмы обладают уникальной способностью реагирования на изменения окружающей среды для адаптации к этим изменениям. Достижение этой цели обеспечивают эволюциоино сложившиеся специфические механизмы рецепции внешнего сигнала, его трансформации и транедукции к соответствующим эффекторам как па уровне одноклеточного, так и многоклеточного организма. Адаптивность ответа живого организма определяется специфичностью (соответствием между поступающими извне сигналами и системами реагирования на них), а также силой и быстротой ответа.

У высших многоклеточных и, в частности, млекопитающих адекватность ответа определяется работой единой нейро-эидокриино-иммунпон системы (НЭИС). Эта система обеспечивает не только специфичность рецепции и транедукции поступающего сигнала, но и формирует интегральный многокомпонентный ответ. Такой ответ имеет своей целью достижение максимально возможной адаптации к возникшему изменению. Оп может включать в себя многочисленные изменения генетических (экспрессия генов), физиологических (эндокринных, иммунных, поведенческих и др.) и даже, если необходимо, морфологических характеристик животного (см. сб. «Современные концепции эволюционной генетики», 2000). При этом наряду со специфическими реакциями, в ответ на воздействие могут вовлекаться и более общие механизмы (эволюционно более древние), пытающиеся обеспечить адаптацию путем поддержания впутриоргаиизмеппого и внутриклеточного гомеостаза. Их действие часто обозначают термином "стресс".

С момента появления в научной литературе терминов "стресс" и "стрессор" (8е1уе, 1936) прошло уже более шестидесяти лет. Создатель этих терминов и автор концепции "стресса" (или "общего адаптационного синдрома") Ганс Селье сам на протяжении многих лет способствовал ее развитию. Подразумевалось, что на действие некоторых факторов окружающей среды (стрессоров) "живая материя" отвечает неспецифическим напряжением, "которое проявляется реальными морфологическими изменениями в различных органах и особенно в эндокринных железах, контролируемых передней долей гипофиза" (Селье, 1960). При этом было очевидно, что под "живой материей" Селье понимал достаточно сложно организованные многоклеточные организмы с развитой нейроэндокринпой системой, так как напряжение гипоталамо-гипофиз-адрепокортикальной системы являлось (по Селье) отличительной чертой любого стресса. Развитие науки привело Селье к пониманию того, что каждый стрессор наряду с неспецифическим (стрессорным) действием оказывает и специфическое влияние на реципиентный организм. Взаимодействуя между собой, эти две составляющие могут оказывать существенное влияние друг па друга (Селье, 1960).

В настоящее время конкретное содержание термина "стресс" может существенно отличаться в зависимости от того, на каком уровне изучается реакция: клеточном, организменном или падорганизменном. Этому способствовало обнаружение неспецифических форм адаптивного ответа на стрессоры на уровне единичной клетки. Обнаружение систем генов раннего ответа, белков теплового шока, апоптоза и перекисного окисления липидов наполнило понятие "общего адаптационного синдрома" новым "генетическим" содержанием. Стало формироваться представление о стрессе, как об очень древнем механизме адаптивного ответа на стрессоры окружающей среды, который возник еще у одноклеточных. Значимость стресс-реакции оказалась настолько велика, что определила эволюционный консерватизм ее отдельных звеньев у достаточно далеко отстоящих друг от друга живых организмов. Таким образом, содержание понятия "стресс" непрерывно эволюционировало, расширялись рамки его применения.

Особенно важным оказалось понимание значения внутриклеточного гомеостаза для нормального протекания генетических процессов и, в частности, мутационного (Керкис, 1940; Лобашев, 1947; Хромов-Борисов, 1976). Стало появляться все больше данных о влиянии нейроэндокринной системы на генетические процессы (Лобашев и др., 1973; Лопатина и др., 1975). Изменения уровня хромосомных аберраций в некоторых органах и тканях при адреналэктомии, денервации, гормональных инъекциях доказывали существенное влияние нейроэндокринной системы животных на мутационный процесс. Было показано, что эмоциональный стресс, как особое состояние нейроэндокринной системы, также меняет уровень хромосомных аберраций и, даже, частоту рекомбинации в делящихся клетках некоторых тканей (Середенин, Дурнев, 1980; Бородин, Беляев, 1980). На модели действия феромонального стрессора у домовой мыши было показано, что одним из звеньев стресс-реакции является нарушение стабильности хромосомного аппарата в мейотически делящихся половых клетках самцов (Даев, 1983). Таким образом, все больше и больше данных свидетельствуют о наличии генетических эффектов стресса.

Развитие взглядов на интеграцию внутри единой нейроэндокрппно-иммунной системы, создание новых моделей изучения стресс-реакций и совершенствование методов исследований позволяют по-повому взглянуть на проблему стресса с точки зрения генетики. Для последней крайне важным оказалось понимание того, что результатом действия сильных стрессоров является изменение активности различных генных систем. При этом обнаруживается скрытая генетическая изменчивость. Её можно рассматривать как ещё одну неспецифическую ответную реакцию в ответ па сильное воздействие. Последние данные, однако, позволяют считать, что: качественной отличительной чертой стресса является запуск механизмов, позволяющих не только проявить размах уже существующей генетической изменчивости, но и индуцировать её île novo, оказывая непосредственное влияние на стабильность генетического аппарата соматических и половых клеток. Это способствует появлению дополнительного материала для естественного отбора и ускоряет эволюционный процесс в периоды кардинальных (как общих для всех, так и специфических для каждого организма) изменений окружающей среды.

Особый интерес представляют специфические для каждого вида (или организма, или клетки) стрессоры, которые определяются особенностями биологии этого вида (организма, клетки) и индивидуальными генотипическими различиями. Поиск и эффективное использование таких стрессоров может ускорять и направлять эволюцию живых организмов. В качестве аналога можно привести создание метода селективных сред для культивирования клеток. Его использование привело к быстрому прогрессу в области создания клеточных культур с "заданными" свойствами.

У многоклеточных, с усложнением их организации, появляются новые уровни интеграции механизмов адаптивного ответа па внешнее воздействие. Сложность анализа интегрированного ответа млекопитающих усугубляется частым использованием "комплексных" стрессорпых воздействий. Трудно представить, на сколько разных действующих компонентов можно разложить, например, "доместикацию", "иммобилизацию", или "метод физических нагрузок", которые зависят от конкретных применяемых методов. То же можно отнести и к большинству других часто применяемых в исследовательской работе "стрессорпых" воздействий.

В настоящей работе, исходя из биологии используемого объекта (линии лабораторных мышей), мы пытались изучать некоторые генетические звенья действия специфических стрессоров естественного происхождения, вычленяя из них элементарные действующие факторы (конкретные вещества). В качестве таких стрессоров использовали феромоны - биологически активные вещества, выделяемые организмами во внешнюю среду с хемокоммуникационными целями.

В век научно-технического прогресса комплекс проблем связанных с изучением стресса приобретает огромную актуальность из-за появления в окружающей среде все новых и новых стрессоров, которые, в конце концов, могут вызвать истощение защитных резервов живой материи. В таких условиях изучение всех закономерностей развития стресс-реакции и, особенно, её повреждающего действия па генетический аппарат клеток, становится приоритетным, так как конечным следствием подобных эффектов может быть гибель живых организмов.

Цель и задачи исследования.

Цель работы состояла в комплексном изучении генетических эффектов ольфакторного стресса у лабораторных мышей. Для ее достижения были сформулированы следующие задачи:

1. Разработка модели для изучения генетических эффектов стресса на основе генотипспецифического действия ольфакторных стресс-факторов у домовой мыши.

2. Изучение эффектов ольфакторного стресса в половых и соматических клетках мышей.

3. Оценка влияния ольфакторного стресса на экспрессию генов главных белков мочи мышей и протоонкогенов с-уоу и с-}ип.

4. Изучение природы используемых стресс-факторов и путей их действия на реципиентные организмы у домовой мыши.

5. Выявление взаимосвязи между химической структурой феромоналмюго стрессора и его стрессирующим действием на реципиептпый организм.

6. Оценка влияния используемого стрессора на иммупогепетические характеристики нейтрофилов периферической крови и репродуктивную функцию домовой мыши.

Научная новизна.

Разработана модель для комплексного изучения генетических эффектов "дозированного" ольфакторного стресса в половых и соматических клетках лабораторных мышей. В ней учтены физиологические и генетические особенности объекта. Модель позволяет вести комплексное изучение влияния "элементарного" стрессора у самцов мышей на стадиях гениальных митозов, диакинеза-метафазы I, метафазы II и анафазы II мейоза на стадии апафазы-телофазы в клетках костного мозга без использования колхицина. Она позволяет изучать эффект действия стрессора на стадии зрелых сперматозоидов и оценивать репродуктивную функцию в тесте па доминантные летали. При этом на клетках костного мозга можно оценивать специфичность действия стрессора в зависимости от иола реципиента. Используя очищенные природные или искусственно синтезированные феромоны можно строго дозировать степень стрессорпого воздействия и изучать специфичность их действия.

Впервые показано, что ольфакторный стресс проявляется на генетическом уровне в соматических и половых клетках: индуцируются нарушения митоза и мейоза; меняется экспрессия протоонкогенов п генов главных белков мочи.

Впервые показано, что феромон мыши 2,5-диметилпнразип, действуя через вомероназальный орган, индуцирует нарушения митоза в клетках костного мозга самцов и самок. Его действие меняет локомоторную активность нейтрофилов и степень фагоцитоза, что позволяет говорить об изменении активности работы генов, контролирующих эти процессы.

Цитогепетическими методами впервые проведено сравнение биологической активности нескольких феромонов домовой мыши, а также разных доз 2,5-диметилпиразина.

Впервые с использованием аналогов 2,5-днметплпнразипа продемонстрирована зависимость цитогенетических эффектов в клетках костного мозга мышей от расположения и количества метильных радикалов в пиразиновом кольце.

Теоретическая и практическая значимость.

В работе рассматривается мало исследованная проблема генетических эффектов стресс-реакции у животных. Расширяются представления о механизмах развития стресс-реакции на ольфакторный стимул у мышей. Звеньями стресса являются: изменение экспрессии ряда генов и нарушение стабильности генетического аппарата половых и соматических клеток; модификация иммунологически важных свойств нейтрофилов периферической крови. Все это связано с репродукцией и общей приспособленностью животных.

Полученные данные указывают па необходимость дальнейшего изучения генетических последствий стресса и, особенно, в половых клетках, что может сказываться в последующих поколениях. В условиях резкого возрастания антропогенной нагрузки на окружающую среду, у человека все большую негативную роль играют различные стрессы. Как показывают результаты многих работ, целый ряд важных физиологических признаков у животных регулируется при участии хемокоммуникациоипых механизмов. Однако до последнего времени большинство вопросов в этой области вызывало противоречия и оставалось мало исследованным (Вгеппап, Кеуегпе,

2004; Эи1ас, ТогеИо, 2003). Поэтому, анализ дестабилизирующего действия феромонов на генетический аппарат делящиеся клеток костного мозга и семенников у мышей могут быть особо цепными для лучшего понимания негативных последствий стрессов вообще.

В работе на линиях лабораторных мышеи демонстрируется единство ответа нейроэндокринно-иммунной и репродуктивной систем па феромоналыюе воздействие.

Сопоставление стрессирующего действия ряда феромонов и их аналогов говорит о сложной связи их химической структуры с цитогеиетнческон эффективностью. Примененный в работе подход может быть использован при анализе механизмов специфических взаимодействий между "сигнальной" молекулой и соответствующими рецепторами.

Разработанный на лабораторных мышах подход может быть использован при комплексном анализе генетических эффектов как феромопальпых, так и других стрессоров. Полученные данные могут быть использовапы при разработке методов контроля репродуктивной функции у домовой мыши, при изучении механизмов индукции нарушений клеточных делений, а также для поиска эффективных иммуномодуляторов, действующих через обоняние.

Результаты работы широко используются в учебном процессе па биолого-почвенном факультете СПбГУ, включаются в курсы лекций для студентов других факультетов СПбГУ и других ВУЗов. Часть результатов вошла в учебник "Генетика с основами селекции" (Инге-Вечтомов,1989).

Положения, выносимые на защиту.

1. Обобщение результатов, полученных на модели ольфакторпого стресса у домовой мыши, в совокупности сданными других современных исследований показало, что понятие «стресса» должно включать в себя дестабилизацию работы генетического аппарата половых и соматических клеток у стрессированных животных.

2. Дестабилизация генетического аппарата и нарушение его целостности в делящихся половых и соматических клетках лежат в основе эффектов угнетения репродукции, иммунитета и других изменений, возникающих в ходе развития стресс-реакции.

3. Изменения активности генетического аппарата клеток иммунной и репродуктивной систем (генов, контролирующих фагоцитоз, локомоторную активность нейтрофилов, аитителопродукцию, генов раннего ответа и главных белков мочи мышей) являются составной частью механизма развития стресс-реакции у домовой мыши.

4. В развитии стресс-реакции на феромональное воздействие 2,5-диметилпиразина, выявляемое по повышению уровня нарушений митоза в клетках костного мозга мышей, решающую роль играют метильные радикалы в 2,5- положениях. Действие этого феромона у домовой мыши осуществляется через рецепторы как вомероназального органа, так и обонятельного эпителия.

5. Некоторые феромоны, для которых показана «физиологическая» активность, способны в разной степени дестабилизировать хромосомный аппарат клеток костного мозга у домовой мыши.

6. Феромональный стресс у домовой мыши - это часть консервативного природного механизма адаптивного ответа организма животных на колебания популяционной плотности. Звеном этого механизма являются индуцированные ольфакторными стрессорами цигогенетические изменения, которые снижают общую приспособленность стрессированных животных и влияют на количество и качество рождающегося у них потомства, таким образом, внося свой вклад в микроэволюционные процессы.

Апробация работы.

Основные материалы диссертации были представлены па: 2-м и 3-м съездах Вавиловского общества генетиков и селекционеров (СПб, 2000; М., 2004); на 8-й Международной мультидисциплинарной конференции по биологической психиатрии «Стресс и поведение» (СПб, 2004); на 2-й конференции МОГиС «Актуальные проблемы генетики» (М., 2003); па Международном симпозиуме, посвященном 150-летию И.П.Павлова "Молекулярно-генетические механизмы адаптивного поведения" (СПб, 1999); на 8-ой Международной конференции "Химические сигналы у позвоночных" (Итака, США, 1997); на 27-ой Международной конференции по репродуктивному поведению (Бостон, США, 1995); па 1-м Всемирном Конгрессе по стрессу (Bethesda, США, 1994); па 4-м Европейском конгрессе по клеточной биологии (Прага, 1994); на Всемирном конгрессе по ландшафтной экологии (Оттава, Канада, 1991); на 19-м Ежегодном совещании EEMS (Родос, Греция, 1989); на 14-м Ежегодном совещании EEMS (Москва, 1984); в трудах ещё более чем 20 Всероссийских и других съездов, совещаний, конференций.

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 23 статьи в отечественных и зарубежных изданиях.

Структура и объем диссертации.

Диссертация состоит из введения, списка сокращений, 3 глав обзора литературы, 2 глав, описывающих материалы и методы, 3 глав, содержащих результаты и их обсуждение, заключения, выводов и библиографии. Работа изложена на 280 страницах машинописного текста, включает 37 таблиц и 29 рисунков. Список цитированной литературы представлен 674 источниками.

Заключение диссертации по теме «Генетика», Даев, Евгений Владиславович

V. ВЫВОДЫ.

I. Разработана модель для изучения действия феромонов па мптотнчсскн и мейотнчеекп делящиеся клетки у домовой мыши. С ее помощью произведена оценка ряда функциональных показателей пммупокомиетентпых клеток, выявлены новые физполого-гепетпчеекпе эффекты хемокоммуинкацноипых сигналов.

Установлено, что дестабилизация генетического аппарата делящихся клеток семенников п костного мозга лежит в основе угнетения иммунной и репродуктивной систем, что является неотъемлемым звеном развития стресс-реакции в ответ па специфические фсромональпые воздействия у домовой мыши. Выявлены межлпнейные различия по частоте индуцируемых феромонами хромосомных аберрации.

Степень ответа па фсромональпые стрессоры зависит от генотипа, возраста и пола доноров п реципиентов п особенностей применяемого стрессора.

Выявлено изменение экспрессии протоопкогепов с^оя и с-]ш1, в клетках семенников после фсромопалыюго воздействия.

Показана активация реакций иерекиспого окисления липидов в тканях костного мозга и семенников у самцов домовой мыши после фсромопалыюго воздействия.

Обнаружена связь конкретных фракций главных белков мочи мышей с цптогепетпческой активностью используемых стресс-факторов. Показано изменение в характере экскреции главных белков мочи самцами мышей после «группировки» - стрессора зоосоцнальной природы, включающего феромопальиую составляющую.

Выявлены модификации ряда функциональных характеристик иммунокомнетентпых клеток крови (подвижности иейтрофнлов, фагоцитарной активности лейкоцитов, количества антптелообразующих клеток) у самцов мышей после феромональных воздействий, зависящие от используемой линии мышей.

8. Ольфакторнып стресс, вызванный 2,5-димстплппразппом нндуцпрует доминантные летали в потомстве стресспровапных самцов мышей, что отражает снижение общей приспособленности как стресспровапных животных, так и пх потомства. Степень индукции зависит от используемой лпппн животных.

9. Показано, что действие феромона 2,5-дпметплппразппа у домовой мыши осуществляется параллельно через вомероиазальпый орган и через обонятельный эпителий носовой полости.

10. Обнаружены различия по эффективности действия ряда феромонов (лактола, фарпсзепов, 2,5-диметнлппразппа и 2,3,5-трпметплппразнпа) в делящихся клетках костного мозга самцов мышей. Показано, что 2,5-положение метпльиых радикалов в ппразпиовом кольце является решающим для индукции митотических нарушений в клетках костного мозга феромоном самок - 2,5-диметилинразином.

11. Сформулирована гипотеза о феромопальпом стрессе у домовой мыши как части консервативного природного механизма адаптивного ответа организма животных па колебания популяцноппой плотности, который дестабилизирует работу генетического аппарата половых и соматических клеток и увеличивает de novo разнообразие рождающегося потомства, тем самым, внося свой вклад в мпкроэволюцноппые процессы.

IV. ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

Переходя к обобщению изложенных в предыдущих разделах данных (Рпе. 27), следует в первую очередь остановиться па перспективности использования модели феромонального стрссспровапия липни лабораторных мышеи для фундаментальных исследовании.

Ольфакторпая сигнализация - это постоянно работающий природный механизм взаимодействия живого организма с окружающей средой, существенным компонентом которой являются другие живые организмы. Применение стрессоров зоосоцналыюй природы, таких как феромоны, позволяет лучше попять механизмы топких межоргапизмеппых взаимоотношений в природных популяциях грызунов па разных уровнях организации (от геномного до популяциоипого).

Первой мншепыо любого внешнего фактора являются соответствующие рецепторпые клетки и псйро-эпдокрнппо-нммупиая система организма. Любой внешний фактор может превратиться в стрессор, если его действие (в силу чрезмерной силы, длительности пли каких-то других особенностей) приводит к нарушению гомеостаза организма. В первую очередь, это касается изменений в самых чувствительных клетках, которые быстрее тратят свои резервы па поддержание стабильного состояния организма. Последнее возможно только в пределах нормы реакции конкретного генотипа. Исходя из нашего понимания стрессора, как фактора, с которым организм (его самые чувствительные клетки) не в состоянии справиться в пределах нормы реакции генотипа (подробнее - см. раздел 1.4 «Обзора лптратуры»), в ткаиях-мншенях, па которые направлено конкретное воздействие, должен возникать «аномальный» песпецпфнческпй ответ генетического аппарата клеток.

Используемая памп модель позволяет выявить такой ответ в виде повышения уровня хромосомных аберраций разных типов в клетках костного мозга н семенников самцов лабораторных мышей. Цитогепетическпе изменения обнаружены также п в тканях мозга животных после эмоциопальпо-болсвых воздействий (Быковская и др., 1994; Дюжпкова и др., 2003), что подтверждает предположение о связи изменении в генетическом аппарате клеток-мишеней со стресс-реакцией на оргаипзмеппом уровне.

После феромопальных воздействии в семенниках, как и в тканях ольфакторных луковиц (вио сЧ а!., 1997; БсЬеШпск сЧ а1., 1993), выявляются изменения активности с-/оя п с>/'/ш. Также, по-видимому, меняется п характер экспрессии генов Мир'я, что косвенно подтверждается работами других авторов (Новиков, 2003; Веупоп, Нш^, 2003;2004). Возможно, именно изменения такого рода являются у мышей, а, возможно, п у других видов животных, первыми признаками феромоиальпого стресса па клеточном п тканевом уровнях. Оргаипзмепный стресс развивается, когда стрессор индуцирует изменения в достаточно большом количестве клеток органа (ткани) - мишени. При этом основная связующая роль в развитии стресса принадлежит центральной нервной системе, клетки которой сами являются одними из первых мишеней действия стрессоров. Развитие стресс-реакции на организменпом уровне, в зависимости от числа стресснрованпых животных, приводит к популяцпоппому стрессу.

Преимуществами, по крайней мере, некоторых феромопальных сигналов является изученность их химической структуры, что позволяет, с одной стороны - дозирован, стрессовое воздействие, а с другой - изучать молекулярные механизмы взаимодействия «стрессор-рецептор» (Возке-! е! а!., 1992; ЫоуоШу, 2003; 811агго\у е1 а!., 2002). Гак, сопоставление биологического действия нескольких структурно близких к уже известному феромону химических соединений позволяет искан, корреляции типа «молекулярная структура соединения - биологический эффект» и делать выводы о строении соответствующего рецептора. При поиске биологически активных веществ, действующих па организм через обоняние, такой подход может оказаться крайне перспективным. Полученные памп данные указывают на возможность обнаружения пммупомодуляторов и модификаторов сперматогенеза среди молекул структурно сходных с некоторыми феромонами домовой мыши.

Использование модели феромоналыюго стресспровапия позволяет четко продемонстрировать взаимосвязь стресс-реакции организма со стабильностью хромосомного аппарата генеративных и соматических клеток животных-реципиентов (Даев, 1994). В зависимости от режима стрессироваппя (однократное или многократное воздействие, краткосрочное пли долгосрочное) меняется степень выраженности ответа па феромопальпыи стрессор. Показано, что при определенных режимах воздействия может развиваться адаптация, выражающаяся в снижении частоты индуцируемых митотическнх и меиотпчееких нарушении (Цапыгпиа и др., 1981).

Взаимосвязь стресса со стабильностью хромосомного аппарата соматических клеток выявлена и с помощью некоторых других моделей. Так, панрпмер, на крысах показано, что длительный шумовой стресс приводит к повышению уровней сестринских хроматидиых обменов и хромосомных аберрации, что указывает па гепотокспческпП эффект психогенных стрессов. Однако в этих экспериментах уровень нарушении повышался как у контрольных, так н у гнпофизэктомнрованпых и ложиооперпроваппых животных. Это, по мпепшо авторов, указывает на участие в формировании генотоксического эффекта стресса не ГГАС (по-краппей мере, не только ГГАС, - прим. автора), а каких-то иных механизмов (Fischman, Kelly, 1999). Как уже отмечалось ранее, эмоцпопалыю-болевоп стресс у крыс приводит к изменениям структуры хроматина в клетках нейронов гпииокампа и повышению уровня хромосомных аберрации в клетках костного мозга (Быковская п др., 1994; Дюжнкова п др., 1996). Тем не менее, феромональпые воздействия, сходные с таковыми в естественных условиях, на наш взгляд, более адекватны действующим в природе стрессорам (чем, например, электрический ток, иммобилизация или шум). Не исключено также, что феромоны действуют сходным образом па клетки не только животных, по и человека (Barni el al., 1999; Marlins et al., 2005).

0СП01ШЫЕ ПОЛУЧЕННЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ азраоотапа модель изучения ольфакторпых воздействий на иммунологические и ренродуктивно важные характерист ики у домовой мыши, с помощью которой показано, что:

I вменяется характер перекиспого окисления липидов

Стресенрутощее действие феромонов зависит от пола п генотипа как животных - доноров, так п реципиентов

11идуцпруется экспрессия c-fos il c-jiiii в семенниках

Исчезает норадрепалии в нервных окончаниях тупики семенников

Эффективност ь действия феромонов снижается после удаления BIЮ

Изучение природы используемых стрессоров позволяет говорить, что ими являются летучие вещества, связанные с главными белками мочи. Их структурные особенности и, по-видимому, размер определяют наличие биологической активности

Изменяется картина экскреции ГБМ

Возрастает уровень хромосомных аберраций в мит отчески делящихся клетках (костный мозг) у самцов и самок

Снижается подвижность пейтрофплов периферической крови

Стимулируется фагоцитоз

Возрастает уровень хромосомных аберраций в снерматоцитах I п II

Возрастает частота аномалий головок снсрмнсв

Снижается вес семенников

Снижается оплодотворяемость самок

Возрастает частота доминант ных легален в потомстве стрессировапных самцов 3

Рис. 27. Основные полученные результаты.

1- характеристики, относящиеся к механизмам и путям действия феромонов;

2- характеристики влияния феромонов на иммунную систему; 3- характеристики отражающие влияние феромонов на репродукцию. В последних экспериментах выявлено также снижение количества антителопродуцпрующнх клеток селезенки у самцов-рецнниеитов и геиопшспецифическнс поведенческие сдвиги при действии феромонов (Даев и др., 2005). П>М - главные белки мочи. ВИС) - вомероиазальный орган.

Следует отметить, что данные о половой специфичности экскреции и рецепции феромонов достаточно хорошо описаны (Johnson et al., 1995; Payne et al., 2001; Wersinger, Rissman, 2000). Применение апа-телофазпого метода при анализе клеток костного мозга мышеи позволяет проводить сравнительные исследования цитогеиетнческих эффектов действия феромонов в зависимости от пола. Выявленные памп впервые различия индуцирующего действия хемосигпалов па частоту мптотпчеекпх нарушении у животных разного пола (табл. 16 и 18) хорошо объясняются разным гормональным статусом последних, разницей состава их ГБМ и, следовательно, как разным составом феромонов, так п соответствующих им рецепторов у самцов н самок мышеи.

Очевидно, что наблюдаемые в костном мозге цптогепетичеекпе изменения можно связать с иммуномодулирующпм действием феромонов (Даев и др., 2000; 2001) и с выявленной нами феромоиалыю индуцированной иммуносупрессиеи (Даев н др., 2005). Подавление аптителопродуцирующеи способности самцов мышеи после феромоиальпых воздействии коррелируют с повышением уровня митотичеекпх нарушении в клетках костного мозга стрессироваппых особен-рецппиептов. Наблюдаемые нами эффекты в клетках-мишенях костного мозга н периферической крови стрессироваппых животных могут быть также обусловлены влиянием феромонов па активность глюкокортикондов п синтез иитерлеикипов (Кагр et al., 1994; Moynihan et al., 1994).

Аналогично, индукция цптогеиетпчеекпх нарушении в сперматоцнтах 1 и II, а также аномалии головок снермпев, коррелирует с угнетением репродукции, критерием чего является повышение уровня индуцированных доминантных летал ей в потомстве феромоиалыю стрессироваппых самцов мышеи (Даев, 2003; Даев, Дукельская, 2004). Выявленные памп эффекты в генеративных клетках показывают влияние ольфакторпо индуцированного стресса па мепоз, формирование сперматозоидов и фертильпость животных. Эти данные хорошо согласуются сданными о связи степени конденсации

ХЕМОСИГПАЛЫ ДОПОРОВ л Л я Л л

ЕЦППТОРЫ ВПО/ОЛ РЕЦИПИЕНТОВ

-а

ЗА11УСК РЕАКЦИИ КАСКАДА С1II I1АЛЫ1011 ТРА11СДУК11ШI, IГЗМЕ11Ш1ИЕ ПР01 II1ЦАЕМОСП1 МЕМ1>РА11. »031II1К1ЮВЕ1II1Н ЭЛЕКТРИЧЕСКОГО СИГНАЛА В КЛЕТКАХ РЕФЛЕКТОРНОМ ДУГИ тг

ИЗМЕНЕНИЯ ВЭЭГ. И В ПОВЕДЕНИИ и О хг

ИЗМЕНЕНИЯ В АКТИВНОСТИ ГЕНОВ РАННЕГО И ПОЗДНЕГО ОТВЕТА

ФОРМИРОВАНИЕ АДАПТИВНОГО ПОВЕДЕНЧЕСКОГО ОТВЕТА

ФОРМИРОВА11ИЕ АДАПТИВНОГО В11УТРИОРГА11ИЗМЕ1ИЮГО ОТВЕТА

ТГ

ТГ

В КЛЕТКАХ ИММУННОЙ СИСТЕМЫ (костном мозге, макрофагах)

КЛЕТКАХ РЕПРОДУКТИВНОЙ СИСТЕМЫ (гоинях, сперматоцитах)

НЕВОЗМОЖНОСТЬ ФОРМИРОВАНИЯ АДАПТИВНОГО ОТВЕТА (например, при высокой плотности популяции)

ТГ

СТРЕСС

5Г

ТТ

НАРУШЕНИЕ РАБОТЫ

ГЕНЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА П0Л0ВБ1Х КЛЕТОК и

НАРУШЕНИЕ РАБОТЫ

ГЕНЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА КЛЕТОК КОСТНОГО МОЗГА И

УГНЕТЕНИЕ РАБОТЫ ИММУШЮИ И Р Е П РОД У КТ И В Н О Й С И СГ ЕIV!

Рис. 28. Предполагаемый пун» ответа рецпппептпого организма па феромопальное воздействие. хроматина в спермиях, их морфологии и фсртильпостп спермы человека (Estcrhuizcnl et al., 2002).

Таким образом, проведенные эксперименты в совокупности с анализом данных литературы позволяют предполагать пути действия используемых хемоспгналов на генетический аппарат клеток мишеней (Рис. 28). Используемый подход вскрывает генетические механизмы, лежащие в основе описанных еще Г.Селье эффектов подавления репродукции и иммунитета при стрессе. Данные цптогепетнческого анализа п другие, полученные в полевых условиях для мышей и полевок (Dmilriev el al., 1997; Massey, Vandenbergh, 1980; 1981) позволяют лучше представить, какую роль выявленные памп феромопальпые эффекты играют в мнкроэволюцнопиых процессах, происходящих в популяциях домовой MI,шш (Рис.29).

Обобщая полученные в настоящей работе данные с результатами некоторых работ других исследователей (Новиков, 1990; Lee, McDonald, 1985), можно сформулировать гипотезу о феромоиальной авторегуляцнп мпкроэволюцнонного процесса у домовой мыши.

Основные положения этой гипотезы сводятся к следующему:

Гипотеза о фсромопалмюм механизме авторсгулицпп мпкроэнолюпиоппого процесса у домовой мыши.

1. С ростом популяцноипой плотности возрастает концентрация химических сигналов, выделяемых животными в окружающую среду. При этом может меняться и качественный состав экскретпруемых феромонов.

2. Изменения в количестве и качестве «сигнальных» феромонов приводят к разнообразным поведенческим изменениям (территориальное, агрессивное, половое, материнское и др. формы поведения). Это отражается па избирательности скрещивании, гомозиготнзацин демов, генотипспецифнческои миграции и др. процессах, отражающихся на генетической структуре популяций домовой мыши.

Изменения в составе и концентрации «праймер»-феромоиов приводят к глубоким пейро-эидокрпппым сдвигам (стресс-реакции) в организме жнвотпых-рецппиептов. Эти сдвиги, являясь следствием регуляторпого влияния феромонов на активность соответствующих генных сетей «раннего ответа», индуцируют па генетическом уровне целый спектр более поздних взаимосвязанных изменении. При этом, изменения носят как регуляторпый, так п мутационный характер. В результате такого действия наблюдается ряд иммуиомодулпрующих эффектов, в частности, угнетается аптителопродукцня и репродуктивная функция. При этом дестабилизируется работа генетического аппарата делящихся клеток, что выражается в первую очередь в увеличении уровня хромосомных аберраций в клетках костного мозга н семенников мышей. Возрастание генетической изменчивости в половых клетках самцов домовой мыши с одной стороны снижает качество спермы, что отражается в увеличении частоты индуцированных домппаптпых легален. С другой стороны, повышается изменчивость рождающегося потомства, как за счет влияния стресса па процессы кроссипговера (Бородин, Беляев, 1980; 1986), так н за счет мутационных изменений, возникающих ile novo в половых клетках родительского поколения.

Таким образом, в популяциях домовой мыши возникают плотпостпо-зависимые изменения генетического разнообразия н общей приспособленности животных. Можно полагать, что в периоды высокой популяциоиной плотности специфические хемосигналы индуцируют падение обшей приспособленности животных (угнетение пммупптета и репродукции). В тоже время возрастает как комбинаторная, так и мутационная генетическая изменчивость. Генотип- и поло- специфическое действие хемокоммуипкациоппых механизмов еще больше усиливает генетическое разнообразие, являющееся материалом для естественного отбора. При низких популяцпопиых плотностях данные феромоиальпые эффекты не проявляются (Рпс. 29).

7. Наличие подобного природного механизма саморегуляции плотности популяций п скорости мнкроэволюцпоппых преобразований у домовой мыши позволяет предполагать существование аналогичных (а иногда и гомологичных) регуляторпых систем у других видов млекопитающих, не исключая и человека.

Проблема взаимосвязи геномного, клеточного п оргаипзмеипого уровней развития стресс-реакции до сих пор остается малоисследованной (Маркель, 2000). Исследования па дрозофиле предполагают существование единого «централизованного» механизма генетического контроля развития стресс-реакции, однако пока пе выяснено, что оп собой представляет(Раушепбах и др., 2000). Тем пе менее, становится всё более понятно, что стресс является «важнейшим модусом эволюции, её фактором» (Беляев, 1979), выявляя уже существующую (по, до поры скрытую) генетическую изменчивость. При этом изменчивость может возрастать ещё и за счет изменений частоты кросспнговера в половых клетках (Бородин, Беляев, 1980; 1986).

- оптимальная млотиос! 1> популяции мы1ш й

-'•■" | - копщ:н11'лция ччл'омоиои к окгужающг.й < н;д| -н - ш-.жиз1и:сп{к:оы1()|. потомспю

Прем я

Рис. 29. Схематическое представление гипотезы о феромональном механизме влияния популяционной плотности на микроэволюционные преобразования у домовой мыши.

Концентрация феромонов в окружающей среде возрастает по мере увеличения плотности популяций. При этом меняется и их качественный состав: начинается синтез дополнительных активно действующих феромонов (например, 2,5-ДМП). Начинается индукция хромосомных аберраций в половых клетках самцов, что снижает их плодовитость. Одновременно, угнетается иммунитет и падает общая приспособленность животных. Однако, феромональный стресс увеличивает генетическое разнообразие выжившего потомства, а снижение численности приводит к ситуации «бутылочного горлышка». Т.о., создаются условия для дивергенции и изменения генетической структуры будущих популяций домовой мыши. Разные типы линий указывают на возникающие генетические различия выживающих животных, дающие начало собственно микроэволюционпому процессу.

Разработанная в данном исследовании модель, в которой были использованы лабораторные мыши разных генотипов, различные феромональпые стресс-факторы в сочетании с ннтогепетпческимп и другими методами анализа, позволила выявить в развитии стресс-реакции па органпзмепном уровне генетическую составляющую. Она проявляется как нарушение целостности и изменение режима работы генетического аппарата клеток-мишеней. Таким образом, речь идет об отдельных звеньях «геномного стресса» (Маркель, 2000), который первичен по отношению к проявлению стресс-реакции па оргапизмеппом п популяцпонпом уровнях.

Полученные результаты отчасти схожи с индуцированным SOS-мутагенезом у бактерии (Walker, 1995) и лежат и русле представлении о ненаправленном «гппермутагепезе», который индуцируется действием различных стрессоров (Bridges, 1997; Lenski, Mitler, 1993).

Нет сомнения, что совершенствование современных молекулярно-геиетпческих и других методов исследований позволит более эффективно изучать взаимосвязь между геномным, клеточным, оргапизменпым и иоиуляцпопиым механизмами развития стресс-реакции у млекопитающих. Использование гепотипспецифических ольфакторпых воздействий па домовой мыши в качестве инструмента исследований поможет вскрыть роль хемокоммуинкацноипых стрессоров в мнкроэволюцноипых преобразованиях.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Даев, Евгений Владиславович, 2006 год

1. Агаджаиов М.И. (отв. ред.). Перекиспое окисление лннпдов в норме н патогенезе различных заболевании// Ереван: Айастаи. 1988. 142 с.

2. Аграновская E.H., Иванова Е.Т., Григорьева С.К. и др. Уровень п динамика секреторных антител п Ig в верхних и нижних отделах дыхательных путей. В кн.: Острые респираторные заболевания и острые пневмонии у взрослых// Л.: Медицина. 1975. С. 44-45.

3. Айала Ф., Кайгер Д. Современная генетика. М.: Мир. Т.З. 1988. 335 с.

4. Арефьев A.A., Даев Е.В., Каидапов Л.З., Лопатина II.Г., Новиков С.II. Аномальный сперматогенез у лабораторных мышей после воздействия летучими соединениями, содержащимися в моче половозрелых самцов// Докл. АН СССР. 1986. Т.291. С. 1257-1259.

5. Аршавскпй H.A. Механизмы и особенности физиологического и патологического стресса в различные возрастные периоды// В сб.: Актуальные проблемы стресса. Кишинев: Штппнна. 1976. С. 5-23.

6. Аслапяп М.М., Глотов II.В., Кузнецова О.В., Соломатнн В.М., Яиушевич С.И. Большой практикум по генетике животных и растений // М.: Изд-во МГУ. 1977. 135 с.

7. Бабков В.В. Линия Дарвина и линия Бэра в русской теоретической биологии // В сб.: Современные концепции эволюционной генетики. Новосибирск: Изд-во ИЦиГ СО РАН, 2000. С. 33-59.

8. Барабой В.А., Брехмап И.II., Голотнп В.Г., Кудряшов Ю.Б. Перекиспое окисление п стресс// СПб.: Наука. 1992. 148 с.

9. Беляев Д.К. Дестабилизирующий отбор как фактор изменчивости при доместикации животных// Природа. 1979. №2. С.36-45.

10. Беляев Д.К., Бородпп П.М. Влияние стресса па наследственную изменчивость п его роль в эволюции// В сб.: Эволюционная генетика. JI.: Изд-во ЛГУ. 1982. С.35-59.

11. Бобрипев П.В., Ревазова 10.А. Статистический анализ и планирование экспериментов в тесте па индукцию аномальных спермпев у мышей // Генетика. 1985. T. XXI. С.54-59.

12. Блаидова З.К., Душкин В.А., Малашепко А.М., Шмидт У.Ф. Липни лабораторных животных для медико-биологических исследований // М.: Паука. 1983. 191 с.

13. Бородин U.M., Беляев Д.К. Влияние стресса па частоту кроссппговера во 2-ой хромосоме домовой мыши// Докл. АН СССР. 1980. Т.253. №3. С.727-729.

14. Бородпп U.M., Беляев Д.К. Влияние эмоционального стресса па частоту рекомбинаций в 1-й хромосоме домовой мыши// Докл. АН СССР. 1986. Т.286. №3. С.726-728.

15. Бурпашева С.А., Габаева U.C., Данилова Л.В., Князева ILO., Костомарова

16. A.A., Райцппа С.С. Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука, 1982.259 с.

17. Быков В.Л. Частная гистология человека// СПб.: Сотпс.1999. С.3-155.

18. Быкова В.П. Лпмфоэиитслпальиые органы в системе местного иммунитета слизистых оболочек// Арх. иатол. 1995. Т.20. С. 11-16.

19. Вайдо А.И., Дюжикова H.A., Ширяева II.В., Соколова H.IL, Вшнвцева

20. B.В. Эпигенетические механизмы долгосрочных эффектов стресса// В сб.трудов 111-го съезда ВОГиС «Генетика в XXI веке: современное состояние п перспективы развития». М., 2004. Т. 1. С. 10.

21. Васильева Л.Д., Ратиер В.А., Бубеищпкова Е.В. Стрессовая ппдукцня транспозиции ретротрапспозопов дрозофилы: реальность явления, характерные особенности и возможная роль в быстрой эволюции// Генетика. 1997. Т.ЗЗ. С. 1083-1093.

22. Вейсмап ПЛ., Худ Л.Е., Вуд У.Б. Введение в иммуиологшо // М.: Высшая школа. 1983.160 с.

23. Вельков В.В. Новые представления о молекулярных механизмах эволюции: стресс повышает генетическое разнообразие// Мол.Биол. 2002. Т.36.№2. С.277-286.

24. Владимиров Ю.А., Олепев В.И., Суслова Т.Б., Потапенко А.Ж Механизм перекпсного окпслеипя липидов п его действие па биологические мембраны // Итоги науки и техники. 1975. Т.5. С.56-117.

25. Воробьев К.В., Ганковская Л.В., Ковальчук Л.В., Шабанова Л.Ф. Межлипейные различия у мышей в выработке фактора, угнетающего миграцию, па антигены Candida albicans // Бюлл. эксиерпм. биол. мед. 1983. № 10. С. 80-82.

26. Воробьев К.В. Роль генетических и клеточных механизмов в регуляпип выработки фактора, угнетающего миграцию макрофагов, у мышеи разных линий на антигены Candida albicans: дне. . канд. биол. паук. М.: Ин-т иммунологии МЗ СССР, 1985. 162 с.

27. Глотов П.В., Животовский Л.А., Ховапов 11.В., Хромов-Борисов 11.11. Биометрия //Л.: Изд-во ЛГУ. 1982. 264 с.

28. Голубовский М.Д. Век генетики: эволюция идей и понятий// СПб.: Борей Арт. 2000. 262 с.

29. Даев Е. В. Нарушения мейоза у молодых самцов домовых мышей при воздействии экзогенными метаболитами половозрелых животных // Зоол. жури. 1982. Т. 61. №8. С. 1269-1271.

30. Даев Е. В. ФсромопальпыП контроль теистических процессов: исследования па домовой мыши (Mus miisculus L.) // Генетика. 1994. Т.30. С.1105-1112.

31. Даев Е.В. действие экзогенных метаболитов па цитогепетпческпе характеристики сперматогенеза п репродуктивную функцию самцов домовой мыши// Дпсс. канд. паук. JI. 1983. 125 с.

32. Даев Е.В. Индукция доминантных легален в потомстве самцов мышей линии СВА после феромональпого воздействия. Генетика. 2003. Т.39. Г10. С. 1347-1352.

33. Даев Е.В., Дукельская A.B. Индукция аномалий спермпевых головок у половозрелых самцов мышей липни СВА феромоном самок мышей 2,5-дпметнлпнразином // Генетика. 2003. Т.39. № 7. С.969-974.

34. Даев Е.В., Дукельская A.B. Влияние феромона самок мышей 2,5-днметилпнразииа на репродуктивные характеристики самцов мышей линии C57BL/6 // Экологическая генетика. 2004. Т.2. №1. С.44-49.

35. Даев Е.В., Дукельская A.B. Индукция мейотнческих нарушений в сперматоцитах I как механизм угнетения репродуктивной функции феромонами самцов домовой мыши// Цитология. 2005. Т.47. №4. С.505-509.

36. Даев Е. В., Полуехипа Е. В. Цнтогепетическпп эффект действия летучих компонентов мочи половозрелых животных па клетках костного мозга молодых самок у домовой мыши (Mus musatliis L.) // Генетика. 1996. T. 32. №3. С. 411-414.

37. Даев Е.В., Свердлова О JI. Меж- и впутрплнпейиый полиморфизм по белковым компонентам мочи самцов лабораторных мышеи // 6-й съезд ВОГпС: Тез. докл. Минск, 1992.

38. Даев Е.В., Свердлова O.JI. Изучеппе феромопалыюп индукции цптогепетпческих нарушений в зависимости от состава главных белков мочи у самцов лабораторных мышей // Генетика. 2002. Т.38. № 2. С. 190195.

39. Даев Е. В., Цапыгпна Р. И. Влияние феромональиых воздействий на репродуктивную функцию у самцов домовой мыши // 5-й съезд ВОГпС: Тез. докл. М., 1987. Т. 1.С. 74.

40. Даев Е.В., Воробьев К.В., Зимина С.А. Ольфакторпый стресс и модификация фагоцитоза в клетках периферической крови половозрелых самцов мышеи // Цитология. 2001. Т.43(10). С. 954-960.

41. Даев Е. В., Цаныгнна Р. И., Лопатина 11. Г. Частота доминантных детален в потомстве молодых самцов домовой мыши (Mus nnisculus L.) после воздействия экскреторными продуктами половозрелых самцов того же вида // Генетика. 1988. Т. 24. С.2015-2021.

42. Даев Е. В., Свердлова О. Л., Мацкевнч O.A., Аптошок Е. В. Цптогеиетпческпе эффекты феромонов в клетках костного мозга у самцов домовой мыши (Mus nnisculus L.) // Генетика. 1995. T.3I С. 632-636.

43. Дарвин Ч. Происхождение видов (Дворяикпп Ф.А., ред.)// М.: Гос. пзд-во сельхозлптературы. 1952. С. 227.

44. Дюжпкова H.A. Особенности действия феромонов па агрессивное поведение у самцов мышей лабораторных линий// Дпсс. канд. паук. JI. 1991. 1. с.

45. Дыосберп Д. А. Поведение животных. Сравнительные аспекты // М.: Мир. 1981.479 с.

46. Ильинских М.П., Ильинских И.П., Бочаров Е.Ф. Цптогепетичеекпй гомеостаз п иммунитет// Новосибирск: Наука. 1986. 256 с.

47. Ипге-Вечтомов С.Г. Генетика с основами сслекнни//М.: Высш. шк. 1989. 591 с.

48. Кайдапов Л.З. Генетика популяций. М.: Высш. шк. 1996. 320 с.

49. Кайдапов Л.З., Лучникова П.М. Физиолого-гепетические основы мнкроэволюцнн// В сб: Физиологическая генетика. М.: Медицина. 1976. С 254-302.

50. Каллис Х.А. Среда как генератор адаптивных изменений// В сб.: Современные концепции эволюционной гепстнкн. Новосибирск: ИЦиГ СО РАН. 2000. С. 168-174.

51. Камышев II.Г., Савватссва Е.В., Поиомареико В.В. О псйро-гормональных факторах регуляции генетических и цнтогенетических процессов// В кн.: (физиологическая генетика и генетика поведения. JI.: Паука. 1981.359 с.

52. Кассиль Г.Н. Некоторые гуморально-гормопальиые и барьерные механизмы стресса// В сб.: Актуальные проблемы стресса. Кишинев: Штпиица. 1976. С. 100-115.

53. Керкпс Ю.Я. Физиологические изменения в клетке как причина мутационного процесса// Усп. совр. бнол. 1940. № I. С. 344-350.

54. Керкпс 10.Я., Скорова C.B. О факторах, контролирующих интенсивность спонтанного мутационного процесса// Информ. бюлл. научного совета по проблемам радиобиологии. 1977. № 20. С.51-52.

55. Кириллова Г.А., Тихонович И.А., Петрова Т.М., (Фадеева Т.С. Определение цнтогепетн чес кого эффекта пестицидов путем учета индуцированных хромосомных перестроек в меристеме корешков ячменя: методические указания // Л.: Изд-во ЛГУ. 1983. 30 с.

56. Кнршеиблат Я.Д. Телергопы химические средства воздействия животных//М.: Наука. 1968. 107 с.

57. Ковалевский К.Л. Лабораторное животноводство// М.: Мсдгиз. 1958. 30 с.

58. Ковальчук Л.В., Гаиковская Л.В., Марпошев A.B. 11овые представления о природе фактора угнетения миграции макрофвгов: гормон с активностью нммуноцнтокнна //Жури, микробиол. 1996. №. 6. С. 91-94.

59. Корогодни В.И., Корогодина B.J1. Информация как основа жизни // Дубна: Феникс. 2000. 208 с.

60. Котенкова Е.В., Мешкова H.H., Шутова М.И. О крысах и мышах// Москва: Наука. 1989. 174 с.

61. Лебедев К.Д., Понякипа И.Д. Иммунограмма в клинической практике. М., Наука. 1990. С. 75.

62. Лекявичус Р.К., Журков B.C., Ревазова Ю.А., Соколовский В.В., Моркунас В.К., Побрипев П.В., Радчеико JI.H. Аномалии головок спермнсв как тест-метод для оценки активности мутагенов среды. Методические указания//Вильнюс. 1983. 13с.

63. Литвинова Е.А. Модификация поведения и хемоснгиалов у самцов мышей (Mus musculus) лабораторной линии ICR и джуигарских хомячков (Phoílopus sungorus) при активации специфического иммунитета. Автореф. дпсс. канд. паук. Новосибирск. 2004. 16 с.

64. Лобашев М.Е. Физиологическая (парапекротическая) гипотеза мутационного процесса// Вести. Леппигр. Ун-та. 1947. №8. С. 10-29.

65. Лобашев М.Е. Физиологическая гипотеза мутационного процесса // Исследования по генетике. Л.: Изд-во ЛГУ, 1976. Выи.6. С.3-14.

66. Лобашев М.Е., Поиомаренко В.В., Полянская Г.Г., Цапыгпиа Р.И. О роли нервной системы в регуляции различных генетических и цитогепетнческпх процессов// Жури. эвол. бнохим. и физпол. 1973. Т.9. №4. С.396-406.

67. Лопатина II.Г., Поиомаренко В.В., Смирнова Г.П. Гипотеза нервной регуляции процесса реализации наследственной информации// В сб.: Проблемы высшей нервной деятельности и нейрофизиологии. Л.: Паука. 1975.С.107-121.

68. Макаров В.П., Сафроиов В.В. Цнтогепетические методы анализа хромосом // М.: Паука. 1978. 85 с.

69. Мамон JI.А. Взаимоотношения между ядерно-нптоплазматпмескпм траппортом и расхождением хромосом// Цитология. 2005. Т.47. № 3. С.263-276.

70. Маргулис H.A., Гужова И.В. Белки стресса в эукарпотпческои клетке// Цитология. 2000. Т.42. №4ю С.323-342.

71. Марксль А.Л. Стресс и эволюция: концепция Д.К.Беляева и ее развитие// В сб.: Современные концепции эволюционной генетики. Новосибирск: ИЦиГСО РАН. 2000. С. 103-114.

72. Мптюшов М.И., Шаляпина В.Г., Ракпцкая В.В., Филаретов A.A. Гипоталампмеская п экстрагнпоталамическая регуляция эндокринного компонента реакции стресс// В сб.: Актуальные проблемы стресса. Кишинев: Штиинца. 1976. С. 186-200.

73. Михеев B.C., Болопипа В.П., Горбачев А.Г. Эффект иммобилизации простатплена в поливиниловом спирте у мышеи // Генетика. 1992. Т.28. С.80-84.

74. Мошкин М.П. Популяцноппая физиология и этология млекопитающих и птиц в проектах РФФИ// Вестник РФФИ. 2000. №3. С.5-17.

75. Наумеико Е.В., Осадчук A.B., Серова Л.И., Шишкина Г.Т. Гепетико-физпологические механизмы регуляции функции семенников// Новосибирск: Наука. 1983.203 с.

76. Нпколье У. Цитогенетнческне методы анализа мутагенности // В сб.: Генетические последствия загрязнения окружающей среды (Ред.). М.: Паука. 1977. С.

77. Новиков Д.К., Адамепко Г.П., Новикова В.И. Определение гиперчувствптелыюстп к антигенам путем подсчета клеток, мигрировавших из капиллярных трубок // Бюлл. эксперим. медицины. 1976. №. 6. С. 707-711.

78. Новиков С.И. Коордпппровапиая экспрессия генов Gits н Мир как потенциальная основа функциональной активности апдрогензавпеимыхферомонов домовой мыши Mus musculiis L.II Докл. Акад. Паук. 2003. Т. 391. №.5. С.707-711.

79. Новиков С.Н. Феромоны и размножение млекопитающих// JI.: Паука. 1988. 169 с.

80. Новиков С.Н. Физиологические механизмы п генетические основы действия феромонов па размножение млекопитающих (грызуны)// Автореферат дпсс. докт. паук. Л. 1990. 34 с.

81. Новиков С.П., Дюжпкова H.A., Бабаляп В.В. Возможная роль ß-глюкуроппдазы и белков мочи в регуляции физиологической активности апдрогепзависпмых феромонов у домовой мыши Mus musculus L./l Ж.эвол. биох. и фпзиол. 1987. Т.23(4). С.558-560.

82. Опольский А.Ф. Влияние гипоталамуса па мутагенез в соматических клетках животных// В сб.: Чувствительность организмов к мутагенным факторам и возникновение мутаций. Вильнюс: Изд-во Вильнюсского госупиверсптета. 1982. С.20-21.

83. Орлов В.П., Чудпповская Г.А., Крюкова E.H. Исследование хромосомных наборов млекопитающих //М.: Наука. 1976. 35 с.

84. Павлова М.Б. Поведенческие и морфо-фпзиологическпе особенности феромопальиого контроля полового созревания самок мышеи лабораторных линий// Автореф. канд. наук. Спб. 1993. 17 с.

85. Павлова М.Б., Гарина И.А., Дюжпкова H.A., Бабаляп В.В., Новиков С.Н. Кортикостеропдпый ответ и содержание ппдоламппов в мозге mi,иней придействии феромона, нарушающего сперматогенез// Физиологический жури. 1989. Т.75. С.138-142.

86. Парсопс П.А. Поведение, стресс п возможности адаптации// 13 сб.: Современные концепции эволюционной генетики. Новосибирск: ИЦпГ СО РАН. 2000. С.95-102.

87. Паткип Е.Л., Вайдо А.И., Кустова М.Е., Ширяева И.В., Лопатина 11.Г. Одиопитевые разрывы ДНК в отдельных клетках мозга различных линий крыс в норме п при стрессорпом воздействии // Цитология.2001. Е.43. С.269-273.

88. Пимепова М.11. Влияние нецро-активпых веществ па цптогенетпческие процессы в соматических клетках (мышь, человек). Автореф. канд. днсс. Л.1975. 23 с.

89. Погодаев К.И. К биологическим основам "стресса" и "адаптационного синдрома"// В сб.: Актуальные проблемы стресса. Кишинев: Штпппца. 1976. С. 211-229.

90. Подольпая М.А., Бобрииев Е.В., Ревазова 10.А. Анализ некоторых методов статистической обработки результатов экспериментов по нидукцип доминантных летальных мутаций в зародышевых клетках мышей // Генетика. 1981. Т.П. С.651-657.

91. Полянская Г.Г. Влияние симпатэктомип па цптогепетическне процессы у мышеи// Автореф. канд. днсс. Л. 1971. 25 с.

92. Попомареико В.В. Гене гика поведения// В кп: Физиологическая гене гика. Л.: Медицина. 1976. С.350-382.

93. Райцппа С.С. Цикл сперматогеппого эпителия и кинетика сперматогенеза у млекопитающих // В сб.: Проблемы биологии развития // М.: Паука. 1982. С.73-107.

94. Салганик Р.И. Генетика оксидатнвного стресса, его опасности п преимущества// В сб.: Современные концепции эволюционной генетики. 11овосибпрск: ИЦиГ СО РАН. 2000. С.79-85.

95. Сапунов В.Б. О роли эндокринной системы в процессе возникновения мутаций// Жури, общей биол. 1980. T.XLI. №2. С. 192-198.

96. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме// М.: Медгиз. 1960.254 с.

97. Селье Г. Па уровне целого организма// М.: Наука. 1972. 122 с.

98. Селье Г. Стресс без дистресса// М.: Прогресс. 1979. 126 с.

99. Семенов Х.Х., Малашенко A.M. Проявление доминантных летальных мутации в раннем эмбриогенезе мыши // Генетика. 1981. Т. 17. С.443-447.

100. Ссрсдеппп C.B., Дурнев А.Д., Ведерникова А.А. Влияние эмоционального стресса па частоту хромосомных аберраций в клетках косного мозга мышей// Бюлл. эксперпм. биол. п мед. 1980. №7. С.91-92.

101. Современные концепции эволюционной генетики (Шумный В.К., Маркель АЛ., отв. ред.). Новосибирск: ИЦпГ СО РАН. 2000. 360 с.

102. Соколов В.Е., Зпикевич Э.П. Основные задачи исследования химической коммуникации млекопитающих// В сб.: Химическая коммуникация животных. Москва: Паука. 1986. С.213-219.

103. Соколов В.П., Скурат Л.П., Котенкова Г.В. Особенности заиаховой сигнализации у домовых мышей (Mus miisciikis)// Зоол. жури. 1976. Т.55. С.1710-1714.

104. Стальная И.Д. Метод определения диенопой конъюгации ненасыщенных высших жирных кислот // Современные методы в биохимии. М.: Медицина. 1977. с.63-64.

105. Сурииов Б.П., Карпова H.A., Жовтуп. Ольфакторпый стресс: дпиамика пммуносупрессии у мышей с различным генотипом// Иммунология. 2004. №3. С. 183-185.

106. Сурпиов Б.П., Карпова H.A., Исаева В.Г., Кулиш Ю.С. Коммуникативные поведенческие эффекты н нарушения иммунитета// Жури. высш. перви. Деятельности. 1998. Т.48. С. 1073-1079.

107. Сурпиов Б.П., Карпова И.А., Исаева В.Г., Кулиш Ю.С. Постстрессорные состояния и коммуникативные нарушения иммунитета п крови// Патол. физпол. и эксперим. терапия. 2000. №4. С.9-11.

108. Трут Л.И. Проблема дестабилизирующего отбора в развитии// В сб.: Современные концепции эволюционной генетики. Новосибирск: ИЦнГ СО РАН. 2000. С.7-21.

109. Феромоны и поведение (Соколов В.IL, ред.). М.: Наука. 1982. 328 с.

110. Хайне X. Механизмы действия потенцированных комплексных препаратов, применяемых в антигомотокснческой медицине // Биологическая медицина. 1999. № 2. С. 9-13.

111. Хаффиер Р., Упллсои К. Гибридизация in situ с мРИК на гистологических срезах // В кн.: Биология развития млекопитающих. Методы (Майк М., ред.). М.: Мир. 1990. С.257-277.

112. Хеспн Р.Б. Непостоянство генома// М.: Паука. 1984. 472 с.

113. Хромов-Борисов H.H. Физиологическая теория мутационного процесса четверть века спустя // Исследования по генетике. Л.: Изд-во ЛГУ, 1976. Вып.6. С. 16-31.

114. Цапыгппа Р.И. Изучение роли центральной нервной системы в регуляции цптогеиетпческих процессов условно-рефлекторным методом// Автореф. канд. днсс. Л. 1972. 25 с.

115. Цапыгппа Р.И., Даев П.В., Арефьев А.А. Химическая сигнализация и сперматогенез у самцов домовой мыши (hius niuscuhis L.) // Проблемы химической коммуникации животных. М.: Наука, 1991. С.388 393.

116. Adler I.-D. The cytogenetic heritable translocations test // Biol. Zbl. 1978. V.97. P.441-451.

117. Akaboshi H., Inoue Y. Stress responses in Drosophila cells// In: Stress-indncible processes in higher eucariolic cells (Koval T.M., ed.). N.Y.: Plenum Press. 1997. P. 59-82.

118. Ailken R.J. Free radicals, lipid peroxidation and sperm function// Reprod. Ferlil. Dev. 1995. V.7. P.659-668.

119. Aitken R.J., Buckingham D.W., Carreras A., Irvine D.S. Superoxide dismutase in human sperm suspensions: relationship with cellular composition, oxidative stress, and sperm function// Free Radic. Biol. Med. 1996. V.21. P.495-504.

120. Angel P, Karin M. The role of Jun, Fos and the AP-1 complex in cell-proliferation and transformation // Biochim. Biophys. Acta. 1991. V.1072. P. 129-157.

121. Aron C. Mechanisms of control of the reproductive function by olfactory stimuli in female mammals// Physiol. Reviews. 1979. V.59. P.229-284.

122. Archer J.E. Adrenocortical response to olfactory stimuli in male mice// J. Mammal. 1969. V.50. P.836-841.

123. Bailey S.M., Goodwin E.H. DNA and telomeres: beginnings and endings// Cytogenct. Genome Res. 2004.V.104. P. 109-115.

124. Bailey S.M., Brenncman M.A., llalbrook J., NickolofF J.A., Ulrich R.L., Goodwin E.II. The kinase activity of DNA-PK is required to protect mammalian telomeres// DNA Repair. 2004. V.3. P.225-233.

125. Bailey S.M., Cornforth M.N., Ulrich R.L., Goodwin E.H. Dysfunctional mammalian telomeres join with DNA double-strand breaks// DNA Repair. 2004. V.3. P.349-357.

126. Baldaccini N.E., Gagliardo A., Pelosi P., Topazzini A. Occurrence of a pyrazine binding protein in the nasal mucosa of some vertebrates// Comp. Biochem. Physiol., B., 1986. V.84. P.249-253.

127. Bard J., Yamazaki K., Curran M., Boyse E.A., Beauchamp G.K. Effect of B2m gene disruption on MMC-determincd odortypes// Immunogenetics. 2000. V.51. P.514-518.

128. Barlke A. The yield of spermatogenesis increases in maturing laboratory mice //.I. Reprod. Pert. 1970. V.22. P.579-581.

129. BartkcA., Shire J.G.M. Differences between mouse strains in testicular cholesterol levels and androgen target organs// J. Endocrinol. 1972. V.55. P. 173-184.

130. Bauerle P. A., Ilcnkel T. Function and activation of NF-kB in the immune system//Annu. Rev. Immunol. 1994. V. 12. P. 141-179.

131. Beatty R.A. The genetics of the mammalian gamete // Biol. Rev. 1970. V.45. P.73-119.

132. Bediz, G.M., Whitsett J.M. Social inhibition of sexual maturation in male prairie deer mice//J/Comp. Physiol. 1979. V.93. P. 493-500.

133. Belgrader P., Maquat L.E. Nonsense but not missense mutations can decrease the abundance of nuclear mPNA for the mouse major urinary protein, while both types of mutations can facilitate exon skipping// Mol. Cell Biol. 1994. V.14. P.6326-6336.

134. Belluscio L., Koentges G., Axel R., Dulac C. A map of phcromone receptor activation in the mammalian brain//Cell. 1999. V.97. P.209-220.

135. Ben-Porath 1., Weinberg R.A. The signals and pathways activating cellular senescence// Int. J. Biochem. Cell Biol. 2005. V.37(5). P.961-976.

136. Bennett I). The T-locus of the mouse // Cell. 1975. V.6. P.441-454.

137. Bcrger F.G., Szoka P. Biosynthesis of the major urinary proteins in mouse liver: a biochemical genetic study//Biochcm. Genet. 1981. V. 19. P. 1261-1273.

138. Berghard A., Buck L.B. Sensory transduction in vomeronasal neurons: evidence for G-alpha-o, G-alpha-i2, and adenylyl cyclase II as majorcomponents of a pheromone signalling cascade// J. Neurosci. 1996. V.16. P.909-918.

139. Berghard A., Buck L.B., Liman E.R. Evidence for distinct signalling mechanisms in two mammalian olfactory sense organs// PNAS USA. 1996. V.93. P.2365-2369.

140. Beynon R.J., Hurst J.L. Urinary proteins and the modulation of chemical scents in mice and rats// Peptides. 2004. V.25(9). P. 1553-1563.

141. Beynon R.J., Hurst J.L. Multiple roles of major urinary proteins in the house mouse, Mus doniesticiisll Biochemical society transactions. 2003. V.31(1). P. 142-146.

142. Beynon R.J., Veggerby C., Payne C., Robertson D.H.L., Gaskell S.J., Humphries R.E., Hurst J.L. Polymorphism in major urinary proteins: molecular heterogeneity in a wild mouse population// J. Chemical Ecol. 2002. V. 28 (7). P. 1429-1446.

143. Bianchet M.A., Bains S., Pelosi P., Pevsner J., Snyder S.I I., Monaco I LL., Amzel L.M. The three-dimentional structure of bovine odorant binding protein and its mechanism of odor recognition// Nature Struct. Biol. 1996. V.3. P.934-939.

144. Bignetti E., Cattaneo P., Cavaggioni A., Damiani G., Tirindelli R. The pyrazine-binding protein and olfaction// Comp. Biochem. Physiol., B. 1988. V.90. P. 1-5.

145. Bignetti E, Cavaggioni A, Pelosi P, Persaud KC, Sorbi RT, Tirindelli R. Purification and characterization of an odorant-binding protein from cow nasal tissue// Eur. J. Biochem. 1985. V.149. P.227-231.

146. Birch M.C. Pheromones// Amsterdam:North Holland Publ. 1974. 495 p.

147. Bockaert J. G protein coupled receptors: structure, function and mutation// In: Molecular mechanisms of signaling and membrane transport (Wirtz K.W.A., ed.). BeilimSpringer. 1997. P.25-45.

148. Böhm S.K., Grady E.F., Bunnett N.W. Regulatory mechanisms that modulate signaling by G-protein-coupled receptors// Biochem.J. 1997. V.322. P. 1-18.

149. Bordet R. Central dopamine receplors: general considerations (Part I)// Rev. Neurol.(Paris). 2004. V. 160(8-9). P. 862-870.

150. Böskei Z, Groom C.R., Flower D.R., Wright C.E., Phillips E.V., Cavaggioni A., Findlay J.B.C., North A.C.T. Pheromone binding to two rodent urinary proteins revealed by X-ray crystallography// Nature. 1992. V.360. P. 186-188.

151. Boudjelal M., Sivaprasadarao A., Findlay J.B. Membrane receptor for odour-binding proteins// Biochem. J. 1996. V.3 17. P.23-27.

152. Boulanger J., Faulds D., Eddy E.M., Lingwood C.A. Members of the 70 kDa heat shock protein family specifically recognize sulfoglycolipids: role in gamete recognition and mycoplasma-rclated infertility//J. Cell Physiol. 1995. V.I65. P.7-17.

153. Bowie A., O'Neill L.A. Oxidative stress and nuclear lactor-kappaB activation: a reassessment of the evidence in the light of recent discoveries// Biochem. Pharmacol. 2000. V.59. P. 13-23.

154. Branscomb A, Seger J, White RL: Evolution of odorant receptors expressed in mammalian testes//Genetics. 2000. V. 156:785-797.

155. Breckle S.-W. Salinity-stress and salt recreation in plants// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P.39-52.

156. Breckle S.-W., Mannesmann R., Waisel Y. Conclusion What is stress? A common phenomenon in organisms// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P. 111-114.

157. Breer II., Wanner I., Strotmann J. Molecular genetics of mammalian olfaction// Behav. Genet. 1996. V.26. P.209-219.

158. Brennan P.A., Keverne E.B. Something in the air? New insights into mammalian phcromones// Current Biol. 2004. V.I4. P. 81-89.

159. Brennan P.A., Schellinck H.M., Kcvcrne E.B. Patterns of expression of the immediate-early gene egr-1 in the accessory olfactory bulb of female mice exposed to pheromonal constituents of male urine// Neuroscience. 1999. V.90. P. 1463-1470.

160. Breton C., Pechoux C., Morel G., Zingg 11.11. Oxytocin receptor messenger ribonucleic acid: characterization, regulation, and cellular localization in the rat pituitary gland. Endocrinology. 1995. V. 136: 2928-2936.

161. Brewen J.G., Payne M.S., Jones K.P., Preston R.S. Studies on chemically induced dominant lethality. 1. The cytogenetic bases of MMS-induced dominant lethality in post meiotic male germ cells // Mutat. Res. 1975. V.33. P.239-250.

162. Bridges B.A. I lypermutation under stress// Nature. 1997. V.387. P.557-558.

163. Bronson P.M. Rodent pheromones// Biol. Reprod. 1971. V.3. P.344-357.

164. Bronson P.M. The reproductive ecology of the house mouse// Quart. Rev. Biol. 1979. V.54. P.265-299.

165. Bronson P.M. The adaptability of the house mouse// Sci. Amer. 1984. V.250. P.I 16-125.

166. Bronson P.M., Caroom D. Preputial gland of the male mouse; attractant function//.). Reprod. Pertil. 1971. V.25. P.279-282.

167. Bronson P.M., Maruniak J.A.Male-induced puberty in female mice: evidence for a synergistic action of social cues// Biol. Reprod. 1975. V.13. P.94-98.

168. Bronson P.M., Maruniak J.A. Differential effects of male stimuli on follicle-stimulating hormone, luteinizing hormone, and prolactin secretion in prepubertal female mice// Endocrinology. 1976. V.98. P.I 101-1108.

169. Brown K. Chemical communication between animals// In: Chemical influences on behaviour (Brown K., Cooper S.J., eds). London: Acad. Press. 1979. P.599-650.

170. Brown R.Ii. The rodents I: effects of odours on reproductive physiology (primer effects)// In: Social odours in mammals, V. I. (Brown R.E., MacDonald D.W., eds.). Oxford: Clarendon Press. 1985. P. 245-344.

171. Brozck C. Proportion of morphologically abnormal spermatozoa in two inbred strains of mice, their reciprocal Fl and F2 crosses and backcrosses // Acta Biol. Krakow (Scr.Zool.). 1970. V.23. P.381-386.

172. Bruce II.M. An exteroceptive block to pregnancy in the mouse// Nature. 1959. V. 184. P.I05.

173. Bruce W.R., I leddle J.A. The mutagenic activity of 61 agent as determined by the micronuclcus, Salmonella, and sperm abnormality assays // Can. J. Genet. Cytol. 1979. V.21. P.319-334.

174. Bruce W.R., l lugenholtz A.P. Heritable sperm abnormalities in mice induced by radiation // Can. J. Genet. Cytol. 1979. V.21. P.557.

175. Buck L., Axel R. A novel multigene family may encode odorant receptors: a molecular basis for odor recognition// Cell. 1991. V.65. P. 175-187.

176. Burger J., Gochfeld M. A hypothesis on the pole of pheromones on age of menarche// Medical Hypotheses. 1985. V. 17. P. 39-46.

177. Campenhausen II. von, Mori K. Convergence of segregated pheromonal pathways from the accessory olfactory bulb to the cortex in the mouse// Eur.J.Neurosci. 2000.V. 12. P.33-46.

178. Cannon W.B. The wisdom of the body// NY.: W.W.Norton & Co. 1932.

179. Cannon W.B. Stresses and strains of homeostasis// Am.J.Med.Sci. 1935. V.89. P.l-14.

180. Carlson S.L., Brooks W.I I., Rosman T.L. Neurotransmitter-lymphocyte interactions: dual receptor modulation of lymphocyte proloferation and c AMP production//.!. Neuroimmunol. 1989. V.24. P. 155-162.

181. Carter C.S., DeVries A.C., Taymans S.E., Roberts R.L., Williams J.R., Chrousos G.P. Adrenocorticoid hormones and the development and expression of mammalian monogamy//Annals N.Y. Acad. Sci. 1995. V.771. P.82-91.

182. Cavaggioni A., Findlay J.B.C., Tirindelli R. Ligand binding characteristics of homologous rat and mouse urinary proteins and pyrazine binding protein of the calf// Comp. Biochcm. Physiol. 1990. V.96B. P.513-520.

183. Cavaggioni A., Mucignat C., Tirindelli R. Pheromone signalling in the mouse: role of urinary proteins and vomeronasal organ// Archives Italiennes de Biologic. 1999. V.I37. P. 193-200.

184. Cavaggioni A., Sorbi R.T., Keen J.N., Pappin D.J., Findlay J.B. Homology between the pyrazine-binding protein from nasal mucosa and major urinary proteins// FEBS Lett. 1987. V.212. P.225-228.

185. Chang F., Steelman L.S., Shelton J.G., Lee J.T., Navolanic P.M., Blalock W.L., Franklin R., McCubrey J.A. Regulation of cell cycle progression and apoptosis by the Ras/Raf/MEK/ERK pathway (Review)// Int. J. Oncol. 2003. V. 22(2). P.469-480.

186. Cherepkova O.A., Lyutova E.M., Eronina T.B., Gurvits B. Ya. Chaperone-like activity of macrophage migration inhibitory factor// Int. J. Biochem. Cell Biol. 2006. V.38(l). P.44-55.

187. Chitty D. Population processes in vole and their relevance to general theory// Can. J. Zool. I960. V.38. P.99-113.

188. Cliitty D. The natural selection of self-regulating behaviour in animal populations// Proc. Ecol. Soc. Aust. 1967. V.2. P.51-78.

189. Clio Y., Gong T.W., Kanicki A., Altschuler R.A., Lomax M.I. Noise overstimulation induces immediate early genes in the rat cochlea// Brain Res. Mol. Brain Res. 2004. V.I30(1-2). P. 134-148.

190. Christensen T.A., Sorensen P.W. Pheromones as tools for olfactory research. Introduction// Chem.Senses. 1996. V.21. P. 241-243.

191. Christian J J. The adrenalo-pituitary system and population cycles in mammals//J. Mammal. 1950. V.3I. P.247-259.

192. Christian J.J. Phenomena associated with population density// PNAS USA. 1961. V. 47. P.428-449.

193. Christian J.J. Population density and reproductive efficiency// Biol. Reprod. 1971. V.4. P.248-294.

194. Christian J.J., Davis D.E. Endocrines, behavior, and population// Science. 1964. V. 146. P. 1550-1560.

195. Christians E.S., Zhou Q., Renard J., Benjamin I.J. Meat shock proteins in mammalian development// Seniin. Cell Dev. Biol. 2003. V.14(5). P. 283-290.

196. Clark A.J., Clissold P.M., Shawi R.A. et al. Structure of mouse major urinary protein genes: different splicing configurations in the 3'-noncoding region // The EMBO J. 1984. V.3. P. 1045-1052.

197. Clem R.J. Apoptosis as a stress response: lessons from an insect virus// In: Stress-indueible processes in higher eucariotic cells (Koval T.M., ed.). N.Y.: Plenum Press. 1997. P. 109-136.

198. Coates P.J., Lorimore S.A., Wright E.G. Cell and tissue responses to genotoxic stress//J. Pathol. 2005. V. 205(2). P. 221-235.

199. Cocke R., Moynihan J.A., Cohen N., Grota L.J., Ader R. Exposure to conspecific alarm chemosignals alters immune responses in BALB/c mice// Brain Behav. Immun. 1993. V.7. P.36-46.

200. Cohen D.M. Mitogen-activated protein kinase cascades and the signaling of hyperosmotic stress to immediate early genes// Comp, Biochem. Physiol. A Physiol. 1997. V.I 17. P.291-299.

201. Crosio C., Cermakian N., Allis C.D., Sassone-Corsi P. Light induces chromatin modification in cells of the mammalian circadian clock // Nat. Neurosci. 2000. V.3. P.1241-1247.

202. Crossen B., Allen W.R., Stewart F. A 19 kl)a protein secreted by the endometrium of the mare is a novel member of the lipocalin family// Biochcm.J. 1996. V.320. P.137-143.

203. Dal Monte M., Andreini I., Rcvoltella R., Pelosi P. Purification and characterization of two odorant-binding proteins from nasal tissue of rabbit and pig//Comp. Biochem. Physiol., B. 1991. V.99. P.445-451.

204. Dan ford N. Measurement of levels of aneuploidy in mammalian cells using a modi lied hypotonic treatment // Mutat. Res. 1984. V.139. P. 127-132.

205. Darwin C. The descent of man and selection in relation to sex// LondomMurray. 1887. P.528-530.

206. Dawirs R.R. Stress and synaptic rearrangements: a mutual principle of adaptation to normal and aberrant stimuli// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P.71-80.

207. Dear T.N., Campbell K., Rabbitts T.M. Molecular cloning of putative odorant-binding and odorant-metabolizing proteins// Biochemistry. 1991. V.30. P. 10376-10382.

208. De Cesare D., Fimia G.M., Sassone-Corsi P. CREM, a master-switch of the transcriptional cascade in male germ cells //J. Endocrinol. Invest. 2000. V.23. P.592-596.

209. Decatanzaro D., Zacliarias R., Muir C. Disruption of early pregnancy by direct and indirect exposure to novel males in mice: comparison of influences of preputialectomized and intact males//J. Reprod. Fertil. 1996. V.106. P.269-274.

210. DennanE. Isolation of a cDNA clone for mouse urinary proteins: age- and sex-related expression of mouse urinary protein genes is trancriptionaly controlled// PNAS USA. 1981. V.78. P.5425-5429.

211. Dhabhar F.S., McEwen B.S., Spencer R.L. Stress response, adrenal steroid receptor levels and corticostcroid-binding globulinlevels a comparison between Sprague-Dawley, Fisher344, and Lewis rats// Brain Res. 1993. V.616. P.89-98.

212. Dhabhar F.S., Miller A.M., McEwen B.S., Spencer R.L. Effects of stress on immune cell distribution. Dynamics and hormonal mechanisms// J. Immunol. 1995. V. 154. P.5511-5527.

213. Dlusen D.E., Ramirez V.D., Carter C.S., Getz L. L. Male vole urine changes luteinizing hormone releasing hormone and norepinephrine in female olfactory bulb// Science. 1981. V.212. P.573-575.

214. Dmitriev S.G., Zakharov V.M., Sheftcl B.I. Cytogenetic homeostasis and population density in red-backed voles Clet/iionomys glareolus and C. rutUis in central Siberia//Acta Theriologica. 1997. Suppl.4. P.49-55.

215. Dorries K.M., Adkins R.E., llalpern B.P. Sensitivity and behavioral responses to the pheromone androsterone are mediated by the vomeronasal organ in domestic pig// Brain Behav. and Evol. 1997. V.49. P.53-62.

216. Dreyer W.J: The area code hypothesis revisited: Olfactory receptors and other related transmembrane receptors may function as the last digits in a cell surface code for assembling embryos// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V.95. P. 9072-9077.

217. Drickamer L.C. Delay of sexual maturation in female house mice by exposure to grouped females or urine from grouped females // J. Reprod. Fertil. 1977. V.51. P.77-81.

218. Drickamer L.C. Acceleration and delay of first estrus in wild Mus musculus II J. Mammal. 1979. V.60. P. 215-216.

219. Drickamer L.C. Iifleet of period of grouping of donors and duration of stimulus exposure on delay of puberty in female mice by urinary chemosignals form grouped females //J. Reprod. Fertil. 1983. V.69. I\723-727.

220. Dudley C.A., Moss R.L. Activation of an anatomically distinct subpopulation of accessory olfactory bulb neurons by chemosensory stimulation// Neuroscience. 1999. V.91. P. 1549-1556.

221. Dudley C.A., Chakravarty S., Barnea A. Female odors lead to rapid activation of mitogcn-activated protein kinase (MAPK) in neurons of the vomeronasal system// Brain Res. 2001. V.915( 1). P.32-46.

222. Dulac C., Axel R. A novel family of genes encoding putative pheromones receptors in mammals//Cell. 1995. V.83. P. 195-206.

223. Dulac C\, Torello A.T. Molecular detection of pheromone signals in mammals: from genes to behaviour// Nature Rev. Neuroscience. 2003. V.4. P.551-562.

224. Duncan R., Matthai R., lluppi K., Roderick T., Potter M. Genes that modify expression of major urinary proteins in mice// Mol. Cell Biol. 1988. V.8. P.2705-2712.

225. Eddy E.M. Role of heat shock protein MSP70-2 in spermatogenesis// Rev. Reprod. 1999. V.4. N 1:23-30.

226. Eggert F., Möller C., Luszyk I)., Müllcr-Ruchholtz W., Ferstl R. MIIC-associated and MllC-independent urinary chemosignals in mice// Physiol. Behav. 1996. V. 59(1). P.57-62.

227. Eggert F., Luszyk D., Ferstl R., Muller-Ruchholtz W. Changes in strain-specific urine odors of micc due to bone marrow transplantations// Neuropsychobiology. 1989. V.22. P.57-60.

228. Ehling U.M. Induction of gene mutations in germ cells of the mouse // Arch. Toxicol. 1980. V.46. P. 123-138.

229. Eisthen M.L. Evolution of vertebrate olfactory systems// Brain Behav. Evol. 1997. V.50. P.222-233.

230. Ellis 11.11. Studies in the psychology of sex. V.4. Sexual selection in man// Philadelphia: Davis. P. 63-66.

231. Engler H., Engler A., Bailey M.T., Sheridan J.I7. Tissue-specific alterations in the glucocorticoid sensitivity of immune cells following repealed social defeat in mice//J. Neuroimmunol. 2005. V. 163(1-2). P.I 10-119.

232. Eshel A. Response of plant roots to water and oxygen stresses// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P.23-32.

233. Hsterhuizen, A. D., Franken, D. R., Becker, P. J., Lourens, J. G. IL, Müller, I. I. & van Rooyen, L. II. Defective sperm decondensation: a cause for fertilization failure//Andrologia. 2002. V. 34 (1). P. 1-7.

234. Evans E.P. Cytological methods for the study of meiotic properties in mice // Genetics (Suppl.). 1979. V.92. P.97-103.

235. Evans E.P., Breckon G., Ford C.E. An air-drying method for meiotic preparations from mammalian testes//Cytogenetics. 1964. V.3. P.289-294.

236. Fabrikant J.I. Cell cycle of spermatogonia in mouse testis // Investigative radiology. 1979. V.I4.1M89-191.

237. Feige U., Morimoto R.I., Yaliara I., Polla B.S. (Eds.). Stress-inducible cellular responses. 1996. Basel: Birkliauscr. 512 p.

238. Feinendegen E.L. Significance of basic and clinical research in radiation medicine: challenges for the future// B.J.R. Suppl. 2005. V.27. P. 185-195.

239. Felicioli A., Ganni M., Garibotti M., Pelosi P. Multiple types and forms of odorant-binding proteins in the Old-World porcupine I lystrix cristata// Comp. Biochem. Physiol., B. 1993. V.105. P.775-784.

240. Ferenik M., Stvrtinova V. Is the immune system our sixth sense? Relation between the immune and neuroendocrine systems. Bratisl. Lek. Listy. 1997. V.98. P. 187-198.

241. Ferenik M., Novak M., Rovensky J. Relation and interactions between the immune and neuroendocrine systems// Bratisl. Lek. Listy. 1998. V.99. P. 454464.

242. Ferrari E., Lodi T., Sorbi R.T., Tirindclli R., Cavaggioni A., Spisni A. Expression of a lipocalin in Pichia pastoris: secretion, purillcation and binding activity of a recombinant mouse major urinary protein// FEBS Lett. 1997. V.401 (1). P. 73-77.

243. Fewell G.D., Meredith M. Experience facilitates vomeronasal and olfactory influence on Fos expression in medial preoptic area during pheromone exposure or mating in male hamsters// Brain Res. 2002. V. 941(1-2). P. 91106.

244. Fiber J.M., Swann J.M. Testosterone differentially regulates pheromone induced Fos expression in limbic regions of male and female Syrian hamsters// In: 27lh Annual Conlei •ence on Reproductive Behavior (Abstracts). Boston. 1995. P. 18.

245. Fiber J.M., Swann J.M. Testosterone differentially influences sex-specific phcromonc-stimulatcd Fos expression in limbic regions of Syrian hamsters// l lorm. Bchav. 1996. V.30. P.455-473.

246. Fimia G.M., Morion A., Macho 13., Dc Cesarc D., Sassone-Corsi P. Transcriptional cascades during spermatogenesis: pivotal role of CREM and ACT // Mol. Cell Endocrino.l 2001. V. 179. P. 17-23.

247. Finlayson J.S., Asofsky R., Potter M., Runner C.R. Major urinary protein complex of normalmice origin//Science. 1965. V. 149. P.981-982.

248. Finlayson J.S., Hudson P.M., Armstrong B.L. Localization of the Mup-a locus on mouse linkage group VIII // Genet. Res. 1969. V. 14. P.329-331.

249. Finlayson J.S., Potter M., Runner C.R. Electrophoretic variation and sex dimorphism of the major urinary protein complex in inbred mice: a new genetic marker // J. Natl. Cancer Inst. 1963. V.31. P.91-107.

250. Fischman U.K., Kelly D.D. Chromosomes and stress// Int. J. Neurosci. 1999. V.99. P.201-219.

251. Fischman U.K., Pero R.W., Kelly D.D. Psychogenic stress induces chromosomal and DNA damage// Int. J. Neurosci. 1996. V.84. P.219-227.

252. Foster I I.E., Small J.D., Fox J.G. The mouse in biomedical research, V.l.// N.Y.: Acad. Press. 1981. 306 p.

253. Frankel E.N. Lipid oxidation: mechanisms, products and biological significance// J. Amer. Oil Chemists Soc. 1984. V.64. P.908-917.

254. Freeman M.E., Kanyicska B., Lcrant A., Nagy G. Prolactin: structure, function, and regulation of secretion// Physiol. Rev. 2000. V.80. P. 1523-1631.

255. Gabai V.L., Mcriin A.B., Mosscr D.D., Caron A.W., Kits S., Shifrin V.I., Sherman M.Y. I Isp70 prevents activation of stress kinases. A novel pathway of cellular thermotolerance//J. Biol. Chem. 1997. V.272. P.I8033-18037.

256. Gaillard I., Rouquier S., Pin J.-P., Mollard P., S. Richard, Barnabe C„ Demaille J., Giorgi D. A single olfactory receptor specifically binds a set of odorant molecules// European J. Neuroscicncc. 2002. V.15. P.409-412.

257. Gaillard R.C., Spinedi E. Sex- and stress-steroids interactions and the immune system: evidence for a neuroendocrine-immunological sexual dimorphism// Domest. Anim. Endocrinol. 1998. V.15. P.345-352.

258. Garcia C., Pithon-Curi T.C., dc Lourdes Firmano M., Pi res de Melo M., Newsholme P., Curi R. Effects of adrenaline on glucose and glutamine metabolism and superoxide production by rat neutrophils// Clin. Sci. 1999. V.96. P.549-555.

259. Garibotti M., Navarrini A., Pisanelli A.M., Pelosi P. Three odorant-binding proteins from rabbit nasal mucosa//Chem. Senses. 1997. V. 22. P.383-390.

260. Gebert A., Pabst R. M-cells at locations outside the gut// Semin Immunol. 1999. V.l I. P.165-170.

261. Gibson A.D., Garbers D.L. Guanylyl cyclases as a family of putative odorant receptors//Annu. Rev. Neurosci. 2000. V.23. P.417-439.

262. Girotti A.W. Lipid hydroperoxide generation, turnover, and effector action in biological systems//J. Lipid Res. 1998. V.39. P. 1529-1542.

263. Gjerset R., Gorka C., Ilasthorpe S., Lawrence J.J., Eisen II. Developmental and hormonal regulation of protein Ml" in rodents // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V.79. P.2333-2337.

264. Gold P.W., Gwirtsman II., Avgerinos P., Chrousos G.P. Abnormal hypothalamic-pituitary-adrenal function in anorexia nervosa; patophysiologicmechanisms in underweight and weight-corrected patients// N. Engl. J. Med. 1986. V.314. IM 335-1342.

265. Gold P.W., Goodwin F., Chrousos G.P. Clinical and biochemical manifestations of depression: relationship to the neurobiology of stress// N. Engl. J. Med. Part 2. 1988. V. 319. P.413-420.

266. Goodale 11.D. Can artificial selection produce unlimited changes? // Amer. Naturalist. 1937. V.7I. P. 433-459.

267. Gosslau A., Ruoff P., Mohsenzadch S., llobohm U., Reusing L. Heat-shock and oxidative stress-induced exposure of hydrophobic protein domains as common signal in the induction of hsp68// J. Biol. Biochcm. 2001. V.276. P. 1814-1821.

268. Goto T, Salpekar A, Monk M. Expression of a testis-specific member of the olfactory receptor gene family in human primordial germ cells// Mol. Hum. Reprod. 2001 V 7 (6):553-558.

269. Greenlund L.J., Deckworth T.I., Johnson E.M. Superoxide dismutase delays neuronal apoptosis: a role for reactive oxygene species in programmed neuronal death//Neuron. 1995. V. 14. P.303.

270. Grimm L.M., Goldberg A.L., Poirier G.G., Schwartz L.M., Osborne B.A. Proteasomes play an essential role in thymocyte apoptosis// EMBO J. 1996. V.I5. P.3835.

271. Grob B., Knapp L.A., Martin R.I)., Anzenbergcr G. The major histocompatibility complex and mate choice: inbreeding avoidance and selection of good genes// Exper. and Clin. Immimogenetics. 1998. V.I 5. P.l 19129.

272. Gropp A. Clinical and experimental pathology of fetal wastage // In: Human Reproduction. Berlin: Exerpta Mcdica. P.208-216.

273. Guo J., Zhou A., Moss R.L. Urine and urine-derived compounds induce c-fos mRNA expression in accessory olfactory bulb// Neuroreport. 1997. V.8. IM 679-1683.

274. Hainey S., Bishop J.G. Allelic variation at several different genetic loci determines the major urinary protein phenotype of inbred mouse strains// Genet. Res. Camb. 1982. V.39. P.31-39.

275. Ilalcm H.A., Cherry J.A., Baum M.J. Vomeronasal neuroepithelium and forebrain Fos responses to male pheromones in male and female mice// J. Ncurobiol. 1999. V. 39. P.249-263.

276. Halpern M., Martinez-Marcos A. Structure and function of the vomeronasal system: an update// Progress in Neurobiology. 2003. V.70. P.213-318.

277. Hamm 11.F. The many faces of G protein signaling// J. Biol. Chem. 1998. V.273. P. 669-672.

278. Hammerschmidt R. Local and systemic plant defensive responses to infection// In: Stress-inducible processes in higher eucariotic cells (Koval T.M., ed.). N.Y.: Plenum Press. 1997. P.27-57.

279. Handbook on genetically standardized JAX mice (Green M.C., Witham B.A., eds.). Bar Harbor: The Jackson Laboratory. 1991. 96 p.

280. Hansson V., Levy P.O., Tasken K. Preface // In: Signal transduction in testicular cells (Hansson V., Levy F.O., Tasken K., eds.). Berlin: Springer. 1996. P.V-VI.

281. Haupt S., Louria-I Iayon L, Haupt Y. P53 licensed to kill? Operating the assassin//J. Cell Biochem. 2003. V. 88(1). P. 76-82.

282. Ileikkila J.J., Ali A., Olian N., Tain Y. Stress Protein gene expression in amphibians// In: Stress-inducible processes in higher eucariotic cells(Koval T.M., ed.). N.Y.: Plenum Press. 1997. P. 137-164.

283. Heinrichs S.C., Menzaghi F., Pich F.M., Brition K.T., Koob G.F. The role of CRF in behavioral aspects of stress// Annals N.Y. Acad. Sei. 1995. V.771. P.92-104.

284. Held W.A., Sampsell B.M. Genetic variation in major urinary proteins in wild mice // Current Topics in Microbiol, and Immunol. 1986. V.127. P. 124-130.

285. Hellstrand K., Hermodsson S. An immunopharmacological analysis of adrenaline-induced suppression of human natural killer cell cytotoxicity// Int. Arch. Allergy Appl. Immunol. 1989. V.89. P.334-341.

286. Ilendrichs II. On social stress in mammals// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P. 105-1 10.

287. Hensold J.O., Hunt C.R., Calderwood S.K., Ilousman D.E., Kingston R.E. DNA binding of heat shock factor to the heat shock clement is insufficient for transcriptional activation in murine erythrolcukemia cells// Mol. Cell Biol. 1990. V.4. P. 1600-1608.

288. Ilerdegen T., Leah J.D. Inducible and constitutive transcription factors in the mammalian nervous system: control of gene expression by Jim, Fos and Krox, and CREB/ATF protein// Brain Research Reviews. 1998. V.28: P.370-490.

289. Ilerent M.F., Collin S., Pelosi P. Affinities of nutty and green-smelling pyrazines and thiazoles to odorant-binding proteins, in relation with their lipophilicity// Chcm. Senses. 1995. V.20. P.601-608.

290. Hsu T.C., Arrighi F.C. Distribution of constitutive heterochromatin in mammalian chromosomes // Chromosoma.1971. V.34. P.243-253.

291. Hunt D.I I., Johnson D.R. Abnormal spermiogenesis in two pink-eyed sterile mutants in the mouse//J. Embriol. Exp. Morphol. 1971. V.26. P. 111-121.

292. Hurst J.L., Beynon R.J. Scent wars: the chemobiology of competitive signaling in mice// BioEssays. 2004. V.26. P. 1288-1298.

293. I lurst J.L., Thorn M.D., Nevison C.M., Humphries R.E., Beynon R.J. M1IC odours are not required or sufllcient for recognition of individual scent owners// Proc. R. Soc. 2005. V. 272. P.715-724.

294. Hyde S.C., Emsly P., Hartshon M.T. et al. Structural model of ATP-binding proteins associated with cystic fibrosis,, multidrug resistance and bacterial transport // Nature. 1990. V. 346. N. 6282. P. 362-365.

295. Inamura K., Kashiwayanagi M., Kurihara K. Regionalization of Fos immunostaining in rat accessory olfactory bulb when the vomeronasal organ was exposed to urine// Eur. J. Neurosci. 1999. V.l 1. P.2254-2260.

296. Ingersoll D.W., Bobotas G., Lee C.-T., Lukton A. 3-GIucuronidase activation of latent aggression-promoting cues in mouse bladder urine // Physiol, Behav. 1982. V.29. P.789-793.

297. Inoue M., Sato E.F., Nishikawa M., Hiramoto K., Kashiwagi A., Utsumi K. Pree radical theory of apoptosis and metamorphosis// Redox Rep. 2004. V. 9(5). P.237-247.

298. Inoue S., Salah-Eldin A.E., Omoteyama K. Apoptosis and anticancer drug resistance// Mum. Cell. 2001. V. 14(3). P. 21 1-221.

299. Jackson L.M., Harder J.D. Vomeronasal organ removal blocks pheromonal induction of estrus in gray short-tailed opossums (Monodelphis domestica)// Biol. Reprod. 1996. V.54. P.506-512.

300. Jean-Paucher Ch., Berger M., de Turckheim M., Veyssiere G.,Jean CI. Developmental patterns of plasma and testicular testosterone in mice from birth to adulthood//Acta Endocrinol. 1978. V.89. P.780-788.

301. Jemiolo B., Novotny M. Inhibition of sexual maturation in juvenile female and male mice by chemosignal of female origin// Physiol. & Behav. 1994. V.55. P.519-522.

302. Jemiolo B., Andreolini P., Xie T.-M., Wiesler D., Novotny M. Puberty-affecting synthetic analogs of urinary chemosignals in the house mouse, Mus clomesticusll Physiol.&Behav. 1989. V.46. P.293-298.

303. Jin B.K., Franzen L., Baker M. Regulation of C-Fos mRNA and fos protein expression in olfactory bulbs from unilaterally odor-deprived adult mice// Int. J. dev. Neurosci. 1996. V.I4. P.971-982.

304. Johan G.E., A. Bierkens. Applications and pitfalls of stress-proteins in biomonitoring// Toxicology. 2000. V. 153(1-3). P.61-72.

305. Johnson C.R., Jarvis W.D. Caspase-9 regulation: an update// Apoptosis. 2004. V. 9(4). P. 423-427.

306. Johnson D.R., Hunt D.M. Hop-sterile, a mutant gene affecting sperm tail development in mice//J/Embriol. Exp. Morphol. 1971. V.25. P.233-236.

307. Johnson D., al-Shawi R., Bishop J.O. Sexual dimorphism and growth hormone induction of murine pheromone-binding proteins// J. Mol. Endocrinol. 1995. V.I4. P.21-34.

308. Johnston R.E. Pheromones, the vomeronasal system, and communication. From hormonal responses to individual recognition// Ann. N. Y. Acad. Sci. 1998. V.855. P.333-348.

309. Johnston R.E., Rasmussen K. Individual recognition of female hamsters by males: role of chemical cues and of the olfactory and vomeronasal systems// Physiol. & Behav. 1984. V. 33. P.95-104.

310. Jones D.T., Reed R.R. G0n-: an olfactory neuron specific-G protein involved in odorant signal transduction// Science. 1989. V.244. P.790-795.

311. Junakovic N., l)i Franco C., Barsanti P., Palumbo G. Transpositions of copia-like elements can be induced by heat-schock// J. Mol. Evol. 1986. V. 20. P.89-93.

312. Kannan S., Archunan G. Biochemical variations of male scent markers alter the attractiveness in the female rats, Rattus norvegicus// Acta Physiol. I lung. 1997-98. V.85. P.l75-181.

313. Kapcala L.P., Chautard T., Eskay R.L. The protective role of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis against lethality produced by immune, infectious, and inflammatory stress// Annals N.Y. Acad. Sci. 1995. V.77I. P.419-437.

314. Karin M. Too many transcription factors: positive and negative interactions // New Biol. 1990. V. 2. P.126-131.

315. Karin M., Chang L. AP-1--glucocorticoid receptor crosstalk taken to a higher level //J. Endocrinol. 2001. V.I69. P.447-451.

316. Karlson P., LÜseher M. "Pheromones": a new term for a class of biologically active substances//Nature. 1959. V.I83. P.55-56.

317. Karp J.D., Cohen N., Moynihan J.A. Quantitative differences in interleukin-2 and interIeukin-4 production by antigen-stimulated splenocytes from individually- and group-housed mice// Life Sci. 1994. V.55. P.789-795.

318. Kartell Y.J., Olariu A., Cameron M.A. Stress in early lile inhibits neurogenesis in adulthood// Trends Neurosci. 2005. V.28(4). P. 171 -172.

319. Kas M.J., Bruijnzeel AAV., Haanstra J.R., Wiegant V.M., Adán R.A. Differential regulation of agouti-related protein and neuropeptide Y in hypothalamic neurons following a stressful event// J. Mol. Endocrinol. 2005. V.35( 1). P. 159-164.

320. Katz A, Gvaryahu G, Robinzon B, Snapir N, Barnea A. The effect of pyrazine odor on body weight and the weight of various organs in chicks (Gallus gallus domesticus)//Poult. Sci. 1999. V.78. P. 1786-1789.

321. Kelliher K.R., Chang Y.M., Wersinger S.R., Baum M.J. Sex difference and testosterone modulation of pheromone-induced neuronal Fos in the ferret's main olfactory bulb and hypothalamus// Biol. Reprod. 1998. V.59. P. 14541463.

322. Keverne E.B. Vomeronasal accessory olfactory system and pheromonal recognition// Chem. Senses. 1998. V.23. P.491-494.

323. Kinyamu II. K., Archer T. K. Modifying chromatin to permit steroid hormone receptor-dependent transcription// BBA. 2004. V.I677. P.30-45.

324. Koch S., Kramer A., Stein J., Adrian V., Wen Hen W. Investigation of mutagenicity in sperm-head test/mouse and mutagenic potency of 2 disinfectants on the basis of peracetic acid and phenolics // Zbl. Ilyg. 1989. V.188. P.394-403.

325. Kohl J. Human pheromones: mammalian olfactory, genetic, neuronal, hormonal and behavioral reciprocity, and human sexuality// Advances in Human Behavior and Evolution. 1996. http://psych.lmu.edu/ahbe.htm

326. Kohl J.V., Atzmueller ML, Fink B., Grammer K. Human pheromones: integrating neuroendocrinology and ethology// Neuroendocrinology Letters. 2001. V.22. P. 309-321.

327. Kollack-Walker S., Newman S.W. Mating-induced expression of c-fos in the male Syrian hamster brain: role of experience, pheromones, and ejaculations// J. Neurobiol. 1997. V.32. P.481-501.

328. Kopin I.J. Definition of stress and sympathetic neuronal responses// Annals N.Y. Acad. Sei. 1995. V.771. P. 19-30.

329. Koob G.F., Heinrichs S.C. A role for corticotropin releasing factor and urocortin in behavioral responses to stressors. Brain Research. 1999. V.848(1-2). P.I4I-I52.

330. Korner C., Breer I I., Singer A.G., O'Connel R.J. Pheromone-induced second messenger signaling in the hamster vomeronasal organ// Neuroreport. 1996. V.7. P.2989-2992.

331. Koval T.M. (Ed.). Stress-inducible processes in higher eukaryotic cells. N.Y.: Plenum Press. 1997. 256 p.

332. Krieger J., Schmitt A., Löbel D., Gudermann T., Schultz G., Breer II., Boekhoff I. Selective Activation of G Protein Subtypes in the Vomeronasal Organ upon Stimulation with Urine-derived Compounds// J. Biol. Chem. 1999. Vol. 274(8). P. 4655-4662.

333. Kruman I., Bruce-Keller A.J., Bredesen D., Waeg G., Mattson M.P. Evidence that 4-hydroxynonenal mediates oxidative stress-induced neuronal apoptosis// J. Neurosci. 1997. V.I7. P.5089-5100.

334. Kruuk L.E., Clutton-Brock T.H., Albon S.D., Pemberton J.M., Guinness F.E. Population density affects sex ratio variation in red deer// Nature. 1999. V. 399. P. 459-461.

335. Krzanowska I I. The influence of age on fertilization rate in inbred and Fl hybrid mice// Acta Biol. Krakow. 1972. V. 15. P.I31-135.

336. Krzanowska 11. Types of sperm head abnormalities in four inbred strains of mice // Acta Biol. Krakow. 1976a. V.I9. P.79-85.

337. Krzanowska 11. Inheritance of sperm head abnormality types in mice the role of the Y-chromosome //Genet. Res. 1976b. V.28. P. 189-198.

338. Lane R.P., Young J., Newman T., Trask B.J. Species specificity in rodent pheromonc receptor repertoires// Genome Res. 2004. V.14. P.603-608.

339. Laudat A., Lecourbe K., Palluel A.M. Lipid peroxidation, morphological stress pattern and nuclear maturity of spermatozoon// Ann. Biol. Clin. (Paris). 1999. V.57. P.51-56.

340. Lawton A.D., Whitsett J.M. Inhibition of sexual maturation by a urinary pheromone in male prairie deer mice// Horm. Behav. 1979. V.13. P. 128-138.

341. Lecyk M. The influence of crowded population stimuli on the development of reproductive organs in the common vole // Acta Theriologica. 1967. V.12. P. 177-179.

342. Lee A.K., McDonald I.R. Stress and population regulation in small mammals// Oxford Rev.Reprod. Biol. 1985. V.7. P.261-304.

343. Lee E., Kong G., Lee S.J., Kim N.D., Surh Y.J. 2-(aliylthio)pyrazine suppresses the growth and proliferation of human promyelocytic leukemia (ML-60) cells via induction of apoptosis// Anticancer. Res. 1999. V.19. P.4073-4080.

344. Lehman-McKeeman L.D., Caudill D., Rodriguez P.A., Eddy C. 2-sec-butyl-4,5,-duhydrothiazolc is a ligand for mouse urinary protein and rat alpha 2p-globulin: physiological and toxicological relevance// 'Ioxicol. Appl. Pharmacol. 1998. V.149. P.32-40.

345. Leinders-Zufall T, Lane A.P., Puche A.C., Ma W., Novotny M.V., Shipley M.T., Zufall F. Ultrasensitive pheromone detection by mammalian vomeronasal neurons// Nature. 2000. V.405. P.792-796.

346. Lemberger T., Stacls B., Saladin II. ct al. Regulation of the peroxisome proliferator-activated receptor alpha gene by glucocorticoids// J. Biol. Chem. 1994. V.269. P.24527-24530.

347. Lenington S. The t complex: a story of genes, behavior, and populations// Adv. Study Bchav. 1991. V.16. P.51-86.

348. Lenski R.E., Mitler I.E. The directed mutation controversy and Neo-Darvinism // Sci. 1993. V.5092. P. 188-194.

349. Lewontin R.C. Adaptation// In: The fossil record and evolution, Scientific American Library. N.Y.: W.Y.Freeman. 1982. P. 17-27.

350. Leypold B.C., Yu C.R., Leinders-Zufall T., Kim M.M., Zufall F., Axel R. Altered sexual and social behaviors in trp2 mutant mice// PNAS. 2002.V.99(9). P.6376-6381.

351. Li T., Spearow J., Rubin C.M., Schmid C.W. Physiological stresses increase mouse short interspersed element (SINE) RNA expression in vivo// Gene. 1999. V.239. P.367-372.

352. Lieber M.M. Environmentally responsive mutator systems: toward a unifying perspective// Rev. Biol. 1998. V.91. P.425-457.

353. Lim C.P., Jain N., Cao X. Stress-induced immediate-early gene, egr-I, involves activation of p38/JNKl// Oncogene. 1998. V.16. P. 2915-2926. Oncogene. 1998. V.16. P.2915-2926.

354. Liman L.R., Corey D.P., Dulac C. TRP2: a candidate transduction channel for mammalian pheromone sensory signaling// Proe. Natl. Acad.Sci. USA. 1999. V.96. P.5791-5796.

355. Lin W., Arellano J., Slotnick B., Restrepo D. Odors detected by mice deficient in cyclic nucleotide-gated channel subunit A2 stimulate the main olfactory system//J. Neurosci. 2004. V.24(14). P.3703-3710.

356. Liu J., Wang X., Shigcnaga M.K., Yeo N.C., Mori A., Ames B.N. Immobilization stress causes oxidative damage to lipid, protein, and DNA in the brain of rats// FASEB J. 1996. V.IO. 1M 532-1538.

357. Liu X.D., Liu P.C., Santoro N., Thiele D.J. Conservation of a stress response: human heat shock transcription factors functionally substitute for yeast HSF// EM BO J. 1997. V.I6. P.6466-6477.

358. Liu Z.-W., Smith S.W., McLaughlin K.A., Schwartz L.V., Osborne B.A. Apoptotic signals delivered through the T-cell receptor of a T-cell hybrid require the immediate-early gene nur77// Nature. 1994. V.367. P.281.

359. Liu W.M., Chii WM, Choudary P.V., Schmid C.W. Cell stress and translational inhibitors transiently increase the abundance of mammalian SINE transcripts// Nucleic Acids Res. 1995. V.25. P. 1758-1765.

360. Lobel D., Marchese S., Krieger J., Pelosi P., Breer IT. Subtypes of odorant-binding proteins-heterologous expression and ligand binding// Eur. J. Biochem. 1998. V.254. P.318-324.

361. Lolait S.J., O'Carroll A.-M., Brownstein M.J. Molecular biology of vasopressin receptors//Annals N.Y. Acad. Sci. 1995. V.771. P.273-292.

362. Lombardi J.R., Vandenbergh J.G. Pheromonally induced sexual maturation in females: regulation by social environment of the male// Science. 1977. V.I 96. P. 545-546.

363. Lowe K.W., Holbrook C.I., Linkcus S.L., Roberts M.R. Preliminary comparison of three cytogenetic assays for genotoxicity in mouse bone marrow cells // Environ. Mutagenes. 1987. V.9. P.8-63.

364. Lucke C., Franzoni L., Abbate F., Lohr F., Ferrari E., Sorbi R.T., Ruterjans 11., Spisni A. Solution structure of a recombinant mouse major urinary protein// Eur. J. Biochem. 1999. V.266. P. 1210-1218.

365. Lyon M.F. Sensitivity of various germ-cell stages to environmental mutagens // Mutat. Res. 1981. V.87. P.323-345.

366. Ma W., Miao Z., Novotny M.V. Pole of the adrenal gland and adrenal-mediated chemosignals in suppression of estrus in the house mouse: the LeeBoot effect revisited// Biol. Rcprod. 1998. V.59. P. 13 17-1320.

367. Ma W., Miao Z., Novotny M.V. Induction of estrus in grouped female mice {Mus domesticus) by synthetic analogues of preputial gland constituents// Chem. Senses. 1999. V.24. P.2S9-293.

368. Maccarrone M., Mclino G., Finazzi-Agro A. Lipoxygenases and their involvement in programmed cell death// Cell Death Differ. 2001. V.8(8). P. 776-784.

369. Magnavacca C., Chanel J. Multiunit olfactory bulb activity in the female rat during estrus and diestrus: modulation of responses to male rat odours// J. Physiol. 1979. V.75. P.8I5-824.

370. Mainworm R.E., Langthaler W.U. Influences of body associated odours on the assessment of the opposite sex // In: 27th Annual Conference on Reproductive Behavior (Abstracts). Boston: Boston Univ. 1995. P.l 14.

371. Majzoub J.A., Muglia L.J., Martinez C., Jacobson L. Molecular and transgenic studies of the corticotropin-rclcasing hormone gene// Annals N.Y. Acad. Sei. 1995. V.77I. P.293-300.

372. Man O., Gilad Y., Lancet D. Prediction of the odorant binding site ofolfactory receptor proteins by human-mouse comparisons// Protein science. 2004. V.13. P.240-254.

373. Marchese S., Pes D., Scaloni A., Carbonc V., Pelosi P. Lipocalins of boar salivary glands binding odours and pheromones// Eur. J. Biochem. 1998. V.252. P.563-568.

374. Marchlewska-Koj A. Sociogenic stress and rodent reproduction// Neurosci. Biobehav. Rev. 1997. V. 21. P. 699-703.

375. Marchlewska-Koj A. Pregnancy block elicited by urinary proteins of male mice// Biol. Rcprod. 1977. V.I7. P.729-732.

376. Marchlewska-Koj A., Bialy E. Modification of the oestrous cycle by urinary proteins of male mice // Biol. Rcprod. 1978. V.26. P.311-314.

377. Marchlcwska-Koj A., Jcmiolo B., Wozniaka J., Kozlowski K. Male-phcronionc cffcct on the efficiency of pregnancy in female mice// J. Reprod. Fertil. 1980. V.58. P.363-367.

378. Marchlewska-Koj A., Pochron E., Sliwowska A. Salivary glands and preputial glands of males as source of estrus-stimulating pheromone in female mice// J. Chem. Ecol. 1990.V. 16. P.2817-2822.

379. Marois G. Inhibition of nidation in mice by modification of the environment and pheromones. Re-establishment by prolactin and thioproperazine// Ann. Endocrinol. 1982. V.43. P.41-52.

380. Marotti T., Gabrilovac J., Rabatic S., Smejkal-Jagar L., Rocic B., I laberstock II. Met-enkephalin modulates stress-induced alterations of the immune response in mice//Pharmacol. Biochem. Behav. 1996. V.54. P.277-284.

381. Martins Y., Preti G., Crabtree C.R., Runyan T., Vainius A. A., Wysocki C. J. Preference for Human Body Odors Is Influenced by Gender and Sexual Orientation//Psychol. Sci. 2005. V.16(9). P.694.

382. Maruniak J.A., Bronson F.H. Gonadotropic responses of male mice to female urine// Endocrinology. 1976. V. 99. N.4. P. 963-969.

383. Maruniak J., Coquelin A., Bronson F.H. The release of LI I in male mice in response to female urinary odors: characteristics of the response in young males//Biol. Reprod. 1978. V.I8. P.25I-255.

384. Massey A., Vandenbergh J.G. Puberty delay by a urinary cue from female house mice in feral populations//Science. 1980.V.209. P.821-822.

385. Massey A., Vandenbergh J.G. Puberty acceleration by urinary cue from male mice in feral populations// Biol. Reprod. 1981. V.24. P.523-527.

386. Mathias S., Pena L.A., Kolesnick R.N. Signal transduction of stress via ceramide// Biochem. J. 1998. V.335. P.465-480.

387. Matsukawa J., Matsuzawa A., Takeda K., Ichijo 11. flic ASKI-MAP kinase cascades in mammalian stress response// J. Biochem. ( Tokyo). 2004. V.136. P.261-265.

388. Matter B.E., Tsuchimoto T. Mutagenicity test systems for the detection of chromosome aberrations in vivo // Arch. Toxicol. 1980. V.46. P.89-98.

389. Matsuoka M., Mori Y., Ichikawa M. Morphological changes of synapses induced by urinary stimulation in the hamster accessory olfactory bulb// Synapse. 1998. V.28. P. 160-166.

390. Matwee C., Kamaruddin M., Betts D.I I., Basrur P.K., King W.A. The effects of antibodies to heat shock protein 70 in fertilization and embryo development// Mol. Num. Reprod. 2001. V.7. N9: 829-37.

391. McClintock B. The significance of responses of the genome to challenge//Science. 1984. V.226. N 4676. P. 792-801.

392. McClintock M. Synchronizing ovarian and birth cycles by female pheromones// In: Chemical signals in vertebrates (Muller-Schwarze D., Silverstein R.M.,eds.). N.Y.: Plenum Press. 1983. P.159-178.

393. McClintock M. Estrous synchrony: modulation of ovarian cycle length by female pheromones// Physiol. Behav. 1984. V.32. P.701-705.

394. McClintock M.K. On nature of mammalian and human pheromones// Ann. N.Y. Acad. Sci. 1998. V.855. P.390-392.

395. McFadyen D.A., Addison W., Locke J. Genomic organization of the rat alpha 2u-globulin gene cluster// Mamm. Genome. 1999. V.I0. P.463-470.

396. McGaughcy R.W., Chang M.C. Initial chromosomal lesions induced by X-irradiating primary spennatocytes of mice // Can. J. Genet. Cytol. 1973. V. 15. P. 341 348.

397. Mcintosh 1., Bishop J.O. Differential expression in male and female mouse liver of similar mRNAs specified by two group I major urinary protein genes// Mol. Cell Biol. 1989. V.9. P.2202-2207.

398. McLaughlin K.A., Osborne B.A., Goldsby R.A. The role of oxygene in thymocyte apoptosis// Eur.(. Immunol. 1996. V.26. P. 1170.

399. Melloni R.IL, Aronin N., DeGennaro L.J., Ferris C.F., Harrison R.J. Dde-I restriction endonuclease fragmentation: a novel method of generating cDNA probes for in situ hybridization in brain//J. Histochem. Cytochem. 1997. V. 45(5). P.755-763.

400. Migliaccio E., Giorgio M., Mele S., Pelicci C>„ Rcboldi P., Pandolll P.P., Lanfrancone L., Pelicci P.G. The p66shc adaptor protein controls oxidative stress response and life span in mammals// Nature. 1999. V.402. P.309-13.

401. Monaco L., Kotaja N., Fienga G., Ilogeveen K., Kolthur U.S., Kimmins S., Brancorsini S., Macho B., Sassone-Corsi P. Specialized rules of gene transcription in male germ cells: the CREM paradigm// Int. J. Androl. 2004. V.27(6). P.322-327.

402. Moncek F., Kvetnansky R., Jezova D. Differential response to stress stimuli of Lewis and Fisher rats at the pituitary and adrenocortical level// Endocrine Regulations. 2001. V.35. P.35-40.

403. Mombaerts P. Seven-transmembrane proteins as odorant and chemosensory receptors//Science. 1999. V.286. P.707-711.

404. Mombaerts P. How smell develops// Nature Neuroscience suppl. 2001. V.4. P. 1192-1198.

405. Mombaerts P., Wang P., Dulac C., Chao S.K., Nemes A., Memdelsohn M., Edmondson J., Axel R. Visualizing an olfactory sensory map// Cell. 1996. V.87. P.675-686.

406. Mora O.A., Cabrera M.M. 'Hie pheromonal restoration of cyclic activity in young estrogenized persistent estrus female rats is a vomeronasal effect// Life Sci. 1997. V.60. P.493-498.

407. Moran D.T., Monti-Bloch L., Stensaas L., Berliner D.L. Structure and function of the human vomeronasal organ// In: Handbook of olfaction and gustation (Doty R.L., ed.). N.Y.: Marcel Dekker Inc. 1995. P.793-820.

408. Mordret G. MAP kinase: a node connecting multiple pathways// Biol. Cell. 1993. V.79. P. 193-207.

409. Mori K., von Campenhause II., Yoshihara Y. Zonal organization of the mammalian main and accessory olfactory systems// Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2000. V.355. P. 1801-1812.

410. Morimoto R.I., Kline M.P., Bimston D.N., Cotto J.J. The heat shock response: regulation and function of heat shock proteins and molecular chaperones// Essay Biochem. 1997. V. 32. P.I7-29.

411. Moriya M., Ochiai M., Yuasa H.J., Suzuki N., Yazawa M. Identification of Ca2+-dependent calmodulin-binding proteins in rat spermatogenic cells as complexes of the heat-shock proteins// Mol. Reprod. Dev. 2004. V.69(3). P.316-324.

412. Morrow A.L., Devautl L.L., Purely R.I I., Paul S.M. Ncuroactive steroid modulators of the stress response// Annals N.Y. Acad. Sci. 1995. V.771. P.257-272.

413. Moss R.L., Flynn R.E., Shi J., Sheii X.M., Dudly C., Zhou A., Novotny M. Flectrophysiological and biochemical responses of mouse vomeronasal receptor cells to urine-derived compounds: possible mechanism of action// Chem. Senses. 1998. V.23. P.483-489.

414. Moynihan J.A., Karp J.D., Cohen N., Cocke R. Alterations in interleukin-4 and antibody production following pheromone exposure: role of glucocorticoids// J. Neuroimmiinol. 1994. V.54. P.51-58.

415. Mucignat-Caretta C., Caretta A., Baldini E. Chem. Protein-bound male urinary pheromones: differential responses according to age and gender// Senses. 1998. V.23. P.67-70.

416. Mucignat-Caretta C., Caretta A., Cavaggioni A. Acceleration of puberty onset in female mice by male urinary proteins// J. Physiol. 1995. V.486. P.517-522.

417. Mugford R.A., Nowell N.W. The preputial glands as a source of aggression-promoting odors in mice// Physiol. Behav. 1971. V.6. P.247-249.

418. Mukhitdinova Kh.N., Stamova E.G., Rasulov M.M. The effects of oxytocin on the activity of cells in the anterior hypothalamus in experimental stress// Neurosci. Behav. Physiol. 2005. V.35(5). P. 469-471.

419. Narnaware Y.K., Baker B.I. Evidence that Cortisol may protect against the immediate effects of stress on circulating leukocytes in the trout// Gen. Comp. Endocrinol. 1996. V.l03. P.359-366.

420. Neuberg M., Schuermann M., Hunter J.B., Miiller R. Two functionally different regions in Fos are required for the -specific DNA interaction of the Fos/Jun protein complex // Nature. 1989. V.338. P.589-590.

421. Ncuer A., Spandorfer S.D., Giraldo P., Jeremias J., Dicterle S., Korneeva I., Liu I I.C., Rosenwaks Z., Wilkin S.S. Meat shock protein expression during gametogcncsis and embryogenesis// Infect. Dis. Obslel. Gynecol. 1999. V.7. P. 10-16.

422. Nicklin M.J., Casari G. A single site mutation in a truncated Fos protein allows it to interact with theTRE in vitro //Oncogene. 1991.V.6. P. 173-179.

423. Nijhoff J.11., de Boer P. Radiation-induced meiolic autosomal non-disjunction in male mice. The effects of low doses of fission neutrons and X-rays in meiosis I and II of a robertsonian translocation helerozygote // Mutat.Res. 1980. V.72. P.431-446.

424. Nikaido H., Llayakawa J.A. A new allele at the IYlup-1 locus controlling an electrophorctic variant of major urinary protein in mice // J. I Icred. 1984. V.75. P.59-61.

425. Nicotera P, Melino G. Regulation of the apoptosis-necrosis switch// Oncogene. 2004. V.23(16). P. 2757-2765.

426. Novotny M.V. Pheromones, binding proteins and receptor responses in rodents// Biochemical Society Transaction. 2003. V.31(l). P. 117-122.

427. Novotny M., Harvey S. D., Jcmiolo B. Farnesenes and related substances for mouse control// US Patent N 5,252,326. 1993. 12.10.1993.

428. Novotny M., Jcmiolo B., Harvey S. Chemistry of rodent pheromones: molecular insights into chemical signaling in mammals// In: Chemical signals in vertebrates 5 (Muller-Schwarze D., Natynczuk S.e., eds.). Oxford: Oxford University Press. 1990. P. I-22.

429. Novotny M., Jemiolo B., I Iarvey S., Wiesler D., Marchlewska-Koj A. Adrenal-mediated endogenous metabolites inhibit puberty in female mice // Science. 1986. V.231. P.722-725.

430. Novotny M., Jorgenson J.W., Carmack M., Wilson S.r. Chemical studies of the primer mouse pheromones// In: Chemical signals Vertebrates and aquatic invertebrates (Muller-Schwarze D., Silverstein R.M., eds.). N.Y.: Plenum Press. 1980. P.377-390.

431. Novotny M.V., Jemiolo B., Wiesler D., Ma W., Harvey S., Xu F., Xie T.-M., Carmack M. A unique urinary constituent, 6-hydroxy-6-methyl-3-heptanone, is a pheromone that accelerates puberty in female mice// Chem. Biol. 1999a. V.6. P.377-383.

432. Oak berg F.F. Duration of spermatogenesis in the mouse // Nature. 1957. V.I80. P. 1137-1158.

433. Oakberg H.F. Spermatogonial stem-cell renewal in the mouse // Anat. Res. 1971. V.169. P.515-532.

434. Oakberg E.F., DiMinno R.L. X-ray sensitivity of primary spcnnatocytes of the mouse // Int. J. Rad. Biol. 1960. V. 2. P. 196 209.

435. Oakberg F.F., Crothwait C.D., Raymer G.D. Spermatogenetic stage sensitivity to 6-mercaptopurine in the mouse // Mutat. Res. 1982. V.94. P. 165-178.

436. O'Brien M.L., Spear B.T., Glauert 11.P. Role of oxidative stress in peroxisome prolilerator-mediated carcinogenesis//Crit. Rev. Toxicol. 2005. V.35(l). P. 6188.

437. Offcrmanns S., Schultz G. Complex information processing by the transmembrane signaling system involving G proteins// Naunyn-Schmiedeberg's Arch. Pharmacol. V.350. P.329-338.

438. Ohta A., Yamada K. Physiological and pharmacological activities of simple alky I- and arylpyrazincs// Yakugaku Zasshi. 1997. V.I 17. P.435-437.

439. Ortega E., Marchena J.M., Garcia J.J., Barriga C., Rodriguez A.B. Norepinephrine as mediator in the stimulation of phagocytosis induced by moderate exercise// Eur. J. Appl. Physiol. 2005. V.93(5-6). P.714-718.

440. Oud J.L., Jong, de Rooij D.G. A sequential analysis of meiosis in the male mouse using a restricted spermatocyte population obtained by a hydroxyurea/triaziquone treatment //Chromosoma. 1979. V.7I. P. 237-248.

441. Pabo C.O., Sauer R.T. Transcription factors: structural families and principles of DNA recognition //Annu. Rev. Bioehem. 1992. V.61. P.1053-1095.

442. Pabo CO, Sauer RT. Annu Rev Bioehem 1992 V.61. P. 1053-1095.

443. Pankevich D., Baum M.J., Cherry J.A. Removal of the superior cervical ganglia fails to block Fos induction in the accessory olfactory system of male mice after exposure to female odors// Neurosci. Lett. 2003. V.345( 1). P. 13-16.

444. Pantages E., Dulac C. A novel family of candidate pheromone receptors in mammals// Neuron. 2000. V.28. P.835-845.

445. Pause B.M. Is the human skin a pheromone-producing organ? // J. Cosmetic Dermatology. 2004. V.3. P.223-228.

446. Parker K.L., Ikeda Y., Luo X. The role of the cell-selective nuclear receptor SF-I in reproductive function// In: Signal transduction in testicular cells (Hansson V., Levy F.O., Tasken K., eds.). Berlin: Springer. 1996. P. 1-12.

447. Parkes A.S., Bruce II. M. Olfactory stimuli in mammalian reproduction// Science. 1961. V. 134. P. 1049-1054.

448. Payne, C.E., Malone, N., Humphries, R., Bradbrook, C., Veggerby, C\, Beynon, R.J., and Hurst, J.L. Heterogeneity of major urinary proteins in house mice: Population and sex differences// In: Chemical signals in vertebrates 9

449. Marclilewska-Koj A., ct al eds.). New York: Kluwcr Academic/Plenum Publishers. 2001.P. 233-240.

450. Pelosi P. Odorant-binding proteins// Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 1994. V.29. P. 199-228.

451. Pelosi P. Perireeeptor events in olfaction//J. Neurobiol. 1996. V.30. P.3-19.

452. Pes D., Dal Monte M., Ganni M., Pelosi P. Isolation of two odorant-binding proteins from mouse nasal tissue//Comp. Biochem. Physiol. (B). 1992. V.103. P.1011-1017.

453. Pes D., Pelosi P. Odorant-binding proteins of the mouse// Comp. Biochem. Physiol. B. 1995. V.I 12. P.471-479.

454. Pes D, Mameli M, Andreini I, Krieger J, Weber M, Breer I I, Pelosi P. Cloning and expression of odorant-binding proteins la and lb from mouse nasal tissue// Gene. 1998. V.2I2. P.49-55.

455. Pevsner J., Hon V., Snowman A.M., Snyder S.I I. Odorant-binding protein, characterization of ligand binding//J. Biol. Chem. 1990. V. 265. P.6118-6125.

456. Pevsner J., Sklar P.B., Snyder S. I I. Odorant-binding protein: localization to nasal glands and secretions// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. V. 83. P.4942-4946.

457. Pevsner J., Trililelti R.R., Striumatter S.M., Snyder S.H. Isolation and characterization of an olfactory receptor protein lor odorant pyrazines// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. V.82. P.3050-3054.

458. Pheromones and reproduction in mammals (Vandenbergh J.G., ed.). N.Y.: Acad. Press. 1983.298 p.

459. Porter R.I I., Winberg J. Unique salience of maternal breast odors for new born infants//Neurosci. Biobehav. Rev. 1999. V.23. P.439-449.

460. Pourtier L, Sicard G. Comparison of the sensitivity of C57BL/6 and AKR mice to airborne molecules of isovaleric acid and amy! acetate// Behav. Genet. 1990. V.20(4). P. 499-509.

461. Prasad B.C., Reed R.R. Chemosensation: molecular mechanisms in worms and mammals. Trends Genet. 1999. V.15. P. 150-153.

462. Pratt W.B., Galigniana M.D., Morishima Y., Murphy P.J. Role of molecular chaperones in steroid receptor action// Essays Biochem. 2004. V.40. P. 41-58.

463. Price M.A., Vandenbergh J.G. Analysis of puberty-accelerating pheromones// J. Exp. Zool. 1992. V.264. P.42-45.

464. Raff I I. Interactions between neurohypophysial hormones and the ACTM-adrcnocortical axis. Ann.N.Y.Acad.Sci. I993.V.689:411-425.

465. Rahman I., Marwick J., Kirkham P. Redox modulation of chromatin remodeling: impact on histone acetylation and deacetylation, NI;-kappaB and pro-inflammatory gene expression// Biochem. Pharmacol. 2004. V.68(6). P.1255-1267.

466. Ransone L.J., Verma I.M. Nuclear prolo-oncogenes fos and jun // Annu. Rev. Cell Biol. 1990. V.6. P.539-557.

467. Rastogi R.K., Milone M., Chiefll G. Impact of socio-sexual conditions on the epididymis and fertility in the male mouse// J. Reprod. Pert. 1981. V.63. P. 331-334.

468. Rekwot P.I., Ogwu D., Oyedipe E.O., Sekoni V.O. The role of pheromones and bioslimulalion in animal reproduction// Anim. Reprod. Sci. 2001. V. 65(3-4). P. 157-170.

469. Ren J.G., Zheng R.L., Shi Y.M., Gong B., Li J.F. Apoptosis, redifferentiation and arresting proliferation simultaneously triggered by oxidative stress in human hepatoma cells//Cell Biol. Int. 1998. V.22. >.41-49.

470. Retana-Marquez S., Bonilla-Jaime I I., Velazquez-Moclezuma J. Lack of effect of corlicosterone administration on male sexual behavior of rats// Physiol. Behav. 1998. V.63. P.367-370.

471. Reyes R., Mendoza J., Ballesteros J., Moffall C. Male chemosignals inhibit the neural responses of male mice to female chemosignals// Brain Res. Bull. 2004 V.63(4). P.301-308.

472. Robertson D.H.L., Beynon R.J., Evershed R.P. Extraction, characterization, and binding analysis of two phcromonally active ligands associated with major urinary protein of house mouse (Mus musculus)// J. Chem. Ecol. 1993. V.I9. P.1405-1416.

473. Robertson D.II.L, Cox K.A., Gaskell S.J., Evershed R.P, Beynon R.J. Molecular heterogeneity in the Major Urinary Proteins of the house mouse Mus Musculus// Biohem.J. 1996. V.316. P. 265-272.

474. Rodriguez I., Feinstein P., Mombaerts P. Variable patterns of axonal projections of sensory neurons in the mouse vomeronasal system// Cell. 1999. V.97. P. 199-208.

475. Romeo R.D., Parfitt D.B., Richardson II.N., Sisk C.E. Pheromones elicit equivalent levels of Fos-immunoreactivity in prepubertal and adult male Syrian hamsters// Horm. Behav. 1998. V.34. P.48-55.

476. Ron E.Z. Adaptation of bacteria to elevated temperatures// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P.7-10.

477. Rose J.D., Kinnaird J.R., Moore F.L. Neurophysiological effects of vasotocin and corticosteroid on medullary neurons: implications for hormonal control of amphibian courtship behavior// Ncurocndocrinology. 1995. V.62. P.406-417.

478. Roy A., Chatterjee B. Androgen action// Critical Rev. in Eukariotic Gene Expression. 1995. V.5. N.2. P. 157-176.

479. Russell M.J., Switz G.M., Thompson K. Olfactory influences on the human menstrual cycle// Pharmacol. Biochem. Behav. 1980. V.13. P.733-738.

480. Rugh R. The mouse. Its reproduction and development// Oxford: Oxford Univ. Press. 1990.320 p.

481. Ryba N.J. Pheromone reception: A complex map of activation in the brain// Ciiit. Biol. 1999. V.9. P.472-474.

482. Ryseck R.P., Bravo R. c-JUN, JUN B, and JUN D differ in their binding affinities to AP-1 and CRE consensus sequences: effect of FOS proteins //. Oncogene. 1991. V.6. P.533-542.

483. Sacharczuk M., Jaszczak K., Sadowski B. Cytogenetic comparison of the sensitivity to mutagens in mice selected for high (MA) and low (LA) swim stress-induced analgesia// Mutat. Res. 2003. V.535( 1 ). >.95-102.

484. Sahu S.C., Dominic C.J. Evidence for the involvement of serotoninergic system in the male-induced ovo-implantation failure (Bruce-effect) in mice// Annales d'Endocrinologie. 1980. V.41. P.425-429.

485. Sandnabba N.K. Heredity, lighting experience and odour cues: factors determining the aggressive interaction in mice// Turku: Kirjapaino Pila Oy. 1986.33 p.

486. Sasaki K., Okamoto K., Inamura K., Tokumitsu Y., Kashiwayanagi M. Inositol-1,4,5-trisphosphatc accumulation induced by urinary pheromones in female rat vomeronasal epithelium// Brain Res. 1999. V.823. P. 161-168.

487. Sassone-Corsi P., Ransone L.J., Verma I.M. Cross-talk in signal transduction: TPA-inducible factor jun/AP-1 activates cAMP-responsive enchancer elements // Oncogene. 1990. V.5. P.427-431.

488. Savic I., Berglund H., Gulyas B., Roland P. Smelling of odorous sex hormonelike compounds causes sex-differentiated hypothalamic activations in humans// Neuron. 2001. V.31. P. 661-668.

489. Schedlowski M., Schmidt R.E. Stress and the immune system// Naturwissenschaften. 1996. V.83. N 5. P.214-220.

490. Schellinck II.M., Smyth C., Brown R.E., Wilkinson M. Odor-induced sexual maturation and expression of c-fos in the olfactory system of juvenile female mice// Brain Res. Dev. Brain Res. 1993. V.74. P. 138-141.

491. Schiml P.A., Rissman E.F. Effects of gonadotropin-rcleasing hormones, corticotropin-releasing hormone, and vasopressin on female sexual behavior// Horm. Behav. 2000. V.37. P.212-220.

492. Schlesinger M.J. Heat shock in avian cells// In: Stress-inducible processes in higher eucariotic cells (Koval T.M., ed.). N.Y.: Plenum Press. 1997. P. 165185.

493. Schwende F. .1., Jorgenson J.W., Novotny M. Possible chemical basis for histocompatibility-related mating preference in mice //J. Chemical Ecol. 1984. V. 10. N. 11. P. 1603-1615.

494. Scolnick D.M., I Ialazonetis T.D. Chfr defines a mitotic stress checkpoint that delays entry into metaphase// Nature. 2000. V.406. P.430-435.

495. Scott J.P., Stewart J.M., De Cohett L.J. Critical periods in the organization of systems// Dev. Psychobiol. 1974. V.7. P.489-513.

496. Sega G. A. Unscheduled DNA synthesis (DNA repair) in the germ cells of male mice its role in the study of mammalian mutagenesis // Genetics. 1979. V.92. P.49-58.

497. SelmanoffM.K., Goldman B.D., Ciinsburg B.E. Developmental changes in serum luteinizing hormone, follicle stimulating hormone and androgen levels in males of two inbred mouse strains // Endocrinology. 1977. V. 100. P. 122 -127.

498. Selye I I. Syndrome produced by diverse nocuous agents// Nature. 1936. V. 138. P.32.

499. Selye IT. The general adaptation syndrome and the diseases of adaptation // J. Clin. Endocr. Metab. 1946. V. 6. P.I 17-230.

500. Selye II. The physiology and pathology of exposure to stress// Montreal: Acta Med. Publ. 1950. P.203.

501. Selye IT. Stress and disease // Science. 1955. V. 122. P. 625-631.

502. Selye II. The stress of life// NY.: McGrow Mill Book Co. 1975. 324 p.

503. Scrizawa S., Miyamichi K., Sakano IT. One neuron-one receptor rule in the mouse olfactory system//TIG. 2004. V.20. P. 648-653.

504. Shackelford R.E., Kaufmann W.K., Panics R.S. Cell cycle control, checkpoint mechanisms, and genotoxie stress// Environ. Health Perspect. 1999. V.107. P.5-24.

505. Shahan K., Denaro M., Gilmartin M., Shi Y., Derman E. Expression of six-mouse major urinary protein genes in the mammary, parotid, sublingual, submaxillary, and lachrymal glands and in the liver// Mol. Cell Biol. 1987. V.7. P.1947-1954.

506. Shepherd G.M. Smells, brains and hormones// Nature. 2006. V.439. P. 149-151.

507. Sherman N.A., Smyth R.S., Middleton E. Effect of adrenergic compounds, aminophylline and hydrocortisone on in vivo immunoglobulin synthesis by normal human peripheral lymphocytes// J. Allergy Clin. Immunol. 1973. V. 52. P. 13-22.

508. Shi Y., Rodriguez M., Shahan K., Derman E. Subfamily of submaxillary gland-specific Mup genes: chromosomal linkage and sequence comparison with liver-specific Mup genes// Nucleic Acids Res. 1989. V.I7. P.6191-6203.

509. Shilov Yu.l., Orlova E.G. Catecholamines as a possible regulators of phagocytic cell functions in acute stress response// Immunol. Letters. 1997. V.56. P.467.

510. Shire J.G.M. Genes and hormones in mice// In: Biology of the house mouse. London: Acad. Press. 1981. P.547-574.

511. Shire J.G.M., Bartke A. Strain differences in testicular weght and spermatogenesis with special reference to C57BL/1 Oj and DBA/2j mice// J.Endocrinol. 1972. V.55. P. 163-171.

512. Silver L.M. Mouse genetics. Concepts and applications// N.Y.: Oxford Univ. Press. 1995. 361 p.

513. Singer A.G., Clancy A.N., Macrides F., Agosta W.C., Bronson F.I I. Chemical properties of a female mouse pheroinone that stimulates gonadotropin secretion in males//Biol. Reprod. 1988. V.38. P. 193-199.

514. S¡rover M.A., Loeb L.A. On the fidelity of DNA synthesis: effects of steroids and 'intercalating agents //Chem. Biol. Onteract. 1980. V.30. P. 1-8.

515. Smith S.W., Osborne B.A. Private pathways to a common death// J. NIH Research. 1997. V.9. P.33-37.

516. Sobel N., Prabhakaran V., Hartley C.A., Desmond J.E., Glover G.H., Sullivan E.V., Gabrieli J. D. Blind smell: brain activation induced by an undetected airborne chemical// Brain. 1999. V.I22. P.209-217.

517. Son H.J., Shahan K., Rodriguez M., Derman E., Costantini F. Identification of an enchancer required for the expression of a mouse major urinary protein gene in the submaxillary gland// Mol. Cell Biol. 1991. V.I 1. P.4244-4252.

518. Song C., Early B., Leonard B.E. Behavioral, neurochemical, and immunological responses to CRF administration. Is CRF a mediator of stress?// Ann. N.Y. Acad. Sei. 1995. V.29. P.55-72.

519. Sorensen P.W. Biological responsiveness to pheromones provides fundamental and unique insight into olfactory function// Chem. Senses. 1996. V.21. P. 245256.

520. Sorger P.K. 1 (eat shock factor and the heat response// Cell. 1991. V. 65. P.363-366.

521. Soti C., Pal C., Papp B., Csermely P. Molecular chaperoncs as regulatory elements of cellular networks// Curr. Opin. Cell Biol. 2005. V. 17(2). P. 210215.

522. Soutlnvick C.I I. Eosinophil response of C57Br mice to behavioral disturbance//Ecology. 1959. V.40. P. 156-157.

523. Spehr M, Gisselmann G, Poplawski A, Riffel 1 JA, Wetzel CI I, Zimmer RK, Matt II. Identification of a testicular odorant receptor mediating human sperm Chemotaxis// Science. 2003. V 299 (56l5):2054-2058.

524. Spclsberg T.C., Rories C., Rcjman J.J., Goldberger A., Fink K., Lau C.K., Colvard D.S., Wiseman G. Sleroid action on gene expression: possible role of regulatory genes and nuclear acceptor sites// BioI.Reprod. 1989. V.40. P. 5469.

525. Stanton M.L., Roy B.A., Thiede D.A. Evolution in stressful environments. I. Phenotypic variability, phenotypic selection, and response to selection in live distinct environmental stresses// Evolution Int. J. Org. Evolution. 2000. V.54( I). P. 93-111.

526. Stern K., McClintock M.K. Regulation of ovulation by human phcromones// Nature. 1998. V.392. P. 177-179.

527. Sternberg E.M. Overview of the conference in the field// Ann. N.Y. Acad. Sci. 1998. V.840. P.1-8.

528. Stoddarl D.M. The role of odor in the social biology of small mammals// In: Pheromones (Birch M.C., ed.). Amsterdam: North Holland Publ. 1974. P.333-356.

529. Stralakis C.A., Chrousos G.P. Neuroendocrinology and pathophysiology of the stress system//Annals N.Y. Acad. Sci. 1995. V.771. P. 1-18.

530. Sundberg 11., Doving K., Novikov S., Ursin 11. A method for studying responses and habituation to odors in rats // Behav. Neural Biol. 1982. V.34. P.l 13-119.

531. Suto G., Kiraly A., Tache Y. Interleukin I beta inhibits gastric empting in rats: mediation through prostaglandin and corticotropin-releasmg factor// Gastroenterology. 1994. V.106. P. 1568-1574.

532. Szoka P.R., Paigen K. Regulation of mouse major urinary protein production by the Mup-a gene// Genetics. 1978. V. 90. P.597-612.

533. Takeda S., Kadowaki S., Ilaga T., Takacsu II., Milaku S. Identification of G protein-coupled receptor genes from the human genome sequence// FEBS Letters. 2002. V.520. P. 97-101.

534. Tatsura II, Nagao H, Tamada A, Sasaki S, Kohri K, Mori K. Developing germ cells in mouse testis express pheromone receptors// FEBS Lett. 2001. V.488.N3:139-144.

535. Taylor R.P., Benjamin I.J. Small heat shock proteins: a new classification scheme in mammals//J. Mol. Cell Cardiol. 2005. V.38(3). P. 433-444.

536. Teague L.C., Bradley E.L. The existence of a puberty accelerating pheromone in the urine of the male prairie deer-mouse (Peromyscus maniculatus baridii)// Biol.Reprod. 1978. V.19. P.314-317.

537. Tegoni M, Pclosi P, Vincent F, Spinelli S, Campanacci V, Grolli S, Ramoni R, Cambillau C. Mammalian odorant binding proteins// Biochim Biophys Acta. 2000. V. 1482:1-2. P.229-240.

538. Tegoni M., Ramoni R., Bignetti E., Spinelli S., Cambillau C. Domain swapping creates a third putative combining site in bovine odorant binding protein dimmer//Nat.Struct.Biol. 1996. V. 11. P.902-906.

539. Teuchcrt-Noodt G. Stress-induced alterations in both peripheral and central nerve system: environmental stress and the mesoprelrontal dopamine projection// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P.69-70.

540. Teskey-Gerstl A., Bamberg E., Steineck T., Palme R. Excretion of corticosteroids in urine and faeces of hares (Lepus europaeus)// J. Comp. Physiol. B. 2000. V.170. P.163-168.

541. Tilbrook A.J., Turner A.L, Clarke I.J. Effects of stress on reproduction in non-rodent mammals: the role of glucocorticoids and sex differences// Rev. Reprod. 2000. V.5. P.105-113.

542. Tilly J.L., Kolesnick R.N. Sphingolipid signaling in gonadal development and function//Chem. Phys. Lipids. 1999. V.102. P. 149-155.

543. Tirintlelli R., Ryba N.J.P. The G-protein gamma-subunit G-gamma-8 is expressed in the developing axons of olfactory and vomeronasal neurons// European J. Neurosci. 1996. V.8. P.2388-2398.

544. Tirindelli R., Mucignat-Caretta C., Ryba N.J.P. Molecular aspects of phcromonal communication via the vomeronasal organ of mammals// 'I lNS. 1998. V.2I. P.482-486.

545. Tringali G., Pozzoli G., Vairano M., Mores N., Preziosi P., Navarra P. lnterleukin-18 displays effects opposite to those of interleukin-1 in the regulation of neuroendocrine stress axis// J. Neuroimmunol. 2005. V. 160(1-2). P.61-67.

546. Tropy D.J., Chrousos G.P. The three-way interactions between the hypothalamic-pituitary-adrenal and gonadal axes and the immune system// Bailliers Clin. Rheumatol. 1996. V.10. P. 181-198.

547. Trotier D., Doving K.B., Eliot C. The vomeronasal organ: a rediscovered sensory apparatus// Tidsskrift for den Norske Laegeforening. 1996. V. 1 16. P.47-51.

548. Tschesche I I., Zolzcr V., Triebel S., Bartsch S. The human neutrophil lipocalin supports the allosteric activation of matrix metalloproteinases// Eur. J. Biochem. 2001. V.268. P. 1918-1928.

549. Tubbiola M. L., Wysocki C. J. FOS Immunoreactivity after exposure to conspecific or heterospecific urine: where are chemosensory cues sorted? // Physiol. Behav. 1997. V. 62. N 4. P. 867-870.

550. Turnn N., Rivest S. Unraveling the Molecular Details Involved in the Intimate Link between the Immune and Neuroendocrine Systems// Lxp. Biol. Med. 2004. V.229. P.996-1006.

551. Ubeda M., Vallejo M., Habener J.F. CHOP enhancement of gene transcription by interactions with Jun/Fos AP-1 complex proteins// Mol. Cell Biol. 1999. V.19. P. 7589-7599.

552. Umegaki K., Higuchi M., Inoue K., Esashi T. Inlluence of one bout of intensive running on lymphocyte micronucleus frequencies in endurance-trained and untrained men//. Int. J. Sports Med. 1998. V.19. P.581-585.

553. Utsumi M., Ohno K., Kawasaki Y., Tamura M., Kubo T., Tohyama M. Expression of major urinary protein genes in the nasal glands associated with general olfaction//J. Neurobiol. 1999. V.39. P.227-236.

554. Vamvakopoulos N.C., Chrousos G.P. Hormonal regulation of human corticotropin-releasing hormone gene expression: implications for the stress-response and immunc/intlammalory reaction// Endocr.Rev. 1994. V. 15. P.409-420.

555. Vandenbergh J.G., Coppola D.M. The physiology and ecology of puberty modulation by primer pheromones//Adv. Study Behav.1986. V.16. P.71-108.

556. Vandenbergh J.G., Whitsett J.M., Lombardi .1.11. Partial isolation of a pheromone accelerating puberty in female mice// J. Reprod. Fertil. 1975. V.43. P.515-523.

557. Vandenbergh J.G., Finlayson J.S., Dobrogoss W.J., Dills S.S., Kost T.A. Chromatographic separation of puberty accelerating pheromones from male mouse urine // Biol.Reprod. 1976. V.15. P. 260-265.

558. Vaux D.L., Hacker G., Strasser A. An evolutionary perspective on apoptosis// Cell. 1994. V.76. P.777-779.

559. Vial E., Marshall C.J. Elevated ERK-MAP kinase activity protects the FOS family member FRA-1 against proteasomal degradation in colon carcinoma cells//J. Cell Sei. 2003. V. 116. P.4957-4963.

560. Vincent F., Löbel D., Brown K., Spinelli S., Grote P., Breer I I., Cambillau C., Tegoni M. Crystal structure of aphrodisin, a sex pheromone from female hamster//J. Mol. Biol. 2001. V.305. P. 459-469.

561. Vincent F., Spinelli S., Ramoni R., Grolli S., Pelosi P., Cambillau C., Tegoni M. Complexes of porcine odorant binding protein with odorant molecules belonging to different chemical classes// J. Mol. Biol. 2000.V.300. P. 127-139.

562. Vosshall L.B. Olfaction: Attracting both sperm and nose// Current Biol. 2004. V.I4. P.918-920.

563. Waise I Y. Epilogue// Bielefelder Ökologische Beiträge, 1992. Band 6. P. 115.

564. Walensky LD, Roskams J, Lefkowitz RJ, Snyder SI I, Ronnett GV: Odorant receptors and desensitization proteins colocalize in mammalian sperm// Mol. Med. 1995. V. 1:130-141.

565. Walker G.C. SOS-regulated proteins in translation DNA synthesis and mutagenesis//TIBS. 1995. V.20. P.416-420.

566. Wang X.Z., Harding H.P., Zhang Y., Jolicoeur E.M., Kuroda M., Ron D. Cloning of mammalian Ire 1 reveals diversity in the ER stress responses// EMBO J. 1998. V.l 7. P.5708-5717.

567. Waris T., Reehardt Z. A rapid method for the demonstration of cutaneous catecholamines in cryostat section with glioxylic-acid-induced fluorescence // Acta Anat. 1977. V. 99. N.3. P. 323-324.

568. Wasser S.K. Stress and reproductive failure: an evolutionary approach with applications to premature labor// Am. J. Obstet. Gynecol. 1999. V.l80. Suppl. P.272-274.

569. Waterman M.R. Regulation of steroid hormone production// In: Signal transduction in testicular cells (Mansson V., Levy P.O., Tasken K., eds.). Berlin: Springer. 1996. P. 13-27.

570. Watt W.C., Storm D.R. Odorants stimulate the ERK/mitogen-activated protein kinase pathway and activate cAMP-response element-mediated transcription in olfactory sensory neurons//.!. Biol. Chem. 2001. V.276. P.2047-2052.

571. Wedekind C., Seebeck T., Bettens P., Paepke A.J. Ml lC-dependent mate preferences in humans // Proc. Roy. Soc. Lond. 1995. V.260. P. 245-249.

572. Weiss R.S., Enoch T., Leder P. Inactivation of mouse Musi results in genomic instability and impaired responses to genotoxic stress// Genes Dev. 2000. V. 14. P. 1886-1898.

573. Wekesa K.S., Anholt R.R.II. Pheromone regulated production of inositol-(l,4,5)-trisphosphate in the mammalian vomeronasal organ// Endocrinology. 1997. V.138. P.3497-3504.

574. Wendelaar Bonga S.E. The stress response in fish// Physiol. Rev. 1997. V.77. P.591-625.

575. Weninger S.C., Peters L.L., Majzoub J.A. Urocortin expression in the Edinger-Westphal nucleus is up-regulated by stress and corticotropin-releasing hormone deficiency// Endocrinology. 2000. V. 141. P.256-263.

576. Wersingcr S.R., Rissman E.F. Oestrogen receptor alpha is essential for female-directed chemo-investigatory behaviour but is not required for the pheromone-induced luteinizing hormone surge in male mice//J. Neuroendocrinol. 2000. V. 12(2). P. 103-1 10.

577. Whittcn W.K. Modification of the oestrous cycle of the mouse by external stimuli associated with the male. Changes in the oestrous cycle determined by vaginal smears//J. Endocrinol. 1958. V.I7. P.307-313.

578. Whittcn W.K., Bronson F.H. The role of pheromoncs in mammalian reproduction// In: Advances in Chemoreception, V.I (Johnson J.W., Moulton D.G., Turk A., cds.). N.Y.: Meridith Corp. 1970. P.309-325.

579. Widen C., Gustafsson J.A., Wikstrom A.C. Cytosolic glucocorticoid receptor interaction with nuclear factor-kappa B proteins in rat liver cells// Biochem J. 2003. V.373(Pt.l). P.211-220.

580. Wieland T., Schulze R., Jakobs K.II. I leterotrimeric guanine nucleotide binding proteins: structure and function// In: Molecular mechanisms of signaling and membrane transport (Wirtz K.W.A., ed.). Beiiin:Springer. 1997. P. I-24.

581. Wilson J.X., Gelb A.W. Free radicals, antioxidants, and neurologic injury: possible relationship to cerebral protection by anesthetics// J. Neurosurg. Anesthesiol. 2002. V.I4(1). P. 66-79.

582. Wilson M.C., Beamer W.G., Whittcn W.K. Puberty acceleration in mice. I. Dose-response effects and lack of critical time following exposure to male mouse urine// Biol. Reprod. 1980. V.22. P.864-872.

583. Wirtz KAV.A. (Ed.). Molecular mechanisms of signaling and membrane transport. Berlin:Springer. 1997.

584. Woloschak G.E. Radiation-induced responses in mammalian cells// Stress-inducible processes in higher eucariotic cells. N.Y.: Plenum Press. 1997. P. 185-219.

585. Woronicz J.D., Calnan B., Ngo V., Winoto A. Requirement for the orphan steroid receptor Nur77 in apoptosis of T-cell hybridomas// Nature. 1994. V. 367. P.277-281.

586. Wuensch K.L. Adrenal hypertrophy in mice following exposure to crowded males odors// Behav. Neural Biol. 1979. P.222-226.

587. Wyrobek A.J. Changes in mammalian sperm morphology after X-ray and chemical exposures // Genetics. 1979, V.92. P.222-226.

588. Wyrobek A.J., Bruce W.R. Chemical induction of sperm abnormalities in mice // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1975. V.72. P.4425-4429.

589. Wyrobek A.J., Heddle J.A., Bruce W.R. Chromosomal abnormalities and the morphology of male mouse sperm heads // Canad. J. Genet. Cytol. 1975. V.I 7. P.675-681.

590. Wyrobek A.J., Gordon L.A., Burkhart J.G., Francis M.W., Kapp R.W., Letz G. Mailing 11.V., Topham J.G., Whorton M.D. An evaluation of the mouse sperm morphology test and other sperm tests in nonluiman mammals // Mutat. Res. 1983. V.I 15. P. 1-72.

591. Wyrobek A.J., Watchmaker G., Gordon L. Sperm morphology testing in mice // In: Handbook of mutagenicity lest procedures. Amsterdam: Hlsevier. 1984. P.739-750.

592. Wysocki C.J., Tubbiola M., Lepri L.J. The prairie vole version of puberty: role of the chemical senses// In: 27lh Annual Conference on Reproductive Behavior (Abstracts). Boston. 1995. P.23.

593. Xu F., Schaefer M., Kida I., Liu N., Rothman D.L., llyder F., Restrepo D., Shepherd G.M. Simultaneous activation of mouse main and accessory bulbs by odors or pheromones// J. Comp. Neurol. 2005. V. 489(4). P. 491-500.

594. Xu M., Hill J.W., Levine J.E. Attenuation of luteinizing hormone surges in neuropeptide Y knockout mice// Neuroendocrinology. 2000. V.72(5). P. 263271.

595. Yamada K., Takahashi 11., Ohta A. Effects of 2,5-dimethylpyrazine on reproductive organs in female rats// Res. Commun. Chem. Pathol. Pharmacol. 1992. V.75. P.99-107.

596. Yamada K., Shimizu A., Ohta A. Effects of dimethylpyrazine isomers on reproductive organs in male rats// Biol. Pharm. Bull. 1993. V. 16. P. 203-206.

597. Yamada !<., Shimizu A., Komatsu I I., Sakata R., Ohta A. Effects of 2,5-dimethylpyrazine on plasma testosterone and polyamines- and acidphosphatasc-lcvels in the rat prostate// Biol. Pharm. Bull. 1994. V.17. P.730-731.

598. Yamazaki K., Beauchamp G.K., Curran M., Bard J., Boyse E.A. Parent-progeny recognition as a function of MITC odortype identity// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. V.97. P. 10500-10502.

599. Yamazaki K., Beauchamp O.K., Matsuzaki O., Bard J., Thomas L., Boyse E.A. Participation of the murine X and Y chromosomes in genetically determined chemosensory identity// PNAS USA. 1986. V.83. P.4438-4440.

600. Yamazaki K., Boyse E.A., Mike V., Thaler II.T., Mathieson B.J., .,Abbot .(., Boyse J., Zayas Z.A., Thomas L. Control of mating preferences in mice by genes in the major histocompatibility complex // J. Exp. Med. 1976. V. 44. P. 1324-1335.

601. Young L.T., Grover A., Gledhill B.L., Lake S., Wyrobek A.J. The quantitative influence of chromosomal translocations on sperm morphology // Environ. Mutagen. 1981. V.3. P.330.

602. Young J.M., Friedman C., Williams E.M., Ross J.A., Tonnes-Priddy L., Trask B. Different evolutionary processes shaped the mouse and human olfactory receptor gene families// Hum. Mol.Genet. 2002. V.I 1. P.5350546.

603. Zalaquett C., Thiessen D. The effects of odors from stressed mice on conspecific behavior// Physiol. Behav. 1991. V.50. P.221-227.

604. Zancanaro С., Mucignat-Carclta С., Mcrigo F., Osculati F. Neuropeptide expression in the mouse vomeronasal organ during postnatal development// Ncuroreport. 1999. V.10. P.2023-2027.

605. Zlian Q. Gadd45a, a p53- and BRCAl-regulated stress protein, in cellular response to DNA damage// Mutat. Res. 2005. V. 569(1-2). P. 133-143.

606. Zhang J., Webb D.M. Evolutionary deterioration of the vomeronasal pheromonc transduction pathway in catarrhine primates// PNAS. 2003. V.100. P.8337-8341.

607. Zidek L., Novotny M.V., Stone M.J. Increased protein backbone conformational entropy upon hydrophobic ligand binding// Nat. Struct. Biol. 1999a. V.6. P.l 118-1121.

608. Ziegler A., Dohr G., Uchanska-Ziegler B. Possible roles for products of polymorphic MHC and linked olfactory receptor genes during selection processes in reproduction// American Journal of Reproductive Immunology. 2002. V.48( I). P.34-42.

609. Zufall F., Munger S.D. From odor and pheromonc transduction to the organization of the sense of smell// Trends in Neurosciences. 2001. V.24(4). P. 191-193.

610. Zurbonsen K, Michel A, Bonnet PA, Mathieu MN, Chevillard C. Antiproliferative, differentiating and apoptotic effects elicited by imidazol,2a.pyrazine derivatives//Gen. Pharmacol. 1999. V.32. P. 135-141.* *