Эффективность методов выявления возбудителя ящура и антител в продуктах убоя и патологическом материале тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.03, кандидат ветеринарных наук Никифоров, Виктор Викторович

• Никифоров, Виктор Викторович
• кандидат ветеринарных наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Никифоров, Виктор Викторович

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Общие сведения о ящуре.

1.2. Экономический ущерб при ящуре.

1.3. Источник инфекции при ящуре.

1.3.1. Продукты убоя как источник распространения ящура.

1.3.2. Роль вирусоносительства в эпизоотологии ящура.

1.3.3. Вирусоносительство у вакцинированных животных.

1.4. Наличие и сохраняемость вируса ящура в продуктах убоя животных.

1.4.1. Патоморфологические изменения при ящуре.

1.4.2. Наличие вируса ящура в продуктах убоя в различные периоды заболевания.

1.4.3. Сохраняемость вируса ящура в продуктах убоя животных.

1.5. Обнаружение вируса ящура в продуктах убоя.

1.5.1. Подготовка проб к исследованиям!.

1.5.2. Методы лабораторной диагностики ящура.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эффективность методов выявления возбудителя ящура и антител в продуктах убоя и патологическом материале»

Ящур - это высококонтагиозное вирусное заболевание парнокопытных животных. Для него характерна тенденция к широкому распространению и эпизоотическому течению. Жесткие карантинные меры по ликвидации ящура нарушают нормальную деятельность хозяйств и предприятий, затрагивают общественные, экономические и межгосударственные связи. Эпизоотии ящура не знают географических и климатических границ и наносят огромный экономический ущерб.

Актуальность темы

Успех организационных мер борьбы с ящуром во многом зависит от знания условий выживаемости вируса в продуктах убоя или в патологическом материале павших и вынужденно убитых животных, времени нахождения вируса в крови и тканях животных в различные стадии болезни. Кроме того, немаловажное значение имеет наличие и сохраняемость вируса у вакцинированных животных, контактировавших с больными.

Импортируемые продукты убоя животных, как правило, поступают в реализацию в замороженном состоянии, и если животное было убито в период болезни или вирусоносительства, то вирус ящура может сохраняться в органах и тканях в течение длительного времени и представлять эпизоотическую опасность [26, 82, 86,119,128,162].

С 2000 года в лабораторию ящура и везикулярных болезней для исследования на наличие вируса ящура или его антигена поступило более 1000 проб мясопродуктов (свинины и говядины), импортируемых в Россию в виде полутуш, субпродуктов, мяса на костях, шейки, ребер, мяса в блоках из стран, неблагополучных по ящуру. Одним из экспортеров мяса в Россию является Монголия, с 2000 года неблагополучная по ящуру типа О.

Ранее проблемой индикации вируса ящура в продуктах убоя животных занимался ряд исследователей. В частности, С.А. Цветковой (1972) был предложен метод биопробы на культуре клеток, основным недостатком которого является длительность получения конечного результата. При ретроспективной диагностике Л.Б. Мезвришвили (1988) была использована непрямая реакция иммунофлюоресценции для выявления постинфекционных антител в тканях и органах животных. Кроме того, для проведения индикации антигена вируса ящура в органах и тканях Т.В. Тюриной (1994) был предложен метод флюоресцентных зондов, требующий последующей идентификации инфекционного агента в реакции нейтрализации.

В настоящее время при лабораторной диагностике ящура в объектах ветеринарного надзора наибольшее признание получили такие методы, как быстрая и высокочувствительная полимеразная цепная реакция (ПЦР), иммуноферментный анализ (ИФА), позволяющие проводить прямую индикацию и специфическую идентификацию вирусного агента, реакция микронейтрализации (РМН) [54, 55, 56, 93,195].

Таким образом, изучение эффективности различных методов, позволяющих проводить индикацию и идентификацию возбудителя ящура в продуктах убоя и патологическом материале животных, а также изучение иммунобиологических свойств штаммов, циркулирующих в последнее время в неблагополучных по ящуру странах, остается актуальной и насущной проблемой в диагностике заболевания.

Цели и задачи исследований

Целью нашей работы явилась разработка схемы исследований для прямой индикации возбудителя ящура и противоящурных антител в продуктах убоя и патологическом материале от зараженных ящуром животных методами, которые позволили бы использовать наиболее вероятные с точки зрения обнаружения возбудителя ткани и органы и проводить диагностику в минимальные сроки.

Для выполнения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

- испытать различные методы очистки и концентрирования суспензии патологического материала для осуществления прямой индикации и специфической идентификации антигена вируса ящура в ИФА после экспериментального заражения животных;

- изучить возможность обнаружения генома вируса ящура в ПЦР в пробах тканей и органов и сравнить с прямой индикацей антигена в ИФА и вирусовыделением в культуре клеток;

- провести сравнительные исследования продуктов убоя до и после их созревания;

- исследовать продукты убоя после заражения животных эпизоотическим штаммом вируса ящура типа О №1964/Монголия/2004 и изучить его свойства;

- изучить возможность обнаружения противоящурных антител в продуктах убоя с помощью ИФА и РМН;

- исследовать продукты убоя, полученные от вакцинированных и затем зараженных ящуром животных, которые могут являться вирусоносителями;

- изучить и сравнить возможность обнаружения вирусного генома прямой индикацией антигена вируса ящура и противоящурных антител в пищеводно-глоточной жидкости (ПГЖ).

Научная новизна

Проведены исследования по обнаружению генома вируса ящура в продуктах убоя с помощью ПЦР.

Разработана схема очистки и концентрирования суспензии патологического материала для прямой индикации антигена вируса ящура.

Осуществлена прямая индикация и специфическая идентификация антигена вируса ящура в тканях животных методом ИФА без предварительной инокуляции чувствительных биосистем.

Проведены сравнительные исследования по обнаружению вирусного генома в ПЦР и антигена в ИФА в продуктах убоя до и после "созревания".

Представлена возможность выявления специфических противоящурных антител в продуктах убоя животных с применением ИФА и РМН.

Изучена возможность обнаружения возбудителя ящура и антител в продуктах убоя после экспериментального заражения вакцинированных животных.

Проведено исследование продуктов убоя в ПЦР, ИФА и РМН на разных стадиях заболевания, после экспериментального заражения животных эпизоотическим штаммом вируса ящура типа О №1964/Монголия/2004, и изучены его иммунобиологические свойства.

Проведена сравнительная оценка возможности обнаружения генома вируса ящура в ПЦР, антигена в ИФА и антител в ИФА и РМН в различных органах и тканях на разных стадиях заболевания после экспериментального заражения.

Установлена возможность обнаружения вирусного генома, прямой индикацией антигена вируса ящура и противоящурных антител в ПГЖ.

Практическая значимость работы

Полученные результаты исследований использованы при подготовке следующих документов:

- "Методические указания по отбору, консервированию и транспортировке проб патологического материала и продуктов убоя для лабораторной диагностики ящура", утвержденные директором ФГУ "ВНИИЗЖ" 29.09.2005 г.;

- "Методические указания по исследованию продуктов убоя животных при подозрении на ящур", утвержденные директором ФГУ "ВНИИЗЖ" 02.06.2005 г;

- штамм вируса ящура типа О №1964/Монголия/2004 депонирован в ФГУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (2004г.).

- проект "Правил профилактики и ликвидации ящура животных", который находится на рассмотрении в МСХ РФ;

- проект "Программы совместных действий государств- участников СНГ по профилактике и борьбе с ящуром в государствах Содружества" (20062008гг.), который находится на рассмотрении в Россельхознадзоре МСХ РФ.

Апробация работы

Материалы диссертации были доложены и опубликованы в сборнике Международной научной конференции «Актуальные проблемы инфекционной патологии животных», посвященной 45-летию ФГУ «ВНИИЗЖ» в 2003г.; Международной научной конференции молодых ученых «Проблемы мониторинга и генодиагностики инфекционных болезней животных» в ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных», г.Владимир, 2004г.; также докладывались на заседании Межправительственного совета по сотрудничеству в области ветеринарии СНГ (Республика Узбекистан) в 2006г. и на ученых советах ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» в 2001-2005 гг.

Публикация научных работ

По материалам диссертации опубликовано 5 научных работ.

Основные положения, выносимые на защиту: усовершенствованные методы очистки и концентрирования вируссодержащих суспензий из проб патологического материала;

- способы прямой индикации антигена вируса ящура в продуктах убоя животных;

- методы исследования продуктов убоя для обнаружения генома вируса ящура;

- обоснование наиболее вероятных органов и тканей зараженных ящуром животных для обнаружения возбудителя при лабораторной диагностике ящура;

- иммунобиологические свойства эпизоотического штамма вируса ящура типа О №1964/Монголия/2004;

- определение противоящурных антител в тканях и органах животных методами ИФА и РМН;

- исследование пищеводно-глоточной жидкости с применением ПЦР, ИФА и РМН.

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Никифоров, Виктор Викторович

4. ВЫВОДЫ

I. Установлена возможность обнаружения генома вируса ящура в тканях и iax животных с помощью ПЦР и показано, что данный метод более гвительный, чем прямая индикация антигена вируса ящура в ИФА и ;овыделение с использованием культур клеток.

I. Показано, что для прямой индикации антигена вируса ящура без зарительной постановки биопробы могут быть использованы гнтрированные методом ультрафильтрации суспензии из тканей и органов тных. Положительные результаты исследований органов и тканей в ИФА и на наличие антигена вируса ящура и вирусного генома свидетельствуют, робы получены от больных или переболевших ящуром животных.

Определена возможность обнаружения противоящурных антител с щью ИФА и РМН в продуктах убоя животных. Антитела выявляли только г заражения как интактных, так и предварительно иммунизированных •тных.

5. Установлено, что при положительных результатах анализа органов и 1Й на наличие противоящурных антител, в том числе без подтверждения штатами анализа на вирусный антиген или геном вируса ящура, продукты , полученные от невакцинированных животных, должны считаться зциально опасными в распространении ящура.

5. Показано, что для лабораторной индикации возбудителя ящура и ивоящурных антител в пробах патологического материала и продуктах животных целесообразно использовать следующие органы и ткани: iCTbie оболочки глотки, языка и пищевода, легкие, надпочечники, (алины, лимфатические узлы.

7. В процессе исследования продуктов убоя после заражения животных эотическим штаммом 0№1964/Монголия/2004 также были изучены его гтва и установлено, что этот штамм отличается от производственного [ма 0j№194 и степень нуклеотидных различий между ними составляет

14,35%. Изучение антигенного спектра штамма вируса ящура типа 0№1964/Монголия/2004 в РСК показало, что он отличается от производственных штаммов 0]№194 и Oi№1618 (R=ll%) и ранее установленных эпизоотических штаммов вируса ящура типа О, но более близок к штамму, выделенному в Таджикистане в 2001 - 2002 гг. (R= 38-40 %).

8. Полученные результаты по изучению свойств эпизоотического штамма вируса ящура типа 0№1964/Монголия/2004 дают основание предложить этот штамм в качестве нового производственного для приготовления вакцинных и диагностических препаратов.

9. Установлено, что пищеводно-глоточная жидкость пригодна для исследований методами ПЦР, ИФА и РМН для выявления генома вируса ящура, антигена, противоящурных антител и прижизненного установления факта переболевания животных ящуром.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Полученные результаты использованы при подготовке следующих документов, одобренных ученым советом и утвержденных директором ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»:

1. "Методические указания по отбору, консервированию и транспортировке проб патологического материала и продуктов убоя для лабораторной диагностики ящура" (утверждены 29.09.2005 г.).

2. "Методические указания по исследованию продуктов убоя животных при подозрении на ящур" (утверждены 02.06.2005 г.).

3. Штамм вируса ящура типа О №1964/Монголия/2004, который в антигенном отношении отличается от производственных штаммов (Oi№194, Oi№1618) и депонирован в ФГУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (2004г.).

4. "Правила профилактики и ликвидации ящура животных" (приложение «О порядке сбора, консервирования и доставки материалов для лабораторной диагностики ящура», одобрены ученым советом и находятся на рассмотрении в Россельхознадзоре МСХ РФ).

5. "Программа совместных действий государств - участников СНГ по профилактике и борьбе с ящуром в государствах Содружества" (дополнение в раздел 5.2. «Основные мероприятия на 2006-2008 гг.», одобрены Россельхознадзором МСХ РФ, представлены на 29-е заседание Межправительственного совета по сотрудничеству в области ветеринарии СНГ 19 апреля 2006 г., г.Ташкент, Республика Узбекистан).

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Никифоров, Виктор Викторович, 2006 год

1. Агабалов Г.П., Заграбян Л.И. О тканевых антителах при ящуре // Матер, науч. сес. по итогам исслед. работ АрмНИИЖиВ. Ереван, 1973. - С. 152-153.

2. Айзен М.С., Казанцева В.А., Дроздов С.Г. и др. Концентрирование вируса полиомиелита из воды на материале марки ФП // Вопр. вирусол. 1979. - № 5. -С. 554-558.

3. Айзен М.С., Пиле Э.Р. Обнаружение вирусов в пищевых продуктах // Вопр. вирусол.-1981.-№ 1.-С. 5-11.

4. Айзен М.С., Пиле Э.Р. Сохраняемость вирусов в продуктах питания // Гигиена и санитария. 1976. - № 10 - С. 75.

5. Андреев Е.В., Бойко А.А. Вирусоносительство при ящуре // Ветеринария. -1966.-№9.-С. 31-33.

6. Базаров М.А., Конюшкина Т.Б. Зависимость иммуноферментного анализа с Р лактамазанными конъюгатом от используемого субстрата // Актуальн. пробл. вет. вирусол.: Тез. докл. науч. конф., посвящен. 30 - летию ВНИЯИ. -Владимир, 1988.-Ч. 1.-С. 62-63.

7. Ашмарин И.П., Васильев Н.Н., Амбросов В.А. Быстрые методы статистической обработки и планирование .экспериментов. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1974. - 78 с.

8. Березин И.В. Экологическая эпизоотология диких теплокровных животных //Вестн. с.-х. науки. 1988. -№ 5. - С. 146- 151.

9. Бойко А.А., Шуляк Ф.С. Ящур: Биолого экономический аспект проблемы. -М: Колос, 1971.-352 с.

10. Брок Т. Мембранная фильтрация. М.: Мир, 1987. - 462 с.

11. Вишняков И.Ф. Диагностика вирусных болезней животных: состояние и перспективы // Вопр. вет. вирусол., микробиол., эпизооол.: Матер, науч. конф. ВНИИВВиМ. Покров, 1992. - Ч. 2. - С. 221-230.

12. Воробьева М.М., Блинова Н.М. Концентрация и очистка вирусов, вызывающих заболевание животных // Тр. ГНКИ. 1964. - Т. 12 - С. 341-347.

13. Воробьева М.М. Очистка лапинизированного вируса ящура // Вопр. вет. вирусол.-М., 1964.-Т. 1.-С. 190-195.

14. Гетманский О.И. Инфицированные продукты убоя источник распространения ящура // Сб. науч. тр. аспирантов КиргНИИЖВ. - Фрунзе, 1968.-Т. 2.-С. 116-118.

15. Гетманский О.И. Изучение сроков сохраняемости вируса ящура в условиях Чуйской долины Киргизской ССР: Автореф. дис. канд. вет. наук. Фрунзе, 1969. -19 с.

16. Головченко А.П. Динамика накопления вируса и вируснейтрализующих антител в крови и лимфе трахеального лимфопротока крупного рогатого скота при экспериментальном ящуре // Матер. 2 годичной науч. конф. ВИЭВ. - М., 1970.-С. 20-22.

17. Гринин А.С., Титов И.Н. Очистка, концентрирование и фракционирование вирусов животных. М.:. Колос, 1971.-240 с.

18. Гриценко А.И. Выделение вируса ящура со слюной у крупного рогатого скота//Ящур. Владимир, 1968. - С. 88-89.

19. Гриценко А.И. Выявление вируса ящура в культуре клеток СП при разных дозах заражения // Актуальн. пробл. вет. вирусол. Владимир, 1983. — С. 103.105.

20. Гуленкин В.М., Байбиков Т.З., Зинковский Ю.В. и др. Методическое руководство по определению экономического ущерба и эффективностипротивоэпизоотических мероприятий при особо опасных болезнях животных (группа А). Владимир, 1996. - 86 с.

21. Гусев А.А., Бурдов А.Н., Старов С.К. и др. Выделение вируса ящура из секретов, экскретов и крови крупного рогатого скота, зараженного в разные сроки после вакцинации // Актуальн. пробл. вет. вирусол. Владимир, 1987. - Ч. 2. - С. 33-35.

22. Гусев А.А, Захаров В.М, Рахманов A.M., Яременко Н.А. Профилактика ящура в Российской Федерации // Ветеринария. 2001. -№ 5. - С. 3 - 5.

23. Гусев А.А., Захаров В.М., Фомина Т.А., Щербаков А.В. Биологические свойства вируса ящура типа 0/1685/"Московский", выделенного у свиней // Сучасш ветеринарш та технолопчш аспекта свинарства: Матер, конф. Киев, 2002.-С. 9-10.

24. Гутник Б.Е., Генералов Н.Ф. Справочник по разделке мяса, производству полуфабрикатов и быстро замороженных готовых мясных блюд. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1984. - 344 с.

25. Диев В.И., Онуфриев В.П. Противоящурные антитела в органах и тканях иммунных ягнят // Матер, науч. производ. совещ. по оздоравливанию хозяйств от инфекц. и инваз. заболеваний животных. - Душанбе, 1971. — С. 5759.

26. Дукаценко В.Г. Экспертиза мяса и продуктов убоя при некоторых вирусных болезнях // Ветеринария. 1976. - № 12 - С. 84-87.

27. Джупина С.И., Свиридов А.А. К вопросу о роли вирусоносителей в эпизоотии вируса ящура // Сб. науч. работ Новосиб. НИВС. 1965. - Т. 2. - С. 73-77.

28. Дидовец С.Р. Бондаренко Г.Ф. Ящур. Киев: Урожай, 1974 - 215с.

29. Дрыгин В.В., Щербаков А.В, Перевозчикова Н.А, Гусев А.А. Использование метода секвенирования генома при изучении вируса ящура // Ветеринария. 1995.-№4.-С. 31-33.

30. Дубяга В.П., Каталевский Е.Е. Технология, развитие производства и свойства отечественных ультрафильтрационных и обратноосматических мембран // Журн. Всесоюз. хим. о-ва им. Д.И. Менделеева. 1987. - Т. 32, № 6. -С. 627-633.

31. Дытнерский Ю.И. Мембранные процессы разделения жидких смесей. М.: Химия, 1975.-229 с.

32. Егоров A.M., Осипов А.П., Дзантиев Б.Б. и др. Теория и практика иммуноферментного анализа. М.: Высш. шк., 1991. - 288 с.

33. Епифанов Г.Ф., Шалашов JI.B. Вирусоносительство у крупного рогатого скота при ящуре // Тр. Иркутской НИВС. 1976. - Т. 3. — С. 114-118.

34. Житенко П.В. Технология продуктов убоя животных. М.: Колос, 1984. -237 с.

35. Жукова И.Н., Онуфриев В.П. Изучение вирусоносительства у овец при ящуре // Актуальн. вопр. вет. вирусол. М., 1967. - Ч. 2. - С. 139-140.

36. Жукова И.Н. Изучение вирусоносительства у овец при ящуре: Автореф. дис. канд. вет. наук. Душанбе, 1971. - 20 с.

37. Замах В.П., Ермолаев Е.Г., Стенгревиц О.А. Технология производства и аппаратурное оформление получения биохимических реактивов и препаратов // Журн. Всесоюз. хим. о-ва им. Д.И. Менделеева. 1984. - Т. 29, № 6. - С. 61 -66.

38. Захаров В.М., Байбиков Т.З., Рахманов A.M. и др. Ящур у диких животных // Диагностика, профилактика и меры борьбы с особо опасными, экзотическими и зооантропозными болезнями животных: Сб. статей междунар. науч.-практ. конф. Покров, 2000. - С. 49 - 51.

39. Зограбян Л.И., Искандарян С.А., Арутюнова Г.М. К изучению продолжительности постинфекционного иммунитета у крупного рогатого скотаразных возрастных групп при ящуре // Матер, науч. сес. по итогам исслед. работ. АрмНИИЖиВ. Ереван, 1973. - С. 143-144.

40. Иммунологические методы исследований / Под ред. И. Лефковитса, Б. Перниса. М.: Мир, 1988. - 530 с.

41. Калитина Т.А. Разработка метода концентрации энтеровирусов при вирусологических исследованиях мяса // Вопр. вирусол. 1978. - № 5. - С. 621625.

42. Кленина Н.В., Лебедева Е.Н., Антонов B.C. Получение очищенных препаратов вируса ящура из различных животных тканей при помощи хлороформа // Вопр. вет. вирусол. М., 1964. - Т. 1 — С. 196 - 202.

43. Климов Н.М., Малахов Л.Г., Грибанов В.Н. Химический метод очистки и концентрации вируса ящура и испытание его антигенных и иммуногенных свойств//Тр. MB А. 1960. - Т. 30.- С. 180-182.

44. Кочемасова З.Н., Ефремова С.А., Рыбакова A.M. Санитарная микробиология и вирусология. -М.: Медицина, 1987. 352 с.

45. Кротков В.Г., Патрикеев В.Г. Вирусовыделение у овец при различных формах течения ящура // Актуальн. вопр. вет. вирусол.: Тез. докл. науч. -теорет. конф., ноябрь 1990 г. Владимир, 1990. - С. 21-22.

46. Кругликов Б.А., Седов В.А., Тарасенко Т.А. Основные факторы, влияющие на развитие и угасание эпизоотии ящура // Ветеринария. 1993. - № 11. - С. 24 -26.

47. Кругликов Б.А., Сухарев И.О., Седов В.А., Тарасенко Т.А. Вирусоносительство при ящуре //Ветеринария. 1997. - № 3. - С. 16-20.

48. Либерман Г., Вагнер С., Вацель В. Опыт определения концентрации вируса ящура физическим методом // СЭВ. Матер, симп. по пробл. "Профилактика и эффект, борьба с ящуром". Владимир, 1981.-С. 51.

49. Липатов Н.Н., Марьин В.А., Фетисов Е.А. Мембранные методы разделения молока и молочных продуктов. М.: Пищевая пром - сть, 1976. - 168 с.

50. Мезвришвили JI.Б. Выделение вируса ящура из органов и тканей экспериментально зараженных животных. // Актуальн. пробл. вет. вирусол. и микробиол.: Тез. докл. конф. молодых ученых. Владимир, 1987. - С. 55-56.

51. Методические указания по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура: Утв. Департаментом ветеринарии МСХ РФ 10.11.02. Владимир, 2002. -31 с.

52. Методические указания по индикации генома и штаммовой дифференциации вируса ящура методом полимеразной цепной реакции и секвенированием гена VP1: Утв. Департаментом ветеринарии МСХ РФ 21.02.97.-Владимир, 1997.

53. Методические указания по индикации генома вируса ящура с помощью полимеразной цепной реакции на основе амплификации консервативной области 3D гена: Утв. Департаментом ветеринарии МСХ РФ 21.02.97. — Владимир, 1997.

54. Мищенко В.А., Базаров М.А., Конюшкина Т.Б. и др. Иммуноферментный метод при диагностике ящура // Вопр. вирусол. 1991. - Ч. 4. - С. 341 - 342.

55. Мищенко В.А., Камалова Н.Е., Никешина Т.Б. и др. Иммуноферментный метод в диагностике респираторно-репродуктивного синдрома свиней // Вирусн. бол. с.-х. жив.-х: Тез. докл. науч.-практ. конф. Владимир, 1995. - С. 53.

56. Мищенко В.А., Тюрина Т.В., Базаров М.А. и др. Индикация вируса ящура в продуктах убоя животных // К новой стратегии борьбы с ящуром: Междунар. конф. Владимир, 1991.-С. 161-162.

57. Муравьев В.К., Онуфриев В.П. Постинфекционный и поствакцинальный иммунитет у овец при ящуре // Вопр. вет. вирусол. М., 1966. - 4.2. - С. 455 — 463.

58. Муравьев В.К., Никонов В.И., Гусев А.А.и др. Изучение противоящурного иммунитета у свиней // Ветеринария. 1978. - № 1. — С. 41 - 44.

59. Нагуманов Ф.М. О вирусовыделении при бессимптомном течении ящура у овец//Актуальн. вопр. вет. вирусол. М., 1967. - 4.2. - С. 140-141.

60. Оковытый А.С. Научные основы селекции производственных вакцинных штаммов вируса ящура // Пробл. инфекц. патол. с.-х. ж-ных: Тез. докл. конф. — Владимир, 1997. С. 45-47.

61. Первиков Ю.В., Эльберт Л.Б. Иммунные комплексы при вирусных инфекциях. М.: Медицина, 1984. - 158 с.

62. Петренко Б.Г., Андреев Е.В. Противоящурная кристаллвиолетовая вакцина // Науч. тр. УНИИЭВ. 1962. - Т. 28. - С. 5 - 26.

63. Петрянов И.В. Волокнистые фильтрующие материалы ФП. М.: Колос, 1968.-67 с.

64. Пилле Э.Р. Вирусы крупного рогатого скота и методы их выявления // Вопр. вирусол. 1975. - № 3. - С. 260-268.

65. Пономарев А.П. Механизм стабилизации и инактивации вируса ящура при воздействии физико-химических факторов: Автореф. дис. докт. биол. наук. — Владимир, 1996. 48 с.

66. Поплаухин С.Г., Епифанов Г.Ф., Шалашов J1.B. О продолжительности сохранения вируса ящура в крови животных, переболевших ящуром // Ветеринария. 1968. - №3. - С. 34 - 35.

67. Поплаухин С.Г. Жизнеспособность ящурного вируса в продуктах убоя // Сельское хоз-во Сибири. 1962. - № 9. - С. 65 - 66.

68. Поплаухин С.Г. О продолжительности выживания вируса в продуктах убоя крупного рогатого скота // Ветеринария. 1961. № 10. С. 70 71.

69. Поплаухин С.Г. О сохраняемости вируса в субпродуктах и эмбрионе крупного рогатого скота, больного ящуром // Сб. науч. работ Алтайской НИВС. 1969.-Вып. 2.-С. 120-122.

70. Простяков А.П., Онуфриев В.П., Лубошников А.Г. и др. Разработка оптимальных условий очистки лапинизированного вируса ящура // Вопр. вет. вирусол. М., 1966. - Т. 2. - С. 24 - 30.

71. Рахманов A.M. Патологоанатомические изменения у крупного рогатого скота при экспериментальном заражении вирусом ящура Азия 1 // К новой стратегии борьбы с ящуром: Тез. докл. междунар. конф. - Владимир, 1991. — С.24-25.

72. Рахманов A.M., Бреславец В.В., Дороговцев А.А. и др. Патоморфология и дифференциальная диагностика ящура у свиней // Диагн., патоморф., патогенез и профилакт. болезней в пром. животноводстве: Межвуз. науч. сб. Саратов, 1990.-4.2.-С. 12-13.

73. Рахманов A.M., Жучкова Л.Г., Лядский М.М. и др. Развитие патоморфологических изменений у овец при ящуре // Патоморф., патогенез и диагн. болезней с.-х. животных: Науч. Тр. ВАСХНИЛ. М.: Колос, 1980. - С. 148-150.

74. Ререр X. Ящур / Пер. с нем Г. А. Сурковой; под ред. П. В. Малярца. М.: Колос, 1971.-314с.

75. Рожанская Т.Н., Аверьянова Е.В., Андреева Т.В. и др. Использование ультрафильтрации в процессах выделения ингибиторов ферментов // Тез. докл. всесоюз. конф. по мембранным методам разделения смесей. Владимир, 1981. -С. 208-209.

76. Салажов Е.Л. Вакцинопрофилактика и диагностика ящура крупного рогатого скота // Курской биофабрике и агробиологической пром.-ти России — 100 лет: Тез. докл. науч. произв. конф. - Курск, 1996. - С. 249 - 255.

77. Сальников М.Д., Поплаухин С.Г. Роль реконвалесцентов в эпизоотии ящура // Сб. науч. работ Алтайской НИВС. 1972. - Вып. 3. - С. 107-109.

78. Санитарный кодекс наземных животных МЭБ. 14 изд. Париж, 2005. - С. 114-126.

79. Саркисян Р.А. Течение и профилактика ящура у овец // Изв. с.-х. наук. -Арм. ССР, 1974.-№ 10.-С. 59-63.

80. Саркисян Р.А., Хухоров В.М., Пронина Н.А. Выявление вируса ящура в некоторых секретах, экскретах и в крови у экспериментально инфицированных овец//Ящур. Владимир, 1974. - Т. 2. - С. 134.

81. Свиридов А.А. О вирусоносительстве при ящуре // Ветеринария. 1953. -№8.-С. 18-19.

82. Семенов В.И. Вопросы ящура: ветеринарные службы предлагают // Главный зоотехник. 2004. - №6. - С. 9 -10.

83. Сергеев В.А. Размножение вирусов животных в культуре ткани // Матер. Всесоюз. конф. по вопр. вет. вирусол. М., 1964. - С. 54 - 56.

84. Сергеев В.А. Размножение вирусов животных в культуре ткани: Автореф. дис. докт. биол. наук. М., 1967. - 30 с.

85. Сибгатулин Р.С., Равилов А.З. Динамика накопления и свойства вируснейтрализующих антител у крупного рогатого скота после вакцинации // Уч. зап. КВИ.- 1975.-Т.19.-С. 15-19.

86. Смертин В.П., Обидор В.Л. Роль вирусоносительства при возникновении вспышек ящура в условиях Новосибирской области // Науч. тр. ин-та. эксперим. ветеринарии Сибири и Дал. Востока. 1979. - Вып. 3. - С. 17-18.

87. Собко А.И., Прохоров В.Н. Методы идентификации штаммов вируса ящура//Ветеринария. 1971.-№5.-С. 110-113.

88. Собко А.И., Цветкова С.Н., Гриценко А.И. и др. Выявление вируса ящура в продуктах убоя // Ветеринария. 1973. - № 9. - С. 40-41.

89. Спирин В.К., Глобенко Л.А., Кремечугская С.Р. Методы диагностики болезней с везикулярным синдромом // Соврем, аспекты вет. патологии ж-ных: Матер, конф., посвящен. 40-летию ВНИИЗЖ. Владимир, 1998.- С. 71-80.

90. Способ очистки биологических жидкостей: А. с. 880441 СССР, МКИ В 01 13/00/ Г.А. Ягодин, Ю.М. Лопухин, Е.В. Юртов, А.З. Граф.- 4 с.

91. Справка об оценках последствий эпидемии ящура в Великобритании и мерах правительства по их устранению. / Б.м. /, /Б.г./. - 2 с. - Preprint.

92. Сюрин В.Н. Частная ветеринарная вирусология: Справ, кн. М.: Колос, 1979.-472 с.

93. Текерлеков П., Кунев Ж. Устойчивост на шапния вирус в продукта от животинеки произход: Обзор. София, 1984. - 76с.

94. Тихоненко Т.И. Методические основы биохимии вирусов. М.: Медицина,1973.-382 с.

95. Толокнов А.С., Дудников А.И., Рыбаков С.С. и др. Взаимодействие вируса ящура с клетками в организме морских свинок // Пробл. инфекц. Патологии с.-х. животных: Тез. докл. конф. Владимир, 1997. С. 39-40.

96. Узюмов B.JI. Ультраструктура и свойства вируса ящура. Фрунзе: Кыргызстан, 1970. - С. 73 - 79.

97. Усович А.Т., Лебедев П.Т. Применение математической статистики при обработке экспериментальных данных в ветеринарии. — Омск, 1970.

98. Фомина Т.А., Гусева Е.В. Лабораторная диагностика ящура и других болезней, протекающих с везикулярным синдромом: Обзор лит.-Владимир: ВНИИЗЖ, 1995.-43 с.

99. Хухоров В.М., Пронина Н.А., Гетманский О.И. и др. Экспериментальное изучение вирусоносительства при ящуре типа О // Актуальн. пробл. вет. вирусол.: Тез. докл. к конф. Владимир, 1978. - С. 164-166.

100. Цветкова С.А. Обнаружение вируса ящура в продуктах убоя животных: Автореф. дис. канд. вет. наук. Покров, 1972. - 16 с.

101. Цветкова С.А. Результаты исследований по обнаружению вируса ящура в продуктах убоя овец и свиней // Ящур. Владимир, 1970.- С. 79-80.

102. Цветкова С.А., Собко А.И. Результаты исследований по обнаружению вируса ящура в продуктах убоя крупного рогатого скота // Ящур. Владимир,1974. Т. 2. С. 144-145.

103. Черняев Ю.А. Разработка методов ускоренной идентификации вируса ящура: Автореф. дис. докт. вет. наук. Покров, 1977. - 34 с.

104. Черняев 10. А., Собко А.И. Реакция пассивной гемагглютинации вируса ящура // Ветеринария. 1972. - № 1. - С. 102-104.

105. Шажко Ж.А. Антитела и антигены для лабораторной диагностики ящура: ГОСТ 29312-92. М.: Изд-во стандартов, - 1992.- 10 с.

106. Шажко Ж.А., Данилюк В.Н. Оптимизация условий проведения ИФА при титровании антигенов вируса ящура // Вирусн. и микробн. болезни ж-ных.: Сб. науч. тр.- Владимир, 1995. С. 97-100.

107. Шажко Ж.А., Мищенко В.А., Маслова Н.С. и др. // Матер. 2-го симпоз. специалистов стран-чл. СЭВ по пробл. "Профилакт. и эффективная борьба с ящуром, а также создание высокоэффективных противоящурных вакцин". — София, 1998.-С. 125-131.

108. Шажко Ж.А., Мищенко В.А., Шуть Н.Н. и др. Оптимизация иммуноферментного метода на фильтровальных мембранах для выявления вируса ящура и протвоящурных антител // Бюл. ВИЭВ. 1985. - Вып. 58.- С. 6267.

109. Шажко Ж.А. Обоснование методических основ современных схем лабораторной диагностики ящура и других везикулярных болезней // Соврем, аспекты вет. патологии, ж-ных: Матер, конф., посвящен. 40-летию ВНИИЗЖ. -Владимир, 1998.- С. 28 29.

110. Шахгильдян И.В., Михайлов М.И., Онищенко Г.Г. Парентеральные вирусные гепатиты (эпидемиология, диагностика, профилактика). М.: ГОУ ВУНМЦМЗ РФ, 2003. - С. 98 - 124.

111. Шесточенко М.А. Люминесцентная микроскопия при вирусных инфекциях // Ветеринария. 1966. -№ 6. - С. 12-15.

112. Щербаков А.В., Андреев В.Г., Дрыгин В.В., Гусев А.А. Молекулярная эпизоотологя ящура в России и странах СНГ // Аграрная Россия. 2002, №2. -С. 8-11.

113. Эрнст Б., Тесман Д. Иммуногистология. Иммунологические методы / Под ред. X. Фримеля. -М.: Мир, 1979. С.373 -413.

114. Яременко Н.А., Хухоров В.М., Пронина Н.А. Выделение ящура больными свиньями // Актуальн. пробл. вет. вирусол. Владимир, 1986. - С. 148-149.

115. Яременко Н.А., Пронина Н.А. Эпизоотическое значение инфицированных вирусом ящура мясных продуктов // Актуальн. вопр. вет. вирусол. Владимир, 1976.-4.1.-С. 183-185.

116. Abu-Elzein Е.М.Е., Crowther J.R. Differentiation of FMD virus strains using a competition enzimelinked immunosorbent assay // J. Virol. Methods.-1982.-V.3 -P. 355-365.

117. Armstrong R.M., Barnett I.T.R. An enznsyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection and quantification of antibodies against swine vesicular disease virus (SVDV) // J. Virol. Methods. 1989. - V. 25, № 1. - P. 71-78.

118. Bachrach H.L., Galliz J.J., Hess W.R., Patty R.E. A plaque assay for foot and mouth disease virus and kinetics of virus reproduction // Virology. 1957. - V. 4, № 2. - P. 224-236.

119. Baibikov T.Z., Gusev A.A., Zakharov V.M., Rakhmanov A.M. Recent FMD outbreaks in the Russian Federation // FMD Newsletter. 1996. - V. 1, №4. - P. 7-8.

120. Barya M.A., Afzal H. Persistence of foot and mouth disease in lymf nodes and blood of experimentally infected buffalo-calves in West Pakistan // Res. Vet. Sci. -1969.-V. 10, №4.-P. 321-325.

121. Baumgarten A. Viral immunodiagnosis // The Yale J. Biol, and Med. 1980. -V. 53.-P. 71-83.

122. Bekkum J.G. van, Straver P.J., Bool P.H., Frenkel S. Donnes complementaries sur la persistance du virus aphteux infectant chez des bovins exposes a des souches du virulent//Bull. Off. Intern. Epizoot. 1966.- V. 65, № 11-12.-P. 1949-1965.

123. Bekkum J.G. van, Frenkel H.S., Frederiks H.H.I., Frenkel S. Observations on the carrier state of cattle exposed to foot-and-mouth disease virus // Tijdschr. Diergeneesk. 1959. - Bd 84, № 20. - P. 1159 - 1164.

124. Bouma A., Dekker A., de Jong M.C.M. No foot-and-mouth disease virus transmission between individually housed calves // Vet. Microbiol. 2004. - V. 98. -P. 29-36.

125. Brooksby J.B. Symp. Series Immunobiol. Standart.- Basel etc, 1968. V.8, P.ll.

126. Brooksby J.B., Gallowey I.A. Observations sur la distribution et la determination des types immunologiques du virus en rapport avec les etudesСepizootologiques sur la fievre aphteuze // Bull. Off. Intern. Epizoot. 1958. - V. 50. — P. 509-516.

127. Buckley L.S., Osborn R.W., Pereira H.G. Laboratory diagnosis of foot-and-mouth disease and swine vesicular disease // Bull. Intern. Epizoot. 1975. - V. 83. -P. 123-129.

128. Buroous R. The persistence survival of foot-and-mouth disease virus in sheep • // J. Hyg. Camb. 1968. - V. 66, № 4. - P. 663-640.

129. Buroous R. Stadies on the carrier state of cattle expozed to foot-and-mouth disease virus // J. Hyg. Camb. 1966. - V. 64, № 1. - P. 81-90.

130. Carpenter Т.Е., Thurmond M.C., Bates T.W. A simulation model of intraherd transmission of foot-and-mouth disease with reference to disease spread before an•• after clinical diagnosis // J. Vet. Diagn. Invest. 2004. -V. 16. - P. 11-16.

131. Catalog Handbook of Fine Chemicals "Aldrich" 1986-1987, USA. 306 p.

132. Clavijo A., Wright P., Kitching P. Developments in diagnostic techniques for differentiating infection from vaccination in foot-and-mouth disease // Vet. J., 2004. -V. 167.-P. 9-22.

133. Cottral G.E., Bachrach H.L. Foot and mouth disease viraemia // Proc. Annu. Meet. USLSA. 1969. - V. 72. - P. 383 - 399.

134. Cottral G.E., Cailiunas P., Camtion R.G. Detection survival of foot-and-mouth disease virus limf nodes of cattle throughout course of infection // Proc. Annu. Meet.

135. USLSA. 1963. - V. 67. - P. 463 - 472.

136. Cottral G.E., Cox B.F., Baldwin D.E The survival of foot-and-mouth disease virus in cured and uncured meat // Amer. J. Vet. Res. 1960. - V. 21, № 81. - P. 288297.

137. Cox B.F., Cottral G.E., Baldwin D.E. Fuzer studies on the survival of foot-and-mouth disease virus in cured and uncured meat // Amer. J. Vet. Res. 1961. - V. 22, № 87. - P. 224-226.

138. Crowther J.R., Abu-Elzeine E.M.E. Application of the enzyme-linked immunosorbent assay to the detection and identification of foot-and-mouth disease virus // J. Hyg. Camb. 1979. - V. 83. - P. 513-519.

139. De Diego M., Brocchi E., Mackay D.K.J., De Simone F. The non-structural polyprotein 3 ABC of FMD as a diagnostic antigen in ELISA to differentiate infected from vaccinated cattle // Arch. Virol.-1997.-V. 142, N 10. P. 2021-2033.

140. Dekker A., Gijsen E. The possible use of native foot-and-mouth disease nonstructural protein ЗА in a serologikal screening test // Vet. Q. 1998.- V.20, Suppl 2. P. S27-S28.

141. De Mello P.A., Honigman M.N., Fernandes M.V. Supervivencia en bovinos del virus modificado de la fievre aftoza // Proc. 5th Congr. Panamer. Vet. Med. Zootech. 1967. - V. 1. - P.58-68.

142. Dhenin Le., Dhenin Lo., Choay J., Thely M. Contribution a l'etude de la septecimie virale au cours des la fievre aphteuse du coboaue et du bovine // Arch, exp Vet. Med. 1961.-V. 15, №2.-P. 267-271.

143. Dhennin L., Froun A., Gioquel L. et al. Risque de dissemination du virus afteuzpar la charcuterie crue //Bull. Acad. Vet. France 1980. - V. 53. - P. 315-322.

144. Disease Information O.I.E. 2005. -V. 18, № 12. - P. 90-91

145. Donn A., Martin L.A., Donaldson A.I. Evaluation of a PCR method fo the detection of persistent FMD in carrier cattle // Europ. Commiss. Control FMD: Sess. Res. Group Stand. Techn. Comm. Vienna, Austria, 19-22 Sept. 1994. Rome, 1994.-P. 16-19.

146. Economic evaluation of foot-and-mouth disease: final report. Ireland, 2002. -124 p.

147. Economic evaluation of foot-and-mouth disease: final report. United Kindom, 2002. - 125 p.

148. El-Shehawy L.E., El-Kilany S., Daoud A.M. 3ABC ELISA for the diagnosis of FMD in Egiptian sheep // Europ. Commiss. Control FMD: Open Sess. Res. Group Stand. Techn. Control FMD. Chaina, Crete (Geece), 12-15 Oct. 2004. P. 52.

149. Ferris N.P., Donaldson A.J. An enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of vesicular stomatitis virus antigen // Vet. Microbiol. 1988. - V. 18, № 3/4. - P. 243-248.

150. Foster M.} Cook A., Cedillo L., Parkhouse R.M. Serological and cellular immune responses to non-structural proteins in animals infected with FMDV // Vet. Q. 1998.- V.20, Suppl 2. - P. S28 - S30.

151. Gallis J.J., Mc. Kercher P.D. Dissemination of FMDV through animal product // Bovin. Pract. 1980. - № 15. - P.l 70 - 174.

152. Gailiunas P., Cottral G.E. The occurrence and survival of foot-and-mouth disease virus in bovin synovial fluid // Bull. Off. Intern. Epizoot. 1964. - V. 61, №1.2.-P. 1-14.

153. Gessler A.E., Bender C.E., Parkinson M.C. A new and rapid method for isolating viruses by selective flluorocarbon de proteinization // New York Acad. Sci. 1956.-V. 18.-P. 707-718.

154. Gibson C.P., Donaldson A.I. Exposure of sheep to natural infection of foot-and-mouth disease virus // Res. Vet. Sci. 1986. - V. 41. - P. 45-49.

155. Gomes I., Monteiro E.M., Darsie G.C. et al Supervivencia do virus da fiebre aftosa tipo Oi em carcacas de ovinos infectados experimentalmente, antes e apos о processo de maturacao // Bol. Centr. Panam. Fiebre Aftosa. 1994. -V. 60. - P. 4959.

156. Growther J.R., Abu-Elzien E.M.E. Application of the enzyme linced immunosorbent assay to the delection and identification of FMD virus // J. Hyg. Camb.-1979.-V. 83.-P. 513-519.

157. Gruia M., Danes M., Borca M. Liguid phase blocking ELISA in FMD antibodydetection // Stud, and Res. Vet. Med. 1995. - N 3. -P. 22-25.

158. Haas В., Sorensen K.J. Comparison of ELISAs for the differentiation of infection from vaccination by detection of antibodies to the non-structural protein

159. ЗАВС of foot-and-mouth disease virus // Europ. Commiss. Control FMD: Sess. Res. Group Stand. Techn. Comm. EU FMD. Cesme, Izmir, Turkey, 17-20 Sept. 2002. -Rome, 2002.- P. 248-253.

160. Hamblin C., Armstrong R.M., Hedger R.S. A rapid enzymlinked immunosorbent assay for the detektion of foot-and-mouth disease virus in epithelial tissues // Vet. Microbiol. 1984. - V. 9, № 5. - P. 435-443.

161. Have P. An assessment of guidelines for treatment of meat from a FMD vaccination zone // Europ. Commiss. Control FMD: Sess. Res. Group Stand. Techn. Comm. EUFMD. Gerzensee, Berne, Switzerland, 16 19 Sept. 2003. - P. 149-152.

162. Hess W.B., Bachrach H.L., Galliz J.J. Persistence of foot-and-mouth disease virus in bovin kidneys and blood as related to the occurrence of antibodes // Amer. J. Vet. Res. 1960.-V. 21. - P. 1104-1106.

163. Ivonne L. Archetti, Amadori M., Donn A. et al. Detection of FMD virus-infected cattle by assement of antibody response in oropharyngeal fluids // J. Clinical Microbiol. 1995. - V. 33. - P. 79- 84.

164. Kaaden O., Eissner G., Bohm H.O. Untersuchungen uber MKS-Virus dauerausscheider bei Vakzinierten und experimentelle infizierten Rindern // Zbl. Vet. Med. R.B. 1970. - Bd 17, H. 4. - S. 486-496.

165. Kapil S., Ahuja K.L., Prasad S. Persistence of foot-and-mouth disease virus type Asia-1 in secretions of vaccinated and unvaccinated calves folowing experimental infection // Rev. Sci. Techn. Off. Intern. Epizoot. 1986. - V. 5, № 3. -P. 715-721.

166. Kitching R.P. Problems of diagnosis of foot-and-mouth disease in domestic animals // FMD: Control strategies: Proc. Int. Sump. 2-5 June 2002 Lyons, France. Paris etc, 2002. - P. 353 - 359.

167. Korn G. Experimented Untersuchungen zum Virusnachweis im Inkulationsstadium der Maul-und-Klauenseuche und zu ihrer Pathogenese // Arch, exp. Vet. Med. 1957. - Bd 11, № 4. - S. 637-639.

168. Kunter E. Die Tenazitat der Maul-und-Klauenseuche-Virus im Zentralnervensystem experimentell infizierter Rinder // Arch. exp. Vet.-med. 1958. -Bd. 12,H. 6.-S. 841-860.

169. Locher F., Suryanarayana V.V.S., Tratschin J.D. Rapid detection and characterization of foot-and-mouth disease virus by restriction enzyme and nucleotide sequence analysis of PCR products // J. Clin. Microbiol. 1995. - V. 33, № 2. - P. 440-444.

170. Lubroth J., Brown F. Identification of native foot-and-mouth disease virus nonstructural protein 2C as a serological indicator to differentiate infected from vaccinated livestock // Res. Vet. Sci. 1995. - V. 59, N 1. - P. 70-78.

171. Mackay D.K.J. Differentiating infection from vaccination in foot-and-mouth disease // Vet. Q. 1998.- V.20, Suppl 2. - P. S2 - S5.

172. Mackay D.K.J., Forsyth M.A., Davies P.R. et al. Differentiating infection from vaccination in foot-and-mouth disease using a panel of recombinant, non-structural proteins in ELISA // Vaccine. 1998. - V.l6, N 5. - P. 446-459.

173. Mackay D.K.J., Forsyth M.A., Davies P.R., Salt J.S. Antibody to the nonstructural proteins of foot-and-mouth disease virus in vaccinated animals exposed to infection // Vet. Q. 1998.- V.20, Suppl 2. - P. S9 - SI 1.

174. Malirat V., Bergmann I.E., Neitzert E. et al. Detection of cattle exposed to foot-and-mouth disease virus by means of an indirect ELISA test using bioengineer nonstructural polyprotein 3ABC // Vet. Q. 1998. - V. 20, Suppl. 2. - P. S24 - S26.

175. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals O.I.E. Paris, 2004.-V. l.-P. 110-118.

176. McVicar J.W., Sutmoller P. Foot-and-mouth disease: the agar gel diffiizion precipition test for antibody to virus infection-associated (VIA) antigen as a tool for epizootologic surveys // Amer. J. Epidemiol. 1970. - V. 92, № 4. - P. 273-278.

177. McVicar J.W., Graves J.H., Sutmoller P. Growth of foot-and-mouth disease virus in the bovine pharynoc // Proc. Meet. USA Anim. Helth Assoc. 1970. - V. 74. - P. 230-234.

178. Meier F. Duration of persistence of foot-and-mouth disease virus in and its excretion by infected pigs // Mh. Tierheilk. 1959. - Bd 11. - S. 109-123.

179. Moonen P., Boonstra J., Hakze van der Honing R. et al. Validation of LightCycler-based revers transcription polymerase chain reaction for the detection of foot-and-mouth disease virus //J. Virol. Meth. 2003. - V. 113. - P. 35-41.

180. Ф 200. Pages W.H. La importancia de las areas libres de fiebre aftosa para los paises impotadores de productos у subproductos pacuarios // Rev. Sci. Off Intern. Epizoot. -* 1982.-V. 1,№3. P. 741-772.

181. Parida S., Paton D., Cox S. et al. Secretory Ig A as an indicator of oropharyngeal FMDV replication // Europ. Commiss. Control FMD: Open Sess. Res. Group Stand. Techn. Control FMD. Chaina, Crete (Geece), 12-15 Oct. 2004. P. 57.

182. Paton D. J., Parida S., Anderson J. Detection of FMD infection in vaccinated animals // Europ. Commiss. Control FMD: Sess. Res. Group Stand. Techn. Comm. EUFMD. Gerzensee, Berne, Switzerland, 16-19 Sept. 2003. P. 44-51.

183. Perry B.D., Randolf T.F. The economics of foot-and-mouth disease its control and its eradication // FMD: Control Strategies: Proc. Int. Sump. 2-5 June 2002 Lyons, France. Paris etc, 2002. - P. 23 - 41.

184. Prasad J.I., Kumar S. Persistence of foot-and-mouth disease virus type "Asia -1" istades in the excretions and secretions of experimentally infected cattle // Indian J. Anim. Sci. 1981. - V. 51, № 9. - P. 834-837.

185. Rasmussen T.B., Uttenthal A., de Strieker K. et al. Development of a novel ® quantitative real-time RT-PCR assay for the simultaneous detection of all serotypesof foot-and-mouth disease virus // Arch. Virol. 2003. V.148. - P. 2005-2021.

186. Reid S.M., Ferris N.P., Hutchings G.H., Alexandersen S. Diagnosis of foot-and-mouth disease virus by automated RT-PCR // Europ. Commiss. Control FMD: Sess. Res. Group Stand. Techn. Comm. EU FMD. Cesme, Izmir, Turkey, 17-20 Sept. 2002.-P. 203-209.

187. Richman D.D, Cleveland P.H., Redfield D.C. et. al. Rapid viral diagnosis // J. Inf. Dis. 1984. - V. 149, № 3. - P. 298-310.

188. Rohrer H., Oiechnowitz A.F. Maul-und-Klauenseuche. Jena; Fischer, 1980. -708 S.

189. Rosado J. M.M. Papel de las canales subproductos del cerdo en la difusion de la fiebre aftosa//HygiaPecoris. -1981. V.3,№ l.-P. 173-176.

190. Ryan E., Durand S., Brownlie J., Alexandersen S. The pathogenesis of FMD in young lambs // Europ. Commiss. Control FMD: Open Sess. Res. Group Stand. Techn. Control FMD. Chaina, Crete (Geece), 12 15 Oct. 2004. - P. 38.

191. Salt J.S. The carrier state in foot-and-mouth disease. An immunologikal rewiev // Br. Vet. J. - 1993. - V. 149. - P. 207-223.

192. Sammin D., Paton D., Hutchings G. et al. Serological responses in relation to vaccination and infection in Zimbabwe cattle following outbreaks of FMD // Europ.

193. Commiss. Control FMD: Open Sess. Res. Group Stand. Techn. Control FMD. • Chaina, Crete (Geece), 12-15 Oct. 2004. P. 47.

194. Savi P., Baldelli В., Morozzi A. Presence et some persistence du virus aphteux dans les viandes de porcins et de bovins et dans leurs produits derives // Bull. Off. Intern. Epizoot. 1962. - V. 57, № 5-6. - P. 853-890.

195. Sharma S.K., Murty D.K. Foot-and-mouth disease in sheep: pattern of virus excretion and distribution in the experimentally infected animals // Indian J. Anim. Sci. 1981. - V. 51, № 1. - P. 61-66.

196. Shen F., Chen P.D., Walfield A.M. et al Differentiation of convalescent animals from those vaccinated against foot-and-mouth disease by a peptide ELISA //

197. Vaccine. 1999. - V.17, N 23-24. - P. 3039 - 3049.

198. Shin J.-H., Sohn H.-J., Choi K.-S. et al. Identification and isolation of foot-and-mouth disease virus from primary suspect cases in Korea in 2000 // J. Vet. Med. Sci. -2003.-V. 65, № l.-P. 1-7.

199. Skinner H.H., Henderson W.M., Brooksby J.B. The use of unveaned whit mice in foot and mouth disease research // Nature. 1952. - V. 169. - P. 794 - 799.

200. Sutmoller P., Gaggero C.A. Foot-and-mouth disease carriers // Vet. Rec. -1965. V. 77, № 33. - P. 968-969.

201. Terpstra C. Pathogenesis of foot-and-mouth disease in experimentally ifected pigs // Bull. Off. Intern. Epizoot. 1982. - V. 77, № 5-6. - P. 859-874.

202. Terreran M.T., Netto P. Observacoes sobre a persistencia do virus de febre • aftosa em orgaos de suinos inoculados experimentalmente // Biologico. 1983. - V.49,№9-10.-P. 253-254.

203. Tewari S.C., Kant R., Prasad S. et.al. A note on the use of bovine kidney cells culture for recovery of foot-and-mouth disease virus from field samplex // Bull. Off. Intern. Epizoot. 1980. - V. 92, № 2-4. - P. 167-169.

204. Trautman R., Bennet C.E. Neutralisation and protection bioassays for foot-and-mouth disease virus // FAMD Bull. -1978. № 5. - P. 23.

205. Uhlman W. Die Persistent des Maul-und-Klauenseuche-Virus in Fleisch geschlachteter naturlich und experimentell infizierter Rinder und Schweine // Bull. Off. Intern. Epizoot. 1962. - V. 57, № 5-6. - P. 824-847.

206. Waldman O., Reppin N. Die Dauer der Infektiositat der Mundschleimhaut bei der Maul-und-Klauenseuche-Virus des Rindes // Arch. Wiss. Prakt. Tierhield. 1927. - Bd. 55. - S. 407-429.

207. Waldman O., Trautwein K., Pyl W. Die Persistent des Maul-und-Klauenseuche-Virus im Korper Durchseuchter Tiere und diene Ausscheidung // Zbl. I. Orig. 1955. - Bd. 162, № 4. - S. 230-238.

208. Wesslen Т., Albertson P.A., Philipson L. Concentration of animal viruses using two phase systems of aqueous polymer solutions // Arch. ges. Virusforsch. -1959. V. 9, № 4. - P. 510 - 520.

209. Wisniewski J. The appearence and survial of foot-and-mouth disease virus in bovin carcasses of diseased animals // Bull. Inst. Vet. in Pylawy. 1963. - V. 7, № 4. -P. 57-56.

210. Yadin H. Small ruminants as FMD virus carriers // Europ. Commiss. Control FMD. Rep. Res. Group Stand. Tech. Comm., Vladimir, Russian Federation, 20-22 Sept., 1995.-Rome, 1995. App. 3. - P. 26-32.

211. Yang P.C., Chu R.M., Chung W.B., Sung H.T. Epidemiological characteristics and financial costs of the 1997 foot-and-mouth disease epidemic in Taiwan // Vet. Rec. 1999. - V. 145, № 25. - P.731 - 734.

212. Zhang Z., Alexandersen S. Detection of carrier cattle and sheep persistently infected with foot-and-mouth disease virus by a rapid real-time RT-PCR assay // J. Virol. Meth. 2003. - V. 111. - P. 95-100.