Внутриклеточные перемещения белков антиоксидантного комплекса. Новая система локализационных репортеров тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.03, кандидат биологических наук Чумаков, Степан Петрович
- Специальность ВАК РФ03.01.03
- Количество страниц 83
Оглавление диссертации кандидат биологических наук Чумаков, Степан Петрович
Оглавление.
Список используемых сокращений.
Глава 1. Организация и регуляция транспорта между цитоплазмой и ядром.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Молекулярная биология», 03.01.03 шифр ВАК
Сигнальные пути ядерного транскрипционного фактора Каппа в (NF-kB) в чувствительных нейронах2010 год, доктор биологических наук Гущина, Светлана Валентиновна
Участие урокиназной системы в дифференцировке и выживаемости нейронов, регенерации и направленном росте аксонов2021 год, доктор наук Семина Екатерина Владимировна
Структурная характеристика белка YB-12012 год, кандидат биологических наук Гурьянов, Сергей Георгиевич
Идентификация участков протимозина альфа, обеспечивающих транспорт белка в ядро дрожжей S. cerevisiae2001 год, кандидат химических наук Шакулов, Виталий Рустэмович
Структура и механизм биологического действия некоторых полисахаридов и полифенолов растительного происхождения2013 год, кандидат наук Ермакова, Светлана Павловна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Внутриклеточные перемещения белков антиоксидантного комплекса. Новая система локализационных репортеров»
Кариоферины и их роль в организации ядерно-цитоплазматического транспорта.7
ГТФаза Ran и Ran-зависимый транспорт.11
Транспорт рецепторов стероидных гормонов.16
Нукпеопорины, их строение и функции.17
Транспортные функции Nup98.22
Модели функционирования NPC.23
Транслокация трансмембранных белков на внутреннюю ядерную мембрану.27
Иерархическая регуляция ядерного транспорта.28
Регуляция на уровне отдельного груза.29
Внутримолекулярное маскирование NLS/NES.29
Межмолекулярное маскирование NLS/NES.30
Модуляция аффинности к кариоферинам посттранскрипционной модификацией.31
Модуляция аффинности к кариоферинам путем посттрансляционной модификации.32
Удержание в цитоплазме или ядре.32
Регуляция на уровне транспортных рецепторов.33
Модуляция экспрессии компонентов нукпеоцитоплазматической транспортной системы.33
Роль импортинов в гаметогенезе.34
Роль экспортинов в процессе развития организма.35
Регуляция на уровне компонентов NPC.36
Роль нукпеопоринов и других модуляторов ядерного транспорта в процессе развития.36
Роль нукпеопоринов в митозе.36
Роль нукпеопоринов в онкогенезе и развитии вирусной инфекции.37
Глава 2. Материалы и методы.39
Используемые клеточные линии, их культивирование и обработка.39
Селекция клеточных культур после трансдукции лентивирусными конструктами 40
Измерение концентрации белка по методу Бредфорд.40
Фракционирование белков в полиакриламидном геле.40
Перенос белков из гелей на фильтры и иммунодетекция.40
Получение компетентных клеток E.coli и трансформация.41
Препаративное и аналитическое выделение плазмидной ДНК.41
Обработка ДНК рестрикционными эндонукпеазами.42
Фракционирование и извлечение ДНК из агарозных гелей.42
Реакция лигирования.42
Трансфекция лентивирусных и плазмидных конструктов и получение клеточных линий.42
Иммунофлуоресценция.43
Определение активности (3-галактозидазы при помощи системы GalScreen®.44
Определение уровней внутриклеточных ROS на FACS при помощи DCF-DA.44
Получение экспрессионных лентивирусных конструктов.44
Этапы клонирования ш-конструкта.44
Этапы клонирования а-конструктов.49
Получение а-конструктов, экспрессирующих мутантные.50 варианты Sesn2 с перманентно-активированными и перманентнорепрессированными сайтами фосфорилирования.50
Получение конструктов, одновременно экспрессирующих несколько shPHK, специфичные к различным генам.52
Глава 3. Резульаты и обсуждение.54
Принцип действия и структура локализационного репортера.54
Конструирование вектора для экспрессии ш-пептида.55
Конструирование векторов для экспрессии белков, слитых с а-пептидом.56
Получение клонов oo-nuc-bleo.58
Отработка функционирования репортера на примере белка F0X03A.60
Влияние обработки hTNF и культивации в среде без сыворотки на изменение внутриклеточной локализации белка Sesn2.63
Перемещения Sesn2 в митохондрии и к плазматической мембране при окислительном стрессе.65
Влияние сульфиредоксина на передислокацию Sesn2.67
Переход Sesn2 в ядро под действием РМА.68
Исследование механизмов PMA-индуцированной передислокации Sesn2.70
Влияние сайтов фосфорилирования белковой молекулы Sesn2 на динамику ядерной транслокации.72
Заключение.75
Выводы.75
Список литературы.76
Список используемых сокращений
AFMAtomic Force MicroscopyАтомно-силовая микроскопия
Ala Alanine Алании
APC Anaphase Promoting Complex Циклосома
BSA Bovine Serum Albumin Бычий сывороточной альбумин
CKII Casein Kinase II Казеинкиназа II
CTE Constitutive Transport Element Конститутивный транспортный элемент
Cys Cysteine Цистеин
DCF 2,,7'-dichlorofluorescin 2',7'-дихлорфлуоресцин
DMEM Dulbecco's Modified Eagle's Среда Игла в модификации
Medium Дульбеко
DMSO Dimethyl Sulfoxide Диметилсульфоксид
DPI Diphenyleneiodonium chloride Дифенилиод хлорид
EBSS Earle's Balanced Salt Solution Сбалансированный солевой раствор
Эрла
EGF Epidermal Growth Factor Эпидермальный ростовой фактор
EGFP Enhanced Green Fluorescent Модифицированный зеленый
Protein флуоресцентный белок
EGFR Epidermal Growth Factor Receptor Рецептор эпидермального ростового фактора
ER Endoplasmic Reticulum localization Сигнал эндоплазматической signal локализации
FACS Fluorescence-Activated Cell Sorter Проточный цитофлуориметр
FCS Fetal Calf Serum Фетальная телячья сыворотка
FG Fenilalanine-Glycine Фенилапанин-глициновый домен; повтор)
FITC Fluorescein isothiocyanate Флуоресцин изотиоцианат
FRET Fluorescence Resonance Energy Резонансный перенос энергии
Transfer флуоресценции
GAG Group-specific antigen Антиген Групповой специфичности
GFP Green Fluorescent Protein Зеленый флуоресцентный белок
HIV Human Immunodeficiency Virus Вирус иммунодефицита человека hTNF Human Tumor Necrosis Factor Фактор некроза опухолей человека
IGF1 Insulin-like Growth Factor Инсулин-подобный фактор роста
INM Inner Nuclear Membrane Внутренняя ядерная мембрана
Kaps Karyopherins Кариоферины
LB Lysogeny Broth Лизогенный бульон
LTR Long Terminal Repeat Длинный концевой повтор
Mem Membrane localization signal Сигнал локализации на плазматической мембране
Mit Mitochondrial localization signal Сигнал митохондриапьной локализации
MOPS 3-(N-morpholino) propanesulfonic 3-(Ы-морфолино)пропансульфоновая acid кислота
NAC N-acetyl-cysteine N-346™ л-ци стеи н
NES Nuclear Export Signal Сигнал ядерного экспорта
NF-AT2 Nuclear factor of activated Ядерный фактор активированных
T-lymphocytes 2 Т-лимфоцитов N92
NLS Nuclear Localization Signal Сигнал ядерной локализации
NOX NADPH Oxidase 4 НАДФ-Н оксидаза
NPC Nuclear Pore Complex Комплекс белков ядерной поры
NTD N-Terminal Domain N-концевой домен
NUC Nuclear Localization Signal Сигнал ядерной локализации
Nup Nucleoporin Нукпеопорин
ONM Outer Nuclear Membrane Внешняя ядерная мембрана
PBS Phosphate Buffered Saline Фосфатный Буферный Раствор
Phe Phenylalanine Фенилаланин
PI3K Phosphoinositide 3-kinase Фосфатидилинозитол-З-киназа
PKA Protein Kinase A Протеинкиназа А
PKB Protein Kinase B Протеинкиназа В
PKC Protein Kinase C Протеинкиназа С
PMA Phorbol 12-myristate 13-acetate Форбол-12-миристрат-13-ацетат
PoM Pore Membrane Поровая мембрана
PTK Phosphotyrosin Kinase Фосфотирозинкиназа
PVDF Polyvinylidene Fluoride Фторопласт
RanBPI Ran-Binding Proteinl Ran-связывэющий белок1
RanGAP Ran GTPase Activating Protein Белок-активатор ГТФазы Ran
RanGEF Ran Guanidine Exchange Factor Фактор гуанидинового обмена Ran
Ran-GTP Ran-Guanidinediphosphate Ran-гуанидиндифосфат
Ran-GTP Ran-Guanidinetriphosphate Ran-гуанидинтрифосфат
Rev Revertase Ревертаза
ROS Reactive Oxygen Species Соединения активного кислорода
Ser Serine Серин shRNA Short hairpin RNA Короткая шпилечная РНК
SOB Super Optimal Broth Супер-оптимальный питательный бульон
TBS Tris-Buffered Solution Трис-буфер
Thr Threonine Треонин
TRITC Rhodamine Родамин
Tvr Tyrosine Тирозин
UTR Untranslated Region Нетранслируемая область мРНК
VSVG Vesicular Stomatitis Virus glycoprotein Гликопротеин Вируса Везикулярного Стоматита
ГР Глкжокортикоидный рецептор гяРНП Гетерогенная ядерная рибонуклеопротеиновая частица
ДНК Дезоксирибонуклеиновая кислота мРНК Матричная рибонуклеиновая кислота
НТФ Нукпеотидтрифосфат
ПЦР Полимеразная Цепная Реакция
РНК Рибонуклеиновая кислота тРНК Транспортная рибонуклеиновая кислота
ЭДТА Этилендиаминтетрауксусная кислота
Похожие диссертационные работы по специальности «Молекулярная биология», 03.01.03 шифр ВАК
Экспрессия гена белка холодового шока капусты при низкотемпературном стрессе2005 год, кандидат биологических наук Матниязов, Рустам Тахирович
Молекулярно-генетические механизмы обучения у виноградной улитки2000 год, доктор биологических наук Гринкевич, Лариса Николаевна
Регуляция экзоцитоза в нейтрофилах человека1999 год, доктор биологических наук Набокина, Светлана Михайловна
Характеристика новых линий репортерных мышей для изучения экспрессии фактора некроза опухолей in vivo и in vitro2012 год, кандидат биологических наук Кучмий, Анна Александровна
Влияние бромпроизводного аминоадамантана - ладастена на активность протеинкиназ и фосфорилирование белков в клетках головного мозга и печени крыс2004 год, кандидат биологических наук Салимгареева, Миляуша Хамитовна
Заключение диссертации по теме «Молекулярная биология», Чумаков, Степан Петрович
Выводы
1. Сконструирована репортерная система для определения внутриклеточных перемещений исследуемого белка, основанная на эффекте а-комплементации 3-галактозидазы
2. Получены клоны клеток линии RKO, стабильно экспрессирующие компоненты локализационной системы. Возможности репортерной системы испытаны на примере флуоресцентного белка GFP и транскрипционного фактора F0X03A.
3. При исследовании антиоксидантного белка Sesn2 установлено, что повышение внутриклеточных уровней ROS приводит к перемещению Sesn2 из цитоплазмы в ядро, что может способствовать защите генома от окислительных повреждений.
4. Установлено, что активация протеинкиназы С вызывает переход Sesn2 из цитоплазмы в ядро, а ее ингибирование предотвращает такой переход. Фосфорилирование сайтов РКС в структуре Sesn2 усиливает его переход в ядро в ответ на стресс, а предотвращение фосфорилирования по этим сайтам снижает количество Sesn2 в ядре.
5. Предложена модель, объясняющая механизм перемещения Sesn2 в ядро в ответ на внешние стимулы, Под влиянием активации мембранных рецепторов происходит стимуляция протеинкиназы С, которая, в свою очередь, стимулирует активность NOX и продукцию соединений активного кислорода. Одновременно протеинкиназа С стимулирует переход Sesn2 в ядро, тем самым настраивая ядерные ан-тиоксидантные системы перед ожидаемым повышением уровня соединений активного кислорода.
Заключение
Разработанная система локализационных репортеров является мощным инструментом для определения изменений внутриклеточной локализации белков. Широкий динамический диапазон и высокая чувствительность позволяют использовать локализационный репортер для определения небольших, относительно общего количества, перемещений исследуемого белка внутри клетки. Изучение внутриклеточной динамики белка Sesn2, являющегося компонентом клеточной защиты от переокисления, показало, что в ответ на окислительный стресс, комплекс белков, в который входит Sesn2, передислоцируется из цитоплазмы в ядро. Возможно, транслокация в ядро способствует повышению устойчивости компонентов ядра к окислению под действием сигнальных молекул Н202. Важную роль в процессе перехода белка Sesn2 из цитоплазмы в ядро играет протеинкиназа С. Sesn2 содержит три сайта фосфорилирования при помощи РКС. Фосфорилирование этих сайтов увеличивает интенсивность перехода Sesn2 из цитоплазмы в ядро в ответ на окислительный стресс, однако само по себе фосфорилирование недостаточно для транслокации Sesn2 в ядро. Весьма вероятно, что для перемещения требуется также фосфорилирование других белков, возможно входящих в комплекс с Sesn2. В настоящий момент детали процесса, приводящего к перемещению Sesn2 в ядро, неизвестны и требуют дальнейшего изучения.
Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Чумаков, Степан Петрович, 2010 год
1. Callan, H.G. and S.G. Tomlin, Experimental studies on amphibian oocyte nuclei. I. Investigation of the structure of the nuclear membrane by means of the electron microscope. Proc R Soc Lond В Biol Sci, 1950.137(888): p. 367-378.
2. Franke, W.W. and U. Scheer, The ultrastructure of the nuclear envelope of amphibian oocytes: a reinvestigation. II. The immature oocyte and dynamic aspects. J Ultrastruct Res, 1970. 30(3): p. 317-327.
3. Gall, J.G., Octagonal nuclear pores. J Cell Biol, 1967. 32(2): p. 391-399.
4. Fahrenkrog, B. and U. Aebi, The nuclear pore complex: nucleocytoplasmic transport and beyond. Nat Rev Mol Cell Biol, 2003. 4(10): p. 757-766.
5. Beck, M., et al., Nuclear pore complex structure and dynamics revealed by cryoelectron tomography. Science, 2004. 306(5700): p. 1387-1390.
6. Beck, M., et al., Snapshots of nuclear pore complexes in action captured by cryo-electron tomography. Nature, 2007. 449(7162): p. 611-615.
7. Fahrenkrog, В., et al., Molecular architecture of the yeast nuclear pore complex: localization of Nsplp subcomplexes. J Cell Biol, 1998.143(3): p. 577-588.
8. Kiseleva, E., et al., Yeast nuclear pore complexes have a cytoplasmic ring and internal filaments. J Struct Biol, 2004.145(3): p. 272-288.
9. Yang, Q., M.P. Rout, and C.W. Akey, Three-dimensional architecture of the isolated yeast nuclear pore complex: functional and evolutionary implications. Mol Cell, 1998.1(2): p. 223-234.
10. Gerace, L. and B. Burke, Functional organization of the nuclear envelope. Annu Rev Cell Biol, 1988. 4: p. 335-374.
11. Gorlich, D. and U. Kutay, Transport between the cell nucleus and the cytoplasm. Annu Rev Cell Dev Biol, 1999.15: p. 607-660.
12. Maeshima, K., et al., Cell-cycle-dependent dynamics of nuclear pores: pore-free islands and lamins. J Cell Sci, 2006.119(Pt 21): p. 4442-4451.
13. Ribbeck, K. and D. Gorlich, Kinetic analysis of translocation through nuclear pore complexes. EMBO J, 2001. 20(6): p. 1320-1330.
14. Pante, N. and M. Kann, Nuclear pore complex is able to transport macromolecules with diameters of about 39 nm. Mol Biol Cell, 2002.13(2): p. 425-434.
15. Weis, K., The nuclear pore complex: oily spaghetti or gummy bear? Cell, 2007.130(3): p. 405407.
16. Fried, H. and U. Kutay, Nucleocytoplasmic transport: taking an inventory. Cell Mol Life Sci, 2003. 60(8): p. 1659-1688.
17. Tran, E.J. and S.R. Wente, Dynamic nuclear pore complexes: life on the edge. Cell, 2006. 125(6): p. 1041-1053.
18. Rexach, M. and G. Blobel, Protein import into nuclei: association and dissociation reactions involving transport substrate, transport factors, and nucleoporins. Cell, 1995. 83(5): p. 683-692.
19. Wozniak, R.W., M.P. Rout, and J.D. Aitchison, Karyopherins and kissing cousins. Trends Cell Biol, 1998. 8(5): p. 184-188.
20. Pemberton, L.F. and B.M. Paschal, Mechanisms of receptor-mediated nuclear import and nuclear export. Traffic, 2005. 6(3): p. 187-198.
21. Melchior, F., et al., Inhibition of nuclear protein import by nonhydrolyzable analogues of GTP and identification of the small GTPase Ran/TC4 as an essential transport factor. J Cell Biol, 1993.123(6 Pt 2): p. 1649-1659.
22. Moore, M.S. and G. Blobel, The GTP-binding protein Ran/TC4 is required for protein import into the nucleus. Nature, 1993.365(6447): p. 661-663.
23. Gorlich, D., et al., Identification of different roles for RanGDP and RanGTP in nuclear protein import. EMBO J, 1996.15(20): p. 5584-5594.
24. Weis, K., Regulating access to the genome: nucleocytoplasmic transport throughout the cell cycle. Cell, 2003.112(4): p. 441-451.
25. Mosammaparast, N. and L.F. Pemberton, Karyopherins: from nuclear-transport mediators to nuclear-function regulators. Trends Cell Biol, 2004.14(10): p. 547-556.
26. Goldfarb, D.S., et al., Importin alpha: a multipurpose nuclear-transport receptor. Trends Cell Biol, 2004.14(9): p. 505-514.
27. Conti, E., et al., Crystallographic analysis of the recognition of a nuclear localization signal by the nuclear import factor karyopherin alpha. Cell, 1998.94(2): p. 193-204.
28. Kobe, В., Autoinhibition by an internal nuclear localization signal revealed by the crystal structure of mammalian importin alpha. Nat Struct Biol, 1999. 6(4): p. 388-397.
29. Rosenblum, J.S., et al., Nuclear import and the evolution of a multifunctional RNA-binding protein. J Cell Biol, 1998.143(4): p. 887-899.
30. Fischer, U., et al., The HIV-1 Rev activation domain is a nuclear export signal that accesses an export pathway used by specific cellular RNAs. Cell, 1995. 82(3): p. 475-483.
31. Johnson, A.W., E. Lund, and J. Dahlberg, Nuclear export of ribosomal subunits. Trends Bio-chem Sci, 2002. 27(11): p. 580-585.
32. Yoshida, K. and G. Blobel, The karyopherin Kap142p/Msn5p mediates nuclear import and nuclear export of different cargo proteins. J Cell Biol, 2001.152(4): p. 729-740.
33. Kaffman, A. and E.K. O'Shea, Regulation of nuclear localization: a key to a door. Annu Rev Cell Dev Biol, 1999.15: p. 291-339.
34. Kutay, U., et al., Export of importin alpha from the nucleus is mediated by a specific nuclear transport factor. Cell, 1997. 90(6): p. 1061-1071.
35. Arts, G J., et al., The role of exportin-t in selective nuclear export of mature tRNAs. EMBO J, 1998.17(24): p. 7430-7441.
36. Kim, V.N., MicroRNA precursors in motion: exportin-5 mediates their nuclear export. Trends Cell Biol, 2004.14(4): p. 156-159.
37. Lei, E.P. and P.A. Silver, Protein and RNA export from the nucleus. Dev Cell, 2002. 2(3): p. 261272.
38. Chook, Y.M. and G. Blobel, Karyopherins and nuclear import. Curr Opin Struct Biol, 2001. 11(6): p. 703-715.
39. Conti, E., Structures of importins. Results Probl Cell Differ, 2002.35: p. 93-113.
40. Matsuura, Y. and M. Stewart, Structural basis for the assembly of a nuclear export complex. Nature, 2004. 432(7019): p. 872-877.
41. Petosa, C., et al., Architecture of CRM1/Exportin1 suggests how cooperativity is achieved during formation of a nuclear export complex. Mol Cell, 2004.16(5): p. 761-775.
42. Cingolani, G., et al., Molecular basis for the recognition of a nonclassical nuclear localization signal by importin beta. Mol Cell, 2002.10(6): p. 1345-1353.
43. Cingolani, G., et al., Structure of importin-beta bound to the IBB domain of importin-alpha. Nature, 1999. 399(6733): p. 221-229.
44. Fukuhara, N., et al., Conformational variability of nucleo-cytoplasmic transport factors. J Biol Chem, 2004. 279(3): p. 2176-2181.
45. Chook, Y.M. and G. Blobel, Structure of the nuclear transport complex karyopherin-beta2-Ran x GppNHp. Nature, 1999. 399(6733): p. 230-237.
46. Vetter, I.R., et al., Structural view of the Ran-lmportin beta interaction at 2.3 A resolution. Cell, 1999. 97(5): p. 635-646.
47. Bayliss, R., T. Littlewood, and M. Stewart, Structural basis for the interaction between FxFG nucleoporin repeats and importin-beta in nuclear trafficking. Cell, 2000.102(1): p. 99-108.
48. Bednenko, J., G. Cingolani, and L. Gerace, Importin beta contains a COOH-terminal nucleoporin binding region important for nuclear transport. J Cell Biol, 2003.162(3): p. 391-401.
49. Ben-Efraim, I. and L. Gerace, Gradient of increasing affinity of importin beta for nucleoporins along the pathway of nuclear import. J Cell Biol, 2001.152(2): p. 411-417.
50. Pyhtila, B. and M. Rexach, A gradient of affinity for the karyopherin Kap95p along the yeast nuclear pore complex. J Biol Chem, 2003.278(43): p. 42699-42709.
51. Shah, S., S. Tugendreich, and D. Forbes, Major binding sites for the nuclear import receptor are the internal nucleoporin Nup153 and the adjacent nuclear filament protein Tpr. J Cell Biol, 1998.141(1): p. 31-49.
52. Zeitler, B. and K. Weis, The FG-repeat asymmetry of the nuclear pore complex is dispensable for bulk nucleocytoplasmic transport in vivo. J Cell Biol, 2004.167(4): p. 583-590.
53. Gorlich, D., M.J. Seewald, and K. Ribbeck, Characterization of Ran-driven cargo transport and the RanGTPase system by kinetic measurements and computer simulation. EMBO J, 2003. 22(5): p. 1088-1100.
54. Bayliss, R., et al., Structural basis for the interaction between NTF2 and nucleoporin FxFG repeats. EMBO J, 2002. 21(12): p. 2843-2853.
55. Oki, M. and T. Nishimoto, A protein required for nuclear-protein import, Moglp, directly interacts with GTP-Gsp1p, the Saccharomyces cerevisiae ran homologue. Proc Natl Acad Sci USA, 1998. 95(26): p. 15388-15393.
56. Steggerda, S.M. and B.M. Paschal, The mammalian Mog1 protein is a guanine nucleotide release factor for Ran. J Biol Chem, 2000. 275(30): p. 23175-23180.
57. Nemergut, M.E., et al., Chromatin docking and exchange activity enhancement of RCC1 by his-tones H2A and H2B. Science, 2001. 292(5521): p. 1540-1543.
58. Renault, L., et al., Structural basis for guanine nucleotide exchange on Ran by the regulator of chromosome condensation (RCC1). Cell, 2001.105(2): p. 245-255.
59. Li, H.Y., D. Wirtz, and Y. Zheng, A mechanism of coupling RCC7 mobility to RanGTP production on the chromatin in vivo. J Cell Biol, 2003.160(5): p. 635-644.
60. Kalab, P., K. Weis, and R. Heald, Visualization of a Ran-GTP gradient in interphase and mitotic Xenopus egg extracts. Science, 2002. 295(5564): p. 2452-2456.
61. Bischoff, F.R., et al., RanGAPI induces GTPase activity of nuclear Ras-related Ran. Proc Natl Acad Sci USA, 1994. 91(7): p. 2587-2591.
62. Bischoff, F.R., et al., Co-activation of RanGTPase and inhibition of GTP dissociation by RanGTP binding protein RanBPI. EMBO J, 1995.14(4): p. 705-715.
63. Izaurralde, E., et al., The asymmetric distribution of the constituents of the Ran system is essential for transport into and out of the nucleus. EMBO J, 1997.16(21): p. 6535-6547.
64. Nemergut, M.E. and I.G. Macara, Nuclear import of the ran exchange factor, RCC1, is mediated by at least two distinct mechanisms. J Cell Biol, 2000.149(4): p. 835-850.
65. Mahajan, R., et al., A small ubiquitin-related polypeptide involved in targeting RanGAPI to nuclear pore complex protein RanBP2. Cell, 1997. 88(1): p. 97-107.
66. Matunis, M.J., E. Coutavas, and G. Blobel, A novel ubiquitin-like modification modulates the partitioning of the Ran-GTPase-activating protein RanGAPI between the cytosol and the nuclear pore complex. J Cell Biol, 1996.135(6 Pt 1): p. 1457-1470.
67. Pichler, A., et al., The nucleoporin RanBP2 has SUM01 E3 ligase activity. Cell, 2002.108(1): p. 109-120.
68. Lindsay, M.E., et al., Npap60/Nup50 is a tri-stable switch that stimulates importin-alpha-.beta-mediated nuclear protein import. Cell, 2002.110(3): p. 349-360.
69. Lindsay, M.E., et al., Ran-binding protein 3 is a cofactor for Crm1-mediated nuclear protein export. J Cell Biol, 2001.153(7): p. 1391-1402.
70. DeFranco, D.B., Navigating steroid hormone receptors through the nuclear compartment. Mol Endocrinol, 2002.16(7): p. 1449-1455.
71. Shank, L.C. and B.M. Paschal, Nuclear transport of steroid hormone receptors. Crit Rev Eu-karyot Gene Expr, 2005.15(1): p. 49-73.
72. Picard, D. and K.R. Yamamoto, Two signals mediate hormone-dependent nuclear localization of the glucocorticoid receptor. EMBO J, 1987. 6(11): p. 3333-3340.
73. Picard, D., et al., Signal transduction by steroid hormones: nuclear localization is differentially regulated in estrogen and glucocorticoid receptors. Cell Regul, 1990.1(3): p. 291-299.
74. Simental, J.A., et al., Transcriptional activation and nuclear targeting signals of the human androgen receptor. J Biol Chem, 1991. 266(1): p. 510-518.
75. Ylikomi, T., et al., Cooperation of proto-signals for nuclear accumulation of estrogen and progesterone receptors. EMBO J, 1992.11(10): p. 3681-3694.
76. Savory, J.G., et al., Discrimination between NL1- and NL2-mediated nuclear localization of the glucocorticoid receptor. Mol Cell Biol, 1999.19(2): p. 1025-1037.
77. Freedman, N.D. and K.R. Yamamoto, Importin 7 and importin alpha/importin beta are nuclear import receptors for the glucocorticoid receptor. Mol Biol Cell, 2004.15(5): p. 2276-2286.
78. Black, B.E., et al., DNA binding domains in diverse nuclear receptors function as nuclear export signals. Curr Biol, 2001.11(22): p. 1749-1758.
79. Saporita, A.J., et al., Identification and characterization of a ligand-regulated nuclear export signal in androgen receptor. J Biol Chem, 2003. 278(43): p. 41998-42005.
80. Katagiri, Y., et al., Modulation of retinoid signalling through NGF-induced nuclear export of NGFI-B. Nat Cell Biol, 2000. 2(7): p. 435-440.
81. Itoh, M., et al., Nuclear export of glucocorticoid receptor is enhanced by c-Jun N-terminal kinase-mediated phosphorylation. Mol Endocrinol, 2002.16(10): p. 2382-2392.
82. Liu, J. and D.B. DeFranco, Protracted nuclear export of glucocorticoid receptor limits its turnover and does not require the exportin 1/CRM1-directed nuclear export pathway. Mol Endocrinol, 2000.14(1): p^ 40-51.
83. Yang, J., J. Liu, and D.B. DeFranco, Subnuclear trafficking of glucocorticoid receptors in vitro: chromatin recycling and nuclear export. J Cell Biol, 1997.137(3): p. 523-538.
84. Kino, T., et al., Protein 14-3-3sigma interacts with and favors cytoplasmic subcellular localization of the glucocorticoid receptor, acting as a negative regulator of the glucocorticoid signaling pathway. J Biol Chem, 2003. 278(28): p. 25651-25656.
85. Holaska, J.M., et al., Calreticulin Is a receptor for nuclear export. J Cell Biol, 2001.152(1): p. 127-140.
86. Qiu, M., et al., Mitogen-activated protein kinase regulates nuclear association of human progesterone receptors. Mol Endocrinol, 2003.17(4): p. 628-642.
87. Cronshaw, J.M., et al., Proteomic analysis of the mammalian nuclear pore complex. J Cell Biol, 2002.158(5): p. 915-927.
88. Rout, M.P., et al., The yeast nuclear pore complex: composition, architecture, and transport mechanism. J Cell Biol, 2000.148(4): p. 635-651.
89. Griffis, E.R., et al., Nup98 is a mobile nucleoporin with transcription-dependent dynamics. Mol Biol Cell, 2002.13(4): p. 1282-1297.
90. Rabut, G., V. Doye, and J. Ellenberg, Mapping the dynamic organization of the nuclear pore complex inside single living cells. Nat Cell Biol, 2004. 6(11): p. 1114-1121.
91. Devos, D., et al., Simple fold composition and modular architecture of the nuclear pore complex. Proc Natl Acad Sci USA, 2006.103(7): p. 2172-2177.
92. Higa, M.M., et al., Molecular characterization of the Ran-binding zinc finger domain of Nup153. J Biol Chem, 2007. 282(23): p. 17090-17100.
93. Handa, N., et al., The crystal structure of mouse Nup35 reveals atypical RNP motifs and novel homodimerization of the RRM domain. J Mol Biol, 2006. 363(1): p. 114-124.
94. Hodel, A.E., et al., The three-dimensional structure of the autoproteolytic, nuclear poretargeting domain of the human nucleoporin Nup98. Mol Cell, 2002.10(2): p. 347-358.
95. Weirich, C.S., et al., The N-terminal domain of Nup159 forms a beta-propeller that functions in mRNA export by tethering the helicase Dbp5 to the nuclear pore. Mol Cell, 2004.16(5): p. 749760.
96. Berke, I.C., et al., Structural and functional analysis of Nup133 domains reveals modular building blocks of the nuclear pore complex. J Cell Biol, 2004.167(4): p. 591-597.
97. Napetschnig, J., G. Blobel, and A. Hoelz, Crystal structure of the N-terminal domain of the human protooncogene Nup214/CAN. Proc Natl Acad Sci USA, 2007.104(6): p. 1783-1788.
98. Drin, G., et al., A general amphipathic alpha-helical motif for sensing membrane curvature. Nat struct Mol Biol, 2007. 14(2): p. 138-146.
99. Isgro, T.A. and K. Schulten, Binding dynamics of isolated nucleoporin repeat regions to importin-beta. Structure, 2005.13(12): p. 1869-1879.
100. Isgro, T.A. and K. Schulten, Cselp-binding dynamics reveal a binding pattern for FG-repeat nucleoporins on transport receptors. Structure, 2007.15(8): p. 977-991.
101. Isgro, T.A. and K. Schulten, Association of nuclear pore FG-repeat domains to NTF2 import and export complexes. J Mol Biol, 2007. 366(1): p. 330-345.
102. Liu, S.M. and M. Stewart, Structural basis for the high-affinity binding of nucleoporin Nuplp to the Saccharomyces cerevisiae importin-beta homologue, Kap95p. J Mol Biol, 2005.349(3): p. 515-525.
103. Denning, D.P., et al., Disorder in the nuclear pore complex: the FG repeat regions of nucleoporins are natively unfolded. Proc Natl Acad Sci USA, 2003.100(5): p. 2450-2455.
104. Denning, D.P., et al., The Saccharomyces cerevisiae nucleoporin Nup2p is a natively unfolded protein. J Biol Chem, 2002. 277(36): p. 33447-33455.
105. Denning, D.P. and M.F. Rexach, Rapid evolution exposes the boundaries of domain structure and function in natively unfolded FG nucleoporins. Mol Cell Proteomics, 2007. 6(2): p. 272-282.
106. Fahrenkrog, B., et al., Domain-specific antibodies reveal multiple-site topology of Nup153 within the nuclear pore complex. J Struct Biol, 2002.140(1-3): p. 254-267.
107. Lim, R.Y., U. Aebi, and D. Stoffler, From the trap to the basket: getting to the bottom of the nuclear pore complex. Chromosoma, 2006.115(1): p. 15-26.
108. Paulillo, S.M., et al., Nucleoporin domain topology is linked to the transport status of the nuclear pore complex. J Mol Biol, 2005. 351(4): p. 784-798.
109. Hetzer, M.W., T.C. Walther, and I.W. Mattaj, Pushing the envelope: structure, function, and dynamics of the nuclear periphery. Annu Rev Cell Dev Biol, 2005.21: p. 347-380.
110. Casolari, J.M., et al., Genome-wide localization of the nuclear transport machinery couples transcriptional status and nuclear organization. Cell, 2004.117(4): p. 427-439.
111. Ishii, K., et al., Chromatin boundaries in budding yeast: the nuclear pore connection. Cell, 2002.109(5): p. 551-562.
112. Dilworth, D.J., et al., The mobile nucleoporin Nup2p and chromatin-bound Prp20p function in endogenous NPC-mediated transcriptional control. J Cell Biol, 2005.171(6): p. 955-965.
113. Meneghini, M.D., M. Wu, and H.D. Madhani, Conserved histone variant H2A.Z protects euchro-matin from the ectopic spread of silent heterochromatin. Cell, 2003.112(5): p. 725-736.
114. Schmid, M., et al., Nup-PI: the nucleopore-promoter interaction of genes in yeast. Mol Cell, 2006. 21(3): p. 379-391.
115. Vassileva, M.T. and M.J. Matunis, SUMO modification of heterogeneous nuclear ribonucleopro-teins. Mol Cell Biol, 2004. 24(9): p. 3623-3632.
116. Panse, V.G., et al., Unconventional tethering of Ulp1 to the transport channel of the nuclear pore complex by karyopherins. Nat Cell Biol, 2003.5(1): p. 21-27.
117. Zhang, H., H. Saitoh, and M.J. Matunis, Enzymes of the SUMO modification pathway localize to filaments of the nuclear pore complex. Mol Cell Biol, 2002.22(18): p. 6498-6508.
118. Hodge, C.A., et al., Rat8p/Dbp5p is a shuttling transport factor that interacts with Rat7p/Nup159p and Gleip and suppresses the mRNA export defect of xpo1-1 cells. EMBO J, 1999.18(20): p. 5778-5788.
119. Schmitt, C., et al., Dbp5, a DEAD-box protein required for mRNA export, is recruited to the cytoplasmic fibrils of nuclear pore complex via a conserved interaction with CAN/Nup159p. EMBO J, 1999.18(15): p. 4332-4347.
120. Lund, M.K. and C. Guthrie, The DEAD-box protein Dbp5p is required to dissociate Mex67p from exported mRNPs at the nuclear rim. Mol Cell, 2005.20(4): p. 645-651.
121. Fontoura, B.M., G. Blobel, and N.R. Yaseen, The nucleoporin Nup98 is a site for GDP/GTP exchange on ran and termination of karyopherin beta 2-mediated nuclear import. J Biol Chem, 2000. 275(40): p. 31289-31296.
122. Pollard, V.W., et al., A novel receptor-mediated nuclear protein import pathway. Cell, 1996. 86(6): p. 985-994.
123. Blevins, M.B., et al., Complex formation among the RNA export proteins Nup98, Rae1/Gle2, and TAP. J Biol Chem, 2003. 278(23): p. 20979-20988.
124. Faria, P.A., et al., VSV disrupts the Rae1/mrnp41 mRNA nuclear export pathway. Mol Cell, 2005. 17(1): p. 93-102.
125. Matsuura, Y. and M. Stewart, Nup50JNpap60 function in nuclear protein import complex disassembly and importin recycling. EMBO J, 2005. 24(21): p. 3681-3689.
126. Rout, M.P., et al., Virtual gating and nuclear transport: the hole picture. Trends Cell Biol, 2003. 13(12): p. 622-628.
127. Macara, I.G., Transport into and out of the nucleus. Microbiol Mol Biol Rev, 2001. 65(4): p. 570594, table of contents.
128. Nachury, M.V. and K. Weis, The direction of transport through the nuclear pore can be inverted. Proc Natl Acad Sci USA, 1999. 96(17): p. 9622-9627.
129. Frey, S., R.P. Richter, and D. Gorlich, FG-rich repeats of nuclear pore proteins form a three-dimensional meshwork with hydrogel-like properties. Science, 2006. 314(5800): p. 815-817.
130. Frey, S. and D. Gorlich, A saturated FG-repeat hydrogel can reproduce the permeability properties of nuclear pore complexes. Cell, 2007.130(3): p. 512-523.
131. Strawn, L.A., et al., Minimal nuclear pore complexes define FG repeat domains essential for transport. Nat Cell Biol, 2004. 6(3): p. 197-206.
132. Galy, V., I.W. Mattaj, and P. Askjaer, Caenorhabditis elegans nucleoporins Nup93 and Nup205 determine the limit of nuclear pore complex size exclusion in vivo. Mol Biol Cell, 2003.14(12): p. 5104-5115.
133. Shulga, N., et al., Yeast nucleoporins involved in passive nuclear envelope permeability. J Cell Biol, 2000.149(5): p. 1027-1038.
134. Rich, A., N.R. Davidson, and L. Pauling, Structural chemistry and molecular biology. 1968, San Francisco,: W. H. Freeman. 907 p.
135. Peters, R., Translocation through the nuclear pore complex: selectivity and speed by reduc-tion-of-dimensionality. Traffic, 2005. 6(5): p. 421-427.
136. D'Angelo, M.A. and M.W. Hetzer, The role of the nuclear envelope in cellular organization. Cell Mol Life Sci, 2006. 63(3): p. 316-332.
137. Schirmer, E.C. and R. Foisner, Proteins that associate with lamins: many faces, many functions. Exp Cell Res, 2007. 313(10): p. 2167-2179.
138. Haraguchi, T., et al., Live fluorescence imaging reveals early recruitment of emerin, LBR, RanBP2, and Nup153 to reforming functional nuclear envelopes. J Cell Sci, 2000.113 (Pt 5): p. 779-794.
139. Ohba, T., et al., Energy- and temperature-dependent transport of integral proteins to the inner nuclear membrane via the nuclear pore. J Cell Biol, 2004.167(6): p. 1051-1062.
140. Braunagel, S.C., et al., Early sorting of inner nuclear membrane proteins is conserved. Proc Natl Acad Sci USA, 2007.104(22): p. 9307-9312.
141. King, M.C., C.P. Lusk, and G. Blobel, Karyopherin-mediated import of integral inner nuclear membrane proteins. Nature, 2006. 442(7106): p. 1003-1007.
142. Zuleger, N., N. Korfali, and E.C. Schirmer, Inner nuclear membrane protein transport is mediated by multiple mechanisms. Biochem Soc Trans, 2008. 36(Pt 6): p. 1373-1377.
143. Jans, D.A., C.Y. Xiao, and M.H. Lam, Nuclear targeting signal recognition: a key control point in nuclear transport? Bioessays, 2000.22(6): p. 532-544.
144. Poon, I.K. and D.A. Jans, Regulation of nuclear transport: central role in development and transformation? Traffic, 2005. 6(3): p. 173-186.
145. Riviere, Y., et al., Processing of the precursor of NF-kappa B by the HIV-1 protease during acute infection. Nature, 1991.350(6319): p. 625-626.
146. Craig, E., et al., A masked NES in INI1/hSNF5 mediates hCRM1 -dependent nuclear export: implications for tumorigenesis. EMBO J, 2002. 21(1-2): p. 31-42.
147. Kaffman, A., N.M. Rank, and E.K. O'Shea, Phosphorylation regulates association of the transcription factor Pho4 with its import receptor Pse1JKap121. Genes Dev, 1998.12(17): p. 26732683.
148. Ferrigno, P., et al., Regulated nucleofcytoplasmic exchange of HOG1 MAPK requires the importin beta homologs NMD5 and XP01. EMBO J, 1998.17(19): p. 5606-5614.
149. Kuge, S., et al., Regulation of the yeast Yaplp nuclear export signal is mediated by redox signal-induced reversible disulfide bond formation. Mol Cell Biol, 2001. 21(18): p. 6139-6150.
150. Kudo, N., et al., A novel nuclear export signal sensitive to oxidative stress in the fission yeast transcription factor Pap1. J Biol Chem, 1999. 274(21): p. 15151-15158.
151. Zhu, J. and F. McKeon, NF-AT activation requires suppression of Crm1-dependent export by calcineurin. Nature, 1999.398(6724): p. 256-260.
152. Beg, A.A., et al., / kappa B interacts with the nuclear localization sequences of the subunits of NF-kappa B: a mechanism for cytoplasmic retention. Genes Dev, 1992. 6(10): p. 1899-1913.
153. Traenckner, E.B., S. Wilk, and P.A. Baeuerle, A proteasome inhibitor prevents activation of NF-kappa B and stabilizes a newly phosphorylated form of I kappa B-alpha that is still bound to NF-kappa B. EMBO J, 1994.13(22): p. 5433-5441.
154. Li, S., et al., Identification of a novel cytoplasmic protein that specifically binds to nuclear localization signal motifs. J Biol Chem, 1998. 273(11): p. 6183-6189.
155. Matheny, S.A., et al., Ras regulates assembly of mitogenic signalling complexes through the effector protein IMP. Nature, 2004. 427(6971): p. 256-260.
156. Almazov, V.P., et al., Construction of chimeric tumor suppressor p53 resistant to the dominant-negative interaction with p53 mutants. Mol Biol (Mosk), 2002. 36(4): p. 664-671.
157. Stommel, J.M., et al., A leucine-rich nuclear export signal in the p53 tetramerization domain: regulation of subcellular localization and p53 activity by NES masking. EMBO J, 1999.18(6): p. 1660-1672.
158. Fineberg, K., et al., Inhibition of nuclear import mediated by the Rev-arginine rich motif by RNA molecules. Biochemistry, 2003. 42(9): p. 2625-2633.
159. Chan, C.K. and D.A. Jans, Synergy of importin alpha recognition and DNA binding by the yeast transcriptional activator GAL4. FEBS Lett, 1999. 462(1-2): p. 221-224.
160. Forwood, J.K., V. Harley, and D.A. Jans, The C-terminal nuclear localization signal of the sex-determining region Y (SRY) high mobility group domain mediates nuclear import through importin beta 1. J Biol Chem, 2001. 276(49): p. 46575-46582.
161. Argentaro, A., et al., A SOX9 defect of calmodulin-dependent nuclear import in campomelic dysplasia/autosomal sex reversal. J Biol Chem, 2003.278(36): p. 33839-33847.
162. Hopper, A.K. and E.M. Phizicky, tRNA transfers to the limelight. Genes Dev, 2003.17(2): p. 162180.
163. Culjkovic, B., et al., elF4E is a central node of an RNA regulon that governs cellular proliferation. J Cell Biol, 2006.175(3): p. 415-426.
164. Kay, R.A., et al., The expression of migration stimulating factor, a potent oncofetal cytokine, is uniquely controlled by 3'-untranslated region-dependent nuclear sequestration of its precursor messenger RNA. Cancer Res, 2005. 65(23): p. 10742-10749.
165. Hwang, H.W., E.A. Wentzel, and J.T. Mendell, A hexanucleotide element directs microRNA nuclear import. Science, 2007.315(5808): p. 97-100.
166. Kohler, A. and E. Hurt, Exporting RNA from the nucleus to the cytoplasm. Nat Rev Mol Cell Biol, 2007. 8(10): p. 761-773.
167. York, J.D., et al., A phospholipase C-dependent inositol polyphosphate kinase pathway required for efficient messenger RNA export. Science, 1999.285(5424): p. 96-100.
168. Hubner, S., C.Y. Xiao, and D.A. Jans, The protein kinase CK2 site (Ser111/112) enhances recognition of the simian virus 40 large T-antigen nuclear localization sequence by importin. J Biol Chem, 1997. 272(27): p. 17191-17195.
169. Komeili, A. and E.K. O'Shea, Roles of phosphorylation sites in regulating activity of the transcription factor Pho4. Science, 1999. 284(5416): p. 977-980.
170. Smith, W.A., et al., Arginine methylation of RNA helicase a determines its subcellular localization. J Biol Chem, 2004.279(22): p. 22795-22798.
171. Trotman, L.C., et al., Ubiquitination regulates PTEN nuclear import and tumor suppression. Cell, 2007.128(1): p. 141-156.
172. Plafker, S.M., et al., Ubiquitin charging of human class III ubiquitin-conjugating enzymes triggers their nuclear import. J Cell Biol, 2004.167(4): p. 649-659.
173. Nikolaev, A.Y., et al., Pare: a cytoplasmic anchor for p53. Cell, 2003.112(1): p. 29-40.
174. Tago, K., et al., Regulation of nuclear retention of glucocorticoid receptor by nuclear Hsp90. Mol Cell Endocrinol, 2004. 213(2): p. 131-138.
175. Lixin, R., et al., Novel properties of the nucleolar targeting signal of human angiogenin. Blo-chem Biophys Res Commun, 2001.284(1): p. 185-193.
176. Briggs, L.J., et al., Novel properties of the protein kinase CK2-site-regulated nuclear- localization sequence of the interferon-induced nuclear factor IF116. Biochem J, 2001.353(Pt 1): p. 6977.
177. Efthymiadis, A., L.J. Briggs, and D.A. Jans, The HIV-1 Tat nuclear localization sequence confers novel nuclear import properties. J Biol Chem, 1998. 273(3): p. 1623-1628.
178. Marg, A., et al., Nucleocytoplasmic shuttling by nucleoporins Nup153 and Nup214 and CRM1-dependent nuclear export control the subcellular distribution of latent Statl. J Cell Biol, 2004. 165(6): p. 823-833.
179. Fang, X., et al., Developmental regulation of the heat shock response by nuclear transport factor karyopherin-alpha3. Development, 2001.128(17): p. 3349-3358.
180. Nachury, M.V., et al., Cloning and characterization of hSRP1 gamma, a tissue-specific nuclear transport factor. Proc Natl Acad Sci USA, 1998.95(2): p. 582-587.
181. Kohler, M., et al., Cloning of two novel human importin-alpha subunits and analysis of the expression pattern of the importin-alpha protein family. FEBS Lett, 1997. 417(1): p. 104-108.
182. Kohler, M., et al., Evidence for distinct substrate specificities of importin alpha family members in nuclear protein import. Mol Cell Biol, 1999.19(11): p. 7782-7791.
183. Timney, B.L., et al., Simple kinetic relationships and nonspecific competition govern nuclear import rates in vivo. J Cell Biol, 2006.175(4): p. 579-593.
184. Yang, W. and S.M. Musser, Nuclear import time and transport efficiency depend on importin beta concentration. J Cell Biol, 2006.174(7): p. 951-961.
185. Dahl, E., et al., Molecular profiling of laser-microdissected matched tumor and normal breast tissue identifies karyopherin alpha2 as a potential novel prognostic marker in breast cancer. Clin Cancer Res, 2006.12(13): p. 3950-3960.
186. Winnepenninckx, V., et al., Gene expression profiling of primary cutaneous melanoma and clinical outcome. J Natl Cancer Inst, 2006. 98(7): p. 472-482.
187. Kim, I.S., et al., Truncated form of importin alpha identified in breast cancer cell inhibits nuclear import Of p53. J Biol Chem, 2000. 275(30): p. 23139-23145.
188. Frieman, M., et al., Severe acute respiratory syndrome coronavirus ORF6 antagonizes STAT1 function by sequestering nuclear import factors on the rough endoplasmic reticulum/Goigi membrane. J Virol, 2007. 81(18): p. 9812-9824.
189. Reid, S.P., et al., Ebola virus VP24 binds karyopherin alphal and blocks STAT1 nuclear accumulation. J Virol, 2006.80(11): p. 5156-5167.
190. Kau, T.R., J.C. Way, and P.A. Silver, Nuclear transport and cancer: from mechanism to intervention. Nat Rev Cancer, 2004. 4(2): p. 106-117.
191. Glarre, M., et al., Patterns of importin-alpha expression during Drosophila spermatogenesis. J Struct Biol, 2002.140(1-3): p. 279-290.
192. Mason, D.A., R.J. Fleming, and D.S. Goldfarb, Drosophila melanogaster importin alphal and alpha3 can replace importin alpha2 during spermatogenesis but not oogenesis. Genetics, 2002.161(1): p. 157-170.
193. Geles, K.G., et al., A role for Caenorhabditis elegans importin IMA-2 in germ line and embryonic mitosis. Mol Biol Cell, 2002.13(9): p. 3138-3147.
194. Gasca, S., et al., A nuclear export signal within the high mobility group domain regulates the nucleocytoplasmic translocation ofSOX9 during sexual determination. Proc Natl Acad Sci U S A, 2002. 99(17): p. 11199-11204.
195. Tekotte, H., et al., Dcas is required for importin-alpha3 nuclear export and mechano-sensory organ cell fate specification in Drosophila. Dev Biol, 2002. 244(2): p. 396-406.
196. Wu, X., et al., Disruption of the FG nucleoporin NUP98 causes selective changes in nuclear pore complex stoichiometry and function. Proc Natl Acad Sci USA, 2001.98(6): p. 3191-3196.
197. Cai, Y., et al., Characterization and potential function of a novel testis-specific nucleoporin BS-63. Mol Reprod Dev, 2002. 61(1): p. 126-134.
198. Under, B., et al., Expression pattern and cellular distribution of the murine homologue of AF10. Biochim Biophys Acta, 1998.1443(3): p. 285-296.
199. De Souza, C.P., et al., Partial nuclear pore complex disassembly during closed mitosis in Aspergillus nidulans. Curr Biol, 2004. 14(22): p. 1973-1984.
200. Makhnevych, T., et al., Cell cycle regulated transport controlled by alterations in the nuclear pore complex. Cell, 2003.115(7): p. 813-823.
201. Chan, G.K., S.T. Liu, and T.J. Yen, Kinetochore structure and function. Trends Cell Biol, 2005. 15(11): p. 589-598.203.204.205.206.207.208.209.210. 211. 212.213.214.215.
202. Xu, X.M. and I. Meier, The nuclear pore comes to the fore. Trends Plant Sci, 2008.13(1): p. 2027.
203. Blower, M.D., et al., A Rae1-containing ribonucleoprotein complex is required for mitotic spindle assembly. Cell, 2005.121(2): p. 223-234.
204. Enninga, J., et al., Role of nucleoporin induction in releasing an mRNA nuclear export block. Science, 2002. 295(5559): p. 1523-1525.
205. Gustin, K.E., Inhibition of nucleo-cytoplasmic trafficking by RNA viruses: targeting the nuclear pore complex. Virus Res, 2003. 95(1-2): p. 35-44.
206. Olsson, M., S. Scheele, and P. Ekblom, Limited expression of nuclear pore membrane glycoprotein 210 in cell lines and tissues suggests cell-type specific nuclear pores in metazoans. Exp Cell Res, 2004. 292(2): p. 359-370.
207. Fan, F., et al., cDNA cloning and characterization of Npap60: a novel rat nuclear pore-associated protein with an unusual subcellular localization during male germ cell differentiation. Genomics, 1997. 40(3): p. 444-453.
208. Galy, V., et al., Nuclear retention of unspliced mRNAs in yeast is mediated by perinuclear Mlp1. Cell, 2004.116(1): p. 63-73.
209. Kubitscheck, U., et al., Nuclear transport of single molecules: dwell times at the nuclear pore complex. J Cell Biol, 2005.168(2): p. 233-243.
210. Rout, M.P. and S.R. Wente, Pores for thought: nuclear pore complex proteins. Trends Cell Biol, 1994. 4(10): p. 357-365.
211. Nehrbass, U., et al., Analysis of nucleo-cytoplasmic transport in a thermosensitive mutant of nuclear pore protein NSP1. Eur J Cell Biol, 1993. 62(1): p. 1-12.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.