Молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.06, кандидат медицинских наук Боднев, Сергей Александрович

  • Боднев, Сергей Александрович
  • кандидат медицинских науккандидат медицинских наук
  • 2009, Кольцово
  • Специальность ВАК РФ03.00.06
  • Количество страниц 133
Боднев, Сергей Александрович. Молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска: дис. кандидат медицинских наук: 03.00.06 - Вирусология. Кольцово. 2009. 133 с.

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Боднев, Сергей Александрович

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Норовирусная инфекция.

1.1.1. История открытия норовирусов.

1.1.2. Патогенез норовирусиой инфекции.

1.1.3. Клиническая картина норовирусиой инфекции.

1.1.4. Осложнения норовирусиой инфекции.

1.1.5. Лечение норовирусиой инфекции.

1.2. Структурная организация норовирусов.

1.2.1. Морфология вирионов норовирусов.

1.2.2. Организация генома норовирусов.

1.2.3. Свойства и функции неструктурных белков норовирусов.

1.2.4. Структура и вариабельность главного белка капсида.

1.3. Классификация калицивирусов.

1.4. Эпидемиология норовирусиой инфекции.

1.4.1. Методы и подходы для детекции норовирусов.

1.4.2. Генотипирование норовирусов.

1.4.3. Преобладающие генетические варианты норовирусов.

1.4.4. Пути и механизмы передачи норовирусов.

1.4.5. Распространенность норовирусиой инфекции.

1.4.6. Вспышечная и спорадическая заболеваемость.

1.4.7. Норовирусы как антропозоонозная инфекция.

1.4.8. Сезонность норовирусиой инфекцин.

1.4.9. Возрастные особенности норовирусиой инфекции.

1.4.10. Исследование норовирусов в РФ.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1. Общая характеристика исследования.

2.2. Материалы.

2.3. Методы.

2.3.1 Формирование базы данных.

2.3.2. Забор материала.

2.3.3. Получение осветленного экстракта фекалий.

2.3.5. Синтез комплементарной ДНК.

2.3.7. Электрофоретический анализ образцов.

2.3.8. Элюция фрагментов ДНК из агарозного геля.

2.3.9. Определение нуклсотидных последовательностей.

2.3.10 Филогенетический анализ.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ.

3.1. Оценка встречаемости норовирусиой инфекции у детей в Новосибирске.

3.2. Норовирусная инфекция у детей раннего возраста Новосибирска с 2005 по 2008 ггбО

3.2.1. Организация исследования.

3.2.2. Значимость норовирусов в этиологической структуре ОКИ.

3.2.3 Встречаемость норовирусов в сочетании с другими патогенами.

3.2.4. Исследование сезонности норовирусиой инфекции.

3.2.5. Анализ возрастных особенностей норовирусиой инфекции.

3.2.6. Клинические особенности норовирусиой инфекции.

3.2.7 Генотипирование и филогенетический анализ изолятов норовирусов.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Вирусология», 03.00.06 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска»

Острые кишечные инфекции (ОКИ) являются одной из важных проблем современного здравоохранения во всем мире. В течение длительного времени возникновение кишечных инфекций связывали с употреблением загрязненной воды и продуктов питания, и ОКИ считались проблемой развивающихся стран, в которых источники водоснабжения и пищевые продукты могут стать причиной масштабных вспышек кишечных инфекций (Parashar U. D. et al., 2003; Steele A. D. et al., 2003; Bresee J. et al., 2004). Однако, несмотря на постоянное улучшение качества питьевой воды и продуктов питания, а также строгий санитарно-эпидемиологический контроль за объектами окружающей среды, и в экономически развитых странах проблема кишечных инфекций стоит достаточно остро (de Wit М.А. et al., 2007; Marvin H. et al., 2009). Как в России, так и в США случаи заболевания кишечными инфекциями занимают одно из ведущих мест среди инфекционных заболеваний, уступая по распространенности лишь инфекциям респираторного тракта.

ОКИ проявляются в виде острых гастроэнтеритов, основными симптомами которых, как правило, являются тошнота, рвота, диарея, сопровождающиеся обезвоживанием. Эти симптомы наиболее тяжело переносятся детьми раннего возраста, у которых вследствие незрелости системы гомеостаза наиболее часто возникают угрожающие жизни состояния. По данным ВОЗ, около 700 миллионов случаев ОКИ регистрируется в мире ежегодно у детей младше 5 лет. Смертность, ассоциированная с гастроэнтеритами, составляет 5-7 миллионов человек ежегодно.

В связи с развитием и усовершенствованием средств диагностики спектр известных патогенов - возбудителей ОКИ постоянно расширяется, и в настоящее время значительную часть из них составляют вирусные патогены: ротавирусы групп А, В, С, астровирусы серотипов 1-8, аденовирусы типов 40, 41, норовирусы и саповирусы, входящие в семейство калицивирусов, энтеровирусы и другие (Atmar R. L. et al., 2001; Maltezou H. С. et al., 2001; Koopmans M. et al., 2002; Koopmans M. et al., 2004; Carter M. J. et al., 2005). Наименее изученными из них являются калицивирусы. Это связано со значительными трудностями культивирования этих вирусов (Duizer Е. et al., 2004), а также с отсутствием адекватной модели заболевания на животных. Тем не менее, благодаря развитию и усовершенствованию молекулярно-биологических методов диагностики достигнуты значительные успехи в изучении патогенеза и эпидемиологии калицивирусной инфекции.

Семейство Caliciviridae состоит их четырех родов, патогенными для человека являются представители родов Norovirus и Sapovirus, при этом наиболее часто в клинических образцах от больных выявляются норовирусы. Их распространенность при спорадической заболеваемости составляет 10-15 % от всех случаев ОКИ (Buesa J. et al., 2002; Bon F. et al., 2005), однако норовирусы играют важную роль в возникновении вспышек этого заболевания. Так, 60-85 % вспышек гастроэнтеритов в США, Европе и Японии ассоциированы с норовирусами (Fankhauser R. L. et al., 2002; Lopman В. et al., 2003; de Wit M. A. et al., 2007). С 1997 no 2000 гг. из 233 вспышек кишечных инфекций, зарегистрированных в CDC (США, Атланта), в 86 % (201 вспышка) выявлялись норовирусы (Fankhauser R. L. et al., 2002). Описаны также вспышки ОКИ, вызванные и другими представителями семейства калицивирусов -саповирусами (Phan Т. G. et al., 2006).

В России показатели заболеваемости от ОКИ ниже, чем в развитых странах. Вероятно, это объясняется недостаточной диагностикой и регистрацией этой инфекции. По данным Федерального Центра Госсанэпиднадзора, в 2007-2008 гг. в РФ официально регистрировалось более 650 тыс. случаев ОКИ в год. При этом этиология кишечных заболеваний была установлена только у 28 % пациентов, из них более половины являлись детьми до 14 лет (http://www.fcgsen.ru). Санитарно-эпидемиологический контроль над норовирусной инфекцией вследствие ограниченности средств диагностики в России не проводится.

Среди существующих прямых методов выявления вирусных возбудителей ОКИ наиболее перспективным является подход с использованием полимеразной цепной реакции. Учитывая, что систематические исследования этиологической значимости норовирусов, вызывающих ОКИ, а также их генотипическая характеристика на территории Западной Сибири не проводились, целью данной работы являлась оценка этиологической значимости норовирусов первой и второй геногруппы у детей раннего возраста и исследование молекулярно-генетического разнообразия циркулирующих изолятов норовирусов в г. Новосибирске.

Цель работы - изучить особенности норовирусной инфекции у детей до 3-х лет, госпитализированных с диагнозом ОКИ, и исследовать молекулярно-генетическое разнообразие выявленных изолятов норовирусов.

Основные задачи исследования:

- оценить этиологическую значимость норовирусов I и II геногрупп в структуре ОКИ у детей до 3-х лет;

- исследовать сезонные особенности норовирусной инфекции и возрастное распределение больных этой инфекцией;

- провести анализ клинических особенностей норовирусной инфекции у детей раннего возраста;

- определить нуклеотидные последовательности кДНК региона О геномов выявленных норовирусов, соответствующих поверхностному субдомену Р2 белка капсида;

- провести филогенетический анализ полученных нуклеотидных и соответствующих аминокислотных последовательностей норовирусов второй геногруппы.

Научная новизна исследования. Впервые проведено многолетнее комплексное молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска. Показан вклад норовирусов в этиологическую структуру ОКИ, представлены данные о распространенности сочетанной инфекции норовирусно-вирусной и норовирусно-бактериальной этиологии.

Впервые проведено исследование генетического разнообразия изолятов норовирусов, выявленных в Новосибирске; продемонстрирована циркуляция норовирусов первой и второй геногрупп, установлено, что норовирусы первой геногруппы являются редкой этиологической причиной ОКИ у детей раннего возраста в Новосибирске. Оценена значимость различных генетических вариантов норовирусов второй геногруппы в структуре ОКИ у детей раннего возраста. Впервые определены и зарегистрированы в базе данных ОепВапк (ЪТСВ1, США) нуклеотидные последовательности региона Э геномов норовирусов, выявленных в Новосибирске.

Практическая значимость работы.

Проведенное исследование распространенности норовирусной инфекции показало значимость норовирусов в заболеваемости ОКИ и позволило определить этиологическую причину в случаях, раннее относившихся к кишечным инфекциям неустановленной этиологии (КИНЭ).

Мониторинг норовирусной инфекции в течение трех лет позволил выявить подъем заболеваемости ОКИ норовирусной этиологии с декабря 2006 г. по март 2007 г. и расшифровать этиологию заболевания более чем в 50% случаев госпитализаций с диагнозом ОКИ в этот период.

Результаты проведенных исследований могут быть использованы при разработке методических рекомендаций для практикующих врачей и эпидемиологов по контролю и профилактике норовирусной инфекции, а также внедрению современных методов диагностики ОКИ норовирусной этиологии.

Результаты изучения генетического спектра норовирусов второй геногруппы могут быть использованы при создании диагностических тест-систем для экспресс-диагностики этих патогенов, а также для разработки вакцинных препаратов.

V Положения, выносимые на защиту.

1. Частота встречаемости норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска, госпитализированных с диагнозом ОКИ, составила 17,3 %.

2. В 38,4 % образцов, содержащих норовирусы, одновременно регистрировалось присутствие других энтеропатогенов вирусной или бактериальной природы.

3. Зарегистрирован значительный подъем заболеваемости норовирусной инфекцией в январе-марте 2007 г., однако выраженной сезонности норовирусной инфекции в Новосибирске в 2005-2008 гг. выявлено не было.

4. Норовирусная инфекция в целом характеризовалась менее острым началом и более легким течением по сравнению с ротавирусной инфекцией.

5. Норовирусы первой геногруппы являлись редкой этиологической причиной острых кишечных инфекций у детей раннего возраста г. Новосибирска-1,8 %.

6. На территории Новосибирской области доминировали норовирусы второй геногруппы; преобладали изоляты 3-го и 4-го генотипов норовирусов этой геногруппы.

Апробация работы и публикации.

Результаты работы представлены на 2-х российских и 4-х международных конференциях: V Российская научно-практическая конференция «Генодиагностика инфекционных болезней», Новосибирск, 2005; III Российская научная конференция «Проблемы инфекционной патологии в регионах Сибири, Дальнего Востока и Крайнего Севера», Новосибирск, 2006; 7th Internaitonal Rotavirus Symposium, Lisbon, Portugal, 2006; 3rd International Conference «Basic Science for Medicine», Novosibirsk, Russia, 2007; 4th

Inernational Conference on Vaccines for Enteric Diseses - VED 2007, Lisbon, Portugal, 2007; 26th Annual Meeting of the European Society for Paediatric Infectious Diseases (ESPID), Graz, Austria, 2008. По материалам диссертации опубликованы пять статей.

Вклад автора

Диссертационная работа была выполнена в лаборатории разработки средств экстренной профилактики ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора в рамках выполнения проекта МНТЦ №2935.

Выделение препаратов РНК/ДНК и комплексная ПЦР-диагностика вирусных (ротавирусы, астровирусы) и бактериальных {Salmonella spp., Shigella spp., Campylobacter) патогенов проводилось автором совместно с Е.В. Жираковской, А.Ю. Тикуновым и Т.Э. Юн. ПЦР-диагностика норовирусной инфекции проводилась лично автором.

Бактериологический посев на Salmonella spp., Shigella spp. и условно-патогенную флору проводился сотрудниками микробиологической лаборатории МУЗ ДГКБ №3.

Эпидемиологический анализ норовирусной инфекции у детей раннего возраста, а также генотипирование выявленных изолятов норовирусов выполнено автором лично. Секвенирование фрагментов генов норовирусов проводилось автором совместно с к.б.н. Е.В. Жираковской. Филогенетический анализ генетической вариабельности изолятов норовирусов проводился автором лично.

Структура и объём диссертации.

Диссертация выполнена на 133 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, главы "Материалы и методы", главы "Результаты и обсуждение", заключения, выводов и списка литературы. Работа иллюстрирована 20 рисунками, включает 8 таблиц и 2 приложения. Библиография включает 260 работ: 11 - отечественных авторов и 249 -зарубежных.

Похожие диссертационные работы по специальности «Вирусология», 03.00.06 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Вирусология», Боднев, Сергей Александрович

выводы

1. Впервые показано, что в структуре острых кишечных инфекций у детей до трех лет, госпитализированных в специализированную клинику Новосибирска, норовирусы являлись второй по значимости этиологической причиной и были выявлены в 17,3% клинических образцов.

2. Норовирусная моноинфекция была выявлена в 63,1 % образцов, содержащих норовирусы, в 36,9 % образцов норовирусы были обнаружены совместно с другими патогенами: с бактериальными энтеропатогенами - в 7,1 % проб, с ротавирусами - в 18,8 % проб, с астровирусами - в 5,5 % проб, с несколькими патогенами одновременно - в 4,8 % проб.

3. В период с декабря 2006 г. по март 2007 г. норовирусы определялись более чем в половине исследованных проб, что превышало распространенность в этот период традиционно превалирующей ротавирусной инфекции; однако, выраженной сезонности за весь период исследования отмечено не было.

4. Наибольшее число случаев норовирусной инфекции было зафиксировано у детей в возрасте от 3 месяцев до полутора лет жизни; пик заболеваемости отмечался в возрасте 9-11 месяцев, когда норовирусы обнаруживались в 23,5 % проб.

5. Установлено, что у больных норовирусной инфекцией заболевание характеризуется менее острым началом и более легким течением, чем при ротавирусной инфекции.

6. Впервые показано генетическое различие циркулирующих изолятов норовирусов, выделенных от детей до трех лет с симптомами ОКИ: в период исследования в нашем регионе доминировали норовирусы геногруппы GII (91,5 %), представленные генотипами GII.3 и GII.4, причем большее распространение имел вариант GII.4.

7. Группирование норовирусов в кластеры зависело от времени выделения изолятов, наблюдалось изменение с течением времени генетической принадлежности преобладающих вариантов изолятов норовирусов.

БЛАГОДАРНОСТИ

Автор выражает глубокую признательность и благодарность научному руководителю, доктору биологических наук Тикуновой Нине Викторовне за помощь и поддержку в написании диссертации, а также рецензентам, доктору медицинских наук Малковой Елене Михайловне и кандидату биологических наук Петровой Ирине Дмитриевне за глубокий и всесторонний анализ диссертационного исследования и сделанные ими ценные замечания.

Автор выражает искреннюю благодарность коллегам Жираковской Елене Владимировне, Тикунову Артему Юрьевичу, Юн Татьяне Эверестовне, Денисовой Наталье Тимофеевне, Сафоновой Наталье Сергеевне за всестороннюю помощь в организации исследования и плодотворное сотрудничество, а также врачам МУЗ ДГКБ №3 Новосибирска Никифоровой Наталье Алексеевне, Корсаковой Татьяне Георгиевне и Клемешевой Вере Владимировне за помощь в организации данного исследования.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В нашем многолетнем исследовании впервые было показано, что норовирусы являются важной этиологической причиной спорадических случаев ОКИ у детей раннего возраста г. Новосибирска. Наибольшее распространение имели норовирусы второй геногруппы, доля которых составила 91,5 % от всех выявленных норовирусов. В целом, за весь период исследования норовирусы были обнаружены в 17,3 % проб (602/3496), в 10,9 % всех исследованных нами образцов фекалий норовирусы были выявлены как единственный патоген (381/3496). В 6,4 % (231/3496) проб, наряду с норовирусами, были обнаружены другие патогены вирусной или бактериальной природы. При этом наиболее часто наблюдались сочетанные пробы с ротавирусами (18,8 %), астровирусами (5,5 %), бактериальными энетропатогенами (7,1 %), а также сочетание двух и более возбудителей ОКИ (4 %). Норовирусные микст-инфекции выявлялись с различной частотой в различное время года с набольшим числом таких выявленных проб в холодные месяцы года.

В целом, для норовирусной инфекции не была характерна выраженная зимняя сезонность. Случаи норовирусной инфекции регистрировались в течение всего трехлетнего периода исследования, при этом в различные годы эпидемические показатели несколько различались. Однако в период с декабря 2006 г. по март 2007 г. норовирусы определялись более чем в половине исследованных проб, что оказалось выше, чем распространенность в этот период традиционно превалирующей ротавирусной инфекции.

Возрастными особенностями норовирусной инфекции являлась ее значительная распространенность среди детей в возрасте до полутора лет жизни, при этом пик заболеваемости у пациентов этой возрастной подгруппы отмечался в возрасте 9-11 месяцев, когда норовирусы обнаруживались в 23,5 % проб фекалий. Исследование также показало, что у детей до трех месяцев в группе сопоставления норовирусы встречались в меньшем количестве проб по сравнению с группой детей до 3-месяцев, госпитализированных с диагнозом кишечная инфекция, что может свидетельствовать о возможности бессимптомного протекания заболевания у детей данной возрастной группы и, возможно, у более старших.

Клиническая картина норовирусной ОКИ характеризовалась сочетанием гастроинтестинальных нарушений и интоксикационного синдрома. Однако, в целом, ОКИ норовирусной этиологии протекало в более легкой форме, чем ротавирусная инфекция. При этом для норовирусной инфекции было характерно более длительное сохранение рвоты и более частые нарушения системы ЖКТ в виде реактивного панкреатита. У части пациентов наблюдались катаральные явления, без сопутствующих клинических проявлений инфекции верхних дыхательных путей, что также было характерно и для ротавирусной инфекции.

Молекулярно-биологическое исследование выявленных изолятов норовирусов показало, что вся циркулирующая популяция разделяется на отдельные генотипы и группы внутри генотипов. Основное количество норовирусов относилось к генотипу 011.4, описанному ранее как источник масштабных вспышек кишечных инфекций во всем мире. Кроме того, в нашем регионе была зарегистрирована циркуляция генотипа вЮ. Проведенное исследование продемонстрировало изменение спектра генотипов циркулирующих изолятов норовирусов с течением времени.

Таким образом, в данном исследовании впервые была показана значимость норовирусов в структуре острых кишечных инфекций у детей раннего возраста г. Новосибирска и проведена молекулярно-генетическая характеризация циркулирующих вариантов этого возбудителя.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Боднев, Сергей Александрович, 2009 год

1. Васильев Б.Я., Васильева Р.И., Лобзин Ю.В. Острые кишечные заболевания : Ротавирусы и ротавирусная инфекция. // СПб.: Лань. 2000 -268 с.

2. Гудков В.Г., Коржев М.О., Виринская A.C. Современные проблемы инфекционной патологии человека. // Материалы II научно-практической конференции/ 2001. - С. 217-222.

3. Дудникова Э.В. Современные взгляды на кишечный дисбактериоз у детей. // Южно-Российский медицинский журнал. 2002. - №2. - С. 28-34.

4. Жираковская Е.В., Никифорова H.A., Корсакова Т.Г. Ротавирусная инфекция у детей раннего возраста в Новосибирске. Генотипирование циркулирующих изолятов. // Эпидемиология и инфекционные болезни. -2007.- № 3 С. 36-45.

5. Лагир Г.М., Горегляд Н.С., Булдык Е.А. Диагностика и лечение острых кишечных инфекций у детей в условиях поликлиники. // Методические рекомендации. 2000. - Москва: Мн.: МГМИ. - С. 41.

6. Мухина, A.A., Шипулин, Г.А., Боковой А.Г. Первый опыт изучения калицивирусной инфекции у детей в Москве. // Вопросы вирусологии. -2002.-№6-С. 28-34.

7. Пайков В.Л. Современные представления о кишечном дисбактериозе. // Сборник лекций и научных работ "Практические вопросы детской гастрорэнтерологии Санкт-Петербурга". С.-П. - 1999. - С. 133-138.

8. Подколзин А.Т., Фенске Е. Б., Абрамычева Н. Ю. Сезонность и возрастная структура заболеваемости острыми кишечными инфекциями на территории РФ. // Терапевтический архив. 2007. - Т. 79 - №11 - С. 10-16.

9. Тимченко В.М. Инфекционные болезни у детей : Учеб. для педиатр, фак. мед. вузов. // СПб.: СпецЛит 2001. - 559 с.

10. Учайкин В.Ф. Руководство по инфекционным болезням у детей : Учеб. пособие для студентов мед. вузов. // М.: ГЭОТАР Медицина 1998. - С. 540.

11. Шадрин С.А. Дисбактериоз кишечника у детей. // Методические рекомендации. Краснодар. - 1999 - С. 36.

12. Norovirus activity United States, 2002. - MMWR Morb Mortal Wkly Rep -2003.-V. 52 (3)-P. 41-5.

13. Norovirus activity-United States, 2006-2007. MMWR Morb Mortal Wkly Rep- 2007. V. 56 (33) - P. 842-6.

14. Adler J.L., Zickl R. // Winter vomiting disease. J Infect Dis - 1969. - V. 119 (6)-P. 668-73.

15. Ando Т., Noel J.S., Fankhauser R.L. // Genetic classification of "Norwalk-like viruses. J Infect Dis - 2000. - V. 181 Suppl 2- P. S336-48.

16. Atmar R.L., Estes M.K. // Diagnosis of noncultivatable gastroenteritis viruses, the human caliciviruses. Clin Microbiol Rev - 2001. - V. 14 (1) - P. 15-37.

17. Batten C.A., Clarke I.N., Kempster S.L., Oliver S.L., Bridger J.C., Lambden P.R. // Characterization of a cross-reactive linear epitope in human genogroup Iand bovine genogroup III norovirus capsid proteins. Virology - 2006. - V. 356 (1-2)-P. 179-87.

18. Bereciartu A., Bok K., Gomez J. // Identification of viral agents causing gastroenteritis among children in Buenos Aires, Argentina. J Clin Virol - 2002.- V. 25 (2)-P. 197-203.

19. Berg D.E., Kohn M.A., Farley T.A., McFarland L.M. // Multi-state outbreaks of acute gastroenteritis traced to fecal-contaminated oysters harvested in Louisiana.- J Infect Dis 2000. - V. 181 Suppl 2- P. S381-6.

20. Bertolotti-Ciarlet A., White L.J., Chen R., Prasad B.V., Estes M.K. // Structural requirements for the assembly of Norwalk virus-like particles. J Virol - 2002. -V. 76 (8) - P. 4044-55.

21. Blacklow N., Dolin R., Fedson D. // Acute infectious nonbacterial gastroenteritis: etiology and pathogenesis. Ann Intern Med - 1972. - V. 76 (6) -P. 993-1008.

22. Boniotti B., Wirblich C., Sibilia M., Meyers G., Thiel H.J., Rossi C. // Identification and characterization of a 3C-like protease from rabbit hemorrhagic disease virus, a calicivirus. J Virol - 1994. - V. 68 (10) - P. 6487-95.

23. Bridger J.C., Hall G.A., Brown J.F. // Characterization of a calici-like virus (Newbury agent) found in association with astrovirus in bovine diarrhea. Infect Immun - 1984. - V. 43 (1) - P. 133-8.

24. Bull R.A., Tu E.T., Mclver C.J., Rawlinson W.D., White P.A. // Emergence of a new norovirus genotype II.4 variant associated with global outbreaks of gastroenteritis. J Clin Microbiol - 2006. - V. 44 (2) - P. 327-33.

25. Burroughs J.N., Brown F. // Presence of a covalently linked protein on calicivirus RNA. J Gen Virol - 1978. - V. 41 (2) - P. 443-6.

26. Butot S., Putallaz T., Sanchez G. // Procedure for rapid concentration and detection of enteric viruses from berries and vegetables. Appl Environ Microbiol - 2007. - V. 73 (1) - P. 186-92.

27. Canizares M.C., Nicholson L., Lomonossoff G.P. // Use of viral vectors for vaccine production in plants. Immunol Cell Biol - 2005. - V. 83 (3) - P. 263-70.

28. Carter MJ. // Enterically infecting viruses: pathogenicity, transmission and significance for food and waterborne infection. J Appl Microbiol - 2005. - V. 98 (6)-P. 1354-80.

29. Caul E.O. // Small round structured viruses: airborne transmission and hospital control. Lancet - 1994. - V. 343 (8908) - P. 1240-2.

30. Caul E.O. // Viral gastroenteritis: small round structured viruses, caliciviruses and astroviruses. Part I. The clinical and diagnostic perspective. J Clin Pathol -1996.- V. 49 (11)-P. 874-80.

31. Chadwick P.R., McCann R. // Transmission of a small round structured virus by vomiting during a hospital outbreak of gastroenteritis. J Hosp Infect - 1994. -V. 26 (4)-P. 251-9.

32. Chakravarty S., Hutson A.M., Estes M.K., Prasad B.V. // Evolutionary trace residues in noroviruses: importance in receptor binding, antigenicity, virion assembly, and strain diversity. J Virol - 2005. - V. 79 (1) - P. 554-68.

33. Clarke I.N., Lambden P.R. // The molecular biology of caliciviruses. J Gen Virol - 1997. - V. 78 ( Pt 2)- P. 291-301.

34. Curtis V. // Talking dirty: how to save a million lives. Int J Environ Health Res - 2003. - V. 13 Suppl 1- P. S73-9.

35. Daughenbaugh K.F., Fraser C.S., Hershey J.W., Hardy M.E. // The genome-linked protein VPg of the Norwalk virus binds eIF3, suggesting its role in translation initiation complex recruitment. Embo J - 2003. - V. 22 (11) - P. 2852-9.

36. Dedman D., Laurichesse H., Caul E.O., Wall P.G. // Surveillance of small round structured virus (SRSV) infection in England and Wales, 1990-5. Epidemiol Infect - 1998. - V. 121 (1) - P. 139-49.

37. Dey S.K., Nguyen T.A., Phan T.G., Nishio O., Salim A.F., Rahman M., Yagyu F., Okitsu S., Ushijima H. // Molecular and epidemiological trend of norovirus associated gastroenteritis in Dhaka City, Bangladesh. J Clin Virol - 2007. - V. 40(3)-P. 218-23.

38. Dingle K.E. // Mutation in a Lordsdale norovirus epidemic strain as a potential indicator of transmission routes. J Clin Microbiol - 2004. - V. 42(9) - P.3950-7.

39. Dolin R., Blacklow N.R., DuPont H., Buscho R.F., Wyatt R.G., Kasel J.A., Hornick R., Chanock R.M. // Biological properties of Norwalk agent of acute infectious nonbacterial gastroenteritis. Proc Soc Exp Biol Med - 1972. - V. 140 (2) - P. 578-83.

40. Doultree J.C., Druce J.D., Birch C.J., Bowden D.S., Marshall J.A. // Inactivation of feline calicivirus, a Norwalk virus surrogate. J Hosp Infect - 1999. - V. 41 (1)-P. 51-7.

41. Duizer E., Schwab K.J., Neill F.H., Atmar R.L., Koopmans M.P., Estes M.K. // Laboratory efforts to cultivate noroviruses. J Gen Virol - 2004. - V. 85 (Pt 1) -P. 79-87.

42. Ehresmann D.W., Schaffer F.L. // RNA synthesized in calicivirus-infected cells is atypical of picornaviruses. J Virol - 1977. - V. 22 (2) - P. 572-6.

43. Estes M.K., Ball J.M., Guerrero R.A., Opekun A.R., Gilger M.A., Pacheco S.S., Graham D.Y. // Norwalk virus vaccines: challenges and progress. J Infect Dis -2000. - V. 181 Suppl 2- P. S367-73.

44. Ettayebi K., Hardy M.E. // Norwalk virus nonstructural protein p48 forms a complex with the SNARE regulator VAP-A and prevents cell surface expression of vesicular stomatitis vims G protein. J Virol - 2003. - V. 7 (21) - P. 11790-7.

45. Evans H.S., Madden P., Douglas C., Adak G.K., O'Brien S.J., Djuretic T., Wall P.G., Stanwell-Smith R. // General outbreaks of infectious intestinal disease in England and Wales: 1995 and 1996. Commun Dis Public Health - 1998. - V. 13.-P. 165-71.

46. Fankhauser R.L., Noel J.S., Monroe S.S., Ando T., Glass R.I. // Molecular epidemiology of "Norwalk-like viruses" in outbreaks of gastroenteritis in the United States. J Infect Dis - 1998. - V. 178 (6) - P. 1571-8.

47. Foley B., O'Mahony J., Morgan S.M., Hill C., Morgan J.G. // Detection of sporadic cases of Norwalk-like virus (NLV) and astrovirus infection in a single Irish hospital from 1996 to 1998. J Clin Virol - 2000. - V. 17 (2) - P. 109-17.

48. Fukuda S., Talcao S., Kuwayama M., Shimazu Y., Miyazaki K. // Rapid detection of norovirus from fecal specimens by real-time reverse transcriptionloop-mediated isothermal amplification assay. J Clin Microbiol - 2006. - V. 444.-P. 1376-81.

49. Gehrke C., Steinmann J., Goroncy-Bermes P. // Inactivation of feline calicivirus, a surrogate of norovirus (formerly Norwalk-like viruses), by different types of alcohol in vitro and in vivo. J Hosp Infect - 2004. - V. 56 (1) - P. 49-55.

50. Glass P.J., White L.J., Ball J.M., Leparc-Goffart I., Hardy M.E., Estes M.K. // Norwalk virus open reading frame 3 encodes a minor structural protein. J Virol - 2000. - V. 74 (14) - P. 6581-91.

51. Glass R.I., Bresee J., Jiang B., Gentsch J., Ando T., Fankhauser R., Noel J., Parashar U., Rosen B., Monroe S.S. // Gastroenteritis viruses: an overview. -Novartis Found Symp 2001. - V. 238 - P. 5-19; discussion 19-25.

52. Gonin P., Couillard M., d'Halewyn M.A. // Genetic diversity and molecular epidemiology of Norwalk-like viruses. J Infect Dis - 2000. - V. 182 (3) - P. 691-7.

53. Gray J J., Green J., Cunliffe C., Gallimore C., Lee J.V., Neal K., Brown D.W. // Mixed genogroup SRSV infections among a party of canoeists exposed to contaminated recreational water. J Med Virol - 1997. - V. 52 (4) - P. 425-9.

54. Green J., Gallimore C.I., Norcott J.P., Lewis D., Brown D.W. // Broadly reactive reverse transcriptase polymerase chain reaction for the diagnosis of SRSV-associated gastroenteritis. J Med Virol - 1995. - V. 47 (4) - P. 392-8.

55. Green J., Norcott J.P., Lewis D., Arnold C., Brown D.W. // Norwalk-like viruses: demonstration of genomic diversity by polymerase chain reaction. J Clin Microbiol - 1993. - V. 31 (11) - P. 3007-12.

56. Green J., Vinje J., Gallimore C.I., Koopmans M., Hale A., Brown D.W., Clegg J.C., Chamberlain J. // Capsid protein diversity among Norwalk-like viruses. -Virus Genes 2000. - V. 20 (3) - P. 227-36.

57. Green K.Y., Ando T., Balayan M.S., Berke T., Clarke I.N., Estes M.K., Matson D.O., Nakata S., Neill J.D., Studdert M.J., Thiel HJ. // Taxonomy of the caliciviruses. J Infect Dis - 2000. - V. 181 Suppl 2- P. S322-30.

58. Greenberg H.B., Valdesuso J.R., Kalica A.R., Wyatt R.G., McAuliffe V.J., Kapikian A.Z., Chanock R.M. // Proteins of Norwalk virus. J Virol - 1981. -V. 37 (3) - P. 994-9.

59. Guntapong R., Hansman G.S., Oka T., Ogawa S., Kageyama T., Pongsuwanna Y., Katayama K. // Norovirus and sapovirus infections in Thailand. Jpn J Infect Dis - 2004. - V. 57 (6) - P. 276-8.

60. Hafliger D., Hubner P., Luthy J. // Outbreak of viral gastroenteritis due to sewage-contaminated drinking water. Int J Food Microbiol - 2000. - V. 54 (1-2)-P. 123-6.

61. Hale A., Mattick K., Lewis D., Estes M., Jiang X., Green J., Eglin R., Brown D. // Distinct epidemiological patterns of Norwalk-like virus infection. J Med Virol - 2000. - V. 62 (1) - P. 99-103.

62. Hale A.D., Tanaka T.N., Kitamoto N., Ciarlet M., Jiang X., Takeda N., Brown D.W., Estes M.K. // Identification of an epitope common to genogroup 1 "norwalk-like viruses". J Clin Microbiol - 2000. - V. 38 (4) - P. 1656-60.

63. Hardy M.E. // Noro virus protein structure and function. FEMS Microbiol Lett -2005.-V. 253 (1)-P. 1-8.

64. Hardy M.E., Kramer S.F., Treanor J.J., Estes M.K. // Human calicivirus genogroup II capsid sequence diversity revealed by analyses of the prototype Snow Mountain agent. Arch Virol - 1997. - V. 142 (7) - P. 1469-79.

65. Hardy M.E., Tanaka T.N., Kitamoto N., White L.J., Ball J.M., Jiang X., Estes M.K. // Antigenic mapping of the recombinant Norwalk virus capsid protein using monoclonal antibodies. Virology - 1996. - V. 217 (1) - P. 252-61.

66. Hardy M.E., White L.J., Ball J.M., Estes M.K. // Specific proteolytic cleavage of recombinant Norwalk virus capsid protein. J Virol - 1995. - V. 69 (3) - P. 1693-8.

67. Hedberg C.W., Osterholm M.T. // Outbreaks of food-borne and waterborne viral gastroenteritis. Clin Microbiol Rev - 1993. - V. 6 (3) - P. 199-210.

68. Hedlund K.O., Rubilar-Abreu E., Svensson L. // Epidemiology of calicivirus infections in Sweden, 1994-1998. J Infect Dis - 2000. - V. 181 Suppl 2- P. S275-80.

69. Herrmann J.E., Nowak N.A., Blacklow N.R. // Detection of Norwalk virus in stools by enzyme immunoassay. J Med Virol - 1985. - V. 17 (2) - P. 127-33.

70. Hoorfar J., Malorny B., Abdulmawjood A., Cook N., Wagner M., Fach P. // Practical considerations in design of internal amplification controls for diagnostic PCR assays. J Clin Microbiol - 2004. - V. 42 (5) - P. 1863-8.

71. Hudson J.B., Sharma M., Petric M. // Inactivation of Norovirus by ozone gas in conditions relevant to healthcare. J Hosp Infect - 2007. - V. 66 (1) - P. 40-5.

72. Hutson A.M., Atmar R.L., Estes M.K. // Norovirus disease: changing epidemiology and host susceptibility factors. Trends Microbiol - 2004. - V. 12 (6) - P. 279-87.

73. Hutson A.M., Atmar R.L., Graham D.Y., Estes M.K. // Norwalk virus infection and disease is associated with ABO histo-blood group type. J Infect Dis - 2002. -V. 185 (9)-P. 1335-7.

74. Hutson A.M., Atmar R.L., Marcus D.M., Estes M.K. // Norwalk virus-like particle hemagglutination by binding to h histo-blood group antigens. J Virol -2003.-V. 77 (1)-P. 405-15.

75. Ike A.C., Brockmann S.O., Hartelt K., Marschang R.E., Contzen M., Oehme R.M. // Molecular epidemiology of norovirus in outbreaks of gastroenteritis in southwest Germany from 2001 to 2004. J Clin Microbiol - 2006. - V. 44 (4) -P. 1262-7.

76. Isakbaeva E.T., Widdowson M.A., Beard R.S., Bulens S.N., Mullins J., Monroe S.S., Bresee J., Sassano P., Cramer E.H., Glass R.I. // Norovirus transmission on cruise ship. Emerg Infect Dis - 2005. - V. 11 (1) - P. 154-8.

77. Jiang X., Matson D.O., Ruiz-Palacios G.M., Hu J., Treanor J., Pickering L.K. // Expression, self-assembly, and antigenicity of a snow mountain agent-like calicivirus capsid protein. J Clin Microbiol - 1995. - V. 33 (6) - P. 1452-5.

78. Jiang X., Wang J., Graham D.Y., Estes M.K. // Detection of Norwalk virus in stool by polymerase chain reaction. J Clin Microbiol - 1992. - V. 30 (10) - P. 2529-34.

79. Jiang X., Wang M., Graham D.Y., Estes M.K. // Expression, self-assembly, and antigenicity of the Norwalk virus capsid protein. J Virol - 1992. - V. 66 (11) -P. 6527-32.

80. Kanerva M., Maunula L., Lappalainen M., Mannonen L., von Bonsdorff C.H., Anttila V.J. // Prolonged norovirus outbreak in a Finnish tertiary care hospital caused by GII.4-2006b subvariants. J Hosp Infect - 2009. - V. 71 (3) - P. 20613.

81. Kapikian A.Z. // Overview of viral gastroenteritis. Arch Virol Suppl - 1996. -V. 12-P. 7-19.

82. Kapikian A.Z., Wyatt R.G., Dolin R., Thornhill T.S., Kalica A.R., Chanock R.M. // Visualization by immune electron microscopy of a 27-nm particle associated with acute infectious nonbacterial gastroenteritis. J Virol - 1972. -V. 10 (5)-P. 1075-81.

83. Kaplan J.E., Feldman R., Campbell D.S., Lookabaugh C., Gary G.W. // The frequency of a Norwalk-like pattern of illness in outbreaks of acute gastroenteritis. Am J Public Health - 1982. - V. 72 (12) - P. 1329-32.

84. Karst S.M., Wobus C.E., Lay M., Davidson J., Virgin H.W.t. // STAT1-dependent innate immunity to a Norwalk-like virus. Science - 2003. - V.299 (5612)-P. 1575-8.

85. Kele B., Abrok M.P., Deak J. // Sporadic norovirus infections among hospitalized and non-hospitalized 0-3-year-old infants. Scand J Infect Dis -2009.- V. 41 (1)-P. 67-9.

86. Kim H.Y., Kwak I.S., Hwang I.G., Ko G. // Optimization of methods for detecting norovirus on various fruit. J Virol Methods - 2008. - V. 153 (2) - P. 104-10.

87. Kirkwood C.D., Bishop R.F. // Molecular detection of human calicivirus in young children hospitalized with acute gastroenteritis in Melbourne, Australia, during 1999. J Clin Microbiol - 2001. - V. 39 (7) - P. 2722-4.

88. Kojima S., Kageyama T., Fukushi S., Hoshino F.B., Shinohara M., Uchida K., Natori K., Takeda N., Katayama K. // Genogroup-specific PCR primers for detection of Norwalk-like viruses. J Virol Methods - 2002. - V. 100 (1-2) - P. 107-14.

89. Koonin E.V., Dolja V.V. // Evolution and taxonomy of positive-strand RNA viruses: implications of comparative analysis of amino acid sequences. Crit Rev Biochem Mol Biol - 1993. - V. 28 (5) - P. 375-430.

90. Koopmans M., Duizer E. // Foodborne viruses: an emerging problem. Int J Food Microbiol - 2004. - V. 90 (1) - P. 23-41.

91. Koopmans M., Vennema H., Heersma H., van Strien E., van Duynhoven Y., Brown D., Reacher M., Lopman B. // Early identification of common-source foodborne virus outbreaks in Europe. Emerg Infect Dis - 2003. - V.9 (9) - P. 1136-42.

92. Koopmans M., Vinje J., Duizer E., de Wit M., van Duijnhoven Y. // Molecular epidemiology of human enteric caliciviruses in The Netherlands. Novartis Found Symp - 2001. - V.238 - P. 197-214; discussion 214-8.

93. Koopmans M., von Bonsdorff C.H., Vinje J., de Medici D., Monroe S. // Foodborne viruses. FEMS Microbiol Rev - 2002. - V. 26 (2) - P. 187-205.

94. Kostela J., Ayers M., Nishikawa J., Mclntyre L., Petric M., Tellier R. // Amplification by long RT-PCR of near full-length norovirus genomes. J Virol Methods - 2008. - V. 149 (2) - P. 226-30.

95. Kuhn R.J., Tada H., Ypma-Wong M.F., Semler B.L., Wimmer E. // Mutational analysis of the genome-linked protein VPg of poliovirus. J Virol - 1988. - V. 62 (11)-P. 4207-15.

96. Lambden P.R., Caul E.O., Ashley C.R., Clarke I.N. // Sequence and genome organization of a human small round-structured (Norwalk-like) virus. Science -1993. - V. 259 (5094) - P. 516-9.

97. Lamothe G.T., Putallaz T., Joosten H., Marugg J.D. // Reverse transcription-PCR analysis of bottled and natural mineral waters for the presence of noroviruses. Appl Environ Microbiol - 2003. - V.69 (11) - P. 6541-9.

98. Le Guyader F.S., Mittelholzer C., Haugarreau L., Hedlund K.O., Alsterlund R., Pommepuy M., Svensson L. // Detection of noroviruses in raspberries associated with a gastroenteritis outbreak. Int J Food Microbiol - 2004. - V. 97 (2) - P. 179-86.

99. Le Pendu J., Ruvoen-Clouet N., Kindberg E., Svensson L. // Mendelian resistance to human norovirus infections. Semin Immunol - 2006. - V. 18 (6) -P. 375-86.

100. LeBaron C.W., Furutan N.P., Lew J.F., Allen J.R., Gouvea V., Moe C., Monroe S.S. // Viral agents of gastroenteritis. Public health importance and outbreak management. MMWR Recomm Rep - 1990. - V. 39 (RR-5) - P. 1-24.

101. Lewis D. // Norwalk agent and other small-round structured viruses in the U.K. -J Infect -1991. V. 23 (2) - P. 220-2.

102. Lindesmith L., Moe C., Marionneau S., Ruvoen N., Jiang X., Lindblad L., Stewart P., LePendu J., Baric R. // Human susceptibility and resistance to Norwalk virus infection. Nat Med - 2003. - V. 9 (5) - P. 548-53.

103. Liu B.L., Lambden P.R., Gunther H., Otto P., Elschner M., Clarke I.N. // Molecular characterization of a bovine enteric calicivirus: relationship to the Norwalk-like viruses. J Virol - 1999. - V. 73 (1) - P. 819-25.

104. Lochridge V.P., Jutila K.L., Graff J.W., Hardy M.E. // Epitopes in the P2 domain of norovirus VP1 recognized by monoclonal antibodies that block cell interactions. J Gen Virol - 2005. - V. 86 (Pt 10) - P. 2799-806.

105. Lodder W.J., Vinje J., van De Heide R., de Roda Husman A.M., Leenen E.J., Koopmans M.P. // Molecular detection of Norwalk-like caliciviruses in sewage. Appl Environ Microbiol - 1999. - V. 65 (12) - P. 5624-7.

106. Logan C., O'Leary J.J., O'Sullivan N. // Real-time reverse transcription PCR detection of norovirus, sapo virus and astro virus as causative agents of acute viral gastroenteritis. J Virol Methods - 2007. - V. 146 (1-2) - P. 36-44.

107. Lopman B.A., Adalc G.K., Reacher M.H., Brown D.W. // Two epidemiologic patterns of norovirus outbreaks: surveillance in England and wales, 1992-2000. -Emerg Infect Dis 2003. - V. 9 (1) - P. 71-7.

108. Lopman B.A., Reacher M.H., Van Duijnhoven Y., Hanon F.X., Brown D., Koopmans M. // Viral gastroenteritis outbreaks in Europe, 1995-2000. Emerg Infect Dis - 2003. - V. 9 (1) - P. 90-6.

109. Machin A., Martin Alonso J.M., Parra F. // Identification of the amino acid residue involved in rabbit hemorrhagic disease virus VPg uridylylation. J Biol Chem - 2001. - V. 276 (30) - P. 27787-92.

110. Maltezou H.C., Zafiropoulou A., Mavrikou M., Bozavoutoglou E., Liapi G., Foustoukou M., Kafetzis D.A. // Acute diarrhoea in children treated in an outpatient setting in Athens, Greece. J Infect - 2001. - V. 43 (2) - P. 122-7.

111. Maniloff J. // Identification and classification of viruses that have not been propagated. Arch Virol - 1995. - V. 140 (8) - P. 1515-20.

112. Mao Y., Zhu C., Boedeker E.C. // Foodborne enteric infections. Curr Opin Gastroenterol - 2003. - V. 19 (1) - P. 11-22.

113. Marcos L.A., DuPont H.L. // Advances in defining etiology and new therapeutic approaches in acute diarrhea. J Infect - 2007. - V. 55 (5) - P. 385-93.

114. Marie-Cardine A., Gourlain K., Mouterde O., Castignolles N., Hellot M.F., Mallet E., Buffet-Janvresse C. // Epidemiology of acute viral gastroenteritis in children hospitalized in Rouen, France. Clin Infect Dis - 2002. - V. 34 (9) - P. 1170-8.

115. Marshall J.A., Dimitriadis A., Wright P.J. // Molecular and epidemiological features of norovirus-associated gastroenteritis outbreaks in Victoria, Australia in 2001. J Med Virol - 2005. - V. 75 (2) - P. 321-31.

116. Martin Alonso J.M., Casais R., Boga J.A., Parra F. // Processing of rabbit hemorrhagic disease virus polyprotein. J Virol - 1996. - V. 70 (2) - P. 1261-5.

117. Marvin H.J.P., Kleter, G.A., Prandini, A., Dekkers, S., Bolton D.J. // Early identification systems for emerging foodborne hazards. Food and Chemical Toxicology - 2009. - V. 47 (5) - P. 915-926.

118. Maunula L., Von Bonsdorff C.H. // Norovirus genotypes causing gastroenteritis outbreaks in Finland 1998-2002. J Clin Virol - 2005. - V. 34 (3) - P. 186-94.

119. Mead P.S., Slutsker L., Dietz V., McCaig L.F., Bresee J.S., Shapiro C., Griffin P.M., Tauxe R.V. // Food-related illness and death in the United States. Emerg Infect Dis - 1999. - V. 5 (5) - P. 607-25.

120. Meeroff J.C., Schreiber D.S., Trier J.S., Blacklow N.R. // Abnormal gastric motor function in viral gastroenteritis. Ann Intern Med - 1980. - V. 92 (3) - P. 370-3.

121. Mohamed N., Belak S., Hedlund K.O., Blomberg J. // Experience from the development of a diagnostic single tube real-time PCR for human caliciviruses, Norovirus genogroups I and II. J Virol Methods - 2006. - V. 132 (1-2) - P. 6976.

122. Moreno-Espinosa S., Farkas T., Jiang X. // Human caliciviruses and pediatric gastroenteritis. Semin Pediatr Infect Dis - 2004. - V. 15 (4) - P. 237-45.

123. Mounts A.W., Ando T., Koopmans M., Bresee J.S., Noel J., Glass R.I. // Cold weather seasonality of gastroenteritis associated with Norwalk-like viruses. J Infect Dis - 2000. - V. 181 Suppl 2- P. S284-7.

124. Mulholland E.K. // Global control of rotavirus disease. Adv Exp Med Biol -2004.- V. 549-P. 161-8.

125. Murray C.J., Lopez A.D. // Mortality by cause for eight regions of the world: Global Burden of Disease Study. Lancet - 1997. - V. 349 (9061) - P. 1269-76.

126. Nayak A., Goodfellow I.G., Belsham G.J. // Factors required for the Uridylylation of the foot-and-mouth disease virus 3B1, 3B2, and 3B3 peptides by the RNA-dependent RNA polymerase (3Dpol) in vitro. J Virol - 2005. - V. 79 (12) - P. 7698-706.

127. Neill J.D. // Nucleotide sequence of a region of the feline calicivirus genome which encodes picornavirus-like RNA-dependent RNA polymerase, cysteine protease and 2C polypeptides. Virus Res - 1990. - V.17 (3) - P. 145-60.

128. Neill J.D., Mengeling W.L. // Further characterization of the virus-specific RNAs in feline calicivirus infected cells. Virus Res - 1988. - V. 11 (1) - P. 5972.

129. Noel J.S., Fankhauser R.L., Ando T., Monroe S.S., Glass R.I. // Identification of a distinct common strain of "Norwalk-like viruses" having a global distribution. J Infect Dis - 1999. - V. 179 (6) - P. 1334-44.

130. Okada M., Ogawa T., Kaiho I., Shinozaki K. // Genetic analysis of noroviruses in Chiba Prefecture, Japan, between 1999 and 2004. J Clin Microbiol - 2005. -V. 43 (9)-P. 4391-401.

131. Oliver S.L., Asobayire E., Dastjerdi A.M., Bridger J.C. // Genomic characterization of the unclassified bovine enteric virus Newbury agent-1 (Newbury 1) endorses a new genus in the family Caliciviridae. Virology - 2006. - V. 350 (1)-P. 240-50.

132. Pang X.L., Honma S., Nakata S., Vesikari T. // Human caliciviruses in acute gastroenteritis of young children in the community. J Infect Dis - 2000. - V. 181 Suppl 2- P. S288-94.

133. Pang X.L., Joensuu J., Vesikari T. // Human calicivirus-associated sporadic gastroenteritis in Finnish children less than two years of age followed prospectively during a rotavirus vaccine trial. Pediatr Infect Dis J - 1999. - V. 18 (5)-P. 420-6.

134. Pang X.L., Preiksaitis J.K., Lee B. // Multiplex real time RT-PCR for the detection and quantitation of norovirus genogroups I and II in patients with acute gastroenteritis. J Clin Virol - 2005. - V. 33 (2) - P. 168-71.

135. Papaventsis D.C., Dove W., Cunliffe N.A., Nakagomi O., Combe P., Grosjean P., Hart C.A. // Norovirus infection in children with acute gastroenteritis, Madagascar, 2004-2005. Emerg Infect Dis - 2007. - V. 13 (6) - P. 908-11.

136. Parashar U.D., Hummelman E.G., Bresee J.S., Miller M.A., Glass R.I. // Global illness and deaths caused by rotavirus disease in children. Emerg Infect Dis -2003. - V. 9 (5) - P. 565-72.

137. Park S.I., Jeong C., Kim H.H., Park S.H., Park S.J., Hyun B.H., Yang D.K., Kim S.K., Kang M.I., Cho K.O. // Molecular epidemiology of bovine noroviruses in South Korea. Vet Microbiol - 2007. - V. 124 (1-2) - P. 125-33.

138. Park Y., Cho Y.H., Jee Y., Ko G. // Immunomagnetic separation combined with real-time reverse transcriptase PCR assays for detection of norovirus in contaminated food. Appl Environ Microbiol - 2008. - V. 74 (13) - P. 4226-30.

139. Parker S., Cubitt D., Jiang J.X., Estes M. // Efficacy of a recombinant Norwalk virus protein enzyme immunoassay for the diagnosis of infections with Norwalk virus and other human "candidate" caliciviruses. J Med Virol - 1993. - V. 41 (3)-P. 179-84.

140. Paul A.V., Peters J., Mugavero J., Yin J., van Boom J.H., Wimmer E. // Biochemical and genetic studies of the VPg uridylylation reaction catalyzed by the RNA polymerase of poliovirus. J Virol - 2003. - V. 77 (2) - P. 891-904.

141. Pfister T., Wimmer E. // Polypeptide p41 of a Norwalk-like virus is a nucleic acid-independent nucleoside triphosphatase. J Virol - 2001. - V. 75 (4) - P. 1611-9.

142. Phan T.G., Kaneshi K., Ueda Y., Nakaya S., Nishimura S., Yamamoto A., Sugita K., Takanashi S., Okitsu S., Ushijima H. // Genetic heterogeneity, evolution, and recombination in noroviruses. J Med Virol - 2007. - V. 79 (9) -P. 1388-400.

143. Phan T.G., Trinh Q.D., Yagyu F., Sugita K., Okitsu S., Muller W.E., Ushijima H. // Outbreak of sapovirus infection among infants and children with acute gastroenteritis in Osaka City, Japan during 2004-2005. J Med Virol - 2006. -V. 78 (6) - P. 839-46.

144. Phan T.G., Yagyu F., Kozlov V., Kozlov A., Okitsu S., Muller W.E., Ushijima H. // Viral gastroenteritis and genetic characterization of recombinant norovirus circulating in Eastern Russia. Clin Lab - 2006. - V. 52 (5-6) - P. 247-53.

145. Prasad B.V., Hardy M.E., Dokland T., Bella J., Rossmann M.G., Estes M.K. // X-ray crystallographic structure of the Norwalk virus capsid. Science - 1999. -V. 286 (5438)-P. 287-90.

146. Prasad B.V., Rothnagel R., Jiang X., Estes M.K. // Three-dimensional structure of baculovirus-expressed Norwalk virus capsids. J Virol - 1994. - V. 68 (8) -P. 5117-25.

147. Pringle C.R. // The universal system of virus taxonomy of the International Committee on Virus Taxonomy (ICTV), including new proposals ratified since publication of the Sixth ICTV Report in 1995. Arch Virol - 1998. - V. 143 (1) -P. 203-10.

148. Qiao H., Nilsson M., Abreu E.R., Hedlund K.O., Johansen K., Zaori G., Svensson L. // Viral diarrhea in children in Beijing, China. J Med Virol - 1999.- V. 57 (4) P. 390-6.

149. Reuter G., Biro H., Szucs G. // Enteric caliciviruses in domestic pigs in Hungary.- Arch Virol 2007. - V. 152 (3) - P. 611-4.

150. Reuter G., Pankovics P., Szucs G. // Genetic drift of norovirus genotype GII-4 in seven consecutive epidemic seasons in Hungary. J Clin Virol - 2008. - V. 42 (2)-P. 135-40.

151. Reuter G., Vennema H., Koopmans M., Szucs G. // Epidemic spread of recombinant noroviruses with four capsid types in Hungary. J Clin Virol -2006.-V. 35(1)-P. 84-8.

152. Rockx B., De Wit M., Vennema H., Vinje J., De Bruin E., Van Duynhoven Y., Koopmans M. // Natural history of human calicivirus infection: a prospective cohort study. Clin Infect Dis - 2002. - V. 35 (3) - P. 246-53.

153. Rohayem J., Munch J., Rethwilm A. // Evidence of recombination in the norovirus capsid gene. J Virol - 2005. - V. 79 (8) - P. 4977-90.

154. Rohayem J., Robel I., Jager K., Scheffler U., Rudolph W. // Protein-primed and de novo initiation of RNA synthesis by norovirus 3Dpol. J Virol - 2006. - V. 80 (14) - P. 7060-9.

155. Rolfe K.J., Parmar S., Mururi D., Wreghitt T.G., Jalal H., Zhang H., Curran M.D. // An internally controlled, one-step, real-time RT-PCR assay for norovirus detection and genogrouping. J Clin Virol - 2007. - V. 39 (4) - P. 318-21.

156. Roman E., Negredo A., Dalton R.M., Wilhelmi I., Sanchez-Fauquier A. // Molecular detection of human calicivirus among Spanish children with acute gastroenteritis. J Clin Microbiol - 2002. - V. 40 (10) - P. 3857-9.

157. Sakai Y., Nakata S., Honma S., Tatsumi M., Numata-Kinoshita K., Chiba S. // Clinical severity of Norwalk virus and Sapporo virus gastroenteritis in children in Hokkaido, Japan. Pediatr Infect Dis J - 2001. - V. 20 (9) - P. 849-53.

158. Sanchez-Fauquier A., Wilhelmi I., Roman E., Colomina J., Montero V., Negredo A. // Surveillance of human calicivirus in Spain. Emerg Infect Dis -2005.-V. 11 (8)-P. 1327-9.

159. Schaub S.A., Oshiro R.K. // Public health concerns about caliciviruses as waterborne contaminants. J Infect Dis - 2000. - V. 181 Suppl 2- P. S374-80.

160. Schreiber D.S., Blacklow N.R., Trier J.S. // The mucosal lesion of the proximal small intestine in acute infectious nonbacterial gastroenteritis. N Engl J Med1973.- V. 288 (25)-P. 1318-23.

161. Schreiber D.S., Blacklow N.R., Trier J.S. // The small intestinal lesion induced by Hawaii agent acute infectious nonbacterial gastroenteritis. J Infect Dis1974.- V. 129 (6)-P. 705-8.

162. Seah E.L., Gunesekere I.C., Marshall J.A., Wright P.J. // Variation in ORF3 of genogroup 2 Norwalk-like viruses. Arch Virol - 1999. - V. 144(5) - P. 1007-14.

163. Seymour I.J., Appleton H. // Foodborne viruses and fresh produce. J Appl Microbiol - 2001. - V. 91 (5) - P. 759-73.

164. Shin G.A., Sobsey M.D. // Reduction of Norwalk virus, poliovirus 1, and bacteriophage MS2 by ozone disinfection of water. Appl Environ Microbiol -2003.- V. 69 (7)-P. 3975-8.

165. Siebenga J.J., Vennema H., Renckens B., de Bruin E., van der Veer B., Siezen R.J., Koopmans M. // Epochal evolution of GGII.4 norovirus capsid proteins from 1995 to 2006. J Virol - 2007. - V. 81 (18) - P. 9932-41.

166. Sinclair M.I., Hellard M.E., Wolfe R., Mitakakis T.Z., Leder K., Fairley C.K. // Pathogens causing community gastroenteritis in Australia. J Gastroenterol Hepatol - 2005. - V. 20 (11) - P. 1685-90.

167. Steele A.D., Ivanoff B. // Rotavirus strains circulating in Africa during 19961999: emergence of G9 strains and P6. strains. Vaccine - 2003. - V. 21 (5-6) -P. 361-7.

168. Sugieda M., Nagaoka H., Kakishima Y., Ohshita T., Nakamura S., Nakajima S. // Detection of Norwalk-like virus genes in the caecum contents of pigs. Arch Virol - 1998.-V. 143 (6)-P. 1215-21.

169. Sugieda M., Nakajima K., Nakajima S. // Outbreaks of Norwalk-like virus-associated gastroenteritis traced to shellfish: coexistence of two genotypes in one specimen. Epidemiol Infect - 1996. - V. 116 (3) - P. 339-46.

170. Tacket C.O. // Plant-based vaccines against diarrheal diseases. Trans Am Clin Climatol Assoc - 2007. - V. 118 - P. 79-87.

171. Tan M., Hegde R.S., Jiang X. // The P domain of norovirus capsid protein forms dimer and binds to histo-blood group antigen receptors. J Virol - 2004. - V. 78 (12) - P. 6233-42.

172. Tan M., Huang P., Meller J., Zhong W., Farkas T., Jiang X. // Mutations within the P2 domain of norovirus capsid affect binding to human histo-blood group antigens: evidence for a binding pocket. J Virol - 2003. - V. 77 (23) - P. 12562-71.

173. Thapar N., Sanderson I.R. // Diarrhoea in children: an interface between developing and developed countries. Lancet - 2004. - V. 363(9409) - P. 641-53.

174. Thornton A.C., Jennings-Conklin K.S., McCormick M.I. // Noroviruses: agents in outbreaks of acute gastroenteritis. Disaster Manag Response - 2004. - V. 2 (1)-P. 4-9.

175. Torner N., Dominguez A., Ruiz L., Martinez A., Bartolome R., Buesa J., Ferrer M.D., Catalan Viral Gastroenteritis Study G. // Acute gastroenteritis outbreaks in

176. Catalonia, Spain: norovirus versus Salmonella. Scand J Gastroenterol - 2008. -V. 43 (5) - P. 567-73.

177. Tsang O.T., Wong A.T., Chow C.B., Yung R.W., Lim W.W., Liu S.H. // Clinical characteristics of nosocomial norovirus outbreaks in Hong Kong. J Hosp Infect - 2008. - V. 69 (2) - P. 135-40.

178. Tseng F.C., Leon J.S., MacCormack J.N., Maillard J.M., Moe C.L. // Molecular epidemiology of norovirus gastroenteritis outbreaks in North Carolina, United States: 1995-2000. J Med Virol - 2007. - V. 79 (1) - P. 84-91.

179. Turcios R.M., Widdowson M.A., Sulka A.C., Mead P.S., Glass R.I. // Réévaluation of epidemiological criteria for identifying outbreaks of acute gastroenteritis due to norovirus: United States, 1998-2000. Clin Infect Dis -2006. - V. 42 (7) - P. 964-9.

180. Vinje J., Altena S.A., Koopmans M.P. // The incidence and genetic variability of small round-structured viruses in outbreaks of gastroenteritis in The Netherlands. J Infect Dis - 1997. - V. 176 (5) - P. 1374-8.

181. Vinje J., Green J., Lewis D.C., Gallimore C.I., Brown D.W., Koopmans M.P. // Genetic polymorphism across regions of the three open reading frames of "Norwalk-like viruses". Arch Virol - 2000. - V. 145 (2) - P. 223-41.

182. Vinje J., Hamidjaja R.A., Sobsey M.D. // Development and application of a capsid VP1 (region D) based reverse transcription PCR assay for genotyping of genogroup I and II noroviruses. J Virol Methods - 2004. - V. 116 (2) - P. 10917.

183. Vinje J., Koopmans M.P. // Molecular detection and epidemiology of small round-structured viruses in outbreaks of gastroenteritis in the Netherlands. J Infect Dis - 1996. - V. 174 (3) - P. 610-5.

184. Vinje J., Koopmans M.P. // Simultaneous detection and genotyping of "Norwalk-like viruses" by oligonucleotide array in a reverse line blot hybridization format. J Clin Microbiol - 2000. - V. 38 (7) - P. 2595-601.

185. Wang J., Jiang X., Madore H.P., Gray J., Desselberger U., Ando T., Seto Y., Oishi I., Lew J.F., Green K.Y., et al. // Sequence diversity of small, round-structured viruses in the Norwalk virus group. J Virol - 1994. - V. 68 (9) - P. 5982-90.

186. Wang Q.H., Han M.G., Cheetham S., Souza M., Funk J.A., Saif L.J. // Porcine noroviruses related to human noroviruses. Emerg Infect Dis - 2005. - V. 11 (12)-P. 1874-81.

187. Waters A., Coughlan S., Hall W.W. // Characterisation of a novel recombination event in the norovirus polymerase gene. Virology - 2007. - V. 363 (1) - P. 11-4.

188. White L.J., Ball J.M., Hardy M.E., Tanaka T.N., Kitamoto N., Estes M.K. // Attachment and entry of recombinant Norwalk virus capsids to cultured human and animal cell lines. J Virol - 1996. - V. 70 (10) - P. 6589-97.

189. White P.A., Hansman G.S., Li A., Dable J., Isaacs M., Ferson M., Mclver C.J., Rawlinson W.D. // Norwalk-like virus 95/96-US strain is a major cause of gastroenteritis outbreaks in Australia. J Med Virol - 2002. - V. 68 (1) - P. 1138.

190. Widerlite L., Trier J.S., Blacklow N.R., Schreiber D.S. // Structure of the gastric mucosa in acute infectious bacterial gastroenteritis. Gastroenterology - 1975. -V. 68 (3) - P. 425-30.

191. Wilhelmi I., Roman E., Sanchez-Fauquier A. // Viruses causing gastroenteritis. -Clin Microbiol Infect 2003. - V. 9 (4) - P. 247-62.

192. Wolf S., Williamson W., Hewitt J., Lin S., Rivera-Aban M., Ball A., Scholes P., Savill M., Greening G.E. // Molecular detection of norovirus in sheep and pigs in New Zealand farms. Vet Microbiol - 2008.

193. Wolfaardt M., Taylor M.B., Booysen H.F., Engelbrecht L., Grabow W.O., Jiang X. // Incidence of human calicivirus and rotavirus infection in patients with gastroenteritis in South Africa. J Med Virol - 1997. - V. 51 (4) - P. 290-6.

194. Woode G.N., Bridger J.C. // Isolation of small viruses resembling astroviruses and caliciviruses from acute enteritis of calves. J Med Microbiol - 1978. - V. 11 (4)-P. 441-52.

195. Wright P.J., Gunesekere I.C., Doultree J.C., Marshall J.A. // Small round-structured (Norwalk-like) viruses and classical human caliciviruses in southeastern Australia, 1980-1996. J Med Virol - 1998. - V. 55 (4) - P. 312-20.

196. Wu F.T., Oka T., Katayama K., Wu H.S., Donald Jiang D.S., Miyamura T., Takeda N., Hansman G.S. // Genetic diversity of noroviruses in Taiwan between November 2004 and March 2005. Arch Virol - 2006. - V. 151 (7) - P. 1319-27.

197. Xi J.N., Graham D.Y., Wang K.N., Estes M.K. // Norwalk virus genome cloning and characterization. Science - 1990. - V. 250 (4987) - P. 1580-3.

198. Xu J., Yang Y., Sun J., Ding Y. // Molecular epidemiology of norovirus infection among children with acute gastroenteritis in Shanghai, China, 2001-2005.-J Med Virol-2009. V. 81 (10)-P. 1826-30.

199. Zahorsky J. // Hyperemesis hiemis or thewinter vomiting disease. Arch Pediatr - 1929.-V. 46-P. 391-395.

200. Zheng D.P., Ando T., Fankhauser R.L., Beard R.S., Glass R.I., Monroe S.S. // Norovirus classification and proposed strain nomenclature. Virology - 2006. -V. 346 (2)-P. 312-23.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.