Постнатальный морфогенез челюстной мускулатуры при пониженной функциональной нагрузке: Экспериментальное исследование тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.02, кандидат биологических наук Курносова, Наталья Анатольевна

• Курносова, Наталья Анатольевна
• кандидат биологических наук
• 2002

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Курносова, Наталья Анатольевна

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Морфофункциональные особенности мускулатуры челюстного аппарата млекопитающих.

1.2. Особенности гистоструктуры, гистофизиологии скелетных мышечных волокон и проблема их классификации

1.3. Возрастные изменения гистологической структуры скелетных мышц.

1.4. Влияние различных типов экспериментально моделируемой гиподинамии на морфогенез скелетной мускулатуры.

1.5. Морфометрические и гистологические изменения скелетной мускулатуры при пониженной функциональной нагрузке.

1.6. Механизмы адаптации скелетной мышечной ткани к ограничению функциональной нагрузки.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Особенности морфогенеза подбородочно-подъязычной мышцы в норме и при пониженной функциональной нагрузке

3.1.1. В озрастная динамика удельного содержания мышечных волокон различных типов.

3.1.2. Возрастная динамика относительной толщины мышечных волокон.

3.1.3. Влияние ограничения функциональной нагрузки на относительную суммарную площадь мышечных волокон.

3.2. Особенности морфогенеза поверхностной жевательной мышцы в норме и при пониженной функциональной нагрузке.

3.2.1. Возрастная динамика относительного содержания мышечных волокон различных типов.

3.2.2. Возрастная динамика относительных диаметров мышечных волокон различных типов.

3.2.3. Влияние ограничения функциональной нагрузки на относительную суммарную площадь мышечных волокон.

3.3. Особенности морфогенеза двубрюшной мышцы (m.digastricus) в норме и при пониженной функциональной нагрузке.

3.3.1. Возрастная динамика относительного содержания мышечных волокон различных типов.

3.3.2. Возрастная динамика относительных диаметров мышечных волокон различных типов.

3.3.3. Влияние ограниченной функциональной нагрузки на относительную суммарную площадь мышечных волокон.

3.4. Возрастной и функциональный аспекты морфогенеза челюстной мускулатуры.

4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННЫХ

ИССЛЕДОВАНИЙ.

4.1. Особенности морфогенеза поверхностной жевательной, двубрюшной и подбородочно-подъязычной мышц.

4.2. Возрастной и функциональный аспекты удельного содержания мышечных волокон различных типов.

4.3. Влияние пониженной функциональной нагрузки на величину относительных диаметров мышечных волокон.

4.4. Изменение относительной суммарной площади мышечных волокон в условиях пониженной функциональной нагрузки.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Постнатальный морфогенез челюстной мускулатуры при пониженной функциональной нагрузке: Экспериментальное исследование»

Проблема адаптации опорно-двигательного аппарата организма к разнообразию факторов внешней среды, регуляции и управления двигательной активностью уже в течение двух десятилетий привлекает внимание исследователей, разрабатывающих проблемы как фундаментальной науки (Крамских В.Н., Самойлов Н.Г., 1987; Kawata Т. et al., 1988; Mul-roy S. et al., 1999; Nakatani T. et al., 1999; Zendzian-Piotrowska M. et al., 2000; Diaz-Herrera P. et al., 2001), так и спортивной (Афанасьев Ю.И. и др., 1986; Кузнецов С.Л., Шенкман Б.С., 1987; Trappe S.W. et al., 1995; Koni-shi M., Tokuhara N., Iwamoto S., 2001; Thompson L.V., 2002), космической (Ильина-Какуева Е.И., Португалов B.B., 1981; Ганин Ю.А., 1982; Ильина-Какуева Е.И., 1984; Desplanches D. et al. 1991; Tischler М.Е., Slentz M., 1995; Fitts R.H. et al., 2001) и клинической медицины (Бабакова JI.JI., Демор-жи М.С., 1989; Inagi К. et al., 1999; Vila L., 2001; Fujita Т. et al., 2002; Py G. et al., 2002). Характер функциональной активности скелетной мускулатуры во многом определяет состояние этой ткани (Давиденко Д.Н. и др., 1987; Калугина Т.Е., Сирота И.В., 1988; Kasper С.Е., 1999; Liu С. et al., 2000; Umnova M.M. et al., 2000; Diaz-Herrera P. et al., 2001).

Адаптационные перестройки скелетной мускулатуры под влиянием увеличения и ограничения двигательных нагрузок изучались на всех уровнях ее организации (Калугина Г.Е., Сирота И.В., 1988; Гогина Т.И., 1991; Ohira Y. et al., 1994; Liu С. et al., 2000; Diaz-Herrera P. et al., 2001; Isfort R.J. et al., 2002). Однако в центре внимания большинства авторов находились процессы адаптации мускулатуры локомоторного аппарата, а проблемам гиподинамии челюстной мускулатуры соответствующее внимание не уделялось (Соловьев В.А., 1982; Saito Т. et al., 2002). Во многом это предопределялось методическими трудностями моделирования гипер- и гиподинамии челюстного аппарата, так как традиционные подходы к скелетной мускулатуре (подвешивание, помещение животного в тесную клетку и т.п.) здесь оказывались непригодными.

Отмечаемая тенденция снижения функциональной нагрузки на челюстную мускулатуру современного человека обусловлена, прежде всего, преимущественным потреблением мелкоизмельченных, денатурированных, рафинированных и искусственных продуктов питания, резко уменьшающих общую функциональную нагруженность мышц челюстного аппарата. Следствием этого является изменение обменных процессов органов ротовой полости, их кровоснабжения и иннервации (Maeda N. et al., 1988а, b; Miyata H. et al., 1993; Saito T. et al., 2002), а также морфогенеза тканевой организации челюстных мышц, формы и структуры черепа в целом (Miyata Н. et al., 1993; Kuboyama N., Moriya Y., 1995; Katsarov C., 2001).

Механизмы адаптации мускулатуры челюстного аппарата в условиях пониженной функциональной нагрузки не изучены. Это предопределило выбор темы, постановку цели и задач нашего диссертационного исследования.

Цель и задачи исследования. Целью настоящей работы является изучение постнатального морфогенеза мускулатуры челюстного аппарата при пониженной функциональной нагрузке у лабораторных белых крыс.

Перед нами были поставлены следующие задачи:

1. Провести гистологические исследования челюстных мышц различных функциональных типов: поверхностной жевательной (m.masseter superficialis), подбородочно-подъязычной (m.geniohyoideus) и двубрюшной (m.digastricus) мышц.

2. Проследить возрастные изменения гистологической структуры основных мышц челюстного аппартата в период постнатального онтогенеза.

3. Изучить морфогенез поверхностной жевательной, подбородочно-подъязычной и двубрюшной мышц при пониженной функциональной нагрузке.

4. Провести морфофункциональный анализ данных о структурных преобразованиях мускулатуры челюстного аппарата в связи с его функциональными особенностями как в норме, так и в условиях пониженной функциональной активности.

Научная новизна. Получена система данных о гистологической структуре поверхностной жевательной (m.masseter superficialis), подборо-дочно-подъязычной (m.geniohyoideus) и двубрюшной (m.digastricus) мышц. Впервые выявлен ряд особенностей морфогенеза челюстных мышц в различные периоды постнатального онтогенеза: динамика возрастных изменений мышечных волокон различных гистологических типов и их морфомет-рических характеристик.

Установлены особенности морфогенеза челюстных мышц в связи с их функциональной спецификой.

Впервые в экспериментальных условиях, максимально приближенных к естественным, показано существенное влияние механических свойств пищи на гистологическую структуру мышц челюстного аппарата, а также на морфометрические характеристики мышечных волокон различных типов.

Углублены имеющиеся представления об особенностях адаптации скелетной мышечной ткани к изменяющимся условиям ее функционирования.

Научно-практическая значимость работы. Результаты выполненного исследования дополняют и углубляют существующие представления о гистологической организации скелетной поперечно-полосатой мышечной ткани, а также преобразовании ее фенотипических особенностей в процессе развития и жизнедеятельности организма. Установленная взаимосвязь течения процессов дифференцировки челюстных мышц с интенсивностью функционирования челюстного аппарата расширяет существующие в морфологической науке представления о морфофункциональных корреляциях в организме на тканевом, органном и системном уровнях.

Данные о характере возрастных изменений мышц челюстного аппарата в норме и при пониженной функциональной нагрузке могут быть использованы в прикладных разработках способов управления морфогенезом в различных условиях среды обитания, в том числе, в условиях космоса и ситуациях с длительно сохраняющимися гиподинамическими условиями.

Полученные данные о возрастных изменениях гистологической структуры челюстных мышц, как в норме, так и при пониженной функциональной нагрузке, могут найти применение в решении ряда прикладных проблем геронтологии и гериатрии.

Апробация работы. Материалы диссертации докладывались на V Международном конгрессе по морфологии позвоночных в Бристоле (Великобритания, 1997), а также на ежегодных научно-практических конференциях Ульяновского государственного университета (Ульяновск 1995, 1996, 1997, 1998, 1999, 2001).

Реализация результатов исследования. Основные положения диссертации изложены в 9 научных работах, опубликованных в статьях и тезисах. Результаты диссертационного исследования используются в учебном процессе при изучении дисциплин "Биология с экологией" и "Гистология, эмбриология, цитология" (темы: "Мышечные ткани", "Регенерация органов и тканей как процесс развития") со студентами медицинского факультета Ульяновского государственного университета, а также в научно-исследовательской работе отдела научных исследований Института медицины и экологии Ульяновского государственного университета. Полученные данные используются в учебных и научных целях на кафедрах анатомии, гистологии и физиологии Санкт-Петербургской академии ветеринарной медицины, Омского, Воронежского, Оренбургского агроуниверсите-тов, Ивановской, Ставропольской сельскохозяйственных академий.

Положения, выносимые на защиту.

1. Постнатальный морфогенез мышц челюстного аппарата характеризуется: изменением удельного содержания мышечных волокон различных типов; дифференцировкой промежуточных волокон в более узко специализированные красные и белые волокна; относительным утолщением мышечных волокон всех гистологических типов.

2. Снижение функциональной нагрузки на мускулатуру челюстного аппарата обусловливает замедление темпов дифференцировки промежуточных волокон в волокна красного и белого типов, снижение средней скорости прироста относительных диаметров мышечных волокон всех гистологических типов, а также уменьшение относительной суммарной площади белых волокон и повышение таковой волокон промежуточного типа.

3. Мышцы различных функциональных типов по разному реагируют на снижение функциональной нагрузки. Среди мышечных волокон наиболее подверженными влиянию гиподинамии во всех исследуемых мышцах челюстного аппарата крыс являются мышечные волокна белого типа.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 9 научных работ.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из общей характеристики работы, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов собственных исследований, их обсуждения, выводов, практических рекомендаций и списка используемой литературы. Работа изложена на 151 листе машинописного текста, иллюстрирована 32 рисунками и 16 таблицами. Список используемой литературы включает 274 работы, из которых 101 работа отечественных авторов.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Патология, онкология и морфология животных», Курносова, Наталья Анатольевна

ВЫВОДЫ:

1. Поверхностная жевательная мышца (m.masseter superficialis) челюстного аппарата крыс характеризуется на протяжении всего исследуемого периода (с 15-го по 120-й день) белым смешанным (IRW) типом гистологической структуры с преобладанием быстрых промежуточных (I) волокон как по удельному содержанию, так и по относительной суммарной площади, и может быть отнесена к группе быстро сокращающихся и устойчивых к утомлению мышц.

2. Двубрюшная мышца крыс (m.digastricus) характеризуется красной смешанной гистологической структурой (RIW) с преобладанием по величине удельного содержания красных (R) волокон, по величине относительной суммарной площади - промежуточных (I) волокон и может быть отнесена к группе медленно сокращающихся и устойчивых к утомлению мышц.

3. Наиболее высокой, среди исследованных мышц челюстного аппарата крыс, степенью дифференцировки гистологической структуры (IRW) выделяется подбородочно-подъязычная мышца (m.geniohyoideus), характеризующаяся, с одной стороны, большим содержанием быстрых белых (W) и медленных красных (R) волокон, а с другой - наиболее низким удельным количеством промежуточных (I) волокон. С учетом суммарной площади сечения мышечных волокон преобладающими являются волокна белого (W) типа.

4. Постнатальный морфогенез поверхностной жевательной, двубрюшной и подбородочно-подъязычной мышц характеризуется дифференциров-кой специализированых красных и белых мышечных волокон за счет волокон универсального промежуточного типа.

5. В постнатальном морфогенезе мышц челюстного аппарата можно выделить два этапа: ранний постнатальный морфогенез (с 15-го по 45-й

119 день), отличающийся высокой интенсивностью увеличения удельного содержания красных и белых волокон, а также утолщением волокон всех трех типов; поздний постнатальный морфогенез (с 45-го по 120-й день), характеризующийся снижением интенсивности дифференцировки красных и белых волокон и снижением средней скорости утолщения мышечных волокон всех типов.

6. Уменьшение функциональной нагрузки на мускулатуру челюстного аппарата обусловливает замедление интенсивности дифференцировки мышечных волокон на раннем этапе и ее ускорение на позднем этапе постнатального морфогенеза. Во всех исследуемых мышцах красные (R) волокна характеризуются стабильными морфометрическими показателями на всех этапах морфогенеза.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Курносова, Наталья Анатольевна, 2002 год

1. Аметов А.С., Заваденко Н.Н., Темин П.А. Обмен половых стероидных гормонов при различных физиологических и патологических состояниях скелетных мышц. // Журнал невропатологии и психиатрии им. Корсакова. 1988. - Т.88, № 3. - С. 125-131.

2. Афанасьев Ю.И., Кузнецов С.Л., Кутузова Т.Г. и др. Соотношение различных типов волокон в скелетной мышце как фактор, влияющий на эффективность тренировки на выносливость. // Теория и практика физич. культуры. 1986. - № 12. - С. 41-42.

3. Байкова О.В. Цитофизиологические показатели состояния репродуктивных органов крыс-самцов после 7-дневного иммобилизационного стресса и 7-дневной гипокинезии. // Косм. биол. и авиакосм, медицина. 1988. - Т.22, №5. - С. 56-59.

4. Барминдра В.П. Аксонный транспорт. // Итоги науки и техн. Сер. "Морфол. чел. и жив. Антропология". М. - 1983. - Т.10. - С. 27-67.

5. Букаева И. А. Цитологическая и цитохимическая характеристика скелетных мышц при гипокинезии: Автореф. дисс. . к.б.н. Москва, 1970.-34 с.

6. Валиуллин В.В. Нейротрофический контроль скелетных мышц у ги-пертиреоидных животных. // Научн.тр.Казан.мед.ин-т. 1987. -Вып.68. - С. 48-53.

7. Ветрова Е.Т., Дроздова Т.Е., Попова И.А. Влияние клиностатической и антиортостатической гипокинезии на активность ферментов сыворотки крови. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1988. - Т.22, № 4. -С. 70-73.

8. Волков Е.М., Полежаев Г.И. Нейротрофический контроль механизма генерации ПД в мышечных волокнах лягушки. // Физиол. жур. СССР. 1983. - Т.69, № 8. - С. 1037-1044.

9. Волкова О.В. Нейродистрофический процесс. М.: Медицина, 1978. - 115 с.

10. Воробьев В.Е., Ковачевич И.В., Гончаров И.Б. и др. Изменения региональной легочной гемодинамики и уровня вазоактивных веществ у человека в условиях антиортостатической гипокинезии. // Косм, биол. и авиакосм. мед. 1988. - Т.20, № 2. - С. 42-46.

11. Воробьев В.Е., Ковачевич И.В., Стагнадзе JI.JI. и др. Состояние метаболизма и периферического кровообращения человека в условиях антиортостатической гипокинезии. // Косм. биол. и авивкосм. мед. -1987.-Т.21,№3.-С. 46-49.

12. Ганин Ю.А. Активность окислительных ферментов цикла трикарбо-новых кислот в скелетных мышцах крыс при гипокинезии. // Косм, биол. и авивкосм. мед. 1982. - Т. 16, № 6. - С. 34-41.

13. Гогина Т.И. Морфологическая характеристика возрастных изменений некоторых мышц туловища в условиях нормы и под влиянием физической нагрузки: Автореф. дисс. к.б.н. Харьков, 1991. - 20 с.

14. Гранит Р. Основы регуляции движений. Москва, 1973. - 367 с.

15. Давиденко Д.Н., Мозжухин А.С., Телегин В.В. Мобилизация физиологических резервов при напряженной мышечной деятельности. // Физиология человека. 1987. - Т.13, № 1. - С. 127-132.

16. Данилов Р.К. Гистогенетические основы нервно-мышечных взаимоотношений. С.-Пб., 1996. - 152 с.

17. Демин А.Н., Белкания Г.С., Дарцмелия В.А. Типологическая характеристика центральной гемодинамики у обезьян в клино- и ортостатике. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1986. - Т.20, № 2. - С. 60-65.

18. Добромыслова О.П., Завгородная Т.И. Влияние бездеятельности мышцы на функциональное состояние расположенных в ней рецепторов. / II съезд физиологов Молдав.ССР: Тез. докл. Кишинев. -1980.-С. 27.

19. Дроздова Т.Е. Ферменты энергетического обмена при воздействии на организм человека факторов космического полета: Автореф. дисс. . к.б.н. Москва, 1980. - 21 с.

20. Дроздова Т.Е., Ветрова Е.Г. Ферменты сыворотки крови в условиях 7-суточной водной иммерсии. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1986.- Т.20, №1. С. 82-83.

21. Зайко Н.Н. Развитие учения о нервной трофике. // Пат. физиол. и экс-перим. тер. 1978, № 2. - С. 3-11.

22. Иванов С.Г., Богомазов Е.Е. "Сухая" иммерсия и перспективы ее применения в клинике. // Косм.биол. и авиакосм.мед. 1988. - Т.22, №5.-С. 4-7.

23. Ильина-Какуева Е.И. Исследование скелетных мышц крыс после кратковременного космического полета на биоспутнике "Космос-1667". //Косм. биол. и авиакосм. мед. 1987. - Т.21, № 6. - С. 31-35.

24. Ильина-Какуева Е.И. Морфологическое исследование мышечных волокон и микроциркуляторного русла мышц обезьян при антиорто-статической гипокинезии. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1984. -№2. - С. 71-73.

25. Ильина-Какуева Е.И., Новиков В.Е. Скелетная мускулатура крыс при моделировании динамических эффекиов невесомости. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1985. - Т. 18, № 3. - С. 56-60.

26. Ильина-Какуева Е.И., Португалов В.В. Влияние искусственной силы тяжести на скелетную мускулатуру крыс в условиях космического полета. // Архив анат. 1979. - Т.76, № 3. - С. 22-27.

27. Ильина-Какуева Е.И., Португалов В.В. Структурные изменения кам-баловидной мышцы крыс, экспонированных на биоспутниках серии "Космос" и при гипокинезии. //Косм. биол. и авивкосм. мед. -1981. -Т.15, № 3. С. 37-40.

28. Ильина-Какуева Е.И., Савик З.Ф. Влияние длительной гипокинезии на рост и скелетную мускулатуру крыс. // Архив анат., гистол. и эм-бриол. 1983. - № 8. - С. 27-33.

29. Казначеев В.П., Казначеев С.В. Адаптация и конституция человека. -Новосибирск: Наука, 1986. 119 с.

30. Калугина Г.Е., Сирота И.В. Особенности типов гемодинамики у женщин-спортсменок. // Медицинские аспекты адаптации в женском спорте. Л. - 1988. - С. 28-35.

31. Катинас Г.С., Оганов B.C. К морфофункциональной характеристике скелетных мышц при ограничении подвижности. // Адаптация к мышечной деятельности и гипокинезии. Новосибирск. - 1970. -С. 82-83.

32. Клячкин JI.M., Годунова А.Г. Опыт построения индивидуальных программ физических тренировок при реабилитации больных ише-мической болезнью сердца в кардиологическом санатории. // Кардиология. 1985. - Т.25, № 11. - С. 252-265.

33. Коваленко Е.А., Галушко Ю.С., Шерамов С.Г., Попков B.JI. Физическая работоспособность и кислородное обеспечение организма крыс при физических нагрузках после длительной гипокинезии. // Косм, биол. и авиакосм. мед. 1975. - №1. - С. 13-19.

34. Корик Л.Г. Функциональная характеристика и особенности графической регистрации рефлекторных движений нижней челюсти: Авто-реф. дисс. к.м.н. Ленинград, 1967. - 14 с.

35. Костур Б.К. Функциональные особенности жевательного аппарата детей и подростков. Л.: Медицина, 1972. - 200 с.

36. Крамских В.Н., Самойлов Н.Г. Морфофункциональная характеристика ферментативной активности мышц в онтогенезе и при физической нагрузке. // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1987. - Т.З, № 8. -С. 43-46.

37. Кузнецов С.Л. Морфофункциональные закономерности адаптации скелетной мышечной ткани к изменяющимся физиологическим нагрузкам: Автореф. дис. д.м.н. Москва, 1988. - 40 с.

38. Кузнецов С.Л. Морфофункциональные изменения в скелетной мышечной ткани в условиях длительной гипокинезии и при воздействии различных физических нагрузок на ее фоне. // I Московский медицинский институт. М. - 1988. - 20 с.

39. Кузнецов С.Л., Шенкман Б.С. Изменчивость соотношения типов волокон в биопсиях скелетной мышцы человека. // Врачебн. контроль за физич. воспитанием и исследов. в спорт, медицине. М. - 1987. -С. 107-112.

40. Лакин Г.Ф. Биометрия. Учебное пособие для университетов и студентов педагогических институтов. Москва, 1973. - 344 с.

41. Лиманский Ю.П. Структура и функции системы тройничного нерва. Киев: Наукова думка, 1976. - 256 с.

42. Мавринская Л.Ф. Гетерогенность скелетных мышц. / Закономерности морфогенеза скелетной и сердечной мускулатуры. 1980. -С. 23-32.

43. Магазанник Л.Г. Характеристика нейромоторных соединений млекопитающих. / Развитие сократительной функции мышц двигательного аппарата. Под ред. Е.К. Жукова. Л. - 1974. - С. 7-34.

44. Макаров В.М. Изменения аминокислотного состава крови при тренировке в условиях дефицита гормонов щитовидной и надпочечной желез. / Межвуз. сб. науч. тр. ЯГПИ. 1985. - № 212. - С. 80-83.

45. Макаров Г.А. Изменение транспорта и утилизации кислорода при длительной гиподинамии организма. / Сб. науч. тр. Рязан. мед. ин-т.1986.-№90.-С. 61-64.

46. Москатова А.К. Генотипическая оценка физиологических функций, определяющих спортивную работоспособность. // Теория и практикафизической культуры. 1988. - № 2. - С. 44-46.

47. Мусаева З.Т., Тамбовцева Р.В. Влияние половых гормонов на развитие биоэнергетики скелетных мышц. В кн.: V Всесоюзн. конференция по биохимии мышц. - Телави, изд. Научного Совета по проблемам биохимии животных и человека АН СССР. - 1985. - С. 156.

48. Наследов Г.А. Нервный контроль структурно-функциональной организации скелетных мышц. Ленинград, 1980. - 167 с.

49. Оганов B.C. Физиологические механизмы адаптации скелетных мышц млекопитающих к невесомости: Автореф. дисс. . д.м.н. Москва, 1984. - 36 с.

50. Пинаев Г.П. Синтез специфических сократительных белков как биохимическая основа дифференцировки миогенных клеток. / Проблемы миогенеза. Л. - 1981. - С. 73-98.

51. Пирс Э. Гистохимия (теоретическая и прикладная). Москва, 1962. -960 с.

52. Поглазов Б.Ф., Левицкий Д.И. Миозин и биологическая подвижность. М. - 1982. -160 с.

53. Поздняков О.И., Бабанова Л.Л., Деморжи М.С. Изменение ультраструктуры поперечно-полосатых мышц под влиянием факторов космического полета. // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1988. - Т. 106, № 12. - С. 746-748.

54. Попов И.Г., Лацкевич А.А. Свободные аминокислоты в крови человека в начальном периоде нахождения в условиях антиортостатиче-ской гипокинезии. // Косм.биол. и авиакосм.мед. 1986. - Т.20, № 2.1. С. 46-54.

55. Попова И.А. Активность ферментов сыворотки крови здорового человека при моделировании эффектов невесомости. // Косм.биол. и авивкосм.мед. 1986. - Т.20, № 2. - С. 54-58.

56. Португалов В.В. Еще раз о механизмах развития гистологических и цитохимических изменений у млекопитающих в орбитальных полетах. // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1978. - Т.75, № 9. - С. 23-29.

57. Португалов В.В. Морфологические и биохимические исследования на биоспутнике "Космос-782". // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1977. Т.72, № 7. - С. 5-20.

58. Потапов А.Н. Некоторые показатели роста крыс и их скелетных мышц при длительном ограничении подвижности. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1972. - Т.6, № 2. - С. 16-20.

59. Потапов П.П. Содержание коллагена, липидов, гликогена в скелетных мышцах крыс в востановительном периоде после 15- и 30-суточной гипокинезии. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1986. - Т.20, № 1. - с. 33-35.

60. Разумовская Н.И. Роль нервной системы в регуляции синтеза мышечных белков. / Нервный контроль структурно-функциональной организации скелетных мышц. JI. - 1980. - С. 69-83.

61. Резвяков Н.П. Гистохимическая характеристика белых и красных мышц в норме и при денервации. // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1974. Т.66, №6. - С. 89-91.

62. Резвяков Н.П. Морфометрическое и гистохимическое изучение "трофического" влияния нервов на скелетные мышцы и вкусовые луковицы: Автореф. дисс. . к.м.н. Казань, 1973. - 26 с.

63. Резвяков Н.П. Общие закономерности дифференцировки и пластичности скелетных мышц: Автореф. дисс. . д.м.н. Казань, 1982. -45 с.

64. Рехачева И.П. Возрастная динамика ферментной активности мышечных волокон: Автореф. дисс. к.м.н. Ленинград, 1980. - 17 с.

65. Рехачева И.П. О классификации мышечных волокон. // Архив анат. гистол. и эмбриол. 1981. - Т.80, № 10. - С. 77-91.

66. Родионов В.А. Гистохимическая структура мышц птиц и млекопитающих: функциональные и филогенетические аспекты. // Мышечная активность и жизнедеятельность человека и животных. -М.- 1986.-С. 102-10

67. Рохленко К.Д., Савик З.Ф. Влияние факторов космического полета на ультраструктуру скелетных мышц. // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1981. - Т.15, № 1,-С. 72-77.

68. Рубинов И.С. Учение о функциональных звеньях жевательной системы. // Стоматология. 1962. - № 5. - С. 65-69.

69. Рябченюк Н.А. (Курносова Н.А.), Сыч В.Ф. Особенности онтогенетического становления структуры мышц челюстного аппарата в условиях гиподинамии. // Морфология. Архив анат., гистол. и эмбриологии. - 2000. - Т. 117. - Вып.З. - С. 104.

70. Склянова Н.А. К количественной характеристике скелетной мышечной ткани при деафферентации. // Науч. тр. Новосиб. мед. ин-та. -1981. Т.105. - С. 76-78.

71. Смирнова Т.Н., Козыревская Г.И. Типы регуляции водно-электролитного обмена в условиях длительной гипокинезии. / Актуальные проблемы космической биологии и медицины. Тез. докладов. -М.- 1986.-С. 156-159.

72. Соловьев В.А. Влияние пониженной функциональной нагрузки на скелетную мышцу. // Архив анат., гистол. и эмбриол. 19836. - Т.84, № 2. -С. 55-60.

73. Соловьев В.А. Морфогистохимическая характеристика мионов жевательной мышцы млекопитающих и человека. // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1982. - Т.83, № 10. - С. 65-81.

74. Соловьев В.А. Типологическая характеристика мышечных волокон двубрюшной мышцы. // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1983а. -№ 8. - С. 33-37.

75. Сорокин А.П., Стрельников Г.В., Вазин А.Н. Адаптация и управление свойствами организма. М.: Медицина, 1977. - 260 с.

76. Стрельникова И.Г. Морфологические изменения надпочечника при адаптации организма к гипокинезии с последующей физической нагрузкой: Автореф. дисс. . к.м.н. Москва, 1987. - 16 с.

77. Сыч В.Ф. Морфология локомоторного аппарата птиц. С.-Петербург - Ульяновск: Изд-во Средневолжского научного центра, 1999. -520 с.

78. Сыч В.Ф., Рябченюк Н.А. (Курносова Н.А.) Адаптивная изменчивость гистоструктуры мышц челюстного аппарата белых крыс в раннем постнатальном онтогенезе. // Гистогенетический анализ изменчивости и регенерация тканей. Санкт-Петербург - 1997. - С. 88.

79. Тамбовцева Р.В. Гистохимическая характеристика мышечных волокон двуглавой и трехглавой мышц плеча в онтогенезе человека. // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1988. -Т.94, № 5. - С. 59-63.

80. Тамбовцева Р.В. Изменение активности сукцинатдегидрогеназы в мышечных волокнах четырехглавой мышце бедра у мальчиков 7-17 лет. // Морфология. 1996. - № 1. - С. 68-70.

81. Тамбовцева Р.В., Корниенко М.А. Развитие различных типов мышечных волокон четырехглавой мышцы бедра и камбаловидной мышцы в онтогенезе человека. // Архив анат., гистол. и эмбриол.1986.-Т.91,№9.-С. 96-99.

82. Тигранян Р.А. Метаболические аспекты проблемы стресса в космическом полете. М.: Наука. - 1985. - 224 с.

83. Тигранян Р.А., Белякова М.И., Давыдова Н.А. и др. Состояние процессов метаболизма в условиях ограничения двигательной активности. // Авиакосмическая медицина. Москва-Калуга. - 1975. - Т.2. -С. 187-190.

84. Уланова А.Ф. Динамика некоторых морфологических и биохимических показателей в мышцах после тенотомии. Кривой Рог. - 1987. -Юс.

85. Улумбеков Э.Г. Знаем ли мы, как двигательный нерв контролирует фенотип скелетного мышечного волокна? // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1981. - Т.80, № 6. - С. 102-108.

86. Улумбеков Э.Г., Резвяков Н.П. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон. / Нервный контроль структурно-функциональной организации скелетных мышц. Л. - 1980. - С. 84-104.

87. Федоров И.В. Обмен веществ при гиподинамии. / Проблемы космической биологии. М.: Наука, 1982. - Т.44. - 214 с.

88. Шубин А.И. Функциональные свойства и волоконный состав двубрюшной мышцы при нейродистрофическом процессе: Автореф. дисс . к.м.н. Москва, 1987. - 18 с.

89. Ahlborg G. Mehanism for glycogenolysis in nonexercising human muscle during and after exercise. // Amer.J.Physiol. 1985. - V.36, N 5. - Pt.l. -P. 540-545.

90. Alnaqeeb M.A., Goldspink G. Changes in fibre type, number and diameter in developing and ageing skeletal muscle. // J. Anat. 1987. - V.153, Aug.-P. 31-45.

91. Andersen P., Henrikson J. Capillary supply of the quadriceps femoris muscle of men: adaptative response to exercise. // J. Physiol. (Gr. Brit.).1977. V.270, N 3. - P. 677-690.

92. Anderson J., Almeida-Silveira M.I., Perot C. Reflex and muscular adaptations in rat soleus muscle after hindlimb suspension. // J. Exp. Biol. -1999. -N202 (Pt.19). P. 2701-2707.

93. Andreev D., Wassilev W., Chakasky K. Ultrastructural changes in the terminal portion of the striated muscle fibers after tenotomy. // Anat. Anz. -1986. V.160, Teil 1. - P. 483-484.

94. Ansved T. Effects of immobilization on the rat soleus muscle in relation to age. //Acta Physiol. Scand. 1995. -N 154 (3). - P. 291-302.

95. Araki M. Effects of facial nerve denervation on masseter muscle of the rats. // Gifo. Shika. Gakkai Zasshi. 1990. -N 17 (1). - P. 203-222.

96. Bagnall K.M., Ford D.M., McFadden K.D. et al. A comparision of vertebral muscle fiber characteristics between human and monkey tissue. //Acta anat. 1983,- V.117,N1.-P. 51-57.

97. Belozerova I.N., Matveeva O.A., Nemirovskaia T.L. Structural and metabolic characteristics of m. vastus lateralis of monkeys during 30-day hypokinesia: effects of prophylactic Gz-accelerations. // Morfologiia. -2001.-N119(3).-P. 70-75.

98. Bobinac D., Malnar-Dragojevic D., Bajek S., Soic-Vranic Т., Jerkovic R. Muscle fiber type composition and morphometric properties of denervated rat extensor digitorum longus muscle. // Croat. Med. J. 2000. -N41 (3). -P. 294-297.

99. Boldwin K.M., Valdez V., Herrick R.E. et al. Biochemical properties of overloaded fast-twitch skeletal muscle. // J. Appl. Physiol.: Respir., Environ. and Exercise Physiol. 1982. - V.52, N 2. - P. 467-472.

100. Booth W. Time course of muscular atrophy during immobilization of hindlimbs in rats. // J. Appl. Physiol.: Respirat., Environ, and Exercise Physiol. 1977. - V.43, N 4. - P. 656-661.

101. Bresin A. Effects of masticatory muscle function and bite-raising on mandibular morphology in the growing rat. // Swed. Dent. J. Suppl.dibular morphology in the growing rat. // Swed. Dent. J. Suppl. 2001. -N 150.-P. 1-49.

102. Brzank R.-D., Reiper K.-S. Characteristics of muscle-cellular adaptation to intense physical loads. // Biomed. biochim. Acta. 1986. - V.45, № 1-2.-P. 107-110.

103. Buller A. J., Eccles J.C., Eccles R.M. Differentiation of slow and fast muscles in the cat hind limb. // J. Physiol. 1960. - V.150. - P. 399-416.

104. Bulyakova N.V. Morphofunctional peculiarities of skeletal muscle regenerates in the ontogeny of rodents. // J. Morphol. 1994. - V.220, № 3. - P. 330.

105. Chopard A., Leclerc L., Muller J. и др. Effect of a 14-day spaceflight on dystrophin associated proteins complex in rat soleus muscle. // J. Gravit. Physiol. 1998. - N 5 (1). - P. 67-68.

106. Cieciura L. Stereological studies of muscle mitochondria of mice subjected to hypokinesis. // Acta Med. Pol. 1980. - V.21, N 4. - P. 307-308.

107. Clamann H.P. Motor units and their activity during movement. / Handb. Behav. Neurobiol. New York, London. - 1981. - P. 69-92.

108. Corley K., Kowalchuk N., McComas A.J. Contrasting effects of suspension on hind limp muscles in the hamster. // Exp. Neurol. 1984. - V.85, N1.-P. 30-40.

109. Creff A.F. Responses hormonales et metaboliques a l'activity physique. // Rev. Med. Fonct. 1986-1987. - N 19. - P. 61-68.

110. Dall P.V., Carmello L.C.T., Dalpai M. Morfologia e histoenzimologia do musculo Extensor Longo do Halux emratos senis. // Rev. Scienc. biomed. 1991.-N 12.-C. 69-78.

111. Dall P.V., Thomax E., Curi P.R. Postnatal growth of skeletal muscle fibers. // Gegenbaurs morphol. Jahrb. 1984. -V.130, N 6. - P. 827-834.

112. Dammeijer P.F., van Mameren H., van Dijk P. и др. Stapedius muscle fibre composition in the rat. // Hear Res. 2000. - N 141 (1-2).1. P. 169-179.

113. Danieli-Betto D., Betto R., Megighian А. и др. Effects of age on sarcoplasmic reticulum properties and histochemical composition of fast-and slow-twitch rat muscles. // Acta Physiol. Scand. 1995. - N 154 (1). - P. 59-64.

114. Davies C.T.M., Rutherford J.C., Thomas D.O. Electrically evoked contraction of the triceps surae during and following 21 days of voluntary leg immobilization. // Eur.J.Appl.Physiol. and Occup.Physiol. 1987. - V.56, N3.-P. 306-312.

115. Desplanches D., Mayet M.H., Ilyna-Kakueva E.I., Frutoso J., Flandrois R. Structural and metabolic properties of rat muscle exposed to weightlessness aboard Cosmos 1887. // Eur. J. Appl Physiol. Occup. Physiol. -1991. -N 63 (3-4). P. 288 -292.

116. Desplanches D., Mayet M.N., Sempore et al. Hindlimb suspension effect on rat skeletal muscle response. // Physiol, spat. 2-eme Collq. int., Toulouse, 20-22 nov. 1985. Paris. - 1986. - P. 95-98.

117. Diaz-Herrera P., Garscia-Gastellano J.M., Torres А. и др. Effect of high-intensity running in rectus femoris muscle fiber in rats. // J. Orthop. Res. -2001.-N 19 (2).-P. 229-232.

118. Diaz-Herrera P., Torres A., Morcuende J.А. и др. Effect of endurance running on cardiac and skeletal muscle in rats. // Histol. Histopathol. -2001.-N 16(1).-P. 29-35.

119. Dorigussi C., Mongini Т., Palmucci L., Gagnon E., Schiffer D. Quantitative analisis of quadriceps muscle biopsy. // J. Neurol, sci. 1984. - V.66, №2-3.-P. 319-326.

120. Duchatean J., Montigny L. de., Hainant K. The effect of disuse on muscle contraction in humans. // Arch.Int.Physiol. et Biochim. 1988. - V.96, N2.-P. 13-14.

121. Eisenberg B. Adaptability of ultrastructure in the mammalian muscle.

122. J. Exp. Biol. 1985. -V. 115. - P. 55-68.

123. Elkerdany M.K., Fahim M.A. Age changes in neuromuscular junctions of masseter muscle. // Anat. Rec. 1993. - V.237, N 2. - P. 291-295.

124. Ennion S., Sanf ana Pereira J., Sargeant A.J., Young A., Goldspink G. Characterization of human skeletal muscle fibres according to the myosin heavy chains they express. // J. Muscle Res. Cell Motil. 1995. - N 16 (1).-P. 35-43.

125. Essen-Gustavsson В., Borges C. Histochemical and metabolic characteristics of human skeletal muscles in relation to age. // Acta Physiol. Scand. -1986.-V.126,N1.-P. 107-114.

126. Faghri P.D., Yount J.P., Pesce W.J., Seetharama S., Votto J.J. Circulatory hypokinesis and functional electric stimulation during standing in persons with spinal cord injury. // Arch. Phys. Med. Rehabil. 2001. - N 82 (11). -P. 1587-1595.

127. Falempin M., Holy X., Leclerco Т., Mounier Y., Stevens L. Contractile properties of rat soleus muscle after week's hindlimb suspension: studies on in sity muscle and isolated skinned fibers. // J. Physiol. 1988. -N406.-P. 45.

128. Fell D., Steffen J.M., Musacchia X.J. Effect of hypokinesia-hypodynamia on rat muscle oxidative capacity and glucose uptake. // Amer. J. Physiol. -1985. V.249, N 3. - Pt2. - P. 308-312.

129. Fitts R.H., Riley D.R., Widrick J.J. Functional and structural adaptations of skeletal muscle to microgravity. // J. Exp. Biol. 2001. - N 204 (Pt 18).-P. 3201 -3208.

130. Fratacci M.D., Levame M., Rauss A., Bousbaa H., Atlan G. Rat diaphragm during postnatal development. I. Changes in distribution of muscle fibre type and in oxidative potential. // Reprod. Fertil. Dev. 1996. -N8(3).-P. 391-398.

131. Fugl-Meyer A.R., Erikson A., Sjostrom M., Sodertrom G. Is muscle structure influenced by genetical or functional factors? A study of three forearm muscles. // Acta. Physiol. Scand. 1982. - V.114, N 2. - P. 277-281.

132. Fujimoto S., Watanabe J., Ogawa R., Kanamura S. Age-related changes in fibre number, fibre size, fibre type composition and adenosin triphosphatase activity in rat soleus muscle. // Anat. Anz. 1994. - N 176 (5). -P. 429-435.

133. Fujita Т., Adachi J., Ueno Y., Peters T.J., Preedy V.R. Chronic ethanol feeding increases 7-hydroperoxycholesterol and oxysterols in rat skeletal muscle. // Metabolism. 2002. - N 51 (6). - P. 737-742.

134. Gardiner P.F., Faltus R.E. Contractile responses of rat plantaris muscles following partial denervation and influence of daily exercise. // Pflugers Arch. 1986. - V.406, N 1. - P. 51-56.

135. Gardiner P.F., Favron M., Corriveau P. Histochemical and contractile response of rat medial gastrocnemius to 2 weeks of complete disuse. // Can J. Physiol and Pharmacol. 1992. -V.70, N 8. - P. 1075-1081.

136. Gardiner P.F., Favron M., Corriveau P. Histochemical and contractile responses of rat medial gastrocnemius to 2 weeks of complete disuse. // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1992. - N 70 (8). - P. 1075-1081.

137. George I.C., Berger A.I. Avian mycology. New York; London: Acad.press. - 1966. - 500 p.

138. Germinario E., Esposito A., Megighian А. и др. Early changes of type 2B fibers after denervation of rat EDL skeletal muscle. // J. Appl. Physiol. -2002. N 92 (5). - P. 2045-2052.

139. Gill N., Mufti S.A., Shakoori A.R. Effect of denervation on extensor digitorum longus muscle in rats. // Pakistan J. Zool. 1981. - V.13, N 1-2. - P. 85-92.

140. Goldberg L.J., Chandler S.H. Relationship between jaw movements and trigeminal motoneuron membrane-potential fluctuations during cortically induced rhythmical jaw movements in the guinea pig. // J. Neurophysiol.1982. -V.48, N 1. P. 110-125.

141. Goldspink D.F., Morton A.J., Loughna P., Goldspink G. The effect of hypokinesia and hypodynamia on protein ternover and the growth of four skeletel muscles of the rat. // Pflugers Arch. 1986. - V.407, N 3. -P. 333-340.

142. Gollvik L. The effects of tenotomy and overload on the postnatal development of medical gastrocnemius motor units in the cat. // Acta Physiol. Scand. 1986. - V.128, N 3. - P. 485-494.

143. Griffits I.R., Duncan I.D., Quirk Ch., McQueen A. The central areas of denervated canine muscle. // J. Сотр. Pathol. 1973. - V.83, N 4. -P. 493-498.

144. Gunn H.M. Differences in the histochemical properties of skeletal muscle of different breeds of horses and dogs. // J. Anat. 1978. - V.127, N 3. -P. 615-634.

145. Horl M., Bruch H.-P., Gold R. et al. Carbonhydrate metabolism of dog skeletal muscle during immobilization. // Res. Exp. Med. 1987. - V.187, N2.-P. 81-85.

146. Haggmark Т., Thorstensson A. Fiber types in human abdominal muscles. // Acta Physiol. Scand. 1979. - V.107, N 4. - P. 319-325.

147. HennemanE., Somjen G., Garpenter D.O. Functional significance of cell size in spinal motoneurons. // J. Neurophysiol. 1965. -V.28, N 3. -P. 560-580.

148. Henricson-Larsen K. Distribution, number and size of different types of fibers in whole cross-section of female musculus tibialis anterior. An enzyme histochemical study. // Acta Physiol. Scand. 1985. - V. 123, N 3. -P. 229-235.

149. Henriksen E.J., Tischler M.E. Glucose uptake in rat soleus: effect of acute unloading and subsequent reloading. // J. Appl. Physiol. 1988. - V.64, N4.-P. 428-1432.

150. Henriksson J., Svedenhag J., Richter E.A., Christensen N.J. Skeletal muscle and hormonal adaptation to physical training in the rat: role of the sympath-adrenal system. // Acta Physiol.Scand. 1985. - V.123, N 2. -P. 127-138.

151. Herbison G.J., Jaweed M.M., Ditunno J.F. Recovery of reinnervating rat muscle after cast immobilization. // Exp. Neurol. 1984. - V.85, N2. -P. 239-248.

152. Hie Han В., Nie Cornelis J.V., Vermeulenvan der Z. E. Effect of endurance exercise on fibre type composition and muscle weight of reinnervating rat plantaris muscle. // Pflugers Arch. 1987. - V.408, N 4. - P. 337397.

153. Hikida R.S. Quantitative ultrastructure of histochemically identified avian skeletal muscle fiber types. // Anant. Res. 1987. - V.218, N2. - P. 128135.

154. Holloszy J.O., Chen M., Cartee G.G., Young J.C. Skeletal muscle atrophy in old rats: Differential changes in the three fiber types. // Mech. Ageing and Dev. -1991. V.60, N2. - P. 199-213.

155. Holmes R., Yamada E.W. Effect of sciatic crush on enzyme activity of skeletal muscle of the rat. // Enzyme. 1979. - V.24, N 3. - P. 188-196.

156. Huguenin F. The short-term influence of catecholamines on acid-base balance of rat soleus muscles in vitro. // Pflugers. Arch. 1984. - V.401, N 3. - P. 272-276.

157. Hurov J., Rosser B.W., Baker K.M. и др. Metabolic transitions in rat jaw muscles during postnatal development. // J. Craniofac. Genet. Dev. Biol. -1992.-N12 (2).-P. 98-106.

158. Iannello R.C., Jeffrey P.L. Neural influence on the metabolism of the skeletal muscle membranes. // Neurosci. Lett. 1987. - Suppl. N 27. -P. 87.

159. Ianuzzo D., Patel P., Chen V., O'Brien P. et al. Thyroid trophic influenceon skeletal muscle myosin. // Nature. 1977. - V.270, N 5632. - P. 74-76.

160. Inagi K., Connor N.P., Schultz E. и др. Muscle fiber-type changes induced by botulinum toxin injection in the rat larynx. // Otolaryngol. Head Neck. Surg. 1999. -N 120 (6). - P. 876-883.

161. Isfort R.J., Wang F., Greis K.D. и др. Proteomic analysis of rat soleus and tibialis anterior muscle following immobilization. // J. Chromatogr. В Analit. Technol. Biomed. Life Sci. 2002. -N769 (2). - P. 323-332.

162. Ju Kaiser P., Tesch P.A., Thorsson A., Karisson Y. и др. Skeletal muscle glycolysis during submaximal exercise following acute-adrenergic blockade in man. //Acta Physiol. Scand. 1985. - V.123,N3. - P. 285-291.

163. James V., James N.T. Studies on the sizes and structure of cell. I. Theoretical analisis of the possible relation between of cells and their mitochondrial content. // J. Anat. 1978. - V.126, N 2. - P. 445-453.

164. Jones S.P., Ridge R.M.A.P., Rowlerson A. The number and size of slow muscle fibers in a fast muscle during post-natal development of the rat. // J. Physiol., Gr. Brit. 1985. - V.360. - P. 78.

165. Jozza L., Thoring J., Jarvinen M. Quantitative alterations in intramuscular connective tissue following immobilization: an experimental study in the rat calf muscles. // Exp. and Mol. Pathol. 1988. - V.49, N 2. - P. 267278.

166. Jozza L., Vandor E., Demel S. et al. Histochemical and biochemical alterations in skeletal muscles of rats during combined chronic hypoxia and hypokinesia. // Gegenbaurs morphol. Jarb. 1985. - V.131, N 1. - P. 4354.

167. Juch P.J., van Willigen J.D., Broekhuijsen M.L., Ballintijn C.M. Masse-ter, digastric and omohyoidal responses from weak mechanical oral stimuli in the chewing rat. // Brain. Behav. Evol. 1984. - N 25 (2-3). -P. 166-174.

168. Karlssen U.L., Anderson D., Matthews B. The structure and distributionof muscle-spindles and tendon organs in the muscles. I I Mastication. -Wright, 1976. P. 35-42.

169. Kasper C.E. Recovery of plantaris muscle from impaired physical mobility. //Biol. Res. Nurs. 1999. -N 1 (1). - P. 4-11.

170. Katsarov C. Masticatory muscle function and transverse dentofacial growth. // Swed. Dent. J. Suppl. 2001. -N 151. - P. 1-47.

171. Kawamura Y., Fujimoto J.A. A study in the jaw opening reflex. // Med. J. Osaka Univ. 1958. - V.9. - P. 377-387.

172. Kawata Т., Fujita Т., Tokimasa С. и др. Suspension "hypokinesia / hypodynamia" may decrease bone mass by stimulating osteoclast production in ovariectomized mice. // J. Nutr. Sci. Vitaminol (Tokyo). 1998. - Oct, N44 (5).-P. 581-590.

173. Keitgaard H., Mantoni M., Chiaffino S.S. и др. Function morphology and protein expression of ageing skeletal muscle: a cross-sectional study of elderly men with different training backgrounds. // Acta Physiol. Scand. -1990.-V.140,N 1,-P. 41-54.

174. Khan M.A., Sonkup T. Histochemical heterogeniety of intrafusal muscle fibers in slow and fast skeletal muscles of the rat. // Histochem. J. 1988. - V.20,N1.-P. 52-60.

175. Kochetkov A.G., Sadovnikov V.N. Adaptive reaction of the dog right cardiac ventricle in dosed hypokinesia. // Morfologiia. 2001. - N 119 (1). -P. 33-36.

176. Kochetkov A.G., Vasiagina T.I. Morphometric evaluation of adaptive responses of the sinoatrial node artery in dogs during various motor activity regimes. // Morfologiia. 2001. - N 119 (3). - P. 62-65.

177. Kochetkov A.G., Vasiagina T.I., Sotnikov O.S. Structural organization of the acellular region of the sinoauricular nerve plexus in the dog heart at maximal motor activity. // Morfologiia. 2001. - N 120 (5). - P. 56-61.

178. Konishi M., Tokuhara N., Iwamoto S. The effect of anabolic steroid onthe distribution of muscle fiber in rat hind limb. // Ital. J. Anat. Embryol. -2001. -N 106 (2 Suppl 1). P. 175-183.

179. Kovanen V., Suominen H. Effects of age and life-time physical training on fibre composition of slow and fast skeletal muscle in rats. // Pflugers Arch. 1987. - V.408, N 6. - P. 543-551.

180. Kowalewski R., Miltzow M. Rattus norregicus Berkenhout. Eine histo-chemische Studie. // Anat. Anz. 1990. - V.170, N 3-4. - P. 205-211.

181. Kuboyama N., Moriya Y. Influence of diet composition and malocclusion on masticatory organs in rats. // J. Nihon. Univ. Sch. Dent. 1995. -N37 (2).-P. 91-96.

182. Leese G., Hopwood D. Muscle fibre typing in the human pharyngeal constrictors and oesophagus: the effects of aging. // Acta anat. 1986. -V.127, N 1. - P. 77-88.

183. Lexell J., Tayler C.C. Variability in muscle fiber areas in whole human quardriceps muscle. Effects of increasing age. // J. Anat. 1991. - V.174. -P. 239-249.

184. Lindboe Ch.F., Platou Ch.S. Effect of immobilization of shot duration on the muscle fiber size. // Clin. Phisiol. 1984. - V.4, N 2. - P. 183-188.

185. Liu C., Zhang L.F., Zhang L.N. и др. Counteracting effects of intermittent head-up tilt on simulated-weightlessness induced atrophy of anti-gravity muscles. // Space Med. Med. Eng. (Beijing). 2000. - N 13 (6). -P. 391-395.

186. Lorbas J.G., Federenko J.F., Naexu K.A. Fluid electrolyte and hormonal changes in conditioned and unconditioned men under hypokinesia. // Acta Astronaut. 1988. V.17,N 10. - P. 1123-1126.

187. Loughna P., Goldspink D.F., Goldspink G. Effect of hypokinesia and hypodynamia upon protein turnover in hindlimb muscles of the rat. // Aviat. Spase and Environ. Med. 1987. - V.58, N 9. - Pt.2. - P. 133138.

188. Luff A.R. Aspects of the neural control in mammalian skeletal muscle. // Proc. Austral. Physiol, and Pharmacol. Soc. 1983. - V.14, N 2. -P. 260-283.

189. Luginbuhl A.J., Dudley G.A., Staron R.S. Fiber type changes in rat skeletal muscle after intense interval training. // Histochemistry. 1984. - V.81, Nl.-P. 55-58.

190. Mac Duogal J.D., Ender G.C.B., Sale D.G. et al. Effects of strength training and immobilization of human muscle fibres. // Eur. J. Appl. Physiol, and Occup. Physiol. 1980. - V.43, Nl.-P. 25-34.

191. Maeda N., Kawasakki Т., Osawa K. et al. Effects of fine-grained on annu-lospiral endings of muscle spindles in the masseter muscle in developing and adult mice. // Anat. Anz. 1988a. - V.165, N 4. - P. 257-261.

192. Maeda N., Sato M., Osawa K. et al. Postnatal development of the mouse temporal muscle and effects of a fine-grained diet on the muscle spindle. // Anat. Anz. 1988b. - V.165, N 2-3. - P. 177-192.

193. Maier A. Occurence and distribution of muscle spindles in masticatory and suprahyoid muscles of the rat. // Amer. J. Anat. 1979. - V.155, N 4. - P. 483-505.

194. Maier A., Crockett J.L., Simpson D.R. et al. Properties of immobilized quinea pig hidlimb muscle. // Amer. J. Physiol. 1976. - V.231, N 5. -Parti.-P. 1520-1526.

195. Mascarello F., Aureli G., Veggetty A. Muscoli masticatori. Determinazi-one istochimica del tipi di fibre musculari in mammiferi. // Quad. anat. pract. 1979. - N. 1-4. - P. 193-213.

196. Maxwell L.C., White T.P., Faulkner J.A. Oxidative capacity, blood flowand capillarity of skeletal muscles. // J. Appl. Physiol.: Respir., Environ, and Exercise Physiol. 1980. - V.49, N 4. - P. 628-633.

197. McLachlan E.M. Atrophic effects of proximal tendon transsection with and without denervation on mouse soleus muscles. // Exp. Neurol. 1983. - V.81,N3.-P. 651-668.

198. McNulty A.L., Otto A.J., Kasper C.E., Thomas D.P. Effect of recovery mode following hind-limb suspension on soleus muscle composition in the rat. // Int. J. Sports Med. 1992. - N 13 (1). - P. 6-14.

199. Miles T.S., Madigan M.L. Programming of antagonist muscle stifness during masticatory muscle unloading in man. // Arch. Oral Biol. 1983. -V.28, № 10.-P. 947-951.

200. Miles T.S., Wilkinson T.M. Limitation of jaw movement by antagonist muscle stiffness during unloading of human jaw closing muscles. // Expl. Brain Res. 1982. - V.46. - P. 305-310.

201. Millward D.J., Bates P.C. Protein degradation in skeletal muscle: implications of a first order reaction for the degradative process. // Acta biol.et med.germ. 1981. - V.40, N 10-11. - P. 1309-1315.

202. Miyata H., Sugiura Т., Kawai Y., Shigenaga Y, Effect of soft diet and aging on rat masseter muscle and its motoneuron. // Anat. Rec. 1993. -N237 (3).-P. 415-420.

203. Miyata H., Sugiura Т., Wada N., Kawai Y., Shigenaga Y. Morphological changes in the masseter muscle and its motoneurons during postnatal development. // Anat. Rec. 1996. - N 244 (4). - P. 520-528.

204. Mommerts W.F. The molecular basis of functional specialization in muscle as inducid by the innervation. / Mol. and Cell Aspects Muscle Func.: Proc. 28th Int.Cong.Physiol.Sci., Budapest, 13-19 July 1980. Budapest-Oxford, 1981. - P. 13-22.

205. Monnier Y. Le systeme musculaire en apesanteur. / Physiol, spat. 2-eme Collq. int., Toulouse, 20-22 nov. 1985. Paris. - 1986. - P. 53-59.

206. Morey E.R. Space flight and bone turnover: corralation with a new rat model of weightlessness. // Bioscience. -1979. -V.29. P. 168-172.

207. Mulroy S., Blough E.R., Mehta E.K., Myhal M., Linderman J.K. Effects of gender and functional overload on plantaris muscle morphology in the dwarf (Hsd01a:dw-4) Lewis rat. // Life Sci. 1999. - Oct., N 65 (23). -P. 2489-2496.

208. Musacchia X.J., Steffen J.M., Fell R.D., Dombrowski M.J. Comparative morphometry of fibers and capillaries in soleus following weightlessness (SL-3) and suspension. // Physiologist. 1988. -N 31 (1 Suppl.). - P. 2829.

209. Musacchia X.J.,Deavers D.R., Meininger G.A., Davis T.P. A model for hypokinesia: effect on muscle atrophy in the rat. // J. Appl. Physiol.: Res-pirat., Environ., Exercise Physiol. 1980. - V.48, N 3. - P. 479-486.

210. Naik Y.M. Some findings on the differentiation of fibre types in the diaphragm of rat during pre-natal, neo-natal and post-natal development. // J. Anim. Morphol. and Physiol. 1984. - V.31, N 1-2. - P. 259-264.

211. Nakamura Y. Brainstem neuronal mechanisms controlling the trigeminal motoneuron activity. // Spinal and supraspinal Mech. Voluntary Mot. Contr. and Locomot. Basel.e.a. - 1980. - P. 181-202.

212. Nakatani Т., Nakashima Т., Kita Т. и др. Succinate dehydrogenase activities of fibers in the rat extensor digitorum longus, soleus and cardiac muscles. // Arch. Histol. Cytol. 1999. - Oct, N 62 (4). - P. 393-399.

213. Norton M., Verstegeden A., Maxwell L.C., McCarter R.M. Constancy of masseter muscle structure and function with age in F344 rats. // Arch. Oral Biol. -2001b. -N46 (2). P. 139-146.

214. Norton M.W., Mejia W., McCarter R.J. Age, fatigue and excitation-contraction coupling in masseter muscles of rats. // J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. -2001a. -N 56 (2). P. 58-65.

215. Ohira Y., Yasui W., Kariya F. и др. Metabolic adaptation of skeletal muscles to gravitational unloading. // Acta Astronaut. 1994. - N 33. -P. 113-117.

216. Oishi Y. Relationship between myosin heavy chain lid isoform and fibre types in soleus muscle of the rat after hindlimb suspension. // Acta Physiol Scand. 2001. -N 171 (3). - P. 267-276.

217. Oishi Y., Ishihara A., Katsuta S. Muscle fiber number of following hindlimb immobilization // Acta Physiol. Scand. 1992. - V.146, N 2. -P. 281-282.

218. Poygi P., Marchetti C., Scelsi R. Automatic morphometric analysis of skeletal muscle fibers in the ageing man. // Anat. Rec. 1987. - V.217, Nl.-P. 30-34.

219. Py G., Lambert K., Milhavet О. и др. Effects of streptozotocin-induced diabetes on markers of skeletal muscle metabolism and monocarboxylate transporter 1 to monocarboxylate transporter 4 transporters. // Metabolism. 2002.-N 51 (7).-P. 807-813.

220. Richter E.A. Influence of the sympatho-adrenal system on some metabolic and normal responses to exercise in the rat. // Acta Physiol. Scand. -Suppl.528. Copenhagen. - 1984. - P. 42.

221. Rivero J.L., Talmadge R.J., Edgerton V.R. Interrelationships of myofibrillar ATPase activity and metabolic properties of myosin heavy chain-based fibre types in rat skeletal muscle. // Histochem. Cell Biol. 1999. - N 111 (4).-P. 277-287.

222. Rowlerson A. Fibre types in the rat fourth deep lumbrical muscle during post-natal development. // J. Physiol. 1988. - V.406. - P. 68.

223. Saenko D.G., Saenko I.V., Shestacov M.P., Ivanov A.M., Kozlovskaia I.B. The effect of 120 day anti-orthostatic hypokinesia on the status of the posture regulation systems. // Aviakosm. Ekolog. Med. 2000. -N34 (5).-P. 6-10.

224. Saito Т., Ohnuki Y., Yamane A., Saeki Y. Effects of diet consistency on the myosin heavy chain m RNAs of rat masseter muscle during postnatal development. // Arch. Oral Biol. 2002. - N 47 (2). - P. 109-115.

225. Sakuma K., Saitoh A., Katsuta S. Denervation-induced region-specific changes in fibre types in the soleus and plantaris muscles of rats. // Acta Neuropathol. (Berl.). 1997. -N93 (2). - P. 129-135.

226. Sale D.G., McComas A.J. Neuromuscular adaptation in human thenar muscles following strenght training and immobilization. //J. Appl. Physiol.: Respir., Environ, and Exercise Physiol. 1982. - V.53, N 2. -P. 419-425.

227. Schantz P.G., Dhoot G.K. Coexistence of slow and fast isoform of contractile and regulatory proteins in human skeletal muscle fibers induced by endurance training. // Acta Physiol.Scand. 1987. - V.131, N 1. -P. 147-154.

228. Shear C.R., Sankey S.L., Resneek W.G., Bloch R.Y. Heterogeneity of the chicken ALD muscle: evidence for a minor, twitch fiber type. // Exp. Neurol. 1984. - V.85, N 3. - P. 506-522.

229. Spriet L.L., Ren J.M., Hultman E. Epinephrine infusion enhances muscles glycogenolysis during prolonged electrical stimulation. // J. Appl. Physiol. 1988. - V.64, N 4. - P. 1439-1444.

230. Staron R.S., Hikida R.S. Myofibrillar ATP-ase activity in human muscle fast-twitch subtypes. //Histochemistry. 1983. - V.78, N 3. - P. 405-408.

231. Steffen J.M., Fell R.D., Geoghegal Т.Е., Ringe L., Musaichia X.J. Age effects on rat hindlimb muscle atrophy during suspension unloading. // J. Appl. Physiol. 1990. - V.68, N 3. - P. 927-931.

232. Stonnington H.H., Engel A.G. Normal and denervated muscle. A morphometric study of fine structure. // Neurology. 1973. - V.23, N 7. -P. 714-724.

233. Suwa M., Nakamura Т., Katsuta S. Muscle fiber number is a possible determinant of muscle fiber composition in rats. // Acta Physiol. Scand. -1999.-N167 (3).-P. 267-272.

234. Sych, V.F., Ryabchenyuk, N.A. (Курносова Н.А.) and Revenkova, Y.A. Morphogenesis of maxillary muscles in white rats under hypodynamic conditions. // J. of morphology Bristol. - 1997. - V.232, N.3. - P. 329.

235. Szczepanovska J., Borovikov J.S., Jakubiec P.A. Effect of denervation, reinnervation and hypertrophy on the state of actine filaments in skeletal muscle fibers. // Eur. J. Cell. Biol. 1987. - V.73, N 3. - P. 394-402.

236. Talesara C.L., Jasra P.K. Differential response of slow fast twitch fibres to denervation in young and adalt rat EDL muscle. // Indian J. Exp. Biol. -1985.-V.23, N5.-P. 247-252.

237. Talesara C.L., Jasra P.K. Response of rat soleus muscle to tenotomy: acorrelative histochemical and biochemical study. // Indian J. Exp. Biol. -1984.-V.22,N9.-P. 467-470.

238. Templeton G.H., Padalino M., Manton J. и др. Influence of suspension hypokinesia on rat soleus muscle. // J. Appl. Physiol.: Respir., Environ, and Exercise Physiol. 1984. -V.56, N 2. - P. 278-286.

239. Thompson L.V. Skeletal muscle adaptations with age, inactivity and therapeutic exercise. // J. Orthop. Sports Phys. Ther. 2002. - Feb, N 32 (2).-P. 44-57.

240. Thorstensson A., Carison H. Fibre types in human lumbar back muscles. // Acta Phisiol. Scand. 1987. -V.131, N 2. - P. 195-202.

241. Timson B.F., Dudenhoeffer G.A. Skeletal muscle fibre number in the rat from youth to adulthood. // J. Anat. 1990. - V.173. - P. 33-36.

242. Tischler M.E., Slentz M. Impact of weightlessness on muscle function. // ASGSB Bull. 1995. - N 8 (2). - P. 73-81.

243. Trappe S., Williamson D., Godard M. и др. Effect of resistance training on single muscle fiber contractile function in older men. // J. Appl. Physiol. -2000. -N89 (1). P. 143-152.

244. Tsika R.W., Herrick R.E., Baldwin K.M. Effect of anabolic steroid on skeletal muscle mass during hindlimb suspension. // J. Appl. Physiol. -1987. V.63, N 5. - P. 2122-2127.

245. Tuxen A., Kirkeby S. An animal model for human masseter muscle: his-tochemical characterization of mouse, rat, rabbit, cat, dog, pig and cow masseter muscle. // J. Oral Maxillofac. Surg. 1990. - N 48 (10). -P. 1063-1067.

246. Vereb G., Bot G., Szucs K., Kovacs E., Erdodi F., Kalapos I., Szoor A., Rapcsak M., Szilagyi T. Effect of immobilization on some glycolytic enzymes of skeletal muscle. //Acta Physiol. Hung. 1984. - V.63, N 1. -P. 55-61.

247. Vigneron P., Dainat J., Bacon F. Properties des fibers muscularies squellettiques. II. Influences hormonales. // Reprod., Nutr., Dev. 1989. -V.29, N 1. - P. 27-53.

248. Vijayan К., Thompson J.L., Norenberg K.M., Fitts R.H., Riley D.A. Fiber-type susceptibility to eccentric contraction-induced damage of hindlimb-unloaded rat AL muscles. //J. Appl. Physiol. 2001. -N90 (3). -P. 770-776.

249. Vila L., Ferrando A., Voces J. и др. Effect of chronic ethanol ingestion and exercise training on skeletal muscle in rat. // Drug Alcohol Depend. -2001.-N64(1).-P. 27-33.

250. Vitti M., Basmajian J.V. Integrated actions of masticatory muscles: simultaneous EMG from eight intramuscular electrodes. // Anat. Rec. 1977. -V.187.-P. 173-190.

251. Walters T.J., Sweeney H.L., Farrar R.P. Aging does not affect contractile properties of type ПЬ FDL muscle in Fischer 344 rats. // Amer. J. Physiol. 1990. - V.258, N 6. - P. 1031-1035.

252. Wang L., Copray S., Brouwer N., Meek M.F., Kernell D. Regional distribution of slow-twitch muscle fibers after reinnervation in adult rat hind-limb muscles. // Muscle Nerve. 2002. - N 25 (6). - P. 805-815.

253. Wroblewski R., Arvidsson I., Jansson E. Effect of immobilization of human skeletal muscle. // J.Electron.Microsc. 1986. - V.35, suppl. N 4. -P. 3097-3098.

254. Yokogoshi H., Mita Т., Takase S., Goda Т., Hoshi T. Effects of suspension hypokinesia / hypodynamia on morphometric measurements of rat muscle fibers. // Agr. and Biol. Chem. 1990. - V.54, N 8. - P. 21272131.

255. Zendzian-Piotrowska M., Gorska M., Dworakowski W., Gorski J. Effect of triiodothyronine on phospholipid metabolism in skeletal muscles of the rat. // J. Physiol Pharmacol. 2000. - Mar, N 51 (1). - P. 103-110.

256. Zukowski F., Roels F. Automated cytometry of fiber size and spatial distribution in the superficial masseter muscle of the rat at three ages. // His-tochem. J. 1994. - N 26 (5). - P. 460-467.