Эколого-генетическая и эпидемиологическая оценка горных территорий Центрального Кавказа, загрязненных тяжелыми металлами (на примере Кабардино-Балкарской Республики) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.16, доктор биологических наук Реутова, Нина Васильевна

• Реутова, Нина Васильевна
• доктор биологических наук
• 2008

Оглавление диссертации доктор биологических наук Реутова, Нина Васильевна

Введение

Глава I. Обзор литературы.

1.1. Принципы эколого-эпидемиологической оценки территорий.

1.2. Методы определения генотоксического влияния окружающей среды. 1.2.1. Прокариотические тест системы для определения мутагенного потенциала загрязнения окружающей среды.

1.2.2. Эукариотические тест системы для определения ге-нотоксичности окружающей среды. 1.2.2.а. Низшие эукариоты. 1.2.2.6. Растительные тест системы. 1.2.2.В. Животные in vitro и in vivo.

1.3. Подходы к определению последствий загрязнения окружающей среды для человека. Заключение

Глава II. Материалы и методы.

2.1 Растительные тест системы

2.2 Crépis capillaris L. как тест система для изучения мутагенного потенциала загрязнителей окружающей среды.

2.3 Использование традесканции для генетического мониторинга загрязнения окружающей среды

2.4. Соя (Glycine max (L.) Merill) как тест система для скрининга загрязнителей окружающей среды

2.5. Использование растений дикорастущей флоры для определения генотоксичности окружающей среды.

2.6. Методика определения загрязнения природных объектов ^g

Глава Ш. Описание района исследования. ^

Глава IV. Растительные тест системы как чувствительный объект для обнаружения мутагенного потенциала тяжелых металлов

4.1 .Определение мутагенной активности тяжелых металлов с использованием Crépis capillaris L.

4.2. Исследование мутагенной активности тяжелых металлов с использованием традесканции (клона 02).

4.3. Определение мутагенного влияния тяжелых металлов с использованием сои (Glycine max. (L.) Merilî).

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эколого-генетическая и эпидемиологическая оценка горных территорий Центрального Кавказа, загрязненных тяжелыми металлами (на примере Кабардино-Балкарской Республики)»

Актуальность темы. Изучение влияния возрастающего загрязнения окружающей среды на живые организмы является одной из важнейших проблем современности. Прогресс человечества неразрывно связан с развитием промышленности, а развитие промышленности неизбежно ведет к заI грязнению атмосферы, гидросферы, литосферы (почвы) и биосферы. Загрязнение воды, воздуха, почвы негативно сказывается на живых организмах, в том числе и на человеке. Сохранение биоразнообразия и создание условий для устойчивого развития экосистем — одна из главных задач человечества на современном этапе. 1

В настоящее время разработан ряд эффективных методов оценки качества окружающей среды, к которым относятся: классический - это отбор проб воздуха, воды, почв и их лабораторный анализ с использованием физико-химических методов. Однако такой подход не дает возможности определить меру опасности выявленного загрязнения для живых организмов (в том числе и человека), их сообществ и экосистем в долгосрочной перспективе. Другой подход - это определение генотоксического эффекта загрязнений с использованием набора тест-систем, что позволяет выявить наличие мутагенного, канцерогенного, тератогенного и других неблагоприятных последствий. С использованием этого подхода в мире было протестировано огромное количество вновь синтезированных веществ, а также компонентов окружающей среды (почв, атмосферного воздуха, поверхностных вод и седиментов), содержащих самые разнообразные загрязняющие вещества. Однако и этот подход не дает достаточной информации о том, каким образом выявленный с помощью тест-систем генотоксический эффект может влиять на растения, животных и их сообщества, а также на здоровье населения. В настоящее время получает развитие еще один подход к оценке качества окружающей среды. Это определение генотоксического влияния загрязнения непосредственно in situ на растения и животных, обитающих на данной территории. В данном случае будет учтен

I 1 вклад всего комплекса опасных веществ, включая их возможный синер1 гизм и антагонизм. Вместе с тем при таком подходе нерешенной проблемой остается оценка влияния загрязнения окружающей среды на здоровье населения. Достаточно трудно определить, как выявленное с помощью тест-систем и видов местной флоры и фауны генотоксическое влияние отI ражается на сообществах местной биоты и здоровье населения.

Загрязненная среда обитания оказывает как токсическое, так и генетическое влияние на живые организмы. Если токсическое, влияние, как правило, легко определимо, то влияние на генетические структуры организма выявить весьма сложно, а его последствия в ряде случаев могут ноI сить отдаленный характер.

Мутагенные загрязнения, привносимые в среду обитания человека, приводят к тяжелым генетическим последствиям — росту числа спонтанных абортов, врожденных уродств, наследственных болезней, что пагубно 1 отражается на генофонде населения в целом. Не меньшую опасность представляют мутагены и как факторы, инициирующие развитие злокачественных опухолей. Известно, что большинство мутагенов являются канцерогенами. Загрязнение окружающей среды мутагенами - один из факторов, вызывающих преждевременное старение и сокращение продолжительности жизни (Дурнев А.Д. 2001).

Для выяснения причин роста числа тех или иных заболеваний и принятия мер для их устранения крайне важно своевременное проведение ток-сико-генетических исследований состояния окружающей среды.

Проблема загрязнения окружающей среды тяжелыми! металлами в мире и в России является универсальной. Несмотря на такую широкую распространенность данного типа загрязнений, отсутствует описание экологических механизмов их неблагоприятного влияния на экосистемы.

В связи с этим было проведено данное междисциплинарное исследование, основой которого являлось: изучение возможности использования растительных тест-систем для определения мутагенного потенциала тяжелых металлов; подбор оптимальных тест-систем и изучение: возможности их применения для выявления генотоксичности отходов' предприятий цветной металлургии; определение уровня и спектра загрязнения исследуемых территорий химическими компонентами; определение генотоксиI ческого влияния разных типов загрязнения с использованием'тест-систем и I видов дикорастущей флоры и оценка показателей здоровья и структуры заболеваемости взрослого населения на исследуемых территориях в динамике. Для экологической оценки территорий, загрязненных тяжелыми металлами, нами использован генетико-эпидемиологический подход, позволяющий в определенной степени экстраполировать данные с тест-систем растительного происхождения на другие высшие организмы, в том числе и на человека.

С использованием такого междисциплинарного проблемного подхода на примере конкретного случая загрязнения тяжелыми металлами горных территорий рассмотрены и описаны механизмы биологических изменений (от геохимических до генетических и медицинских)* вызываемых тяжелыми металлами, разработаны методические подходы и предложены конкретные методики определения генотоксического влияния загрязнения окружающей среды на живые организмы.

Цель работы: разработка методологических подходов и оптимальных методик оценки генотоксического эффекта тяжелых металлов на примере загрязненных горных территорий Центрального Кавказа, анализ состояния здоровья населения, проживающего на данной территории, и (исследование возможности использования локально выявленных генетических изменений у растений в качестве одного из критериев прогноза возможной угрозы здоровью населения. Задачи исследования:

1. Оценка мутагенной активности тяжелых металлов и определение их токсических и мутагенных концентраций с использованием трех растительных тест систем - хромосомные аберрации в клетках! корневой меристемы С. capillaris L., мутации в волосках тычиночных нитей традесканции клона 02 (Трад-ВТН) и соматические мутации в листьях сои {Glycine max (L.) Merill) линии T219.

2. Оценка возможности использования растительных тест-систем для определения генетических эффектов промышленных отходов вольфрамо-молибденового производства.

3. Сравнительное изучение уровня загрязнения окружающей среды тяжелыми металлами в районе расположения горно-обогатительного комбината и в чистых районах, соответствующих ему по геоклиматическим и экологическим характеристикам.

4. Разработка методики оценки генотоксического потенциала почв, загрязненных различными типами химических соединений, с использованием растительной тест системы сои (Glycine max (L.) Merill) линии T219 и определение ее чувствительности и пригодности для этих целей.

5. Оценка возможности использования видов дикорастущей флоры для целей генетического мониторинга загрязнения окружающей среды и выбор видов, обладающих выраженной чувствительностью к различным типам загрязнений.

6. Исследование влияния частоты мутаций на фенотипические признаки растений в районах с разными типами загрязнений (тяжелые металлы и нефтезагрязнения).

7. Анализ возможности использования различных тест-систем и определение оптимального их набора для целей генетического мониторинга загрязнения окружающей среды и прогноза рисков для здоровья населения.

8. Анализ состояния здоровья взрослого населения, частоты онкозаболеваний, спонтанных абортов, рождения детей с врожденными пороками развития (ВПР) и частоты наследственных заболеваний у населения, проживающего в районе расположения горно-обогатительного комбината и сравнение его с аналогичными показателями в контрольных районах.

9. Оценка прогностической ценности предлагаемых подходов и методик проведения эколого-генетического мониторинга загрязнения окружающей среды для определения возможной угрозы здоровью населения, проживающего на загрязненных территориях. Научная новизна.

На основе проведения сравнительной оценки мутагенного потенциала восьми тяжелых металлов (Ag, Hg, Си, Pb, Cd, Cr, Mo, W) с использованием трех растительных тест систем - С. capillaris £.,Трад-ВТН клона 02 и сои (Glycine max (L.) Merill) линии T219 составлены ряды токсичности и мутагенности для этих металлов, показано наличие корреляции между их токсичностью и мутагенностью. Выявлены корреляционные связи между результатами, полученными на всех трех тест системах. Доказана пригодность вышеуказанных растительных тест систем для определения геноток-сичности тяжелых металлов.

Впервые проведена оценка генотоксичности отходов предприятий цветной металлургии с использованием набора из трех растительных тест систем С. capillaris £.,Трад-ВТН клона 02 и сои (Glycine max (L.) Merill) линии T219. В результате сравнительного анализа определены наиболее чувствительные к данному типу загрязнений и удобные в работе тест-системы.

Для целей генетического мониторинга загрязнения окружающей среды использованы растения дикорастущей флоры — 5 видов растений в случае загрязнения тяжелыми металлами: одуванчик лекарственный (Taraxacum officinale Wigg.s.l); костер кровельный (Anisantha tectorum)\ тонконог гребенчатый (Koeleria cristata)', белена черная (Hyoscyanus niger) и юринея предкавказская (Yurinea ciscaucasica) и 4 вида растений в случае загрязнения нефтепродуктами: одуванчик лекарственный {Taraxacum officinale Wigg.s.l), ромашка непахучая {Matricaria recutita L.), конский щавель {Rumex confertus Willd.) и подорожник большой (Plantago major L). С учетом чувствительности и оптимальности предложен наиболее подходящий вид растений дикорастущей флоры - одуванчик лекарственный {Taraxacum officinale Wigg.s.T) - широко распространенный и пригодный для использования в разных регионах для целей генетического мониторинга разных типов загрязнения окружающей среды.

Впервые проведен сравнительный анализ содержания тяжелых металлов и уровня хромосомных аберраций у разных видов растений дикорастущей флоры, произрастающих на отвалах горно-обогатительного комбината.

Впервые проведен сравнительный анализ частоты мутаций, определенных цитогенетическим методом у исследуемых растений с рядом фено-типических признаков и структурой растительных сообществ в изучаемых регионах.

Разработаны методики оценки генотоксического потенциала объектов окружающей среды с использованием растительной тест-системы сои {Glycine max (L.) Merill) линии T219 и видов дикорастущей флоры, высоко чувствительные к разным (тяжелые металлы и нефтезагрязнения) типам загрязнений, экономичные и простые в использовании.

На основе сравнительного анализа частоты и структуры заболеваемости взрослого населения в загрязненных районах по сравнению с таковыми показателями в контрольных регионах выявлена наибольшая частота встречаемости патологии костно-мышечной системы и соединительной ткани.

В случае загрязнения окружающей среды рядом исследованных тяжелых металлов не обнаружено различий между исследуемым и контрольным регионами по показателям онкологических заболеваний, хромосомных и аутосомно-доминантных моногенных заболеваний и рождения детей с врожденными пороками развития.

Получены доказательства мутагенной природы загрязнителей среды в районе расположения горно-обогатительного комбината и выявлено повышение частоты некоторых патологий человека (частота спонтанных абортов).

Показана эффективность использования растительных тест-систем и растений дикорастущей флоры для оценки качества окружающей среды и сформулировано положение о генотоксическом риске тяжелых металлов. Научно-практическая значимость.

На основе изучения ряда растительных тест-систем определены оптимальные методы для выявления генотоксического потенциала тяжелых металлов и комплексного загрязнения окружающей среды отходами предприятий цветной металлургии и показана высокая чувствительность С. capillaris Х.Драд-ВТН клона 02 и сои (Glycine max (L.) Merill) линии T219.

Разработанная методика использования растительной тест системы сои (Glycine max (L.) Merill) линии T219 чувствительной к разным типам поллютантов, значительно упрощает и удешевляет проведение генетического мониторинга, оценку генетической опасности промышленных предприятий разного профиля и определение генотоксического потенциала почв в загрязненных районах.

Предложенный способ использования видов дикорастущей флоры для оценки состояния окружающей среды с точки зрения ее генетической безопасности дает возможность проводить исследования in situ, не требует сложного лабораторного оборудования и высоко квалифицированного персонала. Предлагаемый для этих целей вид - одуванчик лекарственный (Taraxacum officinale Wigg.s.l), обладающий высокой чувствительностью к разным типам загрязнений и произрастающий практически на всей территории России, дает возможность проводить исследования по генотоксиче-скому влиянию загрязнителей окружающей среды в разных регионах с различными типами загрязнения и получать сравнимые результаты. и

Выявленное повышение частоты спонтанных абортов у женщин, проживающих на территории, загрязненной тяжелыми металлами по сравнению с показателями контрольных районов, показывает, что обнаружение генотоксических изменений у растений, как тестовых объектов, могут иметь определенную прогностическую ценность для оценки возможной угрозы здоровью населения.

Предложенная методика проведения генетического мониторинга загрязнения окружающей среды является оптимальной для данных целей, т.к. позволяет проводить исследования in situ, не требует особых материальных затрат и наличия сложной материально-технической базы. Внедрение в практику.

Предложенные в данном исследовании методики были применены для исследования генетического влияния двух предприятий цветной металлургии в Кабардино-Балкарской республике. Это Тырныаузский горнообогатительный комбинат и Нальчикское предприятие "Гидрометаллург".

Проведена оценка состояния здоровья населения, проживающего на территории расположения горно-обогатительного комбината, с особым упором на заболевания, вызванные генетическими причинами.

Проведена оценка генотоксичности почв, загрязненных продуктами кустарной переработки нефти, в Чеченской республике с использованием растительной тест системы сои линии Т219 и видов дикорастущей флоры.

Предлагаемые методы определения генотоксичности окружающей среды и отходов промышленных предприятий внедрены в педагогический процесс на кафедре общей генетики селекции и семеноводства Кабардино-Балкарского государственного университета и используются для выполнения дипломных работ и кандидатских диссертаций.

Предложенные методики используются в учебном процессе в Кабардино-Балкарском эколого-биологическом центре, для подготовки исследовательских проектов учащихся старших классов школ.

Полученные результаты используются в Центре планирования семьи и репродукции ГУЗ КБР для организации и проведения профилактических мероприятий, направленных на снижение уровня спонтанных абортов в зоне расположения комбината. Положения, выносимые на защиту.

1. Выявленная в данном исследовании высокая чувствительность трех растительных тест систем - С. capillaris /,.,Трад-ВТН клона 02 и сои {Glycine max (L.) Merill) линии Т219-дает возможность использовать их для обнаружения генотоксического потенциала тяжелых металлов и исследования мутагенного влияния как жидких, так и твердых отходов предприятий цветной металлургии.

2. Использованная растительная тест система соя {Glycine max (L.) Merill) линии T219 является наиболее удобным и достаточно чувствительным объектом не только для тестирования мутагенов в лабораторных условиях, но и для генетического мониторинга почв и сточных вод.

3. Предлагаемый метод использования видов дикорастущей флоры для целей генетического мониторинга дает возможность проводить оценку генотоксичности окружающей среды in situ, является очень чувствительным, легко доступным и экономически выгодным и снижает риски депопуляции.

4. В случае загрязнения окружающей среды рядом тяжелых металлов и продуктами переработки нефти обнаружена прямая и устойчивая корреляция между частотой мутаций и высотой растений и обратная корреляция между уровнем загрязнения, частотой мутаций и показателями плодовитости растений.

5. В районе расположения горно-обогатительного комбината не выявлено повышения общего уровня заболеваемости. Однако обнаружено достоверное превышение заболеваемости костно-мышечной системы и соединительной ткани у населения изучаемого района по сравнению с аналогичными показателями одного из контрольных районов.

6. У населения района, в котором расположен горно-обогатительный комбинат, не отмечено повышения частоты онкологических заболеваний, частоты рождения детей с врожденными пороками развития и увеличения частоты регистрируемых наследственных заболеваний. Однако, в данном районе повышена частота спонтанных абортов в ряду причин которых основными являются мутации.

7. Применение растительных тест систем и видов дикорастущей флоры для генетического мониторинга загрязнения окружающей имеет прогностическую ценность для определения возможной угрозы здоровью населения.

Апробация работы. Основные результаты диссертационной работы были доложены на общих геофизических семинарах Высокогорного геофизического института Госкомгидромета СССР (Нальчик 1988, 1993-1999, 2007 гг.); выездной сессии отделения АН СССР (Нальчик 3-6 мая 1990 г.); Всесоюзном координационном совещании «Генетические последствия загрязнения окружающей среды мутагенными факторами» (Самарканд, 1990); ежегодной конференции по химическому мутагенезу в Институте химической физики (Москва, 1991), Всероссийских чтениях им. Вернадского (Москва, 2000,2001); Региональной научно-практической конференции «Актуальные вопросы экологии и охраны природы экосистем южных регионов России и сопредельных территорий» (Краснодар 2004); Международной конференции «Устойчивое развитие горных территорий: проблемы и перспективы интеграции науки и образования» (Владикавказ. 2004); 5-м Всероссийском съезде медицинских генетиков (Уфа, 2005); международной конференции «Climate and Environment» (Amsterdam, 2006). Личный вклад автора. Экспериментальные материалы получены автором лично и совместно с коллегами из Высокогорного геофизического института, а также аспирантами, дипломниками и учащимися старших классов в системе дополнительного образования учащихся, работавшими под руководством диссертанта. Соискателю принадлежит разработка программ исследования, схема основных экспериментов, теоретическое обобщение полученных результатов.

Благодарности. Автор выражает искреннюю благодарность сотрудникам Высокогорного геофизического института за помощь, оказанную при определении уровня загрязнения объектов окружающей среды тяжелыми металлами и подготовке данной работы; сотрудникам Центра планирования семьи и репродукции и отдела статистики Минздрава КБР и статотдела Республиканского онкологического диспансера за предоставленные статистические материалы, а также коллективу Республиканского детского эко-лого-биологического центра за помощь и поддержку в проведении исследований.

Заключение диссертации по теме «Экология», Реутова, Нина Васильевна

Выводы.

1. В сравнительном аспекте три использованные растительные тест-системы (С. capillaris L, традесканция клона 02 и Glycine max. (L.) Merill. линии T219), чувствительные к токсическому и мутагенному действию тяжелых металлов, позволяют достоверно выявить гено-токсический потенциал жидких отходов металлургических предприятий.

2. Предлагаемая методика использования растительной тест-системы сои (<Glycine max. (L.) Merill) линии T219 для определения геноток-сического влияния окружающей среды позволяет выявить совокупный генотоксический эффект как органических (продукты горения и переработки нефти), так и неорганических (тяжелые металлы) загрязнителей окружающей среды.

3. Из широкого круга использованных нами видов дикорастущей флоры одуванчик лекарственный {Taraxacum officinale Wigg.s.l) является наиболее чувствительным и экономически выгодным объектом для целей генетического мониторинга. Генотоксическое влияние проявляется в ряде фенотипических изменений: высокий рост растений, наблюдаемый в регионах с высоким уровнем загрязнения, сочетающийся с пониженной репродуктивной функцией растений (снижение количества соцветий и семян).

4. Предложенная методика определения генотоксического влияния окружающей среды с использованием растительной тест-системы сои (Glycine max. (L.) Merill) линии T219 и видов дикорастущей флоры является достаточно чувствительной к разным типам загрязнений и оптимальной для целей генетического мониторинга.

5. Анализ общего уровня заболеваемости в районе расположения горно-обогатительного комбината на протяжении 9-летнего периода по сравнению с контрольными регионами не выявил повышения заболеваемости в целом. Однако установлен повышенный уровень частоты заболеваемости костно-мышечной системы и соединительной ткани у населения загрязненных регионов. Высказана гипотеза, что эта патология связана с особенностями загрязнения, а именно — с повышенным содержанием молибдена в воде, который вызывает нарушения пуринового обмена в живых организмах.

6. У населения в районе расположения горно-обогатительного комбината за 10-летний период не выявлено повышения частоты онкологических заболеваний, врожденных пороков развития и ряда наследственных заболеваний. Общие показатели смертности населения в исследуемом районе не превышены. Вместе с тем, наблюдается четкая тенденция к повышению частоты спонтанных абортов, что является одним из признаков генетического неблагополучия.

7. Обнаружение генотоксического эффекта на ряде чувствительных растительных тест-систем и видов дикорастущей флоры по совокупности исследуемых признаков (фенотипические и цитогенети-ческие изменения) в районе расположения горно-обогатительного комбината по сравнению с контрольными регионами имеет определенную прогностическую ценность для оценки возможного ущерба здоровью населения и благополучию экосистемы.

Заключение.

Оценка генотоксичности различных сред обитания является весьма непростой задачей. Промышленные предприятия загрязняют и атмосферу, и поверхностные воды, и почву и определить уровень опасности от этого загрязнения достаточно трудно. Особую проблему представляет выявление генетического влияния загрязнителей окружающей среды. Токсическое влияние, как правило, достаточно очевидно, выявление же скрытого генетического влияния требует использования специальных тест систем.

В настоящее время для этих целей используется широкий спектр тест систем, представленный и про-, и эукариотическими организмами, растениями и животными. У каждой из используемых тест систем есть свои плюсы и свои минусы, что приводит к необходимости их комплексного использования.

Для целей генетического мониторинга наиболее часто используются бактериальные тест системы. На их долю приходится от 30% до 50% всех опубликованных исследований. Они обладают целым рядом преимуществ:

- в большинстве случаев точно известны типы вызываемых мутаций (сдвиг рамки считывания или замена пары оснований);

- высокая чувствительность;

- возможность автоматизации (Mutatox, SOS Chromotest);

- быстрота (результаты можно получить через несколько часов или несколько суток);

- накоплен большой фактический материал, что дает возможность проводить сравнительный анализ образцов из разных сред, регионов и лабораторий.

Но, с другой стороны, у бактериальных тест систем есть и определенные недостатки. Это:

- необходимость наличия хорошо оборудованных лабораторий, как для проведения опытов, так и для поддержания бактериальных линий;

- необходимость довольно длительной подготовки образцов для тестирования. Это получение вытяжек, их концентрирование, стерилизация;

- зависимость результатов от вида применяемых экстрагирующих веществ;

- невозможность использования in situ;

- невозможность применять в случае загрязнения тяжелыми металлами;

- значительные отличия в метаболизме и строении генетического аппарата от клеток эукариот в связи с чем экстраполяция результатов на эука-риотические организмы весьма проблематична.

Поэтому существует настоятельная необходимость поиска более приемлемых и универсальных и недорогих тест систем в особенности для первого этапа скрининга мутагенов окружающей среды. На наш взгляд наиболее удобными для этих целей являются растительные тест системы. Они также давно и широко используются для оценки генотоксичности загрязнителей окружающей среды и обладают целым рядом преимуществ по сравнению с бактериальными тест системами. Это главным образом прямой контакт с загрязненной почвой, водой или атмосферным воздухом без предварительной подготовки образцов и возможность проведения исследований in situ.

В данной работе мы изучили возможность применения трех растительных тест-систем для выявления генотоксического потенциала тяжелых металлов и провели сравнительный анализ их чувствительности. Все три тест-системы оказались вполне пригодными для этих целей. Данные, полученные на разных тест-системах, хорошо совпадали. На основании полученных результатов были составлены ряды токсичности и мутагенности изученных металлов, которые хорошо совпадали для разных тест-систем. Коэффициенты корреляции колебались от 0,72 до 0,94. Наиболее чувствительным тестом оказалась С. capillaris L. (хромосомные аберрации в клетках корневой меристемы).

Эти же три тест-системы были использованы и для оценки мутагенного потенциала жидких отходов предприятий цветной металлургии и также оказались вполне пригодными для этих целей. Наиболее удобной и простой в работе оказалась соя линии Т219. Именно эта тест-система была использована для исследования генотоксичности почв с разными типами загрязнений (тяжелые металлы и продукты горения и кустарной переработки нефти). И для этих целей данная тест-система оказалась вполне пригодной и даже более чувствительной, чем тест Эймса в случае с нефтезаг-рязнениями.

Весьма многообещающими для целей генетического мониторинга загрязнения окружающей среды являются растения дикорастущей флоры. Мы в своих исследованиях использовали разные виды растений, как широко распространенные, так и более редкие. В данном случае определяли частоту аномальных анафаз в корневой меристеме проростков. И в случае загрязнения тяжелыми металлами, и в случае нефтезагрязнений частота аномальных анафаз возрастала пропорционально уровню загрязнений. Таким образом, эта очень простая методика является практически универсальной для генетического мониторинга in situ. Из всех использованных нами видов растений мы рекомендовали для генетического мониторинга одуванчик лекарственный (Taraxacum officinale Wigg.s.l).

Весьма интересным является вопрос о том, как влияет повышенный уровень мутаций на растения. В случае нефтезагрязнений он вызывал увеличение высоты растений и снижение фертильности. Уменьшалось число соцветий и семян, а также всхожесть семян. Аналогичные результаты были получены и в случае влияния почв загрязненных целым комплексом тяжелых металлов с преобладанием молибдена.

Также совершенно не исследованным является и вопрос о влиянии повышенного уровня мутаций на растительные сообщества. В связи с особенностями формирования отвалов горно-обогатительного комбината у нас была возможность сопоставить уровень мутаций и наличие ряда растений в разновозрастных растительных сообществах. В сообществах старшего возраста (более 10 лет) отсутствовали растения, которые первыми заселяли террасы. Это одуванчик лекарственный (уровень мутаций повышен в 4,85 раза по сравнению с чистой зоной) и белена черная (Нуозсуапиз т%ег) (уровень мутаций повышен в 2,5 раза). С другой стороны на средневозрастных (10-20 лет) и старовозрастных (20-37 лет) террасах росли тонконог гребенчатый (Кое1епа сНзЬаЬа) и костер кровельный (АтяапШа 1ес1огит) у которых уровень мутаций был также повышен в два и более раза. Следовательно, эти виды за прошедший период времени не исчезли из сообществ. Поэтому на имеющемся у нас материале на данный момент невозможно сделать однозначный вывод о том, с чем связано исчезновение пионерных видов - с повышенным уровнем мутаций или просто с закономерностями восстановительной сукцессии.

Еще одним вопросом, широко обсуждаемым в настоящее время, является проблема влияния выявленной генотоксичности, а также уровня загрязнения компонентов окружающей среды, на здоровье населения. В данном исследовании были проанализированы рождаемость и смертность, заболеваемость, как общая, так и по отдельным нозологиям, частота онкологических заболеваний (в том числе и по локализациям) взрослого населения, частота спонтанных абортов, частота рождения детей с врожденными пороками развития (ВПР), частота мертворождений и детской смертности в первые 24 часа жизни, и частота ряда наследственных заболеваний в районе расположения горно-обогатительного комбината. В результате сравнительного анализа было выявлено, что из всех перечисленных заболеваний в загрязненном Эльбрусском районе увеличена только частота спонтанных абортов. Этот район так же характеризовался низкой рождаемостью.

Таким образом, высокий уровень загрязнения почв, речной воды, атмосферного воздуха и растений тяжелыми металлами в районе расположения горно-обогатительного комбината не привел к росту смертности, заболеваемости, частоты онкологических заболеваний и рождению детей с

ВПР и наследственными заболеваниями. Имело место только возрастание частоты спонтанных абортов. По литературным данным они в основном обусловлены мутациями.

Следовательно, результаты, полученные на растительных тест-системах и видах дикорастущей флоры, имеют прогностическую ценность для оценки возможного ущерба здоровью населения. Поэтому их вполне можно рекомендовать для первого этапа мониторинга генетической безопасности окружающей среды. Мы для этих целей предлагаем использовать из растительных тест-систем сою (Glycine max (L.) Merill) линии T219 и растения дикорастущей флоры. Из растений дикорастущей флоры мы особенно рекомендуем одуванчик лекарственный (Taraxacum officinale Wigg.s.l).

В результате проведения данного междисциплинарного исследования с привлечением данных геохимии (определение уровня загрязнения компонентов окружающей среды), морфологии растений (исследование ряда морфологических признаков растений), генетики (определение генотоксичности ксенобионтиков, отходов промышленных предприятий и компонентов окружающей среды), геоботаники (исследование влияния повышенной частоты мутаций на растительные сообщества) и медицины (эпидемиологическая оценка территорий) мы пришли к выводу, что экологическим механизмом неблагоприятного влияния данного комплекса тяжелых металлов на экосистемы является повышение частоты мутаций у видов дикорастущей флоры, что ведет к снижению фертильности растений. Подобная тенденция просматривается и у населения загрязненного региона (повышение частоты спонтанных абортов).

Для определения генотоксического влияния загрязнения окружающей среды на живые организмы мы предлагаем использовать следующие подходы: 1- определение генотоксичности компонентов окружающей среды и/или отходов промышленных предприятий с использованием растительных тест-систем; 2 — определение частоты мутаций у видов дикорастущей флоры, произрастающих на загрязненной территории; 3 — эпидемиологическая оценка состояния здоровья населения с использованием данных медицинской статистики в случае получения положительных результатов на первых двух этапах. Методики: из растительные тест-систем использовать сою линии Т 219, из видов дикорастущей флоры - одуванчик лекарственный (Taraxacum officinale Wigg.s.l) определение ХА анафазно-телофазным методом в кончиках корней проростков.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Реутова, Нина Васильевна, 2008 год

1. Абрамов В.И., Рубанович A.B., Шевченко В.А., Шевченко В.В., Грнних Л.И. Генетические эффекты в популяциях растений, произрастающих в зоне Чернобыльской аварии. // Радиационная биология. Радиоэкология. 2006. Т. 46. № 3. с. 259-267.

2. Авцын A.B. Микроэлементозы человека.- М. Медицина. 1991. С.94-101.

3. Аксенов С.Г., Галзитский В.Г. Техническое состояние и мероприятия по повышению безопасности эксплуатируемых хвосто-хранилищ, шламохранилищ и гидроотвалов. Спасение, защита, безопасность — новое в науке, технике и технологии. М. 1995.

4. Алов И.А. Цитофизиология и патология митоза. М. Медицина. 1972. 183с.

5. Атлас Кабардино-Балкарской Республики. Под. ред. P.A. Бураева. М. Федеральная служба геодезии и картографии России. 1997.

6. Атлас природных опасностей и стихийных бедствий Кабардино-Балкарской Республики. Под. ред. М.Ч. Залиханова. С.-Пб. Гид-рометеоиздат. 2000.

7. Атлас природно-техногенных опасностей Кабардино-Балкарской республики. Под ред. И.И. Мазура. М. Изд. центр «Елима». 2005. С.126-127.

8. Баранов B.C. Генетический мониторинг. В кн. Медико-генетическая служба Санкт-Петербурга. СПб. ГКД. МГЦ. 1999. С. 24-33.

9. Баранов B.C., Баранова Е.В., Иващенко Т.Э., Асеев М.В. Геном человека и гены «предрасположенности» (введение в предиктив-ную медицину).- СПб.: Интермедика, 2000.- 272 с.

10. Ю.Белицкий Г.А., Хесина А.Я., Хитрово И.А., Лычева Т.А. Проблемы выявления бластомогенной активности при изучении сложных смесей в бактериальных тест-системах// Тезисы докладов «Человек191и биосфера», Киев, 1988. С. 13

11. П.Белицкий Г.А., Худолей В.В., Карамышева А.Ф. Факторы внешней среды и генотоксичность: оценка канцерогенного риска. // Современные проблемы генетических последствий загрязнения окружающей среды и охрана генофонда. Алма-Ата, «Наука», 1989. С. 93-105

12. Биологическая роль молибдена.// Под.ред. Я.В. Пейве. М. Наука. 1972. С. 289-294.

13. Бочков Н.П. Клиническая генетика. М. ГЭОТАР-МЕД. 2002. 447 с.

14. Бочков Н.П., Чеботарев А.Н., Катосова Л.Д., Платонова В.И. База данных для анализа количественных характеристик частоты хромосомных аберраций в культуре лимфоцитов периферической крови человека // Генетика. 2001. - Т.37.- №4. С.549-557.

15. Бусуек Т.П., Шагинян И.А., Александрова Г.А. и др. Эпидемиологические аспекты современной эпидемиологической ситуации в России. // Вестник РАМН. 2005. № 8. С. 11-16.

16. Войткевич Г.В., Миропшиков А.Е., Поваренных A.C., Прохоров В.Г. Краткий справочник по геохимии.- М. Недра. 1977. С.45-46.

17. Галушко А.И. Анализ флоры Западной части Центрального Кавказа. // Флора Северного Кавказа. Ставрополь. Ставропольское книжн. изд-во. 1976. С. 7-32.

18. Геворкян Н.М., Дробинская И.Е., Глотова Т.П. и др. Комплексная оценка загрязнения окружающей среды и уровня генетических повреждения у жителей г. Атбасар (Казахстан). // Гигиена и санитария. 1994. №8. С. 37-40.

19. Гичев Ю.П. Загрязнение окружающей среды и здоровье человека (Печальный опыт России) // Новосибирск, СО РАМН. 2002. -230 с.

20. Гогуа M.JI. Изучение генотоксического потенциала солей хрома, молибдена, вольфрама на растительных тест-системах. Диссертация. на соиск. степени к.б.н. М. 2003.

21. Государственный доклад о состоянии окружающей природной среды в Кабардино-Балкарской республике в 1997 году. Нальчик. 1998 63 с.

22. Государственный доклад о состоянии окружающей природной среды в Кабардино-Балкарской республике в 1998 году. Нальчик. 1999.156с.

23. Государственный доклад о состоянии окружающей природной среды в Кабардино-Балкарской республике в 1999 году. Наль-чик.2000.164с.

24. Государственный доклад о состоянии окружающей природной среды в Кабардино-Балкарской республике в 2000 году. Нальчик. 2001.117с.

25. Государственный доклад о состоянии окружающей природной среды в Кабардино-Балкарской республике в 2002 году. Нальчик. 2003. 257с.

26. Гукасян JI.A., Никогосян О.С., Каспарова И.П. Мутагенная активность промстоков Агаракского медно-молибденового комбината. // Биол. Ж. Армении. 1989. Т.42. № 5. С. 455-458.

27. Давыдов М.И., Аксель Е.М. Заболеваемость злокачественными заболеваниями в странах СНГ. // Вестник РАМН. 2007. № 11. С. 4550.

28. Джамбетова П. М., Реутова Н.В. Чувствительность растительных и бактериальных тест систем при определении мутагенного влияния нефтезагрязнений на окружающую среду. //Экологическая генетика. 2006.Т.4 № 1. С. 22-27.

29. Джамбетова П.М. Исследование эколого-генетического влияния загрязнения почв нефтепродуктами на природные популяции растений и тест-системы. Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. Нальчик. 2004. 111с.

30. Джамбетова П.М., Реутова Н.В., Ситников М.Н. Влияние нефтезагрязнений на морфологические и цитогенетические характеристики растений. // Экологическая генетика. 2005. T.III. Вып. 4. С. 5-11.

31. Дзодзикова М.Э., Березов Т.Т. Заболеваемость злокачественными заболеваниями в республике Северная Осетия-Алания в 19912000 гг. // Вопросы онкологии. 2003. Т. 49. №.2. С.181-185.

32. Доклад о состоянии и тенденциях демографического развития Российской Федерации. М. Права человека. 2001. 40с.

33. Долгих В.Т. Опухолевый рост. М. 2001. 80 с.

34. Дружинин В.Г. Хромосомные нарушения у населения крупного промышленного региона: пространственно-временной цитогене-тический мониторинг. Диссертация на соискание ученой степени доктора биологических наук. М. 2003.

35. Дубинина Л.Г. Мутагенная активность придонных отложений природных и искусственных водоемов Астраханской области. //Генетика. 1996. Т. 32. №4. С. 584-589.

36. Дубинина Л.Г. Структурные мутации в опытах с Crépis capillaris L. M. Наука, 1978. С. 188

37. Дурнев А.Д. Модификация мутагенного процесса в клетках человека. // Вестник РАМН. 2001. №10. С. 70-76.

38. Калаев В.Н., Буторина А.К., Шелухина О.Ю. Оценка антропогенного загрязнения районов г.Старый Оскол по цитогенетическим показателям семенного потомства березы пониклой. //Экологическая генетика. 2006. T.IV. № 2. С. 9-21.

39. Киреева H.A., Мифтахова A.M., Кузяхметов Г.Г. Рост и развитие сорных растений в условиях техногенного загрязнения почвы//

40. Вестник Башкирского университета, 2001. №1. С. 32-34.

41. Константинов В.Б., Копейкин Н.Ф. Здоровье — индикатор развития человека и общества. // Гигиена и санитария. 2004. № 3. С. 56-58.

42. Корчина Т.Я. Эколого-биогеохимические факторы и микроэлементный статус некоренного населения, проживающего в Ханты-Мансийском автономном округе. // Экология человека. 2006. № 12. С. 3-8.

43. Кулинский В.И. Обезвреживание ксенобиотиков // Соросовский Образовательный журнал.-1999. №1.- С. 8-12.

44. Курданов Х.А., Медалиев Р.Х., Хуранова JI.M., Барасбиева Г.И., Полесский H.A. Ишемическая болезнь сердца и факторы ее риска. Нальчик. Эльбрус. 1992.

45. Куренной А.И., Кравчук А.П., Зубко Е.С. Оценка мутагенного фона и мутагенной изменчивости популяций из районов с высоким загрязнением пестицидами. //Цитология и генетика. 27. 1993. С. 82-86.

46. Лазюк Г.И. Тератология человека. М. Медицина. 1991. С. 19-21.

47. Лакин Г.Ф. Биометрия. М. Высшая школа. 1990. 351 с.

48. Ларин С.С., Браиловский В.В., Курилов К.С., Еремина H.A., Глушков А.Н. Заболеваемость злокачественными новообразованиями в Кемеровской области в 1990 2000 г. //Вопросы онкологии. 2004. Т. 50. №1. С. 36-37.

49. Леонард А. Нарушения в хромосомах под действием тяжелых металлов. В кн. Некоторые вопросы токсичности ионов металлов. Под ред. Зигель А., Зигель Х.М. М. Мир. 1993. С. 228-242.

50. Макарова О.В., Викторова Т.В., Янбаева Д.Г., Корытина Г.Ф., Якупова Э.В., Каримова Л.К. Полиморфизм генов метаболизма ксенобиотиков у рабочих нефтехимических производств // Генетика. 2003. - Т. 39, №. 9. - С. 1268-1274.

51. Маковский Р.Д. Здоровье населения и окружающая природная среда региона. // Экология человека. 2006. № 12. С. 9-11.

52. Матевосян М.Б. Оценка и мониторинг генотоксичности вод некоторых рек Армении. Автореферат на соискание ученой степ, канд. биол. наук. Ереван 2006.

53. Основные показатели деятельности медицинских учреждений в1997 году. Министерство здравоохранения Кабардино-Балкарской республики. Нальчик. 1998. 98с.

54. Основные показатели деятельности медицинских учреждений в1998 году. Министерство здравоохранения Кабардино-Балкарской республики. Нальчик. 1999. 101с.

55. Основные показатели деятельности медицинских учреждений в1999 году. Министерство здравоохранения Кабардино-Балкарской республики. Нальчик. 2000. 104с.

56. Основные показатели деятельности медицинских учреждений в2000 году. Министерство здравоохранения Кабардино-Балкарской республики. Нальчик. 2001. 107с.

57. Основные показатели деятельности медицинских учреждений в2001 году. Министерство здравоохранения Кабардино-Балкарской республики. Нальчик. 2002. 109с.

58. Полиорганный микроядерный тест в эколого-гигиенических исследованиях. Под ред. Ю.А. Рахманина и Л.П. Сычевой. М. Гени-ус. 2007.312 с.

59. Разумов В.В., Курданов Х.А., Разумова Л.А., Крохаль А.Г., Ба-тырбекова Л.М. Экосистемы гор Центрального Кавказа и здоровье человека. Москва-Ставрополь. Илекса. Ставропольсервис-школа. 2003. 448 с.

60. Разумов В.В., Цепкова Н.Л. Предварительная оценка техногенного воздействия на среднегорные экосистемы. //Труды ВГИ. Вып. 54. М. Гидрометеоиздат. 1984. С. 121-134.

61. Рахманин Ю.А., Ревазова Ю.А. Донозологическая диагностика в проблеме окружающая среда здоровье населения. // Гигиена и санитария. 2004. № 3. С. 3-5.

62. Ревазова Ю.А., Журков B.C. Генетические подходы к оценке безопасности факторов среды обитания человека. // Вестник РАМН. 2001. №10. С. 77-80.

63. Реутова Н.В., Шевченко В.А. Серебро как возможный мутаген. // Генетика. 1991а. Т. 27. №7. С.1280-1284.

64. Реутова Н.В. Изучение мутагенного и токсического влияния соединений серебра и свинца на растительных тест-системах. Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. Москва. 1991 б. 123с.

65. Реутова Н.В. Изучение мутагенного потенциала соединений меди и модификация эффектов иодистым серебром. // Генетика. 2001. Т. 37. №5. С.617-623.

66. Реутова Т.В. , Воробьева Т.И., Гущина Л.П. и др. О необходимости оценки подверженности рекреационных территорий техногенному влиянию на примере национального парка Приэльбрусье. // Метеоспектр. -2005.- №3.- С.93-98.

67. Рокицкий П.В. Биологическая статистика. Минск. 1964. 327 с.

68. Романенко О.П., Клюева С.К. Врожденные пороки развития. СПб. Издательский дом СПбМАПО. 2004. 48 с.

69. Росляков Н.П. Биологическая роль микроэлементов. М. Наука. 1983. 221 с.

70. Сидоренко Г.И., Кутепов E.H. Приоритетные направления научных исследований по проблеме оценки и прогнозирования влияния факторов риска на здоровье населения. // Гигиена и санитария. 1994. №8. С. 3-5.

71. Справка в Кабинет Министров КБР по оценке влияния производственной деятельности Тырныаузского вольфрамо-молибденового комбината на окружающую природную среду.

72. Таова В.И., Реутова Н.В. К вопросу о влиянии серебра на целлю-лозолитическую активность почвы. // В кн.: Высокогорные экосистемы под воздействием человека. Труды ВГИ. Вып. 71. 1988. М. Гидрометеоиздат. С. 105-110.

73. Таова В.И., Реутова Н.В. Влияние серебра на нитрификационную способность почвы. // В кн.: Высокогорные экосистемы под воздействием человека. Труды ВГИ. Вып. 79. 1990. М. Гидрометео-издат. С. 110-116.

74. Урбах В.Ю. Математическая статистика для биологов и медиков. М. Изд-во Академии наук СССР. 1963. 306с.

75. Фисун М.Н., Ахматова А.И. Биологическая рекультивация отвалов промышленной переработки горно-рудных пород на Тырныа-узском вольфрамо-молибденовом комбинате. // Вестник МАНЭБ. № 8 (13). Владикавказ. Рухс. 1999. С.140-141.

76. Фонштейн J1.M., Калинина JI.M., Полухина Г.Н., Абилев С.К., Шапиро A.JI. Тест-система оценки мутагенной активности загрязнителей среды на Salmonella (Методические указания) М., 1977. 36 с.

77. Худолей В.В. Канцерогены: характеристики, закономерности, механизмы действия. СПб. НИИ Химии СПбГУ. 1999. 419с.

78. Цепкова H.JL, Беткараева М. Восстановительные сукцессии посттехногенного ландшафта в Былымской котловине (Центральный Кавказ). Сборник исследовательских работ. XIII Всероссийские юношеские чтения. М. 2006. С. 102-105.

79. Чеботарев А.Н. Закономерности хромосомной изменчивостисоматических клеток человека. // Вестн. РАМН 2001.-№10. -С.64-69.

80. Чеботарев А.Г., Наумова А.П. Заболеваемость с временной утратой трудоспособности рабочих при подземной и открытой добыче руд. // Медицина труда и промышленная экология. 1998. № 2. С.21-26.

81. Чопикашвили JI.B. Генетико-гигиенические аспекты воздействия тяжелых металлов (Cd, Со, Mo). Диссертация на соискание степени доктора биологических наук. М. 1993. 321 с.

82. Шхагапсоев С.Х. Особенности формирования растительности на техногенных ландшафтах Тырныаузского вольфрамо-молибденового комбината. Вестник КБГУ, серия биол. науки, вып. 4. Нальчик. КБГУ. 2000. С. 4-5.

83. Щепетова Е.В. Экологическая оценка генотоксического влияния загрязнения атмосферного воздуха методом микроядерного тестирования. Автореф. дис. канд. биол. наук. Астрахань. 2005.

84. Яблоков А.В., Юсуфов А.Г. Эволюционное учение. М. Высшая школа. 1998. С. 108.

85. Abraham S. Floral abnormalities and somatic mutations in the sta-minal hairs of Tradescantia clone 02 induced by effluents from the titanium factory. //Nukleonika. 1988. Vol. 33. № 4-6. P. 105-115.

86. Ahmad Q.N. A quantitative method for caryotipic analysis applied to the soybean. Glycine max. // Cytologia. 1983. Vol. 48. № 4. P. 879892.

87. Aleem A., Malik A. Genotoxic hazards of long-term application wastewater on agricultural soil. // Mutat. Res. 538. 2003. P. 145-154.

88. Aleem A., Malik A. Genotoxicity of water extracts from the River Yamuna at Mathura, India. //Environ. Toxicol. 18. 2003. P. 69-77.

89. Al-Sabti K., Metcalfe C.D. Fish micronuclei for assessing genotoxicity oin water. //Mutat. Res. 1995. V. 343. P. 121-135.

90. Amaral V.S., Silva R.M., Reguly M.L., de Andrade H.H.R. Droso-phila wing-spot test for genotoxic assessment of pollutants in water samples from urban and industrial origin. //Mutat. Res. 2005. V. 583. P. 67-74.

91. Ames B. N., Lee E. D., Durston W. E. An improved bacterial test system for the detection and classification of mutagens and carcinogens // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1973. Vol. 70. P. 782-786.

92. Ames B. N., McCann J., Yamasaki E. Method for detecting carcinogens and mutagens with the Salmonella/mammalian microsome mutagenecity test. // Mutat. Res. 1975. Vol.3l.P.347-364

93. Arutyunyan R.M., Pogosyan V.S., Simonyan E.H. et al. In situ monitoring of the ambient air around the chloroprene rubber industrial plant using the Tradescantia-stamen-hair mutation assay. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 117-120.

94. Balch G.C., Metcalfe C.D., Huestis S.Y. Identification of potential fish carcinogens in sediments from Hamilton Harbour, Ontario, Canada. //Environ. Toxicol. Chem. 1995. V.14. P. 79-91.

95. Bariliak I., Dougan A. Ozone application in water treatment and induction of gene mutation in biological objects. //Mutat. Res. 1997. V.379. Suppl. I. P.S100.

96. Bataille V. Genetic epidemiology of melanoma. //Eur.J.Cancer.2003. №39. P. 1341-1347.

97. Batalha J.R.F., Guimarâes E.T., Lobo D.J.A. et al. Exploring the clastogenic effects of air pollutants in Sao Paulo (Brazil) using the Tradescantia micronuclei assay. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 229232.

98. Baud-Grasset S., Baud-Grassed F., Bifulco J.M. et al. Reduction of genotoxicity of the creosote-contaminated soil after fungal treatment determined by the Tradescantia micronucleus test. // Mutat. Res. 1993. № 303. P. 77-82.

99. Baumann P.S. Epizootics of cancer in fish associated with genotox-ins in sediments and water. //Mutat. Res. 1998. 411. P.227-233.

100. Belpaeme K., Cooreman K, Kirsgh-Volders M. Development and validation of the in vivo alkaline comet assay for detecting genomic damage in marine flatfish. //Mutat. Res. 1998. V. 415. P. 167-184.

101. Boffetta P. Human cancer from environmental pollutants: The epidemiological evidence. //Mutat.Res. 2006. V.608. P. 157-162.

102. Chen G., White P.A. The mutagenic hazards of aquatic sediments: a review. // Mutat. Res. 2004. № 567. P.151-225.

103. Christianson M.L. Mitotic crossing-over an important mechanism of floral sectoring in Tradescantia. // Mutat. Res. 1975. № 28. P. 389-395.

104. Claxton L.D., Houk V.S., Hughes T.G. Genotoxicity of industrial waste and effluents. // Mutat. Res. 1998. № 410. P.237-243.

105. Claxton L.D., Mattews P.P., Warren S.H. The genotoxicity of ambient outdoor air, a review: Salmonella mutagenicity. //Mutat. Res.2004. V. 567. T. 2-3. P.347-399.204

106. Constantin M J. Utility of specific locus systems in higher plants to monitor for mutagens. // Environ. Health Persp. 1978. № 27. P. 69-75.

107. Constantin M.J., Owens E.T. Introduction and perspectives of plant genetic and cytogenetic assays.// Mutat. Res. 1982. Vol.99. № 1. P.l-12.

108. Cotelle S., Masfaraud J.F., Ferrard J.F. Assessement of genotoxicity of contaminated soil with the Allium/Vicia micronucleus and the Tradescantia micronucleus assays. // Mutat. Res. 1999. № 426. P. 167171.

109. Czyz A., Szpilewska H., Dutkiewicz R. et al. Comparison of the Ames test and a newly developed assay for detection of mutagenic pollution of marine environments. //Mutat. Res. 2002. V. 519. P. 67-74.

110. Davol P., Donnetly K.C., Brown K.W. et al. Mutagenic potential of runoff water from soil amended with three hazardous industrial wastes. // Environ. Toxicol. Chem. 8. 1989. P. 189-200.

111. De Flora S., Vigano L., D'Agostini F. et al. Multiple genotoxicity biomarkers in fish exposed in situ to polluted river water. //Mutat. Res. 1993. №319. P. 167-177.

112. Dearfield K.L., Cimino M.C., McCaroll M.E. et al. Genotoxicity risk assessment: a proposed classification strategy. // Mutat. Res. 2002. № 521. P.121-135.

113. DeMarini D.M. Mutation spectra of complex mixtures. // Mutat Res. 411. 1998. P.ll-18

114. DeMarini D.M., Brooks H.G., Parkes D.G. Induction og prophage lambda by chlorophenol.// //Environ. Mol. Mutagen. 15. 1990. P. 1-9.

115. Devaux A., Flammation P., Bernardon V. et al. Monitoring of the chemical pollution of the River Rhone through measurement of DNA damage and cytochrome P4501A induction in chub {Leuciacus cepha-lus). //Mar. Environ. Res. 1998. V. 46. P. 257-262.

116. Donnetly K.C., Brown K.W., Anderson C.S. et al. Bacterial mutagenicity and acute toxicity of solvent and aqueous extraxts of samples from an abandoned chemical manufactoring site. //Environ. Toxicol. Chem. 10. 1991. P. 1123-1132.

117. Du Four V.A., Janssen C.R., Brits E., Van Larebeke N. Genotoxic and mutagenic activity of environmental air samples from different rural, urban and industrial sites in Flanders, Belgium. //Mutat. Res. 2005. V. 588. P. 106-117.

118. Duan C., Hu B., Jiang X. et al. Genotoxicity of water samples from Dianchi Lake detected by the VIda faba micronucleus test. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 121-125.

119. Duan C.Q., Hu B., Wang Z.H. et al. Tradescantia bioassays for the determination of genotoxicity of water in the Punlong River Kunming, People's Republic of China. // Mutat. Res. 1999. № 426. P. 127-131.

120. Dulieu H. Somatic variations in a yellow mutant Nicotiana tabacum L (aj/ai a2/a2). II Reciprocal genetic events occuring in leaf cells. // Mutat. Res. 1975. № 28. P. 69-77.

121. Eckl P.M. Aquatic genotoxicity testing with rat gepatocytes in primary culture. II. Induction of micronuclei and chromosomal aberrations. //Sci. Total. Environ. 1995. V. 159. P. 81-89.

122. Einisto P. Role of bacterial nitroreductase and O-acetiltransferase in urine mutagenicity assay of rats exposed to 2,4,6-trinitrotoluene (TNT). //Mutat. Res. 262. 1991. P. 167-169.

123. Einisto P., Watanabe M., Ishidate M., Nohmi Ir. T. Mutagenicity of 30 chemicals in Salmonella typhimurium strains possessing different nitroreductase or O-acetiltransferase activities. //Mutat. Res. 259. 1991. P. 95-102.

124. Endo O., Goto S., Matsumoto Y. et al. Mutagenicity of airborne particles, river waters and soils in Japan from 1996 to 2003. //Environ. Mutagen. Res. 2004. V. 26. P. 9-22.

125. F.J. de Serres. Utilisation of higher plant systems as monitor of environmental mutagens. // Environ. Health Persp. 1978. № 27. P. 3-6.

126. Fairbairn D.W., Olive P.L., O'Neil K.L. The comet assay: a comprehensive review. //Mutat. Res. 1995. V. 339. P. 37-59.

127. Fatima R.A., Ahmad M. Genotoxicity of industrial wastewaters obtained from two different pollution sources in northern India: a comparison of three bioassays. //Mutat. Res. 2006. V. 609. P. 81-91.

128. Fomin A., Paschke A, Arndt U. Assessement of genotoxicity of mine-dump material using the Tradescantia stamen hair (Trad-SHM) and Tradescantia-micronucleus (Trad-MCN) bioassays. // Mutat. Res. 1999. №426. P. 173-181.

129. Frische T. Screening for soil toxicity and mutagenicity using luminescent bacteria — a case study of explosive 2,4,6-trinitrotoluene (TNT). //Ecotox. Environ. Saf,2002. V. 51. P. 133-144.

130. Fujii T., Inoue T. Absence of mutagenic activity of benzo(a)pyrene in soybean system. // Environ, and Exp. Bot. 1985. Vol. 25. № 2. P. 139-143.

131. Gabrera G.L., Rodriguez D.M. Genotoxicity of leachates from the landfill using three bioassays. // Mutat. Res. 1999. № 426. P. 207-210.

132. Gabrera G.L., Rodriguez D.M. Genotoxicity of soil from farmland irrigated with wastewater using three plant bioassays. // Mutat. Res. 1999. №426. P. 221-214.

133. Gabrera G.L., Rodriguez D.M., Maruri A.B. Genotoxicity of the extracts from the compost of the organic and the total municipal garbage using three plants bioassays. //Mutat. Res. 1999. V.426. P. 201-206.

134. Gagné F., Trottier S., Blaise C. et al. Genotoxicity of sediment extracts obtained in the vicinity of the creosote-treated wharf Rainbow Trout hepatocytes . //Toxicol. Lett. 1995. V. 78. P. 175-182.

135. George S.E., Huggins-Clark G., Brooks L.R. Use of Salmonella microsuspension bioassay to detect the mutagenicity of munitions compounds at low concentrations. //Mutat. Res. 2001. V. 490. P. 4556.

136. George S.E., Huggins-Clark G., Brooks L.R. Use of a Salmonella microsuspension bioassay to detect the mutagenicity of munitions compounds at low concentrations.// Mutat. Res. 490. 2001. P. 45-56.

137. Geras'kin S.A., Kim J.K., Oudalova A.A. et al. Bio-monitoring the genotoxicity of populations of Scots pine in the vicinity of radioactive waste storage facility. //Mutat. Res. 2005. V. 583. P. 55-66.

138. Gichner T., Badayev S.A., Demchenko S.I. et al. Arabidopsis assay for mutagenicity.// Mutat. Res. 1994. № 310. P. 249-256.

139. Gitcher T., Veleminsky J. Monitoring the genotoxicity of soil extracts from two heavily polluted sites in Prague using the Tradescantia stamen hair and micronucleus (MNC) assays. // Mutat. Res. 1999. № 426. P. 163-166.

140. Graf U., Frei H., Kagi A. et al. Thirty compounds tested in the Drosophila wing spot test. // Mutat. Res. 1989. V. 222. P. 359-373.

141. Gran W.F. Chromosome aberration assays in Allium. // Mutat. Res. 1982. №99. P. 273-291

142. Grant W.F. The present status of higher plant bioassays for the detection of environmental mutagens. //Mutat. Res. 1994. V. 310. P.175-185.

143. Grant W.F., Salamone M.F. Comparative mutagenicity of chemicals selected for test in the Internetional Program on Chemical Safety's collaborative study on plant systems for the detection of environmental mutagens.//Mutat. Res. 1994. № 310. P. 187-209.

144. Grant W.G. Chromosome aberrations in plant as a monitoring system. // Environ. Health Persp. 1978. № 27. P. 37-43.

145. Grant W.G. Plant mutagen assays based upon chromosome mutations. //In: Environmental mutagenesis, carcinogenesis and plant biology. Vol. 11.1982. P.3-24.

146. Griest W. H., Stewart A.J., Tyndall R.I. et al. Chemical and toxico-logical testing of composted explosives contaminated soil. // Environ. Toxicol. Chem. 12. 1993. P. 1105-1116.

147. Grifoll M., Solanas A.M., Bayona J.M. Bioassay-directed chemical characterization of genotoxic agents in the dissolved and particulate water phases of Besos and Llobrigat Rivers (Barcelona, Spain). //Arch. Environ. Con-tam.Toxicol. 23. 1992. P. 19-25.

148. Grover L.S., Kaur S. Genotoxicity of wastewater samples from sewage and industrial effluent detected by the Allium root anaphase aberration and micronucleus assay. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 183188.

149. Guzella L., Ferretty D., Zerbini I., Monarca S. Evaluation of genotoxicity of Italian lakewater for human consumption: a case study inLombardy. //Toxicol. Environ. Chem. 73. 1999. P. 81-92.

150. Guzzella L., Di Caterino F., Monarca S. et al. Detection of mutagens in water-distribution systems after disinfection. //Mutat. Res. 2006. V. 608. P. 72-81.

151. Hastwell P.W., Chai L.-L., Roberts K.J. et al. High-specificity and high-sensitivity genotoxicity assessment in a human cell line: validation of the GreenScreen HC GADD45a-GFP genotoxicity assay. //Mutat. Res. 2006. V. 607. P. 160-175.

152. Ho K.T., Guinn J.G. Bioassay-directed fractionation of organic contaminants in an estuarine sediment using the new mutagenic bioassay Mutatox. //Environ. Toxicol. Chem. 1993. V. 12. 823-830.

153. Hoffman G.R. Genetic effects of dimethyl sulfate and related compounds. // Mutat. Res. 1980. V. 75. P.63-129.

154. Hose J.E., Brown E.D. Field applications of the piscine anaphase aberrationtest: lessons from the Exxon Valdez oil spill. //Mutat. Res. 1998. №399. P. 167-178.

155. Houk V.S., DeMarini D.M. Induction of prophage lambda by chlorinated pesticides. // Mutat. Res. 182. 1987. P. 193-201.

156. Ichigawa S., Sparrow A.H. Radiation induced loss of reproductive integrity in the stamen hairs of Tradescantia blossfeldiana Mildbr, a twelve-ploid species. // Radiat. Bot. 1967. Vol. 7. № 4. P. 333-345.

157. Ichigawa S., Sparrow A.H. Radiation induced loss of reproductive integrity in the stamen hairs of poliploid series of Tradescantia species.// Radiat. Bot. 1967 a. Vol. 7. № 5. P. 429-441.

158. Ichikawa S., Sparrow A.H., Thompson K.H. Morphologically abnormal cells, somatic mutations and loss of reproductive integrity in irradiated Tradescantia stamen hairs. // Radiat. Bot. 1969. № 9. P. 195211.

159. Jain K., Singh J., Chauhan L.K.S., Murthy R.C., Gupta S.K. Modulation of flyash-induced genotoxicity in Vicia faba by vermicompost-ing. //Ecotoxicol. Environ.Saf. 2004. V. 59. P. 89-94.

160. Jarvis A.S., Honeycut M.E., McFarland V.A. et al. A comparison of the Ames assay and mutatox in assessing the mutagenic potential of contaminated dredged sediment. //Ecotoxicol. Environ. Saf. 1996. V. 33. P. 193-200.

161. Jha A.N., Cheung V.V., Foulkes M.E. et al. Detection of genotoxins in the marine environment: adoption and evaluation of an integrated approach using the embrio-larval stages of the marine mussel Mytilus edulis. //Mutat. Res. 2000. V. 464. P. 213-228.

162. Ji Q., Yang H., Zhang X. Vicia root-micronucleui assays on the clas-togenicity of water samples from the Ku River near Xuzhou city, People's Republic of China. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P.133-135.

163. Jiang Y.G., Yu Z.D., Liu G.Z., Chen R.Z., Peng G.Y. Genotoxicity of water samples from the scenic Lijang River in the Guilin area, China, evaluated by the Tradescantia bioassay. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 137-141.

164. Johnson T.B., Long E.R. Rapid toxicity assessment of sediments from estuarine ecosystems: a new tandem in vitro approach. //Environ. Toxicol. Chem. 1998. V. 17. P. 1099-1106.

165. Jolibois B., Guerbet M. Evaluation of industrial, hospital and domestic wastewater genotoxicity with the Salmonella fluctuation test and the SOS chromotest. //Mutat. Res. 2005. V. 565. P. 151-162.

166. Juchhimiuk J., Maluszynska J. Transformed roots of Crepis capillars — a sensitive system for the evaluation of the clastogenicity of abiotic agents. //Mutat. Res. 2005. V. 566. P. 129-138.

167. K. al-Sabti, Metcalfe C.D. Fish micronuclei for assessing genotoxicity in water. //Mutat. Res. 1995. № 343. P. 121-135.

168. Kada T., Moriya M., Shirasu Y. Screening of pesticides for DNA interactions by "rec assay" and mutagenesis testing and frameshift mutagens detected. // Mutat. Res. 26. 1974. P. 243-248.

169. Kada T., Tutikawa K., Sadaie Y. In vitro and host-mediated "rec assay" procedures for screening chemical mutagens: and phloxine, a mutagenic red dye detection. // Mutat. Res. 16. 1972. P. 165-174.

170. Kafer E., Marshall P., Cohen G. Well-marked strains of Aspergillus for tests of environmental mutagens: identification of induced mitotic recombination and mutation. // Mutat. Res. 1976. № 38. P. 141146.

171. Kafer E., Scott B.R., Dorn G.L., Stafford R. Aspergillus nidulans: systems and results of tests for chemical induction of mitotic segregation and mutation. I. Diploid and duplication assay systems. // Mutat. Res. 1982. №98. P. 1-48.

172. Kammann U., Bunke M., Steinhart H., Theobald N. A permanent fish cell line (EPC) for genotoxicity testing of marine sediments with the comet assay. //Mutat. Res. 2001. V. 498. P. 67-77.

173. Kammann U., Riggers J.C., Theobald N., Steinhart H. Genotoxic potential of marine sediments from the North Sea. //Mutat. Res. 2000. V. 467. P. 161-168.

174. Kanaya N., Gill B.S., Grover I.S. et al. Vicia faba chromosomal aberration assay. // Mutat. Res. 1994. № 310. P. 231-247.

175. Kier L.D., Brusick D.J., Auletta A.E. et al. The Salmonella typhi-wwnw/M./mammalian microsomal assay. A report of the US Environmental Protection Agency Gene-Tox Program. // Mutat Res. 1986. № 168. P.69-240.

176. Kihlman B. Root tips for studying the effects of chemicals on chromosomes. In:A. Hollaender (Ed.) Chemical mutagens. Principles and methods for their detection. Vol. 2. Plenum Press. New York,. London. 1973.P.489-514.

177. Knasmuller S., Gottmann E., Steinkeliner H. et al. Detection of genotoxic effects of heavy metal contaminated soil with plant bioas-says. //Mutat. Res. 1998. № 420. P. 1-3.

178. Kobucar G.I.V., Pavlica M., Erhen R., Papes D. Application of the micronucleus and comet assays to mussel Dreissena polimorpha haemocytes for genotoxicity monitoring of freshwater environments. //Aquat. Toxicol. 2003. V. 64. P. 15-23.

179. Kong M.S., Ma T.H. Genotoxicity of contaminated soil and shallow well water detected by plant bioassays. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 221-228.

180. Kovalchuk O., Kovalchuk I., Arkhipov A. et al. The Allium cepa chromosome aberration test reliably measures genotoxicity of soils in inhabited areas in the Ukraine contaminated by the Chernobyl accident. // Mutat. Res. 1998. № 415. P. 47-57.

181. Kumaravel T.S., Jha A.N. Reliable Comet assay measurements for detecting DNA damage induced by ionizing radiation and chemicals. //Mutat. Res. 2006. V. 605. P. 7-16.

182. Kusamran W.R., Wakabayashi K., Oguri A. et al. Mutagenicities of Bangkok and Tokyo river waters. //Mutat. Res. 1994. V. 325. P. 99104.

183. Kwang K.K., Dutka B.J., Rao S.S., Liu D. Mutatox test: a new test for monitoring environmental genotoxic agents. // Environ. Pollut. 65. 1990. P. 323-332.

184. Kyrtopoulos S.A. Biomarkers in environmental carcinogenesis research: Striving for new moment. //Toxicol. Lett. 2006. V. 162. N.l. P. 3-15.

185. Lajmanovich R.C., Cabagna M.,. Peltzer P.M et al. Micronucleus induction in erythrocytes of the Hyla putchella tadpoles (Amphibia: Hylidae) exposed to insecticide endosulfan. //Mutat. Res.2005. V. 587. P. 67-72.

186. Lawrense C.J., Dong Q., Polacco M.L et al. Maize GDB, the community database for maize genetics and genomics. //Nucleic Acids Res. 32. 2004. P. D393-D397.

187. Lee R.F., Steinert S. Use of the single cell gel electrophoresis/comet assay for detecting DNA damage in aquatic (marine and freshwater) animals. //Mutat. Res. 2003. № 544. P. 43-64.

188. Lemos C.T., Vargas V.M.F., Henriques J.A.P., Mattevi M.S. Genotoxicity of river water under the influence of petrochemical industrial complexes. //Bull. Environ. Contam. Toxicol. 52. 1994. P. 848-855.

189. Lewtas J. Genotoxicity of complex mixtures: strategies for the identification and comparative assessment of airborne mutagens and carcinogens from combustion sources . //Fundam.Appl. Toxicol. 10. 1998. P. 571-589.

190. Lewtas J., Claxton L.D, Rosenkranz H.S. et al. Design and implementation of a collaborative study of the mutagenicity of complex mixtures in Salmonella typhimurium.// Mutat Res. 276. 1992. P.3-9

191. Lower W.R., Yanders A.F., Marrero T.R. et al. Mutagenicity of bottom sediments from a water reservoir. //Environ. Toxicol. Chem. 1985. V. 4. P. 13-19.

192. M.J. Plewa. Specific-locus mutation assays in Zea mays. Mutat. Res. 1982. № 99. P. 317-337.

193. Ma H.T. Vicia cytogenetic tests for environmental mutagens. //Mutat. Res. 1982. V. 99. P. 257-271.

194. Ma T.H. Micronuclei induced by X-rays and chemical mutagens in meiotic pollen mother cells of Tradescantia.// Mutat. Res. 1979. № 64. P. 307-313.

195. Ma T.H. Tradescantia cytogenetic tests (root tip mitosis, pollen mitosis, pollen mother-cell meiosis). // Mutat. Res. 1982. № 99. P. 293302.

196. Ma T.H., Cong M.S. Genotoxicity of contaminated soil and well water detected by plant bioassays. //Environ. Mol. Mutagen. 29.1997. P. 19-23.

197. Ma T.H., Gabrera G.L., Cebulska-Wasilevska A. et al. Tradescan-tia stamen hair mutation bioassay. //Mutat. Res. 1994. V. 310. P. 211220.

198. Ma T.H., Gabrera G.L., Chen R. et al. Tradescantia micronucleus assay. //Mutat. Res. 1994. № 310. P. 221-230.

199. Ma T.H., Grant W.F., F.J. de Serres. The genotoxicity monitoring of air, water and soil: a preliminary report of the International Programme on Plant Bioassays (IPPB). // Mutat. Res. 1997. № 279. P. 712.

200. Majer B.J., Tscherko D., Paschke A. et al. Effects of heavy metal contamination of soils on micronucleus induction in Tradescantia and on microbial enzyme activities: a comparative investigation. // Mutat. Res. 2002. №515. P. 111-124.

201. Malachova K. Using short-term mutagenicity tests for the evaluation of genotoxicity of contaminated soils. // J. Soil. Contam. 8. 1999. P. 667-680.

202. Malachova K., Ledincka D., Dobias L. Bacterial assays of mutagenicity in estimating the effectiveness of biological decontamination of soils.//Biologia. 53. 1998. P. 699-704.

203. Maria V.L., Correia A.C., Santos M.A. Genotoxic and hepatic biotransformation responses induced by the overflow of pulp mill andsecondary treated effluents on Anguilla anguilla L. //Ecotoxicol. Environ. Saf. 2003. V. 55. P. 126-137.

204. Marliola L., Andrada J., Marliola X. et al. Genotoxic assessment of Rio Tercero river waters (Cordova, Argentina) under the influence of an industrial area. //Mutat. Res. 1997. V. 379. Suppl. 1. P. S100.

205. Marvin C.H., Tessaro M., McCarry B.E., Briant D.V. A bioassay-directed investigation of Sydney Harbour sediment. //Sci. Total. Environ. 1994. V. 156. P. 119-131.

206. Mericle L.W., Mericle R.P. Genetic nature of somatic mutations for flower color in Tradescantia clone 02. // Radiat. Bot. 1967. № 7. P. 449464.

207. Mericle L.W., Mericle R.P. Mechanisms of somatic «mutation» induction in flowers of hybrid Tradescantia (clone 02). // Genetics. 1967 a. № 56. P. 576-577.

208. Mericle L.W., Mericle R.P. Resolving the enigma of multiple mutant sectors in stamen hairs of Tradescantia. // Genetics. 1973. № 73. P. 575582.

209. Mericle L.W., Mericle R.P. Somatic mutations in clone 02 Tradescantia. //J. Heredity. 1971. № 62. P. 323-328.

210. Mericle R.P., Christianson M.L,. Mericle L.W. Prediction of flower color genotype in Tradescantia by somatic cell analyses. // J. Heredity. 1974. №65. P. 21-27.

211. Migid H.M.A., Azab Y.A., Ibrahim W.M. Use of plant genotoxicity bioassay for the evaluation of efficiency of algal biofilters in bioreme-diation of toxic industrial effluent. //Ecotox. Environ. Saf. 2007. V. 66. N. l.P. 57-64.

212. Minissi S., Lombi E. Heavy metal content and mutagenic activity, evaluated by Vicia faba micronucleus test of Tiber river sediments. //Mutat. Res. 1997. V. 393. P. 17-21.

213. Misik M., Solenska M., Micieta K. et al. In situ monitoring of clas-togenicity of ambient air in Bratislava, Slovakia using the Tradescan-tia micronucleus assay and pollen abortion assays. //Mutat. Res. 2006. V. 605. P. 1-6.

214. Mitchelmore C.L., Chipman J.K. DNA strand breakage in aquatic organisms and potential value of the comet assay in environmental monitoring. //Mutat. Res. 1998. V. 399. P. 135-147.

215. Monarca S., Feretti D., Zanardini A., Falistocco E., Nardi G. Monitoring of mutagens in urban air samples. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 189-192.

216. Monarca S., Ferretti D., Zanardini A. et al. Monitoring airborne genotoxicants in the rubber industry using genotoxicity tests and chemical analyses. //Mutat. Res. 2001. V. 490. P. 159-169.

217. Mortelmans K, Zeiger E. The Ames Salmonella/microsome mutagenicity assay. // Mutat Res. 455. 2000. P.29-60.

218. Muller A.J. On the time period of mutation induction after treatment with N-nitroso-N-methylurea of swelling seeds of Arabidopsis. // Mutat. Res. 1965. № 2. P. 426-437.

219. Nauman C.H., Sparrow A.H., Schairer L.A. Comparative effects ofionizing radiation and two gaseous chemical mutagens on somatic mutation induction in one mutable and two non-mutable clones of Trades-cantia. //Mutat. Res. 1976. № 38. P. 53-70.

220. Nayar G.G. Sparrow A.H. Radiation induced somatic mutations and the loss of reproductive integrity in Tradescantia stamen hairs. // Radiat. Bot. 1967. Vol. 7. № 4. P. 257-267.

221. Nilan R.A. Potential of plant genetic systems for monitoring and screening mutagens. // Environ. Health Persp. 1978. № 27. P. 181-196.

222. Nilan R.A., Vig B.K. Plant test systems for detection of chemical mutagens. //In: Chemical mutagens. Principles and methods for their detection. Vol. 4. Plenum Press. New York. 1973. P. 143-170.

223. Norppa H. Cytogenetic biomarkers and genetic polymorphisms. //Toxicol. Lett. 2004. № 149. P.309-334.

224. Oda Y., Nakamura S., Oki I. et al. Evaluation of the new system (umu test) for the detection of environmental mutagens and carcinogens. // Mutat. Res. 147. 1985. P. 219-229.

225. Ohe T., Ito N., Kawabuti M. Genotoxicity of blue rayon extracts from river waters using sister chromatid exchange in cultured mammalian cells. //Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1993. V. 25. P. 293297.

226. Ohe T., Vatanabe T., Vakabayashi K. Mutagens in surface waters: a review. //Mutat. Res. 2004. № 567. P. 109-149.

227. Ohe T., White P.A., DeMarini D.M. Mutagenic characteristics of river waters flowing through large metropolitan areas in North America. //Mutat. Res. 2003. V. 534. P. 101-112.

228. Pagano D. A., Zeiger D. Conditions for detecting the mutagenicity of divalent metals in Salmonella typhimurium //Environ. Mol. Mutagen. 19. 1992. P. 139-146.

229. Phillips D.H. DNA adducts as biomarkers of exposure and risk. //Mutat. Res. 2005. V. 577. P. 284-292.

230. Plewa M.J. Specific-locus mutation assays in Zea mays. Mutat. Res. 1982. №99. P. 317-337.

231. Plewa M.J., Stavreva D.A., Vagner E.D., Gichner T. Plant activation and its role in environmental mutagenesis and antimutagenesis. //Mutat. Res. 1996. V. 350. P. 163-171.

232. Pra D., Lau A.H., Knakievicz T. et al. Environmental genotoxicity assessment of an urban stream using freshwater planarians. //Mutat. Res. 2005. V. 585. P. 79-85.

233. Privai M J., Zeiger E. Chemicals mutagenic in Salmonella typhi-murium strain TA1535 but not in TA100. //Mutat. Res. 1998. V. 412. P. 251-260.

234. Quillardet P., Hofnung M. The SOS Chromotest a colorimetric bacterial assay for genotoxins, procedures. // Mutat. Res. 147. 1985. P. 6578.

235. Quillardet P., Hofiiung M. The SOS Chromotest: a review.// Mutat. Res. 297. 1993. P. 235-279.

236. Rank J., Nielsen M.H. Evaluation of the Allium anaphase-telophase test in relation to genotoxicity screening of industrial wastewater.// Mutat. Res. 1994. № 312. P. 17-24.

237. Rappaport S.M., Richard M.G., Hollstein M.C., Talcott R.E. Mutagenic activity in organic wastewater concentrates. //Environ. Sci. Technol. 1979. № 13. P. 957-961.

238. Redei G.P. Mutagen assay with Arabidopsis. // Mutat. Res. 1982. № 99. P. 243-255.

239. Rehana X., Malik A., Ahmad M. Mutagenic activity of the Ganges water with special reference to the pesticide pollution in the river between Kachla to Kannauj (U.P.) India. // Mutat. Res. 343. 1995. P.137-144.

240. Reichert W.L., Myers M.S., Peck-Miller K. et al. Molecular epizo-otiology of genotoxic events in marine fish: linking contaminant expo219sure, DNA damage, and tissue-level alterations. //Mutat. Res. 1998. 411. P.215-225.

241. Reichert W.L., Myers M.S., Peck-Miller K. et al. Molecular epizo-otiology of genotoxic events in marine fish: linking contaminant exposure, DNA damage, and tissue-level alterations. //Mutat. Res. 1998. V. 411. P. 215-225.

242. Reiffercheid G., Heil J., Oda Y., Zahn R.K. A microplate version of the SOSlumu- test for rapid detection of genotoxins and genotoxic potentials of environmental samples. //Mutat. Res. 1991. V. 253. P. 215222.

243. Rodrigues G.S., Pimentel D., Weinstein L.H. In situ assessment of pesticide genotoxicity in an integrated pest management programm II-Maize waxy mutation assay.// Mutat. Res. 1998. № 412. P. 245-250.

244. Rogstad S.H., Keane B., Collier M.H. Minisatellite DNA mutation rate in dandelions increases with leaf-tissue concentrations of Cr, Fe, Mn and Ni. //Environ. Toxicol. Chem. 22. 2003. P. 2093-2099.

245. Rossman T.G., Molina M., Meyer L.W. The genetic toxicology of metal compounds. 1. Induction of lambda prophage in E. <%>//. WP2s (lambda). //Environ. Mol. Mutagen. 6. 1984. P. 39-69

246. Ruiz E.F., Rabago V.M., Lecona. S.U. et al. Tradescantia-micronucleus (Trad-MCN) bioassay on clastogenicity of wastewater and in situ monitoring. //Mutat. Res. 1992. № 270. P. 45-51.

247. Sakai M., Yoshida D., Mizusaki S. Mutagenicity of polycyclic aromatic hydrocarbones and quinones on Salmonella typhimurium TA97. // Mutat. Res. 156. 1985. P. 61-67.

248. Sánchez S., Linde A.R., Izquierdo J.I., Garcia-Vázquez E. Micro-nuclei and fluctuating asymmetry in brown trout (Salmo trou) complementary methods to biomonitor freshwater ecosystems. //Mutat. Res. 1998. V. 412. P. 219-225.

249. Sandhu S.S., F.J. de Serres, Gopalan H.N. et al. Environmental monitoring for genotoxicity with plant systems. Results and recommendations. // Mutat. Res. 1994. № 310. P. 257-263.

250. Sarasin A. An overview of the mechanisms of mutagenesis and carcinogenesis. //Mutat. Res. 2003. V. 544. P.99-106.

251. Sayato Y., Nakamuro K., Ueno H., Goto R. Identification of poly-cyclic aromatic hydrocarbons in mutagenic absorbates to a copper-phthalocyanine derivative recovered from municipal river water. //Mutat. Res. 1993. V. 300. P. 207-213.

252. Sayato Y., Nakamuro K., Ueno H., Goto R. Mutagenicity of absorbates to a copper-phthalocyanine derivative recovered from municipal river water. //Mutat. Res. 1990. V. 242. P. 313-317.

253. Schairer L.A., Van't Hof J., Hayes C.G., Burton R.M., de Serres F.J. Exploratory monitoring of air pollutants for mutagenic activity with the Tradescantia stamen hair system. // Environ. Health Persp. 1978. №27. P. 51-60.

254. Scholl R., Sachs M.M., Ware D. Maintaining collections of mutantsfor plant functional genomics. //Methods Mol. Biol. 236. 2003. P. 311326.

255. Scott B.R., Dorn G.L., Kafer E., Stafford R. Aspergillus nidu-lans: systems and results of tests for induction of mitotic segregation and mutation. II Haploid assay systems and overall response of all systems. // Mutat. Res. 1982. № 98. P. 49-94.

256. Sharma A., Talukder G. Effects of metals on chromosomes of higher organisms. //Environ. Mutagenesis. 1987. V. 9. P. 191-226.

257. Siddiqui A.H., Ahmad M. The Salmonella mutagenicity of industrial surface and ground water samples of Aligarh region of India. // Mutat. Res. 541. 2003. P.21-29.

258. Sparrow A.H., Schairer L.A., Vilalobos-Putrini R. Comparison of somatic mutation rates induced in Tradescantia by chemical and physical mutagens. // Mutat. Res. 1974. № 26. P. 265-276.

259. Sparrow A.H., Sparrow R.C. Spontaneous somatic mutation frequencies for flower color in several Tradescantia species and hybrids. // Environ. Exp. Bot. 1976. Vol. 16. № 1. P. 23-43.

260. Stavreva D.A., Vagner E.D., Plewa M.J., Gichner T. Characterisation of a macromolecular matrix isolated from tobacco suspension cell cultures and its role in the activation of promutagenic m-phenylenediamine. //Mutat. Res. 1997. V. 379. P. 191-199.

261. Stein J.E., Reichert W.L., Varanasi U. Molecular epizootiology: assessment of exposure to genotoxic compounds in teleosts. //Environ. Health Persp. 1994. V.102. Suppl. 12 P. 19-23.

262. Steinkellner H., Kassie F., Knasmiiller S. Tradescantia-micronucleus assay for the assessment of the clastogenicity of Austrian water. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 113-116.

263. Tano S., Yamaguchi N. Effect of low dose irradiation from I on the induction of somatic mutations in Tradescantia. // Radiat. Res. 1979. Vol. 80. № 3. P. 549-555.

264. Terziyska A., Waltschewa L., Venkov P. A new sensitive test based on yeast cells for studying environmental pollution. //Environ. Pollut. 2000. V.109. P. 43-52.

265. Topinka J., Wolf T., Schwarz L. et al. DNA adducts induced by fractionated extracts of urban air particles in primary rat hepatocytes. //Mutat. Res. 1997. V. 379. Suppl. 1. P. S99.

266. Umbuzeiro G. de A. Roubicek D.A., Sanchez P.S., Sato M.I.Z. The Salmonella mutagenicity assay in a surface water quality monitoring program based on 20-year survey. // Mutat. Res. 491. 2001. P. 119-126.

267. Umbuzeiro G. de A., Warren S.H., Claxton L.D. The mutation spectra of chlorinated drinking water samples using the base-specific TA7000 strains of Salmonella in the microsuspension assay. //Mutat. Res. 2006. V. 609. P.26-33.

268. Vahl H.H., Karbe L., Westendorf J. Genotoxicity assessment of suspended particulate matter in the Elbe River: comparison of Salmonella microsome test, arabinose resistance test and umu-test. //Mutat. Res. 1997. V. 394. P. 81-93.

269. Valencia R., Abrahamson S., Lee W.R. et al. Chromosome mutation tests for mutagenesis in Drosophila melanogaster. II Mutat. Res. 1984. № 134. P.61-88.

270. Van't Hof J., Schairer L.A. Tradescantia assay system for gaseous mutagens.// Mutat. Res. 1982. № 99. P. 303-315.

271. Vargas V.M.F., Guidobono R.R., Jordao C., Henriques A.P. Use two short-term tests to evaluate genotoxicity of river water treated withdifferent concentration/extraction procedures. // Mutat. Res. 343. 1995. P.31-52.

272. Vargas V.M.F., Migliavacca S.B., de Melo A.C. et al. Genotoxicity assessment in aquatic environments under the influence of heavy metals and organic contaminants. //Mutat. Res. 2001. V. 490. P. 141-158.

273. Vargas V.M.F., Motta V.E.P., Henriques J.A.P. Mutagenic activity detected by Ames test in river water under the influence of petrochemical industries. // Mutat. Res. 319. 1993. P.31-45.

274. Verge X., Chapuis A., Delpoux M. et al. Tobacco plants detect a decrease of environmental genotoxicity in Toulouse (France) //Environ. Monit. Asses. 91.2004. P. 199-209.

275. Vig B.K. Somatic crossing over in Glycine max. (L.) Merill: effect of some ingibitors of DNA synthesis on induction of somatic crossing-over and point mutation. // Genetics. 1973. № 73. P. 583-596.

276. Vig B.K. Somatic crossing over in Glycine max. (L.) Merill: mutagenicity of sodium azide and lack of synergistic with caffeine and mytomycin C. // Genetics. 1973a. Vol. 75. № 2. P. 265-277.

277. Vig B.K. Somatic crossing over in higher plants.// In: Environmental mutagenesis, carcinogenesis and plant biology. Vol. II. Praeger Press. 1982. P. 26-54.

278. Vig B.K. Somatic mosaicism in plants with special reference to somatic crossing over. //Environ. Health Persp. 1978. V. 27. P. 27-36.

279. Vig B.K. Soybean (Glycine max) a new test system for study of genetic paramétrés as affected by environmental mutagens. // Mutat. Res. 1975. №31. P. 49-56.

280. Vig B.K. Soybean (Glycine max. (L.) Merill) as a short-term assay for study of environmental mutagens. // Mutat. Res. 1982 a. V. 99. P. 339-347.

281. Vig B.K., Mandeville W.F. Ineffectivity of metallic salts in induction of somatic crossing-over and mutations in Glycine max. (L.) Mer-ill. // Mutat. Res. 1972. Vol. 10. № 1. P. 151-155.

282. Vig B.K., Paddock E.F. Alteration by mytomycin C of spot friquen-cies in soybean leaves. // J. Heredity. 1968. Vol. 59. №4 P. 225-230.

283. Vigano L., Camoirano A., Izzotti A. et al. Mutagenicity of sediments along the Po River and genotoxicity biomarkers in fish from the polluted area. //Mutat. Res. 2002. V.515. P.125-134.

284. Wang H. Clastogenicity of chromium contaminated soil samples evaluated by Vicia root-micronucleui assays. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 147-149.

285. Watanabe M., Ishidate M., Nohmi Jr., T. A sensitive method for detection of mutagenic nitroarenes: construction of nitroreductase-overproducing derivatives of Salmonella typhimurium tester strainsTA98 and TA100. //Mutat. Res. 1989. V. 216. P. 211-220.

286. Watanabe T., Takahashi Y., Takahashi T. et al. Seasonal fluctuation of the mutagenicity of river water in Fukui, Japan and the contribution of 2-phenylbenzotriazole-type mutagens. //Mutat. Res. 2002. V.519. P. 187-197.

287. White P.A., Claxton L.D. Mutagens in contaminated soils: a review. //Mutat Res. 2004. № 567. P. 227-345.

288. White P.A., Rasmussen J.B., Blaise C. A semi-automated microplate version of the SOS Chromotest for the analysis of complex environmental extracts. //Mutat. Res. 1996. V.360. P. 51-74.

289. Yang G. Tradescantia-micronucleus assay on the water quality of lake Hongzhe in Jiantgsu Province, China. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 155-157.

290. Zani C., Feretti D., Buschini A. et al. Toxicity and genotoxicity of surface water before and after various potabilization steps. //Mutat. Res. 2005. V. 587. P. 26-37.

291. Zeng D., Li Y., Lin Q. Pollution monitoring of three rivers passing through Fuzhou city, People's Republic of China. //Mutat. Res. 1999. V. 426. P. 159-161.

292. Zon JJ, Singh RJ, Hymowitz T. Association of the yellow leaf (ylO) mutant to soybean chromosome 3. // J Hered.2003.Vol.94. № 4. P.352-355.