Питание камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) на ранних стадиях онтогенеза в искусственных условиях тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.18, кандидат биологических наук Эпельбаум, Анна Борисовна

• Эпельбаум, Анна Борисовна
• кандидат биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Эпельбаум, Анна Борисовна

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

Глава 2. Материал и методика исследований.

2.1. Выращивание камчатского краба.

2.2. Морфо-функциональный анализ.

2.3. Изучение строения пищеварительной системы.

2.4. Корма и методы кормления.

2.5. Методика проведения экспериментов по питанию.

Глава 3. Изучение функциональной морфологии пищедобывательного аппарата и пищеварительной системы.

3.1. Классификация щетинок.

3.2. Функциональная морфология пищедобывательного аппарата.

3.2.1. Презоэа.

3.2.2. Личиночные стадии (зоэа I-IV).

3.2.3. Послеличиночная стадия (глаукотоэ).

3.2.4. Ювенильная стадия (малек).

3.3. Строение пищеварительной системы зоэа IV и глаукотоэ.

Глава 4. Экспериментальное изучение питания личинок.

4.1. Количественные закономерности питания.

4.2. Биотехнические аспекты использования различных кормов.

4.2.1. Науплии Artemia sp.

4.2.2. Науплии Balanus balanoides.

4.2.3. Комбикорма.

Глава 5. Обсуждение результатов исследований.

5.1. Анализ способа питания личинок.

5.2. Афагия глаукотоэ.

5.3. Кормление науплиями Artemia sp.

5.4. Кормление науплиями Balanus balanoides.

5.5. Применение комбикормов.

Выводы.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Питание камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) на ранних стадиях онтогенеза в искусственных условиях»

Актуальность исследования

Камчатский краб Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) является одним из важнейших промысловых видов ракообразных. В настоящее время численность природных популяций камчатского краба на Дальнем Востоке значительно снизилась из-за интенсивного промысла и ухудшения экологической обстановки в Мировом океане (Кобликов и др., 2002; Долженков, Кобликов, 2004). В связи с этим появилась необходимость в разработке технологии искусственного воспроизводства данного вида с целью регулирования и пополнения численности природных популяций. Начиная с 2000 года по инициативе Главрыбвода и Камчатрыбвода во Всероссийском научно-исследовательском институте рыбного хозяйства и океанографии (ВНИРО) проводится разработка технологии получения и подращивания личинок и молоди краба в контролируемых условиях до жизнестойких стадий (Ковачева, 2000; Ковачева, 2001). В природных условиях до стадии глаукотоэ выживает около 1% личинок, в то время как получение личинок в искусственных условиях позволяет увеличить эффективность воспроизводства на порядок и более (Ковачева, 2000). Важным элементом создания данной технологии является обеспечение оптимального кормления, особенно в период раннего онтогенеза, поскольку от этого во многом зависит успех дальнейшего культивирования. В связи с этим необходимо изучить питание камчатского краба на ранних, наиболее уязвимых стадиях развития, - личиночных и послеличиночных.

Успешный захват пищи личинкой во многом зависит от возможности ее конечностей захватить, удержать и подготовить пищевые частицы к дальнейшей обработке в желудочно-кишечном тракте. Для подбора оптимальных условий кормления личинок важно изучить морфологию, щетиночное вооружение и функционирование конечностей, входящих в состав их пищедобывательного аппарата. Под пищедобывательным аппаратом понимается совокупность органов и придатков тела, совместно участвующих в захвате и обработке пищевого объекта и образующих единое конструктивное целое (по: Павлов, 2000). Изучение пищевого поведения, пищедобывательного аппарата и пищеварительной системы личинок и послеличинок камчатского краба важно для подбора оптимального рациона, условий и методов их кормления и содержания.

Высокая смертность планктонных личинок камчатского краба на ранних стадиях развития во многом обусловлена недостаточностью запаса энергии, который они получают с кормом (Paul et al., 1989). Для успешного прохождения личиночного периода в искусственных условиях важно определить оптимальный качественный состав кормовых рационов, а также величину суточного рациона, достаточную для обеспечения физиологических потребностей личинок, но не приводящую к избытку пищи в выростных емкостях, поскольку при этом резко ухудшается гидрохимический режим и увеличивается риск возникновения бактериальных и грибковых инфекций (Zheng, Fang, 1998).

Впервые проведенное комплексное изучение особенностей питания камчатского краба на ранних стадиях развития необходимо для прояснения некоторых моментов биологии этого вида и повышения эффективности его искусственного воспроизводства.

Цель исследования - изучение способа питания, функциональной морфологии пищедобывательного аппарата, оптимального качественного и количественного состава кормовых рационов, а также кратности кормления камчатского краба на ранних стадиях развития (личиночных и послеличиночных).

Для достижения указанной цели нами поставлены следующие задачи:

• определить и описать способ питания личинок и послеличинок камчатского краба;

• изучить строение, взаиморасположение и функции конечностей и придатков тела, входящих в состав пищедобывательного аппарата личинок и послеличинок;

• изучить особенности строения пищеварительной системы личинок и послеличинок;

• сравнить особенности строения пищедобывательного аппарата и пищеварительной системы личинок и послеличинок и установить связь найденных различий с образом жизни соответствующих стадий развития;

• определить оптимальный качественный состав кормовых рационов для личинок и послеличинок;

• определить оптимальный количественный состав суточных рационов и кратность кормления для личинок всех стадий и послеличинок.

Научная новизна

Впервые проведено комплексное исследование питания камчатского краба в ходе личиночного и послеличиночного периода.

Подробно исследовано строение и функционирование конечностей пищедобывательного аппарата личинок, глаукотоэ и ювенильных особей. Впервые описано взаимодействие различных элементов пищедобывательного аппарата и способ питания личинок камчатского краба.

При помощи комплексного подхода (экспериментальные наблюдения, морфологический и гистологический анализ) доказана афагия глаукотоэ камчатского краба.

Экспериментально установлены величины суточных рационов зоэа I-IV стадий при кормлении науплиями Artemia sp. Описана зависимость между весом тела личинок и величиной их суточного рациона.

Практическое значение

Составлены рекомендации по кормлению личинок камчатского краба науплиями Artemia sp. при содержании в искусственных условиях, в том числе выведена формула для расчета расхода науплиев на основании суточных рационов личинок каждой стадии в зависимости от плотности посадки и объема выростной емкости. Точный расчет расхода кормов позволяет удовлетворить пищевые потребности личинок, свести к минимуму риск ухудшения гидрохимического режима и возникновения инфекций, а также сократить затраты на приобретение кормов.

Установлена зависимость между величиной суточного рациона и весом тела личинок камчатского краба на каждой стадии развития, что открывает определенные возможности для анализа трофической роли личинок камчатского краба в природных экосистемах.

Впервые проведены эксперименты по введению искусственных кормов в рацион личинок камчатского краба и определению влияния кормов на выживаемость личинок. Показана возможность использования сухих комбикормов серии Start производства компании Dana Feed (Дания) для личинок I-II стадий, что позволяет гарантированно производить кормление при отсутствии живого корма и тем самым повысить эффективность искусственного воспроизводства камчатского краба.

Установлено, что при содержании в искусственных условиях глаукотоэ камчатского краба кормить не следует.

Апробация

Основные положения диссертационной работы доложены на IV Всероссийской конференции по промысловым беспозвоночным (Калининград, 2002), симпозиуме «Холодноводная Аквакультура: старт в 21 век» (Санкт-Петербург, 2003), международной конференции «Aquaculture Еигоре-2003» (Трондхейм, Норвегия, 2003), II Международной научно-практической конференции «Человек и животные» (Астрахань, 2004), V научной конференции «Сохранение биоразнообразия Камчатки и прилегающих морей» (Петропавловск-Камчатский, 2004), Научно-практической конференции «О приоритетных задачах рыбохозяйственной науки в развитии рыбной отрасли России до 2020 года» (Москва, 2004), Международном научном семинаре «Проблемы репродукции и раннего онтогенеза морских гидробионтов» (Мурманск, 2004).

По теме диссертации опубликовано десять печатных работ, одна статья находится в печати.

Структура и объем работы

Диссертация состоит из введения, 5 глав, выводов, практических рекомендаций, списка литературы и приложения. Рукопись состоит из 138 страниц и включает 10 таблиц и 43 рисунка. Список литературы состоит из 170 источников, из них 103 на иностранных языках.

Заключение диссертации по теме «Гидробиология», Эпельбаум, Анна Борисовна

выводы

1. У презоэа камчатского краба конечности пищедобывательного аппарата имеют недоразвитое щетиночное вооружение и покрыты эмбриональной оболочкой. Презоэа не питается.

2. Личинки камчатского краба (зоэа I-IV стадий) имеют пищедобывательный аппарат грасперного типа и используют комбинированный способ питания. Локомоторную и пищевую циркуляцию обеспечивают экзоподиты максиллипед; основу ловчего аппарата составляют эндоподиты максиллипед; максиллярный отдел служит для фиксации и передачи пищи в ротовой отдел; функцией ротового отдела является первичная обработка грубой пищи.

3. Пищеварительная система у зоэа I-IV стадий полностью развита и соответствует описанию, сделанному Ф. Абрунозой и X. Киттака (Abrunhosa, Kittaka, 1997а, b).

4. На стадии глаукотоэ пищедобывательный аппарат и пищеварительная система развиты слабо.

5. Глаукотоэ камчатского краба не питается. Предположительный источник метаболической энергии глаукотоэ - липидные капли, накопленные в пищеварительной железе в ходе личиночного периода.

6. При кормлении личинок камчатского краба науплиями Artemia sp. суточные рационы зоэа I-IV стадий составляют 47.46, 94.08, 139.44 и 175.56 мкг сухого веса на экземпляр в сутки, соответственно.

7. Зависимость между весом тела личинок и их суточным рационом можно рассчитать по следующей формуле:

M=1.1659W 11673, где:

W - вес личинки (г сырого веса);

М - суточный рацион (г сырого веса/экз.).

8. Для кормления зоэа I стадии можно использовать сухие корма Start 100 и Start 300, для кормления зоэа II стадии - Start 300 (Dana Feed, Дания).

Комбикорма следует вносить 3-4 раза в сутки из расчета 50 мг/л и не реже 23 раз в сутки производить чистку дна выростных емкостей.

9. Для того, чтобы оптимизировать корма Start 100 и Start 300 для личинок камчатского краба, разработчикам (Dana Feed, Дания) можно порекомендовать проведение работ в направлении повышения плавучести указанных кормов.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ по кормлению личинок и глаукотоэ камчатского краба в искусственных условиях при температуре воды 8°С

1. Кормление личинок камчатского краба науплиями Artemia sp.:

1.1 Кормление целесообразно проводить два раза в сутки с интервалом в 12 часов, начиная с первого дня выклева.

1.2. Количество науплиев артемии на одно кормление (X) можно рассчитать для каждой стадии (зоэа I-IV) по следующей формуле: Х= V(MN/2w+160), где: X - расход науплиев на одно кормление, шт.; V - объем выростной емкости, л;

М - максимальный суточный рацион, составляющий для зоэа I-IV 47.46, 94.08, 139.44 и 175.56 мкг сухого веса на экземпляр, соответственно; N - плотность посадки личинок, экз./л; w - сухой вес одного науплия, мкг; 2 - константа; 160 - константа.

1.3 Ежедневно перед первым кормлением следует производить чистку дна выростных емкостей.

2. При отсутствии науплиев Artemia sp. в качестве замены можно использовать следующие комбикорма:

- на стадии зоэа I стартовый корм Start 100 и/или Start 300,

- на стадии зоэа II стартовый корм Start 300 (пр-во Dana Feed, Дания).

Комбикорм следует вносить из расчета 50 мг/л 3-4 раза в сутки, и не реже 23 раз в сутки производить чистку дна выростных емкостей.

3. Глаукотоэ следует содержать без пищи.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Эпельбаум, Анна Борисовна, 2004 год

1. Беклемишев В.Н. Проморфология // Основы сравнительной анатомии беспозвоночных. -М.: Наука, 1969. Т. 1. 441 с.

2. Беренбойм Б.И. Состояние запасов и перспективы рационального использования промысловых беспозвоночных Баренцева моря // Материалы отчетной сессии ученого совета ПИНРО, посвященной 80-летию института. -Мурманск: Изд-во ПИНРО, 2001. С. 69-72.

3. Борисов P.P. Морфо-функциональная организация, постэмбриональное развитие Pontastacus leptodactylus (Eschscholtz, 1823) (Decapoda, Astacidae) и его трофические связи в бассейнах Верхней Волги и Меты: Дис. . канд. биол. наук. -Москва. 2001. 201 с.

4. Борисов P.P., Ковачева Н.П. Стадия презоэа камчатского краба (Paralithodes camtschaticus) // Материалы междунар. симпоз. «Холодноводная аквакультура: старт в 21 век».- М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2003. С. 180-181.

5. Валовая М.А., Кавтарадзе Д.Н. Микротехника: правила, приемы, искусство, эксперимент. М.: Изд-во МГУ, 1993. 240 с.

6. Ван X. Некоторые сведения о запасах камчатского краба в районе островов Хоккайдо и Сахалин // Журнал рыболовства, 1937. № 515. С. 291-294.

7. Виноградов JL Г. Камчатский краб. Владивосток: Изд-во ТИНРО, 1941. 94с.

8. Гребницкий Н.А. Исследование морской фауны Великого океана в Авачинской губе // Изв. Вост. Сиб. Отд. ИРГО, 1880. Т. 2. № 1-2.

9. Григорьева Н.И., Федосеев В.А. О воспроизводстве камчатского краба в южном Приморье // Вестник ДВО РАН, 2000. № 1. С. 68-73.

10. Гусев Е.Е. Гипергалинная аквакультура. М.: Агропромиздат, 1990. - 159 с.

11. Долженков В.Н., Кобликов В.Н. Состояние западнокамчатской популяции камчатского краба ухудшилось до критического // Рыбное хозяйство, 2004. № 5. С. 42-44.

12. Закс И.Г. Обзор исследований по камчатскому крабу P. camtschatica и смежным видам Paralithodes И Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура: обзорная информация. М.: ВНИЭРХ, 1998. Вып. 7. С. 1-23.

13. Зенкевич Л.А. Жизнь животных. М.: Изд-во Просвещение, 1968. Т 2. С. 499-529.

14. Зубкова Н.А. Опыт содержания камчатского краба в аквариуме // Тр. ММБИ, 1964. Вып. 5(9). С. 105-113.

15. Иванов А.В., Мончадский А.С., Полянский Ю.И., Полянский А.А. Большой практикум по зоологии беспозвоночных. М.: Высшая школа, 1983. 540 с.

16. Камчатский краб в Баренцевом море (результаты исследований ПИНРО в 1993-2000 гг.). Мурманск: Изд-во ПИНРО, 2001. 198 с.

17. Камшилов М.М. Материалы по биологии личинок усоногих ракообразных Восточного Мурмана // Труды ММБС, 1958. Т. 4. С. 56-67.

18. Карпевич А.Ф. Акклиматизация гидробионтов и научные основы аквакультуры // Избранные труды. М.: Изд-во ВНИРО, 1998. Т. 2. 870 с.

19. Клитин А.К. Распределение и продолжительность развития личинок камчатского краба у западного побережья Сахалина // Труды СахНИРО, 2002. Т. 4. С. 212-228.

20. Клитин А.К. Камчатский краб (Paralithodes camtschaticus) у берегов Сахалина и Курильских островов: биология, распределение и функциональная структура ареала. М.: Изд-во ФГУП «Нацрыбресурсы», 2003. 253 с.

21. Ковачева Н.П. Воспроизводство камчатского краба (Paralithodes camtschaticus) с использованием искусственной морской воды в аппаратах типа "Акватрон" // Аналит. и реферат, информ. сер. Марикультура. -М.: ВНИЭРХ, 2000. Вып. 4. С. 14 -26.

22. Росинформагротех». С. 54-55.

23. Куватани Ю. Культивирование камчатского краба и приморского гребешка в Японии // Биология моря, 1989. № 1. С. 66-71.

24. Левин B.C. Камчатский краб Paralithodes camtschaticus: биология, промысел, воспроизводство. СПб.: Ижица, 2001. 198 с.

25. Литвиненко Л.И., Мамонтов Ю.П., Иванова О.В., Литвиненко А.И., Чебанов М.С. Инструкция по использованию артемии в аквакультуре. -Тюмень: СибрыбНИИпрект, 2000. 58 с.

26. Макаров P.P. Личинки креветок, раков-отшельников и крабов западно-камчатского шельфа и их распределение. М.: Наука, 1966. 164 с.

27. Масленников С.И. Технология крабового фермерства на акватории дальневосточных морей // Дальний Восток России: экономика, инвестиции, конъюктура, 1998. № 1. С. 34-38.

28. Масленников С.И., Кашин И.А., Левин B.C. Промысел и воспроизводство камчатского краба у берегов Приморья // Вестник ДВО РАН, 1999. № 3. С. 100-106.

29. Микулин А.Е. Живые корма. -М.: Дельфин, 1994. 104 с.

30. Мина М.В., Клевезаль Г.А. Рост животных. М.: Наука, 1976. 291с.

31. Навозов-Лавров Н.П. Материалы по этиологии и по промыслу краба в зал. Петра Великого // Производительные силы Дальнего Востока. Хабаровск -Владивосток, 1927. Вып. 4 (Животный мир Владивосток). С. 181-211.

32. Накадзава К. Изучение камчатского краба о-ва Хоккайдо // Зоол. журнал, 1912. Т. 24. С. 1-13.

33. Орлов Ю.И. О проблеме акклиматизации промысловых крабов в Баренцевом море // Тр. Всесоюзного гидробиологического общества, 1962. Т. XII. С. 400-409.

34. Орлов Ю.И. Акклиматизация промысловых крабов в Северо-Восточной Атлантике: обоснование и первые результаты // Аквакультура: ОИ ВНИЭРХ, 1994. Вып. 1.С. 55.

35. Орлов Ю.И. Акклиматизация промысловых крабов: характеристика объектов вселения // Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура: обзорная информация. -М.: ВНИЭРХ, 1995. Вып. 4. С. 1-40.

36. Павлов В.Я. Периодическая система членистых. М.: Изд-во ВНИРО, 2000.186 с.

37. Павлов В.Я. Жизнеописание краба камчатского Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815). М., Изд-во Москва, 2003. 110 стр.

38. Патент 2174750 Россия, МПК7 А01К61/00. Способ воспроизводства крабов (варианты) / В.Я. Федосеев, Н.И. Григорьева (Россия). № 98114577/13. Заявл. 20.06.2000; Опубл. 20.10.2001.

39. Патент 2200386 Россия, МПК' А01К61/00. Способвоспроизводстваракообразных (камчатский краб) / Н.П. Ковачева (Россия). № 2001135398/13. Заявл. 27.12.2001; Опубл. 20.03.2003.

40. Патент РФ на полезную модель 40841 Россия,

41. МПК7 А01К61/00. Устройство для инкубации яиц артемии салина / Н.П. Ковачева, А.В. Жигин, А.В. Калинин, P.O. Лебедев. -№ 20041170002/22(019008) Заявл. 09.06.04 г.; Пол. решение ФИПС от 14.06.2004; Опубл. 10.10.2004 г.

42. Перечень рыбохозяйственных нормативов: предельно допустимые концентрации (ПДК) и ориентировочно безопасные уровни воздействия (ОБУВ) вредных веществ для водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. -М.: Изд-во ВНИРО, 1999. 304 с.

43. Пономарев С.В., Гамыгин Е.А., Никоноров С.И., Пономарева Е.Н. Технологии выращивания и кормления объектов аквакультуры юга России (справочное, учебное пособие). -Астрахань: «Нова плюс», 2002. 264 с.

44. Ржепишевский И.К. Размножение усоногого рачка Balanus balanoides (L.) на Восточном Мурмане // Труды ММБИ, 1960. Вып. 2 (6). С. 114-136.

45. Родин В.Е. Пространственная и функциональная структура популяций камчатского краба // Изв. ТИНРО, 1985. Т. 110. С. 86 97.

46. Слизкин А., Сафронов С. Промысловые крабы прикамчатских вод. -Петропавловск-Камчатский: Изд-во «Северная пацифика», 2000. 180 с.

47. Спекторова JI.B. Живые корма для рыб и беспозвоночных. -М.: Агропромиздат, 1990. 175 с.

48. Сущеня JI.M. Количественные закономерности метаболизма и трансформации вещества и энергии ракообразными: Автореферат дис. . канд. биол. наук. М., 1969. 24 с.

49. Сущеня JLM. Количественные закономерности питания в связи с обменом и ростом ракообразных // Энергетический обмен водных животных. Труды ВГБО, 1973. Т. 18. С. 93-117.

50. Сущеня J1.M. Количественные закономерности питания ракообразных. -Минск: Наука и техника, 1975. 208 с.

51. Федосеев В.Я., Родин В.Е. Воспроизводство и формирование популяционной структуры камчатского краба // Динамика численности промысловых животных Дальневосточных морей. Владивосток: ТИНРО, 1986. С. 35-46.

52. Федосеев В.Я., Григорьева Н.И. Способы выращивания крабов на искусственных сооружениях // Тезисы докладов Международной научно-практической конференции «Прибрежное рыболовство XXI век» 19-21 сентября 2001 г. - Южно-Сахалинск, 2001. С. 119-120.

53. Фенюк В.Ф. Анализ содержимого желудков камчатского краба // Изв. ТИНРО, 1945. Т. 19. С. 71 78.

54. Хуфтаммер М.К., Кузьмин С.А., Ольсен С. Исследования камчатского краба, акклиматизированного в Северо-Восточной Атлантике // Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура: обзорная информация. -М., ВНИЭРХ, 1997. Вып. 8. С. 3-14.

55. Эпельбаум А.Б. Афагия глаукотоэ камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) // VI Всероссийская конференция по промысловым беспозвоночным: Тезисы докладов. М.: Изд-во ВНИРО, 2002. С. 67-69.

56. Abrunhosa F.A., Kittaka J. Morphological changes in the midgut, midgut gland and hindgut during the larval and postlarval development of the red king crab, Paralithodes camtschaticus II Fisheries science (Tokyo), 1997b. Vol. 63. № 5. P. 746 -754.

57. Achituv Y., Blackstock J., Barnes M., Barnes H. Some biochemical constituents of stage I and II nauplii of Balanus balanoides (L.) and the effect of anoxia on stage I // J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 1980. Vol. 42. № 1. P. 1 12.

58. Anger K. Physiological and biochemical changes during lecithotrophic larval development and early juvenile growth in the northern stone crab, Lithodes maja (Decapoda, Anomura) // Mar. Biol., 1996. Vol. 126. P. 283 -296.

59. Barker P.L., Gibson R. Observations on the feeding mechanism, structure of the gut and digestive physiology of the european lobster Homarus gammarus (L.) (Decapoda, Nephropidae) // J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 1977. Vol. 26. P. 297 324.

60. Berkes F. Some aspects of feeding mechanisms of euphausiid crustaceans // Crustaceana, 1975. Vol. 29. № 3. P. 266-270.

61. Bigford Т.Е. Effect of several diets on survival, development time and growth of laboratory-reared spider crab, Libinia emarginata, larvae // Fishery Bull. Natl. Mar. Fish. Serv. U.S., 1978. Vol. 76. P. 59-64.

62. Blau S.F. Kodiak kings in a SAK // Alaska's Wildlife, 1992. Vol. 24. № 2. P. 2627.

63. Blau S.F., Byersdorfer S.C. Sausage-shaped artificial collector developed in Alaska to study young-of-the year red king crabs // Bull. Mar. Sci., 1994. Vol. 55. P. 113118.

64. Bookhout C.G. Salinity effects on the larval development of Pagurus bernhardus (L.) reared in the laboratory // Ophelia, 1964. Vol. 1. № 2. P. 275-294.

65. Bookhout C.G. Larval development of the hermit crab Pagurus alatus reared in the laboratory // Crustaceana, 1972. Vol. 22. P. 215-238.

66. Bouvier L. Sur la classification des Lithodines // Annales des sciences naturelles. Zoologie, 1896. Ser. 8. T. 18.

67. Brick R.W. Effects of water quality, antibiotics, phytoplankton and food on survival and development of larvae of Scylla serrata (Crustacea: Portunidae) // Aquacuture, 1974. Vol. 3. P. 231-244.

68. Bright D. Life histories of the king crab, Paralithodes camtschatica, and Tanner crab, Chionoecetes bairdii, in Cook Inlet, Alaska // Ph.D. thesis. University of Southern California. Los Angeles, 1967. 265 p.

69. Campodonico I., Guzman L. Larval development of Paralomis granulosa (Jacquinot) under laboratory conditions (Decapoda, Anomura, Lithodidae) // Crustaceana, 1981. Vol. 40. P. 272 285.

70. Cannon H.G., Manton S.M. On the feeding mechanism of a mysid Crustacea, Hemimysis lamornae II Trans. Roy. Soc. Edinburgh, 1927. Vol. 55. P. 219 253.

71. Chen J-C., Chin T-S., Acute toxicity of nitrite to tiger prawn, Penaeus monodon, larvae // Aquaculture, 1988. Vol. 69. № 3-4. P. 253-262.

72. Chen L., Jiang H., Zhou Z., Yang J., Zhu, J., Zhang D. Effects of omega-3 HUFA on survival rate and body fatty acids composition of Erioheir sinensis larvae // J. Fish. China, 2000. Vol. 24. № 5. P. 448-452.

73. Coffin H.G. The laboratory culture of Pagurus samuelis (Stimpson) (Crustacea, Decapoda) // Walla College Publ., 1958. Vol. 22. P. 1-5.

74. Dawirs R.R. Elemental composition (C, N, H) and energy in the development of Pagurus bernhardus (Decapoda: Paguridae) megalopa // Marine Biology, 1981. Vol. 64. P. 117-123.

75. Donaldson W.E., Byersdorfer S., Pengilly D., Blau S.F. Growth of red king crab, Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815), in artificial habitat collectors at Kodiak, Alaska// J. Shellfish. Res., 1992. Vol. 11. № 1. P. 85-89.

76. Factor J.R. Morphology of the mouthparts of larval lobsters Homarus americanus (Decapoda: Nephropidae) with special emphasis on their setae // Biol. Bull., 1978. Vol. 154. P. 383 408.

77. Factor J.R. Development and metamorphosis of the digestive system of larval lobsters, Homarus americanus (Decapoda: Nephropidae) // J. Morphol., 1981. Vol. 169. P. 225 242.

78. Factor J.R. The digestive system // Factor J. R. Biology of the lobster Homarus americanus. Acad. Press, New York, 1995. P. 395 440.

79. Factor J.R., Dexter B.L. Suspension feeding in larval crabs (Carcinus maenas) II J. Mar. Biol. Ass. U. K„ 1993. Vol. 73. № 1. P. 207 211.

80. Foxon G.E.H. Observations on the locomotion of some arthropods and annelids // Ann. Mag. Nat. Hist., 1936. Ser. 10, 18. P. 403 419.

81. Gao S., Zou D. Toxicity of nitrite to the larvae of Penaeus penicillatus II J. Oceanogr. Taiwan Strait, 1994. Vol. 13. № 3. P. 236-239.

82. Gibson R., Barker P.L. The decapod h3IIKtopancreas // Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev., 1979. Vol. 17. P. 285 346.

83. Gonor S.L., Gonor J.J. Feeding, cleaning and swimming behavior in larval stages of porcellanid crabs (Crustacea: Anomura) // Fishery Bull. U. S. Natn. Ocean. Atmos. Admn., 1973. Vol. 71. № 1. P. 225 234.

84. Haynes E. description of the larvae of the golden king crab, Lithodes aequispina, reared in the laboratory II Fishery Bull., 1982. Vol. 80. P. 305 313.

85. Hoffman E.G. Description of laboratory-reared larvae of Paralithodes platypus (Decapoda, Anomura, Lithodidae) // J. Fish. Res. Bd. Can., 1968. Vol. 25. № 3. P. 439 -455.

86. Jayasankar P., Muthu M.S. Toxicity of ammonia to the larvae of Penaeus indicus Jl Indian J. Fish., 1983a. Vol. 30. № 1. P. 1-12.

87. Jayasankar P., Muthu M.S. Toxicity of nitrite to the larvae of Penaeus indicus II Indian J. Fish., 1983b. Vol. 30. № 2. P. 231-240.

88. Kanazawa A., Teshima S., Kobayashi Т., Iwashita Т., Kawasaki M. Rearing of the larval crab, Portunus trituberculatus, with the artificial microparticulate diets // Mem. Fac. Fish. Kagoshima Univ., 1983. Vol. 32. P. 121-127.

89. Kawai T. Culture of young-crab stages of the king crab Paralithodes camtschaticus II Ten-day report of Hokkaido Fisheries Experiment Station, 1940. Vol. 469. P. 143-144.

90. Kobayashi Т., Takeuchi Т., Arai D., Sekiya S. Suitable dietary levels of EPA and DHA for larval mud crab during Artemia feeding period // Nippon Suisan Gakkaishi, 2000. Vol. 66. №6. P. 1006-1013.

91. Konishi K. Larval development of spiny of sand crab Lophomastix japonica (Durufle, 1889) (Crustacea, Anomura, Albuneidae) under laboratory conditions 11 Publ. Seto Mar. Biol. Lab., 1987. Vol. 32. № 1/2. P.123-139.

92. Konishi K. Larval development of Paralomis hystrix (De Haan, 1846) (Crustacea, Anomura, Lithodidae) under laboratory conditions // Bull. Natl. Res. Inst. Aquacult., 1994. Vol. 23. P. 43 54.

93. Konishi K., Quintana R. The larval stages of Pagurus brachiomastus (Thallwitz, 1892) (Crustacea, Anomura) reared in the laboratory II Zool. Sci., 1987. Vol. 4. P. 349 -365.

94. Kovatcheva N.P. Observations on rearing red king crab, Paralithodes camtschaticus zoea and glaucothoe in a recycling water system // Crabs in Cold Water

95. Regions: Biology, Management, and Economics, January 17-20, 2001. Anchorage, Alaska, USA, 2001. P. 273-282.

96. Kurata H. Studies on the larva and postlarva of Paralithodes camtschatica. I. Rearing of the larvae, with special reference to the food of the zoea // Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., 1959. Vol. 20. P. 76-83.

97. Kurata H. Studies on the larva and postlarva of Paralithodes camtschatica. II. Feeding habits of the zoea // Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., 1960a. Vol. 21. P. 1 -8.

98. Kurata H. Studies on the larva and postlarva of Paralithodes camtschatica. III. The influence of temperature and salinity on the survival and growth of the larvae // Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., 1960b. Vol. 21. P. 9 14.

99. Kurata H. Studies on the larva and postlarva of Paralithodes camtschatica. IV. Growth of the larvae and postlarvae // Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., 1961. Vol. 1. P. 1 9.

100. Mann D.L., Asakawa Т., Pizzutto M., Keenan C.P., Brock I.J. Investigations of an Artemia-based diet for larvae of the mud crab Scylla serrata // Asian Fisheries Science, special issue, 2001. Vol. 14. № 2. P. 175-184.

101. Marukawa H. Biological and fishery research on Japanese king crab, Paralithodes camtschatica (Tilesius) // Joum. Imp. Fish. Exp. Stat. Tokyo, 1933. Vol. 37. № 4. 152 p.

102. McLaughlin P.A. Internal anatomy and physiological regulation // Mantel L.H. The biology of Crustacea. Vol. 5. Academic Press, New York, 1983. P. 1 52.

103. McMahon J.W. Some physical factors influencing the feeding behavior of Daphnia magna Straus. // Canad. J. Zool., 1965. Vol. 43. № 4. P. 603-611.

104. Nakanishi Т., Kuwatani Y., Kahata H. The relationship between carapace length and body weight of the larvae and post larvae of Paralithodes camtschaticus II Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., 1974. Vol. 40. P. 32 37.

105. Nakanishi Т., Naryu M. Some aspects of large-scale rearing of larvae and post-larvae of the king crab (Paralithodes camtschatica) II Bull. Japan Sea Reg. Fish.Res. Lab., 1981. Vol. 32/P. 39-47.

106. Nakanishi T. Rearing conditions of eggs, larvae, and postlarvae of king crab Paralithodes camtschaticus II Bull. Jpn. Sea Nat. Fish. Res. Inst., 1987. Vol. 37. P. 57 -161.

107. Nakanishi Т. Effects of environment on seedlings of the king crab, Paralithodes camtschatica // Sinderman C. J. Environmental quality and aquaculture systems. NOAA Tech. Rep. NMFS, Seattle, 1988. Vol. 69. P. 25 35.

108. Omi H., Mizushima T. Research on the culture of the king crab Paralithodes camtschaticus II Report on the experiments to develop aquaculture techniques for Paralithodes camtschaticus. Hokkaido, 1980. P. 1-64.

109. Omori M. Preliminary rearing experiments on the larvae of Sergestes lucens (Penaeidae, Natantia, Decapoda) // Mar. Biol., 1971. Vol. 9. № 3. P. 228 234.

110. Ostrensky A., Poersch L.H. Acute toxicity of nitrite on larval rearing pink shrimp Penaeus paulensis Perez-Farfante, 1967 //Neritica, 1992. Vol. 7. № 1-2. P. 101-107.

111. Pang J., Yang M., Yan W., Chen X. Rearing of the larvae of the barnacle Balanus reticulatus Utinomi //Nanhai Studia Mar. Sin., 1980. Vol. 1. P. 119-124.

112. Paul A.J., Paul J.M., Shoemaker P.A., Feder H.M. Prey concentrations and feeding response in laboratory-reared stage-one zoeae of king crab, snow crab, and pink shrimp // Transaction of the American Fisheries Society, 1979. Vol. 108. P. 440-443.

113. Paul A. J., Paul J. M. The effect of early starvation on later feeding success of king crab zoea // J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 1980. Vol. 44. № 2 3. P. 247 - 251.

114. Paul A.J., Paul J.M., Coyle K.O. Energy sources for first-feeding zoea of king crab Paralithodes camtschatica (Tilesius) (Decapoda: Lithodidae) // J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 1989. Vol. 130. № 1. P. 55 -70.

115. Pechenik J.A. Delayed metamorphosis by larvae of benthic marine invertebrates: does it occur? Is there a price to pay? // Ophelia, 1990. Vol. 32. P. 63 94.

116. Qui J-W., Quian P-Y. Effects of food availability, larval source and culture methods on larval development of Balanus amphitrite Darwin: Implications for experimental design // J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 1997. Vol. 27. № 1. P. 47-61.

117. Rainbow P.S., Walker G. The functional morphology and development of the alimentary tract of larval and juvenile barnacles (Cirripedia: Thoracica) // Mar. Biol., 1977. Vol. 42. № 4. P. 337 349.

118. Rice A.L., Ingle R.W. The larval development of Carcinus maenas (L.) and C. mediterraneus (Czerniavsky) (Crustacea, Brachyura, Portunidae) reared in the laboratory // Bull, of the British Museum (Natural History) (Zoology), 1975. Vol. 28. P. 103 119.

119. Robertson R.M., Laverack M.S. The structure and function of the labrum in the lobster Homarus gammarus (L.) // Proc. R. Soc. Lond. Ser. В., 1979. Vol. 206 (1163). P. 209-233.

120. Sato S., Tanaka S. Study on the larval stage of Paralithodes camtschatica (Tilesius). I. About morphological research // Hokkaido Fish. Exp. Stat. Res. Rep. № 1, 1949. Vol. l.P. 7-24.

121. Sato S. Studies on larval development and fishery biology of king crab, Paralithodes camtschatica (Tilesius) // Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., № 17, 1958. P. 102.

122. Shelton R.G.J., Laverack M.S. Receptor hair structure in the lobster Homarus gammarus // J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 1970. Vol. 4. № 3. P. 201-210.

123. Shimizu J. Outline of the rearing experiment on king crab zoea // Hokkaido Prefectural Fisheries Experimental Station. Ten-day Report. № 327, 1939. 408 p.

124. Shirley S.M., Shirley T.C. Photoresponses and swimming ability of red king crab larvae // American Zoologist, 1987. Vol. 27. № 4. P. 103.

125. Shirley S.M., Shirley T.C. Interannual variability in density, timing and survival of Alaskan red king crab, Paralithodes camtschatica, larvae // Mar. Ecol. Prog. Ser., 1989. №54. P. 51-59.

126. Stevens B.G., Kittaka J. Postlarval settling behavior, substrate preference, and time to metamorphosis for red king crab Paralithodes camtschaticus II Mar. Ecol. Prog. Ser., 1998. Vol. 167. P. 197 206.

127. Strathman R.R. Feeding and nonfeeding larval development and life-history evolution in marine invertebrates // Annu. Rev. Ecol. Syst., 1985. Vol. 16. P. 339 361.

128. Sulkin S.D. The significance of diet in the growth and development of larvae of the blue crab, Callinectes sapidus, under laboratory conditions // J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 1975. Vol. 20. P. 119-135.

129. Sulkin S.D., Epifanio C.E. Comparison of rotifers and other diets for rearing early larvae of the blue crab, Callinectes sapidus Rathburn. // Estuar. Coast. Mar. Sci., 1975. Vol. 3.P. 109-113.

130. Sulkin S.D., McKeen G.L. The significance of feeding history on the value of heterotrophic microzooplankton as prey for larval crabs // Mar. Ecol. Progr. Ser., 1999. Vol. 186. P. 219-225.

131. Takeuchi I. On the distribution of zoeal larvae of king crab, Paralithodes camtschatica, in the southeastern Bering Sea in 1960 // Bull. Hokkakido Reg. Fish. Res. Lab., 1962. №24. P. 163-170.

132. Takeuchi T. Essential fatty acid requirements of aquatic animals with emphasis on fish larvae and fmgerlings // Rev. Fish. Sci., 1997. Vol. 5 (1). P. 1-25.

133. Takeuchi Т., Nakamoto Y., Hamasaki K., Sekiya S., Watanabe T. Requirements of n-3 highly unsaturated fatty acids for larval swimming crab Portunus trituberculatus H Nippon Suisan Gakkaishi, 1999a. Vol. 65. P. 797-803.

134. Takeuchi Т., Sato N., Sekiya S., Shimiu Т., Watanabe T. The effect of dietary EPA and DHA on the molting rate of larval swimming crab Portunus trituberculatus И Nippon Suisan Gakkaishi, 1999b. Vol. 65. P. 998-1004.

135. Tamaru C.S., Ako H., Paguirigan R. Jr., Pang L. Enrichment of Artemia for use in freshwater ornamental fish production // Center for Tropical and Subtropical Aquacullture, 1999. Publ. No. 133. 24 pp.

136. Tsai S., Chen J. Acute toxicity of nitrate on Penaeus monodon juveniles at different salinity levels // Acuaculture, 2002. Vol. 213. № 1-4. P. 163-170.

137. Urcera M.J., Arnaiz R., Rua N., Coo A. Rearing of spider crab Maja squinado: feeding influence on the larval development // Astas del IV Congresso National de Acuicultura. Centro de Investigaciones Marinas, Pontevedra (Spain), 1993. P. 269-274.

138. Watanabe Т., Lavens P., Sorgeloos P., Jaspers E., Ollevier F. Importance of docosahexaenoic acid in marine larval fish // Larvi'91 Special Publication, European Aquaculture Society, 1991. No. 15. P. 19.

139. Wolfe S.H., Felgenhauer B.E. Mouthparts and foregut ontogeny in larval, postlarval, and juvenile spiny lobster Panulirus argus (Decapoda, Palinuridae) // Zool. Scripta, 1991. Vol. 20. P. 57 75.

140. Zhang J., Rao G., Wang Z., Meng X., Kong L., Xuan Z., Cao Z., Yang D. Production effect of Erioheir sinensis larvae culture with micro-capsulated diets to replace living foods // J. Shanghai Fish. Univ., 1998. Vol. 7. P. 235-240.

141. Zhao J-H., Lam T.J., Guo J-U. Accute toxicity of ammonia to the early-stage larvae and juveniles of Eriocheir sinensis H. Milne-Edwards, 1853 (Decapoda: Grapsidae) reared in the laboratory // Aquaculture research, 1997. Vol. 28. № 7. P. 517525.

142. Zheng Y., Fang H. Technique for prevention and treatment of common desease in seed-rearing of river crab // Shandong fisheries Yantai, 1998. Vol. 15. № 5. P. 31 34.

143. Zou D., Gao S. Toxicity of ammonia to larvae of Penaeus penicillatus II J. Oceanogr. Taiwan Strait, 1994. Vol. 13. № 2. P. 133-137.