Оптимизация элементов технологии размножения смородины чёрной и крыжовника in vitro тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.08, кандидат наук Матушкин Сергей Александрович

• Матушкин Сергей Александрович
• кандидат наук
• 2020

Оглавление диссертации кандидат наук Матушкин Сергей Александрович

ОГЛАВЛЕНИЕ Стр. ВВЕДЕНИЕ

1. ФАКТОРЫ, ВЛИЯЮЩИЕ НА МОРФОГЕНЕЗ IN VITRO (СОСТОЯНИЕ ИЗУЧЕННОСТИ ВОПРОСА)

1.1 Генотип и состояние родительского растения

1.2 Особенности введения экспланта в стерильную культуру

1.3 Влияние химических факторов культивирования на процесс регенерации in vitro

1.3.1 Минеральный состав питательной среды

1.3.2 Биологически активные вещества

1.4 Влияние физических факторов культивирования на морфогенез изолированной ткани

1.5 Длительное беспересадочное культивирование смородины чёрной и крыжовника in vitro

1.6 Продуктивность меристемных растений in vivo

2. ОБЪЕКТЫ, УСЛОВИЯ И МЕТОДИКА ПРОВЕДЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Объекты исследований

2.2 Методика и условия проведения исследований

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Оптимизация приёмов регенерации смородины чёрной и крыжовника на этапе введения в культуру in vitro

3.2 Особенности регенерации смородины чёрной и крыжовника на этапе собственно микроразмножения

3.2.1 Влияние минерального состава питательной среды на морфогенез эксплантов

3.2.2 Влияние биологически активных веществ на регенерационную способность микропобегов

3.2.3 Влияние типа экспланта на пролиферацию сортов

крыжовника

3.3 Особенности ризогенеза смородины чёрной и крыжовника in

vitro

3.3.1 Влияние минерального состава питательной среды

3.3.2 Влияние биологически активных веществ на ризогенную активность микропобегов

3.4 Депонирование смородины чёрной и крыжовника in vitro

3.5 Адаптация растений-регенерантов к нестерильным условиям

3.6 Вегетативная продуктивность смородины чёрной в зависимости

от способа размножения

4. ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОИЗВОДСТВА САЖЕНЦЕВ СМОРОДИНЫ ЧЁРНОЙ И КРЫЖОВНИКА С

ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ IN VITRO

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

РЕКОМЕНДАЦИИ ДЛЯ НАУКИ И ПРОИЗВОДСТВА

ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Оптимизация элементов технологии размножения смородины чёрной и крыжовника in vitro»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследований. Важнейшим направлением повышения эффективности российского садоводства является его интенсификация, основанная как на использовании сортов нового поколения, так и внедрении в питомниководство новейших способов размножения и оздоровления с помощью метода in vitro. Включение современных технологий в питомниководство позволяет не только получать сертифицированный посадочный материал, соответствующий требованиям мировых стандартов, но и значительно повысить продуктивность маточных и промышленных насаждений.

Метод клонального микроразмножения можно рассматривать как перспективный и наиболее полно реализующий потенциал растительного организма к размножению. Исследования по культуре изолированных тканей и органов относятся к приоритетным направлениям науки XXI века, способным в короткие промежутки времени решать разнообразные научные, теоретические и практические проблемы, участвовать в решении конкретных задач сельскохозяйственного производства. Данный метод, основанный на уникальной способности растительной клетки к тотипотентности, имеет преимущества перед существующими традиционными способами размножения:

• получение генетически однородного посадочного материала;

• освобождение растений от вирусов за счёт использования меристемной культуры, хемо и термотерапии;

• высокий коэффициент размножения (105 - 106 - для травянистых, цветочных растений, 104 - 105 - для кустарниковых древесных растений и 104 - для хвойных в течение года);

• сокращение продолжительности селекционного процесса;

• ускорение перехода растений от ювенильной к репродуктивной фазе развития;

• тиражирование растений, трудноразмножаемых традиционными способами;

• возможность проведения работ в течение всего года.

Использование данного метода затрудняют большие капитальные и текущие расходы на оборудование и содержание лабораторий, необходимость использования высококвалифицированного персонала, присущие методу некоторые технологические трудности (ингибирование роста за счёт выделения эксплантом фенольных соединений в среду, апикальное доминирование микропобега, витрификация, борьба с микроорганизмами, и особенно с бактериями, паразитирующими в тканях растений), риск получения мутантных форм, ограниченность знаний о закономерностях процессов регенерации в условиях in vitro, часто низкая воспроизводимость результатов, индивидуальная реакция генотипов и ряд других организационных проблем. Все это является причиной того, что размножение многих растений in vitro пока что остаётся на лабораторной стадии, особенно у нас в стране, где данный метод используется в основном в процессе оздоровления посадочного материала и для нужд селекции (Высоцкий В.А., 2000; Катаева Н.В., Бутенко Р.Г., 1983; Круглов Н.М. и др., 2003). С момента вступления России во Всемирную торговую организацию (ВТО) резко повысились требования и к производству посадочного материала. В настоящее время в странах Европейского Союза закладывать насаждения несертифицированным посадочным материалом запрещено. Он производится, но не подлежит страхованию в странах ЕС. Основная масса такого посадочного материала, несущая в себе комплекс различных инфекционных заболеваний и вредителей, поступает в Россию (Жиганова Л.П., 2008).

Вышесказанное свидетельствует о необходимости не только существенного увеличения объёма отечественного сертифицированного посадочного материала, но и предъявления принципиально новых требований к его качеству. Включение биотехнологических приёмов в систему производства даёт возможность не только создать базисный генофонд и перевести питомниководство на безвирусную основу, но и открывает возможность выпускать посадочный материал, соответствующий уровню мировых стандартов. Особенно ценное качество этого метода, в сочетании с хемо- и термотерапией, как приёма оздоровления, состоит в

возможности освобождения культивируемого материала от термостабильных вирусов и вирусов, находящихся в латентном состоянии. Использование методов биотехнологии позволяет повысить эффективность оздоровления до 100%, в 5-10 и более раз увеличить коэффициент размножения и на 2-3 года ускорить внедрение в производство новых оздоровленных сортов и форм (Высоцкий В.А., 1998; Куликов И.М., 2005, Сорокопудов В.Н. и др., 2018).

Смородине чёрной, как одной из основных ягодных культур России, отводится ведущее место в валовом производстве ягод. Плоды смородины чёрной - ценный диетический продукт, насыщенный органическими кислотами, сахарами, дубильными веществами и витаминами (С, Р, В1, В2, В9, РР). По содержанию аскорбиновой кислоты смородина уступает только плодам актинидии и шиповника. Культура крыжовника также ценится за высокое содержание биологически активных веществ (Сорокопудов В.Н., 2007.).

Одним из сдерживающих факторов их промышленного производства является трудоёмкость возделывания, отсутствие достаточного количества сертифицированного посадочного материала и частое поражение растений вирусными заболеваниями, которые могут привести к значительной потери продуктивности. Все основные промышленные сорта смородины чёрной восприимчивы к вирусной инфекции, хотя их устойчивость различна (Куликов И.М., 2009). К настоящему времени число выявленных вирусов и микоплазм на смородине 14 (Вердеревская Т.Д., Маринеску В.Г., 1985; Коровин К.Л., Дмитриева А.М., 2010). К наиболее вредоносным вирусам смородины чёрной относятся: реверсия, посветление и сетчатость жилок, зелёная крапчатость, желтуха, инфекционная пестролистность. Реверсия - наиболее вредоносное заболевание чёрной смородины, поражающее 18,9% растений, которое может вызывать полное бесплодие насаждений. Неповирусами поражено 69,7% насаждений смородины чёрной (Кашин В.И., 2002, Сорокопудов В.Н. и др., 2018).

К вирусам крыжовника относятся: окаймление жилок, ложковидность листьев, уродливость листьев. Окаймление жилок крыжовника - трудно идентифицируемое заболевание, т. к. многие сорта повсеместно заражены и

продуктивность больных растений не может быть сравнена с продуктивностью здоровых. Экономические потери в различных районах зависит от чувствительности к данному заболеванию преобладающих сортов (Метлицкая К.В. и др., 2016).

Внедрение результатов исследований по оптимизации технологии клонального микроразмножения смородины чёрной и крыжовника, как элемента системы производства сертифицированного посадочного материала, позволит увеличить площади современных базисных маточников и вывести на качественно новый уровень питомниководство данных культур, что особенно актуально для крыжовника, который относится к трудноразмножаемым культурам.

Клональным микроразмножением смородины чёрной и крыжовника в Российской Федерации занимались В.А. Высоцкий (1995), А.М.; Малиновская (2009); О.В. Матушкина (1996); О.А. Миронова (1985); И.А. Райков (2012); Сковородников Д.Н. (2012); З.Т. Тарашвили (1985).

При размножении смородины чёрной и крыжовника in vitro существует ряд проблем: мельчание микропобегов в конгломератах и невозможность их использования для укоренения; поликонденсация веществ фенольной природы, которая приводит к ингибированию роста и развития; большой процент гибели микропобегов при клональном микроразмножении крыжовника; доминирование единичных микропобегов.

Цель исследований: оптимизировать и разработать элементы технологии клонального микроразмножения перспективных сортов смородины чёрной и крыжовника in vitro с учётом их генотипических особенностей.

Задачи исследований:

1. Оценить морфогенетический потенциал изучаемых генотипов смородины чёрной и крыжовника и разработать эффективные способы индукции морфогенеза in vitro на этапах введения в культуру, собственно микроразмножения и ризогенеза.

2. Изучить влияние генотипа на регенерацию эксплантов смородины чёрной и крыжовника на основных этапах культивирования in vitro (введение в культуру, собственно микроразмножение и ризогенез).

3. Подобрать оптимальный минеральный состав питательной среды, позволяющий наиболее полно реализовать морфогенетический потенциал растений in vitro.

4. Установить оптимальный состав биологически активных веществ, обеспечивающий получение максимального количества качественных микропобегов и стимулирующий их ризогенную активность.

5. Изучить особенности длительного беспересадочного культивирования эксплантов in vitro, что позволит создать банк ценных генотипов.

6. Дать оценку экономической эффективности оптимизированным элементам технологии размножения крыжовника in vitro и выращивания саженцев смородины чёрной и крыжовника с использованием метода клонального микроразмножения.

Научная новизна. Впервые изучены особенности регенерационной способности in vitro перспективных сортов и форм смородины черной и крыжовника селекции ФГБНУ «ФНЦ им. И.В. Мичурина». Установлен оптимальный минеральный состав питательной среды на основных этапах клонального микроразмножения, способствующий повышению уровня регенерации растений. Подобрано сочетание гормонального состава, позволяющее получать микропобеги, пригодные для ризогенеза. Впервые изучено длительное беспересадочное культивирование эксплантов смородины чёрной и крыжовника in vitro, позволяющее длительно депонировать экспланты и создать банк ценных генотипов. Показана экономическая эффективность оптимизированных элементов технологии размножения крыжовника in vitro с использованием в качестве эксплантов конгломератов микропобегов. и выращивания саженцев смородины черной и крыжовника с использованием метода клонального микроразмножения.

Теоретическая значимость полученных результатов. Изучены особенности морфогенетического потенциала перспективных сортов и форм смородины чёрной и крыжовника на основе инициации меристематических тканей. Оптимизирован минеральный и гормональный состав питательной среды, максимально реализующий регенерационную способность растений. Разработана возможность депонирования растений in vitro, а также изучено последействие длительного хранения in vitro на морфогенез эксплантов с учётом генотипических особенностей сортов.

Практическая значимость полученных результатов. Оптимизированы элементы технология клонального микроразмножения перспективных сортов и форм смородины чёрной. Разработаны отдельные элементы технологии размножения сортов крыжовника in vitro с учётом их генотипических особенностей. Технология размножения in vitro данных культур может быть включена в систему производства сертифицированного посадочного материала и использована в современных направлениях селекционной биотехнологии. Результаты исследований апробированы в лаборатории биотехнологии «ФНЦ им. И.В. Мичурина», а полученные in vitro растения-регенеранты смородины черной и крыжовника высажены в базисные маточники ОПО «ФНЦ им. И.В. Мичурина» и на «Опытной станции «Мичуринская»

Методология и методы проведения исследований. Для решения поставленной цели применен системный подход, включающий все этапы клонального микроразмножения. При проведении и постановке лабораторных и полевых опытов использовались современные научные методы. В качестве методологической основы исследований принят метод лабораторного эксперимента. Разработка программы исследований, научной гипотезы и закладка лабораторных и полевых опытов осуществлялись в соответствии с общепринятыми методиками: Б.А. Доспехов (1985), Ю.Г. Попов (1979), В.А. Высоцкий, Е.В. Олешко (1987), Е.Н. Джигадло (2005), О.В. Матушкина, И.Н. Пронина (1998, 2003, 2006, 2008).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Влияние генотипа на морфогенез эксплантов смородины чёрной и крыжовника на основных этапах культивирования in vitro (введение в культуру, собственно микроразмножение, ризогенез).

2. Оптимальный минеральный состав питательной среды, позволяющий наиболее полно реализовать морфогенетический потенциал растений при размножении in vitro.

3. Оптимальное сочетание биологически активных веществ, обеспечивающий получение максимального количества качественных микропобегов и стимулирующий их ризогенную активность.

Степень достоверности и апробация результатов исследований. Достоверность и обоснованность полученных результатов подтверждены 7-летними исследованиями (2012-2019 гг.), проведенными лично автором или при его участии, и большим объёмом экспериментального материала, статистически проанализированного. Результаты исследований доложены на научно-практических конференциях: Международная научно-практическая конференция, посвященная 100-летию со дня рождения доктора сельскохозяйственных наук С.Н. Степанова (21-23 апреля 2015 г., Мичуринск-наукоград РФ); Всероссийская научно-практическая конференция «Фундаментальные и прикладные аспекты развития актуальных направлений в генетике, биотехнологии и вирусологии садовых растений» (ВСТИСП, Москва, 20-22 октября 2015 г.); Международная научно-практическая конференция «Научные основы развития современного садоводства в условиях импортозамещения» (1-3 июня 2016 г., Мичуринск-наукоград РФ); Международная научно-практическая конференция, посвящённая 110-летию со дня рождения доктора с.-х. наук, заслуженного деятеля науки РФ К.Д. Сергеевой и 90-летию со дня рождения кандидата с.-х. наук К.Т. Ярковой «Современное ягодоводство: направления, задачи и перспективы развития» (15-30 июня 2017 г., Мичуринск-наукоград РФ); Международная научно-практическая конференция «Научно-практические основы ускорения импортозамещения продукции садоводства» (День садовода 7-9 сентября 2017 г., Мичуринск-

наукоград РФ); научно-практическая конференция «Современные тенденции повышения эффективности садоводства России» (День садовода 20-22 сентября 2018, Мичуринск-наукоград РФ); научно-практическая конференция с международным участием «Частная генетика и селекция - вековой опыт в садоводстве», посвященная 100-летию со дня основания ЦГЛ им. И.В. Мичурина (24-26 октября 2018 г., Мичуринск-наукоград РФ); Международная научно-практическая конференция «Интенсивные технологии размножения садовых растений в системе производства сертифицированного посадочного материала» (День садовода 12 сентября 2019 г., Мичуринск-наукоград РФ).

Участие в гранте РФФИ р_центр_а №15-44-03094 «Оценка модифицирующего действия химических компонентов питательных сред на уровень генетического полиморфизма плодовых и ягодных культур in vitro» (2015-2016).

Личный вклад соискателя. Совместно с научным руководителем участвовал в постановке цели и формировании задач диссертационного исследования, разработке плана исследований, схемы экспериментов. Лично осуществлял все подготовительные работы (комплексный анализ методической и нормативной литературы, литературных источников по теме диссертации), лично ставил эксперименты, проводил сбор данных и статистическую обработку, обобщение и анализ полученных результатов. Принимал личное участие в апробации полученных результатов в опытно-производственном отделе ФГБНУ «ФНЦ им. И.В. Мичурина» и на «Опытной станции «Мичуринская» - филиал ФГБНУ «ФНЦ им. И.В. Мичурина», а также лично представлял основные положения своей работы в устных докладах на научных конференциях различных уровней.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 168 страницах компьютерного текста, состоит из введения, 4 глав, заключения, рекомендаций для науки и производства, перспектив дальнейшей разработки темы, приложений. Содержит 28 таблиц, 31 рисунок. Список литературы включает 237 источников, в т.ч. 79 на иностранных языках.

Публикации результатов исследований.

Всего по материалам диссертации опубликовано 28 научных статей, в том числе 9 в изданиях, рекомендованных ВАК при Министерстве высшего образования и науки РФ.

1 ФАКТОРЫ, ВЛИЯЮЩИЕ НА МОРФОГЕНЕЗ IN VITRO (СОСТОЯНИЕ

ИЗУЧЕННОСТИ ВОПРОСА)

Морфогенез, лежащий в основе микроразмножения, является одним из наиболее сложных процессов жизнедеятельности растительных организмов, на который оказывает влияние множество факторов. Можно выделить четыре основные группы факторов, определяющих успех микроразмножения: 1) генотип и состояние родительского растения; 2) происхождение экспланта; 3) особенности введения экспланта в стерильную культуру; 4) условия культивирования (Катаева Н.В., Бутенко Р.Г., 1983).

1.1 ГЕНОТИП И СОСТОЯНИЕ РОДИТЕЛЬСКОГО РАСТЕНИЯ

Главным фактором, определяющим успех клонального микроразмножения, является генотип экспериментального материала. В условиях in vitro очень ярко проявляются сортовые и видовые особенности (Альшевцева Л.И., 1990; Бледна В.Ф., Кириленко У.Д., 1982; Иванова-Ханина Л.В., 2014; Матушкина О.В., Пронина И.Н., 2003; Росторгуев С.Л., 2008). Так, например, у крыжовника сорта Финик при культивировании апексов на среде Мурасиге-Скуга (МС) с 6-бензиламинопурином (6-БАП) 0,5 мг/л формирование микропобегов происходило через стадию каллусообразования, а апексы сорта Русский обладали способностью к прямой регенерации (Круглов Н.М. и др., 2003). Согласно В.А. Высоцкому (1976), у разных сортов смородины чёрной наблюдалось достоверное различие в корнеобразовательной способности изолированных верхушек побегов и в размере образуемых микропобегов.

По результатам исследования Р. Boxus (1974) только у тех видов древесных растений, которые хорошо размножаются вегетативно зелеными черенками, можно получить посадочный материал из изолированных меристематических

верхушек. Однако опыты, проведённые В.А. Высоцким (1976) с родом Ribus, не подтверждают эту точку зрения. Вероятнее всего это зависит от места растения на эволюционной лестнице.

Установлено, что разные сорта яблони предъявляют различные требования к условиям и факторам укоренения микропобегов (Zimmerman R., Fordham I, 1985). В ходе своих исследований В.А. Высоцкий (1998) сделал вывод, что подвойные формы древесных растений обладают повышенной способностью к ризогенезу, чем сорта.

1.2 ОСОБЕННОСТИ ВВЕДЕНИЯ ЭКСПЛАНТА В СТЕРИЛЬНУЮ КУЛЬТУРУ

Сроки изоляции и происхождение экаспланта. Давно замечена роль времени года в способности эксплантов к новообразованиям в культуре тканей, что определяется состоянием материнского растения в период изолирования тканей и органов (Козицкий Ю.Н. и др., 1976; Морозова С.С., Мелик-Саркисов О.С., 1981). Чаще всего изолирование апикальной меристемы проводят весной, когда побеги находятся в стадии активного роста (Беседина Е.Н., 2015; Вовк В.В., 2000; Красинская, Т.А., 2009, Майорова Ю.А., 2009; Матушкина О.В., Пронина И.Н., 1989; Пугачёв Р.М., 2003; Титаренко Е.В., 2008; Трушечкин В.Г., Высоцкий В.А., 1985;). По мнению Т.З. Тарашвили (1985, 1986), исходный материал можно брать в течение всего периода вегетации, однако наиболее подходящий срок введения в культуру материала смородины - активная фаза вегетации (с конца апреля до начала июля). В тоже время, по мнению В.В. Шахова (2017), экспланты смородины чёрной лучше всего вводить в культуру летом и осенью, когда их приживаемость достигает 77-89%.

Некоторые авторы рекомендуют для изоляции меристематических верхушек позднеосенний период (Колбанова Е.В., 2013; Мацнева О.В, Ташматова, Л.В. 2018; Сковородников Д.Н., 2012).

Ряд авторов (Высоцкий В.А., 1986; Набиева А.Ю., 2011) полагает, что для некоторых культур, таких как вишня и некоторые подвои яблони, эффективнее использовать для введения эксплантов в культуру фазу покоя.

Морфогенетические потенции культивируемых тканей зависят от органа, из которого изолирован эксплант. В большинстве случаев в качестве исходных эксплантов используют верхушки побегов с 3-5 распустившимися листочками и латеральные почки, изолированные из верхних частей (Альшевцева Л.И., 1992; Атрощенко Г.П., 1995; Говорова Г.Ф., 2004; Деменко В.И., 2006; Джигадло Е.Н., 2005; Калинин Ф.Л., Сарнацкая В.В., 1992; Миронова О.А, 1985; Терентьева О.С, Сковородников Н.Д., 2014; Тимофеева, О.А., Невмержицкая Ю.Ю., 2012).

Возраст и размер экспланта. Согласно исследованиям Н.В. Катаевой, Р.Г. Бутенко (1983), физиологический возраст исходного растения имеет несомненное значение в проявлении способности к морфогенезу. Чем моложе орган и меньше его физиологический возраст, тем быстрее идёт развитие эксплантата, и наоборот, чем старше физиологический возраст, тем медленнее развиваются меристематические ткани.

Размер эксплантата также является одним из факторов, определяющих успех клонального микроразмножения. Чем меньше эксплант, тем меньшей регенерационной способностью он обладает, и наоборот. Экспланты большого размера, состоящие из паренхимы, проводящей ткани и камбия, могут независимо от содержания фитогормонов в питательной среде спонтанно образовывать почки. С другой стороны, в крупном эксплантате увеличивается возможность вирусов и других патогенов от материнского растения, что препятствует оздоровлению размноженных в культуре тканей растений. Оптимальная величина экспланта зависит от видовых особенностей растения-донора и особенностей органа, из которого изолируются экспланты.

По данным K. Gliemeroth, D. Shulz (1982), у систематически заражаемых растений концентрация вируса в побегах уменьшается к периоду вегетации. Это даёт возможность посредством эксплантации (отсечения) меристематической ткани размножать в стерильной культуре in vitro свободные от вирусов и

патогенов растения. Так как внутри точки роста побега собственно меристема образует только небольшое количество слоев клеток размером менее 0,1 мм, то в зависимости от технических возможностей отсекаются кусочки ткани размером от 0,2 до 0,4 мм, которые состоят из меристемы и смежных слоев ткани с 1-2 листовыми зачатками. Таким образом, минимальная концентрация или полное отсутствие вирусных частиц характерны для точек роста. Причина этого явления до конца не ясна. Авторы предполагают, что пониженная концентрация вирусных частиц в активно делящихся меристематических клетках связана с отсутствием в последних развитой проводящей системы. Кроме того, это можно объяснить и физиологическими особенностями клетки, в частности, специфическим балансом биологически активных веществ (например, ауксинов), а также проницаемостью стенок меристематических клеток (Шевелуха В.С. и др.,1998).

В.А. Высоцкий (2000) отмечает, что нельзя также исключать возможное ингибирующее влияние на репликацию вирусных частиц отдельных компонентов питательной среды - ауксинов, цитокининов и др.

По данным З.Т. Тарашвили (1986), экспланты размером 0,5-2,0 мм обладают лучшей регенерационной способностью, чем размером 0,2-0,3 мм.

Стерилизация эксплантов. При проведении стерилизации следует максимально щадить растительные ткани и применять для этого по возможности наименее токсичные вещества. Стерилизующие препараты могут быть разделены на несколько групп. Первую из них составляют растворы, содержащие активный хлор: хлорамин, хлорная известь, гипохлорит кальция и гипохлорит натрия. Хлорамин чаще применяют для стерилизации нежных, легко повреждаемых тканей растений. Этот препарат наряду с гипохлоритами обладает наименее выраженным токсичным действием. Вторая группа представлена ртутьсодержащими препаратами, обладающими наиболее выраженным дезинфицирующим эффектом, и поэтому применяются преимущественно в тех случаях, когда хлорсодержащие оказались не эффективными.

В тех случаях, когда трудно получить исходную стерильную культуру экспланта, некоторые авторы рекомендуют вводить в питательную среду

антибиотики (Бутенко Р.Г., 1964). Однако с этим не всегда можно согласиться. Бактерицидному и фунгицидному действиям антибиотиков противостоит их ингибирующий эффект на рост растительных тканей. Также антибиотики характеризуются избирательной активностью, и поэтому, за редким исключением, трудно подобрать их с необходимым спектром действия (Катаева Н.В., Бутенко Р.Г., 1983).

По мнению А.А. Лебедева и Д.Н. Сковородникова (2015), стерилизовать исходный материал смородины чёрной лучше в 0,1% растворе мертиолата с последующей пятикратной промывкой в стерильной дистиллированной воде.

Для стерилизации эксплантов японской вишни Т. Kyushu (1987) использовал 70,0% спирт и гипохлорит натрия. Экспланты яблони C.I. Le (1985) стерилизовал также, погружая на 5-10 секунд в 70,0%-ный этиловый спирт, затем дважды по 12 мин в 0,8%-ном растворе гипохлорита натрия, промывали стерильной водой и подсушивали на фильтровальной бумаге. E. Werner, A. Boe (1980) рекомендуют стерилизовать подвои яблони в 70,0% этаноле, а затем промывать в дистиллированной воде. Для стерилизации клематиса О.Е. Ханбабаева и др. (2020) предлагали верхушки побегов погружать в 70%-й спирт на 2-3 секунды, затем в 3%-ный гипохлорит натрия в течение 10 минут. По данным И.А. Ламоновой и А.В. Верзилина (2015) наиболее эффективным методом стерилизации для сортов земляники садовой является обработка 6% гипохлоритом натрия в течение 1 мин, а для малины - Лебедев В.Г и др. (2019) использовали раствор 0,1% гипохлорита натрия в течение 20 минут

Л.В. Ломовская (2004) для стерилизации подвоев груши использовала смесь перекиси водорода и 96%-ного спирта с последующей обработкой 0,1-ным раствором сулемы с добавлением препарата Твин-80.

Ряд учёных (Бартиш И.В. и др., 1994) установили, что максимальная эффективность введения в культуру in vitro может быть достигнута при использовании белок-связывающего стерилизатора 0,1-0,3% нитрата серебра.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Матушкин Сергей Александрович, 2020 год

- 20 с.

17. Воровикова, О.В. Микроразмножение косточковых культур / О.В. Воровикова, А.И. Янкова // Научные достижения в биотехнологии виноградарстве и ягодоводстве: сб. науч. тр.- Алматы, 1997. - С. 19-25.

18. Вердеревская, Т.Д. Вирусные и микоплазменные заболевания плодовых культур и винограда в Молдавии / Т. Д., Вердеревская, В.Г. Маринеску.-Кишинев: Штиинца, 1985.- 311 с.

19. Верзилин, А.В. Оздоровление и клональное микроразмножение слаборослых подвоев яблони: монография / А.В. Верзилин, В. А. Минаев, А.М. Тарасов. - Мичуринск: МГПИ, 2007. - 146 с.

20. Верзилин, А.В. Особенности клонального микроразмножения новых сортов земляники садовой / А.В. Верзилин // Роль сорта в современном садоводстве: материалы Международной научно практической дистанционной конференции, посвящённой 70-тию со дня рождения академика РАН, доктора сельско-хозяйственных наук, профессора Н.И. Савельева.- Мичуринск, 2019.-С.45-50.

21. Викулина, А.Н. Адаптация растений рода Rubus L. размноженных in vitro, и оценка их последующего развития: дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.08 / Викулина Александра Николаевна.- М., 2016. - 24 с.

22. Высоцкий, В.А. Действие некоторых регуляторов роста на изолированные меристематические верхушки / В.А. Высоцкий // Плодоводство и ягодоводство Нечернозёмной полосы: сб. науч. тр. / НИЗИСНП.- М., 1976. - Вып. 9. - С. 101-107.

23. Высоцкий, В.А. Морфогенез и клональное микроразмножение растений / В.А. Высоцкий // Культура клеток растений и биотехнология: сб. науч. тр. - М.: Наука, 1986. - С. 91-102.

24. Высоцкий, В.А. Клональное микроразмножение плодовых растений и декоративных кустарников / В.А. Высоцкий // Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве: сб. науч. тр. / ВНИИС им. И.В. Мичурина. - Мичуринск, 1989. - С. 3-8.

25. Высоцкий, В.А. О генетической стабильности при клональном микроразмножении плодовых и ягодных культур / В.А. Высоцкий // Сельскохозяйственная биология.- 1995.- № 5.- С. 57.

26. Высоцкий, В.А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных растений: автореф. дис. ... доктора с.-х. наук: 06.01.07; 03.00.12 / Высоцкий Валерий Александрович. - М., 1998. - 44 с.

27. Высоцкий, В.А. Некоторые итоги и перспективы использования методов культуры изолированных тканей и органов в садоводстве / В.А. Высоцкий // История, современность и перспективы развития садоводства России: мат. межд. конф. / ВСТИСП (г. Москва, 15-17 ноября, 2000 г.) - М., 2000. - С. 163-191.

28. Высоцкий, В.А. Микроклональное размножение яблони / В.А. Высоцкий, О.А. Леонтьев-Орлов // Садоводство. - 1983. - №7. - С. 20-21.

29. Высоцкий, В.А. Становление и развитие биотехнологических исследований в садоводстве / В.А. Высоцкий, Л.В. Алексеенко // Плодоводство и ягодоводство России. 80 лет ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии: сб. науч. работ / ВСТИСП.- М. 2005.- Т. XII.- С. 337-342.

30. Говорова, Г.Ф. Земляника: прошлое, настоящее, будущее / Г.Ф. Говорова, Д.Н. Говоров.- М.: ФГБНУ «Росинформагротех».-2004.- 348 с.

31. Говорова, Г.Ф. Иммунологическое улучшение сортимента земляники в России / Г.Ф. Говорова, В.В. Мазин, М.Д. Колиженкова, Д.И. Говоров // Сельскохозяйственная биотехнология: избранные работы / под. ред. В.С. Шевелухи.- М., 2000.- Т. 1.- С. 115-131.

32. Головина, Л.А. Выявление изменчивости у растений смородины чёрной (Ribes nigrum L.) полученных in vitro для селекции в условиях Башкирии / Л.А. Головина, Р.А. Нигматзянов, В.Н. Сорокопудов // Вестник КрасГАУ.- 2020.- №4 (157).- С. 53-58.

33. Деменко, В.И. Биологические и технологические особенности вегетативного способа размножения в системе производства посадочного

материала: дис. ... доктора с.-х. наук: 06.01.07. / Деменко Василий Иванович.- М., 2006.- 329 с.

34. Деменко, В.И. Роль этиоляции растений. / В.И. Деменко, В.А. Крючкова // Роль этиоляции растений // Доклады ТСХА.- 2001. - № 273. Ч. 2.- С. 298 - 301.

35. Деменко В.И., Лебедева В.А. Адаптация растений in vitro к нестерильным условиям / В.И. Деменко, В.А. Лебедева // Известия ТСХА.- 2011.-В.1.- С. 60-70.

36. Дерфлинг, К. Гормоны растений. Системный подход / К. Дерфлинг -пер. с англ. - М.: Мир, 1985. - 304 с.

37. Джигадло, М.И. Микроклональное размножение и производство посадочного материала плодовых и ягодных культур высших категорий качества / М.И. Джигадло. - Саратов, 2003. - С. 108-109.

38. Джигадло М.И. Размножение вишни методом верхушечных меристем. / М.И. Джигадло, Е.Н Джигадло // Улучшение сортимента и прогрессивные приёмы возделывания плодовых и ягодных культур.- Орёл, 1988.- С. 65-68.

39. Джигадло Е.Н. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами / Е.Н. Дорошенко // ГНУ ВНИИСПК.- Орёл, 2005.- 50 с.

40. Дорошенко, Н.П. Создание и хранение коллекции винограда in vitro / Н.П. Дорошенко, Т.В. Жукова // Русский Виноград. - 2016 - Т. 3 - С. 8-14. Режим доступа: http://docplayer.ru/28893679-Sozdame-i-hraneme-kollekcn-vimgrada-m-vitro.html (Дата обращения 18.07.18).

41. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований) / Б.А. Доспехов // 5-е изд., доп. и перераб.-М.: Агропромиздат, 1985. - 351 с.

42. Жиганова, Л.П. Перспективы развития биотехнологий в XXI веке / Л.П. Жиганова // Современное состояние, инновации и перспективы: Интернет-издание Россия и Америка в XXI веке. - 2008. - №1. - Режим доступа www.rusus.ru. (Дата обращения - 24.03.2010).

43. Иванова-Ханина, Л.В. Оптимизация условий введения малины и ежевики в культуру in vitro / Л.В. Иванова-Ханина // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета [Электронный ресурс]. - 2014. - № 101 (07). - Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2014/01/pdf/65.pdf (Дата обращения - 17.05.2017).

44. Калашников, Д.В. Фитогормоны и синтетические регуляторы роста и развития растений в биотехнологии и растениеводстве / Д.В. Калашников // Сельскохозяйственная биотехнология: под ред. В.С. Шевелухи. - М.: Высш. шк., 1998. - С. 309-377.

45. Кашин, В.И. Научные основы российского плодоводства / В.И Кашин // Вестник с.-х. науки. - 2002.-№2. - С.10-15.

46. Калинин, Ф.Л. Технология микроклонального размножения растений / Ф.Л. Калинин, Г.П. Кушнир, В.В. Сарнацкая.- Киев: Наукова Думка, 1992. - 213 с.

47. Катаева, Н.В. Клональное микроразмножение растений / Н.В. Катаева Н., Р.Г. Бутенко. - М.: Наука, 1983. - 96 с.

48. Ковалёва, И.С. Разработка оптимальных условий длительного депонирования коллекции оздоровленных клонов флокса метельчатого (Phlox paniculata L.) / И.С. Ковалёва, О.Е. Ханбабаева, А.С. Мазаева, В.Н. Сорокопудов // Вестник КрасГау.- 2019.- №8 (149).- С. 47-51.

49. Коваленко, Н.Н. Совершенствование этапов клонального микроразмножения сливы домашней / Н.Н. Коваленко, Н.И. Медведева // Современное садоводство [Электронный ресурс]. - 2015. - № 2. - С. 99-104. -Режим доступа: http://journal.vniispk.ru (Дата обращения: 26.01.2016 г.).

50. Козицкий, Ю.Н. Получение гвоздики из меристематических верхушек / Ю.Н. Козицкий, П.В. Деревянкин, Ю.И. Помазков // Плодоводство и ягодоводство Нечернозёмной полосы: сб. науч. тр. НИЗИСНП. - М., 1976. - Вып. 9. - С. 108-114.

51. Колбанова, Е.В. Влияние стерилизующих соединений и питательной среды на жизнеспособность и развитие меристематических верхушек сортов

крыжовника в культуре in vitro / Е.В. Колбанова // Плодоводство: научные труды, Самохваловичи, 2009. - Т. 21. - С. 252-263.

52. Колбанова, Е.В. Подбор минерального и гормонального состава питательной среды для культивирования сортов крыжовника в культуре in vitro / Е.В. Колбанова // Плодоводство: научные труды.- Самохваловичи, 2013.- Т. 25.-С. 284-294.

53. Колбанова, Е.В. Клональное микроразмножение смородины чёрной сорта Санюта / Е.В. Колбанова, Н.В. Кухарчик // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. работ / ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии.- М., 2011.- Т. XXVI.- C. 222-229.

54. Корнацкий, С.А. Особенности клонального микроразмножения сливы в системе производства оздоровленного посадочного материала: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Корнацкий Сергей Аркадьевич. - М., 1991. - 24 с.

55. Коровин, К.Л. Устойчивость сортов смородины чёрной к грибным болезням / К.Л. Коровин, А.М. Дмитриева // Плодоводство: научные труды. Белсад.- Самохваловичи, 2010. - Т 22. - С.-188-193.

56. Красильникова, Т.Н. Факторы оптимизации репродуцирования in vitro различных представителей рода Rosa L.: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.00.12 / Красильникова Татьяна Анатольевна - Москва, 1999. - 22 с.

57. Красинская, Т.А. Морфофизиологические характеристики развития растений-регенерантов клоновых подвоев и сортов рода Cerasus Mill. в культуре in vitro и при адаптации ex vitro: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 3.00.23 / Красинская Татьяна Анатольевна.- Минск, 2009.- 22 с.

58. Кузьмина, Н.А. Микроклональное размножение и оздоровление растений [Электронный ресурс] / Н.А. Кузьмина // Биотехнология (электронный учебник). - 2010. - Режим доступа: http://www.biotechnolog.rU//pcell/pcell6_1.htm (Дата обращения: 23.03.2012 г.).

59. Круглов, Н.М. Клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур / Н.М. Круглов, О.В. Матушкина, Р.Г. Ноздрачёва, И.Н. Пронина, Н.И.

Туровская // Учебное пособие.- 2-е изд., доп. Воронеж: ВГАУ// Учебное пособие.-Воронеж: ВГАУ, 1998.- 72 с.

60. Круглов, Н.М. Клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур / Н.М. Круглов, О.В. Матушкина, Р.Г. Ноздрачёва, И.Н. Пронина, Н.И. Туровская // Учебное пособие.- 2-е изд., доп. Воронеж: ВГАУ, 2003. - 80 с.

61. Кулаева О.Н. Влияние корней на обмен веществ листьев в связи с проблемой действия на лист кинетина // Физиол. растений. - 1962. - Т. 9, Вып. 2. -С. 229 - 239.

62. Куликов И.М. Пути повышения производства ягод в Российской Федерации / И.М. Куликов // Плодоводство и ягодоводство России: сб. научн. тр. /ВСТИСП.- М., 2009.- Т. 22. - ч. 2 - С. 3-12.

63. Куликов, И.М. Биотехнологические приемы в садоводстве: экономические аспекты / И.М. Куликов, В.А. Высоцкий, А.А. Шипунова // Садоводство и виноградарство. - 2005. - № 5. - С. 24-27.

64. Кухарчик, Н.В. Культура in vitro в размножении и оздоровлении плодовых и ягодных растений / Н.В. Кухарчик, С.Э. Семенас, Е.В. Колбанова // Актуальные проблемы освещения достижений науки в промышленном плодоводстве: материалы междунар. науч. произв. конф. (Самохваловичи, 21-22 августа 2002 г.). - Минск, 2002. - С. 107-113.

65. Ламонова, И.А. Влияние стерилизатора на введение в культуру in vitro земляники садовой / И.А. Ламонова, А.В. Верзилин // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета.- Мичуринск, 2015. - № 4. - С. 57-61

66. Лебедев, А.А. Клональное микроразмножение смородины чёрной / А.А. Лебедев, Д.Н. Сковородников // Агроэкологические аспекты устойчивого развития АПК: материалы XII международной научной конференции.- Брянск. Изд. БГАУ, 2015.- С. 397-401.

67. Лебедев В.Г. Изучение и сохранение биоразнообразия в ботанических садах и других интродуционных центрах / В.Г. Лебедев, Е.О. Видягина, С.Н. Евдокименко, В.Н. Сорокопудов, К.А. Шестибратов // Мактериалы научной

конференции с международным участием, посвящённой 55-тию Донецкого ботанического сада. 2019.- С. 232-236.

68. Леонтьев-Орлов, О.А. Разработка клонального микроразмножения яблони: автореф. дис. канд. ... с.-х. наук: 06.01.07. / Леонтьев-Орлов Олег Анатольевич.- М. 1986.- 24 с.

69. Леонтьева-Орлова, Л.А. Клональное микроразмножение чёрной и красной смородины / Л.А. Леонтьева-Орлова // Краткие тезисы докладов к четвёртой областной научной конференции молодых учёных - М, 1990.- С. 166167.

70. Леонтьева-Орлова, Л.А. Совершенствование метода клонального микроразмножениям смородины и оценка развития растений в нестерильных условиях: автореф. дис. канд. с-х наук: 06.01.07 / Леонтьева-Орлова Лидия Анатольевна. - М, 1991.- 22 с.

71. Ломовская, Л.В. Особенности размножения перспективных форм груши в культуре in vitro / Л.В. Ломовская // Селекция и сортовая агротехника плодовых культур: сб. науч. тр. - Орёл, 2004 - С. 107-113.

72. Майорова, Ю.А. Оптимизация этапов клонального микроразмножения гибридов вишни на основе применения новых биологически активных веществ: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 06.01.07 / Майорова Юлия Алексеевна. -Краснодар, 2009. - 25 с.

73. Малиновская, А.М. Особенности размножения in vitro смородины красной / А.М. Малиновская // Плодоводство: научные труды.- Самохваловичи, 2009. - Т. 21. С. 246-250.

74. Матушкина, О.В. Некоторые вопросы размножения крыжовника а культуре in vitro / О.В. Матушкина // Методы эффективного ведения садоводства: сб. науч. тр. ВНИИС им. И.В. Мичурина. - 1996. - С. 73-79.

75. Матушкина, О.В. Оптимизация процессов регенерации при размножении клоновых подвоев и сортов яблони и груши in vitro: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Матушкина Ольга Васильевна.- Мичуринск: МичГАУ, 2008.- 24 с.

76. Матушкина, О.В. Особенности клонального микроразмножения ягодных культур / О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Пути интенсификации садоводства и селекция плодовых и ягодных культур. - Тула: Приокское книжное издательство, 1989. - С. 167-170.

77. Матушкина, О.В. Методика регенерации яблони и груши из пазушных меристем и вегетативных органов / Матушкина О.В, Пронина И.Н. // Мичуринск-наукоград РФ, 2006.- 21.с.

78. Матушкина, О.В. Технология клонального микроразмножения яблони и груши (методические рекомендации) / Матушкина О.В, Пронина И.Н. // ГНУ ВНИИС им. И.В. Мичурина.-Мичуринск-наукоград РФ, 2008.- 32 с.

79. Матушкина, О.В. Размножение яблони и груши in vitro / О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Достижения науки и техники АПК. - 2009. - №2. - С. 15-17.

80. Матушкина, О.В., Особенности клонального микроразмножения ягодных культур / О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Актуальные проблемы размножения садовых культур и пути их решения: материалы межд. науч.-практ. дистан. конф. - Воронеж: Кварта, 2010. - С. 167-170.

81. Матушкина О.В., Пронина И.Н. Регенерационная способность меристемных растений ягодных культур в условиях in vivo / О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. статей. -ВСТИСП. - М., 2012. -Т. ХХ1Х, ч. 2. - C. 18-23.

82. Матушкина, О.В. Влияние комплексных минеральных веществ на морфогенез яблони и груши in vitro / О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. работ. - ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии. - М., 2014. - Т. XXXVIII. - Ч. 2. - С. 13-19.

83. Матушкина, О.В. Роль углеводов при клональном микроразмножении садовых растений / О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. дост. - ВСТИСП.- Т. 54. - С. 106-110.

84. Мацнева, О.В.,. Ташматова, Л.В Оптимизация сроков введення земляники в культуру in vivo/ О.В. Мацнева, Л.В. Ташматова // Современное

садоводство [Электронный ресурс]. - 2018. - №2. - С. 78-83. - Режим доступа: http://journal.vniispk.ru/pdf/2018/2/38.pdf (Дата обращения: 26.07.2018 г.).

85. Медведева, Н.И. Особенности клонального микроразмножения клоновых подвоев косточковых культур / Н.И. Медведева, Н.В. Поливара, В.Н. Подорожный // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. работ.- ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии.- М., 2015 - Т. XXVI - C. 315-320.

86. Метлицкая, К.В. Распространение вирусов в насаждениях крыжовника и смородины в Центральном регионе РФ / К.В. Метлицкая, М.Т. Упадышев, А.Д. Петрова // Селекция ягодных культур: анализ тенденций и перспективы развития: Всероссийская дистанцион. науч.-практ. конф. (13-31 марта 201.- Режим доступа: www: vstisp. org. (Дата обращения: 31.03.2016 г.).

87. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами / под ред. Е.Н. Джигадло. - Орёл: ГНУ ВНИИСПК, 2005. - 50 с.

88. Минаев, В.А. Клональное микроразмножение слаборослых клоновых подвоев яблони селекции МГАУ / В.А. Минаев, А.В. Верзилин, В.А. Высоцкий // Садоводство и виноградарство. - 2003. - № 5. - С. 12-13.

89. Минаев В.А. Биологические особенности слаборослых клоновых подвоев яблони при клональном микроразмножении: дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07. / Минаев Вадим Александрович.- М., 2005.- 23 с.

90. Миронова, О.А. Микроразмножение крыжовника / О.А. Миронова // Проблемы вегетативного размножения в садоводстве: сб. науч. трудов.- ТСХА, 1985. - С. 102-105.

91. Молканова, О.И. Использование биотехнологических методов для размножения и сохранения редких видов растений / О.И. Молканова // Бюллетень Главного ботанического сада, М.-2017. - №1.- С. 42-48.

92. Молканова, О.И. Научные основы сохранения и устойчивого воспроизводства генофонда растений в культуре in vitro / О.И. Молканова, О.Г. Васильева, Л.Н. Коновалова // Вестник Удмуртского университета. Серия Биология. Науки о Земле, 2015.- Т. 25.- №2.- С.95.

93. Молканова, О.И. Формирование генетического банка in vitro плодовых и ягодных культур в ГБС РАН / О.И. Молканова, Л.Н. Коновалова, Т.С. Стахеева // Плодоводство и ягодоводство России, М.- 2016.- Т. 44.- С. 197-200.

94. Молканова, О.И. Совершенствование технологии клонального микроразмножения ценных плодовых и ягодных культур для производственных условий / О.И. Молканова, О.В. Королёва, Т.С. Стахеева, И.Л. Крахмалева, Е.А. Мелещук // Достижения науки и техники АПК, М., 2018.- Т. 32.- №9.- С. 66-69.

95. Молканова, О.И. Методические основы сохранения растений в генетическом банке in vitro / О.И. Молканова, Т.Ю. Коновалова, И.В. Ширнина, И.Л. Крахмалева, Л.Р. Ахметова, О.В. Королева, Е.Н. Раева-Богословская // Плодоводство и ягодоводство России, М.- 2019.- Т. 58.- С.253-258.

96. Морозова, С.С. Влияние физиологического состояния проростков картофеля на регенерацию растений из изолированных апексов / С.С. Морозова, О.С. Мелик-Саркисов // Доклады ВАСХНИЛ.- 1981. - №9. - С. 8-10.

97. Мохаммед, А.И. Микроразмноженгие, длительное депонирование и криосохранение in vitro малины красной: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 03.00.23 /Мохаммед Абдулваси Ибрахим. - М., 1998 .- 20 с.

98. Муратова, С.А. Особенности введения в культуру in vitro плодовых и ягодных растений / С.А. Муратова, М.Б. Янковская, Д.Г. Шорников [и др.] // Плодоводство: науч. тр., Самохваловичи, 2005. - Т. 17. - Ч. 2. - С. 182-184.

99. Муратова, С.А. Размножение садовых культур in vitro (методические рекомендации) / С.А. Муратова, Д.Г. Шорников, М.Б. Янковская. - Мичуринск-наукроград, 2008. - 69 с.

100. Муромцев, Г.С. Регуляторы роста растений / Г.С. Муромцев // Основы сельскохозяйственной биотехнологии.- М.: Агропромиздат, 1990. - С. 360-376.

101. Муромцев, Г.С. Гиббереллины / Г.С. Муромцев, В.Н. Ангистикова. -М.: Наука, 1984. - 208 с.

102. Набиева, А.Ю. Биотехнологические приемы клонального микроразмножения перспективных сортов Syringa vulgaris L. для Западной

Сибири / А.Ю. Набиева // Вестник ИрГСХА. - Иркутск, 2011. - Вып. 44, Ч. 5. - С. 69-76.

103. Олешко, Е.В. Особенности размножения вишни in vitro / Е.В. Олешко // Культура клеток растений и биотехнология.- 1986.- С. 117 - 120.

104. Патент №2080060 Способ клонального микроразмножения смородины и антиоксидант для клонального микроразмножения смородины / Атрощенко Г.П. // Бюл. №15.- опубл. 27.05.97.

105. Патент № 2141524 . Питательная среда для микроклонального размножения груши / И.М.Фарузинова // Горск. гос. аграр. ун. - т - № 96116867/13. Заявл. 09.08.96. Опубл 20.11.99, Бюл. № 32.

106. Патент № 2486237 Питательная среда для размножения яблони и груши in vitro / О.В. Матушкина, И.Н. Пронина // Бюл. № 18. - 27.06.2013.

107. Патент № 2485766 Питательная среда для укоренения побегов яблони и груши in vitro /Пронина И.Н., Матушкина О.В // Бюл. № 18. - 27.06.2013.

108. Петрова А.Д., Оздоровление и размножение садовых культур in vitro. /А.Д. Петрова, М.Т. Упадышев // Садоводство и виноградарство.- 2002.- № 4. - С. 12-13.

109. Плаксина, Т.В. Особенности размножения алтайских генотипов вишни и микровишни с использованием методов биотехнологии: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Плаксина Татьяна Викторовна; ГНУ Науч.- исслед. ин-т садоводства Сибири им. М.А. Лисавенко СО РАСХН. - Барнаул, 2007. - 18 с.

110. Плаксина, Т. В. Биотехнология в сохранении биоразнообразия растений / Т. В. Плаксина // Проблемы ботаники Южной Сибири и Монголии: сб. науч. ст. - Барнаул: Изд-во АлтГУ, 2017. - С. 321-323.

111. Подорожный, В.П. Ускоренное внедрение в производство алычи и новых клоновых подвоев косточковых культур с использованием биотехнологических методов / В.П. Подоржный // Совершенствование сортимента и технологии возделывания косточковых культур: материалы науч.-метод. конф., (Орёл, 14-17 июля 1998 г.).- Орёл, 1998. - С. 182-184.

112. Полевой, В.В. Роль ауксина в регуляции роста и развития растений / В.В. Полевой // Гормональная регуляция растений. М.: Наука, 1984. - С. 87-100.

113. Попов Ю.Г. Оздоровление и размножение плодовых и ягодных растений методом культуры меристематических верхушек / Ю.Г. Попоп // Методичкские указания.- М., 1979.- 30 с.

114. Программа и методика селекции плодовых, ягодных и орехоплодных культур. (Под общей редакцией академика РАСХН, доктора сельскохозяйственных наук Е.Н. Седова.) - Орёл: Изд-во Всероссийского научно-исследовательского института селекции плодовых культур, 1995.- 502 с.

115. Пронина, И.Н. Оптимизация процесса ризогенеза подвоев и сортов яблони и груши in vitro: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Пронина Ирина Николаевна. - Мичуринск: МичГАУ, 2008.- 24 с.

116. Пронина, И.Н. Влияние салициловой кислоты на ризогенез и депонирование яблони in vitro / И.Н. Пронина // Агроэкологические аспекты устойчивого развития АПК: материалы XIII Межд. науч. конф.- Брянск: Из-во Брянского ГАУ, 2016. - Ч. 2.- С. 333-335.

117. Протасова, Е.С. Клональное микроразмножение и укоренение андрогенных побегов регенерантов / Е.С. Протасова // Проблемы современной науки и решения.- М, 2012.- С. 39-40.

118. Пугачёв, Р.М. Особенности размножения растений рода Prunus L. в культуре in vitro: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05 / Пугачёв Роман Михайлович. - Горки, 2003. - 18 с.

119. Расторгуев, С.А. Совершенствование селекционного процесса плодовых и ягодных растений на основе цитологических методов и культуры изолированных тканей: дис. ... доктора с.-х. наук: 06.01.05. / Расторгуев Сергей Леонидович.- Мичуринск, 2008.- 312 с.

120. Райков, И.А. Совершенствование клонального микроразмножения межвидовых форм смородины чёрной и малины ремонтантного типа: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05 / Райков Игорь Александрович - Брянск, 2012. -20 с.

121. Роговая, В.В. Особенности микроклонального размножения косточковых культур в условиях in vitro / В.В. Роговая, М.А. Гвоздев // Известия Российского государственного педагогического университета им. А.И. Герцена. -2005. - Вып. № 13. - Т. 5. - С. 239-302.

122. Рыбицка, Х. Исследование эндогенных цитокининов в семядолях тыквы в связи в связи с особенностями действия на них экзогенных цитокининов / Х. Рыбицка, Л. Энгельбрехт, Т.П. Микулович, О.Н. Кулаева // Физиология растений.- 1977.- T. 24.- Вып. 2.- С. 371 - 379.

123. Свитайло, А.М. Размножение in vitro сортов вишни Метеор и Норд Стар / А.М. Свитайло // Садоводство.- Киев, 1986,- №3. - С. 57-58.

124. Сковородников, Д.Н. Совершенствование клонального микроразмножения крыжовника / Д.Н. Сковородников // Вестник Орловского ГАУ.-Орёл, 2012.- №6 (39). - С. 24-27.

125. Солопов В.А. Экономические аспекты клонального микроразмножения / В.А. Солопов, Н.В. Бобкова, С.А. Муратова // Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира (физиолого-биохимические, эмбриологические, генетические и правовые аспекты) // мат. VII межд. науч. -праакт. конф., посвящ. 30-летию отдела биотех. раст. Никитского ботанического сада.- Симферополь: Изд-во «Ариал» 2016.- С. 124-125.

126. Сорокопудов, В.Н. Селекция смородины в Западной Сибири / В.Н. Сорокопудов // Современное состояние культуры смородины и крыжовника: Сб. науч. трудов ВНИИС им И.В. Мичурина.- Мичуринск-наукоград РФ, 2007. - С. 164 - 181.

127. Сорокопудов, В.Н. Вирусные болезни и оздоровлений растений жимолости (Lonicera Caerulea L.) // В.Н. Сорокопудов, М.Т. Упадышев, А.Г. Куклина // Российская сельскохозяйственная академия.- М. - 2018.- №3.- С. 14-17.

128. Сорокопудов, В.Н. Значение оздоровленного от вредоносных вирусов гибридного фонда в современной селекции (на примере смородины чёрной и жимолости) / В.Н. Сорокопудов, А.А. Боросива, Т.А. Тумаева // Плодоводство и ягодоводство России, М.- 2018.- Т 52.- С.82-86.

129. Тарашвили, З.Т. Ускоренное размножение чёрной и красной смородины методом in vitro /автореф. дис. ... канд. с-х. наук: 06.01.07 /Тарашвили Заал Тариэлович. - М., 1985. - 22 с.

130. Тарашвили, З.Т. Методические указания по клональному микроразмножению чёрной и красной смородины / Т.З. Тарашвилли.- М. 1986.-С.- 15.

131. Ташматова, Л.В. Депонирование груши in vitro / Л.В. Ташматова // Актуальные проблемы садоводства России и пути их решения: мат. Всерос. науч.-метод. конф. молодых ученых (Орел, 2-5 июня 2007 г.). - Орел: ВНИИСПК, 2007. - С. 310-313.

132. Ташматова, Л.В. Клональное микроразмножение и депонирование перспективных форм груши: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.01 / Ташматова Лариса Владимировна.- Орёл. 2012.- 25 с.

133. Терентьева, О.С. Введение в культуру in vitro растений крыжовника / О.С. Терентьева, Д.Н. Сковородников // Развитие научной, творческой и инновационной деятельности молодёжи: материалы 5-ой Всерос. научно-практ. заочной конф. молод. учёных.- Курган: Изд-во Курганской ГСХА, 2014.- С. 94-97.

134. Тимофеева, О.А. Эффект салициловой кислоты на активность лектинов при действии на растения биотических и абиотических факторов / О.А. Тимофеева, Т.В. Трифонова, Н.А. Щадрнна // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях: тез. докл. VI межд. науч. конф. (26-28 июля 2001). -М., 2001. - С. - 65.

135. Тимофеева, О.А. Клональное микроразмножение растений: учеб.-метод. пособие / О.А. Тимофеева, Ю.Ю. Невмержицкая - Казань: Казанский университет, 2012.- 56 с.

136. Титаренко, Т. Е. Оптимизация методов введения в культуру in vitro некоторых ягодных культур - смородины чёрной (Ribes nigrum L.), смородины красной (Ribes rubrum L.) и крыжовника (Ribes uvacrispa L.) / Т.Е. Титаренко // Бютехнолопя. Наука. Освгга. Практика: тези доповщей IV межн. наук.-практ.

Конф., (Дншропетровськ, 11-13 листопада 2008 р).- Днiпропетровськ, 2008.- С. 176-185.

137. Трушечкин, В.Г. Поглощение элементов питания эксплантатами чёрной смородины в присутствии 6-бензиламинопурина. / В.Г. Трушечкин, А.А. Высоцкий // сб. научн. работ НИЗИСПН.- М.,1979.- № 3.- С. 52-54.

138. Трушечкин, В.Г. Клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур / В.Г. Трушечкин, В.А. Высоцкий // Плодоовощное хозяйство.- 1985. -№1. - С. 43-46.

139. Трушечкин, В.Г. Микроклональное размножение сортов и подвоев косточковых культур / В.Г. Трушечкин, В.А. Высоцкий, Е.В. Олешко // Методические указания. - М.,1987.-17 с.

140. Туровская, Н.И. Особенности регенерации апикальной меристемы клоновых подвоев яблони / Н.И. Туровская // Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве: сб. науч. тр.- ВНИИС им. И.В. Мичурина. - Мичуринск, 1989. - С. 13-17.

141. Туровская, Н.И. Мироразмножение чёрной смородины / Н.И. Туровская, Л.И. Альшевцева // Селекция и сортоизучение чёрной смородины : сб. науч. трудов ВНИИС им. И.В Мичурина. - 1988.- №51.- С. 143-148.

142. Туровская, Н.И. Микроразмножение: результаты опытов с яблоней, грушей, малиной, смородиной / Н.И. Туровская, О.В. Стрыгина, Л.И. Альшевцев // Сортоизучение и селекция плодовых и ягодных культур: сб. науч. тр. ВНИИС им. И.В. Мичурина. - 1992. - С. 68 -81.

143. Упадышев, М.Т. Вирусные болезни и современные методы оздоровления плодовых и ягодных культур: автореф. дис...доктора с. - х. наук: 06.01.07/ Упадышев Михаил Тарьевич.- М., 2011.- 46 с.

144. Упадышев, М.Т. Повышение эффективности микроразмножения плодовых и ягодных культур путём чередования сред с разным минеральным составом. / М.Т. Упадышев // Садоводство и виноградарство.- 2012.- №3.- С. 2931.

145. Упадышев, М.Т. Размножение ежевики и малины чёрной методом культуры тканей / М.Т. Упадышев, В.А Высоцкий // Садоводство и виногродарство.- 1991.- № 6.- С. 24-27.

146. Упадышев, М.Т. Аспекты размножения ягодных и плодовых культур с использованием фенольных соединений / М.Т. Упадышев, А.Д. Петрова // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. работ.- ВСТИСП.- М.- 1998.- С. 50-54.

147. Фролова, Л.В. Оптимизация технологии микроразмножения вишни и оценка влияния ионов тяжёлых металлов в культуре in vitro: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 03.00.23. / Фролов Людмила Владимировна.- Орёл, 2003.- 20 с.

148. Хаак, Э.Р. Клональное микроразмножение косточковых культур / Э.Р. Хаак, Ю.О. Нууст // Садоводство и виноградарство.- 1989.- С. 27-29.

149. Ханбабаева О.Е., Особенности клонального микроразмножения сортов клематиса (Clematis L.) / О.Е. Ханбабаева, А.Е. Мацнева, В.Н. Сорокопудов // Вестник КрасГАУ, 2020.- №2 (155). - С. 46-52.

150. Чайлахян, М.Х., Пол растений и его гормональная регуляция / М.Х. Чайлахян, В.Н. Хрянин. - М.: Наука, 1982. - 173 с.

151. Челяев, Д.Н., Регенерационный потенциал элитных форм малины в культуре in vitro: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05 / Челяев Дмитрий Николаевич. - Брянск, 2012. - 22 с.

152. Шахов, В.В. Сравнительная характеристика сроков введения эксплантов черной смородины (Ribes nigrum L.) в культуру in vitro / В.В. Шахов, Л.В. Ташматова, О.В. Мацнева // Современное садоводство - Contemporary horticulture [Электронный ресурс]. - 2017. - №4. - С. 102-105. - Режим доступа: http://journal.vniispk.ru/pdf/2017/4/39.pdf (Дата обращения: 14.01.2018).

153. Шевелуха, В.С. Сельскохозяйственная биотехнология: Учебник / В.С. Шевелуха, Е.А.Калашникова, С.В. Дегтярев и др.: Под ред. В.С. Шевелухи. - М.: Высш. шк., 1998. - 416 с.

154. Шипунова, А.А. Клональное микроразмножение плодовых растений: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05 /А.А. Шипунова. - М., 2003. - 24 с.

155. Шипунова, А.А. Влияние некоторых факторов культивирования на клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур / А.А. Шипунова., А.В. Высоцкий // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. рабо.-ВСТИСП.- М., 2002.- T.IX.- 501 с.

156. Шмыгля, В.А. Эффективность оздоровления земляники от вирусов методом культуры апикальной меристемы / В.А. Шмыгля, В.Ю. Минаев // Интегрированная защита растений.- М.: 1985. - С. 49-53.

157. Шорников, Д.Г. Совершенствование технологии размножения редких садовых растений в культуре in vitro и оценка их потенциала устойчивости к абиотическим стрессам: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05 / Шорников Денис Генадьевич.- Мичуринск, 2008.- 23 с.

158. Arena Miriam, E. Factores and afectan la multiplication in vitro de los brotes de portainjertos de Prunus / E. Arena Mirian, H. Caso Osvaldo // Fyton. - 1992. - V. 53. № 1. - P. 29-39.

159. Arjona C. Enraizamiento in vitro del portainjerto colt / C. Arjona, E. Welkerling de Tacchini , G.A. Rosell // Turrialba.- 1990- V. 40. № 1.- P. 82 - 87.

160. Berrardi G. In vitro rooting of Pyrus calleryana / G. Berrardi, D. Neri, A. Macorino, R. Adversi // Abstracts of contributed papers: XXIII Inter. Hort. Congress. -1990. - Р. 123.

161. Blazich F.A. Mineral nutrition and adventitions rooting / F.A. Blazich // Adventitious root formation-in cuttings.- 1988. - P. 61-69.

162. Borkowska B. Activity of thidiazuron in vitro shoot cultures of Prunus sp. and Morus alba / B. Borkowska, W. Litwinczuk // Biol. Plantarum. - 1993. - V. 35. №1. - P. 63-67.

163. Boxus P. La micropropagation in vitro du fraisier / P. Boxus // Proc. XIX intern hortic congr. - 1974. - V. 1.- P. 65.

164. Caboni E. Effect phenols, gibberellic acid and carbohуdrates on the rooting of the apple rootstock M 9 / E. Caboni, G.Boumis, C. Damiano // Jork: Pap. Cost Congr. Micropropagat. and Endomуcorrhizat ( Dijon 21-23 maу) // Agronomie. - 1992. - V. -12.-№ 10. - P. 789-794.

165. Chong C. Carbon nutrition of Ottawa-3 apple rootstock during stages of in vitro propagation / C. Chong, E. Pya // J. Hortic. Sc. - 1985. -V. 60. № 3. - P. 285-290.

166. Czynzyk A. Effect of P.22 rootstock propagated in vitro and traditionally on growth and frooting of two apple cultivars / A. Czynzyk, E Piskor // Folina Hort.- 2000. - № 12/1.- P. 29-49.

167. Czynzyk A. Influence of P 14 rootstock propagated in vitro and stoolbeds on the growth and yields of the three apple tree cultivars / A. Czynzyk, P. Bielicki, D. Chlebowska // Acta Horticulturae. - 2007. - № 732. - P. 109-111.

168. Dennis P.S. In vitro shoot proliferation of Pyrus calleriana from vegetative Buds / P.S. Dennis, J.F. Harbage // Hort. Sci..- 1989.- V. 24. № 2. P. 298-299.

169. Ding Y. Xibei zhiwu xuebao / Y. Ding, Y. Qiao, Z. Zhang , Z. Dong, Z. Gao // Akta bot. Boreali - occident. sin.- 2008.- №5.- P. 969-973.

170. Dunstan D. Propagation in vitro of the apple rootstock M4 effect of phytormones jn shoot guality / D. Dunstan, K.Turner, W. Lazaraff // Plant Cell Tissue Cult.-1985. - V. 4. - P. 55-60.

171. Duta M. Research concerning the behavior of the Prunus serrulata «Kazan» variety in the process of in vitro reproduction / M. Duta // Bul. Univ. Agr. Sci. and Vet. Med., Cluj - Napoca. Hort. 2008.- V. 65, №1, P. 84 - 89.

172. Fira A. In vitro rooting and ex-vitro acclimation in apple (Malus domestica) / A. Fira, D. Clapa, C. Plopa. // Cluj Napoca: Bul. Univ. Agr. Sci. and Vet. Med. - 2010. V. 67. № 1. - P. 480.

173. Gamburg O.L. The effekt of amino acids and ammonium on the growth of plant cells in suspension culture / O.L. Gamburg // Physiol. Plant.- 1970.- № 45.- P. 372-375.

174. Garland P. Micropropagation of Pissardi plum/ P. Garland, L.P. Stolts// Ann. Bot. 1981.- V.48. №3.- P. 387-389.

175. Georgiev G.F. In vitro propagation of the apple stock M 9: Initiation proliferation, rooting Inter / G.F. Georgiev // Symposium «Biotechnology Approaches for Explaitation and Preservation of Plant Resouzces» ( Yalta, 26-31 May, 2002) // Abstracts.-2002. - V. 30. - P. 211-214.

176. Gliemeroth K. In vitro Kultur von Strauchbeereinobst zur Bereitstellung gesunden Pflanzenmaterials / K. Gliemeroth, D. Schulz // Gartenbau (Berlin) .- 1982.-V. 29. № 7.- P. 213-315.

177. Golosin B. Uticaj floroglucinola na razmnozavanje in vitro prodloge jabuke M 27 / B. Golosin, L. Radojevic // Jugosl. vocar..- 1985, V.19. № 3-4.- P. 371 - 378.

178. Heller R. Recherches sur la nutrition minerals des tissus ve-getaux cultives in vitro / R. Heller // These, Paris et Ann. Sci. natur.- Bot. biol. et veget.- 1953.- V.14.-P. 1-22.

179. Hutchinson, J. F. Norten Spy in vitro. Faktors affecting shoot proliferation and root initiation in organ cultures of the apple «Norten Spy» / J. F. Hutchinson // Sci. hort (Neth).- 1984.- V. 22. № 4.- P. 347 - 358.

180. Иванова К. Нова техника на работа в фаза мультипликация при микроразмножения на ябълкови подложки // Новая технология микроразмножения подвоев яблони (МРБ). Ростем. Науки.- 1987.- T. 24. №7.- С. 15-19.

181. James D.J. Adventitious root formation in vitro in apple rootstocke (Malus pumila) / D.J. James // Physiologia Plantarum. - 1983. - Vol. 57. № 1. - P. 149-158.

182. James D.J. Stoot and root initiation in vitro in the apple rootstock M9 and the promotive effects of phloroglucind / D.J. James, I.J. Thurbon // J. Hort. Sci.- 1981. -V. 56. № 1. - P. 15-20.

183. Karhu S.T. The effect of different carbohydrates on the rooting of micropropagated apple shoots and their adaptation after transplantation / S.T. Karhu, S.K. Ulvinen // Bull. Rech. Agron. Gembloux.-1995. - V. 30. № 1/2. - P. 87-101.

184. Katano M. Propagation of Japanese cherry (Prunus jamsakura Sieb. ex Koidz.) by shoot-tip culture / M. Katano // Кюсю Ещкай дайгаку ногакубу киё, Proc Fac. Agr. Kyushu Tokai Univ.- 1987.- № 6.- P. 1-4.

185. Klinguer S. Orinige des raciness adventives de Veleppees sur les bou-tures de pommier (Var. Royal Gala) cultivus in vitro / S. Klinguer //Ann. S-ci. Univ Besancon. Biol. Veg. -1983-1984. - № 4-5. - P. 1-5.

186. Корнова К. Микроразмножение на прасковени сортови / Корнова, К. // Интезиф и екологиз на селскостоп произ : 3 науч. конф. с междунар., участием . Плодови.- 1989 - Т. 34. №1. - С. 181-186.

187. Kristensen H.R. Virus diseases of horticultural crops international cooperation organistd by ISHS / H.R. Kristensen // Cronika Horticultural.- 1986.- V. 26. № 2.- P. 69-74.

188. Lane W.D. Shoot tissue culture of apple: comparative response on five cultivars to cytokinin and auxin / W.D. Lane, J. M. McDougald // Can. J. Plant Sci. -1982. - V. 62. №3. - P. 689-694.

189. Le C.L. Multiplication clonale in vitro du pommier (Malus domestica Borkn, varGarvenstein / C.L. Le // Rev. suisseVitic Arboric. Hortic. - 1985. - V. 17. № 5. - P. 311-315.

190. Lee E.S.M. Regeneration of strawberry plants from tissue cultures / E.S.M. Lee, , R.A. De Fossard // Proc. Pl. Soc..- 1975.- P. 277-285.

191. Letham D. S. Regulators of celle division in plant tissues / D. S. Letham, M.W. Williams // VII. The cytokinins of the apple fruit. - Physiol. Plantarum.- 1969- V. 22.- P. 925 - 936.

192. Li D. Hebei daxue xuedao / Dong-Jie Li, Jin-Xian Zhang, Jing-Fang Wei . // Agr. Uniu. Hebei.- 2006. - V. 29. № 4.- P. 41 - 43.

193. Linsmaier E. M. Organic growth factor requirements of tobacco tissue cultures /E. M. Linsmaier and F. Skoog // Physiol. Plant.- 1965. - V.18.- P. 100-127.

194. Liu L. Dongbei linge daxue xuebao / Lin Liu, Shichnan Zhong // J. NorthEast Forest. Unin.- 2006.- V. 34. №1.- P. 42, 27.

195. Lloyd G. Commercially feasible micropropagtion of mountain laurel, Kalmia latifolia by use of shoot tip culture / G. Lloyd, B. H. McCown // Proceeded International Plant Propagators Society - 1980. - Vol. 30. - P. 421 - 427.

196. Lone W. Mistem - tip culture of Eucarpiel fruit sectivn symposium / W. Lone // Frec fruit breeding Angers.- 1979.- P. 181-188.

197. Luo Ya Guoshu xuebao / Ya Luo, Haoru Tang, Xiumei Li // J. Fruit Sci. -2005.- V. 22. № 1. - P. 66-68.

198. Miller G. A. In vitro propagation of «Nemaguard» peach rootstock / G. A. Miller, D.C. Cocton, S. G. Denny, M. S. Romeo // Hort Science.- 1982.- V. 17. № 2.- P. 194.

199. Modgil M. Mikropagation of apple cv Tydemans Farly Worcester / M. Modgil, D.R. Shama, S. Bhadruy // Sc hoof (Neth).- 1999.- V. 81. №2.- P. 178 - 188.

200. . Morini S. Effect of photoperiod applied of different intervals in vitro propagation / S. Morini, P. Fortuna, R. Sciutti, R. Muleo // Abstracts of contributed papers. 1 Oral: XXIII Inter. Hort. Congress. - 1990. - P. 170.

201. Murashige T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobaceo tissue cultures /T. Murashige, F. Skoog // Physiol. Plant.- 1962 .- V. 15. № 95. -P. 473-497.

202. Неделчева С. Установяване на подходящи компоненти на хранитесь на среда през фаз пъпкова пролиферация при размножаване in vitro на круша / С. Неделчева // Растениевъд. Науки.- 1990.- Т. 27. №8. - С. 30-31.

203. Nemeth, G. Induction of rooting / G. Nemeth // Biotechnology in Agriculture and Forestry.- Sprigen-Verlag-Berlin-Heidelberg.- 1986. - V. 1. № 1.-Chapter IV. - P. 49-64.

204. Neskovic M. Vegetativno razmnozavanie belosljive (Prunus domestika L.) u kulturi in vitro / M. Neskovic // Arh poljopr. тanke.- 1985, V. 46. №164.- P. 375 - 380 (серб.-хорв., рез. англ.).

205. Nieuwkerk J.P. Thidiazuron stimulation of apple shoot proliferanion in vitro / J.P.Nieuwkerk, R.H.Zimmerman, I. Fordhan // Hort Science.- 1986.- V 21. №3.- P. 516-518.

206. Nitsch J.P. Haploid plant from pollen grains / J.P. Nitsch, C. Nitsch // Scienel. - 1969. - V. 163. № 3862. - P. 85-87.

207. Orlikowska T. Propagation of quince S1 in vitro / T. Orlikowska // Fruit Sc. Rep. Skiernilwice. - 1988. - Vol. 5. № 4. - P. 157-165.

208. Orlikowska T. Effect of amino acids on rooting of apple dwart root-stocks in vitro / T. Orlikowska // Biol. Plant. -1992. - V. 34. № 1-2. - P. 39-44.

209. Orlikowska T. Effect of mineral composition and Acidity of media, saccharose level, brand and agar on rooting of fruit rootstocks in vitro / T. Orlikowska // Biol. Plant.- 1992. - V. 34. № 1-2. - P. 45-52.

210. Orlikowska, T. Enfluence of arginine on in vitro rooting of dwart apple rootstock / T. Orlikowska // Plant Celle Tissue ancl Organ Cult - 1992.- V. 31. №1. - P. 9 - 14.

211. Pietropaolo P. Micropagation of pissardi plum. Hortic / P. Pietropaolo, B. Reisch // Science.- 1984.- V. 19. №4.- P. 535-536.

212. Poniedzialek W. Namnazanie pedow wisni odmiane Lutowka w kulturach sterylnych / W. Poniedzialek, W. Lech, M. Metodobry // Zesr. nauk. AR Krarowie Ogrod.- 1987.- № 14.- P. 35 - 42.

213. Pruski K. Mikropagation of four cultivars of Saskatoon beer (Amelanchieralifolia NUTT.) / K. Pruski, J. Nowak, G. Grainger // Plant Cell, Tissue and Organ Cult.-1990.- V. 21. №2.- P. 103-109.

214. Qujrin M. Improved mediuv for in vitro culture of Prunus sp / M. Qujrin, P. Lehoivre // Acta. Hortic. - 1997. - V. 78. - P. 437-442.

215. Ramanatha Rao V. The use of Biotechnology for conservation and utilization of plant genetic resources / V. Ramanatha Rao, Kenneth W.R. // Plant Genet Resour News.- 1994.- V. 97.- P. 3-20.

216. Rodrignes R. In vitro propagation of Prunus persica / R. Rodrignes // Fyton.- 1982.- V. 42. №1.- P. 109-113.

217. Rosati P. In vitro propagation of Japanese plum (Prunus salicinav Linde. c.v. Clita) / P. Rosati, C. Marino, C. Swierczeuski // J. Amer. Soc Hortic. Sci..- 1980.- V. 105. №1.- P. 126-129.

218. Ruzic D. Razmnozavanje autohtone slyive tip Sitnica (Prunus domestika L.) mikro - propagacijom in vitro / D. Ruzic, T. Vujoic, R. Cerovic // Vocarstvo.- 2008. -V.42. № 163-164, P. 103-109.

219. Satsu T. Ко6э gaöraKy HoraKyöy x0K0Ky / Takashi Satsu, Takao Ichii, Tetsu Nakanishi, Yoshitaka Kawai // Sci. Repts Fac. Agr. Kobe Univ.- 1988.- V. 18. № 1.- P. 1-7.

220. Schenk R. U. Medium and techniques for induction and growth of monocotyledonous and dicotyledonous plant cell cultures / R. U. Schenk, A. Hildebrandt // Canad. J. Bot.- 1972.- Vol. 50. № 1.- P. 199-204.

221. Snir I. In vitro propagation of Mailing Merton apple rootstocks / I. Snir, A. Eriz // Hortcultural Science.- 1980. - V. 15. № 5. - P. 597-598.

222. Sok J.G. /Gang Sok Jong, Jong SoliRin // Сэнмупbхак, Biology.- 1987.- № 4.- P. 7-11.

223. Sriskandraiah S. Micropropagation of Granny Smith apple: factors affecting root formation in vitro / S. Sriskandraiah, M. G. Mullins // J. Hort. Sci.- 1986.- V. 56. № 1.- P. 71 - 76.

224. Suman S. In vitro propagation of crabapple cultivars / S. Suman // Hort Science.- 1982.- V 17. №2.- P. 191 - 192.

225. Sun N. Xibez zhiwu xuebao / Sun Ning, Xu Xue - Feng, Han Zhen - Kai, Kobg Jin, Wang Y. Xibez // Akta bot. Boreali - occident. sin. - 2008.- №1.- P. 47-51.

226. Travers J.N. Effects of culture medium on in vitro rooting of Antonovka 313 apple /J.N. Travers, C.J. Starburck, N.J. Natarella // Hort Science. - 1985. - V 20. №6.-P. 1051 - 1052.

227. Uosukainen M. Rooting and waning of apple rootstock YP / M. Uosukainen // Agronomie. - 1992. - V.12. № 10.- P. 803-806.

228. Viseur J. Micropropagation of pear Pyrus communis L. in double-phase culture medium / J. Viseur // Acta Horticulturae. - 1987. - Vol. 212. - P. 1117-1124.

229. Wainwright H. The micropropagation of gooseberry (Ribes uva - crispa L.) / H.Wainwright, A.W. Flegmann // In vitro proliferation and in vitro establischment. //J. Hortic. Sci.- 1985.- V. 60. №4.- P. 485-491.

230. Welander M. The rooting ability of shoots raised in vitro from the apple rootstock A2 in juvenile and adult growth phase / M. Welander, J. Hantrieser // Phisiol. Plant. - 1981. V. - 53. №3. - P. 301-306.

231. Welander M. In vitro rooting of apple shoots and acclimatization of the plantlets / M. Welander // Plant Tissue Culture. - 1982. - P. 731-732.

232. Welander M. Mikropropagation of gooseberry, Ribes grossularia / M. Welander // Sci. hort. (Neht). - 1985. - V. 26.- №3. - P. 267-272 .

233. Werner E. In vitro propagation of Mailing 7 apple rootstock / E. Werner, A. Boe // Hort Science.- 1980.- V 15. №4.- P. 509 - 510.

234. Yan X. / Xianwei Yan // MaHtH cra>6ao Acta Hortic Sin. - 1990.- V.17.№4 .- P. 275 - 280.

235. Zimmerman R. Simplified method for rooting apple cultivars in vitro / R. Zimmerman, I. Fordham // J. Am. Soc. Nortic. Sc.- 1985.- V.110. №1.- P. 34-38.

236. Zimmerman R.H. Phloroglucinol and in vitro rooting of apple cultivar culttings / R. H. Zimmerman, O. C. Broome // J. Amer. Soc. Hortic. Sci..- 1981.- V. 106. № 5.- P. 648-652.

237. Zimmerman R.H. Orchard growth and fruiting of micropropagation apple trees / R.H. Zimmerman, S.S. Miller // J. An. Soc. Hortic. Sci.- 1991. - V. 116. - P. 780-785.

Приложение А

УТВЕРЖДАЮ Директор ФГЕНУ йФНЦ им. ИВ. Мичурина» кагат, с.-х. наук MJO> Акимов 22 апреля 2020 года

Справку

О внедрении научных разработок, проведенных ггод руководством младшего научного сотрудника ФГЬНУ «ФНЦ им. И В. Мичурина»

В лаборатории биотехнология ФГБНУ «ФНЦ им, И.В. Мичурина» за период 2012-201У гг. Отработана и внедрена «Технология клоналъиого микрорйэмножйкня смородины черной и крыжовника». Полученные in vitro растсння-регенерантц с.моронины черной и крыжовнике высажены в ОГК) «ФНЦ им. И.В. Мичурина» в базисный маточник а количество: смородины черной -720 шт. и крыжовника -1G9 шт.

Использование растений. полученных мегидом in vitro, для закладки маточника смородины черной позволило увеличить (продуктивность и выхса адревесЕ£евигах череикогс одного гектара в J ,2-] ,9 раза.

Зам. директора ФГБНУ «ФНЦ им. И.Н Мичурина» канд. с.-*, наук инновациям И Сронэво. канд. наук Начальник ОПО ФГБНУ «ФНЦ И*. И.Н. Мичурина» канд, с,-к. наук

C.Ü. Паршнкова

A.M. Тарасов

Приложение Б

АКТ

о Внедрении научных разработок, проведенных под руководством младшего научнопо сотрудника ФГБНУ «ФНЦим. И,В. Мичурина», Мнггушкиня СЛ.

Растения-регенеранты сортов смородины черной Зеленая дымка. Кармелита, Чернавка, Шалунья. полученные методом in vitro„ высажены л базисный vtai очник vyja размножение одревесневшими черепками) на опытной станции «Мичуринская» - филиал ФГБЙУ «ФНЦ им. И.В. Мичурина» на площади 0,2 га. Использование растений смородины черной, полученных методом in vitro. для закладки маточника позволило увеличить продуктивность одревесневших черенков в 1,6 рача, В результате чего уровень рентабельности повысился в 1,5 раза по сравнению с растениями, полученными без in vitro.

ВРИО директора

«Опытная станция «Мичурин с кал » -филиал ФГЫ IV «Ф1 {Ц им. 1LR Мичурина»