Физиология криоустойчивости и криосохранения культивируемых in vitro клеточных штаммов растений тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, доктор биологических наук Попов, Александр Сергеевич

• Попов, Александр Сергеевич
• доктор биологических наук
• 1998

Оглавление диссертации доктор биологических наук Попов, Александр Сергеевич

1. ВВОДНАЯ

ГЛАВА.

1.1. Актуальность работы.

1.2. История проблемы криохранения генофонда.

1.3. Особенности криосохранения культивируемых клеток растений- II

1.4. Цели и задачи исследования

1.5. Научная новизна работы

1.6. Практическое значение исследования - I?

1.7. Апробация работы

2. ГЛАВА 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ:

ОСНОВНЫЕ МЕХАНИЗМЫ КРИОПОВРЕЖДЕНМЯ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ

2.1. Образование льда

2.2. Влияние solution effects

2.3. Обезвоживание клеток и плазмалемма

3. ГЛАВА 3. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ:

КРИОСОХРАНЕНИЕ КЛЕТОЧНЫХ ШТАММОВ РАСТЕНИЙ

3.1. Поиски подходов к решению проблемы

3.2. Процедура криосохранения

3.2.1. Специальное предварительное культивирование (рге^отп!!)

3.2.2. Сбор и концентрирование клеточной культуры

3.2.3. Криозащита

3.2.4. Глубокое замораживание

3.2.4.1. Программное замораживание

3.2.4.2. .Упрощенные способы замораживания

3.2.4.3. Витрификация

О 9 Ц

О » к^ • Хранение

О • bj

6. Оттаивание

О о гу л-/ . К/ . ( I

Возобновление роста клеток - рекультивирование

2.8. Характеристики восстановленных клеточных культур

4. ГЛАВА 4. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ:

ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

4.1. Объекты

4.2. Методы

5. ГЛАВА 5. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ: РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕД0ВАНМЯ-103 5.1. Исследование физиологического состояния клеточных культур

J « i » и

1.1. Физиологические особенности культуры клеток моркови

5.1.2. Суспензионные культуры клеток диоскорен дельтовидной -112 Каллусные клеточные культуры диоскорей кавказской и балканской -119 5Л.4. Суспензионные культуры клеток женьшеней Рапах ginseng,

Р. quinquefoliua (американского), Р. Japonicua

5.2. Влияние криопротекторов на выживаемость

5.2.1. Дополнительная криозащита клеток моркови

5.3. Действие специального предварительного культивирования (подготовка к криосохранению)

5.3.1. Закаливание суспензионных клеточных культур

5.3.2. Снижение водного потенциала питательной среды

5.3.3. Эффект пролина и других антистрессовых аминокислот

5.3.4. Влияние краткой инкубации при пониженной температуре

5.4. Исследования крио- и осмоустойчивости плазмалеммы клеток растений in vitro

5.4.1. Флуориметрический метод определения деструкций плазмалеммы

5.4.2. Повреждения плазмалеммы клеток диоскореи при замораживании-оттаивании и эквиосмотическом сжатии

5.4.3. Повреждения плазмалеммы клеток женьшеня при замораживании-оттаивании и эквиосмотическом сжатии

5.4.4. Влияние глубокого замораживания на К'-стимулируемую Mg2+-saBHCHMyro Н+-АТФазу плазмалеммы клеток женьшеня штамма Ж-2

5.4.4.1. Модификация метода выделения везикул плазмалеммы для культивируемых клеток женьшеня штамма Ж-2

5.4.4.2. Активность K+-, Mg2+-, Н+-АТФазы плазмалеммы контрольной и закаленной культур клеток женьшеня штамма Ж-2 до и после глубокого замораживания

5.5. Значение скорости замораживания и процессов льдообразования в растворе криопротекторов для выживаемости клеток

5.5.1. Изучение процессов кристаллизации криозащитных растворов

5.5.2. Обеспечение плавного обезвоживания клеток при инициации кристаллизации

5.6. Исследование восстановления клеточных и тканевых культур после оттаивания из жидкого азота

5.6.1. Оттаивание

5.6.2. Изучение концентрационных градиентов при удалении криопротекторов и рекультивировании клеток

5.6.3. Физиологические, цитологические и биохимические характеристики клеточных культур, восстановленных после длительного хранения в жидком азоте

5.7. Регенерация растений после криохранения их клеточных культур

6. ГЛАВА 6. АНАЛИЗ ПОЛУЧЕННЫХ ДАННЫХ И РАЗРАБОТКА КОНЦЕПЦИИ

КРИОУСТОИЧИВОСТИ (ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ)

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Физиология криоустойчивости и криосохранения культивируемых in vitro клеточных штаммов растений»

I.I. Актуальность работы.

В условиях экологического неблагополучия как в глобальном масштабе, так и в России и, в особенности, в отдельных ее регионах проблема сохранения генофонда растений, входя в общую проблему охраны живой природы, приобрела особое значение. Растения важны не только как источник пищи, лекарственного и другого технологического сырья. Зеленые фотосинтезирующие растения, в особенности леса -главные создатели нынешнего баланса кислорода в атмосфере Земли, пока еще поддерживающие его несмотря на весь антропогенный прессинг и тем самым обеспечивающие само существование высших форм жизни. Растения удовлетворяют не только материальные, но и духовные потребности человека. Но многие виды растений в опасности. В России нуждаются в охране около 4000 видов, из которых 533 уже внесено в Красную Книгу, в том числе 440 покрытосеменных, а 76 находятся под непосредственной угрозой исчезновения [ Красная Книга, 1988 ]. Сохранение разнообразия видов, подвидов, рас и сортов (в особенности местных) сельскохозяйственных растений и их диких сородичей - непременное условие широкой селекционной работы. Традиционных средств сохранения биологического разнообразия растений (заповедники, ботанические сады, постоянно поддерживаемые полевые коллекции и коллекции семян) в силу присущих им ограничений давно уже недостаточно. Даже хорошо оснащенные коллекции семян при низких положительных температурах не обладают необходимой надежностью для длительного хранения [ Зайцев В.А., Лихачев B.C., 1985 ].

Развитие методов культивирования In vitro клеток, тканей и микроорганов (апикальные меристемы побегов, зиготические и соматические эмбрионы) растений позволило создать биотехнологию поддержания и хранения в условиях пониженного метаболизма (депонированне) мериклонов оздоровленных растеньиц в пробирках. Полевые коллекции важнейших вегетативно размножаемых растений были дополнены и частично заменены коллекциями мериклонов суперэлитного материала, которые обеспечили надежное хранение и резкое сокращение потребных площадей: 200 - 400 образцов при диаметре сосудов 15-50 мм и 5 сосудах на образец занимают лишь I м2 в специальной лаборатории [ Kartiia К., 1985 b ].

Однако, коллекции in vitro требуют значительных непроизводительных затрат ручного труда, энергии, реактивов. Для поддержания клеточных штаммов растений, которые приобрели уже не только чисто научное, но и производственное значение, такие коллекции являются вынужденным решением, далеким от оптимального, поскольку растущие постоянно клетки in vitro (за очень редкими исключениями) генетически нестабильны [ Шамина З.Б., Бутенко Р.Г. и др., 1966; Тогтеу J., 1967; D'Amato F., 1975; Шамина З.Б., 1978; Gould А., 1982 3. Также нестабильны длительно культивируемые линии клеток животных, штаммы микроорганизмов, но для большинства этих объектов давно уже разработаны рутинные методы криохранения, исключающие любые биохимические процессы и обеспечивающие состояние анабиоза.

Следовательно, проблема длительного хранения генофонда растений и их клеточных штаммов стала проблемой криосохранения семян, апексов побегов, эмбрионов и клеток in vitro. Это впервые понято около 30 лет назад [ Туманов И.И., Бутенко Р.Г. и др.,1968; Quatrano R., 1968 ], подчеркнуто в проблемных статьях [ Street Н., 1975; Неп-siiaw G., 1975; Бутенко Р.Г., Попов А,С., 1979 3 и стратегия данного направления продолжает разрабатываться [ Stuslmofi С., 1991; Withers L., 1992; Iwanaga М., 1993; Pay м., 1994 3. Для криохранения генофонда следует прежде всего использовать семена, пыльцу и апексы побегов, которые в культурах in vitro, в отличие от клеток. почти всегда регенерируют исходный генотип. Это особенно важно для вегетативно размножаемых растений, отдельных элитных экземпляров, материнских и трансгенных форм. По криохранению семян проведены хорошие отечественные работы В.Ю.Молодкиным [ 1987 3, В,Л.Тихоновой [ 1985, 1992 ], Т.Ф.Стрибуль [ 1993 3. Совместно с рядом авторов мы провели успешные эксперименты по криосохранению апексов кар тофеля [ А.В.Манжулин и др. 1982, 1983; К.В.Донец и др., 1991; Попов A.C., Волкова Л.А. и др., 1991 3, наперстянки Е Diettrich. В., Wolf Т. et al., 1987 3, ромашки Е Diettrich В., Donath Р. et ab, 1990 ] и земляники садовой Е Высоцкая О.Н., Попов A.C., 1996 3.

Однако в данную работу мы не включаем эти опыты, т.к. меристемы побегов являются отдельной экспериментальной системой, более сложной, чем клетки In vitro. Апекс - организованная структура, орган, состоящий из ряда тканей, взаимодействия клеток которого, выживших после криохранения, определяют возможность последующей прямой (без нежелательного каллусообразования) регенерации растений. В настоящем исследовании мы ограничиваемся проблемой криосо-хранения клеточных штаммов. Решение этой проблемы позволило бы гарантировать неизменность хранимых образцов и резко сократить затраты на коллекцию и требуемую площадь, т.к. в криобанке (например, в нашем) 15000 ампул объемом до 2 мл каждая (5-50 ампул на образец) размещаются на I м^ и еще возможно уплотнение хранения. Таким образом, криоустойчивость клеток и тканей растений in vitro, их естественная и искусственная защита от криоповреждений стали важным, первоочередным направлением исследований.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Попов, Александр Сергеевич

вывода.

1. Выдвинута и экспериментально обоснована концепция формирования крио у с тойчиео с ти клеточных штаммов, тканей, микроорганов растений, которая использует физиологические принципы как предотвращения образования губительного внутриклеточного льда и ослабления чрезмерного сжатия протопласта, так и структурной модификации наружной клеточной мембраны и повышения ее стойкости при дегидратации и регидратации клеток.

2. Для обеспечения криоус тойчиво с ти клеточных штаммов in vitro предложена система криозащиты, включающая совместное применение эндо- и экзоцеллюлярных криопротекторов (ДМСО, глицерин, трегало-за, сахароза, маннит и др.).

3. Изучена криоуотойчивость (глубокое замораживание-хранение в жидком азоте-оттаивание) 29 клеточных штаммов in vitro, полученных от 18 видов растений (в том числе впервые Dioscorea deltoiúea, D. caucas iса, D.bal canica, Panax ginzeng, P.quinquéfol ins, P.japonl-cus, Trit torn timopheevi, Hhaponticvm cartTumoiûes). Криоустойчивы лишь слабовакуолизированные клетки, сосредоточенные в период активного деления в агрегатах-центрах размножения. Сокращение цикла субкультивирования и повышение плотности культуры увеличивали выживаемость таких агрегатов в несколько раз. Успешное криосохране-ние возможно лишь при максимальной жизнеспособности клеточных культур, наблюдаемой у большинства из них в первой половине экспоненциальной фазы роста. Но для ряда длительно культивируемых in vitro клеточных штаммов максимальная жизнеспособность и оптимальная криозащита недостаточны для толерантности к стрессам глубокого замораживания, оттаивания и последующего высева.

4. Выдвинуто представление о необходимости физиологической подготовки к криосохранению клеток и микроорганов растений и разработана система специального предварительного культивирования, » позволяющая большему числу клеток успешно преодолеть эту экстремальную процедуру и обеспечить возобновление роста культуры. Наряду с применением маннита предложены три новых способа предкульти-вирования: закаливание (начиная с 12° и до 2,J, 3 нед) суспензий клеток с повышением концентрации сахарозы, добавление некоторых аминокислот и инкубация суспензий при 9-10° в течение 18-20 ч; сочетание 2-го и 3-го способов было аддитивно.

5. У штаммов диоокореи дельтовидной криоустойчивость коррелирует с преобладанием в их популяциях ди- и триплоидных клеток и предкультивирование крионеустойчивого штамма Д-I с аминокислотами привело к такому же преобладанию за счет снижения числа тетра- и полиплоидных наборов хромосом.

6. Криоустойчивость in yitro лишь отчасти связана с содержанием растворимых Сахаров и свободной воды в клетках, что следует из несоответствия между многократным возрастанием выживаемости клеточных штаммов D.deltoidea и Р.ginseng и увеличением Сахаров и/или уменьшением оводненности. Наряду с этими процессами должны функционировать и другие физиологические механизмы повышения криоустой-чивости клеток, вероятно - на плазмалемме, которая является главной мишенью криоповреждения.

7. О помощью разработанного нами флуориметрического метода выявлены деструктивные повреждения плазмалеммы, нарушающие ее непрерывность и полупроницаемость и приводящие к полной проницаемости и, следовательно, гибели клетки. Метод однозначно показывает количество клеток с такими повреждениями и позволил обнаружить две популяции, резко отличающихся по криоустойчивости, в суспензионных культурах всех исследованных клеточных штаммов столь отдаленных видов, как Р.ginseng и D.cteltotclea.

8. На этих 5 штаммах впервые установлено почти полное совпадение между крио- и осмоустойчивостью клеток, т.е. их устойчивостью в процессе дегидратации (плазмолиза) и регидратации (деплазмолиза) при околонулевой температуре без замораживания. С помощью флуори-метрического метода обнаружено нескольких типов деструктивных повреждений плазмалеммы, происходящих во время плазмолиза и/или деплазмолиза, развитие которых зависит от присутствия криопротектора (ДМСО), подготовки клеток и степени их сжатия при замораживании или в зквиосмоляльных растворах. Соотношение разных типов повреждений различно у клеток разных штаммов и видов.

9. В условиях медленного глубокого замораживания наблюдаемые изменения К+-стимулируемой 1§с+-зависимой Н+--АТФазы плазмалеммы не коррелируют с гибелью клеток. Значит, изменения Н+-АТФазы не могут быть первопричиной деструктивных повреждений наружной клеточной мембраны. Ответственными за такие повреждения могут быть, вероятно, конфигурационные изменения ее бислоя, нарушающие его непрерывность и вызванные его дегидратацией и фазовыми переходами липидов.

10. В целях интенсификации рекультивирования клеток обеспечено быстрое удаление токсичных криопротекторов и постепенное снижение гтшеросмотичности криозащитного раствора с помощью физиологичного, щадящего способа.

11. После многолетнего криосохранения и возобновления роста штаммов получено точное восстановление исходного образца их биосинтетической активности, а также эмбриогенных, морфологических, цитогенетических и ростовых характеристик. 'Тем самым доказана возможность криобанка сохранить в клеточной культуре без нарушений генетический потенциал данного вида.

12. После криосохранения восстановленные клеточные штаммы могут регенерировать растения так же, как и до замораживания (проростки моркови, растения картофеля in vitro, реликтовые исчезающие виды Dloscorea bal can tea и D.caucas tea - in vitro и in vivo). Эмб-риогенные и морфогенетические потенции в результате криосохранения не изменялись. Максимальный испытанный срок успешного криосохране-ния - 12 лет (морковь), хранение продолжается более 20 лет.

13. Впервые доказано, что при криосохранении клеток, тканей и микроорганов растений в процессе программного замораживания целесообразно применять инициацию кристаллизации и скорость первого этапа замораживания 0,25 - 1,0 иС/мин. Разработанный режим охлаждения при наличии криопротекторов (ДМСО) обеспечивал отсутствие губительного внутриклеточного льда по крайней мере до -27°. Следовательно, в клетках практически не оставалось воды, способной замерзнуть.

Для реализации данного режима разработаны три устройства к программным замораживателям для инициации кристаллизации одновременно в большом количестве ампул с клетками без нарушения стерильности, что обеспечивает автоматическое проведение всего процесса замораживания (от помещения ампул в аппарат и до переноса их в жидкий азот). Одно из этих устройств (А.С. СССР Л I440137) с 1988 г. установлено на нескольких моделях программных замораживателей, в том числе на нашем аппарате 3PK-I и работает надежно с любыми программами.

14. В результате проведенных исследований разработаны физиологические основы уникального биотехнологического способа сохранения генофонда растительных клеточных культур in vitro и растений путем криоконсервации, т.е. помещения клеток, тканей и микроорганов в жидкий азот ( -196°С) с последующим оттаиванием, восстановлением роста культур и регенерацией растений. Этот способ уже позволил сохранить генофонд 18 клеточных штаммов (из них 2 регенерировали исчезающие растеши 1п у!уо) 12 видов в течение до 20 лет. В основе способа лежит повышение природной криоустойчивости с помощью оптимизации криозащиты, специального предварительного культивирования,, режима охлаждения и рекультивирования после оттаивания. 9

KJ «

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Как наши результаты, так и литературные данные, том числе полученные на клетках, культивируемых in vitro, свидетельствуют о многообразии и сложности процессов, которые вовлечены в формирование криоустойчивости клеток. Среди этих процессов естественно протекающие и специально применяемые экспериментаторами. И первые, и вторые процессы различны и последовательно сменяют друг друга на разных этапах предварительного культивирования, охлаждения и криозащиты. Более того: эти различия и последовательная смена процессов накладываются на морфо-физиологические характеристики разных клеток и различных компартментов растительной клетки, ее собственный рост и взаимодействия клеток между собой как в популяциях in vitro, так и, в особенности, в составе изолированных микроорганов, культивируемых хотя бы кратковременно. Тем самым происходят дополнительные модификации. Важнейшие модификации определяются как генотипическими характеристиками исходных растений, из которых были получены те или иные культуры [Norgaara J., Baldurs-son S. et ai., 19931, так и генетическими, и эпигенетическими изменениями, произошедшими in vitro. Сложность и разнообразие процессов формирования криоустойчивости определяются, естественно, разнообразием механизмов повреждения, с которыми растительные клетки встречаются на разных этапах охлаждения и замораживания. С учетом известных к настоящему времени экспериментальных фактов, гипотез и предположений эти механизмы могут быть представлены в виде следующей схемы:

Схема развития процессов повреждения клеток при замораживании.

Основшепрвреждающемеханизш^

25°С - температура жизнедеятельности и культивирования. нарушения активности ферментов и метаболизма. дисульфидные и другие сшивки в белках. перестройки (фазовые переходы) липидов в мембранах, важнейшие - плазмалемма и (после нее) тонопласт.

0°С У

-Аг раствора

25 С нарушения АТФаз и систем активного транспорта. образование льда в растворе вокруг клеток, возможно повреждение этим льдом при быстром его росте, токсичность при увеличении концентраций солей, аминокислот и других веществ вне и внутри клето* при деплазмолизе при оттаивании возможен разрыв плазмолеммы вследствие ее непрочности - гибель, проникновение льда в клетку по той же причине -гибель клетки вследствие роста его кристаллов. У переход липидов плазмалеммы в фазу #тт - гибель ! при максимальном сжатии (коллапс клетки). f

-40 С - критическая температура для дегидратации клеток по ,. ! ' условию обезвоживания бислоя плазмалеммы. * 1 У

40иС - нижний предел для роста и перестроек кристаллов льда, О

196 С - температура хранения в жидком азоте,

А* средняя цифра, начало процесса в популяциях - около

-15°С,

КОШЦ ОосуЖДеНИй (СТр.2ёЬ-2и7 )

При снижении температуры и/или надлежащих экспериментальных воздействиях (подготовка, криозащита) в клетках, в соответствии с их генотипическими возможностями и физиологическим состоянием, могут развиваться процессы холодовой адаптации и формирования криоустойчивости. из которых основными следует считать следующие:

- накопление Сахаров, некоторых аминокислот, полипептидов и других веществ, связывающих воду, изменения иитоскелета и в результате:

- торможение растяжения клеток, повышение вязкости цитоплазмы, прочности и гибкости плазмалеммы;

- синтез белков холодового стресса и в том числе:

Ферментов, ведущих вышеперечисленные процессы, а также изменяющих синтез и обмен липидов, в особенности в плазмалемме; осмотинов - белков, повышающих осмотическое давление и препятствующих чрезмерному обезвоживанию и плазмолизу; белков-детоксикаторов; белков, стабилизирующих и экранирующих мембраны, в особенности плазмалемму; белков, непосредственно выполняющих криозащитную Функцию и снижающих At цитоплазмы; белков-антинуклеаторов. препятствующих образованию зародышей нуклеусов) кристаллов льда в цитоплазме, и наоборот -белков-нуклеаторов, секретируемых наружу и облегчающих кристаллизацию внешнего раствора и тем самым своевременное обезвоживание клеток.

Многие из перечисленных процессов уже показаны на растениях, как например активация генов "cor", регулируемых холодом и АБК и кодирующих синтез специфических полипептидов ( Mohapatra S., Poole R. et al., 1988; Robertson A., Gusta L. et al., 1988; Lin G., Quo W. et al., 1990; Anderson M,, Prasad T. et al., 1994: Lang ft «

Y., Mantyla et al., 1994 ], т.е. запускающих синтез части белков холодового стресса. Появились первые данные и о значении цитоске-лета для криоустойчивости [ Morisset 0., Gazeau 0. et al., 1994 ]. Естественно, что у разных объектов и даже у родственных клеточных штаммов относительная роль тех или иных биохимических процессов криоустойчивости различна. Поскольку на культивируемых In vitro клетках исследования этих процессов почти отсутствуют, а их проведение требует большой специальной и трудоемкой работы, в течение которой клетки могут измениться, то большинство работающих по криосохранению предпочитает эмпирически подбирать условия подготовки клеток и криозащиты. Мы действовали аналогично, максимально используя известные из литературы предпосылки, и в результате Институт физиологии растений им.К.А.Тимирязева РАН располагает теперь криобанком клеточных штаммов, список которых приведен на следующей странице и которые при необходимости могут быть восстановлены в активно растущем состоянии. Основное внимание было уделено штаммам-продуцентам. Криобанк этот все еще является единственным, уникальным в России, СНГ и сопредельных государствах.

Будущая, более универсальная технология криосохранения активно метаболизирующих клеток, тканей и микроорганов растений, вероятно, в большей мере будет использовать специальные экспериментальные разработки и способы, направленные на оптимизацию удаления свободной воды из возможно большего числа клеток как до, так и во время глубокого замораживания. Наряду с такими поисками следует ожидать применения улучшенных методов предварительного культивирования.

КЛЕТОЧНЫЕ ШТАММЫ РАСТЕНИЙ, ПОСТОЯННО ХРАНЯЩИЕСЯ Б ЕРМОЕАНКЕ (В ЖИДКОМ 330Т8, -196°С} ИФР РАН вид

Daucus carota (морковь дикая) Díosoorea cleltoiclea

Panax ginseng (женьшень настоящий) штамм М-34 Д-1

ДЙ-0.5 ДК-1 ДМ-8 Ж-1 Ж-2 ж-з

Ж-1 о В Коллекции ВСКЕ-ВР 5

6 8 7 3 1 о

NE -1

Г 3

Panas quinqué fо1ius (женьшень американский) Nicotiana sylvestris

Medicago sativa(люцерна посевная) Л-1

Solanum tuberosum (cv.Tava) КТ-4 индийский сорт картофеля) Rhaponticum cartharnoides левзея, маралий корень)

Tritioum tímoíeeví (пшеница) Triticurn aestivum

Rhs-1 Rhs-2

T-1

16

О "3

A a

34

ЦЮ--194 (адаптирована к NaOl)

Díosoorea baloanioa (органогенная каллусная ткань)

Dioscorea oauoasioa

КЛЕТОЧНЫЕ ШТАММЫ, ВОЗОБНОВИВШИЕ РОСТ и РЕГЕНЕРИРОВАВШИЕ РАСТЕНИЯ ПОСЛЕ ЖИДКОГО АЗОТА Díosoorea baloanioa (органогенная каллусная ткань) Díosoorea oauoasioa ( " !! " )

Solanum tuberosum (ov.Tava) KT-4

Dauous oarota M-34

КЛЕТОЧНЫЕ ШТАММЫ, ВОЗОБНОВЛЯВШИЕ РОСТ ПОСЛЕ ЖИДКОГО АЗОТА:

Rauwolfia serpentina Digitalis lanaia (наперстянка шерстистая)

Panax japonicus (женьшень японский)

Khaponticum cartharnoides

Polysоlas filioifolia

R-III

I VII эмбриоиды Ж-7

Rhs-8.

ШЫ

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Попов, Александр Сергеевич, 1998 год

1. Абропшикова (Саркисова) M.А. 1970. Получение культуры ткани Di oscar еа deli о lúea Wall.//"Поиски новых биологически активных веществ". М., ВИЛР, сс.82-85.

2. Аброшникова (Саркисова) М.А., Бутенко Р.Г., Синюхин A.M. 1971. Культуры тканей Dioscorea delioidea Wall, как продуценты стероидных сапонинов и генинов/УРастительные ресурсы, т.7, M 4, 517-524.

3. Бойко Г.Н. 1976. Изучение морозостойкости изолированных тканей вишни, яблони и груши//Физиол.биохим.культ.раст., т.8, JS I, 49-5:

4. Бутенко Р.Г. 1964. "Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений". М., Наука, 375 с.

5. Бутенко Р.Г., Слепян Л.И., Хретонова Т.И., Михайлова Н.В., Высоцкая Р.И. 1979. Изучение некоторых штаммов культур тканей трех видов Panax L. как возможных источников стимулирующих препаратов// Растительные ресурсы, т.15, M 2, 265-270.

6. Бутенко Р.Г., Попов A.C. 1979. Банк клеток растений возможности и проблемы//Природа, il 4, 3-11.

7. Бутенко Р.Г., Мясоедов H.A., Шамина З.Б., Слепян Л.И. 1982. Штамм Panax ginseng МФР Ж-2 продуцент биологически активных веществ женьшеня И(способ получения биологически активных веществ. Ав.Свид.СССР J« I058281, регистрация 01.08.1983.

8. Бутенко Р.Г., Мясоедов H.A., Шамина 8.В., Слепян Л.И. 1982. Штамм Panax ginseng ИФР Ж-3 продуцент биологически активных ве ществ женьшеня и способ получения биологически активных веществ. Ав.Свид.СССР № 1058282, регистрация 01.08.1983.

9. Бутенко P.P., Попов A.C., Волкова Л.А., Диттрих Б., Лукнер М. 1983. Жизнеспособность клеток растений при различных режимах глу бокого замораживания//Цитология, т.25, Л 10, II9I-II96.

10. Бутенко Р.Г., Каранова 0.1., Шамина З.Б., Пауков В.Н., Носов

11. A.М. 1986. Штамм культивируемых клеток растений ИФР ДМ-0,5 Dioscorea deltoíclea Wall., используемый для получения стероидных сапонинов с агликоном дисюгенином. Ав.Овид.ССОР № 1389283,per.15.12.198?.

12. Веселовский В.А., Веселова Т.В. 1990. "Люминесценция растений" М., Наука, 121 с.

13. Виленчик М.М. 1983. Сколько лет можно хранить зародышевые клетки в криоконсервированном состоянии без существенных повреждений генома? Пущино, НЦБИ АН ССОР, 20 с.

14. Волкова Л.А., Попов А.С., Носов А.М., Бутенко Р.Г. 1982. Сохранение биосинтетического потенциала клетками диоскореи (Dioseo-rea cíeltoidea Wall.) после криогенного хранения//Доклады АН СССР, т.265, » 2, 504-506.

15. Волкова Л.А., Попов А.С., Самыгин Г.А. 1984. Влияние аминокислот на суспензионную культуру клеток диоскореи дельтовидной и ее возобновление после хранения при -196и0//Физиология растений,т.31, 1 4, 632-638.

16. Волкова Л.А., Горская Н.В., Попов А.С., Пауков В.Н., Урманцева

17. B.В. 1986. Сохранение основных характеристик мутантных клеточных штаммов диоскореи после хранения при сверхнизких температурах//Физиология растений, т.33, № 4, 779-787.

18. Высоцкая О.Н., Попов А.С. 1996. Криоконсервация меристем земляники садовой (Fragaria * ашпазэа Ducfr.)//"Консервация генетических ресурсов". Материалы XIV раб. совещ. Пущино, ПНЦ РАН, с.136.

19. Грубишич Д., Чулафич Л., Боевич-Цветич Д. 1991. Регенерация диоскореи кавказской (Dioscorea caucasica Lipsky) и диоскореи балканской (Dioscorea balcanica Kosanin) в культуре in yltro/УФизио-догия растений, т.38, Jfc 5, I018-1023.- 301

20. Грэхем Е.Ф. 1977. Криоконсервация и биохимическая оценка спермы быков и баранов//"Физиология воспроизведения сельскохозяйственных животных". Харьков, сс.25-51 (с.43).

21. Данилова М.С. 1982. Хранение семян зерновых культур в зоне вечной мерзлоты.//Бюлл.ВИГ', Л 118, сс.34-36.

22. Донец Н.В., Мусин G.M., Попов A.C. X99I. Стабильность состава полиморфных белков растений картофеля, полученных из меристем после криогенного хранениях/Сельскохозяйственная биология, J№ 3, 76-83.

23. Зайцев В.А., Лихачев B.C. 1985. Резервы улучшения технологии длительного хранения семян мировой коллекции ВИР//Бюлл.ВМР, Л 152, сс.3-9.

24. Зоринянц С.Э., Смоленская И.Н., Носов A.B. 1993. Быстрорастущая суспензионная культура клеток и протопластов пшеницы 'Тимофеева //Физиология растений, т.40, № 2, 300-306.

25. Исабеков Б.М., Красавцев O.A. 1989. Осмотические свойства морозостойких протопластов//Физиология растений, т.36, Л 2, 214-219.

26. Каранова С.Л., Шамина З.Б. 1977. Изучение суспензионной культуры клеток Dioscorea deltoidea Wall.//Физиология растений, т.24, & 3, 486-490.

27. Каранова С.Л., Шамина З.Б., Раппопорт И.А. 1975. Влияние N-N-M (Н-нитро-Н-метилмочевины) на изменчивость клеточных популяций дио-скореи дельтовидной/УГенетика, т.II, Jfe 5, 35-40.

28. Каранова С.Л., Шамина З.Б., Бутенко P.P. 1978. Индуцированная генетическая изменчивость соматических клеток Dioaoorea del to idea Wal 1.//Генетика, т. 14, Мб, 987-994.

29. Коган Л.А. 1975. "Количественная газовая хроматография". М., Химия, 180 с.

30. Колоша О.И. 1990. Формирование морозостойкости пшеницы в связио02 —с лжшдным и жирнокислотным составом ее линий, изогенным по локу-сам VBN в геноме А,В,D.//2-й съезд Всес.общества физиологов растений, Минск, Тез.докл., М., с.44.

31. Красная Книга РСФСР. 1988. т.2 Растения. М., Росагропром-издат, 592 с.

32. Левитт Д. 1983. Повреждение и выживание после замораживания и связь с другими повреждающими воздействиями//"Холодостойкость растений", ред.Г.А.Самыгин, М., Колос, сс.10-22.

33. Максимов H.A. 1952. Избранные работы по засухоустойчивости и зимостойкости растений, т.2. Зимостойкость растений. М., Изд АН СССР, сс.185-240.

34. Манжулин A.B., Попов A.C., Бутенко Р.Г. 1982. Получение расте-ний-регенерантов из меристем Solanum tuberosum после хранения их в жидком азоте//Физиология растений, т.29, Л 4, 787-789.

35. Манжулин A.B., Бутенко Р.Г., Попов A.C. 1983. Влияние предварительной подготовки апексов картофеля на их .жизнеспособность после глубокого замораживания//Физиология раст., т.30, Ш 6, IX88-II93,

36. Мокроносов А.Т., Купцова E.G., Попов A.C., Кузнецов Вл.В. 1994. Генетическая коллекция как способ сохранения биоресурсов планеты// Вестник РАН, т.64, Ш II, 99I-I00I.

37. Молодкин В.Ю. 1984. Хранение семян зерновых бобовых и технических культур при сверхнизких температурах//Бюлл.ВИР, М 144, 38-40.

38. Молодкин В.Ю. 1987. "Методы консервации семян культурных расте1. О п и (ний при низких и сверхнизких температурах". Автореф. дисс. на соискание учен. степ, кандидата седьскохоз. наук, Л., ВИР им.Н.И.Вавилова, 18 с.

39. Мохамед A.A., Дмитриева H.H. 1977. Некоторые особенности культуры клеток моркови (Damns carota L.) при индукции соматического эмбриогенеза/УФизиология растений, т.24, Л 6, 1289-1292.

40. Николаева М.Г., Тихонова В.Л., Далецкая Т.В. 1992. "Долговременное хранение семян дикорастущих видов растений. Биологические свойства семян". Консервация генетических ресурсов. Пущино, 36 с.

41. Носов A.M. 1984. "Стероидные соединения культивируемых клеток Dioscorea cteltoidea Wall, при глубинном выращивании". Автореф. дисс. на соискание учен. степ, кандидата биол. наук, М., ИФР им. К.А.Тимирязева АН ССОР, 23 с.

42. Оголевец й.В. 1976. Изучение закаливания изолированной каллус-ной ткани древесных растений с разной морозостойкостью//Физиология растений, т.23, Л I, 139-145.

43. Орлова Й.В., Носов A.M., Лукша В.Г., Володин В.В. 1994. Синтез экдистероидов в растениях и культурах клеток W'uapont i сит caríTiamo-iúes Wllld. (II¡Jin) .//Физиология растений, т.41, Л 6, 907-912.

44. Ошмарина В.И., Шамина З.Б. 1982. Культура клеток Nicotiana sylvestrisi получение, рост, выбор селективной системы//Физиология растений, т.29, Л I, 161-167.

45. Ошмарина В.И., Шамина 8.Б., Шевякова Н.й. 1983. Характеристика резистентных к NaCl и этионину клеточных линий Nicotiana svlvestris//Физиология растений, т.30, $> 3, 527-536.

46. Пирс Э. 1962. "Гистохимия". М., ИЛ, 962 с.

47. Писецкая Н.Ф. 1970. К вопросу подбора питательной среды для культуры ткани женьшеня//Физиология растений, т.6, Л 4, 516-520.

48. Пичугин Ю.И. 1993. Итоги и перспективы поиска новых эндоцеллю-лярных криопротекторов//Проблемы криобиологии, Jfc 2, 3-1I.

49. Полевой В.В. 1989. "Физиология растений'". М.,Высш.школа,425 с.

50. Попов A.C. 1963. "К вопросу о роли органических перекисей в радиобиологическом эффекте". Автореф. дисс. на соискание учен, степ, кандидата биол. наук, М., АМН, II с.

51. Попов A.C. 1967. О роли органических перекисей в начальных процессах лучевого поражения животных/УРадиобиология, т.7, Jfe 6, 825—830.

52. Попов A.C. 1981. Криогенное хранение культур клеток растений/,/ "Культура клеток растений", ред.Р.Г.Бутенко. М., Наука, 150-162.

53. Попов A.C. 1984. "Методические указания по криоконсервации клеток и тканей растений". М., ВАСХНИЛ, 22 с.

54. Попов A.C. 1984. Значение криобанка клеток и меристем растений для их биотехнологического применения//"Биотехнология", М., Наука,w~х wuU •

55. Попов A.C. 1987. Криоконсервирование культивируемых тканей и клеток растений//'"Криобиология и биотехнология", ред.А.А.Дудаева. Киев, Наукова думка, I60-181.

56. Попов A.C. 1988. Криоконсервация клеток растений//"Методы культивирования клеток", Л., Наука, 70-77.

57. Попов A.C. 1993. Некоторые механизмы криоповреждения клеток растений in vitro и особенности их криосохранения//Физиология растений, т.40, Л 3, 485-496.- 305

58. Попов A.C. 1996. Криосохранение генофонда растений в культурах in vitro//"Консервация генетических ресурсов". Материалы XIVраб. совещ. Дущино н/Оке, ОНТИ ПЩ РАН, 128-129.

59. Попов A.C., Бутенко Р.Г., Глухова И.Н. 1978. Влияние условий подготовки и глубокого замораживания на возобновление суспензионной культуры клеток дикой моркови//Физиология растений, т.25, № 6, j-t-jh-j f .

60. Попов A.C., Бутенко Р.Г., Глухова И.Н. 1978. Способ сохранения клеток и тканей растений//Автор.Свид.СССР Л 865245, Б.И.Л 35,1981.

61. Попов A.C., Бутенко Р.Г. 1984. Устройство для замораживания живых биологических объектов в контейнерах//Автор.Свид.СССР1. Л 1097875, Б.И. Л 22.

62. Попов A.C., Волкова Л.А., Бутенко Р.Г. 1984. Способ консервирования живых клеток и тканей рас тений.//Автор. Свид. СССР

63. Л I144673, Б.И. Л 10, 1985.

64. Попов A.C., Волкова Л.А., Черняк Н.Д. 1986. Криобанк клеток и тканей растений: программа замораживания и некоторые методы подготовки и рекультивирования//"Культура клеток растений и биотехнология", ред.Р.Г.Бутенко. М., Наука, 219-222.

65. Попов A.C., Волкова Л.А. 1994. Криосохранение и некоторые изменения культур клеток диоскореи на среде без витаминов//Физиология растений, т.41, Л 6, 923-928.

66. Попов A.C., Донец Н.В., Исаков H.A., Бутенко Р.Г. 1989. Устройство для замораживания живых биологических объектов в контей-нерах/ЛЧатент России (Автор. Овид. СССР) М 1522005, Б.И. J# 42.

67. Попов A.C., Исаков H.A., Бутенко Р.Г. 1988. Устройство для замораживания живых биологических объектов в контейнерах//Автор. Свид. СССР Л> 1440137.

68. Попов A.C., Мхеидзе Д.М. 1976. Некоторые методические особенности длительного хранения лимфоцитов человека//Бюлл.зкспер.биол. мед., т.81, J® 6, 763-765.

69. Попов A.C., Черняк Н.Д., Бутенко Р.Г. 1982. Возобновление суспензионной культуры клеток женьшеня Рамах ginseng С.A.ley. после глубокого замораживания//Доклады АН СССР, т.262, ЯЗ, 765-768.

70. Попов A.C., Черняк Н.Д., Пауков В.Н. 1984. Совершенствование рекультивирования клеток и тканей растений после хранения в жидком азоте/УФизиология растений, т.31, №> 3, 602-605.

71. Попов A.C., Федоровский Д.Н. 1992. Повреждения плазмалеммы клеток диоскореи, культивируемых in vitro, в процессе их криосо-хранения//Физиология растений, т.39, Л 2, 335-343.

72. Оамыгин P.A. 1974. "Причины вымерзания растений". М., Наука,1. TQT п-i «У-L w «

73. Самыгин P.A. 1994. Причины повреждения клеток растений внеклеточным льдом//Физиология растений, т.41, Л 4, 614-625.

74. Самыгин P.A., Варламов В.Н., Матвеева Н.М. i960. О способности семян переносить сверхнизкие температуры//Физиология растений, т.7,1. Л I, 97-100.

75. Самыгин P.A., Волкова Л.А., Попов A.C. 1985. Сравнение разных методов для оценки состояния суспензионных и калдусных культур клеток различных растений//Физиология растений, т.32, Л 4, 813-818.

76. Самыгин P.A., Красавцев O.A. 1962. Замораживающий столик кмикроскопу//Физиология .растений, т.9, I 2, 257-260.

77. Олепян Л.И. 1968. Исследование фармакологической активности каллюсных тканей женьшеня, выращиваемых в условиях культуры in YitiW/Труды Ленинград. Химико-Фармацев, Инстит., т.26, 236-240.

78. Сопина Н.Ф., Карасев Г.О., Трунова Т.И. 1994. АБК как фактор закаливания суспензионной культуры пшеницы к морозу//Физиология растений, т.41, № 4, 546-551.

79. Степонкус П., Вист 0. 1983. Изменения плазмалеммы в результате закаливания и замораживания//"Холодостойкость растений", ред.Г.А. Самыгин. Ш., Колос, 64-79.

80. Сытник K.M., Мануильский В.Д. 1985. Криорезистентность мембран и вопросы консервации растений//Криобиология, J№ 2, 5-12.

81. Тихонова В.Л. 1985. "Стратегия мобилизации и сохранения генофонда редких и исчезающих видов растений" Консервация генетических ресурсов. Пущино, ОНТИ ПНЦ, 34 с.

82. Тихонова В.Л. 1992. "Долговременное хранение семян дикорастущих видов растений. Банки: сбор материала, документация, методики, режимы". Консервация генетических ресурсов. Пущино,ОНТИ ПНЦ, 20 с.

83. Трунова Т.И. 1965. Световой и температурный режимы при закаливании озимой пшеницы и значение олигосахаридов для морозостойкости //Физиология растений, т.12, Л I, 85-92.

84. Туманов И.И. 1979. "Физиология закаливания и морозостойкость, растений". М., Наука, сс.165-276.

85. Туманов И.И., Бутенко Р.Г., Оголевец И.В. 1968. Применение метода изолированных тканей для изучения процессов закаливания растительной клетки//Физиология растений, т.15, J 5, 749-756.

86. Туманов И.И., Красавцев O.A., Хвадин H.H. 1959. Повышение морозостойкости березы и черной смородины до -253й путем закаливания/ /Доклады АН ССОР, т.127, Л 6, I3ÖI-I3Ö3.

87. Туманов И.И., Красавцев O.A., Трунова Т.И. 1965. Выживание озимой пшеницы при -195° в результате витрификации/'/Доклады АН СССР, т.161, 14, 978-981.

88. Туманов И.М., Красавцев O.A. 1966. Выяснение условий, необходимых для нитрификации растительных клеток//Физиология растений, т.13, Ш I, 144-152.

89. Туманов И.М., Трунова Т.И. 1963. Первая фаза закаливания к морозу озимых злаков в темноте на растворах сахаров//Физиология растений, т.10, Л 2, 176-188.

90. Биотехнология сельскохозяйственных растений". м., Агропромиздат, 176-204.

91. Федоровский Д.Н., Попов A.C. 1992. Повреждения плазмалеммы различных штаммов диоскореи дельтовидной при криосохранении//Физиология растений, т.39, Л 3, 592-598.

92. Федоровский Д.Н., Черняк Н.Д., Попов A.C. 1993. Исследование повреждений плазмалеммы клеток женьшеня настоящего при криосохра-нении//Физиология растений, т.40, il I, I17-123.

93. Хохлова Л.П., Тимофеева O.A., Заботин А.И., Харитонова Л.Н.,- 309

94. Абдрахимова Й.Р., Бочарова М.А., Трунова Т.И, 1990, Изменения мембран и энергетических функций митохондрий озимой пшеницы при закаливании и действии карталина//Физиол. раст., т.37, Л 2, 308-316.

95. Чулафич Л., Грубишич Д.,Вуиичич Р., Волкова Л.А., Попов А.С. 1994. Соматический эмбриогенез In vitro диоскорей кавказской ибалканской и криосохранение их органогенных каллусных тканей//Фи-зиология растений, т. 41, I 6, 929-934.

96. Шамина З.Б. 1978. Генетическая изменчивость растительных клеток in vitro//"Культура клеток растений" Киев,Наукова душа,80-93.

97. Шамина З.Б., Бутенко Р.Г., Тарасов В.А. 1966, Цитологическое изучение культуры тканей табака//Генетика, т.2, 16 I, 70-75.

98. Шевякова Н.й. 1983. Метаболизм и физиологическая роль пролина в растениях при водном и солевом стрессе/УФизиология растений,т.30, Л 4, 768-783.

99. Шугаев А.Г., Урманцева В.В., Волкова Л.А. 1993. Влияние сали-цилгидроксамовой кислоты на дыхание и оксигеназную активность пе-роксидазы суспензионной культуры клеток люцерны.//Физиология растений, т.40, Л 3, 420-425.

100. D'Amato F. 1975. The Problem of Genetic Stability in Plant Tissue .and Cell Cultures//"Orop Genetic Resourses for Today and Tomorrow", O.Frankel, J.Hawk.es, eds., Cambridge, OU Press, 333-349.

101. Ancliordoguy Т., Carpenter J., Loomis S., Crowe J. 1988. Media nlsms of Interaction of amino acids with phospholipid bilayers during fresing//Biochim.Biophys.Acta M., v.946, Л 2, 299-306.

102. Ancliordoguy Т., Rudolph A., Carpenter J., Crowe J. 1987. Mode; of Interaction of Cryoprotectants with Membrane Phospholipids during Preesing/ZCryobiology, v.24, Л 4, 324-331.

103. Anderson I., Prasad 'Т., Martin В., Stewart 0. 1994. DIf- 310 tial gene expression in chilling-acclimated maize seedlings and evidence for the involvement of abscislc acid in chilling toleran-ce//Plant Physiol., v.105, № I, 331-336.

104. Arora R., Palta J. 1991. A loss In the plasma membrane ATPase activity ana Its recovery coincides with incipient freeze-thaw inJury and postthaw recovery in onion buld scale tissue/ZPlant Physiol., V.95, Л 3, 846-852.

105. Ashwood-Smith M., Frledmann G. 1979. Lethal and Chromosome Effects of Freezing, Thawing, Storage Time, and X-Irradiation on Mammalian Cells Preserved at -196° In DMSO//Cryobiology, v.16, Л 2, 132-140.

106. Ashworth E., Abeles P. 1984. Freezing Behavior of Water in Small Pores and Possible Role in the Freezing of Plant Tissues// Plant Physiol., v.76, Л 1, 201-204.

107. Bajaj Y.P.S. 1976. Regeneration of plants from cell suspensions frozen at -20, -70 and -196°C//Phislol.Plantarum, v.37,1. Л 4, 263-269.

108. Baja.* Y.P.S. 1979. Thechnology and Prospects of Gryopreserva-tlon of Germpiasm/ZEuphytlea, v.28, Л 2, 267-285.

109. Bajaj Y.P.S., ed. 1995. "Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol.32, Cryopreservation of Plant Germplasm I". BerlinHeidelberg, Springer-Verlag, 512 pp.

110. Ba,.'a,]' Y.P.S., Re inert J. 1977. Cryobiology of plant cell cultures .and establishment of gene-banks/VApplied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue -and Organ Culture". Re inert J., Baja; Y.P.S., eds., Berlin a. oths., Springer, 757-777.

111. Becquerel P. 1905. Action de 1'air llquide sur la vie de la gralne//C.R.Ac.Sci., v.140, № 25, 1652-1654.

112. Becquerel P. 1907. Recherches sur la vie latente des grains// Arm.Sci.Nat., ser.9, y.5, pp.193-311.

113. Benson E., Lynch P., Jones J. 1992. The detection of lipid peroxidation products in cryoprotected -and frozen rice cells: consequences for post-thaw survlval/ZPlant Science (Limerick), v.85, № 1 , 107-114.

114. Benson E., Lynch P., Jones J. 1995. The use of the iron chelating agent desferrioxamine In rice cell cryopreservation: a novel approach for Improving recovery/ZPlant Science (Limerick),1. V.110, J£ 2, 249-258.

115. Bergmann J. 1959. A new technique for Isolating and cloning single cells of higher plants//Nature,v.184,Jfe 4886 Suppl.9, p.648.

116. Bewley J., Krochko J. 1982. Desiccation-tolerance//"Physio-loglcal plant ecology 2". Berlin a.oths., Springer, pp.325-346.

117. Bhandal J., Hauptmann R., WIdliolm J. 1985. Trehalose as cryo-protectant for freeze preservation of carrot and tobacco cells// Plant Physiology, v.78, M 2, 430-432.

118. Bonnier L., Steponkus P. 1972. Freeze preservation of callus cultures of Chrysanthemum morI folium Ramat.//Hort Science, v.7,1. Jft 2, 194-197.

119. Bornrnan 0., Jansson E. 1980. Niootiana tabaccvm callus studies. X. ABA increases resistance to cold damage/VPhysiologia plan-tarum, v.48, Jfc 4, 491-494.-

120. Borochov A., Walker M.f Pauls K. 1989. Effects of cold acclimation on the morphological and physiological properties of alfalfa (Meclioago sativa) suspension culture cells//J.Plant Physiology, Y.I33, Jfc 6, 671-677.

121. Bradford M. 1976. A rapid and sensitive method for quantitation of quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding//Anal.Biochem., v.72, pp.248-254.

122. Briggs S., Haug A., Scheffer R. 1982. Localization of spin labels in oat leaf protoplasts/ZPIant Physiol., v.70, Jf 3, 662-667.

123. Butenko R.G., Chromova L.M., Sednina G.V., Kuchko A.A., Burgut in A.B., Komarnitsky I.K. 1984. New Porms of Potato Created by Cell and Protoplast Culture Methods//"Tissue Culture and RES", P.I

124. Rohiich, E.Bacsy, eds., Budapest, Akademial Kiado, pp.515-527.

125. Butenko R.G., Nlklforova I.D., Chernov V.A. 1988. Growth and. Morphogenesis In Cell Cultures of Spring Wheat under Stress Conditions and Selection of Tolerant Cell Lines//Potsdamer Borsch., May 30 June 3, Reiche-Heft 57, Potsdam, pp.9-19.

126. Butenko R.G., Popov A.S. 1984. The possibilities and problems of creating a plant cell ana tissue cryobank//"Man and Biosphere", M., Nauka, 1984, pp.229-242.

127. Carter S., Karl D. 1982. Inorganic phosphate assay with malachite green. An improvement an evaluation//J.Bloch.Biophys.Methods,v 7 T Q1. X ' V ' ' ' '

128. Gellarova E., Oernicka T., Vranova E., Brutovska R., Lapar M. 1992. Viability of Chamomllla recutita (L.) Rauschert Cellsafter Cryopreservation//Cryo-Letters, v.13, Jt 1, 37-42.

129. Chen H., Li P. 1981. Sequential Events in Potato Cold Acclimation// Japan-USA Cooperative Seminar "Plant Cold Hardiness", Abstracts, Sapporo, p.28.

130. Chen T., Gusta L. 1983. Abscisic Acid-Induced Pressing Resistance in Cultured Plant Cells/VPlant Physiol., v.73, » 1, 71-75.

131. Chen T., Kartha K., Constabel P., Gusta L. 1984 a. Freezing Characteristics of Cultured CatTvarantTma roseus (L.) G.Don. Cells Treated with Dimethylsulfoxide .and Sorbitol In Relation to Cryopreservation//Plant Physiol., v.75, to 3, 720-725.

132. Chen T., Kartha K., Leung N., Kurz G., Ghat son K., Constabel F. 1984 b. Cryopreservation of Alkaloid-Producing Cell Cultures of Periwinkle (Gathiranthus roseus)//Plant Physiol., v.75,№ 3,726-731.

133. Chen T., Kartha K., Gusta L. 1985. Cryoprcoervation of Wheat Suspension Culture and Regenerable Callus/7Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v.4, =№ 2, 101-109.

134. Gornejo M., Wong V., Blechl A. 1995. Cryopreservation callus: a source of protoplasts for rice transformation//Plant Cell Rep., v.l4, M 4, 210-215.

135. Crowe J., Crowe L., Carpenter J., Wistrom 0. 1987. Stabilization of cry phnMp'nn. ipiri Ml avers and proteins by su^ars/'/Blochem.1. J., 7.242, № 1 , 1-10.

136. Crowe J., Crowe L., Carpenter J., Rudolph A., Wlstrom C., Spargo B., Anchordoguy T. 1988. Interactions of sugars with mem-branes//Biochim.Blophys.Acta: Rev. Biomembranes, v.947 (MR17),2, 367-384.

137. Cudd A., Steponkus P. 1988. Lamellar-to-hexagonal HTT phasel. ~transitions in liposomes of rye plasma membrane lipids after osmotic dehydratlon//BIochim.BIophys.Acta, v.941, Jfc 2, 278-286.

138. Curatolo W., Neurlnger L. 1986. Effects of Oerebrosides on Model Membrane Shape//J.Biol.Chem., v.261, № 36, 17177-17182.

139. Cutler A., Saleem M., Kendall E., Gusta L., Georges P., Fletcher G. 1989. Winter Flounder Antifreeze Protein Improves the Gold Hardiness of Plant Tissues//J.Plant Physiol., v. 135, № 3, 351-354.

140. Cyr B., Lazaroff W., Grimes S., Quan G., Bethune T., Buns tan B., Roberts D. 1994. Cryopreservation of interior spruce (Picea glauca engelmcinni complex) embryogenic cultures/'/Plant Cell Rep., v.13, J® 10, 574-575.

141. Delmer D. 1979. Dimethylsulfoxide as a potential tool for analysis of compartmentation in living plant cell//PIant Physiol., v. 64, Jl 4, 623-629.

142. Diettrich B., Popov A.S., Pfeiffer B., Neumann B., Butenko R. G., Luckner M. 1982. Cryopreservation of Digitalis lamxta cellcu 11ures//P1 anta Medica, v.46, J6 2, 82-87.

143. Digitalis lanata cells grown In vitro. Precultlvailon and reculti-vation//J.Plant Physiol., v.126, * I, 63-73.

144. Diettrich B.f Wolf T., Bormann A., Popov A.S., Butenko R.G., luckner M. 1987. Cryopreservation of Digitalis lanata shoot tips// Planta Medlca, v.53, Jfi 4, 359-363.

145. Diettrich B., Haack U., Thorn F., Matthes G., Luckner M. 1987. Influence of Intracellular Ice Formation on the Survival of Digitalis lanata Cells Grown in vitro//Cryo-Lett., v.8, Jfi 1, 98-107.

146. Dougall D., Wethereil D. 1974. Storage of wild carrot cultures in the frozen state/VOryobiology, v.115 Jl 5, 410-415.

147. Dougall D., Whitten G. 1980. The Ability of Wild Carrot Ceil Cultures to Retain Their Capacity for Anthocyanin Synthesis After Storage at -140°C//Planta medica, Supplement, 129-135.

148. Dowgert M., Wolfe J., Steponkus P. 1987. The Mechanics of Injury to Isolated Protoplasts following Osmotic Contraction and Expansion/ /Plant Physiology, v.83, J 4, 1001-1007.

149. Dussert S., Mauro iff., Engelmann F. 1991. Cryopreservation of Grape embryogenic cell suspension. 1. Influence of Pre treatment, Freezing and Thawing conditions//Cryo-Letters, v.12, M 5, 287-298.

150. Dussert S., Mauro M., Engelmann F. 1992. Cryopreservation of Grape embryogenic cell suspension. 2. Influence of Post-Thaw Culture Onrifiit.inri.q arid Application to Different Strains/ZOryo-Letters.y.13, M 1, 15-22 .

151. Engelmann F. 1992. Effects of freezing in liquid nitrogen on the properties of a soybean (Glycine max L., var. acme) callus strain used as a bioassay for cytokinin activity/'/Oryo-Letters,-7 10 K R OOTQOp. i 'U , M O , (JOl ouu.

152. Engelmann P., Aguilar M., Dambier D., Oabasson G., Qllitrault P. 1994. Advantages of cryopreservatlon of cell suspensions and embryogenic calll for Citrus breeding programmes//Fruits (Paris), v.49, M 1, 23-30.

153. Engelmann P., Dambier D., Qllitrault P. 1994. Cryopreservatlon of cell suspensions and embryogenic calluses of Citrus using a simplified freezing process/ZCryo-Letters, v.15, M 1, 53-58.

154. Erdei L., Vign L., Dudits D. 1982. Isolation of wheat cell line with altered membrane propertiesZZPiant Physiology, v.69, » 3, 572-574.

155. Fay M. 1994. In what situations Is In vitro culture appropriate to plant conservation?//BIodIversity and Conservation, v.3,2, 176-183.

156. Find J., Floto P., Krogstrup P., Moller J., Nordgaard J., Kristensen I. 1993. Cryopreservatlon of an embryogenic suspension culture of Picea Siichensis and subsequent plant regeneration// Scand.J.For.Res., v.8, J2, 156-162.

157. Pinkie Eo ; Sriffawara. Y. Sakai A. 1974. Survival of suspension- 317 culture sycamore cells cooled to the temperature oi liquid nitro-gen//Plant Physiol., v.54, 15, 722-724.

158. Pinkie B., Sugawara Y., Sakai A. 1975. Freezing of Carrot and Tobacco Suspension Cultures//Plant Physiol., v.56, Suppl.Jfc 2, p.80.

159. Pinkie B., Ulrich J. 1978. Effects of Combinations of Cryo-protectants on the Freezing Survival of Sugarcane Cultured Cells// "Plant Cold Hardiness and Freezing Stress", Li P., A.Sakai, eds.•I a ± «3 London, .AJ? 3 3 (o SST'«

160. Finkle B., Ulrich J. 1979. Effects of Cryoprotectants in Combination on the Survival of Frozen Sugarcane Celis/'/Plant Physiol. V.63, № 4, 598-604.

161. Finkle B., Ulrich J. 1982. Cryoprotectant Removal 'Temperature as a Factor in the Survival of Frozen Rice .and Sugarcane Cells// Cryobiology, v.19, pp.329-335.

162. Finkle B., Ulrich J., Rains D., Stavarek S. 1985. Growth and regeneration of alfalfa callus lines after freezing in liquid nitrogen/ /Plant Sci., v.42, Jft 2, 133-140,

163. Pinkie B., Ulrich J., Schaeffer G., Sharpe P.,Jr. 1983. Cryopreservatlon of Rice Cells//"Cell and Tissue Culture Techniques for Cereal Crop Improvement". Beijing, China, Sci. Pr., 343—369.

164. Pinkie B., Zavala M., ulrich J. 1985. Cryoprotactive Compounds in the Viable Freezing of Plant Tissues//"Cryopreservation of

165. Plant Cells and Organs", K.Kartha.ed. Boca Raton, PI., USA, 75-115,»»

166. Fretz A., Jahne A., Lorz H. 1992. Cryopreservat ion of Embryogenic Suspension Cultures of Barley (Hurcleura vulgore L. )//Botanica Acta, v.105, J6 3, 140- 145.

167. Garve R., Luckner M., Vogel E., Tewes A., Nover L. 1980.

168. Opnwth Mnpnlincpripri Pi an!i nnrvlp'nnl 1 rip "PoTTnatl on 1n T.ntt£F—t.fiTiTl {"Till —- 318 tunes of Digitalis Zamjia/ZPlanta medlca, v.40, 1 2, 92-103.

169. Gawer M., Sansonetti A., Mazliak P. 1983. Lipid composition of tobacco cells cultivated at various temperatures//Ptiytochemis-try, v.22, № 4, 855-859.

170. Gazeau 0., Blanchon 0, Dereuddre J. 1992. Breeze-preservation of Catharanthus protoplast at liquid nitrogen temperature. Comparison with, cells/7Gryo-Letters, v.13, 1 3, 149-158.

171. Gazeau C, Hansz J., Jondet M., Dereuddre J. 1992. Cry©microscopic comparison of freezing (to -40°0) and thawing effects of Gatftar

172. Gnanapragasam S., VaSll I. 1990. Plant regeneration from a cryopreserved embryogenic cell suspension of a commercial sugarcane hybrid (Sacchnnm sp.)//Plant Ceil Rep., v.9, J® 8, 419-423.

173. Gnanapragasam S., YaSii I. 1992. Cryopreservation of Immature embryos, embryogenic callus and cell suspension cultures of gramineous species/ZPlant Sci. (Limerick), v.83, J# 2, 205-215.

174. Gnanapragasam S., VaSil I. 1992. Ultras true tural changes in suspension culture cells of Pan, i cum maximum during cryopreaerva-tion//Plant Cell Rep., v.11, № 4, 169-174.

175. Guldner E., Seit^ U., Reinhai-d E. 1991. Gryopreaervatlon

176. Digitalis lanata Elirh. cell cultures: Preculture and freeze tole-rance//Plant Cell, Tissue a. Organ Cult., v.24, JHe 1, 19-24.

177. Gonzalez B,, Boucaud J., Salette J., Langlois J. 1990. Pruc-tan and cryoprotection in ryegrass (Lolium perenne L.)//New Phyto legist, v.115, »2, 319-323.

178. Gordon-Kami!! W., Steponkus P. 1984 a. Lamellar-to-hexagonal

179. Till a rh t.T\qri,q1 t.1 nria 1n tliH rsls.qrns mpmhfnnp nf l.qnlstprl rrmt.nnl sp.t.q1.o t qafter freeze-induced aehydration//PNAS, y.81, jft 20, 6373-6377.

180. Gordon-Karniii W., Steponkus P. 1984 b. The behavior of the plasma membrane following osmotic contraction of isolated protoplasts: Implications in freezing injury//Protoplasma, v.123, J£ 2, 83-94.

181. Gordon-Kamm W., Steponkus P. 1984 c. The influence of cold acclimation on the behavior of the plasma membrane following osmotic contraction of isolated protoplasts//Ibid. ,v.123, 3,161-173.

182. Gould A. 1982. Chromosome instability in plant tissue cultures studied with banding techniques//"Plant Tissue Culture, 1982= Proc. 5 Int. Gongr. Plant Tissue a. Cell Cult., Tokyo", 431-432.

183. Gupta P., Durzan I)., Pinkie B. 1987. Somatic polyembryogenesis In embryogenic cell masses of Picea abies (Norway sprucc/ ana

184. Pims taeda (loblolly pine) after thawing from liquid nitrogen//

185. Can. J. Forest Res., v.17, 19, 1130-1134.t!

186. Hahne G., Lorz H. 1987. Cryopreservatlon of embryogenic callus cultures from barley (Hordeim vulgare L.)//Plant Breeding,1. V.99, 1 4, 330-332.

187. Haruyuki K., Yasunao N. 1983. Liquid Nitrogen Storage of Apple Callus Cultures//Res. Bull. Hokkaido Nat. Aerio. Em. Stat.,kft -¡'ЭЛ 1-j?- i uU 5 i £— i e

188. Hauptmann R., Widholm J. 1982. Cryostorage of clonal amlno-acld. analog-resistant carrot and tobacco suspension cultures// Plant Physiol., v. 70, № 1, 30-34.9 9

189. Haydu Z., Lazar G., Dudits D. 1977. Increased frequency of PEG-Induced protoplast fusion by DMSO//Plant Science Letters,

190. V . I \J , iiW W , 1 UliU a

191. Hellergren J., Lundborg Т., Widell S. 1984. Gold acclimation in Pirvas sylvestris: Phospholipids In purified plasma membranes from needles of pine//Physiol.Plant., v.62, Л 2, 162-166.

192. Henshaw G. 1975. Technical aspects of tissue culture storage for genetic conservation//"Crop Genetic Resources for To-day and To-morrow", Oambrige, Gambrige Univ. Press, 349-357.

193. HIncha D., Be Vries A., Schmitt J. 1993. Cryotoxiclty of antifreeze proteins and glycoproteins to spinach thylakold membranes comparison with cryotoxic sugar aclds//Biochim.Biophys.Acta,1. Y.1146, 258-264.

194. Hirsh A. 1987. Vitrification in Plants as a Natural Form of

195. Cryoprotection//Cryobiol., v.24, Л 3, 214-228. ?201 . Hnrvat.h T. Vlsrh 1 984. Ян1 f-ariantlvp modi f 1 г°.я±1 nr< nf rnp.mbrane lipids in cell culture of wheat (Triticvm monococcum L.)//

196. Struct., Funct. and Metabolism Plant Lipids. Proc. 6 Int.Symp., f

197. Neuchatel, July 1984", Amsterdam e.a., 535-538.

198. Huber W., Sankhla N. 1980. Effect of Abscislc Acid on Betalne Accumulation in Penntaetum typhoicles Seedlings/ZZ.Pfl., v.97, to 2,1 7Q1 Q9 i ! i .

199. Hunter 0. 1986. In vitro propagation and germplasm storage of GinGhorui//"PlmX Tissue Culture and Its Agricultural Applications" L.Withers, P.Alderson, eds., Butterworths, London a.oths., 291-301,

200. Iswari S., Palta J. 1989. Plasma Membrane ATPase Activity Following Reversible and Irreversible Freezing Injury//Plant Phy-slol., v.9u, to 4, 1088-1095.

201. Iwanaga M. 1993. Enhancing Links between Germplasm Conservation and Use In a Changing World//"Internal. Crop Sci.1", D.Buztoneds. Crop Sci.Society of America, Madison, Wisconsin, USA0 5pp. 407-413.

202. Jain S., Jain R., Wu R. 1996. A simple and efficient procedure for cryopreservatlon of embryogenic cells of aromatic indica rice varletes/./Plant Cell Rep., v. 15, 19, 712-717.

203. Jekkel Zs., Heszky L., All A.-H. 1989. Effect of different cryoprotectants and transfer temperatures on the survival rate of hemp (Cannabis sativa L.) cell suspension In deep freezing//Acta biol.Lung.5 v. 40, № 1-2, 127-136.

204. Jian Ling-cheng, Sun De-lan, Sun Long-hua. 1987. Sugarcane Callus Cryopreservation//"Plant Cold Hardiness". P.LI, ed., Alan

205. P T -f qa Trm TS.T V O.C>qQOG

206. V e ij i-J 9 iiiV e 3 J.H s J o 9 J 9

207. Jian Ling-cheng, Sun Long-hua. 1992. Studies on some factors in cryopreservation of plant cells//VII Intern Congress for Culture Collections, Beijing, China. Abstracts, p.46.

208. Kaimori Noboru, Kameya Toshiaki. 1990. Plant regeneration from dried carrot callus preserved In liquid nitrogen/'/Plant Tissue Cult. Lett., v.73 № 3, 199-201.

209. Kartha K.K. 1985 a. Cryopreservation of Plant Cells and Organs /71API0 Newsletter, № 45, pp.2-15.

210. Kartha K.K., ed., 1985 b. "Cryopreservation of Plant Cells and Organs". ORG Press, Boca Raton, Florida, USA, 304 p.

211. Kartha K., Engelmann E. 1994. Cryopreservation and germplasm storage.//"Plant Cell and Tissue Culture". I.Va&il, T.Thorpe, eds., Kluwer Acad, Publishers, Dordrecht, Netherlands, 195-230.

212. Kartha K., Powke L., Leung N., Caswell K., Hakman I. 1988. Induction of somatic embryos and plantlets from cryopreserved cell cultures of white spruce (Picea gZauca)//J.Plant Physiol., v.132, J 5, 529-539.

213. Kartha K., Leung N., Gaudet-LaPralrie P., Constabel E. 1982. Cryopreservation of periwinkle GaiTmranthus roaeus cells cultured in vitro/VPlant Cell Rep., y.1, $ 4, 135-138.

214. Kaul B., Staba E. 1968. Dloscorea Tissue Cultures^ Bioeynthesis and Isolation oi Diosgenin from Dioscorea deltoidea Callus and Suspension Cells//LIoydia, y.31, M 2, 171-179.

215. Keefe P., Henshaw G. 1984. A Note on the Multiple Role of Artificial Nucleation of the Suspending Medium During Two-step Cryopreservatlon Procedures//Cryo-Letters, v.5, pp.71-78.

216. Kobayashl S.5 Sakai A., Oiyama I. 1990. Oryopreservatlori in liquid nitrogen of cultured navel orange (Citrus sinensis Osb.) nucellar cells .and subsequent plant regeneration/VPlant Cell Tissue Organ Culture, v.23, J 1, 15-20.

217. Kobayashl S., Sakai A. 1993. Cryopreservatlon of citrus//JIGA Ref. Series, it 6, pp.27-51.

218. Kuriyama A., Watanabe K., Ueno S., Mitsuda H. 1990. Effect ofpost-thaw treatment on the viability of cryopreserved Lavandulavera cells/ZGryo-Letters, v.11, 1 3, 171-178. !

219. Laine E., Bade P., David A. 1992. Recovery of plants from cryopreserved embryogenic cell suspensions of Pinus Goribaea// Plant Cell Rep., v.11, 1 5-6, 295-298.

220. Langis R., Schnabel B., Earle E., Steponkus P. 1989. Cryopreservatlon of Brassica campestrts L. suspensions by vitrification// Cryo-Letters, v.10, 1 6, 421-428.

221. Langis R., Steponkus P. 1990. Cryopreservatlon of rye protoplasts by vitrification//Plant Physiology, v.92, № 3, 666-671. 228= Lanpls R,. Steoonkus P. 1991- VItrlflnation of Isolated Rve

222. Protoplasts: Protection Against Dehydration Injury by Ethylene Glycol/VCryo-Letters, y.12, №2, 107-112.

223. Latta R. 1971. Preservation of suspension cultures of plant cells by freezing/YCan. J.Bot. 5 v.49, 1 7, 1253-1254.

224. Leddet G., Schaeverbeke J. 1975. Action de la proline sur la »resistance au gel des tissus de Topinambour maintenus en survie// O.R.Acad.Sci, D, t.280, J6 25, 2849-2852.

225. Lee Y.H., KimH.I., SuhS.O., Ghung T.Y. 1993. Cryopreservation of Oryza sattva L. Nakdongbyeo embryogenlc suspension cells// PDA J. Agricultural Sel., Biotechnology, y.35, il 1, 237-243.

226. Lelbo S., McGrath J., Gravalho E. 1975. Microscopic Observation of Intracellular Ice Formation In Mouse Ova as a Function of Cooling Rate/ZCryobiology, v.12, pp.579-594.

227. Lelbo S., McGrath J., Gravalho E. 1978. Microscopic Observation of Intracellular Ice Formation in Unfertilized Mouse Ova as a Function of Cooling Rate//Oryobloiogy, v.15, të 3, 257-272.

228. Levitt J. 1962. A Sulfhydryl-DIsulfide Hypothesis of Frost Injury and Resistance in Plants//J.Theoret.Biol., v.3, pp.355-391.

229. Lin 0., Guo W., Everson E., Thomashow M. 1990. Cold Acclimation in Arabldopsis and Wheat. A Response Associated with Expression of Related Genes Encoding "Boiling-Stable" Polypeptides// Plant Physiology, v.94, J® 3, 1078-1083,

230. Lin M. Staba J. 1961. Peooermint and soearrnlnt tissue cultu-l j. o.res I. Callus formation and submerged eulture//Lloydia, v.24, 12,1QQ1AT

231. Liu XIan-wang, Du Qu-in. 1996. Galll cryopreservation of Magnolia biloba (Rehd et Wils) Cheng.//J.Plant Resources a. Environment, v.5, J! 1 . 9-13.

232. Liu You-llang, Steponkus P. 1983 a. Influence of proline on the tolerance of isolated protoplasts to osmotically induced contract ion/ expansion/ /Plant Physiol., v.72, Suppl., p.93,

233. Liu You-llang, Steponkus P. 1983 b. Influence of Proline on the Hypertonic-Induced Loss of Osmotic Responsiveness of Isolated Protoplasts/ZOryoblology, v.20, 1 6, p.707.

234. Lovelock J. 1953 a. The mechanism of the protective action of glycerol against haemolysis by freezing -and thawing//Biochim. Bio-phys. Acta, v.11, 11, 28-36.

235. Lovelock J. 1953 b. The haemolysis of human red blood cells by freezing and thawing/VBIochim. Biophys. Acta, v.10, 1 3, 414-426

236. Luu Mei-zhong, Jiang Shuang-ying, Tang Hui-xian. 1990. Cryopreservatlon of suspension cell line derived from the protoplast culture of Braaaica ocmweairis var. ve'Rinenaia//Acta bot. sin.,a iv.32, 16, 432-437.

237. Lyman G., Papahadaj'opoulos D., Preisler H. 1976. Phospholipid membrane stabilization by DMSO and other inducers of Friend leukemic cell differentiation//Biochim.Biophys.Acta, v.448, 1 3, 460-472

238. Lynch P., Benson E. 1995. The embryogenic potential of rice cell suspensions affects their recovery following cryogenic storage/ /Euphytlea, v.85, 1 1/3, 347-349.

239. Lynch D., Steponkus P. 1987. Plasma Membrane Lipid Alterat.lnn.q ARHnnl nt.prl wi t. n Onlr! Anr*.l 1 mat Iran nf WlntfiT* Rvp p e ¡11 i n ,g.q / /

240. PI qr.t "DVi-jci о 1 v M.Q. tf, ,1 7k7

241. X L.'A¿J. U -l-^Jf >w a. ^ -A. » J V » 5 tft* Tj ( Vj 5 i О J о

242. Lynch D., Steponkus P. 1989. Lyotropic phase behavior of unsaturated phosphatidylcholine species: relevance to the mechanism of plasma membrane destabllizatlon and freezing InjuryZZBiochim. Biophys. Acta. Blomembranes. y.984, Л 3, 267-272.

243. Lynch D., Thompson G.s Jr. 1982. Low Temperature-Induced Alterations In the Ohloroplast and Microsomal Membranes of Dunaliella aalina/ZPlaiLt Physiol., v.69, Л 6, 1869-1375.

244. Maddox A., Gonsalves P., Shields R. 1983. Successful Preservation of Suspension Cultures of Three Nicotiana Species at the Temperature of Liquid Nitrogen//Plant Scl.Lett.,v.28,$ 2,157-162.

245. Magglo B. 1985. Geometric and thermodynamic restrictions for the self-assembly of glycosphingollpid-phosphollplcl systerns/VBIo-chim.Biophys.Acta, v.815, J® 2, 245-258.

246. Mannonen L., Toivonen L., Kauppinen V. 1990. Effects of long-term preservation on growth and productivity of Ралах ginseng and GatTuziranihus roseus cell cultures/ZPIant Cell Rep,, v.9, Л 4, 173-178.

247. Mazur P. 1965. The Role of Cell Membranes in the Breezing of Yeast and Other Single Cells//Ann.N.Y.Acad.Sci., v.125, 658-676.

248. Mazur P. 1970. Cryoblology: The Breezing of Biological Sys-tems//ScIence, v.168, Л 3934, 939-949.

249. Mazur P. 1977. The Role of Intracellular Breezing in the Death of Ceils Cooled at Supraoptical Ratesz/Oryoblology, v.14,ffi Q IRi-14ОtJf= 9 i ¿ i *

250. Mazur P., Leibo S., Ghu E. 1972. A two-factor hypothesis of freezing In jury/ZExp.Cell Res., v.71, Л 2, 345-355.256. lei.ler E., van Iren P. Schrilnemakers E. Hensgens T,. van

251. Zljderveld, Schilperoort R. 1991. Retention of the capacity to produce plants from protoplasts in cryopreserved cell lines of rice (Qryza saliva L.)//Plant Cell Rep., v.10, to 4, 171-174.

252. Meryman H. 1968. A modified model for the mechanism of freezing injury In erythPocytes/ZNature, v.218, pp.383-836.

253. Meryman H., Williams R., Douglas M. 1977. Freezing Injury from "Solution Effects" and Its Prevention by Natural or Artificial Cryoprotection//Gryobiology, v. 14, Jf 3, 287-302.

254. Mlronescu S. 1977. Hyperosmotic injury in mammalian cells.I. Survival OHO cells in unprotected and DMSO-treated cultures//Gryo-biology, v.14, 14, 451-465.

255. Mohapatra S., Poole R., Dhlndsa R. 1988. Abscisic Acid-Regulated Gene Expression In Relation to Freezing Tolerance in Alfalfa //Plant Physiol., v.87, * 2, 468-473.

256. Moore R. 1974. Cryopreservatlon of equine cell cultures/zUSA

257. Patent № Q p.RO 'I f'TTQ filac.q' TQR/T P.)

258. Morlsset G., Gazeau G., Hansz J., Dereuddre J. 1994. Is Actin Important for Gryosurvlval?//Gryo-Letters, v.15, to 4, 215-222.

259. Murashige T., Skoog F. 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio-Assays with Tobacco Tissue Cultures//Physiologla plantarum, v.15, to 3, 473-497.

260. Myers P., Hester P., Steponkus P. 1985. Influence of Cold Acclimation on the Phospholipid Composition of the Plasma Membrane of Winter Rye Leaves//Cryobiology, v.22, to 6, p.626.

261. Myers S.»Steponkus P. 1985. Influence of DMSO on the Volumetric Behavior of Isolated Rye Protoplastsz/Ibld., v.22, 1 6, p.627.

262. Nag K., Street H. 1973. Carrot Embryogenesls from Frozen Oul-t-n-pori Hp! 1 r//"Mnt"nr*p v.P45. to 5423. 270-272.

263. Nag K., Street H. 1975, Freeze preservation of cultured plant cells, I. The pretreatment phase//Physiologia plantanun, v.34, J® 3, 254-259 =

264. Nag K=, Street H. 1975. Freeze preservation of cultured plant cells. II. The freeze and thawing phases//Ibid., v.34, J® 3, 260-26

265. Nel T. 1973. Growth of ice crystals in frozen specimens// J. Microscopy, v.99, IS 2, 227-233.

266. Nel T., Asaoa M. 1972. Changes Appearing in the Rewarmlng Process of Rapidly Frozen Erytlirocytes/'/Low Temperature Soi., B, Y=30, pp.45—64.

267. Nishizawa S., Sakai A., Amano Y., Matsuzawa T. 1992. Cryopreservation of Asparagus (Asparagus officinalis L.) embryogenic cells and subsequent plant regeneration by a simple freezing rne-thod//Cryo-Letters, v.13, J® 6, 379-388.

268. Nishizawa S., Sakai A., Amano Y., Matsuzawa T. 1993. Cryopreservation of Asparagus (Asparagus officinalis L.) embryogenic suspension cells and subsequent plant regeneration by vitrification// Plant Scl. (Limeric), y.91 , J® 1, 67-73.

269. Nordby H., Yelenosky G. 1982. Relationships of Leaf Fatty Acids to Cold Hardening of Citrus Seedlings/ZPlant Physiology,v 7H a -1 1 Q9-1 ocs I w 5 tiï= i 3 i '> £ i s

270. Norgaard J., Baldursson S., Krogstrup P. 1993, Genotyplc differences in the ability of embryogenic Abies nordmanniana cultures to survive cryopreservation/ZSllvae Genetlca, v.42, J® 2/3, 93-97.

271. Ohta S., Kojima Y., Yatazawa M. 1978. Some accounts of nicotine biosynthesis in tobacco callus tissues by the use of effective and ineffective strains//Agr.a.Blol.Chem., v.42, J® 9, 1733-173

272. OU.en 0. Smith M. 1977. Ice Adhesions In Relation to Preop •j'j t•J.9Qf^Jl-J KS

273. Stress//Plant Physiology, y.60, to 4, 499-503.

274. Palta J. 1989. Plasma Membrane ATPase as a Key Site of Perturbation In Response to Preeze-Thaw Stress//Current Topics in Plant Biochemistry and Physiology, v.8, pp.41-68.

275. Palta J., LI P. 1980, Alterations in membrane transport properties by freezing injury in herbaceous plants: Evidance against rupture theory//Physlol.plantarum, v.50, 1 2, 169-175.

276. Panis B. 1995. Cryopreservatlon of Musa germplasm//Infomusa, Y.4, * 1, 17-20.

277. Panis B., Dhed'a D., Swennen R. 1992. Feeze-preservation of embrlogenic Mtisa suspension eultures//"Conservation of Plant Genes: DM Banking and In 'vitro Biotechnology", R.Adams et al., eds. Ac.Press, San Diego, USA, pp.183-185,

278. Pienlazek J., Holubowicz T., Kasprzyk M. 1973. The Effect of Temperatures Below 0UG on the Subsequent Growth of Apple Stem Cal-lus/VBuil. de lfAcad. Polonaise des Sei., Ser.biol. CI.7., v,{fun ! n 5 /1 >

279. Plhakaski K., Steponkus P. 1987. Freeze-lnduced phase transitions in the plasma membrane of isolated protoplasts/ZPhysiologla plantarum, v.69, to 4, 666-674.

280. Popov A.S., Volkova L.A., Culaflc L, Cryopreservation of in vitro plants and plant tissue genofond Dioscorea balconied and D. caucasica//Bulletin de l'InstItut et du .jardln botanlques de I'Unlverslte de Beograd, 1997, t.XXIX, pp.1-9.

281. Portlllo P., Serrano R. 1989. Growth control strength and active site of yeast plasma membrane ATPase studied by site-directed mutagenesis//Eur. J.Biochem., v. 186, J® 3, 501-507.

282. Pritchard H., Grout B., Short K. 1986 a. Osmotic Stress as a Pregrowth Procedure for Cryopreservation: 1. Growth and Ultrastructure of Sycamore and Soybean Cell Suspensionsz/Ann. of Botany,1. Y. 57, $ 1 , 41-48.

283. Pritchard H., Grout B., Short K. 1986 b. Osmotic Stress as a Pregrowth Procedure for Cryopreservation: 2. Water Relations and Metabolic State of Sycamore and Soybean Cell Suspensions//Ann.Bot. Y.57, JS 3, 371-379.

284. Prltctord Ho, Grout B.? Short K. 1986 c. Osmotic Stress as a Pregrowth Procedure for Cryopreservatlon: 3. Oryobiology of Sycamore and. Soybean Cell Suspensions//Ann.Bot., v.57, 1 3, 380-387.

285. Quatrano R. 1968. Preeze-preservatlon of cultured flax cells utilising dimethyl sulfoxide/ZPlant Physiol., v.43,1 12,2057-2061.

286. Rapatz G., Luyet B. 1968. Electron microscope study of erythrocytes in rapidly cooled suspension containing various concentrations of glycero1//Blodynamica, v.10, 1 212, 193-210.

287. Rapatz G., Menz L., Luyet B. 1966. Anatomy of the freezing process in biological materials//"Oryobiology", H.Meryman, ed., Acad.Press, London-New York, pp.139-162.

288. Razdan I. a. Cocking E., eds. 1997. "Conservation of Plant Genetic Resources In Vitro". Science Publishers Inc., USA, 350 p.

289. Reaney M., Gusta L., Abrams S., Robertson A. 1989. The effects of absclslc acid, kinetln, and glbbereliin on freezing tolerance In smooth bromegrass (Brcmu3 inerwds) cell suspension// Can.J.Bot., v.67, M 12, 3640-3646.

290. Reinhoud P., Schrij'nemakers E., van Iren P., Kijne J. 1995. Vitrification and heat-shock treatment improve cryopreservatlon of tobacco cell suspensions, compared to two-step freezlng/ZPlant Cell, Tissue a. Organ Culture, v.42, 1 3, 261-267.

291. Reuff I., Seitz U., Ulbrich B., Relnhard E. 1988. Cryopreservatlon of Golem blvmei Suspension and Callus Cultures//!".Plantpy,T7ai nl r,fTT7 ~ 1 QQ ffi A AlA-A-ip.

292. A. -1. L/5 V s t '—/W J H- 5 ■+ I *T -f' « W •

293. Roberts E. 1975. Problems of long-term storage of seed and pollen for genetic resources conservation//"Crop Genetic Resources for To-Day .and To-Morrow. International Biological Programme". Cambridge TTniv, Press- Cambridge, UK, pp.269-295.

294. Robertson a., Gusta L., Reaney M., Ishikawa M. 1988. Identification of Proteins Correlated with Increased Freezing Tolerance in Bromegrass (Bromus inermis Leyss. cy Manchar) Cell Cultures// Plant Physiology, v.86, J® 2, 344-34T.

295. Rochat E., Therrlen H. 1975. Etude ultramicroscopique des modifications cytologiqu.es chez le ble d'hiver lors de l'endurcissement au frold//Canad.J.Bot., y.53, J® 6, 536-543.

296. Rochester C., Kjellbcm P., Andersson B., Larsson 0. 1987. Lipid composition of plasma membranes isolated from light-grown barley (Hordeum vulgare) leaves: Identification of cerebroslde as a major componentzZArch.Blochem.Biophys., v.255, J® 2, 385-391.

297. Rowe A., Lenny L. 1983. Pifteen-year cryogenic storage of blood frozen by a droplet freezing technique and a low glycerol-rapld freezing proceclureZZCryoblology, v.20, № 6, 717.

298. Rubinsky B., Arav A., De Yries A. 1991. Cryopreservation of oocytes using directional cooling and antifreeze glycoproteins// Cryo-Letters, v. 12, J® 2, 93-106.

299. Sakai A., Kobayashi S., Oiyama I. 1990. Cryopreservation ofrniAûl 1 qp r»ûl . a of Tfq~/o 1 MT'QniTû i H ? f r»? i q o <? 71 f^iT} & ? a Oq"H T7qT» hmq? / fens is Tanaka) by vltrification/ZPIant Cell Rep., v.9, M 1, 30-33.

300. Sakai A., Kobayashi S., Oiyama I. 1991. Cryopreservation of nucellar cells of navel orange (Citrus sinensis Osb.) by a simple freezing methodZZPlant Sci., v.74, J® 2, 243-248.

301. Sakai A., Kobayashi S., Oiyama I. 1991. Survival by Vitrification of Nucellar Cells of Navel Orange (Citrus sinensis var.- 333 brastliensta Tanaka) Cooled to -196°C// J. Plant Physiology, v.137, to 4, 465-470=

302. Sakai A., Sugawara Y. 1978. Survival of plant germplasm in liquid nitrogen//"Plant Cold Hardiness ana Preesing Stress", Li P. a. Sakai A., eds. Acad.Press, N.Y., USA, 345-358.

303. Sala P., Cella R., Hollo P. 1979» Preese-Preservation of Rice Cells Grown In Suspension CuIture/ZPhysiologia plantarum, v.45,1 1, 170-176.

304. Santarius K., Heber U. 1970. The Kinetics of the Inactivation of Thylakold Membranes by Preesing and High Concentrations of ElectroIytesZZCryobloIogy, v.7, 1 2-3, 71-78.

305. Schenk R., Hildebrandt A. 1972. Medium and techniques for induction and growth of monocotyledons and dicotiledons plant cell cultures//Ganad. J. Botany, v.50, 1 1, 199-204.

306. Seltz U., Alfermann A., Reinhard E. 1983. Stability of Biotransformation Capacity in Digitalis lariat a Cell Cultures after Cryogenic Storage/ZPlant Cell Reports, v.2, 1 5, 273-276.

307. Serrano R. 1983. Purification and Reconstltution of the Proton-Pumping ATPase of Fungal and Plant Plasma Membranes// Arch. Blochem. Biophys., 7.227, to 1, 1-8.

308. Serrano R. 1990. Recent Molecular Approaches to the Physiology of the Plasma Membrane Proton Pump//Botan.Acta, y.103, 230-234,

309. Shibata S. 1985. Recent Studies on Biologically Active Constituents of Medicinal Plants Biologically Active Saponins and

310. Q QTif\ crop i —i q qr>r? fhplr* HVioml np 1 Mnrfi f "fnq + -f nr}//«T? T? f< <5 Q-r»ri Tn + Qiw

311. Conference on Chemistry and Biotechnology of Biological Active Natural Products", Sofia, Bulgaria, Bulgar.Acad.Sci. Main Plenary Lectures, vol.1, pp.148-167.

312. QO° Shimada K., Asahina E. 1975. Visualisation of intracellular1. J U- :ice crystals formed in very rapidly frozen cells at -27°0//0ryo-bioiogy, v.12, to 3, 209-218.

313. Slminovitch D. 1979. Protoplast surviving freezing to -196°G and osmotic dehydration in 5 molar salt solutions prepared from bark of winter black locust treesz/Plant Physiology, v.63,-+-1-, ,-j 'j L iO1?, .4 T90-T'"1. Jv.- ~r s I I{ I

314. Singh J., Miller R. 1982. Spin-probe studies during freezing of cells isolated from cold hardened and nonhardened winter rye// Plant Physiology, y.69, * 6, 1423-1428.

315. Stanwood P., Bass L. 1978. Ultracold PreserYation of Seed Germplasm//"Plant Gold Hardiness and Freezing Stress", Li P. a. Sakai A., eds. Acad.Press, N.-Y., London, pp.361-371.

316. Steponkus P. 1984. Role of the Plasma Membrane in Freezing Injury and Gold Acclimation//Arm.Rev. of Plant Physiol., y.35,543—584.

317. Steponkus P., Bonnier L. 1971. Cold acclimation of plant tissue cultures/ZGryobiology, v.8, il 4, 386-387.

318. Steponkus P., Bowgert M. 1981. Gas bubble formation during intracellular ice formatlon/zCryo-Letters, v.2, J§ 2, 42-47.

319. Steponkus P., Dowgert M., Evans R., Gordon-Kamm W. 1982, Oryoblology of Isolated Protoplasts//"Plant Gold Hardiness and Freezing Stress Mechanisms and Crop Implications", Vol.2. Li P. a. Sakai A., eds. Acad.Press, N.-Y., 459-474.

320. Steponkus P., Dowgert M., Pergusson J., Levin R. 1984. Oryo-microscopy of Isolated Plant Protoplasts/ZGryobiology, v.21, J® 2,1. OnO9 OOill W 'luu a

321. Steponkus P., Dowgert M., Gordon-Kamm W. 1983. Destabiliza-tlon of the Plasma Membrane of Isolated Plant Protoplasts during a Preeze-Thaw Cycle: The Influence of Cold AcclimationZZCryobiology, Y.20, ils 4, 448-465.

322. Steponkus P., Gordon-Kamm W. 1985. Dehydration-Induced Lamellar-to-Hexagonal t*Phase Transitions of the Plasma Membrane of-L X0 j-ci »JyCt Jr^i u"topid.StjtS// Ox yo 01',/i-O^j7 5 V a ¿ill. 9 ô 5 P o Ollo »

323. Steponkus P. Lanphear P. 1967. Refinement of the triphenyl tetrazolium chloride method of determining cold Injury//Plant Physiology, v. 42, J« 10, 1423-1426.

324. Steponkus P., Lynch B. 1989 a. The behavior of large unilamellar vesicles of rye plasma membrane lipids during freeze/thaw-induced osmotic ezcursions/ZOryo-Letters, v.10, M 1, 43-50.

325. Steponkus P., Lynch D. 1989 b. Freeze/thaw-induced déstabilisation of the plasma membrane and the effects of cold acclimation //J. Bioenerg. and Blomembr., v.21, Jfc 1, 21-41.

326. Steponkus p., Uemura M., Balsamo R., Arvinte T., Lynch D. 1988. Transformation of the cryobehavior of rye protoplasts bymodification of the plasma membrane lipid compositlon//Proc.Nat. Acad.Sci.USA, V.85, if 23, 9026-9030.

327. Steponkus P., Wolfe J., Dowgert M. 1981. Stresses Induced by Contraction and Expansion during a Preeze-Thaw Cycle: a Membrane Perspective//"Effects of Low Temperature on Biological Membranes", Acad.Press, N.-Y., pp.307-322.

328. Strauss A., Pankhauser H., King P. 1985. Isolation and cryopreservation of O-methyltreonlne-resIstant Rosa cell lines altered In the feedback sensitivity of L-threonine deamlnase/ZPlanta,v.163, Jê 4, 554-562.

329. Street H. 1975. Freeze-preservatlon of cultured plant cells// IAFTC Newsletter, № 15, pp.2-4.

330. Strehler J., Mlkollczeak J., Strehler K. 1977. Method and Apparatus for Preserving Biological Materials//Patent USA Jl 4030314, HKM 62-65. BffiJiJi.Msodp. Jê 7, CTp.19, (rp.93) 1981.

331. Qti i qhrinf "f n i QCH H^T/p.-v-.-po Ci 1" i firi n*f fT*n~î +" CTCj'n p "t" i 7~'G

332. TW o U 'JU.DIiii'w'li W» { S I » L'X ,} OUI '^IJul V C3> U J-'Jli Ui J. 'J '-'X S-jOiiC U £'.' wi r -i1. OO Y sources implications for maintenance and diversity during conservât ion/ /Hort Science, v.26, 1 5, 518-522.

333. Sugawara Y., Sakal A, 1978. Gold acclimation of callus cultures of Jerusalem articiioke//"Plant Cold Hardiness and Freezing Stress", LI P., Sakai A., eds. Acad.Press, N.-Y., London, 158-167.

334. Sun W.Q., Irving T., Leopold A. 1994. The role of sugar, vitrification and membrane phase transition in seed desiccation tolerance/ /Physiol.Plantarum, v.90, to 4, 621-628.

335. Sun Long-hua, Jlan Ling-cheng. 1990. Cryopreservatlon of sainfoin tissue cultures and their ultrastructural observation// Acta bot.sin., v.32, to 4, 262-266.

336. Sze H. 1984. H+-trans locating ATPases of the plasma membrane and tonopiast of plant cells//Physiol.Plantarum, v.61, pp.683-691.

337. Takeuchi M. 1978. An Attempt to Freezing Preservation of some Cultured Cells//"4-th Intern.Congr. of Plant Tissue and Cell Cultures. Abstracts." Calgary, Canada, p.103.

338. Tang Dlng-tal, Yang Zhi-qi, Yamada Y. 1988. Cryopreservatlon of protoplast-derived cell suspensions of rice (Oryza sativa L.). //Acta bot.sill., v.30, to 4, 357-361.

339. Tanino K., Chen T., Fuchigami L., Weiser C. 1990. Metabolic alterations associated with abscisic acid-induced frost hardiness in bromegrass suspension culture cells/VPlant a. Cell Physiology,31 » 4, 505-511s '^J 1

340. Tao Da-11, LI P., Carter J. 1983. Role of Cell Wall In Freezing Tolerance of Cultured Potato Cells and their Protoplasts// Physiol.Plantarum, v.58, to 4, 527-532.

341. Torrey J. 1967. Morphogenesis in Relation to Chromosomal Constitution in Long-term Plant Tissue CuItures//Physiol.Plantarum, V.20, J# 2, 265-275.

342. Touchell D., Dixon K. 1993. Cryopreservation of seed of Western Australian native species/ZBiodlversity a. Conservation, v.2, J§ 6, 594-602 =

343. Towlll L. 1991. Cryopreservation//"In Vitro Methods for Conservation of Plant Genetic Resources", Dodds J., ed. Chapman and Hall, London, UK, pp.41-70.

344. Towlll L., Mazur P. 1976. Osmotic Shrinkage as a Factor in Freezing Injury in Plant Tissue Oultures/VPlant Physiology, v.57, № 2, 290-296.

345. Uemura M., Steponkus P. 1989. Effect of Cold Acclimation on the Incidence of Two Forms of Freezing Injury in Protoplasts Isolated from Rye Leaves/VPlant Physiol., v.91, J! 4, 1131-1137 =

346. Uemura M., Steponkus P. 1989. Parallel effects of freezing and osmotic stress on the ATPase activity and protein composition of the plasma membrane of winter rye seedllngs/VPlant Physiology, v.91 , 3, 961-969.

347. Uemura M., Steponkus P. 1994. A Contrast of the Plasma Membrane Lipid Composition of Oat and Rye Leaves In Relation to Freezing Tolerance//Plant Physiology, v.104, J 2, 479-496.

348. Uemura M., Yoshlda S. 1984. Involvement of Plasma Membrane Alterations in Cold Acclimation of Winter Rye Seedlings (Secalecereale L. cv Puma}//Plant Physiol., v.75, 1 3, 818-826.

349. Ueno S., Watanabe K., Yoshida S., Mitsuda H. 1987. Relationship between Termotroplc Properties of Isolated Plasma Membrane Vesicles and Freezing Resistance of Cultured Green Lavandula vera Cells/ZProc.Japan Acad., v.63, Ser.B, 16, 211-214.

350. Ulrich J., Finkle B., Moore P., Ginoza H. 1979, Effect of Mixture of Cryoprotectants in Attaining Liquid Nitrogen Survival of Callus Cultures of a Tropical Plant/ZCryobiology, v. 16, 16,k R i JR K ¿-s

351. Ulrich J., Pinkie B., Tisserax B. 1982. Effects of Cryogenic Treatment on Plantlet Production from Frozen -and Unfrozen Date Palm Callus/'/Plant Physiol., v.69, 1 3, 624-627,

352. Ulrich J., Mickler R., Finkle B., Karnosky D. 1984. Survival and regeneration of American elm callus cultures after being frozen In liquid nitrogen//Can. J. Forest Res., v.14, 1 5, 750-753.

353. Uragami A., Sakai A., Nagai M., Takahashi T. 1989. Survival of cultured cells and somatic embryos of Asparagus officinalis cryopreserved by vitriflcation/ZPlant Ceil Rep.,v.8,1 7, 418-421.

354. Vigh L., Horvath I., Horvath L., Dudlts D., Parkas T. 1979. Protoplast plasmalemma fluidity of hardened wheats correlates with frost resistance/ZFEBS Letters, v. 107, 1 2, 291-294.

355. Watanabe K., Sato P., Yamada Y., Kawai P., Kanamori M., Mitsuda H. 1992. Characterisation of polypeptides in cultured rice cells differing in cryoprotectability// J. of Plant Physiology,-7 1 O.Q щ Aч » i w 5 t-r f H—-t-т- ! •

356. Watanabe K., Ueno S., Mitsuda H. 1990. Alterations of plasma membrane phospholipids in cultured Lavandula vera cells different in cryoprotection by a cry©protectant treatment//Plant and Cell Physiol., Y.31 , J# 1, 163-166.

357. Webb M., Uemura M., Steponkus P. 1994. A Comparison of Freezing Injury in Oat and Rye: Two Cereals at the Extremes of Freezing lolerance/ZPlant Physiology, т.104, № 2, 467-478.

358. Weber G., Lark K. 1979. An Efficient Plating System for Rapid Isolation of Mutants from Plant Cell Suspension// Theoretical and Applied Genetics, v.55, J® 2, 81-86.

359. Wlest S., Steponkus P. 1978. Freeze-Thaw Injury to Isolated Spinach Protoplasts and Its Simulation at Above Freezing Temperatures/ /Plant Physiology, v.62, 1 5, 699-705.

360. Williams R., Hope H. 1981. The Relationship between Oell InJury and Osmotic Volume Reduction/ZOryobiology, v.18, 1 2, 133-146=

361. Williams R., Meryman H. 1970. Freezing injury and resistance in spinach chloroplast grana//Plant Physiol., v.45, 1 6, 752-755.

362. Williams J., Williams R. 1976. Osmotic factors of dehardenlng in Gormia florida L.//Plant Physiology, v.58, M 3, 243-247.

363. Withers L. 1978 a. The Freeze-Preservation of Synchronously Dividing Cultured Cells of Acer paeudoplatanua L.//Oryobiology,1 1 , 87-92

364. Withers L. 1978 b. A Fine-Structural Study of Freeze-Preser

365. Q 11 ryn f "PI QTi f -TH nCr(£j fh -j 1 "H rpp C? T T T^O O T V"i Q'FJO rl QtQtu / /Vl~C\ T "A 1 p qto Q

366. V CI U X J5- '.Jti. i- U X IDuU'-' ilx. o 11 « lii'v/ X i. i.'.fc V V <-X KJ UC.il U U / /XX 0 X. Ci; O J 1 i'-41. V.94, 13-4, 235-248.

367. Withers L. 1983. Germplasm Preservation through Tissue Culture: an 0vervlew//"CelI and Tissue Cultures Techniques for Cereal Crop Improvement", Beijing, China, pp.315-341.

368. Withers L. 1985 a. Long-Term Storage of in vitro Cultures// "In vitro Techniques", Schafer A., ed. Menuhr, Dordrecht, Bostonqr-id A + hs-pQ rvn -! QT1 /1Q

369. Withers L. 1985 b. Cryopreservatlon and Storage of Germplasm / / "p i pin t Hell Culture — a Pra^tlcfj. Ar>"nT,nQfih" p^Trryn pr! 1"RT:

370. Press Lim. s Oxford, 15 pp.169-192.

371. Withers L. 1985 c. Oryopreservation of cultured cells and mea + orna //«f'-pl 1 rhnl +iit>ci q-nrt Cn")ci + 1 f* Holl fipnp + ir.q nf PI onfa 0

372. J. JiO 'J&liLLj/ / L'fcXX Ov^i-X UOU. K^SJiilO. uX'-' uCiiC UX-L'D J- X -i-'—vi-i. 'JiJ . a

373. TWHff+Vi Mil + ->-»-? + i riT"i Pi f'fpT'oril" i q "h i ryn niriri p-;iQ a p"fT/Q 11 nri" . T pf!

374. VJx UVV uii , Bu'jI iui'Jlij 1/ i.1 J. Ci 'jii 'J id, (j J.UU &J.J.W. Xx V.-LJ Ci (uuivil , < x. = = o>i =

375. Acad.Press, Orlando, Florida, USA, pp.253-315.

376. Withers L. 1986 a. In vitro Approaches to the Conservation of Plant Genetic Resources//"Plant Tissue Culture and Its Agricultural Applications", Withers L., Alderson P., eds. Butterworths,

377. T.rifiririn q ri + Via rvn OfA—OI'f-.xJL--i.xLv'Xi. Ci a 'Jiilj o L'j-' = f 1 '-f 3

378. O.QQ OT1 +hPT»c! T. J'Q'P.f-. "h C\rri7r%rrr>aqc,y*xrct 11 nn «vnri ripnohorilra/ /MP1 QTlt1.j- oUCl D xj . I iJ . Jij'.'^'iuDCi » u CUjlU. gxii'j .' x iuiiu

379. Cell Culture Technology", Oxford a. oths., UK, pp.96-140.

380. Withers L. 1989. In Vitro Conservation and Germplasm Utilization// "The Use of Plant Genetic Resources", Brown A. et al., eds. Cambridge Unlvers. Press, Cambridge, UK, pp.309-334.

381. Withers L. 1992. In vitro Conservation//"Blotechnology of Perennial Fruit Crops", Hammerschlag P., Litz R., eds. CAB Intern.,

382. Wall inrrfo-nn TTET rvn 1 AQ-'Jnn

383. JL, -¿-¿-¡.¿--,-1- w-l ^ 9 uxi 5 j"'}- * • ^ ¿—ww a

384. Withers L. 1993. New technologies for the conservation of plant genetic resources//"Intern.Crop Science Congress, Ames, Iowa

385. TTQA" p-n-y+nn n pf al u,ia 0-pn" "r-lppr-Q Qa,-.1 otv MprHpori WTuoji , ulla. u^/jli x.'. ci< di . , . (jiujj uuxcul'u uuuxu uj 9 ¡uuuj.uu11j s1. TQA pr, 45 pjr' ® —— "tJ1-/ .

386. OQT W1 tViowj T. Piqp-c."?' M -1 QTQ A THyioC+TmA+iyr»o1 Q+nri-7 nf li-nap«?»—1.. if i uiicix O Lav ili . ! y I '-! . xx x Xii'- u ul liOiQi u uly 'Ji x x l.Cu'j

387. Preservation of Plant Tissue Cultures. I. The Frozen StateZZProto-plasma, v.94, J 3-4, 207-220.

388. Withers L., King P. 1979. Proline: a novel cryoprotectant for the freeze preservation of cultured cells of Zea mays L.ZZPlant Physiology, y.64, №5, 675-678.

389. Withers L., Street H. 1977 b. The freeze-preservation of plant cell cultures//"Plant Tissue Cultures and Its Bio-technology Application", Barz W, et al., eds. Berlin a. oths., pp.226-244=

390. Wolfe J., Dowgert M., Steponkus P. 1985. Dynamics of Membrane Exchange of the Plasma Membrane and the Lysis of Isolated Protoplasts during Rapid Expansions in Area// J.Membrane Biology, v.86, 12, 127-138.

391. Wolfe J., Dowgert I., Steponkus P. 1986. Mechanical Study of the Deformation and Rupture of the Plasma Membranes of Protoplasts during Osmotic Expansions//J.Membrane Biology, v.93, ! 1, 63-74.

392. Wolfe J., Steponkus P. 1981. The stress-strain relation of the plasma membrane of isolated plant protoplasts/ZBiochim. Biophys. Acta, y.643, pp.663-668.

393. Yamada Y., Hara Y., Eatagl H., Senda M. 1980. Protoplast fusion. Effect of low temperature on the membrane fluidity of cultured cells/ZPlant Physiology, y.65, 1 6, 1099-1102.

394. Yoshida S. 1982. Fluorescence Polarization Studies on Plasma Membrane Isolated from Mulberry Bark Tissues//"Plant Cold Hardi/1 /iness and Freezing Stress", Vol.2» LI P., Sakai A.„ eds. Acad. Press, N.-Y., pp.273-284.

395. Yoshida S. 1984 a. Studies on Freezing Injury of Plant Cells. I »Relation between tiiermotroplc properties of Isolated plasma membrane vesicles and freezing injury//?lent Physiol.,v.75,1 1,38-42.

396. Yoshida S. 1984 b. Chemical and biophysical changes in the plasma membrane during cold acclimation of mulberry bark cells

397. Бесконечно признателен дирекции Института физиологии растений им,К,А.Тимирязева РАН за постоянное внимание, интерес и поддержку этой работы,

398. Особо хочу поблагодарить профессора Г.А.Самыгина за помощь в овладении основами криобиологии растений и в криомикроскопирова-нии, а также сотрудников группы мембранных аспектов адаптации во главе с В.С.Дзюбенко.

399. О очень теплым чувством признательности хочу обратиться ко всем коллегам Отдела биологии клетки и биотехнологии, особенно кработавшим бок о бок сотрудникам группы криосохранения, оказывав шим мне неоценимую помощь в течение многих лет совместной работы