Эпизоотическое состояние форелевых рыбоводных хозяйств Ленинградской области в зависимости от условий выращивания тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.19, кандидат биологических наук Нечаева, Тамара Алексеевна

• Нечаева, Тамара Алексеевна
• кандидат биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Нечаева, Тамара Алексеевна

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Краткая характеристика объектов выращивания

2.2. Материалы и методы

2.3. Характеристика форелевых хозяйств разного типа и биотехники 31 выращивания лососевых рыб

Глава 3. ДИНАМИКА ЭПИЗООТИЧЕСКОЙ СИТУАЦИИ В ФОРЕЛЕВЫХ РЫБОВОДНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ В 70 - 90-е ГОДЫ

3.1. Заболевания радужной форели при искусственном выращива- 37 нии в 70 - 80-е годы (на примере ропшинского хозяйства)

3.2. Изменения эпизоотической ситуации в связи с применением ин- 43 тенсивных методов рыбоводства и новых схем выращивания

Глава 4. ЭПИЗООТИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ В ФОРЕЛЕВЫХ РЫ- 49 БОВОДНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ УСЛОВИЙ ВЫРАЩИВАНИЯ

4.1. Заболевания молоди форели в зависимости от условий инкуба- 49 ции и подращивания

4.2. Эпизоотическое состояние радужной форели в хозяйствах раз- 53 ного типа

Глава 5. ЗАВИСИМОСТЬ ВОЗНИКНОВЕНИЯ ЗАБОЛЕВАНИЙ ОТ 84 ВОЗРАСТА РЫБ И КАЧЕСТВА ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ

5.1 Влияние возраста рыб на возникновение заболеваний

5.2 Влияние качества производителей на проявление заболеваний у 96 потомства

Глава 6. ЗАБОЛЕВАНИЯ НОВЫХ ОБЪЕКТОВ АКВАКУЛЬТУРЫ

Глава 7. СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДОВ ЛЕЧЕНИЯ И ME- 118 РОПРИЯТИЙ ПО УЛУЧШЕНИЮ ЭПИЗООТИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ ЛОСОСЕВЫХ РЫБ В ФОРЕЛЕВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эпизоотическое состояние форелевых рыбоводных хозяйств Ленинградской области в зависимости от условий выращивания»

В последние годы все более возрастает роль аквакультуры в воспроизводстве лососевых рыб. Это связано с сокращением рыбных запасов в естественных водоемах вследствие ухудшения экологических условий и различных нарушений лова. Лососевые рыбы относятся к наиболее ценным объектам аквакультуры, и возможность их разведения в искусственных условиях имеет большие перспективы (Грачева, 1952; Черфас, 1959; Савостьянова, 1976; Кирпичников, 1987; Мамонтов, 2000). Интенсификация же производственных процессов, неизбежная в современном рыбоводстве, влечет за собой усложнение экологической и эпизоотической обстановки в рыбохозяйственных водоемах.

Проявление и развитие заболеваний у рыб зависит от многих биотических и абиотических факторов, которые оказывают влияние на возбудителей болезней и их хозяев. Условия содержания и кормления рыб, создаваемые и контролируемые человеком, имеют большое значение в индустриальных рыбоводных хозяйствах (Бауэр, Богданова, 1963; Богданова, 1976; Стрелков, 1992; Юнчис, Стрелков, 1994).

Многолетний опыт рыбоводства и ихтиопатологии показывает, что меняющиеся со временем технологии выращивания рыб необходимо учитывать при разработке мероприятий по предупреждению и лечению болезней в тех или иных условиях.

Влиянию условий содержания и кормления на эпизоотическое состояние рыб в традиционных прудовых хозяйствах посвящены многочисленные исследования (Догель, 1933, 1948; Столяров, 1934; Бауэр, 1952, 1954, 1955, 1956, 1957, 1958, 1959; Бауэр, Богданова, 1955; Бауэр, СтоляровЛ958; Петрушевский, 1958). Итог по выявлению закономерностей во взаимоотношениях паразитов со средой обитания их хозяев для прудовых хозяйств подведен О. Н. Бауэром (1959а). Однако со времени публикации этих данных многое изменилось в технологии рыбоводства, соответственно изменились условия содержания и кормления. Это несомненно влияет на эпизоотическую обстановку в современных рыбоводных предприятиях. Особенно большие изменения в рыбоводстве произошли за последние годы. Интенсификация произволства, переход на новые корма, освоение новых объектов аквакультуры не могли не повлиять на заболеваемость рыб.

В современных индустриальных хозяйствах выращивание рыб часто производят в экстремальных условиях, что приводит к снижению их физиологического статуса, и как следствие, к возникновению заболеваний (Бауер, Стрелков, 1979; Стрелков, 1985, 1992; Мусселиус, Стрелков, 1987). Чаще всего заболевания встречаются в неблагоприятных условиях: резкие перепады температуры воды, низкий водообмен, дефицит растворенного кислорода в воде, переуплотнение посадки, травмирование рыб, присутствие в воде токсических веществ, избыток органики и т.д. (Ведемейер, 1981, Головин, 1987).

Загрязнение водоема, к примеру, затрудняет удаление продуктов обмена через жабры и приводит к некротическому поражению жаберного эпителия. Некроз жаберной ткани способствует возникновению различных бактериальных заболеваний. Сильное заражение эктопаразитами, в особенности сидячими перитрихами, зачастую связано с высокой плотностью посадки и большим количеством органических соединений в воде (Банина, 1976; Банина и др., 1977; Банина, Чернышева, 1977).

В тепловодных хозяйствах значительное влияние на эпизоотическое состояние рыб оказывает температурный режим, отличающийся от естественного как по абсолютным значениям температуры воды, так и по их колебаниям в относительно короткие промежутки времени (недели, сутки). В результате этого изменяется физиологический статус выращиваемых рыб, снижается резистентность их организма, что способствует возникновению заболеваний различной природы (Стрелков, 1992).

Большое значение для современного индустриального хозяйства имеет качество кормов, которые должны соответствовать физиологическим требованиям, предъявляемым лососевыми рыбами. Применение кормов с излишним количеством углеводов, не используемых лососевыми, с дефицитом витаминов приводит к снижению иммунно-физиологического статуса рыб. Это, в свою очередь, способствует проявлению алиментарных, бактериальных и паразитарных заболеваний (Erdal et al, 1991, Frischknecht et al, 1994, Waagld et al, 1994).

Для предотвращения вспышек заболеваний при индустриальном выращивании рыб необходим постоянный контроль за их состоянием, что позволит выявить факторы, оказывающие наибольшее влияние на эпизоотическую ситуацию данного хозяйства. Это позволит установить причины заболеваний и разработать меры борьбы с ними. Исходя из этого, основная цель настоящей работы заключалась в изучении зависимости эпизоотического состояния форелевых хозяйств разного типа от условий выращивания. Традиционным объектом выращивания в этих хозяйствах является радужная форель. Кроме того, в последнее время началось активное внедрение в аква-культуры новых видов лососевых рыб.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. Проанализировать произошедшие в последнее время изменения в биотехнике выращивания лососевых рыб на рыбоводных предприятиях и выявить факторы, влияющие на формирование эпизоотической ситуаци в хозяйствах;

2. Изучить развитие болезней у различных видов лососевых, культивируемых в искусственных условиях;

3. Выявить зависимость проявления заболеваний у рыб от вида, возраста, качества производителей и условий выращивания;

4. Усовершенствовать методы контроля за эпизоотической ситуацией в индустриальных хозяйствах;

5. Выявить и диагностировать заболевания, представляющие наибольшую опасность в современных условиях

6. Усовершенствовать методы диагностики и лечения болезней, и мероприятия по улучшению эпизоотического состояния в форелевых хозяйствах.

Заключение диссертации по теме «Паразитология», Нечаева, Тамара Алексеевна

ВЫВОДЫ

1. В последние годы эпизоотическая ситуация в индустриальных хозяйствах изменилась, что связано с изменениями условий выращивания. Снижение органического и неорганического загрязнения, использование кормов лучшего качества, получение и выращивание молоди и сеголетков при регулируемом температурном режиме, особенно при инкубации и на ранних этапах подращивания, способствовали заметному улучшению эпизоотического состояния лососевых рыб. Исчезли такие заболевания, как диплостомоз у сеголетков и двухлетков форели, аденокар-цинома кишечника у производителей, наносившие ранее большой ущерб. В значительно меньшей степени наблюдается жаберное заболевание, обусловленное органическим загрязнением. Паразитические простейшие перестали играть самостоятельную роль в развитии заболеваний.

В то же время появились другие болезни, предствляющие опасность в условиях индустриального хозяйства, в особенности это относится к бактериальным заболеваниям;

2. В хозяйствах индустриального типа на эпизоотическое состояние лососевых рыб наибольшее влияние оказывают условия содержания и кормления, возраст рыб и качество производителей;

3. Наиболее опасными заболеваниями в индустриальных хозяйствах разного типа являются:

В холодноводных бассейновых хозяйствах - бактериальные заболевания, в основном, миксобактериозы разных форм. На холодноводных бассейновых хозяйствах с ключевым водоснабжением распространены заболевания, связанные с избытком углекислого газа - вздутие плавательного пузыря и нефрокальциноз. Нефрокальциноз может встречаться и в хозяйствах с поверхностным водоснабжением. В озерных садковых хозяйствах главной проблемой является триенофороз. В тепловодных хозяйствах неблагоприятное воздействие оказывают резкие перепады температуры и загрязнение воды;

4. Новые объекты выращивания (ладожская палия, атлантический лосось и каспийский лосось) еще недостаточно адаптированы к условиям индустриального выращивания. В то же время у этих видов рыб не наблюдаются заболевания, связанные с избытком углекислого газа, что свидетельствует о перспективности их культивирования в холодноводных хозяйствах с ключевым водоснабжением;

5. Контроль за эпизоотической ситуацией в индустриальных хозяйствах должен включать комплекс микробиологических, гистологических гематологических и гидрохимических исследований;

6. Для улучшения эпизоотического состояния лососевых рыб в индустриальных хозяйствах используются методы медикаментозного лечения (ванны и лекарственные корма), а также мероприятия, включающие в себя изменения биотехники выращивания и разработку схем выращивания, исключающих контакт рыб с возбудителем заболевания

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Как показывают исследования, проведенные на базе ропшинского рыбоводного хозяйства в 70 - 80-е годы, основное влияние на проявление и развитие заболеваний лососевых рыб ранее оказывали качество воды и корма. Выращивание молоди производилось при низких температурах воды (6 - 8°С), что сильно тормозило ее развитие. Загрязнение воды органическими и неорганическими соединениями приводило к жаберному заболеванию. Все это, в совокупности с кормами, несбалансированными по составу для лососевых рыб, способствовало низкому физиологическому статусу рыб. В результате часто наблюдались вспышки эктопаразитарных (костиоз, хилодонелез, триходиниоз, апиозомоз, ихтиофтириоз) и алиментарных (аденокарцинома кишечника) заболеваний.

За последние годы эпизоотическая ситуация в форелевых хозяйствах значительно изменилась. Это связано с использованием специализированных кормов, снижением загрязнения воды и изменениями биотехники выращивания. На первый план вышли бактериальные заболевания, в первую очередь - различные формы миксобак-териозов. Именно они в данный момент представляют главную опасность для рыб и наносят наибольший ущерб.

Наши исследования позволили выявить ряд факторов, оказывающих влияние на эпизоотическую обстановку в современных условиях. Это условия выращивания, возраст и качество производителей.

Проявление и развитие заболеваний молоди в значительной мере зависит от условий инкубации и подращивания на самых чувствительных стадиях (выдерживание и переход на активное питание). Молодь, полученная в начале вегетационного периода, выращивается в более благоприятных условиях при сочетании оптимальных температур воды и отсутствии органического загрязнения. Эта молодь быстрее выходит из-под пресса эктопаразитов, не подвергаясь заражению ими. Бактериальные заболевания развиваются в хронической форме, не вызывая массовой гибели. Напротив, молодь от поздних закладок икры, сделанных в конце нереста, более подвержена эк-топаразитарным заболеваниям, а бактериальные болезни часто переносит в острой форме. Такое снижение иммунно-физиологического статуса связано с ухудшением условий выращивания (органическим загрязнением воды), наблюдаемым в тот период, когда молодь находится на наиболее чувствительных этапах развития. В свою очередь, это позволяет предложить использовать для формирования ремонтно-маточного стада молодь с ранним сроком вылупления как обладающую высоким им-мунно-физиологическим статусом и менее подверженную различным болезням.

Условия выращивания оказывают наибольшее воздействие на эпизоотическую ситуацию в индустриальных хозяйствах разного типа. Так, благодаря изменению условий содержания и кормления были ликвидированы такие заболевания как дипло-стомоз и аденокарцинома кишечника., Исчезновение аденокарциномы обусловлено использованием кормов, условия хранения которых исключают рост плесневых грибов, а диплостоматоз исчез в первую очередь по причине изменения схемы выращивания, что привело к разрыву цепи паразит - хозяин. Содержание молоди в павильонах позволило предотвратить контакт рыб и возбудителя на ранних стадиях выращивания. Кроме того, резко снизились объемы выращивания сиговых рыб, представляющих собой резервуар инвазии.

Большую роль в улучшении эпизоотического состояния молоди и сеголетков играет искусственная регуляция температуры воды. В холодноводном бассейновом хозяйстве с ключевым водоснабжением (Мельничный участок) оптимальные температуры воды достигаются не только с помощью искусственного подогрева воды, но и за счет использования оборотной системы прудов, в которой вода подогревается, проходя механическую и биологическую очистку. Пластиковые бассейны дают возможность поддерживать лучшие санитарные условия, что также сказывается на состоянии молоди и сеголеток. Условия содержания в индустриальных хозяйствах весьма разнообразны, что отражается на состоянии рыб.

Бактериальные болезни. Для холодноводных бассейновых хозяйств наиболее опасны миксобактериозы разных форм. Заболевания чаще всего проявляются при температуре воды 8 - 12°С, оптимальной для развития миксобактерий. У молоди в возрасте одного-двух месяцев отмечено бактериальное жаберное заболевание. У сеголеток в возрасте трех-четырех месяцев клинические признаки и данные бактериологических исследований позволяют диагностировать бактериальное холодноводное заболевание. При этом у части рыб можно наблюдать симптомы другой бактериальной болезни - стрептококкоза. У особей с различными поражениями глаз были выделены бактерии рода Streptococcus. Это дает возможность утверждать, что в весенне-летний период миксобактериоз у сеголетков форели осложняется стрептококковой инфекцией.

Новая вспышка миксобактериоза на холодноводных бассейновых хозяйствах наблюдается осенью при понижении температуры воды до 8 - 12°С. Обострению бактериальных заболеваний способствуют органическое загрязнение воды и перевозки больной или ослабленной рыбы.

Эктопаразитарные заболевания в холодноводных бассейновых хозяйствах уже не имеют такого влияния на эпизоотическую ситуацию в хозяйстве, как прежде. Свое значение сохранила только ихтиободо (костия) у молоди в начале вегетационного периода. Ихтиофтириус можно обнаружить у сеголетков радужной форели, ладожской палии и атлантического лосося в августе, но только в том случае, если в течение всего лета в водоисточнике сохранялась высокая температура воды (18°С). Это способствует интенсивному развитию водной растительности в прудах Мельничной системы. В результате наблюдается массовое размножение колюшки - основного переносчика возбудителя ихтиофтириоза. Форель, наиболее адаптированный к искусственному выращиванию вид лососевых рыб, поражается слабее остальных (экстенсивность заражения - 20%, интенсивность - 1 - 5 экз. в поле зрения микроскопа (7x8)).

Сопоставление литературных данных с материалами наших исследований позволяет предположить, что высокое содержание углекислого газа в грунтовых водах является причиной вздутия плавательного пузыря и нефрокальциноза в холодноводных бассейновых хозяйствах с ключевым водоснабжением

Вздутие плавательного пузыря само по себе не вызывает массовой гибели рыб, но может способствовать развитию бактериальных инфекций, что имеет большое значение для индустриальных хозяйств.

Нефрокальциноз наблюдался нами в хозяйствах, как с ключевым, так и с поверхностным водоснабжением, если концентрация углекислого газа была достаточно высока. Данные ряда авторов свидетельствуют, что заболевание проявляется при повышении содержания углекислого газа до 12 мг/л (Smart et al, 1979). Максимальное содержание углекислого газа (58.0 мг/л) было выявлено на Оредежском участке в июле 2001 года. Уже в августе нефрокальциноз был обнаружен у 20% сеголеток форели, причем у 6% - в ярко выраженной форме. На Мельничном участке (цех №1), где содержание углекислого газа осенью и весной поднимается до 30.0 мг/л, первые признаки нефрокальциноза можно наблюдать в сентябре у 5% сеголеток. В конце октября нефрокальциноз был отмечен у 20% рыб. При этом у 5% отложения кристаллов соли в мочеточниках заметны невооруженным глазом. К весне экстенсивность поражения возрастает до 30 - 35%, в сильной степени нефрокальциноз выявлен у 10% годовиков. На Фабричном участке осенью и весной концентрация углекислого газа возрастает до 19.8 мг/л., снижаясь летом до 15.0 мг/л. Так как на Фабричный участок сеголетки форели перевозятся из цеха №1, то первые признаки нефрокальциноза обнаруживаются в сентябре у 5% рыб, как и на Мельничном участке. В конце ноября нефрокальциноз можно наблюдать у 18% рыб, у 3% сеголеток кристаллы соли в мочеточниках заметны визуально. К весне заболевание имеет место у 20% годовиков, в сильной степени -у 6%. Следовательно, ярко выраженный нефрокальциноз проявляется на Фабричном участке на месяц позже, чем на Мельничном и на два месяца позже, чем на Оредеж-ском участке. Наблюдения показывают, что скорость, с которой развивается заболевание, и его экстенсивность могут быть связаны с концентрацией углекислого газа в воде. На Мельничном (цех №1) и Фабричном участках просходит постепенное накопление солей в мочеточниках рыб, и заболевание становилось заметно к середине -концу осени. На Оредежском участке, где содержание углекислого газа было почти в два раза выше, процесс накопления солей был быстрым, и заболевание проявилось уже в августе.

Нефрокальциноз, как и вздутие плавательного пузыря, наблюдается только у форели. У палии и лососей эта болезнь не наблюдалась, что связано, по-видимому, с устойчивостью этих видов к воздействию углекислого газа и его производных.

Жаберное заболевание, вызванное органическим загрязнением, в холодновод-ных бассейновых хозяйствах встречается только при нарушении биотехники выращивания. Так, на Оредежском участке быстрому накоплению органики способствует несовершенство конструкции бассейнов и системы водоподачи. Ситуация может усугубляться отсутствием регулярных санитарных чисток бассейнов.После перевозки рыб в другие хозяйства состояние особей с признаками жаберного заболевания улучшается даже без дополнительных лечебно-профилактических мероприятий, в то время как при жаберном бактериальном заболевании перевозки способствуют обострению болезни. Это свидетельствует в пользу того, что причиной заболевания является загрязнение воды органическими веществами. Следовательно, для успешного выращивания на Оредежском участке лососевых рыб, необходимо принять меры по улучшению качества воды, в первую очередь - по снижению органического загрязнения.

Триенофороз в озерных садковых хозяйствах тесно связан с биотехникой выращивания. Заражение форели гельминтами происходит в июле, как в большинстве хозяйств Северо-Запада (Куденцова, 1987). Заболевание затрагивает не только сеголеток, но и двухлеток. Экстенсивность заражения сеголеток форели в рыбоводном хозяйстве на Копанском озере составляла 44.6%, интенсивность заражения колебалась от 1 до 20 экз. на рыбу. Столь сильному заражению способствовали недостаточное кормление искусственными кормами и отсутствие сортировки, что приводило к тому, что рыбы, особенно отстающие в росте, переходили на питание планктоном. Обрастание садков перифитоном способствовало образованию скоплений циклопов в зоне расположения садков. Регулярное полноценное кормление, сортировки и чистка садков позволяют значительно снизить поражение триенофорозом, но не ликвидировать его полностью. Так в июле 2000 года не удалось избежать заражения двухлеток форели, хотя экстенсивность инвазии была низкой - 10 - 15%, а интенсивность не превышала 1-2 экз. на рыбу. Незараженными оказались особи только особи самой крупной группы с весом не менее 250 г. В то же время было установлено, что сеголетки форели, завозимые в озерное хозяйство в августе, не заражаются. Поэтому в настоящее время удается избегать триенофороза, завозя сеголеток на участок не ранее середины августа, а если лето было жарким - то и в сентябре. Недопущение содержания в садках озерных хозяйств рыб с весом тела менее 250 г позволяет если не полностью исключить возникновение триенофороза, то, по крайней мере, свести заражение к единичным случаям. Это особенно важно, потому что даже не вызывая гибели рыбы, T.crassus портит ее товарный вид, затрудняя реализацию. Процесс же освобождения форели от гельминтов сопровождается повышенной смертностью, так как на теле рыбы в местах выхода паразита образуются язвы, и развивается грибковая инфекция (сапролегниоз).

Ихтиофтириоз, наблюдаемый в озерном садковом хозяйстве на Копанском озере, также связан с условиями выращивания. Высокие температуры воды (22 - 26°С) и низкое содержание кислорода (8.1 - 8.9 мг/л) привели к ухудшению физиологического состояния рыб и способствовали сильному заражению ихтиофтириозом (экстенсивность заражения - 80%, интенсивность - 5 - 15 экз.). Несмотря на проведение лечебных мероприятий, гибель рыб прекратилась лишь при снижении температуры воды до 18°С, что еще раз свидетельствует о первоочередном влиянии условий содержания на эпизоотическое состояние рыб.

При выращивании форели в тепловодных садковых хозяйствах большое влияние оказывают колебания температурного режима и загрязнение воды. Резкие перепады температуры воды, наблюдаемые на тепловодном хозяйстве ЛАЭС, способствуют нарушению обменных процессов в организме. У выращиваемой в таких условиях форели жабрах наблюдается локальное отслоение респираторного эпителия, что характерно для тепловодных хозяйств и связано с колебаниями температурного режима (Дементьева, 1988). Обращают на себя внимание и патологические изменения в паренхиматозных органах, в других условиях содержания не выявленные. У форели, выращиваемой в холодноводных хозяйствах, в печени наблюдается гиперемия и незначительная жировая дистрофия, в поджелудочной железе - незначительная мелкозернистая белковая дистрофия ацинарной ткани, в почках - гиперемия. У форели, содержащейся в тепловодном хозяйстве, в печени обнаружена вакуолизация - один из видов белковых дистрофий, в поджелудочной железе - крупнокапельная белковая дистрофия ацинарных клеток. До 80% ткани поджелудочной железы охвачено некрозом с образованием детрита. В иных условиях выращивания столь сильное некротическое поражение не встречается. В почках обращает на себя внимание некроз гемопоэтической ткани с разжижением цитоплазмы - плазмолизис. Скопление лейкоцитов в кишечнике и гипофункция бокаловидных клеток, сравнительно редко наблюдаемые на других участках, отмечаются у большинства обследованных рыб. Столь неблагополучное физиологическое состояние рыб делает их более чувствительным к заболеваниям бактериальной природы, которые легко могут прогрессировать в таких условиях.

Токсикозы давно являются наиболее серьезной проблемой для тепловодного хозяйства Киришской ГРЭС. Выявленное при этом поражение жабр сравнимо с патологией жаберных лепестков, наблюдаемой при жаберном заболевании. Это гиперплазия и гипертрофия респираторного эпителия с образованием бесструктурной ткани. В ацинарной ткани печени обнаружена крупнокапельная белковая дистрофия, переходящая в некробиоз и диапедез эритроцитов в островках Лангенганса. В гемопоэтиче-ской ткани почек - некротические процессы. В кишечнике - гипофункция бокаловидных клеток. Такая картина напоминает совокупность нарушений гистоструктуры органов и тканей, наблюдаемую в тепловодном хозяйстве ЛАЭС. В частности, деструктивные изменения в почках, приводящие к некрозу гемопоэтической ткани, характерны для тепловодных хозяйств и могут быть связаны с колебаниями температуры воды и токсическим воздействием (Дементьева, 1988). Однако надо отметить, что если температурные перепады приводят только к местным нарушениям структуры жаберного эпителия, то воздействие токсических веществ вызывает сильнейшее поражение жабр и массовую гибель рыб от асфиксии. Это свидетельствует о той опасности, которую представляют токсикозы в индустриальных хозяйствах.

С возрастом повышается устойчивость рыб к ряду заболеваний. Наиболее чувствительны к бактериальным и эктопаразитарным заболеваниям рыбы младших возрастов - до годовиков включительно. У производителей и рыб ремонтной группы болезни эктопаразитарной природы не наблюдались. Признаки бактериальных заболеваний у этих рыб выявляются редко, но они могут быть носителями бактериальных инфекций. Смешанная бактериальная инфекция. Единственная вспышка этого забо-елвания была зарегистрирована в ноябре 1994 года у ремонтной группы форели (трехлетки), ослабленной вздутием плавательного пузыря. Характерной особенностью заболевания были четко очерченные пятна и полосы желтого цвета на брюшке больных рыб. Микробиологические исследования позволили выделить из внутренних органов бактерии родов Pseudomonas, Vibrio и Flavobacterium. Миксобактерии были выделены и из подкожной клетчатки. Биопроба показала, что устойчивые признаки болезни проявляются только при сочетанном действии всех тех штаммов бактерии (Куденцова и др, 1997). Это позволяет говорить о смешанной природе заболевания. Так как с возрастом устойчивость к бактериальным инфекциям возрастает, симптомы заболевания заметны у отдельных рыб, чей иммунно-физиологический статус в преднерестовом состоянии понижен.

Сапролегниоз - заболевание, поражающее, как провило, физиологически ослабленную рыбу (Хренова, Юнчис, 1998). Представляет опасность для производителей форели в посленерестовый период, когда иммунно-физиологический статус понижен. Особенно страдают от сапролегниоза самцы форели, наиболее чувствительные к этому заболеванию.

В настоящее время в связи с улучшением санитарного состояния бассейнов и своевременным проведением лечебно-профилактических мероприятий поражение сапролегнией снизилось с 70 - 80% до 10 - 15%. За последние годы только в посленере-стовый период 2000 года наблюдалось поражение до 50% производителей. Вероятнее всего, это было связано с употреблением производителями продукционного корма и возникшим в результате ожирением. Большое количество полостного жира затрудняло получение половых продуктов, способствуя травмированию производителей и резорбции икры. Травмированные и ослабленные рыбы заражались грибковой инфекцией. Это свидетельствует о том, что и для производителей условия выращивания имеют решающее значение.

Влияние качества производителей на эпизоотическое состояние потомства подтверждают исследования, проведенные в Ропше в 80-х годах сотрудниками ГосНИ-ОРХ, и опыт, поставленный нами в феврале - ноябре 1999 года (Нечаева, 2000г). Данные специалистов ГосНИОРХ свидетельствовали о сильном заражении сапролегнией икры, полученной от производителей, находящихся в плохом физиологическом состоянии (содержание общего белка в сыворотке крови от 2.0 до 3.5 г%), пораженных аденокарциномой кишечника. Результаты нашего опыта позволили установить большую подверженность потомства, полученного от производителей с низким физиологическим статусом, эктопаразитарным (ихтиободоз) и бактериальным (миксобактериоз) заболеваниям. У потомства таких самок обнаружено большое количество уродств и водянки желточного мешка. Сеголетки, полученные от самок с низким содержанием общего белка в крови (3.5 - 3.9 г%), подверглись сильному (25%) поражению миксобактериозом. Смертность при этом составила 15%. Это свидетельствует о значительном влиянии качества производителей на эпизоотическое состояние потомства в современном индустриальном хозяйстве, где миксобактериоз представляет значительную опасность.

Болезни бактериальной природы отмечены не только у форели. Из новых объектов аквакультуры, выращиваемых в индустриальных рыбоводных хозяйствах очень чувствительной к жаберному бактериальному заболеванию оказалась ладожская палия. Гибель сеголеток достигла 30%. Признаки заболевания в разной степени наблюдались у всех рыб. Другим опасным для палии бактериальным заболеванием оказался аэромоноз, возбудителем которога является условно-патогенная бактерия Aeromonas hydrophila. У форели это заболевание не зарегистрировано. Аэромоноз может быть спровоцирован пересадками и сортировками. Палия подвергается «хэндлинг-стрессу» и сильно травмируется, особенно при сортировке через решетки. Отрицательно влияют на нее и высокие температуры воды. Из всех лососевых рыб палия оказалась наиболее чувствительной к ихтиофтириозу (экстенсивность заражения - 75%, интенсивность - 10 - 20 экз.). Ихтиофтириоз был зарегистрирован не только у сеголеток, но и у трехлеток палии (экстенсивность заражения - 60%, интенсивность - 10-20 экз.). Заболевание совпало со вспышкой аэромоноза. Подверженность палии бактериальным и эктопаразитарным заболеваниям связана с недостаточной адаптированностью этой рыбы к условиям индустриального хозяйства. Палия более чувствительна к таким факторам, как высокая температура, органическое загрязнение и «хэндлинг-стресс».

Для атлантического лосося при искусственном выращивании наибольшую опасность преставляет некроз плавников у сеголеток, годовиков и двухлеток. Если в 1998 и в 1999 годах у больных рыб обнаруживался главным образом некротизирован-ный спинной плавник, то при вспышке заболевания в ноябре 2001 года можно было наблюдать не только глубокий некроз спинного плавника, но и экзофтальмию и поражения на поверхности тела - припухлости с беловатым экссудатом. Данные микробиологических исследований позволили диагностировать заболевание как одну из форм миксобактериоза, вызываемую миксобактериями из рода Flavobacterium, так называемое «серое седло». Некроз плавников у атлантического лосося встречается на всех рыбоводных заводах и связывается, прежде всего, с сезонными колебаниями те-ператур (Коренев и др, 1991). В ноябре 2001 года имела место совокупность неблагоприятных факторов, поскольку сеголетки лосося содержались в бассейне с низкой проточностью и застойными зонами. Это привело к возникновению серьезной бактериальной инфекции. Необходимо отметить, что у радужной форели довольно часто встречается некроз концов лучей спинного плавника. Однако глубокое некротическое поражение встрчается редко, сочетаясь с симптомами бактериального холодноводного заболевания - общей анемией и нарушениями нервной системы. Таким образом, можно предположить, что «серое седло» представляет для атлантического лосося боль шую опасность. По степени поражения ихтиофтириозом атлантический лосось занимает промежуточное положение между радужной форелью и ладожской палией (экстенсивность заражения - 40%, интенсивность - 3 - 5 экз.).

У каспийского лосося за весь период его выращивания в условиях холодновод-ного бассейнового хозяйства не было выявлено эктопаразитарных либо бактериальных заболеваний. Однако выяснилось, что производители каспийского лосося подвержены сапролегниозу в большей степени, чем производители форели. Первый нерест проходит благополучно. Однако при повторном созревании наблюдается массовое поражение самцов (80%) сапролегнией. Это связано со снижением иммунно-физиологического статуса самцов лосося при втором нересте, в связи с большими затратами энергетических резервов тела у самцов при размножении. В результате выживаемость в посленерестовый период у самцов многократно ниже, чем у самок (Флеминг, 1998). Поэтому можно рекомендовать использование в рыбоводных целях впервые созревающих самцов.

Необходимо отметить, что у палии и лососей обоих видов не наблюдались заболевания, связанные с избытком углекислого газа. Следовательно, несмотря на недостаточную адаптированность к условиям индустриального хозяйства, ладожская палия, атлантический и каспийский лососи могут быть признаны перспективными объектами для культивирования в холодноводных хозяйствах с ключевым водоснабжением. Особенно подходящим для выращивания в таких хозяйствах видом представляется палия. Низкие температуры воды и высокая концентрация углекислого газа не является для палии столь неблагоприятным фактором, как для форели. Она способна не только выдерживать их влияние, но и в то же время хорошо расти.

Таким образом, наши исследования показывают, что для поддержания нормальной эпизоотической обстановки прежде всего необходимо соблюдение рыбоводных нормативов и биотехники выращивания. Использование сбалансированных кормов позволяет обеспечить быстрый рост рыб и низкий уровень загрязнения окружающей среды. При этом в товарных хозяйствах достаточно не допускать появления карантинных заболеваний, а численность возбудителей других болезней поддерживать на безопачном для рыб уровне. В племенных же хозяйствах нужно добиваться полного оздоровления предприятия. Должно осуществляться наблюдение за эпизоотическим и физиологическим состоянием рыб.

В настоящее время нами осуществляется постоянный контроль за эпизоотическим состоянием лососевых рыб в индустриальных хозяйствах разного типа. Микробиологические исследование позволяют диагностировать бактериальные заболевания и выявить их возбудителей. Гистологические и гематологические исследования дают возможность оценить физиологическое состояние рыб и степень их пораженности при том или ином заболевании. Гидрохимические исследования позволяют контролировать состояние воды в хозяйствах, а также диагностировать такие заболевания как вздутие плавательного пузыря и нефрокальциноз.

Сроки контроля должны быть скорректированы с биотехникой выращивания рыб и в большой степени зависят от типа хозяйств и от вида рыбы. Дополнительное обследование осуществляется в том случае, если планируется проведение каких-либо рыбоводных мероприятий, особенно перевозок. После превозок, пресадок и сортировок также необходимо осуществлять ихтиопатологический осмотр рыб.

Для рыб младших возрастных групп такой осмотр, в стабильных условиях выращивания, проводится ежемесячно. Обследование годовиков осуществляется два раз в год (весной и осенью). Количество обследуемых рыб составляет не менее 15-25 экземпляров. Рыбы старших возрастных групп (ремонтно-маточное стадо) подвергаются осмотру в преднерестовый и посленерестовый период. Произвести полное их-тиопатологичекое обследование большого (15-25 экземпляров) количества производителей и рыб ремонтной группы нецелесообразно по экономическим причинам. Поэтому если состояние ремонтно-маточного стада благополучно и вспышек болезней не наблюдается, количество обследуемыхособей снижается до 5 -10 экземпляров.

Особого внимания требует завоз посадочного материала. Посадочный материал рекомендуется завозить на стадии икры. Это позволяет исключить проникновение на предприятие эктопаразитарных и многих бактериальных заболеваний. При проявлении заболеваний эпизоотическое исследование должно производиться с использованием, если это необходимо, методов бактериологического, гистологического и гидрохимического обследования.

При выращивании рыбы на предприятиях, различающихся по типу рыбоводных сооружений и водоснабжению, приходится сталкиваться с различными заболеваниями. Поэтому существуют некоторые различия в применении лекарственных средств или приемов обработки в хозяйствах разного типа.

Зная заболевания, наиболее опасные в индустриальных хозяйствах, можно разработать методы лечения и мероприятия по улучшению эпизоотического состояния лососевых рыб. При этом надо отметить эффективность такого нового препарата как флубактин при лечении бактериального холодноводного заболевания. Применение ванн с фуразолидоном можно рекрмендовать не только при миксобактериозах, но и при ихтиободозе (костиозе). Препарат вызывает инактивацию паразита, снижает зараженность, не отличаясь при этом токсичностью, что особенно важно при лечении молоди.

Значительно улучшить состояние рыб в холодноводных хозяйствах позволят изменения в биотехнике выращивания. Аэрационные колонны помогут удалить избыток углекислого газа и снизить поражение рыб вздутием плавательного пузыря и нефрокальцинозом в хозяйствах с ключевым водоснабжением (Мельничный и Оре-дежский участки). Реконструкция бассейнов и системы водоподачи (Оредежский участок) даст возможность избавиться от жаберного заболевания. Разработка и применение схемы выращивания, исключающей контакт рыбы и возбудителя, помогает избежать триенофороза в озерном садковом хозяйстве. Снизить заболеваемость новых объектов аквакультуры позволит разработка биотехники выращивания с учетом биологических особенностей этих рыб.

В индустриальных хозяйствах должны регулярно проводиться микробиологические исследования. При этом особое внимание необходимо обратить на миксобак-териозы, как на наиболее распространенные бактериальные заболевания в условиях индустриального выращивания.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Нечаева, Тамара Алексеевна, 2003 год

1. Андерс А. Г., Куражковская Т. И. 1963. Патогистологические изменения у леща при дефиците кислорода // Труды Института биологии водохранилищ. 5 (8): 87 -105.

2. Банина Н. Н. 1969. Инфузории рода Apiosoma (экология, связь с хозяевами) // В сб.: Успехи протозоологии (тез. докл.). Л.: 267 268.

3. Банина Н. Н. 1975. Распределение апиозом по телу рыб в свете паразитохозяинных отношений // Паразитология. 9 (3): 285 292.

4. Банина Н. Н. 1976. Апиозомы как паразитические организмы // Изв. ГосНИОРХ. 105. Л.: 58-68.

5. Банина Н. Н. 1977. Апиозомы и апиозомозы в карповых хозяйствах // Изв. ГосНИОРХ. 199. Л.: 101-106.

6. Банина Н. Н., Бойцова И. Л., Полякова Л.А. 1977. Зависимость фауны сидячих пе-ритрих от условий водоема // Изв. ГосНИОРХ. 199. Л.: 74 80.

7. Банина Н. Н., Куденцова Р. А., Брагина Е. В. 1977. Эпистилезы и некоторые другие случаи массового поражения перитрихами рыб и икры // Изв. ГосНИОРХ. 199. Л.: 107- 109.

8. Банина Н. Н., Чернышева Н. Б. 1977. Влияние апиозом и эпистилисов на ткани рыб // Изв. ГосНИОРХ. 199. Л.: 110-115.

9. Бауэр О. Н. 1952. Заболевания рыб в прудовом хозяйстве и меры борьбы с ними // Труды совещания по вопросам прудового рыбоводства. Л.: 77 84.

10. Ю.Бауэр О. Н. 1954. Формирование паразитофауны в новых водохранилищах // Труды проблемных и тематических совещаний, вып. 4. 47-53.

11. П.Бауэр О. Н. 1955. Ихтиофтириоз в прудовых хозяйствах и меры борьбы с ним // Изв. ГосНИОРХ. 36. Л.: 184-223.

12. Бауэр О. Н. 1956. Опыт борьбы с ихтиофтириозом в прудовых хозяйствах // Науч-но-техн. бюл. ВНИОРХ. 1 2.: 45 - 46.

13. Бауэр О. Н. 1957. Паразитофауна молоди лосося (Salmo salar) на ранних этапах его развития // Труды Ленинградского общества естествоиспытателей, 73 (4): 159 -163.

14. Бауэр О. Н. 1958. Паразитарные заболевания рыб в прудовых нерестово-выростных хозяйствах и рыбопитомниках и меры борьбы с ними // Основные проблемы паразитологии. JL: 267 301.

15. Бауэр О. Н. 1959. Влияние факторов среды на размножение паразитов рыб // Вопр. экологии. 3: 132-141.

16. Бауэр О. Н. 1959. Экология парзитов пресноводных рыб (взаимоотношения паразита со средой обитания) // Изв. ГосНИОРХ, т. 49: 5 206.

17. Бауэр О. Н. Богданова Е. А. 1963. Протозойные и грибковые заболевания при выращивании лососевых // Изв. ГосНИОРХ. 54. JL: 1 14.

18. Бауэр О. Н., Демченко И. Ф. 1960. Производственный опыт применения ванн из поваренной соли для лечения рыб от ихтиофтириоза // Научно-техн. бюл. ГосНИОРХ. 10. Л.: 55 -56.

19. Бауэр О. Н., Столяров В. П. 1958. Формирование паразитофауны и болезни рыб в водохранилищах // В кн.: Основные проблемы паразитологии рыб. Л.: 247 256.

20. Бауэр О. Н., Стрелков Ю. А. 1957. Заболевания молоди атлантического лосося при искусственном выращивании // Тез. докл. V Научной конф. По изучению внутренних водоемов Прибалтики. Минск. 58 59.

21. Бауэр О. Н., Стрелков Ю. А. 1959. Заболевания молоди балтийского лосося при искусственном выращивании // Труды совещ. Ихтиологической комиссии АН СССР, 9: 86 90.

22. Бауэр О. Н., Стрелков Ю. А. 1979. Итоги и перспективы работы лаборатории болезней рыб ГосНИОРХ // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 140. Л.: 3 25.

23. Богданова Е. А. 1966. Триенофороз молоди лососевых рыб при искусственном выращивании // Тез. докл. научной конф. По изучению внутренних водоемов Прибалтики. Таллин.: 35-37.

24. Богданова Е. А. 1969. Фауна паразитов радужной форели (Salmo irideus Gib.) и профилактика ее заболеваний // Изв. ГосНИОРХ. 68. Л.: 224 233.

25. Богданова Е. А. 1976. Паразиты и инвазионные болезни лососевых на рыбоводных заводах Севера и Северо-Запада СССР и мероприятия по их профилактике // Изв. ГосНИОРХ. 105. Л.: 130 - 140.

26. Богданова Е. А. 1976. Особенности паразитофауны и распространение инвазионных болезней у лосося и форели // Изв. ГосНИОРХ. 133. Л.: 87 с.

27. Богданова Е. А. 1994. Болезни лососевых и сиговых рыб в аквакультуре. СПб, 184 с.

28. Богданова Е. А. 1995. Паразитофауна и заболевания рыб крупных озер Северо-Запада России в период антропогенного преобразования их экосистем. СПб, 125 с.

29. Боговский С. П. 1997. Этиология и распространение опухолей рыб в связи с антропогенным загрязнением // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 321. Л.: 17 28.

30. Бойцова И. А. 1977. Инфузории семейства Epistylidae на рыбах // Изв. ГосНИОРХ. 119. Л.: 116-123.

31. Быховская-Павловская И. Е. 1969. Паразитологическое исследование рыб. Л.: 108 с.

32. Васильева, 1999. Природа России: жизнь животных. Рыбы. М.: 640.

33. Варзегова С. А., Пчеловодова Д.В. 1988. Состав белков в сыворотке крови у молоди радужной форели в условиях ее содержания в Оредежском рыбопитомнике // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 276. Л.: 122 125.

34. Ведемейер Г.А., Мейер Ф. П., Смит Л. 1981. Стресс и болезни рыб. М.: 128 с.

35. Веселов А. Е. 1998. Распределение и поведение молоди атлантического лосося в летний период // В кн.: Атлантический лосось. СПб: 159 180.

36. Висманис К. О., Просяная В. В., Глаголева Т. П., Наконечная М. Г. 1982. Клинические, бактериологические и гематологические исследования рыб, больных миксо-бактериозом // В сб.: Рыбохозяйственные иследования Балтийского моря. 17: 76 -81.

37. Воронин В. Н., Чернышева Н. Б., Стрельбицкая И. Н. 1992. Характеристика очага триенофороза форели и меры борьбы с заболеванием в условиях садкового выращивания // Сб. научн. трудов ГосНИРХ. 311. СПб: 9 22.

38. Воронин В. Н., Хотева Г. М., Нечаева Т. А. 2001. Эпизоотическая ситуация в форелевых хозяйствах Северо-Запада и Юга России и пути ее улучшения // В сб.: Рыбное хозяйство. 3: 1 15.

39. Головин П. П. 1981. Меры профилактики газопузырьковой болезни рыб // В сб.: Экспресс-информ., сер. "Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов". 4: 8 -12.

40. Головин П.П. 1983. Газопузырьковая болезнь рыб и ее профилактика // Рыбное хозяйство. 5:34 36.

41. Головин П.П. 1987. Стресс у рыб // Труды Зоол. Ин-та АН СССР, 171. Л.:22 32.

42. Головин П. П., Головина Н. А. 1977. Некоторые вопросы патогенеза при газопузырьковом болезни // В сб.: Болезни рыб и меры борьбы с ними. Алма-Ата.: 66 -69.

43. Голод В. М. 1999. Новая порода форели Рофор // Тез. докл. II Международ, сим-поз.: Ресурсосберегающие технологии в аквакультуре. Адлер.: 30-31.

44. Горбушкин А. М. 2000. Сравнительный морфофункциональный анализ взаимоотношений в системе моллюск трематода // Паразитология. 34 (6): 502 - 504.

45. Грачева М. Н. 1952.Современное состояние и перспективы развития форелевого хозяйства в СССР // Труды совещ. по вопросам прудового рыбоводства. М.:56 72.

46. Грищенко Л. И., Рудиков Н. И. 1985. Проблемы патологии и иммунологии при инфекционных болезнях рыб // В кн. Ихтиология (Итоги науки и техники /ВНИИТИ/). 1.М.: 190-211.

47. Грищенко Л. И., Акбаев М. III., Васильков Л. И. 1999. Болезни рыб и основы рыбоводства. М.: 455 с.

48. Дементьева М. А. 1988. Гистофизиологическое состояние паренхиматозных органов форели под воздействием неблагоприятных факторов при выращивании на сбросных теплых водах // В сб.: Научн. основы интенсификации теплов. рыбоводства. Л.: 113-130.

49. Дементьева М. А. 2000. Состояние жаберных лепестков форели при бассейновом выращивании на сбросных теплых водах // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 326. СПб: 196-202.

50. Дементьева М. А., Чаплыгин В. М., Кирилин С. Ю., Исаков А.А. 1988. Газопузырьковое заболевание форели при бассейновом выращивании на сбросных теплых водах // В сб.: Научн. основы интенсификации теплов. рыбоводства. Л.: 99 -112.

51. Догель В. А. 1933. Проблемы исследования паразитофауны рыб // Труды Ленинградского общества естествоиспытателей. 62 (3): 274 - 286.

52. Догель В. А. 1948. Итоги и перспективы паразитологических исследований в Ленинградском университете // Вестник ЛГУ. 3: 31 39.

53. Догель В. А. 1957. Значение болезней рыб в воспроизводстве рыбных запасов // Труды совещ. по рыбоводству. М.: 117 123.

54. Догель В. А. 1958. Паразитофауна и окружающая среда. Некоторые вопросы экологии паразитов пресноводных рыб //В кн.: Основные проблемы паразитологии рыб. Л.: 9-54.

55. Догель В. А., Петрушевский Г. К., Полянский Ю. И. 1958. Основные проблемы паразитологии рыб. Л.: 364 с.

56. Дорофеева Е. А. 1998. Таксономический статус, морфология и распространение атлантического лосося // В кн.Атлантический лосось. СПб: 11 31.

57. Евсеева Н. В. 1986. Зараженность радужной форели цестодой Trienophorus crassus в условиях садковых хозяйств Северо-Запада // Сб. научн. трудов. ГосНИОРХ. 248. Л.: 159- 168.

58. Зелинский Ю. П. 1985. Структура и дифференциация популяций и форм атлантического лосося. Л.: 128.

59. Казаков Р. В. 1998. История и состояние промысла атлантического лосося в России // В кн.: Атлантический лосось. СПб: 335 382.

60. Казаков Р. В., Веселов А. Е. 1998. Популяционный фонд атлантического лосося в России // В кн.: Атлантический лосось. СПб:383 395.

61. Казаков Р. В., Титов С. Ф. 1998. Популяционно-генетическая структура вида Salmo salar L // В кн.: Атлантический лосось. СПб: 43 74.

62. Казанчеев Е. Н. 1963. Рыбы Каспийского моря. М.: 69 73.

63. Канаев А. Н. 1984. Признаки устойчивости племеннох рыб к болезням // Рыбоводство и рыболовство. 4.: 8-9.

64. Карасева Т. А., Сердюк А. В., Логинова Г. А. 1992. Стрептококковая инфекция на лососевых хозяйствах Европейского Севера // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 311. Л.: 120-124.

65. Кирпичников В. С. 1987. Генетика и селекция рыб. Л.: 520 с.

66. Кожин Н. И. 1923. Очерк современного положения сельскохозяйственного рыбоводства в России // Рыбное хозяйство. 2: 186 198.

67. Кокуричева М. П. 1976. Методическое пособие по проведению гистологических исследований органов и тканей рыб в водной токсикологии. Л.: 52.

68. Конев Н. В. 1996. Нормальная микрофлора рыб и ее роль в возникновении бактериальных заболеваний, вызванных стрессом // Научные тетради ГосНИОРХ. 34. СПб:46 с.

69. Коренев О. Н., Краснов А. М., Полина А. В., Рехтер М. Д. 1991. Некроз плавников у молоди лосося (Salmo salar L.): Распространение на рыбоводных заводах в зависимости от условий выращивания, патогенез // Сб. научн. трудов ВНИИПРХ. 62: 51-61.

70. Куденцова Р. А. 1977. Роль сорных рыб в распространении заболеваний в прудовых хозяйствах Северо-Запада // Изв. ГосНИОРХ. 119. Л.: 142 148.

71. Куденцова Р. А. 1979. Экологический анализ паразитофауны сорных и выращиваемых рыб в прудовых хозяйствах разного типа // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 140. Л.: 48- 107.

72. Куденцова Р. А. 1987. Некоторые вопросы эпизоотологии диплостомоза форели в рыбоводных хозяйствах // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ НПО. 197. Л.: 64 73.

73. Куденцова Р. А. 1992. Динамика структурных изменений в жаберном эпителии молоди форели при искусственном выращивании // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 311. Л.: 53-67.

74. Куденцова Р. А., Морозова Т. И., Юнчис О. Н. 1997. Новое заболевание радужной форели // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 321. СПб: 138 146.

75. Куденцова Р. А., Соломатова В. П. 1978. Новые заболевания рыб при индустриальных методах выращивания // Рыбохоз. использов. внутр. водоемов. 10. М.: 1 -4.

76. Куденцова Р. А., Стадник М. А. 1985. Изучение влияния метацеркарий рода Dip-lostomum на рыбоводные показатели радужной форели (Salmo irideus Gibbons) при индустриальном выращивании // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 235. Л.: 136 143.

77. Куденцова Р. А., Стадник М. А., Тимошина Л. А. 1987. Профилактика триенофо-роза форели на рыбоводных заводах Северо-Запада // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ.-259. Л.: 160- 163.

78. Куденцова Р. А., Толстых А. Ю. 1987. Влияние метацеркарий диплостомид на рыбопродуктивность форелевых хозяйств // Сб. научн трудов ГосНИОРХ. 259. Л.: 51 -54.

79. Куденцова Р. А., Юнчис О. Н. 1985. Возможности использования перитрих в качестве индикаторов органического загрязнения рыбоводных емкостей // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 235. Д.: 144 147.

80. Куденцова Р. А., Юнчис О. Н., 1992. Жаберное заболевание у старших возрастных групп форели // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 311. Л.: 71 75.

81. Куденцова Р. А., Юнчис О. Н., Воронин В. Н. 2000. Бактериальные заболевания лососевых, вызываемые Flavobacterium psychrophilum // В сб.: Рыбное хозяйство. 3: 1-10.

82. Лысанов А. В. 1992. Взаимосвязь некоторых систем организма и их влияние на развитие заболеваний карпа при выращивании на теплых водах // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 311. СПб: 94 98.

83. Мамонтов Ю. П. 2000. Аквакультура и ее роль в жизни человека // Рыбоводство и рыболовство. 2: 4 5.

84. Мельянцев В. Г. 1958. Палия озер Карелии. Петрозаводск.: 65 с.

85. Мирзоева Л. М. 1988. Опухоли рыб // Рыбное хозяйство: Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов. 2: 3 25.

86. Мирзоева Л. М. 1990. Потребности форели и карпа в витаминах и признаки их дефицита // Рыбное хозяйство: Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов. 4: 27 34.

87. Мусселиус В. А., Стрелков А. Ю. 1987. Болезни рыб и борьба с ними в условиях современного рыбоводства // Труды ЗИМ. 171: 14-21.

88. Нечаева Т. А. 1999. Анализ эпизоотического состояния сеголеток радужной форели в зависимости от сроков выклева и условий выращивания // Тез. докл. VI Международной научн. конфер. "Актуальные проблемы биологии и экологии". Сыктывкар.: 152.

89. Нечаева Т. А. 1999а. Бактериальное холодноводное заболевание у молоди форели камлоопс (Oncorhynchus mykiss kamloops Gordon) // В сб.: Проблемы рыбного хозяйства на внутренних водоемах. СПб: 194.

90. Нечаева Т. А. 2000. Анализ эпизоотического состояния форели в ФСГЦР // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 326: 186 195.

91. Нечаева Т. А. 2000а. Факторы, влияющие на эпизоотическое состояние радужной форели в индустриальном хозяйстве ФСГЦР // Научно-техн. симпоз. «Современные средства воспроизводства и использования водных биоресурсов». Тез. докл. 4. СПб: 190-192.

92. Нечаева Т. А. 2000в. Влияние физиологического состояния производителей радужной форели на эпизоотическое состояние полученной молоди // Тез. докл. VII Международной научн. конфер. "Актуальные проблемы биологии и экологии". Сыктывкар.: 158.

93. Нечаева Т. А. 2001. Заболевания ладожской палии при выращивании в искусственных условиях // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 329: 49 53

94. Нечаева Т. А. 2002. Бактериальные заболевания у радужной форели в индустриальном хозяйстве (ФГУП ФСГЦР). Тез. докл. Международной науч. конф. «Биология внутренних вод: проблемы экологии и биоразнообразия». - Барок.: 138.

95. Нечаева Т. А. 20026. Динамика эпизоотического состояния радужной форели в ФСГЦР за последние годы в связи с изменением биотехники выращивания // Тез докл. Первой всероссийской конф. «Генетика, селекция и воспроизводство рыб». -СПб.: 119-122.

96. Никольский Г. В. 1971. Частная ихтиология. М.: 151 152.

97. Hyp Эльдин Амин. 1974. О частоте выделения из органов клинически здоровых белых толстолобиков условно-патогенных бактерий Aeromonas punctata и Pseudomonas // Тез. докл. VI Всесоюзного совещ. по болезням рыб. М.: 169 172.

98. Олах Я., Фаркаш Й., Енеи Г., Енеи Ж., Малик Э. 1988. Роль стресса в бактериальном жаберном некрозе карпа // В кн.: Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве. Душанбе.:37 42.

99. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. 1984. Паразитические простейшие. (Под редакцией О. Н. Бауэра). 1. Л.: 428.

100. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. 1985. Паразитические многоклеточные. Первая часть. (Под редакцией О. Н. Бауэра). 2. Л.: 425.

101. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. 1987. Паразитические многоклеточные. Вторая часть. (Под редакцией О. Н. Бауэра). 3. Л.: 583.

102. Павлов Д. А. 1993. Перетяжка желточного мешка у личинок лососевых // Рыбное хозяйство. 5: 45 46.

103. Петрушевский Г. К. 1957. Водянка и перешнуровывание желточного мешка у личинок невского лосося // Изв. ВНИОРХ. 42: 327 328.

104. Петрушевский Г. К. 1958. Паразитарные заболевания лососевых рыб на рыбоводных заводах и хозяйствах // Вопр. ихтиологии. 10: 162-171.

105. Полина А. В., Коренев О. Н., Краснов А. М., Рыжков Л. П. 1990. Пути снижения заболеваемости некрозом плавников атлантического лосося // Тез. докл. Симп. По атлантическому лососю. Сыктывкар.: 93.

106. Просяная В.В., Наконечная М. Г., Головян А. В. 1978. Миксобактериоз форели, выращиваемой в бассейнах Киевской ТЭЦ-5 // Материал конфер.: Освоение теплых вод энергетических объектов для интенсивного рыбоводства. Киев.: 263 265.

107. Расе. 1983. Жизнь животных. Рыбы. 4. М.: 143 144.

108. Рудиков Н. И., Грищенко JI. И. 1985. Микрофлора и бактериальные болезни рыб // В кн.: Ихтиология (Итоги науки и техники /ВНИИТИ/). 1. М.: 93 -160.

109. Савваитова К. А. 1979. Арктические гольцы (структура популяционных систем, перспективы хозяйственного использования). М.: 224 с.

110. Савваитова К. А., Медников Б. М., Максимов В. А. 1977. Спорные вопросы систематики гольцов рода Salvelinus (Nilsson) Richardson // В сб.: Основы классификации и филогении лососевидных рыб. JL: 31 37.

111. Савостьянова Г. Г. 1976. Происхождение, разведение и селекция радужной форели в СССр и за рубежом // Изв. ГосНИОРХ. 117. Л.:3 13.

112. Сборник нормативно-технологической документации по товарному рыбоводству. 1986. 2. М.: 318.

113. Семенова Н. В., Бауер О. Н., Ковальская М. Г. 1976. Гепатома радужной форели // Рыбное хозяйство. 10: 26 27.

114. Сентищева С. В. 1985. Морфофизиологические показатели молоди радужной форели при разном уровне кормления производителей // 235. В сб.: Биология и воспроизводство рыб. Л.: 83 92.

115. Сердюк А. В. 1991. Диагностика стрептококковой инфекции у заводской молоди атлантического лосося // Тез. докл. совещ. молодых ученых ПИНРО: Проблемы рыбохозяйственной науки в творчестве молодых. Мурманск: 23 24.

116. Сердюк А.В., Калинина Н. Р. 1988. Миксобактерии как этиологический фактор плавниковой гнили при садковом выращивании лососевых в Заполярье // Тез. докл. III Всесоюзн. совещ.: Садковое рыбоводство в естественных водоемах. М.: 52.

117. Соломатова В. П. 1978. Новые болезни рыб при индустриальных методах выращивания на сбросных водах Костромской ГРЭС // Тез. докл. Всероссийского совещ. "Профилактика и меры борьбы с болезнями рыб при интенсивных методах выращивания". М.: 101 103.

118. Соломатова В. П. 1979. Триенофороз лососевых при индустриальных методах выращивания // Тез. докл. VII Всесоюзного совещ. по паразитам и болезням рыб. Л.: 103- 104.

119. Сомов М. П. 1922. Рыбоводство // В кн.: Естественные производительные силы России. 6(3): 50- 104.

120. Столяров В.П. 1934. Паразитарная фауна карповых рыб Ропшинского рыбопитомника и ее хозяйственное значение // Труды Ленинградского общества естествоиспытателей. 63 (2): 239 253.

121. Стрелков Ю. А. 1985. Особенности профилактическо й и лечебной работы в условиях современных индустриальных хозяйств // Сб. научню трудов ГосНИ-ОРХ. 227. Л.: 150- 154.

122. Стрелков Ю. А. 1992. Противоэпизоотическая работа в современном рыбоводстве // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 311. СПб: 3-8.

123. Стрелков Ю. А. 1997. Современное состояние и перспективы развития пресноводной ихтиопатологии // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 321. СПб: 3 16.

124. Строганов Н. С. 1962. Экологическая физиология рыб. М.: 444 с.

125. Таннер P. X. 1989. Микотоксины в рыбных кормах // Сб. научн. трудов ВНИ-ИПРХ. 57. М.: 115-120.

126. Терентьева Е. Г. 1980. Опыт гибридизации стальноголового лосося и радужной форели // В сб.: Интенсификац. Рыбоводства на внутр. водоемах. 28: 22 27.

127. Терентьева Е. Г. 1999. Методика создания пород форели для хозяйств со стабильным абиотическим фоном // Тез. докл. II Международ, симпоз.: Ресурсосберегающие технологии в аквакультуре. Адлер.: 103 104.

128. Терентьева Е. Г., Голод В. М. 1985. Товарное выращивание гибрида стальноголового лосося и радужной форели в условиях рыбхоза "Отрадное" // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 235. Л.: 114 119.

129. Тихоненко В. Ф. 1985. Зависимость выживаемости потомства на ранних этапах жизни от возраста, повторного нереста и размера самок атлантического лосося. // В сб.: Биология и воспроизводство рыб. Л.235: 75 82.

130. Флеминг Я. А. 1998. Размножение атлантического лосося // В кн.: Атлантический лосось. СПб: 127-141.

131. Худолей В. В. 1991. Тестирование образцов кормов для рыб на мутагенную и канцерогенную активность (заключительный отчет). ГосНИОРХ. Л.: 61.

132. Хренова Н. А., Юнчис О. Н. 1998. Биоиндикаторы состояния рыб и условий их содержания // Рыбоводство и рыболовство. 1: 29 30.

133. Шерешевская Е. Г. 1932. Заболевание рыб и рыбьей икры сапролегнией // Рыбное хозяйство Карелии. 1: 117 132.

134. Юнчис О. Н. 1969. Особенности паразитофауны молоди язя, плотвы и уклеи и ее зависимость от биологии хозяина и некоторых внешних факторов // Проблемы паразитологии. 2. Киев.: 287 290.

135. Юнчис О. Н. 1969а. Встречаемость и морфологическая измененчивость Trichodina nigra и Tripartiella incisa в зависимости от сезона года // Успехи протозоологии. Л.: 306 307.

136. Юнчис О. Н. 1972. Формирование паразитофауны плотвы, уклеи и язя озера Врево в первый год жизни // Изв. ГосНИОРХ. 80. Л.: 26 74.

137. Юнчис О. Н. 1972а. Экологические факторы, способствующие зараженности молоди рыб паразитами семейства Scyphiidae // Проблемы паразитологии. 2: 462 -464.

138. Юнчис О. Н., Стрелков Ю. А., 1994. Проблемы болезней лососевых при их искусственном выращивании // Материалы V Всероссиского совещания. СПб: 235 -236.

139. Юнчис О. Н., Стрелков О. Н. 1997. Паразиты рыб как индикаторы состояния водной среды // Сб. научн. трудов ГосНИОРХ. 321. СПб: 111-117.

140. Юрлова Н. И., Водяницкая С. Н., Глупов В. В. 2000. Анализ взаимоотношений в системе паразит —хозяин (на примере моллюсков и трематод) // Успехи современной биологии. 120 (6): 573 580.

141. Юхименко Л. Н., Викторова В. Ф. 1979. Аэромонады рыб // В сб.: Болезни рыб и борьба сними. 23. М.:37 35.

142. Amend D. F., Fryer I. L., Pilcher К. S. 1965. Production trials utilizing sulfonamide drugs for the control of' cold-water ' disease in juvenile coho salmon // Fish Comossion of Oregon Research Briefs. 11: 73 78.

143. Anderson S. J. W., Conroy D. A. 1969. The pathogenis myxobacteria with special referense to fish disease. J. Appi. Bacteriology. 32: 30 - 39.

144. Austin B. 1992. The recoyery of Cytophaga psychrophila from two cases of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) fry syndrome in the U.K. Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 12(6): 297-209.

145. Austin В., Stoble M. 1991. Recovery of jellow-pigmented bacteria from dead and moriburd fish during outbreaks of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) fry syndrome in England. J. Fish Diseases. 14: 677 - 682.

146. Bagliniere J. L., Maisse G., Nihouarn A. 1990. Migratoryand reproductive behaviour of female adult Atlantic salmon, Salmo salar L., in a spawning stream. J. Fish Biol. 36: 511 -520.

147. Bagliniere J. L., Maisse G., Nihouarn A. 1991. Radio-tracking of male adult Atlantic salmon, Salmo salar L., during the last phase of spawning migration in a spawning stream (Brittany, France) // Aguat. Living Resources. 4. 161-167.

148. Barrera J., Torneto E. 1989. Non-hemolytic Streptococcus sp.: outbreak in rainbow trout of Spain // IV Intern. Conf.:"Diseases of fish and shellfish". St. De Compustella.: 83.

149. Baudin-Laurencin F., Castric J. C., Vigneulle M., Tixerant G. 1989. La myxobacte-riose viscerale la truite arc-en-ciel Salmo gairdneri P., une forme nowelle de la maladie de I'eau froide a Cytophaga psychrophila // Ball. Acad. Vet. Er. 62: 147 157.

150. Becker C. D., Fujihara M. R. 1978. The bacterial pathogen Flexibacter columnaris and it's epizootology amond Columbia River fich // Amer. Fish. Soc. Monogr. N0 2: 92.

151. Bernardet I. F., Keronault B. 1989. Phenotypic and genomic studies of "Cytophaga psychrophila" isolated from diseased rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in France // Appi. Euviron. Microbiol. 55: 1796 1800.

152. Bertolini J. M., Wakabayashi H., Watrul V. G., Rohovec J. S. 1994. Electrophoretic detection of proteases from selected strains of Flexibacter psychrophilus and assessment of their variability // J. Aguatic Animal Health. 6: 224 233.

153. Borg A. F. 1960. Studies on myxobacteria associated with diseases in salmonid fishes // Wildlife Disease. 8: 1 85.

154. Bruno W. D. 1989. An investigation into oxytetracycline residues in Atlantic salmon // J. Fish Diseases. 12 (2): 349 351.

155. Bullock G. L. 1990. Bacterial gill disease of freshwater fishes // Fish Dis. Leafled. 82:4.

156. Bullock G. L., Snieszko S. F. 1970. Fin rot, coldwater sisease and peduncle disease of salmonid fishes // US Departament of Interior Division of Fishery Research, Fishery Leafled. Virgrinia.: 462.

157. Carlin B. 1968. Salmon conservation, taggins experiments, migrations of salmon in Sweden // Lect. Ser. Atlantic Salmon Assoc. Montreal.: 12.

158. Chend Т. C. 1962. The effects of parasitism by larvae of Echinoparyphium Dietz (Trematoda: Echinostomatida) on the structure and glycogen diposition in the hepato-pancreats of Helisoma trivolvis (Say) // Am. Zool. 2 (4): 513.

159. Chend Т. C., Lee F. 0. 1971. Glucose levels in the mollusc Biomphalaria glabrata, infected by Schistosoma mansoni // J. Invertebr. Pathol. 18: 395 399.

160. Ceshia G., Giorgetti G., Giavenni R., Sarti N. 1992. A new problem for Italian trout farms // Bull. EAFP: 71-72.

161. Cone D. K. 1982. A Lactobacillus sp. from diseased female rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) in Newfoundland, Kanada // J. Fish Diseases. 5: 479 485.

162. Daoust R. J., Ferguson H. W. 1984. The pathology of chronic ammonia toxicity in rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson // G. Fish Dis. 7(7): 204 205.

163. Daskalow H., Jraseva H., Stoew S. 1999. Hepatic lipoidosis in rainbow trout (On-corhynchus mykiss Walbaum) intluenee of pathomorpholog; cal changes upon flesh guelity // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 19 (1): 20 - 23.

164. Davis H. S. 1946. Care and diseases of trout // US Dept. of the Interior Research Report. 12: 98.

165. Dalsgaard I. 1993. Virulence mechanismus in Cytophaga psychrochila and other Cy-tochaga-like bacteria pathogenis for fish // Annual Review of Fish Diseases. 3: 127 -144.

166. Dalsgaard I., Horlyck V. 1990. Cytophaga psychrophila infection in rainbow trout Denmark (abctract) // Proc. Conference on Bacterial Diseases of Fish. Stirling. Scotland: 37.

167. Decostere A., Haesebrouk F., Turnbull Y. F., Charlier J. 1999. Influence of water guality and temperature on adhesion of high and bow virulence Flavobacterium colum-nare strains to isolated gill arches // J. Fish Diseases. 22 (1): 1-11.

168. Dixon D. C., Hilton J. W. 1981.1nfluence of avialabre dietary carbonyelrate, content on tolerance of waterborne copper by rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) // J. Fish Biol. 19: 509-517.

169. Dixon D. C., Hilton J. W. 1985. Effect of avialabre dietary carbonyelrate and water temperature on the chronic toxicily of waterborne copper to rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) // Can. J. Fish and Aguat. Sci. 42: 1007 1013.

170. Eldar A., Bejerano J., Bercovier H. 1993. Streptococcal meningitis in culturier fishpond // Sixth. Intern. Confer.: 'Diseases of fish and shellfish". Brest. France.: 39.

171. Eldar A., Yhittino C., Bercovier H. 1995. Molecular taxonomy clarifies the status of gram positive coccifish pathogens // Seventh. Intern. Confer.: 'Diseases of fish and shellfish". Palma de Mallorca. 1: 28.

172. Farkas J., Kusuda R., Olah J. 1984. Examination of bacteria isolated from fishes in Hungary // Aguacult. Hungarica. 4.: 275 277.

173. Frischknecht R., Wahli Т., Meier W. 1994. Comparison of pathological changis due ti deficiency of vitamin C, vitamin E and combinations of vitamin С and E in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) // J. Fich Diseases. 17 (1): 31-45.

174. Gerard C., Theron A. 1996. Altered nutrition and assimilacion of the snail host (Biomphalaria glabrata) as a concegyence of the parasitic spatial constrains (Schistosoma mansoni) // Acta tropica. 61: 51 55.

175. Hamphrey J., Lancaster C., Gudcous N., Copland J. 1987. The disease status of Australian salmonids: bacteria and bacterial diseases // J. Fish Diseases. 10 (5): 403 410.

176. Harrison J. G., Richards R. H. 1979. The pathology and histopatholigy of nephrocal-cinosis in rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) in fresh water // J. Fich Diseases. 2(1): 1-12.

177. Harrison J. G. 1980. Nephrocalcinosis of rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) in Freshwater: a Syrveu of Affected farms // Fish Diseases. Third COPRAQ. Session.: 193 198.

178. Heo G. J., Wakabayashi H., Watanabe S. 1990. Purification and characterisation of pili from Flavobacterium branchiophila // Fish Pathol. 26: 21 27.

179. Herman R. L., Kircheis F. W. 1985. Steatit in Sunapee trout (Salvelinus alpinus) oguassa Jirard // J. Fish Diseasea. 8 (2): 237 239.

180. Hineuy M., Samuelsen О. В., Smith R. 1994. Association of mortalities in salmon hathery with the oral administration of flumeguine // Bull. Eur Ass. Fish Pathol. 14 (6): 204-206.

181. Hodasi J. K. 1972. The effect of Fasciola hepatica on Limnea truncatula // Parasitology. 65: 359-369.

182. Hoccut Ch. H., Tilney R. L. 1985. Changes in gill morphology of Oreochromis mos-sambicus subjected to tead stress // Environ. Biol. Fish. 14 (2 3): 107-114.

183. Holliman A., Austin В., Potting T. G. 1991. A previosly un recognised Cytochaga-like bacterium (CLB) causing jaw erosion in farmed rainbow trout (Oncorynchus my-kiss) // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 11 (3): 114 115.

184. Holt R. A. 1972. Characterization and control of Cytophga psychrophila (Borg) the causative agent of low temperature disease in young coho salmon (Oncorhynchus kisutch) // M. C. Thesis, Oregon State University, Corvallis.: 231 235.

185. Holt R. A., Amandi A., Rohoves J. C., Fryer I. L. 1989. Relation of water temperature to bacterial cold-water disease in coho salmon, chinook salmon, and rainbow trout // J. Aguatic Animal Health. 1: 97 101.

186. Holt R. A., Rochoves J. C., Fryer I. L. 1994. Bacterial cold-watern disease // In Bacterial Diseases of Fish (Ed. by V. Inglics, R. J. Roberts @ N. R. Bromage). Oxford. Blackwell Scientific: 3 22.

187. Hoshina Т., Sano Т., Marimoto G. 1958. A Streptococcus pathogenic to fish // J. To-kio Univ. Fish. 44: 57 68.

188. Juarde F., Bertoja J., Zoccarato Y., Tartari E., Biolatti B. 1997. Spontaneous steatitis of epicardial fat farmed white sturgeon (Acipenser transmontanus) // Aguacultura. 158 (3): 167- 177.

189. Johson К. A., Flynn I. K., Amend D. F. 1982. Onset of immunity in salmonid fry vaccinated by direct immersion in Vibrio angvillarum and Yersenia ruckeri bacterins // J. Fish Diseases. 5: 197 205.

190. Jonsson В., Jonsson N., Hansen L. P. 1990. Partial segregation in the timing of migration of Atlantic salmon of different ages // Anim. Behav. 40: 313-321.

191. Jonsson В., Jonsson N., Hansen L. P. 1991. Differences in life history and migratiry behaviour between wild and hatchery reared Atlantic salmon in nature // Aguaculture. 98: 69-78.

192. Kent M. L., Groff J.M., Morrison J. K., Yasutake W. Т., Holt R. A 1989. Spiral swimming behaviour due to cranial and vertebral lesion associated with Cytophaga psy-chrophila infection in salmonid fishes // Diseases Aguatic Organismus. 6:11-16.

193. Koski P., Hiwela-Koski V., Bernardet J. F. 1993. Flexibacter columnaris infection in arctic char (Salvelinus alpinus L.). First isolation in Finland // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 13 (2): 66-69.

194. Kroon K., Wiklund T. 1998. Plasmid profilig of Flavobacterium psychrophilum lum for epidemiologizal studies of bacter coldwater disease (BCWD) in Finland // Methodology in Fish Diseases Research: 39 44.

195. Landolt M. L. 1975. Visceral granuloma and nephrocalcinosis of trout // The Pathology of Fish.: 793 -799.

196. Ledebur J. E. 1937. Uber die Secretion und Resorption von Gasen in der Fischschwimmblase // Biol. Pev. 12: 52 75.

197. Ledebur J. E. 1939. Der Sauerstoff als okologischer Factor // Ergebn. d. Biologie. 16: 65-78.

198. Lorenzen E. 1993. The importance of the brand of the beef extract in relation to the growth of Flexibacter psychrophilus in at // Sci. 37 (10): 1499 1504.

199. Lorenzen E., Dalsgaard J., From Y., Hansen E. M., Horlyck V., Korsholm H., Mellergaard N., Olesen N. J. 1991. Preliminary in vestgation of fry mortality syn-dromein rainbow trout // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 11 (2): 77 79.

200. Lumsden J. S., Ostland V. E., Ferguson H. W. 1996. Necrotic miositis in cage cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum), caused by Flexibacter psychrophilus//J. Fish Diseases. 19(2): 113-119.

201. Madsen L., Dalsgaard J. 1998. Characterization of Flavobacterium psychrophilum, comparison of proteolytic activity and virulence of strains isolated from rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Methodology in Fish Diseases Research: 45 52.

202. Machado J. P., Garling D. L., Kevern N. R., Trapp A. L., Bell T. G. 1987. Histopa-thology and the pathogenesis of embolien (Gas Bubble disease) in rainbow trout (Salmo gairdneri) // Can. J. Fish Aguat. Sci. 44: 1985 1994.

203. Mallat Y. 1985. Fish gill structural changes induced by toxicaus and ofher irritans // Can. J. Fish Aguat. Sci.42 (4): 630 648.

204. Mirle C., Nicrer S., Hiltner R. 1985. Untersuchungen zu vorkommen, Epizootologie, Schadwirkung und Larven Triaenophorose der Regenbogenforelle // Mh. Veter. Med. Yd. 40(4): 138- 142.

205. Mitchell S., Geoh U. 1983. Ammoniacaused Jill Damage in channel catfish (Ictalurus punctatus): confoundiang effect of reridual chlorine // Can. J. Fish Aguat. Scl. 40 (2): 242 247.

206. Netboy A. 1974. The salmon, their fight for servival. Boston: Houghton Mifflin.: 613.

207. Ostland V. E., Lumsden J. S., MacPhu D.D., Ferguson H. W. 1994. Characteristics of Flavobacterium branchiophilum, the cause of salmonid bacterial gill disease in Ontario // J. of Aguatic Animal Health. 6: 13 26.

208. Ostland V. E., McGrogan D. I., Ferguson H. W. 1997. Cephalic osteochondritis and necrotic scleritis in intensively reared salmonids associated with Flexibacter psychrophi-lus // J. Fich Diseases. 20 (6): 443 451.

209. Ordal E. Y., Rucker R. R. 1944. Pathogenis myxobacteria // Prol. Soc. Exp. Biol. Med. 56: 15- 18.

210. Otis E. I. 1984. Lesions of coldwater disease in steelhead trout (Salmo gairdneri): the role of Cytophaga psychrophila extracellular products II m. S. Tesis , University of Rhode Island. Kingston. 5: 107 109.

211. Pacha R. E. 1968. Characteristics of Cytophaga psychrophila (Borg) isolated during outbreas of bacterial cold-water disease // Applied Microbiology. 16: 97 101.

212. Pacha R. E., Porter S. 1968. Characteristics of myxobacteria isolated from the surface of freshwater fich // Applied Microbiology. 16: 1901 1906.

213. Rangdale R. E., Richards R. E., Alderman D. J. 1996. Isolation of Cytophaga psy-chrophila causal agent of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 16(2): 63-67.

214. Reichenbach. 1989. Family I. Cytophagaceae Stanier 1940, 630AL, emend. In Ber-gey's Manual of Systematic Bacteriology // Baltimor. 3: 2061 2071

215. Roberts R. J. 1994. Motile aeromonad septicaemia // In Bacterial Diseases of Fich (Ed. by V. Inglis, R. J. Roberts @ N. R. Bromage). Oxford. Blackwell Scientific: 143 -156.

216. Roberts R. J., Richards R. M., Bullock A. M. 1979. Pancteatit in rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson): a clinical and histopathological Study // J. Fish Diseases. 2 (2): 85-92.

217. Roberts R. J., Schlotfeldt H. J. 1985. Grundlager der Fischpathologie. Berlin.: 425.

218. Rosen R., Dick T. 1984. Grouth and migration of plerocercoides of Triaenophorus crassus Forel and pathology in experemental infected whitefich, Coregonus clupea for-rais (Mitchell) // Can. Y. Zool. 62 (2): 202 211.

219. Ross A.E. 1972. In studies with nifurpiripol (P-7138) and bacterial fish pathogens // Progressive Fish-Culturist. 34: 18 20.

220. Rueker R.R., Earp В. I., Ordal I. 1953. Infections diseases of pacific salmon // Transactions of the American fishheries Society. 83: 297 312.

221. Santos J., Huntly P. I., Turnbull A., Hastein T. S. 1992. Isolation of Cytophaga psy-chrophila (Flexibacter psychrophilus) in association with rainbow trout mortalities in the United Kington // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 12 (6): 209 210.

222. Schachte I. H. 1983. Coldwater disease. In A Guide Integrated fish Health Management in the Great Lakes Basin (Ed. by F. P. Meyer, I. W. Warren @ T. G. Carey J.: 193 197.

223. Schaperclaus W. 1979. Fischkrankheiten. Berlin.: 1228.

224. Schlotfeld H. J. 1980. The increase of Nechrocalcinosis (NC) in rainbow trout in Intensive Aguaculture // Fish Diseases. Third COPRAQ. Session.: 198 206.

225. Schlotfeld H. J., Schoon H. A. 1979. Nierenverkalkung (NC, Nephrocalcinose oder Nephrokalzinose) der Regenbogenforelle in der Intensivaguakultur. Klinischer Verlauf und Histopatologie // Tierarztliche. Praxis. 7 (4): 523 528.

226. Schneider R., Nicholson B. J. 1980. Bacteria associated with fin rot diswase in hatchery-reared atlantic salmon (Salmo salar) // Can. J. Fish Aguat. Sci. 37 (10): 1505 -1513.

227. Smart G. R. 1976. The effect of ammonia exprosure on gill structura of the rainbow trout (Salmo gairdneri R.) // J. Fish Biol. 8:471 475.

228. Smart et al.1979. Nechrocalcinosis in rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) the effect of exposure elevated CO2 concentration // J. of Fish Diseases. 2 (4): 279 289.

229. Snieszko S. F. 1964. Selected topics on bacterial fish diseases // Canadian Fish-Culturist. 32: 19-24.

230. Soltani M., Shanker S., Munday B. L. 1995. Chemotherapy of Cytophaga / Flexibac-ter-like bacteria (CFLB) infections in fish: studies validating clinical efficaciens of selected antimicrobials // J. Fish Diseases. 18: 555 565.

231. Speare D. E., Ferguson H. W., Beamith F. W. M., Yages J. A., Yamashiro S. 1991. Pathology of bacterial gill disease: seguential development of lesion during natural outbreaks of disease // J. Fish Dis. 14: 21 32.

232. Struthes B. J., Wales J. H., Lee D. J., Sinnhuber R. O. 1975. Liver composition and histology of rainbow trout fed cyclopropenoid fatty acid // Exper. a Molecul. Pathology. 23: 154-170.

233. Sturrock В. M. 1966. The influence of infection with Schistosoma mansoni on the growth and reproduction of Biomphalaria pfeiffery // Ann. Trop. Med. Parasitol. 60: 187 -197.

234. Thompson S. N., Megia-Scalas V. 1989. Effect of Schistosoma mansoni on the nutrition of its intermediate host, Biomphalaria glabrata. J. Parasitol. 75 (2): 329 - 332.

235. Toranzo A.E., Barja I. L., Colwell R. R., Hetrick F. M. 1983. Characterization of plasmids in bacterial fish pathogens. Infection and Immunity. 39: 184 - 192.

236. Toranzo A.E., Barja I. L. 1993. Fry mortality syndrome (FMS) in Spain. Isolation of the causative bacterium Flexibacter psychrophilus // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 13 (1): 30-32.

237. Turnbull J. F. 1994. Bacterial gill disease and fin rot // In Bacterial Disease of Fish (Ed. by V. Inglich, Roberts @ N. R. Bromage). Oxford. Blackwell Scientific.: 40 57.

238. Waagld R„ Bjerkas E., Sveier H., Break 0., Bjornestad E., Maage A. 1996. Nutritional status assessed in groups of smolting atlantic salmon (Salmo salar L.) developing cataractes // J. Fish Diseases. 19 (5): 365 373.

239. Waagld R., Jletfe Y., Sandnes K., Hemre J. Y. 1994. Yntluence of dietary curlohy-drate on blood chemistry, immunity and disease resistance in Atlantic calmon (Salmo salar L.) // J. Fich Diseases. 17 (3): 245 258.

240. Wakabayashi H. 1991. Effect of environmental conditions on the infectivity of Flexibacter psychrophilus to fish // J. Fish Diseases. 14: 279 290.

241. Wakabayashi H. 1994. Columnare disease // In Bacterial Diseases of Fish (Ed. by V. Inglich, R. J. Roberts @ N. R. Bromage). Oxford, Blackwell Scientific: 23-39.

242. Wakabayashi H., Egysa S. 1980. Characteristics of Filamentous bacteria Isolated Gill Diseases of Salmonids // Can. J. Fish and Aguat. Sci. 37 (10): 1499 1504.

243. Wakabayashi H., Hikida M., Masumara R. 1984. Flexibacter infection in cultured marine Fish in Japan // Helgolander Meersuntersuchungen. 37: 587 593.

244. Wakabayashi H., Toyama M. 1993. A study on sepotiping of Cytophaga psychrophila isolated from fish in Japan, Europe and USA // Sixth. Internat. Confer. "Diseases of fish and shellfish". Brest. France.: 13.

245. Webb J. H., Hawkins A. D. 1989. The novements and spawning behaviour of adult salmon in the Girnock Burn, a tributary of the Aberdeenshire Dee, 1986 // Scott. Fish Res. Rept. 40: 1 -41.

246. Weis I. 1987. Uber das vorkommen einer kaltwasserkrankheit bei Regenbogenforel-len (Salmo gairdneri) // Tierarztl. Umschau. 42: 575 577.

247. Wiklung Т., Kaas K., Lonnstrom L., Dalsgaard I. 1994. Isolation of Cytophaga psychrophila (Flexibacter psychrophilus) from wild and farmed rainbow trout (Oncorhyn-chus mykiss) in Finland // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 14 (2): 44 46.

248. Wolke R. E. 1975. Pathology of bacterial and Fungal diseases affecting fish // In the Pathology of Fishes (Ed. by W. E. Ribelin, G. Midaki): 33 116.

249. Wood I. W. 1974. Diseases of pacific salmon their prevention and treatmen // State of Washington. Departament of Fisheries. Hatchery Division.: 22 24.

250. Wood I. W., Yasutake W. Т., 1956. Histopathology of fish. Peduncle (coldwater) disease // Progressive Fish-Culturist. 19: 58-61.

251. Лечебно-профилактические мероприятия при выращивании производителей и рыб ремонтной группы

252. Производители подвергаются ихтиопатологическому осмотру в преднерестовый и посленерестовый период. Если состояние ремонтно-маточного стада благополучно, количество обследованных особей составляет 5-10 экз.

253. Лечебно-профилактические мероприятия при инкубации икры

254. Лечебно-профилактические мероприятия при выращивании личинок, молоди и сеголеток

255. Лечебно профилактические мероприятия при выращивании годовиков

256. Лечебно-профилактические мероприятия при выращивании рыб, предназначенных для реализации (товар)

257. Профилактические мероприятия при эндопаразитарных заболеваниях

258. Лечебно-профилактические мероприятия при заболеваниях, связанных с качеством воды

259. Поскольку заболевания, связанные с качеством воды поражают разновозрастных рыб, целесообразно рассмотреть меры борьбы с ними в зависимости от условий выращивания.

260. Жаберное заболевание в холодноводных бассейновых хозяйствах как с ключевым, так и с поверхностным водоснабжением связано с органическим загрязнением.

261. Такие обработки необходимо использовать для ликвидации последствий токсического воздействия при сбросах в водоем органических и неорганических загрязнений в садковых хозяйствах, расположенных на сбросных каналах гидроэлектостан-ций.

262. Лечебно-профилактические мероприятия при выращивании новых объектов аквакультуры

263. Новые объекты аквакальтуры (ладожская палия, атлантический и каспийский лососи) еще недостаточно адаптированы к условиям индустриального хозяйства, в следсвие чего отличаются повышенной чувствительностью к ряду заболеваний.