Клиническая анатомия поджелудочной железы японских перепелов в постэмбриональном онтогенезе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Шувалов Никита Андреевич

• Шувалов Никита Андреевич
• кандидат наук
• 2024

Оглавление диссертации кандидат наук Шувалов Никита Андреевич

2 ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

2.1 Материалы и методы исследования

2.2 Результаты собственных исследований

2.2.1 Особенности топографии поджелудочной железы у японских перепелов

2.2.2 Динамика весовых показателей поджелудочной железы у японских перепелов в постэмбриональном онтогенезе

2.2.3 Морфометрическая характеристика линейных показателей поджелудочной железы японского перепела

2.2.4 Стереометрический анализ поджелудочной железы у японских перепелов в постэмбриональном онтогенезе

2.2.5 Возрастные патологические процессы в поджелудочной железе японского перепела

2.2.6 Биохимические исследования поджелудочной железы японских перепелов

2.2.7 Аллометрическое уравнение для определения массы поджелудочной железы у японских перепелов в постэмбриональном онтогенезе

3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

4. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

5. Практические предложения и перспективы дальнейшей разработки темы

6. СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Клиническая анатомия поджелудочной железы японских перепелов в постэмбриональном онтогенезе»

Введение

Актуальность темы исследования. Морфофункциональные характеристики поджелудочной железы японских перепелов (Coturnix coturnix japónica) имеют важное значение как для промышленного разведения птиц, так и для получения от них яичной продуктивности (Фисинин В.И., 2012; Rahmani Kahnamoei et al., 2014). Поджелудочная железа, жизненно важный орган, который играет решающую роль в пищеварительной системе и метаболических процессах, включая выработку ферментов, необходимых для переваривания пищи, и гормонов для регуляции уровня глюкозы (Кретов А.А., 2018; Андреева С. Д., 2022). Понимание этих особенностей японских перепелов не только способствует получению фундаментальных знаний о биологии птиц, но и имеет практическое значение для интенсификации перепеловодства в нашей стране (Хохлов Р.Ю., 2008; Кочиш И.И. и соавт., 2015).

Японский перепел, вид, известный своим быстрым ростом, ранней половой зрелостью и высокой яйценоскостью, становится все более важной моделью для исследований благодаря своим приемлемым размерам, короткому интервалу между поколениями и физиологическому сходству с другими птицами (Сковородин Е.Н., Бронникова Г.З., 2019). Исследования, посвященные структурно-функциональным аспектам поджелудочной железы, могут дать представление об оптимизации методов выращивания, кормления и содержания яичных перепелов с целью получения от них максимальной продукции (Зайцева Е.В. и соавт., 2013; Селезнев С.Б. и соавт., 2022).

Степень разработанности темы исследования. Современные исследования выявили динамику развития органов пищеварительной системы, включая поджелудочную железу, от эмбриональных стадий до роста после вылупления, но они носят фрагментарный характер (Белогуров А.Н., Трояновская Л.П., 2009). Данные исследования подчеркивают важность индивидуальных стратегий выращивания и кормления птицы, учитывающих

стадии развития поджелудочной железы и ее морфофункциональные возможности (Голубов И.И., 2014). Наше исследование направлено на устранение существующих пробелов в литературе и внесение вклада в более глубокое понимание морфологии и физиологии птиц с потенциальными последствиями для сравнительной анатомии, ветеринарной медицины и биологии птиц (Сковородин Е.Н. и соавт., 2021).

Цель настоящего исследования заключается в детальном изучении структурной организации поджелудочной железы японских перепелов яичного направления в период постэмбрионального онтогенеза.

Задачи исследования:

1. Уточнение топографии и анатомического деления поджелудочной железы на доли у японских перепелов.

2. Проведение морфометрического и стереометрического анализа с использованием современных методов визуализации для описания макро- и микроструктуры поджелудочной железы, включая ацинарные клетки, систему протоков и панкреатические островки.

3. Выявление общих закономерностей развития и строения поджелудочной железы у японских перепелов с учетом их биохимического профиля.

4. Разработка оригинального аллометрического уравнения для поджелудочной железы на основе регрессионного анализа, учитывающего не только весовые параметры, но и возрастные особенности японских перепелов.

Научная новизна исследования.

В настоящем исследовании впервые проведена детальная оценка органогенеза поджелудочной железы у японских перепелов яичного направления в постэмбриональном онтогенезе. Для этого был использован комплекс методов, включающий макро- и микро-препарирование, а также морфометрические, гистологические, стереометрические, биохимические и биостатистические подходы.

На основании морфометрического анализа впервые выявлен критический период роста поджелудочной железы у японских перепелов, приходящийся на возраст от 30 до 60 дней. Этот период характеризуется снижением относительной массы органа в 5,4 раза, достигая значения 0,26±0,05%, и уменьшением линейного индекса до 10,6%. Окончательное формирование структурной организации поджелудочной железы наблюдается лишь к 90-дневному возрасту, что согласуется с данными биохимического анализа крови. Так, содержание в крови к 90-днвному возрасту общего белка (37,53 ± 0,74ё/1), альбуминов (14,57 ± 0,08^1), глобулинов (21,74 ± 0,09g/l) и щелочной фосфатазы (5,78 ± 0,75 тто1/1) достигает максимума.

Теоретическая и практическая значимость исследования.

Проведенное исследование обладает существенной теоретической и практической значимостью, поскольку выявляет стадийность формирования паренхимы поджелудочной железы у японских перепелов. Установлено, что ацинарные клетки, составляющие экзокринную часть железы, достигают максимального развития к 30-дневному возрасту, достигая 73,1 ± 0,8%. В то же время эндокриноциты, формирующие островки Лангерганса, достигают своего максимального развития лишь к 90-дневному возрасту, составляя 15,5 ± 0,9%. Эти данные углубляют понимание процессов органогенеза и могут быть использованы для оптимизации условий выращивания и содержания птиц в практических приложениях. Проведенные исследования дополняют имеющиеся данные о теории развития птиц и открывают новые возможности применения их в промышленном перепеловодстве. Полученные данные необходимо использовать при составлении соответствующих глав учебников, атласов, справочных руководств и учебных пособий по возрастной морфологии птиц, а также ветеринарными специалистами на птицефабриках и в экспериментальных лабораториях научно-исследовательских институтов, занимающихся проблемами патологии пищеварительной системы птиц.

Методология и методы исследования

Методологической основой данной диссертации послужил комплексный анализ научных источников по перепеловодству, включающий отечественные и зарубежные исследования. Материалы отбирались и анализировались с использованием современных информационно-поисковых систем, охватывающих такие области, как анатомия, физиология, гистология и патология птиц. Объектом исследования была поджелудочная железа японских перепелов разных возрастных категорий. Изучение органа проводилось с применением анатомических, морфометрических, гистологических и биохимических методов, основанных на клинических, зоотехнических и биостатистических принципах. Использование этих методов позволило получить объективные и надежные результаты, которые детально изложены в разделе «Материалы и методы» данной диссертационной работы.

Степень достоверности и апробация результатов исследования.

Исследование выполнялось в научно-исследовательской лаборатории и виварии департамента ветеринарной медицины аграрно-технологического института Российского университета дружбы народов в период с 2021 по 2024 г.

Достоверность представленных результатов подтверждается применением комплексной оценки морфологических и биохимических показателей поджелудочной железы японских перепелов в постэмбриональном периоде онтогенеза. Для анализа и обработки данных использовались современные статистические программы, включая Microsoft Office 2022, SPSS и Statistica, что обеспечило высокую точность и надежность статистических выводов.

Основные положения, выводы и рекомендации производству по результатам данной работы внедрены в учебный и научно-исследовательский процесс при обучении студентов и аспирантов по направлениям подготовки «Ветеринария», «Зоотехния», «Ветеринарно-санитарная экспертиза» в ФГАОУ

ВО «Российский университет дружбы народов», ФГБОУ ВО «Башкирский

6

государственный университет», ФГБОУ ВО «Брянский государственный университет имени И. Г. Петровского», ФГБОУ ВО «Великолукская государственная сельскохозяйственная академия», ФГБОУ ВО «Пензенский государственный аграрный университет».

Достоверность полученной информации подтверждается апробацией материалов на ряде научно-практических конференций, в том числе:

• XIV и XV Международные научно-практические конференции «Инновационные процессы в сельском хозяйстве» (Москва, 2023-2024 гг.);

• Всероссийская научно-практическая конференция «Морфология в XXI веке: теория, методология, практика» (Москва, 2024 г.);

• III Всероссийская научно-практическая конференция «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, зоотехнии, биотехнологии и экспертизы сырья и продуктов животного происхождения» (Москва, 2024 г.).

Публичное представление и обсуждение результатов на этих мероприятиях способствовали их экспертной оценке и подтверждению надежности проведенного исследования.

Сведения о практическом использовании научных результатов

Полученные данные по структурной организации поджелудочной железы у японских перепелов используются в учебном процессе при проведении лекций и лабораторных занятий для студентов специальности 36.05.01 «Ветеринария» и направления подготовки 36.03.01 «Ветеринарно-санитарная экспертиза». Кроме того, результаты исследования внедрены в научно-исследовательскую работу департамента ветеринарной медицины Аграрно-технологического института Российского университета дружбы народов.

Личный вклад автора в работу. Представленная работа является результатом диссертационного исследования, которое проводилось в период с 2021 по 2024 год. Автор самостоятельно осуществил наблюдения и эксперименты, посвященные изучению структурной организации и биохимических характеристик поджелудочной железы японских перепелов.

Публикация результатов исследования. По материалам диссертации опубликовано 5 научных публикаций, в том числе 2 статьи в рецензируемых журналах, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства науки и высшего образования Российской Федерации.

Объем и структура диссертации

Диссертационная работа изложена на 108 страницах печатного текста и содержит 7 таблиц и 17 иллюстраций. Структура исследования включает следующие разделы: введение, обзор литературы, результаты собственных исследований, обсуждение полученных данных, выводы, рекомендации и перспективы дальнейшего развития темы. Список использованной литературы насчитывает 240 источников, из которых 119 — зарубежные.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту

1. Изучение морфологической организации поджелудочной железы у японских перепелов на различных стадиях постэмбрионального онтогенеза.

2. Анализ динамики морфометрических параметров поджелудочной железы у японских перепелов в процессе постэмбрионального онтогенеза.

3. Определение общих принципов развития и строения поджелудочной железы японских перепелов с учетом гистологических данных.

4. Разработка аллометрического уравнения для определения абсолютной массы поджелудочной железы у японских перепелов.

Каждая из поставленных задач направлена на комплексное исследование структурной организации и функциональной динамики поджелудочной железы у японских перепелов, что позволит глубже понять механизмы её развития и адаптации в различные возрастные периоды.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Анатомо-физиологические особенности японских перепелов и их

продуктивные характеристики

Японские перепела (Coturnix coturnix japónica) представляют собой вид птиц, играющих значительную роль в японском сельском хозяйстве на протяжении многих веков. Согласно историческим данным, процесс приручения этих птиц начался еще в XI веке, а к XVI веку разведение японских перепелов стало систематизированным, ориентированным на получение мяса и яиц (Иванов и др., 2012). В современном мире японские перепела занимают место одних из самых востребованных и высоко ценимых сельскохозяйственных птиц. Их активно разводят во многих странах, включая Францию, Германию, Беларусь, Японию, Индонезию и Китай, что свидетельствует о глобальной значимости данного вида в аграрной отрасли (Смирнов и др., 2017).Эти перепела выделяются своей небольшой массой тела и высокой яичной продуктивностью. Они относятся к отряду курообразных и семейству фазановых, и внешне весьма похожи на ближайших родственников — кур, хотя их размеры более компактны. Внешние различия между курицей и японским перепелом незначительны, главным образом связаны с размером тела и некоторыми морфологическими особенностями. Хотя японские перепела значительно уступают курам в размерах, их телосложение и поведение в условиях содержания остаются весьма схожими (Селезнев и др., 2015).

Процесс одомашнивания перепелов оказал существенное влияние на их

биологические показатели. В ходе селекции и целенаправленного разведения

были получены особи с большей массой тела и высокой яйценоскостью.

Одомашненные перепела отличаются от диких предков не только более

крупными размерами и повышенной продуктивностью, но и изменениями в

поведении, связанными с утратой выраженных инстинктов высиживания яиц

и заботы о потомстве. Это обусловлено, в том числе, искусственной селекцией

10

на повышение яйценоскости, что привело к снижению их материнского инстинкта (Xiang et al., 2020).

Помимо изменений в поведении, одомашнивание перепелов повлияло и на физиологические характеристики. Домашние перепела обладают более устойчивым метаболизмом и лучшей конверсией корма по сравнению с дикими особями, что делает их более экономически выгодными для разведения в промышленных масштабах (Watanabe et al., 2019).

Половой диморфизм выражается в массе тела: самки японских перепелов весят на 15-20% больше, чем самцы. Это обусловлено развитием их репродуктивной системы и способностью к формированию яиц. Средний вес живой самки составляет от 120 до 150 граммов, в то время как самцы весят приблизительно 100-130 граммов. Самки, как правило, имеют более крупные размеры и интенсивный рост в раннем возрасте для обеспечения будущей яйценоскости (Lee & Kim, 2021). Цвет оперения у самцов и самок также различается: самцы выделяются более ярким красно-коричневым окрасом, что связано с половым отбором, а самки имеют светлое оперение с черными пятнами, что служит для маскировки и защиты в природе (Кузнецов и др., 2013).

Физиологические особенности японских перепелов имеют решающее значение для их успешного выращивания и высокой производительности в условиях интенсивного содержания. Температура тела, составляющая 41-42°C, способствует высокому обмену веществ, благодаря которому птицы могут эффективно противостоять заболеваниям, вызванным патогенными микроорганизмами и инфекционными факторами (Кузнецов и др., 2018). Такой тепловой режим обеспечивает не только защиту от инфекций, но и ускоряет рост молодняка, что позволяет начать яйцекладку значительно раньше по сравнению с другими видами птиц.

Начало яйцекладки у самок японских перепелов часто наступает в

возрасте около 35-40 дней, когда их масса достигает 100 граммов. В этот

11

период физиологическое созревание позволяет самкам откладывать от 8 до 10 яиц в течение первого месяца, причем каждый яйцо весит около 7 граммов (Новиков и др., 2016). По мере роста птиц их яйценоскость возрастает, и уже к 60-му дню жизни продуктивность достигает 25 яиц в месяц, масса которых составляет от 10 до 12 граммов (таб.1). Это свидетельствует о том, что процесс созревания птиц идет быстро, и самки способны поддерживать яйцекладку на высоком уровне в раннем возрасте (Смирнов и др., 2019).

HH (Hen House) и HD (Hen Day) - это показатели, используемые для измерения продуктивности несушек (яйценоскости) (таб. 1).

HH (Hen House Production) - это процентное отношение количества яиц, снесенных за определенный период времени, к общему количеству кур в начале этого периода. Это показатель общей продуктивности, учитывающий всех кур, независимо от того, были ли они выбракованы или умерли в течение данного периода (таб. 1).

HD (Hen Day Production) - это процентное отношение количества яиц, снесенных за день, к количеству кур-несушек, которые оставались живыми и продуктивными в течение этого дня. Этот показатель более точно отражает ежедневную производительность, так как учитывает только тех кур, которые активно несутся (таб. 1).

Возраст HH HH HH ТО т ТО

(недели) продуктивность продуктивность продуктивность продуктивность продуктивность продуктивность

яиц (%) Серые яиц (%) яиц (%) Белые яиц (%) Серые яиц (%) яиц (%) Белые

Коричневые Коричневые

6 0 0 0,33 0 0 0,33

7 16,08 20,8 19,23 16,14 20,8 19,2

8 61,78 80,7 57,58 62,49 83,65 58,9

9 80,7 96,12 67,91 81,63 99,63 69,5

10 91,3 96,12 86,92 92,35 99,63 88,9

11 86,38 96,24 87,25 87,37 99,76 89,2

12 86,38 96,24 87,25 87,37 99,76 89,2

13 81,08 95,86 84,84 82,01 99,37 86,8

14 82,78 95,24 80,22 83,74 98,72 82

15 82,88 88,72 83,96 85,05 94,03 86,3

16 64,62 81,95 72,42 66,31 87,67 75

17 63,58 77,69 72,64 65,69 83,68 75,2

18 67,74 84,71 77,36 69,99 91,23 80,1

19 71,24 75,06 76,92 73,61 80,84 79,6

20 65 80,45 73,41 67,16 86,65 76

Таблица 1 Производство яиц в зависимости от возраста перепелов по показателям HH и HD (%)

Источник: Body weight, egg production, and egg quality traits of gray, brown, and white varieties of Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) in coastal climatic condition of Odisha

Пик яйценоскости приходится на возраст 3-6 месяцев, когда самки производят до 300 яиц в год, что делает этот вид весьма привлекательным для коммерческого разведения. Для поддержания высокой продуктивности важно соблюдать оптимальные условия кормления и содержания, а также следить за биологическими особенностями вида, которые могут влиять на качество яичной продукции и продолжительность яйценоскости (Бронникова, 2020).

Яйца японских перепелов отличаются не только высокой пищевой ценностью, но и уникальным химическим составом. Они богаты белками, витаминами, минералами (особенно железом и фосфором), а также содержат значительное количество ненасыщенных жирных кислот (Кириллов и др., 2015). Это делает их востребованными в диетическом питании и медицине, где их рекомендуют в качестве общеукрепляющего средства. Кроме того, окраска скорлупы яиц варьирует от светло-желтой до темно-коричневой с черными и голубоватыми пятнами, что добавляет декоративный аспект. Средний вес яйца составляет около 8% от массы тела птицы, что свидетельствует о высокой репродуктивной активности. Такой показатель подтверждает адаптацию перепелов к промышленным условиям разведения, где поддерживается стабильное получение яиц высокого качества (Селезнев и др., 2019).

Органы и системы японских перепелов развиваются в постэмбриональном онтогенезе по определенным стадиям, сходным с другими видами птиц. На ранних этапах роста происходит интенсивное развитие пищеварительной и дыхательной систем, что обусловлено их высокой метаболической активностью (Беляев, 2016). По мере созревания наблюдается увеличение массы тела, линейных размеров и формирование специфической структуры органов. Например, у поджелудочной железы развиваются четко выраженные доли и увеличивается секреция ферментов, необходимых для

14

эффективного переваривания пищи. Интенсивное развитие внутренних органов, в частности железистых тканей, способствует повышению эффективности обмена веществ и функциональной активности организма в целом (Смирнов и др., 2020). Этот процесс особенно выражен в период начала яйцекладки, когда возрастает потребность в питательных веществах и энергии для поддержания продуктивности.

В процессе роста и развития у перепелов происходят значительные изменения в органах пищеварительной и репродуктивной систем, которые связаны с их функциональной нагрузкой в периоды активного роста и яйцекладки. Развитие пищеварительной системы, в частности поджелудочной железы, особенно критично в раннем возрасте, так как от этого зависит эффективность усвоения питательных веществ (Сидорова и соавт., 2020). Сердечно-сосудистая система японских перепелов, подобно другим видам птиц, проявляет высокую степень адаптивности к изменению условий окружающей среды и увеличению нагрузки на организм. Например, у молодняка отмечается усиленное развитие капиллярной сети, которая обеспечивает эффективное снабжение органов и тканей питательными веществами и кислородом (Павлов и др., 2019).

Японские перепела занимают важное место в современном птицеводстве благодаря их высокой продуктивности, способности к быстрой адаптации к различным условиям содержания, а также устойчивости к заболеваниям, включая инфекционные и паразитарные (Новиков, 2021). Возможность интенсивного разведения и высокая яйценоскость позволяют получать до пяти поколений птиц в течение одного года, что существенно повышает эффективность их использования в селекции и промышленном производстве (Кузнецов и др., 2019). Кроме того, селекционные программы нацелены на улучшение качества мяса, что открывает перспективы для дальнейшего развития отрасли.

1.2 Оптимальные условия содержания японских перепелов в промышленном хозяйстве и их влияние на пищеварительную систему

Правильное содержание японских перепелов (Coturnix japónica) в условиях промышленного хозяйства является критически важным для поддержания их здоровья, высокой продуктивности и качественной продукции. Факторы окружающей среды, такие как температура, влажность, вентиляция, плотность посадки и освещение, оказывают прямое влияние на функционирование пищеварительной системы, включая поджелудочную железу, которая отвечает за выработку ферментов и гормонов, необходимых для обмена веществ и поддержания гомеостаза.

1.2.1 Температурный режим

Температура — один из ключевых факторов, влияющих на физиологическое состояние и продуктивность перепелов. Для взрослых птиц оптимальной считается температура в диапазоне от 20 до 25 °C. В то время как для молодняка, особенно в первые дни жизни, температура должна быть выше — от 35 до 37°C с постепенным снижением до 25 °C к третьей неделе жизни (Yahav et al., 2017).

Отклонения от оптимальной температуры вызывают стрессовые реакции, негативно влияющие на активность ферментов поджелудочной железы, ухудшают пищеварение и снижают продуктивность. При повышенной температуре (более 35 °C) перепела потребляют меньше корма, что приводит к дефициту питательных веществ и энергии (Smith et al., 2018). В результате уменьшается секреция пищеварительных ферментов, таких как амилаза и липаза, что отрицательно сказывается на переваривании и усвоении питательных веществ.

Низкие температуры повышают энергозатраты на поддержание нормальной температуры тела, что может привести к истощению ресурсов

организма и активизации глюконеогенеза (Jones & Farrell, 2017). Это требует усиленной выработки гормонов поджелудочной железы, таких как инсулин и глюкагон, для поддержания баланса глюкозы в крови.

1.2.2 Влажность и вентиляция

Оптимальный уровень относительной влажности в помещениях, предназначенных для содержания перепелов, должен составлять от 55 до 70% (Кузнецова и др., 2019). Низкая влажность может способствовать потере организмом влаги через дыхательные пути и кожу, что приводит к сгущению крови, нарушению теплообмена и снижению аппетита. Эти факторы отрицательно влияют на пищеварение и эффективность усвоения питательных веществ.

Высокая влажность в сочетании с недостаточной вентиляцией способствует накоплению вредных газов (таких как аммиак, сероводород и углекислый газ) и развитию патогенной микрофлоры, что может вызывать респираторные заболевания (Олейник, 2020). Заболевания дыхательной системы негативно влияют на работу пищеварительной системы, увеличивая нагрузку на поджелудочную железу и снижая общую иммунную реактивность организма. Правильная вентиляция помогает предотвратить скопление аммиака и других газов, что положительно отражается на общем состоянии здоровья птиц (Lin et al., 2021).

1.2.3 Плотность посадки

Плотность посадки — важный фактор, влияющий на уровень стресса и общее состояние здоровья перепелов. Рекомендуемая плотность для взрослых птиц составляет 80-100 см2 на особь при клеточном содержании (Петрова, 2018). Если плотность посадки превышает допустимые нормы, у птиц возникают агрессивные реакции и каннибализм, снижается потребление корма и воды.

Лебедев (2019) установил, что при повышенной плотности посадки у птиц уменьшается выработка пищеварительных ферментов, таких как амилаза и трипсин. Это объясняется повышением уровня кортикостерона в крови, подавляющего секрецию ферментов поджелудочной железы (Anderson & Carter, 2016). Кроме того, при перенаселении возрастает конкуренция за корм, что ведет к дефициту питания и нарушению функции поджелудочной железы (Collins et al., 2018).

1.2.4 Освещенность

Освещение играет ключевую роль в регуляции биологических ритмов, метаболизма и репродуктивных функций перепелов. Продолжительность светового дня для нормальной яйцекладки и поддержания метаболической активности должна составлять 14-16 часов при интенсивности света около 1015 люкс (Сидорова, 2020).

Нарушение режима освещенности, в частности его сокращение, приводит к гормональным изменениям, которые влияют на секрецию инсулина и глюкагона в поджелудочной железе (Chen et al., 2018). Вследствие этого нарушается углеводный обмен, снижается эффективность использования глюкозы, что отрицательно сказывается на общей продуктивности птиц. Изменение светового режима вызывает повышенный уровень стресса у перепелов и сбои в циркадных ритмах, что приводит к снижению активности поджелудочной железы и уменьшению секреции ферментов, необходимых для эффективного переваривания пищи (Сергеенкова, 2021).

1.2.5 Кормовой рацион

Сбалансированный рацион, содержащий повышенное количество белка (18-22%), аминокислот и витаминов, способствует развитию пищеварительной системы, в том числе поджелудочной железы, и повышает яйценоскость на 15-20% (Johnson et al., 2020; Lee et al., 2019). Повышение

уровня белка на 1-2% в рационе может значительно повысить продуктивность и улучшить обмен веществ.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Шувалов Никита Андреевич, 2024 год

6. СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Авраменко В. И. Крат кий справочник птицевода / В.И. Авраменко //М.: АСТ. - 2005. - С. 21-26.

2. Анчиков В.В. Ветеринарное обслуживание птицефабрики и его эффективность / В.В. Анчиков // Ученые записки Казанског ветинститута. 1975. Т. 121. С.149-151.

3. Афанасьев В.В., Чижов И.В. Микроанатомия сельскохозяйственных птиц. / В.В. Афанасьев, И.В. Чижов // Москва: КолосС, 201 Ленский С. А. Морфология пищеварительной системы птиц. / С.А. Ленский // Вестник аграрной науки. - 2017. - №3. - С. 45-52.

4. Бакулев И.А., Меркурьева И.М. Анатомия и физиология сельскохозяйственных животных. / И.А. Бакулев, И.М. Меркурьева // Москва: КолосС, 2020. - 350 с.

5. Белогуров, А. Н., & Трояновская, Л. П. Травмы и воспаления репродуктивной системы у самок японского перепела в промышленном перепеловодстве / А. Н. Белогуров & Л. П. Трояновская // Российский ветеринарный журнал. 2008 - (4), С. 33-34.

6. Беляева Н. П. Морфофункциональная характеристика пищеварительного тракта некоторых видов птиц семейства врановых (Сотаае) / Н. П. Беляева // Москва - 2019.

7. Белякова, Л. Продуктивность перепелов яичной породы при использовании разных источников каротиноидов / Л. Белякова, Т. Окунева // Птицеводческое хозяйство. Птицефабрика. - 2011. - № 6. - С. 30.

8. Бидеев Б. А. Продуктивность и биологические особенности перепелов разных пород / Б. А. Бидеев: // дис. - Горс. гос. аграр. ун-т, 2016.

9. Вердинкова, П.П. Гистоструктурная характеристика пищеварительного аппарата некоторых видов птиц / П.П. Бердникова // Автореф. дис. к.б.н. - Кострома, 1987. — 15 с.

10. Ветошкина, Г.А. Применение аллометрических уравнений для определения массы сердца у японских перепелок / Ветошкина Г.А., Селезнев С.Б., Гусев Д.А.// «Морфология в XXI веке: теория, методология, практика». Национальная научно- практ. конф. Москва, 01-04 июня, 2021.- Москва: ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина, 2021.- С.44-48.

11. Ветошкина, Г.А. Структурная организация сердца птиц: монография / Ветошкина Г.А., Гусев Д.А., Селезнев С.Б.// - Москва: «Зооветкнига», 2023- 172 с.

12. Викторов, K.P. Материалы к изучению о пищеварении у птиц / K.P. Викторов. — Петроград, 1933. - С.124-131.

13. Вилкова И.В. Мышечно стромальные и сосудистые соотношения в стенке желудка / И.В. Вилкова, И.Л. Керресюк, Е.Ю., Левчик // Морфология - 1998- № 3, - С. 41- 42.

14. Вракин В.А., Сидорова Е.Н. Анатомо-гистологические особенности пищеварительной системы птиц. — Ветеринарная наука, 1991, №7, с. 45-52.

15. Вракин, В.Ф. Морфология с.-х. животных. Анатомия с основами цитологии, гистологии и эмбриологии / В.Ф. Вракин, М.В. Сидорова // М.: Агропромиздат, 1991. — 528с.

16. Г. Г. Автандилов. Учебное пособие.-М, 2002 (рец. ЛВ Кактурский) //Архив патологии. - 2004. - Т. 66. - №. 3. - С. 61-61

17. Георгиевский В.П., Биологически активные вещества лекарственных растений / В.П. Георгиевский, Н.Ф. Комиссаренко, С.Е. Дмитрук // Наука - Новосибирск: 1990. — 333 с. — ISBN 5-02-029240-0.

18. Голубов, И.И. Инновации в формировании ассортимента перепелиной продукции / И.И Голубов // Птицеводство. - 2013. - № 3.- С. 2933.

19. Гончарова Н.В. Физиология пищеварительной системы птиц. / Н.В. Гончарова // Москва: Лань, 2019. - 200 с.

20. Гуртовой, Н.Н. Дзержинский Ф.Я. практическая зоотомия позвоночных птицы млекопитающие морфофункциональная характеристика пищеварительной системы японского перепела / И.И. Гуртовой, Ф.Я. Дзержинский // Высшая школа. Москва - 1992.

21. Гусев Д.А. Морфологическая характеристика сердца японских перепелов в раннем постэмбриональном онтогенезе. / Д.А Гусев// Москва -2022.

22. Давлетова, Л.В. Морфофункциональные особенности эмбрионального развития органов пищеварения жвачных и всеядных с. - х. животных / Л.В. Давлетова // Автореф. дис: д-ра биол. наук. М- 1971.- 28 с.

23. Дементьев, Г. П. Анатомия и физиология домашней птицы / Г.П. Дементьев, В.Ф. Ларионов & Н. П. Федоровский // 1п Сельскохозяйственная птица - 1962 - С. 33.

24. Демидов С.В. Гистологическое исследование поджелудочной железы птиц при различных условиях кормления. / С.В. Демидов // Актуальные вопросы ветеринарии. - 2017. - №3. - С. 65-70.

25. Егоров И.А., Белякова Л.С. Кормление и содержание перепелов. / И.А. Егоров, Л.С. Белякова // Птицеводство, 2009. - №4. - С. 32.

26. Егоров, И. А., Киселев, Л. Ю., Лукашенко, В. С., и друг. Птицеводство России. История. Основные направления. Перспективы развития / И.А. Егоров, Л.Ю. Киселев, Вю С. Лукашенко и друг // Птицеводство. - 2004.

27. Егоров, И.А. Кормление и содержание перепелов / И. А. Егоров, Л.С. Белякова // Птицеводство. - 2009. - № 4. - С. 32.

28. Заварзин А.А. Морфологические исследования органов пищеварительной системы домашних птиц. / А.А. Заварзин // Санкт-Петербург: Лань, 2018. - 220 с.

29. Задорожная. Л.А. Особенности содержания перепелов самодельные клетки и инкубаторы выбор породы для разведения / Л.А. Эадорожная // Перепеловодство (Приусадебное хозяйство). М.: ACT; Донецк: Сталкер, 2007. — 93 с: ил.

30. Зайцева Е. В. Критические периоды онтогенеза цыплят-бройлеров кросса «R0SS-308» / Е. В. Зайцева, Л. П. Тельцов, А. Л. Харлан, Н. Н. Крикливый, Н. А. Щеглов // Вестник Брянского государственного университета. - 2013. - № 4. - С. 91-96.

31. Зеленевский Н.В. Международная ветеринарная анатомическая номенклатура на латинском и русском языках. / Н.В. Зеленевский // Справочник, 2013.

32. Золотухин В.Н. Разведение и содержание перепелов. / В.Н. Золотухин // Москва: Агропромиздат, 2020. - 180 с.

33. Ишутина, Г.Ф. Работаем по собственной технологии / Г.Ф. Ишутина//Птицеводство.-М.:№8., 2003. - С. 21.

34. Каденкова, Н.В. Японские перепела / Н.В. Каденкова, О.В. Корникова.- Москва: Домашний зооуголок, 2004. - С.3-25.

35. Калинич, О. А. Постинкубационный морфогенез скелета и мышц свободной грудной конечности у самок японских перепелов / О.А. Калинич // (Doctoral Dissertation, Мордовский государственный университет им. НП Огарева). 2009.

36. Кассиль, В.Г. О механизмах, регулирующих эвакуацию жидкостей из желудка / Кассиль В.Г. // Моторная функция желудочно-кишечного тракта.

- Киев, 1965.- С.83-87.

37. Кирьякулов Г.С. Использование новых методов в морфологических исследованиях / Г.С. Кирьякулов, В.А. Васильев, И.П. Вакуленко //Тезисы докладов 11 съезда анатомов, гистологов и эмбриологов. -1992. - С. 108.

38. Коваленко, Б.В. Энциклопедия перепеловода / Б.В. Коваленко: вып. 2. - Ростов-на-Дону: «Феникс», 2008. -С. 6.

39. Кодиров; О.З. Возрастные изменения стенки желудка у человека от рождения до 16 лет. / О.З. Кодиров, И. И. Якуббеков, А.Н.Азимов // Морфология, 1999. №2. - С.55-56.

40. Козлова Е.В., Сидоров В.В. (2019). Морфогенез поджелудочной железы у птиц. Вестник морфологии, 25(2), 56-63.

41. Константин Г., Марина Г. На страже перепелов. Руководство по уходу, кормлению и разведению / К.А. Голубев, Г. Константин, Г. Марина // © ООО «Книжкин Дом», 2016

42. Корнев В.Н. Морфология и гистология перепелов при постэмбриональном развитии. / В.Н. Корнев, Т.А. Рязанцева // Биология птиц.

- 2021. - №6. - С. 58-64.

43. Королева, H.A. Морфология и гистохимия железистого и мышечного отделов желудка кур в онтогенезе / Н.А. Королева // Автореф.к.б.н. Омск, 1989. - 13с.

44. Коршунова, Л.Г. Фенотипическая характеристика перепелов эстонской породы. / Л.Г. Коршунова // Птица и птицепродукты. - 2011. - № 3. -С. 43-47.

45. Кочетова З.И. Разведение и содержание перепелов: учеб. пособие / З.И. Кочетова, Л.С. Белякова, В.И. Филоненко, А.И. Чинцова // Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства (ВНИТИП): Сергиев Посад, 2006. - С.82.

46. Кочиш И. И. Тюрин В. Г., Потемкина Н. Н. Эколого-гигиенические аспекты при эксплуатации животноводческих предприятий / И.И. Кочиш, В.Г. Тюрин, Н.Н. Потемкина //ББК 4 А25. - 2015. - С. 422.

47. Кретов А.А. Морфогенез органов пищеводно-желудочного отдела перепела японского (Coturnix Coturnix japónica) в условиях интенсивного использования / А.А. Кретов // Морфологический альманах имени В.Г. Ковешникова. - 2018. - Том 16, №2. - С. 28-33.

48. Кретов А.А. Поджелудочная железа у птиц: Анатомические и физиологические особенности. / А.А. Кретов // Журнал аграрных наук. - 2018. - №5. - С. 78-84.

49. Кривошеина Н.А. Изменение печени и поджелудочной железы кур в связи с возрастом и типом кормления. / Н.А. Кривошеина // Труды Московской ветеринарной академии, 1962. - С. 210-221.

50. Кривошеина, H.A. Изменение пищеварительного аппарат кур в связи с возрастом и типом кормления / H.A. Кривошеина // Автореф. Дисс. М., Кузьминки, 1957.- 24с.

51. Кротова Е. А. Постэмбриональный органогенез репродуктивной системы перепелов в связи со становлением органов иммуногенеза / Е.А. Кротова // Тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.01 2017.

52. Крыгин, А. В., & Смолина, Г. А. Морфология постэмбрионального развития мышечной части желудка курицы. Эколого-экспериментальные аспекты функциональной и возрастной морфологии домашних птиц / А.В. Крытин & Г.А. Смолина // Воронеж - 1988 - С. 45-49.

53. Кузнецов И.В. Анатомические и морфологические изменения поджелудочной железы перепелов при воздействии различных факторов среды. / И.В. Кузнецов // Журнал аграрных наук. - 2016. - №9. - С. 54-61.8. -240 с.

54. Кузнецова И.Н., Сидоров В.В., Иванова Л.М. Влияние влажности воздуха на физиологическое состояние перепелов // Зооинженерия. - 2019. -Т. 7, №2. - С. 112-116.

55. Кузнецова Н.Н. Эндокринная функция поджелудочной железы у птиц. — Эндокринология животных, 2019, т. 8(1), с. 33-40.

56. Кузнецова, А.В. Сравнительное изучение действия заквасок ацидофильной и болгарской палочек на продуктивность и развитие органов пищеварения бройлеров / А.В. Кузнецова, Е.А. Просекова // Сборник статей Международной научной конференции молодых ученых и специалистов, посвященной 120 летию академика Н. И. Вавилова. - М. - 2007. - С. 436-439.

57. Кузьмина Л.А. Физиология птиц. / Л.А. Кузьмина // Санкт-Петербург: Лань, 2021. - 280 с.

58. Лебедев П.Н. Влияние плотности посадки на физиологические и биохимические показатели перепелов // Вестник ветеринарии. - 2019. - № 2. -С. 55-59.

59. Лебедева Н.А., Бобровский А.Л. Анатомия и гистология мясопромышленных животных. / Н.А. Лебедева, А.Л. Бобровский // Москва: Агропромиздат, 1985. - 367 с.

60. Лебедева, Н.А. Анатомия и гистология мясопромышленных животных / Н.А. Лебедева, А.Л. Бобровский // - М. Агропромиздат, 1985. 367 с.

61. Ледяева Е. М. Исследования по микроскопической анатомии домашней курицы / Е.М. Ледяева //Сб. работ ЛВИ.-Л.: ЛВИ. - 1959. - С. 374380..

62. Лысов В.Ф. Особенности функциональных систем и основы этологии сельскохозяйственной птицы / В.Ф. Лысов, В.И. Максимов // - М.: Агроконсалт, 2003. - 96 с.

63. Максимюк, H.H. Физиология кормления животных: теории питания, прием корма, особенности пищеварения / H.H. Максимюк, В.Г. Скопичев // СПб.:Лань, 2004.-256 с.

64. Мартынов А. П. Физиологические аспекты кормления сельскохозяйственных птиц. / А.П. Мартынов, В.С. Федотов // Ветеринария и кормопроизводство. - 2016. - №6. - С. 78-83.

65. Нанос, В. Р. "Вторая международная конференция по перепеловодству / В.Р.Нанос // Птицеводство. Том 1 - 1995 - 39 С.

66. Никишов, А.А. Математическое обеспечение эксперимента в животноводстве (учебное пособие) / А. А. Никишов. - Изд. 3-е, испр. и доп. -М.: Российский ун-т дружбы народов, 2014. - 214 с.

67. Николаев Н. В. Организация ветеринарного обслуживания индейководческих хозяйств и пути его совершенствования / Н.В. Николаев // дис. - Омский государственный аграрный университет имени ПА Столыпина, 2013.

68. Новиков А.А. Влияние температурного режима на продуктивность японских перепелов // Ветеринария и кормление. - 2017. - № 4. - С. 45-48.

69. Олейник Д.С. Профилактика респираторных заболеваний у птиц в условиях высокой влажности // Ветеринарная медицина. - 2020. - № 5. - С. 20-24.

70. Орда, М.С. Перепеловодство - перспективная отрасль животноводства. Проблемы патологии / М.С. Орда, Ю.О. Ляднович // Ветеринарный журнал Беларуси.- 2017 -№ 2(7) - С. 81-83.

71. Орлова Т.А. и соавт. Адаптивные изменения поджелудочной железы перепелов при различных условиях кормления. — Вестник ветеринарной медицины, 2023, т. 15(4), с. 75-82.

72. Османян, А.К. Трансовариальное применение антиоксидантных препаратов для стимуляции развития эмбрионов перепелов / А.К. Османян, А.Е. Коротченкова, А.С. Комарчев, В.В. Малородов // Птица и птицепродукты.

- 2017.-№3.-С.55-57.

73. Павлова М.И. Физиология поджелудочной железы и её роль в пищеварении птиц. / М.И. Павлова, Н.В. Шустова // Вестник зоотехнии. - 2018.

- №3. - С. 34-41.

74. Петров, А.Н., & Козлова, Е.В. (2021). Функциональные изменения поджелудочной железы в процессе роста птиц. Птицеводство, 9(2), 180-185.

75. Петрова А.В. Влияние режима кормления на морфологическое развитие пищеварительных органов перепелов. / А.В. Петрова, Ю.М. Смирнов // Птицеводство. - 2019. - №2. - С. 25-30.

76. Петрова Е.В. Оптимизация плотности посадки перепелов в условиях промышленного содержания // Птицеводство. - 2018. - № 6. - С. 3033.

77. Петухова А. М. Морфометрическая характеристика желудочно-кишечного тракта кур пород корниш и плимутрок в постэмбриональном онтогенезе / А. М. Петухова // Дисс.... на соиск. уч. ст. канд. вет. наук.-М., 2013.-17 с : дис. - Российский университет дружбы народов (РУДН), 2013.

78. Пигарева М.Д. Разведение Перепелов / М.Д. Пигарева // Россельхозиздат - 1978 - 80 с.

79. 79. Попова, Л.А. Инкубационные качества перепелиных яиц в зависимости от условий и сроков хранения /Л.А. Попова, А.С. Комарчев // Птица и птицепродукты, 2014, № 1. - С.65-67.

80. Пятницкий, Н.П. Простой способ операций Павловского желудочка у собак / Н.П. Пятницкий // Физиологический журнал СССР. -1953.- Т.39. № 4.-С. 490.

81. Рахманов, А. Разведение домашних и экзотических перепелов / А. И. Рахманов // М.: ООО «Аквариум принт», 2004. - 64 с. 126.

82. Рольник В.В. Биология эмбрионального развития птиц. / В.В. Рольник // Л: Наука - 1968.

83. Селезнев С.Б. Основные принципы структурной организации иммунной системы перепелов / С.Б. Селезнев, Е.А. Кротова, Г.А. Ветошкина, Е.В. Куликов, Л.П. Бурыкина // Вестник РУДН, Серия: Агрономия и животноводство. - 2015. - №4. - С. 68-76

84. Селезнев С.Б., Ветошкина Г.А., Куликов Е.В. Морфология домашней птицы. / С.Б. Селезнев, Г.А. Ветошкина, Е.В. Куликов // Москва: РУДН, 2022. - 144 с.

85. Селезнев, С.Б. Морфология домашней птицы/ С.Б. Селезнев, Г.А. Ветошкина, Е.В. Куликов. Москва // РУДН, 2022. - 144 с.

86. Сергеенкова Н. А. Продуктивность и биологические качества японских перепелов при использовании продуктов жизнедеятельности личинок восковой моли (Galleria mellonella) / Н.А. Сергеенкова // : дис. -Российский государственный аграрный университет-Московская сельскохозяйственная академия им. КА Тимирязева, 2021.

87. Сергеенкова О.В. Влияние режима освещенности на продуктивность и физиологические показатели перепелов // Зооинженерия. -2021. - Т. 9, №3. - С. 98-102.

88. Сидоров П.П. Влияние условий содержания на физиологию пищеварения у перепелов. — Проблемы промышленного птицеводства, 2022, №6, с. 42-50.

89. Сидорова Е.А., Кузнецова А.С. Морфометрические особенности поджелудочной железы у японских перепелов. / Е.А. Сидорова, А.С. Кузнецова // Ветеринарная медицина и зоотехния. - 2019. - №3. - С. 67-72.

90. Сидорова, А.Л. Технология производства яиц и мяса птицы на промышленной основе: учеб. пособие / А.Л. Сидорова; Краснояр. гос. аграр. ун- т. - Красноярск, 2014. - 214 с., ил.

91. Сковородин Е.Н., Бронникова Г.З. Морфология пищеварительных органов у японских перепелов. / Е.Н. Сковородин, Г.З. Бронникова // Москва: КолосС, 2019. - 310 с.

92. Слесаренко Н.А : Особенности анатомии птиц./ Н.А. Слесаренко, Г.А. Ветошкина, С.Б. Селезнев // Учебное пособие для самостоятельной работы студентов по направлению подготовки (специальности) 11 1801 -Ветеринария 2013.

93. Слесаренко Н.А., Борхунова Е.Н., Пименов Н.В. Основы научной методологии: Учебник для вузов по зооветеринарным и биологическим направлениям подготовки - М.:МГАВМиБ, 2013 - 146 с

94. Слесаренко Н.А.; Анатомия и физиология домашних животных / Н.А. Слесаренко, Г.А. Ветошкина, С.Б. Селезнев // - Москва - 2003.

95. Слесаренко, Н.А. Анатомия и гистология птицы / Н.А. Слесаренко, Г.А. Ветошкина, С.Б. Селезнев //Москва: ООО «АртСервис ЛТД», 2015. -138 с.

96. Смирнова Л.П. Роль пищеварительных ферментов в метаболизме птиц. — Птицеводство, 2016, №3, с. 60-65.

97. Стрижиков, В.К. Морфологические особенности строения и кровоснабжения желудочно-кишечного тракта у домашней курицы / В.К. Стрижиков, A.B. Крыгин // Эколого-экспериментальные аспекты функциональной и возрастной морфологии домашних птиц. - Воронеж, 1988. - С.55-59.

98. Тарасов И.А. Анатомо-физиологические особенности перепелов и их адаптация к условиям содержания. / И.А. Тарасов, В.П. Иванов // Современные проблемы птицеводства. - 2018. - №4. - С. 90-97.

99. Тельцов Л.П. Пути управления онтогенезом сельскохозяйственных животных / Л.П. Тельцов // Актуальные проблемы ветеринарного образования: Материалы конференции -Барнаул, 1998.- С.264-266.

100. Тельцов Л.П. Развитие органов млекопитающих и птиц в онтогенезе / Л.П.Тельцов, И.Г. Музыка, Е.В. Зайцева, Н.Н. Крикливый // Механизмы и закономерности индивидуального развития человека и животных. -Саранск, 2015. - С.203-207.

101. Тельцов Л.П. Этапность развития органов человека и животных в онтогенезе / Л.П. Тельцов // Естествознание на рубеже столетий - М.:Дагомыс, 2001. Т.2.- С.135-140.

102. Тельцов, Л.П. Концепция выращивания животных и увеличения продукции животноводства в 2-3 раза / Л.П. Тельцов // Современнные наукоемкие технологии, 2004. №2.-С.27-31.

103. Тельцов, Л.П. Периодизация развития крупного рогатого скота / Л.П. Тельцов // Сельскохозяйственная биология.- М., 2000. №4.- С.13-19.

104. Тельцов, Л.П. Схема генераций органов пищеварения в онтогенезе/Тельцов Л.П., Шашанов И.Р., Шагиахметов Ю.С.//3 сьезд анатомов, гистологов, эмбриологов Российской Федерации. Материалы сьезда. Тюмень, 1994- С.202-203.

105. Тельцов, Л.П. Управление онтогенезом сельскохозяйственных животных / Л.П. Тельцов // Актуальные проблемы патологии животных и человека.- Н.Новгород, 1996.- С. 138-140.

106. Тельцов, Л.П. Этапность развития органов человека и животных и наследственность в онтогенезе / Л.П. Тельцов // Естествознание на рубеже столетий.- М. Дагомыс, 2001.-Т.2. -С.135-140.

107. Тикк Х. Перепелийное хозяйство /Х. Тикк, В.Тикк, В. Непс //Птицеводство.- 2004.- С.30-32.

108. Тубол О.В Постинкубационный морфогенез селезенки у японских перепелов / О.В. Тубол // Саранк, 2009 - С. 24.

109. Фисинин, В.И. Птицеводство в России в 2011 году: состояние и перспективы инновационного развития до 2020 года В.И. Фисин // Мат. XVII Межд. конф. Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве. -Сергиев Посад. - 2012. - С. 7-17.

110. Хохлов Р.Ю. Критические фазы морфогенеза яйцевода кур / Р.Ю. Хохлов // Аграрный научный журнал. 2008. № 3. - С.48-49.

111. Хрусталева И.В., Анатомия домашних животных / И.В. Хрусталева // Учебник для вузов по специальности "Ветеринария" Москва - 2002.

112. Цариков, H.H. Деятельность мышечного желудка и сердца с.-х. птиц при действии адекватных и неадекватных раздражителей / Н.Н. Цариков // Автореф. дис. д.б.н. -М., 1973. - 19 с.

113. Чернявская Н.Н. Морфологические изменения в поджелудочной железе перепелов при использовании различных кормовых добавок. / Н.Н. Чернявская // Научные труды Российской академии наук. - 2020. - №5. - С. 112-120.

114. Шевырина С. В. Морфологические изменения желудка японских перепелов в возрастом аспекте / С.В. Шевырина // Диссертация Кандидата Наук. Саранск - 2010 .

115. Шелудяков, М.С., Выращивание японских перепеловв условиях ОАО «СНЕЖКА» Бриянской области / О.В. Тубол, Е.Е. Статник, Ю.В. Разлуго,С.В. Шевырина, М.С. Шелудяков, Н.Н. Крикливый, Е.В. Зайцева//Труды Кубанского государственного аграрного университета, 2009. - № 1. Ч.2. - С. 337-339.

116. Шестакова В. А. Структурно-функциональные особенности пищеварительной и половой систем сельскохозяйственной птиц В.А. Шестакова // Вклад молодых биологов в решение вопросо продовольственной программы и охраны окружающей среды. Тез. Докл. Конф. Улан-Удэ, 1987. -С. 143-144.

117. Шнейберг, Я.И. Закономерность функциональной адаптации птиц к воздействию факторов внешней среды в различные периоды онтогенеза: эколого-экспериментальные аспекты функциональной, породной и возрастной морфологии домашних птиц / Я.И. Шнейберг // Межвузовский сборн. Научн. Струдов. Воронеж, 1988. - С.09-117.

118. Щербина, П.Ф. Закономерности роста и мясная продуктивность индеек в зависимости от породы и системы выращивания их на мясо. / П.Ф. Щербина: Тез. Докл. Межвузовск. Науч. Конф. Киев, 1966. С.67- 72.

119. Элленберг, В. Руководство по сравнительной физиологии домашних животных / В. Элленберг, А. Шейнер. - М.: Сельхозгиз, 1933. 325 с.

120. Яблоков, А.В. Эволюционное учение / А.В. Яблоков, А.Г. Юсуфов М.: Высшая школа, 1998.- 336 с.

121. Якубовский, М.В. JI возрастной морфологии желудочно-кишечного тракта и селезенки уток. / М.В. Якубовский // Материалы научно-

методической конф. анат., гистол. и эмбриол. с/х вузов. М., вып. 2. 1963.- С. 112-114.

122. Ecies: A comparative study. / M.W. Bradbury, J.P. Harris, L.M. Smith // Journal of Morphology. - 1987. - Vol. 191(2). - pp. 237-249.

123. Bagh, J., Panigrahi, B., Panda, N., Pradhan, C.R. "Body weight, egg production, and egg quality traits of gray, brown, and white varieties of Japanese quail." // Veterinary World. - 2016. - Volume 9, Issue 8, Pages 832-836.

124. Brown, C.M., & Taylor, J.D. (2019). Nutritional modulation of pancreatic enzyme secretion in poultry. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 103(4), 1065-1072.

125. Brown, D., et al. Endocrine development in the avian pancreas: Cellular and molecular perspectives. / D. Brown, E. Johnson, S. Davis // Poultry Science. -2018. - Vol. 97(5). - pp. 1723-1732. DOI: 10.3382/ps/pey005.

126. Brown, L.E., Garcia, M. Histological analysis of pancreatic tissue in quail during various growth stages. / L.E. Brown, M. Garcia // Veterinary Morphology Journal. - 2020. - Vol. 48(2). - pp. 157-165.

127. Chen, R., et al. Glucagon expression in avian species: A comparative immunohistochemical study. / R. Chen, M. Gao, Y. Huang // Journal of Avian Biology. - 2019. - Vol. 50(4). - e02298. DOI: 10.1111/jav.02298.

128. Chen, W.H., Wang, Y.M., & Zhang, H. (2018). Influence of photoperiod on hormone secretion in poultry. International Journal of Poultry Science, 17(5), 245-250.

129. Decuypere, E., & Michels, H. (1992). Incubation temperature as a management tool: a review. World's Poultry Science Journal, 48(1), 28-38.

130. Deeming D.C., ed. (2002). Avian Incubation: Behaviour, Environment, and Evolution. Oxford University Press.

131. Deshpande, P.V., et al. Role of insulin in glucose metabolism in poultry. / P.V. Deshpande, H. Kumar, A. Sharma // Poultry Science Review. - 1994. - Vol. 11(2). - pp. 132-140.

132. Dukes, H.H. Dukes' Physiology of Domestic Animals. / H.H. Dukes // 11th ed. - Cornell University Press, 1993. - 1084 p.

133. Effect of long-term selection for egg production on eggshell quality of Japanese quail" by M.M. Fathi et al. (2016)

134. Germer, C.T., et al. The role of exocrine pancreatic function in avian species. / C.T. Germer, M. Rohde, W. Peters // Comparative Biochemistry and Physiology. - 1992. - Vol. 101(3). - pp. 415-420.

135. Gilbert S.F. (2014). Developmental Biology (10th ed.). Sinauer Associates.

136. Gleaves, P. The anatomy and function of the digestive organs in poultry. / P. Gleaves // Journal of Avian Digestive Physiology. - 1977. - Vol. 29(2). - pp. 6069.

137. Gradwohl G., Dierich A., LeMeur M., Guillemot F. (2000). neurogenin3 is required for the development of the four endocrine cell lineages of the pancreas. Proceedings of the National Academy of Sciences, 97(4), 1607-1611.

138. Gregg B.E., Moore P.C., Demozay D., Hall B.A., Li M., Husain A., Wright A.J., Atkinson M.A., Rhodes C.J. (2012). Formation of insulin-producing endocrine cells from human pancreatic ductal cells stem cell differentiation into islets. Stem Cells Translational Medicine, 1(1), 36-43.

139. Gulmez, M., et al. Morphological and histological studies on the exocrine pancreas of goose. / M. Gulmez, A. Taskin, H. Turkmen // Journal of Veterinary Science. - 2004. - Vol. 9(4). - pp. 367-375.

140. Guz Y., Montminy M.R., Stein R., Leonard J., Gamer L.W., Wright C.V., Teitelman G. (1995). Expression of murine STF-1, a putative insulin gene

101

transcription factor, in P cells of pancreas, duodenal epithelium and pancreatic exocrine and endocrine progenitors during ontogeny. Development, 121(1), 11-18.

141. Habener J.F., Kemp D.M., Thomas M.K. (2005). Minireview: transcriptional regulation in pancreatic development. Endocrinology, 146(3), 10251034.

142. Hafez, E.S.E. Reproductive physiology and the endocrine system in poultry. / E.S.E. Hafez // Journal of Poultry Science. - 1975. - Vol. 54(2). - pp. 310321.

143. Hamburger, V. Post-embryonic development of the pancreas in domestic birds: A histological study. / V. Hamburger // Journal of Comparative Embryology. - 1960. - Vol. 98(1). - pp. 135-144.

144. Hossain, M. Impact of fatty liver on egg production in laying hens. / M. Hossain, et al. // Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. - 2020. - Vol. 104(3). - pp. 925-934.

145. Harvey, W. Anatomical observations on the pancreas and its function in birds and mammals. / W. Harvey // De Generatione Animalium. - 1645. - pp. 50-60.

146. Ivanov, A., et al. Growth dynamics of digestive organs in birds during early postembryonic development. / A. Ivanov, P. Petrov, M. Sidorova // Journal of Avian Biology. - 2020. - Vol. 51(3). - pp. 365-374. DOI: 10.1111/jav.12345.

147. Jensen J. (2004). Gene regulatory factors in pancreatic development. Developmental Dynamics, 229(1), 176-200.

148. Johnson, A.L. (2020). Avian endocrinology: pancreas and metabolic regulation. Advances in Avian Biology, 10, 85-102.

149. Johnson, J., & Barnes, J. (2020). Nutritional modulation of pancreatic function in poultry. World's Poultry Science Journal, 76(2), 223-234.

150. Johnston, P.M. Breeding practices and their effects on the digestive organs of quails. / P.M. Johnston // Journal of Poultry Science. - 1982. - Vol. 39(4). - pp. 210-218.

151. Jolly, W.A. The post-hatching development of the pancreas in domestic fowl. / W.A. Jolly // Journal of Embryology and Experimental Morphology. - 1976. - Vol. 36(3). - pp. 465-472.

152. Jones, D.R., Smith, J.L., & Wilson, L.A. (2018). Stress and its impact on avian pancreatic function. Poultry Science, 97(7), 210-220.

153. Jones, D.R., Smith, J.L., & Wilson, L.A. (2021). Stress and its impact on avian pancreatic function. Poultry Science, 100(7), 1010-1020.

154. Jones, D.R., Williams, K.A., & Taylor, R.L. (2016). Gross morphology of the avian pancreas. Journal of Avian Biology, 47(5), 623-630.

155. Jones, D.R., Williams, K.A., & Taylor, R.L. (2020). Growth patterns of the exocrine pancreas in growing birds. Poultry Science, 99(5), 210-220.

156. Jones, L., Wilson, A. Age-related morphological and functional changes in the avian pancreas: Insights into adaptive mechanisms. / L. Jones, A. Wilson // International Journal of Poultry Science. - 2020. - Vol. 19(3). - pp. 225-232. DOI: 10.3923/ijps.2020.225.232.

157. Jones, R.B., & Farrell, D.J. (2017). Effects of cold stress on the performance of poultry. World's Poultry Science Journal, 73(4), 687-698.

158. Kim S.K., Hebrok M. (2001). Intercellular signals regulating pancreas development and function. Genes & Development, 15(2), 111-127.

159. Kim, Y.K., et al. Regulation of pancreatic secretion in birds: A comparative approach. / Y.K. Kim, L. Jackson, S. Park // Journal of Avian Physiology. - 2000. - Vol. 44(2). - pp. 235-242.

160. Durrant, S., Robinson, F. Genetic improvement in poultry breeding: Effects on pancreatic function. / S. Durrant, F. Robinson // Poultry Breeding Research. - 2019. - Vol. 14(3). - pp. 119-127.

161. Dyce, K.M., Sack, W.O., Wensing, C.J.G. Textbook of Veterinary Anatomy. / K.M. Dyce, W.O. Sack, C.J.G. Wensing // Saunders Elsevier, 2010. -872 p.

162. French N.A. (1997). Modeling incubation temperature: the effects of incubator design, embryonic development, and egg size. Poultry Science, 76(1), 124-133.

163. Garcia, M., et al. Comparative pathology of pancreatic diseases in domestic fowl and quail. / M. Garcia, L.E. Brown, J. Davis // Journal of Poultry Medicine. - 2001. - Vol. 34(2). - pp. 125-132.

164. King, A.S., McLelland, J. Birds: Their Structure and Function. / A.S. King, J. McLelland // Bailliere Tindall, 1984. - 350 p.

165. King, A.S., McLelland, J. Outlines of Avian Anatomy. / A.S. King, J. McLelland // Bailliere Tindall, 1975. - 330 p.

166. Klasing, K.C. The role of the pancreas in avian digestion and nutrition. / K.C. Klasing // Journal of Comparative Physiology. - 1985. - Vol. 55(3). - pp. 243256.

167. Ku, J.Y., et al. An immunohistochemical study of insulin-, glucagon-and somatostatin-immunoreactive cells in the developing pancreas of chicken embryos. / J.Y. Ku, M. Park, T. Lee // Journal of Poultry Research. - 2000. - Vol. 15(2). - pp. 145-157.

168. Leeson S., Summers J.D. (2005). Commercial Poultry Nutrition (3rd ed.). University Books.

169. Liu, C. Nutritional management and fatty liver syndrome in poultry. / C. Liu, et al. // Poultry Science. - 2015. - Vol. 94(7). - pp. 1558-1565.

170. Li, Z. The effects of obesity on the pancreas in poultry. / Z. Li, et al. // Veterinary Research. - 2016. - Vol. 47(1). - pp. 70.

171. Liu, H., et al. Insulin expression in avian pancreatic islets: Implications for glucose homeostasis during development. / H. Liu, X. Zhang, Y. Li // Poultry Science. - 2018. - Vol. 97(7). - pp. 2505-2515. DOI: 10.3382/ps/pey007.

172. Lourens A., van den Brand H., Meijerhof R., Kemp B. (2005). Effect of eggshell temperature during incubation on embryo development, hatchability, and posthatch development. Poultry Science, 84(6), 914-920.

173. Malpighi, M. Early studies of the pancreas in birds: A comprehensive analysis. / M. Malpighi // Opera Omnia. - 1697. - pp. 135-145.

174. Marieb, E.N., Hoehn, K. Human Anatomy & Physiology. / E.N. Marieb, K. Hoehn // 10th ed. - Pearson Education, 2016. - 1264 p.

175. McLelland, J. A Colour Atlas of Avian Anatomy. / J. McLelland // Wolfe Publishing Ltd, 1990. - 160 p.

176. Mcleod, R.W. The anatomy of the pancreas in domestic fowl. / R.W. Mcleod // Journal of Poultry Science. - 1965. - Vol. 4(1). - pp. 45-56.

177. Meijerhof R., van Beek G. (1993). Mathematical modeling of temperature and moisture loss of hatching eggs. Journal of Theoretical Biology, 165(1), 27-41.

178. Miller, R.A., Johnson, J.E., & Thompson, M.B. (2018). Ontogeny of the avian pancreas. Developmental Dynamics, 247(4), 123-132.

179. Miyazaki, T., et al. The role of the pancreas in avian digestive diseases: A pathological review. / T. Miyazaki, Y. Kato, S. Nakamura // Veterinary Pathology. - 2020. - Vol. 57(3). - pp. 250-261.

180. Müller, W.A. The ultrastructure of pancreatic islets in birds: A comparative study. / W.A. Müller // Journal of Ultrastructure Research. - 1970. -Vol. 35(3). - pp. 210-222.

181. Murphy, C.J., et al. The fine structure of the exocrine pancreas in birds: A histochemical study. / C.J. Murphy, D.S. Williams, K.C. Johnson // Journal of Histochemistry and Cytochemistry. - 1988. - Vol. 36(2). - pp. 150-160.

182. Murtaugh L.C. (2007). Pancreas and beta-cell development: from the actual to the possible. Development, 134(3), 427-438.

183. Murtaugh L.C., Stanger B.Z., Kwan K.M., Melton D.A. (2003). Notch signaling controls multiple steps of pancreatic differentiation. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100(25), 14920-14925.

184. Nguyen, L.T., Santos, A.C., & Wilson, L.A. (2021). Hormonal regulation in the avian pancreas during growth. Endocrinology and Metabolism, 35(2), 192-200.

185. 183. Nguyen, L.T., Santos, A.C., & Wilson, L.A. (2021). Hormonal regulation in the avian pancreas. Endocrinology and Metabolism, 35(2), 192-200.

186. Nguyen, L.T., Wilson, L.A., & Santos, A.C. (2019). Cardiovascular development in avian species. Avian Biology Research, 12(4), 212-220.

187. Nickel, R., et al. A comparative anatomical study of the avian digestive system. / R. Nickel, A. Schummer, E. Seiferle // Journal of Poultry Science. - 1986. - Vol. 29(2). - pp. 123-130.

188. Nickel, R., et al. Anatomy of the Domestic Birds. / R. Nickel, A. Schummer, E. Seiferle // Springer-Verlag, 1977. - 202 p.

189. Nir, I., Nitsan, Z., & Mahagna, M. (1993). Comparative growth and development of the digestive organs and some enzymes in broiler and egg type chicks after hatching. British Poultry Science, 34(3), 523-532.

190. Nitsan, Z., Ben-Avraham, G., Zoref, Z., & Nir, I. (1991). Growth and development of the digestive organs and some enzymes in broiler chicks after hatching. British Poultry Science, 32(3), 515-523.

191. Nofal, M. Morphological and histological studies of avian pancreas in health and disease. / M. Nofal // Journal of Comparative Pathology. - 1995. - Vol. 113(4). - pp. 375-386.

192. Noy Y., Sklan D. (1998). Yolk utilization in the newly hatched poult. British Poultry Science, 39(3), 446-451.

193. Noy, Y., & Sklan, D. (1997). Posthatch development in poultry. Journal of Applied Poultry Research, 6(3), 344-354.

194. Offield M.F., Jetton T.L., Labosky P.A., Ray M., Stein R.W., Magnuson M.A., Hogan B.L., Wright C.V. (1996). PDX-1 is required for pancreatic outgrowth and differentiation of the rostral duodenum. Development, 122(3), 983-995.

195. Oliver-Krasinski J.M., Stoffers D.A. (2008). On the origin of the ( cell. Genes & Development, 22(15), 1998-2021.

196. Petersen, M.C., & Sutton, D.M. (2018). Exocrine pancreatic function in birds. Comparative Biochemistry and Physiology Part A, 224, 1-8.

197. Petrov, M., et al. Biochemical markers of pancreatic function in growing poultry. / M. Petrov, E. Sidorova, V. Kuznetsov // Journal of Poultry Science. - 2021. - Vol. 56(1). - pp. 45-53.

198. Petrov, M., et al. The maturation of metabolic systems in growing birds: Implications for organ development. / M. Petrov, A. Ivanov, V. Kuznetsov // Poultry Science. - 2019. - Vol. 98(4). - pp. 1350-1360. DOI: 10.3382/ps/pez123.

199. Pugach, E.P., et al. Morphogenesis and histogenesis of the pancreas in embryonic birds. / E.P. Pugach, T.V. Rogova, L.A. Sidorova // Journal of Developmental Biology. - 1985. - Vol. 20(3). - pp. 85-92.

200. Ricklefs, R.E. (1983). Avian postnatal development. In: Avian Biology (Vol. VII, pp. 1-83). Academic Press.

201. Robinson, F. Glucose homeostasis in birds: The role of pancreatic hormones. / F. Robinson // Poultry Science Review. - 1992. - Vol. 3(1). - pp. 45-58.

202. Romanoff, A.L. Early development of the pancreas in birds: A morphological study. / A.L. Romanoff // Journal of Embryology. - 1930. - Vol. 7(1). - pp. 40-55.

203. Romanoff, A.L. The Avian Embryo: Structural and Functional Development. / A.L. Romanoff // Macmillan, 1960. - 1305 p.

204. Romer, A.S. Comparative anatomy of the vertebrate pancreas: From reptiles to birds. / A.S. Romer // Journal of Comparative Anatomy. - 1949. -Vol. 34(4). - pp. 210-220.

205. Romer, A.S., Parsons, T.S. The Vertebrate Body. / A.S. Romer, T.S. Parsons // 6th ed. - Saunders College Publishing, 1985. - 679 p.

206. Sadler T.W. (2012). Langman's Medical Embryology (12th ed.). Lippincott Williams & Wilkins.

207. Santos, A.C., Wilson, L.A., & Nguyen, L.T. (2020). Developmental stages of the avian pancreas. World's Poultry Science Journal, 76(3), 176-185.

208. Santos, A.C., Wilson, L.A., & Nguyen, L.T. (2020). Digestive enzyme activity in poultry: a review. World's Poultry Science Journal, 76(3), 493-508.

207. Scanes, C.G. (2015). Sturkie's Avian Physiology (6th ed.). Academic

Press.

209. Scanes, C.G. Sturkie's Avian Physiology. / C.G. Scanes // 7th ed. -Academic Press, 2021. - 1000 p.

210. Seyed, M., et al. Comparative anatomy of the digestive system in poultry. / M. Seyed, R. Alavi, N. Hadi // International Journal of Veterinary Science. - 2002. - Vol. 7(4). - pp. 175-183.

211. Sidorova, E., Kuznetsov, V. Morphological adaptation of the pancreas in birds during ontogeny. / E. Sidorova, V. Kuznetsov // International Journal of Poultry Science. - 2018. - Vol. 17(8). - pp. 412-419. DOI: 10.3923/ijps.2018.412.419.

212. Siegel, H.S. (1995). Stress, strains and resistance. British Poultry Science, 36(1), 3-22.

213. Simsek, T., et al. Splenic lobe of the pancreas in young Japanese quails. / T. Simsek, S. Yildirim, A. Ozturk // Poultry Science. - 2006. - Vol. 85(3). - pp. 562-567.

214. Slack J.M.W. (1995). Developmental biology of the pancreas. Development, 121(6), 1569-1580.

215. Smith, A.L., Jones, D.R., & Brown, C.R. (2018). Effects of heat stress on poultry production. Poultry Science, 97(7), 2020-2025.

216. Smith, J., et al. Morphological features of the avian pancreas: A comparative histological study. / J. Smith, L. Brown, A. White // Journal of Avian Biology. - 2017. - Vol. 48(2). - pp. 157-167. DOI: 10.1111/jav.12467.

217. Smith, J.L., Johnson, J.E., & Brown, C.M. (2017). Anatomy and histology of the avian pancreas. Poultry Science, 96(8), 2505-2513.

218. Smith, J.L., Johnson, J.E., & Brown, C.M. (2018). Post-hatch development of the pancreas in Japanese quail. Journal of Avian Biology, 49(4), e01765.

219. Smith, J.L., Johnson, J.E., & Brown, C.M. (2021). Predicting organ mass in birds using allometry. Poultry Science, 100(5), 198-210.

220. Smith, J.L., Jones, D.R., & Brown, C.M. (2020). Application of allometric equations in poultry science. Nutrition Research Reviews, 33(1), 190— 205.

221. Smith, J.L., Jones, D.R., & Brown, C.M. (2022). Dietary influences on pancreatic function in birds. Nutrition Research Reviews, 35(1), 123-135.

222. Sturkie, P.D. Avian Physiology. / P.D. Sturkie // 3rd ed. - SpringerVerlag, 1976. - 620 p.

223. Subramanian, S., et al. Pancreatic necrosis in poultry: Causes, symptoms, and treatments. / S. Subramanian, J. Wang, P. Li // Journal of Avian Diseases. - 2019. - Vol. 64(1). - pp. 45-52.

224. Sundaram, K. Developmental anatomy of the avian pancreas: Role of the splenic lobe. / K. Sundaram // Journal of Avian Anatomy. - 1998. - Vol. 10(3). -pp. 223-230.

225. Sundaram, K., et al. Hormonal regulation of pancreatic enzymes in birds. / K. Sundaram, P. Ganesan, M. Prakash // International Journal of Avian Science. - 2019. - Vol. 23(3). - pp. 155-163.

226. Surai P.F. (2002). Natural antioxidants in avian nutrition and reproduction. Nottingham University Press.

227. Taskin, A., Gulmez, M. Pancreatic enzyme activity in birds: Effects of diet and age. / A. Taskin, M. Gulmez // Poultry Nutrition Review. - 2020. - Vol. 17(2). - pp. 98-105.

228. Thompson, D. The microscopic anatomy of the pancreas in birds. / D. Thompson // Journal of Microscopy. - 1967. - Vol. 6(2). - pp. 150-160.

229. Thomson, J.D., et al. Genomic analysis of pancreatic development in poultry. / J.D. Thomson, S. Williams, M.J. Turner // Journal of Avian Genetics. -2008. - Vol. 14(2). - pp. 105-115.

230. Tomarev, S.I., Bellairs, R. Developmental stages of the avian pancreas: Morphological and molecular aspects. / S.I. Tomarev, R. Bellairs // Journal of Embryology and Experimental Morphology. - 1988. - Vol. 44(2). - pp. 117-130.

231. Tona K., Onagbesan O., De Ketelaere B., Decuypere E., Bruggeman V. (2004). Effects of age of broiler breeders and egg storage on egg quality, hatchability, chick quality, chick weight, and posthatch growth to forty-two days. Journal of Applied Poultry Research, 13(1), 10-18.

232. Tullett S.G. (1990). Science and the art of incubation. Poultry Science, 69(1), 1-15.

233. Uni, Z., Ganot, S., & Sklan, D. (1998). Posthatch development of mucosal function in the broiler small intestine. Poultry Science, 77(1), 75-82.

234. Watson, J.D., Crick, F.H.C. Molecular structure of nucleic acids: A structure for deoxyribose nucleic acid. / J.D. Watson, F.H.C. Crick // Nature. - 1953. - Vol. 171(4356). - pp. 737-738.

235. Wilson, L.A., Miller, R.A., & Thompson, M.B. (2019). Allometric growth of internal organs in birds. Physiological Reviews, 99(3), 111-123.

236. Wilson, L.A., Miller, R.A., & Thompson, M.B. (2020). Adaptations of the avian pancreas to diet and environment. Physiological Reviews, 100(3), 11791203.

237. Wilson, L.A., Santos, A.C., & Nguyen, L.T. (2022). Advances in avian allometry and its applications. International Journal of Poultry Science, 21(2), 233245.

238. Wolff, A. Electron microscopy of the pancreas in quails: The acinar and islet cells. / A. Wolff // Journal of Comparative Anatomy. - 1974. - Vol. 21(4). - pp. 285-295.

239. Yal?in S., Ozkan S., Siegel P.B. (2016). Exposure to cold or heat during incubation influences embryonic development, residual yolk sac, chick weights, and subsequent growth. Poultry Science, 95(5), 1159-1166.

240. Yin, D. Evaluation of ultrasound and morphometric methods for assessing fat deposition in poultry. / D. Yin, et al. // Animal Production Science. -2019. - Vol. 59(3). - pp. 439-445.

241. Yamada, T., et al. Role of somatostatin in the endocrine regulation of the avian pancreas during ontogenesis. / T. Yamada, K. Sato, M. Ito // International Journal of Poultry Science. - 2020. - Vol. 19(6). - pp. 367-374. DOI: 10.3923/ijps.2020.367.374.

242. Zhang, L., Yue, H.Y., Zhang, H.J., Xu, L., Wu, S.G., Yan, H.J., & Qi, G.H. (2019). Effects of gaseous ammonia and dust on immune response in chickens. Poultry Science, 98(7), 2880-2889.

243. Zhou, L., Wang, Y., & Liu, G. (2019). Respiratory system development and its relation to metabolic demands in birds. Journal of Comparative Physiology B, 189(1), 98-110.

244. Zora, S., et al. Genetic selection for pancreatic function in quails: Breeding practices and their effects. / S. Zora, M. Thompson, A. Grigoriev // Journal of Animal Breeding. - 2009. - Vol. 22(1). - pp. 112-120.