Исследование генотоксического действия импульсных электромагнитных излучений с большой пиковой мощностью тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.04, кандидат биологических наук Гудкова, Ольга Юрьевна

• Гудкова, Ольга Юрьевна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Гудкова, Ольга Юрьевна

Список сокращений.

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Анализ потенциальной генотоксичности электромагнитных излучений радиочастотного диапазона.

1.1.1. Преимущества и недостатки методов, применяемых для исследования генотоксических эффектов РЧ ЭМИ.

1.1.2. Различные частотные поддиапазоны РЧ ЭМИ и вызываемые ими генотоксические эффекты.

1.1.2.1. УВЧ.

1.1.2.2. СВЧ.

1.1.2.3. КВЧ. ф 1.2. Влияние физических и химических факторов на ДНК.

1.2.1. Ионизирующее излучение.

1.2.2. Алкилирующие агенты.

1.2.3. Температурное воздействие.

1.3. Меггод «комета-тест».

Глава 2. Материалы и методы исследования.

2.1. Облучение биологических образцов ИЭМИ СВЧ БПМ и ИЭМИ КВЧ БПМ.

2.1.1. Реактивы.

2.1.2. Биологические образцы.

2.1.3. Облучение ИЭМИ СВЧ БПМ.

2.1.4. Облучение ИЭМИ КВЧ БПМ. ф 2.1.5. Воздействие ионизирующего излучения, алкилирующего агента и температуры.

2.1.6. Щелочной вариант комета-теста.

2.1.7. Обработка данных и статистический анализ.

2.2. Облучение водного раствора ИЭМИ КВЧ БПМ.

2.2.1. Реактивы и растворы.

2.2.2. Облучение образцов фосфатногобуфера.

2.2.3. Оценка количества образовавшихся АФК.

Глава 3. Результаты исследования и их обсуждение.

3.1. Исследование прямого повреждающего действия ИЭМИ СВЧ БПМ и

ИЭМИ КВЧ БПМ на ДНК различных типов клеток in vitro.

3.1.1. Исследование прямого повреждающего действия ИЭМИ СВЧ БПМ на ДНК эритроцитов лягушки.

3.1.2. Исследование прямого повреждающего действия ИЭМИ СВЧ БПМ на ДНК лейкоцитов и лимфоцитов крови человека.

3.1.3. Исследование прямого повреждающего действия ИЭМИ КВЧ БПМ на ДНК лейкоцитов цельной крови мыши.

3.2. Оценка возможности повреждения ДНК активными формами кислорода, образующимися под действием ИЭМИ КВЧ БПМ.

3.2.1. Определение продукции АФК в водных растворах под действием

ИЭМИ КВЧ БПМ.

3.2.2. Исследование механизмов образования АФК в водных растворах при облучении ИЭМИ КВЧ БПМ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Исследование генотоксического действия импульсных электромагнитных излучений с большой пиковой мощностью»

Актуальность проблемы. Интерес к биологическому действию импульсных электромагнитных излучений с большой пиковой мощностью (ИЭМИ БПМ) возник сравнительно недавно вслед за созданием и распространением радиолокационных излучающих систем, генерирующих высокомощные электромагнитные импульсы (десятки и сотни кВт) с крайне короткой длительностью (десятки не). При действии таких ЭМИ импульсная напряженность электрического поля в облучаемом биологическом объекте приближается к максимально достижимой из-за близости к величине напряженности пробоя [Albanese et al., 1994; Девятков и др., 2000]. В этих экстремальных условиях можно ожидать наличия прямых генотоксических эффектов ИЭМИ БПМ. Опосредованные механизмы действия ИЭМИ БПМ могут быть обусловлены как увеличением температуры облучаемого объекта, так и термоупругим возбуждением в облучаемом объекте акустических колебаний с последующей поляризацией молекул и образованием свободных радикалов [Guy et al., 1975; Olsen & Lin, 1983], потенциальная генотоксичность которых хорошо известна.

На сегодняшний день работы, в которых было исследовано биологическое действие ИЭМИ БПМ на различные объекты, немногочисленны. Обнаружено, что облучение крыс ИЭМИ БПМ приводит к нарушению их оперантного поведения [Akyel et al., 1991], значительному снижению физической выносливости и изменению когнитивных функций [Raslear et al., 1993], что связывают с нагревом тела животных. Воздействие ИЭМИ БПМ вызывает повреждение изолированного хрусталика глаз крыс [Creighton et al., 1987], уменьшает интервал между сокращениями препаратов сердца лягушки [Pakhomov et al., 2000]. Обнаружено уменьшение скорости роста карциномы Walker у крыс и увеличение средней продолжительности жизни животных-опухоленосителей после in vivo облучения ИЭМИ БПМ [Девятков и др., 1994]. Показано увеличение количества деградирующих опухолевых клеток и опухолевых клеток на стадии лизиса после облучения ИЭМИ БПМ in vitro [Девятков и др., 1998]. Воздействие ИЭМИ БПМ прерывало индивидуальное развитие Drosophila [Bolshakov et al., 2000, 200Г], замедляло рост грибов Fusarium sp. и подавляло скорость синтеза РНК и ДНК в опухолевых клетках мастоцитомы Р-815 [Bolshakov et al., 2000, 2001Ь]. Показано отсутствие специфического действия ИЭМИ БПМ на проводниковую функцию нейронов гиппокампа крыс; переходное и обратимое уменьшение амплитуды спайков было вызвано исключительно увеличением температуры при облучении [Pakhomov et al., 2003]. В настоящее время существуют лишь единичные работы, посвященные исследованию генотоксических эффектов ИЭМИ БПМ на клетках человека и животных. Например, Natarajan et al. [2002] показали, что облучение моноцитов человека ИЭМИ БПМ может увеличивать активность связывания фактора транскрипции NF-кВ с ДНК, что приводит к трансактивации экспрессии генов-мишеней, изменяя тем самым структуру хроматина.

В последние годы большое внимание уделяется оценке генотоксического действия непрерывных и модулированных ЭМИ радиочастотного диапазона (РЧ ЭМИ). В ряде исследований обнаружены индукция повреждений нитей ДНК, увеличение количества дицентрических хромосом, ацентрических участков и микроядер при действии РЧ ЭМИ [Maes et al., 1993; Lai & Singh, 1995; Zotti-Martelli et al., 2000; d'Ambrosio et al., 2002; R.R. Tice et al., 2002]. В то же время, в серии работ показано отсутствие каких-либо прямых мутагенных, генотоксических или карциногенных эффектов РЧ ЭМИ [Brusick, 1998; Verschaeve & Maes 1998; Vijayalaxmi et al., 2000; Li et al., 2001]. Кроме того, в связи с одновременным увеличением содержания в окружающей среде других токсинов очень трудно выделить на их фоне эффекты ИЭМИ БПМ в естественных условиях жизнедеятельности человека. Поэтому обозначенные проблемы должны решаться в условиях контролируемых лабораторных экспериментов.

Из приведенных данных видно, что результаты по оценке генотоксического действия РЧ ЭМИ противоречивы, а работы по исследованию генотоксических эффектов ИЭМИ БПМ практически отсутствуют. Поэтому исследование возможности прямого повреждающего действия ИЭМИ БПМ, не обусловленного нагревом облучаемого объекта, представляет большой научный интерес. Однозначный ответ на вопрос о потенциальной генотоксичности ИЭМИ и знание механизмов действия такого излучения как на клеточном уровне, так и на уровне организма человека и животных позволит разработать научно обоснованные санитарно-гигиенические нормативы для обслуживающего персонала и населения, попадающего в зону действия ИЭМИ.

Цель работы.

Целью диссертационной работы являлось исследование потенциальной генотоксичности импульсных ЭМИ сверхвысоких (СВЧ) и крайне высоких (КВЧ) частот с большой пиковой мощностью (ИЭМИ СВЧ БПМ и ИЭМИ КВЧ БПМ).

Задачи исследования. .

1. Исследование прямого повреждающего действия ИЭМИ СВЧ БПМ и ИЭМИ КВЧ БПМ на ДНК различных типов клеток (эритроцитов лягушки, лейкоцитов и лимфоцитов крови человека и лейкоцитов крови мыши) in vitro.

2. Оценка возможности повреждения ДНК активными формами кислорода (АФК), образующимися под действием ИЭМИ КВЧ БПМ. а) Определение продукции АФК в водных растворах под действием ИЭМИ КВЧ БПМ. б) Исследование механизмов образования АФК в водных растворах при облучении ИЭМИ КВЧ БПМ.

Научная новизна.

Впервые исследовано прямое генотоксическое действие ИЭМИ БПМ на клетках различных биологических объектов. Показано отсутствие индукции повреждений ДНК под действием ИЭМИ для гомойотермных видов (мышь, человек) и увеличение поврежденности ДНК при действии ИЭМИ на клетки животных пойкилотермного вида (лягушка), обусловленное увеличением температуры суспензии облучаемых клеток. В результате модификации метода "комета-тест" была существенно увеличена его чувствительность. Показана возможность применения комета-теста в мониторинговых исследованиях с использованием популяций земноводных на примере эритроцитов лягушки Xenopus laevis.

Установлено, что облучение водных растворов ИЭМИ КВЧ БПМ приводит к образованию в них Н2О2, которая потенциально может вызывать повреждения ДНК в различных клетках. Исследование механизмов образования Н2О2 при облучении показало, что образование Н2О2 в облучаемом ИЭМИ КВЧ БПМ растворе происходит в результате суммарного влияния тепла и возбуждаемых ИЭМИ КВЧ БПМ термоакустических колебаний.

Научно-практическая ценность.

Полученные результаты свидетельствуют о том, что ИЭМИ с параметрами, характерными для современных радиолокационных станций, не обладает прямым генотоксическим действием, что может быть использовано при научном обосновании безопасных санитарно-гигиенических нормативов для обслуживающего персонала и населения, попадающего в зону действия такого излучения.

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Гудкова, Ольга Юрьевна

103 Выводы

1. ИЭМИ СВЧ БПМ с выбранными параметрами (8.8 ГГц, длительность импульса 180 не, импульсная мощность 65 кВт, частота следования импульсов 50 Гц, средняя УПМ 1.6 кВт/кг, время экспозиции 40 мин) не оказывает прямого генотоксического действия на нативные эритроциты лягушки Xenopus laevis in vitro. Увеличение уровня повреждений ДНК в эритроцитах лягушки при действии ИЭМИ СВЧ БПМ обусловлено увеличением температуры суспензии облучаемых клеток.

2. ИЭМИ СВЧ БПМ с выбранными параметрами не вызывает возникновения прямого повреждения ДНК в интактных лейкоцитах и изолированных лимфоцитах крови человека после 40 мин облучения in vitro в диапазоне температур 23-37°С.

3. Облучение ИЭМИ КВЧ БПМ с выбранными параметрами (37 ГГц, длительность импульса 60 не, импульсная мощность 20 кВт, частота следования импульсов 50 Гц, интенсивность 0.24 Вт/см2, время экспозиции 20 мин) не вызывает прямого повреждения ДНК в интактных лейкоцитах крови мыши in vitro в исследованном диапазоне температур.

4. Под действием ИЭМИ КВЧ БПМ (37 ГГц, импульсная мощность 20 кВт, длительность импульса 400 не, частота следования импульсов 500 Гц, интенсивность 0.4 Вт/см2) в водных растворах образуется Н2О2 в наномолярных концентрациях. Показано, что образование Н2О2 происходит в результате суммарного влияния тепла и возбуждаемых ИЭМИ КВЧ БПМ термоакустических колебаний. Обнаруженный факт образования Нг02 под действием ИЭМИ КВЧ БПМ имеет принципиальное значение для дальнейших исследований генотоксического действия ИЭМИ БПМ.

Исследование выполнено при поддержке EOARD/ISTC (проект №017011/№2350) и Российского фонда фундаментальных исследований (проект № 03-04-49210).

104

Заключение

В настоящей работе представлены результаты исследования возможности прямого повреждения ДНК в различных типах клеток после облучения ИЭМИ БПМ (СВЧ и КВЧ), также исследована возможность повреждения ДНК активными формами кислорода, образующимися под действием ИЭМИ КВЧ.

В части 3.1. работы, методом комета-тест, показано увеличение поврежденности ДНК в эритроцитах лягушки Xenopus laevis при действии ИЭМИ СВЧ БПМ. Обнаруженный эффект был обусловлен увеличением температуры суспензии облучаемых клеток на 3.5±0.1°С, что подтверждено в экспериментах по имитации облучения и в экспериментах с инкубацией клеток в течение 40 мин в соответствующих температурных условиях [Chemeris et al., 2004]. В условиях такого повышения температуры увеличение уровня повреждения ДНК может быть связано с усилением депуринизации/депиримидинизации ДНК, протекающей в физиологических условиях. При облучении лейкоцитов цельной крови и изолированных лимфоцитов крови человека изменение уровня повреждения ДНК в клетках не наблюдалось. На основании проведенных экспериментов можно -заключить, что ИЭМИ СВЧ БПМ при выбранном режиме воздействия (8.8 ГГц, длительность импульса 180 не, пиковая мощность в импульсе до 65±5 кВт, частота следования импульсов 50 Гц, средняя УПМ 1.6 кт/кг, длительность экспозиции 40 мин) не оказывает специфического генотоксического действия на ДНК нативных эритроцитов лягушки, лейкоцитов цельной крови и изолированных лимфоцитов крови человека in vitro [Chemeris et al., 2006]. Исследование действия ИЭМИ КВЧ БПМ при выбранном режиме воздействия (37 ГГц, длительность импульса 60 не, импульсная мощность 20 кВт, частота следования импульсов 50 Гц, интенсивность 0.24 Вт/см2) показало, что излучение не оказывает прямого генотоксического действия на ДНК нативных лейкоцитов цельной крови мыши [Гудкова и др., 2004].

Таким образом, первоначальная гипотеза о том, что ИЭМИ БПМ могут вызывать генотоксические эффекты путем прямого действия на ДНК клеток, например, из-за высокой напряженности электрического поля в облучаемом объекте, не подтвердилась. Следовательно, можно предположить, что ИЭМИ БПМ могут оказывать не прямое, а опосредованное генотоксическое действие за счет других механизмов, изучение которых представляет особый интерес.

Механизмы действия, например, ИЭМИ КВЧ БПМ могут быть обусловлены увеличением температуры облучаемого объекта, высокой наведенной в объекте напряженностью электрического поля, термоупругим возбуждением в облучаемом объекте акустических колебаний с последующей поляризацией молекул и образованием свободных радикалов.

На основании результатов, полученных в части 3.2., можно заключить, что облучение водных растворов ИЭМИ КВЧ БПМ приводит к образованию в них АФК с участием тепловых механизмов и термоупругого возбуждения акустических колебаний, приводящих к активации растворенного кислорода и частичному распаду воды, возможно, в результате кавитационных процессов, происходящих в газовых пузырьках воздуха [Гудкова и др., 2005]. В пользу кавитационного механизма действия тепла на водные растворы свидетельствует тот факт, что под действием тепла, помимо АФК, происходит образование окислов азота [Bruskov et al., 2002; Черников и Брусков, 2005], аналогично тому, как это происходит под действием ультразвука [Didenko & Suslick, 2002; Степуро и др., 2004]. Следует отметить существование известного физико-химического механизма трансформации энергии слабых воздействий в высокоэнергетические процессы с помощью газовых пузырьков атмосферного воздуха в воде, как это происходит при сонолюминесценции [Маргулис, 2000; Липсон и Кузнецов, 2002; Didenko & Suslick, 2002]. Растворенный в воде воздух состоит из микропузырьков, что обусловлено гидрофобностью растворенных газов в такой полярной жидкости, как вода. При сонолюминесценции в газовых пузырьках растворенного в воде воздуха происходит концентрирование энергии ультразвукового поля на несколько порядков величины и преобразование ее в видимое или УФ-излучение. Газовые пузырьки являются усилителями и трансформаторами относительно слабой энергии ультразвукового поля в гигантские флуктуации - в высокоэнергетические "сгустки" энергии ЭМП. По всей видимости, аналогичным образом в результате кавитационных процессов в газовых пузырьках воздуха может происходить активация растворенного кислорода и частичный распад воды под действием ИЭМИ КВЧ БПМ.

Достаточно большое время жизни АФК, образующихся в растворе под действием ИЭМИ КВЧ, может указывать на их роль в биологическом действии ИЭМИ КВЧ, например, в результате окислительного повреждения нуклеиновых кислот, белков, липидов, что является, вероятно, одной из основных причин мутагенеза, канцерогенеза, старения и связанных с ними заболеваний [Beckman & Ames, 1998; Bruskov et al., 2002].

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Гудкова, Ольга Юрьевна, 2006 год

1. Ананьева Н.Б., Боркин Л.Я., Даревский И.С., Орлов НЛ. Пятиязычный словарь названий животных. Амфибии и рептилии. М.: Рус. яз., 1988. 555 с.

2. Андреев В.Г., Карабутов А.А., Вдовин В.А. Основные принципы детектирования термоакустической энергии и временного профиля микроволновых импульсов. // Вопросы атомной науки и техники. 2001. №5. С. 24-26.

3. Антипенко Е.Н., Ковешникова И.В. Цитогенетические эффекты микроволн нетепловой интенсивности у млекопитающих. // Докл. АН СССР. 1987. Т. 296, № 3. С. 724-726.

4. Ауэрбах Ш. Проблемы мутагенеза. М.: Мир, 1978. 463 с.

5. Благой Ю.П. Взаимодействие ДНК с биологически активными веществами (ионами металлов, красителями, лекарствами). // Соросовский образовательный журнал. 1998. №10. С. 18-24.

6. Большаков М.А. Физиологические механизмы действия радиочастотных электромагнитных излучений на биообъекты разных уровней организации. // Автореф. диссер. на соиск. учен. ст. д.б.н. Томск. 2002.

7. Большаков М.А., Евдокимов Е.В., Миненко О.В., Плеханов Г.Ф. О влиянии ЭМИ дециметрового диапазона на морфогенез дрозофил. // Радиационная биология. Радиоэкология. 1996. Т. 36, № 5. С. 676-680.

8. Большаков М.А., Князева И.Р., Евдокимов Е.В. Эффект воздействия ЭМИ 460 МГц на эмбрионы дрозофил на фоне повышенной температуры. // Радиационная биология. Радиоэкология. 2002. Т. 42, №2. С. 191-193.

9. Большаков М.А., Князева И.Р., Линдт Т.А., Евдокимов Е.В. Воздействие импульсно-модулированного низкими частотами ЭМИ 460 МГц на эмбрионы дрозофил. // Радиационная биология. Радиоэкология. 2001. Т. 41, №4. С. 399-402.

10. Брусков В.И., Масалимов Ж.К., Черников А.В. Образование активных форм кислорода под действием тепла при восстановлении растворенного кислорода воздуха. // Докл. РАН. 2001. Т. 381, №2. С. 262-264.

11. Брусков В.И., Масалимов Ж.К., Черников А.В. Образование активных форм кислорода в воде под действием тепла. // Докл. РАН. 2002. Т. 384, № 6. С. 821-824.

12. Брусков В.И., Петров А.И. Кинетика образования 8-окси-2-дезоксигуанозин-5'-монофосфата под влиянием тепла: определение констант скоростей энергии активации. // Мол. Биол. 1992. Т. 26. С. 1362-1369.

13. Брусков В.И., Черников А.В., Гудков С.В., Масалимов Ж.К. Активация восстановительных свойств анионов морской воды под действием тепла. // Биофизика. 2003. Т. 48. Вып. 6. С. 1022-1029.

14. Вакс В.Л., Домрачев Г.А., Родыгин ЮЛ., Селивановский Д.А., Спивак Е.И. Диссоциация воды под действием СВЧ излучения. // Изв. ВУЗов. Радиофизика. 1994. Т. 37, № 1. С. 149154.

15. Воронов В.В. Биологический индикатор мутагенности внешней среды. // Автореферат на соиск. уч. ст. к.б.н. Тула. 1998.

16. Газиев А.И., Плосконосова И.И., Баранов В.И., Безлепкин В.Г. Накопление повреждений в ДНК и изменение систем защиты генома со старением организма. // Клиническая геронтология. 1998. №3.

17. Гапеев А.Б., Чемерис Н.К. Действие непрерывного и модулированного ЭМИ КВЧ на клетки животных. Обзор. Часть IV. Биологические эффекты модулированных электромагнитных излучений. // Вестник новых медицинских технологий. 2000. T.VII, №34. С. 61-64.

18. Гершензон С.М. Мутации. Киев: Наукова думка, 1991. 111 с.

19. Гончарова Н. В., Ивановский Р.Н., Филатова Л.В. Участие неорганического фосфата как донора электронов в первичных реакциях фотосинтеза у Rhodobacter sphaeroides. И Биофизика. 2002. Т.47. вып.З. С. 490-499.

20. Григорьев Ю.Г. Роль модуляции в биологическом действии электромагнитных полей. // Радиационная биология. Радиоэкология. 1996. Т. 36, вып. 5. С. 659-670.

21. Гудков С.В., Штаркман И.Н., Смирнова B.C., Черников А.В., Брусков В.И. Гуанозин и инозин как природные антиоксиданты и радиопротекторы для мышей при действии летальных доз у-облучения. // Доклады РАН. 2006. Т. 407. С. 1-4.

22. Девятков Н.Д., Голант М.Б., Бецкий О.В. Миллиметровые волны и их роль в процессах жизнедеятельности. М.: Радио и связь, 1991. 168 с.

23. Дубинин Н.П. Генетика. Кишинев: Штиинца, 1985. 532 с.

24. Дубинин Н.П. Некоторые проблемы современной генетики. М.: Наука, 1994. 224 с.

25. Дубинин Н.П. Потенциальные изменения в ДНК и мутации. Молекулярная цитогенетика. М.: Наука, 1978.245 с.

26. Жестяников В.Д. Репарация ДНК и ее биологическое значение. JI.: Наука, 1979. 285 с.

27. Ковешникова И.В., Анипенко Е.Н. К вопросу о количественных закономерностях цитогенетического действия микроволн. // Радиобиология. 19916. Т. 31. Вып. 1. С. 149-151.

28. Ковешникова И.В., Анипенко Е.Н. Об участии тиреоидных гормонов в модификации мутагенного эффекта микроволн. // Радиобиология. 199Г. Т. 31. Вып. 1. С. 147-149.

29. Кочетков Н.К., Будовекий Э.И. Органическая химия нуклеиновых кислот. М.: Химия, 1970. 600 с.

30. Кощеева Т.А., Шиманская Е.И., Медведев Л.Г., Шкурат Т.П. О возможности оценки адаптивной роли соматического мутагенеза. // Цитология. 1991. Т. 33, № 5. С. 108-109.

31. Крюков В.И. Генетические эффекты электромагнитных полей. // Вестник новых мед. технол. 2000. Т. 7, № 2. С. 8-13.

32. Ленинджер А.Л. Основы биохимии: в 3-х т. Т. 3. // Пер. с англ. М.: Мир, 1985. 320 с.

33. Липсон А.Г., Кузнецов В.А. О механизме концентрирования и трансформации энергии звукового поля в воде при однопузырьковой сонолюминесценции. // Журн. физ. химии 2002. Т.76.№1. С. 116-122.

34. Лушников К.В., Гапеев А.Б., Садовников В.Б., Чемерис Н.К. Влияние крайневысокочастотного электромагнитного излучения низкой интенсивности на показатели гуморального иммунитета здоровых мышей. // Биофизика. 2001. Т. 46. Вып. 4. С. 753-760.

35. Лушников К.В., Гапеев А.Б., Чемерис Н.К. Влияние электромагнитного излучения крайне высоких частот на иммунную систему и системная регуляция гомеостаза. // Радиационная биология. Радиоэкология. 2002. Т. 42, №5. С. 533-545.

36. Маргулис М.А. Сонолюминесценция. // Усп. физ. наук. 2000. Т. 170. №3. С.263-287.

37. Поцелуева М.М., Пустовидко А.В., Евтодиенко Ю.В., Храмов Р.Н., Чайлахян Л.М. Образование реактивных форм кислорода в водных растворах под действием электромагнитного излучения КВЧ-диапазона. // Докл. АН. 1998. Т. 359, № 3. С. 415-418.

38. Семин Ю.А., Швацбург Л.К., Дубовик Б.В. Изменение вторичной структуры ДНК под влиянием внешнего электромагнитного поля малой интенсивности. // Радиационная биология. Радиоэкология. 1995. Т. 35. Вып. 1. С. 36-41.

39. Семин Ю.А., Швацбург Л.К., Жаворонков Л.П. Зависимость эффекта ослабления микроволнами вторичной структуры ДНК от молекулярной массы полинуклиотида. // Радиационная биология. Радиоэкология. 2002. Т. 42, № 2. С. 186-190.

40. Смирнова B.C., Гудков С.В., Штаркман И.Н., Черников А.В., Брусков В.И. Генотоксическое действие ионов уранила на ДНК in vitro, обусловленное генерацией активных форм кислорода. // Биофизика. 2005. Т. 50. Вып. 3. С. 456-463.

41. Сойфер В.Н. Репарация генетических повреждений. // Соросовский образовательный журнал. 1997. №8. С. 4-13.

42. Степуро И.И., Адамчук Р.И., Степуро В.И. Образование оксида азота и ионов нитрозония в воде и водных растворах под действием ультразвука. // Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 5. С. 773-780.

43. Сьяксте Т.Г., Сьяксте Н.И. Химические соединения, повреждающие ДНК. Рига: Зинанте, 1991.152 с.

44. Тарасов В.А. Молекулярные механизмы репарации и мутагенеза. М.: Наука, 1982. 228 с.

45. Тронов В.А., Константинов Е.М. Репарация ДНК и гибель покоящихся лимфоцитов крови человека, индуцированные перекисью водорода. // Биохимия. 2000. Т. 65. Вып. 11. С. 15161524.

46. Филиппович И.В. Итоги науки и техники. Радиационная биология. Т.9: Репарация и репликация ДНК в облученных клетках. М., 1990. 230 с.

47. Хейфец Л.Б., Абалакин В.А. Разделение форменных элементов крови. // Лабораторное дело. 1973. №10. С. 65-71.

48. Черников А.В., Брусков В.И. Фиксация атмосферного азота под действием тепла и света в воде с образованием оксида азота. // Докл. АН. 2005. Т. 400, № 2. С. 40-43.

49. Ярмоненко С.П., Вайнсон А.А. Радиобиология человека и животных. М.: Высшая школа. 2004. 550 с.

50. Ahnstrom G. and Erixon К. Radiation induced strand breakage in DNA from mammalian cells. Strand separation in alkaline solution. // IntJ.Radiat.Biol. 1973. Vol. 23, №3. P. 285-289.

51. Ahnstrom G. Techniques to measure DNA single-strand breaks in cells: A review. // Int. J. Radiat. Biol. 1988. Vol. 54, № 5. P. 695-707.

52. Akyel Y., Hunt E.L., Gambrill C., Vargas C.Jr. Immediate post-exposure effects of high-peak-power microwave pulses on operant behavior of Wistar rats. // Bioelectromagnetics. 1991. Vol. 12, №3. P. 183-195.

53. Albanese R., Blaschak J., Medina R., Penn J. 1994. Ultrashort electromagnetic signals: biophysical questions, safety issues, and medical opportunities. // Aviat Space Environ Med. Vol. 65. Suppl 5, P. Al 16-A120.

54. Ames B.N., Gold L.S. Endogenous mutagens and the causes of aging and cancer. // Mutat. Res. 1991. Vol.250. P. 3-16.

55. Anderson L.E., Sheen D.M., Wilson B.W., Grumbein S.L., Creim J.A.and Sasser L.B. Two-year chronic bioassay of rats exposed to a 1.6 GHz radiofrequency signal. // Radiat. Res. 2004. Vol. 162. P. 201-210.

56. Antonopoulos A., Eisenbrandt H., Obe G. Effects of high-frequency electromagnetic fields on human lymphocytes in vitro. H Mutat. Res. 1997. Vol. 395, № 2-3. P. 209-214.

57. Asanami S. and Shimono K. High body temperature induces micronuclei in mouse bone marrow. // Mutat. Res. 1999. Vol. 390. P. 79-83.

58. Bauch Т., Bocher W., Mallek U., Miiller W.-U., Streffer C. Optimization and Standartization of the "Comet Assay" for Analysing the Repair of DNA Damage in Cells. // Strahfenther Onkol. 1999. Vol. 175, №7. P. 333-340.

59. Beckman K.B., Ames B.N. The free radical theory of aging matures. // Physiol. Rev. 1998. Vol. 78, №2. P. 547-581.

60. Becchey C.V., Brooker D., Kovvalczuk C.I., Saunders R.D., Searle A.G. Cytogenetic effects of microwave irradiation on male germ cells of the mouse. // Int. J. Radiat. Biol. 1986. Vol. 50, № 5. P. 909-918.

61. Benitez-Bribiesca L., Sanchez P., Toledo J., Penarroja R., Flores M., Sosa J. Differential Staining of DNA Strand Breaks in Dried Comet Assay Slides. // The Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 2001. Vol. 49, № 7. P.921-922.

62. Bisht K.S., Moros E.G., Straube W.L., Baty J.D., Roti Roti J.L. The effect of 835.62 MHz FDMA or 847.74 MHz CDMA modulated radiofrequency radiation on the induction of micronuclei in СЗН 10T1/2 cells.//Radiat. Res. 2002. Vol. 157. P. 506-515.

63. Blank M, Goodman R. Initial Interactions in Electromagnetic Field-Induced Biosynthesis. // J Cellular Physiol. 2004. Vol. 199. P. 359-363.

64. Blank M, Soo L. Electromagnetic Acceleration of Electron Transfer Reactions. // J Cell Biochem.2001. Vol. 81. P. 278-283.

65. Blank M., Soo L. Surface Free Energy as the Potential in Oligomeric Equilibria: Prediction of Hemoglobin Disaggregation Constant. // Bioelectrochem Bioenerg. 1987. Vol. 17. P. 349-360.

66. Bruskov V.I., Malakhova L.V., Masalimov Z.K., Chernikov A.V. Heat-induced formation of reactive oxygen species and 8-oxoguanine, a biomarker of damage to DNA. // Nucleic Acids Res.2002. Vol. 30, № 6. P. 1354-1363.

67. Buschini A., Carboni P., Martino A., Poli P., Rossi C. Effects of temperature on baseline and genotoxicant-induced DNA damage in haemocytes of Dreissena polymorpha. II Mutation Res.2003. Vol. 537. P. 81-92.

68. Chen K.-M., Samuel A., Hoopingarner R. Chromosomal aberrations of living cells induced by microwave radiation. // Environ. Lett. 1974. Vol. 6. P. 37-46.

69. Ciaravino V., Meltz M.L., Erwin D.N. Effects of radiofrequency radiation and simultaneous exposure with mitomycin С on the frequency of sister chromatid exchanges in Chinese hamster ovary cells. // Environ. Mutagen. 1987. Vol. 9. P. 393-399.

70. Cohen M.M. and Levy H.P. Chromosome instability syndromes. // Adv. Hum. Genet. 1989. Vol. 18. P. 43-149,365-371.

71. Creda H., Johanson K.J. and Rosander K. Radiation-induced DNA strand breaks and their repair in the developing rat brain. // Int. J. Radiat. Biol. 1979. Vol. 36. P. 65-73.

72. Das E.C. and Sharma T. Effects of temperature on the frequency of sister chromatid exchanges (SCEs) in peripheral blood lymphocytes of man and muntjac. // Environ. Mutagen. 1984. Vol. 6. P. 25-31.

73. Davison P.F. The Rate of Strand Separation in Alkali-treated DNA // J.Mol.Biol. 1966. Vol. 22. P. 97-108.

74. Didenko Yu.T., Suslick K.S. The energy efficiency of formation of photons, radicals and ions during single-bubble cavitation. // Nature. 2002. V.418. P. 394-397.

75. Eiger J.E., Boldker H., Michaelis G. The termal degradation of nucleic acids. // Biochem. Biophys. Acta. 1961. Vol. 51. P. 165-168.

76. Fairbairn D.W., Olive P.L., O'Neill K.L. The comet assay: a comprehensive review. // Mutation Research. 1995. Vol. 339. P. 37-59.

77. Frederico L.A., Kunkel T.A., Shaw B.R. A sensitive genetic assay for the detection of cytosine deamination: determination of rate constants and the activation energy. // Biochemistry. 1990. Vol. 29. P. 2532-2537.

78. Frei M.R., Jauchem J.R., Dusch S.J., Merritt J.H., Berger R.E. and Stedham M.A. Chronic, low-level (1.0 W/kg) exposure of mice prone to mammary cancer to 2450 MHz microwaves. // Radiat. Res. 1998. V. 150. P. 568-576.

79. Fuciarelli A.F., Wegher B.J., Blakely W.F., Dizdaroglou M. Yields of radiation induced base production in DNA: effect of DNA conformation and gassing condition. // Int. J. Radiat. Res. 1990. Vol.3. P. 397-415.

80. Fucic A., Garaj-Vrhovac V., Skara M. and Dimitrovic B. X-rays, microwaves and vinyl chloride monomer: Their clastogenic and aneugenic activity, using the micronucleus assay on human lymphocytes. // Mutat. Res. 1992. V. 282. P. 265-271.

81. Garaj-Vrhovac V. Micronucleus assay and lymphocyte mitotic activity in risk assessment of occupational exposure to microwave radiation. // Chemosphere. 1999. Dec. Vol. 39, № 13. P. 2301-2312.

82. Garaj-Vrhovac V., Fucic A. and Horvat D. Comparison of chromosome aberration and micronucleus induction in human lymphocytes after occupational exposure to vinyl chloride monomer and microwave radiation. // Period. Biol. 1990a. Vol. 92. P. 411-416.

83. Garaj-Vrhovac V., Fucic A., Horvat D. The correlation between the frequency of micronuclei and specific chromosome aberrations in human lymphocytes exposed to microwave radiation in vitro. И Mutat. Res. 1992. Mar. Vol. 281, № 3. P. 181-186.

84. Garaj-Vrhovac V., Horvat D., Koren Z. The effect of microwave radiation on the cell genome. // Mutat. Res. 1990b. Feb. Vol. 243, № 2. P. 87-93.

85. Garson O.M., McRobert T.L., Campbell L.J., Hocking B.A., Gordon I. A chromosomal study of workers with long-term exposure to radiofrequency radiation. // Med J Australia. 1991. Vol. 155. P. 289-292.

86. Guy A.W., Chou C.K., Lin J.C. Microwave-induced acoustic effects in mammalian auditory systems and physical materials. //Ann N.Y. Acad. Sci. 1975. Vol. 247. P. 194-218.

87. Halliwell B. Can oxidative DNA damage be used as a biomarker of cancer risk in humans? Problems, resolutions and preliminary results from nutritional supplementation studies. // Free Rad. Res. 1998. Vol. 29. P. 469-486.

88. Halliwell В., Clement M.V., Long L.H. Hydrogen peroxide in human body. // FEBS Letters. 2000. Vol.486. P. 10-13.

89. Hamnerius Y.', Olofsson H., Rasmuson A., Rasmuson B. A negative test for mutagenic action of microwave radiation in Drosophila melanogaster. II Mutat Res. 1979. Vol. 68. P. 217-223.

90. Hamnerius Y., Rasmuson A., Rasmuson B. Biological effects of high-frequency electromagnetic fields on Salmonella typhimurium and Drosophila melanogaster. И Bioelectromagnetics. 1985. №6. P. 405-414.

91. Hamrick P.E. Thermal denaturation of DNA exposed to 2450 MHz CW microwave radiation. // Radiat. Res. 1973. Vol. 56. P. 400-404.

92. Hartmann A., Agurell E., Beevers C., Brendler-Schwaab S., Burlinson В., Clay P., Collins A., Smith A., Speit G., Thybaud V., Tice R.R. Recommendations for conducting the in vivo alkaline Comet assay. // Mutagenesis. 2003. Vol. 18, № 1. P. 45-51.

93. Heynick L.N., Johnston S.A., Mason P.A. Radio frequency electromagnetic fields: cancer, mutagenesis and genotoxicity. // Bioelectromagnetics Supplement. 2003. Vol. 6. P. 74-100.

94. Hollows F.C., Douglas J.B. Microwave cataract in radiolinemen and controls. // Lancet. 1984. Aug. 18. Vol. 2, № 8399. P. 406-407.

95. Horvatova E., Slamenova D., Hlincikova L., Gabelova A., Collins A.R. The nature and origin of DNA single strand breaks determined with the comet assay. // Mutat. Res. 1998. Vol. 403, № 3. P. 163-171.

96. Huang A.T., Engle M.E., Elder J.A., Kinn J.В., Ward T.R. The effect of microwave radiation 2450 MHz on the morphology and chromosomes of lymphocytes. // Radio Sci. 1977. Vol. 12. P. 173.

97. Johnson H.A., Pavelec M. Thermal injury due to normal body temperature. // Am. J. Patol. 1972.1. Vol. 66. P. 557-564.

98. Jorritsma J.B. and Konings A.W. The occurrence of DNA strand breaks after hyperthermic treatments of mammalian cells with and without radiation. // Radiat. Res. 1984. Vol. 98. P. 198— 208.

99. Ju R., Mao Y., Glick M.J., Muller M.T., Snyder R.D. Catalytic inhibition of DNA topoisomerase II alpha by sodium azide. //Toxicol. Lett. 2001. Vol. 121, № 2. P. 119-126.

100. Kerbacher J.J., Meltz M.L., Erwin D.N. Influence of radiofrequency radiation on chromosome aberrations in CHO Cells and its interaction with DNA-damaging agents. // Radiation. Res. 1990. Vol. 123. P. 311-319.

101. Kinley J.S., Brunborg G., Moan J. and Young R. Detection of UVR induced DNA damage in mouse epidermis in vivo using alkaline elution. // Photochem. Photobiol. 1995. Vol. 61. P. 149— 158. letter.

102. Korn H., Kosea K., Oldenkott S., Schmidt H. and Schultze B. Xray dose-effect relationship on unscheduled DNA synthesis in mouse brain cells studied in vivo. II Radiat. Environ. Biophys. 1989. Vol. 28. P. 13-26.

103. Koyama S., Isozumi Y., Suzuki Y., Taki M., Miyakoshi J. Effects of 2.45-GHz electromagnetic fields with a wide range of SARs on micronucleus formation in CHO-K1 cells. // Scientific World Journal. 2004. Oct. 20; 4 Suppl. 2. P. 29-40.

104. Koyama S., Komatsubara Y., Sakurai Т., Isozumi Y., Miyakoshi J. Effects of exposure to a 1950 MHz radio-frequency (RF) field on micronucleous formation in A172 cells. // Abstract collection Bioelectromagnetics. 2005. Dublin, Ireland. P. 414.

105. Koyama S., Nakahara Т., Wake K., Taki M., Isozumi Y., Miyakoshi J. Effects of high frequency electromagnetic fields on micronucleus formation in CHO-K1 cells. // Mutat. Res. 2003. Nov. 10; Vol. 541, № 1-2. P. 81-89.

106. Lai H., Singh N.P. Acute low-intensity microwave exposure increases DNA single-strand breaks in rat brain cells. // Bioelectromagnetics. 1995. Vol. 16, № 3. P. 207-210.

107. Lai H., Singh N.P. Melatonin and a spin-trap compound block radiofrequency electromagnetic radiation-induced DNA strand breaks in rat brain cells. // Bioelectromagnetics. 1997. Vol. 18, № 6. p. 446-454.

108. Lai H., Singh N.P. Reply to "Comments on 'Acute low-intensity microwave exposure increases DNA single-strand breaks in rat brain cells". // Bioelectromagnetics. 1996a. Vol. 17. P. 166. letter.

109. Lai H., Singh N.P. Single- and double-strand DNA breaks in rat brain cells after acute exposure to radiofrequency electromagnetic radiation. // Int. J. Radiat. Biol. 1996. Apr. Vol. 69, № 4. P. 513-521.

110. Lalic H., Lekic A., Radosevic-Stasic B. Comparison of chromosome aberrations in peripheral blood lymphocytes from people occupationally exposed to ionizing and radiofrequency radiation. // Acta Med Okayama. 2001. Vol. 55. P. 117-127.

111. Lary J.M., Conover D.L., Johnson P.H., Hornung R.W. Dose-response relationship between body temperature and birth defects in radiofrequency-irradiated rats. // Bioelectromagnetics. 1986. Vol. 7. P. 141-149.

112. Lee Т.К., O'Brien K., Christie K., Wiley A.L. J.r, Karlsson U.L. Effect of in vivo hyperthermia on radiation-induced micronuclei in lymphocytes of cancer patients before and during radiotherapy. // Mutat. Res. 1998. Vol. 417, № 1. P. 1-8.

113. Leonard A., Berteaud A.J., Bruyere A. An evaluation of the mutagenic, carcinogenic and teratogenic potential of microwaves. // Mutation Res. 1983. Vol. 123. P. 31—46.

114. Li L., Bisht K.S., LaGroye I., Zhang P., Straube W.L., Moros E.G., Roti Roti J.L. Measurement of DNA damage in mammalian cells exposed in vitro to radiofrequency fields at SARs of 3-5 W/kg. // Radiat. Res. 2001; Sep. Vol. 156, № 3. P. 328-332.

115. Lindahl T, Nyberg B. Heat-induced deamination of cytosine residues in deoxyribonucleic acid. // Biochemistry. 1974. Vol. 13. P. 3405-34010.

116. Lindahl T. Instability and decay of the primary structure of DNA. // Nature. 1993. Vol. 362, № 6422. P. 709-715.

117. Lindahl Т., Nyberg B. Heat-induced deamination of cytosine residues in deoxyribonucleic acid. // Biochemistry. 1974. Vol. 13, № 16. P. 3405-3410.

118. Lindahl Т., Nyberg B. Rate of depurination of native deoxyribonucleic acid. // Biochemistry. 1972. Sep. 12. Vol. 11, №19. p. 3610-3618.

119. Lloyd D.C., Saunders R.D., Finnon P., Kowalczuk C.I. No clastogenic effect from in vitro microwave irradiation of Go lymphocytes. // Int. J. Radiat. Biol. 1984. Vol. 46. P. 135-141.

120. Lloyd D.C., Saunders R.D., Moquet J.E., Kowalczuk C.I. Absence of chromosomal damage in human lymphocytes exposed to microwave radiation with hyperthermia. // Bioelectromagnetics. 1986. Vol. 7. P. 235-237.

121. Maes A., Collier M. and Verschaeve L. Cytogenetic investigations on microwaves emitted by a 455.7 MHz car phone. // Fol. Biol. 2000. Vol. 46. P. 175-180.

122. Maes A., Collier M., Slaets D. and Verschaeve L. Cytogenetic effects of microwaves from mobile communication frequencies (954 MHz). // Electro. Magnetobiol. 1995. Vol. 14. P. 91-98.

123. Maes A., Collier M., Slaets D., Verschaeve L. 954 MHz microwaves enhance the mutagenic properties of mitomycin C. // Environ. Mol. Mutagen. 1996. Vol. 28, № 1. P. 26-30.

124. Maes A., Collier M., Van Gorp U., Vandoninck S., Verschaeve L. Cytogenetic effects of 935.2MHz (GSM) microwaves alone and in combination with mitomycin C. // Mutat. Res. 1997. Vol. 393, № 1-2. P. 151-156.

125. Maes A., Collier M., Versehaeve L. Cytogenetic effects of 900 MHz (GSM) microwaves on human lymphocytes. // Bioelectromagnetics. 2001. Vol. 22, № 2. P. 91-96.

126. Maes A., Versehaeve L., Arroyo A., De Wagter C. and Vercruyssen L. In vitro cytogenetic effects of 2450 MHz waves on human peripheral blood lymphocytes. // Bioelectromagnetics. 1993. Vol. 14. P. 495-501.

127. Malyapa R.S., Ahern E.W., Straube W.L., Moros E.G., Pickard W.F., Roti Roti J.L. Measurement of DNA damage after exposure to 2450 MHz electromagnetic radiation. // Radiat. Res. 1997a. Dec. Vol. 148, № 6. P. 608-617.

128. Manikowska E., Luciani J.M., Servantie В., Czerski P., Obrenovitch J., Stahl A. Effects of 9.4 GHz microwave exposure on meiosis. // Experientia. 1979. Vol. 35. P. 388-390.

129. Marek F., Ondracek J., Brunnhoffer V. The effect of repeated microwave irradiation on the frequency of sex-linked recessive lethal mutations in Drosophila melanogaster. II Mut. Res. 1985. №2-3. P. 163-167.

130. McNamee J.P., Bellier P.V., Gajda G.B., Lavallee B.F., Marro L., Lemay E.P. and Thansandote A. No evidence for genotoxie effects from 24 h exposure of human leukocytes to 1.9 GHz radiofrequency fields. // Radiat. Res. 2003. Vol. 159. P. 693-697.

131. McNamee J.P., McLean J.R.N., Ferrarotto C.L., Bellier P.V. Comet assay: rapid processing of multiple samples. Mutat. Res. 2000. Vol. 466. P. 63-69.

132. McRee D.I., MacNichoIs G., Livingston G.K. Incidence of sister chromatid exchange in bone marrow cells of the mouse following microwave exposure. // Radiat. Res. 1981. Vol. 85. P. 340348.

133. Meltz M.L. Radiofrequency exposure and mammalian cell toxicity, genotoxicity and transformation. // Bioelectromagnetics Supplement. 2003. Vol. 6. P. 196-213.

134. Meltz M.L., Eagan P., Erwin D.N. Absence of mutagenic interaction between microwaves and mitomycin С in mammalian cells. // Environ. Mol. Mutagen. 1989. Vol. 13. P. 294-303.

135. Meltz M.L., Eagan P., Erwin D.N. Proflavin and microwave radiation: Absence of a mutagenic interaction. // Bioelectromagnetics. 1990. Vol. 11. P. 149-157.

136. Meltz M.L., Walker K.A., Erwin D.N. Radiofrequency (microwave) radiation exposure of mammalian cells during UV-Induced DNA repair synthesis. // Radiation Res. 1987. Vol. 110. P. 255-266.

137. Mitchel R.E., Birnboim H.C. Triggering of DNA strand breaks by 45 degrees С hyperthermia and its influence on the repair of gamma-radiation damage in human white blood cells. // Cancer Res. 1985. Vol. 45, № 5. P. 2040-2045.

138. Miyakoshi J., Nakahara Т., Ding G-R., Wake K., Taki M. Effect of high-frequency electromagnetic fields on cell growth, mutation and DNA strand breaks. // Abstracts for the Bioelectromagnetics Society Annual Meeting. 2003. June 22-27. P. 337.

139. Miyakoshi J., Yoshida M., Nakahara Т., Wake K., Taki M. Genotoxic effects of ELF and RF fields in cultured mammalian cells. // Abstracts for the Bioelectromagnetics Society Annual Meeting. 2002. June 23-27. P. 87.

140. Natarajan M, Vijayalaxmi, Szilagyi M, Roldan FN, Meltz ML. NF-кВ DNA-binding activity after high peak power pulsed microwave (8.2 GHz) exposure of normal human monocytes. // Bioelectromagnetics. 2002. Vol. 23, № 4. P. 271-277.

141. Olive P.L., Banath J.P., Durand R.E. Heterogeneity in radiationinduced DNA damage and repair in tumor and normal cells using the "comet" assay // Radiat Res. 1990. Vol. 122. P. 86-94.

142. Olive P.L., Wlodek D., Banath J.P. DNA Double-Strand Breaks Measured in Individual Cells Subjected to Gel Electophoresis. // Cancer Research. 1991. Vol. 51, № 1. Sep. P. 4671-4676.

143. Olivieri G., Bodycote J., Wolff S. Adaptive response of human lymphocytes to low concentrations of radioactive thymidine. Science. 1984. Feb. 10. Vol. 223, № 4636. P. 594-597.

144. Olsen RG, Lin JC. Microwave-induced pressure waves in mammalian brains. // IEEE Trans Biomed Eng. 1983. Vol. 30. P. 289-294.

145. Ostling O., Johanson K.J. Microelectrophoretic study of radiation-induced DNA damages in individual mammalian cells. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1984. Aug 30. Vol. 123, № 1. P. 291-298.

146. Pakhomov A.G., Akyel Y., Pakhomova O.N., Stuck B.E., Murphy M.R. Current state and implications of research on biological effects of millimeter waves: a review of the literature. // Bioelectromagnetics. 1998. Vol. 19. P. 393-413.

147. Pakhomov A.G., Doyle J., Stuck B.E., Murphy M.R. Effects of high power microwave pulses on synaptic transmission and long term potentiation in hippocampus. // Bioelectromagnetics. 2003. Vol.24. P. 174-181.

148. Pay T.L., Beyer E.C., Reichelderfer C.F. Microwaves effects on reproductive capacity and genetic transmission in Drosophila melanogaster. IIJ Microw Power. 1972. Vol. 7. P. 75-82.

149. Prabhakara K., Murthy S.K. Hyperthermic induction of premature chromosome condensation in human lymphocytes. // Mut. Res. 1995. Vol. 331, № 2. P. 175-180.

150. Raslear TG, Akyel Y, Bates F, Belt M, Lu ST. Temporal bisection in rats: the effects of high-peak power pulsed microwave irradiation. // Bioelectromagnetics. 1993. Vol. 14. P. 459-478.

151. Sagripanti J.-L., Swicord M.L. DNA structural changes caused by microwave radiation. // Int. J. Radiat. Biol. 1986. Vol. 50. P. 47-50.

152. Sagripanti J.-L., Swicord M.L., Davis C.C. Microwave effects on plasmid DNA. // Radiation. Res. 1987. Vol. 110. P. 219-231.

153. Sarimov R., Malmgren L.O.G., Markov E., Persson B.R.R., Belyaev I.Y. Non-thermal GSM microwaves affect chromatin conformation in human lymphocytes similar to heat shock. // IEEE Transactions on Plasma Science. 2004. Vol. 32. P. 1600-1608.

154. Sarkar S, Ali S, Behari J. Effect of low power microwave on the mouse genome: a direct DNA analysis. // Mutat Res. 1994. Jan. Vol. 320, № 1-2. P. 141-7.

155. Saunders R.D., Kovvalczuk C.I., Sienkiewicz Z.J. Biological Effects of Exposure to Nonionising Electromagnetic Fields and Radiation: III. Radiofrequency and Microwave Radiation. // National Radiological Protection Board, Chilton, UK, NRPB-R240, 1991.

156. Scarfi M.R., Lioi M.B., d'Ambrosio G., Massa R., Zeni O., Petro R., Berardino D. Genotoxic effects of Mitomycin-C and microwave radiation on bovine lymphocytes. // Electro- and Magnetobiology. 1996. Vol. 15. P. 99-107.

157. Schlatterer К., Gminski R., Tauber R., Fitzner R. Genotoxic effects of RF-EMF on cultured cells in vitro. II Abstracts for the Bioelectromagnetics Society Annual Meeting. 2003. June 22-27. P. 130.

158. Schlatterer K., Tauber R., Fitzner R. Radiofrequency EMF and DNA strand breaks. // Abstracts for the Bioelectromagnetics Society Annual Meeting. 2002. June 23-27. P. 226.

159. Schmid W. The micronucleus test.//Mut.Res. 1975. V. 31. P. 9-15.

160. Shckorbatov Y.G., Grigoryeva N.N., Shakhbazov V.G., Grabina V.A., Bogoslavsky A.M. Microwave irradiation influences on the state of human cell nuclei. // Bioelectromagnetics. 1998. V. 19. P. 414-419.

161. Speit Gilnter, Trenz Kristina, Schiitz Petra, RothfuB Andreas, Merk Oliver. The influence of temperature during alkaline treatment and electrophoresis on results obtained with the comet assay. // Toxicology Letters. 1999. Vol. 110. P. 73-78.

162. Sykes P.J., McCallum B.D., Bangay M.J., Hooker A.M., Morley A.A. Effect of Exposure to 900 MHz Radiofrequency Radiation on Intrachromosomal Recombination in pKZl Mice. Radiat. Res. 2001. V. 156, №5. P. 495-502.

163. Tice R.R., Hook G.G., Donner M., McRee D.I. and Guy A.W. Genotoxicity of radiofrequency signals. I. Investigation of DNA damage and micronuclei induction in cultured human blood cells. // Bioelectromagnetics. 2002. Vol. 23. P. 113-126.

164. Trosic I., Busljeta I., Kasuba V. and Rozgaj R. Micronucleus induction after whole-body microwave irradiation of rats. // Mutat. Res. 2002. Vol. 521. P. 73-79.

165. Trosic I., Busljeta I., Modlic B. Investigation of the genotoxic effect of microwave irradiation in rat bone marrow cells: in vivo exposure. // Mutagenesis. 2004. Vol. 19, № 5. P. 361-364.

166. Vailyeva E., Forgac M. Interaction of the clathrincoated vesicle V-ATPase with ADP and sodium azide.//J. Biol. Chem. 1998. Vol. 273. P. 23823-23829.

167. Verschaeve L., Maes. Genetic, carcinogenic and teratogenic effects of radiofrequency fields. // Mut. Res. 1998. Vol. 410. P. 141-165.

168. Vijayalaxmi, Leal B.Z., Szilagyi M., Prihoda T.J. and Meltz M.L. Primary DNA damage in human blood lymphocytes exposed in vitro to 2450 MHz radiofrequency radiation. // Radiat. Res. 2000. Vol. 153. P. 479-486.

169. Vijayalaxmi, Logani M.K., Bhanushali A., Ziskin M.C. Genotoxicity in mice exposed to millimeter wanes. // Abstract book Twenty-Sixth Annual Meeting. 2004. June 20-24. P. 86.

170. Vijayalaxmi, Natarajan M., Meltz M.L., Wittier M.A. Proliferation and cytogenetic studies in human blood lymphocytes exposed in vitro to 2450 MHz radiofrequency radiation, // Int. J. Radiation Biol. 1997a. Vol. 72. P. 751-757.

171. Vijayalaxmi, Obe G. Controversial cytogenetic observations in mammalian somatic cells exposed to radiofrequency radiation. // Rad. Res. 2004a. Vol. 162. P. 481-496.

172. Vijayalaxmi, Pickard W.F., Meltz M.L., Bisht K.S., Roti Roti J.L. Micronuclei in human blood lymphocytes exposed to radiofrequency radiation. // Abstract collection Bioelectromagnetics Society Annual Meeting. 2001. June 10-14. P. 40.

173. Vijayalaxmi, Sasser L.B., Morris J.E., Wilson B.W., Anderson L.E. Genotoxic Potential of 1.6 GHz Wireless Communication Signal: In Vivo Two-Year Bioassay. // Radiat. Res. 2003. Vol. 159, №4. P. 558-564.

174. Vijayalaxmi, Tice R.R., Strauss G.H.S. Assessement of radiation-induced DNA damage in human blood lymphocytes using the single-cell gel elecrtophoresis. // Mutat. Res. 1992. Vol. 271. P. 243252.

175. Vogelstein В., Pardoll D.M. and Coffey D.S. Supercoiled Loops and Eucaryotic DNA Replication. // Cell. 1980. Vol. 22. Nov. P. 79-85.

176. Warters R.L., Brizgys L.M. Apurinic site induction in the DNA of cells heated at hyperthermic temperatures.//J. Cell Physiol. 1987. Vol. 133, № 1. P. 144-150a.

177. Weber J., Senior A.E. Effects of the inhibitors azide, dicyclohexylcarbodiimide, and auroventin on nucleotide binding to the three Fl-ATPase catalytic sites measured using specific tryptophan probes. //J. Biol. Chem. 1998. Vol. 273. P. 33210-33215.

178. Welsh J., Petersen C., McClelland M. Polymorphisms generated by arbitrarily primed PCR in the mouse: application to strain identification and genetic mapping. // Nucl. Acids Res. 1991. Vol. 19. P. 303-306.

179. Williams G.M. Comment on "Acute low-intensity microwave exposure increases DNA single-strand breaks in rat brain cells" by Henry Lai and Narendra P. Singh. // Bioelectromagnetics. 1996. Vol. 17. P. 165. letter.

180. Zotti-Martelli L., Peccatori M., Scarpato R. and Migliore L. Induction of micronuclei in human lymphocytes exposed in vitro to microwave radiation. // Mutat. Res. 2000. Vol. 472. P. 51-58.