Физиология и биохимия фотосинтеза растений с первичным карбоксилированием фосфоенолпировиноградной кислоты тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, доктор биологических наук Магомедов, Исхан Магомедович

• Магомедов, Исхан Магомедович
• доктор биологических наук
• 1982

Оглавление диссертации доктор биологических наук Магомедов, Исхан Магомедович

ВВЕДЕНИЕ

Список сокращений

Глава I. Общие представления о путях углерода в 12 фотосинтезе

1.1. Основные ферменты - карбоксилазы, синтези- 14 ругащие Сд и С^ - кислоты в фотосинтезе

1.2. Образование С4 - дикарбоновых кислот в фотосинтезе листьев С4 - растений

1.3. Обмен С^ - кислот в листьях суккулентов

Глава 2. Материалы и методы

2.1. Объекты, используемые для изучения образования и распада С^ - кислот в фотосинтезе

2.2. Методы изучения первичйых продуктов фиксации СО2 и определение органических кислот.

2.3. Методы получения протопластов, хлороплас-тов мезофилла и клеток обкладки проводящего пучка С^ - растений и суккулентов

2.4. Методы изучения активности и локализации некоторых ферментов углеродного метаболизма ~ растений, а также суккулентов

2.5. Методы выявления фотохимических реакций хлоропластов С^ - растений

Глава 3. Фиксация СОр листьями С^ - растений

3.1. Первичные продукты усвоения углекислоты листьями кукурузы

3.2. Особенности фиксации СО«? листьями кукурузы разных ярусов

Глава 4. Анатомия листа и структура хлоропластов С^ -растений

Глава 5. Локализация С^-щгти углерода в клеточных структурах

5.1. Усвоение COg хлоропластами из клеток мезофилла и обкладки листьев кукурузы, выделенными в водную и органическую среды

5.2. Фиксация углекислоты протопластами мезофилла и клетками обкладки листа кукурузы

Глава 6. Внутри- и межклеточная локализация некоторых ферментов С^ - фотосинтеза и цикла Кальвина в листьях С4 - растений III

6.1. Ферменты синтеза и распада С4-кислот и их локализация III

6.2. Рибулезобифосфаткарбоксилаза и ее локализация

6.3. Данные ингибиторного анализа для определения локализации ферментов карбоксилирования

Глава 7. Межклеточный транспорт С3 и (^-соединений в листьях кукурузы

7.1. Доказательства транспорта С^-кислот из клеток мезофилла в клетки обкладки и обратного оттока Сд-кислоты для регенерации акцептора углекислоты

7.2. Участие транспортных АТФаз в С4 - фотосинтезе

Глава 8. Световые реакции С4 - фотосинтеза

8.1. Фотохимия хлоропластов "малатных форм (^-растений

8.2. Фотохимия хлоропластов "аспартатных" форм С4-растений

Глава 9. Внешние факторы и С4-путь фотосинтеза

9.1. Свет, температура и С4-путь фотосинтеза

9.2. Азотное питание и С4 - фотосинтез

9.3. Вода и С4 - фотосинтез

9.4. Газообмен и С4 - фотосинтез

Глава 10. Обмен кислот С4-кислот у растений суккулентов

10.1. Суточная ритмика кислотности и образование С^-кислот в листьях

10.2. Пути распада яблочной кислоты в листьях

10.3. Изменение активности ферментов метаболизма С4-кислот в ходе онтогенеза листа.

10.4. Влияние дефицита азота в питательной среде на активность ферментов метаболизма С4-кислот в листьях

10.5. Регуляция метаболизма углерода в листьях суккулентов

10.6. Экологические аспекты САМ типа метаболизма углерода в растениях

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Физиология и биохимия фотосинтеза растений с первичным карбоксилированием фосфоенолпировиноградной кислоты»

Фотосинтез - уникальный биологический процесс, в ходе которого происходит ассимиляция углекислоты и выделение кислорода. Исследования по выяснению механизма фотосинтеза ведутся уже более 200 лет. В 40 годах 20 века использование физико-химических методов для изучения процесса ассимиляции С0г> позволило проследить путь углерода в образовании первичных, промежуточных и конечных продуктов фотосинтеза.

В результате усилий Кальвина и его сотрудников /II/ была составлена экспериментально доказанная схема углеродного метаболизма в фотосинтезирующих клетках. В настоящее время эта схема является общепризнанной и известна как цикл Кальвина.

А.А.Ничипоровичем /134/ была высказана идея о том, что "в зависимости от типа растений, их физиологического состояния, условий питания, температуры, освещения, пути превращения первичных продуктов фотосинтеза могут быть различными и приводить к образованию конечных продуктов фотосинтеза различного состава и качества". Было также показано, что наряду с триозо- и гексозофосфатами на ранних этапах фиксации СО^ синтезируются аминокислоты и органические кислоты. Оказалось, что на долю этих продуктов приходится до 20% усвоенной углекислоты /229/.

В 1965 г. появилась работа Корчака и др. /511/, в которой показано, что органические кислоты являются первичными продуктами фиксации СОр, а не промежуточными, как это считалось ранее. После этого начался новый этап в исследованиях путей ассимиляции углекислоты высшими растениями, связанный с выяснением роли С^ - дикарбоновых кислот в фотосинтезе.

Как известно, в нашей стране на кафедре физиологии и биохимии растений Ленгосуниверситета уже длительное время изучается роль органических кислот в обмене веществ растений. Это направление работ основано академиками В.И.Паллади-яым и С.П.Костычевым и развивалось профессорами С.В.Солдатен-ковым и В.АДесноковым, в работах которых показано разнообразие путей образования, накопления и использования органических кислот при различных физиологических состояниях растений разных экологических групп.

Продолжая работы по изучению обмена органических кислот, мы поставили перед собой задачу выяснить роль С^-кислот в фотосинтезе С4 и CAM-растений, а именно - определить локализацию реакций синтеза и распада С^-кислот с выделением С0£ для функционирования цикла Кальвина в хлоропластах растений двух экологических групп.

К началу наших исследований /1967/ было установлено, что ряд растений тропического происхождения: сахарный тростник, кукуруза и сорго обладают путем фиксации COg, неизвестным ранее, и была предложена схема возможных реакций этого пути /411/. В этой схеме источником углекислоты для осуществления фотосинтеза служили С^-кислоты. С другой стороны, было известно, что С^-дикарбоновые кислоты образуются в темноте в листьях некоторых суккулентов, а на свету эти кислоты служат источником С02 для фотоассимиляции. Однако в то время неясен был механизм фотосинтеза растений с обменом кислот по типу толстянковых /САМ/, а данные по С^ - типу метаболизма были представлены всего двумя сообщениями /411, 511/.

Основой для выполнения данной работы послужило наше представление о некоторой идентичности отдельных реакций, участвующих в образовании С^ - дикарбоновых кислот в листьях растений двух экологических групп, а также путей использования этих кислот в фотосинтезе. Можно было ожидать и специфические черты углеродного метаболизма, характерные душ указанных групп, определяемое условиями существования и развития растений.

Сравнительное исследование метаболизма С^ - кислот и связанных с ним других физиологических процессов у представителей суккулентов и С^ - фотосинтеза дало бы основание ут-верз?ушть о возможности использования органических кислот в Сд - растениях в качестве доноров COg для усиления интенсивности фотосинтеза Cg-растений. В ходе исследования нам пришлось охватить ряд других вопросов, тесно связанных с обменом С4 - кислот у этих групп растений.

Более конкретно мы исследовали:

1. Динамику образования С4 - кислот и их превращения в ходе фотосинтеза.

2. Компартментализадию С^ - и Сд - циклов в С^ - растениях.

3. Локализацию ферментов в мезофильных и обкладочных клетках, изозимный состав отдельных ферментов С^ - фотосинтеза в листьях Сд - и С^ - растений.

4. Влияние интенсивности света, температуры на активность и синтез ферментов С4 - фотосинтеза.

5. Фотохимические реакции двух типов хлоропластов С4 -растений.

6. Сходство и различие в обмене С^ - кислот в С^ - и САМ - растениях.

7. Эволюционные аспекты фотосинтеза С^ и САМ - растений.

На защиту вносятся следующие положения:

I. Первичное карбоксилирование ФЕИ с образованием С^ -кислоты на свету в листьях zea mays , а в темноте в листьях Bryophyllum daigremontianum.

2. Отсутствие карбоксшшрования РДФ и ФЕИ в хлороплас-тах клеток мезофилла листа z.mays . Участие светоинду-цируемого изоэнзима ФЕПК в фиксации углекислоты листьями кукурузы.

3. Локализация ферментов декарбоксилирования С4 - кислот и РДФК в клетках обкладки проводящего пучка листа кукурузы.

4. Участие транспортных АТФаз в межтканевом переносе С4-кислот.

5. Функционирование фотосистемы II в агранальных хлоро-пластах обкладки проводящего пучка.

6. Сходство и различие в метаболизме С^ - кислот в листьях кукурузы и бриофиллума.

7. О возможности концентрирования СО2 в клетках Cg -растений с целью повышения в них интенсивности фотосинтеза.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА. Установлено, что хлоропласта мезофилла не обладают функцией карбоксшшрования РДФ и ФЕП, так как в них не локализованы ФЕПкарбоксилаза и РДФ-карбоксилаза. Синтез С^ - кислот происходит в клетках мезофилла в сопряженных реакциях цитоплазмы и хлоропластов, а их распад - в клетках обкладки проводящего пучка. Получены прямые данные о транспорте Cg - продуктов, являющихся предшественниками акцептора С0?, из клеток обкладки в клетки мезофилла. Выявлена активность фотосистемы II в агранальных хлоро-пластах обкладки листьев кукурузы. На основе изучения механизма фотосинтеза листьев С^ - фотосинтеза предложена схема компартментализации С^ - и С3 - циклов. Главное отличие этой схемы от известных в литературе состоит в том, что в ней отрицается необходимость транспорта ЗФГК для ее восстановления из клеток обкладки в клетки мезофилла, поскольку экспериментальные данные автора указывают на наличие НАДФН в хлороплас-тах обкладки листьев кукурузы, необходимого для этого процесса. Показано разделение синтеза С^ - кислот и ЗФГК в клеточных структурах листьев В. daigremontianum . Установлено, что в темноте образование С^ - кислот связано с одноступенчатым карбоксилированием ФЕП, а на свету имеет место двухступенчатое карбоксилирование РДФ и ФЕП.

На основе изучения ферментов декарбоксилирования С^ -кислот, у суккулентов выделена новая подгруппа САМ - растений с НАД- маликэнзимным типом обмена органических кислот. Установлено, что при становлении как САМ метаболизма углерода, так и С^-фотосинтеза происходит синтез de novo изоформы ФЕПК, отличной от форш, встречаемой в Сд-растениях.

Сравнительное исследование фотосинтеза С4- и С3 - растений показало, что у последних он лимитирован нехваткой COg, хотя количество РДФК значительно выше в клетках Сд - растений. С целью повышения интенсивности фотосинтеза Cg - растений, предложена схема ферментативных реакций для концентрирования углекислоты в центрах карбоксилирования РДФ в хлоропластах листьев.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ И РЕКОМЕНДАЦИИ.

Результаты работы важны как в общетеоретическом плане, так и для практики. Сделан значительный вклад в выяснение причин и условий высокой интенсивности фотосинтеза и продуктивности группы растений, имеющих огромное значение для производства кормового зерна и биомассы. Расширились наши знания о роли Сд - дикарбоновых кислот в обмене веществ растений. С4 - кислоты рассматриваются как доноры С0£ и восстановителя для функционирования цикла Кальвина в хлоропластах клеток растений. Вскрыта сущность сходства и различия в обмене С^ кислот С^ и САМ - растений с точки зрения их экологической приспособленности к условиям среда.

На основании изучения механизма концентрирования С0£ в хлоропластах обкладки С^ - растений автором предложена простая модель ферментативных реакций с целью увеличения концентрации углекислоты в клетке С3 - растения для повышения их интенсивности фотосинтеза, а также для "переживания" засухи при слабом СС^-газообмене. В настоящее время модель проверяется экспериментально на разных биологических объектах с различной организацией структуры фотосинтетического аппарата (водоросли, высшие растения). Материал, изложенный в диссертации, используется при чтении лекций для студентов по спецкурсу "Экология фотосинтеза".

Список используемых сокращений АДФ - аденозиндифосфат АлаАТ - аланинаминотрансфераза АМФ - аденозинмонофосфат АспАТ - аспартатаминотрансфераза АТФ - аденозинтрифосфат ДТТ - дитиотрейтол КГК - кетоглутаровая кислота НАД-МДГ - НАД-зависимая малатдегидрогеназа НАД-МЭ - НАД-специфичный "малик"-энзим НАДО-ГАФД - НАДФ-специфичная дегидрогеназа фосфоглицеринового альдегида НАДФ-МДГ - НАДФ-зависимая малатдегидрогеназа НАДФ-МЭ - НАДФ-специфичный "малик"-энзим САМ - обмен кислот по типу толстянковых

ОЭП - относительная электрофоретическая подвижность ПВК - пировиноградная кислота ПВП - поливинилпироллидон РДФ - рибуло зодифосфат РЖ - рибулозодифосфаткарбоксилаза Р-5-Ф - рибозо-5-фосфат 3-ФГК - трифосфоглицериновая кислота ФЕИ - фосфоенолпировиноградная кислота ФЩЦик - фэсфэенолпируватдикиназа ФЕПК - фосфоенолпируваткарбоксилаза ФЕПКК - фосфоенолпируваткарбоксикиназа Фн - фосфор неорганический ФФН - пирофосфат I Ф - фотофосфорилирование Ф-6-Ф - фруктозо-6-фосфат ФС - фотосистема ХАФ - хлорамфеникол Ц - циклогексимид ЩУК - щавелевоуксусная кислота A. Lividus - Amaranthus Lividus L.

A. hastata - Atriplex hastata L.

B. daigremontianum - Bryophyllum daigremontianum Berger D. eanquinalis - Digitaria sanqufrialis L.

P. milioides - Panicum milioides L. S. cereale - Secale cereale L. S. bicolor - Sorghum bicolor L. Z. mays - Zea mays L.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Магомедов, Исхан Магомедович

ВЫВОДЫ

1. На основании результатов по деградации молекул -^С-яблочной кислоты, выделенных из листьев кукурузы, показано, что образование последней происходит путем первичного кар-боксилирования ФЕП. Скорость фиксации 14С0р в листьях кукурузы при высоких интенсивностях света в 2-3 раза выше, чем в листьях ржи (Сд - растение).

2. Установлено, что хлоропласта клеток мезофилла непосредственно не фиксируют углекислоту, так как в них отсутствуют ферменты карбоксилирования РДФ и ФЕП. Фиксация СОр происходит в цитоплазме клетки мезофилла при помощи свето-индуцируемого изоэнзима ФЕПК.

3. Ключевой фермент цикла Кальвина - РДФК - локализован в хлоропластах клеток паренхимной обкладки листа кукурузы, в них же находится НАДФ-МЭ, участвующий в декарбоксилировании С^ - кислот с выделением углекислоты для осуществления фотосинтеза.

4. Транспорт С^ - кислот как доноров углекислоты и НАДФН из мезофилла в клетки обкладки, по всей вероятности, осуществляется при участии 1Г(£, К+- АТФазы.

5. Экспериментально показано, что в агранальных хлоропластах клеток обкладки функционирует фотосистема II, активность которой составляет 50-60$ от таковой в хлоропластах мезофилла листа кукурузы.

6. На основе изучения локализации ферментов, активности фотосистем и транспорта Сд - продуктов предложена схема метаболизма углерода в листьях кукурузы. Отличительной чертой нашей схемы является отсутствие транспорта ЗФГК из клеток обкладки в хлороплаоты мезофилла для последующего ее восстановления и возврата в клетки обкладки ввиду нехватки НАДФН в агранальных хлоропластах обкладки.

7. Показано сходство метаболизма углерода в С^ - и

САМ - растениях. Экспериментально обоснована гипотеза о пространственном разделении в пределах клетки места синтеза и распада С^ - кислот в листьях бриофиллума. Бета - карбокси-лирование локализовано в цитоплазме, а утилизация яблочной кислоты происходит в основном в митохондриях с участием НАД-МЭ. Это позволило выделить Б. daigremontianшlb подгруппу САМ - растений с НАД-МЭ типом метаболизма углерода.

8. Обобщение экспериментального и литературного материала позволяет рассматривать СА - путь как новую надстройку к Сд - циклу, возникшую в ходе адаптациогенеза растений при дефиците СОр, воды в сочетании с высокой температурой. С^ -растения представлены в относительно молодых таксонах, а их предками были Сд - растения.

9. С целью повышения интенсивности фотосинтеза Сд -растений, предложена модель механизма концентрирования СОр в местах карбоксилирования РДФ, аналогичная подобному механизму в С^ - растениях. Основанием для этого является то, что в Сд - растениях количество РДФК выше, чем в С^ - растениях. Низкая же интенсивность фотосинтеза в Сд - растениях обусловлена нехваткой углекислоты для карбоксилирования РДФ. Усиление активности ФЕПК в Сд - растениях может способствовать также увеличению рефиксации СОр фотодыхания и, таким образом, предотвратить потери в них углерода.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ представленных экспериментальных материалов позволяет нам сделать некоторые обобщающие заключения по затронутым вопросам. До недавнего времени считалось, что С^ - ди-карбоновые кислоты - это метаболиты, участвующие в окислительном и азотном обмене и связывающие процессы фотосинтеза, дыхания и белкового синтеза в растениях /164/. Однако уже первые сообщения о механизме С^ - фотосинтеза /411, 511/ указали, что в листьях некоторых растений тропического происхождения С^-кислоты могут быть и источником углерода для функционирования цикла Кальвина.

Наиболее дискуссионными были вопросы о месте синтеза С^-кислот, о природе основных ферментов, участвующих в этом процессе. До 1969 г., пока не было известно о существовании двух ассимиляционных тканей в листе С^ - растений, участвующих в фотосинтезе, была предложена схема метаболизма углерода в этих растениях, в которой ведущая роль принадлежала процессам транскарбоксидирования /411/. В дальнейшем эти реакции не были экспериментально подтверждены. В литературе имелись противоречивые сообщения о наличии С^ - пути в листьях высших растений, о локализации С^ и Cg - циклов в двух типах клеток /232, 317, 523, 572/.

На основании нашего экспериментального материала мы предложили свою схему метаболизма углерода в листьях кукурузы /100/ (рис.75). Однако презде чем перейти к обоснованию этой схемы, следует остановиться на результатах по изучению фиксации СОр целыми листьями кукурузы.

В нашей стране мы впервые осуществили деградацию моле

283

Мезофилл

СО, хлоропласт крахмал 1 сахароза * +

3-ФГК яблочная кислота цитоплазма

ЩУК«-ФЭП<-Т яблочная кислота

Обкладка хлоропласт

С:, со2— —РДФ<

С4-кислота гексозы сахароза—

3-ФГК — 4 крахмал

Рис.75. Возможные реакции, участвующие в образовании и превращении яблочной кислоты в двух типах клеток листа кукурузы /100/ кулы яблочной кислоты, синтезированной в ходе ассимиляции •^СОр в листьях кукурузы и доказали, что яблочная кислота является продуктом первичного карбоксидирования фосфоенолпи-ровиноградной кислоты /93, 105/. Наши данные полностью согласуются с сообщением /411/ о том, что С^ - кислоты являются первичными продуктами фотоассимиляции СОр, а не промежуточными, как это ранее считалось /229/. Кроме того, поскольку в наших опытах соотношение образования яблочной и аспарагиновой кислот изменялось, мы сомневаемся в строгом разделении С^ - растения на "малатные" и "аспартатные" формы, как было предложено в работе Дауятона /36/. К такому же выводу приходят и другие авторы /768/.

Анализ сообщений Креспо и др. /330/ показывает, что авторы не учли одно обстоятельство: первый лист имеет сокращенный цикл развития и уже к 20-25 дням развития он стареет:* и интенсивность функционирования его снижается. Можно допустить, что при этом увеличивается рыхлость мезофильной ткани, которая способствует лучшему проникновению СОр атмосферы к обкладочным клеткам, в результате происходит параллельное поступление СОр как в мезофилл, так и обкладку. Наши данные соответствуют результатам /570/ и мы считаем, что независимо от места расположения листа С^ - путь представлен во всех листьях кукурузы.

В результате исследования внутриклеточной локализации С^ - пути, а также ферментов карбоксилирования в листьях кукурузы, было установлено, что хлоропласты из листьев кукурузы не фиксируют СОр таким же образом, как хлоропласты шпината и гороха /93, 101, 102, 109/. Хлоропласты из клеток мезофилла кукурузы практически не фиксировали СОр на РДФ и ФЕП в качестве акцепторов. Усвоение СОр на ФЕП наблюдалось только в том случае, если хлоропласты не были отмыты от цитоплазмы. Цитоплазма клеток листьев кукурузы активно фиксировала СОр, в то время как цитоплазма из клеток шпината и гороха лишь незначительно усваивала СОр. Эти данные позволили нам предположить, что хлоропласты мезофилла не усваивают С02, поскольку в строме отсутствуют ферменты карбоксилирования. О том, что хлоропласты мезофилла потеряли карбоксилирующую функцию, говорят следующие факты: РДФК - главный фермент цикла Кальвина - находится только в хлоропластах обкладки, ФЕПК локализована вне стромы хлоропласта клеток мезофилла. Использование ингибиторов синтеза белка также показало, что ФЕПК синтезируется на рибосомах цитоплазмы. Однако можно допустить, что один из изоферментов ФЕПК находится в периферическом ретикулуме - системе везикул на периферии хлоропласта мезофилла, правда, экспериментальные доказательства этого мы не сумели получить вследствие отсутствия соответствующих методов.

Какова роль клеток мезофилла? Наши данные указывают, что мезофильные клетки выполняют функцию синтеза С4 - дикар-боновых кислот. В пределах клетки мезофилла произошла специализация компартментов, которые участвуют в синтезе С^ - кислот. Вероятно, ФЕПК находится в тесной связи с хлоропластами, локализуясь на их внешних мембранах. Продукт карбоксилирования - ЩУК должна быть выведена из места образования, так как она является активным метаболитом и, кроме того, может ингибировать ФЕПК /455/. В случае хорошей обеспеченности восстановителем /НАДФН/ ЩУК восстанавливается в яблочную кислоту в хлоропластах мезофилла. Однако во многих случаях ЩУК может аминироваться и превращаться в аспарагиновую кислоту.

Наши данные по изучению локализации АспАТ с помощью электронной гистохимии показывают, что аспарагиновая кислота может образоваться в периферическом ретикулуме /ПР/ хлоропласта мезофилла. Однако остается неясным, какая доля всей аспа-рагиновой кислоты синтезируется при участии ПР.

Поскольку АспАТ имеет высокую активность в цитоплазме мезофилла, следует предположить, что основным компартментом синтеза аспартата является именно цитоплазма /377, 424/. Яблочная кислота - донор СОр - синтезируется в хлоропластах мезофилла, о чем свидетельствует высокая активность в них НАДФ-МДГ. ЕАД-МДГ, локализованная в цитоплазме, в митохондриях и даже в хлоропластах, выполняет не фотосинтетические функции, а играет роль в дыхательном метаболизме кислот /425, 428/. О роли ФЕПК и НАДФ-МДГ в синтезе С4 - кислот, участвующих в переносе углекислоты в РДФК, свидетельствуют результаты наших опытов по светоактивации этих ферментов, синтезу их de novo на свету только у С4 - форм. ФЕПК С4 -форм состоит из 2 основных изоферментов, один из них возникает в ходе формирования фотосинтетического аппарата. Некоторые считают, что второй изофермент образуется в результате распада мономера на димеры /396, 397/. Однако наши результаты ингибиторного анализа, а также изучения включения ^С -глицина в ферментный белок убеждают нас в возможности синтеза de novo второго изофермента. Наличием данного изофермен-та С4 - формы отличаются от Сд - растений. Эти данные нашли подтверждение в работе /407/. Активность АспАФ в метках мезофилла значительно выше, чем в листьях Сд - растений, что соответствует фотосинтетической роли в них аспарагиновой кислоты.

Таким образом, С^ - кислоты: яблочная преимущественно в "малатных" формах и аспарагиновая в "аспартатных" видах -синтезируются при участии цитоплазмы и хлоропластов. Эти наши представления отображены на схеме (рис.76).

По мнению ряда авторов /425,460/, ФЕП синтезируется в хлоропластах, после чего эта кислота переходит в цитоплазму, где и происходит первичная фиксация С02. С^ - кислоты, как переносчики С02, должны доставлять углекислоту к месту ее потребления - циклу Кальвина. Относительно центров использования С4 - кислот существовало, как указывалось выше, две точки зрения: клетки обкладки /419/ и хлоропласты мезофилла /317/. В нашей работе показано, что ферменты, участвующие в декарбоксилировании С^ - кислот в листьях С^ - растений, локализованы в клетках обкладки. Применение меченой яблочной кислоты также выявило, что ее использование в листьях кукурузы происходит в основном в хлоропластах обкладки. Методом диск-электрофореза в клетках мезофилла не обнаружен белок, ответственный за функции НАДФ-МЭ. Следовательно, С^ -кислоты не разлагаются в клетках мезофилла с выделением С0г>, а должны транспортироваться в клетки обкладки. Наши данные о локализации ферментов декарбоксилирования согласуются с многочисленными данными ряда авторов /93, 215, 239, 250, 259, 369, 370, 384, 404, 425, 429, 473, 474, 633, 690/.

Как можно представить транспорт С^ - кислот? Изучение нами особенностей работы транспортной Wa+-К+-АТФазы показывает, что она проявляет наиболее высокую активность в зеленых проростках кукурузы в отличие от этиолированных, что можно связать с наличием в первых потоков углерода в виде С^ - кислот, в переносе которых она играет роль. Полученные нами данные согласуются с результатами Рагавендры и Даса со 2 воздуха

288 цитоплазма хлоропласт Ж со о + феп V шукаспарагиновая кислота

1 яблочна я кислота" аспарагин ^^ 1 овая кислота клетка обкладки 1

Рис.76. Возможные пути синтеза С4 - кислот в клетке мезофилла листа кукурузы.

635/, которые показали участие катион-стимулируемой АТФазы в транспорте С^ - кислот. Участие в передаче С^ - кислот ь%++-мп++-АТФазы отмечал Карпилов и др. /94/. Однако для выяснения тонкого механизма транспорта С^ и Сд - соединений требуются более углубленные исследования, так как имеются противоречивые сведения об участии одно- и двухвалентных катионов в стимуляции активности АТФаз. Бровченко и Завяловой /21/ удалось показать, что С4 - кислоты выделяются в свободное пространство, а транспорт Сд - продуктов в мезофилл из обкладки, по их мнению, может идти через плазмодесмы. Это созвучно с представлениями Осмонда и др. /430/ об осуществлении транспорта С4 и Сд - веществ по плазмодесмам, при этом остается, однако, неясным, каким образом предотвращается смешивание двух потоков метаболитов.

Нам представляется более логичным предположение о существовании транслокаторов С^ - дикарбоновых кислот подобных тем, которые обнаружены в Сд - растениях /440/. Схема с учао-тием транслокаторов С^ - кислот, предложенная Карпиловым и др. /94/, на наш взгляд, нуждается в экспериментальном обосновании .

Перенос С^ - кислот должен идти сопряженно с обратным транспортом Сд - продуктов, полученных после декарбоксилиро-вания С4 - кислот, иначе может возникнуть дисбаланс углерода и азота в двух типах клеток. Однако этого не наблюдается. Наши прямые опыты по обратному транспорту показали, что ала-нин возвращается в мезофилл и служит предшественником ФЕП.

Если малат служит источником НАДФН и СО2 в клетках обкладки кукурузы, то аспарагиновая кислота считается донором только С0г> /215, 426, 427, 452/. Исходя из наших опытов, можно прийти и к иной точке зрения. При добавлении аспартата в среду, где клетки обкладки фиксировали СОр, имела место стимуляция усвоения -^СОр. Это явление можно объяснить превращением аспартата по следующей схеме: аспартат------>- ЩУК----------> малат.

Малат поступает в митохондрии и с помощью НАД-МЭ превращается в пируват и СОр. При этом не происходит увеличения пула НАДФН в хлоропластах и не увеличивается скорость фиксации углекислоты. Однако малат может поступать и в хлоропласты обкладки, где при участии НАДФ-МЭ осуществляется выделение СОр и новообразование НАДФН. В этом случае должна наблюдаться стимуляция фиксации СОр в хлоропластах обкладки. Поэтому мы считаем, что в определенных условиях аспартат может служить источником НАДФН.

В хлоропластах обкладки листьев проса и кукурузы активно работает АспАФ, которая выполняет функцию, не связанную с декарбоксилированием аспартата как источника углерода, а вероятнее всего, играет роль в реакциях переаминирования, связанных с биосинтетическими процессами. Декарбоксилирование аспартата происходит в митохондриях при участии НАД-МЭ /427, 433/. Выделившаяся углекислота рефиксируется при участии РДФК, которая локализована только в хлоропластах обкладки, хотя в свое время были представлены результаты, указывающие на локализацию РДФК и в клетках мезофилла /224, 288, 317, 590/. При сравнении активности РДФК в С4 и Сд - видах установлено, что активность ее в Сд - формах выше, чем в С^ -растениях /216, 687, 259/. Количественное определение нами белка РДФК показало, что в С4 - растениях ее почти в 2 раза меньше по сравнению с Сд - видами. Аналогичные результаты получены и в других работах /15, 516, 523/. Поэтому при высоких концентрациях СОр интенсивность фотосинтеза Сд - растений должна быть выше, чем у С^ - растений, что и наблюдается /137, 138, 523/. Поскольку концентрация СОр в клетках обкладки С^ - растений обеспечивается за счет С^ - пути, в рао-тениях подобного типа количество ее на порядок выше, чем в Сд - растениях, что соответственно способствует и повышению в них интенсивности фотосинтеза /194/. Таким образом, в С4 -растениях функционирует своеобразный механизм концентрирования СО*?, которого Сд - растения лишены. Вероятно, этот недостаток последние компенсируют в какой-то степени за счет увеличения количества белка РДФК в клетке.

Итак, было показано, что в агранальных хлоропластах обкладки происходит фиксация СОр в цикле Кальвина. Однако предметом широкой дискуссии были вопросы об энергетических возможностях агранальных хлоропластов обкладки для нормального функционирования в них цикла Кальвина. Считалось, что если фиксация СО2 в цикле Кальвина в хлоропластах обкладки листьев кукурузы стехиометрически связана с декарбоксилированием малата, то последний дает половину НАДФН, необходимого для усвоения одной молекулы СОр. Вследствие этого было высказано мнение и экспериментально показано, что агранальные хлоропла-сты неспособны продуцировать НАДФН. Отсюда было сделано заключение о том, что половина ФГК, образуемой в хлоропластах обкладки, должна экспортироваться в мезофильные хлоропласты для восстановления до ЗФГА и в виде последнего возвратиться в агранальные хлоропласты для включения в цикл Кальвина /67, 93, 430/. Наши экспериментальные данные противоречат этим положениям. Во-первых, экспериментально не показан, как транспорт ЗФГК из клеток обкладки в хлоропласты мезофилла, так и обратный транспорт ЗФГА в клетки обкладки. В литературе имеются сообщения о том, что ФС II может быть локализована не только б ламеллах гран, но и в ламеллах стромы. Так, были получены убедительные данные о том, что 1/4 ФС II хлоропластов Сд - растений локализована в ламеллах стромы, и для максимальной скорости ее работы требуются более высокие интенсивности света, чем в том случае, если бы она находилась в ламеллах гран /217/. В другой работе /408/ сообщалось, что ФС II в агранальных хлоропластах не насыщается даже на полном солнечном свету. Эти же авторы считают, что ФС II функционирует в агранальных хлоропластах и обеспечивает необходимое количество НАДФН для работы цикла Кальвина.

Таким образом, можно, вероятно, заключить, что в агранальных хлоропластах образуется достаточное количество НАДФН для функционирования цикла Кальвина, и необходимости оттока 1/2 ЗФГК в хлоропласты мезофилла нет. Из хлоропластов обкладки Сд - продукт переходит в хлоропласт мезофилла для регенерации акцептора СО2 - ФЕП. Фосфорилирование пирувата осуществляется при участии ПФДК. Эта реакция требует две молекулы АТФ, так как ПВК, взаимодействуя с АТФ и Фя, синтезирует ФЕП, АМФ, ФФн. Установлено, что в хлоропластах мезофилла имеются высокоактивные аденилаткиназа и пирофосфатазы, с участием которых синтезируется АТФ из АМФ и ФФн /419/.

По нашему мнению, если ЗФГК переходит из обкладки в мезофилл, то она может служить предшественником для синтеза крахмала в хлоропластах мезофилла. В принципе, любой Сд - продукт может быть источником для образования крахмала в хлоропластах /461, 462/. Однако этот вопрос до конца неясен и требует дальнейших исследований.

По мнению большинства исследователей /73, 100, 194, 259, 523/, главное достоинство С4 - пути состоит в переносе СОр к местам карбоксилирования. Это создает высокую концентрацию

СОр, что приводит к подавлению оксигеназяой функции РДФК и увеличивает соотношение СОр: Ор, которое, в конечном счете, способствует подавлению видимого фотодыхания. С другой стороны, высокоактивная ФЕПК может рефиксировать углекислоту фотодыхания и темнового дыхания и предотвращать увеличение угле-кислотной компенсационной точки. В результате функционирования дополнительного С4 - цикла скорость фотосинтеза увеличивается, что способствует, по признанию многих исследователей, высокой продуктивности С^ - растений /181, 183, 237, 253, 255, 355, 363, 566/. Однако в литературе имеются сообщения /119/ о том, что повышенная продуктивность С4 - форм объясняется другими причинами, а именно - большой длительностью вегетационного периода С4 - растений. Данные Милторфа /1978/, которые утверждают, что по ростовым показателям Со" и С/-виды сти ° 4 не различаются, при статической обработке оказались недостоверными /566/. Установлено, что скорость роста для Сд - растений находится в пределах 34-39, а для С4 - растений 50-54 г/м/сутки. Средняя величина за весь период роста равна 13 для Сд - растений и 22 - для С4 - растений /363/.

В результате изучения механизма С4 - фотосинтеза мы пришли к заключению о необходимости повышения концентрации СОр в местах карбоксилирования и в Сд - растениях с целью повышения интенсивности фотосинтеза и увеличения фиксации атмосферного азота. Для этого мы предложили модель концентрирования СОр в пределах одной клетки Сд - растения. Наша модель активации транспорта СОр в растительную клетку предусматривает кооперацию цитоплазмы и хлоропласта в клетке (рис.77).

Отдельные элементы, показанные на схеме, имеются в виде фрагментов в высших растениях. Так, образование ЩУК происхо

ЦИТОПЛАЗМА^ со2* + фепЛ>щук

Чфн—

ФЕП

С02 ВОЗДУХА

ХЛОРОПЛАСТ

ЩУК

Фн?*АТФ,

АДФ

-ФЕП

КРАХМАЛ

Рис.77. Модель концентрирования СОр в листьях Сд - растений /112/ Обозначения:

1 - ФЕПК

2 - ФЕПКК дат в цитоплазме клеток мезофилла С^ - растений, а в распаде С^ - кислот в некоторых видах С^ - форм и САМ растений активное участие принимает ФЕПКК. Предполагается также, что в определенных условиях, при дефиците воды, для переживания засухи и одновременного осуществления фотосинтеза возможно появление "сезонных" изоферментов синтеза и распада С^ - кислот в некоторых Сд - растениях, близкородственных к С^ - формам. В природных условиях при быстро изменяющихся условиях окружающей среды для осуществления и продолжения жизненных процессов имеются, видимо, несколько вариантов обмена углерода, которые способствуют выживанию организмов.

Более сложную модель для концентрирования углекислоты в Сд - растениях /хлопчатник, сахарная свекла/ с участием кар-боангидразы предложил Ю.С.Насыров/130/.

Одним из подходов к переключению С^ - пути на Сд и обратно могло бы быть изменение условий углеродного и азотного питания, так как именно последние играли важную роль в эволюционном становлении С4 - растений /280/. Наши исследования, проведенные с различными дозами и формами азота, показали, что эффект азота характерен для всех групп растений: С^, Сд и САМ. Однако нами были обнаружены некоторые особенности изменения активности ряда ферментов углеродного и азотного метаболизма в этих растениях. Как известно, при дефиците азота происходит снижение интенсивности фотосинтеза, содержания растворимых белков, белка фракции I /4-8, 135, 136, 180-186/. В наших опытах также наблюдаются подобные изменения. Однако, когда была использована 1/25 нормы азота, выращенные в этом варианте растения, несмотря на то, что оказались меньше по росту, чем на 1/10 нормы азота, обладали более высокой активностью ферментов, которая была соизмерима с уровнем активности их в вариантах полной нормы азота. При дальнейшем уменьшении содержания азота (1/50 нормы) подобного эффекта не наблюдалось. Для объяснения этого факта можно допустить, что при этом происходит увеличение содержания пролина, который является протектором при экстремальных условиях /19/. С другой стороны, не исключено, что 1/25 нормы азота приводит к усилению обводненности клетки, что также может способствовать накоплению пролина. В настоящее время эти предположения проверяются.

Мы показали, что изменение активности ферментов углеродного и азотного метаболизма у Cg и С^ - форм можно добиться и при использовании различных форм азота - ш^+или ноу . Интересным фактом является сохранение гранальности в хлоропластах обкладки кукурузы при выращивании ее на аммонийном азоте. Известно, что при дезагрегации гран на ламеллы, происходят изменения в содержании липидов мембран хлороплас-тов /607/. Возможно, что положительно влияет на липидный обмен хлоропластов и таким образом содействует сохранению гранальности хлоропластов обкладки.

Ярким примером совместного присутствия С^ и Cg - типов метаболизма в одной клетке является обмен С^ - кислот у некоторых суккулентов. Исследование механизма фотосинтеза С^ -растений подтолкнуло нас к пересмотру тех положений, которые существовали в отношении синтеза и распада яблочной кислоты в листьях В. daigremontianum . Напомню, что образование яблочной кислоты ночью приписывалось хлоропластам, а использование ее - транскарбоксилазной реакции /202, 562/. Наши экспериментальные работы /125/, проведенные независимо от других авторов /597, 709), показали, что в листьях в.daigremontianum так же, как и в С^ - растениях, образование яблочной кислоты ночью связано с первичным карбоксилированием на ФЕПе, а на свету имеет место двойное карбоксилирование:

РДФ + СО2----2ФГК---е- ФЕП + СО2----С4 - кислота

К настоящему времени все исследователи признают, что концепция механизма двойного карбоксилирования в синтезе С^ - кислот ночью в листьях бриофиллума устарела /503, 504, 528, 597, 595, 709, 772/.

По вопросу о декарбоксилировании С^ - кислот на свету существовало несколько гипотез (см.лит.обзор). Наиболее близким к истине, на наш взгляд, оказалось предположение Моиза /123, 531, 574/, который считает, что местом распада яблочной кислоты являются митохондрии. В данном процессе, по мнению автора, участвует НАДФ-МЭ. Мы же предположили по аналогии с С^ - растениями, что должна быть третья группа САМ -растений /165/. До нашего сообщения не было известно о существовании НАД—МЭ варианта САМ - растений. Исследования по локализации НАД-МЭ, а также опыты по деградации -^С - яблочной кислоты митохондриями позволили нам высказать идею о необходимости выделения В. ааХвгетоп-Ыапшп в третью группу с относительно высокой активностью НАД-МЭ /165/. Наши данные в дальнейшем были подтверждены в работе Дитриха /350/.

Таким образом, можно заключить, что как в С^ - растениях, так и в САМ - растениях происходит первичное карбоксилирование ФЕП с образованием С^ - кислоты, которая является донором СО«? для функционирования цикла Кальвина. При становлении С^ - фотосинтеза и САМ появляется новая форма ФЕПК, которая отличается от формы, характерной для Сд - растений.

Однако между С^ и САМ - растениями имеется и существенная разница.

1. Интенсивность фотосинтеза у С^ - растении высокая, в то время как у растений с САМ она низкая.

2. Растения с САМ существуют в довольно жестких условиях окружающей среды (высокая температура, низкая влажность), поэтому для них характерно не наращивание углерода и, естественно, органического материала, а лишь положительный баланс углерода.

2. В С^ - растениях С^ и Сд - циклы пространственного разграничены в двух ассимиляционных тканях, а бета-карбокси-лирование с образованием С^ - кислот происходит днем. В САМ растениях реакции С^ и Сд - типов функционируют в пределах одной клетки, но они также компартментированы, - в цитоплазме и хлоропластах. Синтез С4 - кислот происходит в них ночью, а использование - днем.

Результаты сравнительного изучения путей образования и использования С^ - кислот в фотосинтезе двух экологических групп растений дают нам основание предложить возможную схему метаболизма яблочной кислоты, как донора углекислоты для осуществления фотосинтеза (рис.78).

Следует указать, что при определенных условиях в отдельных суккулентах можно индуцировать САМ /700, 762, 755, 772 -777/. Это говорит о том, что усиление потока углерода через ФЕПК систему в принципе возможно. В литературе имеются сообщения, указывающие на такую возможность: молодые листья картофеля способны усваивать СОр через ФЕПК /126, 127/, в проростках пшеницы /675/ при обработке их абсцизовой кислотой увеличивается образование С^ - кислот. Некоторые /494/ наблюдали, что у сорго соотношение С^ и Сд - путей может изменяться в зависимости от стадии онтогенеза. Подобные данные получены и для листьев кукурузы /489/. В связи с этим значительс4 - растение свет феп. + £0 4> свет обкладка

ПВК' мезофилл сам - растение темнота свет фегк + ПО малатцитоплазма пвк

11—I—'

->малат^——кгоо. + рдф—i/

ЗФГК^-митохондрия хлоропласт

Рис.78. Пути метаболизма яблочной кислоты в С/ и САМ - растениях. ный интерес представляют работы группы Клюге /261, 262/, проведенные на листьях классического Cg - растения - шпината. Они показали, что при рН = 7,5 в пластинках из листьев, плавающих на растворах NaHCO^ при преобладании НСО^, усиливается синтез С^ - кислот, а при рН = 3,5, наоборот, происходит уменьшение их количества. Все это указывает на отсутствие жесткой необходимости в наличии "кранц" типа анатомии листа для проявления С4 - пути углерода. В природных условиях, при быстро изменяющихся условиях окружающей среды, вероятно, происходит перестройка углеродного метаболизма. Видимо, для существования и продолжения жизненных процессов имеются несколько вариантов обмена углерода, которые способствуют выживанию организмов.

Таким образом, к настоящему времени сложились представления о существовании 3 экологических групп растений, обладающих 3 типами усвоения СОр.

I. Классический тип усвоения СОр по циклу Кальвина. Растения с этим механизмом стали называть Cg - растениями, так как первичным продуктом фиксации СОр является ЗФГК.

П. С4 - тип метаболизма, характерный для С4 - растений, в которых первичными соединениями являются С^ - дикарбоно-вые кислоты (ЩУК, яблочная и аспарагиновая).

Ш. Обмен кислот по типу толстянковых, известный как Crassulacean acid metabolism - CM - ТИП. Для ЭТИХ растений характерна суточная ритмика в содержании С4 - кислот /89, 100, 194, 259, 403, 433, 509, 527, 574, 597, 718/.

Эти группы растений различаются между собой по многим признакам (физиология, биохимия, анатомия и др.). В таблице 50 приведены литературные и собственные данные по этим показателям /90, 259/.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Магомедов, Исхан Магомедович, 1982 год

1. Абдулов Н.П. Карио-систематическое исследование семейства злаковых. Приложение 4. - Труды по прикладной генетике и селекции, 1931.

2. Аксенова В.А., Кожанова О.Н. 0 механизме активирования пероксидазы у устойчивых и восприимчивых растений при заражении. Физиология растений, 1976, т.23, вып.2, с.391-396.

3. Андреева Т.Ф. Фотосинтез и азотный обмен листьев. М., Наука, 1969, с.200.

4. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А. Влияние азотного питания на фотосинтетическую активность и биосинтез белка. -Минеральные элементы и механизм фотосинтеза. Кишинев, 1970, с.128-136.

5. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А. Белок "фракции I" и фотосинтетическая активность листьев. Физиол.раст., 1970, т.17, № 2, с.225-233.

6. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А., Власова М.П., Нгуен Тхыу Тхыок, Ничипорович A.A. Влияние азотного питания растений на структуру и функцию фотосинтетического аппарата. -Физиология растений, 1971, т.18, В 4, с.701-707.

7. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А., Майорова О.И. Белок "фракции I" и фотосинтетическая активность листа. Теоретические основы фотосинтетической продуктивности, М., Наука, 1972, с.219-224.

8. Андреева Т.Ф., Нцуен-Тхыу-Тхыок. Влияние азотного питания на фотосинтетическую активность листьев различных ярусов и на продуктивность растений конских бобов. Физиол. раст., 1972, т.19, №2, с.265-272.

9. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А. Адаптация фотосинтеза Сд и С4 растений к условиям внешней среды. Физиол. и биохимия культ.раст., 1976, т.8, № 3, с.236-241.

10. Ашмарин И.А., Клшарев Л.А., Ингибиторы синтеза белка. Л., Медицина, 1975, с.207.

11. Бассем Дж., Кальвин М. Путь СОр в фотосинтезирующем растении. Труды У биохим. конгресса. Симпозиум У1. М., изд. АН СССР, 1962, с.300-331.

12. Бассем Д.А. Регуляция путей метаболизма углерода в фотосинтезе. Теоретические основы фотосинтетической продуктивности. М., Наука, 1972, с.117-133.

13. Белозерова Л.С. Превращение органических кислот в листьях суккулентных растений на свету. Автореф.канд.дисс. -Л., 1965, с.20.

14. Белоног Н.П., Магомедов И.М., Гольд В.М., Гаевский Н.А. Использование индукционных переходов флуоресценции как показателя локализации фотосистем I и 2 в тканях листа кукурузы. Биол.исслед.в вузах Красноярского края. Красноярск, 1977, с.152-154.

15. Беляева Е.В., Доман Н.Т., Иванова М.А. Структура и некоторые свойства рибулозодифосфаткарбоксилазы из кукурузы ( Zea mays L. ) И бобов (Vicia faba L) . БИОХИМИЯ, 1979,т.44, № 12, C.2I2I-2I29.

16. Беннет-Кларк T.A. Роль органических кислот в обмене веществ растений. М., Биомедгиз, 1938.

17. Биль К.Я. Исследование взаимосвязи структуры и функций фотосинтетического аппарата у различных типов С-4 растений. Автореф.канд.дисс. M., 1977, с.20.

18. Биль К.Я., Белобродская Л.К., Карпилов Ю.С. Локализация АТФаз в клеточных структурах ассимиляционных тканейлистьев ширицы. Доклады АН СССР, 1976, т.226, № 5, с.1229-1231.

19. Боякова М.Д., Глаголева Г.А., Филиппова Л.А. Последействие пониженной ночной температуры на рост и фотосинтетический метаболизм углерода У Chlorella pyrenoidosa Chick. Ботан. ж., 1976, т.61, .& 9, с.1297-1303.

20. Боулинг Д.Ж.Ф., Туркина М.В., Красавина М.С., Крю-чешникова А.Л. Na+, К+-активируемая АТФаза проводящих тканей. Физиол.раст., 1972, т.19, № 5, с.968-976.

21. Бровченко М.И., Завялова Т.Ф. К вопросу о путях транспорта веществ в листьях растений с С^ типом фотосинтеза. - Физиол.раст., 1978, т.25, № 6, с.II44-1150.

22. Бритиков Е .А. Биологическая роль пролина. М., Наука, 1975, с.88.

23. Дутенко Р.Г. Физиология клеточных культур, состояние и перспективы. Физиол.раст., 1978, т.25, № 5, с.1009-1024.

24. Будыко М.И. Проблема углекислого газа. Гидрометио-издат, Л., 1979, с.58.

25. Быков О.Д. К анализу кинетики газообмена растений на свету. Теория вопроса. Физиол.раст., 1962, т.9,3,с.325-333.

26. Быков О.Д. К анализу кинетики газообмена растений на свету. Экспериментальная часть. Физиол.раст., 1962, т.9, № 4, с.408-414.

27. Быков О.Д., Сахаров Б.В. Фотосинтетический СОр газообмен листьев пшеницы: анализ эффекта Варбурга. Физиол. раст., 1980,

28. Вавилов H.H. Закон гомологических рядов в наследственной изменчивости. Линнеевский вид как система. Наука, Л., 1967, с.5-59.

29. Васильев Б.Р., Лебский В.К., Мирославова С.А., Тшценко H.H. Особенности строения и метаболизма листьев Bryophyllum daigremontianum Berger В различных условиях азотного питания. Тр.Петергоф.биол.ин-та ЛГУ, 1976, № 27, с.51-60.

30. Васильева В.Н., Алиев К.А. Особенности синтеза субъединиц рибулезо-1,5-дифосфаткарбоксилазы в процессе биогенеза хлоропластов. Структура и функции нуклеиновых кислот и биосинтез белка в растениях. Ташкент, 1977, с.12-13.

31. Верховская И.Н., Габелова H.A., Зиновьева Е.Г., Клечковский В.М., Кузин A.M., Мамунь Я.В., Плышевская Е.Г., Франк Г.М., Шехтман Я.Л. Метод меченых атомов в биологии. МГУ, M., 1955, с.452.

32. Вознесенская Е.В. Структура ассимилирующих органов представителей сем. Chenopodiaceae в связи с особенностями фотосинтетического метаболизма. Автореф.дисс.на соиск. уч.степ.канд.биол.наук. Л., 1977, с.20.

33. Вознесенский В.Л. Об углекислотном компенсационном пункте газообмена у растений. Ботан. ж., 1968, т. 53, № 5, с.568-598.

34. Вознесенский В.Л. Углекислотный компенсационный пункт газообмена у хлореллы и кукурузы. В сб.: Фотосинтези использование солнечной энергии. Наука. Л., 1971, с.105-108.

35. Вознесенский В.Л. Фотосинтез пустынных растений. Наука. Л., 1977, с.256.

36. Воскресенская H.A. Фотосинтез и спектральный состав света. М., Наука, 1965, с.309.

37. Воскресенская Н.П. Принципы фоторегулирования метаболизма растений и регуляторное действие красного и синего света на фотосинтез. Фоторегуляция метаболизма и морфогенеза растений. Наука. М., 1975, с.16-36.

38. Гамаюнова М.С., Григора М.Ю., Силаева A.M. Сравнительные характеристики фрагментов тилакоидов стромы из хло-ропластов паренхимной обкладки кукурузы и хлоропластов гороха. Фотосинтез кукурузы. Пущино-на-Оке, 1974, т.51

39. Гамбарова Н.Г., Персанов В.М., Кузнецова Л.Г. Влияние условий азотного и фосфорного питания на активность ферментов углеродного метаболизма. Изв.АН Азерб.ССР. Сер.биол. н., 1975, т.1, № I, с.3-8.

40. Гедемов Т. Исследование путей фиксации и метаболизма углекислоты при фотосинтезе у растений юго-восточных каракумов. Автореф.дисс.на соиск.уч.степ.канд.биол.наук. Л., 1974, с.29.

41. Гиббс М. Ассимиляция СОр изолированными хлороплас-тами: Тез.докл.Всесоюзн.симп.Генетические аспекты фотосинтеза. Душанбе, 1972, т.46.

42. Глаголева Т.А. Зависимость фотосинтеза памирских растений от интенсивности освещения. Труды Ботан.ин-та им. В.Л.Комарова. Эксперимент.ботаника, 1963, с.ЕУ, в.16, с.194-205.

43. Глаголева Т.А., Мокроносов А.Т., Заленский О.В. Влияние кислорода на фотосинтетический метаболизм ^С у пустынных растений. Ботан.ж., 1978, т.63, № 2, с.170-182.

44. Глаголева Т.А., Рейнус P.M., Гедемов Т.Т., Мокроно-сов А.Т., Заленский О.В. Выделение углекислоты на свету и проблема фотодыхания пустынных растений. Ботан.ж., 1972, т.57, & 9, c.I097-II07.

45. Гольд В.М., Раевский H.A., Григорьев 10.С., Пузырь А.Г. Фотохимичеекая активность и тушение флуоресценции хлорофилла в хлоропластах гороха. Биофизика, 1974, т. 19, Jfe 2, с.254-258.

46. Гольд В.М., Гаевский H.A., Григорьев Ю.С. Структурные изменения мембран хлоропластов и их связь с изменениями выхода флуоресценции хлорофилла А в хлоропластах и целых растениях. Депонировано в ВИНИТИ, 1976, т.8, 04, 1976. JS 107676.

47. Григора М.Ю., Гамаюнова М.С., Силаева A.M. Выделение различных фракций изолированных хлоропластов мезофилла кукурузы. Физиол. и биохим. культ.растений, 1973, т.5, № 2,с.144-148.

48. Гуляев Б.И. Газообмен листьев кукурузы. Фотосинтез кукурузы. Пущино-на-0ке, 1974, с.136-152.

49. Гуляев Б.А., Литвин Ф.Ф. Первая и вторая производные спектров поглощения хлорофилла и сопровождающих пигментов в клетках высших растений и водорослей при 20°. Биофизика, 1970, т. 15, !Ь 4, с.670-680.

50. Диксон М., Уэбб Э. Ферменты. М., 1961.

51. Добычина Э.Г. Паренхимные обкладки проводящих пучков в листьях разных видов злаков (ультраструктура). Ботан.ж., 1977, т.55, № 2, с.253- 262.

52. Доман Н.Г., Романова А.К. Ассимиляция углекислоты при фотосинтезе и хемосинтезе. В сб.: Биохимия и биофизика фотосинтеза. Наука. М., 1965, с.262-277.

53. Доман Н.Г., Фирсов H.H., Чернядьев И.И. Сравнительно-эволюционные аспекты развития фотосинтетической ассимиляции углерода. В сб.: Проблемы эволюционной физиологии растений. Л., 1974, с.57-59.

54. Дунаева С.Е. Ультраструктура хлоропластов и суточное распределение в них крахмала у растений, различающихся по степени развития паренхимной обкладки проводящих пучков. Цитология, 1970, т. 10, 3, с.297-305.

55. Дунаева С.Е. Ультраструктура хлоропластов растений, различающихся первичными продуктами фотосинтеза. Автореф. канд.дисс. Л., 1971.

56. Журбицкий З.И. Теория и практика вегетационного метода. М., Наука, 1968, с.260.

57. Заботин А.И. Определение фотоиндуцированных изменений РН при исследованиях фотофоофорилирования. В сб.: Методы исследования фотофоофорилирования. Пущино-на-Оке, 1970, с.182-190.

58. Заленский О.В. Эволюция путей фотосинтетической фиксации углекислоты. В сб.: Проблемы эволюционной физиологии растений. Л., 1974, с.59-61.

59. Заленский О.В. Эколого-физиологические аспекты изучения фотосинтеза. Л., Наука, 1977, с.56.

60. Иванова Т.П. Роль света в динамике кислот у сукку-лентных растений. Автореф.канд.дисс. Л., 1951, с.19.

61. Ивлев A.A. Вопросы теории фракционирования изотопов углерода в фотосинтезирующих организмах. Успехи современ. биологии, 1976, т.81, № I, с.84-105.

62. Ивлев A.A., Князев Д.А., Клинский Г.Д. Стабильные изотопы углерода как средство исследования биохимии растений . Из в. Тимиряз ев ск. с. -х. акад., 1977, Jß 6, с. 219-22 5.

63. Йорданов И.Т. Влияние повышенной температуры на фотосинтез и распределение С у листьев различного физиологического состояния. Ботан.ж., 1977, т.62, № I, с.93-100.

64. Карпилов Ю.С. Распределение радиоактивного углерода среди продуктов фотосинтеза кукурузы. Труды Казанского с/х ин-та, 1980, т.41, $ I, с.15-24.

65. Карпилов Ю.С. Образование и метаболизм аминокислот при фотосинтезе. В сб.: Пути повышения интенсивности и продуктивности фотосинтеза, вып.1, Наукова думка. Киев, 1966, с.58-65.

66. Карпилов Ю.С. Особенности функции и структуры фотосинтетического аппарата некоторых видов растений тропического происхождения. Тр.Молдавск.НИИ орош.земл.и овощ., П спец.выпуск, 1969.

67. Карпилов Ю.С. Участие азота и фосфора в реакциях фотосинтеза. В сб.: Минеральные элементы и механизм фотосинтеза. Кишинев, 1970, с.3-10.

68. Карпилов Ю.С. Кооперативный фотосинтез ксерофитов.-Труды Молдавск.НИИ орош.земл.и овощ. Кишинев, 1970, т.II,3,

69. Карпилов Ю.С. Фотосинтез ксерофитов (эволюционные аспекты). Кишинев. РИ0 АН МССР, с.19.

70. Карпилов Ю.С., Биль К.Я. Соотношение двух типов хлоропластов в листьях кукурузы при различном азотно-фосфор-ном питании растений. Докл.АН СССР, 1970, т.193, № 5,с.1198-1200.

71. Карпилов Ю.С. Участие азота и фосфора в фотосинтетическом метаболизме в связи с его особенностями у различных видов растений. Автореф.докт.дисс. Казань, 1972, с.44.

72. Карпилов 10.С., Малышев О.Г., Персанов В.М., Кузнецова Л.Г. Фотосинтетический углеродный метаболизм листьев кукурузы. В сб.: Фотосинтез кукурузы. Пущино-на-Оке, 1974, с.89-123.

73. Карпилов Ю.С., Биль К.Я. Транспорт промежуточных продуктов фотосинтеза по цитоплазме клеток ассимиляционных тканей С4 растений. - ДАН СССР, 1976, т.226, 16, с. 14691471.

74. Карпилов Ю.С., Персанов В.М. Активность и функции НАДФ-малат-дегидрогеназ в тканях Сд ж С^ растений. -Физиология и биохим.культ.раст. 1977, т.9, № 5, с.511-516.

75. Карпилов 10.С., Карпова Р.Н., Опарина Л.А. Индукция синтеза моР-малат-дегидрогеназы (декарбоксилирущей) в листьях Сд растений яблочной кислотой. - Биохимия, 1977, т.42, в.5, с.860-863.

76. Карпилов Ю.С., Кузьмин А.Н., Биль К.Я. Распределение ферментов гликолиза в ассимиляционных тканях листьев

77. С^ растений и их связь с особенностями реакции фотосинтеза и фотодыхания. - Физиол.раст., 1978, т.25, № 6, с.1129-1135.

78. Карпова Р.Н., Персанов В.М., Карпилов Ю.С. Биосинтез набр -малатдегидрогеназ при зеленении этиолированных листьев кукурузы. Биохимия, 1978, т.43, № 9, с.1636-1639.

79. Кедровский Б.В. Белковая структура клеточного тела. АН СССР. М., 1946.

80. Климов В.В., Крахмалева И.Н., Шувалова В.А., Кара-петян Н.В., Красновский A.A. Зависимость выхода флуоресценции хлоропластов и хроматофоров от состояния реакционных центров. Доклады АН СССР, 1975, т.221, № 5, с.1007-1209.

81. Ковалева Л.Б. Сравнительное исследование метаболизма яблочной кислоты в листьях растений с С^ фотосинтезоми суккулентов. Канд.дисс., Л., 1975, с.180.

82. Костычев С.П., Кордо-Сысоева Е.К. Исследования над суточным ходом фотосинтеза растений Средней Азии. Изв.АН СССР, 1930, }Ь 6, с.467-498.

83. Кочетов Г.А. Практическое руководство по энзимоло-гии. Высшая школа, М., 1980, с.272.

84. Красавина М.С., Выскребенцева Э.И. АТФазная активность и транспорт калия и натрия в тканях корня. Физиология раст., 1972, т.19, В 5, с.978-983.

85. Курсанов А.Л. Фотосинтез и транспорт ассимилятов в листовой пластинке. В сб.: Транспорт ассимилятов и отложение веществ в запас в растениях. Изд.Дальневост.научн. центра АН СССР, 1973, с.8-26.

86. Курсанов А.Л. Транспорт ассимилятов в растении. М., Наука, 1976.

87. Кээрберг О.Ф. Роль света в динамической регуляции фотосинтетического метаболизма углерода. В сб.: Фоторегуляция метаболизма и фосфогенез растений. М., Наука, 1975, с.158-170.

88. Лайск А.Х. Кинетика фотосинтеза и фотодыхания Cg -растений. М., Наука, 1977, с.194.

89. Лархер В. Экология растений. М., Мир, 1978, с.382.

90. Либберт Э. Физиология растений. М., Мир, 1976, с.580.

91. Любимов В.Ю., Карпилов Ю.С. Светозависимый окислительный метаболизм органических кислот в мезофильных хлоро-пластах кукурузы. В сб.: Механизм фотодыхания и его особенности раст.разл.типов. Пущино, 1978, с.58-74.

92. Магомедов И.М. 0 новом пути восстановления углерода углекислоты в фотосинтезе. В сб.: Механизмы биологических процессов. Л., ЛГУ, 1969, с.53-54.

93. Магомедов И.М., Чесноков В.А. Локализация образования С^ дикарбоновых кислот в листьях кукурузы. - Рефераты докладов симпозиума "Биохимия и биофизика фотосинтеза". Иркутск, 1970, т.18.

94. Магомедов И.М., Чесноков В.А. Локализация образования дикарбоновых кислот в листьях кукурузы на свету. -В сб.: Биохимия и биофизика фотосинтеза. Иркутск, 1971,с.134-140.

95. Магомедов И.М., Ковалева Л.В., Назымок A.B. Образование и транспорт органических кислот в листьях кукурузы. -Рефераты докладов симпозиума "Транспорт ассимилятов и отложение веществ в запас". Владивосток, 1971, т.10.

96. Магомедов И.М., Сааков B.C. Спектры второй производной абсорбции хлоропластов листьев кукурузы. Ботанич.журн., 1973, т.58, № 8, с.1201-1204.

97. Магомедов И.М. Фотосинтез и метаболизм углерода у растений с циклом дикарбоновых кислот. Ботан.журн., 1974, т.59, В I, с.123-138.

98. Магомедов И.М., Ковалева Л.Б. 0 локализации фосфо-енолпируваткарбоксилазы в листьях кукурузы. ДАН СССР, 1973, т.209, JS 6, с. 1467-1469.

99. Магомедов И.М., Чернядьев И.И., Ковалева Л.Б., Доман Н.Г. 0 локализации рибулезодифосфаткарбоксилазы в листьях с С4 путем фотосинтеза. - ДАН СССР, 1973, т.213, JS 3, с.737-739.

100. Магомедов И.М., Тищенко H.H. Методика определения ФЕПкарбоксилазы с помощью дискэлектрофореза на полиакрил-амидном геле. Физиол.растений, 1974, т.21, № 5, с.1095-1097.

101. Магомедов И.М., Степанова A.M., Никифорова Л.Ф., Сааков B.C. Исследование активности I и П фотохимической систем хлоропластов кукурузы. В сб.: Фотосинтез кукурузы. Пущино-на-Оке, Наука, 1974, с.65-70.

102. Магомедов И.М., Ковалева Л.Б. 0 локализации ферментов фотосинтетического карбоксилирования и "малик"-энзима в листьях кукурузы. В сб.: Фотосинтез кукурузы. Пущино-на-Оке, Наука, 1974, с.124-130.

103. Магомедов И.М. Изучение С^ фотосинтеза на изолированных протопластах листьев кукурузы. - Материалы ХП Междунар.Ботанич.Конгресса. Л., Наука, 1975, т.2, № 429.

104. Магомедов И.М. Содержание СО«?, СО, Og в воздухе и эффективность фотосинтеза. Вестник ЛГУ, 1976, т.18, с.76-81.

105. Магомедов И.М., Ковалева Л.Б., Чернядьев И.И., Доман Н.Г. Фиксация углекислоты и активность некоторых ферментов углеродного метаболизма в листьях кукурузы. Физиол. раст., 1976, т.23, té I, с.36-41.

106. Магомедов И.М., Тшценко H.H. Изозимный состав основных ферментов С4 пути углерода фотосинтеза. - Физиол. раст., 1976, т.23, № 6, с.1241-1247.

107. НО. Магомедов И.М. Адаптационное значение С^ пути фотосинтеза в углеродном метаболизме растений. - В сб.: Механизмы адаптации живых организмов к влиянию факторов среды. Л., 1977, с.85.

108. Магомедов И.М., Агаев М.Г. Эволюция углеродного метаболизма цветковых растений с циклом С^ дикарбоновых кислот. - В сб.: Генетика фотосинтеза. Душанбе, Дониш, 1977, с.85-89.

109. Магомедов И.М. Физиолого-биохшические особенности фотосинтеза С^ растений и растений с обменом кислот по типу толстянковых. Тезисы симпозиума "Продуктивность фотосин-тезирующих систем в экстремальных условиях. Улан-Удэ, 1978, с.103-107.

110. Магомедов И.М., Даниэл-Фалуды А., Юзбеков А.К. 0 двух реакциях декарбоксилирования яблочной кислоты в листьях Bryophyllum daigremontianum В. Тезисы симпозиума "Продуктивность фотосинтезирующих систем в экстремальных условиях. Улан-Удэ, 1978, с.99-101.

111. Магомедов И.M., Тшценко H.H. Методика исследования главных ферментов С4 фотосинтеза. Труды по прикл.ботан., генет.и селекции ВНИИ растениевод., 1978, т.61, № 3, с.105-110.

112. Магомедов И.М., Тшценко Н.Н., Агаев М.Г. Биохимические особенности фотосинтеза С4 растений в связи с их эволюцией. - Тр.Петергоф.биол.ин-та, 1978, т.27, с.142-147.

113. Макарова М.Н., Магомедов И.М., Щелкунова С.А. 0 деградации яблочной КИСЛОТЫ Lactobacillus arabinosus . -В сб.: Механизмы биологических процессов. Л., ЛГУ, 1969,с.54-55.

114. Маурер Г. Диск-электрофорез. Теория и практика электрофореза в полиакриламидном геле. М., Мир, 1971.

115. Мезенцев А.В., Дутенко Р.Г., Родионова Н.А. Получение изолированных протопластов из мезофилла многолетних трав и ячменя. Физиол.раст., 1976, т.23, В 3, с.508-512.

116. Милторп Ф.Л. Подходы в физиологии урожая. Физи-ол.и биохимия культ.раст., 1978, т.10, № 4, с.339-348.

117. Мирославов Е.А. Пластиды. В кн.: Атлас ультраструктуры растительных клеток. Петрозаводск, Карел.филиал АН СССР, 1972, с.38-82.

118. Мирославова С.А. Переработка органических кислот на свету дисками листа Bryophyllum daigremontianum . -Вестник ЛГУ, 1968, № 15, C.II6-I2I.

119. Моиз А. Некоторые аспекты фотосинтеза в связи с метаболизмом органических кислот и аминокислот. Физиология раст., 1959, т.6, Я 2, с.274-285.

120. Мокроносов А.Т. Общие пути углеродного питания растений. В сб.: Биохигшя и биофизика фотосинтеза. М., Наука, 1965, с.290-304.

121. Мокроносов А.Т. Транспорт ассимилятов как фактор эндогенной регуляции фотосинтеза. В сб.: Транспорт ассимилятов и отложение веществ в запас у растений. Дальневост. научн.центр АН СССР, Владивосток, 1973, с.76-84.

122. Мокроносов А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М., Наука, 1981, 196 с.

123. Мокроносов А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза (на примере листа картофеля). Физиол.раст., 1977, т.24, В 3, с.458-465.

124. Моргенштиерн В. Возделывание сорго. Сельколхозгиз, M., 1931, с.47.

125. Насыров Ю.С. Фотосинтез и генетика хлоропластов. М., Наука, 1975, с.144.

126. Насыров Ю.С. Пути фотосинтетической фиксации СОр и продуктивность растений. Пробл.атмосферуглекислого газа. Тр.Сов-Амер .симпоз. Душанбе, 1978. JI., 1980, с.223-231.

127. Незговорова Л.А. К вопросу о продуктах фотосинте956, ^ ir „за. Физиол.раст., т.З, № 6,а497-507.

128. Незговорова Л.А. Влияние водного режима растений на поступление и распределение углерода в процессе фотосин9SP,теза. Физиол.раст., т.4, tè 5, с.440-449.

129. Николаева М.К., Осипова О.П., Крылов Ю.В. Действие хлорамфеникола на синтез белков хлоропластов и фотосинтетическую активность листьев. Докл.АН СССР, 1967, т.175, № 2,с.487-490.

130. Ничипорович A.A. Световое и углеродное питание растений (фотосинтез). М., АН СССР, 1955, с.233.

131. Ничипорович A.A., Нгуен-Тхю-Тхюк, • Андреева Т.Ф. Сравнительная оценка взаимосвязи между фотосинтезом и некоторыми особенностями азотного метаболизма у кукурузы и бобов. Физиол.раст., 1972, т. 19, 1," 5, с.1066-1073.

132. Ничипорович A.A. Основы фотосинтетической продуктивности растений. В сб.: Современные проблемы фотосинтеза. М., МГУ, 1973, с.17-43.

133. Ничипорович A.A., Чмора С.Н., Слободская Т.А., Авдеева Т.А. Фотосрштетический С0о газообмен листьев свеклы и кукурузы и его связь с типами фитоценозов. - Физиол.раст., 1973, т.20, № 2, с.300-308.

134. Ничипорович A.A. Энергетическая эффективность и продуктивность фотосинтезирующих систем как интегральная проблема. Физиол.раст., 1978, т.25, № 5, с.922-937.

135. Огурцов В. Сорго. Советская Россия, 1975, I& 85.

136. Осипова О.П., Николаева М.Н., Ничипорович A.A. Взаимосвязь метаболизма белка и функциональной активности фотосинтетического аппарата. В сб.: Функциональная биохимия клеточных структур. М., Наука, 1970, т.485.

137. Осипова О.П., Николаева М.Н., Власова М.П. Взаимосвязь между синтезом белка и активностью фотосинтетического аппарата. В сб.: Теоретические основы фотосинтетической продуктивности. М., Наука, 1972, т.547.

138. Параменова Н.В. О структурных образованиях для транспорта метаболитов. В сб.: Электронная микроскопия в ботанических исследованиях. Петрозаводск, 1974, т.84.

139. Параскив М. Влияние света на образование и превращения органических кислот в листьях различных экологических групп растении. Автореф.дисс.на соиск.уч.степ.канд. биол.наук. Л., 1966.

140. Пахомов А.Н., Перевозчиков А.П. Электрофоретиче-ское исследование спектра множественных форм малатдегидро-геназы в ходе развития скелетной мускулатуры цыпленка. -Вестник •ЛГУ, сер.биол., 1971, JS 9, с.73-80.

141. Персанов В.М., Воронова Е.А., Карпилов Ю.С. Исследование свойств НАДФ-малатдегидрогеназы из листьев кукурузы. Биохимия, 1976, т.41, № 6, с.1014-1021.

142. Персанов В.М., Воронова Е.А., Опарина Л.А., Карпилов Ю.С. Выделение и очистка НАДФ-зависимого "малик"-энзима из листьев кукурузы. Биохимия, 1976, т.41, Агз 5,с.921-924.

143. Пояркова Н.М. Действие красного и синего света на ферменты фотосинтетического метаболизма углерода и газообмен С3 и С4 растений. Автореф.дисс.на соиск.уч.степ.канд. биол.наук. М., 1974.

144. Приступа H.A. Перераспределение радиоактивных ас-симилятов в тканях листа у злаков. Физиол.раст., 1964,т.II, Ш I, с.38-42.

145. Приступа H.A. Локализация продуктов кратковременного фотосинтеза в тканях листа кукурузы. Физиол.раст.,1972, т.19, № 3, с.536-544.

146. Репка И., Сарич М., Марек И., Зима М. Влияние недостатка макроэлементов на структуру хлоропластов и продуктивность фотосинтеза у растений кукурузы. Физиол.раст., 1971, т. 18, Je 6, C.II07-III2.

147. Романенко A.C., Саляев Р.К., Короткая А.П., Кучерова И.А. Wa+, IT1" АТФазы и транспорт ионов в растительных клетках. - В сб.: Поглощение и передвижение веществ у растений. Владивосток, 1978, с.3-21.

148. Романова А.К. Биологическое карбоксилирование при фото- и хемосинтезе. В сб.: Успехи биологической химии. М., Наука, 1968, т.9, с.265-283.

149. Романова А.К. Биохимические методы изучения авто-трофии у микроорганизмов. М., Наука,

150. Романова А.К. Энзиматические аспекты автотрофии и эволюция. В сб.: Проблемы эволюционной физиологии растений, 1974, с.71-73.

151. Ронов А.Б. Общие тенденции в эволюции состава зеленой коры, океана и атмосферы. Геохимия, 1964, т.8

152. Рубин Б.А., Гавриленко В.Ф. Биохимия и физиология фотосинтеза. М., МГУ, 1977.

153. Сааков B.C. О связи реакции деэпоксидации ксантофиллов с электрон-транспортной цепью фотосинтеза. Докл. АН СССР, 1971, т.201, Ш 5, с.1257-1260.

154. Саляев Р.К., Романенко A.C., Короткая А.П., Кучерова И.А. Влияние катионов и строфантина на АТФазу из клеточных стенок корней ячменя. Физиол.раст., 1978, т.25, № I, с.645-651.

155. Сафонов В.И., Сафонова М.П. Исследование белков и ферментов растений методом электрофореза в полиакриламидном геле. В сб.: Биохимические методы в физиологии растений. М., Наука, 1971, с.113-135.

156. Силаева А.М. Структура и возможная функция хлоропластов клеток обкладки сосудистых пучков. Физиол.раст., 1966, т.13, № 4, с.623-627.

157. Силаева A.M. Структура хлоропластов и факторы среды. Киев, Наукова думка, 1978.° 204

158. Солдатеяков C.B., Иванова Т.П. Действие света на превращение органических кислот у суккулентных растений. -Уч.зап.ЛГУ, 1955, т.186, № 39, с.19-38.

159. Солдатеяков C.B., Мазурова Т.А. Анализ органических кислот растений методом ионообменных смол и хроматро-графии на бумаге. В сб.: Методика количественной хроматографии Сахаров, орган.к-т и аминокислот у растений. Изд. АН СССР, М.-Л., 1962

160. Солдатеяков C.B. Биохимия органических кислот растений. Изд.ЛГУ, Л., 1971, с.66-74.

161. Солдатенков C.B., Ковалева Л.Б., Пахомob А.Н., Магомедов И.М. О локализации и активности НАД и НАДФ-зави-симых МДГ в листьях С^ растений. - Материалы 3 Биохимич. съезда. Рига, 1974.

162. Солдатенков C.B., Ковалева Л.Б., Магомедов И.М. Метаболизм Яблочной КИСЛОТЫ В ЛИСТЬЯХ Bryophyllum daigre-montianum . Материалы ХП Междунар.Ботанич.Конгресса. Л., Наука, 1975.

163. Солдатенков C.B., Ковалева Л.Б., Юзбеков А.К. Механизм темнового и светозависимого образования яблочной КИСЛОТЫ В ЛИСТЬЯХ Bryophyllum daigremontianum . Вестник ЛГУ, 1976, т.15, № 3, с.ПЗ-117.

164. Спирин A.C., Гаврилова Л.П. Рибосома. М., Наука, 1971, с.254.

165. Стрелков Р.Б. Метод вычисления стандартных ошибок и доверительных интервалов средних арифметических величин с помощью таблицы. Сухуми, 1966.

166. Тарчевский И.А., Каргшлов Ю.С. К вопросу о природе продуктов кратковременного фотосинтеза. Физиол.раст., 1963, т.10, }Ь I, с.229-234.

167. Тарчевский И.А. Фотосинтез и засуха. Изд.Казанск. ун-та, Казань, 1964, с.197.

168. Тарчевский И.А. Изменение фотосинтетического метаболизма углерода как приспособительная реакция. В сб.: Проблемы современной ботаники. М.-Л., Наука, 1965, т.2,с.148-150.

169. Тарчевский И.А. Основы фотосинтеза. Высшая школа, М., 1977, с.290.

170. Тахтадкян А.Л. Происхоэдение и расселение цветковых растений. Наука, Л., 1970.с 147

171. Титлянов Э.А., Степанова A.M., Чесноков В.А. Обмен органических кислот в листьях ревеня на свету при ингибиро-вании фотосинтеза и дыхания. С.-х. биология, 1968, т.З,5, с.688-693.

172. Титлянов Э.А., Магомедов И.М. Локализация обмена органических кислот в зеленой растительной клетке. В сб.: Биохимические исследования на Советском Дальнем Востоке. Владивосток, Новая серия, 1973, т.13/116/, с.68-96.

173. Тихая Н.И., Мишустина Н.Е., Карпова Е.Б., Вахмистров Д.Б., Самойлова С.А. Оуабаин чувствительная /иа++ К+/ АТФазная активность клеточных мембран, изолированных из корней ячменя. - Физиол.раст., 1976, т.23, Jß 6, с.1197-1207.

174. Тищенко H.H. Изменение состава белков хлоропластов и активности аминотрансфераз у растений с различным типом фиксации С0р в зависимости от азотного питания. Вестн. Ленин.университета, 1975, № 21, вып.4, с.115-122.

175. Тищенко H.H., Магомедов И.M. Локализация и изо-ферментный состав аминотрансфераз у растений различных экологических групп. Материалы ХП Междун.Ботанич.конгресса. Л., Наука, 1975, т.2.

176. Тищенко H.H., Магомедов И.М. Активность и локализация алаяин- и аспартатаминотрансфераз у растений с С^ -фотосинтезом. ДАН СССР, 1975, т.225, № 2, с.463-465.

177. Тищенко H.H., Магомедов И.М. Устойчивость фотосинтетического аппарата растений различных экологических групп к недостатку азота в питательной среде. В сб.: Механизмы адаптации живых организмов к влиянию факторов среды. Л., 1977, т.144.

178. Тищенко H.H., Магомедов И.М. Алании- и аспартат-аминотрансферазы и С^ фотосинтез. Тезисы Всесоюзного симпозиума "Азотный и белковый обмен растений". Тбилиси, 1978, с.50-51.

179. Тищенко H.H., Магомедов И.М. Определение изофер-ментного состава и активности аланин- и аспартатаминотрансфераз у высших растений. Труды по прикл.ботан., генет. и селекции. ВНИИ растениевод., 1978, т.61, № 3, с.144-152.

180. Тщенко H.H., Магомедов И.М. Влияние источника неорганического азота на активность аминотрансфераз у растений различных экологических групп. Тезисы 1У Всесоюзн.биохим. съезда. Л., Наука, 1979, т.1, с.261.

181. Тщенко H.H. К вопросу о локализации аланин- и аспартатаминотрансфераз в растениях различных экологических групп. В кн.: Фотосинтез, дыхание и органические кислоты. Воронеж, 1980, с.14-19.

182. Тищенко H.H., Магомедов И.М. Влияние форм азотана ферменты фотосинтетического метаболизма у Cg- и С^ злаковых растений. - Физиол. и биохим.пульт.раст., 1981, т.13, IS I, с.35-42.

183. Усманов И.Ю. Видовая специфичность растений и изменение биоэлектрических и окислительно-восстановительных процессов при питании аммиачным и нитратным азотом. Автореф. канд.дисс. Казань, с. то

184. Филиппова Л.А. 0 методах выделения хлоропластов в неводную среду. Физиол.раст., 1967, т.14, .£ 6, с.1107-III2.

185. Хавкин Э.Е. Индуцированный синтез ферментов в процессах роста и морфогенеза растений. М., Наука, 1968.

186. Хасанов М.М., Бутенко Р.Г. Культура изолированных протопластов из семядолей хлопчатника

187. Физиол.раст., 1979, т.26, В I, с.103-108.

188. Хеч М.Д. Варианты фотосинтетического метаболизма углерода и их физиологические преимущества. Физиол.и био-хим.культ.растений, 1976, т.8, Ш 5, с.473-482.

189. Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. 1!. "Мир". 1977, с.398

190. Цвелев H.H. Злаки СССР. Л., Наука, 1976, с.788.

191. Чернадьев И.И., Доман Н.Г. К вопросу о путях использования углерода в фотосинтезе Rhodopseudomonas palustris . Биохимия, 1970, т.35, №5, с.968-972.

192. Чернов И.А., Крайнова H.H. Многокомпонентная среда для получения препаратов хлоропластов, способных к интенсивной фиксации СОр. Физиол.раст., 1971, т.18, J6 2, с.450-454.

193. Чесноков В.А., Базырина E.H., Бушуева Т.М., Ильинская Н.Л. Выращивание растений без почвы. Изд.ЛГУ, Л., i960 С

194. Чесноков В.А., Солдатенков C.B., Степанова А.М. Зеленые растения как собиратели углерода. Вестник ЛГУ, 1968, të 9, с.73-78.

195. Чесноков В.А., Мирославова С.А. Обмен яблочной кислоты на свету в листьях суккулентов. Вестник ЛГУ, 1969, № 21, с.141-152.

196. Чесноков В.А., Мирославова С.А. Обмен углерода в листьях Bryophyllum daigremontianum на свету. Труды Биолог.ин-та ЛГУ, 1971, т.21, с.225-248.

197. Чмора С.Н., Пояркова Н.М., Воскресенская Н.П. Углекислотный газообмен кукурузы на синем и красном свету. Физиол.раст., 1971, т.18, №6, C.II20-II26.

198. Чмора С.Н., Слободская Г.А., Ничипорович A.A. Ингибирование углекислотного газообмена у Cg и С^ растений кислородом в условиях высокой концентрации СО^ - физиол. раст., 1976, т.23, № 5, с.885-893.

199. Шемякин М.М., Хохлов A.C., Колосов М.Н., Бергельсон Л.Д., Антонов В.К. Химия антибиотиков. АН СССР, М., 1961, т.1, с.142-147.

200. Ширяев А.И. Субмикроскопическая и макромолекуляр-ная организация хлоропластов. Киев, Наукова Думка, 1978,с.ПО.

201. Юзбеков А.К. Светоиндуцированный синтез ферментов С^ пути фотосинтеза в этиолированных листьях кукурузы. -Вестник ЛГУ, 1978, J5 3, C.III-II5.

202. Akita Shigemi, Moss D.N. Differential stomatal response between G^ and species to atmospheric 00£ concentration and light. Crop. Sci., 1972, v.12, N 6, p.789-793.

203. Alberte S. , Thornber J. ELscus Water stress effects on the content and organization of chlorophyll in mesophyll and lundle sheath chloroplasts of maize. Plant Physiol. 1977. V.59, N 3,p. 351-353.

204. Allaway W.0.Accumulation of malate in guard cells of Vicia fada L.during stomatal opening. Planta, 1973,v.110, N I , p.63-70.

205. Andersen K.S. , Bain J.M. , Bishop D. G. ,Smillie R. M. Photosystem II activity in agronal bundle sheath chloroplasts from Zea mays. Plant Phys., 1972, v.49, N p.461-466.

206. Anderson L.B. Light modulation of the activity of carbon metabolism entymes. In M.Avron ed., Proceedings of the Third international Congress on Photosynthesis. 1973. V.II, JSLsevier, Amsterdam, p.1393-1406.

207. Anderson J.M., Woo K.C. , Boardman N.K., Photochemical systeme in mesophyll and bundle sheath chloroplasts of C^ plants. Biochem. Biophys. Acta, 1971, v. 245, N 2,p.398-408.

208. Andrews T.J. , Hatch M.D. Properties and mechanism of action of pyruvate phosphate dihinase from leaves. Biochem. J., 1969, v.114, N 1, p.117-125.

209. Andrews T.J*»Johnson H.S., Slach C.R,, Hatch M.D.,Malic enzyme and aminotransferases in relation to 3-phospholy-cerate formation in plants with the C^-dicarborylic acid pathway of photosynthesis.- Phytochem. 1971,v.10,1. N 9,p. 2005-2013.

210. Andrews I.J. , Hatcn M.D. Activity and properties of ribulo-sediphosphate carboxylase from plants with the -di~ carboxylic acid pathway of photosynthesis. Phytoche-mistry, 1971, v. 10,N 1,

211. Arinond P.A., Arntzen G.J. Localisation and characterization of photosystem II in grana and stroma lamellae. Plant Physiol., 1977, v. 59, N 3, p. 398-404.

212. Badger M.R., Andrews T.J. Effects of C02, 02 and temperature on the highaffinity form of rubulosediphospha-te carboxylase oxygenase from spinach. - Biochem. Biophys. Res. Commun. ,1974,v. 60,p. 204-210.

213. Bahr J.Т.,Jensen R. G. On the activity of ribulosediphospha-te carboxylase with C02 and 02 from leaf exbractes of Zea mays. Biochem. Biophys.Res. Commun.1976, v. 57, N ,p.1180-1185.

214. Baldry 0. w. , Buche 0., Coombs J. Light phosphoenolpyruvate dependent carbon dioxide fixation by isolated sugar cane chloroplasts. Biochem. Biophys. Res. Commun. ,1969,v. 37, N 5,p,828-835«

215. Baldry C.W.,Buche C. ,Coombs J. Effect of some phenolxidase inhibitors on chloroplasts and carboxylating enzymes of sugar cane and spinach. Planta (Berl.) ,1970» V". 94,1. H 2,p. 124-133.

216. BaId.ry C.W. ,Buche 0.,Coombs J. »Progressive release of oar-bo jcylating enzymes during mechanical grinding of sugar cane leaves. Plant a (Berl.), 1971, v.97,N 4,p. 310319.

217. Bandurshi R.S. JUrthes studies on the enzymatic synthesis of oxalacetate from phosphorylend pyruvate and carbon dioxide. Journ. Biol. Chem.1955, v. 217,N 1,p. 137-150.

218. Baskin J.M. ,Bashin G. G. A discussion of the growth and competitive ability of G^ and C^ plants. Castanea,1978, v.43, N 2,p.71-76.

219. Basiouny P.M. ,Van T.K. ,RLgga R.H. Some morphological and biochemical characteristics of and G^ plants irradiated with UV-B. Physiol, plant, 1978,v.42, N 1, p.29-32.

220. Bartholomew B. Drought response in the gas exchauge ef Dudley a farinosa (crassulaeeal) grown unaer natural conditions. Photosynthetica. 1973, v.7,2, p.114-120.

221. Bassham J.A. Kinetic studies of the photosynthetic carbon reduction cycle. Ann.Rev.Plant Phys.,1964, v.l5,p.1Q1 -120.

222. Baszynski T. , Brand J., Barr R. e. a. Some Biochemical Characteristics of ChLoroplasts from Mineral deficient Maize. Plant Physiol., 1972, vol.50,N 3, p.410-411.

223. Bazzaz M.B., Govindjee. Photochemical properties of mesophyll and bundle sheath, chloroplasts of maize. Plant Physiol., 1973,v.52, N 2,p.257- 262.

224. Bednarz R.M. , Rasmussen H.P. GO^-fixation sites in leavesof maize and oats. J.Exp.Bot. ,1972, v. 23, N 75,p.4-15-421.

225. Beer 3., Shomer an A., Waisel J, Salt-stimulated, phospho-enolpyruvate carboxylase in Canile maritima. Physiol, plant., 1975, v.34, N 4, p.193-195-i -a •ip

226. Benedetti B#, £brti G., Garlaschi F. , Rosa L. , On the mechanism of ammonium stimulation of photosynthesis in isolated chl or op lasts. Plant Sci.Lett. , 1976, v.7, N 2, p.85-90.

227. Benedict C.R. , Nature of obligate photoautotrophy. Ann.Rev. Plant Physiol., 1978, v.29, p.67-93.

228. Berry J.A. The compartimentation of reactions in ^g -carbo-xylation photosynthesis. Gamegie Inst, 'fear Booh, 1970, N 69, p.649-655.

229. Berry J.A., Downton W.J.S., Tregunna E.B. The photosynthe-tic carbon metabolism of Zea mays and Gomphrena globosa.: the location of the CO2 fixation and the carboxyl transfer reactions. Can. J.Bot., 1970, v.48, N 4, p.777-732.

230. Berry J.A. Adaptation of photosynthetic processer to stress.- Science, 1975, N 188, p.644-650.

231. Berry J.A. , Troughton J.H. Carbon isotope fractionation by Co and C^ plants in "closed" and "open" atmospheres.

232. Carnegie Inst. Wash.Jear ,b., 1974, v. 7o p.785-790.

233. Berry J., liarquhar C. The C02 concentrating function of photosynthesis a biochemical model. Proc.Int.Congr. Photosynth. London, 1978, ,p.119-131.

234. Bhagwat A.S., Sane P. V. Studies on enzymes G-4 pathway. Part IV. Comparative study of inhibitors of malic enzyme isolated from GAM, C^, Cy-plant. - Indian. J.Exp.Biol., 1977, v.15, N 11, p.1013-1015.

235. Bisalptura 0?. , Downton W. J.S. , Tregunna E.B. The distribution and ultrastructure of chloroplasts in leaves differing in photosynthetic carbon metabolism. I.Wheat, sorghum,and aristida (gramineae). Canad.J. Bot., 1969, v. 47, IT 1, p.15-22.

236. Bishop D. G. , Andersen K.S. , Smillie R.M. Pho tor eduction and oxidation of cytochrome f in bundle sheath cells of maize. Plant Physiol, 1972, v.49, N 4, p.467-470.

237. Bishop D. G. , Andersen K.S., Smille R.M. PH dependence and cof-actor reguirements of photochemical reactions in maize chloroplasts. Plant Physiol., 1972, v.50, N 6, p.774-777.

238. Bishop D. G-. Lamellar structure and composition of chlorop-lasts in relation to photosynthetic electron transfer. Phytochem. Photobiol. , 1974, v. 20,N 2 ,p. 281-299.

239. Bjorhman 0., Gauhl E.Carboxydismutase activity in plants with and without carboxylation photosynthesis. -Planta, 1969, v.88, N 3,p.197- 203.

240. B j ôrkman 0., Pearcy R. W. , Hattison T., Mooney H. Photosynthetic adaptation to high temperatures. A field study in Death Valley California. Science, 1972, v.175, jtf 4023, p.736-789.

241. Bjorkman 0., Badger M., Thermal stability of photosynthe-tic enzymes in heat and cool-adapted C^ species.-An-nu.Rept. Dir. Pepart. Plant Biol. Carnegie Inst.p. 1976-1977, Stanford Calif., 1977, v.7o, p.346-2354.

242. Black C.C., Chen T.M. , Brown R. U. Biochemical basis for plant compefition. Weed. Sci. , 1969, v.17, N , p.338-344.

243. Black C.C. , Mayne B.C. P^qq a^'fci-vi'fcy 311(1 chlorophyll content of plants with different photosynthetic carbon dioxide fixation cycles. Plant Physiol, 1970, v.45,N 6, p. 7 38-741.

244. Blacke C.C. Ecological implications of dividing plants into groups with distinet photosynthetic production capacities.- Ad van. Ecolog.Res. , 1971, v.7 , p. 87-113.

245. Black ^.C. , Edwards G.E. , Kanai R. , Mollenhauer H.H. Photo-synthetic assimilation of carbon in certain higher plants. 2Q<i International congress on photosynthèses,stressa, 1971, v.S . , p.1745-1757.

246. Black G.G., Nollenhauer H.H. Structure and distribution of chloroplasts and other organelles in leaves with various rates of photosynthesis. Plant Physiol, 1971,v. 47, N 1, p.15-23.

247. Black G.G., Edwards Gr. E. , Kanai S. , Mollenhauer H.H.

248. Blackwood G.G., Miffin B.J. !Ehe effect of nitrate ond ammonium feeding on carbon dionide assimilation in maize. J.Exp.Bot. 1976, v. 27,N 9, p.735-747.

249. Bocher M,, Kluge M. Der C^ Weg der G-Fixierung bei Spi14nacea oleracea. 1. G-Markierungsmuster suspendierter Blattstreifen unter dem ELnflu des Suspensionsmediums. Z.Pflantenphysiol, 1977, bd.83, N 4, s.347-361.

250. Böcher M. , Kluge M. Der G^ -Weg der G-fixi.erung bei spina-cea ileracea. II. Pulsechose experimente mit suspencLL erten Blattstreifen. Z. Pflanzenphysiol., 1978,bd. 86,N;. 5, s. 405-412.

251. Boeger G.M., Siwards Gr.E. , Blac G.G. Spectral, physical and electron trapsport activities in the photosynthetic apparatus of mesophyll cells and bundle sheathcells of Digit aria sanguinalis. Plant Physiol. , 1971, v. 47, N 5, p.600-605.

252. Bonugli K.J. , Davies D.D. ïhe regulation of potato phosph-oenolpyruvate carboxylase in relation to a metabolis PH-stat, Planta, 1977, v.133, N 3, p. 281-287.

253. Boulter D., Sllis R. J., Xarwood A. Biochemistry of protein synthesis in plant. Biol. Rev., 1972, v.47, N 1,p.113-175.

254. Bourdu H. Discussion sur les caractéristiques structurales et infra-structurales des feuilles en fonction de1'appartenence aux trois tupes melaboliques. Physiol. veget, 1976, v.14, N 3, p. 551-561.

255. Bawes G * . and W.L. Ogren. Properties of RuDP and PiSP carboxylases frem soybean and corn, fiant Phys. 1971 ,v.4-7, N 58, p.10.268. .Bowes W.Z. Ogren, R.H.Hageman. pH Dopendence of the Km

256. OO2) of Ribulose 1,5-diphosphate carboxylase. Plant Physiol. 1975» v. 56,N 4 , p. 630-633.

257. Bradbeer J.W. , Ranson S.L., Stiller M. Malate synthesis in14crassulacean leaves. I.The distribution of 0 in ma14late in leaves exposed to 002 m "the darh. Plant Physiol., 1958. v. 33, H 1,p.66-70.

258. Bradbeer J.W. , Ranson S.L., Physiological studies on acid metabolism in green plants. VIII. The utilization of labelled pyruvate, fumarate and glucose in kalanchoe leaves in the darg. Proc.Roy.Soc.,1963,B157, N 967, p. 258-279.

259. Brad.beer J.W. The Synthesis of chloroplast enzymes. -In: Biosynthesis and Contr. Plants, Proc. Symp.,.Sittingbo-urne, 1972, London -rTew-.Jork,1973, ,p. 279-30 2.

260. Brandon P.O. Enzymological studies on pathway of crassula-cean acid metabolism. Bros. Koninhl. nederl. wet. 1963,C 66,N 5, p.406-417.

261. Brandon P.O. Temperature features of enzymes affecting Grassulacean acid metabolism.- Plant Physiol., 1967, v.42,N 7, p.977-934.

262. Brangeon L. Compared ontogeny of the two types of chloro-plasts of Zea mays.- J.Microscopie, 1973, v.16, N 2, p. 233-242.

263. Brangeon J. Effect of Irradiance on granal configurations of Zea mays bundle sheath chloroplasts. Photosynthetica, 1973, v.7, N 4,p.365-372.

264. Brown R.H. A difference in N use efficiency in G^ and plants and its implications in adaptation and evolution. Crop. Sci., 1976, v.18,N 1, p.93-98.

265. Brown W. V. Leaf anatomy in grass systematics. Bot. Gat. ,1958, v.119,p. 170-178.

266. Brown W. V. Variations in anatomy, association an origins of Kranz tissue. Amer.J., Bot. 1975, v.62,p. 395-402.

267. Brownell P.P., Crossland O.J. The requirement for sodium as a micronutrient by species hawing the G^ dicarboxy-lic photo synthetic pathway. Plant Physiol., 1972, v.4-9, N 5,

268. Brulfert J., Guerrier D., Queiroz 0. Photoperiodism and enzyme activity: balance between inhibition and induction of the crassulacean acid metabolism. Plant Physiol., 1973,v. 51, N 1, p. 220-222.

269. Bruflert J., Guerrier D. , Queiroz 0. Photoperiodism and enzyme rhythms: Kinetic characteristics of the photoperiodic industion of Crassulacean acid metabolism. Planta, 1975, v.125, N 1, p. 33-44.

270. Bucke G. , Long S.P. Location of enzymes assimilating and shuttling carbon dioxide in sugar cane and maise leaf tissue. Proc.3 Int.Gongr.Photosynth., Stressa,1971, p.1935-1941.

271. Bucke G., Long S.P. Release of carboxylabing enzymes from maize and sugar cane leaf tissue during progressive grinding. Planta, 1974-, v.99, N 3, p.199-210.

272. Bucke C., Oliver I.R. Location of enzymes metabolizing sucrose and starch in the grasses Pennisetum purpureum and Muhlenbergia montana. Planta, 1975, v.122, N 1,p.45-52.

273. Brulfert J., Guerrier D. , Queiroz 0. Changes in the isozyme of phosphoenolpyruvate carlexylase. An early step in pho-toperiodie control of Crassulacean acid metabolism Level. 1979. PI anta.v 146,129-133.

274. Caldwell M.M., Osmond C.B.,Nott D.L. Pathway photosynthesis at low temperature in cold-tolerant Atriplex species.-Plant Physiol.,1977, v.60, K 1, p.157-164.

275. Calvin M. , Bassham A. The photosynthesis of carbon compounds.- New-Xork,1962.

276. Card K.A. , Mahall B. , Troughton J.H. Salinity and carbon isotope ratios in C^ and C^ plants. Carnegie Inst.Annu. Rept Dir. Dep.Plant Biol., p. 1973-1974. Washington, 1974; p.784-785.

277. Ghampigny M.L. L'influence de la lumiere sur la genese des acides amines dans les feuilles de Bryophyllum diagre-montianum Berger. Rev. Genez.Botan. ,1960, v. 67, N 790791-792, p.65-223.

278. Ghampigny M.L., Moyse A.Influence de la carence en azote sur les activités de carbo:xylation et de transamination des chloroplastes isoles des feuilles de Bryophyllum,-Z.Pf 1 anzenphys. ,1967 ,v. 57,N 3,p. 280-297.

279. Ghampigny M.L.,Bismuth. E. Role of photosynthetic electron transter in Light acfivation of calvin cycle enzymes. Ehysiol.Plant. 1976, v. 36,N 1,p.95-94.

280. Ghampigny M.L. Adenine muleoticles and the control of photosyntetic activités. Inter Gongress of photosynthesis London, 1977,

281. Ghampigny M. Z. La regulation du cyell de Gal vin Physion vègètfc. 1976, v.14,N 3,p. 607-628.

282. Chapman E.A. ,Bain J.M. ,Gove D. W. Mitochondria and chloroplast peripheral reticulum in the G^ plant Amaranthus edulis and Atiiplex spongiosa. Austr. J.Plant Phys. , 1975, v. 2, N 2,p. 207-224.

283. Chapman R.S.R., Hatch M.D.Regulation of Mitochondrial NAD-malic emzyme involved in pathway photosynthesis. -Arch.Biochem. and Biophys. ,1977, v. 184,N 1,p. 298-306.

284. Chapman K.S.R., Hatch M.D. Aspartate stimulation of malate decarboxylation in Zea mays bundle sheath cells: possible role in regulation of C^ photosynthesis. -Bioch-em. and Bioph. Res. Commun. ,1979,v.86, N p. 1274-1280.

285. Chang F. H. , Iroughton J.H.Chlorophyll a/b Ratios in C^ -and

286. C4 -plants.- Photosynthetica,1972, v.6,N 1,p.57-65.

287. Chen J.H., Jones R. F. Multiple forms of phosphoenolpyruva-te carboxylase from Chlamydomonas reinhardii. Biochem. biophys. Acta, 1970, v. 214,N 2,p. 318-325.

288. Chen T.M., Brown R. H. ,Blacn C.C. Photo synthetic 1^C02 fixation products and activities of enzymes related to photosynthesis in Bermundagrass and other plants.-Plant Physiol. 1971,v.47,N 1,p.199-203.

289. Chollet R., Ogren W.L. 02 inhibits maize bundle sheath photosynthesis. Biochem. Biophys.Res. Commun. 1972, v. 46, N ,p. 2062-2066.

290. Chollet R., Ogren W.L. The Warburg effect in maize bundlesheatt photosynthesis.- Biochem. Biophys. Res.Commun. 1972 b, v.48, IT , p.684-688.

291. Chollet R., Ogren W.L. Greening in avirescent mutant ofmaize. II. Eazyme Studies. Z.Pflanzenphysiol. 1972, bd. 68, N 1, s. 45-54.1 ¿1

292. Chollet R. The effect of 02 on 1 C02 fixation in mesophyllcells isolated from DigLtaria sanguinalis (L.). Scop.1.aves. Biochem. Biophys. Res. Commun.,1973, v. 55, p.850-856.

293. Chollet R., Ogren W.L. Regulation of Photorespiration in C^ and C^ species. The Botanical Review, 1975,v.41, N 2,p.137-179.

294. Cockburn W. , Mc Aulay A. Changes in metabolite levels in

295. Kalanchoe daigremontiana and the regulation of malic acid accumulation in crassulacean acid metabolism. -Plant Physiol., 1977,v.59, N 3,p.455-458.- Plant. Sci.Letfc., 1976, v.6, p.123-127.

296. Coombs J. The potential of higher plants with the phospho-pyruvic acid cycle. Proc. R.Soc.,London, B.1971,179, p. 221-235.

297. Coombs J., Baldry C.W. C^ -pathway in Pennisetum purpureum.- Nature, New Biol. 1972, v. 238, N 87, p. 268-270.

298. Coombs J., Baldry C.W. , Buche C. The C^ pathway in pennisetum purpureum. I.The allosteric nature of PEP carboxylase. PLanta, 1973a, v.110,N 2,p.95-107.

299. Coombs J., Baldry C.W. , Buche C. The C-4 pathway in pennisetum purpureum. II.Malate dehydrogenase and malic enzyme. PI ant a, 1973b, v. 110,N 2,p. 109-1 20.

300. Coombs J., Baldry C.W. Brown J.E. The C-4 pathway in Pennisetuni purpureum. III. Structure and photosynthesis. -Planta, 1973b, v.110,N 2, p.121-129.

301. Ooombs J., Baldry C.W. Metabolic regulation in -photosynthesis: PPG and 30 intermediates of the photosynthetic carbon reduction cycle. Planta, 1975, v.124,N 2,p.153-1 58.

302. Ooombs J., Mau S.L. , Baldry G.M. Regulation in C^ photosynthesis the inorganic carbon substrate for PSPcarboxyla-se. Plan. Sci. Lett. ,1975sv.4,N2P-121-129.

303. Cooper J.P. Photosynthetic efficiency of maize compared withother field crops. Ann.Appl.Biol., 1977, v.87, N 2, p. 237-294.

304. Cooper R.A. , Romberg H.L. Net formation of phosphoenolpyruvate from pyruvate by Escherichia coli. Biochim. biophys. Acta, 19&5, v.104fIT 2,p. 618.

305. Cooper R.A., T. G.D. Tilmer, M. Wishnick, M.D.Laa. The Active spescies of C02 utilized by R.D. Carboxylase. The J.Bild. Chemistry. 1969, v. 244,N 4,p.1081.

306. Cooper T. G. , H.G.Wood. The Carboxylation of Phosphoenolpyruvate and Pyruvate. II The active species of "CC^" utilized by phosphoenolpyruvate carboxylase and pyruvatecarboxylase. J.Biol.Chem.1971, v.264,N 17,p.5488-54-90.

307. Creach S., Michel J.P. , Thilault. Aspartic Acid as an internal 0C>2 reservoir in Zea mays. Effect; of Oxygen Concentration auf Far-red illumination. PI ant a, 1974, v. 118,1. N 2, p.91-100.

308. Crespo H.M. , Ere an M, Gresswell 0. P., Tew J. The occurrence of both Gj and C^ photosynthetic characteristics in a single Zea moys plant. Planta 1979, v. 14-7,И 3,p.257-263.

309. Crookston R.E., Moss D.N. C-4 and 0-3 carboxylation characteristics in the genus Lygophyllum (Lygophyllaceae) -Ann.Mo. Bot.Gard. 1972,v. 59, N 3, p. 465-470.

310. Crookston R.K., Moss D.N. A variation of C^ leaf anatomy in Arundinella hirta (gramineae).- Plant Physiol., 1973, v. 52,N ,p. 397-402.

311. Dardart J.G. Activités enzymatiqu.es des criloroplastes isoles de feuilles de Bryophyllum dai gremonti anum Berger oxydation des hexoses, formation et degradation d% acide mali-que. Physiol, veg. , 1963, v. 3, p. 215-227.

312. Dardart J. , Queiroz 0. Malic enzyme in the leaves of Bryophyllum daigremontianum. Phytochemistry, 1974, v.13, N , p. 1695-1702.

313. Das V.S.R. , Santakumari M. Stomatal characteristics of somedicotyledonous plants in relation to the C^ and C^ pathway of photosynthesis. Plant and Cell. Physiol. 1977, v. 18,11 4,p.935-938.

314. Das V.S.R. , Santakumari M. The incomplete evolution of C^photosynthesis within the Pantropical taxon, Boerhaa-via (Nyctoginaceae). Photosynthetica, 1978,v. 12, IT 4, p. 418-422.

315. Fekete M.A.K., Vieweg G.H. Synthesis of sucrose in Zea maysleaves. Ber.Deut.Botan.Ges., 1973, v. 86,p. 227-231.1 3

316. Deleens E. La discrimination du C et les tras types de metabolism des plantes. Physiol. Veg. ,1976, v.14,N , p. 641-656.

317. Denias H.R. , Homan P.The relation between photosynthesis, respiration, and Crassulacean. Acid. Metabolism in leaf slices of Aloe arborsens Mill. Plant Physiol., 1972, v.49,N 6, p.873-880.

318. Diefer J.W. , Ereicnel S. , Kirst G. 0. , Curdts E. Environmentally controled changes of PSP-carbohylases in Mesemb-ryanthemuni. Phytochemistry, 1976, v.15, N 10,p.1435-1436.

319. Dittrich P.NAD-specific "Malic" enzyme in Kalanchoe daig-remontiana and other plants exhibiting crassulacean acid metabolism. Plant Phys. ,1976, v. 57,N 2,p. 310314.

320. Dittrich P., Sulin M.J., Blach 0. C. Conversion of carbon4 of malate into products of the pentose cycle by isolated bundle sheath strands of Digitaria sanguinalis (L.) Scop.Leaves, Biochem. a Biophys. Res.Comms, 1973, v. 55,N 1,p. 104-110.

321. Dittrich P. , Campbell W.H. , Blach C.C. Phosphoenolpyruvate carboxykinase in plants exhibiting crassulacean acid metabolism. Plant Physiol. ,1973,v. 52,N 3,p. 357-361.

322. DÔhler G. O^-Weg in Anacystis und Chlorella flëhrend der Photosynthese-Induktion? Ber.Dtsch.bot.ges.-1974, bd.87,N 2, s. 229-238.

323. Doliner L.H. , Jolliffe P.A. fScoligical evidence concerning the adaptive signification of the dicarboxylic acid pathway of photosynthesis.- OecologLa, 1979, v. 38,N 1, p.23-34.

324. Downes W. Different C02-sensitivities of the gas exchange of the two leaf surfaces of Zea mays.-Planta,1971,v.98,N 2,p.186.

325. Downton W.J.S. Preferential C^-dicarboxylic acid synthesis, the postillumination CC^ burstjai' carbosyl transfer step, and grana configurations in plants with G^-photosynthesis. Can.J.Bot., 1970, v.48, N 10,p. 1795.

326. Downton W.J.S., Berry J.A., Tregunna E.B. C^-pho to synthesis. Non-cyclic electron flow and Grana development in hundle sheath chloroplasts. Z.Pflanzenphys., 1970, v.63,N 2, p.194-197.

327. Downton W.J.S. Adaptive and evolutionary aspects of photosynthesis. In: M.D.Hatch, O.B.Osmond and R. O.Sla-tyer, eds.- Photosynthesis and Photorespiration,V&ley -Intrese. , 1971a,N. i. ,p. 3-17.

328. Downton W.J.S. JUther evidence for two modes of carbozyl transfer in plants with C^-photosynthesis. Can.J.

329. Bot., 1971b, v.49,N 8, p.1439-1442.

330. Downton W.J.S. Chech list of C^ species. In: Hatch M.D. , Osmond C.B.,SSlatyer R.0.ed. Photosynthesis and Photorespiration. WLley-Interscience, New York-London-Sidney-Toronto,1971,p.554-558.

331. Downton W.J.S. The occurence of C^ photosynthesis among plants. Photosynthetica, 1975, v.9, N 1,p.96-105.

332. Downton W.D.S., Hawker D.S. Enzymes of starch and sucrose metabolism in Zea mays Leaves. Phytochemistry, v. 12, N 12,p. 1551-1556.

333. Edwards G.E., Lee S.S., Chen T.M., Blach C.C. Carboxylati-on reactions and photosynthetic carbon compounds inisolated, mesophyll and. bundle sheath cells of DigLta-ria sanguinalis. Scop.Biochem.Biophys. Res.Comm. , 1970, v.39,N 3, p.389.

334. Edwards G.E. , Kanai R. , Black C.C. Phosphoenolpyruvate car-boxykinase in leaves of certain plants wich fix CO2 by the G^ -dicarboxylic acid cycle of photosynthesis. Biochem* Bioph. Res. Comm., 1971, v.45, N 2,p.278-285.

335. Edwards G.E. , Black C.C. Isolation of mesophyll cells and hundle sheath cells from Digitaria sanguinalis.Leaves and a scanning microscopy study of the internal leaf cell morphology. Plant Physiol., 1971, v.47,N 1, p.149.

336. Edwards G.E. , Gutierrez M. Metabolic activities in extracts of mesophyll and bundle sheath cells of Panicum milia-ceum (L.) in relation to the C^ dicarboxylic acid pathway of photosynthesis. Plant Physiol., 1972,v.50» N 6, p.728-732.

337. Edwards G.E. , Gutierrez M. , Ku S.B. , Kanai R.Intracellular localization of enzymes of the C^ patway in mesophyll cells of C^ plants. Plant Physiol., annual suppl., H-ft.Anniv. Meeting, 1974, p.1924-1974.

338. Edwards G.E. , Huber S.C. , Gutierrez M. Photo synthetic properties of plant protoplasts. Microbiol and Plant Protoplasts., London e.a., 1976, p.299-322.

339. Ehleringer J., Bjorkman 0. Quantum yields for C02 uptake in C^ and C^ plants. Dependence of temperature,C02 and 02 concentration. Plane Physiol. ,1977, v. 59, N 1,p.86-90.

340. Sickmejer W. G. , Bender M.M. Carbon isotope ratios of crassulacean acid metabolism species in relation to climate and phytosociology. -Oecologia, 1976, v. 25, N 4, p. 341-347.

341. Estep M. F.Tabita F.R., Parker P.L. , Baalen C.V. Carbon isotope practionation by ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase from various organisms. Plant Physiol., 1978,v.61,N 4,p.680-687.

342. Evans I.T. Evolutionary, adaptive and enviromental aspects of the Photosynthetic pathway: Assesment. In Photosyathethis aa<i Photorespiration New Xork. 1971.M.D. Hatch, C.B.Osmand, R. O.Slatyer cols.

343. Fair P.,Tew J., Gresswell G.F. Enzyme activities associatedwith carbon dioxide exchange in illuminated leaves of Hordeum vulgare L.IV. The effect of light intensity on the carbon dioxide compensation point. Ann.Bot.,1974, v. 38, N 154, p.45-52.

344. FLowers T.J. The effect of sodium chloride on enzyme activities from four halophytic species of Ohenopodiaceae. Phytochemistry, 1977, v.11,N 18, p.81-86.

345. Fork D.G., Amesz J. Spectrophotometrie studies on the mechanism of photosynthesis.- Photophysiology, 1969, v.5, N 1,p. 97-126.

346. Puller R. C. The evolution of photosynthetic carbon metabolism. The role of sequences anaillary to the calvin cycle. Ed.by Shoffeniels Biochemical Evolution and the origin of life. 1971, p.259-273.

347. Gallaher R.N., Ashley D.A. , Brown R.H. '^C photosynthatetransaction in C^ and C^ plants as related to leaf anatomy. Crop.Sci., 1975, v.15, N 1, p.55-59.

348. Gibbs M. , Latzko E. , OvNeal D. , Choysin Hew. Photosynthetic carbon fixation by isolated maize chloroplasts. -Bioch. biophys. res. comm., 1970, v.40, N 6,p.1356.

349. Goatly M.B.| Brice M. , Smith H. Differential properties of phosphoenolpyruvate carboxyles from etiolated and green sugar cane. Planta, 1974, v.117, N 1,p.67-73.

350. Goatly M., Ooombs J., Smith H. Development of photosynthesis in Sugar Cane: Changes in properties phosphoenolpyruvate carboxylase during greening. Planta, 1975,v.125, N 1,p. 15-34.

351. Goldstein L.D. , Ray T.B. , Kestler D.P. , Mayne B.C., Brown

352. R.H. , Black 0.0. Biochemical character;ation of Panicum species which are intermediat between 0^ and 0^ photosynthesis plants, Plant Sci Letters, 1976, v.6, N 1, p.85-90.

353. Graham D. , Ilatch M.D. , Slack O.K., Smillie R.M. Light-induced formation of enzymes the 0^ -dicarboxylic acid pathway of photosynthesis in detached Leaves.- Phytochem., 1970, v.9,N 3,p.521-532.

354. Gracen V.B. , Hilliard J.H. , Brown R.H. Peripheral reticulumin cnioroplasts of plants differing in QQ^ fixation pathway and photorespiration. Planta, 1972, v.107,N 3, p. 189-204.

355. Greenway H. , Winter K. , Luttge U. Phosphoenolpyruvate carbo-xylace during development of crassulaceae acid metabolism and during a diurnal cycle in Mesembryanthenumcrystallinum. J.Exp.Bot. ,1978, v. 29,N 110, p. 547-559.

356. Gupta V.K., Anderson L.E. Light modulation of the activityof carbon metabolism enzymes in the Orassulacean Acid Metabolism plant Kalanchoe.- Plant Physiol.,1978,v.61, N 3,p.469-471.

357. Gutierrez. M. , Gracen V.E., Edwards G.S. Biochemical and cytologic al relationships in C^ plants. Planta,1974, v.119,N 4,p. 278-300.

358. Gutierrez M. , Kanai R., Huber 8.G. , Hu S.B., Edwards G.E.

359. Photosynthesis in mesophyll protoplast and sheath cells of various types of C^-plants.- Z.Pflanrenph. 1974, v. 72, N 4,p. 305-319.

360. Hall J.D., Barr R. , Al-Abbas A.H. , Crane F.L. Ihe ultrastructure of chloroplasts in mineral deficient maize leaves. Plant Physiol., 1972, v.50,N 3,p.404-409.

361. Haque D.R.,Sims T.L, Evidence fo Light-Stimulated Synthesis of Phosphoenolpyruvate carboxylase in Leaves of maize. -Plant Physiol.1980,v.66,H3,p.1029-1032

362. Hardy R. W. F. , Havelha U.D., Quelhedeaux B. Increasing crop productivity: the problem, strategies. spproach,and selected ratelimitations related to photosynthesis. —Proc. 4th Int.Congr. Photosynth., 1977.London, 197&,v. ,N , p. 695-719.

363. Hanscom Zac, ,111,Ting P.Physiological responses to irrigation in Opuntia basilaris. -Bngelm and Bigel. -Bot.Gaz,1977, vXcP.^2 , if)9lu7

364. Hatcn M.D»Slack O.R. Photosynthesis by sugar cane leaves. A new carboxylation reaction and the pathway of Sugar formation. Biochem.J.,1966, v.101 1,p.103-111.

365. Hatch M.D., Slack O.R. , Johnson Н.Б. i"utner studies on a new taphway of photosynthetic carbon dioxide fixation in sugar-cane and its occurence in other plant species. -Biochem. J. ,1967, v.102, N 2,p.417.

366. Hatch M.D. , Slack O.R. The participation of phosphoenolpyru-vate synthetase in photosyntnetic OOg fixation of tropical grasses. Arch.Biochem. Bioph.1967, v.120,N 1 ,p. 224 -225.

367. Hatcn M.D., Slack O.R. A new enzyme for the inter coirversion of pyruvare and phosphopyruvate and its role in the 0^ dicarboxylic acid pathway of photosynthesis. -Biochem. J.,1968,v.106,N 1,p.141-146.

368. Hatch M.D.,Slack O.R. Studies on the mechanism of activation of and inactivation of pyruvate phosphate dikinase. A possible regulatory role for the enzyme in the 0^ dicarbo-xylic acid pathway of photosynthesis. Biocnem. J., 1969a,v.112, N 5,p.549-558.

369. Hatch M.D., Slack O.R. NADP-specific malate dexydrogenaseand glycerate kinase in leaves and evidence for their location in chloroplasts. Biochem. Biophys. Res.Comm., 1969b, v.3^,N 5,p.5^9-593.

370. Hatch M.D. ,Slack O.R. , Bull T.A. Light-induced ohanges in the content of some enzymes of -dicarboxylic acid pathway of photosynthesis and its effect of other cnaracteristies of photosynthesis. -Phytochemistry, 1969, v.8,N 4,p.697-706.

371. Hatch M.D. , Slack O.R. , Sillie R.M. Ligh tiunduced formationof enzymes of the 0^ -dicarboxylic acid pathway of photoleavessynthesis in detached. -Phytochemistry, 1970, v.9, H 3, p. 521-532.

372. Hatch M.D. , Slack O.R. The 0^ carboxylic acid pathway of photosynthesis. InsProgress in phytocnemistry. London, Wiley-In berscience ,1970, ,p. 35-106.

373. Hatch M.D., Osmond O.B. , Slatyer R.0. ed. , Photosynthesis and Photorespiration. WLley-Interscience, New York-London-Sydney-Torento,1971

374. Hatch M.D. , The 0^ -pathway of photosynthesis .i3divemce for an intermediate pool of carbon dioxide and the identity of the donor C^ -dicarboxylic acid. -Biochem. J.,1971, v.125, N ,p.425-432.14

375. Hatch M.D. Synthesis of L-malate-4- 0 and determination of label in the C-4 carboxyl of L-malate. Analyt.Biochem., 1972,v.47,N 2,p.174-178.

376. Hatch M.D. Separation and properties of jkleaf asparate aminotransferase and alanine aminotransferase isoenzymes operative in the C^ pathway of photosynthesis. Arch.Bio-chem. Bioph., 1973,v.156,N 1,p. 207-214.

377. Hatch M.D. ,Kagawa T. Enzymes and functional capacities of mesophyll chloroplasts from plants with C^ -pathway of photosinthesis. Arch.Bioch.Biophys. ,1973,v.159, N 2, p. 812-853.

378. Hatch M.D. , Shaio-Lim Mau. Activity, location and role of aspartate aminotransferase and alanine aminotransferase isoenzymes in leaves with C^ pathway of photosynthesis. Arch.Bioch.Biophys.,1973, v.156,n 1,p.195-206.

379. Hatch M.D. ,Kagawa 33.NAD malic enzyme in leaves with C^ -pathway photosynthesis aud its role in C^ acid decarboxylation. Arch. Bioch.Bioph. ,1974, v. 160,N 2,p. 346-349.

380. Hatch M.D., Kagawa T. , Craig S. Subdivision of C^ -pathway species based on differing C^ acid decarboxylating systems and ultrastructural featires. Austr.J. Plant Phys. ,1975,v. 2, E 2,p. 111-1 28.

381. Hatch M.D. C^ -pathway photosynthesis in Portulaca oleracea and significance of alanine labelling. Planta,1975> v. 125,N 3, p. 273-281.

382. Hatch M.D., Osmond G.B. Compartmentation and trannsport in

383. C^ photosynthesis. -Transp.PIants Berlin ,1976, v. 3 , p.144-184.

384. Hatch M.D.,Mau Shaio Lim. Association of NADP and NAD-1inked malic enzyme activities in Zea mays: relation to G^ pathway photosynthesis. Arch.Bioch. Biophys.1977, v.179,N 2,p. 361-369.

385. Hatch M.D.,Oliver I.R. Activation and inactivation of phos-phoenolpyruvate carboxylase in leaf extracts from C^ species.- Austr. J.Plant Phys., 1978,v.5,N 5,p.571-580.

386. Hatch M.D.Regulation of enzymes in photosynthesis. -In: Current Topies cellular regulation. jSd.B.L.Horecker and S.R.Stadtman Academie Press,-.1978,v.14, .1 ,p.1-27.

387. Hattersley P.W. , Watson L. , Osmond G.B. In situ iminunofluo-rescent labelling of ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase in leaves of G^ and C^ plants. -Austral. J.Plant Physiol.,1977, v.4,N 4,p.523-539. '

388. Heidt H. W. , Rapley L.Specific transport of inorganic phosphate, 3-phosphoglycerate and dihydroxyaceatone phosphate and of dicarboxylates across the inner membrane of spinach chloroplasts. Febs Lett., 1970, v. 10,JÜ 3,p.143-148.

389. Heidt H. W., Sauer F. The inner membrane of the chloroplastenvelope as the site of specific metabolite transport.-Biochim et Biophys.Acta,1971,v.234, N 1,p.83-91.

390. Hesketh J., Moss D.N. Variation in the response of photosynthesis to light. Ibid., 19°3,v.3, N ,p.107-110.

391. Hesketh J. Enhancement of photosynthetic CO2 assimilation in the absence of oxygen, as dependent upon species and temperature. Planta, 1967, v.76, N 4,p. 371-374.

392. Hesketh J. Effect of light and temperature during plant growth on subsequent leaf GO2 assimilation rates under standart conditions. Aast. J.Biol.Sei. ,1968, v. 21, N ,p.235-241.

393. Hofstra J.J., Stienstra A.W. Growth and photosynthesis of closely related G^ and G^ grasses, as influenced by light intensity and water sypply. Acta Bot.Neer, 1977,v. 26, N 1,p. 63-7 2.

394. Hilliard J.H. , West S.H. Tne association of cnloroplast peripheral reticulum with low photorespiration rates in a photorespiring plants species. Planta (Berl),1971,v.99, IT 4,p. 352-356.

395. Hold.en M. Chloroplast pigments in plants with the C^ -dicar-boxylic acid pathway of photosynthesis. Photosynthe-tica,1973,v.7, N 1,p.41-49.

396. Horvath G. , Faludi-Daniel A. Accumulation of pigments in mesophyll and bundle-sheath chloroplasts of greening maize leaves.- Photosynthetica, 1972, v. 6, N 4,p.410-414.

397. Huang A. H.0., Beevers H. Microbody enzymes and carboxylasesin sequential extracts from C^ and G^ leaves. -Plant Phusiol. 1972, v. 50,N 2,p. 242-248.

398. Huber W*, de Pekette M.A. , Liegler H. Enzymes of starch metabolism in the chloroplasts of the bundle sheath and palisade cells of Zea mays. Planta, 1969,v.87,N 4, p.360-364.

399. Huber W. , Sankla N. Effect of gibberellic acid ion tne activities of photosynthetic enzymes and CO2 fixation products in leaves of Pennisetum typhoides seedlings. -Z. Pflanzenphysiol., 1974,bd.71,N 3,s.275-280.

400. Huber W., Sankhla N. pathway and regulation of the balance between C^ and G^ metabolism. In: Ecological studies. Analysis and Synthesis, Water and Plant Life.Eds. O.L.Lange, L.Kappen,E.D.Shulze, 1976,v.19, p.335-363.

401. Huber S.G. , Edwards G.E. Studies on the pathway of cyclie electron flow in mesophyll chloroplats of a C^ plant-Bio chem.et Biophys.Acta, 1976,v.449, N 3,p.420-433.

402. Huber S.C., Hall T.G. , Edwards G.E. Differential localization of fraction I protein between chloroplast types. -Plant Physiol., 1976, v.57, N u ,p.730-733.

403. Huber S.G. , Edwards G.E. Transport in C^ mesophyll chloroplasts. Characterization of the pyruvate carrier. Bio-chim. et biophys. acta, 1977a, v.462, N 3, p. 583-602.

404. Huber S.C. , Edwards G.E. Inhibition of NADP reduction and CO2 fixation by mesophyll chloroplasts of Pisum sativum and Hordeum vulgare by chloramphenicol. Plant Sci.Lett. 1977, v.9, N 1,p. 37-43.

405. Jacob J.L. , Bcimot L. , Prevot J.G. Phosphoenolpyruvate carboxylase of Hevea brasilientis. Physiol.PIant,1979, v.17,N 3,p. 501-516.

406. Johnson H.S. ,Hatch M.D. DistrxDutJ-on of the G^ -dicarboxylicacid pathway of photosynthesis and its occurence in dicotyledonous plants. Phytochem., 196b, v.7, N 3,p.375 -380.

407. Johnson H.S. , Hatch M.D. The -dicarboxylic acid pathway of photosynthesis. Identification of intermediates and profucts and quantitative evidence for the route of carbon flow. Biochem. J. ,1969, v.114,N 1,p. 127*-134.

408. Johnson H.S. NADP-malate dehydrogenase photo activation in leaves of plant with Calvin cycle photosynthesis. Biochem. Biophys. Res.Comm., 1971, v.43,N 4,p.703-709.

409. Jolchine G. Sur la distribution du C dans les molecules d*a14cide malique synthetisees par fixation de C0£ dans les fenilles de Bryophyllum daigremontianum. Berger. -Bul.de la Soc. Ghimie biol. ,1959, XDI,N 2-3, p. 227-234.

410. Jolivet E. Les differents modalites de carboxylation, cher les especes Gj et . -Physiol. Veg. ,1976,v.14, N 3,p. 563-594.

411. Jones R. , Wllkins M.B. , Coggins J.R. ,Pewsond Gh. A. , Mai coin A.

412. D.B.Phosphoenolpyruvate carboxylase from the crusulacean plant Bryophyllum fedtschenko. Hamet et Perrier: Purification, molecular and kinetic properties. -Biochem. J., 1978,v.175, N ,p.391-406.

413. Kagawa T.,Hatch M.D. G^ pathway of photosynthesis: mitochondria as a sity for C^ acid decarboxylation.- Plant Physiol. 1974. Ann. ,suppl.r.162.

414. Kagawa T. ,Hatch M.D. Ligb.t-depend.ent metabolism of carbon compounds by mesopbyll chloroplasts from plants with the C^ pathway of photosynthesis. Aust.J.PLant Physiol. ,1974, v.1 ,N 1,p.51-64.

415. Kagawa fJD., Hatch M.D. Mitochondria as a site of 0^ acid decarboxylation in 0^- pathway photosynthesis, -Arch.Bio-chem.Biophys.1975, v.167,N 2,p.687-696.

416. Eagawa T.,Hatch M.D.Regulation of 0^ photosynthesis: characterization of a protein factor mediating the activation and inactivation of NADP-malate dehydrogenase. Arch. Biochem. and Biophys. ,1977, v. 184,11 1,p. 290- 297.

417. Kamiya A. ,Miyachi S. Blue lightinduced formation of phospho-eno'lpyruvate carboxylase in colorless Chlorella mutant cells.- Plant and Gell Physiol., 1975,v.16, N 4,p.729-736.

418. Kanai R., Edwards G. E. Separation of mesophyll protoplastsand bundle sheath cells from maize leaves for photosyn-thetic studies.- Plant Physiol., 1973, v.51,N 6,p.1133-1137.

419. Kanai R. ,Edwards G.E. Purification of enzymabically isolated mesophyll protoplasts from 0^, 0^ and OAMplants using an aqueous dextran-polyethylene glycol two-phase system. Plant Physiol., 1973,v.52,H 5,p.4£4-490.

420. Kanai R., Edwards G.E. Enzymatic separation of mesophyll protoplasts sand bundle sheath cells from plants. Na-turwiss., 1973, v.60,N 3,p.157-158.

421. Kanai R. ,Kashiwagi M. Panicum milioides, a Gramineae plant having Kranz leaf anatomy without 0. photosynthesis.-Plant and Gsll Physiol., 1975, v.16,N 4,p.669-679.

422. Kaven D. , Haril E.Light-indused changes in the pattern of protein synthesis during the early stages of greening of etiolated maize leaves.- Plant Physiol., 1973,v.51, N p.671-676.

423. Kawashima N. , wildman S. G. Studies in fraction I protein.

424. Effect of crystallization of fraction i protein from tobacco Leaves on ribuloseoliphosphate carboxylase activity. Arm. Rev. Plant. Physiol. 1970, v. 21,p. 326-356.

425. Kay W. W. , Cameron M.J. Transport of 0^ -dicarboxylic acids in

426. Salmonella typhi murium. Arch.Bioch.Biophys. ,1978, v.190 N 1,p. 281-290.

427. Kelly G.J., Latzko E. ,(xLbbs M. Regulatory aspects of photo-synthetic carbon metabolism.- Annu. Plant Physiol. 1976, v. 27,N ,p. 181-205.

428. Kennedy R.A. ,Laetsch w.m. Relationship between leaf development and primary photo synthetic products in the C^ plant Portulaca oieracea L.- Planta (Berl),1973,v.115, N 2,p. 113-1 24.

429. Kennedy R.A. , Laetsch W.M. Plant species intermediate forphotosynthesis. Science, 1974,v.184, N 4141, p.1087-1089.

430. Kenneth L.G-. , Besrdsen M. 1?. , Oohen D. Cellular and ultrastructural changes in mesophyll and bundle sheath cells of maize in response to water stress. Plant Physiol., 1974, v. 54, N 2,p. 208-212.

431. Kenneth J.W.,Ellis R.J. Protein synthesis in chloroplasts 17.Polypeptides of the chloroplast envelope. Bioch. Biophys.Acta.1975, v. 378,N 1,p. 143-151.

432. Kerr M.W., Robertson A. Properties of phosphoenolpyruvate carboxylase isolated from maize leaves. Biochem. J. , 1971,v.125,N 2,p.34.

433. Keys A.I., Bird I. P., Cornelius M. J. , Lea P.J., Wallsgrove R.M.,MLflin B.J. Photorespiratory nitrogen cycle. -Nature,1978, v. 275,N 5682,p.74-1-743.

434. Khanna R. ,Sinha S.K. Change in the predominance from C^ to Cj pathway following authesis in Sorghum. Biochem.Bio-phys.Res. Commun. ,1973, v.52,N 1,p.121-124.

435. KLrchanski S. J. ,Park R.B. Comparative studies of the thy-lakoid proteins of mesophyll and bundle sheath plastids of Zea mays. Plant Physiol., 1976, v. 58, N 3,p.345-349.

436. K1 einkopf Gr.E. , Huffaker R. C. Matheson A.Light induced denovo synthesis of ribulose-1,5-diphosphate carboxylase in greening leaves of barley. Plant Physiol. 1970, v. 46,N 3 ,p. 416.-418.

437. Klob W. ,Kandler 0., Tanner W. Regulation of ribulose diphosphate formation in vivo by light. Plant Physiol. 1972,v.49,R 6,p.904-906.

438. Kluge M. , ELscher K. Über Zusammenhänge zwischen dem C02 Austrausch und der Abgabe von Wasserdampf durch Bryoph-yllum daigremontianum Berger. Planta, 1967, v.77,N 3, p. 212-223.

439. Kluge M., Osmond O.B. Pyruvate Pjdikinase in Orassulacean acid metabolism. Naturwlssensch., 1971, v. 58,N 8, p. 414-415

440. Kluge M. »Kriebitzsch 0., V&llert D.J. , Dark fixation of C02 in Orassulacean acid metabolism: are two carboxyla-tion steps involved ?-Z.Prlanzenph. , 1974, v.72, N 5, p.460-465.

441. Kluge M.,Bley L.,Schmid R. Malate synthesis in Orassulacean acid metabolism (GAM) via a double C02 fixation. -In:Environmental and Biological Control of photosynthesis. ,Bd.R.Marcelle, Dr.W.Junk B.K.Publ. La Hoye, 1975, p. 281-288.

442. Kluge M. Metabolism of organic acids. Progr. Bot. ,1976, v. 38, p. 100-107.

443. Kluge M. , Crassulacean acid metabolism (0AM): CO2 and water economy. Ecol.Stud., 1976, v. 19, N ,p. 313-322.

444. KLuge M., Oarbon and nitrogen metabolism under water stress. Ecol.Stud., 1976,v.19, N ,p. 243-252.

445. Kluge M. Is Sedum acre L. a GAM plant?- Oecologia, v.29, 1977, N 1,p.77-83.

446. Kluge M. Regulation of carbon dioxyde fixation in plants.-Integration Activ. Higher Plant. 31 st Symp.Soc.Experim. Biol., Durham., 1976, Cambridge, E.a. , 1977, p.155-177.

447. Kluge M. Ecological aspects of crassulacean acid metabolism (GM). Proc. 4th Int. Congr.Photosynth. , 1977. London, 1978,

448. Krause G.H. Changes in clorophyll fluorescence in reaction to light-dependent cation transfer across thylakoid. -Biochem.et Biophys. Acta, 1974, v.333,N ,p.30l.

449. Ku S.B. , Gutierrez M. , Kanai R. , Edwards G.E.Photo synthesis in mesophyll protoplasts and bundle sheath cells of various types of C^ plants. II. Chlorophyll and Bill reaction studies. Z.Pflanzenphysiol., 1973,bd.72, N , s.320-337.

450. Ku S.B., Edwards G.B. , Kauai R. /Distribution of enzymes related to and C^ pathway of photosynthesis between mesophyll and bundle sheath cells of Panicum hians and Panicum milioides. Plant and cell. Physiol., 1976, v.17, N 3,p. 615-620.

451. KU. 3.B., Biwards G.E. Photo synthetic efficiency of Panicumhians and Panicum milioides in relation to and plants. Plant and cell Physiol., 1978, v.19, N 4,p. 665-675.

452. KU M.S.B. , Schmitt M.R. Quantitative determination of Ru

453. BPcarbosylase-oxygenase protein in leaves of several C^ and plants. -J.Esp.Bot.,1979, v.30,N 114,p.89-98.

454. Laber L.J. ,Latzko B. , Gibbs. Photo synthetic path of carbon dioxide in spinach and corn leaves. J.Biol.Ghem.,1974, v. 249,N 11 ,p. 3436-3441.

455. Laetsch W.M.The C^ syndrome: a structural analysis. -Ann. He v. PI ant. Physiol. ,19 74, v. 25, V , p. 27-52.

456. Latzko B. , Gibbs M. , Lafer L., Neal D.O. tber den Weg des Kohlenstoffs zwischen Calvin- und Hatch-Slack-Cyclus.-Berl.Dtsch. Ges. ,1970,bd.83, N 9/10,s.433.

457. Latzko B. , Kelly G.J. , Graham J. Photosynthesis. Carbon metabolism. Fortschr.Bot., 1974,v.36, 1 p.77-89.

458. Lee S.H., Torack R.M. Aldehyole as iixative for Histochemical cal Study of Glutamic Oxaloacetic Transaminase. -Histo-chemie. 1968, v.12,N 2,p. 341-344.

459. Lee S.H.Ulfrastructural Localization of Glutamic Oxalacetic Transaminase Activity in Cardiac Muscle Slber and Cardiac Mitochondrial Impaction of the Rat. Histochemie. 1969,v.19,N 1,p.99-109.

460. Lee S.S., Travis J., Black C.C. Characterization of ferredo-xLn from nutsedge Cyperus rotundus L.and other species with a high photosyntnetic capacity. Arch.Bioch.Bio-phys. , 1970,v. 141 2,p.676-689.

461. Lerman J.C. , Dellens B. , Pato A., Moyse A. Variation in the carbon isotope composition of plant with crassulacean acid metabolism. Plant Physiol., 1974,v. 53,N 4,p.581-584.

462. Levi C. ,Perchorowicz J.T. , Gibbs M. Malate synthesis by dark carbon dioxide fixation in leaves. Plant Physiol., 1978, v. 61 4,p. 477-480.

463. Liu A.I., Black C.C. Glycolate metabolism in mesophyll cells and bundle sheath cells isolated from Crahgrass,

464. Digitaria sanguinalis (L.) Scop., leaves. Arch.Biochem. Biophys., 1972,v.149,N 1,p. 269-280.

465. Lioret G. , Moyse A. Acid metabolism.- In: Comparative biochemistry, ed.M.FLorkLn a.H.S.Mason, Acad.Press. , N.-Y.-I».1963,v. 5, ch. 3,p. 203-306.

466. Long S.P. , V/oolhouse H. W. The responses of net photosynthesis to vapour pressure deficit and C02 concentration in Spartina townsendii (sensu lato), a species from a cool temperate climate.- JVExp.Bot., 1978,v.29, N110, p.567-577.

467. Lorimer G.H. , Andrews T.J. , Tolbert N.E. ,1973. Ribulose diphosphate oxygenase, II Futher proof of reaction products and mechanism of action. Biochemistry., v.12,N 1, p.18.

468. Lowry O.H. ,Rosenbrough N.J. , Farr A.L. , Randall R.J.Protein measurement with the Folin phenol reagent. J.Biol. Chem. ,1951 ,v. 193,N 1,p. 265-275

469. Ludlow M.M. , Wilson G.L. Photosynthesis of tropical pasture plants.II. Temperature and illuminance history. -Austral. J.Biol.Sci. ,1971 ,v. 24,N 3,p. 1065-1075.

470. Ludlow M.M. Wilson G.L.Photosynthesis of tropical pasture plants. Illuminance, carbon dioxide concentration,leaf temperature and leaf-air vapour pressure difference.-Austral.J. Biol.Sci.,1971,v.24,N 3,p.449-470.

471. Ludlow M.M., Ng T.T.Effect of water deficit on carbon dioxide exchange and leaf elongation rate of Panicum maximum var. tricho glume.- Austral. J.Plant Physiol., 1976, v.3,N 3,p.401-413.

472. Ludlow M.M. ,Ng T.T. Photo synthetic light response curves ofleaves from controlled environment facilities, glasshouses or outdoors. Photosynthetica, 1976,v.10, IT 4, p. 457-462.

473. Luttge U. , Ball E. Mineral ion fluxes of acidified and de-acidified leaves of the GAM plant Bryophyllum daigremontianum. Z.Pflanzenphys., 1974,bd.73,N 4, s. 339-348.14

474. Luttge U. ,Ball E. C02 dark fixation in the halophytic species Mesembryanthemum crystallinum. Biochem. Bio-phys. Acta, 1974,v.343, N ,p.46>-468.

475. L"iittge U. ,Ball E.Proton and malate flux-es in cells of Bry-ophyllum daigremontianum leaf slices in relation to potential camotic pressure of the medium. Z.Pflansen-physiol. ,1974,bd,73,N 4,s. 326-338.

476. Luttge U. , Ball E. Concentration and PH dependence of malate efflux and indlux in leaf slices of CAM plants. Z. Pflanzenphysiol., 1977,bd.83,N 1,s.43-54.

477. Iiyttlefcon J.W.Studies of chloroplasts from Amaranthus and Maize after isolation in aqucos systems. In: Hatch

478. M.D. Osmond. G.B. , Slatyer R. 0. eds.Pho tosynthesis and Photorespiration. Interscience. New York, 1971, <• : p. 232-234.

479. Macrae A.R. Isolation and properties of a "malic" enzyme from cauliflower bud mitochondria. Biochem. J.1971, v. 122,N 4,p.495-501.

480. Macrae A.R. Malic enzym activity of plant mitochondria. -Phytochemistry,1971, v.10, IT 10,p.2343-2348.

481. Margulies M.M. Effect of chloramphenicol on light-dependent development with particular reference to development of photosynthetic activity. Plant Physiol., 1962,v. 37,N 4,p. 473-480.

482. Margulies M.M. Effect of chloramphenicol on light-dependent synthesis of proteins and enzymes of leaves and chlo-roplasts of Phaseolus vulgaris. Plant Physiol. , 1964,v. 39,N 4,p. 579-585

483. Margulies M.M. Relationship between red light mediated gly-ceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase foliation and light dependent development of photosynthesis. -Plant Physiol, 1965,v.40,N 1,p.57-61.

484. Marayama H., Easterday R.L.,Chang H.G., Lane M.D. The enzymatic carboxylation of phosphoenolpyruvate. I.Purification and properties of phosphoenolpyruvate carboxylase.- J .Biol. Onem. , 1960, v. 241 ,N , p.2405-2412.

485. Mathur D.D., Vines H.M. Photoperiod and thermoperiod effects of Crassulacean acid metabolism. Indian J.Plant Physiol. ,1976, v.19,N 1,p.47-52.

486. Mbalcu Sal a B. , Fritz G. J. , Bowes G. Photo synthetic and carbohydrate metabolism in isolated leaf cells of Digita-ria pentzii. Plant Pnysiol. , 1978, v.62,N 4,p.5l0-515

487. Medina E. , Delgado M. , Troughton J.H. , Medina J.D. Physiological ecology of GOg fixation in Bromeliaceae. -.£Lora, 1977,v. 166, N 2, p. 137-152.

488. Meinzer F, 0. , Rundel p. W. Crassulacean acid metabolism andwater use efficiency in Bcheveria pumila. Photosyn-thetica,1973,v.7,N p.356-364.

489. Miflin B.J. , Hageman R. H. Demonstration of phot ©phosphorylation by Maize chloroplasts. Plant Physiol. ,1963, v. 38,N 1,p. 66-70.

490. Milbum T.R., Pearson D.J. , Naegwe M.A.Crassulacean acid metabolism under nature tropical conditions. New Phy-tol, 1968,v.67, N p.837-897.

491. Miller K.R., Miller G.J., Mclntyre K.R. Organization of the photosynthetic membrane in maize mesophyll and bundle sheath chloroplasts. Biochem. Biophys.Acta,1977, v.459,N 2,p. 145-156.

492. Monteith J.J. Reassessment of maximum grouth rates for G^ and C^ crops. Exp.Agr. ,1978, v.14,N 1,p.1^5.

493. Mooney H.A. , Troughton J.H. , Berry J.A. Carbon isotope ratio measurements of succulent plants in southern Africa. Oecologia, 1977, v. 30,N 4,p. 295-305.

494. Moore P.D. When C^ plants do lest. Nature,1978, v.27 2, N 5652,p.400-401.

495. Morel G. , Celati G. , Queiroz 0. Sur le metabolisme acidedes crassulacees. V.Adaptation de la capacité enzyma-tique aux ch.angom.ents de photoperiode. Pnysiol. Veg. , 1972,v.10,N p.743-763.

496. Moradshahi A., Vines H.M., Black G.C. C02 exchange and acidity levels in detached pineapple, Ananas comosus (L.), Merr., leaves during the day et various temperatures, 02 and. 002 concentrations.- Plant Physiol., 1977,v. 59, N 2,p. 274-278.

497. Moss D.N., Rasmussen N.P.Gellular localisation of C02 fixation and translocation of metabolites. Plant Physiol. , 1969,v.44,N 7,p.1063-1068.

498. Moss D.N. , Krenzer E.G., Brun W.A. Carbon dioxide compensation points in related plant species. Science, 1969, v. 164,N , p. 187-188.

499. Moyse A., Les type métaboliques des plantes: C^et CAM.Comparaison avec les plantes G^, Physiol. Veget.,1978, v.14,N 3,p. 533-550.

500. Mukerji S.K. , Ting J.P. Malate dehydrogenase (decarboxyla-ting) (NAOP)isoenzymes of Opuntia stem tissue. Mitochondrial, chloroplasts and soluble forms. Biochem.Bi-ophys.Acta,1968, v.1b7,N 2,p.239- 249

501. Mukerji S.K., Ting J.P. Intracellular localization of C02 metabolism enzymes in Cactus phylloclades. Phytochemistry, v. 7,N 6,p.903-911.

502. Muker.ji S.K. , Ting J.P. Phosphoenol-pyruvate carboxylase isoenzymes. Separation and. properties of three forms cotton leaf tissue. Arch.Biochem., 1971,v.143, N 1, p. 297-317.

503. Mukeroi S.K.Cora leaf phosphoenolpyruvate carboxylases activation by magnesium ions.- Plant Science Lett.,1974, v. 2,N 4, p. 243-243.

504. Murata X., lyama J. Studies on photosynthesis of forage crops.II. Influence of air temperature upon the photosynthesis of some forage and grain crops.- Proc.Crop. Sci. Soc. 1963, Japan, v. 31 ,N ,p. 315-323.

505. Carboxylating enzymes in leaves of two lines of Sorghum vulgare cv.frumentaceum and their first generation hybrid. Photosynthetica, 1972,v.6,N 1,p.7-1 2.

506. ITeales T. F. Effect of hight temperature on the assimilation of carbon dioxide by mature pineapple plants Ananas com' osus (L. ) Merr. Austral.J.Biol.Sci. ,1973, v. 20,N 3, p. 539-546.

507. Neales T. P. , The effect of night temperature on C02 assimilation, tr anspi rati on, and water use efficiency in Agave americana L. Australian J.Biol.Sci. , v. 26,N,5 ,p.705-714.

508. Nutbeam A.R. , Duffus C.M. , Evidence for C — photosynthesis4in barley pericarp tissue. Biochem. Biophys. Res.Gom-muns. ,1976,v.70,N 4,p. 1198-1203.

509. Osmond C.B.C^ photosynthesis in the Chenopodiaceae. -Pflanzenphysiol. ,1970,v.62,N 2 ,p.129-132.

510. Osmond C.B. , Greenway H. Salt responses of carbon carboxyla-tion enzymes from species differing in salt tolerance. -Plant Physiol., 1972,v.49,N 2, p. 260-263.

511. Osmond C.B. , Bender M.M. , Bwiris R.H. Pathways of C0p fixation in the GAM plant Kalanchoe daigremontiana. III.1 3

512. Correlation with C value during growth and water stress. Austral. J.Plant Physiol., 1976,v.3,N 6, p. 155-162.

513. Park R., Epstein S. Carbon isotope fractionation duringphotosynthesis. -Geochim.Acta,1960, v. 21 ,N 1-2,p.110-126.

514. Papadimitriou J.M.,Van Duyn P. Effects of fixation and substrate protection on the isoenzymes of gspartate aminotransfe rase studies.-J.Cell Biol.1970,v.47,ÏÏ 1,p.71-83

515. Pearcy R.W., Troughton J. C^ photosynthesis in tree form Euphorbia species from Hawaiian rainforest sites. -Plant Phys., 1975, v. 55,N 6,p.1054.

516. Photosynthesis and photorespiration. Ms.Hatch M.D. , Osmond C.B., Slatyer R.O. , 1971, ,p.225.

517. Piatt S.G. , Plaut Z. , Baasham. J.A. Ammonia regulation of carbon metabolism in photosynthesizing leaf discs. -Plant Physiol., 1977 ,v. 60,N 5, P. 739-74-2.

518. Poincelot R.P. Differences in lipiol Gomposition between Undifferentiated and nature maize chloroplasts. PL ant Physiol. ,1973, v. 51 ,N 6, v. 802-804.

519. Poincelot R.P.Isolation of envelope membrans from bundle sheath chloroplasts of maize. Plant Physiol.,1977, v.60,N 5,P.767 -770.

520. Polya G.M.,Osmond C.B. Photophosphorilation by mesophyll and bundle sheas chloroplasts of G^ plants. Plant Physiol., 1972,v.49,N 2,p.267-269.

521. Quebedeaux B., Chollet R. Comparative growth analysis of Panicum species with differing rates of photorespiration. Plant Physiol., 1977, v. 59, N 1, p. 42-44.

522. Queiroz O.Sur le metàbolisme acide des crassulacees. III.

523. Variations d*activité enzymatique sous Inaction du photoperiodisme et du thermoperiodisme.- Physiol.ver get. ,1968,v.6,N 2,p.117-136.

524. Queiroz 0. Oircadian rhythms and metabolic patterns. -Ann. Rev. PI ant Phys. ,1974, v. 25,. p.115-134.

525. Queiroz 0., Morel C.Photoperiodism and enzyme activity. Towards a model for the control of circadian metabolic rhythms in the crassulacean acid metabolism. Plant Phys. ,1974,v. 53,N 4,p. 596-602.

526. Queiroz 0. Rythmes circadiensï facteurs organisation du fonctionnement enzymatique dans le systeme CAM. Physiol.1976, v.14,N 5,p.629-639.

527. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Distribution of the 0^ dicarboxylic acid pathway of photosynthesis in local monocotyledonous plants and. its taxjonomic significance. -New.phytol. ,1976,v. 76,IT 2 , p. 301-305.

528. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Diversity in the biochemical and biophysical characteristics of 0^ dicotyledonous plants. Indian J.Plant Physiol., 1976, v.19,N 1, p.101-11 2.

529. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Endogenous pho^phosphorylation by mesophyll and bundle sheath chloroplasts from Setaiia italica and Amaranthus paniculatus. Ann.Bot. , 1977,V.41,N 173,P.667-669.

530. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Light-induced development of photosynthetic enzymes in etiolated detached leaves of Oryza sativa and Setaria italica during grening.1.dian J.Biochem. and Biophys. ,1977, v. 14,N 3,p. 272-274.14

531. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Light-enhanced dark GO2 fixation by leaves in relation to the 0^ decarboxylic acid pathway of photosynthesis. Austral.J.Plant Physiol. ,1977, v.4,N 5,P-833-841.

532. Raghavendra A.S., Das V.S.R. Aspartate-dependent alanine production by leaf disces of Amaranthus paniculatus, an aspartate utilizing NAD-malic enzyme type 0^ plant. -New Phytol. ,1977,v.79,N 3,p.481-487.

533. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Effect of light quality on photosynthetic carbon metabolism in C^ and 0^ plants: rapid movements of photosynthetic intermediates between mesophyll and bundle sheath cells. —J.Exp.Bot.,1977, v.28,H 106,p.1169-1179.

534. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Purification and properties of phosphoenolpyruvate and ribulose diphosphate carboxylases from G^ and C^ plants. Z.Pflanzenphysiol., 1977 ,bd,82,N°4,p. 31 5-321.

535. Reghavendra A.S.,Das V.S.R. Comparative studies on C^ and C^ photosynthetic systems. Effect of metabolic inhibitors and biochemical intermediates on carbon metabolism. -Z.Pflanzenphysiol., 1977,v.85,N 1,p.9-16.

536. Raghavendra A.S.,Das V.S.R. Photochemical characteristics of mesophyll and bundle sheath chloroplasts from C^ plants. -Ehysiol.plant. ,197d,v.43,N 2,p.107-113.

537. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Development of photochemical activities in mesophyll and bundle sheath chloroplasts of C^ and C^ plants during seedling growth. Plant Sci.Lett. ,1973, v. 12,N 3-4,p. 355-360.

538. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Photosyntnebic carbon metabolism in leaves of C^ and C^ - plants: a detailed comparative study.- Z.Pflanzenphysiol., 1978,v.87,N 4,p. 297-311.

539. Raghavendra A.S. , Das V.S.R. Comparative studies on C^ and C^ photosyntnetic systems: enzyme levels in the leavesand tneir distribution in mesophyll and bundle sheath cells. Z.Pflanzenphysiol., 1978, v.87,N 5,P-379- 393.

540. Raghavendra A.3. , Das V.S.R. Pno to chemical activities of chloroplasts isolated from plants with the G^ -pathway of photosynthesis and from plants with the Oalvin cycle. Z.Pflanzenphysiol.,1978,v.88,N 1,p.1-11.

541. Raghavendra A.S., Das V.S.R. (Na+-K+)- stimulated ATP-ase in leaves of C^ plants: possible involvement in active transport of C^ acids.- JVExp.Bot. , 1978, v.29,N 108, p.39-48.

542. Raghavendra A.S. ,Rajendrudu G. ,Das V.S.R. Simultaneous occurence of and photosynthesis in relation to leaf position in Mollugo nudicaulis. -Nature,1978,v.273,1. N 5658,p. 14-3-144.

543. Ramachandra A.R. , Das V.S.R. The dicarboxylating systems in fourthen taxa exhibiting 0AM pathway.- Z.Pflanzenphysiol. 1978, v. 86,N 2,p.141-146.

544. Randall A.S. , Thornbery J. Philip, iiscus 3dwin L. Water stress effects on the content and organization of chlo-rohyll in mesophyll and bundle sheath chloroplasts of maize. Plant Physiol., 1977,v.59, N 3,p.351-353.

545. Ranson S.L., Thomas M. Orassulacean acid metabolism. -Ann. Rev.of Plant Physiol., 1960,v.11,N ,p.81-110.

546. Rathnam G.K.M.,Das V.S.R. Aspartate-type C^ photosynthetic carbon metabolism in leaves of ¿¡leusine coracana Gaer-tn.- Z.Pflanzenphysiol., 1975,v.74,N 5, p. 377-393.

547. Ratnnam G.K.M., Das V.S.R. Inter- and intracellular distribution of carbonic anhydrase, PiSP-carboxylase and

548. RudP-carboxylase in leaves of SLeusine coracana,a C^ -plant. Z.Pflanzenphysiol., 1975, v.75»N p.360-364.

549. Rathnam O.K.M., Edwards G.E.Intracellular localization of certain photosynthetic enzymes in bundle sheath cells of plants possessing the 0^ pathway of photosynthesis. -Arch.Biochem.Biophys. , 1975,v. 171,IT 1,p. 214-225.

550. Rathnam K.M. , Edwards G.E. , 1977-C^ -Dicarboxylic acid metabolism in bundlsheath chloroplasts,mitochondria and strands of Eriochloa borumensis Hack. , a phosphoenolpy-ruvate-carboxykinase type C^ species. Planta,v. 133,N 2, p. 135-1

551. Rathnam O.K.M. , Evidence for reassimilation of COg released from acids by PEP-carboxylase in leaves of C^ plants. FEBS-Lett. ,1977,v. 82,N 2,p. 288-292.

552. Rathnam C.K.M. , Mwards G.E. Use of inhibitors to distinguish between G^ acid decarboxylation mechanisms in bundle sheath cells of plants.Plant and cell Physiol., 1977, v.18,N 5,p.963-968.

553. Rathnam O.K.M., Edwards G.E.acid decarboxylation and 002 donation to photosynthesis in bundle sheath strands and chloroplasts from species representing three groups of G^ plants. Arch.Biochem.and Biophys., 1977,v.182,N 1,p.1-13.

554. Rathnam G.K.M. G^ photosynthesis: the path of carbon in bundle sheath cells. Sci.Progr., 1978,v.65,N 260,p.409-435

555. Rathnam C.K.M. , Metabolic regulation of carbon flux during C^ photosynthesis. I.Evidence for parallel GOg fixation by mesophyll and bundle sheath cells in situ. Z.Pflanzenphysiol. , 1978, v.87,IT 1,p.65-34.

556. Rathnam G.K.M., Heat inactivation of leaf phosphoenolpyruvate carboxylase: protection by aspartate and malate in C4 plants. Planta, 1978, v. 141,IT 3,p. 289-295

557. Rathnam C.K.M. Metabolic regulation of carbon flux during photosynthesis. XI. In situ evidence for refixationof photorepiratory CO2 by phosphoenolpyruvate carboxylase. Planta,1979»v.145,N 1,p.13-24.

558. Rathnam C.K.M., Choilet R. Phosphoenolpyruvate carboxylase reduced photorespiration in Panicum milioides, a C^ -C^ intermediate species. Arch. Biochem.Biophys., 1979»v.193,N 2,p.346-354.

559. Ray T.B., Black C.C. Inhibition of oxalacetate decarboxylation during C^ photosynthesis by 3-mercaptopicolinic acid. J.Biol.Chem. ,1976,v. 251 ,N 18,p. 5824-5826.

560. Ray T.B., Black C.C.Oxaloacetate as the cource of carbon dioxide for photosynthesis in bundle sheath cells of the C^ species Panicum maximum. Plant Physiol.,1977, v. 60,N 2,p.193-196.

561. Reger J. ,Iates J. 33. Distribution of photo synthetic enzymes between mesophyll, specialized parenchyma and bundle sheath cells of Arundinella hix'ta.- Plant; Physiol., 1979,v.63,N 1,p. 209-212.

562. Reibach P.H. , Benedict C.R. fractionation of stable carbon isotopes by phosphoenolpyruvate carboxylase from C^ plants. Plant Physiol. ,1977 ,v. 59,N 4,p. 564-568.

563. Reitmann S., Krankel S. A colorimetric method for the determination of serum glutamic oxalacetic and glutamic pyruvic transaminases.- Amer. J. Clin.Path. ,1957, v. 28,N 1,p.56-63.

564. Repo E. , Hatch. M.D. Photosynthesis in Gomophrena celosioi-des and its classification amongst -pathway plants. Austral. J. PL ant Physiol., 1976, v. 3,U 6,p. 863-876.

565. Rhoades M.M. , Carvalho A. Tne function and structure of the parenhyme sheath plastids of the maize leaf. Bull.Tor-rey Bot.Olub, 1944,v.75,N ,p.335-346.

566. Robards A.W. Plasmodesmata. Ann.Rev.Plant Physiol. ,1975» v. 26, ,p.13-29.

567. Rogbard D., Chrambach A.»Quantitative polyacrilamide gel electrophoresis mathematical and statistical analyses of date.In: -Electrophoresis and isoelectrofocusing in polyacrilamide,1974, ,p. 28-62.

568. Rosado-Alberio J.,Weier T.E. Ultrastruetural studies of isolated Zea mays L.chloroplasts. Protoplasma, 1968,v.60,1. N 1-2,p. 27-34.

569. Rosado- Alberio J.,Weier T.E. , Stocking O.R. Continuity of the chloroplast membrane system in Zea mays L.Plant Physiol. , 1968, v.43,N 9,p. 1325-1331.

570. Rouhani J., Vines H.M. , Black C.C. , Xr. Isolation of mesophyll cells from Sedum telephium leaves. Plant Physiol., 1973, v. 51,N 1,p.97-103.

571. Saha S., Ovitrakul R. , Isawa S., Good N.B. Electron transport and photophosphorylation in chloroplasts as a function of the electron acceptors. Biol. Ghem. 1971,v. 24-6, N 10,p.3204-3209.

572. Salin M.L., Black 0.0. 3-Phosp ho glyceric acid as a hill osi-dan without 00^ fixation, in mesophyll cell isolated from DigLtaria sanguinalis (L.) scop., a C^ plant.Plant Sci.Lett. , 1974, v. 2,N 5,p. 303-308.

573. Saltman P., Kunitake G. , Spolter H. , Stitts G. The dark fixation of GO2 by succulent leaves: the first products. Plant Physiol., 1956,v.31,N 6,p.464-468.

574. Sal tm an P., Lynch V.H. , Kinitake G.M. , Stitt G. , Spolter H.

575. The dark fixation of OO2 "by succulent leaves: metabolic changes subsequent to initial fixation. Plant Physiol., 1957,v. 32,N 3,p.197-200.

576. Samekima M. , Miyachi S. Photosynthetic and light-enhanced14dark fixation of 002 from the ambient atmosphere and 14

577. G-bicarbonate infiltrated through vasculal bundles in maize leaves.Plant and Cell. Physiol., 1978,v.19,N 6, p.907-916.

578. Sankhla N. , Huber W. Regulation of balance between C^ and pat way. Role of abscisic acid. Z.Pflanzenphysiol. , 1975,v.74-,N 3,p. 267-271.

579. Sayre R. T. , Kennedy R.A. , Pringhitz D.J. Photosynthetic enzyme activities and localization in Mollugo verticilla-ta populations differing in the levels of G^ and C^cyc-le operation. Plant Physiol., 1974, v. 64,N 2,p. 293-299.

580. Sayre R. T. , Kennedy R.A. Ecotypic differences in tileand C^ photo synthetic activity in Mollugo verticillata, a intermediate. Planta,1977, v.134,N 3,p. 257- 262.

581. Scandalios J. G.Isoenzymes in development and differentiation. Ann. Rev. Plant Physiol., 1974, v. 25, 7 p. 225-258.

582. Scheibe R., Beck E. Formation of dicarboxylic acids by intact spinach chloroplasts. Planta,1975, v. 125, N 1, p.63-67.

583. Schoch E., Kramer D. Correlation of characteristics of C^ -photosyntnesis within different orders of Angiosperms. PI an ta, 1971, v.101,N 1,p. 51-66.

584. Selwyn M.J.,Temperature and photosynthesis. II. A mechanism for the effects of temperature on carbon dioxide fixation. Biochem. Biophys. Acta, 1966,v.126,N 2,p.214-224.

585. Servaites J.C. , Schrader L.S. , Biwards G.E. GLycolate synthesis in a C^, C^ and intermediate photosynthetic plant type.Plant and cell Physiol., 1978, v.19,N 8, p.1399-1405.

586. Shomer-Ilan A., Waisel X. The effect of sodium chloride onthe balance between the C^ -and C^ carbon fixation pathways. Physiol. PL ant. , 1974,v.29,N 2,p.190-193.

587. Shomer-Ilan A., Beer S., Waisel X. Suacola monoica, a C^ plant without typical bundle sheaths. Plant Physiol., 1975, v. 56,N 4,p. 676-679.

588. Sinclair T. P. , Goudriaan J., It C. T. Mesophyll resistanceand C0£ compensation concentration in leaf photosynthesis models. Photosynthetica, 1977,v.11,N 1,p.56-65.

589. Singh. T.N. , Asp in all D. , Paleg L. G. , Boggess S.F. Stress metabolism. II. Changes in proline concentration in excised plant tissue. Australian J. Biol.Sci., 1973, v. 26, N 1,p. 57-63.

590. Slack C.R., Hatch M.D. Comparative studies on the activity of carboxylases and other enzymes in relation to the new pathway of photosyntnetic carbon dioxide fixation in tropical grasses. Biochem. J. 1967, v.103,N 3, p.660 -665.

591. Slack C.R. The photoactivation of a phosphoenolpyruvate synthase in leaves of Amaranthus palmeri. Biochem. Biophys. Res.Comm., 1968, v.30,N 5, p.483-488.

592. Slack C.R.Localisation of certain photosynthetic enzymes in mesophyll and parenchyma shesth chloroplasts of maize and Amaranthus palmeri. Phytochemistry, 1969, v.8, N 8, p.1387.

593. Slack C.R. , Hatch M.D. , Goodchild D.J. Distribution of enzymes in mesophyll and parenchyma-sheath chloroplasts of maize leaves in relation to the G^ dicarboxylic acid pathway of photosynthesis. Biocnem. J., 1969,v.114,N 3, p. 489-500.

594. Smillie R.M., Andersen S.K., Bishop D.G. Plastocyanindependent photoreduction of ItADP by agranal chloroplasts from maize. Pebs letters., 1971, v. 13, N 6,p. 318-320.

595. Smillie R.M. , Andersen K.S. , Tobin W. P. , Entsch B. , Bishop D.G. Nicotinamide adenine dinucleotide phosphate photoreduction from water by agranal chloroplasts isolated from bundle sheath cells pf maize. Plant Physiol,1972,v.49, N 4,p.471-47513 12

596. Smith B.N. , Epstein S. Two categories of J0/ 0 ratiosfor higher plants. Plant Physiol., 1971, v.47,N 2,p.380 -384.

597. Smith В.Ы. , Robbins M.J. Evolution of photosynthesis: an13 12assessment based on JG/ 0 ratios and Kranz anatomy. Proc.3rd Int.Congr. Photosynth., Rehovot, 1974,v.2,Amsterdam e. a. , 1971, v. о p.1579-1587

598. Smith B.N., Oliver J., McMillan 0. Influence of carbon source, oxygen concentration, light intensity, and tempe-13 12rature on 0/ 0 ratios in plant tissues. Bot. Guz., 1976, v.137,N 2,p.99-104.

599. Spalding M.H., Edwards G.E. Photosyntnesis in enzymatically isolated leaf cells from the CAM plant Sedum telephium L.Planta,1978, V.141,N 1,p.59-63.

600. Spalding M.H., Shmitt M.R., Ku S.B., Edwards GrE. Intracellular Localization of some Key Enzymes of Crassulacean Acid Metabolism in Sedum praealtum. Plant Physiol.,1979, v.63, N5 ,p.738-743.

601. Spanswick R.M. Symplastic transport in plants. In: Transport at the cellular level (symposia of the Society of E:xperiment Botany) v. XXVIII, London, Cambridge University Press, 1974, ,p.127-137.

602. Sprey В., Laetsch W.M. Structural studies of peripheral reticulum in C^ plant chloroplasts of Portulaca olegaceae L.Z.manzenphysiol,1978, v.87,N 1,p. 37-54.

603. G labeled assimilate and photosynthesis in 0^ and C^ species.Crop.Sci. ,1976,v.16,N 2,p. 285-288.

604. Sue E. P. , Newcomb E.H. Ultras truc ture and distribution of microbodies in leaves of Grasses with and without CJO2-p ho tore spi rati on. Planta,1971, v. 96 ,N 2 ,p. 152-174.

605. Sugiyama I., Akazawa T. Ribulose 1,5-diphosphate carboxylase pf Ribodopseudomonas spheroides. Biochem. Biophys. Res. Commun, 1968,v.31, N 6,p.856-861.

606. Sugiyama T. Purification, molecular and catolytic properties of pyruvate phosphate dikinase from the maize leaf. Biochemistry,1973,v. 12,N ,p. 2862-2868.

607. Sutton B.G. , Osmond G.B. Dark fixation of by Grassulacean plants. Plant Physiol., v. 50,N 3,p. 360-365.

608. Sutton B.G.Glycolisis in GAM plants. Austral, J.Plant Physiol., 1975,v.2,N 3,p.389-402.

609. Sutton B.G. The path of carbon in GAM plants at night. Austral. J.Plant Physiol., 1975, v. 2,N 3,p. 377-387.

610. Szarek S.R. , Johnson H.B. , Ting I.P. Drought adaptation in

611. Szarek S.H. , Ting I.P. The occurrence of crassulacean acid metabolism among plants. Photosynthetica, 1977,v.11,N3, p. 330-342.

612. Taylor A. 0. , Rowley J.A. Plants under climatic stress. I.1.w temperature, high light effects on photosynthesis. Plant Physiol. , v. 47 ,N 5,p.713-718.

613. Teeri J. A., Patterson D. T. , Alberte R.3. , Castleberry R.M.

614. Changes in the photosynthetic apparatus of maize in response to simulated natural temperature fluctuations. Plant Physiol., 1977,v.60,N 3,p.370-373.

615. Ting I.P. , Johnson H.B. , Szarek 3.R. Net C02 fixation incrassulacean acid metabolism plants. In: 0.0.Black,ed., Net carbon dioxide assimilation in higher plants. Cotton Inc., North Carolina, 1971, p.26-53.

616. Ting I.P. , Osmond G.B. Photosynthetic PfiP carboxylase characteristics of alloenzymes from leaves of C^ and C^ plants. Plant Physiol., 1973a, v. 51 ,N 3,p.439-447.

617. Ting I.P. , Osmond G.B. Multiple forms of plant phosphoenolpyruvate carboxylase associated with different metabolic pathways. Plant Physiol., 1973b, v. 51 ,N 3, p. 448-453.

618. Ting I.P. Malate dehydrogenase and other enzymes ofacid metabolism in marine plants. Austr.J.Plant Physiol. ,1976,v. 3 , N 1,p.121-127.

619. Ting I.P. , Hanscom Z. Induction of acid metabolism in Por-tulacaria afra. Plant Physiol., 1977,v.59,N 3,p.5H-514.

620. Thomas M. , Ranson S.L. Physiological studies on acid metabolism in green plants. III.Futher evidence of CO2 fixation during dark acidification of plants showing cra-ssulacean acid metabolism. New Phytol.,1954,v.53,N 1, p.1-30.

621. Thomas S.M. , Long S.P. C^ photosynthesis in Spartina townsendii at low and high temperatures. Pi ant a, 1978 ,v.142, N 2,p.171-174.

622. Treharne K.J., Gooper J.P. Effect of temperature on the ak-tivity of carboxylases in tropical and temperate grami-nceae. J.Exp.Bot. ,1969, v. 20,N 62,p. 170-173.

623. Ann.Rept.Dir.Dep.Plant Biol., 1973-1974. Wasctngton, D.O. ,1974,v7£ p. 812^816.

624. Troughton J.H. , Card K.A. Temperature effects on the carbon-isotope ratio of and. crassulacean-acid-metabo-lism(CAM) plants. Planta, 1975, v. 123, N 2,p. 18^-190.

625. Usuda H. , Matsushima H. , Miyachi S. Assimilation of carbon dioxide in mesophyll chloroplasts and bundle sheath strands mechanically isolated from com leaves. Plant and Cell Physiol., 1974, v.15,N 3,p.517-526.

626. Usuda H. , Kanai R. , Miyachi S. Carbon dioxide assimilation and photosystem II deficiency in bundle ¡sheath, strands isolated from C^ plants. Plant and Cell Physiol.,1975, v.16,N 3,p.485-494.

627. Vaklinova S., Gushchina L. Effect of nitrate and. ammonianitrogen on carboanhydrase activity in plants with C^ and C^ type fixation of C02. Докл. Болг. АН, .1975» v. 28,N 3,p. 399-402.

628. Vaklinova S., Popova L. , Dimitrova 0. On the pathway in

629. Zea maize, the participation of ferrodoxine in the C02 reduction and activity of malic enzyme. Докл.Болг. AH, 1976,v.29,N 5,p.705-708.

630. Vaklinova S. , Vasileva V. , Pedina I. , Tsenova E. ,Vunkova R. ,

631. Gushchina L. Changes in the activity of certain enzymes of photosynthesis and photorespiration under the influence of ammonia and nitrate nitrogen in barley seedlings.- Докл. Болг. АН, 1976,v. 29,N б,p. 869-872.

632. Vernon L.P. Spectrophotometry determination of chlorophyllsand pheophytins in plants extracts. Anal.Chem. , 1960, v. 32,N 9,p. 1144-1150.

633. Vidal J., Cavalic G. Mise en evidence de formes isofonction-neles de la PEP carboxylase chez Phaseolus vulgaris L. , Physiol. Veg., 1974,v.12,N 1,p.175-188.

634. Vidal J., Gadal P. Mise en evidence d4une activité malatedehydrogenase dépendante du NADPH, non stimulee par le dithiothreitol dans les femlles et les racines de Phaseolus vulgaris L. Z.Comptes Rendus Acad.Sci. ,ser.D. , 1976, v. 283,N 4,p. 345-348.

635. Vidal J. , Gerald С., Piere G. Etude de la phosphoenolpyruvate carboxylase du haricot et du sorgho par electropho-rase sur gel de polyacrylamide. Plant Sci.lette,1976, v.7,N 4,p. 265-270.

636. Vid.al J., Gadal P., Cavalie G. Cailliau-Commanay L.NADHand NADPH. dependent malate dehydrogenases of Phaseolus vulgaris. Piiysiol.plant, 1977, v. 39,N 2,p. 190-195.

637. Vidal J., Gadal P. Evidence for de novo synthesis of nicotin-amide-adenin dinucleotide phosphate malate dehydrogenase during greening of corn leaves. Physiol.veg., 1981, v.19, N 4, p.483-489.

638. Walker G.H. , Izawa S. Photo synthetic electron transport inisolated maize bundle sheath cells. Plant Physiol.,1979, v.63,N 1,p.133-138.

639. Walker D.A. Physiological studies on acid metabolism.IV.

640. Phosphoenolpyruvic carboxylase activity in extracts of crassulacean plants. Biochem.J.,1957,v.67,N 1,p.73-79.

641. Weber D. J. , Anderson W.R. , Hess S. , Hansen D.X. , Gunasekaran M.Ribulose- 1,5 -bisphosphate carboxylase from plants adapted to extreme environments. Plant and Gell Physiol., 1977,v.18,N 3,p.693-699.

642. Welkie T. W. , Caldwel M. Leaf anatomy of species in some dicatyledon families as related to the and pathways of carbon fixation. Can. J.Bot.1970, v.48,N 12,p. 21-35.

643. Whelan T. , Sackett W.M. , Benedict C.R. Oarbon isotope discrimitation in a plant possessing the C^ dicarboxylic acid pathway. Biochem. Biophys.Res.Communs.1970,v.41,1. N 5 ,p.1205-1210

644. Whelan T.,Sachett i/V.M. , Benedict C.R. Enzymatic fractionation of carbon isotopes by phosphoenolpyruvate carboxylase from C^ plants. Plant Physiol., 1973,v.51,N 6, p.1051-1054.

645. Willert D.J., Kramer D. Feinstruktur und Crassulacean -Saure stoff'Wechsel in Blattern von Mesembryanthemum crystal -linum Wahrend natürlicher und NACE-induzierter Alterung. -Planta, 1972, v. 107,N 2,p. 227-237.

646. Willert D.J. , Kluge M. Studies on malate fluxes in leaf slices of Bryopnyllum daigremontianum. Verapamil enhanced efflux aut of the vacuole. Plant Science Litters.,1973, v.1,H£ ,p. 391-397.

647. Willert 3>. J. Die Bedeutung des anorganischen Phosphats fürdie Regulation der Phosphoenolpyruvat Carboxylase von Mesembryanthemum crystallinum L.Planta, 1975,v.122,N 3, p. 273-280.

648. Willert D. J. , Treichel S. , Kirs b G. 0. , Curdts E. Environmentally controlled, changes of phosphoenolpyruvate carboxylases in Mesembryanthemum. Phytochemistry,1976, v. 15,N 10,p.1435-1436.

649. Willert D.J., Thomas D.A. ,Lobin w. , Gurdta E.Ecophysiologic investigations in the family of the Mesembryanthe-maceae. Occurrence of a GAM and ion content.Oncologia, 1977,v. 29,N 1,p.67-76.

650. Willert D.J. Vorkommen und Regulation des GAM dei Mittagsblumengewachen (Mesembryanthemaceae).Ber.Deutch.Bot. Ges.1979, v.92,N 1,p.133-144.

651. Williams G. Photo synthetic afaptation to temperature in 0^and G^ grasses. A possible ecological role in the shor-tgrass prairie.Plant Pnysiol. ,1974,v. 54,N 5,p.709-711.

652. Williams L.E. , Kennedy R.A. Relationship between early photosynthetic products,photorespiration and stage of leaf development in Lea mays. Z.Pflanzenphysiol,1977,v.81, N 4,p. 314-322.

653. Williams L.E., Kennedy R.A. Photo synthetic carbon metabolism during leaf ontogeny in Lea mays Li enzyme studies. PLanta, 1978,bd. 142,N 3,s. 269-274.

654. Willmer C.M.,Pallas J.E.Jr.,Black G.G.Garbon dioxide metabolism in leaf epidermal tissue. Plant Physiol.,1973, v. 52,N 5,p. 448-452.

655. Winter K. Evidence for the sighificance of crassulacean acid metabolism as an adaptive mechanism to water stress. Plant Science Letters, 1974, v. 3,Nb ,p. 279-281.

656. Winter K. ,L"iibtge U. Malate accumulation in leaf slices of

657. Mesembryanthemum crystallinum in relation to osmoticgradients between the cells and the medium. Aust.r.J. PL ant; Physiol. ,1976, v. 3,N 5,P-653-653.

658. Vti.nter J.,Kandler 0. Misleading date on isotope distributi14on in malate 0 from CAM plants caused by fumarase activity of Lactobacillus plantarum. Z.Pflanzenphysiol. , 1976,v.78,N 1,p.193-112.

659. Vfi.nter K. ,Liittge U. Balance between and CAM pathway of photosynthesis. Bool.Stud.,1976,v.19, p. 323-334.

660. Winter K.,Kramer D.,Troughton J.H.,Card K.A.,Pischer K. ,

661. C^ pathway of photosynthesis in a member of the Polygo-naceae: Calligonum persicum (Boiss.Buhse) Boiss.Z.Pflanzenphysiol. ,1977, v. 81 ,N 4,p. 341-346. 775« Winter K. ,Troughton J.H. Carbon assimilation pathways in

662. Mesembryanthemum nodiflorum L.under natural conditions. Z.Pf 1 anzenphysiol. ,1978,v.88,IT 2,p.153-162.

663. Winter K. ,Liittge U. , Winter J3. , Troughton J.H. Seasonal shift from Gj photosynthesis to crassulacean acid metabolism in Mesembryanthemum crystallinum growing in its natural environment. Oecologia,1978, v. 34,N 2,p. 225-237.

664. Winter K.,Luttge U. C^-Photosynthese und Crassulacean-3aurestoffwechsel bei Mesembryanthemum crystallinum L. Ber.Deutsch.Bot.Ges. ,1979,bd.92,N 1 ,s.117-132.

665. Wong K.F. ,Davies D.D. Regulation of phosphoenolpyruvate carboxylase of Zea mays by metabolites. Biochem.J.,1973, v.131 ,N 3,p.451-458.

666. Woo K.C. ,Anderson J.M. .Boardman N.K. , Downbon W.J.S., Osmond S.B.,Thorne S.M. Dificlent photosystem II in agra-nal bundle sheath chloroplasts of 0^ -plants.Proceedings of Natural Academy of Sciences,1970,v.67,N 1, p.18-25.

667. Woo K. 0. , Pyliotis N.A. , Down ton W.J.S. Thylahoid aggregation and chlorophyll a/chlorophyll b ratio in C^ -plants.Z.Pflanzenphys. ,1971 ,v.64,N 5,p.400-413.

668. Wroblewski F. ,La Due S. Serum glutamic pyruvic transaminasein cardiae and hepatic disease (22330) Proc.Soc.Exp. Biol.Med.,1956,v.91,N 4,p.569-571.

669. Zelitch I.^hotosynthesis, photorespiration and plant produ-ctivity.N.-X.Acad.Press,1971, . p. 374.

670. Zelitcn I.pathways of carbon fixation in green plants.Ann. Rev.Biochem. , • -,Palo Alto, Oalif ,1975a, v.4(t,p. 123-145.

671. Zelitch I.Improving the efficiency of photosynthesis.Science,1975b. ,v.188,N 4188, p. 626-633.

672. Ziegler I. Effect of sulphite on PEP-carboxylase and malatefomiation in extracts of Zea mays. Phytochemistry,1973, v. 12,N 5,p. 1027-1030.

673. Zima J., Sestak Z. Photosynthetic characteristics during ontogenesis of leaves. 4. Carbon fixation pathways,their enzymes and products. Photosynthetica,1979,v.13,N 1,p. 83-106.

674. Zschoche tf.C. ,Ting I.P. Microbody malate dehydrogenase in plants with C^ -photosynthesis. Plant Sci. Lett. 1977, v.9,N 2, p.103-106.