Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота: Диагностика на основе современных методов биотехнологии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.23, доктор биологических наук Кузнецов, Дмитрий Павлович

• Кузнецов, Дмитрий Павлович
• доктор биологических наук
• 2001

Оглавление диссертации доктор биологических наук Кузнецов, Дмитрий Павлович

1. Введение

2. Обзор литературы.

2.1. Вирус инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота

2.1.1. Морфология вируса инфекционного ринотрахеита.

2.1.2. Химический состав вируса инфекционного ринотрахеита.

2.2. Очистка и концентрирования вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и его структурных компонентов.

2.2.1. Очистка и концентрирования вируса.

2.2.2. Очистка вирусных гликопротеинов.

2.2.3. Субъединичные вакцины на основе очищенных гликопротеинов обол очечных вирусов

2.3. Механизм клеточного и гуморального иммунитета как единый процесс иммунной реакции.

2.3.1. Роль неспецифической клеточной резистентности.

2.3.2. Роль специфического гуморального иммунитета.

2.3.3. Роль специфического клеточно-опосредованного иммунитета.

2.4. Диагностика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота.

2.4.1. Традиционные методы диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота.

2.4.2. Иммуноферментный метод для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота.

2.4.3. Диагностика ИРТ с помощью гибридизации ДНК и полимеразной цепной реакции.

2.5. Моноклональные антитела (МКА) в ветеринарной практике

2.6. Анти-идиотипические (анти-ИД) антитела

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота: Диагностика на основе современных методов биотехнологии»

1.1. Актуальность темы.

Одним из движущих факторов развития экономики нашей страны является научно-технический прогресс, способствующий ускорению развития народного хозяйства путем интенсификации науки и производства, внедрения новых технологий. Процесс интенсификации охватывает и биологию в самом широком смысле слова.

В связи с сохранением в нашей стране крупных животноводческих хозяйств, остается актуальной проблема диагностики и ликвидации ряда инфекций, которые при большой концентрации животных часто проявляется у молодняка. Инфекционный ринотрахеит (ИРТ) - одна из наиболее распространенных инфекционных болезней телят при промышленном животноводстве. Изучение ИРТ крупного рогатого скота (КРС) в течении последнего времени показало актуальность данной проблемы.

Несмотря на то, что ветеринарная практика имеет в своем распоряжении большой набор диагностических сывороток и диагностикумов, увеличение номенклатуры, улучшения качества и стандартизация диагностических препаратов для практических лабораторий по-прежнему остается важной задачей.

При диагностике вирусных и бактериальных инфекций в ветеринарии все более широкое применение находят такие современные и высокоточные методы как молекулярная гибридизация и полимеразная цепная реакция (ПЦР). Однако ввиду их высокой стоимости, сложности в постановке и необходимости дорогостоящего оборудования и реактивов метод определения антигенов и антител с помощью иммуноферментного анализа (ИФА) при оптимальном соотношении себестоимость-чувствительность остается действенным инструментом в ветеринарной лабораторной практике. Высокая разрешающая способность этого метода обусловлена, главным образом, природой лиганда, степенью очистки компонентов и чувствительностью приборов, регистрирующих наблюдаемый эффект. Таким образом, очистка и концентрирование вирусов является решающим условием при изготовлении диагностикумов и получении высокоактивных иммунных сывороток, используемых при создании компонентов, необходимых для проведения иммуноферментного анализа.

Для получения антивидовых иммуноглобулинов животных, меченых пероксидазой из хрена (ПХ), необходимо наличие чистых препаратов иммуноглобулинов в, М и А классов.

Методы выделения иммуноглобулинов из сыворотки человека разработаны детально, но применительно к иммуноглобулинам животных они не всегда эффективны. Использование многих иммунологических методов для решения прикладных задач в области ветеринарии сдерживается отсутствием коммерческих моноспецифических антисывороток. Идеальным условием получения моноспецифических антисывороток представляется иммунизация продуцентов чистыми антигенами.

Ключевым моментом в отработке твердофазного непрямого ИФА является получение коньюгата, то есть иммуноглобулина меченого пероксидазой. Качество получаемого коньюгата находится в прямой зависимости от серологической активности иммуноглобулина, активности фермента и условий связывания этих компонентов.

Гибридомная технология, возникшая четверть вера назад, является на сегодняшний день, наряду с генной инженерией, одним из наиболее перспективных направлений биотехнологии. К настоящему моменту в мире получены моноклональные антитела (МКА) к огромному количеству антигенов, налажен выпуск сотен коммерческих препаратов на их основе, ведущие биотехнологические компании производят МКА десятками килограммов в год. В результате бурного развития этого направления МКА более чем на 90% заменили поликлональные антитела в медицинских лабораторных тестах. Все более широкое применение тест-системы на основе моноклональных антител находят и в ветеринарной практике.

Получение МКА и успешное их применение позволяет рассчитывать на существенное усовершенствование методов диагностики вирусных инфекций. В России широкие исследования по получению гибридных линий, продуцирующих моноклональные антитела начаты в конце 80-х годов. Идут интенсивные разработки для получения МКА в промышленных условиях.

Быстрый и точный диагноз инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота является решающим условием организации необходимых мер борьбы с этим заболеванием.

1.2. Цели и задачи исследования.

В связи с вышеизложенным, целью настоящей работы являлось создание диагностикумов на основе очищенного и концентрированного вируса ИРТ КРС, штамм ТК А(ВИЭВ) В2, получения линий гибридомных клеток, секретирующих МКА к вирусу ИРТ КРС, определения белкового состава вируса ИРТ КРС, исследования иммуногенных свойств отдельных гликопротеинов вируса, для использования их в качестве компонентов набора при иммуноферментной диагностике ИРТ КРС при определении уровня антител в крови больных и переболевших животных и определения наличия антигенов вируса ИРТ КРС в различных биологических субстанциях.

Решались следующие задачи:

1.2.1. разработать метод получения очищенного и концентрированного вируса ИРТ КРС, штамм ТК-А (ВИЭВ)В2, репродуцированного в культуре клеток ПТ-80.

1.2.2. изучить белковый состав вируса.

1.2.3. изучить биологические свойства вируса.

1.2.4. изучить напряженность клеточного и гуморального иммунитета при ИРТ КРС

1.2.5. получить анти-ИРТ сыворотки на лабораторных животных, выделить

IgG КРС и IgG мыши, получить анти-IgG сыворотки на кроликах и изготовить коньюгат пероксидазы из хрена с анти-IgG КРС и мыши.

1.2.6. провести сравнительную оценку определения уровня анти-ИРТ антител в традиционных серологических реакциях и ИФА.

1.2.7. получить линии гибридомных клеток, секретирующих МКА к антигенам вируса.

1.2.8. изучить свойства МКА, продуцируемых полученными клонами.

1.2.9. на основе полученных МКА к вирусу ИРТ КРС разработать методы очистки отдельных гликопротеинов вируса.

1.2.10. изучить иммуногенные свойства отдельных гликопротеинов вируса и сравнить их с иммуногенностью цельного инактивированного вируса.

1.2.11. провести сравнительную оценку эффективности определения вируса в вируссодержащем материале вирусологическими методами и ИФА.

1.2.12. получить антиидиотипические поликлональные антитела к белкам вируса на лабораторных животных и изучить их свойства.

1.2.13. на основе полученных МКА к вирусу ИРТ КРС разработать тест-систему и создать «Набор для ретроспективной иммуноферментной диагностики ИРТ КРС» и «Набор для ранней иммуноферментной диагностики ИРТ КРС».

1.3. Научная новизна.

- разработан метод получения очищенного и концентрированного вируса ИРТ КРС, репродуцированного в культуре клеток ПТ-80, изучены биологические свойства вируса и определены условия и сроки хранения его без потери биологической активности;

- разработана схема иммунизации лабораторных животных, обеспечивающая получение высокоактивных, специфических гипериммунных сывороток к вирусу ИРТ КРС и анти-IgG КРС и мыши сывороток;

- выявлено в составе вириона 33 структурных белка с ММ от 13 до 270 кД, 10 из 11 гликозилированных белков являются поверхностными. Установлено, что 9 гликозилированных и 3 негликозилированных белка вызывают интенсивную выработку антител в организме восприимчивых животных;

- получены поликлональные антиидиотипические антитела к белкам вируса ИРТ КРС, вызывающие выработку анти-ИРТ антител у лабораторных животных;

- получено 6 клонов гибридом, синтезирующих МКА к антигенам вируса. Показана возможность применения МКА для выделения методом аффиной хроматографии высокоочищенных препаратов белков вируса;

- изучены иммуногенные свойства отдельных гликопротеинов вируса ИРТ, которые эквивалентны иммуногенным свойствам цельного инактивированного вируса в плане выработки гуморального и клеточного иммунитета у лабораторных животных;

- разработана тест - система для индикации антигенов вируса ИРТ КРС в различных биологических субстанциях;

- разработана технология получения "Набора для ретроспективной иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота" и "Набора для ранней иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота";

- основные положения научной новизны работы защищены патентами и получены приоритетные справки за № 2001108780 и № 20011088771 от 4 апреля 2001г. на "Набор для ретроспективной иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота" и "Набор для ранней иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота".

1.4. Практическая значимость работы.

Показан эффект выработки гуморального иммунитета к ИРТ КРС при введении лабораторным животным антиидиотипических антител к белкам вируса и показана возможность использования, полученных антиидиотипов, в качестве антигена для постановки ИФА при определении анти-ИРТ антител в сыворотках КРС.

Установлен эффект выработки гуморального и клеточного иммунитета к ИРТ КРС при введении лабораторным животным отдельных гликопротеинов вируса эквивалентный введению цельного инактивированного вируса.

Результаты проведенных исследований позволили создать «Набор для иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота», НТД на который утверждена в установленном порядке, а ТУ переданы МЦОМ Госстандарта, где зарегистрирована под № 005/019669. Набор предназначается для индикации и количественного определения анти-ИРТ антител в сыворотках крови КРС.

Внедрение в практику ветеринарии иммуноферментного диагностикума ИРТ (с 1989 года ВНИТИБП ежегодно изготавливает и реализует около 300 наборов по заказу Департамента ветеринарии МСХ РФ) позволило решить проблему массового эпизоотологического обследования поголовья КРС, составляющего основу мероприятий по ликвидации и предупреждению распространения данного заболевания. Диагностикум экспортируется в страны со стационарным неблагополучием скота по ИРТ крупного рогатого скота.

Получение линий гибридомных клеток позволило разработать «Набор для ранней иммуноферментной диагностики ИРТ КРС» Набор предназначается для индикации и количественного определения вируса ИРТ КРС в носовых выделениях КРС, культуральных жидкостях в процессе репродукции вируса, в полуфабрикатах вакцин ИРТ, в сухой вакцине и других вируссодержащих материалах.

Внедрение в практику «Набора для ранней иммуноферментной диагностики ИРТ КРС» позволит проводить диагностику ИРТ КРС в племенных и пользовательских хозяйствах при первых проявления клинических признаков ИРТ, что будет способствовать оздоровлению хозяйств, обеспечению эпизоотологического благополучия, повышению сохранности и продуктивности поголовья, улучшению качества продукции.

1.5. На защиту выносятся следующие положения::

- результаты разработки оптимальных условий очистки и концентрирования вируса ИРТ КРС, штамм ТК-А (ВИЭВ) В2, репродуцированного в культуре клеток ПТ-80 и изучения его биологических и физико - химических свойств;

- результаты испытания антигенов вируса ИРТ КРС, полученных на базе очищенных и концентрированных препаратов, в качестве компонентов в серологических реакциях (РДП, РИГА, РСК, РН и ИФА);

- результаты исследования напряженности клеточного и гуморального иммунитета при ИРТ КРС;

- результаты получения анти-идиотипических и анти-анти-идиотипических антител к антигенам вируса ИРТ КРС, и исследования их свойств;

16 результаты исследования белкового состава вируса ИРТ КРС, штамм ТК-А (ВИЭВ) В2; результаты получения линий гибридомных клеток, продуцирующих МКА к антигенам вируса ИРТ КРС, их выделения и очистки, и исследования их свойств; результаты выделения отдельных гликопротеинов вируса ИРТ КРС, штамм TK-A (ВИЭВ) В2 и исследования их иммуногенных свойств на лабораторных животных; результаты разработки тест - системы ИФА для определения уровня анти-ИРТ антител в сыворотках вакцинированных, больных и переболевших животных и проведения сравнительной оценки определения уровня антител в реакции нейтрализации и ИФА; результаты разработки тест - системы ИФА для детекции антигенов вируса ИРТ КРС в различных вируссодержащих материалах и сравнения чувствительности и специфичности системы с вирусологическими методами и реакции ДНК гибридизации; результаты испытания и промышленного изготовления наборов для иммуноферментной диагностики ИРТ КРС.

2. Обзор литературы.

Заключение диссертации по теме «Биотехнология», Кузнецов, Дмитрий Павлович

6. Выводы.

6.1. Разработан метод очистки и концентрирования вируса ИРТ КРС, штамм ТК-А (ВИЭВ) В2, репродуцированный в культуре клеток ПТ-80, позволяющий получить препараты с титром инфекционности вируса выше, чем в исходной суспензии на 1,6 - 2,0 ^ ТЦД50/Мл

6.2. Изучены биологические свойства очищенного и концентрированного вируса, репродуцированного в культуре клеток ПТ-80, Вирус ИРТ КРС обладает комплементсвязывающей, гемагглютинирующей и преципитирующей активностью, сохраняет биологическую активность в течение 1 месяца в условиях температуры +4°, -7°, -20° и -50°С практически без снижения инфекционности.

6.3. На основе очищенных и концентрированных препаратов разработаны компоненты диагностикума для определения уровня анти-ИРТ антител в сыворотках больных и переболевших животных в иммуноферментном анализе.

6.4. При сравнительной оценке различных методов определения уровня анти-ИРТ антител установлено, что в ИФА и РНГА, коэффициент корреляции равен 0,86 Р<0,01, в ИФА и РН - г = 0.94 Р<0.01. В РДП получены наиболее низкие титры. Преимуществом метода ИФА является его более высокая чувствительность, чем РДП - в 100 раз, РНГА - в 10-20 раз, РН - в 10-50 раз. Метод ИФА может применяться при исследовании большого количества сывороток.

6.5. Разработана технология изготовления "Набора для иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота ". НТД на "Набор" утверждена в установленном порядке, ТУ на "Набор", зарегистрированы в МЦОМ Госстандарта под № 005/019669.

6.7. Показан эффект выработки гуморального иммунитета к ИРТ КРС при введении лабораторным животным анти-ИД антител к белкам вируса и возможность использования полученных анти-ИД в качестве антигена для постановки ИФА при определении анти-ИРТ антител в сыворотках КРС.

6.8. При изучении белкового состава вируса ИРТ КРС, штамм ТК-А (ВИЭВ) И2, выявлено 33 структурных белка с М.М. от 13 до 270 КД. Одиннадцать белков гликозилированы, 10 из которых являются поверхностными белками - гликопротеинами, так как они отцепляются при обработке тритоном Х-100. 9 гликозилированных и 3 негликозилированных белка индуцируют выработку анти-ИРТ антител в организме восприимчивых к ИРТ животных.

6.9. В результате реклонирования полученных линий гибридомных клеток, продуцирующих антитела к вирусу ИРТ, было получено 6 реклонов, которые продуцировали МКА к гликопротеинам вируса ИРТ КРС. Четыре клона продуцировали антитела, участвующие в реакциях вирус нейтрализации, пять - в антителозависимой клеточной цитотоксичности и иммунопреципитации. Все полученные МКА выявляли клетки инфицированные вирусом ИРТ КРС в реакции непрямой иммунофлуоресценции и были высокоактивными в ИФА.

6.10. Используя моноклональные антитела, обладающие вируснейтрализующей активностью, были очищены 4 гликопротеина вируса ИРТ КРС. Специфичность очищенных гликопротеинов была доказана в иммуноблотинге, а также, по их способности ингибировать активность анти-ИРТ сыворотки в ИФА и вируснейтрализующую активность анти-ИРТ сывороток КРС.

243

6.11. Три из четырех отдельных гликопротеина, использованные в нашем исследовании, эквиваленты цельному инактивированному вирусу ИРТ КРС в аспекте индуцирования клеточного и гуморального иммунитета против контрольного заражения вирусом ИРТ у лабораторных животных.

6.12. В результате исследований была разработана схема постановки ИФА для детекции антигенов вируса ИРТ КРС методом тройного сэндвич теста.

6.13. При сравнении специфичности и чувствительности разработанной тест - системы при определении вируса ИРТ в носовых выделениях телят с клиническими проявлениями ИРТ по цитопатическому действию на культуру клеток ПТ-80 и торможению вируснейтрализации анти-ИРТ сыворотки было установлено, что ИФА более чувствителен при определении вирусных антигенов, поскольку давал положительные результаты до 60 дня после проявления первых клинических признаков ИРТ.

7. Практические предложения.

На основе проведенной работы представлена научно - техническая документация:

Инструкция по изготовлению и контролю набора для иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота», утвержденная ГУВ Госагропрома СССР 01.08.89.

Технические условия 10.19.97-89 «Набор для иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота», утвержденные 01.08.89 ГУВ Госагропрома СССР и зарегистрированные МЦОМ Госстандарта 005/019669 от 18.08.89.

Наставление по применению набора для иммуноферментной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота», утвержденное ГУВ Госагропрома СССР от 02.01.89.

Методические указания по лабораторной диагностике инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота иммуноферментным методом», утвержденные ГУВ Госагропрома СССР от 02.01.89.

Временная инструкция по изготовлению и контролю набора для ретроспективной иммуноферментной диагностике ИРТ КРС», утвержденная директором ВНИТИБП 10 апреля 2001г.

Временная инструкция по изготовлению и контролю набора для ранней иммуноферментной диагностике ИРТ КРС», утвержденная директором ВНИТИБП 10 апреля 2001г.

Методические рекомендации по ретроспективной иммуноферментной диагностике ИРТ КРС», утвержденные РАСХН 22 мая 2001г.

Методические рекомендации по ранней иммуноферментной диагностике ИРТ КРС», утвержденные РАСХН 22 мая 2001г.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Кузнецов, Дмитрий Павлович, 2001 год

1. Авилов B.C., Матюгина Н.И. // Влияние дозы и очистки вируса ИРТ КРС на антителообразование при иммунизации кроликов. // Акт.пробл.вет.вирус., тр. ВИЭВ, 1981, 53, 60-62.

2. Авилов B.C., Мникова JI.A., Сологуб В.К., Коромыслов Г.Ф., Дзантиев Б.Б., Сорокина Н.В., Егоров A.M. // Иммуноферментный анализ // Ветеринария, 1981, 8, 33-35.

3. Адамушкин В.Е., Светлышев С.Д., Петрова И.А. // Методы очистки и концентрирования вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. // Проблемы вирусол., молекул. Биологии и гистологии с/х жив., Сб.научн.тр., М., МВА., 1983, 18-20.

4. Андреев Е.В., Драгомир A.B. Изучение гуморальных посвакцинальных антител у КРС, иммунизированного живой и инактивированной вакциной против ИРТ // Инф. И инвазионные болезни с.х. жив., Одесса, 1982, 11 - 15.

5. Андреев Е.В., Красников Г. А., Кучерявенко A.A. // Способ приготовления антигена из вируса ИРТ-ИПВ КРС для реакции преципитации в геле // Авт.свид., С 12 JI 1/00, А 61 Л 39/12, 24.10.77, № 573500.

6. Атамась В. А., Лаврова И.Г. // Изучение гуморальных поствакцинальных антител у крупного рогатого скота, иммунизированного живой и инактивированной вакцинами против инфекционного ринотрахеита. // Инф. и инвазион. Болезни с/х жив., Одесса, 1982, 11-15.

7. Атамась В.А.; Лаврова И.Г.; Масленикова С.И.; Баранов В.А. -Изучение хламидиоза и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота // Соврем, аспекты профилактики инфекц. болезнеймолодняка.с. 32-34

8. Ашмарин И.Н., Воробьев В.В. // Статистические методы в микробиологических исследованиях, 1962, Медгиз, JT.

9. Басова E.H., Стефани Д.В. // Некоторые особенности выделения миеломных IgG человека различных субклассов и их распределение по аллотипам, субклассам и типам легких цепей. ЖМЭИ, 1977, 5, 77-81.

10. Березин В. Э., Зайдес В. М, Исаева Е. С. и др.// Иммуногенные свойства отдельных гликопротеинов парамиксо-вируса. // Вопр. вирусол.—1985,—№2.—С. 166—174.

11. Березин В. Э., Артамонов А. Ф., Таран О. И. и др.// Эффективность иммунизации субъединичной вакциной против парамиксо-вирусов // Вопр. вирусол.—№ 5. — С. 568—572.

12. Березин В. Э., Исаева Е. С., Артамонов А. Ф. и др.// Сравнение иммуногенных свойств субъединичной вакцины с иммуногенностью цельновирионных препаратов. // Журн. микробиол. 1983.- №6.-С. 8188.

13. Березин В.Э., Воркунова Г.К., Мацевич Г.Р., Зайдес В.М., Маренникова С.С., Букуринская А.Г. // Применением метода имууного («вестерн») блотинга для изучения вирусных антигенов и выявления антител к вирусным белкам. //Вопр.вирусол., 1987, 3, 317-323.

14. Берестень С.Ф. // Использование моноклональных антител в терапевтических, научных и диагностических целях // Молек.биол., 1984, 18,5, 1407-1411.15 Биотехнология,— М., 1984.

15. Бобкова А.Ф., Чирков С.Н. // Применение иммуноферментного анализа для диагностики вирусных заболеваний растений (Обзор) // С/х биология, 1983, 5, 32-36.

16. Богаров А.Ф., // Вирусы группы герпеса, М., 1979.

17. Богаров А.Ф., Гофман Ю.П., Бикбулатов P.M. Морфология внутриклеточного паразитизма вируса герпеса человека // В кн., Труды стоматологов Лит. ССР, Каунас, 1967, 49.

18. Богаров А.Ф., Кицак В.Я. Некоторые аспекты персистенции вируса простого герпеса человека // В кн., Хроническая вирусная инфекция и ее роль в патологии человека. Новосибирск, 1978, 63 - 69.

19. Богаров А.Ф., Кицак В.Я., Богаров Е.Ф., Трухачев A.A. // Вирус простого герпеса, Новосибирск, Наука, 1982, 4 27.

20. Брондз Б.Д. // Т-лимфоциты и их рецепторы в иммунологическом распознавании. // М., 1987.

21. Быкова H.H., Лукина В.А., Бойко A.A. // Сравнительная оценка иммуноглобулинов, меченых пероксидазой (иммуноферментных конъюгатов). // Передовой науч.-производст. Опыт в биологической промышленности, 1985, 9, 8-11.

22. Василиади А.Г.; Сергеева И.В.; Хаустов В.И. // Возможность индикации вакцинного штамма в носовых смывах телят методом точечной молекулярной гибридизации // Актуал. вопр. инфекц. и инваз. болезней животных. М., 1993 С. 75-77

23. Васильев A.B., Музычин С.И. // Получение специфической сыворотки к вирусу инфекционного ринотрахеита на телятах. // Пробл.вирусол., мол. биол. и гистол. С/х жив., 1983, 11-12.

24. Витин В.Г.; Закутский Н.И.; Жестерев В.И.; Вишняков И.Ф.; Коломыцев A.A.; Конакова Л.Д. Безыгольный способ иммунизации крупного рогатого скота против инфекционного ринотрахеита ЦПробл. инфекц. патологии с.-х. животных. -Владимир, 199 С. 86

25. Гайдамович С .Я. // В кн.: Аробвирусы, Таллин, 1984, 3-5.

26. Герман Г.П., Чернохвостова C.B., Борисова И.В., Холчев Н.В. // Количественное определение уровня иммуноглобулинов. Сообщ. I. Исследование сывороток здоровых взрослых людей и детей. -Ж.микроб., 1971, 12, 62-67.

27. Глотов А.Г. Связь между введением контаминированной вирусом спермы в хозяйство и заболеванием коров и телят инфекционным ринотрахеитом крупного рогатого скота // Актуал. вопр. ветеринарии. -Новосибирск, 1997 С. 54-55

28. Глотов А.Г. // Обнаружение ДНК вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в тройничном ганглии латентно инфицированных телят методом молекулярной гибридизации // Акту ал. вопр. ветеринарии. -Новосибирск, 1997 С. 51-52

29. Глотов А.Г.; Орешкова С.Ф. // Диагностика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярнойгибридизации // Ветеринария, 1996; N 6 С. 24-27

30. Глотов А.Г.; Сергеев А.Н. // Частота выявления вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в пробах патологического материала от больных телят методом молекулярной гибридизации // Актуал. вопр. ветеринарии. -Новосибирск, 1997 С. 47-48

31. Голшмид В.К., Шрешнев А.Г., Чензова О.И. // К методике выделения фракций IgG из кроличьих агглютинирующих сывороток. // Лаб.дело, 1976, 10, 601.

32. Девришов Д.А. Дифференциальная диагностика респираторных болезней телят // Пробл. лейкоза и инфекц. заболеваний с.-х. животных. М, 1988 с. 99-101

33. Емельяненко П.А., Грызлова О.Н., Кузьмина М.Н. // Приготовление очищенных препаратов иммуноглобулинов крупного рогатого скота. // Докл.Вес.акад. с/х наук, 1973, 3, 35-37.

34. Жданов В.М., Гайдамович С.Я. // Частная вирусология, М., «Медицина», 2, 375 412.

35. Закутский H.H.; Жестерев В.И.; Вишняков И.Ф.; Конакова Л.Д.; Анисимова Л.И.; Шевченко A.A. Культуральная инактивированная вакцина против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота //Ветеринария, 1997; N 8С. 17-20

36. Закутский Н.И.; Жестерев В.И.; Вишняков И.Ф.; Конакова Л.Д.; Анисимова Л.И.; Шевченко A.A. Эффективность культуральной инактивированной вакцины против инфекционного ринотрахеитакрупного рогатого скота // Докл. РАСХН, 1997; N 5 С. 38-40

37. Закутский Н.И.; Жестерев В.И.; Вишняков И.Ф.; Шевченко A.A.; Конакова Л.Д. Схема иммунизации крупного рогатого скота инактивированной вакциной против ИРТ КРС // Пробл. инфекц. патологии с.х. животных. -Владимир, 1997 С. 85

38. Засадная З.С.; Авдосьева И.К.; Костюк Б.В.; Фомин Ю.В.; Мусиенко М.И. Серологические методы контроля инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота при трансплантации эмбрионов // Тезисы докладов. Львов, 1988 с. 43

39. Зудилина З.Ф. // Изучение биологических свойств парамикровируса и вирусов группы герпес крупного рогатого скота. // Авореф.диис.канд.биол.наук, М., 1970, 15.

40. Зудилина З.Ф., Крюков H.H., Надточий Г.А. Выделение и идентификация двух штаммов вируса ИРТ КРС // Бюлл. ВИЭВ, 1971, ХГ, 29-31.

41. Игнатьев A.M., Мони Ю.В., Бабикова P.A., Петрова И.А. -Использование метода иммунофлуоресценции при диагностике Инфекции КРС // Сб. научн. Трудов МВА им. Скрябина, 1973, 70, 118 119.

42. Игудин Л.И., Маркман Г.А., Лобань С.А., Позина И.М., Мигунова В.Н. // Полиэтиленгликоли и их использование в биологии и медицине. // ЖМЭИ, 1984, 4, 17-21.

43. Изотова Н.В., Балашов Н.П., Фарботко Г.Э. Выделение вируса ИРТ -ИПВ из спермы племенных быков // Биологические препараты против инфекционных болезней животных., М., 1981, 98 - 101.

44. Иммунологические методы, М., Мир, 1979.

45. Караджов И., Игнатов Г. // Получаване на антиген от вирус IBR заиммунодифузия. // Вет.наука, 1980, 27, 3, 10-16.

46. Кицак В.Я. // Твердофазный иммуноферментный анализ в вирусологии. Обзор литературы. // МРЖ, 1988, разд.М., I, 20-23.

47. Кицак В.Я., Мойсиади С.А., Биофизические параметры и биологическая активность ДНК вируса простого герпеса. Рестрикционный анализ // вопр. Вирусол., 1980, 1, 16-23

48. Кицак В .Я., Мойсиади С.А., Бочаров А.Ф., Ландин Л.К., Склянская Б.И. Сравнительное изучение эффективности очистки и концентрирования вируса простого герпеса типов 1 и 2 // Вопр. Вирус., 1979,2, 142- 148.

49. Красочко П.А.; Усов С.М. Эффективность использования вакцины "Монорин" для профилактики инфекционного ринотрахеита Технология получения и выращивания здорового молодняка с.-х. животных и рыбопосадоч. материала. // Минск, 1993С. 106-107

50. Крюков H.H. Инфекционный ринотрахеит - пустулезный вульвовагенит КРС // в кн. Инфекционные болезни при прмышленном скотоводстве. М., 1980, 13, 32- 113.

51. Крюков H.H. Инфекционный ринотрахеит // В кн. Инфекционные болезни КРС, 1974, 83-93

52. Крюков H.H. Научные принципы специфической профилактики вирусных респираторных заболеваний КРС // Труды ВИЭВ, 1981, 53, 13-20.

53. Крюков H.H., Семенихин А.Л., Зудилина З.Ф. Экспериментальный ринотрахеит крупного рогатого скота. Вирусные болезни с/х животных // В кн. Мат. Ш Межвуз. Вет. Вирусол. Конф., М, 1970, MB А, 118-119

54. Крюков H.H., Сологуб В.К., Шуляк А.Ф. // Гемагглютинирующие свойства вируса инфекционного ринотрахеита КРС // Ветеринария,1982, 1,26-28.

55. Крюков H.H., Шуляк А.Ф., Сологуб B.K. // Методические рекомендации по приготовлению гемагглютинирующего агента вируса ИРТ КРС, постановке реакции гемагглютинации и торможения гемаглютинации. // ВАСХНИЛ, отд.ветер., ВИЭВ, М., 1983.

56. Кузнецова C.B., Передереев H.H., Кузнецов П.П., Простяков А.П., Игнатьева B.C. // Метод получения антирабической сыворотки. // Тр. ВГНКИ, 1975, XXII, 36-41.

57. Кучерявенко Л.И. // Реакция связывания комплемента для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. // Дисс. на соиск.канд.вет.наук, Киев, 1983.

58. Кэрстак Э. // Успехи в разработке иммуноферментных методов: получение реагентов, планирование экспериментальных исследований и интерпретации результатов. // Семинар ВОЗ по проблеме получения вирусных реагентов, М., СССР, 11-24/XII, 1983.

59. Майборода А.Д., Крюков Н.И. // Адсорбция вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота гидратом окиси алюминия. // Ветеринария, 1976, 4, 51-52.

60. Майборода А.Д., Крюков H.H. Выделение штамма вируса ИРТ КРС // Вторая Всесоюзн. Конф. Молодых ученых по ветеринарии., тезисы докладов, М., 1971, 43 - 45.

61. Мартынова ТТ., Новиков В.В., Зубов C.B. // Оптимизация условий проведения ПАП-реакции с применением моноклональных антител // Биотехнология. 1994. № 9-10.

62. Массино Ю.С., Суханова JI.JL, Кнзим Е.А. // Получение бифункциональных моноклональных антител к IgG человека и пероксидазе хрена и их использование для тестирования антител к ВИЧ // Бюл. экспер. биологии и медицины. 1994. № 3.

63. Методы исследования в иммунологии // М. 1981

64. Морозов И.А.; Шуляк А.Ф.; Артюшин С.К.; Коромыслов Г.Ф. // Дифференциация штаммов вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота с помощью рестрикционного анализа // Молекуляр. генетика, микробиология и вирусология, 1991; Т. 4 с. 2932

65. Мчедлишвили Б.В., Кондратьева H.JL, Аксенвоа Т.А. // Опыт использования мембран типа «Владипор» для концентрирования культурального вируса бешенства. // В сб.: «В опр. мед. виру е.». Теэ. конф., 1975, 500-501.

66. Науменков В.И. // Применение иммунопероксидазного метода для индикации вирусных антигенов в культуре клеток. // Ветеринария, 1984, 7, 70-71.

67. Непоклонова И.В, // Ввявление антигена вируса ИРТ и антител к нему методом ИФА.//Автореф.дисс.вет.наук.М., 1985, 19.

68. Непоклонова И.В. // Получение глобулинов, меченых пероксидазой, для обнаружения антигена вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. // Сб. научных трудов, MB А, 1982, 39-41.

69. Непоклонова И.В. // Применение метода ELISA для обнаруженияантигена вируса ИРТ. // Проблемы вет.иммунол., под ред.академика ВАСХНИЛ Урбана В.П., М., Агропромиздат, 1985, 152-153.

70. Непоклонова И.В., Васильев A.B. // ИФА для выявления вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и антител к нему. // Бюл. ВИЭВ, 1985, 58, 30-35.

71. Нестеренко В. Г. // Функционирование обратной связи внутри иммунной системы // Иммунология.— 1982.— № 2.— С. 5—15.

72. Нестеренко В. Г. // Генерация иммунологической памяти и создание иммунологической толерантности // Иммунология., 1986., № 1., С. 78—83.

73. Нестеренко В. Г. // Клеточные факторы регуляции иммуногенеза // Под ред. В. Ф. Труфакина,— Новосибирск, 1985., С. 71—87.

74. Нестеренко В. Г. // Способность АТ2 индуцировать продукцию антител и Т-клеточные реакции // Иммунология., 1986., № 1.,.— С. 24—26.

75. Новиков В.В., Трофимова М.Н., Сандова О.М., Андреев A.B. // Использование хромотографических методов для очистки моноклональных антител ИКО-1. // Биохимия, биофизика микроорганизмов, 1985, вып.13, 59-64.

76. Нужнов С.А. Диагностические исследования на инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота в хозяйстве, неблагополучном по респираторным болезням телят // Бюл. ВИЭВ, 1989; Т. 71 с. 32-33

77. Нужнов С.А. // Диагностические исследования на инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота в хозяйстве, неблагополучном по респираторным болезням телят // Бюл. ВИЭВ, 1989; Т. 71 с. 32-33

78. Петрова О.Г.; Глотов А.Г. Особенности эпизоотологии инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота на Урале // Актуал. вопр. ветеринарии. -Новосибирск, 1997 С. 52-54

79. Пешкус Ю.К., Мачинайте JI.JI. // Метод получения из сыворотки КРС. // В кн.: Методы в биохимии, Вильнюс, 1975.

80. Пешкус Ю.К., Моркунас А.Б., Диканене И.П. // Применение иммуносорбентов для получения специфических антисывороток к иммуноглобулинам IgGI и IgG2 коров. // Метаболизм и его регуляция биол.актив.веществами, Вильнюсь, 1979, 237-241.

81. Пурэвцэрэн Б. // Диагностика и распространение инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в МНР. // Автореф.дисс.канд.вет.наук, М., 1989, 15.

82. Пурэвцэрэн Б.; Шуляк А.Ф. Реакция диффузионной преципитации при инфекционном ринотрахеите крупного рогатого скота Ветеринария, 1990; Т. 2 с. 39-41

83. Сазанова Э.Я., Кузнецов Д.П., Кузнецова C.B., Байко A.A. // Выделение анти-IgG лошади из сыворотки крови кролика методом аффинной хроматографии. // передовой науч.-проиводст. Опыт в биол.промыш., 1986, 12, 1-3.

84. Сассон А. Биотехнология: свершения и надежды,— М., 1987.

85. Сергиенко А.И.; Гуненков В.В.; Авдосьева И.К.; Урус Р.В. -Оплодотворяемость ооцитов крупного рогатого скота спермой, экспериментально индуцированной вирусом инфекционного ринотрахеита // Тезисы докладов. Львов, 1988 с. 87

86. Сологуб В.К., Шуляк А.Ф. // Гемаггютинирующая активность герпес вируса I крупного рогатого скота. // Труды ВИЭВ, 1981, 53, 42, 49.

87. ПОФарботко Г.Э.; Кондрахина К.Н.; Павлова Л.Д. Эпизоотическая обстановка по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота на племпредприятии // Ветеринария, 1994; N 8 С. 27-30

88. Фримель X, и соавт. Основы иммунологии.— М., 1986.

89. Фукс Б. В. и соавт. ВХО им. Д. И. Менделеева, 1982, 27.

90. Харитоненков И. Г., Закомырдин Ю. Л., Григорьев В. Б. и др. // Вопр. вирусол. — 1982. — № 3. — с. 358—362.

91. Чечеткииа Н.П.; Кузнецов А.Г.; Стеценко A.B. Носительство вирусов инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи у крупного рогатого скота // Пробл. и перспективы паразитоценологии. Харьков; Луганск,С. 175-176

92. Чумаков М. П., Мельникова С. К., Кусов Ю. Ю. и др. // Испытание субъединичной вакцины против гриппа типа А, полученной с помощью детергента ЦТАБ. // Вестн. АМН СССР. — 1983,—№ 12.— С. 21—29.

93. Шипицын А.Г.; Семенов И.Г.; Пшеничный A.A. Сухая культуральная ассоциированная вакцина против парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита Вакцинация телят на откормочных комплексах. // Тр. ВИЭВ, 1991; Т. 69 С. 91-93

94. Юров К.П.; Щербаков П.Н. Реактогенные и иммуногенные свойства новой инактивированной вакцины против ринотрахеита крупного рогатого скота // ВИЭВ Москва 1994 8 с

95. Яковлев Ю.С., Трусова Л.И., Воробьева Ж.И., Павлова А.Ф., Бродецкая С.Е., Гангалюк Е.А. // Получение препарата иммуноглобулина неспецифического с помощью полиэтиленгликоля. // Передов.науч.-произв.опыт в бол.промыш., 1985, 10, 5-6.

96. Янкин Н.Ф., Ванеева Л.И. // Разработка метода получения коньюгатов ПХ с анти-IgG для ИФА. // ЖМЭИ, 1, 1985, 35-40.

97. Ackermann М.; Belak S.; Bitsch V. Round table on infectious bovine rhinotracheitis/infectious pustular vulvovaginitis virus infection diagnosisand control // Veter. Microbiol, 1990; T. 23. N 1/4 p. 361-363

98. Ackermann M.; Müller H.K.; Bruckner I.; Kihm U. // Eradication of infectious bovine rhinotracheitis in Switzerland: Review and prospects // Veter. Microbiol, 1990; T. 23. N 1/4 p. 365-370

99. Ackermann M.; Muller H.K.; Bruckner L. // Die Bekämpfung der Infektiösen Bovinen Rhinotracheitis (IBR) in der Schweiz von 1978 bis 1988 // Schweiz. Arch. Tierheilk, 1989; T. 131. N 7 S. 397-407

100. Ackermann M.; Weber H.; Wyler R. // Aspects of infectious bovine rhinotracheitis eradication programmes in a fattening cattle farm // Prev. veter. Med, 1990; T. 9. N2 p. 121-130

101. Afahar A., Tabjbakhak H. // Occurence of procipiting antibodies to bovine herpes virus (IBR) in sera of farm animals and man in Iran. // J.Comp.Pathol. 1970. V.80 - p.307-310.

102. Affinity Chromatography, Principles and methods, // Pharmacia Fine Chemicals, 1979, p. 12.

103. Allison, A. C. and L. Malluci. // Histochemical studies of lysosomes and lysosomal enzymes in viral infected cell cultures. // J. exp. Med. 121: 463476. 1965.

104. Allison, A. C. // Immunity against viruses. In Scientific Basis of Medicine: // Annual Reviews I. Gilliland and J. Francis, Editors, pp. 49-73. Lon don: The Althone Press. 1972.

105. Allison, A. C. // Interactions of antibodies, corn plement components and various cell types in im munity against viruses and pyogenic bacteria // Transplant Revs. 19: 3-55. 1974.

106. Allison, A. C. // On the role of mononuclear phagocytes in immuity against viruses. // Prog. med. Virol. 18: 15-31. 1974.

107. Alvarado Isias A.; Aguilar Setien A.; Mejia Sanchez P.; Paz Villafan O.de;

108. Aruna D.; Babu T.S. // Prevalence of infectious bovine rhinotracheitis (IBR) virus antibodies in buffaloes of Andhra Pradesh // Indian J.anim.Sc, 1992; T. Vol. 62. N6P. 540-541

109. Avrameas S. // Enzyme immunoassay and related techniques: development and limitations. // Curr.Top.Microbiol. and Immunol., 1983, 104, 93-99.

110. Avrameas S. Ternynck T. // Peroxidase labeled antibody and Fab conjugates with enchanced intracellular penetration. // Immunochemistry. 1971, 8, 1175-1179.

111. Babiuk L.A, L'Italien T.J., S. van Drunen littel-van den Hurk. Zamb T. P. Lawman M.J., Hughes G, A Gifford G // Protection of Cattle from Bovine Herpesvirus Type I (BHV-1) Infection by Immunization with Individual

112. Viral Glycoproteins//VIROLOGY 1987, 159, 57-66.154Babiuk L.A., Rouse B.T. // Ribonukleotides in infectious bovine rhinotracheitis virus DNA // J/ Gen. Virol., 1976, 31, 221

113. Bachmayer H., Liehl E., Schidt G. // Isolation and cell culture propagation of rotaviruses from turkeys and chickens.// Post-grad. Med. J.— 1976.-— Vol. 52,—P. 360—367.

114. Baker J.C. // Clinical aspects of bovine virus diarrhoea virus infection // Rev. scient. techn. Off. Intern. Epizoot, 1990; T. 9. N 1 p. 25-41

115. Baker J.C.; Rust S.R.; Walker R.D. // Transmission of a vaccinal strain of infectious bovine rhinotracheitis virus from intranasally vaccinated steers commingled with nonvaccinated steers // Am. J. veter. Res, 1989; T. 50. N 6 p. 814-816

116. Baker P. J„ Morse H. C., Cross S. S. et al. // Experimental respiratory syncytial virus pneumonia in youngscalves: Microbiologic and immunofluorescence findings. // J. infect. Dis.— 1977.— Vol. 136. P. S20—S28.

117. Balachandran N. Harnish D., Rawals W.E., Bachetti S. // Glycoproteins of herpes simplex virus type 2 as defined by monoclonal antibodies. // J.Virol., 1982, 44,344-355.

118. Balachandran, N , Bacchetti S., and Rawls, W. E. // Protection against lethal challenge of BALB/c mice by passive transfer of monoclonal antibodies tofive glycoproteins of herpes simplex virus type-2 // Infect Immun. 1982a, 37, 1132-1137.

119. Balachandran, N., Harnish, D., Rawa:ls, W.E., Bachetti, S. // Glycoproteins of herpes simplex virus type 2 as defined by monoclonal antibodies. // J. Virol. 1982, 44, 344—355 .

120. Bang, F. B. and A. Warwick. // Mouse macro-phages as host cells for the mouse hepatitis virus and the genetic basis of their susceptibility. // Proc. Nat. Acad. Sei. 46: 1065-1073. 1960.

121. Baron C., Thompson T. E. // Prevalence of antibody to conventional and atypical rotaviruses in chickens.Biochem. bio-phys. // Acta.-1975.-VoL 382,—P. 276—285.

122. Bartha A // Immunization of cattle with an attenuated IBR vaccine. // Dev Biol Stand 1974, 26:5-7.

123. Bartha A., Kisary J., Belan S. // The general ferile respiratory of infectious bovine rhinotracheitis in calves. // Acta Vet. Acad. Sci. Hung., 1974, 24, 1 -2, 77-83.

124. Berezin V. A., Zaides V. M, Artamonov A. F. et al. // Modification of infectious bovine rhinotracheitis virus in tissue culture and development of a vaccine. //Arch. ViroL—1985.—Vol. 8.—P. 281—300.

125. Bergmann H., Hahnefeld H. // Immunofluorescens studion Rhinotracheitis und des Rindes in kalbern encelikulturen. // Arch. Exp.Veterinarmed., 1987, 21,3,801-808.

126. Bergmann H., Hahnefeld H. // Zur Diagnese der IBR-IPV-Virusinfection mit Hilfe fluoreszierender Autikorper. // Fortpfl.Hst., 1987, 3,311-317.

127. Bernard B. A., Yamada K. M., Olden K. // Present status of immunization procedures for infectious bovine rhinotracheitis // J. biol. Chem, 1982, vol. 257, p. 8549- 8554.

128. Bim H., Frischnecht H., Shen F. W. Wigzell H. // Current concepts on the role of viruses in respiratory tract disease of cattle. // J. exp. Med.— 1979.—Vol. 143.—P. 910—917.

129. Bim H., Wigzell H. // A field trial to evaluate an iniranasal infectious bovine rhinotracheitis vaccine. // Contemp. Top. Immunobiol.— 1977.— Vol. 7.—P. 113—141.

130. Bitsch V. // Resistance of infection with IBR virus in Danish cattle heard. // Nord.Vet.Med., 1978,45, 175-185.

131. Black D.N., Slack G. // A comparison of two strains of infectious bovine rhinotracheitis virus. // Arch. Ges. Virustorsch, 1972, 39, 330-337

132. Blanden, R. V. Mechanisms of recovery from a generalized viral infection: mouse pox III. Regression of infectious foci. J. exp. Med. 133: 1090-1103. 1971.

133. Blanden, R. V. // T cell response to viral and bacterial infection. // Transplant Revs. 19: 56-88. 1974.

134. Blobel G., Dobberstein B. // Development of intranasal vaccination for the immunization of cattle against infectious bovine rhinotracheitis. // J. cell Biol., 1975, vol. 67, p. 835-851.

135. Bolton D.C., Chu H.J., Ardans A.A., Kelly B., Zee X.C. // Evaluation of the critical parameters of a sensitive ELISA test using purified infections bovine (IBR) virus antigens. // Vet.Microbiol., 1981, 6, 265-279.

136. Bolton D.C., Zee Y.C., Ardans A.A. // Identification of Envelope and Nucleocapsid Proteins of Infectious Bovine Rhinotracheitis Virus SDS -Polyacrylamide Gel Electrophoresis., // Veter. Microbiol., 1983, 8, 1, 57 -68.

137. Bommell W.R., Kihm U., Lazarowicz M., Steck. F. // Rapid detection of antibodies to infectious bovine rhinotracheitis (IBR) virus by microenzyme linked immuno-sorbent assay (microELISA). // Proc.2. Int.Symp. Vet.Lab.Diagnost., 1980. 235-239.

138. Bona C. A., Moran T. // Comparative efficacy of intranasaily and parentallyadministered infectious bovine rhinotracheitis vaccines. // Ann. Immunol. (Insl. Pasteur) — 1985,—Vol. 1360.—P. 299—311.

139. Boyum A.// Immunity studies in calves vaccinated with a multivalent live respiratory vaccine composed of IBR, parainfluenza 3 and bovine adenovirus type 3. // Tissue Antigens, 1974,4, 3-4, 269-278.

140. Brady M. J., Furminger I. G. 5. // Recovery of infectious bovine rhinotracheitis virus following corticosteroid treatment of vaccinated animals. //J. Hyg. (Lond.).— 1976.— Vol. 77.—P. 161—172.

141. Brand C. M. Skehel J. J. // Reactivation of a bovine herpesvirus aftar corticosteroid treatment. // Nature. — New BioL— 1972.— Vol. 238.-—P.145 147.

142. Brown K. // Activation of latent infectious bovine rhinotracheitis infection. // Broilei industry, 1984, v. 47, N 10

143. Bzik D. J., Fox B. A., DeLuka N. A. et al // Infectious bovine rhinotracheitis virus excretion after vaccination, challenge and immunosuppression. // Ibid., 1984, vol. 133, p. 301-304.

144. Cappel R: Comparison of the humoral and cellular immune responses after immunization with live, UV inactivated herpes simplex virus and a subunit vaccine and efficacy of these immunizations. Arch Virol 52:29-35, 1976.

145. Casselberry NH: Present status of immunization procedures for infectious bovine rhinotracheitis. J Am Vet Med Assoc 152:853-856, 1968.

146. Cavanagh D. // Reactivation of temperature-sensitive and non-temperature-sensitive infectious bovine rhinotracheitis vaccine virus with dexamethasone. // Avian Diseases, 1986, v 30 N 1.

147. Chamberlain, J. P. // Fluorographic detection of radioactivity in polyacrylamide gels with the water-soluble fluor, sodium salicylate. // Anal. Biochem. 1979, 98, 132—135 .

148. Chang L.W., Zee Y.C., Pritchett R.F., Ardans A.A. // Neutralization Monoclonal Antibodies Directed to Infectious Bovine Rhinotracheitis Virus. // Arch.Virol., 1986, 88, 203-215.

149. Chapman M. // Survival of IBR virus in stored bovine semen. // Vet. Sci. Commun., 1979, 25, 3, 137 139.

150. Clereg E., Descamps J., De Somer P., Barr R.J., Jones A.S., Walner R. // N-5-2-bromvinil-21-deoxycitidin a pottent and selective anti-herpes agent // Proc. Nat. Acad. Sci., USA, 1979, 76, 2947 2951

151. Coelingh K. et al. // investigation of possible vaccine-induced epizootics of infectious bovine rhinotracheitis, using restriction endonuclease analysis of viral DNA. // J. Virol., 1986. N 60,'

152. Cohen J. et al. // Restriction endonuclease fingerprinting of herpes simplex virus DNA: a novel epidemiological tool applied to a nosocomial outbreak. //Virology. 1984, v 138,

153. Collard A. // Isolation and purification of bovine immunoglobulins: Use of sephacryl S-300 filtration avods protein pricipitation steps. // Ann.Rech.Veter., 1984, 15, 4, 497-501.

154. Collins J. K., Knight C. A. // Demonstration of exogenous genital reinfection with herpes simplex virus type 2 by restriction endonuclease fingerprinting of viral DNA. // J. Virol. — 1978. — Vol. 26. — P. 457—

155. Collins, J.K., Butcher, A.C., Riegel, C.A., McGrance, V., Blair, C.D., Teramoto, Y.A., Winston, S. // Neutralizing determinants defined by monoclonal antibodies on polypeptides specified by bovine herpesvirus 1. // J. Virol. 1984, 52, 403—409.

156. Conlaghi M.I. // Ust of bifuncional monoclonal antibodies for retargeting human lymphocytes to ovarian carcinoma cells//Period. biol. 1991. № 93.

157. Cortney R., Steiner S. M., Benyesh-Mel-nick M // Molecular epidemiology of DNA viruses: applications of restriction endonuclease cleavage site analysis. // Ibid, 1973, vol. 52, p. 447-455.

158. Cosenza H. Julius M. H., Augustm A. A. // DNA restriction enzyme analysis of digital and genital isolates of herpes simplex virus from three patients. // Immunol. Rev.- 1977.- Vol. 34,- P. 3-33. ,

159. Cote P. J. et al. // Differentiation of subtypes of equine Herpesvirus type 1 by restriction endonuclease analysis. // J. Virolog. Meth. 1981, v 3, ,N3.

160. Coudert M.; Martel J.L.; Fedida M. // The French national network of epidemiological surveillance of bovine disease // Acta veter. scand. Suppl, 1988; T. 84 p. 176-179

161. Coulson B.S., Holmes A.H. // Restriction endonuclease analysis oi herpes simpiex virus from recrydescent lesions, from latent infection and during passage in the skin and nervous system of mice. // J.Virol. Methods, 1984, 8, 165.

162. Cox J. H., Dietzschold B., Schneider L. G. // Characterization of virulent and aviruient strains of pseudorabies virus for thymidine kinaae activity, viruience and restriction paitems. // Infect, and Immun.—1977.—Vol. 16. — p. 754—759.

163. Cravens R.L.; Ellsworth M.A.; Sorensen C.D.; White A.K. // Efficacy of a temperature-sensitive modified-live bovine herpesvirus type-1 vaccineagainst abortion and stillbirth in pregnant heifers // J.Am.Veter.Med.Assn, 1996; Vol.208,N 12 P. 2031-2034

164. Crimmins D. L., Schlesinger S. // Differentiation of pseudorabies (Aujeszky's Disease) virus strains by restriction endonuclease analysis. // Biochemistry (Wash.), 1982, vol. 21, p. 3518- 3524.

165. Crumpacher, C.S. // Viral glycoproteins in infectious disease processes. // Rev. Infect. Dis. 1980, 2, 78—103 .

166. Darcel C Ie Q, Dorward WJ: Recovery of infectious bovine rhino-tracheitis virus following corticosteroid treatment of vaccinated animals. Can Vet J 16:87-88, 1975.

167. Dariel C.Q. // Precipitins in bovine sera to infectious bovine rhinotraheitis virus antigens. // Canad.vet.J., 1977, 18, 9 , 259-262.

168. Dauie J , Seiden M., Greenspan N. et al. // Analysis of bovine herpes-virus type 1 isolates by restriction endonuclease fingerprinting. // Ann. Rev. ' Immunol.- 1984,- Vol. 4.-P. 147-183.

169. Davies, D. H. and L. E. Carmichael. Role of cell mediated immunity in the recovery of cattle from primary and recurrent infections with infec-tious bovine rhinotracheitis virus. Infection & Im munity 8: 510-518. 1973.

170. De B.N.; Chatterjee A.; Sen G.P.; Biswas G. // Investigation of an outbreak of bovine abortion in a large organised dairy farm // Indian veter. J, 1989; T.66. N4 p. 283-287

171. Dichter M. A., Wemer H. L., Fields B. N. et al. // The role of latency in the epizootiology of infectious bovine rhinotracheitis. // Ann. Boston, 1984, pp. 211-227

172. Dix, R.D., Pereira, L., and Baringer, J.R. // Use of monoclonal antibody directed against herpes simplex virus glycoproteins to protect mice against acute virus-induced neurological disease // Infect Immun. 1981, 34, 192199.

173. D'Offay J.M.; Mock R.E.; Fulton R.W. // Isolation and characterization of encephalitic bovine herpesvirus type 1 isolates from cattle in North America // Am.J.veter.Res, 1993; Vol. 54, N 4 P. 534-539

174. Dostal V., Kroath H., Binder M. // Studies of kinetics of DNA synthesis in CV-1 cell cultures infected with different multiplicities (MOI) of herpes simplex type 2 (HSV 2) // Osterr. Z. Onkol., 1976, 3, 3- 8

175. Doumalin L. // La rhinotracheite infectieuse bovine: comment s "en sortir // Product, lait. mod, 1990; T. 198 p. 98-101

176. Duhamel R.C., Schur P.H., Brendel K. // Use of restriction anaiysis for the study of Bovid Herpesvirus 1 latency. // J. Immunol. Meth., 1979, 31,211217.

177. Durham P.J.K., Sillars H.M. Evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for serodiagnosis of infectious bovine rhinotracheitis infeciton, with results of a preliminary survey. // New.Zeland

178. Vet.J., 1986, 34, 3, 27-34.

179. Eckert A. E. // Persistent infection of the genital tract and excretion of the vaccine strain after live virus immunization with bovine herpesvirus 1 (IBR/IPV virus). // Infect, and Immun — 1976.—Vol. 14,—P. 1302—1308.

180. Edelman R. // Excretion and reexcretion of thermosensitive and wild-type strains of infectious bovine rhinotracheitis vims after co-infection or two successive infections. // Rev. Infect. Dis.—1980.— Vol. 2. — P. 370—383.

181. Edelman R., Hardegree M. C., Chedid L. // Ovarian lesions induced in heifers by intravenous inoculation with modifiedlive infectious bovine rhinotracheitis virus on the day after breeding.// J. infect. Dis. — 1980. — Vol. 141.— P. 102—112.

182. Edwards A.J. // The effect of stressors like rumen overload and induced abortion on BRD in feedlot cattle // Agri-Pract, 1989; T. 10. N 2 p. 10-15

183. Edwards S.; White H.; Nixon P. // A study of the predominant genotypes of bovid herpesvirus 1 found in the U.K. // Veter. Microbiol, 1990; T. 22. N 2/3 p. 213-223

184. Egyed L.; Brocchi E.; Rusvai M.; Bartha A. // Study of bovine herpresvirus type 1 strains with monoclonal antibodies // Acta veter. hung, 1992; Vol. 40, N3 P. 225-230

185. Eichmann К.// Effects of a bovine herpesvirus 1 isolate on reproductive function in heifers: Classification as a type 2 (infectious pustular vulvovaginitis)//Advanc. Immunol.— 1978.— Vol. 26.—P. 195—219.

186. Enders О. // Serologische Untersuchungen über die Verbreitung von IBR-Infektionen in den Rinderbestanden des Saarlandes // Диссертация, Датазащиты: 1989

187. Endresen С. // Immunochemical Characteristic of Subfrangments from the G, 3 Homology Region of Human IgG. // Acta path., micorobiol.scand. Sect. C. Immunology, 1977, 85-c, 2, 81-86.

188. Era H. C., Finberg R. W. // IBR/IPV viruses: genome structure and disease. //Proc. nat. Acad. Sci. USA.— 1984.—Vol. 81.—P. 2850-2854.

189. Erti H C., Homans E., Tournas S., Finberg R. W. // Bovine herpesvirus 1: molecular and antigenic characteristics of Vr,risnt virus isolated from calves with neurologic disease. // J. exp. Med.- 1984,- Vol. 150.- P. 1720-1727.

190. Evans D.L., Barnett J.W., Bowen J.M., Dmochenski L. // Antigenic relation ship between the herpesviruses of infectious bovine rhinotracheitis, marons disease, and Burkitts lymphome. // J.Virol., 1972, 10, 2, 272-287.

191. Farley J.E., Skare I.В., Skare J. // Inverted repeat sequences in infectious bovine rhinotracheitis virus DNA. // In: A.J. Nachmias., W.R. Dowdla, R.F.

192. Schinazi. The human herpesviruses, antinterdisciplinary perspective, 590 p., Elsevier, N.Y.

193. Fenner M. // Classification and nomenclature of viruses // Intervirol., 1976, 7,71 116

194. Fenner M., Siegmann K., Bim H. // Restriction endonuclease patterns of bovine herpesvirus type 1 isolated from bovine mammary glands. // Scand. J. Immunol.— 1986,- Vol. 24.—P. 341—349.

195. Ferrua B., Vincent C., Revillard J.P., Petassi G., Malioni R., Viot G., Masseyeff R. // A sand vich method of enzyme-immunoassay. III. Assay for human bets-2-microglobulin compared with radioimmunoassay. // J.Immunol.Meth., 1980, 36, 2, 149-158.

196. Fey H., Peister H., Messerly I., Sturzenegser, Grolimund F. // Methods of Isolation, Purification and Quantitation of Bovine Immunoglobulins. // Zbl.Vet.Med., 1976, 3, 23, 269-300.

197. Fields S., Winter G., Brownlee G.G. // European isolates of bovine herpesvirus 1: a comparison of restriction endonuclease sites, polypeptides, and reactivity with monoclonal antibodies. // Nature, 1981, vol. 290, p. 213217.

198. Finberg R. W., Erti H. C. 1. // Comparison of the herpesviruses of cattle by restriction endonuclease analysis and serologic analysis. // Immunol. Rev.— 1986,— Vol. 90.—P. 122—155.

199. Frankena K.; Franken P.; Vandehoek J.; Koskamp G.; Kramps J.A. //

200. French, E. L. Relationship between infectious bovine rhinotracheitis CIBR) virus and a vims isolated from calves with encephalitis. Aust. vet. J. 38: 555-556, 1962.

201. Frenke. N., Roisman B. // Ribonucleic acid synthesis in cells infected with herpes simplex virus: controls of transcription and of RNA abundance. // Proc. Nat.Acad.Sci. USA, 1972, 69, 2654-2658.

202. Frerking H. // IBR immer noch eine Geissel bei "Rinderversammlungen"? // Tierarztl.Umsch, 1998; Jg.53,N 3 S. 163-164

203. Frilsen A.D. // Process for preparing purified immune globulin (IgG). // Path. 1201063, Canada, MKI A61 K/39/395.

204. Gamble H. et at. // Restriction endonuclease analysis of bovine herpesvirus 1 DNA and nucleic acid homology between isolates. //Immunology and immunoptthology, 1984, v 6, N 314.

205. Gandhi S. S., Stanley P., White D. O. // Infectious bovine rhinotracheitisinfectious pustular vulvovaginitis: BHV-1 infections // Microbios, 1972, vol. 5, p. 41-50.

206. Ganges L.; Barrera M.; Cedeno I.; Montalvo J.M. // Diagnostico de herpesvirus bovino-1 en toros mediante inmunofluorescencia e inmunoperoxidasa directas // Rev.Salud anim., 1997; Vol.l9,N 1 P. 51-52

207. Garroff H., Frischauf A.-M., Simons K, et al. // Changes in the bovine herpesvirus 1 genome during acure infection, after reactivation from latency, and ader superinfection in the host animal. // Nature, 1980, vol. 288, p. 236- 241.

208. Garroff H., Schwarz R. T. F. // An enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of antibody against Aujcszky's disease virus in pig sera // Nature, 1978, vol. 274, p. 487-490.

209. Gauilon T,. N. Sharpe A. Chang D. W. et al. // Investigations on the persistence of the bovine IBR-IPV virus in the semen of naturally infected bulls. // J. Immunol. 1986.—Vol. 137.-- P. 2930—2936.

210. Gell P. G. H., Moss P. A. H. // A micro-enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of antibodies to infectious bovine rhinotracheitis virus. // J. gen. Virol.— 1985. -Vol. 66.— P. 1801—1804.

211. Get cash for reducing fatal. E. coli scoures with the // Genecol-99 Rebate,— Beet, 1986, v 22, N6.

212. Ghevens J. et al. // Production of antibodies against influenza virus by somatic cell hybrids between mouse myeloma and prisned spleen cells. // Infec. and Irnmun., ,1981, v 34, N 1.

213. Gibson R., Kornfeld S., Schlesinger S. // Indirect solid-phase microradioimmunoassay for detection of pseudorabies virus antibody in swine sera. // J. biol. Chem., 1981, vol. 256, p. 456-462.

214. Gibson R., Seavitt R., Kornfeld S. et al. // A method of trace iodination of proteins for immunological studies. // Cell, 1978, vol. 13, p. 671-679.

215. Gobbagy A. // Fluoresczeinsotiocian attat jelzett IgG, tilzett IgG tisztitasa gelfiltratassal. // Kiserl. Orvostub., 1976, 28, 1, 79-86.

216. Goodive A., Potter C. W., C{ark A. et al. // Enayme-linkcd immunosorbeni assay for 'serology of infectious bovine rhinotracheitis virus infections. // J. Hyg. (Lond.). — 1983.—Vol. 90.— P. 107—115.

217. Goodman, T. and H. KOPROWSKI. Study of the mechanism of innate resistance to virus infection. J. Cell coTp. Physiol. 59: 333-373. 1962.

218. Goosen P. // Demonstration of infectious bovine rhinotracheitis vims in newborn-colostrum-dcprived calves wnh particular reference to its cpizootiological significance. // J. Immunol. Meth., 1980, 37, 89-93.

219. Gregerson, J.P., Pauli, G., Ludwig, H. // Bovine herpesvirus 1: Differentiation of IBR- and IP V-viruses and identification and functional role of their major immunogenic components. // Arch. Virol. 1985, 84, 91— 103.

220. Grewal, A. S., B. T. Rouse and L. A. Babiuk. Mechanisms of resistance to herpesvirus: Compari-son of effectiveness of different types in mediating antibody dependent cell mediated cytotoxicity. Infection & Immunity 15: 698-703. 1977.

221. Griffiss J.M., Bertrem M.A., Broud D.D. // separation and purification of immunoglobulins M, A and Q from small volumes of human sera by a continuous, inline chromatographic process. // J.Chromatogr., 1978, 156, 1, 121-130.

222. Grzych J. M., Capron M., Lambert P. H. et al. // Demonstration of colosiral antibodies in the nasal secretions of calves 'and their protective effect against infection. // Nature.— 1985.— Vol. 316,— P. 74—76.

223. Guillilaud D. G. et al. // Point mutations in the hemagglutinin molecule ofinfluenza virus: Their frequency, phenotypic characteristics and biological relevance. // Proc. Nat. Acad Sci V. S., 1980, v 77.

224. Gyorgy E, Sheehan MC, Sokol F: Release of envelope glycoprotein from rabies virions by a nonionic detergent. J Virol 8:649-655, 1971.

225. Haralambiev H // Immunogenicity studies of an inactivated IBR vaccine administered into the nasal mucosa. // Acta Vet Acad Sci Hung ,1976, 26: 215-217.

226. Hartman A.; Wuijckhuise L.van; Frankena K.; Franken P.; Wever P.; Wit J.de; Kramps J. // Within-herd BHV-1 prevalence prediction from an ELISA on bulk milk // Veter.Rec., 1997; Vol.140,N 18 P. 484-485

227. Hartwig N.R. // Is there salvation in a bottle // Feeding and health management. S.l, 1989 p. 26-29

228. Heine JW, Spear PG, Roizman B: Proteins specified by herpes simplex virus. VI. Viral proteins in the plasma membrane. J Virol 9:431-439,1972.

229. Heinz F. X., Kunz Ch. // Antibody formation. III. The primary and secondary antibody response to bacteriophage 0 x 174 in guinea-pigs. // J. gen. Virol.— 1980.—Vol. 49,—P. 125—132.

230. N. Y.). — 1974.—Vol. 146.—P. 200—204.321Heremans, J. R. The IgA system in connection with local and systemic immunity. In The Immuno-globulin A System. J. Mestecky and A. R. Lawton, Editors. Volume 45. pp. 3-12. New York: Plenum Pub. Corp. 1974.

231. Herring A.I., Nettleton P.F., Burrells C. A microenzymelinked immunosorbent assay for the detection of antibodies to infectious bovine rhinotracheitis virus.//Veterinary Rec., 1980, 107, 7, 155-156.

232. Holfmann G. W. // Determinalion of (he protective epitopes on (he glycoproteins of Venezuelan equine encephalomyelitis virus by passive transfer of monoclonal antibodies // Europ. J. Immunol.— 1975 — Vol 5 -P. 638—647.

233. Holloway P. W. // Passive protection of mice and sheep againsi bluctongue virus by a neutralizing monoclonal antibody. // Analyt. Biochem. — 1973. Vol. 53.—P. 304—308.

234. Honda E.; Katsu Y.; Fujii C. // A comparison of polypeptides and restriction endonuclease sites of BFTV-1 isolates and identification of IPV virus in Japan // Japan. J. veter. Sc, 1989; T. 51. N 6 p. 1143-1149

235. Horigome T., Sugano H.// Identification ofidioiypic receptors on reovirus-specinc cyto-lytic T cells. // J. Chromatogr.-1984.-Vol. 283.—P. 315— 322.

236. Hristov S, Karadjov 111 Study on the immunogenic properties of inactivated vaccines produced with the virus of the infectious bovine rhinotracheitis (in Bulgarian, English summary). // Vet Med Nauki ,1975, 13(3):&-13.

237. Hristov S, Karadjov I, Ignatov, et al // On the immunogenic properties of a polyvalent inactivated vaccine from respiratory viruses (IBR, Pi-3, Ad-1, Ad-3) (in Bulgarian, English summary). // Vet Med Nauki , 1976, 13(4): 36-44.

238. Hsu M. C., Scheid A., Choppin P. W. // The direct antiviral cytotoxicity by bovine lymphocytes is not restricted by genetic compatibility of lymphocytes and target cells. // Virology. — 1979. — Vol. 95. — P 476— 491.

239. Huang R. T. C, Wahn K., Klenk H.-D. // Varicella-zoster virus-specific gp 140: a highly immunogenic and disulfide-linked structural glycoprotein. // Ibid.—P. 476—491.

240. Hyland SJ, Easterday BC, Pawlisch R: Antibody levels and immunity to infectious bovine rhinotracheitis virus (IBR) infections in Wisconsin dairy cattle. Dev Biol Stand 28:510-525, 1975.

241. Icenogle J. et 'at.I. // Evidence for functional domains on the reovirus type 3 hemaggiutinin. // Virology, 1981, v 45, N 1.

242. Inaba Y // Development of infectious bovine rhinotracheitis live virus vaccine (in Japanese, English summary). // J Jpn Vet Med Assoc 1975, 28: 410-414,.

243. Ishirava R. // Enzyme immunoassay of insulin by fluometry of insulin-glikoemylase complex. // J.Biochem., 1973, 75, 1319-1321.

244. Issacs, A. and G. Hithhock. // Role of interferon in recovery from virus infections.// Lancet 2: 69-71. 1960.3381 Issacs, A. and J. Lindenman. // Virus interference: In the interferon. // Proc. R. Soc. B. 147: 258-267. 1957.

245. Jennings R., Brand C. M., McLaren C. et al. // Hemagglutinin variants ofreovirus type 3 have altered central nervous system tropism. // Med. Microbiol. Immunol. — 1974. — Vol. 160,—P. 295—309.

246. Jensen R, Pierson RE, Braddy PM, et al: Shipping fever pneu-monia in yearling feedlot cattle. J Am Vet Med Assoc 169:500-506, 1976.

247. Jerne N. K. // Use of monoclonal antibodies in diagnosis of rabies virus infection and differentiation of rabies and rabies-related viruses. // Ann. immunol. — 1974 — Vol. 125C. — P. 373—389.

248. Jetteur P.; Thiry E.; Pastoret P.P. // Enquete serologique concernant les virus IBR, CHV2, BVD, PI3, RSB et bovipestique chez les petits ruminants au Zaire // Rev.Elevage Med.veter, 1990; T. 4 P. 435-437

249. Kaeberle M.; Maxwell D.; Johnson E. // Antl-viral antibodies in a cow herd // Iowa state univ, 1989; T. 597 p. 32-34

250. Kaluza G., Scholtissek C., Rott R. // Six years study with Heipes simplex in a children's home // J. gen. Cirol, 1972, vol. 14, p. 251-259.

251. Kaplan AS, Erickson JS, Ben-Porat T: Excretion of specific glycoproteins by cells infected with herpes simplex virus types 1 and 2. Pros Med Virol 21:1-12. 1975.

252. Kaufmann S. H. E., Eichmann K., Mulier 1., Wrazet L. J. // The pathogenesis of recurrent infections with infectious bovine rhinotracheitis virus induced in calves by treatment with corticosteroids. // J. Iinmuiio.,— 1985,—Vol. 134.--P. 4123—4127.

253. Kauhty n., Karanko V., Peltola., Makela P H // // Host defense mechanisms against Herpes simplex virus. II. Protection conferred by sensitivity. Infect. Immunol // Pediat-rics.— 1984.— Vol. 74.— P. 857— 864.

254. Kay M.M., Goodmen S.R., Sorensen K. // Beitrag. zur Killektiren Behandung pharmakologischer Reihenvcrsuche // Proc.nat Acad., Sci., USA, 1983, 80, 1631-1635.

255. Kelsoe G„ Reth M., Rajeusky K. // Prevention of cell-to-cell spread of Herpes simplex virus by leucocytes. // Immunol, Rev.— 1980. Vol. 52.— P. 75—88.

256. Kennedy R. C. // Immune mechanisms by which the spread of viral infections is stopped. // Curr. Top. Microbiol. Immunol.— 1985— Vol. 119,—P. 1—3.

257. Kennedy R. C., Eichberg 1. E,, Landford R. E., Dress-man G. R. // Lymphocyte interferon production and transformation after Herpes simplex infections in humans // Science.— 1986.— Vol. 232.— P. 220—223

258. Kitces EN, Morahan PS, Tew JG, et al: Protection from oral herpes simplex virus infection by a nucleic acid-free virus vaccine. Infect Immun 16:955960, 1977.

259. Klimentowski S.; Kolodziej P.; Koziol T.; Rypula K. // Epizootia IBR w woj. legnickim // Med.weter, 1994; R. 50, N 8. S. 368-370

260. Knezevic N.; Kosanovic P.; Rogan D. // Imunoprofilaktiksa respiratornog sindroma goveda inaktivisanim vakcinama. 3. Ispitivanje imunogenosti bivalente inaktivisane uljne vakcine IBR i PI-3 // Veter. Glasnik, 1990; T. 44. N 7 s. 503-512

261. Koch G., Boer G.F.// Monoclonal Antibodies Against Avian Infectious Bronchitis Virus. // Tijds.Diergeneeskd, 1985, 110, 20, 846.

262. Kohler G., Milstein C. // Continnous cultures of fused cells secreting antibody ofpredetmed specificity. //Nature, London, 1975, 256, 495.

263. Kolar JR, Shechmeister IL, Kammlade WG, Jr // Use in cattle of formalin-killed polyvalent vaccine with adjuvant against infectious bovine rhinotracheitis, bovine viral diarrhea, and parainfluenza-3 viruses. // Am J

264. Vet Res, 1972,33:1415-1420.

265. Kramps J.A.; Quak S.; Weerdmeester K.; Oirschot J.T.van // Comparative study on sixteen enzyme-linked immunosorbent assays for the detection of antibodies to bovine herpesvirus 1 in cattle // Veter.Microbiol, 1993; Vol. 35, N 1/2 P. 11-21

266. Kucera CJ, Beckenhauer WH: Time required to stimulate protection with intranasal administration of a temperature-sensitive, infectious bovine rhinotracheitis virus vaccine. Vet Med Small Anim Clin 73:83-87, 1978.

267. Kunlcel H. G., Mannik M., Williams R C. // Cell-mediated immunity to Herpes simplex virus in man // Science.— 1963.— Vol. 140.— P. 1218— 1219.

268. Kurstak E. // Application of the immunoperoxidase technique in virology and cancer virology light and electron microscopy. // Virol.immunol., N.J., Acad.Press, 1974, 3-30.

269. Kutinoua L., Slichtova V., Vonka V. // Cell-mediated immunity to Herpes simplex virus in man // Arch. Virol.-1979.-Vol. 61.—P. 141— 147.

270. LAEMMLI, IT. K. // Cleavage of structural proteins during the assembly ofthe head of bacteriophage T4. // Nature 1970, 227, 680—685 .

271. Larin N. M, Gallimore P. H. // Reactivation of a bovine Herpes virus after corticosteroid treatment // J. Hyg. (Lond.).—1971.—Vol. 69.—P. 35—46.

272. Lehmann R.; Kalbe P. // Unger C. IBR/IPV- (BHV 1-) Sanierung in einer Jungrinderaufzuchtanlage: Kurzmitteilung // Mh. Veter.-Med, 1990; T. 45. N15 S. 519-521,

273. Livingstone D.M. // Defense mechanisms against bovine herpesvirus: Relationship of virus-host cell events to susceptibility to antibody-complement lysis. // Methods enzymol., 1974, 34, 723.

274. MacLENNAN, I. C. M. Antibody in the induction and inhibition of lymphocytotoxicity. Transplant Revs. 13: 67-95. 1972.

275. Magyar G.; Tanyi J.; Homyak A.; Bartha A. // Restriction endonuclease analysis of Hungarian bovine herpesvirus isolates from different clinical forms of IBR, IPV and encephalitis. // Acta veter. hung, 1993; Vol. 41, N 1/2 P. 159-170

276. Makino S, Reynolds JA, Tanford C: The binding of deoxycholate and triton X-100 to proteins. J Biol Chem 248: 4926-4932, 1973.

277. Marcus S.; Avraham A.; Zacks M. // A clinical and serological survey in dairy herds vaccinated against IBR, BVD and PI3 infections // Israel J.veter.Med, 1992; Vol. 47, N 2 P. 61-66

278. Marel P., Wezel A. L.// Monoclonal antibodies to the glycoproteins of herpes simplex virus type-2 // Develop. Biol. Stand.—1979.—Vol. 42. — P. 93—98.

279. Marshall R.L., Rodrigues L.L., Letchworth G.J., Characterisation of Envelope Proteins of Infectious Bovine Rhinotracheitis Virus, Bovine Herpesvirus I by Biochemical and Immunological Methods., // J. Virol., 1986,57,3,745 -753.

280. Mayfield J.E., Good P.J., Van Oort H.j., Campbell A.R., Reed D.E. // Cloning and cleavage site mapping of DNA from bovine herpesvirus 1 (Cooper strain). // J.Virol., 1983, 47, 259-264.

281. Mc Sharry J., Benzinger R. // Concentration and purification of VSV by polyethylene glycol "precipitaion". // Virology, 1970, 40, 745-746.

282. McFARLAND, H. F. and R. T. JOHNSON. Inflam-matory response in viral infections. In Viral Im-munology and Immunopathology. A. L. Notkins, Editor, pp. 137-148. New York: Academic Press. 1975.

283. McFARLAND, H. F. In vitro studies of cell-mediated immunity in an acute viral infection. J. Immun. 113: 173-180. 1974.

284. MILLER, J.F.A.P., A. BASTER, J. SPRENT and C. CHEERS. Interaction between lymphocytes in im-mune responses. Cell. Immun. 2: 469-480. 1971.

285. Milstein C. // The Wellcome Foundation lecture, 1980. Monoclonal antibodies from hybrid myelomas. // Proc.Roy.Soc.London, 1980-1981, 211, 1182-1185, 393-412.416MIMS, C. A. // Aspects of the pathogenesis of viral disease. // Bact. Rev. 28: 30-71. 1964.

286. Min-Jou W., Verhoyen M., Deuos R. et al. // Immune interactions with cells infected with herpes simplex virus: antibodies to radioiodinated surface antigens. // Cell, 1980, vol. 19, p. 683-696.

287. Misra, V., R. M. Blumenthai. and L. A. Babiuk. // Proteins specified by bovine herpesvirus 1 (infectious bovine rhinotracheitis vims). // J. Virol. 1981,40,367- 378.

288. Mohan M.; Singh B.K.; Manickam R. // Seroepidemiological studies on infectious bovine rhinotracheitis (IBR) in bulls // Indian veter. J, 1989; T. 66. N 10 p. 914-916

289. Montalvo, E.A., Parmley, R.T., Grose, C. // Structural analysis of thevaricella-zoster gp98—gp62 complex: posttranslational addition of N-linked and 0-linked oligosaccharide moieties. // J. Virol. 1985, 53, 761— 770 .

290. Morein B., Sharp M., Sundquist B. et al.// Mechanisms of resistance of different cell types in mediating antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity. // J. gen. Virol. — 1983. — Vol. 64. — P. 1557— 1569.

291. Morrison S. L., Wims L. A., Oi V. T. // Polymorphonuclear neutrophil-mediated antibody-dependent cell cytotoxicity of hcrpesvirus-infected cells: Ultrastructural studies. // Biol, din Appi — Florence, 1984.- P. 2.

292. Munoz M.C.; Merino N.; Nunez A. // Estudio morfopatologico y serologico en un brote de aborto bovino asociado al virus IBR // Rev. Salud anim, 1989; T. 11. N2 p. 118-124

293. Mushi E.Z.; O'Connell K.; Byrom B.; Ries R. // Antibodies to infectious bovine rhinotracheitis virus in the sera of goats in Zimbabwe // Bull. anim. Health Product, in Africa, 1989; T. 37. N 4 p. 391

294. Nakamura K., Homma M., Compans RW. // Monoclonal antibodies against three major glycoproteins of varicella-zoster vims. // Ibid., 1982, vol. 119, p. 474-487.

295. Nakane P.K., Kawaoi A. // Peroxidase-labelled antibody a new method of conjugation.//J.Histochem,Cytochem., 1974, 22, 12, 1084-1091.

296. Nedler L. M. et al. // Antigenic drift in influenza viruses and association of biological activities with the topography of the hemagglutinin molecule. //1. Cancer. Res. 1980, v 40.

297. Nesterenko Y. G., Kraskina N. A., Rubakova E. // Proteins specified by herpes simplex virus XIII Glycosylation of viral polypeptides // Gru-ner Sh. II Cell. Immunol.— 1982.— Vol. 69 — P 215— 226.

298. Obert G. et al. // Inhibition of influenzaimmune T cell effector function by virus-specific hybridoma antibody. // Spriger Verlag. Berlin, New-York, Tokyo, 1985.

299. Obert G., Blyer C. // An ELISA using monoclonal antibodies for the detection of respiratory syncytial virus in clinical specimens. // Arch. Virol., 1988, 100,37-49.

300. O'Callaghan DJ, Randall CC: // Molecular anatomy of herpesviruses:Recent studies. //Prog Med Virol 22:152-210,1976.

301. Oitdin S. Michet M.C. R. // Cell fusion induced by herpes simplex virus is promoted and suppressed by different viral glycoproteins. // Acad. Sci. — 1963.—Vol. 257,—P. 805—808.

302. Olden K., Pratt R. M. Vamata K, M. // Proteins specified by bovine herpesvirus type-1 (infectious bovine rhinotracheitis virus). //Cell, 1978, vol. 13, p. 461-473.

303. Oslerhaus A. D. M. E., Bunschoten E. ., Weijer K. Uytbe-Haag F. G. C. M. // Biological Applications of Anti-idiotypes. Vol. 2 / Ed. C. A. Bona.— Boca Raton, 1988—P. 14—29.

304. Ouchterlony L. // Antigen-antibody reactions in gele. // Archiv.forkkini, 1949, 26, 1-9.

305. Passelegue P.; Prunaux O.; Guignard A. // La rhinotracheite infectieuse des bovins: enquete serologique a 1 "lie de la Reunion // Rev. Med. veter, 1991; T. 142. N7 p. 575-577

306. Pastoret P.P., Aguilar-Setien A., Burtensey G., Schwere A. // Effect de la cyclophosphamide sur la latence du virus de la rhinotracheite infectionse bovine. // Ann.med.vet., 1980, 124, 1, 55-67.

307. Pertoft H. // Density gradient centrifugation of a herpesvirus (IBRV) in colloidal silica. // Virology, 1970, 41, 2, 368-372.

308. Plummer G., Goodheart C.R., Henson D., Sowling C.P. // A comparisonstudy of the DNA density and behavior in tissue cultures of fourteen different herpesviruses.//Virology, 1969,39, 134-137.

309. Poel W.H.M.van der; Kramps J.A.; Quak J.; Brand A.; Oirschot J.T.van // Persistence of bovine herpesvirus-1-specific antibodies in cattle after intranasal vaccination with a live virus vaccine // Veter.Rec., 1995; Vol.137,N 14P. 347-348

310. PORTER, D. D. Persistence of viral infection in the presence of immunity. In Viral Immunology and Im-munopathology. A. L. Notkins, Editor, pp. 189-200. New York: Academic Press. 1975.

311. Potgieter LND: Current concepts on the role of viruses in respiratory tract disease of cattle. Bovine Pract 12:75-81, 1977.

312. Potter C. W., Jennings R., McLaren C. et al. // The structure of various immunoglobulins and their biological activities. // J. hyg. (Lond.). — 1975. — Vol. 75. —P. 353—362.

313. Powell KL, Buchan A, Sim C, et al: Type-specific protein in herpes simplex virus envelope reacts with neutralising antibody. Nature {London} 249:360-361, 1974.

314. Powell KL, Watson DH: // Some structural antigens of herpes simplex virus type 1.//J Gen Virol 29:167-178, 1975.

315. Powell, K., Buchan, A., Sim, C., and Watson, D. // Type-specific protein in herpes simplex virus envelope reacts with neutralizing antibody // Nature (London) 1974, 249, 360-361.

316. RAWLS, W, E. and W. A. F. TOMPKINS. Destruc-tion of virus-infected cells by antibody and comple-ment. In Viral Immunology and Immunopathology. A.L. Notkins, Editor, pp. 99-112. New York: Aca-demic Press. 1975.

317. Re G. // Allestimento di kit diagnostici ELISA per l'indagine sierologica e il controllo di malattie infettive animali nei paesi in via di sviluppo //

318. Riv.Agr.subtrop.trop, 1990; An. 84, N 4 P. 645-660

319. Reagan К. I. // Type-common and type-specific monoclonal antibody to herpes simplex virus type-1 // Curr. Top. Microbiol. Immunol.— 1985.— Vol. 119.—P. 15—30.

320. Rees A. D. M., Praputpittaya K., Scoging A. et al. // Herpes simplex virus glycoproteins gA/B: Evidence that the infected Vero cell products comap and arise by proteolysis. //Immunology.- 1987.- Vol. 60.- P. 389-393.

321. Rees A. D. M. Scoging A. Dobson N. et al. // Herpesvirus antigens on cell membranes detected by centrifugation of membrane-antibody complexes. // Europ. J. Immunol.- 1987.- Vol. 17.- P. 197-201.

322. Reiss C. S., Schulman J. L. // The direct antiviral cytotoxicity by bovine lymphocytes is not restricted by genetic compatibility of lymphocytes and target cells. // J. Immunol. — 1980.—Vol. 125.—P. 2182—2188.

323. Reyero C., Stockei W. // Membrane proteins specified by herpes simplex viruses III Role of glycoprotein VP7 (B2) in virion infectivity. // J. Immunol. Meth., 1977, 156, 211-221.

324. Riish P. // Untersuchungmen u ber den Titer-verlauf viruneutalisiesenden Antikörper nach akuter IBR. // Schweizer Archiv fur Tiezheilimunde, 1981, 123, 8,419-425.

325. Roechring J.T., Hunt A.R., Mathews J.H. // High Technology Route to Virus Vaccines. // Houston, 1984,- P. 32.

326. Roers N. // Analyse des EDV-Einsatzes zur Lenkung staatlicher Massnahmen zur Bekämpfung der BHV1 -Infektionen des Rindes in Hessen //(Диссертация): Inaug.-Diss 1990

327. Roison B., Morse L.S. // Human herpesvirus 1 as a model of regulation of herpesvirus macromolecular metabolism: a review. // IARC Sci.Publ., 1978, 24, 269-286.

328. Rondle C. M., Walker M. I. Krahn J. B. et al. // Glycoproteins specified by herpes simplex virus type-1: Their synthesis, processing and antigenic relatedness to HSV-2 glycoproteins. //J. biol. Stand. — 1975.—Vol. 3. — P. 341—347.

329. Ronin C., Granier C., Caseti C. et al. // Membrane proteins specified by herpes simplex viruses I. Identification of four glycoprotein precursors and their products in type-1-infected cells. // Europ. J. Biochem, 1981, vol. 118, p. 159- 164.

330. Rosadio R.H.; Rivera H.; Manchego A. // Prevalence of neutralising antibodies to bovine herpesvirus-1 in Peruvian livestock // Veter.Rec, 1993; Vol. 132, N24 P. 611-612

331. Rosadio R.H.; Rivera H.; Manchego A. // Prevalence of neutralising antibodies to bovine herpesvirus-1 in Peruvian livestock // Veter.Rec, 1993; Vol. 132, N24 P. 611-612

332. Rose J.K., Gallione C.J. // Human cytomegalovirus: Glycoproteinsassociated with virions and dense bodies. // J. Virol., 1981, vol. 39, p. 519529.

333. ROSENBERG, G. L. and A. L. NOTKINS. Induction of cellular immunity to herpes simplex virus: rela-tionship to the humoral immune response. J. Immun. 112: 1019-1025. 1974.

334. ROSENBERG, G. L., P. A. FARBER and A. L. NOTKINS. In vitro stimulation of sensitized lym-phocytes by herpes simplex virus and vaccinia virus. Proc. Nat. Acad. Sci. 69: 756-760. 1972.

335. Rossi C.R., Kiesel G.K. // Complement-Requiring Neutralising Antibodies in Cattle to Infectious Bovine Rhinotracheitis Virus. // Archiv.Virusfors, 1974, 45,328-334.

336. Rothman J.E., Lodish H.E.// Production and characterization of monoclonal antibodies against the Epstein-Barr virus membrane antigen. // Nature, 1979, vol. 269, p. 775-780.

337. ROUSE, B. T. and L. A. BABIUK. Host defense mechanisms against infectious bovine rhinotracheitis virus II. Inhibition of viral plaque formation by immune peripheral blood lymphocytes. Cell. Immun. 17: 4356. 1975.

338. ROUSE, B. T. and L. A. BABIUK. Host defense mechanisms against infectious bovine rhinotracheitis virus: in vitro stimulation of sensitized lymphocytes by virus antigen. Infection & Immunity 10: 681-687. 19T4.

339. ROUSE, B. T. and L. A. BABIUK. The direct anti-viral cytotoxicity of bovine lymphocytes is not restricted by genetic incompatibility of lymphocytes and target cells. J. Immun. 188: 618-624. 1977.

340. ROUSE, B. T., R. C. WARDLEY and L. A. BABIUK. The role of antibody dependent cytotoxicity in recov-ery from herpesvirus infections. Cell. Immun. 22: 182-186. 1976.

341. ROUSE, B. T., A. S. GREWAL and L. A. BABIL'K. Complement enhances antiviral antibody dependent cell cytotoxicity. Nature 266: 456458. 1977.

342. ROUSE. B. T., A. S. GREWAL, L. A. BABIUK and Y. FUJIMIYA. Enhancement of antibody dependent cell cytotoxicity of herpesvirus infected cells by com-plement. Infection & Immunity 18: 660-665. 1977.

343. Ruben F. L., Jackson G. C. // // Crossed immunoelectrophoretic analysis and viral neutralizing activity of five monospecific antisera against five different herpes simplex virus glycoproteins. J. infect. Dis. — 1972. — Vol. 125. —P. 656—664.

344. Rubin BA, Tint H: The development and use of vaccines based on studies of virus substructures. Prog Med Virol 21:144-157, 1975.

345. Russel W.C., Grawford L.V. // Properties of the nucleic acids from some herpes group viruses. // Virology, 1964, 22, 288-292.

346. Rweyemamu M.M.; Fernandez A.A.; Espinosa A.M. // Incidence, epidemiology and control of bovine virus diarrhoea virus in South America // Rev. scient. techn. Off. Intern. Epizoot, 1990; T. 9. N 1 p. 207-214

347. Ryan A.M.; Hutcheson D.P.; Womack J.E. // Type-I interferon genotypes and severity of clinical disease in cattle inoculated with bovine herpesvirus 1 // Am.J.veter.Res, 1993; Vol. 54, N 1 P. 73-79

348. Sabirovic M.; Hajdarevic F.; Nevjestic A. // Uticaj virusa infektivnog bovinog rinotraheitisa (IBR/IPV) i virusa mukozne bolesti (BVD/MD) na reproduktivne performanse goveda // Veterinaria (Sarajevo), 1990; T. 39. N 1/2 s. 165-172

349. Sacks D. L., Kirchhoff L.V., Hieny 5., Sher A. // Immune response afterexposure to varicella zoster virus: characterization of virus-specific antibodies and their corresponding antigens. // Ibid.- 1985.- Vol. 135.- P. 4155-4159.

350. Sacks D.L., Sher A. // Shared antigenic determinants between two distinct classes of proteins in cells infected with herpes simplex virus. // J. Immunol.- 1983.-Vol. 131.- P. 1511-1515.

351. Schick M. R., Dressman G.R., Kennedy R.C. -// Protection against lethal challenge of BALB/c mice by passive transfer of monoclonal antibodies to five glycoproteins of herpes simplex virus type-2. // Ibid.- 1987 Vol. 138.-P. 3419-3425.

352. Schipper IA, Kelling CL // Evaluation of inactivated infectious bovine rhinotracheitis vaccines. // Can J Comp Med , 1975, 39:402-405.

353. Schlafer D.H.; Gillespie J.H.; Foote R.H. // Experimental transmission of bovine viral diseases by insemination with contaminated semen or during embruo transfer//Dt. tierarztl. Wschr, 1990; T. 97. N 2 S. 68-72

354. Schlesinger S., Gottlieb C., Fell P. et al // Glycoproteins of herpes simplex virus type-2 as denned by monoclonal antibodies. // J. Virol, 1976, vol. 17, p. 234-246.

355. Schwartz AJF, York CJ, Zirbel LW, et al // Modification of infectious bovine rhinotracheitis (IBR) virus in tissue culture and development of a vaccine. // Proc Soc Exp Biol Med 1957, 96:453-458,.

356. Schwartz AJF, Zirbel LW, Estela LA. et al // Propagation and modification of infectious bovine rhinotracheitis (IBR) virus in porcine kidnay tissue culture. // Proc Soc Exp Biol Med 1958, 97:680-683.

357. Schwarz R.T., Rohrschneider J.M., Schmidt M.F.G. et al. // Use of monoclonal antibody directed against herpes simplex virus glycoproteins to protect mice against acute virus-induced neurological disease // J. Virol., 1976, vol. 19, p. 782-791.

358. Schwers A., Pastoret P.P., Leroy P. // Sensibilité an phosphonofomate de différentes souches du virus de la rhinotracheite infectiouse bovine (bovid herpesvirus 1). //Ann.Med.Vet., 1980, 124, 4, 271-279.

359. Scki C. // Cytotoxic T lymphocytes reactive with vesicular stomatitis virus: Analysis of specificity with monoclonal antibodies directed to the viral glycoprotein. // The Japan Journal of Vet. Res., 1986, v 34, N 2.

360. Servais L. // La Belgique entname un programme d'eradication de 1'I.B.R. // Elevages belges, 1996; N 10 P. 9-14

361. Sheffy BE, Davies DH: Reactivation of a bovine herpesvirus after corticosteroid treatment. Proc Soc Exp Biol Med 140:974-976, 1972.

362. Sheffy BE, Rodman S: Activation of latent infectious bovir rhinotracheitis infection. J Am Vet Med Assoc 163:850-851, 1973.

363. Sher-man D. M. // Effect of tunicamycin and monensin on biosynthesis, transport, and maturation of bovine herpesvirus type-1 glycoproteins. // Irish Vet. News., 1984, v 11.

364. Shimizu Yuko, Isayama Yasure, Kawakami Yoshimi, Murase Nobua, Kawane Toshitana. // Micro inderect hemagglutination test for detecting antibody against infectious bovine rhinotracheitis virus. // Nat.Inst.Anim.Health Quart, 1972, 12, 1, 1-2.

365. SHORE, S. L., A. J. NAHMIAS, S. E. STARR, P. A. WOOD and D. E McFARLIN. Detection of cell-dependent cytotoxicity antibody to cell infected with herpes simplex virus. Nature 251: 350-352. 1974.

366. SHORE, S. L„ C. M. BLACK, F. M. MELWEICZ, P. A. WOOD and A. J. NAHMIAS. Antibody de-pendent cell mediated cytotoxicity to target cells in-fected with Type 1 and Type 2 herpes simplex virus. J. Immun. 116: 194201. 1976.

367. Sibbel R.L.; Bass E.C.; Thomas P.C. // How long will a killed IBR vaccine protect against challenge // Veter. Med. (Edwardsville), 1988; T. 83. Nip. 90-93

368. Silva F.F.; Castro R.S.; Melo L.E.H.; Abreu S.R.O.; Muniz A.M.M. // Anticorpos neutralizantes contra HVB 1 em bovinos do estado de Pernambuco // Arq. brasil. Med. veter. Zootecn. -Belo Horizonte, 1995P.597.599

369. Simons K., Helenius A., Leonard K. et al. // Priming for an induction of anti-poliovirus neutralizing antibodies by synthetic peptides. // Proc. nat. Acad. Sci. USA.—1978.—Vol. 75.—P. 5306—5310.

370. Singh E.L. // The potential of semen and embryos for introducing pathogens into the uterus // Congress proceedings. Vol. 5. Abstracts. S.l, 1988p. 72-79

371. Skare J., Sullivan N., Skare I.B. // Cloning of bovine herpesvirus-1 DNA and localisation of sequences in defective genomes. // Abstract., 1982, Sixth Cold Spring Harbor Meeting on Herpesviruses; N.Y., USA, August 31, September 5.

372. Skehel J. J, Stevens D. J., Daniels R. S. et al. // Isolation of pure IgGi, IgG2a and IgG2b immunoglobulins from mouse serum using protein A-Sepharose. //Proc. nat. Acad. Sci. USA, 1983, vol. 81, p. 1779-1783.

373. Sklyanskaya E.I., Itkin Z.B., Iofman Y.P., Kaverin N.V. // Structural proteins of infectious bovine rhinotracheitis virus // Acta virol., 1977, 21,4, 273 -279

374. Solsona M., Porrin B., Porrin M., Noussa A. // Recherche des anticorps Contre le virus de la rhinotracheite bovine infectieuse par la methode ELISA. //Bul.Acad.Ve.France, 1980, 53, 215-255.

375. Soula A., Laurent N., Tixier G.et Moreen Y. // ELISA IBR expression d'un titre ELISA 50%. // Develop.Biol.Stand., 1982, 52, 147-157.

376. Soulebot I.P., Fetermann H.G., Brache R., Lang R., Mackaviak C. // Reaction de fixation du complement. Application an virus rabique. // Bull.Acad.Vetian.Fr., 1969, 42, 5, 187-211.

377. Sovocol F., Koprowski H. // Structuretunction relationshipsand mode of replication of animal rhabdovirus. // Proc.Nat.Acad.Sci., USA, 1975, 72, 3, 933-936.

378. Spear PG, Keller JM, Roizman B: Proteins specified by herpes simplex virus. II. Viral glycoproteins associated with cellular membranes. J Virol 5:123-131, 1970.

379. Spear PG, Roizman B: Proteins specified by herpes simplex virus. V. Purification and structural proteins of the herpes-virion. J Virol 9:143-159, 1972.

380. Spear, P. // Glycoproteins specified by herpes simplex type-1: Their synthesis, processing and antigenic relatedness. // IARC Sei. Publ 1975, 11, 49-60.

381. Spieck M. // Immunodiffusions test zum Nachweis von Antikörpern der infektiösen bovine Rhinotracheitis in Vergleich mit Neutralisations und Ensum test. // Tierarstl, Umschan, 1986, 41, 958-961.

382. Stein K.E., Soderstrom T. // Bovine herpesviruses. I Bovine herpesvirus-1. //Ibid.— P. 1001—1011.

383. STEVENS, J. G. and M. L. COOK. Restriction of herpes simplex virus by macrophages. An analysis of cell-virus interaction. J. exp. Med. 133: 19-38. 1971.

384. Stinski, M. F. // Sequence of protein synthesis in cells infected by human cytomegalovirus: early and late virus-induced polypeptides. // J. Virol. 1978, 26, 686-701.

385. Stohrer R., Hunter E. // Mechanisms of resistance to herpesviruses: Comparison of the effectiveness of different cell types in mediating antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity. // J. Virol., 1979, vol. 32, p. 412-419.

386. Straub O.C.; Funk K.; Bruchhof B. // IPV-Belastungsversuche nach Applikation einer BHVl-Subunit-Vakzine // Tierarztl. Umsch, 1990; T. 45. N6 S. 383-388

387. Straub O.C.; Mawhinney I.C. // Vaccination to protect calves againstinfectious bovine rhinotracheitis // Veter. Rec, 1988; T. 122. N 17 p. 407411

388. Strnad B. C. et al. // Protection against lethal challenge of BALB/c mice by passive transfer of monoclonal antibodies to five glycoproteins of herpes simplex virus type 2. // J. Virology, 1982, v 41, N 1.

389. Thiriart C., Collignon C., Sneyers M., Lambert A.F., Franssen J.D., Schers

390. Thiry E., Pastoret P.P. // Biocheme de l'herpesvirus bovin 1 (BHV 1) // Annal. Recherc. Veter., 1984, 15, 4, 455 465

391. Thomson T. A., Hilfenhaus J., Moser H., et al. // The synthesis of glycoproteins in human myeloma cells infected with varicella-zoster virus. // Infect, and Immun.—1983.—Vol. 41,—P. 556—562.

392. Tint H., Dobkin M. B., Rubin B. A. // Arrangement of the glycoproteins in the envelope of pseudorabies virus // Symp. Ser. Immunobiol. Stand. — 1974, — Vol. 21,—P. 132—144.

393. Todd JD // Development of intranasal vaccination for the immunization of cattle against infectious bovine rhinotracheitis. // Can. Vet J ,1974, 15:257259.

394. Todd JD, Volenec F J, Paton IM: Intranasal vaccination against infectious bovine rhinotracheitis: Studies on early onset of protection and use of the vaccine in pregnant cows. JAm Vet Med Assoc 159:1370-1374, 1971.

395. TOMASL T. B. and J. BIENENSTOCK. // Secretary immunoglobulins. // Adv. Imrnun. 9: 1-96. 1968.

396. Tousimis A.G., Howells W.V., Griffin T.P., Porter R.P., Chlathem W.I., Mauer F.D. // Biophisical characterization of infectious bovine rhinotracheitis virus // Proc. Soc. Exper. Biol. Med., 1958, 99

397. Towbin H., Gordon J. // Glycoproteins of measles virus under reducing and nonreducing conditions. // 1984, J.Immunol.Meth., 72, 313-340.

398. Towbin H., Staehelin T., Gordon Y. // Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: Procedure and some applications. //Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 1979, 76, 4350-4354.

399. Towbin H., Staehelin T., Gordon J. // A new method for partial peptide mapping using N-chlorosuccinimide urea peptide silver staining in sodium sulfate polyacrylamide gels. // Proc. nat. Acad. Sci. USA.-1979.-Vol. 76. — P. 4350—4354.

400. Tyrrell D. A. G. // Cell fusion induced by herpes simplex virus is promoted and suppressed by different viral glycoproteins. // J. infect. Dis.—1974.— Vol. 129,—P. 766—770.

401. Urbain S., Slaoui M., Leo O. // Proteins specified by bovine herpesvirus 1 (infectious bovine rhino-tracheitis virus). // Ann. Immunol. (Inst. Pasteur).-1982.-Vol. 133D.-P. 179.

402. Uytdehaag F.C.G.M., Bunschoten H., Weijer K. Osterhaus A.D.M.E. // Herpesvirus-induced "early" glycoprotein: characterization and possible role in immune cytolysis. // Immunol. Rev.- 1986.- Vol. 90.- P. 93-113.

403. Valiseh L., Smid B. // Electron microscopy study of the structure of theenvelopes of IBR virus in ultrathin sectious 11 Folia microbiol., 1975, 20, 1, 91-92

404. VAN DRUNEN LITTEL-VAN DEN HURK, S., AND BABIUK, L. A. () Synthesis and processing of bovine herpesvirus-1 glycoproteins. J. Virol 1986, 59, 401-410.

405. VAN DRUNEN LITTEL-VAN DEN HURK, S., AND BABIUK, L. A. // Poly-peptide specificity of the antibody response after primary and recurrent infection with bovine herpesvirus-1. // J. Clin. Microbiol. 1986, 23, 274-282.

406. Van Weemen B.K., Schuurs A.H.W.M. // // Structural analysis of the varicella-zoster virus gp98-gp62 complex: post-translational addition of N-linked and 0-linked oligosaccharide moieties.FEBS Let, 1971, 15, 2, 232236

407. Verhoyen M., Fang R., Min-Jou W. et al // The direct antiviral cytotoxicity by bovine lymphocytes is not restricted by genetic compatibility of lymphocytes and target cells. // Ibid., 1980, vol. 286, p. 771-776.

408. Vernon SK, Lawrence WC, Long CA, et al: Herpesvirus vaccine development: Studies of virus morphological components, in VoUer A, Friedman H (ed): New Trends and Developments in Vaccines. Baltimore, University Park Press, 1978, pp 179-210.

409. Veselinovic S.; Veselinovic S.; Medic D.; Ivkov V.; Grgic Z.; Micic R. // Disturbances in bovine reproduction caused by action of IBR/IPV viruses // Proc.of the 12.Intern.congr.on animal reproduction. S.I., 1992P. 16051607

410. Vestergaard BF, Bjerrum OJ, Norrild B, et al: Crossed immuno-electrophoretic studies of the solubility and immunogenicity of herpes simplex virus antigens. J Virol 24:82-90, 1977.

411. Vestergaard, B.F., and Norrild, B. // Crossed immunoelectrophoretic analysis and viral neutralizing activity of five monospecific antisera againstfive different herpes simplex virus glycoproteins. // IARC Sci Publ. 1979, 24, 225-234,

412. Vilcek S. Vyvoj // PCR testov na detekciu BHV-1, BRSV a pestivirusov // Veter.Med. Praha, 1994; R. 39, c. 11 S. 687-700

413. Vilcek S.; Deliova I.; Forgac 0.; Strojny L.; Harvan M.; Benko G. // Detekcia bovinneho herpesvirusu-1 metodou dot-blot hybridizacie // Veter.Med. Praha, 1993; R. 38, c. 4. 193-202

414. Vilcek S.; Nettleton P.F.; Herring J.A.; Herring A.J. // Rapid detection of bovine herpesvirus 1 (BHV 1) using the polymerase chain reaction // Veter.Microbiol, 1994; Vol. 42, N 1 P. 53-64

415. Visser I.K.G.; Bildt M.W.G.v.d.; Brugge H.N. // Vaccination of harbour seals (Phoca vitulina) against phocid distemper with two different inactivated canine distemper virus (CDV) VACCINES // Vaccine, 1989; T. 7. N6 p. 521-526

416. Voller A. // In: A guide with abstracts of microplate applications. // London, 1979, 1, 128.

417. Voller A. // In: A revien of recent developments with abstracts microplate applications. // London, 1980, 2, 126.

418. Ward C. W. // Membrane proteins specified by herpes simplex viruses. I. Identification of four glycoprotein precursors and their products in type 1-infected cells. // Curr. Top. Microbiol. Immunol., 1981, vol. 94/95, p. 1— 74.

419. WARDLEY, R.C., B.T. ROUSE and L.A. BABIUK. Observations on recovery mechanisms from feline viral rhinotracheitis. Can. J. Med. 40: 257-264. 1976.

420. WARDLEY, R.C. B.T. ROUSE and L.A. BABIUK. Antibody dependent cytotoxicity mediated by neu-trophilis: A possible mechanism of antiviral defense. J. Retic. Soc. 19: 323-332. 1976.

421. WARNER, N. L. The immunological role of the avian thymus and bursa of Fabricius (in antibody formation, transplantation, and delayed hypersensitivity). Folia biol. 13: 1-17. 1967.

422. Webster R. G, Kasel J. A., Couch R. B., et al. // Proteins specified by herpes simplex virus. V. Purification and structural proteins of the herpesvirion. // J. infect. Dis.-1976.-Vol. 134.—P. 48—58.

423. Webster R. G., Askonas B. A. // Human cytomegalovirus: glycoproteins associated with virions and dense bodies. // Europ. J. Immunol. — 1980.— Vol. 10,—P. 396—407.

424. Webster R. G., Hinshaw V. S. // Synthesis of proteins and glycoproteins in cells infected with human cytomegalovirus // Infect, and Immun.—1977.— Vol. 17,—P. 561—566.

425. Webster R. G., Laver W. G. // Production and characterization of monoclonal antibodies against the Epstein-Barr virus membrane antigen // J. Immu-nol. — 1966. — Vol. 96. — P. 596—605.

426. Wezel A.L. // Large-scale concentration and purification of virus suspension from microcarrier culture for the preparation of intractivated virus vaccines. //Develop.biol.Stand., 1979, 42, 65-69.

427. Whitman G.E., Hetrick P.M. // An inderect hemagglutination test for Detecting Antibody to infectious bovine rhinotracheitis virus. // The Cornell Veter., USA, 1965, 55, 4, 613-622.

428. WHITTER, R. L. Natural mechanisms of control-ling lymphotropicherpesvirus infection (Marek's disease) in chickens. Cancer Res. 36: 681687. 1978.

429. Wienmaster G.A., Misra V., Mc.Guire R., Babiuk L.A., De Clerg E. // Bovid herpesvirus type 1 (infectious bovine rhinotracheitis vims) induced thymidine kinase.//Virology, 1982, 118, 191-201.

430. Wilson M.B., Nakome P.K. // In: Knapp W.P. Immunofluorescence and related staining techniques. // Amsterdam, Elsevier/North Holland, 1978, 215-224.

431. Wiseman A. // infectious bovine rhinotracheitis virus // Veter. Ann. Bristol., 1980, 20, 204-208

432. Yoshida N. et al. // Use of monoclonal antibodies for analysis of antibody-dependent immunity to ocular herpes simplex virus type 1 infection. // Science, 1980. N207.

433. Zygraich N, Lobmann M, Vascoboinic E, et al // In uivo and in vitro properties of a temperature sensitive mutant of infectious bovine rhinotracheitis virus. //Res Vet Sci, 1974, 16:328-335.

434. Zygraich N, Vascoboinic E, Huygelen C: Immunity studies in calves vaccinated with a multivalent live respiratory vaccine composed of IBR,314parainfluenza 3 and bovine adenovirus type 3. Dev Biol Stand 33:379-383, 1976.

435. ГОДАРСТВЕННОЙ МТОГ№ШЛЕНгШ ЙОКИТЬТ СССР33» ЪьОО 05'1. Р 31л? ^ V V 1- <? А\д^л/н?*- -'ЛХ

436. Зал^кйшльнкка Главного уврав1. Госагропрома