Эколого-биохимические закономерности биологической очистки воды активным илом и иммобилизованными микроорганизмами тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.16, кандидат биологических наук Фомин, Игорь Викторович

• Фомин, Игорь Викторович
• кандидат биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Фомин, Игорь Викторович

Введение

Часть 1. Обзор литературы

Глава 1. Оценка функционального состояния модельных и природных 12 гидроэкосистем

1.1. Показатели разнообразия и стабильности гидроэкосистем

1.2. Биотестирование токсичности, тест-объекты и биологические 15 показатели

1.3. Методы оценки функционального состояния активных илов 22 и иммобилизованных временных сообществ микроорганизмов в процессе очистки сточных вод

1.4. Перспективы энзимоиндикации в системе биологического контроля

1.5. Иммобилизация микроорганизмов - деструкторов на синтети- 30 ческих носителях. Новые химико-экологические процессы

1.6. Технологические параметры и эффективность работы сооружений 34 биологической очистки сточных вод иммобилизованными микроорганизмами

Часть 2. Собственные исследования

Глава 2. Материал и методы исследования

2.1. Дезинтеграция клеток активного ила и иммобилизованных микроорганизмов. Подготовка ферментных образцов

2.2. Электрофорез. Оборудование и реактивы

2.3. Методы выявления изомерных форм ферментов. Определение 43 общей активности ферментов и относительной активности изоферментов. Денситометрия.

Глава 3. Технологический контроль процессов биологической очистки сточных вод по изменению активности изоферментов малатдегидрогеназы активных илов и иммобилизованных микроорганизмов

Глава 4. Структурные особенности и динамика активности изофер- 67 ментов L-глутаматдегидрогеназы активного ила и иммобилизованных микроорганизмов на действующих сооружениях биологической очистки сточных вод

Глава 5. Активность каталазы и ее изоферментов в процессе очистки 85 сточных вод активным илом и иммобилизованными микроорганизмами

Глава 6. Биомониторинг активных илов и иммобилизованных микроорганизмов. Функциональная взаимосвязь дегидроге-наз и каталазы микросообществ модельных гидроэкосистем. Обсуждение результатов

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эколого-биохимические закономерности биологической очистки воды активным илом и иммобилизованными микроорганизмами»

АКТУАЛЬНОСТЬ. Неуклонное увеличение использования водных ресурсов сопровождается возрастающим влиянием антропогенных факторов на режим водоемов и водные экосистемы. Прогнозы интенсивности водопо-требления показывают, что антропогенный пресс на гидроэкосистемы будет продолжаться и в отдаленной перспективе может привести к непредвиденным последствиям. Биологическая очистка городских и промышленных сточных вод практически во всех странах мира на 90% производится в аэро-тенках . Городские станции аэрации и сооружения биологической очистки сточных вод промышленных производств в середине прошлого столетия были единственной преградой глобального загрязнения внешних и внутренних водоемов планеты. Однако уже через 20—30 лет интенсивной эксплуатации аэротенков возникли серьезные проблемы, касающиеся утилизации избыточного активного ила. Огромные площади земли изъяты из оборота в связи с шламированием отработанного активного ила, который зачастую содержит недоокисленные адсорбированные соединения органического и неорганического характера с различной степенью токсичности. Проблема усугубляется проникновением недоокисленных соединений в верхние горизонты подземных вод и угрозой попадания в скважинные воды.

В настоящее время в лабораторных, опытно-промышленных и промышленных испытаниях показана возможность и перспективность биологической очистки городских и промышленных сточных вод иммобилизованной на синтетических волокнах микрофлорой в анаэробно-аэробных условиях [24, 76, 77, 125]. Разработанные методы внедряются в различных регионах России, в том числе и в Поволжье. Перспективность метода заключается в том, что снимается основная проблема биологической очистки в аэротен-ках- отсутствие избыточного активного ила и исключение шламирования илов. Иммобилизованное на синтетических волокнах временное сообщество микроорганизмов в итоге представляет собой смешанную популяцию бактерий, простейших, грибов, коловраток и водорослей, образующих пищевую цепь. Во временном сообществе образуется несколько трофических уровней: первый представлен гетеротрофными бактериями, высокая окислительная способность которых обуславливает их ведущую роль в биодеградации загрязнителей; на втором уровне находятся жгутиконосцы, ресничные инфузории и коловратки; третий уровень представлен сосущими инфузориями. Количество организмов каждого трофического уровня зависит от таких факторов, как состав поступающей сточной воды, температуры , рН , концентрации кислорода и др. В зависимости от технологических параметров образуется замкнутая модельная гидроэкосистема — биореактор.

Опыт эксплуатации биореакторов в ПО " Самаранефтеоргсинтез" показал, что эффективность их работы зависит от многочисленных факторов, из которых следует выделить кислородный режим. Большинство разработанных методов биологической очистки сточных вод иммобилизованным ценозом на синтетических носителях предполагает анаэробно-аэробные условия с преобладанием анаэробных процессов окисления загрязнителей. Эксплуатация биореакторов в названных условиях не привела к успеху, поскольку зачастую вода на выходе из биореактора по многим показателям не соответствовала состоянию очищенной для сброса в водоемы.

В настоящее время принято считать, что устойчивость природных и модельных гидроэкосистем обеспечивается видовым разнообразием входящих в них сообществ гидробионтов, особенно микроорганизмов [80]. Многолетние наблюдения за гидроэкосистемами показали, что в результате кратковременного мощного антропогенного воздействия, приводящего зачастую к метаболическому шоку, гидроэкосистемы в течение 24-48 часов по многим параметрам достигают исходного функционального состояния, при этом увеличения видового разнообразия не происходит. Эти данные приводили к мысли о том, что в экстремальных ситуациях устойчивость гидроэкосистем достигается каким-то иным путем, в частности, увеличением разнообразия эндо- и экзометаболитов и, как следствие, структурной реорганизацией ключевых олигомерных ферментов метаболизма. Первое предположение нашло экспериментальное подтверждение, рядом авторов показано существование прямой зависимости жизнеспособности морских и пресноводных сообществ от концентрации внеклеточных органических соединений [80, 99, 115, 119, 293]. Второе же предположение остается практически неизученным и открытым. Бесспорно, взаимодействие многочисленных факторов при формировании гидроэкосистем связано с огромным числом сложных и разнообразных биохимических метаболических реакций. На каком-то этапе дальнейшее развитие биохимической экологии будет лимитировано уровнем знаний данного вопроса.

Применяемые в настоящее время традиционные методы определения и контроля функционального состояния модельных и природных гидроэкосистем не дают исчерпывающей информации о молекулярных и субмолекулярных механизмах стабилизации последних. В связи с этим особое значение приобретают исследования, направленные на изучение состава олигомерных форм ключевых ферментов метаболизма в сообществах гидроэкосистем, их роли в реанимации при техногенных, особенно экстремальных воздействиях на водные экосистемы. До сих пор неизвестны механизмы выхода гидроэкосистем в относительно короткие промежутки времени из глубочайших стрессовых ситуаций, достигается ли при этом исходный функциональный статус или экосистемам наносится какой-то "биохимический ущерб".

В то же время, для организации непрерывного биомониторинга природных и модельных гидроэкосистем, в частности, процессов биологической очистки воды в аэротенках и биореакторах, требуются надежные, информативные способы оценки функционального состояния водных сообществ, характеризующие процессы метаболизма и окислительную мощность сооружений биологической очистки в целом.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ. Исследовать эколого-биохимичес кие страте^ гии ответных реакций микроорганизмов активного ила и иммобилизованной микрофлоры на воздействие техногенных загрязнений в различных технологических режимах и* роль в этих процессах молекулярных форм оксидоре-дуктаз.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

1. Изучить структурно-функциональные особенности малатдегидрогена-зы (МДГ, К.Ф. 1.1.1.37) активного ила и иммобилизованной микрофлоры при различных режимах биологической очистки коммунально-бытовых и техногенных сточных вод.

2. Изучить структурно-функциональные особенности глутаматдегидроге-назы (ГДГ, К.Ф. 1.4.1.2) активного ила и иммобилизованной микрофлоры при различных режимах биологической очистки коммунально-бытовых и техногенных сточных вод.

3. Изучить структурно-функциональные особенности каталазы ( К.Ф. 1.11.1.6) активного ила и иммобилизованной микрофлоры при различных режимах биологической очистки коммунально-бытовых и техногенных сточных вод.

4. Разработать способы биомониторинга очистки сточных вод в аэротен-ках и биореакторах по динамике активности и составу изомерных форм исследуемых ферментов, характеризующих функциональное состояние активных илов и иммобилизованных временных сообществ микроорганизмов.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ

1. При воздействии загрязнителей различного состава одним из факторов стабилизации временных сообществ активного ила и иммобилизованной микрофлоры в фазе лог-роста и стационарной фазе развития является увеличение количества олигомерных ферментов окислительного метаболизма. Обнаружение каталитически активных протомеров и субъединиц оксидоредуктаз в водной среде обусловлены нарастанием разнообразия экзометаболитов как в моделях активного ила, так и на действующих сооружениях биологической очистки и направлены на усиление гомеостаза и стабилизацию временных сообществ микроорганизмов.

2. Преимущественная роль в механизмах адаптации,, реанимации и стабилизации модельных временных сообществ микроорганизмов, функционирующих в нормальном технологическом режиме биологической очистки и в экстремальных условиях, принадлежит низкомолекулярным формам ключевых ферментов метаболизма гидробионтов-каталитически активным протомерам и субъединицам. Следствием залповых сбросов высокотоксичных промышленных стоков является блокирование мембранных систем энергообеспечения клеток активного ила и иммобилизованной микрофлоры. В таких условиях срабатывают механизмы компенсаторной биохимической адаптации, заключающиеся в мобилизации ферментов окислительного метаболизма и экспресс биосинтезе активных субъединиц молекулярных форм ферментов, выполняющих роль "реаниматоров".

3. Активность олигомерных форм исследуемых ферментов в большей мере подвержена ингибированию при нарушениях технологического режима и действии токсичных сточных вод и их компонентов

НАУЧНАЯ НОВИЗНА. Впервые получены сведения о структурной организации малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы активных илов и иммобилизованных на синтетических волокнах временных сообществ микроорганизмов, используемых для биологической очистки промышленных и коммунально-бытовых стоков.

Установлена зависимость набора олигомеров и пртомеров исследуемых ферментов от режима процессов биологической очистки.

Определено, что структурная организация и динамика активности изоэнзимов исследуемых ферментов в процессе очистки бытовых и промышленных сточных вод является результирующим окислительно-восстановительных реакций, характеризующих потребность экосистемы в субстратах.

Впервые установлено увеличение числа изоферментов и молекулярных форм исследуемых ферментов в условиях лимитирования процессов биологической очистки кислородом.

Впервые показана перспективность метода диск-электрофореза в гидробиологии, позволившего разработать систему экспрессных, высокоинформативных, интегральных способов биомониторинга модельных гйдроэкоси-стем по динамике изменения активности и набора изоферментов и каталитически активных протомеров некоторых ключевых ферментов окислительного метаболизма.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ. Полученные результаты позволяют пересмотреть подходы к практической реализации биологической очистки сточных вод промышленных производств активным илом и иммобилизованными временными сообществами микроорганизмов. Информация о структурной организации и динамике активности изоферментов исследуемых оксидоредуктаз дает возможность оперативно управлять процессами биологической очистки в аэротенках и биореакторах на всех стадиях.

Полученные данные позволяют провести коррекцию технологии очистки воды в биореакторах, функционирующих в режиме анаэробно-аэробного метаболизма. Коррекция технологии очистки, предполагающая преобладание аэробных процессов метаболизма над анаэробными приводит к стабилизации гидроэкосистемы и, в целом, к значительному улучшению показателей работы биореакторов.

Разработаны и предлагаются к практическому использованию способы биомониторинга модельных гидроэкосистем по изменению активности и набора изоферментов малатдегидрогеназы и глутаматдегидрогеназы иммобилизованных микроорганизмов. Способы отличаются экспрессностью (в модифицированном варианте 2 часа), точностью и воспроизводимостью, могут быть использованы в практике охраны окружающей среды службами биомониторинга.

Материалы диссертационного исследования используются в учебном процессе при проведении практических занятий со студентами и клиническими интернами на кафедре общей гигиены, кафедре клинической фармакологии и профессиональной патологии, кафедре химии фармацевтического факультета в курсе токсикологической химии, кафедре общей, бионеорганической и биоорганической химии Самарского государственного медицинского университета; на кафедре водоснабжения и канализации Самарской строительной академии.

Основные положения диссертации доложены на 2-ой международной научной конференции "Экология и здоровье человека" ( Самара, 1995), на конференции биохимиков Урала, Поволжья и Западной Сибири ( Челябинск, 1999), на международной научно-практической конференции "Экология и жизнь"( Пенза, 1999), на международной научно-практической конференции " Хозяйственно-питьевая и сточные воды: проблемы очистки и использования" ( Пенза 2000), на VII Всероссийском конгрессе "Экология и здоровье человека (Самара,2001), на Всероссийской конференции "Компенсаторно-приспособительные процессы, фундаментальные и клинические аспекты" ( Сибирское отделение РАМН, Новосибирск, 2002).

По материалам диссертации опубликовано 8 работ.

Заключение диссертации по теме «Экология», Фомин, Игорь Викторович

выводы

1. Для модельных временных сообществ активного ила и иммобилизованных микроорганизмов очистных сооружений показано наличие изомерных форм малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы.

2. Изменение набора и активности изомерных форм ферментов сообществ техногенных гидроэкосистем является одним из способов регуляции и коррекции метаболизма.

3. В соответствии со стадиями развития модельных сообществ активного ила установлены изменения в соотношениях между набором изомерных форм и активностью малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы.

4. Индукция, синтез и выход в водную среду изоферментов каталазы активного ила в моделях и на действующих сооружениях биологической очистки обусловлены нарастанием концентрации перекисных соединений и направлены на достижение гомеостаза и стабилизацию временных сообществ активного ила.

5. Лимитирование временных сообществ микроорганизмов кислородом приводит к изменению активности изомерных форм исследуемых ферментов. В относительно анаэробных условиях наблюдается: увеличение активности ГДГ-5 и уменьшение таковой у МДГ-3 и К-2. Аэробные условия характеризуются увеличением активности МДГ-3 и К-2, активность ГДГ-5 уменьшается.

6. При залповых сбросах сточных вод нефтехимических производств и их компонентов мембраносвязанные формы ферментов активного ила подвержены ингибированию в большей мере, чем цитоплазматические.

7. Реанимация и аэробная стабилизация временных сообществ активного ила, подвергшихся действию высокотоксичных сточных вод и их компонентов, сопровождается выявлением множества каталитически активных форм малатдегидрогеназы, глутаматдегидрогеназы и каталазы .

8. Впервые показана перспективность метода диск-электрофореза в гидробиологии, позволяющего разработать систему экспрессных, высокоинформативных, интегральных способов биомониторинга модельных гидроэкосистем по динамике изменения активности и количества изомерных форм некоторых ключевых ферментов окислительного метаболизма.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Фомин, Игорь Викторович, 2004 год

1. Абдрашитова С.А. и др. Каталазная активность штамма Pseudomonas putida, окисляющего мышьяк // Микробиология.-1982.- 51, N 1.- С. 34-37.

2. Авилов И.А. и др. АТФазная активность как показатель функционального состояния активного ила// Вестник ЛГУ.- 1983.- N 9.- С. 121-124.

3. Агатова А.И., Андреева Н.М., Владимирский С.С. Определение активности некоторых ферментов в морской взвеси и осадках // Методы исследования органического вещества в океане.- М.:,1980. С. 234-243.

4. Адлер Ю.П., Маркова Е.В., Грановский Ю.В. Планирование эксперимента при поиске оптимальных условий.- М.:Наука, 1976.- 297 с.

5. Аринбасарова А.Ю., Кощеенко К.А. Ковалентное связывание клеток с активированным силикагелем // Прикл. биохимия и микробиология.-1980.-Т.16, вып. 6.- С. 854-961.

6. Арсланова Г.П. Протозойный биоценоз очистных сооружений // Наземные и водные экосистемы.- Горький, 1988.- С. 112-121.

7. Архипченко И.А. Экспресс-метод оценки структуры и активности микробного ценоза в экосистеме очистных сооружений // Лимитирование и ингибирование роста микроорганизмов: Тез. докл. Всес. конф., Пущино, 12-14 дек. 1989 г.- Пущино: Б.и., 1989.-С. 125.

8. Атанесян М.Б. Частичная очистка дезаминирующих изоферментов аланинглутаматдегидрогеназы у дрожжей Candida quilliermonolii ВКМУ-42 // Биол. ж. Армении.- 1989.- 42, N 5.- С. 518.

9. Асатиани B.C. Ферментные методы анализа,- М.: Наука, 1969.- 740 с.

10. Афиногенова А.В., Маркелова Н.Ю. Очистка загрязненных вод иммобилизованными на волокнистом носителе бделловибрионами // Химия и технология воды. 1997. - Т. 19. - № 2. - С. 203-206.

11. Балаян А.Э., Стом Д.И., Казаринова Т.Ф. Способ биоиндикации токсичности сточных вод // А.с. 1578650 СССР,. МКИ G 01 N 33/18. Открытия. Изобретения.- 1990.-N26.

12. Балыкин А.В. Микроорганизмы в загрязненной среде.- Фрунзе: Илим, 1990.- 127 с.

13. Банина Н.Н., Суханова К.М. Саркодовые активного ила // Протозоология.- Л.:, 1983.- N 8.- С. 55-75.

14. Барынин В.В., Гребенко А.И. Т-каталаза негемовая каталаза экстремально-термофильной бактерии Thermus thermophilus НВ 8 //Докл. АН СССР.- 1986.- 286, N 2.- С. 461-464.

15. Береговая Н.М. Изменение биохимических характеристик гидроида Obelia loveni при биоиндикации активного хлора в морской воде // Всесоюз. школа по техническим средствам и методам исследований Мирового океана: Тез. докл.- М., 1991.- С. 144.

16. Бологова Л.В. Развитие икринок морского карася в сточных водах городского коллектора // Актуальные вопросы экологии и охраны природы экосистемы Черноморского побережья: Сб. матер, научн. конфер., Кубанский гос. ун-т.- Краснодар, 1991. С. 138-141.18.

17. Брагинский Л.П. Комплексные критерии устойчивости водных экологических систем // Оценка и классификация качества поверхностных вод для водопользования: Тез. сообщ. Всес. конфер., Харьков, 1979.-Харьков: Б.и., 1979.- С. 7-11.

18. Бресткина М.Д., Данильченко О.П. Hydra attenuate, в качестве тест-объекта при оценке загрязненности сточных и природных вод // Методы биоиндикации и биотестирования природных вод.- Л.:, 1987.- N 1.- С. 71-76.

19. Бузинова Н.С., Данильченко О.П. Использование физиолого-биохимических показателей гидробиоитов. для определения степени токсичности компонентов сточных вод / / Проблемы охраны природы: Тез.докл конф., Байкальск, 1984,- С. 39-41.

20. Волков И.В. Биотическая функциональная нагрузка как тест в водной токсикологии // Проблемы водной токсикологии.- Петрозаводск, 1988.-С. 7-13.

21. Волошенко М.И., Дислер Е.Н., Кощеенко К.А. Иммобилизация культуры Pseudomonas putida, образующей 2-кето-Д-глюконовую кислоту // Биотех-нология.-1985.-№ 5.- С. 43-47.

22. Гааль Э., Медьеши Г., Верецкеи Л. Электрофорез в разделении биологических макромолекул.- Мл Мир, 1982.- 448 с.

23. Гвоздяк П.И. Микробиология и биотехнология очистки воды: quo vadis ? // Химия и технология воды.- 1989.-Т.11.- № 9.- С. 854-858.

24. Гвоздяк П.И. Перспективы использования электроудерживания для иммобилизации биологически активных частиц // Иммобилизованные клетки микроорганизмов. Пущино: Изд-во Науч. Центра биол. Исследований АН СССР, 1978.- С.80-84.

25. Гвоздяк П.И., Дмитренко Г.Н., Куликов Н.И. Очистка промышленных сточных вод прикрепленными микроорганизмами // Химия и технология воды.-1985.-Т.7.- № 1.- С. 64-68.

26. Гиль Г.А., Шахова Т.В., Балаян А.Э. Биолюминесцентный метод экспрессной оценки токсичности фенолов в промышленных сточных водах // Анализ окружающей природной среды.- Горький, 1987.- С. 5561.

27. Гильмиярова Ф.Н., Радомская В.М. Транспорт восстановленных эквивалентов в миокарде при действии холестерина // Митохондрии. Аккумуляция энергии и регуляция ферментативных процессов.- М.: Наука, 1977.- С. 46-49.

28. Глоба Л.И. Влияние физико-химических свойств микроорганизмов на эффективность их удаления из воды // Химия и технология воды.-1985.-Т.7.1. Л.-СЛЗ-78.

29. Головченко Н.П., и др. Реакции трансдезаминирования у бактерий С/. sporogenes и С/, sticklandii // Микробиология.-1983.- 52, N 2.- С. 181-186.

30. Голубкова Э.Г. Использование функции сократительной вакуоли парамеций для биологического тестирования // Материалы по сравнительной физиологии и адаптации животных к абиотическим факторам внешней среды, Ярославль, 1983. С. 46-50.

31. ГорбаньН.С. ссоавт. (1988)

32. Интенсификация биотехнологии очистки высококонцентрированных сточных вод / Горбань Н.С, Тамарин Г.Л., Бацула Л.И., Поволоцкая В.А. // Экол. и технол. аспекты обезвреживания пром. отходов: Тез. докл. семин., Донецк, дек., 1988.- Черкассы, 1988.-С. 8-9.

33. Горомосова С.А. и др. Некоторые эколого-биохимические показатели устойчивости моллюсков к загрязнению // Гидробиол. ж.-1987.- 23, N 1.-С. 61-66.

34. Гудкова Л.В. и др. Исследование субъединичной структуры каталазы Penicillium vitale // Укр. биохим. ж.- 1985.- 57, N 4.-С. 29-33.

35. Гуревич В.Б., Светлаков А.В., Попова Л.Ю., Шендеров А.Н. Контроль синтеза глутамата у Vibrio harveyi И Микробиология.- 1986.- 55, N 1.- С. 77-80.

36. Гюнтер Л.И. Некоторые микробиологические и биохимические закономерности процесса биологической очистки сточных вод // Ж. ВХО им. Д.И.Менделеева.- 1972.- 17, N2.- С. 150-156.

37. Гюнтер Л.И., Шаталаев И.Ф. К предупреждению загрязнения водоемов сточными водами нефтехимических производств // Водные ресурсы.-1986.- N2.- С. 135-143.

38. Демьяненко Л.И. с соавт. (1999)

39. Получение иммобилизованного селекционированного биоценоза активного ила для биотехнологического процесса очистки воды от несимметричного диметилгидразина / Демьяненко Л.И., Ласкин Б.М., Повеликина Л.Н.,

40. Зуева JI.В. // Журнал прикладной химии. 1999.- Т. 72. - № 12. - С. 20532059.

41. Драбкова В.Г. Проблема устойчивости озерных экосистем в условиях антропогенного воздействия // Антропогенные изменения экосистем малых озер: Матер. Всесоюз. совещ., Ленинград, 27-29 мар. 1990 г.- С-Петербург.- 1991.- С. 13-17.

42. Евтушенко Н.Ю. Оценка физиологического состояния рыб, подверженных влиянию тяжелых металлов // Химические и биологические методы в охране окружающей среды: Тез. докл. Всес. конф., Усть-Каменогорск, 1821 сент. 1990 г.- М.:, 1990.- С. 43.

43. Евтюгин Г. А. и др. Тестирование качества воды с помощью иммобилизованной холинэстеразы // Тр. Гос. НИИ озерного и речного рыбного хозяйства,- 1990.- N 313.- С. 122-135.

44. Емельяненко В.В., Крайнюкова А.Н. Двустворчатые моллюски как индикаторы наличия токсикантов в сточных водах // Проблемы охраны природы: Тез. докл. конф., Байкальск, 1984.- С. 71-73.

45. Емец Г.П., Баздеркина С.А., Зуй Н.В. Ферментативная активность бактериофлоры Запорожского водохранилища. Деп. в ВИНИТИ 26.08.91., N 3570-В 91.-17 С.

46. Емнова Е.Е., Романова А.К., Котелев В.В. Препарат малатдегидрогеназы из термофильной водородной бактерии Pseudomonas thermophilici II Прикладная биохимия и м икробиология.- 1982.- 18, N 2.- С. 221-224.

47. Загорная Н.Б. с соавт. (1990)

48. Микробиологическая очистка надсмольных сточных вод / Загорная Н.Б., Денис А.Д., Гвоздяк П.И., Никоненко В.У., Чеховская Т.П.'// Биотехнология. 1990. 2. - С. 51-53.

49. Золотарев В.А. Токсикологический биотест на уровне сообщества // 5 Всесоюз. конф. по водной токсикологии: Тез. докл., Одесса, 18-22 апр. 1988 г.- М.:, 1988.- 184 с.

50. Иванченко О.Б., Александрова Е.Н., Черепнева. И.Е. Исследование суммарной мутагенной активности воды природных водоемов г. Казани // Эколого-токсикологическая оценка урбанизированных и сопредельных территорий.-Казань, 1990.- С. 125-131.

51. Илялетдинов А.Н. Микробиологические превращения металлов. // Алма-Ата : Наука, 1984.- 268 с.

52. Климагиаускене В.П. Водные растения как тест-организмы на загрязнения тяжелыми металлами.- Вильнюс, 1985.- 18 е.- Рукопись деп. в ВИНИТИ, N4822-85.

53. Колупаев Б.И. Использование метода определения функционального состояния гаммарид для биотестирования вод // Гидрохимические материалы.- 1984.- 89.- С. 8-11.

54. Колупаев Б.И., Карпович Т.А., Маклаков В.В. Биологический метод оценки токсичности промышленных сточных вод // Гидрохимические материалы.- 1984.- 89.- С. 11 -14.

55. Константинова О.Б. с соавт. (1989)

56. Биохимическое окисление сточных вод производства волокна нитрон / Константинова О.Б., Федосова Н.Ф., Потапова Т.В., Макарова В.И. // Тез. докл. 3 Всес. науч.-тех. конф, поев. 70-летию Моск. текст, ин-та, Москва, 14-16 нояб ,1989,-М., 1989.-С.151.

57. Кораблева А.И. К вопросу о связи каталазной активности с процессами-формирования качества воды в водоемах интенсивного комплексного использования // Водные ресурсы. 1989.- N 5.- С. 186-189.

58. Короленко П.И., Гвоздарев А.Ю., Предеина JI.M. К вопросу создания экспресс-методов энзимодиагностики функционального состояния жизнедеятельности организмов природных популяций // Гидрохимические материалы.- J1.:, 1981.- 82,- С. 64-77.

59. Короленко П.И., Дехта В.А. Усовершенствованный прибор для вертикального электрофореза // Гидрохим. материалы.- Л.:, 1981.- 82.- С. 87-99.

60. Корочкин Л.И., Серов О.Л., Пудовкин А.И. Генетика изоферментов.- М.: Наука, 1977.-275 с.

61. Кощеенко К.А. Биосинтез и трансформация органических соединений иммобилизованными клетками // Биотехнология. -1985.- № 2.- С. 113-122.

62. Курганов Б.И., Любарев А.Е. Принципы организации и функционирования микрокомпартмента метаболона // Биохимия.- 1989.- 54, N 5.- С. 716-718.

63. Линевиц С.Н., Бахчевникова И.А., Стрелец Н.Н. Современное состояние и перспективы развития биологических методов очистки промышленных сточных вод // Изв. вузов. Сев.- Кавк. регион. Техн. н. 1998.-№ З.-С. 61-64.

64. Лоскутов Н.Ф., Сычев А.А., Рубец В.И. Исследование токсичности доочищенных городских сточных вод на гидробионтах // Гигиена населенных мест.- 1990.-N29.- С. 10-12.

65. Максимов В.Н., Нагель X., Остроумов С.А. Биотестирование вод, загрязненных сульфонолом//Водные ресурсы.- 1988.-N 1.-С. 165-168.

66. Малыгин А.Г. Регулярность в структуре сети реакций метаболизма // Биохимия.- 1989.- 54, N 6.- С. 883-894.

67. Маслов А.П. и др. Использование экспресс-теста на токсичность при очистке сточых вод производства органического синтеза // Химия и технология воды.- 1987.- 9, N 3.- С. 263-265.

68. Мацкиевский. В.И. Один из методов биотестирования токсичности сточных вод промышленных предприятий // Биол. аспекты изуч. и рацион, использ. животн. и растит, мира: Тез. докл. конф.- Рига, 1981. С. 137.

69. Мацкиевский В.И., Машкевич О.Л., Полевич О.В. Возможности метода рентгеновского флуоресцентного анализа для экологического мониторинга // Проблемы охраны природы: Тез.докл. конф., Байкальск, 1984.-С. 22-24.

70. Микельсаар П.Ч., Вилу P.O., Лакт Т.И. Зависимость синтеза внеклеточных протеаз от фазы роста у Pseudomonas fluorescens // Микробиология.- 1982.- 51, N 2.- С . 212-215.

71. Михайловский Г.Е. Характер связи между сложностью и надежностью климаксных экологических сообществ // Проблемы экологии Прибайкалья: Тез. докл. респ. совещ., Иркутск, 1979.- Иркутск: Б.и., 1979.- С. 156.

72. Михлин Д.М. Биохимия клеточного дыхания. М.: Изд-во Академии наук СССР, 1960 .- 446 с.

73. Монцевичуте-Ерингене. Упрощенные математико-статистические методы в медицинской исследовательской работе // Патологическаяфизиология и экспериментальная терапия.- 1964.- Т.8^- N 4.- С. 71-78.

74. Несынова Л.И., Кофанов В.И., Невинная Л.В. Исследование возможности микробной деструкции гексогена в многосекционном лабораторном биореакторе // Химия и технология воды. 2000. Т.22.- № 1.- С. 96-103.

75. Никовская Г.Н. Адгезионная иммобилизация микроорганизмов в очистке воды // Химия и технология воды. 1989. - Т. 11. - № 2. - С. 158-169.

76. Никовская Г.Н. с соавт. (1990) С Иммобилизация деструктора алкилбензолсульфонатов Pseudomonas alca-ligenes TR на синтетических волокнах / Никовская Г.Н., Гвоздяк П.И., Шамолина И.И., Ставская С.С., Лобова А.Б. // Биотехнология.- 1990. № 2.- С. 53-56.

77. Никовская Г.Н., Гордиенко А.С., Глоба Л.И. Сорбция микроорганизмов волокнистыми материалами в зависимости от заряда клеток и волокон // Микробиология. 1986. - Т.55. - №4.- С. 691-694.

78. Оганесян А.С., Геворкян Ж.С., Бабаян М.А. К механизму регуляции активности глутаматдегидрогеназы // Биол. ж. Армении.- 1989.- 42, N 2.-С. 156-158.

79. Одум Ю. Основы экологии.- М.: Мир, 1975.- 740 с.

80. Опарина Л.А. Значение тиолов в проявлении каталитической активности NADP-малик фермента из листьев кукурузы (Zea Mays) И Биохимия.-1990.-55, N2.- С. 2 32-239.

81. Пастухова Г.В. Гидробионты в биологической очистке сточных вод // Регион, семинар-совещание по проблемам охраны окруж. среды Поволжья и Средней Азии: Тез. докл., Оренбург, 14-15 июня 1990 г.- М.:, 1990.-С. 45-46.

82. Первушкин С.В. Характеристика изоферментных спектров некоторыхдегидрогеназ и аспартатаминотрансферазы мышечной ткани при гиперхолестеринэмии и общем вибрационном воздействии: Автореферат дис. канд.биол. наук.- Куйбышев, 1981.- 24 с.

83. Пиневич А.В., Мамат У. О ферментативных реакциях с участием перекиси водорода в бесклеточных препаратах Anabaena variabilis И Микробиология.- 1982.- 53, N 3.- С. 373-378.

84. Погожев ГТ.И. О стабильности модельных экосистем // Использование и охрана ресурсов флоры и фауны СССР: Докл. МОИП, 1985, Зоол. и ботан.- М.:, 1987. С. 64-67.

85. Пожаров А.В., Шелемотов С.А. Использование экспресс-биотестирования для оценки антропоэкологической ситуации // Дефектоскопия.-1992.- N4.- С. 88-90.

86. Поляновский О.Л. Четвертичная структура ферментов // Успехи биологической химии.- М.: Наука, 1967.- N 8.- С. 34-60.

87. Потапова Н.А., Королевская Т.В. Использование микробиологических тестов для токсикологического контроля загрязненных вод.- Киев, 1986.12 е.- Рукопись деп. в ВИНИТИ, N 2146-86.

88. Предеина Л.М., Федорова Л.С. Активность ферментов сестона в биоиндикации качества природных вод суши // 8 Симп. по пробл. качества воды водоемов: Тез.докл., Таллин, 23-25 окт. 1990 г.- Таллин: Б.и., 1990.- С. 69-71.

89. Родин В.Н., Афанасьева А.Ф., Ловцов А.Е. Биологическая очистка сточных вод в аэротенках с прикрепленной микрофлорой // Водоснабжение и санитарная техн.-1990.- № 5.-С. 26-27.

90. Розанцев Э.Г. с соавт. (1997)

91. Романцев Ф.Е., Прозоровский В.Н., Андриянова Л.Е. Выделение из Micrococcus sp. гомогенных гемсодержащей каталазы и кристаллического белка, обладающего каталазной активностью // Биохимия.- 1983. 48, N 12.- С. 2023-2027.

92. Ротмистров М.Н., Гвоздяк П.И., Ставская С.С. Микробиология очистки воды.- Киев : Наукова думка, 1978. 268 с.

93. Рудик С.М., Валовская Н.А. Активность малатдегидрогеназы мидий разного возраста в связи с антропогенным загрязнением // Экология моря.- 1987.- N 25.- С. 89-91.

94. Рыжкова А.Н., Моисеева В.П., Тикка Г.А. Биотестирование сточных вод сульфат-целлюлозного производства // Изучение и освоение водоемов Прибалтики и Белорусии : Тез. докл. 20-й научн. конф.,Рига, 1979 г.- Рига: Б.и, 1979.-С. 116-118.

95. Рябухин В.П. Простейшие как объекты биотестирования вод, содержащих стоки целлюлозно-бумажной промышленности // Вопросы сравнительной физиологии и разработка теоретических основ биотестирования.- Ярославль, 1986.- С. 36-40.

96. Рязанов А.Г., Спирин А.С. Организация ферментов на внутриклеточных структурах. Эстафета у поверхности // Биохимия.- 1989.- Т.54. N.5.- С. 709-715.

97. Сакевич А.И., Осипов А.Ф. Взаимосвязь между темпами прироста водорослевой массы и концентрации внеклеточных органических соединений // Гидробиологический журнал.- 1983.- Т. 19. N 5.- С. 71-74.

98. Семенчук И.Н. с соавт. (1998)

99. Селективность микробного биосенсора при различных способах иммобилизации бактерий-деструкторов / Семенчук И.Н., Таранова Л.А., Ильясов

100. П.В., Решетилов А.Н. // Химия и техн. воды.-1998.-Т.20.-№ 6.- С. 649-655.

101. Семин В.А., Иголкина Е.Д. Энзимоиндикация загрязнения водных экосистем // Проблемы экологического мониторинга и моделирования экосистем.- Л.:, 1983.- № 6.- С. 137-145.

102. Сидоров B.C. Перспективы использования биохимического тестирования в водной токсикологии // 5 Всес. конф. по вод. токсикологии: Тез. докл., Одесса, 18-22 апр. 1988 г.- М.:, 1988.- С. 72-73.

103. Симаков Ю.Г. Изменения состава микрофауны активного ила при воздействии токсических веществ // Гидробиологический журнал.- 1985.21, N4.-С. 70-78.104.

104. Симаков Ю.Г. Межклеточные взаимодействия в культурах простейших и их значение для биотестирования токсичности водной среды // 5 съезд Всесоюз. гидробиол. об-ва: Тез. докл., Тольятти, 15-19 сент. 1986г.-Куйбышев: Б.и., 1986.- Ч. 2.- С. 216-21 .

105. Симаков Ю.Г., Жукова Н.А. Контроль за содержанием токсикантов в водной среде по чувствительным периодам онтогенеза у гидробионтов.-М.,1983.- 10 е.- Рукопись деп. в ЦНИИТЭИРХ, N 580-84.

106. Смирнов А.Н. Опыт использования биосигнализаторов для контроля токсичности сточных вод // 5 съезд Всес. гидробиол. общества: Тез. докл., Тольятти, 15-19 сент . 1986 г.- Куйбышев: Б.и., 1986.- Ч. 2.- С. 217-218.

107. Смирнова Н.Н. Исследование токсичности дунайских вод на Vallisneria spiralis.- Киев, 1989.- С. 42-47.- Рукопись деп в ВИНИТИ, N 210-В89.

108. Соколова В.А. Изменения зоопланктона Вилюя в условиях антропогенного воздействия // Вопросы регион, гигиены, сан. и эпидемиологии.: Тез. докл. конф. 20-21 ноя б. 1990 г. Якутск: Б.и.,1990.-С. 229-230.

109. Софьин А.В., Диденко Т.Г. Молекулярные формы глутаматдегидро-геназы и глутаминсинтетазы симбиотической азотфиксирующей ассоциации Azolla-Anabaena П Биохимия. 1990.- 55,N 4.- С. 634-644.

110. Ставская С.С. Биологическое разрушение анионных ПАВ.- Киев: Наукова С думка, 1981.- 116 с.

111. Ставская С.С. с соавт. (1991)

112. Иммобилизация бактерий деструкторов на искусственных волокнах для очистки воды от анион-активных ПАВ / Ставская С.С., Шамолина И.И., Никовская Г.Н. // Химия и технология воды.- 1991.- Т.13. № 6.- С. 548554.

113. Стом Д.И., Балаян А.Э., Кобжицкая Н.З., Кожова О.М. Обездвиживание клеток Dunaliella salina как критерий токсического действия // Гидробиологический журнал. 1984.- Т.20. - N 5,- С. 42-45.

114. Сузина Н.Е., Дмитриев В.В., Фихте Б.А. Электронно-цитохимическое обнаружение каталазы у метанотрофных бактерий Methylocystis echinoides II Микробиология.- 1982. -T.51 -N 5. С. 806-808.

115. Сысоев О.В. Динамика молекулярных форм гексокиназы, лактат- и малатдегидрогеназ на разных фазах развития популяции Escherichia coli 11 Факторы развития бактериальных популяций.- Свердловск, 1980. С. 99105.

116. Тамбиев А.Х. Экзометаболиты и внеклеточные продукты водорослей как регулирующий фактор водных экосистем // Разработка и внедрение комплексных фоновых статистических методов биологического мониторинга.- Рига, 1983. С. 152-159.

117. Таможня В.А. Каталазная активность у основных видов обрастателей// Биология моря.- 1983.- N 6.- С. 49-55.

118. Тарасова Р.С. Генетически детерминированные формы НАД-зависимой МДГ и использование их при биохимической паспортизации инбредных линий сахарной свеклы // Генетика,- 1987.- Т.23. N 9.- С. 1630-1636.

119. Тарасова Т.Н., Дубова М.С. Дегидрогеназная активность бактерий, выделенных из сточных вод и активного ила // Наземные и водные экосистемы.- Горький, 1984.- N 4.- С. 29-33.

120. Телитченко М.М., Остроумов С.А. Введение в проблемы биохимической экологии.- М.: Наука, 1990.- 288 с.

121. Тимофеева С.С. Активность окислительных ферментов как биотест для оценки токсичности природных и сточных вод / Методы биоиндикации и биотестирования природных вод.- Л.: 1987.- N 1.- С. 76-84.

122. Тимофеева С.С. Энзимоиндикация качества очистки сточных вод в аэротенках // Химия и технология воды.- 1987. Т.9 - N 5.- С. 445-448.

123. Тимофеева С.С., Кобжицкая Н.З. Окислительно-восстановительные ферменты активных илов предприятий целлюлозно-бумажной промышленности. Иркутск, 1982.- 82 с.

124. Тупик Н.Д. Сравнительная характеристика оксидоредуктаз водорослей // Хемотаксономическое изучение споров растений и грибов: Тез. докл. Всес. совещ., Киев, 16-18 мая 1990 г. Киев, 1990.- С. 98-101.

125. Унгуряну Д.В., Ионец И.Г. Анаэробная обработка сточных вод с помощью С прикрепленной микрофлоры // Биотехнология. 1990.- № 2.- С. 48-50.

126. Федоров А.С., Талипова И.В. Использование иммобилизованных пурпурных бактерий для очистки сточных вод и получения водорода // 2 Откр. гор. науч. конф. мол. ученых г. Пущино, Пущино, 23-25 апр.,1997 :Сб. тр. Пущино, 1997. - с. 145-152.

127. Феофанов Ю.А. Развитие теоретических основ технологии очистки водыиммобилизованными на подвижных носителях биоценозами // Изв. Вузов. Стр-во и архитек. 1997. - № 6.- С. 101-105.

128. Филиппов В.Н. с соавт. (2000)

129. Фихте Б.А., Гуревич Г.А. Дезинтеграторы клеток. М.: Наука, 1988. — 224 с.

130. Фридман В.М., Шапиро С.Г., Лопухин А.С., Сысоев А.А. Контроль биомассы и состояния активного ила по концентрации АТФ // Химия и технология воды.- 1983.- Т.5. N 5.- С. 468-469.

131. Хачкалян Т.К., Симонян А.А. Множественные молекулярные формы NAD-зависимой малатдегидрогеназы в онтогенезе .- Ереван, 1986.- 13 с.-Рукопись деп. в ВИНИТИ, N 8150-В 86.

132. Хоружая Т.А. Перспективы использования биохимических тест-функций в биомониторинге природных вод // Гидробиол. ж. 1989.- Т.25. -N 5. С. 47-52.

133. Хочачка П., Сомеро Д. Стратегия биохимической адаптации.- М.: Мир, 1977.-398 с.

134. Цагарели М.Л., Пруидзе Г.Н. Множественные формы каталазы в листьях чайного растения // Субтропические культуры,- 1990.- N 3.- С. 46-49.

135. Цветанов Методи, Петрова-Трайкова Анетта, Коновски Петър. Электрохимическое определение скорости потребления кислорода активным илом с помощью установки АРК -1.- Тр. водоснабд., канализ. и сан. техн.- 1980.- T.15.-N2.- С. 134-141.

136. Черкасова Т.А. и др. Иммобилизованная уреаза для биотестирования тяжелых металлов // Проблемы взаимодействия человека и биосферы.1. М.: 1989.- С. 76-79.

137. Чернов Ю.И. Биологическое разнообразие: сущность и проблемы // Успехи современой биологии.- 1991.-Т.111. N 4.- С. 499-507.

138. Чернышев М.К., Котова Л.И., Березкина Е.В. Способ биотестирования токсичности сточных вод / А.с. N 1573376 СССР, МКИ G 01 N 33/18 // Открытия. Изобретения.- 1990.- N 23.

139. Шамолина И.И. с соавт. (1990)

140. Швецов В.Н., Морозова К.М., Петрова Л.А. Применение анализа кинетики ферментативных реакций для выбора схемы и параметров процесса биологической очистки сточных вод // Сооружения механической и биологической очистки сточных вод. М.: 1983.- С. 142-152.

141. Шифрин С.М., Мишуков В.Г., Архипченко И.А. ДНК микроорганизмов активного ила для оценки его функционального состояния // Водоснабжение и санитарная техника. 1980. - N 3.- С. 8-9.

142. Юрин В.М. Электроальгологический способ контроля загрязнения природных вод // Методы биоиндикации и биотестирования природных вод.- 1989.-N1.- С. 63-70.

143. Юровская Е.М. Новые критерии оценки действия химических загрязнений на водные микроорганизмы // Оценка и классификация качества поверхностных вод для водопользования: Тез. сообщ. Всесоюз. конф.,

144. Харьков, 1979.- С. 190-193.

145. Яковлев С.В. с соавт. (1985)

146. Биологическая очистка производственных сточных вод / Яковлев С.В., Скирдов И.В., Швецов В.Н. с соавт.- М.: Стройиздат, 1985.- 208 с.

147. Ahn Young-Ho Physiochemical and microbial aspects of anaerobic granular biopellets // J. Environ. Sci. and Health. A.- 2000.- V.35.- No. 9.- P. 1617-1635.

148. AmbramsJ.J.,WebsterD.A. Purification, partial characterization and possible role of catalase in the bacterium Vitreoscilla II Arch. Biochem. and Bio-phys. 1990. - V.279. - N 1.- P. 54-59.

149. Bakterien reinigen Abluft von Formaldehyd. / Galvanotechnik. — 2000. V. 91. -No. 12.-P. 3462.

150. Balogh Katalin V. Comparison of mussels and crustacean plancton to monitor heavy metal polution // Water, Air and Soil Pollut.- 1988.- V.37/ N 3-4. - p. 281-292.

151. Baquene Gilles, Galgani Francois, Truquet Philippe. Characterization and assay conditions for use of AChE activity from several marine species in pollution monitoring // Mar. Environ. Res.- 1990. V.30. - N 2.- p. 75-89.

152. Basaglia Fulvia. Some aspects of isozymes of lactate dehydrogenase, malate dehydrogenase and glucosephosphate isomerase in fish // Сотр. Biochem. and Physiol. В.- 1989.- V.92. N 2. - p. 213-226.

153. Beeckmans Sonia, Kanarek Louis. Clustering of sequential enzymes in the glycolytic and the citric acid cycle pathways // J. Cell. Biochem.- 1989.- Suppl 13E.-p.266.

154. Ben-Shlemo Rachel, Nevo Eviatar. Isozyme polymorphism as monitoring of marine environments: The interactive effect of cadmium and mercury pollution on the hrimp Palaemon elegan //Mar. Pollut. Bull. 1988. - V.19. - N 7.- p. 314-317.

155. Bernie Heele D., Stowers Mark D. Hiperoxide dismutase and catalase in Frankia //Can.J. Microbiol. 1986. - V.32. - N 5 p. 409-413.

156. Beyer Wayne F., Fridovich Irvin. Pseudocatalase from Lactobacillus plantarumi evidence for a homopentameric structure containing two atoms of manganese per subunit // Biochemistry.- 1985.- V.24. N 23.- p. 6460-6467.

157. Bischoff T.W., Garraway M.O. Effects of glucose on NADP and NAD gluta-mate dehydrogenase activities and their relation to ammonium and pH levels in cultures of Bipolar is maydis race T // Mycopatologia.- 1987.- V/98. N 3. - p. 141-148.

158. Biswas R., Shrotri R., Soman S. Activity levels of lactate dehydrogenase and succinic dehydrogenase under thiodan stress in the crab, Scylla serrata (For-skal) // Nat. Acad. Sci. Lett.- 1990.-V.13.-N 3.-p. 101-102.

159. Blackstock J. et al. Environmental and biochemical investigation of some effects of organic pollution in Inner Oslofjord, Norway // Mar. Biol.- 1983. -V.73. N 2.- p. 155-163.

160. Blanc Francois, Kerambrun Pierre, Leveau Michel. L'indicateur biologique aspects autecologiques et synecologiques // Rapp. et pros.- Verb. reun. Com-mis. int. explor. sci. Mer. mediterr. Monaco.- 1979.-V.25-26. N 8.-p. 109113.

161. Bonete Maria Jose, Camacho Monica Z., Cadenas Eduardo. Purification and some properties of NAD dependent glutamate dehydrogenase from Halobacte-rium halobium И Int. J. Biochem.- 1986.- V.18. N 9.- p. 785-789.

162. Buikema Arthur Z., Rutherford Charles Z., Cairns John Ir. Screening sediments for potential toxicity bi in vitro enzyme inhibition // Contam and Sediments. Vol 1. Ann. Arbor, Mich.- 1980.- p. 463-476.

163. Burton G., Allen Ir. Stream impact assessments using sediment microbial activity tests // Chem. and Biol. Charact. Munic. Sludges. Symp., Cincinnati, 2022 May 1986.-Philadelphia, 1988.-p. 300-310.

164. Buschini A.M. et al. Glucose and nitrogen catabolite regulation of NAD-glutamate dehydrogenase and NADP-glutamate dehydrogenase in Kluyveromy-ces lactis И Atti Assoc. genet, ital.- 1988.- 34.- p. 45-46.

165. Chen N., Dojle LP;, Gaafar H.A. Isolation and identification of Neisseria gonorrhoeae catalase // Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1980.- 139.-p.382-391.

166. Consalvi V. et al. Glutamate dehydrogenase from sulfolobus solfataricus: kinetic and physico-chemical properties // Ital. J. Biochem.- 1990.- V.39. N 5.-p. 337-339.

167. Coperland Les, Quinnell Rosanne J., Day David A. Malic enzyme activity in bacteroids from soybean nodules // J. Jen. Microbiol.- 1989.- V.135. N 7.- p. 2005-2011.

168. D'Souza S.F., Melo J.S. Immobilization of yeast cells by adhesion to glass surface using polyelethylenimine / // Biotechnol. Lett. 1986. - V.8. - No. 9. - P. 643-648.171. De Best J.H. etal.(2000)

169. Dichloromethane utilization in a packed-bed reactor in the presence of various electron acceptors / De Best J.H., Ultee J., Hage A. et al. // Water Res.- 2000. -V.34. No. 2.- P. 566-574.

170. Dhandayuthapani S., Ramalingam K. Portial purification and properties of cy-toplasmus malate dehydrogenase from the fish parasite Penetrocerhalus gana-patii (Cestoda: Pscidophyllidea) // Pros. Indian. Nat. Sci. Acad. 1989. - V.55. -N 5-6.-p. 325-334.

171. Din Zubir В., Brooks James M. Use of adenylate enerhy change as a physiological indicator in toxicity experiments // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.-1986.- V.36.-N l.-p. 1-8.

172. Dorward Elanne J., Barlsas B. George. Acute toxicity screening of water pollutants using a bacterial electrode // Environ. Sci. and Technol.- 1984. V. 18. - N 12.-p. 967-972.

173. Ehmke Adelheid, Schneid Heinz-Valter, Hartmann Thomas. Glutamate dehydrogenase of Pisum sativum', heat-dependant interconversion of the multiple forms // Z. Naturforch.- 1984.- V.39. N 3-4.- p. 257-260.

174. Eries C.R., Lee R.F. Pollutant effects on the mixed function oxygenase (MFD) and reproductive systems of the marine polychaete Nereis virens // Mar. BioL-1984.- V.79. -N2.-p. 187-193.

175. Falkentoft C.M., Harremoes P., Mosbak H. The significance of zonation in a denitrifying, phosphorus removing biofilm // Water Res.- 1999.- V.33.- No. 15.- P. 3303-3310.

176. Fauris C. Inhibition de la synthese d' ARN de cellules ecaryotes: une mesure extremement sensible de la toxicite des eaux // Oceanis. 1990. — V. 16. - N 4.-p. 267-276.

177. Fiestas J.A., Martin A., Borja R. Influence of immobilization supports on the kinetic constants of anaerobic purification of olive mill waste water // Biol. Wastes. 1990. -V. 33. - No. 2. - P. 131-142.

178. Florencio F.I., Margues S., Candau P. Identification and characterization of a glutamate dehydrogenase in the unicellular cyanobacterium Synechocystis PCC 6803.- FEBS Gett.- 1987.-V. 223. N 1.- p. 37-41.

179. Fok Agnes K., Allen Richard D., Kaneshiro Edna S. Axenic Paramecium cau-datum. Ill Biochemical and physiologial changes with culture age // Eur. J. Cell. Biol.- 1987.-V.25. -N l.-p. 193-201.

180. Fontigny Anne et al. Some kinetic characteristics of exproteolytic activity in coastal seawater // Estuarine, Coast and Shelf Sci.- 1987.- 25, N 1. p. 127-133.

181. Fontvielle D., Viboud S., Fauvet G. Developpements et role des biomasses fixees en eaux courantes // Techn., sei.,meth. -1999. — No. 11. P. 55-60.

182. Friedrich P., Hajdu J. An overview of supramolecular enzyme organization // Biochem. Soc. Trans.- 1987. V.15. - N 5. - p. 973-977.

183. Fritzsche F., Schopp W. Verhalten von Superoxiddismutase und Catalase in • * i

184. Pseudomonas putida bei Wachstum auf n-Alkanen // Abh^ Akad. Wiss. DDR Abt. Math. Naturwiss., Techn.- 1981.- N 3. p. 251-257.

185. Garrood A.C. et al. Elevation of glutatione transferase in molluscs in response to xenobiotics // Mar. Environ. Res.- 1989.- V.28. N 1-4,- p. 147.

186. Gebara F. Activated sludge biofilm waste water treatment system // Water Res. -1999.-V.33.-No. 1. -P. 230-238.

187. Gerdes-Kuhn M., Diekmann R., Hempel D.C. Tragerfixierung von Spezialkul-turen eine wirkungsvolle Methode zum Abbau persistender Abwasserin-haltsstoffe // Korrespond. Abwasser. - 1989. - V.36. - No.7. - P. 776-784.

188. Ghavez S., Candau P. An NAD-specific glutamate dehydrogenase from Cyano-bacteria. Identification and propertits // FEBS Zett.-- 1991.--V.285. N 1.- p. 35-38.

189. Goldberg Iris, Hochman Ayala. Three different types of catalases in Klebsiella pneumoniae H Arch. Biochem. and Biophys.- 1989.- V.268. N 1.- p. 124-128.

190. GoldbergIris,HochmanAyala.Purificationand characterization of a novel type of catalase from the bacterium Klebsialla pneumoniae II Biochem. et biophys. acta. Gen. Subj.- 1989.- V.991. N 2.- p. 330-336.

191. Gonzalez M.P., Maeso M. Effect of nitrate and ammoniuum on NADH-dependent glutamate dehydrogenase activity of detached roots and cotyledons of Citrullus vulgaris L.- 1987.- V.127. N 3-4. - p. 331-337.

192. Gross Wolfgang. Membranebound malate dehydrogenase in mitochondria from the alga Cyanidium caldarium II Phytochemistry.- 1990.- V.29. N 10.- p. 3081-3085.

193. Grossebuten Wilhelm, Hart! Thomas, Gorish Helmut, Stezowski John Y. Purification and properties of malate dehydrogenase from the thermoacidophilic ar-choebacterum Thermoplasta acidophilum I I Biol. Chem. Hoppe- Seyler.- 1986.

194. Microscopic and enzymatic investigations on biofilms of wastewater treatment systems / Gschlobl Т., Michel I., Heiter M., Nerger C., Rehbein V. // Water Sci. and Technol. 1997. - V. 36. -No. 1. - P. 21-30.

195. Gupta Vijay K., Singh Randhir. Properties of NADP -malate dehydrogenase from immature pod wall of Ciler arietinum // Plant Physiol, and Biochem.-1990.- V.28. N 6.- p. 671-678.

196. Hamon Perla, Toure Bakary. Characterisation of traditional yam varieties be-londing to the Dioscorea coyensis-rotundata complex by their isozymic patterns // Euphytica. 1990.- V.46. - N 2.- p. 101-107.

197. Harendranath C.S. et al. (1996)1.mobilization in fixed-film reactors- an ultrastructural approach. / Harendranath C.S., Anuja K., Singh A. et al. // Water Sci. And Technol. 1996.-V.33.-No. 8.- P. 7-15.

198. Hartl Thomas et al. Crystalline NAD/NADP-dependent malate dehydrogenase; the enzyme from the thermoacidophilic archaebacterium Sulfolobus acidocal-darius II J. Biol. Chem. Hoppe-Seyler.- 1987.- V.368. N 3.- p. 259-267.

199. Heimberger A., Eisenstark A. Compartmentalization of catalases in Esherichia coli II Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1988.- V.154. N 1.- p. 392-397.

200. Hemmings Brian A. Purification and properties of the phospho and dephospho forms of yeast NAD-dependent Glutamate dehydrogenase // J. Biol. Chem.-1980.- V.255. N 16.- p. 7925-7932.

201. Henze M., Harremoes P. Anaerobic treatment of waste water in fixed film re-actors.-a literature review // Water Sci. Technol.-1983.-V. 15.- No. 8/9. -P. 1101.

202. HochmanAyala,GoldbergIris.Purificationand characterization of a catalaseperoxidase and a typical catalase from the bacterium Klebsiella И Biochem. et biophys. acta Protein Struct, and Mol. Enzymol.- 1991.- V.1077. N 3.- p. 299-307.

203. Hornby David P., Engel Paul C. Characterization of Peptostreptococcus asac-charolyticus glutamate dehydrogenase purified by dye-ligand chromatography // J. Gen. Microbiol.- 1984.- V.130. N 9. - p. 2385-2394.

204. Hoxha J. et al. Catalase activiti in the plants exposed to contamination with heavy metals // Acta biol. et med. exp.- (SFRJ). 1985. - V.IO. - N 2.- p. 23-26. '

205. Huang C.Y., Rhee S.Y., Chock P.B. Subinit cooperation and enzymatic catalys // Annu Rev. Biochem. Vol. 51. Palo Alto, Calif, 1982. p. 935-971.

206. Iuch Andrew I., Chung Che-Shengi, Lai Iiu-Kay. Purification and molecular properties of malate dehydrogenase from the marine diatom Nitzschia alba II Biochem J.- 1989.- V.258. N 1.- p. 221-228.

207. Jana Sasadhar. Effect of heawy metals on growth population of a fecal coliform bacterium Escherichia coli И Water, Air, and Soil Pollut.- 1988.- V.38. N 34.- p. 251-254.

208. Jeffery D., Goodenouqh P.W., Weitzman P.D. Cytrate synthase and malate dehydrogenase from tomato fruit // Phytochemistry.- 1988.- V.27. N 1.- p. 4144.

209. Jenkins Ronald L. et al. Assocoation-dissotiation studies of boine and rat liver glutamic dehydrogenase by high-performanse liquid chromatography gel filtration // Arch. Biochem. and Biophys.- 1988.- V.266. N 1.- p. 72-82.

210. Joannou C.L., BrownP.R.NAD-dependentglutamate dehydrogenase from Pseudomonas aeruginosa is a membrane-bound enzyme.// FEMS Microbiol. Lett. 1992. - V.90. - N 2.- p. 205-210.214. Jobbagy A. et al. (2000)

211. Jonas Robert B. et al. Comparison of methods to measure acute metal and or-ganometal toxicity to natural aquatic microbial communities // Appl. and Environ. Microbiol.- 1984.-V.47. -N 5.-p. 1005-1011.

212. Jouve H.M., Tessier S., Pelmont J. Purification and properties of the Proteus mirabilis catalase // Can. J. Biochem. and Cell. Biol.- 1983.- 61, N 1.- p. 8-14.

213. Itagaki Tandashi, Dry Ian В., Wiskich Joseph. Purification and proptrties of NAD-glutamate dehydrogenase from turnipm mitochondria // Phytochemis-try.- 1988.- V.27. N 11.- p. 3373-3378.

214. Kienz Walfgang et al. Einsatz eines Biodetektors als "Kanalspion" zum Nach-wies der Schwermetallherkunft in Abwassersielen // Z. Wasser- und Abwasser-Forsch.- 1989.- Y.22. N 6.- p. 239-244.

215. Kince Ch. M., Trelease R.N., Turley Rickie B. Purification and bioshynthesis of cottonseed catalase // Biochem. J. 1988. V.251. - N 1.- p. 147-155.

216. Kirkman Henry N., Gaetani G.F. Catalase: A tetrameric enzyme with four tightly bound molecules of NADPH // Proc. Nat. Acad. Sci. USA Biol. Sci.-1984.-V.8L -N 14. p. 4343-4347.

217. Kono Iasuhisa, Fridovich Irvin. Isolation and characterization of the pseudocatalase of Lactobacillus plantarum. A new manganesecontaining enzyme //J. Biol. Chem.- 1983. V.258,N 10.- p. 6015-6019.

218. Kowalski E., Lewandowski Z. Aktywne chemiczne wypetnienie ztoz nitryfika-cyjnych // Arch. Ochr. Srodow.-1983.- No. 4/4. P. 95-112.

219. Kristjansson Hordur, Ponnamperuta CyriL Purification and properties of malate dehydrogenase from the extreme thermophile Bacillus caldolyticus II Limits Life. Dordrecht et al.- 1980.- p. 47-54.

220. Kuhl-C., Schreck U., Czermak P. Biologische Aufarbeitung von mineralol-haltigen Abwassern aus Kfz-Betrieben // Chem.-Ind.-Techn. 2001.-V.73.- No. 4.- P. 406-411.

221. Kulkarni B.G., Kulkarni P.G. Effect of mercury exposure on enzymes in the clam Katelysia opima (Gmelin) // Indian J. Mar. Sci.- 1987. V. 16. - N 4.- p. 265-266.

222. Laere Andre Y. Van. Purification and properties of NAD-dependent glutamate dehydrogenase from Phycomyces spores I I J. Jen. Microbiol.- 1988.- V.134. N 6.- p. 1597-1601.

223. Laszlo J.A. Regeneration of azo-dye-saturated cellulosic and anion anaerobic dye reduction // J. Environ. Sci. and Technol. 2000. — V. 34. - No. 1. - P. 167-172.

224. Ling L., Lo K.V. Brewery wastewater treatment using suspended and attached grouth sequencing batch reactors // J. Environ. Sci. and Health. A. 1999. - V. 34.-No. 2.-P. 341-355.

225. Livingstone D.R. et al. Molecular, allular and physiologial responses of the common mussel Mytilus edulus to pollution: Uses in environmental monitoring and management // Hum. Toxicol.- 1989,- V.8. N 1.- p. 59.

226. Lockhart W.L., Menter D.A. Oil-sensitive biomarker studies of fish from Arctic Canada // 14th Arct. and Mar. Oilspill Program Techn. Semin., Vancouver, June 12-14, 1991: Proc.- Vancouver., 1991.-p. 169-176.

227. Loewen Peter C., Switala Jacek. Purification and characterization of catalase-1 from Bacillus subtilis II Biochem. and Cell. Biol.- 1987. -V.65, N 11.- p. 939947.

228. Loewen Peter C., Switala Jacek. Multiple catalases in Bacillus subtilis 11 J. Bacterid.- 1987.- V.169. N 8.- p. 3601-3607.

229. Lu Weiping. Purification and characterization of glutamate dehydrogenase from

230. Brevibacterium flavum IIL Fundan. Univ.- 1988.- V.27.- N 4.- p. 395-401.

231. Mahadevan M.M. Sperm bioassay for detecting acute toxicity of chemical pollutants II Experientia.- 1986.- V.42. N 1.- p. 85-86.

232. Mantsala Pekka. Thermophilic NAD dependent glutamate dehydrogenase from Bacillus stearothermophilic II Biochem. Int.- 1985. V.10, N 6.- p. 955-962.

233. Marshall K.C. Bacterial Adhesion to Surfaces. London: Society of Chem. Industry, 1980.-P. 187-196.

234. Martin-Cereceda M., Serrano S., Guinea A. Biofilm communities and operational monitoring of a rotating biological contactor system // Water, Air and Soil. Pollut. 2001. - V. 126. - No. 3-4. - P. 193-201.

235. Maserti B.E., Ferrara R., Paterno P. Posidonia as an indicator of mercury contamination // Mar. Pollut. BulL 1988. - V.19, N 8.- p. 381-382.

236. Masters Colin, Pegg Michael, Crane Denis. On the multiplicity of the enzyme catalase in mammalian liver // Mol. and Cell. Biochem.- 1986,- V.70, N 2.- p.

237. Mather Mihaich Ellen, Di Gulio Richard T. Oxidant mixed-function oxidase and peroxisomal in channel catphish exposed to a bleached kraft mill effluent // Arch. Environ. Contam. and Toxicol.- 1991.- V.20. N 3,- p. 391-399.

238. Matulova Dragica. The Application of algae as test organismus // Arch. Protis-tenk.- 1991.- V.139. -N 1-4.-p. 279-289.

239. Mc Daniel Huly G. Glutamic dehydrogenase from rat heart mitochondria. 1: purification and physical properties including molecular weight determination // J. Mol. and Cell. Cardiol.- 1984.- V.16, N 4.- p. 295-301.

240. Meir Efrat, Iagil Ezra. Further Characterization of the Two Catalases in Escherichia coli // Cull. Microbiol. 1985. - V.12, N 6.- p. 315-320.246. Meraz M. Et al. (1995)

241. Studies on the dynamics of immobilisation of anaerobic-bacteria in a plastic support / Meraz M., Monroy O., Noyola A., Ilangovan К // Water Sci. and Technol.- 1995. V.32. - No. 8. - P. 243-250.

242. Mittler Ron, Tel-Or Elicha. Oxidative stress responses and shock proteins in the113.120.unicellular cyanobacterium Syntchococcus R2 (PCC-7942) // Arch. Microbiol.-1991.- V.155, N 2.- p. 125-130.

243. Miyatake Kazutaka et al. Purification and immunological properties of NAD-linked malate dehydrogenase isozymes from Euglena gracilus // Agr. and Biol. Chem.- 1986.- V.50, N 10.- p. 2651-2653.249. Monroy O. et al. (2000)

244. Anaerobic digection for wastewater treatment in Mexico: state of the technology / Monroy O., Fama G.,. Meraz M., Montoya L., Macarie H. // Water Res. — 2000.-V. 34.-No. 6.-P. 1803-1816.

245. Mozaffar Sabiha et al. Properties of catalase purified from a methanol-grown jeast Kloecera sp. 2201 // Eur. J. Biochem.- 1986.- V. 155, N 3.- p. 527-531.

246. Mozes N., Rouxhet P.G. Metabolic activity of yeast immobilized as support monolayer // Appl. Microbiol. & Biotechnol. 1985. - V.22. - No. 2. - P. 92-97.

247. Munoz Blano Yuan, Moyano Enrigeta, Cardenas Yacobo. Glutamate dehydrogenase isozyme of Chlamydomonas reinhardtii // FEMS Microbiol. Zett. -1989. V.61, N 3.- p. 315-318.

248. Narbonne J.F. et al. Indicateurs biochemique de contamination de I'environne-ment marin: etude comparative en mer Mediterranee // Oceanis. 1991. - V. 17, N3.- p. 257-275.

249. Ni Weiting, Trelease Richard N., Eising Rainer. Two temporally synthesized charge subnits interact to form five isoforms of cottonsttd catalase // Biochem. J.- 1990.- V.269, N 1.- p. 233-238.

250. Nies Dietrich, Schlegel Hans G. Catalase from Comamonas compransoris U J.Gen. and Appl. Microbiol.- 1982.- V.28, N 4.- p. 311-319.

251. Nikolopoulos Dimosthnis, Manetas Yiannis. Compatible solutes and in vitro stability of Salsola soda enzymes: proline ioncompatibility // Phytochemistry. -1991.-V.30-N2.-p. 411-413.

252. Novotny James F., Perry Jerome J. Characterization of the malate dehydrogenase from Thermoleophilum album NM // Arch. Microbiol.- 1990.- V.154. N 3.- p. 304-307.258. O'Reilly К. etal. ( 1987)

253. Degradation of pentachlorophenol in immobilized bacteria bioreactors / O'Reilly K., Steiert J., Kadakia R. et al. // Abtr. Pap., 194th ACS Nat. Meet. (Amer. Chem. Soc.), New Orleans, LA, Aug. 30 - Sept.4, 1987. - Washington D.C.-1987.- P. 442.

254. Obst U., Holzapfel-Pschorn A. Biochemical testing of Groundwater // Water Sci. and Technol.- 1988. V.20, N3. - p. 101-107.

255. Ohshima Toshihisa, Sacuraba Haruhiko. Purification and characterization of malate dehydrogenase from the phototrophic bacterium Rhodopseudomonas capsulata II Biochim. et biophys. acta Protein Struct, and Mol. Enzymol.-1986.- V.869, N 2 .- p. 171- 177.

256. Pekkala C.M., Kooptan B. Effect of toxicants on algal sinking rates // Water, Air and Soil Pollut.- 1987.-V. 36, N 1-2.- p. 155-162.

257. Pellerin-Massicote Jocelyne, Pelletier Emilien, Paquet Mariane. Cellular and biochemical indicators assessing the quallity of a marine environment // Hydro-biologia.- 1989.- V.188-189.- p. 587-589.

258. Prento Poul, Prento Annette. Crystalline catalase from the earthworm Lumbri-cus terrestris (Oligochaeta Annelida): purification and properties I I Cemp. Bio-chem. and Physiol.- 1984.- V.77, N 2.- p. 325-328.

259. Pugh Shirlej I.R., Knovles Christopher J. Synthesis of catalase by Streptococcus faecalis subsp. zymogenes // Arch. Microbiol.- 1983.- V.136, N 1.- p. 60-63.

260. Radi Amal Ali Radeb, Matkovics B. Effects of metal ions on the antioxidant enzyme activities, protein contents and lipid peroxidation of carp tissues // Сотр. Biochem. and Physiol.- 1988.-V.90, N 1.- p. 69-72.

261. Rao P., Rama Mohana. Cytochemistry of the ciliate Euplotes woodruff! Gaw 1938 with a note on the effect of local pollutants on the ciliate // Geobios ( India ).- 1989.-N6.-p. 275-278.

262. Rasmusson Allan G., Moller Ian M. NADP-utilizing enzymes in the matrix of plant mitochondria//Plant Physiol.- 1990.-V.94, N 3.-p. 1012-1018.

263. Ratajczak Z. et al. Glutamate dehydrogenase isoenzymes in yellous lupine rootnodules- I-Wevelopental patterns and coenzyme requirements I I Acta physiol. plant.- 1988.- V. 10, N 1. p. 41-48.

264. Reddy S.Z., Venugopal N.B: In vivo effects of cadmium chloride on certain aspect of protein metabolism in tissues of a frechwater fields crab Barytelphuusa querini II Bull. Environ Contam. and Toxicol.- 1991.-V. 46, N 4.- p.583-590.

265. Rice David W., Hornby David P., Engel Paul C. Crystallization of an NAD -dependent glutamate dehydrogenase from Clostridium cymbiosum II J. Mol. Biol.- 1985.-V.181, N 1.-p. 147-149.

266. Rivere D., Kerambrun P. Impact d'une pollution d'origine urbaine sur les ac-tivites enzymatiques de deux copepodes planctoniques // Mar. Biol.- 1983.-V.75, N 1.- p. 25-35.

267. Rober В., Stolle J., Reuter G. Eigenschaften der Glucose-6-phosphat-dehydrogenase aus der SCP Candida maltosa H // Z. allg. Microbiol.- 1984.-V.24, N 9.- p. 629-636.

268. Rosenberg M. Bacterial adhesion to hydrocarbons: a useful technique for studing cell surface hydrophobicity // Ibid.-1984.-V.22.- No. 3. -P. 289-295.

269. Rosenberg M., Gutnick D., Rosenberg E. Adherence bacteria to hydrocarbons; a simple method for measuring cell surface hydrophobicity // FEMS Microbiol. Lett.-1984.-V.9.- No. 1. -P. 29-33.

270. Rueter John G. Alcaline phosphatase inhibition by copper: Implications to phosphorus nutrition and use as a biochemical marker of toxicity // Limnol. and Oceanogr.- 1983.- V.28, N 4.- p. 743-748.

271. Ruis H. Heme as a regulator of catalase biosynthesis in the yeast Saccharomy-ces cerevisiae И Highlights Mod. Biochem.: Proc. 14th Int. Congr. Biochem., Praque, 10-15 juli 1988. Vol .1- Utrecht, Tokyo, 1989.- p. 339-347.

272. Sallal A.K.G., Nimer N.A. The presence of glutamate dehydrogenase in Сhloro- gloeopsis fritschii. // FEMS Microbiol Lett.- 1990.- V.67, N l-2.-p. 215-219.

273. Sallal A.K.Y., Nimer N.A. The presence of malate dehydrogenase in thylakoids of Anabaena cylindrica, Nostos muscorum and Chlorogloeopsis fritschii I I Z. Naturforsch. C.- 1990.- V.45, N 3-4.- p. 249-252.

274. Sarada K.V. et al. Isolation and characterization of glutamate dehydrogenase from Mycobacterium smegmatis CDC 46 I I Biochim. et biophys. acta.- 1980.-V.615, N 2,- p. 299-308.

275. Scaven Michael D. et al. The rapid purification of 3-hydroxybutyrate dehydrogenase and malate dehydrogenase on triazine dye affinity matricis // Biochem. J.- 1982.- V.203, N 3.- p. 699-705

276. Schinkinder M.F., Rede В., Stoffler G. Purification and properties of an extreme thermostable glutamate dehydrogenase from the Archaebacterium sul-folobus solfataricus II Biochim et biophys. acta. Gen. Subj.- 1991.- Y.1073, N 1.- p. 142- 148.

277. Schroder Yohannes Horst, Peters Karin. Differential courtship activity of competing guppi males as an indicator for low concentrations of aquatic pollutants // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.- 1988.- V.40, N 3.- p. 396404.

278. Schwegler Helmut. Stabilitatsbegriffe fur biologische Systeme // Angen. Bot.-1981.- V.55,N3-4.-p. 129-137

279. Shien Wen K., lee Carl J. Microbial toxicity moninor for in situ continuous applications//Biotechnol. andBioeng.- 1985.- V.27,N 10.-p. 1500-1506.

280. Shimizu Hiroshi, Kuratsu Taeko, Hirata Fumio. Purification and some properties of glutamate dehydrogenase from Protes inconstans II J. Ferment. Technol.-1979.-V.57,N 5.-p. 428-433.

281. Sleinert S.A., Pickwell G»V. Miltiple forms of lisozyme in copper stressed mussels ( Mytilus edulus ) II Mar. Environ. Res.- 1985.-V.17, N 2-4.- p. 211-214.

282. Srinivasulu Reddy M., Ramana Rao K.V. Effects of phosphamidon and lindane of the limb regeneration of panaeid prown, penaeus monodon // Bull. Environ. Contam. and Toxicol.- 1989.- V.42, N 1.- p. 154-158.

283. Srivastava D.K. et al. Direct transfer of NADH between 1-glycerol phosphate dehydrogenase and lactate dehydrogenase: fact or misinterpretation? // Proc. Nat. Acad. Sci. USA.- 1989.- 86, N. 7.- p. 6464-6468.291. Steyer J. et al. (1999)

284. Advanced control of anaerobic digestion procecces through disturbances monitoring / Steyer J., Buffiere P., Rolland D. et al. // Water Res.- 1999. V.33. -No. 9.-P. 2059-2068.

285. Tayeh Mahmoud A., Madigan Michael T. Malate dehydrogenases in photo-trophic purple bacteria: purification, molecular weight and qaternary structure // J. Bacterid.- 1987.- V.169, N 9.- p. 4196-4202.

286. Telitchenko M.M. Self-purifying and full biological value by hydrobios // Fundamental research in homogeneous catalysis. N.I.: Gordon and Breach, 1986.-Vol. 3.- p. 1273-1287.

287. Teller J.K. Kinetic properties of glutamate dehydrogenase purified from the mealworm fat body. The glutamate synthesizing direction // Сотр. Biochem. and Physiol.- 1988V. 90, N 2.- p. 329-333.

288. Terashima Y., Ozaki H. Utilization of microorganisms immobilized with magnetic particles for wastewater treatment // Res. Activ., Civ., Eng. and Relat. Fields Kioto Univ. -1993. P. 117.

289. Toze S. PCR and the detection of microbial pathogens in water and wastewater // Water Res. 1999. -V. 33.-No. 17. - P. 3545-3556.

290. Tramper J., Suwinska-Borowiec G., Klapwijk A. Characterization of nitrifying bacteria immobilized in calcium alginate // Enzyme & Microbial Technology.-1985.-V.7.-No. 5.-P. 155-160.

291. Trindale Helena, Karmali Amin, Pais Maria S. One-step purification and properties of catalase- from leaves of Zantedeschia aethiopica // Biochemie.- 1988.-V.70, N 12.-p. 1759-1764.299. Tsubone T. et al. (1998)

292. Advanced biological water treatment using immobilization technology / Tsubone Т., Baba K., Sawada Т., Yamada H., Takeshi Т., Atsuura H. // NKK Techn.Rev. 1998. - No. 78. -P. 66-73.

293. Valdivia E et al. Control of catalase and peroxidase biosynthesis by carbon source and oxygen in the jeast Saccharomyces cerevisiae // Can. J. Microbiol.-1983.- V.29, N 9.- p. 1200-1204.

294. Vasseur P., Ferard J.F., Vial J., Larbaig G. Comparaison des tests Microtox et Daphnie pour 1'evaluation de la toxicite aique d' effluents industriels // Environ. Pollut.- 1984.- A .34, N 7.- p. 225-235

295. Vienne Dominique. Relation entre la structure et les formes multiples de la glutamate deshydrogenase du pollen de Luzerne // C. r. Acad, sci.- 1981.- D 291, N 11.-p. 885-888.

296. Vircellani P.A., Smiri R.I., Krieg N.R. Catalase activity in Campylobacter jejune: comparison of a wild-tipe strain with an aerotolerant variant // Can. J. Microbiol.- 1990.- V.36, N 6.- p. 449-451.

297. Von den Berg L. Developments in methanogenesis for industrial waste water // Can. J. Microbiol. 1984. - No. 8. - P. 975-990.

298. Vredenbregt L.H.J. etal.(1997)

299. Fluid bed biological nitrification and denitrification in high salinity waste water / Vredenbregt L.H.J., Nielsen K., Potma A.A. et al. // Water Sci. And Technol.-1997.-V.36. No. 1. - P. 93-100.

300. Warwick W.F. Morphological abnormalities in Chironomidae larvae as measures of toxic stress in freshwater ecosystems: indexing antennal deformities in

301. Chironomus Meigen II Caru J. Fish., and Aquat. Sci.- 1985.-V.42,. N 12.- p. 1881-1914.

302. Wedding Randolph T. Malic enzymes of higher plants: Characteristics, regulation and physiological function // Plant. Physiol.- 1989.- V.90, N 2.- p. 367-371.

303. Weil G., Hugen R. Dieselolabbau mit in Polymeren immobilisierten Mikroor-ganismen // Korrespond. Abwasser. -1997. -V. 44. -P. 104-109.310. Werner A. etal.( 1997)

304. Biotechnologisches Verfahren zum mikrobiellen Fettabbau' in Abwassern / Werner A., Boschke E., Enkelmann U., Bley Th. // Chem. — Ing. Techn. — 1997. - V. 69. - No. 9. - P. 1296.

305. West Sh.M., Price N.C. The unfolding and refolding of glutamate dehydrogenases from bovine liver, bakers yeast and Clostridium symbiosum I I Biochtm. J.-1988.- V.251, N 1.- p. 135-139.

306. Willeford Kenneth O., Wedding Randolph T. Evidence for a multiple subunit composition of plant NAD malic enzyme // J. Biol. Chem.- 1987.- V.262, N 17.-p. 8423-8429.

307. Williamson Kenneth J., Johnson Diane G. A bacterial bioassay for assessment of wastewaters toxicity // Water Res.- 1981.- V.15, N 3.- p. 383-390.

308. Zee B.N., Picard A. Occurrence of glutamate dehydrogenase isoenzymes during growth of Oocystis alga // Biotechnol. and Bioeng.- 1983.-V.25, N 7.- p. 18011816.

309. Zesson Andrea, Komuniecki Patricia R., Komuniecki Richard. Catalase activity during the development of the parasitic nematode Ascaris suum II Compan. Biochem. and Physiol. В.- 1990.- V.95, N 4.- p. 811-815.

310. Zoeven P.C., Switala Y. Purification and characterization of catalase РН II from Eschericha coli K12 // Biochem. and Cell Biol.- 1986.-V. 64, N 7.- p. 638-646.

311. Zoeven P.C., Switala Y. Purification and characterization of sporespecific catalase-2 from Bacillus subtilis II Biochem. and Cell Biol.- 1988.- V.66, N 7.-p. 707-714.