Морфо-физиологическая характеристика базидиомицета Panus tigrinus и возможность его применения для обогащения белком лигноцеллюлозных субстратов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.23, кандидат биологических наук Ибрагимова, Светлана Александровна

• Ибрагимова, Светлана Александровна
• кандидат биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Ибрагимова, Светлана Александровна

СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Микроорганизмы- продуценты белка и физиологически активных веществ.

1.2. Сырье и субстраты, используемые для культивирования микроорганизмов с целью получения белка.

1.2.1. Глубинное культивирование с использованием отходов различных отраслей промышленности.

1.2.2. Использование полимерных субстратов при твердофазном культивировании микроорганизмов.

1.3. Биоконверсия лигноцеллюлозных субстратов грибами.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Микроорганизмы.

2.2. Реактивы, субстраты и материалы.

2.3. Культивирование микроорганизмов.

2.4. Микробиологические методы.

2.5. Аналитические методы.

2.6. Статистическая обработка.

ГЛАВА 3. ИЗУЧЕНИЕ МОРФО-ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ ПРИЗНАКОВ Р. TIGRINUS ПРИ ПОВЕРХНОСТНОМ КУЛЬТИВИРОВАНИИ.

3.1. Влияние условий культивирования на культурально-морфологические признаки гриба.

3.2. Влияние условий культивирования на физиологические признаки гриба.

ГЛАВА 4. ИЗУЧЕНИЕ МОРФО-ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ ПРИЗНАКОВ P. TIGRINUS ПРИ ГЛУБИННОМ КУЛЬТИВИРОВАНИИ.

4.1. Изучение культурально-морфологических признаков гриба при различных условиях культивирования.

4.2. Влияние состава питательной среды на выход биомассы гриба.

4.3. Влияние источников углерода и азота на динамику биомассы

P. tigrimis.

4.4. Влияние температуры и рН среды культивирования на выход биомассы P. tigrimis.

4.5. Влияние промышленных и полимерных субстратов на рост гриба.

4.6. Влияние условий культивирования P. tigrimis на изменение рН среды.

ГЛАВА 5. ИЗУЧЕНИЕ МОРФО-ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ ПРИЗНАКОВ P. TIGRINUS ПРИ ТВЕРДОФАЗНОМ КУЛЬТИВИРОВАНИИ.

5.1. Рост гриба при культивировании на пшеничной соломе.

5.2. Влияние возраста инокулята на рост и биосинтез белка грибом

5.3. Биодеградация лигноцеллюлозного компонента пшеничной соломы при воздействии P. tigrimis.

5.4. Обогащение соломы грибным белком.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфо-физиологическая характеристика базидиомицета Panus tigrinus и возможность его применения для обогащения белком лигноцеллюлозных субстратов»

Актуальность темы. Одной из задач современной биотехнологии является восполнение белкового дефицита в животноводстве. Источником увеличения ресурсов белка может быть промышленное производство мицелия высшего базидиального гриба Раппк tigrirшs, который по вкусовым и питательным качествам обладает преимуществом перед многими продуктами растительного, микробного и животного происхождения. Выращивание гриба можно вести на соломе, которая является сельскохозяйственным отходом и мало используется.

Использование грибов на основе прямой биоконверсии природных полимеров, к сожалению, не находит широкого применения. Разобщена информация, характеризующая грибы с точки зрения перспективности введения в культуру. Не в полной мере освещены вопросы, касающиеся биохимических и культурально-морфологических признаков разных штаммов Р. особенно при росте на природных полимерах, недостаточно изучены условия культивирования, их продуктивность и скорость роста при различных условиях выращивания. Для биодеструкции лигноцеллюлозных отходов необходимо выявление новых активных штаммов.

Проведение таких работ представляется актуальным, поскольку они направлены на решение теоретических проблем микологии и разработку практических подходов при использовании грибов в биотехнологии. Дополнительные сведения о физиолого-морфологических особенностях и закономерностях роста разных штаммов гриба расширяют представления о его физиологии и систематическом статусе.

Цель и задачи исследования. Цель работы - морфо-физиологическая характеристика базидиомицета Р. tigrinus в связи с его возможным применением для обогащения грибным белком лигноцеллюлозных субстратов.

Для достижения этой цели нами решались следующие задачи:

1) Исследовать культурально-морфологические особенности гриба Р. й^ппт шт. 317 в условиях различных способов культивирования;

2) Изучить рост Р. tigrinlls шт. 317 в различных условиях культивирования на плотных средах;

3) Подобрать и оптимизировать условия глубинного культивирования гриба с максимальным выходом биомассы;

4) Установить степень деструкции лигноцеллюлозного компонента пшеничной соломы при твердофазном культивировании Р. И^гтиБ шт. 317;

5) Дать количественную оценку влияния условий твердофазного культивирования базидиомицета на биосинтез белка.

Научная новизна. Впервые исследованы морфо-физиологические признаки Р. tigrinlls ВКМ Р-3616 Б при различных способах и условиях культивирования, что расширяет представления о приспособляемости разных штаммов одного вида. Морфологические признаки гриба, выявленные на стандартных средах и имеющие таксономическое значение на уровне вида, не изменяются под влиянием условий культивирования и сохраняются при росте на лигноцеллюлозном субстрате, что позволяет вести надежный микробиологический контроль чистоты культуры. Подобраны оптимальные условия культивирования исследуемого штамма. Установлено, что вновь выделенный штамм способен расти на среде с березовыми опилками, используя их в качестве единственных источников углерода. При твердофазном культивировании гриб разрушает лигноцеллюлозный комплекс соломы и в зависимости от условий культивирования обогащает ее белком до 15-20%. Исследованный штамм можно рекомендовать для получения белковых кормовых добавок, используемых в рационе сельскохозяйственных животных.

Научно-практическая значимость работы. Использование предварительной обработки соломы съедобным грибом Р. tigrimls шт. 317 позволит получить полноценную кормовую смесь непосредственно в условиях животноводческого хозяйства.

Заключение диссертации по теме «Биотехнология», Ибрагимова, Светлана Александровна

выводы

1. Показано, что в различных условиях культивирования Р. tighnгls шт. 317 образует мицелиальные структуры, характерные для высших базидиальных грибов: пряжки, анастомозы, хламидоспоры. При поверхностном культивировании на более поздних сроках образуется кожистая пленка кремового цвета. Твердофазное культивирование характеризуется формированием волнистых и закрученных в виде петель гиф. В условиях глубинной культуры гриб растет в виде округлых агломератов диаметром от 2 до 7 мм.

2. Р. tigrinlls шт. 317 - быстрорастущий гриб. Максимальный ростовой коэффициент зарегистрирован при культивировании на среде Чапека с кукурузным экстрактом при 25°С. В условиях глубинного культивирования гриба максимальный выход биомассы наблюдается на среде с фруктозой и нитратом натрия, при соотношении углерод/азот 20:1, температуре 30°С и начальном рН 6,0. Оптимальной комплексной питательной средой является среда Чапека с кукурузным экстрактом. Добавление лигносульфоната повышает продуктивность гриба, а березовые опилки можно использовать в качестве дополнительных источников углерода.

4. Среди примененных модификаторов (едкий натр, раствор аммиака, водяной пар) наиболее эффективным средством предобработки соломы является аммиак, при котором биодеструкция лигнина составляет 39%, а целлюлозы - 31%.

5. В условиях твердофазного культивирования гриба количество внеклеточного белка в необработанной соломе увеличивалось в 2,5 раза, а в модифицированной едким натром, раствором аммиака и водяным паром в 3-6 раз, при этом содержание общего белка в соломопродукте возрастало до 15-25%.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Ибрагимова, Светлана Александровна, 2003 год

1. Абрамович ЦЛ., Озолиня Н.Р., Сергеева В.Н. Изменение морфологической структуры и химического состава древесины березы в процессе поражения грибами белой гнили // Химия древесины.-1987,- № 2,- С.88-94.

2. Авров O.E., Мороз З.М. Использование соломы в сельском хозяйстве.-Л.: Колос, 1979.-31 с.

3. Авторское свидетельство №883177. Штамм Partus tigrimis (Fr.) Sing. ИБК-131 продуцент биомассы (A.C. Бухало, В.Г. Бабицкая, Э.Ф. Соломко). -1981.

4. Александрова A.B., Великанов Л.Л., Сидорова И.И. предпочтение видами рода Trichoderma различными субстратами // Тез.докл. I съезда микологов "Современная микология в России",- М.: Нац. Академия микологии, 2002,- С. 41-42.

5. Александрова Е.А., Завьялова Л.А., Трешина В.М., Гарибова Л.В., Феофилова Е.П. Получение плодовых тел и глубинного мицелия L. edodes // Микробиология.- 1998,- Т.67, вып.6,- С.649-654.

6. Алексеева В.В., Булгакова Е.И. Нетрадиционный способ производства кормовой белковой добавки // Тез.докл.- Верна, 1986.- С. 145.

7. Атыкян H.A. Физиологические особенности гриба Partus tigrinus ВКМ F-3616D и свойства ферментов лигнолитического комплекса, продуцируемых им: Диссертация канд. биол. наук,- Воронеж, 2000.-140с.

8. Ахмедова З.Р., Белецкая О.П. Целлюлазы и лигниназы базидиомицетов //Прикладная биохимия и микробиология,- 1993,- Т.62, № 6,- С.823-828.

9. Ахмедова З.Р., Белецкая О.П., Далимова Г.Н., Халикова М.М., Азимходжаева М.Н., Давранов К. Д. Отбор и культивирование целлюлозо- и лигнинразрушающих грибов // Микробиология,- 1994.-Т.63, № 5,- С.929-936.

10. Бабицкая В.Г. Биотехнология белковых препаратов для кормовых целей. В кн.: Микробный синтез на основе целлюлозы: белок и другие ценные продукты,- Минск: Наука и техника, 1988,- С. 137-178.

11. Бабицкая В.Г. Грибы продуценты физиологически активных веществ на лигноцеллюлозе: биология и культивирование: Дис. на соиск. уч. ст. д.б.н., Минск, 1991.

12. Бабицкая В.Г. Ферментативная деструкция лигнина, содержащегося в растительных субстратах, мицелиальными грибами // Прикладная биохимия и микробиология,- 1994,- Т.ЗО, № 6,- С.827-835.

13. Бабицкая В.Г., Важинская И.С. Морфологическая характеристика Coriohis hirsntus (Fr.) quel. БИМ ГМ-73 // Микология и фитопатология.-1990,- Т.24, вып.6,- С.494-499.

14. Бабицкая В.Г., Стахеев И.В. Изучение условий культивирования мицелиальных грибов на соломе // Микология и фитопатология,- 1981.-Т.15, № 1,- С.22-27.

15. Бабицкая В.Г., Стахеев И.В., Щерба В.В., Вадецкий Б.Ю. Изучение условий биотрансформации лигноцеллюлозных субстратов мицелиальными грибами в условиях твердофазной ферментации // Прикл. биохим. и микробиол,- 1986,- Т.22, № 4,- С.531-539.

16. Бабицкая В.Г., Щерба В.В. Деградация природных полимеров мицелиальными грибами продуцентами биологически активных веществ // Прикладная биохимия и микробиология.- 1991,- №5,- С. 687689.

17. Бабицкая В.Г., Щерба В.В. Особенности деградации лигнина природных полимеров ксилотрофамии почвенными сапрофитами. // Микробиология,- 1994,- №1,- С. 65-72.

18. Бабицкая В.Г., Щерба В.В. Антиоксидантная активность грибов деструкторов лигноцеллюлозных субстратов // Прикладная биохимия и микробиология,- 2002,- Т.38, № 2,- С. 169-173.

19. Бабицкая В.Г., Щерба В.В., Олешко B.C., Осадчая О.В. Физиологически активные вещества гриба Coriolus hirsiitus (Fr.) Quel.11 Прикладная биохимия и микробиология,- 1994,- Т.30, № 4-5.-С.624-631.

20. Бадалян С.М. Систематика, биоэкология и физиологическая активность серо-желтого опенка,- Ереван: Ереванский университет, 1993,- 196 с.

21. Бегашвили М.Г., Захариашвили Н.Г., Качлишвили Е.Т. Базидиомицеты продуценты растительно-белкового корма и ферментных препаратов // Тез. докл. республ. конф. "Микроорганизмы в сельском хозяйстве",-Кишинев: Штиинца, 1988,- С.212-213.

22. Бекер М.Е. Использование микробной биотехнологии в кормопроизводстве и утилизации отходов // Биотехнология.-1985.-№ 5,- С.14-24.

23. Белова Н.В., Ефремова И.Я. Препараты из высших базидиальных грибов объект патентно-правовой охраны // Микология и фитопатология.-1992,- Т.26, вып.4,- С.321-324.

24. Бисько H.A., Бухало A.C., Вассер С.П. Высшие съедобные базидиомицеты в поверхностной и глубинной культуре.- Киев: Наукова думка, 1985.-312 с.

25. Бисько H.A., Косман Е.Т. Рост штаммов вешенки обыкновенной Pleurotus ostreatus (Jacg.:Fr.)Kumm. на средах с различными источниками углерода и азота // Микология и фитопатология,- 1988.-Т.22, №6,- С. 516-519.

26. Бисько H.A., Фомина В.И., Володина Е.П. Изменение химического состава субстрата при культивировании Pleiiroías osíreaíus П Микология и фитопатология,- 1986,- Т.20, вып.5,- С. 392-395.

27. Бухало A.C. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. -Киев: Наукова думка, 1988,- 143 с.

28. Бухало A.C., Митропольская Н.Ю. Коллекция культур шляпочных грибов института ботаники им. Н.Г. Холодного национальной АН Украины // Тез.докл. I съезда микологов "Современная микология в России",- М.: Нац. Академия микологии, 2002,- С. 131-132.

29. Бухало A.C., Соломко Э.Ф., Дудка И.А. Рост съедобных базидиомицетов на комплексных средах // Тез. докл. Всесоюзн. конф. "Мицелиальные грибы (физиология, биохимия, биотехнология)".-Пущино, 1983,- С.168-169.

30. Воробьева Г.И., Выслоух В.А., Ксенофонтов Б.С. Получение кормовых белковых продуктов путем биоконверсии соломы на установках малой мощности,- Обзор информ,- М.: ВНИИСЭНТИ, 1988,- 16 с.

31. Гаврилова В.П., Королева О.В. Перспективы промышленного получения белков и биологических катализаторов из базидиомицетов // Тез.докл. I съезда микологов "Современная микология в России",- М.: Нац. Академия микологии, 2002,- С.293-294.

32. Ганбаров Х.Г., Самедова P.A. Биосинтез лакказы и пероксидазы у дереворазрушающего гриба Coriolus versicolor Fr.Quel.// Изв. АН Аз.ССР. Сер.биол.наук,- 1989,-№5,- С.111-115.

33. Гарибова JI.B. Роль кафедры низших растений в развитие отечественного грибоводства // Современные проблемы микологии, альгологии и фитопатологии,- М.: Изд. Дом "Муровей", 1998,- С.9-11.

34. Гарибова JI.B. Грибы: место в системе живого мира, происхождение и эволюция // Тез.докл. межд. конф. "Проблемы лесной микологии и фитопатологии", Москва, 2002,- С.56-63.

35. Головлева Л.А., Леонтьевский A.A. Биодеградация лигнина // Успехи микробиологии,- 1990.-N.24,- С. 128-155.

36. Головлева Л.А., Леонтьевский A.A. Лигнолитическая активность дереворазрушающих грибов // Микробиология,- 1998.-Т.67.-№5.-С.581-587.

37. Головлева Л.А., Мальцева О.В., Мясоедова Н.М. Оценка влияния различных способов предобработки растительных субстратов на лигнолитическую активность гриба Parins tigrinus 144 // Химия древесины,- 1988,- №2,- С.66-71.

38. Горшина Е.С., Скворцова М.М., Высоцкий В.Г. Биотехнологический препарат лекарственного гриба кориола опушенного // Тез.докл. I съезда микологов "Современная микология в России",- М.: Нац. Академия микологии, 2002,- С. 295.

39. Грачева И.М., Грачев Ю.П., Мосичев М.С. Лабораторный практикум по технологии ферментных препаратов,- М.: Легкая и пищевая промышленность, 1982,- 240 с.

40. Грекова Г.А. Обогащение соломы микробным белком в процессе твердофазной ферментации гриба Partus tigrinus.: Автореф. дис. канд. биолог, наук,- Пущино, 1988,- 16 с.

41. Грязькин A.B. Участие дереворазрушающих грибов в биологическом круговороте // Тез.докл. межд. конф. "Проблемы лесной микологии и фитопатологии", Москва, 2002,- С.80-84.

42. Даниляк H.H., Семичаевский В.Д., Дудченко Л.Г., Трутнева И.А. Ферментные системы высших базидиомицетов. Киев: Наукова думка, 1989.-278 с.

43. Денисова Н.П. Протеиназы высших базидиомицетов // Микология и фитопатология,- 1990,- Т.24, вып.6,- С.478-485.

44. Долгих М.С., Кравцов Э.Г., Ермолаев А.В. Протеолитическая активность дрожжеподобных грибов рода Candida продуцентов белка // Микология и фитопатология,- 1990.- Т.24, вып.З,- С.229-235.

45. Дубченко Л.Г., Семичаевский В.Д., Мельничук Г.Г. Влияние рН среды на продуцирование внеклкточных ферментов дереворазрушающими базидиомицетами // Микология и фитопатология,- 1988,- Т.22, вып.2,-С.135 138.

46. Дудка И.А. X Конгресс европейских микологов // Микология и фитопатология,- 1990,- Т.24, вып.5,- С.460-465.

47. Дудка И.А., Вассер С.П., Бухало А.С. Промышленное культивирование съедобных грибов.- Киев: Наукова думка, 1978.- 264 с.

48. Дудце М.Э. Сырье и питательные субстраты для промышленной биотехнологии,- Рига: Зинатне, 1986,- 34 с.

49. Ермаков А.И. Методы биохимического исследования растений,- Л.: Агропромиздат, 1987,- 430 с.

50. Закордонец Л.А., Билай Т.Н., Супрун С.М., Горбик Л.Т. Образование биологически активных веществ мезо- и термофильными грибами при выращивании их на целлюлозо- и крахмалсодержащих субстратах. // Микробиол. журн,- 1983,- Т.45, № 5. С.55-60.

51. Залашко М.В., Королева И.Ф. Дрожжи Rhodotonda gracilis -продуценты белка и биологически активных веществ липидной природы // Тез. докл. республ. конф. "Микроорганизмы в сельсом хозяйстве",- Кишинев: Штиинца, 1988,- С.181-182.

52. Зелкова Н.Г., Плотникова А.В., Кононенко Г.П. Снижение содержания дезоксинвалинола в соломе пшеницы при ощелачивании и обработке перосульфитом Na // Прикладная биохимия и микробиология,- 1997,-Т.ЗЗ, №2,- С. 209-212.

53. Золотарев Ф.А., Головина Г.И., Сивочуб O.A. Деградация лигнина базидиомицетами // Микология и фитопатология,- 1990,- Т.24, вып.1,-С.38-43.

54. Иванова Л.Я., Сивочуб O.A., Болотова А.К. Культивирование дереворазрушающих грибов на различных растительных отходах // Тез.докл. науч.семин. "Превращение древесины при энзиматическом и микробиологическом воздействиях",- Рига: Зинатне, 1985,- С.52-53.

55. Кантере В.М., Мухамеджанова Т.Г., Маляр Е.В., Аверина Г.Б. Использование отходов агропромышленного комплекса для получения микробных белковых препаратов,- В кн.: Микроорганизмы в сельском хозяйстве,- М.: МГУ, 1987,- С.113-114.

56. Капич А.Н. Изучение роста и синтеза протеина съедобным грибом Pamis tigrimis. Fr.Sing. ИБК-131 на средах с сельскохозяйственными отходами // Микробиол. промышленность,- 1983,- N3 С.2-3.

57. Капич А.Н. Биосинтетическая активность дереворазрушающих базидиомицетов при глубинном культивировании // Микология и фитопатология,- 1990. Т.24. -N5. - С.377-384.

58. Капич А.Н. Биосинтетическая деятельность ксилотрофных базидиомицетов: основные особенности и их адаптационная значимость. Автореф. на соиск. учен. степ, д.б.н., Москва. 1993.

59. Капич А.Н., Стахеев И.В., Бабицкая В.Г. Дереворазрушающие базидиомицеты продуценты белка,- Минск: Ин-т микробиол. АН БССР, 1984,- 63 с.

60. Капич А.Н., Шишкина Л.Н. Антиоксидантные свойства дереворазрушающих базидиомицетов // Микология и фитопатология,-1992,- Т.26, вып.6,- С.486-492.

61. Клечак И.Р., Бисько H.A., Билай В.Т. Особенности биодеструкции виноградной выжимки в процессе роста мицелия L. edodes II Микология и фитопатология,- 1999,- Т.ЗЗ, вып.1,- С.44-46.

62. Коваленко С.П. Химические факторы в селекции продуцентов микробных белков,- Минск: Наука и техника, 1980,- 135 с.

63. Коломиец Э.И., Здор H.A., Романовская Т.В., Лобанок А.Г., Босякова И.А. Антимикробная, антибактериальная активности актиномицетов, разлагающих лигноцеллюлозу // Прикладная биохимия и микробиология,- 1994,- Т.30, №4-5,- С.644-649.

64. Кондращенко В.И., Болобова A.B. Биотехнология переработки древесных отходов с целью получения биопластиков // Тез. докл. I Международ. Конгресс "Биотехнология состояния и перспективы развития",- Москва, 2002,- С.307-308.

65. Коробан Л.П. Ферменты гриба Lentinus edodes (Berk.)Sing и их активность при культивировании на среде из свекловичного жома // Тез. докл. I Международ. Конгресс "Биотехнология состояния и перспективы развития",- Москва, 2002,- С.303.

66. Кохреидзе Н.Г., Элисашвили В.И. Лигнолитическая активность Pleurotas ostreatus ИБН 191 при твердофазной ферментации отходов чайного производства // Прикладная биохимия и микробиология.-1993.-Т.29, № 2,- С.227-232.

67. Краснопольская Л.М. Грибы класса ВаБ1(Иоту$е1е$ источники лекарственных веществ // Современные проблемы микологии, альгологии и фитопатологии,- М.: Изд. Дом "Муровей", 1998,- С.230-232.

68. Краснопольская Л.М., Белецкий Н.В., Федорова Г.Б., Катруха Г.С. PI. djamor. способы культивирования и антимикробные свойства // Микология и фитопатология,- 2001,- Т.35, вып.1,- С.62-67.

69. Кузьмина Л.А., Ахмедова З.Р., Давранов К.Д. Влияние состава питательной среды на биосинтез пероксидазы грибом Pleurotus ostreatus шт. УЗБИ И105 // Прикладная биохимия и микробиология.-2001.- Т.37, №2,- С.218-220.

70. Леонтьевский A.A., Мясоедова Н.М., Коломиец Э.И., Головлева Л.А. Индукция лигнолитических ферментов гриба белой гнили Panus tigrhms 8/18. // Биохимия,- 1991,- Вып.9,- С. 1665-1675.

71. Лобанок А.Г., Бабицкая В.Г., Богдановская Ж.Н. Микробный синтез на основе целлюлаз,- В кн.: Белок и другие ценные продукты,- Минск: Наука и техника, 1988,- 261 с.

72. Мамедьяров М.А., Мамедова Ж.М., Ганбаров Х.Г. Ферментативный гидролиз биоделигнифицированных обрезков виноградной лозы // Прикл. биохим. и микробиол,- 1989,- Т.25, № 3,- С.385-389.

73. Межиня Г.Р., Кристапсонс М.Ж., Калныня Д.Э. Биотехнология белковых препаратов для кормопроизводства,- М.: ОНТИТЭИ Микробиопром, 1982,- 43 с.

74. Методы экспериментальной микологии / Под ред. В.И. Билай,- Киев: Наукова думка, 1982,- 538 с.

75. Морозова Г.Р., Поправко O.A., Макарова М.А. Биоконверсия углеводов грибами для получения белка пищевого назначения // Использование биомассы микроорганизмов для пищевых целей,- Пущино: ОНТИ НЦБИ АН СССР, 1985,- С. 21-38.

76. Морозова Г.Р., Сафонова Н.В., Кинареевская Т.В. Питательные среды для промышленного культивирования мицелия высших грибов// Производство высших съедобных грибов в СССР,- Киев: Наукова думка, 1978,-С. 87-91.

77. Музафаров A.M., Таубаев Т.Т. Культивирование и применение микроводорослей.- Ташкент: Фан, 1984,- 132 с.

78. Муратов Г.А., Рахимов М.М., Юлдашев Б.Т. Ферментативный гидролиз волокон коробочек хлопчатника // Прикладная биохимия и микробиология. -1998. Т.34, № 5,- С. 525-528.

79. Мясоедова Н.М. Влияние условий культивирования на лигнолитическую активность грибов Phanerochaete chrysosporium и Pamis tigrimisll Дисс.на соиск.учен.степени канд.биол.наук., Пущино.-1997.-132 с.

80. Мясоедова Н.М., Леонтьевский А.А., Головлева J1.A. Утилизация гидролизного лигнина грибом белой гнили Partus tigrimts II Прикл. биохимия и микробиология,- 1995,- Т.31, №5 С. 505-509.

81. Найдбалис И., Яковенко J1. Влияние микробиологической обработки на содержание сахара и протеина в ячменной соломе // Получение и использование кормовых продуктов из отходов леса, полеводства и торфа,- Л.: Колос, 1981.- Вып.4,- С.48-52.

82. Низовская О.П. Рост грибов порядка Agaricalis в поверхностной и глубинной культуре // Производство высших съедобных грибов в СССР.- Киев: Наукова думка, 1972,- С.92-94.

83. Олешко B.C., Стахеев И.В., Батурина Т.Я. Рост дрожжей на отходах переработки растительного сырья //Биотехнология.-1986.-№ 3.-С.24-28.

84. Олешко B.C., Бабицкая В.Г. Аминокислотный и фракционный состав белков грибного происхождения // Микология и фитопатология,- 1991,-Т.25, вып.З,- С.233-239.

85. Онофраш Л.Ф. Микробная конверсия отходов агропромышленного комплекса в белковые кормовые добавки,- Киев: Наукова думка, 1992,158 с.

86. Осадчая А.И., Подгорский B.C., Семенов В.И. Биотехнологическое использование отходов растениводства.-Киев:Наукова думка, 1990.-96с

87. Осипян JT.JT., Григорян K.M., Юсеф O.A. Загрязненность семян сои и соевой муки микромицетами и микотоксинами // Микология и фитопатология,- 2002,- Т.36, вып. 1.- С.43-47.

88. Пашенова Н.В., Решетникова И.А. Влияние pH среды на рост мицелия К. mutabilis при глубинном культивировании // Микология и фитопатология,- 1989,- Т.23, вып.4,- С.344-439.

89. Позднякова H.H., Леонтьевский A.A., Головлева Л.А. Внеклеточные оксидазы твердофазной культуры лигнолитического гриба Pamis tigrimis 8/18.// Биохимия.-1999.-Т.64.-Вып.4.-С.526-532.

90. Ревин В.В., Кадималиев Д.А., Атыкян H.A., Ситкин Б.В., Самуилов В.Д. Свойства пероксидазы гриба Parins tigrinus II Биохимия. 2000. -Т.65, №11. - С. 15-30.

91. Ревин В.В., Прыткова Т.Н., Лияськина Е.В., Черкасов В.Д., Соломатов В.И. Свидетельство о депонировании микроорганизма Panns (.Lent innsj tigrimis (Bulliard: Fries) Fries, 317. Регистрационный номер BKM F-3616 D присвоен 5 марта 1998 г.

92. Решетникова H.A. Мицелий грибов как источник кормового и пищевого белка.- М.: МГУ, 1989,- 56 с.

93. Решетникова H.A., Елкин В.В., Газарян И.Г. Воздействие ферментного препарата пероксидазы гриба Phellimis igniarius на лигноуглеводный комплекс березовой древесины. // Прикладная биохимия и микробиология. 1995,- Т. 31, № 2. - С. 204-206.

94. Решетникова H.A. Деструкция лигнина ксилотрофными макромицетами. Накопление селена и фракционирование его изотопов микроорганизмами. М.: СП Новинтех-Пресс, 1997. - 202 с.

95. Ю2.Саубенова М.Г., Пузыревская О.М., Владимирова Е.Г. Использование целлюлолитических бактерий в кормопроизводстве // Прикладная биохимия ц Микробиология,- 1998,- Т.34, №1,- С.91-94.

96. ЮЗ.Сивочуб O.A. Дереворазрушающие грибы продуценты кормового белка // Тез. докл. Всесоюзн. конф. "Мицелиальные грибы",- Пущино, 1983,- С.165-166.

97. Синицын А.П., Черноглазов В.П., Гусаков А.В. Методы изучения и свойства целлюлолитических ферментов // Итоги науки и техники. Серия: Биотехнология. -1990,- Т. 25. -С.80-93.

98. Смирнова И.Э., Саубенова М.Г. Целлюлозолитические азотофиксирующие бактерии для обогащения белком грубых кормов // Прикладная биохимия и микробиология,- 2001,- Т.37, №1,- С.86-89.

99. Соловьев В.А. Ксилобиология: основные проблемы и концепции // Тез.докл. межд. конф. "Проблемы лесной микологии и фитопатологии", Москва, 2002,- С.216-219.

100. Соломатов В.И., Селяев В.П., Черкасов В.Д. Перспективы применения биотехнологии в строительстве // Изв. вузов. Строительство. 1997. -№6. - С.34-38.

101. Соломко Э.Ф. Биосинтез витаминов группы В грибом Plearotas ostreatas в глубинной культуре // Прикладная биохимия и микробиология,- 1988,- Т.24, №2,- С. 164-169.

102. Соломко Э.Ф., Бухало А.С., Пархоменко Л.П. Подбор штаммов высших грибов для изучения глубинного культивирования на промышленных средах с мелассой // Производство высших съедобных грибов в СССР.-Киев: Наукова думка, 1978,- С. 105-108.

103. ПО.Соломко Э.Ф., Федоров О.А. Влияние рН среды на кинетику роста Pleurotus ostreatus в глубинной культуре // Микология и фитопатология,- 1988,- Т.22, №6,- С.537-542.

104. Ш.Стахеев И.В., Латышева С.Г., Бабицкая В.Г. Влияние способов обработки соломы на синтез белка полунепрерывной культурой гриба Pénicillium vernicalosum БИМ Г-122 // Биотехнология.-1988.-№3,-С.350-353.

105. Тресков И.А., Гительзон И.И., Сидбко Ф.Я., Окладников Ю.Н. О биологической и кормовой ценности биомассы водородных бактерий // Прикладная биохимия и микробиология,-1984,- Т.20, вып.4,- С.326-327.

106. Феофилова Е.П. Каротиноиды грибов: биологическая зависимость и практическое использование // Прикладная биохимия и микробиология,- 1994,- Т.ЗО, № 2,- С.181-195.

107. Феофилова Е.П. Использование высших базидиальных грибов для создания лекарственных препаратов // Материалы 111 Международ, конгр. "Наука и практика грибоводства", Россия. Кашира, 1996.-С.17-20.

108. Феофилова Е.П. Современные направления в изучении биологически активных веществ базидиальных грибов // Прикладная биохимия и микробиология. 1998,- Т. 34., № 6,- С. 597-608.

109. Феофилова Е.П. Вклад московских ученых Российской Академии Наук в развитие микологии в России: физиолого-биохимические исследования и новые биотехнологии // Микология и фитопатология.-2000,-Т.34, вып.2,- С. 1-6.

110. Феофилова Е.П. Царство грибов: гетерогенность физико-химических свойств и близость к растениям, животным и прокариотам // Прикладная биохимия и микробиология,- Т.37, №2.- 2001.- С. 141-155.

111. Феофилова Е.П. Биотехнология мицелиальных грибов: достижения и перспективы развития // Тез.докл. I съезда микологов "Современная микология в России",- М.: Нац. Академия микологии, 2002,- С.292-293.

112. Фенгел Д., Вегенер Г. Древесина (химия, ультраструктура, реакции). -М.: Лесная промышленность, 1988. 512 с.

113. Хазин Д.А. Производство кормового микробного белка и его использование в кормлении сельскохозяйственных животных,- М.: ВНИИТЭИ-агропром, 1987,- 51 с.

114. Черепанова Н.П. Морфология и размножение грибов,- JL: Изд-во ЛГУ, 1981,- 165 с.

115. Шиврина А.Н., Низовская О.П. Биосинтетическая деятельность высших грибов,- JL: Наука, 1969,- 243 с.

116. Элисашвили В.И. Биоконверсия растительного сырья высшими базидиомицетами // Микология и фитопатология.- 1993.-Т.27.-№6,-С.89-93.

117. Юлдашев Б.Т., Рахимов М.М., Рабинович M.JT. Влияние предобработки на эффективность ферментативного гидролиза целлюлозосодержащих отходов хлопководства // Прикладная биохимия и микробиология. -1992. Т.28.-№3.-С. 443-448.

118. Юрлова H.A., Кудряшова O.A., Софьин A.B. Влияние источников азота на биосинтез экзополисахаридов и активность ферментов углеродногообмена у Aureobasidium pullulons II Микробиология. 1997. -T.66, вып.4. -С.468-474.

119. Adaskaveg J.E., Gilbertson R.L., Blanchette R.A. Washington D.C. Comparative studies of delignification caused by Ganoderma species // Appl. and environm. microbiol.- 1990,- V.56, №6,- P.1932-1943.

120. Aiken B.S., Logan B.E. Degradation of pentachlorophenol by the white rot fungus Phanerochaete chrysosporium grown in ammonium lignosulphonate media // Biodégradation. -1996,- V.7, №3,- P. 175-182.

121. Argyropoulos D.S. Oxidative Delignification // Chemistry. Asc Symposium Series 785. American Chemical Society, Washington, 2001.

122. Anke T. Basidiomycetes: a source for new bioactive secondary metabolites // Bioactive metabolites from microorganisms / Ed. M.E. Bushell, U. Gratte.-Amsterdam: Elsevier, 1990,-P.51-66.

123. Aust S.D. Degradation of environmental pollutants by Phanerochaete chrysosporium.il Microbial Ecology.- 1990,- V.20.- P. 197-209.

124. Badalyan S.M. Naematoloma fasciculare as perspective object for biotechnology // 10th congress of european mycologists.- Tallinn, 1989.-P.10.

125. Beltramt P.L., Carhiti P. Fraqtion and bioconversion of steam-expoloded wheat straw // Bioresour. Technol.- 1992,- V.39, №2,- P. 165-171.

126. Blanchette R.A. Delignification by wood-decay fiingi // Annual Review of Phytopatology.- 1991,- V.29. P. 381-398.

127. Boddy L. Development and function of fungal communities in decomposing wood //In: Carroll D.T., Wicklow D.T. (eds). The Fungal Community.- New York: Marcel Dekker, Inc., 1991. P. 749-782.

128. Boominathan K., Reddy A.C. Fungal degradation of lignin: bioteclinological applications // Handbook of Appl. Mycol. V.4 Fungal Biotechnol.- New York, 1992,-P. 763-822.

129. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the guantitation of microgram guantites of protein utilising the principle of protein dye binding // Anal, biochemistry. - 1976. - V. 72. - P. 248 - 254.

130. Buchalo A.S. Use of higher basidiomycetes cultures in the biotechnology of obtaining food biomass // 10th congress of european mycologists.- Tallinn, 1989,- P.19.

131. Call H.P., Muske J. Degradation of lignin by fungi // J. Biotechnol.- 1997.-V.53, №1,- P.163-202.

132. Cancel A.M., Orth A.B., Tien M. Lignin and veratryl alcohol are not inducers of the ligninolytic system of Phanerochaete chrysosporium. // Appl. Environ. Microbiol.- 1993.- V.59, № 9. P. 2909-2913.

133. Christen sen M. A view of fungal ecology // Mycologia.- 1989,- V.81, № 1.-P.l-19.

134. Ciferri O. Spirulina the edible microorganism // Microbiol. Rev.-1982.-V.47, № 4,- P.551-578.

135. Cullen D., Kersten P.J. Enzymology and molecular biology of lignin degradation. In: The Mucota. V.III.Biochemistry and molecular biology./ Eds.Brambl and Marzluf.-1996.-P.295-312.

136. Deguchi T. Nylon biodégradation by lignin-degrading fungi // Appl. and Environ. Microbiology, 1997. -V.63.- P. 329-331.

137. Delgado G., Guilin F. Light stimulation of aryl-alcohol oxidase activity in Pleurotus eringil. II Mycol.Res.-1992.-V.96.-№i l .-P.984-986.

138. Dix N.J., Webster J. Fungal ecology.- London: Chapman and Hall, 1995.549 p.

139. Douglas R., George E. Lignocellulose pretreatment: a comparison of wet and dry ball attrition // Biotechnol. Lett.- 1987,- V.9, № 5,- P.365-368.

140. Duran N., Ferraz A., Mansilla H. Piopulping a new view on wood delignification // Agr. Biol, and Technol.- 1990,- V.33, №2,- P. 295-315.

141. Eriksson K.E., Blanchette R.A., Ander P. Microbial and enzymatic degradation of wood and wood components.- B.: Springer-Verlag, 1990,407 p.

142. Evans C.S. Lignin degradation // Progress Biochemistry.- 1987.-V.22, № 4,-P. 102-105.

143. Fevrier C. Les organismes unicellulaires dans l'alimentation des porcins // Bull. Technique d'Information.- 1985,- № 397-398,- P.169-179.

144. Fukusume T., Shumada K. Enrymatic degradation of lignin carbohudrate complex // Appl. Biochem. Biotechnol.- 1984,- V.9, № 4.- P.357-358.

145. Golovleva L.A., Golovlev E.L., Chermensky D.N. High layer solid-state fermentation of straw and sawdust // Monitoring and control of plant raw material bioconversion: VTT symp.- Espoo, 1985,- № 60,- P.54-70.

146. Golovleva L.A., Maltseva O.V., Myasoedova N.M., Leontievsky A.A. Panus tigrinus 144 degrading lignin 11 Biotechnology in the pulp and parer industry. Materials of the third int. conf.- Stockholm, 1986.- P.28-29.

147. Gond. H. G. Biodégradation of several aromatic hjdrocarbons bj whiterot fungi //1 Mikrobiol. - 1997. -V. 35, №1. - P. 66-71.

148. Gutiérrez A., del Rio J.C., Martinez M.J., Martinez A.T. Fungal degradation of lipophilic extractives in Eucalyptus globulus wood // Appl. and Environ. Microbiology. 1999. -V.65,№4.-P. 1367-1371.

149. Hammel K.E. Fungal degradation of lignin. In: Plant litter quality and decomposition // Eds. G. Cadisch and K.E. Giller.- United Kingdom: CAB International., 1997,-P.33-45.

150. Harkonen M., Saarimaki T., Mwasumbe L. Tanranian mushrooms and their uses.l.Russiila. 2.An edible species of Coprinus secfion // Karstenia.- 1993,-V.33, № 1.-P.11-50.

151. Hugh W.I., Dominy W., Duerr E. Evaluation of dehydrated Spirulina as a protein replacement in swine starter diets // Hawaii Inst, of Tropical Agric. And Human Resources.- 1985.- 10 p.

152. Irene F., Nelson D. Thiourea effect on the lignin biodégradation // Biotechnol. Lett.- 1987.- V.9, №5,- P.361-364.

153. Ivanova T.A. Optimization of solid-state fermentation of wheat straw by fungi // Bioconversion of plant raw material by microorganisms: VTT symp.-Espoo, 1988,-№ 88.-P. 184-191.

154. James C.M., Felipe M.S.S., Sims P.F.G., Broda P. Expression of a single lignin peroxidase-encoding gene in Phanerochaete chrysosporium strain ME-446 // Gene.-1998.-V. 114.-P.217-222.

155. Johansson M.A. Comparison between the cellulolytic activity of white and brown rot frmgi // Physiol, plant. 1966. - V.19, №5,- P. 709-722.

156. Kachlon S., Dass S. Biological conversion of paddy straw feed // Biol. Wastes.- 1987,- V.22, № 1,-p.l 1-21.

157. Kachlon S.S., Kalra K.L., Grewal H.S. Fungal single cell protein: current status // Indian J. Microbiol.- 1990,- V.30, № 1,- P. 13-28.

158. Kachlon S.S., Neeraj K., Kalra K.L., Grewal H.S. Bioconversion of rice straw into feed // J. Res. Punjab Agr. Univ.- 1990a.- V.27, № 3,- P. 447-456.

159. Kinya K., Shinya K., Masanori S. Degradation of lignin compounds by bacteria from termite guts // Biotechnol. Lett.- 1998,- V.20, № 5,- P.459-462.

160. Kirk T. K., Chang H.-M. Potential application of bioligninolytic systems. // Enzyme Microb. Technol. -1981,- V.3 P. 189-196.

161. Kirk T.K., Farrell R.L. Enzymic combustion. The microbial degradation of lignin //Ann. Rev. Microbiol.-1987.-V.71,-P.465-505.

162. Kuhnigh T., Borst E.-M., Ritter A., Kampfer P., Graf A., Konig H., Degradation of lignin monomer by the hindgut flora of xylophagous termites //Syst. and Appl. Microbiol.-1994.-V.17, N1. P.76-85.

163. Kulvinder S., Arneja J.S. Cellulase and protein praduction by Chaetomium cellulolyticum grown on rice straw // Agr. Res. J. Kerala.- 1993,- V.31, № 1.-P.91-95.

164. Laishram I., Ydava P. Lignin and nitrogen in the decomposition of leaft litter in a sub-tropical forest ecosystem at Shiroy hills in north-eastern India // Plant and Soil.- 1988,- №1,- P.59-64.

165. Linn I. Anhydrides ammonia application to forades// Forade and Grossland. Conf.- 1982,- P. 141-147.

166. Lobanok A.G., Babitskaya V.G. Fungal transformation of cereal straw and flax scutch // Bioconversion of plant raw material by microorganisms: VTT symp.- Espoo, 1988,- P. 151-184.

167. Madan P.S. The microbial conversion of different agricultural residues and its biological efficiency // Acta biotechnol., 1995,- V. 15, № 1.- P.131-135.

168. Mayer A.M., Staples R.C. Laccase: new functions for an oldenzyme // Phitochemistry.- 2002,- V.60.- P.551-565.

169. Mechra R.N., Meclira A.R. Lignosulphonates // Colourage.-1993.-V.40, №6.-P. 56-57.

170. Nicolini L., Hunolstein C., Carilli A. Solid-state fermentation of orange peel and grape stalks by Pleurotus ostreatus, Agrocyble aegerita and Armillaria mellea II Appl. Microbiol. And Biotechnol.- 1987,- V.26, №1,- P.95-98.

171. Olsen J. Effect of media extracellular amylase from the thermofilic fungus Thermomyces lanuginosusll Biotechnol. Lett.-1998.-Vol.8, №5.-P.545-547.

172. Otjen L., Blanchette R.A. A discussion of microstructural changes in wood during decomposition by white-rot Basidiomycetes II Can.J. Bot.- 1986.-V.64, № 5,- P.905-911.

173. Paszczynski S., Crawford D., Blanchette R. Delignification of wood chips and pulp by using natural and synthetic porphyrins: Model of fungal decay // Appl. And Environm. Microbiol.- 1988.- V.54, №1.- P.62-68.

174. Quimio T.H. Sustainable low techology mushroom cultivation for developing countries // Abstr. of the V International Mycological Congress. Vancouver, Canada. August, 1994,- P.175.

175. Rajarathnam S., Schashireka M.N., Bano Z. Biopotentialites of the Basidiomacromysetes II Adv. Appl. Microbiol.- 1992,- V.37.- P.233-236.

176. Reid I.D., Seifert K.A. Effect on an atmosphere of oxygen on growth, respiration and lignin degradation by white-rot fungi // Can. J. of Botany.-1982,- V. 60, №3,- P. 252-260.

177. Riuz L.M., Sanchex J.E., Calvo L.A. Cultivation of Lentinus edodes in tropical Mexico // Abstr. of the V International Mycological Congress. Vancouver, Canada. August, 1994,- P. 187.

178. Rodriguer A., Carnicero A., Perestelo F., fiiente G. Effect of Pénicillium chrisogeniim of lignin transformation// Appl. And Environ. Microbiol.-1994,- V.60, № 8,- P.2971-2976.

179. Ruel K., Josellau J.P. Involvement of an extracellular glucan sheath during degradation of Popidus wood by Phanerochaete chrysosporiiim II Appl. Envizon. Microbiol.- 1991.- V.57, №2,- P 374-384.

180. Sandhya S., Sharad J.R., Narsing P.M. Bioconversion to single cell protein: a potentional resource recovery from paper mill solid waste // J. Ferment. And Bioeng.- 1989,- V.67, № 6,- P.427-429.

181. Sarkar S., Martinez A.T., Martinez M.J. Biochemical and molecular characteristics of a manganese peroxidase isoenzyme from Pleurotiis astre<7^w.//Biochim.Biophys. Acta.-1997.-V. 1339(1).-P.23-30.

182. Singh A., Abidi A.B., Darmwal N.S. Evaluation of chemical pre-preatment for biodegradetion of agricultural lignocellulosic wastes by Aspergillus niger II J. Appl. Microbiol. And Biotechnol.- 1988,- V.4, №4,- P.473-479.

183. Smith R., Anderson J., Senior E. Bioprocessing of lignocellulose // Phil. Trans. Roy. Soc. London.- 1987,- V.321 A, №1561,- P.507-521.

184. Song H.-G. Biodégradation of aromatic hydrocarbons by several white-rot fungi // The Journal of Microbiology.- 1997,- Vol.35, №1,- P. 66-71.

185. Stalpers T/A/ Identification of wood inhabiting Aphyllophorus in pure culture // Studiesin Mycology.- 1978,- V.16.- P. 248.

186. Uma L., Kalaiselvi R., Subramanian G. Isolation of a lignolytic bacterium for the degradation and possible utilization of coiz waste // Bioteclinol. Lett.-1994,-V.16, №3.-P.303-308.

187. Viesturs U.E., Zeltina M.O., Rikmanis M.A. Submerged cultivation of mycelial fungi on pretreated straw // Bioconversion of plant raw materials by microorganisms: VVT symp.- Espoo, 1988,- P.118-131.

188. Wojtas-Wasilewska M., Trajanowski J. Studies on the decomposition of lignosulfonates by the fungi Pleurotus ostreatus and Trametes pubescens II Acta. Microbiol. Pol.- 1975,- V.7, № 2,- P.77-90.

189. Zadrazil E. Conversion of different plant waste into feed by Basidiomysetes II Eur. J.Appl. Microbiol. Biotechnol.- 1980,- V.9.- P.243-248.

190. Проведенный эксперимент показывает, что для засева растительных субстратов, с целью максимального обогащения их грибным белком, лучше использовать трехсуточный посевной материал.

191. Рис. 5.15. Выход белка P. tigfinus шт. 317 при культивировании на соломе (а) и гузапае (б), засеянных посевным материалом разного возраста

192. БИОДЕГРАДАЦИЯ ЛИГНОЦЕЛЛЮЛОЗНОГО КОМПОНЕНТА ПШЕНИЧНОЙ СОЛОМЫ ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ P. TIGRINUS ШТ. 317

193. Рис. 5.19. Потребление лигнина и целлюлозы Р. И^гтш при культивировании на соломе с добавлением дополнительных источников питания

194. Рис. I. Рост Р. íigrímis шт. 317 (а) и шт. 160 (б) при C:N 7:1 х 1000б

195. Рис. 2. Рост Р. шт. 317 на минеральной среде с фруктозой (а) иглюкозой (б) х 1000а

196. Рис. 3. Рост Р. И%гтий шт. 160 на минеральной среде с фруктозой (а) и с сахарозой (б) х 1000б

197. Рис, 5. Рост Р. tigrmus шт. 160 (а) и шт. 317 (б) на минеральной среде с нитратом натрия х 1000а