Структурная организация репродуктивных органов японских перепелов в зависимости от влияния экстракта ромашки тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Эльгабри Сахар Эзелдин Хасан Мохамед

• Эльгабри Сахар Эзелдин Хасан Мохамед
• кандидат наук
• 2023

Оглавление диссертации кандидат наук Эльгабри Сахар Эзелдин Хасан Мохамед

ОГЛАВЛЕНИЕ

№ Название стр.

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Общая характеристика перепелов

1.2 Морфологические особенности японских перепелов

1.2.1 Морфологические особенности репродуктивной системы самцов

1.2.2 Морфологические особенности репродуктивной системы самок

1.3 Системы разведения перепелов

1.4 Биохимические особенности японского перепела

1.5 Продуктивность японских перепелов

1.6 Ромашка аптечная

1.6.1 Фармакологические свойства

1.6.2 Применение ромашки в перепеловодстве

2 ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

2.1 Материалы и методы исследования

2.2 Результаты собственных исследований

2.2.1 Общее количество флавоноидов, фенолов и антиоксидантная способность экстракта ромашки

2.2.2 Структурная организация семенников в контрольной и опытной группе

2.2.2.1 Особенности топографии семенников

2.2.2.2 Динамика абсолютной и относительной массы семенников в контрольной и опытной группе

2.2.2.3 Динамика линейных показателей семенников в контрольной и опытной группе

2.2.2.4 Динамика стереометрических параметров семенников в контрольной и опытной группе

2.2.3 Структурная организация яичников в контрольной и опытной группе

2.2.3.1 Особенности топографии яичников

2.2.3.2 Динамика абсолютной и относительной массы яичников в контрольной и опытной группе

2.2.3.3 Динамика линейных показателей яичников в контрольной и опытной группе

2.2.3.4 Динамика стереометрических параметров яичников в контрольной и опытной группе

2.2.4 Структурная организация яйцеводов в контрольной и опытной группе

2.2.4.1 Особенности топографии яйцеводов

2.2.4.2 Динамика абсолютной и относительной массы яйцеводов в контрольной и опытной группе

2.2.4.3 Динамика стереометрических параметров яйцеводов в контрольной и опытной группе

2.2.5 Биохимические исследования сыворотки крови у японских перепелов в контрольной и опытной группе

2.2.6 Продуктивность японских перепелов в контрольной и опытной группе

2.2.6.1 Динамика роста и кормовой эффективности в контрольной и опытной группе

2.2.6.2 Динамика характеристики тушки в контрольной и опытной группе

2.2.6.3 Динамика яйценоскости и качество яиц в контрольной и опытной группе

3. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕНННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ

4. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

5. РЕКОМЕНДАЦИИ И ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АЛТ Аланинаминотрансфераза

АСТ Аспартатаминотрансфераза

ТГ Триглицериды

ОХ Общий холестерин

ЛПНП Липопротеин низкой плотности

ЛПОНП Липопротеины очень низкой плотности

0С Градус Цельсия

ПК Потребление корма

ЖМ Живая масса

ККК Коэффициент конверсии корма

нг Нанограмм

мкг Микрограмм

мкмоль микромоль

мл Микролитр

г грамм

мм Микрометр

Г - Э Гематоксилин и эозин

л Литр

ед Единица

дл Децилитр

А/Г Альбумин/ Глобулин

% Процент

ВКА Внутренние единицы качества альбумина

АКТГ Адренокортикотропный гормон

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Структурная организация репродуктивных органов японских перепелов в зависимости от влияния экстракта ромашки»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы исследования. Многие страны мира увеличили разведение перепелов. Птицеводы интересуются перепелками из-за их быстрого роста, короткого периода созревания, высокой яйценоскости, меньшего пространства, необходимого для выращивания, и короткого инкубационного периода (Rahmani Kahnamoei et а1., 2014). Мясо перепелов содержит высокую концентрацию белка, незаменимых жирных кислот, минералов и витаминов (Gecgel et al., 2015). Перепелиные яйца богаты витамином D и антиоксидантами и в три-четыре раза питательнее куриных яиц ^аЫп et al., 2008; Tunsaringkarn et al., 2013). Перепелов также используют в качестве подопытных животных в биологических исследованиях (Haruna et а!., 2002; Кочиш И.И. и соавт., 2015).

Заболевания репродуктивных органов сельскохозяйственных птиц являются одной из наиболее серьезных проблем неинфекционных заболеваний. Предрасполагает к этому высокая яйценоскость, что в сочетании с несбалансированным кормлением приводит к нарушениям обмена веществ и дисфункции репродуктивных органов. В различных регионах Российской Федерации от болезней неинфекционной этиологии погибает до 40% общего количества отходов (Белогуров А.Н., Трояновская Л.П., 2009; Фисинин В.И., 2012). Экстракты или фракции, выделенные из лекарственных растений, в настоящее время широко применяются у птиц для профилактики заболеваний репродуктивных органов. Ромашка - популярная лекарственная трава, используемая в различных профилактических и лечебных целях (Behnamifar et а!., 2015; Косман В.М. и соавт., 2015). В нашем исследовании делается попытка узнать больше о том, как ромашка аптечная влияет на репродуктивные органы и продуктивные качества японских перепелов.

Степень разработанности. Ожидается, что к середине века население мира достигнет 9 миллиардов человек, что на 34% больше, чем сегодня. Ежегодное производство мяса в 200 миллионов тонн недостаточно и должно

быть увеличено до 470 миллионов тонн (ФАО, 2009). Помимо увеличения поголовья стада и растущей нехватки продуктов животноводства, здоровье животных имеет решающее значение. Для улучшения здоровья и продуктивности животных в рационы кормления животных на производственных предприятиях вводятся различные кормовые добавки. По мнению Хохлова Р.Ю. и Кузнецова С.И. (2009), перепела обладают высокой яичной продуктивностью, но об их биологических особенностях известно мало. Таким образом, исследования, уточняющие морфологические и биохимические свойства различных систем организма перепелов, в частности репродуктивной системы, представляют, как научный, так и практический интерес. Кроме того, мы исследуем влияние ромашки не только на структуру органов размножения, но и на их продуктивность.

Целью исследования является изучение постэмбрионального органогенеза репродуктивной системы японских перепелов, получавших экстракт ромашки, а также их яичной продуктивности с учетом биохимических показателей крови.

Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи:

1. Уточнить топографию и анатомическое строение репродуктивных органов японских перепелов;

2. Изучить морфометрические (весовые и линейные) показатели репродуктивных органов японских перепелов, получавших экстракт ромашки;

3. Описать микроскопические изменения структуры репродуктивных органов японских перепелов, получавших экстракт ромашки, на основе стереометрического анализа;

4. Установить общие принципы строения и развития репродуктивных органов японских перепелов, получавших экстракт ромашки, с учетом биохимической картины сыворотки крови;

5. Изучить яйценоскость и качества яиц японских перепелов как в контрольной группе, так и в опытной, получавшей экстракт ромашки

Научная новизна исследования. Впервые с использованием макро- и микропрепарирования, морфометрического, гистологического,

стереометрического, биохимического и биостатистического методов исследования изучено влияние водного экстракта ромашки аптечной на структуру репродуктивных органов и качество яиц японских перепелов. Водный экстракт ромашки аптечной влияет на морфометрические показатели семенников (10,3-14,5%), яичников (4,7-8,2%), яйцеводов (7,2%), особенно в возрасте от 30 до 60 дней. Согласно данным стереометрического анализа экстракт ромашки способствует к 90-дневному возрасту у перепелов лучшему развитию на белковых (62.6±1.0%) и скорлуповых (60.1±1.2%) желез яйцевода, обеспечивая в дальнейшем их лучшую яичную продуктивность. Полученные результаты могут быть использованы в качестве «нормативных показателей» в области морфологии птиц, а также для профилактики у перепелов болезней органов размножения.

Теоретическая и практическая значимость исследования обусловлена тем, что установленные закономерности органогенеза репродуктивных органов японских перепелов обобщают и дополняют отдельные положения теории индивидуального развития птиц, создавая новые возможности для их применения в промышленном птицеводстве. Возрастные особенности репродуктивных органов служат «морфологической нормой», которую необходимо учитывать при формулировании критериев рассмотрения отклонений от него, вызванных воздействием на организм экстремальных факторов. Водный экстракт ромашки повышал яйценоскость и значительно снижал коэффициент конверсии корма (3,73±0,08 г корма/г массы яйца) по сравнению с контрольной группой (4,12±0,17 г/г). Таким образом, результаты исследований расширяют, дополняют и углубляют сведения о влиянии экстракта ромашки на репродуктивные органы и яичную продуктивность перепелов и могут быть положены в основу ее совершенствования. Более того, перепеловодам можно рекомендовать использовать ромашку аптечную в кормлении перепелов.

Результаты исследований используются в учебном процессе при обучении аспирантов и студентов по направлениям подготовки «Ветеринария», «Зоотехния», «Ветеринарно-санитарная экспертиза» в ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов», ФГБОУ ВО «Башкирский государственный университет», ФГБОУ ВО «Брянский государственный университет имени И. Г. Петровского», ФГБОУ ВО «Великолукская государственная сельскохозяйственная академия», ФГБОУ ВО «Пензенский государственный аграрный университет».

Методология и методики исследования. Изучение топографии и структуры репродуктивных органов японского перепела на разных возрастных этапах, а также изменения их морфометрических показателей на разных стадиях перепелиного возраста, которые сопровождаются изменением биохимического профиля крови, проводили на основе положений, изложенных в работах отечественных и зарубежных исследователей в области перепеловодства, морфологии и физиологии птиц. Практические исследования проведены в соответствии со стандартными методами и действующими нормативными показателями.

При выполнении диссертационной работы применялся комплексный методический подход, включающий макро- и микропрепарирование, морфометрию, биохимию, классическое гистологическое исследование с последующей стереометрией и биостатистический анализ цифровых данных, который послужил основой для изучения влияния экстракта ромашки на репродуктивные показатели японских перепелов, а также позволил получить объективные и достоверные результаты исследования. Применяемые методики исследования подробно приведены в разделе диссертации «Материалы и методы исследований».

Степень достоверности и апробация результатов исследования.

Исследование выполнялось в экспериментальной научно-

исследовательской лаборатории и виварии Департамента ветеринарной

медицины Аграрно-технологического института Российского университета

8

дружбы народов в период с 2020 по 2023 гг. на достаточном поголовье японских перепелов эстонской породы, полученный материал обработан с помощью статистического пакета анализа данных Microsoft Office 2019 и достоверно подтвержден полнотой рассмотрения предмета исследований в процессе работы. Заключение и практические предложения обоснованы данными, которые представлены в таблицах и рисунках и диссертации.

Внедрение в учебный процесс и всесторонняя апробация материалов диссертации на 6 научно-практических конференциях свидетельствуют о надежности материалов. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на Всероссийской (национальная) научно-практической конференции «Морфология в XXI веке: теория, методология, практика» (Москва, 2023), XIII-XIV международной научно-практической конференции «Инновационные процессы в сельском хозяйстве» (Москва, 2022-2023), международной научно-практической конференция «Достижения и перспективы создания новых растительных лекарственных средств» (Москва, 2023), Международной научной конференции молодых ученых и специалистов, посвященная 135-летию со дня рождения А.Н. Костякова (Москва, 2022).

Личный вклад автора в работу. Представленная работа является результатом диссертационного исследования, которое проводилось в период с 2021 по 2023 годы. Наблюдения и опыты, связанные с изучением влияния ромашки на продуктивные и воспроизводительные показатели японских перепелов, проводились автором самостоятельно.

Публикация результатов исследования. По материалам

диссертации опубликовано 9 научных публикаций, в том числе 3 статьи в рецензируемых журналах, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства науки и высшего образования Российской Федерации, 2 статьи в изданиях, индексируемых в Международных базах данных Scopus.

Объем и структура диссертация. Диссертация изложена на 147 страницах компьютерного текста, содержит 22 таблицы и 39 рисунков. Работа состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, результаты исследования, обсуждение полученных результатов, выводы, рекомендации и перспективы дальнейшей разработки темы. Список литературы включает 192 источников, в том числе 125 иностранных.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту: 1. Динамика весовых и линейных параметров репродуктивных органов у японских перепелов в контрольной группе, так и в опытной, получавшей экстракт ромашки.

2. Структурная организация репродуктивных органов у японских перепелов у японских перепелов контрольной и опытной групп в различные возрастные периоды постэмбрионального онтогенеза

3. Общие принципы строения репродуктивных органов у японских перепелов с учетом биохимического профиля крови и влияния экстракта ромашки.

4. Сравнительный анализ яичной продуктивности у японских перепелов в контрольной группе, так и в опытной, получавшей экстракт ромашки

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 Общая характеристика перепелов

Перепела относятся к птицы, курообразные, фазановые и делятся на диких и домашних перепелов. Существует два вида диких перепелов: обыкновенный перепел (Coturnix coturnix) и японский перепел (Coturnix japónica). Обыкновенный перепел широко распространен по всему миру и имеет многочисленные подвиды в Европе, Африке и Азии из-за его более высокой способности к миграции, в то время как дикие японские перепела в основном встречаются в Восточной Азии (Zheng, 1997; Фисинин, 2012). Многие исследователи считают XI век временем одомашнивания перепелов в Японии. Перепела обитают на пастбищах, сельскохозяйственных угодьях, берегах рек, альпийских лугах и злаковых степях. Первоначально их разводили как декоративных птиц, и только в 20 веке их начали выращивать для мяса и яиц (А. Н. Белогуров, 2012; Вракин, 1984). Японцы выбирали перепелов в период с 1910 по 1941 год, чтобы увеличить производство яиц, и к 1940 году развился прибыльный бизнес. Однако во время второй мировой войны большинство линий по производству яиц, а также все линии по производству певчих перепелов были уничтожены. Несколько оставшихся одомашненных птиц использовались для восстановления перепелиной индустрии после войны, возможно, с добавлением одомашненных линий из Кореи, Китая и Тайваня, а также перепелов, пойманных в дикой природе. Все используемые в настоящее время лабораторные и коммерческие линии японских перепелов произошли от этой послевоенной популяции (Cheng et al., 2010). У японского перепела 32 пары микрохромосом и семь пар макрохромосом, включая половые хромосомы. Kayang et al. (2006) опубликовали интегрированную карту связей.

1.2 Морфологические особенности японского перепела

Самцы японских перепелов имеют темно-коричневую грудку и коричневые перья на шее. У них над клоакой расположена розоватая копчиковая железа. Перья на шее у самок светлее перьев на груди и имеют серо-черные пятна. Клюв у них светлее, чем у самцов, кожа вокруг клоаки темнее, копчиковая железа отсутствует (Елизаров et а!., 2002; Каденкова & Корнилова, 2005). Птенцы перепелов развиваются стремительно; в 11 дней они имеют маховые рулевые перья, в 19 дней полностью оперены, а в 35-40 дней напоминают взрослых птиц (Авраменко, 2002; А. Н. Белогуров, 2012; Рахманов, 2006). Отличительной чертой перепелиных яиц является их пигментация. Цвет яиц варьирует от белого до пятнисто-пестрого (Джавадов & Полежаев, 2004).

САМЕЦ ПЕРЕПЕЛА САМКА ПЕРЕПЕЛА

Рис. 1. Самцы японского перепела (слева), Самки (справа).

В дополнение к своему экономическому значению, перепел является обычной лабораторной птицей во многих научных исследованиях (Chang et al., 2005). Для этого часто используют японских перепелов. Они

являются лучшими исследовательскими животными для изучения поведения, питания, генетики, роста, физиологии, эндокринологии, фармакологии и токсикологии из-за их небольшого размера тела (80-300 г), короткого времени генерации (3-4 поколения в год), высокой яйценоскость, устойчивость к болезням и недорогие требования к выращиванию. Известны многочисленные мутации, и было получено несколько штаммов для использования в исследованиях. перепела использовались в качестве модели в многочисленных исследованиях (Hazard et al., 2005; Кочетова et al., 2006).

Поскольку они имеют заметные и четко определенные половые различия в поведении, японские перепела широко используются для изучения эндокринных и нервных механизмов, контролирующих половую дифференциацию и репродуктивное поведение. Гонадотропин -ингибиторный гормон впервые был обнаружен у перепелов. Он напрямую ингибирует секрецию гонадотропинов, воздействуя на гипофиз. Японских перепелов часто используют в качестве модельных видов токсичности для птиц, поскольку хорошо известно, как их гормоны регулируют половое развитие и поведение (Пигарева & Афанасьев, 1989; Тубол et al., 2009). Они являются важной моделью для изучения воздействия химических веществ, разрушающих эндокринную систему.

Перепел является наиболее подходящим животным для изучения влияния химических веществ на трансгенерацию из-за их раннего созревания и короткого периода генерации. Перепел был популярной моделью для исследования генетики птиц по тем же причинам. Они имели особое значение в исследованиях фотопериодизма и гормонального контроля сексуального поведения. Из-за их сильного фотопериодизма перепелов использовали для изучения того, как циркадные ритмы захватываются птицами, и функции мелатонина во

многих физиологических процессах (Kamata et al., 2006; Гудин et al., 2010).

Кроме того, японские перепела и домашние куры имеют много общих черт и моделей поведения. Поэтому перепела использовались для оценки питательной ценности различных куриных блюд, и они все чаще используются в качестве модели для этого вида в прикладных этологических исследованиях благополучия животных (Odeh et al., 2003). Несмотря на то, что японские перепела были и остаются полезными лабораторными видами, в период с 1992 по 2002 год количество статей, в которых они использовались в качестве модели исследования, сократилось. Самой птице уделялось мало внимания; перепела использовались только в качестве животной модели или для сравнительных исследований (Cheng et al., 2010).

1.2.1 Морфологические особенности репродуктивной системы самцов

Основой выживания каждого вида является успешное размножение. Большая генетическая изменчивость возможна при половом размножении. Эндокринная система направляет организацию гендерно-специфических признаков посредством изменения концентрации гормонов и экспрессии гормональных рецепторов, в результате чего ткани дифференцируются для выполнения своей функции в репродукции. Известно, что деформация репродуктивных органов и изменения или потеря репродуктивного поведения являются результатом аномального уровня гормонов или изменения чувствительности к гормонам во время дифференцировки. Нарушения функции репродуктивных органов или репродуктивного поведения неизбежно приведут к потере репродукции (Halldin, 2005).

В начале эмбрионального развития перепелов дифференцируются половые органы. Оба пола имеют двусторонние бипотенциальные гонады,

которые состоят из мозгового вещества и коры, и их структуры неразличимы до дифференцировки. В мозговом веществе самцов первичные половые тяжи созревают в семенные канальцы, содержащие сперматоциты и клетки Сертоли. Ранний эмбрион содержит двусторонние мюллеровы протоки. Каждый эмбрион начинается с двух наборов протоков - вольфовых и мюллеровых протоков. Если птица становится самцом, вольфовы протоки развиваются в семявыводящие протоки или семявыводящие протоки, а мюллеровы протоки атрофируются. В отличие от того, как левый мюллеров проток дифференцируется, образуя яйцевод у самок, в то время как правый мюллеров проток регрессирует, мюллеровы протоки у самцов регрессируют. Обратное происходит у развивающейся самки. Однако развивается только левый мюллеров проток (и обычно только левый яичник). Превратится ли гонады в семенники или яичники, по-видимому, зависит от количества присутствующего эстрогена (Stevens, 1997). Перед половой дифференцировкой, ароматаза, последний фермент в производстве эстрогена, ингибируется, вызывая образование сперматогенного эпителия и мужского фенотипа у эмбрионов перепелов (Adkins-Regan & Wade, 2001; Б. Бессарабов et al., 2005).

У птиц есть два семенника, по одному с каждой стороны от средней линии тела. Семенники, сложные трубчатые железы, выполняют экзокринную и эндокринную функции. Эпителий, выстилающий семенные канальцы, вырабатывает сперматозоиды как часть их экзокринной функции. Особая интерстициальная (лейдигская) клетка в межтрубчатой соединительной ткани выполняет эндокринную функцию, продуцируя мужской половой гормон тестостерон (Jamieson, 2007). Два слоя влагалищной оболочки, париетальный и висцеральный слои, и один слой белочной оболочки, капсула семенника, покрывают семенник. Эти три слоя состоят из плотной соединительной ткани неправильной формы, которая в основном содержит коллагеновые волокна и небольшое количество эластических

волокон. Глубокая часть влагалищной оболочки богата густыми ветвями тестикулярных кровеносных сосудов. Септикулярные перегородки (spatula testis), которые делят семенника примерно на 250 долей, соприкасаются с T. albugínea. Каждая долька семенника занята 1-4 U-образными двусторонними семенными канальцами (Kühnel, 2003).

Опорные клетки и сперматогенные клетки составляют эпителий семенных канальцев. Сперматогенные клетки окружены поддерживающими клетками (клетки Сертоли), которые находятся в базальной области эпителия. Гемотестикулярный барьер, тесно связанный с другими поддерживающими клетками, защищает развивающиеся сперматогенные клетки от влияний крови. Баланс клеточной популяции составляют сперматогенные клетки на разных стадиях развития. Сперматогоний в основании способен к митозу. В то время как вторичный сперматоцит завершает второе мейотическое деление, первичный сперматоцит, являющийся самой крупной клеткой, проходит первое мейотическое деление. Последующая гаплоидная сперматида развивается в сперматозоид, последнюю стадию развития (Al-Tememy, 2010). Есть две основные части интерстициальной ткани семенника. Первая представляет собой пограничную ткань, плотный слой миофибробластов и соединительной ткани, плотно окружающий семявыносящий каналец. Другой - интерстиций, рыхлая соединительная ткань, которая находится между семенными канальцами. Он полностью проявляется в виде угловатых областей или клиньев между тремя или более соседними семенными канальцами (Al-Tememy, 2010).

Семенные канальцы соединены с прямыми канальцами (tubuli recti),

непрерывными с сетью анастомозирующих каналов, составляющих придаток,

на их концевых участках переходной зоной, окаймленной опорными клетками.

Придаток семенника имеет простой плоский или кубический эпителий. Он

окружен рыхлой соединительной тканью средостения и дренируется семью-

двадцатью выводящими протоками (Семяпровод). Сперматозоиды покидают

16

семеники и накапливаются в семявыносящих протоках, где они удерживаются до совокупления. У некоторых птиц, таких как страусы и утки, сперма передается самке псевдопенисом. У более производных птиц совокупление включает простое сопоставление клоаки самца и самки. Простой цилиндрический или псевдомногослойный эпителий, выстилающий выводящие протоки, содержит некоторое количество реснитчатых клеток. Каждый проток имеет большой просвет и тонкий слой соединительной ткани, называемый собственной пластинкой (Aughey & Frye, 2001).

Здоровье семеники оказывает большое влияние на способность сперматозоидов к оплодотворению, что значительно коррелирует с коэффициентом выводимости. Кроме того, физиологическое репродуктивное состояние птиц и вес семенников тесно связаны (McGary et al., 2002). У производителей бройлеров была обнаружена прямая связь между производством спермы и массой семеники (Leeson & Summers, 2010). Поскольку семенные канальцы и зародышевые элементы составляют примерно 98% от общей массы семеники, размер семеники является ключевой конечной точкой сперматогенеза (Herve et al., 2018).

САМКА САМЕЦ

Рис. 2. Репродуктивные органы японского перепела.

1.2.2 Морфологические особенности репродуктивной системы самок

Репрдуктивная система самок перепелов характеризуется асимметрией половых органов и сильным развитием в яйцеводе известковых желез, образующих скорлупу яиц. Как и у большинства видов птиц, у перепела только левая половая железа развивается в яичник. У ранних эмбрионов имеются двусторонние мюллеровы протоки. Яйцевод развивается из левого мюллерова протока, который дифференцируется, тогда как правый мюллеров проток регрессирует. Левый кластерообразный яичник, в котором образуются яйцеклетки, и левый трубчатый яйцевод являются органами репродуктивной системы перепелов.

Яичник представляет собой полиморфное зернистое тело неправильной формы, расположенное близко к краниальной доле левой почки в поясничном отделе тела. Он полностью закрывает надпочечник. Его можно отличить от соседних органов по более светлому цвету. Он подвешен на короткой брыжейке, в которой проходят сосуды и нервы. В период от 60 до 150 дней он

развивается наиболее интенсивно (Krotova et в1., 2015). Правый яичник сморщивается на протяжении эмбрионального развития. В конце эмбрионального развития происходит полная инволюция правого яичника; после этого почти невозможно различить. Правый яичник развивается у дневных хищников (сов, гагар и попугаев). Тем не менее, даже в таких ситуациях правый яичник почти никогда не производит яйцеклетки, а когда это происходит, яйцеклетки покидают левый яйцевод (Кузнецов & Мушкамбаров, 2005; Подгорнова & Баймишев, 2007; Исупова & Астраханцев, 2008).

Размер яичника определяется его зрелостью или, точнее, размером яйцеклеток, которые там производятся. В яичнике выделяют корковую и мозговую зоны, однако их взаимодействие не всегда хорошо выражено (Krotova et б1., 2015). В корковой зоне происходит развитие овоцитов. Овоцит первого порядка попадает в яйцевод во время овуляции, где он подвергается дополнительному созреванию, оплодотворению, образованию яйцевой скорлупы и ранним стадиям развития эмбриона (Подгорнова & Баймишев, 2008; Родин, 2003). Фолликулярный слой располагается под двухслойной (эпителиально-соединительнотканной) оболочкой, окружающей яичник снаружи. В яичнике перепелов можно обнаружить 1-2 тысячи фолликулов (Krotova et б1., 2015). Белочная оболочка Соединительная ткань) располагается под покровным эпителием. это часть коркового вещества, прилежащая к поверхностному эпителию (Бородулина, 2009).

Границы между корковыми и мозговыми зонами нерегулярны. В соединительной ткани мозговой зоны много коллагеновых волокон. Имеются группы интерстициальных клеток, которые лежат между пучками волокон, через ветви яичниковой артерии проходят сосуды разной величины, а у входа в яичник нервы образуют нервное яичниковое сплетение. В строме мозгового вещества расположены многочисленные кровеносные артерии. Он содержит медуллярные интерстициальные клетки и лакуны, покрытые однослойным

эпителием. Затем нервы и сосуды входят в корковую зону и разветвляются в стенках фолликулов (Мусаев, 2019; Тегза, 2000). Количество фолликулов достигает более 900 на стадии яйцекладки, но между яйцекладами они сжимаются до микроскопических размеров. Фолликулярный эпителий остается прикрепленным к стенке пустого фолликула после овуляции. Он не производит желтое тело (Song & Silversides, 2006; Слесаренко et al., 2015).

Яичник птиц выполняет 2 основные функции: развитие половых клеток и синтез половых гормонов (Кузнецов & Мушкамбаров, 2005; Хохлов, 2009). Функция яичников контролируется корковым веществом, состоящим из интерстициальных клеток и рыхлой соединительной ткани. В массе коркового вещества располагаются фолликулы с ооцитами на разных стадиях развития. Стероидные гормоны продуцируются интерстициальными клетками, имеющими многоугольную или овальную форму, округлые или овальные ядра и множество липидных капель в цитоплазме (Соколов & Чумасов, 2004; Тегза, 2000). Эстрогены, андрогены и прогестерон — это гормоны, вырабатываемые птичьими яичниками. Интерстициальные клетки и, возможно, эпителиальные клетки фолликулов продуцируют эстроген, который стимулирует синтез вителлогенина в печени. Эстроген контролирует общее количество белка и кальция в крови, рост и развитие яйцевода, выработку там овальбумина. Прогестерон вырабатывается гранулезными клетками только что овулировавшего фолликула и влияет на рост покровного эпителия, а также на скорость созревания последующей яйцекладки (Asem et al., 2000).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Эльгабри Сахар Эзелдин Хасан Мохамед, 2023 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Авраменко В.И. Практический справочник птицевода: справочник / В.И. Авраменко. - Москва: ООО «Издательство ACT»; Донецк: «Сталкер», 2004. - 648 с.

2. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия / Г. Г Автандилов. -М.: МИА. 1990.

3. Автандилов Г.Г. Основы количественной патологической анатомии: Учебное пособие / Г. Г Автандилов // Архив патологии. 2004. № 3 (66). C. 61-61.

4. Афанасьев Ю.И., Юрина Н.А. Гистология, цитология и эмбриология. Учебник / Ю.И. Афанасьев, Н.А. Юрина, Е.Ф. Котовский и др. -М.: Медицина, 2001. - 744 с.

5. Баусова К.В. Постынкубационный онтогенез семенников эстонского перепела / К.В. Баусова // Птицеводство. 2016. (8): C. 48-52.

6. Белогуров А.Н. Лимфоидная ткань селезенки японских перепелов в онтогенезе при воздействии грибов Cordyceps / А.Н. Белогуров. Ветеринария. -2012.-№ 11.-С. 57 -58.

7. Белогуров А.Н. Причины воспаления репродуктивной системы самок японского перепела / А.Н. Белогуров, Л.П. Трояновская // Птицеводство. - 2008. - № 12. - С. 27-28.

8. Белогуров А.Н. Средства профилактики воспаления репродуктивной системы самок японского перепела / А.Н. Белогуров, Л.П. Трояновская // Птицеводство. - 2009. - № 12. - С. 49-50.

9. Белогуров А.Н. Травмы и воспаление репродуктивной системы у самок японского перепела в промышленном перепеловодстве / А.Н. Белогуров, Л.П. Трояновская // Российский ветеринарный журнал (Сельскохозяйственные животные). 2008. - № 4. - С. 33 - 34.

10. Бессарабов Б.Ф. Болезни репродуктивных органов у перепелов / Б.Ф. Бессарабов и др. // Птицеводство. 2005. - № 3. - С. 28 - 29.

11. Бессарабов Б.Ф. Птицеводство и технология производства яиц и мяса птицы / Б.Ф. Бессарабов. - Спб: Лань, 2005. - С.352.

12. Бидеев, Б. А. Возрастные изменения биохимических показателей крови перепелов разных пород / Б. А. Бидеев // Известия Горского Государственного Аграрного Университета, 2015.- 52(4), 103-106.

13. Бородулина, И.В. Постнатальное развитие фабрициевой бурсы, тимуса, печени и яичников кур под влиянием некоторых адаптогенов: автореф. дис. канд. ветеринар. наук. / И.В. Бородулина. - Барнаул, 2009. - С.17.

14. Ветошкина Г.А., Никишов А.А. Применение уравнения для вычисления теоретической массы сердца домашних кур / Г.А. Ветошкина, А.А. Никишов // «Вестник РУДН». - 2005. -№12. -С. 71-73.

15. Вракин В. Ф. Анатомия и гистология домашней птицы / В. Ф. Вракин, М. В. Сидорова. - М.: Колос, 1984. - 162 с.

16. Гудин В. А. Физиология и этология сельскохозяйственных птиц: Учебник / В. А. Гудин, В. Ф. Лысов, В. И. Максимов. - СПб.: Лань, 2010. - 336 с.

17. Джавадов Э.Д., Полежаев Ф.И. Диагностика иммунодефицита птиц (серологический, патоморфологический, бактериологический методы) / Э.Д. Джавадов, Ф.И. Полежаев // Ветеринария. 2004. № 3. C. 15-18.

18. Дроздова Л. И. Печень птицы - живая лаборатория оценки качества кормления и содержания/ Л. И. Дроздова, У. И. Кундрюкова //Аграрный вестник Урала. - 2010. - № 5. - С.68-70.

19. Егоров, И. А., & Белякова, Л. С. Кормление и содержание перепелов / И. А. Егоров, Л. С. Белякова // Птицеводство. 2009.- 4, 31-33.

20. Елизаров Е.С. Рост органов и тканей у мясных кур. - Сергиев Посад: ГУП ППЗ «Конкурсный», 2002- С.36.

21. Задорожная Л.А. Перепеловодство. - М.: АСТ, 2005.-93с.

22. Зеленевский Н.В. Международная ветеринарная анатомическая номенклатура на латинском и русском языках / Н.В. Зеленевский. - М.: Мир. 2003. - С.352.

23. Исупова Н.В., Астраханцев А.А. Морфофункциональная характеристика яичников кур кроссов Радонит-2 и Хайсекс белый / Н.В. Исупова, А.А. Астраханцев // Научный потенциал - аграрному производству. 2008. 128-129 с.

24. Каблучеева Т.И. Пищеварение в толстом кишечнике птиц / Т.И. Каблучеева. Краснодар: КГАУ, 2001. - С.230.

25. Каденкова Н.В. Японские перепела / Н.В. Каденкова, О.В. Корникова. - Москва: Домашний зооуголок, 2004. - С. 3-25.

26. Косман, В. М., Пожарицкая, О. Н., Шиков, А. Н., & Макаров, В. Г. (2015). Сравнительное изучение содержания флавоноидов и кумаринов в некоторых препаратах ромашки аптечной. Химия Растительного Сырья. - 2015; 1, 107-112.

27. Кочетова З.И. Разведение и содержание перепелов: учеб. пособие / З.И. Кочетова, Л.С. Белякова, В.И. Филоненко, А.И. Чинцова // Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства (ВНИТИП): Сергиев Посад, 2006. - С.82.

28. Кочиш И. И. Птицеводство / И. И. Кочиш, М. Г. Петраш, С. Б. Смирнов. - М.: КолосС, 2004. - 407 с.

29. Кочиш И.И. Биология сельскохозяйственной птицы / И.И. Кочиш, Л.И. Сидоренко, В.И. Щербатов. - М.: КолосС. 2005 - С.203.

30. Кочиш И.И. Перепеловодство: проблемы и пути их решения / И.И.Кочиш, Н.А.Слесаренко, Л.П.Трояновская, А.Н.Белогуров - М.: ЗооВетКнига, 2015. - 158 с.

31. Кротова, Е.А., Селезнев, С.Б., Ветошкина, Г.А. Морфологическое изучение репродуктивной системы перепелов. Морфология.- 2016.; 3, 114-114a.

32. Кузнецов С.Л. Гистология, цитология и эмбриология / С.Л. Кузнецов, Н.Н. Мушкамбаров. - Москва.: МИА, 2005. - С.600.

33. Мусаев, А. М. оглы. Возрастные изменения репродуктивных органов

Вестник Башкирского Государственного Аграрного Университета. - 2019; №1, C. 70-76.

34. Овсищер Л.Л. Постэмбриональный морфогенез иммунной системы кур в связи со становлением репродуктивных органов: автореф. дис. канд. биол. наук /Л.Л. Овсищер.-Саранск, 2005. - С.22.

35. Первышина, Г. Г., Ефремов, А. А., Гордиенко, Г. П., & Агафонова, Е. А. К вопросу о содержании биологически активных веществ ромашки аптечной (Chamomilla recutita) и ромашки душистой (Chamomilla suaveolens), произрастающих в Красноярском крае. Химия Растительного Сырья.-2002; №3, C.21-24.

36. Пигарева М.Д. Перепеловодство. - М.: Росагропром, 1989. - 334 с.

37. Подгорнова Е.Д., Баймишев Х.Б. Возрастная морфология яйцевода цыплят-бройлеров при использовании прерывистого режима освещения // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2007. № 1. C. 51-52.

38. Подгорнова Е.Д., Баймишев Х.Б. Морфологическая характеристика яичника кур мясной породы в постнатальном онтогенезе // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2008. № 1. C. 108-110.

39. Рахманов А.И. Разведение домашних и экзотических перепелов / А.И. Рахманов. - Москва: Аквариум-Принт, 2006. - С.64.

40. Родин Е.В. Морфология яичника кур в постэмбриональном онтогенезе в зависимости от монохроматического освещения: Автореф. дис. канд. биол. наук. - Оренбург: ОГАУ, 2003.- С.21.

41. Савельева, А. Ю. Морфологическая характеристика яичника и яйцевода перепёлок на момент угасания яйцекладки. Аграрный Вестник Урала.- 2008; 10, 67-69.

42. Савельева А.Ю. Морфологические особенности гонад половозрелого самца домашнего японского перепела / А.Ю. Савельева // Эпоха науки. 2015. № 3 C. 54-56.

43. Сахар Эзельдин Эльгабри. Promising uses of chamomile aqueous extract in male Japanese quails / Сахар Эзельдин Эльгабри, А. А. Никишов, С.Б. Селезнев // Достижения И Перспективы Создания Новых Лекарственных Растительных Препаратов: сборник тезисов Международной научно-практической конференции.- Москва.- 2023 -2023-C.12-16.

44. Сахар Эзельдин Эльгабри. Ромашка (Matricaria Recutita L.): натуральный стимулятор роста японских перепелов / Сахар Эзельдин Эльгабри, С.Б. Селезнев, Г.А. Ветошкина // Журнал «Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса»: 2022. - №3 С. 53-56.

45. Сахар Эзельдин Эльгабри. The impact of medicinal plants on the productivity of quail / Сахар Эзельдин Эльгабри, С. Б. Селезнев // Международная научная конференция молодых ученых и специалистов, посвященная 135-летию со дня рождения А.Н. Костякова: сборник статей.-Москва.- 2022.- Том 2.- С.566-569.

46. Сахар Эзельдин Эльгабри. Does the use of medicinal plants impact the reproductive performance of quail / Сахар Эзельдин Эльгабри, С. Б. Селезнев // Международная научная конференция молодых ученых и специалистов, посвященная 135-летию со дня рождения А.Н. Костякова: сборник статей.-Москва.- 2022.- Том 2.- С.562-566.

47. Сахар Эзельдин Эльгабри. Биохимическое исследование крови японских перепелов: эффект влияния экстракта ромашки (matricaria recutita L.) / С. Б. Селезнев, Сахар Эзельдин Эльгабри, Драму Форомо, Г. А. Ветошкина, А. А. Никишов// Журнал «Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса»: 2023. - №1 С. 46-49.

48. Сахар Эзельдин Эльгабри. Морфометрическое исследование репродуктивных органов японских перепелов: эффект влияния экстракта ромашки (Matricaria Recutita L.) / Сахар Эзельдин Эльгабри, Г. А. Ветошкина, А. В. Лохонина, С. Б. Селезнев // Журнал «Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса»: 2023. - №1 С. 50-52.

49. Сахар Эзельдин Эльгабри. Влияния экстракта ромашки (Matricaria recutita l.) На морфометрические показатели репродуктивных органов у японских перепелов/ Сахар Эзельдин Эльгабри, С. Б. Селезнев, Г. А. Ветошкина // Морфология в XXI веке: теория, методология, практика: сборник трудов Всероссийской научно-практической конференции.- Москва.- 2023.-С. 44-46.

50. Сахар Эзельдин Эльгабри. Ромашка (matricaria recutita l.): натуральный стимулятор роста японских перепелов / Сахар Эзельдин Эльгабри, С.Б. Селезнев, // Инновационные процессы в сельском хозяйстве: сборник тезисов XV Международной научно-практической конференции. -Москва.- 2023 - С. - .

51. Селезнев С.Б., Овсищер Л.Л. Морфофункциональные особенности репродуктивной системы домашних птиц 2003.

52. Слесаренко Н.А. Анатомия и гистология птицы / Н. А. Слесаренко, Г. А. Ветошкина, С. Б. Селезнев. - Москва: ООО «АртСервис ЛТД», 2015. -138 с.

53. Слесаренко Н.А., Борхунова Е.Н., Пименов Н.В. Основы научной методологии: Учебник для вузов по зооветеринарным и биологическим направлениям подготовки // 2013.

54. Соколов В.И. Цитология, гистология, эмбриология: Учеб. для студентов вузов по спец. 310800 "Ветеринария" / В.И. Соколов, Е.И. Чумасов. - М.: КолосС, 2004. - 350.

55. Стебенева, Е. А. Яичная продуктивность перепелов различных генотипов. ВЕСТНИК.-2011; № 4, 143.

56. Тегза А.А. Морфологическая характеристика яичника у половозрелых гусынь // АА Тегза. - 2000. C. 275-277.

57. Техвер Ю.Т. Гистология домашних птиц. - Тарту: Эстонск. СХА, 1965. - С.76.

58. Федотов C.B. Профилактика болезней и биотехника репродукции кур в фермерских хозяйствах: учеб. пособие / C.B. Федотов, В.П. Федотов. -Барнаул: АГАУ, 2007. - С. 137.

59. Фисинин В.И. Новые научные и практические подходы в развитии мирового и отечественного птицеводства // Современная ветеринарная защита в промышленном птицеводстве. - Спб.: МГК, 2004.- С.6-11.

60. Фисинин В.И. Птицеводсто России в 2011 году: состояние и перспективы инновационного развития до 2020 г.// Инновационные разработки и их освоение в промышленном птицеводстве. -Сергиев Посад, 2012. - С.7.

61. Фокина С.М., Воскресенский Р.Р. Ромашка аптечная и ее использование в медицине и косметологии/- 2018. 601-605 с.

62. Хохлов Р.Ю. Функциональная морфология воронки яйцевода кур в пубертатном периоде // Морфологические ведомости. 2006. №2 3-4. - С.124-125.

63. Хохлов Р.Ю. Функциональная морфология органов размножения кур в онтогенезе // автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук / Башкирский государственный аграрный университет. Уфа, 2009. - С.5.

64. Хохлов Р.Ю., Кузнецов С.И. Морфологическая дифференцировка стенки выводного отдела яйцевода кур в период яйцекладки // Сельскохозяйственная биология. 2009. № 2. С. 85-88.

65. Хохлов Р.Ю., Кузнецов С.И. Морфология белкового отдела яйцевода кур в период его интенсивного и стабильного функционирования // Морфологические ведомости. 2007. № 1-2. С. 302-303.

66. Шелудяков М.С. Особенности выращивания и кормления японских перелов в условиях ОАО «СНЕЖКА» Брянской области / Е.Е. Статник, Е.В. Зайцева, O.A. Калинин, C.B. Шевырина, М.С. Шелудяков, Н.Н. Крикливый, О.М. Ткачев // Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 100-летию со дня рождения П.Г. Петского/

Современные научные тенденции в животноводстве. - Киров, 2009. - (ч. 1) -С.226-228.

67. Шереметьева, А. С., Дурнова, Н. А., & Райкова, С. В. Сравнительный анализ антимикробной активности настоев календулы лекарственной (Calendula officinalis L.) и ромашки аптечной (Chamomilla recutita L.). Бюллетень Ботанического Сада Саратовского Государственного Университета.- 2017; 15(3), 41-49.

68. Abaza I.M.K., Asar M.A., Elshaarrawi G.E. Effect of using nigella seeds, chamomile flowers, thyme flowers and harmala seeds as feed additives on performance of broiler // Egyptian Journal of Agricultural Research. 2003. (81). C. 735-750.

69. Abd El-Galil K., Mahmoud H.A. Effect of ginger roots meal as feed additives in laying Japanese quail diets // Journal of American Science. 2015. № 2. C. 139-144.

70. Abou-Elkhair R., Abdo Basha H., Slouma Hamouda Abd El Naby W. Effect of a diet supplemented with the Moringa oleifera seed powder on the performance, egg quality, and Gene expression in Japanese laying quail under heat-stress // Animals. 2020. № 5. C. 809.

71. Abu Taleb A.M., Hamodi S.J., El Afifi SH.F. Effect of using some medicinal plants (anise, chamomile and ginger) on productive and physiological performance of Japanese quail // Isotope and radiation research. 2008. № 4. C. 10611070.

72. Adkins-Regan E., Wade J. Masculinized Sexual Partner Preference in Female Zebra Finches with Sex-Reversed Gonads // Hormones and Behavior. 2001. № 1. C. 22-28.

73. Agatonovic-Kustrin S., Ortakand D.B., Morton D.W. Rapid evaluation and comparison of natural products and antioxidant activity in calendula, feverfew, and German chamomile extracts // Journal of Chromatography A. 2015. C. 103-110.

74. AL Chlabi A.M., Abdul-Rahman S.Y. Effect of Adding Chamomile Flowers, Oak Leaves and Probiotics to Quail Ration on Antioxidant Status Lipid Profile // Rafidain Journal of Science. 2018. № 4. C. 334-342.

75. Al-Dabbagh B., Elhaty I.A., Elhaw M. Antioxidant and anticancer activities of chamomile (Matricaria recutita L.) // BMC Research Notes. 2019. № 1. C. 3.

76. Al-hamo R.N. The inhabiting effect of some plant extracts on primary heads as examine in vitro-College of Veterinary Medicine-Mosul University, symposium about chamomile that hold a meeting in College of Pharmacology // Mosul University. 2003. C. 1-3.

77. Al-Kaisse G.A., Khalel E.K. The potency of chamomile flowers (Matericaria chamomilla L.) as feed supplements (growth promoters) on productive performance and hematological parameters constituents of broiler // International journal of poultry science. 2011. № 9. C. 726-729.

78. Alkan S., Galif A., Karsli T. Effects of egg weight on egg quality traits in partridge (Alectoris Chukar) // Journal of applied animal research. 2015. № 4. C. 450-456.

79. Al-Tememy H. Histological study of testis in quail (Coturnix coturnix japonica) // Al-Anbar Journal Veterinary Sciences. 2010. № 2. C. 36-44.

80. Altine S., Sabo M.N., Muhammad N. Basic nutrient requirements of the domestic quails under tropical conditions / S. Altine, M.N. Sabo, N. Muhammad // World Scientific News. 2016. № 2. C. 223-235.

81. Aminzade B., Karami B., Lotfi E. Meat quality characteristics in Japanese quails fed with Mentha piperita plant // Animal Biology & Animal Husbandry. 2012. № 1. C. 20-23.

82. Ammon H.P., Sabieraj J., Kaul R. Chamomile: mechanisms of antiinflammatory activity of chamomile extracts and components / H.P. Ammon, J. Sabieraj, R. Kaul // Deutsche Apotheker Zeitung. 1996. C. 17-18.

83. Apak R., Guflu K., Ozyurek M. Novel total antioxidant capacity index for dietary polyphenols and vitamins C and E, using their cupric ion reducing capability

134

in the presence of neocuproine: CUPRAC method // Journal of agricultural and food chemistry. 2004. № 26. C. 7970-7981.

84. Asem E.K., Feng S., Stingley-Salazar S.R. Basal lamina of avian ovarian follicle: influence on morphology of granulosa cells in-vitro // Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Pharmacology, Toxicology and Endocrinology. 2000. № 2. C. 189-201.

85. Avallone R., Zanoli P., Corsi L. Benzodiazepine-like compounds and GABA in flower heads of Matricaria chamomilla // Phytotherapy Research (United Kingdom). 1996.

86. Babangida S., Ubosi C.O. Effects of varying dietary protein levels on the performance of laying Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) in a semi-arid environment / S. Babangida, C.O. Ubosi // Nigerian Journal of Animal Production. 2006. № 1. C. 45-52.

87. Bansal P. Pharmacological Potential of Matricaria recutita-A Review

2010.

88. Barnett J.L., Tauson R., Downing J.A. The effects of a perch, dust bath, and nest box, either alone or in combination as used in furnished cages, on the welfare of laying hens // Poultry Science. 2009. № 3. C. 456-470.

89. Behnamifar A., Rahimi S., Karimi Torshizi M.A. Effect of chamomile, wild mint and oregano herbal extracts on quality and quantity of eggs, hatchability, and some other parameters in laying Japanese quails // Journal of Medicinal plants and By-product. 2018. № 2. C. 173-180.

90. Behnamifar A., Rahimi S., Karimi Torshizi M.A. Effect of thyme, garlic and caraway herbal extracts on blood parameters, productivity, egg quality, hatchability and intestinal bacterial population of laying Japanese quail // Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2015. № 3. C. 179-187.

91. Bhaskaran N., Shukla S., Srivastava J.K. Chamomile: an anti-inflammatory agent inhibits inducible nitric oxide synthase expression by blocking RelA/p65 activity // International journal of molecular medicine. 2010. № 6. C. 935940.

92. Butris D.K.I.G.Y. Effect of supplementing Anthemis nobilis ( Chamomile) flower aqueous extract and powder to drinking water and diet of broiler exposed to heat stress on some physiological Characters // iraqi poultry sciences journal. 2008. № 1.

93. Cemek M., Kaga S., §im§ek N. Antihyperglycemic and antioxidative potential of Matricaria chamomilla L. in streptozotocin-induced diabetic rats // Journal of natural medicines. 2008. № 3. C. 284-293.

94. Chang G.B., Chang H., Liu X.P. Developmental research on the origin and phylogeny of quails // World's Poultry Science Journal. 2005. № 1. C. 105-112.

95. Cheng K.M., Bennett D.C., Mills A.D. The Japanese Quail John Wiley & Sons, Ltd, 2010. C. 655-673.

96. Crellin J.K., Philpott J., Bass A.T. Herbal Medicine Past and Present: A reference guide to medicinal plants / J.K. Crellin, J. Philpott, A.T. Bass, Duke University Press, 1990.

97. Crotteau C.A., Wright S.T. What is the best treatment for infants with colic? // Clinical Inquiries, 2006.

98. Dada R., Toghyani M., Tabeidian S.A. The effect of chamomile flower (Matricaria chamomilla L.) extract and powder as growth promoter on growth performance and digestive organs of broiler chickens // Research opinions in animal and veterinary sciences. 2015. № 7. C. 290-294.

99. Debersac P., Vernevaut M.F., Amiot M.J. Effects of a water-soluble extract of rosemary and its purified component rosmarinic acid on xenobiotic-metabolizing enzymes in rat liver // Food and Chemical Toxicology: An International Journal Published for the British Industrial Biological Research Association. 2001. № 2. C. 109-117.

100. Di Stasi L.C., Oliveira G.P., Carvalhaes M.A. Medicinal plants popularly used in the Brazilian Tropical Atlantic Forest // Fitoterapia. 2002. № 1. C. 69-91.

101. El-Galil A., Mahmoud H.A., Hassan A.M. Effect of chamomile flowers meal as feed additives in laying Japanese quail diets on productive and reproductive performance // Journal of Animal and Poultry Production. 2010. № 10 .C. 517-533.

102. Faqi A.S., Solecki R., Pfeil R. Standard values for reproductive and clinical chemistry parameters of Japanese quail. // DTW. Deutsche Tierarztliche Wochenschrift. 1997. № 5. C. 167-169.

103. Fejercakova A., Skalicka M., Nad' P. Impact of matricaria chamomilla l. on Japanese quails exposed to cadmium // FOLIA. 2011. № 4. C. 124-126.

104. Franke R., Schilcher H. Chamomile: Industrial Profiles / R. Franke, H. Schilcher, CRC Press, 2005. 306 c.

105. Fudge A.M. Avian clinical pathology-hematology and chemistry / A.M. Fudge // Avian medicine and surgery. 1997. (1).

106. Ganzera M., Schneider P., Stuppner H. Inhibitory effects of the essential oil of chamomile (Matricaria recutita L.) and its major constituents on human cytochrome P450 enzymes // Life sciences. 2006. № 8. C. 856-861.

107. Gardiner P. Complementary, Holistic, and Integrative Medicine: Chamomile // Pediatrics in review. 2007. № 4. C. e16-e18.

108. Gecgel U., Yilmaz I., Gurcan E.K. Comparison of Fatty Acid Composition between Female and Male Japanese Quail Meats / U. Gecgel, I. Yilmaz, E.K. Gurcan // Journal of Chemistry. 2015. C. 1-8.

109. Giannenas I., Grigoriadou K., Sidiropoulou E. Untargeted UHPLC-MS metabolic profiling as a valuable tool for the evaluation of eggs quality parameters after dietary supplementation with oregano, thyme, sideritis tea and chamomile on brown laying hens // Metabolomics. 2021. № 6. C. 1-15.

110. Gilmore I., Garvey C.J. Investigation of jaundice // Medicine. 2007. № 1. C. 13-16.

111. Haddad H.A. Effect of supplementing Anthemis nobilis (Chamomile) flower powder to diet of commercial layers on some egg quality traits // Tikrit Journal for Agricultural Sciences. 2012. № 4.

112. Halldin K. Impact of endocrine disrupting chemicals on reproduction in Japanese quail // Domestic Animal Endocrinology. 2005. № 2. C. 420-429.

113. Harr K.E. Clinical Chemistry of Companion Avian Species: A Review // Veterinary Clinical Pathology. 2002. № 3. C. 140-151.

114. Haruna U., Daneji M.I., Idi S. Comparative Economic Analysis of Adopters and Non-adopters of Poultry Production Innovation in Bauchi Local Government Area, Bauchi State 2002. 55-62 c.

115. Hazard D., Couty M., Faure J.-M. Relationship between hypothalamic-pituitary-adrenal axis responsiveness and age, sexual maturity status, and sex in Japanese quail selected for long or short duration of tonic immobility // Poultry science. 2005. № 12. C. 1913-1919.

116. Hernández-Ceruelos A., Madrigal-Santillán E., Morales-González J.A. Antigenotoxic Effect of Chamomilla recutita (L.) Rauschert Essential Oil in Mouse Spermatogonial Cells, and Determination of Its Antioxidant Capacity in Vitro // International Journal of Molecular Sciences. 2010. № 10. C. 3793-3802.

117. Herve T., Raphaël K.J., Ferdinand N. Growth performance, serum biochemical profile, oxidative status, and fertility traits in male Japanese quail fed on ginger (Zingiber officinale, roscoe) essential oil // Veterinary medicine international. 2018.

118. Issac O. Recent progress in chamomile research-medicines of plant origin in modern therapy // Prague, Czeco-Slovakia. 1989. (7).

119. Izadi Z., MODARES S.S., Sorooshzadeh A. Antimicrobial activity of chamomile (Matricaria chamomilla L.) and feverfew (Tanacetum parthenium L.) 2013.

120. Jabri M.-A., Sani M., Rtibi K. Chamomile decoction extract inhibits human neutrophils ROS production and attenuates alcohol-induced haematological parameters changes and erythrocytes oxidative stress in rat // Lipids in health and disease. 2016. № 1. C. 1-10.

121. Jamieson B.G. Reproductive Biology and Phylogeny of Birds, Part B: Sexual Selection, Behavior, Conservation, Embryology and Genetics / B.G. Jamieson, CRC Press, 2007.

122. Kamata R., Takahashi S., Shimizu A. Avian transgenerational reproductive toxicity test with in ovo exposure / R. Kamata, S. Takahashi, A. Shimizu // Archives of toxicology. 2006. № 12. C. 846-856.

123. Kayang B.B., Fillon V., Inoue-Murayama M. Integrated maps in quail (Coturnix japonica) confirm the high degree of synteny conservation with chicken (Gallus gallus) despite 35 million years of divergence // BMC genomics. 2006. № 1. C. 1-18.

124. Khan M.Z.I., Hashimoto Y. Large granular lymphocytes in the oviduct of developing and hormone-treated chickens // British Poultry Science. 2001. № 2. C. 180-183.

125. Kim S.H., Cheng K.M.-T., Ritland C. Inbreeding in Japanese quail estimated by pedigree and microsatellite analyses // Journal of heredity. 2007. № 4. C. 378-381.

126. Kintzios S., Michaelakis A. Induction of somatic embryogenesis and in vitro flowering from inflorescences of chamomile (Chamomilla recutita L.) // Plant cell reports. 1999. № 7. C. 684-690.

127. Kolacz R., Bodak E., Switala M. Herb as agents affecting the immunological status and growth of piglets weaned with body weight deficiency // J. Anim. Sci. 1997. № 2. C. 269.

128. Kondaiah N, Panda B, Singhal RA. Internal egg quality measure for quail eggs / N. Kondaiah, B. Panda, R.A. Singhal //Indian Journal of Animal Sciences. 1983.

129. König B., Kluge H., Haase K. Effects of Clofibrate Treatment in Laying Hens // Poultry Science. 2007. № 6. C. 1187-1195.

130. Kroll U., Cordes C. Pharmaceutical prerequisites for a multi-target therapy // Phytomedicine. 2006. C. 12-19.

131. Krotova E.A., Seleznev S.B., Vetoshkina G.A., Morphological aspects of the reproductive system of quails // Innovative processes in agro-industrial complex: Conference Papers of the VII International Scientific and Practical Conference of Professors, Young Scientists, Post-graduate and Under-Graduate students. 2015, / Москва: РУДН. - P. 79-80.

132. Kuhnel W. Color atlas of cytology, histology, and microscopic anatomy / W. Kuhnel // Thieme Medical Publishers, 2003.

133. Leeson S., Summers J.D. Broiler breeder production. 2010.

134. Lierz M., Hafez H. Sex-related differences in plasma chemistry reference values in stone curlews (Burhinus oedicnemus) // The Veterinary record. 2005. C. 91-2.

135. Lukanov H., Genchev A., Kolev P. Egg quality traits in WG, GG and GL Japanese quail populations // Trakia Journal of Sciences. 2019. № 1. C. 49-55.

136. Lumeij J.T. Chapter 30 - Avian Clinical Biochemistry под ред. J.J. Kaneko, J.W. Harvey, M.L. Bruss, San Diego: Academic Press, 1997. C.857-883.

137. Mahesh B., Yim B., Robson D. Does furosemide prevent renal dysfunction in high-risk cardiac surgical patients? Results of a double-blinded prospective randomised trial // European journal of cardio-thoracic surgery. 2008. № 3. C. 370-376.

138. Mamalis A., Nguyen D.-H., Brody N. The active natural anti-oxidant properties of chamomile, milk thistle, and halophilic bacterial components in human skin in vitro // Journal of drugs in dermatology. 2013. № 7. C. 780-784.

139. Marques R.H., Gravena R.A., Silva J.D.T. Camomila como aditivo fitoterapico para codornas na fase de postura Chamomile herbal medicine as an additive for quails in the laying // Revista Brasileira de Saude e Produ?ao Animal. 2010.

140. Marques R.H., Gravena R.A., Silva J.D.T. Chamomile inclusion on performance, behavior and stress in immature quails // Ciencia Rural. 2010. C. 385390.

141. Masarovicova E., Kral'ova K., Kummerova M. Medicinal plants under changing environmental conditions // Vliv Abiotickych a Biotickych Stresor\uu na Vlastnosti Rostlin [Effect of Abiotic and Biotic Factors on Plant Features.]. 2005. C. 40-48.

142. McCrea B.K., Macklin J.H., Norton R. Recovery of campylobacter Jujunum from broiler house samples during four consecutive flocks // Dendrogram, Auburn University, Auburn, Alabama, USA. 2005.

143. McGary S., Estevez I., Bakst M.R. Phenotypic traits as reliable indicators of fertility in male broiler breeders // Poultry Science. 2002. № 1. C. 102111.

144. McKay D.L., Blumberg J.B. A Review of the bioactivity and potential health benefits of chamomile tea (Matricaria recutita L.) // Phytotherapy Research. 2006. № 7. C. 519-530.

145. Mishra D., Sultana N., Masum M.A. Gross and histomorphological studies of the oviduct of native chicken of Bangladesh // Bangladesh Journal of Veterinary Medicine. 2014. № 1. C. 9-15.

146. Murti K., Panchal M.A., Gajera V. Pharmacological properties of Matricaria recutita: a review // Pharmacologia. 2012. № 8. C. 348-351.

147. Narinc D., Aygun A., Sari T. Effects of cage type and mating ratio on fertility in Japanese quails (Coturnix coturnix japonica) eggs / D. Narinc, A. Aygun, T. Sari // Agriculture Science Developments. 2013. № 1. C. 4-7.

148. Nirmalan G.P., Robinson G.A. Haematology of the Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) // British Poultry Science. 1971. № 4. C. 475-481.

149. Novakova L., Vildova A., Mateus J.P. Development and application of UHPLC-MS/MS method for the determination of phenolic compounds in Chamomile flowers and Chamomile tea extracts // Talanta. 2010. № 4. C. 12711280.

150. Odeh F.M., Cadd G.G., Satterlee D.G. Genetic characterization of stress responsiveness in Japanese quail. 1. Analyses of line effects and combining abilities by diallel crosses // Poultry science. 2003. № 1. C. 25-30.

151. Ogawa H., Uchihashi H., Kuwayama T. Estrogen Receptor Binding in the Oviduct Magnum of Guineafowl Hens Comparison with White Leghorn Hens // Japanese poultry science. 2000. № 5. C. 297-305.

152. Ottinger M.A., Rattner B.A. Husbandry and care of quail / M.A. Ottinger, B.A. Rattner // Avian and Poultry Biology Reviews. 1999. № 2. C. 117120.

153. Park Y.-S., Jung S.-T., Kang S.-G. Antioxidants and proteins in ethylene-treated kiwifruits // Food Chemistry. 2008. № 2. C. 640-648.

154. Pavan A.C., Garcia E.A., Mori C. Effect of cage stocking density on performance of laying hens during the growing and laying periods // Revista Brasileira de Zootecnia. 2005. C. 1320-1328.

155. Perez-Rodriguez L., Mougeot F., Alonso-Alvarez C. Cell-mediated immune activation rapidly decreases plasma carotenoids but does not affect oxidative stress in red-legged partridges (Alectoris rufa) // Journal of Experimental Biology. 2008. № 13. C. 2155-2161.

156. Petronilho S., Maraschin M., Coimbra M.A. In vitro and in vivo studies of natural products: A challenge for their valuation. The case study of chamomile (Matricaria recutita L.) // Industrial Crops and Products. 2012. C. 1-12.

157. Poole T.B., English P. UFAW Handbook on the care and management of laboratory animals / T.B. Poole, P. English, Blackwell Science, 1999.

158. Rahimi E., Prado J.M., Zahedi G. Chamomile extraction with supercritical carbon dioxide: Mathematical modeling and optimization // The Journal of Supercritical Fluids. 2011. № 1. C. 80-88.

159. Rahmani Kahnamoei J., Nasirzadeh M., Jafarzadeh Y. Effects of Zingiber Officinale consumption on renal function in quail // Cibtech Journal of Zoology. 2014. (3). C. 70-73.

160. Randall M., Bolla G. Raising Japanese quail / M. Randall, G. Bolla // Primefacts. 2008. C. 1-5.

161. Royer A.F.B., Garcia R.G., Borille R. Welfare of broilers ingesting a pre-slaughter hydric diet of lemon grass // Brazilian Journal of Poultry Science. 2015. C. 301-306.

162. Sahar Ezeldien. Effects of Chamomile Aqueous Extract on Productive Performance, Egg Quality, and Serum Biochemical Parameters in Laying Japanese Quails / Sahar Ezeldien, Foromo Dramou, Fatma M. Yousseff, Alexander A. Nikishov, Sergy B. Seleznev // Journal «Advances in Animal and Veterinary Sciences»: 2023. - № 6 C. 878-885.

163. Sahar Ezeldien. Morphometric and histological characteristics of the stomach and reproductive organs in Japanese quail / Dramou Foromo, Sahar Ezeldien, Ziad Ahmed Alabdallah, S. B. Seleznev // Journal «Caspian Journal of Environmental Sciences»: 2023. - №2 C. 375-388.

164. Sahin N., Akdemir F., Orhan C. Lycopene-enriched quail egg as functional food for humans // Food research international. 2008. № 3. C. 295-300.

165. Salamon I., Honcariv R. Growing condition and breeding of chamomile [Chamomilla recutita (L.) Rauschert] regarding the essential oil qualitative-quantitative characteristics in Slovakia // Herba Polonica. 1994. № 40. C. 68-74.

166. Saleh A. A. K., Abozed G.F. Impact of using chamomile flower as a feed additive on reproductive performance and physiological responses of farafra ewes during heat stress conditions // Egyptian Journal of Nutrition and Feeds. 2018. № 3. C. 635-643.

167. Santurio J.M., Santurio D.F., Pozzatti P. Atividade antimicrobiana dos óleos essenciais de orégano, tomilho e canela frente a sorovares de Salmonella enterica de origem avícola // Ciencia Rural. 2007. № 3. C. 803-808.

168. Schmid I., Wechsler B. Behaviour of Japanese quail (Coturnix japonica) kept in semi-natural aviaries // Applied Animal Behaviour Science. 1997. № 1-2. C. 103-112.

169. Scholtz N., Halle I., Flachowsky G. Serum chemistry reference values in adult Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) including sex-related differences / N. Scholtz, I. Halle, G. Flachowsky // Poultry Science. 2009. № 6. C. 1186-1190.

170. Shrivastav A.K. Quail nutrition under Indian conditions / A.K. Shrivastav // India Journal Poultry Science. 2000. № 3. C. 239-241.

171. Silva J.H.V., Jordao Filho J., Costa F.G.P. Nutritional requirements of quais // Revista Brasileira de Saude e Produ?ao Animal. 2012. № 3. C. 775-790.

172. Singh O., Khanam Z., Misra N. Chamomile (Matricaria chamomilla L.): An overview // Pharmacognosy Reviews. 2011. № 9. C. 82-95.

173. Slinkard K., Singleton V.L. Total phenol analysis: automation and comparison with manual methods // American journal of enology and viticulture. 1977. № 1. C. 49-55.

174. Song Y., Silversides F.G. The technique of orthotopic ovarian transplantation in the chicken // Poultry science. 2006. № 6. C. 1104-1106.

175. Sotiropoulou N.S., Megremi S.F., Tarantilis P. Evaluation of Antioxidant Activity, Toxicity, and Phenolic Profile of Aqueous Extracts of Chamomile (Matricaria chamomilla L.) and Sage (Salvia officinalis L.) Prepared at Different Temperatures // Applied Sciences. 2020. № 7. C. 2270.

176. Sribhen C., Choothesa A., Songserm T. Sex-based differences in plasma chemistry and cardiac marker test results in Siamese fighting fowl // Veterinary Clinical Pathology. 2006. № 3. C. 291-294.

177. Srivastava J.K., Gupta S. Extraction, characterization, stability and biological activity of flavonoids isolated from chamomile flowers // Molecular and cellular pharmacology. 2009. № 3. C. 138.

178. Srivastava J.K., Pandey M., Gupta S. Chamomile, a novel and selective COX-2 inhibitor with anti-inflammatory activity / J.K. Srivastava, M. Pandey, S. Gupta // Life sciences. 2009. № 19-20. C. 663-669.

179. Srivastava J.K., Shankar E., Gupta S. Chamomile: A herbal medicine of the past with a bright future / J.K. Srivastava, E. Shankar, S. Gupta // Molecular medicine reports. 2010. № 6. C. 895-901.

180. Stevens L. Sex chromosomes and sex determining mechanisms in birds / L. Stevens // Science progress. 1997. (80 ( Pt 3)). C. 197-216.

181. Tenorio K.I., Sgavioli S., Roriz B.C. Effect of chamomile extract on the welfare of laying Japanese quail // Revista Brasileira de Zootecnia. 2017. C. 760765.

182. Thomas K.S., Amutha R., Purushothaman M.R. Energy and protein requirements during various stages of production in Japanese quails / K.S. Thomas, R. Amutha, M.R. Purushothaman // International Journal of Science, Environment and Technology. 2019. № 4. C. 790-794.

183. Tousson E. Ameliorative Effects of Spirulina and Chamomile Aqueous Extract against Mice Bearing Ehrlich Solid Tumor Induced Apoptosis / E. Tousson // Asian Oncology Research Journal. 2019. C. 1-17.

184. Tsivelika N., Irakli M., Mavromatis A. Phenolic Profile by HPLC-PDA-MS of Greek Chamomile Populations and Commercial Varieties and Their Antioxidant Activity / N. Tsivelika, M. Irakli, A. Mavromatis // Foods. 2021. № 10. C. 2345.

185. Tunsaringkarn T., Tungjaroenchai W., Siriwong W. Nutrient benefits of quail (Coturnix coturnix japonica) eggs // International Journal of Scientific and Research Publications. 2013. № 5. C. 1-8.

186. Ukwu H. Effect of Egg Weight on External and Internal Egg Quality Traits of Isa Brown Egg Layers in Nigeria // Journal of Animal Science and veterinary Medicine. 2017. C. 126-132.

187. Vali N. The Japanese Quail: A Review // International Journal of Poultry Science. 2008.

188. Velisek J., Stejskal V., Kouril J. Comparison of the effects of four anaesthetics on biochemical blood profiles of perch / J. Velisek, V. Stejskal, J. Kouril // Aquaculture Research. 2009. № 3. C. 354-361.

189. Walzem R.L., Hansen R.J., Williams D.L. Estrogen Induction of VLDLy Assembly in Egg-Laying Hens / R.L. Walzem, R.J. Hansen, D.L. Williams // The Journal of Nutrition. 1999. № 2. C. 467S-472S.

190. Zafari Zangeneh F., Minaee B., Amirzargar A. Effects of Chamomile Extract on Biochemical and Clinical Parameters in a Rat Model of Polycystic Ovary Syndrome // Journal of Reproduction & Infertility. 2010. № 3. C. 169-174.

191. Zakaria A.H. Ovarian follicular development in young and old laying hens / A.H. Zakaria // Archiv fuer Gefluegelkunde (Germany). 1999.

192. Zheng H.L. Study on allozyme polymorphysims in viscera and muscle of two quail strains for egg / H.L. Zheng // Master thesis, University of Westnorth Agriculture. 1997.