Эндокринная функция дофаминергических нейронов целостного мозга в онтогенезе крыс тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.01, кандидат биологических наук Сайфетярова, Юлия Юрьевна

• Сайфетярова, Юлия Юрьевна
• кандидат биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Сайфетярова, Юлия Юрьевна

ОГЛАВЛЕНИЕ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Структурно-функциональная характеристика дофаминергической системы мозга взрослых животных и в онтогенезе

1.1.1. Дофаминергическая система взрослых животных

1.1.1.1. Топография и морфология дофаминергических нейронов

1.1.1.2. Функциональная характеристика дофаминергических нейронов

1.1.1.2.1. Синтез дофамина

1.1.1.2.2. Запасание и выделение дофамина

1.1.1.2.3. Обратный захват дофамина

1.1.1.2.4. Катаболизм дофамина

1.1.1.2.5. Рецепторы к дофамину

1.1.1.3. Нервная и гуморальная регуляция дофаминергической системы

1.1.1.4. Функциональное значение дофаминергической системы

1.1.2. Развитие дофаминергической системы мозга

1.1.2.1. Образование дофаминергических нейронов

1.1.2.2. Морфогенез развивающихся дофаминергических нейронов

1.1.2.3. Функциональная характеристика развивающихся дофаминергических нейронов

1.1.2.3.1. Синтез дофамина

1.1.2.3.2. Запасание и выделение дофамина

1.1.2.3.3. Обратный захват дофамина

1.1.2.3.4. Деградация дофамина

1.1.2.3.5. Рецепторы к дофамину

1.1.2.4. Нервная и гуморальная регуляция развития дофаминергической системы

1.1.2.5. Роль дофамина в регуляции развития мозга

1.2. Периферическая дофамин-продуцирующая система взрослых животных и в онтогенезе

1.2.1. Периферическая дофамин-продуцирующая система взрослых животных

1.2.1.1. Синтез дофамина

1.2.1.2. Рецепторы к дофамину

1.2.1.3. Паракринная и аутокринная роль дофамина в регуляции функционирования периферических органов-мишеней

1.2.2. Развитие периферической дофамин-продуцирующей системы

1.2.2.1. Синтез дофамина

1.2.2.2. Экспрессия рецепторов к дофамину

1.2.2.3. Роль дофамина в развитии периферических органов-мишеней

1.3. Участие дофамина в регуляции секреции пролактина

1.3.1. Структурно-функциональная характеристика гипофиза взрослых животных и в онтогенезе

1.3.2. Морфофункциональная характеристика лактотрофов взрослых животных и в онтогенезе

1.3.3. Регуляция секреции пролактина у взрослых животных и в онтогенезе

1.3.4. Роль дофамина в регуляции секреции пролактина у взрослых животных и в онтогенезе

ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

11.1. Животные

11.2. Эксперименты

11.2.1. Разработка модели специфического ингибирования синтеза дофамина в мозгу крыс на третий день постнатального периода (ш vivo)

11.2.1.1. Подкожное введение ингибитора синтеза дофамина

11.2.1.2. Стереотаксическое введение ингибитора синтеза дофамина в боковые желудочки мозга

11.2.2. Полное или частичное выключение дофаминового ингибиторного контроля секреции пролактина у крыс на третий день постнатального периода (ш vivo)

11.2.3. Инкубация гипофизов крыс на третий день постнатального периода и взрослых животных в Кребс-Рингер буфере (in vitro)

11.2.3.1. Определение времени стабилизации спонтанного выделения пролактина

11.2.3.2. Влияние разных концентраций экзогенного дофамина на секрецию пролактина

11.2.3.3. Контроль специфичности действия дофамина на секрецию пролактина через Д2-рецепторы

11.2.4. Инкубация гипофизов крыс на третий день постнатального периода в плазме крови, содержащей эндогенный дофамин

11.2.5. Гомотрансплантация гипофизов под капсулу почки крысам на первый день постнатального периода с последущим полным или частичным ингибированием дофаминового контроля секреции пролактина на третий постнатальный день

11.3. Взятие и обработка материала

11.4. Методы

11.4.1. Высокоэффективная жидкостная хроматография с электрохимической детекцией

11.4.2. Иммуноферментный анализ

11.5. Статистическая обработка результатов

ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ

III. 1. Моделирование специфического ингибирования синтеза дофамина в мозгу у крыс на третий день постнатального периода

III. 1.1. Концентрация дофамина и его метаболитов в мозгу, плазме крови, надпочечниках и в органе Цукеркандля после подкожного введения ингибитора синтеза дофамина

III. 1.2. Концентрация дофамина и его метаболитов в мозгу, плазме крови, надпочечниках, почках и в органе Цукеркандля после стереотаксического введения ингибитора синтеза дофамина в боковые желудочки мозга

III. 1.3. Концентрация дофамина и его метаболитов в тубероинфундибулярной системе и остальной части мозга после стереотаксического введения ингибитора синтеза дофамина в боковые желудочки мозга

111.2. Концентрация пролактина в плазме крови и гипофизах после полного или частичного ингибирования дофаминового контроля секреции пролактина у крыс на третий день постнатального периода (in vivo)

111.3. Оценка влияния экзогенного дофамина на выделение пролактина из гипофизов крыс на третий день постнатального периода и у взрослых животных (in vitro)

111.3.1. Концентрация пролактина в Кребс-Рингер буфере в ходе оценки времени стабилизации спонтанного выделения пролактина из гипофиза

111.3.2. Концентрация пролактина в Кребс-Рингер буфере в ходе оценки влияния разных концентраций экзогенного дофамина на выделение пролактина из гипофиза

111.3.3. Концентрация пролактина в Кребс-Рингер буфере при инкубации гипофиза в среде, содержащей экзогенный дофамин и антагонист Д2-рецепторов

111.4. Оценка выделения пролактина из гипофиза крыс на третий день постнатального периода под влиянием эндогенного дофамина, содержащегося в плазме крови

111.5. Концентрация пролактина в плазме, трансплантированном и интактном гипофизах после гомотрансплантации гипофиза под капсулу почки крысам на первый день постнатального периода с последущим полным или частичным ингибированием дофаминового контроля секреции пролактина на третий постнатальный день

ГЛАВА IV. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

IV. 1. Мозг до формирования гемато-энцефалического барьера - важнейший источник дофамина в периферической крови у крыс

IV.2. Регуляция секреции пролактина дофаминергическими нейронами развивающегося мозга

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

Ь-ДОФА - Ь-диоксифенилаланин

аМПТ - а-метил-пара-тирозин

АКТГ - адренокортикотропный гормон

АЯ - аркуатное ядро

ВИП - вазоинтестинальный пептид

ВМАТ - везикулярный моноаминовый транспортер

ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография

ГАМК - гамма-аминомасляная кислота

ГРГ - гонадотропин-рилизинг гормон

ГЭБ - гемато-энцефалический барьер

ДА - дофамин

ДАА - декарбоксилаза ароматических аминокислот

ДГБА - 3, 4-дигидроксибензиламин гидробромида

ДОФУК - 3, 4-дигидроксифенилуксусная кислота

ЖКТ - желудочно-кишечный тракт

КОМТ - катехол-о-метилтрансфераза

КРБ - Кребс-Рингер буфер

КРГ - кортикотропин-рилизинг-гормон

ЛГ - лютеинизирующий гормон

МАО - моноаминоксидаза

МСГ - меланоцитстимулирующий гормон

НА - норадреналин

П - постнатальный день развития

ПРЛ - пролактин

СТГ - соматотропный гормон

ТГ - тирозингидроксилаза

ТИС - тубероинфундибулярная система

ТТГ - тиреотропный гормон

ФАВ - физиологически активные вещества

ФСГ - фолликулостимулирующий гормон

Э - эмбриональный день развития

ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эндокринная функция дофаминергических нейронов целостного мозга в онтогенезе крыс»

ВВЕДЕНИЕ

Основным условием жизнеспособности организма является поддержание постоянства внутренней среды, что обеспечивается нейроэндокринной системой. Нейроэндокринная система представляет собой сложную высоко иерархическую систему, компоненты которой связаны между собой прямыми и обратными связями (Угрюмов, 1999; Jackson, 1982; Baulieu, 1990; Tanriverdi et al., 2003). Ключевым звеном нейроэндокринной системы является мозг, и, в частности, гипоталамус (Krieger, 1980; Jackson, 1982; Baulieu, 1990). Во взрослом организме эндокринное влияние мозга на периферические органы ограничивается действием вазопрессина и окситоцина, которые, поступая в общую систему циркуляции, влияют на сердечно-сосудистую, выделительную и отчасти репродуктивную системы (Hatton, 1990; Ugrumov, 2002). Гипоталамические физиологически активные вещества (ФАВ), поступая в гипоталамо-гипофизарную портальную систему циркуляции, регулируют секрецию гормонов гипофиза, которые в свою очередь контролируют секрецию гормонов периферических эндокринных желез, таким образом, участвуя в регуляции функций висцеральных органов и самого мозга (Jackson, 1982; Baulieu, 1990). После переноса с кровью из портальной системы циркуляции в гораздо большую по объему общую систему циркуляции ФАВ гипоталамуса многократно разводятся, причем до такой незначительной концентрации, в которой они уже не в состоянии оказывать эндокринное влияние на периферии (Hoffman, 1992). Несмотря на то, что ФАВ вырабатываются не только в гипоталамусе, но и в других отделах мозга, они не могут проникать в общий кровоток из-за гемато-энцефалического барьера (ГЭБ), а, следовательно, и не могут участвовать в прямой эндокринной регуляции периферических органов (Loizou, 1970; Dahlin et al., 2001).

Нейроэндокринная система в онтогенезе, выполняет специфическую функцию регуляции развития целостного организма (Ugrumov, 2010). Это возможно благодаря тому, что на определенном этапе индивидуального развития гипоталамические ФАВ и гормоны эндокринных желез контролируют не столько функциональную активность клеток- и органов-мишеней, сколько их развитие, причем в последнем случае их действие носит необратимый - морфогенетический характер (Lauder, 1993; Ugrumov, 1997; Mirochnik et al., 2005).

До последнего времени считалось, что мозг включается как центральное звено нейроэндокринной регуляции только после полного своего "созревания" (Rajerison et al., 1976; Dlouha et al., 1982). При этом развитие самого мозга контролируется рядом

ФАВ, циркулирующих в крови, и в первую очередь стероидными гормонами (Dorner, 1981; Pakarinen et al., 1994). Тем не менее, полученные нами и другими исследователями данные, согласно которым нейроны мозга начинают синтезировать и выделять ФАВ задолго до формирования межнейрональных связей и ГЭБ (Ugrumov et al., 1989а; Borisova et al., 1991; Ugrumov et al., 1994) позволяют пересмотреть традиционные представления о роли мозга в нейроэндокринной регуляции развития целостного организма (Rajerison et al., 1976; Dlouha et al., 1982; Fuse, 1996). В связи с этим нами была выдвинута гипотеза, согласно которой, мозг в онтогенезе до формирования межнейрональных синаптических связей и ГЭБ, функционирует как эндокринный орган, участвующий в регуляции развития и функционирования периферических органов и целостного организма.

На примере дофамина (ДА), нами ранее были получены косвенные доказательства в пользу выдвинутой гипотезы. Так было показано, что ДА содержится в периферической крови плодов и новорожденных крыс в концентрации, достаточной для оказания эндокринного влияния на периферические мишени и сам мозг (ауторегуляция) (Лаврентьева, 2006). После закрытия ГЭБ концентрация ДА в периферической крови резко падает, что исключает дальнейшее участие ДА мозгового происхождения в эндокринной регуляции (Лаврентьева, 2006). Однако, прямых доказательств того, что ДА, синтезируясь в нейронах мозга, поступает в общую систему циркуляции в период онтогенеза, предшествующий формированию ГЭБ, получено не было.

Для доказательства того, что развивающийся мозг играет роль эндокринного органа не достаточно показать, что секретируемые им ФАВ поступают в общую систему циркуляции, но необходимо также показать действие этих ФАВ на периферические орган-мишени. Учитывая, что рецепторы к ДА обнаруживаются в разных органах задолго до формирования ГЭБ (Felder et al., 1989; Melnikova et al., 1998) можно ожидать, что ДА, содержащийся в периферической крови, способен оказывать влияние на развитие и/или функциональную активность этих органов, что требует дальнейшей экспериментальной проверки.

Цель настоящей диссертационной работы - получить прямые доказательства эндокринной функции ДА-ергических нейронов целостного мозга в онтогенезе до формирования ГЭБ.

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:

• Разработать экспериментальную модель фармакологического ингибирования синтеза ДА нейронами мозга в онтогенезе до формирования ГЭБ.

• Оценить вклад мозга в формирование физиологически активной концентрации ДА в плазме крови после ингибирования его синтеза в нейронах мозга до формирования ГЭБ.

• Получить доказательства того, что ДА мозгового происхождения, содержащийся в периферической крови до формирования ГЭБ, оказывает прямое эндокринное влияние на выделение пролактина из лактотрофов гипофиза в моделях in vivo и in vitro.

Научная новизна полученных результатов

Впервые разработана модель фармакологического ингибирования синтеза ДА избирательно в мозгу у крыс в раннем постнатальном периоде. Экспериментально подобрана доза ингибитор - а-метил-пара-тирозина (аМПТ) - ингибитора тирозингидроксилазы (ТГ) - ключевого фермента синтеза ДА, существенно снижающая синтез ДА в мозгу и не влияющая на его синтез в периферических ДА-синтезирующих источниках.

Впервые получено прямое доказательство того, что до формирования ГЭБ ДА поступает из мозга в общую систему циркуляции, обеспечивая поддержание его физиологически активной концентрации в крови.

Впервые на моделях in vivo и in vitro показано, что ДА мозгового происхождения, содержащийся в периферической крови у неонатальных крыс до формирования ГЭБ, способен оказывать специфическое влияние на функциональную активность лактотрофов, ингибируя выделение пролактина из передней доли гипофиза.

Научная и практическая значимость работы

Получены убедительные доказательства в пользу гипотезы о том, что мозг до формирования ГЭБ функционирует как эндокринный орган, выделяя ФАВ в общую систему циркуляции, которые в дальнейшем участвуют в регуляции функциональной

активности органов-мишеней, что принципиально меняет существующую концепцию формирования нейроэндокринной регуляции развития целостного организма.

Новый вариант концепции формирования нейроэндокринной регуляции в онтогенезе и ее роли в развитии целостного организма, а также основанные на этой концепции новые представления о патогенезе врожденных заболеваний, могут быть широко представлены в курсах и учебниках по физиологии и фундаментальной медицине для студентов университетов и медицинских институтов.

Работа вносит вклад не только в экспериментальную физиологию, но и в клиническую медицину, в частности перинаталогию. Изучение молекулярно-клеточных механизмов эндокринной регуляции развития периферических мишеней со стороны ФАВ мозгового происхождения позволит по-новому представить себе механизмы развития врожденных заболеваний репродуктивной и выделительной функций, нарушения функционирования сердечно-сосудистой системы и ряда других. Это, в свою очередь, приведет к изменению стратегии ранней диагностики и лечения врожденных заболеваний, существенно повысив их эффективность.

Заключение диссертации по теме «Физиология», Сайфетярова, Юлия Юрьевна

выводы

1. Впервые разработана экспериментальная модель ингибирования синтеза дофамина в мозгу у крыс в перинатальном периоде до формирования гемато-энцефалического барьера. Подобрана минимальная доза ингибитора, максимально снижающая уровень дофамина в мозгу и не влияющая на его синтез в периферических органах.

2. На разработанной модели показан существенный вклад развивающегося мозга в формирование физиологически активной концентрации дофамина в общей системе циркуляции до формирования гемато-энцефалического барьера, о чем свидетельствует значительное снижение концентрации дофамина в плазме крови после ингибирования его синтеза в мозгу.

3. На примере гипофиза как периферического органа-мишени для дофамина в экспериментах in vivo и in vitro получены доказательства того, что до формирования гемато-энцефалического барьера дофамин, поступающий из мозга в общую систему циркуляции, оказывает прямое эндокринное влияние на выделение пролактина из лактотрофов гипофиза.

4. Полученные данные подтверждают гипотезу о том, что мозг в онтогенезе до формирования гемато-энцефалического барьера играет роль эндокринного органа, секретируя в общую систему циркуляции физиологически активные вещества, и оказывает прямое эндокринное влияние на развитие и функционирование периферических органов-мишеней.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Сайфетярова, Юлия Юрьевна, 2012 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Лаврентьева АВ, Мельникова ВИ, Сапронова АЯ, Прошлякова ЕВ, Воронова СН, Угрюмов MB (2006) - Мозг - один из важнейших источников дофамина в общей системе циркуляции в перинатальном периоде онтогенеза у крыс. Рос. Физиол. журн. им. И. М. Сеченова 92:975-983.

2. Розен ВБ (1984) - Основы эндокринологии. М. Высшая школа. 336 стр.

3. Угрюмов MB (1999) - Механизмы нейроэндокринной регуляции. М. Наука. 299 стр.

4. Abbott NJ, Pichon Y (1987) - The glial blood-brain barrier of crustacea and cephalopods: a review. J Physiol (Paris) 82:304-313.

5. Ad I, Cocchi D, Panerai AE, Locatelli V, Mantegazza P, Muller EE (1976) - Altered growth hormone and prolactin responsiveness to TRH in the infant rat. Neuroendocrinology 21:366-378.

6. Altman J, Bayer SA (1981) - Development of the brain stem in the rat. V. Thymidine-radiographic study of the time of origin of neurons in the midbrain tegmentum. J Comp Neurol 198:677-716.

7. Amar AP, Weiss MH (2003) - Pituitary anatomy and physiology. Neurosurg Clin N Am 14:11-23.

8. Amara SG, Kuhar MJ (1993) - Neurotransmitter transporters: recent progress. Annu RevNeurosci 16:73-93Neurotransmitter transporters: recent progress.

9. Anselmino KJ, Hoffmann F (1966) - The fat-metabolism hormone of the anterior pituitary (lipotropin). Its role in fat metabolism under normal and abnormal conditions. Ger Med Mon 11:177-180.

10. Aprison MH, Takahashi R, Folkerth TL (1964) - Biochemistry of the Avian Central Nervous System-I. the 5-Hydroxytryptophan Decarboxylase-Monoamine Oxidase and Cholineacetylase-Acetycholinesterase Systems in Several Discrete Areas of the Pigeon Brain. J Neurochem 11:341-350.

11. Arai R, Horiike K, Hasegawa Y (1998) - Dopamine-degrading activity of monoamine oxidase in locus coeruleus and dorsal raphe nucleus neurons. A histochemical study in the rat. Neurosci Lett 250:41-44.

12. Arai R, Karasawa N, Nagatsu I (1996) - Aromatic L-amino acid decarboxylase is present in serotonergic fibers of the striatum of the rat. A double-labeling immunofluorescence study. Brain Res 706:177-179.

13. Arbogast LA, Voogt JL (1991) - Hyperprolactinemia increases and hypoprolactinemia decreases tyrosine hydroxylase messenger ribonucleic acid levels in the arcuate nuclei, but not the substantia nigra or zona incerta. Endocrinology 128:997-1005.

14. Aron DC, Findling JW, Tyrell JB (1997)- Hypothalamus and pituitary. In: Greenspan FS, Strewler GJ, editors.Basic and clinical endocrinology. 5th edition. Stamford: Appleton and Lange:95-156.

15. Artal R (1980) - Fetal adrenal medulla. Clin Obstet Gynecol 23:825-836.

16. Artalejo CR, Ariano MA, Perlman RL, Fox AP (1990) - Activation of facilitation calcium channels in chromaffin cells by D1 dopamine receptors through a cAMP/protein kinase A-dependent mechanism. Nature 348:239-242.

17. Asa SL, Kovacs K, Horvath E, Losinski NE, Laszlo FA, Domokos I, Halliday WC (1988) - Human fetal adenohypophysis. Electron microscopic and ultrastructural immunocytochemical analysis. Neuroendocrinology 48:423-431.

18. Axelrod J, Albers W, Clemente CD (1959) - Distribution of catechol-o-methy 1 transferase in the nervous system and other tissues. Journal of Neurochemistry 5:6872.

19. Bagdy G (1996) - Role of the hypothalamic paraventricular nucleus in 5-HT1A, 5-HT2A and 5-HT2C receptor-mediated oxytocin, prolactin and ACTH/corticosterone responses. Behav Brain Res 73:277-280.

20. Baines AD (1982) - Effects of salt intake and renal denervation on catecholamine catabolism and excretion. Kidney Int 21:316-322.

21. Baines AD, Chan W (1980) - Production of urine free dopamine from DOPA; a micropuncture study. Life Sci 26:253-259.

22. Baines AD, Ho P, Drangova R (1992) - Proximal tubular dopamine production regulates basolateral Na-K-ATPase. Am J Physiol 262:F566-571.

23. Baker H, Abate C, Szabo A and Joh TH (1991) - Species-specific distribution of aromatic L-amino acid decarboxylase in the rodent adrenal gland, cerebellum, and olfactory bulb. J Comp Neurol 305:119-129.

24. Balan IS, Ugrumov MV, Borisova NA, Calas A, Pilgrim C, Reisert I, Thibault J (1996) - Birthdates of the tyrosine hydroxylase immunoreactive neurons in the hypothalamus of male and female rats. Neuroendocrinology 64:405-411.

25. Banerji A, Prasad C (1982) - The postnatal development of the pituitary thyrotropin-releasing hormone receptor in male and female rats. Endocrinology 110:663-664.

26. Baulieu E-E, Kelly PA (1990) - Hormones. From molecules to disease. Herman Publ. in Arts and Science, New York. pp. 697.

27. Ben-Jonathan N, Hnasko R (2001) - Dopamine as a prolactin (PRL) inhibitor. Endocr Rev 22:724-763.

28. Ben-Jonathan N, Maxson RE (1978) - Elevation of dopamine in fetal plasma and the amniotic fluid during gestation. Endocrinology 102:649-652.

29. Ben-Jonathan N, Neill MA, Arbogast LA, Peters LL, Hoefer MT (1980) - Dopamine in hypophysial portal blood: relationship to circulating prolactin in pregnant and lactating rats. Endocrinology 106:690-696.

30. Bernabe J, Proshlyakova E, Sapronova A, Trembleau A, Calas A, Ugrumov M (1996)- Pharmacological model of catecholamine depletion in the hypothalamus of fetal and neonatal rats and its application. Cell Mol Neurobiol 16:617-624.

31. Bertaccini G, Coruzzi G (1987) - Receptors in the gastrointestinal tract. Pharmacol Res Commun 19:87-118.

32. Bertler A, Falck B, Owman C, Rosengrenn E (1966) - The localization of monoaminergic blood-brain barrier mechanisms. Pharmacol Rev 18:369-385.

33. Bertler A, Falck B, Rosengren E (1963) - The Direct Demonstration of a Barrier Mechanism in the Brain Capillaries. Acta Pharmacol Toxicol (Copenh) 20:317-321.

34. Betz WJ, Angleson JK (1998) - The synaptic vesicle cycle. Annu Rev Physiol 60:347363.

35. Bewley TA, Li CH (1972) - Molecular weight and circular dichroism studies of bovine and ovine pituitary growth hormones. Biochemistry 11:927-931 .Feb 29.

36. Beyer C, Kolbinger W, Reisert I, Pilgrim C (1994) - Activation of cultured rat hypothalamic dopaminergic neurons by long-term but not short-term treatment with prolactin. Neurosci Lett 180:231-234.

37. Bigazzi M, Ronga R, Lancranjan I, Ferraro S, Branconi F, Buzzoni P, Martorana G, Scarselli GF, Del Pozo E (1979) - A pregnancy in an acromegalic woman during bromocriptine treatment: effects on growth hormone and prolactin in the maternal, fetal, and amniotic compartments. J Clin Endocrinol Metab 48:9-12.

38. Bigornia L, Suozzo M, Ryan KA, Napp D, Schneider AS (1988) - Dopamine receptors on adrenal chromaffin cells modulate calcium uptake and catecholamine release. JNeurochem 51:999-1006.

39. Bjorklund A, Lindvall, O (1984) - Dopamine-containing system in the CNS. Handbook of Chemical Neuroanatomy, Elsevier, Amsterdam, pp. 55-122.

40. Bjorklund A, Moore RY, Nobin A, Stenevi U (1973) - The organization of tubero-hypophyseal and reticulo-infundibular catecholamine neuron systems in the rat brain. Brain Res 51:171-191.

41. Bliss DJ, Lote CJ (1982) - Prolactin release in response to infusion of isotonic or hypertonic saline. J Endocrinol 92:273-278.

42. Bodnar I, Gooz P, Okamura H, Toth BE, Vecsernye M, Halasz B, Nagy GM (2001) -Effect of neonatal treatment with monosodium glutamate on dopaminergic and L-DOPA-ergic neurons of the medial basal hypothalamus and on prolactin and MSH secretion of rats. Brain Res Bull 55:767-774.

43. Bonisch H, Eiden L (1998) - Catecholamine reuptake and storage. Overview. Adv Pharmacol 42:149-164.

44. Borisova NA, Sapronova AY, Proshlyakova EV, Ugrumov MV (1991) - Ontogenesis of the hypothalamic catecholaminergic system in rats: synthesis, uptake and release of catecholamines. Neuroscience 43:223-229.

45. Borisova NA, Ugrumov MV, Balan IS, Thibault J (1993) - Development of the tuberoinfundibular system in rats: birthdates of the tyrosine hydroxylase-immunopositive neurons. Brain Res Dev Brain Res 73:173-176.

46. Borta A, Hoglinger GU (2007) - Dopamine and adult neurogenesis. J Neurochem 100:587-595.

47. Boulton AA, Eisenhofer G (1998) - Catecholamine metabolism. From molecular understanding to clinical diagnosis and treatment. Overview. Adv Pharmacol 42:273292.

48. Breese GR, Traylor TD (1972) - Developmental characteristics of brain catecholamines and tyrosine hydroxylase in the rat: effects of 6-hydroxydopamine. Br J Pharmacol 44:210-222.

49. Brito VI, Rozanski VE, Beyer C, Kuppers E (2009) - Dopamine regulates the expression of the glutamate transporter GLT1 but not GLAST in developing striatal astrocytes. J Mol Neurosci 39:372-379.

50. Broch OJ Jr, Fonnum F (1972) - The regional and subcellular distribution of catechol-O-methyl transferase in the rat brain. J Neurochem 19:2049-2055.

51. Brodde OE (1990) - Physiology and pharmacology of cardiovascular catecholamine receptors: implications for treatment of chronic heart failure. Am Heart J 120:15651572.

52. Brown-Borg HM, Zhang FP, Huhtaniemi I, Bartke A (1996) - Developmental aspects of prolactin receptor gene expression in fetal and neonatal mice. Eur J Endocrinol 134:751-757.

53. Brownstein MJ, Russell JT, Gainer H (1980) - Synthesis, transport, and release of posterior pituitary hormones. Science 207:373-378.

54. Buttarelli FR, Fanciulli A, Pellicano C, Pontieri FE (2011) - The dopaminergic system in peripheral blood lymphocytes: from physiology to pharmacology and potential applications to neuropsychiatric disorders. Curr Neuropharmacol 9:278-288.

55. Buu NT, Lussier C (1990) - Origin of dopamine in the rat adrenal cortex. Am J Physiol 258:F287-291.

56. Chan-Palay V, Zaborszky L, Kohler C, Goldstein M, Palay SL (1984) - Distribution of tyrosine-hydroxylase-immunoreactive neurons in the hypothalamus of rats. J Comp Neurol 227:467-496.

57. Chatelain A, Dupouy JP, Dubois MP (1979) - Ontogenesis of cells producing polypeptide hormones (ACTH, MSH, LPH, GH, prolactin) in the fetal hypophysis of the rat: influence of the hypothalamus. Cell Tissue Res 196:409-427.

58. Chen HT (1987) - Postnatal development of pituitary lactotropes in the rat measured by reverse hemolytic plaque assay. Endocrinology 120:247-253.

59. Childs GV (1991) - Multipotential pituitary cells that contain adrenocorticotropin (ACTH) and other pituitary hormones. Trends Endocrinol Metab 2:112-117.

60. Christenson JG, Dairman W, Udenfriend S (1970) - Preparation and properties of a homogeneous aromatic L-amino acid decarboxylase from hog kidney. Arch Biochem Biophys 141:356-367.

61. Chritton SL, Chinnow SL, Grabau C, Dousa MK, Lucas D, Roddy D, Yaksh TL, Tyce GM (1997) - Adrenomedullary secretion of DOPA, catecholamines, catechol metabolites, and neuropeptides. J Neurochem 69:2413-2420.

62. Chronwall BM, Millington WR, Griffin WS, Unnerstall JR, O'Donohue TL (1987) -Histological evaluation of the dopaminergic regulation of proopiomelanocortin gene expression in the intermediate lobe of the rat pituitary, involving in situ hybridization and [3H]thymidine uptake measurement. Endocrinology 120:1201-1211.

63. Civelli O, Bunzow JR, Grandy DK (1993) - Molecular diversity of the dopamine receptors. Annu Rev Pharmacol Toxicol 33:281-307.

64. Costentin J, Marcais H, Protais P, Baudry M, De La Baume S, Martres MP, Schwartz JC (1977) - Rapid development of hypersensitivity of striatal dopamine receptors induced by alpha-methylparatyrosine and its prevention by protein synthesis inhibitors. Life Sci 21:307-313.

65. Coupland RE (1952) - The prenatal development of the abdominal para-aortic bodies in man. J Anat 86:357-372.

66. Coupland RE, Weakley BS (1970) - Electron microscopic observation on the adrenal medulla and extra-adrenal chromaffin tissue of the postnatal rabbit. J Anat 106:213231.

67. Coyle JT, Axelrod J (1972) - Tyrosine hydroxylase in rat brain: developmental characteristics. JNeurochem 19:1117-1123.

68. Czyrak A, Mackowiak M, Chocyk A, Fijal K, Wedzony K (2003) - Role of glucocorticoids in the regulation of dopaminergic neurotransmission. Pol J Pharmacol 55:667-674.

69. Dahlin M, Jansson B, Bjork E (2001) - Levels of dopamine in blood and brain following nasal administration to rats. Eur J Pharm Sci 14:75-80.

70. Dahlstroem A, Fuxe K (1964) - Evidence for the existence of monoamine-containing neurons in the central nervous system. I. Demonstration of Monoamines in the Cell Bodies of Brain Stem Neurons. Acta Physiol Scand Suppl:232:231-255.

71. Daikoku S, Kawano H, Okamura Y, Tokuzen M, Nagatsu I (1986) - Ontogenesis of immunoreactive tyrosine hydroxylase-containing neurons in rat hypothalamus. Brain Res 393:85-98.

72. Davis MD, Lichtensteiger W, Schlumpf M, Bruinink A (1984) - Early postnatal development of pituitary intermediate lobe control in the rat by dopamine neurons. Neuroendocrinology 39:1-12.

73. De Gallardo MR, Freire F, Tramezzani JH (1974) - The organ of Zuckerkandl of the newborn rat and its postnatal involution. Acta Physiol Lat Am 24:290-304.

74. De Vitry F, Hillion J, Catelon J, Thibault J, Benoliel JJ, Hamon M (1991) - Dopamine increases the expression of tyrosine hydroxylase and aromatic amino acid decarboxylase in primary cultures of fetal neurons. Brain Res Dev Brain Res 59:123131.

75. de Vos AM, Ultsch M, Kossiakoff AA (1992) - Human growth hormone and extracellular domain of its receptor: crystal structure of the complex. Science 255:306-312.

76. Denney RM, Fritz RR, Patel NT, Widen SG, Abell CW (1983) - Use of a monoclonal antibody for comparative studies of monoamine oxidase B in mitochondrial extracts of human brain and peripheral tissues. Mol Pharmacol 24:60-68.

77. Dlouha H, Krecek J, Zicha J (1982) - Postnatal development and diabetes insipidus in Brattleboro rats. AnnN Y Acad Sci 394:10-20.

78. Dorner G (1981) - Sex hormones and neurotransmitters as mediators for sexual differentiation of the brain. Endokrinologie 78:129-138.

79. Dupouy JP, Dubois MP (1975) - Ontogenesis of the alpha-MSH, beta-MSH and ACTH cells in the foetal hypophysis of the rat. Correlation with the growth of the adrenals and adrenocortical activity. Cell Tissue Res 161:373-384.

80. Dussault JH, Walker P, Dubois JD (1977) - The development of the hypothalamo-pituitary axis in the neonatal rat: pituitary and serum prolactin concentrations. Can J Physiol Pharmacol 55:84-89.

81. Edwards RM (1985) - Response of isolated renal arterioles to acetylcholine, dopamine, and bradykinin. Am J Physiol 248:F183-189.

82. Edwards RM (1986) - Comparison of the effects of fenoldopam, SK & F R-87516 and dopamine on renal arterioles in vitro. Eur J Pharmacol 126:167-170.

83. Eisenhofer G, Aneman A, Friberg P, Hooper D, Fandriks L, Lonroth H, Hunyady B, Mezey E (1997) - Substantial production of dopamine in the human gastrointestinal tract. J Clin Endocrinol Metab 82:3864-3871.

84. el Feki A, Sakly M (1988) - Impairment of stress-induced secretion of prolactin during development: effects of adrenalectomy, TRH and sulpiride. J Physiol (Paris) 83:36-42.

85. Els worth JD, Roth RH (1997) - Dopamine synthesis, uptake, metabolism, and receptors: relevance to gene therapy of Parkinson's disease. Exp Neurol 144:4-9.

86. Engel J (1972) - Neurochemistry and behavior. A correlative study with special reference to central catecholamines. Goteburg.

87. Eraenkoe O and Haerkoenen M (1965) - Monoamine-Containing Small Cells in the Superior Cervical Ganglion of the Rat and an Organ Composed of Them. Acta Physiol Scand 63:511-512.

88. Everitt BJ, Hokfelt T (1992) - The organization of monoaminergic neurons in the hypothalamus in relation to neuroendocrine integration. Neuroendocrinology / Ed. C.B Nemeroff. Boca Raton, CRC Press:87-128.

89. Fagervall I, Ross SB (1986) - A and B forms of monoamine oxidase within the monoaminergic neurons of the rat brain. J Neurochem 47:569-576.

90. Felder RA, Felder CC, Eisner GM, Jose PA (1989) - The dopamine receptor in adult and maturing kidney. Am J Physiol 257:F315-327.

91. Fernandez-Ruiz JJ, Esquifmo AI, Steger RW, Amador AG, Bartke A (1987a) -Presence of tyrosine-hydroxylase activity in anterior pituitary adenomas and ectopic anterior pituitaries in male rats. Brain Res 421:65-68.

92. Fernandez-Ruiz JJ, Ubeda E, Cebeira M, Agrasal C, Tresguerres JA, Ramos JA, Esquifmo AI (1987b) - Modifications of plasma prolactin levels and catecholamine

content in an ectopic anterior pituitary gland transplanted under the kidney capsule. HormRes 25:105-112.

93. Filicori M (1999) - The role of luteinizing hormone in folliculogenesis and ovulation induction. Fertil Steril 71:405-414.

94. Finkel Y, Eklof AC, Granquist L, Soares-da-Silva P, Bertorello AM (1994) -Endogenous dopamine modulates jejunal sodium absorption during high-salt diet in young but not in adult rats. Gastroenterology 107:675-679.

95. Finley JC, Polak J, Katz DM (1992) - Transmitter diversity in carotid body afferent neurons: dopaminergic and peptidergic phenotypes. Neuroscience 51:973-987.

96. Fiszman ML, Zuddas A, Masana MI, Barker JL, di Porzio U (1991) - Dopamine synthesis precedes dopamine uptake in embryonic rat mesencephalic neurons. J Neurochem 56:392-399.

97. Fitzpatrick PF (2000) - The aromatic amino acid hydroxylases. Adv Enzymol Relat Areas Mol Biol 74:235-294.

98. Flemstrom G, Safsten B (1994) - Role of dopamine and other stimuli of mucosal bicarbonate secretion in duodenal protection. Dig Dis Sci 39:1839-1842.

99. Flores CM, Hulihan-Giblin BA, Hornby PJ, Lumpkin MD, Kellar KJ (1992) - Partial characterization of a neurotransmitter pathway regulating the in vivo release of prolactin. Neuroendocrinology 55:519-528.

100. Fon EA, Pothos EN, Sun BC, Killeen N, Sulzer D, Edwards RH (1997) -Vesicular transport regulates monoamine storage and release but is not essential for amphetamine action. Neuron 19:1271-1283.

101. Foster GA, Schultzberg M, Goldstein M, Hokfelt T (1985) - Ontogeny of phenylethanolamine N-methyltransferase- and tyrosine hydroxylase-like immunoreactivity in presumptive adrenaline neurones of the foetal rat central nervous system. J Comp Neurol 236:348-381.

102. Fraser R, Connell JM, Inglis G, Kenyon CJ, Tree M (1989) - The role of dopamine in the control of corticosteroid secretion and metabolism. J Steroid Biochem 32:217-222.

103. Freeman ME, Kanyicska B, Lerant A, Nagy G (2000) - Prolactin: structure, function, and regulation of secretion. Physiol Rev 80:1523-1631.

104. Fujita M, Shimada S, Nishimura T, Uhl GR, Tohyama M (1993) - Ontogeny of dopamine transporter mRNA expression in the rat brain. Brain Res Mol Brain Res 19:222-226.

105. Fumagalli G, Zanini A (1985) - In cow anterior pituitary, growth hormone and prolactin can be packed in separate granules of the same cell. J Cell Biol 100:20192024.

106. Fuse Y (1996) - Development of the hypothalamic-pituitary-thyroid axis in humans. Reprod Fertil Dev 8:1-21.

107. Gainetdinov RR, Jones SR, Fumagalli F, Wightman RM, Caron MG (1998) -Re-evaluation of the role of the dopamine transporter in dopamine system homeostasis. Brain Res Brain Res Rev 26:148-153.

108. Ganong WF (2001) - The thyroid gland. In: Review of medical physiology. 20th edition. New York: McGraw Hill:307-321.

109. Gerbi A, Maixent JM, Zerouga M, Berrebi-Bertrand I, Debray M, Chanez C, Bourre JM (1997) - Specific modulation of two neuronal digitalis receptors by anaesthesia. J Recept Signal Transduct Res 17:137-147.

110. Gesek FA and Schoolwerth AC (1990) - Hormonal interactions with the proximal Na(+)-H+ exchanger. Am J Physiol 258:F514-521.

111. Gibbs DM and Neill JD (1978) - Dopamine levels in hypophysial stalk blood in the rat are sufficient to inhibit prolactin secretion in vivo. Endocrinology 102:18951900.

112. Glavin GB, Szabo S (1990) - Dopamine in gastrointestinal disease. Dig Dis Sci 35:1153-1161. Bigornia L, Allen CN, Jan CR, Lyon RA, Titeler M, Schneider AS (1990) - D2 dopamine receptors modulate calcium channel currents and catecholamine secretion in bovine adrenal chromaffin cells. J Pharmacol Exp Ther 252:586-592.

113. Glitsch MD (2008) - Spontaneous neurotransmitter release and Ca2+~how spontaneous is spontaneous neurotransmitter release? Cell Calcium 43:9-15.

114. Glowinski J, Axelrod J, Kopin IJ, Wurtman RJ (1964) - Physiological Disposition of H3-Norepinephrine in the Developing Rat. J Pharmacol Exp Ther 146:48-53.

115. Gluckman PD, Grumbach MM, Kaplan SL (1981) - The neuroendocrine regulation and function of growth hormone and prolactin in the mammalian fetus. Endocr Rev 2:363-395.

116. Goldberg LI, Volkman PH, Kohli JD (1978) - A comparison of the vascular dopamine receptor with other dopamine receptors. Annu Rev Pharmacol Toxicol 18:57-79.

117. Goldstein DS, Mezey E, Yamamoto T, Aneman A, Friberg P, Eisenhofer G (1995) - Is there a third peripheral catecholaminergic system? Endogenous dopamine as an autocrine/paracrine substance derived from plasma DOPA and inactivated by conjugation. Hypertens Res 18 Suppl l:S93-99.

118. Goldstein M, Fuxe K, Hokfelt T, Joh TH (1971) - Immunohistochemical studies on phenylethanolamine-N-methyltransferase, dopa-decarboxylase and dopamine- -hydroxylase. Experientia 27:951-952.

119. Gonzalez C, Almaraz L, Obeso A, Rigual R (1994) - Carotid body chemoreceptors: from natural stimuli to sensory discharges. Physiol Rev 74:829-898.

120. Goodman HM (1998) - Pituitary gland. In: Johnson LR, editor. Essential medical physiology. Philadelphia:Lippincott-Raven:511-520.

121. Gregerson KA, Flagg TP, O'Neill TJ, Anderson M, Lauring O, Horel JS, Welling PA (2001) - Identification of G protein-coupled, inward rectifier potassium channel gene products from the rat anterior pituitary gland. Endocrinology 142:28202832.

122. Grillo MA (1966) - Electron microscopy of sympathetic tissues. Pharmacol Rev 18:387-399.

123. Grimsby J, Lan NC, Neve R, Chen K, Shih JC (1990) - Tissue distribution of human monoamine oxidase A and B mRNA. J Neurochem 55:1166-1169.

124. Grossman E, Hoffman A, Chang PC, Keiser HR, Goldstein DS (1990) -Increased spillover of dopa into arterial blood during dietary salt loading. Clin Sci (Lond) 78:423-429.

125. Gudelsky GA, Porter JC (1980) - Release of dopamine from tuberoinfundibular neurons into pituitary stalk blood after prolactin or haloperidol administration. Endocrinology 106:526-529.

126. Hanaway J, McConnell JA, Netsky MG (1971) - Histogenesis of the substantia nigra, ventral tegmental area of Tsai and interpeduncular nucleus: an autoradiographic study of the mesencephalon in the rat. J Comp Neurol 142:59-73.

127. Hansson SR, Hoffman BJ and Mezey E (1998) - Ontogeny of vesicular monoamine transporter mRNAs VMAT1 and VMAT2. I. The developing rat central nervous system. Brain Res Dev Brain Res 110:135-158.

128. Hatton GI (1990) - Emerging concepts of structure-function dynamics in adult brain: the hypothalamo-neurohypophysial system. Prog Neurobiol 34:437-504.

129. Hervonen A (1971) - Development of catecholamine—storing cells in human fetal paraganglia and adrenal medulla. A histochemical and electron microscopical study. Acta Physiol Scand Suppl 368:1-94.

130. Hoeffler JP, Boockfor FR, Frawley LS (1985) - Ontogeny of prolactin cells in neonatal rats: initial prolactin secretors also release growth hormone. Endocrinology 117:187-195.

131. Hoffman GE, Lee WS, Wray S. (1992) - Gonadotropin releasing hormone (GnRH). In: Nemeroff CB (ed) Neuroendocrinology. CRC Press, Boca Raton, pp. 85216.

132. Hokfelt T, Johansson O, Goldstein M. (1984) - Central catecholamine neurons as reveald by immunocytochemistry with special reference to adrenaline neurons. Handbook of Chemical Neuroanatomy. Classical Neurotransmitters in the CNS, Elsevier, Amsterdam: 157-276.

133. Hooghe-Peters EL, Belayew A, Herregodts P, Yelkeniers B, Smets G, Martial JA,Vanhaelst L (1988) - Discrepancy between prolactin (PRL) messenger ribonucleic acid and PRL content in rat fetal pituitary cells: possible role of dopamine. Mol Endocrinol 2:1163-1168.

134. Huang Q, Zhou D, Chase K, Gusella JF, Aronin N, DiFiglia M (1992) -Immunohistochemical localization of the D1 dopamine receptor in rat brain reveals its axonal transport, pre- and postsynaptic localization, and prevalence in the basal ganglia, limbic system, and thalamic reticular nucleus. Proc Natl Acad Sci U S A 89:11988-11992.

135. Huh MM, Friedhoff AJ (1979) - Multiple molecular forms of catechol-O-methyltransferase. Evidence for two distinct forms, and their purification and physical characterization. J Biol Chem 254:299-308.

136. Isaac J, Glahn RP, Appel MM, Onsgard M, Dousa TP, Knox FG (1992) -Mechanism of dopamine inhibition of renal phosphate transport. J Am Soc Nephrol 2:1601-1607.

137. Iversen LL (1967) - The catecholamines. Nature 214:8-14.

138. Izvolskaia M, Duittoz AH, Tillet Y, Ugrumov MV (2009) - The influence of catecholamine on the migration of gonadotropin-releasing hormone-producing neurons in the rat foetuses. Brain Struct Funct 213:289-300.

139. Jackson I, Mueller, GP (1982) - Neuroendocrine interrelationships. In: Biological regulation and development. Hormone action. Plenum Press, New York: 127-202.

140. Jadhav AL, Liu Q (1992) - DAI receptor mediated regulation of Na(+)-H+ antiport activity in rat renal cortical brush border membrane vesicles. Clin Exp Hypertens A 14:653-666.

141. Jaeger CB (1986) - Aromatic L-amino acid decarboxylase in the rat brain: immunocytochemical localization during prenatal development. Neuroscience 18:121-150.

142. Jahng JW, Houpt TA, Wessel TC, Chen K, Shih JC, Joh TH (1997) -Localization of monoamine oxidase A and B mRNA in the rat brain by in situ hybridization. Synapse 25:30-36.

143. Janssens de Varebeke P, Cavalier R, David-Remacle M, Youdim MB (1988) -Formation of the neurotransmitter glycine from the anticonvulsant milacemide is mediated by brain monoamine oxidase B. J Neurochem 50:1011-1016.

144. Jose PA, Raymond JR, Bates MD, Aperia A, Felder RA, Carey RM (1992) -The renal dopamine receptors. J Am Soc Nephrol 2:1265-1278.

145. Kaplan SL, Grumbach MM, Aubert ML (1976) - The ontogenesis of pituitary hormones and hypothalamic factors in the human fetus: maturation of central nervous system regulation of anterior pituitary function. Recent Prog Horm Res 32:161-243.

146. Karhunen T, Tilgmann C, Ulmanen I, Julkunen I, Panula P (1994) -Distribution of catechol-O-methyltransferase enzyme in rat tissues. J Histochem Cytochem 42:1079-1090.

147. Khorram O, Depalatis LR, McCann SM (1984) - Hypothalamic control of prolactin secretion during the perinatal period in the rat. Endocrinology 115:16981704.

148. Kioussi C, Carriere C, Rosenfeld MG (1999) - A model for the development of the hypothalamic-pituitary axis: transcribing the hypophysis. Mech Dev 81:23-35.

149. Kolbinger W, Beyer C, Fohr K, Reisert I, Pilgrim C (1992) - Diencephalic GABAergic neurons in vitro respond to prolactin with a rapid increase in intracellular free calcium. Neuroendocrinology 56:148-152.

150. Koller WC, Rueda MG (1998) - Mechanism of action of dopaminergic agents in Parkinson's disease. Neurology 50:S11-14.

151. König W (1993) - Peptide and Protein Hormones. Structure, Regulation, Activity. A Reference Manual. Weinheim & New York: VCH. Peptide and Protein Hormones.

152. Koslow SH (1976) - Mass fragmentographic analysis of SIF cell catecholamines of normal and experimental rat sympathetic ganglia. SIF Cells,

Structure and Function of the Small Intensely Fluorescent Sympathetic Cells, ed. O. Eranko, Fogarty Int. Cent. Proc. No. 30, DHEW Pub.:82-88.

153. Koslow SH (1977) - Dopamine and other catecholamine-containing SIF cells. Adv Biochem Psychopharmacol 16:553-556.

154. Krieger DT, Hughes JC (1980) - Neuroendocrinology. Sinauer Associates, Inc., Sunderland, pp. 249.

155. Kristensen HK, Lau YY, Ewing AG (1994) - Capillary electrophoresis of single cells: observation of two compartments of neurotransmitter vesicles. J Neurosci Methods 51:183-188.

156. Kuppers E, Beyer C (2001) - Dopamine regulates brain-derived neurotrophic factor (BDNF) expression in cultured embryonic mouse striatal cells. Neuroreport 12:1175-1179.

157. Kurosawa S, Hasler WL, Torres G, Wiley JW, Owyang C (1991) -Characterization of receptors mediating the effects of dopamine on gastric smooth muscle. Gastroenterology 100:1224-1231.

158. Kurtz A, Delia Bruna R, Pratz J, Cavero I (1988) - Rat juxtaglomerular cells are endowed with DA-1 dopamine receptors mediating renin release. J Cardiovasc Pharmacol 12:658-663.

159. Lauder JM (1993) - Neurotransmitters as growth regulatory signals: role of receptors and second messengers. Trends Neurosci 16:233-240.

160. Lauder JM (1993) - Neurotransmitters as growth regulatory signals: role of receptors and second messengers. Trends Neurosci 16:233-240.

161. Lauder JM, Bloom FE (1974) - Ontogeny of monoamine neurons in the locus coeruleus, Raphe nuclei and substantia nigra of the rat. I. Cell differentiation. J Comp Neurol 155:469-481.

162. Lehmann E, Hanze J, Pauschinger M, Ganten D, Lang RE (1990) -Vasopressin mRNA in the neurolobe of the rat pituitary. Neurosci Lett 111 :170-175.

163. Lelkes PI, Ramos EM, Chick DM, Liu J and Unsworth BR (1994) -Microgravity decreases tyrosine hydroxylase expression in rat adrenals. Faseb J 8:1177-1182.

164. Levitt P, Pintar JE, Breakefield XO (1982) - Immunocytochemical demonstration of monoamine oxidase B in brain astrocytes and serotonergic neurons. Proc Natl Acad Sci U S A 79:6385-6389.

165. Lindvall O, Bjorklund A (1978) - Anatomy of the dopaminergic neuron systems in the rat brain. Adv Biochem Psychopharmacol 19:1-23.

166. Loizou LA (1970) - Uptake of monoamines into central neurones and the blood-brain barrier in the infant rat. Br J Pharmacol 40:800-813.

167. Lovenberg W, Weissbach H, Udenfriend S (1962) - Aromatic L-amino acid decarboxylase. J Biol Chem 237:89-93.

168. Lumpkin MD, Samson WK, McCann SM (1983) - Hypothalamic and pituitary sites of action of oxytocin to alter prolactin secretion in the rat. Endocrinology 112:1711-1717.

169. Luque JM, Kwan SW, Abell CW, Da Prada M, Richards JG (1995) - Cellular expression of mRNAs encoding monoamine oxidases A and B in the rat central nervous system. J Comp Neurol 363:665-680.

170. MacLeod RM (1969) - Influence of norepinephrine and catecholamine-depleting agents on the synthesis and release of prolactin and growth hormone. Endocrinology 85:916-923.

171. Mansour A, Meador-Woodruff JH, Zhou Q, Civelli O, Akil H and Watson SJ (1992) - A comparison of D1 receptor binding and rnRNA in rat brain using receptor autoradiographic and in situ hybridization techniques. Neuroscience 46:959-971.

172. Marchand R, Poirier LJ (1983) - Isthmic origin of neurons of the rat substantia nigra. Neuroscience 9:373-381.

173. Matthews MR, Raisman G (1969) - The ultrastructure and somatic efferent synapses of small granule-containing cells in the superior cervical ganglion. J Anat 105:255-282.

174. McCaman RE (1965) - Microdetermination of catechol-O-methyl transferase in brain. Life Sci 4:2353-2359.

175. McCann SM, Lumpkin, M.D., Mizunuma, H., Khorram, 0ttlecz,0., Samson, W.K. (1984) - Peptidergic and dopaminergic control of prolactin release Trends Neurosci 7:127-131.

176. Meister B, Elde R (1993) - Dopamine transporter mRNA in neurons of the rat hypothalamus. Neuroendocrinology 58:388-395.

177. Meister B, Fried G, Holgert H, Aperia A, Hokfelt T (1992) - Ontogeny of aromatic L-amino acid decarboxylase-containing tubule cells in rat kidney. Kidney Int 42:617-623.

178. Meister B, Fryckstedt J, Schalling M, Cortes R, Hokfelt T, Aperia A, Hemmings HC, Jr., Nairn AC, Ehrlich M, Greengard P (1989) - Dopamine- and cAMP-regulated phosphoprotein (DARPP-32) and dopamine DAI agonist-sensitive Na+,K+-ATPase in renal tubule cells. Proc Natl Acad Sci U S A 86:8068-8072.

179. Melnikova V, Orosco M, Calas A, Sapronova A, Gainetdinov R, Delhaye-Bouchaud N, Nicolaidis S, Rayevsky K, Ugrumov M (1999) - Dopamine turnover in the mediobasal hypothalamus in rat fetuses. Neuroscience 89:235-241.

180. Melnikova VI, Orosco M, Rouch C, Calas A, Nicolaidis S, Proshlyakova EV, Sapronova AY, Ugrumov MV (1998) - Prolactin secretion and its dopamine inhibitory control in rat fetuses. Eur J Endocrinol 139:337-342.

181. Merits I (1976) - Formation and metabolism of [14C] dopamine 3-O-sulfate in dog, rat and guinea pig. Biochem Pharmacol 25:829-833.

182. Mezey E, Eisenhofer G, Hansson S, Harta G, Hoffman BJ, Gallatz K, Palkovits M, Hunyady B (1999) - Non-neuronal dopamine in the gastrointestinal system. Clin Exp Pharmacol Physiol Suppl 26:S14-22.

183. Millhorn DE (1988) - Chemical messengers and their coexistence in individual neurons. News Physiol Sci 3:1-5.

184. Mirochnik V, Bosler O, Tillet Y, Calas A, Ugrumov M (2005) - Long-lasting effects of serotonin deficiency on differentiating peptidergic neurons in the rat suprachiasmatic nucleus. Int J Dev Neurosci 23:85-91.

185. Missale C, Castelletti L, Memo M, Carruba MO, Spano PF (1988a) -Identification and characterization of postsynaptic Dl- and D2-dopamine receptors in the cardiovascular system. J Cardiovasc Pharmacol 11:643-650.

186. Missale C, Lombardi C, De Cotiis R, Memo M, Carruba MO, Spano PF (1989) - Dopaminergic receptor mechanisms modulating the renin-angiotensin system and aldosterone secretion: an overview. J Cardiovasc Pharmacol 14 Suppl 8:S29-39.

187. Missale C, Memo M, Liberini P, Spano P (1988b) - Dopamine selectively inhibits angiotensin II-induced aldosterone secretion by interacting with D-2 receptors. J Pharmacol Exp Ther 246:1137-1143.

188. Missale C, Nash SR, Robinson SW, Jaber M, Caron MG (1998) - Dopamine receptors: from structure to function. Physiol Rev 78:189-225.

189. Miyaguchi H, Kato I, Sano T, Sobajima H, Fujimoto S and Togari H (1999)-Dopamine penetrates to the central nervous system in developing rats. Pediatr Int 41:363-368.

190. Modlin IM, Champaneria MC, Bornschein J, Kidd M (2006) - Evolution of the diffuse neuroendocrine system-clear cells and cloudy origins. Neuroendocrinology 84:69-82. of the Pearse AG (1986) - The diffuse neuroendocrine system: peptides, amines, placodes and the APUD theory. Prog Brain Res 68:25-31.

191. Mogg RJ, Samson WK (1990) - Interactions of dopaminergic and peptidergic factors in the control of prolactin release. Endocrinology 126:728-735.

192. Moguilevsky JA, Carbone S, Szwarcfarb B (1992) - Changes in the effect of gamma-aminobutyric acid on prolactin secretion during sexual maturation in female rats. Endocrinology 131:458-462.

193. Moore KE Dominic JA (1971) - Tyrosine hydroxylase inhibitors. Fed Proc 30:859-870.

194. Morel G, Gourdji D, Grouselle D, Brunet N, Tixier-Vidal A, Dubois PM (1985) - Immunocytochemical evidence for in vivo internalization of thyroliberin into rat pituitary target cells. Neuroendocrinology 41:312-320.

195. Morishige WK, Rothchild I (1974) - A paradoxical inhibiting effect of ether on prolactin release in the rat: comparison with effect of ether on LH and FSH. Neuroendocrinology 16:95-107.

196. Mulchahey JJ, Jaffe RB (1988) - Detection of a potential progenitor cell in the human fetal pituitary that secretes both growth hormone and prolactin. J Clin Endocrinol Metab 66:24-32.

197. Nagata S, Rosenfeld MG, Inoue K. (1992) - Development of prolactin and growth hormone production in the fetal rat pituitary: an immunochemical study Develop. Growth & Differentiation 34:473-478.

198. Nagatsu T, Ichinose H (1999) - Regulation of pteridine-requiring enzymes by the cofactor tetrahydrobiopterin. MolNeurobiol 19:79-96.

199. Nagatsu T, Levitt M, Udenfriend S (1964) - Tyrosine Hydroxylase. The initial step in norepinephrine biosynthesis. J Biol Chem 239:2910-2917.

200. Nagatsu T, Stjarne L (1998) - Catecholamine synthesis and release. Overview. Adv Pharmacol 42:1-14.

201. Nakai Y, Shioda S, Ochiai H, Kozasa K (1986) - Catecholamine-peptide interactions in the hypotalamus. Curr. Top. Neuroendocrinol. 7:135-160.

202. Neff NH, Hadjiconstantinou M (1995) - Aromatic L-amino acid decarboxylase modulation and Parkinson's disease. Prog Brain Res 106:91-97.

203. Neill JD (1988) - Prolactin secretion and its control The Physiology of Reproduction / Ed. E. Knobil, J. Neill et al. Raven Press, New York:1379-1390.

204. Nemeskeri A, Acs Z, Toth BE (1995) - Prolactin-synthesizing and prolactin-releasing activity of fetal and early postnatal rat pituitaries: in vivo and in vitro studies using RIA, reverse hemolytic plaque assay and immunocytochemistry. Neuroendocrinology 61:687-694.

205. Newman GR, Jasani B, Williams ED (1989) - Multiple hormone storage by cells of the human pituitary. J Histochem Cytochem 37:1183-1192.

206. Nogami H, Suzuki K, Enomoto H, Ishikawa H (1989) - Studies on the development of growth hormone and prolactin cells in the rat pituitary gland by in situ hybridization. Cell Tissue Res 255:23-28.

207. Nogami H,Yoshimura F (1982) - Fine structural criteria of prolactin cells identified immunohistochemically in the male rat. Anat Rec 202:261-274.

208. Norberg KA, Ritzen M, Ungerstedt U (1966) - Histochemical studies on a special catecholamine-containing cell type in sympathetic ganglia. Acta Physiol Scand 67:260-270.

209. Ohtani N, Goto T, Waeber C and Bhide PG (2003) - Dopamine modulates cell cycle in the lateral ganglionic eminence. J Neurosci 23:2840-2850.

210. Ojeda SR, Krulich L, Jameson HE (1976) - Developmental patterns of plasma and pituitary TSH and prolactin and hypothalamic TRH in the female rat. Endocr Res Commun 3:387-406.

211. Ojeda SR, McCann SM (1974) - Development of dopaminergic and estrogenic control of prolactin release in the female rat. Endocrinology 95:1499-1505.

212. Oliver C, Eskay RL, Porter JC (1980) - Developmental changes in brain TRH and in plasma and pituitary TSH and prolactin levels in the rat. Biol Neonate 37:145152.

213. Olson L, Seiger A (1972) - Early prenatal ontogeny of central monoamine neurons in the rat: fluorescence histochemical observations. Z Anat Entwicklungsgesch 137:301-316.

214. O'Malley KL, Harmon S, Tang L, Todd RD (1992) - The rat dopamine D4 receptor: sequence, gene structure, and demonstration of expression in the cardiovascular system. New Biol 4:137-146.

215. Owman C, Rosengren E (1967) - Dopamine formation in brain capillaries-an enzymic blood-brain barrier mechanism. J Neurochem 14:547-550.

216. Pakarinen P, Proshlyakova E, Huhtaniemi I (1994) - Pituitary-gonadal interactions in perinatal rats: relationships of plasma luteinizing hormone and testosterone concentrations, and pituitary levels of LH subunit mRNAs. Neuroendocrinology 60:42-49.

217. Papka RE, Yu SM, Nikitovitch-Winer MB (1986) - Use of immunoperoxidase and immunogold methods in studying prolactin secretion and application of

immunogold labelling for pituitary hormones and neuropeptides. Am J Anat 175:289306.

218. Pardridge WM, Oldendorf WH (1977) - Transport of metabolic substrates through the blood-brain barrier. J Neurochem 28:5-12.

219. Pares-Herbute N, Tapia-Arancibia L, Astier H (1989) - Ontogeny of the metencephalic, mesencephalic and diencephalic content of catecholamines as measured by high performance liquid chromatography with electrochemical detection. Int J Dev Neurosci 7:73-79.

220. Pares-Herbute N, Tapia-Arancibia L, Astier H (1989) - Ontogeny of the metencephalic, mesencephalic and diencephalic content of catecholamines as measured by high performance liquid chromatography with electrochemical detection. Int J Dev Neurosci 7:73-79.

221. Pasqualini C, Guibert B, Frain O, Leviel V (1994) - Evidence for protein kinase C involvement in the short-term activation by prolactin of tyrosine hydroxylase in tuberoinfundibular dopaminergic neurons. J Neurochem 62:967-977.

222. Payne CM (1989) - Phylogenetic considerations of neurosecretory granule contents: role of nucleotides and basic hormone/transmitter packaging mechanisms. Arch Histol Cytol 52 Suppl:277-292.

223. Peleg D, Arbogast LA, Peleg E, Ben-Jonathan N (1984) - Predominance of L-dopa in fetal plasma and the amniotic fluid during late gestation in the rat. Am J Obstet Gynecol 149:880-883.

224. Phelps CJ (1994) - Pituitary hormones as neurotrophic signals: anomalous hypophysiotrophic neuron differentiation in hypopituitary dwarf mice. Proc Soc Exp Biol Med 206:6-23.

225. Phillippe M (1983) - Fetal catecholamines. Am J Obstet Gynecol 146:840-855.

226. Pickel VM, Joh TH, Field PM, Becker CG, Reis DJ (1975) - Cellular localization of tyrosine hydroxylase by immunohistochemistry. J Histochem Cytochem 23:1-12.

227. Popolo M, McCarthy DM, Bhide PG (2004) - Influence of dopamine on precursor cell proliferation and differentiation in the embryonic mouse telencephalon. Dev Neurosci 26:229-244.

228. Power RF, Lydon JP, Conneely OM, O'Malley BW (1991) - Dopamine activation of an orphan of the steroid receptor superfamily. Science 252:1546-1548.

229. Pronina T, Ugrumov M, Adamskaya E, Kuznetsova T, Shishkina I, Babichev V, Calas A, Tramu G, Mailly P, Makarenko I (2003) - Influence of serotonin on the

development and migration of gonadotropin-releasing hormone neurones in rat foetuses. J Neuroendocrinol 15:549-558.

230. Puymirat J, Barret A, Picart R, Vigny A, Loudes C, Faivre-Bauman A, Tixier-Vidal A (1983) - Triiodothyronine enhances the morphological maturation of dopaminergic neurons from fetal mouse hypothalamus cultured in serum-free medium. Neuroscience 10:801-810.

231. Raiteri M, Cerrito F, Cervoni AM, Levi G (1979) - Dopamine can be released by two mechanisms differentially affected by the dopamine transport inhibitor nomifensine. J Pharmacol Exp Ther 208:195-202.

232. Rajerison RM, Butlen D, Jard S (1976) - Ontogenic development of antidiuretic hormone receptors in rat kidney: comparison of hormonal binding and adenylate cyclase activation. Mol Cell Endocrinol 4:271-285.

233. Rech RH, Carr LA, Moore KE (1968) - Behavioral effects of alpha-methyltyrosine after prior depletion of brain catecholamines. J Pharmacol Exp Ther 160:326-335.

234. Reese TS, Karnovsky MJ (1967) - Fine structural localization of a blood-brain barrier to exogenous peroxidase. J Cell Biol 34:207-217. (Reese and Karnovsky, 1967)

235. Reith ME, Xu C, Chen NH (1997) - Pharmacology and regulation of the neuronal dopamine transporter. Eur J Pharmacol 324:1-10.

236. Ren JQ, Jiang Y, Wang Z, McCarthy D, Rajadhyaksha AM, Tropea TF, Kosofsky BE, Bhide PG (2011) - Prenatal L-DOPA exposure produces lasting changes in brain dopamine content, cocaine-induced dopamine release and cocaine conditioned place preference. Neuropharmacology 60:295-302.

237. Ribary U, Schlumpf M, Lichtensteiger W (1986) - Analysis by HPLC-EC of metabolites of monoamines in fetal and postnatal rat brain. Neuropharmacology 25:981-986.

238. Ricci A, Mariotta S, Greco S, Bisetti A (1997) - Expression of dopamine receptors in immune organs and circulating immune cells. Clin Exp Hypertens 19:5971.

239. Ricci A, Mariotta S, Greco S, Bisetti A (1997) - Expression of dopamine receptors in immune organs and circulating immune cells. Clin Exp Hypertens 19:5971.

240. Rosa P, Fumagalli G, Zanini A and Huttner WB (1985) - The major tyrosine-sulfated protein of the bovine anterior pituitary is a secretory protein present in

gonadotrophs, thyrotrophs, mammotrophs, and corticotrophs. J Cell Biol 100:928937.

241. Rosenfeld P, Suchecki D, Levine S (1992) - Multifactorial regulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis during development. Neurosci Biobehav Rev 16:553-568.

242. Rothman TP, Specht LA, Gershon MD, Joh TH, Teitelman G, Pickel VM, Reis DJ (1980) - Catecholamine biosynthetic enzymes are expressed in replicating cells of the peripheral but not the central nervous system. Proc Natl Acad Sci U S A 77:6221-6225.

243. Rubin LL, Staddon JM (1999) - The cell biology of the blood-brain barrier. Annu Rev Neurosci 22:1 l-28The cell biology of the blood-brain barrier.

244. Sachs C (1973) - Development of the blood-brain barrier for 6-hydroxydopamine. J Neurochem 20:1753-1760.

245. Sales N, Martres MP, Bouthenet ML, Schwartz JC (1989) - Ontogeny of dopaminergic D-2 receptors in the rat nervous system: characterization and detailed autoradiographic mapping with [125I]iodosulpride. Neuroscience 28:673-700.

246. Samson WK, Lumpkin MD, McDonald JK, McCann SM (1983) - Prolactin-releasing activity of porcine intestinal peptide (PHI-27). Peptides 4:817-819.

247. Samson WK, Said SI, Snyder G, McCann SM (1980) - In vitro stimulation of prolactin release by vasoactive intestinal peptide. Peptides 1:325-332.

248. Sarasa M, Climent S (1991) - Cardiac differentiation induced by dopamine in undifferentiated cells of early chick embryo. Dev Biol 148:243-248.

249. Saura J, Kettler R, Da Prada M, Richards JG (1992) - Quantitative enzyme radioautography with 3H-Ro 41-1049 and 3H-Ro 19-6327 in vitro: localization and abundance of MAO-A and MAO-B in rat CNS, peripheral organs, and human brain. J Neurosci 12:1977-1999.

250. Schambra UB, Duncan GE, Breese GR, Fornaretto MG, Caron MG, Fremeau RT, Jr. (1994) - Ontogeny of D1A and D2 dopamine receptor subtypes in rat brain using in situ hybridization and receptor binding. Neuroscience 62:65-85.

251. Schimchowitsch S, Palacios JM, Stoeckel ME, Porte A (1986) - Dopamine D2 receptors are restricted to the prolactin cells in the rabbit pituitary gland: a combined autoradiographic and immunocytochemical study. Neurosci Lett 70:314-319.

252. Schlump M, Lichtensteiger, W., Shoemaker, W.J., Bloom, F.E. (1980) - Fetal monoamine systems: early stages and cortical projections. Biogenic Amines in Development / Ed. H. Parvez and S. Parvez. Amsterdam: Elsevier:567-590.

253. Schuldiner S, Shirvan A, Linial M (1995) - Vesicular neurotransmitter transporters: from bacteria to humans. Physiol Rev 75:369-392.

254. Scully KM, Rosenfeld MG (2002) - Pituitary development: regulatory codes in mammalian organogenesis. Science 295:2231-2235.

255. Shih JC, Chen K, Ridd MJ (1999) - Monoamine oxidase: from genes to behavior. Annu RevNeurosci 22:197-217.

256. Shirasawa N, Yoshimura F (1982) - Immunohistochemical and electron microscopical studies of mitotic adenohypophysial cells in different ages of rats. Anat Embryol (Berl) 165:51-61.

257. Shoaf SE, Elchisak MA (1983) - Distribution of free and conjugated dopamine in rats and mice. Life Sci 33:625-630.

258. Shyr SW, Crowley WR, Grosvenor CE (1986) - Effect of neonatal prolactin deficiency on prepubertal tuberoinfimdibular and tuberohypophyseal dopaminergic neuronal activity. Endocrinology 119:1217-1221.

259. Simerly RB, Swanson LW, Handa RJ, Gorski RA (1985) - Influence of perinatal androgen on the sexually dimorphic distribution of tyrosine hydroxylase-immunoreactive cells and fibers in the anteroventral periventricular nucleus of the rat. Neuroendocrinology 40:501-510.

260. Simerly RB, Young BJ, Capozza MA, Swanson LW (1989) - Estrogen differentially regulates neuropeptide gene expression in a sexually dimorphic olfactory pathway. Proc Natl Acad Sci U S A 86:4766-4770.

261. Simmons DM, Voss JW, Ingraham HA, Holloway JM, Broide RS, Rosenfeld MG, Swanson LW (1990) - Pituitary cell phenotypes involve cell-specific Pit-1 mRNA translation and synergistic interactions with other classes of transcription factors. Genes Dev 4:695-711.

262. Siuciak JA, Krause DN, Dubocovich ML (1991) - Quantitative pharmacological analysis of 2-125I-iodomelatonin binding sites in discrete areas of the chicken brain. J Neurosci 11:2855-2864.

263. Slabaugh MB, Lieberman ME, Rutledge JJ, Gorski J (1982) - Ontogeny of growth hormone and prolactin gene expression in mice. Endocrinology 110:14891497.

264. Smets G, Velkeniers B, Herregodts P, Vanhaelst L, Gepts W, Hooghe-Peters EL (1989) - Ontogeny of hormone-secreting cells of the rat pituitary gland: an immunocytochemical study on dissociated cells. Histochem J 21:337-342.

265. Snyder G, Naor Z, Fawcett CP, McCann SM (1981) - Action of thyrotropin-releasing hormone on mammotrophs and thyrotrophs. Am J Physiol 241 :E298-304.

266. Specht LA, Pickel VM, Joh TH, Reis DJ (1981) - Light-microscopic immunocytochemical localization of tyrosine hydroxylase in prenatal rat brain. I. Early ontogeny. J Comp Neurol 199:233-253.

267. Spector S, Gordon R, Sjoerdsma A, Udenfriend S (1967) - End-product inhibition of tyrosine hydroxylase as a possible mechanism for regulation of norepinephrine synthesis. Mol Pharmacol 3:549-555.

268. Steele MK, Negro-Vilar A, McCann SM (1981) - Effect of angiotensin II on in vivo and in vitro release of anterior pituitary hormones in the female rat. Endocrinology 109:893-899.

269. Suganuma N, Seo H, Yamamoto N, Kikkawa F, Narita O, Tomoda Y, Matsui N (1986) - Ontogenesis of pituitary prolactin in the human fetus. J Clin Endocrinol Metab 63:156-161.

270. Svennilson J, Aperia A (1999) - Dopamine in the developing kidney. Int J Dev Biol 43:441-443.

271. Takahashi N, Miner LL, Sora I, Ujike H, Revay RS, Kostic V, Jackson-Lewis V, Przedborski S, Uhl GR (1997) - VMAT2 knockout mice: heterozygotes display reduced amphetamine-conditioned reward, enhanced amphetamine locomotion, and enhanced MPTP toxicity. Proc Natl Acad Sei U S A 94:9938-9943.

272. Takahashi S, Miyatake, M. (1991) - Immuno-electron microscopical study of prolactin cells in the rat: postnatal development and effects of estrogen and bromocryptine Zoolog. Sei. Tokyo. 8:549-559.

273. Tang L, Todd RD, Heller A, O'Malley KL (1994) - Pharmacological and functional characterization of D2, D3 and D4 dopamine receptors in fibroblast and dopaminergic cell lines. J Pharmacol Exp Ther 268:495-502.

274. Taniguchi Y, Yasutaka S, Kominami R, Shinohara H (2002) - Proliferation and differentiation of rat anterior pituitary cells. Anat Embryol (Berl) 206:1-11.

275. Tanriverdi F, Silveira LF, MacColl GS and Bouloux PM (2003) - The hypothalamic-pituitary-gonadal axis: immune function and autoimmunity. J Endocrinol 176:293-304.

276. Teitelman G, Jaeger CB, Albert V, Joh TH, Reis DJ (1983) - Expression of amino acid decarboxylase in proliferating cells of the neural tube and notochord of developing rat embryo. JNeurosci 3:1379-1388.

211. Tison F, Normand E, Bloch B (1994) - Prenatal ontogeny of D2 dopamine receptor and dopamine transporter gene expression in the rat mesencephalon. Neurosci Lett 166:48-50.

278. Toledo-Aral JJ, Mendez-Ferrer S, Pardal R, Lopez-Barneo J (2002) -Dopaminergic cells of the carotid body: physiological significance and possible therapeutic applications in Parkinson's disease. Brain Res Bull 57:847-853.

279. Tougard C, Picart R, Tixier-Vidal A (1977) - Cytogenesis of immunoreactive gonadotropic cells in the fetal rat pituitary at light and electron microscope levels. Dev Biol 58:148-163.

280. Tougard C, Tixier-Vidal A (1988) - Lactotropes and gonadotropes The Physiology of Repreoduction / Ed. E. Knobil, J. Neill, et al. Raven Press, New York: 1305-1333.

281. Tuinstra T, Cools AR (2000) - Newly synthesized dopamine in the nucleus accumbens is regulated by beta-adrenergic, but not alpha-adrenergic, receptors. Neuroscience 98:743-747.

282. Tuomisto J and Mannisto P (1985) - Neurotransmitter regulation of anterior pituitary hormones. Pharmacol Rev 37:249-332.

283. Ugrumov MV (1992) - Development of the median eminence during ontogenesis (morpho-functional aspects). Prog Brain Res 91:349-356.

284. Ugrumov MV (1997) - Hypothalamic monoaminergic systems in ontogenesis: development and functional significance. Int J Dev Biol 41:809-816.

285. Ugrumov MV (2002) - Magnocellular vasopressin system in ontogenesis: development and regulation. Microsc Res Tech 56:164-171.

286. Ugrumov MV (2010) Developing brain as an endocrine organ: a paradoxical reality. Neurochem Res 35:837-850.

287. Ugrumov MV, Popov AP, Vladimirov SV, Kasmambetova S, Novodjilova AP, Tramu G (1994) - Development of the suprachiasmatic nucleus in rats during ontogenesis: serotonin-immunopositive fibers. Neuroscience 58:161-165.

288. Ugrumov MV, Taxi J, Mitskevich MS, Tramu G (1986) - Development of the hypothalamic serotoninergic system during ontogenesis in rats. Immunocytochemical and radioautographic study. Brain Res 395:75-84.

289. Ugrumov MV, Taxi J, Tixier-Vidal A, Thibault J, Mitskevich MS (1989a) -Ontogenesis of tyrosine hydroxylase-immunopositive structures in the rat hypothalamus. An atlas of neuronal cell bodies. Neuroscience 29:135-156.

290. Ugrumov MV, Tixier-Vidal A, Taxi J, Thibault J and Mitskevich MS (1989b) - Ontogenesis of tyrosine hydroxylase-immunopositive structures in the rat hypothalamus. Fiber pathways and terminal fields. Neuroscience 29:157-166.

291. Ulmanen I, Peranen J, Tenhunen J, Tilgmann C, Karhunen T, Panula P, Bernasconi L, Aubry JP, Lundstrom K (1997) - Expression and intracellular localization of catechol O-methyltransferase in transfected mammalian cells. Eur J Biochem 243:452-459.

292. Venero JL, Absi el H, Cano J, Machado A (2002) - Melatonin induces tyrosine hydroxylase mRNA expression in the ventral mesencephalon but not in the hypothalamus. J Pineal Res 32:6-14.

293. Vicario I, Rigual R, Obeso A, Gonzalez C (2000) - Characterization of the synthesis and release of catecholamine in the rat carotid body in vitro. Am J Physiol Cell Physiol 278-.C490-499.

294. Vila-Porcile E, Picart R, Tixier-Vidal A, Tougard C (1987) - Cellular and subcellular distribution of laminin in adult rat anterior pituitary. J Histochem Cytochem 35:287-299.

295. Voorn P, Kalsbeek A, Jorritsma-Byham B, Groenewegen HJ (1988) - The pre-and postnatal development of the dopaminergic cell groups in the ventral mesencephalon and the dopaminergic innervation of the striatum of the rat. Neuroscience 25:857-887.

296. Wang PC, Buu NT, Kuchel O, Genest J (1983) - Conjugation patterns of endogenous plasma catecholamines in human and rat. A new specific method for analysis of glucuronide-conjugated catecholamines. J Lab Clin Med 101:141-151.

297. Wang YM, Gainetdinov RR, Fumagalli F, Xu F, Jones SR, Bock CB, Miller GW, Wightman RM, Caron MG (1997) - Knockout of the vesicular monoamine transporter 2 gene results in neonatal death and supersensitivity to cocaine and amphetamine. Neuron 19:1285-1296.

298. Watanabe S, Fusa K, Takada K, Aono Y, Saigusa T, Koshikawa N, Cools AR (2005) - Effects of alpha-methyl-p-tyrosine on extracellular dopamine levels in the nucleus accumbens and the dorsal striatum of freely moving rats. J Oral Sci 47:185190.

299. Watanabe YG, Haraguchi H (1994) - Immunohistochemical study of the cytogenesis of prolactin and growth hormone cells in the anterior pituitary gland of the fetal rat. Arch Histol Cytol 57:161-166.

300. Weiner N (1960) - The distribution of monoamie oxidae and succinic oxidase in brain. J New Drugs 6:79-86.

301. Weiner RI, Findell, PR, Kordon C. (1988) - Role of classic and peptide neuromediators in the neuroendocrine regulation of LH and prolactin The Physiology of Reproduction / Ed. E. Knobil, J. Neill, et al. New York: Raven Press:1235-1281.

302. Weisz J, Ward IL (1980) - Plasma testosterone and progesterone titers of pregnant rats, their male and female fetuses, and neonatal offspring. Endocrinology 106:306-316.

303. West GB, Shepherd DM, Hunter RB, Macgregor AR (1953) - The function of the organs of Zuckerkandl. Clin Sci (Lond) 12:317-325.

304. Westlund KN, Denney RM, Rose RM, Abell CW (1988) - Localization of distinct monoamine oxidase A and monoamine oxidase B cell populations in human brainstem. Neuroscience 25:439-456.

305. Widerlov E, Lewander T (1978) - Inhibition of the in vivo biosynthesis and changes of catecholamine levels in rat brain after alpha-methyl-p-tyrosine; time- and dose-response relationships. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 304:111-123.

306. Willems JL, Buylaert WA, Lefebvre RA, Bogaert MG (1985) - Neuronal dopamine receptors on autonomic ganglia and sympathetic nerves and dopamine receptors in the gastrointestinal system. Pharmacol Rev 37:165-216.

307. Williams TH, Palay SL (1969) - Ultrastructure of the small neurons in the superior cervical ganglion. Brain Res 15:17-34.

308. Wirtshafter D, Sheppard AC (2001) - Localization of GABA(B) receptors in midbrain monoamine containing neurons in the rat. Brain Res Bull 56:1-5.

309. Wolfovitz E, Grossman E, Folio CJ, Keiser HR, Kopin IJ and Goldstein DS (1993) - Derivation of urinary dopamine from plasma dihydroxyphenylalanine in humans. Clin Sci (Lond) 84:549-557.

310. Wynick D, Small CJ, Bacon A, Holmes FE, Norman M, Ormandy CJ, Kilic E, Kerr NC, Ghatei M, Talamantes F, Bloom SR, Pachnis V (1998) - Galanin regulates prolactin release and lactotroph proliferation. Proc Natl Acad Sci U S A 95:1267112676.

311. Zeng C, Zhang M, Asico LD, Eisner GM, Jose PA (2007) - The dopaminergic system in hypertension. Clin Sci (Lond) 112:583-597.

312. Zhou QY, Quaife CJ, Palmiter RD (1995) - Targeted disruption of the tyrosine hydroxylase gene reveals that catecholamines are required for mouse fetal development. Nature 374:640-643.