Сохранение биологического разнообразия редких, исчезающих видов, уникальных форм и сортов растений методами биотехнологии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.05, доктор биологических наук Вечернина, Нина Александровна

• Вечернина, Нина Александровна
• доктор биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации доктор биологических наук Вечернина, Нина Александровна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.

ГЛАВА 1 .ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 .Сохранение биологического разнообразия растений методами биотехнологии.

1.2. Факторы, влияющие на процессы регенерации в культуре изолированных клеток, тканей и органов растений.

1.3. Модели регенерации растений в культуре in vitro.

1.4. Основные этапы микроразмножения растений.

ГЛАВА 2.МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

ГЛАВА 3. КУЛЬТУРА ИЗОЛИРОВАННЫХ ТКАНЕЙ РЕДКИХ И ИСЧЕЗАЮЩИХ ВИДОВ РАСТЕНИЙ.

3.1. Adonis vernalis.

3.2. Brachanthemum baranovii.

3.3. Dendranthema sinuatum.

3.4. Представители рода Fritillaria.

3.5. Rhododendron ledebourii.

ГЛАВА 4. КУЛЬТУРА ИЗОЛИРОВАННЫХ ТКАНЕЙ УНИКАЛЬНЫХ ФОРМ И СОРТОВ РАСТЕНИЙ.

4.1 .Actinidia chinensis.

4.2. Allium сера.

4.3. Begonia rex.

4.4. Camellia sinensis.

4.5. Представители рода Cerasus.

4.6. Представитель рода Clematis.

4.7. Daucus sativus.

4.8. Представители рода Fragaria.

4.9. Представители рода Grossularia.

4.10. Представитель рода Hemerocallis.

4.11. Представители рода Iris.

4.12. Представители рода Malus.

4.13. Представители рода Primula.

4.14. Stevia rebaudiana.

ГЛАВА 5. АДАПТАЦИЯ РАСТЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ К УСЛОВИЯМ

ВЫРАЩИВАНИЯ EX VITRO.

ГЛАВА 6. ВКЛЮЧЕНИЕ БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИХ МЕТОДОВ В СИСТЕМУ СОХРАНЕНИЯ И ВОСПРОИЗВОДСТВА РАСТИТЕЛЬНЫХ РЕСУРСОВ.

6.1. Коллекции растений in vitro.

6.2. Изучение регенерантов.

6.3. Экономические аспекты применения методов биотехнологии.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Сохранение биологического разнообразия редких, исчезающих видов, уникальных форм и сортов растений методами биотехнологии»

Актуальность проблемы. Сохранение биологического разнообразия -одна из важнейших задач в деле охраны природы, которой уделяют большое внимание во всем мире. Связано это с ограниченностью необходимых для существования человека биологических ресурсов и угрозой их истощения. С начала XX века исчезновение сортов, видов и даже родов происходит по экспоненте (Драгавцев, 1995; Коропачинский, 1997). Особую актуальность имеют исследования по разработке методов сохранения растений, ареалы и численность которых резко снижается, а также для уникальных форм, расширяющих и улучшающих сортимент возделываемых растений. Стратегия сохранения биологического разнообразия заключается в сохранении его in situ и ex situ. Наряду с традиционными способами сохранения растений ex situ все большее значение приобретает использование для этих целей культуры изолированных тканей и органов (Камелин, 1997).

Привлечение методов биотехнологии, базирующихся на культивировании изолированных органов, тканей и клеток растений для решения проблем сохранения биологического разнообразия имеет преимущества пер^д традиционно используемыми подходами. Методы биотехнологии позволяют получать оздоровленный материал от пораженных вирусными и грибными болезнями растений, а также материал, свободный от нематод; осуществлять быстрое размножение ценного экземпляра растения; получать в больших количествах вегетативное потомство трудно размножаемых в обычных условиях видов и форм растений; работать в лабораторных условиях круглый год и планировать выпуск растений к определенному сроку; размножать растения без вывода их из ювенильной фазы; длительно хранить пробирочные растения и создавать «банк» ценных форм (Высоцкий, 1986).

Однако широкому использованию биотехнологий для многих видов и даже сортов растений препятствует то, что морфогенетический потенциал и регенерационная способность культивируемых тканей часто строго зависят от генотипа и условий культивирования. Отсутствие надежных способов адаптации регенерантов к условиям ex vitro приводит к значительной потере регенерантов и, в некоторых случаях, существенно снижает возможности использования биотехнологических методов, как для сохранения биологического разнообразия, так и для производства высококачественного посадочного материала ценных растений.

Следует отметить, что исследования в области культуры ткани для решения проблем сохранения генофонда растений имеют свои особенности. Довольно часто они связаны с отсутствием возможности свободного выбора объекта, а также дефицитом исходного материала нужного растения. Это, безусловно, оказывает влияние на постановку задач исследований, и, в некоторых случаях, позволяет решить их только эмпирическим путем.

Цель и задачи исследований. Основная цель исследований заключалась в разработке и совершенствовании методов культуры изолированных тканей растений для использования в системе сохранения и воспроизводства растительных ресурсов.

В соответствии с поставленной целью в задачи исследования входило:

- изучить влияние регуляторов роста на регенерационные процессы на стадиях собственно размножения и укоренения;

- выявить роль типа экспланта и его видовой принадлежности в процессах регенерации растений в культуре in vitro;

- определить модель регенерации, обеспечивающую наиболее высокую эффективность микроразмножения для конкретных видов растений;

- установить влияние продолжительности культивирования изолированных тканей на их регенерационную способность;

- усовершенствовать технику и приемы адаптации растений-регенерантов к условиям выращивания ex vitro;

- определить место методов биотехнологии в стратегии мероприятий сохранения биологического разнообразия растений ex situ.

Научная новизна. Впервые изучен морфогенетический потенциал и предложены способы сохранения генофонда для редких и исчезающих видов флоры Алтая. В результате детального изучения процессов регенерации впервые разработаны эффективные способы микроразмножения для ряда уникальных новых форм и сортов растений, полученных или интродуцированных во ВНПОЧСК и ЧП (Грузия), в НИИ садоводства Сибири им. М.А.Лисавенко, в Южно-сибирском ботаническом саду Алтайского государственного университета. Показана целесообразность подбора основных питательных сред и регуляторов роста на каждом этапе микроразмножения. Усовершенствованы конкретные приемы адаптации регенерантов к условиям ех vitro с использованием гидропонных установок и впервые продемонстрирована их высокая эффективность для многих видов растений.

Эффективность использования методов биотехнологии в стратегии мероприятий сохранения биологического разнообразия связана с сокращением сроков получения необходимого количества растений за счет высокого коэффициента размножения в культуре in vitro, с сокращением используемых площадей под коллекциями, а также с возможностью более ранней комплексной оценки новых форм по хозяйственно-полезным признакам за счет ускорения роста и развития регенерантов в условиях открытого грунта.

На защиту выносятся следующие положения:

1. Сохранение биоразнообразия редких, исчезающих видов представителей родов Adonis, Brachanthemum, Dendranthema, Fritillaria, Rhododendron, а также уникальных форм и сортов растений представителей родов Actinidia, Allium, Begonia, Camellia, Cerasus, Clematis, Daucus, Iris, Fragaria, Grossularia, Hemerocallis, Malus, Primula, Stevia, характеризующихся низкой способностью к воспроизводству в естественных условиях произрастания и/или при традиционных способах их размножения, достигается путем использования биотехнологических методов.

2. Повышение эффективности регенерационных процессов в культуре изолированных клеток, тканей и органов достигается за счет подбора минеральный состав) и модификации (регуляторы роста) питательной среды для культивирования в зависимости от вида, формы или сорта растения. 3. Эффективность методов биотехнологии в системе сохранения биоразнообразия и воспроизводства растительных ресурсов обеспечивается двухэтапным приемом адаптации регенерантов к условиям выращивания ex vitro на гидропонных установках «Минивит».

Практическая значимость. Для конкретных видов растений разработаны и усовершенствованы следующие методы регенерации in vitro:

- для Iris hybrida - метод эмбриокультуры;

- для сортов и форм Camellia sinensis, гибридов рода Malus - методы регенерации растений в культуре изолированных тканей семядолей;

- для Actinidia chinensis, гибрида №1 Primula х polyantha, Brachanthemum baranovii, Dendranthema sinuatum, Daucus sativus - методы регенерации в культуре каллуса от листьев, Allium сера - в культуре каллуса от завязей, а для трех видов рода Iris (I ensata, I. sibirica, I. hybrida) - в культуре каллуса от лепестков венчика цветка;

- для Begonia rex - методы прямой регенерации в культуре изолированных эксплантов листьев и эксплантов чешуй луковиц для двух видов рода Fritillaria (F.meleagris и F.verticillata);

- для Actinidia chinensis, двух форм рода Grossularia, гибридов рода Cerasus, гибридов и сортов рода Fragaria, двух видов рода Primula (P. polyantha и Р. prugonicenses), Rhododendron ledebourii, представителя рода Clematis (сорт Мефистофель), представителя рода Hemerocallis (сорт Алан), Brachanthemum baranovii, Dendranthema sinuatum, Adonis vernalis и Stevia rebaudiana - методы регенерации путем активации пролиферации существующих меристем.

На основе указанных моделей регенерации разработаны эффективные технологии микроразмножения для названных видов, форм и сортов растений, усовершенствована технология адаптации растений-регенерантов к условиям выращивания ex vitro. Результаты проведенных исследований являются основой для создания коллекций in vitro, сохранения биоразнообразия растений и их ускоренного воспроизводства.

Разработан способ регенерации in vitro, обеспечивающий ускоренное получение большого числа растений Camellia sinensis (A.c. № 1621825 от 23.01. 1991). С применением технологии микроразмножения получен сорт Р. polyantha - Весеня (A.c. № 35188 от 6.02.2001).

Результаты законченных исследований положены в основу методических указаний «Методы получения и ранняя диагностика гибридного потомства / Allium сера L.» (2001) и «Регенерация, размножение in vitro и интродукция эндемиков флоры Алтая: Brachanthemum baranovii (Кгas ch. et Poljak) Krasch. и Dendranthema sinuatum (Ledeb.) Tzvel.» (2004), изложены в монографии . «Методы биотехнологии в селекции, размножении и сохранении генофонда растений» (2004).

В отделе биотехнологии растений ЮСБС АлтГУ создана живая коллекция различных видов растений, включающая представителей редких и исчезающих видов, а также уникальных форм и ценных сортов хозяйственно-важных растений.

Культивируемые in vitro ткани некоторых видов растений активно используются в учебном процессе в качестве модельных систем для изучения физиологических процессов, протекающих в растительных клетках.

Апробация работы. Результаты исследований докладывались и обсуждались на ежегодных заседаниях ученого совета ВНПОЧСК и ЧП (Грузия) (1983 - 1994), Южно-сибирского ботанического сада АлтГУ (1995 - 2004 гг.) и v НИИ им. М.А.^1исавенко (1997 - 2004 гг.), на Всесоюзной конференции молодых ученых и специалистов (Махарадзе-Анасеули, 1985), международных научных и научно-практических конференциях: «Биология культивируемых клеток и биотехнология» (Новосибирск, 1988), "Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда" (Москва, 1997), «Современные проблемы научных исследований и развития садоводства, субтропического растениеводства и цветоводства» (Сочи, 1998), «Проблемы стабилизации и развития сельскохозяйственного производства Сибири, Монголии и Казахстана в XXI веке» (Новосибирск, 1999), «Проблемы охраны растительного мира Сибири» (Новосибирск, 2001), «Биотехнология на рубеже двух тысячелетий» (Саранск, 2001), «Биология клеток растений in vitro и биотехнология» (Саратов, 2003), а также на региональной научно-практической конференции «Научно-экономические проблемы регионального садоводства» (Барнаул, 2002), на XI съезде Русского ботанического общества «Ботанические исследования в азиатской России» (Новосибирск - Барнаул, 2003) и на научной сессии СО РАСХН, посвященной 35-летию образования СО РАСХН «Сельскохозяйственная наука - агропромышленному комплексу Сибири» (Новосибирск, 2004).

Публикации результатов исследований. Основные положения диссертационной работы опубликованы в 37 печатных работах, в т.ч. в 2 методических рекомендациях, 2 авторских свидетельствах и монографии.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 325 стр., состоит из введения, 6 глав, выводов, содержит 55 рисунков и 69 таблиц. Список литературы включает 583 наименования, в том числе 306 на иностранных языках.

Заключение диссертации по теме «Ботаника», Вечернина, Нина Александровна

выводы

1. Экспериментально показана возможность управления процессами регенерации с помощью регуляторов роста. Лучшими индукторами регенерационных процессов на стадии собственно размножения является использование в составе основной питательной среды определенных концентраций:

- одного из цитокининов - для Adonis vernalis 5 мкМ БАП в МС, Brachanthemum baranovii и Dendranthema sinuatum 0.5—1 мкМ БАП в В5, некоторых эксплантов листьев Bégonia гех 2 мкМ БАП в МС, гибридов Cerasus (1-86-260 и ВЧ №45) 2 мкМ БАП и 4 мкМ БАП в МС соответственно, гибридов и ремонтантных сортов Fragaria 2-5 мкМ БАП и 10-20 мкМ БАП в МС соответственно, для двух бесшипых форм Grossularia 5 мкМ БАП в МС, для Rhododendron ledebourii 5 мкМ ИПА в А;

- цитокинина в сочетании с ауксинами - для Actinidia chinensis 2-5 мкМ БАП и 0.2-0.4 мкМ НУК в В5, Allium сера (сорт Ермак) 8 мкМ БАП и 3 мкМ 2,4-Д, некоторых эксплантов листьев Bégonia гех 2 мкМ БАП и 0.5 мкМ НУК в МС, Camellia sinensis 1-2 мкМ БАП и 5-10 мкМ НУК в В5, Daucus sativus (сорт Parmex) 2 мкМ Кн и 0.4 мкМ АТХП в МС, для Fritillaria (F. meleagris, F. verticillata) 5 мкМ БАП и 5 мкМ НУК в В5, для Iris: I. ensata - 10 мкМ БАП и 1 мкМ НУК, I. hybrida и I. sibirica - 5 мкМ БАП и 10 мкМ 2,4-Д в МС;

- цитокинина в сочетании с ауксинами и ГК - для Hemerocallis (сорт Алан) 10 мкМ БАП, 5 мкМ НУК и 5 мкМ ГК в МС, для гибридов Malus (Жебровское х Заветное, Подарок садоводам х Заветное, Заветное х Подарок садоводам) 5 мкМ БАП, 0.5 мкМ НУК и 5 мкМ ГК в МС, для Primula (P.polyantha и Р. prugonicenses) 10 мкМ БАП, 0.5 мкМ НУК и 5 мкМ ГК в В5.

2. Управлять процессами ризогенеза и повышать эффективность укоренения большинства изученных видов, форм и сортов растений возможно путем использования в составе основной питательной среды ауксинов:

- ИМК: для Actinidia chinensis — 4 мкМ в В5, Brachanthemum. baranovii - 1— 5 мкМ в В5, Dendranthema sinuatum — 2-5 мкМ в В5, двух гибридов Cerasus (1260

86-260 и ВЧ №45) - 5 и 10 мкМ в Уг В5 соответственно, представителей Grossularia - 5 мкМ в МС, гибридов и ремонтантных сортов Fragaria - 0.5-1 мкМ и 2 мкМ в Уг МС соответственно, Clematis (сорт Мефистофель) и Rhododendron ledebourii — 10 мкМ в Уг МС и А соответственно, Hemerocallis (сорт Алан) - 3 мкМ в В5, гибридов Malus (Жебровское х Заветное, Подарок садоводам х Заветное, Заветное х Подарок садоводам) - 2 мкМ в МС;

- НУК: для Fritillaria (F. meleagris, F. verticillata) и Stevia rebaudiana - 5 мкМ в B5, Iris (I. hybrida, I. sibirica, I. ensata) — 1 мкМ в B5, Bégonia rex и Allium сера (сорт Ермак) - 0.5 мкМ в МС и В5 соответственно;

- одного из трех ауксинов (ИМК, НУК или ИПК) для Primula (P.polyantha и P. prugonicenses) - 1 мкМ в Уг МС.

3. На регенерационную способность в культуре изолированных тканей растений и коэффициент размножения существенное влияние оказывает тип экспланта и его видовая принадлежность. У всех изученных видов растений высокой регенерационной способностью обладали изолированные апексы. Культуры изолированных листьев Actinidia chinensis, Bégonia rex, Brachanthemum baranovii, Daucus sativus (сорт Parmex), Primula polyantha характеризовались высокой способностью к регенерации, тогда как эти же типы эксплантов Dendranthema sinuatum, Camellia sinensis, гибридов Malus -очень низкой. Высокая регенерационная способность характерна для видоизмененных листьев: изолированных тканей семядолей всех изучаемых представителей Camellia sinensis и Malus, фрагментов чешуй луковиц представителей Fritillaria, фрагментов лепестков цветков представителей Iris.

4. Для конкретных видов растений изучен морфогенетический потенциал и определены модели регенерации, обеспечивающие наиболее высокую эффективность микроразмножения:

- прямая регенерация почек или соматических эмбриоидов из клеток экспланта: у сортов Camellia sinensis (Грузинский №2, №3, Колхида) и гибридов Malus ((Жебровское х Заветное, Подарок садоводам х Заветное, Заветное х Подарок садоводам) - ткани семядолей, Begonia rex - ткани листа, Fritillaria (F. meleagris и F. verticillata) - ткани чешуй луковиц;

- регенерация путем активации развития существующих меристем (культура пазушных почек): у Actinidia chinensis, Brachanthemum baranovii, гибридов Cerasus (1-86-260 и ВЧ №45), Clematis (сорт Мефистофель), Dendranthema sinuatum, гибридов и сортов Fragaria, бесшипых форм Grossularia, Hemerocallis (сорт Алан), Primula (P.polyantha и P. prugonicenses), Rhododendron ledebourii, Stevia rebaudiana;

- непрямая регенерация почек через каллусогенез: у Actinidia chinensis, Brachanthemum baranovii, Daucus sativus (сорт Parmex) (каллус от фрагментов листа), Allium сера (сорт Ермак) (каллус от завязей), Iris (/. ensata, I. sibirica, I. hybrida) (каллус от лепестков венчика цветка).

5. Коллекции. растений in vitro можно длительно хранить в состоянии активного или замедленного роста. Для Camellia sinensis и Daucus sativus (сорт Parmex) можно рекультивировать каллусные культуры, а для остальных видов, форм и сортов растений - пазушные почки. Продолжительность беспересадочной культуры для Brachanthemum baranovii и Dendranthema sinuatum составляет 4 месяца, а для Fritillaria (F. meleagris и F. 4verticillata), Hemerocallis (сорт Алан), Iris sibirica, Prímula (Ppolyantha и P. prugonicenses) — 18 месяцев, что позволяет хранить эти растения in vitro в состоянии замедленного роста.

6. С большой надежностью в отношении генетической стабильности и при высоком коэффициенте размножения можно получать регенеранты в культуре пазушных почек путем активации развития меристем. Однако при продолжительном культивировании у некоторых растений существует риск появления с небольшой частотой уклоняющихся форм с новыми признаками: Fragaria - альбинизм (сорт Московский деликатес) и пестролистность (сорт Сельва); Grossularia - более продолжительный ювенильный период, а также изменение формы ягод; Malus (Подарок садоводам х Заветное) -низкорослость.

7. Усовершенствован и разработан двустадийный прием адаптации растений-регенерантов к условиям выращивания ex vitro с использованием гидропонных установок, заполненных питательным раствором определенного состава на каждой стадии адаптации: !Л МС+510 мг/л КН2РО4 в первые 10 суток и lA МС + 1650 мг/л NH4NO3 в последующие 10 суток. Такой подход к адаптации регенерантов характеризуется высокой эффективностью, универсальностью и обеспечивает получение высокой частоты приживаемости регенерантов различных видов растений в условиях открытого грунта (98 - 100%).

8. Экономический эффект использования методов биотехнологии в системе сохранения биоразнообразия достигается за счет возможности получения высоких коэффициентов размножения в течение короткого времени даже при дефиците исходного материала, за счет сокращения площадей под коллекциями растений, а также за счет уменьшения сроков получения новых форм и сортов (А.с. №1621825, № 35188).

9. Разработанные приемы получения растений-регенерантов в культуре изолированных тканей могут быть использованы для сохранения генофонда в коллекциях in vitro; адаптированные к условиям выращивания ex vitro регенеранты редких и исчезающих видов флоры Алтая - для интродукции и реинтродукции, уникальных форм и сортов растений - для селекции и получения высококачественного посадочного материала.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Вечернина, Нина Александровна, 2006 год

1. Азизходжаева А., Умаров З.М. Влияние фитогормонов и витаминов на рост недозрелых гибридных зародышей хлопчатника in vitro II Узбекский биологический журнал 1988. - №2. - С.17-19.

2. Александрова М.С., Стахеева Т.С., Василькова О.Г. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов голубики щитковой {Vaccinium corymbosum L.) II Междунар. конф. «Проблемы дендрологии на рубеже XXI века»: Тез. докл. М. - 1999. - С.7-8.

3. Ахметова А.Ш., Байбурина P.K. Размножение Lespedeza bicolor Turcz. в культуре in vitro II Растительные ресурсы 2003. - вып. 1. - С. 115-124.

4. Байбурина Р.К. Микроклональное размножение взрослых гибридных деревьев Betula pendula Roth var. carelica Merckl. II Растительные ресурсы 1998. - 34, №2. - C.9-22.

5. Бартиш И.В., Короховой В.И. Состав культуральной среды и эффективность образования побегов in vitro из листовых эксплантов яблони // Физиология растений. 1997. - 44,№3. - с.440-444.

6. Бахтадзе К.Е. Биологические основы культуры чая. Тбилиси: Мецниереба. 1971. - 367 с.

7. Бахтадзе К.Е. Биология, селекция и семеноводство чайного растения. -М.:Пищепромиздат, 1948. -231 с.

8. Бахтадзе К.Е. Новая крупнолисная форма китайского чая // Агробиология. 1952. - №1. - С.97-100.

9. Башките Е.А., Александрушкина Н.И., Кирнос М.Д. Метилирование ДНК в суспензионной культуре клеток табака при обработке фитогормонами // Биологические науки. 1980. - №4. - С.103-110.

10. Близнюк Л.Г., Кондрацкая И.П. Биотехнологические методы селекции клевера лугового // VIII Междунар. конф. «The Biology of Plant Cells In

11. Vitro and Biotechnology»: Тез. докл.- Саратов: Изд-во Саратовской губернской торгово-промышленной палаты, 2003. С.49.

12. Болтинец B.C., Пивень Н.М. Индуцированный эмбриоидогенез в культуре ткани ореха грецкого // Физиология и биохимия культурных растений 1990. - 22, №4. - С.409-413.

13. Бондарев Н.И,, Носов A.M., Корниенко A.B. Влияние экзогенных регуляторов роста на каллусогенез и рост культивируемых клеток Stevia rebaudiana II Физиология растений. 1998. - 45, №6. - С.888-892.

14. Бородулина И.Д., Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K. Каллусогенез и регенерационная способность листовых эксплантов Primula х polyantha Mill. II Известия АГУ. Барнаул: Изд-во АГУД998. №4. - С. 145-147.

15. Бородулина И.Д., Вечернина H.A., Долганова З.В. Размножение двух гибридных видов рода Primula L^ в культуре in vitro II Растительные ресурсы 2001. - Вып.4. - С. 114-122.

16. Бумагина С.И., Хачунова С.С., Шамова Н.М. Культура in vitro пазушных почек винограда /Биология культивируемых клеток и биотехнология.-Новосибирск, 1988.-Т.1.- С.147.

17. Бургутин A.B. Микроклональное размножение винограда, перевод растения в почвенную культуру // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез. докл. 4.2. -Новосибирск, 1988. - С.312.

18. Бурдасов В.М., Ильина Е.И., Коннова Н.В. Особенности микроклонального размножения яблони // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез докл. 4.2. -Новосибирск. - 1988. - С.360.

19. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.:Наука, 1971. - 342 с.

20. Верещагина И.В. Цветы в Сибири. Барнаул: Алт. книж. изд-во, 1972. - 298 с.

21. Вечернина H.A. Разработка метода индуцирования нормального морфогенеза в длительно поддерживаемой культуре тканей чайного растения // Доклады ВАСХНИЛ. 1991. - №4. - С. 18-21.

22. Вечернина H.A. Каллусогенез и регенерационная способность тканей чайного растения {Camellia sinensis L.) in vitro: Автореф дис. . канд. биол. наук / Институт биохимии растений АН Грузии Тбилиси, 1993. -26 с.

23. Вечернина H.A. Методы биотехнологии в селекции, размножении и сохранении генофонда растений.- Барнаул: Изд-во Алт.ун-та, 2004. 205 с.

24. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Кутубидзе В.В. Культивирование каллуса чайного растения на искусственной питательной среде // Всесоюз.конф. мол.ученых и специал. во ВНИИЧиСК: Тез. докл. -Махарадзе-Анасеули, 1985.-С. 185.

25. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Кутубидзе В.В. Пролиферация и морфогенетический потенциал стеблевого каллуса чайного растения сорта Колхида // Субтропические культуры. 1988, №6. - С.50-57.

26. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Кутубидзе В.В. Соматический эмбриогенез в культуре изолированных семядолей чайного растения // V Междунар. конф. « Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез.докл. Новосибирск, 1988.- 4.2. - С.248-249.

27. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Кутубидзе В.В. Регенерация растений актинидии китайской из каллусных культур листьев //Субтропические культуры. 1990. - №5. - С. 133-139.

28. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Кутубидзе В.В., Кунах В.А. Способ получения растений-регенерантов чая // А.с.№1621825, Бюл. №3, 1991.

29. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K. Культура in vitro Stevia rebaundiana Bert. II Флора и растительность Алтая. Барнаул: Изд-во Алт.ун-та, 1996. - С.140-142.

30. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Пронькина JI.B. Регенерация и ускоренное размножение лилейника in vitro II Известия АГУ. Барнаул: Изд-во АТУ-1997. №1.- С.125-127.

31. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Полковникова J1.A. Морфогенез в7культуре соматических тканей \ridaceae ll Междунар. конф. мол. уч. во ВНИИЦиСК: Тез. докл., Сочи.- 1098. -С.9-10.

32. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Шмаков А.И. К проблеме сохранения Brachanthemum baranovii (Krasch.et Poljak) Krasch: введение в культуру in vitroll Известия АГУ. Барнаул: Изд-во АГУ 1998, №1. -С.133-134.

33. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K. Регенерация Daucus sativus (Hoff.)Roehl. сорта Parmex в культуре in vitro II Известия АГУ. Барнаул:Изд-во АГУ 1999, 3. - С.47-50.

34. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Жаркова С.В. Каллусогенез и регенерационная способность тканей и органов Allium сера L. in vitro II Известия АГУ. Барнаул: Изд-во АГУ, 2000. - №3. - С.47-50.

35. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Жаркова C.B. Размножение in vitro ЦМС-линии лука репчатого // Междунар. конф. «Селекция и семеноводство овощных в XXI в.» М.: Изд-во НИИСОК. -2000. С.56-57.

36. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K. Адаптация растений-регенерантов к условиям выращивания in vivo как завершающий этап микроразмножения // Вестник алтайской науки. Барнаул: Изд-во АГУ. -2001.- Вып.1,Т.1.- С.263-265.

37. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Антонова И.И. Размножение in vitro бесшшшх форм крыжовника // Науч.-практ. конф. «Научно-экономические проблемы регионального садоводства»: Материалы конф.- Барнаул: Изд-во АГУ. 2003а. - C.199-2Q7.

38. Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K., Клементьева Л.А., Долганова З.В. Особенности регенерации и размножения растений рода Iris L. in vitroll Растительные ресурсы , 2004, вып.4, С. 56-65.

39. Внучкова В.А. Разработка метода получения растений-регенерантов томата в условиях культуры ткани // Физиология растений 1977. - 24, №5.-С. 1094-1099.

40. Внучкова В.А., Бирюкова Н.Ф., Гулиев М.И., Лобиков Л.Д. Микроразмножение сенполий: минимум затрат, максимум пользы // Цветоводство. 1991. - №2. - С.6.

41. Высоцкий В.А. Регенерационная способность изолированных меристематических верхушек черной смородины и вишни и методы получения из них целых растений: Автореф. дис. . канд. биол. наук. -Л., 1978.-28 с.

42. Высоцкий В.А. Морфогенез и клональное микроразмножение растений // Культура клеток растений и биотехнология. М.:Наука, 1986. - C.91-102.

43. Высоцкий В.А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных растений // Автореф. дис. на соиск. уч. ст. д с/х наук. М., 1998. - 44с.

44. Высоцкий В. А., Бартенева Л.В. Способ пересадки растений-регенерантов в почвенный субстрат: A.c. 1591887 СССР, МКИ5 А 01 Н 3/00; НИИ садоводства Нечерноземной полосы. №44442378/30-13; Бюл. №34, 1990.

45. Высоцкий В.А., Дьякова Т.М. Микроклональное размножение декоративных кустарников // IV Всесоюзная конференция «Культура клеток растений и биотехнология»: Тез докл.- Кишинев. 1983. - С. 134.

46. Высоцкая О.Н., Попов A.C., Бутенко Р.Г. Преимущество глюкозы перед сахарозой при криосохранении меристем земляники // Физиология растений 1999. - 46, №2. - С. 300-302.

47. Высоцкий В. А., Тарашвили З.Т. Микроразмножение здорового посадочного материала ягодных культур // Садоводство. 1982. - №2. -с.22-23.

48. Выхристова Г.И., Смирнова Н.С. Некоторые аспекты культуры ткани луковичных растений и ремонтантной гвоздики // Труды НИИ горного садоводства и цветоводства Сочи, 1981.- №28. - С.58-67.

49. Горбатенко JI.E. Задачи интродукции растений России // XI съезд Русского ботанического общества «Ботанические исследования в азиатской России»: Сб. материалов. Т.З. - Барнаул: Изд-во «АзБука», 20036. -С.162-163.

50. Гумерова Е.А., Галеева Е.И., Чуенкова С.А., Румянцева Н.И. Соматический эмбриогенез и геммогенез в культуре тканей гипокотилей Fagopyrum esculentum II Физиология растений 2003. - 50, №5. - С. 716-721.

51. Гутиева Н.М. Размножение in vitro персика // VII Междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл. -М., 1997. С.415.

52. Денейко Е.В., Цевелева О.Н., Пельтек С.Е., Бабенко В.Н., Сидорчук Ю.В., Шумный В.К. Сомаклональная изменчивость морфологических и биохимических признаков у растений-регенерантов люцерны // Физиол. раст. 1997. - 44, №5. - С.775-781.

53. Дерфлинг Г.М. Гормоны растений. М.:Наука. - 1989. - 390 с.

54. Долганова З.В. Примула новая культура на Алтае // Методические рекомендации ВАСХНИЛ, Сиб.отд., НИИСС. - Новосибирск, 1991.-26 с.

55. Долганова З.В. Расширение и улучшение ассортимента примулы и методы ее размножения в лесостепной зоне Алтайского края: Автореф. дис. канд. с/хнаук. Новосибирск. - 1993. - 16 с.

56. Долганова З.В., Бородулина И.Д., Вечернина H.A. Примула многоцветковаяВесеня //A.c. №35188

57. Долгих Ю.И., Шамина З.Б. Современные представления о причинах имеханизмах сомаклональной изменчивости // Молекулярные механизмы генетических процессов. М.: Наука, 1991. - С.123-127

58. Дорошенко Н.П. Испытание питательных сред при клональном микроразмножении винограда // Виноградство и виноделие СССР. -1990. №3. С.61-65.

59. Дорошенко Н.П., Лузгин Г.В., Карлов А.Ф. Способ регенерации меристем : Пат. 2120739 Россия, МПК6 А01Н 4/00; НПО «Виноград». -№95104589/13; Заявл. 29.03.95; Опубл.27.10.98. Бюл.№30.

60. Драгавцев В.А. Стратегически важный капитал // Природа. Чехов: Наука, 1995.- № 12.- С.59-63.

61. Евсеева Р.П., Осипова Л.В. Влияние состава питательной среды и когерентного излучения лазера на развитие мериклонов земляники invitro II Бюл. науч. инф. ВНИИ генет. и селекции плод. раст. 1998. -№53. - С. 19-22.

62. Ежова Т.А., Багрова A.M., Хартина Г.А., Гостимский С.А. Изучение наследуемости сомаклональных изменений у регенерантов посевного гороха (Pisum sativum L.) II Генетика. 1989. - 25, №5. - C.878-885.

63. Ермаков Е.И., Кочетов A.A. Особенности роста и развития растений стевии при разных световых режимах в регулируемых условиях // Докл.ады РАСХН. 1996. -№1. - С.8-9.

64. Захленюк О.В. Изучение цитогенетических эффектов производных азотистых оснований и их аналогов в культуре тканей растений // Автореф. дис. . канд. биол. наук. Киев, 1987. - 15 с.

65. Захленюк О.В., Кунах В.А. Цитофизиологические и цитогенетические эффекты производных аденина в культуре тканей Haplopappus gracilis L. II Физиология растений 1987. - 34, №3. - С.584-593.

66. Зленко В.А., Котиков И.В., Трошин Л.П. Способ и устройство для автоматизированного размножения растений in vitro: Пат. 2141195 Россия, МПК6 А01Н 4/00-№95114040/13; Бюл. №32, 1999.

67. Зосимович В.П., Кунах В.А. Уровень, типы и происхождение аббераций хромосом в культуре изолированных тканей растений // Генетика. -1975. 11, №6. - С.37-46.

68. Зубенко В.Ф., Чудновский Б.Д. Рождение новой отрасли // Сахарная свекла. 1990. - №5. - С.49-50.

69. Иванина Л.И. Семейство геснериевых (Gesneriaceae) // Жизнь растений. М.: Просвещение, 1981. - С.436-439.

70. Иванова H.H. Микроразмножение Anthurium andreanum и Begonia riger elatior в условиях in vitro И Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. 2002. - №86. - С. 40-42.

71. Иванович A.A. Микроклональное размножение голубики высокой // Интенсиф. плодоовощевод./ Белорус, с/х акад. Горки, 1992. - С.47-50.

72. Исаева H.A., Годовикова В.А., Бородько A.B. Эмбриогенез в каллусной ткани и суспензионной культуре Hordeum geniculatum L. И Известия АН СССР. Серия биология 1991. - №2. - С.294-299.

73. Калинин Ф.Л., Сарнацкая В.В., Полищук В.Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев:Наукова думка, 1980 - 320 с.

74. Камелин Р.В. Биологическое размножение и интродукция растений // Растительные ресурсы -1997. Т.ЗЗ, Вып.З. - С. 1-11.

75. Карабаев М.К., Джардемалиев Ж.К. Культивируемые клетки пшеницы и кукурузы. Морфогенез и толерантность // Физиология растений 1994. -41, №6. — С.807-814.

76. Катаева Н.В. Особенности микроразмножения трудноукореняемых сортов яблони // Сельскохозяйственная биология 1988. - № 4. - С. 1822.

77. Катаева Н.В. Параметрическое регулирование морфогенеза и клональное микроразмножение растений на примере герберы и фреезии // Автореф. дис. . канд. биол. наук. М. - 1982. - 24 с.

78. Катаева Н.В., Аветисов В.А. Клональное размножение растений в культуре тканей // Культура клеток растений. М.:Наука, 1981. - С.137-149.

79. Кафтан В.Н., Шевцова Г.Г., Конов Г.В. Микроразмножение родиолы розовой в культуре in vitro II V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез. докл. Новосибирск. -1988.-С.364.

80. Кашин A.C., Блюднева Е.А., Силкин М.А. Активация мегагамет и регуляция эмбриогенеза у неоплодотворенных завязей проса in vitro II Физиология растений 2000. - 47, №2. - С.291-301.

81. Керкадзе И.Д., Джапаридзе З.Т. Генетический эффект эндосперма и зародыша на изменчивость чайного растения // Субтропические культуры. 1990. - №1. - С.47-50.

82. КефелиВ.И. Рост растений.-М.: Колос, 1984. С. 17-18.

83. Ким Ю.М., Талалова Е.Е. Интродукция стевии в Узбекистане // Сб.научных трудов по приклад, ботанике, генетике и селекции. Л., 1991. - т. 144. - С. 186-191.

84. Клюшин А.Г. Характеристика роста суспензионной культуры клеток V Polyscias filicifolia bailey при различных способах культивирования //

85. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 2000. - 24 с.

86. Коваленко П.В., Овсюк Т.Н., Игнатова С.А. Морфогенез в каллусных культурах ярового ячменя // VII Междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл. -М., 1997.-С.111.

87. Ковальская B.C., Сидорова H.B. Характер метилирования генов рДНК в каллусной ткани озимой пшеницы // Респуб. конф. «Проблемы теоретической и прикладной генетики в Казахстане»: Сб. материалов. -Алма-ата, 1990. С.62-63.

88. Коев Г.В. Получение безвирусного посадочного материала хризантем методом культуры тканей //13 рабочее, совещ. руководителей служб защиты раст. в бот. садах и сохр. эколог, равновесия: Тез докл. -Саласпис, 1989-С. 110.

89. Конарев A.B., Хорева В.И. Биохимические исследования генетических ресурсов в ВИРе // Цитология и генетика. 2000. - 34, №2. - С.91-104.

90. Конарев В.Г. Проблемы генома растений // Сельскохозяйственная биология 1985, №5. - С.20-31.

91. Конарев В.Г., Гаврилюк И.П. Принцип белковых маркеров и его использование при анализе исходного и селекционного материала // Сельскохозяйственная биология 1977, №5. - С.677-684.

92. Кондратенко О.В., Митрофанова И.В. Особенности клонального микроразмножения двух сортов миниатюрных роз // Бюл. Госуд. Никитского ботанического сада. 2002. - №86. - С.38-40.

93. Концевая И.И., Яцына A.A. Морфогенетический потенциал листовых эксплантов голубики высокой в условиях in vitro II Вести АН Беларуси. -Серия: биологические науки. Минск, 1998. - №1. - С. 33-37.

94. Копертех Л.Г., Бутенко Р.Г. Нативные фитогормоны экспланта и морфогенез пшеницы in vitro II Физиология растений. 1995. - 42, № 4. - С.555-558.

95. Копертех Jl.Г., Стрибная Л.А. Регенерация растений из листовых эксплантов пшеницы // Физиология растений. 2003. - 50, №3. - С.410-414.

96. Коропачинский И.Ю. Древесные растения Сибири. Новосибирск: Наука, 1983.- 378 с.

97. Коропачинский И.Ю. Роль ботанических садов в охране биологического разнообразия России // Сибирский экологический журнал. -Новосибирск, 1997. 4, № 1. - С. 7-12.

98. Короховой В.И., .Бартиш И.В., Копань В.П. Адвентивный органогенез для некоторых сортов яблони домашней // Всероссийское совещ. «Молодые ученые садоводству России»: Тез докл. - М, 1995. - С. 122123.

99. Красная книга республики Алтай: Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений //Отв. ред. И.М.Красноборов,

100. B.П.Седельников. Новосибирск. 1996. - 130 с.

101. Красная книга РСФСР: Растения // Отв. ред. А.Л.Тахтаджан. М.: Росагропромиздат. - 1988. - 591 с.

102. Крашенинников И.М. О роде Brachanthemum DC/ Ботанический материал Гербария БИН АН СССР М.; Л., 1949. - Т.ХГ. - с. 181 - 200.

103. Кузьмина H.A., Потапова O.A. Культивирование различных сортов роз in vitro II Естественные науки: Биология. 2000. - №5. - С.38-39.

104. Кунах В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 1. Изменчивость в онтогенезе // Биополимеры и клетка. 1994. - 10, №11. C.5-35.

105. Кунах В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 4. Изменчивость при дедифференцировке и каллусообразовании in vitro II Биополимеры и клетка. 1998. - 14, №4 - С.298-319.

106. Кунах В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 5. Изменчивость роста и митотического режима в процессе адаптации кусловиям выращивания in vitro II Биополимеры и клетка. 1999. - 15, №5. - С.343-359.

107. Кунах В.А. Изменчивость растительного генома в процессе дедифференцировки и каллусообразования in vitro II Физиология растений. 1999. - 46, №6. - С.919-929.

108. Кунах В.А., Алпатова Л.К. Роль фитогормонов в изменчивости числа хромосом в культуре тканей Haplopappus gracilis LII Доклады АН СССР. 1979. - 245, №4. - С.967-970.

109. Кунах В.А., Захленюк О.В. Диплоидизация культуры ткани растений с помощью 5-урацил-тиоуредоглюкозы (тиацила) // Доклады АН СССР. -1984. 279, №5. - С.1241-1244.

110. Кунах В.А., Зосимович В.П. Влияние кинетина на уровень и типы аберраций хромосом в культуре ткнаей Haplopappus gracilis L. II Генетика.-1977.-13, №8.-C.1355-1365.

111. Кунах В.А., Можилевская Л.П., Алпатова Л.К., Губарь С.И. Устойчивость к 5-метилтриптофану и накопление алкалоидов в каллусной культуре раувольфии змеиной Rauwolfia serpentina Benth. II Биотехнология. 2001. - №3. - C.3-10.

112. Кунах В.А., Сидоренко П.Г., Зосимович В.П. Влияние кинетина на репродукцию клеток различной плоидности // Успехи полиплоидии. -Киев: Наукова думка, 1977. С.208-215.

113. Кунах В.А., Шаламай A.C. Кифорак О.В. и др. 5-урацил-тиоуредоглюкоза, обладающая свойством регулировать число хромосом в культуре растительной ткани // A.c. №1074098. Бюл.№10, 1983.

114. Кутас E.H. Введение в стерильную культуру интродуцированных видов рододендронов // Междунар. конф. «Микробиология и биотехнология на рубеже 21 столетия»: Сб. материалов-Минск, 2000. С.176-177.

115. Кучеренко Л.А. Биологические особенности риса в культуре in vitro и создание на их основе биотехнологии получения исходногоселекционного материала // Автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 1991.-41 с.

116. Кучеренко JI.A. Условия получения растений-регенерантов в культуре тканёй риса // Сельскохозяйственная биология. 1984. - № 4. - С.70-72.ч

117. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. - 352 с.

118. Ламанова Т.Г. Брахантемум Баранова Brachanthemum baranovii (Krasch. et Poljak) Krasch.ll Биологические основы охраны редких и исчезающих растений Сибири: Сб. науч. трудов. - Новосибирск, 1990,- С.4-14.

119. Лебедев В.Г., Деменко В.И., Долгов C.B. Регенерация адвентивных побегов из листовой ткани груши обыкновенной (Pyrus communis L.) in vitro // Науч. конф. молодых ученых и специалистов (Москва, 10-11 июня, 1997): Сб. трудов М., 1999. - с. 142-146.

120. Левенко Б.А., Скороход В.А., Беспалов Ç.H., Рубцова М.А. Промышленная технология микроклонального размножения сортов виноргада // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез докл.- Новосибирск. 1988. - С.311.

121. Леонтьев-Орлов O.A. Клональное микроразмножение яблони // IV Всесоюз. конф. «Культура клеток растений и биотехнология»: Тез докл.-Кишинев. 1983. - С. 113.

122. Лесникова Н.П., Сусский А.Н., Горина В.М. Микроразмножение in vitro алычи (Prunus cerasifera EHRH.) как возможность ускорения селекционного процесса // Бюл. Никитского бот. сада. 2002. - вып. 86. - С.57-58.

123. Логинов Ю.П. Полиморфизм белка глиадина как генетический маркер при отборе элитных растений пшеницы сорта Тюменская-80 //

124. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 1997. - №3-4. -С.20-25.

125. Лубягина Н. П., Ершова Э. А. Рябчик шахматный на Алтае //В сб. науч. тр.» Исчезающие, редкие и слабо изученные растения и животные Алтайского края и проблемы их охраны» . Барнаул, 1987. - С. 14-15.

126. Лубягина Н. П., Ершова Э. А. Рябчик шахматный растение, нуждающееся в охране // Бюл. Главного Бот. сада. - 1990. - вып. 154. -С. 30-34.

127. Лучник З.И. Декоративные растения Горного Алтая. М., 1951. - 223 с.

128. Ляховкин А.Г., Николаев А.П., Учитель В.Б. Стевия медовая трава.-СПб: ЗАО «Весь». - 1999. - 94 с.

129. Майстренко Г.Г., Гордиенко Н.Я., Тищенко С.Ю. Морфогенез сенполий в культуре in vitro при экзогенном внесении гормонов //VII Междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл. М., 1997. - С.125.

130. Матушкина О.В., Пронина И.Н. Регенерация груши in vitro I I VIII Междунар. конф. «The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology»: Тез. докл.- Саратов: Изд-во Саратовской губернской торгово-промышленной палаты, 2003. С.197.

131. Машкина О.С., Табацкая Т.М., Стародубцева Л.М. Длительное микрочеренкование для массового клонального размножения карельской березы и тополя // Физиология растений. 1999. - 46, №6. - С.950-952.

132. Мезенцева О.Ю. Использование тканевых и клеточных культур в селекции на устойчивость к фитопатогенам // Селекция и семеноводство. 1990. - №4. - С.59-62.

133. Мику В.Е., Кисничан Л.П., Багдасараев С.М. Стевия перспективная культура для производства низкокалорийных и диетических продуктов // Пищевая промышленность.-М., 1999. - №10.-С.32.

134. Минаева В.Г. Лекарственные растения Сибири. Новосибирск: Наука, 1991.-272 с.

135. Мусиенко М.М., Тагень М., Абу Д.М. Молекулярное маркирование генотипов Triticum aestivum L. на основе электрофоретических спектров запасных белков // Украинский ботанический журнал. 1994. - 51, №5. - С.21-23.

136. Мусияка В.К. Влияние эмистима и других регуляторов на рост и морфогенез изолированных тканей кукурузы // Физиология и биохимия культурных растений 1998. - 30, №4. - С. 258-263.

137. Мусияка В.К., Желтоножская Л.В., Каменчук О.П. Индукция морфогенеза в длительно культивируемых каллусных тканях люцерны // Междунар. конф. в Институте физиологии растений и генетики АН УССР: Тез. докл. Киев, 1988. - С.82.

138. Мухаметвафина A.A. Регенерация in vitro Lilium regale Wils.II Молодеж. науч. конф. «Актуальные проблемы биологии и экологии»: Тез. докл. -Сыктывкар, 2002. С. 102-103.

139. Мухитов А.Р., Румянцева Н.И. Индукция колхицином морфологической и генетической нестабильности каллусов Fagopirum tataricum II Цитология. 2002. - №7. - С.628-631.

140. Наумова Г.А. Культура киви //Садоводство и виноградарство. — 1988, №3. С.30-31.

141. Неделчева С. Влиянето на някои ауксини и цитокинини върху органогенезиса при калусни култури от кайсиеви кръстоски. II. Органогенезис // Растениеъдчески науки. 1998. - 35, №8. - С.626-628.

142. Носырева М.В., Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K. Изучение регенерационной способности изолированных почек Adonis vernalis L. в культуре in vitro II Известия АГУ. Барнаул: Изд-во АГУ, 2002. - №3. -С.98-100.

143. Носырева М.В., Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K. Регенерация и размножение растений бегонии in vitro II Известия АГУ. Барнаул: Изд-во АГУ, 2004, №3. - С.94-97.

144. Носырева М.В.,Соловьева В.В., Вечернина Н.А Таварткиладзе O.K. Введение в культуру in vitro Adonis vernalis L. II Междунар. совещ. (2124 августа 2001 г.) «Проблемы охраны растительного мира Сибири»: Тез. докл. Новосибирск, 2001. — С.72.

145. Нурмуханбетова Г.А. Клональное микроразмножение касатиковых // Физиология роста и устойчивости интродуцированных растений в Казахстане: Сб. ст. Алма-ата, 1986. - С.139-148.

146. Олешко Е.В. Особенности размножения вишни in vitro II IV Всесоюз. конф. «Культура клеток растений и биотехнология»: Тез докл.-Кишинев. 1983. - С. 114.

147. Олешко E.B. Особенности размножения вишни in vitroll Культура клеток растений и биотехнология. -М.:Наука, 1986. С.117-120.

148. Перуанский Ю.В., Абугалиева А.И. Выделение биотипов риса по данным электрофореза запасных белков // Доклады РАСХН №1. -С.10-12.

149. Петрова Е.JI. Длительное хранение растений ежевики в условиях in vitro II VIII Междунар. конф. «The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology»: Тез. докл.- Саратов: Изд-во Саратовской губернской торгово-промышленной палаты, 2003. С.251.

150. Печеницын В.П., Ефимков В.А., Весманова О .Я., Крюкова О.З. Получение асептических эксплантов монстеры превлекательной и их морфогенетическая активность in vitro II Интродукция и акклиматизация растений (Ташкент). 1996. - №27. - С. 123-126.

151. Пиралов Г.Р., Абраимова O.E. Особенности роста и дифференциации длительно пассируемой каллусной культуры линии кукурузы ДК675 // Физиология и биохимия культурных растений — 2000. 32, №5. - С. 372376.

152. Полевой В.В. Физиология растений. М.: Высшая школа. - 1989. - 464 с.

153. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Физиология роста и развития растений. -Л.: Изд-во Ленинградского ун-та, 1991. 240 с.

154. Полынцева H.A., Утемова JI.Д. Адонис весенний, горицвет, Adonis vernalis L. II Биоэкологические особенности растений Сибири, нуждающихся в охране. Новосибирск: Наука, 1988. - 220 с.

155. Поляков A.B. Комплексное использование биотехнологических методов в селекции растений // Достижения науки и техники АПК. 2002. - №10.- С.21-23.

156. Попович Е.А., Решетников В.Н. Адвентивный органогенез у клематиса гибридного // VIII Междунар. конф. «The Biology of Plant Cells In Vitro and Biotechnology»: Тез. докл. Саратов: Изд-во саратовской губернской торгово-промышленной палаты, 2003. - С.261.

157. Попович Е.А., Филипеня В.Л. Влияние экзогенного цитокинина на жизнеспособность эксплантов голубики высокой in vitro II Физиол. раст.- 1997. 44, №1. - С. 104-107.

158. Пугачев P.M. Подбор оптимального состава питательной среды для клонального размножения in vitro видов сливы (Prunus L.) II Регуляция роста, развития и продуктивности растений. Минск, 1999. - С. 152153.

159. Путенихин В.П. Культура изолированных почек лиственницы Сукачева // Биология культивируемых клеток и биотехнология. М.: Наука, 1991.- С. 224 -227.

160. Ракитин Ю.В. Химические вещества стимуляции и торможения физиологических процессов растений. М.: Изд-во АН СССР, 1959. -294 с.

161. Растительные ресурсы СССР: Цветковые растения сем. Asteraceae (Compositeae)/ Отв. ред. П.Д.Соколов. С-Пб.: Наука, 1993. - 352 с.

162. Редкие и исчезающие виды растений Тувинской АССР / Отв. ред. К.А.Соболевская, И.М. Красноборов. Новосибирск: Наука. - Сиб. отд., - 1989.-271 с.

163. Риекстиня В.Э., Риекстиныи И.Р. Клематисы. Л.:Агропромиздат. Ленингр. отд., 1990. - 287 с.

164. Родина Е.А., Катаева Н.В. Особенности образования каллуса и регенерация почек при культивировании зародышей Picea abies L. in vitro II V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез.докл. Новосибирск, 1988.-Ч. 1.-С. 133-134.

165. Румынии В.А. Массовое размножение in vitro луковичных и клубнелуковичных растений // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез докл.- Новосибирск. -1988.-С.368.

166. Сааков С.Г. Оранжерейные и комнатные растения и уход за ними. Л.: Наука, 1983.-621 с.

167. Сатарова Т.Н. Прямая регенерация растений в культуре пыльников кукурузы // Физиология и биохимия культурных растений 2002. - 34, №2. - С. 152-157.

168. Сафразбекян С.А., Катаева Н.В. Микроклональное размножение каперса in vitro: влияние условий культивирования на появление аномальных побегов // Второй съезд Всесоюз. общ-ва физиологов растений, Минск, 1990, Тез.докл. 4.2. - М.,1992. - С. 189.

169. Свитайло A.M., Бондаренко П.Е., Шевчук Н.С. Клональное микроразмножение подвоев и сортов плодовых культур // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез.докл. -Новосибирск, 1988 т.2, С.346.

170. Семенова Г.П. Интродукция и охрана редких и исчезающих видов флоры Сибири // Сибирский экологический журнал Новосибирск, 1997. - Т.4, №1. - С. 19-29.

171. Сенцова О.Ю., Максимов В.М. Действие тяжелых металлов на микроорганизмы // Успехи микробиологии. 1985. - 20, №2. - С.36-39.

172. Сидоров В.А. Биотехнология растений. Клеточная селекция. Киев: Наукова думка, 1990. - 280 с.

173. Сидорович Е.А., Кутас E.H. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов голубики высокой и брусники обыкновенной в культуре in vitro в связи с генотипами // Вести АН Беларуси. Серия: биологические науки.-Минск, 1998.-№3.-С.5-9.

174. Сидорович Е.А., Кутас E.H. Клональное микроразмножение новых плодово-ягодных растений // Минск: Изд-во «Навука i тэхшка », 1996. -246 с.

175. Сидорович Е.А., Кутас E.H., Филипеня В.Л. Влияние осмотических ингибиторов на сохранение жизнеспособности интродуцированных сортов Vaccinium corymbosum L. и Vaccinium vitis-idea L. в культуре in vitro II Доклады АН Беларуси. 1995. - 39, №1. - С.63-66.

176. Сирота С.М., Жаркова C.B., Вечернина H.A., Таварткиладзе O.K. Методы получения и ранняя диагностика гибридного потомства Allium сера L. И Методические указания. 2001. - Барнаул:Изд-во АГУ. - 21 с.

177. Смирнов В.А., Латыпов С.А., Перчуляк Л.П. Оптимизация питательной среды для побегообразования в культуре клеток томатов // Культура клеток растений и биотехнология. М., 1986.-С. 128-132.

178. Смит М.В., Моисеева H.A. Капсулирование соматических эмбриоидов и регенерация растений моркови // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.:Наука, 1991. С. 186-189.

179. Смолин A.M. Получение оздоровленного посадочного материала хризантем в культуре ткани // Юбилейная конф. «75 лет сельскохозяйственному образованию на Урале»: Тез. докл.- Пермь, 1993.-С. 61-63.

180. Соболевская К.А. Исчезающие растения Сибири и интродукция. -Новосибирск: Наука, 1984.- 219 с.

181. Соловьев A.A. Лютиковые Алтайской горной страны и их охрана: Автореф. дис. . канд. биол. наук / Алт. гос. ун-т. Барнаул, 1999. - 22 с.

182. Солодкая Л.А. Генетические особенности соматических клеток клевера лугового (Trifolium pratense L.) и их использование в селекции // Автореф. . дис. канд. биол. наук. -М., 1987. -22 с.

183. Спасеноски М., Колева Л. In vitro органогенеза на хипокотилии и котиледони од пиперка (Capsicum аппиит L. сорта Куртовска Kannja)// Год. зб. Биол./Прир.-мат. фак. Унив., CKonje. 1995. - 48. - С.21-32.

184. Станилова М. In vitro регенерация на блатно кокиче {Leucojum aestivum L) от листки експланти // Bulg. J. Plant Physiol. 1994. - 20, №1-4. - С. 89-94.

185. Станис В.А., Стане Г.В. Влияние фитогормонов на морфогенез семядолей яблони в культуре ткани // Физиология растений 1991. - 38, №2.- с.392-398.

186. Стахеева Т.С., Васильева О.Г. Размножение интродуцированных рододендронов методом in vitro II Междунар. конф., посвящ. 90-летию со дня рождения члена-корресп. РАН П.И.Лапина «Проблемы дендрологии на рубеже 21 века».: Тез. докл.-М., 1999. С.339-341.

187. Ступницкий В.А., Глеба Д.М. Индукция in vitro морфогенеза у банана карликового {Musa папа) II V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез. докл. Новосибирск, 1988,4 2. -С.325-326.

188. Стыцко С.А., Глотова Л.В., Теслюк Н.И. Применение кукурузного крахмала в культуре винограда in vitro II Виноград и вино России. -2000.- №3. С.48-49.

189. Субботин Г.И. Вишня в Южной Сибири. Барнаул: Изд-во Алт. госуниверситета, 2002. - 145 с.

190. Суриков И.М. Несовместимость и эмбриональная стерильность растений . М.: Агропромиздат, 1991. - 220 с.

191. Таварткиладзе O.K., Вечернина H.A. Методы in vitro для размножения и сохранения Fritillaria meleagris L. и F.verticillata Wild. II Флора и растительность Алтая. Барнаул: Изд-во АГУ. - 1996. - С.136-139.

192. Таварткиладзе O.K., Вечернина H.A. Сохранение генофонда растений в коллекции культур in vitro II Известия АГУ.- Барнаул: Изд-во АГУ.-1999, Спец. выпуск С. 13-15.

193. Таварткиладзе O.K., Вечернина H.A. Ускоренное размножение in vitro и адаптация in vivo ремонтантных сортов земляники // Междунар. конф. «Биотехнология на рубеже двух тысячелетий»: Тез. докл. Саранск: Изд-во МГУ.- 2001.-С.

194. Таварткиладзе O.K., Вечернина H.A., Кутубидзе В.В. Биотехнологические методы в селекции и размножении актинидии китайской// Субтропические культуры 1990. - №2. - С. 136-140.

195. Танклевский М.М., Голодрига П.Я., Зленко В.А., Танклевский A.M. Контейнер для микроразмножения растений. А.с.1341114, СССР. Б.И. 1987, №36.

196. Тарлаковская A.M., Эгги Э.Э., Гаврилюк И.П., Беляева Ж.И. Идентификация сортов гороха методом электрофореза белков семян/ Методические указания.- Д., 1990. 22 с.

197. Тиссера Б. Эмбриогенез, органогенез и регенерация растений // Биотехнология растений: культура клеток. М.:ВО «Агропромиздат», 1989. - С.97-127.

198. Третьяк С.А. Размножение хризантем методом культуры ткани // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез.докл.- Новосибирск, 1988.-4.2.-С.332.

199. Трускинов Э.В. Биотехнология и сохранение мирвого генофонда картофеля // VII Междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл М., 1997. - с. 535.

200. Тукей Т. Регуляторы роста в сельском хозяйстве. М: Изд-во иностр. лит., 1959.-258 с.

201. Туровская Н.И., Стрыгина О.В. Микроклональное размножение малины // Садоводство и виноградарство. 1990. - №8. - С.26-29.

202. Тюкавин Г.Б. Стевия простой способ клонального микроразмножения in vitro и адаптации in vivo// VII Междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл. -М., 1997.-С. 471.

203. Тюкавин Г.Б., Шмыкова H.A. Культура неопыленных семяпочек моркови // Междунар. науч.-практ. конф. «Селекция и семеноводство овощных культур в XXI веке». М., 2000, Т.2, - С.275-277.

204. Тюкавин Г.Б., Шмыкова H.A., Монахова М.А. Цитология эмбриогенеза в культуре пыльников моркови // 'Физиология растений 1999. - 46, №6. -С.876-883.

205. Умаров З.М. Влияние концентрации сахарозы на рост недозрелых гибридных зародышей хлопчатника // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез. докл. Новосибирск, 1988.-С.241.

206. Упадышев М.Т., Высоцкий В.А. Размножение ежевики и малины черной методом культуры тканей // Садоводство и виноградарство М.,1991. -№6. - С.24-27.

207. Упадышев М.Т., Гуськов A.B. Салициловая кислота как регулятор ризогенеза у плодовых и ягодных культур in vitro II Сельскохозяйственная биология. Серия: Биология растений 1998. -№5. - С.63-68.

208. Упадышев М.Т.Клональное микроразмножение садовых культур на безагаровой среде // Садоводство и виноградарство. 2000. - №5-6. -С.20-21.

209. Уразбахтина H.A., Мардамшин А.Г. Содержание таксола в каллусной ткани из однолетней хвои и побегов Taxus baccata L. II Растительные ресурсы. 2001.-37, №2. - C.96-100.

210. Флора Сибири: Asteraceae (Compositeae) / Сост. И.М.Красноборов, М.Н.Ломоносова, H.H. Тупицина и др.- Новосибирск: Наука, 1997.- Т. 13.-472 с.

211. Хавкин Э.Е., Забродина М.В. Наследуемые изменения в спектрах пероксидаз и эстераз у сомаклонов кукурузы // Физиология растений. -1994. 41, №6. - С.127-128.

212. Хадеева Н.В., Гордон Н.Ю. Некоторые закономерности столонообразования при культивировании стахиса in vitro II Физиология растений 1998. - 45, №2. - С.301-307.

213. Хапова С.А. Реакция изолированных побегов земляники на присутствие гербицидов в питательной среде // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез. докл.- Новосибирск. -1988.-С.382.

214. Хасси Г. Размножение сельскохозяйственных культур in vitro / Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.:Агропромиздат. -1987. — С.105-133.

215. Хеншоу Г.Г., О'Хара Дж.Ф. Методы in vitro для сохранения и использования мирового генофонда растений / Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.:Агропромиздат. - 1987. - С.205-224.

216. Цаценко H.H. Культура соматических тканей сорго // Междунар. науч.-практ. конф. «Селекция, семеноводство, технология возделывания и переработки сорго»: Тез. докл. Зерноград, 1999. - С.82-83.

217. Цветановска Л., Спасеноски М. Можности за регенеращуа на домати от котиледони на различии медиуми // Год. зб. биол. / Прир. мат. фак. Унив., CKonje. 1995. - 48. - С. 7-19.

218. Чайлахян М.Х. Химическая регуляция роста и цветения растений // Вестник АН СССР. 1969. - 35, №10. - С.21-26.

219. Чайлахян М.Х., Бутенко Р.Г., Кулаева О.Н. Терминология роста и развития высших растений. М.: Наука, 1982. - 96 с.

220. Чережанова JI.B., Мелик-Саркисова О.С., Овчинникова В.Н. Цитогенетический эффект Сахаров // Генетика. 1991. - Т.27. - С. 13721378.

221. Чуб В.В., Власова Т.А., Бутенко Р.Г. Каллусогенез и морфогенез в культуре генеративных органов весенне-цветущих видов Crocus L. II Физиология растений 1994. - Т.41, №6. - С.815-820.

222. Чулафич Д., Грубиш Д., Вуничич Р., Волкова Л.А., Попов A.C. Соматический эмбриогенез in vitro диоскореи кавказской и балканской и криосохранениеих органогенных каллусных тканей //Физиология растений 1994. - 41, №6. - С.929-934.

223. Шамина З.Б. Генетическая изменчивость в популяциях соматических клеток растений в культуре // Автореф. дис. . докт. биол. наук. Д., 1988. 34 с.

224. Шарикова Л.А., Солодкая Л.А., Лапотышкина Л.И. Флуоресценция хлорофилла как метод отбора устойчивых к кислым почвам формклевера лугового // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез докл. Новосибирск. - 1988, 42. -С.386.

225. Шевелуха B.C. Проблемы, приоритеты и масштабы сельскохозяйственной биотехнологии в XXI веке // Вестник РАСХН. -2000, №4.-с.27-31.

226. Шипунова A.A. Клональное микроразмножение садовых растений: Автореф. дис. . канд. с/х наук. М., 2003. - 24 с.

227. Шмыкова H.A., Тюкавин Г.Б. Особенности морфогенетических изменений в культивируемых in vitro пыльниках моркови // Биотехнология 2002. - №5. - С.65-69.

228. Шривастова Д.К., Андрианов В.И.,Пирузян Э.С. Органогенез и регенерация в культуре тканей арбуза // Физиология растений 1988. -35, №6.-С. 911-920.

229. Шумный В.К. Генная и хромосомная инженерия для растений // Вестник РАН. 2001.- т.71, №8. - с.725-732.

230. Эльконин JI.A., Тырнов B.C., Папазян Н.Д., Ишин А.Г. Культура соматических ктаней сорго. Фитогормональная регуляция морфогенеза // Физиология растений 1986. - 33, №3. - С.504-512.

231. Яцына A.A., Концевая И.И. Клональное микроразмножение морошки приземистой (Rubus chamaemorus L.) II VII Междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл. М., 1997. - С.393.

232. Яшина И.М. Перспективы использования методов культуры клеток и тканей в селекции картофеля /В сб. научн. трудов. «Исследования по клеточной селекции картофеля», М., 1984. С.5-13.

233. Aitken J., Horgan K., Thorpe T. Influence of explant selection on the shoot-forming capacity of juvenile tissue of Pinus radiata II Can. J. Forest Res. -1981.-11,№1.-P.112-118.

234. Ajithkumar D., Seeni S. Rapid clonal multiplication through in vitro axillary shoot proliferation of Aegle marmelos (.L.) Corr., a medicinal tree I I Plant Cell Repts. 1998. - 17, №5. - P. 422-426.

235. Al-Maarri K., Arnaud Y. Microrpropagation of Pyrus communis cultivar "Passe Crassane" seedlinds and cultivar "Williams": Factors affecting root formation in vitro and ex vitro II Sei. hort. (Neth.). 1994. - 58, №3. - P.207-214.

236. Amo-Marco J.B., Picazo I. Effect of growth regulators on in vitro propagation of Ficus benjamina cv. Exotica // Biol, plant. 1994. - 36, №2. - P.167-173.

237. Anderson S., Lewis-Smith A.C., Smith S.M. Methylation of ribosomal RNA" genes in Petunia hybrids plants, callus cultures and regenerated shoots // Plant Cell Repts.- 1990.- 8, № 9. P.554-557.

238. Andersson W.S. Mass propagation by tissue culture: principls and techniques // Proceedings of confer. On nursery production of fruit plants through tissue culture-applications and feasibility Maryland - 1980. - P. 1-10.

239. Arapetyan E., Bilinska I. Antibiotics help plants in struggle with bacteria and fungi: Abstr. 11th Congress of the Federation of European societies of Plant Physiology, Varna, 7-11 Sept., 1998 // Bulg. J. Plant Physiol. 1998. - Spec, issue.-P.223.

240. Asokan M., O' Hair S., Litz R. In vitro plant development from bulbil explants of two Dioscorea species // Hort. Science 1983. - 18, №5. - P.702-703.

241. Auer A., Leonhardt W. Zertifiziertes Rebenvermehrungsgut in vitro-kultur von Reben.T.4 // Winzer. 2000. - jg.56, H.9. - S. 19-22.

242. Baburaj S., Ravichandrum P., Selvapandian M. In vitro adventitions shoot177formation fron leaf cultures of Clerodendrum inerme (L.) Gaertn. II Indian J. Exp.Biol. 2000. - 38, №12. - P.1274-1276.

243. Bach A., Warchot M., Gtogowska-Szwiec M. Indukcia kalusa hiacynta (Hyacinthus orientalis L.) // Rocz. AR poznaniu. Ogrod. 2000. - №29. -P.5-9.

244. Baenziger P.S., Kudirka D.T., Schaeffer G.W., Lazar M.D. The significance of doubled haploid variation // Gene manipulation in plant improvement. New York; London, 1984.- P.385-414.

245. Bais H.P., Walker T. S., McGrew J.J., Vivanco J. M. Factors affecting growth of cell suspension cultures of Hypericum perforatum L. (St. John's wort) and production of hypericin I I In Vitro Cell, and Dev. Biol. Plant. 2002. - 38, №1.-C. 58-65.

246. Bao-Hong Z., Fang L., Chang-Bing Y. Plant regeneration via somatic embryogenesis in cotton // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2000. - 60, №2. - c.89-94.

247. Barabas Z., Kertess Z., Purnhauser L., Sagi F., Pauk J. Breeding on a cellular level and research on Fi hybrid development // Curr. Options Cereal Improv. -Dordrecht etc. 1989. - P. 11-18.

248. Barghchi M., Turgut K., Scott R., Draper J. High-frequency transformation from cultured cotyledons of Arabidopsis thaliana ecotypes "C24" and "Landsberg erecta" // Plant growth Regul. 1994. - 14, №1. - C.61-67.

249. Barker P., Fossard R., Bourne R. Progress toward clonal propagation of Eucaliptus species by tissue culture techniques I I Comb. Proc. / Internat. Plant Propagator's Soc. Milltown. - 1977. - vol. 27. - P.546-556.

250. Barwale U.B., Widholm J.M. Somaclonal variation in plants regenerated from cultures of soybean // Plant Cell Rep. 1987. - 6, №5. - P.365-368.

251. Bass A., Hughes W. Conditions for isolation and regeneration of viable protoplasts of oil palm (Elaeis guineensis) // Plant Cell Repts. 1984. - 3, №5. -P.169-171.

252. Berardi G. Indagine preliminare sulla rigeneration di plantule «in vitro» da rose petalidi // Colt. Prot. 1989. V.18, № 8-9. P.l 11-113.

253. Berthouly M., Guzman N., Chatelet P. Micropropagation in vitro dedifferentes ligness de Coffea arabica var. Camitor //12 Colloq. Sei. int. café, Montreux / Paris/ 1988. - P.462-467.

254. Besendorfer V., Zoldos V., Pescan Т., Krsnik-Rasol M., Littvay Т., Papes D. Identification proteinal cytogenetical and biochemical markers in bioindication of common oak forests // Phyton. 1996. - 36, №3. - P. 139146.

255. Bhalla P.L., Sweeney К. Direct in vitro regeneration of the Australian fan flower, Scaevola aemula R. Br. II Sei. hort. (Neth.). 1999. - 79, №1-2. -P.65-74.

256. Bhatt I.D., Dhar U. Micropropagation of Indian wild strawberry // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2000. - 60, №2. - c. 83-88.

257. Bhattacharya K., Sengupta L., Sharma N. Effect of some growth regulators on callusing in Dalbergia sissoo II Bionature. 1990. - 10, №1-2. - P. 19-22.

258. Bhattacharya P., Dey S., Das N., Bhattacharyya В. C. Rapid mass propagation of Chrysanthemum morifoliumby callus derived from stem and leat explants // Plant Cell Repts. 1990. - 9, № 8. - P.439-442.

259. Bhojwani S., Millina K., Cohen D. In vitro propagation of Pyrus purifolia II Sei. Hort. (Neth.) 1984. - 23, №3. - P.247-254.

260. Bi C., Huo Y., Feng Q., Zhou C., Huang Z., Shen Y. Предварительные исследования по быстрому микроразмножению Cymbidium hybridum II J. Hebei. Norm. Univ. 2002. - 26, №2. - P.190-192.

261. Binsfeld P.C., Schnabl H. Analisis of somatic embryogenic-derived somaclones of perennial Helianthus sp. II J.Appl.Bot.- 2000. 74, №5-6. — P.224-228.

262. Binsfeld P.C., Wingender R., Wunder J., Schnabl H. Direct embruogenesis in the genus Helianthus and RAPD analysis of obtained clones // J. Appl. Bot. -1999.-73, №3-4.-P. 63-68.

263. Blakesley D., Kieman RJ. Cryopreservation of axillary buds of a Eucalyptus grandis X Eucalyptus camaldulensis hybrid // Cryo-Lett. 2001. - 22, №1. -P.13-18.

264. Bohanec B., Osvald J. Moznosti zlahtnjenja radica (Cichorium intybus L.) z vkljucevanjem biotehnoloskih postopkov // Zb. Biotehn. Fak. Univ. Ljubljani.- 1987. 47. - P.33-37.

265. Bohanes B., Jakse M., Ihan A., Javornik B. Studies of gynogenesis in onion (Allium cepa L.): Induction procedurus and genetic analysis of regenerants I I Plant Cell, Tissue and Organ Cult.-1995. -40, №3. -P.205-208.

266. Bojarczyk K. Regeneracja wybranych odmian rozaneznikow z pakow boczych I prybyszowych w kulturach in vitro II Arbor. Kor. 1996. - 4, №41. -P.109.

267. Bonga J.M. Applications of tissue culture in forestry // Applied and fundamental aspects of plant cell, tissue and organ culture, Ed. by Reinert J., Bajaj Y.P.S. 1977. - Part 5. - P.93-107.

268. Borad V.P., Barvt D.M., Macwan S.J., Mehta A.R. Regeneration of plantlets in Sapindus trifoliatus L. II Indian J. Exp. Biol. 2001. - 39, №12. - P. 12881292.

269. Borthakur M., Hazarica J., Singh R.S. A protocol for micropropagation of Alpinia galanga II Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1998. - 55, №3. - P.231-233.

270. Boudok A., El-Agamy S., Gabr M., El-Din L., Khalil F. In vitro micropropagation of «Wardi Red» pomegranate (Punica granatum L.) // Egypt. J. Hort. 1986. - 13, №2. - P. 103-108.

271. Branchard M. Application des vitromethodes a la mise en oeuvere de programmes de selection de plantes resistantes a des maladies // Agronomie. -1984.-4,№9.-P.905-911.

272. Brandle J.E., Rosa N. Heretability for yeld, leaf: stem ratio and stevioside content estimated from a Candrace Cultivar of Stevia rebaudiana II Can. J. Plant Sci. 1992. - 72, №6.-P.1263-1266.

273. Bransal R., Driver J.A., Durzan D.J. Adventitious embriogenesis and plant regeneration from rescued embryod of peach, Prunus persica L. II Indian. J. Exp. Biol. 1991. - 29, №4. - P.334-337.

274. Brother H., Naumann K., Griesbach E. Die Oflecken kranknelt der Begonien (Xanthomonas campestris pv. begonieae) in der DDR // Nachrbl. Pflzschutz in DDR- 1985.- 39,№1.- P.M.

275. Burns J.A., Schwarz O.J. Bacterial stimulation of adventitions rooting on in vitro cultured slash pine (Pinus elliottii Engelm.) seedling explants // Plant Cell Repts. 1996. - 15, №6. -P.405-408.

276. Cameiro M.F.N., Ribeiro T.M. In vitro culture of meristems and plant regeneration in cvs. Caturra, Catual and in two selections S.4 Agaro and DK 1/6 // Physiol. Plant. 1990. - 79, №2, Pt.2.- P.5.

277. Cane K., Bandyopadhyay S., Rasmussen G. Efficient plant regeneration from seedling explants of two commercially important temperature eucalypt species. Eucalyptus nitens and E. globules // Plant Sci. - 1999. - 140, №2. -P.189-198.

278. Cavallini A., Lupi M. Cytological study of callus and regenerated plants of sunflower {Helianthus annuus L.) // Plant Breed. 1987. - 99, №3. - P.203-208.

279. Chalupa V. Rust lesnich stromu vypestovan ych in vitro z organovych kultur a ze somatickych embryi // Les. Pr. 2000. - 79, №11. - P.498-501.

280. Chalupa V. Somatic embriogenesis and plant regeneration in Norway spruce СPicea abies L. (Karst.) II Acta Univ. Carol. Biol. 1997. - 41, №1-2. -P.13-22.

281. Chamhum S.L.C., Vieccelli J.C., Lopes S.D., Campos O.W., Sister C.E. Micropropaga de caquizeiro (Diospyros kaki L.) por meio de gemas laterais e apicais de plantas adultas I I Rev. ceres / Univ. fed. Vicosa.- 1999. 46, №265. - P.267-277.

282. Chand H., Pearson M.N., Lovell P.H. Rapid vegetative multiplication in Colocasia esculenta (L) Scott (taro) // Plant Cell, Tissue and Organ Cult.1998. 55, №3. - P.223-226.

283. Chaturvedi H., Misra P., Sharma M. In vitro multiplication of Rosmarinus officinalis L. II Z. Pflanzenphysiol. 1984. - 113, №4. - P.301-304.

284. Chen D., Xu C., Zhang S. Изучение системы непосредственной регенерации побегов Citrus sinensis in vitro с большим выходом II J. Zhejiang Univ. Agr. And Life Sei.- 2000. 26, №5. - S.493-499.

285. Chen H. Цито-гистологическое исследование на адвентивных почках дифференцирующихся из кончиков адвентивных корней Trichosanthes kirilowii II Acta bot. yunnanica. -2001.-23, №4. P.488-492.

286. Cheng Z.-M., Schurr J.P., Dai W. Micropropagation of Betula platyphylla "Fargo" via shoot tip culture and regeneration from leaf tissues// J. environm. Hortic. 2000. - 18, №2. -P.l 19-122.

287. Chirta V.D.S., Padmaja G. Clonal propagation of mulberry (Morus indica L. cultivar M-5) through in vitro culture of nodal explants II Sei. hort. (Neth.).1999. 80, №3-4. -P.289-298.

288. Chua В., Kunisaki J., Sagawa Y. In vitro propagation of Dracaena marginata L. //Hort. Sei. 1981.- 16,№4.-P.494-495.

289. Collins G.B., Vian W.E., Phillips G.C. Use of 4-amino-3,5,6-trichlorpicolinic acid as an auxin source in plant tissue cultures II Crop. Sei. 1978. - 18, №2. -P.286-288.

290. Corley R.H.V., Wong C. Y., Wooi K.C. Early results from the first oil palm clone trails // Oil Palm in agriculture in the Eighties. PORIM Confer., Kuala Lumpur. 1981.-P. 1-27.

291. Cossio F., Bossi L. Mikropropagazione delcrizanttemo//Colt. prot. 1982. -5, №45. -P. 49.

292. Cronauer S., Krikorian A.D. Rapid multiplication of bananas and plantains by in vitro shoot tip culture // Hort. Sei. 1984. - 19, №2. - P. 234-235.

293. Cuellar J. M. Propagación vegetative in vitro a partir de hojas jóvenes de cana de azúcar {Saccarum officinarum L.) // Agron mesoamer. 1997. - 8, №1. -P.74-80.

294. Carmen M.M., Garcia M.D. Analysis of genetic variability in long-term callus cultures and regenerated plants of maize // Cytologia. 1998. - 63, №2. -P.183-190.

295. Chirta V.D.S., Padmaja G. Clonal propagation of mulberry {Morus indica L. cultivar M-5) through in vitro culture of nodal explants // Sei. hort. (Neth.). -1999. 80, №3-4. - P.289-298.

296. Czechowiak C., Dubois J., Vasseur J. Culture in vitro du Stevia rebaudiana Bertoni //C.R.Acad. sei. 1984. - ser.3, 298, №6. - P. 173-176.

297. Dahleen L.S. Improved plant regeneration from barley callus cultures by increased cooper levels // Plant Cell, Tissue and organ Cult. 1995. - 43, №3. - P.267-269.

298. Dantu P., Bhojwani S. In vitro propagation and cort formation in gladiolus // Gartenbanbauwissenschaft. 1987. -52, №2. -P.90-93.

299. Daquinta M., Concepción O., Trujillo R., Cobo I., Escalona M., Borroto C. Callus formation from inflorescences in Rhapis excelsa II Principes. 1997. -41, №1. -P.50-51.

300. Das A., Paul., Chaudhuri S. Micropropagation of sweet organce, Citrus sinensis Osbeck. for the development of nucellar seedlings // Indian J. Exp. Biol. 2000. - 38,№3. - P.269-272.

301. Das D.K., Prakash N. S., Bahalla-Sarin N. An efficient regeneration system of black gram (Vigna mungo L.) through organogenesis // Plant Sei. 1998. -134, №2.-P. 199-206.

302. Datta S., Datta K. Auxin induced regeneration of forest tree Dalbergia sisso Roxb. through tissue culture // Curr. Sei. (India). - 1983. - 52, №9. - P.434-436.

303. Davies P.A., Morton S. A comparison of barley isolated microspore and anther culture and the influence of cell culture density // Plant Cell Repts. -1998. 17, №3. - P.206-210.

304. De Carlo A., Benelli C., Lambardi M. Development of a shoot-tip vitrification protocol and comparison with encapsulation-based procedures for plum {Prunus domestica L.) cryopreservation // Cryo-Lett. 2000. - 21, №4. -P.215-222.

305. De Klerk G.J., Ter Brugge J. Effectiveness of indoleacetic acid, indolebutyric acid and naphthaleneacetic acid during adventitions root formation in vitro in Malus "Jork 9" II Plant Cell, Tissue and Organ cult. 1997. - 49, №1. - P.39-44.

306. De Mello C.D., Pasqual M., Inshida J.S. Efeitos do acido indolbutirico e sais mineralis sobre o enraizamento in vitro de brotos do ponta-enxerto de macieira MI-793 // Rev. ceres. Univ. fed. Vicosa. 1994. - 41, №236. -P.379-385.

307. De Rijck G., Schrevens E. Comparison of the mineral composition of twelve standard nutrient solutions // J. Plant Nutr. 1998. - 21, №10. - P. 2115-2125.

308. Debergh P. Effects of agar brand and concentration on the tissue culture medium // Physiol.plant. 1983. - 59, №2. - P.270-276.

309. Demeke Т., Hughes H.G. Micropropagation of Phytolacca dodecandra through shoot-tip and nodal cultures // Plant Cell Repts. 1990. - 9, №7. -P.390-392.

310. Deshpande S.R., Josekutty P.C., Prathapasenen G. Plant regeneration from aillaiy buds of a mature tree of Ficus religiosa II Plant Cell Repts. 1998. -17, №6-7.-P.571-573.

311. Diaz Т., Mosquer M.V., San Rose m.C., Gonzales E. Effect of culture media and explant type on propagation of Vitis vinifera L. cv. Albarino // Vitis: viticulat and Enol Absir. 1999. - 38, №3. - P.6-7.

312. Ding L., Liu G., Tian W., Jing X., Zhang Y. Исследования по культуре ткани и клональному размножению Lilium congiflorum х L. formosanum II J. Northw. Norm. Univ. Natur. Sci. 2001. - 37, №1. - P. 80-82.

313. Dobrota C. Relations between growth, chlorophyll content and nitrate distribution in Zea mays /growing under nitrogen limitation // Stud. Univ. Babes-Bolyai. Biol. 1999. - 44, № 1-2. - P. 109-116.

314. Dolezel J., Lucretti S., Novak F. The influence of 2,4-D on cell cycle kinetics and sister-chromatid exchange frequency in garlic {Allium sativum L.) meristem cells // Biol, plant. 1987. - 29, №4. - P.253-257.

315. Dujnkova M., Mala J., Chalupa V. Vegetativni rozmnozovani breku {Sorbus torminalis L. Crantz) a oskeruse {Sorbus domestica L.) in vitro II Pr. VULHM. 1992. - №77. - P.27-48.

316. Durmishidze S.V., Gogoberidze M.K., Mamaladze M.N. Regeneration of plants from callus tissue of Yucca gloriosa buds // Z.Pf^lanzenphysiol. 1983.- Ill,№2.-P. 179-182.

317. Duron M. In vitro propagation of ornamental INRA Malus x Perpetu Evereste // Sci. hort.(Neth.) 1984. - 22, №1-2. - P. 133-137.

318. Echeverrigay S., Biaso S., Fracaro F. Clonal micropropagation of Roman chamomile (Anthémis nobilis L.) II J. Herbs, Spices and Med. Plants. 2000. -7, №2.-P. 35-41.

319. Fadel F., Wenzel G. Medium-genotype-interaction on androgenetic haploid production in wheat // Plant Breed. 1990. - 105, №4. - P.278-282.

320. Fantini M., Cortezzi G. A micropropagation system for Eucalyptus dunnii X Eucalyptus sp. II Ann. Sci. forest. 1989. - 46, Suppl. - P. 136-139.

321. Fartais L., Strajeru S., Avramiuc M. Conservarea explantelor de cartof pe mediu cu inhibitor osmotic (Monitol): Lucr. 19 Simp. nat. genet, veg. si anum., Suceava, 5 -7 sept., 1996 // Cere. Genet, veg. si anim. 1998a. - 5. -P.231-236.

322. Fartais L., Verdes C., Avramiuc M. The regeneration capacity of potato expiants stored on media with growth inhibitors // An. sti.Univ. Iasi. Sec. 2 a.- 1998b.-44.-P.69-73.

323. Fiore M.C., Trabace T., Sunseri F. High frequency of plant regeneration in^ sunflower from cotyledons via samatiy embryogenesis // Plant Cell Repts. -1997.- 16, №5. P.295-298.

324. Fisher M., Ziv M.,Vainstein A. An efficient method for adventitions shoot regeneration from cultured carnation petals // Sci. Hortic.Cult.1993. V.53, №1-2. P.231-237.

325. Founda R., Jambor-Benczuc E., Schmidt G. Preliminary results in the micropropagation of Persica x davidiopersica «Piroska» // Kertesz. es elelmiszerip. egy. kozl. 1994. - 54. - P.95-100.

326. Franck-Duchenne M., Wang Y., Tahar S. B., Beachy R. N. In vitro stem elongation of sweet pepper in media containing 24-epi-brassinolide // Plant, Cell, Tissue, Organ Cult. 1998. - 53, №2. - P.79-84.

327. Fuernkranz H.A., Nowak C.A., Maynard C.A. Light effects on in vitro adventitions rooti formation in axillary shoots of mature Prunus serotina II Physiol. Plant. 1990. - 80, №3. -P.337-341.

328. Furuya T.,Asada Y., Mizobata S., Matsuura Y., Hamada H. Biotransformation of p-aminobenzoic acid by cultured cells of Eucalyptus perriniana II

329. Phytochemistry. 1998. - 49, №1. - P. 109-111.i

330. Gamborg O.Z., Waller R.A., Gima K. Nitrient requirement of suspension cultures of Soybean root cells // Exp. Cell Res. 1968. - 50, №1. - 151-158.

331. Gautheret R.J. Introduction on problems des cultures in vitro de végétaux ligneux II Bull. Soc. Bot. Fr./ Actual. Bot. 1983. - №2. - P.5-10.

332. Genkov T., Novoselska P., Gemishev T., Ivanova I. Effect of benzyladenin, 4

333. George J., Hofer E., Leike H., Dautzenberg H., Loth F. The use of a novel stabilizing substrate for the in vitro cultivation of cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis) II Plant Cell Repts. 1983. - 2, № 4 - P. 189-191.

334. Gerthere D., Kalnina J., Tomsone S. Rhododendron hybrid multiplication by micropropagation technique^// Exp. Biol. 1992. - №3^1. - P.67-68.

335. Ghosh P.K., Chaterjee A. An in vitro induction and maintenance of epicotyl derived callus culture of jute // Indian Biol. 1990. - 22, № 1. - P.38-39.

336. Goh C.J., Lakshmanan P., Lee C.L., Loh C.S., Tanaka M. a simple and efficient method for clonal propagation of Casuarina sumatrana (de Vriese) L. Johnson II Plant Growth Regul. 1995. - 17, №2. - P.l 15-120.

337. Goh C.J., Sim G.E., Morales C.L., Loh C.S. Plantlet regeneration through different morphogenic pathways in pomello tissue culture // Plant, Cell, Tissue, Organ Cult. 1995. - 43, №3. - P.301-303.

338. Gonzalez M.V., Lopez M., Valdes A.E., Ordas R.J. Micropropagation of three berry fruit species using nodal segments from field-grown plants // Ann. Appl. Biol. 2000. - 137, №1. - P.73-78.

339. Gorst J., De Fossard R. Riboflavin and root morphogenesis in Eucalyptus II Plant Cell cultures results and perspectives (Ed. By Sala F. et al.), 1980. -p.271-275.

340. Grafe C., Wricke G. Increase of in vitro regeneration in Malus domestica by the application of phosphatase inhibitors // Plant Breed. 1998. - 117, №6. -P.563-566.

341. Gupta P.K., Mascarenhas A.F., Lagannathan V. Tissue culture of forest trees -clonal propagation of mature trees of Eucalyptus citriodora Hook, by tissue culture // Plant Sci. Let^- 1981.-20, №2. P. 69-92.

342. Haoru T., Zhenglong R., Gabi K. Somatic embryogenesis and organogenesis from immature embryo cotyledons of three sour cherry cultivars {Prunus cerasus L.) II Sci. Hort. (Neth.).- 2000. 83, №2. - P. 109-126.

343. Hartmann H.T., Kester D.E. Plant propagation // Principles and Practices. -New Jersey: Prentice Hall, 1975. 450 p.

344. Hellman H., Schmidt R., Willmitzer L., Frommer W.B. Identification of mutants in metabolically regulated gene expression // Plant. J. 1997. - 11, №1. - P.53-62.

345. Hemphill J.K., Maier C.G.A., Chapman K.D. rapid in vitro plant regeneration of cotton (Gossypium hirsutum L.) II Plant Cell Repts. 1998. - 17, №4. -P.273-278.

346. Hicks G. Patterns of organ development in plant tissue culture and the problem of organ determination // Bot. Rev. 1980. - 46, №1. - P. 1-23.

347. Hildebrandt V., Harney P. In vitro propagation of Deutzia x lemoinei var. campacta И J. Hortic. Sei. 1984. - 59, №4. - P.545-548.

348. Hirimburegama K., Gamage N. In vitro callus and cell cultures of Gossypium hyrsutum L. (Cotton) II J. Nat. Sei. Counc. Sri Lanka.- 1994. 22, №4. -P.305-312.

349. Hirimburegama K., Gamage N. In vitro multiplication of local cultivars of banana (Musa spp.) through shoot-tip culture // J. Nat. Sei. Counc. Sri Lanka. 1996. - 24, №1. - P.9-20.

350. Hitmi A., Barthomeuf C., Sallanon H. Cryopreservation of Chrysanthemum cinerariaefolium shoot tips. Effects of pretreatment conditions and retention of biosynthetic capacity // Ciyo-Lett. 1999. - 20, №2. - P. 109-120.

351. Hong L., Xiaolong Y. Seed size is closely related to phosphorus use efficiency and photosynthetic phosphorus use efficiency in common bean // J. Plant Nutr. 1999. - 22, №6. - P. 877-888.

352. Hu K.L., Matsubara S., Murakami K. Haploid plant production by anther culture in carrot (Daucus carota L.) II J. Japan. Soc.Hort.Sci. 1993. - 62, №3-P.561-565.

353. Huang J., Ye K., Chen G., Li В. Изучение факторов, влияющих на соматический эмбриогенез Carica papaya II Acta sei. nature, univ. Sutyatseni. Natur. Sei. 1996. - 35, №4. - P.90-94.

354. Hwang S., Shen C., Lin H. Cultivation of banana using plantlets from meristem culture // Hort Sei. 1984. - 19, №2. - P. 231-233.

355. Jaiswal V.S., Amin M.N. In vitro propagation of guava from shoot cultures of mature trees // J. Plant Physiol. 1987. - 130, №1. - P.7-12.

356. Japichino G., McCulloch S., Chen Т.Н. Adventitions shoot formation from leaf explants of Rhododendron II Plant, Cell, Tissue, Organ Cult. 1992. - 30, №3. - P.237-241.

357. Jayasree N., Devi B.P., Reddy P.V. Production of synthetic seeds and plant regeneration in Rosa hybrida L. cv. King's Ransom // Indian J. Exp. Biol. -1997. 35, №3. -P.310-312.

358. Jones L.H., Scott T.R. Transfer nucleic acid modification and its relationship to tumorous and nontumorous plant growth // Plant Physiol. 1981. - 67, № 4. -P.535-538.

359. Jones T.C., Batchelor C.A., Harris P.J.C. In vitro culture and propagation of Acacia species (A. binenosa, A. holosericea, A. salicina, A. saligna and A. sclerosperma) // Int. Tree Crops J. 1990. - 6, №2-3. - P.183-192.

360. Joshi S.D., Dhawa R.D. In vitro embryogenesis in Brassica campestris var Sarson //Embryology and seed reproduction: XI Int. Symp., Leningrad, USSR, July 3-7, 1990-Leningrad, 1990.-P.68.

361. Kamenicka A. Sposob rozmnozovania Magnolie soulangeovej metodou in vitro: Пат. 278139 Словакия, МКИ6 A01H 4/00; Ustav ekologia lesa SAV, Zvolen, SK. №84493; Заявл. 06.08.93; Опубл. 07.02.96.

362. Kaminska A., Rypak M. Optimalizacia rastu kalusovej kultury pagastana konskeho {Aesculus hippocastanum L.) vo vztahu k pastovym regulatorom // Biologia. 1988. - 32, №1. - P.61-69.v ,

363. Kaneko K. -Kariological studies on callus cells of Haplopappus gracilis II Kromoso^a. 1974. - №95. - P.2943-2949.

364. Kantharajah A.S., Dewitz I., Jabbri S. Auswirkungen unteschiedlicher Naahrmedien, Wachstumsregulatoren und Explantatquellen auf die in-vitro-Vermhrung von Granatapfel (Punica granatum L.) // Erwerbs-Obstau. 1998. - 40, №2. - P.54-58.

365. Karhu S.T., The quality of applied carbohydrates affects the axillary branching of apple microshoots// Bull. rech, agron. Gembloux. 1995 - 30, №1-2. p. 21-27.

366. Kaushal R.P., Kaushal В., Rashmi N., Vaid A., Singh B.M. Induction of callus cultures and regeneration of somaclones from different explants of urdbean Vigna mungo (L.) hepper. and their evaluation for resistance to

367. Cercospora canescens// Proc. Indian Nat Sci. Acad. B. 1997. - 63, №4. -P.359-367.

368. Kawata S., Ushida C., Kawai F., Kanamori M., Kuriyama A. Micropropagation of passion fruit from subcultured multiple shoot primordial // J. Plant Physiol. 1995. - 147, №2. - C.281-284.

369. Keller W.A. In vitro production of haploids in crop plants from microspores // Can. J. Genet, and Cytol. 1980. - 22, №4. - P.667.

370. Keskitalo M., Rohto A., Savela M., Valkonen J. P.T., Simon J., Pehu E. Alterations in growth of tissue-cultured tansy (Tanacetum vulgare L.) treated with antibiotics // Ann. Appl. Biol. 1998. - 133, №2. - P.281-296.

371. Kim J., La Montte C., Hack E. Plant regeneration in vitro from primery leaf nodes of soybean (Glycine max) seedlings // J. Plant Physiol. 1990. - 136, №6. - P.664-669.

372. Komalavalli N., Rao M.V. In vitro micropropagATION of Gymnema elegans W and A a rare medicinal plant // Indian J. Exp. Biol. - 1997. - 35, №10. -P. 1088-1092.

373. Kornova K., Michailov J., Astadjov N. Application of in vitro techniques forpropagation of Rosa Kazanlika Top. (Rosa dameascena var. trigintipetala):

374. Kozai Т., Kubota C., Watanabe I. Рост растений гвоздики in vitro, культивируемой фотоавтотрофно и фотомиксотрофно на различных средах // Environ. Contr. Biol. 1990. - 28, №1. - Р.21-27.

375. Krikorian A.D. Cloning higher plants from aseptically cultured tissues and cells // Biol. Rev. 1982. - 52, №2. - P. 151-218.

376. Krishnan P.N., Sudha C.G., Seeni S. Rapid propagation through shoot tip culture of Trichopus zeylanicus Gaerthn., a rare ethnomedicinal plant // Plant Cell Repts. 1995. - 14, №11.-P.708-711.

377. Kubalakova M., Tejklova E., Griga M. Some factors affecting root formation on in vitro regenerated pea shoots // Biol, plant. 1988. -30, №3. - P.179-184.

378. Kulkami V.M., Ganapathi T.R., Suprasanna P., Bapat V.A., Rao P.S. In vitro propagation in Ensete superbum (Roxb.) Cheesman: A species closely related to Musa // Indian J. Exp. Biol. 1997. - 35, №1. - P.96-98.

379. Kumar A., Sood A., Palni U.T., Gupta A.K., Palni L.M.S. Micropropagation of Rosa damascena Mill from mature bushes using thidiazuron // J. Hort. Sei. and Biotechnol. 2001. - 76,№1. -P.30-34.

380. Laemli U.K. Cleavage of structural protein during assembly of the head of bacteriophage // Nature. 1970. -227, №6. - P.680 - 684.

381. Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement // Theor. and Appl. Genet. - 1981.-60, №4. - P. 197-214.

382. Lazar M., Gachita-Cosma D. Procedee de multiplicare "in vitro''' la crizanteme // Contrib. Bot.Univ. Babes Bolyai. Cluj - Napoca. - 1982. - P. 231-242.

383. Le C.L. Culture in vitro du genes banc (Artemisia umbelliformis Lam.)/7 Rev. Suisse viticult., arboricult. et horticult. 1998. - 30, №3. - P.153-156.

384. Le C.L., Julmi C., Tschuy F. Regeneration et multiplication in vitro de Gerbera jamesonii Bolus. II Rev. suisse viticult., arboricult. et horticult. -1999. 31, №4. -P.207-211.

385. Le N. M., Ducommun C., Weber G., Dorion N., Bigot C. Observations sur la multiplication in vitro de la hampes florales prelevees chez des bulbes en cours de conservation II Agronomie. 1987. - 7, №5. - P.321-329.

386. Ledbetter C.A. In vitro cultures and the development of new fruit varieties // Comb. Proc. / Inter. Plant Propagators 's Soc. Seattle (Wash.), 2001. -vol.50.-P.574-576.

387. Lemoine M.C., Gianinazzi S., Gianinazzi-Pearson V. Application of endomycorrhizae to commercial production of Rhododendron microplants II Agronomie . 1992. - №12. - P.881-885.

388. Li H.-Z., Pang C.-M., Du Y.-J., An L.-M., Yang H.-Y. Изучение соматического эмбриогенеза Phlox drummondii II Yunnan zhiwu yanjiu = Acta bot. Yunnanica. 1996. 18, №3. - P.341-344.

389. Liang G.H., Xu A., Hoang T. Direct generation of haploids via anther culture // Crop Sci. 1987. - 27, №2. - P.336-339.

390. Liu T., Zhao H., Chen F., Cui В., Zhu J. Культивирование отрезками стеблей и размножение в пробирках хмеля обыкновенного {Humulús lupulus L.) II Acta Bot. Boreali-Occident. Sin. 2000.- 20, №5. - P.778-783.

391. Llamoca Z.R.M., Aguiar L.F., Landsmann J., Campos F.A.P. Whole plant regeneration from the shoot apical meristem of Opuntia ficus-indica Mill. (Cactaceae) // J. Appl. Bot. 1999. - 73, №3-4. - P.83-85.

392. Lloyd D., Roberts A.V., Short K.C. The induction in vitro of adventitions shoots in Rosa II Euphytica. 1988. - 37, №1. - P.31-36.

393. Lopez-Delgado H., Jimenez-Casas M., Scott I.M. Storage of potato microplants in vitro in the presence of acetylsalicylic acid // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1998. — 54, №3. - P.145-152.

394. Mackevicius J. Peculiarities of rape callus growth and differentiation: Pap 1st Conf. Young Biochemists and Mol. Biologists Lithuania, Vilnius, 18 Dec., 1996 // Biologija. 1997. - №1. - P.121-124.

395. Maity S.K., De K.K., Kundu A.K. In vitro propagation of Mussaenda erythrophylla Schum and Trom cv. Scarlet through multiple shoot regeneration // Indian J. Exp. Biol. 2001. - 39, №11. -p.l 188-1190.

396. Marsolairs A. The commercial application of cereal haploidy // Curr. Options Cereal. Improv. Dordrecht etc., 1989. - P.211-214.

397. Masaru N., Yoichiro H., Masahiro M. Adventitions shoot regeneration from cultured petal explants of carnation // Plant, Cell, Tissue, Organ Cult. 1994. - 36, №1. -P.15-19.

398. Matthys-Rochon E., Piola F., Deunff E., Mol R., Dumas C. In vitro development of maize immature embryos: a tool for embryogenesis analysis // J. Exp. Bot. 1998. - 49, №322. - P. 839-845.

399. Matsuoka M., Terauchi Т., Kobayashi M., Shoda M., Nakano H. Isolation of protoplasts from suspension culture and subsequent shoot regeneration in sugarcane // JARQ: Jap. Agr. Res. Quart. 1996. - 30, №1. - P.21-26.

400. Mekers O., Meiresonne L., Meneve I. Etylene production inhibitors can improve in vitro propagation of roses // Meded Fac. landbouwwetensch. Rijksuniv. Gent. 1984. - 49, №3в. - P.l 139-1144.

401. Meynet J., Duclos A. Culture in vitro de la renoncule des feuristes {Ranunculus asiaticus L.). II. Production de plantes par culture d'antheres in vitro // Agronomie. 1990. - 10, №3. -P.213-218.

402. Mitrofanova O.V., Yezhov V.N. Plant regeneration of Clematis L. through somatic embryogenesis in vitro // Бюл. Гос. Никит, ботан. Сада. 2002. -№86.-Р. 16-19.

403. Mitrofanova O.V., Yezhov V.N. The biotechnological investigation of plants in the south of Ukraine// «Biotechnology Approaches for Exploitation and preservation of Plant Resources» Abstracts - Yalta, Ukraine (26-31 May, 2002). - Yalta,2002. - P.22-23.

404. Mix-Wagner G., Evena T. Positive effect of cefataxime on plant regeneration from Cichorium intybus L. leaf material // Landbauforsch. Volkenrode. -1996. 46, №4. - P.166-168.

405. Modgil M., Sharma D.R., Bhadrwaj S.V. Micropropagation of apple cv.Tydeman's Early Worcester // Sci. hort.(Neth.). 1999. - 81, №2. - P. 179-188.

406. Mohan M.I., Krishnamurthy K.V. Somatic embrlogenesis and plantregeneration in pigionpea // Biol, plant. 2002. 45, №1. - P. 27-32.

407. Moreira M.F., Appezzato-Gloria B., Zaidan L.B.P. Anatomical aspects of IBA-treated microcuttings of Gamphrena macrocephala St.-Hil.il Braz. Arch.Biol. and Technol. 2000. - 43, №2. - P.221-227.

408. Morini S., Sciuti R. In vitro propagation of quince clonal rootstocks // Agriculture Mediterránea. 1991. - 121, №1. - P.656-659.

409. Morre J.L., Permingeat H.R., Romagnoli M.V., Heisterborg C.M., Vellejos R.H. Multiple shoot induction and plant regeneration from embryonic axes of cotton // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1998. - 54, №3. - P. 131-136.

410. Morrison R., Whitaker R., Evans D. Somaclonal variation: its genetic basis and prospects for crop improvement // Opportunities Phytochem. Plant Biotechnol.- 1988.-P.1-18.

411. Murashige T. Clonal crops through tissue culture // Plant tissue culture and its bio-technological application. 1976. - P.392-403.

412. Murashige T. Plant propagation through tissue cultures // Ann. Rew. Plant Physiol. 1974. - 25, №2. - P.135-166.

413. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassaysowith tobacco tissue culture // Physiol. Plantar. 1962. - 15, №2. - P. 473497.

414. Mythili J.B., Thomas P. Influence of ammonium to nitrate nitrogen ratio in 4 different basal media on callusing response of capsicum (Capsicum annuum1. grossum Sendt.) anthers // Indian J. Exp. Biol. 1999. - 37, №3. - P.314-316.

415. Mythili P.K., Madhavi A., Reddy V.D., Seetharama N. Efficient regeneration of peart millet (Pennicetum glaucum (L.) R. Br) from shoot tip cultures // Indian J. Exp. Biol. 2001. - 39, №12. - P.1274-1279.

416. Nagari S., Wakhlu A.K., Sharma R.K. Cytological analysis of embryogenic callus and regenerated plants of Baniumpersicum Boiss II Chromosome Sci. -1997.- 1, №2-3.-P.69-71.

417. Nakamura K., Soda R. Method for mass proliferation of mahogany tress by tissue culture: Заявка 1062866 ЕПВ, МПК7 A01H 4/00, C12N 5/00/ Sumitomo Foresty Co., Ltd.- № 979441102; Заявлк) 14.10.97; Опубл. 27.12.00.-Бюл.№ 00/52.

418. Nayak S., Sen S. In vitro propagation of Ornithogalum umbellatum through direct organogenesis // Indian J. Exp. Biol. 1995. -33, №2. - P. 144-146.

419. Nehra N.S., Kartha K.K., Stushnoff C. Nuclear DNA content and isozyme variation in relation to morphogenic of ctrawberry (Fragaria ananassa) callus cultures // Can. J. Genet. Cytol. 1991. - 69, № 3. - P.239-244.

420. Neskovic M. Vegetativno razmnozavanje belosljive (Prunus domestica L.) u kulturi in vitro // Arh. poljopr. nauke. 1985. - 46, №164. - S.375-380.

421. Onisei T. Rapid clonal propagation of scented pelargonium // An. Sti. Univ. Iasi. Sec.2. 1993. - 39. - P.125-127.

422. Orton T.J. Genetic instability in celery tissue and cell cultures // Iowa State J. Res. 1987. - 61, №4. - P.481 -498.

423. Ownley B.H., Benson D.M. Evolution of Penicillum jantinellum as a biological control of Phytophtora root rot of azalea // J. of Amer. Soc. of Hortic. Sei. 1992. - №3. - P.407-410.

424. Paludan N. Inactivation of viroids in chrysanthemum by low-temperature treatment and meristem tip culture // Acta Horticulture treatment Technical communications of IAHS. Intern. Sok. for Hort. Sei. - 1985. - Vol. 164. - P. 181-186.

425. Pan L., Yang Т. Изучение индукции эмбриоидов из неопыленных семяпочек табака // Acta Bot. Booreali-Occident Sin. 2000. -20, №1. - 5963.

426. Pasqual M., Ishida J.S. Influentia de regulators de crescimento sorbe a proliferacao in vitro de brotos do porta-enxerto de macieira MI 793 // Rev. ceres. Univ. fed. Vicosa. 1992. - 39, №226. - P.584-590.

427. Patil V., Jayanthi M. Micropropagation of two species of Rauwolfia (Apocynaceae) // Curr. Sei. (India). 1997. - 72, №12. - P.961-965.

428. Pavengerova D., Briza J., Prenerova E. Odvozeni primarnich kultur z kvetnich pupenu rododendrounu // Rostl. Vyroba. 2000. - 46, №6. - P. 281-283.

429. Peck D., Coming B. In vitro vegetative propagation of cape primrose usingthe corolla of the flower // Hort Science 1984. - 19, №3. - P.399-400.

430. Peck D., Comming B. In vitro propagation of Begonia X tuberhybrida from leaf sections // Hort. Sei. 1984. - 19, №3. - P.395-397.

431. Perez-Molphe-Balch E., Silvia-Figueroa C.A. In vitro propagation of Pelecyphora aselliformis Ehrenberg and P. strobiliformis Werdermann (Cactaceae)// In vitro Cell, and Dev. Biol. 2000. - 38, №1. - P.73-78.

432. Phillips G.C., Luteyn K.J. Effects of picloram and other auxins on onion tissue cultures // J.Amer.Soc.Hort.Sci. 1983. - 108, №6. - P.948-953.

433. Pierik R. Vegetative propagation of horticultural crops in vitro with special attention to shrubs and trees // Acta Horticultural- 1975. 54, №1. - P.71-82.

434. Pijnacker L.P., Ferwerda M.A. Effect of sucrose on polyploidization in early callus cultures of Solanum tuberosum //Plant, Cell, Tissue,- Organ Cult. — 1990. 21, №3.- P. 153-157.

435. Poli F., Bonora A., Vannini G.L., Bruni A., Fasulo M.P. Callus formation< cell suspension culture and plant regeneration in Ranunculus serbicus Vis II J.Plant Physiol. 1990. - 135, №5. - P.637-639.

436. Pua E., Chong C. Requirement for sorbitol (D-glucitol) as carbon source for in vitro propagation of Malus robusta №5 // Can. J. Bot. 1984. - 62, №7. -1545-1549.

437. Purohit S.D., Dave A. Micropropagation of Sterculia urens Roxb. an endangered tree species // Plant Cell Repts. - 1996. - 15, №9. - P.704 - 706.

438. Purohit S.D., Dave A., Kukda G. Micropropagation of safed musli (Chlorophytum borivilianum), a rare Indian medicainal herb // Plant, Cell, Tissue, Organ Cult. 1994. - 39, №1. - P.93-96.

439. Qu L., Polashock J., Vorsa N. A highly efficient in vitro cranberry regeneration system using leaf explants// Hort Science. 2000. - 35, №5. - P. 948-952.

440. Quraishi A., Mishra S.K. Micropropagation of nodal explants from adult trees of Cleistanthus collinus II Plant Cell Repts. 1998. - 17, №5. - P. 430-433.

441. Radulovich M., Plamenak M. Ispitivanje mogucnostti oziljavanja zrelih I zelenih reznica aktinidije u prirodnim uslovima// Poljoprivreda i sumarstvo. -1987. 33, №4. - S.147-153.

442. Raghothama K.G. Phosphate asquisition // Annu. Rev. Plant Physiol, and Plant Mol. Biol. Vol. 50. Palo Alto (Calif.), 2000. - P. 665-693.

443. Ram R.L., Nag K.K. Comparative studies on shoot formation from endosperm, embrio and in vzYroformed leaf cultures on Dendrophtoe falcate L.//Bionature. 1988. - 8, №1. -P.47-55.

444. Rao P.S., Raghava R.N.V. Propagation of sandalwood (Santalum album Linn.) using tissue and organ culture technique // Plant cell cult. Crop. Improv. Int. Symp. (Calcutta)/New-York: London. 1983. -P.l 19-124.

445. Rao P.V., Lakshmana D., De Deepesh N. Tissue culture propagation of tree legume Albizia lebbek (L.) II Plant Sci. 1987. - 51, №2-3. - P.263-267.

446. Rao S., Naidu M.M. A tissue culture derived pesticide tolerant line of chickpea (Cicer arietinum L.) II Proc. Indian Acad. Scio. Plant Sci. 1989. -99, №6. - P.523-527.

447. Rech S.B., Batista C.V.F., Schripsema R., Henriques A.T. Cell cultures of Rauwolfa sellowii: Growth and alkaloid production // Plant, Cell, Tissue and Organ Cult. 1998. - 54, №1. - C. 61-63.

448. Reddy P. C., Patil V., Prasad T.G., Padma K., Udayakurmar M. In vitro axillary bud break and multiple shoot production in Acacia auriculiformis by tissue culture technique // Curr. Sci. (India). 1995. - 69, №6. - P.495-496.

449. Rina A., Gupta S.D., De Deepesh N. Somatic embriogenesis and plant regeneration from leaf derived callus of winged bean Psophocarpus tetragonolobus (L.). II Plant Cell Repts. 1996. - 15, №7. - P.531-535.

450. Roberts H. Problems of long-term storage of seed and pollen for genetic resources conservation // Grop Genetic Resouces for Today and Tomorrow, ed. O.H.Frankel, J.G. Hawkes. Cambridge: Cambridge University Press, 1975. -P.269-296.

451. Romano A., Martins-Loucao M.A. Coservasao in vitro de germeplasma de sobreiro (iQuercus suber L.) // Rev. biol. (Port.). 1994. - 15, №1-4. - P.29-42.

452. Ronchi V.N., Caligo M.A., Nozzolini M. Stimulation of carrot somatic embryogenesis 'proline and serine // Plant Cell Repts. 1984. - 3, № 5. -P.210-214.

453. Roule D. Why does the UK lag on Rieger begonias // Grower. 1983. - n 99, № 13. -P. 21-29.

454. Rout G.R. Direct regeneration from leaf explants of Plumbago species and its genetic fidelity through RAPD markers // Ann. Appl. Biol.- 2002. 140, №3. -P.305-313.

455. Rout G.R., Das P. Effect of AgNC>3 on high frequency plant regeneration of Simarouba glauca Linn. II J. Appl. Bot. 1999. - 73, №1-2. - P. 15-19.

456. Rout G.R., Palai S.K., Pandey P., Das P. Direct plant regeneration of Chrysanthemum m. Ramat cv Deep Pink: Influence of explant source, nutritional factors and hormone regime // Proc. Nat. Acad. Sci, India. B. -1997. 67, №1.-P. 57-66.

457. Rout G.R., Samantaray S., Das P. Somatic embryogenesis and plant regeneration from callus of Acacia catechu a multipurpose leguminous tree // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. - 1995. - 42, №3. - P.283-285.

458. Roy S.K., Islam M.S., Hadiuzzaman S. Micropropagation of Elaeocarpus robustus Roxb. II Plant Cell Repts. 1998. - 17, №10. - P.810-813.

459. Rubos A.C., Pryke J.A. Morphogenesis in embryonic tissue cultures of apple // J. Hort. Sci. 1984. - 59, №4. - P.469-475.

460. Ryynanen L. Effects of early spring birch bud type on postth^w regrowth after prolonged cryostorage // Can. J. Forest Res. 1999. - 29, №1. - P.47-52.

461. Saini R., Iaiwal P. K In vitro multiplication of Peganum harmala. An important mecinal plant // Indian I'. Exp. Biol. 2000. - 38, № 5. - P. 499503.

462. Salomao L. C. C., Vieccelli J. C., Siqueira D.L., Otori W.C., Sister C.E. Micropropaga de caquizeiro (Diospyros kaki L.) por meio de gemas laterals e apicais de plantas adultas // Rev. seres / Univ. fed. Vicosa. 1999. - 46, №265.-P. 267-277.

463. Samantaray S., Rout G.R., Das P. An in vitro study on organogenesis in , TREMA ORIENTALIS (Blume) Linn. II Plant Sei. 1995. - 105, №1. - P.8794.

464. Sanduhu J.S., Gosal S.S., Gill M. S., Dhaliwal H. S. Micropropagation of Indica rice through proliferation of axillary shoots // Euphytica. 1995. - 81, №2.-P. 139-142.

465. Sarvesh A., Reddy T.R., Kavi K.P.B. In vitro anther culture and flowering in Guizotia abyssinica Cass II Indian J.Exp.Biol. 1996. - 34, №6. - P.565-568.

466. Satheeshkumar K., Seeni S. In vitro multiplication of Nothapodites foetidi (Wigth.) Sleumer through seedling expiant cultures // Indian J. Exp. Biol. -2000. 38, № 3. - P. 273-277.

467. Sbay H., Guillot J., Danthu P., Prat D. In vitro propagation of interspecific hybrids in Alnus II Ann. Sei. forest. 1989. - 46, Suppl. - P. 155-157.

468. Sharma D.R., Yadav N.R., Chowdhury J.B. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from shoot tip calli of wild date palm Phoenix sylvestris Roxb. II Indian J. Exp. Biol. 1988. - 26, №10. - P.854-857.

469. Sharon M., Shankar P. C. Somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf primordial of Phoenix dactylifera cv. yakubi II Indian J. Exp. Biol. -1998. 36, №5. - P.526-529.

470. Shibli R.A., Jaradat A.C.,Ajloni M.M.,Aijanabi S.In vitro multiplication of bitter almond {Prunus amygdalus) from North. Jordan // In vitro Cell, and Dev. Biol. Amin? -1996. 32, №3, Pt.2.- P.74.

471. Siebel J., Pauls K.P. A comparison of anther and microspore culture as a breeding tool in Brassica napus II Theor. and Appl. Genet. 1989. - 78, №4.- P.473-479.

472. Siria M.S., Wootton M., Cox J.M. Capillary electrophoresis of wheat varietal identification using pattern matching software // Austral. J. Agr. Res. 2001.- 52, №8. P.839-843.

473. Skoog F., Miller C. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue culture in vitro II Biological action of Growth Substances (Ed. by Porter H.K.) / Cambridge: Cambridge Univer. Press 1957. - Vol.11. -P.118-131.

474. Slabbert M.M., Lindeque J.M., Ferreira D.I. Rapid in vitro multiplication of Asparagus // S. Afr. J. Bot. 1990. - 56, №3. - P.331-335.

475. Snir I. In vitro propagation of "Canino" apricot // HortScience. 1984. - 19, №2.-P. 229-230.

476. Snir I. Micropropagation of red raspberry // Sei. hort. (Neth.) 1981. - 14, №2.-P. 139-143.

477. Sommer H.E. Organogenesis in woody angiosperms: applications to vegetative propagation // Bull. Soc. Bot. Fr.( Actual. Bot.). 1983. - 130, №2.- P.79-85.

478. Sonneborn H. Möglichkeiten zur Herstellung bakteriosefreier pelargonien // "TASPO-Mag."- 1984.- №2.-P.15-17.

479. Sreedhar L., Bewley J.D. Nitrogen- and sulfur-containing compounds enhance the synthesis of storage reserves in developing somatic embryos of alfalfa (.Medicago sativa L.) // Plant Sci. 1998. - 134, №1. - P.31-44.

480. Steward F.S. Growth and organized development of cultured cells. III. Interpretations of the growth from free cell to carrot plant // Amer. J.Bot.-1958. Vol. 45. - P.120-125.

481. Sung Z.R. Development states of embryogenic culture // Somatic Embryo genesis Carrots.Proc.Workshop, San Maniato, May 28-31, 1985 / Roma. -1985.-P.l 17-120.

482. Suri S.S., Jain S., Ramawat K.G. Plantlet regeneration and bulbil formation in vitro from leaf and stem explants of Curculigo orchioides an endangered medicinal plant // Sci. hort. (Neth.). 1999. - 79, №1-2. - P. 127-134.

483. Tabei Y., yamada Т., Morishita Т., Osaki T. Plant regeneration via shoot organogenesis from cotyledons in two wild Cucumis spesies, C. figarei and C. metuliferus IIJARQ, Jap. Agr. Res. Quart. 1998. - 32, №4. - P.281-286.

484. Takahiro W. Регенеранты ремонтантной земляники (Fragaria ananassa),rполученные из каллуса листовых эксплантов // J. Rakuno Gakuen Univ. Natur. Sci. 2002. V.27. №1. P. 79-83.

485. Tang H., Ren Z., Krezal G. Somatic embriogenesis and organogenesis from immature embryo cotyledons of three sour cherry cultivars (Prunus cerasus L.) // Sci. hort. (Neth.). 2000. - 83, №2. - P.109-126.

486. Tavares F., Abreu I., Salema R. Regeneration of actinorhizal plant Myricaу' 'gale L. from epicotyl explants // Plant Sci. 1998. - 135, №2.-P.203-210.

487. Teng W.-L., Liu Y. J., Soong T.-S. Controling vitrification of plants using water absorbent polymer: Пат. 5389542 США, МКИ6 C12N 5/00, C12N 5/02; Development Center for Biotechnology. №970679; Заявл. 04.11.92; Опубл. 14.02.95; НКИ 435/240.45.

488. Tetsumura Т., Yukinaga H. Comparative rooting of shoot tips of four Japanese persimmon cultivars vs. shoots regenerated from roots cultured in vitro И Hort.Sci. 2000 - 35, №5. - P.940-944.

489. Thakur S., Handa A.K., Khurana D.K. A fast and simple technique for in vitro multiplication of Popular hybrids // Indian J. Exp. Biol. 1995. - 33, №10. -P.803-805.

490. Thinh N.T., Takagi H., Yashima S. Cryopreservation of in vitro grown shoot tips of banana (Musa ssp) by vitrification method // Cryo-Lett. - 1999. - 20, №3. - P.163-174.

491. Thompson W., Collin H., Isaoc S., Hardwick K. Isolation of protoplasts from cacao (Theobroma cacao L.) leaves // Café, cacao, the 1987. - 31, №2. -P.l 15-120.

492. Turner S.R., Tan B., Senaratna T., Bunn E., Dixon K.W., Touchell D.H. Cryopreservation of the Australian species Macropidia fuliginosa (Haemodoraceae) by vitrification // Cryo-Lett. 2000. - 21, №6. - P.379-388.

493. Valengelen F.A., Devries S.C. Extracellular proteins in plant embríogenesis // Trends in Genetics. 1992. - 8, №2. - P.66-69.

494. Vengadesan G., Ganapathi A., Anbazhagan V. R., Anand R. P. Somatic embriogenesis in cell suspension cultures of Acacia sinuate (Lour.) Merr. II In

495. Vitro Cell. And Dev. Biol. Plant. 2002. - 38, №1. - P.52 -57.

496. Venkatachalam P., Geetha N., Rao K. S., Jayabalan N., Saravanababu S. BAP-regulated direct shoot organogenesis from cultured seedling explants of groundnut (Arachis hypogaea L.) II Indian J. Exp. Biol. 1999. - 37, №8. -P.807-812.

497. Vesperinas E.S. In vitro root induction in hypocotyls and plumule explants of Helianthus annuus II Environ. And Exp. Bot. -1998. 39, №3. - P.271-277.

498. Vieitez A.M., Vieitez M.L. Culture of chestnut shoots from buds in vitro II J. Hort.Sci. 1980. - 55,№1. - P.83-84.

499. Vijayan K., Chakraborti S.P., Roy B.N. Plant regeneration from leaf explants of mulberry. Influence of sugar, genotype and 6-benzyladenine // Indian J. Exp. Biol. 2000. - 38, №5. - P.504-508.

500. Vyskor В., Gazdova В., Siroky J. Methylation patterns of two repetitive DNA sequences in tobacco tissue cultures and . their regenerants // Biol. Plant. -1993. 35, №3. -P.321-327.

501. Wakhlu A.K., Nagari S., Berna K.S. Somatic embriogenesis and plant regeneration from callus cultures of Bunium persicum Boiss II Plant. Cell Repts. 1990. - 9, №3. - P.301-307.

502. Wang L., Zhou C.L., Zhang Y. изучение применения дезинфицирующих веществ в культуре растительных тканей // J. Guizhou Norm. Univ. Natur. Sci. -2002. №1. -P.15-17.

503. Wang Y., Chen A., Xia X., Li X., Ni G. Действие антибиотиков на рост и дифференциацию эксплантов шелковицы // Acta sericol. sin. 1996. - 22, №2. -Р.72-76.

504. Wickremesinhe E.R.M., Holcomb E.J., Arteca R.N. A practical method for the production of flowering Easter lilies from callus cultures II Sci. hotK(Neth.). 1994. - 60, №1-2. -P.143-152.

505. Wingender R, Henn H.-J., Barth S., Voeste D., machlab H., Schnabl H. A regeneration protocol for sunflower {Helianthus annuus L.) protoplasts // Plant Cell Repts. 1996.- 15, №10. -P.742-745.

506. Winicov I. Salt tolerarance in alfalfa: gene activation in salt tolerant callus and plants regenerated from salt tolerant callus // J. Cell. Biochem. 1990, Suppl. 14 E. -P.312.

507. Witomska M. Effect of cytokinin concentration on multiplication in vitro с shoot from Limonium sinuatum cv."Cream" // Ann Warsaw Agr. Univ.1995.-№17.- P. 17-23.

508. Witomska M., Lukasczewska K. Effect of sucrose concentration on regeneration in vitro from different explants of Frittillaria imperialis L.ll Ann. Warsaw Agr. Univ. SGGW. Hort. - 2000. - №21. - P.21-28.

509. Wodske D. Setting up a small-scale micropropagation lab// Comb. Proc. / Inter.Plant Propagators's Soc. S.I., 2000. - vol. 49. - P.598-601.

510. Wu Y., Engelmann F., Zhao Y., Zhou M., Chen S. Cryopreservation of apple shoot tipe: Importance of cryopreservation technique and of conditioning of donor plants // Cryo-Lett. 1999. - 20, №2. - P. 121-130.

511. Xiao S., Bao W. Фотоаутотрофный рост растений в пробирке, полученных от индивидуальных растений гибридного потомства элитного аутотетраплоидного риса, выращиваемых в открытых условиях // Acta agron. sin.- 1987. 15, №4. - Р.328-334.

512. Xing Z., Zheng W. Культура ткани Hypericum hookerianum II Jangsu Agr. Res. 2000. - 21, №1. - P.45-47.

513. Yamada Y., Mino M. Instability of chromosomes and alkaloid content in cell lines derived from single protoplasts of cultured Coptis japónica cells // Current topic in developmental biol. 1986. - Vol.20. - P.409-417.

514. Yoneda K., Suzuki N., Hasehawa I. Effects of macroelement concentrations on growth, flowering, and nutrient absorption in an Odontoglossum hybrid // Sci. hort. (Neth.). 1999. - 80, № 3-4. - P. 259-265.

515. Yoon H.J., Kim H.K., Ma C.-J., Huh H. Induced accumulation of triterpenoids in Scutellaria baicalensis suspension cultures using a yeast elicitor // Biotechnol. Lett. 2000. - 22, №13. - P.1071-1075.

516. Yu T.A., Yeh S.D., Cheng Y.H., Yang J.S. Efficient rooting for establishment of papay plantlets by micropropagation // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. -2000. 61, №1. -P.29-35.

517. Yuging F. Культура побегов нескольких сортов азалии {Rhododendron simsii) II Acta hortic. sin.- -1996. 23, №1. - P.331-335.

518. Zdravkovic-Kotac S., Neskovic M. Induction and development of somatic embryos from spinach {Spinacia oleráceo) leaf segments // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1998. - 55, №2. - P.109-214.

519. Zhai J., Gu M., Chen R. Tissue culture and rapid propagation of Acacia dealbata //Acta hortic. Sinica. 2001. - vol.28, №2. - P. 149-152.

520. Zhang C.H., Mei X.G., Liu L., Yu L.J. Enhanced paclitaxel production induced by the combination of elicitiors in cell suspension cultures of Taxus chinensis // Biotechnol. Lett. 2000. - 22, №19. - P.1561-1564.

521. Zhang Q.M., Wang H., Mo H.K., Guo J.Y. Factors influencing the vitrification of canation (Dianthus caryophyllus) in vitro and the anatomy of abnormal plantlets // 15th Int. Bot. Congr., Yokogama, Aug. 28 Sept. 3, 1993: Abstr. Yokogama, 1993. - P.532.

522. Zhang Y.-J., Qian Y., Mu X.-J., Cai Q.-G., Zhou Y.-L., Wei X.-P. Plant regeneration from in vzYro-cultured seedling leaf protoplasts of Actinidia enantha Benth II Plant Cell Repts. 1998. - 17, №10. - P.819-821.

523. Zhang Z., Dai W., Cheng Z.-M., Walla J.A. A shoot-tip culture micropropagation system for chjkecherry //J. Environm. Hortic. 2000. -vol.18, №4.-P.234-237.i

524. Zhou J.H., Chen X.H., Ma Y.Z., Luo Z.J., liang H.M. Studies on the orgsnogenesis of excised cucumber (Cucumis sativus) cotyledons. I. Capabilities of organogenesis// 15th Int. Bot. Congr., Yokodama, Aug. 28-Sept. 3, 1993: Abstr. Yokodama, 1993.-P.431.

525. Zlenko V.A., Troshin L.P., Kotikov I.V. In vitro propagation of grapevine. Part I. Cultivation of shoot apexes and in vitro proliferation of axillary grapevine buds II Vitis: Viticulat. And Enol. Absir. 1999. - 38, №3. - P.l 1.