Участие аденилатциклазной сигнальной системы вакуолей столовой свеклы в трансдукции внутриклеточных сигналов при биотическом стрессе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.05, кандидат биологических наук Рыкун, Ольга Васильевна

• Рыкун, Ольга Васильевна
• кандидат биологических наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Рыкун, Ольга Васильевна

1. ВВЕДЕНИЕ.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1. Стадии покоя корнеплодов столовой свеклы.

2.2. Реакция клеток корнеплодов и клубней на инфицирование фитопатогенными микроорганизмами.

2.2.3. Фитопатоген Botrytis cinerea - возбудитель серой гнили корнеплодов столовой свеклы.

2.3. Вакуоль столовой свеклы - полифункциональный компартмент растительной клетки.

2.3.1. Вакуолярное содержимое растительной клетки.

2.3.2. Вакуолярная мембрана - тонопласт.

2.3.3. Функции центральной вакуоли.

2.4. Сигнальная сеть растений.

2.4.1. Рецепторы.

Рецепторы, сопряженные с G белками (GPCR).

Рецепторы - ионные каналы.

Рецепторы, ассоциированные с ферментативной активностью.

2.4.2. G белки.

2.4.3. Протеинкиназы и протеинфосфатазы.

2.4.4. Факторы регуляции транскрипции.

2.4.5. Сигнальные системы растений.

МАР-киназная сигнальная система.

Липоксигеназная сигнальная система.

Фосфатидатная сигнальная система.

N0- синтазная сигнальная система.

Протонная сигнальная система.

Кальциевая сигнальная система.

НАДФН - оксидазная сигнальная система.

Активные формы кислорода в растениях.

Аденилатциклазная сигнальная система.

Аденилатциклазы.

Аденилатциклазы растений. цАМФ - вторичный мессенджер.

Фосфодиэстераза. цАМФ - зависимые протеинкиназы. цАМФ - связывающие белки.

2.4.6. Взаимодействие сигнальных систем.

2.4.7. Внутриклеточный ретроградный сигналинг у растений.

2.4.8. Ретроградный транспорт из вакуолярного компартмента.

2.5. Выводы из обзора литературы.

2.6. Постановка цели и задач исследования.

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1. Растительный материал.

3.2. Выделение вакуолей.

3.3. Выделение тонопласта.

3.4. Проверка стабильности вакуолей под воздействием ионов кальция и пероксида водорода.

3.5. Определение Н202 в вакуолях и среде их инкубации.

3.6. Метод определения общего кальция.

3.7. Определение уровня цАМФ в вакуолях и среде их инкубации.

3.7.1. Очистка образцов от примесей других циклических нуклеотидов с помощью нейтральной окиси алюминия.

3.7.2. Иммуноферментный анализ (ИФА).

3.8. Определение активности «растворимой» и связанной с тонопластом форм аденилатциклазы.

3.9. Статистическая обработка результатов.

3.10. Используемые в работе реактивы.

4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ.

4.1. Влияние ионов кальция и пероксида водорода на стабильность вакуолей.

4.2. Концентрация ионов кальция и пероксида водорода в вакуолях и среде их инкубации в различные периоды покоя под воздействием инфицирования (Botritis cinerea).

4.3. Уровень цАМФ в вакуолях клеток столовой свеклы на стадии начала покоя корнеплодов (октябрь-ноябрь). Влияние ионов кальция и пероксида водорода на этот показатель на фоне биотического стресса {Botritis cinerea).

4.4. Уровень цАМФ в вакуолях клеток столовой свеклы на стадии глубокого покоя корнеплодов (февраль-март). Влияние ионов кальция и пероксида водорода на этот показатель на фоне биотического стресса {Botritis cinerea).

4.5. Динамика изменения активности рАЦ и тАЦ вакуолей клеток столовой свеклы под влиянием ионов кальция и пероксида водорода на стадии начала покоя корнеплода (октябрь-ноябрь).

4.6. Динамика изменения активности рАЦ и тАЦ вакуолей клеток столовой свеклы под влиянием ионов кальция и пероксида водорода на стадии начала покоя корнеплода (октябрь-ноябрь) на фоне инфицирования Botritis cinerea.

4.7. Динамика изменения активности рАЦ и тАЦ вакуолей клеток столовой свеклы под влиянием ионов кальция и пероксида водорода на стадии глубокого покоя корнеплода (февраль-март).

4.8. Динамика изменения активности рАЦ и тАЦ вакуолей клеток столовой свеклы под влиянием ионов кальция и пероксида водорода на стадии глубокого покоя корнеплода (февраль-март) на фоне инфицирования Botritis cinerea.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Участие аденилатциклазной сигнальной системы вакуолей столовой свеклы в трансдукции внутриклеточных сигналов при биотическом стрессе»

Одной из самых актуальных проблем, как в физиологии человека и животных, так и в физиологии растений, остается устойчивость организмов к стрессу. Известно, что феномен устойчивости реализуется на всех уровнях организации клеточного метаболизма, но лучше всего в настоящее время изучены процессы, происходящие на начальном и конечном этапах восприятия и ответной реакции растительного организма на стрессовое воздействие (Kasperska, 2004; Swindell, 2006; Akram,2008). В то же время внутриклеточные процессы, связующие эти два этапа, остаются мало исследованными и понятными. Установлено, что у растений имеются сигнальные системы, во многом аналогичные таковым животных, которые активно откликаются на воздействие любых внешних факторов (Тарчевский, 2001). Также известно, что индукция активности тех или иных генов связана со степенью активности различных интермедиатов растительной клетки (Xiong et al., 2002; Swindell, 2006). Следует отметить, что в настоящее время методами биоинформатики создаются схемы сигнальных путей, организованных в информационную сеть, дешифрующие и дифференцирующие входящие сигналы для индукции экспрессии определенных генов (Genoud et al., 2001; Klamt et al., 2003; Peleg-Grossman et al., 2007; Klamt, Kamp, 2011; Ballerstein et al., 2012), но отсутствие биохимических данных по исследуемым сигнальным системам пока не позволяет создать полноценную модель. При этом, весьма актуальным остается вопрос о молекулярных механизмах, обеспечивающих восприятие и трансдукцию внутриклеточных сигналов на различных этапах покоя соответствующих органов растений. Это связано с тем, что с углублением уровня покоя повышается степень устойчивости к фитопатогенам, а значит и происходят качественные изменения в функционировании сигнальных систем. Одной из причин этого является то, что экзометаболиты грибных патогенов способны оказывать влияние на плазмалемму растительных клеток (Ладыженская, Проценко, 2002). 6

В рамках этой проблемы возникает вопрос о возможном участии внутриклеточных структур в трансдукции сигналов. В последние годы появились данные о прямом и ретроградном сигналингах, функционирующих в несущих геном компартментах, таких как ядра, хлоропласты и митохондрии (Юрина, Одинцова, 2007). Известно, что все сигнальные системы растений испытывают взаимовлияние (Genoud et al., 2001; Pastori, Foyer, 2002; Chinnusamy et al., 2004; Li et al., 2009) и, рассматривая активность какого-либо компонента одного из сигнальных путей, необходимо учитывать этот факт. В то же время, в литературе это явление почти не обсуждается; имеются лишь несистематизированные данные о пересечении некоторых сигнальных путей растений (Колупаев, 2007; Климов, 2008). Что касается органелл клеток растений, то эта тема является совершенно неразработанной, хотя очевидно, что «сигнальный статус» клетки складывается из работы отдельных сигнальных компартментов. Вероятно, поэтому даже при одном виде стресса активируется не один сигнальный путь, а сложная сеть передачи сигналов, что стало понятным при анализе экспрессии перекрывающихся генов (Chinusamy et al., 2004; Takahashi et al., 2004; Swindell, 2006).

В литературе пока только для клеток животных фигурирует термин сигнальные микродомены», подразумевающий наличие компонентов одной или нескольких сигнальных систем в одном внутриклеточном компартменте. Однако у растений роль органелл во внутриклеточной трансдукции сигналов остается весьма мало изученной. В полной мере это относится к вакуолям растительных клеток. Традиционно считается, что одной из важных функций вакуоли является запасание каких-либо метаболитов. Однако имеется ряд литературных данных, указывающих на то, что в вакуолях функционируют компоненты аденилатциклазного сигналинга (Ломоватская и др., 2010), антиоксидантной защиты, входящие в состав нескольких сигнальных систем (Прадедова и др., 2011; Андреев,

2012). В связи с этим, весьма актуальным является изучение вакуоли 7 растительной клетки с точки зрения участия в трансдукции внутриклеточных сигналов, поскольку она может занимать до 90% пространства клетки, контактируя при этом со всеми внутриклеточными мембранами, что позволяет ей достаточно быстро обмениваться сигнальными молекулами с другими компартментами.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Рыкун, Ольга Васильевна

выводы

1. Установлено, что в вакуолях клеток паренхимы столовой свеклы функционирует аденилатциклазная сигнальная система, поскольку в этих органеллах присутствуют ключевые компоненты этой системы: две формы аденилатциклаз - тонопластная (тАЦ), растворимая (рАЦ), а также продукт их реакции - цАМФ, выполняющий роль вторичного мессенджера.

2. Соотношение уровней цАМФ в вакуолях двух типов: «солевых» и «сахарных» и во вневакуолярном пространстве значительно отличалось в различные периоды покоя: в начале покоя уровень этой молекулы во вневакуолярном пространстве преобладал над внутривакуолярным, тогда как в глубоком покое основной пул этой сигнальной молекулы был сосредоточен в вакуолях.

3. Вакуоли на всех этапах покоя отличались по уровню активности аденилатциклазной сигнальной системы: более высокая концентрация цАМФ, активности рАЦ и тАЦ наблюдались в «солевых» вакуолях.

4. Ионы кальция в различных концентрациях оказывали более сильный эффект на активность исследуемых компонентов аденилатциклазной сигнальной системы, чем пероксид водорода.

5. В период глубокого покоя активность тАЦ обоих типов вакуолей значительно возрастала (шах 300 мкмоль/мг белка в мин) по сравнению с периодом начала покоя (шах 90 нмоль/мг белка в мин).

6. Инфицирование Botritis cinerea модулировало активность АСС вакуолей: в начальный период покоя ингибировало тАЦ и почти не влияло на рАЦ в обоих типах вакуолей. При глубоком покое инфицирование подавляло тАЦ в «солевых» и стимулировало активность рАЦ в «сахарных» вакуолях.

7. При инфицировании степень активации тАЦ и рАЦ экзогенными ионами кальция и пероксидом водорода существенно снижалась на разных фазах покоя. Исключение составляло повышение активности обоих форм АЦ в «сахарных» вакуолях при глубоком покое.

8. Центральная вакуоль растительной клетки участвует в трансдукции и преобразовании внутриклеточных сигналов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Для корнеплодов свеклы, как для покоящихся органов, характерны несколько стадий покоя: начала, глубокого покоя и выхода из него.

Регуляция глубины состояния покоя в основном осуществляется с помощью фитогормонов, уровень и качественный состав которых индивидуален для каждой стадии (Ладыженская, Проценко, 2002; Озолина и др., 2005). К числу агентов, способствующих выходу из покоя, относят и экзометаболиты фитопатогенных микроорганизмов, например, грибов. Биохимические процессы, происходящие на плазмалемме при регуляции гормонами состояния покоя и действии грибных элиситоров, имеют много общего (Кораблева, Ладыженская, 1995; Ладыженская, Проценко, 2002). Наиболее ранними реакциями растительной клетки в этом случае является изменение транспорта ионов и величины трансмембранного потенциала плазмалеммы, которые происходят очень быстро (доли секунды и секунды) (Медведев, 2005). Благодаря этому в любом органе растения по сосудистой системе распространяется системный сигнал, представляющий собой потенциал действия (ПД), связывающий этап рецепции с эффекторным ответом растений (Arazi, 2001). При инфицировании или модуляции состояния покоя корнеплодов свеклы, системный сигнал также должен распространяться по клеткам сосудистых пучков, влияя на активность ионных каналов и ферментов, встроенных в мембрану.

По литературным данным, активность мембраносвязанной аденилатциклазы активируется как экзогенными фитогормонами, так и экзометаболитами грибных фитопатогенов (Sim, Kim, 1987; Ichikawa et al.,

1997; Kurosaki et al., 1997). Есть сведения, что элиситоры грибной природы оказывают на плазмалемму клетки растения комплексное воздействие, включающее как связывание с мембраной определенных детерминант, так и изменение параметров связывания (сродства) других компонентов и фитогормонов. Более того, элиситоры и фитогормоны могут конкурировать

111 за сайты связывания (рецепторы) на клеточной мембране (Кораблева, Ладыженская, 1995; Ладыженская Проценко, 2002). При этом каждой фазе состояния покоя корнеплода соответствует индивидуальное соотношение фитогормонов, представляющих собой «коктейль» из стимуляторов и ингибиторов роста, присутствующих в апопласте (Ладыженская, Проценко, 2002; Озолина и др., 2005). Все это, вместе взятое, без сомнения, кардинальным образом способно преобразовывать активность ферментов, локализованных в плазмалемме, в том числе мембраносвязанной аденилатциклазы. Таким образом, в клетке, в ответ на раздражение, формируется определенный пул сигнальных молекул, например, цАМФ, который запускает каскад внутриклеточных сигналов, призванный декодировать внешний импульс в адекватные внутриклеточные ответные реакции.

Если компоненты различных сигнальных систем, локализованные в плазмалемме, более или менее хорошо охарактеризованы (Тарчевский, 2001), то активность присутствующих во внутриклеточных компартментах сигнальных каскадов и их участие в передаче и модуляции внутриклеточных сигналов, изучены явно недостаточно.

Трудность в объяснении наблюдаемых сигнальных процессов и интерпретации результатов заключается еще и в том, что внутриклеточные компартменты, кроме опосредованного влияния факторов внешней среды, испытывают и воздействие внутриклеточных компонентов, тех же фитогормонов, концентрация и состав которых также варьируют в различные периоды роста и покоя растений. Поэтому, внутриклеточный сигнал является интегральным, включающим взаимодействие многих компонентов разных сигнальных систем и регуляторных факторов белковой и гормональной природы. Существенные коррективы в такую картину внутриклеточной трансдукции сигналов вносят и внешние факторы, в частности, экзометаболиты грибного патогена, хотя их воздействие, как указывалось выше, имеет опосредованный характер. Поэтому весьма важно

112 рассмотрение механизмов модуляции активности АСС, в частности, в вакуолях и на тонопласте. Тем более, что до последнего времени роль этого компартмента в литературе представлялась весьма упрощенной, хотя вакуоль занимает в клетке до 90% ее объема и наличие в ней компонентов про- и антиоксидантной защиты, кальциевых ионных каналов, активируемых различными вторичными мессенджерами, подтверждает ее существенную роль в регуляции метаболизма клетки (Тихонова, 1998; Zaccolo, Pozzan, 2003; Прадедова, 2009; Андреев, 2012; Peiter, 2011).

Для реализации этой цели применяли широкий диапазон физиологических концентраций ионов кальция и пероксида водорода (100 нМ-10 мкМ и 100 нМ-7 мкМ соответственно), которыми воздействовали на изолированные вакуоли, и анализ активности АСС проводили в различные периоды покоя здоровых и инфицированных корнеплодов столовой свеклы. Такой план экспериментов был выбран потому, что известные по литературным данным структурные и биохимические изменения мембран внутриклеточных компартментов в различные периоды покоя корнеплода и под влиянием биотического стрессора, могут сказываться на активности компонентов этой сигнальной системы (Ладыженская, Проценко, 2002; Reisen et al., 2005).

На первом этапе исследований представляло интерес выяснить общую реакцию АСС вакуолей на воздействие экзогенных концентраций ионов кальция и пероксида водорода в различные периоды покоя корнеплода.

Исследования показали, что, несмотря на отличающиеся абсолютные значения концентрации цАМФ в вакуолях (в глубоком покое уровень цАМФ менялся с нМолей до мкМолей), можно выделить ряд общих тенденций. Анализ полученных результатов свидетельствует, что ионы кальция в большей степени, чем пероксид водорода, влияли на активность компонентов АСС в обоих типах вакуолей, причем, в начальный период покоя такое влияние было незначительным (за исключением

113 активации рАЦ и тАЦ в «солевых» вакуолях из клеток неинфицированных тканей) или даже отсутствовало («сахарные» вакуоли), но было ярко выражено в период глубокого покоя. Кроме того, инфицирование грибным патогеном значительно меняло чувствительность АСС к экзогенным кальцию и пероксиду водорода. Так, в «солевых» вакуолях на обеих стадиях покоя кардинальные различия наблюдались в активности только тАЦ вакуолей из клеток неинфицированных и инфицированных корнеплодов при воздействии различных концентраций ионов кальция. В то же время в «сахарных» вакуолях инфицирование оказывало серьезное модулирующее (активирующее) воздействие опять же только на тАЦ и только при глубоком покое (рис. 12 Б).

Это еще раз подтверждает, что «солевые» и «сахарные» вакуоли имеют серьезные качественные отличия в структуре компонентов АСС, скорее всего связанные с функциональными задачами каждого типа этих органелл.

Представляет интерес рассмотреть возможные функции цАМФ в вакуолях. Анализ литературных данных позволяет предположить, что данный вторичный мессенджер может регулировать углеводный обмен путем активации ключевых ферментов в растительных клетках (Выскребенцева, Иванов, 1982), и, в частности в вакуолях (Озолина и др., 2005; Прадедова и др., 2009). Здесь уместно упомянуть, что и другие ферменты, встроенные в тонопласт, меняют свою активность на различных этапах онтогенеза под воздействием различных фитогормонов (Озолина и др., 1996; Прадедова и др., 1999). Кроме того, есть сведения, что модуляция активности К+каналов клеток растений осуществляется с участием цАМФ и кальция ( Li et al., 1994; Kurosaki, 1997).

Возникает предположение, что механизм воздействия экзогенных вторичных мессенджеров (ионов кальция и пероксида водорода) на аденилатциклазы, различен. По имеющимся данным, полученным для клеток животных, ионы кальция влияют на кинетические параметры

114 аденилатциклаз (Кашеп^Бку е1 а1., 2006), модулируя степень связывания фермента с субстратом. Проведенные нами ранее исследования активности аденилатциклаз растений дают некоторые основания предполагать существование такого же механизма регуляции и у растений, но при иных концентрациях экзогенного кальция (Ломоватская и др., 2010).

Известно, что пероксид водорода, являясь самостоятельной сигнальной молекулой (Креславский и др., 2012; Ткачук и др., 2012), не только сам подвергается влиянию компонентами других сигнальных систем, но также способен изменять их уровень и активность. Так, есть данные, что, с одной стороны, повышение концентрации кальция и цАМФ приводило к повышению в цитозоле уровня пероксида водорода (ВтёзсЬесНег et а1., 2001; Максимов и др., 2010) а, с другой стороны, повышенная концентрация Н2О2 стимулировала активность кальциевых каналов (Ре1 е1 а1., 2000).

Проведенные исследования позволяют заключить, что активность сигнальных функций вакуоли клеток корнеплода столовой свеклы тесно увязана с физиологическим состоянием последнего, и поддержание метаболизма на необходимом уровне во многом определяется активностью ее сигнальных систем. Это следует из анализа результатов по динамике концентраций внутри- и вневакуолярного цАМФ. Так, если в начальной фазе покоя подавляющая часть цАМФ находится за пределами вакуолей обоих типов, то в состоянии глубокого покоя уровень внутривакуолярного цАМФ значительно возрастает, а выход во вневакуолярное пространство (за исключением только случая с «сахарными» вакуолями, выделенными из клеток неинфицированных тканей) сокращается до минимума (рис.12, А).

Тем самым предотвращается запуск несвоевременной активации синтетических процессов в цитоплазме растительных клеток. Более ярко выраженный такой процесс в «сахарных» вакуолях еще раз подтверждает специфические функции каждого типа вакуолей, выполняемые в клетках, принадлежащих к различным тканям корнеплода свеклы. В то же время

115 частичное моделирование в наших экспериментах подготовки клеток к выходу из глубокого покоя (варьирование концентраций вторичных мессенджеров - кальция, пероксида водорода) выявило как существенные изменения в активности вакуолярных ключевых ферментов аденилатциклазного сигналинга - рАЦ и тАЦ, так и ощутимые различия в содержании цАМФ, конечное количество которого определяется скоординированным функционированием аденилатциклаз и фосфодиэстераз. Впрочем, присутствие последних в вакуолях растительных клеток еще предстоит доказать.

Таким образом, проведенный комплекс исследований позволяет придти к заключению, что вакуоли растительных клеток помимо известных функций, являются компартментом, содержащим компоненты многих сигнальных систем (рис.12 А, Б). Центральная вакуоль растительной клетки, депонируя активные молекулы, в том числе вторичные мессенджеры, выполняет роль модулятора внутриклеточных сигнальных каскадов растений.

Ответы АЦ-сигналинга вакуолей клеток корнеплодов столовой свеклы на вторичные мессенджеры (Са2+, Н202) и биотический стресс

А - содержание вторичных мессенджеров в вакуолях и в среде инкубации п/п

Параметры

Солевые вакуоли

Начало покоя

Глубок, покой неинф.

Сахарные вакуоли

Начало покоя неинф.

Глубок, покой неинф. инфиц. 1

Содержание Са2 в вакуолях (■ *, в**) и в среде инкубации (а*, □**), нМ

Содержание Н2О2 в вакуолях (■ *. и **)и в среде инкубации (■ *, и **), нМ

165

215

107

ЕІ з8

83

170

951

223 3500 I Ь

250 I

298

51 4700

46

66

47

128112

110

70П

2320

1523 4500 I I

67

32с

Содержание цАМФ в вакуолях (■*, и **) и в среде инкубации (□*.□**), нМ/мг белка

Содержание цАМФ в вакуолях (■ *, в**) и в среде инкубации (■*,в**)

Содержание цАМФ в вакуолях (■ *, в**) ив среде инкубации (и, в**) НД****

250

120

228 I

110 1

54 їй

125

16

251

25

50 Ш

54

254250

250

300

225

251

200 І

0.42

248

250 14^

251 14^|

0,3

167

167

0,2 - неинфицированные ткани; ** - инфицированные ткани. - 500 нМ; **** - 700 нМ (наиболее эффективные концентрации).

Б - активности "растворимой" вакуолярной и тонопластной АЦ в ответ на вторичные мессенджеры (Са2+, Н202) и биотический стресс

Параметры Солевые вакуоли Сахарные вакуоли п/п Начало покоя Глубок, покой Начало покоя Глубок. ПОКОЙ неинф. инфиц. неинф. инфиц. неинф. инфии. неинф. инфиц.

6 Исходная активность рАЦ* в вакуолях (нсинф. - ^инфицир. - □) 17 440 16 24 ■ 23 ш 0^8 и 1 ^6 17

2 2 — 5 215

7 8 Активность рАЦ в вакуолях (неин -фиц. - □. инфицир. - н) + Са2',100 нМ Активность рАЦ в вакуолях (неинф.-■ . инфицир. - о) + НД, 100 нМ 17 16 16 КВ 5 17 тж 0^6 0 Кб 13 78 □ ¥ 83 і 90 1

9 Исходная активность тАЦ* в вакуолях (неинф. - ш, инфицир. - □) 210 1 400 66 г ЗЗООО 1 1 335000 I 1000 і 33000 150 1 33 в 3000 1 1 3000 і ЗЗООО

10 Активность тАЦ в вакуолях (неинф,-■ , инфицир. - в) + Са2', 100 нМ 1 80 § 1 51000 1 49000 150 1 30 а 3000 1 1 360 5000

11 Активность тАЦ в вакуолях (неинф,-■ . инфицир.-о)+ НД, 100 нМ 215 1 78 1 | 180 1 33 □ 1 - Активность аденилатциюш, нмоль цАМФ/мг белка в мин.

Рисунок 12. Ответы АЦ сигнальной системы вакуолей корнеплодов столовой свеклы на вторичные мессенджеро! и биотический стресс. А - содержание вторичных мессенджеров в вакуолях и в среде инкубации; Б - активности «растворимой» вакуолярной и тонопластной аденилатциклаз в ответ на вторичные мессенджеры (Са~ , Н2О2) и биотический стресс.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Рыкун, Ольга Васильевна, 2013 год

1. Авдонин П.В. Рецепторы и внутриклеточный кальций / П.В. Авдонин, В.А. Ткачук. M.: Наука, 1994. - 288 с.

2. Аверьянов A.A. Фунгитоксичность систем ферментативного окисления о-диоксифенолов, обусловленная радикалами кислорода / A.A. Аверьянов, В.П. Лапикова // Известия АН СССР. 1989, N.5. - С.776-780.

3. Албертс Б. Молекулярная биология клетки / Б. Албертс, Д. Брей, Дж. Льюис и др. М.: Мир, 1994. Т.З.- 504 с.

4. Алехина Н.Д. Физиология растений / Н.Д. Алехина, Ю.В. Балнокин, В.Ф. Гавриленко. M.:Академия, 2007. - 640 с.

5. Андреев И.М. Функции вакуоли в клетках высших растений / И.М. Андреев // Физиология растений. 2001. - Т.48, N.5. - С.777-787.

6. Андреев И.М. Роль вакуоли в редокс-гомеостазе растительных клеток / И.М. Андреев // Физиология растений. 2012. - Т. 59, N. 5. - С. 660-667.

7. Балнокин Ю.В. Ионный гомеостаз и осморегуляция у галотолерантных микроводорослей / Ю.В. Балнокин // Физиология растений. 1993. - Т. 40, N.4. - С. 567-576.

8. Берестовский Г.Н. Ионные каналы клеток харовых водорослей / Г.Н. Берестовский, О.М. Жерелова, A.A. Катаев // Биофизика. 1997. - Т. 32. - С. 1011-1027.

9. Берестовский Г.Н. Ионные каналы плазмалеммы и тонопласта / Г.Н. Берестовский // Вестник Нижегородского университета, серия биология. -2001.-T. 1.-С. 11-15.

10. Васильева Г.Г. Активность НАДФН-оксидазы в зонах корня проростков гороха, различающихся по чувствительности к ризобиальной инфекции / Г.Г.Васильева, А.К.Глянько, A.A. Ищенко // Вестник ХНАУ. Сер. Биология. 2007. - Вып. 2 (11). - С. 34^2.

11. Васюкова Н.И. Индуцированная устойчивость растений и салициловая кислота / Н.И. Васюкова, O.JI. Озерецковская // Прикладная биохимия и микробиология 2007 . - Т. 43, N. 4. - С. 405^111.

12. Великанов Г.А. Вакуолярный симпласт формируется посредством высокопроницаемого щелевого контакта мембраны эндоплазматического ретикулума с тонопластом / Г.А.Великанов, Л.П. Белова, В.Ю.Леванов // Физиология растений. 2008. - Т.55, N. 6. - С. 921-931.

13. Волин М.С. Механизмы передачи сигнала оксидант-оксид азота в сосудистой ткани / М.С. Волин, К.А. Дэвидсон, П.М. Каминский, Р.П.Фейнгерш, К.М Мохаззаб // Биохимия. 1998. - Т.63. - С. 958-965.

14. Выскребенцева Э.И. цАМФ-связывающий белок из корнеплода сахарной свеклы / Э.И. Выскребенцева, Г.Г. Иванов // Физиология растений. 1982. -Т.29, N.5. - С. 855-859.

15. Гааль Э. Электрофорез в разделении биологических макромолекул / Э. Гааль, Г. Медбети, Л. Верецкеи. М.: Мир, 1982. - 448 с.

16. Гамалей Ю.В. Транспортная система сосудистых растений / Ю.В. Гамалей. -СПб.: Изд. во СПбГУ. 2004. - 421 с.

17. Гамалей Ю.В. Подвижная сетевая организация пластид и митохондрий в растительных клетках / Ю.В. Гамалей // Цитология. 2006. - Т. 48, N.4. - С. 271-282.

18. Гарник Е.Ю. Изучение роли редокс-сигналинга в регуляции экспрессии митохондриальных и ядерных генов растений: дис. канд. биол. наук: 03.00.12 / Е.Ю. Гарник; СИФИБР СО РАН. Иркутск, 2009. - 124 с.

19. Глянько А.К. Активность НАДФН-оксидазы в корнях проростков гороха при ризобиальной инфекции в зависимости от действия неблагоприятных факторов / А.К.Глянько, Г.Г.Васильева, A.A. Ищенко // Вестник ХНАУ. Сер. Биология. 2008. - Вып. 3 (15). - С. 6-14.

20. Глянько А. К. НАДФН-оксидаза растений / А.К. Глянько, A.A. Ищенко, Н.Б. Митанова, Г.Г. Васильева // Вестник ХНАУ. Сер. Биология 2009. - Вып. 2 (17). - С. 6-18.

21. Глянько А. К. Влияние ризобиальной инфекции и других факторов на генерацию оксида азота (NO) в корнях этиолированных проростков гороха / А.К. Глянько, Н. Б. Митанова, А. В. Степанов // Вестник ХНАУ. Сер. Биология. 2010. - Вып. 1 (19). - С.56-68.

22. Глянько А. К. Активные формы кислорода и азота при бобово-ризобиальном симбиозе / А. К. Глянько, Г.Г. Васильева // Прикладная биохимия и микробиология. 2010. - Вып. 46 (1). - С. 21-28.

23. Гречкин А. Н. Липоксигеназная сигнальная система / А. Н.Гречкин, И. А. Тарчевский // Физиология растений. 1999. - Т. 46. - С. 132-142.

24. Дмитриев А.П. Сигнальные молекулы растений / А.П. Дмитриев // Физиология растений. 2003. - Т. 50, N.3. - С. 465^74.

25. Доман Н.Г. Биологическая роль циклического АМФ / Н.Г. Доман, Е.П. Феденко // Успехи биол. химии. 1976. - Т. 17. - С. 63-101.

26. Доман Н.Г. Уровни регуляции функциональной активности органов и тканей / Н.Г.Доман, Е.П. Феденко // Л.: Наука. 1987. - 272 С.

27. Драговоз И.В. Увеличение семенной продуктивности люцерны пр обработке комплексным регулятором роста / И.В.Драговоз, С.Я.Коць, Т. И.Чехун, В. К. Яровская, Н. В. Волкогон // Физиология растений 2002 - Т. 49, N. 6. - С. 925-930.

28. Дьякова Ю.Т. Фундаментальная фитопатология / Ю.Т.Дьякова. М.: КРАСАНДР, 2012.-512 с.

29. Игуменов B.J1. Фосфодиэстераза циклических нуклеотидов из проростков пшеницы. Очистка, свойства, влияния системных фунгицидов / В.Л. Игуменов, Р.Н. Этингоф // Биохимия. 1980. - Т. 45, N. 10. - С. 1797-1802.

30. Ишеева О.Д. Ферменты первичной защиты от окислительного стресса у вакуолей клеток растений: дис. канд. биол. наук: 03.01.05 / О.Д. Ишеева; СИФИБР СО РАН. Иркутск, 2010.-162 с.

31. Каримова Ф.Г. Влияние фитогормонов на содержание цАМФ в растениях / Ф.Г. Каримова, О.И. Тарчевская, С.А. Леонова, С.Н. Жуков // Физиол. и биохим. культ, растений. 1990. - Т. 22, N. 6. - С. 532-537.

32. Каримова Ф.Г. Секреция цАМФ клетками растений / Ф.Г. Каримова, С.А. Леонова, С.А. Гордон, В.И. Фильченкова // Физиол. и биохим. культ, растений. 1993. - Т. 25, N. 4. - С. 362 - 367.

33. Каримова Ф.Г. цАМФ-зависимое фосфорилирование белков гороха, индуцированное форсколином / Ф.Г. Каримова, Е.В. Тырыкина, О. Ю. Захарова // Физиология растений. 2005. - Т. 52. - С. 27-35.

34. Каримова Ф.Г. Влияние Н2Ог на фосфолирования по тирозину белков гороха / Ф.Г. Каримова, Н.В. Петрова // Физиология растений. 2007. - Т. 54, N. 3. -С. 365-372.

35. Карпец Ю.В. Содержание пероксидов в корнях проростков пшеницы при гипертермии в зависимости от кальциевого статуса их клеток / Ю.В. Карпец, Ю.Е. Колупаев // Вестник ХНАУ. Сер. Биология. 2008. - Т. 3, N.15. - С. 33 -40.

36. Катков Б.Б. Сохранение нативных свойств изолированных вакуолей корнеплода красной свеклы, выделенных в растворах на основе КС1 и сорбита / Б.Б. Катков, A.M. Корзун, Р.К. Саляев // Физиология растений. -1990. Т.37, вып.2. - С.362-370.

37. Климов C.B. Адаптация растений к стрессам через изменение донорно-- акцепторных отношений на разных уровнях структурной организации /C.B. Климов // Успехи соврем, биологии. 2008. - Т. 128, N.3. - С. 281-299.

38. Клычников О.И. Органицация рецептора фузикокцина в плазмалемме высших растений: взаимосвязь между аффинностью и молекулярной массой / О.И. Клычников, A.B. Драбкин, О.В. Василенко и др. // Биохимия. 1998. -Т.63, Вып.9. - С. 1269-1278.

39. Клячко H.JI. Сигналящие эндосомы и транспорт эндосом у растений / H.JI. Клячко. 2010. - Т. 57, N. 2. - С. 304-311.

40. Колу паев Ю.Е. Активные формы кислорода в растениях при действии стрессоров: образование и возможные функции / Ю.Е. Колупаев // Вестник ХНАУ. 2007. - Вып. 3 (12). - С. 6-26.

41. Колупаев Ю.Е. Кальций и стрессовые реакции растений / Ю.Е. Колупаев // Вестник ХНАУ. 2007. - Вып. 1(10). - С. 24-41.

42. Колупаев Ю.Е. Формирование адаптивных реакций растений на действие абиотических стрессоров / Ю.Е. Колупаев, Ю.В. Карпец. Киев: Основа, 2010.-352 с.

43. Колупаев Ю.Е. Ранние реакции растений на действие стрессоров: повреждение, сигналинг, защита? / Ю.Е. Колупаев, Ю.В. Карпец // Вестник ХНАУ. Сер. Биология. 2012. - Вып. 2 (26). - С. 6 - 24.

44. Кораблева Н.П. Механизмы гормональной регуляции состояния покоя картофеля Solanum tuberosum L./ Н.П. Кораблева, Э.П. Ладыженская // Биохимия. 1995.-Т. 60, N.1.-C. 49-57.

45. Корзун A.M. Электрический пробой мембран изолированных вакуолей / A.M. Корзун, Р.К.Саляев // Оператив. информ. матер. (Физиологиярастительной клетки, минерального и светового питания) 1983. - С.29 - 32.124

46. Кошникович В.И. Статистические методы в защите растений / В.И. Кошникович. Новосибирск, 2006. - 262 с.

47. Креславский В.Д. Сигнальная роль активных форм кислорода при стрессе у растений / В.Д.Креславский, Д.А. Лось, С.И. Аллахвердиев // Физиология растений. 2012. - Т. 59, N. 2. - С. 163-178.

48. Кузеванов В.Я. Общие принципы выделения вакуолей и вакуолярных мембран / В.Я. Кузеванов, Б.Б. Катков, Р.К. Саляев // Структура и функции биологических мембран растений / под ред. Р.К. Саляева, В.К. Войникова. -Новосибирск: Наука, 1985. 93-107с.

49. Кулаева О.Н. Восприятие и преобразование гормонального сигнала у растений/ О.Н. Кулаева // Физиология растений. 1995, N. 42. - С. 661— 671.

50. Кулинский В.И. Передача и трансдукция гормонального сигнала в разные части клетки / В.И. Кулинский // Соросовский образовательный журнал. -1997, N.8.-С. 14-19.

51. Ладыженская Э.П. Механизм передачи гормонального сигнала абцизовой кислоты через плазмалемму растительной клетки / Э.П. Ладыженская // Биологические мембраны. 2000. - Т. 17, N. 6. - С. 565-576.

52. Ладыженская Э.П. Биохимические механизмы передачи внешних сигналов через плазмалемму растительной клетки при регуляции покоя и устойчивости / Э.П. Ладыженская, М.А. Проценко // Биохимия. 2002. Т. 67, вып. 2.-С. 181-193.2

53. Ладыженская Э.П. Действие жасмоновой кислоты на транспорт Са через мембрану везикул плазмалеммы из клеток клубней картофеля / Э.П.

54. Ломоватская Л. А. Особенности развития инфекционного процесса на начальном и завершающем этапах патогенеза кольцевой гнили картофеля / Л. А. Ломоватская // Автореферат дисс. канд. биол. наук. Иркутск. - 2001. -21 с.

55. Ломоватская Л. А. Возможная роль эндогенного цАМФ картофеля в развитии системного сигнала при патогенезе кольцевой гнили / Л.А. Ломоватская, A.C. Романенко, Н.В. Криволапова, В.Н. Копытчук, Р.К. Саляев // ДАН. 2004. - Т. 394, N. 5. - С. 715-717.

56. Ломоватская Л.А. Системная активация аденилатциклазы, локализованной в плазмалемме клеток картофеля при бактериальном патогенезе / Л.А. Ломоватская, A.C. Романенко, Н.В. Криволапова, В.Н. Копытчук, Р.К. Саляев // ДАН. 2007. - Т. 413, N.3. - С. 420-423.

57. Ломоватская Л.А. Выявление «растворимой» аденилатциклазы в растениях картофеля / Л.А. Ломоватская, A.C. Романенко, Н.В. Филинова, В.Н. Копытчук, Р.К. Саляев // ДАН. 2008. - Т. 420, N. 3. -С. 412-414.

58. Ломоватская Л.А. Аденилатциклазы и устойчивость растений к стрессам / Л.А. Ломоватская; A.C. Романенко; Н.В. Филинова Иркутск: Изд-во Инст. Геогр. Им. В.Б. Сочавы СО РАН, 2010. - 87 с.

59. Лось Д.А. Сенсорные системы цианобактерий / Д.А. Лось. М.: Научный мир, 2010.-218 с.

60. Лукаткин А. С. Холодовое повреждение теплолюбивых растений и окислительный стресс / А. С. Лукаткин. Саранск: Изд-во Мордов. ун-та, 2002.-208 с.

61. Ляхович B.B. Активная защита при окислительном стрессе. Антиоксидант-респонсивный элемент / В.В. Ляхович, В.А. Вавилин, Н.К. Зенков и др. // Биохимия. 2006. - Т.71, вып.9. - С. 1183-1197.

62. Макаренко С.П. Химический состав и структура липидов вакуолярных мембран / С.П. Макаренко, Т.А. Коненкина, Р.К. Саляев // Биол. мембраны. -1992. Т.9, N.3. - С.290-300.

63. Макаренко С.П. Особенности жирнокислотного состава липидов вакуолярных мембран высших растений / С.П. Макаренко, Т.А. Коненкина, Р.К. Саляев // Биол. мембраны. 1999. - Т. 16, N.5. - С.556-562.

64. Макаренко С.П. Жирнокислотный состав липидов вакуолярных мембран корнеплодов / С.П. Макаренко, Т.А. Коненкина, С.В. Хотимченко // Физиология растений. 2007. - Т.54, N.2. - С.223-228.

65. Медведев С.С. Кальциевая сигнальная система растений / С.С. Медведев // Физиология растений. 2005. - Т. 52, N.3, - С. 1-24.

66. Меньшикова Е.Б. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов / Е.Б. Меньщикова, Н.К. Зенков // Успехи современной биологии. 1993. - Т. 113. - С.442-455.

67. Мерзляк М.Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки / М.Н. Мерзляк // Итоги науки и техники. Сер. Физиология растений. М. - 1989. - Т.6. 167 с.

68. Наумов H.A. Болезни сельскохозяйственных растений (фитопатология) / H.A. Наумов. М.: Сельхозгиз, 1940. - 566 с.

69. Нестеркина И.С. Выявление липид-белковых микродоменов (рафтов) на вакуолярной мембране: дис. канд. биол. наук: 03. 01. 05 / И.С. Нестеркина; СИФИБР СО РАН. Иркутск, 2011. - 104 с.

70. Николаев В.О. цАМФ, цГМФ и их визуализация в живых клетках с помощью флуоресцентной микроскопии / В.О. Николаев // Цитология. 2011. -T.53,N.8.-С. 623-631.

71. Новикова Г.В. В начале пути: восприятие АБК и передача ее сигнала у растений / Г.В.Новикова, Н.С.Степанченко, A.B. Носов // Физиология растений. 2009. - Т.56, N.6.- С. 806-823.

72. Озолина Н.В. Влияние фитогормонов на гидролитическую активность фосфогидролаз тонопласта / Н.В.Озолина, Е.В. Прадедова, Р.К. Саляев // ДАН. -1994. Т. 339, N.2. - С. 281-282.

73. Озолина Н.В. Влияние гиббереллина на гидролитическую активность протонных помп тонопласта в онтогенезе красной столовой свеклы / Н.В. Озолина, Е.В. Прадедова, Р.К. Саляев // ДАН. 1996. - Т. 346, N.3. - С.410-412.

74. Палилова A.H. Фундаментальные и прикладные проблемы взаимодействия ядерной и цитоплазматических генетических систем растений / А.Н. Палилова // Вестник ВОГиС. 2005, Т. 9, N. 4. - С. 499-504.

75. Октябрьский О.Н. Редокс регуляция клеточных функций / О.Н. Октябрьский, Г.В. Смирнова // Биохимия. - 2007. - Т.72, N.2. - С. 158-174.

76. Патрушев Л.И. Экспрессия генов / Л.И. Патрушев. М.: Наука. 2000. - 528 с.

77. Орлов С. Н. Выброс клетками циклического аденозинмонофосфата: механизм и физиологическое значение / С. Н. Орлов, Н. В. Максимова // Биохимия. 1999. Т.64. Вып.2. С. 164 -173.

78. Плотникова Л .Я. Иммунитет растений и селекция на устойчивость к болезням и вредителям / Л .Я. Плотникова. М.: КолосС. 2007. - 359 с.

79. Полесская О. Г. Растительная клетка и активные формы кислорода / О. Г.Полесская. М.: КДУ, 2007. 140 с.

80. Попкова К.В. Общая фитопатология / К.В. Попкова. М.: Агропромиздат, 1989.-399 с.

81. Прадедова Е.В. Динамика гидролитической активности аденозинтрифосфатазы и Н^-пирофосфатазы тонопласта в онтогенезе столовой свеклы / Е.В. Прадедова, Н.В. Озолина, Р.К. Саляев, Т. И.Юшкевич // ДАН. 1999. - Т.364, N.6. - С. 835-838.

82. Прадедова E.B. Влияние цАМФ, жасмоновой и салициловой кислот на протонные помпы тонопласта / Е.В .Прадедова, О.Д. Ишеева, Н.В. Озолина // ДАН. 2006. Т. 408, N. 3. - С.411-413.

83. Прадедова Е.В. Супероксиддисмутаза вакуолей клеток растений / Е.В.Прадедова, О.Д. Ишеева, Р.К. Саляев // Биол. мембраны. 2009. -Т.26, N.1.-C. 21-30.

84. Прадедова Е.В. Ферменты антиоксидантной защиты вакуолей корнеплодов столовой свеклы / Е.В.Прадедова, О.Д. Ишеева, Р.К. Саляев // Физиология растений. 2011. - Т.58, N. 1. - С. 40-48.

85. Проценко М.А. Молекулярные механизмы узнавания, функционирующие на поверхности контакта Phytophthora infestans и цитоплазматической мембраны клетки картофеля / М.А. Проценко // Биохимия. 1995. - Т. 60, N.1. - С.58-65.

86. Пузанова H.A. Буферная емкость вакуолярного сока корнеплодов красной столовой свеклы (Beta vulgarisL.) / H.A. Пузанова, В.И. Пузанов, Р.К. Саляев // Опер, информ. материалы СИФИБР СО АН СССР. Иркутск, 1982. - С.25-28.

87. Пузанова, H.A. Изучение химического состава вакуолярного сока корнеплодов красной столовой свеклы / H.A. Пузанова, C.B. Лобохо, Т.Д. Козаренко и др. // Опер, информ. материалы СИФИБР СО АН СССР. -Иркутск, 1982. -С. 16-19.

88. Пятыгин С. С. Особенности сигнальной роли потенциала действия у высших растений / С. С. Пятыгин // Успехи современой биологии. 2007. Т. 127, N. 3.- С. 293-298.

89. Пятыгин С.С. Распространяющиеся электрические сигналы в растениях / С.С. Пятыгин // Цитология. 2008. Т.50, N. 2. - С. 154-159.

90. Пятыгин С.С. Стресс у растений: физиологический подход / С.С. Пятыгин // Журнал общей биологии. 2008. Т. 69, N. 4. - С. 294-298.

91. Рейвн П. Современная ботаника / П. Рейвн, Р. Эверт, С. Айкхорн. М.: Мир, 1990.-Т.1.-348 с.

92. Романенко A.C. Стабилизация корнями картофеля pH среды, смещаемого возбудителем кольцевой гнили / A.C. Романенко, И.А Граскова, A.A. Рифель,

93. B.Н. Копытчук, М.А. Раченко // Физиология растений. 1996. - Т.43, N.5.1. C.707-712.

94. Романенко A.C. Компоненты оболочек клеток картофеля, обладающие сродством к токсину возбудителя кольцевой гнили / A.C. Романенко, Е.В. Рымарева, Т.Н. Шафикова // ДАН. 1998. - Т.358, N. 2. - С.277-279.

95. Романенко A.C. Характеристика экзополисахаридов возбудителя кольцевой гнили и афинных к ним сайтов оболочек клеток картофеля /A.C. Романенко, Е.В. Рымарева, В.Н. Копытчук, Е.Г. Екимова, A.M. Собенин // Биохимия. 1999. - Т.64, N. 10. - С. 1370-1376.

96. Саатов Т.С. Роль липидных компонентов биологических мембран в рецепции гормонов и функционировании аденилатциклазной системы / Т.С.Саатов // Украинский биохим. журнал. 2007. - Т. 53, N.2. - С.44-51.

97. Саляев Р.К. Выделение и очистка вакуолей и вакуолярных мембран из клеток растений / Р.К. Саляев, В.Я. Кузеванов, В.Я. Хаптагаев и др. // Физиология растений. 1981. -Т.28, N.6. - С.1295-1305.

98. Саляев Р.К. Содержание липидов, белков и углеводов в мембране изолированных вакуолей красной свеклы / Р.К. Саляев, В.Я. Кузеванов, Н.В. Озолина и др. // Физиология растений. 1982. - Т.20, вып.5. - С. 933-939.

99. Саляев Р.К. Об ультраструктуре изолированных вакуолярных мембран / Р.К. Саляев, С.Б. Хаптагаев, В.Я. Кузеванов и др. // Цитология. 1983. - Т.35, N.6. - С.643-648.

100. Саляев P.K. Сахарный и солевой статус тканей корнеплода Beta vulgaris L.I P.K. Саляев, C.B. Ланкевич, В.Я. Кузеванов, Т.А.Брук, Л.В. Дударева // ДАН. 1997. - Т.354, N. 5. - С. 710-712.

101. Саляев Р.К. Закономерности формирования «сахарного» и «солевого» статуса клеток в растительной ткани / Р.К. Саляев, C.B. Ланкевич, В.Я. Кузеванов, Л.В. Дударева // ДАН 1999. - Т.364, N. 1. - С. 140-142.

102. Самуилов В.Д. Программируемая клеточная смерть / В.Д. Самуилов, A.B. Олескин, Е.М. Лагунова // Биохимия. 2000. - Т.65, N.8. - С. 1029-1046.

103. Северин Е.С. Роль фосфорилирования в регуляции клеточной активности. -М.: Наука, 1985.-288.

104. Тарчевский И. А. Метаболизм растений при стрессе / И. А. Тарчевский. -Казань: Фэн, 2001. 448 с.

105. Тихонова Л.И. Ионные каналы вакуолярной мембраны высших растений / Л.И. Тихонова // Биол. мембраны. 1998. - Т.15, N.3. - С. 245-258.

106. Ткачук В.А. Мембранные рецепторы и внутриклеточный кальций / В.А. Ткачук // Соровский образовательный журнал. 2001. - Т.7, N.1. - С.10-15.

107. Ткачук В.А. Пероксид водорода как новый вторичный посредник / В.А. Ткачук, П.А. Тюрин Кузьмин, В.В. Белоусов, A.B. Воротников // Биол. мембраны. - 2012. - Т.29, N.1-2. - С. 21-37.

108. Феденко Е.П. Аденилатциклаза и фитохром / Е.П.Феденко, М.А.Иванова, Н.Г. Доман // ДАН. 1983. -Т.269, N.5. - С. 1267-1268.

109. Филиппов П.П. Как внешние сигналы передаются внутрь клетки / П.П.Филиппов // Соросовский образовательный журнал. 1998. - N.3. - С. 28-34.

110. Хаптагаева Е.А. Радиальное распределение ионов и бетанина в ткани корнеплода красной столовой свеклы / Е.А. Хаптагаева, А. М. Корзун, Р.К. Саляев // Опер, информ. материалы СИФИБР СО АН СССР. Иркутск, 1982. -С.13-16.

111. Холл М.А. Протеинкиназы растений в трансдукции абиотических и биотических сигналов / М.А. Холл, Г.В. Новикова, И.Е. Мошков, JI.A. Дж. Мур, А.Р. Смит // Физиология растений. 2002. -Т. 49, N. 1. - С. 123-135.

112. Холодова В.П. Локализация сахарозы в тканях запасающего корнеплода сахарной свеклы / В.П. Холодова // Физиология растений. 1967. - Т. 14, В. 3. -С. 444^50.

113. Шпаков А.О. Структурно-функциональная организация аденилатциклаз одноклеточных эукариот / А.О.Шпаков // Цитология. 2007. - Т.49, N.2. - С. 91-106.

114. Шпаков А.О. Хемосигнальные системы растений / А.О.Шпаков // Цитология. 2009. - Т.51, N.9. - С. 721-734.

115. Шугаев А.Г. Активность антиоксидантных ферментов в митохондриях растущих и покоящихся корнеплодов сахарной свеклы / А.Г. Шугаев, Д.А. Лаштебега, H.A. Шугаева, Э.И. Выскребенцева // Физиология растений. 2011. -Т.58, N.3.-C. 323-329.

116. Этингоф Р.Н. Функциональная и структурная характеристика фосфодиэстеразы циклических нуклеотидов / Р.Н. Этингоф, И.Л. Думлер // Циклические нуклеотиды. Тез. докл. IV Всесоюзного симпозиума. - Минск. -1982.-С. 172.

117. Юрина Н.П. Сигнальные системы растений. Пластидные сигналы и их роль в экспрессии ядерных генов / Н.П. Юрина, М.С. Одинцова // Физиология растений. 2007. - Т.54, N.4. - С.485-498.

118. Юрина Н.П. Сигнальные системы митохондрий. Ретроградная регуляция у дрожжей Saccharomyces cerevisiae / Н.П. Юрина, М.С. Одинцова // Генетика. -2008. Т.44, N.3. - С. 1445-1452.

119. Яворская В.К. О функционировании цАМФ-регулирующей системы в растениях / В.К.Яворская, Ф.Л. Калинин // Физиология и биохимия культурных растений. 1984. - Т. 16, N.3. - С. 217-229.

120. Яворская В.К. Физиологическая роль 3',5'-цАМФ в растительных клетках //

121. Автореферат дисс. д-ра биол. наук. Киев. 1990. - С. 35133

122. Aducci P. Fusicoccinreceptors: perception and transduction of the fusicoccin signal / P.Aducci, M. Marra, V.Fogliano, M.R. Fullone // J. Exp. Bot. 1995. - V.46, N. 291.-P. 1463-1478.

123. Akram Z. Estimation of correlation coefficient among some yield parameters of wheat under rainfed conditions Pakistan / Z.Akram, S. Ajmal, M. Munir // J. Exp. Bot. 2008. - V. 40, N. 4. - P. 1777-1781.

124. Alfenito M.R. Functional complementation of anthocyan in sequestration in the vacuole by widely divergent glutathione-S-transferases / M.R. Alfenito, E. Souer, CD. Goodman et al. // Plant Cell. 1998. -V. 10, N.7. - P. 1135-1149.

125. Ali R. Death don't have no mercy and neither does calcium: Arabidopsis cyclic nucleotide gated channel 2 and innate immunity / R.Ali, W.Ma, F.Lemtiri-Chlieh, D. Tsaltas, Q. Leng, S. von Bodman, G.A Berkowitz // Plant Cell. 2007. - V.19. -P.1081-1095.

126. Allen G.J. Two Voltage Gate Calcium Channels Coreside in the Vacuolar Membrane of Guard Cells / G.J. Allen, D. Sanders // Plant Cell. - 1994. - V. 6. - P. 685-694.

127. Allen G.J. Control of Ionic Currents in Guard Cell Vacuoles by Cytosolic and Lumenal Calcium / G.J Allen, D.Sanders // Plant J. 1996. - V. 10. - P. 1055-1067.

128. Allen G.J. Vacuolar Ion Channels of Higher Plants / G.J.Allen, D. Sanders // Adv. Bot. Res. 1997. -V. 25. - P. 218-252.

129. Amsterdam A. Crosstalk among multiple Signaling pathway Controlling ovarian cell death /A. Amsterdam, R. Gold, K. Hosokawa, Y. Yoshida, R. SassoT, Y. Jung, F. Kotsuji // TEM. 1999. - V. 10, N. 7. - P. 255-262.

130. Arazi T.A. High-Affinity Calmodulin Binding Site in a Tobacco Plasma -Membrane Channel Protein Coincides with Characteristic Element of Cyclic Nucleotide-Binding Domains / T. Arazi, B. Kaplan, H. Fromm // Plant Mol. Biol. -2000.-V. 42.-P. 591-601.

131. Arrigo A.P. Gene expression and the thiol redox state / A.P. Arrigo // Free Rad. Biol. Med. 1999. - V. 27. - P. 936-944.

132. Axelsen K.V. Evolution of Subsrate Specificities in the P-Type ATPase Superfamily / K.V. Axelsen, M.G. Palmgren // J. Mol. Evol. 1998. - V. 46. - P. 84101.

133. Bechtel D.B. Amyloplast formation and starch granule development inhard red winter wheat / D.B. Bechtel, J.D. Wilson // Cereal. Chem. 2003. - V.80. - P. 175183.

134. Becker K.P. Phospholipase D dependent Translocation of ProteinKinase С to a Juxtanuclear Compartment / K.P. Becker, Y.A. Hannun // J. Biol. Chem. - 2004. - V. 279.-P. 28251-28256.

135. Becker K.P. Proteinkinase С and phospholipase D: intimate interactions in intracellular Signaling / K.P. Becker, Y.A. Hannun // Cellular and Molecular Life Sciences. 2005. - V.62. - P. 1448-1461.

136. Beers E. P. Proteinase Activity during Tracheary Element Differentiation inzinnia Mesophyll Cultures / E. P. Beers, T.B. Freeman // Plant Physiol. 1997. - V. 113. -P. 873 -880.

137. Berridge M.J. Calcium a Life and Death Signal / M.J. Berridge,M.D. Bootman, P. Lipp // Nature. - 1998. - V. 395. - P. 645-648.

138. Besson Bard A. Nitric oxid in Plants: production and cross-talk with Ca Signaling / A. Besson - Bard, C. Courtois, A. Gauthier, J. Dahan, G. Dobrowolska,

139. S. Jeandroz, A. Pugin, D. Wendehenne // Molecular Plant. 2008. - V.l, N. 2. - P. 218-228.

140. Bhalta S.C. Subsellular localization of adenylate cyclase in the shoot apices of Bryum argenteum Hedw. / S.C. Bhata, R.N. Chopra //Ann. Bot. 1984. - V. 54. - P. 195-200.

141. Bindschedler LV. Peroxidase dependent apoplastic oxidative burst in Arabidopsis required for pathogen resistance / LV. Bindschedler, J. Dewdney, KA. Blee et al. // Plant J. - 2006. - V.47, N.6. - P.851-863.

142. Blackford S. Voltage Sensitivity of H+/Ca2+ Antiport in Higher Plant Tonoplast Suggests a Role in Vacuolar Calcium Accumulation / S. Blackford, P.A. Rea, D. Sanders // J. Biol. Chem. 1990. - V. 265. - P. 9617-9620.

143. Blume B. Receptor Mediated Increase in Cytoplasmic Free Calcium Requiredfor Activation of Pathogen Defense in Parsley / B. Blume, T. Nürnberger, N. Nass, D. Scheel // Plant Cell. - 2000. - V. 12. - P. 1425-1440.

144. Bohnert H.J. Strategies for Engineering Water Stress Tolerance in Plants / H.J. Bohnert, R.G. Jensen // Trends Biotech. Nol. - 1996. - V. 14. - P. 89- 97.

145. Boller T. Hydrolytic enzymes in the central vacuole of Plant cells / T. Boller , H. Kende // Plant Physiol. 1979. - V.63. - P. 1123 - 1132.

146. Bose J. Calcium efflux systems instress Signaling and adaptation in Plants / J. Bose, J.J. Pottosin, S.S. Shabala, M.G. Palmgren, S. Shabala // Plant science. 2011. -T.2, - V.85. -P.1-17.

147. Bradford M. A rapid and sensitive method for the quantitation of proteinutilising the principal of protein dye Binding / M. Bradford // Anal. Biochem. - 1976. -V.72, N. 1. - P.248-254.

148. Brown E.G. Cyclic Nucleotide phosphodiesterase activity in Phaseolus vulgaris / E.G.Brown, T. A1 Najafi, R.P. Newton // Phytochemistry. - 1977. - V.16, N.9. -P.1333-1337.

149. Brown E.G. A cyclic AMP Binding proteinfrom barley seedlings / E.G. Brown, R.P. Newton , C.I. Smith // Ibid. - 1980. - V. 19, N. 11. - P. 2263-2267.

150. Bush D.S. Calcium Regulation in Plant Cells and Its Role in Signalling / D.S. Bush // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1995. - V. 46. - P. 95-122.

151. Canut H. Hydrolysis of Intracellular Proteins in Vacuoles Isolated from Acerpseudoplatanus L. Cells / H. Canut, G. Alibert, A.M. Boudet // Plant Physiol. -1985.-V.79.-P. 1090-1093.

152. Carricarte V.C. Adenilate cyclase activity in a higher Plant, alfalfa {Medicago sativa) / V.C. Carricarte, G.M. Bianchin, J.P. Muschietti // Biochem. J. 1988. - V. 249.-P. 807-811.

153. Chanson A. Active transport of proton and calcium in higher Plant cell / A. Chanson // Plant Physiol. Biochem. 1993. - V.31, N.6. - P.943-955.

154. Chinusamy V. Molecular Genetic perspectives on cross-talk and specificity inabiotic stress signaling in plants / V. Chinnusamy, K.Schumaker, J-K. Zhu // J. Exp. Bot. 2004. - V. 55. - P. 225-236.

155. Cho M.J. Reciprocal regulation of mammalian nitric oxide synthase and calcineuring by plant calmodulinisoforms / M.J.Cho, P.L. Vaghy, R. Kondo, S.H. Lee, J.P. Davis, R. Rehl, W.D. Heo, J.D. Jonson // Biochem. 1998. - V.37. -P.15593-15597.

156. Conconi A.M. Intracellular levels of free linolenic and linoleic acids increase intomato leaves inresponse to wounding / A.M. Conconi, J.A. Browse, C.A. Ryan // Plant Physiol. 1996. - V.l 11, N.3. - P.797-803.

157. Cooke C.J. Evidence that cyclic AMP is involved in the hypersensitive response of Medicago sativa to a fungal elicitor / C.J. Cooke, C.J. Smith, T.J. Walton, R.P. Newton // Phytochemistry. 1994. - V. 35. - P. 889-894.

158. Courtois C. Nitric oxide Signalling in Plants: interplays with Ca and proteinkinases // C. Courtois, A. Besson, J. Dahan, S. Bourque, G. Dobrowolska, A. Pugin, D. Wendehenne // Mol. Plant. 2008. -V. 1, N. 2. - P. 218-228.

159. Creelman R.A. Jasmonic acid distribution and action in Plants: regulation during development and response to biotic and abiotic stress / R.A. Creelman, J.E. Mullet // Proc. Natl.Acad. Sci. 1995. - V. 92, N. 10. - P. 4114- 4119.

160. Curvetto N. Effect of two cAMP analogues on stomatal opening in Vicia faba: relationship with cytosolic calcium concentration / N. Curvetto, L. Darjania, S. Delmastro // Plant Physiol. Biochem. 1994. - V. 32. - P.365-372.

161. Dadacz Narloch B. A Novel calcium Binding site in the slow vacuolar cation channel TPC1 senses luminal calcium levels / B. Dadacz -Narloch, D. Beyhl, C. Larisch // Plant cell. - 2011. - V. 23. - P.2696-2707.

162. DanchinA. Phylogeny of adenylyl cyclases / A.Danchin // Adv. Second messenger Phosphoprotein Res. 1993. - V. 27. - P. 109-162.

163. Dat J. Dual action of the active oxygen species during Plant stress responses / J. Dat, S. Vandenabeele, E. Vranova, M. Van Montagu, D. Inze, F. Van Breusegem // Cellular and Molecular Life Sciences. 2000. - V. 57. - P. 779-795.

164. Dawson A.P. Calcium Signalling: How Do IP3 Receptor Work? // Curr. Biol. 1997. V. 7. P. 544-R547.

165. De Duve C. Intracellular distribution patterns of enzymes inrat liver tissue / C. De Duve, B.C. Pressman, R. Gianetto, R. Wattiaux, F.Appelmans // Biochem. 1955. V. 60.-P. 604-617.

166. Defer N. Tissue specificity and physiological relevance of various isoforms of adenylyl cyclase / N. Defer, M. Best-Belpomme , J. Hanoune // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2000. - V. 279. - P. 400-416.

167. Delle Done M. Nitric oxide function as a Signal in Plant disease resistance // M. DelleDone, Y. Xia, R.A. Dixo, C.Lamb // Nature. 1998. - V.394, N. 6693. - P. 585-588.

168. Demidchik V. Nonselective Cation Channels in Plants / V. Demidchik, R.J.

169. Davenport, M. Tester // Annu. Rev. Plant Biol. 2002. - V. 53. - P. 67-107.138

170. Ebel J. Early events in the elicitation of plant defence / J. Ebel, A. Mithofer // Planta, 1998. - V. 206. - P.348.

171. Ehsan H. Effect of indomethacinon the cell cycle-depend cyclic AMP fluxes intobacco BY-2 cells / H. Ehsan, J.P. Reichheld // FEBS Letters. 1998. - V.422. -P. 165-169.

172. Evans D.E. P -Type Calcium ATPases in Higher Plants Biochemical, Molecular and Functional Properties / D.E. Evans // D.E. EVans, L.E.Williams // Biochim. Biophys. Acta. - 1998. - V. 1376. - P.l-25.

173. Fehr T.F. Cyclic AMP efflux is regulated by occupancy of the adenosine receptor in pig aortic smooth muscle cells // T.F. Fehr, E.S. Dickinson, S.J. Goldman, L.L. Slakey // J. Biol. Chem. 1990. - V. 265, N.19. - P. 1097-10980.

174. Felle H.H. Sistemic Signaling in barley through action potentials / H.H. Felle, M. R. Zimmermann // Planta. 2007. - V. 226. - P. 203-214.

175. Fernandez A. Retrograde signaling and plant stress: plastid signals initiate cellular stree responses / A.Fernandez, A.Strand // Current opinion in plant Biology. 2008. - V.ll,N. 5.-P. 509-513.

176. Fester T. Reoganization of tobacco root plastids during arbuscule development / T. Fester, D. Strack, B. Hause // P lanta. 2001. - V. 213. - P. 864-868.

177. Foyer C.H. Redox regulation in photosynthetic organisms: signaling, acclimation, and practical implications C.H. Foyer, G.Noctor // Antioxid. Redox Signal. 2009. -V.ll.-P. 861-906.

178. Gehring C. Adenyl cyclases and cAMP in plant signaling past and present / C.Gehring // Cell Commun. Signal. - 2010. - V.8. - P. 1-15.

179. Geisler M. Molecular Aspects of Higher Plant P Type Ca2+-ATPases / M. Geisler, K.B. Axelsen, J.F. Harper, M.G. Palmdren // Bioch. Biophys. Acta. - 2000. -V. 1465.-P. 52-78.

180. Gelli A. Calcium Retrieval from Vacuolar Pools / A. Gelli, E. Blumwald // Plant Physiol. 1993. - V. 102. - P. 1139-1146.

181. Gelli A. Activation of Plant plasma Membrane Ca permeable channels by rase- specific fungal elicitors / A. Gelli, V.J. Higgins, E. Blumwald // Plant Physiol. -1997. V.113.-P. 269-279.

182. Gelli A. Activation of Plant Plasma Membrane Ca2+ Permeable Channels by Racespecific Fungal Elicitors / A. Gelli, V.J. Higgins, E. Blumwald // Plant Physiol.- 1997b.-V. 113.-P. 269-279.

183. Genoud T. Numeric simulation of plant signaling networks / T.Genoud, M.B.T.S. Cruz, J-P. Metraux // Plant Physiol. 2001. - V. 126. - P. 1430-1437.

184. Gilman A.G. A protein Binding assay for adenosine 3',5'-cyclic monophosphate / A.G. Gilman //Proc. Natl. Acad. Sci. 1970.-V.67,N.l.-P. 305-312.

185. Goddard H. Elemental Propagation of Calcium Signals in Response-Specific Patterns Determined by Environmental Stimulus Strength // H. Goddard, N.F.H.

186. Manison, D. Tomos, C. Brownlee // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. - V. 97. -P. 1932-1937.

187. Gray J.C. GFP movement between chloroplasts / J.C. Gray, J.M. Hibbert, P.J. Linley, B. Uijtewaal // Nature Biotech. 1999. - V. 17. - P. 1146.

188. Gray J.C. Stromules: mobile protrusions and interconnections between plastids / J.C. Gray, J. A. SilliVan, J.M. Hibbert, M.R. Hansen // Plant Biol. 2001. - V.3. -P.223-233.

189. Gunning B.E. Plastid stromules: video microscopy of their outgrowth, refraction, tensioning, anchroring, branching, bridging, and tip- shedding / B.E. Gunning // Protoplasma. 2005. - V. 225. - P. 33-42.

190. Hampton M.B. Dual regulation of caspase activity by hydrogen peroxide : implications for apoptosis / M.B. Hampton, S. Orrenius // FEBS Letters. 1997. - V. 414, N. 3.-P. 552-556.

191. Hanoune J. Adenylyl cyclases: structure, regulation,and function in an enzyme superfamily / J.Hanoune, Y. Pouille, E. Tzavara, T. Shen, L. Lipskaya, N. Miyamoto, Y. Suzuki, N. Defer // Mol. Cell. Endocrinol. 1997. - V. 128. - P. 179-194.

192. Hardie D.G. Plant proteinserine / threonine kinases: classification and function / D.G. Hardie // Plant Mol. Biol. 1999. - V.50. - P. 97-131.

193. Hatsugai N. Two vacuole mediated defense strategies in Plants / N. Hatsugai, J. Hara-Nishimura // Plant Signaling Behavior - 2010. - V.5, N. 12. - P. 1568-1570.

194. Hawes Ch. Cytoplasmic illuminations: in Planta targeting of fluorescent proteins to cellular organelles / Ch. Hawes, C.M. Sain-Jore, F. Brandizzi, H. Zheng, A.V. Andreeva, P. Boevink // Protoplasma. 2001. - V. 215. - P.77-88.

195. Hirschi K. Vacuolar H7Ca2+ Transport: Who's Directing the Traffic? / K. Hirschi // Trends Plant Sci. 2001. - V. 6. - P. 100-104.

196. Hubberstey A.V. Cyclase-associated proteins capacity for linking Signal transduction and actinpolimarization / A.V. Hubberstey, E.P. Motillo // FASEB J. -2002.-V. 16.-P. 487-499.

197. Hutcheson S.W. Current Concepts of Active Defense in Plants / S.W. Hutcheson // Annu. Rev. Phytopathol. 1998. - V. 36. - P. 59-90.

198. Ichikawa T. Identification and role of adenylyl cyclase in auxin Signaling in higher Plants / T. Ichikawa, Y .Suzuki, I. Czaja // Nature. 1997. -V. 390, N. 6661. -P. 698-701.

199. Irani N.G. Light-induced morphological alteration in anthocyanin-accumulating vacuoles of maize cells / NG. Irani, E. Grotewold // BMC Plant Biol. 2005. - V.5, N7. - P.l-15.

200. Isayenkov S. Vacuolar ion channels: roles in plant nutrition and signaling / S.Isayenkov, J.C. Isner, J.M. Maathuis // FEBS Letters. 2010. - V.584. - P. 19821988.

201. Janistin B. Stimulation by manganese (II suliphate of a cAMP-dependent proteinkinase from Zea mays seedlings / B. Janistin // Phytochemistry. 1988. - V. 27.-P. 2735-2736.

202. Jaquinod M. A proteomics dissection of Arabidopsis thaliana vacuoles isolated from cell culture / M. Jaquinod, F. Villiers, S. Kieffer-Jaquinod et al. // Mol. Cell Proteomics. 2007. - V.6, N.3. - P.394-412.

203. Jiang J. Evidenes for involvement of endogenous cAMP in Arabidopsis defense responses to Verticillium toxins / J. Jiang, L. W. Fan, W. H. Wu // Cell Research. -2005.-V. 15.-P. 585-592.

204. Johannes E. Calcium Channels in the Vacuolar Membrane of Plants: Multiple Pathways for Intracellular Calcium Mobilization / E. Johannes, J.M. Brosnan, D. Sanders // Phil. Trans. R. Soc. LonDon. Ser. B. 1992. - V. 338. - P. 105-112.

205. Joo J. H. Different signaling and cell death roles of heterotrimec G protein a and P subunits in the Arabidopsis oxidative stress response to ozone / J. H. Joo, S.Wang, J.G. Chen, A.M.Jones, N.V. Fedoroff// The Plant Cell. 2005. - V. 17. - P.957-970.

206. Jones A.M. Plant: the latest model system for G-proteinresearch / A.M. Jones, S. M. Assman // EMBO Reports. 2004. - V. 5, N. 6. - P. 572-578.

207. Jung H-S. Signaling between chloroplasts and the nucleus: can a systems biology approach bring clarity to a complex and highly regulated pathway? / H-S.Jung, J.Chory // Plant Physiology. 2010. - V.152. - P.453-459.

208. Kaiser G. Polypeptide pattern and enzymic character of vacuoles isolated from barley mesophyll protoplasts / G. Kaiser, E. Martinoia, J.M. Schmitt, et al. // Planta. -1986. V.169, N.3. - P.345-355.

209. Kamenetsky M. Molecular details of cAMP Generation inmammalian cells: a tale of two systems / M. Kamenetsky, S. Middelhaufe, E.M. Bank, L.R. Levin, J. Buck, C.Steegborn // J. Mol Biol. 2006. - V. 362. - P. 623-39.

210. Kasperska A. Sensor types in signal transduction pathways in plant cells responding to abotic stressors: do they depend on stress intensity? / A. Kasperska // Plant Physiol. 2004. - V.122. - P. 159-168.

211. Kawabe J.I. Soluble adenylyl cyclase from Spodoptera frugiperda (1Sf9) cells / J.I. Kawabe, Y. Toya, C. Schwencke, N.Oka, T.Ebina, Y. Ishikawa // J. Biol. Chem. -1996. -V. 271, N. 33. P. 20132-20137.

212. Kim M.C. Calcium and calmodulin-mediated regulation of gene expression in plants / M.C.Kim, W.S. Chung, D. Yun, M. J. Cho // Molecular Plant. 2009. - V.2. -P. 13-21.

213. Klamt S. Flux Analyzer: Exploring structure, pathways, and flux distributions in metabolic networks on interactive flux maps / S.Klamt, J.Stelling, M.Ginkel, E. Gilles // Bioin Formatics. 2003. - V.19. - P.261-269.

214. Klamt S. An application programming interface for CellNetAnalyzer / S. Klamt, A. von Kamp// Biosystems. 2011.-V. 105, N.2. - P. 162-168.

215. Knight H. Calcium Signaling during abiotic stress in Plants / H. Knight // Int. Rev. Cytol. 2000. - V.195. - P. 269-324.

216. Kohler R.H. Exchange of proteinmolecules through connections between higher

217. Plant plastids / R.H. Köhler, J. Cao, W.R. Ziphel, W.W. Webb, M.R. Hanson //

218. Science. 1997. - V. 276. - P.2039-2042.143

219. Kohler R.H. Plastid interconnections imaged by fluorescence and phase contrast / R.H. Köhler, M.R. Hanson, S. Wildman // Trends Cell Biol. 1997. - V.7. - P. 392.

220. Kohler C. Characterization of a novel Gene Family of Putative Cyclic Nucleotide -and Calmodulin Regulated Ion Channels in Arabidopsisthaliana / C. Kohler, T. Merkle, G. Neuhaus // Plant J. - 1999. - V. 18. - P. 97-104.

221. Kohler C. Characterization of Calmodulin Binding to Cyclic Nucleotide-Gated Ion Channels from Arabidopsis thaliana / C.Kohler, G. Neuhaus // FEBS Lett. 2000. -V. 471.-P. 133-136.

222. Kohler C. Developmentally Regulated Expression of a Cyclic Nucleotide-Gated Ion Channel from Arabidopsis Indicates Its Involvement in Programmed Cell Death / C.Kohler, T. Merkle, D. Roby, G. Neuhaus // Planta. 2001. - V. 213. - P. 327-332.

223. Kovtun Y. From the cover: Functional analysis of oxidative stress-activated mitogen-activated proteinkinase cascade in Plants / Y. Kovtun, W.L. Chiu, G. Tena, J. Sheen // Proc. Nat. Acad. Sei. USA. 2000. - V. 97. - P. 2940-2945.

224. Krol E. Ways of Ion Channel Gating in Plant Cells / E. Krol, K.Trebacz // Ann. Bot. 2000. - V. 86. - P. 449-469.

225. Kurosaki F. Role of inward K+ channel located at carrot plasma membrane in signal cross-talking of cAMP with Ca cascade / F. Kurosaki // FEBS Letts. 1997. -V. 408. -P.l 15-119.

226. Kwok E. Stromules and the dynamic nature of plastid morphology / E. Kwok, M.R. Hanson // J. Microsc. 2004 . - V. 214. - P. 124-137.

227. Kwok E. Plastids and stromules interact with the nucleus and cell Membrane in vascular Plants / E. Kwok, M.R. Hanson // Plant Cell Rep. 2004. - V. 23. - P. 188-195.

228. Lai Z. Roles of Arabidopsis WRKY3 and WRKY4 transcription factors in Plant responses to pathogen / Z.Lai, K.M. Vinod, Z. Zheng, B.Fan, Z. // BMC Plant Biol. -2008.-N. 8. P.68.

229. Lee Y.W. Arabidopsis thaliana extra-large GTP-binding protein (AtXLGl): a New class of G-protein / Y.W. Lee, S.M. Assman // Plant Mol. Biol. 1999. - V. 40, N.l.-P. 55-64.

230. Leckie C.P. Abscisic Acid-Induced Stomatal Closure Mediated by Cyclic ADP-Ribose / C.P. Leckie, M.R. McAinsh, G.J. Allen, D. Sanders, A.M. Hetherington // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. - V. 95. - P. 15 837-15 842.

231. Lecourieux D. Analysis and effects of cytosolic free calcium icreases inresponse to elicitors in nicotiana plumbaginifolia cells / D.Lecourieux, C. Mazars, N. Pauly, RRanjeva, A. Pugin // Plant Cell. 2002. - V. 14, N. 10. - P. 2627-2641.

232. Leshem Y.Y. Membrane phospholipids catabolism and Ca activity in Control of senescence / Y.Y. Leshem // Physiol. Plant. 1987. - V. 69, N.3. - P.551-559.

233. Lew R.R. Osmotic effects on the electrical properties of Arabidopsis root hair vacuoles in situ / R.R. Lew // Plant Physiol. 2004. - V.134. - P.352-360.

234. Li W., Luan S., Schreiber S.L., Assman S.M. Cyclic AMP stimulates K+ channel activity in mesophyll cells of Vicia faba L. / W.Li, S.Luan, S.L.Schreiber, S.M.Assman //Plant Physiol. 1994. V.106. P. 957-961.

235. Li M. The influence of drought stress on the activity of cell protection enzymes and lipid peroxidation in plant lets of glycyrrhiza uralensis / M. Li, G.-X. Wang // Acta Ecol. Sin. 2002. - V.22, N.4. - P. 503-507.

236. Liavonchanka A. Lipoxygenases: occurrence, functions and catalysis / A. Liavonchanka, I. J. Feussner // Plant Physiol. 2006. - V.163. - P. 348-357.

237. Lin W. Membrane bound ATPase of intact vacuoles and tonoplasts isolated from mature Plant tissue / W. Lin, G.J. Wagner, H.W. Siegelman et al. // BBA. -1977. - V.465, N.l. -P.110-117.

238. Lin Y. Dynamic localization of Rop GTPases to the tonoplast during vacuole development / Y. Lin, D.F. Seals, S.K. Randall, Z. Yang // Plant physiol. 2001. -V. 125.-P. 241-251.

239. Linder J.U. Class III adenylyl cyclases: molecular mechanisms of catalysis and regulation / J.U.Linder // Cell Mol. Life Sci. 2006. - V.63. - P. 1736-1751.

240. Liu H-T. Calmodulinis involved in heat shock Signal transduction in wheat / H-T. Liu, B. Li, Z-L.Shang, X-Z Li, R-L. Mu, D-Y. Sun, R-G. Zhou // Plant Physiol. -2003.-V. 132.-P. 1186-1195.

241. Liu H. X. Identification of Functional exonic splicing enhancer motifs recognized by individual SR protein / H. X. Liu, M. Zhang, A. R. Krainer // Genes. -1998. V. 12.-P. 1998-2012.

242. Lusini P. Adenilate cyclase in roots of Ricinus comuis: stimulation by GTF and Mn2+/ P. Lusini, L. Trabalzini, G.G. Franchi, L. Bovalini , P. Martelli // Phytochem. -1990.-V. 30.-P. 109-111.

243. Lomovatskaya L.A. A modified ensarne immunoassay method for determination of cAMP in Plant cells / L.A.Lomovatskaya, A.S. Romanenko, N.V. Filinova, O.V.Rykun // Trends inimmunolabelled and related tecniques. 2012. - P. 161-168.

244. Loqué D. Tonoplast intrinsic proteins AtTIP2; 1 and AtTIP2; 3 facilitate NH3 transport into the vacuole / D. Loqué, U. Ludewig, L. Yuan et al. // Plant physiol. -2005. V.137, N.2. - P.671- 680.

245. Mahady G. B. Involvement of proteinkinase and G-proteins in the Signal transduction of benzophenanthridine alkaloid biosynthesis // G.B. Mahady, C.Liu, , C. W. W. Beecher // Phytochemistry. -1998. -V.48. P. 93-102.

246. Malmstrom S. A Calmodulin-Stimulated Ca -ATPase from Plant Vacuolar Membranes with Putative Regulatory Domainat Its interminus / S. Malmstrom, P.Askerlund, M.G. Palmgren // FEBS Lett. 1997. - V. 400. - P. 324-328.

247. Martinec J. Subcellular Localization of a High Affinity Binding Site for D-Myo-Inositol 1,4,5-Trisphosphate from Chenopodium rubrum / J.Martinec, T.Feltl, C.H.Scanlon, P.J.Lumsden, I.Machackova // Plant Physiol. 2000. - V. 124. - P. 475-483.

248. Marty F. Plant vacuoles / F.Marty, D.Branton, R.A. Leigh // Biochemistry of Plants. 1980. - V. 1. - P. 625-658.

249. Mason M.G. Isolation of a Novel G-protein y-subunit from Arabidopsis thaliana and its interaction with G P / M.G.Mason, J.R. Botella // Biochim. Biophys. Acta. -2001.-V. 1520.-P. 147-153.

250. Mathieu Y. Cytoplasmic acidification as an early phophorylation-dependent response of tobacco cells to elicitors / Y.Mathieu, D.Lapous, S.Thomin, C Lauriere, J.Guern //Planta. 1996.-V. 1999, N.3.-P.416^124.

251. Matile P. Interactions between Cytoplasm and Vacuole / P.Matile, A.Wiemken // Encyclopedia of PlantPhysiologi. New Series. 1976. - V.3. - P-255-287.

252. Matile P. Biochemistry and Function of Vacuoles / P. Matile // Plant Physiology. -1978.-V. 29.-P. 193-213.

253. Meindl T.The bacterial elicitors flagellin activates its receptor in tomato cells according to the address-message concept / T.Meindl, T.Boller, G.Felix // Plant Cell. 2000. - V.12. - P.1783-1794.

254. Mettler I.J. Isolation and partial characterization of vacuoles from tobacco protoplasts / I.J.Mettler , R.T. Leonard // Plant Physiol. 1979. - V.64, N.6. -P.l 114-1120.

255. Miedema H.Calcium Uptake by Plant Cells Channels and Pumps Acting in Concert / H.Miedema, J.H.F.Bothwell, C.Brownlee, J.Davies // Trends Plant Sci. -2001.-V. 6.-P. 514-519.

256. Mika A. Possible functions of extracellular peroxidases in stress-induced Generation and detoxification of active oxygen species / A.Mika, F. Minibayeva, R. Beckett, S. Liithje // Phytochemistry Reviews. 2004. - V. 3. - P. 173-193.

257. Mikami K. A Gene encoding phosphatidylinositol 4-phosphate 5-kinase is induced by water stress and abscisic acid in Arabidopsis thaliana / K.Mikami, T.Katagiri, S.Luchi // Plant J. -1998. V.15. - P. 563-568.

258. Mongrand S. Membrane rafts in plant cells / S. Mongrand, T. Stanislas,E.M.F. Bayer, J. Lherminier, F. Simon-Plas // Trends in Plant Science. 2010. - V.15, N. 12.-P. 656-663.

259. Moreau F. Electron transport in the Membrane of lutoids from the Latex of Heveabrasiliensis / F. Moreau, J. Jacob, Dupont et al. // Biochem. Biophis. Acta. -1975.-V.396,N1.-P.l 16-124.

260. Morris A.J. Physiological regulation of G-protein-linked Signaling / A.J. Morris, C.C. Malbon//Physiol. Rev. 1999. - V.79. -P.1373-1430.

261. Moutinho A. cAMP acts as a second messenger inpollen tube growth and reorientation / A.Moutinho, P.J. Hussey, A.J. Trewavas, R. Malho // PNAS. 2001. - V.98, N. 18. -P.10481-10486.

262. Mueller M. J. Signaling in the elicitation process is mediated through the octadenoid pathway leading to jasmonic acid / M. J.Mueller, G.Pearce, M.Orozco-Gardenas, C.A. Ryan // PNAS. 1993. - V.90, N.16. - P.7490-7494.

263. Munnik T. Distinct osmo-sensing proteinkinase pathways are involved in signaling moderate and severe hyper-osmotic stress / T.Munnik, W.Ligterink, I.Meskiene, O.Calderini, J.Beyerly, A.Musgrave, H.Hirt // Plant J. 1999. - V.20. -P. 381-388.

264. Muntz K. Proteindynamics and proteolysis in Plant vacuoles / K. MiiNtz // J Exp. Bot. 2007. - V.58, N10. - P.2391-2407.

265. Murata N. Membrane Fluidity and Temperature Perception / N.Murata, D.A. Los // Plant Physiol. 1997. - V. 115. - P. 875-879.

266. Natesan S.K.A. Stromules: a characteristic cell-specific feature of plastid morphology / S.K.A. Natesan, J.A. SulliVan, J.C. Gray // J. Exp.Bot. -2005. -V.56. -P.787-797.

267. Neill S.J. Nitric oxide Signalling in Plants / S.J.Neill, R. Desikan, J. T. Hancock // New Phytologist. 2003. -T.159, - V 1.- P. 11-35.

268. Ng C.K.-Y. Calcium-Based Signalling Systems in Guard Cells / C.K.-Y. Ng, M.R. McAinsh, J.E. Gray, L. Hunt, C.P. Leckie, L. Mills, A.M. Hetherington // New Phytol. -2001. V. 151.-P. 109-120.

269. Ntefidou M. Photoactivated adenylyl cyclase Controls phototaxis in the flagellate Euglena gracillis / M. Ntefidou, M. Iseki, M. Watanabe, M. Lebert, D- P.Hader // Plant Physiol. 2003. - V. 20. - P. 1517-152.

270. Oehl F. Community structure of arbuscular mycorrhizal fungi at Different soil depths inextensively and intensively managed agroecosystems / F.Oehl, E Sieverding, K. Ineichen, E.-A. Ris, T. Boiler, A. Wiemken // New Phytol. 2005. -V.165. - P.273-283.

271. Onda, T. Type-specific regulation of adenylyl cyclase: selective pharmacological stimulation and inhibition of adenylyl cyclase isoforms / T. Onda, Y. Hashimoto, M Nagai // J. Biol. Chem. 2001. - V. 276. - P. 47785-47775.

272. Pandey S. Roles of Ion channels and transporters inguard cell Signal transduction /S. Pandey, W. Zhang , S.M. Assmann // FEBS Letter. 2007. - V. 581, Is. 12. - P. 2337-2347.

273. Pastori G.M. Common components, networks, and pathways of cross-torerance to stress. The central role of «redox» and abscisic acid-mediated controls / G.M. Pastori, C.H.Foyer // Plant Physiol. 2002. - V.129. - P.460-468.

274. Pauly N. Cell Signalling: Control of Free Calcium in Plant Cell Nuclei / N.Pauly, M.R.Knight, P.Thuleau, A.H.Van der Luit, M.Moreau, A.J.Trewavas, R.Ranjeva, C.Mazars // Nature. 2000. -V. 405. - P. 754-755.

275. Pei Z.-M. Calcium channels activated by hydrogen peroxide mediate abscisic acid Signaling inguard cells / Z.-M. Pei, Y. Murata, G. Benning, S. Thomine // Nature. -2000.-V.406.-P.731-734.

276. Peiter E. The plant vacuole: Emitter and receiver of calcium signals / E.Peiter // Cell Calcium. 2011. - V.50. - P. 120-128.

277. Pittman J.K. Don't Shoot the (Second) Messenger: EndoMembrane Transporters and Binding Proteins Modulate Cytosolic Ca Levels / J.K.Pittman, K.D Hirshi. // Curr. Opin.Plant Biol. 2003. - V. 6. - P. 257-262.

278. Pogson B.J. Plastid signaling to the nucleus and beyond / B.J. Pogson, N.S.Woo,

279. B.Forster, I.D.Small // Trends in Plant Science. 2008. - V.3. - P.602-609.

280. Pottosini.I. Slowly Activating Vacuolar Channels Cannot Mediate Ca Induced Ca2+ Release / I.I. Pottosin, L.I. Tikhonova, R. Hedrich, G. Schonk Necht // Plant J. -1997.-V. 12.-P. 1387-1398.

281. Price A.H. Oxidative signals in tobacco increase cytosolic calcium / A.H. Price, A. Taylor, S.J.Ripley, A.Griffiths, A.J.Trewavas, M.R.Knight // The Plant Cell. 1994. -V.6.-P. 1301-1310.

282. Prell H.H. Plant-fungal pathogen interaction / H.H. Prell, P.R.Day. -Berlin: Springer-Verlag, 2001. 215p.

283. Quan, LJ. Hydrogen peroxide in Plants: a versatile molecule of the reactive oxygen species Network / LJ. Quan, B. Zhang, WW. Shi et al. // J. Integr. Plant Biol. 2008. -V.50, N1. - P.2-18.

284. QinW. Molecular HeteroGeneity of Phospholipase D (PLD). Cloning of PLDy and regulation of Plant PLDy, -(3, and -a by polyphosphoinositides and calcium / W.Qin, K.Pappan, X Wang. // J. Biol. Chem. 1997. - V.272. - P.28267 - 28273.

285. Rea P.A. Tonoplast energisation: two H^-pumps? One Membrane / P.A. Rea, D. Sanders//Physiol. Plantarum. 1987. - V.71,N.l. - P. 131-141.

286. Reisen D. New insights into the tonoplast architecture of plant vacuoles and vacuolar dynamics during osmotic stress / D.Reisen, F.Marty, N.Leborgne-Castel // BMC Plant Biology. 2005. - V. 5. - P.5-13.

287. Roos W. Ion Mapping in Plant Cells Methods and Applications in Signal

288. Transduction Research / W.Roos // Planta. -2000. V. 210. - P. 347-370.2+

289. Rudd J.J. Unravelling Response-Specificity in Ca Signalling Pathways in Plant Cells / J.J Rudd, V.E. Franklin-Tong //New Phytol. 2001. -V. 151. -P. 7-33.

290. Reddy A.S.N. Coping with stresses: roles of calcium- and calcium / calmodulin-regulated Gene expression /A.S.N.Reddy, G.S.Ali, H. Celesnic, I.Day // Plant Cell. -2011. -V.23. P.2010-2032.

291. Rhodes J. D. Evidence for physically distinct systemic Signaling pathways in the wounded tomato Plant / J. D. Rhodes, J. F.Thain, D. C. WilDon // ANN. Bot. -1996.-V. 84. P. 109-116.

292. Rich T.C. Cyclic Nucleotide-gated channels colocalize with adenylyl cyclase inreg Ions of restricted cAMP diffusion / T.C. Rich, K.A. Fagan, H. Nakata, J. Schaack, D.M.T. Cooper, J.W.Karpen //J. Gen. Physiol. -2000. -V.l 16. P. 147-161.

293. Richards H. Cycic nucleotidate content of tobacco BY-2 cells // H.Richards, S. Das, C.Smith, L.Pereira, A.Geisbrecht, N.Devitt, D.Games, J.Van Geyschem, A.G.Brenton, R. P. Newton // Phytochemistry. 2002. - V. 61. - P. 531-537.

294. Rodrigues P.L. Proteinphosphase 2C (PP2C) function in higher Plants / P.L. Rodrigues // Plant Mol. Biol. 1998. - V.38, N6. - P.919-927.

295. Roelofs J. Dedusing the origin of soluble adenylyl cyclase, a gene lost in multiple lineages / Roelofs J., Van Haastert J.M. // Mol. Biol. Evol. 2002. - V. 19. - P. 2239-2246.

296. Ruffer M. Evidence against specific Binding of salicylic acid to Plant catalase / M. Ruffer, B. Steipe, M.N. Zenk // FEBS Lett. -1995. V. 377. - P.175-180.

297. Ruy S.V. Increase in free linolenic and linoleic acids associated with phospholipase D-mediated hydrolysis of phospholipids in wounded castor bean leaves / S.V.Ruy, X.Wang //FEBS Lett. 1998. - V.1393, N.l. - P. 193-202.

298. Salyaev R.K. Plant vacuole Membrane: stracture and properties / R.K. Salyaev // Biochem. and function of vacuolar adenosine- triphosphatase in fungiand Plants / Springer-Verlag. N. Y. 1985. - P. 3-13.

299. Sanders D. Communication with Calcium / D.Sanders, C.Brownlee, J.F.Harper // Plant Cell. 1999.-V. 11.-P. 691-706.

300. Sanders D. Calcium at the crossroads of Signaling / D.Sanders, J.Pelloux, C.Brownlee, J.Harper // Plant Cell. -2002. V. 5. - P. 401-417.

301. Sanders D. Calcium at the Crossroads of Signalling / D.Sanders, J.Pelloux, C.Brownlee, J.F. Harper // Plant Cell. 2002. - V. 14. - P. 401-417.

302. Saunders M.I. Calcium Ionophore A23187 stimulates cytokinin-like mitosis in Funaria / M.I. Saunders, P. K. Hepler // Science. -1982. -V. 217. P. 943 - 945.

303. Sang Y. Phospholipase D and phosphatidic acid-mediated Generation of superoxide in Arabidopsis / Y.Sang, D.Cui, X.Wang // Plant. Physiol. 2001. -V.126, N.4. - P.1449-1458.

304. Saroussi S. The little we know on the structure and machinery of V-ATPase / S. Saroussi, N. Nelson // J Exp. Biol. 2009. - V.212, N. 11. - P. 1604-1610.

305. Scandalios J.G. The rise of ROS / J.G. Scandalios // Trends Biochem. Sci. 2002. -V. 27.-P. 483-486.

306. Scandalios J.G. Oxidative stress: molecular perception and transduction of Signals triggering anti-oxidant Gene defenses / J.G. Scandalios // Braz. J. Med. and Biol. Res. 2005. - V. 38. - P. 995-1014.

307. Schmidt UG. Novel tonoplast transporters identified using a proteomic approach with vacuoles isolated from cauliflower buds / UG. Schmidt, A. Endler, S. Schelbert et al. // Plant Physiol. 2007. - V.145, N.l. -P.216-229.

308. Schroeder, J.I. Guard cell Signal transduction / J.I.Schroeder, G.J.Allen, , V. Hugouvieux, J.M. Kwak, , D.Waner // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Мої. Biol. -2001.-V. 52.-P. 627-658.

309. Schultz-Lessdorf B. Protons and Calcium Modulate SV-Type Channels in the Vacuolar-Lysosomal Compartment-Channel Interaction with Calmodulin Inhibitors / В .Schultz-Lessdorf, R.Hedrich // Planta. 1995. - V. 197. - P. 655-671.

310. Schuurink R.C. Characterization of a Calmodulin-Binding Transporter from the Plasma Membrane of Barley Aleurone / R.C. Schuurink, S.F.Shatzer, A.Fath, R.L. Jones // Proc. Natl.Acad. Sci. USA. -1998. V. 95. - P. 1944-1949.

311. Seger R. The MAPK Signaling cascade / R.Seger, E.G. Krebs // FASEB J. -1995. -V. 9.-P. 726-735.

312. Sessa G. Protein kinases in the plant defense response / G. Sessa, G.B. Martin // Plant Pathology. 2000. - V. 32. - P. 379-404.

313. Sharaf M.A. Changes in cyclic nucleotide levels correlated with growth, division and morphology in Clamidomonas chemoctan culture / M.A. Sharaf, D.W. Rooney // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1982. -V.104, N.4. -P.1461.

314. Sheng S-H.Calcium Signaling through proteinkinases. The Arabidopsis calcium-dependent proteinkinase Gene family / S-H.Sheng, M.R.Willmann, H-C.Chen, J.Sheen // Plant Physiol. 2002. - V. 129. - P. 469^185.

315. Shuichi Y. Cross-talk between Signaling pathways in Plants: Controlling degradation of transcription factors is a key for cross-talk / Y. Shuichi // Protein, Nucleic Acid and Enzyme. 2004. - V. 49, N.l3. - P. 2131-2138.

316. Sim W-S., Kim H-R. Effect of GA3 on the cyclic AMP biosynthesis in maize seedling / W-S.Sim, H-R. Kim // Plant Cell Physiol. 1987. - V. 28. - P. 415-420.

317. Simonds W.F. G- proteinregulation of adenylatecyclase / W.F. Simonds // Trends Plant Science. -1999. -V.20. P. 66-73.

318. Sohn E.J. The shoot meristem identity Gene TFL1 is involved in flower development and trafficking to the protein storage vacuole / EJ. Sohn, M. Rojas-Pierce, S. Pan et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. - V.104, N. 47. -P.18801-18806.

319. Spiteri A. Artefactual origins of cyclic AMP in higher Plant tissues /A. Spiteri, O.M. Viratelle, P. Raymond, M. Rancillac, J. Labouesse, A. Prsdet // Plant. Physiol. -1989.-V. 91.-P. 624-628.

320. Stael S. Plant organellar calcium signaling: an emerging field / S.Stael, B. Wurzinger, A. Mair, N. Mehlmer, U.C.Vothknecht, M. Teige // J. Exp. Bot. — 2011. — V.26. -P.1-18.

321. Sunahara R. Isoforms of mammalian adenylyl cyclase: multiplicities of Signaling / R.Sunahara, R.Taussig // Mol. Intervent. 2002. - V.2. - P. 168-184.

322. Sutherland E.W. Adenyl cyclase: distribution, preparation and properties / E.W. Sutherland, T.W. Rail, T. Mennon // J. Biol. Chem. 1962. - V.247, N.2. - P. 12201227.

323. Swindell W.R. The association among gene expression responses to nine abiotic stress treatments in Arabidopsis thaliana / W.R. Swindell // Genetics. 2006. - V.8. -P. 128-132.

324. Sze H. Diversity and Regulation of Plant Ca Pumps: Insights from Expression in Yeast / H. Sze, F. Liang, I. Hwang, A.C. Curran, J.F. Harper // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2000. - V. 51. - P. 433-462.

325. Takahashi H. Differential localization of tonoplast intrinsic proteins on the Membrane of proteinbody type II and aleurone graininrice seeds / H. Takahashi, M. Rai, T. Kitagawa et al. // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2004. - V.68, N.8. -P.1728-1736.

326. Tena G. Cytosolic acidification but not auxinat physiological concentration is an activator of MAP kinases in tobacco cells / G.Tena, J.P. Renaudin // Plant J. 1998. -V.16, N.2. - P.173-182.

327. Tenhaken R. Salicylic acid is needed in hypersensitive cell death insoybean, but does not act as a catalase inhibitor / R. Tenhaken, C. Rubel // Plant Physiol. 1997. -V.115.-P. 291-298.

328. Tesmer, J.J. Two-metal-Ion catalysis in adenylyl cyclase / J. J. Tesmer, R.K. Sunahara, R.A. JohNson, G. Gosselin, A.G. Gilman, S.R. Sprang // Science. 1999. -V. 285.-P. 756-760.

329. Tester M. Plant Ion channels: whole-cell and single-channel studies / M. Tester // Now Phytol. 1990. - V.l 14, N.3. - P.305-340.

330. Thom M. Vacuoles from sugarcane suspension cultures / M. Thorn, A. Maretzki, E. Komor // Plant. Physiol. 1982. - V.69, N.6. - P. 1315-1319.

331. Thomson W.W. Development of Non-green plastids // W.W. Thomson, J.M. Whatley // Annu. Rew. Plant Physiol. 1980. - V.31. - P. 375-394.

332. Ting Zhang H. Expression, molecular characterization and detection of lipoxygenase activity of tomloxD from tomato / H. TingZhang, Q. Xiaoxiao, H. Zongli, C.Guoping, C.Zaigang // African Journal of Biotech. 2011. - V. 10, N. 4. -P. 490^198.

333. Trewavas A.J. Ca2+ Signalling in Plant Cells / A.J. Trewavas, R. Malho // Curr. Opin. Plant.Biol. 1998. - V.l. - P.428^133.

334. Tu J.C. Biochemical and histochemical investigation of diurnal variation in cAMP concentration and adenilate cyclase activity in white dutch clover / J.C.Tu // Protoplasma. -1979. V. 99. - P. 139-146.

335. Urbanus S. L. Plasticity of plasma membrane compattmentalization during plant immune responses / S. L. Urbanus, T. Ott // Frontiers in plant science. 2012. - V.3, N. 181.-P. 1-7.

336. Ushio-Fukai, M. Redox Signaling in angio Genesis: role of NADPH oxidase / M. Ushio-Fukai // Cardiovasc. Res. 2006. - V.71, N.2. - P.226-235.

337. Valster A.H. Plant GTP-ases: the Phos in bloom / A.H. Valster, P.K. Hepler, J. Chernoff// Trends Cell Biol. 2000. - V.10, N. 4. - P. 141-146.

338. Very A.-A. Hyperpolarization Activated Calcium Channels at the Tip of Arabidopsis Root Hairs / A.-A. Very, J.M. Davies // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -2000. -V. 97. - P. 9801-9806.

339. Verhoek B. Lipids and enzymatic activities in vacuolar Membranes isolated via protoplasts from oat primary leaves / B. Verhoek, R. Haas, K. Wrage et al. // Z. Naturforsch. 1983. - V.38. N.9 -10. - P.770-777.

340. Volotovski I.D. Second messengers mediate increases in cytosolic calcium in tobacco protoplasts / I.D. Volotovski, S.G. Sokolovsky, O.V. Molchan, M.R. Knight // Plant Physiol. 1998. - V. 117. - P.1023-1030.

341. Wagner G.J. Enzymes and proteincharacter of tonoplast from Hippeatrum vacuoles / G.J. Wagner // Plant physiol. 1981. - V. 81, N. 2. - P.497-499.

342. Walker J. C. Functional genomics of protein kinases in plants / J. C. Walker // Life Sciences Briefings in Functional Genomic and Proteomics. 2005. - V. 3, Is.4. - P. 362-371.

343. Wang S. Characterization of the Arabidopsis Heterotrimeric G Protein / S. Wang, S.M. Assmann, N.V. Fedoroff // J. Biol. Chem. 2008. - V. 283, Is. 20. - P. 1391313922.

344. Wang X. The role of phospholipase D in Signalling cascade / X. Wang // Plant Physiol. 1999.-V. 120, N.2. -P.645-651.

345. Ward J.M. Calcium Activated K+-Channels and Calcium-Induced Calcium Release by SlowVacuolar Ion Channels in Guard Cell Vacuoles Implicated in the Control of Stomatal Closure / J.M. Ward, J.I. Schroeder // Plant Cell. -1994. V. 6. -P. 669-683.

346. Ward J.M. Roles of Ion Channels in Initiation of Signal Transduction in Higher Plants / J.M.Ward, Z.M. Pei, J.I. Schroeder // Plant Cell. 1995. - V. 7. - P. 833844.

347. Ward J.M. Plant Ion channels: Gene families, physiology, and Functional genomics / J.M. Ward, P. Maser, J.I. Schroeder // Annu. Rev. Physiol. 2009. -V.71. -P.59-82.

348. Waters M.T. Stromule formation is dependent upon plastid size, plastid Differention status and the density of plastids within the cell / M.T. Waters, R.G. Fray, K.A. Pyke // Plant J. 2004. - V. 39. - P. 655-667.

349. White P.J. Calcium channels in higher Plant / P.J. White // Biochim. Biophys. Acta. 2000. - V. 1465, N. 1/2. - P. 171-189.

350. White P.J. Genes for Calcium Permeable Channels in the Plasma Membrane of Plant Root Cells / P.J. White, H.C.Bowen, V. Demidchik, C. Nichols, J.M. Davies // Biochim. Biophys. Acta. - 2002. - V. 1564. - P. 299-309.

351. White P. J. Calcium in Plants / P. J. White, M. R. Broadley // Annu. Bot. 2003. -V. 92.-P. 487-511.

352. Wingender E. TRANSFAC: an integrated system for Gene expression regulation / E. Wingender, X. Chen, R. Hehl, H. Karas, I. Liedich, V. Matis, T. Meinhardt, M. Prus, I. Reuter, F.Schacherer //Nucl. Acid. Res. 2000. - V.28, N.l. - P.316-319.

353. Witters E. Product identification and adenylyl cyclase activity in chloroplasts of Nicotiana tabacum / E. Witters, L. Quanten, J. Bloemen, R. Valcke, H. Van Onckelen // Rapid Commun. Mass Spectrometry. 2004. - V. 18. - P. 499-504.

354. Witters E. Cytoenzymological analysis of adenylyl cyclase activity and 3':5'-cAMP immunolocalization in chloroplasts of Nicotiana tabacum / E. Witters, R. Valcke, H. Van Onckelen // New Phytol. 2005. - V.168. - P.709-712.

355. Wuttke M. Bicarbonat regulated soluble adenylyl cyclase / M. S. Wuttke, J. Buck, L.R. Levin // JOP. J. Pancreas. - 2001. - V. 2. - P. 154-158.

356. Xiong L. Cell Signaling during cold, drought, and salt stress / L. Xiong, K.S. Schumaker, J. -K. Zhu // Plant Cell. 2002. - V. 14. - P. 165-183.

357. Zaccolo M. cAMP and Ca interplay: a matter of occillation patterns / M. Zaccolo, T.Pozzan // Trends in Neurosciences. 2003. - V.26, N.2. - P.53-55.

358. Zhang S. Salicylic acid activates a 48 kD MAP kinase in tobacco / S. Zhang, D.F. Klessig // Plant Cell. - 1997. - V.9, N.5. - P.809-824.

359. Zhang S. The tobacco wounding-activated mitogen activated proteinkinase is encoded by SIPK / S. Zhang, D.F. Klessing // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1998. -V.95. - P.7225-7230.

360. Zhao X. MAP kinase pathways and fungal pathogenesis / X. Zhao, R.Mehrabi, J. -R. Xu // Eukaryotic Cell. -2007. -V. 10. P. 1701-1714.

361. Zimmermann S. An anion current at the plasma Membrane of tobacco protoplasts shows ATP-dependent voltage regulation and is modulated by auxin / S. Zimmermann, S. Thomine, J. Guern, H. Barbier-Brygoo // Plant J. 1994. -V.6. -P. 707-716.1. OA

362. Zimmermann S. Receptor mediated activation of a Plant Ca permeable on channel involved in pathogen defense / S. Zimmermann, T. Nürnberger, J. -M. Frachisse, W. Wirz, J. Guern, R. Hedrich // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. - 1997. -V. 94.-P. 2751-2755.

363. Zimmermann S. Characterization of SKT1, an inward rectifying K+ channel from potato, by heterologous expression in insect cells / S. Zimmermann, I. Talke, T.Enhardt, G. Nast, B. Müller-Röber // Plant Physiol. 1998. - V.l 16. - P. 879-890.

364. Zimmermann S. Ion channels in Plant Signaling / S. Zimmermann, T. Ehrhardt, G. Plesch, B. Müller Röber // Cel. Mol. Life Sei. - 1999. - V. 55. - P. 183-203.

365. Zippin J.H. CO2/HCO3- responsive soluble adenylyl cyclaseas a putative metabolic sensor / J.H. Zippin, l.R. Levin, J. Buck // Trends Endocrinol. Metab. -2001.-V. 12.-P. 366-370.

366. Zippin J.H. Compartmentalization of bicarbonate-sensitive adenylyl cyclase indistinct Signaling microDomains / J.H. Zippin, Y. Chen, P. Nahirney, M. Kamenetsky, M.S. Wuttke, D.A. Fischman, L.R. Levinm, J. Buck // The Faseb. J. -2003.-V. 17.-P. 82-84.

367. Zouhar J. Retrograde transport from the prevacuolar compartment to the trans -Golgi Network / J. Zouhar, E. Rojo, D.C.Bassham // Plant Science. 2010. - V.l78. - P.90-93.