«Биопсия сторожевого лимфатического узла перед и после неоадъювантной полихимиотерапии у больных раком молочной железы» тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Волкова Юлия Игоревна

• Волкова Юлия Игоревна
• кандидат наук
• 2023

Оглавление диссертации кандидат наук Волкова Юлия Игоревна

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1.1 Первые предпосылки изучения лимфатической системы

1.2 Термин «сторожевой» лимфоузел и первые методики его определения

1.3 Современные методы идентификации сторожевого лимфоузла у больных раком молочной железы

1.4 Методы верификации сторожевого лимфатического узла

1.5 Лечение больных раком молочной железы. Диагностика сторожевого лимфатического узла при проведении неоадъювантной полихимиотерапии

1.6 Возможность выполнения биопсии сторожевого лимфоузла у пациентов с позитивными лимфоузлами (е№) перед НАПХТ и конверсировавших до негативных (еК-) после химиотерапии

1.7 Таргетная аксиллярная диссекция. Методы детерминации положительных лимфатических узлов на этапе диагностики

1.8 Оценка патоморфологического ответа опухоли после химиотерапии согласно ее молекулярному типу строения. Отдаленные результаты лечения больных РМЖ с неизмененными лимфоузлами после БСЛУ при проведении НАПХТ

Глава 2. Материалы и методы

2.1 Методы обследования

2.2 Методика определения сторожевого лимфоузла

2.3 Методы лечения больных раком молочной железы

2.4 Оценка качества жизни больных РМЖ

2.5 Методы статистического анализа данных

Глава 3 . Р езультаты собственных исследований

3.1 Результаты биопсии сторожевого лимфатического узла с использованием срочного цитологического исследования у больных РМЖ после НАПХТ

3.2 Корреляция результатов лечения больных от объема проведенного хирургического лечения

3.3 Отдаленные результаты лечения больных

3.4 Анализ качества жизни больных раком молочной железы

Заключение

Обсуждение полученных результатов

Выводы

Практические рекомендации

Список литературы

Сокращения и условные обозначения

ACOSOG - American college of surgeons oncology group AMAROS - After mapping of the Axilla: radiotherapy or surgery ASCO - American Society of Clinical Oncology AUC - Area under curve

CEUS - contrast enhanced ultrasound scan (контраст усиленное ультразвуковое исследование)

ESMO - European Society for Medical Oncology

EORTC-QLQ - European organization for research and treatment of cancer quality of life core questionnaire ICG - Indocyanine green

IARC - International Agency for Research on Cancer NCDB - National Cancer Data Base

NSABP - National surgical adjuvant breast and bowel project cN+ - клинически положительный лимфоузел cN- - клинически отрицательный лимфоузел SENTINA - SENTinel NeoAdjuvant

SN FNAC - Sentinel Node Biopsy Following Neoadjuvant Chemotherapy

SPIO - superparamagnetic iron oxide (суперпарамагнетические частицы оксида

железа)

SPIO - superparamagnetic iron oxide (суперпарамагнетические частицы оксида железа)

БРВ - безрецидивная выживаемость

БСЛУ - биопсия сторожевого лимфоузла

ВОЗ - Всемирная Организация Здравоохранения

ГИ - гистологическое исследование

ИО - истинно-отрицательный

ИП - истинно-положительный

К - краситель

КТ - компьютерная томография

ЛАЭ - лимфаденэктомия

ЛО - ложноотрицательный

ЛП - ложноположительный

НАПХТ - неоадъювантная полихимиотерапия

ОВ - общая выживаемость

РИ - радиоизотоп

РМЖ - рак молочной железы

РФП - радиофармпрепарат

СЛУ - сторожевой лимфатический узел

ТАД - таргетная аксиллярная диссекция

УЗИ - ультразвуковое исследование

ЦИ - цитологическое исследование

Введение диссертации (часть автореферата) на тему ««Биопсия сторожевого лимфатического узла перед и после неоадъювантной полихимиотерапии у больных раком молочной железы»»

Введение

Рак молочной железы (РМЖ) - наиболее распространенная женская онкопатология с неуклонным ростом заболеваемости во всем мире. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) и Международного агентства по исследованию рака (IARC) рак молочной железы занимает первое место в структуре заболеваемости (24,5%) злокачественными новообразованиями среди женщин. В Российской Федерации распространенность РМЖ в 2021 году составила 509,2 случаев на 100 тысяч населения, что в 1,8 раза больше, по сравнению с 2011 годом. Больше половины (72,5%) впервые выявленных случаев РМЖ диагностируются на ранних (1-11) стадиях и 27,1% на Ш-1У стадии заболевания. Приведенные выше данные являются результатом улучшения качества диагностической службы, а так же онконастороженности как врачей первичного звена, так и самих пациентов. Следует отметить снижение показателей летальности от РМЖ в течение первого года с момента установки диагноза. В 2021 году смертность составила 4,8%, что в 1,8 раза меньше по сравнению с 2011 годом - 8,7% [12]. Представленные цифры свидетельствуют не только о своевременной диагностике, но и о возросшем качестве лечения больных раком молочной железы.

Хирургическое лечение рака молочной железы продолжает оставаться одним из основных методов. Ранее, выполнение органосохраняющих операций было возможным только у больных с ранней стадией рака молочной железы, а показанием для выполнения неоадъювантной полихимиотерапии (НАПХТ) являлись только нерезектабельные формы рака. За последние два десятилетия эти подходы претерпели существенные изменения и целью лечения стало не только выздоровление, но и восстановление полноценного качества жизни больных РМЖ, как физического, так и психологического [4-6, 11] На сегодняшний день органосохраняющие операции на молочной железе прочно вошли в рутинную хирургическую практику [1, 13, 14, 48, 49, 105, 106], а проведение НАПХТ

позволяет выполнять эти операции даже пациентам с местно-распространенными формами РМЖ. Тем не менее, одной из проблем, при проведении химиотерапии на первом этапе лечения, является отсутствие достоверных данных о состоянии лимфоузлов на момент установки диагноза. Обычно диагностика состояния регионарных лимфатических узлов проводится при помощи УЗИ и тонкоигольной аспирационной биопсии. Как правило, УЗИ позволяет увидеть увеличенные или измененные подмышечные лимфоузлы и под УЗ-контролем выполнить их пункцию [69, 82]. Это простой и минимально инвазивный метод для первоначальной оценки состояния лимфатических узлов. Его преимущество так же заключается в возможности оценки ответа опухоли и метастатически измененных лимфоузлов на проведенную ПХТ. На сегодняшний день самым достоверным и надежным методом диагностики регионарного распространения опухоли является биопсия сторожевого лимфатического узла (БСЛУ), которая широко практикуется во всем мире и является золотым стандартом диагностики в онкологии [22, 93]. Она так же помогает избежать таких осложнений как лимфоррея, нарушение двигательной активности и наличие болевого синдрома в руке, возникающих после выполнения лимфаденэктомии [73, 91]. Подтверждает достоверность и надежность метода крупнейшее рандомизированное контролируемое исследование NSABP Б32, целью которого было сравнить общую и безрецидивную выживаемость пациентов с БСЛУ и лимфаденэктомией. Период наблюдения составлял 96 месяцев, по итогам которого значительных различий в двух группах пациентов получено не было и БСЛУ была признана безопасным, точным и эффективным методом диагностики [68].

Суммируя вышесказанное, неоспоримым моментом является необходимость выполнения БСЛУ у больных РМЖ с клинически-негативными лимфоузлами, а проведение НАПХТ дает возможность выполнить данную манипуляцию и у больных с клинически-позитивными лимфатическими узлами, конверсировавшими до клинически-негативных.

Цель исследования:

Уменьшение объема хирургического вмешательства в зонах регионарного лимфооттока, путем выполнения биопсии сторожевого лимфатического узла перед и после проведения НАПХТ у больных раком молочной железы ^N0, уеКО, сМ-усШ).

Задачи исследования

1. Оценить роль и место БСЛУ у больных РМЖ с при планировании НАПХТ.

2. Определить эффективность, чувствительность, специфичность и точность БСЛУ у больных РМЖ перед и после проведения НАПХТ.

3. Изучить результаты 5-летней общей и безрецидивной выживаемости больных РМЖ после БСЛУ с N0, усШ, сШ-усШ, которым в плане комплексного лечения проводилась НАПХТ.

4. Выполнить сравнительный анализ послеоперационных осложнений, а так же оценить качество жизни больных РМЖ с БСЛУ перед и после НАПХТ.

Новизна предлагаемой темы

В настоящем исследовании представлена новая концепция диагностики сторожевого лимфатического узла у больных раком молочной железы при проведении НАПХТ. Рассмотрены преимущества выполнения БСЛУ перед НАПХТ. Предложен дифференцированный подход к выбору объема лимфаденэктомии с учетом распространенности опухолевого процесса, гистологического, а также иммуногистохимического типа опухоли.

Проанализированы 5-летняя общая и безрецидивная выживаемость в зависимости от объема хирургического вмешательства на лимфатических узлах.

Выполнена оценка чувствительности, специфичности и эффективности биопсии сторожевого лимфатического узла с использованием метода срочного цитологического исследования до и после проведения НАПХТ.

Проанализированы результаты развившихся послеоперационных осложнений в зависимости от объема хирургического вмешательства на регионарном лимфоколлекторе у больных раком молочной железы.

Выполнена оценка качества жизни у больных раком молочной железы, в зависимости от объема хирургического лечения на регионарном лимфоколлекторе, после комбинированного и комплексного методов лечения.

Доказано, что выполненная лимфаденэктомия существенно ограничивает функционирование верхней конечности, повышает риск возникновения лимфорреи и, как следствие, снижает качество жизни больных раком молочной железы.

Практическая значимость работы

На основании полученных результатов проведенного исследования доказано, что сохранение регионарного лимфоколлектора у больных раком молочной железы, при проведении НАПХТ, не уменьшает эффективность противоопухолевого лечения.

Метод срочного цитологического исследования сторожевого лимфатического узла у больных раком молочной железы имеет высокие показатели чувствительности, специфичности и эффективности.

Расширенная лимфаденэктомия у больных раком молочной железы существенно снижает показатели качества жизни больных. Доказано, что минимизация объема хирургического вмешательства на регионарном лимфатическом коллекторе улучшает качество жизни больных раком молочной железы.

На основании результатов проведенного исследования разработан и внедрен в практику отделения онкологии и реконструктивно-пластической хирургии молочной железы и кожи МНИОИ им. П. А. Герцена - филиала ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, алгоритм диагностики и сохранения регионарных лимфатических узлов у больных раком молочной железы перед и после НАПХТ.

Положения, выносимые на защиту

1. Биопсия сторожевого лимфатического узла перед неоадъювантной полихимиотерапией улучшает показатели диагностики в процессе комплексного лечения больных раком молочной железы и, как следствие, дает более четкое понимание о специфике дальнейшего лечения.

2. Срочное цитологическое исследование обладает высокими показателями чувствительности, специфичности, точности при выполнении биопсии сторожевого лимфатического узла у больных РМЖ перед НАПХТ.

3. Показатели 5-летней безрецидивной и общей выживаемости между группами больных, которым была выполнена БСЛУ перед и после НАПХТ, а так же группами, которым была выполнена ЛАЭ, сопоставимы.

4. Сокращение объема регионарной лимфодиссекции или отказ от нее, значительно улучшает показатели качества жизни больных РМЖ и уменьшает развитие послеоперационных осложнений, без снижения общей и безрецидивной выживаемости.

Степень достоверности и апробация результатов

Степень достоверности результатов исследования подтверждается проведением проспективного и ретроспективного когортного нерандомизированного контролируемого исследования. Основные положения диссертационной работы боли представлены на научно-практических конференциях:

1) IV Научно-практическая конференция «Актуальные вопросы онкологии: клинические и организационные аспекты», 05.02.2021г.

2) II Весенний онкологический онлайн-марафон, 04.03.2021г.

3) XII Съезд онкологов и радиологов стран СНГ и Евразии им. Н.Н. Трапезникова, посвященный 250летию I съезда, 09.04.2021г.

4) XXXIII Всероссийская школа по клинической маммологии, 21.04.2021г.

5) XI съезд онкологов России, Ярославль 13.05.2021г.

6) Региональная научно-практическая конференция АОР в ЦФО: новости и достижения в онкологии, 28.05.2021г.

7) «Времена года. Женское здоровье - от юного до серебряного и золотого возраста" , 22.10.2021г.

Глава 1. Обзор литературы

1.1 Первые предпосылки изучения лимфатической системы

Изучение онкологии и других важных направлений в медицине начинается со времен Гиппократа (460-370 года до нашей эры). Считается, что название «рак» произошло от введенного Гиппократом термина «Карсинос», что в переводе с греческого означает «краб» [65]. Тем временем, работая в школе анатомии в Александрии и используя в своей научной деятельности животных, Герофил (300 год до н. э.) замечает брыжеечные лимфатические сосуды, а Эразистрат (280 год до н. э.) описывает их содержимое, называя его «молочным» [60]. Однако ни тот, ни другой ученый так и не дифференцировали их с кровеносными сосудами. Более системно к изучению лимфатической системы подходит средневековый профессор из Павии Каспар Азелли в 1622 г. В своих опытах на собаках он заново описывает мезентериальные сосуды и циркуляцию лимфы по ним, давая название последней «белая кровь», а сосуды называя «молочными». Тем самым, также считая сосудистую и лимфатическую системы единым целым [19].

Важнейший вклад в изучение лимфатических сосудов внес Датский ученый Томас Бартолин. Впервые открывший и описавший лимфатическую систему, как целостную и отдельную от других систем организма, в 1654 году. Однако он так же отметил неразрывную связь между кровеносной и лимфатической системами, а происхождение лимфы напрямую связано с фильтрацией крови. Именно он впервые дает название лимфатическим сосудам «vasa lymphatica», а слово «lymph» в переводе с латинского языка означает «чистая весенняя вода» [21]. Выполнение контрастирования лимфатической системы было впервые предложено Энтони Нуком (1650-1692), путем введения в лимфатические сосуды смеси из ртути, олова и свинца [97].

Наибольшее значение в изучении лимфатической системы внес немецкий патолог Рудольф Вирхов (1821-1902) предположив, что лимфатические узлы функционируют как фильтры в лимфатической системе. В доказательство этому, после вскрытия тела моряка, он обнаружил локальное накопление угольного пигмента в лимфатическом узле от небольшой татуировки на коже. Кроме этого он заметил, что лимфотток из определенной анатомической зоны осуществляется в определенный лимфоузел и только после этого, перераспределяется в остальные лимфатические узлы [107]. В связи с этим, именно с именем Р. Вирхова связывают начало эпохи сторожевого лимфоузла.

1.2 Термин «сторожевой» лимфоузел и первые методики его определения

В 1992 году в свет выходит статья Д. Мортона, посвященная нецелесообразности выполнения лимфодиссекции у больных меланомой кожи на ранней стадии. Вместо этого предлагается удаление так называемого «сторожевого» лимфоузла [76]. Поэтому использование данного термина чаще всего приписывается именно ему. Однако данный термин использовал и Рамон Кабанас в 1960 году в своих исследованиях о путях метастазирования при раке полового члена, называя «сторожевым» тот лимфоузел, который находился в 4,5 см латеральнее от лобкового бугорка [27]. Хотя его определение основано скорее на анатомии лимфатической системы и противоречит физиологическому лимфодренированию, которое описывал в своих наблюдениях Д.Мортон. В 1933 году, впервые, для картирования лимфоузлов был зарегистрирован синий краситель, который используется и по сей день для визуализации лимфатических узлов [62]. Далее в 1953 году А. Шерман и группа ученых описали лимфосцинтиграфию, продемонстрировав отслеживание коллоидного золота-198 от точки внутрикожной инъекции до лимфатических узлов, тем самым подтвердив гипотезу М. Констант Саппей о том, что отток лимфы из органа имеет упорядоченный характер [100]. Первое изображение сторожевого

лимфатического узла картированного радиоизотопным золотом-198 было получено в 1958 году в Нью-Йорке[94]. Далее, первое картирование йодом-131, с применением гамма излучения, было зафиксировано в 1984 году у больных раком прямой кишки [18]. Интенсивность гамма-излучения в опухоли не намного, но превышала интенсивности накопления в здоровых тканях. Затем, данный вид определения для метастатически измененных лимфоузлов пытались внедрить и при раке толстой кишки, и при опухолях костной системы. Биопсия сторожевого лимфатического узла является золотым стандартом для определения состояния регионарных лимфоузлов при раннем раке молочной железы. А также данная методика широко используется для диагностирования путей лимфооттока от первичной опухоли и, как следствие, для уменьшения или увеличения хирургического вмешательства на регионарном лимфоколлекторе [8, 16].

Эпоха современной хирургии началась во второй половине XIX века. Хирургические объемы лечения РМЖ в онкологии разрабатывались и формировались такими учеными, как Р.Вирхов, Г.Сноу и У.Холстед, долгое время проводился максимальный объем хирургического лечения. Однако в конце ХХ века объем операций стал меняться в сторону органосохраняющего лечения, для сохранения лимфодренажной функции и улучшения качества жизни пациентов, не влияя на общую и безрецидивную выживаемость. В настоящее время, принятая технология биопсии сторожевых узлов идеально подходит для минимизации хирургического вмешательства, а лимфодиссекция выполняется пациентам с метастатически измененными лимфоузлами.

1.3 Современные методы идентификации сторожевого лимфоузла у больных

раком молочной железы

Биопсия сторожевого лимфоузла стала неотъемлемой диагностической процедурой в лечении рака молочной железы. А ее границы, за последние десятилетия, расширились за пределы применения только при раннем раке.

Сторожевой узел является первым барьером на пути метастазирования опухоли, удаляя и исследуя который мы получаем возможность определить распространенность опухолевого процесса и выработать дальнейшую тактику лечения. За последнее время методы детекции сторожевого лимфоузла претерпевали множество изменений и дополнений [9]. На сегодняшний день используемые в клинической практике:

1. контрастный метод

2. радиоизотопный метод

3. флуоресцентный метод

4. магнитный метод

5. ультразвуковой метод с контрастным усилением Контрастный метод.

Впервые определение СЛУ при РМЖ было выполнено A.Giuliano и соавт. в 1994 г. В проведенном исследовании для детекции СЛУ был использован краситель Isosulfan blue [34]. Всего, для определения сторожевых лимфоузлов при РМЖ, описано три вида красителей: Isosulfan blue, Patent blue V, Methylene blue. Существует множество споров, по поводу возможности применения этих трех красителей, ввиду наличия серьезных побочных действий. Однако исследования данных препаратов в некоторых странах до сих пор продолжаются.

Iso-sulfan blue - исключительно лимфотропный препарат, хорошо связывается с альбумином и другими белками и поглощаемый лимфатической системой, что делает его подходящим для выполнения биопсии СЛУ. Цвет окрашивания - синий. Однако имеет ряд побочных эффектов таких как: аллергические реакции вплоть до анафилактического шока, тахиаритмия [35, 75, 96].

Patent Blue V dye - краситель, первоначально используемый в пищевой, косметической и бытовой промышленности. Цвет окрашивания - синий, фиолетовый. Подобно Iso-sulfan blue имеет ряд схожих побочных действий, которые дополняются желудочно-кишечными расстройствами [109].

Methylene blue - Препарат широко применяемый в медицине: в качестве красителя бактериальных препаратов, в качестве антидота при отравлении цианидами, угарным газом, сероводородом, в качестве диагностического агента. Цвет - синий, темно-зеленый. Помимо всех прочих побочных реакций предыдущих красителей отмечен некроз мягких тканей в месте введения [51].

Место введения агентов так же широко обсуждалось. Однако Chagpar A.B. и соавт. установили, что процент определения СЛУ при периареолярном введении препарата выше нежели при перитуморальном [31].

Диагностическая значимость красителей была описана в недавно проведенном мета-анализе, включавшем в себя 21 исследование о применении красителей как самостоятельных агентов, так и в комбинации с радиофармпрепаратом. Согласно полученным результатам, средний показатель определения СЛУ при использовании только одного красителя, составил 85,9% ± 9,8% (65-98%). Ложноотрицательный результат составил 11,5% ± 7,4% (0-23%). При использовании комбинации красителя и радиоизотопа детекция СЛУ составляет 94.2 ± 5.7% (82-100%). Что свидетельствует о превосходстве комбинированного метода определения СЛУ [85].

Радиоизотопный метод.

При радиоизотопном методе применяют радиофармпрепарат (РФП), коллоид меченный 99mTc, сцинтиграфию и гамма-детектор. Наиболее распространенным является технециум 99тТс. РФП на основе технеция -99м используют более чем в 87 % всех радионуклидных исследований. Обусловлено это малой экспозиционной дозой и хорошей проникающей способностью, а также относительно коротким периодом полураспада Т1/2 (6,02 ч). И, что не менее важно, является наиболее доступным РФП для ядерной медицины. В США используется коллоид серы меченный 99mTc (размер частиц после фильтрации через мембрану составляет 100-200 нм), в Европе используют человеческий сывороточный альбумин меченный 99mTc (средний размер частиц 50-80 нм). Для проведения лимфосцинтиграфии размер частиц от 20 до 100 нм является

оптимальным. Основополагающим фактором, при проведении радионуклидных исследований, является размер наночастиц РФП. Так, наночастицы размерами менее 20 нм легко проникают в кровь, а так же могут накопиться не только в «сторожевом», но ив лимфоузлах другого порядка, а частицы более 100 нм перемещаются по лимфосистеме медленно и более того могут так и остаться в месте инъекции. Наиболее предпочтительным путем введения является интрадермальный [37, 52]

Согласно мета-анализу включающему в себя 69 исследований, более 8000 пациентов, которым выполнили биопсию СЛУ с использованием радиоизотопного метода, показатель определения СЛУ составил 96%, а показатель ложно-отрицательного результата - 7,4% [67]. Коэффициент определения при двойном картировании в исследовании AMAROS, включающего 1953 пациентов с клинически отрицательным лимфоузлом составил 97% [101]. В исследовании ALMANAC - 96%, однако при исследовании СЛУ исключительно радиоизотопным методом коэффициент определения был равен 85,6% [55]. В недавно проведенном мета-анализе, включающем 24 исследования, при комбинации методов радиоизотопного коллоида и красителя, отмечено улучшение показателей детекции - 95 %. Правда ложноотрицательный результат, при комбинации двух методов - значительно не изменился и составил 7,5% [59].

До 2019 года, в Российской Федерации не было официально зарегистрированного радиоизотопного коллоида, однако в рамках клинических исследований, для определения сторожевого лимфатического узла при РМЖ, использовался препарата «Технефит» [7].

Фактически, золотым стандартом определения СЛУ является метод двойного картирования, который дает более высокий процент определения СЛУ и более низкий ложноотрицательный результат. Что так необходимо у пациентов получивших НАПХТ.

Флуоресцентный метод.

В последние годы успешно разработаны новые методики для детекции СЛУ. Применены инновационные агенты, такие как индоцианин зеленый (ICG). Изначально препарат позиционировал себя как краситель для детекции СЛУ и имел сравнительного характера успех с обычными красителями - 74% [77]. Но усовершенствуя методы визуализации, применяя для этого необходимые специальные технологии результат определения вырос до 95% [90]. Для получения эффекта свечения используется источник света, близкий к инфракрасному диапазону. Данный краситель, поглощает свет в диапазоне длины волны примерно 760 нм. Как правило, препарат вводиться подкожно периареолярно или ретроареолярно (5-15мг). Далее место инъекции массируется в течение 2-5 минут для распределения препарата по лимфатическим путям [10, 56]. Затем СЛУ визуализируют посредством флюоресценции аппаратами Photodynamic Eye (PDE; Hamamatsu, Япония), Spy Elite (Novadaq, Канада), Vitom Fluorescence Camera (Karl Storz, Германия) и др. позволяющие произвести оценку накопления контраста как в черно-белом свете, так и в цветном [44, 84]. После введения препарата на коже визуализируется «светящаяся дорожка», от места инъекции в сторону аксиллярной области, что, соответственно, облегчает определение локализации СЛУ. Через 5-10 минут после введения выполняется разрез на 2-3 см дальше от места окончания свечения «дорожки» [57].

Особенным преимуществом данного метода является, что визуализация лимфатических сосудов и узлов происходит в режиме реального времени. Так же не лишним будет упомянуть и о возможных нескольких путях лимфодренажной системы. Накапливаясь в нескольких СЛУ данный метод автоматически снижает возможный ложноотрицательный результат. Не мало важным фактором является и ценовая политика в сравнении с тем же самым, более дорогостоящим, радиоизотопным методом.

Однако, не всегда большее количество накопивших лимфоузлов можно назвать «сторожевыми», иногда это происходит вследствие низкой молекулярной массы препарата и его миграции за пределы СЛУ в лимфоузлы другого порядка

[90]. Кроме того при удалении СЛУ повышается риск распределения ICG в хирургическом поле, что также понижает возможность определения другого накопившего лимфоузла. Однако данная проблема разрешима путем меньшего объема введения препарата. И, наконец, применение ICG невозможно у лиц страдающих заболеваниями щитовидной железы и имеющих аллергию на препараты йода.

Использование метода ICG для определения сторожевого лимфатического узла зарекомендовало себя как простой и эффективный способ. При сравнении данного метода с красителем blue dye процент определения СЛУ был значительно выше у ICG (99-100%) [102, 104]. Кроме того несколько клинических исследований продемонстрировали не только безопасность, но и высокий коэффициент детекции СЛУ, который сопоставим или даже выше в сравнении с радиоизотопным методом [20, 95, 98, 108]. Во всех исследованиях используют разный спектр доз ICG, однако стандартизация концентрации препарата и введенного объема - является основополагающей составляющей оценки эффективности определения СЛУ. Недавний мета-анализ показал, что инъекция препарата с пониженной концентрацией (< 5 мг/мл) и большим объемом (> 2 мл)улучшают показатели детекции СЛУ [111]. Однако же используя одновременно две методики определения СЛУ необходимо учитывать и о возможном снижении результата, вследствие взаимосключающих компонентов. Следовательно, согласно проведенному мета-анализу, показатель детекции сторожевого лимфатического узла с использованием ICG составил 98% [115]. В одном из последних опубликованных мета-анализов, включающем в себя 12 исследований также было подтверждено, что показатели определения СЛУ методом ICG одинаковы c методом использования радиоизотопного коллоида -95% [103]. А так же при определении метастатически измененных лимфоузлов процент определения пораженных СЛУ был выше у ICG и составлял 95%, в сравнении с радиоизотопным методом [103]. Эти результаты демонстрируют метод ICG как надежный, чувствительный и специфичный. Так же данная методика определения СЛУ может являться хорошей альтернативой

стандартному радиоизотопному методу. А что еще не мало важно будет подчеркнуть, так это отсутствие радиационного фона, что свойственно методу с использованием РФП.

Магнитный метод или ферромагнетик.

Привлекательность этого метода в отсутствии его инвазивности. Основан он на использовании суперпарамагнитных наночастиц оксида железа (SPIO -superparamagnetic iron oxide) и портативного магнитометра. SentiMAG было первым исследованием которое оценило этот новый метод определения СЛУ [43]. Размер наночастиц варьирует от 20 до 60 нм. Он идеально подходит для СЛУ, поскольку позволяет избирательно накапливать частицы и аналогичен размеру РФП. Однако в сравнении с радиозотопным методом, накопление препарата происходит уже через 20 минут, а время для его детекции увеличивается до 7 дней. После подкожного введения раствора SPIO, он в течение нескольких минут накапливается в СЛУ, преимущественно внутри синусов и в макрофагах, и окрашивают его в коричневый или черный цвет, что так же улучшает визуализацию во время операции. В случае же метастатического поражения лимфоузла, частицы депонируются в не пораженном его участке [63]. Препарат вводят интраоперационно, подкожно, периареолярно в разведенном виде, объемом 5 мл. Далее выполняют массаж места инъекции для лучшего распределения частиц до СЛУ. Как уже писалось выше среднее время накопления 20 минут. После этого при помощи дистанционного магнитометра определяют локализацию СЛУ. В сравнении со стандартной техникой определения СЛУ (радиоизтопной) исследование SentiMAG сообщает об отсутствии различий его идентификации (94,4% и 95%, соответственно) [43]. Исследование Rubio I.T. и соавт. продемонстрировал более высокий результат детекции СЛУ при использовании SPIO (98,3%) в сравнении с радионуклидным методом (95,7%, соответственно)[92]. По аналогии с вышеописанными, испанское мультицентровое исследование IMAGINE так же сообщило о лучшей результативности детекци СЛУ ферромагнитным методом, нежели классическим

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Волкова Юлия Игоревна, 2023 год

Список литературы

1. Босиева А.Р., Ермощенкова М.В., Зикиряходжаев А. Д. Органосохраняющие операции после неоадъювантной лекарственной терапии у больных раком молочной железы // Siberian journal of oncology. 2021. № 4 (20). C. 116-121.

2. Волкова Ю. И., Зикиряходжаев А. Д., Волченко Н. Н. Диагностика сторожевого лимфатического узла при проведении неоадъювантной химиотерапии // Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2021. (10). C. 100-105.

3. Волкова Ю. И., Зикиряходжаев А. Д., Казарян Л. П. Биопсия сторожевого лимфатического узла и таргетная аксиллярная лимфодиссекция у больных раком молочной железы после неоадъювантной химиотерапии // Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2022. (11). C. 44-48.

4. Грушина Т. И., Ткаченко Г. А. Психологический дистресс у больных раком молочной железы после различных видов противоопухолевого лечения // Опухоли женской репродуктивной системы. 2016. (12). C. 56-62.

5. Грушина Т. И., Ткаченко Г. А. Реабилитация при раке молочной железы : физиотерапия, фармакотерапия и психокоррекция 2017. C. 95.

6. Грушина Т. И., Ткаченко Г. А. Пособие для врачей о реабилитации больных раком молочной железы ( этапы , методы и методики ) A guide for doctors on the rehabilitation 2020. № 3 (22). C. 3-34.

7. Дашян Г.А.; Криворотько П.В.; Новиков С.Н. Биопсия сигнальных лимфатических узлов при раке молочной железы: учебно-методическое пособие для обучающихся в системе высшего и дополнительного профессионального образования. СПб.: НИИ онкологии им. Н.Н. Петрова, 2015. -44с.

8. Ермаков А.В. Экономные операции у больных с начальными стадиями рака молочной железы . 2004.

9. Зикиряходжаев А. Д., Грушина Т. И., Старкова М. В. Методы диагностики сторожевого лимфатического узла у больных раком молочной железы // Siberian Journal of Oncology. 2020. № 5 (19). C. 88-96.

10. Зикиряходжаев А.Д., Сарибекян Э.К., Багдасарова Д.В. Биопсия сторожевого

лимфатического узла при раке молочной железы с применением метода флуоресцентной визуализации красителя индоцианин зеленый // Biomedical Photonics. 2019. № 3 (7). C. 4-20.

11. Каприн А. Д., Зикиряходжаев А. Д. Онкопластическая хирургия молочной железы 2017. C. 312.

12. Каприн А. Д., Старинский В. В., Шахзадова О.А. Состояние Онкологической Помощи Населению России В 2021 Году 2022. C. 236.

13. Рассказова Е.А., Зикиряходжаев А. Д. Органосохраняющие и онкопластические резекции при раке молочной железы. Современные тенденции // Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2022;11(5): 65- 69. 2022.

14. Рябчикова Д. А., Петровский А. В. Рак молочной железы 2023. C. 400.

15. Семиглазов В.Ф., Семиглазов В.В., Дашян Г.А. Проблемы хирургического лечения рака молочной железы // Вестник РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН. 2010. C. 217-220.

16. Старкова М.В. Современные методы диагностики и хирургического лечения больных ранним раком (cT1-2N0M0) молочной железы C. 1-128.

17. Aihara T. et al. Comparison of frozen section and touch imprint cytology for evaluation of sentinel lymph node metastasis in breast cancer // Annals of Surgical Oncology. 2004. № 8 (11). C. 747-750.

18. Aitken D. et al. A Gamma-detecting Probe for Radioimmune Detection of CEA-producing tumors. Successful experimental use and clinical case report. Dis Colon Rectum. 1984. № 5 (27). C. 3-6.

19. Aselli G. De Lactibus sive Lacteis Venis, Quarto Vasorum Mesarai Corum Genere Invento. // Milan, Italy: J. B. Bidellius. 1627.

20. Ballardini B. et al. The indocyanine green method is equivalent to the 99mTc-labeled radiotracer method for identifying the sentinel node in breast cancer: A concordance and validation study // European Journal of Surgical Oncology. 2013. № 12 (39). C. 1332-1336.

21. Bartholin T. De Lacteis Thoracis in Homine Brutisque Nuperrime Observatis. // Martzan M, ed. Copenhagen: Hafniae. 1652.

22. Bedrosian I. et al. Accuracy of sentinel lymph node biopsy in patients with large primary breast tumors // Cancer. 2000. № 11 (88). C. 2540-2545.

23. Bi Z. et al. Neoadjuvant chemotherapy and timing of sentinel lymph node biopsy in different molecular subtypes of breast cancer with clinically negative axilla // Breast Cancer. 2019. № 3 (26). C. 373-377.

24. Boileau J. F. et al. Sentinel node biopsy after neoadjuvant chemotherapy in biopsy-proven node-positive breast cancer: The SN FNAC study // Journal of Clinical Oncology. 2015. № 3 (33). C. 258-263.

25. Boughey J. C. et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy in patients with node-positive breast cancer: The ACOSOG Z1071 (alliance) clinical trial // JAMA - Journal of the American Medical Association. 2013. № 14 (310). C. 14551461.

26. Boughey J. C. et al. Identification and resection of clipped node decreases the false-negative rate of sentinel lymph node surgery in patients presenting with node-positive breast cancer (T0-T4, N1-N2) Who receive neoadjuvant chemotherapy: Results from ACO SOG Z107 1 (Allianc // Annals of Surgery. 2016. № 4 (263). C. 802-807.

27. Caba as R. An Approach for the Treatment of Penile. // Cancer. 1977; (39): 456466.

28. Cardoso F. et al. Early breast cancer: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up // Annals of Oncology. 2019. № 8 (30). C. 11941220.

29. Carrera D. et al. Validation of sentinel lymph node biopsy in breast cancer women N1-N2 with complete axillary response after neoadjuvant chemotherapy. Multicentre study in Tarragona // Revista Espa ola de Medicina Nuclear e Imagen Molecular (English Edition). 2016. № 4 (35). C. 221-225.

30. Caudle A. S. et al. Improved axillary evaluation following neoadjuvant therapy for patientswith node-positive breast cancer using selective evaluation of clipped nodes: Implementation of targeted axillary dissection // Journal of Clinical Oncology. 2016. № 10 (34). C. 1072-1078.

31. Chagpar A. B. et al. Factors predicting failure to identify a sentinel lymph node in

breast cancer // Surgery. 2005. № 1 (138). C. 56-63.

32. Choi H. J. et al. Use of sentinel lymph node biopsy after neoadjuvant chemotherapy in patients with axillary node-positive breast cancer in diagnosis // Journal of Breast Cancer. 2018. № 4 (21). C. 433-441.

33. Choy N. et al. Initial Results with Preoperative Tattooing of Biopsied Axillary Lymph Nodes and Correlation to Sentinel Lymph Nodes in Breast Cancer Patients // Annals of Surgical Oncology. 2015. № 2 (22). C. 377-382.

34. Chung A., Giuliano A. E. Lymphatic mapping and sentinel lymphadenectomy for breast cancer // The Breast: Comprehensive Management of Benign and Malignant Diseases. 2018. № 3 (220). C. 604-630.e6.

35. Cimmino V. M. et al. Allergic reactions to isosulfan blue during sentinel node biopsy - A common event // Surgery. 2001. № 3 (130). C. 439-442.

36. Classe J. M. et al. Sentinel lymph node biopsy without axillary lymphadenectomy after neoadjuvant chemotherapy is accurate and safe for selected patients: the GANEA 2 study // Breast Cancer Research and Treatment. 2019. № 2 (173). C. 343-352.

37. Cody H. S. Sentinel lymph node mapping in breast cancer // Breast Cancer. 1999. № 1 (6). C. 13-22.

38. Cox K. et al. Validation of a technique using microbubbles and contrast enhanced ultrasound (CEUS) to biopsy sentinel lymph nodes (SLN) in pre-operative breast cancer patients with a normal grey-scale axillary ultrasound // European Journal of Surgical Oncology. 2013. № 7 (39). C. 760-765.

39. Curigliano G. et al. De-escalating and escalating treatments for early-stage breast cancer: The St. Gallen International Expert Consensus Conference on the Primary Therapy of Early Breast Cancer 2017 // Annals of Oncology. 2017. № 8 (28). C. 17001712.

40. Dellaportas D. et al. Contrast-Enhanced Color Doppler Ultrasonography for Preoperative Evaluation of Sentinel Lymph Node in Breast Cancer Patients // Breast Care. 2015. № 5 (10). C. 331-335.

41. Donker M. et al. Marking axillary lymph nodes with radioactive iodine seeds for axillary staging after neoadjuvant systemic treatment in breast cancer patients the mari

procedure // Annals of Surgery. 2015. № 2 (261). C. 378-382.

42. Donker M. et al. Radiotherapy or surgery of the axilla after a positive sentinel node in breast cancer patients: 10 year follow up results of the EORTC AMAROS trial (EORTC 10981/22023) // Lancet Oncol. 2019. № 12 (15). C. 1303-1310.

43. Douek M. et al. Sentinel node biopsy using a magnetic tracer versus standard technique: The SentiMAG multicentre trial // Annals of Surgical Oncology. 2014. № 4 (21). C. 1237-1245.

44. DSouza A. V. et al. Review of fluorescence guided surgery systems: identification of key performance capabilities beyond indocyanine green imaging // Journal of Biomedical Optics. 2016. № 8 (21). C. 080901.

45. Edge J. et al. Sentinel lymph node biopsy: An audit of intraoperative assessment after introduction of a cytotechnology service // South African Journal of Surgery. 2015. № 2 (53). C. 47-49.

46. Enokido K. et al. Sentinel Lymph Node Biopsy After Neoadjuvant Chemotherapy in Patients With an Initial Diagnosis of Cytology-Proven Lymph Node-Positive Breast Cancer // Clinical Breast Cancer. 2016. № 4 (16). C. 299-304.

47. Fayanju O. M. et al. The clinical significance of breast-only and node-only pathologic complete response (PCR) after neoadjuvant chemotherapy (NACT): A review of 20,000 breast cancer patients in the National Cancer Data Base (NCDB) // Annals of Surgery. 2018. № 4 (268). C. 591-601.

48. Fisher B. Eight-year results of a randomized clinical trial comparing total mastectomy and lumpectomy with or without irradiation in the treatment of breast cancer // The New England Journal of Medicine. 1989. № 16 (310). C. 1023-1031.

49. Fisher B. et al. Twenty-Year Follow-up of a Randomized Trial Comparing Total Mastectomy, Lumpectomy, and Lumpectomy plus Irradiation for the Treatment of Invasive Breast Cancer // New England Journal of Medicine. 2002. № 16 (347). C. 1233-1241.

50. Flores-Funes D. et al. Validation of the targeted axillary dissection technique in the axillary staging of breast cancer after neoadjuvant therapy: Preliminary results // Surgical Oncology. 2019. № July 2018 (30). C. 52-57.

51. Ghiassi S. et al. Methylene blue enhancement of resuscitation after refractory hemorrhagic shock // Journal of Trauma - Injury, Infection and Critical Care. 2004. № 3 (57). C. 515-521.

52. Giammarile F. et al. The EANM and SNMMI practice guideline for lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2013. № 12 (40). C. 1932-1947.

53. Giuliano A. E. et al. Effect of axillary dissection vs no axillary dissection on 10-year overall survival among women with invasive breast cancer and sentinel node metastasis: The ACOSOG Z0011 (Alliance) randomized clinical trial // JAMA - Journal of the American Medical Association. 2017. № 10 (318). C. 918-926.

54. Goetz M. P. et al. Breast cancer, version 3.2018 featured updates to the NCCN guidelines // JNCCN Journal of the National Comprehensive Cancer Network. 2019. № 2 (17). C. 118-126.

55. Goyal A. et al. Factors affecting failed localisation and false-negative rates of sentinel node biopsy in breast cancer - Results of the ALMANAC validation phase // Breast Cancer Research and Treatment. 2006. № 2 (99). C. 203-208.

56. Goyal A. New Technologies for Sentinel Lymph Node Detection // Breast Care. 2018. № 5 (13). C. 349-353.

57. Grischke E. M. et al. ICG Fluorescence Technique for the Detection of Sentinel Lymph Nodes in Breast Cancer: Results of a Prospective Open-label Clinical Trial // Geburtshilfe und Frauenheilkunde. 2015. № 9 (75). C. 935-940.

58. Hage V. et al. Preoperative Chemotherapy in Primary Operable Breast Cancer: Results From the European Organization for Research and Treatment of Cancer Trial 10902. Journal of Clinical Oncology. 2001. 19(22), 4224-4237.

59. He P. S. et al. The combination of blue dye and radioisotope versus radioisotope alone during sentinel lymph node biopsy for breast cancer: A systematic review // BMC Cancer. 2016. № 1 (16).

60. Hewson W. An Inquiry into the Properties of the Blood. In: Gulliver G, ed. The Works of William Hewson FRS. London: Sydenham Society; 1846.

61. Houpeau J. L. et al. Sentinel lymph node identification using superparamagnetic

iron oxide particles versus radioisotope: The French Sentimag feasibility trial // Journal of Surgical Oncology. 2016. № 5 (113). C. 501-507.

62. Hudack S. S., McMaster P. D. The lymphatic participation in human cutaneous phenomena: A study of the minute lymphatics of the living skin // Journal of Experimental Medicine. 1933. № 5 (57). C. 751-772.

63. Johnson L., Pinder S. E., Douek M. Deposition of superparamagnetic iron-oxide nanoparticles in axillary sentinel lymph nodes following subcutaneous injection // Histopathology. 2013. № 3 (62). C. 481-486.

64. Kanesalingam K. et al. Targeted axillary dissection after neoadjuvant systemic therapy in patients with node-positive breast cancer // ANZ Journal of Surgery. 2020. № 3 (90). C. 332-338.

65. Karpozilos A., Pavlidis N. The treatment of cancer in Greek antiquity // European Journal of Cancer. 2004. № 14 (40). C. 2033-2040.

66. Khanna R. et al. Touch imprint cytology evaluation of sentinel lymph node in breast cancer // World Journal of Surgery. 2011. № 6 (35). C. 1254-1259.

67. Kim T., Giuliano A. E., Lyman G. H. Lymphatic mapping and sentinel lymph node biopsy in early-stage breast carcinoma: A metaanalysis // Cancer. 2006. № 1 (106). C. 4-16.

68. Krag D. N. et al. Sentinel-lymph-node resection compared with conventional axillary-lymph-node dissection in clinically node-negative patients with breast cancer: overall survival findings from the NSABP B-32 randomised phase 3 trial 2010. № 10 (11). C. 927-933.

69. Krishnamurthy S. et al. Role of ultrasound-guided fine-needle aspiration of indeterminate and suspicious axillary lymph nodes in the initial staging of breast carcinoma // Cancer. 2002. № 5 (95). C. 982-988.

70. Kuehn T. et al. Sentinel-lymph-node biopsy in patients with breast cancer before and after neoadjuvant chemotherapy (SENTINA): A prospective, multicentre cohort study // The Lancet Oncology. 2013. № 7 (14). C. 609-618.

71. Lee J. et al. 5-year oncological outcomes of targeted axillary sampling in pT1-2N1 breast cancer // Asian Journal of Surgery. 2019. № 6 (42). C. 681-687.

72. Lyman G. H. et al. Sentinel lymph node biopsy for patients with early-stage breast cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update // Journal of Clinical Oncology. 2017. № 5 (35). C. 561-564.

73. Mansel R. E. et al. Randomized multicenter trial of sentinel node biopsy versus standard axillary treatment in operable breast cancer: The ALMANAC trial // Journal of the National Cancer Institute. 2006. № 9 (98). C. 599-609.

74. Matsuzawa F. et al. Accurate evaluation of axillary sentinel lymph node metastasis using contrast-enhanced ultrasonography with Sonazoid in breast cancer: a preliminary clinical trial // SpringerPlus. 2015. № 1 (4). C. 1-9.

75. Momeni R., Ariyan S. Pulse oximetry declines due to intradermal isosulfan blue dye: A controlled prospective study // Annals of Surgical Oncology. 2004. № 4 (11). C. 434-437.

76. Morton D. L. et al. Technical Details of Intraoperative Lymphatic Mapping for Early Stage Melanoma // Archives of Surgery. 1992. № 4 (127). C. 392-399.

77. Motomura K. et al. Sentinel node biopsy guided by indocyanin green dye in breast cancer // Breast Cancer. 1999. № 4 (6). C. 289-291.

78. Najim O. et al. The predictive value of sentinel node biopsy in early breast cancer after neo-adjuvant chemotherapy: A prospective study // European Journal of Obstetrics and Gynecology. 2018. C. 229: 108-111.

79. Natsiopoulos I. et al. Axillary Lymph Node Tattooing and Targeted Axillary Dissection in Breast Cancer Patients Who Presented as cN+ Before Neoadjuvant Chemotherapy and Became cN0 After Treatment // Clinical Breast Cancer. 2019. № 3 (19). C. 208-215.

80. Nielsen Moody A. et al. Preoperative sentinel lymph node identification, biopsy and localisation using contrast enhanced ultrasound (CEUS) in patients with breast cancer: a systematic review and meta-analysis // Clinical Radiology. 2017. № 11 (72). C. 959971.

81. Nogi H. et al. Long-Term Follow-Up of Node-Negative Breast Cancer Patients Evaluated via Sentinel Node Biopsy After Neoadjuvant Chemotherapy // Clinical Breast Cancer. 2017. № 8 (17). C. 644-649.

82. Oruwari J. U. N. et al. Axillary staging using ultrasound-guided fine needle aspiration biopsy in locally advanced breast cancer // American Journal of Surgery. 2002. № 4 (184). C. 307-309.

83. Osoba D. Health-related quality of life and cancer clinical trials // Therapeutic Advances in Medical Oncology. 2011. № 2 (3). C. 57-71.

84. Papathemelis T. et al. Sentinel Lymph Node Biopsy in Breast Cancer Patients by Means of Indocyanine Green Using the Karl Storz VITOM® Fluorescence Camera // BioMed Research International. 2018. (2018). C. 11-13.

85. Peek M. C. et al. Blue dye for identification of sentinel nodes in breast cancer and malignant melanoma: A systematic review and meta-Analysis // Future Oncology. 2017. № 5 (13). C. 455-467.

86. Pesek S. et al. The false-negative rate of sentinel node biopsy in patients with breast cancer: a meta-analysis // World J Surg. 2013. № 9 (36). C. 2239-2251.

87. Petropoulou T. et al. Imprint cytology versus frozen section analysis for intraoperative assessment of sentinel lymph node in breast cancer // Breast Cancer: Targets and Therapy. 2017. (9). C. 325-330.

88. Petursson H. I. et al. Evaluation of intraoperative touch imprint cytology on axillary sentinel lymph nodes in invasive breast carcinomas, a retrospective study of 1227 patients comparing sensitivity in the different tumor subtypes // PLoS ONE. 2018. № 4 (13). C. 8-15.

89. Pi ero-Madrona A. et al. Superparamagnetic iron oxide as a tracer for sentinel node biopsy in breast cancer: A comparative non-inferiority study // European Journal of Surgical Oncology. 2015. № 8 (41). C. 991-997.

90. Polom K. et al. Current trends and emerging future of indocyanine green usage in surgery and oncology: A literature review // Cancer. 2011. № 21 (117). C. 4812-4822.

91. Purushotham A. D. et al. Morbidity after sentinel lymph node biopsy in primary breast cancer: Results from a randomized controlled trial // Journal of Clinical Oncology. 2005. № 19 (23). C. 4312-4321.

92. Rubio I. T. et al. The superparamagnetic iron oxide is equivalent to the Tc99 radiotracer method for identifying the sentinel lymph node in breast cancer // European

Journal of Surgical Oncology. 2015. № 1 (41). C. 46-51.

93. Sabel M. S. et al. Sentinel node biopsy prior to neoadjuvant chemotherapy // American Journal of Surgery. 2003. № 2 (186). C. 102-105.

94. Sage H. Lymphatic scintigrams: a method for studying the functional pattern of lymphatics and lymph nodes. Cancer. 1957. C. 200-203.

95. Samorani D. et al. The use of indocyanine green to detect sentinel nodes in breast cancer: A prospective study // European Journal of Surgical Oncology. 2015. № 1 (41). C. 64-70.

96. Sandhu S., Farag E., Argalious M. Anaphylaxis to isosulfan blue dye during sentinel lymph node biopsy // Journal of Clinical Anesthesia. 2005. № 8 (17). C. 633-635.

97. Sappey PhC. Anatomie, physiologie, pathologie des vaisseaux lymphatiques considérés chez l homme et les vertébrés. Paris, France: A. Delahaye et E. Lacrosnier; 1874.

98. Schaafsma B. E. et al. Clinical trial of combined radio- and fluorescence-guided sentinel lymph node biopsy in breast cancer // British Journal of Surgery. 2013. № 8 (100). C. 1037-1044.

99. Sever A. R. et al. Preoperative sentinel node identification with ultrasound using microbubbles in patients with breast cancer // American Journal of Roentgenology. 2011. № 2 (196). C. 251-256.

100. Sherman A. Lymph-node concentration of radioactive colloidal gold following interstitial injection. Cancer. 1953. C. 1238-1240.

101. Straver M. E. et al. Sentinel node identification rate and nodal involvement in the EORTC 10981-22023 AMAROS trial // Annals of Surgical Oncology. 2010. № 7 (17). C. 1854-1861.

102. Sugie T. et al. Comparison of the indocyanine green fluorescence and blue dye methods in detection of sentinel lymph nodes in early-stage breast cancer // Annals of Surgical Oncology. 2013. № 7 (20). C. 2213-2218.

103. Sugie T. et al. Sentinel lymph node biopsy using indocyanine green fluorescence in early-stage breast cancer: a meta-analysis // International Journal of Clinical Oncology. 2017. № 1 (22). C. 11-17.

104. Tagaya N. et al. A novel approach for sentinel lymph node identification using fluorescence imaging and image overlay navigation surgery in patients with breast cancer // World Journal of Surgery. 2011. № 1 (35). C. 154-158.

105. Veronesi U. et al. Comparing Radical Mastectomy with Quadrantectomy, Axillary Dissection, and Radiotherapy in Patients with Small Cancers of the Breast // New England Journal of Medicine. 1981. № 1 (305). C. 6-11.

106. Veronesi U. et al. Twenty-Year Follow-up of a Randomized Study Comparing Breast-Conserving Surgery with Radical Mastectomy for Early Breast Cancer // New England Journal of Medicine. 2002. № 16 (347). C. 1227-1232.

107. Virchow R. Die Krankhaften Geschwulste. Berlin, Germany: August Hirschwald; 1863.

108. Vorst J. R. Van Der et al. Randomized comparison of near-infrared fluorescence imaging using indocyanine green and 99m technetium with or without patent blue for the sentinel lymph node procedure in breast cancer patients // Annals of Surgical Oncology. 2012. № 13 (19). C. 4104-4111.

109. Wohrl S. et al. Near-fatal anaphylaxis to patent blue V [6] // British Journal of Dermatology. 2004. № 5 (150). C. 1037-1038.

110. Wolmark N. et al. Preoperative chemotherapy in patients with operable breast cancer: nine-year results from National Surgical Adjuvant Breast and Bowel Project B-18. // Journal of the National Cancer Institute. Monographs. 2001. № 30 (15212). C. 96-102.

111. Xiong L. et al. Indocyanine green fluorescence-guided sentinel node biopsy: A meta-analysis on detection rate and diagnostic performance // European Journal of Surgical Oncology. 2014. № 7 (40). C. 843-849.

112. Zada A. et al. Meta-analysis of sentinel lymph node biopsy in breast cancer using the magnetic technique // The British journal of surgery. 2016. № 11 (103). C. 14091419.

113. Zetterlund L. et al. Swedish prospective multicenter trial on the accuracy and clinical relevance of sentinel lymph node biopsy before neoadjuvant systemic therapy in breast cancer // Breast Cancer Research and Treatment. 2017. № 1 (163). C. 93-101.

114. Zetterlund L. H. et al. Swedish prospective multicenter trial evaluating sentinel lymph node biopsy after neoadjuvant systemic therapy in clinically node-positive breast cancer // Breast Cancer Research and Treatment. 2017. № 1 (163). C. 103-110.

115. Zhang X. et al. Diagnostic performance of indocyanine green-guided sentinel lymph node biopsy in breast cancer: A meta-analysis // PLoS ONE. 2016. № 6 (11). C. 1-12.