Бесприборная иммунодиагностика инфекционных заболеваний на основе высокодисперсных корпускулярных маркеров тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.23, доктор биологических наук Полтавченко, Александр Георгиевич

• Полтавченко, Александр Георгиевич
• доктор биологических наук
• 2008

Оглавление диссертации доктор биологических наук Полтавченко, Александр Георгиевич

Список использованных сокращений.

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ПРИМЕНЕНИЕ ТВЕРДОФАЗНЫХ МЕТОДОВ ИММУНОАНАЛИЗА ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ (Обзор ] литературы).

1.1. Общие принципы классификации иммунохимических методов.

1.1.1. Основные принципы иммунохимического анализа.

1.1.2. Типы образцов для иммунохимического анализа.

1.1.3. Характеристики реагентов, используемых в иммуноанализе.

1.1.4. Системы разделения реагентов, связавшихся и несвязавшихся в ходе иммунологической реакции.

1.1.5. Системы детекции результатов иммунологического взаимодействия.

1.1.5.1. Инструментальные методы детекции иммунологического связывания.

1.1.5.2. Методы детекции результатов иммуноанализа с применением меченых биозондов.

1.1.6. Форматы твердофазных иммунохимических тестов.

1.1.6.1. Тесты, выполняемые в планшетах для иммунологических реакций.

1.1.6.2. Иммунохимические тесты, выполняемые на плоских ^ подложках.

1.1.6.3. Быстрые иммунохимические тесты, основанные на фильтрации.

1.1.6.4. Иммунохимический анализ, выполняемый с ^ применением микрочастиц.

1.1.6.5. Иммунохимический анализ, выполняемый на белковых ^ матрицах.

1.1.6.6. Иммуносенсоры.

1.2. Методы оценки результатов иммунодиагностических тестов.

1.3. Стратегии применения иммунодиагностических тестов.

1.3.1. Иммунодиагностическое обследование в специализированных клинических лабораториях.

1.3.2. Иммунодиагностическое обследование, выполняемое в слабооснащенных медицинских учреждениях.

1.3.3. Иммунодиагностическое обследование в кабинете врача и на ^ дому.

1.3.4. Специфическая индикация биологических угроз.

1.4. Подходы к разработке новых иммунодиагностических тестов.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Бесприборная иммунодиагностика инфекционных заболеваний на основе высокодисперсных корпускулярных маркеров»

Актуальность проблемы

В природе существует огромное разнообразие микроорганизмов - вирусов, бактерий и грибов, вызывающих заболевания человека. Человечество находится в состоянии биологической войны с микроорганизмами со времен своего возникновения [63]. Около 70 % всех регистрируемых болезней человека имеют инфекционную этиологию [17]. По данным ВОЗ, на долю инфекционных заболеваний сейчас приходится 24,7 % всех смертей в мире [150, 197]. В России ежегодно регистрируется до 35 млн. случаев инфекционных заболеваний, а прямые и косвенные потери от них составляют около 15 млрд. руб. [83].

Особенность инфекционных болезней заключается в том, что они могут передаваться от больного к здоровому человеку, имеют скрытый период заболевания, в течение которого носитель инфекции может заразить широкий круг контактных лиц, оказаться в другом городе или другом государстве, где и будет обнаружена вспышка заболевания. Контроль распространения инфекций становится все более и более трудным при сегодняшних темпах и масштабах миграции. В последние годы потенциальной угрозой национальной безопасности любой страны считается возможность преднамеренного использования микробиологических агентов в террористических целях [17, 296]. Непредсказуемость биотеррористических атак по времени, объекту, мотивам, используемому поражающему агенту и масштабам последствий обуславливают особую сложность этой проблемы [84].

Эффективная борьба с инфекционными заболеваниями требует быстрой и достоверной диагностики. Большинство инфекционных заболеваний имеет сходную клиническую манифестацию и для правильной постановки диагноза часто необходимы лабораторные методы, среди которых ведущее место занимает иммунохимический анализ. Иммунохимические тесты обладают высокой чувствительностью и специфичностью и позволяют быстро установить видовую, а в ряде случаев и штаммовую принадлежность возбудителя [203]. К настоящему времени создано большое число иммунохимических тестов [196, 357]. При этом сохраняется потребность в разработке новых средств диагностики. Это объясняется, с одной стороны, разнообразием задач, решаемых с помощью иммунохимических методов, а с другой стороны, неудовлетворенностью пользователей техническими и/или эксплуатационными характеристиками тестов в той или иной ситуации. Развитие методик иммуноанализа необходимо для решения следующих задач: расширения круга определяемых соединений; повышения чувствительности и специфичности; обеспечения способности к одновременному анализу ряда аналитов в одном тесте; упрощения операций и сокращения времени проведения анализа; разработки портативных форматов, не требующих дополнительных реагентов; снижения стоимости тестирования; увеличения стабильности и сроков хранения диагностических наборов; снижения или устранения риска для пользователя и окружающей среды; совершенствования технологии производства тест-систем [51, 365].

Первыми сталкиваются с инфекционными заболеваниями работники первичных звеньев системы здравоохранения, и от их действий зависит как здоровье пациента, так и дальнейшее распространение болезни. Решение должно быть принято быстро, а транспортирование образцов для исследования в специализированную лабораторию отнимает много времени, а часто просто невозможно. Однако первичные учреждения обычно не имеют базы для выполнения сложных тестов, таких, например, как иммуноферментный или иммунохемилюминесцентный анализы, требующие дорогого регистрирующего оборудования. Таким образом, эти учреждения нуждаются в оснащении надежными, но простыми и недорогими бесприборными диагностическими тестами. Ряд зарубежных государств (США, Канада, Франция, Израиль и некоторые другие) стимулируют разработку и производство таких тестов, поскольку они не так коммерчески привлекательны, как многотиражные стандартизованные тест-системы для клинических лабораторий. Такие системы основаны, как правило, на использовании маркеров в виде нано- или микрочастиц золота, латексов или красителей. Они обладают хорошими показателями чувствительности и специфичности, позволяют быстро и просто проводить тестирование с визуальным учетом его результатов. В России с ее огромной территорией и отдаленностью населенных пунктов такие тест-системы особенно необходимы. Однако они производятся только по лицензиям зарубежных фирм, имеют ограниченный ассортимент и дороги.

Разнообразные задачи по иммунодиагностике инфекционных заболеваний и индикации биологических агентов ни в настоящее время, ни в ближайшей перспективе, по-видимому, не смогут быть решены с помощью какого-либо одного универсального метода. Более того, набор разнообразных тестов необходим, поскольку диагностика представляет собой вероятностный процесс и параллельное исследование с использованием нескольких независимых методик значительно повышает достоверность полученных результатов. Арсенал надежных, но простых, быстрых и недорогих тестов позволит чаще проводить обследование и, в результате, обнаруживать заболевания на ранней стадии. Кроме того, применение таких тестов может позволить оперативно осуществлять эпидемиологический мониторинг и санитарно-эпидемиологический контроль, а также проводить быструю оценку ситуации и принимать необходимые меры при возникновении биологических угроз.

Таким образом, актуально создание комплекса методов, способных обеспечить иммунохимическое тестирование в условиях слабооснащенных медицинских учреждений или во внелабораторных условиях, что позволит сделать диагностику более своевременной и доступной, а санитерно-эпидемиологический контроль более оперативным и эффективным.

Цель исследования

Разработка технологических подходов к созданию и применению бесприборных методов твердофазного иммунохимического анализа на основе высокодисперсных корпускулярных маркеров.

Задачи исследования

- Оценить возможность применения в иммунохимическом анализе неорганических катализаторов как маркеров, альтернативных ферментным препаратам.

- Разработать технологию получения и применения каталитических маркеров, обеспечивающую надежный визуальный учет результатов иммуноанализа в микротитровальных планшетах.

- Провести комплекс исследований по разработке высокодисперсных корпускулярных маркеров и применению их в быстрых и простых методах иммуноанализа:

- золей серебра, как каталитического маркера, альтернативного коллоидному золоту;

- высокодисперсного активированного угля, как цветного маркера, обладающего универсальными адсорбционными свойствами;

- измельченного угля, импрегнированного серебром, как комбинированного маркера, сочетающего свойства цветной и каталитической метки.

- Разработать технологические подходы к изготовлению белковых матриц и выполнению на них многопрофильного дот-иммуноанализа с использованием каталитических маркеров.

- Создать прототип автономного набора для многопрофильного анализа, позволяющего выполнять исследования во внелабораторных условиях.

Научная новизна

- Впервые предложено и экспериментально обосновано применение золей неорганических катализаторов в качестве маркеров иммунохимического анализа, альтернативных ферментным меткам.

- Разработан метод планшетного иммуноанализа с использованием в качестве маркера кобальтсодержащих золей, обеспечивающий надежный визуальный учет результатов.

- Отработана технология получения и применения высокодисперсного активированного угля как цветного маркера в дот-иммуноанализе, позволяющая создавать простые и недорогие тесты для проведения исследований во внелабораторных условиях.

- Впервые отработаны способы получения и применения в качестве маркера в дот-иммуноанализе высокодисперсного активированного угля, импрегнированного каталитически активными золями серебра, способные упростить постановку иммунологического дот-анализа на пористых подложках и повысить его чувствительность за счет проявления золей.

- Отработаны технологические подходы к изготовлению и применению белковых матриц для одновременного выявления ряда антигенов или антител в многопрофильном дот-иммуноанализе с использованием золей золота и усиления сигнала физическим проявлением.

- Разработан прототип автономного набора реагентов для многопрофильного анализа, позволяющего одновременное определение 8 различных аналитов в каждом образце и пригодного для использования во внелабораторных условиях.

Практическая значимость работы.

В результате проведенных исследований разработан комплекс технологических подходов к созданию и применению иммунохимических тестов, пригодных для осуществления диагностики инфекционных заболеваний и специфической индикации патогенов в слабооснащенных медицинских учреждениях и во внелабораторных условиях.

Предложенный нами принцип применения каталитически активных неорганических маркеров, в частности кобальтсодержащих золей, позволяет создавать планшетные варианты иммуноанализа с надежным визуальным учетом результатов. Такой подход допускает выполнение теста в медицинских учреждениях, не обеспеченных регистрирующим оборудованием.

Отработанная в наших экспериментах технология получения и применения в дот-иммуноанализе золей серебра, а также корпускулярных маркеров на основе активированного угля и угля, импрегнированного серебром, позволяют создавать чувствительные, простые и недорогие тесты с визуальным учетом результатов, пригодные как для массового скрининга, так и для выполнения индивидуальных анализов. Такие тесты пригодны для проведения санитарно-эпидемиологического контроля, эпидемиологического мониторинга и выполнения иммунохимического анализа в экстраординарных ситуациях. В ФГУЗ «Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Сибири и Дальнего Востока» эти методы рекомендованы для анализа образцов в полевых условиях и используются при конструировании тест-систем для диагностики чумы, бруцеллеза и туляремии (Акт о внедрении см. в Приложении 1).

Разработанные нами технологические подходы к конструированию белковых матриц и выполнению на них одновременного иммуноанализа нескольких аналитов позволяют создавать автономные и информативные наборы для комплексного иммунохимического обследования. Внедрение теста на белковых матрицах в широкую практику может дать значительный экономический эффект за счет невысокой себестоимости тест-систем, сокращения трудозатрат на проведение анализа и снижения затрат на приборное обеспечение. Описанные в настоящей работе технологические подходы могут также послужить основой для создания белковых матриц с различным спектром специфичности для других диагностических задач.

Отработанные в наших экспериментах методы иммуноанализа сочетают высокую чувствительность, надежность, простоту выполнения и скорость получения результатов. В то же время они значительно дешевле существующих аналогов и могут выполняться повсеместно, что делает их более доступными для пациентов. Кроме того, применение таких тестов позволяет оперативно осуществлять эпидемиологический мониторинг и санитарно-эпидемиологический контроль, а также проводить быструю оценку ситуации при возникновении биологических угроз.

Описанные выше технологические подходы не требуют дорогого оборудования, универсальны и могут быть использованы при производстве диагностических наборов любой специфичности. Такие подходы могут найти применение не только в диагностике инфекционных заболеваний, но и в других отраслях медицины, а также в ветеринарии, экологических исследованиях и научных экспериментах.

Предложенные технологические подходы защищены 7 патентами РФ.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на следующих конференциях: Межрегиональной научно-практической конференции с международным участием «Новые химические системы и процессы в медицине», (Новосибирск, 2001); Международной научной конференции «Natural Infectious dieases» (Уланбатор, 2002); Международном мультидисциплинарном семинаре «Прогресс в биотехнологии и нейробиологии - интегративная медицина» (Хургада, Египет, 2004); Международной конференции «Актуальные вирусные инфекции -теоретические и практические аспекты» (Санкт-Петербург, 2004); Научно-практической конференции с международным участием «Серебро и висмут в медицине» (Новосибирск, 2005); Международной конференции «Профилактика, диагностика и лечение инфекционных болезней, общих для людей и животных» (Ульяновск, 2006); III Российской научной конференции с международным участием «Проблемы инфекционной патологии в регионах Сибири, Дальнего Востока и Крайнего Севера» (Новосибирск, 2006); Научно-практической конференции с международным участием «Нанотехнологии и наноматериалы для биологии и медицины» (Новосибирск, 2007).

Публикации. По теме диссертации получено 7 патентов РФ и опубликовано 35 печатных работ, в том числе 26 в центральных журналах, рекомендованных ВАК России для опубликования основных научных материалов докторских диссертаций.

Конкретное участие автора в получении результатов

Вклад автора в представленные результаты заключается в личном участии во всех теоретических и экспериментальных исследованиях, обработке результатов и формулировании выводов. Часть исследований выполнена в соавторстве с сотрудниками ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Ю.И. Сенькиным, В.Г. Костровским, И.А. Лавриненко, Ф.П. Тузиковым, А.А.Чепурновым, О.И. Серпинским, Б.Н. Зайцевым, H.H. Карпышевым, З.А. Акименко, A.M Яковченко и А.П. Пак; а также с сотрудниками ФГУЗ «Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Сибири и Дальнего Востока» Т.Ю. Загоскиной, Е.Ю. Марковым, В.Б. Николаевым, C.B. Балахновым, Н.М. Андреевской, A.A. Докориной и Е.П. Голубинским. Автор выражает глубокую благодарность сотрудникам ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор»: П.А. Белавину, C.B. Серегину, М.А. Суслопарову, В.В. Петрову, Г.И. Тюнникову, И.Н. Бабкиной; генеральному директору ЗАО «ИмДи» H.A. Кривенчуку, а также сотруднику НИИ вирусологии РАМН (Москва) О.И. Вышемирскому за помощь в обеспечении работ биоматериалами. Всем, принимавшим участие в данной работе, автор выражает искреннюю признательность. Автор от всей души благодарит Е.М. Малкову, Э.Г. Малыгина, В.И. Офицерова и Е.И. Рябчикову за помощь при подготовке диссертации.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 311 страницах, содержит 28 таблиц и 68 рисунков. Состоит из введения, обзора литературы, главы «Материалы и методы», 3 глав собственных исследований, заключения, выводов, списка литературы и 2 приложений. Список цитированной литературы включает в себя 414 источников, из них 329 иностранных.

Заключение диссертации по теме «Биотехнология», Полтавченко, Александр Георгиевич

выводы

Выполнены исследования по разработке высокодисперсных корпускулярных маркеров для создания комплекса методов твердофазного иммунохимического анализа с визуальным учетом результатов, пригодных для проведения исследований в слабооснащенных лабораториях и в полевых условиях в результате чего:

1. Впервые экспериментально обосновано применение в планшетном варианте иммуноанализа неорганических катализаторов на основе соединений железа, серебра и кобальта как маркеров, альтернативных пероксидазе хрена, а также принципа каталиметрии для их выявления.

2. Установлено, что применение в планшетном варианте иммуноанализа каталитических маркеров на основе кобальтсодержащих золей и субстратов с ализарином 8 при сходной с пероксидазными конъюгатами чувствительности и специфичности анализа обеспечивает отчетливое различие положительных и отрицательных образцов и позволяет визуально проводить надежный учет результатов теста.

3. Показано, что гидрозоли серебра могут служить альтернативой маркерам на основе коллоидного золота, а дот-иммуноанализ с использованием золей серебра и визуализацией результатов физическим проявлением позволяет выявлять антигены возбудителя чумы в концентрации 5 нг/мл.

4. Отработана технология получения и применения в дот-иммуноанализе высоко дисперсного активированного угля. Применение угольных маркеров позволяет создавать простые и быстрые тесты для массового скрининга и исследования индивидуальных серологических образцов, лишь в 2-4 раза уступающие по чувствительности ИФА.

5. Впервые установлено, что импрегнация высокодисперсного активированного угля серебром позволяет повысить чувствительность дот-иммуноанализа с его использованием до уровня чувствительности планшетного варианта иммуноферментного теста.

6. Разработаны основы технологии изготовления и применения белковых матриц для одновременного выявления ряда антигенов или антител в многопрофильном дот-иммуноанализе. Показано, что многопрофильный анализ при сходной чувствительности имеет преимущества перед планшетными иммуноферментными тестами по информативности, оперативности, трудоемкости и удельной стоимости. Этот метод допускает как визуальный учет результатов, так и компьютерную обработку оцифрованных данных с помощью специальной программы.

7. Создан прототип набора реагентов для многопрофильного анализа на белковых матрицах, позволяющий одновременно определять до 8 различных аналитов в каждом образце. Набор полностью укомплектован, а его применение не требует энергообеспечения и высокой квалификации оператора.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведенные исследования по применению в иммуноанализе высокодисперсных корпускулярных маркеров позволили решить поставленную задачу - разработать технологические подходы к созданию комплекса чувствительных, простых, быстрых и недорогих твердофазных иммунохимических тестов, способных обеспечить иммунодиагностику инфекционных заболеваний и специфическую индикацию патогенов в слабооснащенных медицинских учреждениях или во внелабораторных условиях.

Отработанная нами технология получения и применения маркеров на основе золей неорганических катализаторов, в частности соединений кобальта, позволяет создавать планшетные варианты иммуноанализа с надежным бесприборным учетом результатов. Такие тест-системы могут использоваться в городских и районных сельских поликлиниках, стационарах и санитарно-эпидемиологических станциях, где есть условия и специалисты, способные правильно подготовить образцы и выполнить их исследование. Производство иммунокаталитических тестов может быть организовано путем замены конъюгата и ряда рабочих растворов в серийно выпускающихся наборах реагентов для ИФА (Патент РФ № 2092853, приоритет от 12.10.1992).

Мы установили, что каталитические маркеры на основе гидрозолей серебра могут эффективно использоваться в скрининговых диагностических исследованиях как более дешевые заменители коллоидного золота. Дот-иммуноанализ с применением серебряных маркеров не требует дорогого оборудования и может использоваться для санитарно-эпидемиологического контроля, эпидемиологического мониторинга и выполнения иммунохимического анализа в экстраординарных ситуациях. Методология получения серебряных иммунозолей и их использования в иммунохимических реакциях признана перспективной, внедрена в Иркутском научно-исследовательском противочумном институте Сибири и Дальнего Востока и используется при конструировании тест-систем для диагностики чумы, бруцеллеза и туляремии.

В наших исследованиях показано, что дешевым и эффективным цветным маркером в дот-иммуноанализе может служить измельченный активированный уголь. Тесты с использованием угольных маркеров лишь немного уступают по чувствительности ИФА и могут применяться для первичного скрининга сывороток, как в диагностических лабораториях, так и в полевых условиях (Патент РФ № 218712, приоритет от 08.02.1999).

Впервые нами экспериментально продемонстрировано, что чувствительность анализа с применением угольных маркеров может быть повышена путем импрегнации этих маркеров каталитически активными металлами, такими, как серебро. Такой подход позволяет усилить визуальный сигнал в дот-анализе и достигнуть чувствительности планшетного варианта иммуноферментного теста (Патент РФ № 2133469, приоритет от 02. 04.1997).

Быстрый анализ образцов на присутствие специфических антител или антигенов может быть проведен в иммунофильтрационном тесте с использованием золей золота. Отработанный в рамках настоящих исследований способ усиления оптического сигнала путем проточного варианта физического проявления позволяет значительно повысить чувствительность анализа. Такие тесты могут быть незаменимыми инструментами для обследования очагов биологической угрозы и быстрого выполнения индивидуальных анализов в экстренных ситуациях.

Комплексная дифференциальная диагностика инфекционных заболеваний может быть осуществлена в многопрофильном дот-иммуноанализе на белковых матрицах. Разработанные нами технологические подходы к изготовлению и применению белковых матриц позволяют создавать чувствительные и информативные тесты для выявления антигенов (Патент РФ № 2296995, приоритет от 20.06.03), или антител (Патент РФ № 202129206 , приоритет от 31.10.02). Созданный в рамках настоящей работы прототип автономного набора реагентов для многопрофильной иммунодиагностики позволяет выполнять серийные и индивидуальные анализы, как в лаборатории, так и в полевых условиях (Патент РФ № 2298795, приоритет от 29.03.04).

Отработанные в наших экспериментах методы иммуноанализа сочетают высокую чувствительность, надежность, простоту выполнения и скорость получения результатов. В то же время они значительно дешевле существующих аналогов и могут выполняться повсеместно, что делает их более доступными для пациентов. Кроме того, применение таких тестов позволяет оперативно осуществлять эпидемиологический мониторинг и санитарно-эпидемиологический контроль, а также проводить быструю оценку ситуации и принимать необходимые меры при возникновении биологических угроз.

Описанные выше технологические подходы не требуют дорогого оборудования, универсальны и могут быть использованы при производстве диагностических наборов любой специфичности. Такие подходы могут найти применение не только в диагностике инфекционных заболеваний, но и в других отраслях медицины, а также в ветеринарии, экологических исследованиях и научных экспериментах.

Дальнейшее развитие технологий применения корпускулярных маркеров в иммуноанализе, кроме изыскания маркеров с новыми свойствами и эффективных способов их выявления, может быть направлено на создание экспрессных многопрофильных тест-систем на основе иммунофильтрационного метода, а также разработку иммуносенсорных устройств, в том числе и многопрофильных, основанных на электропроводных свойствах золей металлов.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Полтавченко, Александр Георгиевич, 2008 год

1. Агафонов А.П., Калиберов С. А., Патрушева И.В и др. Изучение иммунобиологических свойств штаммов вируса паротита // Вопр. вирусол. -1995. - Т. 40. -№3. - С. 113-115.

2. Анохин В.А., Хасанова Г.Р. Проблемы и новые направления в диагностике инфекционных заболеваний у детей // Росс, педиатр, журнал. 2000. - № 4. - С. 32-38.

3. Антитела. Методы: в 2-х томах / Под ред. Д. Кэтти. М.: Мир, 1991. - 287 с.

4. Бангхем Д. Стандартные препараты и эффекты матрикса // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. -М.: Мир, 1991. С. 25-37.

5. Барнард Д., Ушъямз Д., Пейтон А., Шах Г. Флуоресцентный иммуноанализ с временным разрешением // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз.-М.: Мир, 1991. С. 150-167.

6. Барыкинский Г.М. Влияние химических примесей и химического состояния посуды на процесс образования фотогидрозолей серебра / Препринт № 5: Серебро в медицине, биологии и технике. Новосибирск: ИКИ СО РАМН, 1996. - С. 162-164.

7. Богданчикова Н.Е., Зайковский В.И., Коломийчук В.Н. и др. Физико-химические свойства препаратов коллоидного серебра // Препринт: Коллоидное серебро. Физико-химические свойства. Применение в медицине. Новосибирск: ИКИ СО РАМН, 1992. - С. 5-14.

8. Бохински Р. Современные воззрения в биохимии. М.: Мир, 1987. - 544 с.

9. Быков В.А., Денисов-Никольский Ю.И., Ребров Л.Б. Использование биотест-систем в обеспечении биобезопасности // Вестн. РАМН. 2002. - № 10. -С. 42-45.

10. Быстрые и простые методы определения вирусных инфекций в лабораторной службе России. Методические рекомендации. М., 2004.http://www.biograd.ru/publications/methodicalrecornmendations/hiv/contents.

11. Вейнблат В.И. Антигены Yersinia pestis (биохимические и иммунологические аспекты): Автореф. дис. .канд. мед. наук. Саратов, 1974. - 36 с.

12. Венгерое Ю.Ю., Булгарина Т.В., Кущ A.A. и др. Современные методы иммуноанализа (иммуноферментного) для диагностики вирусных инфекций // Биотехнология. 1987. - № 3. - С. 291-295.

13. Вершинин В.И., Резник Б.Е. О каталитическом эффекте ионов кобальта(П) в реакции окисления о-дифенолов перекисью водорода // Ж. анал. хим. 1975. - Т. XXX. - № 4. - С. 759-764.

14. Вершинин В.И., Чуйко В.Т., Резник Б.Е. Изучение комплексообразования кобальта(П), ализарина С и перекиси водорода // Ж. анал. хим. 1973. - Т. XXVIII.-№ 4. - С. 709-714.

15. Винокуров В.М. Химическое серебрение зеркал. М.: Оборонгиз, 1950. - 86 с.

16. Воробьев A.A. Проблемы биологической безопасности на современном этапе // Вестн. РАМН. 2002. - № 10. - С. 9-12.

17. ГайерГ. Электронная гистохимия. М.: Мир, 1974. - 488с.

18. Гладкова С.Е., Бормотов Н.И., Дедкова Л.М. и др. Иммунохимическое изучение антигенов тахизиотов Toxoplasma gondii, полученных в различных системах культивирования // Мед. паразитол. и паразит, бол. 1998. - № 1. - С. 20-23.

19. Гражданцева A.A., Сиволобова Г.Ф., Кочнева Г.В. и др. Клонирование и экспрессия в E.coli основных антигенов Treponema pallidum и исследование их иммунохимических свойств. //Иммунология. 1998. - № 4. - С. 17-20.

20. Гуртовой Б.Л., Анкирская Л.С., Ванъко Л.В. Бубнова H.H. Внутриутробные бактериальные и вирусные инфекции плода и новорожденного // Акушерство и гинекология 1994. - № 4. - С. 20-26.

21. Джеймс Т.Х. Теория фотографического процесса. Л.: Химия, 1980.- 672 с.

22. Дмитриев Г.А., Брагина Е.Е. Современные методы лабораторной диагностики сифилиса. Часть. II // Вестн. дерматол. венерол. 1996. - № 3. - С. 33-38.

23. Долманова И.Ф., Ушакова Н.М., Пешкова В.М. Кинетическое определение кобальта в присутствии никеля по реакции дифенилкарбазон-тайрон-перекись водорода // Ж. анал. хим. -1973. Т. XXVIII. - № 6. - С. 1131-1134.

24. ДовошД. Электрохимические константы. М.: Мир, 1980. - 365 с.

25. Евстигнеев В.И. Проблемы обеспечения биологической безопасности России // Материалы 11 сессии общего собрания РАМН «Медицинские проблемы биобезопасности» (3-6 апреля 2002 г., Москва) http://www.bio.su/evr.htm.

26. Егоров А.М., Осипов А.П., Дзантиев Б.Б., Гаврилова Е.М. Теория и практика иммуноферментного анализа,- М.: Высш.шк., 1991. 275 с.

27. Ефременко В.И., Ломов Ю.М., Онищенко Г.Г., Тихонов Н.Г. Особо опасные инфекции // Вестн. РАМН. 2002. - № 10. - С. 34-39.

28. Загоскина Т.Ю. Теоретические и прикладные аспекты конструирования твердофазных иммунохимических тест-систем для диагностики бруцеллеза: Автореф. дис. .докт. мед. наук. Владивосток, 2004. - 49 с.

29. Зимон А. Д., Лещенко Н.Ф. Коллоидная химия. М.: Химия. - 1995. - 336 с.

30. Иммунологические методы / Под ред. Г. Фримеля. М.: Медицина, 1987. -456 с.

31. Казачинская Е.И., Перебоев A.B., Чепурнов A.A., и др. Моноклональные антитела к вирусу Эбола: получение, характеристика и изучение перекрестной реактивности с вирусом Марбург // Вопр. вирусол. 2000. - № 3. - С. 40-44.

32. Киселев A.B. Межмолекулярные взаимодействия в адсорбции и хроматографии. М.: Высшая школа, 1986. - 360 с.

33. Клинико-лабораторная диагностика инфекционных болезней: Руководство для врачей. СПб.: Фолиант, 2001. - 384 с.

34. Колкот К, Барнстон Р., Хилл К. и др. Получение и очистка моноклональных антител // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. М.: Мир, 1991.-С. 37-52.

35. Контроль качества клинических диагностических лабораторных исследований: Принципы и методы. М.: Медицина, 1994. - 154 с.

36. Кохен Ф., Амир-Залъцман К)., Страсбургер С. и др. Авидин-биотиновая реакция в иммуноанализе // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. -М.: Мир, 1991. С. 65-77.

37. Краткая химическая энциклопедия: в 5 томах. М.: Сов. Энц., 1964. - Т.З. -С. 230.

38. Крейнголъд С. У. Каталиметрия в анализе реактивов и веществ особой чистоты.- М.: Химия, 1983.- 190 с.

39. Кривеня В.Я., Елигулашвши Р.К. Получение и исследование иммуноферментных комплексов // Вирусные гепатиты типов А и В. Рига, 1983.- С. 110-115.

40. Кричка Л., Стотт Р., Торп Г. Иммуноферментный анализ с усиленной хемилюминесценцией // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У .П. Коллинз. -М.: Мир, 1991.-С. 167-177.

41. Лабораторные работы и задачи по коллоидной химии / Под ред. Ю.Г. Фролова. -М.: Химия. 1986. - С. 93-95.

42. Львов Д. К. Значение вновь возвращающихся инфекций для биобезопасности // Вестн. РАМН. 2002. - № 10. - С. 25-28

43. Мей К. Анализ на дому // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. М.: Мир, 1991. - С. 90-102.

44. Мельниченко П.И., Шумилов В.И., Карниз А.Ф. Совершенствование индикации возбудителей опасных инфекционных болезней в условиях локальных войн и вооруженных конфликтов // ЖМЭИ. 2000. - № 2. - С. 3-6.

45. Мирзабеков А.Д. Биочипы в биологии и медицине 20-го века. Выступление на научной сессии общего собрания РАН // Вестник РАН. 2003. - № 5. -С. 412-415.

46. Миронов В. Л. Основы сканирующей зондовой микроскопии. Нижний Новгород, 2004.-213 с.

47. Мюллер X, Ommo М., Вернер Г. Каталитические методы в анализе следов элементов. М.: Мир. - 1983. - 195 с.

48. Никитин В.М. Справочник методов иммунологии,- Кишинев: Штиинца, 1982.304 с.

49. Нисевич Л.Л., Талалаев А.Г., Каск Л.Н. Значение различных вирусных инфекций в невынашивании, мертворождении, перинатальной и младенческой смертности // Педиатрия. 1999. - № 1. - С. 1-10.

50. Новые методы иммуноанализа / Под ред. W.P. Collins. М.: Мир, 1991. - 280 с.

51. Общая вирусология: В 2 томах / Под ред. С.Я. Гайдомович. М.: Медицина, 1982.-Т.1.-С. 437.

52. Одиторе-Харгивз К., Харгивз В. Анализ в кабинете врача и на дому // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. М.: Мир, 1991. - С. 78-90.

53. Папас М.Г. Точечный твердофазный иммуноферментный анализ / Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. М.: Мир, 1991. - С. 117-137.

54. Парфит Г., Рочестер К. Адсорбция из растворов на поверхностях твердых тел. -М.: Мир, 1986,- 488 с.

55. Перелъман Ф.М., Заворыкин А.Н. Кобальт и никель. М.: Наука,1975. - 215 с.

56. Применение синтетических антигенов для диагностики инфекционных болезней. Доклад ВОЗ № 784.- Женева: ВОЗ, 1991.

57. Протоколы диагностики, лечения и профилактики внутриутробных инфекций у новорожденных детей. МЗ РФ, 2001. - 94 с.

58. Родионов П.П., Третьяков В.В. Колларгол и протаргол, свойства / Препринт: Коллоидное серебро. Физико-химические свойства. Применение в медицине. -Новосибирск: ИК СО АМН, 1992. С.5-14.

59. Расмунссен С.Е. Носители и реактивы / Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. -М.: Мир, 1991. С. 52-64.

60. Розовский Г. И. Химическое меднение с применением в качестве восстановителя боргидрида / Исследования в области осаждения металлов // Материалы к XI республик, конфер. электрохимиков Лит. ССР. Вильнюс, 1971. - С. 93-95.

61. Сандахчиев Л.С., Мартынюк Р.А., Нетесов С.В. Исследовательские приоритеты и будущие программы исследований // Материалы 11 сессии общего собрания РАМН «Медицинские проблемы биобезопасности» (3-6 апреля 2002 г., Москва) http://www.bio.su/sar.htm.

62. Свергун Д.И., Фейгин Л.А. Рентгеновское и нейтронное малоугловое рассеяние. М.: Наука, 1988. - 279 с.

63. Серегин C.B., Белавин П.А., Бабкина И.H. и др. Получение рекомбинантных антигенов Treponema pallidum и их применение в иммуноферментной диагностике сифилиса // Вестник дерматол. и венерол. 2000. - № 2. - С. 5-8.

64. Скоупс Р.К. Методы очистки белков. М.: Мир, 1985. - 358 с.

65. Стражеско Д.И., Тарковская И.А. Исследование ионообменных свойств окисленного угля // Получение, структура и свойства сорбентов. Л.: Гос. научно-техн. изд. хим. лит., 1959. - С. 61-71.

66. Суслопаров И. М., Плясунов И. В., Сафронов П. Ф. и др. Разработка и получение рекомбинантного антигена gD вируса простого герпеса 1-го типа (HSV-1) // Мол. генетика, микробиология и вирусология. 2001. - № 2. - С. 34-37.

67. Тананаев И.В., Сейфер Г.Б., Харитонов Ю.А. и др. Химия ферроцианидов. -М.: Наука, 1971.- 320 с.

68. Таранов А.Г. Диагностические тест-системы: Радиоиммунный и иммуноферментный методы диагностики. Новосибирск: Мокеев, 2002. -288 с.

69. Тернтон М. Современное состояние и перспективы развития иммуноанализа // Новые методы иммуноанализа /Под ред. У.П. Коллинз. М.: Мир, 1991. - С. 1424.

70. Технология лекарственных форм / Под ред. Л.А.Ивановой.- М.: Медицина, 1991,-Т. 2,- С. 201.

71. Титенко A.M. Исследование специфичности антигенов Yersinia pestis для улучшения диагностических методов: Автореф. дис. .канд. мед. наук. -Саратов, 1985.-20 с.

72. Файглъ Ф., Ангер В. Капельный анализ неорганических веществ. М.: Мир, 1976.-Т. 2.-436 с.

73. Чепурнов A.A., Мерзликин Н.В., Рябчикова Е.И. и др. Получение очищенного антигена вируса Эбола // Вопр. вирусол. 1994. - № 6. - С. 254-257.

74. Чепурнов A.A., Мерзликин Н.В., Чепурнова Т.С., Воробьева М.С. Получение кроличьих антисывороток к вирусу Эбола // Вопр. вирусол. 1994. - № 6. - С. 286-288.

75. Черкасский Б.Л., Бакулов И.А., Пчелинцев С.Ю. Зоонозы и биобезопасность // Вести. РАМН. 2002. - № 10. - С. 30-33.

76. Чесем Д., Андертон Д. Применение иммуноанализа в ветеринарии // Новые методы иммуноанализа / Под ред. У.П. Коллинз. М: Мир, 1991. - С. 100-116.

77. Холодова Ю.Д., Чаяло П.П. Липопротеины крови.- Киев: Наукова думка, 1990. -206 с.

78. Храмов Е.Н. Специфическая и неспецифическая индикация микроорганизмов в окружающей среде // Материалы 11 сессии общего собрания РАМН «Медицинские проблемы биобезопасности» (3-6 апреля 2002 г., Москва) -http://www.bio.su/hrr.htm.

79. Цинзерлинг А. В., Мельникова В.Ф. Вопросы патогенеза, морфологической диагностики и клинико-морфологических сопоставлений // Перинатальные инфекции : Руководство для врачей. СПб.: Элби, 2002. - 352 с.

80. Шалкаускас М.И., Вашкялис А.Ю. Химическая металлизация пластмасс. Л.: Химия, 1977.- 132 с.

81. Шевченко Ю.Л. Экология человека: Вызовы цивилизации, долг общества, ответственность здравоохранения // Вестн. РАМН. 2002. - № 10. - С. 3-6.

82. Щербаков Г.Я. Источники и основные угрозы для национальной биологической безопасности // Материалы 11 сессии общего собрания РАМН «Медицинские проблемы биобезопасности» (3-6 апреля 2002 г., Москва). -http://www.bio.su/schr.htm

83. Щукин Е.Д., Перцов А.В., Амелина Е.А. Коллоидная химия,- М.: Высш. шк., 1992. -414 с.

84. Abuknesha R.A., Luh C.Y., Griffith Н.М. et al. Efficient labelling of antibodies with horseradish peroxidase using cyanuric chloride // J. Immunol. Meth. 2005. - Vol. 306.-P. 211-217.

85. Afanassiev V., Hanemann V., Wolfl S. Preparation of DNA and protein micro arrays on glass slides coated with an agarose film // Nucleic Acids Res. 2000. - Vol. 28. - № 12. - P. 1-5.

86. Alcantara F.F., Iglehart D.J., Ochs R.L. Heparin in plasma samples causes nonspecific binding to histones on Western blots // J. Immunol. Meth. 1999. - Vol. 226. - P. 11-18.

87. Alexandre I., Hamels S., Dufour S .et al. Colorimetric silver detection of DNA microarrays //Anal. Biochem. 2001. - Vol. 295. - № 1. - P. 1-8.

88. Ali E., Sengupta J., Dhar T.K. Sandwich immunoassay of small molecules: I. Investigation with testosterone as a model hapten // J. Immunol. Methods. 1992. -Vol. 147.-P. 173-181.

89. Alter J. One-Step separation of plasma from whole blood for in vitro diagnostics // Genetic Engineering News. 1996. - Vol. 16. - № 5. - P. 28-31.

90. Alter J. Single-Step vertical plasma separation of whole blood for tests and sample preparation // Genetic Engineering News. -1996. Vol. 16. - № 20. - P. 30-34.

91. Akhavan-Tafti H., de Silva R., Eickholt R. et al. Characterization of new fluorescent peroxidase substrates // Talanta. 2003. - Vol. 60. - P. 345-350.

92. Akman S., McLain C„ Landon J. The development of an enzymeimmunometric assay for LH and the effects of the methods on the immunoreactivity of the conjugates // J. Immunoass. 1998. - Vol. 19. - P. 113-119.

93. Anderson R.R., Lee T.T., Saewert D.C. et al. Internally referenced ImmunoConcentration™ immunoassays // Clin. Chem. 1986. - Vol. 32. - P. 16921695.

94. Andersson S., da Silva Z., Norrgren H et al. Field evaluation of alternative testing strategies for diagnosis and differentiation of HIV-1 and HIV-2 infections in an HIV-1 and HIV-2-prevalent area //AIDS. 1997. -Vol. 15. -№.11. - P. 1815-1822.

95. Angenendt P., Glokler J., Murphy D. et al. Toward optimized antibody microarrays: a comparison of current microarray support materials // Anal. Biochem. 2002. - Vol. 309. -№2.-P. 253-260.

96. Araujo F.G. A method for demonstration of antibodies to Tripanosoma cruzi by using antigen-coated nitrocellulose paper strips // Am. J. Trop. Med. Hyg. 1985. -Vol. 34. - P. 242-245.

97. Arenkov P., Kukhtin A., Gemmell A. et al. Protein microchips: use for immunoassay and enzymatic reactions // Anal. Biochem. 2000. - Vol. 278. - № 2. - P. 123-131.

98. Aurameas S., Ternynck T. Peroxidase-labelled antibody and fab conjugates with enhanced intracellular penetration // Immunochem. 1971. - Vol. 8. - № 3.1. P. 1175-1182.

99. Aytur T., Foley J., Anwar M. et al. A novel magnetic bead bioassay platform using a microchip-based sensor for infectious disease diagnosis // J. Immunol. Meth. 2006. -Vol. 314.-P. 21-30.

100. Bacarese-Hamilton T., Gray J., Ardizzoni A., Frisanti A. Allergen microarrays // Meth. Mol. Med. 2005. - Vol. 114. - P. 195-207.

101. Bates D.L. Enzyme amplification in diagnostics // Trends Biotechnol. 1987. -Vol. 5. - P. 204-209.

102. Batorfi J., Ye B., Mok S.C. et al. Protein profiling of complete mole and normal placenta using Protein Chip analysis on laser capture microdissected cells // Gynecol. Oncol. 2003. - Vol. 88. - P. 424-432.

103. Batteiger B., Newhall W.J., Robert B. The use of Tween 20 as a blocking agent in the immunological detection of proteins transferred to nitrocellulose membranes // J. Immunol. Meth. 1982. - Vol. 55. - P. 297-307.

104. Bayer E.A., Wilchek M. The use of avidin-biotin complex as a tool in molecular biology // Meth. Biochem. Anal. 1980. - Vol. 26. - P. 1-45.

105. Bendayan M. Protein-A gold electron microscopic immunocytochemistry, methods, applications and limitations // J. Electron. Microsc. Tech. 1984. - № 1. -P. 243-248.

106. Bensinger W.I., Buckner C.D., Clift R.A., Thomas E.D. Clinical trials with staphylococcal Protein A // J. Biol. Resp. Modif. 1984. - № 3. - P. 347-401.

107. Benters R., Niemeyer C.M., Wohrle D. Dendrimer-activated solid supports for nucleic acid and protein microarrays // Chembiochem. 2001. - Vol. 2. - № 9. - P. 686-694.

108. Bhattacharya R. Bhattacharya D., Dhar T.K. A novel signal amplification technology based on catalyzed reporter deposition and its application in a Dot-ELISA with ultra high sensitivity // J. Immunol. Meth. 1999. - Vol. 227. - P. 31-39.

109. Bhattacharya D., Bhattacharya R., Dhar T.K. A novel signal amplification technology for ELISA based on catalyzed reporter deposition. Demonstration of its applicability for measuring aflatoxin B1 // J. Immunol.Meth. 1999. - Vol. 230. -P. 71-86.

110. Biagini R.E. Method for simultaneous measurement of antibodies to 23pneumococcal capsular polysaccharides // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2003. - Vol. 10. - P. 744-750.

111. Bidwell D.E., Buck A.A., Diesfeld H.J. The enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) // Bull. W.H.O. 1976. - № 54. - 129 p.

112. Binnig, G., Quate C.F., Gerber C. Atomic force microscope // Phys. Rev. Lett. -1986. Vol. 56. - № 9. - P. 930-933.

113. Bioterrorism tests in demand // IVDT. 2001. - № 7. - P. 4-6.

114. Bischoff R., Luider T.M. Methodological advances in the discovery of protein and peptide disease markers // Anal. Technol. Biomed. Life Sci.- 2004. Vol. 803. -№ 1. - P. 27-40.

115. Blackburn J.M., Hart D.J. Fabrication of protein function microarrays for systems-oriented proteomic analysis // Methods Mol. Biol. 2005. - Vol. 310. - P. 197-210.

116. Bloom J.W., Wong M.F., Mitra G. Detection and reduction of Protein A contamination in immobilized Protein A purified monoclonal antibody preparations // J. Immunol. Meth. 1989. - Vol. 117. -№ 1. - P. 83-89.

117. Bobrow M.N., Harris T.D., Shaughnessy K.J., Litt G.J. Catalyzed reporter deposition. A novel method of signal amplification: I. Application to immunoassay // J. Immunol. Meth. 1989. - Vol. 125. - P. 279-286.

118. Bobrow M.N., Shaughnessy K.J., Litt G.J. Catalyzed reporter deposition, a novel method of signal amplification: II. Application to membrane immunoassays // J. Immunol. Meth. 1991.-Vol. 137.-P. 103-111.

119. Bogen S.A., Sompuram S.R. Recent trends and advances in immunodiagnostics of solid tumors // BioDrugs. 2004. - Vol. 18. - № 6. - P. 98-114.

120. Bonenberger J., Doumanas M. Overcoming sensitivity limitations of lateral-flow immunoassays with a novel labeling technique // IVDT. 2006. - № 4. - P. 41-46.

121. Bonroy K., Frederix F., Reekmans G. et al. Comparison of random and oriented immobilisation of antibody fragments on mixed self-assembled monolayers // J. Immunol. Meth. 2006. - Vol. 312. - P. 167 181.

122. Boorsma D.M., Kalsbeek G.L. Comparative study of horseradish-peroxidase conjugates prepared with a one-step and a 2-step method // J. Histochem. Cytochem. -1975.-Vol. 23.-P. 200-208.

123. Bora I J., Chugh L., Nahar P. Covalent immobilization of proteins onto photoactivated polystyrene microtiter plates for enzyme-linked immunosorbent assay procedures // J. Immunol. Meth. 2002. - Vol. 268. - P. 171- 177.

124. Bos E.S., van der Doelen A.A., van Rooy N., Schuurs A.H. 3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine as an Ames test negative chromogen for horse-radish peroxidase in enzymeimmunoassay // J. Immunoassay. 1981. - № 2. - P. 187-191.

125. Bostrom M, Markland K., Sanden A.M. et al. Effect of substrate feed rate on recombinant protein secretion, degradation and inclusion body formation in Escherichia coli // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2005. - Vol. 68. - P. 82-90.

126. Branson B. Home sample collection tests for HIV infection // J. Amer. Med. Association. 1998. - Vol. 280. - № 19. - P. 1699-1701.

127. Brenan M., Bath M.L. Indoxyl-tetranitro blue tetrazolium method for detection of alkaline hosphatase in inimunohistochemistrv // J. Histochem. Cytochem. 1989. -Vol. 37.P. 1299-1306.

128. Bussow K., Cahill D., Nietfeld W. et al. A method for global protein expression and antibody screening on high-density filters of an arrayed cDNA library // Nucleic Acids Res. 1998. - Vol. 26. - № 21. - P. 5007-5008.

129. Butler J.E., Ni L., Nessler R. et al. The physical and functional behavior of capture antibodies adsorbed on polystyrene // J. Immunol. Meth. 1992. - Vol. 150. - P. 7789.

130. Butler J.E. Solid supports in enzyme-linked immunosorbent assay and other solidphase immunoassays // Methods. 2000. - Vol. 22. - № 1. - P. 4-23.

131. Cahill D. J. Protein and antibody arrays and their medical applications // J. Immunol. Meth. 2001. - Vol. 250. - P. 81-91.

132. Cantarero L.A., Butler J.E., Oshorn J. W. The adsorptive characteristics of protein for polystyrene and their significance in solid phase immunoassays // Anal. Biochem. -1980. Vol. 105. - P. 375-382.

133. Carney J., Braven If., Seal J., Whitworth E. Present and future applications of gold in rapid assays // IVDT. 2006. - №3. - P. 41-50.

134. Carville D. Microparticle technology in clinical diagnostics // IVDT. 2007. - № 3. -P. 38-35.

135. Catt K.J., Tregear G. W., Burger H.G., Skermer C. Antibody-coated tube method for radioimmunoassay of human growth hormone 11 Clin. Chim. Acta. 1969. - Vol. 27. -P. 267-272.

136. Cha T., Guo A., Zhu X.Y. Enzymatic activity on a chip: the critical role of protein orientation //Proteomics. 2005. - Vol. 5. - P. 416^119.

137. Chan C.P.Y., Sum K.W., Cheung K.Y. et al. Development of a quantitative lateral-flow assay for rapid detection of fatty acid-binding protein // J. Immunol. Meth. -2003.-Vol. 279.-P. 91-99.

138. Chen G.Y., Uttamchandani M., Zhu Q. et al. Developing a strategy for activity-based detection of enzymes in a protein microarray // Chembiochemistry. 2003. - Vol. 4. -P. 336-341.

139. Chiari M., Cretich M., Corti A. et al. Peptide microarrays for the characterization of antigenic regions of human chromogranin A // Proteomics. 2005. - Vol. 5. - № 14. -P. 3600-3603.

140. Chu X., Xiang Z., Fu X. et al. Silver-enhanced colloidal gold metalloimmunoassay for Schistosoma japonicum antibody detection // J. Immunol. Meth. 2005. - Vol. 301.- P. 77-88.

141. Cleveland P.H. Enzyme immunofiltration technique for rapid diagnosis of herpes simplex virus eye infection in rabbit model // J. Clin. Microbiol. 1982. - Vol. 16. -P. 672-685.

142. Coleman M.A., Lao V.H., Segelke B.W., Beernink P.T. High-throughput, fluorescence-based screening for soluble protein expression // J. Proteome Res. 2004.- Vol. 3. № 5. - P. 1024-1032.

143. Collett J.R., Cho E.J., Ellington A.D. Production and processing of aptamer microarrays // Methods. 2005. - Vol. 37. - № 1. - P. 4-15.

144. Colombelli R. Fabrication technologies for quantum cascade photonic-crystal microlasers // Nanotechnology. 2004. - Vol. 15. - P. 675-681.

145. Combaret V., Bergeron C., Brejon S. et al. Protein chip array profiling analysis of sera from neuroblastoma patients // Cancer Lett. 2005. - Vol. 228. - № 1. -P. 91-96.

146. Communicable diseases 2000. Geneva: WHO/CDS. - 2000.

147. Constantine N.T., Fox E., Abbatte E.A. et al. Diagnostic usefulness of five screening assays for HIV in an east African city where prevalence of infection is low // AIDS. -1989.-Vol. 3,-P. 313-317.

148. Conroy J. Developing biodefense IVDs is still a priority // IVDT. 2006. - № 4. -P. 23-25.

149. Cretich M., Damin F., Pirri G., Chiari M. Protein and peptide arrays: Recent trends and new directions // Biomolecular Engineering. 2006. - Vol. 23. - P. 77-88.

150. Dai J., Baker G.L., Bruening M.L. Use of porous membranes modified with polyelectrolyte multilayers as substrates for protein arrays with low nonspecific adsorption // Anal. Chem. 2006. - Vol. 78. - № 1. - P. 135-140.

151. Delehanty J.B., Ligler F.S. A microarray immunoassay for simultaneous detection of proteins and bacteria // Anal. Chem. 2002. - Vol. 74. - P. 5681-5687.

152. Dietrich H.R., Knoll J., van den Doel L.R. et al. Nanoarrays: a method for performing enzymatic assays // Anal. Chem. 2004. - Vol. 76. - № 14. - P. 4112— 4117.

153. Dillon P.P., Killard A.J., Daly S.J. et al. Novel assay format permitting the prolonged use of regeneration-based sensor chip technology // J. Immunol. Meth. -2005. Vol. 296.-P. 77-85.

154. Douglas A.S., Monteith C.A. Improvements to immunoassay by use of covalent binding assay plates // Clin. Chem. 1994. - Vol. 40. - P. 833-838.

155. Eggert J. Das wachstum des kolloiden silbers in gelatineschichten // Zeitschrift fur Elektrochemie. 1929. - Bd. 35. - № 9. - S. 728-733.

156. Eggert J. The present status of photographic development in theory and practice // J. Photogr. Sci. Eng. 1958. - №1. - P. 94-103.

157. Ekins R. P. Ligand assays: from electrophoresis to miniaturized microarrays // Clin. Chem. 1998. - Vol. 44. - P. 2015-2030.

158. Ekins R.P, Chu F.W. Multianalitical microspot immunoassay-microanalyticalcompact disk" of the future // Clin Chem. 1991. - Vol. 37. - P. 1955-1967.

159. Engvall E., Perlmann P. Enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). Quantitation of immunoglobin G // Immunochem. 1971. - Vol. 8. - P. 871-875.

160. Espina V., Woodhouse E.C., Wulfkuhle J. et al. Protein microarray detection strategies: focus on direct detection technologies // J. Immunol. Meth. 2004. - Vol. 290.-P. 121-133.

161. Esser P. Principles in Adsorption to Polystyrene // Nunc Laboratories. 1997. -Bulletin №6. - http://www.nuncbrand.com.

162. Fall B.I., Eberlein-Konig B., Behrendt H. et al. Microarrays for the screening of allergenspecific IgE in human serum // Anal. Chem. 2003. - Vol. 75. - P. 556-561.

163. Falsey J.R., Renil M., Park S., Li S., Lam K.S. Peptide and small molecule microarray for high throughput cell adhesion and functional assays // Bioconjug. Chem. 2001. - Vol. 12. - № 3. - P. 346-353.

164. Faulk W., Taylor G. An immunocolloid method for the electron microscope // Immunochem. 1971. - № 8. - P. 1081-1087.

165. Faulstich K., Gruler R., Eberhard M., Haberstroh K. Developing rapid mobile POC systems. Part 1: Devices and applications for lateral-flow immunodiagnostics // IVDT. -2007.-№7.- P. 47-53.

166. Fernandez-Sanchez C., McNeil C. J., Rawson K. et al. One-step immunostrip test for the simultaneous detection of free and total prostate specific antigen in serum // J. Immunol. Meth. 2006. - Vol. 307. - № 1-2. - P. 1-12.

167. Figeys D. Adapting arrays and lab-on-a-chip technology for proteomics // Proteomics. 2002. - Vol. 2. - P. 373-382.

168. Finnskog D., Ressine A., Laurell T., Marko-Varga G. Integrated protein microchip assay with dual fluorescent- and MALDI read-out // J. Proteome Res. 2004. - Vol. 3. - № 5. - P. 988-994.

169. Fitzpatrick B., O'Kennedy R. The development and application of a surface plasmon resonance-based inhibition immunoassay for the determination of warfarin in plasma ultrafiltrate // J. Immunol. Meth. 2004. - Vol. 291. - P. 11 - 25.

170. Food and Drug Administration (FDA). Licensed/approved HIV, HTLV and hepatitis tests // September 29, 1999.

171. Fowler S.J. The detection of proteins on blots using gold or immunogold // Methods Mol. Biol. 1994. - Vol. 32. - P. 239-255.

172. Frank R. The SPOT-synthesis technique. Synthetic peptide arrays on membrane supports—principles and applications // J. Immunol. Meth. 2002. - Vol. 267. - № 1. -P. 13-26.

173. Frens G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold suspensions //Nat. Phys. Sci. 1973. - Vol. 241. - P. 20-31.

174. Frey A., Meckelein B., Externest D., Schmidt M.A. A stable and highly sensitive 3,3',5,5'-tetramethylbenzidine-based substrate reagent for enzyme-linked immunosorbent assays // J. Immunol. Meth. 2000. - Vol. 233. - P. 47-56.

175. Fukushima K., Ikehara Y., Kanai M. et al. A (VN-aeetylglucosaminyl phosphate diester residue is attached to the glycosy Iphosphatidy 1 inos i to 1 anchor of human placental alkaline phosphatase /7 J. Biol. Chem. 2003. - Vol. 278. - P. 36296-36302.

176. Ge H. UP A, a universal protein array system for quantitative detection of proteinprotein, protein-DNA, protein-RNA and protein-ligand interactions // Nucleic Acids Res. 2000. - Vol. 28. - № 2. - P. 3-9.

177. Geho D., LaharN., Gurnani P. et al. Pegylated, steptavidin-conjugated quantum dots are effective detection elements for reverse-phase protein microarrays // Bioconjug. Chem. 2005. - Vol. 16. - № 3. - P. 559-566.

178. Gibbs J., Root DM. Evaluation of protein binding to 96 well plates by enhanced colloidal gold labeling // Costar Research Newsletter. 1988. -Vol. 1. - Issue 2. - P. 4257.

179. Gosling J.P. A decade of development in immunoassay methodology // Clin. Chem. -1990.-Vol. 36.-P. 1408 -1412.

180. Grennan K., Strachan G., Porter A.J. et al. Atrazine analysis using an amperometric immunosensor based on single-chain antibody fragments and regeneration-free multi-calibrant measurment // Anal. Chim. Acta. 2003. - Vol. 500. - P. 287-294.

181. Guesdon J.L., Ternynck 7'., Avrameas S. The use of avidin-biotin interaction in immunoenzymatic techniques // J. Histochem. Cytochem. 1979. - Vol. 27. - P. 1131-1143.

182. Guidelines for the preparation, charactarization and establishment of international and other standards and reference reagents for biological substances / In: WHO Expert

183. Commettee on Biological Standardization. Fortieth Report. Zheneva: WHO, 1990 (WHO Tekhnical Report Series #800), Annex 4.

184. Hamelinck D., Zhou H., Li L. et al. Optimized normalization for antibody microarrays and application to serum-protein profiling // Mol. Cell. Proteom. 2005. -Vol. 4. - № 6. - P. 773-784.

185. Hashida S., Tanaka K., Kohno T., Ishikawa E. Novel and ultrasensitive sandwich transfer enzyme immunoassay for antigens // Anal. Lett. 1988. - Vol. 21. - P. 114121.

186. Hatch A. A ferrofluidic magnetic micropump // J. Micro-Electromechanical Systems. -2001. Vol. 10.-P. 215-221.

187. Healy D.S., Dax E.M. An evaluation of two simple synthetic peptide based anti-HIV assays // J. Virol. Meth. 1992. - Vol. 38. - P. 305-312.

188. Hemmila I. Europium as a label in Time-Resolved Immunofluorometric Assays // Anal. Biochem. 1984. - Vol. 137. - P. 335-343.

189. Henderson K., Stewart J. Factors influencing the measurement of oestrone sulphate by dipstick particle capture immunoassay // J. Immunol. Meth. 2002. - Vol. 270. -P. 77- 84.

190. Hermann J.E., Collins M.F. Quantitation of immunoglobulin adsorption to plastic // J. Immunol. Methods. 1976. - Vol. 10. - P. 363-367.

191. Herzog V., Fahimi H. A new sensitive colorimetric assay for peroxidase using 3,3'-diaminobenzidine as hydrogen donor // Anal. Biochem. 1973. - Vol. 55. - P. 554561.

192. Herzog D.P. Emerging trends in lab automation and instrumentation // IVDT. 2006.- № 5. P. 44-47.

193. Heymann D.L. Strengthening Global Preparadness for Defense against Infections Disease Threats. Geneva: WHO. - 2001.

194. Hiller R., Laffer S., Harwanegg C. et al. Microarrayed allergen molecules: diagnostic gatekeepers for allergy treatment // FASEB J. 2002. - Vol. 16. - P. 414-416.

195. Holgate C.S., Jackson P.I., Cowen P.N., Bird C.C. Immunogold silver staining: new method of immunostaining with enhanced sensitivity I I J. Histochem. Cytochem.- 1983. Vol. 31.-P. 938-944.

196. Holland C.A., Kiechle F.L. Point-of-care molecular diagnostic systems — past, present and future // Curr. Opin. Microbiol. 2005. - Vol. 8. - P. 504-509.

197. Houseman B.T., Huh J.H., Kron S.J., Mrksich M. Peptide chips for the quantitative evaluation of protein kinase activity // Nat. Biotechnol. 2002. - Vol. 20. - № 3. - P. 270-274.

198. Hsu S.M., Soban E. Color modification of diaminobenzidine (DAB) precipitation by metallic ions and its application for double immunohistochemistry // J. Histochem. Cytochem. 1982. - Vol. 30. - P. 1079-1086.

199. Hu S.Q. A Label-free electrochemical immunosensor based on gold nanoparticles for detection of paraoxon // Talanta. 2003. - Vol. 61. - № 6. - P. 769-777.

200. Hu Y., Hirshfield I. Rapid approach to identify an unrecognized viral agent // J. Virol. Meth. 2005. - Vol. 127. - P. 80-86.

201. Huang R-P. Detection of multiple proteins in an antibody-based protein microarray system // J. Immunol. Meth. 2001. - Vol. 255. - P. 1-13.

202. Huang J.X., Mehrens D., Wiese R. et al. High-throughput genomic and proteomic analysis using microarray technology // Clin. Chem. 2001. - Vol. 47. - P. 1912-1919.

203. Hueber, W., Kidd, B.A., Tomooka, B.H et al. Antigen microarray profiling of autoantibodies in rheumatoid arthritis // Arthritis Rheum. 2005. - Vol. 52. - № 9. -P.2645-2655.

204. Hultschig C., Kreutzberger J., Seitz H. et al. Recent advances of protein microarrays // Cur. Opin. Chem. Biol. 2006. - Vol. 10. - P. 4-10.209. http://www.avtonim.ru.210. http://www.biograd.ru.211. http://www.psrc.usm.edu.

205. Izquierdo M.P. Amino, chloromethyl and acetal-functionalized latex particles for immunoassays: A comparative study // J. Immunol. Meth. 2004. - Vol. 287. - P. 159-167.

206. James T.H The reduction of silver ions by hydroquinone // J. Am. Chem. Soc. -1939. -Vol. 61.-P. 648-652.

207. James T.H. Reduction of silver ions by hydroquinone and p-phenylenediamine in alkaline solution // J. Phys. Chem. 1941. - Vol. 45. - P. 223-233.

208. Janzi, M., Odling, J., Pan-Hammarstrom, Q. et al. Serum microarrays for large scalescreening of protein levels // Mol. Cell. Proteomics. 2005. - Vol. 4. - № 12. - P. 1942-1947.

209. Jauho E. S., Boas U., Wiuff C. et al. New technology for regiospecific covalent coupling of polysaccharide antigens in ELISA for serological detection // J. Immunol. Meth. 2000. - Vol. 242. - P. 133-143.

210. Jeanson A., Cloes J.M., Bouchet M., Rentier B. Comparison of conjugation procedures for the preparation of monoclonal antibody-enzyme conjugates // J. Immunol. Meth. 1988. - Vol. 111. - P. 261-268.

211. Jeney C., Dobay O., Lengyel A. et al Taguchi optimisation of ELISA procedures // J. Immunol. Meth. 1999. - Vol. 223. - P. 137-146.

212. Johannsson A., Stanley C.J., Self C.H. A fast highly sensitive colorimetric enzyme immunoassay system demonstrating benefits of enzyme amplification in clinical chemistry // Clin. Chim. Acta. 1985. - Vol. 148. - P. 119.

213. Johnsson B., Lofas S., Lindquis G. Immobilization of proteins to a carboxymethyldextran-modified gold surface for biospecific interaction analysis in surface plasmon resonance sensors // Anal. Biochem. 1991. - Vol. 198. - P. 268-276.

214. Jones V.W., Kenseth, J.R., Porter M.D. et al. Microminiaturized immunoassays using atomic force microscopy and compositionally patterned antigen arrays // Anal. Chem. 1998. - Vol. 70. - P. 1233-1241.

215. Jonsson U., Fagerstam L., Ivarsson B. et al. Real-time biospecific interaction analysis using surface plasmon resonance and sensor chip technology // BioTechniques. 1991. - Vol. 11. - P. 620-628.

216. Kallstrom G., Warfield K.L., Swenson D.L., Mort S. et al. Analysis of Ebola virus and VLP release using an immunocapture assay // J. Virol. Meth. 2005. - Vol. 127. -P. 1-9.

217. Kamaruzaman M., Asim E. A blocking agent and a blocking step are not needed in ELISA, immunostaining dot-blots and Western blots // J. Immunol. Meth. . -1989. -Vol.117. -№ l.-P. 141-145.

218. Kartalov E.P. High-throughput multi-antigen microfluidic fluorescence immunoassays // BioTechniques. 2006. - Vol. 40. - № 1. - P. 85-90.

219. Kartalov E.P. Multiplexed microfluidic immunoassays for point-of-care in vitro diagnostics // IVDT. 2006. - № 9. - P. 55-60.

220. Kassler W.J., Dillon B.A., Haley C. et al. On-site, rapid HIV testing with same-day results and counseling //AIDS. 1997. - Vol. 11. - P. 1045-1051.

221. Katz E., Willner I. Probing biomolecular interactions at conductive and semiconductive surfaces by impedance spectroscopy: routes to impedance immunosensors, DNA-sensors, and enzyme biosensors // Electroanalysis. 2003. -Vol. 15.-№ 11.-P. 913-947.

222. Kawasaki E., Eisenbarth G.S. High-throughput radioassays for autoantibodies to recombinant autoantigens // Frontiers in Bioscience. 2000. - Vol. 5. - P. 181-190.

223. Kelen G.D., Shahan J.B., Quinn T.C. Emergency department-based HIV screening and counseling: experience with rapid and standard serologic testing //Ann. Emerg. Med. 1999. - Vol. 33. - № 2. - P.147-155.

224. Kendall C., Ionesco-Matiu I., Dressman G.R. Utilization of the biotin/avidin system to amplify the sensitivity of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // J. Immunol. Methods. 1983. - Vol. 56. - P. 329-337.

225. Kiechle F., Ingram R., Karcher R., Sykes E. Transfer of glucose measurements outside the laboratory // Lab. Med. 1990. - Vol. 21. - P. 504-511.

226. Killard A.J. Development of an electrochemical flow-injection immunoassay (FILA.) for the real-time monitoring of biospecific interactions // Anal. Chim. Acta. 1999. -Vol. 400.-P. 109-119.

227. Killard A.J. Rapid antibody biosensor assays for environmental analysis // Biochemical Society Transactions. 2000. - Vol. 28. - № 2. - P. 81-84.

228. KillardA.J., Smyth M.R. Amperometric separation-free immunosensor for real-time environmental monitoring // Analytica Chimica Acta. 2001. - Vol. 427. - P. 173180.

229. Killard A.J., Smyth M.R. Developing electrochemical immunosensors for IVDs // IVDT. 2006. - № 3. - P. 28-36.

230. Kodadek T. Protein microarrays: prospects and problems // Chem. Biol. 2001. -№8. -P. 105.

231. Kohler G., Milstein C. Continous cultures of fused cells secreting antibody of predetermined specificity //Nature. 1975. - Vol. 256. - P. 495-497.

232. Kopf E., Shnitzer D., Zharhary D. Panorama Ab microarray cell signaling kit: a unique tool for protein expression analysis // Proteomics. 2005. - Vol. 5. - № 9. - P. 2412-2416.

233. Kou Q. On-chip optical components and microfluidic systems // Microelectronic Eng. 2004. - Vol. 73-74. - P. 876-880.

234. Kricka L.J. Trends in immunoassay technologies // J. Clin. Immunoass. 1993. -Vol. 16. - P. 267-271.

235. Kricka L.J., Carter T.J., Burt S.M. et al. Variability in the adsorption properties of microtiter plates used as solid supports in enzyme immunoassay // Clin. Chem. 1980. -Vol. 26.-P. 741-746.

236. Kricka L.J., Cooper M, Ji X. Synthesis and characterization of 4-iodophenylboronic acid: a new enhancer for the horseradish peroxidase-catalyzed chemiluminescence of luminol//Anal. Biochem. 1996. - Vol. 240. - P. 119.

237. Kusnezow W. Jacob A., Walijew A. et al. Antibody immunoarrays: an evaluation of production parameters //Proteomics. 2003. - Vol. 3. - P. 254-264.

238. Kusnezow W., Hoheisel J.D. Solid supports for microarray immunoassays // J. Mol. Recognit. 2003. - Vol. 16. - № 4. - P. 165-176.

239. LaBorde R.T., O'Farrell B. Paramagnetic-particle detection in lateral-flow assays // IVDT. 2002. - № 3. - P. 36-41.

240. Lackie P.M. Immunogold silver staining for light microscopy // Histochem. Cell Biol. 1996. - Vol. 106. - P. 9-17.

241. Lasne F. Double-blotting: a solution to the problem of non-specific binding of secondary antibodies in immunoblotting procedures // J. Immunol. Meth. 2001. -Vol. 253.-P. 125-131.

242. Lechtzier V., Hutoran M., Levy T. et al. Sodium dodecyl sulphate-treated proteins as ligands in ELISA // J. Immunol. Meth. 2002. - Vol. 270. - P. 19- 26.

243. Lee J.H., Hwang K.S., Park J. et ai. Immunoassay of prostate-specific antigen (PSA) using resonant frequency shift of piezoelectric nanomechanical microcantilever // Biosens. Bioelectron. 2005. - Vol. 20. - № 10. - P. 2157-2162.

244. Leonard P., Hearty S., Brennan J. et al. Advances in biosensors for detection of pathogens in food and water // Enzyme Microb. Technol. 2003. - Vol. 32. - № 1. -P. 3-12.

245. Ler S.G., Lee F.K., Gopalakrishnakone P. Trends in detection of warfare agents. Detection methods for ricin, Staphylococcal enterotoxin B and T-2 toxin // J. Chromatography A. 2006. - Vol. 1133. - P. 1-12.

246. Lesaicherre M.L., Uttamchandani M., Chen G.Y., Yao S.Q. Antibodybased fluorescence detection of kinase activity on a peptide array // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2002. - Vol. 12. - № 16. - P. 2085-2088.

247. Leung W., Chan P., Bosgoed F. et al. One-step quantitative Cortisol dipstick with proportional reading // J. Immunol. Meth. 2003. - Vol. 281. - P. 109-116.

248. Lewinson G., Twist P. The reduction of silver ions on nuclei by hydroquinone// J. Photogr. Sci. Eng. 1973. - Vol. 21. - P. 211-219.

249. Li Y., Yang H.H., You Q.H., Zhuang Z.X., WangX.R. Protein recognition via surface molecularly imprinted polymer nanowires // Anal. Chem. 2006. - Vol. 78. -P. 317-320.

250. Lidgard G. Simplifying detection technologies // IVDT. 2006. - № 5. - P. 30-35.

251. Lin T.M., Halbert S.P. Rapid dot enzyme immunoassay for the detection of antibodies to cytomegalovirus // J. Clin. Microbiol. 1986. - Vol. 24. - P. 7-11.

252. Lingwood IX, Ballantyne J.S. Alkaline phosphatase-immunoglobulin conjugate binds to lipids in vitro, independent of antibody selectivity // J. Immunol. Meth. 2006. -Vol. 311. - P. 174—177.

253. Liotta L., Petricoin E. Molecular profiling of human cancer // Nat. Rev. Genet.2000. -№ 1. P. 48-54.

254. Liotta L., Kohn E. The microenvironment of the tumour-host interface // Nature.2001. Vol. 411. - P. 375-383.

255. Liotta L.A., Espina V., Mehta A.I. et al. Protein microarrays: meeting analytical challenges for clinical applications // Cancer Cell. 2003. - Vol. 3. - № 4. -P. 317-325.

256. Liu W.-T., Zhu L. Environmental microbiology-on-a-chip and its future impacts // TRENDS Biotechnol. 2005. - Vol. 23. - №.4. - P. 174-179.

257. Lopez M.F., Pluskal M.G. Protein micro- and macroarrays: digitizing the proteome. Review //J. Chromatography B. 2003. - Vol. 787. - P. 19-27.

258. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with Folin's phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. - Vol. 193. - P. 265-275.

259. Luo X. The application of nanoparticles in electrochemical sensors and biosensors // Electroanalysis. 2006. - Vol. 18. - № 4. - P. 319-326.

260. Lyashchenko K. P., Singh M., Colangeli R., Gennaro M. L. A multi-antigen print immunoassay for the development of serological diagnosis of infectious diseases // J. Immunol. Meth. 2000. - Vol. 242. - P. 91-100.

261. Mac Beath G., Schreiber P.L. Printing proteins as microarrays for highthroughput function determination // Science. 2000. - Vol. 289. - P. 1760-1763.

262. McKinney M.M., Parkinson A. A simple, non-chromatographic procedure to purify immunoglobulins from serum and ascitic fluid // J. Immunol. Melh. 1987. - Vol. 96. -№2. - P. 271-278.

263. Medical Devices: Application of Risk Management to Medical Devices, 2nd Edition // ISO/DIS 14971:2005. Geneva: International Organization for Standardization. -2005.

264. Miller, J.C. Antibody microarray profiling of human prostate cancer sera: antibody screening and identification of potential biomarkers // Proteomics. 2003. - Vol. 3. -P. 56-63.

265. Moeremans M., Daneels G., Dijck D.V. et al. Sensitive visualization of antigen-antibody reactions in dot and blot immune overlay assays with immunogold and immunogold/silver staining // J. Immunol. Meth. 1984. - Vol. 74. - P. 353-360.

266. Montoya A., Castell J. V. Long-term storage of peroxidase-labelled immunoglobulins for use in enzyme immunoassay // J. Immunol. Meth. 1987. - Vol. 99. - P. 13-20.

267. Moody M.D., Van Arsdell S.W., Murphy K.P. et al Array-based ELISAs for high-throughput analysis of human cytokines // BioTechniques. 2001. - Vol.31. - P. 186191.

268. Nakane P.K., Kawaoi A. Peroxidase-labeled antibody. A new method of conjugation // J. Histochem. Cytochem. 1974. - Vol. 22. - № 12. - P. 1084-1091.

269. Namasivayam V. Advances in on-chip photodetection for applications in miniaturized genetic analysis systems // J. Micromech. Microeng. 2004. - Vol. 14. -P. 81-90.

270. Nielsen U., Geierstanger B. Multiplexed sandwich assays in microarray format // J. Immunol. Meth. 2004. - Vol. 290. - P. 107- 120.

271. Norde W. The adsorption of proteins at solid surfaces // Adhesion and Adsorption of Polymers. 1979. - Vol. 12. - P. 801-825.

272. O 'Brien A.M., Smith A. T., O'Fagain C. Effects of phthalic anhydride modification on horseradish peroxidase stability and activity // Biotechnol. Bioeng. 2003. - Vol. 81. -P. 233-239.

273. O'Farrell B., Bauer J. Developing highly sensitive, more-reproducible lateral-flow assays. Part 1: new approaches to old problems // IVDT. 2006. - №5. - P. 63-71.

274. O'Farrell B., Bauer J. Developing highly sensitive, more-reproducible lateral-flow assays. Part 2: new challenges with new approaches // IVDT. 2006. - №6. -P. 67-75.

275. Ofir K., Berdichevsky Y., Benhar I. et al. Versatile protein microarray based on carbohydrate-binding modules // Proteomics. 2005. - Vol. 7. - P. 1806-1814.

276. Oliver C. Use of immunogold with silver enhancement // Meth. Mol. Biol. 1994. -Vol. 34. - P. 211-217.

277. O'Keeffe M., Crabbe P., Salden M. C. et al. Preliminary evaluation of a lateral flow immunoassay device for screening urine samples for the presence of sulphamethazine // J. Immunol. Meth. 2003. - Vol. 278. - P. 117-124.

278. Okrongly D. The ADVIA Centaur® imunoassay system—designed for infectious disease testing // J. Clin. Virol. 2004. - Vol. 30. - P. 18-21.

279. Oku Y., Kamiya K., Kamiya H. et al. Development of oligonucleotide lateral-flow immunoassay for multi-parameter detection // J. Immunol. Meth. 2001. - Vol. 258.-P. 73-84.

280. Opalka D. Simultaneous quantitation of antibodies to neutralizing epitopes on viruslike particles for human papillomavirus types 6, 11, 16, and 18 by multiplexed Luminex assay // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2003. - Vol. 10. - P. 108-115.

281. Papadea C. Evaluation of the i-STAT portable clinical analyzer for point-of-care blood testing in the intensive care units of a university children's hospital // Annals of Clinical and Laboratory Science. 2002. - Vol. 32. - P. 231-243.

282. Pappas M.G., Hajkowski R., Hockmeyer W.T. Dot enzyme-linked immunosorbent assay (Dot-ELISA): a micro method for the rapid diagnosis of visceral leishmaniasis // J. Immunol. Meth. 1983. - Vol. 64. - P. 205-214.

283. Pappas M.G. Rapid serodiagnosis of parasitic infections by Dot-ELISA using dipsticks // Trans. Roy. Trop. Med. Hyg. 1986. - Vol. 80. - P. 1006.

284. Park R. Industry joins the battle against bioterrorism // IVDT. 2002. - № 1. -P. 5-10.

285. Park R. Developing diagnostics for the war on bioterrorism // IVDT. 2003. - № 4. -P. 6-8.

286. ParkR. The evolution of assay development // IVDT. 2006. - № 3. - P. 36-38.

287. Patent Eur. N 0217403 (1987) Solid-phase analytical device and method for using same // Brown W., Deverauh S., Knigge K. and al. // Abbott lab., Chicago, US.

288. Patent Eur. № 0258963 (1987) Immunoassay method using colloidal gold // Graham H., Mochnal D., Chang C., Kang J. // Ortho Diagnostic Systems Inc., New Brunswick, U.S.

289. Patent Eur. № 0296398 (1988) Immunoassay method for detecting antibodies and antigens // Todd W„ Barstad P. // Uehkull & Stolberg, Hamburg, BDR.

290. Patent Eur. № 0321008 (1988) Immunoassay with using unmetall labels // Van

291. Doom A., Wichers J., Van Gelder W. // Holland Byotechnology B.V., NL.

292. Patent Eur. № 0298368 (1988) Immunoassay with unmetal colloidal particles // Yost D., Russell J., Yang H. // Abbott lab., Chicago, US.

293. Patent U.S. N 4775636 (1988) Blot overlay assay using colloidal metal particles // Moermans M., Daneels G., De Mey J.// Jenssen Pharmaceutica N.V., Beerse, Belgium.

294. Patent US 5252496 (1980) Carbon black immunochemical label // Princeton J.K., Wyckoff Y„ Edison Y.H.

295. Patent WO 96/22532 (1996) Immunoassay method and reagent involving suspendile carbon labeled bioaffme particles // Lonnberg M., Carlson J.

296. Patton W.F., Lam L., Su Q., Lui M. Metal chelates as reversible stains for detection of electroblotted proteins: application to protein microsequencing and immunoblotting // Anal. Biochem. 1994. - Vol. 220. - № 2. - P. 324-335.

297. Paweletz C.P., Charboneau L., Bichsel V.E. et al. Reverse phase protein microarrays which capture disease progression show activation of pro-survival pathways at the cancer invasion front // Oncogene. 2001. - Vol. 20. - P. 1981-1989.

298. Peluso P., Wilson D.S., Do D., Tran H. et al. Optimizing antibody immobilization strategies for the construction of protein microarrays. Anal. Biochem. - 2003. - Vol. 312.-P. 113-120.

299. Peruski A.H., Johnson III L.H., Peruski Jr.L.F. Rapid and sensitive detection of biological warfare agents using time-resolved fluorescence assays // J. Immunol. Meth. -2002.-Vol. 263.-P. 35-41.

300. Petersen K., McMillan W. IVD systems in bioterrorism response // IVDT. 2002. -№5.-P. 12-16.

301. Pethig R., Markx G.H. Applications of dielectrophoresis in biotechnology // Trends Biotechnol. 1997. - Vol. 15. - P. 426^132.

302. Phelan M.L., Nock S. Generation of bioreagents for protein chips // Proteomics. -2003. Vol. 3. -№ 11.-P. 2123-2134.

303. Porstmann B., Porstmann T., Nugel E. Comparison of chromogens for the determination of horseradish peroxidase as a marker in enzyme immunoassay // J. Clin. Chem. Clin. Biochem. 1981. - Vol. 19. - P. 435-442.

304. Powers D.M. Risk management for IVDs. Part 1: Planning and documenting the risk management process // IVDT. 2006. - № 3. - P. 30-32.

305. Powers D.M. Risk management for IVDs. Part 2: Assessing risks to patients from incorrect test results // IVDT. 2006. - № 4. - P. 28-31.

306. Presentini R., Terr ana B. Influence of the antibody-peroxidase coupling methods on the conjugates stability and on the methodologies for the preservation of the activity in time // J. Immunoass. 1995. - Vol. 16. - P. 309-316.

307. Primary amines introduced on a CovaLinke NH2 polystyrene surface: effect of spacer length on the reactivity on the amino groups // Nunc Technote. 1998. -№ 4. - http://www.nuncbrand.com.

308. Purvis D., Leonardova O., Farmakovsky D., Cherkasov V. An ultrasensitive and stable potentiometric immunosensor // Biosensors and Bioelectronics. 2003. - Vol. 18. - P. 1385-1390.

309. Quinn J.G., O'Kennedy R. Transduction platforms and biointerfacial design of biosensors for real-time biomolecular interaction analysis // Anal. Lett. 1999. - Vol. 32.-№8.-P. 1475-1482.

310. Ramachandran N., Larson D.N., Stark P.R. et al. Emerging tools for real-time labelfree detection of interactions on functional protein microarrays // FEBS J. 2005. -Vol. 272. - № 21. - P. 5412-5425.

311. Reyes D.R. Micro total analysis systems. 1. Introduction, theory, and technology // Anal. Chem. 2002. - Vol. 74. - P. 2623-2636.

312. Robertson W.R., Lambert A., Loveridge N. The role of modern bioassays in clinical endocrinology // Clinical Endocrinology. 1987. - Vol. 27. - № 2. - P. 259-278.

313. Robinson N. Immunogold conjugation for IVD applications // IVDT. 2002. - №3. -P. 33-36.

314. Rogers K.R. Principles of affinity-based biosensors // Mol. Biotechnol. 2000. - Vol. 14,-№2.-P. 109-116.

315. Rosenbloom A.J., Ferris R., Sipe D.M. et al. In vitro and in vivo protein sampling by combined microdialysis and ultrafiltration // J Immunol. Meth. 2006. - Vol. 309. - P. 55-68.

316. Rubenstein A.S., Hostler R.D., White C.C. et al. Particle entrapment: Application to ICON™ immunoassay // Clin. Chem. 1986. - Vol. 32. - P. 1073-1075.

317. Ru-Qiang L., Cui-Yan T., Kang-Cheng R. Colorimetric detection of protein microarrays based on nanogold probe coupled with silwer enhancement // J. Immunol. Meth. 2004. - Vol. 285. - P. 157-163.

318. Safe, Fast and Relable: AIDS Actions Contributing Organization // Washington. -1998. P. 1-32.

319. Sanders G.H.W., Manz A. Chip-based microsystems for genomic and proteomic analysis // Trends Anal. Chem. 2000. - Vol. 19. - P. 364-378.

320. Schaeferling M., Schiller S., Paul H. et al. Application of selfassembly techniques in the design of biocompatible protein microarray surfaces // Electrophoresis. 2002. -Vol. 23. - P. 3097-3105.

321. Schmitt J. Recombinant autoantigens for diagnosis and therapy of autoimmune diseases 11 Biomedicine and Pharmacotherapy. 2003. - Vol. 57. - № 7. -P. 261-268.

322. Schumacher J.T. Direct electron transfer observed for peroxidase to screen-printed graphite electrodes // Electroanalysis. 2001. - Vol. 13. - № 8-9. - P. 779-785.

323. Schweitzer B., Roberts S., Grimwade B. et al. Multiplexed protein profiling on microarrays by rolling-circle amplification // Nat. Biotechnol. 2002. - Vol. 20. -P. 359-366.

324. Schweitzer B., Predki P., Snyder M. Microarrays to characterize protein interactions on a whole-proteome scale // Proteomics. 2003. - Vol. 3. - № 11. - P. 2190-2199.

325. Scorilas A., Bjartell A., Lilja H. et al. Streptavidine polyvinylamine conjugate labeled wit a europium chelate: applications in immunoassay, immunohistochemistry, and microarrays // Clin. Chem. - 2000. - Vol. 46. - P. 1450-1458.

326. Segala D.M., Weinerb G. J., Weinerc L. M. Introduction: bispecific antibodies // J. Immunol. Meth. 2001. - Vol. 248. - P. 1-6.

327. Sehr P., Zumbach K., Pawlita M. A generic capture ELISA for recombinant proteins fused to glutathione ¿'-transferase: validation for HPV serology // J. Immunol. Meth. -2001.-Vol. 253.-P. 153-162.

328. Self C.H. Enzyme amplification a general method applied to provide an immunoassisted assay of placental alkaline phosphatase // J. Immunol. Meth. - 1985. -Vol. 76.-P. 389-397.

329. Self C.H., Cook D.B. Advances in immunoassay technology // Current Opinion Biotechnol. 1996. - Vol. 7. - P. 60-65.

330. Sengupta J., Dhar T.K., Ali E. Sandwich immunoassay of small molecules: II. Effects of heterology and development of a highly specific and sensitive enzyme immunoassay of testosterone // J. Immunol. Meth. 1992. - Vol. 147. - P. 181-188.

331. Seong S.Y., Choi C.Y. Current status of protein chip development in terms of fabrication and application // Proteomics. 2003. - Vol. 3. - №11. - P. 2176-2189.

332. Sezholtz D. Paramagnetic particles for optimized biological separations // IVDT. -2005. -№2.-P. 39^13.

333. Shalev A., Greenberg A.H., McAlpine P.J. Detection of attograms of antigen by a high-sensitivity enzyme-linked immunosorbent assay Hs-ELISA using a fluorogenic substrate//J. Immunol. Meth. 1980. - Vol. 38. - P. 125-134.

334. Shavali S., Samejima M., Uchida K. et al. Improved enzyme immunoassay method for melatonin: application to the determination of serum melatonin in rats, sheep, and humans // Clin. Chem. 1999. - Vol. 45. - P. 690-695.

335. Shreffler W.G., Lencer D.A., Bardina L., Sampson H.A. IgE and IgG4 epitope mapping by microarray immunoassay reveals the diversity of immune response to the peanut allergen, Ara h 2 // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. - Vol. 116. - № 4. - P. 893-899.

336. Shuman D.C., James T.H. Kinetics of physical development // J. Photogr. Sci. Eng. -1971. Vol. 15.-P. 42-47.

337. Snow A. Integrating Risk Management into the Design and Development Process // Medical Device & Diagnostic Industry. 2001. - Vol. 23. - № 3. - P. 99-111.

338. Snowden K., Hommel M. Antigen detection immunoassay using dipsticks and colloidal dyes // J. Immunol. Meth. 1991. - Vol. 140. - P. 57-64.

339. Snyder J. W., Wolcott M.J. The role of diagnostics in bioterrorism // IVDT. 2007. -№ 4. - P. 26-32.

340. Soini E., Kojola H. Time-resolved fluorimetr for lanthanide chelates a new generation non-isotopic immunoassays // Clin. Chem. - 1983. - Vol. 29. - № 1. -P. 65-68.

341. Speer R., Wulfkuhle J.D., Lotta L.A. Petricoin 3rd E.F. Reverse-phase protein microarrays for tissue-based analysis // Curr. Opin. Mol. Ther. 2005. - Vol. 7. -№3. - P. 240-245.

342. Spielberg F., Kabeya C.M., Ryder R.W. et al. Field testing and comparative evaluation of rapid, visually read screening assays for antibody to human immunodeficiency virus // Lancet. 1989. - Vol. 8638. - P. 580- 584.

343. Soroka S.D. The use of simple, rapid tests to detect antibodies to human immunodeficiency virus types 1 and 2 in pooled serum specimens // J. Clin. Virol. -2003.-Vol. 27.-P. 90-96.

344. Stewart B.J., Houghton R.L., Morrow W.J. W., Raychaudhuri S. Design considerations for immunodiagnostics II IVDT. 2006. - № 4. - P. 40-51.

345. Straub T.M., Chandler D.P. Towards a unified system for detecting waterborne pathogens // J. Microbiol. Methods. 2003. - Vol. 53. - P. 185-197.

346. Sulimenko T., Draber P. A fast and simple dot-immunobinding assay for quantification of mouse immunoglobulins in hybridoma culture supernatants // J. Immunol. Meth. 2004. - Vol. 289. - P. 89-95.

347. Tabatabai L.B. Developments in diagnostic technologies for bioterrorism agents // IVDT. 2005. - № 8. - P. 36-42.

348. Takatsy, G. Acta Microbiol. Hung. 1955. - № 3. - P. 191-193.

349. Tam S. W., Wiese R., Lee S., Gilmore J., Kumble K.D. Simultaneous analysis of eight human Thl/Th2 cytokines using microarrays // J. Immunol. Meth. 2002. - Vol. 261. -P. 157-163.

350. Tannapfel A. Identification of novel proteins associated with hepatocellular carcinomas using protein microarrays // J. Pathol. 2003. - Vol. 201. - P. 238-249.

351. Taton T.A., Mirkin C.A., Letsinger R.L. Scanometric DNA array detection with nanoparticle probes // Science. 2000. - Vol. 289. - P. 1757- 1760.

352. Taylor R.F. A phased approach to the development and commercialization of new immunodiagnostic assays. IVDT. - 2006. - № 3. - P. 36-40.

353. Templin M., Stoll D., Schrenk M. et al. Protein microarray technology // Drug Discov. Today. 2002. - № 7. - P. 815-820.

354. Tijssen P., Kurstak E. Highly efficient and simple methods for preparation of peroxidase-antibody conjugates for enzyme immunoassays // Anal. Biochem. 1984. -Vol. 136. -№2.-451-457.

355. Tijssen P., Adam A. Enzyme-linked immunosorbent assay and developments in techniques using latex beads. Review // Curr. Opin. Immunol. 1991. - Vol. 3. - № 2. -P. 233-237.

356. Tisone T. C., Citeau H., Mcintosh B. In-line processing trends for lateral-flow immunoassay manufacturing // IVDT. 2007. - № 6. - P. 24-32.

357. Tomizaki K.Y., Usui K., Mihara H. Protein-detecting microarrays: current accomplishments and requirements // Chembiochem. 2005. - Vol. 6. - № 5. - P. 782799.

358. Tonkinson J.L. Smaller is better // IVDT. 2003. - № 9. - P. 29-34.

359. Towbin H., Gordon J. Immunoblotting and dot immunoblotting current status and outlook // J. Immunol. Meth. - 1984. - Vol. 72. - P.313-340.

360. Tu S.I. Factors affecting the bacterial capture efficiency of immuno-beads. A comparison between beads with different size and density // J. Rapid Meth. Automation in Microbiol. 2003. - Vol. 11. - P. 35-36.

361. Turner D.R., Wolowoiuk C. Electroless copper plating as an image amplifier for electrolytic printing // J. Electrochem. Soc. 1971. - Vol. 118. - № 7. - P.1235-1239.

362. Usui-Aoki K., Shimada K., Nagano M. et al. A novel approach to protein expression profiling using antibody microarrays combined with surface plasmon resonance technology // Proteomics. 2005. - Vol. 5. - № 9. - P. 2396-2440.

363. Urbanek R., Kemeny D.M., Samuel D. Use of the enzyme linked immunosorbent assay for measurement of specific antibodies // J. Immunol. Meth. 1985. - Vol. 79. -P. 123-131.

364. Valkirs G.E., Barton R. ImmunoConcentration™ a new format for solid phase immunoassay//Clin. Chem. - 1985. - Vol. 31.-P. 1427-1431.

365. Van Beek L.K.H. Special properties of physical development process // J. Photogr. Sci. Eng. 1976. - Vol. 20. - № 2. - P. 88-91.

366. Van den Berk G.E. Evaluation of the rapid immunoassay determine HIV 1/2 for detection of antibodies to Human Immunodeficiency Virus types 1 and 2 // J. Clin. Microbiol.-2003.-Vol. 41. P. 3868-3869.

367. Van Noorden C.J,, Jonges G.N. Quantification of the histochemical reaction for alkaline phosphatase activity using the indoxyl-tetranitro BT method // Histochem. -1987. Vol. 19.- P. 94-99.

368. Voogd C.E., van der Stel J. J., Jacobs J.A. On the mutagenic action of some enzyme immunoassay substrates // J. Immunol. Meth. 1980. - Vol. 36. - P. 55-58.

369. Walton B.C., Pappas M.G., Sierra M.Jr. et al. Field use of the Dot-ELISA test for human visceral leishmaniasis in Honduras // Bull. P.A.H.O. 1986. - Vol. 20. - P. 147-155.

370. Wang C.C., Huang R.-P., Sommer M. et al. Array-based multiplexed screening and quantitation of human cytokines and chemokines // J. Proteome Res. 2002. - № 1. -P. 337-342.

371. Wang X., Zhan W., Xing J. Development of dot-immunogold filtration assay to detect white spot syndrome virus of shrimp // J. Virol. Meth. 2006. - Vol. 132. - № 1-2.-P. 212-215.

372. Waris M.E., Meltola N.J., Soini J.T. et al. Two-photon excitation fluorometric measurement of homogeneous microparticle immunoassay for C-reactive protein // Anal. Biochem. 2002. -Vol. 309. - № 1. - P. 67-74.

373. Weinryb I. The oxidation of horseradish peroxidase by periodate // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1968. - Vol. 31. - P. 110-115.

374. Welinder K., Smillie L. Amino acid sequence studies of horseradish peroxidase: II. Thermolytic peptides // Can. J. Biochem. -1972. Vol. 50. - P. 63-68.

375. Verpoorte E. Microfluidic chips for clinical and forensic analysis // Electrophoresis. 2002. - Vol. 23. - P. 677-712.

376. Westgard J.O. Quality of laboratory testing today 11 Labor. Med. 2005. - Vol. 36. -№10. -P. 12-15.

377. Wiese R., Belosludtsev Y., Powdrill T., Hogan M. Simultaneous multianalytes ELISA performed on a microarray platform // Clin. Chem. 2001. - Vol. 47. - P. 1451-1459.

378. Wiese R. Analysis of several fluorescent detector molecules for protein microarray use // Luminescence. 2003. - Vol. 18. - № 1. - P. 25-30.

379. Wilchek M. Bayer E.A. The avidin-biotin complex in immunology // Immunol. Today. 1984. - Vol. 5. - P. 39-43.

380. Wilson D.S., Nock S. Recent developments in protein microarray technology // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 2003. - Vol. 42. - P. 494.

381. Wilson M.B., Nakane P.K. The covalent coupling of proteins to periodate-oxidized sephadex: a new approach to immunoadsorbent preparation // J. Immunol. Meth. -1976. Vol. 12. - P. 171-181.

382. Wins singer N., Damoisseaux R., Tully D.C. et al. PNA-encoded protease substrate microarrays // Chem. Biol. 2004. - Vol. 11. - № 10. - P. 1351-1360.

383. Witte K.L., Nock S. Recent applications of protein arrays in target identification and disease monitoring // Drug Discovery Today: Technology. 2004. - Vol. 1. - №1. - P. 35-40.

384. Wodicka L., Dong H., Mittmann M. et al Genome-wide expression monitoring in Saccharomyces cerevisiae // Nat. Biotechnol. 1997.1. Vol. 15. P. 1359-1366.

385. Woodbury R.L., Varnum S.M., Zangar R.C. Elevated HGF levels in serum from breast cancer patients detected using a protein microarray ELISA // J. Proteome Res. -2002. -№ 1. P. 233-238.

386. World Health Organization. Revised recommendations for the selection and use of HIV antibody tests // Weekly Epidemiol. Rec. 1997. - Vol. 72. - P. 81-88.

387. Xiang X., Tianping W., Zhigang T. Development of a rapid, sensitive, dye immunoassay for schistosomiasis diagnosis: a colloidal dye immunofiltration assay // J. Immunol. Meth. 2003. - Vol. 280. - P. 49- 57.

388. Xu Q., Lam K.S. Protein and chemical microarrays-powerful tools for proteomic // J. Biomed. Biotechnol. 2003. - №5. - P. 257-266.

389. Yamasaki R.B., Osuga D.T., Feeney R.E. Periodate oxidation of methionine in proteins//Anal. Biochem. 1982. -Vol. 126. -№ l.-P. 183-189.

390. Yang Y.F., Mu S.L. Bioelectrochemical responses of the polyaniline horseradish peroxidase electrodes // J. Electroanal. Chem. 1997. - Vol. 432. - № 1. - P. 71-78.

391. Yguerabide J., Yguerabide E.E. Light-scattering submicroscopic particles as highly fluorescent analogs and their use as tracer labels in clinical and biological applications.

392. Theory // Anal. Biochem. 1998. - Vol. 262. - P. 137- 156.

393. Yguerabide J., Yguerabide E.E. Light-scattering submicroscopic particles as highly fluorescent analogs and their use as tracer labels in clinical and biological applications.

394. Experimental characterization // Anal. Biochem. 1998. - Vol. 262. - P. 157- 176.

395. Zhan H., Meyerhoff M.E. Gold-coated magnetic particles for solid-phase immunoassays: Enhancing immobilized antibody binding efficiency and analytical performance // Anal. Chem. 2006. - Vol. 78. - P. 609-616.

396. Zheng G., Patolsky F., Cui Y. et al. Multiplexed electrical detection of cancer markers with nanowire sensor arrays // Nat. Biotechnol. 2005. - Vol. 23. - № 10. - P. 1294-1301.

397. Zhou X, Zhou J. Protein microarrays on hybrid polymeric thin films prepared by self-assembly of polyelectrolytes for multiple-protein immunoassays // Proteomics. -2006.-Vol. 6,-№5.-P. 1415-1426.

398. Zhu H., Klemic J.F., Chang S. et al. Analysis of yeast protein kinases using protein chips // Nat. Genet. 2000. - Vol. 26. - P. 283-288.

399. Zhu H., Bilgin M., Bangham R. et al. Global analysis of protein activities using proteome chips // Science. 2001. - Vol. 293. - P. 2101-2105.

400. Zhu H., Snyder M. Protein chip technology // Curr. Opin. Chem. Biol. 2003. - Vol. 7. -№ l.-P. 55-63.

401. Zhu L. Filter-based microfluidic device as a platform for immunofluorescent assay of microbial cells // Lab. Chip. 2004. - Vol. 4. - P. 337-341.

402. Zhu, Q., Uttamchandani, M., Li, D. et al. Enzymatic profiling system in a small-molecule microarray // Org. Lett. 2003. - Vol. 5. - № 8. - P. 1257-1260.

403. Zhu Y, He W., Liang Y. et al. Development of a rapid, simple dipstick dye immunoassay for schistosomiasis diagnosis // J. Immunol. Meth. 2002. - Vol. 266. -P. 1-5.