Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.23, кандидат биологических наук Кочиш, Татьяна Юрьевна
- Специальность ВАК РФ03.00.23
- Количество страниц 156
Оглавление диссертации кандидат биологических наук Кочиш, Татьяна Юрьевна
1. Введение
2. Обзор литературы.
2.1. Общая характеристика парамиксовирусов
2.2. Респираторно-синцитиальный вирус крупного рогатого скота
2.2. Историческая справка
2.2.2. Распространение болезни, клинические признаки и патологоанатомические изменения
2.2.3. Классификация, морфология и физико-химические свойства РС-вируса
2.2.4. Репликация РС-вируса
2.2.5. Антигенные свойства РС-вируса
2.2.6. Спектр патогенности возбудителя п экспериментальных условиях
2.3. Культуральные свойства PC - вируса
2.3.1. Культивирование PC - вируса в различных клеточных системах
2.3.2. Условия и методы культивирования. Питательные среды, сыворотки, добавки
2.3.3. Цитопатический эффект РС-вируса
2.3.4. Гемагглютинация и гемадсорбция РС-вируса
2.4. Лабораторная диагностика PC - инфекции крупного рогатого скота
2.4.1. Выделение PC - вируса и его идентификация
2.4.2. Серологическая диагностика PC — инфекции крупного рогатого скота
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Биотехнология», 03.00.23 шифр ВАК
Разработка иммуноферментного набора для определения уровня антител к вирусу парагриппа - 3 крупного рогатого скота2004 год, кандидат биологических наук Филиппов, Сергей Юрьевич
Промышленные технологии изготовления компонентов моно- и комплексных диагностикумов инфекционных заболеваний животных2008 год, доктор биологических наук Матвеева, Ирина Николаевна
Разработка компонентов набора для определения уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей методом иммуноферментного анализа2006 год, кандидат биологических наук Коржов, Василий Васильевич
Серологический мониторинг вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота методом иммуноферментного анализа2011 год, кандидат биологических наук Сивков, Георгий Викторович
Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота: Диагностика на основе современных методов биотехнологии2001 год, доктор биологических наук Кузнецов, Дмитрий Павлович
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе»
1.1. Актуальность темы.
Одним из движущих факторов развития экономики н шей страны является научно-технический прогресс, способствующий ускорению развития народного хозяйства путем интенсификации науки и производства, внедрения новых технологий. Процесс интенсификации охватывает и биологию в самом широком смысле слова.
Перевод животноводства на промышленную основу наряду с большими техническими и экономическими преимуществами имеет ряд недостатков, ткаких как, создание благоприятной ситуации для массового распространения инфекционных заболеваний. В их числе и так называемые «малые» респираторные вирусные инфекции крупного рогатсл) скота [5]. Они вызываются как самостоятельно, так и в различных сочетаниях вирусами парагриппа-3 (ПГ-3), инфекционного ринотрахеита (ИРТ), вирусной диареи (В Д), аденовирусами, респираторно-синцитиальным вирусом (РСВ), нанося огромный экономический ущерб животноводству. Эти заболевания представляют значительную проблему в ветеринарии еще и потому, что протекают со сходными клиническими симптомами. По этой причине особенно велика роль лабораторной диагностики вирусных болезней крупного рогатого скота.
Одним из этиологических агентов, вызывающих вспынки острых респираторных заболеваний у крупного рогатого скота, овец и коз различного возраста является респиргторно-синцитиальный вирус (РСВ), представитель семейства парамиксовирусов, рода пневмовирусов.
Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота контагиозная болезнь клинически проявляющаяся повышением температуры, снижением аппетита, затрудненным дыханием, одышкой, истечением из носа, сильным кашлем с последующим развитием бронхопневмоний и интерстициальных эмфизем.
PC - инфекция не вызывает большого отхода животных, но тяжелое и длительное течение с осложнениями приводит к потере продуктивности, вынужденному убою крупного рогатого скота, нанося тем самым значительный экономический ущерб животноводству.
Однако, в отличие от других вирусных респираторнь: < инфекций, распространение и наносимый экономический ущерб этим заболеванием остаются изученными недостаточно, что связано со сложностью выделения и культивирования РС-вируса.
Это в свою очередь затрудняет получение в достаточном количестве и с необходимой инфекционной активностью вирусного сырья для диагностических препаратов и средств специфической профилактики.
Первоначально в 1957г. Ghanock R.M. et. al. [91] выделили PC-вирус человека и только в 1970г. Paccaud М.Р. et. al. [172] был выделен РС-вирус крупного рогатого скота антигенно-родственный р^спираторно-синцитиальному вирусу человека.
В настоящее время PC - инфекция крупного рогатого скота зарегистрирована во многих странах мира: Бельгии, Японии, Англии, США, Нидерландах, Венгрии, Чехии Словакии, Болгарии, в том числе и с 1975года в России (Халенев Г.А., Гуненков В. В.)
Необходимо отметить, что в России и за рубежом проводятся широкие исследования и получены положительные результаты по изучению и диагностике PC-инфекции человека.[35, 36, 45,48].
Но изучением PC-инфекции крупного рогатого скота и ее возбудителя занимаются мало, что подтверждается относительно немногочисленными данными зарубежной литературы.
В нашей стране имеется единственное опубликованное сообщение о выделении PC-вируса крупного рогатого скота Мартыновым Ю. В., Орловым
М.И. [37]. Но авторам не удалось культивировать вирус. ( ообщений о выявлении антител к PC-вирусу в сыворотках крови крупного рогатого скота на территории страны несколько больше. Об этом свидетельствуют данные Метревелли Г.Д. [40], Грязина В.Н. [19], Погуляевой А.В. и др. [25], Муравьева В.Н. и др. [17], Васильева А.В. и др. [52].
С 1977г. биологической промышленностью выпускается набор сухих диагностикумов для диагностики PC-инфекции крупного рогатого скота, разработчиками которого являются Гуненков В.В., Халенев Г.А. Набор применяют для обнаружения вирусного антигена в патматериале методом иммунофлуоресценции (ИФ), выявления вируса и его иден ификации в реакциях ИФ, связывания комплемента (РСК) и диффузной преципитации (РДП), а также для выявления специфических антител в сыворотке крови больных и переболевших животных в РДП. Однако его применение было очень ограничено, из-за трудностей интерпретации полученных данных. Ранее этот диагностический набор сыграл большую роль в диагностике РС-инфекции крупного рогатого скота в нашей стране, его применение позволило установить наличие инфекции.
Несмотря на то, что ветеринарная практика имеет в своем распоряжении большой набор диагностических сывороток и диалюстикумов, увеличение номенклатуры, улучшение качества и стандартизация диагностических препаратов для практических лабораторий по-прежнему остается важной задачей.
При диагностике вирусных и бактериальных инфекций в ветеринарии все более широкое применение находят такие современные и высокоточные методы, как молекулярная гибридизация и полимеразная цепная реакция (ПЦР). Однако ввиду их высокой стоимости, сложности в постановке и необходимости дорогостоящего оборудования и реактивов, метод определения антигенов и антител с помощью иммунофермент doro анализа (ИФА) при оптимальном соотношении себестоимость-чувствительность остается действенным инструментом в ветеринарной лабораторной практике. Высокая разрешающая способность этого метода обусловлена, главным образом, природой лиганда, степенью очистки компонентов и чувствительностью приборов, регистрирующих наблюдаемый эпфект. Таким образом, очистка и концентрирование вирусов является решающим условием при изготовлении диагностикумов и получении высокоактивных иммунных сывороток, используемых при создании компонентов, необходимых для проведения иммуноферментного анализа.
Быстрый и точный диагноз PC-инфекции крупного рогатого скота является решающим условием организации необходимых мер борьбы с этим заболеванием.
1.2. Цели и задачи исследования. ч»
В связи с вышеизложенным, целью настоящей работы являлась разработка набора на основе аффинно-очищенных и концентрированных, антигенов PC-вируса КРС, штамм «Ranaall», для использования их в качестве компонента набора при определении уровня антител в крови больных, переболевших и вакцинированных животных в иммуноферментном анализе.
Решались следующие задачи:
1.2.1. Сравнить условия репродукции PC-вируса, штамм «Randall», в первично-трипсинизированной культуре клеток почки (ПЭК), легкого (ЛЭК), трахеи (ТЭК), сердца (СЭК) эмбриона коровы и г гревиваемых линий ПТ-80 и Тауэр;
1.2.2. Разработать метод получения счищенного и концентрированного антигена PC-вируса, штамм «Randall», репродуцированного в культуре клеток.
1.2.3. Выделить IgG КРС, получить анти-IgG КРС антисыворотки на кроликах, выделить анти-IgG КРС антитела и синтезировать анти-IgG КРС иммунопероксидазный коньюгат.
1.2.4. Выделить поверхностные белки PC-вируса, штамм «Randall», иммобилизовать их в качестве лиганда на BrCN Сефарозу.
1.2.5. На полученном сорбенте выделить специфические к антигенам РС-вируса антитела и иммобилизовать их в качестве лиганда на BrCN Сефарозу.
1.2.6. Разработать компоненты набора для определения уровня антител к РС-вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментноъ анализе на основе аффинно-очищеных антигенов РС-вируса.
1.2.7. Исследовать воспроизводимость результатов по определению уровня антител к PC-вирусу КРС, полученных с использованием разработанного иммуноферментного набора;
1.2.8. Провести сравнительную оценку чувствительности и специфичности РН, РИГА, РСК и разработанного иммуноферментного Набора при определении уровня анти-РСВ антител в крови больного, переболевшего и вакцинированного крупного рогатого скота.
1.3. Научная новизна.
- В результате проведенной работы разработан одноэтапный метод получения очищенных и концентрированных антигенов РС-вируса, репродуцированного в культуре клеток, с помощью препаративной аффинной хроматографии на анти-РСВ IgG Сефарозе.
- При изучении в электрофорезе белков PC-вируса, штамм «Randall», которые отщепляются при обработке Тритоном Х-100, выявлено 9 структурных гликопротеинов с молекулярной массой от 28 до 180 кД.
- По результатам иммуноблотинга показано, что 6 белко: РС-вируса, которые отщепляются при обработке Тритоном Х-100, индуцируют выработку анти-РСВ антител в организме восприимчивых животных.
- разработана технология изготовления иммуноферментного набора для определения уровня антител к PC-вирусу крупного рогатого скота на основе аффинно-очищеных антигенов PC-вируса, штамм «Randall».
1.4. Практическая значимость работы.
Результаты проведенных исследований позволили разработать временную инструкцию по изготовлению набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе и проект нормативной документации. Набор предназначается для индикации и количественного определения анти-РСВ антител в сыворотках крови КРС.
Внедрение в практику ветеринарии иммуноферментного набора для определения уровня антител к респираторно-синцитиальь эму вирусу позволит решить проблему массового эпизоотологического обследования поголовья КРС, составляющего основу мероприятий по ликвидации и предупреждению распространения данного заболевания.
1.5. Апробация работы.
Материалы исследований доложены и обсуждены на заседаниях Ученого совета ВНИТИБП (2002 — 2004г.г.), на международной научно-практической конференции молодых ученых «Научные основы производства ветеринарных биологических биопрепаратов, Щелково (2004 г).
По материалам диссертации опубликовано 3 работы.
1.6. Структура и объем диссертации. Материалы диссертации изложены на 143 страницах машинописного текста и состоят из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты собственных исследований, обсуждение результатов, выводы и практические предложения, список литературы, содержащий 72 отечественных и 151 зарубежный источник, и приложение. В приложении представлены документы, подтверждающие результаты отдельных этапов работы, их научную и практическую ценность. Диссертация иллюст жрована 15 таблицами, 22 рисунками и 1 схемой.
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
Похожие диссертационные работы по специальности «Биотехнология», 03.00.23 шифр ВАК
Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и особенности проявления болезни в современных условиях ведения животноводства2011 год, доктор биологических наук Строганова, Ирина Яковлевна
Разработка тест-систем для диагностики герпесвирусной инфекции кошек на основе иммунологических методов2007 год, кандидат биологических наук Перепечаев, Константин Андреевич
Усовершенствование лабораторной диагностики аденовирусной инфекции крупного рогатого скота2006 год, кандидат биологических наук Лобова, Татьяна Петровна
Разработка технологии иммуноферментной тест-системы для выявления антител к аденовирусам крупного рогатого скота2001 год, кандидат биологических наук Третьякова, Ирина Владимировна
Разработка набора реагентов для оценки эффективности поствакцинального иммунитета к вирусу бешенства в серологических реакциях2005 год, кандидат биологических наук Акиньшина, Татьяна Викторовна
Заключение диссертации по теме «Биотехнология», Кочиш, Татьяна Юрьевна
6. Выводы.
6.1. При репродукции PC-вируса в культурах клеток наибольшее накопление вируса (до 6,0 lg ТЦД50/мл) было достигнуто при использовании первично-трипсинизированной культуры клеток легкого эмбриона коровы.
6.2. Разработана схема очистки и концентрирования PC-вируса, штамм «Randall», репродуцированного в культуре клеток ЛЭК, позволяющая получить препараты вируса очищенные на 99,6% в расчете на инфекционную дозу.
6.3. При изучении состава белков PC-вируса, штамп" «Randall», репродуцированного в культуре клеток ЛЭК, полученных при обработке вируссодержащей суспензии Тритоном Х-100 выявлено 9 структурных белков с ММ от 28 до 180 кД. По результатам иммуноблотинга 6 белков с ММ от 42 до 180 кД индуцируют выработку анти-РСВ антител в организме восприимчивых к PC-инфекции животных.
6.4. Показана возможность одноэтапной препаративной очистки антигенов PC-вируса из вируссодержащих суспензий с помощью препаративной аффинной хроматографии на анти-РСВ IgG Сефарозе 4В.
6.5. При определении разброса результатов полученных с исг эльзованием, разработанного Набора, установлено, что среди лунок кэффицент вариации не превышает 6%, между отдельными планшетами - менее 4%.
6.6. При сравнительной оценке специфичности и чувствительности, разработанного Набора, с РН и РНГА, установлено, что 41 образец сывороток был отрицателен во всех трех реакциях, 6 образцов сывороток имели в ИФА титр 1:200 и были отрицательными в РН и РТГА, 189 исследуемых сывороток были позитивными во всех трех реакциях. Следовательно, можно считать позитивными сыворотки, титр которых в ИФА равен или превышает 1:400.
6.7. Разработана технология изготовления набора для определения уровня антител к PC-вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе на основе аффинно-очищеных антигеноч PC-вируса, штамм «Randall».
7. Практические предложения.
На основе проведенной работы представлена нормативная документация:
Временная инструкция по изготовлению и контролю Набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе» на основе аффинно очищенных антигенов респираторно-синцитиального вируса, штамм «Randall»» утверждена директором ВНИТИБП.
Проект технических условий на «Набор реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе»,
Проект «Временного наставления по применению «Набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе».
Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Кочиш, Татьяна Юрьевна, 2004 год
1. А.с.№ 1116576 А 61 К 39/12. Способ получения сухого эритроцитарного диагностикума респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.// Г.Д. Метревели, 1Я. Чистова,
2. B.В. Гуненков, О.И. Шарабрин. СССР.- 3414875/30-15; Заяв. 29.04.80; Опубл. 31.03.82.
3. Астаханова Л.Н., Брайнингер М.Г. Методы получения стандартных диагностических сывороток к респираторно-синцитиальному вирусу // Лаб. дело.-1975.-№12. С.730-732.
4. Астаханова Л.Н., Брайнингер М.Г. О методах иммунизации пригодных для серийного приготовления диагностических сывороток к PC-вирусу. //Вопр. Этиологии, эпидемиологии, патогенеза и диагностики вирусных заболеваний: Сб./Свердловск, 1976. С.3-9.
5. Баженов К.С. Распространение вирусов парагриппа-3 и респираторно-синцитиальной инфекции среди телят на откорме в осенне-зимний период. //Бюлл. ВИЭВ. -1983.- Вып.50. С. 6-8.
6. Биология вирусов животных. Феннер Ф., Мак-Ослен Б.,Мисис С. Сэмбрук Дж., Уайт Д.; Под ред. В.И. Агола.: Мир. 1977. Т.1. СЛ 61336.
7. Борисович Ю.Ф., Кириллов Л.В. Инфекционные болезни животных: Справочник; Под ред. Д.Ф. Осидзе.-М.: Агропромиздат, 1987. С.77-78.
8. Боронкова Н.М. Сравнительное изучение методов идентификации риновирусов и диагностики вирусных инфекций: Автореф. Дис. Канд. Мед. Наук. -М.: 1972. С.23.
9. Бостанджиева Р., Текерлеков М., Хараламбиев Х.Е. Доказване на респираторно-синцитиальната вирусна инфекция по телятата через реакция за свырзване на комплемента. //Вет. Мед. Науки.- София. 1984. -XXI.- № 9. С.45-50.
10. Бостанджиева Р., Митов Б., Хараламбиев Х.Е. Иммунофлуоресцентное доказательство респираторно-синцитиальной вирусной инфекции у телят. //Вет. Мед. Науки. -София, 1985. -XXII. -№ 9. С.20-26.
11. Бостанджиева Р. Чувствительност на клетъчните культури към говяждия респираторно-синцитиален вирус. //Вет. Мед. Науки. — София,1986. -XXII. -№ 2. С.12-18
12. Бостанджиева Р. Культивирование и диагностика респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота: Автореф. Дис. Канд. Биол. Наук. -София, 1987. С.27
13. Букринская А.Г. Вирусология. -М.: Медицина, 1986. С.271-274.
14. Вирусология: Под. Ред. Б. Филдса, Д. Найпа. -М.: Мир, 1989. -Т.2. С.41-42. .
15. Вирусология: Под. Ред. Б. Филдса, Д. Найпа. -М.: Мир, 1989. -Т.2. С.473-480.
16. Волкова О.В., Елецкий Ю.К. Основы гистологии с гистологической техникой. —М.: Медицина, 1971.201-205.
17. Генчев Г. Энзоотии респираторных заболеваний телят с признаками респираторно-синцитиального вируса //.XXI Всемирный вет. Конгресс.-М., 1979.-Т.З. С. 101.
18. Грязин В.Н. Этиология респираторных заболеваний телят и меры специфической профилактики в условиях спецхоза. //Научно-технический бюллетень Всесоюзной академии с-х. Наук им. В.И. Ленина Сибирское отделение. —1982. -№ 11. С. 19-22У
19. Гуненков В.В., Халенев Г.А., Сюрин В.Н. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция. //Животноводство и ветеринария. -М., 1975.Т.№ 8. С.70-76.
20. Звягин И.В., Хорьков И.А., Токарик Э.Ф. Методические рекомендации по разработке режимов замораживания- высушивания биологических препаратов. М., 1981. С.ЗЗ.
21. Изоляция респираторно-синцитиальния вирус от телят с респираторни заболевания/Харапамбиев Х.Е., Бостанджиева Р. , Георгиев Г.К., Митов Б. // Вет. мед. науки.-София,1984.-ХХ1. №2-С. 3-7.
22. Испытание сухого эритроцитарного диагностикума ^С-инфекции крупного рогатого скота/ Метревели Г.Д., Борисович Ю.Ф., Чистова З.Я.и др.//Сб. науч. тр. ВГНКИ ветпрепаратов.1983.-С.57-60.
23. Казанцев А.П. Матковский B.C. Справочник по инфекционным болезням.-3-е изд. перераб. и доп.-М.: Медицина, 1986-С. 85-87.
24. Комплексная диагностика вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота /Погуляева JI.B., Иванов П.А., Пунская Н.И., Мунирова В.Ф. //Инфекционные болезни с-х животных. -1984. С. 102105.
25. Культура ткани в вирусологических исследованиях. /Анджапаридзе О.Г., Гаврилов В.И., Семенов В.Ф., Степанова Л.Г. //М.: Гос.изд.медлитер., 1962. С.57-146.
26. Культивирование клеток и тканей животных: Учебно-методическое пособие /Дьяконов Л.П., Глухов В.Ф., Поздняков А.А., Денисенко Г.Ф., Калмыкова Т.П. -Ставрополь, 1986. С.96.
27. Лабораторная диагностика респираторно-синцитиальной инфекции: Методические рекомендации /ЛещинскаяН.П., Покровская Е.П., Юрлова Т.И. и др.: Под ред. Я.С. Шварцмана; НИИ эпидемиологии, микробиологии и инфекц. болезней. -Алма-Ата, 1985. С.43.
28. Лакин Г.Ф. Биометрия. -М.: Высшая школа. 1980. С.294.
29. Лебедев Л.И., Авилов С.В. О некоторых биологических свойствах респираторно-синцитиального вируса. //Актуальные вопросы вет. вирусологии; Тез. докл. 5-й Всесоюзн. Науч. Конф.-Казань, 1980. С.83-84.
30. Лещинская Н.П., Юрлова Т.И. Эпидемиология гриппа и других ОРЗ: СБ.науч. тр. /ВНИИ МЗ СССР.-Л., 1983. С. 148-177.
31. Лещинская Н.П. Молекулярнаная биология и генетика вирусов гриппа: Сб.науч.тр. /ВНИИ МЗ СССР.-Л., 1983. С. 13-22.
32. Лещинская Н.П. Вакцинация против респираторно-синцитиальной инфекции //Вопр.вирусол. -1986. Т.31. № 5. С.517-527.
33. Лещинская Н.П., Камферин Л.Е. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция //Медицина и здравоохранение: Сер. Эпидемиология, вирусология и инфекционные заболевания. -М., 1986. С.77.
34. Лопатина О.А., Плетнева Е.А. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция //МРЖ, 1989., № 3. РЗ. С.50-54.
35. Лопатина О.А. Клинико-иммунологические показатели и лечение больных респираторно-синцитиальными вирусными заболеваниями: Автореф.дис.канд.мед.наук. -М., 1989. С.24.
36. Мартынов Ю.В., Орлов М.И. Выделение РСВ от телят с респираторным синдромом //Патогенез, лечение и грофилактика болезней жвачных животных в Западной Сибири. -Оме*:, 1985. С.22i 24.
37. Методические указания по применению перевиваемых клеточных культур для диагностики вирусных заболеваний сельскохозяйственных животных. -Госагропром СССР. М., 1988. С.12.
38. Методы лабораторной диагностики вирусных болезней животных: Справочник /Сюрин В.Н., Белоусова Р.В., Соловьев Б.В., Фомина Н.В. -М.: Агропромиздат, 1986. С.351.
39. Метревели Г.Д. Реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) в диагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота. //Сб.науч.тр. ВГНКИ ветпрепаратов. -М, 1983. С.99-100.
40. Метревели Г.Д. Биологические свойства вируса и серологическая диагностика PC-инфекции крупного рогатого скота: Автореф.дис.канд.биол.наук. -М.,1989. С. 19.
41. Метревели Г.Д., ГуненковВ.В. Современная диагностика — залог успешной борьбы с PC-инфекцией крупного рогатого скота //Тез. докл. Всесоюзн. науч. конф. по проблемам эпизоотологии. -Казань, 1983. С.94.
42. Новак М. Культивирование в суспензии эксплантантов легких эмбриона крупного рогатого скота вируса парагриппа-3 и его некоторые биологические свойства: Дис.канд.биол.наук. -М., 1986. С.38-39.
43. Особенности клинического течения респираторно-синцитиального вирусного заболевания у взрослых /Лопаткина О.А., Крылов В.Ф.,
44. Иванова JI.А., Вихнович Э.М., Бакулина З.Е., Полякова Т.Г. //М., 1989. Деп. во ВНИИ МН МЗ СССР 28.02.89., № 17217. С.10.
45. Патологоанатомическая диагностика вирусных болезней животных: Справочное издание /Архипов Н.И., Чевелев С.Ф., Брагин Г.И.,Зеленцов В.А., Дымин Г.П., Ерохина Л.М.; Под ред. Н.И. Архипова. -М: Колос, 1984. С.76-78.
46. Показатели циркулирующего интерферона при различи »ix вирусных заболеваниях /Лаврухина Л.А., Ершов Ф.И., Крылов Ь.Ф., Князева Л.Д., Белостоцкая О.А., Лопатина О.А. //Вопр.вирусологии. 1989. -№ 2 .С.244-247.
47. Прингл К. Пневмовирусы //Вирусология. Методы: Пер. с англ.; Под ред. Б. Мейхи. М.: Мир. 1988. С. 131-159.
48. Пушкарев Н.В., Соболев А.Д. Основы вариационной статистики: методические указания для аспирантов зооветеринарных специальностей. —2-е издание.-М.: МСЗ СССР Моск. вет. академия., 1983. С.21.
49. Разработка метода получения высокоактивного респираторно-синцитиального вирусного диагногностикума для непрямой реакции гемагглютинации/Денер Л., Дрейзен Р.С., Янкевич О.П , Дикман У., Кемниц Ш/Вопр. Вирусологии-1976. №6 -с.73 9-745.
50. РНГА в серодиагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота/ВасильевА.В.,ОсидзеН.Г., СюринВ.Н.,АкбаеваЛ.М.,СтрогановаИ.Я.,БариноваЛ.И.//Ветеринария. -1988.-№10.-стр.32-34.
51. Сергеев В.А. Репродукция и выращивание вирусов животных.М.,Колос.1976.-стр.302.
52. Сергеев В.А.,Орлянкин Б.Г. Структура и биология вирусов животных. М. Колос, 1983 .-стр.252-267.
53. Слепенко Т.Б. Выделение из клеток и изучение свойства вируса герпеса индеек: Автореф.дисс. канд. Биол. Наук. М.,1987 -19с.
54. Соминина А.А., РумельН.В. Получение комплементсвязывающего антигена PC в суспензионных клеточных культурах //Сб.тр./ВНИИ гриппа.- 1976.-№17.стр.116-120.
55. Бектемиров Т.А. Донская Н.И.,КастрикинаЛ.Н., Агафонова J1.B., Бардина Е.Е./Состояние и перспективы специфической профилактики гриппа и других ОРЗ//Вопр. Вирусологии.-1987г.№-4. Стр.393.
56. Строганова И.Я.,Акбаева JI.M. Чувствительность первичных культур клеток к респираторно-синцитиальну вирусу крупного рогатого скота//Проблемы биологии и патологии с-х животн мх: Сб.науч. трудов./Моск. Вет. академия. 1987г.стр-96-98.
57. Сюрин В.Н. Фомина Н.В. Частная ветеринарная вирусология: Справочная книга.-М.:Колос,1979г.стр257-262.
58. Сюрин В.Н., Белоусова Р.В., Фомина Н.В. Ветеринарная вирусология.М.:Колос, 1984г- стр-61 -63.
59. Трофимова М.Г., Быков И.Н., Семенова Н.С. Повышение чувствительности реакции пассивной геммаглютинации с эритроцитарным диагностикумом респираторно-синцитиального вируса//Вопр. Вирусологии.- 1985г.-№-2.стр236-239.
60. Халенев Г.А.,Гуненков В.В. Комплексная диагностика респираторно-синцитиальной инфекции молодняка крупного рогатого скота в двух хозяйствах.//Проблемы молекулярной биологии и патологии: Сб. науч. тр./Моск. Вет. академия.-1975г.Т.80.стр193-199.
61. Халенев Г.А. Разработка методов производства диагностикумов и усовершенствование лабораторной диагностики вирусной диареи и респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота: Дис. Канд. Вет.наук. -М.; 1976г. стр-270.
62. Халенев Г.А.,Гуненков В.В. Респираторно-синцитиальная, реовирусная и риновирусная инфекция крупного рогатого скота //Лекция15-я/ Моск.вет. академия.-1977г.-стрЗ-9.
63. Юрлова Т.И., ЗощенкоН.Я., КарповаЛ.С. Изучение естественной популяционной изменчивости респираторно-синцитиальных вирусов по их интерферирующим и репродуктивным свойствам.Ас1а virol 1985г. №29 стр.279-284.
64. Sttot E.J., Thomas L.H.,Taylor G., Collins A.P.Jebbett J., Crouch S. A comparion of three vaccines against respiratory syncytial virus in calves // J.Hyg-1984.V-93 .p251-261.
65. Andrews A.H., Grunsell G.S.C., Hill F.W.G. Respiratory disease in calves//The veterinarry annual Isseu.-1983.-v.23.-p.48-55.
66. Antibodies to respiratory syncytial virus polypeptides and their aignificfnct in human infection/Ward K.A.,Lambden P.R.,Ogilvie M.M., Watt P.J.//J. gen. Virol-1983. V.64.-pl867-1876.
67. Armstrong J.A.,Pereira H.G., Valentine R.C. Morfphelogy and development of respiratory syncytial virus in cell cultures//Nature.-1962.-vl96.-pl 179-1181.
68. A sero-epidemiological survey of infections with the bovine respiratory syncytial virus in firetsea aon gracieng calves /PloegerH.W.,Boon J.H.,Klaassen C.H.L.,Florent G.van//J.Vet.Med.-1986.-v.33,№4-p311-318.
69. Association of the chimpanzee corysa agent with acute respiratory disease in children /Baem M., Wright F.H., Hamre D., Egerer R., Cehme M. //New Eng. J. Med. -1960. -v. 263. P.523-530.
70. A survey of virus infections of the respirators tract of cattle and their assotiation with disease /Stott R.J., Thomas L.H., Collins A.P., Crouch S., Jebbett J., Smith G.S., Luther PX»., Casvell R. //J. Hyg. -1980.- v.83. P.257-270.
71. Bachi Т., Howe C. Moфhogenesis and ultrastructure of respiratory syncytial virus. //J. Virol. -1973. -v. 12. P. 1173-1180.
72. Baker J.C., Ames T.R., Markham R.J.F. Serologie studies of bovine respiratory syncytial virus in Minnesota cattle. //Am. J. veter. Res. -1985. — v.46, N 4. P891-892.
73. Baldridge P., Senterfit L.B. Peraistent infection of cells in culture by respiratory syncytial virus //Proc.Soc. Exp. Biol. Med. -1976. —v. 151. — P.684-688.
74. Bartha A., Benco M., Vetisi F. Bovin respiratory syncytial virusfertozottseg es kovetkezmenyei nagyuzemi szarvasmarhaallamanyckban //Magyar allatov. Lapja. -1986. -v.41. N 8. P.451-454.
75. Bennatt C.R., Hamre D. Growth and serological characteristics of respiratory syncytial virus //J. inf. Dis. -1962. -v.l 10. P.8-16.
76. Berthiaume L., Joncas J., Pavilanis V. Comparative structura, morphogenesis and biological characteristics of the respiratory syncytial (RS) virus and the pneumonia virus of mice //Arch. Ges. Virusforach. — 1974. -v.45. P.39-51.
77. Bloth В., Norrby E. Fractionation of respiratory syncytial virus components by centrifugation techniques //Arch. Ges. Virusforsch. -1966. -v.19. P.385-392.
78. Bovine Respiratory syncytial Virus: Host Range in Laboratory Animals and Cell Cultures /Matumoto M., Inaba Y., Kurogi H., Sate K., Omori Т., Goto Y., Hirose O. //Arch. Ges. Virusforsch. -1974. -v.44. P.260-290.
79. Bovine respiratory syncytial virus. Studies on an cutbreak in Japan 19681969 /Inaba V., Tanaka V., Sato K., Omori Т., MatumoO M. //Jap. J. Microbiol.-1972. V.16. P.373-383.
80. Brenner S., Horns R.W. A negative Staining Method for high Resolution Electron Microscopy of virusas //Biochim. Et Biophs. Acta. -1959. -v.34. P.103-110.
81. Cash P., Pringle C.R., Preston C.M. The polypeptidas of human respiratory syncytial virus: products of ctll-free protein synthesis and post-translational modifications //Virology. -1979. -v.92. P.375-384.
82. Chalal Y.D., Elashary Y. The pathogenesis of bovine reapiratory suncytial virus infection in lung organ cultures //Abstrs 79 th Annu.Mott. Amer. Soc. Microbiol. -Los Angeles calif., -1979.
83. Chanock R.M., Pinberg L. Reccvary from infans with respin.tory illness of a virus related to chimpanzee coiysa agent (CCA)/II. Epidemiologic asptcta of infection in infants and young Children //amer. J. Hyg. -1957. -v. 66. P.291-300.
84. Chanock R.M., Parrott R.H. Acute respiratory disease in infoncy and childhood: present understanding and prospects for prevention //Pediat.1965.-v.36. P.21-39.
85. Chanock R.M., Rolzman E., Myers R. Recovery from .n fants with respiratory illnasa of a virus related to chimpanzee coryza agent (CCA). J. Isolation properties and characterisation //Ammer. J. Hyg. -1957. -v.66. P.281-290.
86. Churchill A.E., Biggs P.M. Agent of Marek s disease in tissue culture //Nature (London). -1967. -v.215. P.528-530.
87. Churchill A.E., Chubb R.C., Baxendale W. The attenuation With loss of oncogenicity of the gerpestype virus of Marek s disease (strain HPRS-16) on passage in cell culture //J. Gen. Virol. -1969. -v.4. P.557-564.
88. CostesH.V.,Forsyth B.R., Chanock R.M. Biophysical studiesof respiratory syncytial virus.I.Bensity of respiratory syncytial virusand associated complement-fixing antigens in a caesium chloride density gradient//J.Bact.1966.-v.91.-PI 263-1269.
89. Collins P.L., Huang Y.T., Wertz C.W.Identification of a tenthin RNA of respiratory syncytial virus and assignmeht of polipeptidesto the 10 viral genes//J.Virol.-1984.v.49.-P.572-578.
90. Comparison of a newly developed ensymelinked immunosorbent assay of bovine respiratory syncytial virus infections/Watenbriak P.,Brinkhof J.M.A.,Straver P.J.,Quak J.,De Leeuw P.W.,//Res.Vet.Sci.-1985.-v,№3.-P334-340.
91. Cooney M.K.,Fox J.P., Xall C.E. The Seattle virus watch.VI. Observations of infections with and illness due to parainfluenza, mumps and respiratory syncytial viruses and Mycoplasmapneumaniace//Am.J.Epid.-1975.-v. 101.-P532-551.
92. Gutlip Paul A. Questions and ans were about serening testa//Disiena Jorn J.AIDS Patent Care.-1987.-v.l.№l-P25-27.
93. GutlipR.S., Lehmkuhl H.D.Leslong in lambe experimentakly infected with bovine respiratory syncytial virus//AM.J.Vet.Res.-1979.-v.40.-P.1479-1482.
94. De Jong J.C.,Harmaen M. Stimulated growth of respiratory syncytial virus the presence of actinomicin D.Antcnie van Leeuwenhoek//J.Microbiol.Serel.-1973.-v.39.P409-413.
95. Defection of. rinderpest antigen by latex agglutination test/Banaal R.P.,Joshi R.S.,Chandra U.,Sharma ВУ/Acta virol.-1988.-v.32,№3.-P275-277.
96. Diagnosis of bovine respiratory syncytial virusinfections b / complement fixation test/Takahashi ,Inaba Y.,Kurogi H., Sato K., Goto Y.,Omori T.//Nat.Lust. Anim.Health Quart.-l 975.-V. 15,№4.-P 179.185.
97. Diagnosis of bovine respiratory syncytial virus infections improved by virus detection i lung lavage samples/Kimman T.G.,Limmer G.M.,Straver P.J.,De Leeuw P.W.//Am.J.Veter.Res.-1986.-v.47.№l.-P.143-147.
98. Doggett J.E., Taylor-Robinson D., Gallop R.G.C. A study of an inhibitor in bovine serum active against respiratory syncytial virus //Arch. Ges. Virusforsch. -1968. -v.23. P. 126-137.
99. Dubovi E.J., Geratz J.D., Tidwell R.R. Inhibition of respiratory syncytial virus by BIS (5-amidino-2-bensimidazolyl) methane //Virology. -1980. — v. 103. P.502-504.
100. Dubovi E.J., Geratz J.D., Tidwell R.R. Enhancement jf respiratory syncytial virus induced cytopathology by trypsin, trombin and plasmin //Infect. Immun. -1983. -v.40. P.315-358.
101. Ilashaiy M.A.S.Y., Silim A., Mciin M. A natural cutbresk of bovine respiratory disease causend bu bovine respiratory syncytial virus //Cornell Vet. -1982. -v.72. N 3. P.325-333.
102. Electron microscopic evidence for bridges between bovine respiratory syncytial virus particles /Belanger F., Bethiaume L., Alain R., Lussier G., Trudel M. //J. Gen. Virol. -1988. -v.69. N 6.P.1421-1424.
103. Electron microscopic studies of respiratory syncytial virus temperature — senaitive mutants /Kalica A.R., Wright P.F., Hetrick F.M., Chanock R.M. //Arch. Ges. Virusforsch. -1973. -v.41. P.248-258.
104. Epidemiology of respiratory syncytial virus infection in Washington, D.C.I. Importance of the virus in different respiratory tract disease syndromes and temporal distribution of infection /Kim H.W., Arrobic J.O., Brandt C.D.,
105. Jeffries B.C., Pyles G., Reid J.L., Chanock R.M., Parrott R.H. //Amer. J. Epid. -1973. -v.98. P.216-225.
106. Evalution of a new latex agglutination method for detection of antibody to herpes simplex virus /De Girolami P.C., Dokos J., Eichelberger K., Bieno S. //J. Clin. Vicrobiol. -1988. -v.26. N 5. P. 1024-1025.
107. Experimental pneumonia in gnotobiotic calves produced by respiratory syncytial virus /Thomas L.H., Stott E.J., Collins A.P., Jebbett J. //Br. J. Exp. Path.-1984. -v.65. P. 19-28.
108. Experimental respiratory syncytial virus infection of abults /Mills J., Van Kirk J.E., Wright P.F., Chanock R.M. //J.Immunol. -1971. -v.107. P.123-130.
109. Experimental respiratory syncytial virus infection of fo ir species of primates /Belshe R.B., Richardson L.S., London W.T., Sly D.L., Lerfeld J.H., Camargo E., Prevar D.A., Chanok R.M. //J. Med. Virol. -1977. -v.l. P. 157-162.
110. Ffernil B.F., Gerin J.L. The stabilization and purification of respiratory syncytial virus using MgS04 //Virology. -1980. -v. 106. P. 141-144.
111. Ffernil B.F.,Ford E.C., Gerin J.L. The developmant of BALB/c cells persistent ly infected with respiratory syncytial virus: Presence of ribonucleoprotein on the call surfoco //Prog. Soc. Exp. Biol. Med. -1981. — v.l67. P.83-86.
112. Forsyth B.R. Identification of respiratory syncytial virus antigens by agar gel diffusion and immuncelectrophoresis //Prog. Sog. Exp. Biol. Med.-1970. -v.133. P.568-572.
113. Forsyth B.R., Coates R.V., Chanock R.M. Biophysical studies of respiratory syncytial virus. //Identification of two soluble complement — fuxing antigens of respiratory syncytial virus //J. Bact. -1966. -v.91. P. 1270-1276.
114. Cabathuler K. Respiratorisches syncytialvirus in der Riderpraxis //Schweiz. Areh. Tierheilk. -1983. -H 125. S.149-153.
115. Gillete K.G., Smith P.C. respiratory syncytial virus infection in transported calves //Am. J. Veter. Res. -1985. -v.46. N 12. P.2596.
116. Graham D., Estes M.K. Pretecfitic enhancament of rotavirus infectivity: biologie mechanisms //Virokogy. -1980. -v.lOl.N 2. P.432-439.
117. Grist N.R., Ross C.A.C., Stett E.J. Influensa respiratory syncytial virus and pneumonia in Glasgow 1962-1965 //Br. Med. J. -1967. -v.l. P.456-457.
118. Hall C.B., Douglas R.G. Modes of transmission of respiratory syncytial virus //J.Pediat. -1981. -v.99. P. 100-103.
119. Hall C.B., Douglas R.G., Geiman J.M. Respiratory syncytial virus infections in infants; quantitation and duration of shedding //J. Pediat. — 1976.-v.89. PI 1-15.
120. Hall С.В., Douglas R.G., Geiman J.M. Possible transmission by fomitos of respiratory syncytial virus //J. Inf. Dis. -1980. -v. 141. P.98-102.
121. Hambling M.H. Survial of respiratory syncytial virus during storage under various conlitions //Brit. J. exp. Pat'i. -1964. -v.45. P.647-655.
122. Haralambiev H.E., Bostandjieva R.M., Georgiev G.K. Cultivation of bovine respiratory syncytial virus jn cell line FLK and other cell cultures of sheep origin //Comptes rendus de 1 Academie bulgare des Sciences . -1982. -V.35.N11.P.1611-1613.
123. Holzhauer C., van Nieuwstadt A.P. De etiologischi rol van het bovine respiratory syncytial virus bij pinkangriop. Tijdschr //Diergenecskd. —1976. -v.l01. P. 1023-1031.
124. Huang Y.T., Wertz G.W. The genome of respiratory sync} tial virus is a negative stranded RNA that codes for at least seven mRNA species //J.Virol. -1982. -v.43. P.150-157.
125. Ivvunovirological studies on human respiratory syncytial virus structural protein /Trudel M., Nadon F., Sequin C., Ghoubril S., Paument P., Trepanier P. //Can. J. Microbiol. -1986. -v.32. N 1. P. 15-17.
126. Improvement of respiratory syncytial virus replication inactively growing Hep-2 cells /Pona Marcal W., Lambert A.L., Lambert D.M., Rochovansky O.M. //J. Virol. Meth, -1983. -v.7. N 4. P.217-221.
127. Infection of gnotobiotic calves with a bovine and human isolate of respiratory syncytial virus. Modification of the response by dexametasone /Thomas L.H., Stott E.J., Collins A.P.,Crouch S., Jebbett J. //Arch. Virol. -1984. -v.79. P.67-77.
128. Infectivity of respiratory syncytial virus by various routes of inoculation /Hall C.B., Douglas R.G., Schnabel K.C., Geiman J.M. //Infect. Immun. -1981. -v.33. P.779-783.
129. Ingh F.S.G.A.M., Verhoeff I., Niewatadt A.F.K.M.I. Clinical and pathological observat ons an spontanecus bovine respiratory syncytial virus infections in calves //Res. In veter. Sc. -1982. -v.33. N 2. P. 152-158.
130. Inhibition of respiratory syncytial, parainfluenza 3 and measles viruses bu 2 Deoxy-D-glucose. /Hobes D.S., Schnitzel T.J., Kalica A.R., Canargo E., Chanock R.M. //Virology. -1975. -v.63. P.201-208.
131. Inhibition of respiratory syncytial virus — host cell interactions by monoand diamedines /Dubovi E.J., Gerats J.D., Shaver S.R., Tidvell R.R: //Antimicrob. Ag. Chtmother. -1981. -v. 19. P.649-656.
132. Initiation and maintenance of persistent Inhibition by respiratory syncytial virus /Pringle C.R., Shirodorla P.V., Cash P., Choawell D.J., Malloy P. //J. Virol. -1978. -v.28. P. 199-211.
133. Isolation from turkeus of a cell-assotiated herpesvirus antigenically related to Marek's disease virus /Witter R.L., Nazerian K., Purchase H.G., Burgoyne G.H. //Am. J. Vet. Res. -1970. -v.31. P.525-538.
134. In vitro methods for assay of turcey herpesvirus /Calnek B.W., Carrido C., Okazaki W., Patrascu I.V. //Avian. Dis. 1972. -v. 16. P.25-56.
135. Joncas J., Berthiame L., Pavilanis V. The structure of respiratory syncytial virus //Virology -1969. -v.38. P.493-496.
136. Jordan W.S. Growth characteristics of respiratory syncytial , virus //J. Immunol. -1962. -v.88. P.581-590.
137. Kisch Q.L., Johnson K.M. A plaque assouy for respiratory syncytial virus //Prac. Soc. Exp.Biol. Med. -1963. -v.l 12. N 3. P.583-589.
138. Koves В., Bartha A. Isolation of respiratory syncytial (RS) virus from coffle diseased with respiratory symptoms //Acta Vet. Acad. Sci hund. — 1975 (1976). v.25. N 4. P.357-362.
139. Koves В., Bartha A. Respiratory syncytial (RS) virus isolatosa legzoszer vi tunetekkel meg betegibitt szarvasmarhakbol //Magy. Ellatorv. Lapja. — 1976. -v.31. N.2.P.99-102.
140. Lambert D.M., Pons M.W. Respiratory syncytial virus glicoproteins //Virology. -1983. -v.130. P.204-214.
141. Lehmkuhl H.D., Cough P.M., Reed D.E. Characterization and identification of a bovine respiratory syncytial virus isolated from Young Calves //Am. J. veter. Res. -1979. -v.40. N. 1 P. 124-126.
142. Lehmkuhl H.D.,Cutlip R.C. Ecsperimentally induced respiratory syncytial virus infection in lambe // Am. J. veter. Res. -1979. -v.40. P.512-514.
143. Lehmkuhl H.D., Smith M.N., Cutlip R.C. Morphogenesis ai.d structure of caprine respiratory syncytial virus //Arch. Virol. —1980. -v.65. P.269-276.
144. Levine S. Polypeptides of respiratory syncytial virus //J. virol. —1977. — v.21. P.427-431.
145. Levine S., Buthala D., Hamilton R. Late stage synchronisation of respiratory syncytial virus replication //Virology. -1971. -v.45. P.390-400.
146. Levine S., Hamilton R. Kinetica of respiratory syncytial virus growth cycle in HeLa cells //Arch. Ges. Virusforsch.-1969. -v.28. P.122-l.'-2.
147. Levine S.,Peebles M., Hamilton R. Effect of respiratory syncytial virus infection HeLa on cells macromolecular synthesis //J. Gen. Virol. -1977. — v.37. P 53-63.
148. Linggi Т., Wyler R. Das bovine respirstorische synzytiabvirus als Erreger van Respirationstrakterkrankungen des epidemiologiche Untersuchung in der Schweis //Schweiz. Arch. Teirheilk. -1985. -Bd.127. H.10. S.651-659.
149. Martin H.T. Indirect haemagglutination test for the detection and assay of antibody to bovine respiratory syncytial virus //Vet.Rec. -1983. -v.l 13. N. 3. P.290-293.
150. Matthews R.E.F. Classification and nomenclature of viruses //Intervirology. -1982. -v. 17. P.l 04-105.
151. Menulty M.S., Bruson D.G., Allan G.V. Ecsperimental respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: Microbiologic and immunofluorescent findings //Am. J Vet. Res. -1983. -v.44. P.1656-1659.
152. Mohanty S.B., Ingling A.L., Lillie M.G. Experimentally indyced respiratory syncytial viral infection in calves. //Am. J. Vet. Res. -1975. — v.36. N. 4. P.417-419.
153. Monoclonal antibodies protect against respiratory syncytial virus infection in mice /Taulor G., Stott E.G., Bev M., Fernie B.F., Cote F.J., Collins A.P., Hughes M., Jebbett J. Immunol. -1984. -v.52. P.137-142.
154. Morris J.A., Blount R.E., Savage R.E. Recovery of cytopathic agent from chimpanzees with coryza //Prog. Soc. Exp. Biol. Med. 1956. -v.92. P.544-549.
155. Moyr A. Virus krankenheiten der Kelber //Reportasand Summaris. Repparts et resumes Referate und Zusammenfassungen. -1980. P.233-260.166,167.168.169170,171.172,173174175176177178179180
156. Van Nieuwstadt A.P., Verhoeff J. Serology for diagnosis and epizootological studies of bovine respiratory syncytial virus infections //Research in Veterinary Science.-1983. -v.35. P.153-159.
157. Norrby E., Enders-Ruchle G., Ter-Moulen V. Differences on the appearance of antibodies to structural components of measles virus after immunization with inactivated and live virus //Inf. Dis. -1975. —v.132. P.262-269.
158. Nosocomial respiratory syncytial virus infections /Hall C.B., Douglas R.G., Geiman J.M., Messner M.K. //New. Eng. J. Med. -1975. -v.239. P.1343-1346.
159. Nucleic acids of respiratory sync)tial virus /Lambert D.M., Pons M.W., Mbuy G.N., Dorach-Hasler K. //J. Virol. -1980. -v.36. P.837-846.
160. Nunez A., Caatell S. Defecctien de anticuerpos contra el virus syncytial respiratoric bovine por seroneitralizacion //Rev. Salnd anim. -1987. -v.9. N 3. P.266-267.
161. Odegard O.A.,Krogerud J. A field outbreak by bovine respiratory syncytial virus//Acta vet. Scand.- 1977,-v. 18.-P429-431.
162. Paccaud M.F.,Jacquier A. A respiratory syncytial virus of bovine oxigin//Arch.des. Virusforch.-1970.-V.-30.-P327-342.
163. Paramyxoviridae /Kingabury D.W.,Bratt M.A.,Choppin P.W. ,HansonR.P.,Hosaka Y.,ter Meulen V., NorrbiJ E.,Plowright W.,Rott R., Wunner W.H.//Intervirology.-197 8.-v. 10.-P 137-152.
164. Parry J.E.,Shirodaria P.V.,Pringle C.R. Pneumoviruses: the cell surfoce of lytically and persistently infected ceIle//J.Gen.Virol.-1979.-v.44.-P479-491.
165. Peacoch D.,Clarke S.K.R. Respiratory syncytial virus in Britain//Laneet.-1961.-V.2.-P466.
166. Peebles M.,Levine S. Metobolic reguirements for the maturation of respiratory syncytial virus//J.gen.Virol.l980.-v.50.-P81-88.1. Netu.
167. Pirie H.M., Petrie L., Pringle C.R. Acute fetal pneumonia in calves due to respiratory syncytial virus //Vet. Rec -1981. -v.108. P.411-416.
168. Physicochemical proporties of bovine respiratory syncytial virus /Inaba Y., Tanaka Y., Cmori Т., Matumoto M. //Jap. J. Microbiol. -1973. -v. 17. P.211-216.
169. Porter D.D., Mysk K.B., Prince G.A. The age dependence of respiratory syncytial virus growth in ferret lung can be shown in organ and monolayer cultures //Clin. Immund. Immunopath. -1980. -v.15. N 3. P.415-423.
170. Pospisil L., Mensik J., Valicek L. Isolation and identification of a Bovine Respiratory syncytial virus in Czechoslovakia //Acta. Vet. Brno. -1978. — v.47. P.79-86.
171. Potgieter L.N.D., Aldrida P.L. Use of the indirect fluorescent antebudy test in the detection of bovine respiratory syncytial virus antibodies in Bovine serum. //Amer. J. Vet. Res. -1977. -v.38. N 9. P.1341-1343.
172. Prince G.A., Porter D.D. The pathogenesis of respiratory syncytial virus infection in infant ferrete //Am. J. Pathol. -1976. -v.82. P.339-350.
173. Pringle C.R., Parry J.E. Location and quantitation of antigen of the surface of virus-infected cells by specific bacterial adherence and senbing electron microscopy //J. Viral. Meth. -1980. -v.l. P.61-75.
174. Propagation of bovine respiratory syncytial virus in calftesticle microcarrier culture /Charlier G., Wellwmans G., Lale A., Strobbe R. //Arch. Exp. Veterinarmed. -1984. -v.38. N 6. P.894-899.
175. Properties of a respiratory syncytial virus isolated from a sheep with rhinitis /Wermann J.F., Liggitt H.D., Parish S.M., Word A.C.S., Lea Master B.R. //J. Vet. Res. -1985. -v.46. N 4.
176. Reed L.J., Muench H.A. A simple method of astimating 50 percent endpoints //Am. J. Hyg. -1938. -v.27. P.493-497.
177. Reichstelner J. Thermal inactivation of respiratory syncytial virus in water and hypertonic solutions //J. gen. Virol. -1969. -v.5. P.397-403.
178. Respiratory syncytial virus antibodies in non-human primates and domestic animals /Richardson-Wyatt L.S., Belshe R.B., London W.T., Sly D.L., Camargo E., Chanok R.M. //Lab. Anim. Sci. -1981. -v,31. P.314-415.
179. Respiratory syncytial virus. IV. Corelation of virus shedding, serologic response and illness in adult volunteers /Johnsom K.M., Chanok R.M. Rifhind D., Kravetz H.M., Knight V. //J. Amer. Med. Ass. -1961. -v.176. P.663-667.
180. Respiratory syncytial virus. In: Evans A.S. (ed) /Chanock R.M., Kim H.W., Brandt C., Parrott R.H. //Viral infections of Humans. Epidemiology and Control: Plenum. -1976. P.365-382.
181. Respiratory syncytial virus infections and its serologic epidemiology /Suto Т., Yano N., Ikeda M., Takai S., Jhigeta S., Himema Y., Ishida N.//Am. J. Epidem. -1965. -v.82. P.211 -224.
182. Respiratory syncytial virus infections in indred mice /Prince G.A., Horswcod R.L., Beradt J., Suffin S.C., Chanock R.M. //Infect. Immun. -1979. -v.26. P.764-766.
183. Respiratory syncytial virus infections in mice /Taylor G., Stott E., Hughes N., Collins A.P. //Infect. Immun. -1984. -v.43. P.649-655.
184. Respiratory syncytial virus pneumonia in Friesian calves: physiological findings /Lekeuk P., Verhoeff J., Hajer R., Breukink H.J. /,Res. In veter. Sc.-1985.-v.39.N3.
185. Respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: Clinical and pathologic findings /Bryson D.G., NcNulty M.S., Logan E.F., Cush P.F. //Am. J. Vet. Res. 1983. -v.44. N 9. P. 1648-1655.
186. Respiratory syncytial vims III. Production of illness and clinical jbservations in adult volunteers /Kravetz H.M., Knight V., Chanock R.M., Norris J.A., Johonson K.M., Rifkind D., Utz J.P. //Amer. Med. Ass. -1961. -v. 176. P.657-663.
187. Respiratory syncytial virus ts mutants and nuclear immunofluorescence //J. Virol. -1976. -V.20. N 2. P.487-500.
188. Respiratory syncytial virus vaccine, Merck and Ca. Inr. Пат.46727. Ирландил.заявк. 19.4.78. N768/78. Опублик. 7.9.83. №61к 39/12, С 127/08.
189. Richman A.V., Tauraso N.M. Growth of respiratory syncytial virus in suspension cell culture //Appl. Microbiol. -1971. -v.22. P. 1123-1125.
190. Rossi C.R., Kiasel G.K. Serological evidence for the associationof bovine respiratory syncytial virus with respiratory tract disease in Alabama cattle //Infect. Immun. -1974. -v. 10. P.293-298.
191. Rossi C.R., Kiesel G.K. Bovine respiratory syncytial virus infection of bovine embryonic lung cultures: a kinetic study by the fluorescent antidodi techique //Amer. J. Vet. Res. -1977. -v.38. N 11. P. 1901 -1904.
192. Rossi C.R., Kiesel G.K. Bovine respiratory syncytial viruj infection of bovine embryonic lung cultures: enhancement of infectiviey with diethylaminoethyl-dextran and virus-infected cells //Arch. Virol. -1978. — v.58. N 3. P.227-236.
193. Schirrmier M. Zur morphologischen und immunhistologischen Diagnostik wirusbedingter respiratorischer Erkrankungen der Kelber //Mh. Vet.-Med. -1980. H 35. S.35-39.
194. Senterfit L.B., Baldridge P.B. Separation and concentration of respiratory syncytial virus (RSV) antigens //J. Immunol. Meth. -1974. -v.4. P.349-357.
195. Serological evidence of respiratory syncytial virus infection in sheep /Berthiaume L., Joncas J., Boulay G., Pavilanis V. //Vet. Rec. -1973. -v.93. P.337-338.
196. Shahrabadi M.S.,Lee Patrick W.K.Calcium reguirement for syncitium formation in Hep-2gells by respiratory syncytial virus//J.Clin. Microbiol.-1988.-v.26.№ 1 .P139-141.
197. Smith M.H., Frey M.L.JDierks R.B.Isolation and characterisation of a bovine syncytial virus//Vet.Rec.-1974.-v.-94.-P599.
198. Storch G.A.,Reed C.A.,Dalu L.A. Evaluation ofa latex agglutination test for herpes simplexvirus//J.Clin.Microbiol.-1988.v.-26.№4.-P'87-788.
199. Structure of bovine respiratory syncytial virus/Ito Y.,Tanaka Y.,Inaba Y.,Omori T.//Arch.ges.Virusforsch.-l973.-v40.-P 198-204.
200. Stott E.J., Taylor G.Respiratory syncytial virus//Arch.Virol.-1985.-v.84.-Pl-52.
201. The characterisation and uses of monoclonal to respiratory syncytial virus/ Stott E.J.JBew M.H. Taylor G.,Jebbett J.,Collins A.P.//Develop.Biol.Standart.-1984.
202. The detection of respiratory syncytial virus in nasopharyngeal aspirates :assesament formulation,and eveluation of monoclonal antibodies as a diagnostic reagent/Freke A.,Stott E.J.,Roome A.P.,Caul E.O.//J.Med. Virol.-1986,-v. 18,№2 .-P181 -191.
203. The development of monoclonal antibodies to respiratory syncytial virus and their ugein liagnosis immunofluoreacence/Routledge E.G.,Mcquillin J.,Smason A.C.R.,Toms G.L.//J. Med. Virol.-1985.-vl5.№3.-P305-320.
204. The growth of respiratory syncytial virusin organ cultures of bovine foetal trachea/Thomas L.H., Stoff H.J.,Jebbett J.,Hemiltot S.//Arch.Virol.-1976.-v.-52.-P251-258.
205. The pathogenesis of respiratory syncytial virus infection in cotton rats/Prince G.A.,Jenson A.B.,Horawood R.L.,Camargo E.,Chanock R.M.//Am.J.Pathol.-1978.v.93.-P771-784.
206. TlorentG.,DeMarneffe C.,Boiler E.Bovines respiratorisches syncytial virus(BRSV) in der Sciwei:Eline serologische stutie//Schwauz.I.h.Tiasfeuk.-l 985 .-v. 10.-P 127.
207. Trepanier P.,Payment P.,Trudel M.Concentration of human respiratory syncytial virus sulphatepolysthylene glycol or hollow firbe ultrafiltration//J.Virol.Meth.-1981 .-V.3.-P201 -211.
208. Treuhaft M.W. A colorimetric assay for quanti fication of defective interfering particles of respiratory syncytial virus//J.gen. Virol.-1983.-V.64.P1301-1309.
209. Trauhaft M.W.,Beern M. O.,Defective interfering Particles of respiratory syncytial virus infect //Immun.-1982.-v.37.P 439-444.
210. Ueba O. Purification and polipeptides of respiratory syncytial virus//Microbiol.Immunol.-1980.-V.24-P.3 61 -364.
211. Bovine respiratory syncytial virus infectioon in young dairycattle:clinical and haematologicalfindinys/verhoeff J., Van der VanM., Nieuwstadt A.P.K.M.I.//V et.Rec.-1984. v. 114 ,N: 1 .P9-12.
212. Virus Gross-infection in paediatric wards/Gardner P.S.,GourtS.D.M.,Brocklebank J.T.,Downham M.A.R.S.,Weightman D.//Br. Med.J.-1973.v.2.-P571-575.
213. Vires isolations from throans of children admitted to hospital with respiratory and other diseses,menchester,1962-1964/Holzel A.,Parker L.,Patterson W.H.,Cartmel D.,White L.L.R.,Purdy R.,Thompson K.M.,Tobin J.O.H.//Br.Med. J. 1965. v. 1 .P614-619.
214. Welsh E.E.,Hruska J. Monoclonal antibodies to respiratory : yncytial virus proteins:Identification of the fusion protein// J.Virol.-1983.v.47.P171-177.
215. Waleh E.E.,Schlesinger J.J.,Brandriss M.W. Purification and characterisation of GP90,one of the en velope dlycjproteins of respiratory syncytial virus//J.gen.virol.-1984.v65 .P761 -767.
216. Wellemans G.,van Opdenboach E. Vaccination des bovins contre le respiratory syncytial virus (RSB) au moyen d'une souchs attenuee //Ann. Med. Vet.-1978.-v. 122. P.537-543.
217. Winner W.H., Faulkner C.P., Pringle C.R. Respiratory syncytial virus some biological and biochemical properties. -New York: Academie Press. — 1975. P. 193-201.
218. Winner W.H., Pringle C.R. Respiratory syncytial virus proteins //Virology. -1976.-v.73. P.228-243.
219. Yrlova T.J., Zoshchenkova N.Ya., Karpova L.S. Natural variability of respiratory syncytial viruses, their interverance and reproduction characteristics //Acta Virol. -1985. -v.29. N 4. P.279-284.
220. Zacstilskaya L.Ya., Almeida J.D., Bradstreet C.M.P. The morphological characterisation of respiratory syncytial virus by a simple electron microscope technique //Acta. Virol -1967. -v.l 1. P.420-423.
221. Zrein N., Obert G., Regonortal M.H. van. Use of agg-yalk antibody for detection of respiratory syncytial virus in nase secretions by ELISA //Arch. Viro. -1986. -v.90. N3. P. 197-206.
222. Zugraic N. Vaccination against RS virus: a five yaar experience with Rispoval //Proceedings of XII World Congresse on Diseases of Cattle. -1982. P.189-195.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.