Морфологические особенности хрусталика гидробионтов и их применение в водной токсикологии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.18, доктор биологических наук Никифоров-Никишин, Алексей Львович

• Никифоров-Никишин, Алексей Львович
• доктор биологических наук
• 2005

Оглавление диссертации доктор биологических наук Никифоров-Никишин, Алексей Львович

Введение.

Глава 1. Хрусталик гидробионтов как тест-объект в водной токсикологии

1.1. Морфология хрусталика низших позвоночных животных.

1.2. Морфогенез хрусталика во время эмбрионального развития.

1.3. Цитология и биология митозов.

1.4. Биохимия хрусталика позвоночных животных.

1.5. Классификация и характеристика сточных вод и их компонентов.

1.6. Симптомы отравления рыб.

1.7. Обратимость процессов интоксикации, адаптация к токсикантам, кумуляция.

1.8. Влияние экологических факторов водной среды на токсикорезистентность.

1.9. Влияние видовых, возрастных и индивидуальных особенностей, сезонных и некоторых других факторов на токсикорезистентность.

1.10. Методы комплексных исследований отравлений и токсичности водной среды.

1.11. Методы оценки качества вод при наличии разнородных загрязнителей.

1.12. Влияние загрязнений на морфологию рыб.

1.13. Недостатки принятой системы установления ПДК токсических веществ в водной среде.

1.14. Воздействие тяжелых металлов на гидробионтов.

Глава 2. Объекты и методы исследований.

2.1. Приготовление плоскостных препаратов эпителия хрусталика.

2.2. Схема подсчета митотического индекса.

2.3. Гистологические и гистохимические методы исследования хрусталика гидробионтов и амфибий.

2.4. Электронно-микроскопическое исследование хрусталиков гидробионтов.

2.5. Изучение влияние травмы на митотическую активность эпителия хрусталика рыб.

2.6. Методы исследования совместного действия травмы и токсикантов на митотическую активность эпителия хрусталика рыб.

2.7. Биомикроскопия хрусталика карпа при наличии метацеркарий диплостом.

2.8. Методы исследования влияния растворимых фракций хрусталика рыб на митотическую активность в эпителии хрусталика рыб и амфибий.

2.9. Экспериментальная пересадка хрусталика рыб амфибиям.

2.10. Оценка чувствительности митотической активности эпителия хрусталика рыб.

2.10.1. Краткая характеристика исследованных веществ и соединений.

2.10.2. Подбор гидробионтов для проведения экспериментов по сравнительной оценке чувствительности биологических показателей к действию токсикантов.

2.11. Изучения влияния тяжелых металлов на цитогенетические характеристики клеток эпителия хрусталика рыб.

2.12. Изучение элементного состава хрусталика.

2.13. Статистическая обработка экспериментального материала.

Глава 3. Морфология хрусталика гидробионтов.

3.1. Морфология хрусталика рыб и брюхоногих моллюсков.

3.2. Морфологические изменения в хрусталике рыб при паразитарных катарактах.

Глава 4. Изменение митотической активности эпителия хрусталика под влиянием различных факторов.

4.1. Изменение митотической активности в различных зонах цитодифференцировки эпителия хрусталика рыб при травматизации.

4.2. Пространственное распределение митозов при травматизации эпителия хрусталика.

4.3. Совместное действие травмы и токсикантов на цитодифферинцировку хрусталика рыб.

4.4. Влияние теплового загрязнения на митотическую активность в эпителии хрусталика рыб и амфибий в зимний период.

4.5. Влияние растворимых фракций хрусталика рыб на митотическую активность в эпителии хрусталика рыб и амфибий.

4.6. Экспериментальная пересадка хрусталика рыб амфибиям: влияние на клеточную пролиферацию.

Глава 5. Сравнительный анализ чувствительности показателя митотической активности эпителия хрусталика рыб с чувствительностью существующих методов оценки токсичности веществ.

Глава 6. Влияние тяжелых металлов на цитогенетические характеристики клеток эпителия хрусталика рыб.

6.1. Влияние тяжелых металлов на эпителий хрусталика рыб.

6.2. Изменение элементного состава хрусталика под влиянием тяжелых металлов.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфологические особенности хрусталика гидробионтов и их применение в водной токсикологии»

Усиливающееся антропогенное воздействие на природные и искусственные водоемы в значительной степени нарушает естественные гидробиоценозы. Анализируя процессы антропогенного влияния на биосферу Земли, академик H.H. Моисеев приходит к выводу: "Если человек не найдет нужного ключа к своим взаимоотношениям с природой, то он обречен на погибель, каким бы ни были политика и государственное устройство.", поскольку ".человечество обрело возможность мирного самоуничтожения". "Человек подошел к пределу, который нельзя переступить ни при каких обстоятельствах. Дело в том, что антропогенная нагрузка на биосферу стремительно возрастает и она близка к критической. Биота может потерять стабильность. В новом состоянии биосферы человеку может не найтись места" (Моисеев, 1999).

Функционирование природных биологических систем с каждым днем все больше и больше зависит от деятельности человека. В последнее время все труднее найти реки или водоемы, естественный режим которых так или иначе не изменился. "Даже в том случае если промышленные предприятия будут свято выполнять все меры охраны среды, развивающееся общество будет оказывать на природу прогрессирующее воздействие" (Шварц, 1973).

Контроль загрязнения рек регулярно проводиться подразделениями Природоохранных органов, службами санитарного надзора, управлениями Главрыбвода. Данный контроль позволяет систематически оценивать содержание в воде не более 45-50 основных токсикантов и сравнивать полученные данные с соответствующими показателями ПДК, но этой работы не всегда достаточно для оценки комплексного, суммарного воздействия токсикантов на гидробионтов. По данным института системного анализа Российской Академии Наук многие нетоксичные или малотоксичные компоненты, попадающие в реки со сточными водами, вступая во взаимодействие между собой, образуют столь высокотоксичные соединения, что негативное влияние на природу возрастает многократно, а сами токсиканты остаются вне контроля.

Современное загрязнение природной среды не есть лишь простое следствие плохо контролируемых выбросов антропогенных загрязнителей. Оно также обусловлено всей совокупностью перестроек природы, производимых человеческим обществом. Именно поэтому в гидробиологических исследованиях нельзя ограничиваться только биоиндикацией загрязнения, а необходимо всестороннее изучение антропогенного воздействия на водные экосистемы в целом (Захаров, Кларк, 1993).

Для оценки антропогенного воздействия вредных веществ на гидробионтов необходимо найти тест-объект, с помощью которого можно было бы интегрально оценивать изменение жизненных функций под влиянием ксенобиотиков. Вполне понятно, что найти универсальный интегральный тест-объект невозможно. Однако можно приблизиться к этому, если адекватно подобрать тест-объект и метод оценки токсического воздействия загрязнителей водной среды.

Общеизвестно, что рост гидробионтов нарушается при действии токсических веществ, но для проведения подобных экспериментов требуется продолжительное время и значительное число подопытных организмов, чтобы провести биометрические измерения. Рост гидробионтов непосредственно связан с митотической активностью в тканях организма. Поэтому мы предлагаем оценивать токсическое воздействие загрязнителей на гидробионтов по митотической активности. Это даст возможность также выявить цитотоксическое действие загрязнителей водной среды.

По нашему мнению всем перечисленным выше условиям отвечает хрусталик глаза рыб и амфибий, так как на его монослойном эпителии можно определять митотическую активность, а по нарушению прозрачности под влиянием токсикантов судить о перестройках биологических структур на молекулярном уровне.

Предлагаемый в качестве интегрального тест-объекта хрусталик низших позвоночных для оценки токсичности веществ антропогенного происхождения, может быть использован в том случае, если его биологические показатели окажутся сопоставимы по чувствительности с общепринятыми тест-объектами, используемыми в водной токсикологии. В силу этого необходимо провести сравнительный анализ чувствительности биологических показателей хрусталика и классических тест-объектов, используемых для оценки токсичности вредных веществ, попадающих в рыбохозяйственные водоемы.

Цель и задачи исследований: Выявить наиболее чувствительные к действию токсикантов морфологические и цитологические показатели хрусталика у ряда гидробионтов и дать сравнительную характеристику чувствительности биологических показателей хрусталика и классических тест-объектов, используемых в водной токсикологии.

В соответствии с намеченной целью были поставлены следующие основные задачи:

- Провести сравнительные гистологические и цитогенетические исследования хрусталика моллюсков, рыб и амфибий, содержащихся в лабораторных условиях, и выявить наиболее перспективный тест-объект для токсикологических исследований.

- Исследовать воздействие травмы и токсикантов на митотическую активность эпителия хрусталика рыб.

- Вскрыть закономерности пространственного распределения митозов в эпителии хрусталика рыб при травматизации.

- Провести исследования широкого спектра токсикантов различной степени токсичности и механизма токсического воздействия на митотическую активность хрусталика радужной форели.

- Исследовать комплексное воздействие тяжелых металлов на митотическую активность хрусталика радужной форели.

Провести сравнительный анализ воздействия ряда загрязнителей рыбохозяйственных водоемов на классические тест-объекты, применяемые в водной токсикологии (коловратки, дафнии, моллюски, рыбы) и на цитогенетические показатели хрусталика рыб. Дать сравнительную характеристику чувствительности к токсикантам ряда биологических показателей классических тест-объектов и цитогенетических показателей эпителия хрусталика рыб.

Заключение диссертации по теме «Гидробиология», Никифоров-Никишин, Алексей Львович

Основные выводы

1. Установлены особенности гистологического строения хрусталика у моллюсков, рыб и амфибий, которые заключаются в том, что у амфибий и многих видов рыб основная масса хрусталика образуется за счет дифференцировки эпителия в хрусталиковые волокна; у брюхоногих моллюсков хрусталик образуется за счет бесклеточного вещества. У головешки ротана обнаружен новый неизвестный ранее тип строения хрусталика - кора хрусталика состоит из многоядерных симпластических волокон за счет гипертрофии которых происходит рост хрусталика, при этом ядро хрусталика сохраняет типичное для большинства рыб и амфибий волоконное строение.

2. Выявлены особенности сезонной митотической активности в эпителии хрусталика рыби амфибий. При тепловом загрязнении водоема у рыб (кроме форели) и амфибий сохраняется сезонная цикличность митотической активности. В осенний и зимний периоды, как при наличие теплового загрязнения, так и в его отсутствие, митотическая активность эпителия хрусталика падает до нуля.

3. У пескаря обыкновенного выявлен новый тип реагирования хрусталиковых волокон на инвазию паразитами. Поврежденное волокно не теряет прозрачности по всей длине, а фрагментируется в зоне контакта с метацеркарием. Установлено, что у ряда рыб (в частности, у карповых) паразитические катаракты образуются за счет проникновения единичных метацеркариев диплостом в кору хрусталика, в тоже время у пескаря даже при большой инвазии паразитами катаракта не развивается. Не отмечено проникновение паразитов в хрусталик головешки-ротана, что видимо связанно с наличием толстой, многослойной капсулы хрусталика.

Показано, что под влиянием токсикантов как в острых, так и в хронических опытах наряду с изменением пролиферационной активности в эпителии хрусталика рыб увеличивается количество хромосомных аберраций.

Выявлена синхронизация посттравматических митозов в эпителии хрусталика рыб после нанесения микротравмы в передний полюс хрусталика.

Показана высокая чувствительность хрусталика рыб к антропогенным воздействиям (травматизация, токсическое воздействие, совместное воздействие травматизации и токсикантов).

Сравнительный анализ воздействия токсикантов на биологические показатели таких классических объектов в водной токсикологии как коловратки (Philodina roseola), дафнии (Daphnia magna), пресноводные моллюски (Limnaea stagnalis) и рыбы (Brachydanio rerio) показал, что наиболее чувствительными являются показатели, связанные с размножением и развитием. К таким показателям можно отнести: гаметогенез, количество отложенных яиц, критические стадии эмбрионального развития, выклев эмбрионов из икры. Токсикологические эксперименты с использованием эпителия хрусталика радужной форели (как без травматизации, так и с травматизацией) показали высокую чувствительность митотической активности эпителия хрусталика к токсикантам, сопоставимую с наиболее чувствительными биологическими показателями классических тест-объектов, используемых в водной токсикологии. Показано, что по степени влияния на митотический индекс эпителия хрусталика радужной форели тяжелые металлы можно расположить в ряду Cu>Zn>Pb>Cd. Наиболее выраженное влияние на величину митотического индекса оказывают физиологически значимые элементы: Си и Zn. Свинец, оказывая существенное влияние на митотический индекс, практически не взаимодействует другими металлами. Наименее выраженное воздействие при отсутствии других металлов оказывает кадмий. В тоже время парные взаимодействия меди и цинка с кадмием значимы и существенно уменьшают митотический индекс.

10. Проведенные экспериментальные исследования и их теоретическое обобщение позволили создать новые методы биотестирования, оценки мутагенной активности загрязняющих веществ поступающих в рыбохозяйственные водоемы и определения степени их генотоксичности и цитотоксичности при установлении рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ).

Заключение

Проведенная работа позволила установить особенности строения хрусталика рыб, амфибий и брюхоногих моллюсков. В перечисленных систематических группах строение хрусталика глаза значительно различается на морфологическом и гистохимическом уровне. Морфология хрусталика низших позвоночных животных (рыб и амфибий) имеет ряд типичных особенностей таких как: волоконное строение хрусталика, наличие хрусталикового эпителия, за счет которого происходит образование волокон и рост хрусталика, капсулы, которая состоит из отдельных зонулярных пластин. У головешки ротана, в результате нашей работы, был открыт новый тип строения хрусталика, значительно отличающийся от морфологии линзы глаза других рыб. Рост хрусталика у головешки ротана происходит за счет гипертрофии многоядерных симпластических клеток. Значительно отличается по строению и капсула хрусталика. Ее толщина в существенно больше, чем у рыб с типичным строением хрусталика. Возникший в процессе эволюции данный тип строения предохраняет зрительную систему ротана от повреждений. Морфологическое строение хрусталика брюхоногих моллюсков значительно отличается от такового у низших позвоночных животных. Основная его масса представлена бесклеточным веществом, а капсула также состоит из зонулярных пластин. Проведенные исследования позволяют предположить, что зонулярные пластины капсулы хрусталика играют важную функция в механизме защиты хрусталика от поступления в него вредных веществ.

Изучение влияния теплового загрязнения на митотическую активность эпителия хрусталика рыб и амфибий указывает на то, что этот орган обладает широкой нормой реакции и даже значительное изменение условий среды не вызывает изменения биоритмики митотической активности.

Использование методов оценки генотоксичности водной среды в зимнее время не даст достоверных результатов для гидробионтов, у которых отсутствует естественная митотическая активность.

Выявлена видовая чувствительность хрусталиков различных видов рыб к поражению диплостомами. В основе механизма устойчивости к инвазии метацеркариями диплостом у разных видов рыб могут выступать как механизмы фрагментации волокон, так и развитая капсула хрусталика. Установлен новый тип реагирования хрусталика на инвазию метацеркариями диплостом у пескаря обыкновенного. При нарушении целостности хрусталикового волокна не происходит необратимого помутнения всего волокна, а инактивация паразита осуществляется за счет локальной фрагментации хрусталиковых волокон. Результаты, полученные в работе, помогут понять механизмы катарактогенеза гидробионтов и разработать методику борьбы с помутнениями хрусталиков.

В результате исследований удалось показать, что травматизация хрусталика вызывает кратковременное ингибирование митозов. Однако уже через сутки после нанесения травмы в эпителии хрусталика появляются обширные посттравматические митозы, большая часть которых локализована в герминативной зоне эпителия.

В данной работе впервые комплексно исследованы закономерности размножения и развития гидробионтов, которые в лабораторных условиях традиционно используются для биотестирования природных и сточных вод и для установления рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ). Работа проведена с объектами, у которых отчетливо выражен эмбриональный период развития. В качестве модельных загрязнителей использованы химические соединения, которые с промышленными сточными водами попадают в рыбохозяйственные водоемы, нанося реальный ущерб водным биоценозам.

В результате исследования показано, что и у планктонных организмов (дафнии и коловратки), и у бентосных животных (хирономиды и моллюски), а также у рыб, при размножении и в эмбриональном периоде имеются критические периоды, наиболее чувствительны к действию токсических веществ.

У коловраток-филодин таким показателем является число отложенных яиц и изменение объема желточника в репродуктивном периоде. У дафний под влиянием токсикантов нарушается процесс размножения, падает плодовитость, как в исходном поколении, так и в последующих нескольких поколениях. Под влиянием исследованных загрязнителей у большого пудовика уменьшается количество отложенных яиц, нарушается эмбриональное развитие и выклев молоди. У личинок хирономид самым чувствительным периодом оказался метаморфоз. Выклев предличинок у рыб также является одним из наиболее чувствительных показателей. Все перечисленные выше биологические показатели, связанные с размножением и развитием оказываются более чувствительными, чем выживаемость особей в растворах токсикантов.

Проведен сравнительный анализ чувствительности к токсикантам таких интегральных показателей хрусталика рыб, как изменение митотического индекса и количества хромосомных аберраций, с чувствительностью биологических показателей у классических тест-объектов, применяемых в водной токсикологии, связанных с размножением и развитием. Показано, что митотический индекс и увеличение количества хромосомных аберраций под влиянием токсикантов по чувствительности сравнимы с наиболее чувствительными показателями, связанными с размножением и развитием коловраток, дафний, хирономид, моллюсков и рыб.

Выявленная высокая чувствительность хрусталика гидробионтов к токсическому воздействию веществ, попадающих в рыбохозяйственные водоемы, делают его незаменимым тест-объектом, который с успехом можно использовать в водной токсикологии.

В проведенном исследовании получены данные, которые позволяют использовать их в гидробиологии, ихтиологии, водной и санитарной токсикологии, так как открывается возможность создания экспресс-методов биотестирования и новых методов эколого-рыбохозяйственного нормирования.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Никифоров-Никишин, Алексей Львович, 2005 год

1.Аверкина Р.Ф. Специфические антигены в тканевых зачатках глаза куриных эмбрионов // Бюлл. экспер. биол. и мед., 1964, Т. 58, вып. 11, с. 111-115.

2. Авилова Г.А., Карпухина Е.А. Бензол. М., Центр ГКНТ, 1985, 45 с.

3. Алабастер Д., Ллойд Р. Критерии качества воды для пресноводных рыб // М., Легкая промышленность, 1984, 334 с.

4. Алабастер Дж., Ллойд Р. Критерии качества воды для пресноводных рыб. М., Легкая и пищевая промышленность, 1984, 343 с.

5. Алданазаров А.Т. Кроветворение при свинцовой интоксикации // I

6. Съезд гигиенистов, эпидемиологов, микробиологов Казахстана, Алма-Ата, 1970, Т. 1, С. 301-306.

7. Алексеенко И.Р., Конычев А.А, Панченко H.A. Экстремальныефакторы и биообъекты //Киев, Наук, думка, 1989, 152 с.

8. Алимов А.Ф. Закономерности роста пресноводных двустворчатых моллюсков // Журнал общей биологии, 1974, т. XXXV, № 4, с. 576588.

9. Алимов А.Ф., Бульон В.В., Гутельмахер Б.Л., Иванова М.Б. Применение биологических и экологических показателей для определения степени загрязнения природных вод // Водные ресурсы, 1979, №5, с. 137-150.

10. Алтуфьев Ю.В. Печень каспийских осетровых в условиях антропогенного загрязнения среды // Экологические и морфофункциональные основы адаптации гидробионтов. Л., 1990, с. 3-5.

11. Альберт Э.А. Избирательная токсичность. М.: Мир, 1971, 432 с. И. Амбарцумян М.А. Влияние различной концентрации бора натемп размножения P. Caudatum в зависимости от температуры среды //Цитология, 1975, т. 17, № 9, с. 1094-1096.

12. Андронников С.Б., Иванов Э.В., Лукина Т.М., Шестерин И.С. Оценка экологических условий водной среды по жаберному аппарату рыб // Тез. докл. 4 Всесоюз. конф. по экол. физиологии и биохимии рыб, 1985, С. 8-9.

13. Аникин A.B. Морфологическое обоснование индукции хрусталика глазной чашей // Труды 6-го Всесоюз. Съезда анатомов, гистологов и эмбриологов, Харьков, 1961, т. 1, с. 511-513.

14. Артюхова В.И., Дмитриева А.Г., Исакова Е.Ф., Ларин В.Е., Путинцев А.И., Филенко О.Ф. Мониторинг вод рек Подмосковья методами биотестирования // Водные ресурсы, 1991, № 1, с. 115-121.

15. Архангельский В.Н. Практическое руководство по патологистологической технике для офтальмологов, М.: Медгиз, 1957, 110 с.

16. Бабин Я.А. Биотические концентрации микроэлементов и их значение в процессе обмена веществ // В кн.: Микроэлементы, витамины и ферменты и их применение в медицине и животноводстве, Саратов, 1967, С. 3-5.

17. Балаж А., Блажек К. Эндогенные ингибиторы клеточной пролиферации, М.: Мир, 1982, 302 с.

18. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. Болезни прудовых рыб, 2-е изд., перераб. и доп, М.: Легкая и Пищевая промышленность, 1981,320с.

19. Бауэр О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А.Болезни прудовых рыб, 2-е изд., перераб. и доп, М.: Легкая и Пищевая промышленность, 1981,320с.

20. Беренштейн Ф.Я. Микроэлементы в физиологии и патологии животных //Минск, Урожай, 1966, 46 с.

21. Беспамятнов Г.П., Богушевская К.К., Беспамятнов A.B. и др. Предельно допустимые концентрации вредных веществ в воздухе и воде, Л.: Химия, 1975, 455 с.

22. Бигон М., Харпер Дж., Таунсенд К. Экология: Особи, популяция и сообщества. М.: Мир, 1989, т. 1, 667 е.; т. 2, 477 с.

23. Богданова Е.А. Реакция гидробионтов разных таксонов на антропогенный прессинг гидросферы. // Эколого-ихтиотоксикологические аспекты мониторинга пресноводных водоемов. Сб. научн. трудов, Вып. 326, Изд. ГОСНИОРХ, С.-Пб., 2000, С. 46-61.

24. Бодемер Ч. Современная эмбриология, М.: Мир, 1971,446 с.

25. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Влияние аномалий в распределении показателя преломления хрусталика гидробионтов на качество формируемого изображения // Стратегия развития пищ. промышленности-М.: МГТА, 2003 а, С. 210-214.

26. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Изменения в хрусталике гидробионтов под воздействием когерентного излучения // Сб. научных трудов молодых ученых МГТА. Вып. II М.: МГТА, 2002 а, С. 68-72.

27. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. К вопросу о соотношении митотической активности и митотического индекса эпителия хрусталика рыб // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 17, -М.: МГТА, 2002 б, С. 9-25.

28. Бородин А. Л., Никифоров-Никишин А.Л. Методы рыбохозяйственных исследований. М.: МГУТУ, 2004 в, 348 с.

29. Бородин А. Л., Никифоров-Никишин А.Л. Модель роста хрусталика рыб // Вестник Московского Государственного Университета Технологий и Управления, Сер. "Биология", Вып. 5 -М.: МГУТУ, 2005 б, С. 39-48.

30. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Морфология и оптические характеристики хрусталика гидробионтов. М.: МГУТУ, 2005 в, 138 с.

31. Бородин А. Л., Никифоров-Никишин А.Л. Морфология хрусталика низших позвоночных животных (на примере рыб) // В сб. "Проблемы воспроизводства аборигенных видов рыб" Киев: 2005 а, С. 59-65.

32. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Особенности оптического строения хрусталика рыб // Морфологические и физиологические особенности гидробионтов М.: ВНИРО, 2001 а, С. 24-27.

33. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Построение таблиц многофакторного дисперсионного анализа // Вестник Московского Государственного Университета Технологий и Управления, Сер. "Биология", Вып. 1 -М.: МГУТУ, 2004 а, С. 38-52.

34. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Пространственное распределение некоторых химических элементов в хрусталике кальмара // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 18, М.: МГТА, 2003 в, С. 46-52.

35. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Рефракционные свойства хрусталика брюхоногих моллюсков // Морфологические и физиологические особенности гидробионтов М.: ВНИРО, 2001 б, С. 27-30.

36. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Системная экология. -М.: МГУТУ, 2004 б, 372 с.

37. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Статистические закономерности митотической активности эпителия хрусталика рыб // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 18, М.: МГТА, 2003 б, С. 19-32.

38. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л., Пространственное распределение показателя преломления в хрусталике рыб и головоногих моллюсков // Сб. трудов молодых ученых МГЗИПП. — М.: МГЗИПП, 1997, С. 14-19.

39. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л., Горбунов A.B. Изменение элементного состава хрусталика радужной форели под влиянием тяжелых металлов // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 17, М.: МГТА, 2002, С. 26-34.

40. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л., Симаков Ю.Г. Моделирование оптических характеристик хрусталика гидробионтов // Вестник Московского Государственного Университета Технологий и Управления, Сер. "Биология", Вып. 5 М.: МГУТУ, 2005 б, С. 7-16.

41. Брагинский Л.П. Биологические тесты как метод индикации токсичности водной среды // В кн.: Проблемы аналитической химии. М.: Наука, т. 5, 1979, с. 27-38.

42. Вентцель Е.С., Овчаров Л.А. Теория вероятностей, М.: Наука, 1973, 368 с.

43. Венчиков А.И. Дозировки микроэлемента и уровень энергетических процессов животного организма // Тез. докл. V Всесоюз. совещ. «Биол. роль микроэлементов и их применение в сельском хозяйстве и медицине», т. 2, 1970, 119 с.

44. Венчиков А.И. К применению микроэлементов в медицине в качестве биотических факторов // Тез. докл. IV Всесоюз. международ, совещ. по проблеме: «Микроэлементы и естественная радиоактивность», Петрозаводск, 1965, С. 51-52.

45. Веселов Е.А. Жизнь пресных вод СССР, M.-JL, 1959, 320 с.

46. Веселов Е.А. Критерий токсичности и принципы методик по водной токсикологии. М.: Изд. МГУ, 1971, с. 43-78.

47. Виноградов Г.А. Процессы ионной регуляции у пресноводных животных в условиях антропогенного загрязнения водоемов // Инф. бюл. "Биология внутренних вод", №51, 1981, С. 53-56.

48. Войнар А.И. Биологическая роль микроэлементов в жизни человека и животных. М.: Советская наука, 1960. - 494 с.

49. Войнар А.И. Биологическая роль микроэлементов в организме животных и человека // М., Высшая школа, 1960, С. 5-11.

50. Волков И.В., Заличева И.Н., Каймина Н.В. и др. Региональные особенности токсикорезистентности гидробионтов к металлам // Первая Всесоюз. конф. по рыбох. токсикологии: Тез. докл. Ч. 1, Рига, 1989, С. 75-76.

51. Воробьев В.И. Значение микроэлементов для растущих овец в условиях южностепных регионов Красноярского края // В кн.: Биол. роль микроэлементов и их применение в сельском хозяйстве и медицине, т. 2, Л., Наука, 1970, С. 354-355.

52. Воробьев В.И. Микроэлементы в рыбоводстве Астраханской области // В кн.: Биол. роль и практическое применение микроэлементов, т. 2. Рига, 1975, С. 13-15.

53. Воробьев В.И. Проблемы биогеохимии микроэлементов в рыбоводстве // Тез. докл. VIII Всесоюз. конф. "Биол. роль микроэлементов и их применение в сельском хозяйстве и медицине", т. 1. Иваново-Франковск, 1978, С. 13-14.

54. Воронова Л.Д., Денисова A.B., Пушкарь И.Г., Борисова Т.А. Оценка загрязнения ртутью фауны природных экосистем (по мировым данным) // Мониторинг фонового загрязнения природных сред, вып. 4, 1987, С. 109-121.

55. Втюрин Б.В., Пальцын A.A. Современные методы и приемы электронно-микроскопических исследований биологических объектов (электронно-микроскопическая радиоавтогравия и растровая электронная микроскопия). М.: Радио и связь, 1985, 48 с.

56. Гамбарян С.П., Лаврова Е.А. Нефротоксическое действие соединений платины, хрома и кадмия на морских костистых рыб. // Ж. эволюц. биохимии и физиол,1989, 25,№ 6, С. 729-735.

57. Гирберт С. Биология развития, М.: Мир, 1993, 228 с.

58. Гирса И.И. Влияние фотопериодизма и температуры воды на фотореакцию некоторых рыб. // Вопросы ихтиологии, 1972, т. 12, вып.3(74), с 554-560.

59. Глушко Я.М. Вредные органические соединения в промышленных сточных водах. Л., Химия, 1976, 77 с.

60. Гнездилова С.М., Липина И. Г., Дуркина В.Б., Буровина И.В., Уханов К.Ю. Содержание кадмия в гонаде морского ежа Strongylocentrotus Intermedius и его действие на гаметы и потомство // Биология моря, 1988, № 2, С. 46-51.

61. Гузь О.В., Писько Г.Т. Молекулярные аспекты действия поверхностно-активных веществ на микроорганизмы. // Фармакология и токсикология. Вып. 18, 1983, С. 106-111.

62. Гусев А.Г. Критерий токсичности и принципы методик по водной токсикологии. М.: Изд. МГУ, 1971, с. 29-42.

63. Гярулайтис А.Б., Валушене В.Т., Баршене Я.В. Влияние антропогенного фактора на физиологическое состояние, хромосомный аппарат, численность и запасы рыб Куршского залива // Экспериментальная водная токсикология. Рига, 1990, вып. 14, с. 145149.

64. Данильченко О.П. Сравнительные реакции эмбрионов и предличинок рыб на некоторые природные факторы и синтезированные соединения // Вопр. ихтиологии, 1982, т. 22, вып. 1, с. 128-138.

65. Данильченко О.П. Чувствительность эмбрионов рыб к действию токсических веществ // Вопр. ихтиологии, 1977, т. 13, вып. 3, с. 518527.

66. Дашевский А.И. Новые пути изучения рефракции глаза // В сб. Проблемы физиологической оптики. М. -Л.: изд. АН СССР, 1952.-Т. 10.-С. 97-105.

67. Дементьева М.А. Состояние жаберных лепестков форели при бассейновом выращивании на сбросных теплых водах. // Эколого-ихтиотоксикологические аспекты мониторинга пресноводных водоемов. Сб. научн. трудов, Вып. 326, Изд. ГОСНИОРХ, С.-Пб., 2000, С. 196-202.

68. Дорофеева Л.С., Молина Л.П. Влияние условий внешней среды на биохимические показатели белков крови. // Региональные проблемы экологической генетики и пути их решения. Изд-во Мордов. ун-та, 1996, 11 с.

69. Дре Ф. Экология, М.: Атомиздат, 1976, 125 с.

70. Евтушенко З.С., Христофорова Н.К., Лукьянова О.Н. Металлсвязывающие цитоплазматические белки брюхоногого моллюска Collisella Cassis. // Биология моря, 1984, № 2, С. 59-63

71. Евтушенко З.С., Христофорова Н.К., Лукьянова О.Н. Металлсвязывающие белки и активность щелочной фосфатазы в гигантской устрице, обитающей в условиях антропогенного загрязнения. // Биология моря, 1984, № 3, С. 66-71.

72. Зайцев В.Ф. Федорова H.H., Курникова Н.П., Шипулин С.В., Абдуллаев М.Ш., Ложниченко О.В. Сравнительное накопление тяжелых металлов у самцов и самок стерляди. // Материалы международной научно-технической конференции. Калининград, 2000, С. 142-143.

73. Захаров В.М., Кларк Д.М. (ред.) Биотест. Интегральная оценка здоровья экосистем и отдельных видов. М.: Моск. Отд. Междунар. Фонда "Биотест", 1993, 68 с.

74. Зигель X. Некоторые вопросы токсичности ионов металлов // М., 1993.

75. Израэль Ю.А. Об оценке состояния биосферы и обоснованности мониторинга // ДАН СССР, 1976, т. 226, № 4, с. 955-957.

76. Калинина М.Б. Изучение влияния меди и цинка на картину крови молоди кеты (Oncorhynchus keta). // Первый конгресс ихтиологов России: Тезисы докладов // М.,: Изд-во ВНИРО, 1997, С. 219-220.

77. Карасева Е.М. Накопление тяжелых металлов в половых железах и соматических органах двустворчатых моллюсков // Биология моря, № 2, 1993, С. 66 76.

78. Карасева Е.М. Накопление цинка в гонадах и соматических органах двух видов двустворчатых моллюсков. // Биология моря, № 6, 1987, С. 34-37.

79. Кауфман З.С. Эмбриология рыб, М.: Агропромиздат, 1990, 270

80. Козлов В.А., Никифоров-Никишин A.JL, Бородин A.JI. Аквакультура. М.: МГУТУ, 2004, 433 с.

81. Косицин Н.В., Шнейдман С.А., Щур Ю.Б. Фотографирование угла передней камеры и переднего отдела глаза с помощью щелевой лампы // Вестник офтальмологии. 1965. - № 6. - С. 81-84.

82. Крайнюкова А.Н., Ульянова И.П., Хорунжая Т.А. Методическое руководство по биотестированию воды РД-118-02-90. М., Госкомприрода, 1991, 48 с.

83. Кремер Н.Ш. Теория вероятностей и математическая статистика, М.: Юнити-Дана, 2003, 543 с.

84. Кривандин A.B., Муратов К.О. Сравнительное исследование надмолекулярной структуры кристаллинов в хрусталиках карпа, лягушки и крысы методом малоуглового рассеяния рентгеновских лучей. // Биофизика 1999, т. 44, № 6, с. 1088-1093.

85. Крылов О.Н. О некоторых чувствительных показателях и измерениях в системе организма рыб при отравлении // Методики биологических исследований в водной токсикологии. М., Наука, 1971, с. 119-127.

86. Кутикова Л.А. Коловратки фауны СССР. Л., Наука, 1970, 742 с.

87. Лакин Г.Ф. Биометрия, М.: Высшая школа, 1980, 293 с.

88. Лапин H.A., Красюков В.Н. Влияние гуминовых кислот на поведение тяжелых металлов в эстуарных водах. // Океанология. 26, вып. 4.- 1986, С. 621-627.

89. Лесников Л.А. Методические указания по установлению предельно допустимых концентраций вредных веществ в воде рыбохозяйственных водоемов, Л.: ГОСНИОРХ, 1973, 22 с.

90. Лесников Л.А. Разработка нормативов допустимого содержания вредных веществ в воде рыбохозяйственных водоемов, Л.: ГОСНИОРХ, 1979, т. 144, с. 3-41.

91. Лесников Л.А. Сравнение различных методик проведения водно-токсикологических экспериментов. // Известия НИОРХ, 1976, с. 3-7.

92. Лилли Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. М., Мир, 1969, 645 с.

93. Липина И.Г., Гнездилова С.М. Распределение кадмия в гонадах морских ежей Strongylocentrotus nudus и S. Intermedius. // Биология моря, № 4, 1985, С. 50-53.

94. Лукин A.A. Устойчивость сиговых рыб к воздействию антропогенных факторов (на примере Кольского Севера) // Биология и биотехника разведения сиговых рыб. СПб., 1994, с. 93.

95. Лукьяненко В.И. Общая ихтиотоксикология, М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983, 320 с.

96. Лукьянова О.Н., Евтушенко З.С. Металлотионеины морских беспозвоночных // Биол. моря, № 4, 1982. С. 3-12.

97. Лукьянова О.Н., Евтушенко З.С. Связывание цинка и кадмия с цитоплазматическими белками приморского гребешка при повышенной концентрации цинка в воде // Биология моря, № 5, 1989, С. 18-24.

98. Макаров В.К., Жданова Т.Г., Исиханова И.И. и др. Распределение свинца в органах и тканях белых крыс при хронической затравке. // Гигиена труда и проф. Заболеваний, 1976, № 4, С. 40-43.

99. Макгрегор Г., Варли Дж. Методы работы с хромосомами животных. М., Мир, 1986,272 с.

100. Макеева А.П. Эмбриология рыб, М.: изд. МГУ, 1992, 216 с.

101. Максимов В.Н. Специфические проблемы изучения комбинированного действия загрязнителей на биологические системы // Гидробиологический журнал, 1977, т. 13, № 4, с. 34-45.

102. Максимов В.Н., Булгаков Н.Г., Милованова Г.Ф., Левич А.П. Детерминационный анализ в экосистемах: сопряженности для биотических и абиотических компонентов // Изв. РАН. Сер. биол. 2000. №4. С, 482-491.

103. Максимова Л.П. Биология моин и коловраток и их разведение в качестве корма для сиговых рыб // Л., ГОСНИОРХ, 1968, вып. 67, с. 107-135.

104. Малаян C.B. Анатомия глаза и физиологическая оптика, Ереван: Айастан, 1969, 267 с.

105. Маляревская А.Я. О специфических и не специфических изменениях при воздействии на рыб различных токсикантов // Норма и патология в водной токсикологии. Байкальск, 1977, с. 70-72.

106. Мамонтова Е.А., Мамонтов А.Л., Тарасова E.H. Загрязнение диоксинами и родственными соединениями окружающей среды Иркутской области. Иркутск, СО РАН, 2000, 48 с.

107. Мартин Р. Введение в биофизическую химию, М.: Мир, 1966, 383 с.

108. Метелев В.В., Канаев А.И., Дзасохова Н.Г. Водная токсикология. М.: "Колос", 1971, 247 с.

109. Мещеряков В.Н. Прудовик Limnaea stagnalis // Объекты биологии развития. М., Наука, 1975, с. 53-92.

110. Милейковский С.А. Объем нефтяного загрязнения мирового океана (обзор литературы) // Океанология, 1979, XIX, № 5, С. 828-834.

111. Милованова З.П., Лысенко Л.В. Приготовление гистологических срезов // Микроскопическая техника. М., Медицина, 1996, с. 14-35.

112. Мироновский А.Н. Морфологическая дивергенция популяций плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae) из малых водоемов Москвы: к вопросу о формировании " индустриальных рас" // Вопросы ихтиологии, 1994, т. 34, № 4, с. 486-493.

113. Моисеев H.H. Быть или не быть человечеству. Москва: Изд. Вагриус, 1999, с. 45-46.

114. Моисеенко Т.И. Адаптивный ответ популяций сига на антропогенный стресс // Биология и биотехника разведения сиговых рыб: Материалы V Всерос. совещ. СПб., 1994, с. 100-101.

115. Моисеенко Т.И. Влияние сточных вод на водные экосистемы Севера и их рыбные запасы // Ихтиология, гидробиология, гидрохимия, энтомология и паразитология: Тез. Докл. XI Всесоюз. Симпоз. "Биологические проблемы Севера". Якутск, 1986, вып. 4, с. 47-48.

116. Моисеенко Т.И. Изменение экологии сиговых рыб в условиях промышленного загрязнения водоемов Субарктики // Соременные проблемы сиговых рыб. Владивосток, 1991, ч. 2, с. 199-213.

117. Моисеенко Т.И. Состояние популяций лососовых и сиговых рыб в условиях загрязнения субарктического водоема (на примере озера Имандра) // III Всесоюзное совещание по лососевидным рыбам. Тольяти, 1988, с. 206-207.

118. Моисеенко Т.И. Теоретические основы нормирования антропогенных нагрузок на водоемы Субарктики. Апатиты, 1997, 261 с.

119. Моисеенко Т.И., Лукин A.A., Кашулин H.A. Сиг как тест-объект для биоиндикации качества вод озер Крайнего Севера // Современные проблемы сиговых рыб. Владивосток, 1991, ч. 2, с. 213-224.

120. Моисеенко Т.И., Яковлев В.А. Антропогенные преобразования водных экосистем Кольского Севера. Л.: Наука, 1990, 112 с.

121. Мотузова Г.В., Чичева Т.Б. О мониторинге подвижных форм тяжелых металлов в почвах фоновых районов // Мониторинг фонового загрязнения природных сред, вып.4, 1987, С. 265-270.

122. Мур Д., Рамамурти С. Тяжелые металлы в природных водах. Контроль и оценка влияния. М., Мир. 1987.

123. Мэгерран Р. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир, 1992, 182 с.

124. Нефедова З.А., Тайвонен Л.В. Биохимические особенности катарактогенеза у молоди семги. Липидный состав хрусталика рыб // Конгресс ихтиологов России Астрахань, 1997, с. 232-233.

125. Никифоров-Никишин А.Л. Влияние некоторых токсикантов на годовиков окуня // В сб. "Вопросы экологии гидробионтов". М.: ВНИПРХ, 1991, С. 126-127.

126. Никифоров-Никишин А.Л. Влияние некоторых токсикантов на предличинок кеты // Тез. докл. на Конф. МПО по рыбоводству ВЗИПП секция- экология гидробионтов. М.: ВНИПРХ, 1989, С. 9596.

127. Никифоров-Никишин А. Л., Бородин А. Л. Изучение совместного воздействия травмы и токсикантов на митотическую активность эпителия хрусталика рыб // Сб. трудов молодых ученых МГЗИПП. -М.: МГЗИПП, 1997, С. 45-46.

128. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Влияние умеренно- и слаботоксичных веществ на чувствительные биологические показатели некоторых гидробионтов // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 17, М.: МГТА, 2002 в, С. 62-77.

129. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Воздействие инфракрасного лазерного излучения на хрусталик гидробионтов // Стратегия развития пищ. промышленности — М.: МГТА, 2003 а, С. 203-207.

130. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Количественная оценка оптических характеристик хрусталика гидробионтов при катарактах различной этиологии // Стратегия развития пищ. промышленности -М.: МГТА, 2003 б, С. 207-210.

131. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Некоторые аспекты биохимии хрусталика // Сб. научных трудов молодых ученых МГТА. Вып. II М.: МГТА, 2002 а, С. 57-68.

132. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Оптическая плотность хрусталиков некоторых гидробионтов // Инновационные технологии в пищ. пром. третьего тысячелетия, Т. I, Вып. 6. — М.: МГТА, 2001, С. 23-24.

133. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Оценка комплексного воздействия тяжелых металлов на хрусталик радужной форели (Рагаза1шо туклБз) // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 18, -М.: МГТА, 2003 в, С. 33-45.

134. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Прикладная экология. М.: МГУТУ, 2004 в, 92 с.

135. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Хрусталик гидробионтов как тест-объект в водной токсикологии. — М.: МГУТУ, 2004 б, 145 с.

136. Никифоров-Никишин А. Д., Бородин А. Л. Электронно-микроскопические исследования строения хрусталика гидробионтов // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 17, -М.: МГТА, 2002 б, С. 53-61.

137. Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л., Сотников Ф.И. Анализ чувствительности некоторых биологических показателей гидробионтов к действию трихлорбензола // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 18, М.: МГТА, 2003, С. 515.

138. Никифоров-Никишин А.Л., Горбунов A.B., Бородин А.Л. Анализ чувствительности метода митотической активности эпителия хрусталика рыб (на примере монохлорбензола) // В сб. "Проблемы воспроизводства аборигенных видов рыб" — Киев, 2005 а, С. 123-137.

139. Никифоров-Никишин А.Л., Горбунов A.B., Бородин А.Л. Перспективы развития малых водоемов Центральной части России // Морфологические и физиологические особенности гидробионтов -М.: ВНИРО, 2001. С. 52-56.

140. Никифоров-Никишин А.Л., Кулаев С.Н. Воздействие токсикантов на динамику вещества у рыб // Тез. докл. 2-й Всесоюзной конференции по рыбохозяйственной токсикологии. Санкт-Петербург: ГОСНИОРХ, 1991, С. 71-74.

141. Никифоров-Никишин Д.Л. Гистохимия хрусталика некоторых видов рыб // Мат. VII науч.-практ. конф. "Инновационные технологии в пищевой промышленности третьего тысячелетия", М.: МГТА, 2001, вып. 6, том I, с. 22.

142. Никольский Г.В. Экология рыб. М.: Высш. шк., 1974, 367 с.

143. Новикова О.И. Оценка мутационной активности бурового раствора и его компонентов, Санкт-Петербург: ГОСНИОРХ, 1993, вып. 335, с. 78-81.

144. Одум Э. Общая экология, М.: Мир, 1975, 740 с.

145. Остромогильский А.Х., Петрухин В.А., Кокорин А.О., Виженский В.А., Лапенко Л.А. Свинец, кадмий, мышьяк и ртуть в окружающей среде: моделирование глобального круговорота // Мониторинг фонового загрязнения природных сред, вып. 4, 1987, С. 122-147.

146. Павлов С.Д., Савваитова К.А., Максимов В.А. О взаимоотношениях симпатрических группировок арктических гольцов в озере Собачье (Норило-Пясинская водная система) // Систематика, биология и биотехника разведения лососевых рыб. Л., 1994, с. 148-151.

147. Патин С.Ф., Морозов Н.П. Некоторые аспекты проблемы загрязнения морской среды тяжелыми металлами // Труды ВНИРО, т. 100, Экологические аспекты химического и радиоактивного загрязнения водной среды. М., 1974, С. 7-12.

148. Паттерсон К. Загрязнение внешней среды свинцом // Гигиена и санитария, № 11, 1971, С.89-94.

149. Пашин Ю.В., Козаченко В.И. и др. Химические мутагены окружающей среды. М., Наука, 1983, 138 с.

150. Пейве Я.В. Микроэлементы и ферменты, Рига: изд. АН ЛАТ. СССР, 1960, 286 с.

151. Перевозников М.А., Богданова Е.А. Тяжелые металлы в пресноводных экосистемах. С-Пб., 1999,228 с.

152. Перевозников М.А., Лащевская Т.И. Рыбы биоиндикаторы ионов тяжелых металлов. // Эколого-ихтиотоксикологические аспекты мониторинга пресноводных водоемов. Сб. научн. трудов, Вып. 326, Изд. ГОСНИОРХ, С.-Пб., 2000, С. 41-45.

153. Пири А., ван Гейнинген Р. Биохимия глаза, М.: Медицина, 1968, 400 с.

154. Пирс Э. Гистохимия, М.: Иностранная литература, 1962, 962 с.

155. Райхенбах-Клинке Х.Х. Рыба как тест-объект // В сб. Методы исследований токсичности на рыбах, М.: Агропромиздат, 1985, с. 7-9.

156. Решетников Ю.С. Биологическое разнообразие и изменение экосистем // Биоразнообразие: Степень таксономической изученности. М.: Наука, 1994, с. 77-85.

157. Решетников Ю.С. Современное состояние и перспективы изменения запасов сиговых рыб // Биология сиговых рыб. М.: Наука, 1988, с. 5-17.

158. Решетников Ю.С., Амундсен П.А. Сиговые рыбы системы р. Пасвик // Биология и биотехника разведения сиговых рыб: Материалы V Всерос. совещ. СПб., 1994, с. 112-115.

159. Робертис Э., Новицкий В., Саэс Ф. Биология клетки, М.: Мир, 1967, 473 с.

160. Романов A.A., Алтуфьев Ю.В. Новообразования в половых железах и печени осетровых рыб (Asipenseridae) Каспийского моря // Вопросы ихтиологии, 1990, т. 30, вып. 6, с. 1040-1044.

161. Ромейс Б. Микроскопическая техника, М.: Иностранная литература, 1954, 718 с.

162. Ромер А., Парсонс Т. Анатомия позвоночных, М.: Мир, 1992, 358 с.

163. Роскин Г.И., Левинсон Л.Б. Микроскопическая техника // М., "Наука", 1957, 245 с.

164. Роскин Г.И., Левинсон Л.Б. Микроскопическая техника, М.: Наука, 1957, 245 с.

165. Рощупкин Д.И., Потапенко А.Я. -Биологическое действие ультрафиолетового и видимого излучения. В кн. Внешняя среда и развивающийся организм м.: 1977, с. 53-90.

166. Савенко B.C. О фоновом содержании селена в атмосфере и значении антропогенного загрязнения // Мониторинг фонового загрязнения природных сред, 1987, вып. 4, С. 97-108.

167. Саркисов Д.С., Перов Ю.Л. Микроскопическая техника: Руководство. М.: Медицина, 1996 - 544с.

168. Сахарова Н.Ю., Голиченков В. А. Сезонные изменения регенерационной способности эпителия хрусталика лягушки // Цитология, 1968, т. 10, № 7, с. 896-899.

169. Серпунин Г.Г. Гематологические показатели адаптации молоди карпа к воздействию ионов тяжелых металлов // Аквакультура и биомониторинг водоемов: Сб. научн. тр. КГТУ, Калининград, 2001, С. 84-89.

170. Серпунин Г.Г., Коробейникова Е.Г. Реакция системы крови карпа (Cyprinus carpió L.) на воздействие тяжелых металлов. // Первый конгресс ихтиологов России: Тезисы докладов. М.: Изд-во ВНИРО, 1997, С. 237-238.

171. Симаков Ю.Г. Влияние бензольных соединений на митотическую активность эпителия хрусталика радужной форели Salmo gardineri Rich // "Вопросы ихтиологии", 1982, т. 22, вып. 1, с. 139-144.

172. Симаков Ю.Г. Выявление хромосомных мутаций // Метологические указания по установлению рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ) загрязняющих веществ для воды водных объектов имеющих рыбохозяйственное значение, М.: изд. ВНИРО, 1998, с. 96-102.

173. Симаков Ю.Г. Гидробиология и борьба с загрязнением рыбохозяйственных водоемов // М., МТИПП, 1982, 102 с.

174. Симаков Ю.Г. Методы оценки мутагенной активности веществ в подострых опытах на эпителии хрусталика глаза рыб // Методы ихтиологических исследований. JL, ГОСНИОРХ, 1987, с. 121-122.

175. Симаков Ю.Г. Накопление некоторых макро- и микроэлементов в развивающемся хрусталике травяной лягушки // Вестник Московского университета, 1969, № 5, с. 22-26.

176. Симаков Ю.Г. Новый метод фиксации коловраток для морфологических и гистохимических исследований // Зоологический журнал, 1974, вып. 4, с. 623-625.

177. Симаков Ю.Г. О некоторых макроэлементах и микроэлементах в развивающемся хрусталике // Симпозиум "Регуляция процессов роста и дифференцировки". Автореф. Бюлл. МОИП, 1969, с. 28-31.

178. Симаков Ю.Г. Оценка генотоксичности загрязняющих веществ // Методические указания по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ). М., ВНИРО, 1998, с. 91-102.

179. Симаков Ю.Г. Размножение коловраток Philodina roseola и новые концепции обмена генетической информации" // Доклады по экологии гидробионтов; М., ВНИИПРХ, 1989, с. 85-86.

180. Симаков Ю.Г. Регенерация различных зон эпителия хрусталика после травматизации // Изв. АН СССР, серия биологическая, 1974, № 2, с. 295-298.

181. Симаков Ю.Г. Эмбрионы и личинки рыб // Методические указания по установлению ПДК и ОБУВ загрязняющих веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. М., ВНИРО, 1998, с. 77-79.

182. Симаков Ю.Г., Бородин A.JL, Никифоров-Никишин A.JI. Экспериментальные лучевые и травматические катаракты. — М.: МГТА, 2003 а, 168 с.

183. Симаков Ю.Г., Кулаев С.Н. Морфологические перестройки у гидробионтов под влиянием широкополостного электромагнитного облучения // Состояние и перспективы научно-практических разработок в области марикультуры России. М., ВНИРО, 1996, с. 295303.

184. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин A.JI. Биомикроскопия хрусталика карпа при наличие метацеркарий диплостом // В сб. "Водные биоресурсы, воспроизводство и экология гидробионтов". — М.: ВНИПРХ, 1993, С. 153-155.

185. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин A.JI. Особенности зрения гидробионтов // Водные экосистемы и организмы. (Труды научной конференции МГУ) М.: Макс-Пресс, 2004, С. 68 - 69.

186. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Влияние теплового загрязнения на митотическую активность эпителия хрусталика гидробионтов // Сб. трудов молодых ученых МГЗИПП. М.: МГЗИПП, 1997, С. 20-23.

187. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Изменение некоторых биологических показателей гидробионтов под влиянием мутагенных соединений // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии" МГТА. Вып. 17, М.: МГТА, 2002, С. 35-52.

188. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Хрусталик гидробионтов: морфология, биохимия, цитогенетика. -Ростов н/Д: Изд. Рост.ун-та, 2005, 160 с.

189. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Цитодифференцировка хрусталика и катарактогенные факторы. М.: МГТА, 2003 б, 214 с.

190. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л., Кулаев С.Н. Исследования хромосомных клеточных структур гидробионтов методами оптоэлектроники // В сб. "Водные биоресурсы, воспроизводство и экология гидробионтов", Вып. 67 — М.: ВНИПРХ, 1993, С. 120-123.

191. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л., Кулаев С.Н. Митотическая активность в эпителии хрусталика окуня в норме и при травматизации // В сб. "Вопросы экологии гидробионтов". М.: ВНИПРХ, 1991, С. 127-130.

192. Симаков Ю.Г., Попов В.В. Миграция кальция из сетчатки в хрусталик в развивающемся глазу травяной лягушки // Вестник Московского университета, 1969, №4, с. 17-19.

193. Симонавичене Б.И. Чувствительность серебряного карася к сублетальным концентрациям меди. // Биол. ресурсы водоемов бассейна Балт. моря. Матер. 22 Науч. конф. по изуч. водоемов Прибалтики, Вильнюс, 1987, 847.

194. Смит Л.Л. Критерии биотестов // В кн. Влияние загрязняющих веществ на гидробионтов и экосистемы водоемов, Л., 1979, с. 39-49.

195. Соколов JI.И. Рыбы в условиях мегаполиса (г. Москва) // Соросовский образовательный журнал, 1998, № 5, с. 30-35.

196. Соколов Л.И., Соколова Е.Л., Пегасов В.А., Шатуновский М.И., Кистинев А.Н. Ихтиофауна реки Москвы в черте г. Москвы и некоторые данные о ее состоянии // Вопросы ихтиологии, 1994, т. 34, №5, с. 634 641.

197. Солнцев В.Н. Процессы естественного и антропогенного загрязнения природных комплексов. // Известия Всесоюз. Географ, общества, 1974, т. 106, вып 3, с. 345-365.

198. Строганов Л.М. Содержание микроэлементов в тканях нормального глаза // Матер, к научной конф. по теме "Спектральные методы исследований в биологии и медицине", 1967, с. 70-71.

199. Строганов Н.С. Критерий токсичности и принципы методик по водной токсикологии. М.: Изд. МГУ, 1971, с. 14-28.

200. Строганов Н.С. Научные основы установления ПДК токсических веществ в открытых водоемах (Биологические аспекты) //Водные ресурсы, 1974, № 1, с. 110-121.

201. Строганов Н.С. Токсическое загрязнение водоемов и деградация водных экосистем // В кн. Общая экология. Биоценология. Гидробиология. Сер. Водная токсикология, 1976, т. 3, с.35-46.

202. Ташкэ К. Введение в количественную цитологическую морфологию. Бухарест; Акад. СРР, 1980, 191 с.

203. Тимофеева А.И. Влияние сублетальных концентраций CuS04 на показатели роста сеголеток радужной форели. // Эколого-ихтиотоксикологические аспекты мониторинга пресноводных водоемов. Сб. научн. трудов, Вып. 326, Изд. ГОСНИОРХ, С.-Пб., 2000, С. 257-265.

204. Тишинова-Нанова В. Влияние на кадмия върху активността на пероксидазата в кръвта на шарана. // Год. Софийск. унив. Биол. фак., 1984(1987), 78, № 1, С. 50-54.

205. Трумен Д. Биохимия клеточной дифференцирован, М.: Мир, 1976,168 с.

206. Федоров В.Д. Новый показатель неоднородности структуры сообщества // Вестн. МГУ. Сер. биол. 1973. №2. С, 94-96.

207. Филенко О.Ф. Водная токсикология // М.: Изд. Моск. ун-та, 1988, 154 с.

208. Филенко О.Ф., Хоботьев В.Г. Загрязнение металлами // В. сб.: Итоги науки и техники. Общая экология. Биоценология. Гидробиология, Т. 3. Водная токсикология, 1976, с. 110-150.

209. Флеров Б.А., Комов В.Т. Оценка экологического состояния водоемов при антропогенном воздействии // Гидробиологический журнал, Киев, 1991, т. 27, № 3, с. 8-13.

210. Фомин Г.С. Вода. Контроль химической, бактериальной и радиационной безопасности по международным стандартам. // Энциклопедический справочник, 3-е изд., перераб. и доп. М.: Издательство "Протектор", 2000, 848 с.

211. Фридман Ф.Е. Станок для фиксации экспериментальных животных при биомикроскопии глаз // Физ. журн. СССР им. Сеченова. -1960. Т. 46. - № 5. - С. 633-634.

212. Христофорова Н.К. Содержание тяжелых металлов в мягких тканях трех видов двустворчатых моллюсков острова Багаман (Меланезия) // Биология моря, № 6, 1980, С. 51 -55.

213. Черняев Ж.А., Довгий Т.Н. О воздействии световой радиации на развитие икры сиговых рыб. В кн. Вопросы рыбного хозяйства Восточной Сибири. Иркутск, 1969, с. 50-51.

214. Чуйков Ю.С. Задачи и принципы биологического анализа степени загрязнения водоемов // Гидробиологический журнал, 1975, т. 11,№5, с. 111-118.

215. Шварц С.С. Экологические основы охраны биосферы. "Вестник АН СССР", 1973 с. 9.

216. Шерстнева Л.А., Казакова И.С., Третьякова С.А. Токсичность бромбензола для гидробионтов // Сб. научных трудов ГосНИОРХ и речного рыбного хозяйства, 1993, № 335, с. 93-98.

217. Шеффе Г. Дисперсионный анализ, М.: Наука, 1980, 680 с.

218. Шлопак Т.В. Микроэлементы в офтальмологии // Труды 4-го съезда офтальмологов Укр. ССР, Киев, 1964, с. 408-411.

219. Шлопак Т.В. Некоторые особенности химизма хрусталика в норме и патологии // Офтальмологический журнал, 1962, т. 5, с. 273276.

220. Шлопак Т.В. Химизм хрусталика (в норме и патологии). Послесловие к книге Пири и Гейнингена "Биохимия глаза", М.: Медицина, 1968, с. 5-6.

221. Шустов В .Я. Микроэлементы в гематологии // Л., Наука: 1967, С.5-116.

222. Adler F.H. Physiology of the Eye-Clinical Applications. Mosby. St. Luis, Missouri, 1959. 320 p.

223. Aggett P.J., Comerford J.G. Zinc and human health // Nutr Rev, 53, 1995, p. 16-22.

224. Ahrend M.H.J., Breck O., Wegener A., Midtlyng S., Breipohl W. Age-related changes in cristallin patterns of normal and cataracts lenses of fermed Atlantic Salmon. // 9-th conf. Rhodes, 19-21 Sep. 1999, p. 25.

225. Akaba S. Distribution of glutathione in the pathologic eye. // Nippon Ika. Daig. Z. 1966, v. 33, p. 86-93.

226. Allshire R.C., Javerzat J.P., Redhead N.J., Cranston G. Position effect variegation at fission yeast centromeres. Cell 76, 1994, p. 157-169.

227. Amer S.M., Ali E.M. Cytological effects of pesticides. Meiotic effects of some phenol // Cytologia, 1968, v. 33, p. 21-33.

228. Arey L.B. Developmental Anatomy. Philadelphia: W.B. Saunders and Co., 1974, 674 p.

229. Baldo G.J., Gong X., Martinez-Wittinghan F.J., Kumar N.M., Gilula N.B., Mathias R.T. Gap junctional coupling in lenses from alpha(8) connexin knockout mice. J. Gen. Physiol. 118, 2001, p. 447-456.

230. Balinsky B.J. An Introduction to Embryology (3-rh edd). Philadelphia, London and Toronto: W.B. Saunders and Co., 1970, 345 p.

231. Bassnett S. Lens organelle degradation. Exp. Eye Res. 74, 2002, p. 1-6.

232. Bassnett S., Missey H., Vucemilo I. Molecular architecture of the lens fiber cell basal membrane complex. J. Cell Sci. 112, 1999, p. 21552165.

233. Beauchamp P. De Classe des Rotifer // Traite de Zoologie, Anatomie, Systematique, Biologie. Paris, 1965, v. 4, № 3, p. 283-394.

234. Behl C., Skutella T., Lezoualc'h F., Post A., Widmann M., Newton C.J., Holsboer F. Neuroprotection against oxidative stress by estrogens, p. structure-activity relationship. Mol Pharmacol. 1997, 51, p. 535-541.

235. Belding D.L. Trans. Amer. Fish. Soc., 57, 1927, p. 403-409.

236. Bellows J.G. Cataract and anomalies of the lens. London: Kimpton, 1944.

237. Bengeri K.V., Patil H.S. Lead induced histological changes in the liver of Puntius arulius // J. Anim. Morphol. and Physiol., 1986, 33, № 1-2, p. 147-150.

238. Bentley P. J., Grubb B.R. Effects of zinc deficient diet on tissue zinc concentrations in rabbits //J. Anim. Sci, 69, 1991, p. 4876^1882.

239. Berardinis E., Tieri O., Juglio N. at all. The concentration of lactic acid in the human aqueous humor is not determined by the metabolism of the lens. // Experientia, 1965, v. 21, p. 589-590.

240. Berg J.M., Shi Y. The galvanization of biology: a growing appreciation for the roles of zinc // Science, 271, 1996, p. 1081-1085.

241. Bettger W.J., O'Dell B.L. Physiological roles of zinc in the plasma membrane of mammalian cells // J. Nutr. Biochem, 1993, 4, p. 194-207.

242. Bigsby R.M., Cardenas H., Caperell-Grant A., Grubbs C.J. Protective effects of estrogen in a rat model of age-related cataracts. Proc Natl Acad Sci USA. 1999,96, p. 9328-9332.

243. Bloemendal H. The Vertebrate eye lens // Science, 1977, v. 197, p. 127-138.

244. Boersma M.G., Solyanikova I., Van Berkel W.J., et al. 19F NMR metabolomics for the elucidation of microbial degradation pathways of fluorophenols. J Ind Microbiol Biotechnol. 2001, 26, p. 22-34.

245. Bonting S.L. Na-K activated adenosinetriphosphatase and acetivecation transport in the lens. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 723744.

246. Borchman D., Yappert M.C. Age-related lipid oxidation in human lenses. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1998, 39, p. 1053-1058.

247. Borodin A.L., Nikiforov-Nikishin A.L. Fishes lens growth // Fresh Water Ecosystems Health and Management, Vol. 2, Tel-Avive: Hargol, 2004 b, P. 57-63.

248. Borodin A.L., Nikiforov-Nikishin A.L. Influence Cu, Zn, Cd and Pb on mithotic activity of fishes lens epithelium (on example Parasalmo mykiss) // Fresh Water Ecosystems Health and Management, Vol. 2, Tel-Avive: Hargol, 2004 a, P. 25-33.

249. Bose A., Medda J. A study on the lens inducing process in the chick. // Folia Biol, Krakow, 1965. v. 13, p. 289-295.

250. Bowness T.M., Morton R.A., Shakir M.H., Stubbs A.L. Distribution of copper and zinc in mammalian eyes. Occurrence of metals in melanin fractions from eye tissues //Biochem. J., 1952, 51, p.530-535.

251. Bradley R.W., DuQuesnay C., Sprague J.B. Acclimation of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, to zinc: kinetics and mechanism of enhanced tolerance induction // J. Fish Biol., vol. 27, № 4, 1985, p. 367379.

252. Braverman N., Cohen C., Korton A. Cytotoxicity of lens antisera to dissociated chik neural retina cell in tissue culture // J. Embryol. exp. Morph., 1969, v. 21, p. 391-406.

253. Bremner I. Heavy metal toxicities // Quart. Rev. Biophys., vol. 7, 1974, p. 75-124.

254. Brinton R.D. Cellular and molecular mechanisms of estrogen regulation of memory function and neuroprotection against Alzheimer's disease, p. recent insights and remaining challenges. Learn Mem. 2001, 8, p. 121-133.

255. Brown B.E. Uptake of copper and lead by a metal tolerant isopod Asellum meridianus Rac. // Freshwater Biol., 1977, vol. 7, № 3, p. 235

256. Brown B.E. Observations on the tolerans of the isopod Asellum meridianus Rac to copper and lead // Water Res., 1976, № 5, p. 10.

257. Bryan G.W. Adaptation of on estuarine polychaete to sediments containing high concentrations of heavy metals // Pollution and physiology of marine organisms, New York; London, Acad, press., 1974, p. 123.

258. Calabria G.A. Attivita giucose-6-fosfato e 6-fosfogluconato deidrogenasica del cristallino di vitello. // Boll. Soc. Ital. Biol. Sper, 1964, v. 40, p. 269-272.

259. Canton J.H., Sloof W. The usefulness of Lymnaea stagnalis L. as a biological indicator in toxicological bio-assays (model Substance a-HCH) //Water Res., 1977, v. 11,№ l,p. 117-121.

260. Carmichael N.G., Sguiff K.S., Engel. D.W., Fowler B.A. Metals in the mol-luscan kidney: uptake and subcellular distribution of 109Cd, 54Mn, and 65Zn by the clam Mercenaria mercenaria // Comp. Biochem. and physiol., v. 65A, 1980. p. 203-206.

261. Carr J.F., Hiltunen J.K. Changes in the bottom of Western lake Erie from 1939-1961 // Limnol. and Oceanogr., 1965, v. 10, № 1, p. 286-293.

262. Chalfie M., Tu Y., Euskirchen G., Ward W.W., Prasher D.C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression. Science 263, 1994, p. 802-805.

263. Chander I.H., Marcing L.L. Toxicity of fishery chemical to the Asiatic clam Corbicula manilensis // Program Fish-Cult., 1979, 41, № 3, p. 148-151.

264. Chang B., Wang X., Hawes N.L., Ojakian R., Davisson M.T., Lo W.K., Gong X. A Gja8 (Cx50) point mutation causes an alteration of alpha 3 connexin (Cx46) in semi-dominant cataracts of Lop 10 mice. Hum. Mol. Genet. 11, 2002, p. 507-513.

265. Cherian M.G., Goyer R.A. Metallothioneins and their role in the metabolism and toxicity of metals // Life Sci., v. 23, 1978, p. 1-10.

266. Chiang C.F., Okou D.T., Griffin T.B., Verret C.R., Williams M.N. Green fluorescent protein rendered susceptible to proteolysis, p. positions for protease-sensitive insertions. Arch. Biochem. Biophys. 394, 2001, p. 229-235.

267. Cohen A.I. The electron microscopy of the normal human lens. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 433-446.

268. Coombs T.L., George S.G. Mechanism of immobilization and detoxica-tion of metals in marine organisms // Physiology and behaviour of marine organisms, Oxford, New York, Pergamon press, 1978, p. 179-187.

269. Cotlier E., Beaty C. The role of Na-ions in the transport of alpha-aminoisobutiric acid and other amino acid into the lens. // Invest. Ophthal., 1967, v. 6, p. 64-75.

270. Coughlan D.J., Closs S.P., Kubota J. Acute and sub-shronic toxicity of lead to the early life stages of smallmouth bass (Micropterus dolomieui) // Water, Air, and Soil Pollut., 1986, 28, № 3-4, 265-275.

271. Cubitt A.B., Heim R., Adams S.R., Boyd A.E., Gross L.A., Tsien R.Y. Understanding, improving and using green fluorescent proteins. Trends Biochem. Sci. 20, 1995, p. 448-455.

272. Cumming R.G., Mitchell P. Hormone replacement therapy, reproductive factors, and cataract. The Blue Mountains Eye Study. Am J Epidemiol. 1997, 145, p. 242-249.

273. Daemers-Lambert C., Noel-Lambot F., Bouquegneau J.M. Le canal calcique: Une voie d'entree des metaux lourds dans les cellules des organismes marins // Oceanis., 1988, 14, № 4, p. 513-518.

274. Dahm R., van Marie J., Prescott A.R., Quinlan R.A. Gap junctions containing alpha8-connexin (MP70) in the adult mammalian lens epithelium suggests a re-evaluation of its role in the lens. Exp. Eye Res. 69, 1999, p. 45-56.

275. Davies M.J., Truscott R.J. Photo-oxidation of proteins and its role in cataractogenesis. J Photochem Photobiol B. 2001, 63, p. 114-125.

276. Davis V.L., Chan C.C., Schoen T.J., Couse J.F., Chader G.J., Korach K.S. An estrogen receptor repressor induces cataract formation in transgenic mice. Proc Natl Acad Sci USA. 2002, 99, p. 9427-9732.

277. Deysson G. Antimitotic substances- Intern // Rev. Cytol, 1968, v. 24, p. 99-148.

278. Dische Z., Zelmenis G. The content and structural characteristics of the collagenous protein of rabbit lens capsules at differen ages. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 774-780.

279. Doudoroff P. Int. to the physiology of fishes. Academic Press, 1957, №4, 215 p.

280. Dov S.C. Ontogenical changes in the cristallin compositions of the eye lenses of the territorial damselfish Parma microlepis and their possibleeffects on trance-metal accumulation. // Mar. Biol, 1999, v. 134, № 4, p. 653-663.

281. Dryl S. Response of ciliate protozoa to experimental stimuli // Mosquito News, 1970, 37, № 2, p. 151-155.

282. Dupree A.L., Little J., Langman J. Human lens proteins examined by immunochemical and ultracentrifugal techniques. // Arch. Ophthalmol, Chicago, 1964, v. 72, p. 660-666.

283. Durkina V.B., Evtushenko Z.S. Changes in activity of certain enzymes in sea urchin embryos and larvae after exposure of adult organisms to heavy metals // Mar. Ecol. Progr. Ser., 1991, 72, № 1-2, p. 111-115.

284. Dykens J.A. Free radicals and mitochondrial dysfunction in excitotoxicity and neurodegenerative diseases. Koliatos VE, Ratan VV. Cell Death and Diseases of the Nervous System. Clifton, NJ, p. Humana Press, 1999, p. 45-68.

285. Dykens J.A. Mitochondrial radical production and mechanisms of oxidative excitotoxicity. In, p. Davies KJA, Ursini F., eds. The Oxygen Paradox. Cleup Press, University of Padova, 1995, p. 453-467.

286. Dykens J.A., Fleck B., Ghosh S., Lewis M., Velicelebi G., Ward M. A novel FRET-based assay of mitochondrial membrane potential in situ. Mitochondrion. 2002, 1, p. 461-473.

287. Dykens J.A., Stout A.K. Fluorescent dyes and assessment of mitochondrial membrane potential in FRET modes. Methods Cell Biol. 2001, 65, p. 285-309.

288. Eckhert C.D. Elemental concentrations in ocular tissues of various species // Exp Eye Res., 37, 1983, p. 639-647.

289. Eichler G.I. Journ. Wildlife Management, 1946, 10, p. 217-225.

290. Ellis M.M. Bull. Bur. of Fish., 1940, 18, p. 32-38.

291. Ely L.O. Cytocrom-C content of bovine crystallin Lens // Arch. Ophthalmol, Chicago, 1952. v. 47, № 5, p. 717-719.

292. Enesco H.E., Pisanti F.A., Aloj T.E. The effect of copper on the ultrastructure of Torpedo marmorata neurons // Mar. Pollut. Bull., 1989, 20, № 5, p. 232-235.

293. Fabe J., Grahn B.H., Paterson P.G. Zinc concentrations of selected ocular tissues in zinc-deficient rats // Biol Trace Elem Res, 75, 2000, p. 43-52.

294. Festenstein R., Tolaini M., Corbella P., Mamalaki C., Parrington J., Fox M., Miliou A., Jones M., Kioussis D. (Locus control region functionand heterochromatin-induced position effect variegation. Science 271, 1996). p. 1123-1125.

295. Fischer-Lougheed J., Liu J.H., Espinos E., Mordasini D., Bader C.R., Belin D., Bernheim L. Human myoblast fusion requires expression of functional inward rectifier Kir2.1 channels. J. Cell Biol. 153, 2001, p. 677686.

296. Flannagan J.F. Fields and laboratory studies of the effect of exposure to fenitrothion on freshwater aquatic invertebrates // Manitoba Entomol., №7, 1973, p. 15-25.

297. Francois I., Rabaey M., Stockmans L. Gel filtration of the soluble proteins from normal and cataractous human lenses. // Exp. Eye Res., 1965, v. 4, p. 312-318.

298. Freeman E.E., Munoz B., Schein O.D., West S.K. Hormone replacement therapy and lens opacities, p. the Salisbury Eye Evaluation project. Arch Ophthalmol. 2001, 119, p. 1687-1692.

299. Fruton J.S., Simmonds S. General biochemistry, London: Chapman Hall, 1953.

300. Fu M.X., Requena J.R., Jenkins A.J., et al. The advanced glycation end product, Ne-(carboxymethyl)lysine, is a product of both lipid peroxidation and glycoxidation reactions. J Biol Chem. 1996, 271, p. 9982-9986.

301. Fulhorst H.W., Young R.W. Conversion of soluble lens protein to albuminoid. // Invest. Ophthal., 1966, v. 5, p. 298-303.

302. Galin M.A., Nano H.D., Hall T. Ocular zinc concentration // Invest Ophthalmol.,Vis Sci, № 1, 1962, p. 142-148.

303. Gill T.S., Pant J.C. Chromatin condensation in the erythrocytes of fish following exposure to cadmium // Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1986, 36, № 2, p. 199-203.

304. Ginge R.W.H., Elsbury R.M., Steingraeber M.T. Effects of cadmium on hatching success, growth, and osteological development of larval brook trout (Salvelinus fontinallis) in soft, acidic waters // Aquat. Toxicol., 1988, 11, №3-4, p. 404-405.

305. Godmann I.R. California Fishes, 37, 1951, 68 p.

306. Goldsmitt L.A. Carlson I.P. Divergent toxicity of parathion in two freshwater invertebrates Orconectes rustics and Viviparus malleatus. // J. Environ. Sci. And Health, 1979, 14, № 6, p. 579-588.

307. Gong X., Baldo G.J., Kumar N.M., Gilula N.B., Mathias R.T. Gap junctional coupling in lenses lacking alpha3 connexin. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95, 1998, p. 15303-15308.

308. Gong X., Li E., Klier G., Huang Q., Wu Y., Lei H., Kumar N.M., Horwitz J., Gilula N.B. Disruption of alpha3 connexin gene leads to proteolysis and cataractogenesis in mice. Cell 91, 1997, p. 833-843.

309. Goodnigcht C.J., Witley L.S. Oligochaetes as indicators of pollution. Proc. 15-th Ind. Waste, Conf., Pardue. Univ. Ext. Ser., 1961, v. 106, p. 139-142.

310. Goyer R.A., Leonard D.L., Moore J.F., Rhyme B., Krigman M.R. Lead dosage and role of the intranuclear inclusion body // Arch. Environ. Health, v. 30, 1970. p. 705-711.

311. Grahn B.H., Paterson P.G., Gottschall-Pass K.T., Zhang Z. Zinc and the Eye. // Journal of the American College of Nutrition, Vol. 20, № 2, 2001 p. 106-118.

312. Green P.S., Gordon K., Simpkins J.W. Phenolic A ring requirement for the neuroprotective effects of steroids. J Steroid Biochem Mol Biol. 1997, 63, p. 229-235.

313. Green P.S., Gridley K.E., Simpkins J.W. Estradiol protects against beta-amyloid (25-35)-induced toxicity in SK-N-SH human neuroblastoma cells. Neurosci Lett. 1996, 218, p. 165-168.

314. Green P.S., Perez E.J., Calloway T., Simpkins J.W. Estradiol attenuation of beta-amyloid-induced toxicity, p. a comparison of MTT and calcein AM assays. J Neurocytol. 2000, 29, p. 419^23.

315. Green P.S., Simpkins J.W. Role of estrogens and estrogen-like nonfeminizing compounds in the prevention and treatment of Alzheimer's disease. Ann NY Acad Sci. 2000, 924, p. 93-98.

316. Green P.S., Yang S.H., Nilsson K.R., Kumar A.S., Covey D.F., Simpkins J.W. The nonfeminizing enantiomer of 17beta-estradiol exerts protective effects in neuronal cultures and a rat model of cerebral ischemia. Endocrinology. 2001, 142, p. 400-406.

317. Gridley K.E., Green P.S., Simpkins J.W. A novel, synergistic interaction between 17 beta-estradiol and glutathione in the protection of neurons against beta-amyloid 25-35-induced toxicity in vitro. Mol Pharmacol. 1998, 54, p. 874-880.

318. Gridley K.E., Green P.S., Simpkins J.W. Low concentrations of estradiol reduce beta-amyloid (25-35)-induced toxicity, lipid peroxidation and glucose utilization in human SK-N-SH neuroblastoma cells. Brain Res. 1997, 778, p. 158-165.

319. Griffiths M.H. The components of an a-glycerophosphate cycle and their relation to oxidative metabolism in the lens. // Biochem. J., 1966, v. 99, p. 12-21.

320. Groff J.L., Gropper S.S. Advanced Nutrition and Human Metabolism. Belmont: Wadsworth/Thompson Learning, 2000, p. 419—430.

321. Gysels H. Immunoelectrophoresis of avian lens proteins. // Experientia, 1964, v. 20, p. 145-146.

322. Hadjantonakis A.K., Gertsenstein M., Ikawa M., Okabe M., Nagy A. Generating green fluorescent mice by germline transmission of green fluorescent ES cells. Mech. Dev. 76, 1998, p. 79-90.

323. Hales A.M., Chamberlain C.G., Murphy C.R., McAvoy J.W. Estrogen protects lenses against cataract induced by transforming growth factor-beta (TGFbeta). J Exp Med. 1997, 185, p. 273-280.

324. Halliwell B., Gutteridge J.M.C. Free Radicals in Biology and Medicine. 3rd ed. Oxford, UK, p. Oxford University Press, 1999, p. 381385.

325. Hamilton R.D. Man's impact on the global environment. // Report of the study of critical environment problem, 1970.

326. Han H.J., Park S.H., Park H.J., et al. Effect of various oestrogens on cell injury and alteration of apical transporters induced by tert-butyl hydroperoxide in renal proximal tubule cells. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2002, 29, p. 60-67.

327. Harding C.A., Thayer M.N. DNA synthesis and cell division in the cultured ocular lens // Invest. Ophthalmol., 1964, v. 3, № 3, p. 302-313.

328. Harris J.E., Becker B. Cation transport of the lens. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 709-722.

329. Heyningen R. Some glycolytic enzymes and intermediates in the rabbit lens. // Exp. Eye Res., 1965. v. 4, p. 298-301.

330. Heyningen R. The metabolism of glucose by the rabbit lens in the presensce and absence of oxygen. // Biochem. J., 1965, v. 96, p. 419- 431.

331. Hilmy A.M., Domiaty N.A.E., Daabees A.Y., Abder Latife H.A. Some physiological and biochemical indices of zinc toxicity in two freshwater fishes, Clarias lazera and Tilapia zilli. // Comp. Biochem. and Physiol., 1987, C87, № 2, p. 297-301.

332. Hilmy A.M., El Domiaty N.A., Daabees A.Y., Alsarha A. The toxicity to Clarias lazera of copper and zinc applied jointly. // Comp. Biochem. and Physiol., 1987, C87, № 2, p. 309-314.

333. Hodson P.V. Why inorganic metals do not increase in concentration up the food chain // Thalassia jugosl., 1980, vol. 16, № 2-4, p. 327.

334. Holwerda D.A., de Knecht J.A., Hemelraad J., Veenhof P.R. Cadmium kinetics in freshwater clams. Uptake of cadmium by the excised gill of Anodonta anatina. // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.-1989.-42, №3, p. 382-388.

335. Howard A. Whole mounts of rabbit lens for cytological study // Stain technol., 1952, v. 27, p. 313-317.

336. Howard A.G., Nickless G. Heavy metals complexation in polluted molluscs. 1. Limpets (Patella vulgata and Patella intermedia). Chem. Biol. Inter., v. 16, 1977, p. 107-114.

337. Howard A.G., Nickless G. Protein-binding of cadmium, zinc and copper in environmentally insulted limpets Patella vulgata. J. Chomatogr., v. 104, 1975. p. 457-459.

338. Hsu F.S., Brook L., Shively J.N., Duncan J.R., Pond W.G. Lead inclusion bodies in osteo-clasts. Science, v. 181, 1973, p. 447-448.

339. Hughes G.M., Tort L. Cardio-respiratory responses of rainbow trout during recovery from zinc treatment. / /Environ. Pollut., 1985, A37, № 3, p. 255-266.

340. Hunn J.B. Role of calcium in gill function in freshwater fishes 11 Comp. Biochem. and physiol., 1985, vol. 82 A, № 3, p. 543-547.

341. Ikeda A., Zwaan J. Immunofluorecence studies on induction and differentiation of the chicken eye lens. // Invest. Ophthal., 1966, v. 5, p. 402-412.

342. Ireland M.P. Distribution of metals in the digestive gland-gonad complex of the marine gastropod Nucella lapillus.-J. Mollusc. Stud., v. 45, 1979, p. 322-327.

343. Izumi K. Immunochemical studies on the soluble protein of the lens (on homologous immunity). // Acta Soc. Ophthal. Jap., 1964, v. 68, p. 1121-1125.

344. Jaiswal S.K., Waghray S. Influence of copper and zinc sulphates on chemoorientation of climbing perch, Anabas scandens (Cuv.). // J. Curr. Biosci., 1989, 6, № 3, p. 107-112.

345. Jones I. Fish and River Pollutions, London, Butterworths, 1964, 218 P

346. Kannan R., Stolz A., Ji Q., et al. Vitamin C transport in human lens epithelial cells, p. evidence for the presence of SVCT2. Exp Eye Res. 2001,73, p. 159-165.

347. Karcioglu Z.A. Zinc in the eye // Surv Ophthalmol., 1982, 27, p. 114-122.

348. Karlsson-Norrgren L. Cadmium and aluminium in fish; body distribution and morphological effects // Uppsala, 1985, 27 p.

349. Katz M., Chadwick G. Trans. Amer. Fish. Soc., 1962, v. 91, p. 318324.

350. Ketchum B.H., Zitko V., Saward D. Aspects of heavy metal and organohalogen pollution in aquatio ecosystems // Ecol. Toxicol. Res Eff. heavy metal and organohalogen compounds, N.-Y.-L., 1975, p. 75-90.

351. Ketola H.G. Influence of dietary zinc on cataracts in rainbow trout (Salmo gairdneri) //JNutr, 1979, 109, p. 965-969.

352. King D.L., Ball R.C. A quantitative biological measure stream pollution. // JWPCF, 1970, v. 36, p. 650-653.

353. Kinoshita J.H. Pathways of glucose metabolism in the lens. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 619-628.

354. Klaverkamp J.F., Duncan D.A. Acclimation to cadmium toxicity by white suckers: cadmium binding capacity and metal distribution in gill and liver cytosol. // Environ. Toxicol, and Chem., 1987, 6, № 4, p. 275- 289.

355. Klein B.E., Klein R., Lee K.E. Incidence of age-related cataract, p. the Beaver Dam Eye Study. Arch Ophthalmol. 1998, 116, p. 219-225.

356. Kneffel S., Desi I., Sarosi E. Nfchweis der geringfügigen Pestizigen Wasserverschimutzung mit Hilfe einer auf der Veränderung der physiologischen Funktion beruchenden Methoden // Gesundh Ing. 1976, v. 97, № 5, p. 106-108.

357. Knerr I., Beinder E., Rascher W. Syncytin, a novel human endogenous retroviral gene in human placenta, p. evidence for its dysregulation in preeclampsia and HELLP syndrome. Am. J. Obstet. Gynecol. 186,2002, p. 210-213.

358. Korhonen E., Korhonen L. Histochemical demonstration of cytochrome oxidase activity in the lens. // Acta Ophthal, Kobenhavn, 1966, v. 44, p. 577-580.

359. Koumantakis E., Alexiou D., Grimanis A., Kaskarelis D., Bouzas A. Zinc, cobalt and selenium concentrations in the premature and full term newborn eye // Ophthalmologica, Basel, 1983, 186, p 41-46.

360. Krause A.C. Chemistry of the Lens Lipids // Arch. Ophthalmol., 1935, v. 13, p. 187-190.

361. Krause A.C. Inositol in ocular tissues // Arch. Ophthalmol., 1938, № 20, p. 299-303.

362. Krause A.C. The biochemistry of eye, Baltimore: John Hopkins Press, 1934, 245 p.

363. Kumari K., Banerjee V. Effect of sublethal toxicity of zinc, mercury and cadmium on peripheral haemogram in Anabas festudineus (Bloch) // Uttar Pradesh J. Zool., 1986, 6, № 2, p.241-250.

364. Lake P.S. Accumulation of cadmium in aquatic animals // Chem., Austral., 1979, vol. 46, № 1, p. 26-29.

365. Lang T., Dethlefsen V. Cadmium in skelettdeformierten und normal entwickelten Kabeljau (Gadus morhua L.) in der Ostsee // Inf. Fischwirt., 1987, 34, №3, p. 113-117.

366. Lanno R.P., Slinger S.J., Hilton J.W. Maximum tolerable and toxicity levels of dietary copper in rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) // Aquaculture, 1985, 49, № 3-4, p. 257- 268.

367. Lee K.W., Mossine V., Ortwerth B.J. The relative ability of glucose and ascorbate to glycate and crosslink lens proteins in vitro. Exp Eye Res. 1998, 67, p. 95-104.

368. Lerman S., Zigman S. The metabolism of the lens as related to aging and experimental cataractogenesis. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 643660.

369. Lerman S., Zigman S., Saat Y.A. Further studies on nucleic acid metabolism in the lens. // Amer. J. Ophthalmol., 1965, v. 59, p. 243-247.

370. Lessler M.A., Walters M.L. Erythrocyte osmotic fragility in the presence of lead or mercury // Proc. Soc. Exp. Biol. Med., v. 142, 1973. p. 548-553.

371. Levari R., Wertheimer E., Kornblueth E. Interrelation between the various pathways of glucose metabolism in the rat lens. // Exp. Eye Res., 1964, v. 3, p. 115-117.

372. Liebmann H. Die Notwendigkeit einer Rewision des Saprobiosistem und deren Bedeutung fur die Wasserbeurteilung. Gesundheits Ingeniur, 2, 1960, 105 p.

373. Lin J.S., Eckert R., Kistler J., Donaldson P. Spatial differences in gap junction gating in the lens are a consequence of connexin cleavage. Eur. J. Cell Biol. 76, 1998, p. 246-250.

374. Lin J.S., Fitzgerald S., Dong Y., Knight C., Donaldson P., Kistler J. Processing of the gap junction protein connexin50 in the ocular- lens is accomplished by calpain. Eur. J. Cell Biol. 73, 1997, p. 141-149.

375. Lowell V.S., Fair P.H. The role of small molecular weight proteins and primary amines in the assimilation of trace metals // Estuaries, 1981, vol. 4, № 3, p. 283.

376. Mackay D., Ionides A., Kibar Z., Rouleau G., Berry V., Moore A., Shiels A., Bhattacharya S. Connexin46 mutations in autosomal dominant congenital cataract. Am. J. Hum. Genet. 64, 1999, p. 1357-1364.

377. Madaj J., Nishikawa Y., Reddy V.P., et al. 6-Deoxy-6-fluoro-L-ascorbic acid, p. crystal structure and oxidative degradation. Carbohydr Res. 2000, 329, p. 477-485.

378. Maisel H. Analysis of cortical and nuclear lens proteins by a combination of paper and starch gel electrophoresis. // Anat. Rec., 1965, v. 151, p. 209-215.

379. Maisel H., Goodman M. Comparative electrophoretic study of vertebrate lens proteins. // Amer. J. Ophthalmol., 1965, v. 59, p. 697-699.

380. Maisel H., Goodman M. The ontogeny and specificity of human lens proteins. // Invest. Ophthal, 1965, v. 4, p. 129-137.

381. Manski W., Halbert S.P. Immunochemistry of the lens with special reference to phylogeny. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 539-545.

382. Mason C.V., Hines M.C. Alpha, beta and gamma crystallins in the ocular lens of rabbits: preparation and partial characterization. // Invest. Ophthal., 1966, v. 5, p. 601-609.

383. McCarty C.A., Mukesh B.N., Fu C.L., Taylor H.R. The epidemiology of cataract in Australia. Am J Ophthalmol. 1999, 128, p. 446-465.

384. McDevitt D., Brahma S., Courtois Y., Jeanny J.C. Fibroblast growth factor receptors and rageneration of the eye lens // Dev. Dyn., 1997, v. 208 2, p. 220-226.

385. McEwen B.S. Estrogens effects on the brain, p. multiple sites and molecular mechanisms. J Appl Physiol. 2001, 91, p. 2785-2801.

386. McMahon R.J., Cousins R.J. Mammalian zinc transporters. J Nutr, v.128, 1998, p. 667-670.

387. Mege R.M., Goudou D., Giaume C., Nicolet M., Rieger F. Is intercellular communication via gap junctions required for myoblast fusion? Cell Adhes. Commun. 2, 1994, p. 329-343.

388. Meisner J.D., Hum W. Acute toxicity of zinc to juvenile and subadult rainbow trout, Salmo gairdneri // Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1987, 39, № 5, p. 898-902.

389. Metz H.S., Livingston A.W., Zigman S. Studies on the metabolism of the regenerating rabbit lens. // Arch. Ophthalmol., 1965, v. 74, p. 244247.

390. Michibata H., Nojima Y., Kojima M.K. Stage sensitivity of eggs of the teleost Oiyzias latipes to cadmium exposure // Environ. Res., 1987, 42, № 2, 321-327.

391. Milot E., Strouboulis J., Trimborn T., Wijgerde M., de Boer E., Langeveld A., Tan-Un K., Vergeer W., Yannoutsos N., Grosveld F. et al. Heterochromatin effects on the frequency and duration of LCRmediated gene transcription. Cell 87, 1996, p. 105-114.

392. Miyake N., Otsuka Y., Kurata T. Autoxidation reaction mechanism for L-ascorbic acid in methanol without metal ion catalyst. Biosci Biotech Biochem. 1997, 61, p. 2069-2075.

393. Murphy A.N., Fiskum G., Beal M.F. Mitochondria in neurodegeneration, p. bioenergetic function in cell life and death. J Cereb Blood Flow Metab. 1999, 19, p. 231-245.

394. Nagaraj R.H., Shamsi F.A., Huber B., Pischetsrieder M. Immunochemical detection of oxalate monoalkylamide, an ascorbate-derived Maillard reaction product in the human lens. FEBS Lett. 1999, 453, p. 327-330.

395. Nagasaki T., Zhao J. Centripetal movement of corneal epithelial cells in the normal adult mouse. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 44, 2003, p. 558-566.

396. Naik V.V., Saha N., Banerjee B. Electrophoretograms of soluble proteins of lens in different species. // J. Exp. Med. Sci., 1966. v. 10, p. 14.

397. Nakatani J. Effects of various chemicals on the behavior of Paramecium caudatum // J. Fac. Sci. Hokkaido Univ., 1970, ser. 6, 17, № 3, p. 401-410.

398. Newson W.A., Hockwin O. Chromatographic separation of lens proteins with DEAE-cellulose. // Ophthalmologica Basel, 1966, v. 151, p. 505-511.

399. Nikiforov-Nikishin A.L., Borodin A.L. Accumulation of heavy metals by fishes lens // Fresh Water Ecosystems Health and Management, Vol. 2, Tel-Avive: Hargol, 2004 a, P. 16-24.

400. Nikiforov-Nikishin A.L., Borodin A.L. The analysis of sensitivity some biological parameters hidrobionts to influence of pollutants // Fresh Water Ecosystems Health and Management, Vol. 2, Tel-Avive: Hargol, 2004 b, P. 34-56.

401. Noel-Lambot F., Bouquegneau J.M., Frankenne F., Disteche A. Cadmium, zinc and copper accumulation in limpets (Patella vulgata) from the Bristol Channel with special reference to metallothioneins // Mar. Ecol. Prog. Ser., v. 2, 1980, p. 81-89.

402. Nordberg M., Elinder C., Rannster B. Cd, Zn, Cu in horse kidney metallothioneins // Environ. Res., v. 20, 1979, p. 341-350.

403. Nordmann J. Biologiue du cristallin. paris: Masson, 1954, 425 p.

404. O'Dell B.L. Personal reflections on a galvanizing trail. Ann Rev Nutr, № 18, 1998, p. 1-18.

405. Oertzen J.A. Die Meeresvereschmutsune -ein Problem der Meeresbiology, Biol. Rdsch., vol. 10, № 1, 1972, p. 1-18.

406. Oettingen W.P. The toxicity and potential dangers of nitrous fumes, Washington: Acad. Press, 1941, 120 p.

407. Olsson P.E., Haux C. Alterations in hepatic metallothionein content in perch, Perca fluviatilis, Environmentally exposed to cadmium. // Mar. Environ. Res., 1985, 17, № 2-4, p. 181-183.

408. Ono S., Obara K. Effect on the calcium ion on the protein metabolism in the lens // Med. Bull, Yokohama, 1965, № 16, p. 147-150.

409. Padayatti P.S., Ng A.S., Uchida K., et al. Argpyrimidine, a blue fluorophore in human lens proteins, p. high levels in brunescent cataractous lenses. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2001, 42, p. 1299-1304.

410. Pagano G., Esposito A., Giordano G. Fertilization and larval development in sea urchins following exposure of gametes and embryos to cadmium // Arch. Environ. Contam. Toxicol., v. 11, 1982. p. 47-55.

411. Pal J.D., Liu X., Mackay D., Shiels A., Berthoud V.M., Beyer E.C., Ebihara L. Connexin46 mutations linked to congenital cataract show lossof gap junction channel function. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 279, 2000, p. 596-602.

412. Paraconstantinou J. Molecular aspects of lens cell differention, Science, 1967, v. 156, p. 338-342.

413. Paterson P.G., Grahn B.H., Fabe J.S. Retinal and lens zinc concentration in the zinc-deficient rat // FASEB J., 1998, № 12,A, p.521.

414. Patherson J.W. A review of glucose transport in the lens. // Invest. Ophthal. 1965, v. 4, p. 667-679.

415. Paui R.M. Scient. monthly, 1952, 74, p. 58-63.

416. Pickering Q. The Ohio Journal of Science, 1966, 66(5), p. 153-159.

417. Pietrowicz-Kosmynska D. Chemotaxic effects of cation and pH on Stentor coeruleus // Acta protozool., 1971, 9, № 9-14, p. 235-244.

418. Pietrowicz-Kosmynska D. The influence of definite ionic medium on the negative chemotaxic in Stentor ceruleans //Acta protozool., 1971, 9, № 15-21, p. 305-322.

419. Pragatheeswaran V., Loganathan B., Natarajan R., Venugopalan V.K. Cadmium induced vertebral deformities in an estuarine fish, Ambassis commersoni Cuvier // Proc. Indian Acad. Sci. Anim. Sci., 1987, 96, №4, p. 389-393.

420. Prokai L., Oon S.M., Prokai-Tatrai K., Abboud K.A., Simpkins J.W. Synthesis and biological evaluation of 17 b-alkoxyestra-1, 3, 5(10)- trienes, p. potential neuroprotectants against oxidative stress. J Med Chem. 2001, 44, p. 110-114.

421. Rabaey M. Lens proteins during embryonic development of different vertebrates. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 560-578.

422. Rajan D.P., Huang W., Dutta B., et al. Human placental sodiumdependent vitamin C transporter (SVCT2), p. molecular cloning and transport function. Biochem Biophys Res Commun. 1999, 262, p. 762768.

423. Rao S.S., Mehta P.D., Cooper S.N. Antigenic relationship between insoluble and soluble lens proteins. // Exp. Eye Res., 1965, v. 4, p. 36-41.

424. Rao S.S., Mehta P.D., Cooper S.N. Conversion of alpha-crystallin of bovine lens into insoluble protein in vitro. // Exp. Eye Res., 1965, v. 4, p. 104-107.

425. Rasi V., Costantini S., Moramarco A., Giordano R., Giustolisi R., Gabrieli C.B. Inorganic element concentrations in cataractous human lenses. Ann Ophthalmol., 1992, №24, p. 459^64.

426. Reddy D.V. Distribution of free amino acids and related compounds in ocular fluids, lens and plasma of various mammalian species. // Invest. Ophthal., 1967, v. 6, p. 478-483.

427. Relexans J.C., Lerat L., Etcheber H. Une strategic d'etude des effets de quelques polluants (Cd, Zn, BaP) sur la respiration de communautés benthiques maintenues in vitro // Oceanis., 1988, 14, № 4, p. 411-421.

428. Ringwood A.H. Isognomon califor-nicum. The accumulation of cadmium and its effects on growth of larvae of an Hawaiian bivalve, Isognomon californicum // Pacif. Sci.,1988, 42, № 1-2, p. 130.

429. Robertson G., Garrick D., Wilson M., Martin D.I., Whitelaw E. Age-dependent silencing of globin transgenes in the mouse. Nucleic Acids Res. 24, 1996, p. 1465-1471.465. Robertson G., Garrick D., Wu W., Kearns M., Martin D., Whitelaw

430. E. Position-dependent variegation of globin transgene expression in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 1995, p. 5371-5375.

431. Rosenthal A.R., Eckhert C. Copper and zinc in ophthalmology. In Karcioglu Z.A., Sarper R.M. (eds): Zinc and Copper in Medicine // Springfield: Charles C. Thomas, 1980, p. 579-633.

432. Rosner L., Farmer C., Bellows J.G. Biochemistry of lens, studies on glutathione in crystallin lens // Arch. Ophthalmol., 1938, v. 20, p. 417-426.

433. Rothstein H., Reddan J., Weinsieder A. Response to injury in the lens epithelium of the bullfrog (R. catesbeana). Spatiotemporal patterns of DNA synthesis and mitosis. //Exp. Cell Res., 1965, v. 37, p. 440-451.

434. Rumsey S.C., Daruwala R., Al-Hasani H., et al. Dehydroascorbic acid transport by GLUT4 in Xenopus oocytes and isolated rat adipocytes. J Biol Chem. 2000, 275, p. 28246-28253.

435. Rumsey S.C., Kwon O., Xu G.W., et al. Glucose transporter isoforms GLUT1 and GLUT3 transport dehydroascorbic acid. J Biol Chem. 1997,272, p. 18982-18989.

436. Ruttenberg G. The insoluble proteins of bovine crystalline lens. // Exp. Eye Res., 1965, v. 4, p. 18-23.

437. Saksena D.N., Agarwal A. Effect of cadmium chloride on the ovarian activity in fresh water catfish Clarias batrachus (Linn) // Uttar Pradesh J. Zool., 1986, 6, № 1, p. 108-114.

438. Salanki J. Bihavioural studies on mussel under changing environmental conditions // In: Human Impacts Life in Fresh Water. Budapest, Akad. kiado, 1979, p. 169-176.

439. Salit P.W. Total lipids of human cataractous and sclerosed lenses // Arch. Ophthalmol., 1937, v. 25, p. 32-35.

440. Salit P.W. Total Lipids of Human Cataractous and Sclerosed Lenses // Arch. Ophthalmol.,1937, № 25, p. 32-35.

441. Saxena P., Saxena A.K., Monnier V.M. High galactose levels in vitro and in vivo impair ascorbate regeneration and increase ascorbatemediated glycation in cultured rat lens. Exp Eye Res. 1996, 63, p. 535-545.

442. Schober U., Lampert W. Effects of subletal concentration of the herbicide atrazin on growth and reproduction of Dafnia pulex // Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1977, 17, № 3, p. 269-277.

443. Scorsia H.R., Cooke A.S. Effects of transit herbicidae cyanatrin on aquatic animals // Bull. Environ. Contam. and Toxicol, 1979, 22, № 1-2, p. 135-142.

444. Sehgal R., Saxena A.B. Toxicity of zinc to a viviparous fish, Lebistes reticulatus (Peters) // Bull. Environ. Contam. and toxicol., 1986, 36, № 6, p. 888-894.

445. Shamsi F.A., Nagaraj R.H. Immunochemical detection of dicarbonylderived imidazolium protein crosslinks in human lenses. Curr Eye Res. 1999, 19, p. 276-284.

446. Sharifi M., Connell D.W. Growth rate reduction of goldfish (Carassius auratus) exposed chlorobenzones in diets with differing lipid contents // Bull. Environ. Contam. And Toxicil., 1997, v. 59, № 4, p. 665670.

447. Shestopalov V.I., Bassnett S. Expression of autofluorescent proteins reveals a novel protein permeable pathway between cells in the lens core. J. Cell Sci. 113,2000, p. 1913-1921.

448. Shiels A., Bassnett S., Varadaraj K., Mathias R., Al-Ghoul K., Kuszak J., Donoviel D., Lilleberg S., Friedrich G., Zambrowicz B. Optical dysfunction of the crystalline lens in aquaporin-0-deficient mice. Physiol. Genomics 7,2001, p. 179-186.

449. Shridas P., Sharma Y., Balasubramanian D. Transglutaminase-mediated cross-linking of alpha-crystallin, p. structural and functional consequences. FEBS Lett. 2001, 499, p. 245-250.

450. Shukla J.P., Pandey K. Zinc induced changes in the nucleic acids and protein metabolism in the fingerlings of a Freshwater Murrel, Channa punctatus. // Acta hydrochim. et hydrobiol., 1986, 14, № 2, p. 195-197.

451. Simpkins J.W., Green P.S., Gridley K.E. Fundamental role for estrogens in cognition and neuroprotection. Brioni J.D., Decker M.W. Pharmacological Treatment of Alzheimer's Disease. New York, p. Wiley-Liss, 1997, p. 503-524.

452. Simpson G.L., Ortwerth B.J. The non-oxidative degradation of ascorbic acid at physiological conditions. Biochim Biophys Acta. 2000, 1501, p. 12-24.

453. Singh O., Agarwal R.A. Effects of certain carbamate and organosphosphoruspesticides on isolated organs of Pila globosa (Gastropoda) // Toxicol. And Appl. Pharmacol., 1979, 50, № 3, p. 485-492.

454. Sinha D.P., Sinha K.P. Observations on glutathione and ascorbic acid content in human cataractous lens. // J. Indian Med. Ass., 1966, v. 46, p. 646-649.

455. Sippel T.O. Changes in the water, protein, and glutathione contents of the lens in the course of galactose cataract development in rats. // Invest. Ophthal., 1966, v. 5, p. 568-575.

456. Sippel T.O. Energy metabolism in the lens during aging. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 502-515.

457. Skul'sky I.A., Burovina- I.V., Vasilyeva V.F., Lukyanova O.N., Nikiforov V.A., Syasina I.G. Uptake and microlocalization of cadmium in marine bivalve mollusc tissues // Comp. Biochem. and physiol., 1989, 92, №2, p. 349-353.

458. Sladecek V. System of water quality from biological point of view // Ergebnisse der Limnologie, H. 7. Arch. Hydrobiol. 1973, № 7, p. 32-45.

459. Sordyi H. Influence of exposure time and H+ concentration of the water on the effects of sublethal Pb2+ loads on blood parameters of the rainbow trout (Salmo gairdneri) // Zool. Jahrb: Abt. allg. Zool. und Physiol. Tiere., 1990, 94, № 2, p. 141-152.

460. Spector A. Oxidative stress-induced cataract, p. mechanism of action. FASEB J. 1995, 9, p. 1173-1182.

461. Spector A. The soluble protein of the lens. // Invest. Ophthal., 1965, v. 4, p. 579-591.

462. Spector A., Kinoshita J.H. The incorporation of labeled amino acids into lens protein. // Invest. Ophthal., 1964, v. 3, p. 517-522.

463. Srivastava V.K., Varshney N., Pandey D.C. Role of trace elements in senile cataract. Acta Ophthalmologica, 1992, 70, p. 839-841.

464. Stanojevic-Paovic A., Hristic V., Cuperlovic M., Jovanovic S., Krsmanovic J. Macro- and microelements in the cataractous eye lens // Ophthalmic. Res, 1987, 19, p. 230-234.

465. Steele C.W. Latent behavioural toxicity of copper to sea catfish, Arius felis, and sheepshead, Archosargus probatocephalus // J. Fish Biol., 1985, 27, №5, p. 643-654.

466. Steele E.C., Jr, Lyon M.F., Favor J., Guillot P.V., Boyd Y., Church R.L. A mutation in the connexin 50 (Cx50) gene is a candidate for the No2 mouse cataract. Curr. Eye Res. 17,1998, p. 883-889.

467. Steinmann P. Toxikologie der Fish, 1928, 216 p.

468. Stout A.K., Raphael H.M., Kanterewicz B.I., Klann E., Reynolds I.J. Glutamate-induced neuron death requires mitochondrial calcium uptake. NatNeurosci. 1998, 1, p. 366-373.

469. Swan K.C., Salit P.W. Lence opacities associated with experimental calcium dificiency. Preliminary report // Amer. J. Ophthalmol., 1941, v. 24, p. 611-614.

470. Takata C., Albright J.F., Yamada T. Lens fiber differentiation and gamma crystalins: immunofluorescent study of wolffian regeneration. // Science, 1965, v. 147, p. 1299-1301.

471. Tallandini L., Turchetto M., Coppellotti O., Marcassa C. Assunzione e distribuzione del Cd nei pesci. Effetti sul metabolismo. // Boll. zool.,1988, 55, suppl., p. 91.

472. Tessier F., Birlouez-Aragon I., Tjani C., Guilland J.C. Validation of a micromethod for determining oxidized and reduced vitamin C in plasma by HPLC-fluorescence. Int J Vitam Nutr Res.1996, 66, p. 166-170.

473. Thomas P., Juedes M.J. Altered glutathione status in atlantic croaker (Micropogonias undulatus) tissues exposed to lead // Mar. Environ. Res., 1985, 17, №2-4, p. 192-195.

474. Torres P., Flos R. Effects of dogfish haematology and liver composition after acute copper exposure. Tort Lluis // Comp. Biochem. and physiol., 1987, C 87, № 2, p. 349-353.

475. Tsien R.Y. The green fluorescent protein. Annu. Rev. Biochem. 67, 1998, p. 509-544.

476. Tulasi S.J., Rao J.V.R. Effects of lead on copper content of fresh water crab Barytelphusa guerini (H. Miline Edwards) // Indian J. Exp. Biol., 1988, 26, № 4, p. 323-324.

477. Varanka I. Effect of some pesticides on the rhythmic adductor muscle activity of freshwater mussel larvae // Acta biol. Acad. Sci. Hung., 1978, v. 29, № l,p. 43-55.

478. Vazquez S., Aquilina J.A., Jamie J.F., et al. Novel protein modification by kynurenine in human lenses. J Biol Chem. 2002, 277 p. 4867-4873.

479. Verbost P.M., Flik G., Lock R.A.C., Bonga S.E. Wendelaar. Cadmium inhibition of Ca2+ uptake in rainbow trout gills // Amer. J. Physiol., 1987, 253, № 2, PT2, p. 216-221.

480. Vermorken A.J., Hilderink J.M., van de Ven W.J., Bloemendal H. Lens differentiation // J. of Cell Biology, 9 Vol. 76, 1979 p. 175-183.

481. Versteeg D.J., Giesy J.P. The histological and biochemical effects of cadmium exposure in the bluegill sunfish (Lepomis macrochirus) // Ecotoxicol. and Environ. Safety, 1986, 11, № 1, p. 31-43.

482. Vignery A. Osteoclasts and giant cells, p. macrophage-macrophage fusion mechanism. Int. J. Exp. Pathol. 81, 2000, p. 291-304.

483. Vrensen I., Graw J., DeWolf A. Nuclear breakdown during terminal differentiation of primary lens fibers in mice: a transmission electron microscopic study // Exp. Eye Res., 1991, № 52, p. 647-659.

484. Waagbo R., Bjerkas E., Sveier H., Breck O., Bjornestad E., Maage A. Nutritional status assessed in groups of smolting Atlantic salmon (Salmo salar L.), developing cataracts // J Fish Dis, 1996, 19, p. 365-373.

485. Waley S.G. Metabolism of amino acids in the lens. // Biochem. J., 1964, v. 91, p. 576-583.

486. Walsh C.T., Sandstead H.H., Prasad A.S., Newberne P.M., Fraker P.J. Zinc: Health effects and research priorities for the 1990s // Environ Health Perspect, 1994, 102, p. 5-46.

487. Wang Y., Mackenzie B., Tsukaguchi H., et al. Human vitamin C (L-ascorbic acid) transporter SVCT1. Biochem Biophys Res Commun. 2000, 267, p. 4S8-494.

488. Weintraub J.M., Taylor A., Jacques P., et al. Postmenopausal hormone use and lens opacities. Ophthalmic Epidemiol. 2002, 9, p. 179— 190.

489. Wen G.Y., Sturman J.A., Wisniewski H.M., McDonald A., Niemann W.H. Chemical and ultrastructural changes in the tapetum of beagles with a hereditary abnormality // Invest Ophthalmol Vis Sci, 1982, 23, p. 733742.

490. White T.W., Goodenough D.A., Paul D.L. Targeted ablation of connexin50 in mice results in microphthalmia and zonular pulverulent cataracts. J. Cell Biol. 143, 1998, p. 815-825.

491. Willoughby R.A., MacDonald E., McSherry B.J., Brown G. The interaction of toxic amounts of lead and zinc fed to young growing horses // Vet. Rec., v. 91, 1972, p. 382.

492. Wise P.M., Dubai D.B., Wilson M.E., Rau S.W., Bottner M. Neuroprotective effects of estrogen-new insights into mechanisms of action. Endocrinology. 2001, 142, p. 969-973.

493. Wisk I.D., Cooper K.R. Comparison of the toxicity of several polychlormated dibenzo-p-dioxins in embryos of the Japanese medaka (Orizius latipes) // Chemosphere, 1990, v. 20, № 3-4, p. 361-377.

494. Wisse J.H., Zweers A., Jongkin J.F. Further studies on the sub-units of alpha-crystallin. // Biochem. J., 1966, v. 99, p. 179-188.

495. Wright D.A. Cadmium and calcium interactions in the freshwater amphipod Gammarus pulex // Freshwater Biol., 1980, vol. 10, № 2, p. 123133.

496. Wuhrmann K., Woker H. Verhandl. Int. Ver. Theor. Ang. Limnol., 1955, 12, p. 461-467.

497. Yamawaki K., Hashimoto W., Fujii K.i, Koyama J., Ikeda Y., Ozaki H. Hemochemical changes in carp exposed to low cadmium concentrations // Bull. Jap. Soc. Sei. Fish., 1986, 52, № 3, p. 459-466.

498. Yin X., Gu S., Jiang J.X. Regulation of lens connexin 45.6 by apoptotic protease, caspase-3. Cell Commun. Adhes. 8, 2001, p. 373-376.

499. Yoshikawa T. Studies on lens protein. // Acta Soc. Ophthal. Jap., 1964, v. 68, p. 1115-1120.

500. Zacher P. Beziehungen zwischen dem Auftreten von Tubificidae und der Zufuhr organischer Stoffe im Bodensee // Intern. Rev. ges. Hydrobiol., vol. 49, №3, 1964, p. 1124-1128.

501. Zahner R. Organicmen als Indicatoren fur den Gewasserzustand // Arch. Hygiene fom Bacteriologie. Bd 149, № 3/4, 1965, p. 145-152.

502. Zarina S., Zhao H.R., Abraham E.C. Advanced glycation end products in human senile and diabetic cataractous lenses. Mol Cell Biochem. 2000, 210, p. 29-34.

503. Zaroogian G. Crassostrea virginica as an indicator of cadmium pollution // Mar. Biol., v. 58, 1980, p. 275-284.