Аляриоз плотоядных в Центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации: биология возбудителя, эпизоотология, патогенез и лечение тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.19, кандидат ветеринарных наук Трусова, Анастасия Викторовна

• Трусова, Анастасия Викторовна
• кандидат ветеринарных наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Трусова, Анастасия Викторовна

ВВЕДЕНИЕ.

1.0Б30Р ЛИТЕРАТУРЫ.

2.СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1.МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.РЕЗУЛБТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.1.ЭПИЗООТОЛОГИЯ АЛЯРИОЗА ПЛОТОЯДНЫХ В ЦЕНТРАЛЬНОМ РАЙОНЕ НЕЧЕРНОЗЕМНОЙ ЗОНЫ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ 22 2.2.1.1.3араженность домашних и диких плотоядных половозрелыми трематодами Alaria alata

2.2.1.2.3араженность пресноводных моллюсков из рода Planorbis личиночными стадиями Alaria alata.

2.2.1.3.Зараженность головастиков и взрослых амфибий из отряда Anura мезоцеркариями Alaria alata.

2.2.1 АЗараженность насекомоядных млекопитающих мезоцеркариями Alaria alata.

2.2.1.5.3араженность мышевидных грызунов мезоцеркариями Alaria alata.

2.2.2.РАЗВИТИЕ ALAMA ALATA (Schrank, 1788) Krause, 1914 В

ОРГАНИЗМЕ ПЛОТОЯДНЫХ.

2.2.3. ПАТОГЕНЕЗ АЛЯРИОЗА ПЛОТОЯДНЫХ.

2.1.4. ИЗЫСКАНИЕ СРЕДСТВ ДЕГЕЛЬМИНТИЗАЦИИ ПЛОТОЯДНЫХ

ПРИ АЛЯРИОЗЕ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Аляриоз плотоядных в Центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации: биология возбудителя, эпизоотология, патогенез и лечение»

Актуальность темы. Среди паразитарных болезней плотоядных животных особое место занимает аляриоз, вызываемый трематодой Alaria alata (Goeze, 1782), половозрелые стадии которой паразитируют в тонком отделе кишечника, на территории Российской Федерации аляриоз зарегистрирован повсеместно, трематоды изолированы из кишечника лисиц, песцов, волков, шакалов, собак, енотовидных собак (Л.Ф. Потехина, 1950, 1951, 1971; В.А. Савинов, 1952, 1953; Ю.Ф. Петров и др., 2005; А.Н: Шинкаренко, 2005;Б.Г. Абалихш^и др., 2002; E.H. Крючкова и др., 2008 и др.).

Биологию трематод Alaria alata, которые встречаются на территории Российской Федерации, в организме промежуточных хозяев - пресноводных моллюсков из рода Planorbis изучали N.S.Rosma (1931*, 1934), S.Vamaguti (1939, 1958), Л.Ф. Потехина (1950, 1951), в организме головастиков и взрослых амфибий из отряда Anura - S.Vamaguti (1939, 1958), Л.Ф. Потехина (1950,' 1951), а в организме плотоядных - Л.Ф. Потехина (1950; 1951), В.А. Савинов (1952, 1953), А.Н. Шинкаренко (2005). Однако полученные данные по биологии Alaria alata в организме амфибий из отряда Anura и в организме плотоядных авторы< трактуют по-разному. Все это определяет необходимость еще раз подробно остановиться на изучении биологии- паразита в организме плотоядных.

Несмотря на достаточно широкое распространение аляриоза среди домашних и диких плотоядных, до сих пор остается неясным патогенез и клиника заболевания, хотя в литературе имеется несколько сообщений о метацеркариозной бронхопневмонии плотоядных при паразитировании Alaria alata (В.А. Савинов, 1952,1953; К.И. Скрябин, 1971).

Отечественной ветеринарной наукой предложено много достаточно высокоэффективных антгельминтиков при трематодозах млекопитающих (Н.В. Демидов, 1982; Т.П. Веселова, 1968; Т.П. Веселова и др., 1994; И.А. Архипов, 2009; Ю.Ф. Петров, 1988, 1994; Ю.Ф. Петров и др., 2006; В.В. Кузьмичев, 1997; Б.Г. Абалихин, 1996; А.Н. Шинкаренко, 2005 и др.). Однако практические ветеринарные специалисты пока не располагают высокоэффективными антгельминтиками для дегельминтизации плотоядных i при аляриозе.

Цель и задачи исследований. Целью наших исследований была разработка рациональной системы борьбы с аляриозом домашних и диких плотоядных на территории центрального района Нечерноземной зоны Российской Федерации. Для чего были поставлены следующие задачи:

-изучить распространение аляриоза среди домашних и диких плотоядных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации;

-определить состав промежуточных, резервуарных хозяев Alaria alata в данном регионе;

-уточнить некоторые детали развития Alaria alata в организме плотоядных;

-изучить патогенез и клинику аляриоза у собак.;

-изыскать высокоэффективные антгельминтики для дегельминтизации плотоядных при аляриозе;

-разработать систему профилактики аляриоза для Европейской части Российской Федерации.

Научная новизна. Установлено, что на территории Московской и Тверской областей трематоды Alaria alata паразитируют в тонком отделе кишечника квартирных, служебных, прифермских, бродячих собак, лисиц, волков. В возрастном аспекте наивысшая инвазия наблюдается у плотоядных 4-летнего и старше возраста, умеренная - у животных 1,5-3-летнего возраста, наименьшая - у плотоядных 1-6-месячного возраста.

Промежуточными хозяевами для Alaria alata в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации являются пресноводные моллюски Planorbis planorbis, Planorbis vortex, резервуарными хозяевами -головастики и взрослые амфибии из отряда Anura, в организме которых формируются мезоцеркарии без образования цист. В передаче инвазионного i начала от амфибий к плотоядным важную роль играют насекомоядные млекопитающие (кроты, ежи) и мышевидные грызуны (лесные полевки, обыкновенные полевки, лесные мыши), в мышечной ткани и подкожной клетчатке которых мезоцеркарии A.alata сохраняются длительное время.

Установлено, что мезоцеркарии A.alata в организме плотоядных из желудка мигрируют в грудную, затем в брюшную полость, после чего на 4 сутки достигают альвеолярной ткани легких, где за 14 дней они превращаются в метацеркариев. Последние на 18-20 сутки инвазии мигрируют в бронхи и трахею, отхаркиваются в ротовую полость, заглатываются и на 30-35 сутки инвазии достигают половой зрелости. Некоторая часть мезоцеркариев мигрирует из желудка в легкие гематогенным путем через печень.

Выявлено, что аляриоз протекает в двух формах - острая и хроническая. Острая форма во времени совпадает с паразитированием личинок A.aláta в легких плотоядных и сопровождается? метацеркариозной бронхопневмонией. Хроническая форма? во времени; совпадает с паразитированием половозрелых A.alata в кишечнике плотоядных,, сопровождается развитием; язвенного энтерита, дисбактериозом кишечника: и глубокими нарушениями функций органов и систем;

Для дегельминтизации плотоядных при аляриозе предложены фенбендазол и ивомек плюс.

Практическая ценность. Предложены; для дегельминтизации: плотоядных при аляриозе фенбендазол (по 30-40 мг/кг по ДВ внутрь два-три дня подряд) и ивомек плюс (подкожно;, однократно по 0,150 мл на голову). Научные разработки автора вошли в нормативный документ: «Рекомендации ■ по профилактике аляриоза. плотоядных в Российской Федерации» (утверждены Россельхозакадемией 29 сентября 2005 года).

Апробация работы; Основные положения диссертации доложены; ш одобрены на: научных конференциях ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» (М., 2007, 2008, 2009); научной конференции Костромской TGXA (2009); научной конференции Ивановской ГСХА (2009); научной конференции ГНУ Самарская НИВС (2009).

На защиту выносятся:

-распространение аляриоза среди домашних и диких плотоядных в Московской и Тверской областях;

-состав промежуточных и резерву арных хозяев Alaria alata в изучаемом регионе;

-биология A.alata в организме собак; -патогенез и клиника аляриоза у собак; -эффективность антгельминтиков при аляриозе плотоядных; -система профилактики^ аляриоза в Европейской части Российской Федерации.

Публикации. По материалам диссертации опубликованы 9 работ, в том числе четыре работы в изданиях, регламентированных ВАК РФ для докторских и кандидатских диссертаций, которые отражают основное содержание диссертации.

Личный вклад соискателя. Представленная диссертация является результатом шестилетних научных исследований автора. По материалам первых двух разделов диссертации нами в соавторстве с Петровым Ю.Ф., Гудковой А.Ю., Зубовым A.B., Рогозиной И.Е., Шахбиевым Х.Х., Коренсковой Е.В. в журнале «Российский паразитологический журнал», в материалах научной конференции ВОГ РАН опубликованы три работы. I

Однако в нашу диссертацию не вошли материалы исследований вышеперечисленных соавторов работ (в диссертационный совет представлены справки от соавторов об отсутствии заимствования нами их данных). По материалам третьего раздела диссертации нами в соавторстве с Петровым Ю.Ф., Гудковой А.Ю., Рогозиной И.Е., Буслаевым C.B. в журналах «Ветеринарная патология», «Российский паразитологический журнал» опубликованы две работы. Однако исследования соавторов статей в нашу диссертацию не вошли (в диссертационный совет представлены справки от соавторов об отсутствии заимствования их данных).

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 119 страницах компьютерного текста, содержит 16 таблиц, 33 рисунка. Состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, четырех глав собственных исследований, заключения, выводов, практических предложений. Список литературы включает 115 источников, в том числе 87 отечественных и 28 иностранных авторов.

Заключение диссертации по теме «Паразитология», Трусова, Анастасия Викторовна

ВЫВОДЫ:

1.В центральном районе (г.Москва и Московская область, г.Тверь и

Тверская область) Нечерноземной зоны Российской Федерации половозрелые трематоды Alaria alata паразитируют в тонком отделе кишечника квартирных, служебных, прифермских и бродячих собак, волков и лисиц.

1.1.Квартирные собаки в гг.Москве и Твери, ни разу не выезжавшие вместе с хозяевами за пределы города, на дачу, практически свободны от A.alata, тогда как квартирные собаки, выезжавшие вместе с хозяевами в летний период (июнь-август) на дачу, инвазированы аляриями на 12,5-25% при средней ИИ=3,8+0,18-9,8+0,38 экз. на голову.

1.2.Служебные собаки в г.Москве инвазированы аляриями на 0,25%, а служебные собаки, побывавшие в Чеченской Республике, заражены на 15%.

1.3.Прифермские собаки в Московской и Тверской областях инвазированы аляриями на 40,0-85,3% при средней ИИ=8,4+0,48-10,2+0,48 экз. на голову.

1.4.В г.Москве и Подмосковье, в г.Твери и Тверской области бродячие собаки заражены аляриями на 46,1-59,3% при средней ИИ=14,8+1,21-18,5±0,96 экз. на голову.

1.5.В Тверской и Московской областях волки заражены аляриями на 80-100% при средней ИИ=24,5+0,78-26,8+0,89 экз., лисицы - соответственно на 85,7-87,5% и 32,4+1,27-36,8+2,12 экз. на голову. Норки, барсуки и куницы свободны от алярий.

2.Наивысшая ЭИ (72,1%) и ИИ (28,4+1,84 экз.) аляриями наблюдаются у собак старше 4-летнего возраста, умеренная (50% и 14,8+1,12 экз.) - у плотоядных 1,5-3-летнего возраста, наименьшая (8,2% и 3,8+0,32 экз.) - у животных 1-6-месячного возраста.

3.В центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации промежуточными хозяевами Alaria alata являются пресноводные моллюски Planorbis planorbis (ЭИ=2,7-5,4%) и Planorbis vortex (1,1-1,6%). Наивысшая инвазия моллюсков личинками A.alata наблюдается с середины апреля до середины июня, в летний период инвазированность их падает, но к осени ЭИ несколько увеличивается.

4.Головастики амфибий из отряда Anura инвазированы мезоцеркариями Alaria alata на 1,9-4,1% при средней ИИ=4,6+0,28-6,4+0,24 экз. на голову, а взрослые амфибии (прудовая, озерная, травяная, остромордая лягушки, серая жаба) заражены на 9-11,1% при средней ИИ=7,2+0,28-7,8+0,31 экз. на голову. Мезоцеркарии алярий локализуются в мышечной ткани языка, конечностей, туловища головастиков и взрослых амфибий; окружены они тонкой прозрачной капсулой, но у них отсутствуют цисты, ушковидные придатки, орган Брандеса, половая система.

5.Насекомоядные млекопитающие - ежи инвазированы мезоцеркариями A.alata на, 22,2-50% при средней ИИ=9,7+0,31-9,8+0,18 экз. на голову, кроты - соответственно на 20-50% и 7,9+0,38-8,2+0,44 экз. на голову. Мезоцеркарии алярий располагаются в мышечной ткани конечностей, туловища, груди, языка, сердца, в подкожной клетчатке кротов и ежей. Мезоцеркарии окружены тонкой, прозрачной капсулой, у них отсутствуют цисты, орган Брандеса, ушковидные придатки, половые органы.

6.Мезоцеркарии Alaria alata встречаются в мышечной ткани конечностей, груди, шеи, туловища , языка мышевидных грызунов (лесные полевки, обыкновенные полевки, лесные мыши). ЭИ грызунов составляет

7,8-9,9%, при средней ИИ=3,9+0,18-4,4±0,23 экз. на голову. Мезоцеркарии окружены тонкой, прозрачной капсулой, у них отсутствуют цисты, орган Брандеса, ушковидные придатки, половые органы.

7.В естественных биотопах заражение плотоядных с Alaria alata происходит при поедании инвазированных мезоцеркариями взрослых амфибий, насекомоядных млекопитающих (ежей и кротов) и мышевидных грызунов, которые являются резервуарными хозяевами для трематод. Среди резервуарных хозяев главную роль в передаче инвазионного начала к плотоядным играют головастики и взрослые амфибии из отряда Anura, которые обеспечивают выход личинок Alaria alata из водоема, что делает их доступными для плотоядных.

8.В организме плотоядных мезоцеркарии Alaria alata в течение первых 4 суток мигрируют из желудка в брюшную и грудную полости в легкие, где за 14-16 суток превращаются в метацеркариев, после чего мигрируют в бронхи и трахею, отхаркиваются в ротовую полость, заглатываются и на 30-35 сутки j инвазии в кишечнике* достигают половой зрелости. Некоторая часть мезоцеркариев мигрирует в легкие гематогенным путем, где развивается в метацеркариев. Следовательно, для A.alata плотоядные сначала являются дополнительными (возникает метацеркариозная бронхопневмония), а затем -дефинитивными хозяевами (возникает язвенный энтерит).

9.Аляриоз у плотоядных протекает в острой и хронической формах. Острая форма во времени совпадает с периодом миграции мезоцеркариев из желудка в легкие, формированием в легких метацеркарий и развитием метацеркариозной пневмонии. Хроническая форма аляриоза во времени совпадает с завершением миграции метацеркариев из легких в кишечник и прикреплением половозрелых трематод к стенке тонкого кишечника, сопровождается развитием хронического язвенного энтерита.

Ю.При аляриозе в крови плотоядных снижается концентрация гемоглобина, общего белка, альбуминов, снижается количество эритроцитов, сегментоядерных нейтрофилов, повышаются глобулиновые фракции белка, увеличивается лейкоцитов, эозинофилов, лимфоцитов, палочкоядерных нейтрофилов, возрастает активность ферментов АлАТ, АсАТ, щелочной фосфатазы, > альфа-амилазы, в кишечнике увеличивается факультативная (стафилококки, стрептококки, клостридии, протей, грибы) при значительном снижении индигенной ' микрофлоры (лактобациллы, бифидобактерии, бактероиды). Отмеченные изменения свидетельствуют о глубоком нарушении функции желудочно-кишечного тракта, печени, поджелудочной железы и об иммунологической перестройке организма плотоядных.

11.При аляриозе плотоядных высокоэффективным антгельминтиком является фенбендазол, который дается внутрь в дозе ЗОмг/кг по ДВ два-три дня подряд (ЭЭ=85,7%, ИЭ=95,5%). ЭЭ ивомека плюс (подкожно однократно по 0,150 мл на голову) составляет 71,4% при ИЭ=91%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании проведенных исследований для дегельминтизации плотоядных при аляриозе предложены фенбендазол (дается с кормом в дозе ЗОмг/кг по ДВ два-три дня подряд) и ивомек плюс (подкожно однократно по 0,150 мл на голову). Научные разработки автора вошли в «Рекомендации по профилактике аляриоза плотоядных в Российской Федерации» (утверждены Россельхозакадемией 29 сентября 2005 года).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ литературы и наши собственные исследования свидетельствуют, что в Европейской части Российской Федерации трематоды Alaria alata паразитируют в тонком отделе кишечника собак, енотовидных собак, лисиц, волков, шакалов, очень редко у хорей. В центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации половозрелыми трематодами A.alata интенсивно заражены бродячие, бесхозные собаки, волки, лисицы, умеренно - поражены фермерские и крестьянские собаки. На относительно низком уровне находится инвазированность квартирных собак, которых хозяева ежегодно в летний период вывозят на дачные участки. Что же касается собак, которых хозяева кроуглогодично содержат в своих квартирах в гг.Москве и Твери, а также служебных собак, то они практически свободны от этих трематод.

Работы Л.Ф. Потехиной (1950, 1951), В.А. Савинова (1952, 1953), А.Н. Шинкаренко (2005), Ю.Ф. Петрова и др. (2005) и наши данные свидетельствуют, что промежуточными хозяевами трематод Alaria alata являются пресноводные моллюски Planorbis planorbis и Planorbis vortex, в организме которых трематоды проходят стадии материнской спороцисты, редии и церкарии. Вышедшие из организма моллюсков церкарии активно внедряются в головастиков, где по мере метаморфоза последних во взрослых лягушек в мышечной ткани последних формируются мезоцеркарии, которые окружаются тонкой прозрачной капсулой, но у них отсутствуют цисты.

Взрослых инвазированных мезоцеркариями лягушек могут поедать насекомоядные млекопитающие (кроты и ежи) и мышевидные грызуны. В мышечной ткани кротов, ежей и мышей мезодеркарии алярий окружаются тонкой прозрачной капсулой, но у них отсутствуют цисты.

Следовательно, головастики, взрослые лягушки, кроты, ежи и мышевидные грызуны для алярий являются резервуарными хозяевами. Важное место в циркуляции инвазионного начала от первого промежуточного хозяина (пресноводный моллюск) к основному хозяину (плотоядные) занимают головастики и взрослые амфибии из отряда Апига, которые обеспечивают выход церкариев из водоема, что в конечном итоге обеспечивает высокую вероятность попадания их в организм плотоядных.

В естественных условиях заражение плотоядных происходит при поедании ими взрослых лягушек, насекомоядных млекопитающих (кроты, ежи), мышевидных грызунов, в подкожной клетчатке и мышечной ткани которых содержатся мезоцеркарии А.а1а1а. Из желудка плотоядных мезоцеркарии алярий в течение первых 4 суток мигрируют в брюшную, затем грудную полость, попадают в альвеолярную ткань легких, где за 14-16 дней развиваются в метацеркариев, последние мигрируют в бронхи и трахею, отхаркиваются в ротовую полость и на 18-20 сутки попадают в тонкий отдел кишечника и на 34-35 сутки инвазии достигают половой зрелости. По данным В.Б. Ястреба (2007), некоторая часть мезоцеркариев достигает легочной ткани плотоядных гематогенным путем, что нашло подтверждение и в нашей работе.

Наши исследования, проведенные на экспериментально зараженных собаках, показывают, что течение аляриоза следует разделить на две стадии.

Первая - острая стадия во времени совпадает с паразитированием личинок A.alata в альвеолярной ткани легких, превращением здесь их в метацеркариев, миграцией последних в бронхи и трахею ^завершается достижением трематод тонкого отдела кишечника. Эта стадия характеризуется развитием метацеркариозной бронхопневмонии. Вторая - хроническая стадия во времени совпадает с паразитированием половозрелых Alaria alata в тонком отделе кишечника плотоядных, где развивается^ хронический язвенный энтерит.

При» аляриозе у плотоядных в крови снижается концентрация гемоглобина, общего белка, альбуминов, падает число эритроцитов, сегментоядерных нейтрофилов, увеличивается число лейкоцитов, эозинофилов, лимфоцитов, палочкоядерных нейтрофилов, глобулиновых фракций белка, резко усиливается активность ферментов АлАТ, АсАТ, щелочной фосфатазы, альфа-амилазы, в кишечнике возникает дисбактериоз. Отмеченные изменения свидетельствуют о глубоком нарушении функций органов и систем в организме пораженных аляриями плотоядных. Восстановление функций органов и систем плотоядных наблюдаются на 60-90 сутки после освобождения их от трематод.

Нами впервые для дегельминтизации плотоядных предложены фенбендазол (внутрь по 30-40 мг/кг по ДВ два-три дня подряд) и ивомек плюс (подкожно, однократно по 150 мл на голову).

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Трусова, Анастасия Викторовна, 2009 год

1. Абалихин Б.Г., Крючкова E.H., Сорокина О.Ю. Паразитофауна лисиц, енотовидных собак и волков в Ивановской области// Матер, научно-практич. конф. «Проблемы и перспективы развития с/х науки и АПК в современных условиях». Иваново, 2004, т.2, с.19-20.

2. Абдуллаев Х.С. Формирование паразитарной системы в организме крупного рогатого скота и меры борьбы с паразитозами в Нечерноземной зоне Российской федерации // Дисс.докт. вет. наук, Иваново, 2006, 208с.

3. Архипов И.А. Определение терапевтической эффективности антгельминтиков //Бюлл. ВИГИС., М., 1991, вып. 55, с. 6.

4. Архипов И.А. Эффективность ивомека Плюс при паразитарных заболеваниях крупного рогатого скота // Ветеринарная газета, М., 1995, №1, с.6.

5. Архипов ИА. Новые отечественные антгельмитики при гельминтозах животных // Ж-Л «Ветеринария», Москва, 1998, № 11, с. 19-31.

6. Архипов И.А. Особенности применения и дозирование антгельминтиков на разных видах животных // Труды ВИГИС, М., 2002, т.38, с. 19-36.

7. Архипов. И.А. Экспериментальная терапия паразитарных болезней. Проблемы 21 века // Труды ВИГИС, М., 2003, т. 39, с. 9-22.

8. Ю.Архипов И.А., Мусаев М.Б. Выбор антгельминтиков для лечения животных // Ж-л «Ветеринария», М., 2004, №2, с.28-33.

9. П.Архипов И А. Антгельминтики: Фармакология и применение // Изд. «Россельхозакадемия», 2009, 406с.

10. Атаев A.M. Эколого-эпизоотологический анализ фасциолеза животных и совершенствование мер борьбы с ним в юго-восточном районе Северного Кавказа// Дисс.докт. вет. наук, М., ВИГИС, 1990, 540с.

11. Аюпов Х.В., Хазиев Г.З. Битионол высокоэффективный антгельминтик // Ж-л «Ветеринария». М., 1974, №4, с.84-85.

12. Бессонов A.C. Ветеринарная гельминтология: Проблемы девяностых //ч

13. Ж-л «Вестник с/х науки», М., 1988, №8(384), с.78-83.

14. Большакова А.Ю. Эффективность новых отечественных препаратов при мониезиозах овец // Тез. докл. ИСХИ, Иваново, 1993, с. 204.

15. Быкова A.M. Гельминтозы хищных млекопитающих (Canidae, Felidae, Mustelidae) в Омской области и их эколого-фаунистический анализ // Автореф. кандид. диссерт. Тюмень, 2007.

16. Васильев E.H. Биология и плодовитость возбудителей, эпизоотология и терапия нематодозов свиней в крестьянских и фермерских хозяйствах // Автореф. кандид. диссерт. Нижний Новгород, 2004, 25с.

17. Веселова Т. П. Фасциолоцидные антгельминтики: четыреххлористый углерод, гексахлорэтан и гексахлорпараксилол (экспериментальные исследования по эффективности, фармакологии и токсикологии) // Дисс. . докт. вет. наук. М., 1968, 361 с.

18. Веселова Т.П., Дорошина М.В., Требухин М.В. Эффективность нового образца гексахлорпараксилола при фасциолезе овец // Бюлл. ВИГИС, М., 1973, в.10, С.28-29.

19. Веселова Т.П., Дорошина М.В., Требухин М.В. Гексахлорпараксилол -антгельминтик при гельминтозах животных // Ж-л «Химия в сельском хозяйстве». М., 1974, №3, С.60 68.

20. Веселова Т.П., Архипов И.А., Мусаев М.Б. Пути повышения эффективности политрема при трематодозах животных' // Тез. докл. Всесоюзн. конф. «Методы профилактики и борьбы с трематодами человека и животных», Сумы, М., 1991, с.24.

21. Веселова Т.П., Архипов И. А., Мусаев М.Б. Эффективность куприхола при трематодозах животных // Ж-л «Ветеринария», М., 1994, №12, с.7

22. Вислобоков В.А. Стронгилоидоз лошадей в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации (биология возбудителя,эпизоотология, патогенез, лечение и профилактика) // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2009, 21с.

23. Вишняускас А.Ю. Матисоне Е. Поиск эффективной лекарственной формы ацемидофена для групповой дегельминтизации овец при фасциолезе // Тез. докл. Всесоюзн. науч. конф. Сумы, М., 1991, с.25-26.

24. Вишняускас А.Ю. Терапия фасциолеза овец, фармакокинетика и механизм действия фасциолоцидов // Дисс. докт. вет. наук. М., 1981, 459с.

25. Вишняускас А.Ю., Сируткайтис P.A., Пакятурене Д.А. Салинид — высокоэффективный антгельминтик при хроническом фасциолезе крупного рогатого скота // Труды ВИГИС, М., 1989, т. 30, с.37-40.

26. Власенко Ю.И. Гельминтофауна диких плотоядных // Сборник научных статьей ФГО|У ВПО «Ставропольский аграрный университет». Ставрополь, 2006, с. 286-287.

27. Власенко Ю.И. Гельминтофауна домашних и диких плотоядных Краснодарского края // Матер, научн. конф. ВОГ РАН «Теория и практика с паразитарными болезнями». М., 2006, вып. 7, с. 93-94.

28. Волков Ф.А. Экологическая безопасность применения ивомека в свиноводческих хозяйствах // Ветеринария. М., 1993, №7, с. 35-37.

29. Волков Ф.А., Апалькин В.А. Ивермектин в ветеринарии // Новосибирск, 1995, 43с.

30. Волков Ф.А., Апалькин В.А. Ивермектин в ветеринарии. Ивомек, эквалан и другие препараты // Новосибирск, 1995, 34с.

31. Волков Ф.А., Апалькин В.А., Волков Е.А. Паразитарные болезниживотных, птиц и пчел // Справочное пособие, Новосибирск, 1995, 182с.

32. Волков Ф.А., Апалькин В.А., Корешков М.Н. Ивермектин в ветеринарии (ивомек, эквалан и др. препараты) // Новосибирск, 1995, 54с.

33. Волков Ф.А. Паразитозы животных в Сибири и пути их профилактики // Паразиты в природных комплексах и рисковые ситуации. Новосибирск, 1998, с.3-11.

34. Гаджиев И.Г., Атаева A.M. К фауне гельминтов в Дагестане // Сборник научных статей ФГОУ ВПО «Ставропольский аграрный университет». Ставрополь, 2006, с. 286-287.

35. Гудкова А.Ю, Зубов A.B., Козубович A.B., Рогозина И.Е., Роменский В.И., Трусова A.B. Микрофлора кишечника при гельминтозах (экспериментальное заражение) // Ж-л «Российский паразитологический журнал». М., 2007, №2, с.26-29.

36. Гудкова А.Ю. Динамика формирования паразитоценозов в организме овец при гельминтозах и коррекция ее антгельминтиками и пробиотиками // Автореф. докторск. диссерт. Уфа, 1999, 52с.

37. Демидов Н.В. Антгельминтики в ветеринарии // М. «Колос», 1982, 338с.

38. Диденко П.П. Современные аспекты испытания новых антгельминтиков, лекарственных форм их применения и химиотерапия наиболее распространенных гельминтозов овец // Автореф. докторск. диссерт., М., 1993, 40с.

39. Евдокимова JI.M. Материалы к гельминтофауне пушных зверей Татарской АССР // Труды КФАН СССР. Казань, 1954.

40. Енгашев C.B. Разработка и внедрение новых лекарственных форм ветеринарных препаратов для борьбы с паразитарными болезнями // Автореф. докторской диссертации. Саратов, 2002, 52с.

41. Енгашев C.B. Альбен супер высокоэффективный антгельминтик при трематодозах крупного рогатого скота // Ж-л «Агрорынок». М., 2003, с. 20.

42. Крючкова E.H., Сорокина О.Ю., Абалихин Б.Г., Буслаев C.B. Паразитоценозы у некоторых хищников в центральном Нечерноземье

43. Российской Федерации// Матер. Международной конф. «Актуальные проблемы и перспективы развития агропромышленного комплекса». Иваново. 2005, т. 2, с. 35-36.

44. Кузмичев В.В. Фасциолез животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации (динамика формирования микропаразитоценозов, патогенез, лечение) // Автореф. докт. дисс. Уфа. 1999, 52с.

45. Кузнецов В.М. Мониезиозы жвачных животных в Московской области // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2004, 20с.

46. Морозов Ф.Н. К факту нахождения инцистированных трематод во внутренних органах хорьковых //Труды Горьковского педагогического института им. Горького, Горький, 1937, т. 1, с. 115-120.

47. Морозов Ф.Н. Паразитические черви пушных зверей Mustelidae (куньих). Горьковской области // Труды Горьковского педагогического института им. Горького, Горький, 1939, т. 4, с. 3-21.

48. Носков С.Б. Противопаразитарные и фармакотоксикологические свойства препарата бенальбен // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2002, 24с.

49. Петров A.M. Глистные болезни пушных зверей // В/О «Международная книга». М, 1941

50. Петров A.M. Глистные инвазии собак и их санитарное и экономическое значение //Сельхозгиз. Москва-Ленинград, 1931.

51. Петров A.M., Дубницкий A.A. Диагностика, эпизоотология и терапия аляриоза лисиц // Рукопись, ВИГИС, 1949, М

52. Петров Ю.Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных. Ленинград, 1988, 176с.

53. Петров Ю.Ф. Ассоциативные болезни свиней и их профилактика. Иваново, 1994, 55 с.

54. Петров Ю.Ф., Абдуллаев Х.С., Кузнецов В.М., Кузьмичев В.В., Еремеева O.P. Садов K.M., Волков А.Х., Косяев Н.И., Фазлаев Р.Ч. Эффективность антгельминтиков при трематодозах жвачных животных // Ж-л «Ветеринария», М., 2006, №12, с. 34-37.

55. Петров Ю.Ф., Гудкова А.Ю., Рогозина И.Е., Роменский.В.И., Трусова A.B., Козубович A.B., Коренскова Е.В., Буслаев C.B. Микрофлора кишечника собак в норме и при гельминтозах // Ж-л «Ветеринарная патология». М., 2007, №2(21), с.100-103.

56. Петров Ю.Ф., Гудкова А.Ю., Шинкаренко А.Н., Роменский В.И., Рогозина И.Е., Акимова С. А., Трусова A.B. Рекомендации по профилактике аляриоза плотоядных в Российской Федерации // М., Россельхозакадемия, 2005, 7с.

57. Петров Ю.Ф., Зубов A.B. Трусова A.B., Коренскова Е.В., Шахбиев Х.Х. Биология Alaria alata и особенности эпизоотологии аляриоза в Европейской части России // «Российский паразитологический журнал», М., 2008, №2, с. 35-39.

58. Потехина Л.Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза лисиц и собак // Труды ВИГИС, М., 1950, т. 4.

59. Потехина Л.Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза пушных зверей // Диссерт. на соиск. учен, степени кандид. биологич. наук. М., ВИГИС,1950, 87 с.

60. Потехина Л.Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза лисиц и собак // Доклады АН СССР. М., 1951, т. 26, № 2.

61. Ромашов Б.В., Никулин П.И., Лесников А.И. Хищные млекопитающие-резервенты зоонозных гельминтов (на примере лисицы)// Матер.научн. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2009, вып.10, с.315-317.

62. Савинов В.А. Развитие Alaria alata в организме собак// Труды ВИГИС, 1953, №5, с.63-64.

63. Савинов В.А. Развитие Alaria alata (Goeze, 1782) в организме дефинитивного хозяина//Кандид.дисс., М., ВИГИС, 1952, 145с.

64. Сафиуллин Р.Т., Ревенко A.B. Эффективность панакура при гельминтозах зверей // Ж-л «Ветеринария», М., 2003, №2, с.40-42.

65. Скрябин К.И. Строительство советской гельминтологии // Изд. АН СССР. Москва-Ленинград, 1946.

66. Скрябин К.И. Трематодозы животных и человека. Основы трематодологии // Изд. «Наука», АН СССР, М., 1971, том 24.

67. Скрябин К.И., Шульц P.C. Основы общей гельминтологии // Сельхозизд, М., 1940.

68. Троицкая A.A. Гельминтофауна диких пушных зверей в Татарской

69. АССР // Ученые записки Казанского Госуниверситета. Казань, 1960.

70. Троицкая A.A. К изучению гельминтофауны диких пушных зверей Среднего Поволжья и Башкирской АССР // Труды ВНИИОЗ. Киров, 1967.

71. Трусова A.B. Биология Alaria alata // Матер, науч. конф. Костромской ГСХА, Кострома, 2009, том 2, с.184-186.

72. Трусова A.B. Промежуточные и резервуарные хозяева Alaria alata в Нечерноземной зоне РФ // Матер, науч. конф. Ивановской ГСХА. Иваново, 2009, т.2. С. 215-216.

73. Трусова A.B., Коренскова Е.В. Эффективность антгельминтиков при аляриозе и кренозомозе плотоядных // Матер, науч. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2009, вып. 10.

74. Трусова A.B., Коренскова Е.В., Петров Ю.Ф., Зубов A.B. Паразитофауна собак в Москве и Московской области // Ж-л «Российский паразитологический журнал», М., 2008, №4, с.16-18.

75. Трусова A.B., Коренскова Е.В., Петров Ю.Ф., Зубов A.B., Рогозина И.Е., Шахбиев Х.Х. Развитие Alaria alata в организме плотоядных // Матер, науч. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2008, вып.9, с.472-474.

76. Хакимов Л.М., Сафиуллин Р.Т., Даугалиева Э.Х. Эффективность альбена-супер, абиктина-порошка и фаскоцида при гельминтозах птиц // Матер, научн. конф. ВОГ РАН «Теория практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2006. вып. 7, с. 422-425.

77. Шахбиев Х.Х. Гельминтофауна плотоядных в Чеченской Республике // Матер, научн. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2008, вып. 9, с. 519-521.

78. Шинкаренко A.B. Экология паразитов собак и меры борьбы с вызываемыми или заболеваниями в Нижнем Поволжье // Автореф. докторск. диссерт. Иваново, 2005, 53с.

79. Якубовский М.В., Мясцова Т.Я. Применение фенбендазола для борьбы с гельминтозами свиней // Вет.наука-производству. Минск, 1983, т. 21, с. 84-88.

80. Якубовский М.В., Мясцова Т.Я. Химиопрофилактика некоторых паразитов свиней // Ветнаука-производству. Минск, 1985, т. 23, с. 80-83.

81. Ястреб В.Б. Способ ранний прижизненной диагностики аляриоза (мезоцеркариоза) у собак и кошек // Патент на изобретение №2302822 от 2007 г.

82. Ястреб В.Б., Абалихин Б.Г., Крючкова E.H. Гельминтофауна дикой природы Центрального региона России// Матер, докл. научн. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» ВИГИС. М., вып. 4, 2003, с. 512-514.

83. Batte Е. Evalution of fenbendasole as a swine anthelmintic // Veter. med. Smallanim. Clin.-1978.-p-73.

84. Behrens H. Behandlung des Leberegel tefalls der Schafe mit Hetol // Dtschr. Tieräzztl. Wschr.-1960,67,№17,s.467-470.

85. Boray J.C., Jackson R., Strong N.B. Chemoprotilaxis of fasciolasis with triclabendazole // N. Z. VetJ., 1985, v.33, 11, p.182-185.

86. Bosma N.S. Alaria mustelae sp. nov.a new Trematode requiring four hoste // Sciense, 1931, 74: 521-522

87. Bosma N.S. The life history of the Trematode Alaria mustelae sp. nov.

88. Transactions of the microscopical Society, 1934, vol. LEU, N2

89. Chander A.C. The morphology and life cyrcle of a new strigeidae Fibricola texensis // Transactions of the american microscopical Society, 1942, vol. LXI, N2, pp. 156-157

90. Corba J., Hovozca J., Spaldonova R., Sloffa R., Legeny J., Andrasko N. Efficany of Luxabendaxole (Hoe 216v) Susp. 5% in sheep naturally infected with the most important helminths // J. Helminthologia, 1987, №24, p. 227-235.

91. Cuckler A.C. Studies on the Migrations and Development of Alaria spp. (Trematoda: Strigeata) in the Definitive Host // Journ. of Parasitology, 1940, N 26, N6, p. 36

92. Cuckler A.C. The life circle of Fibricola cratera (Barker and Noll, 1915) Dubois, 1932 // Journal of Parasitology, 1940, N26, p. 32.

93. Dorchies Ph. Efficacy of a single treatment at housing with valbazen against fluke in festation and comparison with a second or a treatment with a specifis flukicide // Biologia, 1993, №l,p.91-93.

94. Dubois G. Monographie des Strigeida (Trematoda) // Nemoiress de la Societe Neuchofeloise des sciences natuzales, 1938, t. Vp.

95. Enigk K. et all. Weitere Erfahrungen mit Fenbencaxol bei oler Bekämpfungides Magen-Darm-Nematodenbefalle beim shwein Tierrozt // Umsch, 1973, 32, p. 414-420.

96. Enigk K., Düwel D. Die Behandlung der Fasciolose beim Rinde mit Hetol// Deutsche Tieräzztl. Wschr.,1960,67,s.535-540.

97. Jamaguti S. Systema Helminthum: 1. The digenetic treinatodcs of vertebratis // N. J.j 1958, 1-1575

98. Jamaguti S. Transactions Studies on the He*lminth-Fauna of Japan. Pt. 25. Trematodes of birds // Japan J. Zool., 1939, 8 (2): 129-210

99. Kearney A., Connoly J.P., Downey HE. Serum transaminase levels in treated Fasciola hepatica infected seep // Vet. Ree., 1967, v.81, p.134-139.

100. Kendall S. Epidemiology and control of fasciolasis // Acta Veterin., 1960,m. 10, F.8,p.l-12. v

101. Kobulej T., Jaszberenyi E., Janisen M. A hazai eloallitasu albendasol fasciolicid hatasanak tanulmaniozasa termeszeteson fertozott juhkban es. szasvas marhalcban // Magyar allatorv. Lapja 1958, m. 40, N8- p. 451-453.

102. Kuttler K.L., Matthews N.15, Marble D.W. Comparative therapeutic efficacy of Carbon Tetrachloride. Hexachloroethane and ME 3625 in Fasciola hepatica infections of sheep //Amcr. J. Vet. Res., 1963, v.24, p.52-58.

103. Lutz A. Consideracoes sobra o Distomum tetracystis Gastaldi e formas semechantes, erzoneamente chamadas Agamodistomos // Mem: Inst. Oswaldo Cruz. Rio de laneiro, 1933, 27, p. 33-49.

104. Quan D.X., Liang X.E., Xiang D.H. Efficacy of nitroxinil and albendazole against helminths of the intestinal tract of dairy gouts // Chinese Journal of Vet. Sciens and Technology. 1991, v. 21, №7, p. 36-37.

105. Reitman S. Frenkels. A. Colorimetric method for the determination of serum glutomic acetic and glutamic pyruvie transaminoses.

106. Ruszkowski M.Y. Die Postembrionale Entwicklung von Hemistomum alatum. Dies aut grand experimentaller Untersuchungen // Bulleten International de L'Academie Polonoise des sciences et des lettze, Serie B., Sciences Naturales, 1922, pp. 237-250.

107. Stewart T.B., Rowelo T.J. Susceptibility of forth — stage Ascaris suum larvae to fenbendasole and host response in the pig // Amer.J. Vet. Res., 1986, 47, №8, p.1671-1673.

108. Zaznowski E., Fagasineki A., Linobury A. Swin warunkach tucsu presemyslowege // Mowosed Woter.-1982, 12, №3.-p.l33-137.