Белоксинтетическая способность и стабильность двух штаммов культуры ткани Polyscias filicifolia при стрессе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.04, кандидат биологических наук Спасенков, Александр Игоревич

• Спасенков, Александр Игоревич
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Спасенков, Александр Игоревич

Список сокращений

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Перспективы использования культуры тканей растений в биохимии и биотехнологии

1.2. Введение в культуру тканей Polyscias filicifolia

1.3. Германийорганические соединения: биологическая активность, применение в медицине

1.4. Метаболизм белка в растениях

1.4.1. Обмен белка в растительных клетках

1.4.2. Кругооборот белка у растений при температурном воздействии 32 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Объект исследования и метод культивирования ткани

2.2. Выделение цитозольной фракции из культивируемых клеток

2.3. Энзиматические методы 45 2.3.1 Определение активности каталазы

2.3.2. Определение активности пероксидазы

2.3.3. Определение активности супероксиддисмутазы (СОД)

2.4. Определение германия в клетках полисциас LX

2.5. Количественный анализ нуклеиновых кислот

2.6. Определение содержания карбонильных групп в белках

2.7. Оценка степени фрагментации окисленных белков

2.8. Определение железо-зависимого образования битирозина

2.9. Электрофоретические методы

2.9.1. Диск-электрофорез в ПААГ

2.9.2. Электрофорез в 10 % ПААГ с DS-Na

2.10. Радиоизотопные методы 52 2.10.1.Определение параметров обмена общего белка в клетках культуры ткани, выращенной на стандартной и обогащенной германийорганическим соединением средах 52 2.10.2. Изучение влияния температурного шока на обмен общего белка

2.11. Аналитические методы

2.12. Статистическая обработка результатов эксперимента

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ

3.1. Обмен внутриклеточного белка в культурах ткани полисциас Polyscias fllicifolia и Polyscias fllicifolia LX-5, выращенных в стандартных условиях культивирования

3.1.1. Динамика прироста биомассы и общего белка в культуре ткани Polyscias fllicifolia и Polyscias fllicifolia LX

3.1.2. Параметры кругооборота внутриклеточного белка в культуре ткани Polyscias fllicifolia и Polyscias fllicifolia LX

3.1.3.Количественное содержание нуклеиновых кислот в культуре ткани Polyscias fllicifolia и Polyscias fllicifolia LX

3.1.4. Оценка антиоксидантного и прооксидантного статуса культуры ткани Polyscias fllicifolia и Polyscias fllicifolia LX

3.1.5. Оценка протеинового спектра внутриклеточных белков в клетках культур ткани Polyscias fllicifolia и Polyscias fllicifolia LX

3.1.6. Фотохимический анализ культуры ткани Полисциас

3.2. Биохимическая оценка метаболизма общего белка в культуры ткани полисциас Polyscias fllicifolia и Polyscias fllicifolia LX-5 в условиях высоко- и низкотемпературного шоков

3.2.1. Динамика содержания общего белка и параметры кругооборота в культуре ткани исходного и селективного штаммов полисциас при воздействии теплового шока и низких температур

3.2.2. Исследование протеиновых спектров внутриклеточных белков в клетках культуры ткани полисциас при воздействии теплового шока и низких положительных температур

3.2.3. Антиоксидантный статус культуры ткани полисциас Polyscias filicifolia Bailey и Polyscias filicifolia LX-5 Bailey в условиях темппературного шока и воздействии низких положительных температур

3.2.4. Пролиферативная активность культивируемых клеток полисциас при высоко- и низко температурных воздействиях

Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Белоксинтетическая способность и стабильность двух штаммов культуры ткани Polyscias filicifolia при стрессе»

Актуальность темы. Растения вида Poliscias folicifolia (полисциас папоротниколистный) произрастают в тропических странах, где издавна используются как ценное лекарственное сырье. Штамм тропического растения Polyscias filicifolia был введен от интактного оранжерейного растения в культуру изолированных тканей in vitro в Санкт-Петербургской Государственной химико-фармацевтической академии в 1972 году (Слепян Л.И. и соавт., 1975). Полученный в СПХФА штамм полисциас Polyscias filicifolia был зарегистрирован во ВСККК-ВР под номером 24, как обладающий адапгогенным и иммуномодулирующим эффектами (Михайлова Н.В., 1981) .Дальнейшие исследования показали, что фармакологические препараты, полученные из биомассы данной культуры ткани, обладают высокой биологической активностью, в частности, тонизирующей, иммуномодулирующей и стресспротекторной. (Трилис Я.Г. и соавт., 1995; Рябков А.Н. и соавт., 2004).

В последние годы исследования германийорганических соединений, обладающих широким спектром биологической активности, являются одним из перспективных направлений в современной химии элементорганических соединений. Известно, что германийорганические комплексы характеризуются низкой токсичностью и высокой биологической активностью. Эти соединения не только повышают эффективность применяемых лекарственных средств, но и снижают токсичность или побочные эффекты препаратов (ГарТ.К., Миронов В.Ф.,1982). Германийорганические соединения оказывают специфическое действие на сердечно-сосудистую и центральную нервную системы, вызывают индукцию интерферона, а также обладают иммуномодулирующим, противоопухолевым и антивирусным действиями (Хромова Н.Ю., Гар Т.К., Миронов В.Ф., 1985).

Селективный штамм Polyscias filicifolia LX-5 был введен в культуру в 2003 году при выращивании исходного штамма полисциас на среде, содержащей германийорганическое соединение (LX-5).

В настоящее время культуры растительных тканей становятся объектом промышленной биотехнологии для получения биологически активных соединений для медицины, косметики, пищевой и ряда других промышленностей. В то же время, для более широкого внедрения в промышленность целевых продуктов на основе культур растительных тканей создаваемые биотехнологические производства должны быть способными выдерживать конкуренцию с альтернативными системами получения данных продуктов. Однако перевод клеток растений в культуру может в значительной степени менять морфологию, биохимические особенности, а также генотип клетки, поэтому многие аспекты ее существования и развития требуют детального самостоятельного изучения. Таким образом, основные трудности, которые тормозят внедрение растительных культур в промышленное производство, связаны с недостаточным знанием как общей картины изменений, происходящих в культивируемых in vitro клетках, так и контрольных механизмов биосинтеза вторичных продуктов растительного происхождения и рядом других проблем (Бутенко Р.Г., 1991; Бурьянов Я.И., 1999). Поэтому в последние годы во всем мире ведутся интенсивные биохимические исследования на модели культур растительных клеток, которые открывают большие перспективы в изучении молекулярных механизмов метаболических процессов, протекающих в клетке, с целью их практического применения (Носов A.M., 1999). В частности, культуры растительных тканей используются в настоящее время в качестве адекватной модели для изучения на клеточном уровне адаптации растений к различным неблагоприятным воздействиям окружающей среды.

Цель и задачи исследования. Основной целью диссертационной работы является сравнительное исследование основных биохимических и фотохимических показателей в процессе культивирования клеток исходного и селективного штаммов Polyscias filicifilia (Moore ex Fournter) Bailey (сем. Araliaceae). Изучение влияния температурного шока и низких температур на белоксинтетическую способность и стабильность культур клеток растения полисциас.

В соответствии с целью работы непосредственными задачами работы являлись:

1. Характеристика динамики прироста биомассы, содержания ДНК и РНК, а также белоксинтезирующей способности клеток исходного полисциас и селективного полисциас LX-5 штаммов

2. Изучение динамики уровня активности ферментов-антиоксидантов (пероксидазы, каталазы и СОД) в процессе роста культивируемых растительных клеток двух штаммов полисциас

3. Определение основных фотохимических показателей биомассы клеток исходного и селективного штаммов полисциас

4. Оценка влияния различных температур на пролиферативную активность, белоксинтезирующую способность и состояние трех исследуемых ферментов-антиоксидантов в культурах растительных клеток

5. Исследование элементного состава и внутриклеточного распределения германия в культуре селективного штамма полисциас

Научная новнзна работы. Основным достижением данной работы представляется проведенное впервые в сравнительном аспекте комплексное исследование основных биохимических и фотохимических показателей в процессе выращивания исходного и селективного штаммов тропического растения полисциас.

Получены новые данные, расширяющие и углубляющие современные представления о метаболизме белков в растительных клетках при экстремальных температурных воздействиях. В результате проведенных исследований впервые была оценена белоксинтезирующая способность и рассчитаны параметры кругооборота внутриклеточного белка в культивируемых клетках полисциас и полисциас LX-5.

Установлена избирательная чувствительность важнейших ферментов антиоксидантной системы - СОД, каталазы и пероксидазы - к воздействию различных температур, что проявляется в усилении или ослаблении уровня их каталитической активности. Отмеченный колебательный характер изменения активности трех основных ферментов антиоксидантной системы коррелировал с ростовыми процессами (накопление биомассы и внутриклеточного белка) и с изменением митотической активности (по содержанию ДНК).

В диссертационной работе впервые изучена динамика содержания ДНК и РНК в клетках двух штаммов культуры полисциас в процессе их культивирования. Установлено, что характер изменения содержания РНК сходен с таковым для ДНК. Впервые были получены новые данные о пролиферативной активности культивируемых клеток полисциас при высоко- и низкотемпературных воздействиях, а также изучена пролиферативная активность клеток in vitro при воздействии активных форм кислорода.

При оценке влияния германийорганических соединений на метаболизм белков было установлено, что выращивание культуры полисциас на селективных средах не только увеличивает содержание нуклеиновых кислот и внутриклеточного белка, но и повышает в исследуемых клетках уровень активности ферментов-антиоксидантов по сравнению с исходным штаммом.

Кроме того, в работе был проведен фитохимический анализ содержания основных биологически активных соединений (суммы гликозидов, углеводов и микроэлементов), а также изучено внутриклеточное распределение германия в клетках селективного штамма. Установлено, что максимальное содержание германия (до 54-55%) локализовано в водорастворимой фракции культивируемых клеток, а примерно 30% общего количества данного элемента остается в шроте, после извлечения липофильных веществ и суммы гликозидов.

Теоретическая и практическая значимость. Полученные в работе данные расширяют и углубляют наши представления о биохимическом состоянии переведенных в культуру растительных клеток. Полученные результаты дополняют уже известную информацию о биологической роли германия, в частности, о возможном участии германийорганических соединешш в биологических процессах в растительной клетке.

Работа носит экспериментально-теоретический характер. Однако полученные результаты характеризуются практической направленностью для биотехнологии и медицины. В частности, в работе было установлено, что добавление в питательную среду германийорганического соединения, оказывало положительное влияние на основные ростовые и биохимические показатели культуры ткани полисциас. Учитывая высокую биологическую активность германийорганических соединений (Хромова Н.Ю., 1983), можно полагать, что препараты (настойки, экстракты и т.п.) из биомассы модифицированного штамма полисциас будут иметь более широкий спектр фармакологического действия по сравнению с исходной культурой полисциас, что открывает большие перспективы в использовании германийорганических соединений в биотехнологии растительных тканей.

Полученные результаты будут использованы при оформлении паспортов на исходный и селективный штаммы культуры Polyscias filicifolia. Материалы данного исследования используются в учебном процессе на кафедре биохимии для студентов Санкт-Петербургской Государственной химико-фармацевтической академии.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Биохимические исследования влияния германийорганического соединения на основные ростовые и биохимические показатели культуры ткани полисциас.

2. Радиоизотопные исследования скорости биосинтеза и времени функционирования общего белка, а также биохимические исследования активности ферментов-антиоксидантов (СОД, каталазы и пероксидазы) в растительных клетках, выращенных в стандартных условиях и при воздействии неблагоприятных температур.

3. Изучение пролиферативной активности культивируемых клеток полисциас при высоко- и низкотемпературных воздействиях, а также при воздействии in vitro активных форм кислорода.

Апробация работы. Материалы работы были апробированы на 60-ой региональной конференции «Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции» (Пятигорск, 2005), IX Международном съезде «Актуальные проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения» (Санкт - Петербург, 2005), Юбилейной конференции «Подготовка кадров для фармацевтической промышленности » (Санкт - Петербург, 2005), 61-ой региональной конференции «Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции» (Пятигорск, 2006), IX Международной конференции молодых ботаников (Санкт -Петербург, 2006).

Публи1сацпи. По теме диссертации опубликовано 6 работ.

Структура и объем диссертации. Работа изложена на 128 страницах, содержит 5 таблиц и 25 рисунков. Работа состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов и их обсуждения, выводов и списка использованной литературы, которая включает 201 наименование на русском и английском языках.

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Спасенков, Александр Игоревич

ВЫВОДЫ

1. Добавление в питательную среду германийорганического соединения увеличивало прирост сырой биомассы каллусной культуры полисциас на 1015%, а суховоздушной - на 20-25%; содержание ДНК в 1,3-1,5 раза, РНК в 1,8-2,5 раза; скорость обновления общего белка на 10%.

2. При переводе культуры ткани полисциас на селективную среду, активность ферментов в клетках каллуса увеличивалась в среднем на 11% (СОД), 18,6% (пероксидаза) и 26,5% (каталаза) и, в основном, коррелировала с фазными изменениями содержания бежа, нуклеиновых кислот и степенью окислительной модификации внутриклеточного белка.

3. Установлено, что в 1 г клеточной и суховоздушной биомассы содержится, соответственно, 0,00005 и 0,0015 г германия. Максимальное содержание германия в ткани селективного штамма отмечено в водорастворимой фракции клеток (54,7%) и более 30% общего количества данного элемента в шроте.

4. При воздействии высоких и низких положительных температур нарушения в метаболизме внутриклеточного бежа (снижение скорости биосинтеза общего бежа от 3%-тепловой до 57%-низкотемпературный шок) и состоянии антиоксидантного статуса в клетках культуры исходного штамма были более значительны по сравнению с селективным штаммом.

5. Установлено, что при воздействии теплового шока (3 часа при 45°С) содержание нуклеиновых кислот в клетках культуры полисциас достоверно снижалось (ДНК на 21%, общий пул РНК - на 31%). При увеличении времени воздействия температуры на растительные клетки (24 часа при 45°С) понижение концентрации ДНК и РНК были более значительные, соответственно, на 30,6 и 41%. Низкие положительные температуры (24 часа при 7°С) вызывали еще более резкое снижение концентрации ДНК на 34,2% и общего пула РНК - на 48%.

6. Присутствие перекиси водорода и феназин метасульфата в среде культивирования биомассы полисциас приводило к дозозависимому и разнонаправленному воздействию на клеточную пролиферацию. Низкие концентрации этих соединений увеличивали (от 18 до 58%), а высокие концентрации снижали (от 18 до 45%) пролиферативную активность культивируемых клеток.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Спасенков, Александр Игоревич, 2006 год

1. Аверьянов А. А. Активные формы кислорода и иммунитет растений // Успехи совр. биол. -1991. Т.111, вып. 5. С. 722-737.

2. Айтхожин М.А., Бельгибаев С.А., Токарев А.А. Регуляция синтеза стрессовых белков на ранних стадиях прорастания семян // Стрессовые белки растений. Новосибирск: Наука. Сибирское отд., 1989. - С.20-43.

3. Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте Л., Уотсон Дж. Молекулярная биология клетки. М.: Мир, 1994. Т. 2. - С. 93-253.

4. Антан И.С., Слепян Л.И., Минина С.А., Шиков А.Н. Разработка метода количественного спектрофотометрического определения основных действующих веществ в препаратах селективного штамма женьшеня //Хим.-фармац. журн. 1995.Т. 29, вып.6. - С.57-61.

5. Бабенко Л.М., Мусатенко Л.И. Белковый синтез при нарушении покоя в семенах клена татарского // Физиология растений. 1998. Т.45., №1. -С. 112-116.

6. Беспалов В.Г., Лимаренко А.Ю., Давыдов В.В. и др. Антиканцерогенные и противоопухолевые свойства препаратов из биомассы Panax ginseng С.А.Меу и его германий-селективных штаммов // Растительные ресурсы. 1993. Т. 29, вып. 4. - С. 1-13.

7. Блейделис Я.Я., Кемме А.А. Кристаллографические параметры 1-органилгерматранов // Химия гетероциклических соединений. 1970. № 3. -С. 332-334.

8. Боровский Г.Б., Ступникова И.В. Антипина А.И., Войников В.К. Накопление дегидринов и Rab-белков в проростках пшеницы при низкотемпературной адаптации // Физиология растений. 2002. Т. 49, № 2. -С.257-263.

9. Браун Г.Н. Механизм белкового синтеза в связи с морозостойкостью растений // Холодостойкость растений. М.: Колос, 1983. -С. 124-131.

10. Браун Г.Н., Моженок Т.П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы. Л.: Наука. Лен.отд., 1987. - С. 113-127.

11. И. Бурьянов Я.И. Успехи и перспективы генно-инженерной биотехнологии растений // Физиол. растений. 1999. Т. 46, № 6. - С. 930-944.

12. Бутенко Р.Г. Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. - 280 с.

13. Бутенко Р.Г. Клеточные технологии для получения экономически важных веществ растительного происхождения // Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986. - С. 3-20.

14. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. - 272 с.

15. Войников В.К., Колесниченко А.В., Побежимова Т.П., Варакина Н.Н. Первая и шестая хромосомы D-генома озимой мягкой пшеницы контролируют экспрессию белка холодового шока с молекулярной массой 310 кД // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 5. - С. 688-692.

16. Войников В.К., Боровский Г.Б. Роль стрессовых бежов в клетках при гипертермии // Успехи совр. биологии. 1994. Т. 114., вып. 1. - С. 85-95.

17. Воллосович А.Г. Культура ткани раувольфии как продуцент противоаритмических ажалоидов: Автореф. дис. докт. биол. наук. С-Пб., 1992.-38 с.

18. Воллосович Н.Е., Воллосович А.Г., Ковалева Т.А., Бутенко Р.Г. Штаммы культуры ткани Rauwolfia serpentina и их продуктивность // Раст. ресурсы. 1976. Т. 12, №4. - с. 578-583.9 20. Воронков М.Г., Дьяков В.И. Силатраны. Новосибирск: Наука,1978.-208 с.

19. Воронков М.Г., Мирсков Р.Г. Четвертое рождение германия // Химия и жизнь. 1982. № 3. - С. 54-56

20. Гар Т.К., Миронов В.Ф. Биологическая активность соединений германия. Обзорн. инф.(серия Элементоорганические соединения и их применение) ГНИИХТЭОС. М.: НИИТЭХИМ, 1982. - 26 с.

21. Гар Т.К., Хромова Н.Ю., Сонина Н.В., Никитин B.C., Полякова Н.В., Миронов В.Ф. Синтез, химические свойства и ИК-спектры Ge-замещенных герматранов // Журнал общая химия. 1979. Т. 49, № 7. - С. 1516-1522.

22. Гималов Ф.Р., Баймиев А.Х., Матниязов Р.Т., Чемерис А.В.,

23. Ф Вахитов В.А. Начальные этапы низкотемпературной индукции экспрессии гена бежа холодового шока капусты // Биохимия. 2004. Т. 69, вып. 5. - С. 706-711.

24. Гималов Ф.Р., Вахитов В.А., Черемис А.В. Индукция белков холодового шока у пшеницы // Генетические механизмы устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды: Тез. докл. Всесоюз. науч. конф., Иркутск. 8-12 июля, 1991. Новосибирск, 1991. - С. 90.

25. Гусев Н.Б., Букач О.В., Марстон С.Б. Структура, свойства и возможная физиологическая роль малого бежа теплового шока с молекулярной массой 20 кДа. // Биохимия. 2005. Т. 70, вып. 6. С. - 762-772.

26. Дубинина Е.Е., Гавровская С.В., Кузмшшч Е.В., Леонова Н.В.

27. Окислительная модификация бежов: окисление триптофана и образованиебитирозина в очищенных бежах с использованием системы Фентона // Биохимия. 2002. Т. 67, вып. 3. - С. 413-421.

28. Емец А.И., Блюм Я.Б. Устойчивость растений к гербецидам с антимикротрубочковым механимзом действия: от природных мутантов до переноски генов // Физиол. растений. 1999. Т.46, № 6. - С. 899-907.

29. Жеребцов Ф.Ф., Мещерякова Н.И., Чуниковская В.Н., Свешниковащ Т.В. Использование методов биотехнологии для оздоровления и• интенсивного размножения розы эфиромаслячной: Тез. докл. обл. научн.-практ. конф. Симферополь, 1990. - С. 99-100.

30. Журавлев Ю.Н., Коляда А.С. Araliaceae: женьшень и другие. -Владивосток: Дальнаука, 1996. 279 с.

31. Захарова И.Я., Косенко Л.В. Методы изучения микробных полисахаридов. Киев: Наукова думка, 1982. - С.36-37

32. Карасев Г.С., Красавцев О.А., Трунова Т.И. Роль белков в адаптации растений к морозу // 3 съезд Всерос. общества физиологоврастений (24-29 июня, 1993 г., Санкт-Петербург): Тез. докл. 6.СП6,1993. С. 601.

33. Карасев Г.С., Нарлева Г.И., Ященко И.А., Кузнецов В.В., Трунова Т.И. Динамика синтеза белков при адаптации озимой пшеницы к морозу // Прикл. биохим. и микробиология. 1994. Т.30., №4-5. - С.667-671.

34. Карлов С.С. Функциональнозамещенные герматраны и азагерматраны. Синтез, строение и реакционная способность.: Автореф. дис. . канд. хим. наук. М., 2000. 26 с.

35. Кириллова Н.В. Изменение активности супероксиддисмутазы в каллусной культуре Rauwolfia serpentina Benth., выращенной в стандартных условиях и при температурном шоке // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т. 40, №1. - С. 89-93.

36. Кириллова Н.В. Ферменты антиоксидантной системы культивируемых растительных клеток // Авт. . докт. биол. наук. СПб.: СПХФА, 2000.-30 с.

37. Колесниченко А.В., Войников В.К. Белки низкотемпературного стресса. Иркутск: Арт-Пресс, 2003. - 196 с.

38. Колесниченко А.В., Таусон Е.Л., Зыкова В.В., .Клименко Е.С., Грабельных О.И., Побежимова Т.П. Природа лиганда, связанного с разобщающим белком БХШ 310 // Физиология растений. 2005. Т.52, № 2. -С.216-220.

39. Колесникова М.П., Тузова М.Н., Кудиева О.Т. и др. Механизмы иммуномодулирующего эффекта германийорганических соединений // Иммунология. 1995. № 1. - С.27-31.

40. Колоша О.И., Костенко И.И. Морозостойкость озимых зерновых культур в связи с водным режимом и ходом метаболических процессов // Устойчивость растений к неблагоприятным температурным условиям среды. Киев: Наук, думка, 1976. - С.5-19.

41. Колупаев Ю.Е., Акинина Г.Е., Мокроусов А.В. Индукция теплоустойчивости колеоптилей пшеницы ионами кальция и ее связь с окислительным стрессом // Физиология растений. 2005. Т.52, №2. - С.227-232.

42. Комов В.П., Шмелев В.К. О некоторых особенностях кинетики ферментативных реакций на примере каталазы // Биохимия 1975. Т.40, вып 4.-С 21-24.

43. Комов В.П., Кириллова Н.В., Алексейчук Н.В. Выделенние и очистка альдолазы из культуры ткани Rauwolfia serpentina Benth. // Биохимия. 1986. Т. 51, вып.7. - С. 1180-1185.

44. Критенко С.П., Титов А.Ф., Акимова Т.В. Влияние ингибиторов биосинтеза белка на физиологические процессы у растений при низких и высоких закаливающих температурах // Термоадаптация и продуктивность растений. Петрозаводск, 1986. - С.45-58.

45. Курганов JI.H., Веселов А.П., Гончарова Т.А., Синицына Ю.В. Перекисное окисление липидов и антиоксидантная система защиты в хлоропластах гороха при тепловом шоке // Физиология растений. -1997. Т.44, №5. С.725-730.

46. Лукевиц Э.Я., Гар Т.К., Игнатович Л.М., Миронов В.Ф. -Биологическая активность соединений германия. Рига: Зинатне, 1990. -191с.

47. Лукевиц Э.Я., Германе С.К., Зидермане А.А.и др. Синтез,нейротропная и противоопухолевая активность ряда герматранов,гермсесквиоксанов и их органических аналогов // Химико-фармацевтический журнал. 1984. Т. 18, № 2. - С. 154-159.

48. Лю Б.И. Кислородно-перекисная концепция апоптоза и возможные варианты его механизма // Успехи совр. биологии. 2001. Т. 121, №5. -С.488-501.

49. Максютова Н.Н. Белковый обмен растений при стрессе // Автореф. дис.докт. биол. наук. М. 1998. 38 с.

50. Методы биохимического исследования растений. / Под ред. А.И. Ермакова Л., 1972. - С.325-327

51. Михайлова Н.В. Полисциас папоротниколистный Polyscias fllicifolia (Moore ex Fournier) Bailey в культуре in vitro: Автореф. дис. канд. фарм. наук Л., 1981. - 26 с.

52. Носов A.M., Пауков В.Н., Бутенко Р.Г. Физиологическая регуляция синтеза стероидов культурой клеток диоскореи дельтовидной -Культура клеток растений и биотехнология. М.:, 1986. С. 76-79.

53. Одум Ю. Экология. -М.: Мир, 1986. Т.1.-328 с.

54. ОсиповаЕ.А., Цибулько Н.С., ШаминаЗ.Б. Вариабельность клеточных клонов // Физиол. растений. 1999 Т. 6, № 6. - С. 908-914.

55. Пескин А.В. Взаимодействие активного кислорода с ДНК // Биохимия. -1997. Т.62, вып.12. С.1571-1578.

56. Писецкая Н.Ф. К вопросу о подборе питальной среды длякультуры ткани женьшеня // Раст. ресурсы. 1970. Т.6, вып.4. - С. 516-522.

57. Раймерс Ф.Э., Хавкин Э.Е. Новообразование белков в растущей клетке // Физиология растений. 1970.Т. 17, вып. 2. - С. 337* 347.

58. Рябков А.Н., Хвойницкая Л.Г. Экспериментальная оценка стресспротективного эффекта препарата из биомассы полисциаса папоротниколистного в условиях мерказолиловой интоксикащш:Тез. докл.

59. Российского национального конгресса «Человек и лекарство» (Москва, 1923 апреля 2004г.). -М, 2004. С. 623-624.

60. Северин Е.С. Избирательная регуляция клеточного метаболизма. -М.: Наука, 1991.-63 с.

61. Скулачев В.П. Апоптоз: запрограммированная смерть организма // Биохимия. 1999. Т.64, вып. 12. - С. 1679-1688.

62. Слепян Л.И., Арнаутов Н.И., Грушвицкий И.В. Культура тканей некоторых видов рода Polyscias filicifolia J. R. et G. Frost (Araliaceae) // Раст. ресурсы. 1975. Т. 11, вып. 2. - С. 198-204.

63. Слепян Л.И., Минина С. А., Старцев Ф.Н. и др.// Способ культивирования тканей и клеток растений-продуцентов БАВ // АС №1531488 от 11.04.88.

64. Слепян Л.И. Женьшень, адаптогены и биотехнология для превентивной медицины // From research to prevention managing occupational and environmental health Hazards: Тез. докл. Междунар. конф. Хельсинки, 1995. - 85 с.

65. Слепян Л.И. Женьшень, адаптогены и 21 век: от штаммов к конечным продуктам // Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда: Тез. докл. 12 Междунар.конф. М., 1997. - С. 507

66. Смолов А.П. Функционирование растительной клетки в культуре in vitro (физиологичекие исследования) // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1990.• № 6. С. 805-820.

67. Соколовский В.В. Тиоловые антиоксиданты в молекулярных механизмах неспецифических реакций организма на экстремальные воздействия // Вопр.мед.химии. 1988. №6. - С.2-11.

68. Соколовский В.В. Антиоксиданты в профилактике и терапии заболеваний // Международные медицинские обзоры. 1993. №1. - С.11-14.

69. Ступникова И.В., Боровский Г.Б., Войников В.К. Накопление термостабильных белков в проростках озимой пшеницы при гипотермии //

70. Физиология растений. 1998. Т.45., №6. - С, 859-864.

71. Тарчевский И. А. Катаболизм и стресс у растений. М.: Наука, 1993.-80 с.

72. Трилис Я.Г., Давыдов В.В. Новые сведения о механизмах адаптогенного действия препаратов культуры тканей Panax Ginseng С.А. Меу и Polyscias filicifolia Bailey (Araliaceae) // Раст.ресурсы. 1995. вып.З. - С. 1935.

73. Турпаев К.Т. Активные формы кислорода и регуляция экспрессии генов // Биохимия. 2002. Т.67., №3. - С.339-352.

74. Тэрумаккуки К.К. Способ культивирования женьшеня на питательной среде, содержащей минеральное соединение германия. С. А. № 54-67598,1972 (Япония) //РЖХ. 1973.Т. 5, № 10. - 1518п.

75. Фармакопейная статья предприятия // Биомасса «Панаксел^), Biomassa "Panaxel11", ФСП42,2000.

76. Фельдман Л.Н., Денько Е.И., Каменцева И.Е., Константинова М.Ф. Теплоустойчивость клеточных функций и белков двух сортов пшеницы с разной агро-биологической характеристикой // Цитология. -1981. Т.21, № 11. С.1275-1283.

77. Фельдман Л.Н., Каменцева И.Е. Роль пероксидаз в изменении активности пероксидазы из закаленных нагревом листьев пшеницы при хранении неочищенного экстракта // Цитология. 1984. Т.26., № 5. - С.583-587.

78. Хавкин Э.Е. Формирование метаболических систем в растущих клетках растений. Новосибирск: Наука. Сибирское отд., 1977. -221 с.

79. Хавкин Э.Е., Токарева Э.В., Обручева Н.В. Скорость синтеза бежа в зонах роста корней проростков кукурузы // Физиология растений. -1967. Т. 14, No 6. С. 997-1005.

80. Хромова Н.Ю. Гар Т.К., Миронов В.Ф. Герматраны и их аналоги. Обзорн. инф. (серия Элементоорганические соединения и их применение) ГНИИХТЭОС. М.: НИИТЭХИМ, 1985. - 34 с.

81. Хромова Н.Ю. Синтез и свойства герматранов и их аналогов: Дис. . канд.хим.наук. М., 1983. 124 с.

82. Чернядьев И.И. Влияние водного стресса на фотосинтетический аппарат растений и защитная роль цитокининов // Прикладная биохимия и микробиология. 2005. Т.41, № 2. - С. 133-147.

83. Шамина З.Б., Савина Т.А., Осипова Е.А., Попов Ю.Г. Повышение продуктивности клеток стефании гладкой Stephania glabra (Roxb) Miers. // Физиол. растений. -1994. Т.41. - С. 885-890.

84. Шинкоренко Н.В. Химическая основа поведения синглетного кислорода в организме человека // Вопр. мед химии. 1986. - Т.32, вып.5. -С.2-7.

85. Яковлев Г.П., Челомбитько В.А. Ботаника. -М: Высшая школа, 1990. 367с.

86. Янковский О.Ю. Токсичность кислорода и биологические системы. СПб.: Игра, 2000. - 295 с.

87. Allen G.C., Hall G., Micchaalowski S., Newman W., Spiker S., Weissinger A.K., Thompson W.F. High level transsgene expression in plant cells: effects of a strong scaffold attachment region from tobacco // Plant Cell. 1996. -Vol. 8.-P. 899-913.

88. Altschler M., Mascarenhas J.P. Heat shock proteins and the effect of head shock in plants // Plant Mol. Biol. 1982. - Vol. 1. - P. 103-115.

89. Anderson M.D., Prasad Т.К., Stewart C. Changes in isozyme profiles of catalase, peroxidase and glutathione reductase during acclimation to chilling in mesocotyls of maze seedlings // Plant Physiol. 1995. - Vol. 109, No 4. - P. 12471257.

90. Arias I.M., Dogle D., Schimke R.T. Studies on the synthesis and degradation of the endoplasmic reticulum of rat liver // J. Biol. Chem. 1969. Vol. 244, No 12. P.-3303-3315.

91. Asai K., Makabe K. Organogermanium compounds. Pat. № 46-2964 Gpn. 1971 // C. A. -1971. Vol. 74. - 125852 p.

92. Bar-Peled M., Raikhel N.V. Characterization of AtSAC12 and AtSaRl. Proyeins likly involved in endoplasmic reticulum and Golgi transport // Plan Physiol. 1997. - Vol. 114. - P. 315-324.

93. Bovaird J. H., Ngo T.T., Jenhott Y.M. Optimizing the o-phenilendiamine assay for horseradish peroxidase : effect of phosphate and pH, substrate and enzyme concentrations and stopping reagents // Clin. Chem. 1982. -Vol. 28.-P.2423

94. Bowler C., Montagu M.V., Inze D.Superoxide dismutase and stress tolerance // Ann.Rev.Plant Physiol.Plant Mol.Biol. 1992. - Vol. 43. - P. 83-116.

95. Burdon R.H. Free radicals and cell proliferation // Free radicals damage and its control (Ed. by C.A. Rise-Evans, R.N.Burdon ).Amsterdam e.a.: Elsevier.-1994.-P. 155-185.

96. Burdon R.H., Gill V., Rice-Evans C. Oxidation stress and tumour cell proliferation // Free Radic.Res.Commun. 1990. - V. 11. - P.65-76.

97. Cervantes E., Perez P., Martinez-Carrasco R. Dry weight accumulation and starch synthesis enzymes in grain of cultured ears of three winter wheat varieties // Physiol, plant. 1989. - V. 77, No 1. - P. 52-58.

98. Chen P.M., Li P.H. Induction of frost hardiness in stemcortial tissues of Comus stolonifera Michx. by water stress // Plant Physiol. 1977. - Vol. 59, No 2. -P.240-243.

99. Close T.J. Dehydrins: emergence of a biochemical role of a family of plant dehydratation proteins // Physiologia Plantarum. 1996. - Vol. 97, № 5. - P. 795-803.

100. Close T.J. Dehydrins: A commonality in the response of plants to dehydration and low temperature// Physiologia Plantarum. 1997. - Vol. 100, № 2. - P.291-296.

101. Considine M.J., Daley D.O., Whelan J. The expression of alternative oxidase and uncoupling protein during fruit ripening in mango// Plant Physiol. -2001.-Vol.126,№4.-P. 1619-1629.

102. Cooper P., Но Т. H. D. Heat shock proteins in maize // Plant Physiol. - 1983. -V. 71. - P. 214-222.

103. Dat J.F., Lopez-Delgado H., Foyer Ch.H., Scott I.M. Parallel changes in H2O2 and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat accumulation in mustard seedlings // Plant Physiol. 1998. - V. 116. - P. 13511357.

104. Davis В.J.Method and application to human serum proteins // In: Disk electrophoresis.Ann.N.Y.Acad. Sci. 1964. - Vol. 121. -P. 404-427.

105. Davies K.J.A., Delsignore M.E., Lin S.W.Protein Damage and Degradation by Oxygen Radicals // J.Biol.Chem. 1987. - Vol. 262, № 20. -P.9902-9907.

106. Davis D.D. Physiological aspects of protein turnover // Encyclopedia of Plant Physiology .Nucleic acids and protein in plants LD.Boulter and B.Parthier (eds.). Springer Berlin, Heidelberg, N. Y, 1982. - Vol. 14A. - P. 189 - 228.

107. Delmer D.P. Studies on the nature of the adaptations of the monkey flower, Mimulus guttatus, to a termophilic environment // Can. J. Bot 1974. -Vol. 52, №7.-P. 1590-1614.

108. Dice J.F., Hess E.J., Goldberg A.L. Studies on the relationship between the degradation rates of proteins in vivo and their isoelectric points // Biochem. J. -1979. -V. 178. P. 305-312.

109. Ekman P., Hermansson U., Bergstrom G., Engstrom L. Rapid proteolytic removal of phosphopeptides and phosphorylatable sites from protein in rat liver cell // FEBS lett. 1978. - Vol. 86. - P. 250-254.

110. Ellis R.J. Role of molecular chaperones in protein folding // Curr.Opinion Struct. Biol. 1994. - Vol. 4, № 1. - р. 117-122.

111. Ericson M.C., Alfinito S.C.H. Proteins produced during salt stress in Tobacco cell culture // Plant Physiol. 1984. - Vol. 74. - P. 506-509.

112. Feder M.E., Hoftnann G.E. Heat-shock proteins, molecular chaperones and the stress response: Evolutionary and ecological physiology // Ann. Rev. Physiol. -1999. Vol. 61. - P. 243-282.

113. Feierabend J., Dehne S. Fate of the porphyrin cofactors during the light-dependent turnover of catalase and of the photosystem 2 reaction-center D1 in matyre rye leaves // Planta. 1996. - Vol. 1 98. - P. 413-422.

114. Flachmann R. Funktionelle bedentung von transit peptiden // Naturwiss. Rdsch. 1991. - Vol. 44, No 5. - S. 180-181.

115. Foyer C.H., Lopez-Delgado H., Dat J.F., Scott I.M. Hydrogen peroxide- and glutathione-associated mechanisms of acclimatory stress tolerance and signaling // Physiol.Plant. 1997. - Vol. 100. - P. 241-254.

116. Griffith M., Ala P., Yang D.S.C., Hon Wai-Ching, Moffat B.A. Antifreeze protein produced endogenously in winter rye leaves // Plant Physiol. -1992. Vol. 100, No 2. - P. 593-596.

117. Griffith M., Marentes E., Mlynerz A., Brush R.A., Knight C,A. The role of apoplastic protein sin frost tolerance of winter rye: Jt. Annu. meet.Amer.

118. Soc. Plant Physiol., Can. Soc. Plant Physiol., Minneapolis, Minn., July 31-Aug.4, 1993: Sci. program, Abstr. Pap. // Plant Physiol. 1993. - Vol. 102, No 1. - P.9.

119. Guy C. Cold acclimation and freezing stress tolerance: role of protein metabolism // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1990. - Vol .41. - P. 187-223.

120. Haberlandt G. Kulturversuche mit izolierten Pflanzenzellen// Sitz. Akad. Wiss. Wien. 1902. - Vol. 111. - P. 69-92.

121. Halliwell B. Free radicals, antioxidants and human disease: curiosity, cause or consequence // Lancet. 1994. - Vol. 344. - P. 721-724.

122. Hamilton C.M., Frary A., Lewis C., Tranksley S.D. Stable transfer of intact high molecular weight DNA into plant chromosomes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. - Vol. 93. - P. 9975-9979.

123. Harrington H.M., Aim D.M. Interaction of Heat and Salt Schock in cultured Tobacco cells // Plant Physiol. 1988. - Vol. 88, № 3. - P. 618-625.

124. Helene C., Toulme J.J. Specific regulation of gene expression by antisense sense and antigene nucleic acids // Biochem. et biophys. acta. 1990. -Vol. 1049, №2.-P. 99-125.

125. Huffaker R.C., Peterson L.W. Protein turnover in plants and possible means of its regulation // Annual. Rev. Plant Physiol. 1974. - Vol. 25. - P.363 -381.

126. Humphreys D.T., Carver J.A., Easterbrook-Smith S.B., Wilson M.R. Clusterin has chapirone-like activity similar to that of small heat schock proteins // J.Biol.Chem. 1999.-Vol 274. - P. 6875-6881.

127. Ikebuchi Y., Masumoto N., Tasaka K. et al. Superoxide anion increases intracellular pH, intracellular free calcium and arachidonate release in human amnion cells //J. Biol. Chem. 1991. - Vol. 266. -P. 13233-13237.

128. Ishiwata Y., Yokochi S., Hashimoto H., Ninomiya F. and Suzuki T.Protection against concanavalin A-induced Murine liver injuri by the organic germanium compound, Progermanium // Scand J. Immunol. 1998. - No 48. - P. 605-614.

129. Jezek P., Garlid K.D. Mammalian mitochondrial uncoupling proteins // Int. J. of Biochemistry and Cell Biology. 1998. - Vol. 30. - P. 1163-1168.

130. Jones R.L., Robinson D.G. Protein secretion in plants // New Phytol. -1989. Vol. 111, No 4. - P. 567-597.

131. Ф 147. Josu-Estanuol M., Puigdomunech P. Developmental and hormonalregulation of genes coding for proline-rich proteins in Female Inflorencebces and Kernels of Maizel// Plant Physiol. 1998. - Vol. 116. - P. 485-494.

132. Kahl G. Mechanismen des intrazellularren enzymabbaus // Naturwissenschaftliche Rundschau. -1981. Vol.32, No7. - P. 273-289.

133. Kamata H., Hirata H. Redox regulation of cellular signalling // Cell.Signal. 1999.-Vol. 11.-P. 1-14.

134. Kaul В., Staba E.F. Visnagis: biosynthesis and isolation from Ammi visnagi suspension culture // Science. 1965. - Vol. 150, № 24. - P. 1731-1732.

135. Kemp J., Sutton D.W. Protein metabolism in culture plant tissue.

136. Changes in the rate of protein synthesis, accumulation, and degradation in culturedpith tissue. // Plant. Physiol. 1972. - Vol. 49, No 4. - P. 596-601.

137. Kendall E.J., McKersie B.D. Free radical and freezing injury to cell membranes of winter wheat//Physiol. Plant. 1989. - Vol. 76. - P. 86-94.

138. Kim B-Y, Han M-J, Chung A-S. Effects of reactive oxygen species on proliferation of chineze hamster lung fibroblast (V79) cells // Free radical biology. -2001. Vol. 30, № 6. -P. 686-697.m

139. Kishor P.B.Kavi, Mehta A.R. Growth and metabolism in cotton and tobacco callus cultures //Proc. Indian. Acad. Sci. Plant Sci. 1988. - Vol. 98, No 4. - P. 277-282.

140. Komov V.P., Kirillova N.V., Samolin Yu.A., Vollosovich A.G. Biosynthesis and stability of some enzymes in the dynamics of the growth of R. serpentina // 20-th Meeting of FEBS. Hungary, 1990. - P. 285.

141. Laemlu U.K. Cleavage of structural proteins during the assembley of the head of the bacteriophage T4 //Nature. 1970. - Vol. 227. - P. 680-682.

142. Leski M.L., Bao F., Wu L. et al. Protein and DNA oxidation in spinal injury: neurofilaments-an oxidation target // Free radical biology. 2001. - Vol.30, № 6. - P.613-624.

143. Levine R.L., Garland D., Oliver C.N., Amici A., Climent J., Lenz A., Ahn В., Shaltiel S., Stadtman E.R. Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins // Meth. Enzymol. -1990. Vol. 186. - P. 464-478.

144. Leung S.M., Hightower L.E. A 16-kDa protein functions as a new regulatory protein for Hsp 70 molecular chaperone and is identified as a member of the Nm/23 nucleoside diphasphate kinase family// J. Biol. Chem. 1997. - Vol. 272.-P. 2607-2614.

145. Limam F., Chanhed K., Ouelhazi N., Grrir R., Ouelhazi L. Phytohormone regulation of isoperoxidases in Catharantus roseus suspention cultures // Phytochemistry. 1998. - Vol. 49, No 5. - P. 1219-1225.

146. Lowry O.H., Rosenhrough J., Farr A., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. -1951. Vol. 193, No 1.-P. 268-275.

147. Lu Y.T., Dharmasiri M.A., Harrington H.M. Characterization of a cDNA encoding a novel heat-shock protein that binds to calmodulin // Plant Physiol. 1995. - Vol. 108. - P. 1197-1202.

148. Maliga P. Plastid transformation in flowering plants // Trends biotechnol. 1993. - Vol. 11. - P. 101-106.

149. Misra H.P., Fridovich I. The univalent reduction of oxygen by reduced flevins and quinones // J. Biol.Chem. 1972. - Vol. 247, № 1. - P 188-192

150. Mohan Kumar G.N., Houtz R.L., Knowles N.R. Age-induced protein modification and increased proteolysis in Potato Seed-Tubers 1 // Plant Physiol. -1999.-Vol. 119.-P. 89-100.

151. Monroy A.F., Labbe E., Dhindsa RS. Low temperature perception in plants: Effects of cold on protein phosphorylation in cell-free extracts // FEBS Letters. 1997. - Vol. 410, No 2-3. - P. 206-209.

152. Morel G. La culture in vitro du meristeme apical de certaines Orchidees// C.R. Ac. Sc. -1963. Vol. 256. - P. 4955-4957.

153. Muriyasy Y. Examination of the contribution of vacuolar proteases to intracellular protein degradation in Chara corallina // Plant Physiol. 1995. - Vol. 109.-P. 1309-1315.

154. Nagai H., HasegawaK., Shimpo K. Reproductive study of rats intraperitoneally treated with carboxyethylgermanium sesquioxide (Ge-132) // Oyo Yacuri. 1980. Vol. 20, № 2. - P. 271-280.

155. Nover L., Hellmunnd D., Neuman D., Scharf K.-D., Serfling E. Heat shock response of eucaryotic cell // Biol. Zentrablatt. Band. 1984. - Vol. 103. -P. 357-435.

156. Ono K., Han J. The p38 signal transduction pathway: activation and function // Cell, signal. 2000. - Vol. 12. - P.l-13.

157. Panniers R.Translational control during heat shock // Biochemie. -1994. Vol. 76, № 8. - P. 737-747.

158. Parsell D.A., Lindquik S. Heat shock protein and stress tolerance// Biol. Heat Shock Proteins and Mol. Chaperones. Cold. Spring. Yarbobor. N.-Y., 1994.-P.457-494.

159. Pihakaskimaunsbach K., Griffith M., Antikainen M., Maunsbach A.B. Immunogold localization of glucanase-like antifreeze protein in cold acclimated winter rye // Protoplasma. 1996. - Vol. 191, No 3-4. - P. 115-125.

160. Pobezhimova Т., Grabelnych О., Kolesnichenko A., Voinikov V. The comparison of uncoupling activity of constituently synthesized and stress-induced forms of winter rye stress uncoupling protein CSP 310 // J. Therm. Biol. 2001. -Vol. 26,No 2.-P. 95-101.

161. Pool M.R., Lypez-Huertas E., Baker A. Characterization of intermediates in the process of plant peroxisomal protein import // EMBO J. -1998.-Vol. 17.-P. 6854-6862

162. Prassad Т.К., Anderson M.D., Martin B.A., Stewart C.R. Evidence for chilling-induced oxidative stress in maize seedlings and a regulatory role for hydrogen peroxide // Plant Cell. -1994. Vol. 6. - P.65-74.

163. Rechinger C. Untersuchungen uber die Grenzen der Teilbarkeit im Pflanzenreich // Abh. d. Zool. Bot. Ges. Wien. 1893. - Vol. 43. - S. 310-334.

164. Ryynanen L. Effect of abscisic acid, cold hardening and photoperiod on recovery of cryopreserved in vitro shoot tips of silver birch // Cryobiology. -1998.-Vol. 36, No 1. -P.32-39.

165. Sabehat A., Weiss D., Lurie S. The correlation between heat-schock protein accumulation and persistence and chilling tolerance in tomato fruit// Plant Cell. 1996. - Vol. 1. - P. 793-803.

166. Santos Ph., Chupeau Y. Penicillins and activity of nitrogen metabolism enzymes in plant tissue culture // Plant. Sci. 1989. - Vol. 59. No 1. -P. 119-125.

167. Sato T. Organic Germanium polymers as therapeutic agents. Pat. 55.167222 Jpn.(1980) // C.A. 1981. Vol. 94. - 185729 b.

168. Scandalios J.G. Molecular genetics of superoxide dismutase in plants // J.Scandalios, ed., Oxidative stress and the Molecular Biology of Antioxidant

169. Defenses. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor. N,-Y., 1997. -P.527-568.

170. Soto A., Allono I., Collada C., Guevara M.-A. et al. Heterologous expression of a plant small heat-schok protein enhances E. coli viability under heat and cold stress // Plant Physiol. 1999. - Vol. 120. - P.521-528.

171. Struglics A., Hakansson G. Purification of serine and histidine phosphorylated mitochondrial nucleoside diphosphate kinase from Pisum sativum // Eur. J. Biochem. -1999. Vol. 262. - P. 765-773.

172. Sun Y., Carnero N., Clore A.M., Moro G.L., Habben J.E., Larkins B.A. Characterization of maize elongation factor 1A and its relationship to protein quality in the endosperm // Plant Physiol. 1997. - Vol. 115. - P. 1101-1107.

173. Suzuki F., Aso H., Kobayashi H., Ohnishi Т., Ishida N. Antiviral effects of carboxyethylgermanium sesquioxide (Ge-132) in mice infected with a lethal dose of influenza virus // Chemotherapy. 1986. - V.34, № 6. - P. 488-494.

174. Tan B.C., Liang H.G. Changes in the metabolism of nucleic acidsЩduring the growth and senescence Tobacco callus // Plant. Physiol. -1991. Vol. 81, № 1. -P.121-126.

175. Teeri Т., Tormala T. Biotekniikka kasvinjalostuksessa ja kasvien lisayksessa // Luonnon. Futkija. 1990. - Vol. 94, No 1-2. - P. 43-49.

176. Tolmasoff J.M., Ono Т., Cutler R.G. Superoxide dismutase: correlation with life-span and specific metabolic rate in primate species // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1980. - Vol. 77, № 5. - P. 2777-2781.

177. Trewavas A. Determination of the rates of protein synthesis anddegradation in Lemna minor // Plant. Physiol. 1972. - Vol.49, No 1. - P. 4046.

178. Vierling E. The role of heat shock proteins in plants // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. -1991. Vol. 42. - P. 579-620.

179. Willekens H., Inze D., Van Montagu M., Van Camp W. Catalase in plants // Molecular Breeding. 1995. - Vol. 1. - P.207-228.

180. Yamashita Y., Ashihara H. Characterization of hexokinase from suspensioncultured Catharanthus roseus cells //Z. Naturforsch. 1988. - Vol. 43, No 11-12.-P. 827-834.

181. Young M.E., Keegstra K., Frochlich J.E. GTF promoters the formation of early-import intermediates but is not required during the translocation step of protein import into chloroplastsl // Plant Physiol. 1999. - Vol. 121. -P.237-244.

182. Zenk M.H., El-Shagi H., Arens H. et al. Formation of the ondole alkaloides serpentine and ajmalicine in cell suspension cultures of Catharanthus roseus // Plant tissue culture and its Bio-technological application. В.: N.-Y., 1977.-P.27-43.