Выделение и свойства рибонуклеиновых кислот кодируемых аденовирусным геномом и анализ продуктов трансляции поздних мРНК аденовирусов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.03, кандидат биологических наук Чайка, Олег Вадимович

• Чайка, Олег Вадимович
• кандидат биологических наук
• 1984

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Чайка, Олег Вадимович

Принятые сокращения

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Геном аденовирусов и его экспрессия

1.1.1. Строение генома аденовирусов

1.1.2. Экспрессия генома аденовирусов

1.1.2.1. Ранняя фаза инфекционного цикла Ю

1.1.2.2. Поздняя фаза инфекционного цикла

1.1.3. Информационные РНК (мРНК) аденовирусов.

1.2. Структурные белки аденовирусов

1.2.1. Физико-химические свойства

1.2.2. Иммунологические свойства

1.3. Трансляция мРНК эукариот в бесклеточных системах

1.3.1. Особенности мРНК эукариот

1.3.2. Системы бесклеточной трансляции

1.3.3. Бесклеточная трансляция мРНК аденовирусов

1.3.4. Трансляция мРНК аденовирусов в системах 51 in тгстго.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Материалы.

2.2. Методы исследования

2.2.1. Получение бесклеточной системы из лизата ретикулоцитов

2.2.2. Выделение РНК вируса табачной мозаики

2.2.3. Выделение поздних мРНК аденовирусов

2.2.4. Выделение поли(А)-содерясащей фракции мРНК

2.2.5. Выделение глобиновой мРНК

2.2.6. Получение ^С и ^-меченых in гш белков аденовирусов

2.2.7. Трансляция РНК в бесклеточной системе

2.2.8. Обработка проб после трансляции

2.2.9. Диск-электрофорез белков в полиакриламидном геле.

2.2.10. Авторадиография

2.2.11. Очистка антигексоновых антител с помощью иммуноаффинной хроматографии.

2.2.12. Удаление примеси антител против гексона из препарата антиотростковой сыворотки.

2.2.13. Радиоиммунопреципитационный анализ.

2.2.14. Олигопептидный анализ гексонов аденовирусов

2.2.15. Электрофорез мРНК в полиакриламидном геле

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Выделение поздних мРНК аденовирусов и их физико-химическая характеристика

3.1.1. Получение препаратов РНК из клеток, зара-кенных аденовирусами

3.1.2. Электронно-микроскопический и электрофоре-тический анализ мРНК

3.2. Бесклеточная трансляция мРНК аденовирусов

3.2.1. Оптимизация бесклеточной системы из рети-кулоцитов.

3.2.2. Трансляционная активность мРНК SA7 и AdI

3.3. Характеристика продуктов трансляции бесклеточной системы из ретикулоцитов

3.3.1. Электрофоретический анализ продуктов трансляции

3.3.2. Олигопептидное картирование гексонов аденовирусов £А7 и AdI.

3.3.3. Идентификация продуктов трансляции методом радиоиммунопреципитационного анализа

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Выделение и свойства рибонуклеиновых кислот кодируемых аденовирусным геномом и анализ продуктов трансляции поздних мРНК аденовирусов»

Среди значительного многообразия ДНК-содержащих вирусов особый интерес представляют аденовирусы. Это связано в первую очередь с широким спектром заболеваний, вызываемых аденовирусами не только у человека, но и у ряда сельскохозяйственных животных и птиц. Кроме того, геном аденовирусов обладает онкоген-ными и трансформирующими свойствами, что имеет большое значение для исследования процессов превращения нормальной клетки в опухолевую на молекулярном уровне. Аденовирусы являются также удобной экспериментальной моделью для выяснения механизмов экспрессии и репликации эукариотических геномов. Особенно важным в этом смысле представляется изучение продуктов экспрессии аденовирусного генома на разных стадиях инфекционного цикла.

Наибольший интерес из вирус-специфических продуктов трансляции поздних мРНК аденовирусов представляют главные капсидные белки аденовирусов гексон и отросток. Именно эти белковые компоненты, по-видимому, наиболее важны с точки зрения получения про-тивоаденовирусных вакцин и диагностикумов ввиду того, что не только индуцируют образование вирус-нейтрализующих антител, но и являются основными структурными белками аденовирусов, составляя в сумме более 60% массы белков аденовириона.

Разработка генно-инженерных подходов к биотехнологии вакци-/Онных и диагностических препаратов открывает перспективу дешевого микробиологического синтеза безопасных и эффективных вакцин и диагностикумов в виде индивидуальных капсидных белков. Однако для этого требуется выяснить, обладают ли такие структурные полипептиды аденовирусов, как гексон и отросток, антигенной и им-муногенной активностью при условии их синтеза в рекомбинантных микроорганизмах. Одним из подходов к решению этой проблемы является изучение особенностей структуры и антигенной активности гексона и отростка в условиях, приближенных к микробиологическому синтезу. Поэтому синтезированные в бесклеточных системах полипептиды гексона и отростка могут являться вполне адекватными объектами для такого исследования.

Целью настоящей работы явилась идентификация продуктов бесклеточной трансляции поздних мРНК аденовирусов обезьян SA7 и человека Adl, а также сравнение их по физико-химическим и иммунологическим характеристикам с соответствующими капсидными белками аденовирусов.

В связи с этим в задачи исследования входило:

1) выделить и охарактеризовать биологически активные препараты мРНК аденовирусов обезьян SA7 и человека Adl на поздней стадии инфекционного цикла;

2) провести в бесклеточной системе из ретикулоцитов кроли-хка трансляцию поздних мРНК SA7 и Adl с полным и эффективным синтезом аденовирусных полипептидов;

3) провести сравнительный анализ структуры и антигенной активности полипептидов гексона аденовирусов, синтезированных in vivo и in vitro , а также полипептидов отростка, синтезированных in vivo и in Viiro .

В работе впервые проведен электронномикроскопический и электрофоретический анализ гетерогенной популяции молекул РНК аденовируса обезьян 5А7. Впервые показано наличие низкомолекулярных вирус-ассоциированных РНК у аденовируса обезьян £А7.

Впервые проведен сравнительный анализ первичной структуры гексонов аденовируса обезьян 5к7 и аденовируса человека Adl, синтезированных in vivo и in vitro , что позволило подтвердить адекватность синтезированного ш vitro гексона нативному гексону.

Впервые прямо показано, что в бесклеточной системе из ре-тикулоцитов кролика гексон аденовирусов синтезируется в форме полностью завершенных мономеров, не обладающих антигенной активностью нативного гексона. Показано наличие антигенной активности у полипептида отростка 5А7, синтезированного в бесклеточной системе из ретикулоцитов.

Работа в общем носит теоретический характер, однако представленные в ней результаты могут быть использованы при разработке подходов к получению противоаденовирусных вакцин и диаг-ностикумов.

В результате проведения настоящего исследования на защиту выносятся следующие положения:

1. При трансляции в бесклеточной системе из ретикулоцитов кролика поли(А)-содержащих поздних мРНК аденовирусов человека Adl и обезьян SA7 происходит синтез полноразмерных полипептидов гексона и отростка.

2. Проведенный в данной работе сравнительный анализ структуры и антигенной активности полипептидов гексонов Ш и Adl, синтезированных in y/i\/o и in vitro позволяет доказать идентичность размеров и первичной структуры гексоновых полипептидов £А7, а также гексоновых полипептидов Adl. Синтезированный invttro полипептид гексона не обладает антигенной активностью нативного гексона и не способен к формированию тримеров.

3. Полипептид отростка SA7, синтезированный in vitro идентичен по размеру, первичной структуре и антигенной активности отростку 5А7, синтезированному in Vivo

Заключение диссертации по теме «Молекулярная биология», Чайка, Олег Вадимович

ВЫВОДЫ

1. Из цитоплазмы клеток, зараженных аденовирусами обезьян Sk7 и человека AdI, на поздней стадии инфекционного цикла выделены препараты, содержащие гетерогенные популяции молекул РНК размерами от 5S до 24-265 , среди которых идентифицированы низкомолекулярные аденовирусные 5S РНК, не содержащие поли(А)-по-следовательностей и мРНК аденовирусов, содержащие поли(А).

2. При трансляции аденовирусных мРНК в бесклеточной системе из ретикулоцитов кролика эффективно синтезируются вирус-специфические белки 5А7 и AdI, среди которых идентифицированы полипептиды гексона с молекулярной массой, соответственно, 108 и 120 килодальтон и отростка SA7 с молекулярной массой 58 килодальтон.

3. Гексоновые полипептиды 5А7 и AdI синтезируются в бесклеточной системе в полностью завершенном виде и идентичны по оли-гопептидным картам интактным полипептидам гексона, синтезированным in vivo , однако не обладают антигенной активностью натив-ных гексонов и не образуют нативных капсомеров гексона-тримеров.

4. Полипептид отростка <$А7, синтезированный in vitro , идентичен по молекулярной массе синтезированному in vivo отростку и обладает антигенной активностью отростка.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Чайка, Олег Вадимович, 1984 год

1. Гайцхоки B.C. - В кн.: Информационные РНК клеток животных, М., "Медицина", 1980, с.16-40.

2. Григорьев В.Г. Анализ структурных белков аденовирусов приматов Канд.диссертация - М., 1983, 175 с.

3. Григорьев В.Г., Чайка О.В. Взаимосвязь между четвертичной структурой и антигенной активностью гексона аденовирусов. -В сб.: Вирусы человека и животных, Рига, 1984, с.55.

4. Григорьев В.Г., Хилько С.Н., Тихоненко Т.И. Условия стабильности четвертичной структуры и антигенной активности гексонов аденовирусов Биохимия, 1985, т.50, вып.2 (в печати).

5. Денисова Т.С., Гибадулин Р.А. Детальное изучение структуры ДНК генома обезьянего аденовируса и идентификация ее последовательностей в трансформированных клетках. Вопр.вирусол., 1982, № 5, с.77-83.

6. Киселева Е.К., Григорьев В.Г. Характер ограниченного протео-лиза нативных гексонов аденовирусов обезьян и человека трипсином и химотрипсином. В сб.: Вирусы человека и животных, Рига, 1984, с.58.

7. Кислинг У., Злобин А.Ю., Хилько С.Н. Трансляция мРНК животных и вирусов в зависимой от мРНК бесклеточной системе из ретикулоцитов кролика Вопр.вирусол., 1981, Ш 2, с.210-214.

8. Комаров Ю.С., Ройхель О.В., Григорьев В.Г. Сравнительный анализ гексонов аденовирусов человека и животных. В сб.: Вирусы человека и животных, Рига, 1984, с.68.

9. Спирин А.С., Гаврилова Л.П. В кн.: Рибосома, М.," Наука", 197I, с.11-48.

10. Тарасишин Л.А. Белки аденовирусов: первичная и антигенная структура. Успехи совр.биологии, 1982, т.94, вып.2(5), с.203-212.

11. Тихоненко Т.И. Перспективы и достижения в создании генно-инженерных противовирусных вакцин. Молекулярная биология, 1984, вып.18, с.176-188.

12. Угарова Т.Ю. Эукариотические бесклеточные белоксинтезирующие системы. В кн.: Физико-химические методы в молекулярной биологии, М., ВИНИТИ, 1976, с.58-141.

13. Гексон аденовирусов: структура, изменчивость и антигенные детерминанты./Хилько С.Н., Григорьев В.Г., Чайка О.В. и др.-Мол.генетика, микробиология и вирусология, 1984, № I, с.9-13.

14. Клонирование внутренних фрагментов ДНК аденовирусов./Бобков А.Ф., Рассулин Ю.Ю., Калинина Т.И. и др. Весяник АМН СССР, 1981, № 2, с.32-35.

15. Клонирование фрагментов вирионной ДНК аденовируса CEL0 , содержащих ген гексона и онкоген. / Грабко В.Н., Лунин В.Г., Тихоненко Т.И. и др. Доклады ВАСХНИЛ, 1983, Ш 12, с.31-33.

16. Клонирование фрагментов ДНК обезьянего аденовируса 7 в бактериях £sc/?er/c/?/a cofi с использованием плазмидного вектора рВК 322./ Народицкий Б.С., ГараевМ.М., Бобков А.Ф. и др. -Доклады АН СССР, 1980, т.253, вып.5, с.1244-1246.

17. Локализация гена, кодирующего гексон, в геномах аденовирусов обезьян./ Вилнис А.Э., Лопарев В.И., Завизион Б.А. и др. -Вестник АМН СССР, 1981, № 9, с.88-94.

18. Некоторые биологические свойства крупнобляшечного клона 230 аденовируса обезьян./ Вихнович Э.М., Золотарская Э.Е., Лопарев В.Н., Дрейзин Р.С. Вопр.вирусол., 1982, № 3, с.109-113.

19. Олигопептидный анализ гексонов аденовирусов человека типов 1,2,6 и аденовируса обезьян SA7./ Тарасишин Л.А., Хилько С.Н., Дяченко Н.С. и др. Вопр.вирусол., 1981, № 5,с.574-580.

20. Олигопептидное картирование терминальных белков обезьяних аденовирусов./Дяченко Н.С., Гольдберг Е.З., Тарасишин Л.А. и др.- В сб.: Вирусы рака и лейкоза, М., 1981, с.127-128.

21. Первичная структура инверсированных концевых повторов аденовируса обезьян SA7. / Скрипкин Е.А., Мирошниченко О .И., Народицкий Б.С., Тихоненко Т.И. Мол.генетика, микробиология и вирусология, 1983, № 12, с.43-46.

22. Распределение ГЦ-пар в ДНК аденовирусов обезьян ЗА7 и человека типа 6./ Дубичев А.Г., Парфенов Н.Н., Чаплыгина Н.М.и др. Вопр.вирусол., 1979, № б, с.599-603.

23. Синтез ДНК аденовирусов SA7 и Ad5 в экстрактах ядер клеток почек зеленой мартышки./ Мирошниченко О.И., Народицкий Б.С., Пономарева Т.Н., Тихоненко Т.И.? Мол.биология, 1982, т.16, с.782-789.

24. Транскрипция генома высокоонкогенного аденовируса обезьян

25. SA7 в ядрах ооцитов Xenopus taevLs ./ Народицкий Б.С., Гольд-берг Е.З., Фельгенгауэр П.Е., Хилько С.Н. В сб.: Вирусы рака и лейкозы, М., 1981, с.132-134.

26. Физическое и функциональное картирование ДНК аденовирусов обезьян SV20 и SV30./ Вилнис А.Б., Завидион Б.А., Федо-ринов В.В. и др. Известия Академии Наук Латв.ССР, 1981, fe 9, с.96-111.

27. Anderson C.W., Baum P.R., Gesteland R.F. Processing of adenovirus 2 induced proteins. J. Virol., 1973, v. 12, p. 241-252.

28. Anderson K.P., Klessig D.F. Altered mRNA splicing in monkey cells abortively infected with human adenovirus may be responsible for inefficient synthesis of the virion fiber polypeptide. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984, v. 81, p. 4023-4027.

29. Anderson C.W., Lewis J.B. Amino-terminal sequence of adenovirus type 2 proteins: hexon, fiber, component IX and early protein IB-ISK. Virology, 1980, v. 104,p. 27-41.

30. Arrand J.R., Roberts R.S. The nucleotide sequences at the termini of adenovirus 2 DNA. J. Mol. Biol., 1979, v. 128, p. 577-594.

31. Aviv H., Leder P. Purification of biologically active globin messenges RNA by chromatography on olygothymidilic acid- cellulose. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1972,v. 69, p. 1408-1412.

32. Axelrod N. Phosphoproteins of adenovirus 2, Virology, 1978, v. 87, p. 366-383.

33. Beck O.E., Gassen H.G. Translation of bacteriophage T4 mRNA into active lysozyme by 2 wheat germ cell-free system. Biochem. Biophys. Res. Comm., 1977, v. 68,p. 1194-1200.

34. Berger S.L., Berkenmeier C.S. Inhibition of intractable nucleases with ribonucleoside-vanadyl complexes. Isolation of messenger ribonucleic acid from resting limfocytes. / Biochemistry, 1979, v. 18, p. 5143-5149.

35. Berget S.M., Moore С., Sharp P.A. Spliced segments atv the 5'terminus of adenovirus 2 late mRNA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1977, v. 74, p. 3171-3175.

36. Berk A.J., Sharp P.A. Sizing and mapping ^df^early adenovirus mRNAs by get electrophoresis of SI/endonuclease digested hybrids. Cell, 1977, v. 12, p. 721-732.

37. Berk A.J., Sharp P.A. Ultraviolet mapping of the adenovi- / rus 2 early promoters. Cell, 1977, v. 12, p. 45-55.

38. Berk A.J., Sharp P.A. Structure of the adenovirus 2 early mRNAs. Cell, 1978, v. 14, p. 695-711.

39. Berns K.I., Kelly T.J.Jr. Visualization of the inverted terminal repetition in adeno-associated virus DNA. J. Mol. Biol., 1974, v. 82, p. 267-271.

40. Bhat R.A., Thimmappaya B. Two small RNAs encoded by Epstein-Barr virus can functionally substitute for the virus-associated RNAs in the lytic growth of adenovirus 5. -Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1983, v. 80, p. 4780-4793.

41. Binger M.H., Flint S.J. Accumulation of early and intermediate mRNA species during subgroup С adenovirus productive infections. Virology, 1984, v. 136, p. 387-403.

42. Blanchard J.-M., hnRNP proteins interact with nascent adenovirus RNA. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1980, v. 97, p. 524-529.

43. Bonner W.M., Laskey R.A. A film detection method for tritium-tabelled proteins and nucleic acids in polyacri-1amide gels. Eur. J. Biochem., 1974, v. 16, p. 83-88.

44. Boudin M.-L., Boulanger P.A. Assembly of adenovirus penton base and fiber. Virology, 1982, v. 116, p. 589-604.

45. Boulanger P.A. Adenovirus assembly: self assembly of partially digested hexons. J. Virol., 1975, v. 16, p. 16781682 .

46. Boulanger P.A., Flamencourt P., Biserte G. Isolation and comparative chemical study of structure proteins of the adenovirus 2 and 5: hexon and fiber antigens. Eur. J. Biochem., 1969, v. 10, p. 116-125.

47. Brawerman G. Characteristics and significance of the poly-adenilate sequence in mammalian messenger RNA. Prog. Nucl. Acid. Res. Mol. Biol., 1976, 17, p. 117-146.

48. Broker T.R., Chow L.T. Patterns and consequences of adenoviral RNA splicing. Trends Biochem. Sci., 19 80, v. 7,p. 174-178.

49. Brosius J., Dull T.J., Noller H.F. Complete nucleotide sequence of a 23S ribosomal RNA gene from Escherichia coli. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1980, v. 77, p. 201-204.

50. Brown M., Weber J. Virion core like organisation of intranuclear adenovirus chromotin late in infection. -Virology, 1980, v. 107, p. 306-310.

51. Carusi E.A. Evidence for blocked 5'-termini in human 4 adenovirus DNA. Virology, 19 77, v. 76, p. 380-394.

52. Celma M.L., Ehrenfeld E. Translation of polyovirus RNA in vitro: detection of two different initiation sites.

53. J. Mol. Biol. 1975, v. 98, p.761-780.

54. Cepko C.L., Sharp P.A. Assembly of adenovirus major cap-sid protein is mediated by a nonvirion protein. Cell, 1982, v. 31, p. 407-415.

55. Challberg M.D., Desiderio S.V., Ketty T.J.Jr. Adenovirus DNA replication of vitro: characterization of a protein covalently linked to nascent DNA strands. Proc. Natl. Acad. Sci, USA, 1980, v. 77, p. 5105-5109.

56. Challberg M.D., Rawlins D.R. Template requirements for theinitiation of adenovirus DNA replication. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984, v. 81, p. 100-104.

57. Chow L.T., Broker T.R., Lewis J.B. Complex splicing patterns of ENAs from the early regions of adenovirus 2. -J. Med. Biol., 1979, v. 134, p. 265-303.

58. Clegg C., Kennedy J. Translation of semliki-forest-virus intracellular 26-S RNA. Eur. J. Biochem., 19 75, v. 56, p. 175-183.

59. Colby W.W., Shenk T. Adenovirus type 5 virions can be assembled in vivo in the absence of detectable polypeptide IX. J. Virol., 1981, v. 39, p. 977-980.

60. Craig E.A., RaskasH.J. Effect of cyclopeximide on RNA metabolism early in productive infection with adenovirus 2. J. Virol., 1974, v. 14, p. 26-31.

61. Craig E.A., Sayavedra M., Raskas H.J. Strand assignment of polyadenilated nuclear mRNAs synthesized early in infection with adenovirus 2. Virology, 19 77, v. 77, p. 545-551.

62. Desiderio S.V., Kelly T.J.Jr. Structure of the linkage between adenovirus DNA and the 55.000 molecular weight terminal protein. J. Mol. Biol.,1981, v.145, p. 319-337.

63. Dorsett P.H., Ginsberg H.S. Characterization of the type 5 adenovirus fiber proteins. J. Virol., 1975, v. 15, p. 208-212.

64. Eggerding F., Raskas H.J. Effect of protein synthesis inhibitors viral mRNAs synthesized early in adenovirus type 2 infection. J. Virol., 1978, v. 25, p. 453-59.

65. Eggo M., Burrow G.N. Synthesis of very high molecular weight thyroglobulin in three heterologous systems.

66. Can. J. Biochem., 1980, v. 58, p. 446-455.

67. Engler J.A., Kilpatrick B.A. Cloning and characterization of class В adenoviruses Ad3 and Ad7 DNA. Gene., 1981, v. 13, p. 125-132.

68. Esche M., Schilling R., Doerfler W. In vitro translation/ of adenovirus type 12 specific mRNA isolated from infected and transformed cells. - J. Virol., 1979, v. 30,p. 21-31.

69. Fedorcsak I., Ehrenberg L. Effects of diethyl-pyrocarbo-nate and methyl methanesulfonate on nucleic acids and nucleases. Acta Chem. Scand., 1966, v. 20, p. 107-111.

70. Feldman L.A., Rapp F. Inhibition of adenovirus replication by l-(3-D-alabinofuranosyl cytosine. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1966, 122, p. 243-247.

71. Flint S.J., Berget S.M., Sharp P.A. Adenovirus transcription III. Mapping of viral RNA sequences in cells productively infected by adenovirus type 5. Virology, 1976, v. 72, p. 443-445.

72. Fraser N., ziff E. RNA structures near poly (A): of adeno-virus-2 late messenger RNAs. J. Mol. Biol., 1978, v. 124, p. 27-51.

73. Gambke C., Deppert W. Late nonstructural 100.000 and 33.000 dalton proteins of adenovirus type 2. I. Subcellular localization during the course of infection. J. Virol.,1981, v. 40, p. 585-593.

74. Gambke С., Deppert W. Specific complex of the late nonstructural 100.000 dalton protein with newly synthesized hexon in adenovirus type 2 infected cells. - Virology, 1983, v. 124, p. 1-12.

75. Gelinas R.E., Roberts R.J. One predominant 51 undeco-nucleotide in adenovirus 2 late messenger RNAs. - Cell, 1977, v. 11, p. 533-544.

76. Ginsberg M.S. Adenovirus structural proteins. In: Comprehensive virology, v. 13, New York-London, Plenum, (ed.

77. Fraenkel-Conrat H. and Wagner R.R.), p. 409-457.

78. Goldberg S., Weber J., Darnell J.E. The definition of a large transcription unit late in Ad. 2 infection of Hela cells. Mapping by effects of ultraviolet irradiation. -Cell. 1977, v. 10, p. 617-621.

79. Goldenberg C.J., Raskas H.J. Splicing patterns of nuclear precursors to the mRNA for adenovirus 2 DNA binding protein. Cell, 1979, v. 16, p. 131-138.

80. Goldenberg C.J., Raskas H.J. In vitro processing of intervening sequences in the precursors of messenger ribonucleic acid for adenovirus 2 deoxyribonucleic acid binding protein. Biochemistry, 1980, v. 19, p. 2719-2723.

81. Goodheart C.R. DNA density of oncogenic and nononcogenic x simian adenoviruses. Virology, 1971, v. 44, p. 645-651.

82. Guilfoyle R., Weinmann R. Control region for adenovirus VA RNA transcription. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 19 81, v. 78, p. 3378-3382.

83. Gurdon J.В., Lingrel J.В., Marbaiz G. Message stability in injected frog oocytes: long life of mammalian and 13- geobin messages. J. Mol. Biol., 1973, v. 80, p. 539550.

84. Haidar M., Hirth L. 5'-terminal structure of tobacco rattle virus RNA: evidence for polarity of reconstitution- Virology, 1977, v. 76, p. 173-185.

85. Horwitz M.S. Bidirectional replication of adenovirus type 2 DNA. J. Virol., 1976, v. 18, p. 307-315.

86. Horwitz M.S. Temperature sensitive replication of H5tsl25adenovirus DNA in vitro. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1978, v. 75, p. 4291-4295.

87. Horwitz M.S., Scharff M.D., Maizel S.M. Synthesis and assembly of adenovirus 2. I. Polypeptide synthesis assembly of capsomers and morphogenesis of virion. Virology, 1969, v. 39, p. 682-689.

88. Hruby D.E., Effect of polyadenilic acid on the functional halflife of encyphalomyocarditis virus RNA during translation. Biochim. Biophys. Commun., 1978, v. 81, p. 14251434 .

89. Hu S.-L., Hays W.S., Potts D.E. Sequence comology between / bovine and human adenoviruses. J. Virol., 19 84, v. 49,p. 604-609.

90. Hunt Т., Vanderhoff G. , London J.M. Control of globinsynthesis: the role of heme. J. Mol. Biol., 1972, v. 66, p. 471-481.

91. Hunter A.R., Jackson R.J., Hunt T. The role of complexes between the 40 S-ribosomal subunit and Met- ;tRNA in the initial of the protein synthesis in the wheat-germ system. Eur. J. Biochem., 1977, v. 75, p. 159-170.

92. Ishibashi M., Maizel J.V. Jr. The polypeptides of adenovirus. VI. Early and late glycopolypeptides. Virology, 1974, v. 58, p. 345-361.

93. Jacobson M.F., Baltimore D. Polypeptide cleavages in the -formation of poliovirus proteins. Proc. Natl. Acad.

94. Sci. USA, 1968, v. 61, p. 77-84.

95. Jones N., Shenk T. An adenovirus type 5 early gene function regulates expression of other early viral genes. -Proc. Natl. Acad. Sci. USA, v. 76, p. 3665-3674.

96. Jornvall H., Philipson L. Limited proteolysis and reactive cysteine residue define accessible regions in the ^ native conformation of the adenovirus hexon protein. -Eur. J. Biochem., 1980, v. 104, p. 237-247.

97. Klessig D.F., Grodzicker F. Mutations that allow Ad 2 and Ad 5 to express late genes in monkey cells map in the viral gene encoding the 72 kD binding protein. -Cell., 1977, v. 17, p. 957-966.

98. Kozak M. How do encaryotic ribosomes select initiation region in messenger RNA? Cell, 1979, v. 15, p. 1109-1123.

99. Kozak M. Possible role of flanking nucleotides in recognition of AUG initiator codon by eykariotic ribosomes. Nucleic Acids Res., 1981, v. 9, p. 5233-5252.

100. Kruiger W., Schaik van F.M.A., Sussenbach J.S. Structure and organization of the gene coding for the DNA binding protein of adenovirus type 5. Nucleic Acids Res., 1981, v. 9, p. 4439-4457.

101. Kruiger W., Schaik van F.M., Sussenbach J.S. Nucleotide sequence of the gene encoding adenovirus type 2 binding protein. Nucleic Acids Res., 1982, v. 10, p. 4493-4500.

102. Kumar A., Lindberg U. Characterization of messenger ribo-nucleoprotein and messenger RNA from KB cells.-Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1972, v. 69, p. 681-688.

103. Laemmly U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 1970, v. 227, p. 680-685.

104. Lewis J.В., Anderson C.W., Atkins J.F. Futher mapping of late adenovirus genes by cell-free translation of RNA selected by hybridization bo specific DNA fragments. Cell, 1977, v. 12, p. 37-44.

105. Lewis J.В., Mathews M.B. Control of Adenovirus Early Gene Expression: a class of immediate early products. Cell, 1980, v. 21, p. 302-313.

106. Li P., Bellett A.J.D., Parish C.R. A comparison of the terminal protein and hexon polypeptides of avian and human adenoviruses. J. Gen. Virol., 1983, v. 64, p. 13751379.

107. Lichy L.H., Horwitz M.S., Hurwitz J. Formation of a co-valent complex between the 80.000 dalton adenovirus ter• minal protein and 5l-dCMP in vitro. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1981, v. 78, p. 2678-2682.

108. Lindberg U., Persson Т., Philipson L. Isolation andcharacterization of adenovirus mRNA in productive infection. J. Virol., 1972, v. 10, p. 909-917.

109. Lindberg U., Sundquist B. Isolation of messenger ribo-nuclea protein from mammalian cells. J. Mol. Biol., 1974, v. 86, p. 451-456.

110. Lockard R.E., Lane C. Requirement for 7 methylguanosine ^ in translation of globin mRNA in vivo. - Nucleic Acids Res., 1978, v. 5, p. 3237-3247.

111. Lucas J.J., Ginsberg H.S. Synthesis of virus specific RNA in KB cells infected with type 2 adenovirus. - J. Virol., 1971, v. 8, p. 203-207.

112. Lucas J.J., Ginsberg H.S. Transcription and transport of virus-specific RNAs in African green monkey cells abori-tively infected with type 2 adenovirus. J. Virol., 1972, v. 10, p. 1109-1121.

113. Maizel J.V. Jr., White O.D., Scharff M.D. The polypeptides of adenoviruses. I. Evidence for multiple protein components in the virion and 2 comparison of type 2, 7, and 12. Virology, 1968, v. 36, p. 115-125.

114. Maniatis Т., Fritsch E.F., Sambrook J. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor, N.Y., 1982, p. 319-352.

115. Marcu K., Dudock B. Characterization of a highly efficient protein synthesizing system derived from commercial wheat germ. Nucleic Acids Res., 1974, v. 1,p. 1385-1397.

116. Mathews J., Brown J., Hall Т., Phaseolin in RNA is translated to yield glycosilated polypeptides in Xenopus oocytes. Nature, 1981, v. 294, p. 175-176.12 4. Mathews M.B. Genes for VA RNA in adenovirus 2. Cell,1975, v. 6, p. 223-230.

117. Mathews M.B., Pettersson U. The low molecular weight RNAs of adenovirus 2 infected cells. J. Mol. Biol., 1978, v. 119, p. 293-299.

118. McGuire P.M., Swart C., Hodge L.D. Adenovirus mRNA in ^mammalian cells. Failure of polyribosome association inthe absence of nuclear cleavage. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1972, v. 69, p. 1578-1584.

119. Messing J., Crea R., Seeburg P.H. A system for shotgun DNA sequencing. Nucleic Acids Res., 1981, v. 9,p. 303-321.

120. Miller J.H. GUG and UUG are initiation codons in vivo. -Cell. 1974, v. 1, p. 73-76.131.'Moss В., Koczot F. Sequence of methylated nucleotidesat the 51 terminus of adenovirus specific RNA. J. Virol., 1976, v. 17, p. 385-393.

121. Nemer M., Dubroff L.M., Graham M. Properties of sea urchin embryo messenger RNA containing and lacking poly (A). Cell, 1975, v. 6, p. 171-178.

122. Nermut M.V. Fine structure of adenovirus type 5. I. Viruscapsid. Virology, 1975, v. 65, p. 480-495.

123. Norrby E. The structural and functional diversity of adenovirus capsid components. J. Gen. Virol., 1969, v. 5, p. 221-236.

124. Norrby E., Wadell G. Immunological relationships between hexons of certain human adenoviruses. J. Virol., 1969, v. 1, p. 663-670.

125. Ohe K., Weissman S.M. The nucleotide sequence of a low molecular weight RNA from cells 5,5 S infected with adenovirus 2. J. Biol. Chem. , 1971, v. 246, p. 6999-7003.

126. Oosterom-Dragon E.A., Anderson C.W. Polypeptide structure and encoding location of the adenovirus serotype 2 late, nonstructural 33K protein. J. Virol., 1983,v. 45, p. 251-263.

127. Oosterom-Dragon E.A., Ginsberg H.S. Purification and preliminary immunological characterization of the type 5 adenovirus, non-structural 100.000 dalton protein. J. Virol., 1980, v. 33, p. 1203-1207.

128. Oosterom-Dragon E.A., Ginsberg H.S. Characterization of two temperature-sensitive mutants of type 5 adenovirus with mutations in the 100.000 dalton protein gene. J. Virol., 1981, v. 40, p. 491-500.

129. Padmanabhan R., Green M. Evidence for palindromic sequences near the termini of adenovirus 2 DNA. Biochim. Biophys. Res. Commun., 1976, v. 72, p. 880-884.

130. Peacock A.C., Dingman C.W. Molecular weight estimation and separation of RNA by electrophoresis in agarose-acry-lamide composite gels. Biochemistry, 1968, v. 7,p. 668-674.

131. Pelham H.R. Synthesis and proteolytic processing of compea mosaic virus proteins in reticulocyte lysates. -Virology, 1979, v. 96, p. 463-477.

132. Pelham H.R., Jackson R.J. An efficient mRNA dependent translation system from reticulocyte lysates. Eur. J. Biochem., 1976, v. 67, p. 247-256.

133. Pereira H.G., Valentine R.C., Russell W.C. Crystalization of an adenovirus protein. Nature (London), 1968, v. 219, p. 946-955.

134. Persson H., Jansson M., Philipson L. Synthesis of an genomic site for an adenovirus type 2 early glycoprotein. J. Mol. Biol., 1980, v. 136, p. 375-394.

135. Persson H., Jornvall H., Zabielski J. Multiple mRNA species for the precursor to an adenovirus-encaded glycoprotein: identification and structure of the signal sequence.- Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1980, v. 77, p. 6349-6353.

136. Persson H., Petterssen U., Mathews M. Synthesis of a structural adenovirus polypeptide in the absence of viral DNA replication. Virology, 1978, v. 90, p. 67-74.

137. Pettersson U. Structural proteins of adenoviruses. VI. On the antigenic determinants of the hexon. Virology, 1971, v. 43, p. 123-128.

138. Pettersson U., Mathews M.B. The gene and messenger RNA for adenovirus polypeptide IX. Cell, 1977, v. 12, p. p. 741-748.

139. Pettersson U., Philipson L., Synthesis of complementary RNA sequences during productive adenovirus infection. -Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1974, v. 71, p. 4882-4888.

140. Philipson L., Lindberg U. Reproduction of adenoviruses. In: Comprehensive virology. (H.' Frankel-Conrat, ed.) New York, 1974, p. 143-227.

141. Pina M., Green M. Biochemical studies on adenovirus multiplication IX. Chemical and base composition analysis of 28 human adenoviruses. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1965, v. 54, p. 547-551.

142. Rapoza N.P. A classification of simian adenoviruses based on hemagglutination. Amer. J. Epidemol., 1967, v. 86, p. 736-745.

143. Rekosh D.M., Lodish H.F., Baltomore D., Protein synthe-^ sis in Escherichia coli extracts programmed by poliovirus

144. RNA. J. Mol. Biol., 1970, v. 54, p. 327-340.

145. Richardson W.D., Anderson C.W. Translation of adenovirus 2 late mRNAs microinjected in the cultured African green monkey kidney cells. J. Virol., 1984, v. 51, p. 559-562.

146. Richardson W., Carter В., Westphal H. Vero cells injected with adenovirus type 2 mRNA produce authentic viral polypeptide patterns. Early mRNA promotes growth of adenovirus-associated virus. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1980, v. 77, p. 931-935.

147. Robinson A., Younghusband H., Bellett A. A circular DNA- protein complex from adenoviruses. Virology, 19 73, v. 55, p. 54-69.

148. Rosen L. Hemagglutination inhibition technique for typing adenovirus. Amer. J. Hyg., 1960, v. 71, p. 120-12 8.

149. Schibler U., Kelley D., Perry R. Comparison of methylated sequences in the messenger RNA and heterogeneous nuclear RNA from mouse L cells. J. Mol. Biol., 1977,v. 115, p. 695-714.

150. Sharp P.A., Gallimore P.H., Flint S.J. Mapping of adenovirus 2 RNA sequences in lytically infected cells and transformed cells lines. Cold Spring Harbor Symp., Quant. Biol., 1975, v. 39, p. 457-474.

151. Shatkin A.J. Capping of eucaryotic mRNAs. Cell, 1976, v. 9, p. 645-653.

152. Shimoja H., Yamamoto H., Abe C. Differentiation of adenovirus 12 antigens in cultured cells. Virol., 196 7,v. 31, p.748-751.

153. Shine J., Dalgarno L. Identical 3'-terminal octanucleo-tide sequence in 18 S ribosomal ribonulceic acid fromdifferent eykaryotes. Biochem. J., 1974, v. 141, p. 609-615.

154. Smith K.O., Geble W.D.,Trousdale M.D. Architecture ofthe adenovirus capsid. J. Bacteriol., 1965, v. 90, p. 254-261.

155. Steitz J. Specific recognition of non-initiator regions in RNA bacteriophage messengers by ribosomes of Bacillus stearothermophillis. J. Mol. Biol., 1973, v. 73, p. 1-16.

156. Steitz J., Jakes K. How rebosomes select initiator regions in mRNA: base pair formation between the 3-terminusof 16 S rRNA and the mRNA during initiation of protein synthesis in E.coli. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1979, v. 72, p. 4734-4738.

157. Stillman B.W., Adenovirus DNA replication in vitro: a protein linked to the 5'-end of nascent RNA strands. J. Virol., 1981, v. 37, p. 139-147.

158. Stillman B.W., Topp W.C., Engler J.A. Conserved sequences at the origin of adeno RNA replication. J. Virol., 1982, v. 44, p. 530-537.

159. Stillman B.W., Tamanoi F., Mathews M.B. Purification of an adenovirus-coded DNA polymerase that is required for initiation of DNA replication. Cell, 19 82, v. 31,p. 613-632.

160. Tarodi В., Puszta R., Beladi J. Structural polypeptides of type 12 human adenovirus. J. Gen. Virol., 1982,v. 62, p. 379-383.

161. Thomas D., Green M. Biochemical studies on adenovirus multiplication. XI. Evidence for a cytoplasmic site forу the synthesis of viral coded proteins. Prac. Natl. Acad. Sci. USA, 1966, v. 56, p. 247-249.

162. Thomas M., White R.L., Daris R.W. Hybridization of RNA to double stranded DNA: Formation of R loops. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1976, v. 73, p. 2294-2301.

163. Tigges M.A., Raskas H.J. Expression of the adenovirus early region 4: Assignment of the early region polypeptides to their respective mRNAs using in vitro translation. J. Virol., 1982, v. 44, p. 907-921.

164. Tooze J. The molecular biology of tumour viruses. -Cold Spring Harbor, N.Y., 1980, p. 382-537.

165. Tsuzuki J., Luftig R.B. The adenovirus type 5 capsid protein Ilia is phosphorylated during an early stage of infection of HeLa cells. Virology, 1983, v. 129,p. 529-533.

166. Valentine R.C., Pereira H.G. Antigens and structure of the adenovirus. J. Mol. Biol., 1965, v. 13, p. 13-25.

167. Van der Vliet P.C., Landberg J., Jansz H.S. Evidence for a function of the adenovirus DNA-binding protein in initiation of DNA synthesis as well as in elongation on nascent DNA chains. Virology, 1977, v. 80, p. 98-110.

168. Vazquez D. Inhibitors of protein synthesis FEBS Letters, 1974, v. 40, Suppl. 36S.

169. Velicer L.F., Ginsberg H.S. Synthesis, transport and morphogenesis of type 5 adenovirus capsid proteins. -J. Virol., 1970, v. 5, p. 338-344.

170. Walter G., Maizel J.V. The polypeptides of adenovirus.1.. The detection of early and late virus-induced polypeptides and their distribution in subcellular fractions. -Virology, 1974, v. 57, p. 402-411.

171. Wang S., Marcu K.B., Inouye M. Translation of a specific mRNA from Escherichia coli in an eykariotic cell-free system. Biochim. Biophys. Res. Commun., 19 76, v. 68, p. 1194-1200.

172. Weber J., Philipson L. Protein composition of adenovirus nucleoprotein complexes extracted from infected cells.- Virology, 1984, v. 136, p. 321-327.

173. Westaway E.G. Strategy of the flavivirus genome: Evidence for multiple internal initiation of translation of proteins specified by Kunjin virus in mammalian cells. -Virology, 1977, v. 80, p. 320-335.

174. Wilcox W.C., Gisberg H.S. Protein synthesis in type 5 adenovirus infected cells. Effect of p-fluorophenylalanine on synthesis of protein, nucleic acids and infectious virus. Virology, 1963, v. 20, p. 269-275.

175. Williams J.F., Young C.S., Austin P.E. Genetic analysis of human adenovirus type 5 in permissive and non permissive cells. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol., 1974, v. 39, p. 427-437.

176. Winnaker E.L. Adenovirus DNA: structure and function ofa novel replicon. Cell, 1978, v. 14, p. 761-773.

177. Zaidel-Blair M.E., Blair G.E., Celis J.E. The synthesis and intracellular localization of adenovirus hexon protein studied by microinjection of mRNA into human cells. Exp. Cell Res., 1982, v. 140, p. 461-464.

178. Ziff E.B., Evans R.M. Coincidance of the promotes and capped 51 terminus of RNA from the adenovirus 2 major late transcription unit. Cell, 1978, v. 15, p. 14631476.

179. A comparative study on translation of flavivirus and picornavirus RNAs in vitro./Svitkin Yu.V., Lyapustin V.N., Lashkevich V.A., Agol V.I. FEBS Letters, 1978, v. 96,p. 211-215.

180. Addition of polyadenilate sequences to virus-specific RNA during adenovirus replication./Philipson L., Wall R., Glickman G., Darnell J.E. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1971, v. 68, p. 2806-2809.

181. Adenoviridae: Second report./Wigand R., Bartha A., Dreizin R.S. et al. Intervirology, 1982, v. 18, p. 169176.

182. Adenovirus DNA replication in vitro: identification ofa host factor that stimulates synthesis of the preterminalprotein-dCMP complex./Nagata K., Guggenheimer R.A. , Enomoto T. et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1982, v. 79, p. 6438-6442.

183. Adenovirus early gene products may control viral mRNA accumulation and translation in vivo./Persson H., Mon-stein H.-J., AkusjSrvi., Philipson L. Cell, 1981, v. 23, p. 485-496.

184. Adenovirus-infected, cell-specific DNA binding proteins. /Levine A.J., van der Vliet P.C., Rosenwirth B. et al. -Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol., 19 75, v. 39,p. 559-566.

185. A maturation protein in adenovirus morphogenesis./Pers-, son H.y Mathisen В., Philipson L., Petterson U.

186. Virology, 1979, v. 93, p. 198-208.

187. An amazing sequence arrangement at the 5* ends of adenovirus 2 messenger RNA./Chow L., Gelinas R.E., Broker T.R., Roberts R. Cell, 1977, v. 12, p. 1-8.

188. Analysis of the genome of type 7 simian adenovirus using . res trie tases ./Naroditsky B.S., Zavizion B.A., Karamov

189. E.V., Tichonenko T.I. Nucleic Acids Res., 197 8, v. 5, p. 999-1011.

190. A new species of virus coded low molecular weight RNA from cells infected with adenovirus type 2 ./Soderlund

191. J., Pettersson U., Vennstrom B. et al. Cell, 1976, v. 7, p. 585-593.

192. A 2 8K polypeptide is the translation product of 9S RNA encoded by region IA of adenovirus 2./Spector D.J., Crossland L.D., Halbert D.N., Raskas H.J. Virology, 1980, v. 102, p. 218-221.

193. A proposed terminology for the adenovirus antigens and virion morphological subunits./Ginsberg H.S., Pereira H.G., Valentine R.C., Wilcox W.C. Virology, 1966, v.28, p. 782-783.

194. Arrangement of messenger RNAs and protein coding sequences in the major late transcription unit of adenovirus 2./Miller J.S., Ricciardi R.P., Roberts B.E. et al.

195. J. Mol. Biol., 1980, v. 142, p. 455-488.

196. Candidate adenovirus 40 and 41: fastidious adenoviruses from human infant stool./de Jong J.C., Wigand R., Kidd A.H., et al. J. Med. Virol., 1983, v. 11, p. 215-233.

197. Characterization of tumour antigens in cells fraslormed / by fragments of adenovirus type 5 DNA./Schrier P.I.,van der Elsen P.J., Hertoghs J.J.L., van der Eb. Virol. 1979, v. 99, p. 372-385.

198. Competition between cellular and viral mRNAs in vitro regulated by 2 messenger discriminatory initiation factor. /Golini F., Thach S.S., Brige C.H. et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1976, v. 73, p. 3040-3044.

199. Complete nucleotide sequence of a 26S ribosomed RNA gene from Escherichia coli./Brosius L., Palmer M.L., Kennedy P.J., Noller H.F. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1978, v. 75, p. 1801-1805.

200. Conserved primary sequences of the DNA terminal proteins of five different human adenovirus groups./Green M., Blackmann K., Wold VT.S.M. et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1979, v. 76, p. 4380-4384.

201. Faithful and efficient translation of homologous and heterologous mRNAs in an mRNA-dependent cell-free systemfrom Saccharomyces cerevisae./Tuite M.F., Plesset J.,

202. Moldave К., Mo Laughlin C.S. J. Biol. Chem., 1980, v. 255, p. 8761-8766.

203. Genetic varyability of adenoviruses./Wadell G., Hammars-kjold M.L., Windberg G. et al. Ann. N.Y. Acad. Sci., 1980, v. 354, p. 16-42.

204. Identification and mutational relocation of AUG codon initiating translation of iso-l-cytochrome с in yeast./ Stewart J.M., Sherman F., Shipman N.A., Jackson M.

205. J. Biol. Chem., 1971, v. 246, p. 7429-7445.

206. Identification of a protein linked to the ends of adeno-^ virus DNA./Rekosh D.M.K., Russele W.C., Bellett A.J.D.,

207. Robinson A.J. Cell, 1977, v. 11, p. 283-295.2 36. Identification of the gene and mRNA for the adenovirus terminal protein precursor./Stilman B.W., Lewis J.В., Chow L.T. et al. Cell, 1981, v. 23, p. 497-508.

208. I translation of early region 1 specific RNA from lytical-ly infected cells./Lupker J.H., Jochemsen H., van der Eb., A.J. J. Virol., 1984, v. 37, p. 524-529.

209. Isolation and characterization of adenovirus type 2 vertex capsomer (penton base)./Boudin M.-L., Moncany M.,

210. D'Halluin J.-С., Boulanger P.A. Virology, 1979, v. 92, p. 125-138.

211. Mapping of RNAs transcribed from adenovirus type 12 early and VA RNA regions./Saito J., Sato J. J.,Handa H. et al. - Virology, 1981, v. 114, p. 379-398.

212. Messenger RNA for the coat protein of tobacco mosaic virus./Hunter T.R., Hunt Т., Knowland J., Zimmern D. -Nature, 1976, v. 260, p. 759-769.

213. Molecular weight of adenovirus serotype 2 capsomer. A new characterization./Devaux C., Zulauf M., Boulanger P., Jacrot B. J. Mol. Biol., 1982, v. 156, p. 927-939.2 49. Nucleotide sequences from the adano/.irus 2 cericme./

214. Preearly adenovirus 5 gene product regulates synthesis of early viral messenger RNAs./Berk A.J., Lee F., Harrison T. et al. Cell, 1979, v. 17, p. 936-944.

215. Protein synthesis in oocytes of Xenopus laevis is not regulated by the supply of messenger RNA./Laskey R.A., Mills A.D., Gurdon J.В., Partington G.A. Cell, 1977, v. 11, p. 345-351.

216. Radioiodination of proteins in single polyacrilamide slices./Elder J.H., Pickett R.A., Hampton J., Lerner R.A. J. Biol. Chem., 1977, v. 252, p. 6510-6515.

217. RNA of low molecular weight in KB cells infected with adenovirus type 2./Reich P.R., Forget B.G., Weissman S.J., Rose J.A. J. Mol. Biol., 1966, v. 17, p. 428-440.

218. Structure and composition of the adenovirus type 2 core. /Brown D.T., Westphal M., Burlingham B.I., et al. J. Virol., 1975, v. 16, p. 366-387.

219. Synthesis of the adenovirus-coded DNA binding protein in infected cells./Gilead Z., Sugawara K., Shanmugan G., Green M. J. Virol., 1976, v. 18, p. 454-466.

220. The adenovirus hexon protein. The primary structure of the polypeptide and its correlation with hexon gene./ J6rnvall H., AkusjSrvi G., AlestrSm P. et al. J. Biol. Chem., 1981, v. 256, p. 6181-6186.

221. The initiation sites for RNA transcription in Ad2 DNA./

222. Evans R.M., Fraser N., Ziff E. et al. Cell, 1977, v. 12, p. 733-739.

223. The 2,2kb Elb mRNA of human Adl2 and Ad5 codes for two tumour antigens starting at different AUG triplets./ Bos J.L., Polder L.J., Bernards R. et al. Cell, 1981, v. 27, p. 121-131.

224. The nucleotide sequence of the gene for protein IVand of the 5 ' leader segment of the major late mRNAs of adenovirus type 5./van Beveren C.P., Maat J., Dekker B.M.M. et al. Gene, 1982, v. 16, p. 179-189.

225. The role of polyamines in cell-free protein synthesis ^ in the wheat-germ system./Hunter A.R., Farrell P.J.,

226. Jackson R.J., Hunt T. Eur. J. Biochem., 1977, v. 75, p. 149-157.

227. The sequence of the 3* non-coding region of the hexon mRNA discloses a novel adenovirus gene./Akusjarvi G., Zabielski J., Perricaudet M., Petterson U. Nucleic Acids Res., 1981, v. 9, p. 1-16.

228. The 5' terminal leader sequence of late 16S mRNA from cells infected with simian virus 40./Ghosh R.K., Reddy V.B., Swinscoe J. et al. J. Biol. Chem., 1978, v. 253, p. 3643-3647.

229. Translation of bacteriophage QB messenger RNA in a murine Krebs 2 ascites tumour cell-free system./Aviv H., Boime I., Loyd В., Leder P. Science, 1972, v. 178,p. 1293-1295.

230. Use of aurintricarboxylic acid as an inhibitor of nucleases during nucleic acid isolation./Hatlick R.B., Chelm B.K., Gray P.W., Orozco E.M.Jr. Nucleic Acids Res., 1977, v. 4, p. 3056-3064.

231. Use of frog eggs in oocytes for the study of mRNA and its translation in living cells./Gurdon J.В., Lane C.D., Woodland H.R., Maraix R. Nature, 1971, v. 233, p. 177182.