Ауторегуляция стрессового ответа микроорганизмов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.03, доктор биологических наук Николаев, Юрий Александрович

• Николаев, Юрий Александрович
• доктор биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации доктор биологических наук Николаев, Юрий Александрович

ВВЕДЕНИЕ.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1. Определения - типы стрессов и стрессоры.

1.1 Признаки стресса у микроорганизмов.

1.2 Типы стрессоров (по способам поражения клетки).

2. Типы ответов микроорганизмов на стрессорные воздействия.

3. Механизмы и уровни адаптации.

3.1. Химический уровень.

3.2. Молекулярно-биологический и биохимический уровень.

3.2.1. Роль гроБ-регулона в защите клеток от стрессоров разной природы.

3.2.2. Роль белков теплового шока в защите от стрессоров разной природы.

3.2.3. Изменения на биохимическом уровне.

3.3. Клеточный уровень.

3.3.1. Образование покоящихся форм как экстремальный ответ на стрессорные воздействия.

3.3.2. Персистеры.

3.4. Популяционный уровень.

3.4.1. Явление диссоциации.

3.4.2. Биоплёнки.-.

3.5. Фазы и продолжительность адаптации.

4. Адаптации микроорганизмов к конкретным стрессорам.

4.1. Окислительный стресс.

4.2. Тепловой стресс (гипертермия).

4.3. Холодовой стресс.

4.4. Стресс голодания (истощения питательных веществ).

4.5. Осмотический стресс и повышенная солёность.

4.6. Воздействие нескольких стрессоров.

5. Коммуникация и стресс.

5.1. Феноменология и значение коммуникации.

5.2. Механический способ передачи информации.

5.3. Физический способ передачи информации.

5.4. Химический способ передачи информации (химическая коммуникация).

5.4.1. Ауторегуляторы развития миксобактерий.

5.4.2. Ауторегуляторы цитодифференцировки и синтеза вторичных метаболитов стрептомицетов. .

5.4.3. Плотностные регуляторы.

5.4.4. Двухкомпонеитные сигнальные системы.

5.4.5. Ауторегуляция стационарныхрегулонов грамполоэ/сительных бактерий.

5.4.6. Ауторегуляторные факторы й} и с12роста и клеточной дифференцировки микроорганизмов.

5.4.7. Ауторегуляторы адаптации к неблагоприятным условиям роста.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Ауторегуляция стрессового ответа микроорганизмов»

Актуальность. Проблема адаптации организмов к изменяющимся условиям окружения является одной из центральных в биологии. Наибольшей приспособляемостью к флук-туациям окружающей среды обладают микроорганизмы, исследованиям механизмов адаптации которых посвящено множество оригинальных работ и обзорных материалов [Хочачка, Сомеро, 1988; Henge-Aronis, 1993; Феофилова, 2003]. Основное внимание уделяется внутриклеточным событиям формирования стрессового ответа: экспрессии генов стрессовых регу-лонов (rpoS, oxyR, SOS-ответа, и др.) [Matin 1992; Hengge-Aronis and Loewen, 1994; Бут, 2005], биосинтезу ферментов, пигментов и метаболитов антиоксидантной защиты клетки [Davies, 1987; Меденцев с соавт., 2005; Октябрьский, Смирнова, 2007], механизмам репарации и стабилизации ДНК [Martinez, Kolter, 1997; Farewell et al., 1998; Головлёв, 1999], изменению в составе дыхательной цепи [Акименко, 1995; Меденцев с соавт., 1999; Jean et al., 2004; Бирюкова с соавт., 2008, 2009] переключению метаболических потоков на синтез стрессовых липидов, углеводов и белков, прежде всего «молекулярных шаперонов», контролирующих фолдинг и стабилизирующих макромолекулы белков [Меденцев с соавт., 2001; Causton et al., 2001; Феофилова, 1992, 2003; Головлев, 2003; Мельников, Ротанова, 2010].

С другой стороны, в последнее время получило признание представление о популяции микроорганизмов как о своеобразной многоклеточной системе, сущностным свойством которой является взаимодействие отдельных клеток, когда их согласованная деятельность направлена на достижение общего результата [Shapiro, Dworkin, 1997; Олескин с соавт., 2000; Волошин, Капрельянц, 2004]. Описан целый ряд примеров популяционного поведения, контролируемого низкомолекулярными внеклеточными микробными метаболитами-ауторегуляторалш (АР) [Aaronson, 1981]. Под внеклеточными ауторегуляторами понимают метаболиты, которые образуются всеми или частью клеток популяции, выделяются в окружающую среду и воздействуют на клетки популяции, вызывая их качественные изменения [Stephens, 1986; Хохлов, 1988]. Ауторегуляторы контролируют важные жизненные явления у микроорганизмов: биолюминесценцию у светящихся бактерий [Fuqua et al., 1994; Visick, McFall-Ngai, 2000]; морфогенез и продукцию антибиотиков у стрептомицетов [Хохлов, 1988]; синтез факторов вирулентности патогенными бактериями [Whiteley et al., 1999; Бухарин с соавт. 2005]; роение (swarming) бактерий [Shapiro, Dworkin, 1997]; автолиз, образование и прорастание покоящихся форм [Хохлов, 1988; Wirth et al., 1996; Dworkin, 1996; Sudo et al., 1997; Kaprelyants et al., 1999; Эль-Регистан с соавт., 1983; 1998; 2005]. Достижения в этой области биологии бактерий, сформировавшейся в самостоятельное направление — химическую экологию, отражены в ряде обзоров и монографий [Aaronson, 1981; Хохлов, 1988;

Shapiro, Dworkin, 1997; Барбье, 1987; Shapiro et al., 1997, 1998; Kaprelyantz et. al., 1999, 2005; Бухарин с соавт., 2005]. В исследовании АР выделяют три этапа: первый - их обнаружение в биотестах, специально разрабатываемых для каждого случая [Aaronson, 1981]. На этом этапе, как правило, используют культуральные жидкости, вытяжки из клеток и подобные субстанции. Разработка нового биотеста может приводить к обнаружению новых АР. На втором этапе производят выделение и идентификацию химических соединений, ответственных за биологические эффекты АР. На последнем этапе исследуют механизмы действия идентифицированных ауторегуляторов.

Среди многочисленных ауторегуляторов недостаточно исследованы те, которые имеют функции адаптогенов - веществ, контролирующих компенсаторно-приспособительные реакции микроорганизмов к стрессовым воздействиям и развитие культур в неоптимальных условиях роста.

К началу диссертационной работы (начало 1990х годов) лишь некоторые коллективы выполняли исследования, посвященные участию внеклеточных адаптогенов (ВА) в приспособлении бактерий к неблагоприятным условиям. Исследования ВА, как правило, не носили систематического характера. Вместе с тем адаптивный потенциал микроорганизмов, занимающих все возможные экологические ниши, предполагает наличие ауторегуляторного контроля систем адаптации к изменениям окружающих условий. Известны следующие внеклеточные ауторегуляторы, участвующие в развитии адаптивных реакций микроорганизмов: гомосеринлактоны и производные тетрагидрофурана некоторых морских вибрионов, способствуйте их адаптации к голоданию и ряду стрессоров [Srinivasan et al., 1998; McDougald et al., 2003; Mostertz et al., 2004; Krin et al., 2006]; протекторы белковой природы y Escherihia coli [Rowbury, Goodson, 2001]; осмопротекторы, содержащиеся в лизатах клеток галобакте-рий [Кокоева, Плакунов, 1993]; антимутагены молочнокислых бактерий белковой и небелковой природы [Воробьёва с соавт., 1993, 2005]; внеклеточные адаптогены тиобацилл, представленные аминокислотами [Пивоварова с соавт., 1991]. Однако, наличие приведённых примеров не давало целостной картины значимости участия внеклеточных адаптогенов в жизни микроорганизмов, их роль в стрессоадаптации оставалась малоисследованной. Отмеченная малоисследованность внеклеточных адаптогенов в совокупности с их определённым функциональным многообразием и наличием у микроорганизмов различных таксономических групп, а также высоким потенциалом практического применения обусловили актуальность изучения микробных внеклеточных адаптогенов - их обнаружение с применением биотестов (защитных эффектов при сублетальных и летальных воздействиях и развитии культур в неоптимальных условиях), определение химической природы, исследование механизмов действия.

Исследуя физиологию псевдомонад, автор обнаружил, что у них существенно выражена обратимая адгезия - первая фаза формирования биоплёнок, занимающих важное место в жизнедеятельности бактерий [Marshall, 1996; O'Toole et al., 2000], а также важных для биотехнологии и медицины [Ильина с соавт., 2004]. Возможность ауторегуляторного контроля обратимой адгезии бактерий и важность этого феномена для практической деятельности обусловили интерес к исследованию ауторегуляции обратимой адгезии бактерий в рамках настоящей работы.

При рассмотрении стрессоадаптации выделяют две группы приспособительных реакций активно развивающихся организмов - с изменением и без изменения стратегии жизни [Бухарин с соавт., 2005]. В первом случае организмы остаются в том же, хотя бы и менее активном, состоянии, продолжают развитие; во втором случае происходит смена стратегии жизни - как правило, переход от активного роста к переживанию. В этой связи интересна ситуация с исследованием ауторегуляторов образования покоящихся форм (ПФ), факторов dj, которые контролируют адаптивные реакции второго типа, связанные со сменой стратегии развития и переходом клеток в покоящееся состояние. Эти соединения представлены у ряда бактерий алкилоксибензолами (АОБ) [Эль-Регистан с соавт., 1980; Бухарин с соавг., 2005; Мулюкин, 2010]. Механизмы, посредством которых АОБ контролируют развитие анабиотического состояния ПФ заключаются в стабилизации клеточных мембран [Капрельянц с соавт., 1987], ингибировании активности ферментов [Колпаков с соавт., 2000], а также в индукции фенотипической диссоциации популяции, связанной с состоянием покоя [Ильинская с соавт., 2002]. Можно было ожидать участия АОБ в и стрессоадаптации первого типа - без изменения стратегии развития культур, т.е. в адаптации растущих культур к неблагоприятным физико-химическим условиям среды и смене условий развития. Представляло интерес исследовать феноменологию и механизмы стрессопротекторного действия АОБ на разных уровнях - молекулярном, клеточном, популяционном. Интерес к АОБ также обусловлен их широким распространением в мире растений и микроорганизмов [Kozubek, Tyman, 1999]; они могут быть также обнаружены в плазме крови человека в наномолярных концентрациях [Ross et al., 2010].

Исходя из вышеизложенного были сформулированы цель и задачи исследования.

Цель работы - исследовать закономерности ауторегуляции адаптации микроорганизмов к неблагоприятным и повреждающим воздействиям и изменениям условий роста: (1) феноменологию ауторегуляции адаптивных реакций, (2) химическую природу внеклеточных адаптогенов, (3) механизмы действия внеклеточных адаптогенов.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи.

Задачи исследования:

1. Изучить с помощью разработанных нами биотестов феноменологию участия внеклеточных адаптогенов в адаптации микроорганизмов про- и эукариот к стрессорным воздействиям различной природы.

2. Выявить функции внеклеточных адаптогенов в обратимой адгезии клеток бактерий как адаптивной реакции на стресс новой среды. Определить химическую природу внеклеточных адаптогенов, контролирующих обратимую адгезию клеток. Выяснить роль обратимой адгезии в стрессоустойчивости микроорганизмов.

3. Изучить роль алкилоксибензолов как внеклеточных адаптогенов микроорганизмов к сублетальным и летальным воздействиям стрессоров различной природы (тепловому, окислительному, осмотическому) в зависимости от структуры и концентрации алкилоксибензолов.

4. Исследовать механизмы действия алкилоксибензолов в: регуляции активности и стабильности ферментных белков, антиоксидантной защите клеток, активации генов стрессовых регулонов, а также контроле фенотипической вариабельности как адаптивном потенциале популяции.

Научная новизна работы.

С применением разработанных биотестов продемонстрирована способность микроорганизмов различных таксономических групп в процессе развития продуцировать специфические внеклеточные метаболиты - адаптогены, способствующие приспособлению микроорганизмов к неблагоприятным воздействиям или изменяющимся условиям существования. ВА контролируют компенсаторно-приспособительные реакции микроорганизмов как при стрессах, запрограммированных в цикле развития микробных культур (голодании, смене среды роста), так и при незапрограммированных стрессорных воздействиях разной природы (термическом, окислительном, осмотическом, токсическом). Ауторегуляция стрессового ответа имеет место при воздействиях разной интенсивности: рост-замедляющих, рост-прекращающих, летальных. Установлено, что ВА, имеющие различные функции, представлены соединениями разных классов - насыщенными углеводородами, липоциклопептидами, алкилоксибензолами, белками.

Впервые описаны феноменологически, выделены и идентифицированы внеклеточные адаптогены нового типа, контролирующие адгезивные свойства клеток в условиях стресса новой среды. Регуляторы адгезии представлены у Р. Аиогезсет н-алканами и протеазами, у В. ИсИет/огтгз - липоциклопептидом. Показано влияние физико-химических факторов на величину обратимой адгезии клеток. Доказана защитная функция обратимой адгезии клеток при воздействии стрессоров.

Установлена роль алкилоксибензолов как адаптогенов, защищающих клетки бактерий и дрожжей от стрессорных воздействий различной природы (теплового шока, у-облучения, фотоокисления). Выявлена адаптивная функция АОБ в обеспечении активного роста микроорганизмов при значениях температуры и рН, неоптимальных для роста и близких к границам толерантности. Обнаружено, что формирование стрессового ответа сопряжено с повышением биосинтеза АОБ. Показана зависимость адаптогенных эффектов АОБ от их структуры и концентрации. Механизм протекторного действия АОБ включает их функционирование как модификаторов белков, эффективных перехватчиков активных форм кислорода (АФК), включая синглетный кислород, активаторов экспрессии стрессовых оперонов (БОБ-ответа и гро^-регулона стационарной фазы). Доказана способность АОБ направленно модифицировать структуру ферментных белков, что приводит к изменению их каталитической активности и повышению операционной и функциональной стабильности. Короткоцепочечные АОБ (С7-АОБ) повышают активность ферментов в широком диапазоне концентраций, а длинно-цепочечные (С12-АОБ) - при низких концентрациях повышают активность, а при более высоких - ингибируют её. Повышение каталитической активности определяется возрастанием амплитуд равновесных флуктуаций атомов в белковой глобуле, отражающей возрастание конформационной (междоменной) подвижности белковой глобулы. Показана антиоксидант-ная активность АОБ, продукты окисления частично идентифицированы; они сохраняют ан-тиоксидантные свойства и способность модифицировать белки, действуя при меньших концентрациях, чем нативные АОБ.

Обнаружено концентрационное влияние длинноцепочечных АОБ на изменение попу-ляционного спектра бактериальных культур как способ реализации их адаптивного потенциала.

Доказанная видонеспецифичность внеклеточных адаптогенов может обеспечивать их адаптогенные функции на уровне сообщества.

Полученные результаты существенно расширяют современные знания о биологии мик-^ роорганизмов в области саморегуляции стрессового ответа и приспособлении микробных популяций к новым или неблагоприятным условиям окружения. На их основе сформулировано положение о системе внеклеточных адаптогенов микроорганизмов: «Микроорганизмы обладают системой ауторегуляции адаптации к неблагоприятным факторам среды разной природы и интенсивности. Эта система включает внеклеточные метаболиты - адаптогены, оказывающие действие на генном, молекулярном, клеточном и популяционном уровнях». Предлагается считать внеклеточные адаптогены самостоятельной группой биологически активных веществ, функция которых - контроль адаптации микробной популяции к неблагоприятным факторам окружающей среды или новым условиям роста.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Микроорганизмы различных таксономических групп обладают способностью синтезировать специфические метаболиты - внеклеточные адаптогены (ВА), функцией которых является регуляция эффективности компенсаторно-приспособительных реакций, обеспечивающих адаптацию микробных популяций к изменяющимся или неблагоприятным условиям окружения.

2. Стрессы, запрограммированные в циклах развития микробных культур, и стрессорные воздействия окружающей среды, являются факторами, стимулирующими биосинтез микробных адаптогенов.

3. Обратимая адгезия клеток суспензионных культур является формой их адаптации к стрессорам разной природы. Ауторегуляторы адгезии концентрационно контролируют переходы между стадиями обратимой адгезии и планктонного существования.

4. Микробные алкилоксибензолы могут обладать функциями адаптогенов. Защитные эффекты АОБ в зависимости от их химической структуры реализуются как протекция клеток микроорганизмов от повреждающих воздействий или как сигнал тревоги для мобилизации защитных ресурсов клеток. Функции АОБ как сигналов тревоги опосредуются через контроль экспрессии генов стрессовых регулонов. Механизм протекторного действия АОБ включает их функционирование как структурных модификаторов ферментных белков, а также как антиоксидантов.

Фенотипическая диссоциация популяции, составляющая её адаптивный потенциал, регулируется алкилоксибензолами, которые контролируют развитие определённого варианта.

Практическая значимость и реализация результатов работы.

1. Полученные в работе результаты могут быть использованы для разработки эффективных способов направленной регуляции роста промышленных штаммов и сообществ микроорганизмов и повышения биосинтеза биологически активных веществ; способов антиок-сидантной защиты про- и эукариотных организмов; для совершенствования методов борьбы с микробной контаминацией и биообрастаниями. Регуляторы адгезии могут быть использованы для предупреждения образования биопленок и при создании средств защиты материалов.

2. На основе природных АОБ и их химических производных разработаны способы: (а) стабилизации и направленного изменения активности ферментных белков; (б) ингибирования ферментативной и микробной активности в бродильных производствах с целью консервации продукта, в частности при производстве пива, кумыса, кваса, молочнокислых продуктов; (в) защиты материалов от биоповреждений. На основе материалов диссертации получены патенты РФ (RU № 02329300 от 26.12.2006 и RU № 2400069 от 11.06.09), подготовлены и поданы 4 заявки на патенты РФ (№ 2009109569 от 17.03.09; №> 2009134293 от 15.09.09; № 2010108915 от 11.03.10; №2010108916 от 11.03.10).

3. На основе информации о структуре и механизмах действия АОБ созданы: (1) серия биоцидных препаратов ИНМИОЛ, предназначенных для защиты материалов от биоповреждений и (2) серия препаратов СИДОВИТ для обработки семян и посевов с целью защиты от фитопатогенной микрофлоры, повышения урожайности, всхожести, лёжкости зерна и его технологических свойств. Препараты ИНМИОЛ и СИДОВИТ успешно испытаны в полевых условиях, что подтверждено соответствующими актами.

4. Часть материалов диссертации включена в курс «Промышленная микробиология», читаемый на кафедре микробиологии МГУ им. М.В. Ломоносова, а также вошла в учебное пособие «Основы динамической биохимии» (Плакунов, Николаев, 2010).

Апробация работы. Основные результаты работы были представлены в виде устных или стендовых сообщений и обсуждались на: Int. Symp. on Bacteriology and Appl. Microbiology, Paris, 2002; Int. Symp. on Subsurface Microbiology, Copenhagen, 2002; Всероссийской научно-технической конференции-выставке «Высокоэффективные пищевые технологии, методы и средства их реализации», Москва, 2003; Втором Московском Международном Конгрессе «БИОТЕХНОЛОГИЯ: состояние и перспективы развития», Москва, 2003; 35th COSPAR Scientific assembly, Paris, France, 2004; Второй международной конференции «Микробное разнообразие: состояние, стратегия сохранения, биологический потенциал, Пермь-Казань-Пермь, 2005; 15th IUPAB and 5th EBSA International Biophysics Congress, 2005, Montpellier, France; Всероссийской молодёжной школе-конференции «Актуальные аспекты современной микробиологии», Москва, 2005; Пятой Национальной конференции по применению рентгеновского, синхротронного излучений, нейтронов и электронов для исследования наноматериалов и наносистем (РСНЭ НАНО-2005), Москва, 2005; Конференции «Коммуникация у бактерий», Москва, 2005; Третьей научно-практической конференции "МЕД-БИОТЕК", Москва, 2006.; VI национальной конференции по применению рентгеновского, синхротронного излучений, нейтронов и электронов для исследования материалов, Москва, 2007; Всероссийской конференции с международным участием «Фундаментальные и прикладные аспекты исследования симбиотических систем», Саратов, 2007; Международной научно-практической конференции «Биотехнология. Вода и пищевые продукты», Москва, 2008.

Место выполнения работы и личный вклад соискателя. Основная часть работы выполнена в Институте микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН, в лабораториях классификации и хранения уникальных микроорганизмов (зав. лаб. чл.-корр. РАН В.Ф. Гальченко), нефтяной микробиологии (зав. лаб. д.б.н. С.С. Беляев), почвенной микробиологии (зав. лаб. д.б.н. Н.С. Паников). Часть результатов получена при выполнении' совместных работ с Институтом химической физики им. Н.Н.Семёнова РАН (д.ф.н. Ю.Ф. Крупянский), кафедрами микробиологии и биофизики МГУ им. М.В. Ломоносова (д.б.н. Л.И. Воробьева, к.б.н. М.Г. Страховская), Московским государственным университетом пищевых производств (д.т.н. М.В. Гернет, к.б.н. Е.Ф. Шаненко, асп. И.А. Конаныхина), Институтом биоорганической химии РАН (д.х.н. |С.Г.Батраков|), Российским химико-технологическим университетом им.

Д.И. Менделеева (д.б.н. [И.А. Крылов|, асп. С.С. Хабибулин), Российским государственным аграрным университетом - МСХА им К.А. Тимирязева (к.б.н. Т.И. Шатилова), Казанским институтом биохимии и биофизики Казанского НЦ РАН (к.б.н. Ю.В. Гоголев), Институтом клеточного и внутриклеточного симбиоза УРО РАН г. Оренбург (чл.-корр. РАН О.В. Бухарин, д.б.н. Н.В. Немцова, к.б.н. Н.Б. Перунова), Институтом биохимии и физиологии микроорганизмов РАН (д.б.н. В.И. Дуда, к.б.н. Н.Е. Сузина), ГНИИ генетики и селекции промышленных микроорганизмов (д.б.н. A.C. Миронов, к.б.н. Т.А. Воейкова). Часть работы выполнена во время стажировки автора в университете г. Абердин, Великобритания.

Личный вклад соискателя состоял в планировании и проведении исследований, анализе и обобщении полученных результатов, их оформлении для публикаций.

Публикации: По теме диссертации опубликовано 60 работ, в том числе 35 экспериментальных статей и 5 обзоров в печатных изданиях, рекомендованных ВАК, 1 учебное пособие (монография), 13 тезисов конференций, 2 патента РФ, 4 заявки на патенты РФ.

Структура и объём диссертации. Диссертация состоит из разделов: введение, обзор литературы, экспериментальная часть (материалы и методы исследования, результаты и обсуждение), практическое значение, заключение, выводы, список литературы, приложения; изложена на 351 стр., содержит 105 рисунков, 42 таблицы. Список литературы включает 642 работ, в том числе 437 на английском языке.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Николаев, Юрий Александрович

выводы

1. Установлено, что в стрессовых условиях микроорганизмы как про-, так и эукариоты (в частности, представители pp. Bacillus, Micrococcus, Pseudomonas, Escherichia, Candida) синтезируют внеклеточные метаболиты, способствующие адаптации микроорганизмов к тому же самому или другим типам стрессорных воздействий. Внеклеточные адаптогены имеют видонеспецифичный и дозозависимый характер действия и представлены соединениями различной химической природы с различными механизмами действия.

2. Синтез внеклеточных адаптогенов стимулируется стрессорными воздействиями разной природы и разной интенсивности, как запланированными в цикле развития культур (стресс новой среды), так и неблагоприятными факторами окружающей среды (воздействием токсикантов, экстремальными значениями температуры, pH, солёности и др.).

3. Доказана адаптогенная функция обратимой адгезии как ответа планктонных популяций бактерий на стресс новой среды и условия, не благоприятствующие росту (повышенные температура, концентрации NaCl, Ca и др.). В состоянии обратимой адгезии микроорганизмы более устойчивы к стрессорным воздействиям.

4. Обнаружен новый тип внеклеточных адаптогенов бактерий - ингибиторы бактериальной адгезии, которые концентрационно регулируют как стадию прилипания клеток к поверхности, так и стадию обратного их перехода к планктонному существованию. Антиадге-зины идентифицированы как липоциклопептиды (у B.licheniformis), а также смесь н-алканов (С21-С33) и белков с протеолитической активностью (у P.fluorescens).

5. Установлено, что микробные алкилоксибензолы могут обладать функциями адаптогенов, защитные эффекты которых при стрессорных воздействиях и в зависимости от их химической структуры и концентрации реализуются как: (1) протекция микроорганизмов от повреждающих воздействий (короткоцепочечные алкилоксибензолы) или (2) сигнал для мобилизации защитных ресурсов клетки (длинноцепочечные алкилоксибензолы). Выявлено адаптогенное действие короткоцепочечных алкилоксибензолов при развитии культур микроорганизмов в неоптимальных для роста условиях. Адаптогенный эффект АОБ максимально выражен при дозах стрессора (pH, соленость), приближающихся к границам толерантности для вида.

6. Установлена способность АОБ в зависимости от их структуры и концентрации направленно модифицировать структуру ферментных белков, что обусловливает стимуляцию или ингибирование каталитической активности одновременно с повышением их функциональной и операционной стабильности.

7. Обнаружена способность АОБ в зависимости от их структуры регулировать экспрессию стрессовых генов - SOS-ответа и гро£-регулона стационарной фазы, обусловливая протекторный эффект (короткоцепочечные АОБ) или функционируя как сигналы тревоги (длинноцепочечные АОБ) для реализации защитных ресурсов клеток, активируя экспрессию стрессовых генов.

8. Установлена способность длинноцепочечных АОБ концентрационно контролировать диссоциативную способность бактериальных культур, составляющую адаптивный потенциал популяции, обеспечивая стабильность развития определенного варианта или индуцируя диссоциативные переходы.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Настоящая работа развивалась по этапам логического пути, свойственного для исследования внеклеточных ауторегуляторов: 1) первоначально выявляют биологические функции новых внеклеточных адаптогенов или находят новые свойства у ранее известных ауторегуляторов с использованием биотестов; 2) затем проводится химическая идентификация внеклеточных адаптогенов, описанных на основании биотестов; 3) на третьем этапе исследуют механизмы действия адаптогенов с использованием выделенных химически чистых адаптогенов или их аналогов; и, наконец, результаты исследования могут найти прикладное значение. Важно подчеркнуть, что изучение АР невозможно без использования биотестов, специальных экспериментальных систем, использующих те или иные организмы в определённых условиях. Не будет преувеличением сказать, что новый биотест может привести к обнаружению нового АР или новой функции у ранее известного АР. Наши исследования развивались по указанным трем направлениям и были успешно развиты в практическом аспекте.

Полученные в ходе выполнения работы данные продемонстрировали способность микроорганизмов различных таксономических групп в процессе развития их культур продуцировать специфические внеклеточные метаболиты - адаптогены (ВА), способствующие приспособлению микроорганизмов к неблагоприятным воздействиям или изменяющимся условиям существования, в том числе — к повышению жизнеспособности клеток. ВА концентрационно контролируют компенсаторно-приспособительные реакции микроорганизмов как при стрессах, запрограммированных в цикле развития микробных культур (голодания, смены среды роста, исчерпания жизненного пространства), так и при незапро-граммированных стрессорных воздействиях разной природы (термальном, окислительном, осмотическом, токсическом). Ауторегуляция стрессового ответа имеет место при воздействиях разной интенсивности: рост-замедляющих, рост-прекращающих, летальных. ВА, имеющие различные функции, представлены соединениями разных классов - насыщенными углеводородами, липоциклопептидами, алкилоксибензолами, белками, летучими соединениями. При этом ВА разной природы могут оказывать схожее действие - так, антиадгезинами псевдомонад являются протеазы и н-алканы, а ВА с антиоксидантными свойствами могут быть представлены АОБ (наши данные) или ЭН-содержащими соединениями (литературные данные).

Алкилоксибензолы и ряд неидентифицированных ВА бактерий являются видонеспе-цифичными, что обеспечивает их адаптогенные функции на уровне сообществ. Прямое перекрёстное действие ВА было продемонстрировано для бактерий, дрожжей и водорослей.

Внеклеточные антиадгезины, ВА нового типа, контролирующие адгезию клеток, впервые описаны феноменологически, выделены и идентифицированы. Обратимая адгезия клеток усиливается в неоптимальных условиях роста и при перенесении в новую среду. Обратимая адгезия защищает клетки от воздействия стрессоров (окислителя ЫЕМ). Регуляторы адгезии Р. Аиогезсет и В. \icheniformis были идентифицированы как н-алканы и протеазы (Р. АиогеБсет) и липоциклопептид (В. Нскет/огпш).

На примере одного из типов ВА, алкилоксибензолов, детально исследованы феноменология и механизмы протекторного антистрессорного действия на молекулярном, генетическом и популяционном уровнях.

Алкилоксибензолы защищают клетки бактерий и дрожжей от стрессорных воздействий различной природы (теплового шока, у-облучения, фотоокисления), а также расширяют температурный и рН-диапазоны активного роста. В ходе стрессового ответа происходит повышение биосинтеза АОБ, аналогично некоторым из неидентифицированных ВА Е.соИ, В.яиЫШБ и Р.Аиогезсет. Адаптогенные эффекты АОБ зависят от их структуры и концентрации. Механизм протекторного действия АОБ на молекулярном уровне включает их функционирование как модификаторов белков и как эффективных перехватчиков активных форм кислорода (АФК), включая синглетный кислород.

Связывание АОБ с ферментными белками приводит к изменению их каталитической активности и повышению операционной и функциональной стабильности. Короткоцепо-чечные АОБ (С7-АОБ, метилрезорцин) повышают активность ферментов в широком диапазоне концентраций, а длинноцепочечные (С12-АОБ, гексилрезорцин) - при низких концентрациях повышают активность, а при более высоких - ингибируют её. Повышение каталитической активности определяется повышением конформационной (междоменной) подвижности, особенно в присутствии С7-АОБ. Обнаруженное противоречие между экспериментально наблюдаемым повышением функциональной стабильности ферментов и снижением их структурной стабильности требует своего разрешения в будущих работах.

При функционировании АОБ как ловушек АФК происходит их многостадийное окисление. Продукты окисления частично идентифицированы, они, как и нативные АОБ, проявляют антиоксидантные свойства и способны к модификации активности и стабильности белков, причём являются более активными модификаторами, чем исходные АОБ.

АОБ влияют на популяционный спектр бактериальных культур, что способствует реализации их адаптивного потенциала в стрессовых условиях и новых условиях жизни. Показана мутагенная активность длинноцепочечных АОБ и её корреляция с интенсивностью диссоциативных переходов. Протекторное или стресс-потенцирующее действие различных гомологов АОБ определяется их различным действием на активность экспрессии стрессовых регулонов: SOS — ответа и rpoS - регулона.

Анализируя феноменологию действия описанных в настоящем исследовании ВА в совокупности с их химической природой и физико-химическими свойствами, а также привлекая данные литературы (табл. 2), по механизму действия можно выделить следующие типы внеклеточных микробных адаптогенов:

1) индукторов защитных механизмов клетки, действие которых проявляется после известного лаг-периода;

2) протекторов прямого действия, участвующих в стабилизации субклеточных структур, действующих без лаг-периода;

3) регуляторов эффективности защитных реакций клеток, например, адгезии;

4) нейтрализующего действия, в том числе с десмутагенной и антиоксидантной активностью.

Индукция — один из наиболее изученных типов действия адаптогенов, когда они в ответ на стрессорное воздействие инициируют включение или стимулируют развитие защитных или приспособительных реакций организма. Как правило, под индукцией понимают появление нового белка (белков) или существенную стимуляцию его (их) синтеза, и этот феномен хорошо исследован [Бут, 2005]. Подобным действием из описанных выше ВА обладают факторы адаптации к новой среде и Хц, длинноцепочечные АОБ (гл. 3), а также многие из описанных в литературе В А [Бут, 2005; Rowbury at al, 1998, 1999, 2000, 2001]. Одним из сущностных свойств адаптогенов-индукторов является необходимость времени на развитие ответа после их воздействия.

Другой тип действия ВА, более быстрый, адаптация с участием протекторов. Протекторным действием обладают внеклеточные метаболиты, которые непосредственно посредством физико-химических взаимодействий с клеточными структурами и макромолекулами осуществляют их стабилизацию от повреждающих воздействий. Так действуют осмопротекторы глицин-бетаин, эктоин [Welsh, 2000], алкилоксибензолы. Возможно, таким механизмом действия обладает и описанный фактор Xi E.coli, В. subtilis и Р. fluorescens. В экстремальных ситуациях протекторы играют важную защитную роль, поскольку они действуют гораздо быстрее, по сравнению с индуцибельными системами защиты, включающими рецепцию и трансдукцию сигнала с последующей экспрессией соответствующих функциональных белков. Протекторы обеспечивают быструю гибкую адаптацию, тогда как индукторы - долговременную, и, действующую в более жестких стрессовых ситуациях. Обе системы защиты дополняют друг друга.

Некоторые из рассмотренных выше ВА, такие как низкомолекулярные алкилокси-бензолы, фактор Хь обнаруживший антиоксидантные свойства, десмутагены пропионово-кислых бактерий [Воробьева с соавт., 1993; Воробьева, Абилев, 2002], низкомолекулярные метаболиты тиобацилл, снижающие токсическое действие Мо6+ [Пивоварова с соавт., 1991] и некоторые другие, относятся к факторам нейтрализующего действия. По молекулярному механизму действия они принципиально отличаются от протекторов: протекторы предотвращают повреждающее действие стрессорных факторов за счет связывания с субклеточными структурами и биополимерами и их стабилизации. Нейтрализаторы обезвреживают молекулы самого стрессора, как правило, химической природы, до его контакта с клеткой.

И, наконец, к последней группе адаптогенов - регуляторам (не индукторам и не протекторам) относятся микробные внеклеточные метаболиты, контролирующие адгезию псевдомонад и бацилл, которые влияют («оказывают эффект») на адгезионные и когези-онные свойства клеток, что приводит к смене места их локализации.

Некоторые ВА оказывают одновременно несколько эффектов, являясь, таким образом, полимодальными по механизму действия (множественного действия). К таким адап-тогенам относятся АОБ, обладающие свойствами нейтрализаторов-антиоксидантов, протекторов-стабилизаторов макромолекул и клеточных мембран, а длинноцепочечные АОБ -также и индукторами.

Таким образом, полученные при выполнении работы результаты демонстрируют способность микроорганизмов различных таксономических групп образовывать специфические внеклеточные метаболиты - адаптогены, способствующие приспособлению микроорганизмов к неблагоприятным воздействиям физической или химической природы или изменяющимся условиям существования. ВА участвуют в адаптации микроорганизмов как при стрессах, запрограммированных в цикле развития микробных культур (голодания, смены среды роста, исчерпания жизненного пространства), так и при незапрограммиро-ванных стрессорных воздействиях разной природы (термальном, окислительном, осмотическом, токсическом). Ауторегуляция стрессового ответа имеет место при воздействиях разной интенсивности: рост-замедляющих, рост-прекращающих, летальных.

ВА, имеющие различные функции, представлены соединениями разной химической природы - насыщенными углеводородами, липоциклопептидами, алкилоксибензолами, белками, летучими соединениями (табл. 2). При этом ВА разной природы могут оказывать схожее действие. Так, антиадгезинами псевдомонад являются протеазы и н-алканы и не-идентифицированные летучие компоненты, а ВА с антиоксидантными свойствами могут быть представлены АОБ (гл. 3) или БН-содержащими соединениями [Воробьёва с соавт., 1995; Октябрьский, Смирнова, 2007].

Важно, что внеклеточные адаптогены бактерий являются видонеспецифичными, что обеспечивает их адаптогенные функции на уровне сообщества. Прямое перекрёстное действие ВА было продемонстрировано для бактерий, дрожжей и водорослей.

Обнаружение схожих (или одинаковых) по выполняемой функции внеклеточных адаптогенов к стрессам у систематически разных микроорганизмов позволяет считать их наличие важным биологическим феноменом, наряду с внеклеточными - ауторегуляторами других типов - гомосеринлактонами [Б^иа е1 а1., 1994; Л^юк, МсРа11-^а1, 2000], факторами морфогенеза и продукции антибиотиков у стрептомицетов [Хохлов, 1988]; факторами дифференцировки бактерий [Бухарин с соавт., 2005], регуляторами реактивации покоящихся форм бактерий [КаргеИуаМг е! а1., 2005] и другими [Волошин, Капрельянц, 2004].

Относительно АОБ можно заключить, что они являются полимодальными универсальными микробными внеклеточными адаптогенами, а с учетом их высокого содержания в растениях — адаптогенами более высокоорганизованных систем. Они обнаружены у широкого круга объектов (микроорганизмы, растения), действуют на микроорганизмы разных таксономических групп (бактерии, грибы). Их адаптогенное действие проявляется на всех уровнях организации живой материи - физическом (молекулярном), молекулярно-генетическом, клеточном, популяционном.

Полученные результаты существенно расширяют современные знания о биологии микроорганизмов в области саморегуляции стрессового ответа и приспособлении популяций к новым или неблагоприятным условиям окружения. На их основе сформировано представление о внеклеточных адаптогенах, как о биологически активных веществах, выделяемых в отдельную группу на основе их биологической функции — контроля адаптации микробной популяции к неблагоприятным факторам окружающей среды или новым условиям роста. Внеклеточные адаптогены представлены соединениями разной химической природы - алкилоксибензолами, белками, гликопротеинами, липопептидами, насыщенными углеводородами, гомосеринлактонами, рядом низкомолекулярных метаболитов (аминокислоты, органические кислоты, нуклеотиды и др.). Значительная их часть к настоящему времени не идентифицирована (табл. 42). Из известных 26 примеров внеклеточных адаптогенов в настоящей работе исследованы 9.

На основе результатов настоящей работы может сформулирована концепция внеклеточных адаптогенов микроорганизмов: «Микроорганизмы обладают специфической системой ауторегуляции адаптации к неблагоприятным факторам среды разной природы и интенсивности. Эта система включает внеклеточные метаболиты-адаптогены разной природы, оказывающие действие на генетическом, молекулярном, клеточном и популяцион-ном уровнях».

В зависимости от силы стрессора в стрессоадаптации принимают участие различающиеся по механизмам действия внеклеточные адаптогены: протекторы и нейтрализующего действия - при минимальных стрессовых воздействиях, приводящих к замедлению роста, эффекторы (например, регуляторы адгезии) - при нарастании степени негативного действия; индукторы (термин применён в широком смысле значения) - на границе толерантности для вида, т.е. в рост-останавливающих условиях; регуляторы образования покоящихся форм и фенотипической диссоциации - при воздействиях, выходящих за пределы толерантности для вида, т.е. в условиях начинающейся гибели клеток (рис. 105).

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Николаев, Юрий Александрович, 2011 год

1. Aaronson S. Chemical communication at the microbial level. CRC Press Inc., Boca Raton. 1981. V.l,2.

2. Aburatani S., Horimoto K. Elucidation of the relationships between LexA-regulated genes in the SOS response // Genome Inform. 2005. VЛ6. № l. p. 95 105.

3. Acs L. Uber die mitogenetische Strahlung der Bacterien // Centr. f. Bact. I Abt. Orig. 1931. V.120. P.116.

4. Aersten A., Michielis C.W. Mrr investigates the SOS response after high pressure stress in Escherichia coli // Mol. Microbiol. 2005. V. 58 (5). P. 1381-1391.

5. Aldea M., Hernandezchico C., Delacampa A.G., Kushner S.R., Vicente M. Identification, cloning, and expression of bolA, an fisZ-dependent morphogene of Escherichia coli // J. Bacteriol. 1988. V. 170. № 11. P. 5169-5176.

6. Allan V.J.M., Callow M.F., Macaskie L.E., Paterson-Beedle M. Effect of nutrient limitation and phosphate activity of Citrobacter sp. // Microbiology. 2002. V. 148. P. 277-288.

7. Alloing G., Martin В., Granadel С., Claveris J.P. Development of competence in Streptococcus pneumoniae: pheromone autoinduction and control of quorum-sensing by the oligopeptide permease // Mol. Microbiol. 1998. V. 21. № 1. P. 75-83.

8. Alper, S., Dufour A., Garsin D.A., Duncan L., Losick R. Role of adenosine nucleotides in the regulation of a stress-response transcription factor in Bacillus subtilis // J. Mol. Biol. 1996. V. 165Л 77.

9. Anderl J.N., Franklin M.J., Stewart P.S. Role of antibiotic penetration limitation in Klebsiella pneumoniae biofilm resistance to ampicillin and ciprpfloxacin // Antimicrob. Agents and Chemother. 2000. V. 44. № 7. P.l818-1824.

10. Anson M. L. The estimation of pepsin, trypsin, papain and catepsin with hemoglobin // J. Gen. Physiol. 1938. V. 22. P. 79-82.

11. Arakawa Т., Ejima D., Kita Y, Tsumoto K. Small molecule pharmacological chaperones: From thermodynamic stabilization to pharmaceutical drugs. // Biochim Biophys Acta. 2006. V. 1764. №11. P. 1677-1687.

12. Atlung Т., Hansen F.G. Low-temperature-induced DnaA protein synthesis does not change initiation mass in Escherichia coli K-12 // J. Bacteriol. 1999. V. 181. № 18. P.5557-5562.

13. Azachi M., Sadka A., Fisher M., Goldshlag P., Gokhman I., Zamir A. Salt induction of fatty acid elongase and membrane lipid modifications in the extreme halotolerant alga Dunaliella salina // Plant Physiol. 2002. Vol. 129. P. 1320-1329.

14. Azam T.A., Ishihama A. Twelve species of the nucleoid-associated protein from Escherichia coli (Sequence recognition specificity and binding affinity) // J. Biol. Chem. 1999. V. 274. №46. P. 33105-33113.

15. Azam T.A., Iwata A., Nishimura A., Ueda S., Ishihama A. Growth phase-dependent variation in protein composition of the Escherichia coli nucleoid // J. Bacteriol. 1999. V. 181. № 20. P. 6361-6370.

16. Bacteria as multicellular organisms. // Eds. D.A. Shapiro, M. Dworkin. N-Y.: Oxford Univ. Press. 1997. 456 p.

17. Balaban N.Q., Merrin J., Chait R., Kowalik L., Leibler S. Bacterial persistence as a pheno-typic switch//Science. 2004. V. 305(5690). P. 1622-1625.

18. Bam N.B., Cleland J.L., Randolph T.W. Molten globule intermediate of recombinant growth hormone stabilization with surfactants // Biotechnol. Prog. 1996. V.12. №6. P. 809801.

19. Bandow J.E., Hecker M. Proteomic profiling of cellular stresses in Bacillus subtilis reveals cellular networks and assists in elucidating antibiotic mechanisms of action. Prog. Drug Res. 2007. V.64. No 79. P. 81-101.

20. Bansal T., Englert D., Lee J., Hedge M., Wood T.K., Jayaraman A. Differential effects of epinephrine, norepinephrine and indole on Escherichia coli 0157:H7 chemotaxis, colonization and gene expression // Infect. Immun. 2007. V.75. P. 4597-4607.

21. Barnard A.M., Bowden S.D., Burr T., Coulthurst S.J., Monson R.E., Salmond G.P. Quorum sensing, virulence and secondary metabolite production in plant soft-rotting bacteria. Philos. Trans. R. Soc. Lond. Biol. Sci. 2007. V. 362. No 1483. P. 1165-1183.

22. Baron M.A. Uber mitogenetische Strahlung bei Protisten.// Roux' Archiv. 1926. V. 108. P. 617.

23. Bassler B.L., Wright M., Showalter R.E., Silverman, M.R. Intercellular signalling in Vibrio harveyi: sequence and function of genes regulating expression of luminescence // Mol. Microbiol. 1993. V. 9. P. 773-786.

24. Bassler B.L., Wright M., Silverman M.R. Multiple signalling systems controlling expression of luminescence in Vibrio harveyi: sequence and function of genes encoding a second sensory pathway//Mol. Microbiol. 1994a. V. 13. P. 273-286.

25. Bassler B.L., Wright M., Silverman. M.R. Sequence and function of LuxO, a negative regulator of luminescence in Vibrio harveyi // Mol. Microbiol. 19946. V. 12. P.403-412.

26. Benov L., Fridovich I. Superoxide dismutase protects against aerobic heat shock in Escherichia coli // J. Bacteriol. 1995. V. 177. № 11. P. 3344-3346.

27. Bhamre S., Gadea B.B., Koyama C.A., White S.J., Fowler R.G. Anaerobic recA-, umuC-dependent pathway of spontaneous base-pair substitution mutagenesis in Escherichia coli II Mutat. Res. 2001. V. 473. P. 229-247.

28. Biebl H., Schwab-Hanisch H., Sproer C., Lunsdorf H. Propionispora vibrioides, nov. gen., nov. sp., a new gram-negative, spore-forming anaerobe that ferments sugar alcohols // Arch. Microbiol.2000. V. 174. P. 239-247

29. Bigger J.W. Treatment of staphylococcal infections with penicillin//Lancet. 1944. V. 11. P. 497-500.

30. Biophoton emission. Multi-author review//Experientia. 1988.V.44. No7. P. 543-630.

31. Biophotonics and coherent systems in biology. Eds. Beloussov L.V., Voeikov V.L., Mar-tynyuk V.S. Springer. N-Y. 2007.

32. Bisset K. A. Bacteria. 1952. E. & S. Livingstone Ltd. Edinburgh, Scotland.

33. Blomberg L., Henriksson A., Conway P.L. Inhibition of adhesion of 1 Escherichia coli 0 K88 to piglet ileal mucus by 1 Lactobacillus 0 spp.// Appl.Environ.Microbiol. 1993. V.59. No l.P. 34-39.

34. Böckelman U., Szewzyk U., Grohmann E. A new enzymatic method for the detachment of particle associated soil bacteria// J. Microbiol. Meth. 2003. V. 55. P. 201-211.

35. Bos R., van der Mei H.C., Busscher H.J. Physico-chemistry of initial microbial adhesive interactions its mechanisms and methods for study // FEMS Microbiol. Rev. 1999. V. 23.P. 179-230.

36. Bose S., Dutko J.A., Zitomer R.S. Genetic factors that regulate the attenuation of the general stress response of yeast // Genetics. 2005. V. 169. P. 1215-1226.

37. Boucher S., Klauck E., Fischer D., Lucassen M., Jung K., Hengge-Aronis R. Regulation of RssB-dependent proteolysis in Escherichia coli: a role for acetyl phosphate in a response regulator-controlled process // Mol. Microbiol. 1998. V. 27. P. 787-795.

38. Bowden M.G., Kaplan H.B. The Myxococcus xanthus lipopolysaccharide O-antigen is required for social motility and multicellular development // Mol. Microbiol. 1998. V. 30. № 2. P. 275-284.

39. Boyd A., Chakrabarty A.M. Role of alginate liase in cell detachment of Pseudomonas aeruginosa. //Appl. Environ, microbiol. 1994. V.60. P. 2355-2359.

40. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding// Analyt. Biochem. 1976. V. 72. P. 248-254.

41. Brand S. S., Vik A,, Friedman L., Kolter R. Biofilms: the matrix revisited// Trends Microbiol. 2005. V. 13. P. 20-26.

42. Brandi A., Pietroni P., Gualerzi C.O., Pon C.L. Post-transcriptional regulation of CspA expression in Escherichia coli // Mol. Microbiol. 1996. V. 19. № 2. P. 231-240.

43. Brandi A., Pon C.L., Gualerzi C.O. Interaction of the main cold shock protein CS7.4 (CspA) of Escherichia coli with the promoter region of HNS // Biochimie. 1994. V. 76. № 10-11. P. 1090-1098.

44. Brandner J.P. Kroos L. Identification of the W 4400 regulatory region, a developmental promoter of Myxococcus xanthus // J. Bacteriol. 1998. V. 180. № 8. P. 1995-2002.

45. Bright J.J., Fletcher M. Amino acid assimilation and electron transport system activity in attached and free-living marine bacteria // Appl Environ Microbiol. 1983. V. 45. № 3. P. 818-825.

46. Briolant V., Reysset G. Identification of the Clostridium perfringens genes involved in the49. adaptive response to oxidative stress // J. Bacteriol. 2002. V. 184. № 9. P. 2333-2343.

47. Broek D., Chin-A-Woeng F.C., Bloemberg G.V., Lugtenberg J. J. Role of RpoS and MutS in phase variation of Pseudomonas sp. PCL1171 // Microbiology. 2005. - V.151. -P.1403-1408.

48. Brown C.R., Hong-Brown L.Q., Biwersi J., Verkman A.S. Chemical chaperones correct the mutant phenotype of the AF508 cystic fibrosis transmembrane conductance regulator protein // Cell Stress and Chaperones. 1996. V. 1. №2. P. 117-125.

49. Browne N., Dowds B.C.A. Heat and salt stress in the food pathogen Bacillus cereus // J. Appl. Microbiol. 2001. V. 91 № 6. P. 1085-1094.

50. Bsat N., Herbig A., Casillas-Martinez L., Setlow P., Helmann J.H. Bacillus subtilis contains multiple Fur homologues: identification of the iron uptake (Fur) and peroxide regulon (PerR) repressors // Mol. Microbiol. 1998. V. 29. P. 189-198.

51. Burke P.V., Raitt D.C., Allen L.A., Kellogg E.A., Poyton R.O. Effects of oxygen concentration on the expression of cytochrome c and cytochrome c oxidase genes in yeast // J. Biol. Chem. 1997. V. 272. P. 14705-14712.

52. Burshard R.P. and Sorongon M.L. A gliding bacterium strain inhibits adhesion and motility of another gliding bacterium strain in marine biofilm // Appl. Environm. Microbiol. 1998. V. 64. P. 4079-4083.

53. Callahan S.M., Dunlap P.V. LuxR- and acyl-homoserine-lactone-controlled non-lux genes define a quorum-sensing regulon in Vibrio fischeri. J Bacteriol. 2000 May;182(10):2811-22

54. Calvio C., Osera C., Amati G., Galizzi A. Autoregulation of swrAA and motility in Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 2008. V.190. No 16. P. 5720-5728.

55. Cashel M., Rudd K.F. The stringent response // Escherichia coli and Salmonella typhi-murium / Eds. Neidhardt F.C. et al. Washington DC: ASM Press, 1987. P.1410-1438.

56. Causton H.C., Ren B., Koh S.S., Harbison C.T., Kanin E., Jennings E.G., Lee T.I., True H.L., Lander E.S., Young R.A. Remodeling of yeast genome expression in response to environmental changes // Mol. Biol. Cell. 2001. V. 12. P. 323-337.

57. Characklis W.G. Microbial fouling: a process analysis, in: Fouling of heat transfer equipment. Somerscales E.F.C., Knudsen J.G. eds. Hemisphere, 1981. Washington D.C. P. 251291.

58. Chater K. Genetics of differentiation in Streptomyces.// Aim. Rev. Microbiol. 1993. V. 47. P. 685-713.

59. Chen L., Keramati L., Helmann J.D. Coordinate regulation of Bacillus subtilis peroxide stress genes by hydrogen peroxide and metal ions // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 8190-8194.

60. Cho B.K., Knight E.M., Palsson B.O. Transcriptional regulation of the fad regulon genes of Escherichia coli by ArcA // Microbiology. 2006. V. 152. P. 2207-2219.

61. Christiansen B.E., Kjosbakken J., Smidsrod O. Partial chemical and physical characterization of two extracellular polysaccharides produced by marine periphytic Pseudomonas sp. Strain NCMB2021 // Appl. Environ. Microbiol. 1985. V.50. № 4. P. 837-845.

62. Claiborne A. Catalase activity // Handbook of Methods for Oxygen Radical Research. Boca Raton: CRC Press. 1986. P. 283-284.

63. Clark J.B. Slime as a possible factor in cell clumping in Nocardia corallina. // J. Bacteriol. 1958. V. 75. №4. P. 400-402.

64. Clarke M.B., Hughes D.T., Zhu C., Boedeker E.C., Sperandio V. The QseC sensor kinase: a bacterial adenergetic receptor. // PNAS USA. 2006. V.103. P. 10420-10425.

65. Cohen F.E. and Kelly J.W. Therapeutic approaches to protein-misfolding diseases. // Nature, 2003. v. 426, №18. p.905-909.

66. Cohen S.S., What do the polyamines do? //Nature, 1978. V. 274. 209-210.

67. Costerton J.W., Geesey G.G., Cheng K.J. How bacteria stick// Sci Amer. 1978. V. 238. P. 86-95.

68. Costerton J.W., Lewandowski Z.L., DeBeer D., Caldwell D., Korber D., James G. Biofilms, the customized microniche//J.Bacteriol. 1994. V. 1176. P. 2137-2142.

69. Craig I.A., Weissman J.S., Horwich A.L. // Heat shock proteins and molecular chaperones: mediators of protein conformation and turnover in the cell. Cell, 1994, V.78, P. 365-372.

70. Cripps R.E., Work E. The accumulation of extracellular macromolecules by Staphylococcus aureus grown in the presence of sodium chloride and glucose. J. Gen. Microbiol. 1967. 49. № l.P. 127-37.

71. Crowe L.M., Womersley C., Crowe J.H., Reid D., Appel L., Rudolph A. Prevention of fusion and leakage in freese-dried liposomes by carbohydrates. // Biochimica et Biophysica Acta. 1986. V. 861. P. 131-140.

72. Davey M.E., Caiazza N.C., O'Toole G.A. Rhamnolipid surfactant production affects biofilm architecture in Pseudomonas aeruginosa PAOl// J.Bacteriol. 2003. V. 185. P. 1027-1036.

73. Davidson J.F., Schiestl R.H. Cytotoxic and genotoxic consequences of heat stress are dependent on the presence of oxygen in Saccharomyces cerevisiae // J. Bacteriol. 2001. V. 183. №15. P. 4580-4587.

74. Davidson J.F., Whyte B., Bissinger P.H., Schiestl R.H. Oxidative stress is involved in heat-induced cell death in Saccharomyces cerevisiae // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93 №10 P. 5116-5121.

75. Davies K.J.A. Protein damage and degradation by oxygen radicals // J. Biol. Chem. 1987. V. 262. P. 9902-9907.

76. Davies, D. G., Parsek M. R., Pearson J. P., Iglewski B. H., Costerton J. W., Greenberg E. P. The involvement of cell-to-cell signals in the development of a bacterial biofilm // Science. 1998. V. 280. P. 295-298.

77. De Beer D., Stoodley P. Microbial Biofilms. Springer-Verlag. New York. 2004.

78. Demain A.L., Vaishnav P. Involvement of nitrogen-containing compounds in beta-lactam biosynthesis and its control. Crit. Rev. Biotechnol. 2006. V. 26. No. 2. P. 67-82.

79. Diamant S., Eliahu N. Rosenthal D., Goloubinoff P. Chemical chaperones regulate molecular chaperones in vitro and in cells under combined salt and heat stresses. J. Biol. Chem. 2001. V. 276. No 43. P. 39586-39591.

80. Diamant S., Eliahu N., Rosenthal D., Goloubinoff P. Chemical chaperones regulate molecular chaperones in vitro and in cells under combined salt and heat stresses // J Biol Chem. 2001. V. 276. № 43. P. 39586-39591.

81. Donlan R.M. Biofilms: microbial life on surfaces. // Emerg. Infect. Dis. 2002. V.8, №9, P.881-890.

82. Drago L., De Vecchi E., Nicola L., Gismondo M.R., Antimicrobial activity and interference of tobramycin and chloramphenicol on bacterial adhesion to intraocular lenses // Drugs exp. Clin. Res. 2003. Vol. 29. № 1. P. 25-35.

83. Ducan S., NystrOm T. Bacterial senescence: stasis results in increased and differential oxidation of cytoplasmic proteins leading to developmental induction of the heat shock regu-lon. // Genes and Development. 1998. V.12. P. 3431-3441.

84. Dunny G.M., Leonard B.A.B. Cell-cell communication in gram-positive bacteria // Annu. Rev. Microbiol. 1997. V. 51. P. 527-564.

85. Dworkin M. Recent advances in the social and developmental biology of the myxobacteria // Microbiol Rev. 1996. V. 60. C. 70-102.

86. Dworkin M., Gibson S.M. A system for studying rapid microbial morphogenesis: Rapid formation of mycrocysts in Myxococcus xanthus // Science. 1964. V. 146. P. 243-245.

87. Dybvig K. DNA rearrangements and phenotypic switching in prokaryotes. Mol. Microbiol. 1993. V. 10. P.465-471.

88. Edwards U., Rogall T., Bloeker H., Ende M.D., Boeettge E.G. Isolation and direct complete nucleotide determination of entire genes, characterization of gene coding for 16S ribosomal RNA. // Nucl. Acids Res. -1989.-V.17. P. 7843-7853.

89. Eisenstark A., Calcutt M.J., Becker-Hapak M., Ivanova A. Role of Escherichia coli rpoS and associated genes in defense against oxidative damage. Free Radic. Biol. Med. 1996. V. 21. No 7. P. 975-993.

90. Esposito D., Del Vecchio P., Barone G. Interaction with natural polyamines and thermal stability o DNA. A DSC study and a theoretical reconsideration // J. Am. Chem. Soc. 1997. V. 119. P. 2606-2613.

91. Farr S.B., Kogoma T. Oxidative stress responses in Escherichia coli and Salmonella ty-phimurium//Microbiol. Rev. 1991. V. 55. P. 561-585.

92. Feucht A., Errington J. ftsZ mutations affecting cell division frequency, placement and morphology in Bacillus subtilis // Microbiology. 2005. - V. 151. - P.2053-2064.

93. Fiddaman P.J., Rossal S. The production of antifungal volatiles by Bacillus sub-tilis.//J.Appl.Bacteriol. 1993. V.74. P. 119-126.

94. Flahaut S., Frere J., Boutibonnes P., Auffray Y. Relationship between the thermotoler-ance and the increase of DnaK and GroEL synthesis in Enterococcus faecalis ATCC19433 //J. Basic Microbiol. 1997. Vol. 37. P. 251-258.

95. Flavier A.B., Clough S.J., Schell M.A., Denny T.P. Identification of 3-hydrixypalmitic acid methyl ester as a novel autoregulator controlling virulence in Ralstonia solana-ceum.//Mol. microbiol. 1997. V.26. No 2. P.251-259.

96. Flemming H.-C., Schaule G., Microbielle werkstoffzerstorung biofilm und biofouling in wasrigen systemen // Werkst, und Korros. 1994. №1. S.40-53.

97. Fletcher M. Bacterial adhesion (mechanisms and significance) Editors D.C. Savage M. Fletcher. N-Y., London: Plenum Press. 1985. P.339-362.

98. Foster P.L. Stress responses and genetic variation in bacteria. Mutat. Res. 2005. V. 569. № 1-2. P. 3-11.

99. Fournier B., Hooper D.C. A new two-component system involved in adhesion, autolysis and extracellular proteolytic activity of Staphylococcus aureus // J. Bacteriol. 2000. V.182. № 14. 3. 3955-3964.

100. Fournier M., Dermount Z., Durand M.C., Dolla A. A new function of the Desulfovibrio vulgaris Hildenborough Fe. hydrogenase in the protection against oxidative stress // J.Biol. Chem. 2004. V. 279. №. 3. P. 1787-1793.

101. Freeman J.A., Bassler B.L. Sequence and function of LuxU: a two-component phos-phorelay protein that regulates quorum sensing in Vibrio harveyi // J. Bacteriol. 1999 a. V. 181. P. 899-906.

102. Freeman J.A., Bassler B.L. A genetic analysis of the function of LuxO, a two-component response regulator involved in quorum sensing in Vibrio harveyi // Mol. Microbiol. 1999 6.V. 31. P. 665-677.

103. Freeman J. A., Lilley B.N., Bassler. B.L. A genetic analysis of the functions of LuxN: a two-component hybrid sensor kinase that regulates quorum sensing in Vibrio harveyi // Mol. Microbiol. 2000. V. 35. P. 139-149.

104. Fridovich I. Superoxide dismutases // Ann. Rev. Biochem. 1975. V. 44. № 1. P. 147159.

105. Fridovich I. The biology of oxygen radicals // Science. 1978. V. 201. P. 875-880.

106. Friedberg E.C., Wagner R., Radman M. Specialzed DNA polymerases, cellular survival, and genetics of mutations //Science. 2002. V. 296. P. 1627 1630.

107. Fuqua W.C., Winans S.C., Greenberg E.P. Quorum sensing in bacteria: the LuxR-LuxI family of cell density-responsive transcriptional regulators // J. Bacteriol. 1994. V. 176. № 2. P. 269-275.

108. Gasch A.P., Spellman P.T., Kao C.M., Carmel-Harel O., Eisen M.B., Storz G., Botstein D., Brown P.O. Genomic expression programs in the response of yeast cells to environmental changes // Mol. Biol. Cell. 2000. V. 11. P. 4241-4257.

109. Gekko K., Timasheff S.N. Thermodynamic and kinetic examination of protein stabilization by glycerol Biochemistry, 1981, v. 20, P. 4667-4676.

110. Gentry D. R., Hernandez V.J., Nguyen L. H., Jensen D. B., Cashel M. Synthesis of the stationary-phase sigma factor as is positively regulated by ppGpp // J. Bacteriol. 1993. V. 175. P. 7982-7989.

111. Gerth K. and Reichenbach H., Induction of myxospore formation in Stigmatella auran-tiaca (Myxobacteriales). General characterization of the system., Arch.Microbiol., 1978, vol. 117, pp. 173 179.

112. Gerth K., Metzger R., Reichenbach H. Induction of in Stigmatella aurantiaca (myxobac-teria): Inducers and inhibitors of myxospore formation, and mutants with a changed sporulation behavior // J. Gen. Microbiol. 1993. V. 139. №4. P. 865-871.

113. GeseniusH. Uber Stoffwechselwirkungen von Gurwitsh-Strahlen //Biochem. Z. 1930. V. 225. P. 328.

114. Gilles R. "Compensatory" organic osmolytes in high osmolarity and dehydration stresses: History and perspectives. // Comparative biochemistry and physiology A-physiology, 1997, Vol. 117, No.3, P.279-290.

115. Gilles-Gonzalez M.A., Gonzalez G. Perutz M.F., Kiger L., Marden M.C., Poyart C. Heme-based sensors, exemplified by the kinase FixL, are a new class of heme protein with distinctive ligand binding and autoxidation//Biochem. 1994. V. 33. P. 8067-8073.

116. Gilles-Gonzalez M.A., Gonzalez G. Signal transduction by hemecontaining PASdomain proteins // J. Appl. Physiol. 2004. V. 96. P. 774-783.

117. Girard G., Bloemberg G.V. Central role of quorum sensing in regulating the production of pathogenicity factors in Pseudomonas aeruginosa. Future Microbiol. 2008. V.3., No 1. P. 97-106.

118. Goldstein J., Pollit N.S., Inouye M. Major cold shock protein of Escherichia coli // Proc. Natl. Acad. USA. 1990. V. 87. № l. p. 283-287.

119. Gong W., Hao B., Mansy S.S., Gonzalez G., Gilles-Gonzalez M.A., Chan M.K. Structure of a biological oxygen sensor: a new mechanism for heme-driven signal transduction // PNAS Biochem. 1998. V. 95. P. 15177-15182.

120. Gordon A.S., Millero F.J. Electrolite effect on an estuatine bacterium // Appl. Environ. Microbiol. 1984. V.47. № 3. P.459-499.

121. Gorin G., Wang S.F., Papapavlou L. Assay of lysozyme by its lytic action on M. lyso-deikticus cells// Anal. Biochem. 1971. V. 39. P. 113-127.

122. Gouesbet G., Jan G., Boyaval P. Lactobacillus delbrueckii ssp bulgaricus thermotoler-ance// Lait. 2001 V. 81. №1-2. P.301-309.

123. Graf E., Empson K., Eaton J. Phytic acid —- a natural antioxidant // J. Biol. Chem. 1987. V. 262. P. 11647-11650.

124. Graumann P., Marahiel M.A. Some like it cold: response of microorganisms to cold shock// Arch. Microbiol. 1996. V. 166. P. 293-300.

125. Gray K.M. Intercellular communication and group behavior in bacteria // Trends Microbiol. 1997. V.5. № 5. P. 184-188.

126. Gurwitsch A., Gurwich L. Uber den Ursprung der mitogenetischen Strahlen. // Roux' Archiv. 1925. V. 105. P. 470.

127. Gutierrez C., Barondess J., Manoil C., Beckwith J. The Use of Transposon TnphoA to Detect Genes for Cell Envelope Proteins Subject to a Common Regulatory

128. Stimulus. Analysis of Osmotically Regulated Genes in Escherichia coli // J. Mol. Biol. 1987. V. 195. P. 289-297.

129. На H.C., Sirisoma N.S., Kuppusamy P. The natural polyamine spermine functions directly as a free radical scavenger // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 1114011145.

130. Hamamoto Т., Kaneda M., Horikoshi K., Kudo T. Characterization of a protease from a psychritroph Pseudomonas fluorescens 114 // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V.60. № 10. P. 3878-3880

131. Harris E.H. The Chlamydomonas Sourcebook. Academic Press, Inc., San Diego, CA, USA, 1989.

132. Harrison J.J., Ceri H., Roper N.J., Badry E.A., Sproule K.M., Turner R.J. Persister cells mediate tolerance to metal oxyanions in Escherichia coli// Microbiology. 2005. V.151. P. 3181-3195.

133. Harrison J.J., Turner R.J., Ceri H. Persister cells, the biofilm matrix and tolerance to metal cations in biofilm and planktonic Pseudomonas aeruginosa//Environ. Microbiol. 2005. V. 7. P. 981-994.

134. Hecker M, Volker U. General stress response of Bacillus subtilis and other bacteria. // Adv. Microb. Physiol. 2001. V. 44. № 1. P. 35-91.

135. Hengge-Aronis R. Back to log phase: 6s as a global regulator in the osmotic control of gene expression//Mol. Microbiol. 1996. V. 21. P. 887-893.

136. Hengge-Aronis R. Survival of hunger and stress: the role of rpoS in early stationary phase gene regulation in Escherichia coli // Cell. 1993. V. 72. P. 165-168.

137. Hengge-Aronis R., Loewen P.C. The role of the sigma factor {sigma} S (KatF) in bacterial global regulation // Annu.Rev.Microbiol. 1994. V. 48. P.53-80.

138. Herbert K.C., Foster S.J. Starvation survival in Listeria monocytogenes: Characterization of the response and the role of known and novel components // Microbiology. 2001 V. 147. №8. P. 2275-2284.

139. Hidalgo E., Bollinger J., Bradley T.M., Walsh C.T., Demple B. Binuclear 2Fe-2S. clusters in the Escherichia coli SoxR protein and role of the metal centers in transcription // J. Biol. Chem. 1995. V. 270. P. 20908-20914.

140. Hidalgo E., Demple B. Adaptive responses to oxidative stress: the SoxRS and OxyR regulon. In: Regulator of gene expression in Escherichia coli / Ed. Lin E., Linch A. Austin: R.G. Landes Company, 1996. P. 435-452.

141. Horionuchi S., Beppu T. A-factor as a microbial hormone that controls cellular differentiation and secondary metabolism in Streptomyces griseus. // Mol. Microbiol. 1994. Y. 12. P. 859-864.

142. Horionuchi S., Beppu T. Regulation of secondary metabolism and cell differentiation in Streptomyces: A-factor as a microbial hormone and the afsR protein as a component of two-component regulatory system.// Gene. 1992. V. 115. P. 167-172.

143. Horn G., Hofweber R., Kremer W., Kalbitzer H.R. Structure and function of bacterial cold shock proteins. Cell. Mol. Life Sci. 2007. V. 64. 12. P.1457-1470.

144. Hossain M.M., Nakamoto H. Role for the cyanobacterial HtpG in protection from oxidative stress // Current Microbiol. 2003. V. 46. № 1. P. 70-76.

145. Hounsa C.G., Brandt E. , Thevelein J., Hohmann S., Prior B.A. Role of trehalose in survival of Saccharomyces cerevisiae under osmotic stress // Microbiology. 1998. Vol. 144. P. 671-680.

146. Huang-Mo S., Yasbin R.E. Adaptive, or stationary-phase, mutagenesis, a component of bacterial differentiation in Bacillus subtilis // J. Bact. 2002. V. 184. № 20. P. 5641-5653.

147. Huisman G.W., Kolter R. Sensing starvation: a homoserine lactone dependent signaling pathway in Escherichia coli // Scince. 1994. V. 265. P. 537-539.

148. Hussain N.H., Goodson M., Rowbury R.J. Recent advances in biology: intercellular communication and quorum sensing in microorganisms. //Science Progress. 1998. V. 81. No l.P. 69-80.

149. Igarashi K. Physiological functions of polyamines and regulation of polyamine content in cells // Yakugaku Zasshi J. Pharm. Soc. J. 2006. V. 126. P. 455-471.

150. Ihihama A. Adaptation of gene expression in stationary phase bacteria // Curr.Opin.Genet.Develop. 1997.V. 7. P. 582-588.

151. Imlay J.A., Fridovich I. Assay of metabolic superoxide production in Escherichia coli // J. Biol. Chem. 1991a. V. 266. P. 6957-6965.

152. Imlay J.A., Fridovich I. Superoxide production by respiring membranes of Escherichia coli//Free Radic. Res. Comms. 1991b. V. 12-13. P. 59-66.

153. Itokawa H., Miyashita T., Morita H., Takeya K., Hirano T., Homma M., Oka K., Structural and conformational studies of Ile7. and [Leu7] surfactins from Bacillus subtilis natto // Chem. Pharm. Bull. 1994. Vol. 42. P. 604-607.

154. Jacob F., Monod J. Genetic regulator}' mechanisms in the synthesis of proteins // J. Mol. Biol. 1961 V.3.P. 318-356.

155. James G.A., Korber D.R., Caldwell D.E., Costerton J.W. Digital image analysis of growth and starvation responses of surface colnizing Acinetobacter // J. Bacterid. 1995. Vol. 177. №4. P. 907-915.

156. Jamieson D.J., Storz G. Transcriptional regulators of oxidative stress response. In: Oxidative stress the molecular biology of antioxidant defenses / Ed. Scandalios J.G. Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor, 1997. P. 91-115.

157. Janison C. Some aspects of SOS-response system a critical survey //Acta Biochim. Pol. 2001. V. 48. P. 599-610.

158. Jean D., Briolant V., Reysset G. Oxidative stress response in Clostridium perfringens // Microbiology. 2004. V.150. № 5-6. P. 1649-1659.

159. Jefferson K.K. What drives bacteria to produce a biofilm?//FEMS Microbiol. Lett. 2004. V. 236. P. 163-173.

160. Jenkins D. E., Chaisson S. A., Matin A. Starvation-induced cross protection against osmotic challenge in Escherichia coli // J. Bacteriol. 1990. Vol. 172. №. 5. P. 2779-2781.

161. Jiang W., Hou Y., Inouye M. CspA, the major cold-shock protein of Escherichia coli, is an RNA chaperone //J. Biol. Chem. 1997. V. 272. № 1. P. 196-202.

162. Jones P.G., Inouye M. RbfA, 30S ribosomal binding factor, is a cold-shock protein whose absence triggers the cold-shock response // Mol. Microbiol. 1996. V. 21. № 6. P. 1207-1218.

163. Jones P.G., Inouye M. The cold-shock response — a hot topic // Mol. Microbiol. 1994. V. 11. №5. P. 811-818.

164. Jones P.G., Krah R., Tafuri S.R., Wollfe A.P. DNA gyrase, CS7.4, and the cold shock response in Escherichia coli // J. Bacteriol. 1992b. V. 174. № 18. P. 5798-5802.

165. Jones P.G., Mitta M., Kim W.J., Inouye M. Cold shock inducts a major ribosomal-associated protein that unwinds double-standed RNA in Escherichia coli // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 76-80.

166. Jones P.G., VanBogelen R.A., Neidhardt F.C. Induction of proteins in response to low temperature in Escherichia coli // J. Bacteriol. 1987. V. 169. № 5. P. 2092-2095.

167. Juan S.M., Cazzulo J.J. The extracellular protease from Pseudomonas fluorescens // Ex-perientia. 1976. V. 32. №. 9. P. 1120-1122.

168. Kaiser D., Losick R. How and why bacteria talk to each other // Cell. 1993. V. 79. P. 873-885.

169. Kandror O., Goldberg A.L. Trigger factor is induced upon cold shock and enhances viability of Escherichia coli at low temperature // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. V. 94. P. 4978-4981.

170. Kaplan J. B., Meyenhofer M. F., Fine D. H. Biofilm growth and detachment of Acti-nobacillus actinomycetemcomitans // aJ. Bacteriol. 2003. V. 185. P. 1399-1404.

171. Kaplan J. B., Ragunath C., Ramasubbu N., Fine D. H. Detachment of Actinobacillus actinomycetemcomitans biofilm cells by an endogenous beta-hexosaminidase activity // J. Bacteriol. 2003. V. 185. P. 4693-4698.

172. Kaprelyants A.S. and Kell D.K. Do bacteria need to communicate each other for growth?// Trends in Microbiology. 1996. V.4. № 6. P.237-242.

173. Kaprelyants A.S., Mukamolova G.V., Kell D.B. Estimation of dormant Micrococcus luteus cells by penicillin lysis and by resuscitation in cell-free spent culture medium at high dilution.//FEMS Microbiology letters. 1994. V.115. P.347-352.

174. Kastaniotis A.J., Mennella T.A., Konrad C., Torres A.M., Zitomer R.S. Roles of transcription factor Mot3 and chromatin in repression of the hypoxic gene ANB1 in yeast // Mol. Cell. Biol. 2000. V. 20. P. 7088-7098.

175. Keren I., Kaldalu N., Spoering A., Wang Y., Lewis K. Persister cells and tolerance to antimicrobials//FEMS Microbiol. Lett. 2004. V. 230. P. 13-18.

176. Keren I., Shah D., Spoering A., Kaldalu N., Lewis K. Specialized persister cells and the mechanism of multidrug tolerance in Escherichia coli//J. Bacteriol. 2004. V. 186. P. 81728180.

177. Keyer K., Gort A.S., Imlay J.A. Superoxide and the production of oxidative DNA damage//J. Bacteriol. 1995. V. 177. P.6782-6790.

178. Kilstrup M., Jacobsen S., Hammer K., Vogensen F.K. Induction of heat shock proteins DnaK, GroEL and GroES by salt stress in Lactococcus lactic // Appl. Environ. Microbiol. 1997. V. 179. № 17. P. 5471-5481.

179. Kim S.K. and Kaiser D. Purification and properties of Myxococcus xanthus C-factor, an intercellular signaling protein, Proc.Natl.Acad.Sci.USA., 1990, vol.87, pp. 3635-3639.

180. Kim S.K. and Kaiser D., C-factor has distinct aggregation and sporulation thresholds during Myxococcus xanthus development, J. Bacteriol., 1991, vol. 173, pp. 1722-1728.

181. Kim, S.K., Kaiser, D., and Kuspa, A., Control of cell density and pattern by intercellular signaling in Myxococcus development.//Annu. Rev. Microbiol., 1992, vol.46, pp. 117-139.

182. Kjelleberg S., Hermansson M. Starvation-induced effects on bacterial surface characteristics // Appl. Environ. Microbiol. 1984. V.48. P. 497-503.

183. Kleerebezem M, Quadri L.E. Peptide pheromone-dependent regulation of antimicrobial peptide production in Gram-positive bacteria: a case of multicellular behavior. Peptides. 2001. V. 22. No 10. P. 1579-1596.

184. Kogoma T. Stable DNA replication: Interplay between DNA replication, homology recombination, and transcription// Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1997. V. 61. P. 212-238.

185. Kolari M., Nuutinen J., Salkinoja-Salonen M.S. Mechanisms of biofilm formation in paper machine by Bacillus species: the role of Deinococcus geothermalis // J. of Ind. Microbiol. And Biotechnol. 2001. V. 27. №. 6. P. 343-351.

186. Kolenbrander P. E. Oral microbial communities: biofilms, interactions, and genetic systems //Annu. Rev. Microbiol. 2000. V. 54. P. 413-437.

187. Konz D., Doekel S., Marachiel M.A. Molecular and biochemical characterization of the protein controlling biosynthesis of the lipopeptide lichenysin // J. Bacteriol. 1999. Vol. 181. № 1. P. 133-140.

188. Kozubek A. Tyman N. Resorcinol lipids, the natural non-isoprenoid phenolic amphi-philes and their biological activity // Chem. Rev. 1999. V.99. №1. P. 1-31.

189. Krin E., Chakroun N., Turlin E., Givaudan E., et al., Pleiotropic role of quorum-sensing autoinducer 2 in Photorabdus luminescens II Appl. Env. Microbiol. 2006. V. 72. P. 64396451.

190. Kroes I., Lepp P. W., Relman D. A. Bacterial diversity within the human subgingival crevice // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P.14547-14552.

191. Lactic Acid Bacteria: Microbiological and Functional Aspects. 3rd ed. New York: Marcel Dekker, 2004.

192. Lai L.C., Kosorukoff A.L., Burke P.V., Kwast K.E. Metabolic-state dependent remodeling of the transcriptome in response to anoxia and subsequent reoxygenation in Saccharo-myces cerevisiae // Eukaryot. Cell. 2006. V. 5. № 9. P. 1468-1489.

193. Lamark T., Rokenes T., McDougall J., Strom A.R. The complex bet promoters of Escherichia coli: regulation by oxygen (ArcA), choline (Betl), and osmotic stress // J. Bacteriol. 1996. V. 178.№6. P. 1655-1662.

194. Lange R., Hengge-Aronis R. Growth phase-regulated expression of bolA and morphology of Escherichia coli cells is controlled by the novel sigma factor, cts (rpoS) // J. Bacteriol. 1991. V. 173. P.4474-4481.

195. Lange R., Hengge-Aronis R. Identification of a central regulator of stationary-phase gene expression in Escherichia coli // Mol. Microbiol. 1991. V. 5. P. 49-59.

196. Lange R., Hengge-Aronis R. The cellular concentration of the os subunit of RNA polymerase in Escherichia coli is controlled at the levels of transcription, translation, and protein stability// Genes Dev. 1994. V.8. P.1600-1612.

197. Laplace J.M., Sauvageot N., Hartke A., Auffray Y. Characterization of Lactobacillus collinoides response to heat, acid and ethanol treatments // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999. V. 51 № 5. P. 659-663.

198. Larsen H., The family Halobacteriaceae. In: The Procoryotes. Pergamon press. N-Y.1981. V.l.

199. Laue B.E., Gill R.E. Using a phase-locked mutant of Myxococcus xanthus to study the role of phase variation in development //J. Bacteriol. 1995. - V. 177, №14. - P. 40894096.

200. Lazazzera B.A., Kurtser I.G., McQuade R.S., Grossman A.D. An Autoregulatory Circuit Affecting Peptide Signaling in Bacillus subtilis. J. Bacteriol., 1999, V. 181, No. 17. P. 5193-5200.

201. Leandro P., Lechner M.C., Tavarec de Almeida I., Konecki D. Glycerol increases the yield and activity of human phenylalanine hydroxylase mutant enzymes produced in a pro-catyotic expression system // Mol. Gen. Metab. 2001. V. 73. P/ 173-178.

202. Leblanc L., Leboeuf C., Leroi F., Hartke A., Auffray Y. Comparison between NaCl tolerance response and acclimation to cold temperature in Shewanella putrefaciens // Current Microbiol. 2003. V. 46. P. 157-162.

203. Leblond P., Denuyter Ph., Moutier L., Laakel N., Decaris B., Simonet J.N. Hipervari-ability, a new phenomenon of genetic instability, related to DNA amplification in Strepto-myces ambofaciens // J. Bacteriol. 1989. V.171, №1. P.419-423.

204. Ledda L., Ferrara L., Scaloni A. Differential proteomic analysis in the study of pro-karyotes stress resistance Ann 1st Super Sanita 2005;41(4):459-468.

205. Lee J., Jayaraman A., Wood T.K. Indole as an inter-species biofilm signal mediated by SdiA // BMC Microbiology. 2007. V. 7. P. 42.

206. Lee M., Morrison D.A. Identificstion of a new regulator in in Streptococcus pneumoniae linking quorum sensing to competence for genetic transformation // J. Bacteriol. 1999. V. 181. № 16. P. 5004-5016.

207. Lee P.C., Bochner B.R., Ames B.N. AppA, heat shock stress and cell oxidation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. V. 80. P. 7596-7600.

208. Lentzen G., Schwarz T. Extremolytes: Natural compounds from extremophiles for versatile applications.//Appl Microbiol Biotechnol. 2006 V. 72. № 4. P. 623-634.

209. Levis K.' Pathogen resistance as the origin of kin altruism//J. Theor. Biol. 1998. V. 193. P. 359-363.

210. Lewis K. Programmed Death in Bacteria // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2000. V. 64. № 3. P. 503-514.

211. Li Y.-H., Hanna M.N., Svensater G., Ellen R.P., Cvitkovitch D.G. Cell density modulates acid adaptation in Streptococcus mutans: implication for survival in biofilms // J.Bacteriol. 2001. V.183. № 23. Pio6875-6884.

212. Lichtenthaler H.K. Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. Meth. Enzymol., 1987. V. 148. P. 350-382.

213. Lorens N.J.M., Tormo A., Martínez-García E. Stationary phase in gram-negative bacteria// FEMS Microbiol. Rev. 2010. V. 34, Iss. 4, P. 476-495.

214. Loewen P.C., Hengge-Aronis R. The role of the sigma factor Ds (KatF) in bacterial global regulation//Annu. Rev. Microbiol. 1994. V. 48. P. 53-80.

215. London J. Bacterial adhesines // Ann. Rep. Med. Chem. 1991. V. 26. P. 229-237.

216. López-García P., Forterre P. DNA topology and the thermal stress response, a tale from mesophiles and hyperthermophiles. Bioessays. 2000. V. 22. No. 8. P. 738-746.

217. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall RJ. Protein measurement with Folin phenol reagent.//J.Biol. Chem. 1951. V.193. P. 265-275.

218. Lund P.A. Microbial molecular chaperones. Adv. Microb. Physiol. 2001. V. No 44. P. 93-140.

219. Lvte M., Frank C.D., Green B.T. Production of an autoinducer of growth by norepine-frine cultured Escherishia coli 0 0157:H7.//FEMS Microbiol Lett. 1996. V.139. P. 155-159.

220. M. Kates, Techniques in Lipidology: Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology, 2nd edn., Elsevier Science, Amsterdam, 1986.

221. Ma M., Eaton J.W. Multicellular oxidant defense in unicellular organisms.// Proc Natl Acad USA. 1992. V.89.P. 7924-7928.

222. Macario A.J. L., Lange M., Ahring B.K., De Macario E.C. Stress genes and proteins in the Archaea // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1999. Vol. 63. No. 4 P. 923-967.

223. MacLeod, F. A., Guiot S. R., Costerton J. W. Layered structure of bacterial aggregates produced in an upflow anaerobic sludge bed and filter reactor//Appl. Environ. Microbiol. 1990. V.56.P. 1598-1607.

224. Magnuson R., Solomon J., Grossman A.D. Biochemical and genetic characterization of a competence pheromone from B. subtilis // Cell. 1994. V. 77. P. 207-216.

225. Malin G., Lapidot A. Induction of synthesis of tetrahydropyrimidine derivates in Strep-tomyces strains and their effect on Escherishia coli in responce to osmotic and heat-stress.//J. of Bacteriol. 1996. V.178. Iss.2. P.385-395.

226. Mamson M.D., Armitage J.D., Hoch J.A., Macnab R.M. Bacterial locomotion and signal transduction//J. Bacteriol. 1998. V. 180. № 5. P. 1009-1022.

227. Manoil C. and Kaiser D. Purine-eontaining compounds, including cyclic adenosine 3' 5'-monophosphate, induce fruiting body formation in Myxococcus xanthus by nutritional imbalance, J. Bacteriol., 1980, vol. 141, pp. 374 380.

228. Maries-Wright J., Lewis R.J. Stress responses of bacteria. Curr. Opin. Struct. Biol. 2007.V. 17. No 6. P. 755-760.

229. Marshall K.C. Adhesion as a Strategy for Access to Nutrients// Bacterial Adhesion. (Molecular and ecological diversity). Wiley-Liss. N-Y. 1996. P. 59-88.

230. Marshall K.C. Mechanisms of Bacterial Adhesion at Solid-Water Interfaces// Bacterial Adhesion. Mechanisms and Physiological significance. Plenum Press. New York, London. 1985. P.133-157.

231. Martinez A., Kolter R. Protection of DNA during oxidative stress by the nonspecific DNA-binding protein Dps // J. Bacteriol. 1997. V. 179. P. 5188-5194.

232. Martino P.D., Fursy R., Bret L., Sandurararju B., Phillips R.S. Indole can act as an extracellular signal to regulate biofilm formation of Escherichia coli and other indole-producing bacteria//Can. J. Microbiol. 2003. V.49. № 7. P. 443-449.

233. Matin A. // Physiology, molecular biology and applications of the bacterial starvation response. J. of Appl. Bacteriol. Symposium Supplement., 1992, V.73, P49S-57S.

234. Matin A., Molecular analysis of starvation stress in Escherichia coli // FEMS Microbiol. Ecol., 1990, vol. 74, pp. 185-196.

235. Matin, A., Physiology , molecular biology and applications of the bacterial starvation response // J.Appl.Bact. Symp.Suppl., 1992, vol. 57, pp. 49-57.

236. Matson M., Armitage J., Hoch J., Macnab R. Bacterial locomotion and signal transduction. J. Bacteriol. 1998. V.180. №5. P. 1009-1022.

237. Matsuhashi M., Shindo A., Ohshima H., Tobi M., Endo S., Watanabe H., Pankrushina A.N, Cellular signals regulating antibiotic sensitivities of bacteria // Microbial drug resistance. 1996. Y.2, № 1, p.91-93.

238. Maximilien R.,. de Nys R., Holmstrom C., Gram L., Crass K.,. Kjelleberg S., Steinberg P.D. Chemical mediation of bacterial surface colonisation by secondary metabolites from the red alga Delisapulchrall Aquat.Microb. Ecol. 1998. V. 15. P. 233-246.

239. Miller M.B., Bassler B.L. Quorum sensing in bacteria. Ann. Rev. Microbiol. 2001. V.55. P.165-199.

240. Mireles J.R., Toguchi A., Harshey R.M. Salmonella enterica serovar typhimurium swarming mutants with altered biofilm-forming abilities: surfactin inhibits biofilm formation//J.Bacteriol. 2001, V. 183. P. 5848-5854.

241. Mobile DNA / Eds. Berg D.E. et.al.Washington D.C.: Amer.Soc.Microbiol. 1989. - P. 972.

242. Morello J.-P., Petaja-Repo,U.E., Bichet,D.G. and Bouvier,M. Pharmacological chaper-ones: a new twist on receptor folding. Trends Pharmacol. Sci., 2000. V. 21. P. 466-469.

243. Morikawa M. Beneficial biofilm formation by industrial bacteria Bacillus subtilis and related species // J. Biosci. and Bioengin. 2006. V. 101. P. 1-8.

244. Morita, R.Y., Bioavailability of energy and its relationship to growth and starvation survival in nature, Can. J.Microbiol, 1988, vol. 34, no. 4, pp. 436 -441.

245. Morris J.G. Bacterial shock responses. // Endeavour, New Series. 1993. V.17. № 1. P.2-6.

246. Moskvin O.V., Kaplan S., Gilles-Gonzalez M.A., Gomelsky M. Novel heme-based oxygen sensor with a revealing evolutionary history // J. Biol. Chem. 2007. V. 282. №39. P. 28740-28748.

247. Mostertz J., Scharf M., Hecker M., Homuth G. Transcriptome and proteome analysis of Bacillus subtilis gene expression in response to superoxide and peroxide stress. // Microbiology (UK). 2004. V. 150. P.497-512.

248. Moyed H.S., Bertrand K.P. hipA, a newly recognized gene of Escherichia coli K-12 that affects frequency of persistence after inhibition of murein synthesis// J.Bacteriol. 1983. V. 155. P. 768-775.

249. Murray K.D., Bremer H. Control of the spoT-dependent ppGpp synthesis and degradation in Escherichia coli // J. Mol. Biol. 1996. V. 259. P. 41-57.

250. Musumeci, F., Scordino, A., Triglia, A., Blandino, G. and Milazzo, I. 1999. Intercellular communication during yeast cell growth, Europhys. Lett. 47(6), pp. 736-742.

251. Nealson K.H., Hastings J.W. Bacterial bioluminescence: its control and ecological significance // Microbiol. Rev. 1979. V. 43. P. 496-518.

252. Nikolaev Yu.A., EI-Registan G.I., Desu S.B. Distant interaction during germination of Bacillus subtilis spores. Biophotonics and coherent systems in biology. Eds. Beloussov L.V., Voeikov V.L., Martynyuk V.S. Springer. N-Y. 2007. P. 159-166.

253. Nunoshiba T., Hidalgo E., Cuevas C.F.A., Demple B. 2-Stage control of an oxidative stress regulon — the Escherichia coli soxR protein triggers redox-inducible expression of the soxS regulatory gene // J. Bacteriol. 1992. V. 174. P. 6054-6060.

254. Nystrom T. Starvation, cessation of growth and bacterial aging. Curr. Opin. Microbiol. 1999. V. 2. No 2. P.214-219.

255. Nystrom T. To be or not to be: the ultimate decision of the growth-arrested bacterial cell // FEMS Microbiol. Rev. 1998. V. 21. P. 283-290.

256. Nystrom T., Flardh K., Kjelleberg T., Responses to multiple-nutrient starvation in marine Vibrio sp. strain CCUG// J. Bacteriol., 1990, vol.172, pp. 3903-3909.

257. Nystrom T., Neidhardt F.C. Cloning, mapping and nucleotide sequencing of a gene encoding a universal stress protein in Escherichia coli // Mol. Microbiol. 1992. V. 6. P. 31873198.

258. Nystrom T. Stationary phase physiology.//Ann.Rev. of Microbiol. 2004. V. 58. P. 161181.

259. Okabe S., Ito T., Satoh H. Sulfate-reducing bacterial community structure and their contribution to carbon mineralization in a wastewater biofilm growing under microaerophilic conditions//Appl. Microbiol. Biotechnol. 2003. V. 63. P. 322-334.

260. Oleskin A.V. Social behavior of microbial populations. // J.Basic Microbiol. 1994. V.34. No 6. P. 425-439.

261. Olson M.E., Ceri H., Morck D.W., Buret A.G., Read R.R. Biofilm bacteria: formation and comparative susceptibility to antibiotics//Can. J. Vet. Res. 2002. V. 66. P. 86-92.

262. O'Toole G. A., Kolter R. Flagellar and twitching motility are necessary for Pseudomonas aeruginosa biofilm development // Mol. Microbiol. 1998. V. 30. P. 295-304.

263. Paerl H.W., Pinckney J.L. A mini-review of microbial consortia: their roles in aquatic production and biogeochemical cycling//Microb. Ecology. 1996. V. 31. P. 225-247.

264. Panoff J.-M., Thammavongs B., Gueguen M. Cold stress responses in mesophilic bacteria CY 972069 // J. Cryobiol. 1998. V. 36. P. 75-83.

265. Park J.-I., Grant C.M., Davies M.J., Dawes I.W. The Cytoplasmic Cu,Zn superoxide dis-mutase of Saccharomyces cerevisiae is required for resistance to freeze-thaw stress. // J Biol Chem., 1998. V. 273, Iss. 36, P. 22921-22928.

266. Parkinson J.S., Kofoid E.C. Communication modules in bacterial signalling proteins // Annu. Rev. Genet. 1992. V. 26. P. 71-112.

267. Parsell D.A., Lindquist S. The function of heat-shock proteins in stress tolerance: degradation and reactivation of damaged proteins // Ann. Rev. Genet. 1993. V. 27. P. 437-496.

268. Penfold W.J. On the Nature of Bacterial Lag. // J. Hyg. 1914. V. 14. P. 215-241.

269. Perego M. A peptide export-import control circuit modulating bacterial development regulates protein phosphatases of the phosphorelay // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. V. 94. №16. P. 8612-8617.

270. Periago P.M., van Schaik W., Abee T., Wouters J. A., Identification of proteins involved in the heat stress response of Bacillus cereus ATCC 14579 // Appl. Envir. Microbiol. 2002. V. 68. P. 3486-3495.

271. Pesci E.C., Milbank J.B.J., Pearson J.P., McKnight S., Kendle A.S., Greenberg E.P., Quinolone signaling in the cell-to-cell communication system of Pseudomonas aeruginosa. // PNAS USA. 1999. V. 96. P. 11229-11234.

272. Petaja-Repo U.E., Hogue M., Bhalla S., Laperriere A., Morello J.P., Bouvier M. Ligands act as pharmacological chaperones and increase the efficiency of delta opioid receptor maturation // EMBO J. 2002 V. 21. № 7. P. 1628-1637.

273. Plaza del Pino I.M., Sanchez-Ruiz J.M. An osmolyte effect on the heat capacity change for protein folding // Biochemistry. 1995.V. 34. P. 8621-8634.

274. Popp F.A, Li K.H., Mei W.P., Galle M. Neurohr R. Physical aspects of biophotons. // Experientia. 1988. V.44.No7. P. 576-585.

275. Pratt L. A., Kolter R. Genetic analysis of Escherichia coli biofilm formation: roles of flagella, motility, chemotaxis and type I pili// Mol. Microbiol. 1998. V. 30. P. 285-293.

276. Primm T.P., Andersen S.J., Mizrahi V., Avarbock D., Rubin H. Barry C.E. The stringent response of Mycobacterium tuberculosis is required for long-term survival // J . Bacteriol. 2000. V. 182. 17. P.4889-4898.

277. Pringle J.H., Fletcher M., Ellwood D.C. Selection of attachment mutant during contini-ous culture of Pseudomonas fluorescens and relationship between attachement ability abd surface composition // J. Gen. Microbiol. 1983. V.129. №. 8. P.2557-2569.

278. Purevdorj-Gage B., Costerton W.J., Stoodley P. Phenotypic differentiation and seeding dispersal in non-mucoid and mucoid Pseudomonas aeruginosa biofilms // Microbiology. — 2005. V.151.P. 1569-1576

279. Rachid S., Olsen K., Witte W., Hacker J., Ziebuhr W. Effect subinhibitory antibiotic concentrations on polysaccharide intercellular adhesion expression in biofilm-forming

280. Staphylococcus epidermidis // Antimicrob. Agents Chemoter. 2000. V. 44. № 12. P.3357-3363.

281. Rahn 0. Ueber den Einfluss der Stoffwechselprodukte auf das Wachstum der Bakterien. // Zentr. Bakt. Parasitenk., 1906. II, 16, P. 417-429 and 609-617.

282. Rahn O. Invisible radiations of organisms. // Gebruder Borntaeger, Berlin, 1936.

283. Rao N., Kornberg A. Inorganic polyphosphate supports resistance and survival of stationary phase Escherichia coli//J. Bacteriol. 1996. V. 178. P. 1394-1400.

284. Read R.R., Costerton J.W. Purification and characterization of adhesive exopolysaccha-rides from Pseudomonas putida and Pseudomonas fluorescens // Can. J. Microbiol. 1987. V. 33. P. 1080-1090.

285. Reusch R.N. and Sadoff, H.L., 5n-Alkylresorcinols from encysting Azotobacter vine-landii: Isolation and characterization.//!. Bacteriol. 1979. V. 139. pp. 448- 453.

286. Reusch, R.N., Sadoff H.L., Novel lipid components of the Azotobacter vinelandii cyst membrane //Nature, 1983, V. 302, N. 5905. P. 268-270.

287. Rice K.C., Bayles K.W. Death's toolbox: examining the molecular components of bacterial programmed cell death. Mol. Microbiol. 2003. V.50, № 3. P. 729-38.

288. Rice K.C., Bayles K.W. Molecular control of bacterial death and lysis. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2008. V. 72. № 1. P.85-109.

289. Rickard A. H., Gilbert P., High N. J., Kolenbrander P. E., Handley P. S. Bacterial coag-gregation: an integral process in the development of multi-species biofilms // Trends Microbiol. 2003. V.ll. P. 94-100.

290. Roberts M.F. Osmoadaptation and osmoregulation in archaea: update 2004. // Front Biosci. 2004. V. 9. P. 1999-2019.

291. Rosenberg E. microbial surfactants. CRC Crit. Rev. Biotechnol. 1986. V.3. P. 109-132.

292. Rosenbluh A., Rosenberg E. Role of autocide AMI in development of Myxococcus xan-thus //J. Bacteriol. 1990. V. 172. P. 4307-4314.

293. Ross A.B., Redeuil K., Vigo M., Rezzi S., Nagy K. Quantification of alkylresorcinols in human plasma by liquid chromatography/tandem mass spectrometry // Rapid Comm. in Mass Spectrometry. 2010. V. 24, Iss. 5, p. 554-560.

294. Rowbury R.J. Extracellular sensors and inducible protective mechanisms // Trends Microbiol. 1999. V. 7. № 9. P. 345-346.

295. Rowbury R.J. Life science up-date. Do we need to rethink our ideas on the mechanisms of inducible process in bacteria?//Science Progress. 1998. V. 81. №3. P. 193-204.

296. Rowbury R.J. Humphrey T.J., Goodson M. Properties of an L-glutamate-indueed acid tolerance response which involves the functioning of extracellular induction components.// J. Appl. Microbiol. 1999. V 86. P. 325-330.

297. Rowbury R.J. Killed cultures of Escherichia coli can protect living organisms from acid stress. // Microbiology. 2000. V. 146, № 8, P. 1759-1760.

298. Rowbury R.J., Goodson M. Extracellular sensing and signaling pheromones switch-on thermotolerance and other stress responses in Escherichia coli // Science Progress. 2001. V. 84. P. 205-233.

299. Rowbury R.J., Goodson M. Induction of acid tolerance at neutral pH in log-phase Escherichia coli by medium filtrates from organisms grown at acidic pH //Lett. Appl. Microbiol. 1998. №26. P. 447- 451.

300. Rowbury R.J., Hussain N.H. The role of regulatory gene products in alkali sensitization by extracellular medium components in Escherichia coli // Lett. Appl. Microbiol. 1998. № 27. P. 193-197.

301. Rusting R.L. Why do we age // Sei. Amer. 1992. V. 267. P. 86-95.

302. Salmon K.A., Hung S.-P., Steffen N.R., Krupp R., Baldi P., Hatfield G.W., Gunsalusa R.P. Global gene expression profiling in Escherichia coli Kl2. Effects of oxygen availability and Acr A//J. Biol. Chem. 2005. V. 280. №15. P. 15084-15096.

303. Salmond G.P.C., Bycroft B.W., Stewart G.S.A.B., Williams P. The bacterial "enigma": cracking the code of cell-cell communication.//Mol. Microbiol. 1995. V.16. № 4. P. 615-624.

304. Samartzidou H., Mehrazin M., Xu Z.H. Benedic M.J., Delcour A.H. Cadaverine inhibition of porin plays a role in cell survival at acidic pH // J. Bacteriol. 2003. V. 185. P. 13-19.

305. Sambrook J., Fritsch E.F. and Maniatis T. Molecular cloning. 2nd edition. Cold Spring Harbor Laboratory Press. 1989. V. 3. P. A. 3.

306. Sauer K., Camper A.K., Erlich G.D., Costerton J.W., Davies D.G. Pseudomonas aeruginosa displys multiple phenotypes during development as a biofllm // J. of Bacteriol. 2002. Vol. 184. №4. P. 1140-1154.

307. Saunders J. N. The genetic basis of phase and antigenic variation in bacteria // Antigenic Var. Infec. Diseases. Oxford. 1986. P.57-76.

308. Schein C.H. Solubility as a function of protein structure and solvent components // Bio/technology. 1990. V. 8. P. 308-317.

309. Schmidt G., Zink R. Basic features of the stress response in three species of bifidobacteria: B.longum, B.adolescentis, and B.breve // Int. J. Food Microbiol. 2000 V. 55 P. 41-45.

310. Schumann W. The Bacillus subtilis heat shock stimulon. Cell Stress Chaperones. 2003. V. 8. No 3. P. 207-217.

311. Sewertzowa L.B. Uber den Einflub der mitogenetischen Strahlen auf die Vermehrung der Bacterien.//Boil. Zentralbl. 1929. V. 49. P. 212-225.

312. Shapiro D.A., Dworkin M. (Eds.). Bacteria as multicellular organisms / N-Y.: Oxford Univ. Press, 1997. 456 p.

313. Shapiro J.A. The significances of bacterial colony patterns // BioEssays. 1995. V. 17. № 7. P. 597-607.

314. Sheffler I.E. Mitochondria. Wiley-Liss. N-Y. 1999. P. 367.

315. Shimkets, L.J. and Dworkin, M., Excreted adenosine is a cell-density signal for the initiation of fruiting body formation in Myxococcus xanthus, Devel. Biol., 1981, vol. 84, pp. 51-60.

316. Skorko-Glonek J., Zurawa D., Kuczwara E., Wozniak M., Wypych Z., Lipinska B. The Escherichia coli heat shock protease HtrA participates in defense against oxidative stress // Mol. Gen. Genet. 1999. V. 262. № 2. P. 342-350.

317. Smithies W.R., Gibbons N.E. The deoxyribose nucleic acid slime layer of some halo-philic bacteria. // Can. J. Microbiol. 1955. V.l. № 8. P. 614-621.

318. Solomon J.M., Grossman A.D. Who's competent and when: regulation of natural genetic competence in bacteria // Trends Genet. 1996. T. 12. № 1. P. 150-155.,

319. Solyanikova I.P., Konovalova E.I., El-Registan G.I., Solovieva L.A. Effect of alkylhy-droxybenzenes on the properties of dioxygenases.// J. of Env. Sei. and Health. 2010. V.45. P. 844-852.

320. Somero G.N. Adaptations to High Hydrostatic Pressure. //Annual Review of Physiology. 1992. V. 54, P. 557-577.

321. Sousa E.E.S., Tuckerman J.R., Gonzalez G., Gilles-Gonzalez M.A. DosT and DevS are oxygen-switched kinases in Mycobacterium tuberculosis // Protein Sei. 2007. V. 16. P. 1708-1719.

322. Spector M.P. The starvation-stress response (SSR) of Salmonella. Adv. Microb. Physiol. 1998. V. 40. P. 233-279.

323. Spoering A.L., Lewis K. Biofilm and planktonic cells of Pseudomonas aeruginosa have similar resistance to killing by antimicrobials//J. Bacteriol., 2001. V. 183. P. 6746-6751.

324. Spreti N., Di Profio P., Marie L., Bufali S., Brinchi L., Savelli G. Activation and stabilization of a-chymotrypsin by cationic additives. // Eur. J. Biochem. 2001. V. 268, P. 64916497.

325. Srinivasan S., Ostling, J., Charlton, T., de Nys, R., Takayama, K., Kjelleberg, S. Extracellular signal molecule(s) involved in the carbon starvation response of marine Vibrio sp. strain S14. J Bacteriol. 1998. V. 180, P. 201-209.

326. Srivatsan A., Wang J.D. Control of bacterial transcription, translation and replication by (p)ppGpp. // Curr. Opin. Microbiol. 2008. V. 11. № 2. P. 100-105.

327. Stasiuk M., Kozubek A. Biological activity of phenolic lipids. Cell. Mol. Life Sci. 2010. V. 67. P. 841-860.

328. Stephens K., Pheromones among prokaryotes // CRC Crit. Rev. Microbiol., 1986, vol. 13, no. 4, pp. 308-344.

329. Stevenson L.G., Rather P.N. A novel gene involved in regulating the flagellar gene cascade in Proteus mirabilis. J. Bacteriol. 2006. V. 188. No 22. P. 7830-7839.

330. Stok J.B., Ninfa A.J., Stosk A.N. Protein phosphorilation and regulation of adaptive responses in bacteria//Microbial. Rev. 1989. V. 53. № 4. P. 450-490.

331. Stoodley P., Dodds I., Boyle J. D., Lappin-Scott H. M. Influence of hydrodynamics and nutrients on biofilm structure // J. Appl. Microbiol. 1999. vol. 85. P. 19-28.

332. Stoodley P., Wilson S„ Hall-Stoodley L., Boyle J.D. Lappin-Scott H.M., Costerton J.W. Growth and detachment of cells clusters from mature mixed-species biofilmss // 2001. V. 67. No. 12. P. 5608-5613.

333. Storz G., Hengge-Aronis R. Bacterial stress responses. Washington: ASM Press DC; 2000.

334. Storz G., Tartaglia L.A., Ames B.N. Transcription regulator of oxidative stress-inducible genes: direct activation by oxidation // Science. 1990. V. 248. P. 189-194.

335. Storz G., Toledano M. Regulation of bacterial gene expression in response to oxidative stress // Methods in Enzymology. 1994. V. 236. Part B. P. 196-207.

336. Stozky G., Schenck S. Volatile organic compounds and microorganisms. // CRC Critical review in microbiology. 1976. V. 4. No 4. P.333-382.

337. Sudo S.Z., Dworkin M. Comparative biology of procaryotic resting cells // Adv. Microbiol. Physiol. 1973. V.9. P. 153 224.

338. Sugiyama K., Izawa S., Inoue Y. The Yaplp-dependent induction of glutathione synthesis in heat shock response of Saccharomyces cerevisiae // J. Biol. Chem. 2000. V. 275. № 20. P. 15535-15540.

339. Summer K-H., Goggelmann W. Mutagenesity of l-fluoro-2,4-dinitrobenzene is affected by bacterial glutatione.//Mutat Res. 1980.V.70. P. 173-178.

340. Sutherland I. W.,. Hughes K. A., Skillman L. C., Tait K. The interaction of phage and biofilms// FEMS Microbiology Letters. 2004 V.232. P. 1-6.

341. Sutherland I.W. Biofïlm exopolysaccharides: a strong and and sticky framework // Microbiology. 2001. V. 147. P. 3-9.

342. Svensater G., Sjogreen B., Hamilton I.R. Multiple stress responses in Streptococcus mu-tans and the induction of general and stress-specific proteins // Microbiol.-UK. 2000. V. 146. Part l.P. 107-117.

343. Tartaglia L.A., Storz G. and Ames B.N.// Identification and molecular analysis of oxyR-regulated promoters important for the bacterial adaptation to oxidative stress. Mol. Biol., 1989, V.210, P. 709-719.

344. Tatzelt J., Prusiner S.B., Welch W.J. Chemical chaperones interfere with the formation of scrapie prion protein// EMBO J. 1996. V. 15. № 23. P. 6363-6373.

345. Timasheff S.N. Water as ligand: preferential binding and exclusion of dénaturants in protein unfolding 1992, v. 31, p. 9857-9864.

346. Tkachenko A., Nesterova L., Pshenichnov M., The role of natural polyamine putrescine in defence against oxidative stress in Escherichia coli. // Arch. Microbiol. 2001. V. 176. P. 155-157.

347. Tluscik F., Kozubek A., Mejbaum-Katzenellenbogen W. Alkylresorcinols in rye (Secale cereale L.) grains //Act. Soc. Bot. Pol. 1981. V. 54. № 7. P. 645-651.

348. Tran L.T., Inoue Y., Kimura A. Oxidative stress response in yeast: purification and some properties of a membrane-bound glutathione peroxidase from Hansenula mrakii // Biochem. Biophys. Acta. 1993. V. 1164. P. 166-172.

349. Turakhia M.H., Kooksey K.E., Charaklis W.G. Influence of a calcium-cpecific chelant on biofilm removal.// Appl.Environ.Microbiol. 1983. V.46. P. 1236-1238.

350. Y.E. Vaskovsky, N.A. Latyshev, Modified Jungnickel's reagent for detecting phospholipids and other phosphorus compounds on thin-layer chromatograms, J. Chromatogr. 115 (1975) 246-249.

351. Van der Vies S.M., Georgopoulos C. Regulation of chaperonin gene expression // Chap-eronins (Series: Cell Biology, A Series of Monographs). 1996. P. 137-166.

352. Van der Woude M., Bäumler A.J. Phase and Antigenic Variation in Bacteria // Clinical Microbiology Reviews. 2004. Vol. 17, No. 3. P. 581-611

353. Van Loosdrecht M.C.H. Bacterial Adhesion. Wageningen. 1988. 200 p.

354. Van Zyl P.J., Kilian S J., Prior B.A. The role of an active mechanism in glycerol accumulation during osmoregulation by Zygosaccharomyces rouxii // Appl. Microbiol. Biotech-nol. 1990. V. 34 № 2. P. 231-235.

355. Vandevivere P., Kirchman D.L. Attachments stimulatesexopolysoccharide synthesis by a bacterium. //Appl.Environ.Microbiol. 1993.V.59.No 10. P. 3280-3286.

356. Varon, M., Teitz, A., and Rosenberg, E., Myxococcus xanthus autocide AMI, J.Bacteriol., 1986, vol. 167, pp. 356-361.

357. Vater J. Lipopeptides, an attractive class of microbial surfactants // Progr. Colloid. Po-lym. Sci. (Poly. Colloid Syst.) 1986. Vol. 72. P. 12-18.

358. Velicer G., Kroos L., Lenski R.E. Developmental cheating in the social bacterium Myxococcus xanthus //Nature. 2000. V. 404. C. 598-601.

359. Velraeds M.M., van der Mei H.C., Reid G., Busscher H.J. Inhibition of initial adhesion of uropathogenic Enterococcus faecalis by biosurfactants from Lactobacillus isolates // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V. 62. P. 1958-1963.

360. Visick K.L., McFall-Ngai M.J. An exclusive contrast specificity in the Vibrio fischeri -Euprymna scolopes partnerst. // J. Bacteriol. 2000. V. 182. P. 1779-1787.

361. Vorobjeva L.I., Khodarv E.Yu., Cherdinceva T.A. The study of induced antimutagenesis of propionic acid bacteria. // J. Of Microbiol. Metii. 1996. V. 24. P. 249-258.

362. Wagner M., Loy A., Nogueira R., Purkhold U., Lee N., Daims H. Microbial community composition and function in wastewater treatment plants// Antonie Leeuwenhoek. 2002. V. 81. P.665-680.

363. Wang B., and Kuramitsu H. K. A pleiotropic regulator, Frp, affects exopolysaccharide synthesis, biofilm formation, and competence development in Streptococcus mutans. Infect. Immun. 2006. V. 74. P. 4581-4589.

364. Wang D., Ding X., Rathr P.N. Indole can act as an extracellular signal in Escherichia coli //J. Bacteriol. 2001. V.183. P. 4210-4216.

365. Wang J.Y., Syvanen M. DNA twist as a transcriptional sensor for environ-mental changes //Mol. Microbiol. 1992. V. 614. P. 1861-1866.

366. Ward D. M., Ferris M. J., Nold S. C., Bateson M. M. A natural view of microbial biodiversity within hot spring cyanobacterial mat communities // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998. V. 62. P. 1353-1370.

367. Watnick P. I., Kolter R. Steps in the development of a Vibrio cholerae biofilm//Mol. Microbiol. 1999. V. 34. P. 586-595.

368. Watson S.P., Clements M.O., Foster S.J. Characterization of starvation-survival response of Staphylococcus aureus // J. Bacteriol. 1998. V. 180. № 7. P. 1750-1758.

369. Webb J. S., Thompson L. S., James S., Charlton T., Tolker-Nielsen T., Koch B., Givskov M., Kjelleberg S. Cell death in Pseudomonas aeruginosa biofilm development//J. Bacteriol. 2003. V. 185. P. 4585^1592.

370. Weber M.H., Marahiel M.A. Bacterial cold shock responses. Sci. Prog. 2003.V. 86. Pt. 1-2. P.9-75.

371. Ween O., Gaustad P., Havarstein L.S. Identification of DNA binding sites for ComE, a key regulator of natural competence in Streptococcus pneumoniae // Mol. Microbiol. 1999. V. 33. №4. P. 817-827.

372. Wei J.-R., Tsai Y.-H., Horng Y.-T., Soo P.-C., Hsieh S.-C., Hsueh P.-R., Horng J.-T., Williams P., Lai H.-C. A Mobile Quorum-Sensing System in Serratia marcescens. J. Bacteriol. 2006.V. 188. P. 1518-1525.

373. Weinack O.M., Snoeyenbos G.H., Smyser C.F. A supplemental test-system to measure competitive exclusion of Salmonellae by native microflora in chicken gut. // Avian. Dis. 1979. V. 23. № 4. P. 1019-1030.

374. Welch T.J., Farewell A., Neidhardt F.C. and Bartlett D.H.// Stress response of Escheri-hia coli to elevated hydrostatic pressure. J. Bacteriol., 1993, V. 175, № 22, P.7170-7177.

375. Welch W.J. and Brown C.R. Influence of molecular and chemical chaperones on protein folding. // Cell Stress Chaperones. 1996. V. 1. № 2. P. 109-115.

376. Welsh D.T. Ecological significance of compatible solute accumulation by microorganisms: from single cells to global climate. // FEMS Microbiol. Rev. 2000. V. 24. P. 263-290.

377. Wessman G.E. and Miller D.J. Biochemical and Physical Changes in Shaken Suspensions ofPasteureliapestis. //Appl Microbiol. 1966. V. 14. № 4. P. 636-642.

378. Wheatley R.E., Millar S.E., Griffits D.W. The production of volatile organic compounds during nitrogen transformation in soils.// Plant and soil. 1996. V. 181. P. 163-167.

379. Whitehead N.A., Barnard A.M.L., Slater H., Simpson N.J.L., Salmond G.P.S. Quorym-sensing in Gram-negative bacteria //FEMS Microbiol. Rev. 2001. V. 25. P. 365-404.

380. Whiteley M., Lee K.M., Greenberg E.P. Identification of genes controlled by quorum sensing in Pseudomonas aeruginosa // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1999. V. 96. № 24. P. 13904-13909.

381. Wick L.M., Egli T. Molecular components of physiological stress responses in Escherichia coli. Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. 2004.V.89. P. 1-45.

382. Wildiers E. Nouvelle substance indispensable au développement de la levure. // La Cellule, 1901.V. 18, P. 313-333.

383. Williams H.N., Kelly J.Y., Baer M.L., Turng E.F.// Can. J. Microbiol. 1992. V. 41. P. 1142-1147. ,

384. Winkler K., Kienle I., Burger M., Wagner L.C., Holzier H. Metabolic regulation of the trehalose content of vegetative yeast // FEBS Lett. 1991. V. 291. № 2. P. 269-272.

385. Wireman, J. W., Dworkin M. Developmentally induced autolysis during fruiting body formation by Myxococcus xanthus. // J. Bacteriol. 1977. V. 129. P. 798-802.

386. Wirth R., Muscholl A., and Wanner G. The role of pheromones in bacterial interactions.// Trends in Microbiology. 1996. V. 4. P.96-103.

387. Wiuff C., Zappala R.M., Regoes R.R., Garner K.N., Baquero F., Levin B.R., Phenotypic tolerance: antibiotic enrichment of noninherited resistance in bacterial populations //Antimicrob. Agenta Chemother. 2005. V. 49. P. 1483-1494.

388. Wolff L.K., Ras G. Einige Untersuchungen über die mitogenetischen Strahlen von Gur-witsch.// Centr. Bact. I Orig. 1931. V. 123. P. 257.

389. Woods M.L., Bonfïglioli R., MsGee L.A. Georgopoulos C. Synthesis of select group of proteins by Neisseria gonorrhoeable in response to thermal stress // Infect, and Immun. 1990. V. 58. №3. P. 719-725.

390. Woojin K.S., Perl L., Hyeon P.J., Tandianus J.E., Noel D.W. // Assessment of stress response of the probiotic Lactobacillus acidophilus. Current Microbiol. 2001. V. 43. № 5. P. 346-350.

391. Yakimov M.M., Abraham W.-R., Meyer H., Guiliano L., Golyshin P.N. Structural characterization of lichenysin A components by fast atom bombardment tandem mass spectrometry // Biochim. Biophys. Acta. 1999. № 1438. P. 273-280.

392. Yakimov M.M., Timmis K.N., Wray V., Fredrickson H.L. Characterization of a new lipopeptide surfactant produced by thermotolerant halotolerant subsurface Bacillus licheni-formis В AS 50 // Appl. Env. Microbiol. 1995. Vol. 61. № 5. P. 1706-1713.

393. Yarmolinsky M.B. Programmed cell death in bacterial populations // Science. 1995. V. 267. P. 836-837.

394. Zgurskaya H.I., Keyhan M., Matin A. The DS level in starving Escherichia coli cells increases solely as a result of its increased stability, despite decreased synthesis // Mol. Microbiol. 1997. V. 24. P. 643-651.

395. Zheng M., Aslund F., Storz G. Activation of the OxyR transcription factor by reversible disulfide bond formation // Science. 1998. V. 279. P. 1718-1721.

396. Zheng M., Storz G. Redox sensing by prokaryotic transcription factors // Biochem. Pharmacol. 2000. V. 59. № 1. P. 1-6.

397. Zhou Y., Gottesman S. Regulation of proteolysis of the stationary-phase sigma factor RpoS //J. Bacteriol. 1998. V. 180. № 5. P. 1154-1158.

398. Zitomer R.S., Lowry C.V. Regulation of gene expression by oxygen in Saccharomyces cerevisiae//Microbiol. Reviews. 1992. V. 56. №1. P. 1-11.

399. Zobell C.E. The effect of solid surfaces upon bacterial activity//J.Bacteriol. 1943. V.46. P.39- 56.

400. Zobell C.E. The influence of solid surfaces upon the physiological activities of bacteria in sea water//J. Bacteriol. 1937. V.33. P. 86.

401. Zuckerberg A., Diver A., Peeri Z., Gutnik D.G., Rosenberg E. Emulsifier of 1 Ar-throbacterO RAG-1: chemical and physical roperties.//Appl.Environ.Microbiol. 1979. V.37. P. 414-420.

402. Адхья С. Регуляция экспрессии генов: опероны и регулоны. В книге: Современная микробиология. Прокариоты. Под ред. Ленгеллера Й., Древса Г., Шлегеля Г. М. Мир. 2005. Т. 1.

403. Акименко В.К„ Альтернативные оксидазы микроорганизмов, М. : Наука, 1989, 263 с.

404. Алейникова Т.Л., Рубцова Г.В. Руководство к практическим занятиям по биологической химии / Под. ред. А.Я. Николаева М.: Высшая школа, 1988. 239 с.

405. Алиханян С.И. Селекция промышленных микроорганизмов. М: Наука. — 1968. -С.14.

406. Анализ рынка пива в России в 2002-2008 гг., оценка влияния кризиса и прогноз на 2009-2010 гг. Электронный ресурс, http://mi.aup.ru/res/98/562949956961398.html

407. Андреищева Е.Н., Соарес М.И.М., Звягильская М.А. Энергетический обмен дрожжей Candida (Yarrowia) lipolytica в норме и при солевом стрессе // Физиология растений. 1997. Том 44. №5. С. 658-664.

408. Ануфриев Л.Ф. К вопросу о диссоциации в культуре В. thuringiensis var.dendrolimus в жидких и твердых среды среды. В кн. Биология микроорганизмов и их использование в народном хозяйстве. Иркутск. 1979. - С. 118-121.

409. Арзуманян В.Г., Воронина Н.А., Плакунов В.К., Беляев С.С. Степень галофильно-сти Rhodococcus erythropolis и Halobacterium salinarum определяется парциальным давлением кислорода// Микробиология. 2000. Т. 68. №2. С. 290-292.

410. Бабусенко Е.С., Эль-Регистан Г.И., Градова Н.Б., Козлова А.Н., Осипов Г.А. Исследование мембранотропных ауторегуляторных факторов метанокисляющих бактерий //Успехи химии. 1991. Т. 60. Вып.11. С. 2362 2373.

411. Багаева Т.В., Золотухина Л.М. Образование углеводородов сульфатредуцирую-щими бактериями в условиях хемолитогетеротрофного роста. // Микробиология, 1994. Т.63 .No 6. С. 993-995.

412. Баснакьян И.А. Стресс у бактерий. М. Медицина. 2003. 136 с.

413. Батраков С.Г., Придачина Н.Н., Кругляк Е.Б. и др. Необычный полиольный липид, 2-С^-талопиранозил-5-алкил-(С19-С21)-резорцин, из азотфиксирующей бактерии Azotobacter chroococcum.// Биоорг. химия. 1982. Т.8. С. 980-986.

414. Батраков С.Г., Эль-Регистан Г.И., Придачина Н.Н., Ненашева В.А., Козлова А.Н., Грязнова М.Н., Золотарева И.Н., Тирозол ауторегуляторный фактор dl Saccharomyces serevisiae // Микробиология. 1993. Т. 62. Вып. 4. С. 633 - 638.

415. Беляков В.Д., Ряпис Л.А., Илюхин В.И. Псевдомонады и псевдомонозы // М.: Медицина, 1990.-С. 224.

416. Биологические проблемы старения и замедение старения антиоксидантами. Сб. Итоги науки и техники. Сер. Общие проблемы биологии. Под ред. Бурлаковой Е.Б. и Наджаряна Т.Л. Т. 5. М. ВИНИТИ. 1986. С. 1-240.

417. Бирюкова Е. Н., Аринбасарова А. Ю., Меденцев А. Г., Адаптация дрожжей Yar-rowia lipolytica к этанолу. // Микробиология, 2009, Т. 78, № 2, С. 186-191.

418. Бирюкова Е.И., Меденцев А.Г., Аринбасарова А.Ю., Акименко В.К. Устойчивость дрожжей Yarrowia lipolytica к окислительному стрессу. // Микробиология. 2006. Т. 75. № 3. С. 293-298.

419. Бирюкова E.H., Меденцев А.Г., Аринбасарова А.Ю., Акименко В.К. Изменение дыхательной активности клеток дрожжей Yarrowia lipolytica в условиях окислительного и теплового стрессов // Микробиология. 2008. Т. 77. № 4. С. 448—452.

420. Большой толковый словарь русского языка. Гл. ред. С.А. Кузнецов. С-Пб.: «Норинт», 2000. 1536 с.

421. Бояркин А.Н. Быстрый метод определения активности пероксидазы // Биохимия. 1951. Т. 16. С. 352-355.

422. Брюханов А.Л., Нетрусов А.И. Аэротолерантность строго анаэробных микроорганизмов: факторы защиты от окислительного стресса. // Прикладная биохимия и микробиология. 2007. Т.43. № 6. С. 635-652.

423. Бурлакова Е.Б. Биоантиоксиданты: вчера, сегодня, завтра. Биологическая кинетика. Сб. обзорных статей. М., 2005. Т. 2. С. 10-45.

424. Бут А. Адаптация к экстремальным средам. В кн. Современная микробиология. Прокариоты. В 2х томах. Т. 2. С. 122-146. М. Мир. 2005.

425. Бухарин О.В., Гинцбург А.Л., Романова Ю.М., Эль-Регистан Г.И. Механизмы выживания бактерий. М.: Медицина. 2005. 367 с.

426. Бухарин О.В., Гриценко В.А. Экологическая детерминированность внутривидового разнообразия патогенных бактерий // Журн. микробиол., эпдемиол. и иммунобиол. — 2000. № 1.С. 103-106.

427. Варвашевич Т.Н., Ковтун Г.Ю., Никифорова Л.С., Сидорова В.Е., Богомазова Т.В. Возможные механизмы адаптации микробных популяций к низким положительным температурам // Микробиол. журн. 1991. Т. 53. № 1. С. 22-27.

428. Веселова Т.В., Веселовский В.А. Стресс у растений (Биофизический подход) М. Изд. МГУ. 1993. 144 с.

429. Волошин С.А., Капрельянц A.C. Межклеточные взаимодействия в бактериальных популяциях//Биохимия. 2004. Т. 69.№11. С. 1555-1564.

430. Воробьёва Л.И. Стрессоры, стрессы и выживаемость бактерий. Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т.40. № 3. С. 261-269.

431. Воробьева Л.И., Абилев С.К. Антимутагенные свойства бактерий // Прикл. биохимия и микробиология. 2002. Т. 38. № 2. С. 115-127.

432. Воробьева Л.И., Алтухова Е.А., Наумова Е.С., Абилев С.К. Десмутагенное действие культуральной жидкости, полученной в результате пропионовокислого брожения //Микробиология. 1993. Т. 62. №. 6. С. 1093-1100.

433. Воробьева Л.И., Ходжаев У.Ю., Пономарева Г.М. Внеклеточный белок Luteococcus japonicus subsp. casei реактивирует клетки, инактивированные ультрафиолетовым облучением и нагреванием // Микробиология. 2003. Т. 72. №. 4. С. 482487.

434. Воробьева Л.И., Чердынцева Т.А., Абилев С.К. Антимутагенное действие бактерий против мутагенеза, индуцируемого 4-нитрохинолон-1-оксидом у Salmonella ty-phimurium // Микробиология. 1995. Т.64. №. 2. С. 228 233.

435. ВоюцкийС.С. Курс коллоидной химии. М. «Химия», 1975. С. 189.

436. Гейдебрехт О.В., Арзуманян В.Г., Плакунов В.К., Беляев С.С. Влияние степени аэрации среды на галотолерантность дрожжей родов Candida,' Rhodotorula и Malassezia // Микробиология. 2003. Т. 72. №3. С. 312-319.

437. Гёсслер К. О сущности жизни. М. Прогресс. 1984. 187 с.

438. Головлев Е.Л. Введение в биологию стационарной фазы бактерий // Микробиология. 1999. Т. 68. № 5. С. 623-631.

439. Головлев Е.Л. Метастабильность фенотипа у бактерий // Микробиология. 1998. -Т. 67, №2. С. 149-155.

440. Головлев Е.Л. Реакция бактериальных клеток на холодовый шок на уровне динамики хромосомы, транскрипции и трансляции // Микробиология. 2003. Т. 72. № 1. С. 5-13.

441. Грачева И. М. «Технология ферментных препаратов» М. «Элевар» 2000. 511с.

442. Грачева И.М., Грачев Ю.П., Мосичев М.С., Борисенко Е.Г., Богатков C.B., Гернет М.В. Лабораторный практикум по технологии ферментных препаратов. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1982. С. 36-57, 186-198.

443. Гурвич A.A. Проблема митогенетического излучения как аспект молекулярной биологии. Москва. Медицина. 1968.

444. Гурвич А.Г, Гурвич А.Д. Митогенетическое излучение: физикохимические основы и приложения в биологии и медицине. М. Медгиз. 1945.

445. Гусева М.А., Эпова Е.Ю., Ковалёв Л.И., Шевелёв А.Б. Изучение механизмов адаптации дрожжей Yarrowia lipolytica к щелочным условиям среды методами протеоми-ки.// Прикладная биохимия и микробиология. 2010. Т.46. № 3. С. 336-341.

446. Дедюхина Э.Г., Желифонова В.П., Ерошин В.К. Углеводороды микроорганизмов. //Успехи микробиологии. 1980. Т. 15. С. 84-98.

447. Демкипа Е.В., Соина B.C., Эль-Регистан Г.И. Образование покоящихся форм Arthrobacter globiformis в автолизирующихся суспензиях // Микробиология. 2000. Т. 69. №3.383-388.

448. Демкина Е.В., Соина B.C., Эль-Регистан Г.И., Звягинцев Д.Г. Репродуктивные покоящиеся формы Arthrobacter globiformis// Микробиология. 2000. Т. 69. №3. С. 377382.

449. Деткова E.H., Болтянская Ю.В. Осмоадаптация галоалкалофильных бактерий: роль осморегуляторов и возможность их пратического применения. // Микробиология. 2007. Т. 76. № 5. С. 581-593.

450. Доронина Н.В., Сахаровский В.Г., Драчук C.B., Троценко Ю.А. Органические ос-мопротекторы аэробных умеренно галофильных метилобактерий // Микробиология. 1998. Т. 67. №4. С. 458-463.

451. Дорошенко Е.В., Лойко Н.Г., Ильинская О.Н., Колпаков А.И., Горнова И.В., Эль-Регистан Г.И. Характеристика диссоциантов Bacillus cereus шт. 504 // Микробиология. 2001. Т. 70. № 6. С. 811-819.

452. Дуда В.И., Пронин C.B., Эль-Регистан Г.И., Капрельянц A.C., Митюшина Л.Л. Образование покоящихся рефрактерных клеток у Bacillus cereus под воздействием ау-торегуляторного фактора // Микробиология. 1982. Т. 51. № 1. С. 77 81.

453. Ждан-Пушкина С.М. Основы роста культур микроорганизмов. Ленинград.: Изд. Лен. Ун-та. 1983. 234 с.

454. Жизнь микробов в экстремальных условиях. Под ред. Кашнера Д. М.Мир.1981. 520 с.

455. Жилина Т.Н., Турова Т.П., Кузнецов Б.Б., Кострикина H.A., Лысенко A.M. Osenia sivashensis sp. nov. новая умеренно галофильная анаэробная бактерия из лагун Сиваша// Микробиология. 1999. Т. 68. № 4. С. 519-527.

456. Звягинцев Д.Г. Взаимодействие микроорганизмов с твердыми поверхностями. М. Изд-воМГУ. 1973.

457. Звягинцев Д.Г., Гузев B.C., Гузева И.С. Адсорбция микроорганизмов в связи с этапами их развития //Микробиология. 1977. Т. 46. № 2. С. 295-299.

458. Зенков Н.К., Ланкин В.З., Меныцикова Е.Б. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты. М.: МАИК Наука/Интерпериодика, 2001. 343 с.

459. Зимон А.Д., Лещенко Н.Ф. Коллоидная химия. М.: АГАР, 2001. 320 с.

460. Иерусалимский Н.Д. Проблема онтогенеза бактерий и пути к ее разрешению // Тр. ИНМИ АН СССР, 1951. С. 5-43. (Обязательно процитировать)

461. Ильина Т.С., Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Биоплёнки как способ существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина: феномен, генетический контроль и системы регуляции их развития// Генетика. 2004. Т. 40. С. 1445-1456.

462. Казначеев В.П., Михайлова Л.П. Биоинформационная функция естественных электромагнитных полей. Наука. Новосибирск. 1985.

463. Казначеев В.П., Михайлова Л.П. Сверхслабые излучения в межклеточных взаимодействиях. Наука. Новосибирск. 1981.

464. Калакуцкий Л.В., Агре Н.С. Развитие актиномицетов. М.: Наука, 1977. 286 с.

465. Капрельянц A.C., Скрыпин В.И., Эль-Регистан Г.И., Островский Д.Н., Дуда В.И. Изменение структурного состояния мембран M. lysodeikticus под влиянием препаратов ауторегуляторных факторов dl // Прикл. биохим. и микробиол., 1985, Т.21, № 31. с. 378-381.

466. Карпекина Т.А., Степаненко И.Ю., Крылова Е.И., Козлова А.Н., Грачёва И.М., Эль-Регистан Г.И. Участие микробных алкилоксибензолов в регуляции автолитиче-ской деструкции дрожжевых клеток // Микробиология. 2002. Т. 71. № 5. С. 611-618.

467. Кейтс М. Техника липидологии. М. Мир. 1975.

468. Кокоева М.В., Плакунов В.К. Возможность модификации осмочувствителыюсти экстремально-галофильных архебактерий. //Микробиология. 1993. Т.62. № 5. С. 825834.

469. Комарова Т.И., Поршнева О.В., Коронелли Т.В. Образование трегалозы клетками R- и S-вариантов Rhodococcus erythropolis // Микробиология. 1998. Т. 67. № 3. С. 428431.

470. Конев C.B. Структурная лабильность мембран и регуляторные процессы. М. Наука и техника. 1987. 240 с.

471. Конев C.B., Аксенцев C.JL, Черницкий Е.А., Кооперативные переходы белков в клетке. Минск. Наука и техника. 1970. 230 с.

472. Конев C.B., Мажуль В.М. Межклеточные контакты. Минск. Наука и техника. 1977. 290 с.

473. Коновалова Е.Ю., Эль-Регистан Г.И., Бабьева И.П. Динамика и накопление ауторегуляторных факторов di и d2 дрожжами Rhodosporidium toruloides. II Биотехнология. 1985, № 3. С. 71 74.

474. Краткий аналитический отчёт "Рынок лакокрасочных материалов". (27.04.2010) -с сайта http://www.himtrade.ru/info/st8.htm

475. Кузнецов В.Д. Изучение изменчивости актиномицетов продуцентов антибиотиков Антибиотики. 1972. Т. 17. № 7. С. 666-674.

476. Кузнецов В.Д. Спонтанная изменчивость актиномицетов продуцентов антибиотиков и стабилизация их биосинтетической активности и таксономических свойств / Док. дис. ИНМИ АН СССР. 1974.

477. Кунтиков Е. И., Горленко В. М. Взаимозависимость гало- и термотолерантности у аноксигенных фототрофных бактерий // Микробиология. 1998. Т. 67. №3. С. 298-304.

478. Ланка Э., Пансеграу В. Обмен генетической информацией между микрорганизма-ми. В кн. Современная микробиология. Прокариоты. В 2х томах. Т. 1. С. 473-502. М. Мир. 2005.

479. Ленгелер Й., Постма П. Общие регуляторные сети и пути передачи сигналов. В кн. Современная микробиология. Прокариоты. В 2х томах. Т. 2. С. 608-614. М, Мир. 2005.

480. Лойко Н.Г., Козлова А.Н., Осипов Г.А., Эль-Регистан Г.И. Низкомолекулярные ауторегуляторы бактерий Thioalkalivibrio versutas и Thioalkalimicrobium aerophilum // Микробиология. 2002. Т. '71. № 3. С. 308-315.

481. Лущак В.И. Окислительный стресс и механизмы защиты от него у бактерий // Биохимия. 2001. Т. 55. № 5. С. 592-609.

482. Лыоис К. Персистирующие клетки и загадка выживания биопленок // Биохимия. 2005.Т. 70. С. 327-336.

483. Максимов В.Н., Милько Е.С., Ильиных И.А. Влияние углеродного, азотного и фосфорного питания на рост R-, S- и М-диссоциантов Pseudomonas aeruginosa в смешанных культурах // Микробиология. 1999. Т. 68, № 4. С. 485-490.

484. Максимов В.Н., Милько Е.С., Ильиных И.А. Влияние углеродного, азотного и фосфорного питания на рост R-, S- и М-диссоциантов Pseudomonas aeuginosa // Микробиология. 1999 б. Т.68. № 2. С. 206-210.

485. Мальцев П. М. Химико-технологический контроль производства солода и пива. М., «Пищевая промышленность», 1976. 446с.

486. Мартиросова Е. И., Карпекина Т. А., Эль-Регистан Г. И. Модификация ферментов естественными химическими шаперонами микроорганизмов // Микробиология 2004. Т. 73. №5. С. 708-715.

487. Матвеева Н.И, Воронина H.A., Борзенков И.А., Плакунов В.К., Беляев С.С. Состав и количественное содержание осмопротекторов в клетках нефтеокисляющих бактерий при разных условиях культивирования // Микробиология. 1997. Т. 66. №1. С. 3237.

488. Матыс В.Ю., Барышникова Л.М., Головлев Е.Л. Адаптация к стрессовым условиям у представителей родов Rhodococcus и Gordona // Микробиология. 1998. Т. 67. №6. С. 743-747.

489. Меденцев А.Г., Акименко В.К. Развитие и активация цианидрезистентного дыхания у дрожжей Yarrowia lipolytica // Биохимия. 1999. Т. 64. № 8. С. 1123-1131.

490. Меденцев А.Г., Аринбасарова А.Ю., Акименко В.К. Адаптация фитопатогенного гриба Fusarium decemcellulare к окислительному стрессу // Микробиология. 2001. Т. 70. №1. С. 34-38.

491. Меденцев А.Г., Аринбасарова А.Ю., Акименко В.К. Биосинтез нафтохиноновых пигментов грибами рода Fusarium // Прикладная биохимия и микробиология, 2005, Т. 41, №5, С. 573-577.

492. Меденцев А.Г., Аринбасарова А.Ю., Акименко В.К. Регуляция и физиологическая роль цианидрезистентной оксидазы у грибов и растений // Биохимия. 1999. Т. 64. Вып. 11. С. 1457-1472.

493. Мейсель М.Н. О биологическом действии ионизирующих излучений на микроорганизмы. Действие облучения на организм. Докл. сов. делегации на Междунар. конф. по мирн. использов. атомн. энергии. Изд-во АН СССР, 1958. С. 78-111.

494. Мейсель М.Н., Кондратьева Т.М. О ранних изменениях в клетках культур тканей под влиянием рентгеновских лучей // Вопросы радиобиологии. 1956. С. 314-324.

495. Мельников Э. Э., Ротанова Т. В. Молекулярные шапероны // Биоорганическая химия, 2010, Т. 36, № 1, С. 5-14.

496. Меньшикова Е.Б., Зенков Р.К., Реутов В.П. Оксид азота и NO-синтазы в организме млекопитающих при различных функциональных состояниях // Биохимия. 2000. Т. 65. №4. С. 485-503.

497. Миллер Дж. Эксперименты в молекулярной генетике. М. Мир, 1976. С. 436.

498. Милько Е.С., Егоров Н.С. Гидрофильно-гидрофобные и адгезивные свойства диссоциантов Rhodococcus rubropertinctus//Микробиология. 1994. Т. 63. Вып. 2. С. 382-384.

499. Милько Е.С., Егоров Н.С. Влияние физико-химических факторов среды на рост диссоциантов некоторых грамположительных бактерий // Биол. науки. 1992. № 5. С. 89-96.

500. Милько Е.С., Егоров Н.С. Гетерогенность популяции бактерий и процесс диссоциации. М.: Изд-во МГУ, 1991. 142 с.

501. Милько Е.С., Ильиных И.А. Влияние пониженных концентраций углерода, азота и фосфора в среде на динамику роста трех диссоциантов Pseudomonas aeruginosa //Микробиология. 2001. Т. 70. № 5. С. 607-610.

502. Милько Е.С., Никитенко J1.A. Влияние физико-химических факторов среды на рост диссоциантов Pseudomonas aeruginosa // Прикл. биохим. и микробиол. 1998. Т. 34. №2. С. 171-174.

503. Мулюкин A.JI. «Покоящиеся формы неспорообразующих бактерий: свойства, разнообразие, диагностика». Диссертация и автореферат на соискание степени доктора биологических наук. Москва. 2010.

504. Мулюкин A.JL, Козлова А.Н., Капрельянц А.С., Эль-Регистан Г.И. Обнаружение и изучение динамики накопления ауторегуляторного фактора dl в культуральной жидкости и клетках Micrococcus luteus II Микробиология. 1996. Т. 65. Вып. 1. С. 20-25.

505. Мулюкин A.JL, Луста К.А., Грязнова М.Н., Бабусенко Е.С., Козлова А.Н. Дужа М.В., Митюшина Л.Л., Дуда В.И., Эль-Регистан Г.И. Образование покоящихся форм в автолизирующихся суспензиях микроорганизмов // Микробиология. 1997. Т. 66. №1. С. 42-49.

506. Мулюкин А.Л., Луста К.А., Грязнова М.Н., Козлова А.Н. Дужа М.В., Дуда В.И., Эль-Регистан Г.И. Образование покоящихся форм Bacillus cereus и Micrococcus luteus //Микробиология. 1996.Т. 65. №6. С. 782-789.

507. Мунблит В.Я., Тальрозе В.Л., Трофимов В.И. Термоинактивация микроорганизмов. // Москва. Наука. 1985. С. 174.

508. Нетрусов А.И., Егорова М.А., Захарчук Л.М. Практикум по микробиологии. М. Academia. 2005. 608 с.

509. Николаев Ю.А. Дистантные информационные взаимодействия у бактерий. // Микробиология, 2000. Т.69. № 5. С. 597-605.

510. Носкин JI.A., Бреслер С.Е., Смирнова И.С., Суслов A.B. Исследование индукции и репарации повреждений ДНК в гепатоцитах крыс, возникающих под действием рентгеновского излучения //Радиобиология. 1982. Т. 22. № 1. С. 44-50.

511. Обзор фармацевтического рынка по итогам первого полугодия 2009 г. http://www.remedium.ru/analytics/review/articles/detail.php ?ID=33921

512. Обзор ЦМИ «Фармэксперт» Коммерческий сектор российского фармрынка по итогам 2007 г., http://www.pharm-medexpert.ru/rating3.php

513. Октябрьский О.Н., Смирнова Г.В. Редокс-регуляция клеточных функций // Биохимия. 2007. Т. 72. Вып. 2. С. 158-174.

514. Олескин A.B., Ботвинко И.В., Цавкелова Е.А. Колониальная организация и межклеточная коммуникация у микроорганизмов // Микробиология. 2000. Т.69. № З.С. 309—327.

515. Олескин A.B., Кировская Т.А. Популяционно-коммуникативное исследовательское направление в микробиологии // Микробиология. 2006. Т.75. № 4. С. 1-6.

516. Осипов А.Н., Азизова O.A., Владимиров Ю.В. Активные формы кислорода и их роль в организме //Успехи биологической химии. 1990. Т. 31. С. 180-208.

517. Осипов Г.А., Эль-Регистан Г.И., Светличный В.А., Козлова А.Н., Дуда В.И., Ка-прельянц A.C., Помазанов В.В. О химической природе ауторегуляторного фактора d Pseudomonas carboxydoflava.//Микробиология. 1985. Т. 54. Вып.2. С. 186-190.

518. Островский Д.Н. Новые участники окислительного стресса у бактерий // Успехи биологической химии.' 1997 а. Т. 37. С. 147-169.

519. Островский Д.Н. Окислительный стресс у бактерий. 53-е Баховское чтение. Москва, 1997 б. 23 с.

520. Паников Н.С. Кинетика роста микроорганизмов: Общие закономерности и экологические приложения. М.: Наука, 1991. 311с.

521. Пивоварова Т. А., Джансугурова P.C., Каравайко Г.И. Роль экзометаболитов в устойчивости Thiobacillus ferrooxidans к молибдену // Микробиология. 1991, Т.60, № 4. С. 609-615.

522. Пирог Т.П., Гринберг Т.А., Малашенко Ю.Р. Защитные функции экзополисахари-дов, синтезируемых бактериями Acinetobacter sp. // Микробиология. 1997. Т. 66. Вып. 3. С. 335-340.

523. Плакунов В. К., Арзуманян В. Г., Воронина Н. А., Беляев С. С. Взаимосвязь кинетики роста и дыхания у родококков в присутствии высоких концентраций солей // Микробиология. 1999. Т. 68. №1. С. 40-44.

524. Плакунов В.К. Основы энзимологии. М.: Логос, 2001. 128 с.

525. Плакунов В.К., Гейдебрехт О.В., Шелемех О.В. Множественный стресс у микроорганизмов: зло или благо? Труды ИНМИ РАН. Вып. XII. 2004. М: Наука. С. 361-375 (обзор).

526. Плакунов В.К., Шелемех О.В., Кислородная регуляция метаболизма у микроорганизмов // Микробиология. 2009. Т. 78. № 5. С. 592-604.

527. Популярная медицинская энциклопедия (http://medicine-enc.net)

528. Прозоров А. А. Феромоны компетентности у бактерий. // Микробиология. 2001. Т. 70. № 1.С. 5-14.

529. Прозоров A.A. Дифференцировка клеток и ее регуляция при генетической трансформации у бактерий // Микробиология. 1997. Т. 66 . № 1. С. 5-13.

530. Прозоров A.A. Рекомбиногенные перестройки генома бактерий, и адаптация к среде обитания // Микробиология. 2001. Т. 70. № 5. С. 581-594.

531. Пронин C.B., Эль-Регистан Г.И., Шевцов В.В., Дуда В.И., Устойчивость покоящихся цистоподобных форм Bacillus cereus к воздействию высокой температуры, ультрафиолетовых лучей и низкомолекулярных спиртов // Микробиология. 1982, Т.51, С. 314-317.

532. Работнова И.Л., Позмогова И.Н., Баснакьян И.А. // Итоги науки и техники. Серия микробиология. Т. 11. М.: ВИНИТИ. 1981. 214 с.

533. Раилкин А.И. Процессы колонизации и защита от биообрастания. С.-Пб: изд-во СпбГУ. 1998. 272 с.

534. Рапопорт А.И., Пузыревская О.М., Саубенова М.Г. Полиолы и устойчивость дрожжей к обезвоживанию //Микробиология. 1988. Т. 52. № 2. С. 329-331.

535. Рихванов Е.Г., Варакина Н.Н., Русалева Т.М., Раченко Е.И., Войников В.К. Действие ингибиторов цитохроксидазного комплекса на термоустойчивость дрожжей // Микробиология. 2003. Т. 72. № 2. С. 174-179.

536. Рихванов Е.Г., Варакина Н.Н., Русалева Т.М., Раченко Е.И., Киселева В.А., Войников В.К. Изменение дыхания при действии теплового шока на дрожжи Saccharomyces cerevisiae // Микробиология. 2001. Т. 70. №4. С. 531-535.

537. Рихванов Е.Г., Варакина Н.Н., Русалева Т.М., Раченко Е.И., Киселева В.А., Войников В.К. Влияние азида натрия на устойчивость к тепловому шоку Saccharomyces cerevisiae и Debaryomyces vanriji // Микробиология. 2001а. Т. 70. № 3. С. 300-304.

538. Рогинский В.А. Фенольные антиоксиданты: реакционная способность и эффективность. М.: Наука, 1988. 247 с.

539. Романовская В.А., Соколов И.Г., Малашенко Ю.Р., Рокитко П.В. Мута-бельность эпифитных и почвенных бактерий рода Methylobacterium и их резистентность к ультрафиолетовому ионизирующему излучению // Микробиология. 1998. Т. 67. № 1. С. 106-115.

540. Рощина Е.К., Добролеж О.В., Петров JI.H. Спектрофлуориметрический анализ Escherichia coli в процессе хранения в физиологическом растворе. // Микробиология, 1984. Т. 53. №6. С. 1016-1020.

541. Рощина Е.К., Петров JI.H. Выделение белка во внеклеточное пространство как неспецифическая реакция Escherichia coli на стресс. // Микробиология, 1997. Т. 66. № 2. С. 179-184.

542. Рубан E.JI. Физиология и биохимия представителей рода Pseudomonas. М. Наука, 1986

543. Ряпис JI.A. Клоновая, фазовая изменчивость бактериальных видов и их связь с проявлениями эпидемического процесса // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммуно-биол. 1995. № 1. С. 109-111.

544. Светличный В.А., Романова А.К., Эль-Регистан Г.И. Изучение количественного содержания мембраноактивных ауторегуляторов при литоавтотрофном росте Pseudomonas carboxydoflava. // Микробиология. 1986. Т.55. С. 55-59.

545. Светличный В.А., Эль-Регистан Г.И., Романова А.К., Дуда В.И., Характеристика ауторегуляторного фактора d2, вызывающего автолиз клеток Pseudomonas carboxydoflava и Bacillus cereus// Микробиология. 1983. т. 52, с. 33 38.

546. Селье Г. Стресс без дистресса. М.: «Прогресс», 1982. 125 с.

547. Смирнова Г. В., Закирова О. Н., Октябрьский О. Н. Роль антиоксидантных систем в отклике бактерий Escherichia coli на тепловой шок // Микробиология. 2001. Т. 70. №5. С. 595-601.

548. Смирнова Г.В., Октябрьский О.Н., Глутатион у бактерий // Биохимия. 2005. Т. 70, Вып. 11, с. 1459-1473.

549. Смирнова Т.А., Диденко JI.B., Азизбекян P.P., Романова Ю.М. Структурно-функциональная характеристика бактериальных биоплёнок. // Микробиология. 2010. Т. 79. № 4. С. 435-446.

550. Соболева Е.В., Гусева А.Н. Химия горючих ископаемых. Изд. МГУ. 1998.

551. Советский энциклопедический словарь. Москва. Советская энциклопедия. 1989. С.617.

552. Современная микробиология. Прокариоты. В 2х томах. М. Мир. 2005.

553. Сузина H. Е., Мулюкин А.Л., Козлова А.Н., Шорохова А.П., Дмитриев В.В., Бари-нова Е.С., Мохова О.Н., Эль-Регистан Г.И., Дуда В.И. Тонкое строение покоящихся клеток некоторых неспорообразующих бактерий // Микробиология. 2004. Т. 73. № 4. С. 516-529.

554. Теппермен Дж., Теппермен X. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. М. Мир. 1989. 659 е.;

555. Терёшина В.М., Меморская A.C. Адаптация Flammulina velutipes к гипотермии в природных условиях: роль липидов и углеводов. // Микробиология. 2005. Т. 74. № 3. С. 329-334.

556. Терёшина В.М., Меморская A.C., Котлова Е.Р., Феофилова Е.П. Состав мембранных липидов и углеводов цитозоля в условиях теплового шока у Aspergillus niger. // Микробиология. 2010. Т. 79. № 1. С. 45-51.

557. Ткаченко А.Г., Нестерова Л.Ю. Полиамины как модуляторы экспрессии генов окислительного стресса у Escherichia coli // Биохимия. 2003. Т. 68. Вып. 8. С. 10401048.

558. Ткаченко А.Г., Пожидаева О.Н., Шумков М.С. Роль полиаминов в формировании множественной антибиотикоустойчивости Escherichia coli в условиях стрессорных воздействий // Биохимия. 2006. Т. 71. С. 1287-1296.

559. Ткаченко А.Г., Салахетдинова О.Я., Пшеничнов М.Р. Обмен путресцина и калия между клеткой и средой как фактор адаптации Escherichia coli к гиперосмотическому шоку // Микробиология. 1997. Т. 66. № 3. С. 329-334.

560. Ткаченко А.Г., Салахетдинова О.Я., Пшеничнов М.Р. Роль транспорта путресцина и калия в адаптации Escherichia coli к голоданию по аммонию // Микробиология. 1996. Т. 65. №6. С. 740-744.

561. Ткаченко А.Г., Чудинов А.А. Обмен полиаминами между клеткой и средой как один из факторов, определяющих развитие культур Escherichia coli // Микробиология. 1989. Т. 58. Вып. 4. С. 584-590.

562. Ткаченко А.Г., Шумков М.С., Ахова А.В. Адаптивные функции полиаминов Escherichia coli при сублетальных воздействиях антибиотиков // Микробиология. 2009. Т. 78. С. 32-41.

563. Феофилова Е.П. Торможение жизненной активности как универсальный биохимический механизм адаптации микроорганизмов к стрессовым воздействиям // Прикл. биохим. и микробиол. 2003. Т. 39. №1. С. 5-24.

564. Феофилова Е.П. Трегалоза, стресс и анабиоз // Микробиология. 1992. Т.61. Вып. 5. С. 741-755.

565. Феофилова Е.П., Терешина В.М., Хохлова Н.С., Меморская А.С. О различных механизмах биохимической адаптации мицелиальных грибов к температурному стрессу: изменения в составе углеводов цитозоля // Микробиология. 2000. Т. 69. Вып. 5. С. 606-611.

566. Фёршт Э. Структура и механизм действия ферментов. М.: Мир, 1980. 432 с.

567. Филимонова М.Н., Губская В.П., Нуретдинов И.А., Бенедик М.Дж, Богомольная Л.М., Андреева М.А., Лещинская И.Б. Изоформы нуклеазы Serratia marcescens. Роль ионо Mg2+ в механизме гидролиза // Биохимия. 1997. Т. 62, Вып. 9. С. 1148-1154.

568. Фунтикова Н.С., Карасевич Ю.Н. Период задержки роста дрожжей Candida tropicalis на феноле. //Микробиология. 1981. Т.50. №. 4. С. 655-658.

569. Хохлов A.C. Низкомолекулярные микробные ауторегуляторы. М: Наука. 1988. 272 с.

570. Хочачка П., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация. М.: Мир, 1988,- 568 с.

571. Шайтан К.В., Терешкина К.Б. Молекулярная динамика белков и пептидов. М: Ойкос, 2004, с. 103.

572. Шапиро Д.А. Бактерии как многоклеточные микроорганизмы.// В мире науки. 1988. № 8. С.46-54.

573. Шелемех О.В., Гейдебрехт О.В., Плакунов В.К., Беляев С.С. "Кислородная регуляция" состава дыхательной цепи дрожжей Debaryomyces hansenii при множественном стрессе // Микробиология. 2006. Т. 75. № 4. С. 562-569

574. Шеховцова Н.В., Звягинцев Д.Г., Паников Н.С., Кинетика роста Arthrobacter globi-fîrmis и Pseudomonas fluorescens на средах со стеколоволокном // Микробиология, 1992. Т.62, № 6. С. 995-1003.

575. Шпаков А.О. Сигнальные молекулы бактерий непептидной природы QS-типа. // Микробиология. 2009. Т. 78. № 2. С.163-175.

576. Электронная биржа http://offers.tradedir.ru/goods/foods/grain/

577. Электронная энциклопеция Википедия http://ra.wikipedia.0rg/wiki/3epH0BbieKyjibTypbi

578. Электронный ресурс http://medi.ni/doc/6100406.htm

579. Электронный ресурс http://www.niopik.ru/products/disinfection/review/;

580. Электронный ресурс http://www.optimadent.ru;

581. Электронный ресурс Анализ рынка ферментов в России в 2009 году. http://www. bioinformatix.ru/interesnoe/ryinok-fermentov-v-ozhidanii-peremen.html

582. Электронный ресурс для расчёта степени гомологий последовательностей ДНК -http: // www. ncbi. nlm. nih. gov / blast / Blast, cqi

583. Электронный ресурс Росстата http://www.gks.ru

584. Эль-Регистан Г.И., Цышнатий Г.В., Дужа М.В., Пронин C.B., Митюшина JI.JI., Савельева Н.Д., Капрельянц A.C., Соколов Ю.М. Регуляция роста и развития

585. Pseudomonas carboxydoflava специфическими эндогенными факторами // Микробиология. 1980. Т. 49. № 4. С. 561-565.

586. Ю. Кротов. Предельно допустимые концентрации химических веществ в окружающей среде. Справочник. Изд-во НПО Профессионал, С-Пб. 2003.

587. Юркевич Д.И., Кутушенко В.П. Медузомицет (чайный гриб): научная история, состав, физиология и метаболизм // Биофизика. 2002. Т. 47. С. 1116-1129.