Диагностика и мелиоративная корректировка экологического состояния антропогенно-нарушенных почв по комплексу микробиологических показателей тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, доктор наук Поляк Юлия Марковна

• Поляк Юлия Марковна
• доктор наук
• 2025

Оглавление диссертации доктор наук Поляк Юлия Марковна

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Деградация почв, как результат антропогенного воздействия

1.2. Изменение состава микробных популяций в загрязненных экосистемах

1.3. Микроорганизмы - деструкторы загрязняющих веществ

1.4. Биоремедиация загрязненных экосистем

1.5. Активность почвенной микробиоты как показатель загрязнения почв

1.5.1. Почвенные внеклеточные ферменты

1.5.2. Ферменты, участвующие в биодеградации поллютантов

1.5.3. Ферменты - биоиндикаторы загрязнения почв

1.5.4. Интегральные показатели ферментативной активности почвы

1.6. Аллелопатическая активность микроорганизмов в почвенных экосистемах

1.6.1. Понятие аллелопатии и ее роль во взаимоотношениях между 58 организмами

1.6.2. Аллелопатические свойства микроорганизмов

1.6.3. Аллелопатические функции ферментов микроорганизмов

1.6.4. Трансформация аллелохимикатов микроорганизмами

1.6.5. Факторы, оказывающие влияние на образование аллелопатических 86 веществ

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Объекты исследования

2.2. Методы исследования

2.2.1. Методы агрофизического и агрохимического анализа

2.2.2. Методы биотестирования

2.2.3. Микробиологические и биохимические методы исследования

2.2.4. Статистическая обработка результатов

ГЛАВА 3. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ ЭКОЛОГИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ ПОЧВ, ЗАГРЯЗНЕННЫХ НЕФТЬЮ И

НЕФТЕПРОДУКТАМИ

3.1. Изменение агрофизических и агрохимических свойств почвы под действием нефтяного загрязнения

3.2. Диагностика нефтезагрязненных почв методами

биотестирования

3.3. Диагностика нефтезагрязненных почв по показателям ферментативной активности

3.4. Влияние нефтяного загрязнения на численность и видовое разнообразие почвенных микроорганизмов

3.5. Изменение аллелопатической активности почвенных микромицетов под действием нефтяного загрязнения

3.6. Использование метаболомного анализа для оценки влияния нефтяного загрязнения на почвенную микробиоту

ГЛАВА 4. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ, КАК ИНДИКАТОР ЗАГРЯЗНЕНИЯ ПОЧВЫ ТЯЖЕЛЫМИ МЕТАЛЛАМИ

4.1. Изменение свойств почвы под действием тяжелых металлов

4.2. Диагностика почв, загрязненных тяжелыми металлами, методами биотестирования

4.3. Оценка экологического состояния почв, загрязненных тяжелыми металлами,

по показателям ферментативной активности

4.4. Влияние тяжелых металлов на численность и видовое разнообразие почвенных микромицетов

4.5. Изменение аллелопатической активности почвенных микромицетов под действием тяжелых металлов

ГЛАВА 5. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА СОСТОЯНИЯ ПОЧВЫ, ЗАГРЯЗНЕННОЙ СОЛЯМИ

5.1. Оценка экологического состояния засоленной дерново-подзолистой суглинистой почвы методами биоиндикации и биотестирования

5.2. Влияние засоления на численность и видовое разнообразие почвенных микромицетов

5.3. Аллелопатическая активность почвенных микромицетов в засоленных почвах

ГЛАВА 6. ДИАГНОСТИКА ПРОЦЕССОВ ВОССТАНОВЛЕНИЯ НЕФТЕЗАГРЯЗНЕННЫХ ПОЧВ

6.1. Влияние различных способов ремедиации на изменение агрохимических свойств нефтезагрязненной почвы

6.2. Оценка эффективности методов ремедиации нефтезагрязненных почв

методами биотестирования

6.3. Оценка эффективности методов ремедиации нефтезагрязненных почв по показателям ферментативной активности

6.4. Применение показателей ферментативной активности для изучения воздействия различных биопрепаратов на процессы восстановления нефтезагрязненной почвы

6.5. Применение показателей аллелопатической активности почвенных микромицетов для оценки эффективности различных стратегий ремедиации нефтезагрязненной почвы

ГЛАВА 7. ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ БИОУГЛЯ ДЛЯ УЛУЧШЕНИЯ КАЧЕСТВА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ПОЧВ ПО МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИМ ПОКАЗАТЕЛЯМ

7.1. Влияние биоугля на ферментативную активность агродерново-подзолистой почвы

7.2. Влияние биоугля на численность и аллелопатическую активность почвенных микромицетов

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Диагностика и мелиоративная корректировка экологического состояния антропогенно-нарушенных почв по комплексу микробиологических показателей»

ВВЕДЕНИЕ

Одной из важнейших экологических проблем является антропогенная деградация почв, в результате которой происходит снижение почвенного плодородия, потеря урожая сельскохозяйственных растений, нарушение экологических и биосферных функций биогеоценозов. Почва, как ключевой компонент любой наземной экосистемы, является одновременно и средой обитания значительной части наземной биоты, и резервуаром питательных соединений, содержащихся в ее органическом веществе.

Микробное сообщество почвы играет ключевую роль в процессах деградации и минерализации органических соединений, обеспечивая рециркуляцию питательных веществ. Почвенная микробиота вносит свой вклад в такие важнейшие процессы, как азотфиксация и нитрификация. Микробная биомасса представляет собой более лабильный и доступный источник углерода и азота, чем другие фракции органического вещества почвы. Загрязнение окружающей среды приводит к снижению функциональной активности почвенной микробиоты, оказывая влияние на циркуляцию питательных веществ и, следовательно, на продуктивность биоценоза.

Почвенные экосистемы загрязнены многими химическими соединениями с различной структурой, свойствами и уровнем токсичности, попадающими в почву в результате антропогенного воздействия. Основные источники загрязнения - это промышленные предприятия, теплоэнергетический комплекс, коммунальные стоки, сельское хозяйство, включая животноводство и растениеводство (Gianfreda, Rao, 2004; Smukler et al., 2008; Kuppusamy et al., 2018). Многие из загрязнителей, например, тяжелые металлы и нефтепродукты, накапливаются в почве, оказывая негативное действие на окружающую среду (Alexander, 1999).

На загрязнение почвы первой реагирует микробиота, при этом, уже на начальных стадиях загрязнения может измениться состав, численность микроорганизмов, их метаболизм, ферментативная активность, синтез биологически активных соединений (Степанов и др., 2005; Gil-Sotres et al., 2005; Lehmann, Stahr, 2007; Поляк, Сухаревич, 2020). Способность к образованию

веществ, обладающих биологической активностью, в том числе алкалоидов, глюкозидов, фенольных соединений, терпеноидов и др., сформировались у многих организмов в процессе сопряженной эволюции (Reigosa et al., 2006).

Каждый представитель биоты выделяет в окружающую среду продукты своей жизнедеятельности, таким образом, в биогеоценозах создается специфическая насыщенность среды метаболитами организмов. В естественных биоценозах этот фон нейтрален, так как в процессе сопряженной эволюции возникают системы, в которых токсические метаболиты подвергаются детоксикации почвенными микроорганизмами, в том числе микроорганизмами ризосферы (Jilani et al., 2008; Cipollini et al., 2012). При воздействии на биогеоценозы нейтральность фона нарушается (Callaway et al., 2005). При этом изменения затрагивают не только структурные и функциональные особенности почвенного биогеоценоза, но и роль экзометаболитов во взаимоотношениях между организмами.

Отклонение экологических условий от оптимума вызывает более интенсивное накопление биологически активных веществ, совпадающее с весьма значительным выделением этих веществ в окружающую среду (Whipps 2001, Witzany 2010). Синтез таких веществ усиливается в условиях стресса, вызванного различными факторами окружающей среды (влиянием температуры, влажности, радиации, недостатка или избытка питательных веществ, токсичных соединений и др.) (Поляк, 2023). В свою очередь, организмы-мишени действия биологически активных веществ становятся более чувствительными в стрессовых условиях, обусловленных изменившимися условиями среды.

При изучении процессов деградации и восстановления антропогенно-нарушенных почвенных экосистем необходимо учитывать роль экзометаболитов во взаимоотношениях между организмами (аллелопатические взаимоотношения), и, прежде всего, аллелопатическую активность микроорганизмов, которым необходимо адаптироваться к новым условиям среды. Исследование механизмов взаимодействия микроорганизмов в почвенных экосистемах многими авторами выдвигается в разряд важнейших проблем (Свистова и др. 2004; Trivedi, 2008,

Сенчакова и др., 2009). Понимание аллелопатических взаимоотношений в почвенных экосистемах является важным условием для создания эффективных и безопасных технологий ремедиации загрязненных почв.

Микроорганизмы продуцируют антибиотики — вещества, подавляющие жизнедеятельность других микроорганизмов, и маразмины — вещества, действующие на высшие растения. Кроме того, они не только участвуют в разложении многих загрязнителей окружающей среды, но и играют решающую роль в обеспечении детоксикации токсических веществ, выделяемых другими почвенными микроорганизмами и высшими растениями. Микроорганизмы могут, как усиливать действие биологически активных соединений, так и снижать его, выполняя защитную функцию (Einhellig, 1995; Inderjit, 2005).

В почве, которая является средой обитания огромного числа микроорганизмов, содержится наибольшее количество бактерий и грибов, обладающих аллелопатической активностью. Несмотря на то, что явление аллелопатии широко распространено в почвенных микробных сообществах и оказывает большое влияние на направленность сукцессионных процессов, эффекты и механизмы регуляции аллелопатической активности микроорганизмов изучены недостаточно и практически не учитываются при оценке интенсивности процессов биоразложения различных загрязняющих веществ (Mrozik, Piotrowska-Seget 2010, Macaulay 2014). Данные об антропогенном воздействии на микробоценозы нарушенных почв и аллелопатическую активность микробных сообществ в доступной литературе ограничены, что не позволяет оценить возможность адаптации микроорганизмов к новым условиям, особенности микробной сукцессии, продолжительность аллелопатического действия (Cipollini et al, 2012).

В связи с неизбежными изменениями, происходящими в функционировании почвенных экосистем при антропогенном воздействии, создание системы биомониторинга антропогенно-нарушенных почв, выявление основных закономерностей их деградации и восстановления, механизмов их устойчивости к антропогенной нагрузке является важной задачей. В условиях прогрессирующей

деградации почв оценка степени антропогенного воздействия на почвенные экосистемы и микробиологическая диагностика происходящих в почве изменений особенно актуальны. Для биомониторинга почв использование микробиологических параметров в качестве критериев имеет большое значение в силу их высокой чувствительности. Актуальной является и разработка эффективных и безопасных технологий восстановления антропогенно-нарушенных экосистем, так же как и разработка чувствительных и информативных методов оценки их эффективности и безопасности.

Для практической реализации этих подходов необходима своевременная комплексная оценка экологического состояния почв как основных компонентов биогеоценозов. Такая оценка необходима не только для определения актуальной (сиюминутной) пригодности почв к использованию, но и для выявления потенциально опасных функциональных нарушений в системе почва-растение, проявляющихся в перспективе. Экологическая диагностика также важна для оценки эффективности традиционных и инновационных мероприятий, направленных на восстановление нарушенных почв, повышение их плодородия и устойчивости растений к действию неблагоприятных факторов среды.

В настоящее время из-за недостаточной информативности разработанных диагностических параметров оказывается сложно оценить экологическое состояние нарушенных земель и их способность к самовосстановлению, а также прогнозировать эффективность применяемых методов ремедиации. Насущно необходима качественная и количественная оценка взаимосвязей между основными компонентами биогеоценозов в стрессовых условиях и идентификация критических значений стрессовых факторов, вызывающих необратимые нарушения в фундаментальных биологических процессах, происходящих в почве.

Степень разработанности темы. Исследованию антропогенно-нарушенных почвенных экосистем уделяется большое внимание практически во всех регионах России. Существуют научные школы, посвятившие свою деятельность изучению проблем восстановления таких экосистем, в том числе на Дальнем Востоке

(Костенков, Пуртова, 2009; Комачкова, 2012; Назаркина и др., 2012), в Сибири (Курачев, Андроханов, 2002; Андроханов, 2005; Андроханов, Курачев, 2010; Чупрова, Шугалей, 2007; Бабаев, Кураченко, 2011; Лопатовская и др., 2012; Соколов и др., 2012), на Кольском п-ве (Махонина, 2003; Переверзев и др., 2007), в Северо-Западном регионе (Арчегова, 2003; Капелькина, Абакумов, Гагарина, 2006; Абакумов и др., 2011). В настоящее время в отечественной и зарубежной литературе предложено к определению от 60 до 90 показателей, чувствительных к воздействиям на почву и отображающих изменение ее свойств, режимов и функций (Arias et al., 2005; Семенов, Соколов, 2016). Чтобы упорядочить этот постоянно расширяющийся ряд эмпирических показателей, сделаны попытки либо использовать минимальный набор характеристик (Gil-Sotres et al., 2005; Karlen et al., 2008), либо использовать различные индексы качества (Orwin, Wardle, 2004; Janvier et al., 2007; Zornoza et al., 2007). Очевидно, что использование все большего количества показателей не имеет практической перспективы, а использование различных индексов может быть затруднено в силу субъективности выбора показателей, используемых для их расчета, и значительной вариабельности почв и их характеристик в зависимости от биоклиматических условий местности и социально-экономического статуса территории (Bastida et al., 2008). Несмотря на наличие определенного прогресса в поисках индикаторов качества и здоровья почв, этот вопрос далек от разрешения, а изучение объективных законов, согласно которым функционируют такие сложные экосистемы как почвы, являются насущной необходимостью при решении проблем, связанных с восстановлением нарушенных экосистем и поддержанием их качества.

Цель настоящей работы - на основе изучения закономерностей микробиологических процессов в деградированных и восстанавливаемых почвенных экосистемах при разных видах антропогенных нарушений (загрязнений) выявить чувствительные микробные индикаторы для создания системы комплексной диагностики качества и здоровья почв, позволяющей

оценить состояние нарушенных земель, их способность к самовосстановлению, прогнозировать эффективность применения рекультивационных мероприятий.

Задачи исследований:

1. Провести комплексную экологическую оценку антропогенно-нарушенных (загрязненных) и восстанавливаемых почв подзолистого типа, характерных для Северо-Западного региона РФ, на основании материалов длительных полевых опытов по загрязнению почв.

2. Разработать новый способ диагностики изменений, происходящих в почвенном микробиоценозе при антропогенном воздействии, основанный на определении аллелопатической активности почвенных микромицетов.

3. Выявить общие закономерности и особенности воздействия нефтяного загрязнения на микробоценозы почв, контрастных по агрохимическим свойствам и экологической уязвимости, изучить характер и динамику их самовосстановления.

4. Оценить биологические последствия загрязнения почвы тяжелыми металлами в условиях полевого опыта, выявить степень воздействия металлов на экофизиологическое состояние почвенной микробиоты и аллелопатические взаимоотношения в почвенной экосистеме.

5. Изучить воздействие обработки противогололедными средствами на почвенную микробиоту и экологические функции дерново-подзолистой почвы, а также выявить аллелопатическую активность почвенных микромицетов.

6. Провести сравнительный анализ микробиологических процессов, происходящих в нефтезагрязненных почвах при различных стратегиях их ремедиации, определить роль биологических препаратов в изменении биологических свойств загрязненных почв.

7. Изучить эколого-микробиологическое состояние дерново-подзолистой почвы при обработке ее биоуглем в целях снижения фитотоксичности микромицетов.

8. Определить наиболее чувствительные микробиологические показатели для ранней диагностики негативных и позитивных изменений в почвенных экосистемах.

Научная новизна. Впервые проведена сравнительная оценка экологического состояния антропогенно-нарушенных почв разных типов с использованием в качестве индикаторов антропогенного воздействия предложенного комплекса токсикологических, микробиологических и агрохимических показателей. Выявлены наиболее чувствительные и информативные микробиологические показатели, позволяющие проводить раннюю диагностику экологического состояния почвенных экосистем Северо-Западного региона РФ, подвергающихся различным видам антропогенных нагрузок.

Впервые на основе молекулярно-генетических данных проведен сравнительный анализ изменения видового разнообразия микробиоты контрастных нефтезагрязненных почв подзолистого типа в процессе их восстановления. Выявленные различия в динамике микробной сукцессии указывают на тесную связь филотипов почвенных микроорганизмов как с различными фазами деградации нефтяных углеводородов, так и со свойствами загрязненной почвы, ее обогащенностью органическим веществом и питательными элементами.

Впервые проведен сравнительный анализ аллелопатических взаимоотношений в почвенных экосистемах при различных видах антропогенных загрязнений. Отмечено длительное негативное влияние таких загрязнителей, как нефть, тяжелые металлы и антигололедные средства на аллелопатическую активность почвенных микроорганизмов и тесно связанные с ней биологические и токсикологические свойства почв. На основании полученных данных разработан новый диагностический метод для оценки и прогнозирования биологических последствий загрязнений по аллелопатической активности почвенных микроорганизмов.

Впервые с использованием метаболомного подхода определены почвенные метаболиты и тенденции их изменения под действием нефтяного загрязнения.

Получены данные о метаболических профилях нефтезагрязненных почв. Концентрация и профиль метаболитов сильно различаются в загрязненной нефтью и незагрязненной почве. Главным образом, различия затрагивают такие группы соединений, как углеводы, органические кислоты, фенольные соединения, терпеноиды.

Впервые на основании сравнительного изучения процессов восстановления нефтезагрязненной дерново-подзолистой почвы при ее рекультивации выявлены различные «сценарии» действия биопрепаратов на экологическое состояние комплекса почвенных микроорганизмов.

Впервые установлена способность биоугля снижать аллелопатическую активность микромицетов, что может служить основанием для более активного использования биоугля при санации почв.

Разработан комплекс микробиологических показателей, адаптированных к условиям Северо-Западного региона РФ, позволяющий оценить состояние нарушенных земель, их способность к самовосстановлению, прогнозировать эффективность применения рекультивационных мероприятий.

Теоретическая и практическая значимость. В работе решена важная фундаментальная проблема диагностики экологического состояния антропогенно-нарушенных почвенных экосистем. Решение данной проблемы имеет большое практическое значение для оценки рисков опасных антропогенных и природных процессов и предупреждения на этой основе ранних угроз экологической безопасности.

Проведенные исследования позволили установить основные закономерности влияния различных видов загрязнения на почвенные микробоценозы, интенсивность и направленность микробиологических процессов в почвах, испытывающих антропогенное воздействие. Полученные результаты имеют важное фундаментальное значение для понимания роли микроорганизмов в формировании экотоксикологических свойств антропогенно-нарушенных экосистем и подтверждают, что в загрязненных почвах образуется сообщество

микроорганизмов, в котором доминируют виды, обладающие высокой аллелопатической активностью.

Данные об экофизиологическом статусе почвенной микробиоты и сукцессионных изменениях микробных сообществ позволяют охарактеризовать скорость самовосстановления почвы при антропогенных нарушениях, что является необходимым этапом решения вопросов, связанных с регуляцией биологической активности почвы, сохранением экологического биоразнообразия и осуществлением устойчивого землепользования.

Выявленные закономерности необходимо учитывать при создании эффективных и экологически безопасных технологий ремедиации загрязненных почв. Предложенный комплекс микробиологических и агрохимических показателей рекомендуется использовать для проведения ранней диагностики экологического состояния почвенных экосистем Северо-Западного региона РФ.

Материалы диссертации используются в учебном процессе в курсах лекций «Основы биоиндикации» и «Биоиндикация: использование микроорганизмов» при подготовке бакалавров и магистров Института наук о Земле и Биологического факультета Санкт-Петербургского государственного университета (СПбГУ).

Методология и методы исследований. В работе использовали стандартизированные современные методы и подходы, относящиеся к микробиологии, биохимии, молекулярной биологии, аналитической химии. Таксономический состав почвенных микробных сообществ определяли на основании анализа ампликонных библиотек фрагментов рибосомальных оперонов. Токсикологические исследования почвенных образцов проводили по комплексной программе с использованием элюатных и контактных методов биотестирования. Уровень аллелопатической активности почвенных микромицетов исследовали по модифицированной нами методике Даниловой (Поляк и др. 2017) и оценивали по суммарной фитотоксичности грибного комплекса. Метаболомный анализ образцов почвы проводили с использованием метода газовой хроматографии-масс-спектрометрии. Для статистической

обработки полученных данных использовали программы Statistica 10.0, Microsoft Office Exel 2007, «Origin Pro».

Положения, выносимые на защиту.

1. В загрязненных почвенных экосистемах формируется микробное сообщество, в котором доминируют виды, обладающие высокой аллелопатической активностью, что приводит к увеличению токсичности антропогенно-нарушенных почв и замедлению процессов восстановления растительного покрова.

2. Характер изменения аллелопатической активности зависит от типа почвы. Высокая аллелопатическая активность и связанное с ней токсическое действие на растения дольше всего сохраняются в уязвимых в экологическом отношении почвах, обедненных органическим веществом и питательными элементами -подзолистых почвах.

3. Применение различных методов рекультивации способствует улучшению биологических свойств нефтезагрязненных почв и снижению фитотоксических свойств микромицетов. Положительный эффект оказывает использование методов биостимуляции (внесение минеральных удобрений и извести) и биоаугментации с применением ряда биопрепаратов. В то же время некоторые биопрепараты отрицательно влияют на биологическую активность почвы и процессы ее восстановления. Такие препараты не только не снижают, но и усиливают аллелопатическую активность микромицетов, что способствует более длительному сохранению токсикоза почвы.

4. Загрязнение подзолистых почв нефтью вызывает изменения в филогенетической структуре микробного сообщества, выражающиеся в снижении обилия чувствительных к загрязнению групп микроорганизмов, таких как археи Crenarchaeota, бактерии Bacteroidota, Actinobacteria, грибы Mortierellomycota, и упрощении видовой структуры микробных комплексов за счет элиминации редких видов. Различия в особенностях изменения структуры и разнообразия микробных сообществ под действием нефти связаны со свойствами почвы.

Тенденция к снижению уровня разнообразия наиболее выражена в бедной подзолистой почве.

5. Использование метаболического профилирования (нецелевой метаболомики) позволяет определить характер изменения почвенных метаболитов в условиях нефтяного загрязнения. Концентрация и профиль метаболитов сильно различаются в загрязненной нефтью и незагрязненной почве. Среди наиболее подверженных воздействию групп соединений - углеводы, относительное содержание которых снижается, и органические кислоты, фенольные соединения и терпеноиды, относительное содержание которых возрастает. Изменение содержания почвенных метаболитов под действием стресса может оказывать влияние на качество почвы.

6. Для диагностики состояния почв, нарушенных при антропогенном воздействии, предлагается использовать систему оценки на основе биологических и агрохимических показателей. Среди показателей биологической активности, отражающих изменение интенсивности и направленности почвенных биохимических процессов, дегидрогеназная активность наиболее чувствительна к различным видам антропогенного воздействия, что позволяет рекомендовать данный показатель для диагностики и оценки экологического состояния антропогенно-нарушенных почв.

7. Информативным биоиндикатором состояния микробиоты почвенных экосистем является коэффициент аллелопатической активности почвенных микромицетов. Данный коэффициент отражает специфический ответ почвенных микроорганизмов на загрязнение и может быть использован в качестве индикационного показателя при определении степени нарушенности почвенных экосистем.

Публикации. По теме диссертации опубликовано более 80 работ, из которых 29 статей в изданиях, рекомендованных ВАК, в том числе 15 в зарубежных изданиях (WoS, Scopus), 2 главы в коллективных монографиях.

Апробация работы. Основные положения работы были представлены и обсуждены на International Scientific Conference "Physiology and biotechnology of

oxygenic photoautotrophic microorganisms: looking into the future" (Moscow, 2014); The Trilateral Gulf of Finland Scientific Forum (Helsinki, 2014, 2016; 2019), научной конференции с международным участием «Современные проблемы гидрохимии и мониторинга качества поверхностных вод» (Ростов-на-Дону, 2015); международной научной конференции «Роль почв в биосфере и жизни человека» (Москва, 2015); Gulf of Finland Trilateral Cooperation Scientific Forum (Tallinn 2015, 2017, 2021); VII съезде Общества почвоведов им. В.В. Докучаева (Белгород,

2016); International Scientific and Practical Conference "BRICS Water Forum" (Moscow, 2016); Международной научно-практической конференции профессорско-преподавательского состава «Научное обеспечение развития сельского хозяйства и снижения технологических рисков в продовольственной сфере» (Санкт-Петербург, 2017); Всероссийской научной конференции «Мониторинг состояния и загрязнения окружающей среды. Основные результаты и пути развития» (Москва, 2017); I Всероссийской междисциплинарной научно-практической конференции (с международным участием) «Крымская инициатива - экологическая безопасность регионов: концептуально-теоретические, практические, природоохранные и мировоззренческие аспекты» (Симферополь,

2017); Всероссийской научной конференции с международным участием «Почвенные ресурсы Сибири: вызовы XXI века» (Новосибирск, 2017); Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 95-летию кафедры микробиологии ВМА им. С.М. Кирова, «Микробиология: от микроскопа до геномного анализа" (Санкт-Петербург, 2018); International Scientific Forum "Gulf of Finland - natural dynamics and anthropogenic impact" (St. Petersburg, 2018); Международной научной экологической конференции "Отходы, причины их образования и перспективы использования" (Краснодар, 2019); 3rd International Conference on Life and Environmental Sciences „Smart Bio" (Kaunas, 2019); 12th Baltic Sea Science Congress (Stockholm, 2019); Всероссийской научной конференции с международным участием «Актуальные проблемы устойчивого развития агроэкосистем (почвеные, экологические, биоценотические аспекты)», посвященной 60-летию лаборатории агроэкологии Никитского ботанического

сада (Ялта, 2019); XII съезде Гидробиологического общества при РАН, (Петрозаводск, 2019); Международной научно-практической конференции «Развитие агро-промышленного комплекса на основе современных научных достижений и цифровых технологий» (Санкт-Петербург, 2020); Всероссийской научной конференции с международным участием "Вклад агрофизики в решение фундаментальных задач сельскохозяйственной науки" (Санкт-Петербург, 2020); Всероссийской научной конференции с международным участием к столетию академика РАН К. Я. Кондратьева «Земля и космос» (Санкт-Петербург, 2020); XVI Международной научно-практической конференции Курского отделения МОО «Общество почвоведов имени В.В. Докучаева», посвященной 175-летию со дня рождения В.В. Докучаева (Курск, 2021); Международной научной конференции "Агрофизический институт: 90 лет на службе земледелия и растениеводства" (Санкт-Петербург, 2022); Всероссийской научно-практической конференции "Россия в XXI веке в условиях глобальных вызовов: проблемы управления рисками и обеспечения безопасности социально-экономических и социально-политических систем и природно-техногенных комплексов" (Москва, 2022); Третьей международной конференции "Цифровизация сельского хозяйства и органическое производство АООР 2023" (Санкт-Петербург, 2023); Юбилейной конференции по медицинской микологии и микробиологии (Москва, 2023); Всероссийской научной конференции с международным участием посвященной 50-летию Института почвоведения и агрохимии СО РАН "Почвы в биосфере" (Новосибирск, 2023); Международной научно-практической конференции "Современные технологии в почвоведении, агрохимии и агроэкологии" (Санкт -Петербург, 2024).

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Поляк Юлия Марковна, 2025 год

Литература

1. Абрамян С.А. Изменение ферментативной активности почвы под влиянием естественных и антропогенных факторов / С.А. Абрамян // Почвоведение. - 1992. - №7. - С. 70-82.

2. Акименко Ю.В. Влияние антибиотиков (бензилпенициллина, фармазина, нистатина) на биологические свойства чернозема обыкновенного / Ю.В. Акименко, К.Ш. Казеев, С.И. Колесников // Почвоведение. - 2014. - Т. 9. - С. 1095-1101.

3. Акименко Ю.В. Изменение биохимических свойств чернозема обыкновенного при загрязнении биоцидами / Ю.В. Акименко, К.Ш. Казеев, С.И. Колесников // Агрохимия. - 2015. - № 3. - С. 81-87.

4. Алиев С.А. Влияние загрязнения нефтяным органическим веществом на активность биологических процессов почв / С.А. Алиев, Д.А. Гаджиев // Изв. АН АзССР, Сер. Биол. наук. - 1977. - № 2. - С. 46-49.

5. Алимов А.Ф. Элементы теории функционирования экосистем / А.Ф. Алимов. - СПб.: ЗИН РАН, 2000. - 147 с.

6. Ананьева Н.Д. Микробиологические аспекты самоочищения и устойчивости почв / Н.Д. Ананьева. - М.: Наука, 2003. - 223 с.

7. Ананьева Н.Д. Грибная и бактериальная микробная биомасса (селективное ингибирование) и продуцирование С02 и ^О дерново-подзолистыми почвами постагрогенных биогеоценозов / Н.Д. Ананьева, Е.В. Стольникова, Е.А. Сусьян, А.К. Ходжаева // Почвоведение. - 2010. - № 11. - С. 1387-1393.

8. Андронов Е.Е. Анализ показателей почвенного микробиома в процессах, связанных с почвообразованием, трансформацией органического вещества и тонкой регуляции вегетационных процессов / Е.Е. Андронов, Е.А. Иванова, Е.В. Першина, О.В. Орлова, Ю.В. Круглов, А.А. Белимов, И.А. Тихонович // Бюллетень Почвенного института имени В.В. Докучаева. - 2015. - Т. 80. - С. 83-94.

9. Андроханов В.А. Почвы техногенных ландшафтов: генезис и эволюция / В.А. Андроханов, Е.Д. Куляпина, В.М. Курачев. - Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2004. - 205 с.

10. Анчугова Е.М. Подходы к оценке методов рекультивации нефтезагрязненных почв / Е.М. Анчугова, Е.Н. Мелехина, М.Ю. Маркарова, Т.Н. Щемелинина // Почвоведение. - 2016. - № 2. - С. 257260.

11. Аринушкина Е.В. Руководство по химическому описанию почв / Е.В. Аринушкина. - М.: Изд-во МГУ, 1970. - 484 с.

12. Артамонова В.С. Техногенное засоление почв и их микробиологическая характеристика / В.С. Артамонова, Л.Ю. Дитц, Т.Н. Елизарова, И.В. Лютых // Сибирский экологический журнал. - 2010. - Т. 17(3). - С. 461470.

13. Архипченко И.А. Патент на изобретение RU 2292326 C2: Биопрепарат-нефтедеструктор: заявл. 21.01.2005; опубл. 27.01.2007 / И.А. Архипченко, В.К. Загвоздкин, И.А. Заикин, В.Г. Иванов, В.Н. Лукашев

14. Ахметов Л.И. Горизонтальный перенос катаболических плазмид в процессе биодеградации нафталина в модельной почве / Л.И. Ахметов, А.Е. Филонов, И.Ф. Пунтус, И.А. Кошелева, И.А. Нечаева, Д. Йонге, Д. Петерсен, А.М. Боронин // Микробиология. - 2008. - Т. 77(1). - С. 29-39.

15. Ашихмина Т.Я. Биотрансформация пестицидов в наземных экосистемах (обзор) / Т.Я. Ашихмина, А.В. Колупаев, А.А. Широких // Теор. и прикл. экол. - 2010. - № 2. - С. 4-12.

16. Баканов А.И. О некоторых методологических вопросах применения системного подхода для изучения структур водных экосистем / А.И. Баканов // Биол. внутр. вод. - 2000. - № 2. - С. 5-18.

17. Батовская Е.К. Влияние нефти и нефтепродуктов на свойства почв и почвенные микроорганизмы / Е.К. Батовская, В.П. Зволинский, Н.А. Черных // Агрохимический вестник. - 2005. - № 3. - С. 22-25.

18. Берестецкий А.О. Фитотоксины грибов: от фундаментальных исследований - к практическому использованию (Обзор) / А.О. Берестецкий // Прикл. биохим. микробиол. - 2008. - Т. 44. - № 5. - С. 501-514.

19. Берестецкий О.А. Фитотоксины почвенных микроорганизмов и их экологическая роль / А.О. Берестецкий // Фитотоксические свойства почвенных микроорганизмов. - Л.: ВНИИ с.х. микробиологии, 1978. - С. 7-31.

20. Билай В.И. Основы общей микологии / В.И. Билай. - Киев: Вища школа, 1989. - 392 с.

21. Билай В.И. Аспергиллы. Определитель / В.И. Билай, Э.З. Коваль. -Киев: Наукова думка, 1988. - 204 с.

22. Билай В.И. Определитель токсинообразующих микромицетов / В.И. Билай, З.А. Курбацкая. - Киев: Наукова думка, 1990. - 234 с.

23. Битюцкий Н.П. Минеральное питание растений / Н.П. Битюцкий- СПб: Изд-во СПб ун-та, 2014. - 540 с.

24. Бойцова Л.В. Структурный состав дерново-подзолистых почв различного землепользования / Л.В. Бойцова // Агрофизика. - 2017. - № 1. - С. 10-19.

25. Боронин А.М. Ризосферные бактерии рода Pseudomonas, способствующие росту и развитию растений / А.М. Боронин // Соровский образовательный журнал. - 1998. - №10. - С. 25-31.

26. Вечерский М.В. Метагеномика - новое направление в экологии / М.В. Вечерский, М.В. Семенов, А.А. Лисенкова, А.А. Степаньков // Известия РАН. Серия биологическая. - 2022. - Т.1. - С. 70-81.

27. Власов Д.Ю. Микроскопические грибы в экстремальных местообитаниях: биологическое разнообразие и сущность взаимодействий / Д.Ю. Власов // Биосфера. - 2011. - Т. 3. - №4. - С. 479492.

28. Воробейчик Е.Л. Экологическое нормирование техногенных загрязнений наземных экосистем (локальный уровень) / Е.Л. Воробейчик, О.Ф. Садыков, М.Г. Фарафонтов. - Екатеринбург: Наука, 1994. - 280 с.

29. Воробьева Л.А. Химический анализ почв. Вопросы и ответы / Л.А. Воробьева, Д.В. Ладонин, О.В. Лопухина, Т.А. Рудакова, А.В. Кирюшин.

- Москва: МГУ, 2011. - 186 с.

30. Галиулин Р.В. Анализ активности ферментов почв и речных донных отложений как способ диагностики хронического и аварийного загрязнения экосистем тяжелыми металлами / Р.В. Галиулин, Р.А. Галиулина // Агрохимия. - 2010. - № 5. - С.72-77.

31. Галиулин Р.В. Ферментативная индикация загрязнения почв тяжелыми металлами / Р.В. Галиулин, Р.А. Галиулина // Агрохимия. - 2006. - № 11.

- С. 84-95.

32. Галстян А.Ш. Об устойчивости ферментов почв / А.Ш. Галстян // Почвоведение. - 1982. - № 4. - С. 108-110.

33. Герасимов А.О. Оценка влияния засоления на аллелопатическую активность микромицетов в дерново-подзолистой почве / А.О. Герасимов, Ю.М. Поляк // Агрохимия. - 2021. - № 3. - С. 51-59.

34. Гилязов М.Ю. Изменение некоторых агрофизических свойств выщелоченного чернозема при загрязнении товарной нефтью в условиях Татарстана / М.Ю. Гилязов // Почвоведение. - 2002. - №12. - С. 15151519.

35. Горбунова Т.И. Полихлорбифенилы: Проблемы экологии, анализа и химической утилизации / Т.И. Горбунова, М.Г. Первова, О.Н. Забелина, В.И. Салоутин, О.Н. Чупахин. - М: Красанд, 2011. - 397 с.

36. Гродзинский А.М. Аллелопатия в жизни растений и их сообществ / А.М. Гродзинский. - Киев: Наукова думка, 1965. - 198 с.

37. Гродзинский А.М. Аллелопатия растений и почвоутомление: Избран. Труды / А.М. Гродзинский. - Киев: Наук. думка, 1991. - 432 с.

38. Гузев В.С. Техногенные изменения сообщества почвенных микроорганизмов / В.С.Гузев, С.В.Левин // Перспективы развития почвенной микробиологии. - М.: МаксПресс, 2001. - С. 178 -219.

39. Даденко Е.В. Изменение ферментативной активности почвенных образцов при их хранении / Е.В. Даденко, К.Ш. Казеев, С.И. Колесников, В.Ф. Вальков // Почвоведение. - 2009. - Т. 12. - С. 14811486.

40. Даденко Е.В. Применение показателей ферментативной активности при оценке состояния почв под сельскохозяйственными угодьями / Е.В. Даденко, М.А. Прудникова, К.Ш. Казеев, С.И. Колесников // Изв. Самарского научн. центра РАН. - 2013. - Т. 15. - № 3(4). - С. 1274-1277.

41. Данилова А.А. Фитотоксичность грибого комплекса в выщелоченном черноземе Приобья при различных способах основной обработки почвы / А.А. Данилова // Сельскохозяйственная биология. - 2010. - № 3. - С. 108-111.

42. Добровольский Г.В. Роль почвы в формировании и сохранении биологического разнообразия / Г.В. Добровольский, И.Ю. Чернов. - М.: Товарищество научных изданий КМК, 2011. - 273 с.

43. Домрачева Л.И. Устойчивость микробных комплексов почвы к антропогенным факторам среды / Л.И. Домрачева, Т.Я. Ашихмина. -Сыктывкар: ИБ ФИЦ Коми НЦ УрО РАН, 2019. - 254 с.

44. Дубровская Е.В. Изменение фитотоксичности полициклических ароматических углеводородов в процессе их микробной деградации / Е.В. Дубровская, Н.Н. Позднякова, А.Ю. Муратова, О.В. Турковская // Физиология растений. - 2016. - Т. 63(1). - С. 180.

45. Евдокимова Г.А. Биологическая активность почв в условиях аэротехногенного загрязнения на Крайнем Севере / Г.А. Евдокимова, Е.Е. Кислых, Н.П. Мозгова. - Л., 1984. - 120 с.

46. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках / Н.С. Егоров. - М.: Изд-во МГУ, Наука, 2004. - 524 с.

47. Егорова Д.О. Состав бактериальных сообществ нефтезагрязненных донных отложений реки Каменка // Вестник Московского университета. Серия 16. Биология / Д.О. Егорова, П.Ю. Санников, Ю.В. Хотяновская, С.А. Бузмаков. - 2023. - Т. 78(1). - С. 17-24.

48. Егорова Л.Н. Структура сообществ микромицетов в почвах городских зеленых насаждений Владивостока / Л.Н. Егорова, Н.С. Шихова, Г.В. Ковалёва // Вестник ДВО РАН. - 2015. - №1. - С. 58-62.

49. Есенаманова М.С. Обезвреживание нефтезагрязненных почв биопрепаратами / М.С. Есенаманова, Ж.С. Есенаманова, А.Е. Абуова, Д.К. Рыскалиева, Д.С. Бектемиров, А.Е. Рысжан // Соврем. проблемы науки и образ. - 2016. - № 6. ЬАрв://вшепсе-education.ru/ru/article/view?id=25534

50. Ефимочкина Н.Р. Токсигенные свойства микроскопических грибов / Н.Р. Ефимочкина, И.Б. Седова, С.А. Шевелева, В.А. Тутельян // Вестник Томского государственного университета. Биология. - 2019. - № 45. - С. 6-33.

51. Звягинцев Д.Г. Биологическая активность почв и шкалы для оценки некоторых ее показателей / Д.Г. Звягинцев // Почвоведение. - 1978. - № 6. - С. 48-54.

52. Звягинцев Д.Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии / Д.Г. Звягинцев. - М: Изд-во МГУ, 1991. - 304 с.

53. Звягинцев Д.Г. Проблемы и методы биологической диагностики и индикации почв / Д.Г. Звягинцев. - М.: Наука, 1976. - С. 176-190.

54. Звягинцев Д.Г. Структурно-функциональная роль почвы в биосфере / Д.Г. Звягинцев. - М.: Геос, 1999. - 278 с.

55. Зиятдинова Г.К. Природные фенольные антиоксиданты в биоаналитической химии: состояние проблемы и перспективы развития / Г.К. Зиятдинова, Г.К. Будников // Успехи химии. - 2015. - Т. 84(2). - С. 194-224.

56. Иванова А.Е. Функциональное разнообразие микроскопических грибов в городских почвах разного возраста формирования / А.Е. Иванова, О.Е. Марфенина, И.И. Суханова // Микология и фитопатология. - 2008. - Т. 42. - №5. - С. 450-60.

57. Иларионов С.А. Экологические аспекты восстановления нефтезагрязненных почв / С.А. Иларионов. - Екатеринбург: Уральское отделение РАН, 2004. -194 с.

58. Исмаилов Н.М. Микробиология и ферментативная активность нефтезагрязненных почв / Н.М. Исмаилов, М.А. Глазовская // Восстановление нефтезагрязненных почвенных экосистем. - М.: Наука. 1988. - С. 42-56.

59. Кабиров Р.Р. Оценка биологической активности нефтезагрязненных почв с помощью интегрального показателя / Р.Р. Кабиров, Н.А. Киреева, Т.Р. Кабиров, И.Е. Дубовик, А.Б. Якупова, Л.М. Сафиуллина // Почвоведение. - 2012. - № 2. - С. 184-188.

60. Казеев К.Ш. Использование интегрального показателя для оценки пространственной дифференциации биологических свойств юга России в градиенте аридности климата / К.Ш. Казеев, Ю.С. Козунь, С.И. Колесников // Почвоведение. - 2015. - Т. 22(1). - С. 112-120.

61. Казиева А.А. Сравнительная оценка различных доз биопрепарата для очистки нефтезагрязненных почв / А.А. Казиева, Э.И. Мелякина // Нефтегаз. технол. и экол. Безопасность. - 2014. - Т. 2(58). - С. 54-58.

62. Каменщиков Ф.А., Богомольный Е.И. Нефтяные сорбенты. - Ижевск: НИЦ Регулярная и хаотическая динамика, 2005. - 268 с.

63. Карасевич Ю.Н. Основы селекции микроорганизмов, утилизирующих синтетические органические соединения / Ю.Н. Карасевич. - М: Наука, 1982. - 140 с.

64. Киреева Н.А. Микробиологические процессы в нефтезагрязненной почве / Н.А. Киреева. - Уфа: БашГУ, 1995. - 172 с.

65. Киреева Н.А. Фитотоксичность антропогенно-загрязненных почв / Н.А. Киреева, Г.Г. Кузяхметов, А.М. Мифтахова, В.В. Водопьянов. - Уфа: Гилем, 2003. - 266 с.

66. Киреева Н.А. Активность каталазы и дегидрогеназы в почвах, загрязненных нефтью и нефтепродуктами / Н.А. Киреева, Е.И. Новоселова, Т.С. Онегова // Агрохимия. - 2002. - № 8. - С.64-72.

67. Киреева Н.А. Активность карбогидраз в нефтезагрязненных почвах / Н.А. Киреева, Е.И. Новоселова, Ф.Х. Хазиев // Почвоведение. - 1998. -№ 12. - С.1444-1448.

68. Киреева Н.А. Фосфогидролазная активность нефтезагрязнённых почв / Н.А. Киреева, Е.И. Новоселова, Ф.Х. Хазиев // Почвоведение. - 1997. -№ 6. - С. 723-725.

69. Киреева Н.А. Активность оксидоредуктаз в нефтезагрязнённых и рекультивируемых почвах / Н.А. Киреева, Е.И. Новоселова, Г.Ф. Ямалетдинова // - Агрохимия. - 2001. - № 4. - С. 53-60.

70. Киреева Н.А. Комплексная биоремедиация нефтезагрязненных почв для снижения токсичности / Н.А. Киреева, Е.М. Тарасенко, Т.С. Онегова, М.Д. Бакаева // Биотехнология. - 2004. - №6. - С.63-70.

71. Киреева Н.А. Ферменты серного обмена в нефтезагрязнённых почвах / Н.А. Киреева, Г.Ф. Ямалетдинова, Е.И. Новосёлова, Ф.Х. Хазиев // Почвоведение. - 2002. - № 4. - С. 474-480.

72. Киреева Н.А. Биологическая активность нефтезагрязненных почв / Н.А. Киреева, В.В. Водопьянов, А.М. Мифтахова. - Уфа: «Гилем», 2001. -376 с.

73. Классификация почв России / Авторы и составители: Л.Л. Шишов, В.Д. Тонконогов, И.И. Лебедева, М.И. Герасимова. - Смоленск: Ойкумена, 2004. - 342 с.

74. Колесников С.И. Биодиагностика устойчивости бурых лесных почв Западного Кавказа к загрязнению тяжелыми металлами, нефтью и нефтепродуктами / С.И. Колесников, К.Ш. Казеев, Р.К. Татлок, З.Р.

Тлехас, Т.В. Денисова, Е.В. Даденко // Сибирский экологический журнал. - 2014. - № 3. - С.493-500.

75. Коломбет Л.В. Грибы рода Trichoderma - продуценты биопрепаратов для растениеводства / Л.В. Коломбет // Микология сегодня. Т. 1. - М.: Национальная академия микологии, 2007. - C. 323-371.

76. Кондратьев М. Взаимосвязи и взаимоотношения в растительных сообществах / М. Кондратьев, Г. Карпова, Ю. Ларикова. - М.: РГАУ-МСХА, 2014. - 300 с.

77. Кононенко Г.П. Продуцирование альтернариола у популяций мелкоспоровых видов Alternaría, ассоциированных с зерновыми кормами / Г.П. Кононенко, Е.А. Пирязева, А.А. Буркин // Сельскохозяйственная биология. - 2020. - Т. 55(3). - C. 628-637.

78. Коронелли Т.В. Принципы и методы интенсификации биологического разрушения углеводородов в окружающей среде (Обзор) / Т.В. Коронелли // Прикл. биохим. микробиол. - 1996. - Т. 32(6). - С.579-585.

79. Коршунова Т.Ю. Перспективы использования консорциума углеводородокисляющих микроорганизмов для очистки нефтезагрязненной почвы Крайнего Севера / Т.Ю. Коршунова, С.П. Четвериков, О.Н. Логинов // Теоретическая и прикладная экология. -2016. - № 1. - С. 88-94.

80. Кураков А.В. Биоиндикация и реабилитация экосистем при нефтяных загрязнениях / А.В. Кураков, В.В. Ильинский, С.В. Котелевцев, А.П. Садчиков. - М.: Изд. Трафикон, 2006. - 336 с.

81. Кураков А.В. Нитрифицирующая активность и фитотоксичность почвенных микроскопических грибов / А.В. Кураков, А.И. Попов // Почвоведение. - 1995. - Т. 3. - С. 314-321.

82. Ложкин А.В. Последствие мелиоративных добавок на свойства почв, загрязненных кадмием, на урожайность и качество ячменя / А.В. Ложкин, А.В. Леднев // Пермский аграрный вестник. - 2016. - № 4(16). - С. 35-41.

83. Лукина Н.В. Метаболомика лесных экосистем: проблемы и перспективы / Н.В. Лукина, М.А. Орлова, И.В. Перминова, В.С. Хусаинова, Д.Н. Тебенькова, Н.А. Артемкина // Лесоведение. - 2016. - Т. 6. - С. 457-465.

84. Лысак Л.В. Характеристика бактериальных сообществ городских загрязненных почв / Л.В. Лысак, Е.В. Лапыгина, И.А. Конова // Доклады по экологическому почвоведению. - 2013. - Т. 18. - № 1. - С. 202-213.

85. Мазлова Е.А. Разработка биологического препарата для лбезвреживания нефтезагрязненных земель в группе Аука (Эквадор) / Е.А. Мазлова, Л.А. Эррера // Защита окруж. среды в нефтегаз. комплексе. - 2014. - № 2. - С. 15-18.

86. Мазуркин П.М. Прогнозирование урожайности сена от улучшенных сенокосов / П.М. Мазуркин, С.И. Михайлова // Успехи соврем. естеств. -2010. - Т. 11. - С. 37-46.

87. Максимов И.В. Стимулирующие рост растений микроорагнизмы как альтернатива химическим средствам защиты от патогенов (обзор) / И.В. Максимов, Р.Р. Абизгильдина, Л.И. Пусенкова // Прикл. биохим. микробиол. - 2011. - Т. 47. - №4. - С. 373-385.

88. Максимов И.В. Эндофитные бактерии как агенты для биопестицидов нового поколения (обзор) / И.В. Максимов, Т.И. Максимова, Е.Р. Сарварова, Благова Д.К. // Прикл. биохим. микробиол. - 2018. - Т. 54. -№2. - С. 134-148.

89. Манучарова Н.А. Изменение филогенетической структуры метаболически активного прокариотного комплекса почв под влиянием нефтяного загрязнения / Н.А. Манучарова, Н.А. Ксенофонтова, Т.Д. Каримов, А.П. Власова, Г.М. Зенова, А.Л. Степанов // Микробиология. -2020. - Т. 89(2). - С. 222-234.

90. Манучаров, Н.А. Характеристика структуры прокариотного комплекса многолетнемерзлых грунтов Антарктиды на основании данных молекулярно-биологических методов / Н.А. Манучарова, Е.В. Трошева, Е.М. Кольцова, Е.В. Демкина, Е.В. Караевская, Е.М. Ривкина, А.В.

Марданов, Г.И. Эль-Регистан // Микробиология. - 2016. - Т. 85(1). - С. 83-91.

91. Марфенина О.Е. Антропогенная экология почвенных грибов / О.Е. Марфенина. - М.: МГУ, 2005. - 196 с.

92. Марфенина О.Е. Реакция комплекса микроскопических грибов на загрязнение тяжелыми металлами // Вестник Моск. Ун-та. Серия 17: Почвоведение. - 1985. - Т. 2. - С. 46-50.

93. Марфенина О.Е. Микроскопические грибы во внешней среде города / Марфенина О.Е., Кулько А.Б., Иванова А.Е. // Микология и фитопатология. - 2002. - Т. 36, Вып.4. - С. 22-31.

94. Медведева Н.Г. Влияние иприта и продуктов его гидролиза на почвенную микробиоту / Н.Г. Медведева, Ю.М.Поляк, С.В. Зиновьева, Т.Б. Зайцева // Почвоведение. - 2000. - № 8. - С. 1023- 1028.

95. Медведева Н.Г. Ферментативная активность почв при загрязнении ипритом и продуктами его гидролиза / Н.Г. Медведева, Ю.М. Поляк, С.В. Зиновьева, Т.Б. Зайцева, В.И. Сухаревич // Почвоведение. - 2001. -№ 5. - С. 628-631.

96. Методика выполнения измерений всхожести семян и длины корней проростков высших растений для определения токсичности техногенно загрязненных почв. ФР.1.39.2006.02264. - СПб, 2009. - 19 с.

97. Методика определения острой токсичности питьевых, пресных природных и сточных вод, водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по изменению оптической плотности культуры водоросли сценедесмус (Зсепейезшт quadricauda (Тигр.) БгеЬ.). - М., 2011. - 35с.

98. Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости дафний. ФР. 1.39.2007. 03222. - М.: Акварос, 2007. - 51 с.

99. Микробная деградация пестицидов / Под ред. И.И.Либерштейна. -Кишинев: Штиинца, 1991. - 80 с.

100. Минеев В.Г. Последействие минеральных удобрений на микробиологические и агрохимические свойства дерново-подзолистой почвы / В.Г. Минеев, Ю.Е. Козлова, А.В. Кураков, Н. Гомонова, Д.Г. Звягинцев // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. - 2001. - № 4. - С. 19-21.

101. Минеев В.Г. Последействие различных систем удобрения на ферментативную активность дерново-подзолистой почвы при загрязнении тяжелыми металлами / В.Г. Минеев, Л.А. Лебедева, А.В. Арзамазова // Агрохимия. - 2008. - № 10. - С. 48-54.

102. Мирчинк Т.Г. Почвенная микология / Т.Г. Мирчинк. - М.: Изд-во МГУ, 1988. - 220 с.

103. Мишустин Е.Н. Ассоциации почвенных микроорганизмов / Е.Н. Мишустин. - М.: Наука, 1975. - 107 с.

104. Мосина Л.В. Экологическая оценка влияния органических и минеральных удобрений на микрофлору дерново-подзолистой почвы и продуктивность агроценозов в экстремальных погодных условиях / Л.В. Мосина, Г.Е. Мерзлая // Известия ТСХА. - 2013. - Вып. 5. - С. 5-18.

105. Муратова А.Ю. Нефтеокисляющий потенциал ассоциативных ризобактерий рода Azospirillum / А.Ю. Муратова, О.В. Турковская, Л.П. Антонюк, О.Е. Макаров, Л.И. Позднякова, В.В. Игнатов // Микробиология. - 2005. - Т. 74. - № 2. - С. 248-254.

106. Назаров А.В. Потенциал использования микробно-растительного взаимодействия для биоремедиации / А.В. Назаров, С.А. Иларионов // Биотехнология. - 2005. - № 5. - С. 54-62.

107. Назаров В.В. Предварительные результаты изучения аллелопатического действия некоторых орхидных in vitro / В.В. Назаров, А.И. Широков // Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского. - 2014. - Т. 27. - №5. - С. 102-109.

108. Наплекова Н.Н. Влияние солей некоторых тяжелых металлов на физиологическую активность целлюлозоразрушающих

микроорганизмов / Наплекова Н.Н. // Изв. СО АН СССР. Сер. биол. наук. - 1982. - №10/2. - С. 79-85.

109. Напрасникова Е.В. Биологические свойства почв на угольных отвалах / Е.В. Напрасникова // Почвоведение. - 2008. Т. 12. С. 1487-1493.

110. Напрасникова Е.В. Уреазная активность и рН как показатели экологического состояния почв в условиях Восточной Сибири / Е.В. Напрасникова // Почвоведение. - 2005. - Т. 11. - С. 1345-1352.

111. Наумов Г.Ф. Аллелопатические свойства выделений прорастающих семян полевых культур и их сельскохозяйственное значение / Г.Ф. Наумов // Аллелопатия и продуктивность растений. - Харьков, 1988. -С. 5 -12.

112. Наумова Н.Б. Таксономическое разнообразие бактериального ансамбля в эмбриоземе самозарастающего золоотвала / Н.Б. Наумова, И.П. Беланов, Т.Ю. Аликина // Почвы и окр. среда. - 2019. - Т. 2(3). - е84. https://doi.org/10.31251/pos.v2i3.84

113. Никитин Д.А. Микробиологические индикаторы экологических функций почв (обзор) / Д.А. Никитин, М.В. Семенов, Т.И. Чернов, Н.А. Ксенофонтова, А.Д. Железова, Е.А. Иванова, Н.Б. Хитров, А.Л. Степанов // Почвоведение. - 2022. - Т. 2. - С. 228-243.

114. Никитина З.И. Микробиологический мониторинг наземных экосистем / З.И. Никитина. - Новосибирск: Наука - 1991. - 221 с.

115. Новосёлова Е.И. Ферментативная активность почв в условиях нефтяного загрязнения и её биодиагностическое значение / Е.И. Новосёлова, Н.А. Киреева // Теоретическая и прикладная экология. - 2009. - №2. - С. 4-12.

116. Одум Ю. Экология: В 2-х т. / Ю. Одум. - М.: Мир, 1986. - Т. 1. 328 с. -Т. 2. 376 с.

117. Орлова Н.Е. Биохимические и микробиологические аспекты применения биоугля в качестве мелиоранта почв / Н.Е. Орлова, Н.М. Лабутова, Е.Е. Орлова, Т.А. Банкина // В сб. научных трудов, посвященном 95- летию Кубанского ГАУ. -Краснодар. КубГАУ, 2017. - С. 323-325.

118. Орлова О.В. Сукцессия бактериальных сообществ при разложении соломы овса в двух разных типах почв / О.В. Орлова, А.А. Кичко, Е.В. Першина, А.Г. Пинаев, Е.Е. Андронов // Почвоведение. - 2020. - Т. 11. -С. 1383-1392.

119. Панкова Е.И. Засоленные почвы России / Е.И. Панкова, Л.А. Воробьева, И.М. Гаджиев, И.Н. Горохова и др. - М: Академкнига, 2006. - 853 с.

120. Пидопличко Н.М. Пенициллии (Ключи для определения видов) / Н.М. Пидопличко. - Киев: Наукова думка, 1972. - 151 с.

121. ПНД ФТ 16.2:2.2-98. Методика определения токсичности проб почв, донных отложений и осадков сточных вод экспресс-методом с применением прибора «Биотестер». - 2010. - 18 с.

122. Полевой определитель почв России. - М.: Почвенный институт им. В. В. Докучаева РАСХН, 2008. - 182 с.

123. Поляк Ю.М. Антропогенный стресс, как фактор воздействия на аллелопатическую активность почвенных микромицетов / Ю.М. Поляк // Успехи медицинской микологии. - 2023. - Т. 25. - С. 116-120.

124. Поляк Ю.М. Ферментативная диагностика нефтезагрязненных почв северо-западного региона РФ / Ю.М. Поляк, Л.Г. Бакина. Поляк Ю.М., Бакина Л.Г. Сборник материалов Международной научной конференции «Роль почв в биосфере и жизни человека», Москва, 5-7 октября 2015 г. -М.: МАКС Пресс. 2015. С. 223-224.

125. Поляк Ю.М. Роль аллелопатических взаимодействий в структурных и функциональных изменениях антропогенно-нарушенных почв / Поляк Ю.М., Бакина Л.Г., Маячкина Н.В., Галдиянц А.А. // Гумус и почвообразование. - 2017а. - № 21. - С. 65-69.

126. Поляк Ю.М. Биодиагностика состояния окультуренной городской почвы, загрязненной тяжелыми металлами, методами биоиндикации и биотестирования / Ю.М. Поляк, Л.Г. Бакина, Н.В. Маячкина, И.В. Дроздова, А.В. Каплан, Д.Л. Голод // Почва и окружающая среда. - 2018. - № 1(4). - С.231-242.

127. Поляк Ю.М. Влияние нонилфенола на цианобактерию Microcystis aeruginosa в различных окислительно-восстановительных условиях среды / Ю.М. Поляк, В.И. Сухаревич // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. - 2016. - №12(3). - С. 23-28.

128. Поляк Ю.М. Аллелопатические взаимоотношения растений и микроорганизмов в почвенных экосистемах / Ю.М. Поляк, В.И. Сухаревич // Успехи современной биологии. - 2019. - Т. 2. - С. 147-160.

129. Поляк Ю.М., Сухаревич В.И. Почвенные ферменты и загрязнение почв: биодеградация, биоремедиация, биоиндикация / Ю.М. Поляк, В.И. Сухаревич // Агрохимия. - 2020. - №3. - С. 83-93.

130. Поляк Ю.М., Сухаревич В.И. Токсины почвенных микроскопических грибов: распространение, экологическая роль, биодеградация // Агрохимия. - 2023. - № 10. - С. 87-96.

131. Поляк Ю.М. Влияние гранулометрического состава донных отложений на подвижность и токсичность тяжелых металлов в прибрежной зоне Финского залива Балтийского моря / Ю.М. Поляк, Т.Д. Шигаева, В.А. Кудрявцева, В.Г. Конаков // Вода: химия и экология. - 2017б. - №1. - С. 11-18.

132. Попов С.Я., Дорожкина Л.А., Калинин В.А. Основы химической защиты растений / С.Я. Попов, Л.А. Дорожкина, В.А. Калинин. - М.: Арт-Лион, 2003. - 208 с.

133. Пунтус И.Ф. Деградация фенантрена бактериями родов Pseudomonas и Burkholderia в модельных почвенных системах / Пунтус И.Ф. Филонов А.Е., Ахметов Л.И., Карпов А.В., Боронин А.М. // Микробиология. -2008. - Т. 77(1). - C .11-20.

134. Растворова О.Г. Физика почв: (Практ. руководство). О.Г. Растворова. -Л.: Изд-во ЛГУ, 1983. - 193 с.

135. Рижия Е.Я. Влияние биоугля на свойства образцов дерново-подзолистой супесчаной почвы с разной степенью окультуренности (лабораторный

эксперимент) / Рижия Е.Я., Бучкина Н.П., Мухина И.М., Белинец А.С., Балашов Е.В. // Почвоведение. -2015. - № 2. - С. 211-220.

136. Рижия Е.Я. Ферментативная активность и эмиссия закиси азота из дерново-подзолистой супесчаной почвы с биоуглем / Рижия Е.Я., Мухина И.М., Вертебный В.Е., Хорак Я., Конончук П.Ю., Хомяков Ю.В. // С.-х. биол. - 2017. - № 3. - С. 464-470.

137. Риклефс Р. Основы общей экологии / Р. Риклефс - М.: Мир, 1979. - 424 с.

138. Рогозина Е.А. Сравнительная характеристика отечественных биопрепаратов, предлагаемых для очистки почв и грунтов от загрязнения нефтью и нефтепродуктами / Е.А. Рогозина, O.A. Андреева, С.И. Жаркова, Д.А. Мартынова // Нефтегаз. геол. Теория и практика. -2010. - Т. 5(3). - С. 1-18.

139. Сараев А.К. Инвентаризация и оценка погребенных объектов прошлого экологического ущерба в почвах и грунтовых водах с использованием новой технологии радиомагнитотеллурических зондирований / А.К. Сараев, А.Е. Симаков, В.М. Питулько, В.В. Кулибаба, И.В. Токарев, Тезкан Б. // Рег. экол. - 2015. - №1(36). - С. 7-21.

140. Саттон Д. Определитель патогенных и условно патогенных грибов / Саттон Д., Фотергилл А., Ринальди М. - М.: Мир, 2001. - 468 с.

141. Свистова И.Д. Токсины микромицетов чернозема: спектр антибиотического действия и роль в формировании микробного сообщества / Свистова И.Д., Щербаков А.П., Фролова Л.О. // Почвоведение. - 2004. - № 10. - С. 1220-1227.

142. Свистова И.Д. Фитотоксическая активность черноземных сапрофитных микромицетов: специфичность, сорбция и стабильность фитотоксинов в почве / И.Д. Свистова, А.П. Щербаков, Л.О. Фролова // Прикладная биохим. и микробиол. - 2003. - Т. 39. - № 4. - С. 441-445.

143. Седова И.Б. Анализ результатов мониторинга загрязнения микотоксинами продовольственного зерна урожаев 2005-2016 гг. / И.Б.

Седова, М.Г. Киселева, З.А. Чалый, И.В. Аксенов, Л.П. Захарова, В.А. Тутельян // Успехи медицинской микологии. - 2018. - Т. 19. - С. 329330.

144. Семенов А.М. Почва как биологическая система и ее новая категория -здоровье / А.М. Семенов, Е.В. Семенова // Успехи соврем. биол. - 2018. - Т. 138. - № 2. - С. 115-125.

145. Семенов А.М. Концепция здоровья почвы: фундаментально-прикладные аспекты обоснования критериев оценки / А.М. Семенов, М.С. Соколов // Агрохимия. - 2016. - № 1. - С. 3-16.

146. Семенов М.В. Метабаркодинг и метагеномика в почвенно-экологических исследованиях: успехи, проблемы и возможности / М.В. Семенов // Журнал общей биол. - 2019. - Т. 80. - № 6. - С. 403-417.

147. Семенов М.В., Манучарова Н.А., Степанов А.Л. Распределение метаболически активных представителей прокариот (архей и бактерий) по профилям чернозема и бурой полупустынной почвы / М.В. Семенов, Н.А. Манучарова, А.Л. Степанов // Почвоведение. - 2016. - Т. 2. - С. 110.

148. Сергеев В.С. Влияние растительных остатков на показатели почвенного плодородия / В.С. Сергеев // Вестн. Алтайского гос. аграрн. ун-та. -2010. - Т. 71. - №9. - С. 28-34.

149. Симагина Н.О. Влияние аллелопатических взаимодействий на лигнификацию анатомических структур однолетних галофитов / Н.О. Симагина, Н.Ю. Лысякова // Экосистемы, их оптимизация и охрана. -2010. - Вып. 2. - С. 75-83.

150. Скугорева С.Г. Биосорбция тяжёлых металлов микромицетами: особенности процесса, механизмы, кинетика / С.Г. Скугорева, Г.Я. Кантор, Л.И. Домрачева // Теор. и прикл. экол. - 2019. - № 2. - С. 14-31.

151. Соколов Д.А. Дифференциация восстановленных продуктов в эмбриоземах Кузбасса / Д.А. Соколов // Сиб. экол. журнал. - 2008. - № 6. - С. 921-925.

152. Соколов И.А. Почвообразование и экзогенез / Д.А. Соколов. - М.: Почв. ин-т им. В.В. Докучаева, 1997. - 244 с.

153. Соколов М.С., Литвишко Е.В. Биологическая защита растений в США / Д.А. Соколов, Е.В. Литвишко // Защита растений. - 1993. - № 11. - С. 18-20.

154. Степанов А.Л., Манучарова Н.А., Смагин А.В. Характеристика биологической активности микробного комплекса городских почв / Степанов А.Л., Манучарова Н.А., Смагин А.В. // Почвоведение. - 2005. -№ 8. - С. 978-983.

155. Структурно-функциональная роль почвы в биосфере / Под ред. Г.В.Добровольского. - М.: ГЕОС, 1999. - 287 с.

156. Терехова В.А. Биотестирование почв: подходы и проблемы / В.А. Терехова // Почвоведение. - 2011. - № 2. - С.190-198.

157. Терехова В.А. Микромицеты в экологической оценке водных и наземных экосистем / В.А. Терехова. - М.: Наука, 2007. - 215 с.

158. Терехова В.А. Некоторые научно-организационные проблемы «Global Indicator Networks» / В.А. Терехова // Теор. прикл. экол. - 2009. - №3. -С. 16-19.

159. Тихонович И.А. Таксономическая структура прокариотных сообществ почв разных биоклиматических зон / И.А. Тихонович, Т.И. Чернов, А.Д. Железова, А.К. Тхакахова, Е.Е. Андронов, О.В. Кутовая // Бюллетень Почвенного института имени В.В. Докучаева. - 2018. - Т. 95. - С. 125153.

160. Трифонова Т.А. Изменение биологической активности почвы городских рекреационных территорий в условиях загрязнения тяжелыми металлами и нефтепродуктами / Т.А. Трифонова, О.Н. Забелина // Почвоведение. - 2017. - № 4. - С. 497-505.

161. Трифонова Т.А. Сравнительная оценка состояния городских почв по их биологической активности / Т.А. Трифонова, О.Н. Сахно, О.Н. Забелина,

И.Д. Феоктистова // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 17. Почвоведение. - 2014. -№ 3. - С.23-27.

162. Турковская О.В. Особенности использования грибов в экологических биотехнологиях / О.В. Турковская, Н.Н. Позднякова // Известия Уфимского научного центра РАН. - 2018. - № 3-5. - С. 60-66.

163. Турковская О.В. Деструктивная активность и продукция внеклеточных пероксидаз у микромицетов с различной экологической стратегией / О.В. Турковская, Е.В. Дубровская, В.С. Гринев, С.А. Баландина, Н.Н. Позднякова // Сел.-хоз. биол. - 2019. - Т. 54(1). - С. 65-75.

164. Филиппова В.А. Филогенетическая структура сообщества прокариот дерново-подзолистой почвы под озимой рожью не зависит от агротехнических приемов / В.А. Филиппова, Ю.В. Круглов, Е.Е. Андронов // Сел.-хоз. биол. - 2018. - Т. 53(5). - С. 994-1003.

165. Хабиров И.К. Устойчивость почвенных процессов / И.К. Хабиров, И.М. Габбасова, Ф.Х. Хазиев. - Уфа: БГАУ, 2001. - 327 с.

166. Хазиев Ф.Х. Методы почвенной энзимологии / Ф.Х. Хазиев. - М.: Наука, 2005. - 252 с.

167. Хазиев Ф.Х. Почва и биоразнообразие / Ф.Х. Хазиев // Экология. - 2011. - № 3. - С. 184-190.

168. Хазиев Ф.Х. Системно-экологический анализ ферментативной активности почв / Ф.Х. Хазиев. - М.: Наука, 1982. - 203 с.

169. Хасан Д. Влияние хлоридного засоления на прорастание семян и рост проростков Brassica napus L. / Д. Хасан, И.С. Ковтун, М.В. Ефимова // Вестник Томского государственного университета. Биология. - 2011. -№ 4 (16). - С. 108-112.

170. Хоменков В.Г. Организация метаболических путей и молекулярно-генетические механизмы биодеградации ксенобиотиков у микроорганизмов / В.Г. Хоменков, А.Б. Шевелёв, В.Г. Жуков, Н.А. Загустина, А.М. Безбородов // Прикл. биохим. микробиол. - 2008. - Т. 44. - №2. - С. 133-152.

171. Чапоргина А.А. Деструкционная активность углеводородокисляющих микромицетов, выделенных из почв Кольского полуострова / А.А. Чапоргина, М.В. Корнейкова, Н.В. Фокина // Микол. и фитопатол. -2019. - Т. 53(1). - С. 36-45.

172. Черников В.А. Агроэкология / В.А. Черников, Р.М. Алексахин, А.В. Голубев и др. - М.: Колос, 2000. - 536 с.

173. Чернов Т.И. Оценка различных индексов разнообразия для характеристики почвенного прокариотного сообщества по данным метагеномного анализа / Т.И. Чернов, А.К. Тхакахова, О.В. Кутовая // Почвоведение. - 2015. - Т. 4. - С. 462-468.

174. Чирак Е.Л. Динамика микробного сообщества типичного чернозема при биодеградации целлюлозы и соломы ячменя / Е.Л. Чирак, О.В. Орлова, Т.С. Аксенова, А.А. Кичко, Е.Р. Чирак, Н.А. Проворов, Е.Е. Андронов // Сел.-хоз. биол. - 2017. - Т. 52(3). - С. 588-596.

175. Широких A.A. Грибы в биомониторинге наземных экосистем / A.A. Широких, A.B. Колупаев // Теор. и прикл. экол. - 2009. - № 3. - С. 4— 14.

176. Щемелинина Т.Н. Биологическая активность нефтезагрязненных почв крайнего севера на разных стадиях их восстановления и при рекультивации: автореф. дисс. ...канд. биолог. Наук / Т.Н. Щемелинина.

- Воронеж: Институт биологии Коми научного центра Уральского отделения РАН, 2008. - 22 с.

177. Шорина Т.С. Влияние нефти на физические свойства чернозема обыкновенного степной зоны Урала / Т.С. Шорина, А.М. Русанов, А.М. Сулейманова // Вестник Оренбургского государственного университета.

- 2010. - №6 (112). - С. 137-140.

178. Юршенас Д.А. Обзор основных таксономических групп микроорганизмов в почвах зонального ряда по данным метагеномного анализа и флуоресцентной гибридизации in situ / Д.А. Юршенас, Н.Н.

Каширская // Успехи современной биологии. - 2022. - Т. 142. - № 6. - С. 578-590.

179. Якутин М.В. Влияние засоления на биомассу микроорганизмов в разновозрастных почвах в лесостепной зоне Западной Сибири / М.В. Якутин, Л.Ю. Анопченко, В.С. Андриевский // Почвоведение. - 2016. -№ 12. - С. 1500-1505.

180. Янкевич М.И. Биоремедиация почв: вчера, сегодня, завтра / М.И. Янкевич, В.В. Хадеева, В.П. Мурыгина // Биосфера. - 2015. - Т. 7(2). -С. 199-208.

181. Abhilash P.C. Transgenic plants for enhanced biodégradation and phytoremediation of organic xenobiotics / P.C. Abhilash, S. Jamil, N. Singh // Biotechnology Advances. - 2009. - Vol. 27. - P. 474-488.

182. Achuba F.I. Effect of spent engine oil on soil catalase and dehydrogenase activities / F.I. Achuba, B.O. Peretiemo-Clarke // Int. Agrophysics. - 2008. -Vol. 22. - P. 1-4.

183. Acosta-Rodríguez I. Bioremoval of different heavy metals by the resistant fungal strain Aspergillus niger / I. Acosta-Rodríguez, J.F. Cárdenas-González, A.S. Rodríguez Pérez, J. Tovar Oviedo, V.M. Martínez-Juárez // Bioinorganic Chem. Appl. - 2018. - Vol. 2018. - 3457196.

184. Agriopoulou S. Ergot alkaloids mycotoxins in cereals and cereal-derived food products: Characteristics, toxicity, prevalence, and control strategies / S. Agriopoulou // Agronomy. - 2021. - Vol. 11 (5). - P. 931.

185. Aislabie J. Microbial degradation of DDT and its residues: A review / J. Aislabie, N. Richards, H. Boul // N.Z. J. Agric. Res. - 1997. - Vol. 40. - P. 269-282.

186. Alberts J.F. Biological degradation of aflatoxin B-1 by Rhodococcus erythropolis cultures / J.F. Alberts, Y. Engelbrecht, P.S. Steyn, W. Holzapfel, W. van Zyl // Int. J. Food Microbiol. - 2006. - Vol. 109. - P. 121-126.

187. Alexander M. Biodegradation and bioremediate ion / M. Alexander. - San Diego: Academic Press, 1999. - 453 p.

188. Ali A. Mycoremediation of potentially toxic trace elements—A biological tool for soil cleanup: A review / A. Ali, D. Guo, A. Mahar, P. Wang, F. Shen, R. Li, et al. // Pedosphere. - 2017. - Vol. 27(2). - P. 205-222.

189. Allison S.D. Evolutionary-economic principles as regulators of soil enzyme production and ecosystem function / S.D. Allison, M.N. Weintraub, T.B. Gartner, M.P. Waldrop // Soil Enzymology. - Springer-Verlag, Berlin, Germany, 2011. - P. 229-243.

190. Alshannaq A. Occurrence, toxicity, and analysis of major mycotoxins in food / A. Alshannaq, J.-H. Yu // Int. J. Environ. Res. Public Health. - 2017. - Vol. 14. - E632.

191. Al-Sharidah A. Isolation and characterization of two hydrocarbon-degrading Bacillus subtilis strains from oil contaminated soil of Kuwait / A. Al-Sharidah, A. Richardt, J.R. Golecki, R. Dierstein, M.H. Tadros // Microbiol. Res. - 2000. - Vol. 155(3). - P. 157-164.

192. Ameen F. Desert soil fungi isolated from Saudi Arabia: cultivable fungal community and biochemical production / F. Ameen, S. AlNAdhari, M.A. Yassin, A. Al-Sabri, A. Almansob, N. Alqahtani, S. Stephenson // Saudi Journal of Biological Sciences. - 2022. - Vol. 29(4). - P. 2409-2420.

193. Amini S. Salt-affected soils, reclamation, carbon dynamics, and biochar: a review / S. Amini, H. Ghadiri, C.R. Chen, P. Marschner // J. Soil Sediment. -2016. - Vol. 16. - P. 939-953.

194. Anaya A.L. Plant-mycorrhizae and endophytic fungi interactions: Broad spectrum of allelopathy studies / A.L. Anaya, A. Saucedo-García, S.M. Contreras-Ramos, R. Cruz-Ortega // Allelopathy. - 2013. - P. 55-80.

195. Angel R. Methanogenic archaea are globally ubiquitous in aerated soils and become active under wet anoxic conditions / R. Angel, P. Claus, R. Conrad // The ISME Journal. - 2012. - Vol. 6. - P. 847-862.

196. Anjorin A.T. Effect of total aflatoxin on the growth characteristics and chlorophyll level of sesame (Sesamum indicum L.) / A.T. Anjorin, T. Inje // New York Sci. J. - 2014. - Vol. 7. - P. 8-13.

197. Ansari F. Review on bioremediation technologies of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) from soil: Mechanisms and future perspective / F. Ansari, A. Ahmad, M. Rafatullah, et al. // Int. Biodeterior. Biodegrad. - 2023. - Vol. 179 - 105582.

198. Arias M.E. Soil health -- a new challenge for microbiologists and chemists / M.E. Arias, J.A. Gonzalez-Perez, F.J. Gonzalez-Vila, A.S. Ball // Int. Microbiol. - 2005. - Vol. 8(1). - P. 13-21.

199. Arora D.S. In vitro antioxidant potential of some soil fungi: screening of functional compounds and their purification from Penicillium citrinum / D.S. Arora, P. Chandra // Appl. Biochem. Biotechnol. - 2011. - Vol. 165(2). - P. 639-651.

200. Arunachalam M. Degradation of (+)-catechin by Acinetobacter calcoaceticus MTC 127 / M. Arunachalam, N. Mohan, R. Sugadev, P. Chellappan, A. Mahadevan // Biochim. Biophys. Acta 2003. Vol. 1621. P. 261-265.

201. Asemoloye M.D. Hydrocarbon degradation and enzyme activities of Aspergillus oryzae and Mucor irregularis isolated from Nigerian crude oil-polluted sites / M.D. Asemoloye, S. Tosi, C. Dacco, X. Wang, S. Xu, M.A. Marchisio, W. Gao, S.G. Jonathan, L. Pecoraro // Microorganisms. 2020. -Vol. 8(12) - 1912.

202. Aslam F. Allelopathy in agro-ecosystems: a critical review of wheat allelopathy - concepts and implications / F. Aslam, A. Khaliq, A. Matloob, A. Tanveer, S. Hussain, Z.A. Zahir // Chemoecology. - 2017. -Vol. 27. - P. 124.

203. Bacon C.W. Is quorum signaling by mycotoxins a new risk-mitigating strategy for bacterial biocontrol of Fusarium verticillioides and other endophytic fungal species? / C.W. Bacon, D.M. Hinton, T.R. Mitchell // J. Agric. Food Chem. - 2017. - Vol. 65. - P. 7071-7080.

204. Bailey V.L. Reconciling apparent variability in effects of biochar amendment on soil enzyme activities by assay optimization / V.L. Bailey, S.J. Fansler,

J.L. Smith, H.J. Bolton // Soil Biol. Biochem. - 2011. - Vol. 43(2). - P. 296301.

205. Bais H.P. Allelopathy and exotic plant invasion: from molecules and genes to species interactions / H.P. Bais, R. Vepachedu, S. Gilroy, R.M. Callaway, J.M. Vivanco // Science. - 2003. - Vol. 301. - P. 1377-1380.

206. Bajpai B. A new approach to microbial production of gallic acid / B. Bajpai, S. Patil // Brazilian Journal of Microbiology. - 2008. - Vol. 39. - P. 708-711.

207. Bakina L.G. Bioaugmentation: possible scenarios due to application of bacterial preparations for remediation of oil contaminated soil / L.G. Bakina, M.V. Chugunova, Y.M. Polyak, N.V. Mayachkina, A.O. Gerasimov // Environmental Geochemistry and Health. - 2021. - Vol. 43(6). - P. 23472356.

208. Bakker A.W. Microbial cyanide production in the rhizosphere in relation to potato yield reduction and Pseudomonas spp. - mediated plant growth-stimulation / A.W. Bakker, B. Schippers // Soil Biol. Biochem. - 1987. - Vol. 19. - P. 451-457.

209. Bala S. Recent strategies for bioremediation of emerging pollutants: A review for a green and sustainable environment / S. Bala, D. Garg, B.V. Thirumalesh, M. Sharma, K. Sridhar, B.S. Inbaraj, M. Tripathi // Toxics. - 2022. - Vol. 10(8). - 484.

210. Baldwin I.T. Mechanism of damage-induced alkaloid production in wild tobacco / I.T. Baldwin // J. Chem. Ecol. - 1989. - Vol. 15. - P. 1661-1680.

211. Baliyarsingh B. Soil Verrucomicrobia and their role in sustainable agriculture / B. Baliyarsingh, B. Dash, S. Nayak, S.K. Nayak // Advances in Agricultural and Industrial Microbiology. - Springer, Singapore, 2022. - P. 105-124.

212. Bandara T. Chemical and biological immobilization mechanisms of potentially toxic elements in biochar-amended soils / T. Bandara, A. Franks, J. Xu, N. Bolan, H. Wang, C. Tang // Critical Reviews Environ. Sci. Technol. - 2020. - Vol. 50 (9). P. 903-978.

213. Banerjee A. The nitrile-degrading enzymes: current status and future prospects / A. Banerjee, R. Sharma, U.C. Banerjee // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2002. - Vol. 60. - P. 33-44.

214. Barazani O. Allelopathic bacteria and their impact on higher plants / O. Barazani, J. Friedman // Crit. Rev. Microbiol. - 2001. - Vol. 27. - P. 41- 55.

215. Barclay M. Biodegradation of metal cyanides by mixed and pure cultures of fungi / M. Barclay, A. Hart, C.J. Knowles, J.C.L. Meenssen, V.A. Tett // Enzyme Microb. Tehcnol. - 1998. - Vol. 22. - P. 22.

216. Bardin M. Is the efficacy of biological control against plant diseases likely to be more durable than that of chemical pesticides? / M. Bardin, S. Ajouz, M. Comby, M. Lopez-Ferber, B. Graillot, M. Siegwart, P.C. Nicot // Front. Plant Sci. - 2015. - Vol. 6:566. doi:10.3389/fpls.2015.00566.

217. Bardina T.V. The use of biological methods for control of soils at industrial waste landfill / T.V. Bardina, M.V. Chugunova, V.V. Kulibaba, V.I. Bardina / International symposium: "Environmental and engineering aspects for sustainable living". Hannover. 27-28 November. - 2014. - P. 26-27.

218. Bártíková H. Veterinary drugs in the environment and their toxicity to plants / H. Bártíková, R. Podlipná, L. Skálová // Chemosphere. - 2016. - Vol. 144. -P. 2290-2301.

219. Bastida F. Past, present and future of soil quality indices: a biological perspective / F. Bastida, A. Zsolnay, T. Hernández, C. García // Geoderma, -2008. - Vol. 147. - 159-171.

220. Bastos A.C. Trametes versicolor: Potential for atrazine bioremediation in calcareous clay soil, under low water availability conditions / A.C. Bastos, N. Magan // Int. Biodeter. Biodegr. - 2009. - Vol. 63. - P. 389-394.

221. Basumatary B. Phytoremediation of crude oil contaminated soil using nut grass, Cyperus rotundus / B. Basumatary, R. Saikia, S. Bordoloi // J. Environ. Biol. - 2012. - Vol. 33(5). - P. 891-896.

222. Bates S.T. Examining the global distribution of dominant archaeal populations in soil / S.T. Bates, D. Berg-Lyons, J.G. Caporaso, W.A. Walters, R. Knight, N. Fierer // ISME J. - 2010. - Vol. 5. - P. 908-917.

223. Batish D.R. 2-Benzoxazolinone (BOA) induced oxidative stress, lipid peroxidation and changes in some antioxidant enzyme activities in mung bean (Phaseolus aureus) / D.R. Batish, H.P. Singh, N. Setia, S. Kaur, R.K. Kohli // Plant Physiol. Biochem. - 2006. - Vol. 44. - P. 819-827.

224. Batisson I. Isolation and characterization of mesotrione-degrading Bacillus sp. from soil / I. Batisson, O. Crouzet, P. Besse-Hoggan, M. Sancelme, J.-F. Mangot, C. Mallet, J. Bohatier // Env. Pollut. - 2009. - Vol. 157(4). - P. 1195-1201.

225. Battilani P. Foreword: mycotoxins in a changing world / P. Battilani, J. Stroka, N. Magan // World Mycotoxin J. - 2016. - Vol. 9. - P. 647-651.

226. Bayat Z. Immobilization of microbes for bioremediation of crude oil polluted environments: A mini review / Z. Bayat, M. Hassanshahian, S. Cappello // Open Microbiol. J. - 2015. - Vol. 9. - P. 48-54.

227. Beaudette L.A. Low surfactant concentration increases fungal mineralization of a polychlorinated biphenyl congener but has no effect on overall metabolism / L.A. Beaudette, O.P. Ward, M.A. Pickard, P.M. Fedorak // Lett. Appl. Microbiol. - 2000. - Vol. 30. - P. 155-160.

228. Bedard D.L. Microbial reductive dechlorination of polychlorinated biphenyls / D.L. Bedard, J.F. Quensen // Microbial transformation and degradation of toxic organic chemicals. - Wiley-Liss: NY, 1995. - pp. 127-216.

229. Bedre R. Genome-wide transcriptome analysis of cotton (Gossypium hirsutum L.) identifies candidate gene signatures in response to aflatoxin producing fungus Aspergillus flavus / R. Bedre, K. Rajasekaran, V.R. Mangu, L.E. Sanchez Timm, D. Bhatnagar, N. Baisakh // PLoS One. - 2015. - Vol. 10. -e0138025.

230. Beesley L. A review of biochars' potential role in the remediation, revegetation and restoration of contaminated soils / L. Beesley, E. Moreno-

Jiménez, J.L. Gomez-Eyles, E. Harris, B. Robinson, T. Sizmur // Env. Pollut.

- 2011. - Vol. 159. - P. 3269-3282.

231. Bellincampi D. Plant cell wall dynamics and wall-related susceptibility in plant-pathogen interactions / D. Bellincampi, F. Cervone, V. Lionetti // Front. Plant Sci. - 2014. - Vol. 5. - P. 228.

232. Bending G.D. Microbial aspects of the interaction between soil depth and biodegradation of the herbicide isoproturon / G.D. Bending, M.S. Rodriguez-Cruz // Chemosphere. - 2007. - Vol. 66. - P. 664-671.

233. Beneduzi A. Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): Their potential as antagonists and biocontrol agents / A. Beneduzi, A. Ambrosini, L.M.P. Passaglia // Genetics and Molecular Biol. - 2012. - Vol. 35, 4 (suppl). - P. 1044-1051.

234. Benoit I. Bacillus subtilis attachment to Aspergillus niger hyphae results in mutually altered metabolism / I. Benoit, M.H. van den Esker, A. Patyshakuliyeva, D.J. Mattern, F. Blei, M. Zhou, et al. // Environ. Microbiol.

- 2015. - Vol. 17. - P. 2099-2113.

235. Bento F.M. Comparative bioremediation of soils contaminated with diesel oil by natural attenuation, biostimulation and bioaugmentation / F.M. Bento, F.A.O. Camargo, B.C. Okeke, W.T. Frankenberger // Bioresourse Technol. -2005. - Vol. 96(9). - P. 1049-1055.

236. Berestetskiy A.O. A review of fungal phytotoxins: from basic studies to practical use / A.O. Berestetskiy // Appl. Biochem. Microbiol. - 2008. - Vol. 44. - P. 453-465.

237. Bçs A. Long-term responses of Scots pine (Pinus sylvestris L.) and European beech (Fagus sylvatica L.) to the contamination of light soils with diesel oil / A. Bçs, K. Warminski, B. Adomas // Environ. Sci. Pollut. Res. - 2019. - Vol. 26. - P. 10587-10608.

238. Bhalerao T.S. Biodegradation of organochlorine pesticide, endosulfan, by a fungal soil isolate, Aspergillus niger / Bhalerao T.S., Puranik P.R. // Int. Biodeter. Biodegr. - 2007. - Vol. 59. - P. 315-321.

239. Bharali P. Autochthonous psychrophilic hydrocarbonoclastic bacteria and its ecological function in contaminated cold environments / P. Bharali, B. Gogoi, V. Sorhie, S.A. Acharjee, B. Walling, Alemtoshi, ... M.P. Shah // Biodegradation. - 2023. - P. 1-46. https://doi.org/10.1007/s10532-023-10042-5

240. Bidja Abena M.T. Microbial diversity changes and enrichment of potential petroleum hydrocarbon degraders in crude oil-, diesel-, and gasoline-contaminated soil / M.T. Bidja Abena, G. Chen, Z. Chen, X. Zheng, S. Li, T. Li, W.Zhong // 3 Biotech - 2020. - Vol. 10: 42.

241. Birk J.J. Microbial response to charcoal amendments and fertilization of a highly weathered tropical soil / J.J. Birk, C. Steiner, W.C. Teixeira, W. Zech, B. Glaser // Amazonian dark earths: Wim Sombroek's vision. - Dordrecht: Springer, 2009. - P. 309-324.

242. Blagodatskaya E. Active microorganisms in soil: Critical review of estimation criteria and approaches / E. Blagodatskaya, Y. Kuzyakov // Soil Biol. Biochem. - 2013. - Vol. 67. - P. 192-211.

243. Blair A.C. A lack of evidence for an ecological role of the putative allelochemical (+/-)-catechin in spotted knapweed invasion success / A.C. Blair, S.J. Nissen, G.R. Brunk, R.A. Hufbauer // J. Chem. Ecol. - 2006. -Vol. 32. - P. 2327-2331.

244. Blanco J.A. The representation of allelopathy in ecosystem-level forest models / J.A. Blanco // Ecol. Modell. 2007. - V. 209. - P. 65-77.

245. Bodor A. Challenges of unculturable bacteria: environmental perspectives / A. Bodor, N. Bounedjoum, G.E. Vincze et al. // Rev. Environ. Sci. Biotechnol. - 2020. - Vol. 19. - P. 1-22.

246. Boer M. Transcriptional responses indicate attenuated oxidative stress in the springtail Folsomia candida exposed to mixtures of cadmium and phenanthrene / M. Boer, J. Ellers, C.M. Gestel, J. Dunnen, N. Straalen, D. Roelofs // Ecotoxicology. - 2013. - Vol. 22. - P. 619-631.

247. Boopathy R. Factors limiting bioremediation technologies / R. Boopathy // Bioresour. Technol. - 2000. - Vol. 74. - P. 63-67.

248. Bornehag C.G. Dampness in buildings as a risk factor for health effects, EUROEXPO: a multidisciplinary review of the literature (1998-2000) on dampness and mite exposure in buildings and health effects / C.G. Bornehag, J. Sundell, S. Bonini, A. Custovic, P. Malmberg, S. Skerfving, T. Sigsgaard, A. Verhoeff // Indoor Air. - 2004. - Vol. 14(4). - P. 243-257.

249. Borowik A. Functional diversity of fungal communities in soil contaminated with diesel oil / A. Borowik, J. Wyszkowska, K. Oszust // Front Microbiol. -2017. - Vol. 8. - 1862.

250. Bosco F. Mycoremediation in Soil. In: Environmental Chemistry and Recent Pollution Control Approaches / F. Bosco, C. Mollea. - IntechOpen, 2019.

251. Boul H.L. Influence of agricultural practices on the levels of DDT and its residues in soil / H.L. Boul, M.L. Garnham, D. Hucker, J. Aislabie // Env. Sci. Technol. - 1994. - Vol. 28. - P. 1397-1402.

252. Brahushi F. Stimulation of reductive dechlorination of hexachlorobenzene in soil by inducing the native microbial activity / F. Brahushi, U. Dorfler, R. Schroll et al. // Chemosphere. - 2004. - Vol. 55. - P. 1477-1484.

253. Brasel T.L. Detection of airborne Stachybotrys chartarum macrocyclic trichothecene mycotoxins in the indoor environment / T.L. Brasel, J.M. Martin, C.G. Carriker, S.C. Wilson, D.C. Straus // Appl Environ Microbiol. -2005. - Vol. 71(11). - P. 7376-7388.

254. Bren U. Guanine alkylation by the potent carcinogen aflatoxin B1: quantum chemical calculations / U. Bren, F.P. Guengerich, J. Mavri // Chem Res. Toxicol. - 2007. - Vol. 20. - P. 1134-1140.

255. Bronicka M. Abundance and diversity of fungi in a saline soil in central-west New South Wales, Australia / M. Bronicka, A. Raman, D. Hodgkins, H. Nicol // Sydowia. - 2007. - Vol. 59 (1). - P. 7-24.

256. Broos K. Toxicity of heavy metals in soil assessed with various soil microbial and plant growth assays: A comparative study / K. Broos, J. Mertens, E. Smolders // Environ. Toxicol. Chem. - 2005. - Vol. 24 (3). - P. 634-640.

257. Buckley D.H. Phylogenetic analysis of nonthermophilic members of the kingdom Crenarchaeota and their diversity and abundance in soils / D.H. Buckley, J.R. Graber, T.M. Schmidt // Appl. Environ. Microbiol. - 1998. -Vol. 64. - P. 4333-4339.

258. Burns R.G. Soil enzymes in a changing environment: current knowledge and future directions / R.G. Burns, J.L. Deforest, J. Marxsen, R.L. Sinsabaugh, M.E. Stromberger, M.D. Wallenstein, et al. // Soil Biol. Biochem. - 2013. -Vol. 58. - P. 216-234.

259. Burns R.G. Enzymes in the Environment: Activity, Ecology and Applications / R.G. Burns, R.P. Dick. - Marcel Dekker, New York, 2002. - 640 p.

260. Cabana H. Elimination of endocrine disrupting chemicals nonylphenol and bisphenol A and personal care product ingredient triclosan using enzyme preparation from the white rot fungus Coriolopsis polyzona / H. Cabana, J.L. Jiwan, R. Rozenberg, V. Elisashvili, M. Penninckx, S.N. Agathos, J.P. Jones // Chemosphere. - 2007. - Vol. 67. - P. 770-778.

261. Cabello P. Assimilation of cyanide and cyano-derivatives by Pseudomonas pseudoalcaligenes CECT5344: from omic approaches to biotechnological applications / P. Cabello, V.M. Luque-Almagro, A. Olaya-Abril, L.P. Saez, C. Moreno-Vivian, M.D. Roldan // FEMS Microbiol. Lett. - 2018. - Vol. 365(6). - DOI: 10.1093/femsle/fny032

262. Caceres P.T. Biodegradation of the pesticide fenamiphos by ten different species of green algae and cyanobacteria / P.T. Caceres, M. Megharaj, R. Naidu // Curr. Microbiol. - 2008. - Vol. 57. - P. 643-646.

263. Cai M. Organization and regulation of pentachlorophenol-degrading genes in Sphingobium chlorophenolicum ATCC 39723 / M. Cai, L. Xun // J. Bacteriol. - 2002. - Vol. 184. - P. 4672-4680.

264. Caldwell B.A. Enzyme activities as a component of soil biodiversity: a review / B.A. Caldwell // Pedobiologia. - 2005. - Vol. 49. - P. 637-644.

265. Cameron M.D. Enzymology of Phanerochaete chrysosporium with respect to the degradation of recalcitrant compounds and xenobiotics / M.D. Cameron, S. Timofeevski, S.D. Aust // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2000. - Vol.54. -P. 751-758.

266. Cang L. Effect of electrokinetic treatment of heavy metal contaminated soil on soil enzyme activities / L. Cang, D.M. Zhou, Q.Y. Wang, D.W. Wu // J. Hazard. Mat. - 2008. - Vol. 172(2-3). - P. 1602-1607.

267. Caporaso J.G. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data / J.G. Caporaso, J. Kuczynski, J. Stombaugh, K. Bittinger, F.D. Bushman, E.K. Costello, N. Fierer, et al. // Nat. Methods. - 2010. - Vol. 7(5). - P. 335-336.

268. Ceballos S.J. Development and characterization of a thermophilic, lignin degrading microbiota / S.J. Ceballos, C.W. Yu, J.T. Claypool, S.W. Singer, B.A. Simmons, M.P. Thelen, C.W. Simmons, J.S. VanderGheynst // Process Biochem. - 2017. - Vol. 63. - P. 193-203.

269. Cerniglia C.E. 2010. Degradation of polycyclic aromatic hydrocarbons by fungi / C.E. Cerniglia, J.B. Sutherland // Handbook of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. - Springer, Berlin, Heidelberg. - P. 2079-2110.

270. Cernohorska L. Antibiotic synergy against biofilm-forming Pseudomonas aeruginosa / L. Cernohorska, M. Votava // Folia Microbiol. - 2008. - Vol. 53. - P. 57-60.

271. Chase W. 2,2'-oxo-1,1'-azobenzene: microbial transformation of rye (Secale cereale L.) allelochemicals in field soils by Acinetobacter calcoaceticus: III / W.R. Chase, M.G. Nair, A.R. Putnam, S.K. Mishra // J. Chem. Ecol. - 1991. - Vol. 17. - P. 1575-1584.

272. Chatterton S. Chitinase and ß-1,3-glucanase enzyme production by the mycoparasite Clonostachys rosea f. catenulata against fungal plant pathogens / S. Chatterton, Z.K. Punja // Can. J. Microbiol. 2009. Vol. 55 (4). P. 356-367.

273. Chaudhary D.K. New insights into bioremediation strategies for oil-contaminated soil in cold environments / D.K. Chaudhary, J. Kim // Int. Biodeterior. Biodegrad. - 2019. - Vol. 142. - P. 58-72.

274. Chaudhary D.K. Flavobacterium naphthae sp. nov., isolated from oil-contaminated soil / D.K. Chaudhary, J. Kim // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. -2018. - Vol. 68(1). - P. 305-309.

275. Chaudhry G.R. Biodegradation of halogenated organic compounds / G.R. Chaudhry, S. Chapalamadugu // Microbiol. Rev. - 1991. - Vol. 55. - P. 5979.

276. Chen J. Biochar soil amendment increased bacterial but decreased fungal gene abundance with shifts in community structure in a slightly acid rice paddy from Southwest China / J. Chen, X. Liu, J. Zheng, B. Zhang, H. Lu, Z. Chi, G. Pan, et al. // Applied Soil Ecol. - 2013. - Vol. 71. - P. 33-44.

277. Chen J. Microbial transformation of nitriles to high-value acids or amides / J. Chen, R.C. Zheng, Y.G. Zheng, Y.C. Shen // Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. - 2009. Vol. 113. - P. 33-77.

278. Cheng F. Research progress on the use of plant allelopathy in agriculture and the physiological and ecological mechanisms of allelopathy / F. Cheng, Z. Cheng // Front. Plant Sci. - 2015. - Vol. 6. - 1020.

279. Chernin L. Microbial enzymes in biocontrol of plant pathogens and pests / L. Chernin, I. Chet // Enzymes in the Environment: Activity, Ecology, and Applications. - Netherlands: Marcel Dekker, 2002. - P. 171-225.

280. Chesire M.V. Origins and stability of soil polysaccharide / M.V. Chesire // Eur. J. Soil Sci. - 1977. - Vol. 98. - P. 371-376.

281. Chroma L. Enzymes in plant metabolism of PCBs and Ps / L. Chroma, M. Mackova, P. Kucerova, C. Der Wiesche, J. Burkhard, T. Macek // Acta Biotechnol. - 2002. - Vol. 22. - P. 35-41.

282. Cipollini D. Microbes as targets and mediators of allelopathy in plants / D. Cipollini, C.M. Rigsby, E.K. Barto // J. Chem. Ecol. - 2012. - Vol. 38. - P. 714-727.

283. Coelho R.R.R. Sugars in hydrolysates of fungal melanins and soil humic acids / R.R.R. Coelho, L.F. Linhares, J.P. Martin // Plant and Soil. - 1988. -Vol. 106(1). - P. 127-133.

284. Colinas C. Population responses of target and non-target forest soil organisms to selected biocides / C. Colinas, E. Ingham, R. Molina // Soil. Biol. Biochem.

- 1994. - Vol. 26. - P. 41-47.

285. Collin-Hansen C. Molecular defense systems are expressed in the king bolete (Boletus edulis) growing near metal smelters / C. Collin-Hansen, R.A. Andersen, E. Steinnes // Mycologia. - 2005. - Vol. 97(5). - P. 973-983.

286. Commandeur L.C.M. Degradation of halogenated aromatic compounds / L.C.M. Commandeur, J.R. Parsons // Biodegradation. - 1990. - Vol. 1. - P. 207-220.

287. Copinet A. Enzymatic degradation and deacetylation of native and acetylated strach-based extruded blends / A. Copinet, C. Bliard, J.P. Onteniente, Y. Couturier // Polym. Degrad. Stabil. - 2001. - Vol. 71. - P. 203-212.

288. Cosme P. Plant phenolics: Bioavailability as a key determinant of their potential health-promoting applications / P. Cosme, A.B. Rodriguez, J. Espino, M. Garrido // Antioxidants (Basel). - 2020. - Vol. 9(12). - 1263.

289. Costa O.Y.A. Responses of Acidobacteria Granulicella sp. WH15 to high carbon revealed by integrated omics analyses / O.Y.A. Costa, M.M. Zerillo, D. Zuhlke, A.M. Kielak, A. Pijl, K. Riedel, E.E. Kuramae // Microorganisms.

- 2020. - Vol. 8(2). - P. 244.

290. Couto M.N.P.F.S. Mesocosm trials of bioremediation of contaminated soil of a petroleum refinery: comparison of natural attenuation, biostimulation and bioaugmentation / M.N.P.F.S. Couto, E. Monteiro, M.T.S.D. Vasconcelos // Environ. Sci. Pollut. Res. - 2010. - Vol. 17. - P. 1339-1346.

291. Crutcher F.K. Conversion of fusaric acid to fusarinol by Aspergillus tubingensis: a detoxification reaction / F.K. Crutcher, J. Liu, L.S. Puckhaber, R.D. Stipanovic, S.E. Duke, A.A. Bell, et al. // J. Chem. Ecol. - 2014. - Vol. 40. - P. 84-89.

292. Crutcher F.K. Detoxification of fusaric acid by the soil microbe Mucor rouxii / F.K. Crutcher, L.S. Puckhaber, A.A. Bell, J. Liu, S.E. Duke, R.D. Stipanovic, et al. // J. Agric. Food Chem. - 2017. - Vol. 65. - P. 4989-4992.

293. Cury J. Microbial diversity and hydrocarbon depletion in low and high diesel-polluted soil samples from Keller Peninsula, South Shetland Islands / J. Cury, D. Jurelevicius, H. Villela, H. Jesus, R. Peixoto, C. Schaefer, . . . A. Rosado // Antarctic Science, - 2015. - Vol 27(3). - P. 263-273.

294. Cycon M. Pyrethroid-degrading microorganisms and their potential for the bioremediation of contaminated soils: a review / M. Cycon, Z. Piotrowska-Seget // Front. Microbiol. - 2016. - Vol. 7. - P. 1463.

295. Cycon M. Biodegradation of the organophosphorus insecticide diazinon by Serratia sp. and Pseudomonas sp. and their use in bioremediation of contaminated soil / M. Cycon, M. Wojcik, Z. Piotrowska-Seget // Chemosphere. - 2009. - Vol. 76. - P. 494-501.

296. Daguerre Y. Fungal proteins and genes associated with biocontrol mechanisms of soil-borne pathogens: a review / Y. Daguerre, K. Siegel, V. Edel-Hermann, C. Steinberg // Fungal Biol. Reviews. - 2014. - Vol. 28. - P. 97-125.

297. Damborsky J. Tetrachloroethene-dehalogenating bacteria / J. Damborsky // Folia Microbiol. (Praha). - 1999. - Vol. 44. - P. 247-262.

298. Das N. Microbial degradation of petroleum hydrocarbon contaminants: an overview / N. Das, P. Chandran // Biotechnol. Res. Int. - 2011. - Vol. 2011. -941810.

299. Dawson J.J.C. Application of biological indicators to assess recovery of hydrocarbon impacted soils / J.J.C. Dawson, E.J. Godsiffe, I.P. Thompson, T.K. Ralebitso-Senior, K.S. Killham, G.I. Paton // Soil Biol. Biochem. -2007. - Vol. 39. - P. 164-177.

300. De Hoog G.S. Atlas of Clinical Fungi / G.S. De Hoog, J. Guarro. -Centraalbureau voor Schimmelcultures, 2000. - 1126 p.

301. Deguchi T. Nylon degradation by lignindegrading fungi / T. Deguchi, M. Kakezawa, T. Nishida // Appl. Environ. Microbiol. - 1997. - Vol. 63. - P. 329-331.

302. Delille D. The influence of temperature on bacterial assemblages during bioremediation of a diesel fuel contaminated subAntarctic soil / D. Delille, E. Pelletier, F. Coulon // Cold Regions Sci. Technol. - 2007. - Vol. 48(2). - P. 74-83.

303. Demarche P. Harnessing the power of enzymes for environmental stewardship / P. Demarche, C. Junghanns, R.R. Nair, S.N. Agathos // Biotechnol. Adv. - 2012. - Vol. 30. - P. 933-953.

304. Dempster D. Biochar addition to soil changed microbial community structure and decreased microbial biomass carbon and net inorganic nitrogen mineralized / D. Dempster, D. Gleeson, Z. Solaiman, D.L. Jones, D. Murphy // Soil solutions for a changing world Brisbane. - 2010. - Vol. 2.2.1. - P. 912.

305. Dhakal R. Expression profiling coupled with in-silico mapping identifies candidate genes for reducing aflatoxin accumulation in maize / R. Dhakal, C. Chai, R. Karan, G.L. Windham, W.P. Williams, P.K. Subudhi // Front. Plant Sci. - 2017. - Vol. 8. - P. 503.

306. Di Martino C. Isolation and characterization of benzene, toluene and xylene degrading Pseudomonas sp. selected as candidates for bioremediation / C. Di Martino, N.I. Lopez, Raiger L.J. Iustman // Int. Biodeter. Biodegr. - 2012. -Vol. 67. - P. 15-20.

307. DiGioia D. Selection and characterization of aerobic bacteria capable of degrading commercial mixtures of low-ethoxylated nonylphenols / D. DiGioia, A. Michelles, M. Pierini, S. Bogialli, F. Fava, C. Barberio // J. Appl. Microbiol. - 2008. - Vol. 104. - P. 231-242.

308. Dilantha W.G. Biosynthesis of antibiotics by PGPR and its relation in biocontrol of plant diseases / W.G. Dilantha, S. Nakkeeran, Y. Zhang //

PGPR: Biocontrol and Biofertilization. - Dordrecht: Springer, 2005. - P. 67109.

309. Dobbelaere S. Plant growthpromoting effects of diazotrophs in the rhizosphere / S. Dobbelaere, J. Vanderleyden, Y. Okon // CRC Crit. Rev. Plant Sci. - 2003. - Vol. 22. - P.107-149.

310. Dolezal A.L. Aspergillus flavus infection induces transcriptional and physical changes in developing maize kernels / A.L. Dolezal, X. Shu, G.R. OBrian, D.M. Nielsen, C.P. Woloshuk, R.S. Boston, et al. // Front. Microbiol. - 2014. - Vol. 5. - P. 384.

311. Dos Santos H.F. Mangrove bacterial diversity and the impact of oil contamination revealed by pyrosequencing: Bacterial proxies for oil pollution / H.F. Dos Santos, J.C. Cury, F.L. do Carmo, A.L. dos Santos, J. Tiedje, J.D. van Elsas, A.S. Rosado, R.S. Peixoto // PLoS One. - 2011. - Vol. 6(3). -e16943.

312. Dourado M.N. Biotechnological and agronomic potential of endophytic pink-pigmented methylotrophic Methylobacterium spp. / M.N. Dourado, A.A. Camargo Neves, D.S. Santos, W.L. Araujo // Biomed Res Int. - 2015. - Vol. 2015. - 909016.

313. Duarte M.C.T. Xylan-hydrolysing enzyme system from Bacillus pumilus CBMAI 0008 and its effects on Eucalyptus grandis kraft pulp for bleaching improvement / M.C.T. Duarte, E.C. Silva, I.M.B. Gomes, A.N. Ponezi, E.P. Portugal, J.R. Vicente, E. Davanzo // Bioresour. Technol. - 2003. - Vol. 88. -P. 9-15.

314. Duca D., Rose D.R., Glick B.R. Characterization of a nitrilase and a nitrile hydratase from Pseudomonas sp. strain UW4 that converts indole-3-acetonitrile to indole-3-acetic acid / D. Duca, D.R. Rose, B.R. Glick // Appl. Environ. Microbiol. - 2014. - Vol. 80(15). - P. 4640-4649.

315. Duke S.O. Modes of action of microbially-produced phytotoxins / S.O. Duke, F.E. Dayan // Toxins. - 2011. - Vol. 3(8). - P. 1038-1064.

316. Ehlers B.K. Soil microorganisms alleviate the allelochemical affects of a thyme monoterpene on the performance of an associated grass species / B.K. Ehlers // PLoSONE - 2011. - Vol. 6. - e26321.

317. Ehlers B.K. Do co-occurring plant species adapt to one another? The response of Bromus erectus to the presence of different Thymus vulgaris chemotypes /

B.K. Ehlers, J. Thompson // Oecologia. - 2004. - Vol. 141. - P. 511-518.

318. Eichlerova I. Laccase activity in soils: Considerations for the measurement of enzyme activity / I. Eichlerova, J. Snajdr, P. Baldrian // Chemosphere. - 2012. - Vol. 88(10). - P. 1154-1160.

319. Eichorst S.A. Genomic insights into the Acidobacteria reveal strategies for their success in terrestrial environments / S.A. Eichorst, D. Trojan, S. Roux,

C. Herbold, T. Rattei, D. Woebken // Environ. Microbiol. - 2018. - Vol. 20. -P. 1041-1063.

320. Einhellig F.A. Allelopathy: current status and future goals // Allelopathy: Organisms, Processes, and Applications / F.A. Einhellig. - Washington DC: American Chemical Society, 1995. - P. 1-24.

321. Einhellig F.A. Mode of allelochemical action of phenolic compounds // Allelopathy, Chemistry and Mode of Action of Allelochemicals / F.A. Einhellig. - CRC Press, Boca Raton, 2004. - 372 p.

322. Elijarrat E. Sample handling and analysis of allelochemical compounds in plants / E. Elijarrat, D. Barcelo // Trends Anal. Chem. - 2001. - Vol. 20. - P. 584-590.

323. Elmer W.H. Effect of biochar amendments on mycorrhizal associations and Fusarium crown and root rot of asparagus in replant soils / W.H. Elmer, J.J. Pignatello // Plant Dis. - 2011. - Vol. 95. - P. 960-966.

324. Elmholt S. Mycotoxins in the soil environment // Secondary metabolites in soil ecology. Soil Biology / S. Elmholt. - Springer, Heidelberg, 2008. - P. 167-203.

325. Epelde L. Adaptation of soil microbial community structure and function to chronic metal contamination at an abandoned Pb-Zn mine / L. Epelde, A.

Lanzen, F. Blanco, T. Urich, C. Garbisu // FEMS Microbiol. Ecol. - 2015. -Vol. 91(1). - P. 1-11.

326. Espeche M.E. Factors affecting growth of an n-hexadecane degrader Acinetobacter species isolated from a highly polluted urban river / M.E. Espeche, W.P. MacCormack, E.R. Fraile // Int. Biodeter. Biodegrad. - 1994. - Vol. 33(2). - P. 187-196.

327. Evtyugin D.D. Recent advances in the production and applications of ellagic acid and its derivatives. A review / D.D. Evtyugin, S. Magina, D.V. Evtuguin // Molecules. - 2020. - Vol. 25(12). - 2745.

328. Fakhouri W. Detoxification of fusaric acid by a nonpathogenic Colletotrichum sp. / W. Fakhouri, F. Walker, W. Armbruster, H. Buchenauer // Physiol. Mol. Plant Pathol. - 2003. - Vol. 63. - P. 263-269.

329. Falade T.D.O. In vitro experimental environments lacking or containing soil disparately affect competition experiments of Aspergillus flavus and co-occurring fungi in maize grains / T.D.O. Falade, S.H. Syed Mohdhamdan, Y. Sultanbawa, M.T. Fletcher, J.J.W. Harvey, M. Chaliha, et al. // Food Addit. Contam. - 2016. - Vol. A 33. - P. 1241-1253.

330. Fang H. Fungal degradation of chlorpyrifos by Verticillium sp. DSP in pure cultures and its use in bioremediation of contaminated soil and pakchoi / H. Fang, Y.Q. Xiang, Y.J. Hao, X.Q. Chu, X.D. Pan, J.Q. Yu, Y.L. Yu // Int. Biodeter. Biodegrad. - 2008. - Vol. 61. - P. 294-303.

331. Fang L. Proper land use for heavy metal-polluted soil based on enzyme activity analysis around a Pb-Zn mine in Feng county, China / L. Fang, Y. Liu, H. Tian, H. Chen, Y. Wang, M. Huang // Environ. Sci. Pollut. Res. -2017. - Vol. 24(36). - P. 28152-28164.

332. Farnet A.M. Alkylphenol oxidation with a laccase from a white-rot fungus: effects of culture induction and of ABTS used as a mediator / A.M. Farnet, A.C. Chevremont, G. Gil, S. Gastaldi, E. Ferre // Chemosphere - 2011. - Vol. 82. - P. 284-289.

333. Farnet A.M. Polycyclic aromatic hydrocarbon transformation with laccases of a white-rot fungus isolated from a Mediterranean schlerophyllous litter / A.M. Farnet, G. Gil, F. Ruaudel, A.C. Chevremont, E. Ferre // Geoderma. - 2009. -Vol. 149. - P. 267-271.

334. Fennell D.E. Dehalococcoides ethenogenes strain 195 reductively dechlorinates diverse chlorinated aromatic pollutants / D.E. Fennell, I. Nijenhuis, S.F. Wilson, S.H. Zinder, M.M. Haggblom // Environ. Sci. Technol. - 2004. - Vol. 38(7). - P. 2075-2081.

335. Fernández M.D. Application of bioassays for the ecotoxicity assessment of contaminated soils / M.D. Fernández, D. Babin, J.V. Tarazona // Bioremediation. Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols). -2010. - Vol. 599. - P. 235-262.

336. Ferris H. Unearthing the role of biological diversity in soil health / H. Ferris, H. Tuomisto // Soil Biol. Biochem. - 2015. - Vol. 85. - P. 101-109.

337. Field J.A. Microbial degradation of chlorinated benzenes / J.A. Field, R. Sierra-Alvarez // Biodegradation. - 2008. - Vol. 9(4). - P. 463-480.

338. Fierer N. Global patterns in belowground communities / N. Fierer, M.S. Strickland, D. Liptzin, M.A. Bradford, C.C. Cleveland // Ecol Lett. - 2009. -Vol. 12(11). - P. 1238-1249.

339. Fisher M.M. Effects of resources and trophic interactions on freshwater bacterioplankton diversity / M.M. Fisher, J.L. Klug, G. Lauster, M. Newton, E.W. Triplett // Microb. Ecol. - 2000. - Vol. 40. - P. 125-138.

340. Flores A. Improved biocontrol activity of Trichoderma harzianum strains by over-expression of the proteinase encoding gene prb1 / A. Flores, I. Chet, A. Herrera-Estrella // Curr. Genet. - 1997. - Vol. 31. - P. 30-37.

341. Foucault Y. Use of ecotoxicity test and ecoscores to improve the management of polluted soils: case of a secondary lead smelter plant / Y. Foucault, M-J. Durand, K. Tack, E. Schreck, F. Geret, T. Leveque, P. Pradere, S. Goix // J. Hazard. Mater. - 2013. - Vol. 246-247. - P. 291-299.

342. Friedman J. Actinomycetes inducing phytotoxic or fungistatic activity in Douglas-fir forest and in an adjacent area of repeated regeneration failure in Southwestern Oregon / J. Friedman, A. Hutchins, C.Y. Li, D.A. Perry // Biologia Plantarum. - 1989. - Vol. 31(6). - P. 487-495.

343. Friedrich J. Ability of fungi to degrade synthetic polymer nylon-6 / J. Friedrich, P. Zalar, M. Mohorcic, U. Klun, A. Krzan // Chemosphere. - 2007.

- Vol. 67. - P. 2089-2095.

344. Frisvad J.C. A critical review of producers of small lactone mycotoxins: patulin, penicillic acid and moniliformin / J.C. Frisvad // World Mycotoxin J.

- 2018. - Vol. 11 (1). - P. 73-100.

345. Fujjta M. Operating parameters affecting the survival of genetically engineered microorganisms in activated sludge processes / M. Fujjta, M. Ike, K. Uesugi // Water Res. - 1994. - Vol. 28. - P. 1153-1160.

346. Gal^zka A. Fungal community, metabolic diversity, and glomalin-related soil proteins (GRSP) content in soil contaminated with crude oil after long-term natural bioremediation / A. Gal^zka, J. Grz^dziel, R. Gal^zka, K. Gawryjolek, A. Ukalska-Jaruga, B. Smreczak // Front Microbiol. - 2020. - Vol. 11. -572314.

347. Gand E. The biotransformation of 8-epicedrol and some relatives by Cephalosporium aphicola / E. Gand, J.R. Hanson, H. Nasir // Phytochemistry.

- 1995. - Vol. 39. - P. 1081-1084.

348. Gao Y. Assessing the quality of oilcontaminated saline soil using two composite indices / Y. Gao, J. Wang, J. Xu, X. Kong, L. Zhao, D.H. Zeng // Ecol. Indic. - 2013. - Vol. 24. - P. 105-112.

349. Gao Y. Bacterial community profile of the crude oil-contaminated saline soil in the Yellow River Delta Natural Reserve, China / Y. Gao, L. Yuan, J. Du, H. Wang, X. Yang, L. Duan, L. Zheng, M.M. Bahar, Q. Zhao, W. Zhang, Y. Liu, Z. Fu, W. Wang, R. Naidu // Chemosphere. - 2022. - Vol. 289. -133207.

350. Gao Y. Assessment of effects of heavy metals combined pollution on soil enzyme activities and microbial community structure: modified ecological dose-response model and PCR-RAPD / Y. Gao, P. Zhou, L. Mao, Y. Zhi, W. Shi // Environ. Earth Sci. - 2010. - Vol. 60. - P. 603-612.

351. Garcia-Ruiz R. Suitability of enzyme activities for the monitoring of soil quality improvement in organic agricultural systems / R. Garcia-Ruiz, V. Ochoa, M.B. Hinojosa, J.A. Carreira // Soil Biol. Biochem. - 2008. - Vol. 40. - P. 2137-2145.

352. García-Segura D. Macrofauna and mesofauna from soil contaminated by oil extraction / D. García-Segura, I.M. Castillo-Murrieta, F. Martínez-Rabelo, A. Gomez-Anaya, J. Rodríguez-Campos, B. Hernández-Castellanos, S.M. Contreras-Ramos, I. Barois // Geoderma. - 2018. - Vol. 332. - P. 180-189.

353. George C. Divergent consequences of hydrochar in the plant-soil system: arbuscular mycorrhiza, nodulation, plant growth and soil aggregation effects / C. George, M. Wagner, M. Kucke, M.C. Rilli // Appl. Soil Ecol. - 2012. -Vol. 9. - P. 68-72.

354. Gerbore J. Biological control of plant pathogens: advantages and limitations seen through the case study of Pythium oligandrum / J. Gerbore, N. Benhamou, J. Vallance, G. Le Floch, D. Grizard, C. Regnault-Roger, P. Rey // Environ. Sci. Pollut. Res. - 2014. - Vol. 21. - P. 4847-4860.

355. Gessner M.O. Diversity meets decomposition / M.O. Gessner, C.M. Swan, C.K. Dang, B.G. McKie, R.D. Bardgett, D.H. Wall, S. Haettenschwiler // Trends in Ecol. Evolut. - 2010. - Vol. 25. - P. 372-380.

356. Gianfreda L. Isolated enzymes for the transformation and detoxification of organic pollutants / L. Gianfreda, J.-M. Bollag // Enzymes in the environment: activity, ecology and applications. - New York: Marcel Dekker, 2002. - P. 491—538.

357. Gianfreda L. Interactions between xenobiotics and microbial and enzymatic soil activity / L. Gianfreda, M.A. Rao // Critical Rev. Environ. Sci. Technol. -2008. - Vol. 38(4). V P. 269-310.

358. Gianfreda L. Potential of extra cellular enzymes in remediation of polluted soils: a review / L. Gianfreda, M.A. Rao // Enzyme Microbial Technol. -2004. V Vol. 35. - P. 339-354.

359. Gianfreda L. Soil enzyme activities as affected by anthropogenic alterations: intensive agricultural practices and organic pollution / L. Gianfreda, M.A. Rao, A. Piotrowska, G. Palumbo, C. Colombo // Sci. Total Environ. - 2005. - Vol. 341. V P. 265-279.

360. Gibson J. Metabolic diversity in aromatic compound utilization by anaeroic microbes / J. Gibson, C.S. Harwood // Ann. Rev. Microbiol. V 2002. - Vol. 56. - P. 345-369.

361. Gil-Sotres F. Different approaches to evaluate soil quality using biochemical properties / F. Gil-Sotres, C. Trasar-Cepeda, V.C. LeirIs // Soil Biol. Biochem. - 2005. - Vol. 37. - P. 877-887.

362. Glick B.R. Promotion of plant growth by ACC deaminase-producingsoil bacteria / B.R. Glick, Z. Cheng, J. Czarny, J. Duan // Eur. J. Plant Pathol. -2007. - Vol. 119. - P. 329-339.

363. Glick B.R. Molecular Biotechnology: Principles and Applications of Recombinant DNA / B.R. Glick, J.J. Pasternak, C. Patten. - Washington: ASM Press, 2003. - 760 p.

364. Goldberg I. Organic acids: old metabolites, new themes / I. Goldberg, J.S. Rokem, O. Pines // J. Chem. Technol. Biotechnol. - 2006. - Vol. l81. - P. 1601-1611.

365. Golovleva L.A. The role and limitations of microorganisms in the conversion of xenobiotics / L.A. Golovleva, N. Aharonson, R. Greenhalgh, N. Sethunathan, J.W. Vonk // Pure Appl. Chem. - 1990. - Vol. 62(2). - P. 351364.

366. Gomez F. Field scale ex-situ bioremediation of petroleum contaminated soil under cold climate conditions / F. Gomez, M. Sartaj // Int. Biodeterior. Biodegrad. - 2013. - Vol. 85. - P. 375-382.

367. Gomez-Sagasti M. Microbial monitoring of the recovery of soil quality during heavy metal phytoremediation / M. Gomez-Sagasti, I. Alkorta, J. Becerril, L. Epelde, M. Anza, C. Garbisu // Water, Air Soil Pollut. - 2012. - Vol. 223(6).

- P.3249-3262.

368. Gramms G. Oxidoreductase enzymes liberated by plant roots and their effects on soil humic material / G. Gramms, K.D. Voigt, B. Kirsche // Chemosphere.

- 1999. - Vol. 38. - P. 1481-1494.

369. Gray E.J. Intracellular and extracellular PGPR: Commonalities and distinctions in the plant-bacterium signaling processes / E.J. Gray // Soil Biol. Biochem. - 2005. - Vol. 37. - P. 395-412.

370. Greeff-Laubscher M.R. Mycotoxin production by three different toxigenic fungi genera on formulated abalone feed and the effect of an aquatic environment on fumonisins / M.R. Greeff-Laubscher, I. Beukes, G.J. Marais, K. Jacobs // Mycology. - 2019. - Vol. 11(2). - P. 105-117.

371. Griffin J.L. Metabolomic analysis of soil communities can be used for pollution assessment / J.L. Griffin // Environ. Toxicol. Chem. - 2014. - Vol. 33. - P. 61-64.

372. Guan S. In vitro efficacy of Myxococcus fulvus ANSM068 to biotransform aflatoxin B1 / S. Guan, L. Zhao, Q. Ma, T. Zhou, N. Wang, X. Hu, et al.// Int. J. Mol. Sci. - 2010. - Vol. 11. - P. 4063-4079.

373. Guangming L. Soil enzymes as indicators of saline soil fertility under various soil amendments / L. Guangming, Z. Xuechen, W. Xiuping, S. Hongbo, Y. Jingsong, W. Xiangping // Agriculture Ecosystems Environ. - 2017. - Vol. 237. - P. 274-279.