Биологические подходы к очистке почв и водоемов, загрязненных продуктами деструкции иприта и люизита тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.07, кандидат биологических наук Любунь, Елена Валентиновна

• Любунь, Елена Валентиновна
• кандидат биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Любунь, Елена Валентиновна

ВВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1. Трансформация люизита (2-хлорвинилдихлорарсина) и продуктов его деструкции в объектах окружающей среды.

1.1. Характеристика объектов, подверженных воздействию ксенобиотиков.

1.2. Основные характеристики люизита и продуктов его деструкции. 13 'ф 1.3. Механизмы токсичного действия мышьяксодержащих соединений

1.4. Фитотоксичность и трансформация соединений мышьяка в растениях

1.5. Влияние соединений мышьяка на почвенные микроорганизмы.

2. Трансформация иприта (2,2'-дихлордиэтилсульфида) и продуктов его деструкции в объектах окружающей среды.

2.1. Трансформация 2,2-дихлордиэтилсульфида в воде и почве.

2.2. Трансформация 2,2'-дихлордиэтилсульфида под действием микроорганизмов.

2.3. Трансформация 2,2-дихлордиэтилсульфида в растениях.

3. Биоремедиация как способ очистки почв и водоемов от токсичных загрязнителей.

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

4. Материалы и методы исследования.

4.1. Объекты исследования.

4.2. Выделение микроорганизмов деструкторов реакционных масс 43 иприта

4.3. Культивирование микроорганизмов.

4.4. Культивирование культуры Lemnagibba.

4.5. Определение устойчивости изучаемых микроорганизмов к продуктам гидролиза люизита

4.6. Оценка фитотоксичности соединений мышьяка.

4.7. Подготовка и проведение экспериментов по биоремедиации почв, загрязненных продуктами деструкции люизита и иприта.

4.8. Анализ состава органических компонентов реакционных масс 50 иприта

4.9. Определение индольных производных.

4.10. Определение содержания мышьяка и фосфора в растительных, 51 почвенных и водных образцах. Пробоподготовка.

4.11. Статистический анализ. ф 5. Полученные результаты и их обсуждение.

5.1. Оценка воздействия продуктов трансформации 2хлорвинилдихлорарсина на растения и микроорганизмы.

5.1.1. Особенности влияния мышьяка на рост бактерий и синтез индо-лил-3 -уксусной кислоты.

5.1.2. Оценка токсичности 2-хлорвиниларсиноксида для растений.

5.1.3. Исследование фитотоксичности арсенита натрия. Лабораторные и микрополевые исследования.

5.1.4. Токсичность различных форм мышьяка для Ьетпа %1ЪЪа и влияф ние фосфатов на биодоступность солей мышьяка.

5.2. Трансформация продуктов детоксикации 2,2'дихлордиэтилсульфида микроорганизмами и аккумуляция их растениями.

5.2.1. Изучение токсичности продуктов гидролиза иприта для микроорганизмов

5.2.2. Изучение возможности деструкции продуктов гидролиза иприта селекционированными культурами бактерий.

5.2.3. Фиторемедиация почв загрязненных реакционными массами ип

С(Ц рита.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Биологические подходы к очистке почв и водоемов, загрязненных продуктами деструкции иприта и люизита»

Актуальность работы

В настоящее время в связи с катастрофическими масштабами антропогенного загрязнения окружающей среды чрезвычайно большое значение для прогнозирования развития возможных критических экологических ситуаций приобретает информация о действии экотоксикантов и продуктов их трансформации в микробно-растительных сообществах среды обитания.

Процессы распространения и воздействия загрязняющих веществ являются сложными, они изучены ещё недостаточно, чтобы надежно прогнозировать опасность в тех или иных случаях. В соответствии с Конвенцией «О запрещении разработки, производства, накопления и применения химического оружия и его уничтожении» и Федеральной целевой программой «Уничтожение запасов химического оружия в РФ» наша страна проводит переработку отравляющих веществ кожно-нарывного действия: иприта, люизита, ипритно-люизитных смесей, на первом этапе которой производится их химическая де-токсикация, на втором - уничтожение полученных реакционных масс.

Одной из важнейших экологических проблем является очистка и восстановление территорий, которые могут быть загрязнены отравляющими веществами или продуктами их детоксикации в местах хранения, транспортировки и уничтожения в результате возможных утечек, аварийных выбросов и т.д. В настоящее время наряду с физическими и физико-химическими способами детоксикации отходов, разрабатываются подходы для их биоремедиации с использованием микроорганизмов и растительно-микробных ассоциаций. Экотоксикан-ты могут вступать во взаимодействие с природными веществами, поглощаться и преобразовываться ими, влиять на функционирование живых организмов.

Токсическое действие различных соединений может не только подавлять жизнеспособность микроорганизмов, но и вызывать их метаболическую адаптацию к новым условиям существования. Концентрация продуктов разложения отравляющих веществ может оказать решающее значение на их трансформа

ЦС\ 6 цшо той или иной ферментной системой клетки и^биоаккумуляцию. Такие cвe-V дения в научной литературе весьма ограничены. Известно, что многие соединения, образующиеся при гидролизе и окислении иприта (2,2-дихлордиэтилсульфида) токсичны, а некоторые сульфониевые соединения по токсичности превосходят исходное отравляющее (Александров, 1990; Федоров, 1997).

Влияние токсических концентраций продуктов деструкции иприта и люизита на почвенные микроорганизмы, растения и растительно-микробные ассоциации практически не исследованы, несмотря на то, что такие исследования необходимы для разработки критериев оценки вредного действия экотоксикан-тов и создания методов и технологий очистки окружающей среды.

Целью работы являлось исследование почвенных микроорганизмов и рас1 тений при воздействии продуктов деструкции иприта и люизита и разработка методических подходов для биоремедиации загрязненных почв и водоемов.

В рамках поставленной цели были определены следующие задачи:

1. Исследование диапазона токсичности мышьяк- и серусодержащих продуктов трансформации иприта и люизита для некоторых почвенных микроорганизмов и растений.

2. Оценка влияния мышьяксодержащих соединений на триптофанзависимый синтез индолил-3-уксусной кислоты штаммом АтяртИит Ъга$Иете Бр 245.

3. Изучение возможности биодеструкции продуктов первой стадии нейтрализации иприта микроорганизмами.

4. Подбор условий для ремедиации почв, загрязненных продуктами трансформации иприта и люизита с использованием растительно-микробных сообществ.

Научная новизна

• Показана возможность ремедиации почв, загрязненных продуктами деструкции кожно-нарывных отравляющих веществ - иприта и люизита, специально подобранными растениями и микроорганизмами.

• Установлен диапазон токсичности мышьякорганических продуктов нейтрализации люизита и реакционных масс иприта для некоторых растений и почвенных микроорганизмов.

• Впервые обнаружена способность микроорганизмов рода Pseudomonas подвергать биодеструкции 1,4-пергидротиазины^^еакционных массах иприта, которые являются их основными компонентами, образующимися в процессе детоксикации иприта. Показано, что интродукция этих микроорганизмов в почву в значительной степени увеличивает эффективность биоремедиации.

• По результатам лабораторных и микрополевых экспериментов показана возможность и даны рекомендации по использованию штаммов Р. aureofa-ciens BS 1393 и А. brasilense Sp 245 в процессе фиторемедиации почв, загрязненных продуктами трансформации люизита.

Практическая значимость

Результаты проведенных исследований являются основой для разработки нового способа очистки почв, загрязнённых продуктами природного и техногенного разложения кожно-нарывных отравляющих веществ - фиторемедиации (Пат. РФ №2185901).

Использование подобранных видов растений с инокуляцией их селекцио-нироваными штаммами микроорганизмов является основой для разработки метода биоремедиации почв, загрязненных продуктами трансформации кожно-нарывных отравляющих веществ - иприта и люизита.

Основные положения, выносимые на защиту

• Растения подсолнечника (сорт Юбилейный 60) и сорго (сорт Волжский 4) устойчивы к высоким концентрациям арсенита натрия (10 ПДК) и способны аккумулировать этот токсикант из загрязненной почвы. Степень извлечении мышьяка значительно возрастает при инокуляции их клетками бактериального ризосферного штамма Р. aureofaciens BS 1393.

• Продукты гидролиза люизита (2-хлорвиниларсиноксид и 2-хлорвиниларсоновая кислота) ингибируют триптофанзависимый синтез ИУК штамма Azospirillum brasilense Sp 245: 2-хлорвиниларсиноксид на 80 % при У концентрации 10"6 г/л, 2-хлорвиниларсоновая кислота на 75 % при концентрациях 10" г/л.

• Идентифицированные производные 1,4-пергидротиазина, являющиеся продуктами детоксикации иприта, подвергаются трансформации клетками селекционированного штамма бактерий Pseudomonas putida ШК1 при росте в среде с реакционными массами иприта.

• Степень очистки почв от серусодержащих продуктов деструкции иприта рас-♦ тенями сорго (сорт Волжский 4) значительно увеличивается при инокуляции семян клетками штамма Pseudomonas putida ШК1.

• Результаты экспериментов по извлечению продуктов деструкции люизита и иприта из загрязненных ими почв при совместном использовании растений и микроорганизмов могут быть использованы для разработки методов биореме диации таких почв.

Работа выполнена в Институте биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН (Саратов) в лаборатории структурных методов исследования в рамках научно-исследовательской работы «Изучение воздействия антро-^ погенных загрязнителей на окружающую среду» (№ гос. регистрации

01200119220), на базе Саратовского военного института радиационной химической и биологической защиты, в Институте биохимии и физиологии микроорганизмов РАН (Пущино) по проекту «Биотехнология защиты окружающей среды от антропогенных загрязнений» Федеральной целевой научно-технической программы «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития науки и техники гражданского назначения», в Институте общей экологии и защиты окружающей среды (Технический университет Дрездена, Германия). Апробация работы ш т Основные результаты работы докладывались на Международном семинаре-презентации инновационных научно-технических проектов «Биотехнология-2000» (Пущино, 2000), на 1-й Европейской конференции по биоремедиации (Ханья, Греция, 2001), на митинге по фиторемедиации ISEB (Лейпциг, Германия, 2001), на 12-м Международном симпозиуме по биодеградации и биоразрушению (Прага, Чехия, 2002), на Международном семинаре по химическому анализу и оценке риска загрязнений в осадках и донных отложениях (Барселона, Испания, 2002), на 1-й региональной конференции молодых ученых «Стратегия взаимодействия микроорганизмов с окружающей средой» (Саратов, 2002), на семинаре-презентации инновационных научно-технических проектов "Биотехнология-2003" (Пущино, 2003), на Международном симпозиуме «Биохимические взаимодействия микроорганизмов и растений с техногенными загрязнителями окружающей среды» (Саратов, 2003), на конференции «Постгеномная эра в биологии и проблемы биотехнологии» (Казань, 2004).

Публикации

По теме диссертации получен патент РФ № 2185901, опубликовано 18 работ, из них 5 статей в российских и зарубежных реферируемых научных журналах.

Структура диссертации

Работа состоит из обзора литературы, описания использованных материалов и методов, результатов собственных исследований, и завершается заключением, выводами и библиографическим указателем, содержащим 176 источников. Общий объем диссертации составляет 123 страницы. Текст иллюстрирован 16 таблицами и 28 рисунками.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Любунь, Елена Валентиновна

выводы

1. Обоснована возможность использования биологических объектов - специально подобранных и селекционированных растений и микроорганизмов для очистки почв и водоемов от продуктов деструкции отравляющих веществ.

2. Впервые определен диапазон фитотоксичности и обнаружен эффект парадоксальной токсичности 2-хлорвиниларсиноксида. Области активации и угнетения роста колеоптиля пшеницы чередуются, концентрации 10"6-10"10 с мг/мл более токсичны, чем 10-10° г/л.

3. Показано, что культура Lemna gibba накапливает мышьяк (V) и (III) до 1350 и 1220 мг/кг сухой биомассы растений соответственно, причем при высоких концентрациях (1000 мкг/л) арсенат более токсичен, чем арсенит. При реме-диации водоемов общая концентрация мышьяка не должна превышать 250 мкг/л.

4. Для культуры Azospirillum brasilense Sp 245 отмечено увеличение токсичности продукта 2-хлорвиниларсиноксида при уменьшении концентрации токсиканта, что обусловливает наличие двух пиков минимальной ингибирую

10 7 щей концентрации: при 3,6x10" и 3,6x10" г/л.

5. Показано, что триптофанзависимый синтез индолил-3-уксусной кислоты бактериями Azospirillum brasilense Sp 245 ингибируется 2-хлорвиниларсоновой кислотой при концентрации выше 0,09x10"2 г/л и 2п хлорвиниларсиноксидом при концентрации выше 3,6x10" г/л, что необходимо учитывать при применении данной культуры в процессе фиторемедиа-ции почв, загрязненных этими продуктами.

6. Выделен штамм Pseudomonas putida ШК1, растущий в средах с реакционными массами иприта и устойчивый к лизису клеток в этих условиях. Этот штамм может использоваться для ремедиации загрязненных объектов.

7. Проведен анализ реакционной массы иприта и идентификация 1,4-пергидротиазинов. Установлено, что при культивировании клеток штамма Pseudomonas putida ШК1 в средах, содержащих реакционные массы иприта,

1,4-пергидротиазины не используются в качестве источников углерода и энергии, но трансформируются растущей культурой.

8. Разработаны методические подходы с использованием микроорганизмов и растений для очистке почв, загрязненных продуктами деструкции иприта и люизита. Штамм Pseudomonas putida ШК1 в сочетании с растениями сорго может быть использован для биоремедиации почв, загрязненных продуктами разложения иприта, степень очистки почвы от серусодержащих соединений, достигает 55-60 %. Для почв, содержащих соединения мышьяка, наиболее эффективно использование растений подсолнечника, инокулированных штаммом Pseudomonas aureofaciens BS 1393 (степень извлечения мышьяка 6,2).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Осуществление всестороннего контроля за состоянием окружающей среды и проведение при необходимости мероприятий по очистке её объектов обеспечивает одну из важных сторон «качества жизни» для населения. В окружающей среде происходит детоксикация многих органических загрязнений, она сорбирует тяжелые металлы и радионуклиды и заслуженно называется «экологическим щитом биосферы».

Попадание в почвы иприта и люизита происходило в период окончания Второй мировой войны, продолжалось в последующее время - при хранении и уничтожении запасов OB, оно возможно и сейчас при аварийных ситуациях в местах их хранения и переработки или при транспортировке. Кроме того, накопление в почвах соединений мышьяка обусловлено широким применением в прошлом мышьяксодержащих пестицидов, выбросами различных предприятий, наличием огромного количества отвалов горнорудной промышленности и т.д. Поэтому необходимость адекватных методов оценки токсичности и способов обеззараживания почв, загрязненных упомянутыми веществами и продуктами их трансформации, совершенно очевидна.

Для решения поставленной задачи необходимо было изучить диапазон токсичности и ответные реакции растений и почвенных микроорганизмов на воздействие продуктов деструкции иприта и люизита, исследовать возможность и пути биодеградации РМ иприта, а также определить роль биологических компонентов окружающей среды, а именно микроорганизмов и растений, в очистке от этих соединений.

Изучалась возможность биодеструкции пергидротиазинов в составе РМ иприта выделенными и селекционированными в процессе выполнения работы бактериями Pseudomonas putida ШК1. Проведена идентификация и анализ пергидротиазинов РМ иприта, которые являются ее основными компонентами. Показано, что при росте в средах с РМ иприта культура использует компоненты дегазирующей смеси моноэтаноламин и этиленгликоль в качестве источников углерода, одновременно осуществляя трансформацию пергидротиазинов. При наличии достаточного количества биоутилизируемых источников углерода для роста степень деструкции может достигать 96 %. Продукты трансформации не токсичны для клеток изучаемого штамма. Данные анализа газовой фазы при культивировании штамма P. putida ШК1 в средах с РМ иприта показывают присутствие этилена и пропилена. Этилен имеет гормональную природу и стимулирует рост и развитие боковых корней растений (Гудвин, 1986). Одним из возможных путей деструкции пергидротиазинов является образование суль-фоксида тиоморфолина и после раскрытия цикла тиодигликолевой кислоты. Аналогичным образом идет биодеструкция тиоморфолинов культурой Mycobacterium aurum MOl (Delort and Combourieu, 2001).

Для изучения возможности фиторемедиационного способа очистки почв, загрязненных РМ иприта, были выбраны растения подсолнечника и сорго, устойчивые к этим токсикантам, определен оптимальный диапазон концентраций для их роста. Редуцирование роста растений на 50 % происходит при концентрации РМ в почве 10 г/кг. Инокуляция растений клетками штамма P. putida ШК1 повышает устойчивость растений к загрязнению и позволяет уменьшить содержание в почве органических соединений серы, основных компонентов РМ иприта, на 58 % по сравнению с уменьшением на 8 % в контроле с неинокули-рованными растениями. Полученные экспериментальные данные являются основой при разработке способа биоремедиации почв, загрязненных продуктами гидролиза иприта.

Для выяснения токсичности продуктов гидролиза люизита и возможности ремедиации объектов окружающей среды, был произведен отбор штаммов микроорганизмов и растений, устойчивых к разным формам мышьяка. В работе использовались как природные, так и содержащие плазмиду устойчивости к мышьяку штаммы ризосферных бактерий, которые стимулируют рост растений, являются продуцентами фитогормонов в количествах, обладающих в ризосфере физиологической активностью, и некоторые их них имеют высокую антагонистическую активность по отношению к широкому кругу фитопатогенных грибов и бактерий (Воронин, 1998). Анализ полученных данных позволил количественно оценить разницу в устойчивости природных бактериальных культур к использовавшимся соединениям мышьяка по величинам МИК и МТК. Для всех изученных штаммов арсенит значительно токсичнее арсената, самая высокая устойчивость отмечена для штаммов Р.аигео/аает В81393 и А.ЬгаяИете Бр 245.

Некоторые продукты вторичного метаболизма микроорганизмов оказывают воздействие на растение и существенно влияют на обмен веществ во всем растительном организме. Это может играть одну из важных ролей в процессах очистки почв методом фиторемедиации. Присутствие 2-хлорвиниларсиноксида в культуральной среде приводит к резкому понижению синтеза ИУК культурой АгоэртЦит ЬгазИете Бр 245. Наиболее сильно ингибируют синтез ИУК концентрации выше, чем 10"6 г/л - на 80 % по отношению к контрольному образцу, не содержащему 2-хлорвиниларсиноксид. При добавлении в культуральную среду 2-хлорвиниларсоновой кислоты ингибирование синтеза ИУК происходит А при концентрациях выше 0,09x10 г/л.

Установлен ярко выраженный токсический эффект 2-хлорвиниларсиноксида для культуры АюяртИит ЬгаБИете 8р 245 и проростков пшеницы, причем отмечено увеличение токсичности при уменьшении концентрации действующего соединения. Это может быть связано с тем, что, ввиду высокой токсичности 2-хлорвиниларсиноксида, с некоторым отставанием включаются защитные, компенсаторные, детоксицирующие системы, снижающие действующую дозу до определенного уровня, после чего доза опять начинает закономерно возрастать (Крипггопенко, 2001). Аналогичный эффект обнаружен при действии арсенита и арсената натрия на культуру Ьетпа фЬЪа Ь.

С целью изучения токсичности различных форм мышьяка (трёх- и пятивалентного) для водных растений в качестве объекта исследования использовали ряску Ь. gibba Ь. В отличие от описанного ранее (Кешпапп et а1., 1998) обнаружено, что при некоторых концентрациях арсенат более токсичен для Ь. gibba Ь., чем арсенит. Так, при концентрации 1000 мкг/л арсенат летален, в то время как арсенит ингибирует рост растений на 95 %. При изучении биодоступности ар-сенита и арсената обнаружено, что она значительно выше для Р-дефицитных (0,98 ±0.08 и 1,09±0.19 г/кг для 0,0136 мг/л Р04"3, соответственно), чем для культур с достаточным содержанием фосфора в среде (243 и 343 мг/кг для 40 л мг/л PCV , соответственно). Изменение токсичности возможно при взаимопревращении химических форм мышьяка, например, в результате окисления As(III) до^ОО в богатой кислородом окружающей среде (Meharg, Hartley-Whitaker, 2002).

Данные лабораторных экспериментов и микрополевых испытаний показали, что растения подсолнечника, обработанные штаммом P.aureofaciens BS1393 и ИУК в концентрации 10"5 г/л наиболее эффективны в процессе очистки почв, загрязненных продуктами щелочного гидролиза люизита (степень извлечения мышьяка 6,2).

Полученные результаты совершенно очевидно показывают, что высокая эффективность ремедиации объектов окружающей среды, загрязненных продуктами деструкции кожно-нарывных ОВ, может быть достигнута путем комплексного применения растений, устойчивых к высоким концентрациям токсикантов в почве и способных к их аккумуляции, с одной стороны, и интродукцией микроорганизмов-деструкторов органических компонентов РМ иприта или устойчивых к мышьяку ризосферных бактерий, стимулирующих рост растений, с другой.

Применение биологических методов для санации загрязненных почв выгодно отличается от других отсутствием вторичных отходов, высокой степенью минерализации поллютантов в объектах окружающей среды, возможностью полной ассимиляции продуктов биодеградации органических соединений и, следовательно, чистотой процесса. Учитывая то обстоятельство, что стоимость очистки почв биологическими методами в сотни раз меньше, чем при использовании других, биотехнологические методы в настоящее время являются высоко перспективными.

Наши исследования закладывают основу для разработки новых критериев оценки и прогноза ответных реакций биологических систем на различные загрязнения окружающей среды. Экспериментальные данные позволили предложить и запатентовать способ очистки почв, загрязненных продуктами гидролиза иприта и люизита, с помощью растений, обработанных раствором ИУК.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Любунь, Елена Валентиновна, 2004 год

1. Александров В.Н., Емельянов В.И. Отравляющие вещества. М.: Воениздат, 1990.-271 с.

2. Альберт Э. Избирательная токсичность. М.: Мир, 1971.-431 с.

3. Берне Ф., Кордонье Ж. Водоочистка. Очистка сточных вод нефтепереработки. Подготовка водных систем охлаждения. М.: Химия, 1997.

4. Беспамятнов Г.П., Кротов Ю.А. Предельно-допустимые концентрации химических веществ в окружающей среде. Л.: Химия, 1985. - 528 с.

5. Биотехнология. Принципы и применение / Под ред. И. Хагинса, Д. Беста, Дж. Джонса. М.: Мир, 1988. - 479 с.

6. Ф 8. Воронин A.M., Сахаровский В.Г., Старовойтов И.И. и др. Научные основыкомплексной экологически безопасной технологии уничтожения иприта // Прикл. биохим. и микробиол. 1996. - Т. 32, № 1. - С. 61-68.

7. Воронин A.M., Сахаровский В.Г., Кашпаров К.И. и др. Комплексный подход к утилизации люизита // Прикл. биохим. и микробиол. -1996. Т. 32, № 2. -С. 211-218.

8. Вредные химические вещества. Азотсодержащие органические соединения: Справ, изд. / Под ред. Б.А. Курляндского и др. Л.: Химия, 1992.

9. Временные методические рекомендации по контролю загрязнений почв. -М.: Гидрометеоиздат, 1983.

10. Гаврилова И.П., Побединцева И.Г. Тяжелые металлы в почвах и растениях горных лесных ландшафтов Южного Урала // 2-я Всесоюз. конф. «Тяжелые металлы в окружающей среде и охрана природы»: Тез. докл. М., 1988. - С. 72-76.

11. Гамаюрова B.C. Мышьяк в экологии и биологии. М.: Наука, 1993. - 208 с.

12. Гормай В.В., Шаповалов В.Н., Шантроха A.B. и др. Проблема уничтожения и утилизации адамсита // Журн. рос. хим. о-ва им. Д.И. Менделеева. 1994. -Т. 38, №2.-С. 39-42.

13. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений: В 2-х т. / Пер с англ. -М.: Мир, 1986.-Т. 2.

14. Гузеев B.C., Левин C.B., Бабьева И.П. Тяжелые металлы как фактор воздействия на микробную систему почв // Экологическая роль микробных метаболитов. -М., 1986. С. 82-104.

15. Гусарова Н.К., Трофимов Б.А., Ефремова Г.Г., Амосова C.B. Дивинилсуль-фоксид. V. Основно-каталитическое присоединение спиртов и термолиз продуктов // Журн. орг. химии. -1981. Т. 17. - С. 2272-2277.

16. Гусарова Н.К., Ефремова Г.Г., Бабкин В.А. и др. Реакция дивинилсульфок-сида с триэтиламином в присутствии кислот // Журн. орг. химии. 1978. - Т. 14. - С. 2009-2012.

17. Дворский М.С. Экология растений. М.: Высшая школа, 1983. - 190 с.

18. Иванова А.Б., Анцыгина Л.Л., Ярин А.Ю. Современные аспекты изучения фитогормонов // Цитология. 1999. - Т. 41. - С. 845-846.

19. Кабата-Пендиас А., Пендиас X. Микроэлементы в почвах и растениях. М.: Мир, 1989.-439 с.

20. Коваль И.В. Сульфиды в органическом синтезе. Применение сульфидов // Успехи химии. 1994. - Т. 63. № 2. - С. 154-176.

21. Кошелев В.Ь., Жданов В.А., Шувалов A.A., Кравчук Ф.Е., Кошелев Ю.П., Евменов Р.Л. Американские разработки методов уничтожения химического оружия // Росс. хим. журн. 1995. - T. XXXIX, № 4. - С. 31-36.

22. Крапивина С.А. Плазмохимические технологические процессы. Л.: Химия, 1981.- 148 с.

23. Криштопенко C.B., Тихонов М.С., Попова Е.Б. Парадоксальная токсичность.- Нижний Новгород: Изд-во Нижегород. гос. акад., 2001. С. 164.

24. Контроль химических и биологических параметров окружающей среды // Энциклопедия "Экометрия". Сер. справ, изд. / Под ред. проф. Л.К. Исакова.- СПб: Экол.-аналит. информ. центр «Союз», 1998. 896 с.

25. Кулаева О.Н. Этилен в жизни растений // Сорос, образоват. журн. 1998. -№11.-С. 78-84.

26. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. М.: Мир, 1984.-477 с.

27. Машкина A.B. Химия сераорганических соединений, содержащихся в неф-тях и нефтепродуктах. М.: Высшая школа, 1972. - Т. 2. - 301 с.

28. Микроорганизмы и охрана почв / Под ред. Д.Г. Звягинцева. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1989. - 206 с.

29. Микрякова Т.Ф. Распределение тяжелых металлов в высших водных растениях Угличского водохранилища // Экология 1994. - № 1. - С. 16-21.

30. Мордухова Е.А., Кочетков В.В., Поликарпова Ф.Я., Воронин A.M. Синтез индолил-3-уксусной кислоты ризосферными псевдомонадами: влияние плазмид биодеградации нафталина // Прикл. биохим. и микробиол. 1998. -Т. 34, №3,-С. 287-292.

31. Мотузова Г.В. Мышьяк в почвах // Агрохимия. 1981. - № 1. - С. 148-154.

32. Орлов Д.С. Химия почв: Учебник. 2-е изд., перераб. и доп. - М: Изд-во1. Моск. ун-та, 1992. 400 с.

33. Пат. 4236464 США, МКИ3 F 23 G 7/04.

34. Петров C.B. Экспертная оценка технологий уничтожения запасов люизита // Росс. хим. журн. 1995. - T. XXXIX, № 4. - С. 4-5.

35. Петрова Т.Н. Лабораторные занятия по физиологии растений с основами биохимии. Саратов, 1994. - 152 с.

36. Пименов Е.В., Дармов И.В., Погорельский И.П. Выделение и характеристика штаммов бактерий, резистентных к соединениям мышьяка // Микробиология. 1996. - Т. 65, № 2. - С. 214-218.

37. Пичугин A.A., Тарасов В.В. Перспективы использования суперкритической экстракции для создания бессточных технологических процессов // Успехи химии. 1991. - Т. 60, вып. 11. - С. 2412-2421.

38. Подольская В.И., Грузина Т.Г., Ульберг З.Р., Соколовская A.C., Гршценко Н.И. Особенности влияния мышьяка на рост бактерий и АТФазную активность плазматических мембран // Прикл. биохим. и микробиол. 2002. - Т. 38, №1,-С. 57-62.1.l

39. Почвоведение / Под ред. И.С. Кауричева. М.: Колос, 1982. - 495 с.

40. Радов A.C., Пустовой И.В., Корольков A.B. Практикум по агрохимии / Под ред. И.В. Пустового. 4-е изд. -М: Агропромиздат, 1985. - 312 с.

41. Ремезов Н.П. Почвы их свойства и распространение. М.: Учпедгиз, 1952. -267 с.

42. Руководство по химическому анализу поверхностных вод суши / Под ред. А.Д. Семенова. Л.: Гидрометеоиздат, 1977.

43. Савин Ю.И., Вишенкова Е.М., Пасынкова Е.М. Исследование поведения иприта и люизита в воде и почве при условиях, имитирующих их природные среды // Росс. хим. журн. 1995. - Т. XXXIX, № 4. - С. 121-125.

44. Сборник санитарно-гигиенических нормативов и методов контроля вредных веществ в объектах окружающей среды. М., 1991.

45. Справочник по гидрохимии / Под ред. A.M. Никанорова. Л.: Гидрометеоиздат, 1988.

46. Степанов А.И., Гехман А.Е., Рамендик Г.И., Нефедов В.И. Исследование взаимодействия продуктов гидролиза а-люизита с алкандитиолами // Росс, хим. журн. 1995. - Т. XXXIX, № 4. - С. 27-31.

47. Трофимов Б.А., Гусарова Н.К., Ефремова Г.Г. и др. Дивинилсульфоксид. I. Взаимодействие с тиолами // Журн. орг. химии. 1980. - Т. 16, вып. 12. - С. 2538-2543.

48. Трофимов Б.А., Гусарова Н.К., Ефремова Г.Г. Дивинилсульфоксид. IV. Взаимодействие с аминами // Журн. орг. химии. 1981. - Т. 17, № 9. - С. 1984-1989.

49. Федин Э.П. Цветы побеждают // Изобретатель и рационализатор.-1998.-№ 6.-С.5.

50. Федоров Л.П. О химическом разоружении с человеческим лицом // Хим. оружие и проблемы его уничтожения. 1997. - № 3. - С. 15-19.

51. Харечко А.Т., Мягких В.И., Остроумов Ю.И. и др. Применение микроорганизмов для деструкции опасных веществ, загрязняющих окружающую среду // Росс. хим. журн. 1993. - Т. XXXVII, № 3. - С. 40-43.

52. Шляхтин Г.В., Рембовский В.Р., Хохоев Т.Х. и др. Реакция растений и животных природных экосистем на воздействие люизита // Росс. хим. журн. -1993.-Т. XXXVII, № 3. С. 108-113.

53. Щербаков А.А. Трансформация иприта в объектах окружающей среды. -Саратов: Научная книга, 2001. 120 с.

54. Элбро Т., Дерет Д., Симак Р. Определение люизита и продуктов его разложения в пробах почв и воды с использованием пламенно-фотометрического и фотоионизационного детекторов в полевых условиях // Росс. хим. журн. -1995. Т. XXXIX, № 4. - С. 125-128.

55. Янкевич М.И., Квитко К.В. Биоремедиация нефтезагрязненных водоемов // Экология и промышленность России. 1998. - № 10. - С.21-27.

56. Abedin M.J., Cresser M.S., Feldmann J., Cotter-Howels J. Arsenic accumulation and metabolism in rice (<Oryza sativa L.) // Environ. Sci. Technol. 2002. - Vol. 36.-P. 962-968.

57. Adriano D.S. Traseelements in the terrestrial environment. N. Y.: Springer, 2001.

58. Albrecht S.L., Okon Y., Lonnquist L., Burns R.H. Nitrogen fixation by corn-Azospirillum associations in a temperature climate //Crop. Sci. 1981. - Vol. 21. -P. 301-306.

59. Alexander J.R., McCombie H. The reactions of divinyl sulphide, sulphoxide and sulphon // J. Chem. Soc. 1931. - P.1913-1918.

60. Alkorta I., Hernandez-Allica J., Garbisu C. Plants against the global epidemic of arsenic poisoning // Environ. Int. 2004. - Vol. 30, N 7. - P. 949-951.

61. Aracil P., Burlo F., Lario Y., Martinez-Romero D., Valero D., Carbonell-Barrachina A. Total arsenic accumulation in edible pods and seeds of Phaseolus vulgaris II J Environ Sci. Health. 2001. - Vol. 36. - P. 849-861.

62. Arienzo M., Adamo P., Chiarenzelli J, Bianco M.R., De Martino A. Retention of arsenic on hydrous ferric oxides generated by electrochemical peroxidation // Chemosphere. -2002. Vol. 48. - P. 1009-1018.

63. Baldani V.L.D., Dôbereiner J. Host-plant specificity in the infection of cereals with Azospirillum spp. // Soil Biol. Biochem. 1980. - Vol. 12. - P. 433-439.

64. Barazani O., Sathiyamoorthy P., Manandhar U., Vulkan R., Golan-Goldhirsh A. Heavy metal accumulation by Nicotiana glauca Graham in a solid waste disposal site // Chemosphere. 2004. - Vol. 54, N 7. - 867-872.

65. Bergey's Manual of Determinative Bacteriology. 8th ed.- Baltimore: Williams and Wilkins, 1974. - P. 273, 437.

66. Biondi S., Lenzi C., Baraldi R., Bagni N. Hormonal effects on growth and morphology of normal and hairy roots of Hyoscyamus muticus II J. Plant Growth Regul. 1997. - Vol. 16. - P. 159.

67. Bondada B.R., Tu S., Ma L.Q. Absorption of foliar-applied arsenic by the arsenic hyperaccumulating fern (Pteris vittata L.) // Sci. Total Environ. 2004. - Vol. 332, N1-3.-P. 61-70.

68. Braddock J.F., Luong H.V., Brown E.J. Growth kinetics of Thiobacillus ferrooxi-dants isolated from arsenic mine drainage // Appl. Environ. Microbiol. 1984. -Vol. 48.-P. 48-55.

69. Cai J., Salmon K., DuBow M.S. A chromosomal ars operon homologue of Pseudomonas aeruginosa confers increased resistance to arsenic and antimony in Escherichia coli II Microbiology. 1998. - Vol. 144. - P. 2705-2713.

70. Carbonell-Barrachina A.A., Burlo F., Burgos-Hernandez A., Lopez E., Mataix J.

71. The influence of arsenite concentration on arsenic accumulation in tomato and bean plants // Scientia Horticulturae. 1997. -Vol. 3-4. - P. 167-176.

72. Carlin A., Shi W., Dey S., Rosen B.P. The ars operon of E. coli confers arsenical and antimonial resistance // J. Bacteriol. 1995. - Vol. 177. - P. 981-986.

73. Chakravarty S., Dureja V., Bhattacharyya G., Maity S., Bhattacharjee S. Removal of arsenic from groundwater using low cost ferruginous manganese ore // Water Res. 2002. - Vol. 36. - P. 625-632.

74. Clayton W.R., Reid E.E. Some esters of thiodiglycol // J. Amer. Chem. Soc. -1942. Vol. 64, N 4. - P. 908-909.

75. Clausen C.A. Improving the two-step remediation process for CCA-treated wood. Part II. Evaluating bacterial nutrient sources // Waste Manag. 2004. - Vol. 24, N4.-P. 407-411.

76. Cleuvers M., Ratte H.T. Phytotoxicity of coloured substances: is Lemna duckweed an alternative to the algal growth inhibition test? // Chemosphere. 2002. - Vol. 49.-P. 9-15.

77. D'Agostinio P.A., Provost L.R. Gas chromatographic retention indications of sulfur toxicants and related compounds // J. Chromatogr. 1988. - Vol. 43, N 3. - P. 399-411.

78. Davies J.H., Oxford A.E. Formation of sulphonium chloride and of unsaturated substances by the action of water and aqueous alcoholic potash on |3,|3'jdichlorodiethyl sulphide // J. Chem. Soc. 1931. - P. 224-236.

79. Delort A-M., Combourieu B. In situ 1H NMR study of the biodegradation of xenobiotics: application to heterocyclic compounds // J. of Industrial Microbiol, and Biotechnol. 2001. - Vol. 26, N 1/2. - P. 2-8.

80. Arsenic(V) to Arsenic(III) in anoxic sediments // Appl. Environ. Microbiol. -1996. Vol. 62, N 5. - P. 1664-1669.

81. Dutre V., Kestens C., Schaep J., Vandecasteele C. Study of the remediation of the site contaminated with arsenic // The Science of the Total Environment. 1998. -Vol. 220.-P. 185-194.

82. E1-Khawas H., Adachi K. Identifications and quantification of auxins in culture media of Azospirillum and Klebsiella and their effect on rice roots // Biol. Fertil. Soils. 1999. - Vol. 28. - P. 377-381.

83. Ernst W.H.O. Sulfur metabolism in higher plants: potential for phytoremediation //Biodegradation. 1998. - Vol. 9. - P. 311-318.

84. Fitz W.J., Wanzel W.J. Arsenic transformations in the soil-rhizosphere-plant system: fundamentals and potential application to phytoremediation // J. Biotech-nol. 2002. - Vol. 99. - P. 259-278.m

85. Gasson E.J., Mc Combie H., Williams A.H., et. al. New organic sulphur vesicants. Part IV. l,2-di-(2-chloroethylthio) ethane and its analogues //J. Chem. Soc., Perkin Trans. 1948. - Vol. 2. - P. 46-48.

86. Gengling Z., Sudan G. Toxic effect of arsenic on plants in red soils // 13th # Congr. Int. Soc. Soil Sci.: Proc. Hanaburg, 1986. - Vol. 2. - P. 368-369.

87. Glass D.J. Current market trends in phytoremediation // Intern. J. Phytoreme-diat. 1999 -Vol. l.-P. 1-8.

88. Harley-Mason J. Some aliphatic thiols and their derivatives. Part II. Thiols derived from 2,2'-dichlorodiethyl sulphide and its analogues nickel complexes from 1,5-dithiols // J. Chem. Soc. 1925. - P.146-148.

89. Hart W.F., Niederl J.B. Thiomorpholines, oxides and dioxides // J. Amer. Chem. Soc. 1946. - Vol. 68, N 4. - P. 714-715.

90. Hartley-Whitaker J., Anisworth G, Wooijs R., Bookum W.T., Schat H., Me-V harg A.A. Phytochelatins are involved in differential arsenate tolerance in Holcuslanatus II Plant Physiol. 2001. - Vol. 126. - P. 229-306.

91. Helfrich O.B., Reid E.E. Reactions and derivatives of P,P'-dichloroethylsulphide // J. Amer. Chem. Soc. 1920. - Vol. 42, N 5. - P. 1208m 1232.

92. Inskeep W.P., McDermott T.R., Fendorf S. Arsenic (V)/(III) cycling in soil and natural waters: chemical and microbiological processes // Environmental Chemistry of Arsenic / Ed. W.T. Frankenberger, Jr. N.Y.: Marcel Dekker, 2002. - P. # 183-215.

93. ISO. 2001. Water quality Determination of the toxic effect of water constituents and waste water to duckweed (Lemna minor) - Duckweed growth inhibition test. ISO International Standard - ISO/CD 20079. ISO TC 147/SC 5 N ISO. - P. 26.

94. Jain M., Gadre R. Effect of as on chlorophyll and protein contents and enzymic activities in greening maize tissues // Water, Air and Soil Pollution. 1993. - Vol.0 93.-P. 109-115.

95. Johnson D.L. Bacterial reduction of arsenate in sea water // Nature. 1972. -Vol. 240, N 5375. - P. 44-45.

96. Kalisova-Spirochova I., Puncocharova J., Kafka Z., Kubal M., Soudek P., Vanek T. Accumulation of heavy metals by in vitro cultures of plants // Water, Air and Soil Pollution: Focus. 2003. - Vol. 3, N 3. - P. 269-276.

97. Kartal S.N. Removal of copper, chromium, and arsenic from CCA-C treated wood by EDTA extraction // Waste Manag. 2003. - Vol. 23, N 6. - P. 537-546.

98. Kaur P., Rosen B.P. Plasmid-encoded resistance to arsenic and antimony // 0 Plasmid. 1992. - Vol. 27. - P. 29-40.

99. Knauer K., Behra R., Hemond H. Toxicity of inorganic and methylated arsenic to algal communities from lakes along an arsenic contamination gradient // Aqua. Toxicol. 1999. - Vol. 46. - P. 221-230.

100. Komossa D., Langebartels C., Sandermann H. Metabolic processes for organic ® chemicals in plants // Plant contamination modeling and simulation of organicchemical processes / Eds. S. Trapp, C. McFarlane. Boca Raton: Lewis Pub., 1995.-P. 69-103.

101. Kopriva S., Rennenberg H. Forest biotechnology and environment //

102. Bundesgesundheitsblatt Gesundheitsforschung - Gesundheitsschutz. - 2000.1. Vol. 43, N2.-P. 121-125.

103. Korte F., Kvesitadze G. Organic toxicants and plants: Review // Ecotoxicol. and Environ. Safety. 2000. - Vol. 47. - P. 1-26.

104. Kyounphile N., Moon H.S., Kim J.Y., Kukor J.J. Linkage between biodégradation of polycyclic aromatic hydrocarbons and phospholipids profiles in soil isolates // J. Microbiol. Biotechnol. 2002. - Vol. 12 (1). - P. 77-84.

105. Lammey J., Curtis F. Intrinsic remediation of a diesel fuel plume in Goose Bay, Labrador// Can. Environ. Pollution. 1998. - Vol. 103, N 2-3. - P. 203-210.

106. Larcher W. Physiological plant ecology. 3rd ed. - Berlin: Springer, 1995.

107. Lawson W.E., Reid E.E. Reactions of f3,P'-dichlorethyl-sulphide with amino compounds // J. Amer. Chem. Soc. 1925. - Vol. 47, N 11. - P. 2821-2836.

108. Macur R.E., Wheeler T.J., McDermott T.R., InskeepW.P. Microbial populations associated with the reduction and enhanced mobilization of arsenic in mine tailings // Environ. Sci. Technol. 2001. - Vol. 35. - P. 3676-3682.

109. Masy J.M., Santini J.M., Pauling B.V., O'Neill A.H., Sly L.I. Two new arse-nate/sulfate-reducing bacteria: mechanisms of arsenate reduction // Arch.m Microbiol. 2000. - Vol. 173. - P. 49-57.

110. Meharg A.M., Hartley-Whitaker J. Arsenic uptake and metabolism in arsenic resistant and nonresistant plant species // New Physiol. 2002. - Vol. 154. - P. 29^43.

111. Mistra T.K. Heavy metals: bacterial resistances in microbiological ecosystems // Mol. Microbiol. Ecol. Man. Dordrecht: Kluwer Acad. Publ., 1995. - P. 1-17.

112. Mkandawire M. PHREEQC (or PHAST) database, organic ligands and trace 0 elements. USGS: Status of PhreeqC Programs. 2001 (http:wwwbrr.cr.usgs.gov.).

113. Moore S., Stein W.H., Fruton J.S. Chemical reactions of mustard gas and related compounds. II. The reaction of mustard gas with carboxyl groups and with amino groups of amino acids and peptides // J. Org. Chem. 1946. - Vol. 11, N 6. - P. 675-680.

114. Mortazavi S., Tezel F.H., Tremblay A.Y., Volchek K. Effect of pH on the uptake of arsenic from contaminated water by activated alumina // Adv. Environ. Res. 1999. - Vol. 3. - P. 109-118.

115. Munro N.B., Talmage S.S., Griffin G.D., et al. The sources, fate, and toxicityof chemical warfare agent degradation products // Environ. Health Perspect. -1999. Vol. 107, N 12. - P. 933-974.

116. Nakajima D., Kojima E., Iwaya S., Suzuki J. Presence of 1-hidroxypyrene conjugates in woody plant leaves and seasonal changes in their concentrations // Environ. Sci. Technol. 1996. - Vol. 30. - P. 1675-1679.

117. Nam K., Hee S.M., Jae Y.K., Kukor J.J. Linkage between biodégradation of polycyclic aromatic hydrocarbons and phospholipids profiles in soil isolates // J. Microbiol. Biotechnol. 2002. - Vol. 12, N 1. - P. 77-84.

118. Neumann H., BodeKirchhoff A., Madeheim A., Wetzel A. Toxicity testing ofheavy metals with the Rhizobium-legumQ symbiosis: High sensitivity to cadmium and arsenic compounds. // Environ Sci. Pollut. Res. 1998. - Vol. 5. - P. 28-36.

119. Newman D., Rietsch A., Polz M. Diversity of arsenate-reducing bacteria from # two contaminated environments // Gen. Meet, of the Amer. Soc. for Microbiol.:

120. Abstr. Chicago, Illinois, USA, May 30 June 3,1999. - Chicago, 1999. - P. 450.

121. Nissen P., Benson A.A. Arsenic metabolism in freshwater and terrestrial plants // Physiol. Plant. 1982. -Vol. 54. - P. 446-450.

122. Perez J., Munoz-Dorado J., de la Rubia T., Martinez J. Biodégradation and biological treatments of cellulose, hemicellulose and lignin: An overview // Intern. Microbiol. 2002. - Vol. 5, N 2. - P. 53-63.

123. Peryea F.J. Phosphate starter fertilizer temporarily enhances soil arsenic uptake by apple trees grown under field conditions // Hort Sci. 1998. - Vol. 33. - P. 826-829.

124. Phung Le T., Silver S. Bacterial heavy metal resistance: new surprise // Annu. Rev. Microbiol. 1996. - Vol. 50. - P. 753-789.

125. Picering I.J, Prince R.C., George M.J., Smith R.D., George G.N., Salt D.E. Reduction and coordination of arsenic in Indian mustard // Plant Physiol. 2000. -Vol. 122, N4.-P. 1171-1178.

126. Price C.C., Roberts R.M. Some reactions of 1,2- bis(p-chloroethylthio)ethane // J. Org. Chem. 1947. - Vol. 12, N 2. - P. 255-263.

127. Radianingtyas H., Wright P.C. 2-Propanol degradation by Sulfolobus solfatari-cus // Biotechnol. Lett. 2003. - Vol. 25, N 7. - P. 579-583.

128. Raskin I., Smith R.D., Salt D.E. Phytoremediation of metals: using plants toremove pollutants from the environmental // Curr. Opinion in Biotechnol. 1997. -Vol. 8.-P. 221-226.

129. Rippen G. Handbuch Umweltchemikalien // Ecomed / Ed. L. Landsberg.1. Germany, 1999.

130. Romero F.M., Armienta M.A., Carrillo-Chavez A. Arsenic sorption by carbonate-rich aquifer material, a control on arsenic mobility at Zimapan, Mexico // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2004. - Vol. 47, N 1. - P. 1-13.

131. Salt D.E., Smith RD., Raskin J. Phytoremediation // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1998. - Vol. 49. - P. 643-668.

132. Shann J.R. The role of plants and plant/microbial systems in the reduction of exposure // Environ. Health Perspect. 1995. - Vol. 103, N. 5. - P. 13-15.

133. Siciliano S.D., Germida J J. Mechanisms of phytoremediation: biochemical and ecological interactions between plants and bacteria // Environ. Rev. 1998.1. Vol. 6. P. 65-79.

134. Singh G., Dowman A., Higginson F.R. Translocation of aged cyclodiene insecticide residues from soil into forage crops and pastures at various growth stages under field conditions // J. Environ. Sci. Health B., 1992. - Vol. 27, N 6. - P. 711-728.

135. Soares A., Guieysse B., Delgado O., Mattiasson B. Aerobic biodégradation of nonylphenol by cold-adapted bacteria // Biotechnol. Lett. 2003. - Vol. 25, N 9. -P. 731-738.

136. Song Y., Hahn H.H., Hoffmann E. Effects of solution conditions on the premcipitation of phosphate for recovery. A thermodynamic evaluation // Chemos-phere. 2002. - Vol. 48. - P. 1029-1034.

137. Stahmann M.A., Golumbic C., Stein W.H., Fruton J.S. Chemical reactions of mustard gas and related compounds. VII. The chemistry of bis(p-chloroethyl)sulphone, divinyl sulphone and divinyl sulphoxide // J. Org. Chem. 1946. - Vol. ti 11,N6. -P. 719-735.

138. Stein W.H., Fruton J.S., Bergmann M. Chemical reactions of mustard gas and related compounds. V. The chemical reactions of 1,2-bis(p-chloroethylthio) ethane.// J. Org. Chem. 1946. - Vol. 11, N 6. - P. 692-703.

139. Tesar M., Reichenauer T.G., Sessitsch A. Bacterial rhizosphere populations of black poplar and herbal plants to be used for phytoremediation of diesel fuel // Soil Biol, and Biochem. 2002. - Vol. 34, N 12. - P. 1883-1892.

140. Trapp S., Matthies M., Scheunert I. Modeling the bioconcentration of organicchemicals in plants // Environ. Sci. Technol. 1990. - Vol. 24. - P. 1246-1252.

141. Tu C., Ma L.Q. Effects of arsenate and phosphate on their accumulation by an arsenic-hyperaccumulator Pteris vittata L. // Plant and Soil. 2003. - Vol. 249, N 2.-P. 373-382.

142. Tu S., Ma L.Q., Fayiga A.O., Zillioux E.J. Phytoremediation of arsenic-contaminated groundwater by the arsenic hyperaccumulating fern Pteris vittata L. // Int. J. Phytoremediat. 2004. - Vol. 6, N 1. - P. 35-47.

143. Turner A.W., Legge J.W. Bacterial oxidation of arsenite // Austral. J. Biol. Sci.-1954. Vol. 7. -P. 479-495.

144. Wackett L., Allan D. Comment on "bioremediation in the rhizosphere" // Environ. Sci. Technol. 1995. - Vol. 29. - P. 551-552.

145. Wang W. 1986. The effect of river water on phytotoxicity of Ba, Cd and Cr // Environ. Pollut. 1986. - Vol. 11. - P. 193-204.

146. Watson A.P., Griffin G.D. Toxicity of vesicant agents scheduled for destruction by the Chemical Stockpile Disposal Program // Environ. Health Perspect. -1992. Vol. 98. - P. 259-280.

147. Wauchope R.D. Uptake, translocation and phytotoxicity of arsenic in plants // ^ Aresenic: Industrial, Biomedical, Environmental Perspectives / Eds. W.H.1.derer, R.J. Fensterheim. N.Y.: Van Nostrand Reinhold Co., 1983. - Chap. 25. -P. 348-375.

148. Woolson EA. Emissions, cycling and effects of arsenic in soil ecosystems // Topics in Environ. Health. Vol 6. Biological and environmental effects of arsenic / Ed. B.A. Fowler. -N.Y.: Elsevier, 1983. 51 p.

149. Zhang W., Cai Y., Tu С., Ma L.Q. Arsenic speciation and distribution in an arsenic hyperaccumulating plant // The Sei. Total Environ. 2002. - Vol. 300. - P. 167-177.

150. Zhang W, Cai Y, Downum KR, Ma LQ. Arsenic complexes in the arsenic hy-peraccumulator Vieris vittata (Chinese brake fern) // J. Chromatogr. 2004. -Vol. 1043, N2.-P. 249-254.1. БЛАГОДАРНОСТИ