Диагностическая эффективность иммуноферментных тест-систем (ИФР и дот-ИФА) при трихинеллезе свиней тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.19, кандидат биологических наук Написанова, Людмила Александровна

• Написанова, Людмила Александровна
• кандидат биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Написанова, Людмила Александровна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Антигены трихинелл и их характеристика.

1.2. Диагностика трихинеллеза иммуноферментным методом.

1.3. Дот-ИФА в диагностике гельминтозов.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материалы и методы.

2.1.1. Материалы.

2.1.2. Методы исследований. а) Получение личинок Trichinella spiralis, приготовление соматического экстракта. б) Получение соматического фракционированного антигена трихинелл. в) Получение экскреторно-секреторного антигена трихинелл. г) Физико-химическая характеристика соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов трихинелл. д) Постановка и учет иммуноферментной реакции при трихинеллезе свиней с экскреторно-секреторным антигеном. е) Разработка дот-ИФА при трихинеллезе свиней. ж) Изучение динамики антител при экспериментальном трихинеллезе свиней в ИФР и дот-ИФА. з) Диагностическая эффективность ИФР при трихинеллезе свиней с соматическим фракционированным и экскреторно-секреторным антигенами. и) Диагностическая эффективность дот-ИФА и ИФР при трихинеллезе свиней с экскреторно-секреторным антигеном в производственных условиях. к) Статистическая обработка результатов.

2.2. Результаты исследований.

2.2.1. Анализ данных по получению соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов Trichinella spiralis.

2.2.2. Анализ данных по физико-химической характеристике соматического фракционированого и экскреторно-секреторного антигенов трихинелл.

2.2.3. Результаты исследований по постановке и учету иммуноферментной реакции при трихинеллезе свиней с экскреторно-секреторным антигеном.

2.2.4. Результаты исследований по разработке дот-ИФА при трихинеллезе свиней.

2.2.5. Анализ данных по динамике антител при экспериментальном трихинеллезе свиней в ИФР и дот-ИФА.

2.2.6. Диагностическая эффективность ИФР при трихинеллезе свиней с соматическим фракционированным и экскреторно-секреторными антигенами.

2.2.7. Диагностическая эффективность дот-ИФА и ИФР при трихинеллезе свиней с экскреторно-секреторным антигеном.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Диагностическая эффективность иммуноферментных тест-систем (ИФР и дот-ИФА) при трихинеллезе свиней»

Актуальность проблемы. Трихинеллез, вследствие повсеместного распространения возбудителя на земном шаре, является глобальным антропозоогельминтозом. Это инвазионное заболевание представляет собой серьезную медицинскую, ветеринарную и социально-экономическую проблему во всем мире, так как наносит немалый ущерб хозяйству стран и обществу в целом. Поэтому во многих странах с неизменным постоянством и высокой интенсивностью ведутся комплексные ветеринарно-медико-биологические исследования по трихинеллезу, но несмотря на это актуальность проблемы не ослабевает, а в нашей стране в последнее время даже возрастает.

Предусмотренные- существующими инструкциями мероприятия по борьбе с трихинеллезом не обеспечивают надежной профилактики этого гельминтоза у сельскохозяйственных животных. Свинина и изделия из нее продолжают оставаться основными источниками возбудителя заболевания людей. Причиной этого является недостаточная эффективность посмертных прямых методов диагностики, используемых на мясокомбинатах и убойных пунктах, не гарантирующих полную выявляемость всех зараженных животных. Так, наиболее широко применяемая в своем классическом варианте методика компрессорной трихинеллоскопии по К^Бтап (1908), основанная на исследовании 24 срезов ножек диафрагмы, позволяет выявлять инвазию с интенсивностью свыше 1-2 личинок на 1г мышц. Между тем, слабое заражение встречается гораздо чаще, чем умеренное и сильное. Помимо этого, метод плохо поддается механизации, малопроизводителен, крайне утомителен и достаточно дорог (требует привлечения большого штата трихинеллоскопистов).

Групповое исследование мышц методом переваривания в искусственном желудочном соке (ИЖС) значительно превосходит по диагностической эффективности компрессорную трихинеллоскопию, особенно с позиций главной задачи экспертизы - предупреждения опасного для здоровья людей заражения трихинеллами, так как успешно выявляет жизнеспособные личинки. Однако, при высоких скоростях убоя и переработки свинины, которые обычно имеются на больших мясоперерабатывающих предприятиях, применение его становится затруднительным (Р.С. Ье1£Ь1у, 1983). Кроме того, он неэффективен в случае гибели личинок, что значительно снижает его ценность (особенно для решения некоторых вопросов эпизоотологии и эпидемиологии).

Для повышения результативности профилактических противотрихинеллезных мероприятий, в первую очередь следует разрабатывать надежные и недорогие методы прижизненной диагностики трихинеллеза свиней, что позволило бы предупреждать затраты на содержание больных животных и решать другие проблемы научно-исследовательского характера, а именно выявлять неблагополучные хозяйства и подворья при эпизоотологических обследованиях, уточнять некоторые вопросы эпизоотологии и эпидемиологии трихинеллеза, пути и факторы передачи, экстенсивность инвазии.

Исходя из сказанного, становится понятным, что совершенствование существующих и изыскание новых, высокоэффективных и возможно универсальных методов посмертной и прижизненной диагностики трихинеллеза является первостепенной задачей и насущной необходимостью как в научном, так и в практическом плане.

Цели и задачи исследования. Основной целью наших исследований было: разработать иммуноферментную тест-систему дот-ИФА и сравнить диагностическую эффективность ИФР и дот-ИФА при трихинеллезе свиней.

Для выполнения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

1. Получить личинки трихинелл для экспериментального заражения свиней и приготовления соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов.

2. Изучить динамику выработки антител у экспериментально зараженных разными дозами Trichinella. spiralis свиней в ИФР.

3. Провести фракционирование соматического экстракта личинок трихинелл и выделить наиболее эффективную диагностическую фракцию.

4. Провести культивирование личинок Т. spiralis в искусственной питательной среде, получить экскреторно-секреторный антиген.

5. Провести электрофоретический анализ соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов личинок трихинелл в ДСН-ПААГ.

6. Отработать параметры постановки иммуноферментной тест-системы дот-ИФА.

7. Оценить диагностические качества фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов.

8. Провести производственные испытания ИФА и дот-ИФА при трихинеллезе свиней

Научная новизна. Впервые в России разработана экономичная по времени и перспективная для полевых испытаний иммуноферментная тест-система дот-ИФА (типа dot-ELISA) при трихинеллезе свиней. Изучена сравнительная динамика выработки антител у свиней, экспериментально зараженных разными дозами личинок трихинелл; проведено фракционирование экстракта Т. spiralis и определена наиболее активная и специфичная фракция; получен экскреторно-секреторный антиген личинок Т. spiralis культивированием в искусственной питательной среде. Проведена сравнительная оценка диагностической эффективности фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов при трихинеллезе свиней; определена молекулярная масса диагностически эффективных фракций в антигенах, полученных из личинок Т. spiralis.

Практическая ценность работы. По материалам диссертации разработаны «Временное наставление по применению набора для диагностики трихинеллеза свиней методом дот-ИФ А» и ТУ на «Набор для диагностики трихинеллеза свиней методом дот-ИФ А», а также «Временное наставление по применению набора для диагностики трихинеллеза свиней иммуноферментным методом (ИФА)» и ТУ на «Набор для диагностики трихинеллеза свиней иммуноферментным методом (ИФА)». Документы утверждены Департаментом ветеринарии Минсельхоза России 30.03.04 г. (№13-5-02/0978, №13-5-02/0977).

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на:

• Международном Ветеринарном Конгрессе, 3-9 сентября, 1995 год, Йокогама (Япония).

• 7-й Научной конференции по трихинеллезу человека и животных, 2-3 октября, 1996 год, Москва (Россия).

• 8-й Всероссийской конференции по трихинеллезу, 30-31 мая, 2000 год, Москва (Россия).

• Научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями», 2003 год, Москва (Россия).

• Объединенных сессиях Координационного совещания по ветеринарной паразитологии Центрального совета Общества гельминтологов РАН и секции «Инвазионные болезни животных» Отделения ветеринарной медицины РАСХН. (10.12.97; 9.12.99; 26.05.00; 01.06.00; 20-22.02.01; 2224.05.02; Москва).

• Заседаниях Ученого совета ВИГИС (1996-2003).

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Приготовление соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигена из личинок Т. spiralis.

2. Электрофоретический анализ соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов в ДСН-ПААГ.

3. Разработка диагностической тест-системы дот-ИФА при трихинеллезе свиней.

4. Изучение динамики выработки антител при экспериментальном трихинеллезе свиней.

5. Оценка диагностической эффективности фракционированного и экскреторно-секреторного антигена при трихинеллезе свиней.

6. Сравнительные испытания ИФР и дот-ИФА при трихинеллезе свиней в производственных условиях.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 11 статей.

Объем и структура диссертации. Материалы диссертации изложены на 130 страницах машинописного текста. Состоят из введения, обзора литературы, раздела собственных исследований, включающего: материалы и методы, результаты исследований и их обсуждение, выводы, практические предложения, список литературы и приложения. Список литературы включает 223 источника, в том числе 53 отечественных и 170 зарубежных авторов. Работа иллюстрирована 5 таблицами, 16 рисунками.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Паразитология», Написанова, Людмила Александровна

4. ВЫВОДЫ

1. Отработана методика получения экскреторно-секреторного антигена из инвазионных личинок Trichinella spiralis культивированием в искусственной питательной среде ДМЕМ для проведения иммунологических исследований.

2. Модифицирована методика получения соматического фракционированного антигена из инвазионных личинок Т. spiralis, обладающего лучшими диагностическими свойствами.

3. Электрофорезом в полиакриламидном геле в белковом спектре соматического фракционированного * антигена трихинелл выявлено 17 полос, пять из которых, расположенных в диапазоне белков молекулярной массы 31-68 кДа, являются мажорными; белковый спектр экскреторно-секреторного антигена включает 18 компонентов, из которых мажорным является один, проявляющийся в зоне белков молекулярной массы 44 кДа.

4. Разработана тест-система дот-ИФА и проведена отработка параметров и режима постановки ИФР при трихинеллезе свиней с экскреторно-секреторным антигеном.

5. Изучена динамика синтеза антител при экспериментальном трихинеллезе свиней, зараженных разными дозами личинок Т. spiralis, в ИФР и дот-ИФА. Показатели уровня антител у инвазированных животных свидетельствуют об их индивидуальной иммунной реактивности.

6. Установлена сопоставимость результатов в динамике антител по срокам появления регистрируемых уровней, по величине титров и периодам их максимальных значений в ИФР и дот-ИФА.

7. Установлена корреляция средних значений логарифмов титров антител в обеих группах свиней, экспериментально инвазированных Т. spiralis, с дозой заражения и средней по группе интенсивностью инвазии.

8. Определена диагностическая эффективность ИФР при трихинеллезе свиней в сравнительном аспекте с соматическим фракционированным и экскреторно-секреторным антигеном. Чувствительность реакции с обоими антигенами составила 100%, специфичность 96,75% и 97,56% соответственно.

9. Проведен сравнительный анализ диагностической эффективности иммуноферментной реакции и дот-ИФА при трихинеллезе свиней с экскреторно-Секреторным антигеном. Установлена сопоставимость результатов по чувствительности и специфичности сравниваемых тестов.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

По разработанной нами реакции дот-ИФА при трихинеллезе свиней подготовлены и утверждены Департаментом ветеринарии Минсельхоза России Технические условия и Временное наставление по ее применению (30.03.04, №13-5-02/0978).

Материалы исследованний по ИФР вошли в Технические условия и Временные наставления по использованию этой реакции в диагностике трихинеллена свиней, также утвержденные Департаментом ветеринарии Минсельхоза России (30.03.04, №13-5-02/0977).

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Написанова, Людмила Александровна, 2004 год

1. Бекеш О.-Я.Л., Рачковская И.В. Аллергическая реакция при экспериментальном трихинеллезе тучных клеток брызжеки крыс //Матер, науч. исслед. членов Всес. об-ва гельминтол,- М.- 1972.- Вып.24.- С. 15-18.

2. Белозеров С.Н. Эффективность реакции непрямой иммунофлуоресценции при экспериментальном трихинеллезе свиней //Бюл. ВИГИС.- М.- 1973.-Вып.Ю.- С. 11-15.

3. Белозеров С.Н. Применение непрямой реакции иммунофлуоресценции для прижизненной диагностики трихинеллеза свиней //Матер, докл. 2-й Всес. конф. по пробл. трихинеллеза человека и животных.- Вильнюс.-1976.-С. 175-178.

4. Белозеров С.Н. Иммунологическая диагностика гельминтозов //Автореф. дис. док. вет. наук,- М.-1990.- 44с.

5. Белозеров С.Н., Бессонов A.C. Применение реакции иммунофлуоресценции для прижизненной диагностики трихинеллеза свиней в производственных условиях //Бюл. ВИГИС.- М.- 1974.- Вып. 12.-С. 175-179.

6. Белозеров С.Н., Гуданавичус Т.И. Реакция энзимом меченных антител для диагностики трихинеллеза //Ветеринария.-1982.- №11.- С.41-44.

7. Белозеров С.Н., Жданова О.Б. Прижизненная диагностика трихинеллеза песцов с помощью иммуноферментной реакции //Ветеринария.- 2000.- №2.-С.34-36.

8. Белозеров С.Н., Шеховцов Н.В. Реакция иммунофлуоресценции для диагностики трихинеллеза //Ветеринария.-1978.- №2.- С.61-64.

9. Бережко В.К. Видоспецифические антигены гельминтов и иммуноферментная реакция в диагностике гельминтозов //Тр. ВИГИС.-1988.-Т.29.-С.8-22.

10. Бережко В.К., Белозеров С.Н., Шеховцов Н.В., НаписановаЛ.А., Успенский A.B. Диагностическая эффективность иммуноферментной реакции при трихинеллезе свиней //Матер. 5-й Всес. конф. по пробл. человека и животных, Новочеркасск,- 1988.- С.21-22.

11. Бессонов A.C. К вопросу об аллергической диагностике трихинеллеза свиней //Тр. ВИГИС.- 1962.- Т.9.- С. 196-209.

12. Бессонов A.C. Изучение реакции латекс-агглютинации для диагностики трихинеллеза свиней //Вопросы очаговости болезни.- Алма-Ата.- 1966.-С.23-25.

13. Бессонов A.C. Сравнительная диагностическая эффективность внутрикожной аллергической реакции, биопсии, трихинеллоскопии ножек диафрагмы при трихинеллезе свиней //Тематический сборник работ по гельминтол. с/х животных,- М.-1967.- №13.- С. 165-174.

14. Бессонов A.C. Эпизоотология и диагностика трихинеллеза свиней //Животноводство и ветеринария.- М:Колос.- 1968.- С.325-337.

15. Бессонов A.C. Эпизоотология (эпидемиология), диагностика и профилактика трихинеллеза (монографический анализ и собственные исследования) //Автореф. дис. док. вет. наук.- М.- 1970.

16. Бессонов A.C. Диагностика трихинеллеза //Вильнюс:Минтис.- 1975.-380с.

17. Бессонов A.C. Иммунитет и иммунодиагностика трихинеллеза //Трихинеллез.- М.:Колос.- 1976.- С. 162-237.

18. Бессонов A.C., Успенский A.B. Прижизненная диагностика трихинеллеза песцов в звероводческом хозяйстве //Бюл. ВИГИС.- 1971.-Вып.75.- С.5-9.

19. Бессонов A.C., Успенский A.B. Методика постановки и учета реакции кольцепреципитации в капилляре для прижизненной диагностики трихинеллеза песцов //Бюл. ВИГИС.- 1977.- Вып. 19.- С.9.

20. Гаркави Б.Л. Реакция кольцепреципитации при трихинеллезе свиней (РКП) //Ветеринария.-1971.- №7.- С.69-70.

21. Ефремов Е.Е. Реакция на ензим белязаните антителя в серодиагностиката на трихинеллозата //5 нац. конф. на младите спец. Варна.-1977.- С.132-133.

22. Ефремов Е.Е., Ермолин Г.А. Иммуноферментный метод обнаружения антител кантигенам декапсулированных личинок трихинелл //В кн.:Морфофункциональные закономерности неспецифических защитных реакций организма.- М.-1980.- С. 112-116.

23. Жданова О.Б. Диагностическая эффективность ИФА при трихинеллезе песцов //Матер, докл. 7-й Науч. конф. по трихинеллезу человека и жмвотных.- М.- 1996.- С.27-28.

24. Жданова О.Б. Иммунологическая диагностика трихинеллеза песцов //Дис. канд. вет. наук.- Киров,- 1997.- 154с.

25. Калюс В.А. Трихинеллез (трихиноз) человека //Автореф. дис. док. мед. наук.- М.-1947.- 41с.

26. Костецкий А.Ф., Васерин Ю.И. Сравнительная характеристика чувствительности и специфичности РНГА с культуральным и коммерческим трихинеллезными антигенами //Матер. 5-й Всес. конф. по проблеме трихинеллеза человека и животных.- М.- 1988.- С.90-91

27. Лейкина Е.С. Сероэпидемиологические исследования пригельминтозах //Мед. паразитол. и паразитар. болезни.-1989.- №2.- С.3-8.

28. Лейкина Е.С., Мартыненко В.Б., Зорихина В.И. и др. Формула коррекции показателей сероэпидемиологического обследования населения на эхинококкозы //Мед. паразитол. и паразитар. болезни.- 1984.- №1.- С. 1719.

29. Лейкина Е.С., Полякова О.И. Упрощенный метод иммунодиагностики гельминтов. I Реакция агглютинации при диагностике экспериментального аскаридоза и трихинеллеза животных //Мед. паразитол и паразитар. болезни.- 1956.- Вып.25(2).- С.131-136.

30. Лукашенко Н.П. Прижизненная диагностика трихинеллеза свиней методами аллергической (внутрикожной) и серологических реакций //Дисс. на соиск. уч. ст. канд. вет. наук.- М.- 1956.- 21с.

31. Лукашенко Н.П. Изучение прижизненной диагностики трихинеллеза свиней методами аллергических и серологических реакций //Ветеринария.-1957.-№2,- С.31-32.

32. Михайлов А.Т., Симирский В.Н. Методы иммунохимического анализа в биологии развития //М.:Наука.- 1991.- 288С.

33. Озерецковская H.H. Иммунологические и иммунопатологические реакции в клинике и патогенезе трихинеллеза //Тр. 1 Моск. мед. ин-та.-1967.- Т.48.- С. 179-194.

34. Пашук В.П. Экспериментальные данные к применению иммунологических реакций в диагностике трихинеллеза //Здравоохранение Белоруссии.- 1956.- Вып.З.- С.42-45.

35. Пашук В.П. Опыт серологической дтагностики трихинеллеза у свиней //Матер. ВОГ.- 1965.- Ч.4.- С.191-195.

36. Пашук В.П. Трихинелльные антигены и серодиагностика трихинеллеза //Вет. наука -пр-ву.- 1984.- Вып.22.- С.199-206.

37. Пашук В.П. Реакция непрямой иммунофлуоресценции и непрямой гемагглютинации в диагностике трихинеллеза человека и вопросы персистенции трихинелл //Матер. 4-й ; Всес. конф. по пробл. человека и животных.- Ереван.-1985.- С.107-110.

38. Полетаева О.Г., Красовская H.H., Глаголева В.А. Характеристика иммуноферментной тест-системы с антигенами трихинелл //Мед. паразитол. и паразитар. болезни.- 1986.- №3.- С.51-56.

39. Полетаева О.Г., Нгуен Суан Тхао, Красовская H.H. Оценка эффективности серологических реакций при трихинеллезе //Матер, докл. науч. конф. Гельминтозы — меры борьбы и профилактика.- М.- 1994.- С. 121123.

40. Полетаева О.Г., Угликова М., Хюбнер И., Красовская H.H. Эффективность двух тест-систем иммуноферментного анализа в диагностике трихинеллеза человека //Мед. паразитол. и паразитар. болезни.-1990.- №4.- С.43-45.

41. Сакалаускайте Ю.А. Иммунный ответ хозяина на паразитирование трихинелл и его изменение под воздействием мебендазола. Сообщение 1//Мед. паразитол. и паразитар. болезни.- 1978.- №5.- С.24-29.

42. Сапунов О.Я. Эффективность реакции кольцепреципитации (РКП) при диагностике трихинеллеза свиней //Бюл. ВИГИС.- 1986.- Вып.43.- С.83.

43. Степанов A.B. Динамика преципитинов в сыворотке крови и лейкоцитарная формула у лабораторных животных при экспериментальном трихинеллезе //Сб науч. тр. Моск. вет. акад.- 1975.- Т.79(2).- С. 13-14.

44. Субботин Н.Ф. Эффективность иммунологических реакций в диагностике трихинеллеза //Ветеринирия.- №2.- С.66-68.

45. Тараканов В.И. Методика приготовления искусственной питательной среды для культивирования трихинелл //Матер. 2-й Всес. конф. по пробл. трихинеллеза человека и животных, Вильнюс.-1976.- С.209.

46. Тараканов В.И. Методические приемы и принципы культивирования гельминтов в искусственных питательных средах //Тр. ВИГИС.- 1985.-№28.- С.109-116.

47. Твердохлебова Т.И., Васерин Ю.И., Нагорный С.А., Попов М.А. Разработка технологии получения диагностикума трихинеллезного антигенного эритроцитарного сухого для РИГА //Метер. докл. науч. конф,-М.- 2001.- С.268-270.

48. Успенский А.В. Изучение реакции латексагглютинации для прижизненной диагностики трихинеллеза животных //Бюл. ВИГИС.- М.-1971.- Вып.5.- С. 127-130.

49. Успенский А.В. Сравнительная диагностическая эффективность агглютинационных реакций при трихинеллезе //Автореф. дис. канд. вет. наук.- М.- 1972.- 27с.

50. Успенский А.В., Назарова Н.С., Нечиненный А.Д., Певнева В.Д. Реакция кольцепреципитации в капилляре (РКПК) для прижизненной диагностики трихинеллеза песцов //Бюл. ВИГИС.- М.- 1975.- Вып.16.- С.80-81.

51. Шеховцов Н.В., Бережко В,К., Написанова JI.A. Сравнительная эффективность РНИФ и ИФР в диагностике трихинеллеза свиней //Ветеринария.-1989.- №12.- С.39-41.

52. Allan J.C., Mencos F., Garsia-Noval J., Sarti E., Flisser A., Wang Y., Liu D., Craig P.S. Dipstick dot-ELISA for the detection of Taenia coproantigens in humans //Parasitology.-1993.- V.107.- P.79-85.

53. Arriaga C., Yepez-Mulia L., Morilla A., Ortega-Pierres G. Detection of circulating Trichinella spiralis muscle larva antigens in serum samples ofexperimentally and naturally infected swine //Vet. Parasitol.- 1995.- V.58(4).-P.319-326.

54. Armas-Serra C., Gimenez-Pardo C., Bernadina W.E., Rodriguez-Caabeiro F. Antibody response to a protease secreted by Trichinella spiralis muscle larvae //Parasitol. Res.-1995.- V.81(6).- P.540-542.

55. Avrameas S., Guilbert B. Dosade enzymo-immunoglogique de proteines a l'aide d'immunosorbants d'antigenes marques aux enzymes //S.R. Acad, Sci., Ser.D.- 1971.- V.273.- P.2705-2715.

56. Berntzen A.K. Efects of environment on the growth and development of Trichinella spiralis in vitro //Proceedings of the 3-d Inter. Conf. on Trichinellosis. New York.- 1974.- P.25-30.

57. Bloomfield N., Snook G.W. Use of slide-latex test for detecting trichinosis in hogs //Cornell Veterinarian.-1962.- V.52(4).- P.569-581.

58. Boctor F.N., Farid Z. El-Scherif N. Using whole bacteria, LPS, and soluble antigens to detect IgG, IgM, IgA in human brucellosis by dot-ELISA with nitrocellulose as a solid phase //Clin. Chemistry.-1987.- V.33.- P.1570-1571.

59. Choy W.E., Lin P.L., Ng M.H. A comparison of immunological methods for the detection of Trichinella spiralis antigen //J. Immunol. Meth.- 1988.-V.113(l).- P.17-24.

60. Choy W.E., Lin P.L. A rapid method for detecting Trichinella spiralis larvae in pork using a monoclonal AT-latex conjugate //Vet. Parasitol.- 1989.- V.32(4).-P.301-310.

61. Chroust K. Sensibility of indirect fluorescent method with living Trichinella spiralis larvae //Wiad. Parasitol.-1970.- V.16(l).- P.12-15.

62. Chroust K., Dubansky V. Fluorescent-antibody studies on muscle larvae Trichinella spiralis (Owen,1835), II the indirect fluorescent-antibody method //Acta Univ. Agric. Fac. Vet.- 1967.- V.36(2).- P.299-306.

63. Chroust K., Mittermayer T. Indirect fluorescent antibody test in diagnosis of trichinellosis in man //Acta Vet. Brno.-1983.- V.52(3-4).- P.177-181.

64. Clinard E. Evaluation of soluble-antigen fluorescent antibody test for antibodies to Trichinella spiralis in experimentally infected swine //Amer. J. Vet. Res.- 1975.- V. 36(5).- P.615-618.

65. Daryl O.M., Benjamin L. An enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of platelet antibodies using detergent-solubilized platelets immobilized on nitrocellulose discs //J. Immunol: Meth.-1987.- V.I05.- P.63-70.

66. Derer M.M., Miescher S., Johansson H. Application of the dot immunobinding assay to allergy diagnosis //J. Allergy Clin. Immunol.- 1984.-V.74.- P.85-92.

67. Diaconu S., Militaru D., Vior E., Sarca M. Kinetics Trichinella antibodies defected by ELISA, the ELITRICH kit, in experimentally infected pigs //Studies and Researches in Vet.Ved.- 1995.- V.3.- P.77-79.

68. Draelants E., Hofkens E., Harding E., Brandt J., Geerts S. Development of a dot-enzyme immunoassay for the detection of circulating antigen in cattle infected with Taenia saginata cysticerci //Res. Vet. Sci.- 1995.- V. 58(1).- P.99-100.

69. Durham R.J., Isenstein R.S., Despommier D.D., Robinson B.J., Mattingly J.A. The use of an ELISA for detection of antibody to Trichinella spiralis in porcine serum of blood //Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1987.- P276.

70. Durham R.J., Isenstein R.S., Despommier D.D., Mattingly J . A. Development of an ELISA for detection of antibody to Trichinella spiralis in porcine serum //Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.-1986.- P.277.

71. Dzebenski Т.Н., Bitkowska E., Plonka W. Detection of a circulating parasitic antigen in acute infections with Trichinella spiralis: diagnostic significance of finding //Zentralblatt fur Bakteriologie.-1994.- V.281(4).- P.519-525.

72. Engvall E., Perlman P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Quatitative assay of immunoglobulin G by means of enzymelabelled antigen and antibody-coated tubes //Biochim., Biophys. Acta.-1971.- V.271.- P.427-435.

73. Faubert O.M., Viens P., Magluilo P. Superiority of the ELISA technique over parasitological methods for detection of trichinellosis in slaughtered pigs in Canada //Can. I. Cong. Med.- 1985.- V.49(l).- P.75-78.

74. Franci C., Ingles J. et al. Further studies on the ELISA-spot technique. Its applications to particulate antigens and potential improvement in sensitivity //J. Immunol. Meth.-1986.- V.88.- P.225-232.

75. Frydas S.I., Alexakis A.E., van Knapen F. Prevalence of IgG antibodies to Trichinella spiralis in dogs in Macedonia, northern Greece /Net. Parasitol.-1995.- V.59(l).- P.81-85.

76. Furuya K., Nero S. et al. Adsorption of influenza viruses to nitrocellulose membrane filters by filtration and their quantitative densitomatric determination //J. Virol. Meth.-1984.- V.- P.191-199.

77. Gamble H.R., Anderson W.R., Graham C.E., Murrell K.D. Diagnosis of swine trichinosis by enzyme-linked immunosorbent (ELISA) using an excretory-secretory antigen //Vet. Parasitol.- 1983.- V.13(4).- P.349-361.

78. Gamble H.R., Graham C.E. Comparison of monoclonal antibody-based competedv and indirect enzyme-linked immunosorbent assays for the diagnosis of swine trichinosis //Vet. Immunol. Immunopathol.- 1984.- V.6(3-4).- P.379-389.

79. Gamble H.R., Murrell K.D. Conservatin of diagnostic antigen epitopes among biologically diverse isolates of Trichinella spiralis //J. Parasitol.- 1986. V.72(6).- P.921-925.

80. Gamble H.R., Rapic. D., Marinculic. A., Murrell K.D. Evaluation on excretory-secretory antigens for the serodiagnosis of swine trichinellosis //Vet. Parasitol.- 1988.- V.30(2).- P.131-137.

81. Gancarz Z. Metody immunologiczne w diagnostyce wlosnicy u ludzi i zvierzat //Med. dosw. i microbiol.-1968.- V.20(2).- P.213-218.

82. Giannini S.H. Induction and detection of leishmanial infections in Rattus norvegicus //Trans. Roy. Trop. Med. Hyg.- 1985.- V.79.- P.458-461.

83. Gore R.W., Sadun E.H. A soluble antigen fluorescent antibody (SAFA) test for the immunodiagnosis of trichinellosis in man and experimental animals //II Int. Conf. of Trichinellosis. Wroclaw.- 1969.- P.153-154.

84. Haralambidis S.T., Fridas S.J., Himonas C.A. Latex agglutination test for detecting Trichinella spiralis infections in pigs using muscle extract //Vet. Parasitol.- 1989.- V.34(3).- P.191-201.

85. Hardman E., Jarvis H.M. Nitrocellulose-based assays for the detection of glucolipids and other antigens: mechanism of binding to nitrocellulose //J. Immunol. Meth.-1985.- V.33.- P.113-123.

86. Hassan M.M., Seleem M.A., Eterwa S.E. Humoral and cellular immune responses in experimental trichinosis //J. Egypt. Soc. Parasitol.- 1994.- V.24(2).-P.363-370.

87. Hawkes R., Niday E., Gordan J.A. A dot immunobinding assay for monoclonal and other antibodies. //Analyt. Biochem.-1982.- V.119.- P.142-147.

88. Ibhu B., Lesia B., Sumana B. Detection of IgE binding to same airborne pollen and fungal allergens using dot immunoassay //J. E. Mitchell Sci. Soc.-1988.- V.103- P.77-79.

89. Isenstein R.S. Testing of swine for trichinellosis in the US //4-th Int. Conf. on Trichinellosis Abstr. of Papers.- 1976.- V.82

90. Isenstein R.S., Marks H.M., Webert D.W., Judkins J.C., Parker C.M., Despommier D.D. Development of an enzyme immunoassay for surveillance of trichinellosis in swine //6-th Int. Conf. on Trichinellosis. Trichinellosis Proceedings.- 1985.- P.240-245.

91. Isenstein R.S., Webert D.W., Leightg J.C., Zimmermann W.J., Singh P., Oliver D.G., Jang L. Development of an industrial immunoassay for trichinellosis //7-th Int. Conf. on Trichinellosis Prog, and Abstr.- 1988.- №.62.

92. Ivanoska D., Sofrinic L., Movsesijan M., Cuperlovic K., Murrell K.D., Gamble H.R. Detection of Trichinella spiralis antigens //Period. Biol.- 1986.-V.88(l).- P.243-245.

93. Ivo dos Santos J., Galvao-Castro B. et al. Dot enzyme immunoassay. A simple, cheap and stable test for antibody to human immunodeficiency virus (HIV) //J. Immunol. Meth.-1987.- V.99.- P.191-194.

94. Jacob H.P., Eckert J., Jemmi T., Gottstein B. Trichinellosis in slaughtered and wild animals in Switzerland using a digestion method and a serologic method (ES-ELISA). //Schweiz Arch. Tierheilkd.- 1994.- V.136(9).- P.298-308.

95. Jiang H.J., Yang L.X., Pang S.H., Sun T., Xie S.P., Meng J.M., Wen G.Z., Wang G.Z. Dot-ELISA in the diagnosis of neurocysticercosis // Chung Kuo Chi Sheng Chung Hsueh Yu Chi Sheng Chug Ping Tsa Chin.- 1990.- V.8(3).- P.207-209.

96. Jol-Van der Zijde C.M., Labadie J. et al. Dot immunobinding assay as an accurate and versatile technique for the quantification of human IgG subclasses //J. Immunol. Meth.- 1988.- V.108.- P.195-203.

97. Kagan I.G. Standardization and quality control of immunodiagnostic methods //Behring Inst. Mitt.-1982.- V.71.- P.10-22.

98. Kagan I.G. Serodiagnosis of trichinosis //Immunol. Parasit. Infect.- 1976.-P.143-151.

99. Kampelmacher E.H., Streefkerk E.W. Experiments with a latex-slide test for the serodiagnosis of trichinosis //Wiad. Parazytol.- 1965.- V.ll(4).- P.317-326.

100. Kimball S.R., Rannels S.L. et al. Quantitation of proteins by dot immunobinding assay. A comparison of visualization methods using eukariotic initiation factor 2 and a monospecific antibody. //J. Immunol. Meth.- 1988.-V.106.- P.217-223.

101. Knapen van F., Franchimont J.H., Ruitenberg E.J., Andre P., Baldelli B., Gibson T.E., Henriksen S.A. et al. Comparison of three methods for detection of prolonged experimental Trichinellosis in pigs //Vet. Parasitol.- 1984a.- V.16(l-2).- P.167-171.

102. Korinkova K., Kovafcik H., Pavlicova Z., Koldela B. Detection of Trichinella infections in experimentally inoculated goat kids by ELISA //Helminthologia.- 2003.- V.40(3).- P. 179.

103. Kozar Z., Kozar M. Indirect fluorescent antibody test in diagnosis on trichinellosis //Wiad. Parazytol.- 1970.- V.16(l).- P.7-13.

104. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 //Nature.-1970.- V.227.- P.680-685.

105. Layne E. Spectrophotometry; and turbidometric methods for measuring proteins //Methods Enzymol.-1957.- V.3.- P.447-454.

106. Lazarovits G., Zutra D., Bar-Joseph M. Enzyme-linked immunosorbent assay on nitrocellulose membranes (dot-ELISA) in the serodiagnosis of plant pathogenic bacteria //Canad. J. Microbiol.- 1987.- V.33.- P.98-103.

107. Leek M.L. van der, Dame J.B., Littel R.C. Minimizing ELISA background in the diagnosis of swine trichinellosis //J. Parasitol.-1982.- V.78(5).- P.822-829.

108. Lefroit-Joliy M., Neven T. Description and comparison of three in vitro methods for the detection of guined pig MHC antigen. //J. Immunol. Meth.-1986.- V.89.- P.141-148.

109. Leighty F.C. Regulatory action to control Trichinella spiralis //Food. Tehnol.-1983.- V.37(3).- P.95-97.

110. Lin T.M., Halbert S.P. Rapid dot enzyme immunoassay for the detection of antibodies to cytomegalovirus //J. Clin. Microbiol.- 1986.- V.24.- P.7-11.

111. Liu Y.S., Du W.P., Wu Z.X. Dot-immunogold-silver staining in the diagnosis of cysticercosis //Int. J. Parasitol.- 1996.- V.26(l).- P.127-129.

112. Londner M.V., Revel A. et al. Dot-ELISA a potential immunoassay of Plasmodium falciparum antibodies //Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg.- 1988.-V.82.- P.686-688.

113. Lupasco G., Hacig A., Solomon P. at al. Etude sur la dynamique des anticorps dans la trichinellose experimentale pas méthode de rimmunofluorescence //Arch. roum. pathol. exp. et microbiol.- 1968.- V.27(3).-P.611-618.

114. Magat W.J., Jeâka E.L. A sérodiagnostic antigen for trichinellosis //Acta parasitol polon.-1976.- V.24(ll-19).- P.191-198.

115. Mazzola V. New trichinosis test first step to fradication //Agricult. Res.-1984.- V.32(10).- P.10.

116. McVie A., Ersfeld K., Rogan M.T, Craig P.S. Expression and immunological characterisation of Echinococcus granulosus recombinant antigen

117. B for IgG4 subclass detection in human cystic echinococcosis //Acta Trop.-1997- V.67(l-2).- P.19-35.

118. Mearus G., Richmond S.J., Storey C.C. Sensitive immune dot blot test for diagnosis of Chlamidia trachomatis infection //J. Clin. Microbiol.- 1988.- V.26.-P.1810-1813.

119. Melcher L.R. An antigenic analysis of Trichinella spiralis //J. Infect. Dis.-1943.- V.73(l).- P.31-39.

120. Molinaro G.A., Eby W.C., Reimer C.A. A monoclonal antibody may show cross reactivities in Ouchterlony assay but not in other assays //J. Immunol. Meth.-1987.- V.96.- P.219-222.

121. Morlow S.J., Handa A.K. Immuno spot-blot using a membrane which covalently binds protein //J. Immunol. Meth.- 1987.- V.101.- P. 133-139.

122. Murrell K.D., Vannier W.E., Ahmed A. Antigenic heterogenity of excretions and secretions //Exp. Parasitol.- 1984.- V.36.- P.316-330.

123. Navarrete J., Reina D., Habela M., Serrano F. Standardization of the ELISA test for the serodiagnosis of Trichinella in pigs //Progr. and Abstr. of the 5-th Europ Multicolloq. of Parasitol.- 1988.- F.10-13.

124. Navarrete J., Serrano F., Habela M., Reina D. Cross-reaction between Trichinella antigens and other parasites of pigs in endemic area of Trichinellosis //Progr. and Abstr. of the 5-th Europ Multicolloq. of Parasitol.- 1988.- F.10-12.

125. Navarrete J., Serrano F., Reina D., Albarran-Gomez E., Habela M., Nieto C.G. Standardization of the enzyme-linked immunosorbent assay in the detection of swine trichinellosis //7-th Int. Conf. on Trichinellosis Progr. and Abstr.- 1988.-№68.

126. Norman L., Sadun E.H., Redding R.W., Cooperider O.E. Flocculation test in sera from hogs experimentally and naturally infected with Trichinella spiralis //J. Parasitol.-1955.- V.41(2).- P.162-166.

127. Ortega-Pierres M.G., Salinas-Tobon M.R., Morilla A., Gallego C., Arriaga C. Use of purified surface stichosomal antigens of Trichinella spiralis muscle larvae in the detection of naturally infected swine //Cull. Soc. fr Parasitol.-1990.-V.8(2).- P.54.

128. Pappas M.G. Recent applications of dot-ELISA immunoparasitology //Vet. Parasitology.-1988.- V.29.- P.105-129.

129. Pappas M.G., Ballou W.R., Gray M.R., Takafuji E.T., Miller R.N., Hockmeyer W.T. Rapid diagnosis of leptospirosis using the IgM specific dot-ELISA: comparison with the microscopic agglutination test //Am. J: Trop. Med. Hyg.- 1985.- V.34.- P.346-354.

130. Pappas M.G., Hajkowski R., Hockmeyer W.T. Dot enzyme-linked immunosorbent assay (dot-ELISA): a micro method for the rapid diagnosis of visceral leishmaniasis //J. Immunol. Meth.- 1983.- V.64.- P.205-214.

131. Pappas M.G., Lunde M.N., Hajkowski R:, McMahon J. Determination of IgM and IgG antibodies to toxoplasma using the IFA test, ELISA and dot-ELISA procedures //Vet. Parasitol.- 1986.- V.20.- P.31-42.

132. Pappas M.G., Schantz P.M., Cannon L.T.Sr., Wahlquist S.P. Dot-ELISA for the rapid serodiagnosis of human hydatid disease //Diag. Immunol.- 1986.- V.4.-P.271-276.

133. Parkhouse R.M.E., Ortega-Pierres G. Stage-specific antigens of Trichinella spiralis //Parasitology.- 1988.- V.88(4).- P.623-630.

134. Patel J.D., Joseph J.M., Falkler W.A. Direct detection of Chlamidia trachomatis in clinical speciamens by a dot immunobinding technique using monoclonal antibody //J. Immunol. Meth.- 1988.- V.108.- P.279-287.

135. Phillip M., Parkhouse R.M.E., Ogilvie B.M. Molecular basis for stage specificity of the primary antibody responses to the surface of T. spiralis //5-th Int. Conf. on Trichinellosis. Trichinellosis Proc. Readbooks.- 1980.- P.59-63.

136. Prichard D.I. Antigen production by encysted muscle larvae of Trichinella spiralis //J. Helminthol.-1985.- V.59(l).- P.71-77.

137. Prosad S., Thraves P. et al. A dot-blot method for screening polyclonal and monoclonal antisera to poly (ADP-ribose). //J.Immunol. Meth.- 1989.- V.116.-P.79-85.

138. Rapic D. Immunoenzimski test (ELISA) u dijagnostici eksperimentalne i prirodne trichineloze svinja //Acta Parasitol. Jugosl.-1980.- V.l 1(1-2).- P.49-57.

139. Rapic D., Dzakula N., Matic-Piantanida D. Evaluation of different antigens in seroepizootiological survey of trichinellosis by enzyme-linked immunosorbent assay //Vet. Parasitol.-1986.- V.21(4).- P.285-289.

140. Rapic D., Dzakula N., Zukovic M. A study of the cross reaction between trichinellosis and metastrongylosis in pigs trichinellosis by enzyme-linked immonosorbent assay (ELISA) //Vet. arhiv.-1981.- V.51(5).- P.223-227.

141. Rapic D., Stojilkovic D., Marinkulic A. Influence of cultivation time of Trichinella spiralis muscle larvae on antigenic properties of excretory/secretory products. //6-th Int. Congr. of Parasitol. Progr. and Abstr. Handbook.- 1986.-№536,1L.

142. Reina D., Munoz-Ojegda M.C., Serrano F., Molina J.M., Navarrete I. Experimental trichinellosis in goats //Vet.Parazitol.- 1996.- V.62(l-2).- P.125-132.

143. Reissmann E. Kann die Trichinenschau ohne sanitaren Nachteil bescharankt und verbilligt werden //Fleisch-u Milchhyg.- 1908.- V.19(l).- P.l-9.

144. Rickard LG. Development and application of dot-ELISA testforthe detection of serum antibodies to Fasciola hepatica antigens in lamas //Vet. Parasitol.-1995.-V. 58(l-2).-P. 9-15

145. Rivera Marrero C.A., Santiago N., Hillyer G.V. Evaluation of immunodiagnostic antigens in the excretory-secretory products of Fasciola hepatica //J.Parasitol.- 1998.- V.74(4).- P.646-652.

146. Rogan M.T., Craig P.S., Zeyhle E., Roming T., Lubano G.M., Deshan L. Evaluation of rapid dot-ELISA us a field test for the diagnosis of cystic hydatid disease. //Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg.-1991.- V.85 (6).- P.773-777.

147. Romia S.A., Youssef M.E., Handoussa A.E., Rizk H.M., Sallam S.M. Dot-ELISA as a diagnostic test in hydatid disease. //J. Egypt. Soc. Parasitol.- 1992.-V.22(3).- P.603-610.

148. Roop R.M., Preston-Moore D. et al. Rapid identification of smooth Brucella species with a monoclonal antibody. //J. Clin. Microbiol.- 1987.- V.25.- P.2090-2093.

149. Rozeik C., Schulz-Harder B. The competitive antigen spot test (CAST). A rapid and simple means of quantitatively screening antisera. //J. Immunol. Meth.-1986.- V.91.- P.91-97.

150. Ruitenberg E.J., Van Knapen F. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) as a diagnostic method for T.spiralis in pigs //Vet. Paraziol.- 1973.-V.3(4).- P.317-326.

151. Ruitenberg E.J., van Knapen F., Vermeulen C.J. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) in Trichinella spiralis infections in pigs //Proc. of the 4-th Int.Conf on Trichinellosis (1976).- Poznan.- 1978.- P.487-489.

152. Ruitenberg E.J., Streerenberg P.A., Brosi B.J.M., Buys J. Serodiagnosis of Trichinella spiralis infections in pigs by enzyme-linked immunosorbent assay //Bull. Wld HLTH 1974.- V.51(l).- P108-109.

153. Rutenberg E.J., Steerenberg P.A., Brosi B.J.M., Buys J. Reliability of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the serodiagnosis of Trichinella spiralis infections in conventionally raised pigs //J. Immunol Method.-1976.- V.10(l).- P.67-83.

154. Sakamoto T. Development and behavior of adult and larval Trichinella spiralis cultured in vitro //Mem.Fac.Agr. Kagoshima Univ.- 1979.- V.15(24).-P.107-114.

155. Scholtens R.G., Kagan I.G., Quist K.D., Norman L.G. An evaluation of test for the diagnosis of trichinosis in swine and associated quantitative epidemiologic observations //Amer. J. Epidemiol.- 1966.- V.83(3).- P.489-500.

156. Seawight G.L., Bartlett M.L, Sanders W.M. Automated enzyme immunoassay for detecting Trichinella spiralis antibody in swine //Abstr. 79-th Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1979.- P.314.

157. Smith H.J. Evalution of the ELISA for the serological diagnosis of trichinosis in Canadian swine //Can. J. Vet. Res.- 1987.- V.51(2).- P.194-197.

158. Smith H.J. Comparison of pepsin-digestion and enzyme-linked immunosorbent assay for the diagnosis of trichinosis in swine //CanJ.Vet. Res.-1988.- V.52(l).- P.63-66.

159. Smith H.J., Snowdon K.E. Detection of Trichinella spiralis nativa antibodies in porcine sera by ELISA using T.spiralis spiralis excretory-secretory antigen ? //Can. J. Vet. Res.- 1987.- V.51(3).- P.413-414.

160. Smith H.J., Snowdon K.E. Experimental Trichinella infections in ponies //Can. J. Vet. Res.- 1987.- V.51(3).- P.415-416.

161. Smith H.J., Snowdan K.E., Bishop L.J. Prevalence of trichinosis in Canadian swine determined serologically by enzyme-linked immunosorbent assay //Can. J. Vet. Res.-1988.- V.52(3).- P.392-393.

162. Stay M., Wahl R., Beierwaltes W.H. Dot-based ELISA and RIA: two rapid assay that screen hybridoma supernatants against whole live cells //J.Immunol. Meth.-1984.- V.73.- P.75-81.

163. Steinmetz H.T., Pfreundschuh M.G. Production of monoclonal antibodies againts glucose oxidase,. alcaline phosphatase and peroxidase. //J. Immunol. Meth.-1987.- V.101.- P.251-259.

164. Strobel H. Die Serodiagnostik der Trichinosis //Munch, med. Wochennschr.-1911.- V.58.- P.672.

165. Su X.Z., Prestwood A.K. A dot-ELISA mimicry western blot test for the detection of swine trichinellosis //J. Parasitol.-1991.- V.77 (1).- P.76-82.

166. Sulzer A.J., Chisholm E.S. Comparison of the IFAA and other test for Trichinella spiralis antibodies //Publ. Health. Rep.-1966.- V.81(8).- P.729-734.

167. Taylor S.M., Kilpatrick D., Kenny J. The influense of age and husbandry of pigs on evaluatin of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for Trichinella spiralis infection //Zbe. Veterinarmed.-1978.- V.25(4).- P.482-489.

168. Tellez-Giron E., Ramas M.C., Alvarez P., Dufour L.,Montante M. Detection and characterization of antigens from Taenia solium cysticercus in cerebrospinal fluid//Acta Leiden.-1989.- V.57(2).- P.101-105.

169. Thomas E.H., Bozicevich J., Hoyem H.M. Flocculation reactions in rabbits experimentally infected with Trihinella spiralis //J. Infect. Diseuses.- 1953.-V.92(l).- P.89-96.

170. Tondon A., Murthy P.K. et al. Dot-ELISA for diagnosis of limphatic filariasis //Indian J. Med.- 1988.- V.87.- P.429-433.

171. Tong W.D., Guo S.J., Sun L.G. Studies on the rapid diagnosis of the cysticercosis, trichinosis and toxoplasmosis using trace blod dot-ELISA //Int. Conf. On Parasitic Zoonoses, Sept. 20-24.- 1994.- P.138.

172. Towbin H., Gordon L. Immunoblotting and dot immunobinding-current status and outlook //J. Immunol. Meth.- 984.-V.72.- P.313-340.

173. Uhlikova M., Hubner J. Comparison of the ELISA reaction with four other methods for the detection of Trichinella spiralis infection //6-ht Int. Helm. Symp.-High Tatras.- Prog. And Abstr.-1991.- P.133.

174. Vertosich F.T., Kelly R.H. Antibodies to native and denatured DNA. Quantitation using on immuno slot-blot technique // J.Immunol. Meth.- 1987.-V.102.- P.15-21.

175. Vior E., Popesku., Vior C., Fromunda V., Oproiu V., Tetu M. Aplicarea testilui imunoenzimatic (ELISA) in trichineloza experimentala //Rev. crest, anim.- 1980.- V.30(10).- P18-22.

176. Vishawapoka U., Hemachudha T. et al. Detection of rabies antigen in canine parotid glands by dot-blot technique //Lancet.-1988.- V.I.- P.881.

177. Vullo V., Contini C. et al. Evalyation of dot immunobinding assay (DIB) for the detection of antibodies against Brucella melitensis //J. Immunol. Immunopharmacol.- 1987.- V.7.- P.147-150.

178. Whelen A.C., George J.E., Osburn R.L., Wikel S.K. Dot-ELISA for examine serologic responses of Bos taurus and Bos indicus to ixodid tick infestation //Fed. Proc.- 1984.- V.43.- P.1628.

179. Wilozynski M., MikulskiZ., Gancarz Z. Immunobiologic methods in the diagnosis of trichinellosis in pigs and laboratory animals //2-d Int. Conf. on Trichinellosis. Abstr of Papers.- 1969.- P.169-170.

180. Yan X.X., Xu X.F., Ma Y.X. Changes in T lymphocytes and their subpopulations and IgG in peripheral blood from mice infected with Trichinella spiralis //Chung Kuo Chi Sheng Chung Hsueh Yu Chi Sheng Chug Ping Tsa Chin.- 1992.- V.10(l).- P.62-65.

181. Yang S.M. A preliminary study on the use of enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for detection of Trichinella spiralis infections in dogs //Vet. Parasitol.- 1989.- V.31(2).- P.165-171.

182. Yao C., Prestwood A.K., McGraw R.A. Trichinella spiralis (Tl) and Trichinella (T5): a comparison using animal infectivity and molecular biology techniques //J. Parasitol.-1997.- V.83(l).- P.88-95.

183. Yepez-Muila L., Ortega-Pierres M.G. Current aspects of trichinosis diagnosis. //Rev. Latinoam. Microbiol.-1994.- V.36(2).- P.127-138.

184. Zalis M., Jaffe C.L. Routine dot-blot assay of multiple serum samples using a simple apparatus //J. Immunol. Meth.- 1987.- V.101.- P.261-264.

185. Zapart W., Slusarski W. Attempts to employ hom-made latex particles in the serodiagnosis of trichinellosis in experimental animals //Acta parazitol polon.-1972.- V.10.- P.29.

186. Zhang Y.W., Lee D.L., Smith J.E. Biochemical haracterisation of Trichinellaspiralis and Trichinella pseudospiralis stihocyti antigens //Appl. Parasitol.- 1993.- V.34(4).- P.291-294.

187. Zhu X.Q., Dou L.Q., Shi X.H., Shi L., Niu B.H. Analisis of excretory-secretory and soluble antigens of Trichinella spiralis muscle larvae by electrophoresis //Acta Vet. at Zootech. Sin.- 1995.- V.26(2).- P.168-173.

188. Zimmerman G.L., Nelson M.J., Clark C.R.B. Diagnosis of ovine fascioliasis by a dot enzyme-linked immunosorbent assay: a rapid microdiagnostic technique //Am. J. Vet.Res.-1985.- V.46.- P.1513-1515.