ФОТОДИНАМИЧЕСКИЙ МЕХАНИЗМ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ЛАЗЕРНОГО И СВЕТОДИОДНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.02, доктор наук МАЧНЕВА ТАТЬЯНА ВЯЧЕСЛАВОВНА

• МАЧНЕВА ТАТЬЯНА ВЯЧЕСЛАВОВНА
• доктор наук
• 2016

Оглавление диссертации доктор наук МАЧНЕВА ТАТЬЯНА ВЯЧЕСЛАВОВНА

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1. Лазерное и светодиодное излучение. Основные характеристики

2.2. Применение лазерного и светодиодного излучений в медицине

2.3. Эффекты низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на биологические клетки

2.3.1. Действие низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на разные виды биологических клеток

2.3.2. Действие низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на лейкоциты и макрофаги

2.3.2.1. Явление прайминга лейкоцитов и макрофагов

2.3.2.2. Действие низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на лейкоциты и макрофаги

2.4. Эффекты низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на биологические ткани

2.4.1. Действие низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на разные виды биологических тканей

2.4.2. Раневой процесс как модель для исследования на тканевом уровне воздействия на биологические объекты

2.4.3. Действие низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучений на биологические ткани при заживлении ран

2.5. Системные эффекты низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на уровне организма

2.5.1. Основные клинические эффекты действия низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на организм

2.5.2. Эндотоксический шок как модель для исследования системных

эффектов на уровне организма

2.5.3. Эндотоксический шок и действие низкоинтенсивных лазерного или светодиодного излучений

2.6. Научные теории действия низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на биологические объекты

2.6.1. Основные группы теорий действия низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на биологические объекты

2.6.2. Современные теории действия низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на биологические объекты

2.6.3. Фотодинамическая теория действия низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений на биологические объекты

2.7. Порфирины, как возможные первичные фотоакцепторы при действии низкоинтенсивного излучения в видимом диапазоне

2.7.1. Порфирины в организме человека

2.7.2. Порфирины как фотосенсибилизаторы

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

3.1. Реактивы

3.2. Животные

3.3. Методы исследования

3.3.1. Процедуры получения крови

3.3.1.1. Процедура получения крови человека

3.3.1.2. Процедура получения крови крыс

3.3.2. Модель экспериментальной кожной раны у крыс

3.3.2.1. Процедура создания экспериментальной кожной раны у крыс

3.3.2.2. Планиметрия и фотографирование экспериментальных кожных ран

3.3.2.3. Патоморфологические исследования экспериментальных кожных ран

3.3.3. Модель экспериментального эндотоксического шока

3.3.4. Процедуры получения плазмы крови, клеток лейкоцитарной фракции крови и раневого экссудата, эритроцитов крови и перитонеальных макрофагов крыс

3.3.4.1. Процедура выделения клеток лейкоцитарной фракции крови человека

3.3.4.2. Процедура выделения перитонеальных макрофагов крыс

3.3.4.3. Культивирование макрофагов перитонеального экссудата крыс

3.3.4.4. Процедура получения раневого экссудата и выделения полиморфноядерных клеток лейкоцитарной фракции раневого экссудата крыс

3.3.4.5. Процедура выделения плазмы крови, полиморфноядерных клеток лейкоцитарной фракции и эритроцитов крови крыс

3.3.5. Процедура экстракции липидов из эритроцитов крови крыс

3.3.6. Измерение люминол-зависимой хемилюминесценции

3.3.6.1. Получение сыворотки крови и опсонизация зимозана

3.3.6.2. Измерение люминол-зависимой хемилюминесценции клеток лейкоцитарной фракции крови человека

3.3.6.3. Измерение люминол-зависимой хемилюминесценции клеток лейкоцитарной фракции раневого экссудата крыс

3.3.6.4. Измерение люминол-зависимой хемилюминесценции клеток лейкоцитарной фракции крови крыс

3.3.7. Определение внутриклеточной продукции активных форм кислорода перитонеальными макрофагами крыс

3.3.8. Определение содержания ионов нитрита (И02~) по методу Грисса

3.3.8.1. Определение содержания ионов нитрита в среде культивирования перитонеальных макрофагов крыс

3.3.8.2. Определение содержания ионов нитрита в исследованиях на модели экспериментальной раны

3.3.9. Определение продукции пероксинитрита перитонеальными макрофагами крыс

3.3.10. Регистрация продуктов окисления липидов

3.3.10.1. Определение накопления ТБК-активных продуктов

3.3.10.1.1. Определение накопления ТБК-активных продуктов в суспензии клеток лейкоцитарной фракции крови человека

3.3.10.1.2. Определение накопления ТБК-активных продуктов в раневом экссудате

3.3.10.2. Определение диеновых коньюгатов в суспензии клеток лейкоцитарной фракции крови человека

3.3.10.3. Регистрация флуоресценции цис-паринариевой кислоты для измерения окисления липидов мембран эритроцитов крови крыс

3.3.10.4. Оценка уровня липопероксильных радикалов в раневых экссудатах крыс методом хемилюминесценции, активированной кумарином С-525 в присутствии ионов двухвалентного железа

3.3.11. Определение супероксиддисмутазной активности

3.3.11.1. Определение супероксиддисмутазной активности перитонеальных макрофагов крыс

3.3.11.2. Определение супероксиддисмутазной активности раневого экссудата крыс

3.3.11.3. Определение супероксиддисмутазной активности плазмы крови крыс

3.3.12. Определение антиоксидантной активности раневого экссудата в системе на основе азодиизобутирамидина гидрохлорида (АДБА)

3.3.13. Измерение антиоксидантной активности раневого экссудата в модельной системе при окислении суспензии фосфолипидных липосом, индуцированном ионами двухвалентного железа

3.3.13.1. Получение общей фракции фосфолипидов из желтков куриных яиц

3.3.13.2. Приготовление многослойных фосфолипидных липосом

3.3.13.3. Измерение антиоксидантной активности раневого экссудата в модельной системе при окислении суспензии фосфолипидных липосом, индуцированном ионами двухвалентного железа

3.3.14. Измерение флуоресценции эндогенных порфиринов в раневых экссудатах и плазме крови крыс

3.3.14.1. Измерение флуоресценции эндогенных порфиринов в раневых экссудатах крыс с помощью флуориметра Hitachi MPF-4

3.3.14.2. Измерение флуоресценции эндогенных порфиринов в раневых экссудатах и плазме крови крыс с помощью оптического спектрометра FS-003V

3.4. Источники и процедура облучения

3.4.1. Источники излучения

3.4.2. Расчет дозы облучения

3.4.3. Процедура облучения

3.4.3.1. Процедура облучения суспензии полиморфноядерных клеток лейкоцитарной фракции крови человека

3.4.3.2. Процедура облучения суспензии перитонеальных макрофагов крыс

3.4.3.3. Процедура облучения крыс

3.4.3.3.1. Процедура облучения крыс при использовании модели экспериментальной раны

3.4.3.3.2. Процедура облучения крыс при использовании модели эндотоксического шока

4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

4.1. Инициирование низкоинтенсивным лазерным излучением перекисного окисления липидов мембран лейкоцитов при облучении in vitro

4.1.1. Инициирование низкоинтенсивным лазерным излучением перекисного окисления липидов мембран клеток лейкоцитарной фракции крови и зависимость этого эффекта от дозы облучения

4.1.2. Инициирование низкоинтенсивным лазерным излучением перекисного окисления липидов мембран клеток лейкоцитарной фракции крови в присутствии экзогенного фотосенсибилизатора протопорфирина IX

4.2. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода и азота лейкоцитами и макрофагами при облучении in vitro

4.2.1. Изменение продукции активных форм кислорода клетками лейкоцитарной фракции крови при увеличении продуктов окисления липидов мембран под действием лазерного излучения

4.2.2. Влияние антиоксидантов на индуцированное лазерным облучением изменение продукции активных форм кислорода клетками лейкоцитарной фракции крови

4.2.3. Увеличение продуктов окисления липидов и повышенное изменение хемилюминесцентного ответа лейкоцитов при лазерном облучении в присутствии протопорфирина IX

4.2.4. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода и азота перитонеальными макрофагами крыс

4.2.4.1. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на внутриклеточную продукцию активных форм кислорода перитонеальными макрофагами крыс сразу после облучения

4.2.4.2. Изменения супероксиддисмутазной активности, а также продукции оксида азота и пероксинитрита перитонеальными макрофагами крыс через 24 часа после лазерного облучения

4.3. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами при облучении in vivo

4.3.1. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами раневого экссудата при облучении поверхности экспериментальной кожной раны

4.3.1.1. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами раневого экссудата при облучении in vivo и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.3.1.2. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами раневого экссудата после введения индуктора синтеза эндогенных порфиринов и облучения in vivo

4.3.1.3. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами раневого экссудата после введения экзогенных фотосенсибилизаторов и облучения in vivo

4.3.2. Системные эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами крови крыс при облучении ушной раковины крыс

4.3.2.1. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на активность лейкоцитов крови при облучении in vivo и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.3.2.2. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на активность лейкоцитов крови при ведении липополисахарида B и облучении in vivo

4.3.2.3. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами крови после введения экзогенных фотосенсибилизаторов протопорфирина IX и додециламида хлорина e6 и облучения in vivo

4.4. Влияние низкоинтенсивного лазерного облучения in vivo на антиокислительную активность раневого экссудата и плазмы крови крыс

4.4.1. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на антиокислительную активность раневого экссудата крыс при облучении поверхности экспериментальной кожной раны

4.4.1.1. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на антиокислительную активность раневого экссудата в системе на основе азодиизобутирамидина гидрохлорида (АДБА) и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.4.1.2. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на супероксиддисмутазную активность раневого экссудата крыс и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.4.1.3. Влияние низкоинтенсивного лазерного облучения ран на супероксиддисмутазную активность раневого экссудата крыс при введении

экзогенных фотосенсибилизаторов - феофорбида а или протопорфирина IX

4.4.2. Системные эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на антиокислительную активность плазмы крови крыс при облучении ушной раковины крыс

4.4.2.1. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного облучения in vivo на супероксиддисмутазную активность плазмы крови крыс без и в условиях генерализованной патологии (без и при введении липополисахарида B) и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.4.2.2. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного облучения in vivo в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов на супероксиддисмутазную активность плазмы крови крыс без и в условиях генерализованной патологии (без и при введении липополисахарида B) и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.5. Влияние низкоинтенсивного лазерного облучения in vivo на процессы перекисного окисления липидов в раневом экссудате и в плазме крови крыс

4.5.1. Эффекты низкоинтенсивного лазерного излучения на процессы перекисного окисления липидов в раневом экссудате при облучении поверхности экспериментальной кожной раны

4.5.1.1. Снижение концентрации ТБК-активных продуктов в раневых экссудатах крыс под действием низкоинтенсивного лазерного излучения

4.5.1.2. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на уровень липопероксильных радикалов в раневых экссудатах крыс при регистрации хемилюминесценции раневого экссудата, активированной кумарином С-525 в присутствии ионов двухвалентного железа

4.5.1.3. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на изменения антиокислительной активности и окисленности раневого экссудата при Ев1+-индуцированном перекисном окислении липидов в липосомах

4.5.2. Системные эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на процессы перекисного окисления липидов в плазме крови крыс при облучении ушной раковины крыс

4.5.2.1. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на окисление липидов мембран эритроцитов крыс без и в условиях генерализованной патологии (без и при введении липополисахарида В) и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.5.2.2. Эффекты воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов на окисление липидов мембран эритроцитов крыс без и в условиях генерализованной патологии (без и при введении липополисахарида В) и их зависимость от дозы и длины волны излучения

4.6. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на скорость заживления экспериментальных кожных ран у крыс

4.6.1. Ускорение заживления экспериментальных кожных ран у крыс под действием низкоинтенсивного лазерного облучения и зависимость этого эффекта от дозы и длины волны излучения

4.6.2. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на скорость заживления экспериментальных кожных ран у крыс при введении аминолевулиновой кислоты

4.6.3. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на скорость заживления экспериментальных кожных ран у крыс при введении экзогенных фотосенсибилизаторов - феофорбида а или протопорфирина IX

4.7. Сравнение биологических эффектов низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучения

4.7.1. Влияние лазерного или светодиодного облучения in vitro на продукцию оксида азота и супероксиддисмутазную активность перитонеальных макрофагов крыс

4.7.2. Влияние лазерного или светодиодного облучения поверхности ран на изменения функциональной активности лейкоцитов раневого экссудата

4.7.3. Влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного облучения ран на концентрацию оксида азота в раневом экссудате крыс

4.7.4. Влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного облучения ран на перекисное окисление липидов и антиокислительную активность раневого экссудата крыс

4.7.4.1. Влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучения на накопление ТБК-активных продуктов в раневом экссудате крыс

4.7.4.2. Влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучения на изменения антиокислительной раневого экссудата в системе на основе азодиизобутирамидина гидрохлорида (АДБА)

4.7.4.3. Влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного облучения ран на изменения супероксиддисмутазной активности раневого экссудата

4.7.5. Влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучения на скорость заживления и гистологическую картину экспериментальных кожных ран у крыс

4.8. Роль эндогенных порфиринов в биологических эффектах низкоинтенсивного лазерного излучения

4.8.1. Регистрация эндогенных порфиринов: разработка методики, определение количества и динамики содержания эндогенных порфиринов в раневых экссудатах крыс

4.8.2. Роль эндогенных порфиринов в эффектах низкоинтенсивного лазерного излучения при облучении поверхности экспериментальных кожных ран у крыс

4.8.3. Флуоресцентное измерение количества эндогенных порфиринов в плазме крови крыс

4.8.4. Зависимость эффектов низкоинтенсивного лазерного облучения in vivo на индекс прайминга лейкоцитов крови и супероксиддисмутазную активность плазмы крови от количества эндогенных порфиринов в плазме крови крыс

5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

6. ВЫВОДЫ

7. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

8. ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

9. СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

10. БЛАГОДАРНОСТИ

11. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. ВВЕДЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «ФОТОДИНАМИЧЕСКИЙ МЕХАНИЗМ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ЛАЗЕРНОГО И СВЕТОДИОДНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ»

Актуальность исследования

Лазерное и светодиодное излучение низкой интенсивности, принадлежащее оптическому диапазону спектра, широко применяется в медицине уже более полувека [1-7]. Однако механизм действия таких излучений до сих пор остается малоизученным [1, 8-12]. В результате этого эффективность и безопасность использования низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений в медицине не соответствуют оптимальным набором характеристик действия (например, длины волны и дозы излучения) и индивидуальных особенностей пациента. Параметры светового воздействия на организм чаще всего подбираются врачами эмпирически или по прецеденту. Для выработки научного решения этого вопроса необходимо прежде всего установить молекулярно-клеточный механизм биологического действия таких излучений. Данный механизм должен учитывать различные уровни организации биологических объектов: от клетки к ткани и организму, а также природу первичного фотоакцептора квантов излучения. В результате установления молекулярно-клеточного механизма и выявления природы первичного хромофора станет возможным индивидуальный подход к пациенту при проведении низкоинтенсивной фототерапии и переход от эмпирического подхода к выбору научно обоснованных условий облучения.

Еще одной проблемой в данной области медицины является выбор источника облучения [4, 13-16] - или лазера с когерентным и поляризованным излучением, или светодиода, не обладающего такими параметрами, но являющегося более дешевым и доступным источником, обеспечивающим достаточную мощность излучения. Необходимо отметить, что в научной литературе данная проблема дискутируется и есть несколько работ, отражающих противоположные точки зрения и светодиодное излучение эмпирически, не имея

научного экспериментального обоснования, используется в практической медицине наряду с лазерным.

Степень разработанности

Исследование механизмов фототерапии приобрели особое распространение после изобретения лазера. Разными авторами предложено несколько теорий о механизмах действия низкоинтенсивного лазерного излучения в оптическом диапазоне спектра на биологические объекты. В настоящее время предпочтение отдается гипотезам о фотохимическом действии света, подразумевающим обязательное наличие первичного фотоакцептора [1, 9, 12, 17-24]. Наиболее значимы работы двух научных школ - школы, возглавляемой академиком РАН, профессором Владимировым Ю.А. и школы профессора Кару Т.Й. Владимиров Ю.А. в 1994 г. предложил три механизма действия низкоинтенсивного лазерного излучения [20]. Один из этих механизмов основан на фотодинамическом действии низкоинтенсивного излучения. Он предполагает наличие фотосенсибилизатора (которым, возможно, являются эндогенные порфирины), как первичного акцептора излучения. Согласно данному предложенному механизму фотосенсибилизированные реакции, вызванные низкоинтенсивным лазерным излучением, в присутствии кислорода вызывают перекисное окисление липидов мембран лейкоцитов, что является причиной изменения концентрации цитозольного кальция и, в результате, изменения активности клеток. Автор предположил, что именно это и ведет впоследствии к терапевтическому эффекту. Данная гипотеза оставалась теоретической пока нами не были исследованы некоторые этапы данного механизма на молекулярно-клеточном уровне in vitro [25-32]. В этих исследованиях было установлено фотоиндуцированное изменение активности лейкоцитов крови, изменение уровня кальция в цитоплазме этих клеток, накопление продуктов окисления в эритроцитах крови, в липопротеинах плазмы крови и в модельной системе

(липосомы). Добавление к образцам экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда усиливало наблюдаемые процессы.

На этом этапе наших исследований не было проведено экспериментов по регистрации продуктов окисления липидов мембран собственно лейкоцитов. Соответственно не было возможности сравнить процесс накопления продуктов окисления и изменения функциональной активности лейкоцитов после облучения.

Кроме того, оставался неизученным вопрос - как механизм фотодинамического действия низкоинтенсивного излучения реализует отсроченные во времени эффекты низкоинтенсивной лазерной терапии.

Так же не было проведено исследований воплощения данного механизма при действии низкоинтенсивных излучений видимого диапазона in vivo, что не позволяло определить все этапы реализации эффектов излучения от клетки к организму, начиная от поглощения фотона и заканчивая терапевтическим эффектом.

Кроме того, не было сравнительного исследования эффективности низкоинтенсивных лазерного (когерентного) и светодиодного (некогерентного) излучения.

Главным неизученным вопросом оставалась природа первичных фотоакцепторов, в качестве которых предлагались, в частности, эндогенные порфирины. Единственным косвенным доказательством их роли являлось усиление наблюдаемого нами изменения индекса прайминга лейкоцитов после облучения in vitro в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда.

Научная новизна

В данной работе впервые исследовано действие низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучений видимого диапазона спектра одновременно

на разных уровнях организации биологических объектов: клеточном, тканевом и организменном и на основе единого молекулярно-клеточного фотодинамического механизма, который позволяет объяснить процессы терапевтического действия низкоинтенсивного светового излучения на разных этапах, начиная от поглощения кванта света и заканчивая терапевтическим эффектом.

Впервые экспериментально доказаны основные этапы фотодинамического механизма действия низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучений in vitro, а также предложено и исследовано воплощение этого механизма при облучении in vivo. Установлена и объяснена зависимость биологических эффектов лазерного и светодиодного излучений от дозы и длины волны излучения.

Кроме того, впервые показано, что отсроченные эффекты низкоинтенсивного лазерного излучения могут опосредоваться макрофагами, а эффекты сразу после облучения - лейкоцитами.

Впервые экспериментально доказана роль эндогенных порфиринов как первичных акцепторов квантов низкоинтенсивного светового излучения в биологических объектах. Показано соответствие уровня эндогенных порфиринов и фотобиологических эффектов, а именно - индуцированных лазерным излучением изменений супероксиддисмутазной активности плазмы крови и раневых экссудатов, а также продукции активных форм кислорода лейкоцитами.

В рамках фотодинамического механизма действия низкоинтенсивных видимых излучений впервые проведен сравнительный анализ и экспериментально доказано, что лазерное (когерентное) и светодиодное (некогерентное) излучения как in vitro, так и in vivo оказывают аналогичные биологические эффекты.

Теоретическая и практическая значимость

Данное исследование позволяет понять терапевтический механизм действия низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучения, начиная от поглощения

кванта света первичным акцептором и заканчивая собственно клиническим эффектом, который может быть как положительным (терапевтическим), так и отрицательным. В работе экспериментально доказана реализация основных этапов фотодинамического механизма действия низкоинтенсивного излучения в оптическом диапазоне спектра для различных длин волн и доз облучения. Выявлена роль эндогенных фотосенсибилизаторов - порфиринов в указанных явлениях.

В результате данного исследования твердо установлено, что биологические эффекты низкоинтенсивных лазерного и светодиодного излучения определяются тремя параметрами: дозой излучения, длиной волны излучения, содержанием эндогенных порфиринов в биологическом образце.

Поэтому данная работа позволяет в будущем разработать точную медицинскую методику индивидуального подбора характеристик излучений (например, дозы и длины волны) для проведения низкоинтенсивной лазерной терапии, основываясь на количестве эндогенных порфиринов в плазме крови или других биологических жидкостях пациента. В результате повысится эффективность фототерапии и снизится риск отрицательного действия данного лечения на часть пациентов.

Также в данной работе разработана методика определения следовых количеств эндогенных порфиринов в биологических жидкостях. Это может быть использовано в будущей медицинской методике для определения индивидуальных параметров излучения при проведении фототерапии. Другая область применения - проведение исследований в экспериментальной медицине и биологии.

Кроме того, показано усиление эффектов низкоинтенсивной лазерной терапии в условиях генерализованной патологии (на модели экспериментального эндотоксического шока). Это необходимо учитывать при выборе условий облучения в практической медицине и при разработке методики индивидуального

выбора условий облучения для лечения конкретной патологии каждого индивидуального пациента.

Путем проведения сравнительного исследования действия низкоинтенсивных лазерного (когерентного) и светодиодного (некогерентного) излучений выявлено отсутствие существенных различий в действии лазерного и светодиодного излучений, что может явиться основанием для соответствующих клинических исследований. В результате возможно применение в практической медицине более дешевых, доступных и миниатюрных светодиодных источников излучений. Тем ни менее, при схожей направленности действия когерентного лазерного и некогерентного светодиодного излучений, количественные характеристики эффектов несколько отличаются друг от друга, что необходимо учитывать при выборе параметров излучений при проведении лечения.

Применение экзогенных фотосенсибилизаторов в данной работе использовалось для доказательства роли фотосенсибилизированных реакций в реализации фотодинамического механизма низкоинтенсивной световой терапии. Однако кроме этого, результаты работы с данными веществами позволили оценить их эффективность и влияние на активность лейкоцитов, макрофагов и антиокислительную активность раневых экссудатов и плазмы крови. Это может быть применено в фотодинамической терапии при использовании данных фотосенсибилизаторов в клинической практике для повышения эффективности лечения. Кроме того, это может быть применено для оценки механизмов действия, безопасности и эффективности новых фотосенсибилизаторов в фотодинамической терапии.

Методология и методы исследования

В работе проведено несколько групп экспериментов на биологических клетках (человека и лабораторных животных), тканях (лабораторных животных) и на целом организме (лабораторные животные). Для этого на клеточном уровне

использовались клетки лейкоцитарной фракции крови человека или крыс и перитонеальные макрофаги крыс, а также эритроциты крови крыс. На тканевом уровне использовалась модель экспериментальной кожной раны (Слуцкий, 1969) у крыс и исследовались ткани раневой поверхности и раневой экссудат. На организменном уровне. использовались лабораторные животные (крысы) и модель эндотоксического шока (Victor, 1999; Karma, 1999; Козлов 2006) (исследовали клетки, плазму и сыворотку крови).

Для проведения исследований выделялись компоненты крови: клетки лейкоцитарной фракции, эритроциты, плазму или сыворотку. Также выделялись перитонеальные макрофаги крыс, раневые экссудаты крыс и клетки лейкоцитарной фракции раневых экссудатов, образцы тканей раневых поверхностей. Кроме того, проводилась экстракция липидов из мембран эритроцитов крови крыс. Также проводилось выделение фосфолипидов из желтков куриных яиц (Folch, 1957) и получались многослойные фосфолипидные липосомы (Bangham, 1965).

Для исследования фотобиологических эффектов на указанных объектах проводилось их облучение низкоинтенсивными монохроматическими лазерными и немонохроматическими светодиодными источниками в видимом диапазоне спектра. Облучение в разных экспериментах проводилось без и в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда. Для исследования вопроса о первичном фотоакцепторе применялся флуоресцентный метод определения эндогенных порфиринов в раневом экссудате и плазме крови крыс. Флуоресцентный метод был разработан для данных объектов исследования и условий эксперимента. Облучение проводилось в разных дозах излучения, сопоставимых с дозами, используемыми в низкоинтенсивной лазерной терапии. Применялось низкоинтенсивное излучение в трех диапазонах видимого спектра электромагнитных волн: "синем", "зеленом" и "красном".

Изучались процессы изменения продукции активных форм кислорода и азота лейкоцитами и макрофагами, перекисного окисления липидов, изменения

антиокислительной активности. Для этого, в основном, использовались хемилюминесцентные, флуоресцентные и спектрофотометрические методы.

Для изучения изменений функциональной активности клеток лейкоцитарной фракции и макрофагов использовался метод люминол-зависимой хемилюминесценции, активированной зимозаном. Также для регистрации продукции активных форм кислорода применялся флуоресцентный метод с применением внутриклеточного зонда 2,7-дихлорфлуоресциндиацетата (Rota, 1999; Hempel, 1999), а также метод Грисса (Шебзухов, 1988; Ding, 1988) для определения ионов нитрита и флуоресцентный метод регистрации окисления дигидрородамина 123 (Kooy, 1994) для определения продукции пероксинитрита.

Для оценки уровня накопления продуктов окисления липидов в исследуемых объектах регистрировалось накопление ТБК-активных продуктов (Yagi, 1984; Гаврилов, 1987) и диеновых коньюгатов (Recknagel, 1984). Кроме того, для изучения уровня окисления липидов использовался флуоресцентный метод с цис-паринариевой кислотой (Kagan, 1998). Также проводилась оценка уровня липопероксильных радикалов методом хемилюминесценции, активированной кумарином С-525 в присутствии ионов двухвалентного железа (Владимиров 1991, 2001, 2005).

При исследовании изменений антиокислительной активности (АОА) изучаемых объектов применялся метод оценки АОА в модельной системе на основе азодиизобутирамидина гидрохлорида (Lissi, 1995) и в модельной системе окисления суспензии фосфолипидных липосом, индуцированном ионами двухвалентного железа (Дремина, 1993). Также был использован спектрофотометрический метод с нитросиним тетразолием для определения СОД-активности, модифицированный Г.И. Клебановым (Клебанов, 1990).

В исследованиях с экспериментальными кожными ранами крыс также использовался методы планиметрии (Стручков, 1975) и фотографирования ран и патоморфологическое исследование биологических тканей раневой поверхности.

Во всех сериях экспериментов проводили контрольные эксперименты и статистическую обработку данных.

Поиск научной литературы в данной работе осуществлялся при использовании международных ресурсов PubMed, ScienceDirect, Scopus и российского ресурса eLibrary.

Статистическая обработка данных проводилась стандартными методами математической статистики. Результаты экспериментов представлены в виде (среднее значение ± стандартная ошибка средней), если не указано иначе. Достоверность различий в некоторых экспериментах определялась с помощью непараметрического критерия Манна-Уитни (указано в соответствующих разделах).

Положения, выносимые на защиту

1. В основе терапевтического действия низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучения в видимом диапазоне спектра, как один из основных, лежит фотодинамический механизм. В рамках такого механизма первичными фотоакцепторами являются фотосенсибилизаторы -эндогенные порфирины. Индуцируемые светом фотосенсибилизированные реакции в присутствии кислорода приводят к окислению мембранных липидов, к изменению уровня антиокислительной защиты, к активации и продукции активных форм кислорода и азота клетками как in vitro, так и in vivo на разных уровнях организации биологических объектов. Разное содержание эндогенных фотосенсибилизаторов может приводить к различным по степени выраженности эффектам при действии излучений с разными длинами волн и разными дозами облучения.

2. Низкоинтенсивное лазерное излучение (НИЛИ) в терапевтических дозах сразу после облучения приводит к накоплению продуктов окисления липидов мембран лейкоцитов крови и к последующему изменению функциональной активности этих клеток. Данные изменения зависят от дозы облучения и усиливаются в присутствии экзогенных

фотосенсибилизаторов порфиринового ряда. Применение антиоксидантов устраняет эффекты НИЛИ.

3. Отсроченное во времени действие низкоинтенсивного лазерного излучения опосредуется реализацией фотодинамического механизма в макрофагах и связанно с продукцией активных форм кислорода и азота и соответствующим изменением СОД-активности. Данные процессы зависят от дозы облучения.

4. Низкоинтенсивное лазерное излучение влияет на продукцию активных форм кислорода лейкоцитами при облучении in vivo и этот эффект зависит от дозы и длины волны излучения и усиливается при введении экзогенных фотосенсибилизаторов или индуктора синтеза эндогенных порфиринов, а также в условиях экспериментальной патологии.

5. Низкоинтенсивное лазерное излучение влияет на антиокислительную активность и процесс перекисного окисления липидов раневого экссудата и плазмы крови крыс при облучении in vivo и эти эффекты зависят от дозы и длины волны излучения и усиливаются при введении экзогенных фотосенсибилизаторов, а также в условиях экспериментальной патологии .

6. Низкоинтенсивное лазерное излучение влияет на скорость заживления экспериментальных кожных ран и этот эффект зависит от дозы, длины волны излучения и от присутствия в области раны экзогенных фотосенсибилизаторов или индуктора синтеза эндогенных порфиринов.

7. Низкоинтенсивное лазерное (когерентное) и светодиодное (некогерентное) излучения оказывают аналогичные биологические эффекты, которые зависят от дозы облучения.

8. Эффективность действия низкоинтенсивного лазерного облучения in vivo зависит от количества эндогенных порфиринов в биологических жидкостях (при фиксированной дозе и длине волны облучения).

Внедрение результатов исследования в практику

Результаты исследования используются в курсах преподавания общей и медицинской биофизики на кафедрах общей и медицинской биофизики медико-биологического факультета и физики и математики педиатрического факультета ГБОУ ВПО РНИМУ имени Н.И. Пирогова МЗ РФ.

Результаты исследования были применены для усовершенствования процедуры проведения фотодинамической терапии опухолей в Государственном научном центре лазерной медицины ФМБА России и в Российском онкологическом научном центре им. Н.Н. Блохина МЗ России. По результатам данной работы используется индивидуальный методический подход при проведении фотодинамической терапии, основанный на учете длины волны и дозы облучения, а также концентраций фотосенсибилизаторов, что позволяет перейти от эмпирического выбора условий облучения к индивидуальному лечебному воздействию, характерному для каждого пациента. Кроме того, учтены результаты исследований с применением экзогенных фотосенсибилизаторов.

Так же результаты данного исследования внедрены в практическую деятельность отделений № 45 физиотерапии и № 30 челюстно-лицевой хирургии ГКБ № 1 им. Н.И. Пирогова Департамента здравоохранения города Москвы, клиники "Псориаз-центр" (ООО медицинский центр "Компания Александр") и кафедры челюстно-лицевой хирургии и стоматологии ГБОУ ВПО РНИМУ им. Н.И. Пирогова МЗ РФ для проведения низкоинтенсивной лазерной терапии. Пациентам с заведомо высоким уровнем эндогенных порфиринов (острый воспалительный процесс, интоксикация, порфирии...) низкоинтенсивная терапия проводится в меньших дозах облучения или противопоказана. Также учтено возможное применение светодиодных источников наряду с лазерными.

Апробация результатов

Диссертация апробирована 20 ноября 2015 года на объединенной научно-практической конференции сотрудников кафедры общей и медицинской биофизики медико-биологического факультета, кафедры физики и математики педиатрического факультета и отдела медицинской биофизики ГБОУ ВПО РНИМУ имени Н.И. Пирогова МЗ РФ.

Основные положения работы представлены на 17-ти симпозиумах и конференциях: II Всероссийском съезде фотобиологов (Пущино, 1998), 8th International laser physics workshop (Будапешт, Венгрия, 1999), III съезде фотобиологов России (Воронеж, 2001), Международной научно-практической конференции Северо-Западного региона РФ (Санкт-Петербург, 2001), 1st International conference "Skin and Environment" (Moscow - St. Petersburg, 2005), международном симпозиуме "Молекулярные механизмы регуляции функции клетки" (Тюмень, 2005), 4-ой национальной научно-практической конференции с международным участием "Активные формы кислорода, азота, антиоксиданты и здоровье человека" (Смоленск, 2005), Одиннадцатой Российской гастроэнтерологической неделе (Москва, 2005), Всероссийской конференции молодых ученых и II школе им. Академика Н.М.Эммануэля "Окисление, окислительный стресс, антиоксиданты" (Москва 2006), 5-th National Scientific Practical Conference with International Participation "Reactive oxygen species, nitric oxide, antioxidants and human health" (Смоленск, 2007), Fifth international conference on porphyrins and phthalocyanines ICPP-5 (Москва, 2008), научно-практической конференции «Медико-биологические науки для теоретической и клинической медицины» (Москва, 2008), научно-практической конференции «Биологически активные вещества: фундаментальные и прикладные вопросы получения и применения» (Крым, 2009), конференции и семинарах по научным направлениям Программы фундаментальных исследований Президиума РАН «Фундаментальные науки - медицине» (Москва, 2009), Десятом съезде

Белорусского общественного объединения фотобиологов и биофизиков «Молекулярные, мембранные и клеточные основы функционирования биосистем» (Минск, Беларусь, 2012), IV съезде биофизиков России: Симпозиум III "Физика - медицине и экологии" (Нижний Новгород, 2012), International Symposium "Topical problems of biophotonics - 2015" (Нижний Новгород, 2015).

По теме диссертации опубликовано 40 печатных работ, из них 18 - в рецензируемых изданиях, входящих в "Перечень российских рецензируемых научных журналов, в которых должны быть опубликованы основные научные результаты диссертаций ..." Высшей аттестационной комиссии Министерства образования и науки РФ.

Объем и структура диссертации

Диссертация состоит из следующих разделов: "Введение", "Обзор литературы", "Результаты исследований" (8 глав), "Обсуждение результатов", "Выводы", "Заключение", "Практические рекомендации", "Благодарности" и "Списка литературы", включающего 368 источников. Общий объем диссертации составляет 388 страниц, она содержит 29 таблиц и иллюстрирована 84 рисунками.

Цель исследования: установить основные этапы фотодинамического механизма терапевтического действия лазерного и светодиодного излучений видимого диапазона спектра при облучении in vitro и in vivo на разных уровнях организации биологических объектов: клеточном, тканевом и организменном.

Задачи исследования:

1. Исследовать процесс перекисного окисления липидов мембран клеток лейкоцитарной фракции крови при низкоинтенсивном лазерном облучении in vitro.

2. Исследовать изменение продукции активных форм кислорода клетками лейкоцитарной фракции крови при низкоинтенсивном лазерном облучении in vitro и сопоставить полученные данные с накоплением продуктов окисления липидов в мембранах клеток. Провести данные исследования без и в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда, а также без и в присутствии антиоксидантов.

3. Изучить изменение продукции активных форм кислорода и азота перитонеальными макрофагами как сразу, так и через сутки после низкоинтенсивного лазерного облучения in vitro.

4. Исследовать изменение продукции активных форм кислорода лейкоцитами раневого экссудата при низкоинтенсивном лазерном облучении in vivo, изучить зависимости эффектов от дозы и длины волны излучения. Провести данные исследования без и в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда.

5. Исследовать изменение продукции активных форм кислорода клетками лейкоцитарной фракции крови крыс при низкоинтенсивном лазерном облучении in vivo, изучить зависимости эффектов от дозы и длины волны излучения. Провести данные исследования без и в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда, а также в условиях экспериментальной патологии.

6. Исследовать изменение антиокислительной активности раневого экссудата и плазмы крови крыс при низкоинтенсивном лазерном облучении in vivo, изучить зависимости эффектов от дозы и длины волны излучения. Провести данные исследования без и в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда, а также в условиях экспериментальной патологии.

7. Исследовать процесс перекисного окисления липидов в раневом экссудате и в плазме крови крыс при низкоинтенсивном лазерном облучении in vivo, изучить зависимости эффектов от дозы и длины волны излучения. Провести данные исследования без и в присутствии экзогенных фотосенсибилизаторов порфиринового ряда, а также в условиях экспериментальной патологии.

Список литературы диссертационного исследования доктор наук МАЧНЕВА ТАТЬЯНА ВЯЧЕСЛАВОВНА, 2016 год

11. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Farivar S. Biological effects of low level laser therapy / Farivar S., Malekshahabi T., Shiari R. // J Lasers Med Sci. - 2014. - Т. 5, № 2. - C. 58-62.

2. Hashmi J.T. Role of low-level laser therapy in neurorehabilitation / Hashmi J.T., Huang Y.Y., Osmani B.Z., Sharma S.K., Naeser M.A., Hamblin M.R. // PM R. -2010. - Т. 2, № 12 Suppl 2. - C. S292-305.

3. Ivandic B.T. Low-level laser therapy improves vision in patients with age-related macular degeneration / Ivandic B. T., Ivandic T. // Photomed Laser Surg. - 2008. - Т. 26, № 3. - C. 241-245.

4. Kim W.S. Is light-emitting diode phototherapy (LED-LLLT) really effective? / Kim W.S., Calderhead R.G. // Laser Ther. - 2011. - Т. 20, № 3. - C. 205 - 215.

5. Leal Junior E. C. Effect of cluster multi-diode light emitting diode therapy (LEDT) on exercise-induced skeletal muscle fatigue and skeletal muscle recovery in humans / Leal Junior E.C., Lopes-Martins R.A., Rossi R.P., De Marchi T., Baroni B.M., de Godoi V., Marcos R.L., Ramos L., Bjordal J.M. // Lasers Surg Med. - 2009. - Т. 41, № 8. - C. 572-7.

6. Mester E. Biological effects of laser radiation / Mester E., Jaszsagi-Nagy E. // Radiobiol Radiother (Berl). - 1971. - Т. 12, № 3. - C. 377-85.

7. Mester E. Lasers in clinical practice / Mester E., Juhasz J., Varga P., Karika G. // Acta Chir Acad Sci Hung. - 1968. - Т. 9, № 3. - C. 349-57.

8. U.S. Food and Drug Administration (FDA). Radiation-Emitting Products. Laser Facts [Электронный ресурс] / U.S. Food and Drug Administration (FDA) // Федеральный исполнительный департамент Министерства здравоохранения и социальных служб США - Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов [Офиц. сайт]. - 2015. -Режим доступа: URL: http://www.fda.gov/Radiation-EmittingProducts/ResourcesforYouRadiationEmittingProducts/ucm252761.htm# 5 (дата обращения: 19.06.2015).

9. Rola P. The Use of Low-Level Energy Laser Radiation in Basic and Clinical Research / Rola P., Doroszko A., Derkacz A. // Adv Clin Exp Med. - 2014. - Т. 23, № 5. - C. 835-842.

10. Agrawal T. Pre-conditioning with low-level laser (light) therapy: light before the storm / Agrawal T., Gupta G.K., Rai V., Carroll J.D., Hamblin M.R. // Dose Response. - 2014. - Т. 12, № 4. - C. 619-49.

11. Москвин С.В. Подсчет дозы низкоинтенсивного лазерного излучения: необходимость или вред? / Москвин С.В. // Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. - 2012. - Т. 6. - C. 54-55.

12. Chung H. The nuts and bolts of low-level laser (light) therapy / Chung H., Dai T., Sharma S.K., Huang Y.Y., Carroll J.D., Hamblin M.R. // Ann Biomed Eng. -2012. - Т. 40, № 2. - C. 516-33.

13. Гейниц А.В. Новые технологии внутривенного лазерного облучения крови: "ВЛОК + УФОК" и "ВЛОК-405" / Гейниц А.В., Москвин С.В. - М.: Тверь: ООО «Издательство «Триада», 2010. - 96 c.

14. Малиновский Е.Л. Низкоинтенсивная лазерная и КВЧ терапия с использованием терапевтических аппаратов серии "Милта" / Малиновский Е.Л. - М.: ЗАО "НПО Космического приборостроения", 2012. - 408 c.

15. Пономаренко Г.Н. Биофизические основы физиотерапии: учебное пособие / Пономаренко Г.Н., Турковский И.И. - М.: ОАО "Издательство "Медицина"", 2006. - 176 c.

16. Толстых П.И. Антиоксиданты и лазерное излучение в терапии ран и трофических язв / Толстых П.И., Клебанов Г.И., Шехтер А.Б., Толстых М.П., Тепляшин А.С. - Москва: Издательский дом "Эко", 2002. - 240 c.

17. Liebert A.D. Protein conformational modulation by photons: a mechanism for laser treatment effects / Liebert A.D., Bicknell B.T., Adams R.D. // Med Hypotheses. - 2014. - Т. 82, № 3. - C. 275 - 281.

18. Владимиров Ю.А. Физико-химические основы фотобиологических процессов / Владимиров Ю.А., Потапенко А.Я. - М.: Дрофа, 2006. - 286 c.

19. Владимиров Ю.А. Фотобиологические основы терапевтического применения лазерного облучения / Владимиров Ю.А., Осипов А.Н., Клебанов Г .И. // Биохимия. - 2004. - Т. 69, № 1. - C. 103-113.

20. Владимиров Ю.А. Три гипотезы о механизме действия лазерного облучения на клетки и организм человека / Владимиров Ю.А. // "Эфферентная медицина", Вып. - - М.: Институт Биомедицинской Химии РАМН, 1994. - С. 66.

21. Karu T.I. Elementary processes in cells after light absorption do not depend on the degree of polarization: implications for the mechanisms of laser phototherapy / Karu T.I., Pyatibrat L.V., Moskvin S.V., Andreev S., Letokhov V.S. // Photomed Laser Surg. - 2008. - Т. 26, № 2. - C. 77-82.

22. Karu T.I. Exact action spectra for cellular responses relevant to phototherapy / Karu T.I., Kolyakov S.F. // Photomed Laser Surg. - 2005. - Т. 23, № 4. - C. 35561.

23. Karu T.I. Multiple roles of cytochrome c oxidase in mammalian cells under action of red and IR-A radiation / Karu T.I. // IUBMB Life. - 2010. - Т. 62, № 8. - C. 607 - 610.

24. Karu T.I. Mitochondrial signaling in mammalian cells activated by red and near-IR radiation / Karu T.I. // Photochem Photobiol. - 2008. - Т. 84, № 5. - C. 1091-9.

25. Чичук Т.В. Свободнорадикальный механизм действия низкоинтенсивного лазерного излучения на лейкоциты: дис.... канд. мед. наук: 03.00.02 / Чичук Татьяна Вячеславовна. - М., 1997. - 144 c.

26. Клебанов Г.И. Влияние эндогенных фотосенсибилизаторов на лазер-индуцированный прайминг лейкоцитов крови. / Клебанов Г.И., Страшкевич И.А., Чичук Т.В., Модестова Т.М., Владимиров Ю.А. // Биологические мембраны. - 1998. - Т. 15, № 3. - C. 273-285.

27. Клебанов Г.И. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на пероксидацию мембранных липидов и концентрацию ионов кальция в цитозоле фагоцитов / Клебанов Г.И., Чичук Т.В., Владимиров Ю.А. // Биологические мембраны. - 2001. - Т. 18, № 1. - C. 42-50.

28. Клебанов Г.И. Роль порфиринов плазмы в стимулирующем действии излучения He-Ne лазера на лейкоциты человека / Клебанов Г.И., Чичук Т.В., Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. // Биофизика. - 2005. - Т. 50, № 4. - C. 713 -718.

29. Klebanov G.I. Interaction of photosensitizers with membranes of liposomes and of erythrocytes / Klebanov G.I., Stranadko E.F., Teselkin Y.O., Babenkova I.V., Chichuk T.V. // Proceedings of SPIE - The International Society for Optical Engineering. - 1996. - Т. 2924. - C. 205-211.

30. Priezzhev A.V. Aggregation and hemolysis of human erythrocytes at photodynamic therapy / Priezzhev A.V., Firsov N.N., Stranadko E.F., Ryaboshapka O.M., Chichuk T.V., Suschinskaya O.V. // Proceedings of SPIE -The International Society for Optical Engineering. - 1996. - Т. 2924. - C. 212-218.

31. Klebanov G. I. Hematoporphyrin derivative or phthalocyanine photosensitized hemolysis of erythrocytes under laser irradiation / Klebanov G.I., Chichuk T.V., Shutova L.N., Stranadko E.F., Vladimirov Y.A. // Membr Cell Biol. - 1998. - Т. 11, № 5. - C. 597-607.

32. Klebanov G. I. Low-power laser irradiation induces leukocyte priming / Klebanov G.I., Teselkin Y.O., Babenkova I.V., Bashkujeva T.Y., Chichuk T.V., Vladimirov Y.A. // Gen Physiol Biophys. - 1998. - Т. 17, № 4. - C. 365-76.

33. Кабардин, О.Ф. Физика: справочные материалы. / Кабардин О.Ф. - М.: Просвещение, 1991. - 367 c.

34. Ремизов, А.Н. Учебник по медицинской и биологической физике / Ремизов А.Н., Максина А.Г., Потапенко А.Я. - М: Дрофа, 2003. - 560 c.

35. Савельев И. В. Курс общей физики: Учеб. пособие. В 3-х т. Т. 2. Электричество и магнетизм. Волны. Оптика. - 3-е изд., испр. / Савельев И. В. - М.: Наука. Гл. ред. физ.-мат. лит., 1988. - 496 c.

36. Егоров В.К. Измерение когерентности лазерного излучения: Учебное пособие и описание лабораторной работы / Егоров В.К., Стариков Р.С. - М.: МИФИ, 2008. - 76 c.

37. Качмарек Ф. Введение в физику лазеров / Качмарек Ф. - М.: Мир, 1981. -540 c.

38. Москвин С.В. Эффективность лазерной терапии: cерия "Эффективная лазерная терапия" / Москвин С.В. - Т. 2. - М.-Тверь: ООО "Издательство "Триада", 2014. - 896 c.

39. Agostinis P. Photodynamic therapy of cancer: an update / Agostinis P., Berg K., Cengel K.A., Foster T.H., Girotti A.W., Gollnick S.O., Hahn S.M., Hamblin M.R., Juzeniene A., Kessel D., Korbelik M., Moan J., Mroz P., Nowis D., Piette J., Wilson B.C., Golab J. // CA Cancer J Clin. - 2011. - Т. 61, № 4. - C. 250-81.

40. Гейниц А.В. Фотодинамическая терапия. История создания метода и ее механизмы. / Гейниц А.В., Сорокатый А.Е., Ягудаев Д.М., Трухманов Р.С. // Лазерная медицина. - 2007. - Т. 11, № 3. - C. 42 - 46.

41. Илларионов В.Е. Современные методы физиотерапии: Руководство для врачей общей практики (семейных врачей) / Илларионов В.Е., Симоненко В .Б. - М.: ОАО "Издательство "Медицина"", 2007. - 176 c.

42. Posten W. Low-level laser therapy for wound healing: mechanism and efficacy / Posten W., Wrone D.A., Dover J.S., Arndt K.A., Silapunt S., Alam M. // Dermatol Surg. - 2005. - Т. 31, № 3. - C. 334 - 340.

43. Pontinen P.J. Comparative effects of exposure to different light sources (He-Ne laser, InGaAl diode laser, a specific type of noncoherent LED) on skin blood flow for the head / Pontinen P.J., Aaltokallio T., Kolari P.J. // Acupunct Electrother Res. - 1996. - Т. 21, № 2. - C. 105 - 118.

44. Whelan H.T. Effect of NASA light-emitting diode irradiation on wound healing / Whelan H.T., Smits R.L., Jr., Buchman E.V., Whelan N.T., Turner S.G., Margolis D.A., Cevenini V., Stinson H., Ignatius R., Martin T., Cwiklinski J., Philippi A.F., Graf W.R., Hodgson B., Gould L., Kane M., Chen G., Caviness J. // J Clin Laser Med Surg. - 2001. - Т. 19, № 6. - C. 305 - 314.

45. Avci P. Low-level laser (light) therapy (LLLT) in skin: stimulating, healing, restoring / Avci P., Gupta A., Sadasivam M., Vecchio D., Pam Z., Pam N., Hamblin M.R. // Semin Cutan Med Surg. - 2013. - Т. 32, № 1. - C. 41-52.

46. Фаустова Е.Е. Что нужно знать косметологу: краткий справочник / Фаустова Е.Е., Федорова В.Н., Бурылина О.М., Шарова Н.М., Фаустов Е.В. -М.: Гэотар-Медиа: Литтерра, 2015. - 152 с.

47. Девятков Н.Д. Применение электроники в медицине и биологии / Девятков Н.Д. // Электронная техника. Серия 1. СВЧ-техника. - 1993. - Т. 455, № 1. -С. 66-76.

48. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Приказ Минздравсоцразвития России №278 от 23 ноября 2004 г. "Об утверждении стандарта санаторно-курортной помощи больным с болезнями пищевода, желудка и двенадцатиперстной кишки, кишечника" [Электронный ресурс] / Министерство здравоохранения Российской Федерации // Министерство здравоохранения Российской [Офиц. сайт] Федерации. - 2004. - Режим доступа: иЯЬ: http://www.rosminzdrav.ru/documents/7967-prikaz-minzdravsotsrazvitiya-rossii-278-ot-23-noyabrya-2004-g (дата обращения: 19.06.2015).

49. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Приказ Минздравсоцразвития России №277 от 23 ноября 2004 г. "Об утверждении стандарта санаторно-курортной помощи больным с болезнями печени, желчного пузыря, желчевыводящих путей и поджелудочной железы" [Электронный ресурс] / Министерство здравоохранения Российской Федерации // Министерство здравоохранения Российской Федерации [Офиц. сайт]. - 2004. - Режим доступа: иЯЬ: http://www.rosminzdrav.ru/documents/7962-prikaz-minzdravsotsrazvitiya-rossii-277^-23-шуа^уа-2004^ (дата обращения: 19.06.2015).

50. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Приказ Минздравсоцразвития России №197 от 27 марта 2006 г. "Об организации деятельности родильного дома (отделения)" [Электронный ресурс] / Министерство здравоохранения Российской Федерации // Министерство здравоохранения Российской Федерации [Офиц. сайт]. - 2006. - Режим доступа: УЯЬ: http://www.rosminzdrav.ru/documents/7918-prikaz-

minzdravsotsrazvitiya-rossii-197-ot-27-marta-2006-g (дата обращения: 19.06.2015).

51. Российский научный центр медицинской реабилитации и курортологии. История Центра [Электронный ресурс] / Российский научный центр медицинской реабилитации и курортологии // Федеральное государственное бюджетное учреждение «Российский научный центр медицинской реабилитации и курортологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ «РНЦ МРиК» Минздрава России) [Офиц. сайт]. - 2015. -Режим доступа: URL: http://www.rncvmik.ru/?ni=history&nii=index&niii=0 (дата обращения: 18.06.2015).

52. Российский научный центр лазерной медицины. История [Электронный ресурс] / Российский научный центр лазерной медицины // Федеральноое государственное бюджетное учреждение «Российский научный центр лазерной медицины» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ «РНЦ лазерной медицины» Минздрава России) [Офиц. сайт]. - 2015. - Режим доступа: URL: http://lasermedicine-ssc.org/history (дата обращения: 19.06.2015).

53. Volpato L.E. Viability of fibroblasts cultured under nutritional stress irradiated with red laser, infrared laser, and red light-emitting diode / Volpato L.E., de Oliveira R.C., Espinosa M.M., Bagnato V.S., Machado M.A. // J Biomed Opt. -2011. - Т. 16, № 7. - C. 075004.

54. Aimbire F. Low-level laser therapy decreases levels of lung neutrophils anti-apoptotic factors by a NF-kappaB dependent mechanism / Aimbire F., Santos F.V., Albertini R., Castro-Faria-Neto H.C., Mittmann J., Pacheco-Soares C. // Int Immunopharmacol. - 2008. - Т. 8, № 4. - C. 603-5.

55. AlGhamdi K. M. Low-level laser therapy: a useful technique for enhancing the proliferation of various cultured cells / AlGhamdi K.M., Kumar A., Moussa N.A. // Lasers Med Sci. - 2012. - Т. 27, № 1. - C. 237-49.

56. Anwer A.G. Visible 532 nm laser irradiation of human adipose tissue-derived stem cells: effect on proliferation rates, mitochondria membrane potential and

autofluorescence / Anwer A.G., Gosnell M.E., Perinchery S.M., Inglis D.W., Goldys E.M. // Lasers Surg Med. - 2012. - ^ 44, № 9. - C. 769-78.

57. Araujo B.F. Effects of Low-Level Laser Therapy, 660 nm, in Experimental Septic Arthritis / Araujo B.F., Silva L.I., Meireles A., Rosa C.T., Gioppo N.M., Jorge A.S., Kunz R.I., Ribeiro Lde F., Brancalhao R.M., Bertolini G.R. // ISRN Rheumatol. - 2013. - ^ 2013. - C. 341832.

58. Asai T. The long-term effects of red light-emitting diode irradiation on the proliferation and differentiation of osteoblast-like MC3T3-E1 cells / Asai T., Suzuki H., Kitayama M., Matsumoto K., Kimoto A., Shigeoka M., Komori T. // Kobe J Med Sci. - 2014. - ^ 60, № 1. - C. E12-E18.

59. Dube A. Modulation of macrophage structure and function by low level He-Ne laser irradiation / Dube A., Bansal H., Gupta P. K. // Photochem Photobiol Sci. -2003. - ^ 2, № 8. - C. 851-5.

60. Goralczyk K. Effect of LLLT on endothelial cells culture / Goralczyk K., Szymanska J., Lukowicz M., Drela E., Kotzbach R., Dubiel M., Michalska M., Goralczyk B., Zajac A., Rosc D. // Lasers Med Sci. - 2015. - ^ 30, № 1. - C. 273278.

61. Lan C. C. Low-energy helium-neon laser induces melanocyte proliferation via interaction with type IV collagen: visible light as a therapeutic option for vitiligo / Lan C.C., Wu C.S., Chiou M.H., Chiang T.Y., Yu H.S. // Br J Dermatol. - 2009. -^ 161, № 2. - C. 273-80.

62. Liao X. Helium-neon laser irradiation promotes the proliferation and migration of human epidermal stem cells in vitro: proposed mechanism for enhanced wound re-epithelialization / Liao X., Xie G.H., Liu H.W., Cheng B., Li S.H., Xie S., Xiao L.L., Fu X.B. // Photomed Laser Surg. - 2014. - ^ 32, № 4. - C. 219-25.

63. Mafra de Lima F. Low intensity laser therapy (LILT) in vivo acts on the neutrophils recruitment and chemokines/cytokines levels in a model of acute pulmonary inflammation induced by aerosol of lipopolysaccharide from Escherichia coli in rat / Mafra de Lima F., Villaverde A.B., Salgado M.A.,

Castro-Faria-Neto H.C., Munin E., Albertini R., Aimbire F. // J Photochem Photobiol B. - 2010. - Т. 101, № 3. - C. 271-8.

64. Yang W.Z. Effects of low power laser irradiation on intracellular calcium and histamine release in RBL-2H3 mast cells / Yang W.Z., Chen J.Y., Yu J.T., Zhou L.W. // Photochem Photobiol. - 2007. - Т. 83, № 4. - C. 979-84.

65. Lavi R. Low energy visible light induces reactive oxygen species generation and stimulates an increase of intracellular calcium concentration in cardiac cells / Lavi R., Shainberg A., Friedmann H., Shneyvays V., Rickover O., Eichler M., Kaplan D., Lubart R. // J Biol Chem. - 2003. - Т. 278, № 42. - C. 40917-22.

66. Ankri R. Visible light induces nitric oxide (NO) formation in sperm and endothelial cells / Ankri R., Friedman H., Savion N., Kotev-Emeth S., Breitbart H., Lubart R. // Lasers Surg Med. - 2010. - Т. 42, № 4. - C. 348-52.

67. Клебанов Г.И. Влияние перекисного окисления липидов на структуру и функционирование мембран и липопротеидов: дис.... докт. биол. наук: 03.00.02 / Клебанов Геннадий Иосифович. - М., 1991. - 267 c.

68. Клебанов Г.И. Клеточные механизмы прайминга и активации фагоцитов / Клебанов Г.И., Владимиров Ю.А. // Усп. совр. биол. - 1999. - Т. 119, № 5. - C. 462 - 475.

69. Uhing R.J. Molecular events in the activation of murine macrophages / Uhing R.J., Adams D.O. // Agents Actions. - 1989. - Т. 26, № 1-2. - C. 9-14.

70. Sheppard F.R. Structural organization of the neutrophil NADPH oxidase: phosphorylation and translocation during priming and activation / Sheppard F.R., Kelher M.R., Moore E.E., McLaughlin N.J., Banerjee A., Silliman C.C. // J Leukoc Biol. - 2005. - Т. 78, № 5. - C. 1025-42.

71. Oldham K. T. The role of oxygen radicals in immune complex injury / Oldham K.T., Guice K.S., Ward P.A., Johnson K.J. // Free Radic Biol Med. - 1988. - Т. 4, № 6. -C. 387-97.

72. McPhail L.C. The NADPH oxidase of human polymorphonuclear leukocytes. Evidence for regulation by multiple signals / McPhail L.C., Clayton C.C., Snyderman R. // J Biol Chem. - 1984. - Т. 259, № 9. - C. 5768-75.

73. Warren J. S. Macrophage-derived cytokines amplify immune complex-triggered O2-. responses by rat alveolar macrophages / Warren J.S., Kunkel S.L., Cunningham T.W., Johnson K.J., Ward P.A. // Am J Pathol. - 1988. - ^ 130, № 3.

- C. 489-95.

74. Charo I. F. Chemotactic peptides modulate adherence of human polymorphonuclear leukocytes to monolayers of cultured endothelial cells / Charo I.F., Yuen C., Perez H.D., Goldstein I.M. // J Immunol. - 1986. - ^ 136, № 9. - C. 3412-9.

75. Woodman R. C. Evidence that de novo protein synthesis participates in a time-dependent augmentation of the chemotactic peptide-induced respiratory burst in neutrophils. Effects of recombinant human colony stimulating factors and dihydrocytochalasin B / Woodman R.C., Curnutte J.T., Babior B.M. // Free Radic Biol Med. - 1988. - ^ 5, № 5-6. - C. 355-61.

76. McPhail L.C. Mechanisms of regulating the respiratory burst in leukocytes / McPhail L.C., Snyderman R. // Contemp Top Immunobiol. - 1984. - ^ 14. - C. 247-81.

77. Koval'chuk L. V. Priming of phagocytes by cytokines and water-soluble products of lipid peroxidation / Koval'chuk L.V., Klebanov G.I., Ribarov S.R., Kreinina M.V., Aptsiauri N.E., Gankowskaya L.W., Karaseva M.V., Shuikina E.E., Vladimirov Y.A. // Biomed. Sci. - 1991. - № 2. - C. 221 - 231.

78. Finkel T. H. Priming of neutrophils and macrophages for enhanced release of superoxide anion by the calcium ionophore ionomycin. Implications for regulation of the respiratory burst / Finkel T.H., Pabst M.J., Suzuki H., Guthrie L.A., Forehand J.R., Phillips W.A., Johnston R.B., Jr. // J Biol Chem. - 1987. - ^ 262, № 26. - C. 12589-96.

79. Yao Y. Neutrophil priming occurs in a sequential manner and can be visualized in living animals by monitoring IL-1beta promoter activation / Yao Y., Matsushima H., Ohtola J.A., Geng S., Lu R., Takashima A. // J Immunol. - 2015.

- ^ 194, № 3. - C. 1211-24.

80. Islam M.A. Alveolar macrophage phagocytic activity is enhanced with LPS priming, and combined stimulation of LPS and lipoteichoic acid synergistically induce pro-inflammatory cytokines in pigs / Islam M.A., Proll M., Holker M., Tholen E., Tesfaye D., Looft C., Schellander K., Cinar M.U. // Innate Immun. -2013. - Т. 19, № 6. - C. 631-43.

81. Liao C. S. Cryptic receptors for chemotactic peptides in rabbit neutrophils / Liao C.S., Freer R.J. // Biochem Biophys Res Commun. - 1980. - Т. 93, № 2. - C. 56671.

82. Melloni E. The calpains / Melloni E., Pontremoli S. // Trends Neurosci. - 1989. -Т. 12, № 11. - C. 438-44.

83. Pietrobon D. Structural and functional aspects of calcium homeostasis in eukaryotic cells / Pietrobon D., Di Virgilio F., Pozzan T. // Eur J Biochem. - 1990.

- Т. 193, № 3. - C. 599-622.

84. Westwick J. Mechanisms of calcium homeostasis in the polymorphonuclear leucocyte / Westwick J., Poll C. // Agents Actions. - 1986. - Т. 19, № 1-2. - C. 80-6.

85. Makni-Maalej K. TLR8, but not TLR7, induces the priming of the NADPH oxidase activation in human neutrophils / Makni-Maalej K., Marzaioli V., Boussetta T., Belambri S.A., Gougerot-Pocidalo M.A., Hurtado-Nedelec M., Dang P.M., El-Benna J. // J Leukoc Biol. - 2015. - Т. 97, № 6. - C. 1081 - 1087.

86. Владимиров Ю.А. Биофизика / Владимиров Ю.А., Рощупкин Д.И., Потапенко А.Я., Деев А.И. - М.: Медицина, 1983. - 273 c.

87. Шубин М.В. Изучение влияния перекисного окисления липидов на проницаемость мембран липосом для ионов Са++ / Шубин М.В., Поглазов А.Ф., Скоцеляс Ю.А., Владимиров Ю.А. // Биофизика. - 1975. - Т. 20, № 1. -C. 161 - 163.

88. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в живых системах / Владимиров Ю.А., Азизова О.А., Деев А.И., Козлов А.В., А.Н. О., Рощупкин Д.И. - Т. 29.

- М.: Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР: Сер. Биофизика, 1991. -252 c.

89. Vladimirov Y. A. Effect of oxidized phospholipids on the chemiluminescence of zymosan-activated leukocytes / Vladimirov Y.A., Ribarov S.R., Bochev P.G., Benov L.C., Klebanov G.I. // Gen Physiol Biophys. - 1990. - Т. 9, № 1. - C. 4554.

90. Klebanov G. I. Effects of endogenous photosensitizers on the laser-induced priming of leucocytes / Klebanov G.I., Strashkevich I.A., Chichuk T.V., Modestova T.M., Vladimirov Y.A. // Membr Cell Biol. - 1998. - Т. 12, № 3. - C. 339-354.

91. Kushibiki T. Blue laser irradiation generates intracellular reactive oxygen species in various types of cells / Kushibiki T., Hirasawa T., Okawa S., Ishihara M. // Photomed Laser Surg. - 2013. - Т. 31, № 3. - C. 95-104.

92. Carlos F. P. Protective effect of low-level laser therapy (LLLT) on acute zymosan-induced arthritis / Carlos F.P., de Paula Alves da Silva M., de Lemos Vasconcelos Silva Melo E., Costa M.S., Zamuner S.R. // Lasers Med Sci. - 2014. - Т. 29, № 2. - C. 757-63.

93. Souza N.H.C. Effect of low-level laser therapy on the modulation of the mitochondrial activity of macrophages / Souza N.H.C., Ferrari R.A.M., Silva D.F.T., Nunes F.D., Bussadori S.K., Fernandes K.P.S. // Brazilian Journal of Physical Therapy. - 2014. - Т. 18, № 4. - C. 308-314.

94. Новоселова Е.Г. Действие низкоинтенсивного лазерного излучения (632,8 нм) на изолированные клетки иммунной системы мышей / Новоселова Е.Г., Черенков Д.А., Глушкова О.В., Новоселова Т.В., Чудновский В.М. , Юсупов В.И., Фесенко Е.Е. // Биофизика. - 2006. - Т. 51, № 3. - C. 509 - 518.

95. Alves A.N. Effects of low-level laser therapy on skeletal muscle repair: a systematic review / Alves A.N., Fernandes K.P., Deana A.M., Bussadori S.K., Mesquita-Ferrari R.A. // Am J Phys Med Rehabil. - 2014. - Т. 93, № 12. - C. 1073-85.

96. Kilik R. Effect of equal daily doses achieved by different power densities of low-level laser therapy at 635 nm on open skin wound healing in normal and diabetic rats / Kilik R., Lakyova L., Sabo J., Kruzliak P., Lacjakova K., Vasilenko T.,

Vidova M., Longauer F., Radonak J. // Biomed Res Int. - 2014. - ^ 2014. - C. 269253.

97. Ekizer A. Light-emitting diode photobiomodulation: effect on bone formation in orthopedically expanded suture in rats--early bone changes / Ekizer A., Uysal T., Guray E., Yuksel Y. // Lasers Med Sci. - 2013. - ^ 28, № 5. - C. 1263-70.

98. Adamskaya N. Light therapy by blue LED improves wound healing in an excision model in rats / Adamskaya N., Dungel P., Mittermayr R., Hartinger J., Feichtinger G., Wassermann K., Redl H., van Griensven M. // Injury. - 2011. - ^ 42, № 9. - C. 917-21.

99. Andrade Fdo S. Effects of low-level laser therapy on wound healing / Andrade Fdo S., Clark R.M., Ferreira M.L. // Rev Col Bras Cir. - 2014. - ^ 41, № 2. - C. 129-133.

100. Avni D. Protection of skeletal muscles from ischemic injury: low-level laser therapy increases antioxidant activity / Avni D., Levkovitz S., Maltz L., Oron U. // Photomed laser Surg. - 2005. - ^ 23, № 3. - C. 273-7.

101. Bayat M. Low-level laser therapy improves early healing of medial collateral ligament injuries in rats / Bayat M., Delbari A., Almaseyeh M.A., Sadeghi Y., Bayat M., Reziae F. // Photomed laser Surg. - 2005. - ^ 23, № 6. - C. 556-60.

102. Byrnes K.R. Photobiomodulation improves cutaneous wound healing in an animal model of type II diabetes / Byrnes K. R., Barna L., Chenault V. M., Waynant R. W., Ilev I. K., Longo L., Miracco C., Johnson B., Anders J. J. // Photomed Laser Surg. - 2004. - ^ 22, № 4. - C. 281-90.

103. Chaves M.E. Effects of low-power light therapy on wound healing: LASER x LED / Chaves M.E., Araujo A.R., Piancastelli A.C.C., Pinotti M. // Anais Brasileiros de Dermatologia. - 2014. - ^ 89, № 4. - C. 616-623.

104. de Araujo C. E. Ultrastructural and autoradiographical analysis show a faster skin repair in He-Ne laser-treated wounds / de Araujo C.E., Ribeiro M.S., Favaro R., Zezell D.M., Zorn T.M. // J Photochem Photobiol B. - 2007. - ^ 86, № 2. - C. 87-96.

105. Dungel P. Low level light therapy by LED of different wavelength induces angiogenesis and improves ischemic wound healing / Dungel P., Hartinger J., Chaudary S., Slezak P., Hofmann A., Hausner T., Strassl M., Wintner E., Redl H., Mittermayr R. // Lasers Surg Med. - 2014. - Т. 46, № 10. - C. 773-80.

106. Fung D.T. Effects of a therapeutic laser on the ultrastructural morphology of repairing medial collateral ligament in a rat model / Fung D. T., Ng G. Y., Leung M. C., Tay D. K. // Lasers Surg Med. - 2003. - Т. 32, № 4. - C. 286-93.

107. Fushimi T. Green light emitting diodes accelerate wound healing: characterization of the effect and its molecular basis in vitro and in vivo / Fushimi T., Inui S., Nakajima T., Ogasawara M., Hosokawa K., Itami S. // Wound Repair Regen. - 2012. - Т. 20, № 2. - C. 226-35.

108. Guzzardella G.A. Laser stimulation on bone defect healing: an in vitro study / Guzzardella G. A., Fini M., Torricelli P., Giavaresi G., Giardino R. // Lasers Med Sci. - 2002. - Т. 17, № 3. - C. 216-220.

109. Lavi R. The plasma membrane is involved in the visible light-tissue interaction / Lavi R., Ankri R., Sinyakov M., Eichler M., Friedmann H., Shainberg A., Breitbart H., Lubart R. // Photomed Laser Surg. - 2012. - Т. 30, № 1. - C. 14-9.

110. Mileva M. Effect of He-Ne laser treatment on the level of lipid peroxidation products in experimental cataract of rabbit eyes / Mileva M., Zlateva G., Karabasheva S., Hadjimitova V., Antonov I. // Methods Find Exp Clin Pharmacol.

- 2000. - Т. 22, № 9. - C. 679-681.

111. Малиновская С.Л. Оценка биологического действия низкоинтенсивного электромагнитного излучения на миокард при экспериментальной ишемии / Малиновская С.Л., Баврина А.П., Соловьева Т.И., Рахчеева М.В., Яковлева Е.И., Монич В.А. // Современные технологии в медицине. - 2015. - Т. 7, № 2.

- C. 49 - 54.

112. Глухов А.А. Основы ухода за хирургическими больными / Глухов А.А., Андреев А.А., Болотских В.И., Боев С.Н. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. - 288 c.

113. Булынин В.И. Лечение ран / Булынин В.И., Глухов А.А., Мошуров И.П. -Воронеж: Изд-во Воронежского государственного университета, 1998. -248 c.

114. Кузин М.И. Раны и раневая инфекция / Кузин М.И., Костюченок Б.М. - М.: Медицина, 1990. - 552 c.

115. Чернух А.М. Воспаление (Очерки патологии и экспериментальной терапии) / Чернух А.М. - М.: Медицина, 1979. - 448 c.

116. Shukla A. Depletion of reduced glutathione, ascorbic acid, vitamin E and antioxidant defence enzymes in a healing cutaneous wound / Shukla A., Rasik A.M., Patnaik G.K. // Free Radic Res. - 1997. - Т. 26, № 2. - C. 93-101.

117. Mester E. The biomedical effects of laser application / Mester E., Mester A.F., Mester A. // Lasers Surg Med. - 1985. - Т. 5, № 1. - C. 31-39.

118. Jongsma F.H. Is closure of open skin wounds in rats accelerated by argon laser exposure? / Jongsma F.H., vd Bogaard A.E., van Gemert M.J., Hulsbergen Henning J.P. // Lasers Surg Med. - 1983. - Т. 3, № 1. - C. 75-80.

119. McCaughan J.S. Jr. Effect of low-dose argon irradiation on rate of wound closure / McCaughan J.S., Jr., Bethel B.H., Johnston T., Janssen W. // Lasers Surg Med. -1985. - Т. 5, № 6. - C. 607-614.

120. Pereira M.C. Influence of 670 nm low-level laser therapy on mast cells and vascular response of cutaneous injuries / Pereira M.C., de Pinho C.B., Medrado A.R., Andrade Zde A., Reis S.R. // J Photochem Photobiol B. - 2010. - Т. 98, № 3. - C. 188-92.

121. Silveira P.C. Effects of low-power laser irradiation (LPLI) at different wavelengths and doses on oxidative stress and fibrogenesis parameters in an animal model of wound healing / Silveira P.C., Silva L.A., Freitas T.P., Latini A., Pinho R.A. // Lasers Med Sci. - 2011. - Т. 26, № 1. - C. 125-31.

122. Ribeiro M. S. Effects of low-intensity polarized visible laser radiation on skin burns: a light microscopy study / Ribeiro M. S., Da Silva Dde F., De Araujo C. E., De Oliveira S. F., Pelegrini C. M., Zorn T. M., Zezell D. M. // J Clin Laser Med Surg. - 2004. - Т. 22, № 1. - C. 59-66.

123. Габуева А.А. Влияние низкоинтенсивного лазерного облучения крови на уровень лактоферрина у больных внебольничной пневмонией / Габуева А.А., Бурдули Н.М. // Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. - 2015. - Т. 2. - C. 9 - 11.

124. Ferraresi C. Light-emitting diode therapy in exercise-trained mice increases muscle performance, cytochrome c oxidase activity, ATP and cell proliferation / Ferraresi C., Parizotto N.A., Pires de Sousa M.V., Kaippert B., Huang Y.Y., Koiso T., Bagnato V.S., Hamblin M.R. // J Biophotonics. - 2015. - Т. 8, № 9. - C. 740-54.

125. Притыко Д.А. Лазерная терапия в детской хирургии / Притыко Д.А., Бурков И.В. // Детская хирургия. - 2014. - Т. 18, № 2. - C. 39 - 42.

126. Аскаров К.А. Порфирины: спектроскопия, электрохимия, применение / Аскаров К.А., Березин Б.Д., Быстрицкая Е.В., Голубчиков О.А., Койфман

0.И., Кузьмицкий В.А., Майрановский В.Г., Пономарев Г.В., Риш М.А., Смирнов Б.Р., Соловьев К.Н., Цвирко М.П., Ярцев Е.И. - М.: Наука, 1987. -384 c.

127. Кулова Л.А. Влияние внутривенной лазерной терапии на функцию эндотелия и состояние микроциркуляции у больных ревматоидным артритом / Кулова Л.А., Бурдули Н.М. // Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. - 2014. - Т. 3. - C. 9 - 12.

128. Шахова А.С. Внутривенное лазерное облучение крови в комплексном лечении псориаза / Шахова А.С., Куликов А.Г., Корсунская И.М. // Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. - 2012. - №

1. - C. 24 - 28.

129. Волотовская А.В. Антиоксидантное действие и терапевтическая эффективность лазерного облучения крови у больных ишемической болезнью сердца / Волотовская А.В., Улащик В.С., Филипович В.Н. // Вопр Курортол Физиотер Леч Физ Культ. - 2003. - № 3. - C. 22-5.

130. Leal Junior E. C. Effect of 655-nm low-level laser therapy on exercise-induced skeletal muscle fatigue in humans / Leal Junior E.C., Lopes-Martins R.A., Dalan

F., Ferrari M., Sbabo F.M., Generosi R.A., Baroni B.M., Penna S.C., Iversen V.V., Bjordal J.M. // Photomed Laser Surg. - 2008. - Т. 26, № 5. - C. 419-24.

131. Пономарев И.В. Применение лазерного излучения в косметологии и офтальмологии / Пономарев И.В. - М., 1994. - 57 c.

132. Пальчун В.Т. Применение лазеров в отоларингологии / Пальчун В.Т., Лапченко А.С., Кучеров А.Г. // Лечебное дело. - 2005. - № 2. - C. 20-23.

133. Nadur-Andrade N. Photobiostimulation reduces edema formation induced in mice by Lys-49 phospholipases A2 isolated from Bothrops moojeni venom / Nadur-Andrade N., Dale C.S., Santos A.S., Soares A.M., de Lima C.J., Zamuner S.R. // Photochem Photobiol Sci. - 2014. - Т. 13, № 11. - C. 1561-7.

134. Nishioka M.A. LED (660 nm) and laser (670 nm) use on skin flap viability: angiogenesis and mast cells on transition line / Nishioka M.A., Pinfildi C.E., Sheliga T.R., Arias V.E., Gomes H.C., Ferreira L.M. // Lasers Med Sci. - 2012. -Т. 27, № 5. - C. 1045-50.

135. Sutalangka C. Laser acupuncture improves memory impairment in an animal model of Alzheimer's disease / Sutalangka C., Wattanathorn J., Muchimapura S., Thukham-Mee W., Wannanon P., Tong-un T. // J Acupunct Meridian Stud. -2013. - Т. 6, № 5. - C. 247-51.

136. Патент. RU 2262106, МПК G 01 N 33/52. Способ подбора индивидуального курса лазеротерапии для детей / Воинова В.М., Амбарцумян Р.В., Улас В.Ю., Степина Н.Д., Юрьева Э.А., Новиков П.В. // Московский научно-исследовательский институт педиатрии и детской хирургии Министерства здравоохранения Российской Федерации. - Заявл. 27.06.2003. Опубл. 10.10.2005. - Бюл. № 28.

137. Guerra Fda R. LLLT improves tendon healing through increase of MMP activity and collagen synthesis / Guerra Fda R., Vieira C.P., Almeida M.S., Oliveira L.P., de Aro A.A., Pimentel E.R. // Lasers Med Sci. - 2013. - Т. 28, № 5. - C. 1281-8.

138. Pinfildi C.E. What is better in TRAM flap survival: LLLT single or multiirradiation? / Pinfildi C.E., Hochman B.S., Nishioka M.A., Sheliga T.R., Neves

M.A., Liebano R.E., Ferreira L.M. // Lasers Med Sci. - 2013. - Т. 28, № 3. - C. 755-61.

139. Барбараш О.Л. Стресс-модулирующие эффекты лазеротерапии у больных ишемической болезнью сердца / Барбараш О.Л., Марцияш А.А., Шейбак Т.В., Чукаева И.И., Корочкин И.М., Сырнев В.В. // Тер. архив. - 1996. - № 12.

- C. 50 - 53.

140. Зверева К.В. Отрицательные эффекты низкоинтенсивной лазерной терапии при ревматоидном артрите / Зверева К.В., Грунина Е.А. // Тер. архив. - 1996.

- № 5. - C. 22 - 24.

141. Litscher D. Yellow laser acupuncture - A new option for prevention and early intervention of lifestyle-related diseases: A randomized, placebo-controlled trial in volunteers / Litscher D., Wang G., Gaischek I., Wang L., Wallner-Liebmann S., Petek E. // Laser Ther. - 2015. - Т. 24, № 1. - C. 53-61.

142. Quah-Smith I. The Antidepressant Effect of Laser Acupuncture: A Comparison of the Resting Brain's Default Mode Network in Healthy and Depressed Subjects During Functional Magnetic Resonance Imaging / Quah-Smith I., Suo C., Williams M.A., Sachdev P.S. // Med Acupunct. - 2013. - Т. 25, № 2. - C. 124133.

143. Hinman R. S. Acupuncture for chronic knee pain: a randomized clinical trial / Hinman R.S., McCrory P., Pirotta M., Relf I., Forbes A., Crossley K.M., Williamson E., Kyriakides M., Novy K., Metcalf B.R., Harris A., Reddy P., Conaghan P.G., Bennell K.L. // JAMA. - 2014. - Т. 312, № 13. - C. 1313-22.

144. He W. Effectiveness of Interstitial Laser Acupuncture Depends upon Dosage: Experimental Results from Electrocardiographic and Electrocorticographic Recordings [Электронный ресурс] / He W., Litscher G., Jing X.-H., Shi H., Wang X.-Y., Gaischek I., Su Y.-S., Litscher D., Yang Z.-K., Xin J.-J., Ling Hu L. // Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. - 2013. - 4 c.-Режим доступа: URL: http://dx.doi.org/10.1155/2013/934783 (дата обращения: 31.10.2015). DOI: 10.1155/2013/934783.

145. Мазуркевич Г.С. Шок: теория, клиника, организация противошоковой защиты / Мазуркевич Г.С., Багненко С.Ф. - Санкт-Петербург: Политехника, 2004. - 539 c.

146. Афанасьева Г.А. О патогенетической взаимосвязи недостаточности антирадикальной защиты эритроцитов и нарушений реологических свойств крови при бактериальном эндотоксикозе / Афанасьева Г.А., Чеснокова Н.П., Кутырев В.В. // Проблемы особо опасных инфекций. - 2009. - Т. 2, № 100. -C. 53 - 56.

147. Altavilla D. Inhibition of nuclear factor-kappaB activation by IRFI 042, protects against endotoxin-induced shock / Altavilla D., Squadrito G., Minutoli L., Deodato B., Bova A., Sardella A., Seminara P., Passaniti M., Urna G., Venuti S.F., Caputi A.P., Squadrito F. // Cardiovasc Res. - 2002. - Т. 54, № 3. - C. 68493.

148. Z. Qiu. Inhibition of neutrophil collagenase/MMP-8 and gelatinase B/MMP-9 and protection against endotoxin shock / Qiu Z., Chen J., Xu H., Van den Steen P.E., Opdenakker G., Wang M., Hu J. // J Immunol Res. - 2014. - Т. 2014. - C. 747426.

149. Nakamura A. Increased susceptibility to LPS-induced endotoxin shock in secretory leukoprotease inhibitor (SLPI)-deficient mice / Nakamura A., Mori Y., Hagiwara K., Suzuki T., Sakakibara T., Kikuchi T., Igarashi T., Ebina M., Abe T., Miyazaki J., Takai T., Nukiwa T. // J Exp Med. - 2003. - Т. 197, № 5. - C. 669-74.

150. Demarco V.G. Alpha-lipoic acid inhibits endotoxin-stimulated expression of iNOS and nitric oxide independent of the heat shock response in RAW 264.7 cells / Demarco V.G., Scumpia P.O., Bosanquet J.P., Skimming J.W. // Free Radic Res. - 2004. - Т. 38, № 7. - C. 675-82.

151. Middelveld R.J. Endotoxin-induced shock in the pig--limited effects of low and high concentrations of inhaled nitric oxide / Middelveld R.J., Alving K. // Acta Physiol Scand. - 2003. - Т. 179, № 2. - C. 203-11.

152. Cuzzocrea S. A role for nitric oxide-mediated peroxynitrite formation in a model of endotoxin-induced shock / Cuzzocrea S., Mazzon E., Di Paola R., Esposito E.,

Macarthur H., Matuschak G.M., Salvemini D. // J Pharmacol Exp Ther. - 2006. -^ 319, № 1. - C. 73-81.

153. Suga H. Reinforcement therapy using nitric oxide synthase inhibitors against endotoxin shock in dogs / Suga H., Nakagawa T., Soga Y., Deguchi Y., Suzuki T., Miyoshi N., Imamura Y., Fukuda M. // Surg Today. - 2006. - ^ 36, № 9. - C. 811-7.

154. Doursout M.F. Distribution of NOS isoforms in a porcine endotoxin shock model / Doursout M.F., Oguchi T., Fischer U.M., Liang Y., Chelly B., Hartley C.J., Chelly J.E. // Shock. - 2008. - ^ 29, № 6. - C. 692-702.

155. Liu L.L. Baicalin inhibits macrophage activation by lipopolysaccharide and protects mice from endotoxin shock / Liu L.L., Gong L.K., Wang H., Xiao Y., Wu X.F., Zhang Y.H., Xue X., Qi X.M., Ren J. // Biochem Pharmacol. - 2008. -^ 75, № 4. - C. 914-22.

156. Karima R. The molecular pathogenesis of endotoxic shock and organ failure / Karima R., Matsumoto S., Higashi H., Matsushima K. // Mol Med Today. - 1999. - ^ 5, № 3. - C. 123-32.

157. Kojika M. Endotoxin adsorption therapy for septic shock using polymyxin B-immobilized fibers (PMX): evaluation by high-sensitivity endotoxin assay and measurement of the cytokine production capacity / Kojika M., Sato N., Yaegashi Y., Suzuki Y., Suzuki K., Nakae H., Endo S. // Ther Apher Dial. - 2006. - ^ 10, № 1. - C. 12-8.

158. Taniguchi T. Effects of post-treatment with direct hemoperfusion using a CTR column on mortality and inflammatory responses to endotoxin-induced shock in rats / Taniguchi T., Takemoto Y., Tsuda K., Inaba H., Yamamoto K. // Blood Purif. - 2006. - ^ 24, № 5-6. - C. 460-4.

159. Tsuda K. Effects of extracorporeal treatment with Lixelle on the mortality and inflammatory responses to endotoxin-induced shock in rats / Tsuda K., Taniguchi T. // Ther Apher Dial. - 2006. - ^ 10, № 1. - C. 49-53.

160. Nakazawa H. Successful management using combination therapy of endotoxin absorption therapy (PMX) and continuous hemodiafiltration (CVVHDF) of a

critically ill burn patient suffering from methicillin-resistant Staphylococcus aureus toxic shock syndrome / Nakazawa H., Nozaki M., Shimoda K., Kikuchi Y., Honda T., Isago T. // Burns. - 2008. - Т. 34, № 2. - C. 288-91.

161. Ронко К. Эндотоксемия и эндотоксический шок. Патогенез, диагностика и лечение. (Российское издание книги "Endotoxemia and endotoxin shock: disease, diagnosis, and therapy" Editors: Claudio Ronco, Pasquale Piccinni, Mitchell H. Rosner. Italy 2010). / Ронко К. // "Научный вклад в нефрологию", Вып. 167 - Ред. К. Ронко, П. Пиччинни, and М.Г. Рознер. - М.: Балабанов И.В., 2012. - С. 130.

162. Гальчиков Ю.И. Органная патология у лиц с хронической алкогольной интоксикацией / Гальчиков Ю.И. // Уральский медицинский журнал. - 2008.

- № 14. - C. 94 - 98.

163. Schoeffel U. Inflammatory consequences of the translocation of bacteria and endotoxin to mesenteric lymph nodes / Schoeffel U., Pelz K., Haring R.U., Amberg R., Schandl R., Urbaschek R., von Specht B.U., Farthmann E.H. // Am J Surg. - 2000. - Т. 180, № 1. - C. 65-72.

164. Liu A.H. Endotoxin: friend or foe? / Liu A.H., Redmon A.H., Jr. // Allergy Asthma Proc. - 2001. - Т. 22, № 6. - C. 337-40.

165. Lepper P.M. Clinical implications of antibiotic-induced endotoxin release in septic shock / Lepper P.M., Held T.K., Schneider E.M., Bolke E., Gerlach H., Trautmann M. // Intensive Care Med. - 2002. - Т. 28, № 7. - C. 824-33.

166. Dholakia S. Endotoxemia in pediatric critical illness--a pilot study / Dholakia S., Inwald D., Betts H., Nadel S. // Crit Care. - 2011. - Т. 15, № 3. - C. R141.

167. Маркина А.А. Комплексное экспериментальное моделирование шоковых состояний / Маркина А.А. // Иммунология. - 2012. - Т. 33, № 5. - C. 250 - 254.

168. Макарова О.В. Морфофункциональные изменения иммунной системы мышей BALB/c и C57BL/6 при хроническом бактериальном грамотрицательном эндотоксикозе / Макарова О.В., Диатроптов М.Е., Серебряков С.Н., Малайцев В.В., Богданова И.М. // Архив патологии. - 2012.

- № 3. - C. 43 - 48.

169. Бондаренко В.М. Диагностика, лечение и профилактика эндотоксинемии / Бондаренко В.М., Лиходед В.Г. // Лечение и профилактика. - 2012. - Т. 2, № 3. - C. 70 - 76.

170. Heumann D. CD14 and LBP in endotoxemia and infections caused by Gramnegative bacteria / Heumann D. // Journal of endotoxin research. - 2001. - Т. 7, № 6. - C. 439 - 441.

171. Mathison J.C. The clearance, tissue distribution, and cellular localization of intravenously injected lipopolysaccharide in rabbits.//Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950) / Mathison J.C., Ulevitch R.J. // - 1979. - Т. 123, № 5. -C. 2133 - 2143.

172. Новоселова Е.Г. Защитный эффект низкоинтенсивного лазерного излучения в условиях острого токсического стресса / Новоселова Е.Г., Глушкова О.В., Хренов М.О., Черенков Д.А., Лунин С.М., Новоселова Т.В., Чудновский В.М., Юсупов В.И., Фесенко Е.Е. // Биофизика. - 2007. - Т. 52, № 1. - C. 137 -140.

173. Barroso-Aranda J. Neutrophil activation, tumor necrosis factor, and survival after endotoxic and hemorrhagic shock / Barroso-Aranda J., Zweifach B.W., Mathison J.C., Schmid-Schonbein G.W. // J Cardiovasc Pharmacol. - 1995. - Т. 25 Suppl 2, №. - C. S23-9.

174. Бондаренко В.М. Молекулярные аспекты повреждающего действия бактериальных липополисахаридов / Бондаренко В.М., Рябиченко Е.В., Веткова Л.Г. // Журн. микробиол. - 2004. - № 3. - C. 98 - 105.

175. Osipov A.N. Biological activity of hemoprotein nitrosyl complexes / Osipov A.N., Borisenko G.G., Vladimirov Y.A. // Biochemistry (Mosc). - 2007. - Т. 72, № 13. - C. 1491-504.

176. Hunley T.E. Nitric oxide and endothelin in pathophysiological settings / Hunley T.E., Iwasaki S., Homma T., Kon V. // Pediatric nephrology (Berlin, Germany). -1995. - Т. 9, № 2. - C. 235-244.

177. Thomas D.D. Breathing new life into nitric oxide signaling: A brief overview of the interplay between oxygen and nitric oxide / Thomas D.D. // Redox Biol. -2015.-Т. 5. -C. 225-233.

178. Predonzani A. Spotlights on immunological effects of reactive nitrogen species: When inflammation says nitric oxide / Predonzani A., Cali B., Agnellini A.H., Molon B. // World J Exp Med. - 2015. - Т. 5, № 2. - C. 64-76.

179. Friebe A. Stimulation of soluble guanylate cyclase by superoxide dismutase is mediated by NO / Friebe A., Schultz G., Koesling D. // Biochem. J. - 1998. - Т. 335. - C. 527-531.

180. Lowenstein C.J. Nitric oxide: a physiologic messenger / Lowenstein C.J., Dinerman J.L., Snyder S.H. // Annals of internal medicine. - 1994. - Т. 120, № 3.

- C. 227 - 237.

181. Moncada S. Nitric oxide: physiology, pathophysiology, and pharmacology / Moncada S., Palmer R.M., Higgs E.A. // Pharmacological reviews. - 1991. - Т. 43, № 2. - C. 109 - 142.

182. Fridovich I. Superoxide radical and superoxide dismutases / Fridovich I. // Annu Rev Biochem. - 1995. - Т. 64. - C. 97 - 112.

183. Ducrocq C. Peroxynitrite: an endogenous oxidizing and nitrating agent / Ducrocq

C., Blanchard B., Pignatelli B., Ohshima H. // Cell. Mol. Life Sci. - 1999. - Т. 55.

- C. 1068 - 1077.

184. Jourd'heuil D. Reaction of superoxide and nitric oxide with peroxynitrite. Implications for peroxynitrite-mediated oxidation reactions in vivo / Jourd'heuil

D., Jourd'heuil F.L., Kutchukian P.S., Musah R.A., Wink D.A., Grisham M.B. // J Biol Chem. - 2001. - Т. 276, № 31. - C. 28799 - 28805.

185. Joe B. Studies on the inactivation of superoxide dismutase activity by nitric oxide from rat peritoneal macrophages / Joe B., Lokesh B.R. // Mol Cell Biochem. -1997. - Т. 168, № 1-2. - C. 87-93.

186. Максименко А.В. Лечебное и превентивное действие биферментного препарата супероксиддисмутаза-хондроитинсульфат-каталаза при эндотоксическом шоке / Максименко А.В., Ваваева А.В., Абрамов А.А.,

Ваваев А.В., Лакомкин В.Л. // Технологии живых систем. - 2014. - Т. 11, № 2. - C. 35 - 43.

187. Lin Y.S. Effects of helium-neon laser on levels of stress protein and arthritic histopathology in experimental osteoarthritis.//American journal of physical medicine & rehabilitation / Lin Y.S., Huang M.H., Chai C.Y., Yang R.C. // Association of Academic Physiatrists. - 2004. - Т. 83, № 10. - C. 758 - 765.

188. Novoselova E.G. Effects of low-power laser radiation on mice immunity / Novoselova E.G., Glushkova O.V., Cherenkov D.A., Chudnovsky V.M., Fesenko E.E. // Photodermatol Photoimmunol Photomed. - 2006. - Т. 22, № 1. - C. 33-8.

189. Buravlev E.A. Effects of laser and LED radiation on mitochondrial respiration in experimental endotoxic shock / Buravlev E.A., Zhidkova T.V., Vladimirov Y.A., Osipov A.N. // Lasers Med Sci. - 2013. - Т. 28, № 3. - C. 785-90.

190. Borisenko G.G. Photochemical reactions of nitrosyl hemoglobin during exposure to low-power laser irradiation / Borisenko G.G., Osipov A.N., Kazarinov K.D., Vladimirov Yu A. // Biochemistry (Mosc). - 1997. - Т. 62, № 6. - C. 661-666.

191. Кожура В.Л. Влияние лазерной коррекции на гидратную оболочку биоструктур клеток миокарда и печени при массивной кровопотере / Кожура В.Л., Николаева С.С., Рощина А.А., Кирсанова А.К., Яковлева Л.В., Быков В.А., Новодержкина И.С., Ребров Л.Б., Паршина Е.Ю. // Общая реаниматология. - 2006. - Т. II, № 2.

192. Рощина А.А. Закономерности изменения различных форм воды в миокарде и печени крыс при кровопотере и в раннем постреанимационном периоде / Рощина А.А., Николаева С.С., Кожура В.Л., Быков В.А., Яковлева Л.В., Новодержкина И.С., Королева О.А., Ребров Л.Б., Паршина Е.Ю., Кирсанова А.К. // Биомедицинская химия. - 2003. - Т. 49, № 5. - C. 451 - 455.

193. Рощина А.А. Состояние воды и пол в тканях крыс при массивной кровопотере и облучении He-Ne-лазером / Рощина А.А., Николаева С.С., Кожура В.Л., Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В., Яковлева Л.В., Быков В.А., Новодержкина И.С., Бесараб Д.А., Ребров Л.Б., Паршина Е.Ю., Кирсанова А.К. // Бюлл. эксп. биол. и мед. - 2003. - Т. 135, № 2. - C. 158 - 161.

194. Кожура В.Л. Механизмы органопротекторного действия низкоинтенсвиного лазерного излучения при массивной кровопотере и клинической смерти / Кожура В.Л., Таланцев К.В., Новодержкина И.С., Кирсанова А.К., Яковлева Л.В., Закс И.О., Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В., Бастрикова Н.А., Чхон К.З. // Анестезиология и реаниматология. - 2000. - № 6. - C. 39 - 43.

195. Wu J. Y. Low-power laser irradiation suppresses inflammatory response of human adipose-derived stem cells by modulating intracellular cyclic AMP level and NF-kappaB activity / Wu J.Y., Chen C.H., Wang C.Z., Ho M.L., Yeh M.L., Wang Y.H. // PLoS One. - 2013. - Т. 8, № 1. - C. e54067.

196. Parry G.C. Role of cyclic AMP response element-binding protein in cyclic AMP inhibition of NF-kappaB-mediated transcription / Parry G.C., Mackman N. // J Immunol. - 1997. - Т. 159, № 11. - C. 5450-6.

197. Wang Y. Low-Level Laser Therapy Attenuates LPS-Induced Rats Mastitis by Inhibiting Polymorphonuclear Neutrophil Adhesion / Wang Y., He X., Hao D., Yu D., Liang J., Qu Y., Sun D., Yang B., Yang K., Wu R., Wang J. // Journal of Veterinary Medical Science. - 2014. - Т. 76, № 11. - C. 1443-1450.

198. Ромоданова Э.А. Влияние температуры на изменение спектральных свойств водных растворов триптофана, вызванное предобработкой воды лазерным излучением / Ромоданова Э.А., Дюбко Т.С., Рошаль А.Д., Тиманюк В.А. // Биофизика. - 2006. - Т. 51, № 3. - C. 409 - 412.

199. Ho M.W. Illuminating water and life: Emilio Del Giudice / Ho M.W. // Electromagn Biol Med. - 2015. - Т. 34, № 2. - C. 113 - 122.

200. Корпан М.И. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на раствор сывороточного альбумина / Корпан М.И., Шуфрид О., Курик М.В., Чекман И.С., Фиалка-Мозер В. // Биомедицинская радиоэлектроника. - 2010. - № 5. -C. 52 - 57.

201. Karu T.I. Absorption measurements of cell monolayers relevant to mechanisms of laser phototherapy: reduction or oxidation of cytochrome c oxidase under laser radiation at 632.8 nm / Karu T.I., Pyatibrat L.V., Kolyakov S.F., Afanasyeva N.I. // Photomed Laser Surg. - 2008. - Т. 26, № 6. - C. 593-9.

202. Haas A.F. Redox regulation of wound healing? NF-kappaB activation in cultured human keratinocytes upon wounding and the effect of low energy HeNe irradiation / Haas A.F., Wong J.W., Iwahashi C.K., Halliwell B., Cross C.E., Davis P.A. // Free Radic Biol Med. - 1998. - Т. 25, № 9. - C. 998-1005.

203. Рощупкин Д.И. Основы фотобиофизики / Рощупкин Д.И., Артюхов В.Г. -Воронеж: ВГУ, 1997. - 116 c.

204. Karu T. I. Absorption measurements of a cell monolayer relevant to phototherapy: reduction of cytochrome c oxidase under near IR radiation / Karu T.I., Pyatibrat L.V., Kolyakov S.F., Afanasyeva N.I. // J Photochem Photobiol B. - 2005. - Т. 81, № 2. - C. 98-106.

205. Dyuba A.V. Reconstruction of Absolute Absorption Spectrum of Reduced Heme a in Cytochrome c Oxidase from Bovine Heart / Dyuba A.V., Vygodina T.V., Konstantinov A.A. // Biochemistry (Mosc). - 2013. - Т. 78, № 12. - C. 1358 -1365.

206. Szundi I. Spectral Identification of Intermediates Generated during the Reaction of Dioxygen with the Wild-Type and EQ(I-286) Mutant of Rhodobacter sphaeroides Cytochrome c Oxidase / Szundi I., Funatogawa C., Cassano J., McDonald W., Ray J., Hiser C., Shelagh Ferguson-Miller S., Robert B. Gennis R.B., Einarsdottir O. // Biochemistry. - 2012. - Т. 51, № 46. - C. 9302 - 9311.

207. Филатов И.А. Строение и свойства цитохромоксидазы / Филатов И.А., Кулиш М.А., Миронов А.Ф. // Биоорганическая химия. - 1988. - Т. 14, № 6. -C. 725 - 745.

208. Lim W. Modulation of lipopolysaccharide-induced NF-kappaB signaling pathway by 635 nm irradiation via heat shock protein 27 in human gingival fibroblast cells / Lim W., Kim J., Kim S., Karna S., Won J., Jeon S.M., Kim S.Y., Choi Y., Choi H., Kim O. // Photochem Photobiol. - 2013. - Т. 89, № 1. - C. 199207.

209. Hoesel B. The complexity of NF-kappaB signaling in inflammation and cancer / Hoesel B., Schmid J.A. // Mol Cancer. - 2013. - Т. 12. - C. 86.

210. Непринцева Н.В. Определение белков теплового шока в моче и ткани почки, значение в оценке активности и прогрессирования хронического гломерулонефрита: дис.... канд. мед. наук: 14.01.29 / Непринцева Наталья Викторовна. - М., 2014. - 104 c.

211. Брусничкин А.В. Термолинзовое определение цитохрома c и его комплекса с NO / Брусничкин А.В., Марикуца А.В., Проскурнин М.А., Проскурнина Е.В., Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. // Вестник Московского университета. Серия 2. Химия. - 2008. - Т. 49, № 6. - C. 409 - 414.

212. Buravlev E.A. Effects of low-level laser therapy on mitochondrial respiration and nitrosyl complex content / Buravlev E.A., Zhidkova T.V., Vladimirov Y.A., Osipov A.N. // Lasers Med Sci. - 2014. - Т. 29, № 6. - C. 1861-1866.

213. Mittermayr R. Blue laser light increases perfusion of a skin flap via release of nitric oxide from hemoglobin / Mittermayr R., Osipov A., Piskernik C., Haindl S., Dungel P., Weber C., Vladimirov Y.A., Redl H., Kozlov A.V. // Mol Med. - 2007. - Т. 13, № 1-2. - C. 22-9.

214. Buravlev E.A. Are the mitochondrial respiratory complexes blocked by NO the targets for the laser and LED therapy? / Buravlev E.A., Zhidkova T.V., Osipov A.N., Vladimirov Y.A. // Lasers Med Sci. - 2015. - Т. 30, № 1. - C. 173-80.

215. Горбатенкова Е.А. Красный свет гелий-неонового лазера реактивирует супероксиддисмутазу / Горбатенкова Е.А., Владимиров Ю.А., Парамонов Н.В., А. А.О. // Бюлл. эксп. биол. и мед. - 1989. - Т. 107, № 3. - C. 302-305.

216. Осипов А.Н. Активные формы кислорода и их роль в организме / Осипов А.Н., Азизова О. А., Владимиров Ю.А. // Усп. биол. химии. - 1990. - Т. 31. -C. 180 - 208.

217. Jeeva J.S. Enzymatic antioxidants and its role in oral diseases / Jeeva J.S., Sunitha J., Ananthalakshmi R., Rajkumari S., Ramesh M., Krishnan R. // J Pharm Bioallied Sci. - 2015. - Т. 7, № Suppl 2. - C. S331-3.

218. Мачнева Т.В. Роль эндогенных порфиринов в эффектах низкоинтенсивного лазерного излучения красного диапазона на свободно-радикальные процессы в крови крыс при экспериментальном эндотоксическом шоке /

Мачнева Т.В., Буравлев Е.А., Булгакова Н.Н., Владимиров Ю.А., Осипов А.Н. // Биофизика. - 2011. - Т. 56, № 4. - C. 705-713.

219. Мачнева Т.В. Роль эндогенных порфиринов в лазерной терапии экспериментальных кожных ран / Мачнева Т.В., Булгакова Н.Н., Владимиров Ю.А., Осипов А.Н. // Биофизика. - 2010. - Т. 55, № 3. - C. 532538.

220. Горенков Р.В. Хроническая гипоксия как один из факторов повышенной флуоресценции эндогенных порфиринов в живых биологических тканях / Горенков Р.В., Карпов В.Н., Рогаткин Д.А., Шумский В.И. // Биофизика. -2007. - Т. 52, № 4. - C. 711-717.

221. Пеленицын А.Б. О механизме фотогемолиза эритроцитов / Пеленицын А.Б., Рощупкин Д.И., Владимиров Ю.А. // Физико-химические основы функционирования надмолекулярных структур клетки. - М-лы Всесоюзного симпозиума, М. 17 - 19 июня, 1974 г. - 1974. - № 2. - C. 59 - 61.

222. Foote C.S. Chemistry of singlet oxygen. X. Carotenoid quenching parallels biological protection / Foote C.S., Chang Y.C., Denny R.W. // J Am Chem Soc. -1970. - Т. 92, № 17. - C. 5216-8.

223. Foote C.S. Mechanisms of photosensitized oxidation. There are several different types of photosensitized oxidation which may be important in biological systems / Foote C.S. // Science. - 1968. - Т. 162, № 3857. - C. 963-70.

224. Непорент Б.С. Из истории физики. Александр Николаевич Теренин / Непорент Б.С. // Успехи физических наук. - 1969. - Т. 98, № 4. - C. 722 - 730.

225. Холмогоров В.Е. Работы теренинской школы в области фотобиофизики / Холмогоров В.Е. // Санкт-Петебургский университет. - 2001. - Т. 17, № 3571. - C. 22 - 25.

226. Красновский А.А. Фотохимические реакции хлорофилла и фталоцианинов / Теренин А.Н., Красновский А.А. // Вестник АН СССР. - 1949. -, № 8. - C. 65.

227. Красновский А.А. Каталитическое и фотосенсибилизированное окисление аскорбиновой кислоты на фталоцианинах / Красновский А.А., Брин Г.П. // Доклады Академии наук СССР. - 1946. - Т. 53, № 5. - C. 447 - 450.

228. Красновский А.А. Современные представления о фотосинтезе / Красновский А. А. // Успехи совр. биол. - 1946. - Т. 21, № 2. - C. 153-184.

229. Krasnovsky A. A. Jr. Photosensitization and quenching of singlet oxygen by pigments and lipids of photoreceptor cells of the retina / Krasnovsky A.A., Jr., Kagan V.E. // FEBS Lett. - 1979. - Т. 108, № 1. - C. 152-4.

230. Krasnovsky A. A. Jr. Photophysical studies of pheophorbide a and pheophytin a. Phosphorescence and photosensitized singlet oxygen luminescence / Krasnovsky A.A., Jr., Neverov K.V., Egorov S., Roeder B., Levald T. // J Photochem Photobiol B. - 1990. - Т. 5, № 2. - C. 245-54.

231. Венедиктов Е.А. Эффективность генерации люминесценции синглетного молекулярного кислорода порфиринами / Венедиктов Е.А., Красновский А. А. // Журнал прикладной спектроскопии. - 1982. - Т. 36, № 1. - C. 152 -154.

232. Raab O. Über die Wirkung fluorescierender Stoffe auf Infusorien / Raab O. // Biol. - 1900. - № 39. - C. 524 - 529.

233. Bacellar I.O. Photodynamic Efficiency: From Molecular Photochemistry to Cell Death / Bacellar I.O., Tsubone T.M., Pavani C., Baptista M.S. // Int J Mol Sci. -2015. - Т. 16, № 9. - C. 20523-59.

234. Castano A.P. Mechanisms in photodynamic therapy: part one-photosensitizers, photochemistry and cellular localization / Castano A.P., Demidova T.N., Hamblin M.R. // Photodiagnosis Photodyn Ther. - 2004. - Т. 1, № 4. - C. 279 - 293.

235. Фут Х. Фотосенсибилизированное окисление и синглетный кислород. Биологические следствия. / Фут Х. // Свободные радикалы в биологии (в 2-х томах). - 1979. - Т. 2. - C. 96 -143.

236. Girotti A. W. Photosensitized oxidation of membrane lipids: reaction pathways, cytotoxic effects, and cytoprotective mechanisms / Girotti A.W. // J Photochem Photobiol B. - 2001. - Т. 63, № 1-3. - C. 103 - 113.

237. Мачнева Т.В. Изменение паpаметpов окcидативного cтpеccа ^и низкоинтенотвном лазеpном облучении тканей в пpиcутcтвии тетpапиppольныx фотоcенcибилизатоpов в уcловияx эндотокcичеcкого шока

/ Мачнева Т.В., Лохматов А.В., Шевцова И.С., Ларкина Е.А., Ткачевская Е.П., Миронов А.Ф., Владимиров Ю.А., Осипов А.Н. // Биофизика. - 2012. -Т. 57, № 2. - C. 274.

238. Клебанов Г.И. Влияние липофильных антиоксидантов на фотосенсибилизированную производными гематопорфирина пероксидацию липосомальных мембран при облучении гелий-неоновым лазером / Клебанов Г.И., Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В., Жамбалова Б.А., Ванданмагсар Б., Нестерова О.А., Странадко Е.Ф. // Биологические мембраны. - 1996. - Т. 13, № 2. - C. 133 - 137.

239. Lopes D. Evaluation of the interplay among the charge of porphyrinic photosensitizers, lipid oxidation and photoinactivation efficiency in Escherichia coli / Lopes D., Melo T., Santos N., Rosa L., Alves E., Clara Gomes M., Cunha A., Neves M.G., Faustino M.A., Domingues M.R., Almeida A. // J Photochem Photobiol B. - 2014. - Т. 141. - C. 145-53.

240. Olchawa M.M. Zeaxanthin and alpha-tocopherol reduce the inhibitory effects of photodynamic stress on phagocytosis by ARPE-19 cells / Olchawa M.M., Herrnreiter A.M., Pilat A.K., Skumatz C.M., Niziolek-Kierecka M., Burke J.M., Sarna T.J. // Free Radic Biol Med. - 2015. - № 89. - C. 873 - 882.

241. Krasnovsky A.A. Photosensitized formation of singlet molecular oxygen in solutions of water-soluble porphyrins. Direct luminescence measurements / Krasnovsky A.A., Egorov S.Y., Nasarova O.V., Yartsev E.I., G.V. P. // Studia biophys. - 1988. - Т. 124, № 2-3. - C. 123 - 142.

242. Красновский А.А. мл. Фотогенерация синглетного кислорода водорастворимыми порфиринами / Красновский А.А.м., Егоров С.Ю., Назарова Н.В., Ярцев Е.И., Пономарев Г.В. // Биофизика. - 1987. - Т. 32, № 6. - C. 982 - 993.

243. Шумарина А.О. Фотодинамическое повреждение субклеточных структур дрожжей с индуцированным накоплением эндогенного протопорфирина IX / Шумарина А.О., Страховская М.Г., Туровецкий В.Б., АФрайкин Г.Я. // Микробиология. - 2003. - Т. 72, № 4. - C. 488 - 492.

244. Strakhovskaya M.G. Endogenous porphyrin accumulation and photosensitization in the yeast Saccharomyces cerevisiae in the presence of 2,2'-dipyridyl / Strakhovskaya M.G., Shumarina A.O., Fraikin G., Rubin A.B. // J Photochem Photobiol B. - 1999. - Т. 49, № 1. - C. 18-22.

245. Fraikin G.Ya. The role of membrane-bound porphyrin-type compound as endogenous sensitizer in photodynamic damage to yeast plasma membranes / Fraikin G.Y., Strakhovskaya M.G., Rubin A.B. // J Photochem Photobiol B. -1996. - Т. 34, № 2-3. - C. 129-35.

246. Lubart R. LLLT and PDT / Lubart R., Friedmann H. // Laser Ther. - 2011. - Т. 20, № 3.-C. 233.

247. Kushibiki T. Regulation of miRNA expression by low-level laser therapy (LLLT) and photodynamic therapy (PDT) / Kushibiki T., Hirasawa T., Okawa S., Ishihara M. // Int J Mol Sci. - 2013. - Т. 14, № 7. - C. 13542-58.

248. Freas W. Neurovascular effects of reactive oxygen intermediates produced by photoradiation / Freas W., Llave R., Hart J.L., Kobayashi Y., Nagel J., Muldoon S.M. // Neuropharmacology. - 1992. - Т. 31, № 8. - C. 809-15.

249. Lubart R. Effect of light on calcium transport in bull sperm cells / Lubart R., Friedmann H., Levinshal T., Lavie R., Breitbart H. // J Photochem Photobiol B. -1992. - Т. 15, № 4. - C. 337-41.

250. Lima F.M. Low-level laser therapy (LLLT) acts as cAMP-elevating agent in acute respiratory distress syndrome / de Lima F.M., Moreira L.M., Villaverde A.B., Albertini R., Castro-Faria-Neto H.C., Aimbire F. // Lasers Med Sci. - 2011. - Т. 26, № 3. - C. 389-400.

251. El Batanouny M. Mitogenic potential inducible by He:Ne laser in human lymphocytes in vitro / El Batanouny M., Korraa S., Fekry O. // J Photochem Photobiol B. - 2002. - Т. 68, № 1. - C. 1-7.

252. Sinyakov M.S. Chemiluminescent analysis of light-irradiated leukocytes as a diagnostic tool for fast identification of pathological states / Sinyakov M.S., Shlenskaya T.S., Belotsky S., Zhevelev H.M., Shainberg B., Lubart R.,

Friedmann H., Avtalion R.R. // Photomed Laser Surg. - 2007. - ^ 25, № 4. - C. 257 - 263.

253. Ben-Hur E. Phthalocyanine-induced photodynamic changes of cytoplasmic free calcium in Chinese hamster cells / Ben-Hur E., Dubbelman T.M., Van Steveninck J. // Photochem Photobiol. - 1991. - ^ 54, № 2. - C. 163-6.

254. Freas W. Vascular interactions of calcium and reactive oxygen intermediates produced following photoradiation / Freas W., Hart J.L., Golightly D., McClure H., Rodgers D.R., Muldoon S.M. // J Cardiovasc Pharmacol. - 1991. - ^ 17, № 1. -C. 27-35.

255. Joshi P.G. Ca2+ influx induced by photodynamic action in human cerebral glioma (U-87 MG) cells: possible involvement of a calcium channel / Joshi P.G., Joshi K., Mishra S., Joshi N.B. // Photochem Photobiol. - 1994. - ^ 60, № 3. - C. 244 - 248.

256. Penning L.C. A role for the transient increase of cytoplasmic free calcium in cell rescue after photodynamic treatment / Penning L.C., Rasch M.H., Ben-Hur E., Dubbelman T.M., Havelaar A.C., Van der Zee J., Van Steveninck J. // Biochim Biophys Acta. - 1992. - ^ 1107, № 2. - C. 255-60.

257. Freas W. Contractile properties of isolated vascular smooth muscle after photoradiation / Freas W., Hart J.L., Golightly D., McClure H., Muldoon S.M. // Am J Physiol. - 1989. - ^ 256, № 3 Pt 2. - C. H655-64.

258. Klebanov G.I. Effect of low-intensity laser radiation on leukocyte function / Klebanov G.I., Teselkin Iu O., Babenkova I.V., Bashkueva T., Modestova T.M., Steklova L.S., Vladimirov Iu A. // Biull Eksp Biol Med. - 1997. - ^ 123, № 4. -C. 341-343.

259. Reeves K. J. Is nitric oxide important in photodynamic therapy? / Reeves K.J., Reed M.W., Brown N.J. // J Photochem Photobiol B. - 2009. - ^ 95, № 3. - C. 141 - 147.

260. Castano A. P. Mechanisms in photodynamic therapy: Part three-Photosensitizer pharmacokinetics, biodistribution, tumor localization and modes of tumor

destruction / Castano A.P., Demidova T.N., Hamblin M.R. // Photodiagnosis Photodyn Ther. - 2005. - Т. 2, № 2. - C. 91-106.

261. Castano A.P. Photodynamic therapy and anti-tumour immunity / Castano A.P., Mroz P., Hamblin M.R. // Nat Rev Cancer. - 2006. - Т. 6, № 7. - C. 535 - 545.

262. Debefve E. Leukocyte-endothelial cell interaction is necessary for photodynamic therapy induced vascular permeabilization / Debefve E., Mithieux F., Perentes J.Y., Wang Y., Cheng C., Schaefer S.C., Ruffieux C., Ballini J.P., Gonzalez M., van den Bergh H., Ris H.B., Lehr H.A., Krueger T. // Lasers Surg Med. - 2011. -Т. 43, № 7. - C. 696-704.

263. Mitra S. Enzyme-activatable imaging probe reveals enhanced neutrophil elastase activity in tumors following photodynamic therapy / Mitra S., Modi K.D., Foster T.H. // J Biomed Opt. - 2013. - Т. 18, № 10. - C. 101314.

264. Rkein A. M. Photodynamic therapy / Rkein A.M., Ozog D.M. // Dermatol Clin. -2014. - Т. 32, № 3. - C. 415 - 425.

265. Гельфонд М.Л. Фотодинамическая терапия в онкологии / Гельфонд М.Л. // Практическая онкология. - 2007. - Т. 8, № 4. - C. 204 - 210.

266. Кузнецова Н.П. Порфирии / Кузнецова Н.П., Панков Б.С., Чубарова А.С., Кривошеев Б. А., Капралов И.К. - М.: Медицина, 1981. - 192 c.

267. Кубатиев А.А. Порфирины, витамин В12 и рак / Кубатиев А.А. - Тула: Приокское кн. изд-во, 1973. - 224 c.

268. Марри Р. Биохимия человека: В 2-х томах. Т. 1. Пер. с англ. / Марри Р., Греннер Д., Мейес П., Родуэлл В. - М.: Мир, 1993. - 384 c.

269. Щербак И.Г. Биологическая химия. Учебник для медицинских вузов. / Щербак И.Г. - Санкт-Петербург: Изд-во СПбГМУ, 2005. - 480 c.

270. Poh-Fitzpatrick M.B. Direct spectrofluorimetry of diluted erythrocytes and plasma, a rapid method in primary and secondary porphyrinemias / Poh-Fitzpatrick M.B., Lamola A.A. // J. Lab and Clin. med. - 1976. - Т. 87, № 2. - C. 362 - 371.

271. Грубина Л.А. Методы измерения количеств порфиринов крови / Грубина Л.А. // Вопросы медицинской химии. - 1988. - Т. 34, № 5. - C. 34 - 37.

272. Kautsky H. [Chlorophyll fluorescence and carbon assimilation. Part XIII. The fluorescence and the photochemistry of plants] / Kautsky H., Appel W., Amann H. // Biochem Z. - 1960. - Т. 332. - C. 277 - 292.

273. Kautsky H. Chlorophyllfluorescenz und Kohlensäureassimilation / Kautsky H. // Klin Wochenschr. - 1948. - Т. 26, № 23-24. - C. 383.

274. Shuvalov V.A. The luminescence of zinc-porphyrins in microorganisms and plants: phosphorescence and delayed fluorescence / Shuvalov V.A., Krasnovskii A.A. // Mol Biol. - 1971. - Т. 5, № 5. - C. 557 - 566.

275. Bystrova M.I. Spectral effects of aggregation of protochlorophyll pigments / Bystrova M.I., Lang F., Krasnovskii A.A. // Mol Biol. - 1972. - Т. 6, № 1. - C. 61 - 68.

276. Bystrova M.I. Photochemical properties of various types of aggregated forms of chlorophylla and bacterioviridin / Bystrova M.I., Krasnovskii A.A. // Mol Biol. -1971. - Т. 5, № 2. - C. 232 - 240.

277. Гуринович Г.П. Спектроскопия порфиринов / Гуринович Г.П., Севченко А.Н., Соловьев К.Н. // Успехи физических наук. - 1963. - Т. LXXIX, № 2. - C. 173-234.

278. Nakanishi T. Kinetic Evaluation of Determinant Factors for Cellular Accumulation of Protoporphyrin IX Induced by External 5-Aminolevulinic Acid for Photodynamic Cancer Therapy / Nakanishi T., Ogawa T., Yanagihara C., Tamai I. // J Pharm Sci. - 2015. - Т. 104, № 9. - C. 3092-100.

279. Nissen C.V. Protoporphyrin IX formation after topical application of methyl aminolaevulinate and BF-200 aminolevulinic acid declines with age / Nissen C.V., Philipsen P.A., Wulf H.C. // Br J Dermatol. - 2015. - Т. 173, № 3. - C. 760766.

280. Грубина Л.А. Содержание копропорфирина в моче здоровых людей и онкологических больных / Грубина Л.А., Гуринович И.Ф. // Вопр. мед. хим. - 1993. - Т. 39, № 4. - C. 38 - 41.

281. Грубина Л.А. Определение содержания эндогенных порфиринов у детей и подростков с патологией щитовидной железы / Грубина Л.А. // Журн. прикл. спектр. - 1997. - Т. 64, № 6. - C. 748 - 752.

282. Грубина Л.А. Изучение люминесцентным методом порфиринового обмена у беременных женщин / Грубина Л.А., Литвинович Н.Г. // Журн. прикл. спектр. - 1997. - Т. 64, № 5. - C. 633 - 636.

283. Волгин В.Н. Оптимизация режимов фотодинамической терапии базально-клеточного рака кожи с Фотосенсом / Волгин В.Н., Странадко Е.Ф., Соколова Т.В., Ламоткин И. А., Рябов М.В. // Лазерная медицина. - 2007. - Т. 11, № 1. - C. 50 - 54.

284. Karrer S. Photodynamic therapy for skin rejuvenation: review and summary of the literature--results of a consensus conference of an expert group for aesthetic photodynamic therapy / Karrer S., Kohl E., Feise K., Hiepe-Wegener D., Lischner S., Philipp-Dormston W., Podda M., Prager W., Walker T., Szeimies R.M. // J Dtsch Dermatol Ges. - 2013. - Т. 11, № 2. - C. 137 - 148.

285. Filip A. G. Photodynamic therapy--indications and limits in malignant tumors treatment / Filip A.G., Clichici S., Daicoviciu D., Olteanu D., Muresan A., Dreve S. // Rom J Intern Med. - 2008. - Т. 46, № 4. - C. 285 - 293.

286. Breskey J. D. Photodynamic therapy: occupational hazards and preventative recommendations for clinical administration by healthcare providers / Breskey J.D., Lacey S.E., Vesper B.J., Paradise W.A., Radosevich J.A., Colvard M.D. // Photomed Laser Surg. - 2013. - Т. 31, № 8. - C. 398 - 407.

287. Ferro S. Efficient photoinactivation of methicillin-resistant Staphylococcus aureus by a novel porphyrin incorporated into a poly-cationic liposome / Ferro S., Ricchelli F., Monti D., Mancini G., Jori G. // Int J Biochem Cell Biol. - 2007. - Т. 39, № 5. - C. 1026-34.

288. Timor R. PEG-Phospholipids Coated Quantum Rods as Amplifiers of the Photosensitization Process by FRET / Timor R., Weitman H., Waiskopf N., Banin U., Ehrenberg B. // ACS Appl Mater Interfaces. - 2015. - Т. 7, № 38. - C. 21107-14.

289. Spano V. Pyrazolo[3,4-h]quinolines promising photosensitizing agents in the treatment of cancer / Spano V., Parrino B., Carbone A., Montalbano A., Salvador A., Brun P., Vedaldi D., Diana P., Cirrincione G., Barraja P. // Eur J Med Chem. -2015. - Т. 102. - C. 334-51.

290. Hausman W. Die sensibilisierende wirkung des hematoporphyrins / Hausman W. // Biochem Z. - 1911. - № 30. - C. 276.

291. Lipson R.L. The photodynamic properties of a particular hematoporphyrin derivative / Lipson R.L., Baldes E.J. // Arch Dermatol. - 1960. - Т. 82. - C. 508 -516.

292. Шляхтин С.В. Возможности и перспективы использования производных хлорофилла для создания эффективных и безопасных фотосенсибилизаторов для фотодинамической терапии. Обзор литературы / Шляхтин С.В., Трухачева Т.В. // Вестник фармации. - 2010. - Т. 48, № 2. - C. 87 - 106.

293. Ляпина Е.А. Влияние фотосенсибилизаторов феофорбида а и протопорфирина IX на заживление кожных ран при низкоинтенсивном лазерном облучении / Ляпина Е.А., Мачнева Т.В., Ларкина Е.А., Ткачевская Е.П., Осипов А.Н., Миронов А.Ф. // Биофизика. - 2010. - Т. 55, № 2. - C. 350355.

294. Radu A. Mucosal ablation with photodynamic therapy in the esophagus: optimization of light dosimetry in the sheep model / Radu A., Conde R., Fontolliet C., Wagnieres G., Van den Bergh H., Monnier P. // Gastrointest Endosc. - 2003. - Т. 57, № 7. - C. 897-905.

295. Pegaz B. Preclinical evaluation of a novel water-soluble chlorin E6 derivative (BLC 1010) as photosensitizer for the closure of the neovessels / Pegaz B., Debefve E., Borle F., Ballini J.P., Wagnieres G., Spaniol S., Albrecht V., Scheglmann D., Nifantiev N.E., van den Bergh H., Konan Y.N. // Photochem Photobiol. - 2005. - Т. 81, № 6. - C. 1505-10.

296. Chin W.W. Improved formulation of photosensitizer chlorin e6 polyvinylpyrrolidone for fluorescence diagnostic imaging and photodynamic

therapy of human cancer / Chin W.W., Heng P.W., Thong P.S., Bhuvaneswari R., Hirt W., Kuenzel S., Soo K.C., Olivo M. // Eur J Pharm Biopharm. - 2008. - Т. 69, № 3.-C. 1083-93.

297. Chin W.W. Chlorin e6 - polyvinylpyrrolidone mediated photosensitization is effective against human non-small cell lung carcinoma compared to small cell lung carcinoma xenografts / Chin W.W., Heng P.W., Olivo M. // BMC Pharmacol. - 2007. - Т. 7. - C. 15.

298. Steinbauer J. Phototoxic reactions in healthy volunteers following photodynamic therapy with methylaminolevulinate cream or with cream containing 5-aminolevulinic acid: a phase II, randomized study / Steinbauer J., Schreml S., Karrer S., Ackermann G., Babilas P., Landthaler M., Szeimies R.M. // Photodermatol Photoimmunol Photomed. - 2009. - Т. 25, № 5. - C. 270 - 275.

299. Puccioni M. Photodynamic therapy using methyl aminolevulinate acid in eyelid basal cell carcinoma: a 5-year follow-up study / Puccioni M., Santoro N., Giansanti F., Ucci F., Rossi R., Lotti T., Menchini U. // Ophthal Plast Reconstr Surg. - 2009. - Т. 25, № 2. - C. 115 - 118.

300. Ehrenberg B. The effect of liposomes' membrane composition on the binding of the photosensitizers Hpd and photofrin II / Ehrenberg B., Gross E. // Photochem Photobiol. - 1988. - Т. 48, № 4. - C. 461 - 466.

301. Ricchelli F. Liposomes as models to study the distribution of porphyrins in cell membranes / Ricchelli F., Jori G., Gobbo S., Tronchin M. // Biochim Biophys Acta. - 1991. - Т. 1065, № 1. - C. 42-8.

302. Ricchelli F. Photophysical properties of porphyrins in biological membranes / Ricchelli F. // J Photochem Photobiol B. - 1995. - Т. 29, № 2-3. - C. 109-18.

303. Gross E. Singlet oxygen generation by porphyrins and the kinetics of 9,10-dimethylanthracene photosensitization in liposomes / Gross E., Ehrenberg B., Johnson F.M. // Photochem Photobiol. - 1993. - Т. 57, № 5. - C. 808-13.

304. Ricchelli F. Meso-substituted tetra-cationic porphyrins photosensitize the death of human fibrosarcoma cells via lysosomal targeting / Ricchelli F., Franchi L.,

Miotto G., Borsetto L., Gobbo S., Nikolov P., Bommer J.C., Reddi E. // Int J Biochem Cell Biol. - 2005. - Т. 37, № 2. - C. 306-19.

305. Moreno G. The effects of singlet oxygen produced by photodynamic action on the mitochondrial permeability transition differ in accordance with the localization of the sensitizer / Moreno G., Poussin K., Ricchelli F., Salet C. // Arch Biochem Biophys. - 2001. - Т. 386, № 2. - C. 243-50.

306. Bombelli C. New cationic liposomes as vehicles of m-tetrahydroxyphenylchlorin in photodynamic therapy of infectious diseases / Bombelli C., Bordi F., Ferro S., Giansanti L., Jori G., Mancini G., Mazzuca C., Monti D., Ricchelli F., Sennato S., Venanzi M. // Mol Pharm. - 2008. - Т. 5, № 4. - C. 672-9.

307. Riccheli F. Photodynamic action of porphyrin on Ca2+ influx in endoplasmic reticulum: a comparison with mitochondria / Ricchelli F., Barbato P., Milani M., Gobbo S., Salet C., Moreno G. // Biochem J. - 1999. - Т. 338 ( Pt 1), №. - C. 2217.

308. Ehrenberg B. Electric depolarization of photosensitized cells: lipid vs. protein alterations / Ehrenberg B., Gross E., Nitzan Y., Malik Z. // Biochim Biophys Acta.

- 1993. - Т. 1151, № 2. - C. 257-64.

309. Miyamoto Y. Effect of 630-NM pulsed laser irradiation on the proliferation of HeLa cells in Photofrin((R))-mediated photodynamic therapy / Miyamoto Y., Nishikiori D., Hagino F., Wakita M., Tanabe I., Toida M. // Laser Ther. - 2011. -Т. 20, № 2. - C. 135 - 138.

310. Lubart R. A pоssible mechanism of low level laser - living cell interaction / Lubart R., Malik Z., Rochkind S., Fisher T. // Laser Ther. - 1990. - Т. 2, № 1. - C. 65-68.

311. Слуцкий Л.И. Биохимия нормальной и патологически измененной соединительной ткани / Слуцкий Л.И. - Ленинград: Медицина, 1969. - 376 c.

312. Стручков В.И. Гнойная рана / Стручков В.И., Григорян А.В., Гостищев В.К.

- М.: Медицина, 1975. - 311 c.

313. Kozlov A.V. Different effects of endotoxic shock on the respiratory function of liver and heart mitochondria in rats / Kozlov A.V., Staniek K., Haindl S.,

Piskernik C., Ohlinger W., Gille L., Nohl H., Bahrami S., H. R. // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol . - 2006. - Т. 290. - C. 543-549.

314. Victor V.M. Modulation of murine macrophage function by N-acetylcysteine in a model of endotoxic shock / Victor V.M., Guayerbas N., Garrote D., Del Rio M., De la Fuente M. // Biofactors. - 1999. - Т. 10, № 4. - C. 347-57.

315. Boyum А. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood / Boyum А. // Scand. J. Clin. Invest. - 1968. - Т. 21, № 97. - C. 77-89.

316. Фримель Г. Иммунологические методы. Пер. с нем. А. П. Тарасова. / Фримель Г. - М.: Медицина, 1987. - 472 c.

317. Клебанов Г.И. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию оксида азота и цитокинов лейкоцитами / Клебанов Г.И., Полтанов Е.А., Долгина Е.Н., Никанкина Л.А., Анохина Е.Б., Ганковская Л.В., Крейнина М.В., Владимиров Ю.А. // Биол. мембраны. - 2002. - Т. 19, № 5. - C. 391 - 402.

318. Мачнева Т.В. Изучение действия низкоинтенсивного лазерного излучения синего, зеленого и красного диапазонов на процесс заживления экспериментальных кожных ран у крыс. / Мачнева Т.В., Протопопов Д.М., Владимиров Ю.А., Осипов А.Н. // Биофизика. - 2008. - Т. 53, № 5. - C. 894901.

319. Мачнева Т.В. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения синего, зеленого и красного диапазонов на свободно-радикальные процессы в крови крыс при экспериментальном эндотоксическом шоке / Мачнева Т.В., Космачева Н.В., Владимиров Ю.А., Осипов А.Н. // Биомедицинская химия. -2013. - Т. 59, № 4. - C. 411-424.

320. Клебанов Г.И. Сравнительное исследование действия лазерного и светодиодного излучения на заживление ран и функциональную активность клеток раневого экссудата / Клебанов Г.И., Шураева Н.Ю., Чичук Т.В., Осипов А.Н., Руденко Т.Г., Шехтер А.Б., Владимиров Ю.А. // Биофизика. -2005. - Т. 50, № 6. - C. 1137-1144.

321. Hempel S.L. Dihydrofluorescein diacetate is superior for detecting intracellular oxidants: comparison with 2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate, 5(and 6)-carboxy-2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate, and dihydrorhodamine 123 / Hempel S.L., Buettner G.R., O'Malley Y.Q., Wessels D.A., Flaherty D.M. // Free Radic Biol Med. - 1999. - Т. 27, № 1-2. - C. 146 - 159.

322. Rota C. Evidence for free radical formation during the oxidation of 2'-7'-dichlorofluorescin to the fluorescent dye 2'-7'-dichlorofluorescein by horseradish peroxidase: possible implications for oxidative stress measurements / Rota C., Chignell C.F., Mason R.P. // Free Radic Biol Med. - 1999. - Т. 27, № 7-8. - C. 873 - 881.

323. Bass D.A. Flow cytometric studies of oxidative product formation by neutrophils: a graded response to membrane stimulation / Bass D.A., Parce J. W., Dechatelet L. R., Szejda P., Seeds M. C., Thomas M. // J Immunol. - 1983. - Т. 130, № 4. - C. 1910 - 1917.

324. Burow S. Flow-cytometric characterization of stimulation, free radical formation, peroxidase activity and phagocytosis of human granulocytes with 2,7-dichlorofluorescein (DCF) / Burow S., Valet G. // Eur J Cell Biol. - 1987. - Т. 43, № 1.-C. 128 - 133.

325. Zeller J.M. Evaluation of human monocyte oxidative metabolism utilizing a flow cytometric assay / Zeller J.M., Rothberg L., Landay A.L. // Clin Exp Immunol. -1989. - Т. 78, № 1. - C. 91 - 96.

326. Шебзухов Ю.Б. Синтез оксида азота перитонеальными макрофагами мыши под действием С-реактивного протеина / Шебзухов Ю.Б., Вайсбурд М.Ю., Артюшкин К.В., Мысякин Е.Б. // Бюлл. Эксп. Биол. и Мед. - 1988. - Т. 125, № 1. - C. 48-50.

327. Ding A.H. Release of reactive nitrogene intermediates and reactive oxigene intermediates from mouse peritoneal macrophages / Ding A.H., Nathan C.F., Stuehr D.J. // J. Immunol. - 1988. - Т. 141, № 7. - C. 2707 - 2412.

328. Kooy N. W. Peroxynitrite-mediated oxidation of dihydrorhodamine 123 / Kooy N. W., Royall J. A., Ischiropoulos H., Beckman J. S. // Free Radic Biol Med. - 1994.

- Т. 16, № 2. - C. 149 - 156.

329. Bolzan R.M. Direct and simultaneous ultraviolet second-derivative spectrophotometric determination of nitrite and nitrate in preparations of peroxynitrite / Bolzan R.M., Cueto R., Squadrito G.L., Uppu R.M., Pryor W.A. // Methods Enzymol. - 1999. - Т. 301. - C. 178 - 187.

330. Yagi K. Assay for blood plasma or serum / Yagi K. // Methods Enzymol. - 1984.

- Т. 105. - C. 328 - 331.

331. Гаврилов В.Б. Анализ методов определения продуктов перекисного определения липидов в сыворотке крови по тесту с тиобарбитуровой кислотой / Гаврилов В.Б., Гаврилова А.П., Мажуль Л.М. // Вопр. Мед. Химии. - 1987. - Т. 33, № 1. - C. 118-122.

332. Recknagel R.O. Spectrophotometry detection of lipid conjugated dienes / Recknagel R.O., Glende Jr. E.A. // Methods Enzymol. - 1984. - Т. 105. - C. 331 -337.

333. Kagan V.E. Sensitive and specific fluorescent probing of oxidative stress in different classes of membrane phospholipids in live cells using metabolically integrated cis-parinaric acid / Kagan V.E., Ritov V.B., Tyurina Y.Y., Tyurin V.A. // Methods Mol Biol. - 1998. - Т. 108. - C. 71-87.

334. McKenna R. Kinetic analysis of the free-radical-induced lipid peroxidation in human erythrocyte membranes: evaluation of potential antioxidants using cis-parinaric acid to monitor peroxidation / McKenna R., Kezdy F.J., Epps D.E. // Anal. Biochem. - 1991. - Т. 196, № 2. - C. 443-450.

335. Sklar L.A. The partition of cis-parinaric acid and trans-parinaric acid among aqueous, fluid lipid, and solid lipid phases / Sklar L.A. // Mol. Cell. Biochem. -1980. - Т. 32, № 3. - C. 169-177.

336. Steenbergen R.H. The use of cis-parinaric acid to measure lipid peroxidation in cardiomyocytes during ischemia and reperfusion / Steenbergen R. H., Drummen

G. P., Op den Kamp J. A., Post J. A. // Biochim. Biophys. Acta. - 1997. - Т. 1330, № 2. - C. 127-137.

337. Van den Berg J.J. The use of cis-parinaric acid to determine lipid peroxidation in human erythrocyte membranes. Comparison of normal and sickle erythrocyte membranes / Van den Berg J.J., Kuypers F.A., Qju J.H., Chiu D., Lubin B., Roelofsen B., Op den Kamp J.A. // Biochim. Biophys. Acta. - 1988. - Т. 944, № 1. - C. 29-39.

338. Владимиров Ю.А. Активированная хемилюминесценция и биолюминесценция как инструмент в медико-биологических исследованиях / Владимиров Ю.А. // Соросовский образовательный журнал. - 2001. - Т. 7, № 1. - C. 16 - 23.

339. Владимиров Ю.А. Активированная кумарином хемилюминесценция липопротеидов низкой плотности в присутствии двухвалентного железа / Владимиров Ю.А., Шерстнев М.П., Азимбаев Т.К. // Биофизика. - 1995. - Т. 40, № 2. - C. 323 - 327.

340. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы и клеточная хемилюминесценция / Владимиров Ю.А., Проскурнина Е.В. // Усп. биол. химии. - 2009. - Т. 49. - C. 341 - 388.

341. Клебанов Г.И. Измерение активности супероксиддисмутазы в процессе стимуляции полиморфноядерных лейкоцитов периферической крови / Клебанов Г.И., Крейнина М.В., Чукаева И.И., Барбараш О.Л., Корочкин И.М., Владимиров Ю.А. // Бюлл. Эксп. Биол. и Мед. - 1990. - Т. 109, № 4. -C. 334 - 336.

342. Evalution of total antioxidant potential (TRAP) and total antioxidant reactivity from luminol-enhanced chemiluminescence measurements / Lissi E., Salim-Hanna M., Pascual C., del Castielo M.D. // Free Rad Biol and Med. - 1995. - Т. 18. - C. 153-158.

343. Folch J. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues / Folch J., Lees M., Stanley G.H.S. // J.Biol. Chem. - 1957. - Т. 226, № 1. - C. 497 - 509.

344. Bangham A.D. Diffusion of univalent ions across the lamallae of swollen phospholipids / Bangham A.D., Standish M.M., Watkins J.C. // J. Mol. Biol. -1965. - Т. 13, № 2. - C. 238 - 252.

345. Васильева О.В. Действие антиоксидантов на кинетику цепного окисления липидов в липосомах / Васильева О.В., Любицкий О.Б., Клебанов Г.И., Владимиров Ю.А. // Биологические мембраны. - 1998. - Т. 15, № 2. - C. 177 -183.

346. Дремина Е.С. Использование кинетики Fe2+-индуцированной хемилюминесценции в трис-буферной суспензии липосом для исследования антиоксидантной активности плазмы крови / Дремина Е.С., Шаров В.С., Владимиров Ю.А. // Биофизика. - 1993. - Т. 38, № 6. - C. 1047-1051.

347. Авдонин П.В. Рецепторы и внутриклеточный кальций / Авдонин П.В., Ткачук В. А. - М.: Наука, 1994. - 288 c.

348. Bae Y.S. Epidermal growth factor (EGF)-induced generation of hydrogen peroxide. Role in EGF receptor-mediated tyrosine phosphorylation / Bae Y.S., Kang S.W., Seo M.S., Baines I.C., Tekle E., Chock P.B., Rhee S.G. // J Biol Chem. - 1997. - Т. 272, № 1. - C. 217 - 221.

349. Dreiem A. Relationship between lipophilicity of C6-10 hydrocarbon solvents and their ROS-inducing potency in rat cerebellar granule cells / Dreiem A., Myhre O., Fonnum F. // Neurotoxicology. - 2002. - Т. 23, № 6. - C. 701-9.

350. Mills E.M. Nerve growth factor treatment prevents the increase in superoxide produced by epidermal growth factor in PC12 cells / Mills E.M., Takeda K., Yu Z.X., Ferrans V., Katagiri Y., Jiang H., Lavigne M.C., Leto T.L., Guroff G. // J Biol Chem. - 1998. - Т. 273, № 35. - C. 22165-8.

351. Sundaresan M. Requirement for generation of H2O2 for platelet-derived growth factor signal transduction / Sundaresan M., Yu Z.X., Ferrans V.J., Irani K., Finkel T. // Science. - 1995. - Т. 270, № 5234. - C. 296-9.

352. Sekkat C. Oxidative phenomena are implicated in human T-cell stimulation / Sekkat C., Dornand J., Gerber M. // Immunology. - 1988. - Т. 63, № 3. - C. 431-7.

353. Росс Р. Заживление ран / Росс Р. // "Молекулы и клетки", Вып. 5 - Ред. Франк Г.М. - М.: Мир, 1970. - С. 134 -152.

354. Hillemanns P. Photodetection of cervical intraepithelial neoplasia using 5-aminolevulinic acid-induced porphyrin fluorescence / Hillemanns P., Weingandt H., Baumgartner R., Diebold J., Xiang W., Stepp H. // Cancer. - 2000. - Т. 88, № 10. - C. 2275 - 2282.

355. PubChem Compound Database; CID=137. Aminolevulinic acid [Электронный ресурс] / PubChem Compound Database; CID=137 // U.S. National Library of Medicine. National Center for Biotechnology Information. - 2015. - Режим доступа: URL: http://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/137#section=Top (дата обращения: 30.07.2015).

356. Pinheiro A.L. Polarized light (400-2000 nm) and non-ablative laser (685 nm): a description of the wound healing process using immunohistochemical analysis / Pinheiro A.L., Pozza D.H., Oliveira M.G., Weissmann R., Ramalho L.M. // Photomed laser Surg. - 2005. - Т. 23, № 5. - C. 485-92.

357. Halliwel B. Free Radicals in Biology and Medicine / Halliwel B., Gutteridge J.M.C. -. Third edNational institute of educational library, Singapore: Oxford University Press, 2001. - 936 c.

358. Karmakova T. Tissue distribution and in vivo photosensitizing activity of 13,15-[N-(3-hydroxypropyl)]cycloimide chlorin p6 and 13,15-(N-methoxy)cycloimide chlorin p6 methyl ester / Karmakova T., Feofanov A., Pankratov A., Kazachkina N., Nazarova A., Yakubovskaya R., Lebedeva V., Ruziyev R., Mironov A., Maurizot J.C., Vigny P. // J Photochem Photobiol B. - 2006. - Т. 82, № 1. - C. 2836.

359. Миронов А.Ф. Направленная модификация природных хлоринов по пиррольному кольцу D / Миронов А.Ф., Нечаев А.В. // Биоорганическая химия. - 2001. - Т. 27, № 2. - C. 141 -144.

360. Su X. PpIX induces mitochondria-related apoptosis in murine leukemia L1210 cells / Su X., Chen Y., Wang X., Wang Y., Wang P., Li L., Liu Q. // Drug Chem Toxicol. - 2014. - Т. 37, № 3. - C. 348-56.

361. Ryazanova O. Fluorescent studies on cooperative binding of cationic pheophorbide-a derivative to polyphosphate / Ryazanova O., Voloshin I., Dubey I., Dubey L., Zozulya V. // Ann N Y Acad Sci. - 2008. - Т. 1130. - C. 293 - 299.

362. Wolkow P.P. Involvement and dual effects of nitric oxide in septic shock / Wolkow P.P. // Inflamm Res. - 1998. - Т. 47, № 4. - C. 152-66.