Изучение фотообмена кислорода с участием некоторых метаболитов хлоропластов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, кандидат биологических наук Гусейнова, Валерия Евгеньевна

• Гусейнова, Валерия Евгеньевна
• кандидат биологических наук
• 1983

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Гусейнова, Валерия Евгеньевна

ВВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1. ФОТОСИНТЕТИЧЕСКИЙ МЕТАБОЛИЗМ КИСЛОРОДА

1.1. Фотопоглощение кислорода и его локализация в клеточных структурах

1.2. Молекулярный кислород как фактор регуляции фотосинтеза.

1.3. Продукты восстановления кислорода в ЭТЦ, пути их дезактивации и участие в метаболизме фототрофной клетки

1.4. Реакция Мелера как основной метод изучения кислородпоглощающей функции ЭТЦ хло-ропластов.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

2. ОБ'ЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3. СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ ФОТООБМЕНА 02 В ЭТЦ МЕЗОФИЛЬНЫХ ХЛОРОПЛАСТОВ с3 И С4-РАСТЕНИЙ С

УЧАСТИЕМ ЩАВЕЛЕВОУКСУСНОИ КИСЛОТЫ

3.1. Химическое взаимодействие ЩУК с восстановленными формами кислорода

3.2. Механизм и локализация в ЭТЦ реакции Мелера с ЩУК

3.3. Изучение фотоокислительных реакций с ЩУК на донорной стороне ФСП

4. УЧАСТИЕ АДЕНИННУКЛЕОТИДОВ В РЕГУЛЯЦИИ ШОТОПОГ

ЛОЩЕНИЯ 02 В ЭТЦ.

4.1. Влияние АДФ+ФН на скорость реакции Мелера с различными реагентами.

4.2. Механизм активации восстановления кислорода в ЭТЦ адениннуклеотидами

5. ВОССТАНОВЛЕНИЕ 02 В ЭТЦ ФОТОСИНТЕЗА В ЛИСТЬЯХ РАЗНОГО ВОЗРАСТА

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Изучение фотообмена кислорода с участием некоторых метаболитов хлоропластов»

В В Е Д Е Н И Е В системе саморегуляции фотосинтеза основного процесса жизнедеятельности растений важную роль выполняет молекулярный кислород как постоянно действующий фактор внешней и внутренней среды. В связи с этим представляется актуальным изучение конкретных механизмов участия в реакциях фотосинтетического метаболизма. Одним из наиболее ранних проявлений действия O g n a фотосинтез является его участие в регуляции функционирования электронтранспортной цепи хлоропластов. Благодаря активации псевдоциклического или циклического фотофосфорилирования, Og может обеспечивать быстрое изменение соотношения компонентов восстановительной силы /АТШ и НАДШН в соответствии с запросами растения, что определяет адаптационную способность фотосинтетического аппарата к изменяющимся внешним условиям, эффективность фотосинт еза, а следовательно, и обшую продуктивность растений. В то же время действие Og в качестве конечного акцептора электронов связано с образованием его высокоактивных восстанов ленных форм, и для оценки реального физиологического значения поглощения Og в ЭТЦ необходимо выяснение путей их метаболической утилизации. Поэтоц изучение способности природных метаболитов хлоропластов взаимодействовать с активными формами Og представляет двойной интерес такие метаболиты могут одновременно участвовать как в активации переноса электронов на 0 с аутоксидабельных компонентов ЭТЦ, так и в использовании образующихся при этом восстановленных форм Og.Целью настоящей работы явилось изучение фотопоглощения О2 на уровне ЭТЦ /реакции Мелера/ с участием природных метаболитов хлоропластов. Выбор метаболитов определялся имеющимися сведениями об их способности активировать поглощение Og изолированными хлоропластами и участии в ключевых реакциях фотосинтетического обмена. В задачи работы входило: 1. Сравнительное исследование действия, щавелевоуксусной кислоты на фотообмен Og в мез.офильных хлоропластах гороха /Сз-растение/ и кукурузы /С-растение/, 2. Выяснение механизма стимуляции АТШ переноса электронов на 02 в хлоропластах. 3. Исследование возрастной динамики фотопоглощения 02 в ЭТЦ. Исследования показали, что фотоокисление ЩУК восстановленными формами 02 в мезофильных хлоропластах как Сз, так и С4-растений осуществляется в фотосистеме П и связано с активацией поглощения 02- Установлено, что ЩУК и оксалат действуют на фотообмен 02 в ЭТЦ также за счет способности донировать электроны на окислительной стороне ФСП до трис-блока. Впервые обнаружена способность адениннуклеотидов взаимодействовать с восстановленной формой 02 супероксидрадикалами /01/ в модельных фотохимических системах. Наибольшую активность проявляет АТФ. Эти результаты позволяют объяснить взаимодействием АТФ с 0| активацию поглощения О2 хлоропластами и указывают на возможность участия кислорода в регуляции не только образования, но и использования АТШ. Показано, что реакция Мелера с АТШ локализована в ШОП. Таким образом, установлена локализация в ШОП взаимодействия с восстановленными формами О2 важных метаболитов хлороплас7 тов ATi и ЩУК. Показано, что фотопоглощение Og в ФСП, активированное ЩУК и другими органическими кислотами, не контролируется АДШ+Фр| и не зависит от возраста листьев. Совокупность этих данных подводит к выводу, что ШСП может являться, наряду с ШС1, физиологически важным участком восстановления О2 в ЭТЦ.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Гусейнова, Валерия Евгеньевна

1. Обнаружены общие закономерности влияния щавелевоуксус ной кислоты на фотообмен 0^ в ЭТЦ мезофильных хлоропластов го роха /Gg-pacTeHHe/ и кукурузы /С^-растение/. Благодаря способ ности к взаимодействию с восстановленными формами кислорода /Ор и НрОо/, ЩУК функционирует в качестве реагента реакции Ме лера с преимущественной локализацией в ШОП. На это указывает незначительное ингибирование поглощения Оо дибромтимохиноном, максимальная активность в слабокислой области рН, суммация ак тивностей при сочетании ЩУК с реагентами ШС1 и снижение в при сутствии ЩУК выделения Оо в реакции Хилла с кремниевомолибдено вой кислотой.2. Действие ЩУК на фотообмен Og не ограничивается актива цией поглощения Og. ЩУК, а также оксалат, вызывает снижение выделения Ор хлоропластами при восстановлении феррицианида и ДХШШ. Такой эффект можно объяснить донорной способностью ЩУК и оксалата, четко проявляющейся в модельных системах. Допирова ние электронов осуществляется на окислительной стороне ШСП до участка ингибирования трисом, поскольку ни ЩУК, ни оксалат не обладают способностью восстанавливать транспорт электронов при блокировании ЭТЦ диуроном или обработкой трисом.3. Показана способность адениннуклеотидов взаимодейство вать с Og- в модельных фотохимических системах генерации Og с разной активностью /АТШ>АДФ> АМФ/, что может служить объясне нием стимулирующего действия АТШ на фотопоглощение Ор хлоро пластами. Определение локализации поглощения 0^ с АТФ в ЭТЦ по рН-зависимости, совместному действию с другими реагентами реакции Мелера и кремниевомолибденовой кислотой показало его

связь с ФСи.4. Перенос электронов на Ор в ШСП обнаруживает независимость от фосфатакцепторной системы /АДШ+Ш^/. Это проявляется в отсут ствии ускоряющего действия АДШ+Ш^^ на реакции Мелера с ЩУК и ма лонатом. Величина ускоряющего эффекта для реакций с каталазой+ этанолом и глиоксилатом, составляющая около 20%, ниже, чем для реакций, локализованных в ШС1 /около 70%/, что может быть свя зано с частичной локализацией действия этих реагентов как в ШС1, так и в ШСП.

5. При старении листьев в хлоропластах снижается скорость реакции Хилла с феррицианидом и реакции Мелера с глиоксилатом и этанолкаталазной ловушкой - реагентами, действие которых связа но с функционированием обеих фотосистем, тогда как активность поглощения Og в ФСП /с ЩУК, малонатом, оксалатом/ не зависит от возраста листьев. Это свидетельствует о нарушении при старе нии транспорта электронов между фотосистемами и может обеспечи вать увеличение доли переноса электронов на Со в общем электрон ном транспорте.6. Полученные данные указывают на то, что перенос электро нов на Со в ФСП может обеспечивать функционирование этого участ ка при блокировании работы полной ЭТЦ /например, при дефиците АДШ или при нарушении связи между фотосистемами при старении листьев/. Таким образом, ФСП, наряду с ШС1, может быть физиоло гически важным участком поглощения Ор в ЭТЦ хлоропластов.Выражаю глубокую благодарность моему научному руководителю Римме Михайловне Бекиной за помощь и поддержку при выполнении настоящей работы, За помощь и консультации при проведении экспе риментов приношу признательность ассистенту каФедры физиологии растений Александре Федоровне Лебедевой.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Гусейнова, Валерия Евгеньевна, 1983 год

1. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А., Степаненко С Ю Влияние азотного питания на активность гликолатонсидазы у растений бобов и кукурузы. Шизиол.растений, 1975, т.22, вып.З, с.553-

2. Афанасьев И.Б. Анион-радикал кислорода Со в химических и биохимических процессах. Усп.химии, 1979, т.48, б, с.977-1

3. Бенина P.M., Лебедева А.Ш. Изучение реакций поглощения кислорода /реакций Мелера/ в хлоропластах в присутствии кремниевомолибденовой кислоты. Биохимия, 1977, т.42, вып.4, с.693-

4. Бенина P.M., Михайлова E.G., Мосолова И.М., Сисакян Н.М. Активирующее действие АТШ на процесс поглощения Ор хлоропластами на свету. Докл. АН СССР, 1966, т.167, 2, с.444-

5. Бенина P.M., Лысенко Г.Г. Рубин Б.А. Фотоокислительное декарбонсилирование органических кислот в хлоропластах и его связь с фотодыханием. Шизиол.растений, 1974, т.21, вып.З, с.468-

6. Бенина P.M., Лебедева А.Ф., Рубин Б.А. О связи фотоокислительных превращений органических кислот в хлоропластах с фотосистемой П. Докл. АН СССР, 1975а, т.224, 4, с.960-

7. Бенина P.M., Шувалов В.А., Лысенко Г.Г., Мошенцева В.Н., Лебедева А.Ш. Исследование механизма фотоокислительных превращений органических кислот в хлоропластах. Шизиол. растений, 19756, т.22, вып.4, с.680-

8. Бенина P.M., Лебедева А.Ф., Рубин Б.А. О локализации реакции Мелера с этанолкаталазной ловушкой в цепи фотосинтетического транспорта электронов. Биохимия, 1976а, т.41, вып.5, с.815-821.

9. Бекина P.M., Лысенко Г.Г.,. Лебедева А.Ф., Гусев М.В. Зависимость фотоиндуцированного восстановления кислорода в хлорошастах от рН. Шизиол.растений, I98I, т.28, вып.4, с.736-

10. Белл Л.Н. Энергетика фотосинтезирующей растительной клетки. М.: Наука, 1980. 300 с. Бойченко В.А. Действие аноксии на активность фотосистемы П у хлореллы: роль гидрогеназной системы. Шизиол.растений, 1980, т.27, вып.1, с.42-

11. Бойченко В.А., Ефимцев Е.И. Ингибирование активности фотосистемы П у хлореллы при высоких концентрациях кислорода. Шизиол.растений, 1979, т.26, вып.4, с.815-

12. Действие различных концентраций кислорода на рост в связи с фотосинтезом и фотодыханием. В кн.: Теоретические основы фотосинтетической продуктивности. М., 1972, с.369-

13. Ваклинова Г., Воскресенская Н.П., Гришина Г С Ошмарова И.С. Некоторые особенности индуцированного светом окисления гидроксиламина в суспензии хлоропластов. Шизиол.растений, 1966, т.13, вып.2, с.208-

14. Венедиктов П С Кренделева Т.Е., Рубин А.Б. Первичные процессы фотосинтеза и физиологическое состояние растительного организма. В кн,: Шизиология фотосинтеза. М., 1982, с.55-

15. Вечер А С Лебедева Т.Д. Активность реакции Хилла с разными окислителями в процессе развития листьев. Докл. АН БССР, 1967, т.II, 8, с.427-

16. Вечер А С Лебедева Т.И., Райцина Г.И. Активность реакции Хилла и фотосинтетического фосфорилирования в изолированных хлоропластах листьев гороха. Докл. АН БССР, 1967, т.II, 5, с.451-454.

17. Воскресенская Н.П. Поглощение кислорода фотосинтезирующими растениями на свету. В кн.: Биохимия и биофизика фотосинтеза. М., 1965, с.219-

18. Воскресенская Н.П. Регуляторное действие синего света на поглощение кислорода и метаболизм углерода у фотосинтезирующей клетки. В кн.: Теоретические основы фотосинтетической продуктивности. М., 1972, с.168-

19. Воскресенская Н.П., Гришина Г.С. Поглощение кислорода зелеными листьями в зависимости от интенсивности, и спектрального состава света. Шизиол.растений, I960, т.7, вып.5, с.497-

20. Воскресенская Н.П., Гришина Г.С. Некоторые особенности поглощения кислорода зелеными листьями на свету. Шизиол.растений, I96I, т.8, вып.6, с.726-

21. Воскресенская Н.П., Поляков М.А., Карпушкин Л.Т. Влияние концентрации кислорода на СОр-газообмен у бобов и кукурузы.Шизиол.растений, 1974, т.21, вып.З, с.455-

22. Гинс В.К., Тихонов А.Н., Мухин Е.Н., Рууге Э.К. Особенности функционирования двух молекулярных форм ферредоксина гороха в цепи электронного транспорта хлоропластов. Биохимия, 1982, т.47, II, с.1859-1

23. Гольдфельд М.Г., Хангулов С В Гусев М.В., Никитина К.А. О поглощении кислорода сине-зелеными водорослями. Биофизика, 1974, т.XIX, вып.4, с.697-

24. Григорьев Ю.С. Светоиндуцируемые изменения флуоресценции хлорофилла а у некоторых групп растений.: Автореф. Дис. канд.биол.наук, Красноярск, 1975. 23 с. Гуляев Б.И. Газообмен листьев кукурузы на свету. В сб.: Шотосинтез кукурузы. Пущине-на-Оке, 1974, с.136-

25. Демидов Э.Д., Керимов Х., Белл Л.Н. О связи между выделением гликолевой кислоты и энергетической обеспеченностью клеток хлореллы на свету. Шизиол.растений, 1978, т.25, вып.5, C.I089-I095.

26. Иванова Т.М., Рубин Б.А., Давыдова М.А. О каталитических функциях пероксидазы хлоропластов. Докл. АН СССР, 1970, т.190, I, с.214-

27. Калер В.Л., Клингер Ю.Е., Локтев А.В., Вечер А.С. Сопряжение метаболизма гликолата с биосинтезом хлорофилла в растениях. Шизиол.растений, 1977, т.24, вып.1, с.30-

28. Канунго М. Биохимия старения. М.: Мир, 1982. 296 с. Карапетян Н.В. Климов В.В., Ланг Ш., Красновский А.А. Исследование индукции флуоресценции листьев кукурузы в анаэробных условиях. Шизиол.растений, I97I, т.18, вып.З, с.507-

29. Карпилов Ю С Любимов В.Ю. Светозависимое окисление органических кислот хлоропластами кукурузы. Докл. АН СССР, 1977, т.237, Р 5, C.I244-I

30. Карпилов Ю С Любимов В.Ю., Чермных P.M., Кособрюхов А.А. Природа светоиндуцированного окисления органических кислот и его возможная роль в регуляции псевдоциклического фотофосфорилирования в хлоропластах. В кн.: Механизм фотодыхания и его возможные особенности у растений различных типов. Пущине, 1978, с.74-

31. Керимов e x Демидов Э.Д., Маслов А.И., Белл Л.Н. Превращение гликолата и глицина в клетках хлореллы. Шизиол.растений, 1980, т.27, вып.1, с.52-

32. Колесников П.А.., Зорэ С В Петроченко Е.И., Шумова Т.А. Ингибирование перекисью водорода метаболизма рибозо-5фосфата и триозо-фосфат-дегидрогеназы в экстрактах из хлоропластов. Докл. АН СССР, 1979, т.247, б, C.I502-I

33. Красновский А.А., мл., Лебедев Н.Н., Литвин Ф.Ш. Обнаружение триплетных состояний хлорофилла и его предшественников в листьях и хлоропластах по фосфоресценции и замедлен34. Кренделева Т.Е., Кукарских Г.П., Материн Д.Н., Тимофеев К.Н., Рубин А.Б. Влияние витамина К3 на фотосинтетический электронный транспорт. Биохимия, 1975, т.40, вып.1, с.57-

35. Кузьмин А.Н., Маслов А.И. Участие фотодыхания в поддержании концентрации АТШ in vivo. -Докл. АН СССР, 1980, т.251, 2, с.510-

36. Кээрберг О.Ф. Действие интенсивности света на продукты фотосинтеза у листьев фасоли. В кн.: Теоретические основы фотосинтетической продуктивности. М., 1972, с.200-

37. Кээрберг О.Ш., Вийль Ю.А. Системы регуляции и энергетика восстановительного пентозофосфатного цикла. В кн.: Физиология фотосинтеза. М., 1982, C.I04-II

38. Лайск А.Х. Кинетика фотосинтеза и фотодыхания Cg-растений. М.: Наука, 1977. 194 с. Литвин Ш.Ш., Синещеков В.А., Бойченко В.А. Соотношение биофизических и физиологических закономерностей начальных стадий фотосинтеза. В кн.: Физиология фотосинтеза.М., 1982, с.34-

39. Лысенко Г.Г., Бекина P.M., Рубин Б.А. Особенности функционирования систем фотопоглощения кислорода в хлоропластах гороха. Научн.докл. высшей школы,- Биол.науки, 1975, W 3, с.64-

40. Любимов В.Ю. Светозависимый окислительный метаболизм органических кислот в мезофильной части листа кукурузы и его связь с фотохимическими реакциями хлоропластов. Дис. канд.биол.наук. Пущине, 1979. 126 с. Любимов В.Ю., Карпилов Ю.С. Светозависимый окислительный метабо-лизм органических кислот в мезофильных хлоропластах кукурузы. В сб.: Механизм фотодыхания и его особенности у растений различных типов. Пущине, 1978, с.58-74.

41. Марголина С М Лысенко Г.Г. Бекина P.M., Гусев М.В. Сравнительное изучение процесса восстановления кислорода в фотосистеме П у цианобактерий Anacystis nidulans и АпаЪаепа variabilis Микробиол., 1980, т.ХЫХ., вып.6, с.859-

42. Мерзляк М.Н., Соболев А С Роль супероксидных анион-радикалов и синглетного кислорода в патологии мембран. В сб.: Итоги науки и техники. Биофизика. М., 1975, т.5, C.II8-I

43. Мерзляк М.Н., Юферова С Р Соболев А С Роль супероксидных анион-радикалев и супероксиддисдтазы в реакциях фотопереокисления липидов изолированных хлоропластов. Биофизика, 1977, т.ХХП, вып.5, с.846-

44. Михайлова Е С Бекина P.M., Шапошникова М.Г., Мосолова И.М., Сисакян Н.М. Окислительные превращения органических кислот в хлоропластах на свету. Шизиол.растений, 1966, т.13, вып.З, с.416-

45. Мокроносов А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Наука, I98I. 196 с. Мосолова И.М., Михайлова Е С Бекина P.M., Сисакян Н.М. Поглощение кислорода хлоропластами на свету в присутствии малоната. Докл. АН СССР, 1965, т.164, Ш 5, с.1179-1

46. Мурзаева С В Акулова Е.А. О локализации каталазы и пероксидазы в изолированных хлоропластах гороха и их фрагментах.Биохимия, 1975, т.40, I, с.166-

47. Мухин Е.Н. Роль ферредоксина в фотосинтезе. Успехи соврем. биол., 1969, т.67, вып.2, с.201-

48. Озолиня P.P., Клявиня Д.Р., Лапиня Л.П. Супероксиддисмутазная активность у растений в зависимости от уровня обеспеченности их медью. В сб.: Шизиолого-биохимические исследования растений. Рига, 1978, с.64-75.

49. Редько Т.П., Шмелева В.Л., Иванов Б.Н., Мухин Е.Н. Соотношение между нециклическим и псевдоциклическим транспортом электронов в хлоропластах гороха в зависимости от концентрации ферредоксина. Биохимия, 1982, т.47, вып.10, с.1695-1

50. Рубин А.Б., Кренделева Т.Е. О природе фотосинтетического фосфорилирования. В сб.: Шизиология и биохимия здорового и больного растения. М., 1970, с.257-

51. Рубин А.Б., Кренделева Т.Е. Шотосинтетическии перенос электронов и сопряженные с ним процессы фосфорилирования в растений. Успехи соврем.биол., 1972, т.73, вып.З, с.364-

52. Рубин А.Б., Воронков Л.А., Живописцева И.В. Некоторые особенности каталитических свойств пероксидазы хлоропластов. Докл. АН СССР, 1970, т.190, 6, с.1483-1

53. Стахов Л.Ш., Макаров А.Д. Об участии птеринового компонента в световом и темповом поглощении кислорода хлоропластами. Биохимия, I98I, т.46, вып.9, с.1646-1

54. Степанова A.M., Шумилова А.А. Шотодыхание /эволюционный и физиологический аспекты/. Ботан.ж., 1980, т.65, W 9, C.II25-II

55. Сытник К.М., Мусатенко Л.И. Богданова Т.Л. Киев: Наук, думка, 1978. 392 с. Шизиология листа. Чмора Н., Слободская Г.А., Ничипорович А.А. О взаимосвязи фотосинтеза и фотодыхания у растений с различной активностью фотосинтетического аппарата. Шизиол.растений, 1975, т.22, вып.6, c.IIOI-1

56. Чмора Н., Слободская Г.А., Ничипорович А.А. Ингибирование газообмена Со-растений кислородом в условиях высокой концентрации СОр. Шизиол.растений, 1976, т.23, вып.5, с.885-892.

57. Шувалов В.А., Красновский А.А. Изучение фотовосстановления Og хлоропластами методом хемилюминесценции люминола и хлорофилла. Биохимия, 1975, т.40, вып.2, с.358-

58. Allen J.F. Oxygen reduction acnd optim-um production of ATP in photosynthesis. Nature, 1975a. v.256, N 5518, p.599-

59. Allen J»P. A two step mechanism for the photosynthetic reduction of oxygen by ferredoxin. Biochem. Biophys. Res. Commim., 1975, v.66, U I, p.56-

60. Allen J,F, Superoxide and photosynthetic reduction of oxygen. In: Superoxide and superoxide dismutase. Ж.-L., 1977, p.417-

61. Allen J.F. Induction of a Mehler reaction in chloroplast preparation by flavin mononucleotide: effects on photosynthesis by intact chloroplasts. Plant Sci. Lett., 1978a, V.I2, I 2, p.151-159. T Allen J.F. Induction of Mehler reaction in chloroplast preparation by methyl viologen and by ferredoxin: effect on photosynthesis by intact chloroplasts. Plant Sci. Lett., 1978b, V.I2, N 2, p.161-

62. Allen J.P., Hall D.O. Superoxide reduction as a mechanism of ascorbate stimulated oxygen uptake by isolated chloroplasts. Biochem. Biophys. Res, Commim., I973, v. 52, N 3, p.856-

63. Anderson J.V/., House C M Polarographic study of oxaloacetate reduction by isolated pea chloroplasts. Plant Physiol., 1979, V.64, N 6, P.IO58-IO

64. Arron G.P., Henry L., Palmer J.M., Hall D.O. Superoxide dismutases in mitochondria from Helianthus tuberosus and Neurospora crassa. Biochem. Soc. Trans., 1976, v. 4, p.618-620.

65. Asada H,, Kiso K. Initiation of aerobic oxidation of sulfite by illuminated spinach chloroplasts. Eur. J. Biochem., 1975a, V.33, N 2, p.253-

66. Asada H., Kiso K. The photo-oxidation of epinephrine by spinach chloroplasts and its inhibition by superoxide dismutase: evidence for the formation of superoxide radicals in chloroplasts. Agric. Biol. Chem., 1973b, v.37» N 2, p.453-

67. Asada K., Kanematsu S. Distribution of cuprozinc, manganic and ferric superoxide dismutases in plants and fungi: an evolutionary aspect. In: Evolution.of Protein Molecules. Tokyo, 1978, p.361-

68. Asada K., Nakano У. Affinity for oxygen in photoreduction of molecular oxygen and scavenging of hydrogen peroxide in spinach chloroplasts. Photochem. Photobiol., 1978, V.28, N 4/5, p.917-

69. Asada K., Urano M., Takahashi M. SubceZlular location of superoxide dismutase in spinach leaves and preparation and properties of crystalline spinach superoxide dismutase. Eur. J. Biochem., 1975, v.36, N I, p.257-

70. Asada K., Kiso K., Yoshikawa K. Univalent reduction of molecular oxygen by spinach chloroplasts on illumination. J. Biol. Chem., 1974, v.249, N 7, p.2I75-2I8I. Asada K., Kanematsu S., Takahashi M., Kono Y. Superoxide dismutases in photosynthetic organisms. In: Iron and Copper Proteins. N.Y., 1976, p.551-

71. Asada K., Takahashi M., Tanaka K., Nakano Y. Formation of active oxygen and its fate in chloroplasts. In: Biochemical and Medical Aspects of Active Oxygen. Tokyo, 1977,p.45-

72. Asami S., Akazawa T. Enzymic formation of glycolate in Chromatium.. Role of superoxide radical in a transketolase-type

73. Asami S., Akazawa T. Photooxidative damage in photosynthetic activities of Chromatium vinosiim. Plant Physiol., 1973, V.62, N 6, p.981-

74. Atkins C.A., Canvin D.T., Pock H. Intermediary metabolism of photosynthesis in relation to carbon dioxide evolution in sunflov/er. In: Photosynthesis and Photorespiration. N.Y.-L.-Sydney-Toronto, I97I. p.497-505Babcock G.T., Sauer K. Two electron donation sites for exogenous reductants in chloroplast photosystem II. Biochim. Biophys. Acta, 1975, v.596, 11 I, p.45-

75. Badger M.R., Andrews T.J. Effects of СО, 0 and temperature on a high-affinity form of ribulose diphosphate carboxylase-oxygenase from spinach. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1974, v.60, N I, p.204-

76. Badger M.S., Canvin D.T. Oxygen uptake during photosynthesis in C- and C plants. In: Proc. Int. Congr. Photosynth. Res. L., I98I, v.4, p.I5I-I6I. Badger M.R., Kaplan A., berry J.A. Internal inorganic carbon pool of Chlamydomonas reinhardtii. Plant Physiol., 1980, V.66, II 5, p.407-

77. Barr R., Crane F.L., Giaquinta R.T, Dichlorophenylurea-insensitive reduction of silicomolybdic,acid by chloroplast photosystem II. Plant Physiol., I975, v,3, 5, p.460-

78. Bassham I.A. Kinetic studies of the photosynthetic carbon reduction cycle. Annu. Rev. Plant Physiol., 1964, V.I5, p.IOI-

79. Beauchamp C O Pridovich I. Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. Anal. Biochem., I97I, v.44, I I, p.276-287. T Beauchamp C O Pridovich I. Isozymes of superoxide dismutase from v/heat germ. Biochim. Biophys. Acta, 1975, V.517, N I, p.50-

80. Behrens P.W., Marsho T.V., Radmer R.J. Photosynthetic Op exchange kinetics in isolated soybean cells. Plant Physiol., I9B2, r.70, n I, P.179-IS5.

81. Birecka H., Chaskes M.J., Goldstein J. Peroxidase and senescence. J. Sxp. Bot., 1979, V.50, N 116, p.565-

82. Bodannes R.S., Chan P.C. Ascorbic acid as a scavenger of singlet oxygen. PEBS Lett., 1979, v. 105, N 2, p.195-196. BOger P. Replacement of photosynthetic electron transport inhibitors by silicomolibdate. Physiol. Plant., 1982, V.54, N 2, p.221-

83. Bouges B, Action de faibles concentrations dhydroxylamine sur 1emission doxygene des algues Chlorella et des chloroplasts depinards. Biochim. Biophys, Acta, I97I, V.254, 11 I, p.105-

84. Bouges-Bocquet B. Limiting steps in photosystem II and v/ater decomposition in Chlorella and spinach chloroplasts. Biochim. Biophys. Acta, 1975, v.292, I 5, p.772-785. T Bowes G., Ogren W.L., Hageman R.H. Phosphoglycolate production catalyzed by ribulose diphosphate carboxylase. Biochem. Biophys. Res. Commun., I97I, v.45, H 5, p.716-

85. Braber J.M. Catalase and peroxidase in primary bean leaves during development and senescence. Z. Pflanzenphysiol., 1980, Bd.97, H.2, S.155-

86. Canvin D.T., Badger M.R., Berry J., Pock M., Osmond C.B. Oxygen exchange in leaves in the light. Plant. Physiol,, 1980, V.66, N 2, p.302-

87. Champigny M., Gibbs M. Photosynthesis by isolated chloroi3asts in the presence of antimycin A and ascorbic acid. In: Progress Photosyathesis Research. Tubingen, 1969, v.3, Р.1534-15З

88. Chia L.S., Thompson J.E., Dumbroff E.B. Stimulation of the ef-

89. Chollet R., Ogren V I Regulation of photorespiration in C and C species. Bot. Review, 1975, v.4I, N 2, p.157-179. Del Rio b.A., Sevilla P., Gomez M., Xanez J., Lopez J. Superoxide dismutase: an enzyme system for the study of micronutrient interactions in plants. Planta, I97S, v.140, N 5, p.221-

90. Dhindsa R.S., Plumb-Dhindsa P., Thorne T.A, Leaf senescence: correlated with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation and decreased levels of superoxide dismutase and catalase. J. Exp. Bot«, I98I, v.52, N 126, P.93--IOI. Dhindsa R.S., Pl\imb-Dhindsa P.L., Eeid D.M, Leaf senescence: effects of some phytohormones and scavengers of free radicals and singlet oxygen, Physiol. Plant., 1982, V.56, N 4, p.455- 91. Diner B., Mauzerall D. Feedback controlling oxygen production in a cross-reaction between two pbotosystems in photosynthesis. Biochim. Biophys, Acta, 1975, v.505, N 2, p.529-

92. Douce R., Moore A.L., Neuburger M. Isolation and oxidative properties of intact mitochondria isolated from spinach leaves. Plant Physiol., 1977, v.60, I 4, p.625-628. f Egneus H., Heber U., Mathieson U., Kirk M. Reduction of oxygen by the electron transport chain of chloroplasts during assimilation of carbon dioxide. Biochim. Biophys. Acta, 1975, v.408, N 5, p.252-

93. Eickenbusch J.D., Beck E. Evidence for involvraent of 2 types of reaction in glycolate formation during photosynthesis in isolated spinach chloroplasts. FEBS Lett., 1975, V.5I, N 2, p.225-

94. Elstner E.F., Heupel A. On the decarboxylation of t-keto acids by isolated chloroplasts. Biochim. Biophys. Acta, 1975, V.525, 11 I, P.I82-I8S. Elstner E.P., Heupel A. On the mechanism of photosynthetic

95. Elstner E.F., Heupel A. Lamellae superoxide dismutase of isolated chloroplasts. Planta, 1975, v.I23, N 2, p.I45

96. Elstner E.F., Kramer R. Role of superoxide free radical ion in photosynthetic ascorbate oxidation and ascorbatemediated phosphorylation. Biochim. Biophys. Acta, 1975, V.5I4, N 5, p.540-

97. Elstner E.F., Stoffer C Heupel A. Determination of superoxide free radical ion and hydrogen peroxide as products of photosynthetic oxygen reduction. Z. Naturforsch., 1975, V.50C, I, p.55-57. T Epel B.L., ITeumann J. The mechanism of the oxidation of ascor2+ bate and 1 п by chloroplasts. The role of the radical Л superoxide. Biochim. Biophys. Acta, 1975, v.525, H 5, p.520-

98. Fair P., Tevi J., Cressv/ell C.F. Enzyme activities associated with carbon dioxide exchange in illuminated leaves of Hordeum vulgare L. III. Effects of concentration and form of nitrogen supplied on carbon dioxide compensation point. Ann. Bot., 1974, V.38, N 154, p.59-

99. Feierabend J., Winkelhtlsener T. Nature of photooxidative events in leaves treated with chlorosis-inducing herbicides. Plant Physiol., 1982, v.70, N 5, p.I277-I2B

100. Forti G., Gerola P. Inhibition of photosynthesis by aside and cyanide and the role of oxygen in photosynthesis. Plant Physiol., 1977, V.59, N 5, p.859-

101. Foyer.C.H,, Hall D.O. A rapid procedure for the preparation of light harvesting chlorophyll a/b protein complex. An assessment of its manganese content. FEBS Lett., 1979, v.IOI, N 2, p.524-

102. Foyer C.H., Hall D.O. Oxygen metabolism in the active chloroplast. Trends Biochem. Sci., I98O, v.5, N 7, p.188-

103. Foyer C.H., Halliwell B. The presence of glutatione and gluta-

104. Fridovich I. Superoxide dismutases. Annu. Rev. Plant Physiol,, 1975, V.26, p.147-

105. FurhankR.T., Badger M.R., Osmond C.В. Photosynthetic oxygen exchange in isolated cells and chloroplasts of C plants.Plant Physiol., 1982, v.70, N 4, p.927-

106. Gerhardt B. Untersuchungen Uber Beziehungen zv/ischen AscorMnsSlure und Photosynthese. Planta, 1964, Bd 61, H.2, S.I0I-I

107. Giannopolitis C.N., Pies S.K. Superoxide dismutases. I. Occurence in higher plants. Plant Physiol,, 1977» v.59, N 2, p.309-

108. Giaquinta E.T., Dilley R,A, A partial reaction in photosystem II: reduction of silicomolybdate prior to the site of dichlorophenyl dimethylurea inhibition. Biochim. Biophys, Acta, 1975, v.387, N 2, p.28B-305, Giaquinta R.T., Dilley R,A,, Crane P,L., Barr R. Photophosphorylation not coupled to DCMU-insensitive photosystem II oxygen evolution, Biochem. Biophys. Res. Commun., 1974, V.59, N 3, p.985-

109. Girault G., Galmiche J.M. Restoration by silicotungstic acide of БОШ-inhibited phot ore actions in spinach chloroplasts.Biochim. Biophys. Acta, 1974, v.333, N 2, p.314-

110. Gleason Barker E, Oxidation of pentoses in alkalin solution. Can. J. Chem., I971, v.49, N 9, p.I425-I

111. Goda K., Kimura Т., Thayer, Kees K., Sihaap P. Singlet molecular oxygen in biological systems: non-quenching of singlet oxygen-mediated chemiluminescence by superoxide dismutase. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1974, V.58, I 3, p.660-666. T Gordon K.H.J,, Peoples M.B., Murray D.R. Ageing-linked changes in photosynthetic capacity and in fraction I protein content of the first leaf of pea Pisum sativum L. New Phytol., 1978, V.8I, К I, p,35-42.

112. Gould J.M., Izav/a S. Photosystem-II electron transport and phosphorylation v/ith dibromothymoquinone as the electron acceptor, Eur. J. Biochem., 1973b, v.57f I I> p.185-

113. Govindjee, Yan Rensen J.J.S. Bicarbonate effects on the electron flow in isolated broken chloroplasts. Biochim. Biophys. Acta, 1978, v.50$, I 2, p,I83-2I3. T Grishina G.S., Yoskresenskaya IT.P. Effect of oxygen and ascorbate on the electron transport chain of photosynthesis.In: Progress in Photosynthesis Research. Ttibingen, 1969, V.3, p.1262-1

114. Groden D., Beck E. 02 "-estruction by ascorbate-dependent systems from chloroplasts. Biochim. Biophys. Acta, 1979. v.56, I 3, p.426-435. T Grodzinski B. Glycolate decarboxylation during photorespiration. Planta, 197s, V.I44, I I, p.51-57. T Haber P,, Weiss J. The catalitic decomposition of hydrogen peroxide by iron salts. J. Proc. Roy. Soc. L., 1934, V.I47, N 2, p.332-

115. Halidal P., Holmen A. The effect of BGMJ /3/3,4-dichlorophenyle/-I,I-dimethyle-urea/ on photosynthesis, glycolate excretion /"photorespiration"/ and amino acid metabolism in the blue green alga Anacystis. Physiol. Plant., 1979a, V.47, I I, p.195-199. T Halidal P., Holmen A. Theinterrelationship betv/een photosynthetic electron transport, glycolate excretion and amino acid metabolism in the blue-green alga Anacystis nidulans. Plant Cell Physiol., 1979b, v.20, II 4, p.757-

116. Hall D.O. Nomenclature for isolated chloroplasts. ITature, 1972, V.235, H 56, p.125-126.

117. Halliwell B. The chloroplast at work a review of modern developments in our understanding of chloroplast metabolism. Prog. Biophys. Molec. Biol., 1978, v.35., p.I-

118. Halliv/ell В., Foyer C.H., Charles S.A. The fate of hydrogen peroxide in illuminated chloroplasts. In: 5th Int. Congr, Photosynth. Ahstr. Halkidiki, 1980. S.I, s.a., p.

119. Harbour J.E., Boltln J.R. The involvement of the hydroxyl radical in the destructive photooxidation of chlorophylls in vivo and in vitro. Photochem, Photohiol., 1978, V.28, К 2, p.251-

120. Harman D. The aging process. Proc. Hatl. Acad. Sci. USA, I98I, V.78. N II, p.7124-7

121. Hauska G., Trebst A. Proton translocation in chloroplasts.Current Topics in Bioenergetics, 1977, v.6, p.151-

122. Havir E.A. Evidence for the presence in tobacco leaves of multiple enzymes for the oxidation of glycolate and glyoxylate. Plant Physiol., 1985, v.71, 4, p.874-

123. Heber U. Stoichiometry of reduction and phosphorylation during illumination of intact chloroplasts. Biochim. Biophys. Acta, 1975, V. 505, N I, p.140-

124. Heber U. Energy coupling in chloroplasts. J. Bioenerg. Biomembr., 1976, v.8, N 2, p.157-

125. Heber U., Ilrause G.H. What is the physiological role of photorespiration? Trends Biochem. Sci., 1980, v.5, 11 2, p.52-

126. Heber U., Egneus E., Hanck U., Jensen M., KHster S. Regulation of photosynthetic electron transport and photophsphorylation in intact chloroplasts and leaves of Spinacia oleracea L. Planta, I978, v. 145, I, p.41-

127. Hewitt E.J. Assimilatory nitrate-nitrite reduction. Annu.

128. Possible participation of superoxide anion in the interstinal trtophan 2,5-dioxygenase reaction. J. Biol. Chem., I97I, v.246, N 24, p.7825-7

129. Hiyama Т., Nishimura Ы., Chance B. Energy and electron transfer systems of Ghlamydomonas reinchardii. I. Photosynthetic and respiratory cytochrome systems of the Pale Green Mutant. Plant Physiol., 1969, v.44, N 4, p.527

130. Huff A. Peroxidase-catalysed oxidation of chlorophyll by hydrogen peroxide. Phytоchemistry, 1982, v.21, I 2, T p.261-

131. Inoue H,, Nishimura M. Electron flow from hydrogen peroxide in photosystem Il-catalized oxidation-reduction reactions of spinach chloroplast, fragments. Plant Cell Physiol., I97I, V.I2, N 5, p.739-

132. Izawa S., Berg S.P. Phosphorylation associated with the jJCMUinsensitive Hill reaction. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1976, v.72, N 4, p.I5I2-I5I

133. Jackson C Bench J., Moore A.L., Halliwell В., Foyer C.H., Hall D.O. Subcellular localisation and identification of superoxide dismutase in the leaves of higher plants. Eur. J. Biochem., 1978, v. 91, N 2, p.339-

134. Jackson Volk R.J. /A, Photorespiration. Annu. Rev. Plant Physiol., 1970, V.2I, p.383-

135. Kaiser U.M. Reversible inhibition of the Calvin cycle in isolated intact chloroplasts by hydrogen peroxide. Planta, 1979, v.145, N 4, p.577-5B

136. Kaiser U.M., Bassham J.A. Carbon metabolism of chloroplasts in the dark: oxidative pentose phosphate cycle versus glycolitic pathway. Planta, 1979, v.144, N 2, p.I93

137. Kaniuga Z., Zabek J., Michalski W.P, Photosynthetic apparatus in chilling-sensitive plants. VI. Cold and darkinduced changes in chloroplast superoxide dismutase activity in relation to loosely-bound manganese content. Planta, 1979, v.I45, N 2, p.145-150. KarM., Mishra D. Catalase, peroxidase and polyphenoloxidase activity during rice leaf senescence. Plant Physiol., 1976, V.57, N 2, p.315-

138. Krause G.H., Thome S.W., Lorimer G.H. Glycolate synthesis by intact chloroplasts. Studies with inhibitors of photophosphorylation. -Arch. Biochem. Biophys., 1977» V.IB5, N 2, p.471-

139. Lorimer G.H., Andrev/s T.J., Tolbert H.E. Ribulose diphosphate oxygenase. II. Further proof of reaction products and mechanism of action. Biochem., 1975» v.12, H I, p.18-23, Luger H, Der Einflus der Askorbinsa.ure auf die Assimile.tion und Atmung htiherer Pflanzen. Protoplasma, 1954/55, Bd XLIT, H.2, S.212-

140. Lumsden J., Hall D.O. Soluble and membrane-bound superoxide dismutases in a blue-green alga /Spirulina/ and spinach.Biochem. Biophys, Res. Commun., 1974, v.58, I I, p.35-41. T Lumsden J., Hall D.O. Superoxide dismutase in photosynthetic organisms provides an evolutionary hypothesis. Hature, 1975a, V.257, N 5528, p.670-

141. Lumsden J., Hall D.O. Chloroplast manganese and superoxide. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1975b, v.64, 11 2, p.595-602. MacKinney G. Absorbtion of light by chlorophyll solutions. J. Biol. Chem., I94I, v.140, I 2, p.315-322. T

142. Marshall M.J., Worsfold M, Superoxide dismutase: a direct continuous linear assay using the oxygen electrode. Anal. Biochem., 1978, v.86, H 2, p.561-

143. Marsho T.V., Behrens P.W., Radmer R.J. Photosynthetic oxygen reduction in isolated intact chloroplasts and cells from spinach. Plant Physiol., 1979, v.64, I 4, р.бЗбT

144. Martinola E,, Balling M.J., Matile Ph. Catabolism of chlorophyll: demonstration of chloroplast-localized peroxidative and oxidative activities. Z. Pflanzenphysiol., 1932, Bd 107, N 3, S.269-

145. Mehler A, Studies on reactions of illuminated chloroplasts. I. Mechanisms of the reduction of oxygen and other Hill reagents. Arch. Biochem. Biophys., I95Ia, v.33, N I, p.65-

146. Mehler A. Studies on reactions of illuminated chloroplasts. II. Stimulation and inhibition of the reaction v/ith molecular oxygen, Arch. Biochem. Biophys., 195ГЬ, v.34, I 2,p.339-351. T Mehler A.H., Brovm A.H. Studies on reactions of illuminated chloroplasts. Ill, Simultaneous photoproduction and consumption of oxygen studied with oxygen isotopes. Arch.

147. Miflin B.J. Nitrite reduction in leaves; studies on isolated chloroplasts. Planta, 197, v.116, I 3, p.IS7-I96. T Misra H.P., Fridovich I. The generation of superoxide during the autoxidation of ferredoxins. J. Biol. Chem., 1971, V.246, N 22, p.6886-6

148. Misra H.P., Pridovich I. The univalent reduction of oxygen by reduced flavins and quinones. J. Biol. Chem., 1972, V.247, К I, p.188-

149. Murai Т., Katoh T» Photosystem I-dependent oxidation of organic acids in blue-green alga, Anabaena variabilis. Plant Cell Physiol., 1975, v.16, H 5, p.789-

150. Hakamura S., Kimura T. Studies on aggregated multienzyme systems. J. Biol. Chem., 1972, v.247, N 20, p.64626468. Nev/comb E.H., Frederick S.E. Distribution and structure of plant microbodies /peroxisomes/. In: Photosynthesis and Phot ©respiration. J e York London Sydney Mv Toronto, I97I, p.442-

151. Mlsen S., Haugstag M,, Holmen A. The effect of photosynthetic enhancement on photorespiration in Sinapis alba. Physiol. Plant., 1979, v.47, N I ,p.19-

152. Hishikimi M. The generation of superoxide anion in the reaction of tetrahydropteridines with molecular oxygen. Arch. Biochem. Biophys., 1975, v.I66, N 2, p.273-

153. Okayama S., Butler W. Extraction and reconstitution of photosystem II. Plant Physiol., 1972, v.49, N 5, p.769

154. Oliver D.J. Role of glycine and glyoxylate decarboxylation in photorespiratory CO release. Plant Physiol., I9BI, V.68, F 5, P.IO3I-IO34. Ort D., Izawa S. Studies on the energy-coupling sites of photophosphorylation. V. Phosphorylation efficiencies /P/2e/ associated with aerobic photooxidation of artificial electron donors. Plant Physiol., 1974, v.53, N 3, p.370-376.

155. Packer L., Deamer D.W., Heath R.L. Regulation and deterioration of structures in membranes. In: Advances in Gerontological Research. V. 2. Few York, 1967, p.77-120. Pan R., Izawa S, Photosystem II energy coupling in chloroplasts v/ith HpOp as electron donors. Biochim, Biophys. Acta, 1979, V.547, N 2, P.51I-

156. Parida R.K., Kar M., Mishra D. Enhancement of senescence in excised rice leaves by hydrogen peroxide. Can. J. Bot., 1978, V.56, IJ 23, p.2937-2

157. Patra H.K., Mishra D. Pyrophosphatase, peroxidase and polyphenoloxidase activities during leaf development and senescence. Plant Physiol., 1979, v.63, N 2, p.318-

158. Patra H.E., Ear M., Mishra D. Catalase activity in leaves and cotyledons during plant development and senescence. Biochem. Physiol. Pflanzen, 1978, Bd 172, H.4, S.385-

159. Pauls K.P., Thompson J.E. In vitro stimulation of senescencerelated membrane,damage by ozone-induced lipid peroxidation. Nature, I98O, v.283, N 5746, p.504-

160. Peiser G.D., Yang S.F. Chlorophyll destruction in the presence of bisulfite and linoleic acid hydroperoxide. Phytochemistry, 1978, v.I7, N I, p.79-

161. Perchoroivicz J.Т., Jensen R.G. Photosynthesis and activation of ribulose bisphosphate carboxylase in v/heat seedlings. Regulation by CO and 0, Plant Physiol., I983, v.7I, N 4, p.955-960. Pov/les S.B., Osmond C.B. Inhibition of the capacity and efficiency of photosynthesis in bean leaflets illuminated in a COg-free atmosphere at low oxygen: a possible role for photorespiration. Aust. J. Plant Physiol., 1978, V. 5, N 5, p.619-

162. Radmer R.J., Kok B. Photoreduction of oxygen primes and replaces COg assimilation. Plant Physiol., 1976, v.58, F 3, p.336-340.

163. Mtrogen and oxygen evolution by hydroxylamine treated chloroplasts. FEBS Lett., 1982, T.I44, N I, p.162-

164. Raghavendra A.G., Das V.S.R. Photochemical characteristics of mesophyll and bundle sheath chloroplasts from Cjplants. Physiol. Plant., 1978, v.43, Ш 2, p.I07-II

165. Regitz G., Berzborn R., Trebst A. On a v/ater-soluble factor neutralazing antibodies against the primary acceptor in photosynthetic electron transport of chloroplasts, Planta, 1970, V.9I, N I, p.8-

166. Renger G, Studies on the mechanism of the water oxidation in photosynthesis. Eur. J. Biochem., 1972, v.27» И 2, p.259-

167. Richardson K.E., Tolbert N.E. Oxidation of glyoxylic acid to oxalic acid by glycolic acid oxidase. J. Biol. Ohem., I96I, V.236, F 5, p.1280-1

168. Robinson J.M., Gibbs M. Hydrogen peroxide synthesis in isolated spinach chloroplast lamellae. An analysis of the Mehler reaction in the presence, of llADT reduction and ATP formation. Plant Physiol., 1982, v.70, I 5, p.1249T 1

169. Robinson J.M., Gibbs H,, Cotler D.N. Influence of pH upon the V/arburg effect in isolated intact spinach chloroplasts. I. Carbon dioxide photoassimilation and glycolate synthesis, Plant Piiysiol., 1977, v.59, 4, p.530-

170. Rosa L., Hall D.O. Phosphorylation in isolated chloroplasts coupled to dichlorophenyldimethylurea-insensitive silicomolybdate reduction. -Biochim. Biophys. Acta, 1976, V.449, I I, p.25-56, T Saha S., Ouitraloil R,, Good N.E. Blectroa transport and Photophosphorylation in chloroplasts as a function of the electron acceptor. J. Biol. Ohem., I97I, v.246, H 10, p.5204-5

171. Salin M.L., Bridges S.M. Isolation and characterization of an iron-containing superoxide dismutase from a eucaryote Brassica campestris. Arch. Biochem. Biophys., 1980a, V.20I, I 2, p.569-574. T

172. Salin M.b., Bridges S.M. Isolation and characterisation of an iron-containing superoxide dismutase from v/ater lily Kuphar luteum. Plant Physiol., 1982, v.69, N I, p.161-

173. Satoh K, Mechanism of photoactivation of electron transport in intact Bryopsis chloroplasts. Plant Physiol,, 1982, V.70, I 5, p. 1415-16. T Sauer K. A role for manganese in oxygen evolution in photosynthesis. Ace. Chem. Res., 1980, v.15, В 8, p.249

174. Schmid G.H., Thihault P. Evidence for a rapid oxygen uptake in tohacco chloroplasts. Z. Natorforsch., 1979» v.54c, I 5-6, p.414-418. T Sestak Z, Photosynthetic characteristics during ontogenesis of leaves.

175. Shain V., Gibhs M. Formation of glycolate by a reconstituted spinach chloroplast preparation. Plant Physiol,, I97I, V.48, I 5, p.525-550. T Siegel S.M., Porto P. Oxidants, antioxidants and grov/th regulation. In: Plant Growth Regulation. Ames, Jowa, I96I, p.541-

176. Sinclair J., Sarai A. Variations in photosynthetic electron

177. Slovacek R.E., Hind G. Influence of antimycin A and uncouplers on anaerobic photosynthesis in isolated chloroplasts. Plant Physiol., 1977, v.60, К 4, p.553-

178. Slovacek R.E., Hind G. Energetic factors affecting carbon dioxide fixation in isolated chloroplasts. Plant Physiol., 1980, V.65, N 5, p.526-

179. Slovacek R.E., Mills J.В., Hind G. The function of cyclic electron transport in photosynthesis. FEBS Lett., I97S, V.87, H I, p.75-

180. Spalding M.H., Spreitzer R.J., Ogren W.L. Genetic and physiological analysis of the COg-concentrating system of Chlamydomonas reinhardii. Planta, 1985, v.159» 3» p.261-

181. Steiger H.-M,, Beck B. Formation of hydrogen peroxide and oxygen dependence of photosynthetic COp assimilation by intact chloroplasts. Plant Cell Physiol., I98I, V.22, N 5, p.561-

182. Takahama U, Stimulation of lipid peroxidation and carotenoid bleaching by deuteriujn oxide in illuminated chloroplast fragments: Participation of singlet molecular oxygen in the reactions. Plant Cell Physiol., 1979, v.20, I I, T p.213-

183. Takahama U., Hishimura M. Formation of singlet molecular oxygen in illuminated chloroplasts. Effects on photoinactivation and lipid peroxidation. Plant Cell Physiol., 1975, V.I6, N 4, p.737-

184. Takahama U,, Nishimura M. Effects of electron donors and acceptors, electron transfer mediators and superoxide disr mutase on lipid peroxidation in illuminated chloroplast fragments. Plant Cell Physiol., 1976, v.17, I I, T p.III-

185. Takahama U., Inoue H., Mshimura M. Oxidation reactions between electron transfer components and hydrogen peroxide

186. Tanaka K., Kondo П., Sugahara K. Accumulation of hydrogen peroxide in chloroplasts of SOg-fujnigated spinach leaves. Plant Cell Physiol., 1982a, v.25, 6, p.999-1

187. Tanalca K., Otsubo T., Kondo IT. Participation of hydrogen peroxide in the inactivation of Calvin cycle SH-enzymes in SOp-fumigated spinach leaves. Plant Cell Physiol., 1982Ъ, V.25, N б, p.1009-1

188. Telfer A., Cammak R., Evans M.C.W. Hydrogen peroxide as the product of autooxidation of ferredoxin: reduced either chemically or by illuminated chloroplasts. FEBS bett., 1970, v.IO, К I, p.21-

189. Tetley R.M., Thimann E.V. The metabolism of oat leaves during senescence. I. Respiration, carbohydrate metabolism and the action of cytokinins. Plant Physiol., 1974, V.54, N 5, p.294-

190. Tolbert N.E. Microbodies peroxisomes and glyoxysomes. Annu. Rev. Plant Physiol., I97I> v.22, p.43-

191. Tolbert N.E., Yamazaki R.K. Leaf peroxizomes and their relation to photorespiration and photosynthesis. Ann. N.Y. Acad. Sci., 1969, v.168, H 2, p.325-

192. Trebst A., Harth В., Draber W. On a nev/ inhibitor of photosynthetic electron transport in isolated chloroplasts.Z. Naturforsch., 1970, Bd 25b, H.IO, S.II57-II

193. Trebst A., Reimer S., Dallacker P. Properties of photoreductions by photosystem II. Plant Sci. Lett., 1976, V.6, N I, p.21-

194. Usuda H., Edwards G.E. Influence of varying СOp and orthophosphate concentrations on rates of photosynthesis and synthesis of glycolate and dihydroxyacetone phosphate by wheat chloroplasts. Plant Physiol., 1932, v.69, Ж 2, p.469-473. Van Ginkel G., Brown J.S. Endogenous catalase and superoxide dismutase activities in photosynthetic membranes. FEES Lett., I97S, v.94, IJ 2, p.284-286.

195. Velthuys В., Кок В. Photosynthetic oxygen evolution from hydrogen peroxide. Biochim. Biophys. Acta, 1978, v.502, H 2, P.2II-22I. Vidaver W., Colhow K., Hall G., Wellel S. Chlorophyll fluorescence quenching by oxygen in plants. Can, J. Bot., I98Ia, V.59, N 2, p.I90-I

196. Vidaver W., Popovic R., Bruce D., Colbow K. Oxygen quenching of chlorophyll fluorescence in chloroplasts. Photochem. Photobiol., I98Ib, v., N 5, p.653-

197. Uber die Geschv/indigkeit der photochemischen Kohlensauresersetzung in lebenden Zellen. Biochem. Z., 1920, V.IO5, N 2, P.I8S-I95. V/est E.R., Wiskich J.T. Photosynthetic control by isolated pea chloroplasts. Biochem. J., 1968, v.I09> N p.527-

198. Whatley J.M. Chloroplast development in primary leaves of Phaseolus vulgaris. Hev/ Phytol., 197» v,75,"Шб, P.I097-III

199. Whittingham P. Photorespiration: its mechanism and significance. Agron. Lusitana, 1979, v.59, IT 2-5, p.II5-I

200. Whyte P., Lucta7ill L.G. Asensitive bioassay for gibberellins based on retardation of leaf senescence in Rumex obtusifolius /L./. Nature, 1966, v.2I0, I 5045, p.I

201. Wildner G.P., Henkel J. Specific inhibition of the oxygenase activity by ribulose-I,5-bisphosphate carboxylase. Biochem. Biophys. Res. Comiaun., 1976, v.69, F I, p.268

202. Wildner G.P., Henkel J. The deactivation and reactivation of ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase and oxygenase during air-argon-oxygen transitions. PEBS Lett., 1979, V.IO5, F 2, p.246-249.

203. Xamashita Т., Butler W.L. Photoreduction and photophosphorylation v/ith tris-Y/ashed chloroplasts. Plant Physiol., 1968, V.43, N 12, P.I97S-I

204. Уосглп С San Pietro A. Perredoxin reducing substance /EPS/ from spinach. Biochem., Biophys. Res. Commun., 1969, V.36, I 4, p.614-624. T Zelitch I. Increased rate of net photosynthetic carbon dioxide uptake caused by the inhibition of glycolate oxidase. Plant Physiol., 1966, v.41, I 10, p.I623-I63I. T Zelitch I. The photоoxidation of glyoxylate by envelope-free spinach chloroplasts and its relation to photorespiration. ilrch, Biochem. Biophys., 1972, v.150, I 2, T p.698-

205. Zelitch I. Improving the efficiency of photosynthesis. Science, 1975a, v.I88, I 4ISS, p.626-633. T Zelitch I. Pathways of carbon fixation in green plants. Annu. Rev. Biochem., 1975b, v.44, p.123-

206. Zelitch I. The close relationship between net photosynthesis and crop yield. Bioscience, 1982, v.32, I 10, p.796T 802.

207. Zilinskas B.A., Govindjee. Silicomolybdate and silicotimgstate mediated dichlorophenyldimethylurea-insensitive photosystem II reaction: electron flov/, chlorophyll a fluorescence and delayed light emission changes, Biochim. Biophys. Acta, I975f V.3B7, Ъ1 2, p.306-

208. Zimmermann R., Plone b., Weser U., Hartmann H.J. Inhibition of lipid peroxidation in isolated inner membrane of rat liver mitochondria by superoxide dismutase. PEBS Lett., 1973, V.29, I I, P.II7-I2O. T