Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и особенности проявления болезни в современных условиях ведения животноводства тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, доктор биологических наук Строганова, Ирина Яковлевна

• Строганова, Ирина Яковлевна
• доктор биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации доктор биологических наук Строганова, Ирина Яковлевна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота.

1.1.1. Историческая справка.

1.1.2. Характеристика возбудителя.

1.1.3. Структура и функционирование генома вируса.

1.1.4. Антигенные и генетические подгруппы вируса.

1.1.5. Репликация вируса.

1.2. Культуральные свойства респираторно-синцитиального вируса.

1.2.1. Культивирование РС-вируса в различных клеточных системах.

1.2.2. Условия и методы культивирования. Питательные среды, сыворотки, добавки.

1.2.3. Цитопатогенное действие вируса.

1.3. Эпизоотологические данные. Особенности проявления респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота в молочных хозяйствах.

1.4. Особенности патогенеза, клинических признаков и патоморфологических изменений при респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.

1.4.1. Патогенез болезни.

1.4.2. Клинические признаки.

1.4.3. Патоморфологические изменения при респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.

1.5. Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.

1.5.1. Выделение вируса в культурах клеток.

1.5.2. Выявление антигена вируса.

1.5.3. Разработка и применение полимеразной цепной реакции для диагностики РСИ КРС.

1.5.4. Серологическая диагностика болезни.

1.6. Характеристика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота.

1.6.1. Особенности течения инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в молочных стадах.

1.7. Характеристика вирусной диареи - болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота.

1.7.1. Особенности течения вирусной диареи-болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота в молочных стадах.

1.8. Респираторные болезни крупного рогатого скота, протекающие с участием вирусов и условно-патогенных бактерий.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и особенности проявления болезни в современных условиях ведения животноводства»

Актуальность проблемы. В настоящее время в России возрастает удельный вес хозяйств по производству молока. В некоторые из них осуществляется ввоз высокопродуктивного скота из других стран. Высокая молочная продуктивность коров часто сопровождается нарушением обмена веществ, что приводит, в частности, к активизации различных инфекционных агентов (А.Г. Шахов, В.Т. Самохин, 2000; Ю.Н. Федоров, 2006). Существуют также молочно-товарные фермы, в которых концентрация животных и их продуктивность бывают разными, а ввод новых животных ограничен. Учитывая существование различных по направлению, численности, концентрации и продуктивности животных хозяйств, эпизоотическая ситуация в них по инфекционным болезням может различаться.

Широкое распространение в молочных хозяйствах получили респираторные болезни животных (О.Г. Петрова и соавт., 2002; К.П. Юров и соавт., 2003; Т.И. Глотова, 2006; М.И. Гулюкин и соавт., 2007; J. Kampa et al., 2009; К.А. Woodbine, 2009; J.F. Ridpath, 2010).

Эти болезни, как правило, протекают с участием нескольких возбудителей, синергетическое взаимодействие которых приводит к усилению тяжести инфекционного процесса (H.H. Крюков и соавт., 1984; В.А. Мищенко и соавт., 2000; Н.Ю. Басова, 2002; А.Г. Глотов и соавт., 2008; Н.Р. Будулов, 2009; D.G. Bryson, 2000; К. A. Brogden, J.M. Guthmiller, 2002).

Одним из этиологических агентов данной патологии является респираторно-синцитиальный вирус крупного рогатого скота (PCB КРС), относящийся к семейству Paramyxoviridae, роду Pneumovirus. Во многих зарубежных странах его относят к числу наиболее важных патогенов молочного скота (L.E. Larsen, 2000; S. Hagglund, 2005; С. Luzzago et al., 2010; B.W. Brodersen, 2010).

Первые сообщения о РСИ КРС в нашей стране относятся к 1975 году (В.В. Гуненков и соавт., 1975). Изучению болезни и разработке средств и методов диагностики были посвящены работы Г.А. Халенева (1976), Г.Д. Метревели (1983), Т.М. Кочиш (2004), И.Н. Матвеевой (2008) и других.

Несмотря на относительно высокую степень изученности многих вирусных болезней, в нашей стране данных, касающихся роли этого возбудителя в возникновении респираторных болезней, в том числе в ассоциациях с другими вирусами, недостаточно. Изучение этой инфекции длительное время сдерживалось из-за высокой лабильности вируса и слабой его способности к размножению в культурах клеток, что, в свою очередь препятствовало разработке диагностических препаратов. Поэтому многие вопросы, касающиеся диагностики, особенностей эпизоотической ситуации, возрастной восприимчивости животных к инфицированию вирусом, характера проявления болезни в молочных хозяйствах в зависимости от их специализации и уровня молочной продуктивности коров остаются открытыми.

Цель и задачи исследований. В связи с этим целью работы являлась разработка эффективных способов серологической и вирусологической диагностики респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и изучение их роли при комплексной оценке особенностей проявления болезни в современных условиях ведения молочного животноводства, в том числе в аспекте смешанных инфекций, протекающих с участием других вирусов и условно-патогенных бактерий.

Для достижения указанной цели были поставлены задачи:

1. Определить и отработать оптимальные параметры выделения, типирования и культивирования РСВ КРС в различных культурах клеток с целью получения антигена, а также - изготовить и испытать эффективность экспериментальных серий эритроцитарного диагностикума в РИГА для выявления антител к вирусу.

2. Изучить пригодность ОТ-ПЦР для типирования вируса в лабораторных условиях, определить ее значение в диагностике болезни у крупного рогатого скота, выяснении роли вируса в этиологии массовых респираторных болезней, а также выявлении наиболее восприимчивых половозрастных групп животных в молочных хозяйствах различного профиля, с учетом наличия импортного и местного скота.

3. С использованием серологического и молекулярного методов исследований провести комплексный анализ особенностей проявления респираторно-синцитиальной инфекции в современных условиях при различных эпизоотических и хозяйственных ситуациях, в том числе в ассоциации с другими вирусными и бактериальными агентами.

Научная новизна. Выделен штамм вируса К-18, депонированный в коллекции микроорганизмов ФГУ ГНЦ вирусологии и биотехнологии «Вектор» Роспотребнадзора под наименованием «Штамм вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота К-18, V-406». Подана заявка на получение патента на изобретение РФ № №2010134476 от 17.08.2010 г. «Метод первичной изоляции штаммов вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота, штамм вируса Bovine Respiratory Syncitial Virus для изготовления диагностических препаратов».

Новизной обладают данные по изучению чувствительности первично-трипсинизированных и перевиваемых (гомологичных и гетерологичных) линий культур клеток к PCB КРС. Подобраны и рекомендованы для практического использования наиболее чувствительные культуры клеток. Определены оптимальные условия культивирования, обеспечивающие максимальное накопление вируса. Показана чувствительность к вирусу новой перевиваемой линии культуры клеток ТЭБ, рекомендованной для его выделения из проб биоматериала от животных.

Отработаны методы ранней индикации, контроля размножения и учета инфекционной активности вируса в чувствительных культурах клеток. В том числе показано преимущество ОТ-ПЦР перед традиционными методиками выявления и титрования вируса: цитопатическое действие (ЦПД); методы бляшкообразующих единиц (БОЕ) и фокусообразующих единиц (ФОБ); цитоморфологические исследования и электронная микроскопия. Установлены сроки хранения вируссодержащей суспензии и выделенной РНК вируса при различных температурных режимах. Изучена возможность дальнейшего использования штаммов вируса РС-Б и К-18 для изготовления эритроцитарного диагностикума. Показано, что чувствительность культур клеток к вирусу имеет «штаммовую» зависимость. Разработан лабораторный регламент культивирования вируса с целью изготовления специфического эритроцитарного антигена для серологической диагностики респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота, овец и коз в РНГА.

С помощью серологических и молекулярных методов исследований показано широкое распространение РСИ КРС в Российской Федерации, а также в хозяйствах региона Сибири с интенсивным типом ведения молочного животноводства. При помощи ОТ-ПЦР выявлены наиболее восприимчивые к инфицированию вирусом половозрастные группы животных. Выявлены особенности эпизоотической ситуации по РСИ КРС, а также смешанным вирусно-бактериальным болезням в условиях промышленного молочного животноводства Сибири с наличием или отсутствием импортированного скота. Изучена частота проявления болезни в зависимости от наличия сопутствующих вирусных инфекций (инфекционный ринотрахеит, вирусная диарея, аденовирусная инфекция и других), а также от некоторых эпизоотологических и хозяйственных факторов. Впервые показана зависимость частоты инцидентности болезни в крупных молочных хозяйствах от уровня серопозитивности и наличия животных, персистентно инфицированных вирусом ВД-БС КРС. Выявлены и изучены ассоциации вирусов и бактерий, возникающие при вспышках массовых респираторных болезней, протекающих у крупного рогатого скота с участием PCB КРС. Изучена частота выявления вируса в моноварианте и в ассоциациях с бактериями семейства Pasteurellacceae.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные результаты создают перспективы использования серологического и вирусологического методов диагностики РСИ КРС в производственных условиях с целью объективной комплексной оценки эпизоотической ситуации и для оптимизации противоэпизоотических мероприятий в хозяйствах с интенсивным типом ведения животноводства, в том числе решении вопроса о специфической профилактике болезни.

Кроме того, они расширяют научные знания относительно спектра чувствительных культур клеток к PCB КРС, биологических свойств и роли вируса в этиологии респираторных болезней крупного рогатого скота на крупных молочных комплексах. Комплекс диагностических методов исследований может использоваться также при дальнейшем изучении эпизоотической ситуации, патогенеза РСИ КРС и смешанных вирусных и вирусно-бактериальных инфекций, протекающих по синергетическому типу.

Внедрение полученных результатов. Материалы диссертации использованы при разработке научно-методических рекомендаций и положений:

- «Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота», утвержденных подсекцией "Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока" отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол № 1 от 26 января 2010 г.).

- «Вирусные и вирусно-бактериальные респираторные болезни молодняка крупного рогатого скота», утвержденных научно-техническим советом Федерального государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования "Красноярский государственный аграрный университет" (протокол № 2 от 14 декабря 2010 г.).

- «Стратегия общих и специальных мероприятий при респираторных болезнях молодняка крупного рогатого скота вирусно-бактериальной природы», утвержденных научно-техническим советом Федерального государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования "Красноярский государственный аграрный университет" (протокол № 2 от 14 декабря 2010 г.).

- «Методы молекулярной биологии и их использование в диагностике вирусных болезней крупного рогатого скота», утвержденных подсекцией "Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока" отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол № 1 от 11 февраля 2011 г.).

- «Индикация и идентификация респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в культурах клеток», утвержденных подсекцией "Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока" отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол № 1 от 11 февраля 2011 г.).

- «Профилактика и лечение вирусных респираторных болезней молодняка крупного рогатого скота», утвержденных научно-техническим советом Федерального государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования "Красноярский государственный аграрный университет" (протокол № 4 от 20 апреля 2011 г.).

Основные положения диссертационной работы использованы при разработке научно-технической документации на:

1. Тест-систему для серологической диагностики респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота, овец и коз в РИГА (ТУ-10-19-162-91).

2. Тест-систему для выявления вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции (Свидетельство о Госрегистрации № ПВР-1-8.9/02499).

Апробация работы. Основные положения диссертации были доложены на: Всесоюзной научно-практической конференции «Интенсификация сельскохозяйственного производства в условиях радикальной экономической реформы», Сумы, 1989; Научной конференции профессорско-преподовате-льского состава КрасГАУ «Наука - сельскохозяйственному производству», Красноярск, 1993; Научной конференции профессорско-преподавательского состава КрасГАУ «Наука - сельскохозяйственному производству», Красноярск, 1995; XI Международном симпозиуме «Реконструкция гомеостаза», Красноярск, 1998; «Актуальные проблемы ветеринарного обеспечения животноводства Сибири», Новосибирск, 2006; Международной школе - конференции «Социально-экологические проблемы природопользования в Центральной Сибири», Красноярск, 2008; Всероссийской научно-практической конференции ФГОУ ВПО КрасГАУ «Инновации в науке и образовании: опыт, проблемы, перспективы развития», Красноярск, 2009; Межрегионарной научно-практической конференции «Аграрно-экономическая наука республики Тыва: основные результаты и перспективы», Кызыл, 2009; Международной конференции «Проблемы современной аграрной науки» ФГОУ ВПО КрасГАУ, Красноярск, 2009; Международной конференции «Научные основы производства ветеринарных биологических препаратов», посвященной 40-летию ВНИТИБП, Московская область, Щелковский район, поселок Биокомбината, ВНИТИБП, 2009; Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина. Современные проблемы и перспективы развития», Саратов, 2010; Международной научно-практической конференции «Современные научно-практические достижения в ветеринарии», Киров, 2010; IV Международной конференции молодых ученых «Новейшие направления развития аграрной науки в работах молодых ученых», Новосибирская область, п. Краснообск, 2010; Всероссийской очно-заочной научно-практической конференции «Инновация в науке и образовании: опыт, проблемы, перспективы развития», Красноярск, 2010; Международной научно-практической конференции «Научные основы улучшения ветеринарного благополучия и продуктивности сельскохозяйственных животных», Кызыл, 2010; XIII Международной научно-практической конференции «Аграрная наука - сельскохозяйственному производству Монголии, Сибири и Казахстана», Улаанбаатар, 2010; Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы экономического развития и обеспечения безопасности в области ветеринарии», Троицк, 2010; Международной заочно научной конференции «Проблемы современной аграрной науки», Красноярск, 2010; Международной научно-практической конференции, посвященной 70-летию со дня основания Института экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока «Актуальные вопросы ветеринарной медицины Сибири», Новосибирская область, п. Краснообск, 2010; VII Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Молекулярная диагностика - 2010», Москва, 2010.

Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликовано 47 научных работ, в том числе 20 - в журналах, рекомендованных ВАК Минобразования и науки Российской Федерации («Ветеринария», «Сибирский вестник сельскохозяйственной науки», «Вестник КрасГАУ», «Достижения науки и техники АПК», «Аграрный вестник Урала», «Сельскохозяйственная биология»).

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 330 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов исследований, выводов, практических предложений, списка литературы и приложения. Работа иллюстрирована 36 таблицами и 33 рисунками. Список

Заключение диссертации по теме «Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов», Строганова, Ирина Яковлевна

4. ВЫВОДЫ

1. Оптимальными параметрами выделения PCB КРС являлись: отбор проб биоматериала от животных на ранних стадиях инфекции, транспортировка в охлажденном виде или в транспортной среде в течение суток в лабораторию с последующей немедленной обработкой и заражением культур клеток в день доставки. Выделение вируса эффективно в двухсуточной первично-трипсинизированной культуре клеток ТБ с адсорбцией в течение часа и добавлением 2% сыворотки плода крупного рогатого скота при 37°С с проведением не менее 8 «слепых» пассажей. Эффективность выделения повышалась при отсутствии стадии центрифугирования суспензии биоматериала или при адсорбции вируса на клетках в течение часа при +20°С с добавлением 1% димексида. Пригодной для выделения и культивирования вируса являлась также перевиваемая линия культуры клеток ТЭБ, обеспечивающая его накопление в титре не

3 5 ниже 10 ' ТЦД5о/мл. Контроль выделения, накопления, а также типирование вируса в зараженных культурах клеток необходимо осуществлять при помощи ОТ-ПЦР путем исследования вируссодержащей суспензии каждого пассажа.

2. При изучении чувствительности 18 культур клеток к двум штаммам вируса (РС-Б и К-18) установлено, что цитопатогенное действие вируса имело «штаммовый» характер. Наиболее чувствительной к штамму РС-Б оказались первично-трипсинизированная культура клеток ЛЭК и перевиваемая линия клеток FLK, титр вируса в которых составлял 3,74+0,12 ^ТЦД50/мл и 3,36±0,17 1§ТЦД50/мл » а к штамму К-18 - ТБ и ТЭБ, обеспечивавшие его накопление в титре 4,83±0,07 lg ТЦД 50/мл и 4,58±0,07 lg ТЦД 5о/Мл

3. Размножение штаммов вируса в инфицированных культурах клеток не всегда сопровождалось развитием видимого ЦПД. Для контроля его репликации и определения инфекционной активности эффективными были методы бляшкообразующих единиц и окрашенных фокусов, электронная микроскопия, цитоморфологические исследования и ОТ-ПЦР. Более эффективным методом титрования вируса являлся метод БОЕ, наиболее простым - метод ФОЕ, а наиболее специфичным - метод ОТ-ПЦР.

4. Оптимальными условиями культивирования штамма PC-Б вируса с целью получения эритроцитарного антигена являлись: возраст культуры клеток 3-5 суток; множественность заражения 0,1 ТЦД5о/Клетка; адсорбция 1,5 часа; поддерживающие, питательные среды - Игла МЕМ, Игла и RPMI -1640 в соотношении 2:1 с добавлением 2% фетальной сыворотки крупного рогатого скота, сыворотки северных оленей или сыворотки цыплят; pH 7,47,8; инкубирование в стационарных или роллерных условиях при температуре 37°С; культивирование в течение 5-6 суток до выраженного ЦП Д. Добавление 1% ДМСО и ДЭАЭ - декстрана 50 мкг на 1 мл положительно влияло на проявление ЦПД и повышало титр вируса на 0,5 и 1 lg ТЦД5о/мл. Оптимальными условиями культивирования штамма К-18 были: использование 2-3 суточных культур клеток ТЭБ и ТБ с предварительным 3-х кратным отмыванием монослоя клеток от ростовой среды с 10% коммерческой сыворотки крови крупного рогатого скота или телят. При использовании сыворотки эмбриона коровы необходимость отмывания монослоя клеток отпадала.

5. Активность эритроцитарных антигенов зависела от титра вируса в чувствительной культуре клеток. Наиболее активные антигены, титры которых со специфической к вирусу сывороткой составляли от 7,92±0,22 до 10,15±0,09 lg2, были получены из вируссодержащей суспензии, накопленной в культурах клеток Л5Э и П5Э, FLK и ЛЭК, а после адаптации и в перевиваемых линиях клеток Т-1 и ПТ. Штамм PC-Б обладал слабой антигенной активностью в отношении белых мышей линии BALB/c и морских свинок. Активность гипериммунных сывороток, использованных для положительного контроля набора, полученных на кроликах и баранах в реакции нейтрализации составила 5,38±0,16 - 6,08±0,09 Производственные испытания опытных серий специфических эритроцитарных антигенов в РИГА показали их высокую специфичность и активность.

6. С помощью РИГА выявлено наличие антител к вирусу респираторно-синцитиальной инфекции у 71,9% молодняка в возрасте 4-6 месяцев; 69,2% - в возрасте 2-4 месяца; 55,9% - в возрасте 6-9 месяцев и у 50,8% крупного рогатого скота в 16 регионах Российской Федерации, в том числе у 33,01% овец и 87,76% коз. Сероконверсию к вирусу устанавливали у телят в возрасте: 4-6 месяцев в 52,6% случаев; 7-9 месяцев - 50,0%; 3-4 месяца - 37,5%, что свидетельствовало о переболевании животных в эти возрастные периоды. Диагностический прирост титров антител к вирусу у телят в возрасте 1-3 месяца устанавливали редко: в 4,0 и 6,7% случаев, соответственно 1 месяц (4,0%). Уровень инфицированности и частота проявления клинических признаков болезни зависели от концентрации животных на единицу площади, уровня молочной продуктивности коров и частоты ввода новых животных. Средние показатели инфицированности крупного рогатого скота различались по регионам и варьировали от 30,8% в регионах с низкой плотностью скота до 66,6% в регионах с высокой плотностью и наличием завозного скота. В крупных хозяйствах циркуляция вируса могла быть непрерывной за счет транзитной инфекции у коров и телят, что обеспечивало постоянный риск возникновения повторных вспышек болезни.

7. По данным метода ОТ-ПЦР к инфицированию вирусом восприимчивы все половозрастные группы животных. В среднем вирус присутствовал в 15,4% исследованных проб биоматериала, полученных от крупного рогатого скота при вспышках болезни. Частота выявления генома вируса от телят до 6-месячного возраста составила 19,7%, а от коров - 16,1% при наличии признаков острых респираторных заболеваний. Выявление вируса в 4,5% проб биоматериала от телят до 10-дневного возраста свидетельствовало о вовлечении их в инфекционный процесс.

8. В крупных молочных комплексах частота проявления РСИ КРС зависела от уровня инфицированное™ животных вирусом ВД-БС КРС, а также наличия в стадах животных, персистентно инфицированных этим вирусом. При уровне инфицированности животных вирусом ВД-БС КРС от 78,02 до 90,3% и наличии в стадах крупного рогатого скота не менее до 3,13% ПИ вирусоносителей инцидентность РСИ КРС повышалась и сопровождалась выявлением возбудителя и сероконверсией к нему у животных различных половозрастных групп, включая коров и телят до 6-месячного возраста.

9. Этиологическая структура респираторных болезней на молочных комплексах носила полиэтиологический характер. Количество проб, содержащих вирус ИРТ в моноварианте в среднем, составляло 30%, ВД-БС КРС - 18%; ассоциации этих вирусов - 71,7%. Сочетание этих вирусов выявляли в легких (37,8%), трахеальном и бронхиальном экссудате (16,5%), слизистой носа (10,2%) и трахеи (9,82%). Количество проб, содержащих PCB в моноварианте, составило 11,0%, его выявляли в 35,0% проб легких и бронхов, 11,0% проб носовых выделений и органов верхнего респираторного тракта. В 10,0% проб выявляли три вируса одновременно.

10. Вирусно-бактериальные ассоциации выявляли в легких: вирус ИРТ и бактерии семейства Pasteurellaceae - в 20,0%, а вирус ВД-БС КРС и бактерии этого семейства в 52,9% исследованных проб. PCB КРС и бактерии семейства Pasteurellaceae - 20,0%, а сочетание трех вирусов и пастерелл -15,0% случаев. Культуры пастерелл в моноварианте изолировали в 33,3% от общего числа исследованных проб, при этом они относились к видам Р. multocida (20,0%) и М. haemolytica (13,3%). Патогенность их варьировала от низкой до высокой. М. haemolytica выделяли от животных всех половозрастных групп с острой формой легочного пастереллеза при завозе импортированного скота, а Р. multocida от молодняка до 6-месяцев при энзоотическом проявлении болезни.

11. Результаты разработки и апробации комплекса диагностических исследований открывают возможность проведения мониторинга РСИ КРС в молочных хозяйствах различного профиля с наличием или отсутствием импортированных животных, а также послужат основой стратегии диагностических исследований для объективной оценки эпизоотической ситуации и установления роли вируса в этиологии массовых респираторных болезней, протекающих с участием этого патогена и других вирусов и бактерий, создавая перспективы оптимизации противоэпизоотических мероприятий, в том числе схем специфической профилактики болезни.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. В хозяйствах молочного направления, неблагополучных по вирусно-бактериальным болезням крупного рогатого скота, необходимо проводить комплекс серологических и молекулярных исследований с целью расшифровки этиологической структуры инфекционной патологии и установления роли респираторно-синцитиального вируса;

2. Комплекс диагностических исследований проводить с использованием

Набора для серодиагностики респираторно-синцитиальной инфекции (РС-инфекции) крупного рогатого скота овец и коз в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА)» ТУ-10-19-162-91.

- «Тест-системы для выявления вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции» (Свидетельство о Госрегистрации № ПВР-1-8.9/02499).

Материалы диссертационной работы используются в учебном процессе в программе подготовки студентов по курсам «Вирусология», «Эпизоотология» по специальности «Ветеринария» в ФГОУ ВПО «Новосибирский Государственный аграрный университет», ФГОУ ВПО «Уральская государственная академия ветеринарной медицины», ФГОУ ВПО «Красноярский Государственный аграрный университет», ФГОУ ВПО «Алтайский Государственный аграрный университет», ГОУ ВПО «Хакасский Государственный университет им. Н.Ф. Катанова».

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Строганова, Ирина Яковлевна, 2011 год

1. Азаренко, B.C. Результаты серологических исследований на вирусные заболевания органов дыхания / B.C. Азаренко, В.А. Демидов, Т.П. Плавник// «Ветеринарная наука производству», тр. БелНИВИ. - Минск, 1973 - Т. 9.

2. Андреев, Е.В. Герпетическая инфекция быков-производителей / Е.В. Андреев, Н.П. Чечеткина, О.В. Дудник // Ветеринария. -1977 №9- С.56-57.

3. Андреев, Е.В. Ассоциированное воздействие на организм вируса и условно-патогенных бактерий /Е.В. Андреев// Ветеринария. 1984. - № 6. -С. 25 - 27.

4. Архипов, Н.И. Патологоанатомическая диагностика вирусных болезней животных: Справочное издание / Н.И. Архипов и др.. Москва.: Колос, 1984.-С. 16-78.

5. Ашмарин, И.П. Быстрые методы статистической обработки и планирования экспериментов /И.П. Ашмарин, H.H. Васильев, В.А. Амбросов. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1974. - 76 с.

6. Бакулов, И.А. Новые проблемы эпизоотологии// Мат-лы междунар. Науч.-практ. конф., посвященной 40-летию ВНИИВВиМ, Покров. 1998. -С. 135 -138.

7. Баженов, К.С. Распространение вирусов прагриппа-3 и респираторно-синцитиальной инфекции среди телят на откорме в осенне-зимний период / К.С.Баженов // Бюл. ВИЭВ. 1983. - Вып. 50. - С. 6 - 8.

8. Басова, Н.Ю. Респираторные болезни молодняка крупного рогатого скота инфекционной этиологии в условиях Северного Кавказа: автореф. дис. .д-ра. вет. наук / Н.Ю. Басова. Краснодар, 2002. - 42 с.

9. Басова, Н.Ю. Распространение респираторных болезней молодняка КРС в Краснодарском крае/ Н.Ю. Басова, А.Г. Шипицын, В.В. Бель// Междунар. науч.-практ. конф. Воронеж, 2002. С. 129 - 130.

10. Бектемиров, Т.А. Состояние и перспективы специфической профилактики гриппа и других ОРЗ/ Т.А. Бектемиров и др..// Вопр. вирусологии.- 1987. №4. - С.393

11. Бостанджиева, Р. Доказване на респираторно-синцитиальната вирус -на инфекция по телятата через реакция за свързване на комплемента / Р. Бостанджиева, М. Текерлеков, Х.Е. Харалмбиев //Вет. мед. науки. София. 1984.- XXI. № 9. - С. 45 - 50.

12. Бостанджиева, Р. Иммунофлуоресцентное доказательство респираторно синцитиальной вирусной инфекции у телят / Р. Бостанджиева, Б. Митов, Х.Е. Харалмбиев //Вет. мед. науки. - София, 1985. - ХХП. - № 9. -С. 20-26.

13. Бостанджиева, Р. Чувствительност на клетьчните культури кьм говяждия респираторно синцитиален вирус / Р. Бостанджиева //Вет. мед. науки. София, 1986. - ХХП. - № 2. - С. 12 - 18.

14. Бостанджиева, Р. Культивирование и диагностика респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота: автореф. дис. . канд. биол. наук / Р. Бостанджиева. София, 1987. - 27 с.

15. Будулов, Н.Р. Профилактика и лечение пневмоэнтеритов телят /Н.Р. Будулов, П.Д. Устарханов, А.И. Алиев, Х.М. Гайдарбекова //Тез. докл. междунар. конф., посвящ. 275-летию РАН и 50-летию ДНЦ РАН, Махачкала. -1999.-С. 278-279.

16. Будулов, Н.Р. Респираторные болезни крупного рогатого скота в Дагестане: автореф. дисс. д-ра. вет. наук. / Н.Р. Будулов. Краснодар, 2009. - 43 с.

17. Бурцева, H.A. Вирусные пневмоэнтериты в условиях крайнего Севера/ H.A. Бурцева// Аграрный вестник Урала. 2008. - №1. - С. 59 - 60.

18. Бучнев, К.Н. Вирусное заболевание крупного рогатого скота с поражением слизистых оболочек / К.Н. Бучнев // Вестник с-х науки Казахстана. 1967. - №7. - С. 11 - 15.

19. Вазир, Я. Антигенные свойства экспериментальной ассоциированной вакцины против аденовирусной инфекции и вирусной диареи крупного рогатого скота /Я. Вазир, И.В. Третьякова, Е.И. Ярыгина, Р.В. Белоусова // Ветеринария. 2008. - 4. - С. 23 - 26.

20. Васильев, A.B. РНГА в серодиагностике респираторно-синцити-альной инфекции крупного рогатого скота/ A.B. Васильев, Н.Г. Осидзе, В.Н. Сюрин и др. // Ветеринария. 1988. - №10. - С. 33 - 34.

21. Верховская, А.Е. Особенности диагностики и профилактики вирусной диареи крупного рогатого скота/ А.Е. Верховская и др.// Ветеринария. 2009. - №8. - С. 3 - 7.

22. Войтова, К.В. Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции: автореф.дис. . .канд. вет. наук / К.В. Войтова. Новосибирск, 2011. - 20с.

23. Волкова, О.В. Основы гистологии с гистологической техникой/ О.В. Волкова, Ю.К. Елецкий. М.: Медицина - 1971. - С. 201 - 205.

24. Воронин, Е.С. Вирусные респираторные инфекции крупного рогатого скота в промышленных комплексах /Е.С. Воронин, A.A. Конопаткин // Лекции для слушателей факультета повышения квалификации. -М., 1982.-29 с.

25. Воронин, Е.С. Настоящее и будущее в профилактике болезней молодняка сельскохозяйственных животных / Е.С.Воронин // Сб. науч. тр.,посвящ. 100-летию ветеринарной науки в России и 30-летию СО РАСХН, Новосибирск. 1998. - С. 131 - 139.

26. Воронин, Е.С. Современная концепция этиологии, профилактики и лечения молодняка сельскохозяйственных животных / Е.С. Воронин, А.Г. Шахов // Мат-лы науч. сессии Россельхозакадемии.: Пленарное заседание, секции 1 11. - 1999. - С. 209 - 214.

27. Высокопоясный, А.И. К этиологии респираторных болезней телят в Краснодарском крае / А.И. Высокопоясный, Н.Ю. Басова, А.Г. Шипицын // Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбы с болезнями животных: Сб. науч. тр. 1999. - С. 54 - 56.

28. Высокопоясный, А.И. Респираторные болезни телят на Кубани /А.И. Высокопоясный и др. // Ветеринария. 2000. - № 2. - С. 8-11.

29. Генчев, Г. Энзоотии респираторных заболеваний телят с признаками респираторно-синцитиального вируса //21 Всемирный вет. конгресс. Москва, 1979.-Т. 3.-101 с.

30. Глотов, А.Г. Распространение вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота / А.Г. Глотов и др. // Ветеринария. 2002. - №3. -С. 17-21.

31. Глотов, А.Г. Генотип и вирулентность изолятов вируса ИРТ КРС / А.Г. Глотов и др. // Ветеринария. 2005. - №11. - С. 20 - 23.

32. Глотов, А.Г. Этиологическая структура массовых респираторных болезней молодняка крупного рогатого скота в хозяйствах, занимающихся производством молока / А.Г. Глотов и др. // Сиб. вестн. с.-х. науки. 2008. -№ 3. - С.72 - 78.

33. Глотов, А.Г. Респираторные болезни телят вирусно-бактериальной этиологии / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова // РАСХН Сиб. отд-ние, ИЭВСиДВ. -Новосибирск.: Агрос 2008. - 258 с.

34. Глотов, А.Г. Вирусная диарея-болезнь слизистых оболочек крупного рогатого скота/ А.Г. Глотов// Ветеринария. 2008. - №11. С. 56 - 60.

35. Глотов, А.Г. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова// Ветеринария. 2009. - № 11. -С. 18-23.

36. Говорун В.М. Новые направления в ДНК-диагностике. Полиме-разная цепная реакция в диагностике и контроле лечения инфекционных заболеваний / В.М. Говорун // Мат-лы 2-й Всероссийской науч.-практ. конф. (20-22 января 1998) Москва, 1998. - С. 12 - 13.

37. Гоппе, В.А. Этиологическое значение вирусов инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи-болезни слизистых в возникновении респираторных болезней телят: автореф. дисс. канд. вет. наук / В.А. Гоппе. Новосибирск, - 2005. - 19 с.

38. Грязин, В.Н. Вирусные респираторные заболевания телят и меры борьбы с ними: автореф. дисс. канд. вет. наук. / В.Н. Грязин. Новосибирск, 1983.-20 с.

39. Гулюкин, М.И. Система ветеринарно-санитарных, профилактических и лечебных мероприятий против инфекционных болезней крупного рогатого скота в хозяйствах российской Федерации / М.И. Гулюкин и др.; ГНУ ВИЭВ, ФГУ «Центр ветеринарии». М., - 2007. - С. 14.

40. Гуненков, B.B. Респираторно-синцитиальная инфекция/ B.B. Гуненков., Г.А. Халенев, В.Н. Сюрин// Животноводство и ветеринария. М.,1975. Т.8. - С. 70-76.

41. Денер, JI. Разработка метода получения высокоактивного респираторно-синцитиального вирусного диагностикума для непрямой реакции гемагглютинации/ JI. Денер, P.C. Дрейзен, О.Д. Янкевич и др.// Вопросы вирусологии. 1976. - №6. - С. 739 - 745.

42. Джупина, С.И. Методы эпизоотологического исследования и теория эпизоотического процесса. /С.И. Джупина Новосибирск: Наука, 1991.-142 с.

43. Жидков, С.А. Изучение этиологии респираторных заболеваний телят/ С.А. Жидков// Тезисы докладов IV Всесоюз. вет. вирусолог, конф.1976.-№2.-С. 34-40.

44. Жидков, С.А. Роль вирусной диареи в этиологии респираторных и желудочно-кишечных болезней телят/ С.А. Жидков и др. // Вест. Рос. акад. с-х наук. 1995. - №3. - С. 50 - 53.

45. Зайцев, Ю.Н. Особенности проявления ассоциированных инфекций телят, обусловленных вирусами вирусной диареи, инфекционного ринотрахеита и бактериями рода Pasteurella: автореф. дис. . канд. вет. наук / Ю.Н.Зайцев. Новосибирск, - 2007. - 17 с.

46. Закутский, Н.И. Инфекционный ринотрахеит (ИРТ) и парагрипп-3

47. ПГ-3) крупного рогатого скота на комплексах / Н.И. Закутский, В.И. Жестерев, Л.Д. Конакова// Ветеринарная газета. 2000. - № 22 (191). - С.4.

48. Иванова, И.П. Инфицированность стад крупного рогатого скота в хозяйствах Минской области / И.П. Иванова, П.А. Красочко// Актуальные проблемы патологии сельскохозяйственных животных: мат-лы между нар. конф. Минск, 2000. - С. 105 - 106.

49. Кашин, A.C. Профилактика и лечение респираторных болезней телят в современных экологических условиях / A.C. Кашин // Мат-лы. науч.-практ. конф. Иркутск, - 2001. - С. 81 - 84.

50. Коннов, Н.М. Проявление абортов и дерматита у крупного рогатого скота, вызванных вирусом инфекционного ринотрахеита / Н.М. Коннов, М.К. Нигматулин // Диагностика, профилактика и методы борьбы с туберкулёзом животных. Казань, - 1985. - С. 53 - 56.

51. Конопаткин, A.A. Эпизоотологические проблемы смешанных инфекций в современном животноводстве / А.А.Конопаткин // Патология органов дыхания и пищеварения сельскохозяйственных животных. М.: Изд-во MB А, - 1983. - С. 3 - 9.

52. Конопаткин, A.A. Эпизоотология и инфекционные болезни сельскохозяйственных животных /A.A. Конопаткин и др.. М.: Колос, -1984. - 544 с.

53. Кочиш, Т.М. Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе: автореф. дис. . канд. биол. наук / Т.М. Кочиш. Щелково, 2004. - 23 с.

54. Красочко, П.А. Эпизоотологическое обследование коров на вирусы инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи по наличию антител в сборном молоке / П.А. Красочко // Тез. докл. 111 Всесоюз. конф., Новосибирск, 1991. - С. 123 - 124.

55. Крюков, H.H. Инфекционный ринотрахеит (пустулёзный вульвова-гинит) крупного рогатого скота / H.H. Крюков // Бюл. ВИЭВ. 1972. -Вып.37. - С. 146 - 149.

56. Крюков, H.H. Вирусные респираторные болезни крупного рогатого скота/ H.H. Крюков, З.Ф. Зудилина, С.И. Евдокимов // Ветеринария. 1976. -№6.-С. 111-113.

57. Крюков, H.H. Инфекционный ринотрахеит пустулёзный вульвовагинит крупного рогатого скота / H.H. Крюков// Итоги науки и техники. Животноводство и ветеринария. - М. - 1980. - С. 32 - 113.

58. Крюков, H.H. Микробный пейзаж и иммунологическая реактивность у телят, выращиваемых в условиях промышленной технологии / H.H. Крюков, А.Т. Семенюта, Э.А. Шегидевич // Тр. ВИЭВ. М., 1984. - Т.60. -С. 15-23.

59. Куриленко, А.Н. Инфекционные болезни молодняка сельскохозяйственных животных / А.Н. Куриленко, B.JI. Крупальник. М.: Колос, 2001.- 113 с.

60. Лебедев, Л.И., Авилов B.C. О некоторых биологических свойствах респираторно синцитиального вируса / Л.И. Лебедев, B.C. Авилов //Актуальные вопросы вет. вирусол. тез. докл. 5-й Всесоюз. науч. конф. -Казань, 1980.-С.83.

61. Лещинская, Н.П. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция / Н.П. Лещинская, Л.Е. Камфорин // Медицина и здравоохранение: сер. эпидемиология, вирусология и инфекционные заболевания. М.,1986. - 77 с.

62. Лисицын, В.В. Проблема колострального иммунитета у новорожденных телят / В.В. Лисицын и др. // Ветеринарная патология. 2007. - №1. -С. 161-164.

63. Магомедов, М.З. Бронхопневмония телят, её патогенез, функциональная морфология и фармакотерапия композиционными пролонгированными препаратами: автореф. дисс. . д-ра вет. наук / М.З. Магомедов. -Москва, 2007.-41 с.

64. Майборода, А.Д., Выделение вируса и клинико-морфологические особенности ИРТ у телят раннего возраста / А.Д. Майборода, К.А. Кашкинбаева // Ветеринария. 1977. - № 3. - С. 54 - 55.

65. Майярд, Р. Значимость вакцинации против вирусной респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота перед отелом/ Р. Майярд// Ветеринария. 2004. - №4. - С. 4 - 5.

66. Мак Керчер, Д.Г. Вирусы и проблема воспроизводства крупного рогатого скота /Д.Г. Мак Кечер //Сельское хозяйство за рубежом. 1970. -№7.-С. 31 -32.

67. Макаревич, В.Г. Чувствительность культур клеток к вирусу диареи крупного рогатого скота /В.Г. Макаревич, В.П. Назаров// Актуальные вопросы вет. вирусол. Изд-во MB А, 1967. 4.2. - С. 45 - 49.

68. Мартынов, Ю.В. Выделение РСВ от телят с респираторным синдромом// Патогенез, лечение и профилактика болезней жвачных животных в Западной Сибири / Ю.В. Мартынов, М.И. Орлов. Омск, 1985. -С. 22-24.

69. Марченко, С.Б. Синтез полистирольных латексов в присутствии смеси ПАВ для иммунодиагностических тест-систем/ С.Б. Марченко и др.// Вопросы физ.-хим. Биологии в ветеринарии. М., 2002. - С. 28-31.

70. Матвеева, И.Н. Тест-система ИФА для определения антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота/ И.Н. Матвеева и др. // Ветеринария и кормление. 2006. - № 6. - С.28 - 29.

71. Матвеева, И.Н. Получение антигена респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота для использования в ИФА / И.Н. Матвеева // Ветеринария. 2007. - № 11. С. 49 - 51.

72. Матвеева, И.Н. Промышленные технологии изготовления компонентов моно- и комплексных диагностикумов инфекционных заболеванийживотных: автореф. дис. д-ра биол. наук / И.Н. Матвеева. Кащинцево, 2008. - 24 с.

73. Метревели, Г.Д. Испытание сухого эритроцитарного диагностикума PC-инфекции крупного рогатого скота / Метревели Г.Д. и др. //Сб. науч. тр. ВГНКИ ветпрепаратов. М., 1983. - С. 57 - 60.

74. Метревели, Г.Д. Реакция непрямой гемагглютинации (РИГА) в диагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота / Г.Д. Метревели //Сб. науч. тр. ВГНКИ ветпрепаратов. М., 1983. -С. 99 -100.

75. Метревели, Г.Д. Биологические свойства вируса и серологическая диагностика PC-инфекции крупного рогатого скота: автореф. дис.канд. биол. наук. / Г.Д. Метревели. Москва, 1989. - 19 с.

76. Методические указания по лабораторной диагностике пастереллезов животных и птиц; Министерство сельского хозяйства. — Москва, 1992. 16 с.

77. Мищенко, В.А. Особенности респираторных инфекций телят / В.А. Мищенко и др. // Ветеринария. 2000. - №9. - С. 5 - 6.

78. Мищенко, В.А. Особенности эпизоотологии инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота / В.А. Мищенко, О.И. Гетманский, Ю.Е. Ручнов, Ю.А. Костыркин // Мат-лы научно-практической конф.-Новосибирск, 2001.- С. 12 14.

79. Муравьев, В.Н. Вспышка острого респираторного заболевания телят, вызванная респираторно-синцитиальным и адено-вирусом/ В.Н. Муравьев, Г.В. Усманова, В.М. Беляев, В.И. Басов// РЖ Ветеринария.- 1986.-№7.-С. 11.

80. Науменков, В.И. Вопросы этиологии и динамики эпизоотического процесса при вирусных пневмоэнтеритах телят / В.И. Науменко // Ветеринария. 1994. - №2. - С. 23-24.

81. Немченко, М.И. Основные причины высокой заболеваемости телят / М.И. Немченко, М.М. Наумов // Ветеринария. 1987. - № 3. - С. 19-23.

82. Нестеренко, В.Ф. Действие диметилсульфоксида (ДМСО) на репродукцию вируса трансмиссивного гастроэнтерита свиней в культуре клеток/ В.Ф. Нестеренко, Е.С. Воронин// Сб. науч. тр. М., МВА, 1983. -С. 32-35.

83. Обухов И.Л. Применение полимеразной цепной реакции в ветеринарии / И.Л. Обухов, А.Н. Панин // Аграрная Россия. 2002. - №2. - С. 62 - 64.

84. Петрова, И.А. Влияние некоторых веществ на повышение титра вируса инфекционного ринотрахеита в культуре клеток/ И.А. Петрова, О.И. Сухарев, А.В. Васильев// Сб. науч. тр. М.: МВА., 1980. - Т.113. - С. 56 - 58.

85. Петрова, О.Г. Острые респираторные заболевания крупного рогатого скота. Диагностика, профилактика, лечение /О.Г. Петрова// Екатеринбург. -1995.-41с.

86. Петрова, О.Г. Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота в племенных хозяйствах среднего Урала и оптимизация системы противоэпизоотических мероприятий: автореф. дисс. д-ра. вет. наук / О.Г. Петрова. Москва, 2002. - 47 с.

87. Петрова, О.Г. Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота в Свердловской области /О.Г. Петрова и др. // Ветеринария. 2002. -№ 2. - С. 11-15.

88. Петрова, О.Г. Особенности эпизоотического процесса и динамика распространения ОРВИ КРС на Среднем Урале/ О.Г. Петрова и др. // Вет.патология 2006. - №3. - С. 101 - 104.

89. Прингл, К. Пневмовирусы //Вирусология. Методы: Пер. с англ.; Под ред. Б. Мейхи /К. Прингл// М.: Мир, 1988. С. 131 - 159.

90. Пыталев, П.Н. Эпизоотологический надзор за важнейшими инфекциями крупного рогатого скота: автореф. дис. . канд. вет. наук / П.Н. Пыталев. Москва, 1996. - 21 с.

91. Саики, Р. Полимеразная цепная реакция. Анализ генома. Методы. Под ред. К. Дейвиса. /Р. Саики, У. Гиленстен, Г. Эрлих. М.: Мир, 1990. - С. 176-189.

92. Сергеев, В.А. Репродукция и выращивание вирусов животных/ В.А. Сергеев. М.: Колос, 1976. - 302 с.

93. Сергеев, В.А. Структура и биология вирусов животных/ В.А. Сергеев, Б.Г. Орлянкин. М.: Колос, 1983. - С. 252 - 267.

94. Слепенко, Т.Б. Выделение из клеток и изучение свойств вируса герпеса индеек: автореф. дис .канд. биол. наук/ Т.Б. Слепенко. Москва, 1987.- 19с.

95. Соминина, A.A. Получение комплементсвязывающего антигена PC в суспензионных клеточных культурах / A.A. Соминина, Н.Р. Румель //Сб. тр., ВНИИ гриппа. 1976. - №17. - С. 116 - 120.

96. Сюрин, В.Н. Диагностика вирусных болезней животных/ В.Н. Сюрин, Р.В. Белоусова, Н.В. Фомина. М.: Агропромиздат, 1991. - 528 с.

97. Сюрин, В.Н. Вирусные болезни животных/ В.Н. Сюрин, А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьев, Н.В. Фомина. М. ВНИТБП, 1998. - 928 с.

98. Трофимова, М.Г. Повышение чувствительности реакции пассивной гемагглютинации с эритроцитарным диагностикумом респираторно-синцитиального вируса / М.Г. Трофимова, И.Н. Быков, Н.С. Семенов // Вопр. вирусологии. 1985. - № 2. - С. 236 - 239.

99. Третьяков, А.Д. Эпизоотическая ситуация в мире по ИРТ-ИПВ КРС /А.Д. Третьяков, H.H. Крюков, С.И. Картушин // Ветеринария. 1975. - № 5. -С. 103-110.

100. Усов, С.М. Иммунологические аспекты терапии и профилактики инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи крупного рогатого скота: автореф. дис. . канд. вет. наук /С.М. Усов. Минск, 1998. - 21 с.

101. Устинов, Д.А. Стресс-факторы в промышленном животноводстве / Д.А. Устинов М.: Россельхозиздат, - 1976. - 166 с.

102. Фарботко, Г.Э. Эпизоотическая обстановка по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота на племпредприятиях / Г.Э. Фарботко, К.Н. Кондрахина, Л.Д. Павлова // Ветеринария. 1994. - № 8. - С. 27 - 30.

103. Федоров, Ю.Н. Иммунологический фактор, как причина желудочно-кишечных заболеваний у телят / Ю.Н. Федоров // Матер, кругл ого стола отд. вет. медицины РАСХН. М, 2000. - С. 36 - 37.

104. Федоров, Ю.Н. Иммунокоррекция: применение и механизм действия иммуномодулирующих препаратов / Ю.Н.Федоров // Ветеринария. -2005.-№2.-С. 3-6.

105. Федоров, Ю.Н. Иммунный статус и инфекционные болезни новорожденных телят и поросят / Ю.Н.Федоров //Ветеринария 2006. -№ 11.- С. 3 5.

106. Халенев, Г.А. Респираторно-синцитиальная, реовирусная и ринови-русная инфекция крупного рогатого скота/ Г.А. Халенев, В.В. Гуненков // Лекция 15-я. MBA. М., 1977. - С. 3 - 9.

107. Харламбиев, Х.Е. Изоляция респираторно-синцитиальния вируса от телят с респираторным заболеванием / Х.Е. Харламбиев, Р. Бостанджиева, Г.К. Георгиев, Б. Митов//Вет. мед. науки,- София, 1984.- XXI.- №2 -С. 3-7.

108. Чекишев, В.М. Профилактика респираторных заболеваний на крупных фермах / В.М. Чекишев, А.И. Кабанцев // Ветеринария. 1983 - №4.- С. 14-16.

109. Чекишев, В.М. Иммунологические аспекты резистентности телят: автореф. дисс. . д-ра вет.наук / В.М. Чекишев Москва,- 1985.- 42 с.

110. Шадрина, М.Н. Профилактика респираторных болезней телят / М.Н. Шадрина, А.Г. Хохлов // Ветеринария. 1983. - № 9. - С. 12.

111. Шахов, А.Г. Этиология, терапия и профилактика болезней молодняка сельскохозяйственных животных / А.Г. Шахов, С.М. Сулейманов // Мат-лы координац. совещ.- Воронеж, 1995. С. 12.

112. Шахов, А.Г. Нарушение обмена веществ у стельных коров / А.Г. Шахов, В.Т. Самохин // Мат-лы. круглого стола отд. вет. медицины РАСХН. М., 2000. - С. 10 - 14.

113. Шаматава, Н. М. Пастереллез (Инфекционные болезни крупного рогатого скота) /Н.М. Шаматава. М. : Колос, 1974. С. 157 - 169.

114. Шегидевич, Э.А. Состояние и перспективы изучения пастереллезов сельскохозяйственных животных / Э.А. Шегидевич // Тр. ВИЭВ. М, 1984. -Т. 60.-С. 58-63.

115. Шегидевич, Э.А. Роль пастерелл в респираторной патологии овец и крупного рогатого скота: автореф. дис. докт. вет. наук / Э.А. Шегидевич. -Москва, 1993.-42 с.

116. Шегидевич, Э.А. Природа, этиологическая структура, патогенез, диагностика массовых желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят и меры борьбы с ними /Э.А. Шегидевич и др. // Труды ВИЭВ. М., 2003. -Т.73. - С. 15-22.

117. Шипицын, А.Г. Особенности течения респираторных болезней телят на комплексах и в хозяйствах репродукторах в Краснодарском крае / А.Г. Шипицин // Мат-лы науч.-прак. конф. - Иркутск, - 2001. - С. 80.

118. Шкиль, H.A. Экологический подход к обоснованию методов профилактики болезней молодняка / H.A. Шкиль и др. // Мат-лы. науч.-практ. конф. Томск, 2002. - С. 92 - 96.

119. Шульпин, М.И. Индикация вируса диареи крупного рогатого скота, генотипирование и филогенетический анализ изолятов, выявленных на территории Российской Федерации / М.И. Шульпин, П.К. Аянот, В.А. Мищенко // Вопросы вирусологии. 2003. - №5. - С. 41 - 46.

120. Щербаков, П.Н. Профилактика и лечение при желудочно-кишечных и респираторных болезнях телят / П.Н. Щербаков, А.Г. Гусев // Ветеринария. 2002. -№ 3. - С. 15-16.

121. Южаков, А.Г. Типизация и филогенетический анализ нецитопатогенных изолятов вируса вирусной диареи-болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота / А.Г. Южаков и др. // Ветеринария. -2009. № 6. - С. 29 - 32.

122. Юрлова, Т.И. Изучение естественной популяционной изменчивости респираторно-синцитиальных вирусов по их интерферирующим и репродуктивным свойствам / Т.И. Юрлова, Н.Я. Зощенко, JI.C. Карпова //Acta vi rol. - 1985. - № 29. - С. 273 - 284.

123. Юров, К.П. Профилактика инфекционных болезней телят / К.П. Юров, А.Ф. Шуляк// Мат-лы науч.-практ. конф. Новосибирск, 2001. -С. 9-10.

124. Юров, К.П. Распространение инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи-болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота в различных регионах России / К.П. Юров и др. // Труды ВИЭВ. 2003, Т. 73.-С. 15-22.

125. Achenbach, J.E. Detection and quantitation of bovine respiratory syncytial virus using real-time quantitative RT-PCR and quantitative competitive RT-PCR assays/ J.E. Achenbachet al.// J. Virol. Methods. 2004. - P. 1 - 6.

126. Ackermann, M. Pro and contra IBR-eradication/ M. Ackermann, M. Engels //Veterinary Microbiology. 2006. - Vol.113. - P. 293 - 302.

127. Ames, T. R. The epidemiology of BRSV infection / T.R. Ames // Veterinary Medicine. 1993. -Vol. 88. - P. 881 - 884.

128. A1 Darraji, A.M. Experimental infection of lambs with bovine respiratory syncytial virus and Pasteurella heamolytica: clinical and microbiologic studies / A.M. A1 Darraji et al. // Am. J.Vet. Res.- 1982.- Vol. 43.- P. 236 240.

129. Aim, K. Acute BRSV infection in young AI bulls: effect on sperm quality / K. Aim, E. Koskinen, S. Vahtiala, M. Andersson // Reprod Domest Anim. 2009. - Vol. 44. - P. 456 - 459.

130. Almeida, R.S. Detection of bovine respiratory syncytial virus in experimentally infected balb/c mice / R.S. Almeidaet al. // Vet. Res. 2004. -Vol. 35.-P. 189-197.

131. Almeida, R.S., BRSV subgroup B is circulating in Brazil. / R.S. Almeida et al. // The Veterinary Record 2005.

132. Andrews, A.H. Respiratory disease. / A.H. Andrews, R. Blowey, H. Boyd, R. Eddy // Bovine Medicine: Diseases and Husbandry of Cattle. Blackwell Scientific Publications, Oxford: 2004. - P. 286 - 293.

133. Angen, O. Respiratory disease in calves: microbiological investigations on trans-tracheally aspirated bronchoalveolar fluid and acute phase protein response / O. Angenet al. //Vet. Microbiol. 2009. - Vol. 28. - P. 165 - 171.

134. Antonis, A.F.G. Vaccine-Induced Immunopathology during Bovine Respiratory Syncytial Virus Infection: Exploring the Parameters of Pathogenesis/ A.F.G. Antonis, R.S. Schrijver, F. Daus // Journal of Virology. 2003. - Vol. 77. -P. 12067 -12073.

135. Antonis, A.F. Vaccination with recombinant modified vaccinia virus Ankara expressing bovine respiratory syncytial virus (bRSV) proteins protects calves against RSV challenge / A.F. Antonis et al. // Vaccine. 2007. - Vol. 15. -P. 4818-4827.

136. Antonis, A.F. Age-dependent differences in the pathogenesis of bovine respiratory syncytial virus infections related to the development of natural immunocompetence / A.F. Antonis et al. // J. Gen. Virol. 2010. - Vol. 91. - P. 2497 - 2506.

137. Arns C.W., Characterization of bovine respiratory syncytial virus isolated in Brazil / C.W. Arns et al. // Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 2003. - Vol. 36. - P. 213 - 218.

138. Atreya, P.L. The NS2 protein of human respiratory syncytial virus is a protein inhibitor of minigenome transcription and RNA replication / P.L. Atreya, M.E. Peeples, P.L. Collins // J. Virol. 1998. - Vol. 72. - P. 1452 - 1461.

139. Babiuk, L.A. Viral-bacterial synergistic interaction in respiratory disease. / L.A. Babiuk, M.J. Lawman, H.B. Ohmann // Advanced Virus Research -1988. Vol. 35. - P. 219 - 249.

140. Babiuk, L.A. Immunology of bovine herpesvirus 1 infection / L.A. Babiuk, S. Van Drunen Littel-van den Hurk, S.K. Tikoo // Vet. Microbiol. -1996. Vol. 53, № 1-2. - P. 31 - 42.

141. Bachi, T. Morphogenesis and ultrastructure of respiratory syncytial virus// T. Bachi, C. Howe// J. Virol. 1973. - Vol. 12. - P. 1173 - 1180.

142. Baker, J.C. Seroepizootiologic study of bovine respiratory syncytial virus in a dairy herd / J.C. Baker, T.R Ames, R.J. Markham // American Journal of Veterinary Research 1986. - Vol. 47. - P. 240 - 245.

143. Baker, J.C. Study on the etiologic role of bovine respiratory syncytial virus in pneumonia of dairy calves / J.C. Baker et al. // JAVMA 1986. - Vol. 189.-P. 66-70.

144. Baker, J.C. The characteristics of respiratory syncytial viruses / J.C. Baker // Vet. Med. 1993. - Vol. 88. - P. 1190 - 1195.

145. Baker, J.C. Bovine respiratory syncytial virus / J.C. Baker // Veterinary Clinics of North America Food Animal Practice. 1997. - Vol. 13. - P. 425 - 454.

146. Bartha, A. Bovin respiratory syncytial virusfertozottseg es kovetkez-menyei nagyuzemi szarvasmarhaallamanyokban / A. Bartha, M. Benko, F. Vetisi //Magyar allatov. Lapja. 1986. - v. 41. N 8. - P. 451 - 454.

147. Beaudeau, F. Spatial patterns of bovine corona virus and bovine respiratory syncytial virus in the Swedish beef cattle population /F. Beaudeau, C. Bjorkman, S. Alenius, J. Frossling // Acta. Vet. Scand. 2010. - Vol. 21. - P. 33.

148. Beaudeau, F. Associations between bovine coronavirus and bovine respiratory syncytial virus infections and animal performance in Swedish dairy herds / F. Beaudeau, A. Ohlson, U. Emanuelson // J. Dairy. Sci. 2010. - Vol. 93. -P. 1523-1533.

149. Belak, S. Application of the polymerase chain reaction (PCR) in veterinary diagnostic virology / S. Belak, A. Ballagi-Pordany // Veterinary Research Communications 1993a. - Vol. 17. - P. 55 - 72.

150. Belak, S. Experiences on the application of the polymerase chain reaction in a diagnostic laboratory / S. Belak, A. Ballagi-Pordany // Molecular and Cellular Probes. 1993b. - Vol. 7. - P. 241 - 248.

151. Belak, S. Molecular diagnosis of animal diseases: some experiences over the past decade / S. Belak, P. Thoren // Expert Review of Molecular Diagnostics -2001. Vol. 1. - P. 434 - 443.

152. Belanger, F. Electron microscopic evidence for bridges between bovine respiratory syncytial virus particles / F. Belanger et al. // J. Gen. Virol. 1988. -Vol. 69. - P. 1421 - 1424.

153. Belknap, E.B., The role of passive immunity in bovine respiratory syncytial virus-infected calves / E.B. Belknap et al. // Journal of Infectious Diseases 1991. - Vol. 163. - P. 470 - 476.

154. Belknap E.B. Recognizing the clinical signs of BRSV infection / E.B. Belknap // Vet. Med. 1993. - Vol. 88. - P. 886 - 887.

155. Belknap, E.B., Experimental respiratory syncytial virus infection in calves and lambs / E.B. Belknap, D.K. Ciszewski, J.C. Baker // Journal of Veterinary Diagnostic Investigation 1995. - Vol. 7. - P. 285 - 298.

156. Bengtsson, B. Respiratoriska virus projekt, panorama och behindlingsstrategier / B. Bengtsson, S. Viring // In: Veterinarmote, Uppsala, Sweden - 2000. - P. 153 - 158.

157. Berghaus, L.J. Effects of dual vaccination for bovine respiratory syncytial virus and Haemophilus somnus on immune responses / L.J. Berghaus et al. // Vaccine. 2006. - Vol. 14. - P. 6018 - 1627.

158. Berthiaume, L. Comparative structure, morphogenesis and biological characteristics of the respiratory syncytial (RS) virus and the pneumonia virus of mice / L. Berthiaume, J. Joncas, V. Pavilanis //Arch. ges. Virusforsch. 1974. -Vol. 45.-P. 39-51.

159. Bidokhti, M.R. Reduced likelihood of bovine coronavirus and bovine respiratory syncytial virus infection on organic compared to conventional dairy farms / M.R. Bidokhti et al. // Vet. J. 2009. - Vol. 182. - P. 436 - 440.

160. Bolin, S.R. Prevalence of bovine viral diarrhea virus genotypes and antibody against those viral genotypes in fetal bovine serum / S.R. Bolin, J.F. Ridpath // J. Vet. Diagn. Invest. 1998. - Vol. 10. - P. 135 - 139.

161. Bossert, B. Nonstructural proteins NS1 and NS2 of bovine respiratory syncytial virus bloc activation of interferon regulatory factor 3 / B. Bossert, S. Marozin, K.-K. Conzelmann // J. Virol. 2003. - Vol. 77. - P. 8661 - 8668.

162. Boxus, M. Real Time RT-PCR for the detection and quantitation of bovine respiratory syncytial virus / M. Boxus, C. Letellier, P. Kerkhofs // J. Virol. Methods. 2005. - Vol. 125. - P. 30.

163. Brodersen, B.W. Bovine respiratory syncytial virus. / B.W. Brodersen. // Vet Clin North Am Food Anim. Pract. 2010. - Vol. 26. - P. 323 - 333.

164. Brogden, K.A. Polymicrobial Diseases / K.A. Brogden, J.M. Guthmiller // J. Virol. 2002. - P. 328.

165. Brock, K.V. Development of a fetal challenge method for the evaluation of bovine diarrhea virus vaccines / K.V. Brock, C.C. Chase // Vet. Microbiol. -2000. Vol. 77. - P. 209 - 214.

166. Brock, K.V. Experimental fetal challenge using type II bovine viral diarrhea virus in cattle vaccinated with modified-live virus vaccine / K.V. Brock, V.S. Cortese // Vet. Therapeutics. 2001. - Vol.2. - P. 354 - 360.

167. Brock, K.V. Protection against Fetal Infection with Either Bovine Viral Diarrhea Virus Type 1 or Type 2 Using a Noncytopathic Type 1 Modified-Live Virus Vaccine / K.V. Brock et al. // Vet. Ther. 2006. - Vol. 7(1). - P. 27 - 34.

168. Bryson, D.G. Observations on outbreaks of respiratory disease in housed calves(l) Epidemiological, clinical and microbiological findings / Bryson, D.G.,

169. J.B. McFerran, H.J. Ball, S.D. Neill // The Veterinary Record 1978a. - Vol. 103.- P. 485 89.

170. Bryson, D.G. Observations on outbreaks of respiratory disease in housed calves(2) Pathological and microbiological findings /D.G. Bryson,, J.B. McFerran, HJ. Ball, S.D. Neill // The Veterinary Record 1978b. - Vol. 103. - P. 503 - 509.

171. Bryson, D.G. Respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: clinical and pathologic findings / D.G. Bryson, M.S. McNulty, E.F. Logan, P.F. Cush //Am. J. Vet. Res. 1983. - Vol. 44. - P. 1648 - 1655.

172. Bryson, D.C. Ultrastructural features of alveolar lesions in induced respiratory syncytial virus pneumonia of calves / D.C. Biyson, S. McConnell, M. McAliskey, M.S. McNulty // Vet. Pathol. 1991. - Vol. 28. - P. 286 - 292.

173. Bryson, D.G. Necropsy findings associated with BRSV pneumonia / D.G. Bryson // Vet. Med. 1993. - Vol. 88. - P. 894 - 899.

174. Bryson, D.G. The calf pneumonia complex current thoughts on aetiology / D.G. Bryson // Cattle Practice 2000. - Vol.8. - P. 103 - 107.

175. Brownlie, J. Experimental production of fatal mucosal disease in cattle / J. Brownlie, M.C. Clarke, C.J. Howard//Vet. Rec.- 1984.- Vol. 114.-P. 535 536.

176. Brownlie, J. Experimental infection of cattle in early pregnancy with a cytopathic strain of bovine viral diarrhea virus / J. Brownlie, M.C. Clarke, C.J. Howard // ResVetSci. 1989. - Vol. 46. - P. 307 - 311.

177. Brownlie, J. Protection of the bovine fetus from bovine viral diarrhoea virus by means of a new inactivated vaccine / J. Brownlie,et al. // VetRec. -1995. Vol.137. - P. 58 - 62.

178. Bunt, A.A. Virus taxonomy, Eigth report of the International Committee on Taxonomy of Virus / A.A. Bunt et al. // London. 2005. - P. 655 - 671.

179. Calnek, B.W. In vitro methods for assay of turkey herpesvirus/ B.W. Calner et al.// Avian Dis. 1972. - Vol.16. - P. 52 - 56.

180. Cane, P.A. Identification of variable domains of the attachment (G) protein of subgroup A respiratory syncytial-virus / P.A. Cane, D.A. Matthews, C.R. Pringle// J. Gen. Virol. 1991. - Vol. 72. - P. 2091 - 2096.

181. Carman, S. Severe acute bovine viral diarrhea in Ontario 1993-1995/ S. Carman et al. // J. Vet. Diagn. Invest. 1996. - Vol.10. - P. 27 - 35.

182. Chalal, Y. D. The pathogenesis of bovine respiratory syncytial virus infection in lung organ cultures/ Y.D. Chalal, Y. Elazhary// Abstrs79th Annu. Mett. Amer. Soc. Microbiol. Los Angeles Calif., 1979.

183. Chang, J. Respiratory syncytial virus infection suppresses lung CD8+T-cell effector activity and peripheral CD8+T-cell memory in the respiratory tract / J. Chang, T.J. Braciale // Nat. Med. 2000. - Vol. 8. - P. 54 - 60.

184. Charlier, G. Propagation of bovine respiratory syncytial virus in calftesticle microcarrier culture/ G. Charlier et al.// Arch. exp. Veterinarmed. -1984. V.38, №6. - P. 894 - 899.

185. Childs, T.X. Disease in cattle Saskatchewan / T.X. Childs // Can. J. Comp. Med. 1946. - Vol.10. - P. 316 - 319.

186. Collins, J.K. Association of bovine respiratory syncytial virus with atypical interstitial pneumonia in feedlot cattle / J.K. Collins et al.// Am. J. Vet. Res. 1988. - Vol. 49. - P. 1045 - 1049.

187. Corbeil, L.B. Specificity of IgG and IgE antibody responses to Haemophilus somnus infection of calves / L.B. Corbeil et al. // Vet Immunol Immunopathol. 2006. - Vol. 15. - P. 191 - 199.

188. Corbeil, L.B. Histophilus somni host-parasite relationships / L.B. Corbeil // Anim. Health. Res. Rev. 2007. - Vol. 8. - P. 151 - 160.

189. Collett, M.S. Genomic structure of BVDV. Bovine Viral Diarrhea Virus: A 50 year review. Cornell University Press, Ithaca, NY.Compendium of Veterinary Products: 2003. Seven Edition. North American Compendiums, Pon Huron, MI. P. 302 - 309.

190. Cortese, V.S. Protection of pregnant cattle and their fetuses against infection with bovine viral diarrhea virus type 1 by use of a modified-live virus vaccine / V.S. Cortese et al. // Am. J. Vet. Res. 1998. - Vol. 59 (11). -P. 1409-1413.

191. Cortese, V.S. Clinical and immunological responses of vaccinated and unvaccinated calves to infection with avirulent type II isolate of bovine viral diarrhea virus / V.S. Cortese et al. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1998. - Vol. 213. -P. 1312-1319.

192. Cortese, V.S. Specificity and duration of neutralizing antibodies induced in healthy cattle after administration of a modified-live virus vaccine against bovine viral diarrhea / V.S. Cortese et al. // Am. J. Vet. Res. 1998. - Vol. 59. -P. 848 - 850.

193. Cote, P.J. Monoclonal antibodies to respiratory syncytial virus: detection of virus neutralization and other antigen-antibody systems using infected human and murine cell/ P.J. Cote et al.// J. Virol. Meth. 1981. - Vol.3. - P. 137 - 147.

194. De Jong, M.C., Quantitative investigation of population persistence and recurrent outbreaks of bovine respiratory syncytial virus on dairy farms / M.C. De Jong et al. // American Journal of Veterinary Research 1996. - Vol. 57. - P. 628 - 633.

195. Deplanche, M. In vivo evidence for quasispecies distributions in the bovine respiratory syncytial virus genome / M. Deplanche et al. // J. Gen. Virol. -2007. Vol. 88. - P. 1260 - 1265.

196. Deregt, D. Bovine viral diarrhea virus: biotypes and disease /D. Deregt, K.G. Loewen // Can. Vet. J. 1995. - Vol. 36 (6). - P. 71 - 78.

197. Doggett, J.E. A study of an inhibitor in bovine serum active against respiratory syncytial virus/ J.E. Doggett et al.// Arch, ges.virusforsch. 1968. -Vol. 23. - P. 126 - 137.

198. Doreleijers, J.F. Solution structure of immunodominant region of protein G of bovine respiratory syncytial virus / J.F. Doreleijers et al. // Biochemastry -1996. Vol. 35. - P. 14684 - 14688.

199. Drew, T.W. The detection of bovine viral diarrhoea virus in bulk milk samples by the use of a single-tube RT-PCR. / T.W. Drew, F. Yapp, D.J. Paton // Vet. Microbiol. 1999. - Vol. 64(2-3). - P. 145 - 154.

200. Dubovi, E.J. Inhibition of respiratory syncytial virus by BIS (5-amidino-2-bensimidazolyl) met-hane / E.J. Dubovi, J.D. Gerats, R.R. Tidwell //Virology. 1980. - Vol. 103. - P. 502 - 504.

201. Dubovi, E.J. Enhancement of respiratory syncytial virus induced cytopathology by trypain, thrombin and plasmin / E.J. Dubovi, J.D. Gerats, R.R. Tidwell // Infect. Immun. -1983. -V. 40. - P. 351 - 358.

202. Dubovi, E.J. Diagnosing BRSV infection: A laboratory perspective / E.J. Dubovi // Veterinary Medicine. 1993. - Vol. 88. - P. 888 - 893.

203. Elazhary, M.A.S.Y. A natural outbreak of bovine respiratory disease caused by bovine respiratory syncytial virus / M.A.S.Y. Elazhary, A. Silim, M. Morin // Cornell. Vet. 1982. - Vol. 72. - P. - 352 - 333.

204. Eleraky, N.Z. The ovine respiratory syncytial virus F gene sequence and its diagnostic application/ N.Z. Eleraky, S.A. Kania, Z.N.D. Potgieter// Journal of Veterinary Diagnostic Invertigation. 2001. - Vol.13, №6. - P. 455 - 461.

205. Ellis, J.A. Fatal pneumonia in adult dairy cattle associated with active infection with bovine respiratory syncytial virus / J.A. Ellis et al. // Can. Vet. J. -1996. Vol. 3. - P. 103 - 105.

206. Ellis, J.A. Update on viral pathogenesis in BRD / J.A. Ellis // Anim. Health. Res. Rev. 2009. - Vol. 10. - P. 149 - 153.

207. Elvander, M. Severe respiratory disease in dairy cows caused by infection with bovine respiratory syncytial virus / M. Elvander // The Veterinary Record 1996. - Vol. 138. - P.loi - 105.

208. Engels, M. Pathogenesis of ruminant herpesvirus infections / M. Engels, M. Ackermann // Veterinary Microbiology. 1996. - Vol. 53. - P. 3 - 11.

209. Ersboll, A. K. Spatial modelling of the between-herd infection dynamics of bovine virus diarrhoea virus (BVDV) in dairy herds in Denmark / A. K. Ersboll et al. // Prev Vet Med. 2010. - Vol. 97. - P. 83 - 89.

210. Fent,G.M. Bovine adenovirus serotype 7 infections in postweaning calves / G.M. Fent, R.W. Fulton, J.T. Saliki. //American Journal of Veterinary Research. 2002. - Vol. 63. - P. 976 - 978.

211. Fernil B.F. The stabilization and purification of respiratory syncytial virus using MgS04. / B.F. Fernil, J.L. Gerin //Virology. 1980. - Vol. 106. -P. 141 -144.

212. Fernil B.F. The development of BALB/c cells persistent lye infected with respiratory syncytial virus: Presone of ribonucleoprotein on the cell surface / B.F. Fernil, E.C. Ford, J.L. Gerin // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1981. - Vol. 167. - P. 83 - 86.

213. Freymuth, F. Detection of respiratory syncytial virus by reverse transcription RCR and hybridization with a DNA enzyme immunoassay / F. Freymuth, G. Eugene, A. Varbret // J. Clin. Microbiol. - 1995. - Vol. 33. -P. 3352-3355.

214. Frey, H.R. Die IBR/IPV Infektionen und ihre Problematik / H.R. Frey // Rinderproduktion. - 1983. - Vol. 6. - P. 24 - 25.

215. Fulton R. W. Prevalence of bovine viral diarrhea virus (BVDV) in persistently infected cattle and BVDV subtypes in affected cattle in beef herds in south central United States / R. W. Fulton et al. // Can J Vet Res. 2009. - Vol. 73.-№4.-P. 283-291.

216. Furze, J.M. Antigenic heterogenicity of the attachment protein of bovine respiratory syncytial virus / J.M. Furze, G. Wertz, G. Taylor // J. Gen. Virol. -1994. Vol. 75. - P. 363 - 370.

217. Furze, J.M. Antigenically distinct G glucoproteins of BRSV strains shape a high degree of genetic homogeneity / J.M. Furze, S.R. Roberts, G.W. Wertz, G. Taylor // Virology. 1997. - Vol. 231. - P. 48 - 58.

218. Gabathuler, K. Respiratoriches Syncitialvirus in der Riderpraxis / K. Gabathuler //Schweiz. Arch. Tierheilk. 1983. - H. 125. - S.149 - 153.

219. Gaddum, R.M. Recognition of bovine respiratory syncytial virus protein by bovine CD8+T lymphocytes / R.M. Gaddum et al. // Immunology 2003. -Vol. 108. - P. 220 - 229.

220. Gaffuri, A. Serosurvey of roe deer, chamois and domestic sheep in the central Italian Alps /A. Gaffuri et al.//J Wildl Dis.- 2006.-Vol. 42.- P. 685 690.

221. Germann, D. Clinical evaluation of respiratory tract infections due to RSV. Adenovirus, Parainfluenza 1,2,3, Influenza A and B and diagnosed Within 24h using an EJA/ D. Germann et al.//Experientia.- 1986.-Vol. 42.- №1.- P. 91.

222. Gershwin, L.J. Bovine respiratory syncytial virus infection: immunopathogenic mechanisms / L.J. Gershwin // Anim. Health. Res. Rev. -2007. Vol. 8. - P. 207 - 213.

223. Gershwin, L.J. Effect of infection with bovine respiratory syncytial virus on pulmonary clearance of an inhaled antigen in calves / L.J. Gershwin, R.A. Gunther, W.J. Hornof, R.F. Larson //Am. J. Vet. Res. 2008. - Vol. 69. -P. 416-422.

224. Gibbs, E.P.J. Bovine Herpesviruses. Part 1. Bovine Herpesvirus 1/ E.P.J. Gibbs, M.M. Rweyemamu // Veterinary Bulletin, Weybridge. 1977. -Vol. 47. - P. 317 - 343.

225. Gilbert, S. A. Typing of Bovine Viral Diarrhea Viruses Directly from Blood of Persistently Infected Cattle by Multiplex PCR / S.A. Gilbert., K.M. Burton, S.E. Prins, D. Deregt// J. of Clin, microbiol. 1999. - Vol. 37. - №. 6. -P. 2020-2023.

226. Gillete, K.G. Respiratory syncytial virus infection in transported calves / K.G. Gillete, P.C. Smith //Am. J. Veter. Res. 1985. - Vol. 46. - P. 2596.

227. Goris, K. Differential sensitivity of differentiated epithelial cells to respiratory viruses reveals different viral strategies of host infection / K. Goris et al. // J. Virol. 2009. - Vol. 83. - P. 1962 - 1968.

228. Greenhalgh, D. Backward bifurcation, equilibrium and stability phenomena in a three-stage extended BRSV epidemic model / D. Greenhalgh, M. Griffiths // J. Math. Biol. 2009. - Vol. 59. - P. 1 - 36.

229. Grooms, D.L. Screening of neonatal calves for persistent infection with bovine viral diarrhea virus by immunohistochemistry on skin biopsy samples/ D.L. Grooms, E.D. Keilen// Clin. Diagn. Lab. Immunol.- 2002.-Vol.9 (4).- P.898 -900.

230. Gulliksen, S.M. Respiratory infections in Norwegian dairy calves / S.M. Gulliksen et al. // J. Dairy. Sci. 2009. - Vol. 92. - P. 5139 - 5146.

231. Hage, J.J. Population dynamics of bovine herpesvirus 1 infection in a dairy herd / J.J. Hage et al. // Vet. Microbiol.- 1996. Vol. 53. - P. 1690 - 1800.

232. Hagglund, S. Dynamics of virus infection involved in the bovine respiratory syncytial disease complex in Swedish dairy herds / S. Hagglund et al. // Vet. J. 2006. - Vol. 172. - P. 320 - 328.

233. Hakhverdyan, M. Evaluation of a single-tube fluorogenic RT-PCR assay for detection of bovine respiratory syncytial virus in clinical samples./ M. Hakhverdyan , S. Hagglund , L.E. Larsen , S. Belak // J. Virol. Methods. 2005. -P. 195 - 202.

234. Hall, C.B., Douglas R.G., Geiman J.M. Respiratory syncytial virus infections in infants; quantitation and duration of shedding / C.B. Hall, R.G. Douglas, J.M. Geiman //J. Pediat. 1976. - Vol. 89. - P. 11 - 15.

235. Hall, C.B. Possible transmission by fomites of respiratory syncytial virus / C.B. Hall, R.G. Douglas //J. Inf. Dis. 1980. - Vol.141. - P. 98 - 102.

236. Hall, C.B. Modes of transmission of respiratory syncytial virus / C.B. Hall, R.G. Douglas //J. Pediat. 1981. - Vol. 99. - P. 130 - 103.

237. Hall, C.B. Respiratory syncytial virus and parainfluenza virus / C.B. Hall // New England Journal of Medicine 2001. - Vol. 344 -P. 1917-1928.

238. Halstead, D.C. Evaluation of five methods for respiratory syncytial virus detection/ D.C. Halstead, S.Tood, G. Fritch// J. Clin. Microbiol. 1990. - 28. -№5.-P. 1021-1025.

239. Hartel, H. Viral and bacterial pathogensin bovine respiratory disease in Finland/ H. Hartel et al.// Acta vet.scand.- 2004.- Vol. 45, № 3- 4.- P. 193 200

240. Himmes, S.R. Bovine respiratory syncytial virus fusion protein gene: sequence analysis of cDNA and expression using a baculovirus vector / S.R. Himes, L.G. Gershwin // J. Gen. Virol. 1992. - Vol. 73. - P. 1563 - 1567.

241. Houe, H. Epidemiology of bovine viral diarrhea virus / H. Houe // Vet. Clin. N. Amer: Food An Pract. 1995. - Vol. 11. - P. 521 - 547.

242. Houe, H. Serological analysis of a small herd sample to predict presence or absence of animals persistently infected with bovine viral diarrhoea virus (BVDV) in dairy herds / H. Houe // Res. Vet. Sci.- 1992.- Vol. 53.- P. 320 323.

243. Inaba, Y. Nomi virus, a virus isolated from an appearently new epizootic respiratory disease of cattle / Y. Inaba, Y. Tanaka, H. Ito, T. Omori, M. Matumoto // Japan. J. Microbiol. 1970. - Vol. 14. - P. 246 - 248.

244. Inaba, Y. Bovine respiratory syncytial virus Studies on an outbreak in Japan, 1968 - 1969 / Y. Inaba et al. // Japanese Journal of Microbiology - 1972-Vol. 16. - P. 373 - 383.

245. Inhg, F.S.C.A.M. Clinical and pathological observations an spontaneous bovine respiratory syncytial virus infections in calves / F.S.C.A.M. Inhg, I. Verhoeff, A.P.K.M.I. Nieuwetad // Res. in veter. Sc. 1982. - Vol. 33. -P. 152-158.

246. Ito, Y. Structure of bovine respiratory syncytial virus / Y. Ito, Y. Tanaka, Y. Ianba, T. Omori //Arch. ges. Virusforsch. 1973. - Vol. 40. - P. 198 - 204.

247. Jericho, K.W.T. Bovine herpesvirus 1 and Pasteurella haemolitica: aerobiology in experimentally infected calves / K.W.T. Jericho, A. Lejeune, G.B. Tiffin"// Am. J. Of Vet. Res. - 1986. - Vol. 47. - P. 205 - 210.

248. Jolly, S. Extensive mast cell degranulation in bovine respiratory syncytial virus-associated paroxystic respiratory distress syndrome/ S. Jolly, J.Detilleux, D. Desmecht// Veterinary Immunology Immunopathology. 2004. -Vol. 97. - №3/4. - P. 125 - 136.

249. Jordan, W.S. Growth characteristics of respiratory syncytial virus / W.S. Jordan //J. Immunol. 1962. - Vol. 88. - P. 581 - 590.

250. Jubb, K.V.P. Pathology of Domestic Animals. 1st Ed, Vol 2., New York: Academic Pr. 1963. - P. 12 - 21.

251. Kargen, A. Recombinant respiratory syncytial virus with deletion of the G or SH genes: G and F proteins bind heparin / A. Kargen, U. Schmidt, U.J. Buchholz // J. Gen. Virol. 2001. - Vol. 82. - P. 631 - 640.

252. Kelling, C.L. Investigation of bovine viral diarrhea virus infections in a range beef cattle herd / C.L. Kelling et al. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1990. -Vol. 197. - P. 589 - 593.

253. Kelling, C.L. Testing and management Strategies for effective beef and dairy herd BVDV biosecurity programs / C.L. Kelling et al.// Bovine Practitioners. 2000. - Vol.34. - P. 13 - 22.

254. Kelling, C.L. Evolution of bovine viral diarrhea virus vaccines / C.L. Kelling // Vet Clin Food Anim. 2004. - Vol.20. - P. 115 - 1 29.

255. Kimman, T.O. Epidemiclogical study of bovine respiratory syncytial virus infection in calves: influence of maternal antibodies on the outcome of disease / T.O. Kimman et al. // Vet. Rec. 1988. - Vol. 123. - P. 104 - 109.

256. Kimman, T.G. Pathogenesis of natural acquired bovine respiratory syncytial virus infection in calves: morphologic and serologic findings / T.G.

257. Kimman, P.J. Straver, G.M. Zimmer // Am. J. Vet. Res. 1989. - Vol. 50. -P. 684 - 693.

258. Kingsbury, D.W. Paramyxoviridae and Their Replication. In: Fields Virology / D.W. Kingsbury // Ravens Press. New York 1990. - P. 945 - 962.

259. Kirkland, P.D. The outcome of widespread use of semen from a bull persistently infected with Pestivirus / P.D. Kirkland, S.G. Mackintosh, A. Moyle // Vet Ree. 1994. - Vol. 135. - P. 527 - 529.

260. Kovarcik, K. Respiratory syncytial viruses: pathogenesis, immunology and disease prevention / K. Kovarcik // Vet. Med. Czech. - 1997. - Vol. 42. -P. 256 - 278.

261. Kovarcik, K. Isolation of bovine respiratory syncytial virus during an outbreak of acute respiratory disease in calves / K. Kovarcik // Vet. Med. Czech. - 1999. - Vol. 44. - P. 121 - 127.

262. Kovarcik, K. The development and application of an indirect ELISA test for the detection of antibodies to bovine respiratory syncytial virus in blood serum / K. Kovarcik // Vet. Med.-Czech. 2001. - Vol. 46. - P. 29 - 34.

263. Koves, B. Isolation of respiratory syncytial (RS) virus from coffle diseased with respiratory symptoms / B. Koves, A. Bartha // Acta. vet. Acad. Sci. hung. 1975. - Vol. 25. - P. 357 - 362.

264. Krilov, I.R. Antibody- mediated enhancement of respiratory syncytial virus infection in two monocyte/ macrophage cell lines/ I.R. Krilov et al.// J. Infec. Diseases. 1989. - 160. - №5. - P. 777 - 782.

265. Lambert, D.M. Nucleic acids of respiratiry syncytial virus / D.M.Lambert , M.W. Pons , G.N. Mbuy, K. Dorsch-Hasler//J. Virol. 1980.-Vol. 36. - P. 837 - 846.

266. Lambert, D.M., Pone M.W. Respiratory syncytial virus glycoprotein's / D.M. Lambert, M.W. Pone //Virology. 1983. - Vol. 130. - P. 204 - 214.

267. Larsen, L.E. Extensive sequence divergence among bovine respiratory syncytial viruses isolated during recurrent outbreaks in closed herds / L.E. Larsen, K. Tjornehoj, B. Viuff // Journal of Clinical Microbiology 2000. - Vol. 38. - P. 4222 - 4227.

268. Larsen, L. E. Bovine Respiratory Syncytial Virus (BRSV): A review / L.E. Larsen // Acta. vet. scand. 2000. - Vol. 41. - P. 1 - 24.

269. Larsen, L.E. Bovine respiratory syncytial virus (BRSV) pneumonia in beef calf herds despite vaccination / L.E. Larsen, C. Tegtmeier, E. Pedersen // Acta. Veterinaria Scandinavia 2001. - Vol. 42. - P. 113 - 121.

270. Lathrop, S.L. Association between infection of the respiratory tract attributable to bovine coronavirus and health and growth performance of cattle in feedlots/ S.L. Lathrop et al. // Am. J. veter. Res. 2000. - Vol.61. - №9. -P.1062 -1066

271. Lehmkuhl, H.D. Characterization and identification of a bovine respiratory syncytial virus isolated from Young Calves / H.D. Lehmkuhl, P.M. Cough, D.E. Reed // An. J. veter. Res. 1979. - Vol. 40. - P. 124 - 126.

272. Lehmkuhl, H.D.Morphogenesis and structure of caprine respiratory syncytial virus / H.D. Lehmkuhl, M.H. Smith, R.C. Cutlip //Arch, virol. 1980. -Vol. 65.-P. 269-276.

273. Lekeux, P. Respiratory syncytial virus pneumonia in Friesian calves: physiological findiags / P. Lekeux, J. Verhoeff, R. Hajer, H.J. Breukink // Res. in veter. Sc. 1985. - Vol. 39.

274. Lekeux, P. Bovine respiratory disease complex: an European perspective / P. Lekeux // Bov. Pract. 1995. - Vol. 29. - P. 71 - 75.

275. Levine, S. Effect of respiratory syncytial virus infection on HeLa cell macromolecular synthesis / S. Levine, M. Peebles, R. Hemilton //J. gen. Virol. -1977. Vol. 37. - P. 53 - 63.

276. Lindberg, A.L.E. Bovine viral diarrhea virus infections and its control. A review / A.L.E. Lindberg // Veterinary Quarterly. 2003. - Vol. 5. - P. 1 - 16.

277. Liu, L. Phylogeny, classification and evolutionary insights into pestiviruses / L. Liu et al. //Virology. 2009. - Vol 385. - P. 351 - 357.

278. Luzzago, C. Bovine respiratory syncytial virus seroprevalence and risk factors in endemic dairy cattle herds / C. Luzzago et al. // Vet Res Commun. -2010. Vol. 34. - P. 19 - 24.

279. Madin, S.H. Isolation of IBR virus / S.H. Madin, C.J. York, D.G. Mc Kercher // Science. 1956. - Vol. 126. - P. 721 - 722.

280. Mallipeddi, S.K. Sequence variability of the glycoprotein gene of bovine respiratory syncytial virus / S.K. Mallipeddi, S.K. Samal // J. Gen. Virol. 1993. -Vol. 74. - P. 2001 - 2004.

281. Mallipeddi, S.K. Mapping the domains on the phosphoprotein bovine respiratory syncytial virus required for N-P interaction using a two-hybrid system / S.K. Mallipeddi, B. Lupiani, S.K. Samal // J. Gen. Virol. 1996. - Vol. 77. - P. 1019 -1023.

282. Martin, H.T. Indirect haemagglutination test for the detection and assay of antibody to bovine respiratory syncytial virus //Vet. Rec. 1983. - Vol. 113. -P. 290-293.

283. Matheise, G.P. Antigenic analysis of the F protein of the bovine respiratory syncytial virus: identification of two distinct antigenic sites involved infusion inhibition / G.P. Matheise et al. // Arch. Virol. 1995. - Vol. 140. -P.993 -1005.

284. Matthews, R.E.F. Classification and nomenclature of viruses / R.E.F. Matthews //Intervirology. 1982. - Vol. 17. - P. 104 - 105.

285. Matumoto, M. Bovine Respiratory syncytial Virus: Host Range in Laboratory Animals and Cell Cultures / M. Matumoto et al.//Arch. ges. Virusforsch. 1974. - Vol. 44. - P. 280 - 290.

286. Mawhinney, I.C. Protection against bovine respiratory syncytial virus challenge following a single dose of vaccine in young calves with maternal antibody / I.C. Mawhinney et al. // The Veterinary Record 2005. - Vol. 156. -P. 139-143.

287. McClurkin, A.W. Reproductive performance of apparently healthy cattle persistently infected with bovine viral diarrhea virus / A.W. McClurkin, M.F. Coria, R.C. Cutlip // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1979.- Vol. 174. - P. 1116 - 1119.

288. Mcguire, T. Failure of colostral immunoglobulin transfer in calves tlviim from infectious disease / T. Mcguire, N. Pfeiffer, J. Weikel, R. Bartsch // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1976. - Vol. 169. - P. 713 - 718.

289. Mcintosh, K. Respiratory Syncytial Viruses. In: Fields Virology / K. Mcintosh, R.M. Chanock // Raven Press. New York 1990. - P. 1045 - 1074.

290. McKercher, D.G. Complications in cattle following vaccination with a combined bovine viral diarrhea-infectious bovine rhinotracheitis vaccine / D.G. McKercher et al. // J. Am. Vet. Med. Assoc.- 1968.- Vol. 152. P. 1621 - 1624.

291. McNulty, M.S. Experimental respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: Microbiologic and imnunofluorescent findings / M.S. McNulty, D.G. Bryson, G.M. Allan //Am. J. Vet. Res. 1983. - Vol. 44. - P. 1656 - 1659.

292. Metz, A.E. The epidemic in a closed population with all susceptibles equally vulnerable; some results for large populations and small initial infections / A.E. Metz // Acta Biotheoretica. 1978. - 27. - P. 75 - 123.

293. Metzler, A.E. Praevalenz des Bovinen Herpesvirus 4 in der schweizerischen Rinderpopulation und moeglische Kreuzreaktion mit dem Bovinen Herpesvirus 1/ A.E. Metzler, R. Wyler // Schweiz. Arch. Tierheilk. -1986. Vol.128. - P. 459 - 467.

294. Meyer, G. Human and bovine respiratory syncytial virus vaccine research and development / G. Meyer, M. Deplanche, F. Schelcher // Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2008. - Vol. 31. - P. 191 - 225.

295. Miller, A.L. Respiratory syncytial virus-induced chemokine production: linking viral replication to chemokine production in vitro and in vivo / A.L. Miller, T.L. Bowlin, N.W. Lukacs // J. Infect. Dis. 2004. - Vol. 189. - P. 1419 - 1430.

296. Misra, V. Analysis of bovine herpes virus type 1 isolates by restriction endonuclease fingerpritting / V. Misra, L.A. Babiuk, C. Darcel // Arch. Of Virol. 1983. - Vol. 76. - P. 341 - 354.

297. Morris, J.A. Recovery of cytopathogenic agent from chimpanzees with corysa / J.A. Morris, R.E. Blount, R.E. Savage // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. -1956. Vol. 92. - P. 544 - 549.

298. Motha, M.X. Prevalence of IBR, PI 3, BRS and BCV infections in the dairy cattle population of New Zealand / M.X. Motha, M.F. Hansen // New Zealand Veterinary Journal 1998. - Vol. 46. - P. 239 - 240.

299. Norrby, E. Differences on the appearance of antibodies to structural components of measles virus after insunisation with inactivated and live virus / E. Norrby, G. Enders-Ruchle, V. Ter-Meulen //J. Inf. Dis. 1975. - Vol. 132. -P. 262 - 269.

300. Nunez, A. Dofecoion de anticuerpos contra el virus sincitial respiratorio bovine por seroneutralizacion / A. Nunez, S. Castell //Rev. salud anim. 1987. -Vol. 9 - P. 266 - 267.

301. Odegaard, O.A. A field outbreak caused by bovine respiratory cyncytial virus/O.A. Odegaard, J. Krogsrud//Acta vet. Scand.- 1977.- Vol.18.- P.429 431.

302. Odeon, A.C. Experimental infection of calves with bovine viral diarrhea virus genotype II (NY-93)/A.C. Odeon et al. // Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 1999. - Vol.11. - P. 221 - 228.

303. Ohlson, A. Risk factors for seropositivity to bovine coronavirus and bovine respiratory syncytial virus in dairy herds / A. Ohlson et al. // Vet. Rec. -2010. Vol. 167. - P. 201 -"206.

304. Olafson, P. An apparently new transmissible disease of cattle / P. Olafson, A.D. MacCallum, F.H. Fox // Cornell Veterinarian. 1946. - Vol. 36. -P. 205-213.

305. Openshaw, P.J. Immunopathogenesis of vaccine-enhanced RSV disease / P.J. Openshaw, F.J. Culley, W. 01szewska//Vaccine 2001.- Vol. 20.- P. 27 - 31.

306. Orro, T. Acute phase protein changes in calves during an outbreak of respiratory disease caused by bovine respiratory syncytial virus / T. Orro et al. // Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2009. - Vol. 6. - P. 11 - 17.

307. Ortman, K. Use of antimicrobial drugs in Swedish dairy calves and replacement heifers / K. Ortman, C. Svensson // The Veterinary Record 2004. -Vol. 154. - P. 136 - 140.

308. Paccaud, M.F. A respiratory syncytial virus of bovine origin / M.F. Paccaud, A. Jacquier // Arch. des. Virusforsch. 1970. - Vol. 30. - P. 327 -342.

309. Pastey, M.K. Structural and sequence comparison of bovine respiratory syncytial virus fusion protein / M.K. Pastey, S.K. Samal // Virus Res. 1993. -Vol. 29. - P. 195 - 202.

310. Pastey, M.K. Nucleotide sequence analysis of the non-structural NS1 (1C) and NS2 (IB) protein genes of bovine respiratory syncytial virus / M.K. Pastey, S.K. Samal //" Gen/Virol. 1995. - Vol. 76. - P. 193 -197.

311. Pastey, M.K. Analysis of bovine respiratory syncytial virus envelope glycoproteins in cell fusion / M.K. Pastey, S.K. Samal // J. Gen. Virol. 1997. -Vol. 78. - P. 1885 - 1889.

312. Pastoret, P.P. Bovid herpesvirus 1 infection in cattle: pathogenesis, consequences of latency / P.P. Pastoret, E. Thiry, B. Brochier, G. Derboven // Ann. Rech. Vet. -1982. - Vol.13. - P. 221 - 236.

313. Pastoret, P.P. Diagnosis and prophilaxis of infectious bovine rhinotracheitis: The role of virus latency / P.P. Pastoret, E. Thiry // Comp. Immunol. Micribiol. Infect. Dis. 1985. - Vol. 8. - P. 35 - 42.

314. Patel, J.R. Evaluation of efficacy of an inactivated vaccine against bovine respiratory syncytial virus in calves with maternal antibodies / J.R. Patel, S.A. Didlick // American Journal of Veterinary Research 2004. - Vol. 65. -P. 417-421.

315. Paton, A.W. Rapid detection of respiratory syncytial virus in nasopharyngeal aspirates by reverse transcription and polymerase chain amplification / A.W. Paton, J.C. Paton, A.P. Collins // J. Clin. Microbiol. 1992. -Vol. 30. - P. 901 - 904.

316. Pellerin, C. Identification of a new group of bovine viral diarrhea virus strains associated with severe outbreaks and high mortalities / C. Pellerin et al. // Virology. 1994. - Vol. 203. - P. 260 - 268.

317. Perino, L.J. A review of bovine respiratory disease vaccine field efficacy / L.J. Perino, B.D. Hunsaker // Bovine Practitioner 1997. - Vol. 31. - P. 59 - 66.

318. Pirie, H.M. Acute fatal pneumonia in calves due to respiratory syncytial virus/ H.M. Pirie, L. Petrie, E.M. Allan, C.R. Pringle //Vet. Res.- 1981.- Vol. 109. P. 87 - 89.

319. Ploeger, H.W. A sero-epidemiological survey of infections with the bovine respiratory syncytial virus in firstsea son grazing calves / H.W. Ploeger et al. //J. Vet. Med. 1986. - Vol. 33. - P. 311 - 318.

320. Pons Marcel, W. Improvement of respiratory syncytial virus replication in actively growing Hep-2 cells// W. Pons Marcel et al.// J.Virol. Meth. 1983. -Vol.7. - №4.-P. 217-221.

321. Potgieter, L. N. D. Use of the indirect fluorescent antebidy test in the detection of bovine respiratory syncytial virus antibodies in Bovine scrum/ L.N.D. Potgieter, P.L. Aldrida //Amer. J. Vet. Res. 1977. - Vol.38. - P. 1341 - 1343.

322. Potgeiter, L.N.D. Immunology of bovine viral diarrhea virus / L.N.D. Potgeiter // Vet. Clin. North. Am.: Food Anim. Pract. 1995. - Vol. 11. -P. 501-520.

323. Porter, D.D. The age dependence of respiratory syncytial virus growth in ferret lung can be shown in organ and monolayer cultures / D.D. Porter, K.B. Muck, G.A. Prince //Clink Immune. Immune path. - 1980. -Vol. 15.-P. 415-423.

324. Pospisil, L. Isolation and Identification of a Bovine Respiratory Syncytial Virus in Czechoslovekia / L. Pospisil, J. Menik, L. Valicek // Acta. Vet. Brno. 1978. - Vol. 47. - P. 79 - 86.

325. Pringle, C.R. Location and quantization of antigen en the surface of virus-infected cells by specific bacterial adherence and senhing electron microscopy / C.R. Pringle, Parry J.E. //J. Viral. Meth.- 1980.- Vol. 1.- P. 61 75.

326. Prozzi, D. Antigenic and molecular analyses of the variability of bovine respiratory syncytial virus G glycoprotein / D. Prozzi et al.// J. Gen. Virol. -1997. Vol. 78. - P. 359 - 366.

327. Quinting, B. Development of a 1-step enzyme-linked immunosorbent assay for the rapid diagnosis of bovine respiratory syncytial virus in postmortem specimens / B. Quinting et al. // J. Vet. Diagn. Invest. 2007. - Vol. 19. -P. 238 - 243.

328. Radostits, O.M. The control of infectious diseases of the respiratory and digestive tracts of cattle / O.M. Radostits // Can. Vet. J. 1991.-Vol. 32. -P. 311-314.

329. Ridpath, J.F. Segregation of bovine viral diarrhea virus into genotypes / J.F. Ridpath, S.R. Bolin, E.J. Dubovi // Virology. 1994. - Vol. 205. - P. 66 - 74.

330. Ridpath, J.F. Bovine viral diarrhea virus: global status / J.F. Ridpath //Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. 2010. - Vol. 26 (1). - P. 105 - 121.

331. Riffault, S. Replication of bovine respiratory syncytial virus in murine cells depends on type I interferon-receptor functionality / S. Riffault et al. // J. Gen. Virol. 2006. - Vol. 87. - P. 2145 - 2148.

332. Riffault, S. A new subunit vaccine based on nucleoprotein nanoparticles confers partial clinical and virological protection in calves against bovinerespiratory syncytial virus / S. Riffault et al.// Vaccine. 2010. - Vol. 7. -P. 3722 - 3734.

333. Rontved, C.M. Increased pulmonary secretion of tumor necrosis factor-alpha in calves experimentally infected with bovine respiratory syncytial virus / C.M. Rontved et al. // Vet. Immunol. Immunopathol. 2000. - Vol. 76. -P. 199-214.

334. Rossi, C.R. Serological evidence for the associationof bovine respiratory syncytial virus with respiratory tract disease in Alabama cattle / C.R. Rossi, G.K. Kiesel //Infect. Immun. 1974. - Vol. 10. - P. 293 - 298.

335. Rossi, C. R. Bovine respiratory syncytial virus infection of bovine embryonic lung cultures: a kinetic study by the fluorescent antibody teohique / C.R. Rossi, G.K. Kiesel //Amer. J. Vet. Res. 1977. - Vol. 38. - P. 1901 - 1904.

336. Rossi, C.R. Bovine respiratory syncytial virus infection of bovine embryonic lung cultures: enhancement of infectivicy with diethylamincethyl-dextran and virus-infected cells / C.R. Rossi, G.K. Kiesel //Arch. Virol. 1 978. -Vol. 58. - P. 227 - 236.

337. Routledge, E.G. The development of monoclonal antibodies to respiratory syncytial virus and their use in diagnosis byindirect immunofluorescence / E.G. Routledge, J. McQuillin, A.C.R. Samson, G.L. Toms //J. Med. Virol. 1985. - Vol. 15. - P. 305 - 320.

338. Rudd, B.D. differential role for TLR3 in respiratory syncytial virus-induced chemokine expression / B.D. Rudd et al. // J. Virol. 2005. - Vol. 79. -P. 3350 - 3357.

339. Saliki, J. T. Laboratory diagnosis of bovine viral diarrhea virus infections / J. T. Saliki, E. J. Dubovi // Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. -2004. Vol.20.1. - P. 69 - 83.

340. Salt, J.S. Efficacy of a quadrivalent vaccine against respiratory diseases caused by BHV-1, PI3V, BVDV and BRSV in experimentally infected calves / J.S.

341. Salt, S J. Thevasagayam, A. Wiseman, A.R. Peters // Vet. J. 2007. - Vol. 174. -P. 616 - 626.

342. Samal, S.K. Molecular cloning and sequence analysis of bovine respiratory syncytial virus mRNA encoding the major nucleocapsid protein / S.K. Samal, M. Zamora, T.H. McPhillips, S.B. Mohanty // Vitology. 1991.- Vol. 180.- P. 453 456.

343. Sandbulte, M.R. T-cell populations responsive to bovine respiratory syncytial virus in seronegative calves/ M.R. Sandbulte, J.A. Roth// Veter. Immonol. Immunohfthol. 2002. - Vol. 84. - №1/2. - P. Ill - 123.

344. Sausker, E.A. Seroprevalence of OHV-2, BVDV, BHV-1 and BRSV in ranch-raised bison (Bison bison) / E.A. Sausker, N.W. Dyer // J. Vet. Diagn. Invest. 2002. - Vol. 14. - P. 68 - 70.

345. Schrijver, R.S. Antibody responses against the G and F proteins of bovine respiratory syncytial virus after experimental and natural infections / R.S. Schrijver et al.// Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology 1996 - Vol. 3 -P. 500-506.

346. Schrijver, R.S. Subgrouping of bovine respiratory syncytial virus strains detected in lung tissue / R.S. Schrijver et al. // Vet. Microbiol. 1996. - Vol. 53.- P. 253 260.

347. Shanthalingam, S. Bighorn sheep fetal lung cell line for detection of respiratory viruses / S. Shanthalingam, C. Topliff, C.L. Kelling, S. Srikumaran // Can. J. Vet. Res. 2010. - Vol. 74. - P. 75 - 77.

348. Shahrabadi, M.S. Calcium reguirement for syncytium formation in HEp-2 cells by respiratory syncytial virus / M.S. Shahrabadi, W.K. Lee Patrick //J. Clin. Microbiol. 1988. - Vol. 26. - P. 139 - 141.

349. Schefers, J. M. Detection, characterization, and control of bovine viral diarrhea virus infection in a large commercial dairy herd / J. M. Schefers, J. E. Collins, S. M. Goyal, T. R. Ames // Can Vet J. 2009.- Vol. 50. - P. 1075 - 1079.

350. Smith, M.H. Isolation and characterization of a. bovine syncytial virus / M.H. Smith, M.L. Frey, R.E. Dierks //Vet. Rec. 1974. - Vol. 94.- P. 599.

351. Spilki, F.R. Phylogenetic relationships of Brazilian bovine respiratory syncytial virus isolates and molecular homology modeling of attachment glucoprotein / F.R. Spilki et al. // Virus. Res. 2006. - Vol. 116. - P. 30 - 37.

352. Stine, L.C. Sequence conservation in the attachment glycoprotein and antigenic diversity among bovine respiratory syncytial virus isolates / L.C. Stine, D.K. Hoppe, C.L. Kelling //Vet. Microbiol. 1997. - Vol. 54. - P. 201 - 221.

353. Stott, E.J. A comparison of three vaccines against respiratory syncytiale virus in calves/ E.J. Stott et al.// J. Hyg. 1984. - Vol. 93. - P. 251 - 261.

354. Stott, E.J. Respiratory syncytial virus: brief review / E.J. Stott, G. Taylor // Arch. Virol. 1985. - Vol. 84. - P. 1 - 52.

355. Straub, O.C. Vorkommen der duren IBR-IPV-viren hervorgerufenen Krankheiten und Moglishe Differential Diagnostische Probleme in den Verschiedenen Kontinenten und Deren Laudern / O.C. Straub // Dt. Tierarztl. Wschr. - 1978. - Vol.85. - P. 84 - 90.

356. Straub, O.C. Advantages in BHV-1 (IBR) research / O.C. Straub // Dtsch. Tierarztl. Wochenschr. 2001. - Vol.108 (10). - P. 419 - 422.

357. Talens, L.T. Efficacy of viral components of a nonabortogenic vaccine for prevention of respiratory and reproductive system diseases in cattle / L.T. Talens, W.H. Beckenhauer, E.T. Thurfer // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1989. -Vol. 194. - P. 1273 - 1280.

358. Taylor, G. Monoclonal omtibodies protect against respiratory syncytial virus infection in mice/ G. Taylor et al.//Immunol.- 1984.-Vol. 52.- P. 137 142.

359. Taylor, G. Protective on the fusion protein of respiratory syncytial virus recognized by murine and bovine monoclonal antibodies / G. Taylor et al. // J. Gen. Virol. 1992. - Vol. 73. - P. 2217 - 2223.

360. Taylor, G. Resistance to bovine respiratory syncytial virus (BRSV) induced in calves by a recombinant bovine herpesvirus-1 expressing theattachment glycoprotein of BRSV / G. Taylor et al. // J. Gen. Virol. 1998. -Vol. 79. - P. 1759 - 1767.

361. Taylor, G. DNA vaccination against respiratory syncytial virus in young calves / G. Taylor et al. // Vaccine 2005. - Vol. 23. - P. 1242 - 1250.

362. Teng, M.N. Identification of the respiratory syncytial virus proteins required for formation and passage of helper-dependent infectious particles / M.N. Teng, P.L. Collins // J. Virol. 1998. - Vol. 72. - P. 5707 - 5716.

363. Teng, M.N. Altered growth characteristics of recombinant respiratory syncytial virus which do not produce NS2 protein / M.N. Teng, P.L. Collins // J. Virol. 1999. - Vol. 73. - P. 466 - 473.

364. Thomas, L.H. The growth of respiratory syncytial virus in organ cultures of bovine foetal trachea / L.H. Thomas, E.J. Stoff, J. Jebbett, S. Hamiltot //Arch. Virol. 1976. - Vol. 52. - P. 251 - 258.

365. Thomas, L.H. The possible role of respiratory syncytial virus and Pasteurella spp. in calf respiratory disease / L.H. Thomas et al.// Vet. Rec. -1980. Vol. 107. - P. 304 - 307.

366. Thomas, L.H. Infection of gnotobiotic calves with a bovine and a human isolate of respiratory syncytial virus. Modification of the response by dexamethasone /L.H. Thomas et al.// Arch. Virol. 1984. - Vol. 79. - P. 67 - 77.

367. Timsit, E. Detection by real-time RT-PCR of a bovine respiratory syncytial virus vaccine in calves vaccinated intranasally / E. Timsit et al. // Vet. Rec. 2009. - Vol. 22. - P. 230 - 233.

368. Timsit, E. Evaluation of a commercial real-time reverse transcription polymerase chain reaction kit for the diagnosis of Bovine respiratory syncytialvirus infection / E. Timsit et al.// J. Vet. Diagn. Invest. 2010. - Vol. 22. -P. 238-241.

369. Tjornehoj, K. An experimental infection model for reproduction of calf pneumonia with bovine respiratory syncytial virus (BRSV) based on one combined exposure of calves / K. Tjornehoj et al.// Research in Veterinary Science 2003. -Vol. 74.-P. 55-65.

370. Tlorent, G. Bovines Respiratorisches Syncytial Virus (BRSV) in der Schweiz: Eiene serologische stutie / G. Tlorent, C. DeMarneffe, E. Boiler //Schwauz. I.s.h. Tiasfeuk. 1985. - Vol. 10. - P. 127.

371. Trepanier, P. Concentration of human respiratory syncytial virus usingammonium sulphate polyethylene glycol or hollow fibre ultrafiltration / P. Trepanier, P. Payment, M. Trudel // J. Virol. Meth.- 1981.- Vol. 3. P. 201 - 211.

372. Treuhaft, M.W. A colorimetric assay for quanti fication of defective interfering particles of respiratory syncytial virus / M.W. Treuhaft //J. gen. Virol.-1983. Vol. 64. - P. 1301 -T309.

373. Trudel, M. Comparison of caprine, human and bovine strains of respiratory syncytial virus / M. Trudel et al. // Arch. Virol. 1989. - Vol. 107. -P. 141 -149.

374. Trudel, M. Immunovirological studies on human respiratory syncytial virus structural proteins /M. Trudel et al. //Can. J. Microbiol. 1986. - Vol. 32. -№ l.-P. 15-12.

375. Ueba, O. Purification and polypeptides of respiratory syncytial virus / O. Ueba //Microbiol. Immunol.' 1980. - Vol. 24. - P. 361 - 364.

376. Uttenthal, A. Viral aetiology of enzootic pneumonia in Danish dairy herds: diagnostic tools and epidemiology / A. Uttenthal, N.P. Jensen, J.Y. Blom // The Veterinary Record 1996. - Vol. 139. - P. 114 -117.

377. Uttenthal, A. Antibody dynamics in BRSV-infected Danish dairy herds as determined by isotype-specific immunoglobulins / A. Uttenthal et al. // Veterinary Microbiology 2000. - Vol. 76 - P. 329 - 341.

378. Valarcher, J.-R. Evolution of bovine respiratory syncytial virus / J.-R. Valarcher, R. Schelcher, H. Bourhy //J. Virol.- 2000.- Vol. 74.- P. 10714 10728.

379. Valarcher, J-R. Bovine Respiratory Syncytial Virus Infection; J-F. Valarcher, G. Taylor // Vet. Res. 2007. - Vol. 8. - P. 153 - 180.

380. Valentova, V. Detection of Bovine Respiratory Syncytial Virus in Cell Cultures by Nested RT-PCR and Use of the Method for Virus Identification in Clinical Samples / V. Valentova, K. Kovalik, I. Pikal // Acta Vet. Brno. 2003. -Vol. 72.-P. 115-122.

381. Valentova, V. Restriction enzyme analysis of RT-PCR amplicons as a rapid method for detection of genetic diversity among bovine respiratory syncytial virus isolates / V. Valentova, A.F. Antonis, K. Kovarcik // Vet. Microbiol. 2005. -P. 1-12.

382. Van der Poel, W.H.M. Diagnosis of bovine respiratory syncytial virus infection: a longitudinal epidemiological study in dairy herds / W.H.M. Van der Poel et al.// Arch. Virol. 1993. - Vol. 133. - P. 309 - 321.

383. Van Campen, H. Evidence for bovine viral diarrhea virus type 2 (BVDV)-associated disease in beef herds vaccinated with a modified-live type 1 BVDV vaccine / H. Van Campen et al.// J. Vet. Diagn. Invest. 2000. - Vol. 12. -P. 263-265.

384. Van der Poel, W.H.M. Respiratory syncytial virus infection in human begins and in cattle / W.H.M. Van der Poel, A. Brand, J.A. Kramps, J.T. Van Oirschot // J. Infect. Dis. 1994. - Vol. 29. - P. 215 - 228.

385. Van der Poel, W.H.M. Serological indication for persistence respiratory syncytial virus in cattle and attempts to detect the virus / W.H.M. Van der Poel et al. // Arch. Virol. 1997. - Vol. 142. - P. 1682 - 1696.

386. Van Donkersgoed, J. Epidemiological features of calf mortality due to hemophilosis in a large feedlot / J.Van Donkersgoed, E.D.Janzen, R.J. Harland // Canadian Veterinary Journal. 1990. - Vol.31. - P. 821 - 825.

387. Van Donkersgoed, J. Enzootic calve pneumonia /J. Van Donkersgoed //Dairy Guide. 1991. - 8 p.

388. Van Donkersgoed, J. Epidemiological study of enzootic pneumonia in dairy calves in Saskatchewan / J.Van Donkersgoed, C.S. Ribble, L.G. Boyer, H.G. Townsend // Canadian Journal of Veterinary Research. 1993. - Vol. 57. -P. 247 - 2 54.

389. Van Nieuwstadt, A.P. Epizootological features of infection with infectious bovine rhinotracheitis virus on dairy farms / A.P. Van Nieuwstadt, J. Verhoeff // Tijdschr Diergeeskd. 1983. - Vol. 15(10). - P. 383 - 391.

390. Van Nieuwstadt, A.P. Serology for diagnosis and epizootiological studies of bovine respiratory syncytial virus infections / A.P. Van Nieuwstadt, J. Varhoeff// Research in Veterinary Science. 1983. - Vol. 35. - P. 153 - 159.

391. Van Oirschot, J.T. Bovine herpesvirus in semen of bulls and the risk of transmission: a brief review / J.T. Van Oirschot // Vet. Q. 1995a. - Vol. 17. -P. 29-33.

392. Van Oirschot, J.T. Virulence and genotype of a bovine herpesvirus 1 isolate from semen of a subclinically infected bulls / J.T. Van Oirschot et al. // Vet. Rec. 1995b. - Vol. 137. - P. 235 - 239.

393. Van Schaik, G. Introduction of BHV -1 on dairy farms. Risk assessment by cattle farmers and veterinarias / G. Van Schaik // Tijdschr. Diergeneeskd. -1998. Vol.15. - P. 180 - 183.

394. Verhoeff, J. Bovine respiratory syncytial virus infection young dairy cattle: clinical and haematological findinys / J. Vehoeff, M. Van der Ban, A.P.K.M.I. Nieuwstadt // Vet. Rec. 1984. - Vol. 114. - P. 9 - 12.

395. Vilcek, S. Development of Nested PCR Assays for Detection of Bovine Respiratory Syncytial Virus in Clinical Samples / S. Vilcek, M. Elvander, A. Bllagi-Pordany, S. Belak // Journal of Clinical Microbiology. 1994. - Vol. 32. -P. 2225-2231.

396. Viuff, B. Sites of replication of bovine respiratory syncytial virus in naturally infected calves as determined by in situ hybridization / B. Viuff, A. Uttenthal, C. Tegtmeier, S. Alexandersen // Vet. Pathol. 1996. - Vol. 33. -P. 383 - 390.

397. Wagne, K. Infektiose Bovine Rhinotracheitis Infectiose Pustulose Vulvovaginitis (IBR-IPV) / K. Wagne, W. Becker, K. Zettl // Tierarztl. Praxis. -1982. - Vol. 10. - P. 329 - 338.

398. Walsh, E.E. Purification and characterisation of GP90, one of the en velope dlycoproteins of respiratory syncytial virus / E.E. Walsh, J.J. Schlesinger, M.W. Brandriss // J. gen. Virol. 1984. - Vol. 65. - P. 761 - 767.

399. Waris, M.Rapid detection of respiratory syncytial virus in cell cultures by immunoperoxidase staining with monoclonal antibodies / M.Waris et al.// J.Clin. Microbiol. 1990. - 28. - №6. - C. 1159 - 1162.

400. Wentink, G.H. Risk of infection with bovine herpes virus 1 (BHV1): a review / G.H. Wentink, J.T. van Oirschot, J. Verhoeff. //Vet. Q. 1993. - Vol.15. - P. 30 - 33.

401. Wermann, S.F. Propertis ofa respiratory syncytia virus isolated from a sheep with rhinitis/J.F. Wermann et al.//J.Vet.Res.-1985.-V.46 P. 1230 - 1233.

402. West, K. A comparison of diagnostic methods for the detection of bovine respiratory syncytial virus in experimental clinical specimens / K. West et al.// Canadian Journal of Veterinary Research. 1998. - Vol. 62. - P. 245 - 250.

403. Whiteley, L.O. Pasteurella haemolytica A1 and bovine respiratory disease: pathogenesis / L.O. Whiteley et al.// Journal of Veterinary Internal Medicine. 1992. - Vol.6. - P. 11 - 22.

404. Wilkens, P.A. Diseases of the respiratory system / P.A. Wilkens, J.C. Baker, T.R. Ames // In Smith B.P. (eds) Large Animal Internal Medicine. Mosby Inc., St. Louis: 2002. P. 479 - 491.

405. Wilson, W.D. Alterations in respiratory function / W.D. Wilson, J. Lofstedt // In Smith B.P. (eds) Large Animal Internal Medicine. Mosby Inc., St. Louis: 2002.-P. 46-81.

406. Wittum, T. E. Persistent bovine viral diarrhoea virus infection in U.S. beef herds / T.E. Wittum, D.M. Grotelueschen, K.V. Brock // Prev. Vet. Med. -2001. -№49. -P. 83-94.

407. Woldehiwet, A. The effects of age, environmental temperature and relative humidity on the bacterial flora of the upper respiratory tract in calves / A. Woldehiwet, B. Mamache, T.G. Rowan. //Br. Vet. J. 1990. - Vol.146. -P. 211-218.

408. Woodbine, K.A. A four year longitudinal sero-epidemiological study of bovine herpesvirus type-1 (BHV-1) in adult cattle in 107 unvaccinated herds in south west England / K.A. Woodbine et al.// BMC Vet Res. 2009. - Vol. 30. -P. 55 - 60.

409. Wren, C.G. Detection of respiratory syncytial virus antigen in nasal washings by Abbott Test Pack enzyme Immunoassay/ C.G. Wren et al.// J. Clin. Microbiol. 1990. - 28. - №6. - P. 1395 - 1397.

410. Wunner, W.H Respiratory syncytial virus proteins / W.H. Wunner, C.R. Pringle // Viroligy. 1976. - Vol. 73. - P. 228 - 243.

411. Yaegashi, G. Genetic and antigenic analyses of bovine respiratory syncytial virus detected in Japan / G. Yaegashi, Y.M. Seimiya, Y. Seki, H. Tsunemitsu // J. Vet. Med. Sci. 2005. - Vol. 67. - P. 145 - 150.

412. Yates, W.D. A review of infectious bovine rhinotracheitis, shipping fever pneumonia and viral-bacterial synergism in respiratory disease of cattle /W.D. Yates// Canadian Journal of Comparative Medicine. 1982. - Vol. 46. -P. 225 - 263.

413. Yates, W.D. Interaction between viruses and bacteria in bovine respiratory disease / W.D. Yates // Canad. Veter. J. -1984. Vol.25. - P. 37 - 41.

414. Ye§ilbag, K. Seroprevalence of bovine respiratory viruses in Northwestern Turkey / K. Ye§ilbag, B. Giingor // Trop Anim Health Prod. 2008. -Vol. 40. - P. 55 - 60.

415. Yurlova, T.J. Natural variability of respiratory syncytial viruses, their interference and reproduction characteristics / T.J.Yurlova, N.Ya. Zoshchenkova, L.S. Karpova //Acta Virol. 1985. - Vol. 29. - № 4. - P. 279 - 284.

416. Zecchinon, L. How Mannheimia haemolytica defeats host defence through a kiss of death mechanism. Review article / L. Zecchinon, T. Fett, D. Desmecht // Vet. Res. 2005. - Vol. 36. - P. 133 - 156.

417. Zimmer, G. Proteolytic activation of respiratory syncytial virus fusion protein / G. Zimmer, L. Budz, G. Herrler // J. Biol. Chem. 2001. - Vol. 276. -P. 31642-31650.

418. Zimmer, G. Virokinin, a bioactive peptide of the tachykinin family, is released from the fusion protein of bovine respiratory syncytial virus / G. Zimmer et al. // J. Biol. Chem. 2003. - Vol. 278. - P. 46854 - 46861.

419. Zrein, M. Use of egg-yalk antibody for detection of respiratory syncytial virus in nasal secretions by ELISA/ M.Zrein, G. Obert, M.H. Regonmortel// Arch. Virol. 1986. - Vol. 90. - №3. - P. 197 - 206.