Особенности функционирования физико-химической системы регуляции перекисного окисления липидов в биологических объектах разной степени сложности в норме и при действии повреждающих факторов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.02, доктор химических наук Шишкина, Людмила Николаевна

• Шишкина, Людмила Николаевна
• доктор химических наук
• 2003

Оглавление диссертации доктор химических наук Шишкина, Людмила Николаевна

Список сокращений

Введение

Материалы и методы

Глава 1. Кинетические характеристики липидов тканей животных в реакциях автоокисления

Глава 2. Роль антиоксидантного статуса в формировании радиобиологических последствий облучения млекопитающих в зависимости от тяжести лучевого поражения

2.1. Вклад антиоксидантов в обеспечение радиорезистентности млекопитающих при остром лучевом поражении

2.2. Роль антиоксидантного статуса в формировании последствий биологического действия излучения в малых дозах

Глава 3. Физико-химическая системы регуляции перекисного окисления липидов в клетках микроорганизмов

3.1. Роль процессов перекисного окисления липидов в жизнедеятельности прокариот

3.2. Роль параметров системы регуляции перекисного окисления липидов в токсигенизации среды условно-патогенной микрофлорой

3.3 Регуляция процессов перекисного окисления липидов в дрожжевых клетках

3.4 Перекисное окисление липидов и его регуляция в мицелии ксилотрофных базидиомицетов

Глава 4. Взаимосвязь между параметрами системы регуляции перекисного окисления липидов в норме и при действии повреждающих факторов

4.1 Влияние интенсивности окислительных процессов и обеспеченности клеток микроорганизмов и тканей животных антиоксидантами на взаимосвязь между параметрами системы регуляции перекисного окисления липидов

4.2. Влияние мощности и дозы ионизирующего излучения на взаимосвязь между параметрами системы регуляции перекисного окисления липидов

4.3. Воздействие химического токсиканта на состояние процессов перекисного окисления липидов в тканях мышей 277 Заключение 291 Выводы 327 Список литературы

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ АО - антиоксидант, антиоксидантный АОА - антиокислительная активность АЛА - антипероксидная активность АПС - арахисовая питательная среда АСД - абсолютно сухие дрожжи KJI - кардиолипин

ЛВС - лиофильно-высушенная среда

ЕЛОФЛ - сумма более легкоокисляемых фракций фосфолипидов ЛФХ - лизоформы фосфолипидов ОЛ - общие липиды

ПАВ - поверхностно-активные вещества ПОЛ - перекисное окисление липидов РПН - ранняя преходящая недееспособность СВ - сухое вещество СМ - сфингомиелин СОД - супероксидоксидаза

ТБК-АП (ТБК-активные продукты) - продукты, реагирующие тиобарбитуровой кислотой

ЕТОФЛ - сумма более трудноокисляемых фракций фосфолипидов

ТФ - токоферол

ФГ - фосфатидилглицерин

ФИ - фосфатидилинозит

ФК - фосфатидная кислота

ФЛ - фосфолипиды

ФС - фосфатидилсерин

ФХ - фосфатидилхолин

ФЭ - фосфатидилэтаноламин

ХС - холестерин

ЦНС - центральная нервная система

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Особенности функционирования физико-химической системы регуляции перекисного окисления липидов в биологических объектах разной степени сложности в норме и при действии повреждающих факторов»

В связи с развитием мембранологии в начале 70-х годов началось активное изучение регуляторной роли липидов в норме и при развитии многих патологий. Общепризнано, что липиды выполняют не только структурные и барьерные функции, но и являются специфическими регуляторами внутриклеточных процессов [72, 202, 226, 371, 515]. Фосфолипиды (ФЛ), одни их важнейших структурных элементов мембранной системы клетки, участвуют в проведении биопотенциала, регуляции иммунологических реакций и других важнейших метаболических процессов [51, 52, 159, 202, 266, 371, 387]. Было установлено, что мембрана является плейотроп-ной, кооперативной системой, изменения в которой следует рассматривать в терминах теории слабых взаимодействий. Неудивительно, что рядом авторов мембрана, наряду с ДНК, начала рассматриваться как одна из мишеней действия облучения на клетку [437, 438, 667]. Изменения состава ФЛ, их упорядоченности и упаковки в бислое играют существенную роль в процессах адаптации клеток к окружающим условиям [21, » 226, 386].

Уже в 50-х годах появилась гипотеза о важности окислительных реакций в липидах для развития лучевого поражения и злокачественного роста [370, 426]. Позже было установлено, что процесс перекисного окисления липидов (ПОЛ) протекает во всех типах мембран высших эукариот и участвует в регуляции клеточного метаболизма как в норме, так и при развитии патологических процессов. Стационарность ПОЛ в интактной мембране обеспечивается физико-химической системой регуляции окислительных реакций в липидах, параметрами которой являются антиокислительная активность (АОА) и состав липидов, способность их к окислению, структурные переходы в компонентах мембран [22, 468, 470]. Было показано также, что эта система играет существенную роль в процессах опухолевого роста, нейродегенеративных, кардиоваскулярных и других патологиях [302,305,470, 601].

К началу наших исследований практически отсутствовали данные о кинетических свойствах липидов в реакциях автоокисления, единичные работы были посвящены изучению процессов ПОЛ в клетках прокариот и грибов [46, 397], не была ясна роль перечисленных выше параметров физико-химической системы регуляции и взаимосвязь между ними в биологических объектах разной степени сложности в норме, не изучен вклад параметров этой системы в обеспечение устойчивости биологических объектов к действию повреждающих и экологически неблагоприятных факторов, практически отсутствовали сведения о состоянии процессов ПОЛ в тканях мышевидных грызунов, обитающих в разных радиоэкологических условиях (техногенное радиоактивное загрязнение, повышенный естественный радиационный фон). Актуальность и важность исследований в этом направлении обусловлены поиском подходов к систематическому анализу механизма регуляции процессов ПОЛ в разных биологических объектах, необходимостью детального изучения биофизических механизмов взаимодействия клеток со средой, исследования взаимосвязей в тканях и баланса функций в организме для оценки биологических последствий воздействия повреждающих факторов в малых дозах и при низких интенсивностях, выработки стратегии и поиска терапевтических средств при действии ионизирующего излучения с низкой мощностью дозы и потребностей биотехнологии.

В связи с изложенным целью данной работы явилось изучение особенностей функционирования физико-химической системы регуляции процессов ПОЛ в норме и при действии повреждающих факторов в биологических объектах разной степени сложности: клетки микроорганизмов (прокариоты, дрожжи, мицелий базидиомицетов), ткани лабораторных грызунов и животных из природных популяций.

В соответствии с этим задачами работы являлись: разработать модель и изучить кинетические характеристики липидов, выделенных из разных биологических объектов, обусловливающих их участие в реакциях низкотемпературного автоокисления; исследовать взаимосвязь между параметрами физико-химической системы регуляции ПОЛ в клетках грамотрицательных бактерий, дрожжей и мицелия ксилотрофных базидиомицетов разных таксономических групп и выявить их роль в процессах взаимодействия клеток микроорганизмов со средой культивирования; исследовать вклад параметров физико-химической системы регуляции ПОЛ в обеспечение природной радиорезистентности животных разных видов и линий в широком диапазоне доз облучения и их роль в репарации мембран после действия ионизирующего излучения в минимально летальных дозах; изучить чувствительность и способность к нормализации параметров физико-химической системы регуляции ПОЛ в тканях животных, различающихся обеспеченностью антиоксидантами (АО), в отдаленные сроки после воздействия ионизирующего излучения в широком диапазоне доз и интенсивности, а также после воздействия химических токсикантов; провести сравнительное исследование взаимосвязей между параметрами системы антиоксидантной (АО) защиты, относящимися к разным субклеточным компартментам, изучить взаимосвязи между обобщенными показателями состава ФЛ в клетках и тканях выше перечисленных биологических объектов в норме и после действия повреждающих и экологически неблагоприятных факторов. сопоставить функционирование физико-химической системы регуляции ПОЛ в тканях лабораторных грызунов и животных, обитающих в природной среде.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Способность липидов из клеток микроорганизмов и тканей животных участвовать в реакциях низкотемпературного автоокисления на стадиях зарождения радикалов и продолжения цепи обусловлена кинетическими характеристиками липидов: АОА липидов; степень торможения окисления (СТО) липидами метилолеата; количество пероксидов в липидах; антипероксидная активность (АПА), т.е. способность разлагать перок-сиды на молекулярные продукты без образования свободных радикалов.

2. Наличие физико-химической системы регуляции ПОЛ в клетках грамотрицательных бактерий, дрожжей разных таксономических групп и штаммов и мицелия дереворазрушающих грибов разных таксономических групп; влияние процессов ПОЛ на регуляцию метаболизма клеток микроорганизмов в норме и при повреждающих воздействиях, а также в процессах «общения» клеток со средой культивирования.

3. Существование взаимосвязи между параметрами физико-химической системы регуляции ПОЛ на клеточном и органном уровнях в биологических системах разной степени сложности.

4. Вклад параметра физико-химической системы регуляции ПОЛ, являющегося ведущим в обеспечении функционирования сложной биологической системы в норме и при действии повреждающих факторов, обусловлен обеспеченностью липидов АО, степенью их ненасыщенности и интенсивностью процессов ПОЛ в системе.

5. Однотипность кинетических свойств липидов и взаимосвязей между параметрами физико-химической системы регуляции в органах лабораторных грызунов и животных из природных популяций. Определяющая роль мембран как координатора регуляции ПОЛ при воздействии слабых повреждающих и экологически неблагоприятных факторов на лабораторных животных и на животных, обитающих в природной среде.

Научная новизна: Впервые показано, что участие липидов в реакциях низкотемпературного автоокисления на стадиях зарождения радикалов и продолжения цепи обусловлено кинетическими характеристиками липидов (АОА и АЛА, СТО метилолеата, количеством пероксидов в липидах) и зависит от интенсивности процесса окисления.

Экспериментально установлено наличие физико-химической системы регуляции ПОЛ в клетках микроорганизмов: грамотрицательные бактерии, дрожжи разных родов и рас, мицелий ксилотрофных базидиомицетов. Обнаружена обратная корреляционная зависимость между величинами ЛДю и соотношениями сумм более легкоокисляемых и более трудноокисляемым фракций фосфолипидов при облучении разных штаммов грамотрицательных бактерий.

Экспериментально доказано, что в биологических системах, липиды которых проявляют преимущественно прооксидантные свойства в реакциях низкотемпературного автоокисления и характеризуются относительно высокой интенсивностью процессов ПОЛ (клетки грамотрицательных бактерий, дрожжей и мицелия дереворазрушающих грибов; селезенка, эритроциты крови и головной мозг лабораторных животных) ведущим звеном физико-химической системы регуляции ПОЛ, обеспечивающим их функционирование в норме и в ответ на повреждающее воздействие, является состав липидов и степень их ненасыщенности. В печени животных, липиды которой обладают преимущественно высокой АОА и характеризуются наиболее низкой интенсивностью ПОЛ среди исследованных биологических объектов, ведущим звеном системы регуляции ПОЛ, обеспечивающим функционирование в норме и при действии неблагоприятных экологических факторов, является АОА липидов.

Впервые показана in vivo нелинейность изменения параметров физико-химической системы регуляции ПОЛ в тканях животных как при радиационных воздействиях в малых дозах в зависимости от дозы облучения и ее мощности, так и при наличии химических токсикантов в низких дозах в питьевой воде животных в зависимости от их суммарной концентрации. Установлена высокая чувствительность параметров системы регуляции ПОЛ к действию низкоинтенсивного облучения и химических токсикантов в малых дозах. Это свидетельствует об определяющей роли мембран как координатора регуляции окислительных реакций при воздействии слабых повреждающих факторов.

Впервые установлены скоординированные изменения параметров системы АО защиты, относящихся к разным субклеточным компарт-ментам, в клетках микроорганизмов и тканях животных; обнаружена взаимосвязанность АОА липидов с биофизическими характеристиками, отражающими структурное и физиологическое состояние органов; показано наличие корреляционных взаимосвязей между обобщенными показателями состава ФЛ, отражающими окисляемость липидов и структурное состояние мембранной системы клетки или тканей, масштаб и направленность которых обусловлены кинетическими свойствами липидов и обеспеченности их АО. Совокупность экспериментальных данных и анализ литературы позволили сформулировать положение о функционировании процессов ПОЛ мембранной системы клетки и органа как единого целого и сделать вывод как об общности механизма регуляции клеточного метаболизма окислительными реакциями в липидах независимо от сложности биологического объекта, так и о существовании физико-химической системы регуляции ПОЛ на клеточном и органном уровнях. Предложена схема взаимосвязей между параметрами этой системы.

Показана важная роль АО статуса в определении устойчивости как к действию повреждающих факторов, так и в формировании биологических последствий низкоинтенсивного облучения в малой дозе. Высокая чувствительность показателей липидного обмена эритроцитов крови к слабым воздействиям позволяет прогнозировать возможность их использования для оценки биологических последствий воздействия неблагоприятных экологических факторов физической и химической природы (низкоинтенсивное облучение в малой дозе, наличие химических токсикантов в питьевой воде в низких концентрациях).

Установлена общность функционирования физико-химической системы регуляции ПОЛ в тканях лабораторных животных и животных, обитающих в природной среде.

Совокупность проведенных исследований позволяет сформулировать создание нового научного направления "физико-химическая экология" (оценка биологических последствий воздействия неблагоприятных экологических факторов на биоту по состоянию системы регуляции ПОЛ тест-объектов).

Научно-практическая значимость. Данная работа является фундаментальным научным исследованием, в котором экспериментально доказано существование физико-химической системы регуляции ПОЛ на клеточном и органном уровнях в биологических объектах разной степени сложности и выявлены особенности взаимосвязей между параметрами данной системы в зависимости от обеспеченности липидов АО и интенсивности процессов ПОЛ в системе. Проведенное комплексное исследование состояния параметров физико-химической системы регуляции ПОЛ в клетках микроорганизмов, тканях лабораторных грызунов и животных природных популяций позволило оценить вклад параметров этой системы в обеспечение ее функционирования в зависимости от кинетических свойств липидов, обеспеченности их АО и интенсивности процесса окисления.

Проведенное исследование состояния физико-химической системы регуляции ПОЛ в биологических объектах разной степени сложности вносит существенный вклад в физико-химическую биологию, углубляя понимание биофизических механизмов функционирования биообъектов в норме и при воздействии повреждающих и экологически неблагоприятных факторов в зависимости от тяжести поражения и природы воздействия.

Экспериментально доказанная нелинейность изменения параметров системы регуляции ПОЛ при воздействии неблагоприятных экологических факторов химической и радиационной природы; существенное изменение характера распределения диких мышевидных грызунов по величинам АОА липидов их печени и мозга в зависимости от радиорезистентности вида, степени радиоактивной загрязненности участка отлова и времени действия радиационного фактора позволяют прогнозировать возможность ревизии таких понятий в нормировании, как "предельно допустимая концентрация" и оценка риска от экологических загрязнений.

Экспериментально показанная взаимосвязь между АО свойствами и составом липидов в клетках микроорганизмов и среде культивирования позволила объяснить появление эффекта неспецифической токсигенизации липидсодержащих сред при росте на них условно-патогенной микрофлоры и обнаружить стимулирующее действие АО в определенных концентрациях на процессы клеточной пролиферации дрожжей рода Candida (Авторское свидетельство № 1306111 от 22 декабря 1986 г.). Установление взаимосвязей между интенсивностью ПОЛ и биодеградацией древесины представляет интерес в связи с поиском экологически чистых и менее энергоемких способов разложения компонентов древесины.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Объекты исследования

Основным предметом исследования являлись липиды, выделенные из следующих биологических объектов:

1. олиготрофные и евтрофные бактерии Renobacter vacuolatum, Flectobacillus major WKM-859, Pseudomonas fluorescens, Methylobacterium organophilum 220, Arcocella aquatica 502, Deinococcus radiodurans 1422; клетки бактерий были предоставлены для исследований сотрудниками ИНМИ РАН (зав. лаб. д.б.н., проф. Д.И. Никитин);

2. среды после роста условно-патогенных штаммов бактерий Escherichia coli, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumonia, Citrobacter freundii 1922; культивирование бактерий проводилось аспиранткой МГУПП О.Г. Лысюк и инженером Е.В. Идрисовой в Институте эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи (зав. лаб. к.м.н. И.И. Самойленко);

3. штаммы дрожжевых клеток Saccharomyces cerevisiae (дикий тип, гаплоидные и диплоидные), Pichia guillermondii (гаплоидные и диплоидные), Pichia pinus (гаплоидные и диплоидные) (предоставлены для исследований сотрудниками лаборатории радиационной биофизики Биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова, зав. лаб. д.б.н., проф. Ю.Б. Кудряшов); «Виерул» (Shizosaccharomyces pombe), КП-1 (Sizosac-charomyces acidodevoratus), Шампанская-21 и сухие шампанские дрожжи СШД (обе расы Saccharomyces oviformis), пленочные дрожжи Х-96К и X-41В (Saccharomyces oviform, cheres), дрожжи Т-198, Т-197, 32, Т-8 (Saccharomyces vini) (коллекция кафедры «Технология продуктов переработки винограда МГУПП); Candida maltosa (культивирование клеток проводили аспиранты КХТИ им. С.М. Кирова З.Ш. Мингалеева и С.Е. Сметанина во ВНИИсинтезбелок);

4. мицелий ксилотрофных базидиомицетов: Panus tigrinus ИБК-13, Gloeophyllum sepiarium ВМК F 708, Fomes fomentarius M71, Ganoderma lucidium Ml48, Laetiporus sulphureus M131, Piptoporus betulinus M60, Shizophyllum commune Ml4, Serpula sclerotiorum Ml8 (выращивание мицелия проведено г.н.с. Института микробиологии АН Беларуси, д.б.н. А.Н. Капичем);

5. клеточные органеллы (ядра и митохондрии) печени и селезенки мышей SHK и линии Balb/c; органы и кровь лабораторных животных разных видов и линий: мыши SHK и линий CBA/J, Balb/c; крысы беспородные, Сибсы и линий Wistar и Август; золотистые хомяки и морские свинки;

6. печень катрана (предоставлена для исследования сотрудниками Объединения «Грузбиохимфармпрепараты», зав. лаб. к.б.н. А.В. Клочко); ткани и кровь мышевидных грызунов, обитающих в природных условиях (совместные исследования в рамках договора о научно-техническом содружестве с Институтом биологии Коми НЦ УрО РАН).

Биофизические и биохимические методы

Липиды из исследуемых объектов выделяли по методу Блая и Дайе-ра в модификации Кейтса [196]. В некоторых экспериментах экстракцию липидов осуществляли смесью хлороформ:эфир (1:1, по объему). Качественный и количественный состав фосфолипидов (ФЛ) определяли методом ТСХ на силикагеле типа G или Н (фирма Sigma), используя системы растворителей хлороформ/метанол/ледяная уксусная кислота/вода в соотношениях 50:30:8:4 или 60:50:1:4 [42]. Проявление хроматограмм проводили в парах йода. После удаления пятен с пластинки и сжигания отдельных фракций ФЛ хлорной кислотой о количестве неорганического фосфата судили по интенсивности образования фосфорномолибденового комплекса в присутствии аскорбиновой кислоты спектрофотометрически при 810 нм на спектрофотометре DU-50 (фирма «Вескшап», США). Для построения калибровочных прямых использовали калий фосфорнокислый однозамещенный марки ос.ч. Помимо анализа доли основных фракций ФЛ, оценивали обобщенные показатели состава липидов: содержание ФЛ в составе общих липидов (%ФЛ); отношение фосфатидилхолин/фос-фатидилэтаноламин (ФХ/ФЭ) и соотношение сумм более легко (ЛО)- к более трудноокисляемым (ТО) фракциям ФЛ (ЕЛОФЛ/ХТОФЛ). Последнее вычисляли по формуле: ЕЛОФЛ/ГГОФЛ = (ФИ + ФС + ФЭ + КЛ + ФК)/(ЛФХ + СМ + ФХ), где ФИ - фосфатидилинозит, ФС - фосфатидил-серин, КЛ - кардиолипин, ФК — фосфатидная кислота, ЛФХ - лизоформы ФЛ, СМ — сфингомиелин.

Содержание стеринов определяли спектрофотометрически при 625 нм по методу [673]. Содержание а-токоферола (ТФ) в липидах определяли спектрофлуориметрически по методу [503]. Интенсивность флуоресценции измеряли на спектрофлуориметре SP-850 фирмы Hitachi (Япония) при X возбуждения 323 нм и X испускания 295 нм. Для построения соответствующих калибровочных прямых использовали холестерин и а-ТФ фирмы «Serva» (ФРГ). Суммарную ненасыщенность липидов тканей определяли методом озонирования [322] с помощью анализатора двойных связей DBA (фирма «АММО», ИХФ РАН) при длине волны 254 нм в инертных по отношению к озону растворителях (CCI4, CHCI3). В качестве стандарта использовали сцинтилляционный стильбен. Количество белка в плазме крови и гомогенатах органов определяли с помощью модифицированного биуретового метода [573]. Содержание продуктов, взаимодействующих с 2-тиобарбитуровой кислотой, анализировали по методу [370] с добавлением в среду инкубации 10 мкл 0,01%-ного спиртового раствора ионола [443]. Уровень сульфгидрильных групп в тканях определяли по методу Элмана в модификации Седлака [663]. Гидролазную активность М§2+-зависимой АТФазы определяли рН-метрическим методом [669.]

Величину АОА липидов определяли на метилолеатной окислительной модели [63] по способности липидов тормозить термическое автоокисление метилолеата при 37,0° ± 0,1° С. Процесс окисления протекал в кинетической области. За ходом окисления следили по количеству пероксидов, уровень которых определяли йодометрически по методу [39] или в соответствии со стандартной методикой ГОСТ 26593. За величину периода индукции принимали время, в течение которого концентрация пероксидов достигала значения 0,02 ммоль/г. Модельный субстрат окисления - метилолеат - предварительно очищали перегонкой в вакууме. Однако поскольку при определении уровня АОА липидов приходилось работать с разными партиями метилолеата, имеющих разную начальную скорость зарождения цепей (W0), обусловленную вариациями как содержания примесей метиллинолеата, так и начального количества пероксидов в перегнанном метилолеате, то все полученные результаты приведены к стандартным значениям. Для определения скорости зарождения цепей в разных партиях метилолеата использовали метод ингибиторов, т.е. термическое окисление метилолеата в присутствии ионола. Соответствующая калибровочная прямая приведена на рис. 1. Величину АОА вычисляли по формуле:

АОА = [(т опыт - т0)/С] х Wo/Wo станд., где Топыт - период индукции окисления растворов липидов в метилолеате, т0 - период индукции окисления чистого метилолеата, Wo ставд. - скорость зарождения цепей стандартного метилолеата, Wo - скорость зарождения цепей в опытной партии субстрата. В качестве стандарта выбран метилолеат, скорость зарождения которого равна 2,91x10'10 М.с"1 , а период индукции окисления 20 час.

Рис. 1. Калибровочная прямая для определения скорости зарождения радикалов по величине периода индукции окисления метилолеата

Т= 37° С)

Разделение тканей на органеллы осуществляли методом дифференциального центрифугирования. Выделение ядер проводили по методу [481]. Чистоту ядерной фракции контролировали микроскопически, окрашивая мазки метиловым зеленым пиронином. Количество клеток печени, синтезирующих ДНК, определяли методом радиоавтографии [163].

Кровь отбирали в пробирки, обработанные 5%-ным раствором цитрата натрия. Кровь разделяли на компоненты центрифугированием [462].

Структурное состояние разных областей мембран оценивали методом слабосвязанного парамагнитного зонда [236]. Для этих целей использовали стабильные нитроксильные радикалы, локализующиеся в различных областях мембран: 2,2,6,6-тетраметил-4-каприлоилоксипиперидин-1-оксил (зонд 1, локализуется в более гидрофобных областях ФЛ бислоя [113]); 5,6-бензо-2,2,6,6-тетраметил-1,2,3,4-тетрагидро-у-карболин-3-ок-сил (зонд 2, локализуется в более гидрофильных областях липидной компоненты мембран, т.е. в липидах, непосредственно «прилегающих» к мембранным белкам [41]); 2,2,4,5,5-пентаметил-1-гидрокси-3-имидазолин

-3-оксид (зонд 3, химические свойства которого [498] позволяют предположить локализацию по всему объему ФЛ бислоя). Работа с зондами осуществлялась в соответствии с разработанным для клеточных органелл методом [66, 116]. Зонды для исследования были предоставлены с.н.с. ИБХФ РАН, к.б.н. А.Н. Голощаповым. Регистрацию спектров ЭПР проводили на радиоспектрометрах ЭПР Е4 (Varian), (фирма Brucker, ФРГ) и Radiopan Sex-2544 (Польша). Времена вращательной корреляции зондов рассчитывали по общепринятой для быстро вращающихся зондов формуле [236]. Структурные формулы зондов, типичный спектр ЭПР и формула для расчета времен вращательной корреляции приведены на рис. 2.

Состояние тканей мышей оценивали с помощью метода ПМР [286] на импульсном ЯМР-релаксометре «Minispec рс-120» (фирма «Brucker», ФРГ) при частоте 20 мгц и температуре 30°С. Измерения проведены сотрудниками группы с.н.с. ИХФ РАН, к.физ.-мат.н. Л.И. Мурзы. Электронные спектры поглощения регистрировали на спектрофотометре «Specord UV-VIS» (фирма «Karl Zeiss», ГДР).

Работа с животными

Острое рентгеновское облучение мышей проводили на установке РУТ-200-20-3. Режим работы: 210 кв, 15 мА. фильтр Си-0.5 мм, мощность дозы 44 - 47 Р/мин. Острое рентгеновское облучение крыс, золотистых хомяков и морских свинок проводили на установке РУП-1 в ИПЭ им. А.Н. Северцова РАН. Режим работы: 190 кВ, 15 мА, фильтр Си 0,5 мм + А1 0,75 мм, мощность дозы 52,5 Р/мин. Крыс в дозе 500 Гр подвергали воздействию электронов высоких энергий на линейном ускорителе ЛУЭ-8 при мощности дозы 50 Гр/с в ГНЦ Институт биофизики МЗ РФ. Мышей в дозе 15 сГр с разной мощностью у-излучения облучали на установке ГУТ-Со-60. Мощность дозы 0,01 сГр/мин (продолжительность облучения 25 час), 0,25 сГр/мин (продолжительность облучения 1 час) и 9 сГр/мин

C7K,5-cdck >Q

N-Q'

ЗондЗ о

Тс = 6,5 ЛН (■ vr

-i о

If-i - 1)10 сек

Рис.2. Структурные формулы и типичный спектр ЭПР использованных в работе спиновых зондов и формула для расчета их времен вращательной корреляции продолжительность облучения 1 мин 40 сек). Мышей облучали в клетках при сохранении корма и питья при мощности дозы 0,01 сГр/мин и только питья - при 0,25 сГр/мин. Мышей опытных и контрольных групп при забое либо разбивали на подгруппы по 2 - 4 животных в каждой, либо анализировали показатели у индивидуальных животных.

Беспородным крысам экспериментальный термический ожог III - IV степени наносили кипятком (площадь ожога 8 - 12 % поверхности тела) или пламенем спиртовой горелки (площадь ожога 10-20 % поверхности тела).

Добавление черного щелока (отходы целлюлозного производства) в питьевую воду мышам SHK (самки) проводили ежедневно в концентрациях 0,005 %; 0,015 % и 0,05 %.

Общее количество животных в экспериментах 10 000 шт.

Статистическая обработка результатов

Статистическую обработку результатов проводили общепринятыми методами вариационной статистики [37, 251] и с помощью пакета компьютерных программ KINS [55]. На рисунках и в таблицах экспериментальные данные представлены в виде средних арифметических с указанием средних квадратичных ошибок среднего арифметического. Вариабельность показателя оценивали как отношение средней квадратичной ошибки среднего арифметического к величине среднеарифметического значения показателя для анализируемой группы и выражали в процентах [251]. Для оценки степени воздействия хронического низкоинтенсивного излучения на состояние природных популяций мышевидных грызунов использовали биометрические методы анализа, поскольку характерным свойством биологических признаков является вариабельность их величины в определенных пределах [591].

Заключение диссертации по теме «Биофизика», Шишкина, Людмила Николаевна

выводы

1. С помощью разработанной модели показано, что кинетические характеристики липидов (ЛОА и АПА липидов, степень торможения окисления ими метилолеата, начальное количество пероксидов) обусловливают их участие в процессах низкотемпературного автоокисления на стадиях зарождения радикалов и продолжения цепи. Установлено, что липиды грамотрицательных бактерий, мицелия дереворазрушающих грибов белой гнили, эритроцитов крови и головного мозга животных проявляют только прооксидантные свойства на метилолеатной окислительной модели независимо от вида и скорости зарождения радикалов в модельной системе; липиды дрожжевых клеток, мицелия дереворазрушающих грибов бурой гнили и селезенки животных могут обладать как антиокси-дантными, так и прооксидантными свойствами в зависимости от вида и условий эксперимента; липиды печени лабораторных животных обладают преимущественно антиоксидантными свойствами и отличаются высокой вариабельностью величины АОА как у отдельных особей, так и между группами животных.

2. Экспериментально доказано наличие физико-химической системы регуляции ПОЛ в клетках микроорганизмов: грамотрицательные бактерии, дрожжи разных таксономических групп и штаммов, мицелий ксилотрофных базидиомицетов разных таксономических групп. Обнаружена высокая лабильность антиоксидантных свойств и состава липидов микроорганизмов в зависимости от сезона и среды культивирования. Установлены взаимосвязанные изменения антиоксидантных свойств и состава липидов в клетках грамотрицательных бактерий и дрожжей и в среде культивирования, что обусловливает появление неспецифической токсигенизации липидсодержащих сред при росте на них условнопатогенной микрофлоры и свидетельствует о важной роли процессов ПОЛ в обеспечении функционирования клеток микроорганизмов.

3. Впервые обнаружены скоординированные изменения параметров системы антиоксидантной защиты, относящихся к разным субклеточным компартментам, в клетках микроорганизмов и тканях животных, показано наличие корреляционных взаимосвязей между обобщенными показателями состава фосфолипидов, характеризующими окисляемость липидов и отражающими структурное состояние мембранной системы клетки или ткани, обнаружена существенная зависимость масштаба и направленности этих корреляционных взаимосвязей от кинетических свойств липидов и обеспеченности их АО. Совокупность экспериментальных и литературных данных позволяют сформулировать положение о функционировании процессов ПОЛ мембранной системы клетки и органа как единого целого. Это обусловливает общность механизма регуляции клеточного метаболизма окислительными реакциями в липидах биологических объектов разной степени сложности и свидетельствует о существовании физико-химической системы регуляции ПОЛ на клеточном и органном уровнях. Предложена схъма взаимосвязей между параметрами этой X системы.

4. Установлена общность кинетических свойств липидов и однотипность взаимосвязей между параметрами физико-химической системы регуляции ПОЛ в органах лабораторных животных и животных природных популяций (дикие мышевидные грызуны, катран). Это позволяет предположить, что система антиоксидантной защиты достаточно устойчива и способна сохранять видовую специфичность биофизических и биохимических параметров на клеточном и органном уровнях для осуществления регуляции ПОЛ в тканях животных природных популяций. Более высокая вариабельность АОА липидов органов и относительно низкие значение этого показателя в печени вследствие высокой степени ненасыщенности липидов, очевидно, являются необходимым условием для поддержания гомеостаза и нормального функционирования клеточных систем в органах диких животных в среде обитания.

5. Впервые показано, что в биологических системах, липиды которых проявляют преимущественно прооксидантные свойства в условиях низкотемпературного автоокисления и характеризуются относительно высокой интенсивностью процессов ПОЛ (клетки грамотрицательных бактерий, дрожжей и мицелия дереворазрушающих грибов; селезенка, эритроциты крови и головной мозг лабораторных животных) ведущим звеном физико-химической системы регуляции ПОЛ, обеспечивающим их функционирование в норме и при действии повреждающих факторов, является состав липидов и степень их ненасыщенности. Для липидов печени животных, обладающих достаточно высокой АОА и характеризующихся наиболее низкой интенсивностью ПОЛ среди всех исследованных биологических объектов, ведущим звеном системы регуляции ПОЛ, обеспечивающим функционирование в норме и при действии неблагоприятных экологических факторов, является АОА липидов.

6. Экспериментально показаны прямые корреляционные взаимосвязи между резистентностью 11 видов и линий животных и величиной АОА липидов органа, являющегося критическим при действии острого облучения в диапазонах доз, вызывающих костномозговую, кишечную или церебральную форму гибели. Показана важная роль физико-химической системы регуляции ПОЛ в репарации мембран после острого облучения животных в минимально летальных дозах. Вклад АОА липидов и эндогенных тиолов в обеспечении радиорезистентности организма зависит от тяжести лучевого поражения: исходный уровень АОА липидов является основным фактором в обеспечении радиорезистентности животных при низких дозах острого облучения и играет существенную роль в формировании биологических последствий низкоинтенсивного облучения в малой дозе.

7. Установлено, что в отдаленные сроки после облучения в сублетальных и малых дозах одним из наиболее чувствительных параметров физико-химической системы регуляции ПОЛ в липидах селезенки мышей является их способность к образованию пероксидов и состав липидов, а в эритроцитах крови - состав липидов. Спустя месяц после острого лучевого воздействия в сублетальных дозах наиболее вариабельным показателем системы регуляции ПОЛ в печени животных является величина АОА липидов. Острое рентгеновское облучение и в малой, и в сублетальной дозах вызывает нарушение взаимосвязи между величиной АОА липидов печени и количеством ТБК-активных продуктов в гомогенате ткани.

8. Впервые показано, что изменения относительного содержания не только минорных, но и основных фракций фосфолипидов в отдаленные сроки после облучения животных в сублетальных дозах происходят в тканях с низким АО статусом (селезенка, эритроциты крови), а при воздействии ионизирующей радиации в малых дозах изменение доли основных фракций фосфолипидов обнаружены во всех исследованных тканях (печень, селезенка, эритроциты крови, головной мозг) и лабораторных животных, и мышевидных грызунов, отловленных в зоне аварии на Чернобыльской АЭС.

9. Впервые показана in vivo нелинейность изменения параметров физико-химической системы регуляции ПОЛ (АОА липидов, содержание ТБК-активных продуктов, соотношение фракций фосфолипидов) в тканях животных как при радиационных воздействиях в малых дозах в зависимости от дозы облучения и ее мощности, так и при наличии химических токсикантов в питьевой воде животных в зависимости от их суммарной концентрации. Обнаружены существенные изменения вида распределения мышевидных грызунов, отловленных в зоне аварии на Чернобыльской АЭС, по величинам АОА липидов их печени и головного мозга в зависимости от радиорезистентности вида, степени радиоактивного загрязнения участка отлова и времени действия радиационного фактора. Высокая чувствительность параметров системы регуляции ПОЛ к действию низкоинтенсивного облучения в малых дозах и наличию химических токсикантов в питьевой воде свидетельствует об определяющей роли мембран как координатора регуляции окислительных реакций в липидах при воздействии слабых повреждающих факторов.

10. Предположено, что изменение направленности и масштаба взаимосвязей между параметрами физико-химической системы регуляции ПОЛ при действии повреждающих факторов является информационным сигналом, определяющим выбор адаптационной стратегии организма в неблагоприятных условиях обитания. Обнаруженная высокая чувствительность показателей липидного обмена эритроцитов крови животных к слабым воздействиям позволяет прогнозировать возможность их использования в качестве тестов для оценки биологических последствий воздействия неблагоприятных экологических факторов (низкоинтенсивное облучение, наличие химических токсикантов в питьевой воде в низких концентрациях).

Список литературы диссертационного исследования доктор химических наук Шишкина, Людмила Николаевна, 2003 год

1. Абдвахитова А.К., Пархоменко И.М., Соколова Т.Н. Исследование изменений клеточных мембран фибробластов китайского хомячка при лазерном и рентгеновском облучении с помощью флуоресцентного зонда //Радиобиология. 1982.№2. С. 155 159.

2. Абдрашитова С.А., Абдуллина Г.Г., Илялетдинов А.Н. Роль арсени-тов в перекисном окислении липидов в клетках Pseudomonas putida, окисляющих арсенит // Микробиология. 1986. Т. 55. Вып. 2. С. 212 216.

3. Абдрашитова С.А., Абдуллина Г.Г., Илялетдинов А.Н., Орлов В.К. Влияние арсенита на перекисное окисление липидов и жирнокислотный состав клеток Algaligenes eutrophus II Микробиология. 1988. Т. 57. Вып. 2. С. 231 -235.

4. Абдрашитова С.А., Мынбаева Б.Н., Абдуллина Г.Г., Айдарханов Б.Б., Илялетдинов А.Н. Взаимосвязь между окислением арсенита и липидов при развитии арсенитокисляющих микроорганизмов // Докл. АН СССР. 1990. Т. N 3. С. 737 740.

5. Абдрашитова С.А., Мынбаева Б.Н., Айдарханов Б.Б., Илялетдинов А.Н. Действие арсенита на перекисное окисление липидов и активность антиоксидантных ферментов у арсенитокисляющих бактерий // Микробиология. 1990. Т. 59. Вып. 2. С. 234 239.

6. Адамович В.Л., Меркушина О.С. Влияние малых доз радиации на биологические изменения в популяционных группировках мышевидных грызунов // Радиац. биология. Радиоэкология. 1997. Т. 37. Вып. 3. С. 303 -311.

7. Алавердиева С., Кривова А. Антиоксидантный баланс в косметических средствах // Косметика & медицина. 1999. 1. N С. 11 15.

8. Алесенко А.В. Роль липидов в передаче информационных сигналов клеточной пролиферации и экспрессии онкогенов // Биоантиоксиданты: теоретические и прикладные аспекты / Под ред. У.К. Ибрагимова, Е.Б. Бурлаковой. Ташкент: ФАН, 1995. С. 83 112.

9. Алесенко А.В. Роль фосфолипидов в функциональной активности клеточного ядра. Автореф. дис. д-ра биол. наук. Черноголовка, 1987.49 с.

10. Алесенко А.В. Функциональная роль сфингозина в индукции пролиферации и гибели клеток // Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 1. С. 75 82.

11. Алесенко А.В., Бурлакова Е.Б. Роль фосфолипидов в синтезе ДНК в клетках млекопитающих // Докл. АН СССР. 1976. Т. 229. N 1. С. 199 202.

12. Алесенко А.В., Бурлакова Е.Б., Пантаз Э.А. Влияние сфингомие-лина на активность РНК-полимераз в ядрах нормальной и регенерирующей печени крыс // Биохимия. 1984. Т. 49. вып. 4. С. 621 628.

13. Алесенко А.В., Дубинская Н.И., Бурлакова Е.Б. Суточные колебания антиокислительной активности липидов и суточный ритм митозов в органах интактных мышей // Биофизика. 1971. Т. 16. N 3. С. 476 481.

14. Алесенко А.В., Красильников В.А., Бойков П.Я. Участие сфинго-миелина в образовании связи ДНК с ядерным матриксом // Докл. АН СССР. 1983. Т. 273. N 1. С. 231 234.

15. Алесенко А.В., Пальмина Н.П. Роль липидов в функциональной активности и биосинтезе ДНК в нормальных и опухолевых клетках // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М: Наука, 1982. С. 84- 100.

16. Алесенко А.В., Соловьев А.С., Терентьев А.А., Хренов А.В. Роль продуктов сфингомиелипового цикла в развитии апоптоза, индуцированного через рецепторы Fas, и фактора некроза опухоли альфа // Изв. РАН. Сер. биол. 1998. N2. С. 157 166.

17. Алешина Н.П., Бурлакова Е.Б., Терехова С.Ф. Влияние фосфолипидов на окисление метилового эфира олеиновой кислоты // Биофизика. 1976. Т. XXI. N 5. С. 944 946.

18. Алмагамбетов К.Х., Горская Е.М., Бондаренко В.М. Транслокация кишечной микрофлоры и ее механизмы // Ж. микробиол., эпидемиол., иммунолог. 1991. N 10. С. 74 79.

19. Антонов В.Ф., Смирнова Е.Ю., Шевченко Е.В. Липидные мембраны при фазовых превращениях. М.: Наука, 1992. 136 с.

20. Аристархова С.А., Архипова Г.В., Бурлакова Е.Б., Гвахария В.О., Глущенко Н.Н., Храпова Н.Г. Регуляторная роль взаимосвязи изменений в концентрации антиоксидантов и составе липидов клеточных мембран // Докл. АН СССР, 1976. Т. 228. N 1. С. 215-218.

21. Аристархова С.А., Бурлакова Е.Б., Заяц Т.Л. Перекисное окисление липидов в субклеточных органеллах печени при термическом ожоге // Вопр. мед. химии. 1983. Т. 29. Вып. 4. С. 102 106.

22. Аристархова С.А., Бурлакова Е.Б., Храпова Н.Г. К вопросу о взаимосвязи природных антиоксидантов в липидах // Биофизика. 1974. Т. 19. N. 4. С. 688-691.

23. Архипова Г.В. Исследование состава липидов различных по радиочувствительности органов и клеточных органелл на ранних стадиях лучевого поражения. Автореф. дис. канд. биол. наук. Пущино., 1975. 29 с.

24. Архипова Г.В., Бурлакова Е.Б. О роли изменений состава липидов при лучевом поражении и действии радиопротекторов // Радиобиология. 1974. Т. 14. N6. С. 828-832.

25. Атлас патоморфологических изменений у полевок-экономок из очагов локального радиоактивного загрязнения / К.И. Маслова, Л.Д. Материй, О.В. Ермакова, А.И. Таскаев. СПб: Наука, 1994. 192 с.

26. Ахрем А.А., Едимичева И.П., Зайцев А.А., Кисель М.А., Тимощук В.А., Шадыро О.И. Элиминирование ациламидов при радиационно-инициированной свободнорадикальной фрагментации сфингомиелина // Докл. АН СССР. 1991. Т. 316. N 4. С. 919 921.

27. Ахрем А.А., Кисель М.А., Шадыро О.И., Юркова И. JI. Радиа-ционно-индуцированная свободнорадикальная фрагментация биологически активных глицеридов//Докл. РАН. 1993. Т. 330. N 6. С. 716 718.

28. Бак 3., Александер П. Основы радиобиологии. М.: Изд-во иностр. лит., 1963. 500 с.

29. Барабой В.А., Орел В.Э., Карнаух И.М. Перекисное окисление и радиация / Отв. ред. Д.М. Гродзинского. Киев: Наук, думка, 1991. 256 с.

30. Батраков С.Г. Липиды стрептомицетов // Успехи соврем, биологии. 1983. Т. 96. Вып. 3(6). С, 366 381.

31. Башлыкова Л.А. Эколого-генетические процессы в популяциях мышевидных грызунов, обитающих в условиях радиоактивных загрязнений. Автореф. дис. канд. биол. наук. Сыктывкар, 2000. 20 с.

32. Безлепкин В.Г., Газиев А.И. ДНК-мембранные взаимодействия в клетках бактерий после у-облучения // Радиобиология. 1983. Т. ХХШ. Вып. 1. С. 3 -8.

33. Бейли Н. Статистические методы в биологии. М., Мир, 1964. 256 с.

34. Белони Ж., Авилов И.А., Громов Б.В. Hyphomicrobiumll Биол. науки. 1984. №6. С. 71 -75.

35. Березин И.В. Кинетика и химизм жидкофазного окисления цикло-гексана и н-гептана кислород воздуха под давлением: Автореф. дис. . канд. хим. наук. М.: Изд-во МГУ, 1953. 19 с.

36. Берри Д. Биология дрожжей. М.: Мир, 1985. 96 с.

37. Бинюков В.И. Исследование состояния и пространственной структуры компонентов бактериальных мембран методами инфракрасной и радиоспектроскопии: Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1974. 28 с.

38. Биологические мембраны. Методы / Под ред. Дж. Б. Финдлея, У. Г. Эванза. М.: Мир, 1990. 424 с.

39. Богословская О.А., Андреев Л.В., Бурлакова Е.Б., Глущенко Н.Н., Конюхов В.Ф. Жирнокислотный состав клеток Escherichia coli и их выживаемость в воздухе // Ж. микробиол., эпидемиол., иммунол. 1984. № 12. С. 65 68.

40. Богословская О.А., Бурлакова Е.Б., Глущенко Н.Н., Конюхов В.Ф. Взаимосвязь устойчивости микробных клеток в воздухе с их фосфолипид-ным составом //Ж. микробиол., эпидемиол., иммунол. 1987. № 1. С. 6 8.

41. Богословская О.А., Бурлакова Е.Б., Глущенко Н.Н., Конюхов В.Ф., Скрыпин В.И. Роль системы перекисного окисления липидов Escherichiacoli в обеспечении их жизнеспособности в воздухе // Ж. микробиол., эпидемиол., иммунол. 1987. № 6. С. 22 25.

42. Богословская О.А., Бурлакова Е.Б., Глущенко Н.Н., Конюхов В.Ф., Храпова Н.Г. Роль антиокислителыюй активности липидов в обеспечении жизнедеятельности микробной клетки // Ж. микробиол., эпидемиол., иммунол. 1984. № 10. С. 24 26.

43. Богуславская JI.B., Бурлакова Е.Б., Кольцова Е.А., Максимов О.Б., Храпова Н.Г. Синергическое влияние фосфолипидов на антиоксидантную активность природных полигидроксинафтахинонов // Биофизика. 1990. Т. 35. С. 928 932.

44. Богуславская JI.B., Мищенко Н.П. Взаимодействие природного антиоксиданта эхинохрома с гидропероксидами в анаэробных условиях // Изв. АН СССР. Сер. хим. 1991. N 2. С. 329 333.

45. Богуславская Л.В., Храпова Н.Г., Максимов О.Б. Полигидрокси-нафтохиноны новый класс природных антиоксидантов // Изв. АН СССР Сер. хим. 1985. N 7. С. 1471 - 1476.

46. Болдырев А.А. Функциональная активность №,К-АТФазы тканей в норме и при патологиях // Укр. биохим. журн. 1992. Т. 64. N 5. С. 3 10.

47. Болдырев А.А., Лопина О.Д., Прокопьева В.Д. Мембранные липиды как регуляторы межбелковых взаимодействий // Нейрохимия. 1985. Т. 4. N 1. С. 80-95.

48. Большакова И.В., Лозовская Е.Л., Сапежинский И.И. Антиокси-дантные свойства ряда экстрактов лекарственных растений // Биофизика. 1997. Т. 42. Вып. 2. С. 480 483.

49. Бондарцев А.С. Трутовые грибы Европейской части СССР и Кавказа. М., Л.: Академия наук СССР, 1953. 1106 с.

50. Брин Э.Ф., Травин С. О. Моделирование механизмов химических реакций //Хим. физика. 1991. Т. 10. N 6. С. 830 837.

51. Броксрхоф X., Дженсен Р. Липолитические ферменты. М.: Мир, 1978. 280 с.

52. Бугаенко Л.Т. Химия высоких энергий // Росс. хим. ж. (Ж. Росс, хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 2000. Т. 44. № 4. С. 40-43.

53. Бурлакова Е.Б. Биоантиоксиданты и синтетические ингибиторы радикальных процессов//Успехи химии. 1975. Т. 44. Вып. 10. С. 1871 1886.

54. Бурлакова Е.Б. Молекулярные механизмы действия антиоксидантов при лечении сердечно-сосудистых заболеваний // Кардиология. 1980. Т. XX. N 8. С. 48 52.

55. Бурлакова Е.Б. О возможной роли свободнорадикального механизма в регуляции размножения клеток // Биофизика. 1967. Т. 12. № 1. С. 82 88.

56. Бурлакова Е.Б. Эффект сверхмалых доз // Вест. РАН. 1994. Т. 64. № 5. С. 425 -431.

57. Бурлакова Е.Б., Алесенко А.В., Молочкина Е.М., Пальмина Н.П., Храпова Н.Г. Биоантиоксиданты в лучевом поражении и злокачественном росте. М.: Наука, 1975. 211 с.

58. Бурлакова Е.Б., Бурлакова Е.В., Джалябова М.И., Молочкина Е.М. Антиокислительная активность липидов как физико-химический показатель состояния мембранных систем клетки // Биол. науки. 1976. № 6. С. 51 54.

59. Бурлакова Е.Б., Буробина С.А., Храпова Н.Г., Ядыкин Г.И. Хемилю-минесцентный метод изучения природных антиоксидантов в липидах // Биофизика. 1971. Т. XVI. Вып. 1. С. 39 43.

60. Бурлакова Е.Б., Голощапов А.Н. Спиновые зонды в изучении мембран нормальных и раковых клеток // Метод спиновых зондов и меток / Под ред. Р.И. Жданова. М.: Наука, 1986. С. 212 225.

61. Бурлакова Е.Б., Голощапов А.Н., Жижина Г.П., Конрадов А.А. Новые аспекты закономерностей действия низкоинтенсивного облучения в малых дозах // Радиац. биология. Радиоэкология. 1999. Т. 39. № 1. С. 26 34.

62. Бурлакова Е.Б., Горбань Н.И., Дзантиев Б.Г., Сергеев Г.Б., Эмануэль Н.М. Действие у-излучения на процесс окисления метилолеата в присутствии ингибиторов свободнорадикальных процессов // Изв. вузов. Химия и хим. технология. 1961. N 5. С. 751 754.

63. Бурлакова Е.Б., Греченко Т.Н., Соколов Е.Н., Терехова С.Ф. Влияние ингибиторов радикальных реакций окисления липидов на электрическую активность нейрона виноградной улитки // Биофизика. 1986. Т. 31. N5. С. 921-923.

64. Бурлакова Е.Б., Губарева А.Е., Архипова Г.В., Рогинский В.А. Модуляция перекисного окисления липидов биогенными аминами в модельных системах // Вопр. мед. химии. 1992. Т. 38. N 1. С. 17 20.

65. Бурлакова Е.Б., Джалябова М.И., Гвахария В.О., Глущенко Н.Н., Молочкина Е.М., Штолько В.Н. Влияние липидов мембран на активность ферментов // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982. С. 113-140.

66. Бурлакова Е.Б., Джалябова М.И., Молочкина Е.М. Регуляция активности микросомального фермента фосфолипидами in vivo И Докл. АН СССР. 1976. Т. 227. N 4. С. 991 994.

67. Бурлакова Е.Б., Дзантиев Б.Г., Зефирова А.К., Сергеев Г.Б., Эмануэль Н.М. Термическое и радиолитическое окисление метилолеата // Изв. вузов. Химия и хим. технология. 1960. Т. III. N 2. С. 265 271.

68. Бурлакова Е.Б., Дзюба Н.М. Синтетические ингибиторы и природные антиоксиданты. Антиокислительная активность липидов печени мышей при облучении и радиозащитное действие ингибиторов свободно-радикальных процессов // Биофизика. 1966. Т. 11. N 1. С. 54 57.

69. Бурлакова Е.Б., Дзюба Н.М., Пальмина Н.П. Синтетические ингибиторы и природные антиоксиданты. I. Действие ингибиторов свободнора-дикальных процессов на антиокислительную активность липидов печени мышей // Биофизика. 1965. Т. XL N 5. С. 766 769.

70. Бурлакова Е.Б., Дзюба Н.М., Пальмина Н.П., Эмануэль Н.М. Антиокислительная активность липидов печение мышей при лучевой болезни и перевивном лейкозе и действие ингибиторов свободноради-кальных процессов//Докл. АН СССР. 1965. Т. 163. N 5. С. 1278 1281.

71. Бурлакова Е.Б., Конрадов А.А., Худяков И.В. Воздействие химических агентов в сверхмалых дозах на биологические объекты // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1990. N2. С. 184-193.

72. Бурлакова Е.Б., Крашаков С.А., Храпова Н.Г. Кинетические особенности токоферолов как антиоксидантов // Хим. физика. 1995. Т. 14. № 10. С. 151 182.

73. Бурлакова Е.Б., Кухтина Е.Н., Храпова Н.Г., Аристархова С.А. Взаимосвязь между количеством природных антиоксидантов и окисляемостью липидов печени мышей в норме и при введении а-токоферола // Биохимия. 1982. Т. 47. № 5. С. 822 826.

74. Бурлакова Е.Б., Мазалецкая Л.И., Шелудченко Н.И., Шишкина Л.Н. Ингибирующее действие смесей фенольных антиоксидантов и фосфатидилхолина // Изв. РАН. Сер. химич. 1995. № 6. С. 1053 1059.

75. Бурлакова Е.Б., Сторожок Н.М., Храпова Н.Г. Исследование роли функциональных групп в действии фосфолипидов как синергистов окисления // Биол. мембраны. 1990. Т. 7. N 6. С. 612 618.

76. Бурлакова Е.Б., Сторожок Н.М., Храпова Н.Г. О взаимосвязи активности антиоксидантов и окисляемости субстратов в липидах природного происхождения // Биофизика. 1988. Т. XXXIII. N 5. С. 781 786.

77. Бурлакова Е.Б., Сторожок Н.М., Храпова Н.Г., Наумов В.В., Кухтина Е.Н. Изучение аддитивного антиокислительного действия суммы природных антиоксидантов липидов // Вопр. мед. химии. 1990. Т. 36. Вып. 4. С. 72 74.

78. Бурлакова Е.Б., Храпова Н.Г. Перекисное окисление липидов мембран и природные антиоксиданты // Успехи химии. 1985. Т. 54. Вып. 9. С. 1540- 1558.

79. Бурлакова Е.Б., Эмануэль Н.М. Особенности действия меркамина и ингибиторов радикально-цепных процессов в реакциях, моделирующих окисление липидов // Докл. АН СССР. 1960. Т. 135. N 3. С. 599 602.

80. Бюллетень экологического состояния зоны отчуждения за первое полугодие 1995 г. / отв. ред. Н.П. Архипов. Чернобыль. 1995. 40 с.

81. Векслер B.C. Протонная магнитная релаксация тканей при ожоговом поражении в эксперименте и клинике. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1985.24 с.

82. Векслер B.C., Найдич В.И. Влияние антиоксидантов на магнито-релаксационные характеристики тканей при экспериментальной ожоговой болезни//Докл. АН СССР. 1983. Т. 269. № 5. С. 1215-1217.

83. Векслер B.C., Найдич В.И., Втюрин Б.В., Туманов В.П., Каем Р.И. Исследование динамики развития отека в органах при экспериментальной ожоговой травме // Бюлл. экспер. биол. и мед. 1983. № 4. С. 39 42.

84. Векслер B.C., Найдич В.И., Каем Р.И., Втюрин Б.В. Магнитная релаксация протонов неводных компонент ткани печени при экспериментальном термическом ожоге // Докл. АН СССР. 1983. Т. 268. № 6. С. 1486 1487.

85. Виноградов А.Д. Митохондриальная АТР-синтезирующая машина: пятнадцать лет спустя // Биохимия. 1999. Т. 64. Вып. 11. С. 1443 1456.

86. Винь Т.Д., Сваровская Л.И., Алтунина Л.К., Доан Ф.В., Шон Ч.Т., Хыонг М.Х. Деградация высоковязких нефтей месторождения Белый Тигр пластовой микрофлорой // Новое в экологии и безопасности жизнедеятельности. СПб., 2000. Т. 2. С. 147 150.

87. Владимиров В.Г., Васильева И.Н., Шарова Л.А. Внеклеточная ДНК и ее значение для современной медицины // Клин, медицина и пато-физиол. 1998. № 1-2. С. 110-119.

88. Владимиров В.Г., Забелинский С.А., Михайличенко П.П. Фосфо-липиды головного мозга после облучения животных в высокой дозе // Радиобиология. 1990. Т. 30. Вып.1. С. 40-45.

89. Владимиров В.Г., Шарова JI.A. Содержание циклических нуклео-тидов и продуктов перекисного окисления липидов в головном мозге облученных мышей // Радиобиология. 1987. Т. 27. N 6. С. 786 789

90. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. 252 с.

91. Власов А.П., Кисель М.А., Шадыро О.И. Влияние продуктов радиационно-индуцированной свободнорадикальной фрагментации фосфолипидов и температуры на липидные мембраны // Биофизика. 2000. Т. 45. вып. 4. С. 666 670.

92. Войницкий В.М., Степанов Ю.В., Цудзевич Б.А., Кучеренко Н.Е. Содержание фосфолипидов и свободных жирных кислот в мембранах саркоплазматического ретикулума на раннем этапе поражения рентгеновским излучением//Радиобиология. 1989. Т. 29. N2. С. 151 153.

93. Воронина О.Ю., Семин Ю.А., Конев В.В., Дубовик Б.В. Физико-химические исследования состояния белковой и липидной фаз в мембранах синаптосом после облучения быстрыми нейтронами // Радиобиология. 1986. Т. 26. N 1.С. 17-21.

94. Воскресенский О.Н., Девяткина Т.А. // Вопр. питания. 1978. N 6. С. 30-35.

95. Габриэлян Э.С., Баджинян С.А., Петросян А.И., Вартанян Г.С., Погосян А.Г., Акопов С.Э. Исследование упругомеханических свойств эритроцитов и механизмов их изменений при облучении // Радиобиология. 1987. Т. 27. N 1. С. 78 81.

96. Гагарина А.Б., Некипелова Т.Д., Эмануэль Н.М. Кинетика ингибированного окисления и время достижения заданной глубиныпревращения углеводородов в области больших торможений // Хим. физика. 1983. N11. С. 1541 1547.

97. Гагарина А.Б., Некипелова Т.Д., Эмануэль Н.М. Кинетика ингибированного окисления в условиях автоускоренного протекания реакции // Хим. физика. 1983. N 12. С. 1666 1673.

98. Гагарина А.Б., Некипелова Т.Д., Эмануэль Н.М. О принципиально достижимой длительности торможения процессов автоокисления // Докл. АН СССР. 1982. Т. 264. N 6. С. 1412 1417.

99. Газиев А.И. ДНК-лигазы // Успехи соврем, биологии. 1974. Т. 78. N. 2(5). С. 171-187.

100. Гераськин С.А., Дикарев В.Г., Удалова А.А., Дикарева Н.С. Закономерности индукции малыми дозами ионизирующего излучения цитогенетических повреждений в корневой системе проростков ячменя // Радиац. биология. Радиоэкология. 1999. Т. 39. № 4. С. 373 383.

101. Гилева Э.А. Эколого-генетический мониторинг с помощью грызунов (Уральский опыт). Екатеринбург: Изд-во Уральского университета, 1997. 105 с.

102. Глущенко Н.Н., Образцов В.В., Орлов С.Н., Данилов B.C. Свободнорадикальное окисление липидов биологических мембран. II. К механизму регуляции автоокисления линолевой кислоты восстановленным глутатионом //Биофизика. 1974. Т. XIX. 193 196.

103. Голдфельд М.Г. Исследование биологических мембран и модельных систем с помощью иминоксильных стабильных радикалов: Автореф. дис. канд. хим. наук. М., 1970. 24 с.

104. Головастов В.В., Михалева Н.И., Кадырова Л.Ю., Несмеянова М.А. Основной фосфолипид Escherichia coli фосфатидилэтаноламин -необходим для продукции и секреции щелочной фосфатазы // Биохимия. 2000. Т. 65. Вып. 9. С. 1295 - 1304.

105. Головлева Л.А., Леонтьевский А.А. Биодеградация лигнина // Успехи микробиологии. 1990. Т. 24. Вып. 9. С. 128 155.

106. Гончаренко Е.Н. О биохимическом фоне радиорезистентности // Радиобиология. 1971. Т. 11. N 6. С. 811 824.

107. Гончаренко Е.Н., Джанумова Т., Жатькова Г.С., Кудрящов Ю.Б. Роль эндогенного дофамина в радиозащитном действии радиопротекторов // Докл. АН СССР. 1972. Т. 205. N 2. С. 465 468.

108. Гончаренко Е.Н., Кудрящов Ю.Б. Гипотеза эндогенного фона радиорезистентности. М.: МГУ, 1980. 176 с.

109. Гончаренко Е.Н., Орловский А.А., Антонова С.В., Рождественский Л.М. Влияние ионизирующего облучения в сверхвысокой дозе на содержание катехоламиновых медиаторов в различных отделах головного мозга крыс //Радиобиология. 1989. Т. 29. N 5. С. 709 711.

110. Граевская Б.М., Золотарева Н.Н. Исследование природы корреляций некоторых биохимических показателей тканей с радиочувствительностью животных // Радиочувствительность нормальной и опухолевой ткани. Алма-Ата: КазССР Наука, 1974. С. 149 153.

111. Граевская Б.М., Золотарева Н.Н. О механизмах, определяющих течение и исход воздействия ионизирующей радиации на организм // Радиобиология. 1991. Т. 31. N 5. С. 747 753.

112. Граевский Э.Я. Сульфгидрильные группы и радиочувствительность. М.: Атомиздат, 1969. 144 с.

113. Граевский Э.Я., Тарасенко А.Г. Тиольная концепция радиочувствительности // Радиобиология. 1972. Т. 12. N. С. 483 492.

114. Грибанов Г.А. Особенности структуры и биологическая роль лизофосфолипидов // Вопр. мед. химии. 1991. Т. 37. № 4. С. 2 10.

115. Григорьев АЛО. Индивидуальная радиочувствительность. М.: Энергоатомиздат, 1991. 80 с.

116. Григорьева JT.B., Малахова J1.A., Колесников В.Г. Выявление факторов патогенности эшерихий на питательных средах // Микробиол. ж. 1990. Т. 52. N7. С. 65-69.

117. Григорян К.М., Эллер К.И., Максименко JT.B., Осипян Л.Л., Тутельян В.А. Способность токсинообразования у видов рода Aspergillus, выделенных из сливочного масла // Микология и фитопат. 1984. Т. 18. N 6. С. 470 474.

118. Гудзь Т.И., Гончаренко Е.Н., Ковалева З.А., Зубкова С.М., Шишкина Л.Н. Механизм регуляции уровня липидных радиосенсибилизаторов в клетках дрожжей с различной радиорезистентностью // Биол. науки. 1985. N 1. С. 25 32.

119. Гуляева Н.В. Перекисное окисление липидов в мозге в механизмах адаптации к стрессу. // Нарушение высшей нервной деятельности (патогенез и нейропептидная коррекция). М.: 1992. С.

120. Гуляева Н.В. Перекисное окисления липидов в мозге при адаптации к стрессу. Автореф. дис. д-ра биол. наук. М., 1989. 52 с.

121. Гуляева Н.В. Ингибирование свободнорадикального окисления липидов в механизмах срочной и долговременной адаптации к стрессу // Биол. науки. 1989. N 4. С. 5 14.

122. Гуриков Ю.В., Бондаренко Н.Ф. Природная вода как окислительная среда //Ж. физ. химии. 2001. Т. 75. № 7. С. 1221 1224.

123. Давыдов Б.И., Ушаков И.Б., Федоров В.П. Радиационное поражение головного мозга. М.: Энергоатомиздат, 1991. 240 с.

124. Даниляк Н.И., Семичаевский В.Д., Дудченко Л.Г., Трутнева И.А. Ферментные системы высших базидиомицетов. Киев: Наук, думка, 1989.280 с.

125. Даренская Н.Г. Индивидуальная радиочувствительность и возможные пути ее предвидения // Радиационное поражение организма. М.: Атомиздат, 1976. Т. 5. С. 138 162.

126. Даренская Н.Г., Кузнецова С.С., Лебенгарц Я.З., Ильин В.В. Влияние различных пищевых рационов на радиочувствительность морских свинок //Радиобиология. 1975. Т. 15. N 4. С. 627 630.

127. Дворецкий А.И., Анненкова С.В., Егорова Е.Г. Эндогенный фосфолипазный гидролиз при лучевом поражении животных // Радиобиология. 1987. Т. 27. N 1. С. 97 100.

128. Дедюхина Э.Г., Дудина Л.П., Ерошин В.К. Влияние концентрации кислорода в среде на состав липидов у Hansenula Polymorpha И Микробиология. 1981. Т. 50. N 6. С. 1080 1083.

129. Деев А.И., Осис Ю.Г., Формазюк В.Е., Владимиров Ю.А., Ланкин В.З. Увеличение содержания воды в липидной фазе липопротеидов при перекисном окислении //Биофизика. 1983. Т. XXVIII Вып. 4. С. 629 631.

130. Дембицкий В.М., Дор И., Шкроб И. Вариабельность липидных компонентов почвенных цианобактерий Microcoleus vaginatus из бассейна Мертвого моря и пустыни Негев // Биохимия. 2000. Т. 65. Вып. 12. С. 1666 1672.

131. Дембицкий В.М., Рябинин В.Е. Влияние иммобилизационного стресса на диацильные и плазмогенные формы фосфолипидов в различных органах крыс // Вопр. мед. химии. 1981. Т. 27. № 5. С. 698 701.

132. Демидова Г.Г. Ультраструктурные изменения мембранных компонентов нервных клеток звездчатого узла, вызванные облучением // Действие ионизирующего излучения на клеточные мембраны. М.: Атомиздат, 1973. С. 98-101.

133. Денисов Е.Т. Механизмы гемолитического распада молекул в жидкой фазе. Итоги науки и техники. Сер. Кинетика и катализ. М.: ВИНИТИ, 1981. Т. 9. 158 с.

134. Денисов Е.Т., Азатян В.В. Ингибирование цепных реакций. Черноголовка, 1997. 268 с.

135. Довгий И.Е., Фоменко Б.С., Акоев И.Г. Пострадиационное снижение экранируемости фосфатидилэтаноламина в мембранах эритроцитов // Радиобиология. 1977. Т. 17. N 6. С. 901 902.

136. Древаль В.И., Сичевская Л.В., Дорошенко А.О., Рошаль А.Д. Радиационно-индуцируемые изменения структуры белков эритроцитар-ных мембран //Биофизика. 2000. Т. 45. Вып. 5. С. 836 838.

137. Дудник Л.Б. Интенсификация перекисного окисления липидов и его роль в изменении физико-химических свойств и структурной организации мембран при ишемии печени. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1981.24 с.

138. Дудник Л.Б., Биленко М.В., Алесенко А.В., Могилевская М.П., Бурлакова Е.Б. Роль перекисного окисления липидов в повреждении мембран при ишемии печени //Вопр. мед. химии. 1981. Т. 27. N 3. С. 380 383.

139. Дудник Л.Б., Биленко М.В., Алесенко А.В., Слесарева Л.Д., Бурлакова Е.Б. // Интенсификация перекисного окисления липидов в гомогенате и субклеточных фракциях ишемизированной печени // Бюл. экспер. биол. мед. 1980. Т. 89. N 4. С. 556 558.

140. Дуженкова Н.А. Действие излучения на аминокислоты и белки // Первичные радиобиологические процессы / Под ред. Н.В. Тимофеева-Ресовского. М.: Атомиздат, 1973. С. 101 168.

141. Дятловицкая Э.В., Безуглов В.В. Липиды как биоэффекторы. Введение // Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 1. С. 3 5.

142. Евсеева Т.И., Гераськин С.А. Сочетанное действие факторов радиационной и нерадиационной природы на традесканцию // Екатеринбург: УрО РАН, 2001. 156 с.

143. Евтеева Н.М., Гагарина А.Б. Особенности обрыва цепей в процессе окисления Р-ионимиденацетата // Докл. АН СССР. 1979. Т. 249. N 3. С. 637 642.

144. Елисеева Л.Г., Гололобов А.Д., Грачева И.М. Влияние источника углерода на биосинтез липидов дрожжей Candida guilliermondii // Микробиология. 1977. Т. 16. N 2. С. 263 269.

145. Епифанова О.И., Терских В.В. Метод радиоавтографии в изучении клеточных циклов. М.: Наука, 1969. 118 с.

146. Жижина Г.П., Скалацкая С.И., Бурлакова Е.Б. Влияние малых доз ионизирующей радиации на ДНК селезенки при облучении мышей // Радиац. биология. Радиоэкология. 1994. Т. 34. N 6. С. 759-762.

147. Жукова А.А., Гогвадзе В.Г. Влияние сверхвысоких доз у-радиации на энергетику митохондрий печени крыс // Радиац. биология. Радиоэкология. 1997. Т. 37. Вып. 3. С. 382 386.

148. Завалишин И.А., Захарова М.Н. Оксидантный стресс общий механизм повреждения при заболеваниях центральной нервной системы // Ж. неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 1996. N 2. С. 111 - 114.

149. Залашко М. В. Биосинтез липидов дрожжами. Минск: Наука и техника, 1971.216 с.

150. Залашко М.В., Королева И.Ф., Салохина Г.А. Влияние температуры культивирования и аэрации среды на развитие процессов перекисного окисления липидов у дрожжей // Весщ НАН Беларуси. Сер. б1ял. н. 1999. N2. С. 57-59.

151. Залашко М.В., Салохина Г.А., Королева И.Ф. Влияние стрессовых воздействий на состав липидов дрожжей // Прикл. биохимия и микробиология. 2000. Т. 36. N 1. С. 37 40.

152. Зенин С.В. Исследование структуры воды методом протонного магнитного резонанса // Докл. АН. 1993. Т. 332. Вып. 3. С. 328 329.

153. Зенков Н.К., Панкин В.З., Меньшикова Е.Б. Окислительный стресс: биохимические и патофизиологические аспекты. М.: МАИК Наука/Интерпериодика, 2001. 340 с.

154. Иваненко Г.Ф. Роль антиокислительной активности липидов и эндогенных тиолов в обеспечении радиорезистентности организма. Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1985. 29 с.

155. Иванова Р.А., Пименова Н.С., Ильина О.Г., Козлов Э.И., Обольни-кова Е.А., Козлова И.В., Самохвалов Г.И., Цепалов В.Ф. Ингибирующие свойства монометиловых эфиров убихинолов и их смесей с токоферолами // Хим.-фарм. журн. 1989. N 1. С. 17 20.

156. Источники, эффекты и опасность ионизирующей радиации // Докл. Научного Комитета ООН по действию атомной радиации Генеральной Ассамблее за 1988. Т.2. М.: Мир, 1993. С. 425.

157. Каган В.Е., Орлов О.Н., Прилипко JI.JI. Проблема анализа эндогенных продуктов перекисного окисления липидов // Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР. Биофизика. М., 1986. Т. 18. 136 с.

158. Каган В.Е., Шведова А.А., Новиков К.Н. Об участии фосфолипаз в «репарации» фоторецепторных мембран, подвергшихся перекисному окислению // Биофизика. 1978. Т. 23. N 2. С. 279 284.

159. Казначеев Ю.С., Коломийцева И.К., Кулагина Т.П., Маркевич Л.Н. Обновление хроматинсвязанных и мембранных липидов печени и тимуса у-облученных крыс // Биохимия. 1984. Т. 49. вып. 12. С. 2008 2011.

160. Кайране Ч.Б. Роль изменений физико-химических свойств и состава липидов наружной митохондриальной мембраны в модификации активности моноаминоксидазы различными агентами. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М.: ИХФ РАН, 1983. 25 с.

161. Калмыкова В.И. Перекиси липидов и антиоксиданты в патогенезе и терапии атеросклероза. Автореф. дис. д-ра мед. наук. М. 1978.

162. Капич А.Н. Биосинтетическая активность ксилотрофных базидиомицетов: основные особенности и их адаптационная значимость. Автореф. дис. докт. биол. наук. М., 1993. 35 с.

163. Капич А.Н., Романовец Е.С., Войт С.П. Содержание липидов в мицелии дереворазрушающих базидиомицетов и их жирнокислотный состав // Микол. и фитопатол. 1990. Т. 24. N 1. С. 51 56.

164. Капич А.Н., Шишкина JI.H. Перекисное окисления липидов и его регуляция в мицелии ксилотрофных базидиомицетов // Микробиология. 1995. Т. 64. N3. С. 120- 126.

165. Капич А.Н., Шишкина JI.H. Сопряжение перекисного окисления липидов мицелия ксилотрофных базидиомицетов с деградацией лигнина (гипотеза) // Докл. АН Беларуси. 1995. Т. 39. № 5. С. 63 68.

166. Карташева З.С., Касаикина О.Т. Кинетика распада инициаторов свободных радикалов в мицелярных растворах // Изв. РАН. Сер. химическая. 1994. N 10. С. 1752 1757.

167. Карташева З.С., Коверзанова Е.В., Кашкай A.M., Касаикина О.Т. Влиние поверхностно-активных веществ на распад кумилгидропероксида // Нефтехимия. 2001. Т. 41. № 3. С. 222 227.

168. Карташева З.С., Максимова Т.В., Коверзанова Е.В., Касаикина О.Т. Влияние поверхностно-активных веществ на окисление этилбензола. Ингибирование окисления этилбензола додецилсульфатом натрия // Нефтехимия. 1997. Т. 37. № 2. С. 153 159.

169. Карташева З.С., Максимова Т.В., Сирота Т.В., Коверзанова Е.В., Касаикина О.Т. Влияние поверхностно-активных веществ на окисление этилбензола. Действие цетилтриметиламмоний бромида // Нефтехимия. 1997. Т. 37. № 3. С. 249 253.

170. Касаикина О.Т. Окисление пол неновых углеводородов // Хим. физика. 1995. Т. 14. N 10. С. 72 85.

171. Кашкай A.M., Касаикина О.Т., Гагарина Л.Б., Фарзалиев В.М., Кулиев Ф.А. Ингибирующее действие серосодержащих полифенолов и аминофенолов в процессах окисления углеводородов // Нефтехимия. 1982. Т. XXII. № 4. С. 497 500.

172. Кашкай A.M., Касаикина О.Т., Шмырева Ж.В. Влияние серосодержащих фенолов и аминов на распад гидропероксидов // Кинетика и катализ. 2000. Т. 41. № 5. С. 674 681.

173. Кейтс М. Техника липидологии. М.: Мир, 1975. 322 с.

174. Кения М.В., Лукаш А.И., Гуськов Е.П. Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе // Успехи соврем, биологии. 1993. Т. 113. Вып. 4. С. 456 470.

175. Кеэп Т.В. Исследование с помощью флуоресцентных зондов перестроек в структуре мембран клеточных ядер при перекисном окислении липидов, вызванном у-облучением // Радиобиология. 1980. Т. XX. Вып. 5. С. 648 653.

176. Кимельдорф Д., Хант Э. Действие ионизирующей радиации на функции нервной системы. М.: Атомиздат, 1969. 376 с.

177. Кисель М.А., Литвинко Н.М., Наубатова М.К., Шадыро О.И. Гидролиз фосфолипазой Аг облученных липидных мембран // Радиац. биология. Радиоэкология. 1995. Т. 25. № 6. С. 873 879.

178. Кисель М.А., Шадыро О.И., Юркова И.Л. Радиационно-индуци-рованная свободнорадикальная фрагментация биологически активных глицеридов // Химия высоких энергий. 1997. Т. 31. N 2. С. 99 103.

179. Климов А.Н., Никульчева Н.Г. Липиды, липопротеиды и атеросклероз. СПб, 1995. 304 с.

180. Клипсон Н.А., Мамедов Т.Г., Тарусов Б.Н. Люминесцентный метод исследования свободнорадикальных состояний // Биолюминесценция. Труды МОИП. М.: Наука, 1965. Т. 21. С. 107 111.

181. Ковальчук В.К., Пархоменко Л.В., Сельникова О.П., Сопиль А.В. Особенности контакта протеолитических штаммов Proteus mirabilis и Klebsiella pneumonia с энтероцитами in vivo // Ж. микробиол., эпидемиол., иммунол. 1991. N 10. С. 2 5.

182. Ковальчук Л.П., Перепелица Э.Д., Бурцева С.А. Антибиотические свойства фосфолипидов дрожжей пекарских // Биосинтез и метаболизм липидов у микроорганизмов. Тез. докл. и стенд, сообщ. 11-й Всесоюз. конф. 12-14 ноября 1979. М. 1979. С.177 179.

183. Козлов Ю.П., Данилов B.C., Каган В.Е., Ситковский М.В. Свобод-норадикальное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Изд-воМГУ, 1972. 88 с.

184. Козлова Н.М., Слобожанина Е.И., Антонович А.Н., Лукьяненко Л.М., Черницкий Е.А. Влияние восстановленного и окисленного глутатиона на физико-химическое состояние мембран эритроцитов // Биофизика. 2001. Т. 46. Вып. 3. С. 467-470.

185. Козубов Г.М., Таскаев А.И. Радиобиологические и радиоэкологические исследования древесных растений. СПб.: Наука, 1994. 256с.

186. Коломийцева И.К. Радиационная биохимия мембранных липидов. М.: Наука, 1989. 182 с.

187. Коломийцева И.К. Регуляция обмена холестерина при повреждении организма ионизирующей радиацией и другими агентами // Успехи соврем, биологии. 1983. Т. 96. N 3 (6). С. 381 393.

188. Коломийцева И.К., Маркевич Л.Н., Вакулова Л.А., Кузин А.М. Влияние Р-каротина на липиды ядер печени крыс в норме и при действии у-излу-чения с низкой мощностью дозы // Докл. РАН. 1998. Т. 363. N 4. С. 549 551.

189. Кондакова Н.В., Рипа Н.В., Сахарова В.В., Сергунина О.Н., Амирагова М.И. О продуктах радиационно-химических превращений сывороточного альбумина человека в водном растворе // Химия высоких энергий. 1996. Т. 30. N 4. С. 329 335.

190. Константинова М.М., Минин А.А., Некрасова И.В. Роль эндогенного глютатиона в радиозащитном эффекте аноксии // Радиобиология. 1981. Т. 21. N2. С. 277-280.

191. Константинова М.М., Минин А.А., Некрасова И.В., Донцова Г.В., Смирнова И.Б. Роль глютатиона в модификации радиочувствительности клеток асцитной карциномы Эрлиха // Проблемы природной и модифицированной радиочувствительности. М., 1983. С. 108 114.

192. Корогодин В.И., Близник К.М., Капульцевич Ю.Г., Петин В.Г., Савченко Г.В., Толсторуков И.И. Роль плоидности в радиочувствительности клеток (эксперименты на дрожжевых организмах разных видов и генотипов) // Радиобиология. 1977. Т. 17. N 5. С. 700 710.

193. Корогодин В.И., Граевский ЭЛ., Корогодина Ю.В., Некрасова И.В., Петин В.Г. Радиочувствительность и содержание сульфгидрильных групп у дрожжей разных генотипов // Радиобиология. 1977. Т. 17. N 5. С. 834-838.

194. Короткина Р.Н., Папин А.А., Молочкина Е.М., Каипова Г.Д.,

195. Бурлакова Е.Б., Воронина Т.А. Влияние транквилизаторов 1,4-бензодиазепинового ряда на некоторые метаболические показатели мозга и печени //

196. Биохимические проблемы .хирургии /ред. В.Д. Федоров, А.А. Карелин.

197. М.: Ин-т хирургии им. А.А. Вишневского АМН СССР, 1991. С. 164 194.

198. Костеша Н.Я., Даренская Н.Г. Кишечная форма лучевой болезни и роль поражения желудка в ее развитии. Томск: Изд-во Том. ун-та. 1990.124 с.

199. Костюк В.А. Возможные пути восстановления перекисей липидов в печени и их внутриклеточная локализация // Биохимия. 1986. Т. 51. Вып. 7. С. 1059 1065.

200. Костюк В.А. Устойчивость продуктов окисления липидов в печени крыс и пути их утилизации // Биохимия. 1986. Т. 51. Вып. 8. С. 1392 1397.

201. Котлова Е.Р. Антиокислительные системы лишайников. Автореф. дис. канд. биол. наук. СПб, 2000. 35 с.

202. Красичкова З.И., Стражевская Н.Б. Изменение состава фосфолипидов, связанных с надмолекулярной ДНК тимуса и печени у-облученных крыс // Радиобиология. 1984. Т. 24. N 4. С. 451 455.

203. Крепе Е.М. Липиды клеточных мембран. Л.: Наука, 1981. 340 с.

204. Круглова Н.Л., Стражевская Н.Б. О механизме радиационного эффекта на уровне надмолекулярных структур ДНК эукариот // Радиобиология. 1987. Т. 27. N 1. С. 24 29.

205. Крутецкая З.И., Лебедев О.Е. Структурно-функциональная организация сигнальных систем в клетках // Цитология. 2000. Т. 42. N. С. 844 874.

206. Кувичкин В.В. ДНК-липидные взаимодействия in vitro и in vivo II Успехи соврем, биологии. 2000. Т. 120. N 5. С. 466 476.

207. Кудяшева А.Г. Роль тиолов и дегидрогеназ в радиочувствительности Microtus oeconomus Pall. // Радиочувствительность растений и животных биоценозов с повышенным естественным фоном радиации. Сыктывкар, 1988. С. 33 42.

208. Кудяшева А.Г., Шишкина Л.Н., Загорская Н.Г., Таскаев А.И. Биохимические механизмы радиационного поражения природных популяций мышевидных грызунов. СПб: Наука, 1997. 156 С.

209. Кузин A.M. Актуальные проблемы радиобиологии // Современные вопросы радиобиологии. М., 1980. С. 3 12.

210. Кузин A.M. О различиях ведущих молекулярных механизмов при действии радиации на организм в больших и малых дозах // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1980. N 6. С. 212 220.

211. Кузин A.M. Проблема малых доз и идеи гормезиса в радиобиологии // Радиобиология. 1991. Т. 31. N 1. С. 16 21.

212. Кузнецов А.Н. Метод спинового зонда. М.: Наука, 1976. 210 с.

213. Кулагина Т.П., Шурута С.А., Коломийцева И.К., Вакулова Л.А. Влияние длительного у-облучения с низкой мощностью дозы и Р-кароти-на на метаболизм липидов ядер тимоцитов крыс // Бюл. экспер. биол. мед. 1998. Т. 126. № 9. С. 311 —313.

214. Кулинский В.И. Исследование механизмов радиозащитного эффекта экзо- и эндогенных биогенных моноаминов // Проблемы природной и модифицированной радиочувствительности / Отв. ред. М.М. Константинова, A.M. Кузин. М.: Наука, 1983. С. 120 134.

215. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Биологическая роль глута-тиона// Успехи соврем, биологии. 1990. Т. 110. Вып. 1(4). С. 20 34.

216. Курбанова М.Е. Физико-химические особенности дрожжевых клеток, выращенных на углеводородах. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М.: Изд-во МГУ, 1972. 16 с.

217. Курганов Б.И. Аллостерические ферменты. М.: Наука, 1978. 248 с.

218. Куриц Т.С., Месянжинов В.В. ДНК-лигазы эукариот, их свойства и функции // Успехи соврем, биологии. 1983. Т. 95. Вып. 1. С. 3 15.

219. Курляндский Б.А. Концептуальные основы химической безопасности в XXI веке // Здоровье и химическая безопасность на пороге XXI века. Материалы междунар. симп. СПбМАПО. 2000. С. 7.

220. Кухтина Е. Н. Особенности действия природных антиоксидантов в системах in vitro и in vivo и их роль в регуляции процессов перекисного окисления липидов. Автореф. дис. канд. хим. наук. М., 1982. 24 с.

221. Лав Р.М. Химическая биология рыб. М.: Пищевая пром-сть, 1976.350 с.

222. Лаврова Г.А., Пушкарева Т.В., Никанорова Н.Г., Свердлов А.Г. К исследованию механизмов действия высоких и сверхвысоких доз у-кван-тов и нейтронов на центральную нервную систему // Радиобиология. 1984. Т 24. N5. С. 616-619.

223. Лаврова Г.А., Свердлов А.Г. Действие высоких и сверхвысоких доз нейтронов деления и у-квантов на центральное норадренергическое образование головного мозга Locus coruleus (голубое пятно) // Радиобиология. 1987. Т. 27. N 2. С. 238 - 241.

224. Ладыгин Б.Я., Ревина А.А. О взаимодействии углеводородных радикалов циклического и нормального строения с антрахиноном // Изв. АН СССР. Сер.хим. 1985. N 10. С. 2180 2186.

225. Ладыгин Б.Я., Ревина А.А., Ванников А.В. Об участии хинонов в окислении углеводородных радикалов // Хим. высоких энергий. 1985. Т. 19. N 5. С. 412 417.

226. Ладыгин Б.Я., Сараева В.В., Ревина А.А. Зимина Г.М. Вклад радиационно-химических исследований в общую теорию жидкофазного окисления органических соединений // Росс. хим. ж. (Ж. Росс. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 1996. Т. 40. N 6. С. 78 89.

227. Лакин Г.Ф. Биометрия. 3-е изд. М.: Высшая школа, 1990. 203 с.

228. Ланкин В.З., Вихерт A.M., Тихазе А.К., Согоян С.М., Бондарь Т.Н. Роль перекисного окисления липидов в этиологии и патогенезе атеросклероза// Вопр. мед. химии. 1989. Т. 35. Вып. 3. С. 18 24.

229. Легеза В.И., Камынина М.Ф., Марковская И.В., Шагоян М.Г. Влияние облучения на содержание и обмен дофамина в головном мозге крыс // Радиобиология. 1986. Т. 26. N. С. 262 264.

230. Лейко В., Пухала М., Шведа-Левандовска 3., Сапежинский И.И., Донцова Е.Г. О влиянии спиртов на радиационные превращения гемоглобина и сывороточного альбумина человека // Радиобиология. 1980. Т. 20. N 6. С. 654 657.

231. Лысюк О.Г. Исследование бактериальной биоконверсии питательного субстрата и деградации токсичных метаболитов дрожжами. Авто-реф. дис. канд. биол. наук. М. 1989. 25 с.

232. Лычкова А.Е., Смирнов В.М. К вопросу о влиянии фосфолипид-ного состава тканей на реализацию синергизма между отделами вегетативной нервной системы // Бюл. Экспер. биол. мед. 2002. Т. 133. № 4. С. 364-366.

233. Магин Д.В., Измайлов Д.Ю., Попов И.Н., Левин Г., Владимиров Ю.А. Фотохемилюминесценция как метод изучения антиоксидантой активности в биологических системах. Математическое моделирование// Вопр. мед. химии. 2000. Т. 64. N 4. С. 419 425.

234. Магнитный резонанс в медицине/ Джонс Р.А., Квернесс Й., Ринк П.А., Сатон Т.Е. /Под ред. П.А. Ринке. Oxford: Blackwell Sci. Publications, 1992.228 p.

235. Максимова Н.П., Доброжинецкая E.B., Фомичев Ю.К. Регуляция биосинтеза аминокислот у облигатных метилотрофных бактерий Methylo-bacillus mucogenes М75 II Изв. РАН. Сер. биол. 2000. N 4. С. 428 436.

236. Маленченко А.Ф., Сушко С.Н., Плотникова С.И., Савченко В.К. Хромосомные аберрации в семенниках мышей при сочетанном действии нитрита натрия и излучения // Докл. АН БССР. 1989. Т. 33. N 11. С. 1043-1045.

237. Маркевич Л.Н. Метаболизм жирных кислот в печени крыс при действии у-радиации в сверхлетальных дозах // Радиац. биология. Радиоэкология. 1998. Т. 38. N 4. С. 540 546.

238. Маркевич Л.Н., Казначеев Ю.С., Коломийцева И.К. Влияние сверхлетальных доз у-радиации на синтез холестерина в печени крыс // Докл. АН СССР. 1986. Т. 288. N 3. С. 744 747.

239. Маркевич Л.Н., Коломийцева И.К. Липиды микросом и митохондрий печени при остром и хроническом у-облучении // Биохимия. 1994. Т. 59. N7. С. 1027- 1033.

240. Мартынова Е.А. Влияние сфинголипидов на активацию Т-лимфо-цитов (обзор)//Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 1. С. 122 132.

241. Маслова К.И., Кудяшева А.Г. К вопросу о радиочувствительности мелких грызунов, обитающих в разных радиоэкологических условиях // Тез. докл. II радиобиол. конф. соц. стран (Варна). София. 1978. С. 190.

242. Медведев Б.И., Евтодиенко Ю.В., Ягужинский JI,C., Кузин A.M. Роль липидов митохондриалыюй мембраны в радиационном нарушении транспорта ионов // Радиобиология. Информ. бюл. 1975. Вып. 18. С. 93 98.

243. Медведев Б.И., Мошков Д.А., Боровягин В.Л. Роль липидов в стабилизации структуры мембран эритроцитов // Действие ионизирующего излучения на клеточные мембраны. М.: Атомиздат, 1973. С. 101 -109.

244. Медведева Т.Н., Матяшова Р.Н., Ленских Г.В., Романова И.Б. Образование внеклеточных высших жирных кислот дрожжами при росте на гексадекане//Микробиология. 1985. Т. 54. Вып. 1.С. 17-21.

245. Меерсон Ф.З. Адаптация, стресс, профилактика. М.: Наука, 1981.278 с.

246. Меныцикова Е.Б., Зенков Н.К. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов // Успехи соврем, биологии. 1993. Т. 13. N4. С. 442-455.

247. Методы биохимических исследований (липидный и энергетический обмен)/Под ред. М.И. Прохоровой. Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. 272 с.

248. Мид Дж. Свободнорадикальные механизмы повреждения липидов и их значение для клеточных мембран // Свободные радикалы в биологии. М.: Мир, 1979. Т. 1. С. 68-87.

249. Михайлов В.Ф., Водолазская Н.А., Ракова И.А. Ранние изменения мембран клеточной поверхности лимфоцитов у крыс после общего воздействия нейтронов и у-излучения // Радиобиология. 1986. Т. 26. N 2. С. 253 256.

250. Михеев Ю.А., Гусева Л.Н., Заиков Г.Е. О структурных эффектах и энтропийном факторе совмещения некристаллических полимеров и жидкостей // Хим. физика. 1996. Т. 15. № 1. С. 7 15.

251. Михеев Ю.А., Заиков Г.Е. Абсорбция и сольватация воды полимерами // Росс. хим. ж. (Ж. Росс. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 1999. Т. 43. №2. С. 67-73.

252. Молочкина Е.М., Боровок Н.В., Каипова Г.Д., Бурлакова Е.Б. Нейромодуляторная роль липидной компоненты нейрональных мембран (in vivo) // Клеточная сигнализация/ Под ред. П.Г. Костюка. М.: Наука, 1992. С. 103-115.

253. Молочкина Е.М., Джаман У.М., Озерова И.Б., Бурлакова Е.Б., Шишкина Л.Н. Биохимические изменения в синаптосомах головного мозга при у-облучении мышей малой дозой с разной интенсивностью // Радиац. биология. Радиоэкология. 1995. Т. 35. N 6. С. 860 868.

254. Мочалина А.С. Действие излучения на высшие жирные кислоты и фосфолипиды // Первичные радиобиологические процессы /Под ред. Н.В. Тимофеева-Рессовского. М.: Атомиздат, 1973. С. 52 100.

255. Мочалина А.С. Радиационно-химические изменения фосфолипидов на молекулярном и субклеточном уровнях // Радиобиология. Информ. бюл. 1979. Вып. 22. С. 17 20.

256. Мочалина А.С., Климова Т.П. Радиационно-химические изменения фосфатидилхолина // Радиобиология. 1977. Т. 17. N5. С. 711-715.

257. Мурза Л.И., Сергеев А.И., Найдич В.И., Евсеенко Л.С., Дисветова В.В. Протонная магнитная релаксации в изучении ожоговой болезни // Докл. АН СССР. 1980. Т. 254. С. 763 764.

258. Некипелова Т.Д., Брин Э.Ф. Конкуренция линейного и квадратичного обрывов цепей при окислении фенилацетилена // Кинетика и катализ 1990. Т. 31. N. 5. С. 1092 1098.

259. Некипелова Т.Д., Гагарина А.Б. Избирательное действие антиоксидантов в процессах окисления органических соединений // Нефтехимия. 1982. Т. XXII.N 2. С. 278 284.

260. Нечаев И.А. Значение генотипического и фенотипического факторов в общей радиочувствительности мышей // Радиобиология. Информ. бюл. 1967. Вып. 10. С. 73 75.

261. Никитин Д.И., Никитина Э.С. Процессы самоочищения окружающей среды и паразиты бактерий (род Bdellovibrio). М.: Наука, 1978. 205 с.

262. Никитин Д.И., Таштемирова М.А., Питрюк И.А., Сорокин В.В., Оранская М.С., Никитин JI.E. Высокая устойчивость к ионизирующей радиации некоторых олиготрофных бактерий // Микробиология. 1993. Т. 62. Вып. 6. С. 1064- 1071.

263. Никитин Д.И., Циренина М.Л., Чумаков К.М. Филогенетическое положение олиготрофных бактерий Н Изв. АН СССР. Сер. биолог. 1986. № 1.С. 125-131.

264. Новикова Т.В. Роль информации в биологической системе // Изв. РАН. Сер. биол. 1999. № 1. С. 98 104.

265. Новое в экологии и безопасности жизнедеятельности. Сб. докл. международного экологического конгресса. В 2-х томах. 14-16 июня 2000 г. Спб / Под ред. Н.И. Иванова; Балт. гос. техн. ун-т, СПб., 2000.

266. Новоселова Е.Г., Кулагина Т.П., Коломийцева И.К., Кузин A.M. Синтез липидов в тимоцитах облученных крыс // Радиобиология. 1986. Т. 26. N2. С. 171-174.

267. Оленев С.Н. Конструкция мозга. Л.: Медицина, 1987. 208 с.

268. Ольсинская H.JL, Романов В.И., Воробьева Л.И. Парафинокисля-ющая система дрожжей Candida guilliermondii II Прикл. биохимия и микробиол. 1979. Т. 15. Вып. 6. С. 805 809.

269. Осипов А.Н., Григорьев М.В., Сыпин В.Д., Померанцева М.Д., Рамайя Л.К., Шевченко В.А. Влияние хронического воздействия кадмия и у-излучения в малых дозах на генетические структуры мышей // Радиац. биология. Радиоэкология. 2000. Т. 40. № 4. С. 373 377.

270. Осипов, Азизова О.А., Владимиров Ю.А. // Успехи биологии, химии. 1990. Т. 31. С. 180-208.

271. Павлюкова Е.Б., Белозерский М.А., Дунаевский Я.Е. Внеклеточные протеолитические ферменты мицелиальных грибов // Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 8. С. 1059 1089.

272. Пальмина Н.П. Изучение изменения антиокислители юй активности липидов некоторых органов мышей в ранние сроки после их облучения и действие ингибиторов радикальных процессов // Радиобиология. 1972. Т. 12. N 5. С, 737 742.

273. Пальмина Н.П. Система регуляции уровня антиокислительной активности липидов клеточных органелл при опухолевом росте. Автореф. дис. докт. биол. наук. М., 1985. 51 с.

274. Пальмина Н.П., Мальцева Е.Л., Бурлакова Е.Б. О липидзависи-мости ядерной глюкозо-6-фосфатазы в процессе опухолевого роста и изменении ее характера после облучения опухоленосителей // Докл. АН СССР. 1982. Т. 265. N 4. С. 986 989.

275. Пальмина Н.П., Мальцева E.JL, Бурлакова Е.Б. Протеинкиназа С -пероксилипидзависимый фермент // Хим. физика. 1995. Т. 14. N 11. С. 47 60.

276. Паньков В.Н., Ворончихина Л.Д., Демьянова В.Т., Рябова Т.И. Биохимические маркеры опухолевой трансформации при лимфопролифе-ративных заболеваниях. М., 1990. 11 с. Деп. в ВИНИТИ. Д. 20087.

277. Перелыгин В.В., Красильников В.А., Евдокимова О.А., Минаева Л.А., Борзенкова Т.Х. Физико-химические свойства липидов бактерий Е. coli в экстремальных условиях // Биосинтез и метаболизм липидов у микроорганизмов. М., 1979. С. 168 170

278. Пстин В.Г., Жураковская Г.П., Пантюхина А.Г., Рассохина А.В. Малые дозы и проблемы синергического взаимодействия факторов окружающей среды // Радиац. биология. Радиоэкология. 1999. Т. 39. Вып. 1. С. 113 126.

279. Петин В.Г., Комаров В.П. Количественное описание модификации радиочувствительности. М.: Энергоатомиздат, 1989. 192 с.

280. Плеханов С.Е. Накопление жирных кислот в культуральной среде водорослей Scenedesmus quadricauda при действии фенолов // Изв. РАН. Сер. биол. 1998. N 2. С. 277 282.

281. Победимский Д.Г., Винаров Ю.А., Решетник О.А., Мингалеева З.Ш., Гутман А.Ш., Шишкина Л.Н. Влияние антиоксидантов на получение микробной биомассы // Acta Biotechnol. 1988. V 8. N 1. С. 55 69.

282. Поливода Б.И., Конев В.В., Попов Г.А. Биофизические аспекты радиационного поражения биомембран. М.: Энергоатомиздат, 1990. 160 с.

283. Попов Д.М., Иванов С.К., Механизм действия ингибиторов-разрушителей пероксидов. София. Изд-во БАН, 1988. 188 с.

284. Последствия ядерной войны. Воздействие на экологию и сельское хозяйство / Харуэлл М., Хатчинсон Т. при участии Кроппера-младшего У., Харуэлл К. и Гровера Г. М.: Мир, 1988. 551 с.

285. Прист Ф. Внеклеточные ферменты микроорганизмов. М.: Мир, 1987. 117 с.

286. Проказова Н.В., Звездина Н.Д., Коротаева А.А. Влияние лизофос-фатидилхолина на передачу трансмембранного сигнала внурь клетки // Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 1. С. 38-46.

287. Пхакадзе Т.Я. Неферментирующие грамотрицательные бактерии как этиологический фактор внутрибольничных инфекций // Лабор. дело. 1987. N3. С. 164- 167.

288. Раевский Б.Н. Лучевая смерть млекопитающих // Вопросы радиобиологии. Пер. с англ. М.: ИЛ, 1956. С. 249 275.

289. Разумовский С.Д., Заиков Г.Е. Озон и его реакции с органическими соединениями. М.: Наука, 1975. 365 с.

290. Рафикова B.C., Скибида И.П., Майзус З.К. Кинетические особенности сопряженных реакций окисления парафиновых и ароматических углеводородов // Нефтехимия. 1970. Т. X. N 5. С. 672 676.

291. Ревина А.А. Радиационно-химическое моделирование быстропроте-кающих процессов с участием промежуточных кислородсодержащих реакционных центров в различных системах. Автореф. дисс. . докт. хим. н. М. 1995.57 с.

292. Решетник О.А., Ежкова Г.О., Каневская Е.Г., Кирпичников П.А. Регуляция антиоксидантом роста, состава и физико-химических свойств липидов Saccharomyces cerevisiae И Докл. РАН. 1996. Т. 346. N 5. С. 705 707.

293. Решетник О.А., Мингалеева З.Ш., Победимский Д.Г. Влияние антиоксиданта на рост дрожжей рода Candida при различных способах культивирования // Биотехнология. 1986. N 2. С. 60-63.

294. Решетникова И.А. Деструкция лигнина ксилотрофными макроми-цетами. Накопление селена и фракционирование его изотопов микроорганизмами. М., 1997. 197 с.

295. Ржавская Ф.М. Липиды рыб и морских млекопитающих. М.: Пищепромиздат, 1976. 470 с.

296. Рипачек В. Биология дереворазрушающих грибов. М.: Лесная пром-сть, 1967. 276 с.

297. Рогинский В.А. К кинетической модели перекисного окисления в липидном бислое // Мол. биология. 1990. Т. 24. N 6. С. 1582 1589.

298. Рогинский В.А. Фенольные антиоксиданты. Эффективность и реакционная способность. М.: Наука, 1988. 248 с.

299. Рогожин С.В., Лозинский В.И., Вайнерман Е.С., Мамцис А.М., Никитин Д.И., Саввичев А.С. Ускорение реакции радикальной полимеризации в присутствии микроорганизмов // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1989. N 4. С. 502-506.

300. Рожавин М.А. Исследование патогенности Pseudomonas aeruginosa II Ж. микробиол., эпидемиол., иммунол. 1988. N 3. С. 106 112.

301. Росивал Л., Энгст Р., Соколай А. Посторонние вещества и пищевые добавки в продуктах. М.: Легкая и пищ. пром-сть., 1982. 264 с.

302. Российский химический журнал. Журнал Росс. хим. об-ва им. Д,И, Менделеева. 1999. Т. XLIII. N 5. Эффекты сверхмалых доз биологически активных веществ. 118 с. 1

303. Рощупкин Д.И. Молекулярные механизмы повреждения биомембран, липидов и белков при действии ультрафиолетового облучения. Автореф. дис. докт. биол. наук. М., 1979. 53с.

304. Рощупкин Д.И., Мурина М.А. Свободнорадикальное и циклоокси-геназное окисление липидов в мембранах клеток крови при УФ-облуче-нии // Биол. мембраны. 1998. Т. 15. № 2. С. 221 226.

305. Рубайло BJL, Гагарина А.Б., Эмануэль Н.М. Влияние сопряжения ненасыщенной связи с фенильной группой на реакционную способность 1-фенилциклогексена в процессе окисления // Докл. АН СССР. 1975. Т. 224. N3. С. 642-645.

306. Рубайло В.Л., Гагарина А.Б., Эмануэль Н.М. Константы скорости реакции продолжения и обрыва цепи при жидкофазном окислении 1-фенилциклогексена // Докл. АН СССР. 1975. Т. 224. N 4. С. 883 886.

307. Рубайло В.Л., Маслов С.А. Жидкофазное окисление непредельных соединений. М.: Химия, 1989. 224 с.

308. Рубан Е.Л. Микробные липиды и липазы. М.: Наука, 1977. 218 с.

309. Руда В.П., Кузин A.M. Влияние хронического облучения в малых дозах на активность аденилатциклазы плазматических мембран легочной ткани крыс // Радиобиология. 1991. Т. 31. N 5. С. 743 746.

310. Русанов А.А. Коллоидная химия на рубеже столетий // Росс. хим. ж. (Ж. Росс. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 2000. Т. 44. № 4. С. 66 69.

311. Рыскулова С.Т., Цветкова Т.В., Балахчи Т.А. Антиокислительная активность липидов плазматических мембран клеток печени и ее изменение после облучения // Радиобиология. 1985. Т. 25. N 1. С. 87 88.

312. Рязанов В.М., Ширяев В.Г., Пархоменко И.М., Кудряшов Ю.Б. О роли фосфолипидов в лучевом поражении млекопитающих, обладающихразличной радиочувствительностью // Вест. МГУ, Сер. биолог. 1973. N 3. С. 36-41.

313. Саенко Н.Ф., Козуб Г.И., Авербух Б.Я., Шур И.М. Вино херес и технология его производства. Кишинев: Картя Молдавеняско, 1975. 160 с.

314. Сапежинский И.И. Биополимеры: кинетика радиационных и фотохимических превращений. М.: Наука, 1988. 216 с.

315. Сапежинский И.И. Роль свободнорадикальных состояний белков в радиационном повреждении их структуры // Радиобиология. Информ. бюл. 1979. Вып. 22. С. 67-71.

316. Сапежинский И.И., Лозовская Е.Л. Радиационная и фотохемилю-минесценция в растворах триптофансодержащих пептидов и белков // Хим. физика. 1995. Т. 14. № 10. С. 126 150.

317. Сараева В.В. Окисление органических соединений под действием ионизирующих излучений. М.: Изд-во МГУ, 1991. 264 с.

318. Сахаровский В.В., Никитин Д.И., Сахаровский В.Г. Физиологические особенности выживания некоторых грамотрицательных бактерий в условиях углеродного голодания // Прикл. биохимия и микробиол. 1999. Т. 35. №4. С. 422-431.

319. Селищева А.А., Козлов Ю.П. Метаболизм фосфолипидов и биологические мембраны . Иркутск, 1988. 88 с.

320. Семин Б.К., Новакова А.А., Сидорова Г.В., Александров А.Ю. Иванов И.И. Исследование методом мессбауэровской спектроскопии действия образующегося комплекса Fe3+ -лецитин на окисление Fe2+ // Биол. науки. 1981. N 9. С. 45 50.

321. Семин Ю.А., Шевчук А.С., Дубовик Б.В. Состояние Р-адренер-гических и ГАМК-ергических рецепторов мозга крыс после воздействия высоких доз ионизирующей радиации // Радиобиология. 1984. Т. 24. N 4. С. 476 480.

322. Серая И.П., Нарциссов Я.Р. Современные представления о биологической роли оксида азота // Успехи соврем, биологии. 2002. Т. 129. № 3. С. 249 258.

323. Силина А.Г., Свердлов А.Г. Влияние сверхвысоких доз у-радиации на содержание и обмен серотонина в головном мозге крыс // Радиобиология. 1987. Т. 27. N 4. С. 556 557.

324. Симонов П.В. (ред.) Индивидуальный мозг: Структурные основы индивидуальных особенностей. М.: Наука, 1993. 127 с.

325. Синицына О.О. Роль пути поступления веществ в организм в комплексной оценке химической безопасности // Здоровье и химическая безопасность на пороге XXI века. Материалы междунар. симп. СПбМАПО. 2000. С. 35-36.

326. Сирота Т.В., Евтеева Н.М., Касаикина О.Т. Влияние ПАВ на распад гидропероксидов углеводородов // Нефтехимия. 1996. Т. 36. № 2. С. 169 174.

327. Слабова О.И., Оранская М.С., Никитин Д.И. Развитие олиготро-фов при низких температурах // Микробиология. 1993. Т. 62. Вып. 6. С. 1072- 1078.

328. Смирнов А.Н. Генерация акустических колебаний в химических реакциях и физико-химических процессах // Росс. хим. ж. (Ж. Росс. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 2001. Т. 45. № 1. С. 29 34.

329. Сорокин Ю.И. Роль микрогетеротрофов в функционировании морских экосистем // Успехи соврем, биологии. 1982. Т. 93. Вып. 2. С. 236 252.

330. Спитковский Д.М. Концепция действия малых доз ионизирующей радиации на клетки и ее возможные приложения к трактовке медико-биологических последствий // Радиобиология. 1992. Т. 32. N 3. С. 382-400.

331. Стальная И.Д., Гаришвили Т.Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии / Под ред. В.Н. Ореховича. М.: Наука, 1977. С. 63 64.

332. Степанов А.Е., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Физиологически активные липиды. М.: Наука, 1991. 136 с.

333. Степанова Н.Т., Мухин В.А. Основы экологии деревообразующих грибов. М.: Наука, 1979. 100 с.

334. Сторожок Н.М. Роль взаимодействия антиоксидантов и фосфолипидов в окислении многокомпонентных липидных систем природного происхождения. Автореф. дисс. канд. хим. н. М., 1987. 27 с.

335. Сторожок Н.М., Храпова Н.Г., Бурлакова Е.Б. Исследование межмолекулярных взаимодействий компонентов природных липидов в процессе окисления // Хим. физика. 1995. Т. 14. N 11. С. 29 46.

336. Сторожок С.А., Санников А.Г., Захаров Ю.М. Молекулярная структура мембран эритроцитов и их механические свойства. Изд-во Тюменского госуниверситета, 1997. 140 с.

337. Стражевская Н.Б., Стручков В.А. Организация надмолекулярных комплексов ДНК хроматина эукариот и их роль в радиационном эффекте //Радиобиология. 1977. Т. 17. N. С. 163 177.

338. Стручков В.А., Стражевская Н.Б. Структурные и функциональные аспекты ядерных липидов нормальных и опухолевых клеток // Биохимия. 2000. Т. 65. Вып. 5. .С. 620 643.

339. Стручков В.А., Стражевская Н.Б. ДНК-связанные липиды: состав и возможные функции // Биохимия. 1993. Т. 58. Вып. 8. С. 1154 1175.ь л

340. Судакова Р.Н., Иыка У.Л., Петер И.В. и др. О выделении энтеро-бактерий из пищевых продуктов // Вопр. питания. 1987. N 1. С. 64 65.

341. Сыскин Г. А. Исследование устойчивости липидов морских организмов к процессам окисления: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Купавна, 1985. 25 с.

342. Тарасов В.А., Тарасов А.В., Любимова И.К., Асланян М.М. Проблема количественной оценки опасности химических соединений в генетической токсикологии // Успехи соврем, биологии. 2002. Т. 122. № 2. С. 136- 147.

343. Тараховский Ю.С., Деев А.А., Масулис И.С., Иваницкий Г.Р. Структурная организация и фазовое поведение комплекса ДНК-кальций-дипальми-тоилфосфатидилхолин // Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 10. С. 1325 -1331.

344. Тарусов Б.Н. Основы биологического действия радиоактивных излучений. М.: Медгиз, 1954. 140 с.

345. Тафельштейн Э.Е., Владимиров Ю.А., Козлов Ю.П. // Сверхслабое свечение в биологии. М.: Наука, 1972. С. 147

346. Текучесть мембраны в биологии: концепции мембранной структуры / Балли М.Б., Бестерлинг Б., Брейлсфорд Дж.Д. и др. Под ред. Р. Элойза. Киев: Наук, думка, 1989. 313 с.

347. О 4387. Ткачук В.А. Фосфоинозитидный обмен и осцилляция ионов Саобзор) // Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 1. С. 47 56.

348. Тонгур A.M., Павловская Т.Е., Губина Н.Б. Действие рентгеновых лучей на тени эритроцитов // Радиобиология. 1983. Т. 23. N 1. С. 35 38.

349. Трещенкова Ю.А., Бурлакова Е.Б. Изменение кинетических свойств альдолазы и лактатдегидрогеназы цитоплазмы мозга мышей после хронического у-облучения в малых дозах // Радиац. биология. Радиоэкология. 1997. Т. 37. N. 1. С. 3 12.

350. Трофимов С.С., Воронина Т.А., Островская Р.У. Вариабельность последствий перинатального патогенного фактора у крыс // Успехи соврем, биологии. 1999. Т. 119. № 3. С. 285 290.

351. Тяжелые естественные радионуклиды в биосфере: миграция и биологическое действие на популяции и биоценозы / P.M. Алексахин, Н.П. Архипов, P.M. Бардухаров и др. М.: Наука, 1990. 368 с.

352. Ушаков И.Б., Карпов В.Н. Мозг и радиация. М.: Изд-во ГНИИИ авиацион. и космич. медицины, 1997. 76 с.

353. Ушкалова В.Н., Сторожок Н.М. Исследование механизма антиоксидантной активности липидов // Бюл. экспер. биол. мед. 1984. Т. 8. С. 179-181.

354. Федоров Н.А., Янева И.С. Экскреция ДНК лимфоцитами человека //Успехи соврем, биологии. 1982. Т. 93. Вып. 2. С. 171 182.

355. Федоров Н.А., Янева И.С., Скотникова О.И., Паньков В.Н. Определение концентрации ДНК в плазме крови человека // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1986. Т. 100. N 9. С. 281-283.

356. Феофилова Е.П. Липиды мицелиальных грибов и перспективы развития микробной олеобиотехнологии. 1. Липиды мицелиальных грибов// Биол. науки. 1990. N 11. С. 5 25.

357. Феофилова Е.П., Бурлакова Е.Б., Кузнецова Л.С. Значение реакций свободнорадикального окисления в регуляции роста и липидообразовании эукариотных и прокариотных организмов // Прикл. биохимия и микробиология. 1987. Т. 23. N 1. С. 3 13.

358. Феофилова Е.П., Бурлакова Е.Б., Кузнецова Л.С., Полетебнова М.В., Розанцев Э.Г. Влияние синтетического антиоксиданта на образование липидов и их состав у Cuninghamella japonica II Прикл. биохимия и микробиология. 1986. Т. 22. N 2. С. 248 253.

359. Физиологическая регуляция метаболизма дрожжей / Под ред. М.В. Залашко. Мн., 1991.

360. Фоменко Б.С., Акоев И.Г. Радиационное повреждение мембран и летальное действие радиации на клетки // Успехи соврем, биологии. 1984. Т. 97. Вып. 1.С. 146- 158.

361. Фоменко Б.С., Акоев И.Г. Структурные изменения плазматической мембраны под действием ионизирующей радиации // Успехи соврем, биологии. 1982. Т. 93. Вып. 2. С. 183 196.

362. Фоменко Л.А., Васильева Г.В., Безлепкин В.Г. В эритроцитах костного мозга потомства самцов мышей, подвергнутых хроническомугамма-облучению с малых дозах, повышена частота микроядер // Изв. РАН. Сер. биол. 2001. № 4. С. 419 423.

363. Химический состав пищевых продуктов/ Под ред И.М. Скурихина, М.Н. Волгарева. М.: Агропромиздат, 1987. Кн. 2. 360 с.

364. Храпова Н.Г. Система природных антиоксидантов и возможность направленного воздействия на нее синтетическими ингибиторами. Автореф. дисс. докт. хим. н. М. 1988. 49 с.

365. Цепалов В.Ф. Метод количественного анализа антиоксидантов с помощью модельной реакции инициированного окисления II Исследование синтетических и природных антиоксидантов in vitro и in vivo. М.: Наука, 1992. С. 16-26.

366. Цепалов В.Ф., Аскинази А.И., Радченко JI.M. Экспрессная оценка окислительной стабильности масел // Пищев. пром-сть. 1990. N 1. С. 42 44.

367. Цепалов В.Ф., Харитонова А.А., Зейналов Э.Б., Гладышев Г.П. Исследования антиоксидантов в композициях сложного состава II Азер. хим. журн. 1981. N 4. С. 113 116.

368. Циперсон В.П. Реакция мелких млекопитающих на воздействие малых доз хронического радиоактивного облучения (на примере Брянской области). Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1999. 25 с.

369. Частухин В .Я., Николаевская М.А. Биологический распад и ресинтез органических веществ в природе. JL: Наука, 1969. 323 с.

370. Чеботарев Е.Е., Барабой В.А., Дружина Н.А., Серкиз Я.И. Окислительные процессы при гамма-нейтронном облучении организма. Киев: Наук, думка, 1986. 216 с.

371. Чеботарева Э.Г., Победимский Д.Г., Колюбакина Н.С., Мукменева Н.А., Кирпичников П.А., Ахмадуллина А.Г. Кинетика взаимодействия фосфитов с гидроперекисью кумола // Кинетика и катализ. 1973. Т. XIV. N4. С. 891 -895.

372. Чернявская Л.И. Роль липидов и их физико-химических характеристик в регуляции активности холинергической системы. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1990. 24 с.

373. Черток В.М., Ботвич Т.А., Артюкова О.А. Изменение показателей липидного обмена в семенниках крыс при воздействии жира печени минтая//Бюл. экспер. биол. мед. 2001. Т. 131. N 2. С. 144 147.

374. Шарпатый В.А. Проблемы радиационной химии белковых молекул (обзор) // Химия высоких энергий. 1995. Т. 29. № 2. С. 85 100.

375. Шарыгин В.Л., Шишкина Л.Н., Рождественский Л.М., Кормер З.С., Пулатова М.К. Быстрые метаболические изменения в крови и органах крыс под влиянием импульсного излучения электронов в сверхвысоких дозах // Изв. РАН. Сер. биолог. 1994. N 2. С. 254 270.

376. Шашков А.С., Тоукач Ф.В., Парамонов Н.А., Сенченкова С.Н., Каца В., Кпирель Ю.А. Структура нового лизин-содержащего О-специ-фического полисахарида бактерий Proteus Mirabilis 026 // Биохимия. 1996. Т. 61. Вып. 1.С. 24-33.

377. Швец В.И., Степанов А.И., Крылова В.Н., Гулак П.В. М/о-инозит и фосфоинозитиды. М.: Наука, 1987. 248 с.

378. Шевченко О.Г. Состояние процессов перекисного окисления липидов в тканях мышевидных грызунов из районов с повышенной естественной радиоактивностью. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 2001.24 с.

379. Шенкман Б.З. Бактериальные эндотоксины и медиаторные системы макроорганизма // Успехи соврем, биологии. 1991. Т. 111. Вып. 3. С. 400-415.

380. Шишкина Л.Н., Березин И.В., Быковченко В.Г., Захаркин В.И., Корнева В.В. Способ получения гидроперекиси циклододецила. А.с. СССР. № 157347 от 27.06.1963.

381. Шишкина JI.H., Пальмина Н.П., Бурлакова Е.Б. Физико-химические свойства липидов и радиочувствительность // Радиочувствительность нормальной и опухолевой ткани. Алма-Ата: Наука КазССР, 1974. С. 78-82.

382. Шляпинтох В.Я., Карпухин О.Н., Постников Л.М., Захаров И.В., Вичутинский А.А., Цепалов В.Ф. Хемилюминесцентные методы исследования медленных химических процессов. М.: Наука, 1966. 300 с.

383. Штамм Е.В., Пурмаль А.П., Скурлатов Ю.И. Роль пероксида водорода в природной водной среде // Успехи химии. 1991. Т. 60. Вып. 11. С. 2373-2411.

384. Эйдус Л.Х. О едином механизме инициации различных эффектов малых доз ионизирующих излучений // Радиац. биология. Радиоэкология. 1996. Т. 35. N. С. 874-882.

385. Эмануэль Н.М. О свободнорадикальном механизме превращения нормальных клеток в опухолевые // Узловые проблемы цитологии. Тез. докл. Л.: АН СССР, 1959. С. 192 193.

386. Эмануэль Н.М., Гагарина А.Б. Критические явления в цепных вырожденно-разветвленных реакциях // Успехи химии. 1966. Т. 35. N 4. С. 619-656.

387. Эмануэль Н.М., Гал Д. Окисление этилбензола (модельная реакция) / Отв. ред. И.В. Березин. М.: Наука, 1984. 376 с.

388. Эмануэль Н.М., Денисов Е.Т., Майзус З.Л. Цепные реакции окисления жидких углеводородов. М.: Наука, 1965. 270 с.

389. Эмануэль Н.М., Лясковская Ю.Н. Торможение процессов окисления жиров. М.: Пищепромиздат, 1961. 355 с.

390. Юрченко Н.И., Гольденберг В.И. Влияние среды на кинетические параметры инициированного окисления и антиоксидантную активность ингибиторов в жирах // Кинетика и катализ. 1980. Т. XXI. N 3. С. 606 -611.

391. Ямскова В.П., Ямсков И.А. Механизм биологического действия физико-химических факторов в сверхмалых дозах // Росс. хим. ж. (Ж. Росс. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 1999. Т. 43. № 2. С. 74 79.

392. Янишлиева Н., Скибида И., Майзус 3., Попов А. О скорости и механизме зарождения церей при окислении метиловых эфиров олеиновой, линолевой и линоленовой кислот // Изв. Отд. хим. наук. Б АН. 1971. Т. IY, N. С. 1-9.

393. Alper Т. Cell Death and It's Modification: The Roles of Primary Lesions in Membranes and DNA // Biophysical Aspects of Radiation Qualities. Vienna: IAEA, 1971. P. 171 194.

394. Alper T. Observation on Relevant to the Mechanism of RBE effects in the Killing of Cells // Biological Effects of Neutron Irradiation upon Cell Function. IAEA Symp. Vienna: IAEA, 1974. P. 133 152.

395. Ames B.N., Cathcart R., Schwies E., Hochstein P. Uric acid provides an antioxidant defense in humans against oxidant- and radical-caused aging andcancer: A hypothesis // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1981. V. 78. N 11. P. 6858 -6862.

396. Anker P., Strain M., Maurice P.A. Spontaneous Release of DNA by Human Blood Lymphocytes as shown in an vitro system // Canser Res. 1975. V. 35. N 9. P. 2375-2382.

397. Aoshima H., Kadoya K., Taniguchi H., Satoh Т., Hatanaka H. Generation of free radicals during the death of Saccharomyces cerevisiae caused by lipid hydroperoxide // Biosci. Biotechnol. Biochem. 1999. V. 63. N 6. P. 1025 1031.

398. Arefjev D.V., Domnina N.S., Komarova E.A., Bilibin A.Y. Sterically hindered phenol-dextran conjugates: synthesis and radical scavenging activity // Eur. Polymer J. 1999. V. 35. N 2. P. 279 284.

399. Asakawa Т., Matsushita S. Coloring Conditions of Thiobarbituric Acid Test for Detecting Lipid Hydroperoxides // Lipids. 1980. V. 15. N 3. P. 137 140.

400. Asaoka Y., Yoshida К., Oka M., Shinomura Т., Mishima H., Matsushima S., Nishizuka Y. The signal-induced phospholipid degradation cascade and protein kinase С activation // Ciba Found Symp. 1992. V. 164. P. 50 59.

401. Atmospheric Oxidation and Antioxidants./ Ed. Scott G. Amsterdam- L.-N.Y.- Tokyo: Elsevier , 1993. V. III. 528 p.

402. Auroma O.I., Halliwell В., Gajewski E., Dizdaroglu M. Copper-ion-dependent damage to the bases in DNA in the presence of hydrogen peroxide // Biochem. J. 1991. V. 273. P. 601 604.

403. Avila M.A., Otero G., Cansado J., Dritschilo A., Velasco J.A., Notario V. Activation of phospholipase D participates in signal transduction pathways responsive to gamma-radiation // Canser Res. 1993. V. 53 (19). P. 4474 4476.

404. Bacq Z., Alexander P. Importance for radioprotection of the reactions of cells to sulphydryl and disuphide compounds //Nature. 1964. V.203. P. 162 164.

405. Bao W., Fukushima Y., Jensen K.A., Moen M.A., Hammel K.E. Oxidative degradation of non-phenolic lignin during lipid peroxidation by fungal manganese peroxidase // FEBS Lett. 1994. V. 354. P. 297 300.

406. Barclay L.R.C., MacNeil J.M., VanKessel J.A., Forrest B.J., Porter N.A., Lehman L.S., Smith K.J., Ellington Jr. J.C. Auoxidation and Aggregation of Phospholipids in Organic Solvents // J. Am. Chem. Soc. 1984. V. 106. P. 6740 6747.

407. Barclay R.L.C., Vinqvist M.R., Antunes F., Pinto R.E. Antioxidant Activity of Vitamin E Determined in a Phospholipid Membrane by Product Studies: Avoiding Chain Transfer Reactions by Vitamin E Radicals // J. Am. Chem. Soc. 1997. V. 119. P. 5764 5765.

408. Barta A., Mehta B.K., Bokadia M.M. Centratherum anthelminticum -Identification of the Fatty Acid Composition and Antimicrobial Activity of Oil // Fette. Seifen. Anstrichmittel. 1983. 85 Jahrgang. N 6. S. 230 232.

409. Batrakov S.G., Nikitin D.I. Lipid composition of the phosphatidyl-choline-producing bacterium Hyphomicrobium vulgare NP-160 // Biochim. Biophys. Acta. 1996. V: 1302. P. 129 137.

410. Batrakov S.G., Nikitin D.I., Pitryuk I.A. A novel glycolipid, 1,2-diacyl-3-a-D-glucuronopyranosyl-sw-glycerol taurineamide, from budding seawater bacterium Hyphomonas jannoschiana II Biochim. Biophys. Acta. 1996. V. 1302. P. 167- 176.

411. Batrakov S.G., Nikitin D.I., Pitryuk I.A. Lipid composition of gram-negative, budding, seawater bacterium Hyphomonas jannaschiana lacking in phospholipids //Biochim. Biophys. Acta. 1996. V. 1303. P. 39 46.

412. Batrakov S.G., Nikitin D.I., Sheichenko V.I., Ruzhitsky A.O. Unusual lipid composition of the gram-negetive, freshwater, stalked bacterium Caulobacter bacteroides NP-105 // Biochim. Biophys. Acta. 1997. V. 1347. P. 127 139.

413. Berger H. Jr., Huang R.C.C., Irvin J.L. Purification and Characterization of a Deoxyribonucleic Acid Polymerase from Rat Liver // J. Biol. Chem. 1971. V. 246. N 23. P. 7275 7283.

414. Bowry V.W., Stocker R. Tocopherol-Mediated Peroxidation. The Pro-oxidant Effect of Vitamin E on the Radical-Initiated Oxidation of Human Low-Density Lipoprotein // J. Am. Chem. Soc. 1993. V. 115. P, 6029 6044.

415. Boyum A. // Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1968. V. 21. Suppl. 97. P. 28-33.

416. Braun P., Gerritse G., van Dijl J.M., Quax W.J. Improving protein secretion by engineering components of the bacterial translocation machinery // Curr. Opin. Biotechnol. 1999. V. 10. N 4. P. 376 381.

417. Bruszewski Т.Е., Fergus S.L., Mumma R.O. // Lipids. 1972. V. 7. P. 695-703.

418. Budker V.G., Godovikov A.A., Naumova L.P., Slepneva I.A. // Nucl. Acids Res. 1980. V. 8.N 11. P. 249^-2515.

419. Burlakova E.B. Consequences of Low Level Radiation A review // Low level Radiation and Living State / Eds. N.G. Huigol, D.V. Gopinath, B.B. Singh. New Deli, Madras, Bombey, Calcutta: Narosa Publ. House, 1994. P. 57 - 62.

420. Burlakova E.B. Effect of oxidative reactions in membrane lipids on1. Ilipid-dependent Mg "ATPase and glucose-6-phosphatase activity // Membrane Transport Process. N.Y.: Raven Press, 1978. V. 2. P. 31 38.

421. Burlakova E.B., Archipova G.V., Djalyabova M.I., Molochkina E.M., Khokhlov A.P. Membrane Lipids as Information Carriers // Biophysical and Biochemical Information Transfer in Aging and Recognition. N.Y.: Plenum Press, 1979. P. 583-594.

422. Burlakova E.B., Archipova G.V., Shishkina L.N., Goloshchapov A.N., Zaslavsky Yu.A. Influence of ionizing radiation on the regulatory function of biomembranes // Studia Biophys. 1975. V. 53. P. 67-71.

423. Burton G.W., Ingold K.U. Vitamin E as an in vitro and in vivo antioxidant. Review. // Ann. NY Acad. Sci. 1989. V. 570. P. 7 22.

424. Bystritsky V. // Biologiya. 1954. V. 9. N 2. P. 566 569.

425. Callerio D., Gadliardi R., Chersicla M., Callerio C. // Instituto Sieroterapico Nilanese Bolletino. 1983. V. 62. N 1. P. 251 256.

426. Capitani S., Mazzotti G., Jovine R., Papa S., Maraldi N.M., Manzoli F.A. Effect of phosphatidylcholine vesicles on the activity of DNA polymerase //J. Mol. and Cell Biochem. 1979. V. 27. N3. P. 135 138.

427. Capitani S., Mazzotti G., Para S. et al. Effects of phospholipid vesicles on the activity of terminal transferase // Biochem. Biophys. Res. Communs. 1979. V. 89. N4. P. 1206- 1211.

428. Casareft A.P., Comar C.L. // Radiat. Res. 1973. V. 53. N 3. P. 455 461.

429. Cash G.A., George G.A., Bartley J.P. A chemiluminescence Study of the Oxidation of Vegetable Oils and Model Compounds and the Effects of Antioxidants // J. Sci. Food Agr. 1988. V. 43. P. 277 287.

430. Cerveny T.Y., Hampton J.D. Postradiation regional cerebral blood flow in primats // Aviat Space and Environ. Med. 1986. V. 57. N 6. P. 578 582.

431. Chance В., Sies H., Boveris A. Hydroperoxide Metabolism in Mammalian Organs // Physiol. Rev. 1979. V. 59. N 4. P. 304 308.

432. Chapman J.D., Gillespie C.J., Revers A.P., Dugle D.L. Radioprotectors, radiosensitiser and the shape mammalian cell survival curve // Cell Survival Low Doses Radiat. Theoret. and Clin Implicat. Ргос.6л L.H. Gray Conf. L, 1975. P. 135.

433. Chauveau J., Moule Y., Roniller C.M. Isolation of pure and unaltered liver nuclei morphology and biochemical composition // Exp. Cell Res. 1956. V. 11. P. 317-321.

434. Cocharane C.G. Mechanisms of oxidant injury of cells // Molec. Aspects Med. 1991. V. 12. P, 137- 147.

435. Cole A., Meyn R.E., Chen R., Corry P.M., Hittelman W. Mechanism of Cell Injury // Radiation Biology in Cancer Research / ed. R.E. Meyn. N.Y.: Raven Press, 1980. P. 33 58.

436. Copper Proteins and Copper Enzymes / Ed. Loutie R. USA: CRC Press, 1984.V. 1 -3.380 p.

437. Cowan S.W., Schirmer Т., Rummel G., Steiert M., Ghosh R., Pauptit R.A., Jansonius J.N., Rosenbusch J.P. Crystal structures explain functional properties of two E. coli porins // Nature. 1992. V. 358. P. 727 733.

438. Cross A.R., Jones O.T.G. Enzymic mechanisms of superoxide production//Biochim. Biophys. Acta. 1991. V 1057. P. 281 298.

439. Cuvelier M.-E., Richard H., Berset C. Comparison of the Antioxidative Activity of Some Acid-phenols: Structure Activity Relationship // Biosci. Biotech. Biochem. 1992. V. 56. N 2. P. 324 - 325.

440. Dardalhon-Samsonoff M., Averback D. DNA-membrane Complex Restoration in Micrococcus Radiodurans after X-Irradiation: Relation to Repair, DNA-systhesis and DNA-degradation // Intern. J. Radiat. Biol. 1980. V. 38. N1. P. 31-52.

441. Dart R.K., Stretton R.J. // Microbiol. Lett. 1976. V. 3. P. 31 36.

442. Davies M J. Applications of Electron Spin Resonance Spectroscopy to the Identification of Radicals Produced During Lipid Peroxidation // Chem. Phys. Lipids. 1987. V. 44. N 2-4. P. 149 173.

443. Davis J.M., Svendsgaard D.J. // J. Toxic. Env. Helth. 1990. V. 30. P. 71 -83.

444. Davy C.A., Tesfay Z., Jones J., McCarthy C., Ostrand-Rosenberg S., Rosenberg R.C. Endogenous superoxide dismutase and catalase activities and radiation resistance in mouse cell lines // Int. J. Radiat. Biol. 1988. V. 53. N 2. P. 283 289.

445. De Vrije Т., de Swat R.L., Downah W., Tommassen J., de Kruijff B. Phosphatidylglycerol is involved in protein translocation across Escherichia coli inner membranes // Nature. 1988. V. 334 (6178). P. 173 175.

446. Dean C.J., Feldschreiber P., Burrel A.P. Repair of double Strand Breaks in X-Irradiated Micrococcus Radiodurans // Proc. of First Europ. Biophys. Congr. Vienna, 1971. V. II. P. 197 201.

447. Delikonstantinos G., Kopeikina-Tsiboukidon L., Villitonou V. Evaluation of membrane fluidity effects and enzyme activities in adriamicin neurotoxity//Biochem. Pharmacol. 1987. V. 36. P. 1153-1158.

448. Denisov E.T., Denisova T.G. Handbook of Antioxidants. Bond Dissocoition Energy, Rate Constants, Activation Energy and Enthalpies of Reactions (2nd ed.) // Boca Raton, London, New York, Washington: CRC Press, 2000. 290 p.

449. Di Monte D., Smith M.T. Free Radicals, Lipid Peroxidation and 1-Methyl-4-Phenyl-l,2,3,6-Tetrahydropyridine (MPTP) Induced Parkinsonism // Revs, in the Neurosciences. 1988. V. 2. N 1. P. 67 - 81.

450. Dikalov S., Kirilyuk I., Grigor'ev I. Spin Trapping of О-, C- and S-Centered Radicals and Peroxynitrite by 2H-imidazole-l-oxides // Biochem. Biophys. Res. Comm. 1996. V. 218. N 2. P. 616 622.

451. Dizdaroglu M., Aruoma A.I., Halliwell 'B. Modification of Bases in DNA by Copper Ion-l,10-Phenanthroline Complexes // Biochemistry. 1990. V. 29. P. 8447-8451.

452. Dowhan W. Molecular basis for membrane phospholipid diversity: why are there so many lipids? // Annu. Rev. Biochem. 1997. V. 66. P. 199 232.

453. Dowhan W. Genetic analysis of lipid-protein interactions in Escherichia coli membranes // Biochim. Biophys. Acta. 1998. V. 1376. P. 455 466.

454. Duca G. Advances and Prospects of Ecological Chemistry // Mediul Ambiant. 2002. N 3(3). P. 4 9.

455. Duggan D.E. Spectrofluorometric Determination of Tocopherol // Arch. Biochem. Biophys. 1959. V. 84. P. 116 122.

456. Dygas A., Baranska J. Lipids and signal transductions in the nucleus // Acta Biochim. Pol. 2001. V. 48. N 2. P. 541- 549.

457. Edimecheva I.P., Kisel M.A., Shadyro O.I., Vlasov A.P., Yurkova I.L. The Damage to Phospholipids caused by free radical attack on glycerol and sphingosine backbone // Intern. J. Radiat. Biol. 1997. V. 71. N 5. P. 555 560.

458. Eerola E., Lehtonen O.-P. Optimal Data Processing Procedure for Automatic Bacterial Identification by Gas-Liquid Chromatography of Cellular Fatty Acids // J. Chem. Microbiol. 1988. V. 26. N 9. P. 1745 1753.

459. Eguchi M., Ishida T. // Mem. Natl. Inst. Polar Rec. Spec. Issue. 1986. V. 40. N2. P. 413-414.

460. Elbash P., Weiss J. Phagocytosis of bacteria and phospholipid degradation // Biochim. Biophys. Acta. 1988. V. 947. P. 29 52.

461. Emanuel N.M., Zaikov G.E., Maizus Z.K. Oxidation of Organic Compounds. Effect of Medium. // Oxford: Percamon Press, 1984. 650 p.

462. English D. Phosphatide acid: a lipid messenger involed in intracellular and extracellular signalling // Cell Signal. 1996. V. 8. N 5. P. 341 347.

463. Eriksson K.-E. L., Blanchette R.A., Ander P. Microbial and Enzymatic Degradation of Wood and Wood Components. Berlin: Springier, 1990. 87 p.

464. Eskelinen S., Saukko P. Effect of lysophosphatidylcholine (LPC) on the size and shape of erythrocytes in iso- and hypertonic solutions. A scanning electron microscope study // Stud, biophys. 1982. V. 90. P. 151 152.

465. Esterbauer H., Rotheneder M., Striegl G., Waeg G., Ashy A., Sattler W., Jurgens G. Vitamin E and other Lipophilic Antioxidants Protect LDL against Oxidation II Fat Sci. Technol. 1989.91 Jahrgang. N 8. S. 316 324.

466. Fairbairn D.J., Law B.A. The effect of nitrogen and carbon sources on proteinase production by Pseudomonas fluorescens II J. Appl. Bacterid. 1987. V. 62. N2. P. 105-114.

467. Farias R.N., Morero R.D., Sineriz F., Frucco R.E. Regulation of allosteric membrane-bound enzymes through changes in membrane lipid composition//Biochim. Biophys. Acta. 1975. V. 415. N2. P. 231 251.

468. Faroogui A.A., Horrocks L.A. Exicitotoxicity and neuronal disorders: involvement of membrane phospholipids // Int. Rev. Neurobiol. 1994. V. 36. P. 267-323.

469. Ferber E., Munder P., Kohlshutter A., Fischer H. Lysolecithin-Stoffweghsel in Erithrocyten membranen.Lysolecithin-Acylierung and Lyso-phospholipase in alternen Erythrocyten // Europ. J. Biochem. 1968. V. 5. N 4. P. 395 402.

470. Finean J.B. Interaction between cholesterol and phospholipid in hydrated bilayers // Chem. Phys. Lipids. 1990. V. 54. N 1. P. 147 156.

471. Fisher A.B., Dodia С., Manevich Y., Chen J.W., Feinstein S.I. Phospholipid hydroperoxides are substrates for non-selenium glutathione peroxidase // J. Biol. Chem. 1999. V. 274. N 30. P. 21346 21334.

472. Floyd R.A., Schneider J.E. Hydroxyl free radical damage to DNA // Membrane Lipid Oxidation / Ed. Vigo-Pelfrey C. Boca Raton Ann Arbor Boston: CRC Press, 1991. V. III. P. 69-85.

473. Foti M., Ingold K.U., Lusztyk J. The Surprisingly High Reactivity of Phenoxyl Radicals // J. Am. Chem. Soc. 1994.V. 116. P. 9440 9447.

474. Frankel E.N. Lipid Oxidation // Prog. Lipid Res. 1980. V. 19. P. 1 22.

475. Frankel E.N. Secondary products of lipid oxidation // Chemistry and Physics of Lipids. 1987. V. 44. N 2-4. P. 73 85.

476. Frimer A.A. Photosensitized Oxygenation of Small Ring Olefins // The Spectrum. 2000. V.13. Issue 2. P. 9 16.

477. Fukami K., Simidu U., Taga N. Distribution of heterotrophic bacteria in relation of the concentration of particulate organic matter in seawater // Can. J. Microbiology. 1983. V. 29. N 5. P. 570 575.

478. Gang M.C., Ojha S., Bansal D.D. Antioxidant status of streptozotocin diabetic rats // Indian J. Exp. Biol. 1996. V. 34. P. 264 266.

479. Gavrilova N.G., Petkova D.H. Role of rat liver plasma membrane phospholipids in regulation of protein kinase activities // J. Lipid Mediat. Cell Signal. 1995. V. 11.N3.P. 241-252.

480. George A.M., Cramp W.A., Yatvin M.B. The influence of membrane fluidity on radiation induced changes in the DNA of E.coli К 1060 // Intern. J. Radiat. Biol. 1980. V. 38. N 4. P. 427 438.

481. Ghosh S., Strum J.C., Bell R.M. Lipid biochemistry: functions of glyce-rolipids and sphingolipids in cellular signaling // FASEB J. 1997. V. 11. N 1. P. 45 50.

482. Gille J.J., Joenje H. Biological significance of oxygen toxicity: an introduction // Membrane Lipid Oxidation / Ed. Vigo-Pelfrey C. Boca Raton Ann Arbor Boston: CRC Press, 1991. V. Ш. P. 1 32.

483. Giulivi C., Hochstein P., Davies K.J.A. Hydrogen peroxide production by red blood cells// Free Radic. Biol. & Med. 1993. V. 16. P. 123 129.

484. Gofman J.W. Radiation-induced cancer from low dose exposure: an independent analysis / Ed. O'Connor. San Francisco, California, 1990. 455 p.

485. Goldstein S., Czapskj G. The role and mechanism of metal ions and their complexes in enhancing damage in biological system or in protecting these systems from the toxicity of 02*// J. Free Radic. Biol. & Med. 1986. V. 2. P.3-11.

486. Goloshchapov A.N., Burlakova E.B. Spin probes for Study of Intact and Cancer Cell Membranes // Bioactive Spin Labels / Ed. R.I. Zdanov. Berlin: Springer-Verlag, 1992. P. 509 526.

487. Goni F.M., Alonso A. Structure and functional properties of diacyl-glycerols in membranes // Prog. Lipid Res. 1999. V. 38. N 1. P. 1-48.

488. Graber R., Sumida C., Nunez E.A. Fatty acids and cell signal transduction // J. Lipid Mediat. Cell Signal. 1994. V. 9. N 2. P. 91 116.

489. Grzelinska E., Bartosz G., Gwozdzinski K., Leyko W. A spin-label Study of the Effect of Gamma-Radiation on Erythrocyte Membrane: Influence of Lipid Peroxidation on Membrane Structure // Intern. J. Radiat. Biol. 1979. V.36.N4. P. 325-334.

490. Guerzoni M.E., Ferruzzi M., Sinigaglia M., Criscuoli G.C. Increased cellular fatty acid desaturation as a possible key factor in thermotolerance in Saccharomyces cerevisiae II Can. J. Microbiol. 1997. V. 43. N 26. P. 569 576.

491. Guerzoni M.E., Lanciotti R., Cocconcelli P.S. Alteration in cellular fatty acid composition as a response to salt, acid, oxidative and thermal stresses in Lactobacillus helveticus И Microbiology. 2001. V. 147. Pt.8. P. 2255 2264.

492. Gupta M.S., Devi P.U. Formation of Giant Hepatocytes in Response to Radiation // Current Sci. 1981. V. 50. N 14. P. 637 638.

493. Gutierrez A., del Rio J.C., Martinez-Inigo M.J., Martinez M.J., Marti-nez A.T. Production of New Unsaturated Lipids during Wood Decay by Ligni-nolitic Basidiomycetes // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V.68. N 3. P. 1344 -1350.

494. Hammel K.E. Extracellular free radical biochemistry of ligninolytic fungi // New J. Chem. 1996. V. 20. N 2. P. 195 198.

495. Hammel K.E., Gai W.Z., Green В., Moen M.A. Oxidative degradation of phenanthrene by the ligninolytic fungus Phanerochaete chrysosporium II Appl. Environ. Microbiol. 1992. V. 58. P. 1832 1838.

496. Hammel K.E., Kapich A.N., Jensen K.A., Ryan Z.C. Reactive oxygen species as agents of wood decay by fungi // Enzyme and Microbial Technology. 2002. V. 30. P. 445 453.

497. Hammer C.T., Wills E.D. The effect of ionizing radiation on the fatty acid composition of natural fats and on lipid peroxide formation // Intern. J. Radiat. Biol. 1979. V. 35. N 4. P. 323 332.

498. Harada K., Moriwaki M., Oda S. Arrhenius Plot Analysis of the Mechanism of Thermotolerance Induction in the Radioresistant Bacterium Deino-coccus Radiodurans II J. Gen. Appl. Microbiol. 1988. V. 34. № 2. P. 209 212.

499. Harvey P.J., Palmer J.M. Oxidation of phenolic compounds by ligninase // J. Biotechnol. 1990. V. 13. N 2-3. P. 169 179.

500. Hatakka A. Biodegradation of Lignin // Biopolymers. Lignin, humic substances and coal / Ed. Hofrichter M. and Steinbuchel A. Wiley-VCH: Verlag GmbH, 2001. V. 1. P. 129 180.

501. Heitzmann M., Wilson R. Low Dose Linearity: The Rule of the Exception? // BELLE Newslettr. 1997. V. 6. N 1. P. 1-10.

502. Hensley K., Robinson K.A., Gabbita P., Salsman S., Floyd R.A. Reactive Oxygen Species, Cell Signaling, and Cell Injury // Free Radic. Biology & Med. 2000. V. 28. N 10. P. 1456 1462.

503. Higgins J.A. Heterogeneity of Phospholipid Synthesis // J. Molec. Biol. 1976. V.34.N1.P. 177- 197.

504. Hirano S., Miyashita K., Ota Т., Nishikawa M., Maruyama K., Nakaya-ma S. Aqueous Oxidation of Ethyl Linoleate, Ethyl Linolenate, and Ethyl Docosahexaenoate//Biosci. Biotech. Biochem. 1997. V. 61.N. 2. P. 281 285.

505. Hirsch P. Budding bacteria // Ann. Rev. Microbiol. 1974. V. 28. P. 391 -444.

506. Hirsch P., Conti S.F. Biology of budding bacteria. Enrichment, isolation and morphology of Hyphomicrobium spp // Arch. Microbiol. 1964. V. 48. P. 339-357.

507. Ho S.K., Но Y.L. The role of Hydroxyl Radicals in Radiation-Induced Single-Strand Breaks of Bacterial DNA Sensitized by Parachloromercuri-benzoate // Radiat. Res. 1976. V. 67. N 2. P. 277 285.

508. Hofer K.G., van Loon N., Schneiderman M.H., Charlton D.E. The Paradoxal Nature of DNA Damage and Cell Death Induced by 125 I Decay // Radiat. Res. 1992. V. 130. P. 121 124.

509. Hofrichter M. Review: lignin conversion by manganese peroxidase (MnP) // Enzyme and Microbial Technology. 2002. V. 30. P. 454 466.

510. Holtsberg F.W., Steiner M.R., Keller J.N., Mattson M.P., Steiner S.M. Lysophosphatidic acid induces necrosis and apoptosis in hippocampal neurons //J. Neurochem. 1998. V. 70. N 1. P. 66 76.

511. Horowitz A., Krichevsky M.I., Atlas R.M. Characteristics and diversity of subaretic marine oligotrophic, stenoheteroterophic and euryhetrophic bacterial populations // Can. J. Microbiol. 1983. V. 29. N. 5. P. 527 535.

512. Houwink A.L. // Experientia. 1983. V. 8. N 4. P. 385

513. Howlett N.G., Avery S.V. Induction of Lipid Peroxidation during Heavy Metal Stress in Saccharomyces cerevisiae and Influence of Plasma Membrane Fatty Acid Unsaturation // Appl. Environ. Microbiol. 1997. V. 63. N. 8.P. 2971 -2976.

514. Howlett N.G., Avery S.V. Relationship between cadmium sensitivity and degree of plasma membrane fatty acid unsaturation in Saccharomyces cerevisiae //Appl. Microbiol. & Biothech. 1997. V. 48. N 4. P. 539 545.

515. Hudson B.J.F., Mahgoub S.E. O. Synergism between phospholipids and naturally-occuring antioxidants in leaf lipids // J. Sci. Food and Agr. 1981. V. 32. N2. P. 208-210.

516. Huijbregts R.P., de Kroon A.I., de Kruijff B. Topology and transport of membrane lipids in bacteria // Biochim. Biophys. Acta. 2000.V. 1469. N 1. P. 43-61.

517. Hunter К., Rose A. The Yeasts. London, Cambrige Univ. Press. 1971. V. 2. D. 211 -273.

518. Ishida T, Eguchi M., Kadota H. // J. Marine Ecology. 1986. V. 30. N. 2. 197-203.

519. Ishikawa Y., Sugiyama K., Nakabayashi K. Stabilization of tocopherol by three components synergism involving tocopherol, phospholipid and amino compound//J. Am. Oil Chem. Soc. 1984. V. 61. N 5. P. 950 954.

520. Itzhaki R., Gill D.M. A micro-biuretic method for estimating proteins // Anal. Biochem. 1964. V. 9. P. 401 410.

521. Jacobson A.F., Yatvin M.B. Changes in phospholipid composition of Escherichia coli following gamma- and UV-irradiation // Radiat. Res. 1976. V. 66. N2. P. 247-266.

522. Jensen K.E., Bao W., Kawai S., Srebotnik E., Hammel K.E. Manganese-Dependent Cleavage of Nonphenolic Lignin Structure by Ceriporiopsis subvermispora in the Absence of Lignin Peroxidase // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V. 62. N 10. P. 3679 3686.

523. Joshi S., Mathur J.M.S. Effect of Growth Temperature on the Physico-chemical Characteristics of Fungal Oil // Fat. Sci. Technol. 1987. 89 Jahrgang. N8. S.311 -313.

524. Kagan V.E., Fabisiak J.P., Shvedova A.A., Tyurina Y.Y., Tyurin V.A., Schor N.F., Kawai K. Oxidative signaling pathway externalization of plasma membrane phosphatidylserine during apoptosis // FEBS Lett. 2000. V. 477. P.

525. Kale R.K., Sitasawad S.L. Non-linear pattern of radiation induces lipid peroxidation is not affected by vitamin E, Fe ions and molecular oxygen // Indian J. Experimental Biol. 1991. V. 29. P. 778 781.

526. Kalo P., Huotari H., Antila M. Pseudomonas fluorescens Lipase-catalysed Intersterification of Butter Fat I I Fat. Science. Technology. 1989. 91 Jahrgang. N 7. S. 276-281.

527. Kandler 0., Zehender C., Huber O. // Arch. Microbiol. 1954. V. 21. N 3.P. 57-59.

528. Kapich A., Hofrichter M., Vares Т., Hatakka A. Coupling of Manganese Peroxidase-Mediated Lipid Peroxidation with Destruction of Nonphenolic Lignin Model Compounds and 14C-Labeled Lignins // Biochem. Biophys. Res. Comm. 1999. V. 259. N 1. P. 212 219.

529. Kapich A.N., Jensen K.A., Hammel K.E. Peroxyl radicals are potential agents of lignin biodegradation // FEBS Lett. 1999. V. 461. P. 115 119.

530. Kato F., Nakazkto Y., Shirashi Т., Hayashi K., Murata A., Yone Y. Screening for Antioxidative Activity in Microorganisms (Utilization of Waste Fish Treated with Microorganisms. Part I. // Nippon Nogeikagaku Kaishi. 1985. V. 59. N9. P. 901 -907.

531. Kheiralla Z.H., Mostafa S.A., Ashour S.M. // Egypt J. Microbiol. 1987. V. 22. N 1. P. 151

532. Kirk Т.К., Farrell R.L. Enzymatic «combustion»: the microbial degradation of lignin// Annu. Rev. Microbiol. 1987. V. 41. P. 465 505.

533. Klema E., Shihab-Eldin A., Wilson R. Some claims of unusually large effects of radiation// Veritas. 1989. July 16. 124 p.

534. Kohn K.W. Assessment of DNA damage by Filter Elution Assays // Base LifeSci. 1986. V. 38. P. 101 118.

535. Kolomiytseva I.K., Slozhenikina L.V., Fialkovskaya L.A., Kulagina T.P., Markevich L.N., Potekhina N.I. Nonmonotonous Changes in Metabolic

536. Parameters of Tissues and Cells under Action of Ionizing Radiation on Animals // J. Biol. Phys. 1999. V. 2$. P. 325 338.

537. Kono Y. Apparent antibacterial activity of catalase: role of lipid hydroperoxide contamination. J. Biochem. (Tokyo). 1995. V. 117. N 1. P. 42 46.

538. Koteles G.Y. New Aspects of Cell Membrane Radiobiology and their Impact on Radiation Protection // Atomic Energy Review. 1979. V. 17. N 1. P. 3-30.

539. Kreeb K.H., Schwegler H., Muller J. et al. Zur Anwendung der «Katastrophenteorie» fur die Modelbindung in Bereich der Bioindikation. Vergleich der Organizationsebenen «Vegetation» und «Chloroplasten» // Angew. Bot. 1981. V. 55. P. 149 167.

540. Kumar V., Misra U.K. Hepatic plasma membrane fluidity and dietary proteins // Ind. J. Biochem. Biophys. 1991. V. 28. August. P. 301 306.

541. Kusters R., de Vrije Т., Breukink E., de Kruijff B. SecB Protein Stabilizes a Translocation-competent State of Purified prePhoE Protein // J. Biol. Chem. 1989. V. 264. N 35. P. 20827 20830.

542. Lang S., Kasiwela E., Wagner F. Antimicrobial Effect of Biosurfactants // Fat. Sci. Technol. 1989. 91 Jahrgang. N 9. S. 363 366.

543. Leibovitz В., Smith-Sonneborn J. A method of lipid peroxidation in Paramecium tetraurelia II Age. 1988. V. 11. P. 128 134.

544. Leonarduzzi G., Arkan M.C., Basaca H., Chirpotto E., Sevenain A., Poli G. Lipid Oxidation Products in Cell Signaling // Free Radic. Biol. & Med. 2000. V. 28.N 2. P. 1370 1378.

545. Maeba R., Maruyama A., Tarutani O., Ueta N., Shimasaki H. Oxidized low-density lipoprotein induces the production of superoxide by neutrophils //FEBS Lett. 1995. V. 337. N 3. P. 309 312.

546. Mansurova S.E., Kulaev I.S., Dukhovich V.F., Khokhlov A.P., Burlakova E.B. // Biochem. Intern. 1982. V. 5. N 4. P. 457 462.

547. Marcon J.L., Filho D.W. Antioxidant processes of the wild tambaqui, Colossoma macropomum (Osteichthyes, Serrasalmidae) from the Amazon // Сотр. Biochem. Physiol. Part C. 1999. V. 123. P. 257 263.

548. Markesbery W.R. Oxidative Stress Hypothesis in Alzheimer's Disease //Free Radic. Biol. & Med. 1997. V. 23. N 1. P. 134 147.

549. McMillin J.B., Dowhan W. Cardiolipin and apoptosis // Biochim. Biophys. Acta. 2002. V. 1585. N 2-3. P. 97 107.

550. Membrane Lipid Oxidation / Ed. Carmen Vigo-Pelfrey. Boca Raton, Ann Arbor, Boston: CRC Press, 1991. V. III. 300 p.

551. Michiels C., Remacle J. Cytotoxicity of linoleic acid peroxide, malon-dialdehyde and 4-hydroxynonenaI towards human fibroblasts // Toxicology. 1991. V. 66. P. 225 234.

552. Miller//J. Bacteriol. 1985. V. 162. N 1. P. 263 270.

553. Moen M.A., Hammel K.E. Lipid Peroxidation by the Manganese Peroxidase of Phanerochaete chrysporium is the Basis for Phenanthrene Oxidation by the Intact Fungus // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V. 60. N 6. P. 1956- 1961.

554. Montandon D., Carbonneau M.-A., Melin A.-M., Rebeyrotte N. Lipid composition, lipid fluidity and radioresistence of Deinococcus radiodurans and two mutant strains // Biochemie. 1987. V. 69. N 11-12. P. 1243 1250.

555. Montville T.J. Food microbiology. Boca Raton /Fla/: CRC Press, 1987. V.l. Concepts in physiology and metabolism. 79 p.

556. Morelle J. Peroxydes lipideques radicaux libres vieillissement et lipoaminoacides. 2 partie // Partums, cosmetique, aromes. 1988. N 80. April -Mai. P. 91 104.

557. Mukai K., Oka W., Watanabe K., Egawa Y., Nagaoka S.-i. Kinetic Study of Free-Radical-Scavenging Action of Flavonoids in Homogenous and Aqueous Triton X-100 Micellar Solutions // J. Phys. Chem. A 1997. V. 101. P. 3746-3753.

558. Munnik T. Phosphatidic acid: an emerging plant lipid second messenger // Trends Plant Sci. 2001. V. 6. N 5. P. 227 233.

559. Nakamura S. Phosphatidylcholine hydrolysis and protein kinase С activation for intracellular signaling network // J. Lipid Mediat. Cell Signal. 1996. V. 14. N 1-3. P. 197-202.

560. Nakazawa Т., Nagatsuka S. Radiation-induced lipid peroxidation and membrane permiability in liposomes // Intern. J. Radiat. Biol. 1980. V. 18. N 5. P. 537 544.

561. Nesmeyanova M.A., Bogdanov M.V. Participation of acid phospholipids in protein translocation across the bacterial cytoplasmic membrane // FEBS Lett. 1989. V. 257. N 2. P. 203 207.

562. Niki E. Antioxidants in relation to lipid peroxidation // Chem. Phys. Lipids. 1987. V. 44. P. 227 253.

563. Niki E. Lipid antioxidants: How they may act in biological system // 1987. P. 155- 157.

564. Niki E., Yamamoto Ya., Takahashi M., Yamamoto K., Yamamoto Yu., Komuro E., Miki M., Yashuda H., Mino M. Free Radical-Mediated Damage of Blood and Its Inhibition by Antioxidants // J. Nutr. Sci. Vitaminol. 1988. V. 34. P. 507-512.

565. Nikitin D., Zlatkin I. Oligotrophic Microorganisms as a Special Evolutionary Group of Procariotes //Recent Advances in Microbial Ecology. Tokyo, 1989. P. 94 99.

566. Nishizuka Y. Intracellular signaling by hydrolysis of phospholipids and activation of protein kinase С // Science. 1992. V. 258. N 5082. P. 607 614.

567. Nishizuka Y. Protein kinase С and lipid signaling for sustained cellular responses // FASEB J. 1995. V. 9. P. 484 496.

568. Nishizuka Y. Turnover of inositol phospholipids and signal transduction//Science. 1986. V. 233. P. 305 312.

569. Nomura K., Imai H., Koumura Т., Arai M., Nakagawa Y. Mitochondrial phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase suppresses apoptosis mediated by a mitochondrial death pathway // J. Biol. Chem. 1999. V. 274. N 41. P. 29294 29302.

570. Ohta H., Hattori T. //Soil Sci. Plant Nutr. 1980. V. 26. N 1. P. 245 265.

571. Ohvo-Rekila H., Ramstedt В., Leppimaki P., Slotte J.P. Cholesterol interactions with phospholipids in membranes // Prog. Lipid Res. 2002. V. 41. N l.P. 66-97.

572. Oxidative Stress / Ed. H. Sies. L.: Acad. Press, 1985. 507 p.

573. Patil K.B., Shivamurthy S.C., Badami R.C. Effect of Fungi on the Lipid Composition of Soybean during Storage at Different Levels of Humidity // Fette. Seifen. Anstrichmittel. 1986. 88 Jahrgang. N 1. S. 18 19.

574. Paukau A., Morgan A.R. Role of DNA-Polymerase // Nature. New Biol. 1971. V. 234. N45. P. 36.

575. Peter H.W., Wiese F., Graszynsky G. // J. Dev. Biol. 1975. V. 46. N 2. P. 439 447.

576. Petkau A., Chelack W.S. Radioprotective effect of superoxide dismutase on model phospholipid membranes // Biochim. Biophys. Acta. 1976. V. 433. N3. P. 445-456.

577. Popov I., Blumstein A., Lewin G. // Arzneimittelforschung. 1994. B. 44. S. 277 282.

578. Popov I.N., Lewin G. Photochemiluminescent detection of antiradical activity. II. Testing of nonenzymic water-soluble antioxidants // Free Radic. Biol. Med. 1994. V. 17. P. 267 271.

579. Popov I.N., Lewin G. Photoluminescent detection of antiradical activity; IV: testing of lipid-soluble antioxidants // J. Biochem. Biophys. Methods. 1996. V. 31. P. 1 -8.

580. Porter J.W., Swenson T.L. Induction of fatty acid synthetase and acetyl-CoA-cadboxylase by isolated rat liver cells // Mol. and Cell Biochem. 1983. V. 53/54. N 1/2. P. 307-325.

581. Pryor W.A., Strickland Т., Curch D.F. Comparison of the Efficiencies of Several Natural and Synthetic Antioxidants in Aqueous Sodium Dodecyl Sulfate Micelle Solutions // J. Am. Chem. Soc. 1988. V. 110. P. 2224 2229.

582. Puddey I.B. Low serum cholesterol and the risk of cerebral haemorrhage//Atherosclerosis. 1996. V. 119. P. 1 6.

583. Raccach M. The antimicrobial activity of phenolic antioxidants in food: a review // J. Food Safety. 1984. N 6. N 3. P. 141 170.

584. Ramos J.L., Gallegos M.T., Godoy P., Ramos-Gonzales M.I., Rojas A., Teran W., Segura A. Mechanisms of solvent tolerance in gram-negative bacteria // Annu. Rev. Microbiol. 2002. V. 56. P. 743 768.

585. Ramos J.L., Gallegos M.T., Marques S., Ramos-Gonzales M.I., Espinosa-Urgel M., Segura A. Responses of Gram-negative bacteria to certain environmental stressors // Curr. Opin. Microbiol. 2001. V.4. N 2. P. 166-171.

586. Ratledge C., Evans C. Lipids and their metabolism // The Yeast / Ed. A.H. Rose and J.S. Harrisson. N.Y.: Academic Press, 1989. V. 3 P. 367 455.

587. Ratledge C., Wilkinson S.G. Microbial Lipids. 1988. V. 1. Academic Press: London.

588. Rezanka Т., Zlatkin I.V., Viden I., Slabova O.L., Nikitin D.I. Capillary gas chromatography-mass spectrometry of unusual and long-chain fatty acids from soil oligoprophic bacteria // J. Chromatogr. 1991. V. 558. P. 215 221.

589. Richter C. Biological Consequences of Lipid Peroxidation in Membranes // Chem. Phys. Lipids. 1987. V. 44. P. 175 189.

590. Ridgway N.D. Interactions between metabolism and intracellular distribution of cholesterol and sphingomyelin // Biochim. Biophys. Acta. 2000. V. 1484. P. 129-141.

591. Robertson A.D., Grutsch I.F. Biphasic responses, quantal signals and cellular behaviour //J. Theor. Biol. 1987. V. 25. N 1. P. 41-47.

592. Roelofsen В., van Deenen L.L.M. Lipid requirement of membrane-bound ATPase. Studies of human erythrocyte ghosts // Europ. J. Biochem. 1973. V. 40. P. 245 -257.

593. Rose В., Agarwal S., Chatterjee S.N. Membrane Lipid Peroxidation by UV-A: Mechanism and Implications // Biotechn. and Appl. Biochem. 1990. V. 12. P. 557-561.

594. Rosenberg B. Possible Mechanisms for Antitumor Activity of PlatinumУ

595. Coordination Complexes // Canser Chemotherapy Rept. 1975. V. 59. N 3. P. 589-598.

596. Ruel K., Joseleau J.P. // Food Hydrocolloids. 1987. V. 1. N 5-6. P. 515 -519.

597. Saadan В., Le Tutour D., Quemeneur F. Oxidation properties of phospholipids: mechanistic studies // New J. Chem. 1998. V. 22. N 8. P. 801 807.

598. Sagan L. A Brief History and Critique of the Low Dose Effects Paradigm // BELLE Newsletter. 1993. V. 2. N 2. P. 1-7.

599. Saier M.H., Wu Jr. L-F., Reizer J. Regulation of bacterial physiological processes by three types of protein phosphorylating systems // Trends Biochem. Sci. 1990. V. 15. P. 391 -395.

600. Sambuichi E.J., Shizuka F., Kishi K. The influence of dietary protein on lipid peroxide formation in old, Food restricted rats // Nutr. Res. 1991. V. 11. P. 1415- 1426.

601. Sandy M.S., Di Monte D., Smith M.T. Relationships between Intracellular Vitamin E, Lipid Peroxidation and Chemical Toxicity in Hepatocytes // Toxicology and Appl. Pharmacology. 1988. V. 93. N 2. P. 288 297.

602. Sanner Т., Pihl A. Sulfhydryl Groups in Radiation Damage // Scand. J. Lab. Clin. Invest. 1968. V.22. Suppl. N 106. P. 53 63.

603. Santiago E., Lopez-Moratalla N., Segovia J.L. Correlation between losses of mitochondrial ATPase activity and cardiolipin degradation // Biochem. Biophys. Res. Commun 1973. V. 53. N 2. P. 439 445.

604. Schafer F.Q., Buettner G.R. Redox environment of the cell as viewed through the redox state of the glutathione disulfide/glutathione couple // Free Radic. Biol. & Med. 2001. V. 30. N 11. P. 1191 1212.

605. Schoemaker H.E., Harvey P.J., Bowen R.M., Palmer J.M. // FEBS Lett. 1985. V. 183. N1. P. 7- 12.

606. Schwenke К., Coslan S., Muhlensiepen H., Altman K.I., Feinendegen L.E. Lipid peroxidation in microsomes of murine bone marrow after low-dose gamma-irradiation//Radiat. Environ. Biophys.1994. V. 33. N. 4. P. 315 323.

607. Sedlak J., Lindsay R.H. Estimation of Total, Protein-bound and Nonprotein Sulphydryl Groups in Tissue with Ellman's Reagent // Anal. Biochem. 1968. V. 25. P. 192-205.

608. Shashkov A.S., Toukach F.V., Paramonov N.A., Ziolkowski A., Senchenkova S.N., Kaca W., Knirel Y.A. Structures of new acidic O-specific polysaccharides of the bacterium Proteus mirabilis serogroups 026 and 030 // FEBS Lett. 1996. V. 386. P. 247 251.

609. Shibuya I. Metabolic regulations and biological functions of phospholipids in Escherichia coli И Prog. Lipid Res. 1992. V. 31. N 3. P. 245 299.

610. Singh B.B. The Role of Membranes in Radiation Damage // Bio-membranes: Architecture, Biogenesis, Bioenergetics and Differentiation. N.Y. etc.: Acad. Press, 1974. P. 313 318.

611. Sipione S., Lupo G., Anfuso S.D., Albanese V., Alberghina M. Phosphatidylcholine synthesis-relared enzyme activities of bovine brain micro-vessels exhibit suspectibility to peroxidation // FEBS Lett. 1996. V. 384. N 1. P. 19-24.

612. Skou I.C. // Bioenegetics. 1973. V. 4. N 1. P. 35 46.

613. Skurlatov Yu.I. Ecological Chemistry of Aquatic Environment Past, Present and Future // Mediul Ambiant. 2002. N 3(3). P. 11 - 16.

614. Soderhall S., Lindahl T. DNA-ligases of eukaryotes // FEBS Lett. 1976. V. 67. N 1. P. 1-8.

615. Sparrow A.H., Underbrink A.G., Sparrow R.C. Chromosomes and cellular radiosensitivity 1. The relationship of D to chromosome volume and complexity in seventy-nine different organisms // Radiat. Res. 1967. V. 5. P. 915-945.

616. Sperry W.M., Webb M. A revision of the schoenheimer-sperry method for cholesterol determination // J. Biol. Chem. 1950. V. 187. N 1. P. 97 106.

617. Srebotnik E., Jensen K.A., Kawai S., Hammel K.E. Evidence That Ceriporiopsis subvermispora Degrades Nonphenolic Lignin Structures by a One-Electron-Oxidation Mechanism // Appl. Environ. Microbiol. 1997. V. 63. N11. P. 4435-4440.

618. Stark G. The effect of ionizing radiation on lipid membranes // Biochim. Biophys. Acta. 1991. V. 1071. P. 103 122.

619. Steels E.L., Learmonth R.P., Watson K. Stress tolerance and membrane lipid unsaturation in Saccharomyces cerevisiae grown aerobically or0 anaerobically // Microbiol. 1994. V. 140. P. 569 -^576.

620. Steinberg D., Parharasarathy S., Carwe Т.Е., Khoo J.D., Witztum J.L. Beyond cholesterol: modifications of low density lipoprotein that increase its atherogenicity//N. Engl. J. Med. 1989. V. 320. P. 915 924.

621. Sungurov A.Yu., Sharlaeva T.M. Thymocyte membrane changes and modification of interphase death // Int. J. Radiat. Biol. 1988. V. 53. N 3. P. 501 506.

622. Sungurov A.Yu., Tokalov S.V., Mazhul V.M., Resunkova O.P., Sharlaeva T.M. Biophysical Studies of irradiated Thymocytes. II. Membrane Changes // Stud. Biophys. 1985. V. 107. N 2. P. 133 139.

623. Sungurov A.Yu., Tokalov S.V., Petrov Yu.P., Sharlaeva T.M. Biophysical Studies of irradiated Thymocytes. I. Surface Changes // Stud. Biophys. 1985. V. 107. N2. P. 127 132.

624. Suzuki S., Akamatsu Y. Involvement of membrane lipids in radiation damage to potassium-ion permiability of Escherichia coli II Int. J. Radiat. Biol. 1978. V. 33. N2. P. 185- 190.

625. Swern D., Coleman G. // J. Amer. Oil Chem. Soc. 1955. V. 32. P. 700 -707.

626. Szumala A., Pernak J. The Natural and Laboratory Resistance of Gram-negative Rods to (Alkylthio)Methyl.Pyridinium Chlorides // Fat. Sci. Technol. 1988. 90 Jahrgang. N 8. S. 319 322.

627. Takai Y., Kishimoto A., Kikkawa U. et al. Unsaturated diacylglycerol as a possible messenger for the activation of calcium activated phospholipid-dependent protein kinase system // Biochem. Biophys. Res. Communs. 1979. V. 91. N4. P. 1218- 1224.

628. Tarahovsky Y.S., Khusainova R.S., Gorelov A.V., Nicolaeva T.I., Deev A.A., Dawson A.K., Ivanitsky G.R. DNA initiates polymorphic structural transitions in lecithin // FEBS Lett. 1996. V. 390. N 2. P. 133 136.

629. Tomassen J., de Vrije Т., de Cock H., Bosch D., de Kruijff B. Involvement of membrane lipids in protein export in Escherichia coli II J. Cell Sci. Suppl. 1989. V. 11. P. 73-83.

630. Topchieva I.N., Erokhin V.N., Osipova S.V., Khrutskaya M.M., Kupriyanova T.A. Block copolymers of ethylene oxide and propylene oxide (pluronics) as immunomodulators and antitumour agents // Biomedical Science. 1991. V. 2. N 1. P.38-44.

631. Touati D. Iron and Oxidative Stress in Bacteria // Arch. Biochem. Biophys. 2000. V. 373. N 1. P. 1 6.

632. Tsevegsuren N., Ochir G., Otgonbajar Tsch., Dorshderem P., Tsend-Ajusch A., Badgaa D. Lipidchemical Investigation of Some Oilplants for

633. Edible Oil Production Cultivated in Mongolia // Fat. Sci. Technol. 1994. 96 Jahrgang. N 10. S. 397-398.

634. Ultra Low Doses / Ed. C. Doutremepuich. London-Washington DC:Naylor& Francis. 1991. 162 p.

635. Van Klompenburg W., Nillson I., von Heijne G., de Kruijff B. Anionic phospholipids are determinants of membrane protein topology // EMBO J. 1997. V. 16. N 14. P. 4261 4266.

636. Van Voorst F., De Kruijff B. Role of lipids in the translocation of protein across membranes // Biochem. J. 2000. V. 347. Pt. 3. P. 601 612.

637. Veness R.G., Evans C.S. The Role of Hydrogen Peroxide in the Degradation of Crystalline Cellulose by Basidiomycete Fungi // J. Gen. Microbiol. 1989. V. 135. N 11. P. 2799 2806.

638. Vokt J.P., Brody S. The kinetics of changes in the fatty acid composition of Neurospora crassa lipids after a temperature increase // Biochim. Biophys. Acta. 1985. V. 835. N2. P. 176 182.

639. Wallach D.F.H. Radiation Effects on Biomembranes // Biomembranes. N.Y., L.: Plenum Press, 1975. V. 5. P. 213 249.

640. Walling C., Rabinowitz R. The Reaction of Trialkyl Phosphites with Thiyl and Alkoxy Radicals // J. Am. Chem. Soc. 1959. V. 81. N 5. P. 1243 1251.

641. Weete J.D. Lipid Biochemistry of Fungi and Other Organisms. N.Y.; L: Plenum Press, 1980. 388 p.

642. Whang К., Hattory Т. Oligotrophic bacteria from renzina forest soil // Antony van Leewenhock. 1988. V. 54. N. 2. P. 19 36.

643. Wills E.D., Wilkinson A.E. The Effect of Irradiation on Sub-cellular particles destruction of Sulphydryl-groups // Intern. J. Radiat. Biol. 1967. V. 13. N1. P. 45-55.

644. Yanishlieva N.V., Rafikova V.S., Skibida I.P. Etude de la Cinetique de L'Oxidation competitive de L'Oleate et du Linoleate de Methyle // Cinetique de L'Oxidation. 1970. N 12. P. 741 746.

645. Yatvin M.B. Evidence that survival of y-irradiated Escherichia coli is influenced by membranes fluidity // Int. J. Radiat. Biol. 1976. V. 30. N 6. P. 571 -575.

646. Yatvin M.B. Influence of membrane-lipid composition on translocation of nascent proteins in heated Escherichia coli II Biochim. Biophys. Acta. 1987. V. 901. N 1. P. 147- 156.

647. Yonei S., Kato M. X-ray -induced structural changes in erythrocytes membranes studied by use of fluorescent probes // Radiat. Res. 1978. V. 75. N 1. P. 31 -45.

648. Yoshida S., Unger G., Rosenberg B.H. DNA swivel enzyme activity in a nuclear membrane fraction // Nucl. Acids Res. 1978. V. 4. N 1. P. 223 228.