Экотоксикологическая оценка водных экосистем с использованием биосенсоров на основе люминесцентных бактерий тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат наук Сазыкина, Марина Александровна

• Сазыкина, Марина Александровна
• кандидат наук
• 2014

Оглавление диссертации кандидат наук Сазыкина, Марина Александровна

Оглавление

ПЕРЕЧЕНЬ СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность исследования

Цель и задачи исследования

Научная новизна

Положения, выносимые на защиту

Теоретическая значимость работы

Практическая значимость работы

Апробация работы

Конкурсная поддержка работы

Личный вклад автора

Публикации

Объем и структура работы

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. Биосенсоры - современное состояние,

тенденции развития и использование в мониторинге

загрязнения.водных экосистем

1.1 Использование биосенсоров для детекции загрязнения природных

вод

1.2 Тенденции развития биосенсорных технологий

1.3 Биосенсоры на основе светящихся бактерий

1.3.1 Характеристика люцифераз

1.3.2 Основы методологии детекции токсических веществ при помощи бактериальных 1их-сенсоров

1.3.3 Эффект-специфичные 1их-штаммы (широкоспецифичные)

1.3.4 Вещество-специфичные штаммы (узкоспецифичные)

1.4 Общая характеристика родников г. Ростова-на-Дону

1.5 Характеристика загрязнения Нижнего Дона

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Материалы исследований

2.1.1 Бактериальные штаммы

2.1.2 Питательные среды

2.1.3 Химические вещества

2.1.4 Образцы воды, донных отложений, атмосферного воздуха, атмосферных осадков, почв, тканей животных и растений

2.2 Методы исследований

2.2.1 Выделение природных биолюминесцентных бактерий

2.2.2 Идентификация выделенных штаммов биолюминесцентных бактерий

2.2.2.1 Идентификация биолюминесцентных штаммов до рода

2.2.2.2 Идентификация биолюминесцентных бактерий до вида

2.2.3 Измерение биолюминесцентного «ответа» 1их-биосенсоров на действие индукторов - стандартных мутагенов и токсикантов

2.2.4 Измерение биолюминесцентного «ответа» суспензии 1их-биосенсоров различной плотности на действие индукторов -стандартных мутагенов и токсикантов

2.2.5 Измерение биолюминесцентного «ответа» 1их-биосенсоров на действие природных проб водных экосистем

2.2.6 Определение индекса токсичности

2.2.7 Определение индекса усиления люминесценции биосенсоров с индуцируемыми промоторами

2.2.8 Приготовление экстрактов проб донных отложений, воздушных фильтров, тканей животных и растений

2.2.9 Определение микробиологических показателей

2.2.10 Определение ПАУ

2.2.11 Определение ПХБ

2.2.12 Определение свинца, кадмия, цинка, меди, ванадия, хрома,

никеля, мышьяка и бария

2.2.13 Определение ртути

2.2.14 Определение нефтепродуктов

2.2.15 Статистическая обработка и достоверность результатов

3 ВЫДЕЛЕНИЕ ШТАММОВ БИОЛЮМИНЕСЦЕНТНЫХ БАКТЕРИЙ ИЗ ВОДЫ АЗОВСКОГО И ЧЕРНОГО МОРЕЙ, ИХ ИДЕНТИФИКАЦИЯ И ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ

К ДЕЙСТВИЮ ТОКСИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ

3.1 Побор питательных сред для светящихся бактерий и их выделение

из морской воды

3.2 Идентификация выделенных штаммов по диагностическим свойствам

3.2.1 Определение интенсивности биолюминесценции выделенных светящихся бактерий

3.2.2 Морфологические и биохимические свойства выделенных биолюминесцентных бактерий

3.3 Оценка чувствительности выделенных штаммов светящихся биолюминесцентных бактерий к действию токсических факторов химического происхождения

3.3.1 Оценка чувствительности биолюминесцентных штаммов, выделенных в 2006 г. из воды Азовского и Черного морей

3.3.2 Оценка чувствительности биолюминесцентных штаммов, выделенных в 2009 г. из воды Черного моря

3.3.3 Оценка токсичности донных отложений Азовского моря с помощью аборигенных биолюминесцентных бактерий

4 VIBRIO A Q UAMARINUS SP. NOV., ЛЮМИНЕСЦЕНТНАЯ БАКТЕРИЯ, ВЫДЕЛЕННАЯ ИЗ ВОДЫ ЧЕРНОГО МОРЯ

5 ПРИНЦИПЫ ФОРМИРОВАНИЯ БАТАРЕИ БАКТЕРИАЛЬНЫХ LUX-БИОСЕНСОРОВ, ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ

БИОСЕНСОРНЫХ ШТАММОВ К СТАНДАРТНЫМ КОНТРОЛЬНЫМ ВЕЩЕСТВАМ, ПОДБОР ОПТИМАЛЬНОЙ ПЛОТНОСТИ СУСПЕНЗИИ БИОЛЮМИНЕСЦЕНТНЫХ ШТАММОВ

5.1 Принципы формирования батареи бактериальных 1их-биосенсоров

5.2 Определение чувствительности биосенсорных штаммов к стандартным контрольным веществам, подбор оптимальной плотности суспензии биолюминесцентных штаммов

6 ЭКОТОКСИКОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА КАЧЕСТВА ВОДЫ РОДНИКОВ Г. РОСТОВА-НА-ДОНУ ПРИ ПОМОЩИ БИОЛЮМИНЕСЦЕНТНЫХ СЕНСОРОВ

6.1 Оценка экотоксикологических параметров воды родников г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров,

2009 г

6.2 Оценка экотоксикологических параметров воды родников г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров,

2010 г

6.3 Оценка экотоксикологических параметров воды родников г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров, октябрь 2011г

6.4 Исследование содержания приоритетных токсикантов

в воде родников г. Ростова-на-Дону, октябрь 2011 г

6.5 Исследование санитарно-микробиологических показателей в воде родников г. Ростова-на-Дону, октябрь-ноябрь 2011г

6.6 Оценка экотоксикологических параметров воды родников г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров, ноябрь 2011 г

6.7 Оценка экотоксикологических параметров воды родников

г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров, 2012 г

6.8 Исследование санитарно-микробиологических показателей в воде родников г. Ростова-на-Дону, март 2012 г

6.9 Итоги тестирования экотоксикологических параметров воды родников г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров в течение 2009-2012 гг

6.10 Сопоставление данных генетико-токсикологического анализа с содержанием различных ксенобиотиков в воде родников

г. Ростова-на-Дону при помощи корреляционного анализа

7 ОЦЕНКА ЭКОТОКСИКОЛОГИЧЕСКИХ ПАРАМЕТРОВ ДОННЫХ ОТЛОЖЕНИЙ НИЖНЕГО ДОНА ПРИ ПОМОЩИ БИОЛЮМИНЕСЦЕНТНЫХ СЕНСОРОВ (2001-2007, 2011 ГГ.)

7.1 Оценка генотоксичности донных отложений Нижнего Дона, 20012007, 2011 гг

7.2 Оценка экотоксикологических параметров донных отложений Нижнего Дона, 2011 г

7.3 Определение содержания приоритетных токсикантов в донных отложениях Нижнего Дона в октябре 2011 г

7.4 Сопоставление данных генетико-токсикологического анализа с содержанием различных ксенобиотиков в донных отложениях Нижнего Дона

8 ПЕРСПЕКТИВЫ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ШХ-БИОСЕНСОРОВ ДЛЯ ОЦЕНКИ ТОКСИЧНОСТИ РАЗЛИЧНЫХ КОМПОНЕНТОВ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ - ПОЧВЫ, ВОЗДУХА, ТКАНЕЙ ЖИВОТНЫХ И РАСТЕНИЙ

8.1 Исследование динамики загрязнения воздуха г. Ростова-на-Дону генотоксичными веществами с использованием биолюминесцентных сенсоров (2001 -2010 гг.)

8.2 Оценка качества атмосферных осадков г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров (2010-2011 гг.)

8.2.1 Исследование токсичности дождевой воды г. Ростова-на-Дону при помощи биолюминесцентных сенсоров (2010-2011 гг.)

8.2.2 Детекция токсичных веществ в пробах снежных осадков

г. Ростова-на-Дону (2010-2011 гг.)

8.3 Детекция токсичных веществ в представителях бриофлоры, лихенофлоры и микофлоры, отобранных в г. Ростове-на-Дону в 2009-2010 гг

8.4 Оценка токсичности почв городов Ростовской области при помощи бактериальных lux-бисенсоров (2010 г.)

8.5 Детекция токсичных веществ с помощью lux-биосенсоров в экстрактах печени скворцов обыкновенных (Sturnus vulgaris), отобранных в пос. Волочаевский Орловского района Ростовской

области в апреле 2010 г

ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Анализ принципов и перспектив применения батареи на основе бактериальных lux-сенсоров в сочетании с химическими аналитическими методами для оценки токсичности

водных экосистем

ВЫВОДЫ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ А. Сертификат Vibrio aquamarinus VKPM В-11245

ПРИЛОЖЕНИЕ Б. Сертификат Vibrio aquamarinus DSM 26054 346 ПРИЛОЖЕНИЕ В. Методические рекомендации. Оценка токсичности компонентов экосистем на основе использования

батареи бактериальных lux-биосенсоров

ПРИЛОЖЕНИЕ Г. Определения. Список основных терминов

Перечень сокращений и условных обозначений

АФК - активные формы кислорода

ВКПМ - Всероссийская коллекция промышленных микроорганизмов

ВМВ ПАУ - полиароматические углеводороды с высоким молекулярным весом

ДО - донные отложения

ДСН - додецил сульфат натрия

КОЕ - колониеобразующая единица

МДА - малоновый диальдегид

МПА - мясо-пептонный агар

НАДН - никотинамидадениндинуклеотид

НМВ ПАУ - полиароматические углеводороды с низким молекулярным весом

НП - нефтепродукты

ОКБ - общие колиформные бактерии

ОМЧ - общее число мезофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов

ПАВ - поверхностно-активные вещества ПАУ - полиароматические углеводороды ПДК - предельно допустимая концентрация ПХБ - полихлорированные бифенилы ФМН - флавинмононуклеотид

DSMZ - Немецкая коллекция микроорганизмов и клеточных культур

ЕС5о (effective concentration) - концентрация вещества, вызывающая 50 %-ое снижение

биолюминесценции бактериальной суспензии

LB - среда Луриа-Бертани

ММС - митомицин С

MNNG - Ы-метил-Ы'-нитро-Ы-нитрозогуанидин

NAD(P)H - никотинадениндинуклеотидфосфат восстановленный

NADH - никотинадениндинуклеотид восстановленный

SDS - додецил сульфат натрия

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Экотоксикологическая оценка водных экосистем с использованием биосенсоров на основе люминесцентных бактерий»

Введение

Актуальность исследования

В последнее десятилетие отмечено усиление антропогенной нагрузки на объекты окружающей среды, что выразилось ее значительным загрязнением токсичными соединениями (Anikiev et al., 2011). В водоемы планеты ежегодно попадает большое количество отходов, содержащих около 500 ООО веществ, многие из которых представляют разные классы токсичных поллютантов (Dickenson et al., 2011). Каждый год в мире производится более 50000 тонн фенолов и пентахлорфенолов, 40000 тонн монохлорфенолов, более 2 млн. тонн сульфонатов. Соответственно, высок и уровень загрязнения окружающей среды (Agency for Toxic Substances, 2008).

Развитие химической, медицинской, биохимической промышленности, нефтедобычи и нефтепереработки привело к появлению в водоемах всевозможных соединений. В их воде появляются углеводороды, в том числе канцерогенные; огромное количество разнообразных поверхностно-активных веществ; высокотоксичные тяжелые металлы; всевозможные сельскохозяйственные ядохимикаты, такие как гербициды, инсектициды, фунгициды. Многие пресноводные и соленые водоемы буквально переполнены токсичными соединениями (Lanceleur et al. 2011; Tchounwou et al., 2011).

В связи с загрязнением источников водоснабжения токсичными веществами антропогенного происхождения все большее значение приобретает проблема контроля качества природных вод как основы экологического благополучия (Vystavna et al., 2013). Задачу сведения к минимуму токсикологического риска можно решить только на основе получения всесторонней объективной информации о загрязнении. Поэтому интерес к мониторингу качества воды в последние годы значительно возрос. Данные по аккумуляции токсических веществ в водных экосистемах имеют определяющее значение для прогноза их развития и состояния биоресурсного потенциала ((Воловик, 2000, 2002; Корниенко и др., 1998; Корниенко

и др., 2000, 2002, 2008).

Также эта информация немаловажна в плане оценки появления возможных последствий для человека. В связи с этим систематическому контролю качества окружающей среды необходимо уделять особое внимание.

Традиционным подходом при проведении экологического мониторинга водной среды является использование методов химического анализа для оценки количественного содержания токсических веществ. Однако физико-химический анализ не учитывает их совокупного (интегрального) токсикологического эффекта на биологические объекты. Одним из перспективных направлений решения данной проблемы является применение биологических методов анализа. Только биота может дать оценку суммарного токсического действия загрязняющих веществ, которое является одной из главных причин негативных последствий антропогенного загрязнения окружающей среды. Токсическое влияние загрязняющих веществ на биоту гораздо показательней сравнения измеренных концентраций элементов и соединений с их предельно допустимыми концентрациями (ПДК) (Бакаева, 2006).

Биотестирование можно применять в различных областях: для проведения экологического мониторинга; с целью оценки степени токсичности сточных вод на очистных сооружениях биологического типа; при осуществлении экологической экспертизы технологий очистки, новых материалов, фармпрепаратов, пищевой продукции и пр. В связи с этим, указанные методы приобретают все большую популярность и внедряются повсеместно.

Главные достоинства биотестирования - простота и доступность приемов их постановки, высокая чувствительность тест-организмов к минимальным концентрациям токсических агентов, быстрота. Биотестирование более целесообразно и в экономическом плане, и в связи с этим часто предвосхищает ресурсоемкие химические исследования (Бакаева, 2011).

Для исследовательских целей в мире используется более сотни различных методов биотестирования, но для целей их практического применения перечень используемых методов значительно ограничен. Не существует универсальной тест-

системы, которая позволила бы обнаруживать все возможные токсиканты в равной степени надежно. Поэтому в настоящее время в практике экологического контроля применяются биотесты на токсичность с использованием различных организмов (Kahru et al., 2005), включая клеточные линии (Dragone et al., 2009) животных (Sims et al., 2009; Hermi et al., 2009) микроорганизмы (Sousa et al., 2009; Riedel et al., 2002). Интерпретация данных, полученных при помощи этих достаточно чувствительных тест-систем, осложняется их низкой специфичностью. В связи с этим проблема поиска новых, высокоэффективных методов биотестирования весьма актуальна.

Одним из наиболее перспективных методов является анализ с использованием биосенсоров (Daniel et al., 2008; Palchetti et al., 2008), в том числе на основе светящихся бактерий (Dawson et al., 2008; Woutersen et al., 2011; Ravikumar et al., 2012; Elad et al., 2011; Elad, Belkin, 2013; Xu et al, 2013; Zhang et al., 2013; Ma et al., 2014). Биолюминесцентные бактериальные сенсоры, в которых в качестве репортеров используются гены бактериальных люцифераз, могут занять ключевую роль в биотестировании качества окружающей среды.

Высокая чувствительность, экспрессность и экономичность биолюминесцентных тестов позволяют использовать их для первичного скрининга больших массивов природных образцов. В результате это дает возможность снизить количество анализируемых дорогостоящими методами проб и использовать возможности аналитической химии для исследования отобранных при помощи биолюминесцентных сенсоров наиболее токсичных образцов. Важным преимуществом биосенсоров является их экономичность, что открывает широкие возможности их использования в экологической токсикологии.

Такие тест-системы удобны для оценки загрязнения воды, воздуха и почвы органическими веществами, нитратами, тяжелыми металлами, металлоидами, сульфонатами, для определения общей токсичности, генотоксичности, присутствия в пробах прооксидантов (Olaniran et al., 2008, 2011; Shin, 2011; Song et al., 2009; Ahn et al., 2009; Niazi et al., 2008; Robinson et al., 2011).

В биолюминесцентном анализе токсичности, наряду с природными микроорганизмами, широко применяются генно-инженерные конструкции. Использование батарей 1их-биосенсоров даст возможность единовременно оценивать присутствие в экосистемах токсических веществ различной природы: ДНК-тропных соединений; веществ, вызывающих состояние окислительного стресса, тяжелых металлов и т.п. Кроме того, появляется возможность сделать предварительное заключение о механизме их действия. Так, если в одной пробе регистрируется активность, связанная с повреждением ДНК и активацией свободно-радикальных процессов, можно предположить, что генотоксичность связана с присутствием веществ, усиливающих окислительное повреждение ДНК.

Необходимо разработать концепцию использования биосенсоров на основе светящихся бактерий в мониторинге токсичности водных экосистем. Должны быть проанализированы основные принципы формирования батарей 1их-биосенсоров, максимально учтены преимущества и недостатки биолюминесцентного тестирования, рассмотрены способы повышения его эффективности и технологичности.

Внедрение светящихся бактерий в практику экологического мониторинга невозможно без анализа данных, полученных при их использовании для тестирования реальных природных проб.

Учитывая тот факт, что первоочередная проблема, которая возникает в результате антропогенного прессинга, - это проблема качества воды, особый интерес представляет контроль водных экосистем с использованием биосенсоров. И особого внимания заслуживает исследование водных объектов, имеющих большое значение для воспроизводства и использования водных биоресурсов.

К наиболее значительным водным объектам по объему и хозяйственной важности в Ростовской области относится р. Дон. Площадь Донского бассейна составляет 422 тыс. км . Вода р. Дон - основной источник питьевой воды населения Ростовской области.

Кроме донской воды, значительной ценностью обладает вода ростовских

родников. Многие города были основаны у источников питьевой воды - рек и родников, которые с течением времени превратились в неотъемлемую часть городского ландшафта. Городские водоемы, как правило, имеют традиционно высокое историческое и культурное значение, поэтому отношение к качеству их воды определяется не только экономическими мотивами.

Осуществление контроля водной экосистемы как р. Дон, так и городских водоемов, может быть основано на использовании преимуществ методов биотестирования, позволяющих быстро давать оценку интегральной токсичности вод.

Практическое использование тест-системы на основе батареи 1их-биосенсоров даст возможность проводить комплексную экспресс-оценку состояния водных экосистем, использовать полученные данные для идентификации вида и источника загрязнения, способствуя тем самым эффективности природоохранных мероприятий.

Цель и задачи исследования Цель работы: Разработать концепцию использования природных и генно-инженерных биосенсоров на основе светящихся бактерий в мониторинге токсичности водных экосистем и оценить экотоксикологические характеристики водоемов Азово-Донского бассейна с помощью сформированной батареи биолюминесцентных тестов.

Задачи исследования:

1. Разработать концепцию использования биолюминесцентных бактерий в мониторинге токсичности водных экосистем на основе анализа принципов и перспектив применения бактериальных 1их-сенсоров в сочетании с химическими аналитическими методами для оценки токсичности водных экосистем.

2. Сформировать батарею биолюминесцентных тестов и оптимизировать протоколы исследования с целью повышения чувствительности к токсикантам различной природы.

3. Выделить, идентифицировать биолюминесцентные бактерии из воды Черного и Азовского морей с целью отбора штаммов, наиболее чувствительных к действию различных токсикантов.

4. Определить таксономическое положение люминесцентного штамма VNB-15 на основе полифазного таксономического подхода, включающего морфологические, культуральные, физиологические, биохимические свойства, хемотаксономическую характеристику и филогенетический анализ.

5. Оценить токсичность воды родников г. Ростова-на-Дону с помощью репрезентативного набора биотестов. Сопоставить показатели токсичности, полученные с помощью lux-биосенсоров, и результаты химического анализа приоритетных поллютантов в родниках г. Ростова-на-Дону.

6. Оценить токсичность донных отложений участков Нижнего Дона с помощью репрезентативного набора биотестов. Сопоставить показатели токсичности, полученные с помощью lux-биосенсоров, и результаты химического анализа приоритетных поллютантов в донных отложениях Нижнего Дона.

Научная новизна

Разработана научная концепция использования биосенсоров на основе светящихся бактерий в мониторинге токсичности водных экосистем.

Впервые апробирована на приоритетных токсикантах и природных образцах воды родников г. Ростова-на-Дону и донных отложений Нижнего Дона батарея экспресс-тестов на основе светящихся бактерий, со временем ответа, не превышающим 2 часа, позволяющая определять интегральную токсичность, генотоксичность, прооксидантную активность, а также оценивать присутствие ртути и мышьяка, и веществ, вызывающих повреждение белков и мембран.

Выделен новый вид биолюминесцентных бактерий рода Vibrio из воды Черного моря. Штамму присвоено название Vibrio aquamarinus sp. nov. Штамм депонирован во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов {Vibrio aquamarinus VKPM В-11245) и в Немецкой Коллекции Микроорганизмов и

Клеточных Культур (Vibrio aquamarinus DSM 26054).

Три штамма биолюминесцентных бактерий, выделенных из воды Черного моря, предложены в качестве новых тест-культур для тестирования токсичности компонентов окружающей среды (Сазыкина, Цыбульский, 2008, 2009-6; Цыбульский, Сазыкина, 2010; Сазыкин и др., 2013).

Впервые получены результаты по токсичности, генотоксичности, проооксидантной активности, присутствию ртути и мышьяка и веществ, повреждающих белки и мембраны, в воде 23 родников г. Ростова-на-Дону в период с 2009 по 2012 гг. (Сазыкина и др., 2010-а, в; 2011-в; 2013-6).

Новизной отличаются исследования генотоксичности экстрактов донных отложений Нижнего Дона в разные сезоны 2003-2007 гг. и 2011 г. (Сазыкина и др., 2012-6). Впервые с помощью батареи биолюминесцентных тестов получены результаты по токсичности, проооксидантной активности, присутствию ртути и мышьяка, а также веществ, вызывающих повреждение белков и мембран, в донных отложениях Нижнего Дона в 2011 г. (Сазыкина и др., 2010-в).

Впервые в воде родников г. Ростова-на Дону (2011 г.) проведено определение содержания ряда приоритетных токсикантов: ртути, полиароматических углеводородов (ПАУ), индивидуальных конгенеров полихлорированных бифенилов (ПХБ). Показано наличие в пробах канцерогенных ПАУ.

Впервые проведено сопоставление показателей токсичности донных отложений р. Дон, полученных при помощи батареи биолюминесцентных тестов, с данными химического анализа по содержанию группы приоритетных токсикантов.

Впервые проведено сопоставление показателей токсичности и генотоксичности воды родников г. Ростова-на-Дону, полученных при помощи батареи биолюминесцентных тестов, с данными химического анализа по содержанию в воде группы приоритетных токсикантов.

Для выделения биолюминесцентных бактерий из морской воды разработаны две новые питательные среды, состав которых запатентован (Сазыкина и др., 2009-а, в).

Положения, выносимые на защиту

1. Использование батареи бактериальных lux-сенсоров перспективно для проведения комплексного экотоксикологического скрининга и позволяет отобрать для детального анализа другими методами пробы, загрязненные токсичными веществами. Исключение «чистых» проб из перечня анализируемых повышает эффективность проведения исследования.

2. Сформирован комплекс экспресс-тестов на основе биолюминесцентных бактерий, со временем ответа, не превышающим 2 часа, позволяющий определять интегральную токсичность, генотоксичность, прооксидантную активность в пробах водных экосистем, а также оценивать присутствие в них ртути, мышьяка и веществ, вызывающих повреждение белков и мембран. Оптимальная батарея биолюминесцентных тестов позволяет оценить спектр токсического действия загрязняющих веществ при проведении экологического мониторинга водных экосистем.

3. Три штамма биолюминесцентных бактерий, выделенных из воды Черного моря, обладают высокой чувствительностью к действию различных токсикантов и перспективны для исследования токсичности проб окружающей среды.

4. Биолюминесцентный штамм VNB-15, выделенный из воды Черного моря, отнесен к новому виду рода Vibrio на основании результатов полифазного таксономического подхода, включающего морфологические, культуральные, физиологические, биохимические свойства, хемотаксономическую характеристику и филогенетический анализ.

5. Загрязнение воды родников г. Ростова-на-Дону в 2009-2012 гг. токсичными веществами, в том числе способными повреждать генетический аппарат и вызывать прооксидантные эффекты, носит масштабный характер. Корреляционный анализ результатов, полученных с помощью биолюминесцентных сенсоров и показателей химического анализа, выявил участие полиароматических углеводородов в развитии прооксидантного эффекта и генотоксичности воды родников г. Ростова-на-Дону.

6. Для исследованных участков Нижнего Дона в 2003-2007 и 2011 гг. характерно стабильное загрязнение генотоксическими веществами. Корреляционный анализ результатов, полученных в 2011 г. с помощью биолюминесцентных сенсоров и показателей химического анализа, выявил, что источниками генотоксичности донных отложений Нижнего Дона служат нефтепродукты, отдельные ПАУ (фенантрен, флуорантен, пирен, хризен, бенз(к)флуорантен, бенз(а)пирен), ванадий, никель и ртуть.

Теоретическая значимость работы

Разработана научная концепция использования бактериальных lux-биосенсоров в мониторинге токсичности водных экосистем, позволяющая повысить его эффективность.

Исследование выделенного из воды Черного моря штамма биолюминесцентных бактерий Vibrio aquamarinus VKPM В-11245 (Vibrio aquamarinus DSM 26054), относящегося к новому виду в роде Vibrio, позволило расширить знания о разнообразии биолюминесцентных бактерий рода Vibrio. Штамм может быть использован в фундаментальных исследованиях.

Результаты мониторинга токсичности воды родников г. Ростова-на-Дону с 2009 по 2012 гг. свидетельствуют о системном характере загрязнения этих водоемов. Особую опасность несет загрязнение воды исследованных родников г. Ростова-на-Дону генотоксикантами. Выявленные факты являются основанием для разработки комплексной программы улучшения качества воды городских водоемов г. Ростова-на-Дону, неотъемлемой частью которой должно быть внедрение в практику системы биомониторинга токсичности. Определение количественных параметров загрязнения токсичными веществами родниковой воды позволит проводить направленный поиск источников загрязнения - предприятий, бытовых стоков, мусорных свалок, элементов городского хозяйства, которые несут основную ответственность за рост токсикологического прессинга городской среды.

Результаты мониторинга донных отложений Нижнего Дона в течение 2003-

2007 гг. и в 2011 г. позволили зарегистрировать периоды времени, на которые пришелся максимум загрязнения генотоксичными веществами. Выявлен хронический характер загрязнения генотоксикантами ряда исследованных районов.

Разработан проект методических рекомендаций «Оценка токсичности компонентов экосистем на основе использования батареи бактериальных lux-биосенсоров».

Материалы работы используются в лекциях на кафедре генетики Южного федерального университета в спецкурсах: «Экологическая генетика», «Экотоксикология», «Мутагены окружающей среды».

В результате проведенных исследований зарегистрированы 6 патентов на изобретения и 4 базы данных, которые используются при проведении экотоксикологического мониторинга окружающей среды.

Практическая значимость работы

Сформирована батарея экспресс-тестов на основе биолюминесцентных бактерий, со временем ответа, не превышающим 2 часа, позволяющая определять интегральную токсичность, генотоксичность, прооксидантную активность проб воды, а также оценивать присутствие в них ртути, мышьяка и веществ, вызывающих повреждение белков и мембран. Данный набор биолюминесцентных тест-систем может быть применен для решения широкого спектра экотоксикологических задач. В настоящее время батарея биолюминесцентных тестов используется для мониторинга токсичности воды, донных отложений и гидробионтов Азово-Донского бассейна, почвы, животных, растений, воздуха и атмосферных осадков Ростовской области, сточных вод г. Ростова-на-Дону и г. Мюнхена, а также для скрининга биологической активности природных и синтетических соединений.

Три выделенных из морской воды штамма биолюминесцентных бактерий (в частности, штамм Vibrio aquamarinus VKPM В-11245) обладают высокой чувствительностью к действию приоритетных токсикантов, что дает возможность их непосредственного применения в биотестировании токсичности водных

экосистем, а также использования /шг-оперонов данных микроорганизмов при дальнейшем конструировании бактериальных люминесцентных сенсоров.

Разработан состав двух новых питательных сред, использование которых позволяет выделить максимальное количество биолюминесцентных бактерий из морской воды.

Апробация работы

Результаты диссертации доложены на второй Международной научной конф. «Биотехнология - охране окружающей среды» (МГУ, 2004); Ш-й научно-практической конференции "Экологические проблемы. Взгляд в будущее" (4-7 сентября 2006 г., СОЛ «Лиманчик»); конференции грантодержателей регионального конкурса РФФИ и администрации Краснодарского края «ЮГ РОССИИ» «Вклад фундаментальных исследований в развитие современной инновационной экономики Краснодарского края» (г. Краснодар, 2006); конференции грантодержателей регионального конкурса Российского фонда фундаментальных исследований и администрации Краснодарского края «ЮГ РОССИИ» «Вклад фундаментальных исследований в развитие современной инновационной экономики Краснодарского края» (г. Краснодар, 2007); Международной конференции «Биоресурсы, биотехнологии, экологически безопасное развитие регионов юга России» (3-5 октября 2007 г., г. Астрахань); Международном Междисциплинарном Симпозиуме «От экспериментальной медицины к превентивной и интегративной медицине» (Судак - Крым, Украина, 19-30 сентября 2008 г.); Международной научной конференции «Современные основы формирования сырьевых ресурсов Азово-Черноморского бассейна в условиях изменения климата и антропогенного воздействия» (15-18 декабря 2008 г., г. Ростов-на-Дону); 4-й Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Экологические проблемы промышленных городов» (г. Саратов, 2009); III Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины», (г. Ростов-на-

Дону, 1—4 октября 2009 г.); Всероссийской конференции с элементами научной школы для молодежи «Экотоксикология-2009. Современные биоаналитические системы, методы и технологии» (26-30 октября 2009 г., Пущино-Тула); Международной конференции «Антропогенная трансформация природной среды» (18-21 октября 2010 г., г. Пермь); 4-й Международной телеконференции «Фундаментальные науки и практика» (г. Томск, 22 февраля^ марта, 2011); 5-й Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Экологические проблемы промышленных городов» (г. Саратов, 12-14 апреля 2011 г.); Семнадцатой Всероссийской научной конференции студентов-физиков и молодых ученых (25 марта-1 апреля 2011 г., г. Екатеринбург); IV Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины», г. Ростов-на-Дону, 22-25 сентября 2011 г.; Международной конференции «Биология - наука XXI века» (г. Москва, 24 мая 2012 г.); I Международном биологическом конгрессе Кыргызстана (24-26 сентября 2012 г., г. Бишкек), V Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины» (г. Ростов-на-Дону, 3-5 октября 2013 г.) и Ученых Советах НИИ биологии ЮФУ.

Конкурсная поддержка работы

Автор как исполнитель участвовала в работе по грантам, поддержанным РФФИ (№ 06-04-96803 «Разработка и апробация тест-системы оценки токсичности компонентов экосистем морских водоемов на основе биолюминесцентных аборигенных бактерий», № 08-04-99108-р_офи «Разработка и апробация тест-системы оценки токсичности компонентов экосистем морских водоемов на основе флуориметрии аборигенных микроводорослей»), по гранту Президента РФ для поддержки ведущих научных школ (НШ-2449.2014.4). В качестве руководителя автор принимала участие в работе по грантам, поддержанным Министерством образования и науки РФ в рамках АВЦП (№ 2.1.1/5028 «Мониторинг загрязнения окружающей среды при помощи бактериальных 1их-биосенсоров»); в рамках ФЦП

(№ 14. Al 8.21.0851 «Исследование экотоксикологических параметров и бактериального загрязнения сточных вод г. Ростова-на-Дону и г. Мюнхена»); по проекту 4.5835.2011 «Исследование механизмов действия негативных антропогенных и экстремальных факторов среды с помощью клеточных биосенсоров»; по проекту, выполняемому в рамках проектной части внутреннего гранта ЮФУ № 213.01.-07.2014/12ПЧВГ «Мониторинг и изучение влияния поллютантов, провоцирующих возникновение и передачу бактериальных детерминант резистентности, в биотопах Азово-Черноморского бассейна, подверженных антропогенному прессингу».

Личный вклад автора

Основу диссертации составляют данные, полученные автором в 2003-2012 гг. Автор принимала личное участие на всех этапах работы, а именно: формулировка проблемы, постановка целей и задач, планирование и проведение экспериментов. По результатам исследований автором или научным коллективом с участием автора опубликованы научные работы, где проанализированы и определены основные результаты диссертации.

Публикации

По теме диссертации опубликовано 102 работы, из которых 30 - в изданиях, рекомендованных ВАК РФ (среди них 10 - в базе данных «Scopus», 9 - в базе данных «Web of Science»), 2 монографии, 1 глава в коллективной монографии, 6 патентов на изобретение, 4 базы данных.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 358 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов исследования, обсуждения полученных результатов, выводов и списка использованной литературы, включающего 134 источника отечественных и 318 зарубежных авторов.

Глава 1 Обзор литературы Биосенсоры - современное состояние, тенденции развития и использование в мониторинге загрязнения водных экосистем

1.1 Использование биосенсоров для детекции загрязнения природных вод

Экспресс-оценка загрязнения объектов окружающей среды является необходимым компонентом экологического контроля. Важная роль в решении задач экологического мониторинга отводится разработке простых в применении, недорогих, высокочувствительных и специфичных методов обнаружения ксенобиотиков. Последнее десятилетие отмечено интенсивным изучением аналитических возможностей и практическим применением биосенсорных систем (Salgado et al., 2011; Somerset, 2011).

Биосенсорами называются устройства, в которых чувствительный биологический элемент (ферменты, клетки, антитела и др.) тесно связан с преобразователем (физический датчик) его реакции на специфическое внешнее воздействие (химическое или физическое) в удобный для регистрации и обработки сигнал (Тернер, 1992). В данном определении биосенсор задается структурно (биологический материал и преобразователь) и функционально (измерение концентрации соединения). Это соответствует сути и назначению биосенсора. В конечном итоге биосенсор - аналитический прибор (Решетилов, Безбородов, 2008).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Сазыкина, Марина Александровна, 2014 год

Список использованной литературы

1 Аллисон А., Палмер Д. Геология. - М.: Мир, 1984. - С 226-227.

2 Воловик С.П. Проблемы рыбного хозяйства Азово-Черноморского бассейна как составная часть комплексного управления прибрежными зонами // Основные проблемы рыбного хозяйства и охраны рыбохозяйственных водоемов Азово-Черноморского бассейна: Сб. науч. тр. (1998 - 1999) / Под ред. Э.В. Макарова. -Ростов-на-Дону: БКИ, 2000. - С. 5-20.

3 Воловик С.П. Структура рыбохозяйственной отрасли // Природные условия и естественные ресурсы Ростовской области: Коллектив авторов. - Ростов-на-Дону: ООО «Батайское книжное издательство», 2002. - С. 323 - 335.

4 Бакаева E.H., Игнатова H.A. Динамика токсичности вод и донных отложений водного объекта рекреации // Современные проблемы науки и образования. -2011. - № 6. - С. 243-243.

5 Бакаева E.H., Никаноров A.M. Гидробионты в оценке токсичности вод суши. — М.: Наука, 2006. — 257 с.

6 Белявский Г.О., Бутченко Л.И., Навроцкий В.М. Основы экологии: теория и практика. - Киев: Либра, 2002. - 357 с.

7 Бова A.A., Горохов С.С. Военная токсикология т токсикология экстремальных ситуаций. Минск: Белорусский гос. Мед. Ун-т. 2005. - 661 с.

8 Бутов П.И. Гидрологические исследования в окрестностях г. Ростова-на-Дону. - 1913. - 120 с.

9 Вайнерт Э., Вальтер Р., Ветцель Т., Егер Э., Клаустнитцер Б. Биоиндикация загрязнений наземных экосистем / Под ред. Р. Шуберта; пер. с нем. -М.: Мир. - 1988.-348 с.

10 Гительзон И.И., Родичева Э.К., Медведева С.Е. и др. Светящиеся бактерии // Новосибирск: Наука. 1984. - 279 с.

11 ГН 2.1.5.1315-03. Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в воде водных объектов хозяйственно—питьевого и культурно-

бытового водопользования. - М.: Минздрав России, 2003. - 74 с.

12 ГН 2.1.6.1338-03 "Предельно допустимые концентрации (ПДК) загрязняющих веществ в атмосферном воздухе населенных мест".

13 ГН 2.1.7.2041-06. Гигиенические нормативы. Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в почве.

14 ГН 2.1.7.2511-09. Ориентировочно допустимые концентрации (ОДК) химических веществ в почве

15 Голдовская Л.Ф. Химия окружающей среды. - М.: Мир, 2007. - 368 с.

16 ГОСТ 17.1.1.01-77. Охрана природы. Гидросфера. Использование и охрана вод. Основные термины и определения.

17 ГОСТ 17.4.3.01-83. Охрана природы. Почвы. Общие требования к отбору

проб.

18 ГОСТ 17.4.4.02-84. Охрана природы. Почвы. Методы отбора и подготовки проб почвы для химического, бактериологического и гельминтологического анализа.

19 ГОСТ Р 17.0.0.6-2000. Охрана природы. Экологический паспорт природопользователя. —Введ. 01.07.2001. —М.: Госстандарт России, 2001.

20 ГОСТ Р 51446-99 (ИС07218-96). Продукты пищевые. Общие правила микробиологических исследований.

21 ГОСТ Р 52426-2005. Вода питьевая. Обнаружение и количественный учет Escherichia coli и колиформных бактерий. Часть 1. Метод мембранной фильтрации

22 Государственный доклад "О состоянии окружающей природной среды Ростовской области в 1998 году" / Под ред. Литвинова В.А., Агеева В.Н., Парашенко В.М.. - Ростов-на-Дону. «АУФ», 1999. - 274 с.

23 Государственный доклад "О состоянии окружающей природной среды Ростовской области в 2000 году" / Под ред. Водолацкого В.П., Ульянова П.П., Паращенко М.В. - Ростов-на-Дону: Ростоблкомприрода, 2001. - 258 с.

24 Государственный доклад "О состоянии окружающей среды Ростовской области в 2004 году" / Экологическая газета Дона. - Ростов-на-Дону, 2005. - № 4. -36 с.

25 Государственный доклад «О состоянии и об охране окружающей среды

Российской Федерации в 2011 г.» 2012 г. 316 с. (http://www.mnr.gov.ru/regulatory/detail.php?ID= 130175) (Государственный доклад, 2011).

26 Данилов B.C., Зарубина А.П., Ерошников Г.Е., Сенсорные биолюминесцентные системы на основе lux-оперонов разных видов люминесцентных бактерий // Вестн. МГУ. Сер. 16, Биология. - 2002. - № 3. - С. 2024.

27 Дерябин Д.Г. Бактериальная биолюминесценция: фундаментальные и прикладные аспекты. - М.: Наука, 2009. - 246 с.

28 Дехта В.А., Кузина В.Ф., Корниенко Г.Г., Шишкина И.В. Эколого-генетические исследования основных компонентов экосистемы Азово-Донского бассейна // Основ, проблемы рыбн. хоз-ва и охраны рыбохоз. водоемов Азово-Черноморского бассейна: Сб. науч. тр. (1998 - 1999 гг.) / Под ред. Э.В. Макарова. -Ростов н/Д: БКИ, 2000. - С. 154-159.

29 Дьяченко В.Ф., Клисенко М.А., Кофанов В.И. Полихлорированные бифенилы в водной среде и их биологическая опасность // Гидробиологический журнал. - 1976. - Т. 12, № 4. - С. 180-208.

30 Евгеньев М.И. Тест-методы и экология // Сорос. Образов. Журн. - 1999. -№ 11. - С. 29-34.

31 Завильгельский Г.Б., Зарубина А.П., Манухов И.В. Определение и сравнительный анализ нуклеотидной последовательности lux-оперона Photorhabdus luminescens штамм ZM1. ERIC элементы как предполагаемые «горячие» точки рекомбинации // Молекулярная биология. - 2002. - Т. 36. - № 5. - С. 792-804.

32 Зарубина А.П., Маркелова С.И., Юдина Т.П., Ерошников Г.Е., Соловьева JI.H., Данилов B.C. Автоматизированный мониторинг загрязнения водной среды с использованием биосенсора «Эколюм»// Международная науч. гонф. «Новые технологии в защите биоразнообразия в водных экосистемах» (Москва, 27-29 мая, 2002) - М., 2002.- С. 30.

33 Кацев А. М. Некоторые характеристики Черноморских светящихся бактерий и их прикладное значение // Прикл.биохимия и микробиология. - 2002. -

№2-С. 189-192.

34 Кацев А. М., Макемсон Дж. Идентификация светящихся бактерий, выделенных из Черного и Азовского морей // Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского. Серия Биология, химия». -2006. - Т. 19(58).-№ 4.-С. 111-116.

35 Кейльгак. Подземные воды и источники (перев. с нем. под ред. В. П. Отоцкого) // Изд. журн. «Почвоведение», 1914.

36 КНД 211.1.4.060-97. Визначення токсичност1 води на бактер1ях Photobacterium phosphoreum (Cohn) Ford. - 21.05.1997.

37 Корниенко Г.Г. Оценка изменений функционального состояния рыб Азово-Черноморского бассейна // Тез. докл. Межд. конф. «Новые технологии в защите биоразнообразия в водных экосистемах». - М.: МАКС Пресс, 2002. - С. 37.

38 Корниенко Г.Г., Бойко Н.Е., Сергеева С.Г., Дехта В.А., Ложичевская Т., Колесникова Л.В. Основные направления физиолого-биохимических и генетических исследований ихтиофауны Азово-Черноморского бассейна // Вопросы рыболовства. 2008. Т. 9. № 4-36. С. 847-860.

39 Корниенко Г.Г., Дехта В.А., Кузина В.Ф., Шишкина И.В. Эколого-генетический мониторинг загрязнения акваторий Азово-Донского бассейна // Геоэкономические исследования и охрана недр: Инф. сб. - М.: ЗАО «Геоинформмарк», 2001. - вып. 4. - С. 3-9.

40 Корниенко Г.Г., Кожин A.A., Воловик С.П., Макаров Э.В. Экологические аспекты биологии репродукции. - Ростов-на-Дону: Эверест, 1998.- С. 39-136.

41 Корниенко Г.Г., Сапожников В.М., Колесникова Л.В. Биохимический мониторинг антропогенного загрязнения и репродуктивные качества азовских осетровых рыб в современный период // Тез. докл. Межд. конф. «Осетровые на рубеже XXI века», изд. КаспНИРХ, 2000. - С. 141-142.

42 Кратасюк В.А., Кузнецов A.M., Родичева Э.К., Егорова О.И., Абакумова В.В., Грибовская И.В., Калачева Г.С. Проблемы и перспективы биолюминесцентного тестирования в экологическом мониторинге // Сиб. экол. ж. - 1996. - Т. 3. - № 5. - С. 397-403.

43 Кузнецов A.M., Медведева С.Е., Родичева Э.К.. Использование генетически модифицированного светящегося штамма Escherichia coli в биотестировании // Проблемы окружающей среды и природных ресурсов. - 2000. -№ 10. - С. 67-73.

44 Кузнецов A.M., Родичева Э.К., Шилова Е. Биотест на основе лиофилизированных светящихся бактерий // Биотехнология. - 1996. - № 9. - С. 57-61.

45 Лакин Г.Ф. Биометрия. - М.: Высшая школа, 1990. - 352 с.

46 Линник П.Н. Влияние различных факторов на десорбцию металлов из донных отложений в условиях экспериментального моделирования // Гидробиол. Журн. - 2006. - Т. 42, № 3. - С. 97-113.

47 Лобанов А.В., Шувалова Ю.В., Зырина Н.В., Китова А.Е., Макаренко А.А., Кувичкина Т.Н., Фесай А.П., Решетилов А.Н. Биосенсоры для экологического контроля // Экологические системы и приборы. - 2001. - № 6. - С. 7276.

48 Лозановская И.Н., Орлов Д.С., Садовникова Л.К. Экология и охрана биосферы при химическом загрязнении. - М.: Высшая школа, 1998. - 287 с.

49 Люблина Е.И., Дворкин Э.А. // Гигиеническая токсикология металлов. М. 1983. С. 114.

50 Малыгина В. Ю., Кацев А. М. Светящиеся бактерии Черного и Азовского морей // Экология моря - 2003. - Т. В. 64. - С. 18-23.

51 Манухов И.В., Дужий Д.Е., Завильгельский Г.Б. Клонирование генов luxA и luxB Vibrio harveyi и экспрессия биолюминесценции в клетках Escherichia coli и Bacillus subtilis II Биотехнология (Biotekhnologia). - 1996. - № 1. - С. 1-6.

52 Манухов И.В., Котова В.Ю., Мальдов Д.Г., Ильичев А.В., Бельков А.П., Завильгельский Г.Б. Индукция окислительного стресса и SOS-ответа в бактериях Escherichia coli растительными экстрактами- Р. роль гидроперекисей и эффект синергизма при совместном действии с цисплатиной // Микробиология. - 2008. - Т. 77.-№5. - С. 590-597.

53 Методические указания МУК 4.2.1018-01. Санитарно-микробиологический анализ питьевой воды. М.: Минздрав России, 2001. 24 с.

54 Методы общей бактериологии: В 3 т. / Под ред. Герхардта Ф. - М.: Мир,

1984. Т. 2.-470 с.

55 МР 01.019-07 Определение интегральной токсичности почв с помощью биотеста "Эколюм". Утв. 15 июня 2007 г.

56 МР 01.021-07 Методика экспрессного определения интегральной химической токсичности питьевых, поверхностных, грунтовых, сточных и очищенных сточных вод с помощью бактериального теста "Эколюм". Утв. 15 июня 2007 г.

57 Надеин А. Ф., Тарханов С. Н., Лобанова О. А. Сравнительная оценка эпифитных лишайников и мхов как биоиндикаторов аэротехногенного загрязнения / // Экология северных территорий России. Проблемы, прогноз ситуации, пути развития, решения: Международная конференция, Архангельск Материалы конференции. — Архангельск, 2002. — Т.1 , 17-22 июня, 2002. — С. 699—703.

58 Назаренко О.В. Геоэкологическое исследование родников г. Ростова-на-Дону в историческом аспекте // Историческая география, геоэкология и природопользование: новые направления и методы исследования: Мат. Межд. науч. конф. - Санкт-Петербург, 2002-а. - С. 104-105. [Электронный ресурс] / О.В. Назаренко, 2002. URL http://rspring.narod.ru/Published/p_21.html (дата обращения 01.07.2012)).

59 Назаренко О.В. Геоэкологическое состояние родников Ростова-на-Дону // Геоэкология. Инженерная геология. Гидрогеология. Геокриология. 2002 -б. - № 4. -С. 347-352.

60 Назаренко О.В. Значение родников в оздоровлении населения г. Ростова-на-Дону // Биометеорология Человека: Мат. Межд. конгресса. - Санкт-Петербург, сентябрь, 2000. - С. 97-98.

61 Назаренко О.В. Методы оценки состояния окружающей природной среды городских агломераций по данным о родниках // Школа экологической геологии и рационального недропользования: Мат. второй межвуз. молод, науч. конф. - Санкт-Петербург, 2001. - С.225-227.

62 Назаренко О.В. Оценка ландшафтной ценности родников. Россия на пороге нового тысячелетия: проблемы, тенденции, модели [Электронный ресурс] /

O.B. Назаренко, 2000-6. URL http://rspring.narod.ru/Published/p_8.html (дата обращения 08.07.2012).

63 Назаренко O.B. Родники и их реакреационная ценность // Рекреационная география и география туризма. - 2002-в. - Т. 1. - С. 80-85.

64 Несчисляев В.А., Арчакова Е.Г., Моховикова В.Б., Белова И.В. разработка питательных сред для производства пробиотических препаратов // Фундаментальные исследования. - 2007. - № 12 - С. 349.

65 Никашина A.A., Пурыгин П.П., Решетилов А.Н., Ильясов, П.В. Использование биосенсоров на основе микроорганизмов-деструкторов для детекции нефтепродуктов. Известия высших учебных заведений // Химия и химическая технология. - 2010. - Т. 53. - № 1. - С. 125-127.

66 Нормативы качества воды водных объектов рыбохозяйственного значения, в том числе нормативы предельно допустимых концентраций вредных веществ в водах водных объектов рыбохозяйственного значения". - Утв. Приказом Росрыболовства от 18.01.2010. № 20. - 214 с.

67 Нормы и критерии оценки загрязненности донных отложений в водных объектах Санкт-Петербурга региональный норматив. Утверждено 17.06.1996

68 О сохранении, обустройстве и использовании природных родников на территории города Москвы. Постановление Правительства Москвы. 30 мая 2000 г. № 399-1111. Электронный ресурс: http://novostroy.ru/law/direct.php?num=5355&id=23&sort=date2 &type=mos

69 Оксиюк О.П., Жукинский В.Н. и др. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши // Гидробиологический журнал, 1993. - Т. 29, вып. 4. - С. 62-76.

70 Омельченко Г.В., Кхатаб З.С., Шерстнев А.К., Сазыкина М.А., Вардуни Т.В., Шиманская Е.И. Оценка генотоксичности окружающей среды г. Ростова-на-Дону и Ростовской области с использованием растительных и бактериальных тест-систем. Экология урбанизированных территорий // 2011. - № 3. - С. 94-101.

71 Определитель бактерий Берджи. Т. 1,2/ Под ред. Дж.. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, С. Уильямса. - М.: Мир, 1997. - 800 с.

72 Петров С.Н., Калач A.B., Мещерякова O.J1. О микробных биосенсорах для экспресс-определения БПК сточных вод мясокомбинатов // Сорбционные и хроматографические процессы. - 2008. - Т. 8. - С. 1008-1012.

73 Приваленко В.В., Безуглова О.С. Экологические проблемы антропогенных ландшафтов Ростовсой области //Т. 1. Экология города Ростова-на-Дону. - РнД.: СКНЦ ВШ, 2003 г. - 286 с.

74 Птицын JI.P. Биолюминесцентный анализ SOS-ответа клеток Е. coli II Генетика. 1996. Т. 32. №3. С. 354-358.

75 Расторгуев С.М., Завильгельский Г.Б. Lux-биосенсор для детекции ионов мышьяка // Биотехнология. - 2001. - № 2. - С. 77-82.

76 РД 15-226-91 «МВИ концентрации общей ртути в донных отложениях методом беспламенной атомной абсорбции».

77 РД 52.24.479-2008 «МВИ массовой концентрации ртути в водах методом атомной абсорбции в холодном паре».

78 Региональный норматив "Предельно допустимый уровень (ПДУ) содержания нефти и нефтепродуктов в донных отложениях поверхностных водных объектов на территории Ханты-Мансийского автономного округа - Югры" (Постановление от 10 ноября 2004 годаЫ 441-п г. Ханты-Мансийск)

79 Решение коллегии администрации г. Ростова н/Д от 06.02.97 № 2 о программе «Родники г. Ростова-на-Дону». Электронный ресурс: http://www.bestpravo.ru/rostov/data06/ tex20470.htm.

80 Решетилов А. Н., Безбородов А. М. Нанобиотехнология и биосенсорные исследования // Прикладная биохимия и микробиология. - 2008. - Т. 44. - № 1. -С. 3-8.

81 Ровинский Ф.Я., Теплицкая Т.А., Алексеева Т.А. Фоновый мониторинг полициклических ароматических углеводородов. - Ленинград: Гидрометеоиздат, 1988.-224. С.

82 Родина А.Г. Методы водной микробиологии. - М.: Наука, 1965. - 363 с.

83 Сазыкина М. А., Чистяков В. А., Сазыкин И.С., Лагутова Л. П., Новикова Е. М., Латышев A.B. Использование бактериального lux-биосенсора для детекции

загрязнения природных вод ртутью // Вода: Химия и Экология. - 2010-а. - № 5. - С. 24-29.

84 Сазыкина М.А. Генотоксичность донных отложений реки Дон и Азовского моря // Известия вузов. Северо-Кавказский регион. - 2003. - № 3. - С. 7880.

85 Сазыкина М.А. Программный комплекс «База данных по бактериальным lux-биосенсорам»: свидетельство о регистрации электронного ресурса № 16198 / Сазыкина М.А., Сазыкин И.С., Чистяков В.А., Празднова Е.В., Севрюков A.B., Денисенко Ю.В. № 50201001549; заявл. 23.09.2010-6; выдано 04.10.2010-6.

86 Сазыкина М.А. Программный комплекс «База данных по токсичности воды, донных отложений и гидробионтов водоемов Азовского бассейна: свидетельство о регистрации электронного ресурса № 16273 / Сазыкина М.А., Сазыкин И.С., Чистяков В.А., Празднова Е.В., Севрюков A.B., Денисенко Ю.В. № 50201050037; заявл. 04.10.2010; выдано 14.10.2010-в.

87 Сазыкина М.А. Программный комплекс «База данных по токсичности воздуха и атмосферных осадков г. Ростова-на-Дону», свидетельство о регистрации электронного ресурса № 17602 / Сазыкина М.А., Сазыкин И.С., Чистяков В.А., Новикова Е.М., Денисенко Ю.В. № 50201151454; заявл. 18.11.2011; выдано 21.11.2011-а.

88 Сазыкина М.А. Программный комплекс «База данных по токсичности почвы, животных и растений экосистем Ростовской области»: свидетельство о регистрации электронного ресурса № 16353 / Сазыкина М.А., Сазыкин И.С., Чистяков В.А., Празднова Е.В., ОСеврюков A.B., Денисенко Ю.В. № 50201050106; заявл. 29.10.2010; выдано 10.11.2010-г.

89 Сазыкина М.А., Кудеевская Е.М., Костина Н.В., Сазыкин И.С., Хмелевцова JI.E., Хаммами И.Х. Исследование динамики загрязнения воздуха г. Ростова-на-Дону генотоксичными веществами с использованием биолюминесцентных сенсоров // Валеология. - 2013-а. - № 3. - С. 21-25

90 Сазыкина М.А., Кхатаб З.С., Новикова Е.М., Сазыкин И.С. Оценка качества воды родников г. Ростова-на-Дону на основе микробиологических и

токсикологических показателей // Вода: Химия и Экология. - 2013-6. - № 1.- С. 102107.

91 Сазыкина М.А., Новикова Е.М., Кхатаб З.С., Чистяков В.А., Сазыкин И.С. Токсичность почв городов Ростовской области // Теоретическая и прикладная экология. - 2012-а. - № 2.- С. 76-81.

92 Сазыкина М.А., Цыбульский И.Е, Абросимова К.С. Способ выделения биолюминесцентных бактерий. Пат.2358009. Российская Федерация, МПК C12N 1/20, C12Q 1/04 / заявитель и патентообладатель Федеральное Государственное унитарное предприятие Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства. - 2007114379/13, заявл. 16.04.2007; опубл. 10.06.2009-а, Бюл. № 16.- 7 с : таблица1.

93 Сазыкина М.А., Цыбульский И.Е. Штамм бактерий Vibrio fischery, используемый в качестве тест-культуры для определения токсичности объектов окружающей среды. Пат. 2342434. Российская Федерация, МПК C12Q1/02, C12R1/63 /; заявитель и патентообладатель Федеральное Государственное унитарное предприятие Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства. - № 2007125181/13; заявл.03.07.2007; опубл. 27.12.2008, Бюл. № 36.- 7 с. : таблица 4.

94 Сазыкина М.А., Цыбульский И.Е. Штамм бактерий Vibrio fischery, используемый в качестве тест-культуры для определения токсичности объектов окружающей среды. Пат. 2346035. Российская Федерация, МПК C12N1/20, C12R1/01; заявитель и патентообладатель Федеральное Государственное унитарное предприятие Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства. - № 2007130940/13; заявл. 13.08.2007 ; опубл. 10.02.2009-6, Бюл. № 4.- 7 с. : таблица4.

95 Сазыкина М.А., Цыбульский И.Е., Абросимова К.С. Питательная среда для выращивания биолюминесцентных бактерий. Пат.2368658. Российская Федерация, МПК C12N 1/20, C12Q 1/04 / заявитель и патентообладатель Федеральное Государственное унитарное предприятие Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства.-2007114380/13, заявл. 16.04.2007; опубл. 27.09.2009-в, Бюл. № 27.- 6 е.: таблица 1.

96 Сазыкина М.А., Чистяков В.А. Мониторинг генотоксичности водной

среды: Азово-Донской бассейн: Монография / Сазыкина М.А., В.А. Чистяков.-Ростов н/Д: Изд-во ЮФУ, 2009-г. - 183 с.

97 Сазыкина М.А., Чистяков В.А., Воинова Н.В. Способ определения генотоксичности химических веществ. Пат. 2179581. Российская Федерация, МПК C12Q1/02, C12Q1/66; заявитель и патентообладатель Государственное унитарное предприятие Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства. - № 2000118945/13; заявл. 17.07.2000; опубл. 20.02.2002, Бюл. №. 5 - 5 с.: таблица 2.

98 Сазыкина М.А., Чистяков В.А., Сазыкин И.С. Генотоксичность водной среды. Генотоксиканты в экосистемах бассейна р. Дон и Азовского моря Монография / Сазыкина М.А., Чистяков В.А., Сазыкин И.С.- LAP LAMBERT Academic Publishing GmbH & Co. КД 2011-6. - p. 188.

99 Сазыкина M.A., Чистяков B.A., Сазыкин И.С. Генотоксичность донных отложений р. Дон (2001-2007 гг.) // Водные ресурсы. - 2012-6. - Т. 39, № 1. - С. 9298.

100 Сазыкина М.А., Чистяков В.А., Сазыкин И.С., Новикова Е.М., Кхатаб З.С., Лагутова Л.П., Латышев А.В. Генотоксичность воды родников г. Ростова-на-Дону (2009 г.) // Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Естественные науки. — 2011-в. - № 2. - С. - 44-46.

101 Сазыкин И.С. Положительное решение от 12.12.2013 по заявке № 2012148361 на выдачу патента на изобретение «Штамм Vibrio aquamarinus, способ определения токсичности проб с его помощью и тест-культура для определения токсичности проб» / Сазыкин И.С., Сазыкина М.А., Кудеевская Е.М., Сазыкина М.И.; заявитель и патентообладатель Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Южный федеральный университет". Заявл. 13.11.2012.

102 СанПиН 2.1.4.1074-01. Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества. М.: Минздрав России, 2002. 62 с.

103 СанПиН 2.1,4.1175—02. Гигиенические требования к качеству воды нецентрализованного водоснабжения. Санитарная охрана источников. М.: Минздрав

России, 2003.15 с.

104 Семенов А.Д., Коропенко Е.О. Динамика пестицидного загрязнения Нижнего Дона // Тез. докл. Межд. конф. «Новые технологии в защите биоразнообразия в водных экосистемах». М.: МАКС Пресс, 2002. - С. 215.

105 Семенов А.Д., Короткова Л.И., Сапожникова Е.В., Коропенко Е.О. Современное состояние пестицидного загрязнения водных объектов Азовского бассейна // Основные проблемы рыбного хозяйства и охраны рыбохозяйственных водоемов Азово-Черноморского бассейна: Сб. науч. тр. (1998-1999гг.) / Под редакцией Э.В.Макарова. - Ростов-на-Дону: БКИ, 2000. - С. 301-306.

106 СП 1.3.2322-08 Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней

107 Тернер Э., Карубе И., Уилсон Дж. Биосенсоры: основы и приложения. -М.: Мир, 1992. - 674 с.

108 Туманов А. А., Глухоев М. Н., Субботина Г. М. Ответные реакции микроорганизмов на изменение химического состава среды и трансформация их в аналитический сигнал // Журнал аналитической химии. - 1998. - № 12. - С. 1252 -1260.

109 ФР. 1.31.2005.01511 МВИ массовой концентрации нефтепродуктов в пробах природных (пресных и морских) и очищенных сточных и питьевых вод.

110 ФР.1.31.2005.01512 МВИ массовой доли нефтепродуктов в пробах почв и донных отложений пресноводных и морских водоёмах.

111 ФР.1.31.2005.01514 «МВИ измерений массовых концентраций алюминия, железа, кадмия, кобальта, марганца, меди, мышьяка, никеля, свинца, серебра, стронция, сурьмы, таллия, хрома и цинка в пробах природных (пресных и морских) и очищенных сточных вод методом атомной абсорбции с электротермической атомизацией».

112 ФР.1.31.2007.03104 «МВИ массовой доли кадмия в пробах донных отложений и почв методом атомной абсорбции с электротермической атомизацией».

113 ФР.1.31.2006.02634 «МВИ массовых долей алюминия, бария, ванадия, железа, кобальта, магния, марганца, меди, мышьяка, никеля, свинца, стронция,

титана, хрома, цинка и серы общей в пробах донных отложений и почв методом рентгенфлуоресцентного анализа».

114 ФР. 1.31.2007.03207 «МВИ массовых долей смесевых препаратов полихлобифенилов в пробах почв и донных отложений пресных и морских водных объектов методом газожидкостной хроматографии».

115 ФР. 1.31.2007.03548 «МВИ массовой доли полициклических ароматических углеводородов в пробах почв и донных отложений пресных и морских водных объектов».

116 ФР. 1.31.2007.03947 «МВИ массовой концентрации полициклических ароматических углеводородов в пробах природных (пресных и морских) и очищенных сточных вод методом высокоэффективной жидкостной хроматографии»

117 ФР. 1.31.2011.10538 «МВИ массовых концентраций индивидуальных конгенеров полихлорбифенилов в пробах природных (пресных и морских), питьевых и очищенных сточных вод методом хроматомасс-спектрометрии».

118 Хиляс И. В., Зиганшин А. М., Наумова Р. П. Патент № 2437930. Биосенсор для определения 2,4,6-тринитротолуол. Зарегистрировано 04.08.2010.

119 Хоулт Дж., Криг Н. Определитель бактерий Берджи. В 2-х т. Том 1 Издательство: Мир Год: 1997. - 800 с.

120 Цыбульский И.Е., Сазыкина М.А. Новые биосенсоры для мониторинга токсичности среды на основе морских люминесцентных бактерий // Прикладная биохимия и микробиология. - 2010. - Т.46, № 5. - С. 1-6.

121 Чистяков В.А., Лысенко B.C., Сазыкина М.А., Сазыкин И.С., Вардуни Т.В., Сазыкина М.И. Ультразвуковая сенсибилизация биопленок люминесцентных бактерий Vibrio fisheri к воздействию хлорамфеникола // Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Естественные науки. - 2011. - № 1. - С. - 7882.

122 Чистяков В.А., Сазыкина М.А., Сазыкин И.С., Латышев A.B. Проблемы развития методологии мониторинга токсичности природных сред: необходимость синтеза// Проблемы региональной экологии. - 2009. - Т. 5. - С. 152-156.

123 Эггинс Б. Химические и биологические сенсоры. - М.: Техносфера, 2005.

- 337 с.

124 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2002 году» / Под ред. Назарова С.М., Остроуховой В.М., Паращенко М.В. - Ростов н/Д, 2003. - 291 с.

125 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2003 году» / Под ред. Назарова С.М., Остроуховой В.М., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Издательство Артель», 2004. -262 с.

126 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2004 году» / Под ред. Назарова С.М., Остроуховой В.М., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Синтез технологий», 2005. -298 с.

127 Экологический вестник Дона: «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2005 г.» / Под ред. Назарова С.М., Остроуховой В.М., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Синтез технологий», 2006.

128 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2006 году» / Под ред. Назарова С.М., Остроуховой В.М., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Синтез технологий», 2007. -300 с.

129 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2007 году»/ Под ред. Назарова С.М., Скрипки Г.И., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Синтез технологий», 2008. - 372 с.

130 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2008 году»/ Под ред. Курдюмова С.Г., Скрипки Г.И., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Синтез технологий», 2009. - 355 с.

131 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2009 году»/ Под ред. Курдюмова С.Г., С.М., Скрипки Г.И., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Синтез технологий», 2010. -365 с.

132 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и

природных ресурсов Ростовской области в 2010 году»/ Под ред.Трифонова С.Ф., Скрипки Г.И., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: «Синтез технологий», 2011. - 349 с.

133 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2011 году»/ Под ред. Гребенщикова А. А., Скрипки Г.И., Паращенко М.В. - Ростов н/Д: ООО "Снтез технологий", 2012. -360 с.

134 Экологический вестник Дона «О состоянии окружающей среды и природных ресурсов Ростовской области в 2012 году» / Под ред. Гребенщикова А.А., Куренкова А.Г. - Ростов н/Д: ООО «Альтаир», 2013. - 375 с.

135 Adeyoju О., Iwuoha E.I., Smyth M.R., Leech D. High-Performance Liquid-Chromatographic Determination of Phenols Using a Tyrosinase-Based Amperometric Biosensor Detection System //Analyst. - 1996.- № 12. - P. 1885 - 1889.

136 Ahn J.M., Hwang E.T., Youn C.H., Banu D.L., Kim B.C., Niazi J.H., Gu M.B. Prediction and classification of the modes of genotoxic actions using bacterial biosensors specific for DNA damages // Biosens. Bioelectron. - 2009. - V. 25. - № 4. - P.767-772.

137 Ames B.N., Lee F.D., Durston W.E. Improved bacterial test system for detection and classification of mutagens and carcinogens // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1973.- V. 70. - P. 782-786.

138 Aminea H. Mohammadia, I. Bourais, Palleschi G. Enzyme inhibition-based biosensors for food safety and environmental monitoring // Biosens. Bioelectron. - 2006. -V. 21. - P. 1405-1423.

139 Anderson S., Sadinski W., Shugart L., Brussard P., Depledge M., Ford Т., Hose J., Stegeman J., Suk W., Wirgin I., Wogan G. Genetic and molecular toxicology: a research framework // Environ. Health Perspect. - 1994. - V. 102. - Suppl. 12. - P. 3-8.

140 Anikiev V.V. Kolesov G. M., Pavlov A. A. Impact of anthropogenic and natural factors on the air quality above the northern Caspian Sea and the ecological risk level for the human population in the coastal zone // Geochem. Intern. - 2011. - V. 49. -№. 2.-P. 154-169.

141 Appels J., Kuester E., van den Broeke J., Tangena В., de Zwart D., Brandt A. Combination of an on-line biomonitor using light emitting bacteria and a UV

spectrophotometer probe for homeland security and drinking water safety // Proc. SPIE 6540, Optics and Photonics in Global Homeland Security III, 654005 - 04. 2007. doi: 10.1117/12.719983

142 Applegate B., Kelly .C, Lackey L., McPherson J., Kehrmeyer S., Menn F.M., Bienkowski P., Sayler G. J. Pseudomonas putida B2: a tod-lux bioluminescent reporter for toluene and trichloroethylene co-metabolism // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. - 1997. V. 18. -№ l.-P. 4-9.

143 Arafa H.M., Aly H.A., Abd-Ellah M.F., El-Refaey H.M. Hesperidin attenuates benzo[alpha] pyrene-induced testicular toxicity in rats via regulation of oxidant/antioxidant balance // Toxicol. Ind. Health. - 2009. - V. 25. - № 6. - P. 417-427.

144 Arufe M.I., Arellano J., Moreno M.J., Sarasquete C. Comparative toxic effects of formulated simazine on Vibrio fischeri and gilthead seabream (Sparus aurata L.) larvae // Chemosphere. - 2004. -V. 57. - № 11. - P. 1725-1732.

145 Asad N.R., Asad L., Almeida C.E.B., Felzenszwalb I., Cabral-Neto J.B., Leitao AC. Several pathways of hydrogen peroxide action that damage the E. coli genome // Genet. V. Mol. Biol. - 2004. - V. 27. - № 2. - P. 291-303.

146 Ast J. C., Urbanczyk H. U., Dunlap P. V. Multi-gene analysis reveals previously unrecognized phylogenetic diversity in Aliivibrio II Syst. Appl. Microbiol. -2009. - V. 32. - № 6. - P. 379-386.

147 Ast J.C., Cleenwerck I., Engelbeen K., Urbanczyk H., Thompson F.L., Paul De Vos and Paul V. Dunlap. Photobacterium kishitanii sp. nov., a luminous marine bacterium symbiotic with deep-sea fishes // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. - 2007. - V. 57. -P. 2073-2078

148 ATSDR (Agency for Toxic Substances and Disease Registry). Toxicological profile for phenol. U. S. Department of Health and Human Services, Public Health Service, Agency for Toxic Substances and Disease Registry, Atlanta, GA. - 2008.

149 Aubrecht J., Caba E. Gene expression profile analysis: an emerging approach to investigate mechanisms of genotoxicity // Pharmacogenomics. - 2005. - V. 6. - № 4. - P. 419-428.

150 Azhir E., Etefagh R., Shahtahmasebi N., Mohammadi M., Amiri D. and

Sarhaddi R. Aspergillus niger biosensor based on tin oxide (Sn02) nanostructures: nanopowder and thin film // J. Sei. Technol. - 2012. - V. 5. - №. 7. - P. 3010-3012.

151 Baird W.M., Hooven L.A., Mahadevan B. Carcinogenic polycyclic aromatic hydrocarbon-DNA adducts and mechanism of action // Environ. Mol. Mutagen. — 2005. — V. 45. — P. 106—114.

152 Baumann P. and Baumann L. Genus II. Photobacterium Beijerinck 1889, 401AL. Bergey's manual of systematic bacteriology. - 1984. - V. 1. - P. 539-545.

153 Baumann P., Schubert R.H.W. Family II. Vibrionaceae Veron 1956, 5245AL. Bergey's manual of systematic bacteriology. - 1984. - Vol. 1 - P. 516-517.

154 Baumstark-Khan C., Rabbow E., Rettberg P., Horneck G.The combined bacterial Lux-Fluoro test for the detection and quantification of genotoxic and cytotoxic agents in surface water: results from the "Technical Workshop on Genotoxicity Biosensing Aquat. Toxicol» // Aquat. Toxicol. - 2007. - V. 85. - № 3. - P. 209-218.

155 Beaz-Hidalgo R., Dieguez A.L., Cleenwerck I., Balboa S., Doce A., de Vos P., Romalde J.L. Vibrio celticus sp. nov., a new Vibrio species belonging to the Splendidus clade with pathogenic potential forclams // Syst. Appl. Microbiol. - 2010. - V. 33. - № 6. -P. 311-315.

156 Bechor O., Smulski D.R., Dyk T.K., LaRossa R.A., Belkin S. J. Recombinant microorganisms as environmental biosensors: pollutants detection by Escherichia coli bearing fabA'::lux fusions // Biotechnol. - 2002. -V. 94. - № 1. P. 125-132.

157 Bechor O., Smulski D.R., Van Dyk T.K., LaRossa R.A., Belkin S. Recombinant microorganisms as environmental biosensors: pollutants detection by Escherichia coli bearing fab0::lux fusions // J. Biotechnol. - 2002. - V. 94. - P. 125-132.

158 Behymer T.D., Hites R.A., 1985. Photolysis of polycyclic aromatic hydrocarbons adsorbed on simulated atmospheric particulates // Environ. Sei. Technol. -1985. -V. 19. - P. 1004-1006.

159 Belkin S. Microbial whole-cell sensing systems of environmental pollutants // Curr. Opin. Microbiol. - 2003. - V. 6. - № 3. - P. 206-212.

160 Belkin S., Smulski D.R., Dadon S., Vollmer A.C., Dyk T.K, Larossa R.A. A panel of stress-responsive luminous bacteria for the detection of selected classes of

toxicants // Water Res. - 1997. -V. 31. - № 12. - R 3009-3016.

161 Besombes J-L., Cosnier S., Labbe P., Reverdy G. A biosensor as warning device for the detection of cyanide, chlorophenols, atrazine and carbamate pesticides // Anal. Chim. Acta. - 1995. - № 2. - P. 253 - 263.

162 Beyersmann D., Hartwig A. Carcinogenic metal compounds: recent insight into molecular and cellular mechanisms // Arch. Toxicol. - 2008. - V. 8. -P. 493-512.

163 Billard P., DuBow M.S. Bioluminescence-based assays for detection and characterization of bacteria and chemicals in clinical laboratories // Clin Biochem. - 1998. -V. 31.-№ l.P. 1-14.

164 Biran A., Yagur-Kroll S., Pedahzur R., Buchinger S., Reifferscheid G., Ben-Yoav H., Shacham-Diamand Y., Belkin S. Bacterial genotoxicity bioreporters // Microb. Biotechnol. -2010. - V. 3. - № 4. - P. 412-427.

165 Biran I., Babai R., Levcov K., Rishpon J., Ron E.Z. Online and in situ monitoring of environmental pollutants: electrochemical biosensing of cadmium // Environ. Microbiol. - 2000. - V. 2. - P. 285-292.

166 Black D.E., Gutjaht-Gobell R., Pruell R. J., Bergen B., Mills L., Mcelory A. T. Reproduction and policlorinated biphenyls in Funudulus heteroclitus (Linnaeus) from New Bedford Harbor, Massachusetts, USA // Environ. Toxicol. Chem. - 1998. - V. 17. - № 7. -P. 1405-1412.

167 Boonyatumanond R., Wattayakorn G., Togo A., Takada H. Distribution and origins of polycyclic aromatic hydrocarbons (HAY) in riverine, estuarine, and marine sediments in Thailand // Mar. Pollut. Bull. - 2006. - V. 52. - P. 942-956.

168 Brorstroem-Lunden E., Lindskog A. Degradation of polycyclic aromatic hydrocarbons during simulated stack gas sampling // Environ. Sci. Technol. 1985. - V. 19. -P. 313-316.

169 Brown K., Tompkins E.M., White I.N. Applications of accelerator mass spectrometry for pharmacological and toxicological research // Mass Spectrom. Rev. -2006.-V.25.-№ 1.- P. 127-145.

170 Burmolle M., Hansen L.H., Sorensen S.J. Use of a whole-cell biosensor and flow cytometry to detect AHL production by an indigenous soil community during

decomposition of litter // Microb. Ecol. - 2005. - V. 50. - P. 221-229.

171 Calabrese E.J. , Baldwin L.A. Hormesis: The Dose-Response Revolution // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. - 2003. - V. 43. - P, 175-197.

172 Cameron K.S., Buchner V., Tchounwou P.B. Exploring the molecular mechanisms of nickel-induced genotoxicity and carcinogenicity: a literature review // Environ. Health. - 2011. - V. 26. - № 2. - P. 81-92.

173 Cano-Gomez A., Bourne D.G., Hall M.R., Owens L., Hoj L. Molecular identification, typing and tracking of Vibrio harveyi in aquaculture systems: Current methods and future prospects //Aquaculture. - 2009. - V. 287. - P. 1-10.

174 Chan C., Lehmann M., Tag K., Lung M., Kunze G., Riedel K., Gruendig B. & Renneberg R. Measurement of biodegradable substances using the salt-tolerant yeast Arxula adeninivorans for a microbial sensor immobilized with poly (carbamoyl) sulfonate (PCS): Part I: construction and characterization of the microbial sensor // Biosens. Bioelectron. - 1999. - V. 14. - P. 131-138.

175 Chandra R., Pandey P.K., Srivastava A. Comparative toxicological evaluation of untreated and treated tannery effluent with Nostoc muscorum L. (algal assay) and «Microtox» bioassay //Environ Monit Assess. - 2004. - V.95. - № 1-3. - P.287-294.

176 Checa S.K., Zurbriggen M.D., Soncini F.C. Bacterial signaling systems as platforms for rational design of new generations of biosensors // Curr. Opin. Biotechnol. -2012. -V. 23. - № 5. - 2012. - P. 766-772.

177 Chee G.J., Nomura Y., Ikebukuro K., Karube I. Stopped-flow system with ozonizer for the estimation of low biochemical oxygen demand in environmental samples // Biosens. Bioelectron. - 2007. - V. 22. - P. 3092-3098.

178 Chee G.-J., Nomura Y., Ikebukuro K., Karube I. Biosensor for the evaluation of biochemical oxygen demand using photocatalytic pretreatment // Sens. Actuators B. -2001. -V. 80. - P. 15-20.

179 Chee G.-J., Nomura Y., Ikebukuro K., Karube I. Development of highly sensitive BOD sensor and its evaluation using preozonation // Anal. Chim. Acta. - 1999. -V. 394. - P. 65-71.

180 Chee G.-J., Nomura Y., Ikebukuro K., Karube I. Development of photocatalytic

biosensor for the evaluation of biochemical oxygen demand // Biosens. Bioelectron. -2005.-V. 21.-P. 67-73.

181 Chee G-J. Biosensor for the Determination of Biochemical Oxygen Demand in Rivers, Environmental Biosensors, Prof. Vernon Somerset (Ed.), 2011. - P. 257-276.

182 Chemnitius G., Mlusel M., Zaborosh C., Knoel M., Spener F. Cammann K. Highly sensitive electrochemical biosensors for water monitoring. Food Technology and Biotechnology //Anal. Chim. Acta. - 1996. - № 34. - № 1. - P. 23 - 29.

183 Chen S., Huang J., Du D., Li J., Tu H., Liu D., Zhang A. Methyl parathion hydrolase based nanocomposite biosensors for highly sensitive and selective determination of methyl parathion // Biosens. Bioelectron. - 2011. - V. 26. - №11. - P. 4320-4325.

184 Chianella I., Mascini M. Disposable DNA electrochemical biosensors for environmental monitoring // Anal. Chim. Acta. - 1999. - № 3. - P. 297 - 307.

185 Chiti G., Marrazza G., Mascini M. Electrochemical DNA biosensor for environmental monitoring // Anal. Chim. Acta. - 2001. - V. 427. - P. 155-164.

186 Cho J.C., Park K.J., Ihm H.S., Park J.E., Kim S.Y., Kang I., Lee K.H., Jahng D., Lee D.H., Kim S.J. A novel continuous toxicity test system using a luminously modified freshwater bacterium // Biosens Bioelectron. - 2004. - V. 15. - № 20 (2). - P. 338344.

187 Choi S., Gu M. A whole cell bioluminescent biosensor for the detection of membrane-damaging toxicity // Biotechnol. Bioprocess. Eng. 1999. - V. 4. № 1. V. 59-62.

188 Christie W.W. Thin-layer chromatography of lipids // http://lipidlibrary.aocs.org/topics/tlc/index.htm

189 Christofi N., Hoffmann C., Tosh L. Hormesis responses of free and immobilized light-emitting bacteria // Ecotoxicol. Environ. Saf. - 2002. - V. 52. - № 3. -P. 227-231.

190 Ciumasu I.M, Krämer P.M., Weber C.M, Kolb G., Tiemann D., Windisch S., Frese I., Kettrup A.A. A new, versatile field immunosensor for environmental pollutants: development and proof of principle with TNT, diuron, and atrazine // Biosens. Bioelectron. - 2005. - V. 21. - № 2. - P. 354-64.

191 Clark L.C., Lyons C. Electrode systems for continuous monitoring in

cardiovascular surgery //Ann. N.Y. Acad. Sci. - 1962. - V. 102. - P. 29-45.

192 Conrath M., Grundig B., Huwel S., Cammann K. A novel enzyme sensor for the determination of inorganic phosphate // Anal. Chim. Acta. - 1995. - № 1. - P. 47 - 52.

193 Cotte H., Grundig B., Vorlop K. - D., Strehlitz B., Stottmeister U. Methylphenazonium - Modified Enzyme Sensor Based on Polymer Thick Films for Subnanomolar Detection of Phenols // Anal. Chem. - 1995. - V. 67. - № 1. - P. 65 - 70.

194 Daniel R. Modeling and measurement of a whole-cell bioluminescent biosensor based on a single photon avalanche diode / Daniel R., Almog R., Ron A., Belkin S., Diamand Y.S. // Biosens. Bioelectron. - 2008. - V. 24. - № 4.. p. 888-893.

195 Davidov Y., Rozen R., Smulski D.R., Van Dyk T.K., Vollmer A.C., Elsemore D.A., LaRossa R.A., Belkin S. Improved bacterial SOS promoter::lux fusions for genotoxicity detection // Mutat. Res. Genet. Toxicol. Environ. Mutag. - 2000. - V. 466. -P. 97-107.

196 Dawson J.J., Iroegbu C.O., Maciel H., Patón G.I. Application of luminescent biosensors for monitoring the degradation and toxicity of BTEX compounds in soils // J. Appl. Microbiol. - 2008. - V.104. - № 1. - P. 141-151.

197 Dawson J.J., Iroegbu C.O., Maciel H., Patón G.I. Application of luminescent biosensors for monitoring the degradation and toxicity of BTEX compounds in soils // J. Appl. Microbiol. - 2008. - V. 104. - № 1. - P. 141-151.

198 Dickenson E. R. V., Snyder S. A., Sedlak, D. L., & Drewes J. E. Indicator compounds for assessment of wastewater effluent contribution to flow and water quality // Water Res. - 2011. - V. 45. - P. 1199-1212.

199 Dipple A. Polycyclic aromatic hydrocarbons and carcinogenesis. — Washington DC: American Chemical Society Press, 1985. — p. 1—17.

200 Divies C. Ethanol oxidation by an acetobacter xylinum microbial electrode // Ann. Microbiol. - 1975. - № 126. - P. 175 - 186.

201 Domínguez-Renedo O., Alonso-Lomillo M.A., Ferreira-Gon^alves L. Arcos-Martínez M.J. Development of urease based amperometric biosensors for the inhibitive determination of Hg (II) // Talanta. - 2009. - V.79. - № 5. - P. 1306-1310.

202 Dragone R., Frazzoli C. Grappelli C., Campanella L. A new respirometric

endpoint-based biosensor to assess the relative toxicity of chemicals on immobilized human cells // Ecotoxicol. Environ. Saf.- 2009. - V. 72. - № 1. - P. 273-279.

203 D'Souza S.F. Microbial biosensors // Biosens Bioelectron. - 2001. - V. 16. - № 6. P. 337-353.

204 Dunlap P.V. and Kita-Tsukamoto K. Luminous bacteria // The Prokaryotes, 3rd ed. - 2006. -Vol. 2. - № 2. - P. 863-892

205 Durrieu C., Tran-Minhw C. Optical algal biosensor using alkaline phosphatase for determination of heavy metals // Environ. Res. Sect. - 2002. - V. 51. - P. 206-209.

206 Elad T., Almog R., Yagur-Kroll S., Levkov K., Melamed S., Shacham-Diamand Y., Belkin S.Online monitoring of water toxicity by use of bioluminescent reporter bacterial biochips // Environ. Sci. Technol. 2011. V. 45. № 19.P. 8536-8544.

207 Elad T., Almog R., Yagur-Kroll S., Levkov K., Melamed S., Shacham-Diamand Y., Belkin S. Online monitoring of water toxicity by use of bioluminescent reporter bacterial biochips // Environ. Sci. Technol. - 2011. - V. 45. - № 19. - P. 85368544.

208 Elad T., Belkin S. Broad spectrum detection and "barcoding" of water pollutants by a genome-wide bacterial sensor array // Water res. - 2013. - V. 47. - P. 3782-3790.

209 Elasri M.O., Miller R.V. A Pseudomonas aeruginosa biosensor responds to exposure to ultraviolet radiation. Appl Microbiol Biotechnol. 1998. - V. 50. - № 4. - P. 455-458.

210 Escher B.I., Bramaz N., Maurer M., Richter M., Sutter D., von Kanel C., Zschokke M. Screening test battery for pharmaceuticals in urine and wastewater // Environ. Toxicol. Chem. - 2005, - V.24. - № 3. - P.750-758.

211 Farmer J.J., Hickman-Brenner F.W. The genera Vibrio and Photobacterium. In: Balows A., Truper H.G., Dworkin M., Harder W., Schleifer, K.H. (Eds.). (1992). The Prokaryotes, 2nd ed. - New York, NY: Springer-Verlag, 1992.- pp. 2952-3011.

212 Farre M., Kloter G., Petrovic M., Alonso M. C., Lopez de Alda M. J., Barcelo D. Identification of toxic compounds in wastewater treatment plants dring a field experiment//Anal. chim. acta. - 2002. -V. 456. - № 1. - P. 19-30.

213 Fatima R.A., Ahmad M. Genotoxicity of industrial wastewaters obtained from two different pollution sources in northern India: a comparison of three bioassays. Mutat Res. - 2006 - V. 609.-№ 1.-P. 81-91.

214 Fernandez J. J., Lopez J. R., Correig X., Katakis I. Reagentless carbon paste phosphate biosensors: preliminary studies // Sens. Actuators. B. Chem. - 1998. - № 1. - P. 13-20.

215 Fonnum F, Mariussen E, Reistad T. Molecular mechanisms involved in the toxic effects of poly chlorinated biphenyls (PCBs) and brominated flame retardants (BFRs) // J. Toxicol. Environ. Health A. - 2006. - V. 69. - № 1-2. P. 21-35.

216 Frampton G.K., Jansch S., Scott-Fordsmand J.J., Rombke J., Van den Brink P.J. Effects of pesticides on soil invertebrates in laboratory studies: a review and analysis using species sensitivity distributions // Environ. Toxicol. Chem. - 2006. - V. 25. - № 9. - P. 2480-2489.

217 Frense D., Muller A., Beckmann D. Detection of environmental pollutants using optical biosensor with immobilized algae cells // Sens. Actuators B. Chem. - 1998. -№ 3. - P. 256-260.

218 Frey J., Ghersa P., Palacios G., Belet M. Physical and genetic analysis of the ColD plasmid // J. Bacteriol. - 1986. - V. 166. - P. 15-19.

219 Fu A.Y., Spence C., Scherer A., Arnold F.H., Quake S.R. A microfabricated fluorescence-activated cell sorter//Nat. Biotechnol. - 1999. -V. 17. - P. 1109-1111.

220 Galindo E., Garcia J.L., Torres L.G., Quintero R. Characterization of microbial membranes used for the estimation of biochemical oxygen demand with a biosensor // Biotechnol. Tech. - 1992. - V. 6. - P. 399-404.

221 Gautam P., Prachi S. S., Amrita K., Madathil D., Nair B. A.N. A review on recent advances in biosensors for detection of water contamination // Intern. J. Environ. Sci. - 2012. - V. 2. - № 3. - P. 1565-1574.

222 Ghirardini V.A., Ghetti P.F., Di Leo V., Pantani C. «Microtox»® solid-phsse bioassay in sediment toxicity assessment: pap // 26th Congress, San Paulo, 1995//Verh./Int.Ver.theor. und angew. Limnol. - 1998. - V.26. - №5. - P.2393 - 2397.

223 Girotti S., Bolelli L., Roba A., Gentilimi G., Musiani M. Improved detection of toxic chemicals using bioluminescent bacteria // Anal. chim. acta. - 2002. - V. 471. - № l.-P. 113-120.

224 Girotti S., Ferri E.N., Fumo M.G., Maiolini E. Monitoring of environmental pollutants by bioluminescent bacteria // Anal. Chim. Acta. - 2008. - V. 608. - № 1. - P. 229.

225 Golden R., Kimbrough R. Weight of evidence evaluation of potential human cancer risks from exposure to poly chlorinated biphenyls: an update based on studies published since 2003 // Crit. Rev. Toxicol. - 2009. - V. 39. - № 4. - P. 299-331.

226 Goldstein B.D. Advances in risk assessment and communication // Annu. Rev. Public Health. - 2005. - V. 26. - P. 141-163.

227 González-Martínez M.A., Puchades R., Maquieira A. Optical immunosensors for environmental monitoring: how far have we come? // Anal. Bioanal. Chem. - 2007. -V. 387. - № l.-P. 205-18.

228 Gordon C., Toze S. Influence of groundwater characteristics on the survival of enteric viruses // J. Appl. Microbiol. - 2003. - V. 95. - № 3. - P. 536-544.

229 Grant W.F. Higher plant assays for the detection of genotoxicity in air polluted environments // Ecosyst Health. — 1998. — V. 4. — P. 210—229.

230 Gruzina T.G., Zadorozhnyaya A.M., Gutnik G.A., Vember V.V., Ulberg Z.R., Kanyuk N.I., Starodub N.F. A bacterial multisensor for determination of the contents of heavy metals in water // J. Water Chem. Technol. - 2007. - V. 29. - P 50-53.

231 Gu M.B., Mitchell R.J., Kim B.C. Whole-cell-based biosensors for environmental biomonitoring and application // Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. - 2004. -V. 87.-P. 269-305.

232 Guidelines, 1979 http://water.epa.gov/scitech/methods/cwa/pollutants.cfm

233 Guzzella L., Bartone C., Ross P., Tartarí G., Muntau H. Toxicity identification evaluation of lake Orta (Northern Italy) sediments using the «Microtox» system // Ecotoxicol. and Environ. Safety. - 1996. - V. 35. - № 3. - P. 231-235.

234 Guzzella L., Feretti D., Monarca S. Advanced oxidation and adsorption technologies for organic micropollutant removal from lake water used as drinking-water

supply // Water Res. - 2002. - V. 36. - № 17. - P. 4307-4318.

235 Hakkila K., Green T., Leskinen P., Ivask A., Marks R., Virta M. J. Detection of bioavailable heavy metals in EILATox-Oregon samples using whole-cell luminescent bacterial sensors in suspension or immobilized onto fibre-optic tips // Appl. Toxicol. -2004-a. - V. 24. - P. 333-342.

236 Hakkila K., Lappalainen J , Virta M. Toxicity detection from EILATox-Oregon Workshop samples by using kinetic photobacteria measurement: the Flash method // J. Appl. Toxicol. - 2004-6. - V. 24. - № 5. - P.349-353.

237 Hakkila K., Maksimow M., Karp M., Virta M. Reporter genes lucFF, luxCDABE, gfp, and dsred have different characteristics in whole-cell bacterial sensors // Anal. Biochem. - 2002. - V. 301- № 2. - P. 235-242.

238 Han T.S., Sasaki S., Yano K., Ikebukuro K., Kitayama A., Nagamune T., Karube I. Flow injection microbial trichloroethylene sensor // Talanta. - 2002. - V. 57. - № 2. - P. 271-276.

239 Hanifah SA., Heng LY., Ahmad M. Biosensors for phenolic compounds by immobilization of tyrosinase in photocurable methacrylic-acrylic membranes of varying hydrophilicities // Anal. Sci. - 2009. - V. 25. - № 6. - P. 779-84.

240 Heineman W. H., Haloall H. B., Guilbault G. G. and Mascini M. Electrochemical immunosensors. Analytical Uses of Immobilized Biological Compounds for Detection // Med. Industr. Uses. - 1999. - P. 281 - 290.

241 Heitzer A., Webb O.F., Thonnard J.E., Sayler G.S.Specific and Quantitative Assessment of Naphthalene and Salicylate Bioavailability by Using a Bioluminescent Catabolic Reporter Bacterium // Appl. Environ. Microbiol. 1992. - V. 58. - № 6. - P. 1839-1846.

242 Hennion M. - C., Barcelo D. Strengths and limitations of immunoassays for effective and efficient use for pesticide analysis in water samples // Anal. Chim. Acta. -1998.-№ 1.-p. 3-34.

243 Hermi M., Mahmoudi E., Beyrem H., A'issa P., Essid N. Responses of a free-living marine nematode community to mercury contamination: results from microcosm experiments // Arch. Environ. Contam. Toxicol. - 2009. - V.56. - № 3. - P. 426-433.

244 Hernando M.D. , Malato, O., Farré M., Fernandez-Alba A.R., Barceló D. Application of ring study: Water toxicity determinations by bioluminescence assay with Vibrio fischeri // Talanta. - 2006. - V. 69. - № 2. - P. 370-376.

245 Hernando M.D., De Vettori S., Martínez Bueno M.J., Fernández-Alba A.R. Toxicity evaluation with Vibrio fischeri test of organic chemicals used in aquaculture // Chemosphere. - 2007. - V. 68. - № 4. - P. 724-730.

246 Holt J.G., Krieg N.R., Sneath P.H.A., Staley, T., Williams, S.T.. Bergey's Manual of Determinative Bacteriology. Williams and Wilkins editors. 9th ed., Wavely Company, Baltimore, 1994. - pp. 787.

247 Hwang E.T., Ahn J.M., Kim B.C., Gu M.B. Construction of a nrdA::luxCDABE Fusion and Its Use in Escherichia coli as a DNA Damage Biosensor // Sensors. - 2008. - V. 8. - № 2. - P. 1297-1307.

248 Hyun C.K., Tamiya E., Takeuchi T., Karube I., Inoue N. A novel BOD sensor based on bacterial luminescence // Biotechnol. Bioeng. - 1993. - V. 41. - P. 1107- 1111.

249 ICES. Report of the joint meeting of the Working Group on marine sediments in relation to pollution and the Working Group on biological effects of contaminants.// International Council for the Exploration of the Sea. - JCES. - 1994. -19 p.

250 Igbinosa E.O., Okoh A.I. Emerging Vibrio species: an unending threat to public health in developing countries // Res. Microbiol. - 2008. - V. 159. - P. 495-506.

251 Ikebukuro K., Miyata A., Cho S.J., Nomura Y., Chang S.M., Yamauchi Y., Hasebe Y., Uchiyama S., Karube I. Microbial cyanide sensor for monitoring river water // Biotechnol. - 1996. - V. 48. - P.73-81.

252 Ivask A., Rolova T., Kahru A. A suite of recombinant luminescent bacterial strains for the quantification of bioavailable heavy metals and toxicity testing // BMC Biotechnol. - 2009. - V. 9. - P. 41.

253 IvaskA., Green T., Polyak B., Mor A., Kahru A., Virta M., Marks R.Fibre-optic bacterial biosensors and their application for the analysis of bioavailable Hg and As in soils and sediments from Aznalcollar mining area in Spain // Biosens. Bioelectron. -2007.- V. 22. - № 7. - P. 1396-1402.

254 Jaffrezic-Renault N. New Trends in Biosensors for Organophosphorus Pesticides // Sensors. - 2001. - № 1. - P. 60-74.

255 Janion C. Inducible SOS Response System of DNA Repair and Mutagenesis in Escherichia coli // Int. J. Biol. Sei. V. - 2008. -V. 4. - № 6. - P. 338-344.

256 Jerrett M., Burnett R.T., Ma R., Pope C.A., Krewski D., Newbold K.B., Thurston G., Shi Y., Finkelstein N., Calle E.E., Thun M.J. Spatial analysis of air pollution and mortality in Los Angeles // Epidemiology. — 2005. — V. 16. — P. 727—736.

257 Jia J., Tang M., Chen X., Qi L., Dong S. Co-immobilized microbial biosensor for BOD estimation based on sol-gel derived composite material // Biosens. Bioelectron. -2003. -V. 18. - P. 1023-1029.

258 Jia L., Lifeng Y., Yunrong D., Fan J., Junfeng N. Application of Electrochemical Enzyme Biosensor in Environmental Pollution Monitoring // Prog. Chem. - 2012. - V. 24-№ l.-P. 131-143.

259 Jin C., Luo P., Zuo H., Chen J., Chen M., Wang W. Vibrio zhuhaiensis sp. nov., isolated from a Japanese prawn (Marsupenaeus japonicus) // Antonie Van Leeuwenhoek. -2013. - V. 103. - № 5. - P. 989-96.

260 Jos A., Repetto G., Rios J.C., del Peso A., Salguero M., Hazen M.J., Molero M.L., Fernandez-Freire P., Perez-Martin J.M., Labrador V., Camean A. Ecotoxicological evaluation of the additive butylated hydroxyanisole using a battery with six model systems and eighteen endpoints // Aquat. Toxicol. - 2005. - V. 26. - №71(2). - P. 183-192.

261 Kahru A., Ivask A., Kasemets K., Pöllumaa L., Kurvet I., François M., Dubourguier H.C. Biotests and biosensors in ecotoxicological risk assessment of field soils polluted with zinc, lead, and cadmium // Environ. Toxicol. Chem. - 2005. - V. 24. -№ 11. - P. 2973-2982.

262 Kamens R.M., Guo Z., Fulcher J.N., Bell D.A. The influence of humidity, sunlight, and temperature on the daytime decay of polyaromatic hydrocarbons on atmospheric soot particles // Environ. Sei. Technol. - 1988. - V. 22. - P. 103-108.

263 Karube I, Matsunaga T, Mitsuda S, Suzuki S. Microbial electrode BOD sensors // Biotechnol. Bioeng. - 1977. - V. 19. - P. 1535-1547.

264 Karube I., Mitsuda S., Matsunaga T., Suzuki S. A Rapid Method for Estimation

of BOD by using Immobilized Microbial Cells // J. Ferment. Technol. - 1977. - V. 55. - P. 243-248.

265 Karube I., Sogabe S., Matsunaga T., Suzuki S. Sulfite Ion Sensor with Use of Immobilized Organelle // Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol. - 1983. - № 2. - P. 216 -220.

266 Karube I., Yokoyama K., Sode K., Tamiya E. Microbial BOD sensor utilizing thermophilic bacteria //Anal. Lett. - 1989. -V. 22. - P. 791-801.

267 Kay D.P., Newsted J.L., Benkinney M.T., Iannuzzi T.J., Giesy J.P. Passaic river sediment interstitial water phase I toxicity identification evaluation // Chemosphere.

- 2008. - V. 70. - № 10. - P. 1737-1747.

268 Khadro B., Namour P., Bessueille F., Leonard D. and Jaffrezic-Renault N. Enzymatic conductometric biosensor based on PVC membrane containing methyl viologen/nafion®/nitrate reductase for determination of nitrate in natural water samples // Sens. Mater. - 2008. - V. 20. - P. 267-279.

269 Khlupova M., Kuznetsov B., Demkiv O., Gonchar M., Csoregi E., Shleev S. Intact and permeabilized cells of the yeast Hansenula polymorpha as bioselective elements for amperometric assay of formaldehyde // Talanta. - 2006. - V. 71. - № 2. - P. 934-940.

270 Kim B.C., Park K.S., Kim S.D., Gu M.B. Evaluation of a high throughput toxicity biosensor and comparison with a Daphnia magna bioassay // Biosens Bioelectron.

- 2003. - V. 8. - № 5-6. - P.821-826.

271 Konig A., Backmann T. T., Metzger J. V., Schmid R. D. Disposable sensor for measuring the biochemical oxygen demand for nitrification and inhibition of nitrification in wastewater // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 1999. - № l.-P. 112-117.

272 Kratasyuk V.A., Esimbekova E.N., Gladyshev M.I., Khromichek E.B., Kuznetsov A.M., Ivanova E.A. The use of bioluminescent biotests for study of natural and laboratory aquatic ecosystems // Chemosphere. - 2001. - V. 42. - № 8. - P. 909-915.

273 Kratasyuk V.A., Gitelson J.I. Using of luminous bacteria in bioluminescent analysis // Uspekhi Microbiol. - 1987. - V. 21. - P.3-30.

274 Kuczynska A., Wolska L., Namiesnik J. Integrated approach for evaluation of pollution level of underground water in the vicinity of a municipal landfill // Fresenius

Environ. Bull. - 2006. - V. 15. - № 7. - P. 692-696.

275 Kudlak B., Rogowska J., Wolska L., Kalas M., L^czynski L., Namiesnik J. Toxicity assessment of sediments associated with the wreck of s/s Stuttgart in the Gulf of Gdansk № Poland // J. Environ. Monit. - 2012. - V. 14. - № 4. - P. 1231-1236.

276 Kumlanghan A, Liu J, Thavarungkul P, Kanatharana P, Mattiasson B. Microbial fuel cell-based biosensor for fast analysisof biodegradable organic matter // Biosens. Bioelectron. - 2007. - V. 22. - P. 2939^14.

277 Kungolos A., Samaras P., Koutseris E. Using bioassays for testing seawater quality in Greece // J. Environ. Sei. Health A. Tox Hazard Subst. Environ. Eng. - 2003. -V. 38. № 3. - P.533-544.

278 Kuswandi B. Simple optical fibre biosensor based on immobilised enzyme for monitoring of trace heavy metal ions // Anal. Bioanal. Chem. - 2003. - V.376. - P. 1104— 1110.

279 Kuznetsov A.M., Rodicheva E.K., Medvedeva S.E. Analysis of river water by bioluminescent biotests // Luminescence. - 1999. - V. 14. - № 5. - P. 263-265.

280 Lagarde F., Jaffrezic-Renault N. Cell-based electrochemical biosensors for water quality assessment // Anal. Bioanal. Chem. 2011. - V. 400. - №4. - P. 947-964.

281 Lahdelma I., Oikari A. Resin Acids and Retene in Sediments Adjacent to Pulp and Paper Industries // J. Soils & Sediments. - 2005. - V. 5. - № 2. - P. 74-81.

282 Lanceleur L., Schäfer J., Chiffoleau J.F., Blanc G., Auger D., Renault S., Baudrimont M., Audry S. Long-term records of cadmium and silver contamination in sediments and oysters from the Gironde fluvial-estuarine continuum - evidence of changing silver sources // Chemosphere. - 2011. - V. 85. - № 8. - P. 1299-12305.

283 Lanciotti E, Pancani P, Riva S, Sacco C. Environmental spread of barium: health effects and and hygienic relevance of contamination of drinking water // Ann Ig. 1990 V. 2. № 5. C. 321-334.

284 Lasa A., Dieguez A.L., Romalde J.L. Vibrio toranzoniae sp. nov., a new member of the Splendidus clade in the genus Vibrio II Syst. Appl. Microbiol. - 2013. - V. 36. -№2. - P. 96-100.

285 Laschi S, Mascini M. Disposable electrochemical immunosensor for

environmental applications // Ann. Chim. - 2002. - V. 92. - № 4. - P. 425-33.

286 Layton A.C., Muccini M., Ghosh M.M., Sayler G.S. Construction of a Bioluminescent Reporter Strain To Detect Polychlorinated Biphenyls // Appl. Environ. Microbiol. 1998.64- №12.- P. 5023-5026.

287 Lee HJ., Gu M.B. Construction of a sodA::luxCDABE fusion Escherichia coli: comparison with a katG fusion strain through their responses to oxidative stresses // Appl.Microbiol. Biotechnol. - 2003. - V. 60. - № 5. - P. 577-580.

288 Lee J.H., Mitchell R.J., Kim B.C., Cullen D.C., Gu M.B. A cell array biosensor for environmental toxicity analysis // Biosens. Bioelectron. 2005. V. 21. - № 3. - P. 500507.

289 Lee J.H., Park J.Y, Min K., Cha H.J., Choi S.S., Yoo Y.J. A novel organophosphorus hydrolase-based biosensor using mesoporous carbons and carbon black for the detection of organophosphate nerve agents // Biosens. Bioelectron. - 2010. - V. 25. -№7. - P. 1566-1570.

290 Lee J.H., Youn C.H., Kim B.C., Gu M.B. An oxidative stress-specific bacterial cell array chip for toxicity analysis // Biosens. Bioelectron. - 2007. - V. 22. № 9-10. P. 2223-2229.

291 Lee J.H., Youn C.H., Kim B.C., Gu M.B. An oxidative stress-specific bacterial cell array chip for toxicity analysis // Biosens. Bioelectron. - 2007. - V. 22. - № 9-10. - P. 2223-2229.

292 Leedjarv A., Ivask A., Virta M., Kahru A. Analysis of bioavailable phenols from natural samples by recombinant luminescent bacterial sensors // Chemosphere. -2006.-V. 64-№ 11.-P. 1910-1919.

293 Lehmann M., Chan C., Lo A., Lung M., Tag K., Kunze G., Riedel K., Gruendig B. & Renneberg R. Measurement of biodegradable substances using the salt-tolerant yeast Arxula adeninivorans for a microbial sensor immobilized with poly (carbamoyl) sulfonate (PCS): Part II: application of the novel biosensor to real samples from coastal and island regions // Biosens. Bioelectron. - 1999. - V. 14. - P. 295-302.

294 Lehmann M., Riedel K., Adler K., Kunze G. Amperometric measurement of copper ions with a deputy substrate using a novel Saccharomyces cerevisiae sensor //

Biosens. Bioelectron. - 2000. - V. 15. - P 211-218.

295 Lei Y., Chen W., Mulchandani A. Microbial biosensors // Anal. Chim. Acta. -2006.-V. 568.-P. 200-210.

296 Lei Y., Mulchandani P., Chen W., Mulchandani A. Direct determination of p-nitrophenyl substituent organophosphorus nerve agents using a recombinant Pseudomonas putida JS444-modified Clark oxygen electrode // J. Agric. Food Chem. - 2005. - V.53. - P. 524-33.

297 Lesley S.A., Graziano J., Cho C.Y., Knuth M.W., Klock H.E. Gene expression response to misfolded protein as a screen for soluble recombinant protein // Protein Eng. - 2002. - V. 15.-№2.-P. 153-160.

298 Lewis M., Weber D., Stanley R., Albrecht B. Treated wastewater as a source of sediment contamination in gulf of Mexico near-coastal areas: A survey// Environ. Toxicol. Chem. - 2000. -V. 19 - P. 192.

299 Li F., Tan T. C., Lee Y. K. Effects of preconditioning and microbial composition on the sensing efficasy of a BOD biosensor // Biosens. Bioelectron. - 1994. -№3. - P. 197-205.

300 Li G., Xia X., Yang Z., Wang R., Voulvoulis N. Distribution and sources of polycyclic aromatic hydrocarbons in the middle and lower reaches of the Yellow River, China. Environ // Environ. Pollut. - 2006. - V. 144. - № 3. - P. 985-993.

301 Li Y.F., Li F.Y., Ho C.L., Liao V.H.C. Construction and comparison of fluorescence and bioluminescence bacterial biosensors for the detection of bioavailable toluene and related compounds //Environ Pollut. - 2007. -V. 152. - № 1. P. 123-129.

302 Ligler F.S. Perspective on optical biosensors and integrated sensor systems // Anal. Chem. - 2009. - V.81. - № 2. - P. 519-526.

303 Liu J, Mattiasson B. Microbial BOD sensors for wastewater analysis // Water Res. - 2002. - V. 36. - № 15. - P. 3786-3802.

304 Lowe C.R. In: Handbook of biosensors and biochips. Marks R.S, Cullen D.C., Karube I., Lowe C.R., Weetall H.H., editors. - Chichester: Wiley; 2007. - pp. 7-22.

305 Lucena T., Ruvira M.A.,Arahal D.R., Macian M.C., Pujalte M.J. Vibrio aestivus sp. nov. and Vibrio quintilis sp. nov., related to Marisflavi and Gazogenes

clades, respectively 11 Syst. Appl. Microbiol.- 2012 . - V. 35. - № 7. - P. 427-431.

306 Lushchak V. I. Adaptive response to oxidative stress: Bacteria, fungi, plants and animals // Comp. Biochem. Physiol. C Toxicol. Pharmacol. - 2011. - V. 153. - № 2. -P. 175-190.

307 Lutz E. S. M., Dominguez E. Development and Optimisation of a Solid Composite Tyrosinase Biosensor for Phenol Detection in Flow-Injection Systems // Electroanalysis. - 1996. - № 2. - P. 117 - 123.

308 Lyngberg O.K., Stemke D.J., Schottel J.L., Flickinger M.C. A single-use luciferase-based mercury biosensor using Escherichia coli HB101 immobilized in a latex copolymer film // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. - 1999. - V. 23. - № 1. - P. 668-676.

309 Lyytikainen M., Sormunen A., Ristola T., Juvonen R., Kukkonen J.V. Toxicity of freshwater sediments in the vicinity of an old sawmill: application of three bioassays // Arch. Environ. Contam. - Toxicol. - 2001. - V. 40. - № 3. - P. 318-326.

310 Ma X.Y., Wang X.C., Ngo H.H., Guo W., Wu M.N., Wang N. Bioassay based luminescent bacteria: Interferences, improvements, and applications // Sci. Total Environ. - 2014. - V. 468^469. - P. 1-11.

311 Magrisso S., Erel Y. and Belkin S., Microbial reporters of metal bioavailability // Microbial. Biotechnol. - 2008. - V. 1. - P. 20-330.

312 Makower A., Eremenko A. V., Streffer K., Wollenberger U., Schellr F. W. Tyrosinase-Glukosedehydrogenase Substrate-Recycling Biosensor - a Highly-Sensitive Measurement of Phenolic Compounds // J. Chem. Technol. Biotechnol. - 1996. - V.65. -№ 1. - P. 39-44.

313 Maniatis T., Fritsch E.F., Sambrook J. // Molecular Cloning: a Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory. - New York, 1982. - 545 p.

314 Marco M. P., Gee S., Hammock B. D. Immunochemical techniques for environmental analysis. Immunosensors // Anal. Chem. - 1992. - № 7. - P. 47 - 55.

315 Marques P.R.B.O. and Yamanaka H., Biosensores baseados no processo de inibisro enzim6tica, Quim. Nova. 2008.V.7. P. 1791-1799.

316 Marvin C.H., Lundgrian J.A., McCarry B.E., Bryant D.W. Determination and genotoxicity of high molecular mass polycyclic aromatic hydrocarbons isolated from coal-

tar-contaminated sediment // Environ. Toxicol. Chem. - 1995. - V. 14. - №12. - P. 20592066.

317 Marvin C.H., McCarry B.E., Bryant D.W. Determination and genotoxicity of polycyclic aromatic hydrocarbons isolated from Dreissina polymorpha (zebra mussels) sampled from Hamilton Harbor // J. Great Lakes Res. - 1994. - V.20. - P. 523-530.

318 Marvin C.H., McCarry B.E., Villela J., Allan L.M., Bryant D.W. Chemical and biological profiles of sediments as indicators of sources of contamination in Hamilton Harbour. Part, n: bioassay-directed fractionation using the Ames Salmonella/microsome assay // Chemosphere. - 2000. - V. 41. - № 7. - P. 989-999.

319 Mascini M, Palchetti I. Nucleic Acid Biosensors for Environmental Pollution Monitoring Royal Society of Chemistry. - 2011. - 186 p. DOI: 10.1039/9781849732697-FP001.

320 Matsui N., Kaya T., Nagamine K., Yasukawa T., Shiku H., Matsue T. Electrochemical mutagen screening using microbial chip // Biosens. Bioelectron. - 2006. -V. 21.-№7. -P. 1202-1209.

321 Maugeri T.L., Caccamo D., Gugliandolo C. Potentially pathogenic Vibrios in brackish waters and mussels // J. Appl. Microbiol. - 2000. - V. 89. - P. 261-266.

322 McCready S., Spyrakis G., Greely C.R., Birch G.F., Long E.R. Toxicity of surficial sediments from Sydney Harbour and vicinity, Australia // Environ. Monit. Assess. - 2005. - V. 96. - № 1-3. - P.53-83.

323 McDowell J.E., Lancaster B.A., Leavitt D.F. et al. The effects of lipophilis organic contaminants on reproductive physiology and disease processes in marine bivalve molluscs // Limnol. Oceanogr. - 1999. - V. 44. - № 3. - Pt 2. - P. 903-909.

324 Meighen E.A. Molecular biology of bacterial bioluminescence // Microbiol. Rev. - 1991. - V. 55. - P. 123-142.

325 Mellado E., Moore E.R.B., Nieto J.J., Ventosa A. Analysis of 16S rRNA gene sequences of Vibrio costicola strains: Description of Salinivibrio costicola gen nov, comb nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. - 1996. - V. 46. - № 3. P. 817-821.

326 Menzel R., Swain S.C., Hoess S., Claus E., Menzel S., Steinberg C.E., Reifferscheid G., Stiirzenbaum S.R. Gene expression profiling to characterize sediment

toxicity~a pilot study using Caenorhabditis elegans whole genome microarrays // BMC Genomics. - 2009. - 10:160 (http://www.biomedcentral.com/1471-2164/10/160).

327 Mevsel M., Trau D., Katerkamp A., Meier F., Polzivs R., Cammann K. New ways in bioanalysis - one-way optical sensor chip for environmental analysis // Sens. Actuators. B. Chem. - 1998. - № 51. - № 3. - P. 249 - 255.

328 Michiko E. Taga and Bonnie L. Bassler. Chemical communication among bacteria // PNAS. - 2003. - V. 100, suppl. 2. - P. 14549-14554.

329 Míguez D.M., Huertas R., Carrara M.V., Carnikián A., Bouvier M.E., Martinez M.J., Keel K., Pioda C., Darré E., Pérez R., Viera S., Massa E. Bioavailability, ecotoxicity, and geological characteristics of trace lead in sediments from two sites on Negro River, Uruguay, South America // Ennviron. Geochem. Health. - 2012. - V. 34. - № 2. - P. 199205.

330 Mita D.G., Attanasio A., Arduini F., Diano N., Grano V., Bencivenga U., Rossi S., Amine A. & Moscone D. Enzymatic determination of BPA by means of tyrosinase immobilized on different carbon carriers // Biosens. Bioelectron. - 2007. - V.23. - № 1. -P.60-65.

331 Mitchell R.J., Gu M.B. Construction and evaluation of nagR-nagAa::lux fusion strains in biosensing for salicylic acid derivatives //Appl. Biochem. Biotechnol. - 2005. -V. 120. -№3. - P. 183-197.

332 Mowat F.S., Bundy K.J. Correlation of field-measured toxicity with chemical concentration and pollutant availability // Environment International. - 2001. - V. 27. - № 6. - P. 479-489.

333 Mulchandani A., K.R. Rogers (Eds.), Enzyme and Micriobial Biosensors: Techniques and Protocols, Humana Press, Totowa, NJ, 1998. - p. 278.

334 Mulchandani P., Chen W., Mulchandani A., Wang J., Chen L. Amperometric microbial biosensor for direct determination of organophosphate pesticides using recombinant microorganism with surface expressed organophosphorous hydrolase // Biosens. Bioelectron. - 2001. - V. 16. - P. 433.

335 Nakanishi K., Ikebukuro K., Karube I. Determination of cyanide using a microbial sensor// Appl. Biochem. Biotechnol. - 1996. - V. 60. - P. 97-104.

336 Nepomuscene N. J., Daniel D. and Krastanov A. Biosensor to detect chromium in wastewater // Biotechnol. & Biotechnol. Eq. 2007. V. 21. - №. 3. - P. 377-381.

337 Niazi J.H., Kim B.C., Ahn J.M., Gu M.B. A novel bioluminescent bacterial biosensor using the highly specific oxidative stress-inducible pgi gene // Biosens. Bioelectron. 2008. - V. 24. - № 4. - P. 670-675.

338 Niazi J.H., Kim B.C., Ahn J.M., Gu M.B. Recombinant microorganisms as environmental biosensors: pollutants detection by Escherichia coli bearing fabA'::lux fusions // Biosens Bioelectron. - 2008. - V. 24. - № 4. - P. 670-675.

339 Niazi J.H., Kim B.C., Gu M.B. Characterization of superoxide-stress sensing recombinant Escherichia coli constructed using promoters for genes zwf and fpr fused to lux operon // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2007. - V. 74. - № 6. - P. 1276-1283.

340 Niazi J.H., Kim B.C., Gu M.B. Characterization of superoxide-stress sensing recombinant Escherichia coli constructed using promoters for genes zwf and fpr fused to lux operon // Appl Microbiol Biotechnol. - 2007. - V. 74. - № 6. - P. 1276-1283.

341 Niazi J.H., Kim B.C., Ahn J.M., Gu M.B. A novel bioluminescent bacterial biosensor using the highly specific oxidative stress-inducible pgigQne II Biosens.Bioelectron. - 2008. - V. 24. - № 4. - P. 670-675.

342 Nirnmo D.R., Hansen D.J., Couch J.A., Cooley N.R., Parrish P.R., Lowe J.I. Toxicity of Arochlor-R 1254 and its physiological activity in several estuarine organisms // Arch. Environ. Contam. Toxicol. - 1975. - V. 3. - № 1. - P. 31-34.

343 Niu S.Y., Wang S.J., Shi C., Zhang S.S. Studies on the fluorescence fiber-optic DNA biosensor using p-hydroxyphenylimidazo[f]l,10-phenanthroline ferrum[III] as indicator // J. Fluoresc. - 2008. - V. 18. - № 1. - P. 227-235.

344 Norman A., Hansen L.H., S0rensen S.J. Construction of a ColD cda promoter-based SOS-green fluorescent protein whole-cell biosensor with higher sensitivity toward genotoxic compounds than constructs based on recA, umuDC, or sulA promoters // Appl. Environ. Microbiol.- 2005.-V. 71. P. 2338-2346.

345 Oda Y., Funasaka K., Kitano M., Nakama A., Yoshikura T. Use of a high-throughput umu-microplate test system for rapid detection of genotoxicity produced by

mutagenic carcinogens and airborne particulate matter carcinogens and airborne particulate matter // Environ. Mol. Mutag. - 2004. - V. 43. - № 1. - P. 10-19.

346 Ohe T., Watanabe T., Wakabayashi K. Mutagens in surface waters: a review // Mutat. Res. - 2004. - V. 567. - № 2-3. - P. 109-149.

347 Ohe T., Watanabe T., Wakabayashi K. Mutagens in surface waters: a review // Mutat. Res. 2004. - V. 567. - № 2-3. - P. 109-149.

348 Ohki A., Shinohara K., Ito O., Naka K., Maeda S. A BOD sensor using Klebsiella oxytoca AS1 // J. Environ. Anal. Chem. - 1994. - V. 56. - P. 261-269.

349 Okochi M., Mima K., Miyata M., Shinozaki Y., Haraguchi S., Fujisawa M., Kaneko M., Masukata T., Matsunaga T. Development of an automated water toxicity biosensor using Thiobacillus ferrooxidans for monitoring cyanides in natural water for a water filtering plant // Biotechnol. Bioeng. - 2004. - V. 87. - P. 905-911.

350 Olaniran A.O., Hiralal L., Pillay B. Whole-cell bacterial biosensors for rapid and effective monitoring of heavy metals and inorganic pollutants in wastewater // J. Environ.Monit. - 2011. - V.13.- № 10. - P.2914-2920.

351 Olaniran A.O., Motebejane R.M., Pillay B. Bacterial biosensors for rapid and effective monitoring of biodégradation of organic pollutants in wastewater effluents // J. Environ. Monit. - 2008. - V. 10. - № 7. - P. 889-893.

352 Oubinla A., Barceloz D., Marco M.-P. Effect of competitor design of immunoassay specificity: Development and evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay for 2,4-dinitrophenol // Anal. Chim. Acta. - 1999. - № 3. - P. 267 -279.

353 Ovbina A., Ballesteros B., Yalve R., Barcelo D., Marco M- P. Development and optimization of an indirect enzyme - linked immunosorbent assay for 4-Dinitrophenol. Application to the analysis of certified water samples // Biosens. Bioelectron. - 1998. - V. 13.-№8.-P. 869- 874.

354 Palchetti I., Mascini M. Nucleic acid biosensors for environmental pollution monitoring // Analyst. - 2008. - V. 133. - № 7. - P. 846-854.

355 Pedahzur R., Polyak B., Marks R.S., Belkin S. Water toxicity detection by a panel of stress-responsive luminescent bacteria // J. Appl. Toxicol. - 2004. - V. 24. - № 5.

-P. 343-348.

356 Pham H. and Parkinson J. S. Phenol Sensing by Escherichia coli Chemoreceptors: a Nonclassical Mechanism // J. Bacteriol. - 2011. - V. 193. - № 23. - P. 6597-6604.

357 Piletskaya E. V., Peletsky S. A., Sergeyeva A. V., El'skaya A. V., Sozinov A. A., Marty J. - L., Rovillon R. Thylakoid membranes - based test-system for detecting of trace quantities of the photosynthesis-inhibiting herbicides in drinking water // Anal. Chim. Acta. - 1999. - V. 391. - № 1. - P. 1 - 7.

358 Ptitsyn L.R., Horneck G., Komova O., Kozubec S., Krasavin E.A., Bonev M., Rettberg P. A biosensor for Environmental Genotoxin Screening Based on an SOS lux Assay in Recombinant Escherichia coli Cells // Appl. Environ. Microbiol. - 1997. - V. 63. -№ 11.-P. 4377-4384.

359 Puig D., Ruzgas T., Emneus J., Gorton L., Markovarga G., Barcelo D. Characterization of Tyrosinase-Teflon/Graphite Composite Electrodes for the Determination of Catechol in Environmental Analysis // Electroanalysis. - 1996. - V.8. -№ 10. - P. 885 -890.

360 Rainina E. I., Badalian I. E., Ignatov O. V., Fedorov A. Y., Simonian A. L., Varfolomeyev S. D. Cell Biosensor for Detection of Phenol in Aqueous Solutions // Appl. Biochem. Biotechnol. - 1996. - V.56. - № 2. - P. 117 - 127.

361 Ramanathan S., Ensor M., Daunert S. Bacterial biosensors for monitoring toxic metals // Trends Biotechnol. - 1997. - V.15. - №12. - P. 500-506.

362 Rameshkumar N., Gomez-Gil B., Spröer C., Lang E., Dinesh Kumar N., Krishnamurthi S., Nair S., Roque A. Vibrioplantisponsor sp. nov., a diazotrophic bacterium isolated from

a mangrove associated wild rice (Porteresiacoarctata Tateoka) // 2011. - V. 34. - № 7. - P. 487-493.

363 Ravikumar S., Ganesh I., Yoo I., Hong S.H. Construction of a bacterial biosensor for zinc and copper and its application to the development of multifunctional heavy metal adsorption bacteria //Process Biochemistry. 2012. - V. 47. - № 5. - P. 758765.

364 Rechnitz G.A. Biochemical electrodes using tissue slice I I Chem. Eng. News. -1978. -V. 56. - P. 16.

365 Reiss M., Tari A. & Hartmeier W. BOD-biosensor basing on an amperometric oxygen electrode covered by Lipomyces kononenkoae // Bioengineering. - 1993. - V. 9. - P. 87-94.

366 Ren S., Frymier P.D.The use of a genetically engineered Pseudomonas species (Shkl) as a bioluminescent reporter for heavy metal toxicity screening in wastewater treatment plant influent // Water Environ Res. - 2003. - V.75. - № 1. - P. 21-29.