Сообщества насекомых-фитофагов капусты, их взаимоотношения с растением-хозяином и агентами биоконтроля тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат наук Шаталова, Елена Игоревна

• Шаталова, Елена Игоревна
• кандидат наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат наук Шаталова, Елена Игоревна

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Капустовые культуры и их экологические особенности

1.1.1. Белокочанная капуста

1.1.2. Краснокочанная капуста

1.1.3. Савойская капуста

1.1.4. Брюссельская капуста

1.1.5. Цветная капуста

1.1.6. Брокколи

1.1.7. Кольраби

1.2. Насекомые-фитофаги и их экологические связи с растением

1.2.1. Биологические особенности фитофагов

1.2.2. Взаимоотношения фитофагов с растением-хозяином

1.3. Природные регуляторы численности фитофагов

1.3.1. Энтомопатогены

1.3.2. Биопрепараты на основе энтомопатогенов

1.3.3. Энтомофаги - регуляторы численности фитофагов

1.4. Система триотрофа: кормовое растение - насекомое - агент биоконтроля

2. УСЛОВИЯ, ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Условия проведения исследований

2.2. Объекты исследования

2.3. Методы исследований

2.4. Статистическая обработка экспериментальных данных

3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

3.1. Взаимодействия в системе фитофаг - растение-хозяин

3.1.1. Сообщество крестоцветных блошек на трех разновидностях

капусты

3.1.2. Влияние разновидности капусты на капустную моль

3.1.3. Значение разновидности капусты в заселении капустной совкой

3.1.4. Влияние разновидности капусты на капустную белянку и репную белянок

3.1.5. Зависимость заселяемости капустной тлей от разновидности

капусты

3.2. Взаимоотношения в системе триотрофа

3.2.1. Взаимоотношения в системе растение-хозяин - фитофаг -энтомопатоген

3.2.2. Взаимоотношения в системе растение-хозяин - капустная тля -

энтомофаг

ВЫВОДЫ

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Сообщества насекомых-фитофагов капусты, их взаимоотношения с растением-хозяином и агентами биоконтроля»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы. В последнее время экологические проблемы возделывания овощных культур становятся все более актуальными. В условиях Западной Сибири, среди овощных культур в открытом грунте, лидирующее положение занимает капуста белокочанная. Продуктивность культуры сильно зависит от повреждения насекомыми-фитофагами, что требует мер по снижению численности их популяций. Главным образом, это достигается интенсивным применением синтетических пестицидов, в результате чего нарушаются природные механизмы регуляции численности популяций фитофагов энтомофагами, происходит накопление химикатов в овощной продукции. Поэтому с экологических позиций важны исследования по регуляции численности фитофагов белокочанной капусты биологическими методами (Осинцева, 1995). Введение в агроэкосистему агентов биологического контроля численности насекомых-фитофагов, в виде биопрепаратов или энтомофагов, способствует стабилизации экологической ситуации. В последние годы в Западной Сибири, наряду с белокочанной, стали выращивать другие подвиды капусты, включая цветную (Brassica oleraceae var. botrytis L.), краснокочанную {Brassica oleracea var. rubra capitata Lizg) и др. При расширении исследований по регуляции численности фитофагов на других подвидах капусты необходимо учитывать взаимоотношения в системе триотрофа (растение-хозяин - насекомое -агент биоконтроля) (Шапиро и др., 1986; Вилкова, 2001). Поэтому переход к возделыванию других подвидов капусты требует изучения взаимодействий сообщества насекомых, как с растением-хозяином, так и с агентами биологического контроля численности популяций фитофагов. Полученные результаты обеспечат основу для рационального использования экологически безопасных биологических препаратов, регулирующих численность фитофагов капусты с учетом влияния подвида культуры.

Цель работы: изучение влияния растения-хозяина на численность насекомых-фитофагов капусты и их взаимоотношений с агентами биоконтроля популяций насекомых.

Задачи исследований:

1. Определить таксономический состав и структуру энтомофауны на разных подвидах капусты.

2. Изучить особенности взаимоотношений основных фитофагов с растением-хозяином в зависимости от подвида капусты.

3. Оценить влияние растения как кормового субстрата чешуекрылых насекомых на контроль их численности энтомопатогеном в системе триотрофа.

4. Проанализировать роль кормового ресурса фитофага в изменении численности энтомофагов - агентов биологического контроля популяции капустной тли.

Защищаемые положения:

1. Взаимоотношения фитофагов с растением-хозяином определяют состав сообщества насекомых на разных подвидах капусты и степень их заселения.

2. Численность энтомофагов-агентов биоконтроля капустной тли зависит от разновидности капусты, на которой питается фитофаг.

3. Регуляция численности фитофагов трех подвидов капусты при внесении биологического препарата в агроценоз определяется растением - хозяином насекомого.

Научная новизна. Впервые в условиях лесостепи Западной Сибири изучен таксономический состав сообщества насекомых-фитофагов на трех разновидностях капусты и установлена динамика их численности. Выявлена роль растения-хозяина в изменении численности основных фитофагов капустовых культур. Показаны различия в действии биологического препарата на популяцию чешуекрылых вредителей, обитающих на трех подвидах капусты. Определена роль растения-кормового субстрата капустной тли в регуляции ее численности энтомофагами.

Практическая значимость. Полученные результаты имеют значение в прикладной экологии для совершенствования методов экологически безопасной регуляции численности популяции фитофагов овощных культур. Целесообразно применение биопрепарата для снижения численности популяций чешуекрылых

насекомых, повреждающих краснокочанную капусту в условиях Сибирского региона. Результаты работы использованы в рекомендациях «Применение биопрепаратов для защиты капусты от фитофагов в Западной Сибири», рассмотренных и одобренных на совместном заседании секции образования и сельскохозяйственного консультирования НТС Минсельхоза России и Совета проректоров по научной работе аграрных вузов России при Ассоциации «Агрообразование» (протокол №3 от 14 февраля 2012г.). Материалы диссертации используются в учебном процессе Новосибирского ГАУ и Бурятской СХА им. В.Р. Филиппова при подготовки бакалавров, специалистов и магистров в курсах «Биоэкология полезных видов», «Биологическая защита растений» и «Сельскохозяйственная экология» по направлениям «Агроэкология» и «Агрономия».

Апробация работы. Основные результаты диссертационной работы были доложены и обсуждены на студенческой научной конференции «Достижения и перспективы студенческой науки» (Новосибирск, 2009); XIV Международной экологической конференции «Экология России и сопредельных территорий. Проблемы изучения состояния биосистем, методы биоэкологических исследований» (Новосибирск, 2009); Всероссийской конференции молодых ученых «Биоразнообразие: глобальные и региональные процессы» (Улан-Удэ, 2010); VIII межрегиональном совещании «Энтомологические исследования в Северной Азии» (Новосибирск, 2010); Международной научной конференции «Фундаментальные проблемы энтомологии в XXI веке» (Санкт-Петербург, 2011); Международной молодежной научной школе «Пищевые технологии и биотехнологии» (Томск, 2012).

Публикация результатов исследований. Всего по теме диссертационной работы опубликовано 16 работ, из них 4 в изданиях, рекомендуемых ВАК.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, трех глав и выводов. Работа изложена на 139 страницах, содержит 46 рисунков, 14 таблиц. Библиографический список включает 288 источников, из них 156 - на иностранном языке.

Благодарности. Автор выражает глубокую благодарность научному руководителю, доктору биологических наук, профессору М.В. Штерншис, а также доценту кафедры энтомологии и биологической защиты растений НГАУ, кандидату сельскохозяйственных наук И.В. Андреевой, за неоценимую помощь в проведении экспериментов. Автор также признателен сотрудникам ГНУ СибНИИРС, к. с.-х. н. Т.В. Штайнерт и В.В. Бехтольд, за помощь при проведении полевых исследований.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1. Капустовые культуры и их экологические особенности

Все виды капусты относятся к отделу Magnohophyta (Покрытосеменные), классу Magnohatae (Двудольные), порядку Capparales Hutchinson, семейству Brassicaceae (Капустные, Капустовые или Брассиковые), роду Brassica (Ипатьев, 1966; Лизгунова, 1984; Баранов, 1994; Пивоваров, 2006; Гринберг и др., 2006; Цевелёв, 2011). Вид Brassica oleracea L. чрезвычайно полиморфен, вследствие чего его разделяют на ряд разновидностей, близких по скрещиваемости. Ведущее место на территории Западной Сибири занимает белокочанная капуста {Brassica oleracea convar. capitata (L.) Alef. var. capitata L. f. alba DC), однако в настоящее время все большую популярность завоевывают ранее редкие разновидности, такие как краснокочанная {Br. oleracea convar. capitata (L.) Alef. var. capitata L. f. rubra (L.) Thell.), савойская {Brassica oleracea var. sabauda L.), брюссельская {Brassica oleracea var. Gemmifera (DC.) Zenker,), цветная {Br. oleracea convar. botrytis (L.) Alef. var. botrytis L.), брокколи {Brassica oleracea var. Italica Plenk) и другие разновидности капусты.

Согласно учению Н.И. Вавилова (1987) о мировых центрах происхождения культурных растений, капуста имеет в качестве первичного источника происхождения и распространения побережья Средиземного моря и Атлантического океана, где и в настоящее время встречаются дикие подвиды данной культуры. Можно полагать, что происхождение данной культуры влияет на биологические и экологические особенности растения.

1.1.1. Белокочанная капуста

Капуста белокочанная - древняя культура, происходит от дикорастущих видов средиземноморских районов Западной Европы и Северной Африки (Ипатьев, 1966; Велик 1988, Гончаров, 2007; Björkman et al., 2011). Выделяют несколько подвидов белокочанной капусты, из них на территории Западной

Сибири наибольшее значение имеет европейский подвид (subsp. europea Lizg.), сформировавшийся на территории Европы и Азии (Сибирь) в различных климатических условиях (Лизгунова, 1984; Куликов, 2004; Пивоваров, 2006).

Капуста белокочанная в первый год жизни образует кочаны, во второй -цветоносные побеги и семена. Стебли белокочанной капусты прямостоячие или полуприподнятые. Корни веретеновидные, разветвленные. Листья крупные, очередные, обычно цельнокрайние, сидячие или с небольшими черешками, зеленой окраски различной интенсивности. Растения второго года жизни образуют разветвленный цветоносный стебель. Цветки собраны в длинные кисти или щитки, цветки с четырьмя желтыми или белыми лепестками и шестью тычинками. Плод - стручок, семена округлые или шаровидные, желтой или бурой окраски (Соловых, 1987; Велик, 1988).

Для кочанной капусты характерен большой разброс по сортовой изменчивости длительности периода вегетации, морозо-, жаро- и засухоустойчивости, а так же устойчивости к болезням и вредителям (Асякин, 1987; Чернышова, 2011). К теплу малотребовательна, скорее страдает от высокой, чем от низкой температуры. Выдерживает заморозки до -7°С даже в виде рассады. Оптимальная температура роста 15-18°С. Сумма активных температур выше 10°С для раннеспелых сортов составляет 1100-1200°С, для среднеспелых сортов 1200-1300°С. Растение длинного дня, требовательно к освещению, но может расти между кулисами из высокорослых растений. К почве требовательно, дает высокие урожаи только на богатых почвах, оптимальное значение рН 6,0 (Афонин и др., 2008).

Кочаны капусты обладают высокими вкусовыми качествами. Биохимический состав капусты сильно различается в зависимости от сортовых особенностей, условий возделывания, агротехники, ее пищевая ценность очень высока (Боос и др, 1988; Пивоваров, 2006; Типсина, Ташлыкова, 2010). Богата белокочанная капуста и углеводами, в основном представленными моносахарами (глюкоза, фруктоза). Содержит большое количество витаминов: С (аскорбиновая кислота), Вь В2, В3, РР, К, Е (токоферол), Н (биотин), фолиевую и фолиновую

кислоты. Капуста содержит также витамин и, подавляющий развитие язвы желудка и злокачественных опухолей (Пивоваров, 2006; Гринберг и др., 2006; Харламов, 2006; Типсина, 2010).

1.1.2. Краснокочанная капуста

Краснокочанная капуста имеет единое происхождение с белокочанной разновидностью, что определяет сходные с ней биологические и экологические характеристики. Форма краснокочанной капусты менее распространена на территории России. Эта форма была известна со времен Теофаста и Плиния. Одним из первых описал краснокочанную капусту Додениус в 16 веке. В 17 веке она попадает из Европы на территорию России. По морфологическим признакам, особенностям роста и развития не отличается от белокочанной капусты (Пивоваров, 2006).

К теплу краснокочанная капуста малотребовательна. Выдерживает заморозки до -5 -7°С даже в виде рассады, но при длительном похолодании может дать цветуху (зацветает в первый год жизни без образования кочана). Оптимальная температура роста 12-15° С. Растение длинного дня (более 14 часов), требовательна к влаге и более требовательна к плодородию почв, чем белокочанная капуста, оптимальное значение рН 6,0 (Афонин и др., 2008).

Свое название эта разновидность получила из-за красно-фиолетовой окраски листьев, обусловленной наличием в листьях цианидина - вещества с Р-витаминной активностью. По своему биохимическому составу и пищевой ценности краснокочанная капуста превосходит белокочанную. В ней больше витаминов А, С, Вь В2, В3 К, белков, Сахаров, клетчатки. Содержит те же углеводы (глюкоза, фруктоза), но в другом соотношении. Высокое содержание антоциана, обладающего бактерицидным действием, не только благотворно влияет на человека, но и обусловливает высокую лёжкость кочанов (Велик ,1988; Пивоваров, 2006).

1.1.3.Савойская капуста

В пределах данной разновидности выявлено две формы: бескочанная (БиЬБр. с1езриша Lizg.) и кочанная (БиЬБр. еисар'иша Lizg.). Верхушечная почка образует гофрированный, рыхлый кочан. Листья нежные, не имеют грубых жилок. По урожайности значительно уступает белокочанной капусте. По сравнению с белокочанной капустой у савойской выше содержание белка, витамина С и минеральных веществ (Пивоваров, 2006). Капуста савойская - самая холодостойкая и морозоустойчивая из всех видов капусты, меньше повреждается листогрызущими вредителями. Весенние заморозки ниже -2.-3°С для ранних сортов и ниже -5...-8°С для поздних губительны. Плохо переносит затенение, малоплодородные и кислые почвы (Лебедева, 2004).

1.1.4.Брюссельская капуста

По поводу происхождения данной разновидности многие ученые придерживаются мнения, что она произошла от диких форм листовой капусты, в результате гибридизации с савойской капустой и изменения характера ветвления. По биологической ценности брюссельская капуста превосходит все другие разновидности (Пивоваров, 2006). Она богата витамина, солями, сахарами и белками. Вегетационный период у брюссельской капусты длительный, от появления всходов до образования кочана проходит 140-160 дней. Данная разновидность плохо переносит тяжелые глинистые почвы с кислой реакцией почвенного раствора (рН менее 5,5), малоплодородные почвы. Брюссельская капуста - светолюбивое растение, не выдерживает загущенных посадок и затенения (Лебедева, 2004; Пивоваров, 2006).

1.1.5. Цветная капуста

Цветная капуста является очень древним культурным растением. Из сильноразветвленных, тесно расположенных цветоносных побегов образуется головка капусты. Первичным центром формирования разнообразия цветной капусты стала Италия, откуда она проникла во Францию, Великобританию и другие европейские страны. В конце 18 века появилась в России (Пивоваров 2006)

Цветная капуста более требовательна к условиям внешней среды, в частности к температуре и почвенному плодородию. Предпочитает легкие суглинистые почвы. Холодоустойчива, некоторые сорта морозостойкие (до -3-4°С). Оптимальная температура для формирования головок 15-18°С. Светолюбива, оптимальная длина светового дня 17 часов (в южных районах - 14 часов). Длинный световой день неблагоприятен для формирования головок. Нуждается в постоянном увлажнении почвы и высокой относительной влажности воздуха. (Афонин и др., 2008).

В пищевом отношении она имеет большую ценность, чем капуста белокочанная. Более половины азотистых веществ представлены легкоусвояемыми белками, много минеральных солей калия, железа, фосфора и витаминов (С, Вь В2, В3, В6, РР, Н), имеются микроэлементы (кобальт, магний, йод), пантотеновая кислота (Каменская, 1956; Нечаева, 1968; Глебова и др., 1978; Белик, 1988; Пивоваров, 2006).

1.1.6. Брокколи

Брокколи - однолетняя культура. Растения формируют стебель до 80 см длиной, заканчивающийся головкой, состоящей из укороченных цветоносов с плотно сомкнутыми бутонами. Скороспелая культура. Брокколи, при удалении верхушечного соцветия, образует в пазухах листьев новые отпрысковые головки. К условиям произростания нетребовательна. Для нормального развития необходима хорошая освещенность и увлажненность почвы. Брокколи плохо

переносит кислые почвы. Сухая и жаркая погода способствует быстрому рассыпанию головки и цветению. Выдерживает понижение температуры до -7°С (Лебедева, 2004; Пивоваров, 2006).

Головки брокколи содержат витамины A, Bi, В2, РР, С, К, соли калия, фосфора, кальция, магния, антисклеротические вещества холин и метионин (Пивоваров, 2006).

1.1.7.Кольраби

От всех капустных культур отличается утолщенным стеблем, напоминающим по форме репу бледно-зеленого или фиолетового цвета. Данный подвид отличается скороспелостью. Растения холодостойкие, светолюбивые, хорошо растут на любых почвах, кроме кислых. При постоянном рыхлении выдерживают тяжелые глинистые почвы. Переносят заморозки до -6°С.

Эта капуста богата белками, углеводами, солями натрия, калия, кальция, магния, фосфора, железа и йода, витаминами (Вь В2, С и РР) (Лебедева, 2004; Пивоваров, 2006).

1.2. Насекомые-фитофаги капусты и их экологические связи с

растением

1.2.1. Биологические особенности фитофагов

Капустовые культуры во все фазы развития повреждают насекомые разного таксономического состава, наибольший вред наносят гусеницы, способные полностью уничтожить урожай капусты.

Крестоцветные блошки - р. Phyllotreta (сем. листоеды - Chrysomelidae, отр. жесткокрылые - Coleóptera).

Жуки мелкие, длиной 1,8-3,5 мм, характеризуются продолговато-овальным, слабо выпуклым телом, одноцветными (черными, синими или зеленоватыми с

металлическим блеском) или двухцветными (черными с желтой извилистой продольной полоской) надкрыльями в зависимости от вида насекомого. Усики с 11 члениками, нитевидные. Жуки имеют утолщенные бедра задних ног, в связи, с чем могут передвигаться с помощью прыжков (Щеголев, 1960; Ластовецкий, 2001).

Зимуют неполовозрелые жуки под растительными остатками, опавшими листьями, в верхних слоях почвы на полях или лесных полянах и лесополосах, а также в парниках (Липп, 2009). Жуки хорошо перезимовывают при температуре верхнего слоя почвы под снежным покровом - 4°С.

Весной жуки выходят сразу после оттаивания снега и появления растительности, где жуки проводят период дополнительного питания в течение 40-60 дней. Яйца откладывают в поверхностный слой почвы у прикорневой зоны крестоцветных растений. Окукливаются в почве. Блошки опасны в весенний период при питании жуков на всходах крестоцветных культур и высаженной в грунт капусте. Они съедают едва появившиеся всходы, изъязвляют семядольные листочки, образуют краевые и межжилковые погрызы, скелетируют листовую поверхность. При сильном повреждении язвочки сливаются, листья засыхают и растения погибают (Щеголев, 1960; Осмоловский, Бондаренко; 1980; Бондаренко и др., 1991; Ластовецкий, 2001; Горбунов и др., 2008; Липп, 2009).

Изучение фауны земляных блошек в агроценозах капустного поля лесостепной зоны Приобья показало, что доминантным видом являлась блошка крестоцветная черная {Phyllotreta atra L.); субдоминантные - блошка крестоцветная волнистая (Ph.undulata Kutsch.), и блошка хлебная полосатая {Ph.vittula Redt.). Другие виды - это блошка крестоцветная выемчатая {Ph.striolata F.), блошка крестоцветная светлоногая (Ph.nemorum L.) и блошка бронзовая {Psylliodes cuprea Koch.). Блошка свекловичная обыкновенная (Chaetocnema coticinna Marsh.) меньше всего встречается в сообществе земляных блошек агроценоза капусты. Характерным является смена видовой структуры блошек в течение сезона (Осинцева, 1998).

Капустная моль - РЫеПа ху1о81е\1а Ь. (сем. серпокрылые моли -Р1ШеШс1ае, отр. чешуекрылые - Ьер1с1ор(ега ). Распространена повсеместно.

Бабочка в размахе крыльев 14-17 мм, крылья темно-серые, узкие, в спокойном состоянии сложены вдоль тела и имеют сверху ромбовидный рисунок. Задние крылья пепельно-бурые, с длинной бахромой. Яйца приплюснутые, похожи на капельку воска. Гусеницы светло-зеленого цвета, веретенообразной формы, с редкими черными щетинками, очень подвижные. С растений спускаются на паутинке. Куколки скрыты в рыхлом шелковистом грязно-белом коконе.

Зимуют куколки в коконе в укромных местах. Лёт бабочек - в конце мая и начале июня. Бабочки активны в сумерках и ночью. Яйца откладывают на нижней стороне листьев по одному или небольшими группами (развиваются 3-7 дней). Отродившиеся гусеницы минируют лист, а после линьки осуществляют окошечное выгрызание. Гусеницы развиваются 9-15 дней. В Сибири развивается в двух поколениях. Периодически дает вспышки массового размножения. На капусте капустная моль наиболее вредоносна в фазу образования сердечка; при повреждении точки роста кочан не образуется (Осмоловский, 1972; Копанева, 1982; Осмоловский, 1983; Месяц и др., 1989; Гуркина 2003; Гриценко и др., 2005; Слепцов и др., 2005; Горбунов и др., 2008).

Капустная совка - Матез^а Ъгазъкае Ь. (сем. Совки, - ЫосШ1с1ае, отр. чешуекрылые - Ьер1с1ор1ега).

Бабочка в размахе крыльев 42-52 мм. Передние крылья темно-бурые со сложным рисунком. Задние крылья серовато-бурые, осветленные в основании. Яйца полушаровидные, в основании приплюснутые, вершины их в виде буро-красного бугорка, ребристые. Сначала яйца восково-желтого цвета, затем становятся сероватыми. Взрослые гусеницы длиной до 50 мм. Окраска варьирует от зеленого, зеленовато-бурого до буро-коричневого и почти черного цвета. По бокам тела проходит широкая продольная желтоватая полоса. Куколки гладкие, блестящие, красновато-коричневые, на конце брюшка с коротко раздвоенным кремастером. Длина 20-24 мм (Осмоловский, 1964; Поспелова, 1974;

Осмоловский, 1983; Бондаренко, Глущенко, 1985; Савздарг, 1987; Поспелов, 1988; Ламперт, 2003).

Зимует капустная совка в фазе куколки, уходя в почву на глубину 9-12 см. Лёт начинается во второй половине июня. Бабочки ведут сумеречный образ жизни, прячась на день в укромные места. Самки размещают яйца группами, в одной кладке обычно 25—60 яиц и более. Эмбриональное развитие длится 7-14 дней, гусениц - от 35-45 до 60-65 дней. Молодые гусеницы осуществляют одностороннее дырчатое выгрызание мякоти листа. Гусеницы старших (4 - 6-го) возрастов вгрызаются в кочан, оставляя в ходах экскременты (Осмоловский, 1972; Осмоловский и др., 1976; Бондаренко и др., 1985; Месяц, 1989; Гуркина, 2003). В условиях Западной Сибири является наиболее опасным фитофагом капусты, в отдельные годы процент поврежденных растений достигает 60-100%. Наибольшее повреждение капусте совка причиняет в фазе «завивки». Даже при наличии 4-5 гусениц кочан образуется с сильным запозданием и получается мелким и рыхлым. Сильное объедание наружных листьев у поздних сортов капусты в период формирования кочана приводит к задержке его роста и кочан становится мелким. Развивается в одном поколении. Откладка яиц начинается в июле - начале августа (Поспелова, 1974; Осинцева, 1995; Горбунов и др., 2008).

Капустная белянка - Pieris brassicae L. (сем. белянки - Pieridae, отр. чешуекрылые - Lepidoptera).

Бабочка в размахе крыльев 55-65 мм, крылья белые. Передние крылья с черной серповидной каймой, спускающейся до середины наружного края. У самок на верхней стороне передних крыльев два крупных черных пятна и такого же цвета мазок на заднем крае. У самцов два черных пятна располагаются на нижней стороне. Бабочки активны в дневное время, особенно в жаркий период дня, питаются нектаром, предпочитая растения семейства Капустные. Самки размещают яйца плотными кучками на нижнюю сторону листа по 50-70 штук (Попов, Попова, 1993). Важно отметить, что Яйца столбчатые, ребристые, желтого цвета, высотой 1,25 мм. Отродившиеся гусеницы бледно-зеленого цвета с черной головой, тело с короткими волосками; гусеницы старших возрастов до 40

мм длиной, желтовато-зеленые, на спинной стороне и по бокам рисунок из сгруппированных в прямоугольники желто-черных пятнышек (Поспелова, 1974; Яковлев, 1974; Копанева, 1982; Вянгеляускайте и др., 1989; Власенко Коротких, 2004; Гриценко и др., 2005; Слепцов и др., 2005; Горбунов и др., 2008). Куколки желто-зеленые, угловатые, с черными пятнами, длиной 23 мм.

Зимуют куколки. Лет бабочек начинается в первой половине мая. Бабочки активны днем. Самки откладывают яйца на нижнюю сторону листьев группами по 60-80 штук. Гусеницы первых возрастов держатся вместе, выедая небольшие отверстия на листе, а начиная с 3-го возраста, расползаются на соседние растения. Гусеницы развиваются 20-30 дней. Окукливаются открыто (фаза длится 12-14 дней). Массовый лет бабочек - в последней декаде июля. В фауне Западной Сибири капустную белянку начали отмечать в начале XX века. Первые экземпляры этого фитофага в Новосибирском районе были отмечены в 1963 году. В Сибири капустная белянка обычно развивается в двух поколениях. Наиболее вредоносны гусеницы второго поколения 4-го и 5-го возраста (Поспелова, 1974; Яковлев, 1974; Копанева, 1982; Вянгеляускайте и др., 1989; Власенко и др., 2004; Гриценко и др., 2005; Слепцов и др., 2005; Горбунов и др., 2008).

Репная белянка - Р/ега гарае Ь. (сем. белянки - Р1епс1ае, отр. чешуекрылые - Ьер1с1ор1ега).

После весеннего вылета бабочки некоторое время питаются нектаром растений семейства Вгазяюасеае. Передние крылья репной белянки мучнисто-белые, у самок слегка желтоватые, на вершине крыла черный мазок. Кроме него у самцов одно, а у самок два черных пятна; снизу крылья белые с желтым мазком и двумя черными пятнами. Задняя пара крыльев сверху у обоих полов беловатого цвета с одним черным пятном на переднем крае, снизу задние крылья желтые. Размах крыльев 40-55 мм. После периода дополнительного питания происходит спаривание и откладка яиц. У белянок (Р1епс1ае) самки способны к многократному спариванию (полиандрии); их плодовитость прямо связана с количеством спариваний, так как самцы вместе со сперматофором передают самке питательные вещества, необходимые для развития яиц. В таком случае

большее количество раз спарившаяся самка будет откладывать больше жизнеспособных яиц. Поэтому самцам выгодно производить повышенное количество эякулята, а для этого они сами должны быть крупнее и развиваться дольше (Шкурихин, 2011). Бабочки активны днем, откладывают яйца с нижней стороны листа, располагая их по одному. Яйца желтые, ребристые, удлиненно-бутылковидной формы. Гусеницы отрождаются через 4-5дней. Гусеницы бархатисто-зеленые, длиной 40-45 мм, с желтой полоской вдоль спины. В младших возрастах они выгрызают небольшие отверстия на нижней стороне внешних листьев кочана, а начиная с 3-4-го возрастов, забираются на верхнюю часть кочана под кроющие листья, где выгрызают сквозные отверстия в ткани листа. Наиболее опасны старшие возраста гусениц второго поколения. Гусеницы развиваются 18-20 дней, куколки - 10-11 дней. Куколки серо-зеленоватого цвета с черными крапинками, угловатые. Зимуют куколки. Лет начинается с конца мая. (Копанева, 1982; Попов, Попова, 1993; Горбачев, 2002; Гуркина, 2003; Гриценко, 2005; Горбунов, 2008; Захваткин, Исаичев, 2011). В Западной Сибири репная белянка не имеет большого хозяйственного значения, хотя и является постоянным элементом фауны. Массовый лет бабочек второго поколения во II и III декадах июля. Отдельные поколения нерезко разграничены. Вспышек массового размножения не наблюдалось, в некоторые годы процент зараженных растений капусты бывает достаточно большим, но 1-2 гусеницы на растение не вызывают заметных повреждений (Поспелова, 1974; Горбунов, 2008).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Шаталова, Елена Игоревна, 2013 год

Библиографический список

1. Адашкевич, Б.П. Энтомофаги вредителей овощных культур / Б.П. Адашкевич. - Науч. тр. ВАСХНИЛ. - М.: Колос, 1975.- 192 с.

2. Андреева, И.В. Взаимодействие в системе кормовой ресурс - луговой мотылек {Pyrausta sticticalis L.) - энтомопатогенная бактерия / И.В. Андреева // Ж. с\х биология. - 2009. - №5. - С. 103-107

3. Асякин, Б.П. Зараженность энтомофагами капустных мух на разных сортах капусты. Эколого-физиологические основы триотрофа и стратегия защиты растений / Б.П. Асякин // Вопросы экологической физиологии насекомых и проблемы защиты растений. Тр. ВИЗР. - Л., 1979. - С. 34-39.

4. Асякин, Б.П. Оценка белокочанной капусты на устойчивость к вредителям и болезням в Западной Сибири / Б.П. Асякин, Л.Н. Спиченко, Э.Н. Медведкова // Интегрированная защита от вредителей. 1987. С. 4-9.

5. Асякин, Б.П. Управление развитием фитофагов в системе триотрофа (на примере агроценоза капусты) / Б.П. Асякин, О.В. Иванова // Arpo XXI. - 1999. -№ 12. — С.16-17.

6. Асякин, Б.П. Экологически безопасная система защиты капусты от комплекса вредных организмов на основе использования устойчивых сортов / Б.П. Асякин, О.В. Иванова, В.А. Выцкий // Вестник защиты растений. - 2000. — №2.-С. 33-39.

7. Афонин, А.Н. Агроэкологический атлас России и сопредельных стран: экономически значимые растения, их вредители, болезни и сорные растения / Афонин А.Н.; Грин С.Л.; Дзюбенко Н.И.; Ред. Фролов А.Н. // [Интернет-версия 2.0]. - 2008. Режим доступа: http://www.agroatlas.ru

8. Барайщук, Г.В. Регулирование численности непарного шелкопряда Lymantria dispar L. в лесах Омской области / Г.В. Барайщук, Е.А. Силина //Лесное хозяйство и лесное строительство в Западной Сибири: материалы Ш-его междунар. интернет-семинара (май 2007г.). Томск, 2007. - С. 13-18.

9. Баранов, В.Д. Мир культурных растений. Справочник / В.Д. Баранов, Г.В. Устименко. -М.: Мысль, 1994. -381с.

10. Баранчиков, Ю.Н. Трофическая специализация чешуекрылых / Ю.Н. Баранчиков - Красноярск: ИЛиД СО АН СССР, 1987. - 171 с.

11. Бахвалов С.А. Вирозы насекомых / С.А. Бахвалов // Патогенны насекомых: структурные и функциональные аспекты (Ред. В.В. Глупов). - М.: Круглый год, 2001. - С. 20-76.

12. Бахвалов, С.А. Динамика численности шелкопряда-монашенки Lymantria monacha L. и непарного шелкопряда L. dispar L. (Lymantriidae, Lepidoptera): роль кормового ресурса и вирусной инфекции/ С.А. Бахвалов, A.B. Ильиных, В.Н. Жимерикин, В.В. Мартемьянов // Евразиатский энтомол. журнал. -2002. - Т. 1, вып. 2. - С.101-108.

13. Березина, Н.В. Перспективы применения авермектинсодержащих препаратов в защите растений от вредителей / Н.В.Березина, В.Н.Чижов, В.А.Дриняев, В.А.Юркив // Гавриш. - 1997. - №2. - С10-13.

14. Биологическая защита растений / М.В. Штерншис, Ф.С.-У. Джалилов, И.В. Андреева, О.Г. Томилова. Ред. М.В. Штерншис. - М.: КолосС, 2004. - 264с.

15. Богданов, В.Б. Устойчивость капусты к капустной тле (Brevicoryne brassicae L.) в условиях Волго-Вятского региона. Автореф. дис. канд. биол. наук. / В.Б. Богданов. - Ленинград, 1990. - 20 с.

16. Бондаренко, Н.В. Практикум по общей энтомологии / Н.В. Бондаренко, А.Ф. Глущенко-Л.: Агропромиздат. Ленингр. Отд-ние, 1985. -352с.

17. Бондаренко, Н.В.Общая и сельскохозяйственная энтомология / Н.В. Бондаренко, С.М. Поспелов, М.П. Персов. - Л.: ВО «Агропромиздат», 1991. - 432 с.

18. Борисов, Б.А. Энтомопатогенные аскомицеты дейтеромицеты / Б.А. Борисов, В.В. Серебров, И.И. Новикова, И.В. Бойкова // Патогенны насекомых: структурные и функциональные аспекты (Ред. В.В.Глупов). - М.:Круглый год, 2001.-С. 352-427.

19. Бурцева, Л.И. И.Бактериальные болезни насекомых / Л.И. Бурцева, М.В. Штерншис, Г.В. Калмыкова// Патогенны насекомых: структурные и

функциональные аспекты (Ред. В.В. Глупов). - М.: Круглый год, 2001. - С. 189245.

20. Вавилов, Н.И. Теоретические основы селекции. - М.: Наука, 1987. -

510 с.

21. Вейзер, Я. Микробиологические методы борьбы с вредными насекомыми. - М.: Колос, 1972. - 640с.

22. Вилкова, H.A. Изменчивость и адаптивная микроэволюция насекомых-фитофагов в агробиоценозах в связи с иммуногенетическими свойствами кормовых растений / Н.А.Вилкова, С.Р.Фасулати // Труды РЭО. -Вып.27. - СПб.: Наука, 2001. - С. 107-128.

23. Вилкова, H.A. Иммунитет растений к вредителям и его связь с пищевой специализацией насекомых-фитофагов / H.A. Вилкова // Чтения памяти H.A. Холодковского. - Л.: Наука, 1979. - Т. 31. - С. 68-103.

24. Вилкова, H.A. Иммунологическая защита растений от вредителей / H.A. Вилкова, И.Д. Шапиро // Научные основы защиты растений. - М.: Колос, 1984. - С.116-138.

25. Власенко, Н.Г. Взаимодействие специализированных вредителей с крестоцветными культурами / Н.Г. Власенко, О.В. Сушкова // Вест. Рос. Ак. с-х н. - 1997.-№3.-С. 37-39.

26. Власенко, Н.Г. Полевые капустовые культуры в Западной Сибири / Н.Г. Власенко, H.A. Коротких //РАСХН. Сиб. Отд-ние. СибНИИЗХим. -Новосибирск, 2004. - 152с.

27. Воронин, К.Е. Биоценотическая роль афидофагов и энтомофтороза в агроэкосистемах / К.Е. Воронин, Г.А. Пукинская, Э.Г. Воронина, Н.Л. Максимова, А.Ф. Зубков // Вестник защиты растений. - 2000. - №3. - С. 3-12.

28. Воронина, Э. Г. Энтомофторовые грибы / Э.Г. Воронина, Г.Р. Леднев, Т.Ю. Мукамолова // Патогенны насекомых: структурные и функциональные аспекты (Ред. В.В. Глупов). - М.: Круглый год, 2001. - С. 271-351.

29. Вянгеляускайте, А.П. Вредители овощных культур: Справочник /А.П. Вянгеляускайте, Г.М. Жуклене и др. - М.: Агропромиздат, 1989. - 462с.

30. Вятчина, О.Ф. Экологические особенности энтомопатогенных бактерий вида Bacillus thuringiensis, циркулирующих в биоценозах Камчатки: Дис. к. б. н. / О. Ф. Вятчина. - Иркутск, 2003. - 244с.

31. Гаврилюк, A.B. Трофические связи наездников (Hymenoptera: Aphidiidae, Aphelinidae) и тлей (Homoptera: Aphididae) в Новосибирской и Курганской областях / Гаврилюк A.B., Новгородова Т.А. // Евраз. энтом. журн. -

2007. - Т.6, №3. - С. 267-270.

32. Глебова, Е.И. Овощеводство и плодоводство / Е.И. Глебова, А.И. Воронина, Н.И. Калашникова и др. - JL: Колос, 1978. - 448с.

33. Голосова, М.А. Насекомые-вредители леса. Биологическое регулирование популяций / М.А. Голосова. - М.: Изд-во МГУЛ, 2004. - 188с.

34. Гончаров, Н.П. Центры происхождения культурных растений / Гончаров Н.П. // Вестн. ВОГиС. - 2007. - Т. 11, №314. - С. 561-574.

35. Горбунов, H.H. Вредители овощных и плодово-ягодных культур в Сибири (видовой состав, биоэкологические особенности фитофагов, системы надзора и защитные мероприятия): Учеб. Пособие /H.H. Горбунов, В.П. Цветкова,

A.B. Штундюк, Л.Н. Васильковская // Новосиб. гос. аграр. ун-т. - Новосибирск,

2008. - 240с.

36. Горбунов, H.H. Вредители полевых культур в Сибири / H.H. Горбунов, В.П. Цветкова, Н.Ф. Шадрина. - Новосибирск: НГАУ, 2004. - 210 с.

37. Гринберг, Е.Г. Овощеводство Западной Сибири / Е.Г. Гринберг, Т.Г. Ксензова, Р.Ф. Хананова и др.; Ред. Т.Г. Ксензовой, Р.Ф. Ханановой. Новосиб. гос.аграр. ун-т. - Новосибирск, 2006. - 237с.

38. Гриценко, В.В. Защита растений / В.В. Гриценко, Д.А. Орехов, С .Я. Попов и др.; Ред. С.Я. Попова. - М.: Мир, 2005. - 488 с.

39. Гулий, В.В. Микробиологическая борьба с вредными насекомыми /

B.В. Гулий, Г.М. Иванов, М.В.Штерншис. - М.: Колос, 1982. - 272с.

40. Гуркина, Л.К. Вредители капустных культур / Защита и карантин растений. - 2003. - № 5. - С.44-46.

41. Доспехов, Б.А. Методика полевого опыта / Б.А. Доспехов. - М. «Колос», 1979.-415 с.

42. Егорова, Н.Ф. Совершенствование элементов интегрированной защиты белокочанной капусты и рапса от основных вредителей: Автореф. дис. канд. биол. наук / Н.Ф. Егорова. - М., 2007. - 19 с.

43. Ермакова, H.H. Инфекционность бакуловирусов, выделенных из лугового мотылька / Н.И. Ермакова, М.В. Штерншис // С.-х. биология. - 1987. -№4. - С. 34-36.

44. Захваткин, Ю.А. Словарь-справочник энтомолога / Ю.А. Захваткин, В.В. Исаичев. - М.: Книжный дом «ЛИБРОКОМ», 2011. - 368с.

45. Защита растений от вредителей / И.В. Горбачев, В.В. Гриценко, Ю.А. Захваткин и др.; Ред. В.В. Исачев. - М.: Колос, 2002 - 472 с.

46. Иванова, О.В. Об иммунитете капусты к капустной моли и капустной белянке / О.В Иванова // Бюл. Всесоюз. НИИЗР. - 1987. - №68 - С. 59-65.

47. Изучение и поддержание мировой коллекции капусты. Методические указания / Г.В. Боос, Т.И. Джохадзе, A.M. Артемьева, В.И. Кривченко, и др. -Л.:1988.- 117с.

48. Ипатьев, А.Н. Овощные растения земного шара. Систематика, биология, агротехника и сортовые ресурсы / А.Н. Ипатьев. - Минск: «Вышэйшая школа», 1966. - 384с.

49. Калюга, М.В. Биологическое обоснование совместного применения микробиопрепаратов и хлорофоса против чешуекрылых на различных кормовых растениях: Автореф дис. канд. с-х. наук / М.В. Калюга. - Л.-Пушкин., 1969. - 22 с.

50. Каменёк, Л.К. Дельта-эндотоксин Bacillus thuringiensis: строение, свойства и использование для защиты растений: Дис. док. биол. наук / Л. К. Каменёк. - М., 1998. - 345 с.

51. Каменская, А.И. Цветная капуста / А.И. Каменская, O.A. Филиппова. -М.: Московский рабочий., 1956. - 92 с.

52. Кандыбин, H.B. Бактериальные средства борьбы с грызунами и вредными насекомыми / Н.В. Кандыбин. - М.: Агропромиздат, 1989. - 175 с.

53. Коппел, X. Биологическое подавление вредных насекомых / X Коппел, Мертинс Дж. - М.: Мир, 1980. - 427с.

54. Кузнецова И.А. Биопрепараты в защите капусты белокочанной от вредителей и болезней в условиях Красноярской степи: Дис. канд. с-х. н. / И.А. Кузнецова - Новосибирск, 2003. - 152с.

55. Кулагин, B.C. Эпизоотологические проблемы применения Bacillus thuringiensis в лесных биоценозах / B.C. Кулагин // Энтомопатогенные бактерии и их роль в защите растений. - Новосибирск, 1987. - С.92-107.

56. Куликов, М.А. Организация выращивания капусты белокочанной в фермерских и личных подсобных хозяйствах / М.А. Куликов. - М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2004. - 124с.

57. Ламперт, К. Атлас бабочек и гусениц. Места обитания. Физические характеристики. Поведение. Размножение / К. Ламперт; Ред. А.И. Быховца. - , Минск.: Харвест, 2003. - 736с.

58. Ластовецкий, В.Е. Крестоцветные блошки и рапсовый цветоед на рапсе в условиях центральной зоны Краснодарского края: Автореф. дис. канд. биол. наук / В.Е. Ластовецкий. - Краснодар, 2001 - 25 с.

59. Лебедева, А.Т. Капуста / А.Т. Лебедева. М.: ООО «Издательство ACT», ООО «Издательство Астрель», 2004. - 123с.

60. Лизгунова, Т.В. Культурная флора СССР. Капуста / Т.В. Лизгунова Л.: «Колос», 1984. - Т. XI. - 328с.

61. Липп, Л.Е. Вредители капусты белокочанной, биологические и химические меры борьбы с ними в северной лесостепи Челябинской области: Автореф. дис. канд. с-х. наук / Л.Е. Липп. - Челябинск, 2009 - 18с.

62. Липп, Л.Е. Эколого-биологические особенности вредителей капусты белокочанной / Л.Е. Липп //Аграрный вестник Урала. - 2008. - №9. - С.67-70.

63. Лысенко, О. Микроорганизмы как источники новых инсектицидных химикатов: токсины / О. Лысенко, М. Кучера // Микроорганизмы в борьбе с вредными насекомыми и клещами. - М.: Колос, 1976. - С. 170 - 189.

64. Мартемьянов, В.В. Влияние дефолиации березы повислой {Betula pendula Roth.) и аллелохемиков растений на развитие непарного шелкопряда (Lymantria dispar L.) и его чувствительность к вирусу ядерного полиэдроза: Дис. канб. биол. наук / В.В. Мартемьянов. Новосибирск, 2003. - 132с.

65. Мартемьянов, В.В. Экологические взаимосвязи в системе триотрофа и их влияние на развитие и популяционную динамику лесных филлофагов /В.В. Мартемьянов, С.А. Бахвалов // Евроазиат. энтомол. жур. - 2007. - Т. 2, № 6. -С.205-221.

66. Мейер, Н.Ф. Биологический метод борьбы с вредными насекомыми и теоретическое его обоснование / Н.Ф. Мейер // Успехи современной биологии. -1939.-Т. 11, № 1. - С. 93-123.

67. Методика выявления сортообразцов капусты, устойчивых к основным вредителям / Б.П. Асякин, О.В. Иванова, В.Б. Богданов, Р.В. Пухаев; Ред. H.A. Вилкова - СПб.: ВИЗР, 2001. - 18 с.

68. Микроорганизмы в борьбе с вредными насекомыми и клещами. / Пер. с англ. H.A. Емельяновой. Ред. М.С. Гиляров. М.: «Колос», 1976. - 584с.

69. Митрофанов, В.Б. Эффективность природных и экспериментальных вирозов в регуляции численности насекомых-фитофагов / В.Б. Митрофанов // Биологические средства защиты растений, технологии их изготовления и применения. - Спб., 2005. - С. 241-260.

70. Мокроусова, Е.П. Биохимические аспекты пищевых адаптаций капустной совки. / Е.П. Мокроусова, В.И. Танский // Сб. науч. тр. Л., 1986. - С. 26-35.

71. Нечаева, Л.С. Цветная капуста / Л.С. Нечаева. Ред. В.А. Брызгалова. -Л.: «Колос», 1968. - 64 с.

72. Овощные культуры: Альбом-справочник / В.Ф. Белик Н.Ф. Ермаков, В.И. Кортукова и др. - М.: Росагропромиздат, 1988. - 351с.

73. Определитель вредных и полезных насекомых и клещей овощных культур и картофеля в СССР / Сост. Л.М. Копанева; B.C. Великань, В.Б. Голуб, Е.Л. Гурьева и др. - Л.: Колос, 1982. - 272с.

74. Определитель сельскохозяйственных вредителей по повреждениям культурных растений / Ред. Г.Е. Осмологвского. - Л., «Колос», 1976. - 696с.

75. Орловская, Е.В. Биологические аспекты использования энтомопатогенов для регуляции численности насекомых-вредителей леса / Е.В. Орловская // Информ. бюл. ВПС МОББ. - 2002. - №33. - С. 141-146.

76. Орловская, Е.В. Цели, проблемы и перспективы применения энтомопатогенных вирусов в борьбе с вредными насекомыми / Е.В. Орловская // Проблемы энтомологии в России. - СПб., 1998. - Т.2. - С.66 - 67.

77. Осинцева, Л.А. Защита капусты белокочанной от вредителей, болезней и сорняков в природоохранных зонах возделывания лесостепи Приобъя / Л.А. Осинцева // Рекомендации СО РАСХН. - Новосибирск, 1995. - 24с.

78. Осинцева, Л.А. Применение бактериального инсектицида и ингибитора синтеза хитина для контроля листогрызущих гусениц на капусте в лесостепи Приобья / Л.А. Осинцева // Агрохимия. - 1995. - № 1. - С. 84-89.

79. Осинцева, Л.А. Природоохранная система защиты капусты белокочанной от вредных организмов в лесостепи Приобья: Учебн. пособ. / Л.А. Осинцева. - Новосибирск, 1996. - 28с.

80. Осинцева, Л.А. Экологически безопасная система регулирования численности листогрызущих насекомых в агроенозе капустного поля: Автореф. дис. док. биол. наук /Л.А. Осинцева. - Новосибирск, 1998 - 43 с.

81. Осмоловский, Г.Е. Вредители капусты / Г.Е. Осмоловский. - Л.: Колос, 1972.-78с.

82. Осмоловский, Г.Е. Выявление сельскохозяйственных вредителей и сигнализация сроков борьбы с ними / Г.Е. Осмоловский, И.Д. Шапиро, И.А. Юревич. - М.: Россельхозиздат, 1964. - 203с.

83. Осмоловский, Г.Е. Сельскохозяйственная энтомология / Г.Е. Осмоловский. - М.: Колос, 1983. - 416с.

84. Осмоловский, Г.Е. Энтомология / Г.Е. Осмоловский, Н.В. Бондаренко -Л.: Колос, 1980.- 359с.

85. Павлюшин, В.А. Антропогенная трансформация агроэкосистем и ее фитосанитарные последствия / В.А. Павлюшин, С.Р. Фасулати, H.A. Вилкова, Г.И. Сухорученко, Л.И. Нефедова // ВИЗР. - СПб., 2008. - 120 с.

86. Павлюшин, В. А. Биопрепараты. Перечень разрешенных к применению и новых перспективных биопрепаратов для защиты растений / В.А. Павлюшин, Н.Е. Агансонова // ВИЗР. - СПб, 2001. - 32с.

87. Павлюшин, В.А. Ферментативная активность и вирулентность энтомопатогенного гриба В. bassiana / В.А. Павлюшин // Микология и фитопатология. - 1977. - №4. - С. 283-289.

88. Пивоваров, В.Ф. Капуста, ее виды и разновидности: (разнообразие и способы выращивания) / В. Ф. Пивоваров, В. И. Старцев. - М.: ВНИИССОК, 2006.- 191 с.

89. Попов, С.Я. Полевая диагностика вредных чешуекрылых на капусте / С.Я. Попов, Т.А. Попова // Защита и карантин растений. - 1993. - №6. - С. 38-39.

90. Поспелов, С.М. Совки - вредители сельскохозяйственных культур / С.М. Поспелов. - Л.: Колос, 1988. - 112с.

91. Поспелова, В.М. Насекомые - вредители сельскохозяйственных культур в лесной зоне Приобья / В.М. Поспелова. - Томск: Изд-во Том. ун-та, 1974.- 150с.

92. Правдина, Н.Ф. Синтез и распад гликогена в организме куколки дубового шелкопряда в период метаморфоза / Н.Ф. Правдина, А.Н. Смолин // Уч. записки / МГПИ. - 1958. - Т. 14, вып. 9. - С. 255-260.

93. Провоторова, Г.М. Чешуекрылые вредители капусты и биологические меры борьбы с ними в Красноярской лесостепи. Дис. канд. с-х. наук / Г.М. Проворотова. - Москва, 1983. - 174с.

94. Пястолова, О.А, К вопросу о специфике накопления и расходования энергетических резервов самками и самцами животных в природных популяциях и в условиях эксперимента / O.A. Пястолова, Л.Н. Добринский, H.A. Овчинников

// Экспериментальное изучение внутривидовой изменчивости позвоночных животных. Труды Института биологии. Свердловск, 1966. - с. 87-93.

95. Районы Новосибирской области / Ред. А.И. Шпаковский. -Новосибирск: Новосибирское книжное издательство, 1959. - 369с.

96. Савздарг, В.Э. Защита растений на приусадебных участках. М.: Моск. рабочий. 1987. - 157с.

97. Сельскохозяйственный энциклопедический словарь / Ред. В.К. Месяц и др. - М.: Сов. Энциклопедия, 1989. - 656с.

98. Селянинов, Г.Т. О сельскохозяйственной оценке климата / Г.Т. Селянинов // Тр. По сельскохозяйственной метеорологи. 1928. - Вып. 20. - С. 165177.

99. Сивова, A.B. Экология и трофические связи некоторых личинок-энтомофагов мух-журчалок (Díptera, Syrphidae) Дальнего Востока России / A.B. Сивова // Чтения памяти Алексея Ивановича Куренцова. Владивосток: Дальнаука, 2003.-Вып. 14.-С. 21-29.

100. Сидляревич, В.И., Болотникова В.В. Полезные насекомые сада и огорода. / В.И. Сидляревич, В.В. Болотникова. - Минск.: Ураджай, 1990. - 126с.

101. Сиротенко, О. Д. Методы оценки изменений климата для сельского хозяйства и землепользования. Методическое пособие / О.Д. Сиротенко. М.: Росгидромет, 2007. - 77с.

102. Слепцов, С.С. Экологически безопасная защита капусты от вредителей в Якутии / С.С. Слепцов, Н.Г. Власенко, А.И. Степанов. РАСХН. Сиб. Отд-ние. - Новосибирск, 2005. - 139с.

103. Смирнов, А.П. Видовой состав и динамика численности крестоцветных блошек на столовых корнеплодах в Ленинградской области / А.П. Смирнов // Вестник защиты растений. - 2009. - №2. - С. 38-43.

104. Соловых, З.Х. Капустные овощи и блюда из них / З.Х. Соловых. - М.: Агропромиздат, 1987. - 159с.

105. Сорокин, О.Д. Прикладная статистика на компьютере / О.Д. Сорокин. - 2-е изд. Краснообск: ТУП РПО СО РАСХН, 2009. - 222с.

106. Степановских, A.C. Экология: Учебник для вузов / A.C. Степановских. - М.: ЮНИТИ-ДАНА, 2001. - 703с.

107. Тарасевич, JI.M. Вирусы насекомых / JI.M. Тарасевич. - М.: Наука, 1975,- 198с.

108. Тиисина, H.H., Использование белокочанной капусты в пищевой промышленности / H.H. Типсина, Е.Е. Ташлыкова // Вестник КрасГАУ. — 2010. — №11.-С. 176-181.

109. Тряпицын, В.А. Паразиты и хищники вредителей сельскохозяйственных культур / В.А. Тряпицын, B.JI. Шапиро, В.А. Щепетильникова. - Д.: Колос. Ленинград, отд-ние. - 1982. - 256с.

110. Тюльпанова В.А. Хитиназная активност энтомопатогенных грибов рода Beauveria как фактор вирулентности / В.А. Тюльпанова, В.Г. Тюльпанов, Т.Л. Козлова, B.C. Малютина // Энтомопатогенные микроорганизмы и их роль в защите растений. - Иркутск, 1986. - С. 169-178.

111. Фитосанитарный контроль за вредителями и сорняками сельскохозяйственных культур в Сибири: Учебное пособие / H.H. Горбунов, В.П. Цветкова, В.Б. Пивень, В.А. Коробов, Н.Ф. Шадрина, Д.П. Бедин, Л.Н. Васильковская, И.Б. Кнор, С.Б. Виноградов. Ред. H.H. Горбунов, В.П. Цветкова. — Новосибирск: Новосиб. гос. аграр. ун-т, 2001. - 146с.

112. Харламов, Д.М. Селекция гетерозисных гибридов F, белокочанной капусты / Д.М. Харламов // Гавриш. - 2006. - № 3. - С.40-44.

113. Цвелёв, H.H. О русских названиях семейств покрытосеменных растений / H.H. Цвелёв // Новости систематики высших растений: сборник. — М.—СПб.: Товарищество научных изданий КМК, 2011. — Т.42. — С.24-29.

114. Чернышев, В.Б. Экология насекомых / В.Б. Чернышев. - М.: Изд-во МГУ, 1996.-304с.

115. Чернышова, H.H. Теоретические основы и практическая реализация исследований по селекции, семеноводству и агротехнологии капусты белокочанной в условиях Западной Сибири: Автореф. дис. док. с-х. наук / H.H. Чернышова. - Барнаул, 2011. - 34 с.

116. Чижов, В.Н. Действие авермектинсодержащих препаратов на членистоногих / В.Н.Чижов, Е.В. Скукина, В.А. Юркив // Защита и карантин растений. - 2000. - №8. - С. 14-15.

117. Шапиро, И.Д. Иммунитет растений к вредителям и болезням // И.Д. Шапиро, H.A. Вилкова, Е.И. Слепян. - СПб: Агропромиздат, 1986 - 192 с.

118. Шкурихин, А.О. Протандрия моно- и поливольтинных видов белянок и бархатниц (Lepidoptera, Pieridae, Satyridae) в условиях южно-уральской лесостепи / А.О. Шкурихин, Т.С. Ослина, Е.Ю. Захарова // Вестн. Том. гос. ун-та. Биология. - 2011. - №4. - С.80-91.

119. Штерншис М.В. Энтомопатогены - основа биопрепаратов для контроля численности фитофагов: монография / М.В. Штерншис. - Новосибирск: Новосиб. гос. аграрн. ун-т. ВНИИ биол. Защиты раст, 2010. - 160с.

120. Штерншис, М.В. Биопрепараты в защите растений/ М.В. Штерншис, Ф.С. Джалилов, И.В. Андреева, О.Г. Томилова. - Новосибирск: Новосиб. гос. аграр. ун-т, 2003. - 140с.

121. Штерншис, М.В. Биотехнология в защите растений: Учеб. Пособие / М.В. Штерншис, О.Г. Томилова, И.В. Андреева. Новосибирск: Новосиб. гос. аграрн. ун-т, 2006. - 200с.

122. Штерншис, М.В. Микробиологическая борьба с вредителями сельскохозяйственных культур Сибири и Дальнего Востока / М.В. Штерншис. — М.: Росагропромиздат, 1988. — 125 с.

123. Штерншис, М.В. Основные направления биологической защиты растений в Сибири / М.В. Штерншис, И.В. Андреева, О.Г. Томилова, Т.В. Шпатова // Вестник НГАУ. - 2004. - №1. - С.50-55.

124. Штерншис, М.В. Усиление действия дельта-эндотоксина / М.В. Штерншис, JI.K. Каменек // Интегрированная защита с.-х. культур от вредителей и болезней в Сибири. - Новосибирск, 1986. - С. 15-19.

125. Штерншис, М.В. Экологические основы биологической защиты растений. / М.В. Штеншис // Защита растений в Сибири: Сб. науч. Тр. -Новосибирск: Новосиб. гос. аграр. ун-т, 2003. - С.3-8.

126. Щеголев, В.Н. Сельскохозяйственная энтомология / В.Н. Щеголев. М.: Гос. изд-во сельскохоз. лит-ры, 1960. - 235с.

127. Эдельман, Н.М. Влияние биохимического состава корма на возрастные изменения физиологического состояния насекомых. В кн.: Вопросы экологии / Н.М. Эдельман. - М., 1962. -T.l. - С.211-213.

128. Экологически безопасные приемы защиты томата от болезней и вредителей. Руководство / K.JI. Алексеева, Н.С. Горшкова, Т.А. Терешонкова, Л.Г. Сметанина. Ред. Р. Д. Нурметов. - М., 2010. - 31с. (режим доступа) http://vniioh.ru/wp-content/uploads/2012/03/ruk 2010 zaschita tomata.pdf

129. Энтомофаги в защите растений: Учеб. Пособие / А.С. Бабенко, М.В. Штерншис, И.В. Андреева, О.Г. Томилова, В.А. Коробов; Ред. А.С. Бабенко, М.В. Штерншис // Мин-во сел. хоз-ва РФ. Новосиб. гос. аграр. ун-т; Томе. гос. ун-т. -Новосибирск, 2001.-206 с.

130. Яковлев Б.В. Общая энтомология / Б.В. Яковлев. - М.: «Высш. Школа», 1974.-269с.

131. Яхонтов В.В. Экология насекомых / В.В. Яхонтов. - М.: Высшая школа, 1969.-488с.

132. Agaisse, Н. How does Bacillus thuringiensis produce so much insecticidal crystal protein? / H. Agaisse, D. Lereclus // J. Bacteriology. - 1995. - V. 177. - P. 6027-6032.

133. Agelopoulos, N. G. Plant natural enemy association in the tritrophic system, Cotesia rubecula - Pieris rapae - Brassiceae (Cruciferae): sources of infochemicals / N. G. Agelopoulos, M. A. Keller // J. Chem. Ecol. - 1994. - V. 20. - P. 1725-1734.

134. Agerbirk, N. A common pathway for metabolism of 4-hydroxybenzylglucosinolate in Pieris and Anthocaris (Lepidoptera: Pieridae) / N. Agerbirk, C. Muller, С. E. Olsen, F. S. Chew // Biochem. Syst. Ecol. - 2006. - V.34. -P. 189- 198.

135. Agerbirk, N. Host plant dependent metabolism of 4-hydroxybenzylglucosinolate in Pier is rapae: substrate specificity and effects of genetic modification and plant nitrile hydratase / N. Agerbirk , С. E. Olsen, H. B. Topbjerg, J. C. Sorensen // Insect Biochem. Mol Biol. - 2007. - V.37. - P. 1119-1130.

136. Agrawal A.A. Induced plant defense: evolution of induction and adaptive phenotypic plasticity. / AA Agrawal // (eds S Tuzun, E Bent). Induced plant defenses against pathogens and herbivores: biochemistry, ecology and agriculture. // APS, Minosota.- 1999.-P. 251-268.

137. Agrawal, A.A. A role for isothiocyanates in plant resistance against the specialist herbivore Pieris rapae / A.A. Agrawal, N.S. Kurashige // J Chem Ecol. -2003.-V.29.-P. 1403-1415.

138. Al-Azawi, A.F. Studies on the effect of bacillus thuringiensis Berl. on the spiny bollworm, Earias insulana Boisd. and other lepidopterous insects / A.F. Al-Azawi // Entomophaga. - 1964. - V. 9. - P. 137-145.

139. Ali, M.I. Influence of interspecific and intraspecific host plant variation on the susceptibility of Heliothines to a Baculovirus / M.I. Ali, G.W. Felton, T. Meade, S.Y. Young // BioControl. - 1998. - V. 12. - P. 42-49.

140. Askew, R.R. Parasitoid communities: their size, structure, and development / R.R. Askew, M.R. Shaw // (eds J. Waage, D. Greathead). Insect parasitoids. Academic, London. - 1986. - P. 225-264.

141. Awmack, C.S. Host plant quality and fecundity in herbivorous insects / C.S. Awmack, S.R. Leather // Arm. Rev. Ent. - 2002. - V.47. - P. 817-844.

142. Bellostas, N. Glucosinolate profiling of seeds and sprouts of B. oleracea varieties used for food / N. Bellostas, P. Kachicki, J.C. Sorensen, H. Sorensen // Scientia Horticulturae. - 2007. - V. 114. - P. 234-242.

143. Benz, G. Environment. / G. Benz // (eds J.R. Fuxa, Y. Tanada). Epizootiology of insect diseases. John Wiley, New York. - 1987. - P. 177-214.

144. Bjorkman, M. Phytochemicals of Brassicaceae in plant protection and human health - Influences of climate, environment and agronomic practice / M. Bjorkman, I. Klingen, A.N.E. Birch, A.M. Bones, T.J.A. Bruce, T.J. Johansen, R.

Meadow, J. Molmann, R. Seljasen, L.E. Smart, D. Stewart // Phytochem. — 2011. — V.72.-P. 538 - 556.

145. Blande, J.D. A comparison of semiochemically mediated interactions involving specialist and generalist Brassica-feeding aphids and the braconid parasitoid Diaeretiella rapae / J.D. Blande, J.A. Pickett, GM. Poppy // J. Chem. Ecol. - 2007. -V.33. - P.767-779.

146. Bohinc T. Glucosinolates in plant protection strategies: a review / T. Bohinc, S.N. Ban, D. Ban, S. Tran // Arch. Biol. Sci., Belgrade. - 2012. - V.64. -P.821-828.

147. Bohinc, T. Glucosinolates as arsenal for defending Brassicas against cabbage flea beetle (Phyllotreta spp.) attack / T. Bohinc, I.J. Kosir, S. Trdan // Zemdirbyste-Agriculture. - 2013. - V. 100. - P. 199-204.

148. Bradburne, R.P. Glucosinolate genetics and the attraction of the aphid parasitoid Diaeretiella rapae to Brassica / R.P. Bradburne, R. Mithen // Proc. R. Soc. Lond. B-Biol. Sci. - 2000. - V.267. - P.89-95.

149. Bridges, M. Spatial organization of the glucosinolate-myrosinase system in brassica specialist aphids is similar to that of the host plant / M. Bridges, A.M.E. Jones, A.M. Bones, C. Hodgson, R. Cole, E. Bartlet, R. Wallsgrove, V.K. Karapapa, N. Watts, J.T. Rossiter // Proc. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. - 2002. - V.269. - P. 187-191.

150. Broekgaarden C. Responses of Brassica oleracea cultivars to infestation by the aphid Brevicoryne brassicae: an ecological and molecular approach / C. Broekgaarden, E.H. Poelman, G. Steenhuis, R.E. Voorrips, M. Dicke, B. Vosman // Plant, Cell and Environ. - 2008. - V.31. - P. 1592-1605.

151. Bugg R.L. Flower flies (Syrphidae) and other biological control agents for aphids in vegetable crops / R.L. Bugg, R. G. Colfer, W. E. Chaney, H. A. Smith, J. C. Cannon // Publication 8285. The Regents of the University of California Division of Agriculture and Natural Besources, Davis, CA. - 2008. - P.l - 25.

152. Bukovinszky T. Consequnces of constitutive and induced variation in plant nutritional quality for immune defence of a herbivore against parasitism / T.

Bukovinszky, E.H. Poelman, R. Glos, G. Prekatsakis, L.E.M. Vet, J.A. Harvey, M. Dicke // Oecologia. - 2009. - V.160. - P. 299-308.

153. Cartea, M.E. Seasonal variation in glucosinolate content in Brassica oleracea crops grown in northwestern Spain / M.E Cartea, P. Velasco, S. Obregon, G. Padilla, A. de Haro // Phytochem. - 2008. - V.69. - P.403-416.

154. Chandler, A.E.F. A preliminary key to the eggs of some of the commoner aphidophagous Syrphidae (Diptera) occurring in Britain / A. E. F. Chandler // Transactions of the Royal Entomological Society of London. - 1968. - V.120. - P. 199217.

155. Chaplin-Kramer, R. Chemically mediated tritrophic interactions: opposing effects of glucosinolates on a specialist herbivore and its predators / R. Chaplin-Kramer, D.J. Kliebenstein, A. Chiem, E. Morrill, N.J. Mills, C. Kremen // J. Appl. Ecol. - 2011. - V.48. - P.880-887.

156. Charnley, A.K. Fungal pathogens of insects: cuticle degrading enzymes and toxins / A.K. Charnley // Adv. Botan. Res. - 2003. - V.40. - P. 241-321.

157. Chen, Y. Effects of nitrogen fertilization on tritrophic interections / Y. Chen, D.M. Olson, J.R. Ruberson // Arthropod-Plant Interections. - 2010. - V.4. -P.81-94.

158. Chew, F.S. Biological effects of glucosinolates. / F.S. Chew // (ed) H.G. Cutler. Biologically active natural products. American Chemical Society, Washington, 1988. — P. 155—181.

159. Chirinos, D.T. Encapsulation of Metaphycus sp. (Hymenoptera: Encyrtidae) by its host, Capulinia sp. (Hemiptera: Eriococcidae) / D.T. Chirinos, F. Geraud-Pouey, L. Caltagirone // Entomotropica. - 2006. - V.21. - P.91-103.

160. Cole, R.A. Locating a resistance mechanism to the cabbage aphid in two wild Brassicas / R.A. Cole // Entomol. exp. appl. - 1994. - V.71. - P.23-31.

161. Colley, M. R. Relative attractiveness of potential beneficial insectary plants to aphidophagous hoverflies (Diptera: Syrphidae) / M.R. Colley, J.M. Luna // Environ. Entomol. - 2000. -V.29. - P. 1054-1059.

162. Costa, S.D. Influence of Solarium host plants on Colorado Potato Beetle (Coleoptera: Chrysomelidae) susceptibility to the entomopatogen Beauveria bassiana / S.D. Costa, R. Gaugler//Environ. Entomol. - 1989. - V. 18. -P.531-536.

163. David, W.A.L. Mustard oil glucosides as feeding stimulants for Pieris brassicae larvae in semi-synthetic diet / W.A.L. David, B.O.C. Gardiner // Entomol. Exp. Appl. - 1966. - V.9. - P.247-255.

164. Dawson, G. W. Plant compounds that synergize activity of the aphid alarm pheromone / G. W. Dawson, D. C. Griffiths, J.A. Pickett, L. J. Wadhams, C. M. Woodcock // British Crop Protection Conference—Pests and Diseases, Proc. - 1986. -P.829-834.

165. Dicke, M. Jasmonic acid and herbivory differentially induce carnivore-attracting plant volátiles in lima bean plants / M. Dicke, R. Gols, D. Ludeking, M. A. Posthumus // J. Chem. Ecol. - 1999. - V.25. - P. 1907-1922.

166. Dicke, M. The evolutionary context for herbivore-induced plant volátiles: beyond the 'cry for help'/ M. Dicke, I.T. Baldwin // Trends in Plant Science. - 2010. -V.15.-P. 167-175.

167. Driss, F. Molecular characterization of a novel chitinase from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki / F. Driss, M. Kallassy-Awad, N. Zouari, S. Jaoua // Journal of Applied Microbiology. - 2005. - V.99. - P.945-953.

168. Du Y.J. Relative importance of semiochemicals from first and second trophic levels in host foraging behavior of Aphidius ervi / Y.J. Du, Poppy G.M., W.Powell //Journal of Chemical Ecology. - 1996. - V.22. - P. 1591-1605.

169. Du, Y.J. Identification of semiochemicals released during aphid feeding that attract parasitoid Aphidius ervi / Y.J. Du, G.M. Poppy, W. Powell, J.A. Pickett, L.J. Wadhams, C.M. Woodcock // Journal of Chemical Ecology. - 1998. - V.24. - P. 13551368.

170. Duchovskiene, L. Seasonal abundance of Brevicoryne brassicae L. and Diaeretiella rapae (M'lntosh) under different cabbage growing systems / L. Duchovskiene, L. Raudonis // EKOLOGIJA. - 2008. - V.54. - P. 260-264.

171. Escudero, I. R. D. Molecular and Insecticidal Characterization of a Cry 11 Protein Toxic to Insects of the Families Noctuidae, Tortricidae, Plutellidae, and Chrysomelidae / I. R. D.Escudero, A. Estela, M. Porcar, C. Martinez, J.A. Oguiza, B. Escriche, J. Ferre, P. Cabballero // Appl. Environ. Microbiol. - 2006. - V.72. - P.4796-4804.

172. Fahey, J.W. The chemical diversity and distribution of glucosinolates and isothiocyanates among plants / J.W. Fahey, A.T. Zalcmann, P. Talalay // Phytochem. -2001.-V.56.-P.5-51.

173. Faria, V. de Mycoinsecticides and mycoacaricides: comprehensive list with world wide covrrage and international classification of formulation types / V. de Faria, S. Wraight // Biol. Control. - 2007. - V.43. - P. 237-256.

174. Federici, B.A. Baculovirus pathogenesis / B.A. Federici // The baculoviruses (ed. L.Miller). - Plenum Press. New York, 1997. - P.33-59.

175. Feeny, P. Effect of oak leaf tannins on larval growth of the winter moth Operophtera brumata / P. Feeny // J. Insect Physiol. - 1968. - V. 14. - P. 805-817.

176. Feeny, P. Plant apparency and chemical defense / P. Feeny // Recent advances in phytochemistry (eds J.W. Wallace, R.L. Mansell). Plenum Press, New York, 1976.-V. 10.-P. 1-40.

177. Felton, G.W. Inactivation of a baculovirus by quinones formed in insect-damaged plant tissue / G.W. Felton, S.S. Duffey // Journal of Chemical Ecology. -1990.-V.16.- P.1211-1236.

178. Felton, G.W. Interaction of nuclear polyhedrosis virus with catechols: Potential incompatibility for host-plant resistance against noctuid larvae / G.W. Felton, S.S. Duffey, P.V. Vail, H.K. Kava, J. Manning // J. Chem. Ecol. - 1987. - V.13. -P.947-957.

179. Fordyce, J.A. Another perspective on the slow-growth/high-mortality hypothesis: chilling effects on swallowtail larvae / J.A. Fordyce, A. Shapiro // Ecology. - 2003. - V.84. - P.263-268.

180. Fox, L.R. Parasitism rates and sex ratios of a parasitoid wasp: effects of herbivore and plant quality / L.R. Fox, D.K. Letourneau, J. Eisenbach, S.V. Nouhuys // Oecologia. - 1990. - V.83. - P.414-419.

181. Francis, F. Characterisation of aphid myrosinase and degradation studies of glucosinolates / F. Francis, G. Lognay, J.P. Wathelet, E. Haubruge // Arch. Insect Biochem. Physiol. - 2002. - V.50. - P. 173-182.

182. Francis, F. Effects of allelochemicals from first (Brassicaceae) and second (Myzus persicae and Brevicoryne brassicae) trophic levels on Adalia bipunctata / F. Francis, G. Lognay, J.P. Wathelet, E. Haubruge // J. Chem. Ecol. - 2001. - V.27. -P.243-256.

183. Gabrys, B. The role of sinigrin in host plant recognition by aphids during initial plant penetration / B. Gabrys, W.F. Tjallingii // Entomol. Exp. Appl. - 2002. -V.104. - P.89-93.

184. Godfray, H.C.J. Parasitoids: Behavioral and evolutionary ecology / H.C.J. Godfray // Princeton University Press, New Jersey. - 1994. - 488p.

185. Gols, R. Genetic variation in defense chemistry in wild cabbages affects herbivores and their endoparasitoids / R. Gols, R. Wagenaar, T. Bukovinszky, N.M. van Dam, M. Dicke, J.M. Bullock, J.A. Harvey // Ecology. - 2008. - V.89. - P.1616-1626.

186. Gols, R. Performance of generalist and specialist herbivores and their endoparasitoids differs on cultivated and wild Brassica populations / R. Gols, T. Bukovinszky, N. M. van Dam, M. Dicke, J. M. Bullock, J. A. Harvey // Journal of Chemical Ecology. - 2008. - V.34. - P. 132-143.

187. Gols, R. Temporal changes affect plant chemistry and tritrophic interactions / R. Gols, C.E. Raaijmakers, N.M. van Dam, M. Dicke, T. Bukovinszky, J.A. Harvey // Basic. Appl. Ecol. - 2007. - V.8. - P.421-433.

188. Goulson, D. Responses of Mamestra brassicae L. (Lepidoptera: Noctuidae) to crowding: interactions with disease resistance, colour phase and growth / D. Goulson, J.S. Cory // Oecologia. - 1995. - V.104. - P.416-423.

189. Gupta, P.D. Food plant relationships of the diamondback moth (Plutella maculipennis Curt.). - II. Sensory regulation of oviposition of the adult femaly / P.D. Gupta, A.J. Thorsteinson // Ent. Exp. Appl. - 1960. - V.3. - P.305-314.

190. Halkier, B.A. Biology and biochemistry of glucosinolates / B.A. Halkier, J. Gershenzon // Annu. Rev. Plant. Biol. - 2006. - V.57. - P.303-333.

191. Harvey, J.A. Factors affecting the evolution of development strategies in parasitoid wasps: the importance of functional constraints and incorporating complexity / Harvey J.A. //Entomologia Experimentalis et Applicata. - 2005. - V.l 17. - P. 1-13.

192. Harvey, J.A. Tri-trophic effects of inter- and intra-population variation in defence chemistry of wild cabbage {Brassica oleráceo) / J.A. Harvey, N.M. van Dam, C.E. Raaijmakers, J.M. Bullock, R. Gols // Oecologia. - 2011. - V.l66. - P.421-431.

193. Haukioja, E. Tree defenses against insects / E. Haukioja (Eds. E. Bent, S. Tuzun) // Multigenic and induced systemic resistance in plants. Boston: Kluver Academic Publishers. - 2005a. - P.279-296.

194. Hayashya, K. Red fluorescent protein in the digestive juice of the silkworm larvae fed on host-plant mulberry leaves / K. Hayashya // Entomol. Exp. Appl. - 1978. - V.24. - P.228-236.

195. Heil, M. Indirect defence via tritrophic interactions / M. Heil // New Phytologist. - 2008. - V. 178. - P.41 -61.

196. Hicks, K.L. Mustard oil glucosides: Feeding stimulants for adult cabbage flea beetle, Phyllotreta cruciferae (Coleóptera: Chrysomelidae) / K. L. Hicks // Ann. Entomol. Soc. Amer. - 1974. - V.67. - P.261-264.

197. Hilker, M. Early herbivore alert: insect eggs induce plant defense / M. Hilker, T. Meiners // J. Chem. Ecol. - 2006. - V.32. - P. 1379-1397.

198. Hilker, M. Induction of plant responses to oviposition and feeding by herbivorous arthropods: a comparison / M. Hilker, T.Meiners // Entomol. Exp. Appl. -2002. - V.104. -P.181-192.

199. Hoover, K. Inhibition of baculoviral disease by plant-mediated peroxidase activity and free radical generation / K. Hoover, J.L. Yee, C.M. Schultz,

B.D. Hammock, D.M. Rocke, S.S. Duffey // Journal of Chemical Ecology. - 1998. -V.24. - P. 1949-2002.

200. Hunter, M.D. Effects of plant quality on the population ecology of parasitoids / M.D. Hunter // Agricultural and Forest Entomology. - 2003. - V.5. - P.l-8.

201. Jankowska, B. Predatory Syrphids (Diptera, Syrphidae) occurring in the cabbage aphid (Brevicoryne brassicae L.) colonies on different cabbage vegetables / B. Jankowska // Journal of Plant Protection Research. - 2005. - V.45. - P.9-16.

202. Jansen, J.J. Crossfit analysis: a novel method to characterize the dynamics of induced plant responses / J.J. Jansen, N.M. van Dam, H.C. Hoefsloot, A. K. Smilde // BMC Bioinformatics. - 2009. -V. 10. - P.l-15.

203. Johansen, N.S. Mortality of eggs, larvae and pupae and larval dispersal of the cabbage moth, Mamestra brassicae, in white cabbage in South-Eastern Norway / N. S. Johansen // Entomol. Exp. Appl. - 1997. - V.83. - P.347-360.

204. Johnson, K.S. Comparative detoxification of plant (Magnolia virginiana) allelochemicals by generalist and specialist Saturniid silkmoths / K.S. Johnson // J Chem Ecol. - 1999. - V.25. - P.253-269.

205. Jones, A.M.E. Purification and characterisation of a non-plant myrosinase from the cabbage aphid Brevicoryne brassicae (L.) / A.M.E. Jones, M. Bridges, A.M. Bones, R. Cole, J.T. Rossiter // Insect Biochem. Mol. Biol. - 2001. - V.31. - P. 1 -5.

206. Kang S. Purification and characterization of a novel chitinase from the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae / S. Kang, S. Park, D. Lee // J.Invertebr. Pathol. - 1999. - V.73. -P.276-281.

207. Karban, R. Induced responses to herbivory / R. Karban, I.T. Baldwin University of Chicago Press, Chicago, 1997. - P.319.

208. Kazana, E. The cabbage aphid: a walking mustard oil bomb / E. Kazana, T.W. Pope, L. Tibbies, M. Bridges, J.A. Pickett, A.M. Bones, G. Powell, J.T. Rossiter // Proc. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. - 2007. - V.274. - P.2271-2277.

209. Keating, S.T. Leaf phenolic inhibition of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus / S.T. Keating, M.D. Hunter, J.C. Schultz // J. Chem. Ecol. - 1990. - V.16. -P.1445-1457.

210. Khan, M.M. Role of secondary metabolites in defense mechanisms of plants / M.M. Khan, F. Mohammed // Biology and Medicine. - 2011. - V.3. - P.232-249.

211. Kim, J.H. Identification of indole glucosinolate breakdown products with antifeedant effects on Myzus persicae (green peach aphid) / J.H. Kim, B.W. Lee, F.C. Schroeder, G. Jander // Plant J. - 2008. - V.54. - P.1015-1026.

212. Kim, J.H. Myzus persicae (green peach aphid) feeding on Arabidopsis induces the formation of a deterrent indole glucosinolate / J.H. Kim, G. Jander // Plant J. - 2007. - V.49. - P.1008-1019.

213. Kim, Y.S. Targets for indole-3-carbinol in cancer prevention / Kim Y.S., Milner J.A. // J. Nutritional Biochemistry. - 2005. - V.16. - P.65-73.

214. Kissen, R. Modifying the alkylglucosinolate profile in Arabidopsis thaliana Alters the tritrophic interaction with the herbivore Brevicoryne brassicae and parasitoid Diaeretiella rapae / R. Kissen, T. W. Pope, M. Grant, J.A. Pickett, J.T. Rossiter, G. Powell / J. Chem. Ecol. - 2009. - V.35. - P.958-969.

215. Kos, M. Herbivore-mediated effects of glucosinolates on different natural enemies of a specialist aphid / M. Kos, B. Houshyani, B.B. Achhami, R. Wietsma, Gols, R., Weldegergis, B.T., Kaboum, P., Bouwmeester, H.J., Vet, L.E.M., Dicke, M., and J.J.A. van Loon // J. Chem. Ecol. - 2012. - V.38. - P. 100-115.

216. Kos, M. Prey-mediated effects of glucosinolates on aphid predators / M. Kos, P. Kabouw, R. Noordam, K. Hendriks, L.E.M. Vet, J.J.A. Loon, M. Dicke // Ecol. Entomol. - 2011. - V.36. - P.377-388.

217. Kouassi, K.C. Variation in the susceptibility of the Forest Tent Caterpillar (Lepidopera: Lasiocampidae) to Bacillus thuringiensis variety kurstaki HD-1: Effect of the host plant / K.C. Kouassi, F. Lorenzetti, C. Guertin, J. Cabana, Y. Mauffette // J. Econ. Entomol. - 2001. - V.94. - P. 1135-1141.

218. Krischik, V.A. Three trophic level interactions: allelochemicals, Manduca sexta (L.), and Bacillus thuringiensis war.kurstaki Berliner / V.A. Krischik, P. Barbosa, C.F. Reichelderfer // Environmental Entomology. - 1988. - V.17. - P.476-482.

219. Kunimi Y. Relationship of larval phase and susceptibility of the armyworm, Pseudaletia seperam Walker (Lepidoptera: Noctuidae) to a nuclear polyhedrosis virus and a granulosis virus / Y. Kunimi, E. Yamada // Appl Entomol. Zool. - 1990. - V.25. - P.289-297.

220. Lankau, R. A. Specialist and generalist herbivores exert opposing selection on a chemical defense / R. A. Lankau // New Phytol. - 2007. - V. 175. - P. 176-184.

221. Lee, K.P. Flexible diet choice offsets protein costs of pathogen resistance in a caterpillar / Lee K.P., Cory J.S., Wilson K., Raubenheimer D., Simpson S.J. // Proc. R. Soc. B. - 2006. - V.273. - P.823-829.

222. Leur van H. Genetics, chemistry and ecology of a qualitative glucosinolate polymorphism in Barbarea vulgaris / H. van Leur II PhD thesis Wageningen University, 2008. - P.227.

223. Leur, van H. Barbarea vulgaris glucosinolate phenotypes differentially affect performance and preference of two different species of lepidopteran herbivores / H. van Leur, L. Vet, W. van der Putten, N. van Dam // J. Chem. Ecol. - 2008. - V.34. -P.121-131.

224. Li, Q. Feeding and growth of Plutella xylostella and Spodoptera eridania on Brassica juncea with varying glucosinolate concentrations and myrosinase activities / Q. Li, S.D. Eigenbrode, G.R. Stringham, M.R. Thiagarajah // J Chem Ecol. - 2000. -V.26. -P.2401-2419.

225. Loader C. Nitrogen content of food plants and vulnerability of Pieris rapae to natural enemies / C. Loader, H. Damman // Ecology. - 1991. - V.72. - P.1586-1590.

226. Loon, van J.J.A. Flavonoids from cabbage are feeding stimulants for diamondback moth larvae additional to glucosinolates: Chemoreception and behaviour / J.J.A. Loon, C.Z. Wang, J.K. Nielsen, R. Gols, Y.T. Qiu // Proceedings of the 11th International Symposium on Insect-Plant Relationships Series Entomologica. - 2002. -V. 57. - P.27-34.

227. Loon, van J.J.A. Leaf surface compound from Brassica oleracea (Cruciferae) induces oviposition by Pieris brassicae (Lepidoptera: Pieridae) / J.J.A. van Loon, A. Blaakmeer, F.C. Griepink, T.A. van Beek, L.M. Schoonhoven, A. de Groot, // Chemoecology. - 1992a. - V.3. - P.39-44.

228. Lord, J. From Metchnicoff to Monsanto and beyond / J. Lord // J. Invertebr. Pathol. - 2005. - V.89. - P. 19-29.

229. Louda, S. Glucosinolates: chemistry and ecology / Louda S., Mole S., eds G.A. Rosenthal, M.R. Berenbaum // Herbivores: their interactions with secondary plant metabolites. Academic Press, San Diego. - 1991. - P. 123-164.

230. Lucchetta, P. Foraging and associative learning of visual signals in a parasitic wasp / P. Lucchetta, C. Bernstein, M. Thery, C. Lazzari, E. Desouhan // Anim. Cogn. - 2008. - V.l 1. - P.525-533.

231. Ludlum, C.T. Plant defenses: chlorogenic acid and polyphenol oxidase enhance toxicity of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki to Heliothis zea / C.T. Ludlum, G.W. Felton, S.S. Duffey // Journal of Chemical Ecology. - 1991. - V.17. -P.217-237.

232. Martin, P.A.W. Worldwide abundance and distribution of Bacillus thuringiensis isolates / P.A.W. Martin, R.S. Travers // Appl. Environ. Microbiol. 1989. - Y.55. P.2437-2442.

233. Mayadunnage, S. Occurrence of aphidophagous Syrphids in Aphid colonies on cabbage {Brassica oleracea) and their parasitoids / S. Mayadunnage, H.N.P. Wijayagunasekara, K.S. Hemachandra, L. Nugaliyadde // Tropical Agricultural Research. - 2009. - V.21. - P.99-109.

234. Mayoori, K. Damage pattern of cabbage flea beetle, Phyllotreta cruciferae (Goeze) (Coleoptera: Chrysomelidae) and its associated host of crops and weeds / K. Mayoori, G. Makunthan // American - Eurasian Journal Agriculture and Environment Science. - 2009. - V.6. - P.303-307.

235. McCloskey, C. Influence of foliar glucosinolates in oilseed rape and mustard on feeding and growth of the bertha armyworm, Mamestra corfigurata Walker / C. McCloskey, M.B. Isman // J. Chem. Ecology. - 1993. - V. 19. - P.249-266.

236. Moraes, C.M. de Herbivore-infested plants selectively attract parasitoids / C.M. De Moraes, Lewis W.J., Pare P.W., Alborn H.T., Tumlinson J.H. // Nature. -1998.-V.393.-P. 570-573.

237. Moyes, C.L. Glucosinolates and differential herbivory in wild populations of Brassica oleracea / C.L. Moyes, H.A. Collin, G. Britton, A.F. Raybould // J. Chem. Ecol. - 2002. - V.26. - P.2625-2641.

238. Müller, C. Interactions between glucosinolate- and myrosinase- containig plants and the sawfly Athalia rosae / C. Müller // Phytochem.Rev. - 2009. - V.8. -P.121-134.

239. Müller, R. Differential effects of indole and aliphatic glucosinolates on Lepidopteran herbivores / R. Müller, M. de Vos, J.Y. Sun, I.E. Sonerby, B.A. Halkier, U. Wittstock, G. Jander // J. Chem. Ecol. - 2010. - V.36. - P.905-913.

240. Mumm, R. Formation of simple nitriles upon glucosinolate hydrolysis affects direct and indirect defense against the specialist herbivore, Pieris rapae / R. Mumm, M. Burow, K.G. Bukovinszkine, E. Kazantzidou, U. Wittstock, M. Dicke, J. Gershenzon // J. Chem. Ecol. - 2008. - V.34. - P. 1311-1321.

241. Nault, L. R. Effects of sinigrin on host selection by aphids / L. R. Nault, W. E. Sty er // Entomol. exp. appl. - 1972. - V.15. - P.423-431.

242. Nielsen, J.K. Host plant discrimination within Cruciferae: Feeding responses of four leaf beetles (Coleoptra: Chrysomelidae) to glucosinolates, curcurbitacins and cardenolides / Nielsen J.K. // Entomol. Exp. Appl. - 1978. - V.24. -P.41-54.

243. Nielsen, J.K. The effect of glucosinolates on responses of young larvae to non-host plants / J.K. Nielsen // Entomol. Exp. Appl. - 1989. - V.51. - P.249-259.

244. Ode, P.J. Plant chemistry and natural enemy fitness: effects on herbivore and natural enemy interactions / P.J.Ode / Ann. Rev. Ent. - 2006. - V.51. - P. 163-185.

245. Ploomi, A. Effect of cultivar on oviposition preference of the cabbage moth, Mamestra brassicae L. (Lepidoptera: Noctuidae) / A. Ploomi, K. Jögar, L. Metspalu, K. Hiiesaar, E. Svilponis, I. Kivimägi, N. Menshykova, A. Luik, I. Sibuland A. Kuusik // Agr. Res. - 2009. - V.7. - P. 451-456.

246. Plymale, R. Plant-mediated alteration of the peritrophic matrix and baculovirus infection in lepidopteran larvae / R. Plymale, M.J. Grove, D. Cox-Foster, N. Ostiguy, K. Hoover // Journal of Insect Physiology. - 2008. - V.54. - P.737-749.

247. Poecke van R.M.P. Induced parasitoid attraction by Arabidopsis thaliana: involvement of the octadecanoid and the salicylic acid pathway / R.M.P. van Poecke, M. Dicke // J. Exp. Bot. - 2002. - V.53. -P.1793-1799.

248. Poelman, E.H. Chemical diversity in Brassica oleracea affects biodiversity of insect herbivores / E.H. Poelman, N.M. Dam, J.J.A. Loon, L.E.M. Vet, M. Dicke // Ecology. - 2009. - V.90. - P. 1863-1877.

249. Polis, G.A. Food web complexity and community dynamics / G.A. Polis,

D.R. Strong // The American Naturalist. - 1996. - V.147. - P.813-846.

250. Ponti L. Compost enhances parasitization of Brevicoiyne brassicae (L.) by Diaeretiella rapae (M'lntosh) in broccoli under different levels of crop diversification and plant competition / L. Ponti, M. Altieri, A.P. Gutierrez // Poster at: Cultivating the Future Based on Science: 2nd Conference of the International Society of Organic Agriculture Research ISOFAR, Modena, Italy, June 18-20. - 2008. - P.236-239.

251. Poprawski, T.J. Host plant effects on activity of the mitosporic fungi Beauveria bassiana and Paecilomyces fumosoroseus against two populations of Bemisia white/lies (Homoptera: Aleyrodidae) / T.J. Poprawski, W.J. Jones // Mycopathologia. -2001. -V.151. - P. 11-20.

252. Pratt, C. Accumulation of glucosinolates by the cabbage aphid Brevicoryne brassicae as a defense against two coccinellid species / C.J. Pratt // Chem. Ecol. - 2008. - V.34. - P.323-329.

253. Radcliffe, E.B. The relative resistance to insect attack of three cabbage varieties at different stages of plant maturity / E.B. Radcliffe, R.K. Chapman // Annals of the Entomological Society of America - 1965. - V.58. - P.897-902.

254. Radcliffe, E.B. Varietal resistance to insect attack in various cruciferous crops / E.B. Radcliffe, R.K. Chapman // J. of Econ. Ent. - 1966. - V.59. - P.120-125.

255. Radcliffe, E.B. Plant resistance to insect attack in varions cruciferous crop /

E.B. Radcliffe, R.K.Chapman // J. of Econ. Ent. - 1966. - V.59 - P.120-125.

256. Radovich T.J.K., Planting date affects total glucosinolate concentrations in six commercial cabbage cultivars / T.J.K. Radovich, M.D. Kleinheiz, J.G. Streeter, R.A. Miller, J.C. Scheerens // HortScience. - 2005. - V.40. - P. 106-110.

257. Ratzka, A. Disarming the mustard oil bomb / Ratzka A., Vogel H., Kliebenstein D.J., Mitchellold S.T., Kroymann J. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. - 2002. -V.99.-P.11223-11228.

258. Redovnikovic, I.R. Glucosinolates and their potential role in plant / I.R. Redovnikovic, T. Glivetic, K. Delonga, J. Vorkapic-Furac // Periodicum biologorum. -2008. - V.l 10 - P.297-309.

259. Reed, D.W. Identification of chemical oviposition stimulants for the diamondback moth, Plutella xylostella present in three species of Brassicaceae / D. W. Reed, K.A. Pivnick, E.W. Underhill // Entomol. Exp. Appl. - 1989. - V.53. - P.277-286.

260. Reifenrath, K. Leaf surface wax layers of Brassicaceae lack feeding stimulants for Phaedon cochleariae / K. Reifenrath, M. Riederer, C. Müller // Entomol. Exp. Appl. - 2005. - V.l 15. - P.41-50.

261. Renwick, J.A.A. Leaf surface chemicals stimulating oviposition by Vieris rapae (Lepidoptera: Pieridae) on cabbage / J.A.A. Renwick, C.D. Radke, K. Sachdev-Gupta, E. Städler // Chemoecology. - 1992. - V.3. - P.33-38.

262. Rios, R.S. Effects of host plant maternal feeding experience on population vital rales of a spcialized leaf beetle / R.S. Rios, M. Cardenas, K. Conzalez, M.F. Cisternas, P.C. Guerra, A.P. Loayza, E. Gianoli // Arthropod-Plant Interections. - 2013. -V.l. -P.109-118.

263. Rosenthal G.A. Herbivores: their interactions with secondary plant metabolites / Eds G.A. Rosenthal, M.R. Berenbaum // Academic Press, San Diego, 1992.-V.l.-P.308.

264. Scheit, J.V. Improved methods of testing and release of Aphidoletes aphidimyza (Diptera: Cecidomyiidae) for aphid control in glasshouses / J.V. Scheit, S. Mulder // Eur. J. Entomol. - 2000. - V.97. - P.511-515.

265. Schoonhoven, L.M. Insect-plant biology / L.M. Schoonhoven, J.J.A. Loon, M. Dicke // Oxford, UK: Oxford University Press. - 2005. - P.421.

266. Schramm, K. Metabolism of glucosinolate-derived isothiocyanates to glutathione conjugates in generalist lepidopteran herbivores / K. Schramm, D.G. Vassao, M. Reichelt, J. Gershenzon, U. Wittstock // Insect Biochem. and Mol. Biol. -2012. - V.42. - P.174-182.

267. Shah, P. Eentomopathogenic fungi as biological control agents / P.Shah, J. Pell // Appl. Microbiol.Biotechnol. - 2003. - V.61. - P. 413 - 423.

268. Shikano, I. Indirect plant-mediated effects on insect immunity and disease resistance in a tritrophic system / I. Shikano, J.D. Ericsson, J.S. Cory, J.H. Myers//Basic and Applied Ecology. - 2010.-V.ll. - P. 15-22.

269. Shternshis, M. V. Ecologically safe insect pest control, the past, the present and the future / M. V. Shternshis, R. Harley, A. Caesar // Emerging concepts of plant health management. - 2004. Research Signpost. - P. 187-212.

270. Silva, R.J. Host quality of different aphid species for rearing Diaeretiella rapae (Mcintosh) (Hymenoptera: Braconidae) / R.J. Silva, F.J. Cividanes, E.C. Pedroso, S.R.D. Sala // Neotrop. entomol. - 2011. - V.40. - P.477-482.

271. Smallegange, R.C. Flower vs. leaf feeding by Pieris brassicae: glucosinolate-rich flower tissues are preferred an sustain higher growth rate / R.C. Smallegange, J.J.A. van Loon, S.E. Blatt, J.A. Harvey, N. Agerbirk, M. Dicke // J. Chem. Ecol. - 2007. - V.33. - P. 1831 -1844.

272. Soler, R. Impact of foliar herbivory on the development of a root-feeding insect and its parasitoid / R. Soler, T.M. Bezemer, A.M. Cortesero, W.H. van den Putten, L.E.M. Vet, J.A. Harvey // Oecologia. - 2007. - V.152. - P.257-264.

273. Tanada, Y. Epizootiology of insect diseases / Y. Tanada, Ed P. DeBach // Biological control of insect pests and weeds. Chapman and Hall, London. - 1964. -P.548-578.

274. Textor, S. Herbivore induction of the glucosinolate-myrosinase defense system: major trends, biochemical bases and ecological significance / S. Textor, J. Gershenzon // Phytochem. Rev. - 2009. - V.8. - P. 149-170.

275. Thorsteinson, A.J. The chemotactic responses that determine host specificity in an oligophagous insect (Plutella maculipennis (Curt.) Lepidoptera / A.J. Thorsteinson // Can. J. Zool. - 1953. - V.31. - P.52-72.

276. Traynier, R.M.M. Potent natural egg-laying stimulant for cabbage butterfly Pieris rapae / R.M.M. Traynier, R.J.W. Truscott // J. Chem. Ecol. - 1991. - V. 17. -P.1371-1380.

277. Trdan, S. The role of Chinese cabbage as a trap crop for flea beetles (Coleoptera: Chrysomelidae) in production of white cabbage / S. Trdan, N. Valid, D. Znidarcic, M. Vidrih, K. Bergant, E. Zlatic, L. Milevoj // Sci. Hortic. - 2005. - V.106. -P. 12-24.

278. Turlings, T.C.J. The induction of volatile emissions in maize by three herbivore species with different feeding habits: Possible consequences for their natural enemies / T.C.J. Turlings, M. Bernasconi, R. Bertossa, F. Bigler, G. Caloz, S. Dorn // Biological control. - 1998. - V.2. - P.122-129.

279. Ulmer, B. Feeding preferences, growth, and development of Mamestra configurata (Lepidoptera: Noctuidae) on Brassicaceae / B. Ulmer, C. Gillot, M. Erlandson / Can. Entomol. -2001. - V.133. -P.509-519.

280. Velasco, P. Factors affecting the glucosinolate content of kale {Brassica oleracea acephala group) / P. Velasco, M.E. Cartea, C. Gonzalez, M. Vilar, A. Ordas // J. Agric. Food Chem. - 2007. - V.55. - P.955-962.

281. Vet, L.E.M. Ecology of infochemical use by natural enemies in a tritrophic context / L.E.M. Vet, M. Dicke // Annual Review of Entomology. - 1992. - V.37. -P.141-172.

282. Villena de F.A. Changes in gluconasturtiin concentrations in Chinese cabbage with increasing cabbage looper density / F.A. de Villena, V.A. Fritz, J.D. Cohen, V.D. Hutchison // Hort.Sci. - 2007. - V.42. - P. 1337-1340.

283. Vos, M. Plant-mediated indirect effects and the persistence of parasitoid-herbivore communities / M. Vos, S.M. Berrocal, F. Karamaouna, L. Hemerik, L.E.M. Vet // Ecology Letters. - 2001. - V.4. - P.38-45.

284. Whithe, A. J. Habitat Manipulation to enhance biological control of Brassica pests by hover flies (Diptera: Syrphidae). / A.J. While, S.D. Wratten, N.A. Berry, U. Weigmann // Journal of Economic Entomology. - 1995. - V.88. - P.l Hill 76.

285. Winde, I. Insect herbivore counteradaptations to the plant glucosinolate -myrosinase system / I. Winde, U. Wittstock // Phytochemistry. - 2011. - V.72. -P.1566-1575.

286. Wittstock, U. Successful herbivore attack due to metabolic diversion of a plant chemical defense / U. Wittstock, N. Agerbirk, E.J. Stauber, C.E. Olsen, M. Hippler, T. Mitchell-Olds, J. Gershenzon, H. Vogel // Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. -2004. - V. 101. - P.4859-4864.

287. Zangerl, A.R. The probability of attack and patterns of constitutive and induced defense: a test of optimal defense theory / A.R. Zangerl, C.E. Rutledge // Am. Nat. - 1996.-V. 147,-P.599-608.

288. Zimmermann, G. The entomopathogenic fungi Isaria farinose (formerly Paecilomyces farinosus): biology, ecology and use biological control / G. Zimmermann // Biocontrol Sei. Technol. - 2008. - V.18. - P.865-901.