Аллелопатический эффект лекарственных растений на сорняки тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.05, кандидат наук Скороходова Анастасия Николаевна

• Скороходова Анастасия Николаевна
• кандидат наук
• 2019

Оглавление диссертации кандидат наук Скороходова Анастасия Николаевна

Введение

ГЛАВА 1 Обзор литературы по теме исследования

1.1. Аллелопатия и аллелохимикалии

1.2. Аллелопатический потенциал сорняков

1.3. Факторы, влияющие на биосинтез аллелохимикалий

1.4. Механизмы действия аллелохимикалий

1.5. Использование аллелопатии для борьбы с сорняками

в агроэкосистемах

1.6. Применение аллелопатии в системах земледелия

1.7. Экологические изменения, вызываемые аллелохимикалиями

1.8. Аллеллопатический потенциал лекарственных и ароматических растений

1.9. Методы биотестов в исследованиях аллелопатии

растительных видов

ГЛАВА 2 Объекты и методы исследований

2.1. Объекты исследований

2.2. Целевые растения, использованные в экспериментах

2.3. Главные требования, предъявляемые к биотестированию

2.3.1. Биотестирование водных вытяжек из семян

лекарственных растений

2.3.2. Изучение влияния метаболитов, выделяемых семенами лекарственных и сорных растений, при совместном проращивании

2.3.3. Исследование влияния мульчи из надземных частей лекарственных растений на рост и развитие сорняков

2.4. Статистическая обработка данных и анализируемые параметры

ГЛАВА 3 Результаты исследований

3.1. Изучение влияния семян лекарственных растений на сорняки при совместном проращивании семян

3.2. Исследование влияния мульчи из надземных частей лекарственных растений

на прорастание семян и рост сорняков

3.2.1. Формирование фотосинтетического аппарата

проростков сорняков

3.3. Исследование эффекта вытяжек из семян лекарственных растений на

прорастание семян сорняков

3.3.1. Биотестирование водных вытяжек из семян лекарственных

растений на рост проростков сорняков

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Рекомендации для дальнейших исследований

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Аллелопатический эффект лекарственных растений на сорняки»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность работы. Современные методы контроля за сорняками сельскохозяйственных культур в значительной степени зависят от использования синтетических гербицидов. Способность эффективно контролировать сорняки является одной из ключевых проблем наряду с использованием удобрений, "зеленой" революцией, которые привели к росту урожайности за последние 50 лет. В н.в. имеется большое количество коммерчески активных синтетических гербицидов, представляющих небольшое количество классов химических соединений, которые имеют достаточно ограниченную область применения. Несмотря на успешный контроль сорняков с помощью этих гербицидов, некоторые виды сорняков, в конечном счете, адаптировались к некоторым из этих соединений. В отдельных случаях адаптация к синтетическому гербициду происходит очень быстро (в течение 2-3 лет), что является причиной адаптации и к другим соединениям этого химического класса, тем самым подчёркивая постоянную потребность в новых химических соединениях для других агроэкосистем.

Индустрия защиты растений подвергается быстрой трансформации, поскольку новые парадигмы, основанные на биотехнологических, устойчивых к гербицидам трансгенных культурах, дестабилизировали традиционный рынок гербицидов. Технологические преимущества этих методов обычно охватывают более широкие спектры сорняков, более низкую травмирование сельскохозяйственных культур и более простые и сравнительно менее дорогие методы ведения сельского хозяйства. Кроме того, общественная озабоченность по поводу безопасности пестицидов была мощной силой, что привело к принятию Законов о защите качества пищевых продуктов в ряде стран, которые ввели более строгие правила регистрации синтетических пестицидов и гербицидов. Эти новые руководящие принципы оказали дополнительное давление на агрохимическую промышленность и косвенно снизили стимулы для инвестиций в разработку традиционных гербицидов.

Тем не менее, гербициды составляют большую часть пестицидов, используемых в земледелии, и они будут продолжать выполнять важную роль в обозримом будущем. Компьютерное проектирование и комбинаторные подходы, которые расхваливались как наиболее перспективные подходы, не оправдали ожиданий. Хотя некоторые компании возвращаются к традиционным подходам химического синтеза, другие производители фокусируются на соединениях природного происхождения.

Натуральные продукты являются исторически ценным используемым источником многих пестицидов, применяемые непосредственно в качестве химической основы для разработки пестицидов на основе природных продуктов. Природные продукты исторически больше используются в качестве фунгицидов и инсектицидов, чем в виде гербицидов (Даян, 2002), но потенциальные преимущества естественных гербицидов на основе продуктов остаются недооцененными. Существует множество растений, микробов, и натуральных продуктов животного происхождения с огромным спектром структурного разнообразия (Henkel et al., 1999), которые возникли в результате совместной эволюции между конкурирующими организмами. Таким образом, большинство вторичных метаболитов биологически активны. Их естественные функции могут соответствовать фитотоксинам, как в случае фосфинотрицина, продуцируемого Streptomyces hygroscopis (Lydon and Duke, 1999) или продуцируемый аллелохимикалия сорголеона в Sorghum bicolor (Netzly and Butler, 1986; Einhellig and Souza, 1992).

Интерес к растениям был меньше, чем к микробам как источникам смесей для гербицидов, хотя многие образуемые растениями соединения обладают сильной фитотоксичностью. Одним из примеров является цинметилин, гербицид, применяемый с небольшой эффективностью, который имитирует цинеолы и трикетоны растений, новый класс гербицидов от Zeneca и получаемый из растительного вторичного метаболита растений - лептоспермона (Lee et al., 1997). Пеларгоновая кислота (нонаноиковая кислота), растительная жирная кислота, используется для борьбы с сорняками в газонах (Bradley and Hagood, 2002; Irzyk et

al. 1997; Pline et al. 2000). Возобновление интереса к биологически активным соединениям природного происхождения может отчасти объясняться последними технологическими достижениями в части выделения, характеристики и тестирования натуральных продуктов. Другим фактором является осознание того, что природа произвела отбор специфических биологически активных соединений, при этом многие природные соединения еще предстоит обнаружить. Тем не менее, биологическая активность относительно немногих известных природных продуктов вызвала интерес к их использованию в качестве натуральных гербицидов.

Развитие природы в последние тысячелетия тесно взаимосвязано с развитием человеческого общества. Поэтому неудивительно, что сегодня проблемы, касающиеся взаимодействия человека и природы, считаются наиболее сложными и насущными в современном мире. Они затрагивают практически все сферы человеческой деятельности. Химические средства защиты растений широко используются в сельском хозяйстве для борьбы с сорняками, вредителями и болезнями сельскохозяйственных растений. В среднем на каждого человека Земли ежегодно расходуется 400-500 г пестицидов, а в России и США - до 2 кг. Использование химических средств защиты, весьма негативно отражается на фауне и флоре природных экосистем.

В связи с этим в настоящее время активно ведутся поиски вторичных соединений, содержащихся в растениях и оказывающих щадящий токсический (ингибиторный) эффект на другие виды в агроэкосистемах. Такие соединения являются многофункциональными и широко используются растениями -донорами в межвидовой конкуренции с другими растительными видами, противостоянии вредителям, микроорганизмам и вирусам, при внедрении в естественные и агроэкосистемы инвазивных видов. Особое место среди растений - источников вторичных соединений занимают лекарственные растения. Их биогербицидные функции до настоящего времени остаются мало изученными, но именно они интенсивно исследуются на роль источников биогербицидов.

Степень разработанности. Механизмы действия некоторых аллелохимикалий похож на синтетические гербициды. Это обстоятельство стало причиной рассмотрения в качестве альтернативы использования в контроле за сорняками в виде биогербицидов. Однако эта область знаний изучена слабо, хотя является весьма привлекательной для практического применения. Большинство алелопатически активных соединений полностью или частично водорастворимы, что облегчает их применение без дополнительных поверхностно-активных веществ (Бауаи й а1., 2009; Ууууаи ^ а1., 2002). Разнообразие аллелохимикалий делает их перспективным инструментом, обладающим определенными свойствами при обнаружении новых специфических целевых мест связывания в акцепторных растениях. Это дает возможность устранить сорняки, которые уже устойчивы к синтетическим гербицидам с одинаковым режимом действия. Однако выявление новых растений-доноров аллелопатически активных соединений и способов их применения очень сложен и трудоёмок. В отличие от синтетических гербицидов, когда их химический синтез, биоанализ, оценка эффективности действия «поставлены на поток», аллелохимические соединения должны сначала выделяться из растительных экстрактов, очищаться, после чего производится отбор наиболее привлекательного соединения и определение его механизма действия в растениях. Наиболее трудоёмким этапом является поиск растительных видов в качестве источников аллелохимикалий. Длительный процесс обнаружения и идентификации химической природы аллелохимикалий обычно компенсируется более коротким и менее дорогим способом их регистрации (Бауаи й а1., 2012). Таким образом, до того, как аллохимический препарат может стать гербицидом, необходимо выполнить следующие условия: установить растение-донор, выявить среди сорняков виды-рецепиенты, определить фитотоксическую активность водных вытяжек в диапазоне от 10 до 10-7 М, идентифицировать химическую структуру аллелохимического соединения, выявить способ действия в растениях, полупериод распада в почве, возможное влияние на микробиоценоз почвы и нецелевые растения, выявить возможные токсические свойства на здоровье человека и рентабельность

производства в промышленном масштабе (Bhowmik, 2003). Тем не менее, большое количество ограничений не исключает применение аллелохимических препаратов как возможных гербицидов.

Одной из серьезных проблем использования аллопатии как инструмента контроля за сорняками, вероятно, является скептицизм, вызванный трудностью доступа к получению данных и отсутствием информации по этой теме. Использование соответствующих методологий для анализа полевых исследований по изучению аллелопатии остается проблемой. В последнее время научный прогресс и новое оборудование, а также экспериментальные протоколы помогли выявить ряд направлений этой сложной проблемы. Некоторые аллелохимические вещества, такие как бензоксазиноны и их производные, которые могут вызвать подавление сорняков, уже были охарактеризованы при их образовании в растении-доноре (Secale cereale L.) ещё до их до их испытания на целевом растении (Avena fatua L.) (Macias et al., 2014). До 20 кг бензоксазинонов можно выделять из ржаных остатков с одного гектара, а после разложения извлекать из почвы этих аллелохимикалий до 5 кг с 1 га (Schulz et al., 2013). К сожалению, это является исключением, так как полный путь экстракции для большинства аллелохимических веществ остается неизвестным. Достижения в этой области обеспечат знания, необходимые для лучшего использования аллелопатии в контроле за сорняками в агроэкосистемах (Gronle et al., 2015)

Кроме того, многие методы и приёмы, показывающие преимущества аллопатии, эмпирически уже использовались в сельском хозяйстве для подавления сорняков некоторыми видами культур. Современное сельское хозяйство тесно связано с традиционной системой обработки почвы и интенсивным использованием ресурсов (таких как синтетические удобрения и пестициды, энергия, вода, механизация). В качестве альтернативы, природоохранное сельское хозяйство основано на минимальном нарушении почвенного покрова (нулевая обработка) и постоянном поддержании почвенного покрова (мульча) в сочетании с севооборотом, становится общепринятом подходом во многих районах для сохранения воды и почвы (Tabaglio et al., 2008;

Bajwa, 2014). Системы обработки почвы могут влиять как на появление, так и на развитие однолетних и многолетних сорняков (Arif et al., 2007). Признание важности аллелопатии полезно для планирования и управления системами земледелия (Gronle et al., 2015). Снижение заражения сорняками, в случае использования природоохранной системы земледелия, может быть достигнуто с помощью использования подходящих сорняков-сорбентов (Altieri et al., 2011; Jabran, 2015; Nichols et al., 2015.), сортов сельскохозяйственных культур, обладающих аллелопатической активностью (Nichols et al., 2015). Высокопродуктивные севообороты должны использовать виды сельскохозяйственных культур, которые являются толерантными к аллелохимическим веществам, высвобождаемым из предшествующих культур.

Засоренные посевы сельскохозяйственных культур приводят к огромным финансовым потерям в агроэкосистемах. Во всем мире считается, что сорняки уменьшают урожайность сельскохозяйственных культур на 13,2%.

Чунг и Миллер в 1995 изучили возможность использования люцерны в качестве природного гербицида и сообщили об ингибировании водными экстрактами из высушенной надземной части люцерны при прорастании таких сорных растений как: марь белая (Chenopodium album L.), щирица запрокинутая (Amaranthus retroflexus L.), щитинник Фебера (Setaria faberi L.) и костра ржаного (Bromus secalinus L.). Также было выяснено, что порошок, полученный путем высушивания надземных частей (стебли и листья) люцерны, в значительной степени препятствует прорастанию некоторых ползучих сорняков, а водный экстракт люцерны подавляет прорастание семян и ингибирует проростки кресс -салата (Lepidium sativum L.). Наблюдения показали, что мульча люцерны значительно ингибировала рост сорных растений в посевах риса. Отсюда можно предположить, что мульчу люцерны можно использовать в качестве природного гербицида в рисовых полях.

В 1999 было обнаружено, что прорастание щирицы Палмера (Amaranthus palmeri L.) ингибировалось эфирными маслами лимонного базилика (Ocimum citriodorum L.) и майорана (Origanum majorana L.). Кроме того, было обнаружино,

что эфирные масла из красного тимьяна (Thymus vulgaris L.), гвоздики (Syzgium aromaticum L.) и корицы (Cinnamomum zeylanicum L.) вызывали выход электролитов, что приводило к гибели клеток растения одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale L.). Также в 2007 году обнаружили, что эфирные масла, экстрагированные из четырех сортов базилика, уменьшают прорастание семян и рост корней ежовника обыкновенного (Echinochloa cruss-galli L.) и мари белой (Chenopodium album L.). Эти результаты свидетельствуют о том, что эфиромасличные растения при заделке в почву или при использовании в качестве мульчи обладают способностью вырабатывать фитотоксичные эфирные масла, которые могут играть важную роль в подавлении сорных растений в посевах сельскохозяйственных культур.

Таким образом, в настоящее время стали всё чаще появляться исследования, относящиеся к использованию лекарственных и ароматических растений в качестве альтернативных приёмов борьбы с сорняками в сельском хозяйстве. Природные вещества, высвобождаемые из остатков аллопатически активных лекарственных растений, могут решить проблему негативного воздействия синтетических гербицидов, применяемых для борьбы с сорными растениями, на окружающую среду и сделать сельскохозяйственную продукцию более безопасной для людей.

Цель исследования. Выявить потенциальную гербицидную активность семян и надземных органов лекарственных растений: ромашки лекарственной (Matricaria chamomila L.), пижмы обыкновенной (Tanacetum vulgare L.), полыни горькой (Artemisia absinthium L.), клещевины обыкновенной (Ricinus communis L.) в отношении сорняков, наиболее распространённых в агрофитоценозах.

Задачи исследования. Для достижения поставленной цели исследования предусмотрено решение следующих основных задач:

1. Изучить взаимное влияние лекарственных и сорных видов на ранних стадиях при совместном проращивании семян;

2. Выявить аллелопатический эффект водных вытяжек из семян лекарственных растений: ромашки лекарственной (Matricaria chamomila L.),

пижмы обыкновенной (Tanacetum vulgare L.), полыни горькой (Artemisia absinthium L.), клещевины обыкновенной (Ricinus communis L.^на энергию прорастания, всхожесть семян, а также на рост и развитие проростков сорных растений: ярутки полевой (Thlaspi arvense L.), мари белой (Chenopodium album L.), щирицы запрокинутой (Amaranthus retroflexus L.) и звездчатки средней (Stellaria media L.);

3. Установить эффект мульчи из надземной части лекарственных растений Matricaria chamomila, Tanacetum vulgare, Artemisia absinthium, Ricinus communis, на целевые растения (растения-мишени): ярутку полевую (Thlaspi arvense L.), марь белую (Chenopodium album L.), щирицу запрокинутую (Amaranthus retroflexus L.) и звездчатку среднюю (Stellaria media L.);

Объект исследования. В работе использовались лекарственные растения -потенциальные доноры аллелохимикалий четырех видов: ромашка лекарственная - Matricaria chamomilla L., полынь горькая - Artemisia absinthium L., клещевина обыкновенная - Ricinus communis L., пижма обыкновенная - Tanacetum vulgare L.

Научная новизна данной темы. Впервые изучены ответные реакции прорастающих семян, проростков, молодых сорных растений Thlaspi arvense L., Chenopodium album L., Amaranthus retroflexus L., Stellaria media L. на обработку водными вытяжками из семян и надземных органов лекарственных растений: Matricaria chamomilla L., Artemisia absinthium L., Ricinus communis L., Tanacetum vulgare L. Исследовано влияние мульчи из надземной части лекарственных растений на рост, развитие и другие физиологические процессы сорных растений. Выявлен негативный эффект семян лекарственных растений на рост и развитие проростков сорных видов, выращенных из семян при совместном проращивании с семенами лекарственных растений

Теоретическая и практическая значимость работы. Получены новые сведения о возможности использования водных вытяжек из семян и вегетативной массы лекарственных растений ромашки лекарственной (Matricaria chamomila L.), пижмы обыкновенной (Tanacetum vulgare L.), полыни горькой (Artemisia absinthium L.), клещевины обыкновенной (Ricinus communis L.), содержащих

значительное количество вторичных соединений двойного назначения: 1) обладающих лечебными свойствами, 2) характеризующихся потенциальной гербицидной активностью по отношению к сорным растениям. Помимо этого, полученные в работе результаты могут помочь в дальнейшем изучении прямых и косвенных взаимодействиях между растениями при межвидовой и внутривидовой конкуренции, а также в решении экологических проблем современного сельскохозяйственного производства. Предлагаются рекомендации и схемы возможных опытов для исследований биогербицидных свойств лекарственных растений в названных аспектах научной деятельности.

Результаты работы могут быть включены в курсы физиологии и экологии растений аграрных вузов и биологических факультетов университетов.

Методология и методы исследований. Диссертационная работа выполнена с использованием классических методов биоанализа, широко используемых в современной науке, в основе которых лежит метод биотестов в различных вариациях. Был использован способ получения водных вытяжек из семян лекарственных растений в лабораторных условиях. Также был поставлен вегетационный опыт в лаборатории искусственного климата РГАУ -МСХА имени К.А. Тимирязева. Все использованные в работе методы соответствуют требованиям, предъявляемым к практическим исследованиям в области физиологии растений.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Биотестирование водных вытяжек из лекарственных растений является информативным методом при изучении аллелопатической активности лекарственных растений;

2. Аллелопатические выделения из семян и надземной части ромашки лекарственной, полыни горькой и пижмы обыкновенной обладают биогербицидными свойствами на прорастание семян, рост и развитие поростков тест-растений;

3. Эффект водных вытяжек из семян лекарственных растений на рост тестируемых растительных видов зависит как от концентрации водной вытяжки, так и от вида тест-растения;

4. Надземные части лекарственных растений, используемые в качестве мульчи, оказывают заметный негативный (гербицидный) эффект на рост и развитие сорняков;

5. Сорные виды растений обладали разной чувствительностью к компонентам разлагающейся массы лекарственных растений. Наибольшим гербицидным эффектом обладала зелёная масса ромашки лекарственной, наибольшей чувствительностью - прорастающие семена ярутки полевой.

Реализация результатов исследования. Полученные в работе результаты могут быть полезными при дальнейшем изучении прямых и косвенных взаимодействий между растениями при межвидовой и внутривидовой конкуренции, а также в практике сельскохозяйственного производства при использовании массы вегетирующих растений в качестве «зелёного» удобрения и при введении в оборот залежных земельных участков.

Апробация результатов. Результаты исследований были представлены на следующих научных мероприятиях:

1. Научная конференция «Фундаментальные и прикладные проблемы современной экспериментальной биологии растений», посвященная 125-летию Института физиологии растений им. К.А. Тимирязева РАН (Москва, 2015)

2. Всероссийская научная конференция «Биологические аспекты распространения, адаптации и устойчивости растений» (Саранск, 2016);

3. Годичное собрание общества физиологов растений России. «Экспериментальная биология растений: фундаментальные и прикладные аспекты» (Крым, Судак, 2017)

4. В Орловском государственном университете имени И.С. Тургенева «Современные аспекты структурно-функциональной биологии растений от молекул до экосистем (Орел, 2017)

5. Международнаяя научно-практическая конференция, посвящённая 130-летию со дня рождения Н.И. Вавилова. РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва, 2017)

6. За разработку прибора для сбора корневых экссудатов растений получены диплом и серебренная медаль Российской агропромышленной выставки «Золотая осень» 2017г.

7. За разработку устройства для сбора и концентрирования корневых выделений аллелопатически активных растений получены диплом и серебренная медаль Российской агропромышленной выставки «Золотая осень» 2018г.

Личный вклад соискателя. Работа является результатом исследований, проведенных лично автором на всех этапах: сбор материала, выбор методов исследований, проведение экспериментов, обработка и анализ полученных данных, подготовка публикаций.

Публикации результатов исследований. Основные положения и научные результаты диссертации опубликованы в 9 работах, в том числе 3 статьи в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследований, изложения полученных результатов и их обсуждения, выводов, рекомендаций для дальнейших исследований и списка цитируемой литературы. Материалы диссертации изложены на 131 страницах машинописного текста и содержат 5 таблиц и 25 рисунков. Список цитируемой литературы включает 263 наименований, в т.ч. 251 иностранных.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ ПО ТЕМЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 1.1. Аллелопатия и аллелохимикалии

Аллелопатия - это форма положительного или отрицательного взаимодействия между организмами, которая вызвана действием химического соединения, называемым аллелохимикалием (аллелопатически активным соединением) (Rice, 1984.). Эти соединения образуются, главным образом, в результате вторичного метаболизма растений и микроорганизмов (бактерий, вирусов и грибов) и могут влиять на некоторые процессы в экосистемах и агроэкосистемах (Rizvi et al., 1992; Seigler, 1996; Olofsdotter et al., 2002). Аллелохимикалии могут характеризоваться различными механизмами действия в растениях. Аллелопатический эффект в основном характеризуется негативным типом взаимодействия (Radosevich et al., 2007; De Albuquerque et al., 2011), но о положительных взаимодействиях также сообщалось в зависимости от вида рассматриваемого аллелохимического растения и испытанной концентрации (Eichenberg et al., 2014). В агроэкосистемах аллелопатия может влиять на управление сорняками, размножение растений, консорциумы видов, мульчирующий эффект на посевы, преемственность и севооборот (Chon et al., 2006).

В обзорах потенциального использования аллелохимических веществ в качестве гербицидов выделено шесть классов аллелохимических соединений, а именно: алкалоиды, бензоксазиноны, производные коричной кислоты, цианогенные соединения, этилен и другие стимуляторы прорастания семян и флавоноиды, которые были выделены из более чем 30 семейств наземных и водных растений. Все эти химические вещества обладают реальной или потенциальной фитотоксичностью (Putnam, 1988). В настоящее время известны десятки тысяч вторичных веществ, образующихся из нескольких сотен низкомолекулярных соединений первичного метаболизма, но только ограниченное число было признано аллелохимикалиями. Атмосферные осадки выщелачивают аллелопатические вещества из листьев, которые попадают на

поверхность других растений и почву, что приводит к ингибированию роста и прорастания сельскохозяйственных культур (Mann, 1987). Биоразлагаемые природные растительные продукты редко содержат атомы галогенов. Они обладают структурным разнообразием и сложностью, тем самым составляя такой класс химических веществ, который можно непосредственно использовать в качестве гербицидов. (Duke et al., 2000).

К первоначально обнаруживаемым эффектам аллелохимикалий на рост и развитие растений относятся торможение или потеря всхожести семян, их потемнение и вздутие; уменьшение роста корешков в длину и толщину, некроз верхушек корней, скручивание оси зародышевых корней, изменение цвета, отсутствие корневых волосков, уменьшенное накопления сухой массы и т.д. Эти негативные морфологические эффекты могут быть вторичными проявлениями первичных событий, вызванных целым рядом более специфических эффектов, действующих на клеточном или молекулярном уровне в растениях-реципиентах (Rice, 1984).

Чтобы оказывать эффект на целевое растение, аллелохимические вещества должны выделяться из растения-донора. Это может происходить по-разному:

1. Сток и фильтрат из листьев и стеблей растений. Например, аллелохимические вещества в листьях черного ореха - Juglans nigra L., которые, будучи выщелоченными из надземных частей, могут заблокировать рост травянистых растений под кроной дерева и вблизи него (Bode, 1958).

2. Летучие фитотоксические соединения из зеленых частей растения, например, Salvia leucophylla L. и Artemisia californica L. (Halligan, 1973).

3. Фитотоксические смеси, образующиеся при разложении вегетативной массы ржи - Secale cereale L., использованной в качестве мульчирующего материала. Помимо затенения и поддержания почвы влажной, ржаная мульча также ингибирует прорастание и рост сорняков через высвобождение фитотоксинов (Barnes et al., 1986).

4. Фитотоксические соединения, выделяемые из корней растений. Например, вегетирующие растения риса способны избирательно подавлять рост сорняков (Navarez et al., 1996; Olofsdotter et al., 1997).

1.2. Аллелопатический потенциал сорняков

Многие сорняки, содержащие специфические типы аллелохимикалий, уже в настоящее время имеют значение в качестве агентов для борьбы с сорняками. Эти аллелохимикалии способны подавлять прорастание семян и рост некоторых других сорняков, которые являются устойчивыми к синтетическим гербицидам. Дадим характеристику некоторым из них.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Скороходова Анастасия Николаевна, 2019 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Исаин, В.Н. Ботаника: учебник / В.Н. Исаин. - Государственное издательство сельскохозяйственной литературы: Москва, 1951.- С. 154 .

2. Кондратьев, М.Н. Эффект водных вытяжек из листьев борщевика Сосновского (Heracleum sosnowskyi Manden) на распространение семян и рост проростков некоторых сельскохозяйственных и лекарственных растений / М.Н. Кондратьев, С.Н. Бударин, Ю.С. Ларикова // Биологические аспекты распространения, адаптации и устойчивости растений. - 2014.- C. 46-50.

3. Кондратьев, М.Н. Морфофизиологические реакции тест-растений при воздействии веществ вторичного метаболизма некоторых представителей семейства Сельдерейные (ApiaceaeL.) / М.Н. Кондратьев, С.Н. Бударин, И.Е. Лизунова, Л.Н. Зайко, Т.Н. Загуменникова // Годичное собрание физиологов растений. Сигнальные системы растений: «от рецептора до ответной реакции организма, СПб. - 21-24 июня. 2016.- C. 33-34.

4. Кондратьев, М.Н. Эффект корневых выделений культурных растений на рост сорных видов. Требования к методике проводимых экспериментов / М.Н. Кондратьев, О.С. Дёмина, Ю.С. Ларикова // Журнал ВАК РФ. «Научная жизнь».-2017- №9.- C.14-21.

5. Кондратьев, М.Н. Взаимосвязи и взаимоотношения в растительных сообществах / М.Н. Кондратьев, Г.А. Карпова, Ю.С. Ларикова // Москва. РГАУ-МСХА.- 2014 - C. 300.

6. Кондратьев, М.Н. Потенциальные биогербицидные свойства некоторых лекарственных растений. Научно-практический журнал / М.Н. Кондратьев, Ю.С Ларикова., А.Н Давыдова // Вопросы биологической медицинской и фармацевтической химии. - 2016-№ 6.- C. 62-66.

7. Кондратьев, М.Н. Экофизиология семян. Формирование фитоценозов / М.Н. Кондратьев, Ю.С. Ларикова // Москва. РГАУ-МСХА.- 2011- С. 278.

8. Коновалова, И.О. Оптимизация светодиодной системы освещения витаминной космической оранжереи / И.О. Коновалова, Ю.А. Беркович, А.Н.

Ерохин, С. О. Смолянина, О. С. Яковлева, А.И. Знаменский, И.Г. Тараканов, С.Г. Радченко, С.Н. Лапач, Ю.В. Трофимов, В.И. Цвирко // Авиакосмическая и экологическая медицина. - 2016 - Т.50 - №3. С. 17-22.

9. Ларикова, Ю.С. Физиология древесных растений // Ю.С. Ларикова, М.Н. Кондратьев // Москва. ООО Транслог -2017- C. 228.

10. Николаева, М.Г. Физиология глубокого покоя семян: учебное пособие / М.Г. Николаева. - Наука: Л.- 1967 - С. 207.

11. Николаева, М.Г. Биология семян: учебное пособие / М.Г. Николаева, И.В. Лянгузова, Л.М Поздова. - С.-П. - 1999 - С. 232.

12. Паденов, К.П. Сорные растения, их вредоносность, методы учета и меры борьбы: учебное пособие / К.П.Паденов, В.К.Довбан - Минск - 1979 - С. 54.

13. Abrahim, D., Braquini, W. L., Kelmer-Bracht, A. M. and Ishii-Iwamoto, E. L. (2000). Effects of four monoterpenes on germination, primary root growth, and mitochondrial respiration of maize. Journal of Chemical Ecology 26: 611- 624.

14. Akhtar, N., Javaid, A. and Bajwa, R. (2001). Herbicidal activity of aqueous extracts of Cirsium arvense and Ageratum conyzoized against weeds of wheat. Pakistan Journal of Biological Sciences 4: 1364-1367

15. Aldrich, J.D. (1984). Weed-crop ecology: Principles and practices. Breton anPublishers pp.215-241

16. Aliotta, G., Cafiero, G. and Martinez-Otero, A. (2006). Weed germination, seedling growth and their lesson for allelopathy in agriculture. pp. 285 - 297, In Reigosa, M. J., Pedrol, N. and Gonzales, L. (Eds.). Allelopathy: A Physiological Process with Ecological Implications. Springer, Netherlands

17. Allan, S. M. and Adkins, S. (2007). The effect of medicinal plant extracts on growth of Lemna aequinoctialis. Allelopathy Journal 19: 267-274.

18. Altieri MA, Lana MA, Bittencourt HVH, Kieling AS, Comin JJ, Lovato PE. 2011. Enhancing crop productivity via weed suppression in organic no-till cropping systems in Santa Catarina, Brazil. J Sustain Agr. 35:855 -869;

19. Appel HM. 1993. Phenolics in ecological interactions: the importance of oxidation. J Chem Ecol. 19:1521-1552.

20. Arif M, Munsif F, Waqas M, Khalil IA, Ali K. 2007. Effect of tillage on weeds and economics of fodder maize production. Pak J Weed Sci Res. 13:167-175.

21. Ashrafi, Z. Y., Sadeghi, S., Alizade, H. M., Mashhadi, H. R. and Mohamadi, E.R. (2009). Study of bioassay the allelopathical effect of neem (Azadirachta indica) n-hexane, acetone and water-soluble extracts on six weeds. International Journal of Biology 1: 71-77.

22. Assaeed, A .M. (2003). Ailelopathic effects of Artemisia monosperma DEL.on germination and seedling growth of some range plant species. Annals Agricultural Science, Moshtohor 41: 1383- 1395.

23. Bajwa AA, Mahajan G, Chauhan BS. 2015. Nonconventional weed management strategies for modern agriculture. Weed Sci. 63:723-747.

24. Bajwa AA. 2014. Sustainable weed management in conservation agriculture. Crop Prot. 65:105-113.

25. Balbinot Junior AA, Fleck NG, Menezes VG, Agostinetto D. 2003. Competitividade de cultivares de arroz irrigado com cultivar simuladora de arroz-vermelho. Pesqui Agropecu Bras. 38:53-59.

26. Baleroni, C. R., Ferrarese, M. L.,Souza, N. E. and Ferrarese-Filho, O. (2000). Lipid accumulation during canola seed germination in response to cinnamic acid derivatives. Biología Plantarum 43: 313 - 316

27. Barnes, J. P., Putnam, A. R. (1986): Evidence for allelopathy by residues and aqueous extracts of rye Secale cereale). Weed Sci. 34, 384-390

28. Barney, J. N. and Weston, L. A. (2002). Isolation of volatile bioactive compounds from mugwort (Artemisia vulgaris). Weed Science Society American Abstracts 42: 48.

29. Batish DR, Singh HP, Kohli RK. 2001. Vegetation exclusion under Casuarina equisetifolia L.: Does allelopathy play a role? Community Ecol. 2:93-100.

30. Batish, D. R., Arora, K., Singh, H. P. and Kohli, R. K. (2007a). Potential utilization of dried powder of Tagetes minuta as a natural herbicide for managing rice weed. Crop Protection 26: 566 - 571.

31. Batish, D.R., Kaur, M., Singh, H.P. and Kohli, R. K. (2007b). Phytotoxicity of a medicinal plant, Anisomeles indica, against Phalaris minor and its potential use as natural herbicide in wheat fields. Crop Protection 26: 948-952.;

32. Beck, K.G., Hanson, D.E. (1989). Rangeland grass seed germination and mycorrhizal fungi affected by Russian knapweed aqueous extracts. In: Proceedings of the Knapweed Symposium. Montana State University, Bozeman, p. 204.

33. Ben-Hammouda, M., Kremer, R.J., Minor, H.C. and Sarwar, M. (1995). A chemical basis for differential allelopathic potential of sorghum hybrids on wheat. Journal of Chemical Ecology 21: 775-786.

34. Bernat, W., Gawronska, H. and Gawronski, S.W. (2004a). Physiological effects of allelopathic activity of sunflower on mustard. Zeszyty Problemowe Post^pow NaukRolniczych.[ Advances of Agricultural Sciences Problem Issue] 496: 275 - 287.

35. Bernat, W., Gawronska, H.,Janowiak, F. and Gawronski, S.W. (2004b). The effect of sunflower allelopathics on germination and seedling vigour of winter wheat and mustard.Zeszyty Problemowe Post^pow Nauk Rolniczych.[ Advances of Agricultural Sciences Problem Issue] 496: 289 - 299;

36. Bertholdsson NO. 2004. Variation in allelopathic activity over 100 years of barley selection and breeding. Weed Res. 44:78-86.

37. Bertin C, Yang X, Weston LA. 2003. The role of root exudates and allelochemicals in the rhizosphere. Plant Soil. 256:67-83.

38. Bhowmik, P. C. Inderjit. Challenges and opportunities in implementing allelopathy for natural weed management. Crop Protection (2003). , 22(4), 661-671

39. Bittencourt HVH, Lovato PE, Comin JJ, Lana MA, Altieri MA, Costa MD, Gomes JC. 2013. Effect of winter cover crop biomass on summer weed emergence and biomass production. J Plant Protect Res. 53:248-252;

40. Blum, U. (1995). The value of model plant-microbe-soil system for understanding processes associated with allelopathic interactions. In: Allelopathy,

Organisms, Processes and Applications. eds. (K.M.M., Dakshini and Einhellig, F.A. ed.) ACS Symposium Series No. 582. American Chemical Society, Washington D.C., USA. 127-131;

41. Blum, U. (2002). Soil solution concentrations of phenolic acids as influenced by evapotranspiration. Abstracts of the Third World Congress on Allelopathy. p.56

42. Blum, U., Gerig T.M., Worsham, A.D., Holappa, L.D. and King, L.D. (1992). Allelopathic activity in wheat-conventional and wheat no-till soils: Developments of soil extract bioassays. Journal of Chemical Ecology 18: 2191-2221

43. Blum, U., Shafer, S. R. (1988). Microbial populations and phenolic acids in soil. Soil Biology and Biochemistry 20: 793-800

44. Blum, U., Shafer, S.R. and Lehman, M.E. (1999). Evidence for inhibitory allelopathic interactions involving phenolic acids in field soils: Concepts vs. an experimental model. Critical Reviews in Plant Sciences 18: 673-693

45. Blum, U., Wentworth, T.R., Klein, K., Worsham, A. D., King, L.D., Gerig, T.M. and Lyu, S.W. (1991). Phenolic acid content of soils from wheat no till, wheat conventional till, and fallow-conventional till soybean cropping systems. Journal of Chemical Ecology 17: 1045-1068.;

46. Bode, H. R. (1958). eitrage zur Kenntnis allelopatischer Ercheinungen bei einigen Juglandaceen. Planta 51, 440-480

47. Bogatek, R,. Gniazdowska, A., Zakrzewska, W., Oracz, K. and Gawronski, SW (2006). Allelopathic effects of sunflower extracts on mustard seed germination and seedling growth. Biologia Plantarum 50: 156-158.

48. Borges WLB, Freitas RS, Mateus GP, Sa ME, Alves MC. 2015. Cover crops for the northwest region from Sao Paulo State, Brazil. Cienc Rural. 45:799-805

49. Bradley, KW. Hagood, ES. (2002) Evaluations of selected herbicides and rates for long-term mugwort (Artemisia vulgaris) control. Weed Technol 16: 164-170

50. Buehler C, Rodgers J. 2012. Soil property differences between invaded casuarina (Casuarina equisetifolia L.) sites and non-casuarinasites in the Bahamas. Phys Geogr. 33:574-588.

51. Cheema ZA, Khaliq A, Ali K. 2002. Efficacy of sorgaab for weed control in wheat grown at different fertility levels. Pak J Weed Sci Res. 8:33-38.

52. Cheema ZA, Khaliq A. 2000. Use of sorghum allelopathic properties to control weeds in irrigated wheat in a semi arid region of Punjab. Agr Ecosyst Environ. 79:105-112;

53. Cheema, Z.A., Luqman, M. and Khalid, A. (1997). Use of allelopathic extracts of sorghum and sunflower herbage for weed control in wheat. Journal of Applied and Pure Sciences 7: 9193

54. Cheema, Z.A., Rakha, A. and Khaliq, A. (2000). Use of sorgaab and sorghum mulch for weed management in mungbean. Pakistan Journal of Agricultural Sciences 37: 140-144

55. Cheng HH. 1992. A conceptual framework for assessing allelochemicals in the soil environment. In: Rizvi SJH, Rizvi V, editors. Allelopathy. New York: Chapman & Hall; p. 21-29.

56. Chiapusio, G., Sanchez, A. M., Reigosa, M. J., Gonzalez, L. and Pellisier, F. (1997). Do germination indices adequately reflect allelochemical effects on the germination process? Journal of Chemical Ecology 23: 2445 - 2453.;

57. Chon, S.U. and Kim, J.D. (2002). Biological activity and quantification of suspected allelochemicals from alfalfa plant parts. Journal of Agronomy and Crop Science 188: 219 - 290

58. Chon, S.U., Jennings J.A., Nelson C.J., 2006. Alfalfa (Medicago sativa L.) autotoxicity: Current status. Allelopathy J. 18:57-80

59. Chou, C.H. (1999). Roles of allelopathy in plant biodiversity and sustainable agriculture. Critical Reviews in Plant Sciences 18: 609 - 636.

60. Chung IM, Ahn JK, Yun SJ. 2001. Assessment of allelopathic potential of barnyardgrass (Echinochloa crus-galli) on rice (Oryza sativa) cultivars. Crop Prot. 20:921-928.

61. Chung, I. M., and Miller, D.A. (1995a). Effect of alfalfa plant and soil extracts on germination and seedling growth. Agronomy Journal 87, 762-767.;

62. Ciarka, D., Gawronska, H., Malecka, M. and Gawronski, S. (2004). Allelopathic potential of sunflower roots and root exudates. Zeszyty Problemowe Post^pow Nauk Rolniczych.[ Advances of Agricultural Sciences Problem Issue]. 496: 301 - 313;

63. Cipollini D, Rigsby CM, Barto EK. 2012. Microbes as targets and mediators of allelopathy in plants. J Chem Ecol. 38:714-727.

64. Dahiya, D.S. and Narwal, S.S. (2003). Allelopathic plants. 7. Sunflower (Helianthus annuus L.). Allelopathy Journal 11: 1-20.

65. Dayan FE, Owen DK, Duke SO. 2012. Rationale for a natural products approach to herbicide discovery. Pest Manag Sci. 68:519-528.

66. Dayan, F. E, Cantrell, C. L, Duke, S. O. Natural products in crop protection. Bioorganic & Medicinal Chemistry (2009). , 17(12), 4022-4034,

67. Dayan, F. E, Owens, D. K, Duke, S. O. Rationale for a natural products approach to herbicide discovery. Pest Management Science (2012), 68(4), 519-528.

68. Dayan, F. E.; Hernandez, A.; Allen, S. N.; Moraes, R. M.; Vroman, J. A.; Avery, M.A. and Duke, S. O. (1999). Comparative phytotoxicity of artemisinin and several sesquiterpene analoques. Phytochemistry 50: 607 - 614.

69. De Albuquerque M.B., Santos R.C., Lima L.M., Melo Filho P.A., Nogueira R.J.M.C., Da Camara C.A.G., Ramos A.R. 2011. Allelopathy, an alternative tool to improve cropping systems. A review. Agron Sustain Dev. 31:379-395

70. DeAlmeida, F.S. (1985). Effect of some winter crop mulches on the soil weed infestation. In: Proceedings British Crop Protection Conference Weeds 651-659.

71. Deef, H. E. and AbdEL-Fattah, R. I. (2008). Allelopathic effects of water extract of Artemisia princeps var. orientalis on wheat under two types of soils. Academic Journal of Plant Sciences 1: 12-17.

72. Dhima, K.V., Vasilakoglou, I.B., Eleftherohorinos, I.G. and Lithourgidis, A.S. (2006). Allelopathic potential of winter cereals and their cover crop mulch effect on grass weed suppression and corn development. Crop Science 46: 345-352.

73. Dhima, K.V., Vasilakoglou, I.B.,Gatsis, Th.D., Panou-Philotheou,E.and Eleftherohorinos I.G. (2009). Effects of aromatic plants incorporated as green manure. Field Crops Research 110: 235-241

74. Dolling, A.; Zackrisson, O. and Nilsson, M.C. (1994). Seasonal variation in phytotoxicity of bracken (Pteridium aquilinum L. Kuhn). Journal of Chemical Ecology 20: 3163-3172

75. Dudai, N., Poljakoff-Mayber, A., Mayer, A.M., Putievsky, E. and Lerner, H.R. (1999). Essenial oils as allelochemicals and their potential use as bioherbicides. Journal of Chemical Ecology 25: 1079-1089.

76. Duke SO, Dayan FE, Rimando AM, Schrader KK, Aliotta G, Oliva A. 2002. Chemicals from nature for weed management. Weed Sci. 50:138-151.;

77. Duke SO. 2012. Why have no new herbicide modes of action appeared in recent years? Pest Manag Sci. 68:505-512

78. Duke, S.O. and Abbas, H.K. (1995). Natural products with potential use as herbicides. American Chemical Society, Symposium Series 582: 348-362.;

79. Duke, S.O. and Laydon, J. (1993). Natural phytotoxins as herbicides. In: Duke, S.O., J.J. Menn and J.R. Plimnter (eds.), Pest Control with Enhanced Environmental Safety, Vol. 524, pp. 111-121. ACS Symp. Series, American Chemical Society, Washington D.C, USA.

80. Duke, S.O., Dayan, F.E., Romagni, J.G., Rimando, A.M. (2000). Natural products as sources of herbicides: current status and future trends. Weed Res. 40, 99111

81. Duke, S.O., Rimando, A.M., Dayan, F.E., Canel, C., Wedge, D.E.,Tellez, M.R., Schrader, K.K., Weston, L.A., Smillie, T.J., Paul, R.N. and Duke, M.V. (2000b). Strategies for the discovery of bioactive phytochemicals. In: Bidlack, W.R., Omaye, S.T., Meskin, M.S. and Topham, D.K.W. (Eds.), Phytochemicals as Bioactive Agents. pp. 1 - 20. Technomic Publishing Co., Lancaster, Pennsylvania, USA;

82. Duke, S.O., Vaughn, K.C., Croom, E.M. and Elsohly, H.N. (1987). Artemisinin, a constituent of annual wormwood Artemisia annua is a selective phytotoxin. Weed Science 35: 499 - 505.

83. Duke, SO. Abbas, HK. Amagasa, T. Tanaka, T. (1996) Phytotoxins of microbial origin with potential for use as herbicides. In L.G. Copping (ed). Crop Protection Agents from Nature, Natural Products and Analogues, pp. 82-113. Royal Soc Chem, Cambridge, U.K.

84. Duke, SO. Dayan, FE. Rimando, AM. (2000a) Natural products and herbicide discovery. In AH Cobb, RC

85. Eichenberg D, Ristok C, Kroeber W, Bruelheide H. 2014. Plant polyphenols - implications of different sampling, storage and sample processing in biodiversity-ecosystem functioning experiments. Chem Ecol. 30:676-692.

86. Einhellig, F.A. (1985). Mechanisms and modes of action of allelochemicals. In "The Science of Allelopathy". (Eds.): A.P. Putnam and C. Teng. John Wiley and Sons Publishers. pp. 170-188;

87. Einhellig, F.A. (1986). Mechanisms and modes of action of allelochemicals. In "The Science of Allelopathy". (Eds.): A.P. Putnam and C. Teng. John Wiley & Sons Publishers. pp. 170-188.

88. Einhellig, F.A. (1987). Interactions among allelochemicals and other stress factors of the plant environment. In G.R Waller (ed.). Allelochemicals: Role in agriculture and forestry. American Chemical Society Washington DC, pp. 343-357

89. Einhellig, F.A. (1995a). Allelopathy: Current status and future goals. pp.124 In Inderjit., Dakshini, K.M.M. and Einhellig, F. A. (eds.), Allelopathy: Organisms, processes, and applications. American Chemical Society, Washington, DC.

90. Einhellig, F.A. (1995b). Mechanism of action of allelochemicals in allelopathy. pp. 96-116 In: Inderjit., Dakshini, K.M.M. and Einhellig, F. A. (eds.), Allelopathy: Organisms, processes, and applications. American Chemical Society, Washington, DC.

91. Einhellig, F.A. (1996). Interactions involving allelopathy in cropping systems. Agronomy Journal 88: 886-893.

92. Einhellig, F.A. (2001). The physiology of allelochemical action: clues and

views, First European Allelopathy Symposium, Vigo, Spain, June 21-23.

93. Einhellig, F.A. (2002). The physiology of allelochemical action: clues and views. In: Allelopathy, from Molecules to Ecosystems, M.J. Reigosa and N. Pedrol, Eds. Science Publishers, Enfield, New Hampshire

94. Einhellig, F.A., Rasmussen, J.A., Hejl, A.H. and Souza, I.F. (1993). Effects of root exudate sorgoleone on photosynthesis. Journal of Chemical Ecology 19: 369375.

95. Einhellig, FA. Souza, IF. (1992) Phytotoxicity of sorgoleone found in grain sorghum root exudates. J Chem Ecol 18: 1-11

96. El-Darier, S.M. (2002). Allelopathic effects of Eucalyptus rostrata on growth, nutrient uptake and metabolite accumulation of Vicia faba L. and Zea mays L. Pakistan Journal of Biological Sciences 5: 6-11.

97. El-Darier, S.M. and Youssef, R.S. (2000). Effect of soil type, salinity, and allelochemicals on germination and seedling growth of a medicinal plant Lepidium sativum L. Annals of Applied Biology 136: 3179 - 305.

98. Escudero, A.,Albert, M.J., Pita, J.M. and Perez-Garcia, F. (2000). Inhibitory effects of Artemisia herba-alba on the germination of the gypsophyte Helianthemum squamatum. Plant Ecology 148: 71-80.

99. Farooq M, Bajwa AA, Cheema SA, Cheema ZA. 2013. Application of allelopathy in crop production. Int J Agric Biol. 15:1367-1378.

100. Farooq M, Jabran K, Cheema ZA, Wahid A, Siddique KH. 2011. The role of allelopathy in agricultural pest management. Pest Manag Sci. 67:493 -506.

101. Foy, C.L. (1999). How to make bioassays for allelopathy more relevant to field conditions with particular reference to cropland weeds. In: Inderjit, K.M.M. Dakshini and C.L. Foy (eds.), Principals and Practices in Plant Ecology: Allelopathic Interactions. pp. 25-33. CRC Press, Washington.

102. Friedman, J., Orshan, G. and Ziger-Cfir, Y. (1977). Suppression of annuals by Artemisia herba-alba in the Negev Desert of Israel. Journal of Ecology 65: 413-426

103. Fujii, Y. (1992). The potential biological control of paddy weeds with allelopathy: Allelopathic effect of some rice varieties. In: 'Proceedings International

Symposium on Biological Control and Integrated Management of Paddy and Aquatic Weeds in Asia', pp. 305-320. National Agricultural Research Center, Tsukuba, Japan

104. Fujii, Y. (2001). Screening and future exploitation of allelopathic plants as alternative herbicides with special reference to hairy vetch. Journal of Crop Production 4: 257 - 275.;

105. Fujii, Y., Parvez, S.S.,Parvez, M.M., Ohmae, Y. and Iida, O. (2003). Screening of 239 medicinal plant species for allelopathic activity using the sandwich method. Weed Biology and Management 3: 233-241.

106. Gavazzi C, Schulz M, Marocco A, Tabaglio V. (2010). Sustainable weed control by allelochemicals from rye cover crops: from the greenhouse to field evidence. Allelopathy J. 25:259-274;

107. Gawronska, H., Ciarka, D. and Gawronski, S.W. (2006). Genetic diversity in crop allelopathy. Cereal crop diversity: implications for production and products, SUSVAR proceeding. pp. 92-94.

108. Gniazdowska, A. and Bogatek, R. (2005 a). Allelopathic interactions between plants. Multi site action of allelochemicals. Acta Physiologiae Plantarum 27: 395 - 407

109. Gniazdowska, A. and Bogatek, R. (2005 b). Allelopathic interactions between plants. Multi site action of allelochemicals. Acta Physiologiae Plantarum 27: 395 - 407

110. Gniazdowska, A. and Bogatek, R. (2005). Allelopathic interactions between plants. Multi site action of allelochemicals. Acta Physiologiae Plantarum 27: 395 - 407.

111. Gonzalez, V.M., Kazimir, J., Nimbal, C., Weston, L. A. and Cheniae, G. M. (1997). Inhibition of a photosystem II electron transfer reaction by the natural product sorgoleone. Journal of Agricultural and Food Chemistry 45: 1415-1421.

112. Grodzinsky, A.M. (1989). General and specific mechanisms of biochemical interactions between plants. Biologia Plantarum 31: 448- 457.

113. Gronle A, Heb J, Bohm H. 2015. Weed suppressive ability in sole and intercrops of pea and oat and it is interaction with ploughing and crop interference in organic farming. Org Agric. 5:39-51.

114. Halbrendt JM. 1996. Allelopathy in the management of plant-parasitic nematodes. J Nematol. 28:8-14.

115. Hall, A.B., Blum, U. and Fites, R.C. (1982). Stress modification of allelopathy of Helianthus annuus L. debris on seed germination. American Journal of Botany 69: 776-783.

116. Halligan, J. P., (1973). Bare areas associated with shrub stands in grasslands: the case of Artemisia california. Bioscience 23, 429-432

117. Hao WY, Ren LX, Ran W, Shen QR. 2010. Allelopathic effects of root exudates from watermelon and rice plants on Fusarium oxysporum f. sp. niveum. Plant Soil. 336:485-497.

118. Hatcher, P.E. and Melander, B. (2003). Combining physical, cultural and biological methods prospects for integrated non-chemical weed management strategies. Weed Research 43: 303-322.

119. Haugland, E. and Brandsaeter, L. O. (1996). Experiments on bioassay sensitivity in the study of allelopathy. Journal of Chemical Ecology 22(10):1845-1859;

120. Henkel, T. Brunne, RM. Müller, H. Reichel, F. (1999) Statistical investigation into the structural complementarity of natural products and synthetic compounds. Angew Chem Inter Ed 38: 643-647

121. Hess DE, Ejeta G, Butler LG. 1992. Selecting sorghum genotypes expressing a quantitative biosynthetic trait confer resistance to Striga. Phytochemistry. 31:493-497

122. Hoagland, R. E. and Williams, R. D. (2004). Bioassays- useful tools for the study of allelopathy. PP, 315 - 351, In: F. A. Macias et al. (Eds.). Allelopathy, Chemistry and Mode of Action of Allelochemicals. CRCPress, Boca-Raton, FL.;

123. Hong , N. H ., Xuan , T. D., Tsuzuki , E., Terao , H., Matsuo, M . and Khanh, T. D. (2003) . Screening for allelopathic potential of higher plants from Southeast Asia. Crop Protection 22: 829 - 836;

124. Inderjit, (2001). Soil: environmental effects on allelochemical activity. Agronomy Journal 93: 79-84;

125. Inderjit, (2005). Soil microorganisms: an important determinant of allelopathic activity. Plant and Soil 274: 227-236

126. Inderjit, and Dakshini, K. M. (1994). Allelopathic effect of Pluchea lanceolata (Asteraceae) on characteristics of four soils and tomato and mustard growth. American Journal of Botany 81: 799-804

127. Inderjit, and Dakshini, K. M. (1995). Allelopathic potential of an annual weed, Polygonum monspeliensis, in crops in India. Plant and Soil 173: 251 - 257.;

128. Inderjit, and Weston, L.A. (2000). Are laboratory bioassays suitable for prediction of field responses? Journal of Chemical Ecology 26: 2111-2118

129. Inderjit, Del Moral R. 1997. Is separating resource competition from allelopathy realistic? Bot Rev. 63:221-230;

130. Inderjit, Wardle DA, Karban R, Callaway RM. 2011. The ecosystem and evolutionary contexts of allelopathy. Trends Ecol Evol. 26:655-662.

131. Inderjit, Weiner J. 2001. Plant allelochemical interference or soil chemical ecology? Perspect Plant Ecol. 4:3-12;

132. Iqbal, J. and Cheema, Z.A. (2007). Intercropping of field crops in cotton for management of purple nutsedge (Cyperus rotundus L.). Plant and Soil 300: 163-171

133. Irzyk, GP. Zorner, P. Kern, A. (1997) Scythe herbicide: a new contact herbicide based on naturally- occurring pelargonic acid. Weed Sci So Amer Abstr 37: 103

134. Jabran K, Mahajan G, Sardana V, Chauhan BS. 2015. Allelopathy for weed control in agricultural systems. Crop Prot. 72:57-65;

135. Javaid A. 2007. Allelopathic interactions in mycorrhizal associations. Allelopathy J. 20:29-42;

136. Jefferson, L.V. Pennacchio, M., (2003). Allelopathic effects of foliage extracts from four Chenopodiaceae species on seed germination. Journal of Arid Environments 55, 275-285

137. Jensen LB, Courtois B, Shenab L, Liab Z, Olofsdotter M, Mauleona RP. 2001. Locating genes controlling allelopathic effects against bayarndgrass in upland rice. Agron J. 93:21-26.

138. Kah M, Brown CD. 2006. Adsorption of ionizable pesticides in soil. Rev Environ Contam Toxicol. 188:149-217

139. Kato-Naguchi, H. and Macias, F. A. (2004). Mode of action of MBOA on inhibition of plant germination. In: Proceedings of Second European Allelopathy Symposmm"AlMopathy-from understanding to application". Pulawy, Poland, pp, 96 -97.

140. Kato-Noguchi, H. (2001). Effects of lemon balm, Melissa officinalis extract on germination and seedling growth of six plants. Acta Physiologiae Plantarum 23: 4953.

141. Kato-Noguchi, H. and Macias, F.A. (2005). Effects of 6-methoxy-2-benzoxazolinone on the germination and a-amylase activity in lettuce seeds, Journal of Plant Physiology 162: 1304-1307

142. Kato-Noguchi, H. and Macias, F.A. (2008). Inhibition of germination and a-amylase induction by 6-methoxy-2-benzoxazolinone in twelve plant species. Biologia Plantarum 52: 351-354.

143. Khan ZR, Hassanali A, Overholt W, Khamis TM, Hooper AM, Pickett JA, Wadhams LJ, Woodcock M. 2002. Control of witchweed Striga hermonthica by intercropping with Desmodium spp., and the mechanism defined as allelopathic. J Chem Ecol. 28:1871-1885.

144. Khanh, T.D., Chung, I.M., Tawata, S. and Xuan, T.D. (2006). Weed suppression by Passiflora edulis and its potential allelochemicals. Weed Research 46: 296-303

145. Khanh, T.D., Chung, I.M., Xuan, T.D. and Tawata, S. (2005). The exploitation of allelopathy in sustainable agricultural production. Journal of Agronomy and Crop Science 191: 172-184.

146. Khanh, T.D., Elzaawely, A.A., Chung, I.M., Ahn, J.K., Tawata, S. and Xuan, T.D. (2007). Role of allelochemical for weed management in rice. Allelopathy Journal 19: 85-96.

147. Kil, B. and Yun, K.W. (1992). Allelopathic effects of water extracts of Artemisia princeps var. orientalis on selected plant species. Journal of Chemical Ecology 18: 39-51.

148. Kirkwood (eds) Herbicides and their Mechanisms of Action, pp. 105-133. Academic Press, Sheffield

149. Kobayashi, K. (2004). Factors affecting phytotoxic activity of allelochemicals in soil. Weed Biology and Management 4: 1-7

150. Koeppe, D.E., Southwick, L.M. and Bittell, J.E. (1976). The relationship of tissue chlorogenic acid concentration and leaching of phenolics from sunflowers grown under varying phosphate nutrient conditions. Canadian Journal of Botany 54: 593-599.

151. Kohli, R.K., Batish, D. and Singh, H.P. (1998). Allelopathy and its implications in agroecosystems. Journal of Crop Production 1:169-202.;

152. Kong, C., Hu, F, Xu, T. and Lu, Y. (1999). Allelopathic potential and chemical constituents of volatile oil from Ageratum conyzoides. Journal of Chemical Ecology 25: 2347 - 2356;

153. Kordali, S., Cakir, K., Akcinc, T.A.,Meted, E., Akcine, A., Aydinb, T. and Kilic, H. (2009). Antifungal and herbicidal properties of essential oils and n-hexane extracts of Achillea gypsicola Hub-Mor. and Achillea biebersteinii Afan (Asteraceae). Industrial Crops and Products 29: 562-570.

154. Kupidlowska, E., Dobrzynska, K., Parys, E. and Zobel, A. M. (1994). Effect of coumarin and xantoxin on mitochondrial structure, oxygen up take and succinate dehydrogenase activity in onion root cells. Journal of Chemical Ecology 20: 2471 - 2480.

155. Leather, G.R. and Einhellig, F.A. (1985). Mechanism of allelopathic action in bioassay. pp.197-205, In: Thompson AC, (ed). The chemistry of allelopathy, American Chemical Society. Symposium Series 268; Washington, DC.

156. Leather, G.R. and Einhellig, F.A. (1986). Bioassays in the study of allelopathy. In: The science of allelopathy, pp. 133-145.

157. Leather, G.R. and Einhellig, F.A. (1988). Bioassay of naturally occurring allelochemicals for phytotoxicity. Journal of Chemical Ecology 14: 1821-1828.

158. Lee, DL. Prisbylla, MP. Cromartie, TH. Dagarin, DP. Howard, SW. Provan, WM. Ellis, MK. Fraser, T. Mutter, LC. (1997) The discovery hydroxyphenylpyruvate dioxygenase. Weed Sci 45: 601-609

159. Levitt, J. and Lovett, J.V. (1984). Datura stramonium L.: alkaloids and allelopathy. Australian Weeds, 3 (3):108-112.

160. Li, H. H.; Inoue, M.; Nishimura, H.; Mizutami, J. and Tsuzuki, E. (1993). Interactions of trans-cinnamic acid, its related phenolic allelochemicals, and abscisic acid in seedling growth and seed germination of lettuce. Journal of Chemical Ecology 19:1775 - 1787.

161. Lovett, J.V. and Ryuntyu M.Y. (1992). Allelopathy: broadening the context pp 11-17.In "Allelopathy: Basic and Applied Aspects" Edited by S.J.H rizivi and d. rizivi. Publisher, Springer p 473;

162. Lydon, J. Duke, SO. (1999) Inhibitors of glutamine biosynthesis. In Singh, BK. (ed) Plant Amino Acids. pp. 445-464. Marcel Dekker, New York, New York Netzly,

163. Lydon, J., Teasdale, J.R. and Chen, P.K. (1997). Allelopathic activity of annual wormwood Artemisia annua and the role of artemisinin. Weed Science 45: 807811.

164. Lyu, S.W.,Blum, U.,Gerig, T. M. and O'Brien, T. E. (1990). Effect of mixtures of phenolic acids on phosphorus uptake of cucumber seedling. Journal of Chemical Ecology 16: 2559 - 2567.

165. Macias FA, Molinillo JMG, Varela RM, Galindo JCG. 2007. Allelopathy -a natural alternative for weed control. Pest Manag Sci. 63:327-348.

166. Macias FA, Oliveros-Bastidas A, Marin D, Chinchilla N, Castellano D, Molinillo JMG. 2014. Evidence for an allelopathic interaction between rye and wild oats. J Agr Food Chem. 62:9450-9457

167. Macias, F. A., Castelland, D. and Molinillo, M. J. (2000). Search for a standard phytotoxic bioassay for allelochemicals. Selection of standard target species. Journal of Agricultural and Food Chemistry 48: 2512-2521.

168. Macias, F.A., Galindo, J.C., Molinillo, J.M. and Cutler, H.G. (2004). Allelopathy: chemistry and mode of action of allelochemicals. CRC Press, Boca Raton, FL. pp.372.

169. Maffei, M., Bertea, C.M., Garneri, F. and Scanneri, S. (1999). Effect of benzoic acid hydroxy-and methoxy ring substituents during cucumber (Cucumis sativus L.) germination. I. Isocitrate lyase and catalse activity. Plant Science 141: 139 - 147.

170. Mahmood, A. and Z.A. Cheema. (2004). Influence of sorghum mulch on purple nutsedge (Cyperus rotundus L.). International Journal of Agriculture and Biology 6: 86-88.

171. Mallik, M.A. and Williams, R.D. (2009). Allelopathic principles for sustainable agriculture. Allelopathy Journal 24: 1-34.

172. Mandava, N.B. (1985). Chemistry and biology of allelopathic agents. pp. 33-54. In: Thompson, A.C. (Ed), The chemistry of allelopathy. Biochemical interactions among the plants. A. C. S. Symposium Series 268, American Chemical Society, Washington, DC.;

173. Mann, J. (1987). Secondary Metabolism, 2nd Edition. Clarendon Press, Oxford, 374pp

174. Martin VL, Maccoy EL, Dick WA. 1990. Allelopathy of crop residues influences corn seed germination and early growth. Agron J. 82:555-560.

175. McLaughlin, J. C. and Smith, S. M. (1994). Metabolic regulation of glyoxylate cycle enzyme synthesis in detached cucumber cotyledons and protoplasts. Plant physiology and biochemistry 33: 87- 95.

176. Mekky, M. S. (2008). Allelopathic effects of blue gum (Eucalyptus globules), sweet basil (Ocimum basilicum), wormwood (Artemisia annua) and sweet potato (Ipomoea batatas) extracts on seeds germination and seedling development of some weed species. Egyptian Journal of Applied Science 23: 95-106.

177. Modallal, N. M. and Al-Charchafchi, F. M. (2006). Allelopathic effect of Artemisia herba alba on germination and seedling growth of Anabasis setifera. Pakistan Journal of Biological Sciences 9: 1795-1798.

178. Moradshahi, A.; Ghadiri, H. and Ebrahimikia, F. (2003). Allelopathic effects of crude volatile oil and aqueous extracts of Eucalyptus camaldulensis Dehnh., leaves on crops and weeds. Allelopathy Journal 12: 189-195.

179. Morris, C.; Grossl, P.R. and Call, C.A. (2009). Elemental allelopathy: processes, progress, and pitfalls. Plant Ecology 202: 1-11

180. Muller, C.H. (1965). Inhibitory terpenes volatilized from Salvia shrubs. Bulletin of the Torrey Botanical Club 92: 38-45.

181. Muller, C.H., Muller, W.H. and Haines, B.L. (1964). Volatile growth inhibitors produced by aromatic shrubs. Science (Washington, DC) 143: 471-473;

182. Muscolo, A., Panuccio, M. R. and Sidari, M. (2001). The effect of phenols on respiratory enzymes in seed germination. Respiratory enzyme activities during germination of Pinus laricio seeds treated with phenols extracted from different forest soils. Plant Growth Regulation 35: 31- 35.

183. Mutter, LC. (1997) The discovery hydroxyphenylpyruvate dioxygenase. Weed Sci 45: 601-609

184. Narwal, S.S. (1994). Allelopathy in crop production. Scientific Publishers Jodhpur (India) p.288

185. Narwal, S.S. (2000). Weed management in rice: Wheat rotation by allelopathy. Critical review in plant sciences 19: 249-266

186. Navarez, D., and M. Olofsdotter, (1996). Relay seeding technique for screening allelopathic rice (Oryza sativa). Proc. 2nd Int. Weed Control Congr., Copenhagen, 1285 1290;

187. Netzly, DH. Butler, LG. (1986) Roots of sorghum exude hydrophobic droplets containing biologically active components. Crop Sci 26: 775-778

188. Nichols V, Verhulst N, Cox R, Govaerts B. 2015. Weed dynamics and conservation agriculture principles: a review. Field Crop Res. 183:56-68.

189. Oerke, E.C., Dehne, H.W.,Schonbeck, F. and Weber, A. (1995). Crop production and crop protection: Estimated losses in major food and cash crops. Elsevier Science Publishers.B.V. Amsterdam.

190. Olofsdotter M, Jensen LB, Courtois B. 2002. Improving crop competitive ability using allelopathy - an example from rice. Plant Breeding. 121:1-9

191. Olofsdotter, M., Navarez, D., Rebulanan, M., (1997). Rice allelopathy -where are we and how far can we get? Brighton Crop Protect. Conf. Weeds, 1, 99-104

192. Om, Hari, Dhiman, S.D., Kumar, S., Kumar, H. (2002). Allelopathic response of Phalaris minor to crop and weed plants in rice-wheat system. Crop Protection 21, 699-705

193. Padhy, B., Patnaik, P. K. and Tripathy, A. K. (2000). Allelopathic potential of Eucalyptus leaf litter leachates on germination of seedling growth of fingermillet. Allelopathy Journal 7: 69 - 78.

194. Patterson, D. T. (1986). Allelopathy. In N. D. Camper, ed. Research Methods in Weed Science. 3rd ed. Champaign, IL: Southern Weed Science Society. pp. 111-134.

195. Pawar, K. B. and Chavan, P.D. (2007). Influence of leaf leachates of soybean, Moringa, Parthenium and Eucalyptus on carbohydrate metabolism in germinating seeds of Sorghum bicolor (L.) Moench. Allelopathy Journal 19: 321-326.

196. Penuelas, J., Ribas-Carbo, M. and Giles, L. (1996). Effect of allelochemicals on plant respiration and oxygen isotope fractionation by alternative oxidase. Journal of Chemical Ecology 22: 801- 805.

197. Pline, WA. Hatzios, KK. Hagood, ES. (2000) Weed and herbicide-resistant soybean (Glycine max) response to glufosinate and glyphosate plus ammonium sulfate and pelargonic acid. Weed Technol 14: 667-674

198. Popa, V.I., Dumitru, M.,Volf, I. and Anghel, N. (2008). Lignin and polyphenols as allelochemicals. Industrial crops and Products 27:144-149.

199. Pudelko K, Mankowski J, Kolodziej J. 2015. Cultivation of fiber and oil flax (Linum usitatissimum L.) in no-tillage and conventional systems. Part II. Influence

of no-tillage and use of herbicides on yield and weed infestation of oil flax and the physical and biological properties of the soil. J Nat Fiber. 12:72-83.

200. Putnam, A. R. and Duke, W. O. (1978). Allelopathy in agroecosystems. Annual Reviews of Phytopathology 16: 431 - 451;

201. Putnam, A. R., Defrank, J. and Barnes, J. P. (1983). Exploitation of allelopathy for weed control in annual and perennial cropping systems. Journal of Chemical Ecology 9:1001-1010.;

202. Putnam, A.R. (1988). Weed Tech. 2, 510-518

203. Qasem, J. R. (2002). Allelopathic effects of selected medicinal plants on Amaranthus retroflexus and Chenopodium murale. Allelopathy Journal 10: 105 - 122.

204. Qasem, J. R. and Foy, C. L. (2001). Weed allelopathy, its ecological impacts and future prospects: a review. Journal of Crop Production 4: 43 - 92

205. Qasem, J.R. and Hill, T.A. (1989). Possible role of allelopathy in the competition between tomato, Senecio vulgaris L. and Chenopodium album L. Weed Research 29: 349-356;

206. Radosevich S.R, Holt J.S, Ghersa C. 2007. Ecology of weeds and invasive plants: relationship to agriculture and natural resource management. New York: Wiley; p. 454;

207. Rector BG. 2008. Molecular biology approaches to control of intractable weeds: new strategies and complements to existing biological practices. Plant Sci. 175:437-448.

208. Rice E.L. 1984. Allelopathy, 2nd edition. Rice EL, editor. Orlando: Academic Press; p. 422

209. Rice EL, Lin C, Huang C. 1981. Effects of decomposing rice straw on growth of and nitrogen fixation by Rhizobium. J Chem Ecol. 7:333-344.

210. Rice, E.L. (1974). Allelopathy. Academic Press, New York, NY. pp.353

211. Rice, E.L. (1995) Biological Control of Weeds and Plant Diseases -Advances in Applied Allelopathy.University of Oklahoma Press, Norman, USA. pp.439.;

212. Rizvi S.J.H., Haque H., Singh U.K., Rizvi V. 1992. A discipline called allelopathy. In: Rizvi SJH, Rizvi H, editors. Allelopathy: basic and applied aspects. London: Chapman & Hall; p. 1-10;

213. Rizvi, S. J. H. and Rizvi, V. (1992). Allelopathy: basic and applied aspects. Chapman and Hall, London. pp. 480.

214. Rizvi, S.J.H.; Haque, H.; Singh, H.K. and Rizvi, V. (1992). A discipline called allelopathy. pp. 1-10. In: Allelopathy: Basic and Applied Aspects. (ed.). Rizvi, S. J. H. and Rizvi, V. Chapman and Hall Press. New York.;

215. Rizvi, S.J.H.; Tahir, M.; Rizvi, V.; Kohli, R.K. and Ansari, A. (1999). Allelopathic interactions in agroforestry systems. Critical Reviews in Plant Sciences 18: 773-779.

216. Romagni, J. G.; Allen, S. N. and Dayan, F. E. (2000a). Allelopathic effects of volatile cineoles on two weedy plant species. Journal of Chemical Ecology 26: 303 -313.

217. Romagni, J.G.; Duke, S.O. and Dayan, F.E. (2000b). Inhibition of asparagines synthetase by 1, 4-cineole, the key to the mode of action of cinmethylin. Plant Physiology 123: 725 - 732

218. Sampietro, D.A.; Sgariglia, M.A.; Sober on, J.R.; Quiroga, E.N. and Vattuone, M.A. (2007). Role of sugarcane straw allelochemicals in the growth suppression of arrowleaf sida. Environmental and Experimental Botany 60: 495-503.

219. Sati, S.C., Palaniraj, R., Narwal, S.S., Gaur R.D., and Dahiya D.S. (2004). Effects of decomposingwheat and barley residues on the germination and seedling growth of Trianthema portulacastrum and Echinochloa colonum. International conference:Allelopathy in sustainable Terrestrial and aquatic Ecosystem. August 2325, Haryana Agri. University., Hisar-125004, India.

220. Schreiner RP, Koide RT. 1993. Antifungal compounds from the roots of mycotrophic and non-mycotrophic plant species. New Phytol. 123:99-105.

221. Schulz M, Marocco A, Tabaglio V, Macias FA, Molinillo MG. 2013. Benzoxazinoids in rye allelopathy - from discovery to application in sustainable weed control and organic farming. J Chem Ecol. 39:154-174.

222. Seigler D.S. 1996. Chemistry and mechanism of allelopathic interactions. Agron J. 88:876-885;

223. Singh, A.; Singh, D. and Singh, N.B. (2009). Allelochemical stress produced by aqueous leachate of Nicotiana plumbaginifolia Viv. Plant Growth Regulation 58:163-171.

224. Singh, H.P.; Batish, D. R. and Kohli, R .K. (2003a). Allelopathic interactions and allelochemicals: new possibilities for sustainable weed management. Critical Reviews in Plant Sciences 22: 239-311;

225. Singh, H.P.; Batish, D.R. and Kohlie, R.K. (2001). Allelopathy in agroecosystems: an overview. Journal of Crop Production 4: 1-41.

226. Singh, H.P.; Batish, D.R.; Pandher, J.K. and Kohli, R.K. (2003b). Assessment of allelopathic properties of Parthenium hysterophorus residues. Agriculture, Ecosystems and Environment 95: 537-541.

227. Singh, H.P.; Batish, D.R.; Setia, N. and Kohli, R.K. (2005). Herbicidal activity of volatile oils from Eucalyptus citriodora against Parthenium hysterophorus. Annals of Applied Biology 146: 89-94

228. Sisodia, S, Siddiqui M.B., (2008). Allelopathic effect of Lantana camara on Bidens pilosa VEGTOS. 20, 29-32; Sisodia, S., Siddiqui, M.B. (2009). Allelopathic potential of rhizosphere soil of Croton bonplandianum on growth and establishment of some crop and weed plants. Afr. J. Agric. Res. 4, 461-467

229. Souza Filho APS, Alves SM. 2002. Alelopatia: principios basicos e aspectos gerais. Belem: Embrapa Amazonia Oriental; p. 206.

230. Stinson KA, Campbell SA, Powell JR, Wolfe BE, Callaway RM, Thelen GC, Hallett SG, Prati D, Klironomos JN. 2006. Invasive plant suppresses the growth of native tree seedlings by disrupting belowground mutualisms. Plos Biol. 4:727-731;

231. Stowe, L.G. and Osborn, A (1980).The influence of nitrogen andphosphorus levels on the phytotoxicity of phenolic compounds. Canadian Journal of Botany.58:1149 -1153.

232. Tabaglio V, Gavazzi C, Menta C. 2008. The influence of no-till, conventional tillage and nitrogen fertilization on physico-chemical and biological indicators after three years of monoculture barley. Ital J Agron. 3:233 -240;

233. Tabaglio V, Gavazzi C, Schulz M, Marocco A. 2008. Alternative weed control using the allelopathic effect of natural benzoxazinoids from rye mulch. Agron Sustain Dev. 28:397-401;

234. Tabaglio V, Marocco A, Schulz M. 2013. Allelopathic cover crop of rye for integrated weed control in sustainable agroecosystems. Ital J Agron. 8:35-40.

235. Tang, W., Pasternak, J.J. and Glick, B.R. (1995). Persistence in soil of the plant growth promoting rhizobacterium Pseudomonas putida GR12-2 and genetically manipulated derived strains Can. J. Microbiol. 41: 455-451

236. Tellez, MR, Dayan FE, Schrader KK, Wedge DE and Duke SO, (2000) Composition and some biological activities essential oil ofCallicarpa americana (L). J Agric Food Chem 48:3008-3012

237. Tesfamariam T, Yoshinaga H, Deshpande SP, Srinivasa Rao P, Sahrawat KL, Ando Y, Nakahara K, Hash CT, Subbarao GV. 2014. Biological nitrification inhibition in sorghum: the role of sorgoleone production. Plant Soil. 379:325-335.

238. Trezzi MM, Vidal R. 2004. Potencial de utilizacao de cobertura vegetal de sorgo e milheto na supressao de plantas daninhas em condicoes de campo: II - Efeitos da cobertura morta. Planta Daninha. 22: 1-10.

239. Tsuzuki, E., Miura, M., Sakaki, N., Yoshino, T. (1999). Study on the control of weeds by using higher plants. Report of the Kyushu Branch of Crop Science Society of Japan, vol. 65, pp. 39-40 (in Japanese).;

240. Tworkoski, T. (2002). Herbicide effects of essential oils. Weed Science 50: 425-431.

241. Uremis, I.; Arslan, M. and Uludag, A. (2005). Allelopathic effects of some Brassica species on germination and growth of cutleaf ground cherry (Phyolis angulata L.). Journal of Biological Sciences 5: 661-665

242. Vasilakoglou, I.; Dhima, K.; Wogiatzi, E.; Elefherohorinos, I. and Lithourgidis, A. (2007). Herbicidal potential of essential oils of oregano or marjoram

(Origanum spp.) and basil (Ocimum basilicum) on Echinochloa crus-galli (L.) P. Beauv. and Chenopodium album L. weeds. Allelopathy Journal 20: 297-306.

243. Vilhena KSS, Guilhon GMSP, Zoghbi MGB, Santos LS, Souza Filho APS. 2014. Chemical investigation of Cyperus distans L. and inhibitory activity of scabequinone in seed germination and seedling growth bioassays. Nat Prod Res. 28:2128-2133.

244. Vyvyan, W. R. Allelochemicals as leads for new herbicides and agrochemicals. Tetrahedron (2002). 58(9), 1632-1646

245. Wardle, D. A.; Njchot.Son, K. S. and Rahman, A. (1993). Influence of plant age on allelopathic potential of Nodding Thistle (Curduus nutans L.) against pasture grasses and legumes. Weed Research 33: 69-78.

246. Weston LA, Mathesius U. 2013. Flavonoids: their structure, biosynthesis and role in the rhizosphere, including allelopathy. J Chem Ecol. 39:283-297.

247. Weston, L.A. and Duke, S.O. (2003). Weed and crop allelopathy. Critical Reviews in Plant Sciences 22: 367-389.

248. Weston, L.A.; Harmon, R. and Mueller, S. (1989). Allelopathic potential of sorghumsudangrass hybrid (sudex). Journal of Chemical Ecology 15: 1855-1865.

249. Willis, R.J. (1985). The historical bases of the concept of allelopathy. Journal of the History of Biology 18: 71-102

250. Wink, M. (1999). Introduction: biochemistry, role and biotechnology of secondary metabolites. In: Functions of Plant Secondary Metabolites and Their Exploitation in Biotechnology, ed. M. Wink. CRC Press, Boca Raton FL. Annual Plant Reviews 3: 1-16.

251. Wink, M. and Twardowski, T. (1992). Allelochemical properties of alkaloids: effects on plants, bacteria and protein biosynthesis. pp. 129-150. In: S.J.H. Rizvi and V. Rizvi, eds. Allelopathy: Basic and Applied Aspects. New York: Chapman and Hall.;

252. Wink, M.; Schmeller, T. and Latz-Bruning, B. (1998). Modes of action of allelochemical alkaloids: Interaction with neuroreceptors, DNA, and other molecular targets. Journal of Chemical Ecology 24: 1881-1937

253. Worthington M, Reberg-Horton SC, Brown-Guedira G, Jordan D, Weisz R, Murphy JP. 2015. Relative contributions of allelopathy and competitive traits to the weed suppressive ability of winter wheat lines against Italian ryegrass. Crop Sci. 55:5764.

254. Wortman SE, Francis CA, Bernards MA, Blankenship EE, Lindquist JL. 2013. Mechanical termination of diverse cover crop mixtures for improved weed suppression in organic cropping systems. Weed Sci. 61:162-170.

255. Wu, H.; Haig, T.; Pratley, J.; Lemerle, D. and An, M. (2000). Distribution and exudation of allelochemicals in wheat Triticum aestivum. Journal of Chemical Ecology 26: 2141-2154.

256. Xu M, Hillwig ML, Prisic S, Coates RM, Peters RJ. 2004. Functional identification of rice syn-copalyl diphosphate synthase and its role in initiating biosynthesis of diterpenoid phytoalexin/allelopathic natural products. Plant J Cell Mol Biol. 39:309-318.

257. Xuan TD, Tsuzuki E. 2002. Varietal difference in allelopathic potential of alfafa (Medicago sativa L.). J Agron Crop Sci. 188:2-7.

258. Xuan, T.D., Tawata, S., Hong, N.H., Khanh, T.D.and Chung, I.M.,(2004a). Assessment of phytotoxic action of Ageratum conyzoides L. (billy goat weed) on weeds. Crop Protction on ScienceDirect . 23, 915-922.

259. Xuan, T.D.; Tawata, S.; Khanh, T.D. and Chung, I.M. (2005). Decomposition of allelopathic plants in soil. Journal of Agronomy and Crop Science 191: 162-171;

260. Xuan, T.D.; Tsuzuki, E.; Uematsu, H. and Terao, H. (2001). Weed control withalfalfa pellets in transplanting rice. Weed Biology and Management 1: 231-235.;

261. Yu, J.Q. and Matsui, Y. (1997). Effect of root exudates of cucumber (Cucumis sativus) and allelochemicals on ion uptake by cucumber seedlings. Journal of Chemical Ecology 23: 817- 827.

262. Yun, K.W., and M.A. Maun. (1997). Allelopathic potential of Artemisia campestris ssp. caudata on Lake Huron sand dunes. Canadian Journal of Botany 75: 1903-1912.

263. Zanuncio A, Teodoro PE, Ribeiro LP, Correa CCG, Oliveira M, Torres FE. 2013. Alelopatia de adubos verdes sobre Cyperus rotundus. Rev Ciencs Agrar. 36:441— 446.