Слабоконденсирующиеся хромосомы простейших тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.25, доктор биологических наук Скарлато, Сергей Орестович

• Скарлато, Сергей Орестович
• доктор биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации доктор биологических наук Скарлато, Сергей Орестович

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ВЗГЛЯДЫ НА ПРОСТЕЙШИХ.

ГЛАВА 2. ОСНОВНЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О СТРУКТУРНОЙ ОРГАНИЗАЦИИ КЛЕТОЧНОГО ЯДРА И ХРОМОСОМ ПРОСТЕЙШИХ.

2.1. Морфология, ультраструктура и молекулярная организация ядра.

2.2. Хромосомы, хромосомные территории и хроматин.

2.3. Ядерные гены и геномы.

2.4. Митоз, мейоз и другие способы деления ядра

2.5. Эволюция митоза.

ГЛАВА 3. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА.

3.1. Происхождение культур простейших.

3.2. Культивирование простейших.

3.3. Светооптические исследования.

3.4. Электронно-микроскопические исследования.

3.5. Пульс-электрофорез хромосомных ДНК.

3.6. Блоттинг ДНК хромосом и гибридизация.

3.7. Определение содержания ДНК в клетках методом проточной цитометрии.

3.8. Обработка текста, иллюстраций и трехмерная реконструкция серийных срезов с помощью компьютерных программ.

ГЛАВА 4. СТРОЕНИЕ ЯДРА И ХРОМОСОМНОГО АППАРАТА

КИНЕТОП ЛАСТИ Д.

4.1. Общая характеристика кинетопластид.

4.2. Структурная организация ядра в интерфазе.

4.3. Структура хромосом в интерфазе.

4.4. Деление ядра.

4.4.1. История изучения и терминология.

4.4.2. Митоз у Trypanoplasma borreli.

4.4.3. Митоз у Dimastigella mimosa и других свободноживущих бодонид.

4.4.4. Митоз у Trypanosoma danilewskyi.

4.4.5. Митоз у Crithidia sp., штамм С4.

4.4.6. Митоз у Phytomonas sp., Endotrypanum monterogei и Leishmania tarentolae.

4.4.7. Гипотеза "один кинетохор - одна слабоконденсирующаяся хромосома".

4.5. Электрофоретическое кариотипирование.

4.5.1. Общие представления о пульс-электрофорезе.

4.5.2. Хромосомные молекулы ДНК бодонид.

4.5.3. Хромосомные молекулы ДНК трипаносоматид.

4.6. Содержание ДНК в ядре, плоидность ядра, размер и пластичность генома.

4.7. О несоответствиях, возникающих при определении числа слабоконденсирующихся хромосом кинетопластид, в процессе использования различных методов исследования.

4.8. Ядерные структуры и организация хроматина в гигантских многоядерных клетках

4.9. Ядерные структуры и организация хроматина в цистах и цистоподобных клетках.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Слабоконденсирующиеся хромосомы простейших»

Изучение структурной организации индивидуальных хромосом и хромосомных комплексов эукариот - важнейшая проблема современной клеточной биологии. В течение последних 30 лет многие ее аспекты анализировались особенно интенсивно благодаря существенному расширению круга объектов и методов исследования (Кикнадзе, 1972; Ченцов, Поляков, 1974; Богданов, 1975; Дарлингтон, Ла Кур, 1980; Восток, Самнер, 1981; Бродский, Урываева, 1981; Макгрегор, Варли, 1986; Збарский, 1988; Гагинская, 1989; Георгиев, 1989; Смирнов, 1991; Жимулев, 1992, 1994, 2002; Заварзин и др., 1992; Албертс и др., 1993, 1994; Gruzova, Parfenov, 1993; Глазков, 1995, 1999; Van Holde, Zlatanova, 1995; Woodcock, Horowitz, 1995; Razin, 1996; Сингер, Берг, 1998a, 19986; Lamond, Earnshaw, 1998; Родионов, 1999; Gall, 2000, 2001; Патрушев, 2000; Cremer et al., 2000; Grif, 2000; Spector, 2001; Sumner, 2003, и др.). В ходе изучения этой проблемы произошло обособление многих новых научных направлений. Одно из них -изучение структурной организации и эволюции хромосом простейших и некоторых других протистов, которых традиционно исследуют протозоологи (Райков, 1978, 1989; Raikov, 1982, 1989, 1994, и др.). Полагают, что среди именно этих организмов следует искать наиболее вероятных прямых потомков первичных ядросодержащих форм. Такими потомками в разное время считали динофлагеллят, других жгутиконосцев, некоторых амеб, микроспоридий и др. (см.: Dodge, 1965; Райков, 1967, 1978; Cavalier-Smith, 1975, 1993, 2002; Raikov, 1982, 1994; Lee et al., 1985, 2000; Серавин, 1986a, 19866, 1986b, 1986r, 2000; Corliss, 1994, 1998; Vickerman, 1998). Несмотря на сохраняющуюся неопределенность в вопросе об очередности происхождения современных таксонов этих низших эукариот существует убеждение, что именно у каких-то предков Protozoa около 2 млрд. лет назад впервые структурно оформились протохромосомы, которые обособились от цитоплазмы при помощи ядерной оболочки. Приблизительно в то же время для упорядоченной сегрегации автореплицированных копий этих протохромосом должен был появиться примитивный митоз (Райков, 1971, 1978; Raikov, 1982, 1994).

В начале XX века среди биологов было широко распространено мнение, согласно которому у каких-то чудом сохранившихся древних простейших генетический аппарат ядра мог быть представлен в виде "неорганизованного" хроматина. Полагали, что оформленные хромосомы могли вообще отсутствовать у этих примитивных одноклеточных (Ве1аг, 1926; см. также: Райков, 1971, 1978). Однако к середине 20-х годов прошлого столетия в результате широких сравнительно-цитологических исследований и прежде всего с применением реакции Фельгена, которая надежно выявляет хроматин и хромосомы на светооптическом уровне, стало очевидно, что все изученные к тому моменту виды простейших имеют в той или иной степени выраженные хромосомы (Ве1аг, 1926). После установления этого факта некоторые "горячие головы" стали вообще отрицать примитивность простейших. Тем не менее по мере накопления дополнительного фактического материала стало ясно, что у простейших эволюция хромосомной структуры безусловно шла, но речь может идти не о появлении хромосом из неорганизованного хроматина, а об эволюции архитектуры хромосом и целых хромосомных комплексов (Райков, 1971, 1978; На\коч, 1982).

На протяжении всего прошлого столетия продолжались интенсивные исследования структурных элементов генетического аппарата ядра простейших. Показано, что все простейшие имеют хромосомы, при этом число хромосом в гаплоидном наборе у них сильно варьирует - от двух до нескольких сотен. Однохромосомных геномов у простейших достоверно не обнаружено. В большинстве по-настоящему хорошо изученных случаев подтвержден закон постоянства числа хромосом в геноме по крайней мере для тех хромосом, которые несут гены "домашнего хозяйства". Однако морфологическая индивидуальность хромосом (общая длина, положение центромеры и вторичной перетяжки и др.) оказалась четко выраженной у относительно небольшого числа видов (Райков 1967, 1978; Ра1коу, 1982, 1994).

Среди современных простейших выделяются две большие и неоднородные группы, различающиеся по степени конденсации хромосом. Каждая из этих групп включает значительный набор таксонов разного уровня. Хромосомы простейших первой группы остаются конденсированными на протяжении всего жизненного цикла организма. Среди таких простейших наибольшую известность приобрели панцирные жгутиконосцы-динофлагелляты, строение хромосом и ядра в целом которых одно время рассматривалось как отражающее ранний этап эволюции ядерного аппарата (Dodge, 1965, 1973; Райков, 1967, 1978). Еще 15-20 лет назад во многих руководствах, крупных сводках, энциклопедических словарях и учебниках по общей и клеточной биологии подробно излагалась гипотеза, согласно которой генетический аппарат ядра этих жгутиконосцев сохранил мезокариотный уровень организации, т.е. уровень, промежуточный между прокариотным ("предъядерным") и эукариотным ("настоящим ядерным") (см. например: Dodge, 1973; Kubai, 1975; Райков, 1978; Гиляров, 1986; Заварзин, Харазова, 1982; Воронцов, 1987; Заварзин и др., 1992, и др.). Сторонники этой гипотезы даже предлагали повысить ранг таксона Dinoflagellida с отряда до царства, надцарства или подымперии. Эта гипотеза имела важное значение для привлечения усилий десятков лабораторий к изучению динофлагеллят. Однако результаты дальнейших исследований, в особенности данные молекулярной филогении и биохимического анализа гистоноподобных белков, убедительно опровергли мезокариотную природу хромосом живущих ныне панцирных жгутиконосцев и позволили считать, что примитивизм хромосомного аппарата этих одноклеточных является эволюционно вторичным (Raikov, 1995с).

Хромосомы простейших второй группы, наоборот, сохраняют слабую конденсацию на протяжении жизненного цикла. При этом в митозе они часто не только не уплотняются, а, напротив, степень их конденсации становится меньше, чем в интерфазе. Эти хромосомы не могут быть выявлены с применением обычного светового микроскопа, что значительно осложняет их изучение. Для таких хромосом-'невидимок" простейших был предложен специальный термин - "слабоконденсирующиеся хромосомы" (СХ) (Скарлато, 1997, 1999, 2000; Скарлато и др., 1998). Долгие годы идентификация и эффективные исследования СХ простейших были существенно затруднены или просто невозможны. Оставалось неясным, насколько широко они представлены у этих ядросодержащих микроорганизмов, какие морфологические особенности СХ все же поддаются регистрации с помощью микроскопического анализа, в каких фазах жизненного цикла простейшего это сделать проще, и, наконец, каково "место" СХ в эволюции хромосомного аппарата эукариот. Значительный прогресс в развитии методических приемов современного естествознания обеспечил новые подходы к выявлению и изучению СХ. В течение последних десятилетий появилась возможность наряду с традиционными цитологическими методами исследования хромосом (световая и электронная микроскопия) использовать новейшие методы клеточной и молекулярной биологии (пулье-электрофорез, блот-гибридизация ДНК хромосом, проточная цитометрия, флуоресцентная цитофотометрия, дисперсия хроматина и хромосом и др.). При этом важное значение приобрели как глубокие мультидисциплинарные исследования СХ у модельных объектов, так и широкие сравнительные исследования этих хромосом у представителей различных систематических групп простейших в разных фазах клеточного и жизненного циклов, например, в интерфазе, митозе, мейозе, в многоядерных клетках, при образовании цист и цистоподобных клеток и др. Необходимо специально отметить, что при отсутствии периода жизненного цикла, аналогичного эмбриональному развитию в онтогенезе у животных, и весьма скудных палеонтологических сведений о генетических системах одноклеточных проверка любых эволюционных гипотез может осуществляться практически только с помощью данных сравнительной цитологии, клеточной биологии, биохимии, а также молекулярной филогении.

Цель настоящей работы - изучить структурную организацию СХ и их комплексов у представителей различных систематических групп простейших и некоторых других ядросодержащих микроорганизмов, а также оценить вероятное "место" этих хромосом в эволюции генетического аппарата эукариот.

Задачи исследования состояли в следующем:

1) на основе анализа литературы установить, у каких простейших хромосомы слабо конденсируются в митозе и поэтому не могут быть идентифицированы как дискретные структуры с помощью обычных методов световой и электронной микроскопии;

2) определить, представители каких таксонов могут служить подходящими модельными объектами для исследования СХ;

3) с помощью современных методов изучить у этих объектов структурную организацию СХ в интерфазе и митозе;

4) выявить специфику структурной организации СХ в некоторых особых фазах жизненного цикла ряда паразитических простейших (например, в многоядерных и цистоподобных клетках);

5) охарактеризовать "место" СХ в эволюции хромосомной структуры простейших и других эукариот.

В ходе выполнения диссертации были сформулированы, обоснованы и вынесены на защиту следующие основные положения и результаты:

1) ядерный геном некоторых простейших и других низших эукариот представлен не только в интерфазе, но и в митозе в виде СХ;

2) у многих простейших и других низших эукариот, для которых характерны СХ, такое состояние генетического аппарата является показателем его эволюционной примитивности;

3) у некоторых видов паразитических простейших наличие СХ может быть не результатом сохранения примитивной ("древней") структурной организации генетической системы, но следствием упрощения хромосомной структуры в связи с переходом к паразитизму (вторичный примитивизм).

Последний раз крупное обобщение об особенностях структурной организации и эволюции хромосом простейших было опубликовано более двадцати лет назад (Ра1коу, 1982).

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, клеточная биология», Скарлато, Сергей Орестович

ВЫВОДЫ

I. У представителей ряда групп простейших, не находящихся в прямом филогенетическом родстве (например, свободноживущие и паразитические кинетопластиды, трихомонады, энтамебы, многие споровики), и некоторых других низших эукариот (например, микроспоридии), традиционно исследуемых протозоологами, хромосомы во всех фазах клеточного и на большинстве стадий жизненного цикла слабо конденсированы.

II. В ядрах различных видов кинетопластид содержится от 10 до 120 хромосомных молекул ДНК размером от 50 до 6000 т.п.н. Так называемые минихромосомы (50-150 т.п.н.), характерные для некоторых видов африканских трипаносом, у других представителей класса Kinetoplastidea не обнаружены.

III. Для хроматина кинетопластид и микроспоридий характерен нуклеосомный уровень организации. При этом у этих низших эукариот обнаружен структурный мозаицизм нуклеосомных фибрилл, выражающийся в вариабельности числа нуклеосом, приходящихся на единицу длины фибриллы, и длин линкерных участков ДНК.

IV. У кинетопластид более высокий, чем нуклеосомный, уровень упаковки хроматина представлен фибриллами толщиной около 20 нм, а не 30 нм, как у высших эукариот. Хроматиновая фибрилла толщиной около 20 нм этих жгутиконосцев обычно содержит две сцепленные нуклеосомные фибриллы и нередко не формирует структур высокого уровня упаковки.

V. Плотные слоистые бляшки, выявляемые у кинетопластид в митозе, представляют собой спаренные сестринские кинетохоры, которые с началом удлинения ядра расщепляются пополам на индивидуальные кинетохоры; последние при участии кинетохорных микротрубочек расходятся к противоположным полюсам митотической фигуры. Участки хромосом, прилегающие к кинетохорам, не подвергаются гетерохроматинизации.

VI. У кинетопластид число кинетохоров в делящемся ядре (3-10) меньше, чем число интактных хромосомных ДНК, выявляемое в пульс-электрофорезных гелях (10-120), и число хромосом, расчитанное исходя из данных об абсолютном содержании ДНК в ядре этих жгутиконосцев (около 200). Для объяснения первого несоответствия предложена гипотеза, согласно которой только крупные хромосомы кинетопластид, несущие гены "домашнего хозяйства", имеют кинетохоры. Второе несоответствие, вероятно, связано с полиплоидией или анеуплоидией некоторых кинетопластид.

VII. Ядро трофозоитов дизентерийной амебы Entamoeba histolytica содержит более 50 нитевидных хромосом, а не 5-6 относительно крупных хромосом, как считалось ранее. Мелкие СХ энтамеб объединены и образуют 6-14 хроматиновых ассоциатов, которые формируют одну хроматиновую кариосому в центре интерфазного ядра.

VIII. Ядро Е. histolytica относится к типу овулярных ядер, т.е. таких ядер, на периферии которых располагается множество индивидуальных ядрышек, либо, как в случае энтамеб, слой слившихся ядрышек. Совокупность ядрышек в ядре у этого паразита предлагается называть "сложным периферическим ядрышком.

IX. По многим важным структурным параметрам СХ простейших являются хромосомами эукариотного типа. Вместе с тем, существует по крайней мере 10 особенностей СХ, по совокупности которых их можно отличить от хромосом эукариот, для которых в клеточном цикле характерен обычный цикл конденсации-деконденсации. СХ характеризуются:

1) небольшим размером (обычно до 6000 т.п.н.);

2) непостоянством формы и отсутствием продольной морфологической дифференцировки;

3) отсутствием или слабой выраженностью гетерохроматинизации;

4) нерегулярным расположением нуклеосом на нуклеосомных фибриллах;

5) упаковкой нуклеосомных фибрилл в хроматиновые фибриллы диаметром около 20 нм;

6) нередко отсутствием наднуклеосомных структур более высокого уровня - типа глыбок или хромомеров;

7) необычными биохимическими свойствами гистоновых и других хромосомных белков;

8) нередко различающимся генным составом у гомологов;

9) передачей от одного клеточного поколения к другому в результате примитивных форм митоза - закрытого внутриядерного плевромитоза, закрытого внеядерного плевромитоза, полуоткрытого плевромитоза и закрытого внутриядерного ортомитоза;

10) постоянством числа обычно только тех СХ, которые несут гены "домашнего хозяйства".

X. Предложена гипотеза, в соответствии с которой именно СХ, а не постоянно конденсированные хромосомы простейших, как считалось ранее, послужили стартовой площадкой для эволюции генетических систем всех эукариот. При этом у некоторых низших эукариот, как свободноживущих, так и паразитических, СХ и их комплексы могли "законсервироваться" и сохраниться до наших дней в малоизмененной форме. У других паразитических видов наличие СХ может быть следствием упрощения структурной организации хромосом в связи с переходом простейшего к паразитизму.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В диссертации подведены итоги исследований структурной организации хромосом простейших и некоторых их родственников, которые были выполнены за последние 25 лет. За этот период времени (1) наука о хромосомах простейших и (2) в целом кариология эукариотных микроорганизмов превратились из преимущественно описательных дисциплин в синтетические науки, в которых использование разнообразных приемов современной световой и электронной микроскопии сочетается с применением других методов клеточной и молекулярной биологии, генетики, биохимии, паразитологии, протистологии и др.

В ходе выполнения настоящей работы сформулировано новое направление исследований в рамках современной клеточной биологии -исследование слабоконденсирующихся хромосом простейших. Это направление исследований своими корнями уходит в сравнительную кариологию простейших (Райков, 1978; Raikov, 1982). Термин "слабоконденсирующиеся хромосомы" впервые предложен автором (Скарлато, 1997, 1999, 2000; Скарлато и др., 1998) для обозначения необычных хромосом-"невидимок" простейших, которые не могут быть выявлены у этих эукариот с применением стандартных цитогенетических методик.

За последние годы были достигнуты немалые успехи в изучении как самих СХ простейших, так и ядер, в которых они локализуются и функционируют.

Во-первых, уточнены число, размер и конфигурация СХ у многих видов этих микроорганизмов. При этом во многих случаях удалось исправить ошибки и неточности в определении ключевых параметров кариотипа клеток, допущенные ранее.

Во-вторых, достаточно полно была изучена структурная организация СХ у ряда модельных видов, у части которых к тому же была полностью (Plasmodium falciparum) или почти полностью (Leishmania major, Trypanosoma brucei и др.) расшифрована нуклеотидная последовательность всего ядерного генома.

В-третьих, показано, что все по-настоящему хорошо изученные СХ имеют нуклеосомный уровень организации. При этом обнаружена структурная гетерогенность нуклеосомных фибрилл, выражающаяся в неравномерном распределении нуклеосомных частиц по длине фибриллы. Эта гетерогенность связана с необычными биохимическими свойствами гистонов и других белков хроматина простейших.

В-четвертых, как правило, в СХ не обнаруживаются хроматиновые фибриллы диаметром более 20-25 нм. В частности, у них не регистрируются фибриллы диаметром около 30 нм и нередко структуры типа глыбок и хромомеров, характерные для большинства других эукариот. Вместе с тем, у некоторых видов простейших, например, у Entamoeba, СХ могут группироваться в хромосомные комплексы (хроматиновые тела, ассоциаты и т.п.), которые, в свою очередь, часто формируют кариосомы различной плотности.

В-пятых, установлено, что гены "домашнего хозяйства" локализуются преимущественно в наиболее крупных СХ простейших, тогда как более мелкие СХ и(или) так называемые минихромосомы содержат в основном небольшое число коротких, специализированных генов или семейства повторяющихся некодирующих последовательностей ДНК (сателлитные ДНК).

В-шестых, СХ преимущественно отмечены у простейших, у которых при делении ядра двухмембранная оболочка ядра остается интактной (закрытый митоз) или имеет лишь небольшие отверстия в области расположения ЦОМТов (полуоткрытый митоз). Поскольку мы рассматриваем СХ как эволюционно примитивную форму организации хромосом, это обстоятельство служит дополнительным доводом в пользу того, что наиболее примитивным следует считать закрытый внутриядерный плевромитоз простейших с независимыми полуверетенами. Именно этот тип митоза широко распространен среди наиболее примитивных из живущих ныне простейших.

В-седьмых, достигнуты большие успехи в изучении структуры, биохимии и функционирования кинетических элементов ядра (митотические ЦОМТы, различные классы микротрубочек веретена, кинетохоры, внутренняя мембрана ядерной оболочки, ламина), участвующих в сегрегации

СХ в процессе деления ядра. Интересно, что спектр элементов ахроматинового аппарата делящегося ядра простейших сходен с таковым высших эукариот, у которых реализуется обычный цикл конденсации-деконденсации хромосом в ходе митоза открытого типа. Однако детали строения и особенности локализации этих элементов в делящихся ядрах простейших различного типа варьируют в широком диапазоне. Так, роль ЦОМТов могут выполнять внутриядерные структуры (плотные примембранные пластинки; гранулярные диски, встроенные в ядерную пору; кинетохоры и т.п.) и внеядерные структуры (уплотнения приядерной цитоплазмы; кинетосомы-центриоли, которые, однако, далеко не всегда оказываются ЦОМТами веретена деления).

В-восьмых, СХ различных размерных классов могут сегрегировать в митозе с помощью различных механизмов и структурных элементов.

В-девятых, за последние годы принципиально новых типов митоза по сравнению с описанными ранее (Райков, 1978) не обнаружено. Однако учет такого признака, как "слабая конденсация хромосом", позволяет детализировать классификацию типов ядерного деления у низших эукариот.

Среди современных простейших и некоторых других протистов выявлены основные таксоны (кинетопластиды, трихомонадиды, микроспоридии, ряд видов амеб, некоторые споровики и др.), у представителей которых в разных фазах клеточного и жизненного цикла достоверно встречаются СХ. Представители всех этих таксонов бесспорно являются эукариотами, хотя нередко у них отмечаются необычные черты структурной, молекулярной и функциональной организации клеток. Филогенетические связи между этими организмами до конца не ясны, а в ходе эволюции их хромосомного аппарата несомненно имели место конвергенции и параллелизмы, которые значительно осложняют выяснение этих связей. Более того, следует понимать, что слабая морфологическая дифференцированность СХ во многих случаях может быть в большей степени связана с особым функциональным состоянием генетического аппарата, а не с сохранением каких-то специфических предковых черт. Тем не менее именно среди простейших с СХ следует искать наиболее вероятных прямых потомков примитивных, филогенетически древних ядросодержащих организмов, у которых шло становление надмолекулярной структуры хромосом и митоза. Отсюда представляется оправданным рассматривать слабую конденсированность хромосом по крайней мере у некоторых простейших как результат сохранения анцестрального признака. При отсутствии у одноклеточных организмов периода жизненного цикла, аналогичного эмбриональному развитию у животных, и при отсутствии данных палеонтологии для их генетических систем проверить эту гипотезу можно только с помощью методов сравнительной клеточной и молекулярной биологии. В рамках этого подхода следующие черты структурной организации СХ наиболее вероятно являются примитивными:

1) небольшой размер,

2) непостоянство формы и отсутствие продольной морфологической дифференцировки,

3) отсутствие или слабая выраженность гетерохроматинизации,

4) локализация СХ в митозе внутри интактной ядерной оболочки,

5) необычный биохимический состав гистоновых и других хромосомных белков,

6) нерегулярное расположение нуклеосом на нуклеосомных фибриллах,

7) закручивание нуклеосомных фибрилл в хроматиновые фибриллы диаметром менее 30 нм,

8) нередко отсутствие в неактивном хроматине наднуклеосомных структур более высокого уровня упаковки, чем хроматиновая фибрилла толщиной около 20 нм.

К началу XXI в. первостепенное значение приобрели исследования СХ у паразитических простейших и их ближайших родственников: жгутиконосцев-кинетопластид, трихомонад, энтамеб, микроспоридий, гемоспоридий и некоторых других споровиков. Все большее подтверждение находит тезис о том, что слабая конденсация хромосом в митозе, в других фазах клеточного цикла и в жизненном цикле протистов является удачной адаптацией к паразитическому образу жизни. Принципиальные различия в структурной организации хромосомных аппаратов паразитических простейших и клеток организма-хозяина создают благоприятные условия для разработки новых антипротозойных препаратов, вызывающих повреждение структуры и функций только СХ паразита. Таким образом, исследование СХ имеет существенное значение для медицины и ветеринарии, и в ближайшем будущем можно ожидать появления новых эффективных способов борьбы с опасными паразитарными заболеваниями человека, такими как малярия, лейшманиозы, трипаносомозы, амебиазы, микроспоридиозы, кокцидиозы (Хованских, 1984; Бейер, 1989; Крылов, 1994а, 19946, и др.).

Несмотря на отмеченные выше успехи в изучении СХ, остается немало нерешенных вопросов. Так, (1) исследования пространственной организации СХ в интерфазных и делящихся ядрах простейших, как и реконструкция самих ядер, содержащих СХ, только начинаются; (2) недостаточно исследована репликация СХ; (3) неясны механизмы политении СХ у простейших; (4) слабо изучены особенности функционирования СХ в разных фазах клеточного и жизненного циклов простейших; (5) неизвестно, чем отличается структура интерфазных и митотических СХ от структуры деспирализованных мейотических хромосом простейших; (6) остаются неизвестными филогенетические взаимоотношения между многими группами простейших, в ядрах которых обнаружены СХ.

Итак, в настоящей работе показано, что хромосомы некоторых простейших существуют в иных структурных форматах, чем хромосомы большинства других низших и высших эукариот. Однако несмотря на эти различия для всех хромосом ядросодержащих организмов, в отличие от кольцевых, реже линейных "хромосом" доядерных организмов (бактерий и вирусов), характерна надмолекулярная упаковка, сложность которой определяется, главным образом, набором специфических белков, связанных с двухцепочечной молекулой ДНК. По-видимому, пока говорить о едином плане строения СХ у всех изученных видов простейших не представляется возможным. Вместе с тем, есть основания рассматривать СХ простейших в качестве особой структурно-функциональной формы хромосом, которая имела в прошлом и продолжает играть в настоящее время существенную роль в эволюции генетического аппарата эукариот.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Скарлато, Сергей Орестович, 2003 год

1. Авакян A.A. Атлас анатомии простейших, патогенных для человека и животных. М.: Медицина, 1975. 312 с.

2. Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уотсон Дж. Д. Молекулярная биология клетки. М.: Мир, 1993. Т. 2. 539 с.

3. Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уотсон Дж. Молекулярная биология клетки. М.: Мир, 1994. Т. 1. 517 с.

4. Асеев В.В., Карелина И.Ю. Размер генома и чило рибосомных генов у Críthidia oncopelti // Современные проблемы протозоологии. Вильнюс, 1982. С. 32.

5. Бейер Т.В. Клеточная биология споровиков возбудителей протозойных болезней животных и человека. Л.: Наука, 1989. 184 с.

6. Бобылева H.H. Отряд Hypermastigida Grassi et Foa, 1911 -Гипермастигиды // Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. Ч. 1. С. 369-392.

7. Бобылева H.H., Насонова Е.С., Скарлато С.О. Особенности иерархической структуры хроматина у кинетопластиды Críthidia fasciculata и микроспоридии Nosema grylli И Цитология. 2000. Т. 42, № 3. С. 266.

8. Бобылева H.H., Насонова Е.С., Скарлато С.О. Нуклеосомный уровень упаковки хроматина у микроспоридии Nosema grylli II Цитология. 2002. Т. 44, №9. С. 861-862.

9. Бобылева H.H., Скарлато С.О. Структурная организация неактивного хроматина жгутиконосцев-трипаносоматид рода Críthidia //ДАН. 1994. Т. 339, 4. С. 551-554.

10. Бобылева Н. Н., Скарлато С. О. Ультраструктура диспергированного хроматина низших трипаносоматид // Цитология. 1997. Т. 39, № 1. С. 41-42.

11. Борхсениус С.H., Чернова O.A., Чернов В.М., Вонский М.С. Микоплазмы: молекулярная и клеточная биология, взаимодействие сMиммунной системой млекопитающих, патогенность, диагностика. СПб.: Наука, 2002. 319 с.

12. Восток К., Самнер Э. Хромосома эукариотической клетки. М.: Мир, 1981. 600 с.

13. Бродский В.Я., Урываева И.В. Клеточная полиплоидия: Пролиферация и дифференцировка. М.: Наука, 1981. 259 с.

14. Видаль Г. Древнейшие эукариотические клетки // В мире науки. 1984. №4. С. 14-24.

15. Воронцов H.H. Происхождение жизни и многообразие ее форм. Материалы к новому курсу общей биологии. Новосибирск: Наука, 1965. Вып. 5. 55 с.Ф

16. Воронцов H.H. Системы органического мира и положение животных в них//Зоол. журн. 1987. Т. 66, вып. 11. С. 1668-1684.

17. Гагинская Е.Р. Функциональная морфология хромосом в оогенезе птиц. Автореф. докт. дис. Л., 1989. 35 с.

18. Гагинская Е.Р., Цветков А.Г. Электронно-микроскопическое исследование структуры хроматина в диспергированных хромосомах -ламповых щетках курицы // Цитология. 1988. Т. 30, № 2. С. 142-150.

19. Георгиев Г.П. Гены высших организмов и их экспрессия. М.: Наука, 1989. 254 с.

20. Гиляров М.С. (Ред.). Биологический энциклопедический словарь. М.: Сов. энциклопедия, 1986. 831 с.

21. Гинецинская Т. А., Добровольский A.A. Частная паразитология. Паразитические простейшие и плоские черви. М.: Высш. шк., 1978. Т.1. 303 с.

22. Глазков М.В. Петельно-доменная организация генов в эукариотных хромосомах//Молекуляр. биол. 1995. Т. 29. С. 965-982.

23. Глазков M.B. Взгляд на структурно-функциональную организацию хромосом эукариот: еще раз о хромомерах // Генетика. 1999. Т. 35, № 11. С. 1470-1479.

24. Гордеева Л.М., Соловьев М.М. Нуклеиновые кислоты в интерфазном и делящемся ядре амеб рода Entamoeba (Protozoa, Sarcodina) И Структура и функции клеточного ядра. М.: Наука, 1967. 165-168.

25. Гранстайн М. Гистоны как регуляторы генов // В мире науки. 1992. № 11-12. С.150-158.

26. Громов Д.Б. Сравнительное изучение ультраструктуры ядер крупных пресноводных амеб в интерфазе и в митозе: Автореф. канд. дис. Л., 1986. 15 с.

27. Дарлингтон С.Д., Ла Кур Л.Ф. Хромосомы. Методы работы. М.: Атомиздат, 1980. 182 с.

28. Демин С.Ю., Скарлато С.О., Продеус Т.В. Хромосомоподобные тела дизентерийной амебы Entamoeba histolytica // Цитология. 2001. Т. 43, № 11. С. 1080-1087.

29. Догель В.А. Общая протистология. М.: Сов. наука, 1951. 604 с.

30. Догель В.А. Зоология беспозвоночных. М.: Высш. школа, 1981. 606 с.

31. Догель В.А., Полянский Ю.И., Хейсин Е.М. Общая протозоология. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1962. 592 с.

32. Долгих В.В., Насонова Е.С., Паскерова Г.Г. Активность ферментов углеводного и энергетического обмена в спорах микроспоридии Nosema grylli //Паразитология. 1996. Т.ЗО, вып. 2. С. 178-181.

33. Жимулев И.Ф. Политенные хромосомы: морфология и структура. Новосибирск: Наука, 1992. 480 с.

34. Жимулев И.Ф. Хромомерная организация политенных хромосом. Новосибирск: ВО Наука, 1994. 565 с.

35. Жимулев И.Ф. Общая и молекулярная генетика. Новосибирск: Изд-во Новосиб. ун-та, 2002. 459 с.

36. Заварзин A.A., Харазова А.Д. Основы общей цитологии. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1982. 240 с.

37. Заварзин A.A., Харазова А.Д., Молитвин М.Н. Биология клетки: общая цитология. СПб.: Изд-во СПбГУ, 1992. 320 с.

38. Зайцева Г.Н. Митохондриальный геном кинетопласта трипаносоматид: генная организация и транскрипция макси-кольцевой ДНК // Цитология. 1993. Т. 35, № 3. С. 4-23.

39. Заславская И.В. 1975. Экспериментальное изучение штаммов и клонов дизентерийной амебы в связи с вопросом об их эпидемиологической значимости: Автореф. канд. дис. М. 25 с.

40. Захаров А.Ф. Хромосомы человека (проблемы линейной организации). М.: Медицина, 1977. 192 с.

41. Зацепина О.В., Поляков В.Ю., Лозовская Е.Р., Ченцов Ю.С. Изучение структуры хромомеров и дисков политенных хромосом Drosophila virilis в условиях искусственной деконденсации // Цитология. 1983а. Т. 25, № 6. С. 735-739.

42. Зацепина О.В., Поляков В.Ю., Ченцов Ю.С. Электронно-микроскопическое изучение хромонемы и хромомеров в митотических и интерфазных хромосомах// Цитология. 19836. Т. 25, № 2. С. 123-129.

43. Зацепина О.В., Поляков В.Ю., Ченцов Ю.С. Различия в структурной организации G- и R- сегментов, выявляемые в процессе дифференциальной деконденсации хромосом // Цитология. 1985. Т. 27, № 8. С. 865-871.

44. Збарский И.Б. Организация клеточного ядра. М.: Медицина, 1988. 368с.

45. Иванов A.B. Происхождение многоклеточных животных. Л.: Наука, 1968. 287 с.

46. Инге-Вечтомов С.Г. Генетика с основами селекции. М.: Высшая школа, 1989. 592 с.

47. Инге-Вечтомов С. Г., Карпова Т.С. Частная генетика дрожжей-сахаромицетов. СПб.: Изд. СПб. ун-та, 1993. 252 с.

48. Исси И.В. Микроспоридии как тип паразитических простейших // Микроспоридии. Л.: Наука, 1986. С. 6-136.

49. Каллиникова В.Д. Клеточная органелла кинетопласт. Л.: Наука, 1977.127 с.

50. Караджян Б.П. Ультраструктура микронуклеуса Didinium nasutum (Ciliophora, Gymnostomata) во время мейоза // Цитология. 1977. Т. 19, № 12. С. 1327-1332.

51. Карпов С.А. Система протистов. Омск: Межвузовская типография ОмПИ, 1990. 261 с.

52. Карпов С.А. Система протистов и проблемы их мегасистематики // Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. Ч. 1. С. 123-137.

53. Карпов С.А., Жуков Б.Ф. Ультратонкое строение Pleuromonas jaculans Perty (Kinetoplastida, Zoomastigophorea) // Простейшие активного ила. Л.: Наука, 1983. С. 153-156.

54. Кикнадзе И.И. Функциональная организация хромосом. Л.: Наука, 1972.211 с.

55. Клюева Т.С., Ченцов Ю.С., Поляков В.Ю. Электронномикроскопическое изучение ядер Euglena gracilis // Цитология. 1978. Т. 20, № 9. С. 987-991.

56. Колесников A.A. Молекулярные параметры кинетопластной ДНК трипаносоматид как таксономический признак// Цитология. 1993. Т. 35, № 3. С. 24-38.

57. Кострикина H.A., Бирюзова В.И., Салихов Т.А., Зайцева Г.Н. Электронно-микроскопическое и биохимическое изучение биполярных тел клетки Crithidia oncopelti // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1974. № 5. С. 750-754.

58. Краевский В.А., Лагарькова М.А., Шарова Н.П., Столяров С.Д., Аузио X. Исследование структурных перестроек хроматина с помощью интеркалирующих красителей //ДАН. 2001. Т. 378, № 1. С. 108-110.

59. Крылов М.В. Возбудители протозойных болезней домашних животных и человека. СПб.: Изд-во. Зоол. ин-та., 1994 а. Т. 1. 283 с.

60. Крылов М.В. Возбудители протозойных болезней домашних животных и человека. СПб.: Изд-во. Зоол. ин-та, 1994 б. Т. 2. 270 с.

61. Крылов М.В., Белова Л.М. Полиморфизм малатдегидрогеназы у критидий (Protozoa, Mastigophora) //ДАН СССР. 1985. Т. 280, № 6. С. 15021505.

62. Крылов М.В., Подлипаев С.А., Хаецкий A.C., Белова Л.М., Фролов А.О., Ниязбекова Б.Я. Один ли вид содержится в культуре Crithidia oncopelti (Kinetoplastmonada, Trypanosomatidae)? // Зоол. журн. 1985а. Т. 64, вып. 2. С. 165-171.

63. Крылов М.В., Самовар А.Г., Подлипаев С.А., Хаецкий A.C. Исследование наличия генетического обмена в жизненном цикле Crithidia oncopelti (Protozoa, Kinetoplastmonada) //Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 19856. Т. 129. С. 4-25.

64. Кусакин О.Г., Дроздов А.Л. Филема органического мира. Часть 1. Пролегомены к построению филемы. СПб.: Наука, 1994. 272 с.

65. Кусакин О.Г., Дроздов А.Л. Филема органического мира. Часть 2. Prokaryota, Eukaryota: Microsporobiontes, Archemonadobiontes, Euglenobiontes, Myxobiontes, Rhodobiontes, Alveolates, Heterokontes. СПб.: Наука, 1998. 381 с.

66. Макгрегор Г., Варли Дж. Методы работы с хромосомами животных. М.: Мир, 1986. 272 с.

67. Малышева М.Н., Скарлато С.О. Исследование ультратонкой организации жгутиконосцев Leptomonas peterhoffi, культивируемых на жидкой и твердой питательных средах // Цитология. 1989. Т. 31, № 3. С. 267-272.

68. Марахова Н.В., Скарлато С.О., Фролов А.О. Молекулярные кариотипы низших трипаносоматид // Кариосистематика беспозвоночных животных. СПб, 1993. Т. 2. С. 104-106.

69. Марахова Н.В., Скарлато С.О., Фролов А.О., Цуладзе A.M. Полиморфизм молекулярных кариотипов низших трипаносоматид // Цитология. 1991. Т. 33, № 10. С. 59-66.

70. Марахова Н.В., Сопина В.А., Скарлато С.О., Громов Д.Б. Выявление молекул ДНК хромосомного размера Amoeba proteus методом электрофореза в пульсирующем поле //ДАН. 1993. Т. 330, № 6. С. 794-796.

71. Маргелис J1. Роль симбиоза в эволюции клетки. М.: Мир, 1983. 351 с.

72. Межевая Е.В., Степанова В.П., Яровой Б.Ф. Пульсфорез как новый инструмент в генетике//Успехи современной генетики. М.: Наука, 1993. Вып. 18. С. 136-162.

73. Мережковский КС. Теория двух плазм как основа симбиогенезиса, нового учения о происхождении организмов. Казань, 1909. 102 с.

74. Мирабдуллаев И.М. Проблема происхождения эукариот // Усп. совр. биол. 1989.Т. 107. С. 341-356.

75. Миронов A.A., Комиссарчик Я.Ю., Миронов В.А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине. СПб.: Наука, 1994. 400 с.

76. Мошковский Ш.Д. О природе простейших (Protozoa) и границах протозоологии // Тр. Ленингр. об-ва естествоиспыт. 1957. Т. 73, вып. 4. С. 129-137.

77. Насонова Е.С., Соколова Ю.Я., Скарлато С.О. Хромосомные ДНК и размер генома микроспоридии Nosema grylli// ДАН. 1998. Т. 361, № 4. С. 554557.

78. Одум Ю. Основы экологии. М.: Мир, 1975. 740 с.

79. Осипов Д.В. Проблемы гетероморфизма ядер у одноклеточных организмов. Л.: Наука, 1981. 167 с.

80. Осипов Д. В., Подлипаев С. А. Внутриядерные симбиотические микроорганизмы как фактор эволюционного процесса одноклеточных животных//Паразито-хозяинные отношения. Л.: Наука, 1984. С. 30-34.

81. Патрушев Л.И. Экспрессия генов. М.: Наука, 2000. 527 с.

82. Подлипаев С.А. Каталог мировой фауны простейших семейства Trypanosomatidae //Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1990. Т. 217. 178 с.

83. Подлипаев С.А., Фролов O.A. Филогения трипаносоматид: молекулярный и морфологический подходы // Паразитология. 2000. Т. 34, вып. 3. С. 169-182.

84. Подлипаев С.А., Филатов М.В., Пантина P.A. Сравнительное определение количества ДНК и молекулярные кариотипы у низших трипанозоматид из клопов Северо-Запада СССР // Паразитология. 1991. Т. 25, вып. 3. С. 250-257.

85. Подлипаев С.А., Фролов O.A., Колесников A.A. Proteomonas inconstans п. gen., п. sp. (Kinetoplastida: Trypanosomatidae) паразит клопа Calocoris sexguttatus (Hemiptera: Miridae) // Паразитология. 1990. Т. 24, вып. 4. С. 339349.

86. Полянский Ю.И. Жизненные циклы фораминифер // Вопросы микропалеонтологии. 1982. Вып. 25. С. 3-18.

87. Полянский Ю.И., Суханова K.M., Карпов С.А. Общая характеристика протистов // Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. Ч. 1. С. 145-180.

88. Прокофьева-Бельговская A.A. Гетерохроматические районы хромосом. М.: Наука, 1986. 431 с.

89. Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. Ч. 1. 679 с.

90. Райков И.Б. Ультраструктура ядер инфузории Nassula omata II Цитология. 1965. Т. 7, № 5. С. 675-678.

91. Райков И.Б. Кариология простейших. Л.: Наука, 1967. 260 с.

92. Райков И.Б. Эволюция хромосомного аппарата простейших // Успехи современной генетики. М.: Наука, 1971. Т. 3. С. 216-232.

93. Райков И.Б. Ядро простейших. Морфология и эволюция. Л.: Наука, 1978. 328 с.

94. Райков И.Б. Пути эволюции митотического аппарата у низших эукариот //Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1986. Т. 144. С. 26-56.

95. Райков И.Б. Ядерный геном простейших // Организация генома. М.: Наука, 1989. С. 110-154.

96. Райков И.Б. Ядерная дифференцировка и гетероморфизм ядер у простейших// Цитология. 1992. Т. 34, № 7. С. 3-16.

97. Райков И.Б., Миньо Ж.-П. Сегрегированные ядрышки и внутриядерные пористые пластинки в цистах покоя у раковинной амебы Arcella И ДАН СССР. 1989. Т. 308, № 1. С. 200-202.

98. Родионов A.B. Эволюция дифференциальной исчерченности хромосом // Генетика. 1999. Т. 35, № 3. С. 277-290.

99. Розанов Ю.М. Проточная цитометрия // Методы культивирования клеток. Л.: Наука, 1988. С. 136-146.

100. Серавин Л.Н. Макросистема жгутиконосцев // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1980. Т. 94. С. 4-22.

101. Серавин Л.Н. Простейшие. Что это такое? Л.: Наука, 1984. 176 с.

102. Серавин Л.Н. Происхождение эукариотной клетки. I. Исторические истоки и современное состояние концепции симбиотического и аутогенного происхождения клетки // Цитология. 1986а. Т. 28, № 6. С. 563-575.

103. Серавин Л.Н. Происхождение эукариотной клетки. II. Критический анализ симбиотической (экзогенной) концепции // Цитология. 19866. Т. 28, № 7. С. 659-669.

104. Серавин Л.Н. Происхождение эукариотной клетки. III. Некоторые принципы морфофункциональной организации эукариотной клетки // Цитология. 1986в. Т. 28, № 8. С. 779-789.

105. Серавин Л.Н. Происхождение эукариотной клетки. IV. Общая гипотеза аутогенного происхождения эукариот // Цитология. 1986г. Т. 28, № 9. С. 899910.

106. Серавин Л.Н. О параллелизмах на субклеточном уровне живых систем // Вестник ЛГУ. 1987. Сер. 3. С. 3-10.

107. Серавин Л.Н. Существует ли в действительности такой таксон -подцарство Protozoa? // Научн. докл. высш. шк. 1989. № 7. С. 4-13.

108. Серавин Л.Н. Основные типы и формы тонкого строения крист митохондрий, степень их эволюционной стабильности (способность к морфологическим трансформациям) // Цитология. 1993. Т. 35, № 1. С. 3-34.

109. Серавин Л.Н. Пути эволюции протистов // Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. Ч. 1. С. 138-145.

110. Серавин Л.H., Гудков A.B. Агамные слияния протистов и происхождение полового процесса. СПб, Омск: Изд-во ОмГПУ, 1999. 155 с.

111. Сергеева Г.И. О структуре хроматина макронуклеуса инфузории Bursaria truncatella II Цитология. 1977. Т. 19, № 10. С. 1146-1154.

112. Сергеева Г.И., Бобылева H.H. Образование кристаллоподобных структур в хроматине соматического ядра у инфузорий рода Bursaria при переходе клеток в состояние длительного покоя // Цитология. 1988. Т. 30, № 11. С. 1291-1300.

113. Сергеева Г.И., Самошкин A.A. ДНК-содержащие полигональные структуры, выявляемые в соматических ядрах инфузории Bursaria ovata II Цитология. 2002. T. 44, № 10. С. 1015-1028.

114. Сингер M., Берг П. Гены и геномы. М.: Мир, 1998а. Т. 1. 373 с.

115. Сингер М., Берг П. Гены и геномы. М.: Мир, 19986. Т. 2. 391 с.

116. Скарлато С.О. Ультраструктура ядерного аппарата инфузории Stentor coeruleus/l Цитология. 1977. Т. 19, № 5. С. 478-483.

117. Скарлато С.О. Электронномикроскопическое исследование изменения макронуклеуса инфузории Stentor coeruleus в процессе конъюгации // Цитология. 1978а. Т. 20, № 6. С. 607-611.

118. Скарлато С.О. Тонкое строение зачатков макронуклеуса инфузории Stentor coeruleus II ДАН СССР. 19786. Т. 242, № 5. С. 1192-1193.

119. Скарлато С.О. Ультрацитохимическое исследование макронуклеуса инфузории Stentor coeruleus И Цитология. 1979а. Т. 21, № 3. С. 292-294.

120. Скарлато С.О. Ядерный аппарат инфузории Stentor coeruleus (Ciliophora, Heterotrichida) и его реорганизация в процессе конъюгации: Автореф. канд. дис. Л., 19796. 18 с.

121. Скарлато С.О. Особенности тонкого строения ядра паразитического жгутиконосца Trypanoplasma borreli (Kinetoplastida) в интерфазе и митозе // ДАН СССР. 19876. Т. 293, № 1. С. 220-221.

122. Скарлато С.О. Хромосомы кинетопластид и их сегрегация в митозе // Цитология. 1992. Т. 34, № 4. С. 141.

123. Скарлато С.О. Структурная организация хроматина и хромосом у низших эукариот // Цитология. 1993. Т. 35, № 10. С. 91-92.

124. Скарлато С.О. Хромосомы низших эукариот: идентификация, изоляция и структура // Генетика. 1994. Т. 30, приложение. С. 146.

125. Скарлато С.О. Структура слабоконденсирующихся хромосом одноклеточных животных//Цитология. 1997. Т. 39, № 1. С. 105-106.

126. Скарлато С.О. Протозоология в Санкт-Петербурге. // Петербургская Академия наук в истории Академий мира. К 275-летию Академии наук. СПб.: Изд-во СПб Научного центра РАН, 1999. Т. 1. С. 267-274.

127. Скарлато С.О. Примитивные черты структурной организации слабоконденсирующихся хромосом простейших // Цитология. 2000. Т. 42, № 3. С. 309.

128. Скарлато С.О., Бобылева H.H. Изучение ДНК-содержащих структур ядра и цитоплазмы жгутиконосцев Crithidia методом Миллера // Цитология. 2002. Т. 44, №5. С. 411-421.

129. Скарлато С.О., Малышева М.Н. Ультраструктура гигантских многоядерных клеток паразитических жгутиконосцев Crithidia oncopelti II Цитология. 1987. Т. 29, № 12. С. 1337-1342.

130. Скарлато С.О., Махлин Е.Е. Изменения ультраструктуры ядер амеб, утративших жизнеспособность в результате кратковременного нахождения в их цитоплазме ядер амеб другого штамма // Цитология. 1983. Т. 25, № 10. С. 1153-1158.

131. Скарлато С.О., Паршкова Т. А., Фролов А.О. Электронно-микроскопическое и молекулярно-биологическое исследование ядра у низших трипаносоматид Blastocrithidia miridarum и Crithidia brevicula II Цитология. 1990. Т. 32, № 4. С. 317-324.

132. Скарлато С.О., Сомова Н.В., Розанов Ю.М., Кудрявцев Б.Н., Бобылева H.H., Фролов А.О. Особенности организации хромосомного аппарата жгутиконосцев Crithidia sp. // Цитология. 1998. Т. 40, № 11. С. 991-1005.

133. Скарлато С.О., Фролов А.О. Необычный способ деления у трипаносоматид //ДАН СССР. 1988. Т. 298, № 3. С. 729-731.

134. Смирнов В.Г. Цитогенетика. М.: Высшая школа, 1991. 247 с.

135. Смирнов A.B., Гудков A.B. Подкласс Gymnamoebia Haeckel, 1862 -Голые лобозные амебы // Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. Ч. 1. С. 451-468.

136. Соколова Ю.Я., Насонова Е.С., Сомова Н.В., Скарлато С.О. Ультраструктура ядерного аппарата и электрофоретический кариотипмикроспоридии Nosema grylli внутриклеточного паразита сверчка Gryllus bimaculatus II Цитология. 1998. T. 40, № 5. С. 407-416.

137. Соколова Ю.Я., Селезнев К.В., Долгих В.В., Исси И.В. Микроспоридия Nosema grylli n.sp. из сверчка Gryllus bimaculatus И Паразитология. 1994. Т.28, вып. 6. С. 488-494.

138. Соколова Ю.Я., Снигиревская Е.С., Скарлато С.О., Комиссарчик Я.Ю., Миронов A.A. Необычный аппарат Гольджи микроспоридий на пролиферативной стадии жизненного цикла //ДАН. 2001. Т.378, № 3. С. 403406.

139. Соколова Ю.Я., Тимошенко С.А., Исси И.В. Морфогенез и ультратонкое строение микроспоридии Nosema mesnili на разных стадиях жизненного цикла // Цитология. 1988. Т. 30, № 1. С. 26-32.

140. Соловьев М.М., Ченцов Ю.С. Электронномикроскопическое изучение Lamblia mûris в связи с особенностями экологии паразита // Мед. паразитол. и паразитарн. болезни. 1966. № 6. С. 667-672.

141. Сомова Н.В., Скарлато С.О., Фролов А.О. Хромосомы свободноживущих жгутиконосцев-кинетопластид//ДАН. 1997. Т. 357, № 3. С. 414-416.

142. Сопина В.А. Клеточная биология амеб и амебожгутиконосцев -паразитов человека и животных// Цитология. 1997. Т. 39, № 4/5. С. 361-386.

143. Сопина В.А. Паразитические амебы и амебофлагелляты классов Lobosea и Heterolobosea. Паразитология. 1998. Т. 32, вып. 4. С. 332-346.

144. Старобогатов Я.И. К вопросу о числе царств эукариотных организмов // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1986. Т. 144. С. 4-25.

145. Студитский В.М. Транскрипция хроматина // Молекуляр. биол. 2001. Т. 35, вып. 2. С. 235-247.

146. Суханова K.M. Отряд Trichomonadida Kirby, 1947 Трихомонадиды // Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. Ч. 1. С. 358-368.

147. Сухарева-Немакова H.H., Корнилова В.Ф., Лосаберидзе Н.Ш. Влияние трипафлавина на размноженние и субмикроскопическую организацию Críthidia oncopelti (при культивировании в условиях активной аэрации) // ДАН СССР. 1971. Т. 200, № 4. С. 963-966.

148. Сухарева-Немакова H.H., Титова Т.С., Авакян А.Н. Некоторые особенности ультраструктуры Críthidia oncopelti с различнойчувствительностью к оливомицину // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1975. № 2. С. 275-280.

149. Тахтаджян А.Л. Четыре царства органического мира // Природа. 1973. № 2. С. 22-32.

150. Трифонов Э.Н. Генетическое содержание последовательностей ДНК определяется суперпозицией многих кодов // Молекуляр. биол. 1997. Т. 31, вып. 4. С. 759-767.

151. Фролов А.О. Жизненный цикл Blastocrithidia miridarum (Kinetoplastida, Trypanosomatidae) // Зоол. журн. 1987. T. 66, вып. 5. С. 655-661.

152. Фролов А.О. Происхождение трипаносоматид // Паразитология. 1993. Т. 27, вып. 2. С. 97-107.

153. Фролов А.О. Новая гипотеза происхождения трипаносоматид. Автореф. докт. дисс. СПб, 1997. 50 с.

154. Фролов А. О. Класс Kinetoplastidea // Протисты: Руководство по зоологии. СПб.: Наука, 2000. С. 211-256.

155. Фролов А.О., Малышева М.Н. Crithidia allae sp.n. и С. brevicula sp. п. (Protozoa, Trypanosomatidae) из клопа Nabis brevis II Зоол. журн. 1989. Т. 68, вып. 7. С. 5-10.

156. Фролов А.О., Малышева М.Н. Эндомастиготы особый тип расселительных стадий трипаносоматид рода Proteomonas // Паразитология. 1992. Т. 26, вып. 4. С. 351-354.

157. Фролов А.О., Мыльников А.П., Малышева М.Н. Электронно-микроскопическое исследование нового вида свободноживущего жгутиконосца Dimastigella mimosa sp. п. // Цитология. 1997. Т. 39, N2 6. С. 442448.

158. Фролов А.О., Скарлато С.О. Свето- и электронно-микроскопические исследования Leptomonas pyrrhocoris Z. (Trypanosomatidae) // Паразитология. 1987. Т. 21, вып. 1. С. 3-9.

159. Фролов А.О., Скарлато С.О. Локализация и способы закрепления жгутиконосцев Blastocríthidia miridarum в пищеварительном тракте клопов Adelphocoris quadrípunctatus // Паразитология. 1988. Т. 22, вып. 6. С. 481-487.

160. Фролов А.О., Скарлато С.О. Электронно-микроскопическое исследование жгутиконосцев Leptomonas jaculum из средней кишки клопа Nepa cinerea И Паразитология. 1989. Т. 23, вып. 5. С. 383-389.

161. Фролов А.О., Скарлато С.О. Структура розетковидных клеточных ассоциатов у низших трипаносоматид // Цитология. 1990а. Т. 32, № 5. С. 455461.

162. Фролов А.О., Скарлато С.О. Дифференцировка цистоподобных клеток паразитического жгутиконосца Leptomonas mycophilus in vitro // Цитология. 19906. Т. 32, № 10. С. 985-992.

163. Фролов А.О., Скарлато С.О. Описание Leptomonas mycophilus sp.n. (Trypanosomatidae) паразита клопа Phytocoris sp. (Miridae) // Паразитология. 1991. Т. 25, вып. 2. С. 99-103.

164. Фролов А.О., Скарлато С.О. Тонкое строение и механизмы адаптации низших трипаносоматид в полужесткокрылых насекомых // Цитология. 1995. Т. 37, № 7. С. 539-560.

165. Фролов А.О., Скарлато С.О., Шаглина Е.Г. Морфология цистоподобных клеток жгутиконосцев Leptomonas jaculum II Цитология. 1991. Т. 33, № 10. С. 55-58.

166. Фролов А.О., Малышева М.Н., Подлипаев С.А., Скарлато С.О. Электронно-микроскопическое исследование ядер промастигот трипаносоматид Endotrypanum monterogei, Leishmania tarentolae и

167. Phytomonas sp. в интерфазе и митозе // Цитология. 1997. Т. 39, № 4/5. С. 278-284.

168. Хаецкий А.С. Клонирование жгутиконосца Crithidia oncopelti на плотной питательной среде неопределенного состава, не содержащей гемин // Цитология. 1982. Т. 24, № 2. С. 211-214.

169. Хаусман К. Протозоология. М.: Мир, 1988. 336 с.

170. Хованских А.Е. Биохимия кокцидий и кокцидиозов. Л.: Наука, 1984. 192с.

171. Ченцов Ю.С., Поляков В.Ю. Ультраструктура клеточного ядра. М.: Наука, 1974. 175 с.

172. Чернов Ю.В., Акимова Т.В., Гордеева Л.М., Продеус Т.В. Морфология внутриядерных включений трофозоитов Entamoeba histolytica И Паразитология. 1984. Т. 18, вып. 5. С. 357-361.

173. Чернов Ю.В., Продеус Т.В., Гордеева Л.М. Возможное поступление фрагментов бактериального генома в ядро трофозоита дизентерийной амебы // Паразитология. 1988. Т. 22, вып. 2. С. 149-153.

174. Шаглина Е.Г., Фролов А.О., Скарлато С.О. Ультраструктура паразитического жгутиконосца Leptomonas nabiculae из клопа Nabicula flavomarginata II Цитология. 1995. Т. 37, № 1/2. С. 159-165.

175. Adoutte A., Germot A., le Guyader H., Philippe H. Que savons-nous de I'histoire evolutive des Eucaryotes? De la diversification des protistes a la radiation des multicellulaires // Soc. Franc, de Gen., Med. et Sci. 1996. T. 12. P. 1-17.

176. Albach R.A. Nucleic acids of Entamoeba histolytica И J. Protozool. 1989. Vol. 36. P. 197-205.

177. Albach R.A., Booden Т., Boonlayangoor P., Dowing S. Concepts of function of peripheral non-chromatin and endosome in Entamoeba histolytica II Arch. Invest. Med. (Мех). 1980. Vol. 11. P. 63-74.

178. Alberts B., Bray D., Lewis J., Raff M„ Roberts K., Watson J.D. Essential cell biology: an introduction to the molecular biology of the cell. New York: Garland, 1998. 1207 p.

179. Alexeiev A. Systématisation de la mitose dite "primitive". Sur la question du centriole // Arch. Protistenkd. 1913. Bd 29. S. 345-363.

180. Allshire R. RNAi and heterochromatin a hushed-up affair // Science. 2002. Vol. 297. P. 1818-1819.

181. Ammermann D. The contribution of hypotrichous ciliates to our understanding of molecular biology and evolution of ciliates // Zool. Sci. 1990. Vol. 7. P. 13-22.

182. Ammermann D., Schlegel M. Characterization of two sibling species of the genus Stylonychia (Ciliata, Hypotricha): S. mytilus Ehrenberg, 1838 and S. lemnae n.sp. I. Morphology and reproductive behavior // J. Protozool. 1983. Vol. 30. P. 290-294.

183. Anand R. Pulsed field gel electrophoresis: a technique for fractionating large DNA molecules //Trends Genet. 1986. Vol. 2. P. 278-283.

184. Andrulis E.D., Neiman A.M., Zappulla D.C., Strenglanz R. Perinuclear localization of chromatin facilitates transcriptional silencing // Nature. 1998. Vol. 394. P. 592-595.

185. Arguello C., Valenzuela B., Rangel E. Structural organization of chromatin during the cell cycle of Entamoeba histolytica trophozoites // Arch. Med. Res. 1992. Vol. 23. P. 77-80.

186. Arts G.J., Benne R. Mechanism and evolution of RNA editing in Kinetoplastida // Biochim. biophys. acta. 1996. Vol. 1307. P. 39-54.

187. Aymerich S., Goldenberg S. The karyotype of Trypanosoma cruzi Dm28c: comparison with other T. cruzi strains and trypanosomatids // Exp. Parasitol. 1989. Vol. 69. P. 107-115.

188. Baez-Camargo M., Flores-Soto E., Orozco E. Improved molecular karyotype of Entamoeba histolytica //Arch. Med. Res. 1992. Vol. 23. P. 7-9.

189. Bailey K.A., Reeve J.N. DNA repeats and archaeal nucleosome positioning // Res. Microbiol. 1999. Vol. 150. P. 701-709.

190. Baker J.R. The distribution of nucleic acids in Trypanosoma evansi II Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. 1961. Vol. 55. P. 518-523.

191. Bakker-GrunwalcJ T., Wöstmann C. Entamoeba histolytica as a model for the primitive eukaryotic cell // Parasitol. Today. 1993. Vol. 9. P 27-31.

192. Ball P. Portrait of a molecule // Nature. 2003. Vol. 421. P. 421-422. Barlow S.B., Triemer R.E. The mitotic apparatus in the dinoflagellate Amphidinium carterae II Protoplasma. 1988. Vol. 145. P. 16-26.

193. Bastien P. The complete chromosomal organization of the reference strain of the Leishmania genome project, L. major "Friedlin" // Parasitol. Today. 1998. Vol. 14. P. 301-303.

194. Baxter J., Merkenschlager M., Fisher A.G. Nuclear organisation and gene expression //Curr. Opin. Cell Biol. 2002. Vol. 14. P. 372-376.

195. Beers C.D. Cytochemical observations on the interphase nucleus of the parasitic ameba Hydramoeba hydroxena (Entz) // J. Parasitol. 1964. Vol. 50. P. 630-633.

196. Belar K. 1926. Der Formwechsel der Protistenkerne. Eine vergleichendmorphologische Studie. Ergebnisse und Fortschritte der Zoologie. Jena: G. Fischer Verlag, 1926. S. 235-654.

197. Bender K., Betschart B., Marion C., Michaion P., Hecker H. Structural differences between the chromatin of procyclic Trypanosoma brucei brucei and of higher eukaryotes as probed by immobilized trypsin //Acta tropica. 1992. Vol. 52. P. 69-78.

198. Bender K., Mirelman D. Composition and properties of Entamoeba histolytica chromatin //J. Euk. Microbiol. 1995. Vol. 42. P. 27A.

199. Berezney R., Coffey D.S. Identification of a nuclear protein matrix // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1974. Vol. 60. P. 1410-1417.

200. Berezney R., Mortillaro J., Ma H., Wei X., Samarabandu J. The nuclear matrix: a structural milieu for genomic function // Int. Rev. Cytol. 1995. Vol. 162A. P. 7-65.

201. Bernards A. Antigenic variation of trypanosomes // Biochim. biophys. acta. 1985. Vol. 824. P. 1-15.

202. Beverley S.M. Gene amplification in Leishmania // Annu. Rev.Microbiol. 1991. Vol. 45. P 417-444.

203. Beverley S.M., Coburn C.M. Recurrent de novo appearance of small linear DNAs in Leishmania major and relationship to extra-chromosomal DNAs in other species // Mol. Biochem. Parasitol. 1990. Vol. 42. P. 133-141.

204. Bhattacharya A., Satish S., Bagchi A., Bhattacharya S. The genome of Entamoeba histolytica II Intern. J. Parasitol. 2000. Vol. 30. P. 401-410.

205. Bhattacharya S., Som I., Bhattacharya A. The ribosomal DNA plasmids of Entamoeba!/ Parasitol. Today. 1998. Vol. 14. P. 181-185.

206. Bhat M.A., Philp A.V., Glover D.M., Bellen H.J. Chromatid segregation at anaphase requires the barren product, a novel chromosome-associated protein that interacts with topoisomerase II // Cell. 1996. Vol. 87. P. 1103-1114.

207. Bianchi L., Rondanelly E.G., Garosi G., Gerna G. Endonuclear mitotic spindle in the leptomonad of Leishmania tropica // J. Parasitol. 1969. Vol. 55. P. 1091-1092.

208. Bickmore W.A., Oghene K. Visualizing the spatial relationships between defined DNA sequences and the axial region of extracted metaphase chromosomes // Cell. 1996. Vol. 84. P. 95-104.

209. Biderre C., Pages M., Metenier G., Canning E.U., Vivares C.P. Evidence for the smallest nuclear genome (2.9 Mb) in the microsporidium Encephalitozoon cuniculill Mol. Biochem. Parasitol. 1995. Vol. 74. P. 229-231.

210. Birren B., Lai E. Pulse field gel electrophopresis: A practical guide. San Diego: Acad. Press, 1993. 253 p.

211. Bishop R.P., Miles M.A. Chromosome size polymorphisms of Leishmania donovani// Mol. Biochem. Parasitol. 1987. Vol. 24. P. 263-272.

212. Blackburn E.H. Characterization and species differences of rDNA: Protozoans. The Cell Nucleus. New York, London: Acad. Press, 1982. Vol. 10. P. 145-170.

213. Blackburn E.H. Telomeres // Trends Biochem. Sei. 1991. Vol. 16. P. 378381.

214. Blackburn E.H. Telomeres: no end in sight // Cell. 1994. Vol. 77. P. 621623.

215. Blackburn E.H. Telomere states and cell fates // Nature. 2000. Vol. 408. P.53.56.

216. Blackburn E.H., Challoner P.B. Identification of a telomeric DNA sequence in Trypanosoma bruceiII Cell. 1984. Vol. 36. P. 447-457.

217. Blaineau C., Bastien P., Rioux J.A., Roizes G., Pages M. Long-range restriction maps of size-variable homologous chromosomes in Leishmania infantum II Mol. Biochem. Parasitol. 1991. Vol. 46. P. 293-302.

218. Borst P. Discontinuous transcription and antigenic variation in trypanosomes //Annu. Rev. Biochem. 1986. Vol. 55. P 701-732.

219. Borst P., Fase-Fowler F., Frasch A.C.C., Hoeijmakers J.H.J., Weijers P.J. Characterization of DNA from Trypanosoma brucei and related trypanosomes by restriction endonuclease digestion // Mol. Biochem. Parasitol. 1980. Vol. 1. P. 221246.

220. Borst P., Van der Ploeg M., Van Hoek J.F.M., Tas J., James J. On the DNA content and ploidy of trypanosomes // Mol. Biochem. Parasitol. 1982. Vol. 6. P. 13-23.

221. Bowers B., Korn E.D. The fine structure of Aca nth amoeba castellanii. I. The trophozoite // J. Cell Biol. 1968. Vol. 39. P. 95-111.

222. Brennicke A., Marchfelder A., Binder S. RNA editing // FEMS Microbiol. Rev. 1999. Vol. 23. P. 297-316.

223. Brooker B.E., Ogden C.G. Encystment of Bodo caudatus II Protoplasma. 1972. Vol. 74. P. 397-409.

224. Brown S.W. Heterochromatin // Science. 1965. Vol. 151. P. 418-425.

225. Brugerolle G. Etude de la cryptopleuromitose et la morphogenese de division chez Trichomonas vaginalis et chez plusieurs gernes de Trichomonas primitives // Protistologica. 1975. Vol. 11. P. 457-468.

226. Brugerolle G., Lee J.J. Phylum Parabasalia // An illustrated guide to the Protozoa. Second edition. Organisms traditionally referred to as protozoa, or newly discovered groups. Lawrence, Kansas: Allen Press, 2000. Vol. 2. P. 11961250.

227. Brunk C.F. Genome reorganization in Tetrahymena II Int. Rev. Cytol. 1986. Vol. 99. P. 49-83.

228. Burri C., Bodley A.L., Shapiro T.A. Topoisomerases in kinetoplastids // Parasitai. Today. 1996. Vol. 12. P. 226-231.

229. Biitschli O. Protozoa. Klassen und Ordnungen des Thier-Reichs. Leipzig: C.F. Winter, 1880-1889. S. 1-2035.

230. Byers T.J. Molecular biology of DNA in Acanthamoeba, Amoeba, Entamoeba, and Naegleria// Int. Rev. Cytol. 1986. Vol. 99. P. 311-341.

231. Canning E.U. Nuclear division and chromosomal cycle in microsporidia // BioSystems. 1988. Vol. 21. P. 333-340.

232. Carle G.F., Olson M.V. Separation of chromosomal DNA molecules from yeast by orthogonal-field-alternation gel electrophoresis // Nucl. Acids Res. 1984. Vol. 12. P. 5647-5664.

233. Carmo-Fonseca M., Mendes-Soares L., Campos I. To be or not to be in the nucleolus // Nature Cell Biol. 2000. Vol. 2. P. E107-E112.

234. Cary C., Lamont D., Dalton J.P., Doerig C. Plasmodium falciparum chromatin: nucleosomal organization and histone-like proteins // Parasitai. Res. 1994. Vol. 80. P. 255-258.

235. Castro C., Craig S.P., Castaneda M. Genome organization and ploidy number in Trypanosoma cruzi II Mol. Biochem. Parasitai. 1981a. Vol. 4. P. 273282.

236. Castro C., Hernandez R., Castaneda M. Trypanosoma cruzi ribosomal RNA: Internal break in the large-molecular-mass species and number of genes // Mol. Biochem. Parasitai. 1981b. Vol. 2. P. 219-233.

237. Cavalier-Smith T. The origin of nuclei and eukaryotic cells // Nature. 1975. Vol. 256. P. 463-468.

238. Cavalier-Smith T. The evolutionary origin -and phylogeny of microtubules, mitotic spindles and eukaryote flagella // BioSystems. 1978. Vol. 10. P. 93-114.

239. Cavalier-Smith T. A 6-kingdom classification and a unified phylogeny // Endocytobiology II. Berlin: de Gruyter, 1983. P. 1027-1034.

240. Cavalier-Smith T. The evolution of cells. Evolution of Life. Tokyo, Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag, 1991a. P. 271-304.

241. Cavalier-Smith T. Archamoebae: the ancestral eukaryotes? // BioSystems. 1991b. Vol. 25. P. 25-38.

242. Cavalier-Smith T. Kingdom Protozoa and its 18 phyla // Microbiol. Rev. 1993. Vol. 57. P. 953-994.

243. Cavalier-Smith T. Cell and genome coevolution: facultative anaerobiosis, glycosomes and kinetoplastan RNAediting //Trends Genet. 1997. Vol. 13. P. 6-9.

244. Cavalier-Smith T. A revised six-kingdom system of life // Biol. Rev. 1998. Vol. 73. P. 203-266.

245. Cavalier-Smith T. The phagotrophic origin of eukaryotes and phylogenetic classification of Protozoa // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002. Vol. 52. P. 297-354.

246. Cavalli G. Chromatin as a eukaryotic template of genetic information // Curr. Opin. Cell Biol. 2002. Vol. 14. P. 269-278.

247. Cervantes R.B., Lundblad V. Mechanisms of chromosome-end protection // Curr. Opin. Cell Biol. 2002. Vol. 14. P. 351-356.

248. Cesana D. La mitose gamogonique chez India lucida (Foraminifera, Lagynidae) //Ann. Sci. Nat., Zool., ser. 12. 1978. T. 20. P. 287-300.

249. Chatton E. Essai sur le structure du noyau et de la mitose chez les Amoebiens. Faits et theories //Arch. Zool. Exp. Gener. 1910. T. 5. P. 267-337.

250. Chaves I., Zomerdijk J., Dirks-Mulder A., Dirks R.W., Raap A.K., Borst P. Subnuclear localization of the active variant surface glycoprotein gene expression site in Trypanosoma brucei 1/ Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1998. Vol. 95. P. 1232812333.

251. Chen T.T. Chromosomes in Opalinidae (Protozoa, Ciliata) with special reference to their behavior, morphology, individuality, diploidy, haploidy, and association with nucleoli //J. Morphol. 1948. Vol. 83. P. 281-358.

252. Chu G., Vollrath D., Davis R.W. Separation of large DNA molecules by contour-clamped homogeneous electric field // Science. 1986. Vol. 234. P. 15821585.

253. Chung H.M.M., Shea C., Fields S„ Taub R.N., Van der Ploeg L.H.T., Tse D.B. Architectural organization in the interphase nucleus of the protozoan Trypanosoma brucei: location of telomeres and mini-chromosomes // EMBO J. 1990. Vol. 9. P. 2611-2619.

254. Clark C.G., Diamond L.S. The Laredo strain and other "Entamoeba histolytica like" amoebae are Entamoeba moshkovskii II Mol. Biochem. Parasitol. 1991. Vol. 46. P. 11-18.

255. Clark C.G., Roger A.J. Direct evidence for secondary loss of mitochondria in Entamoeba histolytica II Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1995. Vol. 92. P. 65186521.

256. Clark C.G., Silberman J.D., Diamond L.S., Sogin M.L. Molecular systematics of the intestinal amoebae // Evolutionary relationships among Protozoa. London: Chapman and Hall, 1998. P. 169-180.

257. Clark S.M., Lai E., Birren B.W., Hood L. A novel instrument for separating large DNA molecules with pulsed homogeneous electric fields // Science. 1988. Vol. 241. P. 1203-1205.

258. Cleveland L.R. The origin and evolution of meiosis // Science. 1947. Vol. 105. P. 287-288.

259. Cleveland L.R. Types and life cycles of centrioles of flagellates // J. Protozool. 1957. Vol. 4. P. 230-241.

260. Cleveland L.R. A factual analysis of chromosomal movement in Barbulanympha II J. Protozool. 1958. Vol. 5. P. 47-62.

261. Cleveland L.R. The centrioles of Trychomonas and their function in cell reproduction//Arch. Protistenkd. 1961. Bd 105. S. 149-162.

262. Comeau A.M., Miller S.I., Wirth D.F. Chromosome location of four genes in Leishmania/f Mol. Biochem. Parasitol. 1986. Vol. 21. P. 161-169.

263. Connelly C., Hieter P. Budding yeast SKP1 encodes an evolutionary conserved kinetochore protein required for cell cycle progression // Cell. 1996. Vol. 86. P. 275-285.

264. Cook P.R. A chromomeric model for nuclear and chromosome structure // J. Cell Sci. 1995. Vol. 108. P. 2927-2935.

265. Copeland H.F. The kingdoms of organisms // Quart. Rev. Biol. 1938. Vol. 13. P. 383-420.

266. Copeland H.F. The classification of lower organisms. Pacific Books: Palo Alto, 1956. 302 p.

267. Corliss J.O. Comments on the systematics and phylogeny of the Protozoa // Syst. Zool. 1960. Vol. 8. P. 169-190.

268. Corliss J.O. The kingdom Protista and its 45 phyla // BioSystems. 1984. Vol. 17. P. 87-126.

269. Corliss J.O. An interim utilitarian ("user-friendly") hierarchical classification and characterization of the protists //Acta protozool. 1994. Vol. 33. P. 1-51.

270. Corliss J.O. Classification of Protozoa and Protists // Evolutionary relationships among Protozoa. London: Chapman and Hall, 1998. P. 169-180.

271. Corliss J.O. Biodiversity and biocomplexity of the protists and an overview of their significant roles in maintenance of our biosphere // Acta protozool. 2002. Vol. 41. P. 199-219.

272. Cremer T., Cremer C. Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells // Nature Rev. Genet. 2001. Vol. 2. P. 292301.

273. Croft S.L. Ultrastructural study of the nucleus of Leishmania hertigi II Protistologica. 1979. Vol. 15. P. 103-110.

274. Curgy J.J., Vavra J, Vivares C. Presence of ribosomal RNAs with prokaryotic properties in microsporidia eukaryotic organisms // Biol. Cell. 1980. Vol. 38. P. 49-52.

275. Daniels E.W., McNiff J.M., Ekberg D.R. Nucleopores of the giant amoeba, Pelomyxa carolinensis IIZ. Zellforsch. 1969. Bd. 98. S. 357-363.

276. Darwish A., Weidner E., Fuxa J.R. Vairimorpha necatrix in adipose cells of Trichoplusia ni II J. Protozool. 1989. Vol. 36. 3. P. 308-311.

277. Dawson D., Herrick G. Telomeric properties of C4A4-homologous sequences in micronuclear DNA of Oxytricha fallax II Cell. 1984. Vol. 36. P. 171177.

278. Deane M.P., Milder R. A process of reproduction of Trypanosoma conorhinl different from binary or multiple fission//J. Protozool. 1966. Vol. 13. P. 553-559.

279. Deane M.P., Milder R. Ultrastructure of the "cyst-like" bodies of Trypanosoma conorhinl II J. Protozool. 1972. Vol. 19. P. 28-42.

280. De Lange T., Liu A.Y.C., Van der Ploeg L.H.T., Borst P., Tromp M.C., Van Boon J.H. Tandem repetition of the 5'-mini-exon of variant surface glycoproteingenes: a multiple promoter for VSG gene transcription? // Cell. 1983. Vol. 34. P. 891-900.

281. Denko N., Giaccia A., Peters В., Stamato T.D. An asymmetric field inversion gel electrophoresis method for the separation of large DNA molecules // Anal. Biochem. 1989. Vol. 178. P. 172-176.

282. De Souza W., Meyer H. On the fine structure of the nucleus in Trypanosoma cruzi in tissue culture forms. Spindle fibers in the dividing nucleus // J. Protozool. 1974. Vol. 21. P. 48-52.

283. Desportes I. Ultrastructure des Gregarines du genre Stylocephalus: la phase enkystee // Ann. Sci. Nat., Zool., ser. 12. 1970. T. 12. P. 73-169.

284. Dietrich P., Soares M.B., Affonso M.H.T., Floeter-Winter L.M. The Trypanosoma cruzi ribosomal RNA-encoding gene: analysis of promoter and upstream intergenic spacer sequences // Gene. 1993. Vol. 125. P. 103-107.

285. Dodge J.D. Chromosome structure in the dinoflagellates and the problem of the mesokaryotic cell // Progress in protozoology (Abstr. II Intern, conf. protozool.). London, 1965. P. 264-265.

286. Dodge J.D. The fine structure of algal cells. London, N.Y.: Acad. Press, 1973. 261 p.

287. Dodge J.D. The chromosomes of dinoflagellates // Int. Rev. Cytol. 1985. Vol. 94. P. 5-19.

288. Dogiel V.A. (revised by J.I. Poljanski, E.M. Chejsin). General Protozoology, 2nd ed. Oxford: Clarendon Press, 1965. 747 p.

289. Dolezel D., Jirku M., Maslov D.A., Lukes J. Phylogeny of the bodonid flagellates (Kinetoplastida) based on small-subunit rRNA gene sequences // Intern. J. System. Evol. Microbiol. 2000. Vol. 50. P. 1943-1951.

290. Dollet M. Plant diseases caused by flagellate protozoa (Phytomonas) // Annu. Rev. Phytopathol. 1984. Vol. 22. P. 115-132.

291. Donelson J.E., Gardner M.J., El-Sayed M.N. More surprises from Kinetoplastida // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1999. Vol. 96. P. 2579-2581.

292. Dorfman D.M., Lenardo M.J., Reddy L.V., Van der Ploeg L.H.T., Donelson J.E. The 5.8 S ribosomal RNA gene of Trypanosoma brucei: structural and transcriptional studies // Nucl. Acids Res. 1985. Vol. 13. P. 3533-3549.

293. Draper G.C., Gober J.W. Bacterial chromosome segregation // Annu. Rev. Microbiol. 2002. Vol. 56. P. 567-597.

294. DuPraw E.J. Evidence for a "folded-fibre" organization in human chromosomes // Nature. 1966. Vol. 209. P. 577-581.

295. Duschak V.G., Cazzulo J.J. The histones of the insect trypanosomatid, Crithidia fasciculat// Biochim. biophys. acta. 1990. Vol. 1040. P. 159-166.

296. Dvorak J.A. Analysis of the DNA of parasitic protozoa by flow cytometry // Methods in Molecular Biology. 1993. Vol. 21. P. 191-204.

297. Dvorak J.A., Hall T.E., Crane M.S.J., Engel J.C., McDaniel J.P., Uriegas R. Trypanosoma cruzi: flow cytometric analysis. I. Analysis of total DNA/organism by means of mithramycin-induced fluorescence // J. Protozool. 1982. Vol. 29. P. 430437.

298. Dvorak J.A., Kobayashi S„ Ailing D.W., Hallahan C.W. Elucidation of the DNA synthetic cycle of Entamoeba spp. using flow cytometry and mathematical modeling //J. Euk. Microbiol. 1995. Vol. 42. P. 610-616.

299. Earnshaw W.C. Mitotic chromosome structure // BioEssays. 1988. Vol. 9. P. 147-150.

300. Earnshaw W.C., Pluta A.F. Mitosis // BioEssays. 1994. Vol. 16. P. 639-643.

301. Eichenlaub-Ritter U., Ruthmann A. Holokinetic composite chromosomes with "diffuse" kinetochores in the micronuclear mitosis of a heterotrichous ciliate // Chromosome. 1982. Vol. 84. P. 701-716.

302. Ellis D.S., Evans D.A., Stamford S. The penetration of the salivary glands of Rhodnius prolixus by Trypanosoma rangeli II Z. Protistenkd. 1980. Bd 62. S. 63-74.

303. Ellis D.S., Evans D.A., Stamford S. Studies by electron microscopy of the giant forms of some African and South American trypanosomes found other than within their mammalian hosts // Folia parasitol. 1982. Vol. 25. P. 5-11.

304. Ellis D.S., Maudlin I., Sachs R. The behaviour of trypanosomes in Liberian tsetse //Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. 1985. Vol. 79. P. 883.

305. El-Sayed N.M., Hegde P., Quackenbush J., Melville S.E., Donelson J.E. The African trypanosome genome // Int. J. Parasitol. 2000. Vol. 30. P. 329-345.

306. Engberg J. The ribosomal RNA genes of Tetrahymena: structure and function // Eur. J. Cell Biol. 1985. Vol. 36. P. 133-151.

307. Engman D.M., Reddy L.V., Donelson J.E., Kirchhof L.V. Trypanosoma cruzi exhibits inter- and intra-strain heterogeneity in molecular karyotype and chromosomal gene location // Mol. Biochem. Parasitol. 1987. Vol. 22. P. 115-123.

308. Ersfeld K., Gull K. Partitioning of large and minichromosomes in Trypanosoma brucei II Science. 1997. Vol.276. P. 611-614.

309. Ersfeld K., Melville S.E., Gulf K. Nuclear and genome organization of Trypanosoma brucei II Parasitol. Today. 1999. Vol. 15. P. 58-63.

310. Espinoza I., Toro G.C., Hellman U., Galanti N. Histone H1 and core histones in Leishmania and Crithidia: comparison with Trypanosoma II Exp. Cell Res. 1996. Vol. 224. P. 1-7.

311. Esponda P., Souto-Padron T., De Souza W. Fine structure and cytochemistry of the nucleus and the kinetoplast of epimastigotes of Trypanosoma cruzi/U. Protozool. 1983. Vol. 30. P. 105-110.

312. Evans D.A., Ellis D.S. Recent observations on the behaviour of certain trypanosomes within their insect hosts //Adv. Parasitol. 1983. Vol. 22. P. 1-42.

313. Fais D., Prusov A.N., Polyakov V.Yu. The anchorosome, a special chromatin granule for the anchorage of the interphase chromosome to the nuclear envelope//Cell Biol. Int. Rep. 1989. Vol. 13. P. 747-758.

314. Febvre J. La division nucleaire chez les Acanthaires. I. Etude ultrastructurale de la mitose. Comparaison avec la caryocinese d'autres organismes // J. Ultrastr. Res. 1977. Vol. 60. P. 279-295.

315. Felsenfeld G., Groudine M. Controlling the double helix // Nature. 2003. Vol. 421. P. 448-453.

316. Filipowicz W., Pogacic V. Biogenesis of small nucleolar ribonucleoproteins // Curr. Opin. Cell Biol. 2002. Vol. 14. P. 319-327.

317. Finch J.T., Klug A. Solenoidal model for superstructure in chromatin // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1976. Vol. 73. P. 1897-1901.

318. Fodinger M., Ortner S., Plaimauer B., Wiedermann G., Scheiner O., Duchene M. cDNA cloning of Entamoeba histolytica histone H3 //Arch. Med. Res. 1992. Vol. 23. P. 19-21.

319. Fokin S.I., Karpov S.A. Bacterial endocytobionts inhabiting the perinuclear space of Protista // Endocytobiosis Cell Res. 1995. Vol. 11. P. 81-94.

320. Fritz L., Triemer R.E. An ultrastructural study of mitosis in a marine dinoflagellate: Prorocentrum minimum II J. Protozool. 1983. Vol. 30. P. 437-444.

321. Frolov A.O., Karpov S.A. Comparative morphology of kinetoplastids // Tsitologiya (Russia). 1995. Vol. 37. P. 1072-1096.

322. Frolov A.O., Karpov S.A., Malysheva M.N. The ultrastructure of mitosis in the free-living kinetoplastid Bodo curvifilus II Eur. J. Protistol. 1996. Vol 32. P. 498505.

323. Frolov A.O., Skarlato S.O. Unusual pattern of mitosis in the free-living flagellate Dimastigella mimosa (Kinetoplastida) // Protoplasma. 1998. Vol. 201. P. 101-109.

324. Fuller M.S. Mitosis in Fungi // Int. Rev. Cytol. 1976. Vol. 45. P. 113-153.

325. Gaffal K.P., Wolf K.W., Schneider G.J. Morphometric and chronobiological studies on the dynamics of the nuclear envelope and the nucleolus during mitosis of the colorless phytoflagellate Polytoma papillatum II Protoplasma. 1983. Vol. 118. P. 19-35.

326. Gall J.G. A pictorial history. Views of the cell. Bethesda: The American Society for Cell Biology Publ., 1996. 128 p.

327. Gall J.G. Cajal bodies: the first 100 years // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2000. Vol. 16. P. 273-300.

328. Gall J.G. A role for Cajal bodies in assembly of the nuclear transcription machinery// FEBS Letters. 2001. V. 498. P. 164-167.

329. Gall J.G., Bellini M., Wu Z., Murphy C. Assambly of the nuclear transcription and processing machinery: Cajal bodies (Coiled bodies) and transcriptsomes // Mol. Biol. Cell. 1999. V. 10. P. 4385-4402.

330. Galvan S.C., Castro C., Segura E., Casas L., Castaneda M. Nucleotide sequences of the six very small molecules of Trypanosoma cruzi ribosomal RNA // Nucl. Acids Res. 1991. Vol. 19. P. 2496.

331. Gardiner K., Laas W., Patterson D. Fractionation of large mammalian DNA restriction fragments using vertical pulsed field gradient gel electrophoresis // Somatic Cell Mol. Genet. 1986. Vol. 12. P. 185-195.

332. Gardiner K., Patterson D. Transverse alternating electrophoresis // Nature. 1988. Vol. 331. P. 371-372.

333. Gardner M.J., Hall N., Fung E., White O. et al. Genome sequence of the human malaria parasite Plasmodium falciparum II Nature. 2002. Vol. 419. P. 498511.

334. Garside L., Bailey M., Gibson W. DNA content and molecular karyotype of trypanosomes of the subgenus Nannomonas //Acta tropica. 1994. Vol. 57. P. 2128.

335. Gay L.S., Wilson M.E., Donelson J.E. The promoter for the ribosomal RNA genes of Leishmania chagasi // Mol. Biochem. Parasitol. 1996. Vol. 77. P. 193200.

336. Gerace L., Burke B. Functional organization of the nuclear envelope // Annu. Rev. Cell Biol. 1988. Vol. 4. P. 335-374.

337. Gibbs A.J. Leptomonas capsularis n. sp. and other flagellates parasitic in Cletus ochraceus (Hemiptera) // Parasitology. 1951. Vol. 41. P. 128-133.

338. Gibson W.C., Borst P. Size-fractionation of the small chromosomes of Trypanozoon and Nannomonas trypanosomes by pulsed field gradient gel electrophoresis // Mol. Biochem. Parasitol. 1986. Vol. 18. P. 127-140.

339. Gibson W.C., Marshall T.F.C., de, Godfrey D.G. Numerical analysis of enzyme polymorphism: a new approach to the epidemiology and taxonomy of trypanosomes of the subgenus Trypanozoon II Adv. Parasitol. 1980. Vol. 18. P. 175-246.

340. Gibson W.C., Miles M.A. The karyotype and ploidy of Trypanosoma cruzi II EMBO J. 1986. Vol. 5. P. 1299-1305.

341. Gibson W.C., Osinga K.A., Michels P.A.M., Borst P. Trypanosomes of subgenus Trypanozoon are diploid for housekeeping genes // Mol. Biochem. Parasitol. 1985. Vol. 16. P. 231-242.

342. Gicquaud C.R. Etude de I'ultrastructure du noyau et de la mitose de Entamoeba histolytica II Biol. Cell. 1979. Vol. 35. P. 305-312.

343. Gillott M.A., Triemer R.E. The ultrastructure of cell division in Euglena gracilis II J. Cell Sci. 1978. Vol. 31. P. 25-35.

344. Glassberg J., Miyazaki L., Rifkin M.R. Isolation and partial characterization of mutants of the trypanosomatid Crithidia fasciculata and their use in detecting genetic recombination //J. Protozool. 1985. Vol. 32. P. 118-125.

345. Golder T.K. The macromicronuclear complex of Woodruffia metabolica II J. Ultrastr. Res. 1976. Vol. 54. P. 169-175.

346. Golemansky V.G., Skarlato S.O., Todorov M.T. A light- and electron-microscopical (SEM and TEM) study of Microchlamys sylvatica n. sp. (Rhizopoda: Arcellinida) //Arch. Protistenkd. 1987. Bd 134. S. 161-167.

347. Gomez M.P., Aldrich H.C., Walne P.L. Ultrastructural observations of age-related changes in the nuclear envelope of Euglena gracilis "Z" // J. Protozool. 1975. Vol. 22. P. 8A.

348. Gomez-Conde E., Hernandez-Jauregui P., Gonzalez-Camacho M., Orozco E., Lopez C.A. Chromatin organization during the nuclear division stages of live Entamoeba histolytica trophozoites // Exp. Parasitai. 1998. Vol. 89. P. 122-124.

349. Gonzalez A., Prediger E., Huecas M.E., Nogueira N., Lizardi P.M. Minichromosomal repetitive DNA in Trypanosoma cruzi. Its use in a high-sensitivity parasite detection assay // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1984. Vol. 81. P. 3356-3360.

350. Gonzalez-Robles A., Martinez-Palomo A. The fine structure of Entamoeba histolytica processed by cryo-fixation and cryo-substitution // Arch. Med. Res. 1992. Vol. 23. P. 73-76.

351. Goode D., Cachon M. Immunofluorescence and ultrastructural studies of spindle microtubules during mitosis in the colonial radiolarian Collozoum pelagicum II Biol. Cell. 1985. Vol. 53. P. 41-50.

352. Görtz H.-D. Intracellular bacteria in ciliates // Int. Microbiol. 2001. Vol. 4. P. 143-150.

353. Gottesdiener K., Garcia-Anoveros J., Lee M.G., Van der Ploeg L.H.T. Chromosome organization of the protozoan Trypanosoma brucei II Mol. Cell. Biol. 1990. Vol. 10. P. 6079-6083.

354. Grasse P.-P. Etude du mecanisme cellulaire: centromeres et centrosomes dans la mitose de certains Flagelles//C. r. Soc. Biol. 1939. T. 131. P. 1015-1018.

355. Grasse P.-P. Embranchement des Protozoaires. Généralités // Traite de Zoologie. Paris: Masson et Cie, 1952. Vol.1, fasc. 1. P. 37-132.

356. Grell K.G. The protozoan nucleus // The cell (biochemistry, physiology, morphology). New York, London: Acad. Press, 1964. Vol. 6. P. 1-79.

357. Grell K.G. Protozoology. Berlin, Heidelberg, N.Y.: Springer-Verlag, 1973.554 p.

358. Grell K.G. Cytogenetic systems and evolution in Foraminifera // J. Foram. Res. 1979. Vol. 9. P. 1-13.

359. Grif V.G. Some aspects of plant karyology and karyosystematics // Int. Rev. Cytol. 2000. Vol. 196. P. 131-175.

360. Griffith J.D., Comeau L., Rosenfield S., Stansel R.M., Bianchi A., Moss H., de Lange T. Mammalian telomeres end in a large duplex loop // Cell. 1999. Vol. 97. P. 503-514.

361. Gromov D.B. infrastructure of mitosis in Amoeba proteus II Protoplasma. 1985. Vol. 126. P. 130-139.

362. Grondal E.J.M., Evers R., Kosubek K., Cornelissen A.W.C.A. Characterization of RNA polymerases of Trypanosoma brucei: Trypanosoma! mRNAs are composed of transcripts derived from both RNA polymerase II and III // EMBO J. 1989. Vol. 8. P. 3383-3389.

363. Grondal E.J.M., Evers R., Cornelissen A.W.C.A. Identification and sequence analysis of the ribosomal DNA promoter region of Crithidia fasciculata II Nucl. Acids Res. 1990. Vol. 18. P. 1333-1338.

364. Gruzova M.N., Parfenov V.N. Karyosphere in oogenesis and intranuclear morphogenesis // Int. Rev. Cytol. 1993. V. 144. P. 1-52.

365. Haapala O.K., Soyer M.-O. Organization of chromosome fibrils in Euglena gracilis II Hereditas. 1975. Vol. 80. P. 185-194.

366. Haeckel E. Generelle Morphologie der Organismen. Georg Reimer: Berlin, 1866. 462 S.

367. Hager K.M., Striepen B., Tilney L.G., Roos D.S. The nuclear envelope serves as an intermediary between the ER and Golgi complex in the intracellular parasite Toxoplasma gondii II J. Cell Sei. 1999. Vol. 112. P. 2631-2638.

368. Hall I.M., Shankaranarayana G.D., Noma K.-l., Ayoub N., Cohen A., Grewal S.I.S. Establishment and maintenance of a heterochromatin domain // Science. 2002. Vol. 297. P. 2232-2237.

369. Hasan G., Turner M.J., Cordingley J.S. Ribosomal RNA genes of Trypanosoma brucei. Cloning of a rRNA gene containing a mobile element // Nucl. Acids Res. 1982. Vol. 10. P. 6747-6761.

370. Hasan G., Turner M.J., Cordingley J.S. Ribosomal RNA genes of Trypanosoma brucei: mapping the regions specifying the six small ribosomal RNAs // Gene. 1984. Vol. 27. P. 75-86.

371. Hauser M. The intranuclear mitosis of the ciliates Paracineta limbata and Ichthyophthirius multifiliis. I. Electron microscope observations on pre-metaphase stages//Chromosoma. 1972. Vol. 36. P. 158-175.

372. Hazard E.I., Andreadis T.G., Joslyn D.J., Ellis E.A. Meiosis and its implications in the life cycles of Amblyospora and Parathelohania (Microspora) // J. Parasitol. 1979. Vol. 65. P. 117-122.

373. He D., Zeng C., Brinkley B.R. Nuclear matrix proteins as structural and functional components of the mitotic apparatus // Int. Rev. Cytol. 1995. 162B. P. 174.

374. Heath I.B. Variant mitosis in lower eukaryotes: indicators of the evolution of mitosis? // Int. Rev. Cytol. 1980. Vol. 64. P. 1-80.

375. Hecker H., Bender K., Betschart B., Modespacher U.-P. Instability of the nuclear chromatin of procyclic Trypanosoma brucei brucei II Mol. Biochem. Parasitol. 1989. Vol. 37. P. 225-234.

376. Hecker H., Betschart B., Bender K., Burri M., Schlimme W. The chromatin of trypanosomes // Int. J. Parasitol. 1994. Vol. 24. P. 809-819.

377. Hecker H., Betschart B., Burri M., Schlimme W. Functional morphology of trypanosome chromatin // Parasitol. Today. 1995. Vol. 11. P. 79-83.

378. Hecker H., Gander E.S. The compaction pattern of the chromatin of trypanosomes // Biol. Cell. 1985. Vol. 53. P. 199-208.

379. Heller C., Pohl F.M. A systematic study of field inversion gel electrophoresis // Nucl. Acids Res. 1989. Vol. 17. P. 5989-6003.

380. Hennig W. Phylogenetic systematics. Urbana: Univ. Illinois Press, 1966.263 p.

381. Henriksson J., Aslund L., Pettersson U. Karyotype variability in Trypanosoma cruziII Parasitol. Today. 1996a. Vol. 12. P. 108-114.

382. Henriksson J., Solari A., Rydaker M., Sousa O.E., Pettersson U. Karyotype variability in Trypanosoma rangeli II Parasitology. 1996b. Vol. 112. P. 385-391.

383. Hernandez R., Castaneda M. An endonuclease restriction analysis of the ribosomal RNA genes of Trypanosoma cruzi II Mol. Biochem. Parasitol. 1983. Vol. 8. P. 305-315.

384. Hernandez R., Nava G., Castaneda M. Small-size ribosomal RNA species in Trypanosoma cruzi If Mol. Biochem. Parasitol. 1983. Vol 8. P 297-304.

385. Hernandez-Rivas R., Martinez-Calvillo S., Romero M., Hernandez R. Trypanosoma cruzi 5 S rRNA genes: molecular cloning, structure and chromosomal organization // FEMS Microbiol. Lett. 1992. Vol. 92. P. 63-68.

386. Hernandez-Verdun D. The nucleolus today // J. Cell Sci. 1991. Vol. 99. P. 465-471.

387. Herzog M., von Boletzky S., Soyer M.-O. Ultrastructural and biochemical nuclear aspects of eukaryote classification: independent evolution of thedinoflagellates as a sister group of the actual eukaryotes? // Origins of Life. 1984. Vol. 13. P. 205-215.

388. Heywood P. Ultrastructure of mitosis in the chloromonadophycean alga Vacuolaria virescens II J. Cell Sei. 1978. Vol. 31. P. 37-51.

389. Heywood P. Ultrastructure of Chilomonas Paramecium and the phylogeny of the cryptoprotists // BioSystems. 1988. Vol. 21. P. 293-298.

390. Heywood P., Weinman D. Mitosis in the hemoflagellate Trypanosoma cyclops/l J. Protozool. 1978. Vol. 25. P. 287-292.

391. Hinnebusch A.G., Klotz L.C., Immergut E., Loeblich A.R. Deoxyribonucleic acid sequence organization in the genome of the dinoflagellate Crypthecodinium cohniill Biochemistry. 1980. Vol. 19. P. 1744-1755.

392. Hinnebusch A.G., Klotz L.C., Blanken R.L., Loeblich A.R. An evaluation of the phylogenetic position of the dinoflagellate Crypthecodinium cohnii based on 5 S rRNA characterization //J. Molec. Evol. 1981. Vol. 17. P. 334-347.

393. Hoeijmakers J.H.J., Borst P. Kinetoplast DNA in the insect trypanosomes Crithidia luciliae and Crithidia fasciculata. II. Sequence evolution of the minicircles // Plasmid. 1982. Vol. 7. P. 210-220.

394. Hogg J. On the distinction between a plant and an animal, and on a fourth kingdom of Nature // Edinburgh New Philosophical J. (new series). 1861. Vol. 2. P. 216-225.

395. Holaska J.M., Wilson K.L., Mansharamani M. The nuclear envelope, lamins and nuclear assembly// Curr. Opin. Cell Biol. 2002. Vol. 14. P. 357-364.

396. Hollande A. Le déroulement de la cryptomitose et les modalités de la segregation des chromatides dans quelques groupes de Protozoaires // Annee Biol. 1972. T. 11. P. 437-466.

397. Hollande A. Etude comparée de la mitose syndinienne et de celle des Peridiniens libres et des Hypermastigines. Infrastructure et cycle évolutif des Syndiniens parasites des Radiolaires // Protistologica. 1974. T. 10. P. 413-451.

398. Hollande A., Carruette-Valentin J. Le probleme du centrosome et la cryptopleuromitose atractophorienne chez Lophomonas striata II Protistologica.1972. T. 8. P. 267-278.

399. Holt R.A., Subramanian G.M., Halpern A. et al. The genome sequence of the malaria mosquito Anopheles gambiae II Science. 2002. Vol. 298. P. 129-149.

400. Honigberg B.M., Balamuth W., Bovee E.C., Corliss J.O., Gojdics M., Hall R.P., Kudo R.R., Levine N.D., Loeblich Jr. A.R., Weiser J., Wenrich D.H. A revised classification of the phylum Protozoa // J. Protozool. 1964. Vol. 11. P. 720.

401. Horn P.J., Peterson C.L. Chromatin higher order folding: wrapping up transcription // Science. 2002. Vol. 297. P. 1824-1827.

402. Huang P.L., Roberts B.E., Pratt D.M., David J.R., Miller J.S. Structure and arrangement of the p-tubulin genes of Leishmania tropica II Mol. Cell. Biol. 1984. Vol. 4. P. 1372-1383.

403. Jahn C.L., Klobutcher L.A. Genome remodeling in ciliated protozoa //Annu. Rev. Microbiol. 2002. Vol. 56. P. 489-520.

404. Janse C.J. Chromosome size polymorphism and DNA rearrangements in Plasmodium // Parasitol. Today. 1992. Vol. 9. P. 19-22.

405. Jenkins R.A. The role of microtubules in macronuclear division of Blepharisma II J. Protozool. 1977. Vol. 24. P. 264-275.

406. Jenni L., Marti S., Schweizer J., Betschart B., Le Page R.W.F., Wells J.M., Tait A., Paindavoine P., Pays, E., Steinert M. Hybrid formation between African trypanosomes during cyclical transmission // Nature. 1986. Vol. 322. P. 173-175.

407. Jenuwein T. An RNA-guided pathway for the epigenome // Science. 2002. Vol. 297. P. 2215-2218.

408. Jordan E.G. Nucleolar nomenclature // J. Cell Sci. 1984. Vol. 67. P. 217220.

409. Kallinikova V.D. The kinetoplast as a cell organelle // Int. Rev. Cytol. 1981. Vol. 69. P. 105-156.

410. Kallinikova V.D., Kondratieva T. Yu. Nucleo-kinetoplast interactions and variability in the Kinetoplastida // Protistology. 2000. Vol. 1. P. 152-160.

411. Karadzan B.P., Raikov I.B. Fine structure of the nuclear apparatus of Didinium nasutum (Ciliophora, Gymnostomata) in interphase and during binary fission // Protistologica. 1977. T. 13. P. 15-29.

412. Karajan B.P., Popenko V.I., Raikov I.B. Organization of transcriptionally inactive chromatin of the interphase macronucleus of the ciliate Didinium nasutum //Acta protozool. 1995. Vol. 34. P. 135-141.

413. Karpov S.A., Mylnikov A.P. Preliminary observations on the ultrastructure of mitosis in choanoflagellates // Eur. J. Protistol. 1993. Vol. 29. P. 19-23.

414. Kawakami Y., Inoue T., Ito K., Kitamizu K., Hanawa C., Sunairi M,, Ando T., Iwano H., Ishihara R. Comparison of chromosomal DNA from four microsporidia pathogenic to the silkworm, Bombyx mori // Appl. Entomol. Zool. 1994. Vol. 29. P. 120-123.

415. Keeling P.J. A kingdom's progress: Archezoa and the origin of eukaryotes // BioEssays. 1998. Vol. 20. P. 87-95.

416. Keeling P.J., Deane J.A., McFadden G.I. The phylogenetic position of alpha- and beta-tubulins from the Chlorarachnion host and Cercomonas (Cercozoa) // J. Euk. Microbiol. 1998. Vol. 45. P. 561-570.

417. Keeling P.J., Fast N.M. Microsporidia: biology and evolution of highly reduced intracellular parasites//Annu. Rev. Microbiol. 2002. Vol. 56. P. 93-116.

418. Keryer G., Garreau de Loubresse N., Bordes N., Bornens M. Identification of a spindle-associated protein in ciliate micronuclei // J. Cell Sei. 1989. Vol. 93. P. 287-298.

419. Kimmel A.R., Gorovsky M.A. Number of 5 S and tRNA genes in macro- and micronuclei of Tetrahymena pyriformis II Chromosoma. 1976. Vol. 54. P. 327-337.

420. Kivic P.A., Walne P. An evaluation of a possible phylogenetic relationship between the Euglenophyta and Kinetoplastida // Origins of Life. 1984. Vol. 13. P. 269-288.

421. Kofoid C.A., Swezy O. On the number of chromosomes and the type of mitosis in Entamoeba disenteriae. University of California. Zoology. 1925. Vol. 26. P. 331-352.

422. Kooter J.M., De Lange T., Borst P. Discontinuous synthesis of mRNA in trypanosomes // EMBO J. 1984. Vol. 3. P. 2387-2392.

423. Kooy R.F., Ashall F., Van der Ploeg M., Overdulve J.P. On the DNA content of Trypanosoma cruzi II Mol. Biochem. Parasitol. 1989a. Vol. 36. P. 73-76.

424. Kooy R.F., Hirumi H., Moloo S.K., Nantulya V.M., Dukes P., Van der Linden P.M., Duijndam W.A.L., Janse C.J., Overdulve J.P. Evidence for diploidy in metacyclic forms of African trypanosomes // Proc. Natl Acad. Sei. USA. 1989b. Vol. 86. P. 5469-5472.

425. Kubai D.F. Unorthodox mitosis in Trichonympha agilis: kinetochore differentiation and chromosome movement // J. Cell Sei. 1973. Vol. 13. P. 511552.

426. Kubai D.F. The evolution of the mitotic spindle. // Int. Rev. Cytol. 1975. Vol. 43. P. 167-227.

427. Magnaval R., Valencia R., Paoletti J. Subunit organization of Euglena chromatin //Biochem. Biophys. Res. Commun. 1980. Vol. 92. P. 1415-1421.

428. Makioka A., Ellis J. DNA polymerases of parasitic protozoa // Int. J. Parasitol. 1994. Vol. 24. P. 463-476.

429. Malone L.A., Mclvor C. Pulsed-field gel electrophoresis of DNA from four microsporidian isolates//J. Invertebr. Pathol. 1993. Vol. 61. P. 203-205.

430. Maney T., Ginkel L.M., Hunter A.W., Wordeman L. The kinetochore of higher eucaryotes: a molecular view//Int. Rev. Cytol. 1999. Vol. 194. P. 67-131.

431. Manuelidis L. A view of interphase chromosomes // Science. 1990. Vol. 250. P. 1533-1540.

432. Margulis L., Schwartz K.V. Five kingdoms. An illustrated guide to the phyla of life on Earth. Istedn. San Francisco: W.H. Freeman and Co., 1982. 338 p.

433. Margulis L., Schwartz K.V. Five kingdoms. An illustrated guide to the phyla of life on Earth. 3rd edn. N.Y.: W.H. Freeman and Co., 1998. 396 p.

434. Margulis L., Corliss J.O., Melkonian M., Chapman D.J. (eds.) Handbook of Protoctista. Boston: Jones and Bartlett Publ., 1990. 914 p.

435. Margulis L., McKhann H.I., Olendzenski L. (eds.) Illusrated glossary of Protoctista. Boston, London: Jones and Bartlett Publ., 1993. 288 p.

436. Martinkina L.P., Novikova E.G., Streltsov S.A., Kolesnikov A.A., Vengerov Yu.Yu. Structural organization of kinetoplast DNA and its compaction in the in vitro model system // Eur. J. Cell Biol. 1991. Vol. 56. P. 123-131.

437. Maslov D.A., Kolesnikov A.A., Zaitseva G.N. Conservatic and divergent base sequence regions in the maxicircle kinetoplast DNA of several trypanosomatid flagellates // Mol. Biochem. Parasitol. 1984. Vol. 12. P. 351-364.

438. Mathew M.K., Smith C.L., Cantor C.R. High-resolution and accurate size determination in pulsed-field gel electrophoresis of DNA. I. DNA size standartsand the effect of agarose and temperature // Biochemistry. 1988. Vol. 27. P. 92049210.

439. Mazus B., Falchuk K.H., Vallee B.L. Histone formation, gene expression, and zinc deficiency in Euglena gracilis II Biochemistry. 1984. Vol. 23. P. 42-47.

440. McCulloch I. Crithidia euryophthalmi sp. n. from hemipteran bug, Euryophthalmus couvivus Stal. // Univ. California Publ. Zool. 1917. Vol. 18. P. 7588.

441. McGhee R.B., Hanson W.L. Growth and reproduction of Leptomonas oncopelti in the milkweed bug, Oncopeltus fasciatus II J. Protozool. 1962. Vol. 9. P. 488-493.

442. Mcintosh J.R. Mechanisms of mitosis //Trends Biochem. Sci. 1984. Vol. 9. P. 195-198.

443. McLaughlin J., Aley S. The biochemistry and functional morphology of the Entamoeba II J. Protozool. 1985. Vol. 32. P. 221-240.

444. Mehlhorn H., Schaub G.A., Peters W., Haberkorn A. Electron microscopic studies on Blastocrithidia triatomae Cerisola et al., 1971 (Trypanosomatidae) // Tropenmed. Parasitol. 1979. Bd 30. S. 289-300.

445. Melendy T., Ray D.S. Purification and nuclear localization of a type I topoisomerase from Crithidia fasciculata II Mol. Biochem. Parasitol. 1987. Vol. 24. P. 215-225.

446. Melville S.E. The African trypanosome genome project: focus on the future II Parasitol. Today. 1998. Vol. 14. P. 129-131.

447. Meza I. Entamoeba histolytica: phylogenetic consideration. A review // Arch. Med. Res. 1992. Vol. 23. P. 1-5.

448. Mignot J.-P. Etude ultrastructurale de la mitose vegetative chez I' Heliozoaire Actinophrys sol II Protistologica. 1984. T. 20. P. 247-263.

449. Mignot J.-P., Brugerolle G. Cell division in the heliozoan Dimorpha mutans and evolution of centrosomal organization during the cell cycle // Biol. Cell. 1991. Vol. 72. P. 51-60.

450. Miller O. L., Bakken A. H. Morphological studies of transcription// Acta endocrinol. 1972. Vol. 168. P. 155-177.

451. Miller O.L., Beatty B.R. Visualization of nucleolar genes // Science. 1969. Vol. 164. P. 955-957.

452. Miller J.H., Swartzwelder J.C., Deas J.E. An electron microscopic study of Entamoeba histolytica II J. Parasitol. 1961. Vol. 47. P. 577-587.

453. Minassian I., Bell L.G.E. Studies on changes in the nuclear helices of Amoeba proteus II J. Cell Sei. 1976. Vol. 20. P. 273-288.

454. Mitchison T.J., Salmon E.D. Mitosis: a history of division // Nature Cell Biol. 2001. Vol. 3. P. E17-E21.

455. Moens P.B., Pearlman R.E. Chromatin organization at meiosis // BioEssays. 1988. Vol. 9. P. 151-153.

456. Möhn E. System und Phylogenie der Lebewesen. Band 1. Stuttgart: Schwertzerbart'sche Verlag, 1984. 884 S.

457. Moir R.D., Yoon M., Khuon S., Goldman R.D. Nuclear lamins A and B1: different pathways of assembly during nuclear envelope formation in living cells // J. Cell Biol. 2000. Vol. 151. P. 1155-1168.

458. Molyneux D.H., Ashford R.W. The biology of Trypanosoma and Leishmania, parasites of man and domestic animals. London: Taylor, Francis, 1983. 294 p.

459. Molyneux D.H., Croft S.L. Studies on the ultrastructure of candidate "cyst" in Leptomonas species of Siphonaptera // Z. Parasitenkd. 1980. Bd. 63. S. 233239.

460. Morales, M., Onate, E., Imschenetzky, M., and Galanti, N. HMG-like chromosomal proteins in Trypanosoma cruzi. II J. Cell. Biochem. 1992. Vol. 50. P. 279-284.

461. Muhlfordt H. Uber die Bedeutung und Feinstruktur des Blepharoplasten bei parasitischen Flagellaten HZ. Tropenmed. Parasitol. 1963 Bd 14. S. 475-501.

462. Mulisch M. Perinuclear organization in the heterotrich eiliate Stentor coeruleusll Protoplasma. 1988. Vol. 143. P. 170-175.

463. Munderloh U.G., Kurtti T.J., Ross S.E. Electrophoretic characterization of chromosomal DNA from two microsporidia // J. Invertebr. Pathol. 1990. Vol. 56. P. 243-248.

464. Munoz-Jordan J.L., Cross G.A.M., de Lange T., Griffith J.D. t-loops at trypanosome telomeres // EMBO J. 2001. Vol. 20. P. 579-588.

465. Murray A.W. A mitotic inducer matures // Nature. 1988. Vol. 335. P. 207208.

466. Murti K.G., Prescott D.M. Electron microscopic visualization of transcribed genes in the nucleus of Amoeba proteus II Exp. Cell Res. 1978. Vol. 112. P. 233240.

467. Murti K.G., Prescott D.M. Telomeres of polytene chromosomes in a ciliated protozoan terminate in duplex DNA loops // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1999. Vol. 96. P. 14436-14439.

468. Nasmyth K. Segregating sister genomes: the molecular biology of chromosome separation // Science. 2002. Vol. 297. P. 559-565.

469. Newton B.A. A synthetic growth medium for the trypanosomatid flagellate Strigomonas (Herpetomonas) oncopelti If Nature. 1956. Vol. 177. P. 279-280.

470. Oakley B.R., Dodge J.D. Evidence for a double-helically coiled toroidal chromonema in the dinoflagellate chromosome // Chromosoma. 1979. Vol. 70. P. 277-291.

471. Ogden C.G. An ultrastructural study of division of Euglypha (Protozoa: Rhizopoda) // Protistologica. 1979. T. 15. P. 541-556.

472. Okada T.A., Comings D.E. Higher order structure of chromosomes // Chromosoma. 1979. Vol. 72. P. 1-14.

473. Ono B., Ishino-Arao Y. Inheritance of chromosome length polymorphisms in Saccharomyces cerevisiae/l Curr. Genet. 1988. Vol. 14. P. 413-418.

474. Opperdoes F.R. Glycosomes. Biochemical Parasitology. London: Taylor, Francis, 1991. P. 134-144.

475. Orozco E., Baez-Camargo M., Gamboa L., Flores E., Valdes J., Hernandez F. Molecular karyotype of related clones of Entamoeba histolytica II Mol. Biochem. Parasitol. 1993. Vol. 59. P. 29-40.

476. Orozco E., Solis F.J., Domínguez J., Chavez B., Hernandez F. Entamoeba histolytica: cell cycle and nuclear division // Exper. Parasitol. 1988. Vol. 67. P. 8595.

477. Otieno L.H., Darji N., Onyango P. Development of Trypanosoma (Trypanozoon) brucei in Glossina morsitans inoculated into the tsetse haemocoel //Acta tropica. 1976. Vol. 33. P. 143-150.

478. Ossipov D.V., Karpov S.A., Smirnov A.V., Rautian M.S. Peculiarities of the symbiotic systems of protists with diverse patterns of cellular organisation // Acta protozool. 1997. Vol. 36. P. 3-21.

479. Ouzounis C.A., Kyrpides N.C. Parallel origins of the nucleosome core and eukaryotic transcription from Archaea //J. Mol. Evol. 1996. Vol. 42. P. 234-239.

480. Pascher A. Flagellaten und Rhizopoden in ihren gegenseitigen Beziehungen //Arch. Protistenkd. 1918. Bd 38. S. 1-88.

481. Paterson W.B., Woo P.T.K. Ultrastructural studies on mitosis in Trypanosoma danilewskyi (Mastigophora: Zoomastigophorea) // Can. J. Zool. 1984. Vol. 62. P. 1167-1171.

482. Patterson D.J. The fine structure of Opalina ranarum (family Opalinidae): opalinid phytogeny and classification // Pritistologica. 1985. T. 21. P. 413-428.

483. Patterson D.J. Protozoa: evolution and systematics. Progress in Protozoology. Stuttgart; Jena; N.Y.: Gustav Fischer Verlag, 1994. P. 1-14.

484. Paulin J.J. Intranuclear microtubules in dividing Trypanosoma equiperdum II BioSystems. 1975. Vol. 7. P. 308.

485. Paulin J.J. Crithidia fasciculata: reconstruction of the mitochondrion based on serial thick sections and high-voltage electron microscopy // Exp. Parasitol. 1977. Vol. 41. P. 283-289.

486. Paulson J.R., Laemmli U.K. The structure of histone-depleted metaphase chromosomes // Cell. 1977. Vol. 12. P. 817-828.

487. Pays E., Laurent M., Delinte K., Van Meirvenne N., Steinert M. Differential size variations between transcriptionally active and inactive telomeres of Trypanosoma brucei II Nucl. Acids Res. 1983. Vol. 11. P. 8137-8147.

488. Peckova H., Lorn J. Growth, morphology and division of flagellates of the genus Trypanoplasma (Protozoa, Kinetoplastida) in vitro II Parasitol. Res. 1990. Vol. 76. P. 553-558.

489. Pederson T. Thinking about a nuclear matrix // J. Mol. Biol. 1998. Vol. 277. P. 147-159.

490. Pederson T. Half a century of "the nuclear matrix" // Mol. Cell. Biol. 2000. Vol. 11. P. 799-805.

491. Peng P.L.M., Wallace F.G. The cysts of Blastocrithidia triatomae Cerisola etal„ 1971 //J. Protozool. 1982. Vol. 29. P. 464-467.

492. Pereira G., Schiebel E. Centrosome-microtubule nucleation // J. Cell Sci. 1997. Vol. 110. P. 295-300.

493. Philippe H. Molecular phylogeny of kinetoplastids // Evolutionary relationships among Protozoa. London: Chapman & Hall, 1998. P. 195-212.

494. Philippe H., Adoutte A. The molecular phylogeny of Eukaryota: solid facts and uncertainties. Evolutionary relationships among Protozoa. London: Chapman & Hall, 1998. P. 25-56.

495. Pickett-Heaps J.D. Mitotic mechanisms: an alternative view // Trends Biochem. Sci. 1986. Vol. 11. P. 504-507.

496. Pickett-Heaps J.D., Tippit D.H. Rethinking mitosis // Cell. 1982. Vol. 29. P. 729-744.

497. Pines J., Rieder C.L. Re-staging mitosis: a contemporary view of mitotic progression // Nature Cell Biol. 2001. Vol. 3. E3-E6.

498. Podgornaya O.I., Voronin A.P., Enukashvily N.I., Matveev I.V., Lobov I.B. Structure-specific DNA-binding proteins as the foundation for 3-dimensional chromatin organization // Int. Rev. Cytol. 2002. Vol. 224. P. 227-296.

499. Poirier M.G., Marko J.F. Mitotic chromosomes are chromatin networks without a mechanically contiguous protein scaffold // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2002. Vol. 99. P. 15393-15397.

500. Prescott D.M. The DNA of ciliated Protozoa // Microbiol. Rev. 1994. Vol. 58. P. 233-267.

501. Prescott D., Carrier M. Experimental procedures and cultural methods for Euplotes eurystomus and Amoeba proteus II Methods in cell physiology. N.Y., L.: Acad. Press, 1964. Vol. 1. P. 85-95.

502. Pussard M., Pons R. Etude de la "centrosphere" d'Acanthamoeba echinulata Pussard et Pons 1978 // Protistologica. 1978. T. 14. P. 247-251.

503. Raabe Z. Remarks on the principles and outline of the system of Protozoa //Acta protozool. 1964. Vol. 2. P. 1-18.

504. Raikhel N., Paulin J.J., Skarlato S.O. Mitosis of micronuclei during division and regeneration in the ciliate Stentor coeruleus II J. Protozool. 1981. Vol. 28. P. 103-107.

505. Raikov I.B. Ultrastructure des "capsules nucleairea" ("noyaux composes") du Cilie psammophile Kentrophoros latum Raikov, 1962 // Protistologica. 1972. T. 8. P. 299-313.

506. Raikov I.B. The protozoan nucleus. Morphology and evolution. Wien; New York: Springer-Verlag, 1982. 474 p.

507. Raikov I.B. Primitive never-dividing macronuclei of some lower ciliates // Int. Rev. Cytol. 1985. Vol. 95. P. 267-325.

508. Raikov I.B. Nuclear genome of the Protozoa // Prog, in Protistology. 1989. Vol. 3. P. 21-86.

509. Raikov I.B. The diversity of forms of mitosis in Protozoa: A comparative review//Eur. J. Protistol. 1994. Vol. 30. P. 253-269.

510. Raikov I.B. Meiosis in Protists: Recent advances and persisting problems // Eur. J. Protistol. 1995a. Vol. 31. P. 1-7.

511. Raikov I.B. Structure and genetic organization of the polyploid macronucleus of ciliates: a comparative review // Acta protozool. 1995b. Vol. 34. 151-171.

512. Raikov I.B. The dinoflagellate nucleus and chromosomes: Mesokaryote concept reconsidered //Acta protozool. 1995c. Vol. 34. 239-247.

513. Raikov I.B. Advances in the study of nuclear phenomena during sexual processes in ciliates//Eur. J. Protistol. 1996a. Vol. 32. Suppl. I. P. 128-134.

514. Raikov I.B. Nuclei of ciliates // Ciliates. Cells as organisms. Stuttgart, Jena, Lubeck, Ulm: Gustav Fischer, 1996b. P. 221-242.

515. Raikov I.B., Mignot J.-P. Fine structural study of mitosis in the testacean Arcella vulgaris Ehrbg. // Eur. J. Pritistol. 1991. Vol. 26. P. 340-349.

516. Rattner J.B. Integrating chromosome structure with function // Chromosoma. 1992. Vol. 101. P. 259-264.

517. Rattner J.B., Lin C.C. Radial loops and helical coils coexist in metaphase chromosomes // Cell. 1985. Vol. 42. P. 291-296.

518. Razin S.V. Functional architecture of chromosomal DNA domains // Crit. Rev. Euk. Gene Expression. 1996. Vol. 6. P. 247-269.

519. Razin S.V., Gromova I.I. The channels model of nuclear matrix structure // BioEssays. 1995. Vol. 17. P. 443-450.

520. Razin S.V., Gromova 1.1., larovaia O.V. Specificity and functional significance of DNA interaction with the nuclear matrix: new approach to clarify the old questions // Int. Rev. Cytol. 1995. Vol. 162B. P.405-448.

521. Reddy R., Spector D., Henning D., Liu M.-H., Busch H. Isolation and partial characterization of dinoflagellate U1-U6 small RNAs homologous to rat U small nuclear RNAs // J. Biol. Chem. 1983. Vol. 258. P. 13965-13969.

522. Reduth D., Schaub G.A. The ultrastructure of the cysts of Blastocrithidia triatomae Cerisola et al. 1971 (Trypanosomatidae): a freeze-fracture study // Parasitol. Res. 1988. Vol. 74 P. 301-306.

523. Rieder C.L. The formation, structure, and composition of the mammalian kinetochore and kinetochore fiber// Int. Rev. Cytol. 1982. Vol. 79. P. 1-58.

524. Rieder C.L., Salmon E.D. The vertebrate cell kinetochore and its roles during mitosis // Trends Cell Biol. 1998. Vol. 8. P. 310-318.

525. Riou G., Pautrizel R. Nuclear and kinetoplastic DNA from trypanosomes // J. Protozool. 1969. Vol. 16. P. 509-513.

526. Ris H. Primitive mitotic mechanisms // BioSystems. 1975. Vol. 7. P. 298304.

527. Ris H., Kubai D.F. An unusual mitotic mechanism in the parasitic protozoan Syndinium sp. // J. Cell Biol. 1974. Vol. 60. P. 702-720.

528. Ritter H., Inoue S., Kubai D. Mitosis in Barbulanympha. I. Spindle structure, formation and kinetochore engagement // J. Cell Biol. 1978. Vol. 77. P. 638-654.

529. Robinson D.R., Gull K. Basal body movements as a mechanism for mitochondrial genome segregation in the trypanosome cell cycle // Nature. 1991. Vol. 352. P. 731-733.

530. Ropstorf P., Hulsmann N., Hausmann K. Karyological investigation on the vampyrellid filose amoeba Lateromyxa gallica Hulsmann, 1993 // Eur. J. Protistol. 1993. Vol. 29. P. 302-310.

531. Ropstorf P., Hulsmann N., Hausmann K. Comparative fine structural investigation of interphase and mitotic nuclei of vampyrellid filose amoeba // J. Euk. Microbiol. 1994. Vol. 41. P. 18-30.

532. Rosenbaum R.M., Wittner M. Ultrastructure of bacterized and axenic trophozoites of Entamoeba histolytica with particular reference to helical bodies // J. Cell Biol. 1970. Vol. 45. P. 367-382.

533. Rudenko G., Cross M., Borst P. Changing the end: antigenic variation orchestrated at the telomeres of African trypanosomes // Trends Microbiol. 1998. Vol. 6. P. 113-117.

534. Samaras N., Spithill T.W. Molecular karyotype of five species of Leishmania and analysis of gene locations and chromosomal rearrangements // Mol. Biochem. Parasitol. 1987. Vol. 25. P. 279-291.

535. Samuel Ch., Mackie J., Sommerville J. Macronuclear chromatin organization in Paramecium primaurelia II Chromosoma. 1981. Vol. 83. P. 481492.

536. Schaub G.A., Pretsch T.M. Ultrastructural studies on the excystment of Blastocrithidia thatomae (Trypanosomatidae) // Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. 1981. Vol. 75. P. 168-171.

537. Scheer U., Hock R. Structure and function of the nucleolus // Curr. Opin. Cell Biol. 1999. Vol. 11. P. 385-390.

538. Schlegel M. Protist evolution and phylogeny as discerned from small subunit ribosomal RNA sequence comparison // Europ. J. Protistol. 1991. Vol. 27. P. 207-219.

539. Schlegel M. Molecular phylogeny of eukaryotes // Trends Ecol. Evol. 1994. Vol. 9. P. 330-335.

540. Schöller J.К., Reed S.G., Stuart K. Molecular karyotype of species and subspecies of Leishmania И Mol. Biochem. Parasitol. 1986. Vol. 20. P. 279-293.

541. Schrevel J., Asfaux-Foucher G., Bafort J.M. Etude ultrastructurale des mitoses multiples au cours de la sporogonie du Plasmodium b. berghei // J. Ultrastr. Res. 1977. Vol. 59. P. 332-350.

542. Schuster F.L. Ultrastructure of the mitosis in the amoebo-flagellate Naegleria gruben II Tissue and Cell. 1975. Vol. 7. P. 1-12.

543. Schwartz D.C., Cantor C.R. Separation of yeast chromosome-sized DNAs by pulsed-field gradient gel electrophoresis //Cell. 1984. Vol. 37. P. 67-75.

544. Schwartz D.C., Saffran W., Welsh I., Haas R., Goldenberg M., Cantor C.R. New techniques for purifying large DNAs and studying their properties and packaging //Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1983. Vol. 67. P. 189-195.

545. Seebeck T., Whittaker P.A., Imboden M.A., Hardman N., Braun R. Tubulin genes of Trypanosoma brucei: a tightly clustered family of alternating genes // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1983. Vol. 80. P. 4634-4638.

546. Selzer P.M., Webster P., Duszenko M. Influence of Ca2+ depletion on cytoskeleton and nucleolus morphology in Trypanosoma brucei // Eur. J. Cell Biol. 1991. Vol. 56. P. 104-112.

547. Sergejeva G.I., Bobyleva N.N. Polynemic structures in the differentiated macronucleus of the ciliate Bursaria ovata Beers 1952 // Acta protozool. 1995. Vol. 35. P. 115-124.

548. Sergejeva G., Livolant F. Eukaryotic cell in cryptobiosis: strategies in dormancy and activity // Abstr. XVIII Intern, congr. zool. Athens, 2000. P. 208.

549. Sergejeva G.I., Samoshkin A.A., Da Conceicao M., Bobyleva N.N., Pochukalina G.N., Livolant F. Strategies of ciliates of the genus Bursaria in cryptobiosis//Abstr. XI Intern, congr. protozool. Salzburg, 2001. P. 20.

550. Shapiro S.Z., Doxsey S.J. Purification of nuclei from a flagellate protozoan, Trypanosoma brucei II Anal. Biochem. 1982. Vol. 127. P. 112-115.

551. Shapiro T.A., Englund P.T. The structure and replication of kinetoplast DNA //Annu. Rev. Microbiol. 1995. Vol. 49. P. 117-143.

552. Simpson L., Thiemann O.H. Sense from nonsense: RNA editing in mitochondria of kinetoplastid protozoa and slime molds // Cell. 1995. Vol. 81. P. 837-840.

553. Skarlato S.O. Fine structure of the micronuclei of the ciliate Stentor coeruleus during meiosis // J. Protozool. 1979. Vol. 26 (suppl.). P. 36A.

554. Skarlato S.O. Electron microscope study of reconstruction of the nuclear apparatus of the ciliate Stentor coeruleus after conjugation // Abstr. VI Intern, congr. protozool. Warszawa, 1981. P. 339.

555. Skarlato S.O. Electron microscope study of the micronuclei of the ciliate Stentor coeruleus during meiosis//Protistologica. 1982. T. 18. P. 281-288.

556. Skarlato S.O. Fine structural cytochemistry of the macronucleus of the free living ciliate Stentor coeruleus during conjugation // Abstr. VII Intern, congr. histochem. cytochem. Helsinki, 1984. P. 391.

557. Skarlato S.O. The kinetoplastid nucleus in mitosis // Abstr. VIII Int. Congr. Protozool. Tsukuba, 1989. P. 86.

558. Skarlato S.O., Bobyleva N.N., Marakhova N.V. Chromosomes of the lower trypanosomatids //Abstr. IX Intern, congr. protozool. Berlin, 1993. P. 119.

559. Skarlato S.O., Djomin S. Y., Prodeus T.V. Chromosomes of Entamoeba histolytica. 11th Intern, congr. protozool. Salzburg, 2001. P. 33.

560. Skarlato S.O., Lom J. Mitosis in the flagellate Trypanoplasma borreli (Kinetoplastidea: Bodonida) // Eur. J. Protistol. 1997. Vol 33. P. 77-86.

561. Skarlato S.O., Lom J., Nohynkova E. Fine structural morphology of the nucleus of Trypanosoma danilewskyi (Kinetoplastida, Trypanosomatina) during mitosis //Arch. Protistenkd. 1987. Bd. 133. S. 3-14.

562. Smith C.L., Klco S.R., Cantor C.R. Pulsed-field gel electrophoresis and the technology of large DNA molecules. Genome analysis. A practical approach. Oxford; Washington: IRL Press, 1988. P. 31-72.

563. Snigirevskaya E.S. Electron microscopic study of the schizogony process in Eimeria intestinalis // Acta protozool. 1969. Vol. 7. P. 57-70.

564. Sogin M.L. Early evolution and the origin of eukaryotes // Curr. Opin. Genet. Develop. 1991. Vol. 1. P. 457-463.

565. Sokolova J., Selesnjov K., Dolgikh V., Issi I. Electron-microscopic and electrophoretic studies of microsporidian prespore stages, isolated from infected host cells by gradient centrifugation on Percoll // J. Euk. Microbiol. 1994. Vol. 41. P. 62S.

566. Sokolova Yu., Snigirevskaya E., Morzina E., Skarlato S., Mironov A., Komissarchik Ya. Visualization of early Golgi compartments at proliferate and sporogenic stages of a microsporidian Nosema grylli // J. Euk. Microbiol. 2001. Vol. 48. P. 86S-87S.

567. Solari A.J. The 3-dimensional fine structure of the mitotic spindle in Trypanosoma cruzi/J Chromosoma. 1980a. Vol. 78. P. 239-255.

568. Solari A.J. Function of the dense plaques during mitosis in Trypanosoma cruzi/J Exp. Cell Res. 1980b. Vol. 127. P. 457-460.

569. Solari A.J. Nuclear ultrastructure during mitosis in Crithidia fasciculata and Trypanosoma brucei II J. Protozool. 1982. Vol. 29. P. 330-331.

570. Solari A.J. The ultrastructure of mitotic nuclei of Blastocrithidia triatomae II Z. Parasitenkd. 1983. Vol. 69. P. 3-15.

571. Solari A.J. Mitosis and genome partition in trypanosomes // Biocell. 1995. Vol. 19. P. 65-84.

572. Solari A.J., Tandler C.J., Duschak V. Fine structure and cytochemistry of the mitotic plaques of Trypanosoma cruzi and Crithidia fasciculata II J. Submicrosc. Cytol. 1985. Vol. 17. P. 583-591.

573. Solis F.J., Adams H.P. New observations of the nuclear division in Entamoeba histolytica. The chromosomes // Biol. Cell. 1997. Vol. 89. P. 475-480.

574. Sollner-Webb B. Trypanosome RNA editing: resolved // Science. 1996. Vol. 273. P. 1182-1183.

575. Somova N.V. Electrophoretic karyotypes of some species of the genus Leptomonas (Kinetoplastida, Trypanosomatidae), homoxenous trypanosomatids parasites of insects // Tsitologiya. 2001. Vol. 43. P. 815-821.

576. Spector D.L. Macromolecular domains within the cell nucleus //Annu. Rev. Cell Biol. 1993. Vol. 9. P. 265-315.

577. Spector D.L., Vasconcelos A.C., Triemer R.E. DNA duplication and chromosome structure in the dinoflagellates // Protoplasma. 1981. Vol. 105. P. 185-194.

578. Speer C.A., Dubey J.P. An ultrastructural study of first- and second-generation merogony in the coccidian Sarcocystis tenella II J. Protozool. 1981. Vol. 28. P. 424-431.

579. Spencer D.F., Collings J.C., Schnare M.N., Gray M.W. Multiple spacer sequences in the nuclear large subunit ribosomal RNA gene of Crithidia fasciculata IIEMBO J. 1987. Vol. 6. P. 1063-1071.

580. Sprague V., Becnel J.J., Hazard E.l. Taxonomy of phylum Microspora // Crit. Rev. Microbiol. 1992. Vol. 18. P. 285-395.

581. Spurck T.P., Pickett-Heaps J.D. On the mechanism of anaphase A: evidence that ATP is needed for microtubule disassembly and not generation of polewards force // J. Cell Biol. 1987. Vol. 105. P. 1691-1705.

582. Starobogatov Ya. I. The position of flagellated protists in the system of lower eukaryotes//Tsitologiya. 1995. Vol. 37. P. 1030-1037.

583. Starr C.M., Hanover J.A. Structure and function of the nuclear pore complex: new perspectives // BioEssays. 1990. Vol. 12. P. 323-330.

584. Starr C.M., Hanover J.A. A common structural motif in nuclear pore proteins (nucleoporins)//BioEssays. 1991. Vol. 13. P. 145-146.

585. Steiger R.F. On the ultrastructure of Trypanosoma (Trypanozoon) brucei in the course of its life cycle and some related aspects // Acta tropica. 1973. Vol. 30. P. 64-168.

586. Sternberg J., Ross C.A., Tait A. Nuclear DNA content of Trypanosoma congolense/l Acta tropica. 1988a. Vol. 45. P. 27-31.

587. Sternberg J., Tait A., Haley S., Wells J.M., Le Page R.W.F., Schweizer J., Jenni L. Gene exchange in African trypanosomes: Characterisation of a new hybrid genotype // Mol. Biochem. Parasitol. 1988b. Vol. 27. P. 191-200.

588. Stevens J.R., Noyes H.A., Dover G.A., Gibson W.C. The ancient and divergent origins of the human pathogenic trypanosomes, Trypanosoma brucei and T. cruziff Parasitology. 1999. Vol. 118. P. 107-116.

589. Stoffler D., Fahrenkrog B., Aebi U. The nuclear pore complex: from molecular architecture to functional dynamics // Curr. Opin. Cell Biol. 1999. Vol. 11. P. 391-401.

590. Stohlman S.A., Kuwahara S.S., Kazan B.H. Enzyme, protein and nucleic acid content of two morphological forms of Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi II Arch. Mikrobiol. 1973. Vol. 92. P. 301-311.

591. Streett D.A. Analysis of Nosema locustae (Microsporida: Nosematidae) chromosomal DNA with pulsed-field gel electrophoresis // J. Invertebr. Pathol. 1994. Vol. 63. P. 301-303.

592. Strouboulis J., Wolffe A.P. Functional compartmentalization of the nucleus //J. Cell Sci. 1996. Vol. 109. P. 1991-2000.

593. Stuart K., Feagin J. E. Mitochondrial DNA of kinetoplastids // Int. Rev. Cytol. 1992. Vol. 141. P. 65-88.

594. Subirana J.A., Munoz-Guerra S., Aymami J., Radermacher M., Frank J. The layered organization of nucleosomes in 30 nm chromatin fibers // Chromosoma. 1985. Vol. 91. P. 377-390.

595. Sumner A.T. Chromosomes. Organization and function. Oxford, Melbourne, Berlin: Blackwell Sci., 2003. 287 p.

596. Tait A. Sexual processes in the Kinetoplastida // Parasitology. 1983. Vol. 86. P. 29-57.

597. Tait A., Turner C.M.R. Genetic exchange in Trypanosoma brucei II Parasitol. Today. 1990. Vol. 6. P. 70-75.

598. Tajbakhsh J., Luz H., Bornfleth H., Lampel S., Cremer C., Lichter P. Spatial distribution of GC- and AT-rich DNA sequences within human chromosome territories // Exp. Cell Res. 2000. Vol. 255. P. 229-237.

599. Tartar V. The biology of Stentor. Oxford, London, N.Y., Paris: Pergamon Press, 1961. 413 p.

600. Taylor A.E.R., Baker J.R. The cultivation of parasites in vitro. Oxford, Edinburgh: Blackwell Sci. Publ., 1968. 377 p.

601. Taylor F.J.R. Problems in the development of an explict hypothetical phytogeny of the lower eukaryotes // BioSystems. 1978. Vol. 10. P. 67-89.

602. Thatcher T.H., Gorovsky M.A. Phylogenetic analysis of the core histones H2A, H2B, H3, and H4 // Nucl. Acids Res. 1994. Vol. 22. P. 174-179.

603. Thoma F., Koller T., Klug A. Involvement of histone H1 in the organization of chromatin and the salt dependent superstructures of chromatin // J. Cell Biol. 1979. Vol. 83. P. 403-427.

604. Thomashow L.S., Milhausen M., Rutter W.J., Agabian N. Tubulin genes are tandemly linked and clustered in the genome of Trypanosoma brucei II Cell. 1983. Vol. 32. P. 35-43.

605. Tibayrenc M. Leishmanial sex, karyotypes and population genetics // Parasitol. Today. 1992. Vol. 8. P. 305-306.

606. Tibayrenc M., Ward P., Moya A., Asyala F.J. Natural populations of Trypanosoma cruzi, the agent of Chagas' disease, have a complex multiclonal structure // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1986. Vol. 83. P. 115-119.

607. Tieszen K.L., Molyneux D.H., Abdel-Hafez S.K. Ultrastructure of cyst formation in Blastocrithidia familiaris in Lygaeus pandurus (Hemiptera: Lygaeidae) IIZ. Parasitenkd. 1985. Bd 71. S. 179-188.

608. Tieszen K.L., Molyneux D.H., Abdel-Hafez S.K. Host-parasite relationships and cysts of Leptomonas lygaei (Trypanosomatidae) in Lygaeus pandurus (Hemiptera: Lygaeidae)// Parasitology. 1989. Vol. 98. P. 395-400.

609. Tikhonenko A.S., Bespalova I .A., Martinkina L.P., Popenko V.I., Sergejeva G.I. Structural organization of macronuclear chromatin of the ciliate Bursaria truncatella in resting cysts and at excysting // Eur. J. Cell Biol. 1984. Vol. 33. P. 37-42.

610. Tippit D.H., Pillus L.A., Pickett-Heaps J.D. Organization of spindle microtubules in Ochromonas danica II J. Cell Biol. 1980. Vol. 87. P. 531-545.

611. Torres-Guerrero H., Peattie D.A., Meza I. Chromatin organization in Entamoeba histolytica II Mol. Biochem. Parasitol. 1991. Vol. 45. P. 121-130.m

612. Triemer R.E. Ultrastructural features of mitosis in Anisonema sp. (Euglenida) //J. Protozool. 1985. Vol. 32. P. 683-690.

613. Triemer R.E. Ultrastructure of mitosis in Entosiphon sulcatum (Euglenida) // J. Protozool. 1988. Vol. 35. P. 231-237.

614. Triemer R.E. Ultrastructure of mitosis in Diplonema ambulator Larsen and Patterson (Euglenozoa) // Eur. J. Protistol. 1992. Vol. 28. P. 398-404.

615. Triemer R.E., Farmer M. An ultrastructural comparison of the mitotic apparatus, feeding apparatus, flagellar apparatus and cytoskeleton in euglenoids and kinetoplastids // Protoplasma. 1991a. Vol. 164. P. 91-104.

616. Triemer R.E., Farmer M. The ultrastructural organization of the heterotrophic euglenids and its evolutionary implications // The biology of free-living heterotrophic flagellates. Oxford: Clarendon Press, 1991b. Vol. 45. P. 185204.

617. Triemer R., Fritz L.M., Herman R. Ultrastructural features of mitosis in Leishmania adleri II Protoplasma. 1986. Vol. 134. P. 154-162.

618. Tucker J.B. Changes in nuclear structure during binary fission in the ciliate Nassula //J. Cell Sci. 1967. Vol. 2. P. 481-498.

619. Tucker J.B., Beisson J., Roche D.L.J., Cohen J. Microtubules and control of macronuclear "amitosis" in Paramecium II J. Cell Sci. 1980. Vol. 44. P. 135-151.

620. Tucker J.B., Mathews S.A., Henry K.A.K., Mackie J.B., Roche D.L.J. Spindle microtubule differentiation and deployment during micronuclear mitosis in Paramecium II J. Cell Biol. 1985. Vol. 101. P. 1966-1976.

621. Turkewitz A.P., Orias E., Kapler G. Functional genomics: The coming of age for Tetrahymena thermophila II Trends. Genet. 2002. Vol. 18. P. 35-40.

622. Turner C.M.R., Melville S.E., Tait A. A proposal for karyotype nomenclature in Trypanosoma brucei II Parasitol. Today. 1997. Vol. 13. P. 5-6.

623. Urena F. Three-dimensional reconstructions of the mitotic spindle and dense plaques in three species of Leishmania II Z. Parasitenkd. 1986. Vol.72. P. 299-306.

624. Valdes J., Hernandez F. de la C., Ocadiz R., Orozco E. Molecular karyotype of Entamoeba histolytica and Entamoeba invadens II Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. 1990. Vol. 84. P. 537-541.

625. Van der Ploeg L.H.T. Control of antigenic variation in african trypanosomes //The new biologist. 1991. Vol. 3. P. 324-330.m

626. Van der Ploeg L.H.T., Cornelissen A.W.C.A., Barry J.D., Borst P. Chromosomes of Kinetoplastida // EMBO J. 1984a. Vol. 3. P. 3109-3115.

627. Van der Ploeg L.H.T., Cornelissen A.W.C.A., Michels P.A.M., Borst P. Chromosome rearrangements in Trypanosoma brucei II Cell. 1984b. Vol. 39. P. 213-221.

628. Van der Ploeg L.H.T., Liu A.Y.S., Borst P. Structure of the growing telomeres of trypanosomes // Cell. 1984c. Vol. 36. P. 459-468.

629. Van der Ploeg L.H.T., Schwartz D.C., Cantor C.R., Borst P. Antigenic variation in Trypanosoma brucei analyzed by electrophoretic separation of chromosome-sized DNA molecules // Cell. 1984d. Vol. 37. P. 77-84.

630. Van der Ploeg L.H.T., Smith C.L., Polvere R.I., Gottesdiener K.M. Improved separation of chromosome-sized DNA from Trypanosoma brucei, stock 427-60 // • Nucl. Acids Res. 1989. Vol. 17. P. 3217-3227.

631. Van der Ploeg L.H.T., Gottesdiener K.M., Korman S.H., Weiden M., Le Blancq S. Protozoan genomes. Karyotype analysis, chromosome structure, andchromosome specific libraries // Methods in molecular biology. 1992a. Vol. 12. P. 203-223.

632. Van der Ploeg L.H.T., Gottesdiener K.M., Lee M. G.-S. Antigenic variation in African trypanosomes //Trends Genet. 1992b. Vol. 8. P. 452-457.

633. Vanhamme L., Pays E. Control of gene expression in trypanosomes // Microbiol. Res. 1995. Vol. 59. P. 223-240.

634. Van Holde K.E. Chromatin. New York, Berlin, Heidelberg, London, Paris, Tokyo: Springer-Verlag, 1989. 497 p.

635. Van Holde K., Zlatanova J. Chromatin higher order structure: chasing a mirage? //J. Biol. Chem. 1995. Vol. 270. P. 8373-8376.

636. Venter J.C., et al. The sequence of the human genome // Science. 2001. Vol. 291. P. 1304-1351.

637. Verheijen R., Venrooij W. van, Ramaekers F. The nuclear matrix: structure and composition // J. Cell Sci. 1988. Vol. 90. P. 11-36.

638. Vickerman K. The mode of attachment of Trypanosoma vivax in the proboscis of the tsetse fly Glossina fuscipes: An ultrastructural study of the epimastigote stage of the trypanosome // J. Protozool. 1973. Vol. 20. P. 394-404.

639. Vickerman K. The diversity of the kinetoplastid flagellates // Biology of the Kinetoplastida. London etc.: Acad. Press, 1976. Vol. 1. P. 1-34.

640. Vickerman K. DNA throughout the single mitochondrion of a kinetoplastid flagellate: Observations on the ultrastructure of Cryptobia vaginalis (Hesse, 1910) //J.Protozool. 1977. Vol. 24. P. 221-233.

641. Vickerman K. Organization of the bodonid flagellates // The biology of free-living heterotrophic flagellates. Oxford: Clarendon Press, 1991. Vol. 45. P. 159176.

642. Vickerman K. The evolutionary expansion of the trypanosomatid flagellates // Int. J. Parasitol. 1994. Vol. 24. P. 1317-1331.

643. Vickerman K. Revolution among the Protozoa. Evolutionary relationships among Protozoa. London: Chapman and Hall, 1998. P. 1-24.

644. Vickerman К. Order Kinetoplastea. An illustrated guide to the Protozoa. Second edition. Organisms traditionally referred to as protozoa, or newly discovered groups. Lawrence, Kansas: Allen Press, 2000. Vol. 2. P. 1159-1185.

645. Vickerman K., Brugerolle G., Mignot J.-P. Mastigophora // Microscopic Anatomy of Invertebrates. New York, Chichester, Brisbane, Toronto, Singapore: Wiley-Less, Inc.,1991. Vol. 1. P. 13-159.

646. Vickerman K., Preston T.M. Spindle microtubules in the dividing nuclei of trypanosomes // J. Cell Sci. 1970. Vol. 6. P. 365-383.

647. Vickerman K., Preston T.M. Comparative cell biology of the kinetoplastid flagellates // Biology of the Kinetoplastida. London etc.: Acad. Press, 1976. Vol. 1. P. 35-130.

648. Villalba E., Ramirez J.L. Ribosomal DNA of Leishmania brasiliensis: Number of ribosomal copies and gene isolation // J. Protozool. 1982. Vol. 29. P. 438-441.

649. Vivier E. Observations ultrastructurales sur I'enveloppe nucleaire et ses "pores" chez les Sporozoaires // J. Microscopie. 1967. T. 6. P. 371-390.

650. Vossbrink C.R., Maddox J.V., Friedman S., Debrunner-Vossbrink B.A., Woese C.R. Ribisomal RNA sequence suggests microsporidia are extremely ancient eukaryotes // Nature. 1987. Vol. 326. P. 411-414.

651. Vossbrink C.R., Woese C.R. Eukaryotic ribosomes that lack a 5.8S RNA // Nature. 1986. Vol. 320. P. 287-288.

652. Wallace F.G. The trypanosomatid parasites of insects and arachnids // Exp. Parasitol. 1966. Vol. 18. P. 124-193.

653. Walsh J.A. Problems in recognition and diagnosis of amebiasis: estimation of the global magnitude of morbidity and mortality // Rev. Infect. Dis. 1986. Vol. 8. P. 228-238.

654. Watson J.D., Crick F.H.C. A structure for deoxyribose nucleic acid // Nature. 1953. Vol. 171. P. 737-738.

655. Webster P., Russell D.G. The flagellar pocket of trypanosomatids // Parasitol. Today. 1993. Vol. 9. P. 201-206.

656. Weiden M., Osheim Y.N., Beyer A.L., Van der Ploeg L.H.T. Chromosome structure: DNA nucleotide sequence elements of a subset of the minichromosomes of the protozoan Trypanosoma brucei // Mol. Cell. Biol. 1991. Vol. 11. P. 3823-3834.

657. Weiner A.M., Emery H.S. The rDNA of Dictyostelium discoideum and Physarum polycephalum. The Cell Nucleus. New York, London: Acad. Press, 1982. Vol. 10. P. 127-143.

658. Weiss L.M., Edlind T.D., Vossbrinck C.R., Hashimoto T. Microsporidian molecular phylogeny: The fungal connection // J. Euk. Microbiol. 1999. Vol. 46. P. 17S-18S.

659. White J.H., Kilbey B.J. DNA replication in the malaria parasite // Parasitol. Today. 1996. Vol. 12. P. 151-155.

660. White T.C., Rudenko G„ Borst P. Three small RNAs within the 10 kb trypanosome rRNA transcription unit are analogous to domain VII of other eukaryotic 28 S rRNAs // Nucl. Acids Res. 1986. Vol. 14. P. 9471-9489.

661. Whittaker R.H. On the broad classification of organisms // Quart. Rev. Biol. 1959. Vol. 34. P. 210-226.

662. Whittaker R.H. New concepts of kingdoms of organisms // Science. 1969. Vol. 163. P. 150-160.

663. WHO Thirteenth Programme Report of the UNDP/World Bank/WHO Special Programme for Research and Training in Tropical Disease. 1996. P. 124133.

664. Willhoeft U., Tannich E. The electrophoretic karyotype of Entamoeba histolytica II Mol. Biochem. Parasitol. 1999. Vol. 99. P. 41-53.

665. Willhoeft U., Tannich E. Fluorescence microscopy and fluorescence in situ hybridization of Entamoeba histolytica nuclei to analyse mitosis and the localization of repetitive DNA // Mol. Biochem. Parasitol. 2000. Vol. 105. P. 291296.

666. Woldringh C.L., Jensen P.R., Westerhoff H.V. Structure and partitioning of bacterial DNA: determined by a balance of compaction and expansion forces? // FEMS Microbiol. Lett. 1995. Vol. 131. P. 235-242.

667. Wolffe A.P., Guschin D. Review: chromatin structural features and targets that regulate transcription //J. Structural. Biol. 2000. Vol. 129. P. 102-122.

668. Wolniak S.M. The regulation of mitotic spindle function // Biochem. Cell Biol. 1988. Vol. 66. P. 490-514.

669. Wong S.T.C., Desser S.S. Ultrastructural observations on renal schizogony of Leucocytozoon dubreuili in the American robin // J. Protozool. 1978. Vol. 25. P. 302-314.

670. Woodcock C.L. Chromatin fibres observed in situ in frozen hydrated sections. Native fiber diameter is not correlated with nucleosomal repeat length // J. Cell Biol. 1994. Vol. 125. P. 11-19.

671. Woodcock C.L., Horowitz R.A. Chromatin organization re-viewed // Trends Cell Biol. 1995. Vol. 5. P. 272-277.

672. Woods J.K., Triemer R.E. Mitosis in the octaflagellate prasinophyte, Pyramimonas amylifera (Chlorophyta) // J. Phycol. 1981. Vol. 17. P. 81-90.

673. Yao M.-C. Ribosomal RNA gene amplification in Teterahymena may be associated with chromosome breakage and DNA elimination // Cell. 1981. Vol. 24. P. 765-774.

674. Zatsepina O.V., Polyakov V.Yu., Chentsov Yu.S. Chromonema and chromomere. Structural units of mitotic and interphase chromosomes // Chromosoma. 1983. Vol. 88. P. 91-97.

675. Zomerdijk J.C.B.M., Kieft R., Borst P. A ribosomal RNA gene promoter at the telomere of a mini-chromosome in Trypanosoma brucei II Nucl. Acids Res. 1992. Vol. 20. P. 2725-2734.1. БЛАГОДАРНОСТИ

676. Особую признательность хотелось бы также выразить своим старшим коллегам по лаборатории д.б.н., профессору Т.В. Бейер, д.б.н. A.B.

677. Успенской, к.б.н. Е.Е. Махлину, к.б.н. Г.И. Сергеевой за постоянную помощь и полезную критику при обсуждении результатов исследований.