Разработка компонентов набора для определения уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей методом иммуноферментного анализа тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.23, кандидат биологических наук Коржов, Василий Васильевич

• Коржов, Василий Васильевич
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Коржов, Василий Васильевич

1. Введение

2. Обзор литературы

2.1. Общая характеристика семейства герпесвирусов

2.2. Инфекционная ринопневмония лошадей

2.2.1. Разновидности и распространение герпесвирусов лошадей

2.2.2. Клинические проявления ринопневмонии лошадей

2.2.3. Пути передачи вируса РПЛ 19 ф 2.2.4. Иммунитет при ринопневмонии лошадей

2.3. Культивирование вируса ринопневмонии лошадей

2.4. Морфология и химический состав вируса РПЛ.

2.5. Антигенное родство и различие герпесвирусов и штаммов вируса РПЛ

2.6. Концентрирование и очистка вируса РПЛ

2.7. Очистка фракции иммуноглобулинов класса в 28 ( 2.8. Лабораторная диагностика ринопневмонии лошадей

2.8.1. Индикация вируса

2.8.2.Гемагглютинирующая активность вируса РПЛ

2.8.3. Серологическая идентификация вируса

2.8.4. Серодиагностика и ретроспективная диагностика

2.8.5. Иммуноферментный анализ 37 ~ 2.9. Заключение по обзору литературы

3. Материалы и методы.

4. Собственные исследования. 52 4.1. Выбор культуры клеток для репродукции вируса ринопневмонии лошадей, штамм «СВ/69» ф 4.2. Очистка и концентрирование вируса РПЛ

4.3. Биологические свойства вируса РПЛ

4.4. Получение коньюгата анти-^в лошади с пероксидазой из хрена

4.4.1. Выделение иммуноглобулина класса в из сыворотки крови лошади

4.4.2. Получение анти-^в лошади из анти-^в сыворотки.

4.4.3. Выделение антивидовых иммуноглобулинов анти-^в лошади)

4.4.4. Мечение антивидовых иммуноглобулинов анти-^в лошади) ферментом пероксидазой из хрена

4.5. Тест-система для определения уровня антител к вирусу РПЛ в иммуноферментном анализе

4.5.1. Получение антигенов вируса РПЛ для иммуноферментного анализа.

4.5.2.0птимизация условий проведения иммуноферментного анализа РПЛ

4.6. Выявление антител к вирусу РПЛ методом иммуноферментного анализа

4.7. Набор для определения уровня антител к вирусу

РПЛ в иммуноферментном анализе

5. Обсуждение результатов

6. Выводы.

7. Практические предложения.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка компонентов набора для определения уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей методом иммуноферментного анализа»

Одним из движущих факторов развития экономики нашей страны является научно-технический прогресс, способствующий ускорению развития народного хозяйства путем интенсификации науки и производства, внедрения новых технологий. Процесс интенсификации охватывает и биологию в самом широком смысле слова.

В связи с развитием конного спорта и увеличением количества коневодческих хозяйств в нашей стране, становится актуальной проблема диагностики и ликвидации ряда инфекций. Инфекционная ринопневмония (РПЛ) - одна из наиболее распространенных инфекционных болезней в коневодстве. В естественных условиях вирус РПЛ поражает лошадей, ослов и мулов, независимо от пола, породы и возраста. Отмечено, что чистокровные лошади более восприимчивы, чем полукровки и местные породы.

Инфекционная ринопневмония лошадей наносит значительный экономический ущерб коневодству, который складывается из потери воспроизводительной способности конематок, недополучения приплода, выбраковки ценных в племенном отношении лошадей и проведения ветеринарно-санитарных мероприятий. Возникнув в коневодческом хозяйстве любого типа (конный завод, племенная конеферма, ипподром, конноспортивный комплекс и др.), РПЛ принимает характер стационарной инфекции. Острое течение инфекции чередуется с периодами стертого атипичного .проявления болезни, что крайне осложняет диагностику заболевания. Изучение РПЛ в течении последнего времени показало актуальность данной проблемы.

Поэтому в системе мер, направленных на борьбу с ринопневмонией лошадей, важное значение имеют быстрые и точные методы лабораторной ( » диагностики. Используемые в настоящее время в ветеринарной практике серологические методы диагностики имеют определенные недостатки.

Предварительная клиническая диагностика респираторной формы болезни затруднительна, так как симптомы заболевания сходны с клиникой других вирусных и бактериальных болезней, особенно таких, как грипп лошадей, вирусный артериит, бруцеллез или вообще клиника не проявляется (88).

Диагностика инфекционной ринопневмонии включает клинический осмотр, учет нарастания случаев абортов во второй половине жеребости, выделение и идентификацию вируса на культуре клеток, выявление антител различными методами диагностики (РИФ, РН, ПЦР, РТГА, РГА, РСК).

Несмотря на то, что ветеринарная практика имеет в своем распоряжении большой набор диагностических сывороток и диагностикумов, улучшения качества и стандартизация диагностических препаратов для практических лабораторий по-прежнему остается важной задачей.

При диагностике вирусных и бактериальных инфекций в ветеринарии все более широкое применение находят такие современные и высокоточные методы, как молекулярная гибридизация и полимеразная цепная реакция (ПЦР). Однако ввиду их высокой стоимости, сложности в постановке и необходимости дорогостоящего оборудования и реактивов метод определения антигенов и антител с помощью иммуноферментного анализа (ИФА) при оптимальном соотношении себестоимость-чувствительность остается действенным инструментом в ветеринарной лабораторной практике. Высокая разрешающая способность этого метода обусловлена, главным образом, природой лиганда, степенью очистки компонентов и чувствительностью приборов, регистрирующих наблюдаемый эффект. Таким образом, очистка и концентрирование вирусов является решающим условием при изготовлении диагностикумов и получении высокоактивных иммунных сывороток, используемых при создании компонентов, необходимых для проведения иммуноферментного анализа.

Для получения антивидовых иммуноглобулинов животных, меченых пероксидазой из( хрена (ПХ), необходимо наличие чистых препаратов иммуноглобулинов в, М и А классов.

Методы выделения иммуноглобулинов из сыворотки человека разработаны детально, но применительно к иммуноглобулинам животных они не всегда эффективны. Использование многих иммунологических методов для решения прикладных задач в области ветеринарии сдерживается отсутствием коммерческих моноспецифических антисывороток. Идеальным условием получения моноспецифических антисывороток представляется иммунизация продуцентов чистыми антигенами.

Ключевым моментом в отработке твердофазного непрямого ИФА является получение . коньюгата, то есть иммуноглобулина меченого пероксидазой. Качество получаемого коньюгата находится в прямой зависимости от серологической активности иммуноглобулина, активности фермента и условий связывания этих компонентов.

Быстрый и точный диагноз инфекционной ринопневмонии лошадей является решающим условием организации необходимых мер борьбы с этим заболеванием.

Перечисленные выше обстоятельства явились основополагающими в создании иммуноферментной тест- системы для определения уровня антител к вирусу РПЛ, что позволит решить проблему массового эпизоотологического обследования поголовья лошадей.

Цели и задачи исследования.

В связи с вышеизложенным, целью настоящей работы являлась разработка тест-системы на основе концентрированных и аффинно-очищенных антигенов вируса РПЛ, штамм СВ/69, при использовании их в качестве компонента набора для постановки серологических реакций и иммуноферментного анализа при определении уровня антител к вирусу РПЛ в сыворотке крови лошадей.

Решались следующие задачи:

1. Разработать метод получения очищенного и концентрированного вируса РПЛ, штамм СВ/69, репродуцированного в культуре клеток ПТ-80 и изучить его биологические свойства.

2. Выделить поверхностные антигены вируса РПЛ, изучить их состав в электрофорезе и активность в иммуноблотинге и получить на их основе иммуносорбент на ВгСЫ сефарозе.

3. Выделить лошади, получить анти-^в лошади антисыворотки на кроликах, выделить анти-^О лошади антитела и синтезировать анти-^в лошади иммунопероксидазный коньюгат.

4. Выделить на полученном сорбенте специфические к антигенам вируса РПЛ антитела и иммобилизовать их в качестве лиганда на ВгСЫ сефарозу.

5. Разработать тест - систему для определения уровня антител к вирусу РПЛ на основе аффинно-очищенных антигенов вируса РПЛ методом иммуноферментного анализа.

6. Провести сравнительную оценку определения уровня анти-РПЛ антител в серологических реакциях (РН, РТГА) и разработанной иммуноферментной тест - системе.

Научная новизна.

1. Разработан метод получения очищенных и концентрированных поверхностных антигенов вируса РПЛ, репродуцированного в культуре клеток ПТ-80, с помощью препаративной аффинной хромотографии на анти-РПЛ ДО ВгСЫ Сефарозе.

2. Выявлено 10 структурных гликопротеинов вируса РПЛ, штамм СВ/69 с молекулярной массой от 24 до 260 кД, которые отщепляются Тритоном X-100.

3. В иммуноблотинге показано, что 10 белков вируса РПЛ, отщепляющиеся < при обработке Тритоном Х-100, индуцируют выработку анти-РПЛ антител в организме животных.

4. Разработана тест-система для определения уровня антител к вирусу РПЛ методом иммуноферментного анализа на основе аффинно очищенных антигенов вируса РПЛ, штамма СВ/69.

Практическая значимость работы.

Результаты проведенных исследований позволили разработать инструкцию по изготовлению и проект нормативно-технической документации на «Тест-систему для определения уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей методом иммуноферментного анализа». Набор предназначается для индикации и количественного определения анти-РПЛ антител в сыворотках крови лошадей.

Внедрение в практику ветеринарии иммуноферментной тест - системы для определения уровня антител к вирусу РПЛ позволит решить проблему массового эпизоотологического обследования поголовья лошадей, на территории РФ так и на территориях других стран, составляющего основу мероприятий по предотвращению, ликвидации и предупреждении распространения инфекционной ринопневмонии лошадей.

Внедрение в практику «Тест-системы для определения уровня антител к вирусу РПЛ в иммуноферментном анализе» позволит проводить диагностику РПЛ в племенных и пользовательских хозяйствах (ипподромов, заводов, частных конеферм и др.) в качестве профилактических мер по предупреждению РПЛ, что будет способствовать оздоровлению хозяйств, обеспечению эпизоотологического благополучия, повышению сохранности молодняка и продуктивности поголовья.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Биотехнология», Коржов, Василий Васильевич

6. Выводы.

6.1. Разработан метод концентрирования и очистки вируса РПЛ, штамм

СВ/69», репродуцированного в культуре клеток ПТ-80, позволяющий получать препараты с титром инфекционности вируса выше, чем в исходной суспензии на 2.0 - 2.5 lg ТЦД5о/мл и очищенных от балластных белков на 97-98%.

6.2. При изучении состава поверхностных антигенов вируса РПЛ, штамм

СВ/69», полученных при обработке вируссодержащей суспензии Тритоном Х-100, в иммуноблотинге выявлено 10 структурных гликопротеинов с ММ от 24 до 260 кД, индуцирующих выработку анти-РПЛ антител в организме зараженных вирусом ринопневмонии лошадей.

6.3. Показана возможность одноэтапной препаративной очистки антигенов вируса РПЛ из вируссодержащих суспензий с помощью аффинной хроматографии на анти-РПЛ IgG Сефарозе 4В.

6.4. На основе очищенных и концентрированных антигенов вируса РПЛ разработаны компоненты набора для определения уровня анти-РПЛ антител в сыворотках лошадей в иммуноферментном анализе.

6.5. При сравнительной оценке различных методов определения уровня анти

РПЛ антител установлено, что в ИФА и РТГА, коэффициент корреляции равен 1=0,86, в ИФА и РН - г=0,94. Преимуществом метода ИФА при определении антител к вирусу РПЛ в сыворотках крови лошадей является возможность инструментального учета результатов.

6.6. Разработана тест-система для определения уровня антител к вирусу РПЛ методом иммуноферментного анализа на основе аффинно-очищенного антигена вируса РПЛ, штамм «СВ/69».

Практические предложения.

На основе проведенной работы представлена нормативная документация:

Временная инструкция по изготовлению и контролю компонентов набора для определения уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей на основе аффинно очищенных антигенов вируса РПЛ, штамм «СВ/69», утвержденная директором ВНИТИБП 10 сентября 2006 г.

Проект технических условий на «Набор для определения уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей в иммуноферментном анализе».

Проект «Инструкции по применению набора для определения уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей в иммуноферментном анализе», утвержденная директором ВНИТИБП 10 сентября 2005 г.

Методические рекомендации по определению уровня антител к вирусу ринопневмонии лошадей в иммуноферментном анализе», рекомендованы на заседании секции «Ветеринарная медицина» 14 февраля 2006 г. для утверждения РАСХН в установленном порядке. 4

БЛАГОДАРНОСТЬ

Выражаю глубокую признательность и благодарность администрации ВНИТИБП за предоставленную возможность провести научные исследования по представленной теме, руководителю работы доктору биологических наук Кузнецовой C.B., заведующему отделом молекулярной биологии доктору биологических наук, профессору Кузнецову Д.П., сотрудникам отдела Ярыгиной Е.И., Сазановой Э.Я. и всему коллективу отдела за помощь в проведении и оформлении работы.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Коржов, Василий Васильевич, 2006 год

1. Авилов B.C., Матюгина Н.И. // Влияние дозы и очистки вируса ИРТ КРС на антителообразование при иммунизации кроликов. // Акт. пробл. вет. вирус., тр. ВИЭВ, 1981, 53, 60-62

2. Авилов B.C., Мникова Л.А., Сологуб В.К., Коромыслов Г.Ф., Дзантиев Б.Б., Сорокина Н.В., Егоров A.M. // Иммуноферментный анализ // Ветеринария, 1981, 8, 33-35

3. Авророва Р.И. // Усовершенствование и применение реакции пассивной гемаглютинации в практике лабороторных исследований при гриппе. // Автореферат дис. канд. мед. наук. М. 1967

4. Амекбеков M.4I Иммуногенные и реактогенные свойства вирусвакцины против ринопневмонии лошадей. //. Авториф. дисс. кандид. вет. наук, Москва, 1982, 25 с.

5. Амирбеков М., Юров К.П., Крюков H.H. // Иммуногенные свойства вирус-вакцины против ринопневмонии лошадей. // Ветеринария, 1984; Т. 8, с. 2830

6. Амирбеков М., Юров К.П. // Иммунодепрессивные свойства вируса ринопневмонии лошадей. // Тр. ВИЭВ Всесоюзный институт экспериментальной ветеринарии, 1983; Т. 57, - с. 110-112

7. Атамась В.А. // Инфекционные и инвазиозные болезни сельскохозяйственных животных. // Одесса 1982, с. 7-11

8. Атамась В.А., Лаврова И.Г. // Изучение гуморальных поствакцинальных антител у крупного рогатого скота, иммунизированного живой и инактивированной вакцинами против инфекционного ринотрахеита. // Инф. и инвазион. Болезни с/х жив. Одесса, 1982, с. 11-15

9. Ахметсадыков H.H. // Комплексная иммунопрофилактика ринопневмонии и сальмонеллезного аборта кобыл живыми вакцинами // Алма-Ата, 1988, 22

10. Басалгина, С.А. // Совершенствование тест-систем для диагностики хламидиозов на основе непрямого иммунофлуоресцентного и иммуноферментного анализа // Дис. канд. мед. наук: 03.00.07 Ин-т экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН Пермь. 2003

11. Баранов O.K. и др. // Изготовление реагентов для иммуноферментного анализа: Метод, рекомендации. // ВАСХНИЛ, Сиб. отд-ние, Ин-т эксперим. ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1987

12. Белозеров С.С., Архипов З.С. // Динамика ТВ- лимфоцитов у больных вирусом гепатитом. // Клин. Мед. 1976, т. 54, №. 1. с. 24-26

13. Бобкова А.Ф., Чирков С.Н. // Применение иммуноферментного анализа для диагностики вирусных заболеваний растений (Обзор). // С/х биология, 1983,5,32-36

14. Будулов Н.Р. // Иммуногенная активность респираторного и фетального штаммов вируса ринопневмонии для жеребят. Актуал. вопр. диагностики и борьбы с болезнями с.-х. животных. // Ставрополь, 1999, С. 47-49

15. Бусол В.А., Галатюк А.Е., Мандыгра Н.С. // Эпизоотическая ситуация в отрасли коневодства Украины. // Новосибирск, 1997, С. 52-53

16. Быкова H.H., Лукина В.А., Бойко A.A. // Сравнительная оценка иммуноглобулинов, меченых пероксидазой (иммуноферментных конъюгатов). // Передовой науч.-производст. Опыт в биологической промышленности, 1985, 9, 8-11

17. Вершняк T.B. // Условно-патогенная микрофлора в птицехозяйствах и диагностика эшерихиоза птиц на основе тест-системы иммуноферментного анализа. // Дис. канд. биол. наук Щелково, 2003 150 с.

18. Галатюк O.E. // Серолопчна д1агностика ринопневмонн коней у РГГА и РНГА. // Лаб. вет. медицина: ф!з. xiM. методи дослщ. - Р1вне, 1998, - С. 54-58

19. Галатюк О. // Нервова форма ринопневмонн коней та диференщйна д1агностика хвороби. // Вет. медицина Украши, 2000; N 2, С. 21-23

20. Грязин В.Н. // Диагностика некоторых вирусных инфекций КРС в Новосибирской области. // Лекция. Новосибирский аграрный университет. Новосибирск. 1992. - с. 29-36

21. Егоров А.М., Осипов А.П., Дзантиев Б Б., Гаврилова Е.М. // Теория и практика иммуноферментного анализа. // М.: Высш. шк., 1991

22. Забегина Е.Ф. // Типирование герпесвирусов лошадей методом рестрикционного анализа ДНК и изыскание вакцинного штамма. // Диссертация, Москва. ВИЭВ, 1998. с. 51-58

23. Зудилина З.Ф. // Изучение биологических свойств парамикровируса и вирусов группы герпес крупного рогатого скота. // Авореф. дисс.канд. биол. наук, М., 1970, 15 с.

24. Зьентара С. // Ринопневмония лошадей (молекулярная биология, диагностика и профилактика). // Ветеринар, 2001; N 6, С. 4-8

25. Кадыкоев Р.Т. // Использование полимеразной цепной реакции (ГТЦР) для выявления ДНК вируса ринопневмонии лошадей. // Дис. канд. биол. наук. Всерос. НИИ вет. вирусологии и микробиологии. Покров, 1999

26. Карахан, Н.М. . // Методы молекулярной гибридизации, иммунофлюоресценции и иммуноферментного анализа в диагностике (herpes simplex (человек) virus). // Дис. канд. биол. наук: 03.00.07. М., 1996

27. Каныпина A.B. // Разработка методов иммуноферментного анализа для выявления антител к вирусу репродуктивно-респираторного синдрома свиней. // Дис. канд. вет. наук Владимир, 2004 123 с

28. Кицак В.Я. // Твердофазный иммуноферментный анализ в вирусологии. Обзор литературы. // МРЖ, 1988, разд.М., I, 20-23

29. Кочиш Т.Ю. // Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе. // Дис. .канд. биол. наук. Шелково, 2004 156 с.

30. Коромыслов Г.Ф. // Иммуноферментный анализ в ветеринарии. // М.: ВИЭВ, 1985

31. Кривошия П.Ю., Галатюк O.E., Кот Л.Б. // Цитопатогенна та аглютинуюча актившсть in'vitro деяких пптив Bipycy ринопневмони. // Вет. медицинаЛн-т експеримл юишч. вет.медйцини УААН, 2000; Вип.78,т.1, С. 190-192

32. Крюков H.H. // В кн. Инфекционные болезни КРС. // М. 1974, С. 83-93

33. Крюков H.H. и Юров К.П. // Авторское свидетельство №1187303. // М. 1985

34. Крюков H.H. // Ринопневмония лошадей. В кн.: Инфекционные и инвазионные болезни лошадей. Составитель Ф.М. Орлов М., // Колос, 1976, с. 90-98.;

35. Крюков H.H., Юров К.П. // Выделение вируса аборта кобыл. // Труды ВИЭВ, 1970, т. 37, с. 141-145;

36. Кузнецов Д.П. // Разработка набора для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом иммуноферментного анализа. // Дис. канд. биол. наук / ВИЭВ М., 1990;

37. Кузнецов Д.П., Самуйленко А.Я., Кузнецова C.B., Бойко A.A., Блехерман Б.Е. // Тест-система иммуноферментного анолиза для диагностики инфекционного ринотрахеита КРС // Ветеринария, 1990, 10, с.50-51

38. Кузнецов П.П. Иванов. B.C. и др // Rabien Vaccine from virus-fix strain adapted to established BHK-21/13 cell lines // XXI Всемирный вет. конгрес. 1979,3;

39. Кумекбаева Ж.Ж., Юров К.П. // Иммунологические реакции у лошадей на введение инактивированного вируса ринопневмонии. // Ветеринария, 1988; Т. 5, с. 24-26

40. Кэрстак Э. // Успехи в разработке иммуноферментных методов: получение реагентов, планирование экспериментальных исследований и интерпретации результатов. // Семинар ВОЗ по проблеме получения вирусных реагентов, М., СССР, 11-24/XII, 1983.

41. Лебедев П.Т. // Заразный катар верхних дыхательных путей. // Коневодство й кон. спорт. 1999; N 4, С 9

42. Люлькова Л.С. // Инфекционная анемия: разработка диагностических тест-систем РДП и ИФА на основе антигена культурального вируса. // Автореф. дис. канд. биол. наук. Всерос. н.-и. и технол. ин-т биол. пром-сти. Щелково, 2001, 26 е., ил

43. Мельниченко Л.П. // Диагностика инфекционного эпидидимита баранов методами флуоресцирующих антител и иммуноферментного анализа. // М, 1991,-23

44. Музычин С.И., Шинко С.И., Ковалев H.A. // Иммунный ответ у телят при аэрозольной вакцинации против парагриппа 3. // В кн. Инфекционные болезни КРС и меры борьбы с ними. - Минск - 1982 - с. 77 — 81

45. Нго Т.Т., Ленхоффа Г. Иммуноферментный анализ. // Пер. с англ М.; Мир, 1988,-444 е., ил

46. Непоклонова И.В. // Применение метода ELISA для обнаружения антигена вируса ИРТ. // Проблемы вет. иммунол., под ред. академика ВАСХНИЛ Урбана В.П., М., Агропромиздат, 1985, 152-153

47. Непоклонова И.В., Васильев A.B. // ИФА для выявления вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и антител к нему. // Бюл. ВИЭВ, 1985, 58,30-35

48. Непоклонова И.В, // Выявление антигена вируса ИРТ и антител к нему методом ИФА. // Автореф. дисс. вет. наук. М., 1985, 19

49. Носков Ф.С. Коникова P.E., Баяр Г. А. // Лиофилизированные эритроцитарные диагностикумы для реакции непрямой гемаглютинации. // Военно-медицинский журнал 1973 - №5 - с. 52 - 58

50. Нужнов С.А. // Реактогенные и иммуногенные свойства вируса ринопневмонии лошадей при гетерологичной иммунизации телят против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. // ВИЭВ. М. 1989, -22 с.

51. Нужнов С.А. // Диагностические исследования на инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота в хозяйстве, неблагополучном по респираторным болезням телят// Бюл. ВИЭВ, 1989; Т. 71 с. 32-33

52. Петкова К., Текерлеков П., Антонов П., Цветков П. // Използване на реакция коаглутинация при контрол на ваксина срещу ринопневмонита по конете. // Ветер. Мед. 1996; T.2,N 4, С. 233-235

53. Пешкус Ю.К., Моркунас А.Б., Диканене И.П. // Применение иммуносорбентов для получения специфических антисывороток к иммуноглобулинам IgGI и IgG2 коров. // Метаболизм и его регуляция биол. активн. веществами, Вильнюсь, 1979, 237-241

54. Покровский В.И., Шабалина C.B. // Веер. Хим. Об-ва им. Д.И. Менделеева, 1989, 34, 1

55. Пурэвцэрэн Б. // Проблемы диагностирования ринопневмонии лошадей. // НИИВ Новосибирск, 1998, С. 82

56. Пурэвцэрэн Б. // Репродукция штамм НН1, ринопневмоний лошадей в клеточных культурах. // Новосибирск, 1999, С. 27-28

57. Сазанова Э. Я. и др. // Иммуноферментный анализ при индикации вируса бешенства и определении уровня антител. //Ветеринария. 1991. 8.

58. Сазанова Э. Я. и др. // Сравнительная оценка иммуногенности вируса бешенства методом иммуноферментного анализа и в реакции нейтрализации по NIH. // Всесоюзный симпозиум «26-28 сент.,», 1989, с. 65

59. Сазанова Э.Я., Кузнецов Д.П., Кузнецова C.B., Байко A.A. // Выделение анти-IgG лошади из сыворотки крови кролика методом аффинной хроматографии. // передовой науч.-проиводст. Опыт в биол. промыш., 1986, 12,1-3

60. Самуйленко А.Я., Кузнецов Д.П., Кузнецова C.B. // Иммуноферментный анализ в ветеринарной медицине. // ВНИиТИБП. 2001, с. 20-23

61. Сансызбаев А.Р. // Влияние некоторых химических соединений на иммуногенность вируса ринопневмонии при создании инактивированнойвакцины. -// Соврем, пробл. профилактики зооноз. болезней и пути их решения. Минск, 1987, - С. 62-63

62. Сансызбаев А.Р. // Методы инактивации вируса ринопневмонии лошадей. //ВИЭВ, 1983; Т. 32, с. 13-15

63. Сергеев В.А., Орлянкин Б.Г. // Структура и биология вирусов животных. // М. Колос, 1983,-336 с.

64. Соковых Л.И., Горбунова A.C., Исаченко В.А. // Реакция пассивной гемаглютинации при вирусных инфекциях. // Вопросы вирусологии 1966 -№ 3 - С. 254 - 258

65. Строкина Г.М., Белкина Н.М., Федорова Е.С. // Гидролизатные среды на основе ГСБМ для выращивания вирусов. // Материалы конференции молодых ученых. М, 1986, с. 203-206

66. Сюрин В.Н. // Конструирование диагностикумов и противовирусных вакцин: современные биотехнологии. // Вестник с/х науки, 1986, 2, 141-148

67. Сюрин В.Н., Самуйленко А. Я. // Вирусные болезни животных. // М; ВНИТИБП, 1998. - 928 с, ил 1998

68. Таранов А.Г. // Диагностические тест системы: Радиоиммун. и иммунофермёнт. методы диагностики. // Новосиб. гос. мед. Акад. Новосибирск: Изд-во Новосиб. ун-та, 2002

69. Тарасишин Л.А. // Мол. Генетика, микробиология и вирусол. // 1986, 5.

70. Татаров Г., Диловски М. // Създаване на авирулентен и имуногенен мутант от вируса на ринопневмонита. // Вет. мед. Науки, 1986; Т. 23. N 7, с. 33-40, ил. 2.табл. 5

71. Филиппов С.Ю. // Разработка иммуноферментного набора для определения уровня антител к вирусу парагриппа 3 крупного рогатого скота. // Щёлково, 2004 135 с.

72. Ходун JI.M и др. // Иммуноферментный анализ для диагностики туберкулеза животных. Приготовление реагентов тест-системы и методика постановки реакции. // Моск. НИИ туберкулеза Омск, 1990, 11 с.

73. Цыбанов С.Ж., Цыбанова Л.Я., Кадыкоев Р.Т., Калабеков М.И. // Идентификация вируса ринопневмонии лошадей с помощью ПЦР. // ВНИИВВиМ. Ветеринария, 2000, N 12, С. 20-24

74. Цыбанова Л.Я., Цыбанов С.Ж., Балышев В.М., Щетникова Л.А., Кадыкоев Р.Т., Калабеков М.И. // Очистка вируса ринопневмонии лошадей. // Всероссийский НИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии; г. Покров1998,-С. 74

75. Цыбанова Л.Я., Кадыкоев Р.Т., Чевелева Т.С., Калабеков М.И. // Изучение динамики инактивации вируса ринопневмонии лошадей. // ВНИИВВиМ; г. Покров. М., 1999, - С. 11-12

76. Чайка H.A. // Иммуноферментный анализ в вирусологии 2 Ч. // Ленингр. НИИЭМ им. Пастера, 1986

77. Чайка. H.A. // Иммуноферментный анализ в вирусологии: Библиогр. указ, отеч. и зарубеж. лит. Ч. 4'. // Ленингр. НИИЭМ им. Пастера, 1986

78. Ченчев И., Мартинов С. // Проучване разпространението на инфекцията с херпесвирус 1 при еднокопитни в България за перирда 1994-1996 година. // Ветер. Мед. 1997; T.3,N 3, С. 121-123;

79. Щетникова JI.A. // Получение чистых антител и иммуноглобулинов классов М и G КРС методом аффинной хроматографии на сефарозе. // Сб. научн.тр. МВА, 1979, 107, 34-35

80. Юров К.П., Лопарев В.И., Ярных Е.В., Забегина Е.Ф., Белкина Н.М. // Вакцина для профилактики гриппа и ринопневмонии лошадей и способ ее применения. // Авторское свидетельство, N 1608893 от 22 июня 1990 г. 8 с.

81. Юров К.П. // Инфекционные болезни лошадей. // Москва, 1988 г., с. 87

82. Юров К.П., Амирбеков М.А. // Поствакцинальный иммунитет при ринопневмонии у жеребых кобыл. // Тр. ВИЭВ Всесоюзный институт экспериментальной ветеринарии, 1984; Т. 61, - с. 72-76

83. Яковлев Ю.С., Трусова Л.И., Воробьева Ж.И., Павлова А.Ф., Бродецкая С.Е., Гангалюк Е.А. // Получение препарата иммуноглобулина неспецифического с помощью полиэтиленгликоля. // Передов, науч.-произв.опыт в биол.промыш., 1985, 10, 5-6.

84. Adair В.М., // Immuno fluorescence in the serological of parainfluenza type 3 and respiratory synciytial virus in calves. // Res. Vet. Sci. 1986. - V. 41 - P. 414 -416

85. Adeyefa C.A. // Serological evidence of equine herpesvirus type 1 (EHV-1) activity in polo horses in Nigeria. // Zentralbl Veterinarmed B. 1992;39(8):628-30

86. Alkahalaf A.N., Halvorson D.A., Saif Y.M. // Comparison of enzyme-linked immunosorbent assays and virus neutralization test for detection of antibodies to avian pneumovirus. //Avian Dis., 2002; Vol.46,N 3, P. 700-703

87. Allen P.G.'// Respiratory Infections by Equine Herpesvirus Types 1 and 4. //Department of Veterinary Science, University of Kentucky, Lexington, KY, USA 2002. Publisher: International Veterinary Information Service (www.ivis.org), Ithaca, New York, USA

88. Alvarado J.F., Dolz G., Herrero M.V., McCluskey В., Salman M. // Comparison of the serum neutralization test and a competitive enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of antibodies to vesicular stomatitis virus

89. New Jersey and vesicular stomatitis virus Indiana. // J.veter.diagnostic Investig., 2002; Vol. 14,N 3, P. 240-242

90. Andrews C.H. // Viruses of Vertebrates // London. Bailliere. Tindall and Cox. -1964.-423 p

91. Arnatadt K.L., Berg D. // Sensitive enayme immunoassay for progesterone in human plasma and soliva. // J.Clin.Chem. and Clin.Biochem., 1981, 19.8, 602-603

92. Arsci Z.I, Wisnewski J. // Poziom przeciweial III dla wirusa parainfluenzy-3 w surowicach bydla w woj olsztynskim, gdanskim i bydgoskim. // Med. Wet. 1972. - v 28-n. 8-p. 456-459

93. Audonett J.C., Winslow J., Allen G.P., Paoletti E. // Equine herpesvirus type I unique short fragment encodes glycoproteins with gomology to herpes simplex virus type I gD, gl and gE. // J.Gen. Virol., 1990, v. 71, p.2969-2978

94. Avrameas S. // Enzyme immunoassay and related techniques: development and limitations. // Curr.Top.Microbiol. and Immunol., 1983, 104, 93-99

95. Avrameas S. Ternynck T. // Peroxidase labeled antibody and Fab conjugates with enchanced intracellular penetration. // Immunochemistry. 1971, 8, 1175-1179

96. Banbura M., Chmielewska A., Tucholska A., Malicki K. // Test PCR w diagnostyce wirusowego zakaznego ronienia klaczy. // Med.weter., 1998; R.54,N 11,-S. 772-774

97. Bartha A., Hajdu G., Aldasy P., Paczolay G. // Occurence of encephalitis cauced by infectious bovine rhinotracheitis virus among cawes in Hungary. // Acta Vet. Acad. Set. Hung.- 1969.-19.-2.-145-151;

98. Bartha A., Fener D. // On Equine virus abortion // Acta. Jen. Acod. Sei. Hund., 1955, N. 5, p. 203-214;

99. Beccaria E. // Rapid detection of antibodies to Infectious Bovine Rhinotracheitis by "macro" and "micro" "ELISA". // Rev. Biolog.Stand., 1982, 52. 141-146

100. Bernadac M. // Note sur l'episode de rhinopneumonie de Cagnes-sur-Mer. // Bull. Soc. Veter. Prat. Fr, 1994; T.78,N 5, P. 271-280

101. Bioveta, n.p., Nitra, CSSR. // Immunoprofylaxia, 3/1983. // Bratislava; Priroda., 1983,-99 c.

102. Bitsch V. // Resistance of infection with IBR virus in Danish cattle heard. // Nord.Vet.Med., 1978, 45, 175-185

103. Blue W.T. abd Plummer G. // Antigenic relatioship among four herpesviruses. // Infect. Immun. 1973, 7, h. 1000

104. Bognar Karoly, Wassan Badr, Hassan Ali, Autal Tibor, Kicsera Laszio. // A szarvasmarha fertpzp rhinotracheitise es as Aujeszky-tele betegseg elleni aktiv immunizatolas // Magy. allatorv. Lapja. 1986. T.41, N.l 1, p. 647-657;

105. Bolton D.C., Chu H.J., Ardans A.A., Kelly B., Zee X.C. // Evaluation of the critical parameters of a sensitive ELISA test using purified infections bovine (IBR) virus antigens. // Vet.Microbiol., 1981, 6, 265-279.

106. Bommell W.R., Kihm U., Lazarowicz M., Steck. F. // Rapid detection of antibodies to infectious bovine rhinotracheitis (IBR) virus by microenzyme linked immuno-sorbent assay (microELISA). // Proc.2. Int.Symp. Vet.Lab.Diagnost., 1980.235-239

107. Browning G.F., Studdert M.J. // Physical mapping of a genome of equine herpesvinis 2 (equine cytomegalovirus ). // Arch. Virology, 1989, v. 104, n.l-2, p. 77-86

108. Bryans J.T., Allen G.P. // Equine viral rhinopneumonitis. // Rev. scient. techn. Off. Intern. Epizoot, 1986; T. 5. N 4, p. 837-847;

109. Budulov N.R., Galnbek T.V., Taktashev S.S. // Sensitivity odf diploid cell cultures from porcine thyroid to equine herpesvirus type 1. // Trudy Vsesouuyznogo Instituía Eksperimentalnoi veterinarii.//!987,64, p. 34-35

110. Burki F., Nowotny N., Hinaidy B., Pallan C. // Die Ätiologie der Lipizzanerseuche in Piber 1983: Equines Herpesvirus 1. // Wien, tierarztl. Mschr, 1984; T. 71. N11,- S. 312-320

111. Busbnell S.E., Edwards S. // The development and standartization of an enzyme-linned immunosorbent assay for the detection of antibodies to bovine herpesvirus 2. //J.ofBiol.Standard., 1988, 16, 45-53

112. Carmichael L.E., Barnes F.D. // Serological comparisons between infectious canine hepatitis virus and human adenovirus types. // Proc. Soc. Exp. Biol. N. Y., 1961.- 107.-214-218

113. Chowdhury S.I., Ludwig H., Bunk H.J. // Molecular biological characterization of equine herpes virus type I (EHV-I) isolates from ruminants hosts. // Virus Research, 1988, v.2, n.ll,p. 127-139.

114. Collard A. // Isolation and purification of bovine immunoglobulins: Use of sephacryl S-300 filtration avods protein pricipitation steps. // Ann.Rech.Veter., 1984,15,4,497-501

115. Collins A. // Equine herpesvirus. // Veterinary Record, 1989, v.124, n.18, p.496

116. Corbella E. // Vaccini e vaccinazioni nel cavallo. // ODV Obiettivi Doc. veter, 1985; T. 5, -p. 29-33

117. Coulson B.S., Holmes A.H. // Restriction endonuclease analysis oi herpes simpiex virus from recrydescent lesions, from latent infection and during passage in the skin and nervous system of mice. // J.Virol. Methods, 1984, 8, 165

118. Crabb B.S., MacPherson CM., Studdert M.J., Drummer H.E. // A type-specific serological test to distinquish anthybodies to equine herpesvirus 4 and 1. // Arch. Virology, 1993,140, p.245-258

119. Dannacher G., Perrin V., Perrin B. // Utilisation d'une techniques d'hemagglutination passive pour la detection des antico corps countre le virus de la rhinotracheite bovine infectieuse. // Rec.Med.Vet., 1979. 155, 7-8, 633-637.

120. Dawson L.J. // Equine viral rhinopneumonitis. Equine Pract, 1984; T. 6. N 10, -p. 12-16

121. Doll E.R., Bryans I. T. // Development of complement-fixing and virus neutralizing antibodies in viral rhinopneumonitis of horses // Am. J. Veter. Res. 1962, T. 23, N. 95, p. 843-846

122. Doll E.R., Knoppenbereu R.E., Bryans I.T. // An outbreak of abortion caused by the Equine Arteritis virus. // Cornell Vet., 1957., T. 47, N. 1, p. 69-75

123. Doll E.R. // Infection immunity in equine virus abortion. // Cornell Veter. 1955 T. 45, N. 3, p. 387-410

124. Doll E.R. et. al. // Infection periods for abortion in Equine viral rhinopneumonitis. // Am. J. Veter. Med. Assn., 1962, T. 111, N. 3, p. 351-354

125. Duncan J, MCGeoch,. Dolan A, and Ralph A. // Toward a Comprehensive Phytogeny for Mammalian and Avian // Journal of Virology, Nov. 2000, p. 10401— 10406

126. Durham P.J.K., Sillars H.M. // Evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for serodiagnosis of infectious bovine rhinotracheitis infeciton, withHresults of a preliminary survey. // New.Zeland Vet.J., 1986, 34, 3, 27-34

127. Dutta S. K., Alurup A.,'Bumgardner M. K. // Lymphocyte responses to virus and mutogen in ponies during experimental infection with Equine Herpesvirus 1. // Am. J. Vet. Res. 1980, T. 41, N. 12 p. 2066-2068

128. Ebner D., Heider G. // Forischritle in der serodiagnostik von virusinfektionea. // * Mh. Vet.-Med.-1986. -V. 41 -P. 11- 14

129. Edington N. // Latency of equine herpes virus 4. // Vet. Records, 1988 6, v. 123, n. 25, p. 653-654

130. Elbers rnut et.al. // Equine viral rhinopneumonitis // Vet. Med. Gmd H № ^ 00103241:51.2000

131. Engvall E., Perlmann P.// Specificity of cieavage in replicative-form DNA of bovine herpesvirus 1.//Immunochemistry, 1971,8,8,871-874

132. Erol N. // Vergleich verschiedener Enzyme-linked Immunosorbent Assays (ELISA) zum Nachweis von Antigen des Klassischen Schweinepestvirus. Inaug. // -Diss. Hannover, 2000, VI, 131 c., Ta6ji

133. Fey H., Peister H., Messerly I., Grolimund F. // Methods of Isolation, Purification and Quantitation of Bovine Immunoglobulins. // Zbl.Vet.Med., 1976, 3, 23, 269-300

134. Fields S., Winter G., Brownlee G.G. // European isolates of bovine herpesvirus 1: a comparison of restriction endonuclease sites, polypeptides, and reactivity with monoclonal antibodies. //Nature, 1981, vol. 290, p. 213-217

135. Fitzpatrick D.R., Studdert M.J. // Immunologic relationships between equine rhinopneumonitis virus. // Am. J. veter. Res, 1984; T. 45. N 10, p. 1947-1952

136. Florent G., De Marnette. // Enzyme linned immunosorbent assay used to monitor serum antibodies to bovine respiratory disease viruses. // Vet.Microbiol., 1986,11,4,309-317

137. Forletta R. // Le piu importanti virosi respiratore del cavallo. // Ann. Fac. Med. Veter. Pisa, 1988; T. 40:1987, p. 143-149

138. Frank C. // Equine herpesvirus outbreaks. // Veterinary Record, 1989, v. 124, n.17, p.471

139. Frilsen A.D. // Process for preparing purified immune globulin (IgG). // Path. 1201063, Canada, MKI A61 K/39/395.^Gobbagy A. // Fluoresczeinsotiocian attat jelzett IgG, tilzett IgG tisztitasa gelfiltratassal. // Kiserl. Orvostub., 1976, 28, 1, 79* 86

140. Ghram A., Chabchoub A., Boussetta M., Baazaoui S., Ibn Amor H., Landolsi F. // Enquete seroepidemiologique de la rhinopneumonie des equides en Tunisie. // Rev. Elevage Med. veter. Pays trap., 1997; An.50, N 4. P. 273-276

141. Gilkerson J., Jorm-L.R., Love-D.N., Lawrence-G.L., Whalley-J.M. // Epidemiologic Investigation of Equid Herpesvirus-4 (EHV-4) Excretion Assessed by Nasal Swabs Taken from Thoroughbred Foals. // Veterinary Microbiology, 1994, V. 39, n. 3-4, p. 275-283.

142. Glavits R., Molnar T., Palfi V. // A lovak rhinopneumonitis-virus okazta vetelesevel kapcsolatos megfigyelesek. // Magyar allatorv. Lapja, 1984; T. 39. N 6, -p. 361-365

143. Griffiss J.M., Bertrem M.A., Broud D.D. // separation and purification of immunoglobulins M, A and Q from small volumes of human sera by a continuous, inline chromatographic process.//J.Chromatogr., 1978, 156, 1, 121-130.

144. Heider O., Hlinan A., Prusas Christine, Brichel Annelle. // Entwicklung eines Zweiseitenbindungs ELISA zum Nachweis von Antikörpern gegen das virus der Aviaren Encephalomyelitis. // Monatsh.Veter., 1988, 43, 13, 475-477

145. Herring A.I., Nettieton P.F., Burrells C. // A microenzymelinked immunosorbent assay for the detection of antibodies to infectious bovine rhinotracheitis virus. // Veterinary Ree., 1980, 107, 7, 155-156.,

146. Herrmann R., Wiedemann C. // Ein neuer Kombinationsimpfstoff gegen equine Influenza und Rhinopneumonitis Cavallon IR Prakt. // Tierarzt, 1995; Jg.76,N 1, -S. 18-26

147. Higgins W.P., Gillespie J.H., Robson D.S. I I Studies of maternally-acquired antibodies in the foal to equine influenza A1 and A2, and equine rhinopneumonitis. // Equine veter. Sc, 1987; T. 7. N 4, p. 207-210

148. Hmidouch A., Harrak M., Chakri A., Ouragh L., Lotfi C., Bakkali-Kassimi L. // Etude epidemiologique de la rhinopneumonie chez les equides au Maroc. //. Rev.Elevage Med.veter.Pays trop., 1997; T.50, N 3, P. 191-196

149. Holloway S.A. et al., // Equine herpesvirus. // Arch. Virol. 1999 v. 144 №2 p 287-307

150. Ishirava R. // Enzyme immunoassay of insulin by fluometry of insulin-glikoemylase complex. // J.Biochem., 1973, 75, 1319-1321

151. Jana A.M., Pandya G., Rao K.M. // Evidence of complement fixing anthybodies against equine rhynopneumonitis virus in army horses and mules. // Current Sciences, Banglacore, India, 1980, v.49, n.17, p.675-677

152. Johnson M.A., Tyack S.G. // Molecular Evolution of Infectious Laryngotracheals Virus (Iltv, Gallid-Herpesviras-1) Ancient Example of the Alphaherpesviridae .// Vet.Microbiology, 1995, V.46, N. 1 -3, p. 221 -231.

153. Jolken R.H., Leister F.I. // Staphylococcal protein A-enzyme immunoglobulin conjugates: verstile tools for ensyme immunoassaya. // J.Immunol.Health, 1981, 33,2,209-218

154. Karbe A. // Vergleichende Untersuchungen zur Diagnose der Paratuberkulose des Rindes mittels KBR, ELISA und AGIDT. // Giessen, 1988, 4, 191 c., hji -133

155. Karlin S., Mocarski E.S., Schachtel G. // A Molecular Evolution of Herpesviruses -Genomic and Protein-Sequence Comparisons. // J. Virology, 1994, V.68,N.3, p. 1886-1902

156. Kemeny D.M. // ELISA and other solid phase immunoassays: theoretical and practical aspects. // Chichester etc; Wiley., 1988, 8, 367 c.

157. Kirisawa R., Ui S., Takahashi A., Kawakami Y., Iwai H. // Comparison of the Genomes of Attenuated Equine Herpesvirus-1. Strains with Their Parent Virulent-Strain. // Z. Virology, 1994, V. 200, N.2, p. 651-660

158. Kotiw M., Wilks C.R., May J.T. // The Effect of Serial in-Vivo Passage on the Expression of Virulence and DN A Stability of an Infectious Laryngotracheitis Virus-Strain of Low Virulence. // Vet. Microbiology, 1995, V.45, N.I, p. 71-80

159. Kukreja A., Walker C., Fitzmaurice T., Awan A., Love D.N., Whalley J.M., Field H.J. // Protective effects of equine herpesvirus-1 (EHV-1) glycoprotein B in a murine model of EHV-1-induced abortion. // Veter.Microbiol., 1998; Vol.62,N 4, -P. 303-311

160. Kumekbaeva Zn.Zn., Budulov N.R. // Sensitivity of various cell culture to equine rhinopneumonitis herpesvirus. // Bulleten Vsesouyznogo Instituta Eksperimentalnoi Veterinarii. 1987,61, p. 54-56

161. Kundsen K.A. // Host defense mechanisms against infectious bovine rhinotracheitis virus. II. Inhibition of plaque formation by immune peripheral blood lymphocytes. //Proc Natl.Acad.Sci., USA, 1981, 78, 6071

162. Kurstak E. // Application of the immunoperoxidase technique in virology and cancer virology light and electron microscopy. // Virol.immunol., N.J., Acad.Press, 1974,3-30

163. Livingstone D.M. // Defense mechanisms against bovine herpesvirus: Relationship of virus-host cell events to susceptibility to antibody-complement lysis. // Methods enzymol., 1974, 34, 723

164. Matsumura T., Smith R.H., Callaghan DJ. // DNA sequence and transcriptional analysis of the region of the equine herpesvirus type I Kentucky A strain genome encoding glycoprotein Q. // J. Virology, 1993, v. 193, p. 910-923

165. MakKowiak M.et.al. // Bull. Soc. // Veter. Prakt. Fr. 1990, 74 :4

166. Mayr A.//Schutzimpfung der Pfirde gegen virus abortierarztl // Umsch. 1970, T. 25 N. 3

167. Mayr A. // Vaccination of horses against equine herpes virus. // Int. Conf. Equine Inf. Diseases. Paris, 1969, p 41-45

168. Mayr A., Thein P. // Aktuelle Viruskrankheiten des Pferdes. // Tierarztl. Praxis, 1984; T. 12. N4,- S. 481-488

169. McCollum W. H., Doll E. R., Ruans I. T. // Agglutination of horse erythrocytes by tissue extracts from hamstersinfected with equine abortion virus. // Am. J. Veter. Res. 1956. N. 17, p. 267-270

170. Messerschmid S. // Untersuchungen zur Eignung verschiedener ELISA-Systeme fur die Diagnose einiger phytopathogener Viren. // Hohenheim 1995, -VI, 157 c.

171. Mihajlovic B., Rogan D., Krstic L. // Vrusni pobacaj kobila. 1. Izolovanje i identifikacija virusa. // Veter. Glasnik, 1987; T. 41. N 10, s. 741-744

172. Miranda Q.R., Bailey G.D., Fräser A.S., Tenoso H.J. // Solid phase ensyme immunoassay for herpes simplex virus. // J.Infect.Diseases, 1977, 36, 3, 304-310.

173. Moraillon A., Moraillon R. // Results of an epidemiological investigation on viral arteritis in France and some other European and African countries. // Ann Rech Vet. 1978;9(l):43-54

174. Moraillon A., Pastoret P.P. // A propos de la maladie des lipizzans: actualite de , la rhinopneumonie equine. // Ann. Med. veter, 1984; T. 128. N 8, p. 625-639

175. Morris C.M., Field H.J. // Application of cloned fragments of equine herpesvirus type-I for detection of virus-specific DNA in equine tissue. // Equine Vetetrinary J. 1988. v. 20, n.5, p. 341-346

176. Nagesha H.S., Crabb B.S., Studdert M.J. // Analysis nucleotide sequence of five genes at the left end of the unique short region of the equine herpesvirus 4 genome. //Virology, 1993,191, p. 143-154

177. Nakane PK, Pierce G.B. // Enzyme-labeled antibodies; preparation and localization of antigens. // J Histochem Cytochem 1966; 14; 929 -931

178. Nakane P.K., Kawaoi A. // Peroxidase-labelled antibody a new method of conjugation.//J.Histochem,Cytochem., 1974, 22, 12, 1084-1091

179. Nosetto E.O., Galosi C.M., Oliva G.A. // Obtención de antigeno para el diagnostico de rinoneumonitis equina (HVE-1) por la prueba de doble inmunodifiision en agar (DIDA). // Rev. Med. Veter, 1985; T. 66. N 5, p. 298301

180. Paweska J.T., Gerdes T., Van Heerden J. // Serological relationship between a donkey alphaherpesvirus (isolate M7/91) and equid herpesvirus type 1 and 4. // J S Afr Vet Assoc. 1994;65(2):64-6.

181. Payment P., Assat R., Trudel N., Marois P., // Enzyme-linked immunosorbent assay for serology of infectious bovine rhinotracheitis virus infectious. // J.Clin.Microbiol., 1979, 10, 5, 633-636.

182. Pertoft H., Johnsson A., Warmegard B., Seljelid R. // Separation of human monocytes on density gradients of Percoll. // J Immunol Methods. 1980;33(3):221-229

183. Pierson R.E., Vair C.A. // The economic loss associated with infectious bovine rhinotracheitis in dairy heard. // J. Amer. Vet. Med. Assoc. 1965 t. 147, p 350-352

184. Pitre J. 11 Contribution du laboratoire a la connaissance de T'etiologie des avortements et de la mortinatalite chez les juments. // Prat, veter. equine, 1984; T. 16. N4,-p. 163-182

185. Purchio A.F., Larson R., Collett M.S. // Characterization of bovine viral diarrhea virus proteins. // J Virol. 1984;50(2):666-669

186. Purdy C.W., Ford S.J., Porter R.C. // Equine rhinopneumonitis vaccine: Immunogenicity and safety in adult horses, including pregnant mares. // Am J Vet Resl978;39:377-383.

187. Purdy C.W., Porter R.C., Ford S.J. // Equine rhinopneumonitis vaccine: Immunogenicity and safety in foals. // Am J Vet Res 1978;39:745-752

188. Rosenberg G.L., Farber G.L., Notkins A.L. // In vitro stimulation of sensitized lymphocytes by Herpes simplex virus and vaccine virus. // Proc. Nat. Acad. Sei. 1972. N. 69, p 756

189. Rosenberg G.L., Notkins A.L. // Induction of cellular immunity to Herpes simplex virus: Relationship to the humoral immune response. // J. Immunol. 1974, n. 112, p. 1019

190. Rosenberg G.L., Wohlenberg C., Nahmias A.I., Notkins A.L. // Differentiation of type 1 and type 2. Herpes simplex virus by in vitro stimulation of immune lymphocytes. // J. Immunol. 1972. N. 109, p. 413

191. Rydbeek R., Orvell C., Love A., Norrby. // Characterization of four parainflluenza virus type 3 proteins by use of monoclonal antibodies. // J. Gen. Virol. 1986. - V. 76 - P. 1531 - 1542

192. Sabine M., Robertson G.R., Whaley J.M. // Differentiation of subtypes of Equine Herpesvirus type 1 by restriction endonuclease analysis. // Aust. Vet. J., 1981, V.57,p. 148-152.

193. Schwarts Warren E. // Process-scale isolation and purification of immunoglobulin. // LC and GC, 1986, 4, 5, 442-444, 446, 448.

194. Sharma A. et al. // VII Inter. Cjnf, on Defin. Immunobiol. Immunoenz. Studies and Rel. Techn., Niagara Falls N. Y., 1982, 12. 27

195. Shimizu M., Saton K., Nisliioka N. // Monoclonal antliibodies with neutralizing activity to equine herpesvirus I. // Arch. Virology, 1989, v. 104, n. 1-2, p. 169-174

196. Shimizi T. et. al. // Experimental infection of colts with Equine Rhinopneumonitis. //Nat. Inst. Anim. Heth. Quart. 1961. N. 1, h 119-125

197. Sinclair R., Cook R.F., Mumford J.A. // The characterization of neutralizing and non-neutralizing monoclonal anthibodies against equid herpesvirus type I. // J.Gen. Virology, 1989, v.70, n.2, p. 455-459

198. Solsona M., Porrin B., Porrin M., Noussa A. // Recherche des anticorps Contre le virus de la rhinotracheite bovine infectieuse par la methode ELISA. // Bui.Acad.Ve.France, 1980, 53, 215-255.

199. Soula A., Laurent N., Tixier G.et Moreen Y. // ELISA IBR expression d'un titre ELISA 50%. //Develop.Biol.Stand., 1982, 52, 147-157.

200. Spieck M. // Immunodiffusions test zum Nachweis von Antikörpern der infektiösen bovine Rhinotracheitis in Vergleich mit Neutralisations und Ensum test. // Tierarstl, Umschan, 1986, 41, 958-961

201. Spear P. A., Roizman B. // Proteus specified by herpes simplex virus. V. Purification and strucnural proteus of the herpesvirion. // J. Vir. 1972. N. 9, p. 143-159

202. Stokes A., Allen G.P., Pullen L. A, Murrey P.K. // A hamster model of equine herpesviras type I infection: passsive protection by monoclonal anthibodies totheEHV-I glycoproteinsB, 14 and 17/18. // J.Gen. Virology, 1989, v.70, n.5, p. 1173-1183

203. Studdert M.J., Simpson T., Roizman B. // Differentiation of Respiratory and Abortigenic isolates of Equine Herpes 1 by restriction endonuclease analysis. //Science, 1981,V.214, p. 562

204. Studdert M.J., Fitzpatrick D.R., Horner G.W. // Molecular epidemiology and pathogenesis of some equine herpesvirus type 1 (equine abortion virus) and type 4 (equine rhinopneumonitis virus) isolates. // Austral, veter. J, 1984; T. 61. N 11, p. 345-348

205. Telford E.A.R., Watson M.S., Perry J., Cullinane A.A., Davison A.J. // The DNA sequence of equine herpesviras-4. // J.Gen. Virology, 1998, v.79, p. 11971203

206. Telford E.A.R., Watson M.S., McBride K., Davison A.J. // The DNA sequence of Equine Herpesvirus I. // Virology, 1992, 189, p. 304-316

207. Towbin H., Staehelin T., Gordon Y. // Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: Procedure and some applications. // Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 1979, 76, 4350-4354

208. Thein P., Ludwig H., Meyer H. // Beitrag zur molekularen Epizootologie equiner Herpesviren. // Tierarztl. Umsch, 1987; T. 42. N 1, S. 23-27

209. Turtinen L.W., Allen G.P. // Identification of envelope surfase glicoproteins of Equine Herpesvirus type 1. // J. of Gener. Virol. 1982 T. 63, N. 2, p. 481-486

210. Urov K.P., Zabegina E.K. // Restriction analysis for studies of the molecular epizootology of equine herpes virus I. // XXIV World Vet. Congr. Rio de Janeiro, Brazil, 1991,abstr. 21.1.7. p. 182

211. Voller A. // In: A revien of recent developments with abstracts microplate applications.//London, 1980, 2, 126

212. Wilson M.B., Nakome P.K., Knapp W.P. // Immunofluorescence and related staining techniques. // Amsterdam, Elsevier/North Holland, 1978, 215-224

213. Wilks C.R. and Coggins L. // Immunity to equine herpesvirus type 1 ( rhinopneumonitis): in vitro lymphocyte response. // Amer. J. Vet. Res. 1976, T. 37, N. 5, p 487-492

214. Yanai T., Sakai,T., Fukushi H., Hirai K., Narita M., Sakai H. and Masegi T. // Neuro-pathological study of Gazelle Herpesvirus 1 (Equine Herpesvirus 9) infection in Thomson Gazelles (Gazella thomsoni). // J. Comp. Pathol. 119: 158168, 1998

215. Yesildere T., Gurel A., Arun S.S. // Turkiye'de Izmit yoresinde ozel haralardaki kisraklarda rhinopneumonitis equi'nin patolojisi uzerine calismalar. // Istanbul Univ.Veter.Fak.Derg., 1994; Cilt20,sayi 1,- S. 151-160

216. Zaghawa A.A. // Direkte und indirekte Immunperoxidase-Techniken zum Nachweis von Antikörpern gegen Hundestaupe-, Rinderpest- und Seehundstaupevirus. // Hannover, 1989, 111 c

217. Zemp K., Steck F. // Comparison of serum neutralization and the ELISA-technique in the detection of antibodies to IBRIMP-virus in cattle. // Experientia, 1981, 37, 1229