Влияние фитогенных комплексов, полученных из продуктов переработки эфиромасличных культур фенхеля обыкновенного и кориандра посевного на формирование пищеварительной и иммунной системы телят тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Кольцов Кирилл Сергеевич

• Кольцов Кирилл Сергеевич
• кандидат наук
• 2024

Оглавление диссертации кандидат наук Кольцов Кирилл Сергеевич

2. ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ

2.1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1.1 Использование эфирных масел в качестве альтернативы антибиотикам в животноводстве

2.1.2 Кориандр посевной и фенхель обыкновенный

2.1.3 Антибактериальная активность эфирных масел

2.1.4 Влияние эфирных масел на желудочно-кишечный тракт

2.1.5 Гепатопротекторная активность эфирных масел

2.1.6 Противовоспалительные свойства ЭМ

2.1.7 Иммуномодулирующая активность эфирных масел

2.1.8 Антиоксидантная активность ЭМ

2.1.9 Ферментации в рубце

2.1.10 Эфирные масла в питании животных

2.1.11 Заключение по обзору литературы

2.2 СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.2.1 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1.1. Научно-исследовательская база и общая схема исследований

2.2.1.2 Уровень неспецифического иммунитета

2.2.1.3 Параметры крови

2.2.1.4 Полимеразная цепная реакция в реальном времени

2.2.1.5 NGS - секвенирование

2.2.1.6 Статистический анализ

2.2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.2.2.1 Оценка эффективности и безопасности эфирного масла кориандра и фенхеля на кроликах

2.2.2.2 РЕЗУЛЬТАТЫ НА БЫЧКАХ МОЛОЧНОГО ПЕРИОДА ВЫРАЩИВАНИЯ

2.2.2.2.1 Влияние эфирных масел кориандра и фенхеля на показатели динамики роста молодняка крупного рогатого скота в молочный период выращивания

2.2.2.2.2 Морфологические показатели крови бычком молочного периода выращивания на фоне применения эфирных масел фенхеля обыкновенного и кориандра посевного

2.2.2.2.3 Влияние эфирных масел фенхеля и кориандра на антиоксидантный статус телят молочного периода выращивания

2.2.2.2.4 Изучение микробиома молодняка крупного рогатого скота в молочный период

2.2.2.2.5 Экспрессия генов иммунной системы и обмена веществ у телят в молочный период

2.2.2.2.6 Показатели неспецифической резистентности животных

2.2.2.3 РЕЗУЛЬТАТЫ НА ТЕЛЯТ В ПЕРИОД ДОРАЩИВАНИЯ

2.2.2.3.1 Влияние плодов эфирных масел кориандра и фенхеля на показатели динамики роста молодняка крупного рогатого скота в период доращивания

2.2.2.3.2 Морфологические показатели крови бычком в период доращивания на фоне применения плодов эфиромасличных культур фенхеля обыкновенного и кориандра посевного

2.2.2.3.3 Влияние плодов эфиромасличных культур фенхеля и кориандра на антиоксидантный статус бычков на доращивание

2.2.2.3.4 Изучение микробиома рубца бычков в период доращивания на фоне применения плодов эфиромасличных культур фенхеля и кориандра

2.2.2.3.5 Экспрессия генов иммунной системы и обмена веществ у бычков на доращивание

2.2.2.3.6 Показатели неспецифической резистентности

3. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

3.1 Выводы

3.2 Предложение производству

3.3 Перспективы дальнейшей разработки темы

3.4. Благодарности

Список сокращений и условных обозначений

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение 1. Основной рацион телят в послемолочный период с 3-месячного до 5-месячного возраста

Приложение 2. Полнорационный комбикорм ВетКормТорг для лабораторных кроликов ПК-93

Приложение 3. Основной рацион телят в период с 5-месячного возраста. .. 141 Приложение 4. Экспрессия генов ГЬ6, ГЬ8, SIRT3

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние фитогенных комплексов, полученных из продуктов переработки эфиромасличных культур фенхеля обыкновенного и кориандра посевного на формирование пищеварительной и иммунной системы телят»

1. ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования. Современные технологии выращивания и откорма бычков должны учитывать потребности в питании, потребленной энергии, общее клиническое состояние животного для повышения рентабельности получения говядины. Показатели периода выращивания и откорма связаны не только с успешностью программы кормления теленка, но и с его последующей мясной продуктивностью. Проблемы с питанием и заболеваниями (особенно диарея и респираторный синдром) в раннем постэмбриональном периоде онтогенеза негативно влияют на последующую продуктивную жизнь телят. Причины, связанные с состоянием стресса, приводят к снижению иммунитета, повышению восприимчивости к различным возбудителям инфекции и росту уровня смертности. Разработка эффективных стратегий выращивания, поддерживающих правильное питание, улучшающие развитие и здоровье телят - одно из перспективных направлений животноводства.

Основной причиной смертности телят молочного периода выращивания является, приводящая к обезвоживанию, диареи, вызванная патогенными бактериями. Традиционно в качестве метода борьбы с патогенными возбудителями используются антибиотики. Применение противомикробных препаратов снижает риск развития инфекции, способствует развитию рубца и оказывает положительное влияние на показатели продуктивности телят. Обеспокоенность по поводу устойчивости к антибиотикам в целом вынуждает отказаться от их использования в профилактических целях у сельскохозяйственных животных. Поиск подходящей альтернативы антибиотикам стал актуальным, и одним из потенциальных решений проблемы может быть использование эфирных масел (ЭМ).

Возможность использования с этой целью природных кормовых добавок растительного происхождения (фитобиотиков, растительных экстрактов, эфирных масел и др.) становится очевидной, поскольку вторичные

растительные соединения обладают совокупностью свойств - в том числе антисептической и противомикробной активностью. ЭМ снижают окислительный стресс, влияют на фагоцитарную активность лейкоцитов и способны ингибировать систему комплемента (Рецкий М.И., 1997).

Эфирные масла кориандра посевного и фенхеля обыкновенного представляют собой натуральные экстракты растительных метаболитов, обладающих антибактериальной, противовирусной, противогрибковой, антиоксидантной и противовоспалительной активностью. Эфирные масла стали активной областью исследований благодаря их способности избирательно изменять метаболизм и рост патогенных бактерий.

Теоретической основой исследований послужили работы, направленные на сохранение и повышение продовольственной безопасности путем эффективного использования нетрадиционных ресурсов. Знания биологической ценности фитобиотиков помогают поддерживать продуктивность и здоровье животных и добиваться повышения эффективности в животноводстве.

Исходя из этого, исследование эфирных масел и плодов, полученных из отечественных сортов селекции НИИСХ Крыма, кориандра посевного и фенхеля обыкновенного, влияющих на повышение: адаптационных возможностей организма, обмен веществ, сохранность и продуктивность животных являются перспективным направлением в животноводстве.

Степень разработанности проблемы. Теоретической основой исследований стали работы, связанные с эффективным использованием нетрадиционных ресурсов в животноводстве, исследованием и разработкой инновационных технологий изготовления кормов и кормовых добавок для животных. Знания биологической ценности фитобиотиков помогают поддерживать продуктивность и здоровье животных и добиваться повышения эффективности в животноводстве. Эфирные масла интенсивно изучают так же в связи с их способностью изменять метаболизм и рост бактерий (Kertz A.F., 2017; Froehlich K.A., 2017; Akbarian-Tefaghi M., 2018; Mandai, G.P., 2014;

Kazemi-Bonchenari M., 2018). Вторичные метаболиты эфиромасличных культур модифицируют микроорганизмы рубца и могут повышать эффективность утилизации азота (Mandal, G.P., 2014). Это обусловлено способностью некоторых ЭМ ингибировать бактерии, гиперпродуцирующие аммиак и повышать эффективность использования небелкового азота в рубцовом пищеварении (Swedzinski C., 2019; Liu T., 2020; Yatoo M.A., 2018; Bismarck D., 2022).

Во многих мировых исследованиях изучалась возможная роль фитогенов в управлении процессом ферментации для снижения выбросов метана жвачными животными (Xiao S., 2020; FriedmanM., 2017; Wu J., 2020; Garcia M., 2015; Akter A., 2022; Soltani E., 2020). Однако мало что известно об их воздействии за пределами рубца, а именно на гемато-биохимический профиль и иммунитет. Несмотря на разнонаправленное изучение фитогенов, на сегодняшний день в России и мире нет комплексных исследований, позволяющих определить ассоциированную взаимосвязь между формированием микробиома рубца, рубцовым пищеварением и иммунным статусом телят в различные циклы выращивания. Не до конца изучен механизм действия фитогенов на формирование микробиома ЖКТ, рубцовое пищеварение телят и их иммунный статус.

Цель и задачи исследований. Целью работы является экспериментальное обоснование и практическое применение эфирных масел и плодов эфиромасличных культур (кориандра посевного - КП, фенхеля обыкновенного - ФО) для стимуляции роста, развития рубцового пищеварения, повышения уровня неспецифической резистентности молодняка крупного рогатого скота.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Определить безопасность применения и эффективную дозировку введения эфирного масла (КП, ФО) на модельных животных (кроликах калифорнийской породы).

2. Выявить влияние эфирного масла (КП, ФО) на физиолого -

биохимические показатели крови, антиоксидантный статус и формирование иммунной системы телят в молочном периоде выращивания.

3. Определить влияние эфирного масла (КП, ФО) на формирование микробиоты рубца и зоотехнические показатели телят в молочном периоде выращивания.

4. Изучить влияние плодов КП, ФО на физиолого-биохимические показатели крови, антиоксидантный и иммунной статус быков на доращивании

5. Изучить влияние плодов КП, ФО на микробиоту рубца и зоотехнические показатели быков на доращивании.

6. Провести апробацию технологической схемы применения эфирного масла и плодов КП, ФО для повышения эффективности выращивания бычков молочных пород.

Научная новизна. Впервые проведены комплексные исследования по разработке основ применения эфирных масел и плодов (кориандра посевного и фенхеля обыкновенного) с целью повышения иммунитета и направленного формирования микробиоты рубца у телят молочного периода и на доращивании, для интенсификации приростов, как основного показателя продуктивности. Полученные данные обосновывают разработку подходов к профилактике абомазоэнтеритов различной этиологии в условиях интенсивного производства говядины. Результаты работы могут найти практическое применение в профилактике алиментарных нарушений и укреплении иммунитета при внедрении инновационных подходов нормированного кормления в современных системах выращивания крупного рогатого скота.

Теоретическая и практическая значимость работы.

Включение в основной рацион телят молочных пород эфирных масел и плодов кориандра посевного и фенхеля обыкновенного способствует повышению неспецифической резистентности животных, профилактике абомазоэнтеритов, а также оказывает положительное влияние на

биохимический статус, процессы пищеварения и продуктивность крупного рогатого скота (КРС). Материалы, представленные в диссертационной работе, могут быть использованы при подготовке научно -информационной литературы, в образовательном процессе сельскохозяйственных вузов, а также в ветеринарной практике и животноводстве.

Методология и методы исследований. Методологической основой диссертационного исследования послужило изучение современных подходов к повышению иммунного статуса и продуктивности животных, представленных в трудах отечественных и зарубежных исследователей. Методика исследования включала использование современного сертифицированного оборудования и применение клинических, биохимических, гематологических, зоотехнических, молекулярно -генетических и статистических методов. Обработка первичных данных проводилась с использованием программного обеспечения STATISTICA (версия 13RU, StatSoft, Inc., 2011; www.statsoft.com) и Microsoft Excel 2010, с применением однофакторного и двухфакторного дисперсионного анализа (ANOVA). Статистически значимыми различиями считались те, где р<0,01, значимыми — при р<0,05, а различия, находящиеся в интервале р>0,05 и р<0,10, рассматривались как тенденции.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

1) определены показатели биобезопасности и оптимальные дозировки применения эфирных масел кориандра посевного и фенхеля обыкновенного на модельных животных;

2) введение в заменитель цельного молока (ЗЦМ) эфирных масел кориандра посевного и фенхеля обыкновенного приводит к повышению адаптивных свойств организма (усиление неспецифического иммунитета), оптимизирует обменные процессы и способствует формированию преджелудочного и кишечного пищеварения телят;

3) за счет улучшения пищеварения и биохимического статуса организма телят происходит повышение продуктивности животных, формируется

микробиом рубца, что позволяет раньше перевести телят молочного периода выращивания на грубые и объемистые корма.

4) использование технически обработанных плодов кориандра посевного и фенхеля обыкновенного позволяет повысить показатели неспецифической резистентности, влиять на микробиоту рубца, что выражается в повышении продуктивности быков в период доращивания.

Степень достоверности и апробация результатов работы.

Исследования были проведены в условиях вивария ВНИИФБиП, а также в лабораториях ВНИИФБиП - филиал ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста и в лаборатории молекулярно-генетических исследований ООО «Биотроф» с использованием поверенного, сертифицированного оборудования, стандартизированных реактивов и общепринятых методик. Надежность полученных результатов подтверждается правильным выбором методик и биометрической обработкой первичных данных. Исследования состояли из нескольких этапов: на первом этапе определялись параметры безопасности использования эфирных масел, на втором — оценивалась эффективность применения эфирных масел и плодов кориандра посевного и фенхеля обыкновенного для телят молочных пород КРС в период молочного выращивания и доращивания.

Полученные цифровые материалы биометрически обработаны с использованием методов статистики.

Основные положения диссертации доложены, обсуждены и одобрены на следующих научных мероприятиях: на научных конференциях отдела кормления ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста; на научно-практической конференции молодых исследователей "Аграрная наука - 2022", ФГБОУ ВО «Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева», 2022; на IX Национальной научно-практической конференции с международным участием "Актуальные научно-технические средства и сельскохозяйственные проблемы", Кузбасская ГСХА, 2022; на Международной научно-практической конференции "Актуальные проблемы

ветеринарии и интенсивного животноводства", Брянский ГАУ, 2023; на XV научно-практической конференции "Научные основы устойчивого развития сельскохозяйственного производства в современных условиях", ВНИИФБиП - филиала ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста, 2022; на XVI международной научно-практической конференции "Научные основы повышения продуктивности, здоровья животных и продовольственной безопасности", 2022; на Международной научно-практической конференции "Современные аспекты производства и переработки сельскохозяйственной продукции", 2022; на Международной научно-практической конференции аспирантов и молодых ученых, 2023; на VIII Международной научной конференции "Современное состояние, проблемы и перспективы развития аграрной науки", 2023.

По теме диссертационной работы опубликовано 5работ, в том числе 3в ведущих рецензируемых научных журналах и изданиях (ВАК, МБД), рекомендованных для публикации основных научных результатов диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 143 страницах компьютерного текста, содержит 26 таблиц, 7 рисунков; структурно включает следующие разделы: введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты собственных исследований, заключение, выводы, рекомендации производству, перспективы дальнейшей разработки темы, список использованной литературы, включающий 341 источников, из них 246 на иностранном языке, приложение.

2. ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ

2.1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1.1 Использование эфирных масел в качестве альтернативы антибиотикам в животноводстве

Рост населения на планете привел к повышению потребления животных продуктов и сокращению сроков выращивания животных. С целью ускорения роста мясных пород скота и профилактики заболеваний начали применяться антибиотики (Goossens H., 2005). Если раньше этому значения не придавалось, то с 1990-х годов общество начало осознавать нерациональное применение антибиотиков как проблему глобального масштаба, так как формируется бактериальная резистентность среди населения и темпы её только растут (Hu Y.; 2017; Forsberg K.J.; 2012).

С 1 марта 2023 года в силу вступил Федеральный закон от 30.12.2021 №463-Ф3 «О внесении изменений в Закон Российской Федерации «О ветеринарии» и Федеральный закон «Об обращении лекарственных средств», который запрещает добавление антибиотиков в корма при их производстве. Встал вопрос об альтернативе антибиотиков в животноводстве. Замена появилась среди лекарственного растительного сырья, в котором содержатся эфирные масла (ЭМ), обладающие антибактериальными свойствами (Liu C.H., 2017). Эти соединения извлекаются из растений путем дистилляции, холодного прессования, экстракции, анфлеража.

ЭМ используются в различных секторах, включая фармацевтику, косметическую и пищевую промышленность. В настоящее время известно более 3000 видов ЭМ, но только получение 10% из них является экономически целесообразным. ЭМ обладают различными эффектами: антибактериальными, усиливающими аппетит, успокаивающими и другими свойствами. В Российской Федерации ЭМ регулярно используются в составе пищевых

продуктов в роли ароматизаторов, в косметических средствах таких как лосьоны после бритья и парфюмерия, также находят применение в необработанном виде в качестве добавок к пище и в составе кормов для скота (Cutter C.N., 2000; Rebícková K., 2020; Aziz Z.A.; 2018, Juliano C., 2000).

За последние шесть лет объем производства эфирных масел в России увеличился вдвое, достигнув 367 тонн в год. Лидерами в производстве стали предприятия Южного федерального округа (33% от общего объёма производства), Сибирь (31%), Центральный и Приволжский федеральные округа занимают 21% и 15% соответственно. Стоит отметить, что климат Российской Федерации не позволяет выращивать лекарственное растительное сырье в необходимом масштабе, поэтому Россия остается зависимой от импорта со стороны Индии и Китая.

Увеличению объёма производства также способствует и формирование приверженности среди населения к натуральным продуктам, в том числе и лекарственным препаратам, так как они обладают лучшей переносимостью и меньшим количеством нежелательных лекарственных реакций (Shi 2017; Moro 2015).

Исследования, проведенные в основном в области птицеводства и свиноводства, продемонстрировали способность некоторых ЭМ улучшать продуктивность желудочно-кишечного тракта животных путем стимуляции пищеварительной секреции, увеличения числа пробиотических бактерий, а именно Lactobacillus spp., стимуляции иммунной функции и микробиоты желудочно-кишечного тракта и снижения окислительного стресса (Li S.Y., 2012; Omonijo F.A., 2018; Barker D.J.P., 1986; Boyle W., 1955; Luebbe K.M., 2019).

Эффективность ЭМ сильно варьирует и зависит от различных внутренних и внешних факторов: инфекций, питания, окружающей среды и состава рациона (Funston R.N., 2013).

В настоящее время активно проводятся исследования, направленные на изучение потенциала эфирных масел (ЭМ) как средства для регулирования

метаболических процессов и подавления роста бактерий (Forsberg K.J., 2012; Simitzis P.E., 2017). Особое внимание уделяется их антибактериальному эффекту, который изучается на примере Escherichia coli — бактерий, широко распространенных в пищеварительной системе жвачных животных. Экспериментальные данные показывают, что для лечения колибактериоза возможно применение ЭМ душицы обыкновенной, эффективность которого сопоставима с действием неомицина при дозировке 10 мг ЭМ на 1 кг массы тела теленка (Mushtaq S., 2018).

Кроме того, ЭМ оказывают положительное влияние на развитие телят, стимулируя аппетит, увеличивая потребление стартерного корма и повышая эффективность кормления и прирост живой массы. Они также способствуют увеличению количества полезных бактерий в кишечной микрофлоре, что дополнительно укрепляет здоровье животных (Brenes A., 2010).

2.1.2 Кориандр посевной и фенхель обыкновенный

Кориандр (Coriandrum sativum L.), семейство Зонтичные (Umbelliferae). Широко распространен в России и занимает до 90% общей площади, выделенной под культивацию эфиромасличных культур. Семена кориандра легко доступны и характеризуются низкой стоимостью производства. Семена содержат жизненно важные ненасыщенные жирные кислоты (линолевая кислота), минералы, витамин С. Кориандр богат биологически активными веществами, обладающими антиоксидантными, противовоспалительными и антибактериальными свойствами.

Основным действующим веществом ЭМ кориандра является линалоол (примерно 70%). Он проявляет противомикробные, противовоспалительные, противораковые и антиоксидантные свойства, а также оказывает обезболивающий эффект и положительное влияние на ЦНС - данные подтверждены на лабораторных животных в ходе проведения доклинических испытаний (Shi C., 2017). Исследования указывают на защитные и

терапевтические эффекты линалоола в отношении печени, почек и легких (Lykkesfeldt J., 2007). Благодаря своим защитным свойствам и низкой токсичности ЭМ КП может быть использовано в качестве вспомогательного средства к антибиотикам. Таким образом, линалоол обладает значительным потенциалом для применения в роли натурального и безопасного альтернативного терапевтического средства (Castillo C., 2005).

Однако линалоол содержится не только в плодах кориандра посевного, но и в плодах ФО. Массовая доля ЭМ в плодах ФО она составляет от 4,50% до 4,65%. Эти значения соответствуют нормам, установленным в ГОСТ ISO 35162018 и ГОСТ 3982-02 соответственно.

ФО (Foeniculum vulgare Mill.) относится к семейству Сельдерейных (Apiaceae). Используют в кулинарии, медицине, фармацевтике, животноводстве, ветеринарии, парфюмерно-косметической сфере и в других отраслях промышленности (Пономарева Е.И., 2015). Это растение используют в народной медицине, в клинической практике в составе травяных сборов из различных видов лекарственного растительного сырья.

Основным действующим веществом ЭМ ФО является анетол, (содержание до 70%). Анетол обладает противовоспалительными и нейропротекторными свойствами, а также антиноцицептивным эффектом в отношении нейропатической боли.

В зависимости от почвенно-климатических условий, фенхель выращивают как однолетнее или двулетнее растение. Урожай плодов во второй год вегетации в 1,5 раза больше, чем в первый. Растения фенхеля засухоустойчивы, однако требуют достаточного увлажнения почвы в период от посева до образования розетки. Минимальная температура прорастания семян 6-8 °С. При оптимальных условиях - 15-16 °С и достаточной влажности почвы семена прорастают на 4-5 день. Особенно высокие требования к тепловому режиму у фенхеля предъявляются во время фаз цветения и созревания. При прорастании семена потребляют много воды. Критический для фенхеля период в потреблении влаги - от начала стеблевания до полного цветения,

когда растения формируют основную вегетативную массу. Во время цветения, часто выпадающие осадки неблагоприятно отражаются на плодообразовании, а при суховеях плоды не образуются вовсе. Лучшими предшественниками для фенхеля являются озимые и пропашные культуры, а также однолетние травы.

Кориандр посевной (Янтарь, Нектар, Медун, Силач) и фенхель обыкновенный (Мэрцишор и Оксамит) выращивали в Научно-исследовательском институте сельского хозяйства Крыма (НИИСХ Крыма) в период с 2018 по 2022 год. Кроме того, создана смесь товарных плодов различных сортов этих культур, полученных в ходе урожаев с 2018 по 2020 год. Массовая доля ЭМ в товарных плодах кориандра составляет 3,01 ± 0,05%, а в фенхеле - 4,45 ± 0,01%. Содержание основных компонентов в ЭМ из товарных плодов также соответствует стандартам: линалоол (кориандр) - 70,2 ± 0,1%, анетол (фенхель) - 68,1 ± 1,1%.

Использование легкодоступного лекарственного растительного сырья является экономическим выгодным, так как позволяет снизить применение биологически активных добавок, содержащих искусственно синтезированные химические компоненты (Кротова И.В., 2002). Однако содержание действующих веществ в составе ЭМ также сильно варьирует и завит от ряда факторов. Например, от времени сбора урожая, генетических особенностей, методов культивирования и географического происхождения (Lis-Balchin M., 1998). Наивысшую антибактериальную активность проявляют ЭМ, получаемые из растений, которые были собраны в фазу цветения или сразу после таковой. (Daferera D.J., 2003). Право и левовращающиеся энантиомеры химических соединений - пары стереоизомеров, представляющих собой зеркальные отражения друг друга, не совмещаемые в пространстве, содержащихся в ЭМ, обладают различной антибактериальной активностью (Lens-Lisbonne C., 1987). В этом также заключается дороговизна и сложность синтеза данных соединений в промышленности, потому что правовращающиеся изомеры необходимо отделять от левовращающихся, не обладающих антибактериальной активностью. Большая стоимость связана с

тем, что для разделения энантиомеров используются высокотехнологические методы - измерение угла вращения плоскости поляризации света, хроматографические с использованием «хиральных» колонок, то есть хроматографических колонок с энантиоселективной стационарной фазой, а также основанные на ЯМР-спектроскопии. Добавление удобрений и изменение условий выращивания также могут влиять на состав ЭМ (Sellami I.H., 2011).

2.1.3 Антибактериальная активность эфирных масел

Свойства эфирных масел зависят от химической структуры соединений, механизма действия, их фармакокинетики и фармакодинамики. В основном ЭМ являются лиофильными соединениями, что позволяет им воздействовать на клеточную мембрану микроорганизмов, вызывая изменения в энергетическом статусе клетки и регулировании метаболизма. Это воздействие может также включать изменение экспрессии оперонов и влиять на ферменты, ответственные за биосинтез липидов (Chouhan S., 2020).

Что касается фармакокинетики, то гидрофобная природа молекул эфирных масел облегчает их проникновение через клеточную мембрану. Считается, что происходят структурные изменения в клеточной мембране, которые нарушают транспорт питательных веществ. Отсутствие достаточного количества питательных веществ в клетке способствует, соответственно, деградации жизнедеятельности клетки (Giovannini D., 2016).

Исследования in vitro подтверждают антибактериальную активность ЭМ против широкого спектра патогенов, включая грамположительные и грамотрицательные бактерии, плесневые грибы и дрожжи. Основным показателем, который определяет антибактериальную активность является минимальная ингибирующая концентрация (МИК). МИК - это минимальная концентрация, при которых наблюдается ингибирование видимого роста патогенов. Стоит отметить, что для каждого вида и подвида живых организмов

МИК различна и должна быть изучена отдельно при проведении специфических исследований (Nychas G.J.E., 1995).

Антибактериальная активность экстракта сырого масла кориандра была изучена против различных видов бактерий, включая Yersinia enterocolitica, Bacillus megaterium, Enterococcus faecalis, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella typhimurium, Listeria monocytogenes и Staphylococcus aureus (Benchaar C., 2011). ЭМ, полученное из кориандра, также проявило антибактериальную активность против Acinetobacter baumannii LMG 1025 (МИК 1 мкл/мл) и LMG 1041 (МИК 4 мкл/мл). Антибактериальный пептид, плантарицин, выделенный из экстракта листьев кориандра, также проявил антибактериальное действие против K. Pneumoniae (МИК - 71,55 г/мл), P. Aeruginosa (МИК - 86,4 г/мл) и S. Aureus (МИК - 35,2 г/мл) (Li P., 2012).

В эксперименте с рыбами, инфицированными Aeromonas hydrophila был выявлен иммуностимулирующий потенциал ЭМ (Xu Y., 2020). Кроме того, ЭМ кориандра демонстрировало антибиопленочную активность против Stenotropomonas maltophilia (Xie Z., 2020).

Антибактериальная активность фракционированные ЭМ оценивали в отношении четырех патогенных бактерий типичных для пищевых продуктов, а именно S. aureus, B. subtilis, E. coli и P. aeruginosa. В данном исследовании все образцы фракционированные ЭМ продемонстрировали значительную антибактериальную активность против всех тестируемых штаммов. Особенно высокую эффективность в ингибировании роста бактерий показали фракционированные ЭМ, полученные из комбинации растительных масел пальмы, лаванды и лимона, превзойдя действие гентамицина на 23,5%, 25,0%, 6,6% и 16,6% для S. aureus, B. subtilis, E. coli и P. Aeruginosa.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Кольцов Кирилл Сергеевич, 2024 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Адамушкина Л.Н. Антиоксидантная система редокс-витаминов в норме и при гепатозе крупного рогатого скота / Л.Н. Адамушкина // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2010. - Т. 203.- С. 3-6.

2. Алинкина Е. С. Антиоксидантные и антирадикальные свойства эфирных масел in vivo и in vitro: дисс. к-та биол. наук. - Москва. - 2013. - 148 с.

3. Амерханов Х., Стрекозов Н. Научное обеспечение конкурентности молочного скотоводства / Х. Амерханов, Н. Стрекозов // Молочное и мясное скотоводство, 2012. - Спецвып. - С.2-6

4. Андреева Н.Л., Соколов В.Д. К вопросу о терминологии использования биологически активных веществ в ветеринарии / Н. Л. Андреева, В. Д. Соколов // Международный вестник ветеринарии. - 2010 г. -№4. - С. 25-29

5. Арутюнян Н.С. Фосфолипиды растительных масел / Н.С. Арутюнян, Е.П. Корнена. - М.: Агропромиздат, 1986. - 256 с

6. Барабой В.А., Брехман И.И., Голотин В.Г., Кудряшов Ю.Б. Перекисное окисление липидов. СПб.: Наука, 1992. - 148 с.

7. Бич А.И. Генетические основы создания высокопродуктивного молочного скота черно-пестрой породы путем использования голштинских производителей /А.И. Бич, Е.И. Сакса; Бюл. ВНИИРГЖ. Л., 1987. - Вып. 99.-С. 15-21.

8. Борознов С.Л., Курдеко А.П., Мацинович А.А. Биохимические показатели крови высокопродуктивных коров и новорожденных телят / С.Л. Борознов, А.П. Курдеко, А.А. Мацинович // Учёные записки УО ВГАВМ. -2006. - № 42. - С. 10-13.

9. Бурмистров Е.А. Динамика морфологических показателей крови коров черно-пестрой породы в зависимости от сезонов года / Е.А. Бурмистров,

М.Ф. Юдин, В.Н. Лазаренко // «Технол. пробл. пр-ва продукции животноводства». Троицк, 2001. - С.14-17.

10. Буряков Н.П. Кормление высокопродуктивного молочного скота. -М.: Проспект, 2009. - 416 с.

11. Васильева Е.А. Клиническая биохимия сельскохозяйственных животных. - М.: Агропромиздат, 2000. - 359 с.

12. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Соросовский Образовательный Журнал. 2000. Т 6, №12. - С. 13- 19.

13. Воскресенский О.Н., Левицкий А.П. Перекиси липидов в живом организме / О.Н. Воскресенский, А.П. Левицкий // Вопросы медицинской химии. - 2003. - Т. 16. - № 6. - С. 563-583.

14. Воскресенский С.К., Жутаев И.А., Бобырев В.Н. Антиоксидантная система, онтогенез и старение / С.К. Воскресенский, И.А. Жутаев, В.Н. Бобырев // Вопросы медицинской химии. - 2004. - № 1. - C. 14- 2

15. Гаврикова Е.И. Показатели оксидантной-антиоксидантной системы высокопродуктивных коров после холодных ингаляций анисового 193 эфирного масла / Е.И. Гаврикова // Аграрный научный журнал - 2016 - № 9 -С.6-9

16. Гамко Л. Теоретические основы кормления высокопродуктивных коров / Л. Гамко // Главный зоотехник. - 2012. - № 4. - С. 19-24.

17. Гамко Л.Н. Биологически активные вещества в животноводстве / Л.Н. Гамко В.Е. Подольников Г.Ф. Подобай. - Брянск: Изд-во БГСХА, 2011. -183 с.

18. Голиков А.Н. Физиологическая адаптация животных / А.Н. Голиков // Ветеринария. - 1988. - №11. - С.55-58.

19. Гусев, И.В. Контроль биохимического статуса свиней и коров: руководство / И.В. Гусев, Н.В. Боголюбова, Р.А. Рыков, Г.Н. Левина. -Дубровицы: ФГБНУ ВИЖ им.Л.К.Эрнста, 2019. - 40 с.

20. Даниленко, М.В. Использование биологически активных веществ в животноводстве / М.В. Даниленко // Приоритетные научные направления: от теории к практике. - 2014. - №12. - С. 97-101.

21. Дубинская В.А., Поляков Н.А., Ефремов А.А., Ефремов Е.А. Определение биологической активности эфирных масел с помощью биотест -систем in vitro / В.А. Дубинская, Н.А. Поляков, А.А. Ефремов, Е.А. Ефремов // Химия растительного сырья. - 2013. -№ 3. - С. 149-153

22. Дунин И. М. Перспективы развития молочного скотоводства и конкурентоспособность молочного скота, разводимого в Российской Федерации / И. М. Дунин, А. Данкверт, А. Кочетков // Скотоводство. - 2013. -№3. - С. 1-3.

23. Дунин И.М. Настоящее и будущее отечественного скотоводства / И.М. Дунин, В. Шаркаев, А. Кочетков // Молочное и мясное скотоводство. -2012. - №6. - с. 2-5

24. Жаров А.В. Патология обмена веществ у высокопродуктивных животных / А.В. Жаров, Ю.П. Жарова // Ветеринария. - 2012. - №9. - С. 46- 50

25. Зайцев В.Г. Модельные системы перекисного окисления липидов и их применение для оценки антиоксидантного действия лекарственных препаратов: дисс. к-та биол. наук. - Волгоград. - 2001. - С. 104

26. Зайцев С.Ю. Биохимия животных. Фундаментальные и клинические аспекты / С.Ю. Зайцев, Ю.В. Конопатив. - изд. «Лань», 2004. - 384с.

27. Зенков Н.К. Окислительный стресс. Биохимические и патофизиологические аспекты / Н.К. Зенков, В.З. Лапкин, Е.Б. Меньшикова. -М.: Наука / Интерпериодика, 2001. - 343с.

28. Ильинова С.А. Применение биологически активных добавок в молочной промышленности / С.А. Ильинова, Т.Б. Брикота, Н.А. Монахова, В.В. Петракова // Известия вузов. Пищевая технология. - 2008. - №5-6. - С.17-20.

29. Казанцев А.В. Разработка и оценка потребительских свойств функциональных биологически активных добавок и пищевых продуктов на

основе растительного сырья: дис. ... канд. техн. наук. - Краснодар, 2004. - 139 с

30. Калашников А.П. Нормы и рационы кормления с.-х. животных / А.П. Калашников, В.И. Фисинин, В.В. Щеглов и др. - Москва, 2003. - 456с

31. Калинкина Г.И., Писарева С.И. Метод определения антиоксидантной активности растительных водно-спиртовых экстрактов // Хим.-фармацевт, журн. - 1992 - № 1- С. 65-66.

32. Кения М.В., Лукаш А.И., Гуськов Е.П. Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе // Успехи современной биологии. - 1993 . - №4. - С. 456-470.

33. Кердяшов Н.Н. Применение нетрадиционных кормовых добавок и лечебно-профилактических средств в животноводстве / Н.Н. Кердяшов, А.А. Наумов, А.П. Смольянова // Нива Поволжья. - 2008. - №1(6). - С. 46- 50.

34. Кибкало Л.И. Эффективные технологии в скотоводстве: монография / Л.И. Кибкало, Н.И. Жеребилов, С.Н. Коростелев. - Курск: Изд-во Курск. гос. с.-х. ак., 2014. - 572 с.

35. Клебанов Г.И., Бабенкова И.В., Теселкин Ю.О. Оценка антиокислительной активности плазмы крови с применением желточных липопротеинов / Г.И. Клебанов, И.В. Бабенкова, Ю.О. Теселкин // Лаб. дело -1988. - № 5. - С. 59-62

36. Клебанов Г.И., Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В. Антиоксидантная активность сыворотки крови / Г.И. Клебанов, Ю.О. Теселкин, И.В. Бабенкова и др. // Вестник Рос. АМН. - 1999. - №2. - С. 15- 22.

37. Козырь В. С. Организация питания высокопродуктивных коров / В. С. Козырь // Аграрная наука. - 2000. - № 11. - С. 16-17.

38. Кондрахин И. П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: справочник / И. П. Кондрахин, А. В. Архипов, В. И. Левченко; под ред. И. П. Кондрахина. - М. : Колос, 2004. - 520 с

39. Кондрахин, Н.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. М.: Колос, 2004. 520 с.

40. Кормовые ресурсы животноводства. Классификация, состав и питательность кормов / под ред. М. П. Кирилова, Н. Г. Первова, В. Н. Виноградова, В. М. Косолапова. М., 2009.

41. Коровушкин А. А. Разведение с основами частной зоотехнии. Учебник / Г. М. Туников, А. А. Коровушкин. - Рязань: Московская полиграфия, 2010. - 711 с.

42. Короткова Е.И. Новый способ определения активности антиоксидантов // Журнал физической химии. - 2000. - Т. 74. - №9. - C. 15441546.

43. Костромитинов Н. А. Антиоксидантная система защиты и липидный обмен у молодняка крупного рогатого скота в возрастной динамике / Н. А. Костромитинов, И. В. Сидоров, Е. А. Суменкова // с.-х. биология. 2005. - №6 -С. 46-51.

44. Кротова И.В., Ефремов А.А. Возможности рационального использования эфиромасличных растений / И.В. Кротова, А.А. Ефремов // Химия растительного сырья. - 2002. - №3. - С. 29-33.

45. Кузнецов С.Г. Биохимические критерии полноценности кормления животных / С.Г. Кузнецов, Т.С. Кузнецов, A.C. Кузнецов // Ветеринария 2008. - № 4. - С. 3-8

46. Купчинская С. С. Биологическая и патогенетическая роль антиок-сидантной системы в функционировании живого организма (обзор литературы) / С. С. Купчинская // Тольяттинский медицинский консилиум. -2014. - № 1-2. - С. 56-59.

47. Макаров А. В. Морфо-биохимические и физико-химические показатели крови и молока в зависимости от состояния здоровья животных / А. В. Макаров // Вестн. Краснояр. гос. аграр. ун-та. - 2008. - №4. - С. 190 -193.

48. Макарова Я. С. Про- и антиоксидантная система крови крупного рогатого скота при различных физиологических состояниях / Я.С. Макарова, И.П. Степанова // Зоотехния. - 2010. - №2. - С.21-22.

49. Макарцев Н.Г. Кормление седьскохозяйственных животных / Н.Г. Макарцев. - 2-е изд., перераб. и доплн. - К.: Изд-во Н.Ф. Бочкаревой, 2007.608 с.

50. Макарцев Н.Г. Кормление сельскохозяйственных животных: учебник для вузов / Н.Г. Макарцев. - Калуга: издательство «Ноосфера», 2012. - 640с

51. Максимюк Н.Н. Физиология кормления животных / Н.Н. Максимюк, В.Г. Скопичев. - СПб.: Лань, 2004. — 256 с.

52. Маниатис Т. Молекулярное клонирование / Т. Маниатис, Э. Фрич, Дж. Сэмбрук. - М.: Мир, 1984. - 480 с.

53. Меньшикова Е. Б. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты / Е.Б. Менышикова, В.З. Ланкин, Н.К. Зенков, И.А. Бондарь,

H.Ф. Круговых, В.А. Труфакин. - М.: Фирма «Слово», 2006. - 556 с

54. Микулец Ю.И. Биохимические и физиологические аспекты взаимодействия витаминов и биоэлементов / Ю.И. Микулец, А.Р. Цыганков, А.Н. Тищенков. - Сергиев Посад, 2002. - С. 110-116.

55. Мишарина Т.А., Полшков А.Н. Антиоксидантные свойства эфирных масел. Автоокисление эфирных масел лавра, фенхеля и их смеси с эфирным маслом кориандра // Прикладная биохимия и микробиология. - 2005. - Т. 41, №6. - С. 693-702.

56. Музыка А.А. Воздействие иммуностимуляторов на иммунологический статус молодняка крупного рогатого скота / А.А. Музыка, М.Н. Матвеева, М.А. Печенова // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства: сб. науч. тр. / БГСХА. - Горки, 2009. - Вып. 12. Ч.

I. - С. 58-64.

57. Мысик А. Т. Развитие животноводства в мире и России / А. Т. Мысик // Зоотехния, 2015. - № 1. - С. 2 - 5.

58. Николаевский В. В., Еременко А.Е., Иванов И.К. Биологическая активность эфирных масел. - М.: Медицина. 1987. - 144 с.

59. Нормы потребностей молочного скота и свиней в питательных веществах: Монография / Под ред. Р.В. Некрасова, А.В. Головина, Е.А. Махаева / Р.В. Некрасов, А.В. Головин, Е.А. Махаев, А.С. Аникин, Н.Г. Первов, Н.И. Стрекозов, А.Т. Мысик, В.М. Дуборезов, М.Г. Чабаев, Ю.П. Фомичев, И.В. Гусев. - Москва. - 2018 - 290 с.

60. Орлинский, Б.С. Добавки и премиксы в рационах / Б.С. Орлинский. - М.: Россельхозиздат, 1984. - 173 с.

61. Пахомов А.Н. Теоретическое и экспериментальное обоснование создания функциональных пищевых продуктов и биологически активных добавок на основе растительного сырья: дис. ... д-ра техн. наук. - Краснодар, 2005. - 252 с.

62. Петрова С.Н., Ивкова А.В. Химический состав и антиоксидантные свойства видов Rosa L. / С.Н. Петрова, А.В. Ивлева // Химия растительного сырья. - 2014. - №2. - 13-19.

63. Позднякова, В.Ф. Современные кормовые добавки в животноводстве и их безопасность / В.Ф. Позднякова, Т.Ю. Гусева, П.О. Щеголев, А.В. Масленникова // Вестник МАНЭБ. - 2018. - Т. 23. - № 3. - С. 46-50.

64. Покровская М.В. Некоторые особенности микроэлементарного состава цельной крови голштинизированного черно-пестрого скота / М.В. Покровская, И.В. Гусев, Р.А. Рыков // Зоотехния.- 2013. - № 9. - С. 12-14.

65. Пономарева Е.И., Маврина А.Р., Вотинцева Е.О., Молохова Е.И. Эфирные масла на фармацевтическом рынке / Е.И. Пономарева, А.Р. Маврина, Е.О. Вотинцева, Е.И. Молохова // Теоретические и прикладные аспекты современной науки. - 2014. - № 6-2. - С. 116-120.

66. Пономарева Е.И., Молохова Е.И., Холов А.К. Применение эфирных масел в фармации / Е.И. Пономарева, Е.И. Молохова, А.К. Холов // Современные проблемы науки и образования. - 2015. - № 4. - С. 567.

67. Попков Н.А. Корма и биологически активные вещества /Н.А. Попков, В.И. Фисинин, И.А Егоров, Ю.А. Пономаренко, В.А. Шаршунов, В.С. Понаморенко. - Минск: Беларусская навука, 2005. - 562с.

68. Раицкая В. И., Глушков В. В., Виль Л. Г. Влияние гематологических и биохимических показателей крови у разных половозрастных групп крупного рогатого скота герефордской породы в разные сезоны года / В. И. Раицкая, В. В. Глушков, Л. Г. Виль // Вестник Хакасского государственного университета им. Н.Ф. Катанова. - 2014. - № 8. - С. 142-146.

69. Рецкий М. И. Значение антиоксидантного статуса в адаптивной гетерогенности и иммунологической резистентности животных / М. И. Рецкий, В. С. Бузлама, А. Г. Шахов // Ветеринарная патология. - 2003. - № 2. - С. 63-65.

70. Рецкий М.И. Система антиоксидантной защиты у животных при стрессе и его фармакологической регуляции: дис. ... д -ра б. наук. - Воронеж, 1997. - 309 с.

71. Сафонов В. А. Свободнорадикальное окисление липидов и репродуктивное здоровье коров / В. А. Сафонов и др. // Сельскохозяйственная биология. - 2014. - №6. - С. 107-115.

72. Сафонов В.А. Адаптивные изменения антиоксидантного и гормонного статуса коров /В.А. Сафонов// Ветеринария. - 2011. - №6. - С.32-34.

73. Сейботалов М.Т. Проблемы содержания высокопродуктивного крупного рогатого скота / М.Т. Сейботалов // Экономика сельского хозяйства России. - 2013. - № 7-8. - С. 80-84.

74. Сидоров И.В. Роль биоксидантов в обменных процессах в организме животных / И. В. Сидоров, Н. А. Констромитинов, Е. М. Уколова // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2008. - № 8. - С. 4-7.

75. Сизова Ю.В. Биохимические показатели крови коров / Ю.В. Сизова // Вестник биотехнологии. - 2016. - № 1. - С. 5.

76. Сизова Ю.В. Влияние периода содержания коров на их биохимический состав крови / Ю.В. Сизова // Бюллетень науки и практики. -2016. - № 6 (7). - С. 59-64.

77. Степанова И. П. Метод для выявления окислительного стресса у крупного рогатого скота / И. П. Степанова // Ветеринария. - 2005. - № 8. - С. 47-49.

78. Степанова И. П. О взаимосвязи между перекисным окислением липидов и активностью антиоксидантной системы защиты у коров / И. П. Степанова, Л. М. Дмитриева, И. В. Конева // СХБ. - 2005. - №2. - С. 113- 115.

79. Степанова И. П. Состояние антиоксидантной системы у крупного рогатого скота / И. П. Степанова // Зоотехния. - 2005. - № 7. - С. 9- 11.

80. Сударев Н.П. Разведение крупного рогатого скота голштинской и черно-пестрой пород в хозяйствах России, Центрального Федерального округа и Тверской области / Н. П. Сударев, Г. А. Шаркаева, Д. А. Абылкасымов, О. П. Прокудина, Ю.С. Кузнецова / Зоотехния, 2016. - №3. - С. 2 - 4.

81. Ткаченко К.Г. Эфирномасличные растения и эфирные масла: достижения и перспективы, современные тенденции изучения и применения / К.Г. Ткаченко // Вестник Удмуртского университета. Серия Биология. Науки о Земле. - 2011. - № 6-1. - С. 88-100.

82. Топорова Л.В. Сбалансированное кормление высокопродуктивных животных - основа профилактики и лечения нарушений обмена веществ / Л.В. Топорова, А.В. Архипов, И.В. Топорова, В.В, Андреев // Организация кормопроизводства и сбалансированного кормления крупного рогатого скота в хозяйствах Московской области по фактической питательности кормов: Материалы научно-производственного семинара, Дубровцы, ВИЖ. - 2010. -С.51 - 62.

83. Тяпугин Е.А. Применение антиоксидантов при воспроизводстве коров / Е. А. Тяпугин и др. // Зоотехния. - 2006. - № 7. - С. 31-32

84. Хазиахметов Ф.С. Нормирование кормление сельскохозяйственных животных / Ф.С. Хазиахметов, Б.Г. Шарифянов, Р.А. Галлямов. - М.: Лань, 2005. - 271 с.

85. Хасанов В.В., Рыжова Г.Л., Мальцева Е.В. Методы исследования антиоксидантов / Химия растительного сырья. - 2004. - №3. - С. 63-75

86. Хохрин С.Н. Кормление сельскохозяйственных животных / С.Н. Хохрин. - М..: «КолосС», 2007. - 241 с.

87. Хохрин, С.Н. Корма и кормление животных: Учебное пособие / С.Н. Хохрин. - СПб.: Издательство «Лань», 2002. - 512с.

88. Царевский И.В. Применение пробиотиков и эфирных масел на фоне аэроионизации при выращивании телят: дис. ... канд. вет. наук. - Чебоксары, 2009. - 112 с.

89. Шатилов А.В. Роль антиоксидантов в организме в норме и при патологии / А.В. Шатилов// Ветеринарная патология. - 2007. - № 2. - С.207-211

90. Шахов А.Г. Методические рекомендации по оценке и коррекции неспецифической резистентности животных: методические рекомендации / А.Г. Шахов. - Воронеж: ГНУ ВНИВИП, 2005. - 62 с.

91. Шпоганяч Н.Н. Влияние антиоксидантов разной природы на неспецифическую резистентность и витаминную обеспеченность сухостойных коров: дисс. к-та биол. наук. - Белгород. - 2009. -148 с.

92. Ярован Н.И., Гаврикова Е.И. Зависимость антиоксидантных свойств эфирных масел от состава модельных систем перекисного окисления липидов и условий проведения опыта / Н.И. Ярован, Е.И. Гаврикова // Фундаментальные и прикладные исследования - сельскохозяйственному производству: сборник материалов VIII Международной науч. -практ. Интернет-конференции 14 апреля 2016 года. - Орел: ФГБОУ ВО Орловский ГАУ, 2016. - С.120-125.

93. Ярован Н.И., Гаврикова Е.И. Использование новых устройств с подогревом и без подогрева для ингаляций анисового эфирного масла крупному рогатому скоту / Н.И. Ярован, Е.И. Гаврикова // Современные тенденции развития аграрного комплекса: материалы международной научно-практической конференции / с. Соленое Займище. ФГБНУ «ПНИИАЗ». -Соленое Займище. - 2016. - С.1079-1082.

94. Ярован Н.И., Гаврикова Е.И. Свободнорадикальное окисление у высокопродуктивных коров в условиях промышленного комплекса при использовании эфирных масел / Н.И. Ярован, Е.И. Гаврикова // Проблемы и перспективы инновационного развития агротехнологий: Материа- лы XX Международной научно-производственной конференции (Белгород, 23 - 25 мая 2016 г.). Том 3.- Белгород: Издательство ФГБОУ ВО Белгородский ГАУ, 2016. - С. 35-36.

95. Ярован Н.И., Гаврикова Е.И., Полехина Н.Н. Разработка модельной системы для изучения свободно - радикального окисления на основе липосом из лецитина подсолнечника / Н.И. Ярован, Е.И. Гаврикова, Н.Н. Полехина // Наука, образование и инновации: сборник статей Международной научно -практической конференции (13 мая 2016 г, г. Саратов). В 4 ч. Ч.4 - Уфа: МЦИИ ОМЕГА САЙНС. - 2016. - С.107-111.

96. Abboud M., El Rammouz R., Jammal B., Sleiman M. In vitro and in vivo antimicrobial activity of two essential oils Thymus vulgaris and Lavandula angustifolia against bovine Staphylococcus and Streptococcus mastitis pathogen. Middle East J. Agric. Res. 2015, 4: 975-983.

97. Adaszynska-Skwirzynska M., Szczerbinska D. The effect of lavender (Lavandula angustifolia) essential oil as a drinking water supplement on the production performance blood biochemical parameters and ileal microflora in broiler chickens. Poult. Sci. 2019, 8: 358-365.

98. Aiemsaard J., Aiumlamai S., Aromdee C., Taweechaisupapong S., Khunkitti W. The effect of lemongrass oil and its major components on clinical isolate mastitis pathogens and their mechanisms of action on Staphylococcus aureus DMST 4745. Res. Vet. Sci. 2011, 91.

99. Akbarian-Tefaghi M., Ghasemi E., Khorvash M. Performance rumen fermentation and blood metabolites of dairy calves fed starter mixtures supplemented with herbal plants essential oils or monensin. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2018, 102: 630-638.

100. Akter A., Caldwell J.M., Pighetti G.M Shepherd E.A., Okafor CC Eckelkamp EA Edwards JL Schneider LG. Hematological and immunological responses to naturally occurring bovine respiratory disease in newly received beef calves in a commercial stocker farm. J Anim Sci. 2022,100(2).

101. Alagawany M., Farag M.R., Abdelnour S.A., Elnesr S.S. A review on the beneficial effect of thymol on health and production of fish. Rev. Aquac. 2021, 13: 632-641.

102. Alam M.N., Bristi N.J., Rafiquzzaman M. Review on in vivo and in vitro methods evaluation of antioxidant activity. Saudi Pharm. J. 2013, 21: 143-152.

103. Alhaj N.A., Shamsudin M.N., Alipiah N.M., Zamri H.F., Bustamam A., Ibrahim S., Abdullah R. Characterization of Nigella sativa L. essential oil-loaded solid lipid nanoparticles. Am. J. Pharmacol. Toxicol. 2010, 5: 52-57.

104. Alizadeh Behbahani B., Noshad M., Jooyandeh H. Improving oxidative and microbial stability of beef using Shahri Balangu seed mucilage loaded with Cumin essential oil as a bioactive edible coating. Biocatal. Agric. Biotechnol. 2020, 24.

105. Almeida F.N., Htoo J.K., Thomson J., Stein H.H. Amino acid digestibility in camelina products fed to growing pigs. Can. J. Anim. Sci. 2013, 93: 335-343.

106. Alsaiqali M., El-Shibiny A., El-Shibiny A., Adel M., Abdel-Samie M., Ghoneim S. Use of Some Essential Oils as Antimicrobial Agents to Control Pathogenic Bacteria in Beef Burger. World J. Dairy Food Sci. 2016, 11: 109-120.

107. Amaral A.B., Silva M.V.D., Lannes S.C.D.S. Lipid oxidation in meat: Mechanisms and protective factors a review. Food Sci. Technol. 2018, 38: 115.

108. Amorati R., Foti M.C., Valgimigli L. Antioxidant Activity of Essential Oils. J. Agric. Food Chem. 2018, 61.

109. Andersson D.I., Hughes D. Persistence of antibiotic resistance in bacterial populations. FEMS Microbiol. Rev. 2011, 35: 901-911.

110. Artiga-Artigas M., Acevedo-Fani A., Martín-Belloso O. Improving the shelf life of low-fat cut cheese using nanoemulsion-based edible coatings containing oregano essential oil and mandarin fiber. Food Control. 2017, 76: 112.

111. Arzola-Alvarez C., Hume M.E., Anderson R.C., Latham E.A., Ruiz-Barrera O., Castillo-Castillo Y., Olivas-Palacios A.L., Felix-Portillo M., Armendariz-Rivas R.L., Arzola-Rubio A., et al. Influence of sodium chlorate ferulic acid and essential oils on Escherichia coli and porcine fecal microbiota. J. Anim. Sci. 2020, 98: 19.

112. Assane I.M., Valladao G.M.R., Pilarski F. Chemical composition cytotoxicity and antimicrobial activity of selected plant-derived essential oils against fish pathogens. Aquac. Res. 2021, 52: 793-809.

113. Aziz Z.A., Ahmad A., Setapar S.H.M., Karakucuk A., Azim M.M., Lokhat D., Rafatullah M., Ganash M., Kamal M.A., Ashraf G.M. Essential Oils: Extraction Techniques Pharmaceutical and Therapeutic Potential—A Review. Curr. Drug Metab. 2018, 19: 1100-1110.

114. Bakkali F., Averbeck S., Averbeck D., Idaomar M. Biological effects of essential oils—A review. Food Chem. Toxicol. 2008, 46: 446-475.

115. Bakry A.M., Abbas S., Ali B., Majeed H., Abouelwafa M.Y., Mousa A., Liang L. Microencapsulation of Oils: A Comprehensive Review of Benefits Techniques and Applications. Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. 2016, 15: 143-182.

116. Barker D.J., Osmond C. Infant mortality childhood nutrition and ischaemic heart disease in England and Wales. Lancet. 1986, 327: 1077-1081.

117. Bauer K., Garbe D., Surburg H. Common Fragrance and Flavor Materials: Preparation Properties and Uses. Weinheim: Wiley-VCH. 2001, 293

118. Ben Jemaa M., Falleh H., Saada M., Oueslati M., Snoussi M., Ksouri R. Thymus capitatus essential oil ameliorates pasteurization efficiency. J. Food Sci. Technol. 2018, 55: 3446-3452.

119. Ben Khedher M. R., Ben Khedher S., Chaieb I., Tounsi S., & Hammami M. Chemical composition and biological activities of Salvia officinalis essential oil from Tunisia. Excli Journal. 2017, 16: 160-173.

120. Benchaar C. Diet supplementation with thyme oil and its main component thymol failed to favorably alter rumen fermentation improve nutrient utilization or enhance milk production in dairy cows. Journal of Dairy Science. 2021, 104: 324-336.

121. Benchaar C., & Greathead H. Essential oils and opportunities to mitigate enteric methane emissions from ruminants. Animal Feed Science and Technology. 2011, 166-167, 338-355.

122. Benchaar C., Petit H. V., Berthiaume R., Ouellet D. R., Chiquette J., & Chouinardt Y. Effects of essential oils on digestion ruminal fermentation rumen microbial populations milk production and milk composition in dairy cows fed alfalfa silage or corn silage. Journal of Dairy Science. 2007, 90: 886-897.

123. Benjemaa M., Neves M. A., Falleh H., Isoda H., Ksouri R., & Nakajima M. Nanoencapsulation of Thymus capitatus essential oil: Formulation process physical stability characterization and antibacterial efficiency monitoring. Industrial Crops and Products. 2018, 113: 414-421.

124. Bismarck D., Becker J., Müller E., Becher V., Nau L., Mayer Screening of Antimicrobial Activity of Essential Oils against Bovine Respiratory Pathogens -Focusing on Pasteurella multocida. Planta Med. 2022; 88 (3-04):274-281.

125. Botsoglou N. A., Yannakopoulos A. L., Fletouris D. J., Tserveni-Goussi A. S., & Fortomaris D. Effect of dietary thyme on the oxidative stability of egg yolk. Journal of Agricultural and Food Chemistry 1997, 45: 3711-3716.

126. Bouhaddouda N., Aouadi S., & Labiod R. Evaluation of chemical composition and biological activities of essential oil and methanolic extract of Origanum vulgare L. ss glandulosum (DESF.) Ietswaart from Algeria. International Journal of Pharmacognosy and Phytochemical Research. 2016, 8: 104-112.

127. Bounatirou S., Smiti S., Miguel M. G., Faleiro L., Rejeb M. N., Neffati M., Costa M. M., Figueiredo A. C., Barroso J. G., & Pedro L. G. Chemical composition antioxidant and antibacterial activities of the essential oils isolated from Tunisian Thymus capitatus Hoff. et Link. Food Chemistry. 2007, 105: 146-155.

128. Bourgou S., Pichette A., Marzouk B., & Legault J. Bioactivities of black cumin essential oil and its main terpenes from Tunisia. South African Journal of Botany. 2010, 76: 210-216.

129. Bourgou S., Tammar S., Salem N., Mkadmini K., & Msaada K. Phenolic composition essential oil and antioxidant activity in the aerial part of Artemisia herba-alba from several provenances: A comparative study. International Journal of Food Properties. 2016, 19: 549-563.

130. Bousbia N., Abert Vian M., Ferhat M. A., Petitcolas E., Meklati B. Y., & Chemat F. Comparison of two isolation methods for essential oil from rosemary leaves: Hydrodistillation and microwave hydrodiffusion and gravity. Food Chemistry. 2009, 114: 355-362.

131. Boyle W. Spices and essential oils as preservatives. The American Perfumer and Essential Oil Review. 1955, 66: 25-28.

132. Bozin B., Mimica-Dukic N., Samojlik I., & Jovin E. Antimicrobial and antioxidant properties of rosemary and sage (Rosmarinus officinalis L. and Salvia officinalis L., Lamiaceae) essential oils. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2007, 55: 7879-7885.

133. Bozkurt H. Comparison of the effects of sesame and Thymbra spicata oil during the manufacturing of Turkish dry-fermented sausage. Food Control. 2007, 18: 149-156.

134. Brenes A., & Roura E. Essential oils in poultry nutrition: Main effects and modes of action. Animal Feed Science and Technology. 2010, 158: 114.

135. Buendía L., Soto S., Ros M., Antolinos V., Navarro L., Sánchez M. J., Martínez G. B., & López A. Innovative cardboard active packaging with a coating including encapsulated essential oils to extend cherry tomato shelf life. LWT. 2019, 116.

136. Burits M., & Bucar F. Antioxidant activity of Nigella sativa essential oil. Phytotherapy Research. 2000, 14: 323-328.

137. Burt S. Essential oils: Their antibacterial properties and potential applications in foods—A review. International Journal of Food Microbiology. 2004, 94: 223-253.

138. Calsamiglia S., Busquet M., Cardozo W., Castillejos L., & Ferret A. Invited review: Essential oils as modifiers of rumen microbial fermentation. Journal of Dairy Science. 2007, 90: 2580-2595.

139. Carson C. F., & Riley T. V. Antimicrobial activity of the essential oil of Melaleuca alternifolia. Letters in Applied Microbiology. 1993, 16: 49-55.

140. Castillo C., Hernandez J., Bravo A., Lopez-Alonso M., Pereira V., & Benedito J. L. Oxidative status during late pregnancy and early lactation in dairy cows. The Veterinary Journal. 2005, 169: 286-292.

141. Castillo C., Hernandez J., Pereira V., & Benedito J. L. Update about nutritional strategies in feedlot for preventing ruminal acidosis. Advances in Zoology Research. 2012, 4: 184.

142. Castillo C., Hernández J., Valverde I., Pereira V., Sotillo J., Alonso M. L., & Benedito J. L. Plasma malonaldehyde (MDA) and total antioxidant status (TAS) during lactation in dairy cows. Research in Veterinary Science. 2006, 80: 133-139.

143. Castillo C., Pereira V., Abuelo Á., & Hernández J. Effect of supplementation with antioxidants on the quality of bovine milk and meat production. The Scientific World Journal. 2013, 616098.

144. Castro-Montoya J., Peiren N., Cone J. W., Zweifel B., Fievez V., & De Campeneere S. In vivo and in vitro effects of a blend of essential oils on rumen methane mitigation. Livestock Science. 2015, 180: 134-142.

145. Ceciliani F., Ceron J. J., Eckersall D., & Sauerwein H. Acute phase proteins in ruminants. Journal of Proteomics. 2012, 75: 4207-4231.

146. Cetin E., Yibar A., Yesilbag D., Cetin I., & Cengiz S. S. The effect of volatile oil mixtures on the performance and ilio-caecal microflora of broiler chickens. British Poultry Science. 2016, 57: 780-787.

147. Chandrakanthan M., Handunnetti S. M., Sirimal G., Premakumara A., & Kathirgamanathar S. Topical anti-inflammatory activity of essential oils of Alpinia calcarata Rosc., its main constituents and possible mechanism of action. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine 2020.

148. Chapeau A.L.; Bertrand N.; Briard-Bion V.; Hamon ; Poncelet D.; Bouhallab S. Coacervates of whey proteins to protect and improve the oral delivery of a bioactive molecule. J. Funct. Foods. 2017, 38: 197-204.

149. Charai M.; Mosaddak M.; Faid M. Chemical Composition and Antimicrobial Activities of Two Aromatic Plants: Origanum majorana L. and O. compactum Benth. J. Essent. Oil Res. 1996, 8: 657-664.

150. Cheraif K.; Bakchiche B.; Gherib A.; Bardaweel S.K.; Qol Ayvaz M.; Flamini G.; Ascrizzi R.; Ghareeb M.A. Chemical Composition Antioxidant Anti-Tyrosinase Anti-Cholinesterase and Cytotoxic Activities of Essential Oils of Six Algerian Plants. Molecules. 2020, 25: 1710.

151. Cho B.W.; Cha C.N.; Lee S.M.; Kim M.J.; Park J.Y.; Yoo C.Y.; Son S.E.; Kim S.; Lee H.J. Therapeutic effect of oregano essential oil on subclinical bovine mastitis caused by Staphylococcus aureus and Escherichia coli. Korean J. Vet. Res. 2015, 55: 253-257.

152. Chouhan S.; Guleria S. Anti-inflammatory Activity of Medicinal Plants: Present Status and Future Perspectives. In Botanical Leads for Drug Discovery; Springer: Singapore. 2020; 67-92.

153. Cosentino S.; Tuberoso C.I.G.; Pisano B.; Satta M.; Mascia V.; Arzedi E.; Palmas F. In-vitro antimicrobial activity and chemical composition of Sardinian Thymus essential oils. Lett. Appl. Microbiol. 1999, 29: 130-135.

154. Cox S.D.; Mann C.M.; Markham J.L.; Bell H.C.; Gustafson J.E.; Warmington J.R.; Wyllie S.G. The mode of antimicrobial action of the essential oil of Melaleuca alternifolia (Tea tree oil). J. Appl. Microbiol. 2000, 88: 170-175.

155. Crosthwaite D. UK trade within the flavour and fragrance industry. In Proceedings of the International Federation of Essential Oils and Aroma Trades—

21st International Conference on Essential Oils and Aroma's 1998; IFEAT: Londo n UK. 1998; 6-12.

156. Cutter C.N. Antimicrobial effect of herb extracts against Escherichia coli O157:H7, Listeria monocytogenes and Salmonella Typhimurium associated with beef. J. Food Prot. 2000, 63: 601-607.

157. Daferera D.J.; Ziogas B.; Polissiou M.G. The effectiveness of plant essential oils on the growth of Botrytis cinerea Fusarium s and Clavibacter michiganensis subs michiganensis. Crop Prot. 2003: 344.

158. Daferera D.J.; Ziogas B.N.; Polissiou M.G. GC-MS analysis of essential oils from some Greek aromatic plants and their fungitoxicity on Penicillium digitatum. J. Agric. Food Chem. 2000, 48: 2576-2581.

159. De Nardi R.; Marchesini G.; Plaizier J.C.; Li S.; Khafipour E.; Ricci R.; Andrighetto I.; Segato S. Use of dicarboxylic acids and polyphenols to attenuate reticular pH drop and acute phase response in dairy heifers fed a high grain diet. BMC Vet. Res. 2014: 10.

160. De Oliveira Monteschio J.; de Souza K.A.; Vital A.C.; Guerrero A.; Valero M.V.; Kempinski E.M.B.C.; Barcelos V.C.; Nascimento K.F.; do Prado I.N. Clove and rosemary essential oils and encapsulated active principles (eugenol thymol and vanillin blend) on meat quality of feedlot-finished heifers. Meat Sci. 2017, 130, 5057.

161. Delmas T.; Piraux H.; Couffin A.C.; Texier I.; Vinet F.; Poulin Cates M.E.; Bibette J. How to prepare and stabilize very small nanoemulsions. Langmuir. 2011, 27: 1683-1692.

162. Demetzos C.; Perdetzoglou D.K.; Tan K. Composition and antimicrobial studies of the oils of Origanum calcaratum juss and O. scabrum boiss. et Heldr. from Greece. J. Essent. Oil Res. 2001, 13: 460-462.

163. Dima C.; Dima S. Essential oils in foods: Extraction stabilization and toxicity. Curr. Opin. Food Sci. 2015, 5: 29-35.

164. Dob T.; Dahmane D.; Chelghoum C. Essential oil composition of Juniperus oxycedrus growing in Algeria. Pharm. Biol. 2006, 44: 1-6.

165. Dong Z.; Xu F.; Ahmed I.; Li Z.; Lin H. Characterization and preservation performance of active polyethylene films containing rosemary and cinnamon essential oils for Pacific white shrimp packaging. Food Control. 2018, 92: 37-46.

166. Donsi, F.; Annunziata M.; Sessa M.; Ferrari G. Nanoencapsulation of essential oils to enhance their antimicrobial activity in foods. Lwt Food Sci. Technol. 2011, 44: 1908-1914.

167. El Asbahani A.; Miladi K.; Badri W.; Sala M.; Addi E.H.A.; Casabianca H.; El Mousadik A.; Hartmann D.; Jilale A.; Renaud F.N.R.; et al. Essential oils: From extraction to encapsulation. Int. J. Pharm. 2009, 483: 220-243.

168. El Jery A.; Hasan M.; Rashid M.M.; Al Mesfer M.K.; Danish M.; Ben Rebah F. Phytochemical characterization and antioxidant and antimicrobial activities of essential oil from leaves of the common sage Salvia officinalis L. from Abha Saudi Arabia. Asian Biomed. 2020, 14: 261-270.

169. Elama C.; Alayoubi M.; Jazzar M. FA-R Effect of Different Essential Oils on the Shelf Life of Concentrated Yogurt. Annu. Res. Rev. Biol. 2019, 30: 1-9.

170. Elansary H.O.; Abdelgaleil S.A.M.; Mahmoud E.A.; Yessoufou K.; Elhindi K.; El-Hendawy S. Effective antioxidant antimicrobial and anticancer activities of essential oils of horticultural aromatic crops in northern Egypt. BMC Complement. Altern. Med. 2018, 18: 214.

171. Estevez M.; Cava R. Effectiveness of rosemary essential oil as an inhibitor of lipid and protein oxidation: Contradictory effects in different types of frankfurters. Meat Sci. 2006, 72: 348-355.

172. Estevez M.; Ventanas S.; Cava R. Protein oxidation in frankfurters with increasing levels of added rosemary essential oil: Effect on color and texture deterioration. J. Food Sci. 2005, 70: 427-432.

173. Faleiro M.L.; Miguel M.G.; Ladeiro F.; Venancio F.; Tavares R.; Brito J.C.; Figueiredo A.C.; Barroso J.G.; Pedro L.G. Antimicrobial activity of essential oils isolated from Portuguese endemic species of Thymus. Lett. Appl. Microbiol. 2003, 36: 35-40.

174. Forsberg K.J.; Reyes A.; Wang B.; Selleck E.M.; Sommer M.O.; Dantas G. The shared antibiotic resistome of soil bacteria and human pathogens. Science. 2012, 337: 1107-1111.

175. Fox L.K.; Zadoks R.N.; Gaskins C.T. Biofilm production by Staphylococcus aureus associated with intramammary infection. Vet. Microbiol. 2005, 107: 295-299.

176. Franz C.; Baser K.; Windisch W. Essential oils and aromatic plants in animal feeding a European perspective. A review. Flavour Fragr. J. 2010, 25: 327340.

177. Friedman M., Chemistry Antimicrobial Mechanisms and Antibiotic Activities of Cinnamaldehyde against Pathogenic Bacteria in Animal Feeds and Human Foods. J Agric Food Chem. 2017, 65(48): 10406-10423.

178. Froehlich K.A., Abdelsalam K.W., Chase C., Koppien-Fox J., Casper D. Evaluation of essential oils and prebiotics for newborn dairy calves. J Anim Sci. 2017; 95(8):3772-3782. doi: 10.2527/jas.2017.1601.

179. Funston R.N.; Summers A.F. Effect of prenatal programming on heifer development. Vet. Clin. Food Anim. Pract. 2013, 29: 517-536.

180. Garcia M., Shin J.H., Schlaefli A., Greco L.F., Maunsell F., Thatcher W.W., Santos J.E., Staples C.R. Increasing intake of essential fatty acids from milk replacer benefits performance immune responses and health of preweaned Holstein calves. J Dairy Sci. 2015; 98(1):458-77.

181. Garcia M., Shin J.H., Schlaefli A., Greco L.F., Maunsell F., Thatcher W.W., Santos J.E., Staples C.R. Increasing intake of essential fatty acids from milk replacer benefits performance immune responses and health of preweaned Holstein calves. J Dairy Sci. 2015; 98(1):458-77.

182. Gavahian M., Hashemi S. M., Khaneghah A. M., & Tehrani M. A. Ohmically extracted Zenyan essential oils as natural antioxidant in mayonnaise. International Food Research Journal. 2013, 20(5): 3189-3195.

183. Ghalem B. R., & Zouaoui B. Microbiological physico-chemical and sensory quality aspects of yoghurt enriched with Rosmarinus officinalis oil. African Journal of Biotechnology. 2013, 12(2): 192-198.

184. Giovannini D., Gismondi A., Basso A., Canuti L., Braglia R., Canini A., Mariani F., & Cappelli G. Lavandula angustifolia Mill. Essential oil exerts antibacterial and anti-inflammatory effect in macrophage mediated immune response to Staphylococcus aureus. Immunological Investigations. 2016, 45(1): 1128.

185. Goksen G., Fabra M. J., Pérez-Cataluña A., Ekiz H. I., Sanchez G., & López-Rubio A. Biodegradable active food packaging structures based on hybrid cross-linked electrospun polyvinyl alcohol fibers containing essential oils and their application in the preservation of chicken breast fillets. Food Packaging and Shelf Life. 2021: 27.

186. Goossens H., Ferech M., Vander Stichele R., & Elseviers M. Outpatient antibiotic use in Europe and association with resistance: A cross-national database study. The Lancet. 2005, 365(9459): 579-587.

187. Goudjil M. B., Zighmi S., Hamada D., Mahcene Z., Bencheikh S. E., & Ladjel S. Biological activities of essential oils extracted from Thymus capitatus (Lamiaceae). South African Journal of Botany. 2020, 128: 274-282.

188. Günal M., Pinski B., & AbuGhazaleh A. A. Evaluating the effects of essential oils on methane production and fermentation under in vitro conditions. Italian Journal of Animal Science. 2017, 16(3): 500-506.

189. Gutierrez J., Barry-Ryan C., & Bourke Antimicrobial activity of plant essential oils using food model media: Efficacy synergistic potential and interactions with food components. Food Microbiology. 2009, 26(2): 142-150.

190. Halasa T., Huijps K., 0sterás O., & Hogeveen H. Economic effects of bovine mastitis and mastitis management: A review. The Veterinary Quarterly. 2007, 29(1): 18-31.

191. Halasa T., Nielen M., De Roos A. W., Van Hoorne R., de Jong G., Lam T. J. G. M., Van Werven T., & Hogeveen H. Production loss due to new subclinical

mastitis in Dutch dairy cows estimated with a test-day model. Journal of Dairy Science. 2009, 92(2): 599-606.

192. Harris S. E., Huff-Lonergan E., Lonergan S. M., Jones W. R., & Rankins D. Antioxidant status affects color stability and tenderness of calcium chloride-injected beef. Journal of Animal Science. 2001, 79(3): 666-677.

193. Hashemi S. M. B., Khorram S. B., & Sohrabi M. Antioxidant activity of essential oils in foods. In Hashemi S. M. B., Khorram S. B., & Sohrabi M. (Eds.), Essential Oils in Food Processing: Chemistry Safety and Applications. 2017: 247265.

194. Hernandez E. Essential oils | Distillation. In Wilson I. D. (Ed.), Encyclopedia of Separation Science. 2000, 2739-2744.

195. Hogeveen H., & Van Der Voort M. Assessing the economic impact of an endemic disease: The case of mastitis. OIE Revue Scientifique et Technique. 2017, 36(1): 217-226.

196. Hu Y., Gao G. F., & Zhu B. The antibiotic resistome: Gene flow in environments animals and human beings. Frontiers of Medicine. 2017, 11(2): 161168.

197. Hyldgaard M., Mygind T., & Meyer R. L. Essential oils in food preservation: Mode of action synergies and interactions with food matrix components. Frontiers in Microbiology. 2012, 3.

198. Ilsley S., Miller H., Greathead H., & Kamel C. Herbal sow diets boost pre-weaning growth. Pig Progress. 2002, 18(8).

199. Iseppi R., Di Cerbo A., Aloisi P., Manelli M., Pellesi V., Provenzano C., Camellini S., Messi P., & Sabia C. In vitro activity of essential oils against planktonic and biofilm cells of extended-spectrum ^-lactamase (ESBL)/carbapenamase-producing gram-negative bacteria involved in human nosocomial infections. Antibiotics. 2020(272).

200. Iseppi R., Tardugno R., Brighenti V., Benvenuti S., Sabia C., Pellati F., & Messi Phytochemical composition and in vitro antimicrobial activity of essential

oils from the Lamiaceae family against Streptococcus agalactiae and Candida albicans biofilms. Antibiotics. 2020, 9(9): 592.

201. Jafari S., Ebrahimi M., Goh Y. M., Rajion M. A., & Jahromi M. F. Manipulation of rumen fermentation and methane gas production by plant secondary metabolites (saponin tannin and essential oil)—A review of ten-year studies. Annals of Animal Science. 2019, 19(1): 3-29.

202. Jang I. S., Ko Y. H., Kang S. Y., & Lee C. Y. Effect of a commercial essential oil on growth performance digestive enzyme activity and intestinal microflora population in broiler chickens. Animal Feed Science and Technology. 2007, 134(34): 304-315.

203. Jerkovic I., Mastelic J., & Milos M. The impact of both the season of collection and drying on the volatile constituents of Origanum vulgare L. ss hirtum grown wild in Croatia. International Journal of Food Science and Technology. 2001, 36(6): 649-654.

204. Juglal S., Govinden R., & Odhav B. Spice oils for the control of co-occurring mycotoxin-producing fungi. Journal of Food Protection. 2002, 65(4), 683687.

205. Jugreet B. S., Suroowan S., Rengasamy R. R. K., & Mahomoodally M. F. Chemistry bioactivities mode of action and industrial applications of essential oils. Trends in Food Science & Technology. 2020, 101: 89-105.

206. Juliano C., Mattana A., & Usai M. Composition and in vitro antimicrobial activity of the essential oil of Thymus herba-barona Loisel growing wild in Sardinia. Journal of Essential Oil Research. 2000, 12(5): 516-522.

207. Kacaniova, M., Galovicova, L., Ivanisova, E., Vukovic N. L., Stefanikova, J., Valkova, V., Borotova, , Ziarovska, J., Terentjeva M., & Felsociova, S. Antioxidant antimicrobial and antibiofilm activity of Coriander (Coriandrum sativum L.) essential oil for its application in foods. 2020, 9(3): 282.

208. Kalemba D., & Kunicka A. Antibacterial and antifungal properties of essential oils. Current Medicinal Chemistry. 2005, 10(10): 813-829.

209. Kammerer M., Le Guenic M., Roussel P., Linclau O., Cartaud G., Tainturier D., Larrat M., & Bareille N. Le traitement des mammites cliniques de la vache laitière par des huiles essentielles. Innovations Agronomiques. 2009, 4: 7983.

210. Kazemi-Bonchenari M., Falahati R., Poorhamdollah M., Heidari S.R., Pezeshki A. Essential oils improved weight gain growth and feed efficiency of young dairy calves fed 18 or 20% crude protein starter diets. J Anim Physiol AnimNutr (Berl). 2018, 102 (3):652-661.

211. Kertz A.F., Hill T.M., Quigley J.D. 3rd Heinrichs A.J., Linn J.G., Drackley J.K. A 100-Year Review: Calf nutrition and management. J Dairy Sci. 2017; 100 (12):10151-10172.

212. Kim M. H., & Kang J. H. Effect of the essential oil and extract mixture on productivity of broiler chickens. Korean Journal for Food Science of Animal Resources. 2017, 37(3): 410-417.

213. Kirbaslar F. G., Tavman A., Dülger B., & Turker G. Antimicrobial activity of Turkish citrus peel oils. Pakistani Journal of Botany. 2009, 41(6): 32073212.

214. Kordali S., Cakir A., Akcin T. A., Mete E., Akcin A., Aydin T., Kilic H., & Kaya D. Antifungal and herbicidal properties of essential oils and n-hexane extracts of Achillea gypsicola Hub-Mor. and Achillea biebersteinii Afan.(Asteraceae). Industrial Crops and Products. 2009, 29(23): 562-570.

215. Krist S., Halwachs S., Saukel J., & Buchbauer G. Headspace analysis of the essential oil compounds of Achillea collina Becker ex Rchb.(Asteraceae). Journal of Essential Oil Research. 2008, 20(4): 336-339.

216. Lang G., & Buchbauer G. A review on recent research results (20082010) on essential oils as antimicrobials and antifungals. A review on recent research results (2008-2010) on essential oils as antimicrobials and antifungals. 2012, 24(3): 273-299.

217. Lavitan A. L., Borges A., Silva A. V. F., Mesquita F. R., Pereira S. R., & Bertechini A. G. Efficacy of the use of essential oils in broiler production. Revista Brasileira de Ciencia Avícola. 2014, 16(2): 133-138.

218. Levy S. B., & Marshall B. Antibacterial resistance worldwide: causes challenges and responses. Nature Medicine. 2004, 10(12): 122-129.

219. Lis-Balchin M., & Deans S. G. Bioactivity of selected plant essential oils against Listeria monocytogenes. Journal of Applied Microbiology. 1997, 82(6): 759762.

220. Lis-Balchin M., Deans S. G., & Eaglesham E. Relationship between bioactivity and chemical composition of commercial essential oils. Flavour and Fragrance Journal. 1998, 13(2): 98-104.

221. Liu T., Chen H., Bai Y., Wu J., Cheng S He B., Casper D. Calf starter containing a blend of essential oils and prebiotics affects the growth performance of Holstein calves. J Dairy Sci. 2020; 103. (3): 2315-2323.

222. Mahmoud S.S.; Croteau R.B. Strategies for transgenic manipulation of monoterpene biosynthesis in plants. Trends Plant Sci. 2002, 7, 366-373.

223. Manabe A.; Nakayama S.; Sakamoto K. Effects of Essential Oils on Erythrocytes and Hepatocytes from Rats and Dipalmitoyl Phosphatidylcholine-Liposomes. Jpn. J. Pharmacol. 1987, 44: 77-84.

224. Mandal G.; Roy A.; Patra A.K. Effects of feeding plant additives rich in saponins and essential oils on the performance carcass traits and conjugated linoleic acid concentrations in muscle and adipose tissues of Black Bengal goats. Anim. Feed Sci. Technol. 2014, 197: 76-87.

225. Mandal S., Mandal M. D., & Pal N. K. Synergistic anti-staphylococcus aureus activity of ampicillin and tea extracts. Journal of Medical Microbiology. 2007, 56(10): 1428-1429.

226. Manzanilla E.G.; Nofrarias M.; Anguita M.; Castillo M.; Perez J.F.; Martin-Orue S.M.; Kamel C.; Gasa J. Effects of butyrate avilamycin and a plant extract combination on the intestinal equilibrium of early-weaned pigs. J. Anim. Sci. 2006, 84: 2743-2751.

227. Mari M.; Bertolini ; Pratella G.C. Non-conventional methods for the control of post-harvest pear diseases. J. Appl. Microbiol. 2003, 94: 761-766.

228. Marino M., Bersani C., & Comi G. Impedance measurements to study the antimicrobial activity of essential oils from Lamiaceae and Compositae. International Journal of Food Microbiology. 2001, 67(3): 187-195.

229. Marino M.; Bersani C.; Comi G. Antimicrobial activity of the essential oils of Thymus vulgaris L. measured using a bioimpedometric method. J. Food Prot. 1999, 62: 1017-1023.

230. Marino M.; Bersani C.; Comi G. Impedance measurements to study the antimicrobial activity of essential oils from Lamiaceae and Compositae. Int. J. Food Microbiol. 2001, 67: 187-195.

231. Marques J. V. Use of essential oils as disinfectants in hospitals. The Open Infectious Diseases Journal. 2008, 2(1).

232. Martín-Sánchez A.M.; Chaves-López C.; Sendra E.; Sayas E.; Fenández-López J.; Pérez-Álvarez J.Á. Lipolysis proteolysis and sensory characteristics of a Spanish fermented dry-cured meat product (salchichón) with oregano essential oil used as surface mold inhibitor. Meat Sci. 2011, 89: 3544.

233. Mascheroni E., Guillard V., Gastaldi E., & Gontard N. The effect of essential oils and homogenization on the physical properties of chitosan-based films. Journal of Polymers and the Environment. 2010, 18(3): 504-512.

234. McKay D. L., & Blumberg J. B. A review of the bioactivity and potential health benefits of chamomile tea (Matricaria recutita L.). Phytotherapy Research: An International Journal Devoted to Pharmacological and Toxicological Evaluation of Natural Product Derivatives. 2006, 20(7): 519-530.

235. Mendoza-Yepes M.J.; Sanchez-Hidalgo L.E.; Maertens G.; Marin-Iniesta F. Inhibition Of Listeria Monocytogenes And Other Bacteria By A Plant Essential Oil (Dmc) In Spanish Soft Cheese. J. Food Saf. 1997, 17: 47-55.

236. Miguel G.; Cruz C.; Faleiro M.L.; Simoes M.T.F.; Figueiredo A.C.; Barroso J.G.; Pedro L.G. Salvia officinalis L. essential oils: Effect of

hydrodistillation time on the chemical composition antioxidant and antimicrobial activities. Nat. Prod. Res. 2011, 25: 526-541.

237. Miguel M.G. Antioxidant and anti-inflammatory activities of essential oils: A short review. Molecules. 2010, 15: 9252-9287.

238. Mimica-Dukic, N.; Orcic, D.; Lesjak M.; Sibul F. Essential oils as powerful antioxidants: Misconception or scientific fact. In ACS Symposium Series; American Chemical Society: Washington DC USA. 2016; 1218: 187-208.

239. Minozzi G., Buggiotti L., & Broudiscou L. Effet des extraits de plantes sur les fermentations in vitro de la ration chez la vache laitière. Animal. 2008, 2(8): 1259-1266.

240. Mishra A.; Devkota H.; Nigam M.; Adetunji C.O.; Srivastava N.; Saklani S.; Shukla I.; Azmi L.; Shariati M.A.; Coutinho H.D.M.; et al. Combination of essential oils in dairy products: A review of their functions and potential benefits. LWT. 2020, 133.

241. Moghaddam M.; Mehdizadeh L. Chemistry of Essential Oils and Factors Influencing Their Constituents. In Soft Chemistry and Food Fermentation; Academic Press: Cambridge MA USA. 2017; 379-419.

242. Montironi I.D.; Reinoso E.B.; Paullier V.C.; Siri M.I.; Pianzzola M.J.; Moliva M.; Campra N.; Bagnis G.; LaRocque-de-Freitas I.F.; Decote-Ricardo D.; et al. Minthostachys verticillata essential oil activates macrophage phagocytosis and modulates the innate immune response in a murine model of Enterococcus faecium mastitis. Res. Vet. Sci. 2019, 125: 333-344.

243. Moore K. L., Brennan J. D., Kenyon S. J., & Griffith M. Plant and animal antisense antifreeze gene expression effects on rhizobacteria and seedling colonization. Molecular Breeding. 2003, 11(1): 65-70.

244. Moro A.; Libran C.M.; Berruga M.I.; Carmona M.; Zalacain A. Dairy matrix effect on the transference of rosemary (Rosmarinus officinalis) essential oil compounds during cheese making. J. Sci. Food Agric. 2015, 95: 1507-1513.

245. Morsy T.A.; Kholif S.M.; Matloup O.H.; Abdo M.M.; El-Shafie M.H. Impact of Anise Clove and Juniper Oils as Feed additives on the productive performance of lactating goats. Int. J. Dairy Sci. 2012, 7: 20-28.

246. Msaada K.; Hosni K.; Taarit M.B.; Hammami M.; Marzouk B. Effects of growing region and maturity stages on oil yield and fatty acid composition of coriander (Coriandrum sativum L.) fruit. Sci. Hortic. 2009, 120: 525-531.

247. Mssillou I.; Agour A.; El Ghouizi A.; Hamamouch N.; Lyoussi B.; Derwich E. Chemical Composition Antioxidant Activity and Antifungal Effects of Essential Oil from Lauras nobilis L. Flowers Growing in Morocco. J. Food Qual. 2020,5: 1-8.

248. Muchtaridi M., Subarnas A., Apriyantono A., & Mustarichie R. Identification of compounds in the essential oil of nutmeg seeds (Myristica fragrans Houtt.) that inhibit locomotor activity in mice. International Journal of Molecular Sciences. 2010, 11(11): 4771-4781.

249. Mushtaq S.; Shah A.M.; Shah A.; Lone S.A.; Hussain A.; Hassan Q.; Ali M.N. Bovine mastitis: An appraisal of its alternative herbal cure. Microb. Pathog. 2018, 114: 357-361.

250. Nafis A.; Kasrati A.; Jamali C.A.; Custodio L.; Vitalini S.; Iriti M.; Hassani L. A Comparative Study of the in Vitro Antimicrobial and Synergistic Effect of Essential Oils from Lauras nobilis L. and Prunus armeniaca L. from Morocco with Antimicrobial Drugs: New Approach for Health Promoting Products. Antibiotics. 2020, 9: 140.

251. Nazzaro F., Fratianni F., Martino L. D., Coppola R., & Feo V. D. Effect of essential oils on pathogenic bacteria. Pharmaceuticals. 2013, 6(12): 1451-1474.

252. Ncube N. S., Afolayan A. J., & Okoh A. I. Assessment techniques of antimicrobial properties of natural compounds of plant origin: Current methods and future trends. African Journal of Biotechnology. 2008, 7(12).

253. Negi S. Plant extracts for the control of bacterial growth: Efficacy stability and safety issues for food application. International Journal of Food Microbiology. 2012, 156(1): 7-17.

254. Nehme R.; Biel W.; Montillet A.; Bellettre J.; Marchai L. Production of oil in water emulsions in microchannels at high throughput: Evaluation of emulsions in view of cosmetic nutraceutical or pharmaceutical applications. Chem. Eng. Process. Process Intensif. 2021, 161.

255. Nejad Ebrahimi S.; Hadian J.; Ranjbar H. Essential oil compositions of different accessions of Coriandrum sativum L. from Iran. Nat. Prod. Res. 2010, 24: 1287-1294.

256. Nerin C., Tovar L., Salafranca J., Aznar M., & Cacho J. Behaviour of a new antioxidant active film versus oxidizable model compounds. Journal of Food Engineering. 2006, 72(1): 1-7.

257. Nikbakht M. R., Yazdanpanah K., Amiri M. S., Farhadi R., & Vahedi H. Chemical composition and biological activities of essential oils from leaves of Ziziphora clinopodioides Lam. and Ziziphora tenuior L. International Journal of Food Properties. 2018, 21(1): 1893-1901.

258. Noirot V.; Moncouldon R.; Sauvant D.; Bayourthe C. Effet d'une Supplémentation en Huiles Essentielles et Composés D'huiles Essentielles Chez le Ruminant: Analyse Statistique. Rev. Med. Vet. 2007, 158: 587-597.

259. Nostro A., Cellini L., Di Bartolomeo S., Cannatelli M. A., Di Campli E., Grande R., & Procopio F. Effects of combining extracts (from propolis or Zingiber officinale) with clarithromycin on Helicobacter pylori. Phytotherapy Research. 2005, 20(3): 187-190.

260. Nychas G. J. E. Natural antimicrobials from plants. In Gould G. W. (Ed.), New Methods of Food Preservation. 1995, 58-89.

261. Nychas G.J.E. Natural antimicrobials from plants. In New Methods of Food Preservation; Gould G.W., Ed.; Blackie Academic and Professional: London UK. 1995; 58-89.

262. Nzeako B.C.; Al-Kharousi Z.S.; Al-Mahrooqui Z. Antimicrobial activities of clove and thyme extracts. Sultan Qaboos Univ. Med. J. 2006, 6: 33-39.

263. Oh J.; Hristov A.N. Effects of plant-derived bio-active compounds on rumen fermentation nutrient utilization immune response and productivity of

ruminant animals. In ACS Symposium Series; American Chemical Society: Washington DC USA. 2016, 1218: 167-186.

264. Oh S.Y.; Yun W.; Lee J.H.; Lee C.H.; Kwak W.K.; Cho J.H. Effects of essential oil (blended and single essential oils) on anti-biofilm formation of Salmonella and Escherichia coli. J. Anim. Sci. Technol. 2017, 59.

265. Omonijo F.A.; Ni L.; Gong J.; Wang Q.; Lahaye L.; Yang C. Essential oils as alternatives to antibiotics in swine production. Anim. Nutr. 2018, 4: 126-136.

266. Oosterhaven K.; Poolman B.; Smid E.J. S-carvone as a natural potato sprout inhibiting fungistatic and bacteristatic compound. Ind. Cro Prod. 1995, 4: 2331.

267. Ouariachi E.; Paolini J.; Bouyanzer A.; Hammouti B.; Salghi R.; Costa J. Chemical composition and antioxidant activity of essential oils and solvent extracts of Thymus capitatus (L.) Hoffmanns and link from Morocco. J. Med. Plant Res. 2011, 5: 5773-5778.

268. Oussalah M.; Caillet S.; Saucier L.; Lacroix M. Inhibitory effects of selected plant essential oils on the growth of four pathogenic bacteria: E. coli O157:H7, Salmonella Typhimurium Staphylococcus aureus and Listeria monocytogenes. Food Control. 2007, 18: 414-420.

269. Ozbek Z.A.; Ergonul G. A Review on Encapsulation of Oils. Celal Bayar Universitesi Fen Bilimleri Dergisi. 2017, 13: 293-309.

270. Ozcan M.M.; Arslan D. Antioxidant effect of essential oils of rosemary clove and cinnamon on hazelnut and poppy oils. Food Chem. 2011, 129: 171-174.

271. Ozel M.Z.; Gogus F.; Lewis A.C. Comparison of direct thermal desorption with water distillation and superheated water extraction for the analysis of volatile components of Rosa damascena Mill. using GCxGC-TOF/MS. Anal. Chim. Acta. 2006, 566: 172-177.

272. Ozkan G.; Simsek B.; Kuleasan H. Antioxidant activities of Satureja cilicica essential oil in butter and in vitro. J. Food Eng. 2007, 79: 1391-1396.

273. Pandey R.; Kalra A.; Tandon S.; Mehrotra N.; Singh H.N.; Kumar S. Essential Oils as Potent Source of Nematicidal Compounds. J. Phytopathol. 2000, 148: 501-502.

274. Pateiro M.; Barba F.J.; Domínguez R.; Sant'Ana A.S.; Khaneghah A.M.; Gavahian M.; Gómez B.; Lorenzo J.M. Essential oils as natural additives to prevent oxidation reactions in meat and meat products: A review. Food Res. Int. 2018, 113: 156-166.

275. Patra A.K. Effects of Essential Oils on Rumen Fermentation Microbial Ecology and Ruminant Production. Asian J. Anim. Vet. Adv. 2011, 6: 416-428.

276. Patra A.K.; Yu Z. Essential oils affect populations of some rumen bacteria in vitro as revealed by microarray (RumenBactArray) analysis. Front. Microbiol. 2015, 6.

277. Pessoa L.M.; Morais S.M.; Bevilaqua C.M.L.; Luciano J.H.S. Anthelmintic activity of essential oil of Ocimum gratissimum Linn. and eugenol against Haemonchus contortus. Vet. Parasitol. 2002, 109: 59-63.

278. Pintore G.; Usai M.; Bradesi ; Juliano C.; Boatto G.; Tomi F.; Chessa M.; Cerri R.; Casanova J. Chemical composition and antimicrobial activity of Rosmarinus officinalis L. oils from Sardinia and Corsica. Flavour Fragr. J. 2002, 17: 15-19.

279. Prudent D.; Perineau F.; Bessiere J.M.; Michel G.M.; Baccou J.C. Analysis of the essential oil of wild oregano from martinique (Coleus aromaticus Benth.)—Evaluation of its bacteriostatic and fungistatic properties. J. Essent. Oil Res. 1995, 7: 165-173.

280. Qian C.; McClements D.J. Formation of nanoemulsions stabilized by model food-grade emulsifiers using high-pressure homogenization: Factors affecting particle size. Food Hydrocoll. 2011, 25: 1000-1008.

281. Rana V.S.; Juyal J.; Blazquez M.A. Chemical constituents of essential oil of Pelargonium graveolens leaves. Int. J. Aromather. 2002, 12: 216-218.

282. Raskovic A.; Milanovic I.; Pavlovic N.; Cebovic T.; Vukmirovic S.; Mikov M. Antioxidant activity of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) essential oil and its hepatoprotective potential. BMC Complement. Altern. Med. 2014, 14: 225.

283. Ratika K.; James Singh R.K. Plant Derived Essential Oil in Ruminant Nutrition—A Review. Int. J. Curr. Microbiol. Appl. Sci. 2018, 7, 17471753 c.

284. Rebícková, K.; Bajer T.; Silha D.; Ventura K.; Bajerová, Comparison of Chemical Composition and Biological Properties of Essential Oils Obtained by Hydrodistillation and Steam Distillation of Laurus nobilis L. Plant Foods Hum. Nutr. 2020, 75, 495504 c.

285. Riahi L.; Chograni H.; Ziadi S.; Zaouali Y.; Zoghlami N.; Mliki A. Chemical profiles and antioxidant activities of the essential oils of two medicinal plant species grown in Tunisia. J. Essent. Oil Res. 2013, 25: 324-329.

286. Rivaroli D.C.; Guerrero A.; Valero M.V.; Zawadzki F.; Eiras C.E.; del Mar Campo M.; Sañudo C.; Jorge A.M.; do Prado I.N. Effect of essential oils on meat and fat qualities of crossbred young bulls finished in feedlots. Meat Sci. 2016, 121: 278-284.

287. Rojas-Graü, M.A.; Raybaudi-Massilia R.M.; Soliva-Fortuny R.C.; Avena-Bustillos R.J.; McHugh T.H.; Martín-Belloso O. Apple puree-alginate edible coating as carrier of antimicrobial agents to prolong shelf-life of fresh-cut apples. Postharvest Biol. Technol. 2007, 45: 254-264.

288. Saab A.M.; Tundis R.; Loizzo M.R.; Lampronti I.; Borgatti M.; Gambari R.; Menichini F.; Esseily F.; Menichini F. Antioxidant and antiproliferative activity of Laurus nobilis L. (Lauraceae) leaves and seeds essential oils against K562 human chronic myelogenous leukaemia cells. Nat. Prod. Res. 2012, 26: 1741-1745.

289. Sagiri S.S.; Anis A.; Pal K. Review on Encapsulation of Vegetable Oils: Strategies Preparation Methods and Applications. Polym. Plast. Technol. Eng. 2016, 55: 291-311.

290. Sahin Yaglioglu A.; Eser F.; Yaglioglu M.S.; Demirtas I. The antiproliferative and antioxidant activities of the essential oils of Juniperus species from Turkey. Flavour Fragr. J. 2020, 35: 511-523.

291. Salvia-Trujillo L.; Rojas-Graü, M.A.; Soliva-Fortuny R.; Martín-Belloso O. Use of antimicrobial nanoemulsions as edible coatings: Impact on safety and quality attributes of fresh-cut fuji apples. Postharvest Biol. Technol. 2015, 105: 816.

292. Sandner G.; Heckmann M.; Weghuber J. Immunomodulatory activities of selected essential oils. Biomolecules. 2020, 10: 11-39.

293. Sarmoum R.; Haid S.; Biche M.; Djazouli Z.; Zebib B.; Merah O. Effect of Salinity and Water Stress on the Essential Oil Components of Rosemary (Rosmarinus officinalis L.). Agronomy. 2019, 9: 2-14 .

294. Scotti R.; Stringaro A.; Nicolini L.; Zanellato M.; Boccia P.; Maggi F.; Gabbianelli R. Effects of Essential Oils from Cymbopogon sp and Cinnamomum verum on Biofilm and Virulence Properties of Escherichia coli O157:H7. Antibiotics. 2021, 10: 113.

295. Selim S. Antimicrobial activity of essential oils against vancomycin-resistant enterococci (vre) and Escherichia coli o157:h7 in feta soft cheese and minced beef meat. Braz. J. Microbiol. 2011, 42: 187-196.

296. Sellami I.H.; Wannes W.A.; Bettaieb I.; Berrima S.; Chahed T.; Marzouk B.; Limam F. Qualitative and quantitative changes in the essential oil of Laurus nobilis L. leaves as affected by different drying methods. Food Chem. 2011, 126: 691-697.

297. Setya S.; Talegaonkar S. Nanoemulsions: formulation methods and stability aspects. World J. Pharm. Pharm. Sci. 2014, 3: 2214-2228.

298. Shah B.; Davidson M.; Zhong Q. Encapsulation of eugenol using Maillard-type conjugates to form transparent and heat stable nanoscale dispersions. Lwt Food Sci. Technol. 2012, 49: 139-148.

299. Sharma C.; Rokana N.; Chandra M.; Singh B.; Gulhane R.D.; Gill J.S.; Ray Puniya A.K.; Panwar H. Antimicrobial resistance: Its surveillance impact and alternative management strategies in dairy animals. Front. Vet. Sci. 2018, 4: 237.

300. Shelef L.A.; Jyothi E.K.; Bulgarellii M.A. Growth of Enteropathogenic and Spoilage Bacteria in Sage-Containing Broth and Foods. J. Food Sci. 1984, 49: 737-740.

301. Shi C.; Zhang X.; Zhao X.; Meng R.; Liu Z.; Chen X.; Guo N. Synergistic interactions of nisin in combination with cinnamaldehyde against Staphylococcus aureus in pasteurized milk. Food Control. 2017, 71: 10-16.

302. Simirgiotis M.J.; Burton D.; Parra F.; López J.; Escobar H.; Parra C. Antioxidant and Antibacterial Capacities of Origanum vulgare L. Essential Oil from the Arid Andean Region of Chile and its Chemical Characterization by GC-MS. Metabolites. 2020, 10: 414.

303. Simitzis P.E. Enrichment of Animal Diets with Essential Oils—A Great Perspective on Improving Animal Performance and Quality Characteristics of the Derived Products. Medicines. 2017, 4: 35.

304. Singh G.; Marimuthu de Heluani C.S.; Catalan C. Chemical constituents and antimicrobial and antioxidant potentials of essential oil and acetone extract of Nigella sativa seeds. J. Sci. Food Agric. 2005, 85: 2297-2306.

305. Sivropoulou A.; Papanikolaou E.; Nikolaou C.; Kokkini S.; Lanaras T.; Arsenakis M. Antimicrobial and cytotoxic activities of Origanum essential oils. J. Agric. Food Chem. 1996, 44: 1202-1205.

306. Smeti S.; Hajji H.; Mekki I.; Mahouachi M.; Atti N. Effects of dose and administration form of rosemary essential oils on meat quality and fatty acid profile of lamb. Small Rumin. Res. 2018, 158: 62-68.

307. Soltan Y.A.; Natel A.S.; Araujo R.C.; Morsy A.S.; Abdalla A.L. Progressive adaptation of sheep to a microencapsulated blend of essential oils: Ruminal fermentation methane emission nutrient digestibility and microbial protein synthesis. Anim. Feed Sci. Technol. 2018, 237: 8-18.

308. Soltani E., Naserian A.A., Khan M.A., Ghaffari M.H., Malekkhahi M. Effects of conditioner retention time during pelleting of starter feed on nutrient digestibility ruminal fermentation blood metabolites and performance of Holstein female dairy calves. J Dairy Sci. 2020; 103 (10):8910-8921.

309. Somrani M.; Inglés M.C.; Debbabi H.; Abidi F.; Palop A. Garlic onion and cinnamon essential oil anti-biofilms' effect against listeria monocytogenes. Foods 2020, 9: 567 c.

310. Su G.; Zhou X.; Wang Y.; Chen D.; Chen G.; Li Y.; He J. Effects of plant essential oil supplementation on growth performance immune function and antioxidant activities in weaned pigs. Lipids Health Dis. 2018, 17: 139.

311. Sultan M.T.; Butt M.S.; Karim R.; Ahmad N.; Ahmad R.S.; Ahmad W. Nigella sativa fixed and essential oil improves antioxidant status through modulation of antioxidant enzymes and immunity. Pak. J. Pharm. Sci. 2015, 28: 589-595.

312. Swedzinski C., Froehlich K.A., Abdelsalam K.W., Chase C., Greenfield T. J Koppien-Fox J., Casper D. Evaluation of essential oils and a prebiotic for newborn dairy calves. Transl Anim Sci. 2019; 4 (1):75-83.

313. Swedzinski C., Froehlich K.A., Abdelsalam K.W., Chase C., Greenfield T. J Koppien-Fox J., Casper D. Evaluation of essential oils and a prebiotic for newborn dairy calves. Transl Anim Sci. 2019; 4 (1):75-83.

314. Takayama C.; de-Faria F.M.; de Almeida A.C.A.; Dunder R.J.; Manzo L.; Socca E.A.R.; Luiz-Ferreira A. Chemical composition of Rosmarinus officinalis essential oil and antioxidant action against gastric damage induced by absolute ethanol in the rat. Asian Pac. J. Tro Biomed. 2016, 6: 677-681.

315. Tavares T.D.; Antunes J.C.; Padrao J.; Ribeiro A.I.; Zille A.; Amorim M.T.; Felgueiras H. Activity of Specialized Biomolecules against Gram-Positive and Gram-Negative Bacteria. Antibiotics. 2020, 9: 314.

316. Terenina M.B.; Misharina T.A.; Krikunova N.I.; Alinkina E.S.; Fatkulina L.D.; Vorob'eva A.K. Oregano essential oil as an inhibitor of higher fatty acid oxidation. Prikl. Biokhimiia I Mikrobiol. 2011, 47: 490-494.

317. Timilsena Y.; Akanbi T.O.; Khalid N.; Adhikari B.; Barrow C.J. Complex coacervation: Principles mechanisms and applications in microencapsulation. Int. J. Biol. Macromol. 2019, 121: 1276-1286.

318. Tongnuanchan P.; Benjakul S. Essential Oils: Extraction Bioactivities and Their Uses for Food Preservation. J. Food Sci. 2014, 79: 1231-1249.

319. Torres R.N.S.; Moura D.C.; Ghedini C.P.; Ezequiel J.M.B.; Almeida M.T.C. Meta-analysis of the effects of essential oils on ruminal fermentation and performance of shee Small Rumin. Res. 2020, 189.

320. Tóth T.; Kórmóndi M.; Tkovács A.; Csavajda É.; Trombitás M.; Tóthi R. Effect of essential oil supplement on milk yield and composition of lactating dairy cows. Krmiva. 2017, 59: 15-19.

321. Turek C.; Stintzing F.C. Stability of essential oils: A review. Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. 2013, 12: 40-53.

322. Ultee A.; Smid E.J. Influence of carvacrol on growth and toxin production by Bacillus cereus. Int. J. Food Microbiol. 2001, 64: 373-378.

323. Van de Braak S.A.A.J.; Leijten G.C.J.J. Essential Oils and Oleoresins: A Survey in the Netherlands and other Major Markets in the European Union; CBI Centre for the Promotion of Imports from Developing Countries: Rotterdam The Netherlands. 1999; 116.

324. Vargas J.E.; Andrés S.; López-Ferreras L.; Snelling T.J.; Yáñez-Ruíz D.R.; García-Estrada C.; López S. Dietary supplemental plant oils reduce methanogenesis from anaerobic microbial fermentation in the rumen. Sci. Re 2020, 10: 19.

325. Viuda-Martos M.; Ruiz Navajas Y.; Sánchez Zapata E.; Fernández-López J.; Pérez-Álvarez J.A. Antioxidant activity of essential oils of five spice plants widely used in a Mediterranean diet. Flavour Fragr. J. 2010, 25: 13-19.

326. Viuda-Martos M.; Ruíz-Navajas Y.; Fernández-López J.; Pérez-Álvarez J.A. Chemical Composition of the Essential Oils Obtained From Some Spices Widely Used in Mediterranean Region. Acta Chim. Slov. 2007, 54: 921-926.

327. Wei H.K.; Xue H.X.; Zhou Z.X.; Peng J. A carvacrol-thymol blend decreased intestinal oxidative stress and influenced selected microbes without changing the messenger RNA levels of tight junction proteins in jejunal mucosa of weaning piglets. Animal 2017, 11: 193-201.

328. Wu J., Bai Y., Lang X., Wang C., Shi X., Casper D., Zhang L., Liu H., Liu T., Gong X., Liang T., Zhang R. Dietary supplementation with oregano essential

oil and monensin in combination is antagonistic to growth performance of yearling Holstein bulls. J Dairy Sci. 2020, 103(9): 8119-8129.

329. Wu J., Bai Y., Lang X., Wang C., Shi X., Casper D., Zhang L., Liu H., Liu T., Gong X., Liang T., Zhang R. Dietary supplementation with oregano essential oil and monensin in combination is antagonistic to growth performance of yearling Holstein bulls. J Dairy Sci. 2020, 103(9): 8119-8129.

330. Xiao S., Cui Shi W., Zhang Y. Identification of essential oils with activity against stationary phase Staphylococcus aureus. BMC Complement Med Ther. 2020, 20 (1): 99.

331. Xie Z.; Zhao Q.; Wang H.; Wen L.; Li W.; Zhang X.; Lin W.; Li H.; Xie Q.; Wang Y. Effects of antibacterial peptide combinations on growth performance intestinal health and immune function of broiler chickens. Poult. Sci. 2020, 99: 64816492.

332. Xu Y.; Lahaye L.; He Z.; Zhang J.; Yang C.; Piao X. Micro-encapsulated essential oils and organic acids combination improves intestinal barrier function inflammatory responses and microbiota of weaned piglets challenged with enterotoxigenic Escherichia coli F4 (K88+). Anim. Nutr. 2020, 6: 269-277.

333. Yang C.; Kennes Y.M.; Lepp D.; Yin X.; Wang Q.; Yu H.; Yang C.; Gong J.; Diarra M.S. Effects of encapsulated cinnamaldehyde and citral on the performance and cecal microbiota of broilers vaccinated or not vaccinated against coccidiosis. Poult. Sci. 2020, 99: 936-948.

334. Yang C.; Zhang L.; Cao G.; Feng J.; Yue M.; Xu Y.; Dai B.; Han Q.; Guo X. Effects of dietary supplementation with essential oils and organic acids on the growth performance immune system fecal volatile fatty acids and microflora community in weaned piglets. J. Anim. Sci. 2019, 97: 133-143.

335. Yatoo M.A., Chaudhary L.C., Agarwal N., Chaturvedi V.B., Kamra D.N. Effect of feeding of blend of essential oils on methane production growth and nutrient utilization in growing buffaloes. Asian-Australas J Anim Sci. 2018; 31 (5): 672-676.

336. Yatoo M.A., Chaudhary L.C., Agarwal N., Chaturvedi V.B., Kamra D.N. Effect of feeding of blend of essential oils on methane production growth and nutrient utilization in growing buffaloes. Asian-Australas J Anim Sci. 2018; 31 (5): 672-676.

337. Yilmaz E.S.; Timur M.; Aslim B. Antimicrobial Antioxidant Activity of the Essential Oil of Bay Laurel from Hatay Turkey. J. Essent. Oil Bear. Plants. 2013, 16: 108-116.

338. Youdim K.A.; Deans S.G. Effect of thyme oil and thymol dietary supplementation on the antioxidant status and fatty acid composition of the ageing rat brain. Br. J. Nutr. 2000, 83: 87-93.

339. Younsi F.; Mehdi S.; Aissi O.; Rahali N.; Jaouadi R.; Boussaid M.; Roura E. Review on in vivo and in vitro methods evaluation of antioxidant activity. Flavour Fragr. J. 2020, 25: 282.

340. Zeng Z.; Xu X.; Zhang Q.; Li P.; Zhao P.; Li Q.; Liu J.; Piao X. Effects of essential oil supplementation of a low-energy diet on performance intestinal morphology and microflora immune properties and antioxidant activities in weaned pigs. Anim. Sci. J. 2015, 86: 279-285.

341. Zhai H.; Liu H.; Wang S.; Wu J.; Kluenter A.M. Potential of essential oils for poultry and pigs. Anim. Nutr. 2018, 4: 179-186.

ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение 1. Основной рацион телят в послемолочный период с 3-месячного до 5-месячного возраста.

Состав В рационе, кг. контроль Фенхель Кориандр

Зеленная масса 4,000 4,000 4,000

СЕНО ЗЛАКОВО-БОБОВОЕ 0,500 0,500 0,500

ПШЕНИЦА 1,000 1,000 1,000

ЯЧМЕНЬ 1,000 1,000 1,000

ШРОТ ПОДСОЛНЕЧНЫЙ СП 32%. СК 18% 0,800 0,800 0,800

Гранулы МУКА ТРАВЯНАЯ ЛЮЦЕРНОВАЯ СП 17% 0,100 0,100 0,100

СОЛЬ ПОВАРЕННАЯ 0,012 0,012 0,012

МОНОКАЛЬЦИЙФОСФАТ 0,020 0,020 0,020

МЕЛ КОРМОВОЙ 0,040 0,040 0,040

П62-1 6-18 мес. Румянцево 0,005 0,005 0,005

Структура рациона в расчете на сухое вещество

Ед. изм. Значение Мин. Макс.

Концентрированные корма % 60,3 0 55,00

Грубые корма % 12,0 0 10,00

Сочные корма % 26,9 0 70,00

Зеленые корма % 0 70,00

Показатели качества Дополнительно введено БАВ в рационе, не менее Стоимостные показат в расчете на 1 голову, ели руб.

Наименование Ед. изм. % в СВ Расчет 8,4 8,4 47,0 7,4 4,2 639,5 485,9 505,4 139.8 109.9 Наименование Ед. изм. Знач. Показатель Цена

Молоко из ПП кг ВИТАМИН А тыс.МЕ 5,0 ЦЕНА БЕЗ НДС 58,00

Молоко из NEL кг ВИТАМИН D тыс.МЕ 1,0 НДС 5,80

ОЭ КРС МДж 11,2 ВИТАМИН Е мг 5,0 ОТПУСКНАЯ ЦЕНА 64,00

ЧЭ ЛАКТАЦИИ МДж 1,8 Си мг 2,5

СУХОЕ ВЕЩЕСТВО кг 0,1 Zn мг 12,5

СЫРОЙ ПРОТЕИН г 15,23 Ип мг 5,0

ПРОТЕИН г 11,57 Со мг 0,8

РП г 12,03 I мг 0,5

НРП г 3,33 Se мг 0,1

СЫРОЙ ЖИР г 2,62

СЫРАЯ г 14,87 624,4

БЭВ г 59,86 2 514,0

КРАХМАЛ г 29,11 1 222,8

САХАР г 3,67 154,1

ЛПУ (КРАХМАЛ + г 32,79 1 377,0

Са г 0,65 27,1

Р г 0,59 24,8

Ист г 0,27 11,5

S г 0,11 4,7

К г 1,16 48,6

Na г 0,14 5,9

С1 г 0,23 9,7

NaCl г 0,35 14,7

КАРОТИН мг/кг 23,3 97,7

ВИТАМИН А Тыс. МЕ/кг 1,2 5,0

ВИТАМИН D Тыс. МЕ/кг 0,3 1,4

Fe мг/кг 131,3 551,6