Роль гипоталамических нонапептидов в приспособительных реакциях эпителиев лёгких в условиях воздействия бактерий различной вирулентности тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.04, доктор наук Козлова Алина Николаевна

• Козлова Алина Николаевна
• доктор наук
• 2017

Оглавление диссертации доктор наук Козлова Алина Николаевна

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. Морфофункциональная характеристика эпителиев легких и нейросекреторных клеток супраоптических ядер гипоталамуса в норме и при воздействии неблагоприятных факторов

1.1. Морфофункциональная характеристика многорядного реснитчатого эпителия воздухоносных путей легких

1.2. Морфофункциональная характеристика клеток респираторных отделов легких

1.3. Морфофункциональная характеристика эпителиев воздухоносных путей и респираторных отделов легких при воздействии стрессорных факторов

1.4. Морфофункциональная характеристика нейросекреторных клеток супраоптических ядер гипоталамуса в норме

1.5. Морфофункциональная характеристика нейросекреторных клеток гипоталамуса при воздействии стрессорных факторов

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материалы исследования

2.2. Методы исследования

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Морфофункциональная характеристика эпителия воздухоносных путей и респираторных отделов легких при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), не обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «-»)

3.2. Морфофункциональная характеристика эпителия воздухоносных путей и респираторных отделов легких при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «+»)

3.3. Морфофункциональная характеристика эпителия воздухоносных путей и респираторных отделов легких при интратрахеальном введении штамма бактерий Providencia rettgeri (P. rettgeri), не обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «-»)

3.4. Морфофункциональная характеристика эпителия воздухоносных путей и респираторных отделов легких при интратрахеальном введении штамма бактерий Providencia rettgeri (P. rettgeri), обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «+»)

3.5. Морфофункциональная характеристика эпителия воздухоносных путей и респираторных отделов легких при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), обладающего антилактоферриновой активностью на фоне хронического эмоционально-болевого стресса (ЭБС)

3.6. Морфофункциональная характеристика эпителия воздухоносных путей и респираторных отделов легких при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), обладающего антилактоферриновой активностью и введения окситоцина (ОТ) на фоне хронического эмоционально-болевого стресса (ЭБС)

3.7. Морфофункциональная характеристика супраоптических ядер гипоталамуса крыс при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), не обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «-»)

3.8. Морфофункциональная характеристика супраоптических ядер гипоталамуса крыс при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «-»)

3.9. Морфофункциональная характеристика супраоптических ядер гипоталамуса крыс при интратрахеальном введении штамма бактерий

Providencia rettgeri (P. rettgeri), не обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «-»)

3.10. Морфофункциональная характеристика супраоптических ядер гипоталамуса крыс при интратрахеальном введении штамма бактерий Providencia rettgeri (P. rettgeri), обладающего антилактоферриновой активностью (АЛФА «-»)

3.11. Морфофункциональная характеристика супраоптических ядер гипоталамуса и нейрогипофиза крыс при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), обладающего антилактоферриновой активностью на фоне хронического эмоционально-болевого стресса (ЭБС)

3.12. Морфофункциональная характеристика супраоптических ядер гипоталамуса и нейрогипофиза крыс при интратрахеальном введении штамма бактерий Escherichia coli (E. coli), обладающего антилактоферриновой активностью и введения окситоцина (ОТ) на

фоне хронического эмоционально-болевого стресса (ЭБС)

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ

ВЫВОДЫ

СПИСОК УСЛОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль гипоталамических нонапептидов в приспособительных реакциях эпителиев лёгких в условиях воздействия бактерий различной вирулентности»

ВВЕДЕНИЕ

Организм человека постоянно находится под воздействием множества факторов внутренней и внешней среды, требующих реакции клеток, тканей, органов и систем органов, направленных на адаптацию, активизацию защитно-приспособительных и компенсаторных реакций к новым условиям существования.

Вопросы патологии органов дыхательной системы все больше привлекают внимание исследователей в связи с растущим уровнем заболеваний бронхолегочного аппарата. Вследствие экологического неблагополучия возникли такие серьезные проблемы, как рост инфекций, вызываемых различной микрофлорой. При этом наибольшее распространение имеют пневмонии, причиной которых являются бактерии, среди которых выявлены кишечные палочки и протеи (Карапетян Т.А., 2008; Катосова Л.К., Спичак Т.В., Ким С.С., 2009; Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Козлов Р.С. и соавт., 2010; Чубукова О.А., 2012; Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Ефимов Е.И. и соавт., 2013).

Несмотря на достаточную распространенность эшерихиозов и протеозов легких, почти не изучены корреляции между свойствами возбудителей in vitro, теми изменениями, которые происходят с ними in vivo, и характером вызываемых ими реакций в макроорганизме.

Транслокация эндогенной симбионтной микрофлоры семейства энтеробактерий, осуществляется в организме при состояниях, когда нарушаются барьерные функции покровных эпителиев и сосудов или бактерии проявляют свойства, позволяющие им обойти факторы, представляющие препятствия для попадания микробов во внутреннюю среду организма (Стадников А.А., Бухарин О.В., 2012; Бухарин О.В., Перунова Н.Б., 2014).

Наибольшее внимание исследователей приобретают изучаемые в последние годы секретируемые бактериями факторы, направленные на инактивацию защитных сил организма (Бухарин О.В., 1999; Бухарин О.В.,

Усвяцов Б.Я., Карташова О.Л., 2002; Бухарин О.В., Гинцбург А.Л., Романова Ю.М. и соавт., 2005; Логинова А.К., Плотников А. О., 2011; Черкасов С.В., Гладышева И.В., Бухарин О.В., 2012; Валышев А.В., Герцен Н.В., 2014), среди которых отмечают антилактоферриновую активность. В литературе отсутствуют данные по адаптивным, реактивным и регенераторным перестройкам клеток макроорганизма при эшерихиозах и протеозах легких, вызванных бактериями, сходными по своим биохимическим свойствам, но отличающимися персистентными свойствами по антилактоферриновой активности, а также возможного защитного эффекта лактоферрина при означенных инфекциях.

За последние годы объем информации по различным аспектам проблемы стресса необычайно расширился, и смысл, вложенный в понятие «стресс» его основоположником Г. Селье (1960), частично потерял первоначальную конкретность чрезвычайного или экстремального происшествия. Стрессом стали называть почти каждое физическое или психическое возбуждение, отнюдь не укладывающееся в рамки «сильного, сверхсильного, чрезвычайного, экстремального» (Кассиль Г.Н., 1983).

В немногочисленных работах описаны изменения в легких при стрессорных воздействиях холода и тепла, иммобилизации, голодании, на основании чего становится очевидным, что стрессорные повреждения нарушают функцию внешнего дыхания и провоцируют возникновение или обострение легочных заболеваний (Шишканов В.В., Серебровская И.А., 1980; Тнимов М.Х., Семенюк А.В., Воронина Н.П., 1984; Розова Е.В., Середенко М.М., Меерсон Ф.З., 1989; Красавина Н.П., 2000).

Среди важнейших регулирующих систем организма роль нейроэндокринной системы в поддержании гомеостаза, обеспечении процессов адаптации и компенсации нарушенных функций через нейротрансмиттерные и гуморальные механизмы считается бесспорной (Поленов А.Л., 1968, 1983, 1993; Акмаев И.Г., Гриневич В.В., 2001; Стадников А.А., 1999, 2001).

Гипоталамусу в концепции стресса отводится роль «стартера», запускающего работу стресс-системы, прежде всего посредством эндокринных механизмов (Акмаев И.Г., 2001; Теплый Д.Л., Бажанова Е.Д., Абатнина Ю.В., 2005; Стадников А.А., Бухарин О.В., 2012).

Однако наряду со структурами, обеспечивающими регуляцию формирования ответной реакции на стрессорное воздействие, в гипоталамусе включаются ограничительные стресс-лимитирующие гуморальные механизмы. Такая роль отводится одному из нонапептидных гормонов окситоцину.

В пульмонологии практически отсутствуют исследования о влиянии хронического эмоционально-болевого стресса и окситоцина в развитии адаптивных реакций клеток и тканей легких, не установлена роль в разработке принципиальной стратегии предупреждения и устранения нарушений клеточного и тканевого гомеостаза при воздействии стресса и бактерий.

Все выше изложенное свидетельствует о слабой изученности, взаимодействий про- и эукариот с позиций их симбионтных особенностей, цитологической оценки персистентного потенциала бактерий относительно реализации тканями макроорганизма своих гисто- и органотипических свойств, проявляющихся под нейроэндокринным контролем со стороны нонапептидергических нейросекреторных центров гипоталамуса.

Таким образом, возникает необходимость экспериментального изучения морфофункциональных изменений в легких при заражении и при заражении на фоне стрессорного воздействия.

Исходя из выше изложенного, нами была поставлена цель и определены конкретные задачи исследования.

Цель и задачи исследования. Цель настоящего исследования -определение структурно-функциональной реорганизации эпителиев легких в условиях воздействия штаммов бактерий Escherichia coli и Providencia rettgeri, отличающихся по наличию признака антилактоферриновой активности и установление роли гипоталамо-гипофизарной нейроэндокринной системы и

окситоцина в регуляции защитно-приспособительных реакций эпителиев легких.

В соответствие с целью работы были поставлены следующие задачи:

1. Определить на ультраструктурном, клеточном и тканевом уровнях реакцию эпителиев воздухоносных путей и респираторных отделов легких крыс на воздействие штаммов бактерий Escherichia coli и Providencia rettgeri, обладающих антилактоферриновой активностью (АЛФА «+») и без таковой (АЛФА «-»).

2. Оценить на ультраструктурном и клеточном уровнях динамику изменений в супраоптических ядрах гипоталамуса у крыс при воздействии штаммов бактерий Escherichia coli и Providencia rettgeri, обладающих антилактоферриновой активностью (АЛФА «+») и без таковой (АЛФА «-»), в том числе на фоне длительного эмоционально-болевого стресса.

3. Выявить взаимосвязь между структурно-функциональными изменениями, происходящими в гипоталамо-гипофизарном комплексе и реорганизацией эпителиев легких в условиях инфицирования крыс.

4. Определить диапазон гисто- и органотипических свойств, реактивных возможностей эпителиев воздухоносных путей и респираторных отделов легких у экспериментальных крыс в условиях интратрахеального введения штамма бактерий Escherichia coli АЛФА «+» на фоне длительного эмоционально-болевого стресса (ЭБС).

5. Оценить особенности реактивных возможностей эпителиев воздухоносных путей и респираторных отделов легких у экспериментальных крыс в условиях интратрахеального введения штамма бактерий Escherichia coli АЛФА «+» и окситоцина на фоне длительного ЭБС.

6. Охарактеризовать динамику реактивных изменений гипоталамо-гипофизарного нейроэндокринного комплекса у экспериментальных животных в условиях интратрахеального введения штамма бактерий Escherichia coli АЛФА «+» на фоне длительного ЭБС и в условиях интратрахеального введения штамма

бактерий Escherichia coli АЛФА «+» и окситоцина на фоне длительного ЭБС.

Научная новизна исследования. Впервые в рамках одного исследования установлено, что под действием бактерий с антилактоферриновой активностью в мерцательном эпителии воздухоносных путей возникают нарушения барьерных функций, сопровождающиеся десквамацией и гибелью клеток, что подтверждается высокими показателями количества клеток с вакуолизированной цитоплазмой, кариопикнозом, при низких значениях числа клеток, экспрессирующих ген проапоптотического белка р-53 и фермента активации апоптоза каспазы-3.

Установлено, что бактерии с антилактоферриновой активностью подавляют апоптоз в альвеолоцитах респираторных отделов легких и инициируют гибель некрозом, что способствует диссеминации бактерий и увеличивает их повреждающее действие на морфологическую организацию легких.

Показано, что независимо от свойств бактерий ММП-9 активируется в клетках и межклеточном веществе интерстиция респираторных отделов легких, при этом уровень экспрессии гена ММП-9 ниже при наличии антилактоферриновой активности у бактерий, что препятствует реализации защитных реакций в легких.

Впервые выявлено, что при воздействии бактерий, отличающихся по наличию признака антилактоферриновой активности, общим в изменении динамики течения фаз нейросекреторного цикла клеток гипоталамуса является уменьшение их численности в фазах накопления и выведения нейросекрета и возрастание количества клеток с признаками опустошения и дегенерации. Более высокие показатели увеличения количества дегенерирующих форм нейросекреторных клеток, наблюдаются при воздействии бактерий, обладающих антилактоферриновой активностью.

Установлено, что длительный эмоционально-болевой стресс приводит к нарушениям в реализации защитно-приспособительных реакций эпителия

воздухоносных путей при заражении, к изменениям типовой специфичности строения многорядного мерцательного эпителия, снижению секреции факторов неспецифической защиты легких лактоферрина, белка СС-16, нарушению мукоцилиарного клиренса, увеличению проницаемости клеток для бактерий.

Впервые выявлено, что длительный эмоционально-болевой стресс, предшествующий заражению, лежит в основе развития функциональной недостаточности супраоптических ядер гипоталамуса. При сочетанном воздействии стрессорных факторов нарушение ультраструктурной организации нейросекреторных клеток и их нейросекреторного цикла сопровождается нарушением формирования, упаковки и транспорта нейросекрета на уровне аксовазальных комплексов нейрогипофиза.

Впервые установлено оптимизирующее действие окситоцина на стрессорную устойчивость эпителия легких, что нашло отражение в сохранении типовой специфичности строения многорядного мерцательного эпителия, ускоренном восстановлении мукоцилиарной транспортной системы, усилении секреции факторов естественной резистентности белка СС-16 и лактоферрина, уменьшении численности гибнущих клеток, поддержании пролиферативного потенциала альвеолоцитов и функционирования аэрогематического барьера.

Было выявлено адаптогенное действие окситоцина на нейросекреторные клетки в супраоптических ядрах гипоталамуса, что нашло подтверждение в сохранении структурной организации нейросекреторных клеток, уменьшении числа клеток в состоянии физиологической дегенерации, с положительной Типе1-реакцией и экспрессией белка р-53.

Практическая значимость работы. Результаты исследования позволили выявить отдельные звенья в механизмах реализации защитно-приспособительных реакций эпителиев легких и роль основных регулирующих систем ГГНС, что представляется важным в концептуальной основе и значимым для клинической медицины, поскольку подводят теоретический базис к разработке диагностических критериев и подходов к лечению и профилактике

заболеваний легких.

Обнаружена взаимосвязь между уровнем морфофункциональных изменений в эпителиях легких, в НСК СОЯ гипоталамуса и наличием персистентных свойств по антилактоферриновому признаку у штаммов бактерий, что имеет значение для обоснования новых и более эффективных способов лечения воспалительных заболеваний легких бактериальной этиологии.

Установленные в процессе применения окситоцина позитивные эффекты на структурно-функциональную реорганизацию и течение защитно-приспособительных реакций в эпителиях воздухоносных путей и респираторных отделов легких, в адаптирующем действии на структурно-функциональное состояние компонентов супраоптических ядер гипоталамуса и нейрогипофиза, имеют важное значение для обоснования применения окситоцина в клинической пульмонологии.

Новые данные о значимости нейропептидов супраоптических ядер гипоталамуса в оптимизации защитно-приспособительных процессов в эпителиях легких открывают новые перспективы в изучении роли нейроэндокринной регуляции взаимодействий про- и эукариот в условиях инфицирования лёгких и дальнейшего изучения регуляции механизмов репаративной регенерации эпителиальных барьеров легких.

Внедрение. Результаты работы используются в учебном процессе при изложении материала на лекциях и проведении практических занятий со студентами на кафедрах гистологии, цитологии и эмбриологии, патологической анатомии, микробиологии, вирусологии и иммунологии Оренбургского государственного медицинского университета.

Положения, выносимые на защиту:

1. При воздействии штаммов бактерий Escherichia coli и Providencia rettgeri происходит структурно-функциональная реорганизация эпителиоцитов воздухоносных путей и респираторных отделов легких, направленная на

активизацию защитно-приспособительных реакций и элиминацию антигенов, что находит свое проявление в десквамации эпителия бронхов, компенсаторной гипертрофии эпителиоцитов, активации мукоцилиарного аппарата, секреции белка СС-16, активации ММП-9, гибели альвеолоцитов апоптозом.

2. В эпителии воздухоносных путей и респираторных отделов легких при воздействии штаммов бактерий Escherichia coli и Providencia rettgeri, обладающих антилактоферриновой активностью происходит подавление факторов неспецифической защиты, проявляющееся снижением синтеза белка СС-16, нарушением мукоцилиарного клиренса, снижением экспрессии гена ММП-9, повышением уровня показателей деструктивных изменений и гибели клеток некрозом.

3. При действии бактерий, обладающих антилактоферриновой активностью реактивные изменения в супраоптических ядрах характеризуются снижением функциональной активности, что проявляется низкими морфометрическими показателями, увеличением количества дегенерирующих форм нейросекреторных клеток, ультраструктурными проявлениями деструктивных изменений ядерных и цитоплазматических структур более длительные сроки и увеличением количества нейросекреторных и глиальных клеток, экспрессирующих ген белка р-53.

4. В легких при инфицировании на фоне длительного ЭБС происходит истощение защитно-приспособительных возможностей эпителиев с нарушением барьерных функций, проявляющееся в воздухоносных путях гибелью и десквамацией клеток, нарушением мукоцилиарного аппарата, низким уровнем секреции белка СС-16 и лактоферрина, нарушением секреции сурфактанта альвеолоцитами, активации апоптотической гибели альвеолоцитов на фоне снижения экспрессии антиапоптотического белка bcl-2 и снижением показателей пролиферативной активности альвеолоцитов, увеличением в них экспрессии гена ММП-9.

5. Окситоцин участвует в регуляции адаптационно-компенсаторных процессов в альвеолоцитах, способствуя снижению мембранотоксического эффекта и сохранению активности митохондриального и секреторного аппарата. Окситоцин оказывает стимулирующее действие на процессы пролиферации и регенерации в респираторных отделах легких, что подтверждается увеличением количества альвеолоцитов, экспрессирующих ген белка К1-67.

6. Окситоцин оказывает цитопротекторное и адаптогенное действие на нейросекреторные клетки супраоптических ядер гипоталамуса при инфицировании на фоне длительного эмоционально болевого стресса, что нашло отражение в сохранении микроскопической и ультраструктурной организации нейросекреторных клеток, увеличения количества активно секретирующих и уменьшения числа клеток на стадии опустошения и дегенерации, уменьшения количества нейросекреторных клеток с положительной Типе1-реакцией и экспрессирующих ген белка р-53.

Апробация работы. Материалы работы доложены на VII Всероссийской конференции по патологии клетки (Москва, 2005); VIII Конгрессе Международной ассоциации морфологов (Орел, 2006); Конференции, посвященной 70-летию Тверской государственной медицинской академии и 100-летию со дня рождения основателя кафедры анатомии человека, профессора И.С. Кудрина (Тверь, 2006); Научно-практической конференции «Современные аспекты гистогенеза и вопросы преподавания гистологии в вузе», посвященной 100-летию со дня рождения профессора Л.И. Фалина (Смоленск, 2007); IX Конгрессе Международной ассоциации морфологов (Бухара, 2007); Всероссийской научной конференции «Нейробиологические аспекты морфогенеза и регенерации» (Оренбург, 2008); Международной конференции «Морфогенезы в эволюции, индивидуальном развитии и эксперименте», посвященной 80-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РФ проф. П.В. Дунаева (Тюмень, 2008); 7-й Всероссийской научной конференции «Бабухинские чтения в Орле» (Орел, 2009); VI Всероссийском съезде анатомов,

гистологов и эмбриологов (Саратов, 2009); VIII Всероссийской конференции «Нейроэндокринология - 2010» (С-Петербург, 2010); VIII Всероссийской конференции по патологии клетки (Москва, 2010); X Конгрессе Международной ассоциации морфологов (Ярославль, 2010); Российской научно-практической конференции с международным участием «Актуальные проблемы диагностики и лечения болезней органов дыхания» (Оренбург, 2011); III эмбриологическом симпозиуме Всероссийского научного медицинского общества анатомов, гистологов, эмбриологов «ЮГРА-ЭМБРИ0-2011. Закономерности эмбрио-фетальных морфогенезов у человека и позвоночных животных» (Ханты-Мансийск, 2011); XI конгрессе Международной ассоциации морфологов (Самара, 2012); Всероссийской научной конференции «Актуальные проблемы морфологии, адаптогенеза и репаративных гистогенезов», посвященной памяти профессора Ф.М. Лазаренко (Оренбург, 2013); XIV Всероссийской конференции «Нейроэндокринология - 2015» (С-Петербург, 2015). XIII Конгрессе МАМ (Петрозаводск, 2016).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 60 работ, из них 34 в изданиях, рекомендованных ВАК при Минобрнауки РФ для публикации материалов докторских и кандидатских диссертаций, в том числе 13 статей.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 376 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, раздела «Материалы и методы исследования», двенадцати глав результатов собственных исследований, обсуждения, выводов и списка литературы. Диссертация иллюстрирована 238 рисунками, 10 таблицами и 3 схемами. Библиография включает 111 отечественных и 491 зарубежных источников литературы.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Морфофункциональная характеристика эпителиев легких и нейросекреторных клеток супраоптических ядер гипоталамуса в норме и при воздействии стрессорных факторов

1.1. Морфофункциональная характеристика многорядного реснитчатого эпителия воздухоносных путей легких

Постоянство внутренней среды живых организмов является основополагающим в процессе сохранения жизни. В связи с этим, чрезвычайно важное значение имеет деятельность тех систем органов, которые непосредственно контактируют с факторами внешней среды и в процессе эволюции приобрели строение, обеспечивающее им способность адекватно реагировать на эти воздействия (Хлопин Н.Г., 1946; Kimura A., Gomi T.G., Kikuchi Y. et al., 1991; Whitsett J.A., Wert S.E., Weaver T.E., 2010; Hsia C.C., Schmitz A., Lambertz M. et al., 2013).

Важное значение в обеспечение гомеостаза организма имеют органы дыхательной системы. Факторы воздушной среды, прежде всего, контактируют с эпителием воздухоносных путей, суммарная площадь поверхности которых у человека составляет в среднем 2,471 ± 0,320 м2. При этом общее количество эпителиальных клеток, входящих в состав трахеобронхиальной системы составляет 10,5 х 109, что в 18 раз меньше, чем число альвеолярных эпителиоцитов (Mercer R.R., Russell M.L., Roggli V.L. et al., 1994).

Структурно-функциональные особенности легких и значительный транзит атмосферного воздуха (8000-12000 л/сут) и крови (6000-8000 л/сут) через них определяют высокую поражаемость органа при воздействии разнообразных экзогенных и эндогенных факторов (Яковлев М.Ю., Алексеев В.Н., 1988; Васильева Л.С., Украинская Л.А., 2002; Богомолова Н.В., 2005; Azoulay E.,

Attalah H., Yang K. et al., 2005; Chen X.Y., Chen X.Y., Wang B. et al., 2005; Hollingsworth J.W., Chen B.J., Brass D.M. et al., 2005; Bo D., Yafei L., Yao Z. et al., 2013; Hiraiwa K., van Eeden S.F., 2013; Shu-Yi L., Xihong L., Christiani D.C., 2013; Tomasek L., 2013)

С одной стороны - поток венозной крови, несущей эндогенные продукты метаболизма и токсины, попавшие в организм, с другой - вдыхаемый воздух, с током которого могут попадать патогенные микроорганизмы, пыли и агрессивные вещества. В связи с этим легкие часто становятся мишенью повреждения различного генеза.

В покровном эпителии воздухоносных путей большинство авторов выделяют три основных вида клеток: реснитчатые, бокаловидные и базальные (Поликар А., Гали П., 1972; Непомнящих Г.Н., Кононов А.В., Непомнящих Л.М., 1986; Boers J.E., Ambergen A.W.,Thunnissen F.B., 1999; Knight D.A., Holgate S.T., 2003; Bishop A.E., 2004; Ross A.J., Dailey L. A., Brighton L.E. et al., 2007; Wa Xian, McKeon F., 2012; Wong A.P, Rossant J., 2013).

Ряд исследователей наряду с выше перечисленными клетками к обязательно присутствующим клеточным элементам покровного эпителия воздухоносных путей легких относят щеточные, эндокринные, секреторные клетки, а камбиальные клетки подразделяют на базальные и промежуточные (Трахтенберг А.Х., Кузьмин И.В., 1985; Бойков А.К., Бойкова С.П., Тарасова Л.Б., 1989; Заварзин А.А., 2000; McDowell E.M., Combs J.W., Newkirk C., 1983; Plopper C.G., Mariassy A.T., Wilson D.W. et al., 1983; Boers J.E., Ambergen A.W., Thunnissen F.B., 1998).

Бронхиальный эпителий, являясь физиологическим барьером для инфекции, выполняет уникальную роль в защитных механизмах. Показано, что эпителиальные клетки воздухоносных путей являются источником модуляторных комплексов, из которых цитокины играют самую большую роль в патогенезе респираторных болезней (Upham J.W., Stick S.M., 2006; Hiemstra P.S., 2007; Kato A., Schleimer R.P., 2007; Rate A., Upham J.W., Bosco A., 2009; Ryu

J.H., Kim C.H., Yoon J.H., 2010; Parker D., Prince A., 2011; Proud D., Leigh R., 2011; Lambrecht B.N., Hammad H., 2012; Schuijs M.J., Willart M.A., Hammad H., 2013).

К дифференцированным элементам эпителиальной выстилки воздухоносных путей исследователи относят реснитчатые клетки. Эти клетки цилиндрические по форме, сужающиеся в базальной части, имеют овальное ядро, расположенное ближе к основанию клетки. Размер реснитчатой клетки в длину составляет 20 мкм и 7 мкм в ширину в верхних отделах клетки и 2 мкм -в базальной ее части (Бойков А.К., Бойкова С.П., Тарасова Л.Б., 1989).

Основным признаком их дифференцировки являются реснички, которые располагаются на апикальной поверхности клетки в количестве от 200 до 250, длиной 5-10 мкм и диаметром 0,1-0,3 мкм (Романова Л.К., 2000; McGrath J., Brueckner M., 2003). Вариабельность длины и количества ресничек в разных реснитчатых клетках, вероятно, связана с разными стадиями зрелости эпителиоцитов (Reed W., Carson J.L., Moats-Staats B.M. et al., 2000; Zhang Y.J., O'Neal W.K., Randell S.H. et al., 2002; Hagiwara H, Ohwada N, Takata K., 2004).

Каждая ресничка мерцательной клетки состоит из осевого комплекса, представленного по окружности 9 парами фибрилл трубчатого строения и 2 одиночными микротрубочками в центре, покрыта клеточной мембраной (Непомнящих Г.И., 1979; Fisch C., Dupuis-Williams P., 2011). Под каждой ресничкой в апикальной части цитоплазмы находятся базальные тельца, из которых развиваются периферические дуплеты ресничек. К каждому базальному тельцу сбоку прикрепляется базальная ножка, осуществляющая посредством связи с соседними дуплетами синхронную работу ресничек (Dawe H.R., Farr H., Gull K., 2007; Kobayashi D., Takeda H., 2012).

В процессе цилиогенеза Романовой Л.К. (2000) выделены две фазы: внутриклеточная и внеклеточная (завершенная и незавершенная). При незавершенном цилиогенезе характер распределения ресничек на поверхности клетки и длина, а также число могут отличаться от нормальных ресничек.

Некоторые авторы описывают клетки, имеющие в норме реснички

атипичного строения, с единичными микротрубочками и пучками микрофиламентов дискомплексированного характера (Gonzalez S., von Bassewitz D.B., Grundmann E. et al., 1985; Bautista Harris G., Rodriguez Bermejo J.C., Castillo Suarez M., 2000). Помимо ресничек на апикальной поверхности реснитчатых клеток имеются микроворсинки, увеличивающие площадь поверхности клеток и принимающие участие в обмене веществ между клеткой и внешней средой (Романова Л.К., 2000). Ядра реснитчатых эпителиоцитов овальные, крупные, относительно светлые, содержат обычно одно ядрышко (Непомнящих Г.И., 1979). Средний объем ядер у мерцательных клеток равен 310 ± 30 мкм3 (Mercer R.R., Russell M.L., Roggli V.L. et al., 1994). В базальной части клеток имеются цистерны цитоплазматической сети, многочисленные свободные рибосомы, различного вида лизосомы и тонофиламенты (Романова Л.К. 2000). Большое число митохондрий с плотным матриксом и значительным количеством параллельных крист располагается преимущественно в апикальной части клетки под основанием ресничек.

Реснитчатые клетки находятся на стадии конечной дифференцировки и не способны к делению митозом, их центриоли идут на образование ресничек (Kauffman S.L., 1980).

Основная функция реснитчатых клеток - дренажная. Кроме того, они контролируют количество жидкости, депонирующейся вокруг ресничек (Yoshisue H., Puddicombe S.M., Wilson S.J. et al., 2004; Vareill M., Kieninger E., Edwards M.R. et al., 2011).

В эпителиальном пласте воздухоносных путей у млекопитающих и человека располагаются бокаловидные клетки (Rogers D.F., 1997; Hattrup C.L., Gendler S.J., 2008; Raiford K.L., Park J., Ko-Wei L. et al., 2011; Turner J., Roger J., Fitau J. et al., 2011).

Соотношение бокаловидных и реснитчатых клеток в бронхах по данным разных авторов несколько варьирует в соотношении 1:5 (Поликар А., Гали П., 1972), 1:3, 1:4 (Непомнящих Г.И., 1979). Бокаловидные клетки эпителиальной

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Козлова Алина Николаевна, 2017 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абрамзон О.М. Биологические свойства возбудителей и их коррекция при острых гнойных заболеваниях легких и плевры: автореф. дисс. докт. мед. наук / Абрамзон О.М. - Оренбург, 2004. - 43 с.

2. Абрамзон О.М., Карташова О.Л., Валышев А.В., Кириллов Д.А., Перунова Н.Б. Экспериментально-клиническое изучение влияния антибиотиков, окситоцина и их сочетаний на персистентные свойства возбудителей острых гнойно-воспалительных заболеваний легких и плевры // Антибиотики и химиотерапия. - 2003. - Т. 48. - № 12. - с. 14 - 17.

3. Автандилов Г.Г. Основы количественной патологической анатомии. - М.: Медицина. - 2002. - 240 с.

4. Автандилов Г.Г. Основы патолого-анатомической практики: рук-во. 2-е изд. - М.: РМАПО. - 1998. - 505 с.

5. Акмаев И.Г. Нейроиммунноэндоринные взаимодействия: их роль в дисрегуляторной патологии // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. - 2001. - № 4. - С. 3 - 10.

6. Акмаев И.Г., Гриневич В.В. Нейроиммуноэндокринология гипоталамуса. Изд-во: Медицина. - 2003. - 168 с.

7. Барков В.Н. Экспериментально-морфологическое обоснование применения нейропептидов и деминерализованного костного матрикса при лечении больных с кистами челюстей: автореф. дисс. канд. мед. наук/ В.Н. Барков. - Оренбург, 2004. - 19 с.

8. Блинова С.А. Эндокринные клетки АРЦО-системы в легких человека (электронно-микроскопическая характеристика) // Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. - 1989. - Т. 46. - № 2. - С. 55 - 59.

9. Боголепов Н.Н., Чучков В.М., Курникова И.А., Карпова А.В. Цитоархитектоника продолговатого мозга, варолиева моста и среднего мозга крысы: Атлас. - Москва: Изд-во «АНК». - 2002. - 130 с.

10. Богомолова Н.В. Бактериальный эндотоксикоз: современное состояние вопроса // Бюллетень ВНЦ РАМН и Администрации Волгоградской области. - 2005. - № 1. - с. 16 - 17.

11. Бойков А.К., Бойкова С.П., Тарасова Л.Б. Ультраструктура компонентов эпителия трахеобронхиального дерева // Арх. патол. - 1989. - Т. 51.

- № 2. - с. 85 - 89.

12. Брындина И.Г., Исаева В.Л. Влияние хронического иммобилизационного стресса на поверхностно-активные свойства и липиды сурфактанта легких при воздействиях на центральные катехоламинергические и серотонинергические структуры // Российский физиологический журнал. - 2015.

- № 3. - с. 308 - 315.

13. Бухарин О. В., Васильев Н. В., Володина Е. П. Окситоцин и вазопрессин - регуляторы иммунного гомеостаза. - Л., 1982. - С. 129 - 130.

14. Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. - М.: Медицина.

- 1999. - 367 с.

15. Бухарин О.В., Гинцбург А.Л., Романова Ю.М., Эль-Регистан Г.И. Механизмы выживания бактерий. - М.: Медицина. - 2005. - 367 с.

16. Бухарин О.В., Валышев А.В. Механизмы устойчивости энтерококков к антимикробным белкам и пептидам // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2012. - Т. 12. - № 5. - с. 89 - 94.

17. Бухарин О.В., Кириллов Д.А., Шеенков Н.В. Влияние циклоферона на биологические свойства бактериальных внутриклеточных патогенов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. - 2005. - № 3. - с. 8 -10.

18. Бухарин О.В., Перунова Н.Б. Микросимбиоценоз. - Екатеринбург: УрО РАН. - 2014. - 260 с.

19. Бухарин О.В., Усвяцов Б.Я., Карташова О.Л. Биология патогенных кокков. - М.: Медицина. - Екатеринбург: УрО РАН. - 2002. - 282 с.

20. Валышев А.В., Валышева И.В., Бухарин О.В. Роль лактоферрина в противоинфекционной защите // Успехи современной биологии. - 2011. - Т. 131. - № 2. - с. 135 - 144.

21. Валышев А.В., Герцен Н.В. Бактериоциногения энтерококков кишечной микрофлоры человека // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2014. - № 6. - с. 78 - 81.

22. Васильева Л.С., Украинская Л.А. Ограничение стресс-индуцированной альтерации лёгких путем активации ГАМК-ергической стресс-лимитирующей системы // Актуальные проблемы морфологии: Тр. Сибирского мед. Ун-та. - Томск. - 2002. - с. 99 - 100.

23. Волков Ю. О. Экспериментально-морфологическое обоснование применения окситоцина для оптимизации репаративных гистогенезов при костной аутопластике дефектов нижней челюсти (экспериментально -гистологическое исследование): автореф. дис. канд. мед. наук / Волков Ю. О. -Оренбург, 2013. - 28 с.

24. Гавриленко В.Г., Есипов В.К., Сивожелезов К.Г. Морфологическая характеристика раневого процесса у больных, с диабетическими гнойно-некротическими поражениями стоп при воздействии окситоцином //Морфология. - 2003. - № 5. - с. 24 - 27.

25. Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Сундуков Д.В., Голубев М.А. Морфологическая характеристика легких при ингаляции липополисахарида и перфторана // Общая реаниматология. - 2015. - № 1. - с. 6 - 13.

26. Горбанева Г.А. Экспериментально-клиническое обоснование целесообразности применения пробиотика и окситоцина в лечении острого гнойного верхнечелюстного синусита: автореф. дис. ... канд. мед. наук / Г. А. Горбанева. - Оренбург, 2006. - 22 с.

27. Гриневич В.В., Поленов А.Л. Морфофункциональная специализация главных и добавочных крупноклеточных нейроэндокринных ядер гипоталамуса // Морфология. - 1997. - Т. 112. - № 5. - с. 26 - 29.

28. Гриневич В.В., Поленов А.Л. Эволюция нонапептидергических нейросекреторных центров гипоталамуса у позвоночных животных (проблемная статья) // Журнал эволюционной биохимии. - 1994. - Т. 30. - № 2. - с. 270 - 292.

29. Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Ефимов Е.И., Бруснигина Н.Ф., Малеев В.В., Тартаковский И.С., Биличеко Т.Н., Шкарин В.В., Ковалишена О.В., Чубукова О.А., Благонравова А.С. Внебольничные пневмонии: классификация, патогенез, этиология, эпидемиология, лабораторная диагностика на современном этапе. Аналитический обзор. Москва. - 2013. - 65 с.

30. Ерохин В.В. Функциональная морфология легких. М.: Медицина, 1987. - 272 с.

31. Завадская И.С., Морева Е.В. Фармакологический анализ механизма стресса и его последствий. - Л.: Медицина, 1981. - с. 147 - 165.

32. Заварзин А.А. Сравнительная гистология. Учебник / Под ред. Строевой О. Г. - СПб.: Изд-во С. - Петерб. ун-та. - 2000. - 520 с.

33. Зак В.И., Курлаев П.П. Местное лечение постинъекционных абсцессов комбинацией окситоцина и антибиотиков // Хирургия. - 1985. - № 5.

- с. 112 - 115.

34. Исаева В.Л. Сурфактант легких при нейрогенном стрессе в условиях нарушенного вагусного нейротрофического контроля: автореф. дисс. канд. мед. наук / В.Л. Исаева. - Казань, 2005. - 25 с.

35. Карапетян Т.А. Внебольничная пневмония сегодня/ Т.А. Карапетян // Вестник Санкт-Петербургского университета Серия 11: Медицина. - 2008. - №1.

- с. 1 - 14.

36. Кассиль Г. Н. Внутренняя среда организма. - М.: Наука, 1983. -

228 с.

37. Котельникова С. В., Котельников А. В., Влияние токсического стресса на морфометрические показатели супрахиазматического ядра гипоталамуса белых крыс в разные сезоны года // Современные проблемы науки и образования. - 2011. -№ 4. - 7 с.

38. Катосова Л.К. Этиологическая диагностика острых пневмоний у детей / Катосова Л.К., Спичак Т.В., Ким С.С. и др. // Вопросы диагностики в педиатрии.

- 2009. - № 2. - с. 27 - 31.

39. Киясов А.П. Методы иммуногистохимии. В кн. Руководство по иммуногистохимической диагностике опухолей человека. / Под ред. Петрова С.В., Райхлина Н.Т. // Казань: «Титул». - 2000. - с. 15 - 38.

40. Козлов Л.Б., Сахаров С.П., Диц Е.В. Роль микробных ассоциаций в инфекционной патологии человека // Фундаментальные исследования. - 2013. -№ 9. - с. 366 - 370.

41. Коптев М.Н., Пронина Е.Н., Аветиков Д.С. Влияние хронической иммобилизации на периферические отделы лёгкого крысы // Современная медицина: актуальные вопросы. - 2013. - Вып. 23. - с. 1 - 8.

42. Корнева Е. А., Клименко В. М., Шхинек Э. К. Нейрогормональное обеспечение иммунного гомеостаза. - Л.: Наука, 1978. - 248 с.

43. Корнева Е.А., Григорьев В.А., Клименко В.М., Столяров И.Д. Электрофизиологические феномены головного мозга при иммунных реакциях. -Л.: Наука, 1989. - 150 с.

44. Косырева А.М., Симонова Е.Ю., Макарова О.В. Половые различия реакции иммунной системы и легких при экспериментальном остром эндотоксикозе // Бюлл экспер. биол. и медицины. - 2012. - Т. 153. - № 3. - с. 318

- 321.

45. Красавина Н.П. Морфофункциональная характеристика соединительной ткани органов дыхания при общем охлаждении организма и медикаментозной коррекции: Дис. докт. мед. наук. - Иркутск. - 2000. - 367 с.

46. Красновская И.А. О функциональном различии крупноклеточных ядер гипоталамуса у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1978. - № 7. - с. 3 - 5.

47. Кретинин С.В., Фадеев С.Б., Перунова Н.Б., Молостов Е.В., Явнова С.В. Сочетанное применение окситоцина и цефотаксима в условиях

экспериментального сепсиса // Сборник материалов VI Всеармейской международной конференции «Инфекция в хирургии мирного и военного времени». - Москва. - 2006. - с. 114 - 115.

48. Кретинин С. В. Экспериментальное обоснование сочетанного применения антибиотика и окситоцина в лечении абдоминального сепсиса: автореф. дис. ... канд. мед. наук / С.В. Кретинин. - Оренбург. - 2008. - 24 с.

49. Курлаев П.П., Зак В.И. Применение окситоцина в комбинации с антибиотиками при лечении больных с лактационным маститом/ Хирургия. -1988. - № 4. - с. 58 - 61.

50. Лакни Г.Ф. Биометрия: Учеб. пособие для биол. спец. вузов - 4-е ИЗД., перераб. и доп. - М.: Высш. шк. - 1990. - 352 с.

51. Лилли Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия.

- М.: «Мир». - 1969. - 645 с.

52. Логинова А.К., Плотников А. Универсальный механизм взаимодействия бактерий, обладающих антигистоновой активностью, с клетками эукариот // Вестник Оренбургского государственного университета. -2011. - Т. 135. - № 16. - с. 300 - 302.

53. Лучкина O.E. Провоспалительные цитокины при хронической обструктивной болезни легких: автореф. дис. канд. мед. наук / O.E. Лучкина. -Ставрополь, 2007. - 21 с.

54. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. Новосибирск: Наука. - 1989. - с. 34 - 40.

55. Меерсон Ф.3. Пшенникова М. Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. - М.: Медицина, 1988. - 256 с.

56. Меркулов Г.А. Курс патогистологической техники. - Л.: Медицина.

- 1969. - 424 с.

57. Мулик А.Б. Оптимизация медико-биологического эксперимента in vivo. - Волгоград. - 2003. - 212 с.

58. Непомнящих Г.И. Патологическая анатомия и ультраструктура бронхов при хроническом воспалении легких. Новосибирск: Наука. - 1979. - 295 с.

59. Непомнящих Г.Н., Кононов А.В., Непомнящих Л.М. Иммунологическая и ультраструктурная характеристика слизистой оболочки бронхов при хроническом воспалении // Бюлл. экспер. биол. и мед. - 1986. - Т. 12. - № 3. - с. 359 - 363.

60. Новикова Н.С., Корнева Е.А., Гаврилов Ю.В., Перекрест С.В. Стресс-индуцированные изменения реакций клеток гипоталамических структур на введение антигена (липополисахарида) (по экспрессии c-fos белка) // Российский физиологический журнал. - 2006. - Т. 135. - № 11. - с. 1296 - 1304.

61. Охонская И.А. Функциональная морфология нейросекреторных клеток и задней доли гипофиза белых мышей в условиях длительной стимуляции // Цитология. - 1972. - Т.14. - № 8. - с. 925 - 931.

62. Ощепкова О.М. Закономерности развития стрессорных повреждений внутренних органов и их предупреждение производными глицина (эксперим. исслед.): Дис. ... канд. мед. наук / О.М. Ощепкова. - Иркутск, 1995. - 205 с.

63. Пащенков М.В., Алхазова Б.И., Львов В.Л., Пинегин Б.В. Особенности индукции провоспалительных генов в дендритных клетках и макрофагах под действием глюкозаминилмурамилтрипептида грамотрицательных бактерий // Иммунология. - 2013. - Т. 34. - № 1. - с. 10 - 15.

64. Пирс Э. Гистохимия. - Москва: Изд. ин. лит. - 1962. - 962 с.

65. Писарев В.Б. Изучение объемной плотности нейронов различных ядер и полей гипоталамуса нормальных крыс // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. - 1982. - Т. 82. - № 5. - с. 25 - 27.

66. Писарев В.Б., Богомолова Н.В., Новочадов В.В. Бактериальный эндотоксикоз: взгляд патолога. - Волгоград: Изд-во ВолГМУ. - 2008. - 320 с.

67. Полак Д., Ван Норден С. Введение в иммуноцитохимию, современные методы и проблемы. Пер. с англ. М.: Мир. - 1987. - 74 с.

68. Поленов А.Л. Морфофункциональная организация нейросекреторных клеток гипоталамуса //Нейроэндокринология. - СПб.: Медицина. - 1993. - с. 139 - 187.

69. Поленов А.Л., Константинова М.С., Гарлов П.Е. Гипоталамо-гипофизарный нейроэндокринный комплекс // Нейроэндокринология часть 1, СПб.: РАН. - 1993. - с. 139 - 187.

70. Поленов А.Л., Онищенко И.Л., Красновская И.А. Морфофункциональный анализ ядерного аппарата нонапептидергических нейросекреторных клеток гипоталамуса позвоночных // Цитология. - 1996. - Т. 38. - № 1. - с. 28 - 38.

71. Поленов АЛ. Гипоталамическая нейросекреция / А.Л. Поленов. - Л.: Наука, 1968. - 159 с.

72. Поленов АЛ. Морфофункциональная организация нейросекреторных клеток гипоталамуса // Нейроэндокринология. - СПб.: РАН. -1993. - с. 31 - 70.

73. Поленов А.Л. О жизненном пути и секреторном цикле нейросекреторных клеток гипоталамуса // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. - 1974. - Т. 67. - № 7. - с. 5 - 19.

74. Поликар А., Гали П. Бронхолегочный аппарат. Структуры и механизмы в норме и патологии. - Новосибирск: Наука. - 1972. - 333 с.

75. Потанин М.Б. Морфологическая вариабельность гипоталамуса в обеспечении конституциональной стресс-реактивности (экспериментальное исследование): автореф. дисс. докт. мед. наук / М.Б. Потанин. - Волгоград, 2008. - 42 с.

76. Розова Е.В., Середенко М.М., Меерсон Ф.З. Электронно-микроскопическая характеристика стрессорного лёгкого // Бюл. эксперим. биологии и медицины. - 1989. - Т. 58. - № 12. - с. 735 - 738.

77. Розова Е.В. Изменения морфофункционального состояния митохондрий клеток тканей легких и сердца крыс при гипоксии различного генеза // Журн. Акад. мед. наук Украины. - 2008. - T. 14. - № 4. - с. 752 - 765.

78. Романова Л.К. Воздухоносные пути. В кн: клеточная биология легких в норме и при патологии /Под ред. В.В. Ерохина, Л.К. Романовой // М.: Медицина. - 2000. - с. 95 - 113.

79. Романова Л.К. Органы дыхания. В кн.: Атлас сканирующей электронной микроскопии клеток, тканей и органов / Под ред. Волковой О.В., Шахламова В.А., Миронова А.А. - М.: Медицина. - 1987. - с. 288 - 293.

80. Романова Л.К., Горячкина В.Л. Цитофизиология секреторных бронхиолярных клеток легкого-источника «антимедиаторов» воспаления //Арх. пат. - 1999. - Т. 61. - № 2. - с. 20 - 27.

81. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме. - М.: Медгиз. - 1960.

- 252 с.

82. Сивожелезов К.Г. Комплексное лечение гнойно-воспалительных заболевания пальцев и кисти: автореф. дис. ...канд. мед. наук/ Сивожелезов К.Г.

- Оренбург, 2005. - 29 с.

83. Сивожелезов К.Г., Сулейманов И.М. Лечение флегмон кисти закрытым способом с местным использованием окситоцина //Актуальные вопросы хирургии. - Оренбург. - 2000. - с. 98 - 99.

84. Сидоренко С.В. Микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae: клиническое значение и этиотропная терапия //Consilium Medicum. - 2004. - Т.6.

- № 1. - с . 46 - 50.

85. Скоробогатых Ю.И., Перунова Н.Б., Курлаев П.П., Бухарин О.В. Экспериментальное изучение комбинации ципрофлоксацина с окситоцином на образование биоплёнок условно патогенными бактериями//Журнал микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии. - 2010. - № 6. - с. 3 - 7.

86. Стадников A.A. Нейробиологические аспекты регуляции репара-тивных гистогенезов // Морфология. - 1995. - Т. 133. - № 2. - с. 16 - 19.

87. Стадников А.А. Гипоталамические факторы регуляции процессов роста, пролиферации и цитодифференцировки эпителия аденогипофиза. Екатеринбург: УрО РАН. - 1999. - 140 с.

88. Стадников А.А. Роль гипоталамических нейропептидов во взаимодействиях про- и эукариот: структурно-функциональные аспекты. Екатеринбург: УрО РАН. - 2001. - 244 с.

89. Стадников А.А., Бухарин О.В. Гипоталамическая нейросекреция и структурно-функциональный гомеостаз про- и эукариот (морфологические основы реактивности, пластичности и регенерации). Оренбург: ОрГМА. - 2012. - 296 с.

90. Стадников Б.А. Клинико-экспериментальное обоснование применения нейропептидов и гиалуроновой кислоты в комплексном лечении осложнений острого панкреатита: автореф. дис. ... докт. мед. наук / Стадников Б.А. - Оренбург, 2005. - 48 с.

91. Ташке К. Введение в количественную цито-гистологическую морфологию. - Изд-во академии социалистической республики Румынии. -1980. - 194 с.

92. Теплый Д.Л., Бажанова Е.Д., Абатнина Ю.В. Апоптоз нейросекреторных клеток гипоталамуса при стрессе у мышей на разных этапах онтогенеза // Морфология. - 2005. - Т. 127. - № 3. - с. 27 - 29.

93. Теппермен Дж. Физиология обмена веществ и эндокринной системы: Вводный курс: пер. с англ. / Дж. Теппермен, X. Теппермен. - М.: Мир. - 1989. -656 с.

94. Тнимов М.Х., Семенюк А.В., Воронина Н.П. Влияние низкой температуры на перекисное окисление липидов в легких и активность легочных макрофагов у крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины. - 1984. - Т. 138. - № 11. - с. 591 - 593.

95. Трахтенберг А.Х., Кузьмин И.В. Ранний рак легкого /Ранняя онкологическая патология // Под ред. Б.Е. Петерсона и В.М.Чиссова. - М.: Медицина. - 1985. - с. 167 - 203.

96. Третьяков А.А., Стадников А.А, Чумаков А.М. Применение окситоцина при экспериментальном холангите // Анналы хирургической гепатологии. - 2009. - Т. 14. - № 3. - с. 30 - 35.

97. Украинская Л.А. Стресс-индуцированная альтерация легких и ее коррекция медиаторами и метаболитами стресс-лимитирующих систем: автореф. дисс. канд. биол. наук / Л.А. Украинская. - Иркутск, 2002 . - 18 с.

98. Фельдман Ю.М. Количественное определение бактерий в клинических материалах //Лаб. дело. - 1984. - № 10. - с. 616 - 619.

99. Филиппенко Л.Н. Светооптическое и электронно-микроскопическое изучение щеточных альвеолоцитов легких крыс// Бюлл. эксперим. биол. и мед. -1978. - Т. 86. - № 2. - с. 592 - 596.

100. Хлопин Н.Г. Общебиологические и экспериментальные основы гистологии. - М.-Л.: Изд. АН СССР. - 1946. - 491 с.

101. Червонская Г.П., Панкратова Г.П., Миронова Л.Л. Этика медико-биологического эксперимента в доклинических исследованиях // Токсикол. Вестн. - 1998. - № 3. - с. 2 - 8.

102. Черкасов С.В., Гладышева И.В., Бухарин О.В. Симбиотические взаимодействия коринебактерий и лактобацилл в реализации окислительных механизмов антагонизма // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2012. - № 6. - с. 13 - 16.

103. Чубукова О.А. Совершенствование эпидемиологического и микробиологического мониторинга в системе эпидемиологического надзора за внебольничными пневмониями. Автореф. дис. канд. мед. наук. - Нижний Новгород. - 2012. - 26 с.

104. Чучалин А.Г. Внебольничная пневмония у взрослых. Практические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике / Чучалин А.Г.,

Синопальников А.И., Козлов Р.С., Тюрин И.Е., Рачина С.А. - М.: Медицина, 2010. - 60 с.

105. Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Козлов Р.С., Тюрин И.Е., Рачина С.А. Внебольничная пневмония у взрослых: практические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике (Пособие для врачей). Инфекционные болезни. Новости. Лечение. Обучение. - 2013. - № 2. - с. 91 - 123.

106. Шишканов В.В., Серебровская И.А. Изменение сурфактантной системы легких во время и после длительного голодания //Бюл. эксперим. биологии и медицины. - 1980. - Т.139. - № 6. - с. 678 - 680.

107. Эллиниди В. Н., Аникеева Н. В., Максимова Н. А. Практическая иммуноцитохимия. СПб: ВЦЭРМ МЧС России. - 2002. - 36 с.

108. Яглов В.В. Актуальные проблемы биологии диффузной эндокринной системы // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. - 1989. -Т. 96. -№ 1. - с. 14 - 25.

109. Яковлев В.Н., Алексеев В.Н. Токсический отек лёгких // Моск. мед. журн. - 1998. - Т. 8. - №5. - с. 16 - 19.

110. Яковлев М.Ю. Элементы эндотоксиновой теории физиологии и патологии человека // Физиология человека. - 2003. - Т. 29. - № 4. - с. 98 - 109.

111. Яковлев С.В., Яковлев В.П. Применение левофлоксацина в пульмонологии // Пульмонология. - 2001. - Т. 11. - № 3. - с. 76 - 83.

112. Abdel-Latif M.E., Osborn D.A. Intratracheal Clara cell secretory protein (CCSP) administration in preterm infants with or at risk of respiratory distress syndrome // Cochrane Database of Systematic Reviews. - 2011. - № 5. - Art. No.: CD008308. DOI: 10.1002/14651858.CD008308.pub2.

113. Abirami L., Fivaz M., Glauser P.E., Parton R.G., Van der Goot F.G. A pore-forming toxin interacts with a GPI anchored protein and causes vacuolation of the endoplasmic reticulum // J Cell Biol. - 1998. - v. 140. - № 3. - р. 525 - 540.

114. Ackermann M.R., Cheville N.F. Ultrastructural studies of the lung of turkeys (Meleagris gallopavo) inoculated intratracheally with Escherichia coli //Vet

Pathol. - 1991. - v. 28. - № 3. - p. 183 - 191.

115. Aguilera G. Regulation of pituitary ACTH secretion during chronic stress // Front Neuroendocrinol. - 1994. - v. 15. - № 4. - p. 321 - 350.

116. Aguilera G., Pham Q., Rabadan-Diehl C. Regulation of pituitary vasopressin receptors during chronic stress: relationship to corticotroph responsiveness // J.Neuroendocrinol. - 1994. - v. 6. - № 3. - p. 299 - 304.

117. Al-Amran F, Shahkolahi M. Oxytocin ameliorates the immediate myocardial injury in rat heart transplant through downregulation of neutrophil-dependent myocardial apoptosis // Transplant Proc. - 2013. - v. 45. - № 6. - p. 2506

- 2512.

118. Alberts B., Johnson A., Lewis J., Raff M., Roberts K., Walter P. Molecular Biology of the Cell. 4th edition // New York: Garland Science. - 2002. - v. 91. - № 3.

- p. 401.

119. Alessandrini F., Weichenmeier I., van Miert E., Takenaka S., Karg E., Blume C., Mempel M., Schulz H., Bernard A., Behrendt H. Effects of ultrafine particles-induced oxidative stress on Clara cells in allergic lung inflammation // Part Fibre Toxicol. - 2010. - v. 7. - p. 11.

120. Alfven G. Plasma Oxytocin in Children with Recurrent Abdominal Pain // Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition. - 2004. - v. 38. - № 5. - p. 513

- 517.

121. al-Hussain S., al-Jomard R. Morphology of neurons in the anterior hypothalamic area and supraoptic hypothalamic nucleus of the adult human brain // Ital J Neurol Sci. - 1996. - v. 17. - № 4. - p. 261 - 266.

122. Alizadeh A.M., Faghihi M., Sadeghipour H.R., Mohammadghasemi F., Khori V. Role of endogenous oxytocin in cardiac ischemic preconditioning // Regul Pept. - 2011. - v. 167. - № 1. - p. 86 - 90.

123. Al-Jubouri M.A., Vardhan M.S. A case of purple urine bag syndrome associated with Providencia rettgeri // J Clin Pathol. - 2001. - v. 54. - № 5. - p. 412.

124. Alto N.M., Orth K. Subversion of cell signaling by pathogens // Cold

Spring Harb Perspect Biol. - 2012. - v. 4. - № 9. - p. 1 - 16.

125. Amrani Y., Syed F., Huang C., Li K., Liu V., Jain D., Keslacy S., Sims M. W., Baidouri H., Cooper P.R., Zhao H., Siddiqui S., Brightling C.E., Griswold D., Li L., Panettieri R.A. Expression and activation of the oxytocin receptor in airway smooth muscle cells : Regulation by TNFa and IL-13 // Respir. Res. - 2010. - v. 11. -№ 1. - 12 p. - doi: 10.1186/1465-9921-11-104.

126. Anderson D. S., Silva R. M., Lee D., Edwards P. C., Sharmah A., Guo T., Pinkerton K. E., Van Winkle L. S. Persistence of silver nanoparticles in the rat lung: Influence of dose, size, and chemical composition // Nanotoxicology. - 2014. - p. 1 -12.

127. Andrews S. C., Robinson A. K., Rodriguez-Quinones F. Bacterial iron homeostasis // FEMS Microbiol. Rev. - 2003. - v. 27. - № 2-3. - p. 215-237.

128. Anschel S., Alexander M., Perachio A.A. Multiple connections of medial hypothalamic neurons in the rat. // Exp Brain Res. - 1982. - v. 46. - № 3. - p. 383 -392.

129. Antoni F.A., Holmes M.C., Jones M.T. Oxytocin as well as vasopressin potentiate ovine CRF in vitro // Peptides. - 1983. - v. 4. - № 4. - p. 411 - 415.

130. Aracil F.M, Bosch M.A, Municio A.M. Influence of E. coli lipopolysaccharide binding to rat alveolar type II cells on their functional properties // Mol Cell Biochem. - 1985. - v. 68. - № 1. - p. 59 - 66.

131. Arias-Diaz J., Vara E., Garcia C., Balibrea J.L. Tumor necrosis factor-alpha-induced inhibition of phosphatidylcholine synthesis by human type II pneumocytes is partially mediated by prostaglandins // J Clin Invest. - 1994. - v. 94. -№ 1. - p. 244 - 250.

132. Ariki S., Nishitani C., Kuroki Y. Diverse functions of pulmonary collectins in host defense of the lung // J. Biomed. Biotechnol. - 2012. - doi: 10.1155/2012/532071.

133. Armstrong L., Medford A.R., Uppington K.M., Robertson J., Witherden I.R., Tetley T.D., Millar A.B. Expression of functional toll-like receptor-2 and -4 on alveolar epithelial cells // Am J Respir Cell Mol Biol. - v. 31. - p. 241 - 245.

134. Arsalane K., Broeckaert F., Knoops B., Wiedig M., Toubeau G., Bernard A. Clara cell specific protein (CC16) expression after acute lung inflammation induced by intratracheal lipopolysaccharide administration // Am J Respir Crit Care Med. -2000. - v. 161. - № 5. - p. 1624-1630.

135. Assenmacher I., Barbanel G., Gaillet S., Givalois L., Ixart G., Malaval F., Mekaouche M., Siaud P., Szafarczyk A. Central regulation of ACTH release in stress // Ann N Y Acad Sci. - 1995. - v. 29. - № 771. - p. 41 - 54.

136. Azoulay E., Attalah H., Yang K., Herigault S., Jouault H., Brun-Buisson C., Brochard L., Harf A., Schlemmer B., Delclaux C. Exacerbation with granulocyte colony-stimulation factor of prior acute lung injury during neutropenia recovery in rats // Crit. Care Med. - 2003. - v. 31. - № 1. - p. 61 - 67.

137. Baciu I., Hriscu M., Saulea G. Hypothalamic mechanisms of immunity // Int J Neurosci. - 2003. - v. 113. - № 2. - p. 259 - 277.

138. Baggiolini M., De Duve C., Masson P.L. and Heremans J.F. Association of lactoferrin with specific granules in rabbit heterophil leukocytes // J. Exp. Med. -1970. - v. 131. - № 3. - p. 559 - 570.

139. Baldwin F. Basal cells in human bronchial epithelium // Anat Rec. - 1994.

- v. 238. - № 3. - p. 360 - 367.

140. Bals R., Hiemstra P.S. Innate immunity in the lung: How epithelial cells fight against respiratory pathogens // Eur Respir J. - 2004. - v. 23. - № 2. - p. 327 -333.

141. Bansil R., Turner B. S. Mucin structure, aggregation, physiological functions and biomedical applications // Curr Opin Colloid Interf Sci. - 2006. - v. 11.

- p. 164 - 170.

142. Bao A.M., Meynen G., Swaab D.F. The stress system in depression and neurodegeneration: focus on the human hypothalamus //Brain Res Rev. - 2008. - v. 57. - № 2. - p. 531 - 553.

143. Baribeau D.A., Anagnostou E. Oxytocin and vasopressin: linking pituitary neuropeptides and the irreceptors to social neurocircuits // Front. Neurosci. - 2015. -http://dx.doi.org/10.3389/fnins.2015.00335.

144. Barkauskas C.E., Cronce M.J., Rackley C.R., Bowie E.J., Keene D.R., Stripp B.R., Randell S.H., Noble P.W., Hogan B.L.M. 2 alveolar cells are stem cells in adult lung // J Clin Invest. - 2013. - v. 123. - № 7. - p. 3025 - 3036.

145. Baroncini M., Jissendi P., Balland E., Besson P., Pruvo J.P., Francke J.P., Dewailly D., Blond S., Prevot V. MRI atlas of the human hypothalamus // Neuroimage.

- 2012. - v. 59. - № 1. - p. 168 - 180.

146. Bates S.R., Dodia C., Tao J.Q., Fisher A.B. Surfactant protein-A plays an important role in lung surfactant clearance: evidence using the surfactant protein-A gene-targeted mouse // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2008. - v. 294. - № 2.

- p. 325 - 333.

147. Bautista Harris G., Rodriguez Bermejo J.C., Castillo Suarez M. Different frequency of cilia with transposition in human nasal and bronchial mucosa. A case of acquired ciliary dyskinesia // Virchows Arch. - 2000. - v. 437. - № 3. - p. 325 - 330.

148. Baxt L.A., Garza-Mayers A.C., Goldberg M.B. Bacterial subversion of host innate immune pathways // Science. - 2013. - v. 340. - № 6133. - p. 697 - 701.

149. Bedetti C.D., Singh J., Singh G., Katyal S.L., Wong-Chong M.L. Ultrastructural localization of rat Clara cell 10 KD secretory protein by the immunogold technique using polyclonal and monoclonal antibodies // J Histochem Cytochem. - 1987. - v. 35. - № 7. - p. 789 - 794.

150. Beishuizen A., Thijs L. G. Endotoxin and the hypothalamo-pituitary-adrenal (HPA) axis // J Endotoxin Res. - 2003. - v. 9. - № 1. - p. 3 - 24.

151. Bingxin X., Chenglin L., Jianying W., Jihua W., Shaoyan S., Zhiguo L., Jianzhong L., Jianzhong Z., Yan C. Lung injury via oxidative stress in mice induced

by inhalation exposure to rocket kerosene // Int J Clin Exp Pathol. - 2015. - v. 8. - № 5. - p. 5497-5502.

152. Beloborodova N.V., Osipov G.A. Small molecules originating from microbes and their role in microbes-host relationship // Microb. Ecol. Health Dis. -2000. - v. 12. - № 1. - p. 12 - 21.

153. Benito E., Bosch M.A. The inflammatory cytokines tumor necrosis factor alpha and interleukin-1beta stimulate phosphatidylcholine secretion in primary cultures of rat type II pneumocytes // Mol Cell Biochem. - v. 189. - № 1/2. - p. 169 -176.

154. Benson M., Carlsson L., Adner M., Jernäs M., Rudemo M., Sjögren A., Svensson P.A., Uddman R., Cardell L.O. Gene profiling reveals increased expression of uteroglobin and other anti-inflammatory genes in glucocorticoid-treated nasal polyps // J Allergy Clin Immunol. - 2004. - v. 113. - № 6. - p. 1137 - 1143.

155. Bentura Remacha M.L., Lazcano Camarero M.A. Quantitative and morphometric parameters determining the development of the supraoptic nucleus in the albino rat // Acta Anat (Basel). - 1988. - v. 133. - № 2. - p. 111 - 117.

156. Berciano M.T., Novell M., Villagra N.T., Casafont I., Bengoechea R., Val-Bernal J.F., Lafarga M. Cajal body number and nucleolar size correlate with the cell body mass in human sensory ganglia neurons // J. Struct. Biol. - 2007. - v. 158. -№ 3. - p. 410 - 420.

157. Berclaz P.Y., Carey B., Fillipi M.D., Wernke-Dollries K., Geraci N., Cush S., Richardson T., Kitzmiller J., O'connor M., Hermoyian C., Korfhagen T., Whitsett J.A., Trapnell B.C. GM-CSF regulates a PU.1-dependent transcriptional program determining the pulmonary response to LPS // Am J Respir Cell Mol Biol. -2007. - v. 36. - № 1. - p.114 - 121.

158. Berliner N., Hsing A., Graubert T., Sigurdsson F., Zain M., Bruno E., Hoffman R. Granulocyte colony-stimulating factor induction of normal human bone marrow progenitors results in neutrophil-specific gene expression // Blood. - 1995. -v. 85. - № 3. - p. 799 - 803.

159. Bernard A., Roels H., Lauwerys R., Witters R., Gielens C., Soumillion A., Van Damme J., De Ley M. Human urinary protein 1: evidence for identity with the Clara cell protein and occurrence in respiratory tract and urogenital secretions. ClinChim Acta. - 1992. - v. 207. - № 3. - p. 239 - 249.

160. Bertok L. Bacterial endotoxins and their effects // Orv Hetil. - 1998. - v. 139. - № 33. - p. 1947 - 1953.

161. Betsuyaku T., Shipley J.M., Liu Z., Senior R.M. Gelatinase B deficiency does not impair neutrophil migration in vivo // American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. - 1999. - v. 20. - p. 1303 - 1309.

162. Bishop A.E. Pulmonary epithelial stem cells // Cell Proliferation. - 2004.

- v. 37. - № 1. - p. 89 - 96.

163. Biyikli N.K., Tugtepe H., Sener G., Velioglu-Ogün5 A., Cetinel S., Midillioglu S., Gedik N., Yegen B.C. Oxytocin alleviates oxidative renal injury in pyelonephritic rats via a neutrophil-dependent mechanism // Peptides. - 2006. - v. 27.

- № 9. - p. 2249 - 2257.

164. Blanchard D.C., Sakai R.R., McEwen B.S., Weiss S.M., Blanchard R.J. Subordination stress: behavioral, brain and neuroendocrine correlates // Behav Brain Res. - 1993. - v. 58. - № 1-2. - p. 113 - 121.

165. Bloom F.E., Battenberg E.L.F., Rivier J., Vale W. Corticotropinreleasing factor (CRF): immunoreactive neurons and fibers in rat hypothalamus // Regul Pept. -1982. - v. 4. - p. 43 - 48.

166. Boers J.E., Ambergen A.W., Thunnissen F.B. Number and proliferation of basal and parabasal cells in normal human airway epithelium // Am J Respir Crit Care Med. - 1998. - v. 157. - № 6/1. - p. 2000 - 2006.

167. Boers J.E., Ambergen A.W., Thunnissen F.B. Number and Proliferation of Clara Cells in Normal Human Airway Epithelium // American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. - 1999. - v. 159. - № 5. - p. 1585 - 1591.

168. Bosch O.J., Neumann I.D. Both oxytocin and vasopressin are mediators of maternal care and aggression in rodents: from central release to sites of action // Horm Behav. - 2012. - v. 61. - № 3. - p. 293 - 303.

169. Bowden D.H: Cell turnover in the lung // Am Rev Respir Dis. - 1983. -v. 128. - № 2 pt 2. - p. 46 - 48.

170. Bowie A., O'Neill L.A. Oxidative stress and nuclear factor kappaB activation: a reassessment of the evidence in the light of recent discoveries // Biochem Pharmacol. - 2000. - v. 59. - № 1. - p. 13 - 23.

171. Braun V., Braun M. Active transport of iron and siderophore antibiotics // Curr. Opin. Microbiol. - 2002. - v. 5. - № 2. - p.194 - 201.

172. Brody A.R. The brush cell // Am J Respir Crit Care Med. - 2005. - v. 172.

- № 10. - p. 1349.

173. Broeckaert F., Bernard A. Clara cell secretory protein (CC16): characteristics and perspectives as lung peripheral biomarker // Clin Exp Allergy. -2000. - p. 30. - № 4. - p. 469 - 475.

174. Brogden K.A. Changes in pulmonary surfactant during bacterial pneumonia/ Antonie van Leeuwenhoek. - 1991. - v. 59. - № 4. - p. 215 - 223.

175. Brownstein M.J., Russell J.T., Gainer H. Synthesis, transport, and release of posterior pituitary hormones. Science. - 1980. - v. 207. - № 4429. - p. 373 - 378.

176. Brunton P.J., Meddle S.L., Ma S., Ochedalski T., Douglas A.J., Russell J.A. Endogenous opioids and attenuated hypothalamic-pituitary-adrenal axis responses to immune challenge in pregnant rats // J Neurosci. - 2005. - v. 25. - № 21. - p. 5117

- 5126.

177. Bullen J. J. The significance of iron in infection // Rev. Infect .Dis. - 1981.

- v. 3. - p. 1127 - 1138.

178. Burgoyne R.D., Morgan A. Secretory granule exocytosis // Physiol Rev. - 2003. - v. 83. - № 2. - p. 581 - 632.

179. Bustos M.L., Mura M., Marcus P., Hwang D., Ludkovski O., Wong A. P., Waddell T.K. Bone Marrow Cells Expressing Clara Cell Secretory Protein Increase

Epithelial Repair After Ablation of Pulmonary Clara Cells // Mol Ther. - 2013. - v. 21. - № 6. - p. 1251 - 1258.

180. Button B., Cai L.H., Ehre C., Kesimer M., Hill D.B., Sheehan J.K., Boucher R.C., Rubinstein M. A periciliary brush promotes the lung health by separating the mucus layer from airway epithelia// Science. - 2012. - v. 337. - №2 6097.

- p. 937 - 941. - doi: 10.1126/science.1223012.

181. Campbell A. Oxytocin and human social behavior. Pers Soc Psychol Rev.

- 2010. - v. 14. - № 3. - p. 281 - 295.

182. Carroll J.L. Jr, McCoy D.M., McGowan S.E., Salome R.G., Ryan A.J., Mallampalli R.K. Pulmonary-specific expression of tumor necrosis factor-alpha alters surfactant lipid metabolism // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2002. - v. 282.

- № 4. - p. 735 - 742.

183. Carter D.A., Lightman S.L. Diurnal pattern of stress-evoked neurohypophyseal hormone secretion: sexual dimorphism // Neurosci Lett. - 1986. -v. 71. - № 2. - p. 252 - 255.

184. Carvalho-Assef A.P., Pereira P.S., Albano R.M., Beriao G.C., Chagas T.P., Timm L.N., Da Silva R.C., Falci D.R., Asensi M.D. Isolation of NDM-producing Providencia rettgeri in Brazil // J Antimicrob Chemother. - 2013. - v. 68. - № 12. - p. 2956 - 2957.

185. Cassoni P., Sapino A., Parroco T., Chini B., Bussolanti G. Oxytocin and oxytocin receptors in cancer cells and proliferation // J Neuroendocrinol. - 2004. - v. 16. - № 4. - p. 362 - 364.

186. Cazareth J., Guyon A., Heurteaux C., Chabry J., Petit-Paitel A. Molecular and cellular neuroinflammatory status of mouse brain after systemic lipopolysaccharide challenge: importance of CCR2/CCL2 signaling // J Neuroinflammation. - 2014. - v. 11. - p. 132.

187. Chang L.Y., Mercer R.R., Crapo J.D. Differential distribution of brush cells in the rat lung // Anat Rec. - 1986. - v. 216. - № 1. - p. 49 - 54.

188. Chapin R.E., Morgan K.T., Bus J.S. The morphogenesis of testicular degeneration induced in rats by orally administered 2,5-hexanedione // Exp Mol Pathol.

- 1983. - v. 38. - № 2. - p. 149 - 169.

189. Chen M., Bao W., WAizman R., Huang P., Aspevall O., Gustafsson L.E., Ceccatelli S., Celsi G. Activation of extracellular signal-regulated kinase mediates apoptosis induced by uropathogenic Escherichia coli toxins via nitric oxide synthase: protective role of heme oxygenase-1 // J Infect Dis. - 2004. - v. 190. - № 1. - p. 127

- 135.

190. Chen X.Y., Wang B., Tan W., Xiong H., Li X.Q., Gao Y.S., Tian Y.N., Liu X.M. Inhibitory effects of protease inhibitor on endotoxin-induced acute lung injury in rats // Beijing Da Xue Xue Bao. - 2005. - v. 37. - № 4. - p. 398 - 401.

191. Chiou-Feng L., Chia-Ling C., Wei-Ching H., Yi-Lin C., Chia-Yuan H., Chi-Yun W., Ming-Yuan H. Different Types of Cell Death Induced by Enterotoxins // Toxins. - 2010. - v. 2. - № 8. - p. 2158 - 2176.

192. Chow C. W., Herrera Abreu M. T., Suzuki T., Downey G. P. Oxidative stress and acute lung injury // Am J Respir Cell Mol Biol. - 2003. - v. 29. - № 4. - p. 427 - 431.

193. Christopher M.J., Link D.C. Regulation of neutrophil homeostasis // Curr Opin Hematol. - 2007. - v. 14. - № 1. - p. 3 - 8.

194. Claes S. J. Corticotropin-releasing hormone (CRH) in psychiatry: from stress to psychopathology // Ann Med. - 2004. - v. 36. - № 1. - p. 50 - 61.

195. Clodi M., Vila G., Geyeregger R., Riedl M., Stulnig T. M., Struck J., Luger A. Oxytocin alleviates the neuroendocrine and cytokine response to bacterial endotoxin in healthy men // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. - 2008. - v. 295. - № 3. - p. 686 - 691.

196. Cole A.M., Waring A.M. The role of defensins in lung biology and therapy // Am. J. Respir. Med. - 2002. - v. 1. - № 4. - p. 249 - 259.

197. Crapo J.D., Barry B.E., Gehr P., Bachofen M., Weibel E.R. Cell number and cell characteristics of the normal human lung // Am Rev Respir Dis. - 1982. - v. 126. - № 2. - p. 332 - 337.

198. Creasy D.M., Beech L.M., Gray T.J., Butler W.H .The ultrastructural effects of di-n-pentyl phthalate on the testis of the mature rat // Exp Mol Pathol. - 1987.

- v. 46. - № 3. - p. 57 - 371.

199. Crowley W.R., Armstrong W.E. Neurochemical regulation of oxytocin secretion in lactation // Endocr Rev. - 1992. - v. 13. - № 1. - p. 33 - 65.

200. Cui Y.H., Wang Y.Y., Liu Z. Transdifferentiation of Clara cell 10-kDa protein secreting cells in experimental allergic rhinitis // Am J Rhinol Allergy. - 2011.

- v. 25. - № 3. - p. 145 - 151.

201. Cutz E. Neuroendocrine cells of the lung. An overview of morphologic characteristics and development // Exp Lung Res. - 1982. - v. 3. - № 3 - 4. - p. 185 -208.

202. Cutz E., Perrin D.G., Pan J., Haas E.A., Krous H.F. Pulmonary neuroendocrine cells and neuroepithelial bodies in sudden infant death syndrome: potential markers of airway chemoreceptor dysfunction // Pediatr Dev Pathol. - 2007.

- v. 10. - № 2. - p. 106 - 116.

203. Cutz E.,. Yeger H., Pan J. Pulmonary neuroendocrine cell system in pediatric lung disease-recent advances // Pediatr Dev Pathol. - 2007. - v. 10. - № 6. -p. 419 - 435.

204. Davis D.W., Weidner D.A., Holian A., McConkey D.J. Nitric Oxide-Dependent Activation of P53 Suppresses Bleomycin-Induced Apoptosis in the Lung // J Exp Med. - 2000. - v. 192. - № 6. - p. 857 - 870.

205. Dawe H.R., Farr H., Gull K. Centriole/basal body morphogenesis and migration during ciliogenesis in animal cells // J Cell Sci. - 2007. - v. 120. - p. 7 - 15.

206. de Simoni M.G., Terreni L., Chiesa R., Mangiarotti F., Forloni G.L. Inteferon-y potentiates interleukin (IL)-6 and tumor necrosis factor- a but not IL-10

induced by endotoxin in the brain // Endocrinology. - 1997. - v. 138. - № 12. - p. 5220

- 5226.

207. Dekali S., Gamez C., Kortulewski T., Blazy K., Lacroix P. R. Assessment of an in vitro model of pulmonary barrier to study the translocation of nanoparticles // Toxicology Reports. - 2014. - v. 1. - p. 157 - 171.

208. Delclaux C., Delacourt C., D'Ortho M.P., Boyer V., Lafuma C., Harf A. Role of gelatinase B and elastase in human polymorphonuclear neutrophil migration across basement membrane // American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. - 1996. - v. 14. - № 3. - p. 288 - 295.

209. Demedts I.K., Bracke K.R., Maes T., Joos G.F., Brusselle G.G. Different Roles for Human Lung Dendritic Cell Subsets in Pulmonary Immune Defense Mechanisms // American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. - 2006.

- v. 35. - № 3. - p. 387 - 393.

210. Desiderato O., Mac Kinnon J.R., Hisson H. Development of gastric ulcer in rats following stress termination // J. Comp. Physiol. Psychol. - 1974. - v. 87. - № 2. - p. 208 - 214.

211. Detillion C.E., Craft T.K.S., Glasper E.R., Prendergast B.J., DeVries A.C. Social facilitation of wound healing // Psychoneuroendocrinology. - 2004. - v. 29. -№ 8. - p. 1004 - 1011.

212. Devost D., Zingg H. Homo- and hetero-dimeric complex formations of the human oxytocin receptor // J. Neuroendocrinol. - 2004. - v. 16. - № 4. - p. 372 -377.

213. Dolhnikoff M., Mauad T., Ludwig M.S. Extracellular matrix and oscillatory of rat lung parenchyma in bleomycin-induced fibrosis // Am L Respir Crit Care Med. - 1999. - v. 160. - № 5. - p. 1750 - 1757.

214. D'Ortho M.P., Jarreau P.H., Delacourt C., Macquin-Mavier I., Levame M., Pezet S., Harf A., Lafuma C. Matrix metalloproteinase and elastase activities in LPS-induced acute lung injury in guinea pigs // American Journal of Physiology. - 1994. -v. 266. - № 3. - p. 209 - 2163.

215. Dos Santos C.C., Han B., Andrade C.F., Bai X., Uhlig S., Hubmayr R., Tsang M., Lodyga M., Keshavjee S., Slutsky A.S., Liu M. DNA microarray analysis of gene expression in alveolar epithelial cells in response to TNF-alpha, LPS, and cyclic stretch // Physiol Genomics. - 2004. - v. 19. - № 3. - p. 331 - 342.

216. Dubin R.F., Robinson S.K., Widdicombe J.H. Secretion of lactoferrin and lysozyme by cultures of human airway epithelium // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2004. - v. 286. - № 4. - p. 750 - 755.

217. Durga P., Jonnavithula N., Panigrahi M.K., Mantha S. Unilateral neurogenic pulmonary oedema: An unusual cause for post-operative respiratory dysfunction following clipping of ruptured intracranial aneurysm // Indian J Anaesth. - 2012. - v. 56. - № 1. - p. 56 - 58.

218. Durrbach A., Louvard D., Coudrier E. Actin filaments facilitate two steps of endocytosis // J Cell Sci. - 1996. - v. 109. - № 2. - p. 457 - 465.

219. Dusunceli F., Iseri S.O., Ercan F., Gedik N., Yegen C., Yegen B.C. Oxytocin alleviates hepatic ischemia-reperfusion injury in rats // Peptides. - 2008. - v. 29. - № 7. - p. 1216 - 1222.

220. Eberhardt W., Huwiler A., Beck K.F., Walpen S., Pfeilschifter J. Amplification of IL-1 beta-induced matrix metalloproteinase-9 expression by superoxide in rat glomerular mesangial cells is mediated by increased activities of NF-kappa Band activating protein-1 and involves activation of the mitogen-activated protein kinase pathways // J Immunol. - 2000. - v. 165. - № 10. - p. 5788 - 5797.

221. Edde L., Hipolito R.B., Hwang F.F., Headon D.R., Shalwitz R.A., Sherman M.P. Lactoferrin protects neonatal rats from gut-related systemic infection // Am. J. Physiol. - 2001. - v. 281. - № 5. - p. 1140 - 1150.

222. Ekins A., Khan A.G., Shouldice S.R., Schryvers A.B. Lactoferrin receptors in Gram-negative bacteria: insights into the iron acquisition process // BioMetals. - 2004. - v. 17. - № 3. - p. 235 - 243.

223. Elizur A., Adair-Kirk T.L., Kelley D.G., Griffin G.L., deMello D.E., Senior R.M. Clara cells impact the pulmonary innate immune response to LPS // Am J Physiol Lung Physiol. - 2007. v. - 293. - p. 383 - 392.

224. Elkington P.T., O'Kane C.M., Friedland J.S. The paradox of matrix metalloproteinases in infectious disease // Clin Exp Immunol. - 2005. - v. 142. - № 1. - p. 12 - 20.

225. Engelmann M., Landgraf R., Wotjak C.T. The hypothalamic-neurohypophysial system regulates the hypothalamic-pituitary-adrenal axis under stress: an old concept revisited // Front Neuroendocrinol. - 2004. - v. 25. - № 3-4. -p. 132 - 149.

226. Erickson M.A., Banks W.A. Cytokine and chemokine responses in serum and brain after single and repeated injections of lipopolysaccharide: multiplex quantification with path analysis // Brain, Behavior, and Immunity. - 2011. - v. 25. -№ 8. - p. 1637 - 1648.

227. Eutamene H., Theodorou V., Schmidlin F., Tondereau V., Garcia-Villar R., Salvador-Cartier C., Chovet M., Bertrand C., Bueno L. LPS-induced lung inflammation is linked to increased epithelial permeability: role of MLCK // Eur Respir J. - 2005. - v. 25. - v. 5. - p. 789 - 796.

228. Evans M.J., Van Winkle L.S., Fanucchi M.V., Plopper C.G. Cellular and molecular characteristics of basal cells in airway epithelium // Exp Lung Res. - 2001. - v. 27. - № 5. - p. 401 - 415.

229. Evans S.F., Evans R.W. Lactoferrin—a multifunctional protein with antimicrobial properties // Molecular Immunology. - 2003. - v. 40. - № 7. - p. 395 -405.

230. Fabbri A., Falzano L., Travaglione S., Stringaro A., Malorni W., Fais S., Fiorentini C. Rho-activating Escherichia coli cytotoxic necrotizing factor 1: Macropinocytosis of apoptotic bodies in human epithelial cells // Int. J. Med. Microbiol. - 2002. - v. 29. - № 6-7. - p. 551 - 554.

231. Fahy J.V., Dickey B.F. Airway mucus function and dysfunction // N Engl J Med. - 2010. - v. 363. - № 23. - p. 2233 - 2247.

232. Farnaud S., Spiller C., Moriarty L.C., Patel A., Gant V., Odell E.W., Evans R. W. Interactions of lactoferricin-derived peptides with LPS and antimicrobial activity // FEMS Microbiology Letters. - 2004. - v. 233. - № 2. - p. 193 - 199.

233. Fay M.J., Du J., Yu X., North W.G. Evidence for expression of vasopressin V2receptor mRNA in human lung // Peptides. - 1996. - v. 17. - № 3. - p. 477 - 481.

234. Fehrenbach H. Alveolar epithelial type II cell: defender of the alveolus revisited // Respir Res. - 2001. - v. 2. - № 1. - p. 33 - 46.

235. Ferry G., Lonchampt M., Pennel L., De Nanteuil G., Canet E. Tucker G.C. Activation of MMP-9 by neutrophil elastase in an in vivo model of acute lung injury // FEBS Letters. - 1997. - v. 402. - № 2. - p. 111 - 115.

236. Fields R.L., Ponzio T.A., Kawasaki M., Gainer H. Cell-Type Specific Oxytocin Gene Expression from AAV Delivered Promoter Deletion Constructs into the Rat Supraoptic Nucleus in vivo // PLoS ONE. - 2012. - v. 7. - № 2. - p. 1 - 12.

237. Fiorentini C., Falzano L., Fabbri A., Stringaro A., Logozzi M., Travaglione S., Contamin S., Arancia G., Malorni W., Fais S. Activation of rho GTPases by cytotoxic necrotizing factor 1 induces macropinocytosis and scavenging activity in epithelial cells // Mol. Biol. Cell. - 2001. - v. 12. - № 7. - p. 2061 - 2073.

238. Fisch C., Dupuis-Williams P. Ultrastructure of cilia and flagella - back to the future! // Biol Cell. - 2011. - v. 103. - № 6. - p. 249 - 270.

239. Flament-Durand J. The hypothalamus: anatomy and functions // Acta Psychiatr Belg. - 1980. - v. 80. - № 4. - p. 364 - 375.

240. Flores-Villasenor H., Canizalez-Roman A., Reyes-Lopez M., Nazmi K., de la Garza M., Zazueta-Beltran J., Leon-Sicairos N., Bolscher J.G. Bactericidal effect of bovine lactoferrin, LFcin, LFampin and LFchimera on antibiotic-resistant Staphylococcus aureus and Escherichia coli // Biometals. - 2010. - v. 23. - № 3. - p. 569 - 578.

241. Frank J.A. Claudins and alveolar epithelial barrier function in the lung // Ann N Y Acad Sci. - 2012. - 9 p. - 1257:175-83. doi: 10.1111/j.1749-6632.2012.06533.x.

242. Frisch S.M., Francis H. Disruption of epithelial cell-matrix interactions induces apoptosis // J Cell Biol. - 1994. - v. 124. - № 4. - p. 619 - 626.

243. Fujiwara Y., Hiroyama M., Sanbe A., Yamauchi J, Tsujimoto G, Tanoue A. Mutual regulation of vasopressin- and oxytocin-induced glucagon secretion in V1b vasopressin receptor knockout mice // J.Endocrinol. - 2007. - v. 192. - № 2. - p. 361

- 369.

244. Fukuda Y., Ishizaki M., Kudoh S., Kitaichi M., Yamanaka N. Localization of matrix metalloproteinases-1, -2, and -9 and tissue inhibitor of metalloproteinase-2 in interstitial lung diseases // Lab Invest. - 1998. - v. 78. - p. 687 - 698.

245. Gado I., Erdei J., Laszlo V. G., Paszti J., Czirok E., Kontrohr T., Toth I., Forsgren A., Naidu A.S. Correlation between human lactoferrin binding and colicin susceptibility in Escherichia coli. Antimicrob // Agents Chemother. - 1991. - v. 35. -№ 12. - p. 2538 - 2543.

246. Gadek-Michalska A., Spyrka J., Rachwalska P., Tadeusz J., Bugajski J. Influence of chronic stress on brain corticosteroid receptors and HPA axis activity // Pharmacol Rep. - 2013. - v. 65. - № 5. - p. 1163 - 1175.

247. Gainer H. Cell-type specific expression of oxytocin and vasopressin genes: an experimental odyssey // J Neuroendocrinol. - 2012. - v. 24. - № 4. - p. 528

- 538.

248. Georas S.N., Rezaee F. Epithelial barrier function: At the front line of asthma immunology and allergic airway inflammation // J. Allergy Clin. Immunol. -2014. - v. 134. - № 3. - p. 520 - 529.

249. Goncharova N. D. Stress Responsiveness of the Hypothalamic-Pituitary-Adrenal Axis: Age-Related Features of the Vasopressinergic Regulation //

Front Endocrinol (Lausanne). - 2013 - v. 4. - 15 p. - doi: 0.3389/fendo.2013.00026.

250. Grainge C.L., Davies D.E. Epithelial injury and repair in airways diseases // Chest. - 2013. - v. 144. - № 6. - p. 1906 - 1944.

251. Guilliams M., De Kleer I., Henri S., Post S., Vanhoutte L., De Prijck S., Deswarte K., Malissen B., Hammad H., Lambrecht B.N. Alveolar macrophages develop from fetal monocytes that differentiate into long-lived cells in the first week of life via GM-CSF // J Exp Med. - 2013. - v. 210. - № 10. - p. 1977 - 1992.

252. Galan J.E., Bliska J.B. Cross-talk between bacterial pathogens and their host cells // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. - 1996. - № 12. - p. 221 - 255.

253. Garcia-Verdugo I., Ravasio A., Garcia de Paco E., Synguelakis M., Ivanova N., Kanellopoulos J., Haller T. Long-term exposure to LPS enhances the rate of stimulated exocytosis and surfactant secretion in alveolar type II cells and upregulates P2Y2 receptor expression // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2008. - v. 295. - № 4. - p. 708 - 717.

254. Gao Z, Su X. CFTR regulates acute inflammatory responses in macrophages // QJM. - 2015. - doi: http://dx.doi.org/10.1093/qjmed/hcv067.

255. Garg P., Ravi A., Patel N.R., Roman J., Gewirtz A.T., Merlin D., Sitaraman S.V. Matrix metalloproteinase-9 regulates MUC-2 expression through its effect on goblet cell differentiation // Gastroenterology. - 2007. - v. 132. - № 5. - p. 1877 - 1889.

256. Gavrilov Y.V., Perekrest S.V., Novikova N.S. Intracellular expression of c-Fos protein in various structures of the hypothalamus in electrical pain stimulation an administration of antigens // Neurosci Behav Physiol. - 2008. - v. 38. - № 1. - p. 87 - 92.

257. Gibbs D.M. Stress-specific modulation of ACTH secretion by oxytocin // Neuroendocrinology. - 1986. - v. 42. - № 6. - p. 456 - 458.

258. Gimpl G., Fahrenholz F. The oxytocin receptor system: structure, function, and regulation // Physiol Rev. - 2001. - v. 81. - № 2. - p. 629 - 683.

259. Glotfelty L.G., Gail A.H. Enteropathogenic E. coli effectors EspG1/G2 disrupt tight junctions: new roles and mechanisms // Ann N Y Acad Sci. - 2012. - v. 1258. - № 1. - p. 149 - 158.

260. Goehler L.E., Gaykema R.P.A., Hansen M.K., Anderson K., Maier S.F., Watkins L.R. Vagal immune-to-brain communication: a visceral chemosensory pathway // AUTON NEURO. - 2000. - v. 85. - № 1-3. - p. 49 - 59.

261. Goenaga M.A., María Morán J., Carrera J.A., Garde C., Millet M. Bacteremia due to Providencia rettgeri // Enferm Infecc Microbiol Clin. - 2001. - v. 19. - № 6. - p. 282 - 283.

262. Gomi T., Kimura A., Kikuchi K., Tsuchiya H., Sasa S., Kishi K. Electron-microscopic observations of the alveolar brush cell of the rat // Acta Anat (Basel). -1991. - v. 141. - № 4. - p. 294 - 301.

263. Gonzalez R.F., Allen L., Dobbs L.G. Rat alveolar type I cells proliferate, express OCT-4, and exhibit phenotypic plasticity in vitro // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2009. - v. 297. - № 6. - p. 1045 - 1055.

264. Gonzalez S., von Bassewitz D.B., Grundmann E., Nakhosteen J.A., Müller K.M. Atypical cilia in hyperplastic, metaplastic, and dysplastic human bronchial mucosa // Ultrastruct Pathol. - 1985. - v. 8. - № 4. - p. 345 - 356.

265. Gordon S.B., Read R.C. Macrophage defences against respiratory tract infections. The immunology of childhood respiratory infections // Br Med Bull. - 2002. - v. 61. - № 1. - p. 45 - 61.

266. Gosney J.R., Williams I.J., Dodson A.R., Foster C.S. Morphology and antigen expression profile of pulmonary neuroendocrine cells in reactive proliferations and diffuse idiopathic pulmonary neuroendocrine cell hyperplasia (DIPNECH) // Histopathology. - 2011. - v. 59. - № 4. - p. 751 - 762.

267. Grassmen H., Kirschnek S., Riethmuller J., Riehle A., von Kurthy G., Lang F., Weller M., Gulbins E. CD95/CD95 ligand interactions on epithelial cells in host defense to Pseudomonas aeruginosa // Science. - 2000. - v. 290. - № 5491. - p. 527 - 530.

268. Gray-Owen S.D., Schryvers A.B. Bacterial transferrin and lactoferrin receptors // Trends Microbiol. - 1996. - v. 4. - № 5. - p. 185 - 191.

269. Grinevich V., Ma X.M., Herman J.P., Jezova D., Akmayev I., Aguilera G. Effect of repeated lipopolysaccharide administration on tissue cytokine expression and hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity in rats // J Neuroendocrinol. - 2001. - v. 13. - № 8. - p. 711 - 723.

270. Gu X., Karp P.H., Brody S.L., Pierce R.A., Welsh M.J., Holtzman M.J., Ben-Shahar Y. Chemosensory functions for pulmonary neuroendocrine cells // Am J Respir Cell Mol Biol. - 2014. - v. 50. - № 3. - p. 637 - 646.

271. Guillot L., Nathan N., Tabary O., Thouvenin G., Le Rouzic P., Corvol H., Amselem S., Clement A. Alveolar epithelial cells: master regulators of lung homeostasis // Int J Biochem Cell Biol. - 2013. - v. 45. - № 11. - p. 2568 - 2573.

272. Guth A.M., Janssen W.J., Bosio C.M., Crouch E.C., Henson P.M., Dow S.W. Lung environment determines unique phenotype of alveolar macrophages // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2009. - v. 296. - № 6. - p. 936 - 946.

273. Hackett N.R., Shaykhiev R., Walters M.S., Wang R., Zwick R.K., Ferris B., Witover B., Salit J., Crystal R.G. The human airway epithelial basal cell transcriptome // PLoS One. - 2011. - v. 6. - № 5. - 22 p. - doi: 10.1371/journal.pone.0018378.

274. Hagiwara H, Ohwada N, Takata K. Cell biology of normal and abnormal ciliogenesis in the ciliated epithelium // Int Rev Cytol. - 2004. - v. 234. - p. 101 - 141.

275. Haglund C.M., Welch M.D. Pathogens and polymers: Microbe-host interactions illuminate the cytoskeleton // JCB. - 2011. - v.195. - №. 1. - p. 7 - 17.

276. Haies D.M., Gil J., Weibel E.R. Morphometric study of rat lung cells. I. Numerical and dimensional characteristics of parenchymal cell population // Am Rev Respir Dis. - 1981. - v. 123. - № 5. - p. 533 - 541.

277. Hai-long W., Min P., Zhang Z. The changes of Clara cell ultramicrostructure and CC16 in rat COPD model // Journal of Shanxi Medical University. - 2007. - v. 38. - № 2. - p. 110 - 113.

278. Hammad H., Lambrecht B.N. Dendritic cells and epithelial cells: linking innate and adaptive immunity in asthma // Nat. Rev. Immunol. - 2008. - v. 8. - № 3.

- p. 193 - 204.

279. Han B., Mura M., Andrade C.F., Okutani D., Lodyga M., dos Santos C.C., Keshavjee S., Matthay M., Liu M. TNFalpha-induced long pentraxin PTX3 expression in human lung epithelial cells via JNK // J Immunol. - 2005. - v. 175. - № 12. - p. 8303 - 8311.

280. Harding A.J., Halliday G.M., Oliver J. Comraison of the number of vasopressin-producting hypothalamic neurons in rats and humans // Neuroendocrinol.

- 1995. - v. 7. - № 8. - p. 629 - 636.

281. Harrod K.S., Jaramillo R.J. Pseudomonas aeruginosa and tumor necrosis factor-a attenuate Clara cell secretory protein promoter function // Am J Respir Cell Mol Biol. - 2002. - v. 26. - № 2. - p. 216 - 223.

282. Hartshorn K.L. Role of surfactant protein A and D (SP-A and SP-D) in human antiviral host defense // Front. Biosci. 2010. - v. 2. - p. 527 - 546.

283. Hashimoto K., Ohno N., Murakami.K., Kageyama J., Aoki Y., Takahara J. The effect of serotonin agonist 1 -(trifluoromethylphenyl)-piperazine on corticotropin releasing factor and arginine vasopressin in rat hypothalamic nuclei // Endocrinol Jpn.

- 1982. - v. 29. - № 3. - p. 383 - 338.

284. Hattrup C.L., Gendler S.J. Structure and function of the cell surface (tethered) mucins // Annu Rev Physiol. - 2008. - v. 70. - p. 431 - 457.

285. Hawthorn J., Angvinrent T., Jenkins J. S. Comprison of the distribution of oxytocin and vasopressin in the rat brain / // Brain Res. - 1984. - v. 307. - № 1 - 2. -p. 289 - 294.

286. Hayashida S., Harrod K.S., Whitsett J.A. Regulation and function of CCSP during pulmonary Pseudomonas aeruginosa infection in vivo // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2000. - v. 279. - № 3. - p. 452 - 459.

287. He X., Han B., Liu M. Long pentraxin 3 in pulmonary infection and acute lung injury // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 2007. - v. 292. - № 5. - p. 1039

- 1049.

288. Henics T., Wheatley D.N. Vacuolar cytoplasmic phase separation in cultured mammalian cells involves the microfilament network and reduces motional properties of intracellular water // inf J Exp PafhoZ. - 1997. - v. 78. - № 5. - p. 343 -354.

289. Henicsa T., Wheatley D.N. Cytoplasmic vacuolation, adaptation and cell death: A view on new perspectives and features // Biology of the Cell. - 1999. - v. 91.

- № 7. - p. 485 - 498.

290. Herget U., Ryu S. Coexpression analysis of nine neuropeptides in the neurosecretory preoptic area of larval zebrafish // Front Neuroanat. 2015 Feb 12;9:2. doi: 10.3389/fnana.2015.00002.

291. Herman A.P., Misztal T., Herman A., Tomaszewska-Zaremba D. Expression of Interleukin (IL)-1p and IL-1 receptors genes in the hypothalamus of anoestrous ewes after lipopolysaccharide treatment // Reproduction in Domestic Animals. - 2010. - v. 45. - № 6. - p. 426 - 433.

292. Herman J.P., Flak J., Jankord R. Chronic stress plasticity in the hypothalamic paraventricular nucleus // Prog Brain Res. - 2008. - v. 170. - p. 353 -364.

293. Hermans C., Knoops B., Wiedig M., Arsalane K., Toubeau G., Falmagne P., Bernard A. Clara cell protein as a marker of Clara cell damage and bronchoalveolar blood barrier permeability // Eur Respir J. - 1999. - v. 13. - № 5. - p. 1014 - 1021.

294. Hernandez V.S., Vazquez-Juarez E., Marquez M.M., Jauregui-Huerta F., Barrio R.A., L. Zhang. Extra-neurohypophyseal axonal projections from individual vasopressin-containing magnocellular neurons in rat hypothalamus // Front. Neuroanat. - 2015. - v. 9. - http://dx.doi.org/10.3389/fnana.2015.00130.

295. Hiemstra P.S. Altered macrophage function in chronic obstructive pulmonary disease // Ann Am Thorac Soc. - 2013. - v. 10. - p. 180 - 185.

296. Hiemstra P.S. The role of epithelial beta-defensins and cathelicidins in host defense of the lung // Exp Lung Res. - 2007. - v. 33. - № 10. - p. 537 - 542.

297. Higuchi T., Honda K., Negoro H. Influence of oestrogen and noradrenergic afferent neurones on the response of LH and oxytocin to immobilization stress // J Endocrinol. - 1986. - v. 110. - p. 245 - 250.

298. Hippenstiel S., Opitz B., Schmeck B., Suttorp N. Lung epithelium as a sentinel and effector system in pneumonia-molecular mechanisms of pathogen recognition and signal transduction // Respir. Res. - 2006. - v. 7. - 17 p. - doi: 10.1186/1465-9921-7-97.

299. Hiraiwa K., van Eeden S.F. Contribution of Lung Macrophages to the Inflammatory Responses Induced by Exposure to Air Pollutants // Mediators of Inflammation. - 2013. -10 p. - http://dx.doi.org/10.1155/2013/619523.

300. Hofman M.A., Goudsmit E., Purba J.S. Morphometric analysis of the supraoptic nucleus in the human brain // J Anat. - 1990. - v. 172. - № . - p. 259 -270.

301. Hokama S., Toma C., Iwanaga M., Morozumi M., Sugaya K., Ogawa Y. Oxalate-degrading Providencia rettgeri isolated from human stools // Int J Urol. - 2005. - v. 12. - № 6. - p. 533 - 538.

302. Hollingsworth J.W., Chen B.J., Brass D.M., Berman K., Gunn M.D., Cook D.N., Schwartz D.A. The critical role of hematopoietic cells in lipopolysaccharide-induced airway inflammation // Am. J. Respir. Crit Care Med. -2005. - v. 171. - № 8. - p. 806 - 813.

303. Hotchkiss R.S., Dunne W.M., Swanson P.E., Davis Christopher C.G., Tinsley K.W., Chang K.C., Buchman T.G., Karl I.E. Role of apoptosis in Pseudomonas aeruginosa pneumonia // Science. - 2001. - v. 294. - № 5548. - p. 1783a - 1783b.

304. Hsia C.C., Schmitz A., Lambertz M., Perry S.F., Maina J.N. Evolution of air breathing: oxygen homeostasis and the transitions from water to land and sky // Compr Physiol. - 2013. - v. 3. - № 2. - p. 849 - 915.

305. Hueston C.M., Deak T. The inflamed axis: the interaction between stress, hormones, and the expression of inflammatory-related genes within key structures

comprising the hypothalamic-pituitary-adrenal axis // Physiol Behav. - 2014. - v. 124.

- p. 77 - 91.

306. Hybertson B.M., Lee Y.M., Cho H.G., Cho O.J., Repine J.E. Alveolar type II cell abnormalities and peroxide formation in lungs of rats given IL-1 intratracheally // Inflammation. - 2000. - v. 24. - № 4. - p. 289 - 303.

307. Ikegami M., Scoville E. A., Grant S., Korfhagen T., Brondyk W., Scheule R. K., Whitsett J. A. Surfactant protein-D and surfactant inhibit endotoxin-induced pulmonary inflammation // Chest. - 2007. - v. 132. - № 5. - p. 1447 - 1454.

308. Insel T.R. The Challenge of Translation in Social Neuroscience: A Review of Oxytocin, Vasopressin, and Affiliative Behavior // Neuron. - 2010. - v. 65.

- № 6. - p. 768 - 779.

309. Iseri S.O., Gedik I.E., Erzik C., Uslu B., Arbak S., Gedik N., Yegen B.C. Oxytocin ameliorates skin damage and oxidant gastric injury in rats with thermal trauma // Burns. - 2008. - v. 34. - № 3. - p. 361 - 369.

310. Iseri S.O., Sener G., Saglam B., Gedik N., Ercan F., Yegan B.C. Oxytocin ameliorates oxidative colonic inflammation by neutrophil-dependent mechanism // Peptide. - 2005. - v. 26. - № 3. - p. 483 - 491.

311. Iseri S.O., Sener G., Saglam B., Gedik N., Ercan F., Yegen B.C. Oxytocin protects against sepsis-induced multiple organ damage: role of neutrophils // J Surg Res. - 2005. - v. 126. - № 1. - p. 73 - 81.

312. Ivanov A.I., Parkos C.A., Nusrat A. Cytoskeletal Regulation of Epithelial Barrier Function During Inflammation // Am J Pathol. - 2010. - v. 177. - № 2. - p. 512 - 524.

313. Ixart G., Alonso G., Szatarczyk A., Malaval F., Nougier- Soule J., Assenmacher I. Adrenocorticotropic regu-lations after bilateral lesions of the paraventricular or supraoptic nuclei and in Brattleboro rats // Neuroendocrinology. -1982. - v. 35. - p. 270 - 276.

314. Jahani S., Shakiba A., Jahani L. The Antimicrobial Effect of Lactoferrin on Gram-Negative and Gram-Positive Bacteria // Int J Infect. - 2015. - v. 2. - № 3. -

p. 1 - 4.

315. Jambo K. C., Banda D. H., Kankwatira A. M., Sukumar N., Allain T. J., Heyderman R. S., Russell D. G., Mwandumba H C. Small alveolar macrophages are infected preferentially by HIV and exhibit impaired phagocytic function // Mucosal Immunol. - 2014. - v. 7. - № 5. - p. 1116 - 1126.

316. Jankord R., Zhang R., Flak J. N., Solomon M. B., Albertz J., Herman J. P. Stress activation of IL-6 neurons in the hypothalamus // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. - 2010. - v. 299. - № 1. - p. 343 - 351.

317. Jankowski M., Bissonauth V., Gao L., Gangal M., Wang D., Danalache B., et al. Anti-inflammatory effect of oxytocin in rat myocardial infarction // Basic Res Cardiol. - 2010. - v. 105. - № 2. - p. 205 - 218.

318. Jankowski M., Wang D., Hajjar F., Mukaddam-Daher S., McCann S. M., Gutkowska J. Oxytocin and its receptors are synthesized in the rat vasculature // Proc Natl Acad Sci USA.- 2000. - v. 97. - № 11. - p. 6207 - 6211..

319. Jankowski M., Wang D., Hajjar F., Mukaddam-Daher S., McCann S.M., Gutkowska J. Oxytocin and its receptors are synthesized in the rat vasculature // Proc Natl Acad Sci U S A. - 2000. - v. 97. - № 11. - p. 6207 - 6211.

320. Jeng Y.J., Soloff M.S. Characterization of the cyclic adenosine monophosphate target site in the oxytocin receptor gene in rabbit amnion // Biol Reprod. - 2009. - v. 81. - № 3. - p. 473 - 479.

321. Jenssen H., Hancock R.E.W. Antimicrobial properties of lactoferrin // Biochimie. - 2009. - v. 91. - № 1. - p. 19 - 29.

322. Ji Y.K., Hyun C.C., Cheolmin A., Sang-Ho C. Early and Late Changes of MMP-2 and MMP-9 in Bleomycin-Induced Pulmonary Fibrosis // Yonsei Med J. -2009. - v. 50. - № 1. - p. 68 - 77.

323. Ji-ping L., Chun-hua C., Hai-chao L., Xiu-ying T. Effects of N-acetylcysteine on Clara cells in rats with cigarette smoke exposure // Chinese Medical Journal. - 2010. - v. 123. - № 4. - p. 412 - 417.

324. Jiwang Chen, Zhongming Chen, Narendranath Reddy Chintagari, Manoj Bhaskaran, Nili Jin, Telugu Narasaraju and Lin Liu. Alveolar type I cells protect rat lung epithelium from oxidative injury / J Physiol. - 2006. - v. 572. - № 3. - p. 625 -638.

325. Johnson D.E., Georgieff M.K. Pulmonary Neuroendocrine Cells: Their Secretory Products and Their Potential Roles in Health and Chronic Lung Disease in Infancy // American Review of Respiratory Disease. - 1989. - v. 140. - № 6. - p. 1807 - 1812.

326. Johnson N., Krebs M., Boudreau R., Giorgi G., LeGros M., Larabell C. Actin-filled nuclear invaginations indicate degree of cell de-differentiation // Differentiation. - 2003. - v. 71. - № 7. - p. 414 - 424.

327. Jonathan S., Grayson T.H., Grayson M.H. Dendritic Cells, Viruses, and the Development of Atopic Disease // J Allergy (Cairo). - 2012. - doi: 10.1155/2012/936870.

328. Jung H.C., Eckmann L., Yang S.K., Panja A., Fierer J., Morzycka-Wroblewska E., Kagnoff M.F. A distinct array of proinflammatory cytokines is expressed in human colon epithelial cells in response to bacterial invasion // J Clin Invest. - 1995. - v. 95. - № 1. - p. 55 - 65.

329. Junttila E., Ala-Kokko T., Ohtonen P., Vaarala A., Karttunen A., Vuolteenaho O., Salo T., Sutinen M., Karhu T., Herzig K.H., Koskenkari J. Junttila E, Ala-Kokko T, Ohtonen P, et al. Neurogenic pulmonary edema in patients with nontraumatic intracerebral hemorrhage: predictors and association with outcome // Anesth Analg. - 2013. - v. 116. - № 4. - p. 855 - 861.

330. Kakizaki Y., Watanobe H., Kohsaka A., Suda T. Temporal profiles of interleukin-1p, interleukin-6, and tumor necrosis factor-a in the plasma and hypothalamic paraventricular nucleus after intravenous or intraperitoneal administration of lipopolysaccharide in the rat: estimation by push-pull perfusion // Endocrine Journal. - 1999. - v. 46. - № 4. - p. 487 - 496.

331. Kannan S., Huang H., Seeger D., Audet A., Chen Y., Huang C., Gao H., Li S., Wu M. Alveolar epithelial type II cells activate alveolar macrophages and mitigate P. aeruginosa infection // PLoS ONE. - 2009. - v. 4. - № 3. - p. 4891.

332. Kariagina A., Romanenko D., Ren S. G., Chesnokova V. Hypothalamic-pituitary cytokine network // Endocrinology. - 2004. - v. 145. - № 1. - p. 104 - 112.

333. Kasper M., Hofer D., Woodcock-Mitchell J., Migheli A., Attanasio A., Rudolph T., Muller M., Drenckhahn D. Colocalization of cytokeratin 18 and villain in type III alveolar cells (brush cells) of the rat lung // Histochemistry. - 1994. - v. 101. - p. 57-62.

334. Kato A., Schleimer R.P. Beyond inflammation: airway epithelial cells are at the interface of innate and adaptive immunity // Curr Opin Immunol. - 2007. - v. 19. - № 6. - p. 711 - 720.

335. Kauffman S. L. Cell proliferation in the mammalian lung // Int Rev Exp Pathol. - 1980. - v. 22. - p. 131 - 191.

336. Kazuhide T., Hidetoshi S., Sumimoto K., Tetsuo O. Protein synthesis— dependent cytoplasmic translocation of p53 protein after serum stimulation of growth-arrested MCF-7 cells //Molecular Carcinogenesis. - 1993 - v.8. - № 1. - p. 58 - 66.

337. Kennedy C.L., Smith D.J., Lyras D., Chakravorty A., Rood J.I. Programmed cellular necrosis mediated by the pore-forming alpha-toxin from Clostridium septicum // PLoS Pathog. - 2009. - v. 5. - № 7. - 11 p. - doi: 10.1371/journal.ppat.1000516.

338. Kim B.Y., Kang J., Kim K.S. Invasion processes of pathogenic Escherichia coli // Int J Med Microbiol. - 2005. - v. 295. - № 6-7. - p. 463 - 470.

339. Kim M., Ashida H., Ogawa M., Yoshikawa Y., Mimuro H., Sasakawa C. Bacterial interactions with the host epithelium // Cell Host Microbe. - 2010. - v. 8. -№ 1. - p. 20 - 35.

340. Kimura A., Gomi T.G., Kikuchi Y., Kishi K.K. Morphplogical studies on ontogeny of the rat lung //Zool. Sci. - vol. 8. - № 6. - p. 1155.

341. Kimura T., Saji F., Nishimori K., Ogita K., Nakamura H., Koyama M., Murata Y. Molecular regulation of the oxytocin receptor in peripheral organs // Journal of Molecular Endocrinology. - 2003. - v. 30. - № 2. - p. 109 - 115.

342. Knight D.A., Holgate S.T. The airway epithelium: Structural and functional properties in health and disease // Respirology. - 2003. - v. 8. - № 4. - p. 432 - 446.

343. Kobayashi D., Takeda H. Ciliary motility: the components and cytoplasmic preassembly mechanisms of the axonemal dyneins // Differentiation. -2012. - v. 83. - № 2. - p. 23 - 29.

344. Koreishi A.F., Schechter B.A., Karp C.L. Ocular infections caused by Providencia rettgeri // Ophthalmology. - 2006. - v. 113. - № 8. - p. 1463 - 1466.

345. Kovacheva S., Ribarov S. R. Lipid peroxidation in lung of rat stressed by immobilization: effects of vitamin E supplementation // Lung. - 1995. - v. 173. - № 4. - p. 255 - 263.