Развитие партенит трематод тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.08, доктор биологических наук Атаев, Геннадий Леонидович

• Атаев, Геннадий Леонидович
• доктор биологических наук
• 2000

Оглавление диссертации доктор биологических наук Атаев, Геннадий Леонидович

основные разделы)

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Современные трактовки жизненного цикла трематод

I. 2. Защитные реакции моллюсков на поселение партенит

I. 2.1. Основные барьеры на пути инвазии моллюсков 21 I. 2. 2. Проявление резистентных свойств по отношению к трематодам

I. 2. 3. Неспецифический клеточный иммунитет моллюсков

ГЛАВА II. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

II. 1. Объекты исследования 31 П. 2. Методы

П. 2.1. Сбор материала в природе

II. 2. 2. Вскрытие моллюсков 35 II. 2. 3. Постановка жизненных циклов в лабораторных условиях 36 П. 2. 4. Содержание моллюсков 37 П. 2. 5. Методы изучения морфологии личинок и партенит 38 II. 2. 6. Изучение биологии личинок трематод 40 II. 2.7. Культивирование партенит in vitro 41 II. 2. 8. Трансплантация партенит 42 II. 2. 9. Анализ гемолимфы моллюсков 43 II. 2.10. Обработка цифровых данных

II. 2.11. Программное обеспечение 44 Условные сокращения

Глава 1П. РЕЗУЛЬТАТЫ

III. 1. Развитие микрогемипопуляции Philophthalmus rhionica

III. 1.1. Биология мирацидиев Philophthalmus rhionica 46 III. 1. 2. Развитие партенит Philophthalmus rhionica 54 III. 1.3. Факторы, регулирующие развитие партенит Philophthalmus rhionica

III. 1. 4. Эмиссия церкарий Philophthalmus rhionica

III. 2. Развитие партенит Echinostoma caproni

III. 2.1. Мирацидии Echinostoma caproni

III. 2. 2. Трансформация мирацидия в материнскую спороцисту

III. 2. 3. Материнские спороцисты Echinostoma caproni

III. 2. 4. Материнские редии Echinostoma caproni

П1.2.5. Дочерние редии Echinostoma caproni

III. 2. 6. Количественный состав МГП Echinostoma caproni 132 III. 2. 7. Воздействие метацеркарий Echinostoma caproni на развитие партенит

III. 3. Развитие материнских спороцист Echinostoma paraensei

III. 4. Развитие партенит в Biomphalaria glabrata резистентной линии 154 П1. 4.1. Реакция Biomphalaria glabrata резистентной линии на партенит Echinostoma caproni 154 III. 4. 2. Реакция Biomphalaria glabrata резистентной линии на партенит Schistosoma mansoni

III. 5. Развитие партенит in vitro 171 П1. 5.1. Культивирование материнских спороцист Echinostoma caproni 171 III. 5. 2. Культивирование материнских спороцист Schistosoma japonicum 180 III. 5. 3. Поведение в условиях in vitro партенит различных генераций

III. 6. Сезонная динамика трематодной инвазии моллюсков Bithynia teniae ulata

III. 6.1. Общая характеристика проведения исследования

П1. 6. 2. Общая экстенсивность заражения битиний

III. 6. 3. Состав паразитофауны 199 Ш. 6.4. Динамика эмиссии церкарий

Глава IV. ОБСУЖДЕНИЕ

IV. 1. . Формирование микрогемипопуляций партенит

IV. 1.1. Развитие партенит 212 IV. 1. 2. Механизм размножения партенит 226 IV. 1. 3. Типы развития микрогемипопуляций

IV. 1. 4. Основы устойчивости микрогемипопуляции партенит

IV. 2. Факторы, регулирующие развитие партенит

IV. 2.1. Биотические факторы

IV. 2. 2. Абиотические факторы

IV. 3. Анализ природы партенит

IV. 3.1. Природа генеративных клеток

IV. 3. 2. Ранние этапы становление жизненного цикла трематод

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Развитие партенит трематод»

Уже более столетия трематоды являются одними из наиболее интенсивно изучаемых беспозвоночных. Интерес к этой группе обусловлен не только экономической значимостью многих ее представителей, являющихся опасными паразитами человека и животных, но и своеобразием жизненного цикла, присущего дигенеям. Уникальность последнего заключается и в смене хозяев, и в чередовании поколений, и в неимеющем аналога феномене наличия двух фаз развития паразита (мариты/партениты), на одной из которых (партениты) осуществляется эндогенная агломерация.

Исторически так сложилось, что в изучении трематод изначально господствовало направление, позднее получившее название "маритоцентризм". Усилия исследователей были направлены, в первую очередь, на изучение систематики, морфологии и биологии особей гермафродитного поколения (от церкарий до марит). Обусловлено это было тем, что именно паразитирование марит и их личинок приводит к различным заболеваниям позвоночных животных. Соответственно, исследование гермафродитного поколения представлялось наиболее эффективным направлением для выработки мероприятий, служащих оздоровлению гельминтологической ситуации.

Однако в ходе их проведения было установлено, что без детального анализа биологии и развития всего жизненного цикла невозможно осуществлять контроль за распространением опасных заболеваний, так как "только изучив весь жизненный цикл, можно планомерно бороться с конкретными трематодозами" (Гинецинская, 1968). Более того, выяснилось, что паразиты наиболее уязвимы как раз на фазе партенит и расселительных стадиях (Кеннеди, 1978; Шигин, 1981; Бауэр, 1982 и др.). К сожалению, доводы в пользу комплексного подхода к изучению трематод не принимаются во внимание даже многими современными паразитологами, а в прошлом веке они были просто неизвестны.

В то же время еще в начале уходящего столетия вопросы о природе жизненного цикла трематод, их эволюции и филогенетических связях с другими плоскими червями были подняты в трудах Д. Ф. Синицына (1905, 1910, 1911). Но такой подход, как уже говорилось выше, не получил тогда распространения - основные усилия исследователей были направлены на изучение систематики, фауны, морфологии марит. Позднее в центре внимания ученых оказались также церкарии. Только начиная с 40-х годов, после работ Корта (\¥. Сой), начинается планомерное изучение партенит и их личинок -мирацидиев. И все же особая заслуга в распространении новой методологии в исследовании трематод, основанной на детальном анализе всех этапов развития жизненных циклов, выполненном с учетом знаний о животных-хозяевах; сопоставлении полученных сведений с данными изучения других беспозвоночных, принадлежит Т. А. Гинецинской.

Последствия "маритоцентризма" продолжают сказываться до настоящего времени. Наши знания о морфологии, физиологии и развитии партенит остаются отрывочными и противоречивыми. В первую очередь это относится к двум тесно связанным проблемам: что представляет собой процесс размножения спороцист и редий и какова природа их генеративных клеток. А без решения этих проблем невозможны ни реконструкция ранних этапов становления трематод как группы, ни создание их естественной системы.

Отмеченные пробелы в изучении партенит обусловлены также сложностью интерпретации данных, полученных учеными в разное время. Многие из этих сведений не подкреплены документально; зачастую в работах отсутствуют исходные данные, а приводятся лишь заключения. Из-за этого приходится критически относиться к опубликованным результатам и выводам, учитывая взгляды авторов на природу редий и спороцист. Это относится, прежде всего, к старым публикациям, представляющим тем не менее большой интерес в связи с наличием в них огромного фактического материала.

Следует отметить, что в последнее время наблюдается повышение интереса к изучению партенит и делаются попытки по новому осмыслить накопленный материал. Наибольший интерес в этой связи представляет монография К. В. Галактионова и А. А. Добровольского "Происхождение и эволюция жизненных циклов трематод" (1998), в которой большое внимание уделяется и партенитам. Однако специального исследования системы партениты-моллюск до настоящего времени не выполнено. Поэтому остается необобщенным большой фактический материал. Это касается и проблемы размножения партенит различных генераций, и динамики заселения ими моллюска-хозяина, а также факторов, регулирующих эти процессы.

Кроме перечисленных причин, выбор темы диссертации обусловлен также тем, что "система партениты-моллюск представляет собой исключительно удобный объект для решения ряда общепаразитологических проблем, связанных с изучением разных аспектов паразито-хозяинных отношений" (А. А. Добровольский и др., 1993). Действительно, зачастую даже на протяжении жизни одного поколения трематодам приходится менять среду обитания и использовать широкий набор адаптаций, обуславливающих не только выживание паразита, но и его размножение (примером являются материнские спороцисты, которые на ларвальной фазе представляют собой свободноживущие организмы, а во "взрослом" состоянии становятся эндопаразитами). Именно наличие разнообразных адаптаций к конкретным условиям обитания и одновременно большая биологическая пластичность трематод, очевидно, обеспечивают им возможность реализовывать сложные жизненные циклы в самых разных экосистемах. Все это и определило взгляд на жизненный цикл трематод как на систему адаптации (Гинецинская, Добровольский, 1983).

В ходе выполнения данной работы нам удалось расширить количество видов трематод, для которых выполнено комплексное изучение партенит. Это позволило более объективно подойти к анализу литературных данных, которые часто имеют фрагментарный и противоречивый характер. Собранный материал позволяет во многом по новому взглянуть на проблемы развития и биологии трематод. И, в частности, обсудить остающийся открытым уже более ста лет вопрос о природе партенит.

Основной целью данной работы явилось изучение основных закономерностей становления системы партениты-моллюск и механизмов, обеспечивающих ее устойчивость в природе. Соответственно были определены следующие основные задачи исследования:

I. Изучение развития и биологии партенит:

1. Изучить основные механизмы размножения партенит различных генераций и установить основные типы стратегии развития формируемых ими микрогемипопуляций;

2. Определить на примере ряда биотических и абиотических факторов механизм регулирования различных сторон жизни партенит;

3. Исследовать роль клеточных защитных реакций резистентных моллюсков в подавлении развития партенит;

4. Изучить развитие и поведение партенит в условиях культивирования в искусственной среде;

5. На примере конкретной экосистемы оценить, насколько стабильны данная система в природных условиях.

II. Анализ природы партенит:

1. На основании детального изучения собственных и литературных данных проанализировать природу генеративных клеток и размножения партенит в целом;

2. Исходя из результатов данного анализа рассмотреть природу партенит и выяснить возможные пути становления жизненного цикла трематод.

Считаю своим приятным долгом выразить глубокую благодарность заведующему кафедрой зоологии беспозвоночных Санкт-Петербургского государственного университета А. А. Добровольскому за постоянное внимание к моим исследованиям и большую помощь в подготовке диссертации.

Заключение диссертации по теме «Зоология», Атаев, Геннадий Леонидович

ВЫВОДЫ

1. Терминальный материал МС может быть представлен в мирацидиях "первичными" ГК, дробление которых приводит к образованию эмбрионов следующей генерации партенит, а также НК, в результате деления которых могут возникать "вторичные" ГК, развитие которых приурочено к паразитической фазе развития МС. При этом, если число зародышей, развивающихся из первичных ГК ограничено и, в целом, видоспецифично, то процесс мультипликации вторичных ГК строгих количественных рамок не имеет.

2. По стратегии размножения МС всех трематод можно разделить на две группы:

Первую группу составляют дигенеи, завершающие мультипликацию генеративных элементов - ГК и (или) эмбрионов - во время эмбриогенеза мирацидия. Соответственно, на паразитической фазе развития МС у этих дигеней наблюдается развитие только того терминального материала, который был сформирован к моменту вылупления мирацидиев. В эту группу входят в основном представители архаичных семейств.

Вторую группу составляют виды, для которых характерен перенос размножения МС на паразитическую фазу. У одних представителей терминальный материал в мираци-дии представлен недифференцированными и генеративными клетками (часть последних может приступить к дроблению). В других случаях терминальный материал в мирацидиях представлен только НК - здесь размножение МС целиком приурочено к паразитической фазе. Эту группу составляют высшие трематоды.

3. Несмотря на обилие вариантов размножения партенит, все они основаны на процессе пролиферации НК. В результате образуются ГК, деление которых приводит к возникновению эмбрионов партенит или церкарий. При этом мультипликация генеративных элементов происходит только в органах размножения партенит - терминальных массах. Для разных видов характерны различия в структуре, локализации и численности данных образований, однако во всех случаях сохраняется их роль, как центров мультипликации генеративных элементов партенит. Мы рассматриваем терминальную массу не только как функциональный аналог, но и как прямой гомолог яичника, вторично измененный в процессе перехода партенит к партеногенетическому способу размножения.

4. По динамике численности партенит среди трематод выделяются две группы: с "пролонгированным" и с "лимитированным" типом развития МГП.

К первому типу относится большинство видов (РаБсюШае, РагатрЫвиж^ае, ЕсЬтовЮтайёае, РзЦовШтайёае, РЬу1орЬШа1ш1ёае, ЫоЮсойШае, часть БсЫзи^отайбае, Не1егорЫ1Н(1ае; возможно, Strigeidae и др.), у которых имеется одно или несколько поколений продуцирующих только партенит, а затем появляются дочерние поколения, отрождаю-щие церкарий, но сохраняющие при этом способность к формированию партенит. Эта способность обеспечивает самовосполнение зрелой МГП.

Лимитированный тип является вторичным вариантом стратегии внутримоллюско-вого развития, при котором формируется квази-МГП. Он характерен для плагиорхиат и некоторых других трематод. Общее количество партеногенетических поколений здесь не превышает двух - материнского и одного дочернего. Стратегия развития партенит сводится к формированию сотен дочерних спороцист, в которых развивается большое количество церкарий.

5. Признание терминальной массы в качестве универсального центра мультипликации генеративных элементов партенит; возможности возникновения новых ГК только в результате пролиферации и последующей специализации НК; а также общности процессов формирования яйцеклеток в яичнике марит и ГК в терминальных массах партенит, являются дополнительными убедительными доводами половой природы ГК и, как следствие, правильности теории гетерогонии, постулирующей наличие в жизненном цикле трематод гермафродитного и одного или нескольких партеногенетических поколений.

6. Становление гетерогонии происходило уже после освоения моллюска протрема-тодами (напоминавшими прямокишечных турбеллярий) в качестве коменсалов. Отказ от амфимиксиса в пользу партеногенеза способствовал их переходу к эндопаразитизму. В целях поддержания гетерозиготности, очевидно, возникло гермафродитное поколение марит. Вначале они оставались свободноживущими животными, а затем перешли к паразитизму в позвоночных. При этом функцию медиатора инвазионного начала от моллюска к позвоночному взяли на себя личинки марит - церкарии.

7. На основании результатов собственных и литературных данных установлены основные факторы, регулирующие развитие партенит трематод: резистентные свойства моллюсков, возраст и их размеры, интенсивность заражения, условия содержания зараженных моллюсков (прежде всего, температура и интенсивность их питания), предварительное или последующее заражение моллюсков-хозяев пар-тенитами другого вида (множественная инвазия), аккумуляция моллюсками метацеркарий.

304

По отношению к большинству факторов МГП партенит представляет собой устойчивую систему, гибко реагирующую на их воздействие в относительно широких пределах;

8. Заражение моллюска партенитами может вызывать очаговую клеточную реакцию в области пенетрации мирацидия. В некоторых случаях это позволяет моллюску заблокировать дальнейшее развитие партенит, однако чаще в его подавлении принимают участие гемоциты, образованные в активизированном в результате заражения АПО. В специфичных моделях может также наблюдаться пролиферация гемоцитов хозяина, однако последние не инкапсулируют паразитов, а скапливаются в нейтральные агглютинации;

9. Многолетнее изучение зараженности моллюсков В 'йНута (еШасиЫа партенитами трематод в прудах Ст.-Петербурга показало высокую степень устойчивости данной модели даже в столь нестабильных условиях, которые характерны для мегаполиса, расположенного в сложной климатической зоне. Качественный состав трематод оставался неизменным на протяжении всего срока наблюдения (на это обстоятельство принципиально не повлияло даже значительное обновление популяции битиний, вызванное повышенной смертностью сеголеток). Такие данные лежат в основе заключения, что сохранение жизненных циклов большинства видов дигеней в условиях северных и умеренных широт обеспечивается за счет моллюсков. Именно на фазе партенит или метацеркарий паразиты "пережидают" в моллюсках холодное время года и оказываются источником продолжения жизненного цикла в начале нового вегетационного сезона.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Атаев, Геннадий Леонидович, 2000 год

1. Атаев Г. Л. 1991. Влияние температуры на развитие и биологию редий и церкарий Philophthalmus rhionica (Trematoda). Паразитология. 25, с. 349-359.

2. Атаев Г. Л. 1991. Развитие редий и церкарий Philophthalmus rhionica (Trematoda) в условиях голодания моллюска-хозяина. Паразитология. 25, с. 456-461.

3. Атаев Г. Л. 1993. Влияние температуры и освещенности на биологию мирацидиев Philophthalmus rhionica (Trematoda). Паразитология. 27. с. 134-139.

4. Атаев Г. Л. 1998. Фауна трематод Bithynia tentaculata в прудах Санкт-Петербурга. В сб.: Проблемы систематики и филогении плоских червей. СПб, с. 11-13.

5. Атаев Г. Л., Добровольский А. А. 1986. Об отсутствии полового зачатка у материнских редий Philophthalmus rhionica Tichomirov, 1976. В сб.: X конференция Украинского общества паразитологов. Ч. 1. Киев. Наукова Думка, с. 34.

6. Атаев Г. Л., Добровольский А. А. 1990. Развитие микрогемипопуляции партенит трематод Philophthalmus rhionica. Паразитология. 24. с. 499-507.

7. Атаев Г. Л., Добровольский А. А. 1992. Развитие микрогемипопуляции редий Philophthalmus rhionica, природно-зараженных другими видами трематод. Паразитология. 26, с. 227-233.

8. Атаев Г. Л., Добровольский А. А. 1998. Современные взгляды на природу генеративных клеток партенит трематод. В сборнике: Проблемы систематики и филогении плоских червей. СПб, с. 13-16.

9. Атаев Г. Л., Добровольский А. А., Озерский П. В. 1993. Влияние освещенности на эмиссию церкарий Philophthalmus rhionica (Trematoda). Вильнюс: Биология, 41-42.

10. Атаев Г. Л., Козминский Е. В. 1997. Стабильность паразитофауны трематод моллюска Bithynia tentaculata (Linne, 1758) в прудах Санкт-Петербурга. В сб.: Экологический мониторинг паразитов. СПб, с. 24.

11. Анохин И. А. 1966. Суточный ритм муравьев, инвазированных метацеркариями Dicrocoelium lanceatum. Докл. АН СССР. 166, с. 757-759.

12. Баршене Я. 1993. Кариотипы трематод. Вильнюс: Академия. 370 с.

13. Белякова Ю. В., Жальцанова Д. С. 1987. Суточный ритм эмиссии и биология церкарий Plagiorchis multiglandularis Semenov, 1927. Изв. АН КазССР. Сер. биол. 4, 89-90.

14. Березанцев Ю. А., Добровольский А. А. 1968. Процессы инкапсуляции метацеркариев трематод Posthodiplostomum cuticola (Nordmann, 1832) Dubois, 1936, в рыбах. Труды Астраханск. зап. Астрахань. 11, с.7-12.

15. Быховская-Павловская И. Е. 1970. Особенности фауны трематод пролетных птиц Куршской косы. В сб.: Проблемы паразитологии в Прибалтике. Матер. 4-й научн. координац. конф. по пробл. паразитол. прибалт, респ. Рига. с. 58-59.

16. Быховская-Павловская И. Е., Кулакова А. П. 1971. Церкарии битиний (Bithinia tentaculata и В. leachy) Куршского залива. Паразитология, 5 (3), с. 222-232.

17. Галактионов В. Г. 1993. Жизненные циклы трематод как компоненты эко-систем. Апатиты. Кольский научн. центр РАН, 199 с.

18. Галактионов В. Г. 1995. Очерки эволюционной иммунологии. М., Наука. 256 с.

19. Галактионов К. В. 1980. Жизненный цикл сосальщика Mesostephanus appendiculatus (Ciurea, 1916) Lutz, 1935 пес Martin, 1961. Вестник ЛГУ. 21, с. 27-34.

20. Галактионов К. В., Добровольский А. А. 1987. Гермафродитное поколение трематод. Л., Наука. 193 с.

21. Галактионов К. В., Добровольский А. А. 1998. Происхождение и эволюция жизненных циклов трематод. СПб, Наука. 404 с.

22. Галактионов К. В., Оленев А. В., Добровольский А. А. 1980. Два вида циатокотилидных церкарий из пресноводного моллюска Melanopsis praemorsa. Паразитология. 14 (4), с. 299-307.

23. Гвоздев М. А., Атаев Г. Л. 1986. Шистозоматозный церкариоз человека в Ленинградской области. В сб.: X конференция Украинского общества паразитологов. Ч. 1. Киев. Наукова Думка, с. 136.

24. Гвоздев М. А., Атаев Г. Л. 1988. Оценка количества церкарий и факторы, регулирующие их численность в пресноводных экосистемах. ЛГПИ им. А. И. Герцена. Л. Деп. в ВИНИТИ, №1784 В 88.18 с.

25. Гиляров А. М. 1990. Популяционная экология. М.: МГУ. 184 с.

26. Гинецинская Т. А. 1954. О значении таксисов в жизнедеятельности церкариев. Докл. АН СССР. ХСУП (2), с. 369-372.

27. Гинецинская Т. А. 1959. К фауне церкарий моллюсков Рыбинского водохранилища. II. Влияние экологических факторов на зараженность моллюсков партенитами трематод. Л.: ЛГУ. 21, с. 62-77.

28. Гинецинская Т. А. 1960. Гликоген в теле церкариев и зависимость его распределения от их биологии. Докл. АН СССР. 135 (4). с. 1012-1015.

29. Гинецинская Т. А. 1965. О природе жизненных циклов трематод. Вестник ЛГУ. 21, 5-13.

30. Гинецинская Т. А. 1968. Трематоды, их жизненные циклы, биология и эволюция. JL: "Наука". 411.

31. Гинецинекая Т. А., Галкин А. К., Долинина Т. К. 1976. Воздействие голодания на состояние моллюска-хозяина и на паразитирующих в нем спороцист трематод. 11-й Всес. симпоз. по болезням и параз. водных беспозв. JL: Наука, с. 17-18.

32. Гинецинская Т. А., Добровольский А. А. 1963. Гликоген и жир на разных фазах жизненного цикла сосальщиков. I. Морфология распределения гликогена и жира. J1., Вестн. ЛГУ, 3, с. 23-33.

33. Гинецинская Т. А., Добровольский А. А. 1983. Жизненный цикл трематод как система адаптаций. В сб.: Свободноживущие и паразитические беспозвоночные. Труды БИНИИ, 34. Л.: ЛГУ, с. 112-157.

34. Гинецинская Т. А., Добровольский А. А. 1983. Свободноживущие и паразитические беспозвоночные. В сб.: Морфология, биология, эволюция. Л.: Труды БИНИИ. 34, с. 112-157.

35. Гинецинская Т. А., Добровольский А. А., Оксов И. В. 1981. Роль гликогена в биологии личиночных стадий развития трематод. В сб.: Работы по гельминтологии. М.: Наука, с. 82-87.

36. Гуляев Г. В., Мальченко В. В. 1983. Словарь терминов по генетике, цитологии, селекции, семеноводству и семеноведению. М.: Россельхозиздат. 240 с.

37. Дажо Р. 1975. Основы экологии. М.: Прогресс, 415 с.

38. Добровольский А. А. 1965. Некоторые новые данные о жизненном цикле сосальщика Opisthioglyphe ranae Frohl., 1791(Plagiorchiidae). Helminthologia. VI, 3, с. 205-221.

39. Добровольский А. А. 1967. Жизненные циклы некоторых трематод семейств Telorchiidae и Plagiorchiidae. Автореф. канд. дис. ЛГУ. 14 с.

40. Добровольский А. А. 1975. Некоторые закономерности эволюции материнских спороцист трематод подотряда Plagiorchiata. Эколог, и эксп. паразитол. Л. вып. 1, с. 96-108.

41. Добровольский А. А., Мухамедов Г. К. 1979. Некоторые особенности размножения материнских спороцист Xiphidiocercaria sp. 7 Odening (Trematoda, Plagiorchiata). В сб.: Экологическая и экспериментальная паразитология. 2, с. 42-47.

42. Добровольский А. А., Райхель А. С. 1973. Жизненный цикл Haplometra cylindracea Zeder, 1980 (Trematoda, Plagiorchiidae). Вестн. ЛГУ. 3, с. 5-13.

43. Догель В. А. 1947. Курс общей паразитологии. Л.: Учпедгиз, 372 с.

44. Догель В. А. 1962. Общая паразитология. Л.: ЛГУ. 464 с.

45. Иванов А. В., Полянский Ю. И., Стрелков А. А. 1981. Большой практикум по зоологии беспозвоночных. I. М.: Высшая школа. 504 с.

46. Ивантер, Коросов. 1992. Основы биометрии. Петрозаводск: ПГУ. 164 с.

47. Катков М. В. 1980. Экспериментальное изучение биологии партенит Liorchis scotiae (Willmott, 1950) Velichko, 1966 (Trematoda: Paramphistomidae). В сб.: Вопросы паразитологии водных беспозвоночных животных. Вильнюс, с. 46-48.

48. Козминский Е. В. 1999. Популяционный анализ сообщества Bithynia tentaculata (Gastropoda, Prosobranchia) партениты трематод. Автореф. канд. дисс. СПбГУ, 20 с.

49. Козминский Е. В., Атаев Г. Л. 1995. Влияние трематодной инвазии на размножение Bithynia tentaculata (Linne, 1758). В сб.: 6-й Веер. симп. по популяционной биологии па-разитов. М.

50. Конки Д., Эрба Э., Фрешни Р. Гриффите В., Хэй Р., Ласнитски И., Маурер Г., Мораска Л., Вилсон Э. Культура животных клеток. Методы. М.: Мир., 1989. 333 с.

51. Кононский А. И. 1976. Гистохимия. К.: Высш. шк. 278 с.

52. Краснолобова Т. А. 1987. Трематоды фауны СССР (род Plagiorchis). М.: Наука. 164 с.

53. Курандина Д. П. 1976. Некоторые экспериментальные данные по биологии двух видов короткохвостых церкарий (Microcercariae). 2-й Всесоюзный симпозиум по болезням и паразитам водных беспозвоночных. Л.: Наука, с. 41-43.

54. Лакин Г. Ф. 1990. Биометрия.М.: Высшая школа. 352 с.

55. Логачев Е. Д. 1962. Люминисцентно-микроскопическое исследование кутикулярных структур ленточных гельминтов. В сб.: Материалы научной конференции ВОГ. II. М., 102с.

56. Ляйман Э. М., Садковская О. Д. 1952. Чернопятнистое заболевание карпов и меры борьбы с ним. Тр. Научн.-иссл. инст. пруд, и озерно-речн. рыбн. хоз. УССР, 8. Киев, изд. с.-х. лит. с. 108-116.

57. Оленев А. В. 1979. Фауна церкарий пресноводного моллюска Melanopsis praemorsa (L.) из Западной Грузии. II. Экологическая и экспериментальная паразитология. 2, с. 3041.

58. Оленев А. В., Добровольский А. А. 1972. Фауна личинок трематод пресноводного моллюска Melanopsis praemorsa (L.) из Западной Грузии. I Всесоюзн. симпоз. по паразитологии водных беспозвоночных. Львов, с. 66-67.

59. Оленев А. В., Добровольский А. А. 1975. Фауна церкарий пресноводного моллюска Melanopsis praemorsa (L.) из Западной Грузии. II. Экологическая и эксперименталь ная паразитология. 1, с. 73-96.

60. Орлов И. В. 1948. Изучение цикла развития трематоды бобров Stichorchis subtriquetrus Rud., 1814. В сб.: Паразитофауна и заболевания диких животных. Изд. Гл. упр. по заповеди., М., с. 134-152.

61. Петров Д. Ф. 1988. Апомиксис в природе и опыте. Новосибирск: Наука, 214 с.

62. Пирс Э. Гистохимия. 1956. М.: Иностр. литер. 488 с.

63. Полевщиков А. В. 1996. Лектины в защитных реакциях беспозвоночных. Журнал общей биологии. 57, с. 718-739.

64. Потафеев H. Е., Тихонов Е. В. 1979. Люминисцентно-микроскопическое исследование редий и церкарий Fasciola hepatica. В сб.: Экологическая и экспериментальная паразитология. Л.: ЛГУ. 2, с. 101-104.

65. Райшите Д. 1967. К биологии трематоды Apatemon gracilis (Rud., 1819) паразита домашних и диких уток. - Acta parasitológica Lituanica 7, с. 71-84.

66. Рыбаков А. В. 1984. Фауна и экология трематод массовых видов моллюсков СевероЗападной части Японского моря. Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 25 с.

67. Сазанов А. М. 1971. О специфичности некоторых моллюсков лимнеид как промежуточных хозяев фасциол. Тр . Всес. инст. гельминтол. 18, с. 229-234.

68. Сазанов А. М. 1972. О факторах, обуславливающих устойчивость моллюсков к заражению мирацидиями фасциол. Бюл. Всес. инст. гельминтол. 7, с. 27-29.

69. Семенов О. Ю. 1997. Экспериментальное изучение биологии мирацидия Philophthalmus rhionica Tichomirov. Автореф. канд. дис. Л.: ЛГУ. 20 с.

70. Семенов О. Ю. 1991. Мирацидии: строение, биология, взаимоотношения с моллюсками. Л., ЛГУ. 204 с.

71. Синицын. Д. Ф. 1905. Материалы по естественной истории трематод. Дистомы рыб и лягушек окрестностей Варшавы. Изв. Варшавск. у нив. 210 с.

72. Синицын Д. Ф. 1911. Партеногенетическое поколение трематод и его потомство в черноморских моллюсках. Записки императорской академии наук. VIII серия, 30 (5). СПб, 127 с.

73. Соколина Ф. М. 1969. Эксперименты по заражению лимнеид мирацидиями печеночной двуустки. Вопросы малокологии Сибири. Томск, с. 155-156.

74. Соколов В. Е., Скурат JI. Н., Степанова JI. В., Сумина Е. Б., Шабадаш С. А. 1988. Руководство по изучению кожного покрова млекопитающих. М.: Наука. 279 с.

75. Судариков В. Е. 1974. Cyatocotyle bithyniae sp. nov. (Trematoda: Cyathocotylidae) и его метацеркарий. Helmintol. XV, 1-4.

76. Тихомиров И. А. 1980. Жизненный цикл Philophthalmus rhionica sp. nov. (Trematoda: Philophthalmidae). Канд. дисс. JI., ЛГУ. 219 с.

77. Тарасов В. В. 1987. Простейшие, патогенные для человека. М.: МГУ. 159 с.

78. Усинене В. 1974. Суточная динамика выхода гимноцефальных церкарий. Acta parasitológica Lituanica 12,131-136.

79. Филимонова Л. В. 1982. Обзор и таксономический анализ видового состава трематод рода Notocotylus фауны СССР. В кн.: Гельминты водных животных. М.: Наука. 107-149.

80. Филимонова Л. В. 1985. Трематоды фауны СССР (нотокотилиды). М.: Наука. 128 с.

81. Шигин А. А. 1962. Влияние температуры на процесс формирования и выделения церкарий Diplostomum spathaceum (Rud., 1819) (Trematoda: Diplostomatidae). В сб.: Материалы научной конференции ВОГ. 1, с. 214-216.

82. Шигин А. А., Шигина Н. Г. 1966. О характере зависимости между размером моллюска и числом продуцируемых им церкариев Diplostomum spathaceum (Rud., 1819) Материалы науч. конф. ВОГ. М. 3, с. 327-330.

83. Шигин А. А. 1993. Трематоды фауны России и сопредельных регионов. Род Diplostomum. Мариты. М., Наука. 208 с.

84. Шигин А. А. 1996. Морфологические критерии вида у церкарий рода Diplostomum (Trematoda: Diplostomidae) и методы их изучения. Паразитология, 30 (5), с. 425439.

85. Шилов И. А. 1997. Экология.М.: Высш. шк. 512 с.

86. Adema С. М., Loker Е. S. 1997. Specificity and immunobiology of larval digenean-snail associations. In Trematode Biology, eds B. Fried, Т. K. Graczyk. CRC Press, Boca Raton, N. Y„ p. 229-263.

87. Alicata J. E. 1962. Life cycle and developmental stages of Philophthalmus gralli in the intermediate and final hosts. Journal of Parasitology 48 (1), p. 47-54.

88. Ameel D. J., Cort W. W., Van der Woude. 1949. Germinal development in the Mother sporocyst and Redia of Halipegus eccentricus Thomas. Journal of Parasitology 35, p. 569-78.

89. Ameel D. J., Cort W. W., Van der Woude. 1950. Germinal development in the heterophuid, Euryhelmis monorchis Ameel, 1938. Journ. Parasitol. 36, p. 427-432.

90. Ameel D. J., Cort W. W., Van der Woude. 1951. Development of the mother sporocyst and rediae of Paragonimus kellicotti Ward, 1908. Journ. 37, p. 395-404.

91. Anderson R. M., May R. M. 1979. Prevalence of schistosome infections within molluscan populations: observed patterns and theoretical predictions. Parasitology. 79, p. 63-93.

92. Anderson R. M., Chain B. M. 1982. Journal of Invertebrate Pathology 40, p. 320-326.

93. Anderson R. M., Fried B. 1987. Experimental infection of Physa heterostropha, Helisoma trivolvis and Biomphalaria glabrata (Gastropoda) with Echinostoma revolutum (Trematoda) cercariae. Journal of Parasitology 73, p. 49-54.

94. Asch H. L. 1972. Rhythmic emergence of Schistosoma mansoni cercariae from Biomphalaria glabrata : Control by illumination. Experimental Parasitology. 31, p. 350-355.

95. Ataev G. L. 1993. Forming of the schizocoel of Philophthalmus rhionica (Trematoda). Biology. 1. Vilnius, p. 42-43.

96. Ataev G. L., Coustau C. 1999. Cellular response to Echinostoma caproni infection in Biomphalaria glabrata strains selected for susceptibility/resistance. Developmental and Comparative Immunology. 23, p. 187-198.

97. Ataev G. L., Dobrovolskij A., Fournier A., Jourdane J. 1997. Migration and development of mother sporocysts of Echinostoma caproni (Digenea: Echinostomatidae). Journal of Parasitology. 83, p. 444-453.

98. Ataev G. L., Fournier A., Coustau C. 1998. Comparison of Echinostoma caproni mother sporocysts development in vivo and in vitro using of Biomphalaria glabrata snails and a B. glabrata embryonic cell line. Journal of Parasitology. 84, p. 227-235.

99. Barnes R. D. 1980. Invertebrate Zoology. Philadelphia: Saunders Colleg Press. 1053 p.

100. Barsiene J., Kiseliene V. 1990. Karyological studies of trematodes within the familes Psilostomidae and Echinostomatidae. Helminthologia 27, p. 99-108.

101. Barus V., Moravec F. & Rysavy B. 1974. Antagonistic interaction between Echinistoma revolutum and Echinostoma recurvatum (Trematoda) in the definitive host. Folia Parasitológica. Praha. 21, p. 155-59.

102. Bash P. F. 1969. The arterial system of Biomphalaria glabrata (Say). Malacologia 7, p. 169-181.

103. Bash P. F., DiConza J. J., 1975. Predation by echinostome rediae upon schistosome sporocysts in vitro. Journal of Parasitology. 61, p. 1044-1047.

104. Bash P., Lie J. K. 1966. Infection of single snails with two different trematodes. Zeitschrift Parasitenkunde. 27 (3) S, 252-253,260-270.

105. Bash P., Lie J. K., Heyneman D. 1970. Experimental double and triple infections of snails with larval trematodes. Southeast Asian Journal of Tropical Medicine and Public Helth. 1, p. 129-137.

106. Bayne C. J. 1974. On the immediate fate of bacteria in the land snail Helix. In Cooper (ed), Contemporary topics in immunology. N. Y.: Plenum Press. 4, p. 37-45.

107. Bayne C. J. 1982. Molluscan immunobiology: Isolation of an Aeromonas formicans wich escapes the internal defense system of Helixpomatia. Dev. Comp. Immunol. 6, p. 675-682.

108. Bayne C. J. 1983. Molluscan immunology. In "The Mollusca" (K. Wilbur, Ed.). Academic Press, Orlando, FL. 5, p. 407-486.

109. Bayne C. J., Boswell C. A., Loker E. S., Yui M. A. 1985. Plasma components wich mediate cellular defences in the gastropod mollusc Biomphalaria glabrata. Developmental and Comparative Immunology. 9, p. 523-530.

110. Bayne C. J., Sminia T., Van deT Knapp W. P. W. 1980. Immunological memory: Status of molluskan studies. In "Phylogeny of Immunological memory" (M. G. Manning, Ed.), Elsevier/North-Holland, Amsterdam, p. 57-64.

111. Bayne C. J., Yoshino T. P. 1989. Determinants of compatibility in mollusc-trematode parasitism. Amer. Zool. 29, p. 399-407.

112. Bearup A. J. 1960. Life history of Acanthoparyphium spinulosum Johnston, 1917 (Trematoda: Echinostomatidae). Austral. Journ. Zool. 8 (2), p. 217-225.

113. Beaver P. C. 1937. Experimental studies on Echinostoma revolutum (Froel.), a fluke from birds. Illinois Biol. Monogr., XV (1), 1-96.

114. Bednarz S. 1962. The development cycle of germ-cells in Fasciola hepatica L., 1758 (Trematodes, Digenea). Zool. Polon. 12 (4), p. 439-466.

115. Bednarz S. 1973. The The development cycle of germ-cells in several representatives of Trematoda (Digenea). Zool. Polon. 23 (3-4), p. 279-326.

116. Behrens A. C., Nollen P. M. 1993. Hatching of Echinostoma caproni miracidia from eggs derived from adults grown in hamsters and mice. Parasitology Research. 79, p. 28-32.

117. Bell G. 1982. The Masterpiece of Nature: the Evalution and Genetics of Sexuality. London and Canberra: Croom Helm.

118. Bell E. J., Smyth J. D. 1958. Cytological and histochemical criteria for evaluating development of trematodes and pseudophyllidean cestodes in vivo and in vitro. Parasitology., 48 (131).

119. Brooks F. G. 1930. Studies on the germ-cell cycle of Trematodes. Amer. Journ. Hyg. 12, p. 299340.

120. Butcher E. O., 1930. The formation, regeneration, and transplantation of eyes in pecten (Gibbus borealis). Biol. Bull., 59. p. 154-164.

121. Cable R. M. 1934. Studies on the germ-cell cycles of Cryptocotyle lingua. II. Germinal development in the larval stages. Quart. Journ. Micr. Sc. 76, p. 573-614.

122. Cable R. M. 1974. Phylogeny and taxonomy of trematodes with reference to marine species. In Symbiosis in the Sea. Columbia. South Carolina, p. 173-193.

123. Cary L. R. 1909. The life history of Diplodiscus temporatus Stafford, with especial reference to the development of the parthenogenetic eggs. Zool. Jahrb. Abt. Anat. Ont. 28, p. 595-659.

124. Canzonier W. J. 1974. Tissue grafts in the American oyster, Crassostrea virginica. Proc. Natl. Shellfish. Assoc., 64: 92-101.

125. Campbell W. G. 1961. Notes on the eff and miracidium of Fascioloides magna (Trematoda). Trans. Amer. Micr. Soc. 80 (3), p. 308-319.

126. Catalano P. A. 1986. The morphology and emergence patterns of the cercaria of Allocreadium pseudotritoni Rancin, 1937 (Trematoda, Allocreadidae). Onio Journ. Aci. 86 (3), p. 8184.

127. Chen P. D. 1937. The germ cell cycle in trematode, Paragonimus kellicotti Ward. Trans. Amer. Micr. Soc. 56, p. 208-236.

128. Cheng T.C. (1961). Studies on the morphogenesis, development and germ cell cycle in the sporocysts and cercariae of Clypthelmins pennsylvaniensis Cheng, 1961 (Trematoda: Brachyocoeliidae). Proc. Pennsylvania Acad. Sci. 35, p. 10-22.

129. Cheng T. C., Galloway P. C. 1970. Transplantation immunity in mollusks: The histoincompability of Helisoma durij normale with allografts and xenografts. Journal of Invertebrate Pathology. 15: p. 177-192.

130. Cheng T. C, Jourdane J. 1987. Transient cellular reaction in Biomphalaria glabrata (Mollusca) to heteropic isografts. Journal of Invertebrate Patology 49, p. 273-278.

131. Cheng T. C, Rifkin E., 1970. Cellular reactions in marine molluscs in response to helminth parasitism. In "A Symposium on Diseases of Fishes and Shellfishes" (S. F. Snieszko, Ed.), Spec. Publ. 5. Amer. Fisher. Soc., Washington, DC., p. 443-496.

132. Chernin E. 1963. Observations on hearts explanted in vitro from the snail Australobis glabratus. The Journal of Parasitology. 49, p. 353-364.

133. Chernin E. 1966. Transplatation of larval Schistosoma mansoni from infected to uninfected snails. Journal of Parasitology 52, p.473-482.

134. Chemin E. 1967. Behavior of Biomphalaria glabrata and of other snails in a thermal gradient. Journal of Parasitology 53, p. 1233-1240.

135. Chowaniec W. 1961. Influence of enviroment and development of liver fluke and the problem of superinvasion and reinvasion in the intermediate host. Acta parasitol. polon. 9, p. 463480.

136. Christensen N. O., Frandsen, F., Roushdy M. Z. 1980. The influence of environmental conditions and parasite-intermediate host-related factors on the transmission of Echinostoma liei. Zeitschrift fur Parasitenkunde 63, p. 47-63.

137. Chu K. Y., Dawood I. K. 1970. Cercarial production from Biomphalaria alexandrina infected with Schistosoma mansoni. Bulletin of World Health Organization. 42, p. 569-574.

138. Chu K. Y., Massoud J., Sabbaghian H. 1966a. Host-parasite relationship of Bulinus truncatus and Schistosoma haematobium in Iran. 1. Effect of age of B. truncatus on the development of S. haematobium. Bulletin of World Health Organi-zation. 34,113-119.

139. Clark W. C. 1974. Interpretation of life history pattern in the Digenea. Int. Journ. for Parasitology. 4, p. 115-123.

140. Coles G. C. 1973. The effect of diet and crowding on the shedding of Schistosoma mansoni cer-cariae by Biomphalaria glabrata. Ann. Trop. Med. Hyg. 67, p. 419-423.

141. Combes C. 1980. Atlas mondial des cercaires. Mémoires du Museum National d'Histoire Naturelle. Serie A, T. 115. 235 p.

142. Combes C. 1982. Trematodes: antagonism between species and sterilizing effects on snails in biological control. Parasitology. 84, p. 151-175.

143. Combes C. 1995. Interactions durables. Ecologie et evolution du parasitisme. Paris-Milan-Barcelone: Masson. 524 p.

144. Cort W.W. 1915. Gordius larvae parasitic in a trematode. Journ. Parasitol., 1, p. 198-199.

145. Cort W.W. 1922. A study of the escape of cercariae from their snail hosts. Journal of the Parasitology 8, p. 177-184.

146. Cort W. W., Ameel D. J. 1944. Further studies on the development of the sporocyst stages of plagiorchiid trematodes. Journ. Parasitol. 30, p. 37-56.

147. Cort W. W., Ameel D. J., Oliver L. 1944. An experimental study of the development of Schistosomatium douthitti (Cort, 1915) in its intermediate host. Journ. of. Parasitol. 30, p.1.17.

148. Cort W. W., Me. Mullen D. B., Brackett S. 1937. Ecological studies on the cercariae in Stagnicola emarginata angulata (Sowerby) in the Douglas Lake Region, Michigan. Journal of Parasitology. 23, p. 504-532.

149. Cort W. W., Ameel D. L., Van der Woude A. 1948. Studies on germinal development in rediae of the trematode order Fasciolatoidea Szidat, 1936. Journ. of Parasitol. 34, p. 428-451.

150. Cort W. W., Ameel D. J., Van der Woude A. 1949. Germinal masses in redia embryos of an echinostoma and a psilostome. Journal of Parasitology 35, 6 (1), p. 579-582.

151. Cort W. W., Ameel D. J., Van der Woude A. 1951. Early developmental stages of strigeid mother sporocysts. Proc. Helm. Soc. Wash. 18, p. 6-9.

152. Cort W.W., Ameel D. J. & Van der Woude A. 1952. Development of the mother and daughter sporocysts of a snake plagiorchoid, Lechriorchis primus (Trematoda: Reniferidae). Journal of Parasitology 38, p. 187-202.

153. Cort W. W., Ameel D. J., Van der Woude A. 1953. Further studies on the early development of the daughter sporocysts of Schistosomatium douthitti. Proc. Helm. Soc. Wash. 20, p. 4349.

154. Cort W. W., Ameel D. J., Van der Woude A. 1954a. Germinal development in the sporocysts and rediae of the digenetic trematodes. Experimental Parasitology 3, p. 185-225.

155. Cort W. W., Ameel D. J., Van der Woude A. 1954b. Germinal development in the sporocysts of the blood flukes of Turles. Proc. Helm. Soc. Wash. 21, p. 85-96.

156. Cort W. W., Ameel D. J., Van der Woude A. 1954c. Further studies on the germinal development in the sporocysts of bird schistosome, Trichohilharzia stagnicolae (Talbot 1936). Proc. Helm. Soc. Wash. 21, p. 97-106.

157. Cort W.W., Ameel D.J. & Van der Woude A. 1955. Germinal development in the sporocysts of a Bird Schistisome Trichohilharzia physellae (Talbot, 1936). Journal of Parasitology 41, p.2.16.

158. Cort W. W., Oliver L. 1941. Early developmental stages of strigeid trematodes in the first intermediate host. Journ. of Parasitol. 27, p. 493-504.

159. Cort W. W., Oliver L. 1943. The development of the larval stages of Plagiorchis muris Tanabi, 1922, in the first intermediate host. Journ. of Parasitol. 29, p. 81-99.

160. Coustau C., Ataev G. L., Jourdane J., Yoshino T. P. 1997. Schistosomajaponicum: In vitro cultivation of miracidium to daughter sporocysts using Biomphalaria glabrata embryonic cell line. Experimental Parasitology. 87, p. 77-87.

161. Coustau C., Yoshino T. P. 1994. Surface membrane polyptides associated with hemocytes from Schistosoma ma/wom-susceptible and -resistant strains of Biomphalaria glabrata (Gastropoda). Journal of Invertebrate Pathology. 63, p. 82-89.

162. Cowden R. R. 1972. Journal of Invertebrate Pathology. 19, p. 113-119.

163. Cowden R. R., Curtis K. 1981. Invertebrate blood cells. N. Y.: Acad. Press. 1, p. 301-323.

164. Crandall R. B. 1960. The life history and affinities of the turtle lung fluke, Heronimuschelydrae MacCallum, 1902. Journal of Parasitology 46, p. 289-307.

165. Crichton R., Lafferty K. J. 1975. The discriminatory capacity of phagocytic cells in the chiton (Liolophura gaimardi). In W. H. Hildemann and A. A. Benedict (eds.), Advances in experimental medicine and biology. N. Y.: Plenum Press. 64, p. 89-98.

166. Christensen N. 0., Fried B., Kanev I. 1990. Taxonomy of 37-collar spined Echinostoma (Trematoda: Echinostomatidae) in studies on the population regulation in experimental rodent hosts. Angewandt Parasitologic. 31, p. 127-130.

167. Cushing J. E. 1957. Tissue transplantation in Pecten irradians. Biol. Bull. P. 113: 327.

168. Czapsky Z. 1978. New observations on the life cycle of Easciola hepatica L. in Calba truncatula O. F. Muller, Calba occulta Jack, and Calba turricola Held. Forth Intern. Cong. Parasitol. Short Communications. Sec. A, 10.

169. Dawes B. 1946. The Trematoda. With special reference to British and other European. Cambridge. 644 p.

170. Davies P. S., Partridge T. 1972. Journ. Cell Sci. 14, p. 319-330.

171. De Kock K. N., Joubert P. H., Pretorius S. J. 1989. Geographical distribution and habitat preferences of the invader freshwater snail species Lymnaea Onderstepoort J. vet. Res. 56, p.271-275.

172. De Witt W. B. 1955. Influence of temperature on penetration of snail hosts by Schistosoma mansoni miracidia. Experimental Parasitology 4, p. 271-276.

173. DiConza J. J., and Basch P. F. 1974. Axenic cultivation of Schistosoma mansoni daughter sporo-cysts. Journal of Parasitology 60, p. 757-763.

174. Dinnik J. A., Dinnik N. N. 1954. The life cycle of Paramphistomum microbotrium Fishoeder, 1901 (Trematoda, Paxamphistomatidae). Parasitology. 44, p. 285-299.

175. Dinnik J. A., Dinnik N. N. 1956. Observations on the succession of redial generations of Easciola gigantica Cobbold, in a snail host. Z. Troppenmed. Parasitol. 7, p. 397-419.

176. Dinnik J. A., Dinnik N. N. 1960. Development of Carmyerius exoporus Mapleston (Trematoda: Gastrothylacidae) in a snail host. Parasitology. 50, 469-480.

177. Dinnik J. A. & Dinnik N. N. 1964. The influence of temperature on the succession of redial and cercarial generations of Fasciola gigantica in a snail host. Parasitology 54, p. 59-65.

178. Dobrovolskij A. A. 1965. Uber die Eincheitlichkeit des Bauplanes von Mirazidien der Uberfamilie Plagiorchioidea. Agnew. Parasitol. 6 (3), p. 157-165.

179. Dönges J. 1963. Die Die experimentelle Bestimmung der Anzahl der Rediengenerationen bei Trematoden. Naturwissensch. 50 (3). 103p.

180. Dönges J. 1964. Der Lebenszyklus von Posthodiplostomum cuticola (V. Nord-mann 1832) Dubois 1936 (Trematoda, Diplostomatidae). Zeitschrift fur Parasitenkunde. 24, p. 169248.

181. Dönges J. 1971. The potential number of Redial generations in Echinostomatids (Trematoda). Intern. Journ. for parasitol., p. 51-59.

182. Dönges J. 1972. Double infection experiments with echinostomatids (Trematoda) in Lymnaea stagnalis by implantation of rediae and exposure to miracidia. Intern. Journ. Parasitol. 2, p. 409-423.

183. Dönges J. 1973. Das Miracidium von Isthmiophora metis (Schrank, 1788) (Echinostomatidae). Ökologie und Morphologie. Z. Parasitenk. Bd 41, p. 215-230.

184. Dönges J. Gotzelmann M. 1975. Isthmiophora melis (Trematoda, Echinostomatidae): normal adults after 41 snail passages in 7 jears of redial transplantation. International Journal for Parasitol. 5, p. 421-422.

185. Dönges J. Gotzelmann M. 1977. Isthmiophora melis: Experimental reinfection of Lymnaea stagnalis by implantation of miracidia after implantation of rediae. Experimental parasitology 42, p. 318-321.

186. Drew G. H., Morgan W., 1910. The origin and formation of fibrous tissue produ-ced as a reaction to injury in Pecten maximus, as a type of the Lamellibran-chiata. Q. J. Microsc. Sei., 55, p. 595-620.

187. Dreyfuss G., Rondelaud D. 1995. Comparative studies on productivity of Fasciola gigantica and F. hepatica sporocysts in Lymnaea tomentosa that died after a cercarial shedding or without emission. Parasitol. Res. 81, p. 531-536.

188. Dubois G. 1929. Les cercaires de la Region de Neuchatel. Bull. Soc. neuchatel. Sei. nat. 53, 177p.

189. Dusanic D. G., Lewert R. M. 1963. Alterations of proteins and free amino acids of Australorbis glabratus hemolymph after exposure to Schistosoma mansoni miracidia. Journ. Infect. Diseases. 112, p. 243-246.

190. Dwaronat A. 1966. Untersuchungen über ektogene Helminthenstadien. 3. Experimentelle Untersuchung über die Lebensdauer der Miracidien von Fasciola hepatica unter Berücksichtigung verschiedener äussere Einflüsse. Angew. Parasitol. 7 (1), p. 31-38.

191. Ehret C. F., Trucco E. 1967. Molecular models for the Orcadian Clock. I. The Chronon concept. Journ. Theoret. Biology. 15 p.

192. Erasmus D. A. 1959. The migration of CercariaX Baylis (Strigeida) within the fish intermediate host. Parasitology. 49, p. 173-190.

193. Erasmus D. A. 1972. The Biology of Trematodes. London: Edvard Arnold.

194. Evans N. A. 1985. The influence of enviromental temperature upon transmission of the cercariae of Echinostoma liei (Digenea: Echinostomatidae). Parazitology 90, p. 269-75.

195. Evans N. A., Gordon D. M. 1983. Experimental observations on the specificity of Echinoparyphium recurvatum toward second intermediate hosts. Zeitschrift fur Parasitenkunde. p. 217-222.

196. Fashuyi S. A. 1982/1986. Field observations on the possibility of using echinostomes to control schistosome infections in snails. Egipt. Journ. Bilharziasis. 9 (2), p. 89-93.

197. Faust E. C. 1917. Life history studies on Montana trematodes. Illinois Biol. Monogr. 4, p. 1-101.

198. Foster R. 1964. The effect of temperature on the development of Schistosoma mansoni Sambon 1907 in the intermediate host. Journal of Tropical Med. Hyg. 67, p. 289-92.

199. Fournier A. 1984. Photoreceptors and photosensitivity in platyhelminthes. Photoreception and vision in invertebrates (Plenum Publishing Corporation), p. 217-239.

200. Fournier A., Pages J., R., Touassem R., Mouahid A. 1989. Can tegumental morphology be used as a taxonomic criterion between Schistosoma japonicum, S. intercalatum and S. bovis. Parasitology Research 75, p. 375-380.

201. Fournier A., Xia M., Combes C. 1986-1987. Etudeultrastructurale du sporocyste-fils de Schistosoma japonicum: comparaison avec le sporocyste-fils des autres Schistosomes. Annales des Sciences Naturelles, Zoologie. Paris. 13, p. 5-10.

202. Frank G. H. 1966. The effect of temperature on the rate of development and emergence of schistosome cercariae. Zoologica Africana. 2, p. 211-221.

203. Fried B. 1985. Maintenance of Echinostoma revolutum (Trematoda) in the laboratory. Proceeding of the Pensylvania Academy of Science 59, p. 27-28.

204. Fried B., Bennet M. C. 1979. Studies on encystment of Echinostoma revolutum cercariae. Journal of Parasitology 65, p. 38-40.

205. Fried B., Huffman J. 1996. The biology of the intestinal trematode Echinostoma caproni. Advances in Parasitology. 38, p. 311-368.

206. Fried B., Idris N., Ohsawa T. 1995. Experimental infection of juvenile Biomphalaria glabrata with cercariae of Echinostoma trivolvis. Journal of Parasitology. 81, p. 308-310.

207. Fried B., Schmidt K. A, Sorensen R. E. 1997. In vivo and ectopic encystment of Echinostoma revolutum and chemical excystation of the metacercariae. Journal of Parasitology. 83, p. 251-254.

208. Fried B., Weaver L. J. 1969. Effects of temperature on the development and hatching of eegs of the trematode Echinostoma revolutum. Transactions of the American Microscopical Society. 88, p. 253-257.

209. Fuhrmann 0. 1916. Notes helminthologique Suisse. II. Une nouvelle espece de cercaire a que fourchue. Rev. Suisse zool. 24 (4), p. 389-393.

210. Canzonier W. J. 1974. Tissue grafts in the American oyster, Crassostrea virginica. Proc. Natl. Shellfish. Assoc., 64, p. 92-101.

211. Gerard C., Mone H., Theron A. 1993. Schistosoma mansoni Biomphalaria glabrata: dynamics of the sporocyst population in relation to the miracidial dose and the host size. Can. Journ. Zool. 71, p. 1880-1885.

212. Giovannola A. 1936. Inversion in the periodicity of emission of cercariae from their snail hosts by reversae of light and darkness. Journal of the Parasitology 22 (3), p. 292-295.

213. Clegg J. A. 1965. In vitro cultivation of Schistosoma mansoni. Ecperimental Parasitology. 16 (133).

214. Gorbushin A. M. 1997. Field evidence of trematode-induced gigantism in Hydrobia spp. (Gastropoda: Prosobranchia). Journ. mar. biol. Ass. U. K. 77, p. 785-800.

215. Grobben G. 1882. Doliolum und sein Generations wechsel nebst Bemerkangen uber den Generationswechsel bei Acalephen, Cestoden und Trematoden. Arb. Zool. Inst. Univ. Wien, 4 (2), p. 201-298.

216. Grosholz E. D. 1994. The effect of host genotype and spatial distribution on digene parasitism in a bivalve population. Evolution. 48, p. 1514-1524.

217. Guilford H. G. 1958. Observations on the development of the miracidium and the germ cell cycle in Heronimus chelydrae MacCallum (Trematoda). Journal of Parasitology 44 (1), p. 6474.

218. Gumble A., Otori Y., Ritchie L. S, Hunter G. W. 1957. The effect of light, temperature and pH on the emergence of Schistosoma japonicum cercariae from Oncomelania nosophora. Nransactions of American Microscopical Society. 76, p. 87-92.

219. Haas W. 1969. Reizphysiologische Untersuchungen an Cercarien von Diplostomum spathaceum, Zeitschrift fur vergleichende Physiologie. 64, p. 254-287.

220. Haight M., Davidson D., Pasternak J. 1977a. Relationship between nuclear morphology and phases of the cell cycle during cercarial development of the digenetic trematode Trichobilharzia ocellata. Journ. Parasitol. 63 (2), p. 267-273.

221. Haight M., Davidson D., Pasternak J. 1977b. Cell cycle analysis in developing cercariae of Trichobilharzia ocellata (Trematoda, Schistosomatidae). Journ. Parasitol. 63 (2), p. 274281.

222. Hadorn E., Wehner R. 1986. Allgemeine Zoologie. Georg Thieme Verlag Stuttgart, N. Y. 515 s.

223. Hansen E. L. 1976. A cell line from embryos of Biomphalaria glabrata (Pulmonata) : establishment and characteristics. In "Invertebrate tissue culture : Research applications". Academic Press, New York, USA. p. 75-99.

224. Hansen E. L., Hansen J. W. 1980. Present state of culture of schistosomes; limitations, improvements, applications to control. In "The in vitro cultivation of the Patogens of tropical di-seases". Tropical Disease Research Series. 3, Schwabe, Basel.

225. Heyneman D. 1960. On the origin of complex life cycles in digenetic flukes. Libro Hamenaje al dr. Eduardo Caballero Jubileo 1930-1960. Mexico, p. 133-152.

226. Heyneman D., Lim H. K., Jeyarasasingam U. 1972. Antagonism of Echinostoma liei (Trematoda: Echinostomatidae) against the trematodes Paryphostomum segregatum and Shistosoma mansoni. Parasitology 65, p. 223-233.

227. Hirai H., Agatsuma T. 1991. Triploidy in Paragonimus westermani. Parasitology Today. 7 (1), 1991.

228. James B. L., Bowers E. A. 1967. Reproduction in the daughter sporocyst of Cercaria bucephalopsis haimeana (Lacaze-Duthiers, 1854), (Bucephalidae) and Cercaria dichtoma Lebour, 1911 (non Muller) (Gymnophallidae). Parasitology. 57(4), p. 607-625.

229. Jeyarasasingam U., Heyneman D., Lim H.-K. & Mansour N. 1972. Life cycle of new echinostome from Egupt, Echinostoma liei sp. nov. (Tematoda: Echinostomatidae). Parazitology. 65, p. 203-22.

230. Joky A., Matricon-Gondran M., Benex J. 1985. Response to the amoebocyte-producting organ of sensitized Biomphalaria glabrata after exposure to Echinostoma caproni miracidia. Journal of Invertebrate Pathology 45, p. 28-33.

231. Jones G. E., Schoentgen F., Partridge T. 1976. Journ. Cell. Sci. 22, p. 21-33.

232. Joubert P. H., de Kock K. N. 1988. An evaluation of baby fish as a suitable diet for the freshwater snail, Biomphalaria pfeifferi glabrata (Say). J. Limnol. Soc. sth. Afr. 14, p. 119-120.

233. Jourdane J. 1982. Etude des mécanismes de rejet dans les couples mollusque-schistosome incompartibles a partir d'infestations par voie naturelle et par transplantation microchirurgicales de stades parasitaires. Acta Tropica. 39, p. 325-335.

234. Jourdane J., and Cheng T. C. 1987. The two-phase recognition process of allografts in a Brazilian strain of Biomphalaria glabrata. Journal of Invertebrate Patology. 49, p. 145-158.

235. Jourdane J., Theron A. 1980. Schistosoma mansoni: cloning by microsurgical transplantation of sporocysts. Experimental Parasitology. 50, p. 349-357.

236. Jourdane J., Theron A., Combes C. 1980. Demonstration of several sporocyst generations as a normal pattern of reproduction of Schistosoma mansoni. Acta Tropica. 37,177-182.

237. Jourdane J., Kulo S.D. 1981. Etude experimentale du cycle biologique de Echinostoma togoensis n. sp. parazite a l'état larvaire de Biomphalaria pfeifferi au Togo. Annals of Parasitology. Paris. 56,477-88.

238. Jourdane J., Kulo S. D. 1982. Perspectives d'utilisation de Echinostoma togoensis Jourdane and Kulo, 1981 dans le controle biologique de la bilharziose intestinale en Afrique. Ann. Parasitol. (Paris). 57,443-451.

239. Jourdane J., Mounkassa S. B. 1986. Topographie shifting of primari sporocysts of Schistosoma mansoni in Biomphalaria pfeifferi as result of confection with Echinostoma caproni. Journal of Invertebrate Pathology. 48 (3), 269-274.

240. Jourdane J., Xia M. 1987. The primary sporocyst stage in the life cycle of Schistosoma japonicum (Trematoda: Digenea). Trans. Am. Microsc. Soc. 106, p. 364-372.

241. Kanev I. 1985. On the morphology, biology, ecology and taxonomy of E. revolutum group (Trematoda: Echinostomatidae: Echinostoma). Doctoral Dissertation. Acad. Sci. Sofia, Bulgaria.

242. KaHeB H. 1987. MHKaricyjinpaHe a HHaKTHBHpaHe Ha cnopon,HCTH Ha Echinostoma revolutum (Froelich, 1802) (Trematoda: Echinostomatidae) ot tbkahhte h xemojinmcfjata ha OXJHOBH Lymnaea stagnalis (L.) (Mollusca: Gastropoda). XejiMHHTOJiorna. 24, c. 26-31.

243. Kendall S. B. 1965. Relationships between the species of Fasciola and their molluscan host. Adv. Parasitol. 3, p. 59-98.

244. Kendall S. B., McCullough. 1951. The emergence of the cercariae of Fasciola hepatica from the snail Lymnaea trunc.atula. Journal of Helminthology. 25, p. 77-92.

245. Khalil G. M., Cable R. M. 1968. Germinal development in Philophthalmus megalurus (Cort, 1914) (Trematoda, Digenea). Zeitschrift fur Parasitenkunde. 31, p. 211-231.

246. Kinoti G. K., Bira R. G., Barker M. 1971. Electron microscope and histohemical observations on the daughter sporocyst of Schistosoma mattheei and Schistosoma bovis. Joum. Helminthol. 45, p. 237-244.

247. Kostova T. V., Chipev N. H. 1991. A model of the dynamics of intramolluscan trematode populations: some problems concerning oscillatory behavior. Computers Math. Applic. 21, 15 p.

248. Krejci K.G. & Fried B. 1994. Light and scanning electron microscopic observations of the eggs, daughter rediae, cercariae, and encysted metacercariae of Echinostoma trivolvis and E. caproni. Parazitology Research. 80, p. 42-7.

249. Kuris A. M. 1980. Effect of exposure to Echinostoma liei miracidia on growth and survival of young Biomphalaria glabrata snails. International Journal for Parasitology 10,303-308.

250. Kuris A. M. 1994. Community structure: Larval trematodes in snail host. Annul. Rev. Syst. 25, p. 189-217.

251. C.-T. Lee K.-M. 1995. Schistosoma japonicum, zoophilic strain, in Oncomelania hupensis chiui and 0. h. formosana: Miracidial penetration and comparative histology. Journal Parasitology 81, p. 708-713.

252. C.-T. Lee K.-M. 1996. Pattern of Emergence and the effects of Temperature and Light on the emergence and survival of Heterophyid cercariae (Centrocestus formosanus and Haplorchis pumilio). Journal of Parasitology 82(2), p. 347-350.

253. Majarian H. H. 1954. Developmental stages in the life cycle of Echinoparyphium flexum (Linton, 1892) Dietz, 1910 (Trematoda: Echinostomatidae). Journal of Morfology 94, p. 165-197.

254. Malek E.A. 1985. Snail hosts of Schistosomiasis and other snail-transmitted diseases in tropical america: A Manual. Washington: World Health Organization, Scientific Publication. 478p.

255. Malek E. A., Cheng T. C. 1974. Medical and Economic Malacology. Academic Press, N. Y. p. 1398.

256. Madhavi R. 1978. Life history of Genarchopsis goppo Ozaki, 1925 (Trematoda: Allocreadiidae) from the freshwater fish Channa punctata. Journ. Helminthol. 52, p. 251-259.

257. Mao C. P., Wu C. C. 1949. Studies on the emergence of cercariae of Schistosoma japonicum from their host, Oncomelania hupensis. American Journal of Tropical Medicine 24, p. 937-944.

258. Mathias P. 1925. Recherches expérimentales sur le cycle évolutif de quelques trematodes. Bull. Biol. 49, p. 1-123.

259. Mayr E. 1969. Animal species and evolution. Oxphord, 824 p.

260. McCarthy A. M., Kanev I. 1990. Pseudechinoparyphium echinatum (Digenea: Echinostomatidae): experimental observations on cercarial specificity toward second intermediate hosts. Parasitology 100, p. 423-428.

261. McLaughlin J. D. 1975. Experimental studies on the life cycle of Cyclocoelum mutabile (Zeder) (Trematoda, Cyclocoelidae). Canad. Journal of Zoology 54, p. 48-54.

262. Meece J., Nollen P. 1996. A comparison of the adult and miracidial stages of Echinostoma paraensei and E. caproni. International Journal for Parasitology. 26 (1), p. 37-43.

263. Michelson E. H. 1964. Miracidia-immobilising substances in extracts prepared from snails infected with Schistosoma mansoni. Amer. Journ. Med. Hyg. 13 (1), p. 36-42.

264. Miller J. A. 1989. Clockwork in the brain. Biologists use a mutant hamster to identify the sources of daily rhythms. Biossience 2, p. 75-78.

265. Mohamed S. H. 1992. Ultrastructural aspects of intramolluskan developing cercariae of Echinostoma liei. Journal of the Egiptian Society of Parasitology 22, p. 479-87.

266. Mone H. 1991. Influence of non-target molluscs on the growth of Biomphalaria glabrata infected with Schistosoma mansoni: corelation between growth and cercarial production. Journ. Moll. Stud. 57, p. 1-10.

267. Mone H., Fournier A. 1994. Effect of snail-conditioned water on survival and host-searching behaviour of schistosome miracidia. Anim. Behav. 48, p. 1-8.

268. Monroy E. P., Loker E.C., 1993. Production of heterogeneous carbohydrate-binding proteins by the host snail Biomphalaria glabrata following the exposure to Echinostoma paraensei and Schistosoma mansoni. Journal of Parasitology 79, p. 416-423.

269. Moravec F., Barus V., Risavy B., Yousif F. 1974. Observations on the development of two echinostomes, Echinoparyphium recurvatum and Echinostoma revolutum, the antagonists of human schistosomes in Egypt. 21, p. 107-126.

270. Mouahid A. 1994. Biologie et ecologie de la transmission dans le modele Schistosoma bovis. These de Doctorat d'Etat. Marrakech: Univ. cadi ayyad. Maroc. 467 p.

271. Mouahid A. , Mone H. 1990. Interference of Echinoparyphium elegans with the host-parasite system Bulinus truncatus-Schistosoma bovis in natural conditions. Annals of Tropical Medicine and Parasitology 84 (4), p. 341-348.

272. Moukassa J. B., Jourdane J. 1990. Dynamics of the leukocytic response of Biomphalaria glabrata during the larval development of Schistosoma mansoni and Echinostoma liei. Journal of Invertebrate Pathology 55, p. 306-311.

273. Moukrim A, Zekhnini A., Rondelaud D. 1995. A comparative study of the shedding of cercariae of Schistosoma haematobium in newborn Bulinus truncatus. Parasitology 81, p. 537-539.

274. Murrils R. J., Reader T. A. J., Southgate V. R. 1985a. Studies on the invasion of Notocotylus attenuatus (Notocotylidae, Digenea) into its snail host Lymnaea peregra. The contents of the fully embryonated egg. Parasitology 91, p. 397-405.

275. Narain A. S. 1972. Journ. Morphology.137, p. 63-70.

276. Niemann G. M., Lewis F. A. 1990. Schistosoma mansoni: influence of Biomphalaria glahrata size on susceptibility to infection and resultant cercarial production. Experimental Parasitology 70, p. 286-292.

277. Nieuwkoop P. D., Sutasurya L. A. 1981. Primordial germ cells in the invertebrates. Cambridge. 258 p.

278. Niewiadomska K. 1980. Acta parasit. Polon. 26 (15), p. 137-142.

279. Noda S. 1992. Effect of excretory-secretory products of Echinostoma paraensei larvae on the hematopoetic organ of M-line Biomphalaria glabrata snails. Journal of Parasitology. 78, p. 512-517.

280. Nojima H., Noda S., Sato A. 1982. Serial implantations of larval Schistosoma mansoni from infected to uninfected snails. Journal of Parasitology. 66, p. 478-482.

281. Nojima H., Sato A. 1982. Schistosoma mansoni and Schistosoma haematobium: Emergence of schistosome cercariae from snails with darkness and illumination. Experimental Parasitology 53, p. 189-198.

282. Nolf L. O., Cort W. W. 1933. On immunity reactions of of snails to the penetration of the cercariae of Cotylurus flabellifomis. Journal of Parasitology. 20, p. 38-48.

283. Nollen P. M. 1990a. Echinostoma caproni: mating behavior and the timing of development and movement of reproductive cells. Journal of Parasitology. 76, p. 784-789.

284. Nollen P. M. 1990b. Escape of rediae from miracidia of Philophthalmus megalurus and Philoph-thalmus gralli during in vitro culture. Journal of Parasitology. 76, p. 725-729.

285. Oliver J. H., Schort R. B. 1956. Longevity of miracidia of Schistosomatium douthitti. Experimental Parasitology. 3, p. 238-249.

286. Palm V. 1962 Glycogen und Fett bei Trematodenlarvenstadien am Beispiel von Dolichosaccus rastellus und Haplometra cylindraceum (Plagiorchiidae). Acta parasitol. Polon. X (9), p. 117-123.

287. Palmieri J. R., Sullivan J. T., Ow-Yang C. K. 1977. Occurrence of a sporocyst generation of Fasciola hepatica in the molluscs Lymnaea rubignosa. Journal of Parasitology. 63, p. 299-300.

288. Pan C. T. 1958. The general histology and topographic microanatomy of Australorbis glabratus. Bulletin of the Museum of Comparative Zoology at Harvard college. 119, p. 237-299.

289. Paraense W. L., Correa L. R. 1963. Variation in susceptibility of populations of Australorbis glabratus to a strain of Schistosoma mansoni. Revista do Instituto de Medicine Tropical Sao Paulo. 5, p. 15-22.

290. Partridge T., Davies P. S. 1974. Journ. Cell. Sci. 14, p. 319-330.

291. Patterson J. T. 1927. Polyembryony in animals. Quarterly Reviews in Biology 2, p. 399-462.

292. Pearson J. C. 1961. Observations on the morphology and life cycle of Neocliplostomum intermedium (Trematoda: Diplostomotidae). Parasitology 51 (1-2), p. 133-172.

293. Pearson J. C. 1972. A phylogeny of life-cycle patterns of the Digenea. Adv. Parasitol. 10, p. 153189.

294. Pearson J. C. 1992. On the position of the digenean family Heronimidae: an inquiry into a cladistic classification of the Digenea. Syst. Parasitol. 21, p. 81-166.

295. Pesigan T. P., Hairston N. G., Jauregui J. J. Garcia E. G., Santos A. T., Santos B. C., Besa A. A. 1958. Studies of Schistosoma japonicum infection in the Philippines. 2. The molluscan host. Bull. Wld. Hlth. Org. 18, p. 481-578.

296. Pfluger W. 1980. Experimental epidemiology of schistosomiasis. I. The prepat ment period and cercarial production of Schistosoma mansoni 'mBiompha laria snails at various constant temperatures. Parasitology research 63, p. 159-169.

297. Prah S. K., James C. 1977. The influence of physical factors on the behaviour and infectivity of miracidia of Schistosoma mansoni and S. haematobium. II. Effect of light and depth. Journal of Helminthology 52, p. 115-120.

298. Rakotondravao, Moukrim A., Hourdin P., Rondelaud D. 1992. Redial generations of Fasciola gigantica in the pukmonate snail Lymnaea truncatula. Journal of Helminthology 66, p. 159-166.

299. Ratcliffe N. A., Rowley A. F., Fitzgerald S. W., Rhodes C. P. 1985. Interbrate immunity: Basic concepts and recent advances. Int. Rev. Cytol. 97, p. 183-350.

300. Rea J. G., Irwin S.W.B. 1991. Behavioural responses of the cercariae of Cryptocotile lingua (Digenea: Heterophyidae) to computer-controlled shadow sequences. Parasitology 103, p. 471-477.

301. Rea J. G., Irwin S.W.B. 1995. The effect of age, temperature and shadow stimuli on activity patterns of the cercariae of Cryptocotyle lingua (Digenea: Hetero phyidae). Parasitology. Ill, p. 95-101.

302. Rees F. G. 1940. Studies on the germ cell cycle of the digenetic trematode Parorchis acanthus Micoll. Structure of the miracidium and germinal development in the larval stages. Parasitology. 32, p. 372-391.

303. Rees F. G. 1948. A study of the effect of light, temperature and salinity on the emergence of Cercaria purpurae Lebour from Nucella lapillus (L.). Parasitology 38 (4), p. 228-242.

304. Reddy A., Fried B. 1996. Egg laying in vitro of Echinostoma caproni (Trematoda) in nutritive and nonnutritive media. Parasitology Research

305. Renwrantz L. 1979. Zool. J. Phisiol. 83, p. 283-333.

306. Renwrantz L., Schancke W., Harm H., Erl. H., Liebsch H., Gercken J. 1981. Discriminative ability and function of the immunobiological recognition system of the snail Helix pomatia. Journ. Comp. Phisiol. 149, p. 535-546.

307. Reuss H. 1903. Die Cerkaria und Sporozyste des Distomum duplicatum. Zeitschr. wiss. Zool. 74, p. 458-477.

308. Richards C. S. 1975a. Genetic factors in susceptibility of Biomphalaria glabrata for different strains of Schistosoma mansoni. Parasitology 70, p. 231-241.

309. Richards C. S. 1975b. Genetic studies of pathologic conditions and susceptibility of juveniele Biomphalaria glabrata. Ann. N. Y. Acad. Sci., 266, p. 394-410.

310. Richard J., Brygoo E.R. 1978. Cycle Ovolutif du Trematode Echinostoma caproni Richard, 1964 (Echinostomatoidea). Paris. Annales de Parasitologic 53, p. 265-75.

311. Richards C. S., Merritt J. W. 1972. Genetic factors in the susceptibility of juvenile Biomphalaria glabrata to Schistosoma mansoni infection. Amer. Journ. Trop. Med. Hyg. 21, p. 425434.

312. Richards C. S., Minchella D. J. 1986. Genetic studies of biphallic Biomphalaria glabrata. Malacologia 27, p. 243-247.

313. Richards C. S., Knight M., Lewis F. A. 1992. Genetics of Biomphalaria glabrata and its effect on the outcome of Schistosoma mansoni infection. Parasitology Today 8, p. 171-174.

314. Rollinson D., Simpson A. J. G. 1987. The biology of schistosomes from genes to latrines. London: Academic Press.

315. Rondelaud D. 1994. Fasciola hepatica: the infection rate and the development of redial generations in Lymnaea truncatula exposed to miracidia after experimental desiccation and activation in water. Journal of Helminthology 68, p. 63-66.

316. Rondelaud D., Barthe D. 1982. Les generations rediennes de Fasciola hepatica L. chez Lymnaea truncatulaMuller. A propos des effets de plusieurs. Ann Parasitol Hum Comp. 57, p. 245262.

317. Rossbash E. 1906. Beitrage zur Anatomie und Entwicklungsgeschichte der Redien. Zeitschrift fur Wissenschaftliche Zoologie 84, p. 361-445.

318. Runham N. W., Hunter P. J. 1970. "Terrestrial Slugs." Hutchinson, London.

319. Sapp K. K., Meyer K. A., Loker E. S. 1998. Intramolluskan development of the digenean Echi-nostoma paraensei: rapid production of a unique mother redia that adversely affects development of conspecific parasites. Invertebrate Biology 117 (1), p. 20-28.

320. Schaller G. 1960. Beitrage zum Problem der Keimzellenbildung bei Trematoden-larven. Zeitschr. Parasitenk. 20 (2), p. 146-151.

321. Schmidt K. A., Fried B. 1996. Emergence of cercariae of Echinostoma trivolvis from Helisoma trivolvis under different conditions. Journal of Parasitology 82 (4), p. 674-676.

322. Schell S. C. 1965. The life history of Haematoloechus breviplexus Stafford, 1902 (Trematoda: Haplometridae McMullen, 1937) with emphasis on the development of the sporocysts. Journal of Parasitology 51 (4), p. 587-593.

323. Schutte C. H. J. 1974a. Studies on the South African Strain of Schistosoma mansoni Part 1: Morphology of the miracidium. South African Journal of Science 70, p. 299-302.

324. Schutte C. H. J. 1974b Studies on the South African Strain of Schistosoma mansoni Part 2: The Intra-molluscan larval stages. South African Journal of Science 70, p. 327-346.

325. Sewel R. B. S. 1922. Cercariae indicae. Indian Journ. Med. Res. Suppl. 10. 360 p.

326. Shimazu T., Oshima T. 1983. Morphology and development of a lung fluke of the genus Paragonimus (Trematoda: Paragonimidae) from Primorye, USSR, in snails, Semisulcospiralibertina, in the laboratory. Journal Nagano-Ken Junior College. 38, p. 715.

327. Short R. B., Mensel M. Y. 1959. Chromosomes in parthenogenetic miracidia and embryonic cercariae of Schistosoma douthitti. Exp. Parasitol. 8,249-264.

328. Sindermann C. J., Farrin A. E. 1962. Ecological studies of Cryptocotyle lingua (Trematoda: Heterophyidae) whose larvae cause "Pigment spots" of marine fish. Ecology 43 (1), p. 69-75.

329. Sloss B., Meece J., Romano M., Nollen P. 1995. The genetic relationships between Echinostoma caproni, E. paraensei, and E. trivolvis as determined by electrophoresis. Journal of Helminthology.

330. Sminia T., Barendsen L. 1980. Acomparative morphological and enzymz histochemical study on blood cells of the freshwater snails Lymnaea stagnalis, Biomphalaria glabrata, and Bulinus truncatus. Journal of Morphology 165, p. 31-39.

331. Sminia T., Pietersma K., Scheerboom J. E. M. 1973. Ztschr. Zellforsch. und Mikrosk. Anat. Bd. 141, p. 561-573.

332. Sminia T. 1974. Hematopoiesis in the fresh water snail Lymnaea stagnalis studied by electron microscopy and autoradiography. Cell Tiss. Res. 150,443-454.

333. Sminia T., Borghart-Reinders E., Van de Linde A. W. 1974. Encapsulation of foreign materials experimentally introduced into the freshwater snail Lymnaea stagnalis. An electron microscopic and autoradiographic study. Cell Tissue Res. 153, p. 307-326.

334. Smyth J. D. 1990. « In vitro cultivation of parasitic helminths ». (J. D. Smyth, Ed.), 276 p. CRC Press, Boca Raton, Ann Arbor, Boston, USA.

335. Sobhon P., Upatham E. S. 1990. Snail hosts, life-cycle, and tegumental structure of oriental schistosomes. Lincoln Promotion, Thailand. 335 p.

336. Sousa W. P. 1993. Interspecific antagonism and species coexistence in a diverse guild of larval trematode parasites. Ecological Monographs 63 (2), p. 103-128.

337. Southgate V. R. 1970. Observations on the epidermis of the miracidium and on the formation of the tegument of the sporocyst of Fasciola hepatica. Parasitology 61, p. 177-90.

338. Sparks A. K. 1972. Invertebrate pthology: Noncommunicable disease. N. Y.: Acad, press.

339. Standen O. D. 1952. Experimental infection of Australorbis glabratus with Schistosoma mansoni. I. Individúale and mass infection of snails, and the relationship of infection to tempe-ratures and season. Ann. Trop. Med. Parasitol. 46, p. 48-53.

340. Stauber L. A. 1950. The fate of India ink injected intracardially into the oyster, Ostrea virginica, Gmelin. Biol. Bull. 98, p. 227-241.

341. Stein P. C., Bash P. F. 1977. Metacercarial cyst formation in vitro of Echinostoma paraensei. Journal of Parasitology 63, p. 1031-1040.

342. Stirewalt M. A. 1954. Effect of snail maintenance temperatures on development of Schistosoma mansoni. Experimental Parasitology 3 (6), p. 504-516.

343. Stuncard H. W. 1957. The morphology and life history of the digenetic trematode Microphallus similis. Biol. Bull. 112, p. 254-266.

344. Sturrock R. F., Sturrock B. M. 1970. Observations on the susceptibility to Schistosoma mansoni from St. Lucia of several caribean strains of snails of the genus Biomphalaria. W. I. Med. J. 19, lp. 1-13.

345. Sullivan J. T. 1988. Hematopoiesis in three species of gastropods following infection with Echinostoma paraensei (Trematoda: Echinostomatidae). Trans. Am. Microsc. Soc. 107, p. 355-361.

346. Sullivan J. T. 1990 Long-term survival of heterotopic allogrfts of the amoebocyte-producing organ in Biomphalaria glabrata (Molluska: Pulmo nata). Trans. Am. Microsc. Soc. 109, p. 52-60.

347. Sullivan J. T., Cheng T. C., and Howland K. H. 1984. Mitotic responses of the anterior pericardial wall of Biomphalaria glabrata (Mollusca) subjected to challenge. Journal of Invertebrate Patology 44, p. 114-116.

348. Suomalainen E. 1950. Partenogenesis in animals. Advances in Genetics. 3, p. 193-253.

349. Szidat L. 1924. Beitrage zur Entwicklungsgeshichte der Holostomiden. II. Zool. Anz. 61 (11/12), p. 249-266.

350. Szidat L. 1932. Zur Entwicklungsgeschichte der Cyclocoeliden. Der Lebenscyclus von Tracheophilus sisowi. Zool. Anz. 100, p. 205-213.

351. Szidat L. 1937. Uber die Entwicklungsgeschichte von Sphaeridiotrema globulus Rud. 1914 und die Stellung der Psilostomidae Odhner ins naturlicken System. Zeitschr. for Parasitenk. 9, p. 529-542.

352. Takahashi T., Mori K., Snigeta Y. 1961. Phototactic, termotactic and geotactic responses of miracidia Schistosoma japonicum. Japanase Journal of Parasitology 10, p. 686-691.

353. Targett G. A. T., and D. L. H. Robinson. 1964. Observations on the in vitro survival of miracidia of Schistosoma mansoni. Ann. Trop. Med. Parasitology 58, p. 453-456.

354. Tchuem Tchuente L. A, Imbert-Establet D., Southgate V. R., Jourdane J. 1994. Interspecific stimulation of parthenogenesis in Schistosoma intercalatum and S. mansoni. Journal of Helminthology 68, p. 167-173.

355. Tennent D. 1906. A study of the life history of Bucephalius hamianusa, a parasite of the Oyster. Quart. Journ. Micr. Sei. 49 (4), p. 635-690.

356. Theron A. 1985. Dynamiques de production des cercaires de Schistosoma mansoni en relation avec les variations de la dose miracidiale proposee au mollusque vecteur Biomphalaria glabrata. Ann. Parasitol. Hum. Comp. 60, p. 665-674.

357. Theron A., Gerard C., Mone H. 1992. Early enhanced growth of the digestive gland of Biomphalaria glabrata infected by Schistosoma mansoni: side effect or parasite manipulation? Parasitol. Res. 78, p. 445-450.

358. Theron A., Mone H. 1986. Shedding patterns of Schistosoma mansoni and Ribeiroroia marini cercariae from a mixed infection of Biomphalaria glabrata. Joural of Helmintology 60 (4), p. 255-259.

359. Theron A., Pointier J. P. Ecology, dynamics, genetics and divergence of trematode populations in heterogeneous environments: the model of Schistosoma mansoni in the insular focus of guadeloupe. Research and Reviews in Parasitology 55, p. 49-64.

360. Thomas A. P. 1883. The life history of the liver fluke. Quart Journ. Micr. Sci. 23, p. 90-133.

361. Timmermann W. 1936. Zur Biologie von Cercaria C (Szidat) und Diplostomum volvens (von Nordmann). Jnaug.-Diss. Munchen. 63 p.

362. Tripp M. R. 1961. The fate of foreign materials experimentally introduced into the snail Austra-lorbis glabratus. Journal of Parasitology 47,745-751.

363. Upatham E. S. 1973. Location of Biomphalaria glabrata (Say) by miracidia Schistosoma mansoni Sambon in natural standing and running waters on the West Indian island of St. Lucia. Int. Journ. Parasitol. 3, p. 289-297.

364. Upatham E. S., Kruatrachue M., Viyanant V., Khunborivan V., Kunatham L. 1985. Biology of Robertsiella kaporensis snails and Malaysian Schistosoma. Southe Asian J. Trop. Med. Pub. Hlth. 16, p. 1-9.

365. Van der Knaap W. P. W., Sminia T., Kroese F. G. M., Dikkeboom R. 1981. Elimination of bacteria from the circulation of the pond snail Lymnaea stagnalis. Dev. Comp. Immunol. 5, p. 21-32.

366. Van der Woude A. 1950. Germ cell cycle of Megalodiscus temporatus (Stafford, 1905) Harwood, 1932. Journ. of Parasitol. 36, p. 14-15.

367. Van der Woude A., Cort W. W., Ameel D. J. 1953. The early development of the daughter sporocysts of the Strigeoidea (Trematoda). Journ. of Parasitol. 39, p. 38-44.

368. Ward R. D., Lewis F. A., Yoshino T. P., Dunn T. S. 1988. Schistosoma mansoni: relationship between cercarial production levels and snail host susceptibility. Experimental Parasitology 66, p. 78-85.

369. West A. F. 1961. Studies on the biology of and Philophthalmus gralli Mathis and Leger, 1910 (Trematoda: Digenea). American Midland Naturalist 66, p. 363-383.

370. Wheeler N. C. 1939. A comparative study on the behaviour of four species of pleurolophocercous cercariae. Journal of Parasitology 25, p. 343-353.

371. Wilson R. A. 1969. Fine structure of the tegument of the miracidium of Fasciola hepatica L. Journal of Parasitology 55, p. 124-133.

372. Wilson R. A., Denison J. 1980. The parasitic castration and gigantism of Lymnaea truncatula infected with larval stages of Fasciola hepatica. Zeitschrift fur Parasitenkunde 61, p. 109119.

373. Wilson, R.A., R. Pullin, and J. Denison. 1971. An investigation of the mechanism of infection by digenetic trematodes: the penetration of the miracidium of Fasciola hepatica into its snail host Lymnaea truncatula. Parasitology 63, p. 491-506.

374. Whitfield P.J., Evans N.A. 1983. Parthenogenesis and asexual multiplication among parasitic platyhelmints. Parasitology 86, p. 121-60.

375. Woodhead A. E. 1931. The germ cell cycle in the Trematode family Bucephalidae. Trans Amer. Micr. Soc. 50, p. 169-187.

376. Woodhead A. E. 1955. The germ cell cycle in the Trematode family Brachylaemidae. Trans Amer. Micr. Soc. 74 (1), p. 28-33.

377. Woodhead A. E. 1957. Germ cell development in the first and second generations of Schistosomatiumdouthitti (Cort, 1914) Price, 1931 (Trematoda: Schistosomatidae). Trans Amer. Micr. Soc. 76 (2), p. 173-176.

378. Xia M., Imbert-Establet D., Jourdane J. 1990. Parthenogenesis in the genus Schistosoma electrophoretic evidence for this reproduction system is S. japonicum and S. mansoni. Parasitology Research, p. 2012-2016.

379. Xia M. Y., Jourdane J. 1991. Penetration and migration routes of Schistosoma japonicum miracidia hi the snail Oncomelania hupensis. Parasitology 103, p. 77-83.

380. Yoshino, T. P., Laursen J. R. 1995. Production of Schistosoma mansoni daughter sporocysts from mother sporocysts maintained in synxenic culture with Biomphalaria glabrata embryonic (BGE) cells. The Journal of Parasitology 81, p. 714-722.

381. Yssel E., Wolmarans C. T. 1989. Factors influencing the leukocyte concentration of the freshwater snail Bulinus africanus. Journal of Invertebrate Pathology 53, p. 269-271.

382. Zishke J. A. 1967. Redia populations of Echinostoma revolutum developing in snails of different sizes. Journal of Parasitology 53, p. 1200-1204.

383. Zishke J. A. 1968. Reproduction of Echinostoma revolutum rediae when transfered to uninfecred snails of different sizes. Journal Parasitology 54, p. 39-42.